FR 3152409 A1 20250307 FR 2309262 A 20230904 Procédé pour l’élimination sélective des leucocytes et des érythrocytes d’un produit concentré en plaquettes. L’invention concerne un procédé pour éliminer de façon sélective des leucocytes et des érythrocytes d’un produit concentré en plaquettes sanguines, ledit procédé comprenant le passage d’un produit concentré en plaquettes sanguines et réduit en leucocytes au travers d’un élément poreux barrière aux érythrocytes, ledit élément poreux barrière aux érythrocytes comprenant au moins une membrane poreuse réalisée dans un matériau hydrophile, les pores de ladite membrane ayant une taille nominale comprise entre 1 µm et 4 µm, et une taille absolue de pores comprise entre 2 µm et 5 µm. Figure pour l’abrégé : Fig. 3 Procédé pour l’élimination sélective des leucocytes et des érythrocytes d’un produit concentré en plaquettes L’invention concerne un procédé pour l’élimination sélective des leucocytes et des érythrocytes d’un produit sanguin concentré en plaquettes, ainsi qu'une unité de filtration et des systèmes à poches pour mettre en œuvre ledit procédé. Elle s’applique typiquement à la filtration du sang ou d’un composant sanguin contenant des plaquettes tel qu’un plasma riche en plaquettes (PRP), un concentré plaquettaire unitaire (CPU) ou un assemblage de concentrés plaquettaires (CP). Le sang total est constitué de deux types de composants : les cellules sanguines comprenant les globules rouges, les leucocytes et les plaquettes, et le plasma, liquide jaune pâle dans lequel les cellules sanguines sont en suspension. Actuellement, dans la très grande majorité des cas, on ne transfuse aux patients que les composants sanguins nécessaires à leur état. Par exemple, on ne transfuse que des concentrés plaquettaires aux patients atteints de thrombocytopénie, c’est-à-dire dont la teneur en plaquettes dans le sang est réduite. Il existe plusieurs méthodes de préparation des concentrés plaquettaires issus de sang total, parmi lesquelles on peut citer la méthode de préparation à partir de couches leucoplaquettaires (European Directorate for the Quality of Medicines. Healthcare (EDQM), Council of Europe: Guide to the preparation, use and quality assurance of blood components, (2019)). Selon cette méthode de préparation, une unité de sang total est centrifugée de sorte à séparer le sang en trois couches : une couche de surnageant de plasma, une couche intermédiaire leucoplaquettaire comprenant un mélange de leucocytes, plaquettes, globules rouges et plasma, et une couche de culot de globules rouges. La couche leucoplaquettaire est séparée des autres couches. Entre quatre et huit couches leucoplaquettaires ainsi séparées sont ensuite réunies et re-suspendues dans du plasma ou dans une solution additive pour plaquettes. Ce mélange est à nouveau centrifugé (centrifugation douce) de sorte à obtenir une couche de surnageant de concentré plaquettaire et une couche de culot de globules rouges. Le concentré plaquettaire est enfin séparé et conservé jusqu’à 4 à 7 jours à température ambiante. Ce concentré plaquettaire contient encore des leucocytes et des globules rouges résiduels. Or, les leucocytes ont des effets indésirables très importants, ce qui a conduit à chercher à les éliminer des composants sanguins destinés à la transfusion. En effet, les leucocytes augmentent le risque de rejet immunitaire tel que la maladie du greffon contre l’hôte et favorisent la transmission d’agents infectieux. Il a aussi été démontré que les leucocytes affectaient de façon négative la conservation des plaquettes. D’autre part, les globules rouges résiduels ainsi que les microparticules dérivées des plaquettes présents dans les concentrés plaquettaires entraînent un risque d’alloimmunisation des globules rouges, c’est-à-dire la production d’anticorps anti-érythrocytaires chez le transfusé (Moncharmont P. et al. "Red blood cell alloimmunisation after platelet transfusion: a 5-year study." Blood Transfusion 12.Suppl 1 (2014): s147). Reckhaus et al. ont constaté que ce risque d’alloimmunisation est plus important avec des concentrés plaquettaires préparés à partir d’un assemblage de couches leucoplaquettaires (Buffy-coat derived Platelet Concentrate, BC-PC) qu’avec des concentrés plaquettaires obtenus par aphérèse (Apheresis derived Platelet Concentrate, AP-PC), ces derniers contenant en moyenne moins de globules rouges résiduels. En effet, les concentrés plaquettaires BC-PC contiennent en moyenne 0,302.10 9 globules rouges/L quand les concentrés plaquettaires AP-PC en contiennent 0,014.10 9 /L (Reckhaus, Johanna, et al. "Platelet transfusion induces alloimmuization to D and non-D Rhesus antigens." Transfusion medicine and hemotherapy 45.3 (2018): 167-172.) Pour éliminer les leucocytes des concentrés plaquettaires destinés à la transfusion, on connaît déjà des unités de filtration renfermant un milieu de déleucocytation. Dans de telles unités, le milieu de déleucocytation comprend une ou plusieurs membrane(s) et/ou une ou plusieurs couche(s) de non-tissé réalisée(s) en un matériau polymère et traitée(s) de façon à améliorer le taux de déleucocytation et/ou la récupération des plaquettes. Par exemple, le document EP 2 783 717 A1 décrit un filtre pour éliminer de façon sélective les leucocytes d’un fluide contenant des plaquettes, ledit filtre renfermant un non-tissé enduit d’un polymère obtenu d’un monomère de méthacrylate de méthyle et d’un macromonomère méthacrylate de poly(oxyde d’éthylène). Dans le document WO 2022/136138 A1, le filtre pour éliminer de façon sélective les leucocytes d’un fluide contenant des plaquettes comprend un non-tissé imprégné d’un co-polymère de méthacrylate de 2-méthoxyéthyle et d’un momomère hydrophobe tel qu’un méthacrylate de méthyle ou un acétate de vinyle. Dans un autre exemple, le document US 5,152,905 décrit un filtre pour éliminer les leucocytes d’un plasma riche en plaquettes (PRP) préparé à partir d’un don de sang total, le filtre comprenant des fibres de poly(téréphtalate de butylène) (PBT) greffées avec un monomère de méthacrylate d’hydroxyéthyle (HEMA) et d’acide méthacrylique (MAA). En variante, le filtre comprend en amont un milieu poreux de plus haute densité pour bloquer les globules rouges. Ce milieu poreux agit comme une valve en bloquant l’écoulement de PRP dès que les globules rouges entrent en contact avec ce milieu poreux et s’agrègent à sa surface. Ce document indique que la rétention des globules rouges n’est pas dû à la taille des pores du milieu poreux ni à une filtration mécanique. Le document US 5,234,593 décrit un autre type de filtre pour éliminer de façon sélective les leucocytes d’un concentré plaquettaire à l’aide d’un corps poreux possédant une texture réticulaire continue, tridimensionnelle, contenant des pores ouverts continus ayant un diamètre moyen de 6 à 12 µm. Plus particulièrement, le corps poreux est une mousse de polyuréthanne dont plus de 60% des pores ont un diamètre supérieur ou égale à 4 µm. Ces deux derniers filtres, commercialisés sous les noms Autostop (Haemonetics) et Imugard (Terumo BCT), ne permettent pas d’atteindre une concentration en globules rouges résiduels aussi faible que dans un concentré plaquettaire d’aphérèse (Van der Meer P. et al. "Leucoreduced platelet concentrates in additive solution: an evaluation of filters and storage containers." Vox sanguinis 81.2 (2001): 102-107). En effet, les globules rouges, bien qu’ayant une taille d’environ 5 à 9 µm, sont déformables et capables de passer au travers des pores ayant une taille inférieure à 1 µm. Les plaquettes ont quant à elles une taille d’environ 2 à 4 µm et les leucocytes d’environ 6 à 19 µm. L’invention propose un procédé permettant d’obtenir un produit concentré en plaquettes réduit en leucocytes et contenant notamment moins de 80 érythrocytes par µL, plus particulièrement moins de 15 érythrocytes par µL. Selon un premier aspect, l’invention propose un procédé pour éliminer de façon sélective des leucocytes et des érythrocytes d’un produit concentré en plaquettes sanguines, ledit procédé comprenant le passage d’un produit concentré en plaquettes sanguines et réduit en leucocytes au travers d’un élément poreux barrière aux érythrocytes, ledit élément poreux barrière aux érythrocytes comprenant au moins une membrane poreuse réalisée dans un matériau hydrophile, les pores de ladite membrane ayant une taille nominale comprise entre 1 µm et 4 µm, et une taille absolue de pores comprise entre 2 µm et 5 µm. Selon un second aspect, l’invention concerne une unité de filtration pour la mise en œuvre du procédé de l’invention comprenant une enveloppe extérieure munie d’au moins un orifice d’entrée et d’au moins un orifice de sortie, l’enveloppe renfermant d’amont en aval : - un élément poreux de déleucocytation par adsorption et/ou par filtration des leucocytes, ledit élément poreux de déleucocytation comprenant au moins une couche dont les pores ont un diamètre moyen compris entre 3 et 15 µm, et - un élément poreux barrière aux érythrocytes comprenant au moins une membrane poreuse réalisée dans un matériau hydrophile, les pores de ladite membrane ayant une taille nominale comprise entre 1 µm et 4 µm, et une taille absolue de pores comprise entre 2 µm et 5 µm. Selon un troisième aspect, l’invention concerne un système à poches pour l’élimination sélective des leucocytes et érythrocytes d’un produit concentré en plaquettes, comprenant : - une unité de filtration selon le deuxième aspect de l’invention, et - une poche de recueil du filtrat, ladite poche étant reliée, par l’intermédiaire d’une tubulure, à un orifice de sortie de l’unité de filtration. Un quatrième aspect de l’invention porte sur un système à poches pour la mise en œuvre du procédé selon l’invention, comprenant : - une première unité de filtration pour l’élimination sélective des leucocytes, ladite première unité de filtration comprenant un élément poreux de déleucocytation par adsorption et/ou par filtration des leucocytes, ledit élément poreux de déleucocytation comprenant au moins une couche dont les pores ont un diamètre moyen compris entre 3 et 15 µm, - une première poche de recueil du filtrat, ladite première poche étant reliée, par l’intermédiaire d’une tubulure, à un orifice de sortie de ladite première unité de filtration, - une deuxième unité de filtration pour l’élimination sélective des érythrocytes, ladite deuxième unité de filtration comprenant un élément poreux barrière aux érythrocytes, ledit élément poreux barrière aux érythrocytes comprenant au moins une membrane poreuse réalisée dans un matériau hydrophile, les pores de ladite membrane ayant une taille nominale comprise entre 1 µm et 4 µm, et une taille absolue de pores comprise entre 2 µm et 5 µm, ladite deuxième unité de filtration étant en outre reliée ou destinée à être reliée par l’intermédiaire d’une tubulure, à un orifice de sortie de ladite première poche de recueil du filtrat, et - une deuxième poche de recueil du filtrat, ladite deuxième poche de recueil étant reliée, par l’intermédiaire d’une tubulure, à un orifice de sortie de ladite deuxième unité de filtration. Les dessins annexés illustrent l’invention : FIG. 1 représente une vue schématique d’une unité de filtration selon l’invention. FIG. 2 représente une vue schématique en coupe d’une unité de filtration de la FIG. 1 . FIG. 3 représente une vue schématique d’un système à poches pour mettre en œuvre le procédé pour éliminer les leucocytes et les érythrocytes d’un produit concentré en plaquettes. FIG. 4 représente une vue schématique d’un autre système à poches pour mettre en œuvre le procédé pour éliminer les leucocytes et les érythrocytes d’un produit concentré en plaquettes. Selon un premier aspect, l'invention propose un procédé pour éliminer de façon sélective des leucocytes et des érythrocytes d’un produit concentré en plaquettes sanguines. Un produit concentré en plaquettes sanguines est un produit dont la concentration en plaquettes est supérieure à la concentration normale en plaquettes dans le sang. Un produit concentré en plaquettes est typiquement obtenu en fractionnant le sang total ou en pratiquant une aphérèse. Un produit concentré en plaquettes est par exemple un plasma riche en plaquettes (PRP), un concentré plaquettaire unitaire (CPU) préparé à partir d’un PRP ou d’une couche leucoplaquettaires, ou un assemblage de concentrés plaquettaires (CP). Dans le cas d’un assemblage de concentrés plaquettaires, celui-ci est préparé en particulier par la méthode de préparation à partir de couches leucoplaquettaires, en utilisant une solution additive pour plaquettes. Lorsqu’on utilise une solution additive pour plaquettes, le concentré plaquettaire final est constitué en général des plaquettes re-suspendues dans un mélange constitué de plasma (20-40%) et de solution additive (60-80%). Selon cette méthode de préparation, le concentré plaquettaire comprend des leucocytes mais aussi des érythrocytes résiduels qui représentent un risque immunologique pour le patient transfusé. Le procédé de l’invention permet de séparer sélectivement ces leucocytes et érythrocytes résiduels des plaquettes sanguines. Notamment, dans le cas d’un concentré plaquettaire issu de couches leucoplaquettaires, le procédé permet d’obtenir un nombre de leucocytes dans le concentré plaquettaire inférieur à 1.10 6 , un nombre de plaquettes d'au moins 2.10 11 et une concentration en érythrocytes résiduels inférieure à 80 érythrocytes par µL. Le procédé de l’invention comprend le passage d’un produit concentré en plaquettes sanguines et réduit en leucocytes au travers d’un élément poreux barrière aux érythrocytes, ledit élément poreux barrière aux érythrocytes comprenant au moins une membrane poreuse réalisée dans un matériau hydrophile, les pores de ladite membrane ayant une taille nominale comprise entre 1 µm et 4 µm, et une taille absolue de pores comprise entre 2 µm et 5 µm. Le passage du produit concentré en plaquettes sanguines et réduit en leucocytes au travers d’un élément poreux barrière aux érythrocytes est réalisé par gravité ou plus particulièrement sous pression, par exemple à l’aide d’une presse. L’élément poreux barrière aux érythrocytes est destiné à retenir les érythrocytes résiduels d’un produit concentré en plaquettes préalablement réduit en leucocytes tout en laissant passer les plaquettes. L’élément poreux barrière aux érythrocytes comprend une membrane hydrophile. Selon une réalisation, la membrane est réalisée dans un matériau naturellement hydrophile tel que le polyester, le polyester sulfone, l’acétate de cellulose ou le nylon. En variante, la membrane est réalisée dans un matériau hydrophobe tel que le polycarbonate, rendu hydrophile par enduit chimique. En particulier, la membrane est revêtue d’un polymère biocompatible. Par polymère biocompatible, on entend un polymère compatible avec le sang ou les composants sanguins, prévenant ou réduisant l’adsorption des protéines et des plaquettes sur la membrane revêtue d’un tel polymère. Le polymère biocompatible est constitué d’au moins une unité provenant d’un monomère biocompatible. Selon une réalisation, le monomère biocompatible est choisi dans la liste constituée des monomères de N-vinylpyrrolidone, acrylate de 2-méthoxyéthyle, 2-méthacryloyloxyéthylphosphorylcholine, méthacrylate de 2-hydroxyéthyle, éthylène glycol et les mélanges de ces monomères. Selon une variante, le polymère biocompatible est constitué d’au moins une unité provenant d’un monomère biocompatible et d’au moins une unité provenant d’un monomère hydrophobe. Selon une réalisation, le monomère hydrophobe est choisi parmi le groupe constitué d’un acrylate d’alkyle, un méthacrylate d’alkyle et un alkylate de vinyle. Par exemple, ce monomère hydrophobe est le méthacrylate de méthyle ou l’acétate de vinyle. Ce monomère hydrophobe contribue au maintien du polymère biocompatible à la surface de la membrane. Des exemples particuliers de polymères biocompatibles sont les polymères constitués d’une unité monomère d’acrylate de 2-méthoxyéthyle et d’une unité monomère de méthacrylate de méthyle ou d’acétate de vinyle ; d’une unité monomère de méthacrylate de poly(oxyde d’éthylène) et d’une unité monomère de méthacrylate de méthyle ; d’une unité monomère de méthacrylate de 2-hydroxyéthyle et d’une unité monomère de méthacrylate de diéthylaminoéthyle ; ou d’une unité monomère de pyrrolidone de vinyle et d’une unité monomère d’acétate de vinyle. Selon une réalisation, la membrane est une membrane naturellement hydrophile revêtue d’un polymère biocompatible. Plus particulièrement, la membrane est une membrane de polyester revêtue d’un polymère biocompatible constitué d’une unité monomère d’acrylate de 2-méthoxyéthyle et d’une unité monomère de méthacrylate de méthyle. La membrane formant élément poreux barrière aux érythrocytes possède une taille de pores nominale comprise entre 1 µm et 4 µm. Par taille de pores nominale, on entend la taille des pores prédominante d’une membrane. La membrane comprend des pores plus grands ou plus petits que cette taille nominale, mais la quantité de pores ayant la taille de pores nominale est plus importante que celle des pores ayant une autre taille. Une membrane ayant une taille de pores nominale supérieure à 4 µm ne retient pas suffisamment d’érythrocytes résiduels d’un produit concentré de plaquettes. Une membrane ayant une taille de pores nominale inférieure à 1 µm ne permet pas de récupérer suffisamment de plaquettes. La membrane possède en outre une taille absolue de pores comprise entre 2 µm et 5 µm. Par taille de pores absolue, on entend la taille des plus petites particules complètement retenues par la membrane. La taille absolue des pores d’une membrane correspond à la taille maximale des pores d’une membrane. Une membrane ayant une taille absolue de pores inférieure à 2 µm ne laisse pas passer suffisamment de plaquettes. Une membrane ayant une taille absolue de pores supérieure à 5 µm ne retient pas suffisamment les érythrocytes. Une telle membrane est notamment fabriquée par un procédé d’inversion de phase, un procédé d’étirage ou un procédé de bombardement ionique suivi d’une gravure (track-etching). Le procédé de track-etching est avantageux en ce qu’il permet d’obtenir une grande densité de pores et un diamètre des pores régulier. Par exemple, la densité de pores de la membrane est comprise entre 4.10 5 et 2.10 7 pores/cm², notamment d’environ 2.10 6 pores /cm². Notamment, l’épaisseur de la membrane est comprise entre 9 et 12 µm. Par exemple, la membrane possède une taille de pores nominale de 2 µm et une taille absolue de 2,5 µm. Dans un autre exemple, la membrane possède une taille de pores nominale de 3 µm et une taille absolue de 4,2 µm. Selon une réalisation particulière, l’élément poreux barrière aux érythrocytes comprend en outre un pré filtre et/ou post-filtre qui sont réalisés sous la forme d’au moins une couche de non-tissé et qui sont disposés respectivement côté amont et côté aval de la membrane poreuse. Ces pré-filtres ou post-filtres ont notamment une taille de pores moyenne supérieure à celle de la membrane, par exemple comprise entre 25 et 50 µm. Les pré-filtres et post-filtres sont avantageusement imprégnés d'un polymère biocompatible facilitant le passage des plaquettes comme décrit ci-dessus. Selon une autre réalisation, l’élément poreux barrière aux érythrocytes comprend plusieurs membranes poreuses réalisées dans un matériau hydrophile de même porosité ou de porosité décroissante d’amont en aval de l’élément poreux barrière aux érythrocytes, dans le sens de la filtration. La taille nominale de ces membranes est comprise entre 2 et 7 µm, par exemple 2, µm, 3 µm et 5 µm. Avantageusement, afin d’éviter le colmatage d’un tel empilement de membranes, l’élément poreux barrière aux érythrocytes comprend des couches intercalaires de porosité supérieure à celle des membranes. Par exemples, ces couches intercalaires sont des couches de non-tissé ayant une porosité moyenne comprise entre 3 et 15 µm, notamment entre 7 et 10 µm. Ces couches intercalaires sont avantageusement imprégnées d'un polymère biocompatible facilitant le passage des plaquettes comme décrit ci-dessus. Le polymère biocompatible est le même ou non que celui utilisé pour imprégner la membrane poreuse. Selon le procédé de l’invention, le produit concentré en plaquettes est réduit en leucocytes avant passage au travers de l’élément poreux barrière aux érythrocytes. La réduction en leucocytes évite le colmatage de la membrane poreuse formant barrière aux érythrocytes. Ainsi, le procédé pour éliminer de façon sélective des leucocytes et des érythrocytes d’un produit concentré en plaquettes sanguines comprend le passage préalable du produit concentré en plaquettes au travers d’un élément poreux de déleucocytation par adsorption et/ou par filtration des leucocytes, de sorte à obtenir un produit concentré en plaquettes et réduit en leucocytes. Le passage du produit concentré en plaquettes sanguines au travers d’un élément poreux de déleucocytation est réalisé par gravité ou sous pression. Les leucocytes sont retenus par l’élément poreux de déleucocytation par l'un et/ou l'autre des mécanismes suivants. Le premier mécanisme est l'adsorption des leucocytes à la surface de l’élément poreux de déleucocytation. Les leucocytes sont adsorbés sur des surfaces cationiques et moyennement hydrophobes. La qualité de l'adsorption dépend également de la surface de contact disponible pour l'adsorption des leucocytes. Le deuxième mécanisme est le tamisage et dépend principalement du diamètre des pores de l’élément poreux de déleucocytation. L’élément poreux de déleucocytation permet une déleucocytation sélective d’un produit concentré en plaquettes, c'est-à-dire qu'il est capable de retenir les leucocytes tout en laissant passer les plaquettes. Notamment, lorsque le fluide à filtrer est un concentré plaquettaire issu de couches leucoplaquettaires, l’élément poreux de déleucocytation est apte à obtenir un nombre de leucocytes dans le concentré plaquettaire filtré qui est inférieur à 1.10 6 et à laisser passer au moins 70 % des plaquettes sanguines. Le nombre de plaquettes dans le concentré plaquettaire après filtration est notamment d'au moins 2.10 11 plaquettes. L’élément poreux de déleucocytation comprenant au moins une couche poreuse dont les pores ont un diamètre moyen compris entre 3 et 15 µm, notamment entre 7 et 10 µm. Cette taille de pores permet de retenir par filtration mécanique les leucocytes. Selon une réalisation, l’élément poreux de déleucocytation comprend une ou plusieurs couches de non-tissé. En particulier, l’élément poreux de déleucocytation comprend entre 5 et 40 couches de non-tissé, et plus particulièrement entre 15 et 25 couches de non-tissé. Par exemple, le diamètre des fibres de la ou des couches de non-tissé est compris entre 0,3 et 7 µm, avec une moyenne comprise entre 1 et 3 µm. Notamment, l’élément poreux de déleucocytation comprend des fibres de polyester, par exemple des fibres de polybutylène téréphtalate ou de polyéthylène téréphtalate. Avantageusement, l’élément poreux de déleucocytation est imprégné d'un polymère biocompatible tel que décrit ci-dessus prévenant l’adhésion des plaquettes à sa surface. Le polymère biocompatible est le même ou non que celui utilisé pour imprégner l’élément poreux barrière aux érythrocytes. Selon une réalisation particulière, l’élément poreux de déleucocytation comprend en outre un pré filtre et/ou post-filtre qui sont réalisés sous la forme d’au moins une couche de non-tissé et qui sont disposés respectivement côté amont et côté aval de la ou les couches poreuses. Ces pré-filtres ou post-filtres ont notamment une taille de pores moyenne supérieure à celle de la ou les couches poreuses, par exemple comprise entre 25 et 50 µm. Les pré-filtres et post-filtres sont imprégnés d'un polymère biocompatible facilitant le passage des plaquettes comme décrit ci-dessus. Selon une réalisation particulière, le produit concentré en plaquettes est en outre réduit en anticorps anti-A et/ou anti-B. En effet, comme les concentrés plaquettaires comprennent du plasma, certains centres de transfusion appliquent les mêmes règles de compatibilité ABO lors d’une transfusion d’un concentré plaquettaire que lors d’une transfusion de plasma (compatibilité mineure). Ainsi, le plasma AB est utilisable quel que soit le groupe du receveur, et le plasma A ou B est utilisable pour un receveur O. Cette règle permet d’éviter une hémolyse post-transfusionnelle, c’est-à-dire une hémolyse des globules rouges du receveur par les anticorps hémolysants anti-A et anti-B présents dans le plasma du donneur. Cependant, il n’est pas rare de transfuser des concentrés plaquettaires incompatibles ABO en cas d’urgence ou en cas d’indisponibilité de concentrés plaquettaires compatibles ABO. Dans ce cas, on sélectionne les concentrés plaquettaires ayant un titrage en anticorps anti-A et/ou anticorps anti-B faible. La réduction des anticorps anti-A et/anti-B dans des concentrés plaquettaires permet non seulement de réduire le risque d’hémolyse post-transfusionnelle en cas de transfusion incompatible ABO mais aussi de faciliter l’inventaire des concentrés plaquettaires dans les banques de sang et les hôpitaux. Pour réduire le titrage des anticorps anti-A et/ou anti-B, le procédé comprend, avant le passage du produit concentré en plaquettes au travers de l’élément poreux barrière aux érythrocytes, la mise en contact d’un produit concentré en plaquettes sanguines avec un ensemble de particules capables de lier les anticorps anti-A et/ou anti-B dudit produit concentré en plaquettes, de sorte à obtenir un mélange d’un produit concentré en plaquettes réduits en anticorps anti-A et/ou anti-B et de particules liées ou non à des anticorps anti-A et/ou anti-B. La mise en contact du produit concentré en plaquettes avec l’ensemble des particules est réalisé avant ou après l’élimination des leucocytes par passage au travers de l’élément poreux de déleucocytation, mais avant passage au travers l’élément poreux formant barrières aux érythrocytes. Les particules capables de lier les anticorps anti-A et/ou anti-B sont notamment celles décrites dans le document WO 2021/144380. Notamment, ces particules sont greffées avec des oligosaccharides, tels que des oligosaccharides capables de lier des anticorps tels que les anticorps anti-A et/ou les anticorps anti-B. Par exemple, ces particules sont des particules de cellulose ultrafines greffées à l’aide d’un oligosaccharide antigénique de groupe A ou B, comme celles décrites dans le document WO2016/177967. Dans un autre exemple, les particules sont celles décrites dans le document EP3141558A1 ou les billes IsoClear commercialisées par Prometic Bioseparations. Par exemple, les particules ont une taille moyenne supérieure à 15 µm avec une distribution en taille allant de moins de 2 µm jusqu’à environ 100 µm. Le produit concentré en plaquettes réduit en anticorps anti-A et/ou anti-B est ensuite passé au travers de l’élément poreux barrière aux érythrocytes ou au travers de l’élément poreux de déleucocytation puis celui barrière aux érythrocytes afin de séparer les particules du produit concentré plaquettaire réduit en anticorps anti-A et/ou anti-B. L’élément poreux barrière aux érythrocytes forme alors un élément poreux barrière aux particules puisqu’il permet de retenir les particules liées ou nan aux anticorps anti-A et/ou anti-B du produit concentré en plaquettes réduit en anticorps anti-A et/ou anti-B. Dans une réalisation particulière, pour s’assurer que l’ensemble des particules ne comprend pas de particules ayant une taille plus petite que celle des pores de la membranes poreuse formant élément barrière aux érythrocytes et/ou aux particules, avant mise en contact avec le produit concentré plaquettaire, l’ensemble des particules est passé à travers un tamis ayant des mailles dont la taille est supérieure à la taille des pores de la membrane poreuse. Par exemple, le tamis possède des mailles ayant une taille de 5 µm, 10 µm ou 20 µm. Selon un autre aspect et en lien avec les figures 1 et 2, l’invention concerne une unité de filtration 1 pour la mise en œuvre du procédé pour éliminer de façon sélective des leucocytes et des érythrocytes d’un produit concentré en plaquettes sanguines, ladite unité de filtration 1 comprenant une enveloppe extérieure munie d’au moins un orifice d’entrée 2 et d’au moins un orifice de sortie 3, l’enveloppe renfermant d’amont en aval : - un élément poreux de déleucocytation 4 par adsorption et/ou par filtration des leucocytes, ledit élément poreux de déleucocytation comprenant au moins une couche dont les pores ont un diamètre moyen compris entre 3 et 15 µm, et - un élément poreux barrière aux érythrocytes 5 comprenant au moins une membrane poreuse réalisée dans un matériau hydrophile, les pores de ladite membrane ayant une taille nominale comprise entre 1 µm et 4 µm, et une taille absolue de pores comprise entre 2 µm et 5 µm. Les termes « amont et « aval » sont définis par rapport au sens d’écoulement du produit concentré en plaquettes dans l’unité de filtration. Chacun des éléments poreux de déleucocyation et barrière aux érythrocytes sont notamment ceux décrit ci-dessus. L’élément poreux de déleucocytation est disposé en amont de l’élément poreux barrière aux érythrocytes. Ainsi, le produit concentré en plaquettes est d’abord réduit en leucocytes, puis réduit en érythrocytes. Cette disposition réduit le risque de colmatage de la membrane formant l’élément poreux barrière aux érythrocytes. On décrit maintenant en lien avec la FIG. 3 , un système à poches 6 pour l’élimination sélective des leucocytes et érythrocytes d’un produit concentré en plaquettes. Le système à poches 6 comprend une unité de filtration 1 et une poche 7 de recueil du filtrat, ladite poche 7 étant reliée, par l’intermédiaire d’une première tubulure 8, à un orifice de sortie 3 de l’unité de filtration 1. L’unité de filtration 1 comprend d’amont en aval un élément poreux 4 de déleucocytation par adsorption et/ou par filtration des leucocytes, et un élément poreux 5 barrière aux érythrocytes tels que décrits ci-dessus. En variante, l’unité de filtration comprend seulement un élément poreux 5 barrière aux érythrocytes. L'enveloppe extérieure de l'unité de filtration est souple, rigide ou semi-rigide. Le système à poches 6 comprend en outre une poche 9 d’assemblage connectée ou destinée à être connectée par l'intermédiaire d'une deuxième tubulure 10 à l'unité de filtration 1. Pour la préparation d’un assemblage de couches leucoplaquettaires, la poche 9 d’assemblage est en communication fluidique avec un ensemble de tubulures en configuration « pieuvre », ledit ensemble de tubulures étant constitué d'une tubulure principale 11 et de tubulures secondaires 12 branchées sur la tubulure principale. Ces tubulures secondaires 12 sont destinées à être connectées de façon stérile à au moins quatre poches contenant une couche leucoplaquettaire et éventuellement à une poche contenant une solution additive de conservation des plaquettes ou du plasma. Dans une réalisation particulière, la poche d’assemblage 9 comprend un ensemble de particules 17 capables de lier les anticorps anti-A et/ou anti-B dudit produit concentré en plaquettes. Ces particules sont avantageusement passées au travers d’un tamis avant agencement dans la poche d’assemblage. Selon une autre réalisation particulière, la poche 7 de recueil du filtrat est en communication fluidique par l'intermédiaire d'une troisième tubulure 13 à une poche satellite 14 destinée à recevoir l'air présent dans la poche 7 de recueil du filtrat et/ou au recueil d'un échantillon du fluide contenu dans la poche 7 de recueil du filtrat. Afin de prélever des échantillons du fluide contenu dans la poche 7, le système à poches comprend une quatrième tubulure 15 branchée sur la troisième tubulure 13, ladite quatrième tubulure 15 étant pourvue à son extrémité d'un moyen de prélèvement 16. L'échantillon prélevé par ce moyen est utilisé pour la détection d'une contamination bactérienne (Système Bact/Alert® par exemple). Les tubulures sont pourvues de clamp pour contrôler l'écoulement des fluides à l'intérieur du système à poches. Lorsque l’unité de filtration comprend une enveloppe souple, l’unité de filtration 1 gonfle lors de la filtration. Afin d’éviter ce gonflement, on place avantageusement l’unité de filtration dans un étui rigide (non représenté). En relation avec le système à poches de type « pieuvre » de la FIG. 3 , on décrit maintenant une utilisation particulière du système à poches 6 pour la préparation d’un concentré plaquettaire réduit en leucocytes et érythrocytes. Entre quatre et huit poches contenant une couche leucoplaquettaire sont connectées de façon stérile, par exemple à l'aide d'un appareil de connexion stérile de type SCD (Terumo) aux tubulures secondaires 12 d'un système à poches 6. Une poche de solution de conservation de type SSP+ (Macopharma, France) est également connectée de façon stérile à l'une des tubulures secondaires 12. Les couches leucoplaquettaires s'écoulent dans la poche 9 d’assemblage. Les poches ayant contenues lesdites couches leucoplaquettaires sont ensuite rincées à l’aide de la solution de conservation. Puis on transfère le reste de la solution de conservation vers la poche 9 d’assemblage. L'ensemble de tubulures principale et secondaires 11,12 est ensuite séparé de la poche 9 d’assemblage par soudure. La poche 9 d’assemblage est centrifugée pour obtenir une couche de culot de globules rouges et une couche de surnageant de concentré plaquettaire. La poche 9 d’assemblage contenant le culot de globules rouges et le surnageant de concentré plaquettaire est ensuite pressée, par exemple à l'aide d'un dispositif de presse de type Macopress Smart (Macopharma, France) afin d'envoyer le concentré plaquettaire dans la poche 7 de recueil du filtrat via l'unité de filtration 1 de l'invention. On obtient ainsi un concentré de plaquettes réduit en leucocytes et en érythrocytes. Dans la variante selon laquelle la poche 9 d’assemblage comprend un ensemble de particules 17 capables de lier des anticorps anti-A et/ou anti-B dudit produit concentré en plaquettes, avant la centrifugation de la poche 9 d’assemblage, le mélange de couches leucoplaquettaires dans la poche 9 d’assemblage est incubé avec l’ensemble des particules 17 pendant un temps suffisant pour lier lesdits anticorps auxdites particules, par exemple une heure. Après centrifugation de la poche 9 d’assemblage, la couche de culot comprend non seulement les globules rouges mais aussi les particules liées ou non aux anticorps anti-A et/ou anti-B. A la fin du procédé, on obtient un concentré de plaquettes réduit en leucocytes, en érythrocytes et en anticorps anti-A et/ou anti-B. Une variante de système à poches pour éliminer de façon sélective des leucocytes et des érythrocytes d’un produit concentré en plaquettes sanguines est représentée sur la FIG. 4 . Dans cette variante, l’élément poreux de déleucocytation et l’élément poreux barrière aux érythrocytes sont agencés chacun dans une unité de filtration distincte. Ce système à poches est utilisé pour préparer un concentré plaquettaire à partir de couches leucoplaquettaires selon la méthode « train ». Les éléments communs au système à poches de la FIG. 3 conservent la même numérotation. En lien avec la FIG. 4 , le système à poches 18 comprend : - une première unité de filtration 19 pour l’élimination sélective des leucocytes, ladite première unité de filtration 19 comprenant un élément poreux de déleucocytation par adsorption et/ou par filtration des leucocytes, ledit élément poreux de déleucocytation comprenant au moins une couche dont les pores ont un diamètre moyen compris entre 3 et 15 µm, - une poche de recueil du premier filtrat 20, ladite première poche de recueil 20 étant reliée, par l’intermédiaire d’une cinquième tubulure 21, à un orifice de sortie de ladite première unité de filtration 19, - une deuxième unité de filtration 22 pour l’élimination sélective des érythrocytes, ladite deuxième unité de filtration comprenant un élément poreux barrière aux érythrocytes, ledit élément poreux barrières aux érythrocytes comprenant au moins une membrane poreuse réalisée dans un matériau hydrophile, les pores de ladite membrane ayant une taille nominale comprise entre 1 µm et 4 µm, et une taille absolue de pores comprise entre 2 µm et 5 µm, ladite deuxième unité de filtration 22 étant en outre reliée par l’intermédiaire d’une sixième 23 tubulure, à un orifice de sortie de ladite poche de recueil du premier filtrat 20, et - une poche de recueil du filtrat 7, ladite poche de recueil étant reliée, par l’intermédiaire d’une première tubulure 8, à un orifice de sortie de ladite deuxième unité de filtration 22. Le système à poches 18 comprend en outre une poche 9 d’assemblage de couches leucoplaquettaires, connectée ou destinée à être connectée par l'intermédiaire d'une deuxième tubulure 10 à l’orifice d’entrée de la première unité de filtration 19. En variante non représentée, cette poche 9 d’assemblage comprend un ensemble de particules 17 capables de lier des anticorps anti-A et/ou anti-B. En variante représentée sur la FIG. 4 , un ensemble de particules 17 capables de lier des anticorps anti-A et/ou anti-B d’un produit concentré en plaquettes est placé dans la poche 20 de recueil du premier filtrat. En relation avec le système à poches de la FIG. 4 , on décrit maintenant une utilisation particulière du système à poches 18 pour la préparation d’un concentré plaquettaire réduit en leucocytes et érythrocytes. Un assemblage de quatre à huit couches leucoplaquettaires en suspension dans une solution de conservation des plaquettes est obtenu dans une poche d’assemblage 9 par la méthode « train ». Cette poche 9 d’assemblage est connectée de façon stérile au reste du système à poche 18 puis centrifugée afin d’obtenir une couche de culot de globules rouges et une couche de surnageant de concentré plaquettaire. Cette poche est ensuite pressée, par exemple à l'aide d'un dispositif de presse de type Macopress Smart (Macopharma, France) afin d'envoyer le concentré plaquettaire dans la poche 20 de recueil du premier filtrat via l'unité de filtration 19 afin d'obtenir un concentré de plaquettes réduit en leucocytes. Le concentré plaquettaire réduit en leucocytes est ensuite envoyé à l’aide de la presse dans la poche 7 de recueil de filtrat via la deuxième unité de filtration 22 afin d’obtenir un concentré plaquettaire réduit en leucocytes et en érythrocytes. Dans la variante selon laquelle un ensemble de particules capables de lier des anticorps anti-A et/ou anti-B est agencé dans la poche 9 d’assemblage, l’assemblage de couches leucoplaquettaire est mis en contact avec lesdites particules pendant un temps suffisant pour lier lesdits anticorps auxdites particules, par exemple une heure, afin d’obtenir un assemblage de couches leucoplaquettaires réduit en anticorps anti-A et/ou anti-B. Dans l’autre variante selon laquelle l’ensemble de particules 17 capables de lier des anticorps anti-A et/ou anti-B est agencé dans la poche 20 de recueil du premier filtrat, le concentré plaquettaire réduit en leucocytes est alors mis en contact avec lesdites particules pendant un temps suffisant pour lier lesdits anticorps auxdites particules, par exemple une heure, avant d’être transféré dans la poche 7 de recueil du filtrat via la deuxième unité de filtration 22, afin d’obtenir un concentré plaquettaire réduits en leucocytes, érythrocytes et anticorps anti-A et/ou anti-B. Exemple 1 Solution polymère d’imprégnation Une solution d’imprégnation est préparée en solubilisant dans de l’éthanol un polymère obtenu d’un monomère de méthacrylate de méthyle et d’un macromère de méthacrylate de poly(oxyde d'éthylène) comme décrit dans le document EP 2 783 717 A1 Exemple 2 : Imprégnation Une membrane de polyester (PETE) ayant une taille de pore nominale de 2 µm et une taille de pore absolue de 2,5 µm est imprégnée par foulardage séchage avec la solution polymère préparée ci-dessus. Une membrane de polyester (PETE) ayant une taille de pore nominale de 5 µm est imprégnée par foulardage séchage avec la solution polymère préparée ci-dessus. Une couche non-tissé de polybutylène téréphtalate (42 g/m², diamètre moyen de pores de 8,5 µm) est imprégnée par foulardage séchage avec la solution polymère préparée ci-dessus. Exemple 3 : Essai de filtration des érythrocytes dans un filtre miniature Un filtre miniature est réalisé en plaçant dans un boitier rigide un média filtrant avec la composition suivante : Composition porosité 1 membrane imprégnée 5 µm 1 couche de non-tissé imprégné 8,5 µm 1 membrane imprégnée 5 µm 1 couche de non-tissé imprégné 8,5 µm 1 membrane imprégnée 2 µm 1 couche de non-tissé imprégné 8,5 µm 1 membrane imprégnée 2 µm 1 couche de non-tissé imprégné 8,5 µm 1 membrane imprégnée 2 µm 1 couche de non-tissé imprégné 8,5 µm 1 membrane imprégnée 2 µm 1 couche de non-tissé imprégné 8,5 µm 1 membrane imprégnée 2 µm La surface de filtration de chacune des couches et des membranes est d’environ 14 cm². Un concentré plaquettaire est préparé en assemblant quatre couches leucoplaquettaires de même groupe sanguin et 250 ml solution de conservation des plaquettes (SSP+, Macopharma). L’assemblage est ensuite centrifugé puis filtré au travers d’un filtre pour éliminer sélectivement les leucocytes (TXP, Macopharma) de sorte à obtenir un concentré plaquettaire réduit en leucocytes. Le concentré de plaquettes est ensuite filtré au travers du filtre miniature ci-dessus (cf. Tableau 1). Avant filtration Après filtration Concentration en érythrocytes (érythrocytes/µL) 1092 80 Concentration en leucocytes (/µL) 0,067 0 Nombre de plaquettes 2,5.10 11 2,2.10 11 Le taux de récupération des plaquettes est de l’ordre de 88%. Le taux de filtration des globules rouges est de l’ordre de 93%. Exemple 4 : Essai de filtration à échelle réelle des érythrocytes Deux types de filtre sont réalisés en plaçant dans une enveloppe souple un média filtrant avec la composition suivante : Composition 1 Composition 2 1 membrane imprégnée 2 µm 1 membrane imprégnée de porosité 5 µm 1 couche de non-tissé imprégné de porosité 8,5 µm 1 membrane imprégnée de porosité 2 µm La surface de filtration de chacune des couches et des membranes est d’environ 53 cm². Un concentré plaquettaire est préparé en assemblant quatre couches leucoplaquettaires de même groupe sanguin et 250 ml solution de conservation des plaquettes (SSP+, Macopharma). L’assemblage est ensuite centrifugé puis filtré au travers d’un filtre pour éliminer sélectivement les leucocytes (TXP, Macopharma) de sorte à obtenir un concentré plaquettaire réduit en leucocytes. Le concentré de plaquettes réduit en leucocytes (265 mL) est ensuite filtré au travers un filtre ayant l’une des compositions 1 ou 2 ci-dessus (cf. Tableau 3). Composition 1 Composition 2 Concentration en érythrocytes (érythrocytes/µL) Avant filtration 1349 1357 Après filtration Jour 1 21 27 Après filtration Jour 7 9 8 Concentration en leucocytes (10 3 /µL) Avant filtration 0,0001 0 Après filtration Jour 1 0 0 Après filtration Jour 7 0,0009 0,0009 Nombre de plaquettes Avant filtration 2,2.10 11 2,2.10 11 Le taux de récupération des plaquettes est de l’ordre de 89 % pour la composition 1 et 80% pour la composition 2. Le taux de filtration des globules rouges et de l’ordre de 99 % pour la composition 1 et 98% pour la composition 2. Exemple 5 : Essai de filtration des leucocytes et des érythrocytes Un filtre est réalisé est réalisé en plaçant dans un boitier rigide un média filtrant ayant la composition suivante : Composition porosité 20 couches de non-tissé imprégné 8,5 µm 1 membrane imprégnée 2 µm La surface de filtration de chacune des couches et des membranes est d’environ 53 cm². Un concentré plaquettaire est préparé en assemblant quatre couches leucoplaquettaires de même groupe sanguin et 250 ml solution de conservation des plaquettes (SSP+, Macopharma). L’assemblage est ensuite centrifugé puis filtré au travers du filtre de sorte à obtenir un concentré plaquettaire réduit en leucocytes et en érythrocytes. Les résultats de filtration sont les suivants : Avant filtration Après filtration Concentration en érythrocytes (érythrocytes/µL) 1,58.10 6 26 Concentration en leucocytes (10 3 /µL) 10,71 0 Nombre de plaquettes 3,9.10 11 2,2.10 11 Les concentrations avant filtration sont les concentration des cellules dans l’assemblage de couches leucoplaquettaires et de solution additive, avant centrifugation. Procédé pour éliminer de façon sélective des leucocytes et des érythrocytes d’un produit concentré en plaquettes sanguines, ledit procédé comprenant le passage d’un produit concentré en plaquettes sanguines et réduit en leucocytes au travers d’un élément poreux barrière aux érythrocytes, caractérisé en ce que ledit élément poreux barrière aux érythrocytes comprenant au moins une membrane poreuse réalisée dans un matériau hydrophile, les pores de ladite membrane ayant une taille nominale comprise entre 1 µm et 4 µm, et une taille absolue de pores comprise entre 2 µm et 5 µm. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que ladite membrane est obtenue par bombardement ionique suivi d’une gravure. Procédé selon l’une des revendications 1 ou 2, caractérisé en ce que ladite membrane est réalisée en polycarbonate ou polyester. Procédé selon l’une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que ladite membrane possède une taille de pore nominale de 2 µm et une taille absolue de 2,5 µm. Procédé selon l’une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que ladite membrane est revêtue d’un polymère biocompatible dérivé d’au moins un monomère choisi dans la liste constituée des monomères de N-vinylpyrrolidone, acrylate de 2-méthoxyéthyle, 2-méthacryloyloxyéthylphosphorylcholine, méthacrylate de 2-hydroxyéthyle, éthylène glycol et les mélanges de ces monomères. Procédé selon l’une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisé en ce qu’il comprend : - le passage préalable d’un produit concentré en plaquettes au travers d’un élément poreux de déleucocytation par adsorption et/ou par filtration des leucocytes, de sorte à obtenir un produit concentré en plaquettes et réduit en leucocytes, ledit élément poreux de déleucocytation comprenant au moins une couche dont les pores ont un diamètre moyen compris entre 3 et 15 µm. Procédé selon la revendication 6, caractérisé en ce que l’élément poreux de déleucocytation comprend une ou plusieurs couches de non-tissé. Procédé selon l’une des revendications 6 ou 7, caractérisé en ce que l’élément poreux de déleucocytation comprend des fibres de polybutylène téréphtalate ou de polyéthylène téréphtalate. Procédé selon l’une quelconque des revendications 6 à 8, caractérisé en ce que l’élément poreux de déleucocytation est imprégné d’un polymère biocompatible dérivé d’au moins un monomère choisi dans la liste constituée des monomères de N-vinylpyrrolidone, acrylate de 2-méthoxyéthyle, 2-méthacryloyloxyéthylphosphorylcholine, méthacrylate de 2-hydroxyéthyle, éthylène glycol et les mélanges de ces monomères. Procédé selon l’une quelconque des revendications 1 à 9, caractérisé en ce qu’il comprend, avant le passage d’un produit concentré en plaquettes au travers d’un élément poreux barrière aux érythrocytes, la mise en contact d’un produit concentré en plaquettes sanguines avec un ensemble de particules capables de lier les anticorps anti-A et/ou anti-B dudit produit concentré en plaquettes, de sorte à obtenir un mélange d’un produit concentré en plaquettes réduits en anticorps anti-A et/ou anti-B et de particules liées ou non à des anticorps anti-A et/ou anti-B. Unité de filtration (1) pour la mise en œuvre du procédé selon l’une quelconque des revendications 1 à 10, caractérisée en ce qu’elle comprend une enveloppe extérieure munie d’au moins un orifice d’entrée (2) et d’au moins un orifice de sortie (3), l’enveloppe renfermant d’amont en aval : - un élément poreux de déleucocytation (4) par adsorption et/ou par filtration des leucocytes, ledit élément poreux de déleucocytation comprenant au moins une couche dont les pores ont un diamètre moyen compris entre 3 et 15 µm, et - un élément poreux barrière aux érythrocytes (5) comprenant au moins une membrane poreuse réalisée dans un matériau hydrophile, les pores de ladite membrane ayant une taille nominale comprise entre 1 µm et 4 µm, et une taille absolue de pores comprise entre 2 µm et 5 µm. Système à poches (6) pour l’élimination sélective des leucocytes et érythrocytes d’un produit concentré en plaquettes, caractérisé en ce qu’il comprend : - une unité de filtration (1) selon la revendication 11, et - une poche de recueil du filtrat (7), ladite poche étant reliée, par l’intermédiaire d’une tubulure (8), à un orifice de sortie (3) de l’unité de filtration (1). Système à poches selon la revendication 12, caractérisé en ce qu’il comprend en outre une poche d’assemblage (9) reliée par l’intermédiaire d’une tubulure (10) à un orifice d’entrée (2) de l’unité de filtration (1), ladite poche (9) d’assemblage comprenant un ensemble de particules (17) capables de lier des anticorps anti-A et/ou anti-B dudit produit concentré en plaquettes. Système à poches (18) pour la mise en œuvre du procédé selon l’une quelconque des revendications 1 à 10, caractérisé en ce qu’il comprend : - une première unité de filtration (19) pour l’élimination sélective des leucocytes, ladite première unité de filtration comprenant un élément poreux de déleucocytation par adsorption et/ou par filtration des leucocytes, ledit élément poreux de déleucocytation comprenant au moins une couche dont les pores ont un diamètre moyen compris entre 3 et 15 µm, - une poche de recueil (20) du premier filtrat, ladite poche de recueil étant reliée, par l’intermédiaire d’une tubulure (21), à un orifice de sortie de ladite première unité de filtration (19), - une deuxième unité de filtration (22) pour l’élimination sélective des érythrocytes, ladite deuxième unité de filtration (22) comprenant un élément poreux barrière aux érythrocytes, ledit élément poreux barrière aux érythrocytes comprenant au moins une membrane poreuse réalisée dans un matériau hydrophile, les pores de ladite membrane ayant une taille nominale comprise entre 1 µm et 4 µm, et une taille absolue de pores comprise entre 2 µm et 5 µm, ladite deuxième unité de filtration étant en outre d’une part reliée ou destinée à être reliée par l’intermédiaire d’une tubulure (23), à un orifice de sortie de ladite poche de recueil (20) du premier filtrat, et - une poche de recueil du filtrat (7), ladite poche de recueil (7) étant reliée, par l’intermédiaire d’une tubulure (8), à un orifice de sortie de ladite deuxième unité de filtration (22). Système à poches selon la revendication 14 caractérisé en ce qu’il comprend en outre un ensemble de particules (17) capables de lier des anticorps anti-A et/ou anti-B dudit produit concentré en plaquettes, ledit ensemble de particules étant placé dans ladite poche (20) de recueil du premier filtrat ou dans une poche d’assemblage (9) reliée par l’intermédiaire d’une tubulure (10) à un orifice d’entrée de la première unité de filtration (19).