FR 3160979 A1 20251010 FR 2403406 A 20240403 BIO-CONTRÔLE POUR LUTTER CONTRE LA BIO-CONTAMINATION DES RÉSERVOIRS DE CARBURANT La présente invention concerne l’utilisation de microorganismes comme agents de bio-contrôle pour la prévention et/ou le traitement d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant. La présente invention a particulièrement pour objet un procédé de prévention et/ou de traitement d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant, comprenant d’introduire au moins un agent de bio-contrôle dans le réservoir. La présente invention a également pour objet un procédé de sélection d’au moins un agent de bio-contrôle, ainsi qu’une composition et un kit comprenant un agent de bio-contrôle. Figure pour l'abrégé : néant BIO-CONTRÔLE POUR LUTTER CONTRE LA BIO-CONTAMINATION DES RÉSERVOIRS DE CARBURANT Domaine de l’invention La présente invention concerne le traitement des bio-contaminations dans les réservoirs de carburant. Arrière-plan technologique La bio-contamination des réservoirs de carburant est un phénomène courant qui touche de nombreux secteurs d’activité (stockage de carburant avant distribution ou utilisation, ou encore stockage dans des engins tels que des bateaux, engins agricoles, aéronefs, engins routiers, …). Il est en effet courant qu’une phase aqueuse apparaisse lorsque des produits pétroliers combustibles sont stockés. Des conditions favorables au développement d’une contamination microbienne sont ainsi créées : les carburants, riches en carbone, apportent une source essentielle de nutriment aux bactéries, champignons et levures qui vivent dans la phase aqueuse. Quelle que soit la forme du stockage de carburant, la multiplication de ces microorganismes est toujours préjudiciable, en raison des risques de bio-corrosion, colmatage de filtres, obstruction d’orifice ou de gauge, etc. en résultant. Pour lutter contre les développements microbiens et les conséquences problématiques qu’ils peuvent entrainer, plusieurs stratégies ont été envisagées, telles que la mise au point de revêtements biocides, l’ajout de biocides, l’utilisation de surfaces super-hydrophobes favorisant l’évacuation de l’eau. Toutefois, ces différentes stratégies ont montré des limitations en termes d’efficacité ou de mise en œuvre ou ne peuvent être utilisées en raison de l’interdiction de certains biocides, notamment par la réglementation Européenne BPR ( Biocide Product Regulation ). A ce jour, la seule solution réellement efficace pour le traitement d’une bio-contamination est le nettoyage mécanique des réservoirs. Toutefois, cette solution est très contraignante et ne permet pas de prévenir l’apparition de nouvelles bio-contaminations. Il existe donc un réel besoin de fournir des solutions permettant à la fois de traiter et de prévenir des bio-contaminations dans les réservoirs de carburant, ces solutions étant de préférence faciles à mettre en œuvre. Description de l’invention De manière surprenante, les Inventeurs ont mis en évidence qu’il est possible de prévenir et/ou traiter une bio-contamination dans un réservoir de carburant en utilisant des microorganismes comme agents de bio-contrôle. Ces « bons » microorganismes, appelés par la suite « agents de bio-contrôle », permettent d’inhiber la croissance des « mauvais » microorganismes responsables de dommages au niveau du réservoir et du carburant lui-même. Ces « mauvais » microorganismes sont appelés « microorganismes contaminant » par la suite. Afin de prévenir et/ou traiter une bio-contamination, le ou les agents de bio-contrôle sont tout simplement introduits dans le réservoir de carburant, de préférence après un nettoyage préalable du réservoir en cas de bio-contamination importante. Il est possible d’utiliser un seul agent de bio-contrôle, i.e. un seul microorganisme, ou bien un mélange d’au moins deux agents de bio-contrôle, i.e. au moins deux microorganismes, en particulier d’une espèce et/ou d’un genre différents. Le ou les agents de bio-contrôle peuvent être fournis sous la forme d’une composition liquide qui est tout simplement pulvérisée à l’intérieur du réservoir de carburant, avant son remplissage. Alternativement, le ou les agents de bio-contrôle sont mélangés directement au carburant avant introduction de celui-ci. Le procédé selon l’invention présente notamment l’avantage d’être simple de mise en œuvre. Un premier objet de l’invention concerne ainsi un procédé de sélection d’au moins un agent de bio-contrôle utile pour la prévention et/ou le traitement d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant, ledit procédé comprenant : fournir au moins un microorganisme à tester, mettre en culture ledit microorganisme à tester ou chacun desdits microorganismes à tester avec un microorganisme contaminant des réservoirs de carburant ou avec un mélange d’au moins deux microorganismes contaminant des réservoirs de carburant, et sélectionner, comme agent de bio-contrôle, au moins un microorganisme capable d’inhiber la croissance dudit microorganisme contaminant ou desdits microorganismes contaminants dudit mélange. Le microorganisme contaminant des réservoirs de carburant utilisé dans le procédé de sélection peut être un champignon, une levure et une bactérie. Ledit microorganisme contaminant des réservoirs de carburant est par exemple : un champignon d’un genre sélectionné dans le groupe consistant en Amorphotheca , Acremonium , Aspergillus, Alternaria , Hypocreales , Discophaerina , Exophiala , Fusarium , Helminthosporium, Paecilomyces , Penicillium, Phialophora , Rhinocladiella , Trichosporium et Trichoderma , une levure d’un genre sélectionné dans le groupe consistant en Aureobasidium , Candida et Rhodotorula , ou une bactérie d’un genre sélectionné dans le groupe consistant en Micrococcus , Staphylococcus, Acinetobacter , Arthrobacter , Aerobacter , Aeromonas , Alcaligenes , Brevibacterium , Desulfovibrio , Dietzia , Escherichia, Enterobacter , Flavobactrium , Kocuria , Leucobacter , Pantoea , Pseudomonas, Streptomyces , Sphingomonas , Serratia et Alicyclobacillus . Le microorganisme à tester dans le procédé de sélection qui est fourni à l’étape a) est de préférence un microorganisme isolé d’un réservoir de carburant non contaminé et/ou exprimant au moins un composé fongicide et/ou exprimant au moins un composé bactéricide et/ou exprimant au moins un composé levuricide. Le microorganisme sélectionné comme agent de bio-contrôle à l’étape c) du procédé de sélection présente en outre de préférence au moins une des propriétés suivantes, de préférence au moins quatre des propriétés suivantes : ledit microorganisme est capable de se multiplier sur un substrat carboné consistant en un carburant, ledit microorganisme survit dans une gamme de températures comprise de - 40°C à 60°C, de préférence de - 40°C à 70°C, plus préférentiellement de - 40°C à 80°C, ledit microorganisme n’est pas pathogène pour l’homme, ledit microorganisme n’est pas toxique pour le carburant, et/ou ledit microorganisme n’est pas toxique pour le réservoir. Un autre objet de l’invention concerne une composition comprenant au moins un agent de bio-contrôle, ledit agent de bio-contrôle étant un microorganisme capable d’inhiber la croissance d’au moins un microorganisme contaminant des réservoirs de carburant. Un autre objet de l’invention concerne un kit pour la prévention et/ou le traitement d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant, ledit kit comprenant : une première composition comprenant au moins un agent de bio-contrôle, ledit agent de bio-contrôle étant un microorganisme capable d’inhiber la croissance d’au moins un microorganisme contaminant des réservoirs de carburant, et une deuxième composition comprenant au moins un agent de formulation. Un autre objet de l’invention est un procédé de prévention et/ou de traitement d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant, ledit procédé comprenant : optionnellement, nettoyer le réservoir de carburant, et introduire à l’intérieur du réservoir de carburant au moins un agent de bio-contrôle, ledit agent de bio-contrôle étant un microorganisme capable d’inhiber la croissance d’au moins un microorganisme contaminant des réservoirs de carburant. Ledit agent de bio-contrôle est de préférence un microorganisme du genre Bacillus , de préférence sélectionné dans le groupe consistant en Bacillus subtilis , Bacillus velenzensis et Bacillus altitudinis . Ledit agent de bio-contrôle est de préférence apporté sous la forme d’une composition comprenant en outre au moins un agent de formulation. Un autre objet de l’invention est l’utilisation (i) d’au moins un agent de bio-contrôle, ledit agent de bio-contrôle étant un microorganisme capable d’inhiber la croissance d’au moins un microorganisme contaminant des réservoirs de carburant ou (ii) d’un kit tel que défini ci-dessus, pour la prévention et/ou le traitement d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant. Un autre objet de l’invention est l’utilisation d’un microorganisme comme agent de bio-contrôle pour la prévention et/ou le traitement d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant. Réservoir, carburant et microorganisme contaminant Le réservoir est un contenant approprié pour recevoir, stocker et/ou restituer un carburant. Par « carburant », on désigne ici un carburant comprenant des hydrocarbures. Le carburant est par exemple sélectionné dans le groupe consistant en du kérosène, essence et gazole. Le carburant est de préférence du kérosène. Le réservoir peut être de toute taille, dépendant notamment de son utilisation. Le réservoir peut par exemple avoir un volume d’au moins un litre, par exemple au moins 10 litres, au moins 20 litres ou au moins 30 litres. Le réservoir peut avoir un volume nettement plus grand, par exemple un volume d’au moins 1000 litres, au moins 3000 litres, au moins 30 000 litres ou au moins 100 000 litres, par exemple dans le cas d’un réservoir de carburant d’un avion. Le réservoir peut être constitué de tout matériau approprié pour stocker un carburant, par exemple en alliage léger, tel qu’un alliage d’aluminium ou de l’acier inoxydable et/ou du mastic, tel que polysulfure ou polythioéther, avec par exemple une peinture en époxy ou en polyuréthane. Le réservoir comprend en outre de préférence au moins un élément sélectionné dans le groupe consistant en un circuit, un injecteur, un filtre moteur, une jauge et une pompe. Le réservoir peut être intégré dans ou faire partie d’un véhicule, tel qu’un véhicule terrestre, maritime, aérien ou spatial. Par « réservoir de carburant contaminé », on désigne ici un réservoir comprenant des microorganismes qui sont toxiques pour le carburant et/ou pour le réservoir de carburant. Un microorganisme toxique pour un carburant et/ou pour un réservoir de carburant est appelé par la suite « microorganisme contaminant des réservoirs de carburant » ou « microorganisme contaminant ». Un microorganisme toxique pour un carburant est un microorganisme qui altère au moins une propriété d’un carburant, ladite propriété du carburant étant par exemple sélectionnée dans le groupe consistant en sa composition (en particulier acidité et/ou, teneur en composés aromatiques), sa volatilité (en particulier température de distillation, point d’ébullition final, point éclair, résidu de distillation, perte de distillation et/ou densité à 15°C), sa fluidité (en particulier point de congélation et/ou viscosité à -20°C), qualité de combustion (chaleur de combustion nette et/ou point de fumée), sa stabilité thermique, l’absence de contaminants et sa conductivité électrique. Les propriétés du carburant peuvent être évaluées par toute méthode appropriée bien connue de l’homme du métier, par exemple telle que décrite dans la norme ASTM D1655 et, optionnellement, dans la norme ASTM D4054. La composition du carburant est altérée si au moins un composé du carburant est dégradé. La dégradation d’au moins un composé du carburant résulte par exemple de la production d’acides organiques et/ou la sécrétion d’exopolysaccharides acides par le microorganisme contaminant ou encore de la production de sulfure d’hydrogène par le microorganisme contaminant, lorsqu’il s’agit d’un microorganisme sulfato-réducteur. Un microorganisme toxique pour un réservoir de carburant est un microorganisme qui dégrade le réservoir, par exemple en générant de la bio-corrosion et/ou en formant un biofilm dense capable d’obstruer un ou plusieurs éléments du réservoir, tels que circuit, injecteur, filtre moteur et/ou jauge. Un réservoir de carburant contaminé est ainsi notamment caractérisé par la présence de corrosion à l’intérieur du réservoir et/ou par la présence de biofilms denses. Par « corrosion », on désigne ici l’altération d’un matériau par réaction chimique. Par « bio-corrosion », on désigne ici la corrosion d’un matériau causée par des micro-organismes. La bio-corrosion résulte par exemple de la production d’acides par le métabolisme du microorganisme qui sont impliqués dans des réactions chimiques corrosives. La bio-corrosion est accentuée lors de la formation d’un biofilm qui concentre les acides à un endroit et/ou génère des aérations différentielles par la juxtaposition de microorganismes aérobie et anaérobie. La bio-corrosion peut résulter également de la dégradation des polymères du réservoir (par exemple les polymères du mastic et/ou les polymères de la peinture du réservoir), affaiblissant ainsi le film protecteur des fonds, parois ou équipements métalliques des réservoirs. Par « biofilm », on désigne ici une communauté de microorganismes adhérant entre eux et à une surface, généralement à une surface en contact avec de l’eau. Le biofilm comprend des microorganismes et une matrice extracellulaire adhésive et protectrice. Cette matrice extracellulaire est sécrétée par ces microorganismes. Le biofilm permet ainsi aux microorganismes de s’attacher à une surface, en particulier ici à la surface interne du réservoir et/ou à la surface des éléments du réservoir. Par « biofilm dense », on désigne ici un biofilm capable d’obstruer un orifice. De nombreux microorganismes différents ont été identifiés dans des réservoirs de carburant contaminés. Le microorganisme contaminant des réservoirs de carburant peut être un champignon, une levure ou une bactérie. Le microorganisme contaminant des réservoirs de carburant est par exemple : un champignon d’un genre sélectionné dans le groupe consistant en Amorphotheca , Acremonium , Aspergillus, Alternaria , Hypocreales , Discophaerina , Exophiala , Fusarium , Helminthosporium, Paecilomyces , Penicillium, Phialophora , Rhinocladiella , Trichosporium et Trichoderma , une levure d’un genre sélectionné dans le groupe consistant en Aureobasidium , Candida et Rhodotorula , ou une bactérie d’un genre sélectionné dans le groupe consistant en Micrococcus , Staphylococcus, Brachybacterium , Aerococcus Acinetobacter , Arthrobacter , Aerobacter , Aeromonas , Alcaligenes , Brevibacterium , , Desulfovibrio , Dietzia , Escherichia, Enterobacter , Flavobactrium , Kocuria , Leucobacter , Pantoea , Pseudomonas, Streptomyces , Sphingomonas , Serratia et Alicyclobacillus . Le champignon du genre Amorphotheca est par exemple Amorphotheca resinae (également appelé Hormoconis resinae ). Le champignon du genre Penicillium est de préférence sélectionné dans le groupe consistant en Penicillium chrysogenum , Penicillium spindosum et Penicillium corylophilum . Le champignon du genre Alternaria est par exemple Alternaria hordeiaustralica . Le champignon du genre Acremonium est par exemple Acremonium strictum . Le champignon du genre Aspergillus est par exemple Aspergillus niger ou Aspergillus fumigatus . Le champignon du genre Discophaerina est par exemple Discophaerina fagi . Le champignon du genre Exophiala est par exemple Exophiala jeanselmei . Le champignon du genre Fusarium est par exemple Fusarium moniliforme . Le champignon du genre Paecilomyces est par exemple Paecilomyces variotii . Le champignon du genre Phialophora est par exemple Phialophora richardsia . Le champignon du genre Trichoderma est par exemple Trichoderma viride . La levure du genre Aureobasidium est par exemple Aureobasidium pullulans . La levure du genre Candida est par exemple Candida famata ou Candida lipolytica . La levure du genre Rhodotorula est par exemple Rhodotorula mucilaginosa . La bactérie contaminant des réservoirs est de préférence une bactérie sulfato-réductrice et/ou libérant des métabolites acides. La bactérie du genre Micrococcus est par exemple Micrococcus aloeverae . La bactérie du genre Staphylococcus est par exemple Staphylococcus wameri ou Staphylococcus vitulinus . La bactérie du genre Acinetobacter est par exemple Acinetobacter calcoaceticus ou Acinetobacter cerificans . La bactérie du genre Arthrobacter est par exemple Arthrobacter cummins ii . La bactérie du genre Aerobacter est par exemple Aerobacter aerogenes . La bactérie du genre Brevibacterium est par exemple Brevibacterium ammoniagenes . La bactérie du genre Desulfovibrio est par exemple Desulfovibrio desulfuricans . La bactérie du genre Dietzia est par exemple Dietzia cinnamea . La bactérie du genre Enterobacter est par exemple Enterobacter cloacae ou glomerans . La bactérie du genre Flavobacterium est par exemple Flavobacterium arborescens ou Flavobacterium diffusum . La bactérie du genre Kocuria est par exemple Kocuria rhizophilia . La bactérie du genre Leucobacter est par exemple Leucobacter komagatae . La bactérie du genre Pantoea est par exemple Pantoea ananatis . La bactérie du genre Pseudomonas est par exemple Pseudomonas aeruginosa . La bactérie du genre Streptomyces est par exemple Streptomyces argenteolus , Streptomyces orientalis ou Streptomyces pulcher . La bactérie du genre Sphingomonas est par exemple Sphingomonas zeae ou Sphingomonas aeria . La bactérie du genre Serratia est par exemple Serratia marcescens ou Serratia odorifera . La bactérie du genre Alicyclobacillus est par exemple Alicyclobacillus acidocaldarius . Un réservoir de carburant contaminé comprend généralement au moins un microorganisme contaminant sélectionné dans le groupe consistant en Amorphotheca Resinae , Aspergillus Niger , Penicillium chrysogenum , Penicillium spindosum , Alternaria hordeiaustralica , Micrococcus aloeverae et Staphylococcus wameri . Un réservoir contaminé comprend le plus souvent le microorganisme contaminant Hormoconis resinae . Un réservoir de carburant non contaminé comprend également des microorganismes, mais ces derniers ne sont pas toxiques pour le réservoir, ni pour le carburant. En particulier, les microorganismes présents dans des réservoirs non contaminés ne forment pas de biofilms denses. Un réservoir de carburant non contaminé est caractérisé par l’absence de biofilm dense, l’absence de corrosion et l’absence de biodégradation des polymères du réservoir. Agent de bio-contrôle La présente invention a particulièrement pour objet un agent de bio-contrôle, en particulier utile pour la prévention et/ou le traitement d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant, en particulier dans un réservoir de kérosène. Par « agent de bio-contrôle », on désigne ici un microorganisme capable d’inhiber la croissance d’au moins un microorganisme contaminant des réservoirs de carburant. Le microorganisme contaminant des réservoirs de carburant est notamment tel que défini ci-dessus. L’inhibition de croissance peut être totale ou partielle. En cas d’inhibition de croissance partielle, ladite inhibition de croissance est suffisante pour empêcher le microorganisme contaminant de générer de la corrosion et/ou de former un biofilm dense. L’inhibition partielle peut notamment résulter d’un effet biostatique de l’agent de bio-contrôle. Selon que le microorganisme contaminant est une bactérie, une levure ou un champignon, l’effet biostatique est respectivement un effet bactériostatique, levurostatique ou fongistatique. Un effet biostatique signifie un ralentissement de la croissance du microorganisme contaminant. Une inhibition totale de croissance peut résulter d’un effet biocide de l’agent de bio-contrôle. Selon que le microorganisme contaminant est une bactérie, une levure ou un champignon, l’effet biocide est respectivement un effet bactéricide, levuricide ou fongicide. Un effet biocide signifie que le microorganisme contaminant est tué. L’agent de bio-contrôle est de préférence sélectionné par un procédé de sélection tel que défini ci-dessous. L’agent de bio-contrôle possède de préférence au moins une des propriétés suivantes, plus préférentiellement au moins deux des propriétés suivantes, plus préférentiellement encore au moins quatre des propriétés suivantes : il est capable de se multiplier sur un substrat carboné consistant en un carburant, il survit dans une gamme de températures comprise de -40°C à 60°C, de préférence de -40°C à 70°C, plus préférentiellement de -40°C à 80°C, il n’est pas pathogène pour l’homme, il n’est pas toxique pour le carburant, et/ou il n’est pas toxique pour le réservoir. De préférence, l’agent de bio-contrôle tel que défini ci-dessus possède au moins les trois propriétés suivantes: il n’est pas pathogène pour l’homme, il n’est pas toxique pour le carburant, et il n’est pas toxique pour le réservoir. L’agent de bio-contrôle peut provenir d’un échantillon prélevé dans un réservoir de carburant non contaminé. Dans ce cas, l’agent de bio-contrôle peut avoir été isolé dudit échantillon, puis multiplié. Alternativement, l’échantillon prélevé dans un réservoir de carburant non contaminé est utilisé directement comme source d’agents de bio-contrôle, par exemple par transfert direct dans un réservoir contaminé ou non contaminé, ou bien l’échantillon prélevé dans un réservoir de carburant non contaminé est mis en culture avant d’être utilisé comme source d’agents de bio-contrôle. L’agent de bio-contrôle est de préférence une souche pure. Par « souche pure », on désigne une population dont tous les individus sont identiques. L’agent de bio-contrôle peut être une bactérie, une levure ou un champignon. L’agent de bio-contrôle est de préférence une bactérie. L’agent de bio-contrôle est de préférence une bactérie du genre Bacillus . L’agent de bio-contrôle est de préférence une bactérie sélectionnée dans le groupe consistant en Bacillus subtilis , Bacillus velenzensis et Bacillus altitudinis . L’agent de bio-contrôle est par exemple une souche de Bacillus velenzensis , une souche de Bacillus subtilis ou une souche de Bacillus altitudinis , ladite souche ayant été isolée d’un réservoir de carburant non contaminé. Procédé de sélection d’au moins un agent de bio-contrôle La présente invention a particulièrement pour objet un procédé de sélection d’au moins un agent de bio-contrôle utile pour la prévention et/ou le traitement d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant, en particulier dans un réservoir de kérosène. Par « bio-contamination », on désigne ici une contamination par un ou plusieurs microorganismes contaminant des réservoirs de carburant. Le ou les microorganismes contaminant des réservoirs de carburant sont notamment tel que défini ci-dessus. La bio-contamination d’un réservoir de carburant peut être diagnostiquée de différentes façons : visuellement, par exemple par détection de bio-corrosion et/ou la présence de biofilms denses formant des résidus marrons à l’intérieur du réservoir ; la détection peut être réalisée lorsque le réservoir est vide ou par boroscopie ; et/ou par analyse biologique, par exemple par ATPmétrie ou mise en culture, notamment sur un prélèvement dans le réservoir à l’interface carburant / phase aqueuse. L’analyse par ATPmétrie donne une indication globale de l’activité microbienne. Le traitement d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant signifie donc le traitement d’un réservoir de carburant contaminé. Le réservoir de carburant contaminé est notamment tel que défini ci-dessus. La prévention d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant signifie donc la prévention d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant non contaminé initialement. Le procédé de sélection tel que défini ci-dessus comprend de préférence de : fournir au moins un microorganisme à tester, mettre en culture ledit microorganisme à tester ou chacun desdits microorganismes à tester avec un microorganisme contaminant des réservoirs de carburant ou avec un mélange d’au moins deux microorganismes contaminant des réservoirs de carburant, et sélectionner, comme agent de bio-contrôle, au moins un microorganisme capable d’inhiber la croissance dudit microorganisme contaminant ou desdits microorganismes contaminant dudit mélange. Etape a) L’étape a) comprend de fournir au moins un microorganisme à tester. Le procédé de sélection peut en effet permettre de tester un seul microorganisme ou plusieurs microorganismes. Le microorganisme à tester peut être sélectionné sur la base de l’effet biocide, en particulier de l’effet bactéricide et/ou fongicide et/ou levuricide, des composés qu’il sécrète. Il est possible d’identifier un tel microorganisme à partir de bases de données et de publications existantes ou encore en analysant son génome pour déterminer s’il peut exprimer un ou des composés ayant un effet bactéricide et/ou fongicide et/ou levuricide. Le microorganisme à tester est de préférence un microorganisme exprimant au moins un composé fongicide et/ou exprimant au moins un composé bactéricide et/ou exprimant au moins un composé levuricide. Ledit composé fongicide et/ou bactéricide et/ou levuricide est de préférence excrété par le microorganisme. Le microorganisme à tester peut également être un microorganisme isolé d’un réservoir de carburant non contaminé. L’avantage d’un tel microorganisme est qu’il est déjà adapté à un substrat à base de carburant, ainsi qu’aux températures auxquelles est exposé un réservoir de carburant dans son utilisation habituelle. Le microorganisme à tester est par exemple une bactérie du genre Bacillus , de préférence isolée d’un réservoir de carburant non contaminé. Le microorganisme à tester n’exprime pas nécessairement un composé bactéricide, fongicide ou levuricide. Etape b) L’étape b) comprend de mettre en culture ledit microorganisme à tester ou chacun desdits microorganismes à tester avec un microorganisme contaminant des réservoirs de carburant ou avec un mélange d’au moins deux microorganismes contaminant des réservoirs de carburant. Lorsque plusieurs microorganismes à tester sont fournis à l’étape a), l’étape b) peut comprendre la culture d’un seul microorganisme à tester ou d’un mélange d’au moins deux microorganismes à tester avec (i) un microorganisme contaminant ou (ii) un mélange d’au moins deux microorganismes contaminant. De préférence, l’étape b) comprend la culture d’un seul microorganisme à tester avec (i) un microorganisme contaminant ou (ii) un mélange d’au moins deux microorganismes contaminant. Il est alors possible après l’étape c), de réaliser une nouvelle étape b) avec un mélange d’au moins deux microorganismes sélectionnés à l’étape c). Lorsqu’au moins deux microorganismes sont testés en mélange, ces microorganismes peuvent inhiber la croissance du même genre et/ou de la même espèce de microorganisme contaminant ou d’espèces et/ou genres de microorganismes contaminant différents. Lorsqu’au moins deux microorganismes sont testés en mélange, ces microorganismes peuvent avoir été préalablement sélectionnés individuellement par le procédé de sélection selon l’invention. Le ou les microorganismes contaminant des réservoirs de carburant peuvent avoir été isolés d’un échantillon prélevé dans un réservoir de carburant contaminé. Le ou les microorganismes contaminant des réservoirs de carburant peuvent être sous la forme d’un échantillon prélevé dans un réservoir de carburant contaminé. Le ou les microorganismes contaminant des réservoirs de carburant peuvent être des souches pures, par exemple disponibles commercialement. Le ou les microorganismes contaminant des réservoirs de carburant sont par exemple tels que définis ci-dessus. Le microorganisme contaminant des réservoirs de carburant est par exemple un champignon, une levure ou une bactérie. Le microorganisme contaminant des réservoirs de carburant est de préférence sélectionné dans le groupe consistant en Amorphotheca resinae , Aspergillus niger , Penicillium chrysogenum , Penicillium spindosum , Alternaria hordeiaustralica , Micrococcus aloeverae , et Staphylococcus wameri . Le microorganisme contaminant des réservoirs de carburant est de préférence Amorphotheca resinae ou Aspergillus niger , Le mélange d’au moins deux microorganismes contaminant peut par exemple être caractéristique des microorganismes présents dans un réservoir de carburant contaminé ou comprendre les microorganismes les plus abondants et/ou retrouvés le plus fréquemment dans un réservoir de carburant contaminé. La culture peut par exemple être effectuée sur un milieu de culture solide, tel que sur boîte de pétri, ou dans un milieu de culture liquide. Les conditions de culture sont celles appropriées pour cultiver le ou les microorganismes à tester et/ou le ou les microorganismes contaminant. Les conditions de culture, en particulier le milieu de culture et la température, sont bien connues de l’homme du métier. A titre d’exemple, le milieu de culture peut être un milieu riche, comme le LB (milieu de Luria_Bertani), TSB (Tryptone Soja Broth) ou YEPD (Yeast Extract Peptone Dextrose), optionnellement additionné avec de l’agar-agar, en particulier pour faire des géloses de culture. A titre d’exemple, la culture est réalisée à une température comprise de 18°C à 37°C, par exemple comprise de 19°C à 30°C, plus préférentiellement à température ambiante, par exemple de 19°C à 23°C. Alternativement, les conditions de culture peuvent se rapprocher des conditions présentes dans un réservoir de carburant dans son utilisation habituelle. Par exemple, la culture peut être effectuée dans une phase liquide en contact avec du carburant utilisé comme source de carbone et dans une gamme de température à laquelle est exposée le réservoir de carburant dans son utilisation habituelle. De préférence, les mêmes quantités de microorganisme à tester et de microorganisme contaminant sont ensemencées. Les quantités peuvent être exprimées en UFC (unité formant colonie). La quantité de microorganismes est par exemple comprise de 100 UFC à 10 7 UFC selon le(s) micro-organisme(s) à cultiver. Par exemple, une culture en milieu liquide de chaque microorganisme est effectuée sur la nuit (pendant environ 18h) et le même volume de la culture ainsi obtenue est ensemencé pour chaque microorganisme. Lorsqu’il s’agit d’une culture solide, le ou les microorganismes à tester et le ou les microorganismes contaminants peuvent être ensemencés au même endroit ou bien à deux endroits distincts. La culture est de préférence effectuée jusqu’à ce qu’une compatibilité ou une incompatibilité des microorganismes en culture soit observée. Par « compatibilité », on désigne ici le fait que les différents microorganismes coexistent dans la culture. Dans ce cas, le ou les microorganismes à tester ont un effet biostatique sur le ou les microorganismes contaminant. Par « incompatibilité », on désigne ici le fait qu’un ou des microorganismes se développent au détriment du ou des autres microorganismes. Si le ou les microorganismes à tester se développent au détriment du ou des microorganismes contaminant, le ou les microorganismes à tester inhibent la croissance du ou des microorganismes contaminant, ce qui peut résulter d’un effet biocide. La culture est par exemple effectuée pendant au moins deux jours, de préférence au moins trois jours, par exemple au moins cinq jours, au moins une semaine, au moins deux semaines ou au moins trois semaines. La culture est par exemple effectuée pendant une durée comprise entre trois jours et un mois. Le ou les microorganismes à tester peuvent être ensemencés en même temps que le ou les microorganisme contaminant. Le ou les microorganismes à tester peuvent être ensemencés avant le ou les microorganismes contaminant, en particulier pour tester l’effet sur la prévention d’une bio-contamination par ce ou ces microorganismes contaminant. Le ou les microorganismes à tester peuvent être ensemencés après le ou les microorganisme contaminant des réservoirs de carburant, en particulier pour tester l’effet sur le traitement d’une bio-contamination par ce ou ces microorganisme contaminant. L’étape b) permet ainsi d’évaluer l’effet biocide (en particulier fongicide, bactéricide ou levuricide) ou l’effet biostastique du ou des microorganismes à tester vis-à-vis du ou des microorganismes contaminant. Etape c) L’étape c) comprend de sélectionner, comme agent de bio-contrôle, au moins un microorganisme capable d’inhiber la croissance dudit microorganisme contaminant ou desdits microorganismes contaminants dudit mélange. L’inhibition de la croissance du ou desdits microorganismes contaminant peut être une inhibition partielle ou totale. L’inhibition de la croissance peut être évaluée en déterminant la surface occupée par chaque microorganisme ou en analysant la formation de biofilms. L’inhibition de la croissance peut être évaluée visuellement, par exemple à l’œil nu ou par toute technique appropriée, telle que par microscopie. Par exemple, en microcopie, un marqueur peut être utilisé pour marquer les membranes cellulaires ou l’ADN. Dans ce cas, l’inhibition de la croissance est évaluée en comparant (i) le résultat de la culture individuelle de chaque microorganisme (à tester et contaminant) avec (ii) le résultat d’une co-culture du ou des microorganismes à tester avec le ou les microorganismes contaminant. En cas d’inhibition totale, le ou les microorganismes à tester sont les seuls présents à la fin de l’étape b). En cas d’inhibition partielle, la surface occupée par le ou les microorganismes contaminant est inférieure ou égale à celle occupée par le ou les microorganismes à tester. En cas d’inhibition partielle, le ou les microorganismes contaminant occupent de préférence moins de 40% de la surface occupée par la totalité des microorganismes présents à la fin de l’étape b), plus préférentiellement moins de 30% ou moins de 20%. En cas d’inhibition partielle, le ou les microorganismes contaminant ne forment plus de biofilm dense. Le microorganisme sélectionné comme agent de bio-contrôle à l’étape c) présente de préférence en outre au moins une des propriétés suivantes, plus préférentiellement au moins deux des propriétés suivantes, plus préférentiellement encore au moins quatre des propriétés suivantes : ledit microorganisme est capable de se multiplier sur un substrat carboné consistant en un carburant, ledit microorganisme survit dans une gamme de températures comprise de - 40°C à 60°C, de préférence de - 40°C à 70°C, plus préférentiellement de - 40°C à 80°C, ledit microorganisme n’est pas pathogène pour l’homme, ledit microorganisme n’est pas toxique pour le carburant, et/ou ledit microorganisme n’est pas toxique pour le réservoir. Le microorganisme sélectionné comme agent de bio-contrôle à l’étape c) présente de préférence les trois propriétés suivantes : ledit microorganisme n’est pas pathogène pour l’homme, ledit microorganisme n’est pas toxique pour le carburant, et ledit microorganisme n’est pas toxique pour le réservoir, et présente, optionnellement, au moins une des propriétés suivantes : ledit microorganisme est capable de se multiplier sur un substrat carboné consistant en un carburant, et/ou ledit microorganisme survit dans une gamme de températures comprise de - 40°C à 60°C, de préférence de - 40°C à 70°C, plus préférentiellement de - 40°C à 80°C. Le procédé de sélection tel que défini ci-dessus peut ainsi comprendre : une étape d’évaluation d’au moins une propriété du ou des microorganismes à tester, avant l’étape a), ou une étape ultérieure d’évaluation d’au moins une propriété du ou des microorganisme sélectionnés comme agent de bio-contrôle à l’étape c), ladite propriété étant sélectionnée dans le groupe consistant en l’absence de pathogénicité pour l’homme, l’absence de toxicité pour le carburant, l’absence de toxicité pour le réservoir, la capacité à se multiplier sur un substrat carboné consistant en un carburant et la capacité à survivre dans une gamme de températures comprise de - 40°C à 60°C, de préférence de - 40°C à 70°C, plus préférentiellement de - 40°C à 80°C. La capacité d’un microorganisme à se multiplier sur un substrat carboné consistant en un carburant peut être évaluée par toute méthode appropriée, telle que la mise en culture du microorganisme dans un récipient comprenant du carburant et une phase aqueuse. A cet effet, par exemple 10 5 UFC du microorganisme sont introduits dans un récipient comprenant de l’eau ; le carburant est ensuite ajouté et l’ensemble est mis en incubation pendant au moins 2 jours, de préférence 7 jours, par exemple à une température appropriée pour ledit microorganisme ou à des températures plus extrêmes choisies entre -40°C et 80°C. Le microorganisme est capable de se multiplier sur le carburant si sa population ne diminue pas. La gamme de température comprise de - 40°C à 80°C correspond notamment à la gamme de températures extrêmes à laquelle peut être exposé un réservoir de carburant dans un avion. La capacité du microorganisme à survivre dans une gamme de températures comprise de - 40°C à 60°C, de préférence de - 40°C à 70°C, plus préférentiellement de - 40°C à 80°C peut être évaluée par toute méthode appropriée. Par exemple, le microorganisme est exposé à un stress thermique à -40°C, par exemple pendant au moins 2 jours, puis est mis en culture à température ambiante, par exemple pendant au moins 2 jours, puis est exposé à un stress thermique (par exemple à une température comprise de 60°C à 80°C), par exemple pendant au moins 2 jours, et à nouveau mise en culture à température ambiante, par exemple pendant au moins 2 jours. On évalue ensuite la quantité de microorganismes vivants, par exemple par étalement de dilutions sur milieu de culture riche. Ledit microorganisme survit dans une gamme de températures comprise de - 40°C à 60°C, de préférence de - 40°C à 70°C, plus préférentiellement de - 40°C à 80°C s’il est toujours isolable après l’exposition aux températures extrêmes de l’intervalle considéré. Pour des températures extrêmes, telles que 70°C-80°C, le microorganisme survit généralement sous forme sporulée. Le milieu de culture peut être une phase aqueuse en contact avec un biocarburant comme source de carbone ou un milieu de culture approprié pour le microorganisme. Le microorganisme n’est pas pathogène pour l’homme, s’il ne présente pas de risque pour la santé humaine, en particulier lors de sa manipulation par l’homme (incluant notamment l’isolement, la culture et le conditionnement du microorganisme et son utilisation dans les réservoirs de carburant). La toxicité d’un microorganisme pour le carburant peut être évaluée par toute méthode appropriée. Par exemple, le microorganisme est mis en culture dans la phase aqueuse d’un réservoir ou d’un bioréacteur comprenant du carburant, par exemple pendant au moins deux semaines. Si aucun composé du carburant n’est dégradé ou si les autres propriétés du carburant, en particulier telles que définies ci-dessus, ne sont pas altérées, alors le microorganisme n’est pas toxique pour le carburant. La toxicité d’un microorganisme pour le réservoir peut être évaluée par toute méthode appropriée. Par exemple, le microorganisme est mis en culture dans la phase aqueuse d’un réservoir ou d’un bioréacteur comprenant du carburant, par exemple pendant au moins six mois. S’il n’est pas observé de corrosion ou de biofilms denses dans le réservoir ou le bioréacteur, alors le microorganisme n’est pas toxique pour le réservoir. Les toxicités d’un microorganisme pour le carburant et pour le réservoir peuvent être testées en même temps. Si le microorganisme sélectionné n’est pas capable de se multiplier sur un substrat carboné consistant en un carburant et/ou de survivre dans une gamme de température comprise de - 40°C à 60°C, de préférence de - 40°C à 70°C, plus préférentiellement de - 40°C à 80°C, ou si l’on souhaite améliorer les capacités du microorganisme sélectionné, il est possible d’effectuer une ou plusieurs étapes d’adaptation du microorganisme. Le procédé tel que défini ci-dessus peut ainsi comprendre au moins une étape ultérieure d’adaptation du microorganisme sélectionné comme agent de bio-contrôle à l’étape c). L’étape d’adaptation peut comprendre de mettre en culture le microorganisme sélectionné : en présence de carburant comme seule source de carbone, et/ou à une température comprise de - 40°C à 60°C, de préférence de - 40°C à 70°C, plus préférentiellement de - 40°C à 80°C, par exemple (i) entre -40°C et 0°C (notamment à -40°C), (ii) entre 0°C et 40°C (notamment à 0°C et/ou à 20°C°) et/ou entre (iii) 40°C et 80°C (notamment à 50°C, 60°C, 70°C et/ou 80°C). La durée de l’étape d’adaptation est par exemple d’au moins un jour, de préférence au moins 4 jours, de préférence au moins une semaine. La durée de l’étape d’adaptation est par exemple d’au moins un jour, de préférence au moins 4 jours, de préférence au moins une semaine, par condition de culture, notamment pour chaque température de culture utilisée. L’étape d’adaptation permet au microorganisme d’évoluer en sélectionnant les descendants capables de se multiplier dans les conditions de température et/ou de substrat utilisés. Le procédé tel que défini ci-dessus peut en outre comprendre une étape d’utilisation du ou des microorganismes sélectionnés à l’étape c) ou obtenus après au moins une étape d’adaptation telle que définie ci-dessus, comme agent de bio-contrôle, dans un réservoir de carburant. Cette étape d’utilisation comprend par exemple l’introduction, à l’intérieur du réservoir de carburant, dudit ou desdits microorganismes sélectionnés à l’étape c) ou obtenus après au moins une étape d’adaptation. L’introduction dudit ou desdits microorganismes à l’intérieur du réservoir est en particulier telle que décrite ci-dessous dans la section « Procédé de prévention et/ou de traitement d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant ». Composition comprenant au moins un agent de bio-contrôle La présente invention a également pour objet une composition comprenant au moins un agent de bio-contrôle tel que défini ci-dessus. L’agent de bio-contrôle est de préférence obtenu par le procédé de sélection tel que défini ci-dessus. Dans un mode de réalisation, la composition telle que définie ci-dessus comprend au moins deux agents de bio-contrôle tels que définis ci-dessus, par exemple deux, trois, quatre ou au moins cinq agents de bio-contrôle tels que définis ci-dessus. La composition peut être un échantillon prélevé dans un réservoir de carburant non contaminé, en particulier prélevé à l’interface phase aqueuse / carburant. La composition peut être obtenue par culture d’un échantillon prélevé dans un réservoir de carburant non contaminé, en particulier prélevé à l’interface phase aqueuse / carburant. Dans un mode de réalisation, la composition telle que définie ci-dessus ne comprend pas un échantillon prélevé dans un réservoir de carburant non contaminé, ni une culture d’un échantillon prélevé dans un réservoir de carburant non contaminé. Dans un mode de réalisation préféré, l’agent de bio-contrôle présent dans la composition permet d’inhiber la croissance d’ Hormoconis resinae , Aspergillus niger et/ou d’une bactérie sulfato-réductrice ou libérant des métabolites acides. L’agent de bio-contrôle est de préférence une bactérie du genre Bacillus , en particulier sélectionnée dans le groupe consistant en Bacillus subtilis , Bacillus altitudinis et Bacillus velenzensis . La composition peut avantageusement comprendre en outre au moins un agent de formulation. L’agent de formulation est de préférence approprié à la survie et/ou à l’adhésion du ou desdits agents de bio-contrôle dans un réservoir de carburant. L’agent de formulation peut par exemple favoriser l’adhésion, la pulvérisation, la dispersion, la stabilité et/ou la survie du ou desdits agents de bio-contrôle. L’agent de formulation est par exemple un agent d’adhésion. L’agent d’adhésion a pour objet de favoriser l’adhésion du ou des agents de bio-contrôle à la surface interne du réservoir et/ou à la surface du ou des éléments compris dans le réservoir. L’agent d’adhésion est par exemple un cation divalent (tel que Ca2+, Mg2+, Fe2+ ou leurs combinaisons) ou un polymère (tel que polylysine(s)). L’agent de formulation peut par exemple être un nutriment. Le nutriment a pour objet de permettre à l’agent ou aux agents de bio-contrôle de se multiplier rapidement, en particulier une fois introduit dans un réservoir de carburant. Le ou les agents de bio-contrôle utiliseront ensuite le carburant comme substrat carboné pour leur croissance. Le nutriment est de préférence spécifique de la croissance du ou desdits agents de bio-contrôle. En particulier, le nutriment ne favorise de préférence pas la croissance d’un ou plusieurs microorganismes contaminants. Dans un mode de réalisation préféré, le nutriment ne favorise pas la croissance d’ Hormoconis resinae et/ou d’ Aspergillus niger . Le ou les agents de formulation peuvent être présents dans la composition sous la forme d’une solution ou d’une poudre. La composition comprend de préférence au moins 80%, de préférence au moins 90%, par exemple au moins 95% de l’agent de bio-contrôle ou des agents de bio-contrôle, le pourcentage étant un pourcentage massique, en particulier lorsque la composition est sous forme sèche. Lorsque que la composition comprend plusieurs agents de bio-contrôle, ils sont de préférence présents en quantités égales. La composition comprend de préférence au moins 100 UFC, par exemple au moins 1000 UFC, au moins 10 4 UFC ou au moins 10 5 UFC du ou de chaque agent de bio-contrôle. Le ou les agents de bio-contrôle présents dans la composition sont sous forme active. Par « forme active », on désigne ici un agent de bio-contrôle capable de se multiplier. L’agent de bio-contrôle sous forme active peut être sous forme vivante et/ou revivifiable. L’agent de bio-contrôle sous forme revivifiable est par exemple sous forme sporulée. Le ou lesdits agents de bio-contrôle sont de préférence sous forme lyophilisée ou de spores déshydratées. La composition telle que définie ci-dessus est de préférence sous forme de poudre, par exemple sous forme de poudre lyophilisée. La présente invention a également pour objet une composition obtenue par mélange de la composition telle que définie ci-dessus, en particulier dans laquelle le ou les agents de bio-contrôle sont sous forme lyophilisée, avec de l’eau. Alternativement, le ou lesdits agents de bio-contrôle sont encapsulés dans des billes ou micro-capsules ou tout autre support approprié. kit pour la prévention et/ou le traitement d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant La présente invention a également pour objet un kit pour la prévention et/ou le traitement d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant, en particulier dans un réservoir de kérosène, ledit kit comprenant : une première composition comprenant au moins un agent de bio-contrôle, ledit agent de bio-contrôle étant un microorganisme capable d’inhiber la croissance d’au moins un microorganisme contaminant des réservoirs de carburant, et une deuxième composition comprenant au moins un agent de formulation, en particulier approprié à la survie et/ou à l’adhésion du ou desdits agents de bio-contrôle de ladite première composition dans un réservoir de carburant . La première composition et l’agent de formulation de la deuxième composition sont notamment tels que définis ci-dessus dans la section « Composition comprenant au moins au agent de bio-contrôle ». La deuxième composition peut être sous la forme d’une solution ou d’une poudre. Procédé de prévention et/ou de traitement d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant La présente invention a également pour objet un procédé de prévention et/ou de traitement d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant, ledit procédé comprenant : optionnellement, nettoyer le réservoir de carburant, et introduire à l’intérieur du réservoir au moins un agent de bio-contrôle, ledit agent de bio-contrôle étant un microorganisme capable d’inhiber la croissance d’au moins un microorganisme contaminant des réservoirs de carburant. Le réservoir et le carburant sont notamment tels que définis ci-dessus. Le carburant est de préférence du kérosène. Le réservoir est de préférence un réservoir de kérosène d’un avion. Etape a) L’étape a) est optionnelle et comprend de nettoyer le réservoir de carburant. L’étape a) est de préférence effectuée lorsque le réservoir de carburant est contaminé. Cette étape permet alors d’améliorer l’efficacité du procédé. L’étape a) est de préférence effectuée lorsque le réservoir de carburant a été traité avec un agent biocide. L’étape a) est notamment réalisée lorsque le procédé concerne le traitement d’une bio-contamination et la prévention d’une contamination ultérieure. L’étape a) peut être précédée d’une étape comprenant de vider le réservoir et/ou rincer le réservoir, le cas échéant. Le nettoyage du réservoir de carburant comprend en particulier le nettoyage de la surface interne du réservoir ainsi que du ou des éléments présents à l’intérieur du réservoir. Le nettoyage peut être effectué par tout moyen approprié bien connu de l’homme du métier. Le nettoyage est de préférence un nettoyage mécanique, tel qu’un nettoyage à haute pression, par exemple à une pression comprise de 10 à 30 bars. Etape b) L’étape b) comprend d’introduire à l’intérieur du réservoir de carburant au moins un agent de bio-contrôle tel que défini ci-dessus. En particulier, ledit agent de bio-contrôle est un microorganisme capable d’inhiber la croissance d’au moins un microorganisme contaminant des réservoirs de carburant. Dans un mode de réalisation préféré, l’agent de bio-contrôle permet d’inhiber la croissance d’ Hormoconis resinae , Aspergillus niger et/ou une bactérie sulfato-réductrice ou libérant des métabolites acides. L’agent de bio-contrôle est de préférence une bactérie du genre Bacillus , en particulier sélectionné dans le groupe consistant en Bacillus subtilis , Bacillus altitudinis et Bacillus velenzensis . L’agent de bio-contrôle est de préférence obtenu par le procédé de sélection tel que défini ci-dessus. Alternativement, l’agent de bio-contrôle peut également provenir d’un échantillon prélevé dans un réservoir de carburant non contaminé. Dans ce cas, l’agent de bio-contrôle peut avoir été isolé dudit échantillon, puis multiplié, ou bien encore l’échantillon prélevé est utilisé directement ou après mise en culture. Le ou les agents de bio-contrôle sont par exemple fournis dans une composition, en particulier telle que définie ci-dessus. La composition peut avantageusement comprendre en outre au moins un agent de formulation. Ledit agent de formulation est notamment tel que défini ci-dessus. La composition peut être un échantillon prélevé dans un réservoir de carburant non contaminé, en particulier prélevé à l’interface phase aqueuse / carburant. La composition peut être obtenue par culture d’un l’échantillon prélevé dans un réservoir de carburant non contaminé, en particulier prélevé à l’interface phase aqueuse / carburant. La composition est de préférence sous forme liquide. Si la composition comprenant le ou les agents de bio-contrôle est sous forme solide, par exemple sous forme de poudre, l’étape b) comprend de préférence le mélange de ladite composition avec un diluant (par exemple de l’eau), afin d’obtenir une composition liquide. L’introduction d’au moins un agent de bio-contrôle à l’intérieur du réservoir de carburant peut être effectuée en appliquant le ou lesdits agents de bio-contrôle sur l’ensemble de la surface interne du réservoir et, optionnellement, sur le ou les éléments compris dans le réservoir. Dans ce cas, le réservoir ne comprend pas de carburant à l’étape b). La composition est de préférence appliquée sur la surface interne du réservoir et sur le ou les éléments compris dans le réservoir au moyen d’un pulvérisateur. Alternativement, l’introduction d’au moins un agent de bio-contrôle à l’intérieur du réservoir de carburant peut être effectuée en injectant le ou lesdits agents dans le réservoir, en particulier au niveau des interfaces carburant / air et/ou des interfaces carburant / phase aqueuse et/ou au niveau des surfaces internes du réservoir non immergées dans du carburant. Alternativement, l’introduction d’au moins un agent de bio-contrôle à l’intérieur du réservoir de carburant peut être effectuée en mélangeant préalablement le ou les agents de bio-contrôle au carburant et en introduisant le mélange ainsi obtenu dans le réservoir de carburant. Etape c) Le procédé tel que défini ci-dessus peut comprendre une étape ultérieure c) comprenant de remplir le réservoir avec un carburant, en particulier lorsque le réservoir est vide ou incomplètement rempli à l’étape b). L’étape c) est de préférence réalisée au moins 1 heure, par exemple au moins deux heures, au moins trois heures , au moins quatre heures ou au moins 5 heures, après l’étape b). Etape d) Le procédé peut comprendre une étape ultérieure d) de contrôle de l’absence de bio-contamination dans le réservoir. La bio-contamination d’un réservoir de carburant peut être diagnostiquée comme indiqué ci-dessus, par exemple par analyse visuelle ou analyse biologique. Si une bio-contamination est détectée, l’étape b) ou les étapes a) et b) du procédé ci-dessus peuvent être répétées. L’étape de contrôle de l’absence de bio-contamination dans le réservoir peut être effectuée plusieurs fois au cours du temps. Le procédé selon l’invention est de préférence mis en œuvre avant chaque remplissage du réservoir, notamment à tire de prévention, ou dès qu’une bio-contamination est diagnostiquée. De préférence, le procédé de prévention et/ou de traitement d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant tel que défini ci-dessus ne comprend pas d’étape de traitement avec un agent biocide ou biostatique autre qu’un agent de bio-contrôle selon l’invention. Utilisation d’un agent de bio-contrôle ou d’un agent de bio-contrôle La présente invention a également pour objet l’utilisation (i) d’au moins un agent de bio-contrôle tel que défini ci-dessus ou (ii) d’un kit tel que défini ci-dessus, pour la prévention et/ou le traitement d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant, en particulier dans un réservoir de kérosène. Tous les termes sont notamment tels que définis ci-dessus. La présente invention a également pour objet l’utilisation d’au moins un microorganisme comme agent de bio-contrôle pour la prévention et/ou le traitement d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant, en particulier dans un réservoir de kérosène. La présente invention a par exemple pour objet l’utilisation d’un microorganisme comme agent de bio-contrôle ou d’au moins deux microorganismes comme agents de bio-contrôle, pour la prévention et/ou le traitement d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant. Le ou lesdits microorganismes sont par exemple sélectionnés par le procédé de sélection tel que défini ci-dessus. Le ou lesdits microorganismes utilisés comme agents de bio-contrôle sont en particulier capables d’inhiber la croissance d’au moins un microorganisme contaminant des réservoirs de carburant. L’invention apparaîtra plus clairement à la lecture de la description qui va suivre, donnée uniquement à titre d’exemple non limitatif. Figures FIG. 1 La FIG. 1 montre les résultats de la culture de la souche A ( Bacillus altitudinis ), la culture de la souche B (une souche d’ Hormoconis resinae ), la culture de la souche C (une autre souche d’ Hormoconis resinae ), la co-culture des souches A et B et la co-culture des souches A et C, sur boite de pétri agar-agar, au bout de 3 jours, 5 jours, 7 jours, 2 semaines et un mois. Pour les co-cultures, les souches sont inoculées au même endroit. FIG. 2 La FIG. 2 montre les résultats de microscopie confocale de la culture en biofilm de la souche A ( Bacillus altitudinis ), la culture de la souche B (une souche d’ Hormoconis resinae ), la culture de la souche C (une autre souche d’ Hormoconis resinae ), la co-culture des souches A et B et la co-culture des souches A et C. Pour chaque condition, à gauche est représentée une vue en 3D dans laquelle les microorganismes sont colorés à la fois avec Syto9 et WGA, au centre une capture en lumière transmise, pour observer la limite entre l'huile et le milieu utilisé et à droite une image en 2D montrant le biofilm immergé formé par les différents microorganismes. FIG. 3 La FIG. 3 montre les résultats de cultures à une semaine ( A ) ou à deux semaines ( B ) de différentes souches de Bacillus et d’une souche d’ Hormoconis resinae . « XX » : culture de la souche X inoculée à deux endroits voisins (1 ère rangée) ou au même endroit (2 ème rangée). « XY » : co-culture des souches X et Y inoculées à deux endroits voisins. « X+Y » : co-culture des souches X et Y inoculées au même endroit. A : souche d’ H. resinae . B : souche de Bacillus altitudinis . C : souche de Bacillus sp . . D : souche de Bacillus velezensis . E : souche de Bacillus subtilis . Exemples Matériel et méthode (i) Isolement/Culture des souches Des échantillons provenant de réservoirs de kérosène d’avion ont été cultivés sur différents milieux riches tels que LB (Luria-Bertani), TSB (Bouillon de Tryptone Soja), et YEPD (Extrait de levure Peptone Dextrose). La culture a été réalisée soit sous forme de milieu liquide, soit sur des milieux gélosés (en enrichissant le milieu riche avec 1,5% d'agar). Les milieux gélosés ensemencés ont été cultivés à température ambiante (environ 20°C) pendant une semaine pour garantir que tous les micro-organismes présents dans l'échantillon aient le temps de se développer. Les souches ont ensuite été isolées en vue de leur purification sur de nouveaux milieux gélosés. Les souches ont ensuite été stockées à -80°C après avoir été cultivées uniquement en milieu liquide, puis ajustées avec 20% de glycérol. (ii) Milieu composite Le milieu composite est un bouillon de Soja Tryptique (TS ; Liofilchem, REF 610053), complété avec 1% de glucose (glu ; Fisher, A16828.0E) et 20% d'extrait de levure peptone dextrose dans le volume final (YEPD ; Extrait de levure Peptone Dextrose Bacto™ : ThermoFisher, REF 212750, Peptone Bacto™ : ThermoFisher, REF 211677, Glucose). Les concentrations et les références sont détaillées dans le Tableau 1 ci-dessous. Milieu Concentration (g/L) Reference Tryptic Soy Broth 30 Liofilchem, REF 610053 Glucose 14 Fisher, A16828.0E Bacto™ Yeast extract 2 ThermoFisher, REF 212750 Bacto™ Peptone 4 ThermoFisher, REF 211677 Difco™ Agar 15 ThermoFisher, REF 214530 Tableau 1 : Composition du milieu composite (iii) Stockage des microorganismes en billes Les microorganismes, y compris les bactéries, les champignons et levures, obtenus à partir d'un réservoir de kérosène d'avion par culture sur boite de Pétri, ont été soigneusement conservés pour des analyses futures. Les souches isolées ont été stockées à -80°C dans des billes commercialisées. A cet effet, une colonie de chaque microorganisme a été mise en culture dans 5 mL de milieu composite (TS + 1% de glu + YEPD à 20% de concentration finale) dans un tube Falcon de 50 mL à température ambiante avec agitation continue (150 rpm). La période d'incubation variait de 2 à 5 jours, en fonction de la souche et du temps nécessaire pour que les microorganismes atteignent la phase stationnaire ou soient bien développés. Après l'incubation, les cultures ont subi une agitation vigoureuse, et pour certaines souches de champignons, un broyage (à l'aide de l'IKA Ultra Turrax t25 après un processus de stérilisation) était nécessaire pour faciliter la désagrégation des organismes en vue du pipetage ultérieur. Après la période d'incubation, de 1,5 mL à 3 mL du mélange cultivé (en fonction de la souche) ont été collectés dans un tube Eppendorf. Les échantillons ont subi une centrifugation à vitesse maximale pendant 2 minutes, après quoi le surnageant a été éliminé, et le culot a été suspendu dans la solution de conservation présente dans les billes commerciales (référence TS/80-MX). Le culot a été soigneusement mélangé avec la solution de conservation et ensuite cultivé avec les billes après 15 secondes d'agitation. Les cultures ont ensuite été laissées à l'obscurité pendant 2 heures pour permettre l'adhérence aux billes. Après cette période d'incubation, l'excès de liquide a été retiré des tubes, et les billes ont été stockées à -80°C pour une utilisation ultérieure. Ce protocole complet assure une conservation efficace des microorganismes. (iv) Culture de nuit Dans une plaque de 12 puits, on réalise la culture d’une bille récupérée du stockage à -80°C dans 3 mL de milieu composite. La culture est mise en incubation à température ambiante sur un agitateur réglé à 150 rpm pendant environ 20 heures. (v) Culture sur boite de pétri Les souches à tester ont été cultivées en milieu liquide dans leurs milieux respectifs (TS pour les bactéries, YPD pour les levures / champignons) à température ambiante jusqu’à atteindre leur phase exponentielle de croissance. 5µL de chaque culture ont ensuite été déposés soit à un même endroit, soit à 1 cm de distance sur une boite de milieu gélosé mixte (50% TS/ 50% YPD). Après 3 jours à 1 mois de culture à température ambiante, (1) le phénotype de la macrocolonie qui s’est développée à partir d’un inocula composé deux types microbiens est comparé à celui des macrocolonies obtenues pour chaque souche pure et (2) la taille et le phénotype de chacune des macrocolonies qui se sont développées à 1 cm de distance l’une de l’autre sont évalués. (vi) Caractérisation du Biofilm - Conditions Expérimentales de la Colonie Dans une plaque de 6 puits, une préparation de 5 mL de TS + 1% de glucose + YEPD (20% de concentration finale), supplémentée de 1,5% d'agar, a été réalisée et laissée sécher pendant une heure sous la hotte un jour avant l'inoculation. Pour chaque souche (et dans le cas de la co-culture, un ratio de 1:1 a été mélangé), 5 µL de la culture sur la nuit ont été inoculés au milieu des puits des plaques d'agar à 1,5% contenant le milieu composite. Ces plaques ont ensuite été mises en incubation à température ambiante (environ 20°C), et des images ont été capturées tous les quelques jours. L'interprétation d'un biofilm mature a été considérée après une semaine de culture. Pour évaluer l'interaction entre les micro-organismes, l'inoculation a été réalisée de manière à ce que les centres d'inoculation entre les deux points soient séparés d'1 cm, avec une bordure de 1-2 mm entre les deux points. Cette conception expérimentale a permis l'exploration et l'observation des interactions microbiennes tout au long de la période d'incubation. - Développement du Biofilm Submergé et Essais de Microscopie Confocale Les biofilms submergés ont été cultivés à la surface de plaques de microtitration en polystyrène à 96 puits avec une base µclear (Greiner Bio-one, France), permettant une imagerie par fluorescence haute résolution. Chaque puits a reçu 100 µL de TS + 1% de glucose + YEPD (20% de concentration finale), inoculé avec 5 µL d'une culture nocturne, et complété avec 50 µL d'huile de paraffine (Sigma-Aldrich, REF: 18512). La plaque de microtitration a ensuite été incubée à température ambiante pendant 3 jours. Pour l'observation confocale, une combinaison de colorants dilués a été appliquée. Plus précisément, 25 µL du mélange de colorants, contenant 2 µL de Syto9 et 100 µL de WGA, préparé dans 1 mL d'eau stérile, ont été ajoutés à chaque puits. Syto9 sert de colorant nucléique fluorescent vert pour la coloration des cellules vivantes, mettant en évidence les acides nucléiques tels que l'ADN et l'ARN à l'intérieur des cellules, se révélant utile dans les études de biofilm pour visualiser les cellules microbiennes. En revanche, le WGA, dérivé du germe de blé, est une lectine qui se lie spécifiquement aux résidus de N-acétylglucosamine et d'acide sialique à la surface des cellules. Dans les études de biofilm, le WGA sert de colorant fluorescent pour visualiser les substances polymériques extracellulaires (EPS), des composants critiques pour la formation et l'intégrité structurelle du biofilm. Cette approche a facilité la coloration efficace et la visualisation des structures du biofilm avant l'imagerie confocale. Les biofilms immergés ont été observés à l'aide d'un microscope confocal à balayage laser Leica SP8 AOBS inversé (CLSM, LEICA Microsystems, Wetzlar, Allemagne) à la plateforme INRAE MIMA2. Les biofilms ont été balayés avec un objectif 10x. L'excitation SYTO 9 a été réalisée à 488 nm avec un laser argon, et la fluorescence émise a été enregistrée dans la plage de 500 à 600 nm sur des détecteurs hybrides. L'excitation Résultats (i) Effet d’une souche de Bacillus altitudinis isolée d’un réservoir de carburant non contaminé sur des souches d’ Hormoconis resinae Lorsque la souche A de Bacillus altitudinis (isolée d’un prélèvement dans un réservoir de carburant non contaminé) est associée avec une souche du champignon Hormoconis resinae , seul le phénotype de la bactérie s’exprime à 2 semaines et à 1 mois post-inoculation. La bactérie a donc des propriétés fongicides vis-à-vis du champignon Hormoconis resinae ( cf. FIG. 1 ). La même conclusion peut être dressée avec une autre technique d’observation : la microscopie confocale. Cette technique permet d’observer la morphologie des biofilms des différentes souches individuellement : la souche A de la bactérie Bacillus altitudinis présente un biofilm peu épais et formant des alvéoles, la souche B du champignon Hormoconis resinae forme un biofilm peu dense épais, et la souche C du champignon Hormoconis Resinae forme un biofilm peu épais, mais dense. Lorsque la souche A de la bactérie Bacillus altitudinis est associée avec l’une des souches de Hormoconis resinae , le biofilm obtenu présente des caractéristiques proches de celui de la bactérie seule ( cf. FIG. 2 ). Ces résultats montrent qu’en biofilm, la bactérie Bacillus altitudinis inhibe la croissance des biofilms des souches de Hormoconis resinae . (ii) Effet de différentes souches du genre Bacillus sur différentes souches de bactéries isolées de réservoirs contaminés de kérosène D’autres essais ont été réalisés en mettant en incubation les souches à deux emplacements voisins, mais distincts sur milieu gélosé. Les bactéries suivantes ont été testées : - souche D : souche de Bacillus subtilis NDmed issue d’une collection de culture, - souche A : souche de Bacillus altitudinis issue d’un prélèvement d’avion, - souche E : souche de Bacillus velezensis issue d’un prélèvement d’avion, et - souche F : souche de Bacillus velezensis QST713 commercialisée par Truffaut. Chacune des bactéries ci-dessus est donc inoculée sur des boîtes de pétri à proximité de divers champignons et bactéries isolés d’échantillons prélevés dans des réservoirs contaminés de kérosène, à savoir : B et C : souches de Hormoconis resinae , G : Penicillium chrysogenum , H : Penicillium spindosum , I : Hypocreales sp . , J : Micrococcus aloeverae , K : Staphylococcus warneri , et L : Alternaria hordeiaustralalica . Comme montré dans le tableau 2 ci-dessous, les bactéries testées montrent un effet biocide plus ou moins notable vis-à-vis des microorganismes contaminant des réservoirs de carburant. Les bactéries Bacillus velezensis semblent les plus efficaces. B C G H I J K L D ++ + + + 0 ++ 0 ++ A + 0 0 0 0 ++ 0 - E ++ + + 0 + ++ 0 ++ F ++ ++ ++ 0 ++ 0 0 ++ Tableau 2 : Caractérisation des interactions existantes entre différents Bacilli (D, A, E, F) et des microorganismes isolés de réservoirs d’avions biocontaminés (B, C, G, H, I, J, K et L) ++ : présence presque uniquement de la souche Bacillus, + : souche Bacillus majoritaire, 0 : les 2 souches interagissent, - : souche contaminant majoritaire Les résultats diffèrent des essais précédents concernant la souche A de Bacillus altitudinis : lorsque les champignons Hormoconis resinae ne sont pas inoculés au même endroit que la bactérie, ceux-ci ont le temps de se développer et de se renforcer ; ils résistent mieux à l’action fongicide de la bactérie qui ne semble donc que locale, mais suffisante pour un bio-contrôle. (iii) Effet de différentes souches du genre Bacillus sur une souche d’ H. resinae D’autres essais ont été réalisés à partir d’une culture de nuit d’une bille d’ H. resinae (A), comme décrit précédemment. Toutefois, s’agissant des souches de Bacillus testées (B ( Bacillus altitudinis ), C ( Bacillus sp . ), D ( Bacillus velezensis ) et E ( Bacillus subtilis )), une culture de nuit de chacune de ces souches a été effectuée à partir d’une colonie prélevée sur une boite de Pétri, puis mise en culture dans 3 mL de milieu composite. Chaque culture de Bacillus a été diluée seulement 100 fois, avant d’être mis en incubation à température ambiante pendant 5 heures. 5 µL des cultures ainsi obtenues ont été inoculés sur milieu gélosé pour les essais. Pour les co-cultures, 5µl de la culture de H. resinae ont été placés au centre d’un milieu gélosé. Après 5 minutes d’incubation pour absorption dans le milieu gélosé, 5 µl des cultures de Bacillus ont été inoculés soit à un emplacement voisin, mais distinct, soit au même endroit que H. resinae . La FIG. 3 montre les résultats des cultures obtenues au bout d’une semaine (A) et deux semaines (B). Chaque souche de Bacillus testée a permis d’empêcher la croissance de H. resinae dès une semaine de culture, que l’inoculation des deux souches ait été réalisée au même endroit ou à des endroits voisins. Ces résultats ont été confirmés au bout de 2 semaines de culture : seules les souches de Bacillus se sont développées. Kit pour la prévention et/ou le traitement d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant comprenant : une première composition comprenant au moins un agent de bio-contrôle, ledit agent de bio-contrôle étant un microorganisme capable d’inhiber la croissance d’au moins un microorganisme contaminant des réservoirs de carburant, et une deuxième composition comprenant au moins un agent de formulation. Procédé de prévention et/ou de traitement d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant, ledit procédé comprenant : optionnellement, nettoyer le réservoir de carburant, et introduire à l’intérieur du réservoir de carburant au moins un agent de bio-contrôle, ledit agent de bio-contrôle étant un microorganisme capable d’inhiber la croissance d’au moins un microorganisme contaminant des réservoirs de carburant. Procédé selon la revendication 2, caractérisé en ce que ledit agent de bio-contrôle est un microorganisme du genre Bacillus , de préférence sélectionné dans le groupe consistant en Bacillus subtilis , Bacillus velenzensis et Bacillus altitudinis . Procédé selon la revendication 2 ou 3, caractérisé en ce que ledit agent de bio-contrôle est apporté sous la forme d’une composition comprenant en outre au moins un agent de formulation. Utilisation d’un kit selon la revendication 1, pour la prévention et/ou le traitement d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant. Utilisation d’un microorganisme comme agent de bio-contrôle pour la prévention et/ou le traitement d’une bio-contamination dans un réservoir de carburant.