FR 3134285 A1 20231013 FR 2203206 A 20220407 La présente invention concerne une méthode de lutte contre des insectes piqueurs, tels que les pucerons, comprenant l’application sur des plantes à traiter de microcapsules contenant une ou des substances attractantes qui ont un effet attractant sur des prédateurs desdits insectes piqueurs. Les microcapsules peuvent être utilisées en association avec un insecticide asphyxiant et/ou desséchant. La présente invention concerne également une composition comprenant un insecticide asphyxiant et/ou desséchant et des microcapsules contenant une ou des substances attractantes qui ont un effet attractant sur des prédateurs desdits insectes piqueurs, et son procédé de préparation. PROCEDE BIOLOGIQUE DE LUTTE CONTRE LES INSECTES PIQUEURS DOMAINE TECHNIQUE DE L’INVENTION La présente invention concerne une méthode de lutte contre des insectes piqueurs tels que les pucerons utilisant des microcapsules contenant une ou des substances attractantes qui ont un effet attractant sur des prédateurs desdits insectes piqueurs. Les microcapsules peuvent être utilisées en association avec un insecticide asphyxiant et/ou desséchant. La présente invention concerne donc également une composition comprenant des microcapsules contenant une ou des substances attractantes et un insecticide asphyxiant et/ou desséchant, et son procédé de préparation. ETAT DE LA TECHNIQUE Les pucerons sont des insectes piqueurs causant de grands dommages sur les cultures du fait des blessures infligées aux végétaux mais aussi des maladies dont ils peuvent être les vecteurs. Par ailleurs, les pucerons sont capables de se reproduire par accouplement et par parthénogénèse ce qui les rend très prolifiques. La première méthode de lutte est d’utiliser des insecticides moléculaires, synthétiques tels que des produits à base de cyperméthrine, de lambda-cyhalothrine ou de deltaméthrine, ou naturels tels que des produits à base de pyrèthre par exemple. Ces molécules agissent par empoisonnement des pucerons selon divers mécanismes biochimiques. Ces produits sont très efficaces mais en agissant à grande échelle sur des colonies très importantes de pucerons, une sélection d’individus moins sensibles voire résistants à ces insecticides s’opère naturellement. La sélection des pucerons induit une propagation rapide et invasive de ces souches résistantes. Devant cette adaptabilité des pucerons aux molécules insecticides chimiques, l’homme du métier a dû progressivement augmenter les doses ou la fréquence des traitements appliqués ce qui a eu pour effet d’améliorer encore la sélection des souches résistantes pour in fine aboutir à une situation où l’insecticide devient inopérant. Les pouvoirs publics ont donc réagi en obligeant les utilisateurs a alterné les insecticides pour limiter les effets de sélection mais cette tactique ne fait que retarder le développement de résistance. Par ailleurs, l’augmentation des doses et l’utilisation de molécules de plus en plus toxiques pour les pucerons ne peut se faire sans conséquences parfois grave pour la biodiversité et parfois même pour l’homme. La difficulté croissante de concilier l’efficacité des insecticides chimiques et le respect de la santé et de l’environnement est clairement décrite dans : Rapport du Centre national d’Expertise sur les Vecteurs, 2014. Utilisation des insecticides et gestion de la résistance . Une deuxième méthode de lutte avec des insecticides existe et consiste à utiliser des substances grasses ou tensio-actives telles que des paraffines, des huiles végétales ou des savons. Ces produits pulvérisés sur les végétaux attaqués par les pucerons ont un effet asphyxiant (pour les paraffines) et desséchant (pour les savons ou tensioactifs) des insectes qu’ils submergent. Ces produits sont donc très efficaces lorsque les pucerons sont atteints par la pulvérisation mais comme beaucoup de colonies se protègent en enroulant des feuilles autour d’elles un passage n’est jamais suffisant et la prolifération des populations de pucerons à partir des foyers cachés dans la végétation implique de nombreux passages ce qui induit des coûts importants. Les doses utilisées sont aussi très importantes (avec environ 15 à 30 g par ha par application), le risque de pollution des sols et des eaux de ruissellement est non négligeable à long terme. De tels produits sont décrits notamment dans EP3442333. Une troisième méthode de lutte biologique a consisté à effectuer des lâchers de prédateurs de pucerons comme les coccinelles aphidiphages, les chrysopes, les syrphes. Ces insectes sous forme de larves ou d’adultes sont capables de venir à bout de colonies de puceron mais leur effet est décalé par rapport à l’invasion de pucerons puisqu’il faut assez de pucerons pour que leurs prédateurs se développent suffisamment pour avoir un effet de nettoyage d’une culture. En fonction des effets climatiques, les lâchers de prédateurs peuvent être à refaire plusieurs fois et l’agriculteur ne peut savoir si les coccinelles ou les chrysopes vont rester dans ses champs ou préférer aller dans des zones voisines plus riches en pucerons tels que des zones boisées. Si à long terme la repopulation artificielle d’un espace par des prédateurs de pucerons peut améliorer la situation sanitaire d’une parcelle, les contraintes logistiques pour organiser ces lâchers et la faible certitude de leur efficacité sur le rendement de l’année n’en font pas une solution durable économiquement. Par ailleurs, si à cause d’autres infestations l’agriculteur est contraint d’utiliser un insecticide, il va impacter cette population d’insecte réintroduit et perdre sa protection contre les pucerons. Il existe donc un besoin de trouver des solutions de lutte contre les insectes piqueurs, tels que les pucerons, offrant une meilleure empreinte durable que les insecticides chimiques, une efficacité plus longue que les insecticides asphyxiant et/ou desséchant et une efficacité plus grande que les lâchers artificiels de prédateurs. Par ailleurs, le côté artificiel de ces lâchers oblige à introduire des espèces étrangères dans des écosystèmes, ce qui peut avoir des effets déstabilisants imprévisibles. La demanderesse a donc trouvé un moyen d’utiliser des prédateurs présents dans l’écosystème pour lutter efficacement contre les pucerons, en optimisant les coûts d’application. Ce moyen consiste en l’utilisation de suspensions de microcapsules contenant une ou des substances émises naturellement par les insectes piqueurs, tels que les pucerons, ou les plantes attaquées par lesdits insectes piqueurs, tels que les pucerons, ayant un effet attractant sur les prédateurs de ces insectes piqueurs, tels que des coccinelles aphidiphages, des chrysopes ou des syrphes. Ces microcapsules ont donc pour effet d’attirer ces prédateurs sur la parcelle pour nettoyer les foyers d’insectes piqueurs, tels que les pucerons, et éventuellement d’empêcher l’arrivée de nouveaux foyers d’insectes piqueurs, tels que les pucerons. Ainsi, la présente invention a pour objet une méthode de lutte contre des insectes piqueurs comprenant l’application sur des plantes à traiter de microcapsules contenant une ou des substances attractantes qui ont un effet attractant sur des prédateurs desdits insectes piqueurs. Avantageusement, la méthode comprendra en outre l’application sur les plantes à traiter d’un insecticide asphyxiant et/ou desséchant, de préférence de manière simultanée avec l’application des microcapsules. Plus particulièrement, la méthode comprendra l’application, notamment la pulvérisation, sur les plantes à traiter d’une bouillie comprenant un insecticide asphyxiant et/ou desséchant et lesdites microcapsules. La présente invention a donc également pour objet une composition comprenant ledit insecticide asphyxiant et/ou desséchant et lesdites microcapsules. Selon un premier mode de réalisation, la composition comprend de 1% à 3%, de préférence de 2% à 3% en poids de l’insecticide asphyxiant et/ou desséchant, et de 0,01 à 0,1%, de préférence de 0,02% à 0,05% en poids des microcapsules, et est utile comme bouillie dans une méthode selon l’invention. Selon un deuxième mode de réalisation, la composition comprend de 30% à 99%, de préférence de 60% à 99% en poids de l’insecticide asphyxiant et/ou desséchant, et de 0,1% à 4%, de préférence de 0,6% à 2% en poids des microcapsules, et est utile comme prémélange concentré destiné à être dilué avant utilisation pour former la bouillie utile dans une méthode selon l’invention. Une telle composition peut comprendre également un tensioactif, un agent antimousse, un ou des additifs, avantageusement choisis parmi les agents anti-microbiens, les agents anti-oxydants et leurs mélanges. La présente invention a également pour objet un procédé de préparation d’une composition selon l’invention comprenant l’ajout d’une suspension de microcapsules à l’insecticide asphyxiant et/ou desséchant, éventuellement en mélange avec le tensioactif, l’agent antimousse, et les additifs, lorsqu’ils sont présents, avantageusement à une température de 15°C à 30°C, de préférence de 18°C à 25°C. FIGURES : Image des microcapsules de l’exemple 2 obtenue au microscope optique avec un zoom x640. : Image du prémélange de l’exemple 4 obtenue au microscope optique avec un zoom x640. EXEMPLES Le E-β-farnesène, les autres substances attractantes, le polyéthylèneglycol monooléate et les antioxydants comme le BHT ou le tocophérol sont sourcés chez Sigma Aldrich. Le copolymère de type HASE utilisé dans les exemples est le Pharma 38 fourni par la société Coatex. L’huile de tournesol utilisées dans les exemples est une huile de tournesol commerciale Isio 4. La cire d’abeille blanchie est fournie par la société Prayon. L’agent antimousse est fourni par la société DOW (DC62) ou BYK (BYK-1630). Les viscosités sont mesurées à l’aide d’un viscosimètre Brookfield DV1 munie d’une chambre. La taille des microcapsules est mesurée par analyse par diffraction de la lumière avec un appareil Mastersizer 3000 par diffraction d’un rayon laser. Le protocole de mesure est le suivant : On prépare tout d’abord les échantillons en dispersant 0,5g de formulation dans 100ml d’eau déminéralisée sous agitation magnétique pendant 10 min. Puis on procède à la mesure des tailles de particules en prenant soin tout d’abord d’aligner l’appareil et de mesurer le bruit de fond pour enregistrer les phénomènes de diffraction engendrés par l’eau. L’échantillon est ensuite introduit dans la cellule de mesure et 5 mesures successives sont effectuées. La taille des particules est alors déterminée en prenant la moyenne de ces 5 mesures. L’analyse des teneurs en substances attractantes est réalisée par chromatographie en phase gazeuse (CPG) avec un détecteur à ionisation de flamme sur un appareil Agilent - HP séries II 5890. Les études de relargage des substances attractantes sont réalisées dans des étuves ventilées sans hublot de manière à ne pas subir de rayonnement lumineux. Ces études sont réalisées selon deux méthodes, soit par suivi de perte de poids des échantillons, soit par suivi de la concentration résiduelle de la phéromone dans l’échantillon par CPG. La microscopie optique est réalisée sur un microscope AXIO PLAN 2 de marque ZEISS. Les observations des échantillons sont réalisées en transmission avec un objectif 40x plan et 20x plan. Une caméra AxioCam ICC3 de marque ZEISS permet de visualiser les images sur un écran d’ordinateur. Exemple 1 : Fabrication d’une suspension de microcapsules de E- β -farnesène Dans un ballon tricol N°1 muni d’une agitation mécanique de type ancre sont introduits l’eau déminéralisé 126g, et le copolymère de type HASE 15g. Le mélange est agité 5 min (100 rpm) et le pH est ajusté à 11 avec une solution de soude à 10%. Dans un ballon tricol N°2 sont agités à 70°C : l’huile végétale (huile de coprah) 71,8 g, le E-β-farnesène 13,7g, le a-tocophérol 1,3g, le BHT 1,3g, et l’oxybenzone 1,3g. Le contenu du ballon tricol N°2 est coulé sur le contenu du ballon tricol N°1 sous agitation (600 rpm) à la température de 70°C. Le ballon tricol N°1 est alors laissé sous agitation (600 rpm) 1h après la fin de l’addition. Le pH est ensuite ajusté à 7,5 par addition de H 3 PO 4 à 4%. Le mélange est refroidi à la température de 20°C. 0,2g d’H 2 O 2 à 35% sont alors additionné sous agitation (300 rpm) suivi d’une quantité suffisante d’eau déminéralisé de 5g. La suspension de microcapsules obtenue présente une viscosité de 101000 cP à 3 rpm et 20°C (viscosimètre Brookfield DV1 avec mobile LV5) et un diamètre médian D50 de 1,9 μm. Le relargage du E-β-farnesène est étudié en mettant 2g de la suspension en étuve à 30°C sur un support plastique pesant 0,2g et en pesant régulièrement l’échantillon. Dans ces conditions, le temps de demi-vie caractéristique de la diffusion du E-β-farnesène à 30°C est de 13 jours. Exemple 2 : Préparation de microcapsules d’un mélange de substances attractantes pour coccinelles et chrysopes (50/50 E- β -farnesène/camphène) Dans un ballon tricol N°1 muni d’une agitation mécanique de type ancre sont introduits l’eau déminéralisé 135g, et le copolymère de type HASE 8,7g. Le mélange est agité 5 min (100 rpm) et le pH est ajusté à 10 avec une solution de soude à 10%. Dans un ballon tricol N°2 sont agité à 70°C : l’huile végétale (huile de tournesol) 64g, la cire d’abeille 7,13g, le E-β-farnesène 6,8g, le camphène 6,8g, le a-tocophérol 0,5g, le BHT 0,5g, et l’oxybenzone 0,5g. Le contenu du ballon tricol N°2 est coulé sur le contenu du ballon tricol N°1 sous vive agitation (600 rpm) à la température de 70°C. Le ballon tricol N°1 est alors laissé sous agitation (600 rpm) 1h après la fin de l’addition. Le pH est ensuite ajusté à 7,5 par addition de H 3 PO 4 à 4%. Le mélange est refroidi à la température de 20°C. 0,2g d’H 2 O 2 à 35% sont alors additionné sous agitation (300 rpm) suivi d’une quantité suffisante d’eau déminéralisé de 12g. La suspension de microcapsules obtenue présente une viscosité de 800 cP à 20°C, 6rpm (viscosimètre Brookfield DV1 avec mobile SC4-16) et un diamètre médian D50 de 10,6 µm. Les microcapsules ont été observées au microscope optique avec un zoom x640. L’image obtenue est présentée en . Exemple 3 : Utilisation des microcapsules pour attirer des insectes bénéfiques – démonstration par piégeage 0,5 g d’une suspension de microcapsules selon l’exemple 1 ou 2 est déposé sur un piège de type plaque engluée de dimensions 20cmx20cm de couleur jaune. La substance attractante commence à se libérer environ 24h après la pose, une fois l’eau de la composition évaporée. On dispose dans un jardin mixte verger (pommiers, pêchers, pruniers, cerisiers) et potager (fêves, pommes de terre, artichauts) situé sur la commune de Pern dans le Lot, de dimensions 30mx30m, sur des supports situés à 1m à 1,5m du sol, 5 plaques engluées de dimensions 20cmx20cm avec la suspension de microcapsules de l’exemple 1, 5 laques avec la suspension de microcapsules de l’exemple 2 et 5 plaques qui sont vierges et serviront de population témoin. Les plaques engluées sont réparties de telle sorte qu’elles sont espacées de 5 m entre elles en prenant soin d’être au moins à 5 m du bord du jardin. Chaque semaine on effectue un relevé des pièges et on compte le nombre d’insectes piégés en identifiant leurs natures. On rapporte le nombre de coccinelles, de chrysopes et le reste des insectes piégés (mouches, hyménoptères, lépidoptères …) est regroupé dans un seul décompte. La période d’expérience est du 1 mai au 31 mai. Les résultats obtenus sont présentés dans le Tableau 1 ci-dessous. Décompte des insectes piégés pour les 5 pièges de chaque modalité (coccinellidés/chrysopidés/Autres) Jours Témoin Exemple 1 Exemple 2 7 mai 1/2/20 3/8/26 2/4/42 14 mai 0/3/31 3/6/28 5/8/62 21 mai 1/2/98 6/8/42 7/12/160 28 mai 2/1/153 5/7/125 2/1/>200 Cet exemple montre que les pièges équipés des suspensions de microcapsules de l’exemple 1 ou de l’exemple 2 attirent plus les coccinelles et les chrysopes que le témoin. L’apparition des premiers pucerons noirs a été observée le 28 avril sur fèves et le 3 mai sur cerisiers. L’apparition de pucerons verts sur pêchers et de pucerons lanigères sur pommiers et poiriers a été observée le 18 mai. Exemple 4 : Fabrication d’un prémélange concentré sur unité Unimix 15L à dose constante (2%) de microcapsules Dans une première phase, le réacteur est chargé avec l’huile de paraffine Isane Biolife 78 (10,00kg) et le polyéthylèneglycol monooléate (800 g) et le mélange est agité à une vitesse de 1200 rpm pendant 5 min à la température de 25°C. Une deuxième phase consiste à ajouter l’agent antimousse DC62 (0,03kg) ou BYK-1630 (0,04kg). Le milieu est agité à une vitesse de 1000 rpm pendant 8 min à 25°C. Une troisième phase consiste en l’ajout de la suspension de microcapsules (606g) préparée selon l’exemple 2. La suspension est additionnée via la pompe de recirculation fonctionnant à 1200 rpm et le mélange est laissé à homogénéiser 5 min à 30°C. Récupération : le produit est récupéré sous la forme d’une émulsion inverse blanche liquide de viscosité de 1200cp à 3 rpm et 20°C (viscosimètre Brookfield DV1 avec mobile LV5). L’émulsion est analysée par microscopie optique avec un zoom de x640 qui démontre l’intégrité des capsules. L’image obtenue est présentée en . Exemple 5 : Fabrication d’un prémélange concentré sur unité Unimix 15L à dose constante (4%) de capsules On reproduit les conditions opératoires de l’exemple 4 avec les quantités suivantes : l’huile de paraffine Isane Biolife 78 (8,00kg), le polyéthylèneglycol monooléate (640 g), agent antimousse BYK-1630 (0,04kg), suspension de microcapsules (970g) préparée selon l’exemple 2. Récupération : le produit est récupéré sous la forme d’une émulsion inverse blanche liquide de viscosité de 1500cp à 3 rpm et 20°C (viscosimètre Brookfield DV1 avec mobile LV5). Exemple 6 : Préparation d’une bouillie de pulvérisation On vise des dilutions de 20L/ha soit 20L dans 1000L d’eau (volume pulvérisé sur 1 ha). Dans un mélangeur de 15L on ajoute 8,5L d’eau et on verse sous agitation 0,15L u prémélange de l’exemple 4. On obtient une émulsion de paraffine avec des microparticules en suspension. On pulvérise la bouillie obtenue sur un support et on l’observe par microscopie optique. Méthode de lutte contre des insectes piqueurs comprenant l’application sur des plantes à traiter de microcapsules contenant une ou des substances attractantes qui ont un effet attractant sur des prédateurs desdits insectes piqueurs, les microcapsules ayant avantageusement un diamètre médian D50 compris entre 0,5 µm et 20 µm, de préférence entre 0,8 µm et 10 µm. Méthode selon la revendication 1, caractérisée en ce que les insectes piqueurs sont des pucerons et/ou des cochenilles, de préférence des pucerons. Méthode selon la revendication 1 ou 2, caractérisée en ce que la plante à traiter est choisie parmi les betteraves ; les arbres à fruits tels que les pommiers, poiriers, pêchers, ou les pruniers ; les céréales telles que le blé, ou l’orge ; ou encore les plantes maraichères telles que les fèves, les artichauts, les carottes, les pommes de terre, les haricots, ou les pois. Méthode selon l’une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisée en ce qu’elle comprend en outre l’application sur les plantes à traiter d’un insecticide asphyxiant et/ou desséchant. Méthode selon la revendication 4, caractérisée en ce qu’elle comprend l’application, notamment la pulvérisation, sur les plantes à traiter d’une bouillie comprenant un insecticide asphyxiant et/ou desséchant et lesdites microcapsules. Méthode selon la revendication 5, caractérisée en ce que la bouillie contient, par rapport au poids total de la bouillie, de 1% à 3%, de préférence de 2% à 3% en poids de l’insecticide asphyxiant et/ou desséchant, de 0,01 à 0,1%, de préférence de 0,02% à 0,05% en poids des microcapsules. Méthode selon l’une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisée en ce que les prédateurs des insectes piqueurs sont des insectes aphidiphages, et en particulier des insectes braconidés, coccinellidés, syrphidés, anthocoridés, chrysopidés ou une combinaison de ceux-ci, de préférence des coccinelles, notamment à 7 points ou à 11 points, des chrysopes, des syrphes ou une combinaison de ceux-ci. Méthode selon l’une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisée en ce que la ou les substances attractantes sont le β-farnesène seul ou en mélange avec une ou des substances choisies parmi le camphène, les esters salicyliques tels que le salicylate de méthyle, le E-2-hexénal, le Z-3-hexenyl acétate, le 2-phényl éthanol, le b-ocimène, l’alcool benzylique, et une combinaison de ceux-ci, le mélange contenant avantageusement au moins 50% en poids de β-farnesène. Méthode selon l’une quelconque des revendications 1 à 8, caractérisée en ce que l’insecticide asphyxiant et/ou desséchant est choisi parmi une paraffine, une huile végétale, une huile de silicone, un savon, notamment synthétique ou naturel, ou une combinaison de ceux-ci. Composition comprenant un insecticide asphyxiant et/ou desséchant et des microcapsules contenant une ou des substances attractantes qui ont un effet attractant sur des prédateurs desdits insectes piqueurs, les microcapsules ayant avantageusement un diamètre médian D50 compris entre 0,5 µm et 20 µm, de préférence entre 0,8 µm et 10 µm. Composition selon la revendication 10 comprenant : - de 30 à 99 parties, de préférence de 30 à 99 parties en poids d’un insecticide asphyxiant et/ou desséchant, - de 0 à 30 parties, de préférence de 5 à 20 parties en poids d’un tensioactif, de préférence choisi parmi des tensioactifs non ioniques tels que les acides gras polyalcoxylés, les esters d’acide gras et de sorbitan, les esters d’acides gras et de sorbitan (poly)alcoxylés, les alkylphénols alcoxylés, les alcools gras alcoxylés, les esters d’acides gras et de glycérol et leurs combinaisons, - de 0,1 à 4 parties, de préférence de 0,6 à 2 parties en poids de microcapsules contenant une ou des substances attractantes, et - de 0 à 1 parties, de préférence de 0,1 à 1 parties en poids d’un agent antimousse tels que les organosiloxanes et leurs formes polymériques, les organosilicones, les polyéthers et polyesters de glycérides et les combinaisons de ceux-ci. Composition selon la revendication 10 ou 11, caractérisée en ce que la ou les substances attractantes sont le β-farnesène seul ou en mélange avec une ou des substances choisies parmi le camphène, les esters salicyliques tels que le salicylate de méthyle, le E-2-hexénal, le Z-3-hexenyl acétate, le 2-phényl éthanol, le b-ocimène, l’alcool benzylique, et une combinaison de ceux-ci, le mélange contenant avantageusement au moins 50% en poids de β-farnesène, et en ce que l’insecticide asphyxiant et/ou desséchant est une paraffine, une huile végétale, une huile de silicone, un savon, notamment synthétique ou naturel, ou une combinaison de ceux-ci. Composition selon l’une quelconque des revendications 10 à 12, caractérisée en ce que les microcapsules comprennent : - un cœur comprenant un mélange de cire, d’huile végétale et de la ou des substances attractantes, et - une enveloppe extérieure entourant le cœur comprenant un copolymère de type HASE, éventuellement neutralisé, totalement ou partiellement, sous forme d’un sel de sodium, de potassium ou d’ammonium, le cœur représentant avantageusement de 99,8% à 95% en poids du poids total des microcapsules, et l’enveloppe extérieure représentant avantageusement de 0,2% à 5% en poids du poids total des microcapsules. Composition selon la revendication 13, caractérisée en ce que le copolymère de type HASE est un copolymère d’acide (méth)acrylique tel que l’acide méthacrylique, d’acrylate d’alkyle tel que l’acrylate d’éthyle et d’un ou plusieurs macromonomères hydrophobes de formule Chem. I suivante : [Chem. I] dans laquelle : - m est un entier supérieur ou égal à 5, notamment compris entre 10 et 40, de préférence compris entre 10 et 30, et - R un groupement hydrocarboné de formule C n H 2n+1 dans lequel n est un entier compris entre 9 et 25, de préférence entre 10 et 22, et encore préférentiellement égal à 12, 16 ou 22. Composition selon la revendication 13 ou 14, caractérisée en ce que le cœur comprend, par rapport au poids total du cœur, de 5% à 30% en poids de cire, de 60% à 90% en poids d’huile végétale et de 1 à 20% en poids de la ou des substances attractantes. Composition selon l’une quelconque des revendications 13 à 15, caractérisée en ce que l’huile végétale est choisie dans le groupe constitué par l’huile de tournesol, l’huile d’arachide, l’huile de soja, l’huile de colza, l’huile de maïs, l’huile d’olive, l’huile de raisin, l’huile de noix, l’huile de lin, l’huile de palme, l’huile de coco, l’huile d’argan, l’huile d’avocat, l’huile d’amande, l’huile de noisette, l’huile de pistache, l’huile de riz, l’huile de coton, l’huile de germes de blé, l’huile de sésame, et leurs mélanges, et en ce que la cire est choisie parmi les cires d’origine animale, les cires d’origine végétale, les cires minérales et leurs mélanges, de préférence parmi la cire d’abeille, la cire de lanoline, la cire d’insectes de Chine, la cire de riz, la cire de carnauba, la cire de candelilla, la cire de jojoba, la cire d’ouricurry, la cire d’alfa, la cire de fibres de liège, la cire de canne à sucre, la cire du Japon la cire de sumac, la cire de montan, les cires microcristallines, et leurs mélanges. Procédé de préparation d’une composition selon l’une quelconque des revendications 10 à 16 comprenant l’ajout d’une suspension des microcapsules à l’insecticide asphyxiant et/ou desséchant, éventuellement en mélange avec le tensioactif, et l’agent antimousse, avantageusement à une température de 15°C à 30°C, de préférence de 18°C à 25°C.