INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
b)- Le DIVISEUR pliant Fig.26 (68) se compose de quatre ou plus panneaux (61) facilement pliables grace a des rainuras Fig.27 (62) ménagées perpen- diculairement au grand Côté du dit panneau.
3 - Les PANIERS: Fig.30 (69).
L'utilisateur de cette MACHINE peut également, pour confectionner des Produits de Bouche tels que : Crèmes Glacées en Bac de 1/2 et 1 Litre, en Ramequins, en Glaces sur Batonnets etc..., employer les PANTERS Fig.30 (69).
Ces pièces, objet de la présente invention sans aucun caractère limitatif quant aux dimensions ni aux matériaux de fabrication utilisé sont ainsi conçus: Deux armatures en profilés plats (64) sont pliées en forme d'Oméga et sont rendues solidaires par soudure ou collage de tringles de petit diamètre (65).
Deux ou plusieures tringles du centre (66) sont légérement plus longues et pliées dans le sens des armatures.
Les parties pliées à angle droit et vers l'extérieur des armatures (64) reposent, pendant la Congélation sur les BARRES Fig.21 (39); les Bacs à Crème Glacée et Moules divers sont déposés sur le fond du PANIER pour Congélation Les différents Moules pour fabrication de Glaces sur Batonnets sont disposées de la même manière-.
son utilisent ce système de PANIERS, cette MACHINE peut aussi congeler des Produits de la Mer. Or, il y a dans ce domaine, un créneau important, celui de le Conservation, avant Collecte, du Poisson - entier ou an quartier - des Crevettes, Scampis, Queue de Langoustes etc... en particulier dans les zones Tropicales des Pays en voie de Développement.
Cette MACHINE peut palier l'absence de la grosse industrie a Conrélation spécialement dans les Zones de Pêche du Tiers Monde où de petites Communautés pourraient traiter et stocker le produit de leur pêche et se créer ainsi de nouveaux débouchés.
COMMUTATEUR POUR UNE CARTE A CIRCUIT IMPRIME L'invention est relative à un commutateur pour une carte à circuit imprimé ayant une pièce rotative de support d.Sun contact en forme de pont, montée à rotation sur un axe perpendiculaire à la carte, ayant des plots de contact fixe, répartis sur une première piste circulaire concentrique audit axe de rotation pour coopérer avec l'un des contacts du pont rotatif, dont l'autre contact coopère avec une deuxième piste circulaire concentrique de contact fixe.
Un commutateur connu du genre mentionné est constitué par un composant monté sur la carte. Ce composa;lt est volumineux et couteux et son montage sur la carte nécessite une fixation mécanique et un raccordement électrique au circuit imprimé relativement couteux.
La présente invention a pour but de permettre la réalisation d'un commutateur fiable et simple permettant d'assurer un grand nombre de positions de commutations stables en utilisant direcrement le circuit imprimé de la carte comme plots de contact.
Le commutateur selon l'invention est caractérisé en ce que la fixation de la pièce rotative sur ladite carte est réalisée par des crochets d'encliquetage, portés par la pièce rotative en s'étendant parallèlement autour dudit axe qui s'encliquètent dans un trou rond ménagé dans la carte fixe et que l'indexage en position de la pièce rotative par rapport au circuit porté par la carte est réalisé par des crans, répartis sur le pourtour interne dudit trou, avec lesquels coopèrent élastiquement une ou plusieurs protubérances portées par lesdits crochets.
Le commutateur est constitué de trois pièces, en l'occurrence la carte avec le circuit imprimé formant les plots de contact fixe, le pont de contact en forme de lame métallique élastique et la pièce rotative portant le pont de contact qui est agencé en bouton de manoeuvre encliqueté dans un trou ménagé dans la carte.
L'indexage en position de la pièce rotative est réalisé au niveau de la fixation mécanique et plus particulièrement par les becs d'encliquetage portant sur leur face en regard du trou de la carte des protubérances pénétrant dans les crans ménagés sur le pourtour interne du trou de la carte. Les plots de contact fixe sont des parties planes du circuit imprimé afin de limiter l'usure due au frottement du pont de contact rotatif. Le bouton de m anoeuvre présente sur son pourtour externe des rainures permettant un actionnement par un outil, notamment un tournevis ou une manoeuvre manuelle sur une surface non lisse. Les positions d'indexage sont marquées par tout moyen approprié sur le pourtour externe du bouton permettant un repérage facile de la position du commutateur.Le bouton de manoeuvre porte sur sa périphérie externe des trous de plombage, dont le nombre correspond au nombre de positions de commutation, par exemple de 12, chaque trou permettant le passage d'un fil de plombage, qui verrouille en rotation le bouton par rapport à une partie fixe, par exemple un bottier de logement de la carte à circuit imprimé.
vers procédés qui existent dans l'industrie, tels que le procédé de dépôt chimique "Titan Kote" (marque déposée),
de la firme Richter Precision Incorporated, ou un procé-
dé de dépôt chimique de la firme Blazers Tool Coating,
Inc. de North Tonawanda, New-York, E.U.A.. Dans les pro-
cédés de dépôt chimique, des composés appropriés sont mé-
langés pour former des gaz de nitrure de titane qui, en-
suite, se fixent chimiquement à la surface de l'âme 30
ou se déposent sur cette surface. On peut également uti-
liser un processus de liaison ionique pour former le re-
vêtement 32.
Ensuite, et comme on l'a représenté sur la figu-
re 5, on meule la face 36 de la partie tranchante 24 au moyen de la meule 43 ou d'une autre meule, pour enlever la partie correspondante du revêtement 32, pour affûter
la partie tranchante 24 et pour dégager un bord du revê-
tement 32 de façon à former l'arête tranchante 40. C'est
en celà que résident le principe et l'avantage de la la-
me 10. Etant donné que la face 25 est revêtue de la mati-
Une partie du boîtier (1) assure le recueil des déchets tombés du tapis, afin de les diriger vers le broyeur.
Un regard vitré (4) permet de visionner le bon fonctionnement du broyeur.
La fig 5 montre l'appareil vue d'une face, avec la pompe (1) le panier filtre (2) le broyeur (3) le tuyau d'eau (4).
Egalement on peut voir une partie du boîtier (5) en forme d'entonoir assurant la descente des déchets, ainsi que le tuyau (4) d'eau aidant la chute des déchets.
La fig 6 montre une partie du boîtier inférieur (1), le moteur (2) la poulie d'entraînement (3).
Le panneau électrique de commande de l'appareil, visible sur la fig 7, fait apparaitre, le bouton d'avancement (1) du tapis pour l'opération - mise de la table - et débarrassage des épluchures, lors de la préparation des repas.
Egalement, sur ce panneau électrique se trouve le programmateur (3) avec différents cycles (2), pour commander le système de lavage.
Enfin, le minuteur (4) qui permet de régler le temps de broyage des déchets.
Ce système permet un lavage parfait des instruments à vaisselle étant donné que ceux-ci se trouvent parfaitement positionnés, individuellement, et de plus la rotation du tapis permet aux jets d'eau de frapper tous les angles possibles des objets à laver.
Ainsi le temps de lavage peur être considérablement réduit comparativement au lave-vaissele traditionnel en raison des avantages précités, assurant ainsi des économies d'énergie.
L'ensemble de l'appareil forme un meuble déplaçable et peut s'insérer dans une cuisine traditionnelle.
Le système, représenté schématiquement par la fig 1 est conçu avec un broyeur à ordures. Mais on peut très bien envisager le remplacement du broyeur par une poubelle emménagée, afin de récupérer les déchets.
COMPOSITION MEDICAMENTEUSE A BASE DE PLANTES A USAGE.
INTERNE.
L'invention concerne une nouvelle composition médicamenteuse à base de plantes à usage interne pour administration par voie bucale.
L'invention concerne une composition médicamenteuse du type en question qui soit facile à préparer et à administrer et donne d'excellents résultats dans les traitements préventifs et curatifs spécialement comme antiinflammatoires, antalgiques, antisclérosants tissulaires, draneurs et reminéralisants, tant pour l'animal que pour l'humain.
Une telle souche mutante peut être obtenue par des méthodes habituelles. Par exemple, une telle souche mutante peut être obtenue comme suit. D'abord, des cellules de la bactérie ci-dessus mentionnée sont mutées en utilisant la N-méthyl-N'-nitro-N-nitroso guanidine pour obtenir des cellules mutantes. Des cellules mutantes, les cellules mutantes auxotrophes qui nécessitent l'acide glutamique sont choisies et isolées. Les cellules mutantes ainsi isolées sont soumises à des déterminations concernant l'activité de CS, AH et ICDH, et une cellule mutante ne présentant pas d'activité de CS, AH ou ICDH est choisie.
La cellule ainsi choisie est mise en culture pour obtenir une souche mutante déficiente en CS, AH ou ICDH. La mutation d'une bactérie peut également être effectuée par des techniques habituelles, par exemple irradiation aux ultraviolets, irradiation aux rayons X , traitement par divers mutagènes, traitement par des transposons, etc.
Alternativement, la souche connue déficiente en CS, AH ou ICDH peut être obtenue de dépôts publics ayant une telle souche.
(5) Des transformants obtenus à l'étape (4) cidessus, le transformant qui retient un ADN recombinant contenant un gène codant pour CS, AH ou ICDH est choisi et isolé par le critère de l'auxotrophie de l'acide glutamique. A titre d'exemple, les transformants sont mis en culture dans un milieu synthétique ne contenant pas d'acide glutamique à 20 à 370C selon une méthode habituelle.
Les cellules croissant dans le milieu de synthèse ne contenant pas d'acide glutamique sont isolées . Les cellules ainsi isolées sont mises séparément en culture dans le milieu pour obtenir des souches. Les cellules des souches respectives sont recueillies, avec ensuite extraction pour obtenir des extraits de cellules. Les extraits respectifs de cellules sont soumis à une mesure de l'activité de CS, AH et ICDH selon une méthode habituelle pour choisir une souche présentant une activité de CS, AH ou ICDH. La souche présentant l'activité de CS, AH ou ICDH a un fragment d'ADN contenant un gène codant pour CS, AH ou ICDH. La souche est mise en culture pour cloner le fragment d'ADN. Le fragment d'ADN est isolé des cellules de la souche selon une méthode habituelle. Par exemple, le fragment d'ADN peut être isolé des cellules comme suit.D'abord, des cellules de la souche, l'ADN recombinant contenant le fragment d'ADN souhaité est isolé par une méthode habituelle et l'ADN recombin-ant isolé est digéré par une enzyme de restriction pour obtenir un mélange d'ADN d'un ADN de vecteur et d'un fragment d'ADN contenant un gène codant pour CS, AH ou ICDH. Alors le mélange d'ADN est soumis à une electrophorèse sur gel agarose pour séparer le mélange d'ADN en ADN du vecteur et fragment d'ADN souhaité. Du gel agarose résultant, une portion qui contient le fragment d'ADN souhaité est découpée et dissoute dans une solution aqueuse comme un tampon, et est soumise à des extractions, successivement, au phénol, au phénol-chloroforme et au chloroforme.L'extrait ainsi obtenu est soumis à une précipitation dans ltéthanol, pour ainsi obtenir le fragment d'ADN souhaité contenant un gène codant pour CS, AH ou ICDH.
L'un des exemples spécifiques du fragment d'ADN de la présente invention est obtenu de la bactérie Corynebacterium melassecola 801 déposée au Fermentation Research Institute (appelé ci-après "FR1") sous le numéro d'accession FERM BP-558.
Dans le cas où l'enzyme qui est codée par le gène contenu dans le fragment d'ADN est CS, le fragment d'ADN obtenu de la bactérie ci-dessus mentionnée a les caractéristiques suivantes (1) Le fragment d'ADN a une longueur moléculairè d'environ 4,9 kb.
(2) Le fragment d'ADN a ses deux bouts collants formés par clivage par XabI.
(3) Le fragment d'ADN a les sites suivants de clivage par endonucléase de restriction : un premier site BamHI, un premier site XhoI, un site SalI, un second site BamHI, un premier site HindIII, un second site XhoI, un site PstI et un second site HindIII, ledit premier site XhoI, ledit site SalI, ledit second site BamHI, ledit premier site HindIII, ledit second site XhoI, ledit site PstI et ledit second site HindIII étant respectivement placés à environ 1,5 kb, environ 3,2 kb, environ 3,2 kb, environ 3,5 kb, environ 3,8 kb, environ 3,8 kb et environ 4,6 kb dudit premier site BamHI.
Les sites de clivage par endonucléase- de restriction (souvent appelés simplement ci-après "sites de restriction") du fragment d'ADN sont déterminés comme suit. D'abord, l'ADN recombinant contenant le fragment d'ADN est obtenu des cellules de la souche ci-dessus mentionnée par une méthode habituelle. Alors, le fragment d'ADN est obtenu de l'ADN recombinant en utilisant des enzymes de restriction. Le fragment d'ADN ainsi obtenu est complètement digéré en présence d'un excès d'une enzyme de restriction.
Alors, les produits digérés obtenus subissent une électrophorèse sur un gel agarose à 1% (poids/volume) puis sur un gel de polyacrylamide à 4% (poids/volume) selon la méthode de Maniatis et autres (T. Maniatis, E.F. Fritsch, J. Sambrook: Molecular Cloning A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, New York, pages 50-185, 1982). Après accomplissement de l'électrophorèse, le gène résultant est immergé dans une solution aqueuse à 1 pg/mQ de bromure d'éthidium pendant 30 minutes pour teinter le gel. Le gel résultant est irradié d'une lumière ultraviolette et le nombre de fragments résolvables est compté pour déterminer le nombre de sites de restriction. La longueur moléculaire de chacun des fragments scindés est déterminée comme suit.Dans le cas d'une électrophorèse sur gel agarose, des fragments qui sont obtenus par digestion de 1'ADN X phagique de E. coli par HindIII et dont les longueurs moléculaires sont respectivement de 23130 pb, 9419 pb, 6557 pb, 4371 pb, 2322 pb, 2028 pb, 564 pb et 125 pb dans l'ordre de plus grande longueur moléculaire, subissent une électrophorèse sur le même gel agarose pour former des motifs standards de migration des fragments. La longueur moléculaire de chacun des fragments obtenus par digestion du fragment d'ADN est déterminée par comparaison avec les motifs standards de migration.Dans le cas d'un gel de polyacrylamide, les fragments qui sont obtenus par digestion de l'ADN du -X174 phage de E. coli par HaeIII et dont les longueurs moléculaires sont respectivement de 1353 pb, 1078 pb, 872 pb, 603 pb, 310 pb, 281 pb, 271 pb, 234 pb, 194 pb, 118 pb et 72 pb dans l'ordre de plus grande longueur moléculaire, subissent une électrophorèse sur le même gel de polyacrylamide, pour ainsi former des motifs standards de migration des fragments. La longueur moléculaire de chacun des fragments obtenus par digestion du fragment d'ADN est déterminée par comparaison avec les motifs standards de migration.
Pour déterminer la longueur moléculaire de chaque fragment, dans le cas où la longueur moléculaire du fragment est d'environ 0,1 kb à moins de 1,0 kb, on adopte les données obtenues par l'électrophorèse sur gel de polyacrylamide à 4% (poids/volume). Par ailleurs, dans le cas où la longueur moléculaire du fragment est supérieure à 1,0 kb, on adopte les données obtenues par électrophorèse sur gel agarose à 1% (poids/volume). La longueur moléculaire du fragment d'ADN est obtenue en additionnant les longueurs moléculaires des fragments obtenus par un clivage par enzyme de restriction.
Les sites de restriction du fragment d'ADN peuvent être déterminés par digestion complète du fragment d'ADN par diverses sortes d'enzymes de restriction , par électrophorèse des fragments résultants sur un gel agarose puis sur un gel de polyacrylamide et analyse des résultats obtenus.
Le fragment d'ADN peut être modifié tant.que cela ne nuit pas au gène codant pour CS. Par exemple, une partie du fragment d'ADN peut être éliminée tout en retenant le gène codant pour CS dans le fragment d'ADN pour obtenir un dérivé par délétion du fragment d'ADN.
La délétion partielle du fragment d'ADN peut être effectuée par digestion du fragment d'ADN par une ou plusieurs enzymes de restriction.
Comme exemples spécifiques d'un tel dérivé par délétion, on peut mentionner les fragments d'ADN suivants, par exemple.
ETUDES DE VACCINATION CHEZ LE PORC. Des porcs sevrés (âgés de 4 à 6 semaines) et des truies gravides ont été obtenus à partir de troupeaux de porcs connus pour être dépourvus de maladies pseudo-rabique. La sensibilité des animaux d'essai à la pseudo-rage a été de plus vérifiée en vérifiant dans le sérum de porc l'absence d'anticorps neutralisant contre le virus pseuso-rabique (VPR). Les porcs sevrés et des porcelets agés de 3 à 4 jours ont été traités par inoculation intramusculaire de 1 ml de liquide viral contenant environ 104 à 1 o6 unités infectieuses (DICT50). Les animaux ont été observés chaque jour après la vaccination en ce qui concerne des réactions néfastes (signes cliniques d'une maladie à VPR) et les températures corporelles ont été notées.Des échantillons de sécrétions amygdaliennes ont été obtenues et cultivées pour déterminer si le virus vaccinal était capable de se répandre et de s'étendre à d'autres animaux. L'immunité a été déterminée en mesurant les teneurs en anticorps sériques contre le VPR à des intervalles d'une semaine et, dans certains cas, en mettant à l'épreuve les porcs vaccinés par contact avec le virus virulent. Dans ce dernier cas, les animaux vaccinés et un groupe de porcs non vaccinés ont été soumis à une inoculation de souche Iowa S-62 de VPR virulent, en utilisant une quantité de virus provoquant une maladie à VPR chez au moins 80 % du groupe de porcs non vaccinés. Cela a été effectué environ 28 jours après vaccination. Les animaux mis à l'épreuve ont été observés chaque jour en ce qui concerne des signes de maladie et des températures corporelles accrues. Une autopsie a été effectuée sur les animaux qui sont morts et des tissus sélectionnés ont été examinés et cultivés pour déterminer la présence de VPR.
EXEMPLES EXEMPLE 1 S-PRV-004 On a produit un virus qui présente une délétion dans la région de jonction entre l'ADN long unique et la séquence de répétition interne du VPR, et une délétion dans le gène thymidine-kinase endogène du VPR dans la région longue unique. Dans la délétion de la région de jonction, on a effectué un clonage du gène thymidine-kinase (TK) du virus herpes simplex de type 1 (VSH-1) sous le contrôle du promoteur ICP4. Ce virus est appelé S-FRV-004.
Pour produire ce virus, on a tout d'abord cloné le fragment SalI NO 1 du VPR. L'ADN du VPR a été préparé, puis coupé avec l'enzyme de restriction SalI. L'ADN coupé a été soumis à une électrophorèse sur un gel d'agarose et la bande SalI la plus grande (15 kb) a été purifiée par séparation du gel (voir EXTRACTION PAR LE PHENOL DE L'ADN DE L'AGAROSE). L'ADN purifié a été introduit par ligation dans le plasmide pSP64 (voir LIGATION) et le mélange d'ADN a été utilisé pour transformer E. coli HB101 suivant Maniatis et collaborateurs (1). Les sites de restriction du clone SalI NO 1 ont été cartographiés.
Le procédé de recombinaison homologue a été utilisé pour produire S-PRV:-004 (voir figure 2). La position exacte de la région de jonction a été déterminée par séquence de l'ADN du fragment SalI N 1. Il a été trouvé que la région de jonction était placée entre deux sites StuI (figure 2A). Deux fragments d'ADN provenant du clone SalI ont été utilisés pour produire le vecteur d'homologie en vue d'une recombinaison. L'un était un fragment provenant de BamHI N 8', de StuI à BamHI, et l'autre était un fragment provenant de BamHI N 8, de BamHI à StuI (voir figures 1B et 2A). Ces fragments ont été clonés dans le site BamHI de psP64. Ce plasmide a été coupé avec StuI, et un fragment PvuII de 3,8 kb, obtenu auprès de B.Roizman (16), The University of Chicago, et contenant le promoteur ICP4 sur le fragment BamHI-N et le gène TK de VSH-1 sur le fragment BamHI-Q, fusionnés au niveau des sites BamHI/BglII, a été introduit par ligation dans le site Stuc. Le résultat final de cette série de clonages était un plasmide qui présentait une délétion de 3 kb entre les sites StuI, et dans lequel 3,8 kb du gène TK étranger ont été incorporés (voir figure 2B). Le gène TK a été ainsi entouré de séquences d'ADN du VPR afin de permettre l'insertion du gène étranger dans le génome du VPR par recombinaison homologue. L'ADN plasmidique a été transfecté dans des cellules d'épiderme de lapin avec l'ADN du VPR intact provenant de S-RS -003, qui est un virus pseudo-rabique qui présente une délétion dans le gène TK endogène.La souche de transfection de virus a été choisie dans du milieu HAT et le virus a été identifié et sélectionné par analyse du schéma de restriction d'ADN isolé des cellules infectées.
S-PRV-004 contenait le gène TK de VSH-1 et effectuait l'expression de ce gène, comme l'ont démontré l'incorporation de 14C-thymidine dans une analyse sur plaque décrite dans Tenser et collaborateurs (40) et l'analyse directe d'activité de TK dans des extraits cellulaires infectés, suivant le mode opératoire de Cheng et collaborateurs (41). L'emplacement de ce gène dans le génome du VPR est indiqué sur la figure 2C.- Six porcs en âge d'être sevrés ont été vaccinés avec 105'0 unités infectieuses de S-PRV-004 et mis à l'épreuve par contact avec du VPR virulent 28 jours plus tard, suivant le mode opératoire des ETUDES DE VACCINATION CHEZ LE PORC. Les porcs vaccinés sont restés sains après vaccination et ont produit un anticorps sérique neutralisant contre le VPR (voir le tableau I ci-dessous).Le virus vaccinal n'a pas été recueilli dans les sécrétions nasales ou amygdaliennes.Après exposition au VPR virulent, 83 % des porcs vaccinés étaient protégés contre la maladie à VPR. TABLEAU I REPONSES DE PORCS SEVRES VACCINES AVEC S-PRV-004 ET MIS A L'EPREUVE PAR CONTACT AVEC DU VPR VIRULENT Après vaccination Après mise à l'épreuve Anticorps Anticorps Teneur en Porc Jour Jour Jour Signes Isolement Jour Jour Signes Isolement antigène N 14 21 28 cliniques du virus 7 14 clinquesa du virus 1 32 32 16 Aucun Aucun > 64 > 64 F Ecouvillons 2 16 32 8 Aucun Aucun > 64 > 64 F Ecouvillons 105,0 3 8 16 4 Aucun Aucun > 64 > 64 F Ecouvillons 4 4 16 8 Aucun Aucun > 64 > 64 F,C Ecouvillons 5 16 16 8 Aucun Aucun > 64 > 64 F Ecouvillons 6 8 8 4 Aucun Aucun > 64 > 64 F Ecouvillons a Légende des signes cliniques :C = Système nerveux central, F = fébrile EXEMPLE 2 S-PRV-005 S-PRV-005 est un virus pseudorabique qui présente une délétion dans la région de répétition et dans le gène TK endogène de VPR dans la région longue unique, et présente une insertion du gène TK de VHS -1 sous le contrôle du promoteur ICP4 incorporé aux deux copies de la région de répétition entre le site XbaI et le site HpaI dans le fragment BamHI NO 5 (voir figure 3).
Pour produire ce virus, on a tout d'abord obtenu un clone de fragment BamHI NO 5 provenant dtu VPR (figure 1B).
Le fragment BamHI NO 5 a été cloné dans le plasmide pACYC184 au niveau du site BamHI (voir LIGATION ci-dessus). Une carte du fragment BamHI NO 5 est présentée sur la figure 3A.
Le plasmide contenant le fragment BamHI NO 5 a été coupé avec XbaI et HpaI et le plasmide linéarisé a été purifié (voir EXTRACTION PAR LE PHENOL DE L'ADN DE L'AGAROSE).
Le fragment PvuII de 3,8 kb décrit dans l'exemple 1 et contenant le gène TK et le promoteur ICP4 a été purifié de manière similaire. Le site XbaI a été comblé pour obtenir une extrémité franche (voir REACTION DE COMBLEMENT DE BRECHES PAR UNE POLYMERASE), et les deux ADN ont été mélangés et réunis par ligation. Le plasmide résultant qui avait incorporé le gène TX dans la délétion XbaI-HpaI a été sélectionné et analysé par cartographie de restriction (figure 3B).
Le plasmide contenant le gène TK entouré par les séquences BamHI NO 5 du VPR a été utilisé pour transfecter des cellules d'épiderme de lapin avec de l'ADN purifié provenant de S-PRV-003, un virus pseudorabique qui présentait une délétion dans le gène TK endogène. Le VPR recombinant résultant qui avait incorporé le gène TK de VHS-1 dans la délétion dans les séquences de répétition a été sélectionné et purifié à partir de la souche de transfection par le mode opératoire intitulé SELECTION D'HERPES VIRUS RECOMBINANT'PAR HYBRIDATION sans aucune sélection antérieure.