FR 3158516 A1 20250725 FR 2400621 A 20240123 TITRE : PRODUCTION DE VECTEURS TOXIQUES La présente invention concerne généralement le domaine de la médecine. Plus particulièrement, elle concerne la production de vecteurs toxiques, ces vecteurs toxiques en tant que tel et leur utilisation pour la mise en œuvre de thérapies cellulaires efficaces et sûres. (Pas de figure) PRODUCTION DE VECTEURS TOXIQUES DOMAINE DE L’INVENTION La présente invention concerne généralement le domaine de la médecine. Plus particulièrement, elle concerne la production de vecteurs toxiques, ces vecteurs toxiques en tant que tel et leur utilisation pour la mise en œuvre de thérapies cellulaires efficaces et sûres. ART ANTÉRIEUR Depuis plus de vingt-cinq ans, des vecteurs lentiviraux basés sur le génome du VIH-1 sont produits et utilisés pour le transfert de gène efficace en cellules de mammifères in vitro et in vivo . Le génome de ces vecteurs et les procédés de production ont été optimisés afin d’améliorer leur efficacité et leur sécurité dans l’optique d’une utilisation en médecine humaine. Profitant de l’essor important de la thérapie génique, les vecteurs lentiviraux sont impliqués dans de nombreux essais cliniques malgré leurs limites et les effets secondaires dus notamment à leur intégration préférentielle dans les régions transcrites du génome de la cellule génétiquement modifiée. Les vecteurs lentiviraux ont la capacité de transduire des cellules prolifératives ou quiescentes ainsi que d’intégrer un transgène dans le génome de leur hôte. Leur utilisation en ingénierie cellulaire offre ainsi des possibilités d’applications thérapeutiques très variées. L’une d’elles consiste en l’élimination de la cellule transduite, une stratégie appelée « thérapie génique suicide », envisagée pour aborder des situations médicales diverses (traitement anti-tumoral, sécurisation de cellules greffées, etc. ). Toutefois, en consultant les bases de données bibliographiques, rare sont les publications relatant l’usage de vecteurs lentiviraux pour le transfert d’un gène cytotoxique. En effet, ces applications sont confrontées à deux verrous technologiques majeurs : (1) produire des vecteurs lentiviraux véhiculant un transgène cytotoxique et (2) limiter l’expression du transgène aux cellules ciblées. Pour résoudre ces problèmes, de nombreux travaux ont été entrepris depuis plusieurs années et seules des solutions partielles ont été apportées, notamment pour tenter d’obtenir une expression tissu-spécifique du transgène. Dans ce but, au moins deux grandes stratégies sont envisagées pour restreindre, soit l’entrée du vecteur, soit l’expression du transgène, dans les seules cellules cibles. Les lentivirus entrent dans les cellules par interaction entre une glycoprotéine d’enveloppe virale et une protéine membranaire cellulaire. Ainsi, le choix parmi différentes glycoprotéines d’enveloppe permet le pseudotypage des particules afin d’exploiter la diversité des affinités entre enveloppes virales et récepteurs cellulaires pour moduler le tropisme des vecteurs lentiviraux. Cependant, les méthodes actuelles d’ingénierie des enveloppes lentivirales ne permettent pas une restriction suffisante du tropisme des particules de vecteurs pour envisager un transfert de gène ciblé, in vivo , par cette seule voie (Li, M., Husic, N., Lin, Y. & Snider, B. J. J. Vis. Exp . JoVE e4031 (2012) ; Ebrahimabadi, S., Shahbazi, M., Akbari, M., Golalipour, M. & Farazmandfar, T. J. Gene Med. 21 , e3095 (2019) ; Gutierrez-Guerrero, A., Cosset, F.-L. & Verhoeyen, E. Viruses 12 , 1016 (2020)). Aussi une restriction transcriptionnelle est-elle le plus souvent envisagée pour assurer l’expression tissu-spécifique du transgène. Ce contrôle transcriptionnel de l’expression du transgène, peut être obtenu par le clonage d’un promoteur tissu-spécifique dans un vecteur d’expression ou en ciblant l’intégration du transgène sous un promoteur cellulaire spécifiquement actif dans les cellules cibles. L’intégration ciblée du transgène dans le génome de la cellule cible, est principalement développée ex vivo par le biais de la transfection de complexes nucléoprotéiques (CRISPR/Cas9 et ARN guide) et d’un ADN donneur d’intérêt. Pour le transfert de gènes suicides, la majorité des gènes cytotoxiques utilisés aujourd’hui, codent une protéine dont la toxicité est conditionnée à la présence d’une molécule effectrice (Ganciclovir pour la thymidine kinase du Virus de l’Herpès Simplex, 5-fluorocytosine pour la cytosine déaminase, dimérisateur chimique pour la Caspase-9 inductible, etc. ). Ces systèmes enzyme/pro-drogue permettent de produire des vecteurs lentiviraux véhiculant ces gènes sans toxicité pour les cellules productrices, et de contrôler le déclenchement de la mort cellulaire. Cependant, certaines de ces enzymes, d’origine virale, bactérienne ou contenant des épitopes chimériques, sont potentiellement immunogènes (Berger, C. Blood 107 , 2294–2302 (2006)), et la pro-drogue n’est pas toujours approuvée pour une utilisation clinique. Par ailleurs, l’utilisation de transgènes codant une protéine avec une toxicité directe est également explorée (toxine diphtérique, entérotoxines, caspase activée, etc. ) mais la transgénèse passe alors majoritairement par des vecteurs non lentiviraux (Pahle, J. et al. Cancers 13 , 4393 (2021) ; Chang, A., Ling, J., Ye, H., Zhao, H. & Zhuo, X. Bioengineered 12 , 6572–6578 (2021) ; Abbaspour, A., Esmaeilzadeh, A. & Sharafi, A. 3 Biotech 11 , 140 (2021)). En effet, la production de vecteurs lentiviraux exprimant ces transgènes pose un problème technique du fait de leur toxicité sur les cellules où sont produit les vecteurs, ce qui réduit drastiquement les titres de particules recombinantes. La procédure de production de vecteurs lentiviraux repose en effet sur la co-transfection en cellules HEK 293T de plasmides exprimant : (1) le génome lentiviral véhiculant le transgène, (2) une protéine d’enveloppe et (3) les protéines de structures et les enzymes du VIH-1 nécessaires à la production de particules lentivirales recombinantes non réplicatives (gag, pol et rev). Dans les vecteurs lentiviraux, le transgène est classiquement cloné sous le contrôle d’un promoteur interne. Aussi, au cours du processus de production, le transgène est fortement exprimé et ce, malgré les modifications des séquences lentivirales et l’utilisation de promoteurs internes inductibles ou tissus spécifiques (Pourzadegan, F. et al. Cancer Gene Ther . 23 , 7–12 (2016) ; Brandtner, E. M. et al. J. Gene Med. 10 , 113–122 (2008)). En effet, les plasmides utilisés pour la production de vecteurs lentiviraux recombinants ont une structure circulaire et contiennent au moins un promoteur fort, contrôlant la transcription du génome vecteur qui sera encapsidé dans les particules VIH recombinantes. De plus, il a été récemment montré que les plasmides contiennent également d’autres promoteurs, cryptiques, qui peuvent être à l’origine de départs de transcription sur l’un ou l’autre des deux brins d’ADN du plasmide (Muerdter, F. et al. Nat. Methods 15 , 141–149 (2018) ; Lemp, N. A., Hiraoka, K., Kasahara, N. & Logg, C. R. Nucleic Acids Res. 40 , 7280–7290 (2012)). Ainsi, dans le cas des cellules d’empaquetage, l’expression basale d’un transgène cytotoxique réduit fortement le titre des vecteurs obtenus (Maunder, H. E. et al. Nat. Commun. 8 , 14834 (2017)). Dans certains cas, l’utilisation d’une lignée de production résistante au gène toxique est possible (Lange, M. J., Lyddon, T. D. & Johnson, M. C. Sci . Rep. 9 , 8985 (2019) ; Li, Y. et al. Cancer Res . 2002 May 1;62(9):2576-82), mais cela ne constitue pas une solution universelle. BREF APERÇU DE L’INVENTION Face à ce défi majeur de pouvoir promettre une thérapie cellulaire in vivo sûre et efficace, les inventeurs ont construit un génome vecteur innovant permettant de réduire significativement l’expression du transgène dans les cellules d’empaquetage et ainsi, de permettre produire des titres élevés de vecteurs lentiviraux véhiculant un transgène directement cytotoxique. Ainsi, un premier but de l’invention est de mettre à disposition du corps médical ce génome vecteur ainsi que le plasmide le comprenant pour produire un vecteur lentiviral. De facto , un second but de l’invention correspond à proposer l’utilisation du génome vecteur de l’invention et du plasmide le comprenant pour mettre en œuvre une méthode de production du vecteur lentiviral de l’invention. Un autre but de l’invention est de mettre à disposition l’utilisation dudit vecteur lentiviral pour transduire une cellule eucaryote, laquelle est destinée à être utilisée dans une thérapie cellulaire in vivo sûre et efficace. Aussi, un autre but de l’invention est de proposer une cellule eucaryote transduite et son utilisation en thérapie cellulaire. DESCRIPTION DÉTAILLÉE Dans son aspect le plus général, l’invention a pour objet un génome vecteur comprenant un génome lentiviral dans lequel a été introduit une cassette d’expression comprenant un promoteur inductible en amont d’un transgène toxique ou suicide, ledit promoteur inductible étant choisi parmi : le 2xAARE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 1 ; le 2xAARE TK dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 2 ; le 4xSRE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 3 ; le 9xHRE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 ; le GRP78 YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 5 ; le promoteur du miR223 dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 6 ; et le miniCHAC1 YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 7, et l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription de ladite cassette d’expression étant inversée par rapport à l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription dudit génome lentiviral. De manière inattendue, la combinaison d’un promoteur inductible, notamment exemplifié ci-après par le promoteur 2xAARE YB_TATA (SEQ ID NO : 1), avec l’inversion de la cassette d’expression du transgène, s’est révélée être un système efficace permettant de produire à haut rendement des vecteurs lentiviraux véhiculant un transgène cytotoxique (toxique ou suicide) quel qu’il soit dans des cellules sauvages, ce qui jusqu’alors n’était pas possible. D’ailleurs et en plus de réduire l’expression du transgène cytotoxique (toxique ou suicide), l’utilisation d’un promoteur inductible en amont de celui-ci a l’avantage de prévenir la production d’ARN complémentaires qui causeraient la destruction des transcrits du génome lentiviral par ARN interférence. Par « génome vecteur », on entend une séquence d’acides nucléiques comprenant à la fois : l’acide nucléique comprenant l’information génétique (= génome lentiviral) nécessaire à la production d’un vecteur lentiviral également appelé particule (lenti-)virale, ledit vecteur lentiviral ou ladite particule (lenti-)virale comprenant ledit génome vecteur encapsidé et enveloppé, lequel est efficace pour s’introduire dans la cellule et est non réplicatif ; et l’acide nucléique comprenant l’information génétique d’une cassette d’expression comprenant un promoteur inductible en amont d’un transgène toxique ou suicide, l’acide nucléique codant ledit transgène toxique ou suicide pouvant comprendre à son extrémité 3’ une séquence d’acides nucléiques permettant la transcription d’une queue polyA, ladite cassette d’expression ayant été introduite dans ledit génome lentiviral de telle sorte que sa transcription soit inversée par rapport à celle dudit génome lentiviral. Par « génome lentiviral », on entend comme mentionné ci-dessus un acide nucléique portant l’information génétique nécessaire à la production d’un vecteur lentiviral également appelé particule (lenti-)virale, ledit vecteur lentiviral ou ladite particule (lenti-)virale comprenant ledit génome vecteur encapsidé et enveloppé. Ce vecteur lentiviral est par ailleurs efficace pour s’introduire dans la cellule, il est non réplicatif, et il conduit à l’intégration (ciblée ou non) dudit génome vecteur dans le génome d’une cellule infectée. Dans certains cas, la particule lentivirale contiendra une intégrase mutante (D64V) ce qui aboutira à un provirus (ADN vecteur post reverse transcription) non-intégratif dans le génome de la cellule transduite. En conséquence, le génome de ce vecteur sera sous forme d’épisome dans le noyau cellulaire. Classiquement, la structure de ce génome lentiviral après reverse transcription comprend : Les séquences cis du génome lentiviral HIV, soit deux Long Terminal Repeats (LTR) flanquant les extrémités du génome vecteur avec les régions U3, R et U5 mais ou la région U3 est mutante (ΔU3), dépourvue de sa séquence enhancer et donc sans activité promoteur. Les vecteurs lentiviraux avec ΔU3 dans les LTR sont appelés « self- inactivating » puisqu’ils ne peuvent être transcrits par un virus HIV sauvage. Le LTR en 5’ du génome est suivi d’une séquence « psi » pour l’encapsidation du génome ARN du vecteur, d’une séquence Rev Responsive element (RRE) pour l’export du génome vecteur ARN, des séquences, Central Polypurine Tract « cppt » et Central Termination Sequence « cts », pour la formation du triplex ADN central lors de la reverse transcription et d’un LTR 3’. Outre les séquences cis du virus, ces vecteurs contiennent une cassette d’expression, placée entre les deux LTR. Par « cassette d’expression », on entend comme mentionné ci-dessus un acide nucléique comprenant un promoteur inductible en amont d’un transgène toxique ou suicide, l’acide nucléique codant ledit transgène toxique ou suicide pouvant comprendre à son extrémité 3’ une séquence d’acides nucléiques permettant la transcription d’une queue polyA, ladite cassette d’expression ayant été introduite dans ledit génome lentiviral de telle sorte que sa transcription soit inversée par rapport à celle dudit génome lentiviral. Par « promoteur inductible », on entend un acide nucléique situé en amont d’un gène (ou transgène) et qui en contrôle son expression, notamment en régulant sa transcription. Dans l’invention, ce promoteur est qualifié d’inductible parce que l’expression du gène (ou transgène) qu’il contrôle n’est pas constitutive et est uniquement induite après son activation en réponse au bon stimulus (petite molécule, hormone, etc. ) ou au bon environnement cellulaire. Ainsi, dans l’expression « promoteur inductible » sont également inclus les promoteurs tissus-spécifiques. Dans l’invention, ces derniers sont le 2xAARE YB_TATA , le 2xAARE TK , le 4xSRE YB_TATA , le 9xHRE YB_TATA , le GRP78 YB_TATA , le miniCHAC1 YB_TATA ou le promoteur du miR223. Les promoteurs 2xAARE YB_TATA , 2xAARE TK et miniCHAC1 YB_TATA sont activés par un inducteur induisant l’expression du facteur de transcription ATF4 ; le promoteur GRP78 YB_TATA est activé par un inducteur induisant le facteur de transcription ATF6 ; le promoteur 4xSRE YB_TATA est induit par les hormones stéroïdiennes et plus précisément par la dexaméthasone ; le promoteur 9xHRE YB_TATA est induit par une hypoxie et le promoteur du miR223 est spécifiquement induit dans les cellules myéloïdes et est un exemple de promoteur tissus spécifique non exprimé en cellules HEK-293T. De manière intéressante, les promoteurs inductibles mentionnés précédemment sont tributaires de l’expression de facteur de transcriptions cellulaires peu ou non exprimés en condition de production de vecteur dans les cellules HEK 293T. Comme mentionné ci-dessus, l’acide nucléique de ces derniers a une séquence ayant respectivement au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NOs : 1 à 5, 7 et 6. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est le 2xAARE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 1. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est le 2xAARE TK dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 2. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est le 4xSRE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 3. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est le 9xHRE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est le GRP78 YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 5. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est le promoteur du miR223 dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 6. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est le miniCHAC1 YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 7. Par « % d’identité », on entend le pourcentage déterminé par comparaison directe de deux séquences d’oligonucléotidiques (séquence d’acides nucléiques), en déterminant le nombre de nucléotides identiques entre les deux séquences, puis en le divisant par le nombre de nucléotides de la séquence la plus longue des deux, et en multipliant le résultat par 100. Par « ayant au moins 80% d’identité » on entend donc que le pourcentage d’identité susmentionné est d’au moins 80%, d’au moins 81%, d’au moins 82%, d’au moins 83%, d’au moins 84%, d’au moins 85%, d’au moins 86%, d’au moins 87%, d’au moins 88%, d’au moins 89%, d’au moins 90%, d’au moins 91%, d’au moins 92%, d’au moins 93%, d’au moins 94%, d’au moins 95%, d’au moins 96%, d’au moins 97%, d’au moins 98%, d’au moins 99%, ou est de 100%. A cet égard, il convient de noter que cette définition s’applique à tous les modes de réalisation de l’invention y compris lorsqu’il s’agit d’une comparaison directe de deux séquences de polypeptides (séquence d’acides aminés). Par ailleurs, il est entendu que les séquences ayant au moins 80% d’identité avec une séquence de référence conservent les mêmes propriétés et les mêmes fonctions, voire celles-ci sont améliorées. Par « transgène toxique ou suicide », on entend un acide nucléique situé en aval dudit promoteur inductible ou tissus-spécifique et qui code pour une protéine toxique, cytotoxique ou suicide dans la cellule génétiquement modifiée. C’est-à-dire qu’après l’activation dudit promoteur inductible ou tissus-spécifique contrôlant l’expression dudit transgène toxique ou suicide et ce, uniquement en réponse au bon stimulus ou au bon environnement cellulaire, le produit ( i.e. la protéine toxique ou suicide) issue de la transcription et de la traduction de cet acide nucléique provoque (conduit à) la mort cellulaire de la cellule l’exprimant. Dans l’invention, ces derniers peuvent être choisi parmi les gènes codant : la Caspase-9 inductible (iC9), Bax (S184 del), Noxa (la protéine sauvage ou un de ses mutants, notamment le mutant S13A), la Gasdermine B (N-ter), la caspase-3 constitutivement active (V266E), un canal ionique M2 (H37A) du virus influenza, la sous-unité A de la toxine diphtérique (DTA) et un mutant atténué aDTA (G128D), une streptolysine O (notamment celle de S. pyogenes ) et une entérotoxine (notamment celle de C. perfringens ). Il s’agit là de protéines toxiques ou suicides non sécrétées, i.e. dont l’expression après activation dudit promoteur inductible ou tissu spécifique en amont de l’acide nucléique les codant ne se retrouve pas dans le milieu extracellulaire et n’entraîne donc que la mort cellulaire de la cellule les exprimant. Par « l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription de ladite cassette d’expression étant inversée par rapport à l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription dudit génome lentiviral », on entend, comme illustré sur la FIG. 1 , que la transcription de ladite cassette d’expression est inversée par rapport à celle dudit génome lentiviral. Avec cette construction innovante, les inventeurs ont ainsi développé un système inédit et efficace de production à haut titre de vecteurs lentiviraux codant des transgènes toxiques ou suicides. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est choisi parmi : le 2xAARE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 1 ; le 2xAARE TK dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 2 ; le 4xSRE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 3 ; le 9xHRE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 ; le GRP78 YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 5 ; le promoteur du miR223 dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 6 ; et le miniCHAC1 YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 7. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est le 2xAARE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 1. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est le 2xAARE TK dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 2. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est le 4xSRE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 3. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est le 9xHRE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est le GRP78 YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 5. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est le promoteur du miR223 dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 6. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est le miniCHAC1 YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 7. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est choisi parmi : une protéine Caspase-9 inductible (iC9), une protéine Bax (S184 del), une protéine Noxa, une protéine Gasdermine B (N-ter), une protéine caspase-3 constitutivement active (V266E), un canal ionique M2 (H37A) du virus influenza, une sous-unité A de la toxine diphtérique (DTA) et un mutant atténué aDTA (G128D), une streptolysine O (notamment celle de S. pyogenes ) et une entérotoxine (notamment celle de C. perfringens ). En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est choisi parmi : une protéine Caspase-9 inductible (iC9), une protéine Bax (S184 del), une protéine Noxa, une protéine Gasdermine B (N-ter), une protéine caspase-3 constitutivement active (V266E), un canal ionique M2 (H37A) du virus influenza, une sous-unité A de la toxine diphtérique (DTA) et un mutant atténué aDTA (G128D). Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est choisi parmi : une protéine Caspase-9 inductible (iC9) dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 8 ou dont l’acide nucléique code une protéine Caspase-9 inductible (iC9) dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 9 ; une protéine Bax (S184 del) dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 10 ou dont l’acide nucléique code une protéine Bax (S184 del) dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 11 ; un canal ionique M2 (H37A) du virus influenza dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 12 ou dont l’acide nucléique code un canal ionique M2 (H37A) du virus influenza dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 13 ; une protéine caspase-3 constitutivement active (V266E) dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 14 ou dont l’acide nucléique code une protéine caspase-3 constitutivement active (V266E) dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 15 ; une sous-unité A de la toxine diphtérique (DTA) dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 16 ou dont l’acide nucléique code une sous-unité A de la toxine diphtérique (DTA) dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 17, et un mutant atténué aDTA (G128D) dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 18 ou dont l’acide nucléique code un mutant atténué aDTA (G128D) dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 19 ; une protéine Gasdermine B (N-ter) dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 20 ou dont l’acide nucléique code une protéine Gasdermine B (N-ter) dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 21 ; une protéine Noxa dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 22 ou dont l’acide nucléique code une protéine Noxa dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 23 ; une streptolysine O dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 334 ou dont l’acide nucléique code une streptolysine O dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 335 ; et une entérotoxine dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 336 ou dont l’acide nucléique code une entérotoxine dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 337. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une protéine Caspase-9 inductible (iC9) dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 8 ou dont l’acide nucléique code une Caspase-9 inductible (iC9) dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 9. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une protéine Bax (S184 del) dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 10 ou dont l’acide nucléique code une protéine Bax (S184 del) dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 11. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est un canal ionique M2 (H37A) du virus influenza dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 12 ou dont l’acide nucléique code un canal ionique M2 (H37A) du virus influenza dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 13. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une protéine caspase-3 constitutivement active (V266E) dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 14 ou dont l’acide nucléique code une protéine caspase-3 constitutivement active (V266E) dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 15. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une sous-unité A de la toxine diphtérique (DTA) dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 16 ou dont l’acide nucléique code une sous-unité A de la toxine diphtérique (DTA) dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 17 ; ou un mutant atténué aDTA (G128D) dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 18 ou dont l’acide nucléique code un mutant atténué aDTA (G128D) dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 19. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une protéine Gasdermine B (N-ter) dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 20 ou dont l’acide nucléique code une protéine Gasdermine B (N-ter) dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 21. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une protéine Noxa dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 22 ou dont l’acide nucléique code une protéine Noxa dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 23. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une streptolysine O dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 334 ou dont l’acide nucléique code une streptolysine O dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 335. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une entérotoxine dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 336 ou dont l’acide nucléique code une entérotoxine dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 337. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est choisi parmi : une protéine Caspase-9 inductible (iC9) dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 8 ou dont l’acide nucléique code une Caspase-9 inductible (iC9) dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 9 ; une protéine Bax (S184 del) dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 10 ou dont l’acide nucléique code une protéine Bax (S184 del) dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 11 ; un canal ionique M2 (H37A) du virus influenza dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 12 ou dont l’acide nucléique code un canal ionique M2 (H37A) du virus influenza dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 13 ; une protéine caspase-3 constitutivement active (V266E) dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 14 ou dont l’acide nucléique code une protéine caspase-3 constitutivement active (V266E) dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 15 ; une sous-unité A de la toxine diphtérique (DTA) dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 16 ou dont l’acide nucléique code une sous-unité A de la toxine diphtérique (DTA) dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 17, et un mutant atténué aDTA (G128D) dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 18 ou dont l’acide nucléique code un mutant atténué aDTA (G128D) dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 19 ; une protéine Gasdermine B (N-ter) dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 20 ou dont l’acide nucléique code une protéine Gasdermine B (N-ter) dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 21 ; une protéine Noxa dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 22 ou dont l’acide nucléique code une protéine Noxa dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 23 ; une streptolysine O dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 334 ou dont l’acide nucléique code une streptolysine O dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 335 ; et une entérotoxine dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 336 ou dont l’acide nucléique code une entérotoxine dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 337. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une protéine Caspase-9 inductible (iC9) dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 8 ou dont l’acide nucléique code une Caspase-9 inductible (iC9) dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 9. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une protéine Bax (S184 del) dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 10 ou dont l’acide nucléique code une protéine Bax (S184 del) dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 11. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est un canal ionique M2 (H37A) du virus influenza dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 12 ou dont l’acide nucléique code un canal ionique M2 (H37A) du virus influenza dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 13. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une protéine caspase-3 constitutivement active (V266E) dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 14 ou dont l’acide nucléique code une protéine caspase-3 constitutivement active (V266E) dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 15. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une sous-unité A de la toxine diphtérique (DTA) dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 16 ou dont l’acide nucléique code une sous-unité A de la toxine diphtérique (DTA) dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 17 ; ou un mutant atténué aDTA (G128D) dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 18 ou dont l’acide nucléique code un mutant atténué aDTA (G128D) dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 19. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une protéine Gasdermine B (N-ter) dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 20 ou dont l’acide nucléique code une protéine Gasdermine B (N-ter) dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 21. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une protéine Noxa dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 22 ou dont l’acide nucléique code une protéine Noxa dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 23. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une streptolysine O dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 334 ou dont l’acide nucléique code une streptolysine O dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 335. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une entérotoxine dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 336 ou dont l’acide nucléique code une entérotoxine dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 337. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel l’acide nucléique codant pour ledit transgène toxique ou suicide comprend à son extrémité 3’ une séquence polyA ( e.g. SEQ ID NO : 24). Dans la mesure où l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription de ladite cassette d’expression est inversée par rapport à l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription dudit génome lentiviral, l’ajout de cette séquence polyA ( e.g. SEQ ID NO : 24) à l’extrémité 3’ de l’acide nucléique codant pour ledit transgène toxique ou suicide favorise, après (et seulement après) induction dudit promoteur inductible, la transcription et la stabilité d’un ARNm, lequel autorise la traduction dudit transgène toxique ou suicide. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est choisi parmi : le 2xAARE YB_TATA , le 2xAARE TK , le 4xSRE YB_TATA , le 9xHRE YB_TATA , le GRP78 YB_TATA , le promoteur du miR223 et le miniCHAC1 YB_TATA ; et dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une protéine Caspase-9 inductible (iC9). Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est choisi parmi : le 2xAARE YB_TATA , le 2xAARE TK , le 4xSRE YB_TATA , le 9xHRE YB_TATA , le GRP78 YB_TATA , le promoteur du miR223 et le miniCHAC1 YB_TATA ; et dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une protéine Bax (S184 del). Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est choisi parmi : le 2xAARE YB_TATA , le 2xAARE TK , le 4xSRE YB_TATA , le 9xHRE YB_TATA , le GRP78 YB_TATA , le promoteur du miR223 et le miniCHAC1 YB_TATA ; et dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est un canal ionique M2 (H37A) du virus influenza. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est choisi parmi : le 2xAARE YB_TATA , le 2xAARE TK , le 4xSRE YB_TATA , le 9xHRE YB_TATA , le GRP78 YB_TATA , le promoteur du miR223 et le miniCHAC1 YB_TATA ; et dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une protéine caspase-3 constitutivement active (V266E). Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est choisi parmi : le 2xAARE YB_TATA , le 2xAARE TK , le 4xSRE YB_TATA , le 9xHRE YB_TATA , le GRP78 YB_TATA , le promoteur du miR223 et le miniCHAC1 YB_TATA ; et dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une sous-unité A de la toxine diphtérique (DTA) ou un mutant atténué aDTA (G128D). Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est choisi parmi : le 2xAARE YB_TATA , le 2xAARE TK , le 4xSRE YB_TATA , le 9xHRE YB_TATA , le GRP78 YB_TATA , le promoteur du miR223 et le miniCHAC1 YB_TATA ; et dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une protéine Gasdermine B (N-ter). Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est choisi parmi : le 2xAARE YB_TATA , le 2xAARE TK , le 4xSRE YB_TATA , le 9xHRE YB_TATA , le GRP78 YB_TATA , le promoteur du miR223 et le miniCHAC1 YB_TATA ; et dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une protéine Noxa (la protéine sauvage ou un de ses mutants, notamment le mutant S13A). Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est choisi parmi : le 2xAARE YB_TATA , le 2xAARE TK , le 4xSRE YB_TATA , le 9xHRE YB_TATA , le GRP78 YB_TATA , le promoteur du miR223 et le miniCHAC1 YB_TATA ; et dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une streptolysine O (notamment celle de S. pyogenes ). Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est choisi parmi : le 2xAARE YB_TATA , le 2xAARE TK , le 4xSRE YB_TATA , le 9xHRE YB_TATA , le GRP78 YB_TATA , le promoteur du miR223 et le miniCHAC1 YB_TATA ; et dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est une entérotoxine (notamment celle de C. perfringens ). Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est le 2xAARE YB_TATA ; et dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est choisi parmi : une protéine Caspase-9 inductible (iC9), une protéine Bax (S184 del), une protéine Noxa (la protéine sauvage ou un de ses mutants, notamment le mutant S13A), une protéine Gasdermine B (N-ter), une protéine caspase-3 constitutivement active (V266E), un canal ionique M2 (H37A) du virus influenza, une sous-unité A de la toxine diphtérique (DTA) et un mutant atténué aDTA (G128D), une streptolysine O (notamment celle de S. pyogenes ) et une entérotoxine (notamment celle de C. perfringens ). Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est le 2xAARE TK ; et dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est choisi parmi : une protéine Caspase-9 inductible (iC9), une protéine Bax (S184 del), une protéine Noxa (la protéine sauvage ou un de ses mutants, notamment le mutant S13A), une protéine Gasdermine B (N-ter), une protéine caspase-3 constitutivement active (V266E), un canal ionique M2 (H37A) du virus influenza, une sous-unité A de la toxine diphtérique (DTA) et un mutant atténué aDTA (G128D), une streptolysine O (notamment celle de S. pyogenes ) et une entérotoxine (notamment celle de C. perfringens ). Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est le 4xSRE YB_TATA ; et dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est choisi parmi : une protéine Caspase-9 inductible (iC9), une protéine Bax (S184 del), une protéine Noxa (la protéine sauvage ou un de ses mutants, notamment le mutant S13A), une protéine Gasdermine B (N-ter), une protéine caspase-3 constitutivement active (V266E), un canal ionique M2 (H37A) du virus influenza, une sous-unité A de la toxine diphtérique (DTA) et un mutant atténué aDTA (G128D), une streptolysine O (notamment celle de S. pyogenes ) et une entérotoxine (notamment celle de C. perfringens ). Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est le 9xHRE YB_TATA ; et dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est choisi parmi : une protéine Caspase-9 inductible (iC9), une protéine Bax (S184 del), une protéine Noxa (la protéine sauvage ou un de ses mutants, notamment le mutant S13A), une protéine Gasdermine B (N-ter), une protéine caspase-3 constitutivement active (V266E), un canal ionique M2 (H37A) du virus influenza, une sous-unité A de la toxine diphtérique (DTA) et un mutant atténué aDTA (G128D), une streptolysine O (notamment celle de S. pyogenes ) et une entérotoxine (notamment celle de C. perfringens ). Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est le GRP78 YB_TATA ; et dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est choisi parmi : une protéine Caspase-9 inductible (iC9), une protéine Bax (S184 del), une protéine Noxa (la protéine sauvage ou un de ses mutants, notamment le mutant S13A), une protéine Gasdermine B (N-ter), une protéine caspase-3 constitutivement active (V266E), un canal ionique M2 (H37A) du virus influenza, une sous-unité A de la toxine diphtérique (DTA) et un mutant atténué aDTA (G128D), une streptolysine O (notamment celle de S. pyogenes ) et une entérotoxine (notamment celle de C. perfringens ). Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est le promoteur du miR223 ; et dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est choisi parmi : une protéine Caspase-9 inductible (iC9), une protéine Bax (S184 del), une protéine Noxa (la protéine sauvage ou un de ses mutants, notamment le mutant S13A), une protéine Gasdermine B (N-ter), une protéine caspase-3 constitutivement active (V266E), un canal ionique M2 (H37A) du virus influenza, une sous-unité A de la toxine diphtérique (DTA) et un mutant atténué aDTA (G128D), une streptolysine O (notamment celle de S. pyogenes ) et une entérotoxine (notamment celle de C. perfringens ). Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur inductible est le miniCHAC1 YB_TATA ; et dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est choisi parmi : une protéine Caspase-9 inductible (iC9), une protéine Bax (S184 del), une protéine Noxa (la protéine sauvage ou un de ses mutants, notamment le mutant S13A), une protéine Gasdermine B (N-ter), une protéine caspase-3 constitutivement active (V266E), un canal ionique M2 (H37A) du virus influenza, une sous-unité A de la toxine diphtérique (DTA) et un mutant atténué aDTA (G128D), une streptolysine O (notamment celle de S. pyogenes ) et une entérotoxine (notamment celle de C. perfringens ). Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 25 à 80. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 25 à 80. En particulier, l’invention a également pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est la séquence SEQ ID NO : 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39, 40, 41, 42, 43, 44, 45, 46, 47, 48, 49, 50, 51, 52, 53, 54, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63, 64, 65, 66, 67, 68, 69, 70, 71, 72, 73, 74, 75, 76, 77, 78, 79 ou 80 (voir Tableau 1). CASSETTE D’EXPRESSION SEQ ID NO : 2xAARE(YB_TATA)-iC9-pA 25 2xAARE(YB_TATA)-Bax-pA 26 2xAARE(YB_TATA)-M2-pA 27 2xAARE(YB_TATA)-Casp3-pA 28 2xAARE(YB_TATA)-DTA-pA 29 2xAARE(YB_TATA)-aDTA-pA 30 2xAARE(YB_TATA)-GasdB-pA 31 2xAARE(YB_TATA)-Noxa-pA 32 2xAARE(TK)-iC9-pA 33 2xAARE(TK)-Bax-pA 34 2xAARE(TK)-M2-pA 35 2xAARE(TK)-Casp3-pA 36 2xAARE(TK)-DTA-pA 37 2xAARE(TK)-aDTA-pA 38 2xAARE(TK)-GasdB-pA 39 2xAARE(TK)-Noxa-pA 40 4xSRE(YB_TATA)-iC9-pA 41 4xSRE(YB_TATA)-Bax-pA 42 4xSRE(YB_TATA)-M2-pA 43 4xSRE(YB_TATA)-Casp3-pA 44 4xSRE(YB_TATA)-DTA-pA 45 4xSRE(YB_TATA)-aDTA-pA 46 4xSRE(YB_TATA)-GasdB-pA 47 4xSRE(YB_TATA)-Noxa-pA 48 9xHRE(YB_TATA)-iC9-pA 49 9xHRE(YB_TATA)-Bax-pA 50 9xHRE(YB_TATA)-M2-pA 51 9xHRE(YB_TATA)-Casp3-pA 52 9xHRE(YB_TATA)-DTA-pA 53 9xHRE(YB_TATA)-aDTA-pA 54 9xHRE(YB_TATA)-GasdB-pA 55 9xHRE(YB_TATA)-Noxa-pA 56 GRP78(YB_TATA)-iC9-pA 57 GRP78(YB_TATA)-Bax-pA 58 GRP78(YB_TATA)-M2-pA 59 GRP78(YB_TATA)-Casp3-pA 60 GRP78(YB_TATA)-DTA-pA 61 GRP78(YB_TATA)-aDTA-pA 62 GRP78(YB_TATA)-GasdB-pA 63 GRP78(YB_TATA)-Noxa-pA 64 miR223p-iC9-pA 65 miR223p-Bax-pA 66 miR223p-M2-pA 67 miR223p-Casp3-pA 68 miR223p-DTA-pA 69 miR223p-aDTA-pA 70 miR223p-GasdB-pA 71 miR223p-Noxa-pA 72 miniCHAC1(YB_TATA)-iC9-pA 73 miniCHAC1(YB_TATA)-Bax-pA 74 miniCHAC1(YB_TATA)-M2-pA 75 miniCHAC1(YB_TATA)-Casp3-pA 76 miniCHAC1(YB_TATA)-DTA-pA 77 miniCHAC1(YB_TATA)-aDTA-pA 78 miniCHAC1(YB_TATA)-GasdB-pA 79 miniCHAC1(YB_TATA)-Noxa-pA 80 Tableau 1. Liste des cassettes d’expression Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 25 à 32. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 25 à 32. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 33 à 40. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 33 à 40. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 41 à 48. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 41 à 48. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 49 à 56. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 49 à 56. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 57 à 64. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 57 à 64. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 65 à 72. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 65 à 72. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 73 à 80. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 73 à 80. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 25, 33, 41, 49, 57, 65 et 73. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 25, 33, 41, 49, 57, 65 et 73. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 26, 34, 42, 50, 58, 66 et 74. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 26, 34, 42, 50, 58, 66 et 74. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 27, 35, 43, 51, 59, 67 et 75. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 27, 35, 43, 51, 59, 67 et 75. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 28, 36, 44, 52, 60, 68 et 76. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 28, 36, 44, 52, 60, 68 et 76. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 29, 37, 45, 53, 61, 69 et 77. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 29, 37, 45, 53, 61, 69 et 77. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 30, 38, 46, 54, 62, 70 et 78. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 30, 38, 46, 54, 62, 70 et 78. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 31, 39, 47, 55, 63, 71 et 79. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 31, 39, 47, 55, 63, 71 et 79. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 32, 40, 48, 56, 64, 72 et 80. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 32, 40, 48, 56, 64, 72 et 80. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome lentiviral dans lequel a été introduit ladite cassette d’expression est un Self- inactivating Lentivirus (SIN) ou un Respiratory syncytial virus (RSV). Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome lentiviral dans lequel a été introduit ladite cassette d’expression est un Self- inactivating Lentivirus (SIN). En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome lentiviral dans lequel a été introduit ladite cassette d’expression est un Self- inactivating Lentivirus (SIN) dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 81. En particulier, l’invention a également pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome lentiviral dans lequel a été introduit ladite cassette d’expression est un Self- inactivating Lentivirus (SIN) dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 81. A noter que l’insertion de ladite cassette d’expression dans ledit Self- inactivating Lentivirus (SIN) de séquence SEQ ID NO : 81 peut être ou est réalisée au niveau des nucléotides 2 229 et 2 230 de cette SEQ ID NO : 81. C’est-à-dire que ladite cassette d’expression se situe dans ce cas entre les séquences SEQ ID NOs : 82 et 83. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome lentiviral dans lequel a été introduit ladite cassette d’expression est un Respiratory syncytial virus (RSV). En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome lentiviral dans lequel a été introduit ladite cassette d’expression est un Respiratory syncytial virus (RSV) dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 84. En particulier, l’invention a également pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome lentiviral dans lequel a été introduit ladite cassette d’expression est un Respiratory syncytial virus (RSV) dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 84. A noter que l’insertion de ladite cassette d’expression dans ledit Respiratory syncytial virus (RSV) de séquence SEQ ID NO : 84 peut être ou est réalisée au niveau des nucléotides 1 737 et 1 738 de cette SEQ ID NO : 84. C’est-à-dire que ladite cassette d’expression se situe dans ce cas entre les séquences SEQ ID NOs : 85 et 86. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome lentiviral dans lequel a été introduite ladite cassette d’expression est : un Self- inactivating Lentivirus (SIN) dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 81 ; ou un Respiratory syncytial virus (RSV) dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 84 ; et dans lequel ladite cassette d’expression comprend : un promoteur inductible choisi parmi : le 2xAARE YB_TATA , le 2xAARE TK , le 4xSRE YB_TATA , le 9xHRE YB_TATA , le GRP78 YB_TATA , le promoteur du miR223 et le miniCHAC1 YB_TATA ; et un transgène toxique ou suicide choisi parmi : une protéine Caspase-9 inductible (iC9), une protéine Bax (S184 del), une protéine Noxa (la protéine sauvage ou un de ses mutants, notamment le mutant S13A), une protéine Gasdermine B (N-ter), une protéine caspase-3 constitutivement active (V266E), un canal ionique M2 (H37A) du virus influenza, une sous-unité A de la toxine diphtérique (DTA) et un mutant atténué aDTA (G128D), la streptolysine O (notamment celle de S. pyogenes ) et une entérotoxine (notamment celle de C. perfringens ). Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 87 à 198. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 87 à 198. En particulier, l’invention a également pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est la séquence SEQ ID NO : 87, 88, 89, 90, 91, 92, 93, 94, 95, 96, 97, 98, 99, 100, 101, 102, 103, 104, 105, 106, 107, 108, 109, 110, 111, 112, 113, 114, 115, 116, 117, 118, 119, 120, 121, 122, 123, 124, 125, 126, 127, 128, 129, 130, 131, 132, 133, 134, 135, 136, 137, 138, 139, 140, 141, 142, 143, 144, 145, 146, 147, 148, 149, 150, 151, 152, 153, 154, 155, 156, 157, 158, 159, 160, 161, 162, 163, 164, 165, 166, 167, 168, 169, 170, 171, 172, 173, 174, 175, 176, 177, 178, 179, 180, 181, 182, 183, 184, 185, 186, 187, 188, 189, 190, 191, 192, 193, 194, 195, 196, 197 ou 198 (voir Tableau 2). GENOME VECTEUR SEQ ID NO : GENOME VECTEUR SEQ ID NO : LVi(SIN) 2xAARE(YB_TATA)-iC9-pA 87 LVi(RSV) 2xAARE(YB_TATA)-iC9-pA 143 LVi(SIN) 2xAARE(YB_TATA)-Bax-pA 88 LVi(RSV) 2xAARE(YB_TATA)-Bax-pA 144 LVi(SIN) 2xAARE(YB_TATA)-M2-pA 89 LVi(RSV) 2xAARE(YB_TATA)-M2-pA 145 LVi(SIN) 2xAARE(YB_TATA)-Casp3-pA 90 LVi(RSV) 2xAARE(YB_TATA)-Casp3-pA 146 LVi(SIN) 2xAARE(YB_TATA)-DTA-pA 91 LVi(RSV) 2xAARE(YB_TATA)-DTA-pA 147 LVi(SIN) 2xAARE(YB_TATA)-aDTA-pA 92 LVi(RSV) 2xAARE(YB_TATA)-aDTA-pA 148 LVi(SIN) 2xAARE(YB_TATA)-GasdB-pA 93 LVi(RSV) 2xAARE(YB_TATA)-GasdB-pA 149 LVi(SIN) 2xAARE(YB_TATA)-Noxa-pA 94 LVi(RSV) 2xAARE(YB_TATA)-Noxa-pA 150 LVi(SIN) 2xAARE(TK)-iC9-pA 95 LVi(RSV) 2xAARE(TK)-iC9-pA 151 LVi(SIN) 2xAARE(TK)-Bax-pA 96 LVi(RSV) 2xAARE(TK)-Bax-pA 152 LVi(SIN) 2xAARE(TK)-M2-pA 97 LVi(RSV) 2xAARE(TK)-M2-pA 153 LVi(SIN) 2xAARE(TK)-Casp3-pA 98 LVi(RSV) 2xAARE(TK)-Casp3-pA 154 LVi(SIN) 2xAARE(TK)-DTA-pA 99 LVi(RSV) 2xAARE(TK)-DTA-pA 155 LVi(SIN) 2xAARE(TK)-aDTA-pA 100 LVi(RSV) 2xAARE(TK)-aDTA-pA 156 LVi(SIN) 2xAARE(TK)-GasdB-pA 101 LVi(RSV) 2xAARE(TK)-GasdB-pA 157 LVi(SIN) 2xAARE(TK)-Noxa-pA 102 LVi(RSV) 2xAARE(TK)-Noxa-pA 158 LVi(SIN) 4xSRE(YB_TATA)-iC9-pA 103 LVi(RSV) 4xSRE(YB_TATA)-iC9-pA 159 LVi(SIN) 4xSRE(YB_TATA)-Bax-pA 104 LVi(RSV) 4xSRE(YB_TATA)-Bax-pA 160 LVi(SIN) 4xSRE(YB_TATA)-M2-pA 105 LVi(RSV) 4xSRE(YB_TATA)-M2-pA 161 LVi(SIN) 4xSRE(YB_TATA)-Casp3-pA 106 LVi(RSV) 4xSRE(YB_TATA)-Casp3-pA 162 LVi(SIN) 4xSRE(YB_TATA)-DTA-pA 107 LVi(RSV) 4xSRE(YB_TATA)-DTA-pA 163 LVi(SIN) 4xSRE(YB_TATA)-aDTA-pA 108 LVi(RSV) 4xSRE(YB_TATA)-aDTA-pA 164 LVi(SIN) 4xSRE(YB_TATA)-GasdB-pA 109 LVi(RSV) 4xSRE(YB_TATA)-GasdB-pA 165 LVi(SIN) 4xSRE(YB_TATA)-Noxa-pA 110 LVi(RSV) 4xSRE(YB_TATA)-Noxa-pA 166 LVi(SIN) 9xHRE(YB_TATA)-iC9-pA 111 LVi(RSV) 9xHRE(YB_TATA)-iC9-pA 167 LVi(SIN) 9xHRE(YB_TATA)-Bax-pA 112 LVi(RSV) 9xHRE(YB_TATA)-Bax-pA 168 LVi(SIN) 9xHRE(YB_TATA)-M2-pA 113 LVi(RSV) 9xHRE(YB_TATA)-M2-pA 169 LVi(SIN) 9xHRE(YB_TATA)-Casp3-pA 114 LVi(RSV) 9xHRE(YB_TATA)-Casp3-pA 170 LVi(SIN) 9xHRE(YB_TATA)-DTA-pA 115 LVi(RSV) 9xHRE(YB_TATA)-DTA-pA 171 LVi(SIN) 9xHRE(YB_TATA)-aDTA-pA 116 LVi(RSV) 9xHRE(YB_TATA)-aDTA-pA 172 LVi(SIN) 9xHRE(YB_TATA)-GasdB-pA 117 LVi(RSV) 9xHRE(YB_TATA)-GasdB-pA 173 LVi(SIN) 9xHRE(YB_TATA)-Noxa-pA 118 LVi(RSV) 9xHRE(YB_TATA)-Noxa-pA 174 LVi(SIN) GRP78(YB_TATA)-iC9-pA 119 LVi(RSV) GRP78(YB_TATA)-iC9-pA 175 LVi(SIN) GRP78(YB_TATA)-Bax-pA 120 LVi(RSV) GRP78(YB_TATA)-Bax-pA 176 LVi(SIN) GRP78(YB_TATA)-M2-pA 121 LVi(RSV) GRP78(YB_TATA)-M2-pA 177 LVi(SIN) GRP78(YB_TATA)-Casp3-pA 122 LVi(RSV) GRP78(YB_TATA)-Casp3-pA 178 LVi(SIN) GRP78(YB_TATA)-DTA-pA 123 LVi(RSV) GRP78(YB_TATA)-DTA-pA 179 LVi(SIN) GRP78(YB_TATA)-aDTA-pA 124 LVi(RSV) GRP78(YB_TATA)-aDTA-pA 180 LVi(SIN) GRP78(YB_TATA)-GasdB-pA 125 LVi(RSV) GRP78(YB_TATA)-GasdB-pA 181 LVi(SIN) GRP78(YB_TATA)-Noxa-pA 126 LVi(RSV) GRP78(YB_TATA)-Noxa-pA 182 LVi(SIN) miR223p-iC9-pA 127 LVi(RSV) miR223p-iC9-pA 183 LVi(SIN) miR223p-Bax-pA 128 LVi(RSV) miR223p-Bax-pA 184 LVi(SIN) miR223p-M2-pA 129 LVi(RSV) miR223p-M2-pA 185 LVi(SIN) miR223p-Casp3-pA 130 LVi(RSV) miR223p-Casp3-pA 186 LVi(SIN) miR223p-DTA-pA 131 LVi(RSV) miR223p-DTA-pA 187 LVi(SIN) miR223p-aDTA-pA 132 LVi(RSV) miR223p-aDTA-pA 188 LVi(SIN) miR223p-GasdB-pA 133 LVi(RSV) miR223p-GasdB-pA 189 LVi(SIN) miR223p-Noxa-pA 134 LVi(RSV) miR223p-Noxa-pA 190 LVi(SIN) miniCHAC1(YB_TATA)-iC9-pA 135 LVi(RSV) miniCHAC1(YB_TATA)-iC9-pA 191 LVi(SIN) miniCHAC1(YB_TATA)-Bax-pA 136 LVi(RSV) miniCHAC1(YB_TATA)-Bax-pA 192 LVi(SIN) miniCHAC1(YB_TATA)-M2-pA 137 LVi(RSV) miniCHAC1(YB_TATA)-M2-pA 193 LVi(SIN) miniCHAC1(YB_TATA)-Casp3-pA 138 LVi(RSV) miniCHAC1(YB_TATA)-Casp3-pA 194 LVi(SIN) miniCHAC1(YB_TATA)-DTA-pA 139 LVi(RSV) miniCHAC1(YB_TATA)-DTA-pA 195 LVi(SIN) miniCHAC1(YB_TATA)-aDTA-pA 140 LVi(RSV) miniCHAC1(YB_TATA)-aDTA-pA 196 LVi(SIN) miniCHAC1(YB_TATA)-GasdB-pA 141 LVi(RSV) miniCHAC1(YB_TATA)-GasdB-pA 197 LVi(SIN) miniCHAC1(YB_TATA)-Noxa-pA 142 LVi(RSV) miniCHAC1(YB_TATA)-Noxa-pA 198 Tableau 2. Liste des génomes vecteurs A noter également que du fait de l’inversion de la cassette d’expression telle que décrite ci-dessus par rapport à l’orientation de la transcription du génome vecteur tel que décrit ci-dessus, l’ensemble des séquences fournies relatives à ladite cassette d’expression telle que décrite ci-dessus se retrouvent sur le brin complémentaire dudit génome vecteur tel que décrit ci-dessus dont seules les séquences sens (5’ > 3’) sont fournies. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 87 à 94. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 87 à 94. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 95 à 102. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 95 à 102. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 103 à 110. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 103 à 110. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 111 à 118. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 111 à 118. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 119 à 126. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 119 à 126. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 127 à 134. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 127 à 134. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 135 à 142. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 135 à 142. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 87, 95, 103, 111, 119, 127 et 135. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 87, 95, 103, 111, 119, 127 et 135. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 88, 96, 104, 112, 120, 128 et 136. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 88, 96, 104, 112, 120, 128 et 136. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 89, 97, 105, 113, 121, 129 et 137. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 89, 97, 105, 113, 121, 129 et 137. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 90, 98, 106, 114, 122, 130 et 138. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 90, 98, 106, 114, 122, 130 et 138. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 91, 99, 107, 115, 123, 131 et 139. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 91, 99, 107, 115, 123, 131 et 139. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 92, 100, 108, 116, 124, 132 et 140. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 92, 100, 108, 116, 124, 132 et 140. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 93, 101, 109, 117, 125, 133 et 141. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 93, 101, 109, 117, 125, 133 et 141. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 94, 102, 110, 118, 126, 134 et 142. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 94, 102, 110, 118, 126, 134 et 142. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 143 à 150. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 143 à 150. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 151 à 158. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 151 à 158. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 159 à 166. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 159 à 166. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 167 à 174. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 167 à 174. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 175 à 182. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 175 à 182. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 183 à 190. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 183 à 190. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 191 à 198. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 191 à 198. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 143, 151, 159, 167, 175, 183 et 191. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 143, 151, 159, 167, 175, 183 et 191. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 144, 152, 160, 168, 176, 184 et 192. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 144, 152, 160, 168, 176, 184 et 192. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 145, 153, 161, 169, 177, 185 et 193. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 145, 153, 161, 169, 177, 185 et 193. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 146, 154, 162, 170, 178, 186 et 194. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 146, 154, 162, 170, 178, 186 et 194. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 147, 155, 163, 171, 179, 187 et 195. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 147, 155, 163, 171, 179, 187 et 195. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 148, 156, 164, 172, 180, 188 et 196. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 148, 156, 164, 172, 180, 188 et 196. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 149, 157, 165, 173, 181, 189 et 197. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 149, 157, 165, 173, 181, 189 et 197. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 150, 158, 166, 174, 182, 190 et 198. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 150, 158, 166, 174, 182, 190 et 198. Selon un deuxième aspect, l’invention a pour objet un plasmide comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, en particulier dans lequel l’orientation 5’ vers 3’ du promoteur cryptique de l’origine de réplication bactérienne est inversée par rapport à l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription de ladite cassette d’expression. Par « plasmide », on entend une molécule d’ADN circulaire double brin, qui possède obligatoirement une origine de réplication bactérienne et accessoirement du virus SV40, afin qu’il puisse se répliquer de manière autonome, e.g. , en E. c oli pour son amplification et, e.g. , dans la cellule HEK 293T après transfection, et un gène de sélection pour qu’il ne soit pas perdu lors de son amplification bactérienne au fil des multiplications cellulaires. Dans l’invention, celui-ci comprend en outre l’acide nucléique dudit génome vecteur de l’invention et les moyens de l’exprimer. Par « les moyens de l’exprimer », on entend les éléments génétiques nécessaire à l’expression du génome vecteur de l’invention et la production d’un vecteur lentiviral selon l’invention. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant un plasmide pLV-SIN ou un plasmide pLV-RSV. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant un plasmide pLV-SIN. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant un plasmide pLV-SIN dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 199. En particulier, l’invention a également pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant un plasmide pLV-SIN dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 199. A noter que l’insertion dudit génome vecteur dans ledit plasmide pLV-SIN de séquence SEQ ID NO : 199 peut être ou est réalisée au niveau des nucléotides 4 939 et 4 940 de cette SEQ ID NO : 199. C’est-à-dire que ledit génome vecteur se situe dans ce cas entre les séquences SEQ ID NOs : 200 et 201. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant un plasmide pLV-RSV. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant un plasmide pLV-RSV dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 202. En particulier, l’invention a également pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant un plasmide pLV-RSV dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 202. A noter que l’insertion dudit génome vecteur dans ledit plasmide pLV-RSV de séquence SEQ ID NO : 202 peut être ou est réalisée au niveau des nucléotides 234 et 235 de cette SEQ ID NO : 202. C’est-à-dire que ledit génome vecteur se situe dans ce cas entre les séquences SEQ ID NOs : 203 et 204. Par « l’orientation 5’ vers 3’ du promoteur cryptique de l’origine de réplication bactérienne est inversée par rapport à l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription de ladite cassette d’expression », on entend que l’orientation de ladite cassette d’expression est inversée par rapport à celle dudit promoteur cryptique de l’origine de réplication bactérienne. En particulier, l’invention a donc pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, dans lequel l’orientation 5’ vers 3’ du promoteur cryptique de l’origine de réplication bactérienne est inversée par rapport à l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription de ladite cassette d’expression. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus, ledit plasmide dans lequel a été introduit un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer est : un plasmide pLV-SIN dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 199 ; ou un plasmide pLV-RSV dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 202 ; ledit génome lentiviral dans lequel a été introduite ladite cassette d’expression étant : un Self- inactivating Lentivirus (SIN) dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 81 ; ou un Respiratory syncytial virus (RSV) dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 84 ; et ladite cassette d’expression comprenant : un promoteur inductible choisi parmi : le 2xAARE YB_TATA , le 2xAARE TK , le 4xSRE YB_TATA , le 9xHRE YB_TATA , le GRP78 YB_TATA , le promoteur du miR223 et le miniCHAC1 YB_TATA ; et un transgène toxique ou suicide choisi parmi : une protéine Caspase-9 inductible (iC9), une protéine Bax (S184 del), une protéine Noxa (la protéine sauvage ou un de ses mutants, notamment le mutant S13A), une protéine Gasdermine B (N-ter), une protéine caspase-3 constitutivement active (V266E), un canal ionique M2 (H37A) du virus influenza, une sous-unité A de la toxine diphtérique (DTA) et un mutant atténué aDTA (G128D), la streptolysine O (notamment celle de S. pyogenes ) et une entérotoxine (notamment celle de C. perfringens ). Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 205 à 316. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 205 à 316. En particulier, l’invention a également pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide ayant la séquence SEQ ID NO : 205, 206, 207, 208, 209, 210, 211, 212, 213, 214, 215, 216, 217, 218, 219, 220, 221, 222, 223, 224, 225, 226, 227, 228, 229, 230, 231, 232, 233, 234, 235, 236, 237, 238, 239, 240, 241, 242, 243, 244, 245, 246, 247, 248, 249, 250, 251, 252, 253, 254, 255, 256, 257, 258, 259, 260, 261, 262, 263, 264, 265, 266, 267, 268, 269, 270, 271, 272, 273, 274, 275, 276, 277, 278, 279, 280, 281, 282, 283, 284, 285, 286, 287, 288, 289, 290, 291, 292, 293, 294, 295, 296, 297, 298, 299, 300, 301, 302, 303, 304, 305, 306, 307, 308, 309, 310, 311, 312, 313, 314, 315 ou 316 (voir Tableau 3). PLASMIDE SEQ ID NO : PLASMIDE SEQ ID NO : pLVi(SIN) 2xAARE(YB_TATA)-iC9-pA 205 pLVi(RSV) 2xAARE(YB_TATA)-iC9-pA 261 pLVi(SIN) 2xAARE(YB_TATA)-Bax-pA 206 pLVi(RSV) 2xAARE(YB_TATA)-Bax-pA 262 pLVi(SIN) 2xAARE(YB_TATA)-M2-pA 207 pLVi(RSV) 2xAARE(YB_TATA)-M2-pA 263 pLVi(SIN) 2xAARE(YB_TATA)-Casp3-pA 208 pLVi(RSV) 2xAARE(YB_TATA)-Casp3-pA 264 pLVi(SIN) 2xAARE(YB_TATA)-DTA-pA 209 pLVi(RSV) 2xAARE(YB_TATA)-DTA-pA 265 pLVi(SIN) 2xAARE(YB_TATA)-aDTA-pA 210 pLVi(RSV) 2xAARE(YB_TATA)-aDTA-pA 266 pLVi(SIN) 2xAARE(YB_TATA)-GasdB-pA 211 pLVi(RSV) 2xAARE(YB_TATA)-GasdB-pA 267 pLVi(SIN) 2xAARE(YB_TATA)-Noxa-pA 212 pLVi(RSV) 2xAARE(YB_TATA)-Noxa-pA 268 pLVi(SIN) 2xAARE(TK)-iC9-pA 213 pLVi(RSV) 2xAARE(TK)-iC9-pA 269 pLVi(SIN) 2xAARE(TK)-Bax-pA 214 pLVi(RSV) 2xAARE(TK)-Bax-pA 270 pLVi(SIN) 2xAARE(TK)-M2-pA 215 pLVi(RSV) 2xAARE(TK)-M2-pA 271 pLVi(SIN) 2xAARE(TK)-Casp3-pA 216 pLVi(RSV) 2xAARE(TK)-Casp3-pA 272 pLVi(SIN) 2xAARE(TK)-DTA-pA 217 pLVi(RSV) 2xAARE(TK)-DTA-pA 273 pLVi(SIN) 2xAARE(TK)-aDTA-pA 218 pLVi(RSV) 2xAARE(TK)-aDTA-pA 274 pLVi(SIN) 2xAARE(TK)-GasdB-pA 219 pLVi(RSV) 2xAARE(TK)-GasdB-pA 275 pLVi(SIN) 2xAARE(TK)-Noxa-pA 220 pLVi(RSV) 2xAARE(TK)-Noxa-pA 276 pLVi(SIN) 4xSRE(YB_TATA)-iC9-pA 221 pLVi(RSV) 4xSRE(YB_TATA)-iC9-pA 277 pLVi(SIN) 4xSRE(YB_TATA)-Bax-pA 222 pLVi(RSV) 4xSRE(YB_TATA)-Bax-pA 278 pLVi(SIN) 4xSRE(YB_TATA)-M2-pA 223 pLVi(RSV) 4xSRE(YB_TATA)-M2-pA 279 pLVi(SIN) 4xSRE(YB_TATA)-Casp3-pA 224 pLVi(RSV) 4xSRE(YB_TATA)-Casp3-pA 280 pLVi(SIN) 4xSRE(YB_TATA)-DTA-pA 225 pLVi(RSV) 4xSRE(YB_TATA)-DTA-pA 281 pLVi(SIN) 4xSRE(YB_TATA)-aDTA-pA 226 pLVi(RSV) 4xSRE(YB_TATA)-aDTA-pA 282 pLVi(SIN) 4xSRE(YB_TATA)-GasdB-pA 227 pLVi(RSV) 4xSRE(YB_TATA)-GasdB-pA 283 pLVi(SIN) 4xSRE(YB_TATA)-Noxa-pA 228 pLVi(RSV) 4xSRE(YB_TATA)-Noxa-pA 284 pLVi(SIN) 9xHRE(YB_TATA)-iC9-pA 229 pLVi(RSV) 9xHRE(YB_TATA)-iC9-pA 285 pLVi(SIN) 9xHRE(YB_TATA)-Bax-pA 230 pLVi(RSV) 9xHRE(YB_TATA)-Bax-pA 286 pLVi(SIN) 9xHRE(YB_TATA)-M2-pA 231 pLVi(RSV) 9xHRE(YB_TATA)-M2-pA 287 pLVi(SIN) 9xHRE(YB_TATA)-Casp3-pA 232 pLVi(RSV) 9xHRE(YB_TATA)-Casp3-pA 288 pLVi(SIN) 9xHRE(YB_TATA)-DTA-pA 233 pLVi(RSV) 9xHRE(YB_TATA)-DTA-pA 289 pLVi(SIN) 9xHRE(YB_TATA)-aDTA-pA 234 pLVi(RSV) 9xHRE(YB_TATA)-aDTA-pA 290 pLVi(SIN) 9xHRE(YB_TATA)-GasdB-pA 235 pLVi(RSV) 9xHRE(YB_TATA)-GasdB-pA 291 pLVi(SIN) 9xHRE(YB_TATA)-Noxa-pA 236 pLVi(RSV) 9xHRE(YB_TATA)-Noxa-pA 292 pLVi(SIN) GRP78(YB_TATA)-iC9-pA 237 pLVi(RSV) GRP78(YB_TATA)-iC9-pA 293 pLVi(SIN) GRP78(YB_TATA)-Bax-pA 238 pLVi(RSV) GRP78(YB_TATA)-Bax-pA 294 pLVi(SIN) GRP78(YB_TATA)-M2-pA 239 pLVi(RSV) GRP78(YB_TATA)-M2-pA 295 pLVi(SIN) GRP78(YB_TATA)-Casp3-pA 240 pLVi(RSV) GRP78(YB_TATA)-Casp3-pA 296 pLVi(SIN) GRP78(YB_TATA)-DTA-pA 241 pLVi(RSV) GRP78(YB_TATA)-DTA-pA 297 pLVi(SIN) GRP78(YB_TATA)-aDTA-pA 242 pLVi(RSV) GRP78(YB_TATA)-aDTA-pA 298 pLVi(SIN) GRP78(YB_TATA)-GasdB-pA 243 pLVi(RSV) GRP78(YB_TATA)-GasdB-pA 299 pLVi(SIN) GRP78(YB_TATA)-Noxa-pA 244 pLVi(RSV) GRP78(YB_TATA)-Noxa-pA 300 pLVi(SIN) miR223p-iC9-pA 245 pLVi(RSV) miR223p-iC9-pA 301 pLVi(SIN) miR223p-Bax-pA 246 pLVi(RSV) miR223p-Bax-pA 302 pLVi(SIN) miR223p-M2-pA 247 pLVi(RSV) miR223p-M2-pA 303 pLVi(SIN) miR223p-Casp3-pA 248 pLVi(RSV) miR223p-Casp3-pA 304 pLVi(SIN) miR223p-DTA-pA 249 pLVi(RSV) miR223p-DTA-pA 305 pLVi(SIN) miR223p-aDTA-pA 250 pLVi(RSV) miR223p-aDTA-pA 306 pLVi(SIN) miR223p-GasdB-pA 251 pLVi(RSV) miR223p-GasdB-pA 307 pLVi(SIN) miR223p-Noxa-pA 252 pLVi(RSV) miR223p-Noxa-pA 308 pLVi(SIN) miniCHAC1(YB_TATA)-iC9-pA 253 pLVi(RSV) miniCHAC1(YB_TATA)-iC9-pA 309 pLVi(SIN) miniCHAC1(YB_TATA)-Bax-pA 254 pLVi(RSV) miniCHAC1(YB_TATA)-Bax-pA 310 pLVi(SIN) miniCHAC1(YB_TATA)-M2-pA 255 pLVi(RSV) miniCHAC1(YB_TATA)-M2-pA 311 pLVi(SIN) miniCHAC1(YB_TATA)-Casp3-pA 256 pLVi(RSV) miniCHAC1(YB_TATA)-Casp3-pA 312 pLVi(SIN) miniCHAC1(YB_TATA)-DTA-pA 257 pLVi(RSV) miniCHAC1(YB_TATA)-DTA-pA 313 pLVi(SIN) miniCHAC1(YB_TATA)-aDTA-pA 258 pLVi(RSV) miniCHAC1(YB_TATA)-aDTA-pA 314 pLVi(SIN) miniCHAC1(YB_TATA)-GasdB-pA 259 pLVi(RSV) miniCHAC1(YB_TATA)-GasdB-pA 315 pLVi(SIN) miniCHAC1(YB_TATA)-Noxa-pA 260 pLVi(RSV) miniCHAC1(YB_TATA)-Noxa-pA 316 Tableau 3. Liste des plasmides Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 205 à 212. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 205 à 212. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 213 à 220. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 213 à 220. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 221 à 228. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 221 à 228. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 229 à 236. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 229 à 236. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 237 à 244. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 237 à 244. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 245 à 252. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 253 à 260. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 205, 213, 221, 229, 237, 245 et 253. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 205, 213, 221, 229, 237, 245 et 253. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 206, 214, 222, 230, 238, 246 et 254. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 206, 214, 222, 230, 238, 246 et 254. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 207, 215, 223, 231, 239, 247 et 255. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 207, 215, 223, 231, 239, 247 et 255. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 208, 216, 224, 232, 240, 248 et 256. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 208, 216, 224, 232, 240, 248 et 256. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 209, 217, 225, 233, 241, 249 et 257. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 209, 217, 225, 233, 241, 249 et 257. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 210, 218, 226, 234, 242, 250 et 258. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 210, 218, 226, 234, 242, 250 et 258. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 210, 218, 226, 234, 242, 250 et 258. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 210, 218, 226, 234, 242, 250 et 258. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 211, 219, 227, 235, 243, 251 et 259. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 211, 219, 227, 235, 243, 251 et 259. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 212, 220, 228, 236, 244, 252 et 260. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 212, 220, 228, 236, 244, 252 et 260. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 261 à 268. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 261 à 268. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 269 à 276. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 269 à 276. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 277 à 284. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 277 à 284. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 285 à 292. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 285 à 292. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 293 à 300. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 293 à 300. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 301 à 308. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 301 à 308. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 309 à 316. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 309 à 316. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 261, 269, 277, 285, 293, 301 et 309. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 261, 269, 277, 285, 293, 301 et 309. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 262, 270, 278, 286, 294, 302 et 310. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 262, 270, 278, 286, 294, 302 et 310. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 263, 271, 279, 287, 295, 303 et 311. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 263, 271, 279, 287, 295, 303 et 311. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 264, 272, 280, 288, 296, 304 et 312. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 264, 272, 280, 288, 296, 304 et 312. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 265, 273, 281, 289, 297, 305 et 313. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 265, 273, 281, 289, 297, 305 et 313. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 266, 274, 282, 290, 298, 306 et 314. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 266, 274, 282, 290, 298, 306 et 314. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 267, 275, 283, 291, 299, 307 et 315. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 267, 275, 283, 291, 299, 307 et 315. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 268, 276, 284, 292, 300, 308 et 316. En particulier, l’invention a pour objet le plasmide tel que décrit ci-dessus comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, ledit plasmide étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 268, 276, 284, 292, 300, 308 et 316. Selon un troisième aspect, l’invention a pour objet l’utilisation d’un plasmide tel que décrit ci-dessus pour produire un vecteur lentiviral comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus. Par « vecteur lentiviral », on entend une particule lentivirale recombinante obtenue grâce au plasmide de l’invention, lequel permet de produire la particule (lenti-)virale de l’invention. Celui-ci comprend ledit génome vecteur encapsidé et/ou enveloppé. Il est efficace pour s’introduire dans la cellule, il est non réplicatif et il conduit soit à l’intégration (ciblée ou non) dudit génome vecteur dans le génome d’une cellule infectée, soit à la présence d’un épisome non intégré dans le génome cellulaire. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet l’utilisation d’un plasmide telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 87 à 198. En particulier, l’invention a pour objet l’utilisation d’un plasmide telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 87 à 198. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet l’utilisation d’un plasmide telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit plasmide est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 205 à 316. En particulier, l’invention a également pour objet l’utilisation d’un plasmide telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit plasmide est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 205 à 316. A noter que les plasmides de séquences SEQ ID NOs : 205 à 316 comprennent respectivement les génomes vecteurs de séquences SEQ ID NOs : 87 à 198. Selon un quatrième aspect, l’invention a pour objet une méthode de production de vecteurs lentiviraux comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus, ladite méthode comprenant au moins les étapes : a. de co-transfection d’une cellule eucaryote animale avec : i. un plasmide tel que décrit ci-dessus ; ii. un plasmide comprenant une protéine d’enveloppe virale et les moyens de l’exprimer ; et iii. un plasmide comprenant les protéines de structures et les enzymes du VIH-1, et les moyens de l’exprimer, pour obtenir une cellule eucaryote animale transfectée ; b. de culture de ladite cellule eucaryote animale transfectée pour permettre la production de vecteurs lentiviraux comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus ; et c. de récolte et de purification desdits vecteurs lentiviraux. Une telle méthode est illustrée dans les exemples ci-après et est accessible à l’homme du métier au vu de la littérature à sa disposition ( e.g. Zennou et al. Nat Biotechnol . 2001 May; 19(5):446-50) ). Néanmoins et aux fins d’illustrations, il est précisé que : ladite cellule eucaryote animale peut être une cellule appartenant à une lignée cellulaire choisie parmi : HEK 293T, HEK 293, CHO, GS-CHO, Free style 293-F cells (FS293), Viral Production Cells (VPC and VPC 2.0), COS-1, HeLa, PS5.8 et PS46.2 ; ledit plasmide comprenant une protéine d’enveloppe virale et les moyens de l’exprimer peut être choisi parmi les plasmides : pHCMV-VSV (SEQ ID NO : 328), pHCMV-Mokola, pHCMV-RabiesG, pHCMV-AmphoEnv, pHCMV-LCMV-WE, pHCMV-LCMV-Arm53b et pHCMV-10A1 (Sena-Esteves M et aL . Optimized large-scale production of high titer lentivirus vector pseudotypes. J Virol Methods. 2004 Dec 15;122(2):131-9); et ledit plasmide comprenant les protéines de structures et les enzymes du VIH-1, et les moyens de l’exprimer peut être choisi parmi les plasmides : p8.92 (SEQ ID NO : 329), p8.92 (IN D64V) (SEQ ID NO : 330), psPAX2 (SEQ ID NO : 331), pMDLg/pRRE (SEQ ID NO : 332) et pRSV-Rev (SEQ ID NO : 333). Aux fins d’illustrations et de façon non limitative, il est également fourni le protocole suivant : Des cellules ( e.g. HEK 293T) ont été ensemencées sur des supports adaptés à la culture cellulaire et de façon à atteindre une confluence de 50 à 60% après 24 heures de culture. Le lendemain, les cellules ont été co-transfectées, par la méthode de précipitation au phosphate de calcium, avec le plasmide codant le génome lentiviral et deux plasmides transcomplémentants codants pour les enzymes et protéines structurelles du VIH-1 (p8.9) et la glycoprotéine d’enveloppe du virus de la stomatite vésiculaire (pVSVg). La co-transfection a été réalisée au ratio plasmidique 2 : 2 : 1. Les cellules transfectées ont été cultivées 5 heures au contact du précipité puis le milieu de culture a été renouvelé. Le surnageant contenant les particules lentivirales a été récolté 48 heures plus tard. La suspension lentivirale a été traitée à la DNAse I pour éliminer les plasmides persistants, filtrée (porosité de la membrane 0,2 µm) puis ultra-centrifugée à 60 000g pendant 90 minutes à 4°C. Les culots de particules ont été repris dans un volume de tampon phosphate salin (PBS) correspondant à une concentration d’un facteur 1000. Les suspensions obtenues ont été aliquotées et conservées à -80°C jusqu’à utilisation. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est une cellule appartenant à la lignée HEK 293T. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 87 à 198. En particulier, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 87 à 198. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit plasmide a.i. est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 205 à 316. En particulier, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit plasmide a.i. est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 205 à 316. Selon un cinquième aspect, l’invention a pour objet un vecteur lentiviral comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus. Selon ce même aspect, l’invention a également pour objet un vecteur lentiviral susceptible d’être obtenu par la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le vecteur lentiviral tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 87 à 198. En particulier, l’invention a pour objet le vecteur lentiviral tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 87 à 198. Selon un sixième aspect, l’invention a pour objet l’utilisation d’un vecteur lentiviral tel que décrit ci-dessus pour transduire une cellule eucaryote animale, en particulier ladite cellule eucaryote animale étant choisie parmi : une cellule cancéreuse, notamment une cellule cancéreuse formant une tumeur solide ou étant impliquée dans un cancer du sang ; une cellule immunitaire notamment choisie parmi : le lymphocyte T et la cellule NK ; un myofibroblaste, notamment un myofibroblaste impliqué dans un processus de fibrose ; un astrocyte, notamment un astrocyte activé lors d’un traumatisme cérébral ou de la moelle épinière et formant une cicatrice gliale empêchant la régénération ; et une cellule souche induite (iPS). Par « une cellule cancéreuse », on entend une cellule anormale ayant acquis des caractères spécifiques à l’origine d'un cancer (ou tumeur maligne), lequel est une maladie caractérisée par une prolifération cellulaire (tumeur) non contrôlée et anormalement importante au sein d’un tissu normal (sain) de l'organisme, de telle manière que la survie de ce dernier est menacée. Parmi ces tumeurs, il existe les tumeurs solides et les tumeurs liquides. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet l’utilisation d’un vecteur lentiviral telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est une cellule cancéreuse, notamment une cellule cancéreuse formant une tumeur solide ou étant impliquée dans un cancer du sang. En particulier, l’invention a également pour objet l’utilisation d’un vecteur lentiviral telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est une cellule cancéreuse formant une tumeur solide. En particulier, l’invention a également pour objet l’utilisation d’un vecteur lentiviral telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est une cellule cancéreuse étant impliquée dans un cancer du sang. Par « une cellule immunitaire », on entend une cellule impliquée dans le fonctionnement du système immunitaire. De nombreux exemples existent comme les lymphocytes ( e.g. T, B, NK et NKT), les phagocytes ( e.g. macrophage et cellule dendritique) et les granulocytes ( e.g. neutrophile, éosinophile et basophile) et les cellules précurseurs de ces cellules. Ces cellules peuvent être d’origine autologue, syngénique, allogénique ou xénogénique. Enfin ces cellules peuvent être génétiquement modifiées. A noter que dans l’invention sont particulièrement mis en œuvre un lymphocyte T et une cellule NK. Par « lymphocyte T », l’invention fait notamment référence à un lymphocyte T naïf, effecteur ou mémoire, avec des propriétés auxiliaires, cytotoxiques ou régulatrices. Par « cellule NK », l’invention fait notamment référence à une cellule NK primaires, cancéreuses ou immortalisées. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet l’utilisation d’un vecteur lentiviral telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est une cellule immunitaire notamment choisie parmi : le lymphocyte T et la cellule NK. En particulier, l’invention a également pour objet l’utilisation d’un vecteur lentiviral telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est un lymphocyte T ou une cellule NK. Par « un myofibroblaste », on entend une cellule caractérisée par des propriétés de production de protéines matricielles, de prolifération, de migration et de contraction, activées dans des processus de réparation et cicatrisation. Ces myofibroblastes sont retrouvés dans certains organes comme le foie, le poumon, le cœur ou le rein lors de maladies chroniques. Le processus de remplacement du tissu par des myofibroblastes est appelé fibrose. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet l’utilisation d’un vecteur lentiviral telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est un myofibroblaste. En particulier, l’invention a également pour objet l’utilisation d’un vecteur lentiviral telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est un myofibroblaste impliqué dans un processus de fibrose. Par « un astrocyte », on entend une cellule gliale du système nerveux central. Généralement de forme étoilée, il assure une diversité de fonctions importantes, centrée sur le support et la protection des neurones. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet l’utilisation d’un vecteur lentiviral telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est un astrocyte, notamment un astrocyte activé lors d’un traumatisme cérébral ou de la moelle épinière et formant une cicatrice gliale empêchant la régénération. En particulier, l’invention a également pour objet l’utilisation d’un vecteur lentiviral telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est un astrocyte activé lors d’un traumatisme cérébral ou de la moelle épinière formant une cicatrice gliale empêchant la régénération. Par « une cellule souche », on entend une cellule caractérisée par son indifférenciation et sa capacité à se différencier et à générer ou régénérer un tissu, comme le tissu hématopoïétique, le muscle, le cerveau (neurones), la rétine, le foie (hépatocytes), des cellules beta du pancréas, le rein, du cartilage, de l’os ou de la peau. Ces cellules, prélevées sur un organisme adulte, ou induites à partir de cellules différenciées (iPS), peuvent être d’origine autologue, syngénique, allogénique ou xénogénique. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet l’utilisation d’un vecteur lentiviral telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est une cellule souche induite (iPS). Selon un autre aspect, l’invention a pour objet une cellule eucaryote animale transduite par un vecteur lentiviral tel que décrit ci-dessus, ladite cellule eucaryote animale transduite étant en particulier choisie parmi : une cellule cancéreuse, notamment une cellule cancéreuse formant une tumeur solide ou étant impliquée dans un cancer du sang ; une cellule immunitaire notamment choisie parmi : le lymphocyte T et la cellule NK ; un myofibroblaste, notamment un myofibroblaste impliqué dans un processus de fibrose ; un astrocyte, notamment un astrocyte activé lors d’un traumatisme cérébral ou de la moelle épinière et formant une cicatrice gliale empêchant la régénération ; et une cellule souche induite (iPS). Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la cellule eucaryote animale transduite telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est une cellule cancéreuse, notamment une cellule cancéreuse formant une tumeur solide ou étant impliquée dans un cancer du sang. En particulier, l’invention a également pour objet la cellule eucaryote animale transduite telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est une cellule cancéreuse formant une tumeur solide. En particulier, l’invention a également pour objet la cellule eucaryote animale transduite telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est une cellule cancéreuse étant impliquée dans un cancer du sang. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la cellule eucaryote animale transduite telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est une cellule immunitaire notamment choisie parmi : le lymphocyte T et la cellule NK. En particulier, l’invention a également pour objet la cellule eucaryote animale transduite telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est un lymphocyte T ou une cellule NK. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la cellule eucaryote animale transduite telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est un myofibroblaste. En particulier, l’invention a également pour objet la cellule eucaryote animale transduite telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est un myofibroblaste impliqué dans un processus de fibrose. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la cellule eucaryote animale transduite telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est un astrocyte, notamment un astrocyte activé lors d’un traumatisme cérébral ou de la moelle épinière et formant une cicatrice gliale empêchant la régénération. En particulier, l’invention a également pour objet la cellule eucaryote animale transduite telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est un astrocyte activé lors d’un traumatisme cérébral ou de la moelle épinière formant une cicatrice gliale empêchant la régénération. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la cellule eucaryote animale transduite telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est une cellule souche induite (iPS). Selon un autre aspect, l’invention a pour objet une cellule eucaryote animale transduite telle que décrite ci-dessus pour son utilisation en thérapie cellulaire, en particulier pour traiter une pathologie choisie parmi : un cancer, une leucémie et une fibrose. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la cellule eucaryote animale transduite telle que décrite ci-dessus pour son utilisation telle que décrite ci-dessus pour traiter une pathologie choisie parmi : un cancer, une leucémie et une fibrose. En particulier, l’invention a pour objet la cellule eucaryote animale transduite telle que décrite ci-dessus pour son utilisation telle que décrite ci-dessus pour traiter un cancer. En particulier, l’invention a pour objet la cellule eucaryote animale transduite telle que décrite ci-dessus pour son utilisation telle que décrite ci-dessus pour traite une leucémie. Par « thérapie cellulaire », on entend une méthode dite de « biothérapies » laquelle vise à soigner un organe ou un organisme par l’apport de cellules thérapeutiques pour remplacer, suppléer ou tuer des cellules défaillantes. Alternativement et selon ce même aspect, l’invention a pour objet une méthode de traitement d’une pathologie choisie parmi : un cancer, une leucémie et une fibrose, ladite méthode comprenant l’administration d’une cellule eucaryote animale transduite selon l’invention (ou d’une composition pharmaceutique comprenant au moins une cellule eucaryote animale transduite selon l’invention et un excipient pharmaceutiquement acceptable) à un patient qui en a besoin. Au-delà de permettre la production à des titres élevés de vecteurs lentiviraux codant pour des transgènes toxiques (cytotoxiques) ou suicides, jusqu’ici jamais atteint, l’invention permet la mise en œuvre de thérapies cellulaires efficaces et sûres. Celles-ci exploitent en effet la technologie dite de safety switch ou d’interrupteur de sécurité , qui sous l’action du bon stimulus (et uniquement du bon stimulus) permet l’activation du promoteur inductible de ladite cassette d’expression, rendant possible l’expression du transgène toxique ou suicide, provoquant la mort de la cellule. Aussi et par exemple, l’emploi thérapeutique d’une cellule immunitaire : modifiée et armée pour cibler et détruire des cellules cancéreuses ; et transduite selon l’invention, va, après son administration à un patient qui en a besoin, jouer son rôle de ciblage et de destruction des cellules cancéreuses. Seulement et si cette même cellule immunitaire devient dysfonctionnelle, il sera alors possible de la détruire afin d’éviter des effets adverses et ce, grâce au système de sécurité qu’apporte l’invention ( i.e. cassette d’expression comprenant un promoteur inductible en amont d’un transgène toxique ou suicide). À tout égard, il convient de noter que les différents aspects de l’invention, tout comme les différents modes de réalisation de celle-ci sont interdépendants. Ces derniers peuvent donc être combinés entre eux à foison autant que nécessaire pour obtenir des aspects et/ou des modes de réalisation préférés de l’invention non explicitement décrits. Ceci est également valable pour l’ensemble des définitions fourni dans la présente description, lequel s’applique à tous les aspects de l’invention et ses modes de réalisation. En outre, la présente invention est illustrée, sans toutefois s’y limiter, par les figures et exemples suivants. LISTE DES FIGURES [Fig 1] FIG. 1 . Schémas des vecteurs lentiviraux sens ( pLV ; panel du haut) et inversé ( pLVi ; panel du bas), véhiculant un transgène sous le contrôle du promoteur 2xAARE YB_ TATA (SEQ ID NO : 1) . [Fig 2] FIG. 2 . Production de particules lentivirales véhiculant un transgène toxique. Les titres de particules lentivirales (pLV), véhiculant un gène toxique inductible, mesurés en quantité de p24 (pg/µL), sont significativement plus faibles comparés au vecteur sens contrôle exprimant la GFP (expériences n≥3 productions ; moyenne ± déviation standard ; statistiques 1-way ANOVA avec test de Dunnett pour comparaison multiple au contrôle GFP ; *** P≤0,0002). [Fig 3] FIG. 3 . Incrémentation des titres de vecteurs lentiviraux par l’inversion de la cassette 2xAARE YB_TATA -gene suicide (GS). A) L’inversion de la cassette 2xAARE YB_ TATA -GFP-GS (GS : gène suicide) dans un vecteur lentiviral (pLVi, colonnes grises) a permis d’accroitre significativement les titres de particules recombinantes en cellules HEK-293T par rapport à un vecteur sens (pLV, colonnes noires). Statistiques : Two-way ANOVA et test Sidak de comparaison multiple, (ns) p>0.05 ; (*) p [Fig 4] FIG. 4 . Fonctionnalité des vecteurs pLVi véhiculant un transgène cytotoxique sur lignée de mélanome et sur lymphocytes humains. A-B) mesure de l’impédance (xCELLigence) représentée par le cell index normalisé à partir du début des traitements. A) Lignée de mélanome humain EST109 transduite avec le vecteur pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP (SEQ ID NO : 327) ; le traitement à la puromycine a été toxique et a provoqué le décollement des cellules EST109, visible par une chute du cell index ; les traitements avec l’inducteur de stress tunicamycine (Tm, 4µg/mL) ou son solvant DMSO n’ont pas induit de toxicité. B) Lignée de mélanome humain EST109 transduite avec le vecteur pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-iC9 (SEQ ID NO : 205). Le traitement à la puromycine a provoqué le décollement des cellules EST109. Les traitements avec l’inducteur de stress tunicamycine (Tm, 4µg/mL) ou son solvant DMSO n’ont pas induit de toxicité. Seul le double traitement avec la Tm et l’AP1903 (4µM) a induit la toxicité du transgène iC9 et a provoqué le décollement des cellules. C) Confirmation par cytométrie en flux de la toxicité de la cassette 2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-iC9 (SEQ ID NO : 25) en cellules EST109. Le double traitement avec Tm et AP1903 n’a pas eu d’effet sur la population transduite avec le pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP (SEQ ID NO : 327). Au contraire, la combinaison de la Tm et de l’AP1903 a provoqué la disparition significative des cellules transduites avec le pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-iC9 (SEQ ID NO : 205). D) Mesure du cell index des cellules EST109 transduites avec le vecteur pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-aDTA (SEQ ID NO : 210). Le traitement à la Tm a induit le transgène dont la toxicité a provoqué le décollement des cellules. E-F) analyse par cytométrie de lymphocytes CD3+ humains transduits avec les vecteurs pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP (SEQ ID NO : 327), pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-iC9 (SEQ ID NO : 205) ou pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-M2 (SEQ ID NO : 207). E) Le traitement à la Tm a induit le transgène dans ces cellules (signal GFP) ; le double traitement à la Tm et l’AP1903 a activé la toxicité de l’iC9 et a ainsi provoqué la disparition des cellules GFP positives. F) Le double traitement à la Tm et à l’Amantadine (Amt) a induit l’expression des transgènes GFP et M2 mais a protégé les cellules de la toxicité du canal ionique M2 et a donc augmenté donc la proportion de cellules positives à la GFP ; en absence d’Amt, le traitement Tm a provoqué la disparition des cellules exprimant la GFP. EXEMPLES - PRODUCTION DE VECTEURS TOXIQUES MATERIELS & METHODES Clonage des plasmides lentiviraux Les plasmides lentiviraux utilisés dans les expériences ont été clonés par linéarisation enzymatique et re-circularisation par homologie grâce au protocole de NEBuilder HiFi DNA Assembly (New England Biolabs) en insérant des séquences synthétisées (Twist Bioscience) dans un plasmide porteur du génome lentiviral auto-inactivant de deuxième génération (pLV(SIN) ; SEQ ID NO : 199). Culture cellulaire Les cellules ont été cultivées en incubateur à atmosphère humidifiée et contrôlée à 37°C et 5% CO2. Les HEK-293T ( Human Embryonic Kidney , ATTC–CRL-11268) ont été cultivées en milieu High Glucose Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM, Thermo Fischer) contenant 10% de sérum de veau fœtal (SVF) et 100 U/mL de Pénicilline/Streptomycine. L’induction du stress a été réalisée par traitement à la tunicamycine (Tm, 4 µg/mL, Sigma Aldrich). Les cellules EST109 (publiées sous la référence UKRV-Mel-2 [ECACC 13012436] ; Artuc M et al. Biochem Biophys Res Commun. 213(2):699-705) ont été cultivées dans les mêmes conditions mais dans du milieu Roswell Park Memorial Institute (RPMI 1640, Thermo Fischer) contenant 10% de SVF et 100 U/mL de Pénicilline/Streptomycine. Les lymphocytes T primaires isolés du sang de donneurs sains ont été cultivés dans du milieu exempt de sérum et sans apport nourricier (SFM) GIBCO OpTmizer™ CTS™ (Thermo Fischer) complémenté en Glutamax (Thermo Fischer) et avec 100 U/mL de Pénicilline/Streptomycine. Production de vecteurs lentiviraux Les particules lentivirales non-réplicatives ont été obtenues grâce au protocole de production de deuxième génération décrit par Zennou et al. en 2001 ( Nat Biotechnol . 2001 May;19(5):446-50). Des cellules HEK 293T ont été ensemencées sur des supports adaptés à la culture cellulaire et de façon à atteindre une confluence de 50 à 60% après 24 heures de culture. Le lendemain, les cellules ont été co-transfectées, par la méthode de précipitation au phosphate de calcium, avec le plasmide codant le génome lentiviral (pLV ou pLVi) et deux plasmides transcomplémentants codants pour les enzymes et protéines structurelles du VIH-1 (p8.92 ; SEQ ID NO : 329 ou 330), et la glycoprotéine d’enveloppe du virus de la stomatite vésiculaire (pVSVg ; SEQ ID NO : 328). La co-transfection a été réalisée au ratio plasmidique 2 : 2 : 1. Les cellules transfectées ont été cultivées 5 heures au contact du précipité puis le milieu de culture a été renouvelé. Le surnageant contenant les particules lentivirales a été récolté 48 heures plus tard. La suspension lentivirale a été traitée à la DNAse I pour éliminer les plasmides persistants, filtrée (porosité de la membrane 0,2 µm) puis ultra-centrifugée à 60 000g pendant 90 minutes à 4°C. Les culots de particules ont été repris dans un volume de tampon phosphate salin (PBS) correspondant à une concentration d’un facteur 1000. Les suspensions obtenues ont été aliquotées et conservées à -80°C jusqu’à utilisation. Titration La concentration en particules lentivirales a été déterminée par quantification de la protéine de capside lentivirale p24. Pour cela, un aliquot de suspension lentivirale a été décongelé, lysé et dilué d’après le protocole fournisseur du kit de titration HIV-1 p24 Antigen ELISA 2.0 (Zeptometrix réf. 0801008). La concentration de p24 obtenue a été exprimée en pg/µL dont l’équivalence est 1 pg de p24 pour 104 particules physiques lentivirales pseudotypées VSVg (Dull, T et al. J Virol . 1998 Nov;72(11):8463-71). Des tests peuvent préciser ces valeurs mais, en moyenne, 1% des particules physiques obtenues sont infectieuses soit 1 pg ≈ 100 unités de transduction (TU). Transduction Pour intégrer un transgène par infection d’un vecteur lentiviral, la quantité de particules nécessaires à obtenir la multiplicité d’infection voulue (ratio vecteur : cible) a été diluée dans du milieu de culture. Cette suspension lentivirale a été mise en contact des cellules cibles. Les cellules infectées ont été cultivées pendant au moins 24 heures. Selon la cassette promoteur/gène intégrée, l’expression du transgène a pu être observée ou mesurée dès le lendemain par microscopie, cytométrie ou analyse biochimique. Analyse par cytométrie en flux En fin d’expérience, les cellules en culture ont été récoltées et rincées au PBS. Elles ont ensuite été incubées 30 minutes avec les anticorps de marquages de surface et le marqueur de viabilité Live-or-Dye 405/452 (Biotium) selon les recommandations des fabricants respectifs. Les cellules ont été rincées puis fixées dans du PBS avec 1% de paraformaldéhyde pendant 15 minutes à 4°C. Après rinçage, l’expression du transgène a été analysée au cytomètre MACSQuant Analyser 10 (Miltenyi). Analyse de l’adhérence cellulaire en temps réel Des cellules (3,5.105 EST109 par puit) ont été ensemencées sur des E-plates (Agilent) et placées sur le dispositif xCELLigence Real-Time Cell Analysis (Agilent) disposé dans un incubateur. Les cellules ont été transduites et traitées directement dans les E-plates. Le dispositif xCELLigence mesure et normalise continuellement les évolutions d’impédance, valeur liée directement au nombre, à la taille et à la morphologie des cellules adhérantes sur la surface de l’E-plate. RESULTATS Augmentation des titres de vecteurs lentiviraux inversés exprimant un gène cytotoxique. Dans le but de produire de hauts titres de vecteurs lentiviraux véhiculant des gènes cytotoxiques (ou suicides), dont l’expression est inductible par ATF4, ont été obtenus et utilisés : sept vecteurs lentiviraux sens (pLV) ;et sept vecteurs lentiviraux inversés (pLVi), pour produire des particules recombinantes véhiculant un transgène rapporteur contrôle, ou un transgène toxique ( FIG. 1 ). Dans chaque vecteur le transgène a été placé sous le contrôle du promoteur 2xAARE YB_ TATA (SEQ ID NO : 1). Les vecteurs contrôles (SEQ ID NO : 320 et 327) véhicule le transgène rapporteur « enhanced Green Fluorescent Protein » (eGFP ; SEQ ID NO : 317), et les douze vecteurs toxiques (SEQ ID NOs : 205 à 210 et 321 à 326) transportent respectivement le gène eGFP associé par un peptide P2A (SEQ ID NO : 318) aux gènes cytotoxiques choisi parmi : la Caspase-9 inductible (iC9 ; SEQ ID NO : 8) ; Bax (S184 del ; SEQ ID NO : 10); le canal ionique M2 (H37A ; SEQ ID NO : 12) du virus influenza; la caspase-3 constitutivement active (V266E ; SEQ ID NO : 14) ; et la sous-unité A de la toxine diphtérique (DTA ; SEQ ID NO : 16) ou un mutant atténué aDTA (G128D ; SEQ ID NO : 18). La banque de vecteurs lentiviraux ainsi produite comprend : les sept vecteurs lentiviraux sens suivants : pLV-2xAARE YB_ TATA -GFP (SEQ ID NO : 320), pLV-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-iC9 (SEQ ID NO : 321), pLV-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-Bax (SEQ ID NO : 322), pLV-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-Casp3 (SEQ ID NO : 323), pLV-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-M2 (SEQ ID NO : 324), pLV-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-aDTA (SEQ ID NO : 325), et pLV-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-DTA (SEQ ID NO : 326) ; et les sept vecteurs lentiviraux inversés suivants : pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP (SEQ ID NO : 327), pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-iC9 (SEQ ID NO : 205), pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-Bax (SEQ ID NO : 206), pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-Casp3 (SEQ ID NO : 208), pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-M2 (SEQ ID NO : 207), pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-aDTA (SEQ ID NO : 210), et pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-DTA (SEQ ID NO : 209). Après production des particules lentivirales sens, il a été observé par quantification de la p24 dans le surnageant de culture que les six vecteurs sens portant un gène toxique étaient produits à des titres significativement plus faibles que le vecteur sens contrôle ( FIG. 2 ). Cela démontre que le transgène a été exprimé pendant la transfection en cellules HEK-293T, malgré l’utilisation d’un promoteur inductible 2xAARE YB_ TATA , et que la fuite de l’expression d’un transgène toxique a affecté le processus de production des particules de vecteurs et a fait chuter les titres. Par ailleurs, ces résultats indiquent que parmi les différents gènes toxiques utilisés, Bax est apparu être le moins toxique et DTA le plus toxique, s’il est considéré que le titre moyen de chaque vecteur est inversement proportionnel à la toxicité de l’expression de son transgène sur la viabilité des cellules HEK-293T ( FIG. 2 ). Après production des particules lentivirales inversées, il a été observé par quantification de la p24 dans le surnageant de culture que l’inversion de la cassette d’expression entre les LTR 5’ et 3’ lentiviraux permet d’élever significativement les titres de particules lentivirales véhiculant les transgènes toxiques iC9, Bax, Casp3, M2 et aDTA, mais pas le transgène toxique DTA ( FIG. 3 ). Dans le détail, cette modification de l’orientation de la cassette d’expression a permis d’augmenter significativement les titres de 3x pour Bax, de 26x pour M2, de 28x pour iC9, de 77x pour Casp3 et de plus de 5000x pour aDTA. L’inversion de la cassette d’expression du transgène toxique a permis d’obtenir des titres de vecteurs lentiviraux élevés utilisables pour transduire des tissus in vivo . Les vecteurs lentiviraux inversés produits sont fonctionnels. Les capacités à transduire des cellules en culture et à les faire disparaitre en condition de stress ont été mesurées pour les particules recombinantes produites à partir de vecteurs inversés pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-iC9 (SEQ ID NO : 205), pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-M2 (SEQ ID NO : 207) ou pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-aDTA (SEQ ID NO : 210). À cette fin, ont été utilisées des cellules de mélanome humain (EST109) ou des lymphocytes primaires humains ; et la toxicité des transgènes a été corrélée, soit au décollement des cellules EST109 par mesure de l’impédance estimée sur xCELLigence (Agilent) par le « cell index » (Hamidi, H., Lilja, J. & Ivaska, J. Bio-Protoc. 7 , e2646 (2017)) ; soit à la disparition des cellules exprimant la GFP par cytométrie en flux. Lors d’une première expérience, ont été transduites des cellules adhérentes EST109 avec un vecteur pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-iC9 (SEQ ID NO : 205) ou un vecteur contrôle pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP (SEQ ID NO : 327). L’expression des transgènes GFP et iC9 ont ensuite été induits avec 4µg/mL de Tunicamycine (Tm), en présence ou en absence du dimérisateur AP1903 (4µM). Des cellules EST109 traitées avec 5µg/mL de puromycine ont servi de contrôle positif de toxicité. Il n’a été observé de décollement des cellules (chute du cell index) qu’avec les EST109 transduites avec le vecteur pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-iC9 (SEQ ID NO : 205) en présence de Tm et d’AP1903, mais pas dans les cellules contrôles (Fig. 4A -B). De plus, l’analyse par cytométrie des mêmes cellules EST109 transduites avec un vecteur pLVi-2xAAREYB_TATA-GFP-P2A-iC9 (SEQ ID NO : 205) ou un vecteur contrôle pLVi-2xAAREYB_TATA-GFP (SEQ ID NO : 327), a montré une réduction significative de la proportion de cellules exprimant la GFP uniquement pour les cellules transduites avec le vecteur pLVi-2xAAREYB_TATA-GFP-P2A-iC9 (SEQ ID NO : 205) traitées avec Tm et AP1903, mais pas sur les contrôles, n’exprimant que la GFP ou traités seulement à la Tm ( Fig. 4C). L’efficacité d’un autre vecteur cytotoxique sur les cellules EST109 a été testée et pour cela, ces cellules ont été transduites avec le vecteur pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-aDTA (SEQ ID NO : 210). Dans ces conditions, il a été observé un décollement massif des cellules suite à l’induction de l’expression du transgène à la Tm, mais pas en absence d’induction (Fig. 4D). Ces résultats ont été complétés par l’évaluation de la capacité des deux vecteurs, pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-iC9 (SEQ ID NO : 205) et pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-M2 (SEQ ID NO : 207) à transduire et éliminer des lymphocytes primaires humains en conditions induites. Les protéines iC9 et M2 ne sont pas toxiques en absence d’AP1903 ou en présence d’Amantadine (Amt), respectivement. Cette toxicité conditionnelle a permis de suivre les cellules modifiées par leur expression de la GFP en condition induite et non toxique. Ainsi, des lymphocytes CD3+ ont été transduits avec les vecteurs pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-iC9 (SEQ ID NO : 205) ou pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP (SEQ ID NO : 327), puis traités à la Tm, avec ou sans AP1903. Le traitement de ces lymphocytes à la Tm seule a permis d’observer un nombre équivalent de cellules exprimant la GFP avec les deux vecteurs. Cependant, le double traitement par la Tm et l’AP1903 a réduit significativement le nombre de lymphocytes transduits avec le vecteur pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-iC9 (SEQ ID NO : 205), mais pas par le vecteur pLVi-2xAARE YB_ TATA -GFP (SEQ ID NO : 327) (Fig. 4E ). De façon semblable, dans des lymphocytes CD3+ transduits avec les vecteurs pLVi-2xAAREYB_TATA-GFP-P2A-M2 (SEQ ID NO : 207) ou pLVi-2xAAREYB_TATA-GFP (SEQ ID NO : 327), l’expression de la GFP a été induite dans une proportion équivalente de lymphocytes en présence d’Amt, alors qu’en absence de cette drogue, le nombre de lymphocytes exprimant M2 a significativement été réduits ( Fig. 4F). Ces expériences ont démontré que les gènes cytotoxiques n’exercent leurs fonctions délétères sur la survie cellulaire qu’en cas d’induction d’ATF4 par un stress ; et que les particules lentivirales recombinantes véhiculant les cassettes inversées 2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-iC9 (SEQ ID NO : 25), 2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-M2 (SEQ ID NO : 27) et 2xAARE YB_ TATA -GFP-P2A-DTA (SEQ ID NO : 29), et produites en cellules HEK-293T, sont fonctionnelles. Génome vecteur comprenant un génome lentiviral dans lequel a été introduit une cassette d’expression comprenant un promoteur inductible en amont d’un transgène toxique ou suicide, ledit promoteur inductible étant choisi parmi : le 2xAARE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 1 ; le 2xAARE TK dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 2 ; le 4xSRE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 3 ; le 9xHRE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 ; le GRP78 YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 5 ; le promoteur du miR223 dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 6 ; et le miniCHAC1 YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 7, et l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription de ladite cassette d’expression étant inversée par rapport à l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription dudit génome lentiviral. Génome vecteur selon la revendication 1, dans lequel ledit promoteur inductible est choisi parmi : le 2xAARE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 1 ; le 2xAARE TK dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 2 ; le 4xSRE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 3 ; le 9xHRE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 ; le GRP78 YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 5 ; le promoteur du miR223 dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 6 ; et le miniCHAC1 YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 7. Génome vecteur selon la revendication 1 ou 2, dans lequel ledit transgène toxique ou suicide est choisi parmi : une protéine Caspase-9 inductible (iC9), une protéine Bax (S184 del), une protéine Noxa, une protéine Gasdermine B (N-ter), une protéine caspase-3 constitutivement active (V266E), un canal ionique M2 (H37A) du virus influenza, une sous-unité A de la toxine diphtérique (DTA) et un mutant atténué aDTA (G128D), une streptolysine O et une entérotoxine. Plasmide comprenant un génome vecteur selon l’une quelconque des revendications 1 à 3 et les moyens de l’exprimer, en particulier dans lequel l’orientation 5’ vers 3’ du promoteur cryptique de l’origine de réplication bactérienne est inversée par rapport à l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription de ladite cassette d’expression. Utilisation d’un plasmide selon la revendication 4 pour produire un vecteur lentiviral comprenant un génome vecteur selon l’une quelconque des revendications 1 à 3 à l’aide d’une cellule eucaryote animale appartenant à une lignée cellulaire choisie parmi : HEK 293T, HEK 293, CHO, GS-CHO, Free style 293-F cells (FS293), Viral Production Cells VPC et VPC 2.0, COS-1, HeLa, PS5.8 et PS46.2. Méthode de production de vecteurs lentiviraux comprenant un génome vecteur selon l’une quelconque des revendications 1 à 3, ladite méthode comprenant au moins les étapes : a. de co-transfection d’une cellule eucaryote animale appartenant à une lignée cellulaire choisie parmi : HEK 293T, HEK 293, CHO, GS-CHO, Free style 293-F cells (FS293), Viral Production Cells VPC et VPC 2.0, COS-1, HeLa, PS5.8 et PS46.2 avec : i. un plasmide selon la revendication 4 ; ii. un plasmide comprenant une protéine d’enveloppe virale et les moyens de l’exprimer ; et iii un plasmide comprenant les protéines de structures et les enzymes du VIH-1, et les moyens de l’exprimer, pour obtenir une cellule eucaryote animale transfectée ; b. de culture de ladite cellule eucaryote animale transfectée pour permettre la production de vecteurs lentiviraux comprenant un génome vecteur selon l’une quelconque des revendications 1 à 3 ; et c. de récolte et de purification desdits vecteurs lentiviraux. Vecteur lentiviral comprenant un génome vecteur selon l’une quelconque des revendications 1 à 3. Utilisation in vitro d’un vecteur lentiviral selon la revendication 7 pour transduire une cellule eucaryote animale, ladite cellule eucaryote animale étant différente d’une cellule souche pluripotente ou totipotente, ou d’une cellule souche isolée à partir d’un tissu de l’organisme, en particulier ladite cellule eucaryote animale étant choisie parmi : une cellule cancéreuse, notamment une cellule cancéreuse formant une tumeur solide ou étant impliquée dans un cancer du sang ; une cellule immunitaire notamment choisie parmi : le lymphocyte T et la cellule NK ; un myofibroblaste, notamment un myofibroblaste impliqué dans un processus de fibrose ; un astrocyte, notamment un astrocyte activé lors d’un traumatisme cérébral ou de la moelle épinière et formant une cicatrice gliale empêchant la régénération ; et une cellule souche induite (iPS). Cellule eucaryote animale transduite par un vecteur lentiviral selon la revendication 7, ladite cellule eucaryote animale transduite étant différente d’une cellule souche pluripotente ou totipotente, ou d’une cellule souche isolée à partir d’un tissu de l’organisme, en particulier ladite cellule eucaryote animale transduite étant choisie parmi : une cellule cancéreuse, notamment une cellule cancéreuse formant une tumeur solide ou étant impliquée dans un cancer du sang ; une cellule immunitaire notamment choisie parmi : le lymphocyte T et la cellule NK ; un myofibroblaste, notamment un myofibroblaste impliqué dans un processus de fibrose ; un astrocyte, notamment un astrocyte activé lors d’un traumatisme cérébral ou de la moelle épinière et formant une cicatrice gliale empêchant la régénération ; et une cellule souche induite (iPS). Cellule eucaryote animale transduite selon la revendication 9 pour son utilisation en thérapie cellulaire, en particulier pour traiter une pathologie choisie parmi : un cancer, une leucémie et une fibrose.