INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Des voyants prédéterminés 591 à 595 sont prévus pour indiquer notamment à l'usager un code incorrect, une erreur de manipulation, etc... Selon une autre variante, l'ensemble des voyants 591 à 595 peut être remplacé par un afficheur de préférence à cristal liquides, visualisant différentes instructions Si usager desire recevoir un reçu du montant encaissé MI, usager appuie sur le bouton-interrupteur 55T avant la phase de numérotation des caractères C1 à C3. L'interface 31 commande une imprimante 572 logée derrière la sébile 571, en réponse au numéro de compte C1 à C5 détermine par unité 30.L'imprimante est protégée par un "portillon" coulissant ou pivotant à l'intérieur de la sébile 571 pour éviter tout dévidage de ruban de papier ou blocage de sortie de ticket En meme temps que le compte C1 à C5 est affiché par l'afficheur 57D la sébile 571 délivre un ticket indiquant la date et l'heure de l'opération de paiement race a un horodateur contenu dans la base de temps 32, le numéro de compte attribué C1 à C5 et le montant enregistré MIo P3) Choix de appareil téléphonique La vision directe des états de fonctionnement des appareils téléphoniques li à 1M grace aux trois couleurs différentes possibles des voyants 511 à 51M sur le plan 50 permet à usager de ofs l'un des appareils téléphoniques inoccupés, en bon fonctionnement Lusager se rend facilement près de cet appareil en lisant lVadresse correspondante sur le plan 50 Les états des appareils li à i sont analysés par unité centrale 30, mémorisés dans la mémoire PA 332 et lus dans la mémoire 332 en vue de leurs signalements par les voyants 511 à 51M.
Un ou plusieurs appareils téléphoniques peuvent etre prévus à proximité du dispositif de gestion 3, par exemple en façade du bureau de poste, afin de les réserver en priorité pour des handicapes et pour établir des communications urgentes correspondant aux numéros appel 17 et 18 En utilisant un appareil à pro=imite du bureau de poste, usager obtient une communication téléphonique après une durée sensiblement égale à celle exigée par des appareils téléphoniques publics connus Cependant, pour d'autres communications ultérieures, aucune manipulation de monnaie nQest nécessaire et usager a beaucoup plus de chance de trouver un appareil en état de fonctionnement que selon la technique antérieure, puisque les appareils téléphoniques selon l'invention ne procèdent à aucun encaissement de pièces En outre, le dispositif sélecteur 35 est plus efficace que ceux utilisés dans les appareils téléphoniques connus, car il est alimenté en permanence et très bien protégé au niveau du bureau de poste. A-cet égard, le dispositif de gestion 3 est doté d'une alimentation connue 39 reliee au secteur et secourue par batterie.
Des obstructions des fentes 521 à 52p ou des sébiles 56 et 571 seront peu frequentes et les preposés au bureau de poste pourront y remédier rapidement, ce qui permettra une utilisation pratiquement continue du dispositif de gestion 3.
Selon une autre variante, le dispositif sélecteur 35 est associé à un dispositif monnayeur connu pour rendre, si nécessaire, de la monnaie après composition du montant MI au clavier 54.
Dans une variante (non montrée) de la réalisation représentée sur les figures 1 et 2 on prévoit une gorge analogue à celle de repère 30 sur la figure 4, les autres parties de la réalisation décrite en relation avec la figure 1 et 2 restant cependant inchangées. On établit ainsi une rotation angulairement limitée autour de l'axe Y Y'.
Toutefois cette rotation n'est possible que lorsque les saillies 14 et 15 pénètrent dans ladite gorge, c'est-à-dire lorsque les axes 16 et 16' sont alignés.
Dans une variante de la réalisation des figures 3 et 4 on prévoit une seconde bille (non représentée) logée dans la gorge 30 et dans une seconde gorge de la boule 12 symétrique de la gorge 34 par rapport au plan X Y. Si cette solution est adoptée la rotation autour de l'axe Y Y' est limitée à un angle légèrement inférieur à 1800.
On se réfère maintenant aux figures 5 et 6.
Dans cet exemple la boule 12 est identique à celle de l'exemple des figures 3 et 4, c'est-à-dire qu'elle comporte une gorge 34. On prévoit également une bille 33. Cette réalisation se distingue cependant de celle des figures 3 et 4 par le fait qu'à la place de la gorge 30 de l'élément femelle 11 on prévoit une simple cavité hémisphérique 35 dans l'empreinte 19 de rayon légèrement supérieur à celui de la bille 33. De cette manière la rotation autour de l'axe Y Y' n'est plus possible, le fonctionnement restant par ailleurs le même que celui de l'exemple des figures 3 et 4.
En variante le logement 35 est sur la boule 12 et la gorge 34 dans l'empreinte 19.
Dans toutes les réalisations où l'on prévoit une bille les dimensions de cette dernière et des gorges seront choisies pour assurer un jeu suffisant permettant la rotation de la bille sur ellemême.
Dans une réalisation (non représentée) l'élément femelle il présente un trou central d'axe 16' et, de même, l'élément mâle 10 présente également un trou central d'axe 16. Ces trous permettent le passage d'un conducteur électrique reliant une pièce fixée à l'élément Il à une autre pièce fixée à l'élément 10. La limitation de la rotation autour de l'axe Y Y' diminue les risques de détérioration de ce conducteur électrique car si cette rotation n'était pas limitée une manipulation sans précautions pourrait conduire à torsader le fil et ainsi risquer de le casser.
Un tel conducteur électrique est par exemple un câble de sortie d'une caméra de surveillance fixée à l'élément 11 et connectée à un moniteur de télévision. La limitation du mouvement d'un appareil fixé à l'élément 10 ou à l'élément 11 est également utile dans certains cas pour des raisons de sécurité des usagers.
La présente invention concerne un procédé de nitru ration d'oxydes réfractaires, et en particulier la prépa ration de nitrure d'aluminium, selon un procédé original conduisant à un nitrure d'aluminium particulièrement pur et réactif.
La préparation de céramiques de type nitrure ou oxynitrure ou des verres oxyazotés se fait généralement à partir de réactifs à l'état solide. L'introduction d'azote dans ces phases nécessite l'utilisation d'un nitrure ou d'un oxynitrure.
Dans le cas des céramiques connues sous le nom de "sialons", leur densification s'effectue par addition d'un oxyde MgO, Ln203 ou d'un oxyde analogue. Les sources-d'azote nécessaires à la préparation de ces phases sont soit Si3N4 ou Si2 N20, soit le nitrure d'ajout, soit le nitrure d'aluminium. Le nitrure de silicium est peu réactif et nécessite donc des températures de réaction très élevées. L'utilisation du nitrure d'ajout est souvent délicate (grande hygroscopicité de Mg3N2,Ca3N2etc, difficulté de préparation et hygroscopicité de LnN, Li3N, etc) et même parfois impossible ( le nitrure de sodium par- exemple est inconnu).L'oxynitrure de silicium Si2N2O peut être utilisé dans certains cas (FR-A-2 525 001).Si l'on veut obtenir des phases exemptes de silicium : par exemple les oxynitrures Ln2Al03N ou les mixtes Al203-AlN, il est nécessaire de disposer de nitrure d'aluminium pur et réactif On dispose habituellement de nitrure d'aluminium préparé selon la méthode classique correspondant à la réaction suivante:
Cette réaction est conduite à des températures comprises entre 1600 et 180C. Le produït obtenu n'est pas pur comme le prouvent les observations 'suivantes - Sa couleur est grise. Cette coloration est due à la présence de carbone ou de carbure d'aluminium.
- la mesure de la masse spécifique expérimentale (3,28 g/cm3) donne une valeur supérieure à la valeur calculée (3,26 g/cm3).
- le dosage de l'azote est déficitaire, la mesure du pourcentage d'azote expérimental (31,8 % N) donne une valeur inférieure à la valeur calculée (34,2 % N).
Récemment Huseby (Journal of the American Ceramic Society -66,p217,1983) a mis au point une nouvelle méthode d'obtention de nitrure d'aluminium. Elle nécessite la préparation préliminaire du fluorure double d'aluminium et d'artKtcnium qui est ensuite décomposé en AlF3.
Le fragment d'ADN de la présente invention a les avantages suivants.
Lorsque le fragment d'ADN de la présente invention est inséré dans un vecteur pour former un ADN recombinant et que l'ADN recombinant est transféré à une bactérie, la capacité de production de GDH de la bactérie peut être améliorée. La bactérie qui a une capacité améliorée de production de GDH peut produire l'acide glutamique à un fort rendement. Par conséquent, le fragment d'ADN de la présente invention est utile pour obtenir une bactérie corynéforme produisant l'acide glutamique qui est capable de produire l'acide glutamique à un rendement élevé. A partir de l'acide glutamique, divers acides aminés peuvent être produits dans une cellule d'une bactérie . Si on le souhaite, une telle cellule peut être encore mise en culture pour produire un peptide voulu à partir des acides aminés. Par conséquent, en utilisant le fragment d'ADN de la présente invention, on peut également obtenir des bactéries capables de produire divers acides aminés et peptides.
L'ADN recombinant de la présente invention peut avantageusement être employé pour transformer une bactérie afin d'obtenir la bactérie ci-dessus mentionnée ayant une excellente capacité de production de l'acide aminé ou du peptide souhaité.
Le microorganisme de la présente invention est utile pour la production de divers acides aminés et peptides à un haut rendement, La présente invention sera illustrée en plus de détail en se référant aux exemples suivants, qui ne doivent pas en limiter le cadre.
EXEMPLE 1 Dans cet exemple, on a utilisé Corynebacterium melassecola 801 (FERM BP-558) comme donneur d'ADN pour effectuer le clonage d'un gène codant pour GDH (Corynebacterium melassecola 801 est déposé au Fermentation Research Institute ou FRI sous le numéro d'accession FERM BP-558). Le gène codant pour GDH a été cloné en utilisant le système hte-vecteur oè l'on a utilisé la souche PA340 d'Escherihia coli K12 comme hôte et le plasmide par325 comme vecteur. La souche pBR340 de Escherichia coli K12 a été obtenue du Docteur Barbara J.Bachmann de E. coli Genetic Stock Center3 Department of Human Genetics, Value University, School of Medicine, 333 Ceder Street P.O. Box 3333 New Haven, Connecticut 0651Q E.U.A. La souche PA340 de Escherichia coli K12 est publiquement disponible au E. coli Genetic Stock Center. Le plasmide pBR325 a été acheté au Bethesda Research Laboratories, E.U.A.
Etape 1 (Extraction de l'ADN de Corynebacterium melassecola 801 (FERM BP-558) et sa scission) Le microorganisme Corynebacterium melassecola 801 (FERM BP-558) a été inoculé dans 100 ml de milieu de mélasse (préparé en dissolvant 80 g demélasse de betterave , 035 g de MgS04.7H,O, 8 g d'urée et 1,5 g d'acide phosphorique dans l'eau de façon que le volume total soit de 1 litre et en ajustant le pH à 6,2l avec ensuite stérilisation à 1200C pendant 15 minutes et mise en culture à 320C pendant une nuit tout en agitant, pour ainsi obtenir une culture du microorganisme.
De la culture, les cellules du microorganisme ont été collectées, lavées puis mises en suspension dans 8 m d'un tampon contenant 10 mM de Tris-HCl et 2 mM de EDTA.
A la suspension,on a ajouté de la lysozyme en une quantité telle que le mélange résultant ait une concentration en lysozyme de 5 mg/ml. On a laissé le mélange résultant à 370C pendant 4 heures. Alors, au mélange on a ajouté Pronase E (fabriquée et vendue par Sigma Chemical Company, E.U.A.) en une quantité telle que le mélange résultant ait une concentration en Pronase E de 200 pg/ml. On a laissé le mélange résultant reposer à la température ambiante pendant 15 minutes. Alors, au mélange, on a ajouté du dodécylsulfate de sodium en une quantité telle que le mélange résultant ait la concentration en dodécylsulfate de sodium de 1% (poids/volume). On a laissé le mélange reposer à 370C pendant 1 heure.Ensuite, on a ajouté, au mélange obtenu ci-dessus, un volume égal de phénol saturé d'une solution tampon de TNE (contenant 50 mM de Tris-HCl, 5 mM de EDTA, 100-mM de NaCl et pH 8,0).
Alors , le mélange résultant a été soumis à une centrifugation à 10.000 t/mn (11.000 g) pendant 10 minutes et une phase aqueuse a été collectée. A la phase aqueuse, on a ajouté un volume égal de phénol-chloroforme (1:1, volume/ volume), avec ensuite mélange. Alors, le mélange résultant a été soumis à une centrifugation à 10.000 t/mn (11.000 g) pendant 10 minutes et l'on a récupéré une phase aqueuse.
A la phase aqueuse, on a de plus ajouté un volume égal de chloroforme, avec ensuite mélange. Alors, le mélange résultant a été soumis à une centrifugation à 10.000 t/mn (11.000 g) pendant 10 minutes et on a récupéré une phase aqueuse. A la phase aqueuse on a ajouté de la ribonucléase A (fabriquée et vendue par Sigma Chemical Company, E.U.A.) en une quantité telle que le mélange résultant ait une concentration en ribonucléase A de 40 yg/ml. On a laissé le mélange reposer à 370C pendant 1 heure. Ensuite, on a ajouté, au mélange, 1/5 volume d'une solution aqueuse contenant 5M de NaCl et 1/4 volume d'une solution aqueuse contenant 50% (poids/poids) de polyéthylène glycol 6000, avec ensuite mélange. On a laissé le mélange résultant reposer à 40C pendant 4 heures.Alors, le mélange a été soumis à une centrifugation à 5.000 t/mn (2.700 g) pendant 20 minutes pour obtenir des précipités et un liquide surnageant. Les précipités ont été recueillis et dissous dans 4 ml d'un tampon TE contenant 10 mM de Tris-HCl et 1 mM de EDTA, pH 7,5. A la solution ainsi obtenue, on a ajouté de l'acétate de sodium en une quantité telle que le mélange résultant ait une concentration en acétate de sodium de 300 mM. Subséquemment, on a ajouté, au mélange, deux fois le volume d t éthanol. On a agité le mélange ainsi obtenu, on l'a laissé reposer à -300C pendant 3heures et on l'a soumis à une centrifugation à 10.000 t/mn (11.000 g) pendant 20 minutes pour obtenir un liquide surnageant et des précipités.Les précipités ont été collectés, séchés sous pression réduite et dissous dans 2 ml d'un tampon TE, pour obtenir ainsi une solution d'ADN contenant 0,85 mg/ml d'ADN.
L'ADN dans la solution d'ADN a été scindé comme suit. 160 unités de l'enzyme de restriction EcoRI (fabriquée et vendue par Nippon Gene Co., Ltd, Japon) ont été ajoutées à 34 ug de 1'ADN, et on a mélangé le mélange résultant avec 67 pl d'un tampon contenant 50 mM de Tris-HCl (pH 7,4), 10 mM de MgS04 et 100 mM de NaCl et on a laissé reposer à 370C pendant 30 minutes de façon que la réaction se passe. Alors, on a chauffé le mélange réactionnel à 700C pendant 10 minutes pour arrêter la réaction.
Etape 2 (Préparation du plasmide pBR325 et sa scission) La souche PA340 d'Escherichia coli K12 a été inoculée dans 50 ml d'un bouillon L (contenant 10 g/l de polypepton, 5 g/l d'extrait de levure , 5 g/l de NaCl et pH 7,2)et et mise en culture à 370C jusqu'à ce que la concentration des cellules atteigne 5 x 108 cellules/ml. Les cellules ont été collectées de la culture par centrifugation à 20C . Les cellules ont été mises en suspension dans 50 ml de 100 mM de MgC12 tout en refroidissant avec de la glace . De la suspension, les cellules ont été collectées et mises en suspension dans 25 ml de 100 mM de CaC12 tout en refroidissant avec de la glace. On a laissé la suspension ainsi obtenue reposer dans la glace pendant 30 minutes. De la suspension, les cellules ont été collectées et mises en suspension dans 5 ml de 100 mM de CaCl2 tout en refroidissant avec de la glace. On a laissé la suspension ainsi obtenue reposer dans la glace pendant 1 heure.
A 200 ul de la suspension, on a ajouté 0,l' > ig d'ADN de pBR325 (fabriqué et vendu par Bethesda Research Laboratories, EUA) et on a laissé le mélange résultant reposer dans la glace pendant 1 heurs. Subséquemment, on a laissé le mélange reposer à 420C pendant 2 minutes et ensuite on a ajouté, au mélange, 5 ml d'un bouillon L. Le mélange résultant a été incubé de manière stationnaire à 370 pendant 90 minutes.Alors, le mélange a été dilué avec 100 mM de CaCî2 et enduit sur un milieu d'agar L (milieu obtenu en ajoutant 15 g d'agar à un bouillon L de façon que le volume total soit de 1 litre) contenant lOjug/ml de tétracycline, avec ensuite incubation pendant une nuit à 370C pour obtenir Escherichia coli transformé par le plasmide pBR325.
La souche PA340 d'Escherichia coli K12 transformée par le plasmide pBR325 a été inoculée dans 100 ml d'un bouillon L contenant-lOsg/ml de tétracycline et mise en culture pendant une nuit à 370C.
Du mélange, des cellules ont été collectées par centrifugation et lavées avec un tampon TE. Les cellules ont été mises en suspension dans 2 ml d'une solution aqueuse consistant en 15 (poids/volume) de saccharose, 50 mM de Tris-HCl (pH S,5), 50 mN de EDTA et 2 mg/ml de lysozyme (fabriquée et vendue par sigma Chemical Company, EUA) et on a laissé reposer à 370C pendant 30 minutes. A la suspension résultante, on a ajouté 2 ml diune solution de Triton L0,l% (poid/volume) de Triton X-100 (fabriqué par Rohm et Haas Cp ; EUA et vendu par Wako Pure Chemical Industries Ltd, Japon), 50 mM de Tris-HC1 (pH 8,5) et 50 mN de EDTA3et on a laissé reposer à 370C pendant 30 minutes.
La solution ainsi obtenue a été soumise à centrifugation a 3n.000 t/mn (64.000 g) à 5 C pendant 1 heure pour obtenir un liquide surnageant. Au liquide surnageant, on a ajouté le tampon TE en une quantité telle que le mélange résultant ait un volume de 18 ml. On a doucement dissous 1,2 ml d'une solution aqueuse à 10 mg/ml de bromure d'éthidium et 18,64 g de chlorure de cesium, dans le mélange ci-dessus obtenu, avec ensuite centrifugation à 40.000 t/m (100 000 g) à 150 C pendant 48 heures. Aprés accomplissement de la centrifugation, deux bandes ont été visualisées sous une lumière ultraviolette.La bande inferieure a été prélevée du tube de centrifugeuse à travers le côté du tube en utilisant une seringue pour obtenir une fraction du plasmide pBR325. La fraction ainsi obtenue a été soumise à une exti-action avec un volume égal d'alcool isopropylique quatre fois pour obtenir un extrait. De l'extrait, le bromure d'éthidium a été retiré et la solution résultante a été dialysée avec la tampon TE pour obtenir 1 ml d'un dialysat contenant le plasmide pBR325 qui avait une concentration en ADN de 130 pg/ml.
sur la plaque de base ( 30).
7. Peu de véhicule automobile selon l'une
quelconque des revendications 4 à 6, caractérisé en ce que
les microplaquettes de diodes lumineuses ( 31) sont logées dans des évidements en forme de cavités ( 32) de la plaque de base ( 30) et sont recouvertes en commun d'une couche de matière synthétique transparente ( 35)0
8. Peu de véhicule automobile selon la re-
vendication 7, caractérisé en ce que la couche de matière synthétique ( 35) présente une surface essentiellement plane, et une diffusion de lumière prédéterminée est produite au moyen d'un verre diffusant séparé ( 37) au-dessus de la
couche de matière synthétique ( 35).
ENSEMBLE FRIGORIFIQUE A COMPARTIMENTS A TEMPERATURES DIFFERENTES La pressente invention concerne un ensemble frigorifique à compartiments à températures différentes.
Cet ensemble frigorifique se présente habituellement sous forme d'un réfrigérateurs d'un congélateur, d'un meuble frigorifique ou dsune chambre rigorifiqueO Le cas le plus fréquemment rencontré est un ensemble frigorifique sous forme d'un réfrigérateur à deux compartiments maintenus respectivement à des températures relativement constantes par deux évaporateurs à températures diffé rentes L'un de ces compartirnents est appelé compartiment de réfrigération7 généralement maintenu à + 5"C environ, et l'autre est un compartiment de congélation maintenu à - 18"C approximativement.
La plupart des réfrigérateurs connus de ce type fonctionnent avec un seul compresseur assurant le refroidissement de deux évaporateurs mis en série dans le circuit. La répartition du froid entre les deux compartiments est, dans ce cas, fixée par construction et ne peut donc s'adapter exactement aux besoins. La répartition des besoins entre les compartiments varie en effet d'une part en fonction de l'usage (ouvertures de porte, introduction de produits à refroidir ou à congeler) et d'autre part en fonction de la température ambiante. Lorsque la température ambiante se refroidit, on ne fait plus assez de froid dans le compartiment basse température et on n'obtint donc plus le -18" requis.Pour y parvenir on peut soit réchauffer le compartiment réfrigérateur au moyen d'une résistance, soit prévoir des compartiments équilibrés correctement aux températures respectives de -18 C et +50C par exemple à la température ambiante la plus basse de + 16 C par exemple mais alors à la température ambiante la plus élevée de +32"C par exemple, on aura des températures respectives de -23 C et 50C.
Ces deux solutions (résistance ou balance thermique plus froide) entraînent un surcroît de consommation d'énergie. De plus on n'obtient de performances satisfaisantes que dans une plage de température limitée, et pour des valeurs de volume du compartiment basse température limitées en valeur relative à environ 2596 du volume total et en valeur maximale à une capacité de l'ordre de 100 litres.
Egalement, on refroidit les deux compartiments en évaporant le fluide frigorigène à la température requise pour le compartiment le plus froid ce qui ne donne pas le meilleur rendement.
D'autres appareils sont équipés de deux compresseurs qui fournissent du froid respectivement à deux évaporateurs. Cette solution permet d'obtenir des performances satisfaisantes dans les deux compartiments indépendamment du rapport de leurs volumes et de donner à l'utilisateur la possibilité de régler séparément les deux compartiments. Mais cette solution s'averse nettement plus coûteuse.
Ces appareils consomment au moins autant d'énergie que ceux du cas rappelé dans les paragraphes précédents car les pertes fixes de deux compresseurs bien qu'ils soient relativement plus petits doivent être additionnées.
De nombreuses solutions ont été envisagées pour assurer l'indépendance de fonctionnement de ces deux compartiments dans un appareil équipé avec un seul compresseur. La plunart de ces solutions utilisent une électro-vanne permettant d'arreter le refroidissement d'un évaporateur, généralement celui du compartiment de réfrigération, tout en continuant de refroidir l'autre compartiment.
Mais on n'obtient pas réellement l'indépendance de réglage et la stabilité des températures souhaités car les conditions de fonctionnement du circuit frigorifique sont très différentes selon que l'on assure le refroidissement d'un seul évaporateur ou des deux et on ne s'approche du résultat recherché qu'en utilisant une régulation plus élaborée et sensiblement plus coûteuse.
On réalise Ja fonction de mémorisation a t du filtre adapté 170 de telle sorte qu'elle puisse être contrôlée afin d'assurer, à tout moment au cours des opérations de mesure, les conditions optimales pour le fonctionnement du filtre. Ce contrôle du filtre est effectué au moyen d'un ordinateur 172 qui reçoit des données appropriées d'un élément de mémorisation et d'appel 173 ainsi qu'on le décrira ci-après.
Un signal yt obtenu au conducteur de sortie 174 du filtre adapté 170 peut être exprimé par une convolution de la fonction d'entrée xt et de la fonction de mémorisation at. Dès lors yt = xt*at = a0xt + a1xt-1 + ... + anxt-n (33) où l'astérisque indique une convolution. En substituant, dans cette formule (33), xt = bt + ut, on obtient yt = ct + vt (34) où c t = bt 9 t (35) est la réponse du filtre à une entrée de signal pur et vt = ut * at (36) est la sortie de bruit. La figure 9 donne un schéma fonctionnel indiquant ces relations.
Afin d'assurer les conditions optimales lors du fonctionnement du filtre adapté 170, on choisit un certain montent, par exemple, le moment t = t0 et la puissance instantanée de la sortie du filtre contenant un signal au moment t = t0 doit être aussi grande que possible par rapport à la puissance moyenne du bruit filtré à ce moment.