INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
On connait un filet à enroulement, un genre de réseau élastique, de la société norvégienne Dacon Sub Sea A/S, où un coté du filet est fixé dans le plat-bord et l'autre est remonté par traction, la personne dans le filet s'enroulant pour remonter sur le côté du bateau. Le réseau est long pour les bords hauts, la personne ne se prel.' pa dedans et n'trt pas retenue et le dispositif est donc inadapté par mer fcarc. Le dipotif ne peut étie déplacé jusqu'à la personne, il est fixé au plat-bord et conçu uniquen;int pour des bateaux de sauvetage patrouillant jusqu'à un blessé par mer calme et n'est pas prévu pour un autre usage, par exemple il ne convicnt pas aux navires courants.
Ce n'est habituellement que par temps de tempête et par mer forte que des personnes tombent à l'eau, que des navires coulent et que les secours sont difficiles. Une tempête de neige, le gel et l'obscurité et un groupe de dix hommes sur un radeau en train de couler sur le côte du bateau, noir et glissant d'huile, à seulement deux mètres du plat-bord, vent fort et vagues de 12 mètres de haut ; aucun espoir de se mettre à l'eau ; aucun des disposi- tifs de secours connus n aurait pu être utile. Un équipage de 10 membres sur un bateau de pêche a secouru quatre hommes vivants, mais deux sont morts. Celà est un compte rendu exact d'un accident réel.
Des personnes grelottantes et mourantes, incapables de comprendre la langue de leurs sauveteurs ne peuvent rigoureusement rien faire d'autre que tâtonner dans la confusion et dans l'obscurité.
Cela suffit pour nécessiter un sauvetage avec un filet selon l'invention.
''invention concerne un filet de sauvetage constitué d'un filet, par exemple de 1,4 sur 2,5 mètres carrés avec des mailles de 300 mm à 500 mm en fil de chalut, où les bords sont reliés en cordes latérales reliées à des cordes de traction au niveau de l'extrémité antérieure et à une corde de sauvetage au niveau de l'extrémité postérieure et pourvus de flotteurs, tandis que l'extrémité postérieure est équipée d'une corde plombée. Les cordes latérales sont munies de verrous ouvrables qui peuvent s'accrocher dans le filet, fermant le filet autour du corps.
Lorsque le filet est tiré à bord, le corps se prend dans le filet et ne peut se dégager ni tomber du filet.
Le bout de la corde de traction est fixé sur le pont et le filet est jeté par-dessus le bord à une personne dans l'eau, qui se déplace lentement sur la corde plombée t l'exttémite postéiure.
La lame peut être montée dans un appareil de coupe auto-
matique qui imprime un mouvement alternatif à la lame pendant la coupe. La lame de couteau comprend une partie
tranchante qui possède une âme et un revêtement recou-
vrant une partie de l'âme, l'âme étant formée d'une ma-
tière à usure relativement forte et le revêtement étant
formé d'une matière à usure relativement faible.
Selon une caractéristique de l'invention, la ma-
tière à usure relativement faible peut être plus dure
que la matière à forte usure. La partie tranchante possè-
de deux faces adjacentes; l'une des faces est formée par la matière de revêtement dure, à usure relativement faible et l'autre face est formée de la matière d'âme
tendre à usure relativement forte. Avec cette concep-
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tion, le revêtement dur à usure relativement faible dépo-
sé sur la partie tranchante, est toujours exposé au con-
tact de la pièce pour assurer une coupe efficace. En ou-
tre, la face tendre, à usure relativement forte, tend à s'user plus rapidement que la face dure à usure relative- ment faible, en dégageant ainsi davantage la face dure à usure relativement faible, et en conférant ainsi à la
(Transformation) La cellule curée de plasmide préparée à l'étape ci-dessus a été mise en culture dans le milieu semisynthétique mentionné ci-dessus à 32OC pendant 12 heures tout en secouant. On a inoculé 0,5 mt de la culture ainsi obtenue dans 50 m du même milieu semi-synthétique et mis en culture à 320C tout en secouant. La densité optique (DO) de la culture à 660 nm a été surveillée en utilisant un spectrophotomètre modèle 228 (fabriqué et vendu par Hitachi, Ltd., Japon). Au moment où la valeur de OD est devenue de 0,2, de la pénicilline G a été ajoutée à la culture de manière que la concentration en pénicilline soit de 0,3 unité/mt . La culture résultante a été incubée à 32 C pendant 1,5 heures. De la culture ainsi obtenue, des cellules ont été recueillies et mises en suspension dans 5 m4 d'un milieu R Milieu préparé en dissolvant 5 g de glucose, 10 g d'acide casamino, 10 g d'extrait de levure, 0,35 g de K2HPû4 , 0,15 g de KH2P04, 137 g de saccharose, 5,73 g d'acide N-tris-(hydroxyméthyl)méthyl- 2-aminoéthanesulfonique (appelé ci-après "TES"), 0,95 g de MgC12 et 1,11 g de CaC12 dans de l'eau dont les ions étaient échangés et distillée de manière que le volume total soit de 1 litre, et en ajustant à pH -7,2 avec NaOH pour obtenir une suspension de cellules.A 4,5 m l de la suspension de cellules, on a ajouté 0,5 mi du milieu R contenant 3 mg/mf de lysozyme (stérilisé en utilisant un filtre Millipore) avec ensuite incubation à 35 C pendant 5 heures pour ainsi former des protoplastes. La culture résultante a été soumise à centrifugation à 7.000 t/mn (4.500 g) à SOC pendant 7 minutes pour obtenir les protoplastes. Les protoplastes ainsi obtenus ont été mis en suspension dans 5 mt du milieu R. La suspension des protoplastes a été soumise à centrifugation dans les mêmes conditions que celles mentionnées ci-dessus pour obtenir des protoplastes. Les protoplastes ont été mis en suspension dans 5 me du milieu R pour obtenir un suspension de protoplastes.
A 0,5 mi de la suspension de protoplastes, on a ajouté un mélange de 50 8 du mélange réactionnel de ligase obtenu à la sous-étape (2) de l'étape 1 de l'Exemple 4 et 50 r2 d'une solution 2 x TSMC (TSMC est une solution aqueuse contenant TES 25 mM, saccharose 0,4 M, MgCl2 10 mM et CaCl2 30 mM et ajustée à pH 7,2 en utilisant NaOH). Alors, au mélange résultant, on a doucement ajouté 1,5 mi d'une solution de PEG Solution préparée en dissolvant un polyéthylène glycol ayant un poids moléculaire de 6000 dans la solution TSMC, jusqu'à une concentration finale de 40% (poids/volume) 3 , et on a laissé reposer à température ambiante pendant 2 minutes.Alors, au mélange, on a ajouté 5 ml d'une solution R-PVP t solution préparée en dissolvant de la polyvinyl pyrrolidone (appelée ci-après "PVP" ) dans le milieu R à une concentration de 40 g/Q 1 avec ensuite centrifugation à 4.000 t/mn (1.800 g) à température ambiante pendant 10 minutes pour former un produit surnageant et des précipités. Le produit surnageant a été enlevé. Aux précipités,on a ajouté 5 mt de la solution R-PVP, avec ensuite centrifugation dans les mêmes conditions que celles mentionnées ci-dessus pour obtenir des protoplastes comme précipités. Les protoplastes ainsi obtenus ont été doucement mis en suspension dans 0,5 me de la solution R-PVP.La suspension a été incubée à 30 C pendant 3 heures et diluée avec la solution R-PVP pour obtenir une suspension diluée. La suspension diluée a été inoculée dans un milieu régénérant contenant 10 yg/mt de tétracycline. Le milieu régénérant était un milieu d'agar en couche double comprenant une couche inférieure du milieu d'agar obtenue en ajoutant PVP et de l'agar à des concentrations respectives de 40 9/t et 15 g/ au milieu R et, superposée sur la couche inférieure, une couche supérieure du milieu d'agar obtenue en ajoutant PVP et de l'agar aux concentrations respectives de 40 g/4 et 6 g/e au milieu R, et l'inoculation de la suspension diluée ci-dessus mentionnée a été effectuée par son mélange avec 3 me de la couche supérieure fondue du milieu d'agar avant de former la couche double du milieu d'agar.
Le milieu régénérant résultant a été incubé à 32OC pendant 4 jours pour former des souches résistantes à la tétracycline.
Des souches résistantes à la tétracycline ainsi formées, on a choisi au hasard 10 souches et on les a fait croître sous une forme biologiquement pure sur le milieu d'agar LG contenant 10 ,ug/mt de tétracycline.
De chacune des souches, un plasmide a été isolé sensiblement de la même manière qutà la sous-étape (7) de l'étape 1 de l'Exemple 4. Les sites de restriction et la longueur moléculaire du plasmide ainsi isolé ont été déterminés en utilisant 0,5 ug du plasmide et les enzymes de restriction EcoRI, HindIII, PstI, BamHI, BglII (fabriqués et vendus par Nippon Gene Co., Ltd., Japon) et XbaI, sensiblement de la meme manière qu'à l'étape 6 de l'Exemple 1 pour ainsi obtenir un plasmide pAG14.
En utilisant l'ADN du plasmide ainsi obtenu, on a transformé des cellules de la souche curée de plasmide de Corynebacterium melassecola 22243 (déposé au Fermentation Research Institute sous le numéro d'accession FERMBP-560), sensiblement de la même manière qu'on l'a mentionné cidessus pour obtenir un transformant résistant à la tétracycline. Du transformant ainsi obtenu, on a séparé un plasmide avec ensuite analyse sensiblement de la même manière qu'on l'a mentionné ci-dessus. Par suite, on a trouvé que le plasmide séparé avait la même carte de clivage par endonucléase de restriction que celle du plasmide pAG14.
(4) Isolement,du plasmide pAG14, d'un fragment d'ADN contenant un gène pour la résistance à la tétracycline A 20 p9 du plasmide pAG14 obtenu à la sous-étape (3) de l'étape 1 de l'Exemple 4, on a ajouté 100 unités de chacune des enzymes de restriction BamHI et BglII. On a laissé le mélange résultant réagir dans 100 mi d'un tampon contenant Tris-HC1 10 mM (pH 7,4), MgSO4 10 mM, NaCl 50 mM et dithiothréitol 1 mM à une température de 37 C pendant 2 heures. Le plasmide digéré a été soumis à une électrophorèse sensiblement de la même manière qu'à l'étape 7 de l'Exemple 1. Le gel agarose a été teinté de bromure d'éthidium et exposé à une irradiation à une lumière ultraviolette de manière à observer, visuellement, un fragment d'ADN contenant un gène pour la résistance à la tétracycline et ayant une longueur moléculaire d'environ 3,1 kb. Une partie du gel où l'on avait trouvé un tel fragment d'ADN a été découpée. Le gel découpé a été soumis à l'extraction du fragment d'ADN sensiblement de la même manière qu'à l'retape 7 de l'Exemple 1 pour obtenir un fragment d'ADN contenant un gène pour la résistance à la tétracycline et ayant une longueur moléculaire d'environ 3,1 kb.
(5) Préparation du plasmide pAG3 et son traitement par l'enzyme de restriction BamHI On a ajouté 20 unités de l'enzyme de restriction BamHI à 4 pg de l'ADN du plasmide pAG3 obtenu de Corynebacterium melassecola 22220 (déposé au Fermentation Research Institute sous le numéro d'accession FERM BP-559) et on a purifié sensiblement de la même manière qu'à la sous-étape (1) de l'étape 1 de l'Exemple 4. On a laissé le mélange résultant réagir dans 100 m e d'un tampon contenant Tris-HCl 10 mM (pH 7,4), MgS04 10 mM, NaCl 50 mM et dithiothréitol lmM à une température de 37 C pendant 2 heures. Alors, on a ajouté, au mélange, un volume égal d'un mélange à 1:1 (volume/volume) de phénol et de chloroforme et on a soumis à agitation avec ensuite récupération d'une phase aqueuse.A la phase aqueuse, on a ajouté un volume égal de chloroforme et on a soumis à agitation, avec ensuite récupération d'une phase aqueuse.
A la phase aqueuse, on a ajouté de l'acétate de sodium jusqu'à une concentration finale de 300 mM puis un volume double d'éthanol. Alors, le mélange a été maintenu au repos à 300C pendant 3 heures et soumis à centrifugation à 12.000 t/mn (8.900 g) à température ambiante pendant 10 minutes pour obtenir une boulette d'ADN. La boulette ainsi obtenue d'ADN a été séchée sous pression réduite.
(6) Isolement du plasmide pAG50 On a fait réagir la totalité de la quantité de chacun des ADN obtenus aux sous-étapes (4) et (5) de l'étape 1 de l'Exemple 4 avec 3 unités d'ADN ligase T4 phagique dans 50 t d'un tampon contenant Tris-HCl 50 mM (pH 7,4), MgCl2 10 mM, dithiothréitol 10 mM , spermidine 1 mM, ATP 1 mM et 0,1 mg/m de BSA à une température de 150C pendant une nuit. La température a été élevée à 700C et maintenue à 70 C pendant 10 minutes pour terminer la réaction.
En utilisant 50du mélange réactionnel de ligase, on a obtenu un transformant résistant à la tétracycline de Corynebacterium melassecola 801 (FERM BP-558) selon la même technique de transformation que celle employée à la sous-étape (3) de l'étape 1 de l'Exemple 4, à l'exception que l'incubation dans le milieu régénérant a été entreprise pendant 7 jours. On a ainsi obtenu un transformant résistant à la tétracycline. Un plasmide retenu dans le transformant résistant à la tétracycline obtenu ci-dessus a été séparé du transformant sensiblement de la même manière qu'à la sous-étape (1) de l'étape 1 de l'Exemple 4.Alors, le plasmide ainsi obtenu a été soumis à une analyse en utilisant les enzymes de restriction EcoRI, HindîlI , PstI, BamHI, SalI et XbaI sensiblement de la même manière qu'à l'étape 6 de l'Exemple 1. Le plasmide ainsi obtenu a été désigné par pAG5O.
Des cellules de Corynebacterium melassecola 801 (FERM BP-558) ont été transformées sensiblement de la même manière qu'on l'a mentionné ci-dessus, en utilisant le plasmide obtenu ci-dessus pour obtenir un transformant résistant à la tétracycline . Le transformant retenant le plasmide pAG50 a été désigné par Corynebacterium melassecola 801 (pAG5O). Du transformant, on a isolé un plasmide sensiblement de la même manière qu'à la sousétape (1) de l'étape 1 de l'Exemple 4, avec ensuite analyse en utilisant des enzymes de restriction sensiblement de la même manière qu'à l'étape 6 de l'Exemple 1.
La carte de clivage par endonucléase de restriction du plasmide retenu dans le transformant s'est révélée être la même que celle du plasmide pAG50.
Etape 2 (Insertion d'un fragment d'ADN contenant un gène codant pour CS dans le plasmide pAG50) A 5 9 de l'ADN du plasmide pAG50 préparé à la sous-étape (6) de l'étape 1 de l'Exemple 2, on a ajouté 15 unités de l'enzyme de restriction XbaI. On a laissé le mélange résultant réagir dans 60 pt d'un tampon contenant Tris-HCl 50 mM (pH 7,4), MgSO4 10 mM et NaC1 100 mM à 37 C pendant 2 heures. Alors, la température a été élevée à 700C et maintenue à 700C pendant 10 minutes pour terminer la réaction. Au mélange, on a ajouté de l'acétate de sodium jusqu'à une concentration finale de 300 mM puis un volume double d'éthanol.On a laissé le mélange résultant reposer à -3û C pendant 3 heures et on l'a soumis à centrifugation à 12.000 t/mn (8.900 g) à température ambiante pendant 10 minutes pour obtenir une boulette d'ADN. La boulette ainsi obtenue a été séchée sous pression réduite. Alors, la boulette a été dissoute dans 200 yg d'un tampon BAPT contenant Tris-HCl 50 mM (pH 8,4). A la solution résultante, on a ajouté 1 unité de phosphatase alcaline bactérienne (fabriquée et vendue par Takara Shuzo Co., Ltd., Japon).
On a laissé le mélange résultant réagir à 65 C pendant 30 minutes. Alors, on a ajouté, de plus, 1 unité de la phosphatase alcaline bactérienne, dans le mélange réactionnel. On a laissé le mélange résultant réagir à 65 C pendant 3 heures. Au mélange réactionnel ainsi obtenu, on a ajouté un volume égal de phénol saturé du tampon TNE et on a soumis à agitation. Alors, le mélange a été soumis à centrifugation à 12.000 t/mn (8.900 g) à température ambiante pendant 10 minutes avec ensuite récupération d'une phase aqueuse. A la phase aqueuse, on a ajouté un volume égal de phénol saturé du tampon TNE et on a soumis à agitation. Le mélange a été soumis à centrifugation dans les mêmes conditions que celles mentionnées ci-dessus pour obtenir une phase aqueuse. A la phase aqueuse, on a ajouté un volume égal d'un mélange à 1:1 (volume/volume) de phénol et de chloroforme et le mélange résultant a été soumis à agitation et à centrifugation à 12.000 t/mn (8.900 g) à température ambiante pendant 10 minutes avec ensuite récupération d'une phase aqueuse. A la phase aqueuse, on a ajouté un volume égal de chloroforme et le mélange résultant a été soumis à agitation et à centrifugation à 12.000 t/mn (8.900 g) à température ambiante pendant 10 minutes avec ensuite récupération d'une phase aqueuse. A la phase aqueuse, on a ajouté de l'acétate de sodium jusqu'à une concentration finale de 300 mM puis un volume double d'éthanol, et on l'a soumise à agitati-on.
Alors, on a laissé le mélange reposer à -300C pendant 3 heures et on l'a soumis à centrifugation à 12.000 t/mn (8.900 g) à température ambiante pendant 10 minutes pour obtenir une boulette d'ADN. La boulette ainsi obtenue d'ADN a été séchée sous pression réduite.
La sortie de ce tableau doit être divisée par 4096 et multipliée par la valeur de la tension de référence.
Loi A - Conversion numérique-analogique Segment (0) (1) 2 3 4 5 6 7 Pas 0 1 33 66 132 264 528 1056 2112 1 3 35 70 140 280 560 1120 2240 2 S 37 74 148 296 592 1184 2368 3 7 39 78 156 312 624 1248 2496 4 9 41 82 164 328 656 1312 2624 5 11 43 86 172 344 388 1376 2752 6 13 X5 90 180 360 720 1440 2880 7 15 X7 94 188 376 752 1504 3008 8 17 49 98 196 392 784 1568 3136 9 19 51 102 204 408 816 1632 3264 10 21 53 106 212 424 848 1696 3392 11 23 55 110 220 440 880 1760 3520 12 25 57 114 228 456 912 1824 3648 13 27 59 118 236 472 944 1888 3776 14 29 61 122 244 488 976 1952 3904 15 31 63 126 252 504 1008 2016 4032 Par exemple, Si on veut décoder la valeur correspondant au segment 3 et au pas 10, on doit déli- vrer la valeur 212.
La tension analogique correspondante obtenue par le circuit est alors 21214096 VREF où VREF est la tension de référence.
Le dispositif de l'invention peut également être appliqué à la conversion analogique numerique Pour cette conversion la loi A est légère- ment différente.
La sortie du tableau suivant doit être divisée par 4096 et multipliée par la valeur de la tension de référence.
Loi A - Conversion - Analogique Segment (0) (1) 2 3 4 5 6 7 Pas 0 0 32 64 128 256 512 1024 2048 1 2 34 68 136 272 544 1088 2176 2 4 36 72 144 288 576 1152 2304 3 6 38 76 152 304 608 1216 2432 s 8 40 80 160 320 640 1280 2560 5 10 42 84 168 336 672 1344 2688 6 12 4X 88 176 352 705 1408 2816 7 14 46 92 184 368 736 1472 2944 8 16 48 96 192 384 768 1536 3072 9 18 50 100 200 400 800 1600 3200 10 20 52 10 208 416 832 1664 3328 11 22 54 108 216 432 864 1728 3456 12 24 56 112 224 448 896 1792 3584 13 26 58 116 232 464 928 1856 3712 14 28 60 120 240 480 960 1920 3840 15 30 62 124 248 496 992 1984 3968 Selon une technique connue, un convertisseur analogique-numérique peut être réalisé à l'aide d'un convertisseur numérique-analogique. un comparateur et un circuit logique de commande.
Ce convertisseur doit suivre la loi A pour la conversion analogique-numérique.
L'ensemble des coefficients G et G" peut être adapté directement à cette loi en considérant que les valeurs à établir sont également le produit de deux entiers.
Le convertisseur représente à la Fig.3 pré sente des dimensions réduites car il nécessite : (dans le cas d'un gain du systéme égal à 1).
- 65 condensateurs unitaires comme condensateurs d'entrée pour le générateurs de pas - 64 condensateurs unitaires comme condensateurs d'intégration au générateurs de pas: - 6* condensateurs unitaires comme condensateurs d'entrée du générateurs de segments; - 6X condensateurs unitaires comme condensateurs d'intégration du générateurs de segments; au lieu de - 32 condensateurs unitaires comme condensateurs d'entrée du générateurs de pas; - 32 condensateurs unitaires comme condensateurs d'intégration du générateurs de pas: - 128 condensateurs unitaires comme condensateurs d'entrée du générateurs de segments: - 128 condensateurs unitaires comme condensateurs d'intégration du générateurs de segments: pour une architecture classique.
Cette dimension réduite du réseau de condensateurs permet de meilleures performances de rapidité et/ou une taille réduite de l'amplificateurs, Un autre avantage de l'agencement de l'in- vention est que le gain de tout le système peut être réglé lors de la conception en réglant simplement la valeur des premiers ou des seconds condensateurs d'intégration ou bien des deux.
La tension de référence d'un circuit peut ainsi être utilisée sans réglage par un étage particulier, De plus, le décodage du code d'entrée est particulièrement simple et direct.
En comparaison, avec les agencements classiques, le nombre des interrupteurs est divisé par deux et la logique de commande est considérablement simplifiée et réduite.
Le raccordement est obtenu au moyen de cables introduits dans les deux orifices étanches {21J . Le troisième orifice étanche (19) est utilisé pour raccorder les électrodes de mesure de conductibilité (23) du sol, au moyen d'un cable de longueur suffisante .
Les raccordements électriques sont obtenus en retirant le capot (20) retenu sur le socle par les points de fixation (18) que l'on dévisse Sur la face avant du boitier, on trouve le témoin de mise sous tension (1), la cellule photo sensible (2) , le commutateur nuit-jour (3) et le bouton (4) permettant de fonctionner en automatique ou en manuel Le bouton (5) est utilisé pour réaliser le réglage du taux d'humidité général de toutes les voies Les boutons 6, 7, 8 et 9 représentent les interrupteurs de mise en marche des quatre électrovannes , lorsqu'on utilise ce nombre de possibilités ;; il est possible de multiplier le nombre d'électrovannes selon les besoins ) Les témoins lumineux 10, 11, 12, 13 indiquent le bon fonctionnement de ces voies , tandis que les boutons 14, 15, 16, 17 sont des potentiomètres destinés au réglage du taux d'humidite sur le site que l'on désire arroser, correspondant aux électrovannes 1,2,3, 4 Suivant une caractéristique importante de l'invention, on a représenté sur la figure 2 le schéma synoptique de l'électronique commandant l'arrosage des sites L'alimentation électrique (24) du boitier est obtenue, soit au moyen du secteur, soit au moyen d'une tension continue issue d'une batterie d'accumulateurs 12 ou 24 volts Le champ électrique utilisé par cette électronique est une tension alternative ou continue de 12, 24 e- 220 volts Cette tension alimente les électrovannes 25, 2t, 27 et 28 ainsi que la pompe (29) servant à augmenter la pression dans les canalisations d'arrosage Le fonctionnement des électrovannes est commandé par des relais ou transistors de puissance 30, 31, 32, 33 eux-mêmes pilotés par le séquenceur (34) .Ce dernier génére des impulsions d'excitation des transistors de puissance 30, 31, 32 et 33 qui commandent l'ouverture et la fermeture des électrovannes Le réglage des impulsions de sortie du séquenceur est obtenu par des potentiomètres 14, 15, lt, 17, dont les plots correspondent au-dessus du boitier de la figure 1 Le séquenceur est commandé par un générateur d'impulsions (35) placé en amont qui acremente les signaux Le séquenceur (34) est commandé au moyen d'une porte logique (36) qui s'ouvre lorsque les comparateurs (37) et (38) reçoivent des informations satisfaisantes de la cellule photo sensible (2) ( réglée par le potentiomètre (39) ) et de la sonde (23)( réglée par le potentiomètre (5 ) ) Un second ocmparateur (38) analyse les informations issues de la sonde d'humidification (25), elle-même réglée par le potentiomètre fol .
L'intensité du micro-courant administré - et éventuellement la fréquence des impulsions, la durée séparant deux séries d'impulsions et celle de chaque série, ainsi que le temps total d'adrinistration des des stimulations électriques - étant réglée(s) par potentioaètre(s) manuellement par le curseur ou automatiquement par le microprocesseur.
La fiche mala du câble peut également Stre fixée à un appareil générateur de micro-courants indépendant du dispositif objet de l'innovation ( ce qui laisse , pendant tout le temps d'administration des stimulations le dispositif libre pour intervenir sur d'autres zones de la surface du filiez à traiter, ou sur un autre élément ).
L'utilisateur peut également appuyer sur l'interrupteur précédent pour provoquer le passage dans l'aiguille appliquée contre le point détecté, d'un nicro-courant pulsé, sans pénétration de cette aiguille dans la surface du milieu concerné.
L'utilisateur peut enfin appuyer simultanément sur le déclencheur souple et sur l'interrupteur précédent, ce qui ta à la fois î - mettre en fonction le moteur qui actionne la crémaillère coulissante pour introduire l'aiguille à la profondeur programmée sous le point détecté.