INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
Etape 11 (Séparation, du plasmide pAG311, d'un fragment SalI contenant un gène codant pour ICDH et ayant une longueur moléculaire d'environ 3,4 kb) A 20 ;jg de l'ADN du plasmide pAG311 obtenu à l'étape 8 de l'Exemple 3, on a ajouté 60 unités d'une enzyme de restriction SalI. On a laissé le mélange résultant réagir dans 100 lut d'un tampon contenant Tris-HCl 50 mM (pH 7,4), MgS04 10 mM et NaCl 100 mM à 37 C pendant 2 heures . Le produit ainsi obtenu de digestion a été soumis à une électrophorèse sur gel agarose sensiblement de la même manière qu'à l'étape 7 de l'Exemple 1 pour confirmer la présence d'un fragment -d'ADN ayant une longueur moléculaire d'environ 3,4 kb et contenant un gène codant pour ICDH.On a découpé, du gel agarose, une portion où l'on a trouvé un tel fragment d'ADN. L'extraction du fragment d'ADN du gel découpé a été effectuée sensiblement de la même manière qu'à l'étape 7 de l'Exemple 1 pour obtenir environ 4 p9 d'un fragment d'ADN contenant un gène codant pour ICDH dérivé de la bactérie corynéforme produisant l'acide glutamique et ayant une longueur moléculaire d'environ 3,4 kb. Le fragment d'ADN ainsi obtenu avait une structure telle que l'extrémité formée par clivage de EcoRI du fragment EcoRI-SalI obtenu à l'étape 10 de l'Exemple 3 était convertie en extrémité formée par clivage de SalI.
EXEMPLE 4 Dans cet exemple, on a inséré un fragment d'ADN, dérivé d'une bactérie corynéforme produisant l'acide glutamique, contenant un gène codant pour CS (citrate synthase) , dans un vecteur dérivé de la bactérie corynéforme produisant l'acide glutamique pour préparer un ADN recombinant pour la production de CS. Un transformant capable de former CS en une grande quantité a alors été préparé en utilisant l'AON recombinant. Le fragment XbaI obtenu à l'étape 7 de l'Exemple 1, c'est-à-dire un fragment XbaI contenant un gène codant pour CS et ayant une longueur moléculaire d'environ 4,9 kb, a été utilisé comme fragment d'ADN, dérivé d'une bactérie corynéforme produisant l'acide glutamique , contenant un gène codant pour CS.
On a utilisé le plasmide pAG50 comme vecteur dérivé d'une bactérie corynéforme produisant l'acide glutamique. Le plasmide pAG50 était un plasmide du vecteur qui avait été préparé à partir de plasmides pAG1 et pAG3 dérivés de la bactérie corynéforme produisant l'acide glutamique par la méthode qui sera mentionnée ci-dessous. Le plasmide pAG1 est un plasmide résistant à la tétracycline qui a été isolé de Corynebacterium melassecola 22243 dépose au FR1 sous le numéro d'accession FERM BP-560. Le plasmide pAG3 est un plasmide cryptique isolé de Corynebacterium melassecola 22220 déposé au FRI sous le numéro d'accession FERM BP-559.
Etape 1 L Préparation du plasmide pAG50 et son isolement de Corynebacterium melassecola 801 (pAG5O) retenant le plasmide pAG50 3 (1) Isolement d'un plasmide pAG1 de Corynebacterium melassecola 22243 (FERM BP-560) Le micro-organisme Corynebacterium melassecola 22243 a été mis en culture dans un milieu semi-synthétique milieu préparé en dissolvant 10 g de (NH4)2S04, 3 g d'urée, 1 g de K2HP04 , 50 mg de NaC1, 400 mg de MgS047H20, 2 mg de MnS044-6H20, 2 mg de FeS044-6H20, 20 g de glucose, 50 ,ug de biotine, 200 p9 de chlorhydrate de thiamine et 1 g d'extrait de levure dans de l'éau dont les ions étaient échangés et distillée de manière que le volume total soit de 1 litre, et en ajustant la valeur du pH du mélange à 7,2 3 à 320C pendant une nuit tout en secouant. On a inoculé 8 m-l. de la culture ainsi obtenue dans 200 et du même milieu semi-synthétique, avec ensuite mise en culture à 32 C pendant 5 heures tout en secouant pour obtenir une culture du-micro-organisme.
De la culture, des cellules du micro-organisme ont été recueillies et mises en suspension dans 10 mt d'une solution de lysozyme (pH 8,0) contenant du glucose 50 mM, EDTA 10 mM, Tris 25 mM et 10 mg/mt de lysozyme (fabriqué et vendu par Sigma Chemical Company, EUA) avec ensuite incubation à 42 C pendant 1 heure. A la suspension, on a ajouté 20 mt d'une solution alcali-SDS contenant NaOH à 0,2 N et 1% (poids/volume) de dodécylsulfate- de sodium (souvent appelé ci-après SDS"). Le mélange a été soumis à agitation puis on l'a laissé reposer dans la glace pendant 5 minutes.Alors, au mélange on a ajouté 15 mi d'une solution d'acétate de potassium refroidie à la glace (mélange de 60 me d'acétate de potassium 5 M, 11,5 mt d'acide acétique et 28,5 mL d'eau échangée en ions et distillée). Le mélange a été soumis à agitation et on la laissé reposer dans la glace pendant 10 minutes pour obtenir un lysat. La totalité du lysat a été transférée à un tube de centrifugeuse et soumise à une centrifugation à 12.000 t/mn (13.000 g) à 4 C pendant 5 minutes, pour ainsi obtenir un produit surnageant . Le produit surnageant a été soumis à une extraction avec un volume égal de phénol-chloroforme (1:1) et l'on a recueilli une phase aqueuse.A la phase aqueuse , on a ajouté un volume double d'éthanol et le mélange résultant a été soumis à agitation et on l'a laissé reposer à température ambiante pendant 5 minutes. Alors, le mélange a été soumis à centrifugation à 10.000 t/mn (11.000 g) à 200C pendant 10 minutes pour ainsi obtenir une boulette. La boulette a été lavée avec 70% (volume/volume) d'éthanol, séchée sous pression réduite et dissoute dans 20 mt d'un tampon TE (pH 7,5) contenant Tris 10 mM et EDTA 1 mM dans un tube de centrifugeuse. A la solution résultante, on a ajouté doucement 1,2 m e d'une solution aqueuse à 10 mg/me de bromure d'éthidium et 23,6 g de chlorure de césium et on a dissous, avec ensuite centrifugation à 40.000 t/mn (100.000 g) à 15 C pendant 48 heures.Après accomplissement de la centrifugation, deux bandes ont été visualisées sous lumière ultraviolette. La bande inférieure a été sortie du tube de centrifugeuse à travers la paroi latérale du tube en utilisant une seringue pour obtenir un plasmide pAG1. La fraction ainsi obtenue de plasmide a été soumise à une extraction avec un volume égal d'alcool isopropylique, quatre fois , pour obtenir un extrait. De l'extrait, le bromure d'éthidium a été enlevé et la solution résultante a été dialysée avec le tampon TE pour obtenir 1 me d'un dialysat contenant un plasmide pAG1 à une concentration de 50 jJglme . La carte de clivage par endonucléase de restriction du plasmide pAG1 ainsi obtenu est illustrée à la figure 1.
(2) Recombinaison in vitro du plasmide pAG1 A 0,5 9 du plasmide pAG1 préparé à la sous-étape (1) ci-dessus de l'étape 1 de l'Exemple 4, on a ajouté 10 unités d'une enzyme de restriction EcoRI. On a laissé le mélange résultant réagir dans 40 pt d'un tampon contenant Tris-HCl 50 mM (pH 7,4), MES 10 mM et NaC1 100 mM à 370C pendant 2 heures. Alors, la température a été élevée à 70 C et maintenue à cette valeur pendant 10 minutes pour terminer la réaction.On a fait réagir 20 u du mélange réactionnel ainsi obtenu avec 3 unités d'ADN ligase T4 phagique (fabriquée et vendue par Nippon Gene Co., Ltd., Japon) dans 50 t d'un tampon contenant Tris-HCl 50 mM (pH 7,4), MgC12 10 mM, dithiothréitol 10 mM, spermidine 1 mM, ATP 1 mM et 0,1 mg/m de BSA (albumine de sérum bovin) (fabriquée et vendue par Bethesda Research Laboratories , EUA) à 15 C pendant une nuit.
(3) Isolement du plasmide pAG14 (Curage du plasmide) Une boucle de Corynebacterium melassecola 22243 (FERM BP-560) a été inoculée dans 5 mi d'un milieu LG (milieu préparé en dissolvant 10 g de Trypton, 5g d'extrait de levure, 5 g de NaC1 et 2 g de glucose, dans de l'eau échangée en ions et distillée de façon que le volume total soit de 1 litre, et en ajustant la valeur du pH du mélange à 7,2) et mise en culture à 37 C pendant une nuit tout en agitant. La culture ainsi obtenue a été diluée avec une eau stérilisée. La culture diluée a alors été étendue sur un milieu d'agar LG (milieu préparé en ajoutant de l'agar au milieu LB de manière que la concentration en agar du milieu résultant soit de 1,5% en poids), avec ensuite mise en culture à 320C pendant 2 jours pour former des colonies.
100 colonies ainsi formées ont été transférées, par réplique-placage, sur une plaque d'agar LG contenant 10 ug/me de tétracycline, avec ensuite mise en culture à 320C pendant 2 jours. Alors, on a choisi deux cellules sensibles à la tétracycline. Pour les deux cellules ainsi choisies, l'existence du plasmide pAG1 dans les cellules a été déterminée par la méthode d'isolement du plasmide décrite précédemment. Par suite, on a trouvé que les deux cellules ne contenaient pas de plasmide , c'est-à-dire que les cellules étaient une souche curée de plasmide.
L'une des cellules a été utilisée comme hôte à l'étape suivante.
En pratique les moyens de positionnement 29 consistent en au moins une patte 30 globalement axiale, ici deux, d'un seul tenant avec la pièce de désolidarisation 26, élastiquement déformable radialement vers l'intérieur ; lesdites pattes présentent, à leurs extrémités dirigées vers le dispositif débrayeur, une portée arrondie 33 de contact et sont situées axialement en retrait par rapport a la paroi 27 de la pièce de désolidarisation. Avantageusement cette pièce de désolidarisation 26 est en matière synthétique.
De plus, comme visible sur les figures 1 et 2, la piéce de désolidarisation 26 a en coupe une forme en L et comporte, pour action d'un organe de manoeuvre, une collerette radiale 31, en saillie à sa périphérie, disposée à l'extrémité de la piece de désolidarisation 26 opposée à la tranche 27, de diamètre externe supérieur à celui de la paroi axiale 42 du capot 41.
En pratique la hauteur de la collerette 31 est déterminée en fonction des doigts de la fourchette pour procurer un bon appui à celle-ci lors d'un démontage comme décrit ci-après et ici son diamètre externe est radialement à un niveau supérieur à celui de la patte 47.
Cette collerette radiale 31 est dotée, pour son montée sur la pièce d'attaque 16, d'une saignée radiale 34, débouchant radialement vers l'extérieur, dans le prolongement d'une autre saignée 35 axiale. Ici, cette saignée axiale 35 s'étend de part et d'autre de la partie axiale de ladite pièce de désolidarisation 26 en se raccordant à la saignée radiale 34. En outre, ladite collerette 31 présente, opposée diamétralement par rapport à cette saignée 34, un secteur aminci en épaisseur 36, qui,, de par sa faible étendue circonférentielle et de par son amincissement, permet d'obtenir une élasticité supplémentaire lors de l'ouverture des saignées 34 et 35 de la pièce de désolidarisation 26, pour le montage sur la pièce d'attaque 16, par exemple par-dessus l'arête 21 de la pièce d'attaque 16.
Après le montage de la pièce de désolidarisation sur la pièce d'attaque 16, une plaque 37, dite plaque d'usure, est accolée à la face de ladite collerette 31 dirigée vers la butée de débrayage 1 et est maintenue par sertissage sur ladite face par.les bords 38, 39 de ladite plaque. Plus précisément, le bord externe de la plaque est replié axialement vers le dispositif débrayeur pour former le bord axial 39 puis radialement vers l'axe de l'ensemble pour former le bord radial 38 en emprisonnant le bord périphérique externe de la collerette 31. De ce fait, grâce à cette plaque 37 la collerette 31 ainsi que la pièce de désolidarisation 26 ne peuvent plus s'ouvrir.
Pour l'assemblage de l'ensemble et tel que mieux visible sur les figures 3 et 4, le montage est effectué de la manière suivante Dans la première phase (figure 1), la butée de débrayage 1 avec sa pièce de désolidarisation 26 et sa collerette 31, telles que décrites ci-dessus, est présentée en vis-à-vis de la pièce d'accostage 4 portant le jonc de solidarisation 14.
Par action des doigts 45 de la fourchette sur les faces d'appui 44 des pattes 47, dans le sens axial allant de la butée vers le dispositif débrayeur, la butée se présente en face de l'ouverture centrale de la pièce d'accostage 4 jusqu'au contact de la portée de centrage 21 de la pièce d'attaque 16 avec la portée d'engagement 8 de la pièce d'accostage 4.
Après poursuite du mouvement, la butée 1, grâce aux deux portées 8, 21, se précentre par rapport à la pièce d'accostage 4 puis, le mouvement continuant, la pièce d'attaque 16 glisse et se centre, par sa zone 40, le long de la portée cylindrique de guidage 9 de la pièce d'accostage 4 en entrainant avec elle la pièce de désolidarisation 26 et en particulier l'extrémité de ladite piéce de desolidarisation dirigée vers la butée de débrayage 1 qui pénètre sous la portée 9, jusqu'au moment où les moyens de positionnement, ici les pattes 30, en position déployée viennent en contact, par leurs bords arrondis 33, avec la portée tronconique 8 de la pièce d'accostage 4.
Après ce contact et en poursuivant le mouvement, la pièce de désolidarisation est sollicitée, grâce aux pattes 30 au contact de la portée 8, en direction de la butée de débrayage 1 et coulisse sur la périphérie externe de la pièce d'attaque 16 jusqu'au contact par sa partie arrière avec la butée d'arrêt 32 prévue transversalement pour elle sur la butée de débrayage 1.
A la suite de ce mouvement la pièce de désolidarisation 26 est en butée sur la butée de débrayage en 32 et est en contact avec la portée 8. De ce fait, la paroi mobile 27, est positionné de manière déterminée par rapport à l'autre des parois, dite fixe, de la gorge 24, ici la portée d'entraînement 22, et la portée tronconique d'engagement 8 de la pièce d'accostage 4. De plus, la portée tronconique de centrage 21 de la pièce d'attaque 16 précentre les moyens de solidarisation, ici le jonc 14.
En continuant le mouvement, la pièce d'accostage 4 étant par commodité considérée fixe, la butée de débrayage 1 ainsi que la pièce de désolidarisation 26 et sa collerette 31 se déplace dans le sens axial allant de la butée 1 à la pièce d'accostage 4. Ce déplacement entraîne, de par leurs élasticités et leurs contacts avec la portée tronconique 8, l'introduction par escamotage dans l'ouverture de la pièce d'accostage 4, des pattes 30 élastiquement déformables vers l'intérieur et en même temps le jonc 14, de par son élasticité radiale, se déploie en glissant le long de la portée 21 et simultanément le long de la portée 12 jusqu'à ce que le diamètre extérieur dudit jonc soit approximativement situé dans le fond 11 de la gorge de retenue 11', alors que son diamètre intérieur est situé au moins sur le diamètre D2 de la face 40.On notera que, lorsque le jonc 14 est en contact avec la zone 40, un léger jeu existe entre ledit jonc et le fond 11 de la gorge 11'.
Après poursuite du mouvement, l'axe vertical du jonc 14 quitte la zone 40 gt de par son élasticité radiale glisse respectivement le long de la portée 22 de la gorge 24 et le long de la portée 10 de la pièce d'accostage 4 jusqu'à ce que le jonc 14 vienne au contact, par son diamètre intérieur, avec le fond 11 de la gorge 24.
Le mouvement se poursuit jusqu'à ce que la portée 21 de la pièce d'attaque 16 vienne au contact de la portée d'arrêt 13 du talon 23. Ce contact, procurant une résistance au mouvement, permet de faire savoir à l'opérateur que le jonc 14 se trouve dans la gorge 24 de la pièce d'attaque 16.
A la suite de cette opération il suffit, après avoir constaté que le jonc 14 se trouve dans la gorge 24, d'effectuer un mouvement axial en sens inverse, allant du dispositif débrayeur vers la butée, par appui des doigts 45 de la fourchette sur les faces d'appui 43 des pattes 46, pour que le jonc 14 soit en contact avec la portée d'entrainement 22 de la pièce d'attaque 16 et avec la portée 10 de la pièce d'accostage 4. Cette configuration permet alors d'assurer une liaison axiale entre la pièce d'accostage 4 et la pièce d'attaque 16 et de transmettre ainsi l'action axiale de débrayage. On notera que, lors des opérations décrites ci-dessus, la paroi 27 est à distance du jonc 14, les longueurs de la pièce de désolidarisation 26 et de la pièce d'attaque 16 étant déterminée en conséquence.
Pour démonter l'ensemble, il suffit d'effectuer grâce à l'action des doigts 45 de la fourchette sur les faces 44 des pattes 47, un mouvement axial allant de la butée vers le dispositif débrayeur, d'une part, à la butée de débrayage afin que la pièce d'a-ttaque 16 et plus particulièrement sa portée 21 soit au contact avec la portée 13 du talon 23 de la pièce d'accostage 4, entraînant de ce fait la libération du jonc 14 par rapport aux portées d'entrainement 22, 10, et, d'autre part, une fois cette position obtenue, de Faire intervenir les doigts 45 sur la plaque d'usure 37. Cette opération est possible par l'escamotage au démontage vers l'intérieur de la face 44 avec la face d'engagement 51 dans l'évidement 52, grâce à la combinaison du fléchissement du bras 50 élastique et à l'effort exercé par la fourchette sur la face escamotable 44.A la suite de cette opération les doigts 45 viennent au contact de la plaque d'appui 37 sur sa face dirigée vers le roulement 18 (fig. 4). Le mouvement se poursuivant les doigts 45, en contact dans le sens axial allant vers le dispositif débrayeur 2, avec la plaque d'appui 37 de la collerette 31 provoque le coulissement de la pièce de désolidarisation 26 jusqu'à ce que la paroi 27 de l'extrémité de ladite pièce de désolidarisation vienne au contact du jonc de solidarisation 14.
A partir de cette position et en continuant le mouvement la paroi 27, de par sa partie radiale 28 pousse le jonc 14 vers la portée tronconique 22 et le fait glisser le long de cette portée, ceci est permis grâce à l'élasticité dudit jonc et à son pouvoir d'ouverture radiale. Le glissement du jonc 14 le long de la portée 22 s'effectue jusqu'au moment ou ledit jonc quitte ladite portée et se localise ensuite, par son diamètre extérieur, approximativement dans le fond de la gorge 11', et par son diamètre intérieur sur le diamètre extérieur de la pièce de désolidarisation 26(figure 5).Ceci est possible grâce au flanc incliné 25 qui, de par sa complémentarité avec la portée 22, permet à la partie radiale 28 de la paroi 27 de passer au-delà de l'axe vertical du jonc 14, situé dans sa gorge 11' , et de venir au contact avec la portée 22 par son bord intérieur.
La partie raidisseuse 126 aide la partie tran-
chante 124 à résister à la flexion latérale, elle forme une zone que le porte-lame 14 peut tenir et elle est identique par sa conception à la partie raidisseuse 26
de la lame 10.
Les figures 9 à 11 illustrent un procédé de fa-
brication de la lame 110. Initialement, on forme le
corps ou l'âme 130 représenté sur la figure 9, par exem-
ple, par une opération d'usinage appropriée. On taille des gorges 148, 148 dans une face 139 de l'âme 130, ces gorges étant perpendiculaires à l'arête tranchante 146 de la lame 110. Par exemple, les gorges 148, 148 ont une profondeur de 25,4 microns à 127 microns. Les gorges 148, 148 sont représentées uniformément espacées, bien
que ceci ne soit pas nécessaire.
Ensuite, comme ceci est représenté par la vue avant de la figure 10, l'âme 130 est revêtue et, dans le mode de mise en oeuvre représenté, le revêtement couvre
pratiquement toute la surface de l'âme 130. Le revête-
ment possède une épaisseur sensiblement uniforme et il il11 2592608
prend donc la forme de la partie tranchante 124 qui con-
siste dans la forme ondulée de la face 140 qui forme les
bosses 143, 143 et les creux 145, 145.
Ensuite, comme représenté sur la figure 11, on meule la face 142 de la partie tranchante 124 à l'aide
d'une meule 150 qui possède un axe 152 parallèle à l'arê-
articulation. Pour procéder à l'installation des opé-
rateurs équipés d'un tel dispositif il est possible, grâce a l'articulation, de procéder dans un premier temps à la fixation de l'extrémité articulée, puis dans
un deuxième temps à la fixation de l'autre extrémité.
Ceci nécessite soit au moins une personne disposant de moyens d'élévation pour amener et maintenir en place l'extrémité articulée et procéder à sa fixation au moyen d'un axe ou d'une goupille et au moins d'une deuxième personne pour supporter et guider l'autre extrémité qui sans cela serait amenée à glisser sur le sol, provoquant la détérioration des éléments fragiles du groupe motoréducteur enveloppés à cette extrémité, soit des moyens d'élévation pour amener et maintenir l'opérateur sensiblement à sa position de fixation et
d'au moins une personne pour procéder à sa fixation.
De manière générale, les dispositifs connus sont donc tels qu'ils ne permettent pas à un installateur isolé ne disposant pas de moyens complémentaires de main d'oeuvre ou de matériel, de procéder sans risque de détérioration sérieuse et sans danger à l'installation de l'opérateur. Par ailleurs, tous les dispositifs connus nécessitent l'usage de pièces complémentaires annexes telles que vis, axes, goupilles, qu'il convient
2595 1 1 0
de mettre en place alors que l'opérateur est encore en-
tièrement soutenu par l'installateur, ce qui ajoute
encore aux difficultés d'installation et au danger.
La présente invention a pour but de permettre la mise en place d'une installation d'actionnement de porte basculante ou sectionnelle, telle que définie plus haut, par une seule personne, à l'aide d'un outillage
conventionnel, sans pièces annexes, sans risque de dé-
térioration et sans danger.
A cet effet l'installation d'actionnement de porte bas-
culante ou sectionnelle selon l'invention est caracté-
risée en ce que les moyens de fixation du bâti situés à une extrémité du bâti sont constitués, d'une part, d'un support fixe, indépendant du bâti, présentant au moins un appui profilé et une partie située -au-dessus de cet appui profilé à une distance déterminée de cet appui, mesurée verticalement, et, d'autre part, à l'extrémité du bâti, une surface d'appui profilée coopérant avec ledit appui profilé du support et de profil au moins approximativement conjugué au profil de l'appui du support et, au-dessus de ladite surface d'appui, une surface de verrouillage tournée vers le haut et située à une distance hors toute de ladite surface d'appui égale à la distance séparant ledit appui profilé de la partie située au-dessus de celui-ci, le tout de telle
Les courbes (fig.11) obtenues avec les quatre doses de KLH montrent quelles suspensions de cellules lymphoides de souris injectées avec 105 macrophages répondent beaucoup plus fortement lorsque ces macrophages proviennent de souris traitées par la PhA2 que lorswueceux-ci proviennent de souris normales.
La réponse des souris injectées avec la plus forte quantité de macrophages traités est inférieure à celle des souris injectées avec les macrophages de souris normales, ce qui est une observation fréquente : une trop forte stimulation ou un nombre trop élevé de cellules entraine une diminution de la réponse.
Pour conclure, l'activité immunodulatrice de la PhA2 se traduit par une stimulation de l'activité macrophagique des cellules et de la réponse immunitaire du type humorale.
Par contre, la PhA2 n'agit pas sur la division cellulaire, ou l'inhibe légèrement.C'est donc très certainement grâce à la stimulation de l'activité des macrophages que la PhA2 augmente la destruction des cellules leucémiques et l'intensité de l'immunisation antileucémique. Des tests effectués chez le singe confirment ces résultats.
TABLEAU 1 -MODIFICATIONS DE L'ACTIVITE DES MACROPHAGES APRES L'INJECTION DE PHOSPHOLIPASE A2A LA SOURIS.
SUPEROXYDES Mol pour 106 cellules TEMOINS 0,39 # 0,07 } p 0,01 PhA2 0,61 # 0,06 TDM 0,58 # 0,11 } p } p 0,001 } p 0,01 TDM PhA2 0,86 # 0,09 TABLEAU 2 -MODIFICATION DELA REPONSE SPLENIQUE AUX GLOBULES ROUGES DE MOUTON PAR L'ADMINISTRATION DE PHOSPHOLIPASE A2.
CELLULES FORMATRICES DE PHAGES PAR RATE # SD TRAITEMENT EXP. N 1 EXP. N 2 EXP. N 3 EXP. N 4 TEMOIN 13.200 # 8000 6226 # 3719 25.800 # 4400 32.000 # 7800 PhA2 104.000 # 12.800 17.733 # 923 60.600 # 4000 55.600 # 3400 TDM 74.400 # 11.200 23.600 # 2050 54.400 # 4500 TDM + PhA2 103.302 # 8000 32.666 # 4670 68.200 # 5000 ACLA 31.200 # 4000 26.000 # 2116 32.200 # 9300 ACLA + PhA2 38.664 # 5600 26.666 # 6201 42.400 # 4600 BESTATINE (1 g) BESTATINE # PhA2 TABLEAU 3 - MODIFICATION PAR L'ADMINISTRATION DE PHOSPHOLIPASE A2 DE LA REPONSE AUX GLOBULES ROUGES DE MOUTON DEPRIMEE PAR L'HYDROCORTISONE.
CELLULES FORMATRICES DE PHAGES PAR RATE # SD EXP. N 1 EXP. N 2 TEMOIN 39.400 # 3400 28.600 # 6600 PhA2 50.000 # 3000 37.600 # 6600 HYDROCORTISONE (2,5 mg J-1) 2080 # 720 680 # 320 HYDROCORTISONE + PhA2 4840 # 1580 1950 # 700 TABLEAU 4 - MODIFICATION DE LA REPONSE MITOGENIQUE PAR L'ADDITION DE PHOSPHOLIPASE A2 A LA CULTURE.