FR 3103826 A1 20210604 FR 1913610 A 20191202 L'invention concerne une préparation de microorganismes comprenant, dans un milieu nutritif aqueux sucré, un consortium de microorganismes comprenant au moins une bactérie lactique, par exemple du genre lactobacillus ou pediococcus, au moins une levure, par exemple du genre Saccharomyces, Schyzosaccharomyces ou Torulaspora, et au moins une bactérie acétique, par exemple du genre acetobacter, gluconobacter, ou komagataeibacter. Elle concerne aussi un procédé de production d'un extrait végétal riche en composés actifs, par fermentation en présence dudit consortium d'un substrat qui peut être issu d'une plante entière, d'une partie de plante, ou d'un coproduit végétal. Est également revendiquée l'utilisation de ces extraits pour la fabrication de produits pharmaceutiques et cosmétiques, de parfums, de compléments alimentaires ou de produits de traitement des plantes. PREPARATION DE MICRO-ORGANISMES POUR LA FERMENTATION DE VEGETAUX, EXTRAITS OBTENUS ET LEURS UTILISATIONS présente invention appartient au domaine de l'extraction de composés actifs d'origine végétale et de leur valorisation. Elle concerne une composition de micro-organismes, un procédé de fermentation de végétaux à l'aide de cette composition et l'utilisation des extraits végétaux obtenus dans diverses applications. Les plantes sont utilisées depuis des millénaires pour leurs propriétés bénéfiques. Elles contiennent en effet de nombreux composés actifs comme des polysaccharides, des oligosaccharides, des protéines, des lipides, mais aussi des vitamines, des minéraux et beaucoup d'autres substances présentant des activités biologiques particulières. L'utilisation de ces substances suppose de les extraire des tissus végétaux les renfermant et de les rendre disponibles sous une forme adaptée à l'usage prévu, notamment dans les domaines de la santé, de la cosmétique, de la parfumerie, de l'alimentation, ou même pour la santé des plantes. Parmi les méthodes classiques, on trouve les procédés d'extraction par solvant au cours desquels la matière végétale riche en composé d'intérêt est plongée dans un liquide ayant une affinité avec celui-ci. Les techniques d'extraction par solvant organique, longtemps prépondérantes, sont aujourd'hui décriées en raison de la pollution induite par ces solvants qui génèrent des déchets écotoxiques dont le recyclage est difficile et l'élimination peu respectueuse de l’environnement. De plus, ces procédés sont très énergivores et nécessitent souvent des conditions particulières de confinement (CO 2 supercritique, eau subcritique) rendant leur mise en œuvre complexe. Une alternative peut résider dans l'extraction en phase huileuse à l'aide de solvants d’origine naturelle, comme des huiles végétales. Cependant, cette technique ne permet d'extraire que des composés lipophiles. L’extraction en phase aqueuse a quant à elle des rendements faibles, à moins de mettre en œuvre des conditions de traitement particulières pour améliorer les taux d'extraction : température élevée, ajout de co-solvants ou d’additifs. Les extraits obtenus sont fragiles et sont sujets aux contaminations microbiennes qu'il est impératif de maîtriser pour assurer une conservation suffisante par un contrôle strict des conditions opératoires (notamment pH, force ionique, pression, température, stérilité). Une autre approche consiste à utiliser les végétaux comme matière première de transformations orchestrées par des micro-organismes. De nombreux procédés faisant intervenir des micro-organismes sélectionnés ou modifiés sont décrits dans la littérature et sont utilisés en milieu industriel. Les plus répandus reposent sur la fermentation, connue depuis des millénaires comme procédé de conservation des aliments et définie comme la transformation des substrats carbonés en absence d’oxygène. La fermentation repose sur la microflore endogène du substrat ou sur des micro-organismes ajoutés, généralement choisis pour leurs capacités fermentaires ou de résistance aux conditions du milieu. Dans ces procédés, un type de micro-organismes transforme un substrat donné, pour un objectif unique déterminé. Par exemple, on peut citer les procédés de vinification (raisins – levures – production de vin) ou de brassage de bière (malt d'orge – levures – production de bière). Par ailleurs, des procédés biotechnologiques mettant en œuvre des micro-organismes sur des milieux nutritifs synthétiques adaptés sont utilisés pour produire des composés d’intérêt comme la vitamine B12, l’acide citrique, l’acide lactique ou même l’acide hyaluronique. Ces fermentations, ou plutôt transformations opérées par des micro-organismes sont exigeantes en termes de mise en œuvre : température, pH, force ionique, milieu nutritif spécifique, intrants de synthèse, atmosphère strictement contrôlée (gaz, pression), conditions d’asepsie (absence de contaminants). Elles sont suivies d’étapes de purification coûteuses, tant en énergie qu’en solvants de purification et en traitement des rejets. Dans tous les cas, ici encore, ces procédés concernent un triptyque substrat – micro-organisme – objectif unique. Or, on sait que dans la nature, les micro-organismes s'organisent au sein de communautés agissant en interaction, ce qui leur permet de réaliser la biodégradation de la matière organique, y compris dans des milieux peu propices. Ces communautés, appelées consortia (consortium au singulier), développent des comportements synergiques grâce à des couplages métaboliques étroits. Dès lors, il est apparu intéressant de concevoir des combinaisons de micro-organismes choisis de manière adéquate et de les utiliser à des fins agricoles. Le document WO2019/133923 décrit par exemple des compositions comprenant un consortium synthétique de plusieurs micro-organismes, et leur utilisation en application foliaire pour stimuler la croissance des plantes, ou lors des opérations d'ensilage. Une autre voie prometteuse est la production d'hydrogène par dégradation de la biomasse. Des travaux menés en vue d'optimiser la production de bio-hydrogène ont mis en évidence l'existence d'une interaction physique et d'échanges de molécules cytoplasmiques entre les cellules microbiennes d'un consortium sélectionné à partir d'un consortium naturel du sol. La présente invention a pour objectif de mettre à profit ces facultés de coopération entre micro-organismes, pour extraire différents types de composés à partir de végétaux. Un procédé de fermentation utilisant un tel consortium doit permettre de dégrader la biomasse et d'extraire ou de rendre disponibles des composés présents dans un substrat végétal, sans recourir à des intrants de synthèse et sans rejet de déchets polluants. Ces conditions opératoires, qui sont en outre économes en énergie, répondent à un objectif de développer des technologies dites écoresponsables. Un but de la présente invention est ainsi de proposer un consortium de micro-organismes, défini et stable, apte à réagir avec un substrat végétal, en milieu aqueux. Un autre objectif de l'invention est de proposer un consortium apte à fermenter et à transformer toute sorte de substrats végétaux, pour extraire et rendre accessibles les composés qu'ils renferment. Encore un autre objectif de l'invention est de réaliser une extraction efficace des composés actifs de différentes plantes, y compris de composés peu accessibles par d'autres techniques, avec un haut rendement. Encore un objectif de l'invention est d'obtenir des extraits riches en composés actifs variés, utilisables en tant que tels, ou pour la préparation ultérieure de produits à destination pharmaceutique, cosmétique, alimentaire, phytosanitaire, ou autre. La présente invention repose sur une démarche inédite, selon laquelle un consortium microbien unique fonctionne avec une grande variété de plantes et avec tout type de substrat végétal ou d’origine végétale, liquide ou solide, pour en extraire de nombreux composés disponibles sous la forme d'extraits aqueux ou de poudre, faciles à conserver et à utiliser dans toutes sortes d'applications. Un premier objet de l'invention concerne ainsi une préparation de micro-organismes comprenant un consortium de micro-organismes dans un milieu nutritif aqueux sucré, ledit consortium comprenant i) au moins un micro-organisme appartenant au groupe des bactéries lactiques, ii) au moins un micro-organisme appartenant au groupe des levures et iii) au moins un micro-organisme appartenant au groupe des bactéries acétiques. Les micro-organismes composant le consortium artificiel ainsi créé selon l'invention sont choisis dans trois groupes présents dans la nature, du fait de leurs activités complémentaires. Ce sont de préférence des micro-organismes non-modifiés génétiquement. Les levures sont des cellules eucaryotes aérobie-anaérobie qu'on peut qualifier de multi-réacteurs biologiques. Elles utilisent les substrats carbonés comme sources de carbone et d'énergie. Elles sont capables de métaboliser de nombreux sucres, à l'exception des polysaccharides. Elles produisent en particulier du CO 2 et de l’alcool, ainsi que de nombreuses molécules aromatiques. Les bactéries acétiques consomment les sucres simples pour produire entre autres des acides organiques tels que l’acide gluconique et des vitamines. Elles consomment également l’alcool provenant du métabolisme des levures et des bactéries lactiques en le transformant en acide acétique. En outre, elles sont capables de synthétiser un biofilm, qui jouera un rôle important dans la stabilité du consortium, comme nous le verrons plus loin. Les bactéries lactiques, lorsqu'elles sont dans un milieu adéquat, induisent une acidification rapide du milieu, avec synthèse concomitante de bactériocines qui assurent ainsi leur protection contre les pathogènes et autres micro-organismes Gram+, tels que les Bacillus ou autres. Cependant elles sont exigeantes en ce qui concerne leurs conditions de développement et sont peu résistantes à l’acidification du milieu sous formes libres. On sait que la présence de levures contribue à leur croissance. Il est rare que dans des conditions naturelles, ces trois groupes trouvent des conditions favorables à leur croissance au même moment et au même endroit. Le consortium microbien est par conséquent un assemblage artificiel de micro-organismes, qui doivent pouvoir coexister et collaborer pour former un consortium équilibré, stable et reproductible. Cet assemblage est en outre conçu de manière à associer des activités complémentaires. Dans la composition en présence, des genres de micro-organismes ont été privilégiés, à l'intérieur desquels des espèces particulières ont été retenues comme plus favorables à ces multiples exigences. Pour les bactéries lactiques, sont utilisés avantageusement des micro-organismes de l’ordre des lactobacillales de la famille des lactobacillaceae du groupe 1, notamment ceux appartenant aux genres lactobacillus et pediococcus . Par exemple, peuvent être employées deux souches alimentaires comme Lactobacillus plantarum et Lactobacillus acidophilus , avec une préférence pour Lactobacillus plantarum car il est couramment trouvé sur les végétaux. Les levures de l’ordre des saccharomycetales de la famille des saccharomycetaceae ou de l’ordre des schyzosaccharomycetales de la famille des schyzosaccharomycetaceae peuvent être avantageusement utilisées, notamment celles des genres Saccharomyces, Schyzosaccharomyces ou Torulaspora . Par exemple, des levures de boulangerie Saccharomyces cerevisiae , et Torulaspora delbrueckii , des levures de bière Saccharomyces boulardii et Schyzosaccharomyces pombe peuvent être choisies, seules ou en association. Pour les bactéries acétiques, des bactéries de l’ordre des rhodospirillales de la famille des acetobacteraceae sont utilisées de préférence, avec en particulier les genres acetobacter, gluconobacter et komagataeibacter ( gluconacetobacter ) . Ces bactéries acétiques peuvent être originaires d'un vinaigre de cidre ou de vin non pasteurisé ayant un taux d'acidité de 4% à 5%, avantageusement d'un vinaigre de cidre du commerce, labélisés "Agriculture biologique" selon la définition de l'Union Européenne. L'inoculation se fait donc par ajout direct d'un aliquot de vinaigre dans la composition. Il existe dans les vinaigres, à côté des bactéries acétiques dominantes, une flore indigène naturelle complexe dont une partie va pouvoir cohabiter avec les micro-organismes ajoutés. Une autre partie va péricliter lors de l'établissement du consortium, de la même manière que le développement en symbiose de l’ensemble des micro-organismes formant le consortium empêche le développement des espèces indésirables, parmi lesquelles espèces pathogènes. C'est pourquoi, selon une caractéristique préférée, la préparation de micro-organismes selon l'invention comprend : - au moins une bactérie lactique appartenant au genre lactobacillus ou pediococcus , - au moins une levure appartenant au genre Saccharomyces, Schyzosaccharomyces ou Torulaspora, - au moins une bactérie acétique appartenant au genre acetobacter, gluconobacter, ou komagataeibacter . Selon une caractéristique particulièrement préférée de la préparation de micro-organismes objet de l'invention, celle-ci comprend : - au moins une bactérie lactique choisie parmi Lactobacillus plantarum et Lactobacillus acidophilus , - au moins une levure choisie parmi Saccharomyces cerevisiae, Saccharomyces boulardii , Schyzosaccharomyces pombe et Torulaspora delbrueckii, - au moins une bactérie acétique provenant d'un vinaigre de cidre ou d'un vinaigre de vin. Le milieu de culture joue également un rôle important. Dans la composition selon l'invention, le milieu est un milieu nutritif sucré, c'est-à-dire riche en sucres assimilables par les micro-organismes en présence. Ces glucides, généralement des mono- ou des disaccharides, peuvent provenir de diverses sources. Il peut s'agir d'un sucre pur, généralement du saccharose, du glucose ou du fructose, ou bien d'un produit transformé ou coproduit, tel que de la mélasse. Des sources mixtes sont envisageables bien que plus complexes à gérer. À noter que le saccharose étant assimilable par de nombreux micro-organismes, et en particulier par ceux du consortium selon l'invention, il aura la préférence. De manière originale, la phase aqueuse du milieu nutritif n'est pas de l'eau pure, mais un extrait végétal. Il peut s'agir d'une infusion, d'une décoction ou d'une macération ou encore d’un jus (fraction liquide crue obtenue par pressage) d'une plante ou d'une partie de plante, par exemple de feuilles de thé, de grains de café, de cabosses de cacao, ou autre. Une infusion présente l'avantage que le végétal est soumis brièvement à des températures élevées, assurant une réhydratation convenable sans dégrader les composés extraits. Une infusion de thé ( Camellia sinensis ) s'est avérée convenir particulièrement, avec en plus l'avantage d'une grande facilité de mise en œuvre. À noter que le thé possède naturellement une flore indigène complexe, qui va disparaître en présence du consortium, ou cohabiter dans la composition sans conséquence néfaste pour son activité. Ainsi, selon une caractéristique originale préférée de l'invention, le milieu nutritif comprend un extrait aqueux de thé et une source de sucres assimilables choisie parmi le saccharose, le glucose, le fructose, la mélasse, ou un mélange de ceux-ci. Typiquement, le milieu nutritif peut être une infusion de thé noir préparée avec 2 g/l à 50 g/l de feuilles de thé, additionnée de saccharose à une concentration comprise entre 20 g/l et 100 g/l. De préférence, le thé est préparé avec 5 g/l à 10 g/l de feuilles de thé, et sucré avec 50 g/l à 95 g/l de saccharose. Ce dernier peut être remplacé par un mélange de glucose et fructose. Ce milieu, totalement végétal et sans intrant de synthèse, permet d’assurer le confort vital de chacun des micro-organismes. Il offre à chacun d'eux la possibilité de satisfaire ses besoins énergétiques en phase de croissance dans des conditions de culture en batch (culture discontinue) bien définies en aérobie ou anaérobie. Les micro-organismes sont introduits sous forme sèche ou humide dans le milieu nutritif sucré, avec un taux d'inoculation communément compris entre 10 3 CFU/g et 10 5 CFU/g de milieu. La suspension microbienne obtenue est incubée entre 12°C et 45°C, de préférence entre 25°C et 30°C, pendant 6 à 21 jours, aux termes desquels on obtient une composition de micro-organismes avec une flore totale comprise entre 10 5 CFU/g et 10 7 CFU/g. Un dénombrement microbiologique des flores viables indique qu'un équilibre des flores s’est créé dans le milieu. Le consortium est visualisé par la présence d'un biofilm en surface. On entretient la composition aussi longtemps que désiré par repiquage sur milieu nutritif neuf. On peut également conserver la composition en la réfrigérant à 4°C ou par congélation, en vue d'une utilisation ultérieure. Ainsi, selon un mode de réalisation préféré de la préparation de micro-organismes objet de la présente invention, celle-ci est obtenue par un procédé comprenant : - l'introduction desdits micro-organismes dans ledit milieu nutritif pour obtenir une suspension microbienne, et - l'incubation de la suspension microbienne dans un réacteur ouvert, à une température comprise entre 12°C et 45°C durant 6 à 21 jours, pour obtenir un consortium stable desdits micro-organismes sous la forme d'un biofilm, comprenant une flore totale de 10 5 CFU/g à 10 7 CFU/g. Il a été observé que dans les conditions de culture susmentionnées, les micro-organismes sont capables de se développer ensemble et de former un consortium équilibré, stable et reproductible. Il est remarquable que la culture se déroule dans un réacteur ouvert, sans qu'il soit nécessaire de prendre des mesures particulières pour assurer son asepsie vis-à-vis de contaminants exogènes, contrairement aux méthodes de culture discontinues classiques. On peut faire l'hypothèse que le choix de micro-organismes ayant des besoins variés et spécifiques en oxygène favorise le développement de chaque population lors d'une culture dans les conditions susmentionnées. En effet, une répartition se crée dans le réacteur qui est dépendante entre autres du gradient en O 2 du milieu et de son potentiel redox, et aussi de l’apparition d'un biofilm fabriqué par les micro-organismes à l’interface eau-air. Ce biofilm permet de manière avantageuse de protéger le milieu des contaminants de l’environnement, chimiques ou biologiques. Il matérialise la coopération des trois groupes de micro-organismes et participe à la robustesse du processus. Le consortium de la préparation de micro-organismes selon l'invention est apte à réagir avec un substrat végétal, en milieu aqueux. Il est capable de diriger la fermentation extractive de toute sorte de végétaux, pour rendre accessible, et éventuellement transformer, une grande diversité des composés qu'ils renferment. Ainsi un deuxième objet de la présente invention concerne un procédé de production d'un extrait végétal, comprenant les étapes consistant à : a) - préparer un milieu fermentaire contenant un substrat végétal en phase aqueuse, b) - inoculer ledit milieu fermentaire avec une préparation de micro-organismes décrite précédemment en quantité telle que le taux d'inoculation est compris entre 10 2 CFU/g et 10 4 CFU/g de milieu fermentaire, c) - incuber dans un réacteur ouvert, à une température comprise entre 12°C et 45°C, durant 2 à 20 jours, d) - récupérer le surnageant, avec ou sans la biomasse résiduelle, pour obtenir un extrait dudit végétal riche en composés actifs. L'extrait obtenu peut donc être constitué du surnageant liquide seul ou de bien l'ensemble du milieu de culture qui peut être récolté avec la biomasse et éventuellement subir un séchage. Dans un mode de réalisation préféré du procédé de production d'un extrait végétal selon l'invention, à l'étape b), le milieu fermentaire est inoculé avec une quantité de la préparation de micro-organismes comprise entre 0,5% et 5%, en masse rapportée à la masse de milieu fermentaire, et incubé à une température comprise entre 25°C et 30°C, durant 10 à 15 jours. De préférence, le taux d'inoculation se situe entre 0,8% et 3%. Comme on le voit, même inoculé à des taux relativement faibles (soit entre 10 2 CFU/g et 10 4 CFU/g), le consortium colonise rapidement le milieu pour induire la fermentation. Le procédé se déroule en présence de la plante qui devient une source continue de nutriments sous l’action des outils biochimiques des différents micro-organismes. Cela permet de la maintenir dans le milieu de culture pendant plusieurs jours, voire quelques semaines, sans intervention humaine. Bien qu'une fermentation se déroule en principe en anaérobie, le processus est conduit ici en milieu ouvert pour des échanges de gaz avec l'atmosphère, et sans contrainte particulière pour assurer la stérilité. Il est fait l'hypothèse que les conditions induites et tolérées par le consortium dans le réacteur empêchent le développement de la flore pathogène présente sur le substrat et dans l’environnement, même en conditions non-aseptiques. La composition de micro-organismes inoculée est capable de diriger la fermentation extractive de toute sorte de végétaux. Le substrat peut être choisi au sein des végétaux supérieurs de tout type, qu'il s'agisse de plantes à fleur, de plantes aromatiques, de céréales, de plantes fourragères, de protéagineux, d'oléagineux, ou autres, représentant une grande diversité de composés susceptibles d'être utilisés et valorisés. Il peut aussi appartenir aux végétaux inférieurs, parmi lesquels on trouve les fougères, les mousses, les champignons, les lichens et les algues. Il peut encore être choisi parmi les organismes se trouvant dans le phytoplancton, c’est-à-dire l’ensemble des organismes végétaux vivant en suspension dans l’eau, autotrophes vis-à-vis du carbone, ce qui inclut notamment les microalgues et des bactéries telles que les cyanobactéries (anciennement "algues bleu-vert"). C'est pourquoi, selon une caractéristique du procédé selon l'invention, le substrat végétal est choisi parmi les végétaux supérieurs, les végétaux inférieurs ou les organismes du phytoplancton. On le voit, le procédé de fermentation objet de l'invention est d'une grande polyvalence et revêt un caractère général, voire universel. De manière remarquable, le consortium est à même de s’adapter à différents types de substrats sensibles à la putréfaction (céréales, plantes fourragères, algues, plantes riches en protéines, …), riches en minéraux ou en composés aromatiques (romarin, lavande, camomille, gingembre, curcuma, café, thé, cacao …), ainsi qu'à des organismes unicellulaires comme par exemple la spiruline. Quel que soit le substrat, on aura recours autant que possible à des sources d'approvisionnement respectant les normes de l'agriculture biologique qui refuse l'emploi de produits chimiques de synthèse. Selon des modes de réalisation particuliers de l'invention, le substrat végétal peut être l'ortie ( Urtica dioica ), le pastel ( Isatis tinctoria ), la rose de Damas ( Rosa damascena ), le Jujubier ( Ziziphus zizyphus ), le Ginkgo biloba , le romarin ( Rosmarinus officinalis ), la lavande ( Lavandula ), la camomille (camomille romaine Chamaemelum nobile ou camomille sauvage, allemande, matricaire …), la bruyère (notamment l'espèce C alluna vulgaris ), le gingembre ( Zingiber officinale ), le curcuma ( Curcuma longa ), le café ( Rubiaceae coffea ), le thé ( Camellia sinensis ), le cacao ( Theobroma cacao ), ou encore la spiruline ( Spirulina ). Le substrat végétal peut inclure une plante entière ou une partie de plante. Il peut en outre être frais ou séché, natif ou transformé. La partie de la plante choisie peut être celle qui est connue dans l’état de l'art comme contenant des composés d'intérêt ou possédant des propriétés particulières, comme la racine de curcuma, le fruit du Jujubier, la fleur de lavande, etc. On peut aussi choisir d'autres parties du végétal, qui pourront révéler leur teneur en composés actifs négligés, voire ignorés jusqu'à aujourd'hui, mais qu'il est possible d'extraire et de valoriser grâce à l'action synergique du consortium microbien selon l'invention. Des coproduits végétaux peuvent aussi être utilisés : les feuilles de pastel restant après extraction des pigments par décoction sont un substrat prometteur comme source de composés intéressants pour d'autres applications. En outre, le substrat végétal peut se présenter sous une forme solide ou sous une forme ayant une composante liquide prépondérante. Leur mise en œuvre sera adaptée en conséquence. Selon un premier mode de réalisation de l'invention, le substrat végétal peut être obtenu sous une forme solide, c'est-à-dire sous la forme de fragments, de broyat ou de poudre, à partir d'une plante entière ou d'une partie de plante, ou un coproduit solide issu d'un traitement dudit végétal pour d'autres buts et dans d'autres procédés. Conformément à l'invention, pour la production d'un extrait végétal adaptée à un substrat sous forme solide, à l'étape a), ledit substrat est mélangé à de l'eau puis porté à une température comprise entre 25°C et 90°C, et si nécessaire un ajout de sucre est effectué, avant ou après mise à température, pour amener le milieu fermentaire à un degré Brix compris entre 2 et 10. L'apport de sucre peut aller jusqu'à 100 g/l de milieu fermentaire, ou être inutile quand le substrat est en lui-même suffisamment sucré. Selon un deuxième mode de réalisation de l'invention, le substrat végétal peut être sous une forme liquide ou essentiellement liquide, obtenu notamment sous la forme d'un jus, d'une infusion, d'une décoction ou d'une macération, à partir d'une plante ou d'une partie de plante fraiche ou sèche, ou en tant que coproduit liquide issu d'un traitement dudit végétal. Sont concernés ici des jus de fruits frais, le nectar de fleurs, ainsi que toutes les plantes en phase aqueuse avec ou sans chauffage. Des fragments peuvent rester dispersés dans la phase liquide, comme de la pulpe de fruits, les feuilles d'une infusion, ou des cellules de spiruline. La phase liquide issue de l’extraction du pastel après précipitation et décantation du pigment de pastel est un coproduit qui doit être mentionné parmi d'autres également intéressants. Selon un mode de production d'un extrait végétal adapté à un substrat sous forme essentiellement liquide, conformément à l'invention, à l'étape a), le substrat végétal est chauffé à une température comprise entre 25°C et 85°C, et si nécessaire un ajout de sucre est effectué avant ou après mise à température, pour amener le milieu fermentaire à un degré Brix compris entre 2 et 10. L'apport de sucre peut aller jusqu'à 100 g/l de milieu fermentaire si besoin. Par exemple, le substrat liquide additionné de 50 g/l de saccharose est chauffé à une température de l'ordre de 70°C, pendant 5 mn à 10 mn. Une fraction d'eau déchlorée peut être ajoutée pour diluer les jus dans certains cas que l'homme du métier saura identifier. Dans les cas où à l'étape a), l'ajout de sucre est requis pour amener le milieu fermentaire au taux souhaité, il est possible de procéder de différentes manières, et notamment, le milieu fermentaire peut être sucré par addition d'une source de sucres assimilables choisie parmi le saccharose, le glucose, le fructose, la mélasse, le miel, ou un mélange de ceux-ci. À noter que le miel peut apporter sa propre contribution aux propriétés de l'extrait obtenu. Par exemple, certains miels particulièrement riches en minéraux et en polyphénols, comme le miel de bruyère ou de châtaigner, peuvent exprimer leur pouvoir antiseptique ou d'autres effets bénéfiques renforçant ceux conférés par les actifs provenant du substrat végétal. L'extrait végétal obtenu est stable. Il est remarquable qu'aucun phénomène de putréfaction ne soit observé durant le processus d’extraction-fermentation, alors que les substrats végétaux sont généralement chargés d'une flore microbienne provoquant leur dégradation, comme l'est singulièrement l'ortie. Il peut être utilisé immédiatement ou conservé par une technique connue. Quoi qu'il en soit, il peut subir différentes opérations avant d'être utilisé ou stocké, de préférence entre 4°C et 18°C. À l'issue du processus d’extraction-fermentation, on peut porter son intérêt sur le surnageant dans lequel des composés extraits sont dissous, auquel cas le procédé de production d'un extrait végétal selon l'invention peut comprendre : - une étape de filtration de l'extrait fermenté pour éliminer les résidus végétaux, - une étape de filtration stérilisante pour éliminer la flore microbienne, communément effectuée sur filtre de 0,2 µm. Ces filtrations seront omises si la biomasse est conservée comme c'est le cas quand on cherche à récupérer des actifs restés dans la biomasse, mais rendus bio-disponibles par la fermentation et l'action de l'équipement enzymatique des micro-organismes du consortium. Il est précisé que dans la présente description, l'expression "extrait végétal" désigne le produit issu du processus d’extraction par la fermentation, avec ou sans filtration, et aussi bien avec que sans la biomasse végétale et microbienne du milieu fermentaire. Que l'extrait végétal soit un soluté ou une masse, on fera en sorte de stopper la fermentation et d'autres processus indésirables, afin de stabiliser le produit obtenu. On pourra recourir à tout moyen connu, par exemple la pasteurisation ou la stérilisation par chauffage, la décontamination microbiologique par une technique employée dans le domaine alimentaire (rayons gamma, pression hydrostatique, …). On pourra lyophiliser les extraits aqueux, sécher les extraits solides, par exemple par un passage en étuve entre 30°C et 45°C, et les broyer plus ou moins finement selon l'usage envisagé. Le procédé selon l'invention peut ainsi comprendre après l'étape d), une ou plusieurs des opérations suivantes : une filtration de l'extrait fermenté pour éliminer les résidus végétaux, une filtration stérilisante pour éliminer la flore microbienne, une décontamination microbiologique, une lyophilisation, un séchage en étuve, un broyage. La personne du métier saura choisir les techniques appropriées en fonction de l'état initial de l'extrait et de la forme souhaitée en vue de sa conservation et de son utilisation ultérieure. Le procédé qui vient d'être décrit constitue un gain de temps important et réduit les opérations faisant intervenir des opérateurs. Il répond aux exigences actuelles en termes d’éco-responsabilité : pas d’intrant de synthèse, conditions de culture en système ouvert peu énergivores et sans asepsie, autonomie de fonctionnement durant le processus. Il est industrialisable et rentable économiquement. On souligne qu'il permet d'accéder à des composés qui sont rarement extraits par des méthodes classiques par solvant ou même par des méthodes enzymatiques ciblées. On attribue cette faculté au fait que le consortium à l'œuvre offre une grande diversité d’outils biochimiques, dont certains sont capables de casser des structures supramoléculaires de la plante, de simplifier des macro-composés pour les rendre solubles et ainsi les libérer. Dès lors, le procédé peut être qualifié de procédé d’extraction-fermentation-transformation (tout en un). Un extrait végétal contenant des composés actifs, obtenu par un procédé tel que décrit ci-dessus est également objet de la présente invention. Comme exposé plus haut, cet extrait peut être produit à partir d'une multitude de végétaux, le végétal pouvant être choisi parmi les végétaux supérieurs, les végétaux inférieurs ou les organismes du phytoplancton. Peut être notamment concerné un extrait végétal produit à partir d'un substrat choisi parmi les plantes à fleur, les plantes aromatiques, les céréales, les plantes fourragères, les protéagineux, les oléagineux, et en particulier l'ortie, le pastel, la rose de Damas, le jujubier, le ginkgo biloba, le romarin, la lavande, la camomille, la bruyère, le gingembre, le curcuma, le café, le thé, le cacao, la spiruline. Comme exposé plus haut, les extraits végétaux obtenus à l'aide de la composition de micro-organismes par le procédé d'extraction selon l'invention sont caractérisés par une grande diversité de composés obtenus, et de manière corollaire une grande variété d'activités biologiques, de propriétés physico-chimiques et de propriétés organoleptiques, notamment olfactives, avec dans certains cas, des synergies intéressantes. Ils sont donc particulièrement indiqués pour être utilisés dans des compositions élaborées en vue de la mise en œuvre de ces activités. Ils peuvent en particulier être formulés dans des compositions, qui font également l'objet de la présente invention, telles que des crèmes, des lotions, des gels ou d'autres formes, destinés à diverses utilisations. C'est le cas d'une composition comprenant un extrait végétal fermenté selon l'invention, ou susceptible d'être obtenue par un procédé selon l'invention, et au moins un composé choisi parmi : un excipient, un additif naturel, un additif de synthèse, un épaississant, un stabilisant, un émulsifiant, un adjuvant, ou un mélange de ceux-ci. Quelle qu'en soit la formulation spécifique, les extraits végétaux selon l'invention sont des ingrédients qui peuvent être utilisés dans des applications nombreuses et variées, notamment pour la fabrication d'un produit pharmaceutique, notamment dermatologique, d'un produit cosmétique, d'un parfum, d'un complément alimentaire ou d'un produit de traitement des plantes. Selon un mode de réalisation, un extrait végétal objet de l'invention peut être utilisé pour la fabrication d'un produit à visée cosmétique ou thérapeutique pour une application cutanée, notamment une crème. Cette crème peut par exemple comprendre un ou plusieurs extraits végétaux fermentés tels qu'un extrait d'ortie, un extrait de ginkgo biloba, un extrait de pastel, ou autres. Un extrait végétal selon l'invention peut également être utilisé pour la fabrication d'un parfum comprenant un ou plusieurs extraits végétaux fermentés, par exemple un extrait de jujube, un extrait de thé, ou tout autre extrait odorant que l'expert imaginera d'assembler. Selon un autre mode de réalisation, un extrait végétal selon l'invention peut être utilisé pour la fabrication d'un complément alimentaire, par exemple comprenant un extrait de spiruline fermenté riche en phycocyanine libre, obtenu après filtration du milieu fermentaire, ou obtenu par déshydratation et broyage en présence du milieu fermentaire. Selon encore un autre mode de réalisation, un extrait végétal selon l'invention peut être utilisé pour la fabrication d'un produit à usage phytosanitaire. Par exemple, un extrait d'ortie et/ou un extrait de thé, destiné à une application telle que la prévention ou le traitement des lésions foliaires, la régulation hydrique, ou la stimulation de la croissance du végétal. La présente invention sera mieux comprise, et des détails en relevant apparaîtront, à la lumière de la description qui va être faite de différentes variantes de réalisation, en relation avec les figures annexées, dans lesquelles : représente l'évolution de la teneur en fer dans un extrait d'ortie selon l'invention. représente l'évolution de l'acidité totale dans le même extrait d'ortie. présente le taux de fibroblastes vivants à différentes concentrations de l'extrait d'ortie E1. présente le taux de kératinocytes vivants à différentes concentrations de l'extrait E1. présente l'influence de cet extrait d'ortie sur différentes activités. montre le taux de fibroblastes vivants à différentes concentrations de l'extrait de Ginkgo biloba E3 selon l'invention. présente le taux de kératinocytes vivants à différentes concentrations du même extrait de Ginkgo biloba. présente l'influence de cet extrait E3 sur différentes activités. donne les spectres d'absorption d'extraits de Curcuma selon l'invention. présente le taux de fibroblastes vivants à différentes concentrations de l'extrait E6 (feuilles de pastel issues de décoction) selon l'invention. présente le taux de kératinocytes vivants à différentes concentrations du même extrait. montre le taux de fibroblastes vivants à différentes concentrations de l'extrait E7 (jus coproduit du pastel) selon l'invention. présente le taux de kératinocytes vivants à différentes concentrations du même extrait E7. présente le taux de fibroblastes vivants à différentes concentrations de l'extrait E8 (feuilles natives de pastel) selon l'invention. présente le taux de kératinocytes vivants à différentes concentrations du même extrait E8. montre l'influence de l'extrait E6 sur différentes activités. présente l'influence de l'extrait E7 sur différentes activités. présente l'influence de l'extrait E8 sur différentes activités. donne les spectres d'absorption d'un milieu fermentaire de spiruline selon l'invention. représente l'effet d'extraits selon l'invention sur des cellules végétales. EXEMPLE 1 : Élaboration d'une composition de micro-organismes Les micro-organismes choisis sont introduits sous forme sèche ou humide dans du thé noir sucré constituant le milieu nutritif. Le thé est préparé à partir de 2 g/l à 50 g/l de feuilles sèches infusées dans de l'eau à une température de 70°C à 90°C durant 10 mn à 60 mn. Communément, on utilise 5 g/l à 10 g/l de feuilles de thé infusées 15 mn à 80°C. L'infusion peut être utilisée en l'état avec les feuilles, ou de manière plus commode la phase aqueuse est filtrée. Le saccharose est ensuite dissous dans la phase aqueuse à une concentration, comprise entre 20 g/l et 100 g/l, en général de 50 g/l. Le saccharose peut être remplacé par un mélange de glucose et fructose. Le taux d’inoculation est compris entre 10 3 CFU/g et 10 6 CFU/g de milieu selon les groupes de microorganismes. Les bactéries acétiques sont apportées par une quantité de vinaigre non pasteurisé telle que le pH du milieu nutritif reste dans un intervalle de 4 à 5. Les microorganismes se développent facilement dans les conditions définies. La suspension microbienne est incubée entre 25°C et 30°C pendant 6 à 21 jours, en conditions non-aseptiques dans un réacteur ouvert, avantageusement de forme cylindrique, de sorte que le système est dynamique et qu'une autorégulation s'opère. Après une quinzaine de jours, un biofilm se forme indiquant la création du consortium. Le consortium est entretenu dans le milieu nutritif en respectant un rapport massique consortium/milieu allant de 50/50 à 20/80. Au bout d'environ 3 semaines, le pH et le degré Brix ont diminué indiquant que les sucres sont consommés. Un repiquage sur milieu nutritif frais est alors réalisé selon les techniques conventionnelles connues dans l'état de l'art. Des compositions de micro-organismes ont été élaborées selon cette procédure. Composition C1 : La composition C1 est élaborée selon l’exemple 1 en utilisant deux souches alimentaires de bactéries lactiques, Lactobacillus plantarum et Lactobacillus acidophilus , deux souches de levures de boulangerie, Saccharomyces cerevisiae et Torulaspora delbrueckii et du vinaigre de vin non pasteurisé à 5% d'acidité, dans une infusion de thé noir préparée avec 8 g/l de feuilles infusées 15 mn à 85°C puis filtrée, et additionnée de 50 g/l de saccharose. Le biofilm du consortium se forme à partir de 15 jours. Composition C2 : La composition C2 est élaborée selon l’exemple 1 en utilisant deux souches alimentaires de bactéries lactiques, Lactobacillus plantarum et Lactobacillus acidophilus , deux souches de levures de boulangerie, Saccharomyces cerevisiae et Torulaspora delbrueckii et du vinaigre de cidre non pasteurisé à 5% d'acidité. Les ferments sont introduits dans une infusion préparée avec 10 g/l de feuilles de thé infusées 20 mn à 80°C puis filtrée, et additionnée de 70 g/l de saccharose. Le biofilm du consortium se forme à partir de 15 jours, bien qu'un peu moins important que dans la composition C1. Formation du consortium : Un dénombrement microbiologique des flores viables a été effectué après 5 jours de culture. Il indique la présence d'une flore totale comprise entre 10 6 CFU/g et 10 7 CFU/g, avec une représentation similaire de chaque groupe microbien. À titre de comparaison, chaque micro-organisme de la composition C1 a été mis en culture individuellement dans les mêmes conditions : milieu de culture de thé sucré, un taux d’inoculation voisin de 10 6 CFU/g, réacteurs en conditions non-aseptiques, température de 25°C à 30°C. Au bout de 5 jours, les lactobacilles n’ont pas survécu et les levures ont été contaminées. L’essai avec le vinaigre seul n’a fait apparaitre aucune évolution : ni contamination, ni croissance des bactéries acétiques. Par ailleurs, du thé noir sucré identique au milieu nutritif de la composition C1 a été incubé dans les mêmes conditions. Il a présenté une contamination par des moisissures au bout de 5 jours. Aucun des essais n’a montré la formation de biofilm. EXEMPLE 2 : Élaboration d'extraits végétaux Extrait E1 Une poudre d’ortie ( Urtica dioïca ) est mélangée à de l’eau déchlorée chauffée à 80°C à hauteur de 50 g/kg de milieu. Du saccharose est ensuite ajouté à hauteur de 50 g/kg de milieu et laissé à refroidir. La composition C2 préparée selon l’exemple 1 est ajoutée à raison de 1% et le tout est incubé à 28°C pendant 11 jours. On obtient l'extrait d'ortie E1, avec le résidu de poudre d'ortie. Les fractions solide et liquide peuvent ensuite être séparées par filtration, centrifugation ou autre technique connue en soi, selon les applications envisagées. Extrait E2 Une poudre d’ortie ( Urtica dioïca ) est mélangée à de l’eau déchlorée chauffée à 80°C à hauteur de 50 g/kg de milieu. Le milieu est ensuite sucré à hauteur de 50 g/kg de milieu et laissé à refroidir. La composition C2 préparée selon l’exemple 1 est ajoutée dans les proportions de 2% à la suspension aqueuse d’ortie non filtrée. Le mélange d’ortie avec le résidu de poudre est incubé pendant 11 jours. Le surnageant de l’essai est prélevé puis soumis à une première filtration pour éliminer les résidus de plantes et à une seconde filtration stérilisante sur 0,2 µm pour éliminer les ferments. On obtient l'extrait E2. Des extraits de romarin ( Rosmarinus officinalis ), de rose de Damas ( Rosa damascena ) et de feuilles de jujubier ( Ziziphus zizyphus ) ont été préparés selon un protocole identique. Extrait E3 Du Ginkgo biloba sous forme de 50 g/kg de poudre de feuilles est mis dans de l’eau déchlorée chauffée à 80°C. Du saccharose est ajouté à hauteur de 50 g/kg. La composition C2 préparée selon l’exemple 1 est ajoutée à la suspension aqueuse de Ginkgo à hauteur de 2%. Le tout est incubé pendant 13 jours à 28°C. Le surnageant de l’essai est prélevé puis filtré pour éliminer les résidus de plantes et stérilement pour éliminer les ferments. Extrait E4 Le Curcuma ( Curcuma longa , poudre de racines) est mis à 200 g/kg dans l’eau sucrée à 50 g/kg chauffée à 80°C pendant 15 min. Le milieu est brassé et mis à refroidir avant l’ajout des ferments de la composition C2 préparée selon l’exemple 1, à 2%. L’essai est incubé pendant 15 jours à 28°C. À la fin de l’extraction/fermentation, la poudre fermentée est récupérée et séchée. Un échantillon est prélevé et repris dans de l’eau à 200 g/kg pour le caractériser. Il est comparé à de la poudre de Curcuma non-fermentée et reprise dans de l’eau à hauteur de 200 g/kg. L’observation visuelle des deux échantillons montre une différence nette de comportement : le surnageant de l’extrait fermenté de Curcuma est de couleur jaune et trouble, indiquant la solubilisation de composés tels que la curcumine ou autres molécules colorées, alors que le Curcuma dans l’eau est translucide avec un dépôt important après décantation, indiquant très peu de composés solubilisés. Extrait E5 Un extrait fermenté de thé noir ( Camellia sinensis ) a été préparé en infusant 8 g/l de feuilles dans de l’eau à 80°C, puis du saccharose a été ajouté à hauteur de 50 g/l. Après refroidissement à température ambiante, la composition C1 préparée à l'exemple 1 est ajoutée à hauteur de 2%. L’ensemble est mis à incuber à 25°C pendant 14 jours. La phase liquide acidifiée à hauteur de 2% (acidité totale en équivalent acide acétique) est prélevée puis filtrée sur filtre 0,2 µm. Extrait E6 L’extraction du pigment bleu pastel tiré de la plante du même nom ( Isatis tinctoria ) demande de traiter une grande quantité de feuilles en décoction dans l’eau. Le rendement en pigment est faible puisqu’avec 1 tonne de feuilles fraiches, on extrait 1 kg de pigment. Le procédé d’extraction ciblé sur le pastel génère donc des coproduits en grande quantité, qui peuvent contenir des composés intéressants pour d’autres applications. L’obtention du pigment met en œuvre des outils enzymatiques issus de la flore endogène de la plante, indiquant son caractère fermentescible. Cependant, la fermentation des feuilles d’Isatis sans contrôle donne lieu au développement de flores putrides dégageant des odeurs pestilentielles lors de l’épandage ou du stockage de ces déchets. Nous nous sommes intéressés à trois coproduits, à savoir les feuilles fraîches après décoction dans l’eau (extrait E6), la phase liquide issue de l’extraction du pastel obtenue après précipitation et décantation du pigment de pastel (extrait E7) et le jus issu de la décoction des feuilles fraîches (extrait E8). Des feuilles d’Isatis ayant subi une première extraction par décoction ont servi à préparer l'extrait fermenté E6. Pour ce faire, 8,5 kg de feuilles entières humides (contenant environ 15% de matière sèche) sont d'abord soumises à une décoction dans 20 kg d’eau sucrée à 50 g/kg à 60°C. Puis, 30 kg d’eau froide déchlorée sont ajoutés pour compléter et refroidir la préparation. Lorsque celle-ci atteint 30°C, on ajoute la composition C2 préparée selon l’exemple 1, à hauteur de 2%. Le tout est incubé pendant 10 jours à 28°C. Le surnageant de fermentation est prélevé puis filtré pour éliminer les résidus de plantes, puis stérilement sur 0,2 µm pour éliminer les ferments. L’extrait obtenu a une odeur fraiche et végétale, caractéristique de l’Isatis, alors que la charge microbienne initiale des feuilles humides était élevée puisqu’elle était supérieure à 3.10 7 CFU/g. La fermentation contrôlée et orchestrée par le consortium de micro-organismes de la composition C2 a donc permis de surmonter la flore endogène des feuilles d’Isatis. Les minéraux libérés lors de la fermentation ont été dosés par spectrométrie à plasma à couplage inductif (ICP-OES) ou par spectrométrie de masse à couplage inductif (ICP-MS). Le taux de calcium libéré est de 218,0 mg/kg, celui de magnésium de 31,4 mg/kg et celui de fer de 9,15 mg/kg. Ces concentrations en minéraux sont significatives et démontrent l’intérêt de fermenter les feuilles humides issus de la décoction pour leur décomplexation et leur libération. Extrait E7 Un extrait fermenté d'un jus restant après précipitation et décantation du pigment de pastel a été préparé. L'objectif est de valoriser ce coproduit qui est actuellement jeté, en le traitant par fermentation. Le jus a été chauffé à 80°C et, à cette température, du saccharose est ajouté à hauteur de 50 g/l et maintenu à cette température pendant 15 mn afin de diminuer la charge microbienne endogène qui s'élève à 5.10 7 CFU/g. Lorsque le milieu est refroidi, la composition C2 est ajoutée à hauteur de 2% au milieu et le tout est incubé à 28°C pendant 10 jours. Le pH initial du milieu est de 5,6 ce qui est propice au développement du consortium. Au bout de 10 jours, la fermentation est arrêtée par filtration stérilisante. L’extrait obtenu est de couleur brune avec une plaisante odeur végétale caractéristique. Extrait E8 Le jus obtenu par décoction des feuilles natives d’Isatis à 200 g/l dans de l’eau à 70°C avant précipitation et décantation du pigment de pastel a été fermenté. Pour ce faire, le jus est chauffé pendant 15 mn à 80°C, puis du saccharose est ajouté à hauteur de 50 g/l. Le jus sucré est maintenu à cette température pendant 15 mn. Après refroidissement, la composition C2 est ajoutée à hauteur de 2% au milieu et le tout est incubé à 28°C pendant 10 jours. Le pH initial du milieu est de 4,5 ce qui est propice au développement du consortium. Au bout de 10 jours, la fermentation est arrêtée par filtration stérilisante. L’extrait obtenu est de couleur brun-vert avec une odeur végétale caractéristique, et moussant. Les minéraux libérés durant la fermentation ont été dosés par spectrométrie à plasma à couplage inductif (ICP-OES) ou par spectrométrie de masse à couplage inductif (ICP-MS). Le taux de calcium libéré est de 321,0 mg/kg, celui de magnésium de 63,0 mg/kg et celui de fer de 15,2 mg/kg. Ces concentrations en minéraux sont significatives et intéressantes pour des applications cosmétiques. Le pouvoir moussant de l’extrait E8 peut être exploité pour des produits nettoyants doux. On remarque en outre que l'extrait E6 obtenu à partir de feuilles issues de la production du pastel a permis d'accéder à des quantités de minéraux allant de 50% à 70% de celles tirées des feuilles natives (extrait E8). Le procédé selon l'invention montre qu'une valorisation des coproduits du pastel est à considérer. Extrait 9 La spiruline est une cyanobactérie utilisée pour la santé humaine du fait de sa richesse en micronutriments (minéraux, vitamines, acides aminés, pigments, acides gras essentiels). Elle est aussi connue pour sa teneur en phycocyanine, pigment bleu aux nombreuses propriétés biologiques (antioxydantes, anti-inflammatoires, hépatoprotectrices, …). L’extraction de celle-ci nécessite actuellement des procédés complexes faisant appel à des étapes multiples, des solvants ou des adjuvants de synthèse ou à des procédés énergivores (ultra-sons, micro-ondes, vortex, congélation / décongélation). Une extraction-fermentation de spiruline a été réalisée pour libérer la phycocyanine et accroître sa durée de conservation sous forme humide. La spiruline sous forme de poudre sèche à 20 g/l est mise dans de l’eau déchlorée chauffée à 80°C. Le saccharose est ajouté à hauteur de 50 g/kg. La composition C1 préparée selon l’exemple 1 est ajoutée à la suspension aqueuse de spiruline à hauteur de 2%. L’essai est incubé pendant 6 jours à 28°C. Extrait E10 La callune ou bruyère commune est connue pour ses propriétés calmante, antiseptique et antioxydante liées à la présence de tanins et de polyphénols tels que la quercétine. Les préparations commerciales sont des extraits alcooliques susceptibles d’engendrer des effets secondaires sur la santé et lors de la préparation, sur l’environnement. L’extraction par fermentation en milieu totalement aqueux offre une solution à ce problème. Il est en outre proposé de sucrer le milieu fermentaire par du miel, bien que l’acidité de la bruyère et du miel, conjuguée à leurs propriétés antiseptiques créent des conditions de fermentation défavorables à la réussite de cette extraction. La fermentation de fleurs de bruyère (calluna vulgaris ) a été réalisée en présence de miel de châtaigner. Les fleurs en boutons sont introduites à 10 g/l dans de l’eau et infusées pendant 30 mn à 80°C-90°C. L’infusion est filtrée et lorsque sa température est inférieure à 45°C, le miel de châtaigner est ajouté à hauteur de 70 g/l. Quand la température est inférieure à 30°C, le milieu est ensemencé avec 20% de composition C2. Au bout de 12 jours de fermentation à 26°C, les sucres sont consommés et le taux d’acide formé voisin de 2,5%, ce qui indique avec la présence d’un biofilm, que le consortium s’est développé. Le surnageant est filtré sur 0,2 µm pour assurer sa stabilisation microbiologique. On constate que le consortium selon l'invention a parfaitement assuré la fermentation extractive, malgré des conditions difficiles. EXEMPLE 3 : Extraction du fer d'un extrait d'ortie L'ortie étant riche en fer, des tests ont été réalisés concernant son extraction par le procédé objet de l'invention. Le milieu de fermentation avec résidu (noté ORT-AR) conduisant à l'extrait d'ortie E1 a été comparé avec deux autres milieux préparés comme suit : - Une fermentation est réalisée de manière similaire à celle de E1, mais une filtration du milieu est effectuée avant l'ajout de la composition C2 pour éliminer les résidus d’ortie (le milieu fermentaire est noté ORT-AR). - Une fermentation témoin sans inoculation de ferment est réalisée en remplaçant la composition C2 par de l’eau (le milieu fermentaire est noté ORT-SSF). Des échantillons du surnageant des trois milieux sont prélevés au cours de la fermentation à J0, J3, J6 et J12 et le fer est dosé par colorimétrie avec du permanganate de potassium. Les résultats obtenus sont présentés à la Figure 1. Les échantillons avec résidus ORT-AR présentent un taux de fer extrait croissant au cours du temps, alors que ce taux n'évolue pas dans le milieu sans poudre d'ortie ORT-SR. Ceci atteste de l’extraction en continu du fer à partir des résidus de la plante au cours de la fermentation, le taux d’extraction maximal étant atteint dès le 6 ème jour par l’action des ferments ajoutés. En effet, une extraction de fer est visible aussi dans les échantillons sans ferment ORT-SSF, mais elle est plus lente puisqu'elle n'atteint son maximum qu'au bout de 12 jours. D’autre part, les échantillons ORT-SSF présentent une prolifération importante de la flore indigène de l’ortie, entraînant le développement d’une odeur forte, désagréable, ainsi qu’un noircissement du produit, signes de sa dégradation. Au contraire, les échantillons ORT-AR sont vert foncé avec une odeur végétale puissante. L’acidité totale a également été mesurée, par dosage colorimétrique par la soude en présence de phénolphtaléine. Elle est exprimée en % d’équivalents acide acétique, comme présenté à la Figure 2. Le taux de sucre en degrés Brix a été relevé à J0 et J6. La différence d'acidité entre les trois milieux est marquée dès le 6 ème jour et se poursuit jusqu’au 11 ème jour. Dans l’essai ORT-SSF, l'acidité se stabilise à partir du 8 ème jour ce qui indique que la production d’acide est arrêtée, signant ainsi l’absence de fermentation à proprement parler, alors que les sucres ne sont pas complétement consommés (à J6, le sucre est dosé à 4,6 °Bx pour une valeur initiale de 4,9). Par contre, en présence de la composition C2, l'acidité augmente régulièrement, avec consommation concomitante du sucre (pour les échantillons ORT-AR, le sucre est à 2,9 °Bx à J6, contre 5,3 à J0 ; pour les échantillons ORT-SR, le sucre est à 2,7 °Bx à J6, contre 5,1 à J0). La production d'acide avec consommation du sucre au cours des fermentations est caractéristique de la mise en place du consortium de la composition C2 dans les milieux fermentaires. Ces résultats montrent que le traitement par extraction/fermentation selon l'invention a permis simultanément de libérer rapidement le fer contenu dans l’ortie et d’empêcher le développement microbien sauvage, protégeant tant l'extrait liquide que la biomasse résiduelle de la plante ainsi traitée. EXEMPLE 4 : Propriétés biologiques d'un extrait d'ortie Cytotoxicité L’extrait d'ortie E2 obtenu à l'exemple 2 a été testé au regard de sa cytotoxicité in vitro sur deux types cellulaires : les kératinocytes épidermiques humains normaux, représentatifs de l’épiderme, et les fibroblastes dermiques humains normaux, représentatifs du derme. Pour ce faire, l'extrait est préalablement dilué en cascade dans un milieu de culture adapté à chaque type de cellules dans des concentrations comprises entre 0,01% et 10%. Les extraits dilués sont mis en contact avec les cellules pendant 24 heures. Durant les 3 dernières heures, le réactif coloré WST1 (Roche) est introduit dans le milieu. La densité optique à 450 nm (coloration jaune) est proportionnelle au nombre de cellules vivantes. Les résultats donnés à la Figure 3 (fibroblastes) et à la Figure 4 (kératinocytes), montrent que l’extrait E2 ne manifeste aucune cytotoxicité par rapport au témoin sans extrait, sur les deux types cellulaires, lorsqu'il est présent à une teneur comprise entre 0,01% et 1% in vitro , ce qui est compatible avec des applications cutanées. Activités cellulaires L'extrait E2 a ensuite été testé sur puce génomique pour identifier les activités stimulées. L’extrait est préalablement dilué dans du milieu de culture, à la concentration non-toxique de 0,01%, puis incubé avec des kératinocytes épidermiques humains normaux pendant 24 heures. Les ARN messagers (ARNm) sont extraits puis analysés par RT-qPCR (Real Time quantitative Polymerase Chain Reaction). Les résultats sont présentés à la Figure 5. Ils sont exprimés en %, positif en cas de surexpression et négatif en cas d’inhibition par rapport à l’expression du gène dans des cellules cultivées dans des conditions normales. On observe une surexpression de 60% à plus de 150% des gènes correspondant aux des activités suivantes : fibrillines 1 et 2, collagène VII, occludine, syndécan, aquaporine, facteur de croissance HBEGF (Heparin-Binding EGF-like Growth Factor), sirtuine, catalase et propiomellanocortine. La surexpression de ces gènes est intéressante pour des applications cosmétiques de type "anti-âge". EXEMPLE 5 : Propriétés biologiques d'un extrait de Ginkgo biloba Cytotoxicité L’extrait de Ginkgo biloba E3 obtenu à l'exemple 2 a été testé au regard de sa cytotoxicité in vitro sur deux types cellulaires humains normaux : les kératinocytes et les fibroblastes, selon la procédure identique à l'exemple 4. Les résultats donnés à la Figure 6 (fibroblastes) et à la Figure 7 (kératinocytes), montrent que l’extrait E3 ne manifeste aucune cytotoxicité par rapport au témoin sans extrait lorsqu'il est présent à une teneur comprise de 0,01% à 1% in vitro , ce qui est compatible avec des applications cutanées. Activités cellulaires L'extrait E3 a ensuite été testé sur puce génomique pour identifier les activités stimulées, après dilution dans du milieu de culture, à la concentration non-toxique de 0,01%, puis incubation avec des kératinocytes épidermiques humains normaux pendant 24 heures. Les ARN messagers (ARNm) sont extraits puis analysés comme ci-dessus. Les résultats sont présentés à la Figure 8. On observe une surexpression de 60% à plus de 100% des gènes correspondant aux des activités aquaporine, filaggrine, involucrine et transglutaminase 1 et jusqu'à 320% pour l'inhibiteur de peptidase-3. Par contre, l'activité de la métalloprotéase est inhibée. Les modifications d’expression de ces gènes sont intéressantes pour des applications cosmétiques visant à renforcer la fonction barrière de la peau. EXEMPLE 6 : Extraction de la curcumine et dérivés d'un extrait de Curcuma longa On sait que le curcuma est naturellement riche en curcuminoïdes, majoritairement de la curcumine. L'extrait E4 préparé à l'exemple 2 dont l'observation visuelle laisse présumer la solubilisation de composés colorés, a été analysé. Pour ce faire, à la fin du processus d’extraction/fermentation, le surnageant de fermentation est séparé de la poudre résiduelle de curcuma, laquelle est séchée à l’étuve à 45°C. La phase liquide (curcuma-F-jus) et la phase solide séchée (curcuma-F-poudre) sont analysées par spectrophotométrie et comparées au curcuma natif non fermenté repris dans l’eau (curcuma-H 2 O). À cette fin, les poudres de curcuma, fermentée et native, sont reprises à 100 mg/ml et des dilutions au ¼ sont effectuées pour pouvoir comparer les échantillons. Les échantillons sont centrifugés et le surnageant est analysé en spectrophotométrie visible. Les spectres obtenus sont présentés à la Figure 9. Les spectres des trois échantillons font apparaitre la présence de curcumine (absorbant entre 400 nm et 430 nm) et d’autres composés issus du procédé (absorbant entre 450 nm et 500 nm). La teneur en curcumine semble être équivalente dans le surnageant de curcuma fermenté (Curcuma-F-jus) et le curcuma natif (Curcuma-H2O) montrant que la fermentation n’a pas dégradé ce composé. De plus, la poudre fermentée de curcuma (Curcuma-F-poudre) présente des pics en curcumine et des composés de métabolisation très marqués, environ quatre fois plus importants que ceux du curcuma natif. Le procédé d’extraction-fermentation a permis de libérer 4 fois plus de curcumine qu’une simple extraction à l’eau et donc rend la curcumine plus accessible. Ces résultats montrent que la curcumine n’est pas dégradée par la fermentation et que la poudre fermentée séchée est enrichie en une forme de curcumine biodisponible et extractible à l’eau. EXEMPLE 7 : Propriétés biologiques d'extraits de pastel et de coproduits de pastel Isatis tinctoria, connue pour la production de pastel, contient d’autres composés qui peuvent présenter des propriétés intéressantes pour le domaine cosmétique. Des tests ont été réalisés sur les trois extraits E6, E7 et E8 de l’exemple 2, après chauffage à 80°C pendant 30 mn et filtration stérilisante. Cytotoxicité Les extraits E6, E7 et E8 ont été testés au regard de leur cytotoxicité in vitro sur kératinocytes et fibroblastes humains, selon la procédure décrite à l'exemple 4, avec des concentrations en extraits comprises entre 0,01% et 5%. Les résultats relatifs à l'extrait E6 (feuilles d'Isatis fermentées, noté FISAF) sont donnés à la Figure 10 (fibroblastes) et à la Figure 11 (kératinocytes). Les résultats relatifs à l'extrait E7 (jus d'Isatis fermentées, noté JISAF) sont donnés à la Figure 12 (fibroblastes) et à la Figure 13 (kératinocytes). Les résultats relatifs à l'extrait E8 (feuilles non-traitées, noté DECISA) sont donnés en Figure 14 (fibroblastes) et en Figure 15 (kératinocytes). Ils montrent que l’extrait E6 ne manifeste aucune cytotoxicité par rapport au témoin lorsqu'il est présent à une teneur comprise de 0,01% à 2,5% in vitro , les extraits E7 et E8 étant dépourvus de toxicité à une teneur comprise de 0,01% à 0,5%. Des applications cutanées peuvent donc être envisagées. Activités cellulaires Les extraits E6, E7 et E8 ont ensuite été testés sur puce génomique pour identifier les activités stimulées. Les extraits ont été dilués dans du milieu de culture adapté aux kératinocytes, à une concentration non-cytotoxique de l’extrait, puis incubés avec des kératinocytes épidermiques humains normaux pendant 24 heures. Les ARN messagers (ARNm) sont extraits puis analysés comme à l'exemple 4. Les résultats sont présentés aux Figures 16, 17 et 18 respectivement pour les extraits E6, E7 et E8. L'extrait E6 fait apparaitre une surexpression marquée des gènes correspondant à l'aquaporine 3 et à l'involucrine, et une surexpression particulièrement élevée des gènes de l'inhibiteur de peptidase 3 (environ 350%). Concernant l'extrait E7, plusieurs gènes sont surexprimés entre 50% et 180% (aquaporine 3, Heparin-Binding EGF-like Growth Factor ou HBEGF, involucrine, occludine, Serine Protease INhibitor Kazal-type 5 ou SPINK5). La surexpression du gène correspondant à l'inhibiteur de peptidase-3 est particulièrement élevée à un niveau d'environ 450%. Concernant l’extrait E8, plusieurs gènes sont surexprimés entre 80% et 180%. La surexpression des gènes de la décorine et de l'involucrine autour de 250% est particulièrement élevée. On peut affirmer que les activités détectées sur les trois extraits à base d’Isatis sont intéressantes pour des applications cosmétiques. On observe en outre que les activités détectées sont différentes pour chacun des extraits. EXEMPLE 8 : Extraction des pigments d'un extrait de spiruline L'extrait E9 préparé à l'exemple 2 a été analysé. Aux jours J0, J3 et J6, un aliquot de spiruline est prélevé et centrifugé pour analyse en spectrophotométrie. Le spectre obtenu est présenté à la Figure 16. Le spectre à J6 indique une absorption plus importante de 400 nm à 700 nm par rapport à J0 et présente les deux pics caractéristiques de la spiruline, autour de 460 nm pour les caroténoïdes et autour de 600 nm pour la phycocyanine. Le biofilm contient aussi de la phycocyanine. D’autre part, on sait que la spiruline est sensible à la contamination microbienne en milieu aqueux du fait de sa riche composition en nutriments et de son pH basique. Elle dégage une odeur marine caractéristique qui peut parfois gêner le consommateur. Un échantillon témoin de spiruline a été incubé dans de l’eau sans ferments dans les mêmes conditions que ci-dessus. Après 1 jour, le milieu fermentaire présente une contamination sauvage, identifiée par l’odeur nauséabonde de putréfaction. Au contraire, dans l'essai réalisé avec la composition C1, l'odeur marine désagréable a disparu. On constate donc que le procédé selon l'invention a permis d’éviter la fermentation sauvage du milieu. Ainsi, l’extraction/fermentation permet d’extraire des composés d’intérêt de la spiruline et permet aussi d’hygiéniser la spiruline en phase aqueuse. Dès lors, il est possible de la conserver sans ajout de conservateur. Elle peut être utilisée comme source d'actifs, ou bien. Ces opérations peuvent être réalisées sans inconvénient en présence de la biomasse du consortium de micro-organismes. EXEMPLE 9 : Crème de soin comprenant un extrait d'ortie L’ortie est généralement utilisée pour ses propriétés apaisantes sur la peau. Les activités présentes dans l'extrait E2 mises en évidence à l'exemple 3 sont intéressantes pour être utilisées dans une crème de soin à effet restructurant, raffermissant, hydratant. Une formulation de crème de soin à l’extrait d’ortie fermentée a été réalisée et a montré qu’il est possible de l’incorporer facilement. Dans 35 g d’eau déminéralisée, 0,5 g de gomme xanthane est dissous sous forte agitation. Puis, la base émulsionnante (0,75 g de copolymère d'hydroxyéthyl acrylate et de sodium acryloyldiméthyl taurate) est ajoutée sous agitation. De 1 g à 5 g de l’extrait E2 d’ortie fermentée (1% à 10% de la formule finale) sont ajoutés au mélange précédent, ce qui constitue la phase aqueuse. La phase huileuse est préparée en mélangeant du coco caprylate (0,75 g), du beurre de coco (0,5 g) et de l’huile de jojoba (3,75 g). Sous forte agitation à la pale défloculeuse. La phase huileuse est ajoutée doucement à la phase aqueuse et l’émulsion obtenue est agitée doucement pendant quelques minutes. Un système de conservation est ajouté, par exemple un mélange d’alcool benzylique, d’acide salicylique et d’acide sorbique. L’émulsion ainsi obtenue est ajustée à un pH compris entre 5 et 5,5 avec de la soude 1N et à une masse de 50 g avec de l’eau déminéralisée. La crème obtenue est lisse, légèrement brillante et modérément compacte. La composition comprenant de 10% d’extrait E2 est d’un blanc très légèrement cassé avec une légère odeur caractéristique de l’ortie. Elle s’étale aisément sur la peau, pénètre facilement et laisse un toucher soyeux et confortable. EXEMPLE 10 : Crème de soin et gel comprenant un extrait de Ginkgo biloba Le Ginkgo biloba est généralement utilisé pour ses effets sur la microcirculation sanguine. Les activités présentes dans l'extrait E3 mises en évidence à l'exemple 4 sont intéressantes pour être utilisées sur la peau. L'extrait E3 a été incorporé sans difficulté dans une crème de soin et dans un gel. Crème de soin comprenant un extrait de Ginkgo biloba Dans 35 g d’eau déminéralisée, 0,5 g de gomme xanthane est dissous sous forte agitation, puis la base émulsionnante (0,75 g de copolymère d'hydroxyéthyl acrylate et de sodium acryloyldiméthyl taurate) est ajoutée sous agitation. De 0,5 g à 5 g d’extrait E3 de Ginkgo biloba fermenté (1% à 10% de la formule finale) sont ajoutés au mélange précédent, ce qui constitue la phase aqueuse. La phase huileuse préparée comme à l'exemple précédent est ajoutée doucement à la phase aqueuse, ainsi qu'un système de conservation. L’émulsion ainsi obtenue est ajustée à un pH compris entre 5 et 5,5 avec de la soude 1N et à une masse de 50 g avec de l’eau déminéralisée. La crème obtenue comprenant de 10% d’extrait E3, est assez compacte, blanc brillant. Elle n'exhale pas l'odeur typique de la plante. Elle s’étale facilement et pénètre en laissant un toucher soyeux et une peau bien hydratée et plus claire. Gel aqueux comprenant un extrait de Ginkgo biloba Dans 45 g d’eau déminéralisée, 0,5 g de gomme xanthane est ajouté. Le mélange est agité fortement jusqu’à solubilisation complète de la gomme et épaississement. De 0,5 g à 5 g d’extrait E3 de Ginkgo biloba fermenté (1% à 10% de la formule finale) est ajouté sous agitation moyenne. Un système de conservation, par exemple de l’acide déhydroacétique et de l’alcool benzylique, est ajouté. Le mélange obtenu est ajusté à un pH de 5 à 5,5 si nécessaire, et en masse à 50 g avec de l’eau déminéralisée. Le gel obtenu possède une texture très gélifiée qui s’étale bien sur la peau. EXEMPLE 11 : Lotion anti-démangeaison L'extrait E10 à base de bruyère et de miel a été testé pour ses effets sur les piqures d’insectes et en particulier de moustiques-tigres. Quelques gouttes d'extrait pur ont été appliquées par léger massage sur la peau de patients présentant en plusieurs endroits du corps des boutons, indices d'une réaction inflammatoire suite à des piqures de moustique. Les patients ont affirmé ne plus ressentir de démangeaison seulement 3 mn à 5 mn après l'application. Au bout de 24h, les boutons avaient tous nettement régressé, voire totalement disparu. Ce résultat montre que l'extrait E10 possède des propriétés antiallergiques et apaisantes marquées, qu'on pourra mettre à profit dans une lotion aqueuse. EXEMPLE 12 : Création de parfums Les parfums en général sont constitués d’une partie alcoolique et d’une partie aqueuse dans des proportions variables. Des extraits végétaux obtenus selon l'invention peuvent avantageusement remplacer la partie aqueuse des parfums, ce qui permet de rehausser les notes odorantes mais aussi d'apporter une touche de soin au produit fini. L’eau et l’alcool (éthanol) étant miscibles, les parfums ainsi composés seront plutôt légers et frais. De plus, l’ajout de plantes fermentées dans des solutions parfumantes présente un potentiel antioxydant très intéressant, permettant d'envisager leur utilisation dans des formulations d’eau de soin parfumées. Le mélange des senteurs et la création seront l’œuvre de l’expert. Différentes compositions ont été réalisées en mélangeant des extraits fermentés avec de l’éthanol (EtOH). Les extraits d'ortie, de romarin, de rose de Damas et de feuilles de jujubier ont été fermentés selon le protocole utilisé pour l’extrait E2 de l’exemple 2. L'extrait de thé noir E5 préparé selon l'exemple 2 est également employé. Composition parfumante A Une composition parfumante A a été réalisée en mélangeant les extraits fermentés de romarin (5%), rose de Damas (54%), ortie (27%) et feuilles de jujubier (14%). La note de tête dominante est celle évoquant la rose soutenue par le romarin que l’on perçoit dans un second temps. Pour adoucir l’ensemble des notes plus subtiles sont apportées par les autres extraits. Compositions parfumantes B1 et B2 Deux compositions ont été réalisées à partir d’une eau de toilette du commerce au parfum de pêche très sucré et lourd. Dans la composition B1, a été ajouté l'extrait de romarin (très odorant) à hauteur de 20%. Dans la composition B2, 20% de thé fermenté (peu odorant mais acétique) a été ajouté. La note de tête est différente dans les compositions, mais suggère la pêche de façon plus légère et fraiche que dans l'eau de toilette initiale. Les nouveaux parfums B1 et B2 obtenus sont vivifiés par la présence des extraits fermentés et l’acidité apporte de la volatilité aux arômes, les rendant ainsi plus légers et frais. EXEMPLE 13 : Traitement de lésions sur des végétaux Les effets d'un extrait de thé fermenté sont montrés dans une expérience sur des feuilles de vigne. La feuille de vigne est lésée à deux endroits avec un scalpel (1 et 2). Sur la lésion 1, une goutte de l'extrait de thé noir E5 décrit à l'exemple 2 a été déposée, la lésion 2 est laissée telle quelle. Un témoin est constitué par le dépôt d'une goutte de l'extrait E5 sur une partie de la feuille saine et sans lésion. Après 2 jours, on constate une évolution très nette du tissu végétal de la zone lésée traitée par l'extrait E5 sur laquelle la zone de la lésion est délimitée par diffusion du produit E5 et où les différentes lésions ne sont plus visibles. Au contraire, elles restent ouvertes et susceptibles au développement de maladies sur la partie non traitée. La partie saine de la feuille ne fait apparaitre aucune réaction visible des cellules de la feuille, attestant de l’innocuité de l'extrait E5. On peut faire l'hypothèse d'une interaction des polyphénols de l'extrait E5 avec les polysaccharides de structure de la feuille de vigne induisant un effet barrière. EXEMPLE 14 : Action sur les stomates des végétaux D’autres effets d'un extrait de thé selon l'invention ont été observés sur des cellules végétales et plus particulièrement sur les stomates, véritables organes récepteurs sensoriels responsables des échanges de la plante avec son environnement. Quelques gouttes de l'extrait de thé E5 ont été appliquées sur les feuilles de diverses plantes : iris ( Iris germanica ), ciboulette ( Allium schoenoprasum ), plante porcelaine ( Graptopetalum paraguayense ). Les cellules observées au microscope optique (grossissement x 600) présentent des stomates largement ouverts. Ainsi, l’application de l’extrait de thé fermenté induit une réponse mécanique des cellules végétales et facilite les échanges cellulaires avec leur environnement, comme le ferait une lumière bleue sur un végétal, accélérant ainsi la croissance des cellules. Cet extrait E5 favorise la réceptivité du tissu tout en maintenant un terrain sain. EXEMPLE 15 : Action sur l'hydratation des cellules végétales On sait que l’action de l’eau salée sur un tissu animal ou végétal entraîne une déshydratation des cellules due à la différence de pression osmotique entre l’extérieur et l’intérieur des cellules du tissu. L'action de deux extraits fermentés a été observée, à savoir l'extrait d'ortie E2 et l'extrait de thé E5 préparés comme décrit à l'exemple 2. Une solution d'eau salée (NaCl 0,9%) a été additionnée d'une part de 1% d'extrait d'ortie E2, et d'autre part de 1% d'extrait de thé E5. Quelques gouttes de chacune des préparations ont été déposées sur une feuille de plante porcelaine ( Graptopetalum paraguayense ). La réaction de la plante à la solution d'eau salée est prise comme témoin. Les effets sont illustrés à la Figure 17. On observe une action très nette sur la paroi cellulaire : l’extrait d’ortie E2 protège de la déshydratation (cliché A), l’extrait de thé E5 favorise l’hydratation (cliché B), alors que l’eau salée entraîne un amincissement des parois marquant ainsi son effet déshydratant (cliché C). Au niveau cellulaire, les deux extraits fermentés inhibent l’effet déshydratant de l’eau salée avec une action plus prononcée pour l’extrait de thé fermenté. EXEMPLE 16 : Action sur la germination Les deux extraits d'ortie E2 et de thé E5 ont été testés sur un tubercule d’Oca du Pérou ( Oxalis tuberosa ) qui a la faculté de germer et pousser facilement hors sol dans une ambiance humide. Trois tubercules germés sont placés dans des tubes contenant de l’eau salée additionnée ou non d'extraits fermentés E2 ou E5. Ils sont incubés à la lumière naturelle entre 20°C et 25°C à environ 40% d’humidité avec 5 ml de liquide au fond du tube, à savoir respectivement : eau salée NaCl 0,9% (tube ES), extrait de thé fermenté E5 1% dans l'eau salée NaCl 0,9% (tube Thé-F-1%) et extrait d’ortie fermentée E2 1% dans l'eau salée NaCl 0,9% (tube Ort-F-1%). Au cours du temps, seule de l’eau douce est ajoutée pour que le tubercule ne se déshydrate pas. On observe au bout de 30 jours que le tubercule du tube Ort-F-1% présente une croissance de l'ordre de 2,5 cm en longueur avec apparition de feuillage, alors que les tiges foliaires des tubes Thé-F-1% et ES se sont très peu allongées. On note en outre que le tubercule du tube ES présente des moisissures, ce qui n'est pas le cas de celui des tubes Ort-F-1% et Thé-F-1%. Toutefois, dans ce dernier tube, le tubercule n’a pas montré de croissance du feuillage. Le contact du tubercule avec l’extrait d'ortie E2 a donc été très stimulant et protecteur. L’extrait d'ortie fermentée selon l'invention présente un grand intérêt pour la protection des cellules végétales et l’induction de leur croissance. L’extrait de thé fermenté quant à lui, s'il contribue à prévenir la déshydratation des cellules, n’induit pas de croissance. Préparation de microorganismes caractérisée en ce qu'elle comprend un consortium de microorganismes dans un milieu nutritif aqueux sucré, ledit consortium comprenant au moins un microorganisme appartenant au groupe des bactéries lactiques, au moins un microorganisme appartenant au groupe des levures et au moins un microorganisme appartenant au groupe des bactéries acétiques. Préparation de microorganismes selon la revendication 1, caractérisée en ce qu'elle comprend : - au moins une bactérie lactique appartenant au genre lactobacillus ou pediococcus , - au moins une levure appartenant au genre Saccharomyces, Schyzosaccharomyces ou Torulaspora, - au moins une bactérie acétique appartenant au genre acetobacter, gluconobacter ou komagataeibacter . Préparation de microorganismes selon la revendication précédente, caractérisée en ce qu'elle comprend : - au moins une bactérie lactique choisie parmi Lactobacillus plantarum et Lactobacillus acidophilus , - au moins une levure choisie parmi Saccharomyces cerevisiae, Saccharomyces boulardii , Schyzosaccharomyces pombe et Torulaspora delbrueckii, - au moins une bactérie acétique provenant d'un vinaigre de cidre ou d'un vinaigre de vin. Préparation selon l'une des revendications précédentes, caractérisée en ce que le milieu nutritif comprend un extrait aqueux choisi parmi une infusion, une décoction, une macération ou un jus d'une plante ou d'une partie de plante. Préparation selon l'une des revendications précédentes, caractérisée en ce que le milieu nutritif comprend une infusion de thé et une source de sucres assimilables choisie parmi le saccharose, le glucose, le fructose, la mélasse, ou un mélange de ceux-ci. Préparation selon l'une des revendications précédentes, obtenue par un procédé comprenant : - l'introduction desdits microorganismes dans ledit milieu nutritif pour obtenir une suspension microbienne, et - l'incubation de la suspension microbienne dans un réacteur ouvert, à une température comprise entre 12°C et 45°C durant 6 à 21 jours, pour obtenir un consortium desdits microorganismes, comprenant une flore totale de 10 5 CFU/g à 10 7 CFU/g. Procédé de production d'un extrait végétal, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes consistant à : a) - préparer un milieu fermentaire contenant un substrat végétal en phase aqueuse, b) - inoculer ledit milieu fermentaire avec une préparation de microorganismes selon l'une des revendications précédentes à un taux d'inoculation compris entre 10 2 CFU/g et 10 4 CFU/g de milieu fermentaire, c) - incuber dans un réacteur ouvert, à une température comprise entre 12°C et 45°C, durant 2 à 20 jours, d) - récupérer le surnageant, avec ou sans la biomasse résiduelle, pour obtenir un extrait dudit végétal riche en composés actifs. Procédé de production d'un extrait végétal selon la revendication précédente, caractérisé en ce que à l'étape b), ledit milieu fermentaire est inoculé avec une quantité de ladite préparation de microorganismes comprise entre 0,5% et 5% en masse rapportée à la masse de milieu fermentaire, et incubé à une température comprise entre 25°C et 30°C, durant 10 à 15 jours. Procédé de production d'un extrait végétal selon la revendication 7 ou 8, caractérisé en ce que le substrat végétal est choisi parmi les végétaux supérieurs, les végétaux inférieurs ou les organismes du phytoplancton. Procédé de production d'un extrait végétal selon l'une des revendications 7 à 9, caractérisé en ce que le substrat végétal est choisi parmi l'ortie, le pastel, la rose de Damas, le jujubier, le Ginkgo biloba , le romarin, la lavande, la camomille, la bruyère, le gingembre, le curcuma, le café, le thé, le cacao, la spiruline. Procédé de production d'un extrait végétal selon l'une des revendications 7 à 10, caractérisé en ce que le substrat végétal est obtenu sous la forme de fragments, de broyat ou de poudre, à partir d'une plante entière ou d'une partie de plante, ou en tant que coproduit solide issu d'un traitement dudit végétal. Procédé de production d'un extrait végétal selon la revendication précédente, caractérisé en ce que à l'étape a), le substrat végétal est mélangé à de l'eau puis porté à une température comprise entre 25°C et 90°C, et si nécessaire un ajout de sucre est effectué, avant ou après mise à température, pour amener le milieu fermentaire à un degré Brix compris entre 2 et 10. Procédé de production d'un extrait végétal selon l'une des revendications 7 à 10, caractérisé en ce que le substrat végétal est obtenu sous la forme d'un jus, d'une infusion, d'une décoction ou d'une macération, à partir d'une plante ou d'une partie de plante fraiche ou sèche, ou en tant que coproduit liquide issu d'un traitement dudit végétal. Procédé de production d'un extrait végétal selon la revendication précédente, caractérisé en ce que à l'étape a), le substrat végétal est porté à une température comprise entre 25°C et 85°C, et si nécessaire un ajout de sucre est effectué avant ou après mise à température, pour amener le milieu fermentaire à un degré Brix compris entre 2 et 10. Procédé de production d'un extrait végétal selon l'une des revendications 7 à 14, caractérisé en ce que à l'étape a), le milieu fermentaire est sucré par addition d'une source de sucres assimilables choisie parmi le saccharose, le glucose, le fructose, la mélasse, le miel, ou un mélange de ceux-ci. Procédé de production d'un extrait végétal selon l'une des revendications 7 à 15, caractérisé en ce qu'il comprend en outre après l'étape d), une ou plusieurs des opérations suivantes : une filtration de l'extrait fermenté pour éliminer les résidus végétaux, une filtration stérilisante pour éliminer la flore microbienne, une décontamination microbiologique, une lyophilisation, un séchage en étuve, un broyage. Extrait végétal contenant des composés actifs, obtenu par un procédé selon l'une des revendications 7 à 16. Extrait végétal selon la revendication précédente, caractérisé en ce qu' il est produit à partir d'un végétal choisi parmi les végétaux supérieurs, les végétaux inférieurs ou les organismes du phytoplancton. Utilisation d'un extrait végétal selon l'une des revendications 17 ou 18 ou susceptible d'être obtenu par un procédé selon l'une des revendications 7 à 16, pour la fabrication d'un produit pharmaceutique, d'un produit cosmétique, d'un parfum, d'un complément alimentaire ou d'un produit de traitement des plantes. Utilisation selon la revendication précédente pour la fabrication d'un produit pharmaceutique ou un produit cosmétique comprenant au moins en plus un composé choisi parmi : un excipient, un additif naturel, un additif de synthèse, un épaississant, un stabilisant, un émulsifiant, un adjuvant, ou un mélange de ceux-ci.