INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
L'objet portatif (2) calcule donc par l'intermédiaire de ses circuits de traitement (DOT) un- résultat (R1) par exécution d'un programme (P2) préenregistré dans sa mémoire (DOM) et tel que R1 = f2(Sd, X) où (Sd) est la clé diversifiée de l'objet portatif (2) et (X) une donnée que l'on prend par exemple égale a la donnée (Eu) précitée interne à l'objet portatif (2).
Le dispositif de contrôle (4) calcule, par l'intermédiaire de ses circuits de traitement (DST), un résultat (R2) par exécution du même programme (P2) préenregistré dans sa mémoire (DSM) et tel que R2 = f2(Sd, X) où (Sd) est la clé diversifiée précédemment calculée par le dispositif de contrôle (4) et (x) la donnée (Eu) prélevée dans la mémoire de l'objet portatif (2).
Le résultat (R1) calcule par l'objet portatif (2) est ensuite prélevé par le dispositif de contrôle (4) et comparé avec le résultat (R2) dans pn circuit comparateur (cc) par exemple relié au bus (b4).
A titre d'exemple, les programmes (P1) et (P2) peuvent être les mêmes.
Si les deux résultats (R1, R2) sont identiques ou satisfont une condition prédéterminée, le dispositif de contrôle (4) aura authentifié l'objet portatif (2) comme possédant une clé diversifiée qui a bien été élaborée à partir d'une clé de base prédéterminée. Dans le cas contraire, le dialogue est interrompu entre l'objet portatif (2) et l'appareil (3).
Selon un mode de réalisation de l'invention, la mémoire et les circuits de traitement du dispositif d'initialisation (1), de l'objet portatif (2) et du dispositif de contrôle (4) sont des blocs fonctionnels pouvant être intégrés dans des plaquettes semiconductrices (puces) séparées ou non et montées dans un boîtier (5).
Enfin, les bottiers (5) des objets portatifs (2r et des dispositifs de contrôle (4) peuvent être avantageusement conçus selon les caractéristiques des brevets français nO 2 401 459 et 2 461 301 de la demanderesse et montés dans un support portatif tel qu'une carte à mémoire normalisée.
Parmi ces caractéristiques, il faut retenir celle de la mémoire qui contient une zone inaccessible de l'extérieur et où seront enregistrées les clés diversifiées (Sd) et les clés de base (Sb).
Le dispositif d'exploitation (3) peut également être conçu pour gérer plusieurs clés de base (Sbl, Sb2,...Sbn) associées respectivement à n familles d'objets portatifs (2). Ainsi, tout objet portatif possèdant une clé diversifiée établie à partir de l'une de ces clés de base pourra être authentifiée par tout dispositif d'exploitation dans lequel sont préenregistrées ces clés de base.
Dans l'exemple décrit précédemment, l'appareil d'exploitation authentifie un objet portatif comme possèdant bien une clé secrète que seul un organisme habilité a pu élaborer. Le calcul des résultats (R1, R2) peut également prendre en compte une donnée secrète (S) préenregistrée dans la mémoire de l'objet portatif et dans la mémoire de l'appareil. Cette donnée secrète (S) peut par exemple être spécifique du service rendu par l'appareil et seuls les objets portatifs ayant cette donnée secrète (S) pourront accéder à ce service. Ainsi, si les résultats (R1, R2) concordent, l'appareil aura non seulement authentifié la clé diversifiée (Sd) de l'objet portatif, mais encore vérifié que l'objet portatif donne bien droit au service dispensé par cet appareil.Dans le cas contraire, soit la clé diversifiée (Sd) de l'objet portatif n'est pas reconnue conforme, soit la clé diversifiée (Sd) est reconnue conforme mais la donnée secrète (S) de l'objet portatif n'est pas identique à celle de l'appareil ce qui signifie que l'objet portatif ne permet d'accéder au service dispensé par cet appareil.
Etape 8 (Conversion de l'extrémité EcoRI du fragment EcoRI-SalI contenant un gène codant pour ICDH et ayant une longueur moléculaire d'environ 3,4 kb en extrémité SalI) A 5 ,ug de l'ADN du plasmide pAG302 obtenu à l'étape I de l'Exemple 3, on a ajouté 20 unités de l'enzyme de restriction EcoRi. On a laissé le mélange résultant réagir dans 100 jut d'un tampon contenant Tris-HCl 50 mM (pH 7,4), MES 10 mM et NaC1 100 mM à 37 C pendant 2 heures.
Ensuite, on a chauffé le mélange à 700C pendant 10 minutes pour arrêter la réaction. Au mélange réactionnel, on a ajouté de l'acétate de sodium en une quantité telle que le mélange résultant contienne de l'acétate de sodium à une concentration de 300 mM. Au mélange, on a ajouté un volume double d'éthanol et on a laissé le mélange obtenu reposer à -30 C pendant 3 heures. Alors, le mélange a été soumis à centrifugation à 12.000 t/mn (8.900 g) à température ambiante pendant 10 minutes pour obtenir un produit surnageant et des précipités. Les précipités ont été recueillis et séchés sous pression réduite, pour ainsi obtenir l'échantillon XVI d'ADN.
L'échantillon XVI d'ADN ainsi obtenu et 3 unités d'ADN polymérase T4 (fabriquée et vendue par Takara Shuzo Co., Ltd., Japon) ont été ajoutés à 4 l d'un mélange aqueux contenant Tris-CH3COOH 33 mM (pH 7,9), CH3COOK 66 mM, (CH3C00)2Mg 10 mM, dithiothréitol 0,5 mM, 0,1 mg/cf de BSA, 2'-désoxyedénosine 5'-triphosphate 0,1 mM (fabriqué et vendu par Sigma Chemical Company, EUA) , 2'-désoxycytidine 5'-triphosphate 0,1 mM (fabriqué et vendu par Sigma Chemical (:ompany, EUA), 2'-désoxyguanosine 5'-triphosphate 0,1 mM (fabriqué et vendu par Sigma Chemical Company, EUA) et thymidine 5'-triphosphate 0,1 mM (fabriqué et vendu par Sigma Chemical (:ocpany, EUA).On a laissé le mélange ainsi obtenu reposer à 30 C pendant 20 minutes pour faire avancer une réaction. Au mélange, on a ajouté de l'acétate de sodium jusqu'à une concentration finale de 300 mM. Alors, on a ajouté, au mélange, un volume double d'éthanol et on a laissé le mélange reposer à 30 C pendant 3 heures.
Subséquemment, le mélange a été soumis à centrifugation à 12.000 t/mn (8.900 g) à température ambiante pendant 10 minutes pour obtenir un produit surnageant et des précipités. Les précipités ont été recueillis et séchés sous pression réduite, pour ainsi obtenir un échantillon XVII d 'ADN.
On a ajouté 1,5 yg du linker SalI (fabriqué et vendu par Takara Shuzo Co., Ltd., Japon) et 2,5 unités de polynucléotide kinase T4 (fabriquée et vendue par Takara Shuzo Co., Ltd., Japon) à 10 t d'un mélange aqueux contenant Tris-HCl 66 mM (pH 7,6), ATP 1 mM, MgCl2 10 mM, spermidine 1 mM, dithiothréitol 15 mM et 0,2 mg/me de BSA.
Alors, on a laissé le mélange obtenu reposer à 37 C pendant 1 heure pour avancer une réaction et ainsi obtenir un échantillon XVIII d'ADN.
La moitié de la quantité de l'échantillon XVII d'ADN et la totalité de la quantité de l'échantillon XVIII d'ADN , avec 6 unités d'ADN ligase T4 phagique,ont été ajoutées à 22 ,uQ d'un mélange aqueux contenant Tris-HCl 66 mM (pH 7,6), ATP 1 mM , MgC12 10 mM, spermidine 1 mM, dithiothréitol 15 mM et 0,2 mg/m-2 de BSA. Alors, on a laissé le mélange obtenu reposer à 22OC pendant 4 heures pour faire avancer une réaction. Au mélange réactionnel,on a ajouté un volume égal d'un mélange à 1:1 (8.900 g) à température ambiante pendant 10 minutes pour récupérer une phase aqueuse. A la phase aqueuse ainsi obtenue, on a ajouté de l'acétate de sodium jusqu'à une concentration finale de 300 mM, puis un volume double d'éthanol tout en agitant. On a laissé le mélange résultant reposer à -300C pendant 3 heures. Subséquemment, le mélange a été soumis à centrifugation à 12.000 t/mn (8.900 g) à température ambiante pendant 10 minutes pour obtenir des précipités d'ADN. Les précipités d'ADN ont été séchés sous pression réduite, pour ainsi obtenir l'échantillon XIX d'ADN.
A la totalité de la quantité de l'échantillon XIX d'ADN,on a ajouté 15 unités de l'enzyme de restriction SalI.
On a laissé le mélange réagir dans 50 jut d'un tampon contenant Tris-HCl 50 cM (pH 7,4), MES 10 mM et NaC1 10 mM à 37 C pendant 2 heures. Le produit ainsi obtenu de digestion a été soumis à une électrophorèse sur gel agarose sensiblement de la même manière qu'à l'étape 7 de l'Exemple 1 pour confirmer la présence d'un fragment d'ADN ayant une longueur moléculaire d'environ 3,4 kb. Une portion où lton avait trouvé le fragment d'ADN a été découpée du gel agarose. Du gel découpé, on a obtenu un ADN sensiblement de la même manière qu'à l'étape 7 de l'Exemple 1 (échantillon XX d'ADN).
A 4 ug du plasmide pBR325 obtenu à l'étape 2 de l'Exemple 3, on a ajouté 20 unités de l'enzyme de rectriction SalI. On a laissé le mélange résultant réagir dans 50 {ut d'un tampon contenant Tris-HCl 50 mM (pH 7,4), MgS04 10 mM et NaCl 100 mM à 37 C pendant 2 heures. Au mélange réactionnel résultant, on a ajouté un volume égal d'un mélange à 1:1 (volume/volume) de phénol et de chloroforme et on a soumis à agitation avec ensuite récupération d'une phase aqueuse. A la phase aqueuse on a ajouté un volume égal de chloroforme et on a soumis à agitation avec ensuite récupération d'une phase aqueuse. A la phase aqueuse résultante on a ajouté de l'acétate de sodium jusqu'à une concentration finale de 300 mM puis un volume double d'éthanol.Alors, le mélange a été maintenu au repos à -30 C pendant 3 heures et soumis à centrifugation à 12.000 t/mn (8.900 g) à température ambiante pendant 10 minutes pour obtenir une boulette d'ADN. La boulette ainsi obtenue d'ADN a été séchée sous vide, pour ainsi obtenir l'échantillon XXI d'ADN.
On a fait réagir la totalité de la quantité de l'échantillon XX d'ADN et la totalité de la quantité de l'échantillon XXI d'ADN avec 3 unités d'ADN ligase T4 phagique dans 100 t d'un tampon contenant Tris-HCl 50 mM (pH 7,4), MgCl2 10 mM, dithiothréitol 10 mM, spermidine 1 mM, ATP 1 mM et 0,1 mg/m de BSA à 15DC pendant une nuit.
Ensuite, on a chauffé le mélange réactionnel résultant à 7O0C pendant 10 minutes pour terminer la réaction.
En utilisant 40 ,uQ du mélange réactionnel de ligase ci-dessus obtenu, la transformation des cellules de la souche EB106 de E. coli K12 a été effectuée sensiblement de la même manière qu'à l'étape 4 de l'Exemple 3 pour obtenir des transformants. Les transformants ainsi obtenus ont été séparément mis en culture sur le milieu d'agar de synthèse ci-dessus mentionné contenant du chloramphénicol (20 pg/m2) et de la tétracycline (10 Vg/m2) et sur le milieu d'agar de synthèse ci-dessus mentionné contenant du chloramphénicol (20 pg/me). Les cellules qui ne croissaient pas sur le milieu d'agar de synthèse contenant du chloramphénicol et de la tétracycline mais qui croissaient sur le milieu d'agar de synthèse contenant le chloramphénicol seul ont été sélectionnées et isolées.Les cellules ainsi isolées étaient sensibles à la tétracycline mais résistantes au chloramphénicol et ne nécessitaient pas d'acide glutamique pour leur croissanc-e.
Le plasmide retenu dans les cellules isolées a été séparé et purifié sensiblement de la même manière qu'à l'étape 2 de l'Exemple 3. Le plasmide hybride ainsi obtenu a été désigné par pAG311.
Par suite d'une étude de la structure de l'ADN plasmidique selon la méthode mentionnée à l'étape 6 de l'Exemple 3, on a trouvé que le plasmide pAG311 avait la structure illustrée par la carte de clivage par endonucléase de restriction montrée à la figure 5 et que le plasmide se composait du vecteur pBR325 et, inséré au site scindé par l'enzyme de restriction SalI, un fragment étranger de SalI ayant une longueur moléculaire d'environ 3,4 kb.
Le fragment de SalI était un fragment d'ADN contenant un gène codant pour ICDH dérivé de Corynebacterium melassecola 801 (FERM BP-558), avait une structure telle que l'extra- mité EcoRI du fragment EcoRI-SalI comme on l'a mentionné à l'étape 7 de l'Exemple 3 soit convertie en une extrémité SalI. Les cellules de la souche EB106 de E. coli K12 ont été transformées par le plasmide pAG311 obtenu ci-dessus sensiblement de la même manière qu'à l'étape 2 de l'Exemple 3 à l'exception que l'on a utilisé le plasmide pAG311 au lieu de pBR325 pour obtenir des transformants.
Le CORPS de l'ECHANGEUR, Fig 4 et , objet de la présente invention est un BLOC constitué de deux partis (5)(7) smétriques, qui aprés soudure ou ccllage, présente une CAVITE TUBULAIRE CONTINUE (9) mais, obstruée an ses extrémités par deux blocs (10)(11) symétriques faisant étanchéité autour de chaque Tube du Faisceau lors de l'entrée ou de la sortie de celui-ci de la CAVITE (9)-.
Dans cette CAVITE, dont la longueur et la section sont fonction de la puissance de l'ECHANGEUR, circule le Médium Réfrigérant. I1 y pénètre et en sort par des PIPES ou Raccords filetés Fig. 7 et 8 (12) prisonniers dans la masse (7) -.
Ce CORPS d'Echangeur est réaiisé en Résines synthétiques on en Alliage léger ou an tout autre matériau résistant aux basses températures -.
C'est le Circuit Secondaire alors que le Circuit Primaire est constitué par le Faisceau (1) -.
Sur toute la longueur de la CAVITE TUBULAIRE, le Médium circule contamment en sans inverse du Gaz-.
Le Médium, circule à vitesse constante et continue, grasse à une Pompe centrifuge classique disposée sur la partie extérieure du Circuit qui constitue une boucle.
Le GAZ frigorigène qui arrive en " R " Bi.Z. 1, liquéfié, par l'intermédiaire des Tubes Capillaires, - un par tube - sa vaporise an ss détendant dans la partie du Faisceau logée dans la CAVISTE (9)-.
3 -LE CAISSON ISOTHERME.
Ce CAISSON qui a pour but l'isolation thermique du CORPS de l'Echangeur, est réalisé de la façon suivante C'est une enveloppe, Fig. 9-10 et 11 (14), métallique ou tout autre matériau résistant, qui entoure le CORPS de l'ECHANGEUR a une égale distance de celui-ci sur toutes ses faces, l'intervalle (13) est rempli de mousse de polyuréthane ou tout autre produit à haut coefficient d'isolation thermique.
Un doigt de gant (15) est prévu pour recevoir un Bulbe thermostatique qui sera en contact avec le Médium. Ce doigt de gant travers l'isolation thermiqus et le CORPS de l'ECHANGEUR.
II -L'ECHANGEUR THERMIQUE du GAZ Frigorigène.
Cette pièce Fig. 12-13 et 14, a pour utilité d'abaisser la température du GAZ frigorigène se trouvant à l'étât liquide et ce, avant sont passage dans les organes de détente.
Cet ECHANGEUR, objet de la présente invention, dans aucun caractère limitatif quant aux dimensions ni aux matériaux de fabrication utilisés, se compose ces parties suivantes 1 -Le CORPS de l'ECHANGEUR - Fig 12 (16).
C'est une CUVE de petite dimension, cylindrique, avec deux fonds bombés (17) et deux Piquages (18) filetés disposés en opposition suivant l'axes de la génératrice du cylindre.
L'un des piquage (18)E, pour l'arrivée Su Médium en provenance da la CUVE de CONGELATION et l'autre, (18)S, pour le départ du dit Médium en direction de la Pompe de circulation.
C'est le Circuit Primaire-.
Puis le programme du microprocesseur continue à se dérouler comme aupa ravant (jusqu'à ce que l'utilisateur appuie de nouveau sur ce bouton poussoir ). Ce bouton permet donc à l'utilisateur d'administrer de prélever - en certains endroits et quand il le désirs, une quantité de produit supérieure à celle qui a eté initialement fixée.
Un détecteur de contact - ou de préssion - peut être situé sur l'extrémité antèrieure de la crémaillère coulissante et être mis en fonc- tion quand l'utilisateur pousse un sélecteur à deux positions " Automa- tique - Manuel " sur la position n Automatique "s ce détecteur entre alors en fonction à la place du déclencheur souple.
Toutes les fois que l'utilisateur applique l'extrémité antèrieure de la créiaillère coulissante contre la surface du milieu concerné E eu exerce une légère préssion - le programme du microprocesseur se déroule. g cola permet d'éviter la fatigue de l'opérateur lorsqu'il doit introduire ou prélever dea produits sur une grande surface d'un milieu donné, ou sur un nombre important d'éléments, et permet également d'assurer un fonc tionnement entièrement automatique, dans le milieu industriel notamment, quand 1. dispositif est fixé sur un support électro-mécanique qui assure re le balayage d'une zone délimitée de façon très précise sur la surfa- ces des éléments concernés.
Ce détecteur peut Stre constitué X - Soit par une micro-plaque métallique de quelques illiètres da cette, fixée sur l'extrémité antèrieure de la crémaillère coulissante et reliée au microprocesseur par l'intermédiaire d'ua circuit électronique détec- teur de proximité I dont le seuil de sensibilité peut alors Stre ajusté au moyen d1un potentiomètre réglé manuellement par un curseur.Dés que cette micro-plaque métallique est mise au contact do la surface du mi- lieu concerné, ce denier se comporte comme une antenne qui stimule le détecteur électronique de proximité.Le microprocesseur, alors informé de cette stimulation, déclenche alors le déroulement du programme.).
- Soit par deux micro-plaques métalliques espacées de quelques millimè tre sur l'extrémité antèrieure de la crémaillère coulissante et reliées au microprocesseur. Dés que les deux micro-plaque entrent en contact avec la surface du milieu concerné, le contact est rétabli entre les deux plaques, ce qui stimule le microprocesseur qui déclenche le dérou le ont du programme.
- Soit par un détecteur électronique de préssion s un élément sensible aux variations de préssion, situé sur l'extrémité antèrieure de la cré maillère coulissante est relié au microprocesseur par l'intermédiaire d'un circuit électronique amplificateur du micro-courant engendré par une variation de préssion, ce qui stimule là encore le microprocesseur qui déclenche le déroulement du programme.
Le dispositif prélève et administre des micro-courants grâce à l'aiguille dont la partie postèrieure, bonne conductrice de courant, rient se fixer sur l'extrémité de la seringue au niveau d'un support mé gallique qui est relié au microporocesseur par l(intermédiaire d'un circuit électronique sensible à des variations de conductibilité électrique de quelques micro-ampères au niveau de la surface du milieu concerné, lorsqu'un interrupter-potentiomètre est enclanché par l'utilisateur.
Cet interrupteur-potentiomètre a également pour fonction d'actionner si multanément le moteur électrique qui fait pénétrer complètement la cré maillère à l'intèrieur du carter puis arrete automatiquement celle-ci dans cette position, de telle manière que seule l'aiguille entre en contact avec la surface du milieu concerné.Ce potentiomètre, réglé manuel- liement par un curseur ou automatiquement par le microprocesseur, ajuste le seuil de sensibilité du circuit électronique sensible à des variations de conductibilité électrique au niveau de la surface du milieu concerné, on fonction de la résistance de celle-ci.
Un cable portant à une extrémité une fiche maîe(destinée à ttre introduite dans la fiche femelle eliée à ce circuit électronique sensible à dem variations de conductibilité électrique de quelques micro-ampères) et à son autre extrémité une électrode - ou une pince crocodile - destinée à entrer on contact avec un autre point de la surface du milieu con- corné.Dés que ce circuit électronique détecte, par l'intermédiaire de l'aiguille, une très légère augmentation do la conductibilité au niveau d'un point de la surface du milieu concerné, il crée une stimulation électrique qui informe le microprocesseur.
Si un sélecteur à deux positions " Automatique - Manuel " est mis sur la position " Manuel ", le microprocesseur a seulement pour fonction de signaler grâce à un signal sonore ou visuel ou sur l'écran à criataux liquides ou à LED que l'aiguille se trouve sur un point présentant une conductibilité différente par rapport au reste de la surface envi- ronnante du milieu concerne.
L'utilisateur peut alors i - soit appuyer sur le déclencheur souple qui met en fonction la moteur électrique qui fait sortir du carter et avancer la crémailère dont l' extrémité antérieure vient repousser la surface du milieu concerné, con- tre laquelle l'aiguille a été appliquée.
Dans un second temps, le microprocesseur inverse la polarité du administré au moteur qui, en fonctionnant en sens inverse, ait reculer la crémaillère jusqu'à ce que l'aiguille pénètre, au niveau du point dé tecté de la surface du milieu concerné, à la profondeur programée.
Le microprocesseur fait ensuite entrer en function en-sans-invers de moteur qui va, en actionnant la crémaillère, provoquer la poussée du piston dans le corps de la seringue et introduire une quantité de pro duit fixés, à la profondeur programmée, au niveau de ce point détecté0 Si un interrupteur situé sur la poignée est actionné par l'opérateur, le moteur qui actionne le piston à l'intèrieur du corps de la seringue n'est pas mis en fonction lorsque l'aiguille a pénétré ; aucun produit n'est alors injecté à la profondeur programmée sous le point détecté ( le même effet peut d'ailleurs ttre obtenu lorsque l'utilisateur n'a placé que le corps de la seringue, sans son piston dans la partie su- pèrieure du carter : le moteur qui a pour fonction d'actionner le pi ton, actionne alors la crémaillère correspondante, mais aucun produit n'est injecté sous le point détecté ).
Puis le microprocesseur inverse a nouveau la polarité du courant ai nistré au moteur qui fait ressortir du carter et avancer la crémaillè- re jusqu'à ce ce son extrémité antèrieure repousse la surface du milieu concerné et retire ainsi l'aiguille, sauf si l'utilisateur décide do laisser l'aiguille en place, à la profondeur programée :: -En appuyant d'aabord sur l'intrerrupteur général du dispositif ; -Puis , à l'aide d'une micro-clé à facettes stérilisable par le chaleur et livrés avec l'appareil, en bloquant la partie intermédiaire à facottes de l'aiguille, pour séparer sans hourt sa partie postèrieure cylin drique de l'extrémité de la seringue. ( cette possibilité, conçue notam ment pour le domaine médical., offre au praticien une seconde voie d'abord de la pathologie à traiter, en laissant en place plusieurs aiguilles implantées de la même façon au niveau d'autres points détectés sur la surface de l'élément concerné ).
L'utilisateur peut également stimuler électriquement l'aiguille - ou les différentes aiguilles - ainsi implantée(s) t En En fixant un cable portant à une extrémité une fiche Iale destinée à être introduite dans la fiche femelle reliée au circuit générateur de micro-courants pulsés, et à son autre extrémité plusieurs cables en " que le cheval " qui portent chacun à leur extremité une pince crocodile destinée à Entre fixée sur l'extrémité postèrieure de chaque aiguille implantée.
. Et en appuyant sur l'interrupteur souple et étanche de la poignée, qui va provoquer le passage dans chaque aiguille implantée, d'un micro-courant pulsé, engendré par ce circuit électronique, à partir de l'énergie four- nie par les piles - ou l'accumulateur - ou par le transformateur.
TABLEAU RESUME DES INDICATIONS ESSENCES AROMAllQUES (doess6 par Noewan Defruoe)
du w w e 1191:. w E 8 .n3EIIPL oe w q, w w w z oO L woe zoeo m Ww ru3W ZpgmY-3?X & z z Z cO TJr 5 ZZOOOXK > AN; t~ t t- 2 ~ 9 i l *NTIDI*RRHEIOUES-IOIRWHLt AMACRI > SANTS ANI.ANEMIOUES ANTI.ARTRIT:QIJES ANTI.DIARRHIQuEs ÀNTI.DySENTERIOUES ANTI.EPIDMIOUs- VOIR ANTI.INFECTIEUX ANTI.LITIASBIIAIRS ANTI-LITHIAS URINAIRS ANTI.MIGRAINEUX ANTI NEVR LGIQUES-VOIR ANTALGIOUS ANTI-OPHTALMIUES ANTI.PARA5ITAIRS-VOIR PARASITICIDS ANTIPRuRIcINeux ANTI.RACHITIOuES rlm 41 r f - - ~ 0 t i l 4 :I:R*=HIF1XI: -- ;i-C H:; GEN.x -'=: ANTISEPTINTESTIN ~~~~~~ ANTISEPT PULMON ANTISEPTURINAIRES ANTISPASMODIQUES NTIWWR*L W:I"WEUx-- BACTERIOSTATIQUES CORICIDE EW, EXPECTORANTS FLUIDIFIANT rlt ;F : HYPERTENStURS nr NYPOTENSEURS PARASITICIDES REEQUILIBR.GENET NERV REEQUILIBR0LANDUL aEHINEa*LIU.iu-~ C I rl : STIMUL BULBAIRE STIMCARDIAQUES STIM CEREBRAUX STIM.cIRCULATOIRES STCORTICAUX-SuRREN STihLOASTRIQUE
Nouvelle fraction antigénique obtenue par libération dans un milieu de culture de vibrions cholériques, procédé de préparation d'une telle fraction et son application à la préparation d'un vaccin cholérique oral.
La présente invention a trait à une nouvelle fraction antigénique obtenue par libération dans un milieu de culture de vibrions cholériques pathogènes, et destinée à être utilisée dans la préparation d'un vaccin cholérique oral Elle concerne également le procédé de préparation d'une telle fraction et le vaccin correspondant.