INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
L'élimination partielle des cations K+ peut être realisée par des traitements en milieu acide sur la zéolithe KL (L.
SHIRINSKAJA, N. ERMOLENKO, J. NIKOLINA, N. BOKHAN, N. ORJAKHINA, VESTI A.N. BSSR 1970, nO 5, 21-27) ou une zéolithe L préalablement échangée par NH4+ ; (P. PICHAT, C. FRANCO-PARRA and D. BARTHOMEUF, J. CHEM. Soc. Faraday Trans I, 71, 991 (1975)). Si les conditions de traitement sont modérées (faible concentration en acide, basse température) la structure cristalline de la zéolithe est modérément altérée mais les taux d'échange sont alors limités. Une teneur assez basse en potassium : 1.56 % en poids a éte obtenue par traitement acide direct dans HC1 0.02 N (N. BURSIAN, Y. SHAVANDIN, V. NIKOLINA, L.KIRKACH and Z. DAVYDOVA, Zh. Prik. Khim, vol. 48, n" 3, (1975), 554).Cependant la zeolithe -L a très probablement dans ce cas un rapport Si02/A1203 très faible de l'ordre de 5, la teneur en potassium de 1.56 % en poids correspond alors à un taux d'echange compris entre 80 et 90 %. Des conditions de traitement plus severes permettent d'augmenter le taux d'échange mais conduisent alors à une destruction sévère de l'ordre cristallin et à une amorphisation de la zéolithe (L. SHIRINSKAJA, N. ERMOLENKO, J. NIKOLINA, N. BOKHAN, N. PRJAKHINA, VESTI.AN BSSR (1970) nO 5,21-27). Par ailleurs les traitements directs dans des solutions acides ne conduisent pas uniquement à une décationisation mais egalement à une désalumination du solide (P. PICHAT, C. FRANCO-PARRA, and D. BARTHOMEUF J. Chem.
Soc. Faraday Trans I, 71, 991, (1975)). -I1 est bien connu dans l'art antérieur qu'une désalumination directe en solution de zeolithes riches en aluminium se traduit par l'apparition de défauts dans la structure et par une destruction de l'ordre cristallin. I1 n'est donc pas étonnant que les essais de décationisation par traitement direct en milieu acide dans des conditions non parfaitement contrôlées de la zéolithe L se soient révélés négatifs.
L'examen de la littérature montre donc qu'il n'a pas été possible jusqu'à present de préparer une zéolithe L tres fortement d'echange supérieur à 80 % pour Si02/A1203 egal 6 par exemple) non désaluminee et conservant sa structure cristalline intacte.
En ce qui concerne la stabilite thermique de la zéolithe NH4KL seuls des solides contenant des quantites importantes de potassium ont pu être étudies (taux d'échange généralement inférieur à 80 %). A cet égard les resultats de la litterature convergent tous vers la même conclusion : les zeolithes NH4KL sont tres fragiles thermiquement. Ainsi des zeolithes NH4KL échangées à environ 80 % traitées sous vapeur d'eau voient leur taux de cristallinité mesuré par diffraction X très fortement diminué dès 550 C, la destruction etant effective à 820 C (M. RUSAK , I. URBANOVICH, N. KOZLOV. Izv.
An. BSSR. Ser. Khim, 3, (1976), 37). Le meme type de phénomène est observé, lors de calcinations réalisées dans des conditions non contrôlées en l'absence de vapeur d'eau, pour des formes NH4KL fortement échangees ( ~ 80 %) : des 500 C la cristallinité mesuree par diffraction X est très fortement dégradée (T. WEEKS and A.
BOLTON, J. Phys. Chem, 79, (1975), 1924 ; P. PICHAT, C.
FRANCO-PARRA, and D. BARTHOMEUF J. Chem. Soc. Faraday Trans I, 71, 991, (1975)). Dans des conditions similaires (I. MISHIN, A.
KLYACHKO, T. MATKHE, G. ASHAVSKAYA and M. KUTATELADZE, Izv. Akad.
Nauk. SSSR. Ser. Khim, 5, (1983), 977) les taux de cristallinite DX sont compris entre 15 et 30 %. D'après la plupart des auteurs la fragilité lors de traitements thermiques de la zéolithe L sous forme NH4K augmente quand la teneur en potassium diminue, c'est-à-dire quand le taux d'echange augmente (Y. ONO, M. KANEKO, K. KOGO, H.
TAKAYANAGI and T. KEII, J. Chem. Soc. Farad. Trans 1, 72, (1976), 2150@. D'après ces mêmes auteurs la présence de potassium en quantité importante, particulièrement dans les cages cancrinites serait nécessaire pour maintenir à hàute température la cohérence du réseau cristallin. I1 est possible de limiter la destruction de formes NH4KL fortement echangees lors de traitements thermiques en utilisant des lits epais (T. WEEKS and A. BOLTON, J. Phys. Chem. 79, (1975), 1924), cependant les cristallinites mesurees par DX des solides obtenus par cette technique sont très inférieures à celles du solide initial.
Dans le brevet US 3,794,600 qui reprend en partie un procédé décrit dans US 3,375,065, une méthode est revendiquée pour éliminer pratiquement complètement'le potassium de la zéolithe L (% K < 0.35 % pds) sans alterer la cristallinité des solides Cette méthode consiste à calciner la zéolithe NH4KL à des températures inférieures à 600 C et à procéder à des échanges dans des solutions de sels d'ammonium contenant des ions chromates. I1 est très important de noter que dans ce document (US 3,794,600) la cristallinité des solides n'est pas mesurée par diffraction X mais par adsorption de benzène. Or il a été établi (T. WEEKS and A. BOLTON, J. Phys. Chem.
79, (1975), 1924) que la calcination realisee sans précautions particulières de la zéolithe NH4KL échangée à 80 % (1ère étape de US 3,794,600) conduit à une très severe altération voire une destruction de la cristallinité DX alors que la capacite d'adsorption du solide reste relativement très élevée. Dans ces conditions, dans la mesure où les conditions de- calcination ne sont pas clairement précisees dans US 3,794,600 il est tres probable que les solides décationisés obtenus suivant les procédures préconisées dans ce document ont une cristallinité DX faible.
I1 apparait ainsi, que dans .1 'état actuel de l'art, on ne sait pas préparer une'zéolithe L décationisée, desaluminée, de faible volume de maille, stabilisée et possédant un réseau de pores secondaires. A partir de zéolithes L possédant de telles caracte- ristiques il est possible de préparer des catalyseurs actifs et sélectifs pour les réactions de conversion d'hydrocarbures.
ZEOLITHES L DECATIONISEES, DESALUMINEES ET STABILISEES.
ou dans un angle ou un coude du trajet d'alimenta-
tion en encre, peuvent être éliminées de façon sûre.
Après ce processus d'aspiration, l'électro-
valve 8 est ouverte pendant une période prédéterminée, à l'étape S311, le coiffage est effectué sur la tête 1 et le trajet d'écoulement est connecté, par la valve à trois voies 80, vers le côté de la tête 1 à l'étape S313, ce qui achève le processus et met en attente un
processus suivant d'enregistrement.
Dans cette forme de réalisation, une première
opération d'aspiration à partir de la tête 1 est effec-
tuée et, ensuite, une seconde opération d'aspiration
à partir de la partie raccordée 86 est effectuée. Cepen-
dant, cette seconde opération d'aspiration peut être
effectuée lorsque cela est nécessaire, par exemple uni-
quement lorsque la première opération d'aspiration est insuffisante. De plus, dans cette forme de réalisation, la pompe 6 et l'orifice 3 de raccordement servent de moyens communs pour effectuer l'aspiration de l'encre
à partir de la tête 1 et de la partie raccordée 86.
Cependant, des pompes et des parties de raccordement séparées peuvent être prévues, et le trajet d'aspiration peut être choisi par la commutation d'une valve à trois voies. En outre, le tube de branchement partant de la valve à trois voies peut aboutir directement au tube
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d'aspiration 4 ou à la pomnpe 6.
REACTION DE COMBLEMENT DE BRECHES PAR UNE POLYMERASE.
L'ADN a été remis en suspension dans un tampon contenant 50 mM de tris à pH 7,4, 50 mM de KCl, 5 mM de MgCl2 et 400 micromoles de chacun des quatre désoxynucléotides. On a ajouté 10 unités d'ADN-polymérase de Klenow (BRL) et on a laissé la réaction s'effectuer pendant 15 minutes à température ambiante. L'ADN a été ensuite extrait par un phénol et précipité par l'éthanol de la manière indiquée ci-dessus.
REACTION DE RESECTION PAR UNE EXONUCLEASE.
L'ADN a été remis en suspension dans 100 microlitres de 60 mM de tris à pH 8,0, 0,66 mM de MgCl2, 1 mM de bêta-mercapto-éthanol. L'échantillon a été chauffe à 30"C pendant 5 minutes, et 10 unités d'exonucléase lambda III (BRL) ont été ajoutées. A des intervalles de temps rapprochés (par exemple toutes les 2,5 minutes), des portions aliquotes de 10 microlitres ont été diluées dans 100 microlitres d'acétate de sodium 30 mM à pH 4,5, NaCl 250 mM, ZnSO4 1 mM, 4 microgrammes/100 microlitres d'ARNt de levure, 30 unités/100 microlitres de nucléase S1. Au bout de 45 minutes à 30"C, 15 microlitres de tampon d'arrêt comprenant 625 mM de tris à pH 9,0, 150 mM d'EDTA, 1 X de DSS, ont été ajoutés.Les échantillons ont été ensuite extraits par un phénol et précipites à l'éthanol de la manière indiquée ci-dessus. Les produits de diges tion de l'ADN ont été ensuite analysés et purifiés par électrophorèse sur gel d'agarose.
EXTRACTION PAR LE PHENOL DE L'ADN DE L'AGAROSE.
Des bandes d'ADN séparées par découpage de gels d'agarose de bas points de fusion ont été diluées à une concentration d'agarose inférieure à 0,5 X jusqu'à une concentration finale de 0,3 M d'acétate de sodium. Les échantillons ont été chauffés à 65"C pour faire fondre l'agarose, puis ont été refroidis à 37"C pendant 5 minutes. Un volume égal de phénol a été ajouté et l'échantillon a été extrait par le phénol à trois reprises (voir EXTRACTION PAR LE PHENOL).
L'ADN a été ensuite précipité par ltéthanol et le culot remis en suspension à une concentration de 3 à 6 fmoles d'ADN/microlitre.
LIGATION.
La jonction de l'ADN a été effectuée par l'action de l'enzyme appelé ADN-ligase T4 (BRL). Les réactions de ligation faisaient intervenir 10 fmoles d'ADN, 20 mM de tris à pH 7,5, 10 mM de MgCl2, 10 mM de dithiolthréitol (DTT), de l'ATP 200 micromolaire et 20 unités d'ADN-ligase T4 dans un volume de réaction final de 10 microlitres. On a laissé la ligation s'effectuer pendant 3 à 16 heures à 15"C. Normalement, les fragments d'ADN devant être reliés les uns aux autres par ligation ont été ajoutés à un rapport molaire égal. Normalement, deux fragments d'ADN différents ont été reliés au cours de la ligation, mais la jonction de trois ou quatre ADN différents à la fois était également possible.
CARTOGRAPHIE DE RESTRICTION DE L'ADN.
Une cartographie de restriction de l'ADN a été effectuée de la manière décrite en détail par Maniais et collaborateurs (1). Une fois cloné, l'ADN a été digéré avec un certain nombre d'enzymes de restric tion différents et les ADN ont été analysés sur des gels d'agarose et les dimensions des fragments résultants ont été mesurées. Une double digestion avec deux enzymes de restriction différents a été effectuée sur le même échantillon d'ADN pour faciliter l'interprétation des cartes.Une autre voie utilisée a consisté à couper l'ADN avec un enzyme de restriction possédant un seul site unique dans l'ADN, a marqué l'extrémité de l'ADN avec le 32P en utilisant de l'ADN-kinase l'ADN-kinase de T4 ou de l'ADN-polymérase de Klenow (voir REACTION DE COMBLEMENT DE BRECHES PAR UNE POLYMERASE), puis à couper l'ADN avec d'autres enzymes de restriction à basse température ou pendant de courtes durées afin que se produise seulement une digestion partielle.
L'analyse ultérieure des fragments de digestion partielle sur des gels d'agarose a servi à classer les sites de restriction sur la carte. Tous ces procédés de cartographie sont bien connus de l'homme de l'art et sont décrits en détail par Maniatis et collaborateurs (1). Les cartes de restriction les plus complètes peuvent seulement être constituées une fois que l'ADN a été séquencé, et la séquence est ensuite analysée au moyen d'un calculateur recherchant tous les sites d'enzymes de restriction connus. Certaines des cartes de la présente invention ont été produites par informations successives.
ANALYSE DE L'ADN PAR LA METHODE DE SOUTHERN.
Le procédé général de la méthode d'analyse de Southern a été extrait de Maniatis et collaborateurs (1). L'ADN a été déposé sur des filtres de nitrocellulose (S & BA85) dans 20X SSC (1X SSC = 0,15 N NaCl, 0,015 H citrate de sodium, pH 7,0), et préhybridé dans une solution d'hybridation comprenant 30 % de formamide, 1X solution de Denhardt (0,02 % de polyvinylvinylpyrrolidone (PVP), 0,02 % de sérum-albumine bovine (SAB), 0,02 % de Ficoll), 6X SSC, 50 mM de NaH2P04, à pH 6,8, 200 microgrammes/ml d'ADN de sperme de saumon pendant 4 à 24 heures à 55"C. Une sonde d'ADN marquée a été ajoutée, qui a été marquée par coupure-substitution en utilisant un kit provenant de Bethesda Research 32 Laboratories (BRL) et un nucléotide marqué au P.La sonde d'ADN a été séparée des nucléotides non incorporés au moyen d'une colonne de NACS (BRL) ou sur une colonne de Sephadex G50 (Pharmacia). Après hybridation pendant une nuit à 55"C, le filtre a été lavé une fois avec 2X SSC à température ambiante, puis lavé à deux reprises avec 0,1X SSC, 0,1 % de dodécylsulfate de sodium (DSS) pendant 30 minutes à 55"C. Le filtre a été séché et autoradiographié.
TRANSFECTION D'ADN POUR LA PRODUCTION D'UN VIRUS RECOM BINANT.
Le procédé est basé sur le procédé de précipitation d'ADN par le phosphate de calcium de Graham et Van der Eb (32), avet les modifications suivantes.
daire 12, entre le c6té de la tête 1 et le c8té de la
partie raccordée 86.
Un clapet d'évent 5A est prévu au milieu d'un tube 5 s'ouvrant à l'atmosphère. Le clapet d'évent A réagit à la manoeuvre d'un levier 9 et peut être fermé par une partie 9B de ce levier 9. Un absorbeur d'encre 3B est prévu dans une coiffe 3A pour retenir l'encre, et est réalisé en une matière poreuse ayant pour propriété d'absorber les liquides. Il convient de noter que la coiffe 3A est généralement réalisée en une matière du type caoutchouc, tel qu'un caoutchouc
au silicone et un butyl-caoutchouc.
Un filtre 30 est placé au milieu du tube 17 d'alimentation en encre afin de retenir les matières étrangères, telles que de la poussière, présentes dans l'encre d'alimentation, empêchant ainsi les matières étrangères de s'écouler vers le côté de la tête 1 d'en- registrement. Un absorbeur 16 d'encre résiduelle est logé dans une cartouche 13 afin de recevoir l'encre résiduelle aspirée par la pompe 6 et passant dans un
tube 10 d'encre résiduelle.
La figure27 montre l'agencement d'un système de commande de l'appareil de la forme de réalisation montrée sur la figure 26. Un dispositif 500 de commande, par exemple un micro-ordinateur comportant une unité centrale de traitement, une mémoire morte, une mémoire
vive, etc., commande les parties respectives conformé-
ment à la séquence de traitement mémorisée dans la mémoire morte, et actionne la tête 1 d'après les données d'images reçues d'une unité centrale ou analogue, de façon à exécuter ainsi un enregistrement. Un capteur PS de papier
détecte la présence d'une feuille P d'enregistrement.
Lorsque le capteur PS détecte une feuille de papier, le dispositif 500 de commande actionne un cylindre 21 par l'intermédiaire d'un mécanisme 21A d'alimentation en papier comprenant un moteur d'alimentation en papier,
de façon à commander l'opération d'avance du papier.
Un capteur CS de position de chariot détecte la posi-
tion d'un chariot 22. Le dispositif 500 de commande entraîne le chariot 22 ou commande l'amenée du chariot 22 en position de repos ou analogue par l'intermédiaire d'un moteur 22A de chariot, en fonction de données de
position détectée provenant du capteur CS.
Le dispositif 500 de commande utilise un mécanisme 7 de transfert comportant, en plus d'une roue dentée 7A et d'une came 7B, un élément d'entraînement, tel qu'un moteur, pour le transfert d'un orifice 3 de raccordement. A l'aide du mécanisme 7 de transfert, le dispositif 500 de commande positionne l'orifice 3 de raccordement par rapport à la tête 1 en fonction d'un signal provenant d'un contact d'un commutateur 11. Des moyens 1205 et 1255 de commande et d'affichage sont prévus sur le tableau de manoeuvre montré sur la figure lB. Un capteur LS de position peut être agencé pour travailler en association avec un levier 9 ou un contact 6A de la pompe. En outre, le dispositif 500 commande la commutation de la valve à trois voies 80
Les particularités et avantages de l'invention apparaîtront maintenant de façon plus précise dans la description qui suit et dans les dessins annexés, donnés à titre d'exemples et dans lesquels - la figure 1 montre un exemple de réalisation préférentiel de l'appareil selon l'invention - les figures 2, 3, 4 représentent des exemples particuliers de réalisation respectivement de l'étage d'émission, du circuit de suppression des échos fixes, et du circuit d'estimation de paramètres d'écoulement - la figure 5 met en évidence le principe de fonctionnement de l'unité de calcul.
L'appareil représenté sur la figure 1 comprend, de façon classique, un transducteur ultrasonore 10 associé d'une part à un étage d'émission 20 et d'autre part à un étage 30 de réception et de traitement, ainsi qu'à un dispositif 40 de commande de balayage mécanique du transducteur. A la place de ce transducteur pourrait bien entendu être utilisé un réseau de transducteurs, associé alors à un dispositif de commande de balayage électronique.
Dans la réalisation décrite de façon plus détaillée sur la figure 2, l'étage d'émission 20 comprend un générateur 21 de signaux électriques d'excitation, envoyés vers le transducteur 10 qui les convertit en trains périodiques de signaux impulsionnels ultrasonores. Cette émission est commandée par des signaux d'horloge disponibles sur une connexion 102 et délivrés à une fréquence de récurrence F déterminée -de l'ordre de 5 kilohertz par exemple- par un séquenceur comprenant successivement un oscillateur 22, ici de fréquence 32 mégahertz, et un diviseur de fréquence 23. Ce divi-seur délivre les signaux d'horloge sur la connexion 102, ainsi que d'autres signaux de commande respectivement sur des connexions 104 et 106, à 1 kilohertz et 16 mégahertz dans l'exemple ici décrit.Les signaux de commande présents sur la connexion 104 commandent en particulier le dispositif 40, pour le balayage du transducteur. Un séparateur 24 des étages d'émission 20 et de réception et de traitement 30 est inséré entre le transducteur 10, le générateur 21, et ledit étage 30, et évite l'aveuglement des circuits de réception par les signaux d'émission.
L'étage de réception et de traitement 30 comprend, en sortie du séparateur 24, un amplificateur haute fréquence 300 incluant la compensation de gain en fonction de la profondeur et suivi de deux voies de traitement 301 et 302 prévues en parallèle. La voie 301, de type traditionnel, comprend ici, en série, un détecteur d'enveloppe 310, un amplificateur de compression logarithmique 311, un dispositif de mémorisation et de conversion de balayage 370 incluant aussi une fonction de codage de couleur, et un dispositif 312 de visualisation.
Cette voie 301 permet l'obtention, sous forme d'images en échelle de gris, de plans de coupe des milieux explorés selon le principe de l'échographie classique.
Conformément à l'invention, la voie 302 comprend en série un circuit 320 de suppression des échos fixes, un circuit 630 d'estimation de paramètres d'écoulement, un circuit discriminateur 360, le dispositif de mémorisation, de conversion de balayage et de codage de couleur 370, et le dispositif de visualisation 312.
Le circuit numérique 320 de suppression des échos fixes comprend lui-même, dans l'exemple de réalisation représenté sur la figure 3, un convertisseur analogique-numérique 321 dont la sortie est reliée d'une part directement à l'entrée négative d'un soustracteur 322 et d'autre part à l'entrée positive de ce soustracteur par l'intermédiaire d'un circuit à retard 323. Le retard apporté par ce dernier circuit 323 pourrait être de plusieurs périodes T = 1/F, mais il est avantageux que ce retard soit le plus faible possible et égal à T. Ce circuit 320 est prévu pour l'élimination de tous les échos fixes, en particulier de ceux dont l'apparition est provoquée par la réflexion des ondes ultrasonores contre les parois des vaisseaux où se produisent les écoulements étudiés.
Cette présence d'échos fixes est gênante du fait de leur amplitude bien plus élevée (de l'ordre de +40 dB dans le cas des écoulements sanguins) que celle des signaux utiles, les signaux rétrodiffusés par les cibles mobiles. Le circuit 320 est également commandé, par l'intermédiaire de la connexion 106, par le diviseur de fréquence 23 du séquenceur qui lui fournit le signal de commande d'échantillonnage à la fréquence de 16 mégahertz.
Le circuit 630 d'estimation de paramètres d'écoulement, représenté sur la figure 4, comprend ici un circuit d'intercorrélation et une unité de calcul 650. A partir des signaux de différence entre deux lignes échographiques successives d'échantillons di(t), di+l(t), etc... (où i représente le rang de ce signal) successivement fournis par le circuit 320 de suppression des échos fixes, le circuit d'intercorrélation délivre trois valeur de fonction de corrélation. A partir de ces trois valeurs, l'unité de calcul délivre des paramètres caractérisant les différents écoulements rencontrés le long de l'axe de propagation de l'onde ultrasonore. Ces paramètres sont ici la composante axiale de la vitesse locale moyenne V7 et la variance locale a 2 de celleci, le mot local étant ici employé au sens de la localisation en profondeur le long dudit axe Z de propagation.
Plus précisément, le circuit d'intercorrélation 630 comprend trois corréla#teurs 642 qui, sur une première entrée, reçoivent chacun directement la sortie di+i(t) du circuit 320 de suppression d'échos fixes et, sur une deuxième entrée, reçoivent cette même sortie du circuit 320, mais retardée par des lignes à retard 641 et correspondant donc au signal précédent di(t). De plus, chacune de ces lignes 641 présente, pour permettre le calcul des trois valeurs de la fonction de corrélation, un retard distinct prenant trois valeurs T - At, T, T + At, où at représente la période d'échantillonnage imposée par la connexion 106.
Ce calcul, effectué en parallèle, des trois valeurs de la fonction de corrélation utilise K échantillons successifs des deux signaux d'entrée des corrélateurs. Les groupes de K échantillons définissent des fenêtres temporelles successives de longueur K At se décalant progressivement au rythme de la fréquence imposée par la connexion 106.La fonction de corrélation est définie par une expression du type k=K fi(J,P) = E di((k+J) #t). di+i( k=I dans laquelle - J détermine le début de la fenêtre temporelle de longueur K at - P représente le décalage temporel introduit entre di et di+1 et pour lequel on calcule la valeur de la fonction de corrélation (P variant de -1 à +1) par pas de 1) - i représente le rang de la différence entre deux lignes échographiques successives ei et ex+1.
Les corrélateurs 642, commandés par l'intermédiaire de la connexion 106 de sortie du diviseur de fréquence 23 du séquenceur, sont, on l'a vu, des corrélateurs 1 bit.L'unité de calcul 650 peut être une unité de calcul programmée, incluant un microprocesseur, ou de préférence une unité de calcul câblée.Cette unité de calcul dispose de trois valeurs de la fonction de corrélation C1 = C(t0, - At) (12) C2 = C(to, O) (13) C3 = C(to, Lt) (14) Le signe de la pente de la fonction de corrélation, auquel correspond le sens de la vitesse, est déterminé par :: s = signe (C3 - C1) (15) En utilisant la relation (7), la vitesse est donnée par l'expression
La valeur A de la pente en O de la fonction de corrélation est obtenue selon le tableau ci-après
C2 b 0,5 C2 0,5 C3-Cl u O A = (C2-C1)/ At A = (C3-C2)/ #t C3-C1 O A = (C3-C2)/ At A = (C2-C1)/ Qt Ce tableau fait l'inventaire, en association avec les figures Sa à 5d correspondantes, des quatre types de configuration possible décrivant les valeurs Cl, C2, C3.
On en déduit la valeur CMAX du pic de corrélation ainsi que la variance c