FR 3156351 A1 20250613 FR 2313876 A 20231208 L’invention concerne une composition sous forme de poudre, comprenant un peroxyde de métal alcalino-terreux, des micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants, des ingrédients nutritifs pour ces micro-organismes, et optionnellement une base ; et une solution ainsi que des microsphères, leurs procédés de préparation et leurs utilisations dans la dépollution des environnements tels que les sols et les milieux aqueux. figure pour l’abrégé : pas de figure Composition et microsphère pour la remédiation des sites, des sols et des milieux aqueux pollués. La présente invention concerne une composition sous forme de poudre, une solution ainsi que des microsphères, leurs procédés de préparation et leurs utilisations dans la dépollution des environnements tels que les sols et les milieux aqueux. La pollution engendrée par les activités industrielles, les activités agricoles, l’exploitation massive des hydrocarbures et par les autres activités humaines représentent des risques pour les écosystèmes marins, terrestres ainsi que pour la santé humaine. Ainsi, 75% des sols terrestres seraient pollués. Cette pollution des sols n’est pas anodine et engendre une altération de la biodiversité des sols, une réduction de matière organique et de la capacité des sols à agir comme un filtre, ce qui induit la contamination de l’eau stockée dans les sols et les eaux souterraines. De ce fait, la dépollution des sols et des milieux aqueux représente un enjeu crucial. A ce jour, des solutions sont mises en place pour lutter contre la pollution des sols et des milieux aqueux, en amont, mais aussi, en aval, pour la dépollution de ces environnements que ce soit par des méthodes de dépollution hors-site, sur site ou in-situ. Les méthodes de dépollution peuvent être diverses comme la dépollution biologique qui comprend notamment la dépollution par remédiation biochimique, ou la dépollution physico-chimique qui comprend différentes techniques d’extraction (par aspiration, électrique, par chauffage …) ou encore la dépollution par remplacement du sol. La remédiation biochimique est une des alternatives utilisées pour la dépollution d’un environnement tel qu’un sol ou un milieu aqueux. La remédiation biochimique consiste en la dépollution de ces environnements grâce notamment à des micro-organismes capables de dégrader des molécules complexes. Toutefois, la dépollution par remédiation biochimique présente des limites intrinsèques notamment dans l’apport constant d’éléments nécessaires aux développements et au maintien des micro-organismes. En effet, la biodisponibilité de l’oxygène est un facteur important pour la croissance initiale des micro-organismes. Néanmoins, cette biodisponibilité est limitée et est difficile à contrôler dans le temps. De plus, la remédiation biochimique nécessite la modification préalable et volontaire des paramètres de réactions chimiques par l’opérateur, au cours du temps, tels que le pH et la température, qui vont dépendre de la quantité de produits polluants présents dans l’environnement à dépolluer. De ce fait, tous ces inconvénients induisent des résultats techniques limités en terme de dépollution de l’environnement et un important coût financier. Le travail des inventeurs a permis de mettre en évidence qu’il était possible de mettre au point une composition permettant le développement de micro-organismes en vue de permettre l’oxydation des composés polluants présents dans les sols et les milieux aqueux ainsi que la libération progressive et contrôlée d’éléments nécessaires à leurs activités et notamment le peroxyde d’hydrogène. En effet, la libération de peroxyde d’hydrogène va participer directement ou indirectement à la biodégradation des composés organiques polluants. De plus, le développement des micro-organismes va permettre, via son métabolisme, une biodégradation par le biais des métabolites et des enzymes qu’ils sont susceptibles de secréter. L’invention concerne donc notamment une composition sous forme de poudre comprenant : - de 1 à 50% en masse d’un peroxyde de métal alcalino-terreux, - de 0,5 à 50% en masse de micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants, - de 10 à 90% en masse d’ingrédient(s) nutritif(s) pour les micro-organismes, - de 0 à 2% en masse d’une base, les pourcentages en masse étant donnés sur la masse de la composition sous forme de poudre. Dans la présente demande, sauf spécifié autrement, toutes les valeurs numériques données s’entendent bornes incluses. Par « sous forme de poudre », on entend une composition sous forme de particules. De préférence, les particules ont une taille comprise entre 85 et 120, préférentiellement, entre 90 et 110, plus préférentiellement, entre 95 et 100 µm. Par « taille de particules », on vise la plus grande dimension de la particule. Selon l’invention, la composition sous forme de poudre comprend entre 1 et 50% en masse d’un peroxyde de métal alcalino-terreux, exprimé sur la masse totale de composition sous forme de poudre. Par « peroxyde de métal alcalino-terreux », on entend le produit de réaction entre un métal alcalino-terreux et du peroxyde. Les métaux alcalino-terreux sont choisis parmi le groupe constitué du béryllium, du magnésium, du calcium, du strontium, du baryum et du radium. Préférentiellement, le peroxyde de métal alcalino-terreux est choisi parmi le peroxyde de magnésium (MgO 2 ), le peroxyde de calcium (CaO 2 ) ou leurs mélanges, plus préférentiellement, le peroxyde de métal alcalino-terreux est du peroxyde de calcium (CaO 2 ). Avantageusement, la composition sous forme de poudre comprend entre 5 et 40% en masse d’un peroxyde de métal alcalino-terreux, préférentiellement, entre 10 et 30% en masse, plus préférentiellement, entre 12 et 25% tel que par exemple entre 15 et 20% en masse d’un peroxyde de métal alcalino-terreux, exprimé sur la masse totale de composition sous forme de poudre. Selon l’invention, la composition sous forme de poudre comprend entre 0,5 et 50% en masse de micro-organismes, exprimé sur la masse totale de composition sous forme de poudre. Avantageusement, la composition sous forme de poudre comprend entre 0,5 et 40% en masse de micro-organismes, préférentiellement, entre 1 et 40% en masse de micro-organismes, plus préférentiellement, entre 1 et 30%, tel que par exemple entre 5 et 28% en masse de micro-organismes, exprimé sur la masse totale de composition sous forme de poudre. Par « micro-organisme », on entend un organisme vivant microscopique et invisible à l’œil nu. Le micro-organisme peut être une bactérie, une archéobactérie, un virus, un protiste, une plante (telle qu’une algue), un animal (tel qu’un protozoaire) ou un champignon. Par « saprophyte », on entend un organisme végétal, animal, fongique ou bactérien capable de se nourrir de matière organique en décomposition. Préférentiellement, le micro-organisme saprophyte est d’origine fongique (champignon) ou bactérienne (bactérie). Par « aérobie », on entend un organisme qui utilise de l’oxygène pour se développer. Par « alcalophile », on entend un micro-organisme qui se développe dans des environnements basiques, c’est-à-dire dans des environnements ayant un pH supérieur à 7. Par « alcalotolérant », on entend un micro-organisme qui peut se développer dans des environnements ayant un pH basique, c’est-à-dire dans des environnements ayant un pH supérieur à 7. Le développement de ces micro-organismes va permettre, par le biais de leurs métabolismes, la sécrétion de métabolites et d’enzymes susceptibles d’abaisser le pH de l’environnement dans lequel le micro-organisme croît. Plus particulièrement, ces enzymes, sécrétées par les micro-organismes, sont des hydrolases et/ou des oxydoréductases. A titre d’exemples d’hydrolases, on peut citer les estérases telles que les lipases et/ou les carboxylestérases ; les peptidases tels que les subtilisines ; les glucosides hydrolases et/ou les phosphatases ; les cellulases et/ou les hemicellulases. A titre d’exemples d’oxydoréductases, on peut citer les peroxydases tels que les lignines peroxydases et/ou les manganèses peroxydases ; les Glucose-Méthanol-Choline oxydoréductases ; les réductases ; les mono-oxygénases ; les dioxygénases ; les laccases ; les catalases ; les oxydases telles que les glyoxal oxydases, les oxydases multi cuivre, les alcools oxygénases et/ou les aldéhydes oxygénases. Préférentiellement, les enzymes sécrétées sont des peroxydases (lignines peroxydases et/ou les manganèses peroxydases et/ou les versatiles peroxydases), des catalases et/ou des laccases. De préférence, les micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants sont des champignons, qui peuvent être issus d’un même genre ou de plusieurs genres, d’une même espèce ou de plusieurs espèces. Plus préférentiellement, le champignon saprophyte aérobie alcalophile ou alcalotolérant est choisi parmi les ascomycètes et les basidiomycètes. De préférence, la composition sous forme de poudre dans laquelle les micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants sont des champignons, lesdits champignons étant de(s) genre(s) choisi(s) parmi le groupe constitué par Acremonium, Aspergillus, Fusarium, Coprinus, Penicillium, Pleurotus, Trichoderma, Gliocladium, Phialophora, Stachylidium, Stilbella et leurs mélanges. Préférentiellement, les champignons saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants sont d’une espèce choisie parmi le groupe constitué par Acremonium alternatum, Acremonium furcatum, Acremonium sp.6, Aspergillus flavus, Aspergillus niger, Aspergillus oryzae, Fusarium oxysporum, Fusarium solani, Coprinus comatus, Coprinus cinereus, Coprinus friesii, Penicillium chrysogenum, Penicillium janthinellum, Penicillium digitatum, Penicillium simplicissimum, Penicillium veruculosum peyronel, Pleurotus ostreatus, Pleurotus eryngii, Pleurotus ulmarius, Pleurotus pulmonarius, Pleurotus sajor saju, Pleurotus sp. Florida, Trichoderma viride, Trichoderma harzianum, Trichoderma asperellum, Trichoderma virens, Trichoderma longibrachiatum, Trichoderma koningii, Gliocladium cibotii, Phialophora geniculata, Stachylidium bicolor et Stilbella annulata et leurs mélanges. Plus préférentiellement, les champignons saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants sont d’une espèce choisie parmi le groupe constitué par Aspergillus flavus, Fusarium oxysporum, Fusarium solani, Coprinus comatus, Coprinus cinereus, Coprinus friesii et leurs mélanges. La composition comprend au moins une espèce de champignons saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants. Cependant, d’autres champignons et/ou des bactéries peuvent être ajoutés à la composition sous forme de poudre. Ces autres champignons peuvent être des champignon(s) saprophyte(s) aérobie(s) alcalophile(s) ou alcalotolérant(s) comme indiqué ci-avant ou d’autres champignons. Par « autres champignons », on entend au moins un champignon d’une espèce qui n’est pas saprophyte aérobie alcalophile ou alcalotolérante. A titre d’exemple d’autres champignons, on peut citer des champignons pouvant produire des mélanines tels que les Melanocarpus albomyes . Ces champignons produisent avantageusement des laccases en milieu basique qui pourront oxyder directement des composants organiques. On peut également citer des champignons acidophiles non alcalotolérants tels que ceux des genres Agaricus, Agrocybe, Allescheriella, Amanita, Armillaria, Anthracophyllum, Antrodia, Aureobasisium, Bjerkandera, Boletus, Candida, Cantharellus, Chaetomium, Clitocybe, Collybia, Coriolopsis, Cortinarius, Cunninghamella, Daedaela, Debaryomyces, Dichomitus, Dipodascus, Flamulina, Fistulina, Funalia, Galerina, Ganoderma, Gautiera, Gloeophyllum, Glomus, Gomphidius, Grifola, Hydnellum, Hydnum, Hypholoma, Irpex, Kuehneromyces, Kretzschmaria, Laccaria, Lactarius, Laetiporus, Leccinum, Lentinus, Lepista, Lycoperdon, Macrocybe, Macrolepiota, Marasmiellus, Marasmius, Morchella, Neolentinus, Omphalotus, Paecilomyces, Paxillus, Perenniporia, Phanerochaete, Phlebia, Pholiota, Poria, Pycnoporus, Radiigera, Rozites, Russula, Sarcosphaera, Scedosporium, Schizophyllum, Sporotrichum, Stachybotrys, Stemphylium, Stropharia, Suillus, Trametes, Thelephora, Trichosporum, Tricholoma, Volvarielia , Xerocomus et leurs mélanges. Préférentiellement, les champignons acidophiles non alcalotolérants sont ceux d’une espèce choisie par le groupe constitué par Agaricus avensis, Agaricus bisporus, Agaricus bitorquis, Agaricus brasiliensis, Agaricus bresadolanus, Agaricus brunescens, Agaricus campestris, Agaricus involutus, Agaricus semotus, Agaricus silvicola, Agaricus aestivalis, Agaricus macrosporus, Agrocybe aegerita, Agrocybe praecox, Allescheriella sp., Amanita muscaria, Amanita rubescens, Armillaria mellea, Anthracophyllum discolor, Antrodia radiculosa, Aureobasisium pullulans, Bjerkandera adusta, Boletus badius, Boletus edulis, Boletus variegatus, Candida boidinii, Candida lipolytica, Cantharellus cibarius, Cantharellus tubaeformis, Chaetomium globosum, Clitocybe inversa, Clitocybe decembris, Clitocybe nebularis, Collybia dryophila, Coriolopsis polyzona, Cortinarius eliator, Cunninghamella elegans, Daedaela quercina, Debaryomyces castelli, Debaryomyces marasmus, Dichomitus squalens, Dipodascus aggregatus, Flamulina velutipes, Fistulina hepatica, Funalia gallica, Galerina vittiformis, Ganoderma lucidum, Ganoderma Applatum, Gautiera crispa, Gloeophyllum sepiarium, Glomus intraradices, Gomphidius glutinosus, Grifola frondosa, Hydnum rufescens, Hydnum repandum, Hypholoma capnoïdes, Hypholoma udorinus, Hypholoma fasciculare, Hypholoma sublateritium, Irpex lacteus, Kuehneromyces mutabilis, Kretzschmaria deusta, Laccaria fraterna, Laccaria amethystina, Laccaria laccata, Laccaria proxima, Lactarius helvus, Lactarius turpis, Laetiporus sulphureus, Leccinum aurantiacum, Leccinum crocipodium, Leccinum scabrum, Lentinus edodes, Lentinus tigrinus, Lentinus subnudus, Lentinus strigosus, Lepista nebularis, Lepista nuda, Lycoperdon periatum, Macrocybe titans, Macrolepiota excoiata, Macrolepiota gracilenta, Macrolepiota procera, Macrolepiota Rachodes, Marasmiellus troyanus, Marasmiellus palmivorus, Marasmiellus inoderma, Marasmiellus istambulensis, Marasmiellus Candidus, Marasmiellus opacus, Marasmiellus flaccidus, Marasmiellus tenerrimus, Marasmiellus ramealis, Marasmiellus juniperinus Murill, Marasmius oreades, Morchella esculenta, Morchella atretomentosa, Neolentinus lepideus, Omphalotus illudens, Paecilomyces lilacinus, Paxillus involutus, Paxillus atretomentosus, Perenniporia medulla-panis, Phanerochaete chrysosporium, Phanerochaete magnaliae, Phlebia brevispora, Podospora anserina, Pholiota chocenensis, Pholiota aurivella, Pholiota conissans, Pholiota alnicola, Pholiota gummosa, Pholiota brunnescens, Pholiota castanea, Pholiota highlandensis, Pholiota molesta, Pholiota microspora, Pholiota squarrosa, Poria cinescens, Pycnoporus cinnabarinus, Radiigera astrogleba, Rozites caperatus, Russula densifolia, Russula nigricans, Russula Purpurea, Russula cyanoxantha, Saccaromyces cerevisiae, Sarcosphaera coronaria, Scedosporium apiospermum, Schizophyllum commune, Sporotrichum pruinosum, Stachybotrys chartarum, Stachybotrys chlorohalonata, Stemphylium loti, Stropharia coronilla, Stropharia rugoso annulata, Suillus luteus, Suillus grevillei, Suillus variegatus, Suillus tomentosus, Trametes Versicolor, Trametes trogii, Thelephora terrestris, Trichosporum mucoïdes, Tricholoma magnivelare, Tricholoma terreum, Volvarielia speciosa, Xerocomus badius, Xerocomus chrysenteron et leurs mélanges. Plus préférentiellement, le champignon acidophile non alcalotolérant est choisi parmi les espèces Agrocybe aegerita, Agrocybe praecox, Allescheriella sp., Armillaria mellea, Bjerkandera adusta, Clitocybe nebularis, Cortinarius eliator, Daedaela quercina, Flamulina velutipes, Fistulina hepatica, Funalia gallica, Ganoderma lucidum, Ganoderma Applatum, Glomus intraradices, Grifola frondosa, Hydnum rufescens, Hydnum repandum, Hypholoma capnoïdes, Hypholoma udorinus, Hypholoma fasciculare, Hypholoma sublateritium, Irpex lacteus, Kuehneromyces mutabilis, Laccaria fraterna, Laccaria amethystina, Laccaria laccata, Laccaria proxima, Lactarius helvus, Lactarius turpis, Laetiporus sulphureus, Lentinus edodes, Lepista nebularis, Lepista nuda, Macrocybe titans, Macrolepiota procera, Marasmiellus troyanus, Marasmiellus palmivorus, Marasmiellus inoderma, Marasmiellus Candidus, Marasmius oreades, Paxillus involutus, Phanerochaete chrysosporium, Podospora anserina, Pholiota chocenensis, Pholiota aurivella, Pholiota conissans, Pholiota alnicola, Pholiota microspora, Pholiota squarrosa, Pycnoporus cinnabarinus, Russula densifolia, Russula nigricans, Russula Purpurea, Russula cyanoxantha, Schizophyllum commune, Stropharia rugoso annulata, Suillus luteus, Suillus grevillei, Suillus variegatus, Suillus tomentosus, Trametes Versicolor, Trametes trogii, Thelephora terrestris, Tricholoma magnivelare, Tricholoma terreum, Volvarielia speciosa et leurs mélanges. Lorsque plusieurs champignons d’espèces différentes sont introduits dans la composition sous forme de poudre, on parle de « consortium » de champignons. Optionnellement, le consortium de champignons peut également comporter des bactéries. Avantageusement, un consortium de champignons comporte 2 espèces de champignons, préférentiellement, 3 espèces de champignons. Le consortium de champignons peut par exemple comporter de 3 à 5 espèces de champignons. Préférentiellement, le consortium de champignons peut, notamment, être composé de trois espèces, une espèce étant choisie dans chacun des groupes ci-dessous : - groupe 1 : Coprinus spp, Marasmius spp, Kuehneromyces spp, - groupe 2 : Trametes spp, Ganoderma spp, Phanerochaete spp, - groupe 3 : Russula spp, Lactarius spp, Suillus spp. Plus préférentiellement, le consortium de champignons peut être composé des espèces Coprinus comatus , Trametes versicolor et Lactarius laccata. Alternativement, le consortium de champignons peut être composé d’un mélange d’espèce de Fusarium tel que par exemples Fusarium oxysporum et Fusarium solani . Les bactéries, quant à elles, peuvent être d’un genre choisi parmi le groupe constitué par Acinetobacter, Bacillus, Citrobacter, Enterobacter, Pseudomonas, Streptomyces et leurs mélanges. Préférentiellement, les bactéries sont d’espèce(s) choisie(s) parmi le groupe constitué par Acinetobacter calcaoceticus, Bacillus cereus, Bacillus stearothermophilus, Citrobacter spp, Enterobacter spp, Pseudomonas aeruginosa, Pseudomonas ovalis, Pseudomonas putida, Streptomyces spp (tel que Streptomyces Badius, Streptomyces viridosporus) et leurs mélanges. Selon l’invention, la composition sous forme de poudre comprend entre 10 et 90% en masse d’ingrédient(s) nutritif(s), exprimé sur la masse totale de composition sous forme de poudre. Avantageusement, la composition sous forme de poudre comprend entre 20 et 85% en masse d’ingrédient(s) nutritif(s), préférentiellement, entre 30 et 80% en masse d’ingrédient(s) nutritif(s), plus préférentiellement, entre 40 et 70%, tel que par exemple entre 50 et 60% en masse d’ingrédient(s) nutritif(s), exprimé sur la masse totale de composition sous forme de poudre. Par « ingrédient nutritif », on entend un ingrédient nécessaire à la croissance des micro-organismes. Préférentiellement, l’ingrédient nutritif est choisi parmi le groupe constitué par les glucides, les sources de protéine ou leurs mélanges. Par « glucides », on entend notamment le glucose, le dextrose, la maltodextrine, le fructose, le galactose, le lactose, le sucrose, le maltose et/ou le saccharose. Par « source de protéine », on entend notamment les peptones et plus particulièrement les peptones de soja ou les peptones de caséine. La composition sous forme de poudre comprend entre 0 et 2% en masse d’une base, exprimé sur la masse totale de composition sous forme de poudre. Plus particulièrement, la composition sous forme de poudre comprend optionnellement, entre 0,1 et 2% en masse d’une base, exprimé sur la masse totale de composition sous forme de poudre. Par « base », on entend un composé qui, en milieu aqueux, est capable de capturer un ou des protons. De préférence, la base est une base forte. La base est préférentiellement choisie parmi l’hydroxyde de sodium (NaOH), aussi appelé soude, l’hydroxyde de potassium (KOH), aussi appelé potasse ou leurs mélanges. Préférentiellement, la base est l’hydroxyde de sodium. Avantageusement, la composition sous forme de poudre comprend optionnellement entre 0,1 et 1% en masse d’une base, préférentiellement, entre 0,1 et 0,5%, plus préférentiellement, entre 0,1 et 0,4%, tel que par exemple entre 0,1 et 0,3% en masse d’une base, exprimé sur la masse totale de composition sous forme de poudre. L’ajout d’une base dans la composition sous forme de poudre va permettre de stabiliser ladite composition. La composition sous forme de poudre selon l’invention peut être utilisée de différentes manières selon l’environnement à dépolluer. Par environnement à dépolluer, on vise plus particulièrement des environnements de type eaux usées et/ou sols, notamment ceux pollués par des polluants organiques. En effet, si l’environnement à dépolluer est un milieu aqueux, par exemple de type eaux usées, la composition sous forme de poudre peut être épandue directement dans cet environnement. Alternativement, si l’environnement à dépolluer est un milieu non aqueux, par exemple un sol, la composition sous forme de poudre peut être épandue directement dans cet environnement. Toutefois, un apport d’eau dans le milieu non aqueux à dépolluer peut être alors nécessaire. Un tel apport d’eau peut résulter par exemple de la pluie, d’un arrosage, etc. En présence d’eau, le peroxyde de métal alcalino-terreux de la composition va successivement libérer du dioxygène et du peroxyde d’hydrogène, via la modulation de la fonction pH par le micro-organisme, ce qui va permettre la dégradation des polluants organiques présents dans l’environnement à dépolluer. Sans vouloir être lié par une quelconque théorie, le demandeur pense que dans un premier temps, à pH basique, la libération progressive et contrôlée de dioxygène va permettre d’assurer la croissance initiale du micro-organisme, via la dissociation, au contact de l’eau, du peroxyde de métal alcalino-terreux. Ainsi, les micro-organismes présents dans la composition vont croître et par le biais de leur métabolisme favoriser la libération de métabolites et d’enzymes permettant l’oxydation des composés polluants. Cette sécrétion de métabolites va également induire un abaissement progressif du pH, qui va modifier la réaction de dissociation du peroxyde de métal alcalino-terreux et ainsi permettre la libération de peroxyde d’hydrogène. Cette libération de peroxyde d’hydrogène va directement et indirectement favoriser la dégradation des polluants organiques présents dans l’environnement à dépolluer. La dépollution par le peroxyde d’hydrogène peut se faire de trois manières, par contact direct, par catalyse chimique et par catalyse biologique. La dépollution par contact direct se fait par réaction d’oxydoréduction entre un donneur et un accepteur d’électron(s), c’est-à-dire entre un oxydant (réduit) et un réducteur (oxydé). La dépollution par contact direct est dépendante du potentiel oxydant et réducteur du peroxyde d’hydrogène et du polluant et, de ce fait, de l’environnement à dépolluer. La dépollution par catalyse chimique se fait grâce à la réaction d’un métal tel que le fer avec du peroxyde d’hydrogène pour produire des radicaux OH. Ces radicaux OH étant instables, ces derniers vont permettre d’oxyder les composés organiques et inorganiques de l’environnement à dépolluer. La dépollution par catalyse biologique, quant à elle, se fait par l’intermédiaire d’une réaction entre des enzymes sécrétées par des bactéries ou des champignons, tels que des peroxydases, des catalases, des laccases, qui catalysent la réaction du peroxyde d’hydrogène avec un composé à dépolluer. De ce fait, le peroxyde d’hydrogène va pouvoir dégrader par oxydation les polluants de l’environnement, tels que les hydrocarbures pétroliers totaux, les hydrocarbures aromatiques polycycliques, polychlorobiphényles, les dioxines et les furanes. Cette dégradation par oxydation peut être complète et produire du CO 2 et de l’eau ou incomplète et produire un composé organique non toxique. A titre d’exemple, selon le pH de la composition aqueuse, le peroxyde de calcium (CaO 2 ) en contact avec de l’eau (H 2 O) va se dissocier en peroxyde d’hydrogène (H 2 O 2 ) ou en dioxygène (O 2 ). En effet, à pH acide, c’est-à-dire à un pH inférieur à 7, la dissociation du peroxyde de métal alcalino-terreux (CaO 2 ) en peroxyde d’hydrogène (H 2 O 2 ) est favorisée par rapport au dioxygène (O 2 ). A l’inverse, à un pH basique, c’est-à-dire à un pH supérieur à 7, la dissociation du peroxyde de métal alcalino-terreux (CaO 2 ) en dioxygène (O 2 ) est favorisée par rapport au peroxyde d’hydrogène (H 2 O 2 ). La composition sous forme de poudre comprend par exemple : - de 5 à 40% en masse d’un peroxyde de métal alcalino-terreux, de préférence du CaO 2 , - de 0,5 à 40% en masse de micro-organismes saprophytes aérobie alcalophiles ou alcalotolérants, - de 20 à 85% en masse d’ingrédient(s) nutritif(s) pour les micro-organismes, - optionnellement de 0,10 à 1% en masse d’une base, de préférence de la soude, les pourcentages en masse étant donnés sur la masse de la composition sous forme de poudre. Selon un mode de réalisation avantageux, la composition sous forme de poudre selon l’invention comprend : - de 10 à 30% en masse d’un peroxyde de métal alcalino-terreux, de préférence du CaO 2 , - de 1 à 40% en masse de micro-organismes saprophytes aérobie alcalophiles ou alcalotolérants, - de 30 à 80% en masse d’ingrédient(s) nutritif(s) pour les micro-organismes, - optionnellement de 0,10 à 0,50% en masse d’une base, de préférence de la soude, les pourcentages en masse étant donnés sur la masse de la composition sous forme de poudre. De préférence, la composition sous forme de poudre selon l’invention comprend : - de 12 à 25% en masse de CaO 2 , - de 1 à 30% en masse de micro-organismes saprophytes aérobie alcalophiles ou alcalotolérants, - de 40 à 70% en masse de d’ingrédient(s) nutritif(s) pour les micro-organismes, - optionnellement de 0,10 à 0,40% en masse de soude, les pourcentages en masse étant donnés sur la masse de la compositions sous forme de poudre. Avantageusement, la composition sous forme de poudre selon l’invention comprend un sel de fer. Sans vouloir être lié par une quelconque théorie, le demandeur pense que l’ajout d’un sel de fer à la composition permet la libération de radicaux OH et son utilisation dans la dépollution, tel que décrit précédemment. Préférentiellement, le sel de fer, peut être choisi parmi le groupe constitué par le sel ferreux et le sel ferrique. Par « sel ferreux », on entend un sel de fer comportant un fer divalent, c’est-à-dire ayant un état d’oxydation +II. Par « sel ferrique », on entend un sel de fer comportant un fer trivalent, c’est-à-dire ayant un état d’oxydation +III. Préférentiellement, le sel de fer est choisi parmi le sulfate de fer, l'oxyde de fer (II) ou l’oxyde ferreux FeO, l’oxyde de fer (III) ou oxyde ferrique Fe 2 O 3 , l'oxyde ferrique hydraté (Fe 2 O 3 .H 2 O) ou leurs mélanges. Un mélange de sels de fer peut être un mélange de sels de fer purs ou en association avec d’autres éléments. A titre d’exemple de mélange de sels, que l’on peut trouver sous forme de minerais, on peut citer, la "magnétite" (Fe 3 O 4 ), l’hématite (Fe 2 O 3 ), ou la limonite (Fe 2 O 3 .xH 2 O). Avantageusement, la composition sous forme de poudre selon l’invention comprend entre 1 et 70% en masse de sel de fer, préférentiellement, entre 5 et 60% en masse de sel de fer, plus préférentiellement, entre 10 et 50% en masse de sel de fer, exprimé sur la masse totale de composition sous forme de poudre. Avantageusement, la composition sous forme de poudre peut être diluée avant épandage. De ce fait, l’invention vise également un procédé de préparation d’une composition sous forme de poudre par mélangeage du peroxyde de métal alcalino-terreux, des micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants, d’ingrédient(s) nutritif(s) et optionnellement de la base. Selon un premier mode de réalisation du procédé de préparation de la composition, le peroxyde de métal alcalino-terreux, les micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants, le ou les ingrédient(s) nutritif(s), et optionnellement la base sont chacun individuellement sous forme de poudre. Un simple mélangeage des poudres est alors effectué. Selon un second mode de réalisation le procédé de préparation de la composition, une première étape de mélangeage s’effectue en présence d’eau. A titre d’exemple, une culture fongique en milieu liquide peut être préparée, comportant l’eau, les micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants et le ou les ingrédient(s) nutritif(s). Une seconde étape de mélangeage permet alors l’ajout du peroxyde de métal alcalino-terreux et optionnellement de la base, permettant d’obtenir ainsi une solution. Enfin, une étape de séchage et/ou broyage de la solution permet alors d’obtenir la composition sous forme de poudre. Lesdits procédés peuvent comprendre en outre une étape d’incorporation de sel de fer. L’invention vise aussi une solution comprenant la composition sous forme de poudre et de l’eau. Par « eau », on entend une eau du robinet, une eau minérale, une eau ultra pure ou une eau déminéralisée. Préférentiellement, l’eau est de l’eau déminéralisée. Plus particulièrement, la solution comprend : - de 50 à 95% en masse d’eau, - de 2 à 10% en masse d’un peroxyde de métal alcalino-terreux, - de 1 à 20% en masse de micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants, - de 1 à 30% en masse d’ingrédient(s) nutritif(s) pour les micro-organismes, - de 0 à 0,2% en masse d’une base, les pourcentages en masse étant donnés sur la masse de la solution. Dans la solution, à l’exception des teneurs, le peroxyde de métal alcalino-terreux, les micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants, l(es) ingrédient(s) nutritif(s) et la base optionnelle sont tels que décrits ci-avant, y inclus les modes préférentiels et avantageux. Avantageusement, la solution comprend entre 55 et 89% en masse d’eau, préférentiellement, entre 60 et 82% en masse d’eau, plus préférentiellement, entre 65 et 79% en masse d’eau, exprimé sur la masse totale de la solution. Avantageusement, la solution comprend entre 3 et 8% en masse d’un peroxyde de métal alcalino-terreux, préférentiellement, entre 4 et 6% en masse, plus préférentiellement, entre 4,5 et 5,5 % en masse d’un peroxyde de métal alcalino-terreux, exprimé sur la masse totale de la solution. Avantageusement, la solution comprend entre 2 et 15% en masse de micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants, préférentiellement, entre 3 et 12% en masse de micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants, plus préférentiellement, entre 4 et 10% en masse de micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants, exprimé sur la masse totale de la solution. Avantageusement, la solution comprend entre 5 et 25% en masse d’ingrédient(s) nutritif(s), préférentiellement, entre 10 et 20% en masse d’ingrédient(s) nutritif(s), plus préférentiellement, entre 12 et 18% en masse d’ingrédient(s) nutritif(s), exprimé sur la masse totale de la solution. La solution comprend entre 0 et 0,2% en masse d’une base, exprimé sur la masse totale de solution. Plus particulièrement, la solution comprend optionnellement, entre 0,01 et 0,2% en masse d’une base, préférentiellement, entre 0,02 et 0,1% en masse, plus préférentiellement, entre 0,03 et 0,07% en masse, encore plus préférentiellement, entre 0,04 et 0,05% en masse d’une base, exprimé sur la masse totale de la solution. L’ajout de soude dans la solution peut notamment permettre d’éviter l’initiation précoce de la réaction de la dissociation du CaO 2 en dioxygène. La solution peut également comprendre un sel de fer, tel que défini précédemment. Avantageusement, si un sel de fer est ajouté, alors la solution comprend entre 3 et 16% en masse de sel de fer, préférentiellement, entre 4 et 12% en masse de sel de fer, plus préférentiellement, entre 4,5 et 11%, tel que par exemple entre 5 et 10% en masse de sel de fer entre exprimé sur la masse totale de la solution. L’invention vise également un procédé de préparation de la solution, par mélangeage de l’eau, du peroxyde de métal alcalino-terreux, des micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles alcalotolérants, d’ingrédient(s) nutritif(s) et optionnellement de la base. Selon un premier mode de réalisation du procédé de préparation de la solution, ce dernier peut comprendre une étape de fourniture de la composition sous forme de poudre telle que définie précédemment, et une étape de mélangeage de ladite composition avec de l’eau pour obtenir la solution. La solution selon l’invention peut également être préparée directement sans passer par la préparation d’une composition sous forme de poudre. En effet, selon un second mode de réalisation du procédé de préparation de la solution, certains ingrédients de la composition sous forme de poudre peuvent être préalablement mélangés à l’eau lors d’une première étape de mélangeage. A titre d’exemple, le(s) ingrédient(s) nutritif(s) peuvent être mélangés à l’eau pour former un milieu de culture. Les micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants peuvent ensuite être ajoutés pour former une culture fongique en milieu liquide. Enfin, lors d’une seconde étape de mélangeage, le peroxyde de métal alcalino-terreux et optionnellement la base peuvent être ajoutés pour former la solution. Ledit procédé de préparation de la solution peut en outre comprendre une étape d’incorporation de sel de fer. La solution peut également comporter des ingrédients additionnels afin de préparer un mélange permettant la fabrication de microsphères par réticulation d’une goutte de mélange. L’invention propose donc également un mélange comprenant la solution et un sel monovalent d’alginate. Par « sel monovalent d’alginate », on entend un sel de l’acide alginique déprotoné. L’acide alginique et ses dérivés tels que les alginates sont des polysaccharides qui proviennent des algues brunes. Un sel monovalent d’alginate est capable de réticuler en présence d’un sel divalent afin de former un hydrogel thermostable de sel divalent d’alginate. Avantageusement, le mélange comprend entre 0,5 et 5% en masse de sel monovalent d’alginate, préférentiellement, entre 0,75 et 4% en masse de sel monovalent d’alginate, plus préférentiellement, entre 1 et 3% en masse de sel monovalent d’alginate, exprimé sur la masse totale de mélange. Préférentiellement, le sel monovalent d’alginate est choisi parmi le groupe constitué par l’alginate de sodium, l’alginate de potassium, l’alginate de magnésium et l’alginate d’ammonium Plus préférentiellement, le sel monovalent d’alginate est de l’alginate de sodium. L’alginate de sodium peut être choisi parmi le groupe constitué par l’alginate de sodium à haute viscosité (viscosité à 25°C, à 1% (m/v), supérieure à 3500 mPa.s), l’alginate de sodium à moyenne viscosité (viscosité à 25°C, à 1% (m/v), comprise entre 240-3500 mPa.s) et l’alginate de sodium à basse viscosité (viscosité à 25°C, à 1% (m/v), inférieure à 240 mPa.s). Préférentiellement, l’alginate de sodium est de l’alginate de sodium à haute viscosité. Le mélange peut en outre comprendre un chélateur. Par « chélateur », on entend une molécule qui a la capacité de former, avec un ion métallique positif un composé stable. Avantageusement, le chélateur est un composé soluble et non toxique. Préférentiellement, le chélateur est choisi parmi le groupe constitué par l’acide phytique, l'acide éthylènediaminetétraacétique (EDTA), l’acide éthylènediamine-N,N ‘-disuccinique (EDDS), l’acide citrique, l’acide oxalique et l’hexamétaphosphate de sodium. Plus préférentiellement, le chélateur est l’acide phytique. Le chélateur permet notamment d’empêcher la réticulation immédiate du sel monovalent d’alginate et du peroxyde de métal alcalino-terreux dans le mélange. Le mélange peut comprendre entre 0,10 et 2% en masse de chélateur, préférentiellement, entre 0,25 et 1,5% en masse de chélateur, plus préférentiellement, entre 0,3 et 1% en masse de chélateur, exprimé sur la masse totale de mélange. Avantageusement, le mélange peut également comprendre de l’acide humique. Le mélange peut comprendre entre 0,5 et 5% en masse d’acide humique, préférentiellement, entre 1 et 4% en masse d’acide humique, plus préférentiellement, entre 1,5 et 3% en masse d’acide humique, exprimé sur la masse totale du mélange. L’invention vise également un procédé de préparation du mélange par mélangeage de la solution avec le sel monovalent d’alginate. Ledit procédé de préparation du mélange peut comprendre en outre une étape d’incorporation du chélateur et/ou de l’acide humique. L’invention a également pour objet une microsphère comprenant : - de 3 à 50% en masse d’eau, - de 0,5 à 40% en masse d’un peroxyde de métal alcalino-terreux, - de 2 à 35% en masse de micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants, - de 30 à 90% en masse de d’ingrédient(s) nutritif(s) pour les micro-organismes, - de 0,01 à 5% en masse d’une base, - de 0,1 à 7% en masse d’un sel divalent d’alginate, les pourcentages en masse étant donnés sur la masse de la microsphère. Dans la microsphère, à l’exception des teneurs, l’eau, le peroxyde de métal alcalino-terreux, les micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants, le(s) ingrédient(s) nutritif(s) et la base sont tels que décrits ci-avant, y inclus les modes préférentiels et avantageux. Par « microsphère », on entend un objet sensiblement sphérique ayant une structure homogène. Avantageusement, la microsphère a un diamètre compris entre 200 et 6000 µm, préférentiellement entre 500 et 4000 µm, plus préférentiellement entre 800 et 3000 µm. De par la réticulation du sel monovalent d’alginate en sel divalent d’alginate, la microsphère selon l’invention se présente sous la forme d’un hydrogel. Par « sel divalent d’alginate », on vise préférentiellement l’alginate de calcium, l’alginate de magnésium, l’alginate d’ammonium et/ou l’alginate de potassium. Plus préférentiellement, le sel divalent d’alginate est de l’alginate de calcium. Selon l’invention, la microsphère comprend entre 3 et 50% en masse d’eau, préférentiellement, entre 5 et 30% en masse d’eau, plus préférentiellement, entre 10 et 25% en masse d’eau, exprimé sur la masse totale de la microsphère. Selon l’invention, la microsphère comprend entre 0,5 et 40% en masse d’un peroxyde de métal alcalino-terreux, préférentiellement, entre 2 et 30% en masse, plus préférentiellement, entre 5 et 25% en masse d’un peroxyde de métal alcalino-terreux, exprimé sur la masse totale de la microsphère. Selon l’invention, la microsphère comprend entre 2 et 35% en masse de micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants, préférentiellement, entre 7 et 30% en masse de micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants, plus préférentiellement, entre 15 et 25% en masse de micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants, exprimé sur la masse totale de la microsphère. Selon l’invention, la microsphère comprend entre 30 et 90% en masse d’ingrédient(s) nutritif(s), préférentiellement, entre 35 et 80% en masse d’ingrédient(s) nutritif(s), plus préférentiellement, entre 40 et 68% en masse d’ingrédient(s) nutritif(s), exprimé sur la masse totale de la microsphère. Selon l’invention, la microsphère comprend entre 0,01 et 5% en masse d’une base, préférentiellement, entre 0,02 et 3% en masse d’une base, plus préférentiellement, entre 0,05 et 2% en masse d’une base, exprimé sur la masse totale de la microsphère. Selon l’invention, la microsphère comprend entre 0,1 et 7% en masse d’un sel divalent d’alginate, préférentiellement, entre 0,5 et 6% en masse d’un sel divalent d’alginate, plus préférentiellement, entre 1 et 5% en masse d’un sel divalent d’alginate, exprimé sur la masse totale de la microsphère. La microsphère selon l’invention peut comporter en outre un chélateur tel que défini ci-avant et/ou de l’acide humique. L’acide humique permet notamment de parfaire l’aspect esthétique de la microsphère. La microsphère va permettre la dépollution de l’environnement. L’eau présente dans l’environnement à dépolluer va s’insérer par capillarité dans la microsphère et permettre l’initiation de la dissociation du peroxyde de métal alcalino-terreux en dioxygène, ledit dioxygène permettant alors le développement des micro-organismes. La base présente dans la microsphère permet avantageusement de maintenir le pH de cette dernière entre 9 et 12, au contact de l’eau, ce qui permet de favoriser la dissociation du peroxyde de métal alcalino-terreux en dioxygène. Cela va permettre aux micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants de se développer en présence du dioxygène ainsi libéré. La microsphère est susceptible d’être obtenue par réticulation du mélange en présence d’un sel divalent. Le sel divalent est un sel de métal alcalino-terreux. Préférentiellement, le sel divalent est un sel de calcium ou de magnésium. Avantageusement, lorsque la microsphère est obtenue par réticulation du mélange, le mélange comportera une base. En effet, sans vouloir être lié par une quelconque théorie, il est considéré que lors de l’obtention des microsphères par réticulation du mélange, la base présente dans le mélange va avantageusement permettre d’empêcher des interactions entre le métal alcalino-terreux du peroxyde de métal alcalino-terreux et le sel monovalent d’alginate, une réticulation précoce non souhaitée du sel monovalent d’alginate étant susceptible de résulter de ces interactions. En effet, la dissociation du peroxyde de métal alcalino-terreux en dioxygène peut libérer le métal alcalino-terreux, et ainsi initier la réticulation du sel monovalent d’alginate. L’incorporation de la base va permettre de réagir avec le métal alcalino-terreux libéré, pour former un hydroxyde métallique, et éviter la réticulation. L’invention a également pour objet un procédé d’obtention d’une microsphère comprenant une étape de réticulation du sel monovalent d’alginate contenu dans une goutte d’un mélange. Préférentiellement, la microsphère est obtenue par immersion d’une goutte du mélange dans un bain de réticulation. Par « bain de réticulation », on entend un bain préparé avec de l’eau, préférentiellement de l’eau déminéralisé et un sel divalent tel qu’un sel de calcium ou un sel de magnésium. Le bain de réticulation permet de réticuler le sel monovalent d’alginate présent dans le mélange. En effet, le sel monovalent d’alginate réagit avec le cation divalent provenant du sel divalent pour former un réseau tridimensionnel et ainsi former la microsphère. Préférentiellement, le bain de réticulation est préparé avec de l’eau et du chlorure de calcium (CaCl 2 ). Avantageusement, le bain de réticulation a une concentration en Ca 2+ ou CaCl 2 comprise entre 0,05M et 2M, préférentiellement entre 0,5M et 1,5M, plus préférentiellement, entre 0,1M et 1M. Avantageusement, le mélange est immergé dans le bain de réticulation par un système de goutte à goutte pour former les microsphères. Typiquement, le système de goutte à goutte du mélange peut être réalisé par une pompe. A titre d’exemple, le goutte à goutte peut être réalisé par une pompe à membrane. Avantageusement, le bain de réticulation est agité. Avantageusement, le pH du bain de réticulation est entre 7 et 9. A titre d’exemple, le pH du bain de réticulation peut être maintenu entre 7 et 9 en ajoutant 1M d’une solution d’acide chlorhydrique. Avantageusement, la goutte de mélange est immergée dans le bain de réticulation pendant 5 à 20 min, préférentiellement pendant 5 à 10 min, tel que pendant 5 à 6 min pour former la microsphère selon l’invention. Le temps d’immersion de la goutte de mélange dans le bain de réticulation permet notamment de contrôler le degré de réticulation de la microsphère formée. De préférence, la réticulation du mélange dans la microsphère est complète, c’est-à-dire que la diffusion des cations divalents s'est opérée jusqu'au cœur de la microsphère, créant une structure tridimensionnelle dans l'intégralité du volume de la microsphère (réticulation à cœur et non seulement en surface). A l’issue de la réticulation, la microsphère formée dans le bain de réticulation est récupérée. Une fois la microsphère récupérée, elle peut être rincée à l’eau. Ce rinçage permet notamment d’arrêter la réticulation de la microsphère. La microsphère récupérée ou rincée peut être égouttée et/ou séchée. Préférentiellement, la microsphère est séchée à l’aide de toute technique bien connue de l’homme de l’art, telle qu’une technique sous flux d’air. La microsphère peut ensuite être conditionnée (ensachée, par exemple) et conservée préférentiellement à température et hygrométrie ambiantes à l’abri de la lumière. Avantageusement, la microsphère comprend : - de 5 à 30% en masse d’eau, - de 2 à 30% en masse d’un peroxyde de métal alcalino-terreux, - de 7 à 30% en masse de micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants, - de 35 à 80% en masse de d’ingrédient(s) nutritif(s) pour les micro-organismes, - de 0,02 à 3% en masse d’une base, - de 0,5 à 6% en masse d’un sel divalent d’alginate, les pourcentages en masse étant donnés sur la masse de la microsphère. Préférentiellement, la microsphère comprend : - de 10 à 25% en masse d’eau, - de 5 à 25% en masse d’un peroxyde de métal alcalino-terreux, - de 15 à 25% en masse de micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants, - de 40 à 68% en masse de d’ingrédient(s) nutritif(s) pour les micro-organismes, - de 0,05 à 2% en masse d’une base, - de 1 à 5% en masse d’un sel divalent d’alginate, les pourcentages en masse étant donnés sur la masse de la microsphère. Selon un autre aspect, l’invention concerne également l’utilisation de la composition sous forme de poudre, de la solution, du mélange ou de la microsphère dans la dépollution d’un environnement. Plus particulièrement, la dépollution se fait par remédiation biochimique. La dépollution d’un environnement s’effectue par mise en contact de la composition sous forme de poudre, de la solution, du mélange ou de la microsphère avec l’environnement à dépolluer. Lorsque la dépollution est réalisée avec la composition sous forme de poudre, celle-ci peut être mise en contact avec l’environnement à dépolluer par épandage comme indiqué précédemment. Lorsque la dépollution est réalisée avec la solution ou le mélange, ceux-ci peuvent être mis en contact avec l’environnement à dépolluer par arrosage, pulvérisation, épandage. Lorsque la dépollution est réalisée avec la microsphère, celle-ci peut être mise en contact avec l’environnement à dépolluer par épandage, dispersion, ou alternativement par aspersion ou injection sous pression après mise en suspension dans un liquide. De préférence, l’environnement à dépolluer est choisi parmi le groupe constitué par les eaux usées et/ou les sols. D’autres avantages, buts et caractéristiques particulières de la présente invention ressortiront de la description non limitative qui suit d’au moins un mode de réalisation particulier des dispositifs et procédés objets de la présente invention, en regard des dessins annexés, dans lesquels : - FIG. 1 représente le dégagement de dioxygène des microsphères selon l’invention et du CaO 2 (référence) au cours du temps pendant 8 minutes ; - FIG. 2 représente le dégagement de dioxygène des microsphères selon l’invention et du CaO 2 (référence) au cours du temps pendant (90 heures) 4 jours. Exemple 1 : Préparation de la composition selon l’invention Matériel : - Verrerie : béchers toutes tailles - Produit : eau déminéralisée, soude (NaOH solide), peroxyde de calcium (en poudre, Sigma et IXPER), Fe 2+ - Autres : spatules - Milieu de culture standard : Peptone de soja ou de caséine, dextrose - Souche fongique : La souche fongique est sélectionnée pour ses propriétés alcalophiles, par exemple, Fusarium Solani , en culture sur gélose. Méthode : Etape 1 : Préparation de la culture fongique en milieu liquide (milieu de culture fongique) Pour 1,5L de milieu, 30 g de dextrose et 22,5 g de peptone ont été utilisés, et complétés avec de l’eau déminéralisée. Le pH a été ajusté à un pH de 7, si nécessaire. Le milieu de culture a été autoclavé à 121°C pendant 20 minutes. Le milieu de culture a été laissé à refroidir sous hotte à flux laminaire durant toute la nuit. Une fois le milieu de culture refroidi à température ambiante, celui-ci a été inoculé à partir de la culture sur gélose comprenant la souche fongique, sous environnement axénique, et a été placé sur un agitateur magnétique pendant 5 jours. Le bouchon est muni d’un filtre à air de 0,2 µm. Le milieu de culture fongique a alors été broyé pendant 30 s, et le pH a été ajusté à un pH de 7, si nécessaire. Etape 2 : Préparation de la composition Pour 500 mL de composition : dans un bécher de 1 L, 237,5 g d’eau déminéralisée et 237,5 g de milieu de culture fongique ont été ajoutés, puis mélangés à la spatule et 25 g de CaO 2 ont été ajoutés en mélangeant 1–2 minutes au mixer et optionnellement 0,2 g de soude peuvent être pesés et ajoutés à la composition. Il est également possible d’ajouter un sel de fer (tel que par exemple un sel ferreux ou un sel ferrique) à la composition lors de l’étape 2. Le sel de fer peut être choisi parmi le sulfate de fer, l'oxyde de fer (II) ou oxyde ferreux FeO, l’oxyde de fer (III) ou oxyde ferrique Fe 2 O 3 , l'oxyde ferrique hydraté (Fe 2 O 3 .H 2 O) ou leurs mélanges. A titre d’exemple de mélange de sels, que l’on peut trouver sous forme de minerais, on peut citer, la "magnétite" (Fe 3 O 4 ), l’hématite (Fe 2 O 3 ), ou la limonite (Fe 2 O 3 .xH 2 O). La composition selon l’invention ainsi obtenue peut ensuite être séchée et/ou broyée pour obtenir une poudre. Exemple 2 : Préparation d’un mélange et des microsphères selon l’invention Matériels : - Verrerie : béchers toutes tailles - Produit : eau déminéralisée, soude (NaOH solide), acide humique, alginate de sodium de haute viscosité, acide phytique (hexaphosphate d’inositol), peroxyde de calcium (en poudre, Sigma et IXPER), CaCl 2, acide chlorhydrique - Autres : seringue, spatules - Milieu de culture standard : Peptone de soja, dextrose - Souche fongique : La souche fongique est sélectionnée pour ses propriétés alcalophiles, par exemple, Coprinus comatus , en culture sur gélose. Méthode : Etape 1 : Préparation de la culture fongique en milieu liquide La culture fongique a été préparée comme à l’exemple 1, étape 1. Etape 2 : Préparation du mélange selon l’invention Pour 500 mL de mélange : dans un bécher de 1 L, 0,2 g de soude et 10 g d’acide humique ont été pesés, 229 g d’eau déminéralisée et 229 g de milieu de culture fongique ont été ajoutés, puis mélangés à la spatule. 5 g d’alginate de sodium haute-viscosité ont été ajoutés et mélangés au mixer 5 minutes en veillant à casser les grumeaux, 1,85 g d’acide phytique dilué à 50% dans de l’eau ont été ajoutés et mélangés, puis 25 g de CaO 2 ont été ajoutés en mélangeant 1–2 minutes au mixer. Etape 3 : Réalisation des microsphères selon l’invention Le mélange a été transféré à l’encapsulateur par une pompe à membrane. Un compresseur d’air microfiltré alimente le dispositif et les paramètres de procédé ont été ajustés à : - Une buse de 1mm a été utilisée. - Fréquences utilisées : 80Hz – 240Hz - Pression nominale : 1500-3200 mBar Un bain de réticulation a été préparé tel que : - Eau (courante) - CaCl 2 : entre 0,1M et 1M Pour un bain au volume équivalent au volume à encapsuler la concentration est de 0,1M de CaCl 2 . Et pour un bain équivalent à 4x le volume à encapsuler la concentration est de 1M de CaCl 2 . Le bain a été prolongé entre 5 et 10 minutes. Le bain a été agité par recirculation du fluide. L’évolution du pH du bain a été contrôlée avec une sonde. Quelques gouttes d’une solution d’acide chlorhydrique 1M, ont été ajoutées, de façon régulière pour limiter l’augmentation du pH entre 7 et 9. Les microsphères ont été extraites du bain et ont été rincées à l’eau ultrapure. Les microsphères ont été égouttées et séchées sous hotte ou déshydrateur. Exemple 3 : Dégagement de dioxygène par des microsphères de référence comportant du CaO 2 (ci-après désignées « Microsphères de référence CaO 2 ») Le dégagement de dioxygène, au cours du temps, par des microsphères de référence comportant du CaO 2 (sans micro-organismes) a été mesuré et l’efficacité de relargage de ce dernier a pu en être déduite. L’objectif de cette mesure est de déterminer la quantité de dioxygène libérée par les microsphères de référence CaO 2 , afin de s’assurer de la disponibilité de celui-ci, pour d’éventuels micro-organismes qui pourraient être ajoutés aux microsphères et dont la croissance dépendrait de cette disponibilité. 1. Préparation de microsphères Matériels : - Verrerie : béchers toutes tailles - Produit : eau déminéralisée, soude (NaOH solide), acide humique, alginate de sodium de haute viscosité, acide phytique (hexaphosphate d’inositol), peroxyde de calcium (en poudre, Sigma et IXPER), CaCl 2 , acide chlorhydrique, - Autres : seringue, spatules Méthode : Etape 1 : Préparation du mélange Pour 500 mL de mélange : dans un bécher de 1 L, 0,2 g de soude et 10 g d’acide humique ont été pesés, 458 g d’eau déminéralisée ont été ajoutés, puis mélangés à la spatule. 5 g d’alginate de sodium haute-viscosité ont été ajoutés et mélangés au mixer 5 minutes en veillant à casser les grumeaux, 1,85 g d’acide phytique dilué à 50% dans de l’eau ont été ajoutés et mélangés, puis 25 g de CaO 2 ont été ajoutés en mélangeant 1–2 minutes au mixer. Le mélange ainsi obtenu à un pH supérieur à 11. Etape 2 : Réalisation des microsphères de référence CaO 2 Les microsphères de référence CaO 2 ont été préparées comme à l’exemple 2, étape 3. 2. Dégagement de dioxygène et efficacité du relargage de dioxygène par les microsphères de référence CaO 2 au cours du temps Le dégagement de dioxygène par des microsphères de référence CaO 2 a été mesuré et l’efficacité de relargage de dioxygène par ces microsphères de référence CaO 2 a pu en être déduite. La quantité de dioxygène sortant des microsphères de référence CaO 2 a été mesurée à l’aide d’une sonde O 2 placée dans des flacons scellés de 100 mL. 0,4% de microsphères de référence CaO 2 ont été pesés pour 100 mL d’eau déminéralisée dégazée préalablement à l’azote. Les microsphères de référence CaO 2 ont ensuite été introduites rapidement dans les flacons. Les flacons ont été laissés sous agitation à température ambiante (la sonde prend en compte la T°C). Le contrôle négatif « eau » correspond à un flacon scellé sans ajout de microsphères, avec 100 mL d’eau déminéralisée et dégazée, qui a été ouvert pendant quelques secondes pour simuler le temps d’ajout des microsphères. Le contrôle positif « CaO 2 » correspond à un flacon scellé dans lequel ont été introduit 0,2% de CaO 2 pour 100mL d’eau déminéralisée dégazée préalablement à l’azote. Il y a environ 50% de CaO 2 dans les microsphères, de ce fait deux fois plus de microsphères ont été ajoutées que de poudre de CaO 2 pure pour pouvoir comparer leur relargage. Les résultats de dégagement de dioxygène sont indiqués dans la FIG. 1 et la FIG. 2 . Les figures représentent les quantités de dioxygène relarguées dans de l’eau déminéralisée et dégazée pour différents échantillons : le CaO 2 qui sert de contrôle positif, l’eau déminéralisée et dégazée, qui sert de contrôle négatif, et les microsphères de référence CaO 2 . La FIG. 1 représente le dégagement de dioxygène pendant 8 minutes et la FIG. 2 représente le dégagement de dioxygène pendant 90h (4 jours). Les résultats de la FIG. 1 montrent que les microsphères de référence CaO 2 produisent un dégagement de dioxygène. Ce dégagement est moins important que la poudre de CaO 2 pure (CaO 2 , contrôle positif). Il n’est pas non plus dû à l’ouverture du flacon lors de l’ajout des microsphères de référence CaO 2 car le témoin négatif (eau seule) indique des valeurs de concentration en O 2 proches de 0 mg/L. Les résultats de la FIG. 2 montrent que les microsphères de référence CaO 2 produisent un dégagement de dioxygène, que le relargage de dioxygène est plus important au début du suivi qu’à la fin. De plus, l’efficacité de dégagement de dioxygène des microsphères de référence CaO 2 est de 68% à 3 jours et de 74% à 4 jours. L’efficacité de dégagement de dioxygène a été mesurée avec la formule suivante : , dans laquelle C représente la concentration. En conclusion, les microsphères de référence CaO 2 permettent de relarguer du dioxygène dans le temps. Ce dioxygène va ensuite être utilisé par les micro-organismes pour faciliter leur croissance dans un milieu micro-aérobie et contraint. Exemple 4 : Dégagement de H2O2 Le dégagement de peroxyde d’hydrogène (H 2 O 2 ), au cours du temps, a été mesuré et l’efficacité de relargage de ce dernier a pu en être déduite. Cette mesure va permettre de déterminer la quantité de peroxyde d’hydrogène (H 2 O 2 ) libérée par les microsphères. L’objectif de ce dégagement de peroxyde d’hydrogène (H 2 O 2 ) est d’être, par la suite, utilisé directement ou indirectement pour la biodégradation des composés organiques polluants. Ce dégagement de peroxyde d’hydrogène résulte de l’abaissement du pH par les micro-organismes présents dans les microsphères ce qui va permettre de favoriser la dissociation du peroxyde d’hydrogène. 1. Préparation de microsphères Matériels : - Verrerie : béchers toutes tailles - Produit : eau déminéralisée, soude (NaOH solide), acide humique, alginate de sodium de haute viscosité, acide phytique (hexaphosphate d’inositol), peroxyde de calcium (en poudre, Sigma et IXPER), CaCl 2, , acide chlorhydrique, talc ; - Autres : seringue, spatules - Milieu de culture standard : Peptone de soja, dextrose - Souche fongique : La souche fongique est sélectionnée pour ses propriétés alcalophiles, par exemple, Aspergillus flavus , en culture sur gélose. Méthode : Microsphères selon l’invention : les microsphères sont préparées selon la méthode décrite à l’exemple 2. Microsphères de référence comportant du CaO 2 seul : les microsphères sont préparées selon la méthode décrite à l’exemple 3. Microsphères de référence comportant la souche fongique : Etape 1 : Préparation de la culture fongique en milieu liquide La culture fongique a été préparée comme à l’exemple 1, étape 1. Etape 2 : Préparation du mélange Pour 500 mL de mélange : dans un bécher de 1 L, 0,2 g de soude et 10 g d’acide humique ont été pesés, 229 g d’eau déminéralisée et 229 g de milieu de culture fongique ont été ajoutés, puis mélangés à la spatule. 5 g d’alginate de sodium haute-viscosité ont été ajoutés et mélangés au mixer 5 minutes en veillant à casser les grumeaux, 1,85 g d’acide phytique dilué à 50% dans de l’eau ont été ajoutés et mélangés, puis 25 g de CaO 2 ont été ajoutés en mélangeant 1–2 minutes au mixer. Etape 3 : Réalisation des microsphères comportant la souche fongique Les microsphères comportant la souche fongique ont été préparées comme à l’exemple 2, étape 3. 2. Production de peroxyde d’hydrogène 4 flacons contenant 100mL d’eau déminéralisée ont été préparés. Puis, les microsphères ont été versées selon les conditions suivantes : 200 mg de microsphères selon l’invention à tester 142 mg de microsphères de Référence CaO 2 200 mg de microsphères de référence souche fongique Tous les flacons ont été mis sous agitation. La production de H 2 O 2 , a été suivie, toutes les minutes pendant 10 minutes, grâce à des bandelettes permettant de de détecter la présence de peroxyde d’hydrogène en solution. Puis, les valeurs ont été prises toutes les heures pendant 1 jour puis une fois par jour pendant 3 jours. Composition sous forme de poudre comprenant : - de 1 à 50% en masse d’un peroxyde de métal alcalino-terreux, - de 0,5 à 50% en masse de micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants, - de 10 à 90% en masse d’ingrédient(s) nutritif(s) pour les micro-organismes, - de 0 à 2% en masse d’une base, - les pourcentages en masse étant donnés sur la masse de la composition sous forme de poudre. Composition sous forme de poudre selon la revendication 1, dans laquelle les micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants sont des champignons, lesdits champignons étant de(s) genre(s) choisi(s) parmi le groupe constitué par Acremonium, Aspergillus, Fusarium, Coprinus, Penicillium, Pleurotus, Trichoderma, Gliocladium, Phialophora, Stachylidium, Stilbella et leurs mélanges. Composition sous forme de poudre selon la revendication 1 ou 2, comprenant un sel de fer. Procédé de préparation d’une composition sous forme de poudre selon l’une quelconque des revendications 1 à 3, par mélangeage du peroxyde de métal alcalino-terreux, des micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants, d’ingrédient(s) nutritif(s) et optionnellement de la base. Solution comprenant la composition sous forme de poudre selon l’une quelconque des revendications 1 à 3, et de l’eau. Solution comprenant : - de 50 à 95% en masse d’eau, - de 2 à 10% en masse d’un peroxyde de métal alcalino-terreux, - de 1 à 20% en masse de micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants, - de 1 à 30% en masse d’ingrédient(s) nutritif(s) pour les micro-organismes, - de 0 à 0,2% en masse d’une base, les pourcentages en masse étant donnés sur la masse de la solution. Mélange comprenant la solution selon la revendication 5 ou 6, et un sel monovalent d’alginate. Microsphère comprenant : - de 3 à 50% en masse d’eau, - de 0,5 à 40 % en masse d’un peroxyde de métal alcalino-terreux, - de 2 à 35 % en masse de micro-organismes saprophytes aérobies alcalophiles ou alcalotolérants, - de 30 à 90 % en masse de d’ingrédient(s) nutritif(s) pour les micro-organismes, - de 0,01 à 5% en masse d’une base, - de 0,1 à 7% en masse d’un sel divalent d’alginate, les pourcentages en masse étant donnés sur la masse de la microsphère. Microsphère susceptible d’être obtenue par réticulation du mélange selon la revendication 7, en présence d’un sel divalent. Procédé d’obtention d’une microsphère selon la revendication 8 ou 9, comprenant une étape de réticulation du sel monovalent d’alginate contenu dans une goutte d’un mélange selon la revendication 7. Utilisation de la composition sous forme de poudre selon l’une quelconque des revendications 1 à 3, de la solution selon les revendications 5 ou 6, du mélange selon la revendication 7 ou de la microsphère selon la revendication 8 ou 9, dans la dépollution d’un environnement.