FR 3164476 A1 20260116 FR 2407564 A 20240711 La présente invention concerne une souche de microalgues appartenant au genre Haematococcus à haut rendement en astaxanthine ainsi qu’un procédé de production d’astaxanthine. En particulier, l’invention concerne une souche de microalgues d’Haematococcus pluvialis comprenant au moins 5% d’astaxanthine en poids par rapport au poids total de la matière sèche d’Haematococcus pluvialis Nouvelle souche de microalgues d’Haematococcus pluvialis à haut rendement d’astaxanthine L’invention concerne le domaine technique des microalgues. En particulier, l’invention a pour objet une souche particulière d’Haematococcus pluvialis à haut rendement en astaxanthine et un procédé de production d’astaxanthine mettant en œuvre ladite souche. Etat de l’art La demande croissante de molécules d’origine naturelles incite les industriels à explorer des méthodes novatrices de production. Les microalgues, organismes photosynthétiques unicellulaires, émergent comme des candidats privilégiés pour répondre à ce besoin, offrant un environnement cellulaire unique propice à la biosynthèse de composés d'intérêt. Dans le contexte de la production de molécules naturelles, les microalgues présentent de nombreux avantages tels que leur capacité à prospérer dans des conditions environnementales variées, leur taux de croissance rapide, et leur faible empreinte environnementale en font des candidats idéaux pour des processus de production durables et économiquement viables. Toutefois, malgré les nombreuses avancées dans le domaine de la biotechnologie, les microalgues présentent, dans certains cas, un rendement de production trop faible par rapport aux besoins du marché. C’est notamment le cas pour la production d’astaxanthine d’origine naturelle. L’astaxanthine (3,3'-dihydroxy-β, β'-carotène-4,4'-dione) est un caroténoïde appartenant à la famille des xanthophylles présentant une couleur rouge. L’astaxanthine est reconnu pour ses propriétés bénéfiques chez l’Homme et l’animal, tel que : *son effet antioxydant : L'une des propriétés les plus remarquables de l'astaxanthine est son pouvoir antioxydant exceptionnel. L’astaxanthine a une capacité bien supérieure à celle de la vitamine E, de la vitamine C et de nombreux autres caroténoïdes ; et *ses effets anti-inflammatoires. Du fait de ses propriétés exceptionnelles, l'astaxanthine trouve des applications dans de nombreux domaines tel que dans l'industrie alimentaire, pharmaceutique, cosmétique et aquacole. Hematococcus pluvialis, une microalgue d'eau douce, est la principale source naturelle d'astaxanthine. Cependant, avec ses capacités intrinsèques, la production naturelle de cette molécule par Hematococcus pluvialis reste limitée, ne répondant pas pleinement à la demande croissante du marché. Malgré les difficultés à produire de l’astaxanthine d’origine naturelle, l'astaxanthine demeure un composé d'une importance capitale, motivant la recherche de solutions innovantes pour surmonter les limitations liées à sa production naturelle. Il existe donc un besoin pour de nouvelles approches visant à augmenter substantiellement la capacité de production d'astaxanthine à partir de microalgues, notamment à partir d’Hematococcus pluvialis, et ainsi répondre à la demande des industries en ayant besoin. Pour répondre à ce besoin, l’invention propose ainsi une nouvelle souche de microalgues d’Hematococcus pluvialis comprenant au moins 5% d’astaxanthine en poids par rapport au poids total de la matière sèche. De façon surprenante, les inventeurs, sont parvenus à obtenir une nouvelle souche d’intérêt à partir d’une souche sauvage d’Hematococcus pluvialis. L’invention permet de répondre aux besoins des industriels en proposant une nouvelle souche de microalgues présentant une production d’astaxanthine améliorée par rapport aux souches décrites dans l’art antérieur, notamment la souche sauvage UTEX 2505 référencée au sein de la collection de culture d’algues de l’université du Texas à Austin. En effet, la souche sauvage UTEX 2505 connue pour sa capacité de production élevée d’astaxanthine comprend moins de 5% d’astaxanthine en poids par rapport au poids total de la matière sèche. Préférentiellement, la souche de microalgues selon l’invention est une souche de microalgues particulière appartenant au genre Hematococcus et à l’espèce pluvialis, également appelée Hematococcus pluvialis choisie parmi la souche déposée auprès de la banque espagnole des algues (Banco Español de Algas) sous le numéro BEA_IDA_0084 ou la souche déposée auprès de la banque espagnole des algues (Banco Español de Algas) sous le numéro BEA_IDA_0087. Ces nouvelles souches, stables sur le plan génétique, présentent une production en astaxanthine supérieure à la souche sauvage UTEX 2505 connue pour avoir une production importante d’astaxanthine. Selon un objet préféré de l’invention, la souche de microalgues selon l’invention est une souche dérivée d’au moins une souche choisie parmi la souche de microalgues déposée sous le numéro BEA_IDA_0084 ou la souche de microalgues déposée sous le numéro BEA_IDA_0087. Selon un autre objet particulièrement préféré de l’invention, la souche de microalgues selon l’invention est une souche comprenant une séquence d’ADNr 18S ayant au moins 97% d’identité avec la séquence SEQ ID NO : 1 d’ADNr 18S de la souche déposée sous le numéro BEA_IDA_0084. Avantageusement, la souche déposée sous le numéro BEA_IDA_0084 présente une séquence d’ADNr 18S identique à la séquence d’ADNr 18S de la souche déposée sous le numéro BEA_IDA_087. Très préférentiellement, l’invention concerne une nouvelle souche de microalgues d’Haematococcus pluvialis déposée sous le numéro BEA_IDA_0084 ou sous le numéro BEA_IDA_0087. Selon un autre aspect, l’invention se rapporte à l’utilisation d’au moins une souche de microalgues d’Haematococcus pluvialis pour produire de l’astaxanthine, préférentiellement ladite souche de microalgues est choisie parmi la souche de microalgues déposée sous le numéro BEA_IDA_0084 ou la souche de microalgues déposée sous le numéro BEA_IDA_0087. Enfin, l’invention concerne, selon un autre aspect, un procédé de production d’astaxanthine comprenant la culture d’au moins une souche de microalgues d’Hematococcus pluvialis comprenant au moins 5% d’astaxanthine en poids de matière sèche, préférentiellement la souche de microalgues d’Hematococcus pluvialis est choisie parmi la souche de microalgues déposée sous le numéro BEA_IDA_0084 ou la souche de microalgues déposée sous le numéro BEA_IDA_0087 déposée sous le numéro BEA_IDA_0084. D’autres caractéristiques et avantages ressortiront de la description détaillée de l’invention, des exemples et des figures uniquement illustratifs et nullement limitatifs de la portée de l’invention. Brève description des figures FIG. 1 La FIG. 1 est une représentation graphique d’un essai comparatif de la quantité de matière sèche produite après 18 jours de culture d’une souche sauvage d’Hematococcus pluvialis en comparaison avec une souche selon l’invention. FIG. 2 La FIG. 2 est une représentation graphique d’un essai comparatif de la concentration d’astaxanthine retrouvée au sein d’un échantillon de microalgues après 18 jours de culture appartenant à une souche sauvage d’Hematococcus pluvialis en comparaison avec une souche selon l’invention. FIG. 3 La FIG. 3 est une représentation graphique d’un essai comparatif de la concentration massique en astaxanthine retrouvée au sein de la matière sèche produite après 18 jours de culture d’une souche sauvage d’Hematococcus pluvialis en comparaison à une souche selon l’invention. Description détaillée de l’invention Définitions Par « microalgues » au sens de l’invention, on entend des microorganismes en très grande partie photosynthétiques unicellulaires ou multicellulaires. Les microalgues sont classées par famille, genre, espèce. Chaque espèce de microalgues comprend une diversité de souches de microalgues. Dans le contexte de l’invention, la souche de microalgues appartient à la famille des Haematococcacées, au genre Hematococcus et à l’espèce pluvialis. Par « souche de microalgues » ou « souche » au sens de l’invention, on entend une souche de microalgues spécifiques mais également toutes les microalgues issues de la souche ou obtenues à partir de la souche ou correspondant à la souche de microalgues et ayant les mêmes fonctions métaboliques, par exemple, au moins une microalgue prélevée d’une colonie issue de la souche. Par « microalgues selon l’invention » au sens de l’invention, on entend une souche de microalgues selon l’invention. Par « souche de microalgues dérivée » ou « souche mutante » ou « souche dérivée » ou « microalgues dérivées » au sens de l'invention, on entend une souche de microalgues ayant une forte similarité avec la souche de microalgues déposée sous le numéro BEA_IDA_0084 ou la souche de microalgues déposée sous le numéro BEA_IDA_0087, notamment en maintenant ou en améliorant les capacités de production de l’astaxanthine de la souche de microalgues BEA_IDA_0084 ou de la souche de microalgues BEA_IDA_0087 Préférentiellement, la souche comprend une séquence nucléotidique ayant au moins 99,90% d’identité d’ANI avec la séquence nucléotidique du génome de la souche de microalgues BEA_IDA_0084 ou la souche de microalgues BEA_IDA_0087, plus préférentiellement au moins 99,91%, au moins 99,92%, au moins 99,93%, au moins 99,94%, au moins 99,95%, au moins 99,96%, au moins 99,97%, au moins 99,98%, ou au moins 99,99% d’identité d’ANI. Par « ANI » au sens de l’invention, on entend le pourcentage d’identité moyen des nucléotides calculé à partir de la comparaison deux-à-deux de toutes les séquences de génome partagées entre les deux souches de microalgues. Selon les connaissances générales bien connues de l’Homme du métier, à partir d’au moins une souche d’intérêt choisie parmi la souche de microalgues déposée auprès de la BEA sous le numéro BEA_IDA_0084 ou la souche de microalgues déposée auprès de la BEA sous le numéro BEA_IDA_0087, l’ADN génomique peut être extrait à partir d’une culture de microalgues pure issue de ladite souche d’intérêt, suivi du séquençage de l’ADN selon différentes méthodes bien connues, par exemple Sanger, Roche 454, Illumina, Oxford Nanopore puis le génome séquencé est assemblé par bio-informatique et les séquences obtenues sont analysées. Enfin, les génomes d’intérêt sont comparés deux à deux pour calculer l’ANI. Par « souche sauvage » ou « souche sauvage d’Hematococcus pluvialis » au sens de l’invention, on entend la souche sauvage UTEX 2505 référencée au sein de la collection de culture d’algues de l’université du Texas à Austin connue pour sa capacité à produire l’astaxanthine. Ladite souche sauvage selon l’invention a été prélevée dans un milieu naturel et n’a pas subi de sélection ou de modification génétique. Par « en poids de la matière sèche » au sens de l’invention, on entend la quantité d’astaxanthine présente dans la matière sèche d’Hematococcus pluvialis. Ce pourcentage peut également s’exprimer en gramme pour 100 grammes de matière sèche. Par « matière sèche » au sens de l’invention, on entend la biomasse d’Hematococcus pluvialis séchée. Préférentiellement, la matière sèche est obtenue après mise en culture de la souche de microalgue selon l’invention dans des conditions optimales pour induire la production d’astaxanthine. Par « culture de microalgues » au sens de l’invention, on entend le milieu de culture liquide adapté à la croissance et la reproduction des microalgues, ainsi que lesdites microalgues. Par « milieu de culture liquide adapté à la croissance et la reproduction des microalgues » on entend un milieu de culture présentant au moins l’un des paramètres suivants, à savoir : une température comprise entre 25 et 32°C, avantageusement entre 28 et 32°C ; ou un pH supérieur à 7,5 avantageusement un pH compris entre 7,5 et 9, très avantageusement entre 8,5 et 9. Souche de microalgues selon l’invention La présente invention a donc pour objet une souche de microalgues d’Hematococcus pluvialis comprenant au moins 5% d’astaxanthine en poids par rapport au poids total de la matière sèche d’Hematococcus pluvialis. Les inventeurs sont ainsi parvenus à obtenir une souche d’Hematococcus pluvialis à haut rendement d’astaxanthine, c’est-à-dire produisant une quantité d’astaxanthine supérieure à la quantité d’astaxanthine produite par la souche sauvage d’Hematococcus pluvialis telle que la souche UTEX 2505. Ainsi, la souche de microalgues selon l’invention comprend au moins 5% d’astaxanthine en poids par rapport au poids total de la matière sèche d’Hematococcus pluvialis, préférentiellement au moins 5,1%, au moins 5,2%, au moins 5,3%, au moins 5,4%, plus préférentiellement au moins 5,5% en poids de la matière sèche d’Hematococcus pluvialis. Selon un mode de réalisation particulier, la souche de microalgue selon l’invention est capable de se développer dans un milieu liquide présentant au moins un paramètre choisi parmi : * une température comprise entre 25 et 32°C, avantageusement entre 28 et 32°C ; et *un pH supérieur à 7,5 avantageusement un pH compris entre 7,5 et 9, très avantageusement entre 8,5 et 9. Ainsi, selon un mode particulièrement avantageux, ladite souche selon l’invention croît dans des conditions de culture ne permettant pas à la souche sauvage UTEX 2505 de se développer et croître, à savoir : * une température comprise entre 25 et 32°C, typiquement entre 28 et 32°C ; et *un pH supérieur à 7,5 notamment un pH compris entre 7,5 et 9, typiquement entre 8,5 et 9. De façon particulièrement préférée, la souche de microalgues selon l’invention est une souche d’Haematococcus pluvialis choisie parmi la souche déposée auprès de la BEA sous le numéro BEA_IDA_0084 ou la souche déposée auprès de la BEA sous le numéro BEA_IDA_0087. Lesdites souches de microalgues d’Hematococcus Pluvialis ont ainsi été déposées auprès de la banque espagnole des algues (Banco Español de Algas) sous le numéro BEA_IDA_0084 ou sous le numéro BEA_IDA_0087. Ladite souche déposée sous le numéro BEA_IDA_0084 a pour séquence d’ADNr 18S, la séquence SEQ ID NO :1. En outre, l’Homme du métier, par ses connaissances générales est en mesure de déterminer la séquence complète du génome (ANI) de la microalgues selon l’invention à partir de la souche déposée et accessible auprès de la BEA sous le numéro BEA_IDA_0084. La classification scientifique de la souche de microalgues BEA_IDA_0084 est la suivante : Domaine : Eukaryota ; Phylum : Chlorophyta ; Classe : Chlorophycea ; Ordre : Chlamydomonadales ; Famille : Haematococcaceae ; Genre : Hematococcus ; Espèce : pluvialis. Lorsque ladite souche selon l’invention est cultivée dans des conditions appropriées, c’est-à-dire dans un milieu de culture adapté, la taille de ses cellules végétatives varie de 5 à 25 micromètres. Ces cellules sont de forme ovale, de couleur verte, en mouvement actif, avec une extrémité étroite et une structure papillaire. Lesdites cellules possèdent également deux flagelles isométriques permettant le déplacement des microalgues. L’accumulation de l’astaxanthine est réalisée au sein de granules se regroupant autour du noyau des microalgues. Lors de l’accumulation de l’astaxanthine, les cellules augmentent leur volume et perdent leurs flagelles. Ainsi, lorsque la souche selon l’invention est cultivée dans des conditions appropriées, la majorité des cellules de ladite souche ne présentent pas de flagelle. Selon un mode de réalisation préféré, la souche de microalgue selon l’invention comprenant au moins 5% d’astaxanthine en poids par rapport au poids total de la matière sèche d’Haematococcus pluvialis est une souche dérivée d’au moins une souche de microalgues choisie parmi la souche déposée sous le numéro BEA_IDA_0084 ou la souche déposée sous le numéro BEA_IDA_0087. Ladite souche maintien ou améliore les capacités décrites dans la présente invention, à savoir une production d’astaxanthine supérieure à 5% en poids de la matière sèche d’Haematococcus pluvialis. Ladite souche dérivée peut alternativement être produite naturellement ou intentionnellement, par des méthodes de mutagénèse connues de l’Homme du métier. A titre d’exemple les méthodes de mutagénèse pouvant être mises en œuvre dans le cadre de la présente invention sont la croissance du micro-organisme original en présence d'agents mutagènes ou producteurs de stress, ou par le génie génétique visant à modifier des gènes spécifiques ou non telle que la mutagénèse dirigée ou la mutagénèse aléatoire. Lorsque la souche est obtenue par mutagénèse dirigée ou mutagénèse aléatoire, la souche dérivée de la souche BEA_IDA_0084 ou de la souche BEA_IDA_0087 d’Haematococcus pluvialis est préférentiellement un mutant génétiquement modifié. Selon un autre mode de réalisation préféré, la souche de microalgues selon l’invention comprend au moins 5% d’astaxanthine en poids par rapport au poids total de la matière sèche d’Haematococcus pluvialis et présente une séquence d’ADNr 18S ayant au moins 97%, de préférence au moins 98%, plus préférentiellement au moins 99% d’identité avec la séquence SEQ ID NO :1 d’ADNr 18S de la souche de microalgues BEA_IDA_0084. L’ARN ribosomique 18S (ARNr 18S) est l’ARN ribosomique constituant la sous unité (40S) des ribosomes chez les eucaryotes. Les gènes codant pour cet ARN sont appelés ADNr 18S. La séquence ARNr 18S ou ADNr 18S est régulièrement utilisé dans des analyses phylogénétiques pour étudier les relations évolutives entre différentes espèces de microalgues. Cela permet de comprendre la diversité génétique et l'évolution des microalgues à un niveau moléculaire. En effet, la séquence ARNr 18S ou ADNr 18S est une structure très conservée permettant d’identifier et de caractériser des microalgues et par conséquent particulièrement adapté dans le contexte de l’invention. Le pourcentage d’identité de la séquence d’ADNr 18S entre deux souches de microalgues, plus particulièrement deux souches de Haematococcus pluvialis, peut être déterminé par la méthode dite BLAST qui est une méthode de recherche heuristique bien connue de l’homme de l’art. Elle permet de trouver les régions similaires entre deux ou plusieurs séquences de nucléotiques ou d’acide aminés, et de réaliser un alignement de ces régions homologues. Dans certains cas, la séquence d’ADNr 18S ne permet pas toujours de différencier deux souches d’une même espèce ayant pour autant des propriétés différentes, par exemples des capacités de production d’astaxanthine différentes. Par conséquent, l’Homme du métier de par ses connaissances générales est en mesure de caractériser une souche de microalgues selon d’autres paramètres tels que le calcul de distance phylogénétique basé sur le génome complet (ANI), la taille du génome, le nombre de CDS (Coding DNA Sequence ou en Français Séquence d’ADN Codante), mais également l’identification de gènes spécifiques de ladite souche d’intérêt. Selon une variante, l’invention se rapporte également à une souche de microalgues comprenant au moins 5% d’astaxanthine en poids par rapport au poids de la matière sèche d’Haematococcus pluvialis et présentant une séquence nucléotidique ayant au moins 99% d’identité d’ANI avec la séquence nucléotidique de la souche de microalgues BEA_IDA_0084. Préférentiellement ladite souche selon l’invention comprend une séquence nucléotidique ayant au moins 99,91%, au moins 99,92%, au moins 99,93%, au moins 99,94%, au moins 99,95%, au moins 99,96%, au moins 99,97%, au moins 99,98%, au moins 99,99% d’identité d’ANI avec la séquence nucléotidique de la souche de microalgues BEA_IDA_0084. Une telle souche est donc une souche dérivée de la souche de microalgues BEA_IDA_0084 ou de la souche BEA_IDA_0087 permettant de maintenir ou d’améliorer les capacités de production d’astaxanthine, à savoir au moins 5% en poids par rapport au poids total de la matière sèche d’Haematococcus pluvialis. Selon un mode de réalisation avantageux, la souche de microalgues selon l’invention est obtenue par la mise en œuvre d’un procédé de culture comprenant la mise en œuvre des étapes suivantes : a) une étape de prolifération d’au moins une souche de microalgues selon l’un des quelconques modes de réalisation préalablement décrit dans un milieu de culture adapté ; et b) une étape d’induction de la production d’astaxanthine des microalgues issues de l’étape a). Préférentiellement, l’étape a) de prolifération est réalisée dans un milieu autotrophe, hétérotrophe ou mixotrophe. Selon un mode de réalisation très préféré, l’étape a) est réalisée dans un milieu de culture autotrophe choisi parmi Bolb basal modified medium (BBM), Blue green 11 medium (BG-11) et Kobayashi medium 1 (KM1). Selon un mode de réalisation préféré, le milieu de culture adapté de l’étape a) comprend au moins une source de carbone et au moins une source d’azote. Lorsque le milieu comprend au moins une source de carbone, celle-ci peut être choisie parmi le glucose, le fructose, le maltose, le galactose, le mannose, le sucrose, l'arabinose, le xylose, l’acétate et le glycérol, préférentiellement la source de carbone est l’acétate. Lorsque le milieu comprend au moins une source d’azote, celle-ci peut être i) une source d'azote organique sélectionnée dans le groupe constitué d'un extrait de levure, de peptone et de tryptone, ou ii) une source d'azote inorganique sélectionnée dans le groupe constitué du chlorure d’ammonium, du sulfate d’ammonium,de nitrate de sodium,de nitrate de potassium, de l’urée, et du glutamate monosodique(MSG). Selon un mode de réalisation, le milieu de culture de l’étape a) comprend au moins une vitamine, préférentiellement au moins une vitamine choisie parmi la vitamine B1, B12, H et leurs mélanges. Lorsqu’il comprend au moins une vitamine, le milieu de culture de l’étape a) comprend préférentiellement : *entre 2.10 -7 M et 4.10 -7 M de vitamine B1 ; *entre 3.10 -10 et 5.10 -10 M de vitamine B12 ; et *entre 1.10 -9 et 3.10 -9 M de vitamine H ; Préférentiellement, l’étape a) de prolifération d’au moins une souche de microalgues comprend une exposition dudit milieu de culture comprenant les microalgues à une intensité lumineuse comprise entre 5 et 100 µmol m -2 s -1 , plus préférentiellement 20 µmol m -2 s -1 . L’exposition lumineuse de la culture peut être réalisée notamment au moyen de leds ou de néons fluorescents adaptés. Dans le contexte de l’invention, la mesure de l’intensité lumineuse est réalisée par un photomètre (li-cor LI-250A). Ainsi, la culture selon l’étape a) des microalgues d’Haematococcus pluvialis est réalisée dans des conditions optimales de croissance. Selon un autre mode de réalisation, l’étape b) d’induction de la production d’astaxanthine comprend une exposition de ladite culture de microalgues issues de l’étape a) à une intensité comprise entre 110 et 500 µmol m -2 s -1 , préférentiellement entre 110 et 250 µmol m -2 s -1 , plus préférentiellement entre 110 et 150 µmol m -2 s -1 , encore plus préférentiellement entre 110 et 130 µmol m -2 s -1 , de façon encore plus préférentiellement de 125 µmol m -2 s -1 . Préférentiellement, l’étape b) comprend une diminution de l’apport d’au moins un élément choisi parmi l’azote, le phosphore ou le souffre. Préférentiellement, l’étape b) comprend l’application d’un stress salin, ledit stress salin comprend une concentration de chlorure de sodium dans le milieu de culture d’au moins 0,2% du milieu de culture en poids du poids total du milieu de culture. Selon un mode de réalisation préféré, l’étape b) comprend l’ajout d’acétate de sodium et/ou d‘ions ferreux. De façon très préférée, l’étape b) comprend l’ajout d’au moins 20mM d’acétate de sodium et/ou d’au moins 400µM de sulfate de fer. Selon un mode de réalisation particulièrement préféré, l’étape b) comprend l’exposition de la culture de microalgues issues de l’étape a) de prolifération à une intensité lumineuse supérieure à 100 µmol m -2 s -1 et/ou l’ajout d’acétate de sodium et/ou à des ions ferreux. Avantageusement au moins 20mM d’acétate de sodium et/ou au moins 400µM de sulfate de fer. Ainsi, selon un mode de réalisation, l’invention concerne une souche de microalgues d’Hematococcus Pluvialis comprenant au moins 5% d’astaxanthine en poids de la matière sèche obtenue après exposition d’une culture desdites microalgues à une intensité lumineuse supérieure à 100 µmol m -2 s -1 et/ou d’ajout d’acétate de sodium, préférentiellement au moins 20mM d’acétate de sodium et/ou d’ajout d’ions ferreux, préférentiellement au moins 400µM de sulfate de fer. Selon un mode de réalisation particulier de l’invention, la souche de microalgues selon l’invention est obtenue par la mise en œuvre d’un procédé de culture comprenant la mise en œuvre des étapes suivantes : a) une étape de prolifération d’au moins une souche de microalgues selon l’un des quelconques modes de réalisation préalablement décrit dans un milieu de culture adapté, dans laquelle : - le milieu de culture est un milieu de culture autotrophe; et - la culture de microalgues est exposé à une intensité lumineuse comprise entre 5 et 100 µmol m -2 s -1 ; et - le milieu de culture comprend au moins de l’acétate et du nitrate ; et - optionnellement, le milieu de culture comprend au moins une vitamine choisie par la vitamine B1 et/ou B12 et/ou H ; et b) une étape d’induction de la production d’astaxanthine des microalgues issues de l’étape a) de prolifération, dans laquelle : - la culture de microalgues issue de l’étape a) est exposée à une intensité lumineuse comprise entre 110 et 500 µmol m -2 s -1 ; et/ou - le milieu de culture comprenant les microalgues issu de l’étape a) est supplémenté en acétate de sodium et/ou en ions ferreux. Avantageusement, l’étape b) permet d’optimiser encore plus la production d’astaxanthine de la souche de microalgue selon l’invention. Selon un autre objet, l’invention concerne l’utilisation d’une souche de microalgues selon l’un des quelconques modes de réalisation précédent pour produire de l’astaxanthine. Selon un autre objet, l’invention concerne une souche de microalgue d’Haematococcus pluvialis déposée sous le numéro BEA_IDA_0084 ou sous le numéro BEA_IDA_0087. De façon préférée, la souche de microalgue d’Haematococcus pluvialis déposée sous le numéro BEA_IDA_0084 ou sous le numéro BEA_IDA_0087 présente une production augmentée d’astaxanthine comparé à la souche sauvage UTEX 2505. Ainsi, la présente invention vise également l’utilisation d’une souche de microalgue d’Haematococcus pluvialis déposée sous le numéro BEA_IDA_0084 ou sous le numéro BEA_IDA_0087 pour augmenter la production d’astaxanthine par rapport à la production d’astaxanthine d’une souche sauvage d’Haematococcus pluvialis. Procédé de production d’astaxanthine L’invention concerne également un procédé de production d’astaxanthine à haut rendement. Ainsi, l’invention a pour objet un procédé de production d’astaxanthine comprenant au moins une étape de culture d’au moins une souche de microalgues selon l’un des quelconques modes de réalisation préalablement décrit. Selon un mode de réalisation, le procédé de production d’astaxanthine comprend la culture d’au moins une souche de microalgues d’Hematococcus pluvialis, ladite souche comprenant au moins 5% d’astaxanthine en poids de la matière sèche d’Hematococcus pluvialis. Préférentiellement, le procédé de production d’astaxanthine comprend au moins une étape de culture d’au moins une souche de microalgues d’Haematococcus pluvialis déposée sous le numéro BEA_IDA_0084. Selon un autre mode de réalisation préféré, le procédé de production d’astaxanthine comprend la mise en œuvre des étapes suivantes : a) une étape de prolifération d’au moins une souche de microalgues selon l’un des quelconques modes de réalisation préalablement décrit dans un milieu de culture adapté ; b) une étape d’induction de la production d’astaxanthine des microalgues issues de l’étape a) ; et c) une étape d’extraction de l’astaxanthine des microalgues issues de l’étape b). Préférentiellement, le milieu de culture de l’étape a) est choisi parmi un milieu autotrophe, hétérotrophe ou mixotrophe. Selon un autre mode de réalisation préféré, l’étape a) de prolifération est réalisée dans un milieu de culture autotrophe choisi parmi BBM, BG-11 et KM1. Préférentiellement, le milieu de culture de l’étape a) comprend au moins une source de carbone et au moins une source d’azote. Lorsqu’il comprend au moins une source de carbone, ladite source de carbone peut être choisie parmi le glucose, le fructose, le maltose, le galactose, le mannose, le sucrose, l'arabinose, le xylose, l’acétate et le glycérol, préférentiellement la source de carbone est l’acétate. Lorsqu’il comprend au moins une source d’azote, ladite source d’azote peut être i) une source d'azote organique sélectionnée dans le groupe constitué d'un extrait de levure, de peptone et de tryptone, ou ii) une source d'azote inorganique sélectionnée dans le groupe constitué du chlorure d’ammonium, du sulfate d’ammonium,de nitrate de sodium,de nitrate de potassium, de l’urée, et du glutamate monosodique (MSG). Préférentiellement, ladite au moins une source d’azote est un nitrate. Selon un mode de réalisation, le milieu de culture de l’étape a) comprend au moins une vitamine, préférentiellement au moins une vitamine choisie parmi la vitamine B1, B12, H et leurs mélanges. De façon préférée, le milieu de culture de l’étape a) comprend : *entre 2.10-7M et 4.10-7M de vitamine B1 ; et *entre 3.10-10 et 5.10-10M de vitamine B12 ; et *entre 1.10-9 et 3.10-9M de vitamine H ; Préférentiellement, l’étape a) de prolifération d’au moins une souche de microalgues comprend une exposition dudit milieu de culture comprenant les microalgues à une intensité lumineuse comprise entre 5 et 100 µmol m-2 s-1, plus préférentiellement 20 µmol m-2 s-1. L’exposition lumineuse de la culture peut être réalisée notamment au moyen de leds ou de néons fluorescents adaptés. Dans le contexte de l’invention, la mesure de l’intensité lumineuse est réalisée par un photomètre (li-cor LI-250A). Ainsi, la culture selon l’étape a) des microalgues d’Haematococcus pluvialis est réalisée dans des conditions optimales de croissance. Selon un autre mode de réalisation, l’étape b) d’induction de la production d’astaxanthine comprend une exposition de ladite culture de microalgues issues de l’étape a) à une intensité lumineuse supérieure à 110 µmol m-2 s-1, préférentiellement comprise entre 110 et 500 µmol m-2 s-1, notamment entre 110 et 250 µmol m-2 s-1, plus préférentiellement entre 110 et 150 µmol m-2 s-1, encore plus préférentiellement entre 110 et 130 µmol m-2 s-1, de façon encore plus préférentiellement de 125 µmol m-2 s-1. Préférentiellement, l’étape b) comprend une diminution de l’apport d’au moins un élément choisi parmi l’azote, le phosphore ou le souffre. Préférentiellement, l’étape b) comprend l’application d’un stress salin, ledit stress salin comprend une concentration de chlorure de sodium dans le milieu de culture d’au moins 0,2% du milieu de culture en poids du poids total du milieu de culture. Selon un mode de réalisation préféré, l’étape b) comprend l’ajout d’acétate de sodium et/ou d‘ions ferreux. De façon très préférée, l’étape b) comprend l’ajout d’au moins 20mM d’acétate de sodium et/ou d’au moins 400µM de sulfate de fer. Selon un mode de réalisation particulièrement préféré, l’étape b) comprend l’exposition de la culture de microalgues issues de l’étape a) de prolifération à une intensité lumineuse supérieure à 100 µmol m-2 s-1 et/ou l’ajout d’acétate de sodium et/ou à des ions ferreux. Avantageusement au moins 20mM d’acétate de sodium et/ou au moins 400µM de sulfate de fer. Selon un mode de réalisation particulier, le procédé selon l’invention comprend la mise en œuvre des étapes suivantes : a) une étape de prolifération d’au moins une souche de microalgues selon l’un des quelconques modes de réalisation préalablement décrit dans un milieu de culture adapté, dans laquelle : - le milieu de culture est un milieu de culture autotrophe; et - la culture de microalgues est exposé à une intensité lumineuse comprise entre 5 et 100 µmol m-2 s-1; et - le milieu de culture comprend au moins de l’acétate et du nitrate ; et - optionnellement, le milieu de culture comprend au moins une vitamine choisie par la vitamine B1 et/ou B12 et/ou H ; et b) une étape d’induction de la production d’astaxanthine des microalgues issues de l’étape a) de prolifération, dans laquelle : - la culture de microalgues issue de l’étape a) est exposée à une intensité lumineuse comprise entre 110 et 500 µmol m-2 s-1; et/ou - le milieu de culture comprenant les microalgues issu de l’étape a) est supplémenté en acétate de sodium et/ou en ions ferreux. Avantageusement, l’étape b) permet d’optimiser encore plus la production d’astaxanthine de la souche de microalgue selon l’invention. Selon un mode de réalisation, l’étape c) d’extraction est réalisée au moyen de dioxyde de carbone en état supercritique. Avantageusement, l’extraction au dioxyde de carbone en état supercritique permet d’extraire sélectivement l’astaxanthine et donc d’optimiser son extraction. Selon un mode de réalisation préféré, l’étape c) d’extraction comprend la mise en œuvre des étapes suivantes : *séchage de la biomasse de microalgues issues de l’étape b) ; *lyse des parois cellulaire des microalgues, préférentiellement au moyen d’au moins une enzyme ou au moins un moyen mécanique ; et *extraction de l’astaxanthine à l’aide du dioxyde de carbone en état supercritique. Selon un mode de réalisation, l’étape c) d’extraction comprenant une étape de séchage, préférentiellement au moyen d’une étuve à 95°C pendant 24 heures. Exemple 1 : Etude comparative de la production d’astaxanthine d’une souche sauvage d’Haematocoocus p luviali s UTEX 2505 vs la souche selon l’invention déposée sous le numéro BEA_IDA_0084 . Souches La souche sauvage UTEX 2505 a été obtenue à partir de la collection de cultures d'algues de l’université du Texas à Austin (UTEX). La souche selon l’invention a été obtenue de façon surprenante, à partir d’une souche sauvage d’Hematococcus pluvialis en combinant des méthodes sélections darwiniennes et un procédé de criblage à très haut débit. Pour la réalisation de cet exemple, la souche selon l’invention est la souche déposée sous le numéro BEA_IDA_0084. Les deux souches de microalgues ont été cultivées sur un milieu basal gras (BBM) à 24°C en lumière continue. Culture Les cultures ont été réalisées dans des fioles Erlenmeyer de 250 ml contenant 70 ml de milieu BG-11 à 24°C, sous agitation orbitale à 140rpm et sous illumination continue (50 µmol m -2 s -1 ) pendant 7 jours puis 350 µmol m -2 s -1 pendant 10 jours. Contamination La présence de contamination a été vérifiée par la mise en évidence d'une goutte de culture sur le milieu LB+agar à la fin de chaque culture. Essais Détermination de la matière sèche Après 18 jours de culture, un échantillon de chaque culture est prélevé et centrifugé à 3500g pendant 5 minutes à température ambiante. Le culot cellulaire a été lavé une fois avec 2 ml d'eau distillée et placé sur des microtubes eppendorf préalablement séchés. Ensuite, les microtubes ont été séchés à 60°C pendant 24 heures. Les résultats sont illustrés à la FIG. 1 et démontrent une meilleure prolifération de la souche selon l’invention par rapport à la souche sauvage. En d’autres termes, la souche selon l’invention permet de produire une biomasse de microalgues plus importante par rapport à la souche sauvage et donc une quantité de matière sèche plus conséquente. Dosage de l'astaxanthine La concentration en astaxanthine (AC) est déterminée par la méthode photométrique. Brièvement, après 18 jour de cultures dans les conditions précitées, les cellules de microalgues ont été collectées à partir d'un échantillon de 1 ml par centrifugation (3000 rpm, 2 min), puis traitées avec 5% (p/v) de KOH dans 30% (v/v) de méthanol à 80 °C pendant 30 min. Le culot restant a été lavé trois fois et extrait avec 5 ml de DMSO/acétone (80/20) pendant 30 minutes dans un bain de sonication. Le surnageant a été recueilli après centrifugation (10000 rpm, 5 min). La procédure d'extraction a été répétée plusieurs fois jusqu'à ce que le culot devienne incolore. Enfin, l'absorbance de l'extrait a été mesurée à une longueur d'onde de 492 nm. Ainsi la concentration d’astaxanthine a été calculée selon la formule : AC=4,5×A492×Va/10 2 où A492 est l'absorbance des extraits à 492 nm et Va est le volume des extraits. Les résultats sont illustrés à la FIG. 2 et démontrent que la souche selon l’invention à une capacité de production supérieure d’astaxanthine comparée à la souche sauvage. En complément, les inventeurs ont mesuré la concentration en astaxanthine au sein de la matière sèche résultant d’une culture des deux souches de microalgues pendant 18jours. Les résultats sont présentés à la FIG. 3 et démontrent une concentration d’au moins 5% d’astaxanthine en poids par rapport au poids total de la matière sèche. Souche de microalgues d’Haematococcus pluvialis comprenant au moins 5% d’astaxanthine en poids par rapport au poids total de la matière sèche d’Haematococcus pluvialis. Souche de microalgues selon la précédente revendication, caractérisée en ce qu’elle est dérivée d’au moins une souche choisie parmi la souche de microalgues déposée sous le numéro BEA_IDA_0084 ou la souche de microalgues déposée sous le numéro BEA_IDA_0087. Souche de microalgues selon l’une des précédentes revendications, caractérisée en ce qu’elle comprend une séquence d’ADNr 18S ayant au moins 97% d’identité avec la séquence SEQ ID NO : 1 d’ADNr 18S de la souche déposée sous le numéro BEA_IDA_0084. Souche de microalgues selon l’une des précédentes revendications, caractérisée en ce qu’elle est choisie parmi la souche déposée sous le numéro BEA_IDA_0084 ou la souche déposée sous le numéro BEA_IDA_0087. Utilisation d’une souche de microalgue selon l’une des précédentes revendications, pour produire de l’astaxanthine. Procédé de production d’astaxanthine, caractérisé en ce qu’il comprend au moins une étape de culture d’au moins une souche de microalgues selon l’une des revendications 1 à 4. Procédé selon la précédente revendication, caractérisé en ce qu’il comprend la mise en œuvre des étapes suivantes : a) une étape de prolifération d’au moins une souche de microalgues selon l’une des revendication 1 à 4 dans un milieu de culture adapté ; b) une étape d’induction de la production d’astaxanthine des microalgues issues de l’étape a) ; c) une étape d’extraction de l’astaxanthine des microalgues issues de l’étape b). Procédé selon la précédente revendication, caractérisé en ce que le milieu de culture de l’étape a) est autotrophe, hétérotrophe ou mixotrophes. Procédé selon l’une des revendications 7 ou 8, caractérisé en ce que le milieu de culture de l’étape a) comprend une source de carbone et une source d’azote. Procédé selon la précédente revendication, caractérisé en ce que la source de carbone est choisie parmi le glucose, le fructose, le maltose, le galactose, le mannose, le sucrose, l'arabinose, le xylose, l’acétate et le glycérol. Procédé selon l’une des revendication 9 ou 10, caractérisé en ce que la source d’azote est : i) une source d'azote organique sélectionnée dans le groupe constitué d'un extrait de levure, de peptone, et de tryptone ; ou ii) une source d'azote inorganique sélectionnée dans le groupe constitué du chlorure d'ammonium, du sulfate d'ammonium, du nitrate de sodium, de l’urée, et du glutamate monosodique (MSG). Procédé selon l’une des revendication 7 à 11, caractérisé en ce que le milieu de culture de l’étape a) comprend également au moins une vitamine choisie parmi la vitamine B1, la vitamine B12, la vitamine H et leurs mélanges. Procédé selon l’une des revendications 7 à 12, caractérisé en ce que l’étape a) de prolifération comprend une exposition de la culture de microalgues à une intensité lumineuse comprise entre 5 et 100 µmol m -2 s -1 . Procédé selon l’une des revendications 7 à 13, caractérisé en ce que l’étape b) comprend une exposition de la culture de microalgues issues de l’étape a) de prolifération à une intensité lumineuse supérieure à 110 µmol m -2 s -1 et/ou à l’ajout d’acétate de sodium et/ou à d‘ions ferreux. Procédé selon l’une des revendications 8 à 14, caractérisé en ce l’étape c) est réalisée au moyen de dioxyde de carbone en état supercritique. Procédé selon la précédente revendication, caractérisé en ce que l’étape c) comprend la mise en œuvre des étapes suivantes : *séchage de la biomasse de microalgues issues de l’étape b) ; *lyse des parois cellulaire des microalgues, préférentiellement au moyen d’au moins une enzyme ou d’au moins un moyen mécanique ; et *extraction de l’astaxanthine à l’aide du dioxyde de carbone en état supercritique.