INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
A 0,5 ml de la suspension de protoplastes on a ajouté un mélange de 50 ul du mélange réactionnel de ligase obtenu à la sous-étape (2) de l'étape 1 de l'exemple 2 et 50nul de solution 2x TSMC (une solution aqueuse contenant 50 mM de TES, 0,8 M de saccharose, 20 mM de MgCl2 et 60 mM de CaCl2 et ajustée à pH 7,2 en utilisant NaOH). Alors, au mélange résultant on a doucement ajouté une solution de PEG t une solution préparée en dissolvant un polyéthylène glycol ayant un poids moléculaire de 6.000 dans une solution de TSMC contenant 25 mM de TES, 0,4 M de saccharose, 10 mM de MgCl2 et 30 mM de CaCl2 , laquelle solution a été ajustée à pH 7,2 en utilisant NaOH, jusqu'à une concentration finale de 40% (poids/volume), et on a laissé reposer à la température ambiante pendant 2 minutes. Alors, au mélange, on a ajouté 5 mî d'une solution R-PVP [solution préparée en dissolvant de la polyvinyl pyrrolidone (appelée ci-après "PVP") dans le milieu R à une concentration de 40 g/l] avec ensuite centrifugation à 4.000 t/mn (1.800 g) à la température ambiante pendant 1D minutes pour former un liquide surnageant et des précipités. Le surnageant a été retiré. Aux précipités on a ajouté 5 ml de la solution R-PP, avec ensuite centrifugation dans les mêmes conditions que celles mentionnées ci-dessus pour obtenir des protoplastes en tant que précipités.Les protoplastes ainsi obtenus ont été doucement mis en suspension dans 0,5 ml de la solution R-PVP. La suspension a été incubée à 300C pendant 3 heures et diluée avec la solution R--PVP pour obtenir une suspension diluée. La solution diluée a été inoculée dans un milieu régénérant contenant 10 ygXml de tétracycline.Le milieu régénérant était un milieu d'agar à deux couches comprenant une couche inférieure de milieu d'agar obtenue en ajoutant PVP et l'agar à des concentrations respectives de 40 gjl et 15 g/l au milieu R et, superposée sur la couche inférieure, une- couche supérieure de milieu d'agar obtenue en ajoutant PVP et l'agar aux concentrations respectives de 40 g/l et 6 gil au milieu R; et l'inoculation de la suspension diluée ci-dessus mentionnée été effectuée par son mélange avec 3 ml de la couche supérieure ci-dessus du milieu d'agar fondu avant de former la double couche Le milieu régénerant résultant a été incubé à 320C pendant 4 jours pour former des souches résistant à la tétracycline.
Des souches résistant à la tétracycline ainsi formés, 10 souches ont été choisies au hasard et on les a mises en culture sous une forme biologiquement pure sur le milieu d'agar LG contenant 10 yg/ml de tétracycline.
De chacune des souches, on a isolé un plasmide sensiblement de la même manière qu'a l'étape 1 de l'exemple 1. Les sites de restriction du plasmide ainsi isolé ont été déterminés en utilisant 0,5 9 du plasmide sensiblement de la même manière qu'à l'étape 6 de l'exemple 1, pour ainsi obtenir un plasmide pAG14 En utilisant 1'ADN plasmidique ainsi obtenu, les cellules de la souche curée de plasmide Corynebacterium melassecola 22243 (déposé au FRI sous le numéro d'accession FERM BP-560) ont été transformées sensiblement de la meme maniere qu'on lia mentionné ci-dessus pour obtenir un transformant résistant à la tétracycline.Du transformant ainsi obtenu, on a séparé un plasmide avec ensuite analyse sensiblement de la même maniere qu'on l'a mentionné ci-dessus. Par suite, on a trouvé que le plasmide séparé avait la même carte de scission d'endonucléase de restriction que celle du plasmide pAG14.
(4) Isolement d'un fragment d'ADN codant un gène pour la résistance à la tétracycline à partir du plasmide pAG14 A 20 pg de l'ADN du plasmide pAGi4 obtenu à la sous-étape (3) de l'étape 1 de l'exemple 2, on a ajouté 100 unités de chacune des enzymes de restriction BamHI et BglIl. On a laissé le mélange résultant réagir dans 100 pl d'un tampon contenant 10 mM de Tris-HC1 (pH 7,4), 10 mM de Mg 504 , 50 mM de NaCl et 1 mM de dithiothréitol à une température de 370C pendant 2 heures.Le plasmide digéré a été soumis à une électrophorèse à 40C en utilisant un gel agarose à 1% préparé à partir de LMP Agarose (dénomination commerciale d'un produit fabriqué et vendu par Bethesda Research Laboratories, EUA) sensiblement de la même manière qu'à l'étape 6 de l'exemple 1. Le gel agarose î été teinté de bromure d'ethidium et exposé à un rayonnement de lumière ultraviolette, de façon à observer visuellement les fragments d'ADN contenant un gène pour la résistance à la tétracycline et ayant une longueur moléculaire d'environ 3,? kb. Une portion du gel où de tels fragments d'ADN ont été trouvés a été séparée . Au gel séparé1 on a ajouté le tampon TE en une quantité de trois fois le poids du gel, et on a chauffé à 650C pendant 10 minutes pour effectuer une dissolution complète du gel agarose. A la solution résultante, on a ajouté un volume égal de phénol et on a agité, avec ensuite récupération d'une phase aqueuse. A la phase aqueuse on a ajouté un volume égal d'un mélange à 1:1 (volume/volume) de phénol et de chloroforme et on a agité avec ensuite récupération d'une phase aqueuse. A la phase aqueuse on a ajouté un volume égal de chloroforme et on a agité, avec ensuite récupération d'une phase aqueuse. A la phase aqueuse on a ajouté de l'acétate de sodium jusqu'à une concentration finale de 300 mM puis on a ajouté un volume double d'éthanol et on agité.Alors, le mélange a été maintenu au repos à -300C pendant 3 heures et soumis à une centrifugation à 10.000 t/mn (9.000 g) à la température ambiante pendant 10 minutes pour obtenir une boulette d'ADN. La boulette ainsi obtenue d'ADN a été séchée invacuo.
(5) Préparation du plasmide pAG3 et son traitement avec l'enzyme de restriction BamHI 20 unités de l'enzyme de restriction BamHI ont été ajoutées à 4 p9 de 1'ADN du plasmide pAG3 obtenu de Corynebacterium melassecola 22220 (déposé au FRI sous le numéro d'accession FERM BP-559) et purifiées sensiblement de la même manière qu'à la sous-étape (1) de l'étape 1 de l'exemple 2. On a laissé le mélange résultant réagir dans 100 p1 d'un tampon contenant 10 mM de Tris-HCl (pH 7,4), 10 mM de Mg SO4 , 50 mM de NaCl et 1 mM de dithiothréitol à une température de 370C pendant 2 heures. Alors, un volume égal d'un mélange à 1:1 (volume/volume) de phénol et de chloroforme a été ajouté au mélange et on a agité, avec ensuite récupération d'une phase aqueuse.A la phase aqueuse, on a ajouté un volume égal de chloroforme puis on a agité, avec ensuite récupération d'une phase aqueuse.
A la phase aqueuse on a ajouté de l'acétate de sodium jusqu'à une concentration finale de 300 mM puis on a ajouté un volume double d'éthanol, et on a agité. Alors, le mélange a été maintenu au repos à -30 C pendant 3 heures et soumis à une centrifugation à 12.000 t/mn (8.900 g) à la température ambiante pendant 10 minutes pour obtenir une boulette d'ADN. La boulette ainsi obtenue d'ADN a été séchée in vacuo.
(6) Isolement d'un plasmide pAG50 On a fait réagir toute la quantité de chacun des ADN obtenus aux sous-étapes (4) et (5) de l'étape 1 de l'exemple 2 avec 3 unités d'ADN ligase de phage T4 dans 50 pl d'un tampon contenant 50 mM de Tris-HCl (pH 7,4), 10 m de MgCl2 , 10 mM de dithiothréitol, 1 mM de spermidine , 1 mM de ATP et 0,1 mg/ml de BSA à une température de 150C pendant une nuit. L3 température 2 été élevée à 700C et maintenue à 700C pendant 10 minutes pour terminer la réaction.
En utilisant 50 ul du mélange réactionnel de ligase, on a obtenu un transformant résistant à la tétracycline de Corynebacterium melassecola 801 (déposé au FRI sous le numéro d'accession FERM BP-558), selon la même technique de transformation que celle employée à la sousétape (3) de l'étape 1 de l'exemple 2 à l'exception que l'incubation dans le milieu régénérant a été entreprise pendant 7 jours. Ainsi, on a obtenu un transformant résistant à la tétracycline. Un plasmide retenu dans le transformant résistant à la tétracycline obtenu ci-dessus a été séparé sensiblement de la même manière qu'employée à l'étape 1 de l'exemple 2. Alors, le plasmide ainsi obtenu a été soumis à une analyse sensiblement de la même manière qu'employée à l'étape 6 de l'exemple 1. Le plasmide ainsi obtenu a été désigné par pAG5O.
Sensiblement de la même manière qu'on l'a mentionné ci-dessus, des cellules de la souche curée de plasmide de Corynebacterium melassecola 801 (déposé au FRI sous le numéro d'accession FERM BP-558) ont été transformées en utilisant le plasmide ci-dessus obtenu pour obtenir un transformant résistant à la tétracyclinela carte de scission d'endonucléase de restriction du plasmide retenu dans le transformant s'est révélée être la même que celle du plasmide incorporé dans la transformation ci-dessus.
Etape 2 Insertion d'un fragment d'ADN contenant un gène codant pour GDH dans le plasmide pAG5O) A 5 jjg de l'ADN du plasmide pAG50 préparé à la sous-étape (6) de l'étape 1 de l'exemple 2, on a ajouté 15 unités de l'enzyme de restriction EcoRI. On a laissé 1e mélange résultant réagir dans 60 pl d'un tampon contenant 50 mM de tris-HCl (pH 7,4), 10 mM de MgSO4 et 100 mM de NaCl à 370C pendant 2 heures. Alors, la température a été élevée à 70 C et maintenue à cette valeur pendant 10 minutes pour terminer la réaction.Au mélange, on a ajouté de l'acétate de sodium jusqu'à une concentration finale de 300 mN puis on a ajoutéfdeux fois son volume d'éthanol. On a laissé le mélange résultant reposer à -300C pendant 3 heures puis on lia soumis à une centrifugation à 12.008 timn (8.900 g) à la température ambiante pendant 10 minutes pour obtenir une boulette d'ADN. La boulette ainsi obtenue a été séchée sous pression réduite. Alors5 la boulette a été dissoute dans 200 d'un tampon BAPT contenant 50 mM de Tris-HCl (pH 8,4).
A la solution résultante on a ajouté 1 unité de phosphatase alcaline bactérienne (fabriquée et vendue par Takara Shuzo Co., Ltd, Japon).
On a laissé le mélange résultant réagir à 550 pendant 30 minutes. Alors, on a ajouté, de plus, 1 unité de la phosphatase alcaline bactérienne, au mélange eactionel. On a laissé le mélange résultant réagir à 650C pendant 3 heures. Au mélange réactionnel ainsi obtenu, on a ajouté un volume égal de phénol saturé du tampon TNE et on a agité. Alors, on a soumis le mélange à une centrifugation à 12.000 t/mn (8.90D g) à la température ambiante pendant 1Q minutes avec ensuite récupération d'une phase aqueuse.A la phase aqueuse, on a ajouté un volume égal de phénol saturé du tampon TNE et on a agité.
Le mélange a été soumis à une centrifugation dans les mêmes conditions que celles mentionnées ci-dessus pour obtenir une phase aqueuse. A la phase aqueuse on a ajouté un volume égal d'un mélange à 1:1 (volumeivolume) de phénol et de chloroforme, on agité et on au soumis à une centrifugation à 12.000 t/mn (8.900 g) pendant 10 minutes avec ensuite récupération d'une phase aqueuse. A la phase aqueuse on a ajouté un volume égal de chloroforme, on a agité et on a soumis à une centrifugation à 12.000 t/mn (8.900 g) à la température ambiante pendant 10 minutes avec ensuite récupération dTune phase aqueuse. A la phase aqueuse , on a ajouté de l'acétate de sodium jusqu'à une concentration finale de 300 mM puis on a ajouté un volume double d'éthanol, et on agité.Alors, on a laissé le mélange reposer à -300C pendant 3 heures et en lia soumis à une centrifugation à 12.000 t/mn (8.900 g) à la température ambiante pendant 10 minutes pour obtenir une boulette d'ADN. La boulette ainsi obtenue d'ADN a été séchée in vacuo.
On a fait réagir toute la quantité de l'ADN ainsi obtenu et 1 > ,g de l'ADN préparé à l'étape 7 de l'exemple 1 avec 3 unités d'ADN ligase de phage T4 (fabriquée et vendue par Nippon Gene Co., Ltd, Japon) dans 50 ul d'un tampon contenant 50 mM de Tris-HCl (pH 7,4), 10 mM de MgCl2 , 10 mM de dithiothréitol , 1 mM de spermidine, 1 mM de ATP et O,i mg/ml de BSA (fabriquée et vendue par Bethesda Research Laboratories, EUA) à une température de 15 C pendant une nuit. La te-mpErature a été élevée à 700C et maintenue à cette valeur pendant 10 minutes pour terminer la réaction.
Etape 3 (Isolement d'un plasmide hybride pAG1001 contenant un gène codant pour GDH, Corynebacterium melassecola 801 (déposé au FRI sous le numéro d'accession FERM 8P-558) a été mis en culture dans le milieu semi-synthétique mentionné précédemment à 329C pendant 12 heures tout en agitant. On a inoculé 0,5 ml de la culture ainsi obtenue dans 50 ml du même milieu semi-synthétique et mis en culture à 32 C sous agitation. La densité optique (OD) de la culture à 660 nm a été surveillée en utilisant un spectrophotomètre modèle 228 (fabriqué et vendu par Hitachi Ltd, Japon).
Lorsque les lignes (7) sont des lignes de contact électrique, des isolateurs doivent être en outre prévus au niveau des points de suspension des lignes de contact (7) au transversal inférieur (3) ainsi qu'au niveau des points d'ancrage du funiculaire (2) et du transversal (3) sur les poteaux (4).
Les portiques souples tels qu'ils sont actuellement réalisés sont donc lourds, du fait du poids des matériaux et des accessoires utilisés, et très complexes à monter, notamment dans le cas où des isolateurs sont nécessaires.
De ce fait, les coûts en fournitures et de montage sont très élevés. En outre, il y a risque de corrosion des divers cables, lorsque de l'acier galvanisé est utilisé par exemple, et l'impact visuel de ces portiques est important du fait des isolateurs. L'objet de la présente invention est de remédier à ces inconvénients et notamment de prévoir un portique souple, du type précité, qui soit facile à monter, relativement léger et de faible coût en matériau et en montage, tout en assurant une excellente tenue à la corrosion et un très bon isolement.
Ceci est atteint en ce que, dans le portique souple selon l'invention, le funiculaire, le cable transversal inférieur, et chaque pendule est formé par un cable synthétique et en ce que l'ancrage de chaque funiculaire et cable transversal inférieur sur chaque poteau, la liaison de chaque pendule au funiculaire et au transversal inférieur ainsi que la suspension de chaque ligne de contact électrique ou autre au transversal inférieur sont réalisés par des moyens en matériau synthétique ou en alliage léger incorrodable.
Le portique souple ainsi réalisé est beaucoup plus léger que les portiques souples traditionnels, tout en garantissant une excellente tenue à la corrosion, un isolement considérablement amélioré et en étant beaucoup moins coûteux et plus facile à monter du fait de la légèreté des matériaux employés.
Avantageusement, selon une forme d'exécution préférée de l'invention, la liaison de chaque pendule au cable transversal inférieur est effectuée au même niveau de ce cable que la suspension à celui-ci d'une ligne de contact électrique ou autre.
De ce fait, le temps de montage est encore réduit, puisque le nombre de pièces assurant la liaison pendule-cable et la liaison cableligne de contact est diminué.
En outre, du fait que la suspension d'une ligne de contact s'effectue au même niveau du cable transversal inférieur que la liaison à ce cable du pendule, les efforts exercés sur la ligne de contact sont transmis intégralement au cable transversal supérieur porteur, et l'horizontalité du transversal inférieur peut être ajustée très précisément.
Avantageusement, chaque pendule est relié au cable transversal supérieur de façon oscillante et chaque cable transversal supérieur et transversal inférieur est ancré de façon oscillante aux poteaux associes Cette disposition permet au portique souple de se déformer lorsqu'il est soumis à des vents importants et donc d'éviter tout risque de rupture de celui-ci dans ce cas.
Avantageusement aussi, un terminal est associé à chaque extrémité des cables transversal supérieur, transversal inférieur et pendule, chaque terminal étant formé par un fourreau muni d'une partie conique présentant un évidement conique apte à coopérer avec un cône de même conicité pour serrer l'extrémité du cable associé et d'une partie sensi blement cylindrique apte à assurer la fixation du terminal sur un dispositif d'ancrage ou de liaison.
Afin d'assurer l'ancrage oscillant de chaque cable transversal supérieur et inférieur ainsi que la liaison oscillante de chaque pendule au cable transversal supérieur associe, chaque terminal associé présente sur sa partie cylindrique deux trous transversaux coaxiaux, aptes à recevoir un axe d'oscillation, cet axe étant bloqué dans ces trous par des moyens de type goupille, vis, écrou...etc.
L'ancrage de chaque cable transversal sur un poteau est réalisé à l'aide d'un dispositif d'ancrage de type connu muni d'un crochet fixé sur le poteau et à l'aide d'un terminal oscillant solidaire de l'extrémité du cable, la partie cylindrique de ce terminal présentant une échancrure pour son engagement sur le crochet du dispositif d'ancrage.
La liaison de chaque pendule et chaque ligne de contact au cable transversal inférieur est réalisée à l'aide d'une pince de suspension de type connu solidaire du cable transversal inférieur, cette pince de suspension présentant sur chacune de ses extrémités supérieure et inférieure, respectivement un bossage muni d'un filetage intérieur apte à coopérer avec un filetage correspondant formé sur la partie cylindrique du terminal associé au pendule, et une partie filetée apte à coopérer avec une griffe unifilaire solidaire de la ligne de contact, le bossage et la partie filetée étant sensiblement coaxiales.
De toute façon l'invention sera bien comprise et d'autres carat téristiques seront mises en évidence à l'aide de la description qui suit en référence au dessin schématique annexé représentant à titre d'exemple non limitatif une forme de réalisation de ce portique souple.
- Figure I est une vue en perspective d'un- portique souple traditionnel, - Figure 2 est une vue de face en élévation d'un portique selon l'invention, - Figure 3 est, à échelle agrandie, une vue en perspective d'un élément d'ancrage des cables transversaux, - Figure 4 est une vue similaire à celle de figure 3 d!un pendule.
Le portique souple (11 ) selon l'invention, montré à la figure 2, comprend un cable transversal supérieur ou funiculaire (12) et un cable transversal inférieur (13), ancrés à chacune de leurs extrémités sur un poteau (14).
De toute manière, dans une scie à ruban horizontal classique, le dispositif de détection d'amplitude d'écart à la ligne de coupe verticale dans la pièce doit être reréglé à la main, de manière que la valeur permise pour cet écart soit déterminée pour chaque largeur différente de coupe dans la pièce. Ainsi, la relation entre la largeur de coupe et la valeur permise pour l'écart de coupe dans la pièce doit être enregistrée sous forme d'un graphique ou d'un-tableau, afin qu'on puisse s'y référer ultérieurement, et chaque fois que la largeur de coupe dans la pièce change, la valeur permise pour l'écart de
En outre, dans une scie à ruban de type horizontal, lorsque la profondeur de coupe de la lame dans la pièce est excessive, la lame de scie peut glisser sur la roue motrice, et la lame peut ainsi sortir de cette roue. Habituellement, un dispositif qui détecte une variation de vitesse de rotation de la roue menée estutilisé couramment pour la détection de
De plus, dans une scie horizontale à ruban, une brosse métallique rotative est destinée à retirer la sciure qui adhère à la lame lorsque la pièce est en cours de sciage. Cependant, dans une scie horizontale classique, le changement de la brosse métallique rotative n'est pas très simple et pose donc un problème. De plus, dans une scie horizontale classique à ruban, la lame de scie est exposée dans l'espace compris entre l'organe de guidage de la lame entre la roue motrice et la roue menée, et le tronçon de boîtier qui loge la roue menée, et crée donc
L'arête ou angle 12 de la came de commande 11 tournée vers la partie avant 3 de la commande du clignoteur sert de butée lors de l'activation du lignoteur au cours d'un changement de direction vers la gauche.
Une autre butée 13 est prévue sur l'autre côté à la même distance de la commande 1 du clignoteur.
Le levier pivotant 14 de la commande 1 du clignoteur dans ce type de réalisation est fixé approximativement en son centre par un boulon 16.
Le levier 14 représenté en coupe à la fig.3 a une forme rectangulaire.
Aux deux bords d'attaque du levier 14 sont prévus respectivement les tenons 5 et 17 qui s'insèrent en coulissant dans les lumières ou rainures oblongues 4 et 18 dans le prolongement 3 et/ou dans la came 19.
La came 19 tout comme l'autre came 20 se déplacent autour d'un angle bien défini et sont reliées à un arbre à cames 21.
Les cames 19 et 20 ont comme illustré à la fig.4 la forme d'un segment sphérique ayant approximativement le même diamètre sur une moitié du cercle.
Comme illustré par les fig.2 et 3, la came 19 comporte sur sa partie inférieure un décrochement 22 qui se prolonge jusqu'à son bord extérieur.
Les deux angles 23 du décrochement 22 -sont biseautés.
A proximité directe des deux angles 23 sont prévus à hauteur de l'extrémité des biseaux du décrochement 22 des boutons 24A et 248 d'interrupteurs 25A et 258. Les interrupteurs 25A et 258 sont comme illustrés à la fig. 1 disposés suivant les branches d'un V.
L'arbre à cames 21 est fixé en position de rotation par un boulon 26 qui se situe sur une ligne imaginaire passant par l'axe tournant 2 de la commande dJ clignoteur 1, par l'axe 16 du levier 14 et par l'axe de la colonne de direction 27.
L'arbre à cames 21 présente dans sa moitié supérieure une portion cylindrique à l'extrémité inférieure de laquelle est réalisée les deux cames 19 et 20.
Sous les cames 19 et 20 est prévu un logement 28 avec un fond 29 comme illustré sur les fig.2 et 3.
De plus, sur le boulon 26 est fixé le levier 31 pivotant en forme de U dont le bras supérieur 30 repose sur la partie supérieure de l'arbre à cames 21 et dont le bras inférieur 32 repose sur la partie inférieure de l'arbre à cames 21 dans le logement 28.
Pour garantir l'insertion des dents 20 dont est dotée la came 20 dans des dents dont est dotée une roue dentée 36, les bras 30 et 32 du levier 31 en forme de U possèdent aux points de fixation avec le boulon 26 des trous oblongs appropriés dans le sens de l'axe central du levier 31 en forme de U.
Sur le bras supérieur 30 approximativement au milieu se trouve comme illustré à la fiv.1, l'extrémité d'un ressort 33 qui amène le levier 31 aussi bien vers la colonne de direction 27 que vers le boulon 26.
de la dent de coupe représentée sur la figure 8.
En se référant à la figure 1 des dessins, on y voit représentée une scie de jardinier 10 comportant
une lame allongée 12, à une extrémité de laquelle est fi-
xée une poignée 14. La scie 10 est du type à traction, ce qui signifie qu'elle est agencée de manière à couper lorsque la lame 12 est tirée sur et à travers une branche 16 comme cela est indiqué par la flèche 18. Le déplacement
vers l'avant ou déplacement de poussée de la scie est sim-
plement un mouvement de retour pendant lequel il se pro-
duit une faible opération de coupe ou même aucune opéra-
tion de coupe. (Cependant l'invention est aisément appli-
cable à des scies du type à poussée, dans lesquelles les dents de coupe sont inversées). D'une manière générale le sciage implique de saisir la poignée 10 et, tout en tirant la lame suivant la direction 18, on repousse la poignée selon un mouvement de pivotement vers l'avant,
comme cela est indiqué par la flèche 20, de manière à re-
pousser la lame 12 à l'intérieur de la branche 16.
En se référant maintenant aux figures 2 à 5, on comprendra que le bord de coupe de la lame 12 comporte une succession de dents de coupe 22. Chaque dent de coupe 22 comporte une surface avant 24 et une surface inférieure
26. Ces surfaces sont formées de manière à réaliseren coo-
pération la fonction de coupe commandée, décrite précé-
demment. La configuration des dents est complétée par con-
formation de la surface arrière 28 qui, en association avec la surface avant de la dent suivante, forme une gorge , c'est-à-dire le dégagement servant a l'enlèvement des
atteint par une commande de la vitesse de la coupe à pro-
gression verticale vers le bas, jusqu'à une valeur telle qu'aucune charge excessive ne soit imposée au brin tranchant
de-ladite scie à ruban sans fin.
De plus, conformément à la présente invention, il est
également proposé un procédé pour couper une matière pré-