INPI-France/Brevets-Francais-2024-Chunked huggingface dataset:
On réalise l'empoisonnement des sites catalytiques du Chromosorb P en passant sur cette colonne maintenue à 1700C en débit constant d'hélium (5 cm /mn.) saturé en quinoléine à la température d'opération. Le balayage de la colonne est réalisé pendant 16 heures.
La colonne est ensuite purgée de la quinoléine non chimisorbée par passage pendant 1 heure d'hélium pur à 1700C, à 3 un débit de cm cm3/minute.
On injecte ensuite dans la colonne le meme mélange de Nérol-+ Géraniol que précédemment. L'enregistrement du chromatogramme est représenté sur la courbe 12. Ce chromatogramme est absolument identique à celui obtenu sur une colonne garnie du Chromosorb W, réputé inerte, et imprégnée de 12,5 % de carbowax 20M (courbe 14).
Surface des pics (mm2) Produit de Nérol Géraniol transformation Total Chromosorb P NAW 1740 2220 890 4850 non traité Chromosorb P NAW 1116 2640 0 3756 traité à la quinoléine Chromosorb W 1310 3100 0 4410 Analyse quantitative Composition (% poids) Nérol Géraniol Produit de - transformation identifié Chromosorb P NAW non traité 36 % 46 % 18 % Chromosorb P NAW traité 29,8 % 70 > 2 % O % à la quinoléine Chromosorb W 29,8 % 70,2 % O % La méthode de traitement à la quinoléine, telle que décrite dans l'exemple ci-dessus, permet d'éliminer totalement l'activité catalytique parasite que présente le chormosorb P pour la transformation du Nérol et du Géraniol.
Conditions expérimentales correspondant à l'exemple 1 Colonne $ = 1/8" L = 1,50 m Support Chromosorb P NAW : courbe 4 Chromosorb P NAW : traité à la quino léine : courbe 12 Chromosorb W : courbe 14 Phase stationnaire : carbowax 20 M = 20 % sur Chromo sorb P et 12,5 % sur Chromosorb W Températures : Injecteur : 200ÜC Colonne : 1700C Détecteur : 200du Gaz vecteur : hélium - débit 5 cm3/minute Détecteur : FID Exemple 2 Une colonne de Chromosorb P à 20 % de carbowax 20 M, identique à celle utilisée dans l'exemple nO 1 est portée à 1800C dans le four d'un chromatographe analytique et traitée de la manière suivante.On injecte dans cette colonne, via le vaporiseur du chromatographe analytique, 10 gl de pyridine. Les injections sont répétées toutes les 10 minutas pendant une heure. A chaque injection, la pyridine non chimisorbée sur le support émerge de la colonne sous la forme d'un pic chromatographique décelé sur l'enregistreur de l'appareil. Après la dernière injection de pyridine, la colonne est balayée par de l'hélium pur pendant 30 minutes. On réalise alors l'analysa de l'acétate de linalyle sur cette colonne.
Les chromatogrammes 1 8 et 20 obtenus respectivement avant et après traitement (figure 3) montrent très clairement la réduction de l'activité catalytique du Chromosorb P. La comparaison des chromatogrammes 20 et 22 montre en outre que le Chromosorb P traité à la pyridine est plus inerte face à l'acétate de linalyle que le Chromosorb W, support utilisé pour l'analyse correspondant au chromatogramme 22.
Conditions expérimentales correspondant à l'exemple 2 Colonne $ = 1/8" L = 1,50 m Support Chromosorb P NAW : courbe 18 Chromosorb P NAW traité à la pyridine : courbe 20 Chromosorb W : courbe 22 Phase stationnaire : carbowax 20- M : 20 % sur Chromosorb P et 12,5 % sur Chromosorb W Températures : Injecteur : 2000C Colonne : 1800C Détecteur : 2000C Exemple 3 On chauffe à reflux pendant-24 heures, sous pression atmosphérique et à 2500C, 2 kg de Chromosorb P dans 5 litres de quinaldine ou 2 méthyl quinoléine. Après refroidissement, le support est filtré et séché à 2500C sous azote. Le support sec est ensuite imprégné à 20 % poids par du SE 30 (Polysiloxane).
Le support ainsi imprégné est utilisé pour le remplissage d'une colonne de chromatogrephie préparative (L = 1 m $ = 40 mm). Cette colonne est montée dans un appareil de chromatographie préparative de laboratoire (THN 102 de ELF/SRTI). La colonne est portée à 200du et est utilisée à purifier une charge contenant 80 % poids de linalol.
L'analyse du produit purifié sur l'appareil indique une pureté de plus de 99 %.
Le même essai réalisé sur une colonne contenant du Chromosorb P non traité à la quinaldine, nous a conduit, dans les mêmes conditions d'opération, à un produit dont la pureté était de 68 %, soit inférieure à celle de la charge. Ce produit renfermait une quantité importante d'isomères et de produits de déshydratation du linalol, composés qui n'étaient pas présents dans la charge à traiter.
La présente invention concerne un procédé de pré paration en continu de solutions aqueuses de sels aliphatiques d'a cides a -hydroxysulfoniques.
On sait que les aldéhydes réagissent avec des bi sulfites de métaux alcalins en donnant des produits d'addition.
C'est ainsi que l'on peut obtenir, en discontinu, l'acide -hy*xE- méthane-sulfonique à partir de solutions aqueuses de formaldéhyde et de bisulfite de sodium (cf. Berichte 62, (1929), page 2873).
Par ailleurs, on a déjà obtenu liacide a-hydroxy- méthane-sulfonique libre en faisant passer de l'anhydride sulfureux dans une solution aqueuse de formaldéhyde (cf. Comptes rendus 173, (1921), page 1180). Dans cette méthode on ne travaille cependant pas avec addition simultanée d'hydroxyde alcalin.
HOLD - lndicateur à un bit indiquant que toutes les vi tesses suivant les axes dcivcnt être mises à zéro.
OHOLD - Indicateur à un bit indiquant que HOLD était un un lors de la période antérieure 21 itération T.
HALT - Indicateur à un bit injiquant qu'un arrôt d'er rcur rouge esi nécessaire.
LT - Indicateur à-un bit imposant l'allongement des périodes # T.
EMHOLD - Indienteur à un bit indiquant qu'un arrêt d'ur gence est nécessaire.
YR0 - Nombre. transmis par la console de la machine et représentant le dépassement d'avance choisi par l'opérateur.
- - Indicateur à un bit provenant de la console et indiquant qu'un maintien est demandé par la ma- chine.
STOP - Indicateur à un bit transmis à partir de la con sole et indiquant que l'opérateur eu une autre source a demandé un arrêt d'urgence.
XIN - Position réelle instantanée de l'organe commande le long de l'axe X, indiquée par détection de l'organe.
.YrN - Analogue à XIN mais pour l'axe T.
B. Dans la mémoire intermédiaire Xn+1 - Coordonnées X du point final pour le bloc Bn+1.
Xn+1 - Coordonnées Y du point final du bloc Bn+1.
TPRX - Nombre temporaire de vitesse snivant l'axe X pour le bloc Bn+1 (destiné à devenir PRXC lorsque Bn+1 devient le nouveau bloc Bn) TPRY - Analogue à TPRX mais pour l'axe Y.
LOOPP - Nombre de boucles ou périodes # T nécessaires pour l'exécution du bloc Bn+1 programmé.
LCOPF - Analogue à LCOPC, mais pour le bloc Bn+1.
LOOPS - Analogue à LOOPB mais pour le bloc Bn+1 .
C. En traitant chacun des composés de départ de +,6- diaminoglycosyl-1,3-diaminocyclitol énumérés dans l'exemple ci-dessus 6A, d'une manière identique à celle décrite dans n'importe lequel des exemples 1A à 1K, on obtient leur dérivé 1-N-alcoylé correspondant.
Exemple 7 Préparation des 1-N-substitués-4,6-di(aminoglycosyl)-1,3diaminocyclitols via des produits intermédiaires sélectivement bloqués A. 1-N-éthylgentamicine C1 via produit intermédiaire 2',3 di-N-substitué On dissout 240 mg de 2',3'-di-N-trifluoroacétyl- gentamicine C1 dans 10 ml d'un mélange eau-méthanol (2:1) et on ajuste le pH de la solution jusqu'à environ 3,5 en ajoutant de l'acide sulfurique lN. On ajoute 0,19 ml d'acétaldéhyde, on agite pendant 10 minutes, puis an ajoute 27 mg de cyanoborohydrure de sodium, et on agite le rélange réactionnel pendant 10 minutes supplémentaires.On évapore le mélange réactionnel sous vide pour obtenir un résidu comprenant la 1-N-éthyl-2',3-di-N-trifluoroacétylgentamicine 1 On dissout le résidu précédent dans 50 ml d'hydroxyde d'ammonium concentré et on laisse la solution au repos à la température ambiante pendant 24 heures. On évapore le mélange sous vide et on effectue la chromatographie du résidu résultant sur du silicagel (12 g) en éluant avec la phase inférieure d'un mélange de chloroforme-méthanol-hydroxyde d'ammonium aqueux 10 < ; (2:1:1). On combine les fractions analogues (comme déterminé par chromatographie en couche mince) et on évapore les éluats combinés sous vide jusqu'à obtenir un résidu comprenant la 1-N-éthylgentamicine C1 (rendement = 80 mg).
3. l-N-éthylsisomicine via produit intermédiaire 6'-N- substitué D'une manière identique à celle décrite dans l'exemple 7A ci-dessus, on traite la 6'-N-t-butoxycarbonylsisomicine (préparée d'une manière similaire à celle de la préparation 3Dj dans du méthanol aqueux avec de l'acide sulfurique, puis de l'acétaldéhyde et du cyanoborohydrdrede sodium. On laisse le mélange réactionnel au repos à la température ambiante pendant 30 minutes, puis on évapore sous vide pour obtenir la l-N-éthyl-6'-N-t-butoxyearbonylsisomicine. On dissout le résidu précédent dans l'acide trifluoroacétique et on laisse la solution au repos pendant 10 minutes.Ensuite on ajoute un excès de méthanol anhydre, on filtre le précipité résultant de sel d'acide trifluoroacétique de l-N-éthylsisomicine et on effectue une chromatographie sur silicagel en utilisant la phase inférieure d'un système chloroformeméthanol-hydroxyde d'ammonium d'une manière identique à celle décrite dans l'exemple 7A pour obtenir la l-LT-éthylsisomicine.
C. l-N-méthylsisomicine à partir de la 3"-N-4"-C-carbonyl- sisomicine De la 3"-N-4"-O-carbonyl-sisomicine (5g) dans de l'eau distillée (300 ml) est traitée avec de l'acide sulfurique 1 N jusqu'à ce que le pH de la solution atteigne 2,5. Du formaldéhyde aqueux (37 %) (2 ml) est ajouté, et après 10 minutes, une solution de cyanoborohydrure de sodium (500 mg) dans l'eau (5 ml) est ajoutée goutte à goutte. Après une heure, le volume de la solution est réduit à la moitié par évaporation sous vide, le pH de la solution concentrée est ajusté à ll avec addition d'une solution d'hydroxyde de sodium 1 N, et la solution est évaporée à sec.Le résidu est extrait avec du méthanol (3 x 100 ml) et les produits extraits combinés de méthanol sont dilués avec un volume égal de chloroforme, filtrés et évaporés à sec pour donner de la l-N-méthyl-3"-N-4" O-carbonyl-sisomicine brute.
Le produit brut est traité avec de l'hydroxyde de potassium aqueux 10 % à lOO pendant 5 heures. La solution refroidie est passée dans une résine échangeuse d'ions (H+) Amberlite IRC-50 et éluée avec de l'hydroxyde d'ammonium aqueux 2 N et l'éluant est concentré et lyophilisé pour donner de la l-N-méthylsisomicine brute.
La chromatographie du matériau brut surdu silicagel (300 g) dans un mélange chlorofonne-méthanol- hydroxyde d'ammonium 7 % (2:1:1) donne la l-N-méthylsisomicine.
[α]D26 + 1530 (0,3 % H20) Spectre de masse (M + l)+ m/e 462 et aussi m/e 127, 140, 159, 160, 177, 187, 205, 256, 285, 303, 318, 331, 336(w), 346, 376, 386, D. l-N-méthylverdamicine via produit intermédiaire de 3",4" N-O-oxyz olidone (l) A une solution aqueuse de 1 g de verdamicine, on ajoute du carbonate de sodium jusqu'à ce que le pH soit compris entre environ 8 et 9.On ajoute une solution de 5 g de -nitrophényl-chlorocarbonate dans 25 ml de diméthylformamide goutte à goutte avec agitation pendant une période de 3 heures tout en maintenant le pH du mélange réactionnel compris entre environ 8 et 9 en ajoutant davantage de solution de carbonate de sodium. Après que l'addition est achevée, on continue l'agitation à pH 8-9 pendant seize heures. On évapore le mélange sous vide, on extrait le résidu résultant plusieurs fois avec du chloroforme treks chaud, on combine et on évapore les produits extraits et on effectue la chroma to graphie du résidu résultant sur 100 g de silicagel en éluant avec la phase inférieure d'un système solvant de chloroforme-méthanol-hydroxyde d'ammonium concentré (2:1:1). On combine et on évapore les fractions analogues comme déterminé par chromatographie en couche mince pour obtenir la 3" ,4"-N,O-oxazolidone-verdamicine.
(2) D'une manière identique à celle décrite dans l'exemple lD, on traite le dérivé précédent d'oxazolidone dans l'eau avec de l'acide sulfurique, du formaldéhyde et du cyanoborohydrure de sodium. On isole et on purifie le produit résultant d'une manière similaire à celle décrite pour obtenir la l-N-méthylverdamicine-3"-4"-N,O-oxazolidone.
(3) On dissout 0,2 g de 1-N-méthylverdamicine-3",4"-N,O- oxyzolidone dans 10 ml d'une solution d'hydroxyde de sodium 2 N. On chauffe sous reflux pendant cinq heures, on neutralise la solution réactionnelle avec de l'acide acétique et on évapore jusqu a obtenir un résidu. On effectue la chromatographie du résidu sur 10 g de silicagel en éluant avec la phase inférieure d'un mélange (2:1:1) de chloroforme-méthanolhydroxyde d'ammonium 15 . On combine et on évapore les fractions analogues comme déterminé par chromatographie en couche mince jusqu'à obtenir un résidu pour obtenir la l--méthylverdamicine.
Exemple 8 l-N-benzylgentamicine C1 via un produit intermédiaire tri-Nprotégé-1-N-base de Schiff (1) On dissout 0,3 g de 2',3-di-N-trifluoroacétylgentamicine C1 dans 12 ml d'éthanol et on ajoute 0,9 ml de benzaldéhyde. On agite le mélange réactionnel pendant 3 heures puis on évapore sous vide. On dissout le résidu résultant dans 0,8 mg de chloroforme et on ajoute la solution goutte à goutte à 25 ml d'hexane-éther (3:1). On sépare le précipité résultant par filtration et on sèche sous vide pour obtenir la l-N-3" -N-4 "-0-bi s-benzylidine- 2',3-di-N-trifluoroacétylgentamicine C1. (Rendement = 0,38 g) ; p.f. = 128-134 C ; [α]D26 + 74,6 (c = 0,26 % éthanol).
(2) On dissout 1,37 g du produit obtenu dans l'exemple 8(1) ci-dessus dans 100 ml d'éthanol et on l'ajoute à un mélange agité de 1,37 g de méthoxyde de sodium et de 1,94 g de borohydrure de sodium dans 100 ml d'éthanol. On agite pendant 3 heures, on acidifie le mélange jusqu'à un pH d'environ 3 avec de l'acide chlorhydrique, puis on agite pendant 16 heures supplémentaires. On extrait la solution avec de l'éther, on sépare et on met de côté la couche d'éther. On ajoute de l'hydroxyde d'ammonium à la phase aqueuse jusqu'à ce qu'elle devienne basique, puis on évapore sous vide pour obtenir un résidu. On extrait le résidu avec 35 ml d'éthanol chaud. On combine les extraits et on évapore sous vide.On fait une chromatographie du résidu résultant sur 75 g de silicagel en éluant avec la phase inférieure d'un solvant constitué par un mélange de chloroforme-méthanolhydroxyde d'ammonium-eau (2:1:0,2:0,8). On combine les fractions semblables comme déterminé par chromatographie en couche mince et on évapore pour obtenir un résidu comprenant de la l-N-benzylgentamicine C1, point de fusion 83-88 C, [α]D26 + 90 (c=0,3 %, H2O) rmp (ppm) (D2 ) :cùl,O3 '3H, d, J=7Hz, HC-CH3) ; 1,16 (3H,s, C-CH3 ) ; 2,27 (3H, s, N-CH3) ; 2,5C (3H, s, N-CH3) ; 4,7 (D20 + PhCH2N ) ; 4,92 (1H, d, J=4Hz, H-l"), ; 5,08 (lH,d, J=3,5Hz, H-1'), 7,43 (5H, s, H aromatique) spectre : (M + 1) + m/e 568 également m/e 440, 437, 412, 394, 379, 281, 263, 253, 235, 160, 157.
(3) Dans l'exemple ci-dessus, en substituant d'autres aldéhydes, par exemple le propionaldéhyde ou le phénylacétaldéhyde au benzaldéhyde, on obtient respectivement la 1-Npropylgentamicine C1 et la l-N-phényléthylgentamicine C1.
Exemple 9 l-N-subst.-4 6-diaminoglycosyl-1 3-diaminocyclitols Préparés par réduction à l'hydrure des dérivés 1-N acylés correspondants A. 1-N- (S-Cr -amino- B -hydroxybutyl gentamicine Ci (1) On met en suspension 98 mg de 1-N-(S--amino- hydroxybutyryl)gentamicine C1 dans 8 ml de tétrahydrofurane. On ajoute 14 ml de diborane 1 N le tétrahydrofurane et on chauffe à la température de reflux pendant 6 heures sous atmosphère d'azote.
On ajoute soigneusement 2 ml d'eau pour décomposer tout diborane en excès et on évapore ; on dissout le résidu résultant dans de l'hydrate d'hydrazine et on chauffe à la température de reflux sous atmosphère d'azote pendant 16 heures. On évapore la solution et on extrait le résidu avec de l'éthanol aqueux chaud.On évapore les extraits combinés d'éthanol et on procède à une chromatographie du résidu résultant sur 10 ml de silicagel en éluant avec la phase inférieure d'un solvant constitué par un mélange de chloroformeméthanol-hydroxyde d'ammonium concentré (2:1:1).On combine et on évapore les fractions analogues comme déterminé par chromatographie en couche mince pour obtenir de la 1-N- (S-#-amino- -hydroxybutyl) gentamicine C1 (rendement = 14,5 mg), p.f. = 93-980C, [α]D26+ 72,4] (c = 0,35 %, H2O) ; rmp (ppm) (D2O) # 1,18 (3H,d, J=7hz, CH-CH3) ; 1,24 (3H, s, C-CH3) ; 2,49 (3H,s, N-CH3) ; 2,54 (3H,s, N-CH3) ; 5,07 (lH,d,J=3,5Hz, H-i") 5,24 (1H,d, J=3,5Hz, H-1').
Spectre de masse : (M+1) m/e 565 aussi m/e 528, 516, 490, 437, 434, 410, 397, 278, 250, 232, 160, 157.
(2) Dans le processus ci-dessus, on substitue la 1-N-(S-γ-amino-ss-hydroxypropionyl)gentamicine C1 à la 1-N-(S-#-amino-ss-hydroxybutyryl)gentamicine C1 pour obtenir la 1-N-(S- 6 -amino- -hydroxypropyl)gentamicine C1.
A une solution de 140 mg de sodium dans 8 g (0,177 mole) d'méthanol absolue on ajoute 17,3 g (0,05 mole) de 2-[1-(2'chloro-4-biphénylyl)-1-éthyl]-acétoacétate d'éthyle et on chauffe lo mélange de manière à faire passer goutte à goutte le mélange éthanol/acétate d'éthyle formé à travers une colonne do Vigreux de lO cm. Après environ 2,5 heures, on ajoute à nouveau 8 g d'éthanol absolu. Après 5 heures, la réaction est terminée.
On ajoute alors 250 ml de méthanol et ensuite une solution aqueuse d'hydroxyde de sodium à 30% jusqu'à réaction fortement alcaline. On chauffe le mélange à reflux durant 30 minutes, puis on évapore le solvant. Au résidu, on ajoute 250 m d'eau et on extrait avec de l'éther. Après élimination de la solution éthérée, on acidifie la solution aqueuse alcaline avec de l'-acide chlorhydrique dilué et on l'extrait avec de l'éther.
On lave la solution éthérée avec de l'eau, on la sèche et on 1 'évapore.
On dissout le résidu solide dans 200 ml d'un mélange acétone/acétate d'éthyle (1 : 1), on ajoute à la solution de la cyclohexylamine jusqu'à réaction alcaline, on essore le pré cipité formé et on le lave avec de l'acétate d'éthyle. Le sel avec la cyclohexylamine (15 g - 80% de la théorie3 fond à 180-182 C.
L'acide 3-(2'-chloro-4-biphénylyl)-butyrique, obtenu à partir de ce sel, fond, après recristallisation dans du cyclohexane, à 128-130 C.
a) Le 2-E1-(4'-fluoro-4-biphénylyl)~1-éthyl]-acétoacétate d'éthyle.
A une solution de 22,8 g (0,15 mole) d'acétoacétate d'éthyle sodique dans 70 ml d'méthanol absolu, on ajoute, goutte à goutte et en agitant, une solution de 23,4 g (0,1 mole) de 1-(4'-fluoro- 4-biphénylyl)-1-chloroéthane (produit brut) dans 60 ml de ben zène et on chauffe le mélange à reflux durant 30 minutes. Après refroidissement, on élimine par essorage le chlorure de sodium formé et on débarrasse le filtrat du solvant par distillation.
On ajoute au résidu 250 ml d'eau et on le reprend dans de l'éther. On lave ensuite la solution éthérée avec de l'eau, on la sèche, on l'évapore et on obtient 28 g (85 > 5% de la théorie) de produit brut.
Le 2-[1-(4'-fluoro-4-biphénylyl)-1-éthyl]-acétoacétate d'éthyle incolore distille sous une pression de 0,15 mm à 1720C.
b) L'acide 3-(4'-fluoro-4-biphénylyl)-butyrique.
On opère comme ddns l'exemple 19b, mais en utilisant 16,4 g (0,05 mole) de 2-[1-(4'-fluoro-4-biphénylyl)-1-éthyl]-acétoacéta- te d'éthyle.
On obtient 14 g (78 > 5% de la théorie) du sel de cyclohexylamine de P.F: 182-1840C. -L'acide 3-(4'-fluoro-4-biphénylyl)butyrique1 libéré à partir de ce sel, fond, après recristallisation dans de l'éthanol, à 141-1430C.
a) Le [1-(2'-fluoro-4-biphénylyl)-1-éthyl]-(triphénylphosphoranylidène)-acétate d'éthyle.
On remarquera que, dans ce qui vient d'être decrit, on a supposé que les liaisons ME et MS acheminent des combinaisons codées en parallèle, alors que les descriptions antérieures (figure 2) concernaient une transmission série. Il est bien évident que les conversions nécessaires doivent être introduites aux endroits appropriés Par exemple, le registre REM peut être un registre à décalage chargé en parallèle et émettant en série sur la liaison MS.
Le dispositif de la figure 6 comprend encore un registre tampon RTMC chargé par l'unité centrale UC en vue d'un changement de configuration (insertion ou retrait d'une case de mémoire), un registre de commande IRC chargé à partir du précédent, un compteur CIR avançant sous l'effet d'impulsions acîr, un registre RAR chargé à partir du compteur CIR, des circuits de calcul d'adresse LCA et diverses portes et comparateurs.
Le fonctionnement de l'ensemble du dispositif de la figure 6 est place sous la commande d'une horloge HGC recevant le signal syit et fournissant en réponse les signaux leir, inir, led, ind, acir. Ces différents signaux sont illustrés par la figure 7.
Tant que les configurations des liaisons d'entrée et de sortie sont stables, le fonctionnement du dispositif est simple. Chaque impulsion syit correspond à un intervalle de temps des liaisons d'entrée et de sortie. Il y a lieu en conséquence de prévoir une opération de lecture et une opération d'inscription dans la mémoire MC et ces opérations seront respectivement commandées par les signaux led et ind fournis par l'horloge HCC.
Durant cet intervalle de temps, la mémoire de trajets MTS fournit une adresse adr et un signal de validation val (s'il y a lieu de lire une combinaison codée à destination de la liaison MS). De même, les circuits d'adressage d'entrée CAE fournissent une adresse adi et un signal de validation vai (s'il y a lieu d'inscrire une combinaison codée en provenance de la liaison ME) Les circuits LCA reçoivent le signal led. Si le signal val est présent ils fournissent en échange le signal lec. En même temps, l'adresse adr est retransmise comme adresse AD. L'opération de lecture s'effectue.En l'absence de signal de validation val, un signal rzd est produit par les circuits LCA ; il remet à zéro le registre 'Wl, pour qu'une combinaison nulle soit transmise sur la liaison lfS. L'opération peut etre résumée, en ce qui concerne 11 intervention des circuits LCA et suivant une convention d'écriture connue, par lec = led.val AD = led.adr rzd = led.val
La combinaison codée lue (ou une information nulle) s'inscrit dans le registre RD1. La condition acir la transfère un peu plus tard vers le registre PEM pour émission sur la liaison MS.
De même, les circuits LCA reçoivent le signal ind. Si le signal vai est présent, ils fournissent en échange le signal ins. En même temps, l'adresse adi est retransmise comme adresse AD et la condition cin est fournie. L'opération dtinscription s'effectue. Elle peut être résumée par ins = ind.vai AD = ind.adi cin = ind.vai
La combinaison codée présente sur la liaison ME est inscrite directement dans la mémoire "C, la porte pin étant passante.
Lorsque, par exemple, un canal de la liaison d'entrée doit être mis en activité, un ordre est reçu dans le registre RrjJC en provenance de l'unité centrale UC. Pour simplifier, on supposera que cet ordre est transféré dans le registre IPXMC, à travers une porte pmm ouverte par une condition dmm (fournie par des moyens de synchronisation propres à la liaison riE et qui ne seront pas décrits), juste avant le début d'un multimotif. Le même signal dmm remet en position O le compteur CIR et le registre RAR s'ils nty sont pas déjà.
L'ordre en question, comme illustré en relation dans le registre IRMC, comprend une adresse AIR et une commande CI, la commande CR n'étant pas fournie. La commande CI spécifie qu'il s'agit d'insérer une case de mémoire pour un canal à mettre en activité. L'adresse AIR indique l'emplacement qui doit être attribué à cette case de mémoire dans la mémoire -rC ; on supposera que sa valeur est X, comme précedemment envisage. II y a lieu de décàler d'un pas toutes les cases de mémoire a partir de celle qui a encore L'adresse X et y compris celle-ci.