INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
La présente invention concerne un procédé de recouvrement d'articles tels que la mousse moulée ou coupée pour coussins de sièges. Pour la mise en oeuvre du procédé, on choisit une base telle qu'un bloc de mousse. Cependant, on peut choisir n'importe quelle matière de base ou article pré-façonné en considérant la fermeté ou d'autres caractéristiques de l'environnement d'une application particulière. On traite ensuite une ou plusieurs couches de mousse flexible avec un adhésif.
On applique ces couches à la surface de la matière de base pour établir une couche intermédiaire de support et de liaison devant recevoir la matière de recouvrement.
dien qu'on puisse utiliser un adhésif quelconque pour l'application décrite, on préfère un adhésif hautement flexible et durcissable à l'humidité et à la chaleur pour les applications des coussins de sièges, car un tel adhésif reste fluide à la température ambiante et neanL#o1ns durcit en quelques minutes à des températures plus élevées. n utilisant une telle technique, on em poche le durcissenent prématuré de l'adhésif qui aurait lieu en considérant l'aptitude des couches intermédiaires à prendre et conserver la forme moulée de l'article.
Une matière choisie de recouvrement, telle qu'un produit vinylique ou une étoffe, est ensuite appliquée à la surface de la couche intermédiaire Cette structure composite, y compris la base, la ou les couches intermédiaires et le recouvrement, est ensuite introduite dans un moule ou bien on place un moule sur le composite. On applique une pression à l'article dans le moule. Hn wême temps, on étire le recouvrement sur la surface de l'article, on lui fait épouser le contour de la surface de l'article et on imprime les motifs de gaufrage dans la surface de l'article. On applique de la chaleur pendant et/ou après le stade de compression pour contribuer au façonnage du recouvrement selon le contour de la surface de l'article, et aussi pour faire durcir l'adhésif entre les surfaces adjacentes traitées par lui.De cette façon, on munit un article précédemment façonné d'un recouvrement lisse et contigu qui épouse toute la surface désirée de l'article à recouvrir et qui présente une surface amortie ayant la résilience voulue.
D'autres buts, caractéristiques et avantages de l'invention ressortiront de la description détaillée qui va suivre en regard des dessins annexés, sur lesquels la figure 1 est une coupe transversale d'un article simple recouvert par le procédé selon la présente invention; la figure 2 représente un article fabriqué par le procédé de l'invention et comportant une couche intermédiaire à couches multiples; la figure 3 représente un article fabriqué par le procédé de l'invention comportant une plaque de base d'un seul tenant; la figure 4 montre un article fabriqué par le procédé de l'invention recouvert sur les deux côtés et comportant une sangle de support; la figure 5 montre un article fabriqué par le procédé de l'invention utilisant une mousse rainurée pour recevoir des motifs gaufrés en profondeur; ; la figure 6 montre un article fabriqué par le procédé de l'invention dont la base est formée de matières de densités différentes; la figure 7 montre un autre mode de réalisation d'un article selon l'invention comportant dans la base des placues de mousse de densités différentes; et la figure 8 est une coupe transversale d'un panneau de portière d'automobile à niveaux multiples.
Tout d'abord sur la figure 1 on a représenté un article 10 recouvert d'une forme relativement simple et du type qui convient pour recouvrement par le procédé de l'invention. On conçoit et on le décrira par la suite qu'on peut recouvrir une grande variété d'articles de formes différentes en matériaux différents par le procédé de l'invention. Cependant, ce procédé convient particulièrement pour la fabrication de meubles revêtus de mousse et de produits composites en mousse, notamment des sièges en mousse et similaires. Ainsi, on peut exé- cuter le procédé sur des matériaux profilés ou en gouttière ou sur des matériaux composites comportant, d'un seul tenant, des ressorts, des tringles, des pièces structurales de support et similaires.
On va maintenant examiner le procédé. On choisit d'abord une matière de base convenable 12 et on choisit également une matière pour la couche intermédiaire 14 servant de milieu pour supporter et appliquer la matière de recouvrement 16 à l'article utilisé. Dans un mode de mise en oeuvre de l'invention, la couche intermédiaire est une feuille de mousse de polyurethane flexible. On utilise cette matière parce qu'elle fournit une finition lisse et uniforme de la surface quand on applique le recouvrement 16, et aussi elle fournit un supplément de flexibilité entre le recouvrement 16 et la base 12.Comme on le voit sur la figure 2, cette couche intermédiaire peut aussi être formée de feuilles multiples de mousse telles que 18, 20, 22 et 24, selon les desiderata pour assurer un amortissement supplémentaire ou pour modifier ou rehausser le contour superficiel de l'article.
Une autre raison pour fournir une couche intermédiaire à couches multiples est de permettre des profondeurs variables et accrues de gaufrage et de faire varier le degré de flexibilité qu'on désire dans la couche intermédiaire.
L'utilisation d'une couche intermédiaire 14 à couches multiples améliore aussi l'adhérence du recouvrement 16 à l'article car chaque feuille intermédiaire contribue à réduire la contrainte de chaque feuille adjacente. Ainsi, plus le nombre de feuilles qu'on applique par ce procédé est important, moins grands seront les risques d'un arrachement de la couche intermédiaire à partir des contours moulés de la base après le durcissement de l'adhésif entre les couches.
En outre, on peut utiliser d'autres matières pour les couches intermédiaires, par exemple une mousse à cellules closes ou des matières ayant des caractéristiques différentes de flexibilité selon les exigences spécifiques. Par exemple, la couche intermédiaire 14 peut être d'une flexibilité plus dou#e que celle de la base 12 pour assurer plus de confort à l'occupant du siège lorsque l'article terminé est un siège en mousse.
On enduit ensuite chaque section de la eouche intermédiaire avec un adhésif 15 pour assurer une liai- son forte et durable qui convient pour l'application particulière de l'article. belon la nature des matières à unir, on peut employer un adhésif en polyuréthane d'une qualité allant du dur au mou. Si l'on désire une haute flexibilité de l'article recouvert, on peut employer un adhésif durcissable par l'humidité et la chaleur. De tels adhésifs restent fluides aux températures et humidités ambiantes mais durcissent rapidement, par exemple en qualques minutes à des températures plus éle vées.
On a laissé le melange résultant réagir dans 100 yl d'un tampon contenant 10 mM de Tris-HCl (pH 7,4), 10 mM de MgS04 , 50 mM de NaCl et 1 mM de dithiothréitol à 370C pendant 1 heure. Au mélange réactionnel résultant, on a ajouté un volume égal d'un mélange à 1:1 (volume/volume) de phénol et de chloroforme et on a agité avec ensuite récupération d'une phase aqueuse, A la phase aqueuse, on a ajouté un volume égal de chloroforme et on a agite, avec ensuite récupération d'une phase aqueuse. A la phase aqueuse, on a ajouté de l'acétate de sodium jusqu'à une concentration finale de 300 mM puis on a ajouté un volume double d'éthanol, et on a agité.Alors, le mélange a été maintenu au repos à -300C pendant 3- heures et soumis à une centrifugation à 12.000 t/mn (8.900 g) à la température ambiante pendant 10 minutes pour obtenir une boulette d'ADN. La boulette d'ADN ainsi obtenue a été séchée in vacuo. La boulette séchée d'ADNa été dissoute dans 100 d'un tampon TE. Sensiblement de la même manière qulà l'étape 7 de l'exemple 1, on a obtenu, du mélange résultant, environ 0,5 yg d'un fragment d'ADN contenant un gène codant pour GDH et ayant une longueur moléculaire d'environ 3,1 kb.
Etape 10 (Isolement d'un fragment d'ADN contenant un gène codant pour GDH et ayant une longueur moléculaire d'environ 3,2 kb) A 20 pg de 1'ADN du plasmide pAG103 obtenu à l'étape 6 de l'exemple 1, on a ajouté 100 unités de chacune des enzymes de restriction EcoRI et XbaI; On a laissé le mélange résultant réagir dans 100 yl d'un tampon contenant 50 mM de tris-HCl NaCl à 370C pendant 2 heures. Le plasmide digéré a été soumis à une électrophorèse en utilisant un gel agarose à 1% sensiblement de la même manière qu'à l'étape 7 de l'exemple 1.
Le gel agarose a été teinté de bromure d'éthidium et exposé à un rayonnement.ultraviolet de façon que l'on observe visuellement des fragments d'ADN ayant une longueur moléculaire d'environ 3,2 kB. Une portion du gel où de tels fragments d'ADN ont été trouvés a été séparée.
Un fragment d'ADN a été extrait du gel obtenu sensiblement de la même manière qu'à l'étape 7 de l'exemple 1.
Ainsi, on a obtenu environ 2 pg d'un fragment d'ADN contenant un gêne codant pour GDH et ayant une longueur moléculaire d'environ 3,2 kb, Etape Il (Isolement d'un fragment d'ADN contenant un gene codant pour GDH et ayant une longueur moléculaire d'environ 3,5 kb) A 20 jig de l'ADN du plasmide pAG1O3 obtenu à l'étape 6 de l'exemple 1, on a ajouté 100 unites de chacune des enzymes de restriction Ecofil et XhoI. On a laissé le mélange résultant réagir dans 100 ul d'un tampon contenant 50 mM de Tris-HCl (pH 7,4), 10 mm de MgS04 et 100 mM de NaCl à 370C pendant 2 heures.Le plasmide digéré a été soumis à une électrophorèse en utilisant un gel agarose à 1% sensiblement de la même manière qulà l'étape 7 de l'exemple 1. Le gel agarose a été teinté de bromure d'éthidium et exposé à un rayonnement ultraviolet, de façon que l'on observe visuellement des fragments d'ADN ayant une longueur moléculaire d'environ 3,5 kb. Une portion du gel où l'on a trouvé de tels fragments d'ADN a été séparée Un fragment d'ADN a été extrait du gel obtenu sensiblement de la même manière qu'à l'étape 7 de l'exemple 1. Ainsi, on 3 obtenu environ 3 g d4un fragment d'ADN contenant un gène codant pour GDH et ayant une longueur moléculaire d'environ 3,5 kb.
Etape 12 (Isolement d'un fragment d'ADN contenant un gène codant pour GDH et ayant une longueur moléculaire d'environ 4,5 kb) A 40 p9 de l'ADN du plasmide pAG103 obtenu à l'étape 6 de l'exemple 1, on a ajouté 100 unités d'une enzyme de restriction BglII. On a laissé le mélange résultant réagir dans 100 ul d'un tampon contenant 10 mM de Tris-HCl (pH 7,4), 10 mM de MgS04 et 1 mM de dithiothréitol à 370C pendant 4 heures. Au mélange réactionnel résultant, on a ajouté de l'acétate de sodium jusqu'à une concentration finale de 300 mM puis on a ajouté un volume double d'éthanol. Alors, le mélange a été maintenu au repos à -300C pendant 3 heures et soumis à une centrifugation à 10.000 t/mn (9.000 g) à la température ambiante pendant 10 minutes pour obtenir une boulette d'ADN. La boulette d'ADN ainsi obtenue a été séchée in vacuo.A toute la quantité de la boulette d'ADN, on a ajouté 100 unités d'une enzyme de restriction EcoRI. On a laissé le mélange résultant réagir dans 100 pl d'un tampon contenant 50 mM de Tris-HCl (pH 7,4), 10 mM de NgS04 et 100 mM de NaCl à 370C pendant 4 heures. Le plasmide digéré a été soumis à une électrophorèse en utilisant un gel agarose à 1% sensiblement de la même manière qu'à l'étape 7 de l'exemple 1. Le gel agarose a été teinte de bromure d'éthidium et exposé à un rayonnement ultraviolet de façon que l'on observe visuellement des fragments d'ADN ayant une longueur moléculaire d'environ 2,9 kb et environ 1,6 kb.
Des portions du gel où de tels fragments d'ADN ont été trouvés ont été découpées. Les fragments d'ADN ont été extraits du gel obtenu sensiblement de la même manière qu'à l'étape 7 de l'exemple 1. On a ainsi obtenu un fragment d'ADN contenant un gène codant pour GDH et ayant une longueur moléculaire d'environ 4,5 kb et environ 2 > ig d'un fragment d'ADN ayant une longueur moléculaire d'environ 2,9 kb et environ 1 9 d'un fragment d'ADN ayant une longueur moléculaire d'environ 1,6 kb.
EXEMPLE 2 Dans cet exemple, un fragment d'ADN, dérivé d'une bactérie corynéforme produisant l'acide glutamique, contenant un gène codant pour GDH, a été inséré dans. un vecteur dérivé de la bactérie corynéforme produisant l'acide glutamique pour produire un ADN recombinant pour la production de GDH. Un transformant capable de former GDH à une haute quantité a alors été préparé en utilisant l'ADN recombinant. Le fragment de EcoRI obtenu à l'étape 7 de l'exemple l,c'est-à-dire un fragment de EcoRI contenant un gène codant pour GDH et ayant une longueur moléculaire d'environ 5,4 kb, a été utilisé comme fragment d'ADN, dérivé d'une bactérie corynéforme produisant l'acide glutamique, contenant un gène codant pour GDH. Un plasmide pAG50 a été utilisé comme vecteur dérivé d'une bactérie corynéforme produisant l'acide glutamique.Le plasmide pAG50 est un plasmide qui a été préparé à partir de plasmides pAGI et pAG3 dérivés d'une bactérie corynéforme produisant l'acide glutamique par la méthode qui sera mentionnée ci-dessous. Le plasmide pAGI est un plasmide résistant à la tétracycline qui a été isolé de Corynebacterium melassecola 22243 déposé au FRI sous le numéro d'accession FERM BP-560. Le plasmide pAG3 est un plasmide cryptique isolé de Corynebacterium melassecola 2220 déposé au FRI sous le numéro d'accession FERM BP-559.
Etape 1 tPréparation du plasmide pAG50 et son isolement de > Corynebacterium melassecola 801 (pAG5O) (1) Isolement d'un plasmide pAGI de Corynebacterium melassecola 22243 (FERM BP-560) Le microorganisme Corynebacterium melassecola 22243 a été mis en culture dans un milieu semi-synthétique Lun milieu préparé en dissolvant 10 g de (NH4)2S04 , 3 9 d'urée, 1 g de K2HP04 , 50 mg de NaCl, 400 mg de MgS04.7H20, 2 mg de MnSO4. 4-6H2 0, 2 mg de FeS04.4-6H20, 20 g de glucose, 50 p9 de biotine, 200 ;;jg de chlorhydrate de thiamine et l g d'extrait de levure dans de l'eau échangée en ions et distillée de façon que le volume total soit de 1 litre, et en ajustant à pH 7,2 a à 320C pendant une nuit tout en agitant. On a inoculé 8 ml de la culture ainsi obtenue à 200 ml du même milieu semi-synthétique, avec ensuite mise en culture à 320C pendant 5 heures tout en agitant pour obtenir une culture du microorganisme.
De la culture, des cellules du microorganisme ont été recueillies et mises en suspension dans lu mol d'une solution de lysozyme (pH 8,0)contenant 50 mM de glucose, 10 mM de EDTA, 25 mM de Trishydroxylméthylaminométhane (ci-après appelé souvent "Tris") et 10 mg/ml de lysozyme (fabriquée et vendue par Sigma Chemical Company, EUA) avec ensuite incubation à 420ê pendant l heure. A la suspension, on a ajouté 20 ml d'une solution alcali-SDS contenant 0,2 N de NaOH et 1X (poids/volume) de dodécylsulfate de sodium (souvent appelé ci-après "SDS"). On a agité le mélange et on l'a laissé alors reposer dans la glace pendant 5 minutes.
Alors, au mélange on a ajouté 15 ml d'une solution d'acétate de potassium refroidi à la glace (un mélange de 60 ml d'acétate de potassium à 5 M, 11,5 ml d'acide acétique et 28,5 ml d'eau distillée et échangée en ions). On a agité le mélange et on l'a laissé reposer dans la glace pendant 10 minutes pour obtenir un lysat. L'ensemble du lysat a été transféré à un tube de centrifugeuse et soumis à une centrifugation à 12.000 t/mn (13.000 g) à 40C pendant 5 minutes pour ainsi obtenir un liquide surnageant. Le liquide surnageant a été soumis à une extraction avec un volume égal de phénol-chloroforme (1:1) et une phase aqueuse a été collectée. A la phase aqueuse on a ajouté un volume double d'éthanol et on a agité le mélange résultant et on l'a laissé reposer à la température ambiante pendant 5 minutes.Alors, le mélange a été soumis à une centrifugation à 10 GDD t/mn (11.000 g) à 200 pendant 10 minutes pour ainsi obtenir des précipités Les précipités ont été lavés avec 70% d'éthanol (volume/volume), séchés sous pression réduite et dissous dans 20 ml d'un tampon TE (pH 7,5) contenant 10 mM de Tris et 1 mM de EDTA dans un tube de centrifugeuse. A la solution résultante, on a ajouté doucement 1,2 ml d'une solution aqueuse à 10 mg/ml de bromure d'éthidium et 23,6 g de chlorure de césium et on a dissous, avec ensuite centrifugation à 40.00Q t/mn (100,000 g) à 15 C pendant 48 heures.Après avoir accompli la centrifugation, deux bandes ont été visualisées sous une lumière ultraviolette. La bande inférieure a été extraite du tube de centrifugeuse par la paroi latérale du tube en utilisant une seringue pour obtenir un plasmide pAG1 La fraction de plasmide ainsi obtenue a été. soumise à l'extraction avec un volume égal d'alcool isopropylique quatre fois pour obtenir un extrait. De l'extrait, du bromure d'éthidium a été retiré et la solution résultante a été dialysée avec le tampon TE pour obtenir 1 .tl d'un dialysat contenant un plasmide pAG1 à une concentration de 50 u-g/ml.
(2) Recombinaison in vitro du plasmide pAG1 A 0,5 > 'g de l'ADN du plasmide pAGI préparé à la sous-étape (1) ci-dessus de l'étape 1 de l'exemple 2, on a ajouté 10 unités de l'enzyme de restriction EcoRI.
On a laissé le mélange résultant réagir dans 40 p1 d'un tampon contenant 50 mM de Tris-HCl (pH 7,4), 10 mM de MgS04 et 100 mM de NaCl à 370C pendant 2 heures. Alors, la température a été élevée à 700C et maintenue à 700C pendant 10 minutes pour terminer la réaction. On a fait réagir 20 pl du mélange réactionnel ainsi obtenu avec 3 unités de 1'ADN ligase duphage T4 (fabriquée et vendue par Nippon Gene Co., Ltd, Japon) dans 50 p1 d'un tampon contenant 50 mM de Tris-HCl (pH 7,4), 10 mM de MgCl2 10 mn de dithiothréitol, 1 mM de spermidine, 1 mM d'ATP et 0,1 mgjml de BSA (albumine de sérum bovin) (fabriquée et vendue par Bethesda Research Laboratories, EUA) à 15 C pendant une nuit.
(3) Isolement du plasmide pAG14 (Curage du plasmide) Un enroulement de Corynebacterium melassecola 22243 (FERM BP-560) a été inoculé dans 5 ml d'un milieu LG (un milieu préparé en dissolvant 10 g de trypton, 5 g d'extrait de levure, 5 g de NaCl et 2 g de glucose dans de l'eau échangée en ions et distillée de façon que le volume total soit de 1 litre, et en ajustant à pH 7,2) et mis en culture à -370C pendant une nuit sous agitation. La culture ainsi obtenue a été diluée dans une eau stérilisée.
La culture diluée a alors été étendue sur un milieu d'agar LG (un milieu préparé en ajoutant de l'agar au milieu LB de façon que la concentration en agar du milieu résultant soit de 1,5% en poids) suivi de la mise en culture à 320C pendant 2 jours pour former des colonies. 100 colonies ainsi formés ont été transférées par réplique-placage sur une plaque d'agar LG contenant 10 pg/ml de tétracycline, suivi de la mise en culture à 320C pendant 2 jours. Ensuite, deux cellules sensibles à la tétracycline ont été choisies. En ce qui concerne les deux cellules ainsi choisies, l'existence du plasmide pAGI dans les cellules a été déterminée par la méthode d'isolement du plasmide decrite précédemment. Par suite, on a trouvé que les deux cellules ne contenaient pas de plasmide, c'est-à-dire que les cellules étaient une souche curée de plasmide.Une des cellules a été utilisée comme hôte dans l'étape suivante.
(Transformation) La cellule curée de plasmide préparée à l'étape ci-dessus a été mise en culture dans le milieu semisynthétique mentionné précédemment à 320 pendant 12 heures sous agitation. On a inoculé 0,5 ml de la culture ainsi obtenue dans 50 ml du même milieu semi-synthétique et on a mis en culture à 320C sous agitation. La densité optique -(OD) de la culture à 660 nm a été surveillée en utilisant un spectrophotomètre modèle 228(fabriqué et vendu par Hitachi, Ltd, Japon). Au point où la densité optique est devenue de 0,2 , de la pénicilline G a été ajoutée à la culture de façon que la concentration en pénicilline soit de 0,3 unité/ml. La culture résultante a été incubée à 320C pendant une heure et demie.
Sauf indication contraire, dans ces exemples, le polypropylène mis en oeuvre est un polypropylène commercialisé par Naphtachimie sous la marque déposée NAPRYL 61200",de masse moléculaire en poids Mw= 330 000 et de masse moléculaire en nombre Mn=70 000. Pour chaque type de population de particules, on détermine les diamètres par un examen de microscopie électronique à balayage qui permet de définir un diamètre moyen en nombre Dn qui est une moyenne arithmétique des diamètres, et un diamètre moyen en poids Dp donné par la
relation i i = n mi | E mi Di3 Dp = i 1 I mi i=o mi étant la masse de la particule de diamètre Di et n le nombre de particules mesuré.
~~erapport de ces deux grandeurs Dp/Dn définit la polydispersité des tailles des particules obtenues.
La mise en solution du polymère est effectuée dans un réacteur double enveloppe permettant la circulation d'un fluide thermostaté. Ce réacteur est surmonté d'un réfrigérant ascendant permettant d'atteindre la température d'ébullition du solvant utilisé. Ce réacteur est également muni d'un système d'agitation avec une pale en forme d'ancre, afin d'agiter la composition.
Après recristallisation, le polymère est filtré sur un verre fritté, puis est lavé avec de l'acétone jusqu'à éliminer complètement le solvant résiduel retenu dans les particules du polymère.
De même, sauf indication contraire, dans les tableaux, la concentration C de polymère est donnée en grammes de polymère par litre de solvant et les diamè tres Dn et Dp sont indiqués en microns.
Exemple i A l'aide de 1 l'appareillage décrit ci-dessus, on dissout sous agitation des quantités variables de polypropylène NAPRYL dans 250 ml d'orthodichlorobenzène, à 1500C. La solution est refroidie par transfert dans un bécher de un litre. On passe de 1500C à 50 C en 45 minutes environ. Les résultats obtenus sont rassemblés dans le tableau I ci-après.
C Dn Dp Dp/Dn 50 1,7 2 1,18 100 4,9 7 1,43 267 61 81 1,40 On observe que les dimensions des particules sont fonction de la concentration. Pour des concentrations égales ou supérieures à 100, les particules obtenues ne sont pas sphériques, mais d'aspect prismatique.
Exemple 2 On répète l'exemple 1 mais on effectue le refroidissement de manière plus lente dans le réacteur luimême. Le temps nécessaire pour passer de 1500C à 50 C est de quatre heures. Les résultats obtenus sont rassemblés dans le tableau II ci-dessous.
C Dn Dp Dp/Dn 270 116 147 1,26 400 119 153 1,28 Ainsi, le domaine de concentration pour lequel la taille des particules varie avec la concentration est plus restreint pour un refroidissement lent que pour un refroidissement rapide.
Exemple 3 On répète l'exemple 1 mais en changeant le solvant.
Les résultats obtenus sont rassemblés dans le tableau III ci-après.
Solvant Température C Dn Dp Dp/Dn d'ébullition ( C) Xylène 140 100 92,2 93,5 1,01 270 37,3 39,7 1,06 400 18,9 21,1 1,11 Décane 173 150 147,2 171 1,16 270 135,7 150,7 1,10 400 251 278 1,10 Décahydronaphtalène 190 270 67,9 96,8 1,42 350 78,06 95,4 1,22 600 151,2 188,5 1,24 L'examen des clichés de microscopie électronique des particules ainsi réalisées et quelque soit le solvant, montre que celles-ci sont essentiellement sphériques pour des concentrations en polymère supérieures ou égales à 100 g/l et que leur polydispersité en taille varie avec la nature du solvant.
Les conduits 4 et 5 seront reliés par un conduit court-circuit fermé par robinet HP pour permettre le déplacement éventuel manuel du véhicule.
L'organisation de la transmission s'effectue autour de deux circuits, à savoir : 1- Circuit de Puissance s constitué par les généra- teurs 2 et 3 sortiR du moteur thermique 1 et les récepteurs 6 sur les roues 7, reliés par les conduits 4 et 5, BP-HP réversible, le réservoir 9 et conduit 16 toujours BP, l'accumulateur 10 et conduit 17, toujours HP.
2- Circuit de Commande t conduit Basse Pression branché sur conduit 16, conduit Haute Pression branehé sur conduit 17.
Il comporte toua les dispositifs d'embrayage et de débrayage des étages de transmission, clapets 11, vérins 12, asservissement de la variabilité du générateur 3, électro clapet 28,...