FR 3101640 A1 20210409 FR 1911088 A 20191007 La présente invention concerne une lignée cellulaire de monocytes humains exprimant de manière stable et fonctionnelle des récepteurs Fc gamma (FcγR) CD16, CD32 et CD64 humains à leur surface, ainsi qu’un procédé d’évaluation in vitro de l’activité phagocytaire de ladite lignée. La présente invention concerne également un procédé de sélection d’anticorps à forte activité ADCP médiée par les récepteurs Fc gamma (FcγR) CD16, CD32 et/ou CD64 humains ainsi qu’un procédé de sélection d’un inhibiteur de l’ADCP médiée par les récepteurs Fc gamma (FcγR) CD16, CD32 et/ou CD64 humains. Lignée cellulaire de monocytes humains et son utilisation en tant que modèle cellulaire de la phagocytose. La présente invention concerne une nouvelle lignée cellulaire de monocytes humains, et son utilisation en tant que modèle cellulaire de la phagocytose. La phagocytose est le processus cellulaire par lequel certaines cellules regroupées sous la dénomination générale de phagocytes peuvent ingérer des particules étrangères solides d'échelle micrométrique. On considère habituellement que la phagocytose est une forme particulière d'endocytose. Elle se distingue d'autres processus d'internalisation cellulaire (endocytose, pinocytose) par au moins deux critères généraux : la phagocytose est induite par le contact physique avec la particule-cible ; la particule-cible de la phagocytose a une taille supérieure à 0,5 µm. Bien que la phagocytose ait été observée expérimentalement dans plusieurs types cellulaires, elle est généralement fortement associée avec certaines catégories de leucocytes, tels les macrophages, les cellules dendritiques ou les neutrophiles. Son action est essentielle dans la réponse immunitaire. Qu’elle soit innée ou adaptative, la phagocytose est impliquée dans l’élimination des pathogènes. En effet, elle constitue la première ligne de défense face à une infection. Cependant, elle joue également un rôle important dans le maintien de l’homéostasie des tissus ainsi que dans le remodelage et la réparation de ces derniers. La rate est un organe mou du système lymphatique. Il joue un rôle déterminant dans l’immunité et le processus de renouvellement cellulaire du sang. La rate est composée de deux principaux types de tissu, chacun ayant une fonction différente : la pulpe blanche et la pulpe rouge. La pulpe blanche est une composante du système de défense contre les infections (système immunitaire). Elle contient des globules blancs appelés lymphocytes, qui à leur tour produisent des anticorps (protéines spécialisées qui luttent contre l’envahissement par une substance étrangère). La pulpe rouge filtre le sang et élimine les éléments indésirables. Elle contient d’autres globules blancs, les macrophages, qui ingèrent les micro-organismes, comme les bactéries, les champignons et les virus. De plus, elle contrôle également les globules rouges, en détruisant ceux qui sont anormaux, trop vieux ou ceux qui ne fonctionnent plus correctement. Enfin, elle sert de réservoir pour différents éléments sanguins : essentiellement les globules blancs et les plaquettes (particules pseudo-cellulaires impliquées dans la coagulation). L’élimination de ces éléments n’est cependant qu’une fonction mineure de la pulpe rouge. Les macrophages résidant de la pulpe rouge de la rate jouent également un role majeur dans la clairance des cellules sanguines opsonisées par des immunoglobulines G (IgG), comme dans le purpura thrombopénique immunologique (PTI) ou dans l’anémie hémolytique autoimmune (AHAI). Les cellules sanguines sont phagocytées via les récepteurs Fc gamma (FcγRs). Ces macrophages spléniques sont distincts chez l’homme des monocytes spléniques et des macrophages circulants dérivés de monocytes en termes d’expression des FcγRs et d’autres marqueurs de surface. En effet, les macrophages humains de la pulpe rouge expriment de manière prédominante les récepteurs de faibles affinité CD32a (ou FcRγIIa) et CD16a (ou FcγRIIIa). Ils n’expriment pas le CD32b (ou FcγRIIb) et expriment très faiblement le récepteurs de haute affinité CD64 (FcγRI). Le processus de phagocytose tel que définit aujourd’hui est caractérisé par trois étapes principales ; la phase d’adhésion qui s’effectue grâce à des récepteurs des micro-organismes étrangers ou de cellules sénescentes présents à la surface du macrophage, ou par l’intermédiaire des récepteurs aux opsonines, la phase d’internalisation ou ingestion qui aboutit à la formation du phagosome et la phase de dégradation par divers enzymes qui s’accumulent dans le phagosome suite à sa fusion avec les lysosomes. C’est la reconnaissance de la particule qui permet d’enclencher la cascade de signaux qui aboutissent à la polymérisation de l’actine, la production de divers produits toxiques et la synthèse de cytokines et de chimiokines anti-inflammatoires. La phagocytose est également impliquée dans de nombreuses pathologies, et notamment dans la thrombocytopénie immunitaire associée au purpura (ITP). Elle peut également représenter le mécanisme d’action de certains médicaments, tels que l’anti-D. Actuellement, il n'existe pas de modèle cellulaire stable et établi de phagocytose médiée par les récepteurs Fcγ notamment par le CD16 (FcγRIII) permettant d’obtenir un résultat fiable et reproductible. C’est pourquoi, les inventeurs ont mis au point une nouvelle lignée cellulaire de monocytes destinée à être utilisée comme modèle cellulaire de phagocytose, notamment pour la phagocytose de complexes anticorps/entité cible, par exemple anti-D/hématies et anticorps/ plaquettes. Ainsi, la présente invention porte sur une lignée cellulaire de monocytes humains exprimant de manière stable et fonctionnelle les récepteurs Fc gamma (FcγR) CD16, CD32 et CD64 humains à leur surface. Par «lignée cellulaire», on entend, au sens de la présente invention, un ensemble de cellules provenant d'une même cellule mère et possédant les mêmes caractéristiques génétiques que cette cellule mère. Une lignée cellulaire se caractérise en outre par sa capacité à se multiplier dans un milieu de culture de façon stable in vitro pendant un grand nombre de générations. Par « exprimant de manière stable», on entend au sens de la présente invention, que la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention est capable d’exprimer les récepteurs Fc gamma (FcγR) CD16, CD32 et CD64 humains à leur surface après un nombre important de passages en culture cellulaire, en particulier après au moins 20 passages, avantageusement au moins 25 passage, avantageusement au moins 30 passages. Par « exprimant de manière stable», on entend également au sens de la présente invention, que la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention est capable d’exprimer les récepteurs Fc gamma (FcγR) CD16, CD32 et CD64 humains à leur surface sans évolution notable du niveau d’expression au cours du temps. Par « exprimant de manière fonctionnelle », on entend, au sens de la présente invention, la capacité des récepteurs Fc gamma (FcγR) humains ainsi exprimés comme étant capables de fixer la région Fc, portion constante, des immunoglobulines, afin d’induire la phagocytose. Par « exprimant de manière fonctionnelle», on entend également au sens de la présente invention, que la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention est capable d’exprimer suffisamment de récepteurs Fc gamma (FcγR) CD16, CD32 et CD64 humains, afin d’obtenir une activité de phagocytose médiée par l’un ou la combinaison des récepteurs Fc gamma (FcγR) CD16, CD32 et CD64, lors des tests fonctionnels en bloquant les autres récepteurs. La lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention exprime de manière stable et fonctionnelle les récepteurs Fc gamma (FcγR) CD16, CD32 et CD64 humains. Dans un mode de réalisation particulièrement avantageux, la lignée cellulaire de monocytes humains est dérivée du sang périphérique d’un patient atteint d’une leucémie aigüe myélo-monocytaire. Avantageusement, la lignée cellulaire de monocytes humains est dérivée du sang périphérique d’un patient masculin âgé d’un an atteint d’une leucémie aigüe myélo-monocytaire. Dans un mode de réalisation particulièrement avantageux, la lignée cellulaire de monocytes humains est dérivée de la lignée de cellules THP1. Avantageusement, la lignée cellulaire de monocytes humains est dérivée de la lignée de cellules THP1, déposée auprès de l’ECACC sous le numéro 88081201. Dans un mode de réalisation particulier, la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention est capable d’exprimer de manière stable et fonctionnelle les récepteurs Fc gamma (FcγR) CD16, CD32 et CD64 humains après au moins 30 passages de culture cellulaire. Avantageusement, la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention exprime de manière stable et fonctionnelle au moins 50 000 récepteurs CD16, avantageusement au moins 60 000 récepteurs CD16, avantageusement au moins 70 000 récepteurs CD16, avantageusement au moins 80 000 récepteurs CD16, avantageusement au moins 90 000 récepteurs CD16, avantageusement au moins 95 000 récepteurs CD16, avantageusement au moins 96 000 récepteurs CD16, avantageusement au moins 97 000 récepteurs CD16, avantageusement au moins 98 000 récepteurs CD16, avantageusement au moins 99 000 récepteurs CD16, avantageusement au moins 100 000 récepteurs CD16, avantageusement au moins 105 000 récepteurs CD16 après au moins 30 passages de culture cellulaire. Avantageusement, la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention exprime de manière stable et fonctionnelle au moins 5 000 récepteurs CD32, avantageusement au moins 6 000 récepteurs CD32, avantageusement au moins 7 000 récepteurs CD32, avantageusement au moins 8 000 récepteurs CD32, avantageusement au moins 9 000 récepteurs CD32, avantageusement au moins 10 000 récepteurs CD32, avantageusement au moins 11 000 récepteurs CD32, avantageusement au moins 12 000 récepteurs CD32, avantageusement au moins 13 000 récepteurs CD32, avantageusement au moins 14 000 récepteurs CD32, avantageusement au moins 14 000 récepteurs CD32, avantageusement au moins 16 000 récepteurs CD32, avantageusement au moins 17 000 récepteurs CD32 après au moins 30 passages de culture cellulaire. Avantageusement, la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention exprime de manière stable et fonctionnelle au moins 20 000 récepteurs CD64, avantageusement au moins 21 000 récepteurs CD64, avantageusement au moins 22 000 récepteurs CD64, avantageusement au moins 23 000 récepteurs CD64, avantageusement au moins 24 000 récepteurs CD64, avantageusement au moins 25 000 récepteurs CD64, avantageusement au moins 26 000 récepteurs CD64, avantageusement au moins 27 000 récepteurs CD64, avantageusement au moins 28 000 récepteurs CD64, avantageusement au moins 29 000 récepteurs CD64, avantageusement au moins 30 000 récepteurs CD64, avantageusement au moins 31 000 récepteurs CD64, avantageusement au moins 32 000 récepteurs CD64 après au moins 30 passages de culture cellulaire. Dans un mode de réalisation particulier, la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention est capable d’exprimer de manière stable et fonctionnelle entre 50 000 et 105 000 récepteurs CD16, entre 5 000 et 17 000 récepteurs CD32 et entre 20 000 et 32 000 récepteurs CD64 à sa surface après au moins 30 passages de culture cellulaire. Avantageusement, la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention est capable d’exprimer de manière stable et fonctionnelle entre 60 000 et 105 000 récepteurs CD16, entre 6 000 et 17 000 récepteurs CD32 et entre 21 000 et 32 000 récepteurs CD64 à sa surface après au moins 30 passages de culture cellulaire. Avantageusement, la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention est capable d’exprimer de manière stable et fonctionnelle entre 70 000 et 105 000 récepteurs CD16, entre 7 000 et 17 000 récepteurs CD32 et entre 22 000 et 32 000 récepteurs CD64 à sa surface après au moins 30 passages de culture cellulaire. Avantageusement, la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention est capable d’exprimer de manière stable et fonctionnelle entre 80 000 et 105 000 récepteurs CD16, entre 8 000 et 17 000 récepteurs CD32 et entre 22 000 et 32 000 récepteurs CD64 à sa surface après au moins 30 passages de culture cellulaire. Avantageusement, la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention est capable d’exprimer de manière stable et fonctionnelle entre 90 000 et 105 000 récepteurs CD16, entre 9 000 et 17 000 récepteurs CD32 et entre 23 000 et 32 000 récepteurs CD64 à sa surface après au moins 30 passages de culture cellulaire. Avantageusement, la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention est capable d’exprimer de manière stable et fonctionnelle entre 95 000 et 105 000 récepteurs CD16, entre 10 000 et 17 000 récepteurs CD32 et entre 24 000 et 32 000 récepteurs CD64 à sa surface après au moins 30 passages de culture cellulaire. Avantageusement, la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention est capable d’exprimer de manière stable et fonctionnelle entre 96 000 et 105 000 récepteurs CD16, entre 11 000 et 17 000 récepteurs CD32 et entre 25 000 et 32 000 récepteurs CD64 à sa surface après au moins 30 passages de culture cellulaire. Avantageusement, la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention est capable d’exprimer de manière stable et fonctionnelle entre 97 000 et 105 000 récepteurs CD16, entre 12 000 et 17 000 récepteurs CD32 et entre 26 000 et 32 000 récepteurs CD64 à sa surface après au moins 30 passages de culture cellulaire. Avantageusement, la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention est capable d’exprimer de manière stable et fonctionnelle entre 98 000 et 105 000 récepteurs CD16, entre 13 000 et 17 000 récepteurs CD32 et entre 27 000 et 32 000 récepteurs CD64 à sa surface après au moins 30 passages de culture cellulaire. Avantageusement, la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention est capable d’exprimer de manière stable et fonctionnelle entre 99 000 et 105 000 récepteurs CD16, entre 14 000 et 17 000 récepteurs CD32 et entre 27 000 et 32 000 récepteurs CD64 à sa surface après au moins 30 passages de culture cellulaire. Avantageusement, la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention est capable d’exprimer de manière stable et fonctionnelle entre 100 000 et 105 000 récepteurs CD16, entre 15 000 et 17 000 récepteurs CD32 et entre 30 000 et 32 000 récepteurs CD64 à sa surface après au moins 30 passages de culture cellulaire. Dans un mode de réalisation particulier, la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention exprime de manière stable et fonctionnelle 102 000 récepteurs CD16, 16 000 récepteurs CD32 et 31 000 récepteurs CD64 à sa surface après au moins 30 passages de culture cellulaire. Dans un mode de réalisation particulier de l’invention, la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention a été obtenue par transduction rétrovirale avec un vecteur lentiviral comprenant au moins un acide nucléique de séquence SEQ ID No.1 ou un variant de l’acide nucléique de séquence SEQ ID No.1. Par « transfection » ou « transduction », on entend, au sens de la présente invention, un procédé par lequel des cellules incorporent un acide nucléique exogène et intègrent cet acide nucléique dans leur génome. Par « acide nucléique », on entend, au sens de la présente invention, un oligomère ou un polymère, simple ou double brin, de bases nucléotidiques lues à partir de l'extrémité 5' vers l'extrémité 3'. Le terme «acide nucléique » peut se référer à une molécule d'ADN, d'ARN ou à une molécule hybride ARN/ADN, d'origine naturelle ou synthétique. Dans la notation nucléotidique utilisée dans la présente demande, sauf mention particulière, l'extrémité gauche d'une séquence nucléotidique simple brin est l'extrémité 5'. Dans un mode de réalisation particulièrement avantageux, l’acide nucléique de SEQ ID No.1 code pour une protéine correspondant au domaine extracellulaire du récepteur Fc gamma CD16 (FcγRIII) humain, en particulier pour une protéine correspondant au domaine extracellulaire du récepteur Fc gamma CD16a (FcγRIII) humain. Acide nucléique de SEQ ID No.1 : atgcggactgaagatctcccaaaggctgtggtgttcctggagcctcaatggtacagggtgctcgagaaggacagtgtgactctgaagtgccagggagcctactcccctgaggacaattccacacagtggtttcacaatgagagcctcatctcaagccaggcctcgagctacttcattgacgctgccacagtcgacgacagtggagagtacaggtgccagacaaacctctccaccctcagtgacccggtgcagctagaagtccatatcggctggctgttgctccaggcccctcggtgggtgttcaaggaggaagaccctattcacctgaggtgtcacagctggaagaacactgctctgcataaggtcacatatttacagaatggcaaaggcaggaagtattttcatcataattctgacttctacattccaaaagccacactcaaagacagcggctcctacttctgcagggggctttttgggagtaaaaatgtgtcttcagagactgtgaacatcaccatcactcaaggtttggcagtgtcaaccatctcatcattctttccacctggg. Par " variant de l’acide nucléique de séquence SEQ ID No.1", on entend au sens de la présente invention, un acide nucléique qui diffère d'une ou plusieurs bases par rapport à l'acide nucléique de SEQ ID No.1. Un acide nucléique variant peut être d'origine naturel, tel qu'un variant allélique retrouvé naturellement, ou peut être aussi un variant non naturel obtenu par exemple par des techniques de mutagénèse. En général, les différences entre l'acide nucléique de référence et l'acide nucléique variant sont réduites de telle sorte que les séquences nucléotidiques de l'acide nucléique de référence et de l'acide nucléique variant sont très proches et, dans de nombreuses régions, identiques. Les modifications de nucléotides présentes dans un acide nucléique variant peuvent être silencieuses, ce qui signifie qu'elles n'altèrent pas les séquences d'acides aminés codées par ledit acide nucléique variant. Cependant, les changements de nucléotides dans un acide nucléique variant peuvent aussi résulter dans des substitutions, additions, délétions dans le polypeptide codé par l'acide nucléique variant par rapport à la protéine codée par l'acide nucléique de SEQ ID No.1. En outre, des modifications de nucléotides dans les régions codantes peuvent produire des substitutions, conservatives ou non conservatives dans la séquence d'acides aminés. De préférence, les acides nucléiques variants de l’acide nucléique de séquence SEQ ID No.1 selon l'invention codent pour des protéines qui conservent sensiblement la même fonction ou activité biologique que les protéines codées par l'acide nucléique de référence ou encore la capacité à être reconnus par des anticorps dirigés contre les protéines codées par l'acide nucléique initial. Avantageusement, les acides nucléiques variants de l’acide nucléique de séquence SEQ ID No.1 selon l’invention conservent la même capacité de fixation du récepteur CD16 (FcγRIII) humain, ou présente une capacité de fixation du récepteur CD16 (FcγRIII) humain augmentée ou diminuée. Avantageusement, les acides nucléiques variants de l’acide nucléique de séquence SEQ ID No.1 selon l’invention conservent la même capacité de fixation du récepteur CD16a (FcγRIII) humain, ou présente une capacité de fixation du récepteur CD16a (FcγRIII) humain augmentée ou diminuée. À titre d’exemple de variant de l’acide nucléique de SEQ ID No.1 selon l’invention, on peut notamment citer l’acide nucléique de SEQ ID No.2. Acide nucléique de SEQ ID No.2 : atgcggactgaagatctcccaaaggctgtggtgttcctggagcctcaatggtacagggtgctcgagaaggacagtgtgactctgaagtgccagggagcctactcccctgaggacaattccacacagtggtttcacaatgagagcctcatctcaagccaggcctcgagctacttcattgacgctgccacagtcgacgacagtggagagtacaggtgccagacaaacctctccaccctcagtgacccggtgcagctagaagtccatatcggctggctgttgctccaggcccctcggtgggtgttcaaggaggaagaccctattcacctgaggtgtcacagctggaagaacactgctctgcataaggtcacatatttacagaatggcaaaggcaggaagtattttcatcataattctgacttctacattccaaaagccacactcaaagacagcggctcctacttctgcagggggcttgttgggagtaaaaatgtgtcttcagagactgtgaacatcaccatcactcaaggtttggcagtgtcaaccatctcatcattctttccacctggg. Dans un mode de réalisation particulier de l’invention, un variant de l’acide nucléique de séquence SEQ ID No.1 est l’acide nucléique de SEQ ID No.2. Avantageusement, l’acide nucléique de SEQ ID No.2 code pour une protéine correspondant au domaine extracellulaire du récepteur CD16 (FcγRIII) humain, dans lequel l’acide aminé en position 158 a été remplacé par la valine. Par «vecteur», on entend, au sens de la présente invention, un véhicule de transit à base d'acides nucléiques, une molécule d'acide nucléique adaptée pour livrer de l'acide nucléique ou une molécule d'ADN capable de réplication autonome dans le monocyte, par exemple un plasmide, un cosmide, un phagemide, un génome (chromosome) viral, un génome (chromosome) phagique, et qui permet le clonage de molécules d'ADN. Dans un mode de réalisation particulièrement avantageux, le vecteur utilisé est un vecteur lentiviral. Dans ce cas, la séquence d'acide nucléique utilisée est placée sous le contrôle de signaux permettant son expression dans la lignée cellulaire de monocytes humains. Le vecteur doit comporter un promoteur, des signaux d'initiation et de terminaison de la traduction, ainsi que des régions appropriées de régulation de la transcription. Il doit pouvoir être maintenu de façon stable dans le monocyte et peut éventuellement posséder des signaux particuliers spécifiant la sécrétion des protéines traduites. À cet effet, la séquence d'acide nucléique peut être insérée dans des vecteurs à réplication autonome au sein de la lignée cellulaire de monocytes humains, ou des vecteurs intégratifs de la lignée cellulaire de monocytes humains. De tels vecteurs seront préparés selon les méthodes couramment utilisées par l'homme du métier, et les clones en résultant peuvent être introduits dans la lignée cellulaire de monocytes humains par des méthodes standards telles par exemple la transfection par précipitation au phosphate de calcium, la lipofection, l'électroporation, le choc thermique. La transduction dans la lignée cellulaire de monocytes humains du vecteur peut être réalisée au moyen de quantité équimolaire par les procédures standard du type précipitation au phosphate de calcium ou par la lipofectine. Ensuite, les lignées transfectées sont sélectionnées dans les milieux de culture adéquats. Dans un mode de réalisation particulier de l’invention, le vecteur lentiviral comprend en outre un acide nucléique de séquence SEQ ID No. 3. Acide nucléique de séquence SEQ ID No.3 : cctcagctctgctatatcctggatgccatcctgtttctgtatggaattgtcctcaccctcctctactgtcgactgaaggtaatccaagtgcgaaaggcagctataaccagctatgagaaatcagatggtgtttacacgggcctgagcaccaggaaccaggagacttacgagactctgaagcatgagaaaccaccacag. Avantageusement, l’acide nucléique de SEQ ID No.3 code pour une protéine correspondant aux domaines transmembranaire et intracellulaire de la chaine gamma des récepteurs FcεRI humain. Dans un autre mode de réalisation particulièrement avantageux de l’invention, le vecteur lentiviral comprend un acide nucléique de séquence SED IQ No.4 constitué de l’acide nucléique de séquence SEQ ID No.2 et de l’acide nucléique de séquence SEQ ID No. 3. Acide nucléique de séquence SEQ ID No.4 : atgcggactgaagatctcccaaaggctgtggtgttcctggagcctcaatggtacagggtgctcgagaaggacagtgtgactctgaagtgccagggagcctactcccctgaggacaattccacacagtggtttcacaatgagagcctcatctcaagccaggcctcgagctacttcattgacgctgccacagtcgacgacagtggagagtacaggtgccagacaaacctctccaccctcagtgacccggtgcagctagaagtccatatcggctggctgttgctccaggcccctcggtgggtgttcaaggaggaagaccctattcacctgaggtgtcacagctggaagaacactgctctgcataaggtcacatatttacagaatggcaaaggcaggaagtattttcatcataattctgacttctacattccaaaagccacactcaaagacagcggctcctacttctgcagggggcttgttgggagtaaaaatgtgtcttcagagactgtgaacatcaccatcactcaaggtttggcagtgtcaaccatctcatcattctttccacctgggcctcagctctgctatatcctggatgccatcctgtttctgtatggaattgtcctcaccctcctctactgtcgactgaaggtaatccaagtgcgaaaggcagctataaccagctatgagaaatcagatggtgtttacacgggcctgagcaccaggaaccaggagacttacgagactctgaagcatgagaaaccaccacag Dans un autre mode de réalisation particulièrement avantageux de l’invention, le vecteur lentiviral comprend un acide nucléique de séquence SED IQ No.5 constitué de l’acide nucléique de séquence SEQ ID No.1 et de l’acide nucléique de séquence SEQ ID No. 3. Acide nucléique de séquence SEQ ID No.5 : atgcggactgaagatctcccaaaggctgtggtgttcctggagcctcaatggtacagggtgctcgagaaggacagtgtgactctgaagtgccagggagcctactcccctgaggacaattccacacagtggtttcacaatgagagcctcatctcaagccaggcctcgagctacttcattgacgctgccacagtcgacgacagtggagagtacaggtgccagacaaacctctccaccctcagtgacccggtgcagctagaagtccatatcggctggctgttgctccaggcccctcggtgggtgttcaaggaggaagaccctattcacctgaggtgtcacagctggaagaacactgctctgcataaggtcacatatttacagaatggcaaaggcaggaagtattttcatcataattctgacttctacattccaaaagccacactcaaagacagcggctcctacttctgcagggggctttttgggagtaaaaatgtgtcttcagagactgtgaacatcaccatcactcaaggtttggcagtgtcaaccatctcatcattctttccacctgggcctcagctctgctatatcctggatgccatcctgtttctgtatggaattgtcctcaccctcctctactgtcgactgaaggtaatccaagtgcgaaaggcagctataaccagctatgagaaatcagatggtgtttacacgggcctgagcaccaggaaccaggagacttacgagactctgaagcatgagaaaccaccacag Dans un mode de réalisation particulièrement avantageux de l’invention, la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention a été obtenue par transduction rétrovirale avec un vecteur lentiviral comprenant : - un acide nucléique de séquence SED IQ No.4 constitué de l’acide nucléique de séquence SEQ ID No.2 et de l’acide nucléique de séquence SEQ ID No. 3, ou - un acide nucléique de séquence SED IQ No.5 constitué de l’acide nucléique de séquence SEQ ID No.1 et de l’acide nucléique de séquence SEQ ID No. 3. Dans un mode de réalisation particulier, les acides nucléiques de séquences SEQ ID No.4 et SEQ ID No.5 code respectivement pour une protéine chimérique comprenant le domaine extracellulaire du récepteur CD16 (FcγRIII) humain et les domaines transmembranaire et intracellulaire de la chaine gamma des récepteurs FcεRI humain. Avantageusement, l’acide nucléique de séquence SEQ ID No.4 code pour une protéine chimérique comprenant le domaine extracellulaire du récepteur CD16 (FcγRIII) humain dans lequel l’acide aminé en position 158 a été remplacé par la valine et les domaines transmembranaire et intracellulaire de la chaine gamma des récepteurs FcεRI humain. Avantageusement, l’acide nucléique de séquence SEQ ID No.5 code pour une protéine chimérique comprenant le domaine extracellulaire du récepteur CD16 (FcγRIII) humain dans lequel l’acide aminé en position 158 est la phénylalanine et les domaines transmembranaire et intracellulaire de la chaine gamma des récepteurs FcεRI humain. Dans un autre mode de réalisation particulier de l’invention, la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention a été obtenue par transduction rétrovirale avec un vecteur lentiviral comprenant un acide nucléique de séquence SEQ ID No.6. Acide nucléique de séquence SEQ ID No.6 : atgtggcagctgctgctgccgaccgcgctgctgctgctggtgagcgcgggcatgcgcaccgaagatctgccgaaagcggtggtgtttctggaaccgcagtggtatcgcgtgctggaaaaagatagcgtgaccctgaaatgccagggcgcgtatagcccggaagataacagcacccagtggtttcataacgaaagcctgattagcagccaggcgagcagctattttattgatgcggcgaccgtggatgatagcggcgaatatcgctgccagaccaacctgagcaccctgagcgatccggtgcagctggaagtgcatattggctggctgctgctgcaggcgccgcgctgggtgtttaaagaagaagatccgattcatctgcgctgccatagctggaaaaacaccgcgctgcataaagtgacctatctgcagaacggcaaaggccgcaaatattttcatcataacagcgatttttatattccgaaagcgaccctgaaagatagcggcagctatttttgccgcggcctgtttggcagcaaaaacgtgagcagcgaaaccgtgaacattaccattacccagggcctggcggtgagcaccattagcagcttttttccgccgggctatcaggtgagcttttgcctggtgatggtgctgctgtttgcggtggataccggcctgtattttagcgtgaaaaccaacattcgcagcagcacccgcgattggaaagatcataaatttaaatggcgcaaagatccgcaggataaa Avantageusement, l’acide nucléique de SEQ ID No.6 code pour une protéine correspondant au récepteur CD16 (FcγRIII) humain natif. Dans un autre mode de réalisation particulier de l’invention, la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention constitue un modèle cellulaire de phagocytose splénique. Dans un autre mode de réalisation particulier de l’invention, la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention constitue un modèle cellulaire de phagocytose dans la pulpe rouge de la rate. Un autre aspect de l’invention concerne un procédé d’obtention de la lignée de monocytes humains telle que décrite précédent, comprenant les étapes suivantes : a) isoler les monocytes humains du sang périphérique d’un patient atteint d’une leucémie aigüe myélo-monocytaire, b) transduction des monocytes humains avec un vecteur lentiviral comprenant un acide nucléique de séquence choisie parmi séquence choisie parmi SEQ ID No.1, SEQ ID No.4, SEQ ID No.5, SEQ ID No.6 ou un variant de l’acide nucléique de séquence SEQ ID No.1, c) sélectionner l’expression des monocytes humains avec un milieu de sélection, et d) vérifier les niveaux d’expression des récepteurs au CD16, CD32 et CD64. Un autre aspect de l’invention concerne un procédé d’obtention de la lignée de monocytes humains telle que décrite précédent, comprenant les étapes suivantes : a) obtenir une lignée monocytaire humaine établie b) transduction des monocytes humains avec un vecteur lentiviral comprenant un acide nucléique séquence choisie parmi séquence choisie parmi SEQ ID No.1, SEQ ID No.4, SEQ ID No.5, SEQ ID No.6 ou un variant de l’acide nucléique de séquence SEQ ID No.1, c) sélectionner l’expression des monocytes humains avec un milieu de sélection, et d) vérifier les niveaux d’expression des récepteurs au CD16, CD32 et CD64. Un autre aspect de l’invention concerne l’utilisation de la lignée cellulaire de monocytes selon l’invention comme modèle cellulaire de la phagocytose notamment pour la phagocytose de complexes anticorps/entités cibles. Par « entités cibles », on entend au sens de la présente invention, des organismes et des particules disposant d’un antigène de surface susceptible de fixer un anticorps. Avantageusement, les organismes peuvent être des organismes vivants ou des organismes morts, lesdits organismes vivants ou morts contenant de l’ARN ou de l’ADN. Dans un mode de réalisation particulier, les organismes sont choisis parmi les virus, les bactéries, les champignons, les mycoplasmes, les virions, les levures, les cellules vivantes, en particulier les cellules vivantes modifiées et les cellules vivantes non modifiées, les précurseurs cellulaires, et les fragments de ceux-ci. Dans un autre mode de réalisation particulier, les particules disposant d’un antigène de surface susceptible de fixer un anticorps peuvent être des particules chimiques synthétiques, en particulier les nanoparticules. Dans un mode de réalisation particulier, la lignée cellulaire de monocytes selon l’invention peut être utilisée comme modèle cellulaire de la phagocytose du complexe anti-D/hématies. Dans un autre mode de réalisation particulier, la lignée cellulaire de monocytes selon l’invention peut être utilisée comme modèle cellulaire de la phagocytose des plaquettes. Dans un autre mode de réalisation particulier, la lignée cellulaire de monocytes selon l’invention peut être utilisée comme modèle cellulaire de la phagocytose de cellules cancéreuses. Un autre aspect de l’invention concerne un procédé d’évaluation in vitro de l’activité phagocytaire d’une lignée cellulaire de monocytes humains comprenant les étapes suivantes : a) marquage et sensibilisation des entités cibles avec des anticorps dirigés contre lesdites entités cibles, b) mise en contact des entités cibles issues de l’étape a) avec la lignée cellulaire de monocytes humains telle que décrite précédemment, c) mesure de l’activité phagocytaire médiée par les anticorps dirigés contre lesdites entités cibles par cytométrie de flux, et d) détermination de la phagocytose Un autre aspect de l’invention concerne un procédé d’évaluation in vitro de l’activité phagocytaire d’une lignée cellulaire de monocytes humains comprenant les étapes suivantes : a) marquage et sensibilisation des entités cibles avec des anticorps dirigés contre lesdits entités cibles, b) pré-incubation de la lignée cellulaire de monocytes humains telle que définie précédemment en présence d’un agent bloquant les récepteurs Fc gamma (FcγR) CD16, CD32 et/ou CD64 humains à la surface de la lignée cellulaire de monocytes, c) mise en contact des entités cibles issus de l’étape a) avec la lignée cellulaire de monocytes humains issue de l’étape b), d) mesure de l’activité phagocytaire médiée par les anticorps dirigés contre lesdits entités cibles par cytométrie de flux, et e) détermination de la phagocytose. La détermination de la phagocytose se fait au moyen de toute technique habituelle connue de l’homme du métier. En particulier, la détermination de la phagocytose peut être effectuée par exemple par une ou plusieurs méthodes différentes telles que la détermination du pourcentage de phagocytose, la mesure de l’intensité de fluorescence. En particulier, la détermination de la phagocytose peut être effectuée par différentes méthodes permettant d’analyser le processus de phagocytose dans son entièreté : Reconnaissance et d’adhésion de l’organisme, entité ou particule cible. Par exemple, par l’analyse de la formation de rosette visible au microscope ou par toute technique habituelle connue de l’homme du métier, Activation de la voie de signalisation. Par exemple, par l’analyse de l’état de phosphorylation de protéines impliquées dans la voie de signalisation de la phagocytose par cytométrie, western blot ou toute technique habituelle connue de l’homme du métier Ingestion. Par exemple, par l’analyse du pourcentage de cellules effectrices ayant phagocytées des cibles ou du nombre de cibles phagocytées par cytométrie, microscopie ou toute technique habituelle connue de l’homme du métier Relargage des composants cellulaire. Par exemple, par l’analyse des composés relargués dans le milieu par dosage immunologique en ELISA, cytométrie ou toute technique habituelle connue de l’homme du métier Le procédé d’évaluation in vitro de l’activité phagocytaire d’une lignée cellulaire de monocytes humains présente l’avantage d’être fiable, précis, sensible et reproductible. Ainsi, le procédé selon l’invention peut être utilisé comme modèle cellulaire de phagocytose. Dans un mode de réalisation particulier de l’invention, les entités cibles sont choisies parmi les organismes et les particules disposant d’un antigène de surface susceptible de fixer un anticorps. Dans un autre mode de réalisation particulier de l’invention, les organismes sont choisis parmi les organismes vivants et les organismes morts, lesdits organismes vivants ou morts contenant de l’ARN ou de l’ADN. Dans un mode de réalisation particulier, les organismes sont choisis parmi les virus, les bactéries, les champignons, les mycoplasmes, les virions, les levures, les cellules vivantes, en particulier les cellules vivantes modifiées et les cellules vivantes non modifiées, les précurseurs cellulaires, et les fragments de ceux-ci. Dans un autre mode de réalisation particulier, les particules disposant d’un antigène de surface susceptible de fixer un anticorps peuvent être des particules chimiques synthétiques, en particulier des nanoparticules. Dans un mode de réalisation particulier de l’invention, les cellules vivantes sont choisies parmi les plaquettes, les érythrocytes et les cellules cancéreuses. Dans un mode de réalisation particulier de l’invention, les particules disposant d’un antigène de surface susceptible de fixer un anticorps sont des nanoparticules. Dans un mode de réalisation particulier de l’invention, les anticorps dirigés contre lesdites entités cibles sont choisis parmi les anticorps anti-D, en particulier Roledumab, et les anticorps anti-plaquettes, en particulier l’anti-CD41. Dans un mode de réalisation particulier de l’invention, les entités cibles sont préalablement marquées au PKH67. Dans un mode de réalisation particulier de l’invention, l’agent bloquant les récepteurs Fc gamma (FcγR) CD16, CD32 et/ou CD64 humains à la surface de la lignée cellulaire de monocytes est choisi parmi une immunoglobuline G polyvalente et/ou un fragment Fc recombinant. Avantageusement, tout concentré d’immunoglobulines G polyvalentes actuellement sur le marché peut être utilisé. À titre d’exemple, le produit Iqymune ® (LFB) peut être utilisé. Dans un mode de réalisation particulier, le procédé d’évaluation in vitro de l’activité phagocytaire d’une lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention comprenant les étapes suivantes : a) marquage au PKH67 et sensibilisation des érythrocytes avec un anticorps anti-D, b) mise en contact des érythrocytes issus de l’étape a) avec la lignée cellulaire de monocytes humains en présence d’immunoglobulines G, c) mesure de l’activité phagocytaire médiée par l’anticorps anti-D, par cytométrie de flux, et d) détermination de la phagocytose. Le procédé selon l’invention utilisant les hématies comme organismes cibles constitue un modèle cellulaire fiable précis, sensible et reproductible du mécanisme d’action de Roledumab. Dans un autre mode de réalisation particulier, le procédé d’évaluation in vitro de l’activité phagocytaire d’une lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention comprenant les étapes suivantes : a) marquage au PKH67 et sensibilisation des plaquettes avec un anticorps anti-CD41, b) pré-incubation de la lignée cellulaire de monocytes humains telle que définie précédemment en présence d’une immunoglobuline G polyvalente et /ou un fragment Fc recombinant, c) mise en contact des plaquettes issus de l’étape a) avec la lignée cellulaire de monocytes humains issue de l’étape b), d) mesure de l’activité phagocytaire médiée par un anticorps anti-plaquettes, en particulier l’anticorps anti-CD41, par cytométrie de flux, et e) détermination de la phagocytose. Le procédé selon l’invention utilisant les plaquettes comme organismes cibles constitue un modèle cellulaire fiable précis, sensible et reproductible de la thrombocytopénie immunitaire associée au purpura (ITP). Un autre aspect de l’invention concerne un procédé de sélection d‘anticorps à forte activité ADCP médiée par les récepteurs Fc gamma (FcγR) CD16, CD32 et/ou CD64 humains. La phagocytose cellulaire dépendante des anticorps (ADCP) est le mécanisme par lequel les anticorps (par leur fragment Fc) vont agir en tant qu'opsonines pour favoriser l'ingestion des entités cibles par la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention. Par « anticorps à forte activité ADCP », on entend au sens de la présente invention, un anticorps présentant une forte capacité à induire la phagocytose des entités cibles par la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention. Avantageusement, le procédé de sélection d‘anticorps à forte activité ADCP médiée par les récepteurs Fc gamma (FcγR) CD16, CD32 et/ou CD64 humains comprenant les étapes suivantes : a) pré-incubation de la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention en présence d’un agent bloquant les récepteurs Fc gamma (FcγR) CD16, CD32 et/ou CD64 humains à la surface de la lignée cellulaire de monocytes, b) mise en contact de la lignée cellulaire de monocytes humains issue de l’étape a) avec lesdits anticorps à sélectionner, lesdits anticorps étant liés à leurs entités cibles, c) détermination de la phagocytose, et d) sélection des anticorps à forte activité ADCP médiée par le CD16 et/ou CD32 et/ou CD64. Dans un mode de réalisation particulier, l’agent bloquant les récepteurs Fc gamma (FcγR) humains à la surface de la lignée cellulaire de monocytes est choisi parmi une immunoglobuline G polyvalente et/ou un fragment Fc recombinant. Avantageusement, toute immunoglobuline G polyvalente actuellement sur le marché peut être utilisée. À titre d’exemple, le produit Iqymune® (LFB) peut être utilisé. Un autre aspect de l’invention concerne un procédé de sélection d’un inhibiteur de l’ADCP médiée par les récepteurs Fc gamma (FcγR) CD16, CD32 et/ou CD64 humains. Par « inhibiteur de l’ADCP », on entend au sens de la présente invention, toute molécule, en particulier anticorps, capable d’inhiber la phagocytose des entités cibles par la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention. Avantageusement, le procédé de sélection d’un inhibiteur de l’ADCP médiée par les récepteurs Fc gamma (FcγR) CD16, CD32 et/ou CD64 humains comprenant les étapes suivantes : a) opsonisation des entités cibles avec un anticorps à forte activité ADCP dirigés contre lesdites entités cibles, b) mise en contact de la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention avec les entités cibles opsonisées lors de l’étape a) et lesdits inhibiteurs à sélectionner, c) détermination de la phagocytose, et d) sélection des inhibiteurs de l’ADCP médiée par le CD16 et/ou CD32 et/ou CD64. FIGURES La figure 1 représente la carte de restriction du vecteur lentiviral comprenant un acide nucléique de SEQ ID No.1. La figure 2 représente le profil d’expression des récepteurs Fc gamma (FcγR) humains (CD16, CD32 et CD64) de la lignée cellulaire de monocytes humains de l’invention. Le profil d’expression a été obtenu par cytométrie de flux en utilisant les anticorps fluorescents spécifiques suivants : CD16-FITC, CD32-PE et CD64-PC7. La figure 3A représente le pourcentage de phagocytose des plaquettes, provenant d’un donneur 1, sensibilisées avec l’anticorps anti-CD41 par la lignée cellulaire de monocytes selon l’invention, en utilisant des concentrations croissantes d’IgIV à 10% (Iqymune, LFB) ou des fragments Fc recombinant (LFBD192-DS AY, LFBD192-DS EY et LFBD191-DS AY) (agent bloquant les récepteurs Fc gamma (FcγR)), de 6,66x10-5 M, 6,66x10-6 M, 6,66x10-7 M, à 6,66x10-8 M. Les résultats sont obtenus par cytométrie de flux. La figure 3B représente l’intensité de fluorescence moyenne (MFI pour Mean Fluorescence Intensity) associée à la quantité de plaquettes ingérées par la lignée cellulaire de monocytes selon l’invention en utilisant des concentrations croissantes d’IgIV à 10% (Iqymune, LFB) ou des fragments Fc recombinant (LFBD192-DS AY, LFBD192-DS EY et LFBD191-DS AY) (agent bloquant les récepteurs Fc gamma (FcγR)), de 6,66x10-5 M, 6,66x10-6 M, 6,66x10-7 M, à 6,66x10-8 M, lesdites plaquettes provenant d’un donneur 1, et ayant été sensibilisées avec l’anticorps anti-CD41. Les résultats sont obtenus par cytométrie de flux. La figure 3C représente le pourcentage de phagocytose des plaquettes, provenant d’un donneur 2, sensibilisées avec l’anticorps anti-CD41 par la lignée cellulaire de monocytes selon l’invention, en utilisant des concentrations croissantes d’IgIV à 10% (Iqymune, LFB) ou des fragments Fc recombinant (LFBD192-DS AY, LFBD192-DS EY et LFBD191-DS AY) (agent bloquant les récepteurs Fc gamma (FcγR)), de 6,66x10-5 M, 6,66x10-6 M, 6,66x10-7 M, à 6,66x10-8 M. Les résultats sont obtenus par cytométrie de flux. La figure 3D représente l’intensité de fluorescence moyenne (MFI) associée à la quantité de plaquettes ingérées par la lignée cellulaire de monocytes selon l’invention en utilisant des concentrations croissantes d’IgIV à 10% (Iqymune, LFB) ou des fragments Fc recombinant (LFBD192-DS AY, LFBD192-DS EY et LFBD191-DS AY) (agent bloquant les récepteurs Fc gamma (FcγR)), de 6,66x10-5 M, 6,66x10-6 M, 6,66x10-7 M, à 6,66x10-8 M, lesdites plaquettes provenant d’un donneur 2, et ayant été sensibilisées avec l’anticorps anti-CD41. Les résultats sont obtenus par cytométrie de flux. La figure 3E représente le pourcentage de phagocytose des plaquettes, provenant d’un donneur 3, sensibilisées avec l’anticorps anti-CD41 par la lignée cellulaire de monocytes selon l’invention, en utilisant des concentrations croissantes d’IgIV à 10% (Iqymune, LFB) ou des fragments Fc recombinant (LFBD192-DS AY, LFBD192-DS EY et LFBD191-DS AY) (agent bloquant les récepteurs Fc gamma (FcγR)), de 6,66x10-5 M, 6,66x10-6 M, 6,66x10-7 M, à 6,66x10-8 M. Les résultats sont obtenus par cytométrie de flux. La figure 3F représente l’intensité de fluorescence moyenne (MFI) associée à la quantité de plaquettes ingérées par la lignée cellulaire de monocytes selon l’invention en utilisant des concentrations croissantes d’IgIV à 10% (Iqymune, LFB) ou des fragments Fc recombinant (LFBD192-DS AY, LFBD192-DS EY et LFBD191-DS AY) (agent bloquant les récepteurs Fc gamma (FcγR)), de 6,66x10-5 M, 6,66x10-6 M, 6,66x10-7 M, à 6,66x10-8 M, lesdites plaquettes provenant d’un donneur 3, et ayant été sensibilisées avec l’anticorps anti-CD41. Les résultats sont obtenus par cytométrie de flux. La figure 4A représente le pourcentage de phagocytose des hématies sensibilisées avec l’anticorps anti-D (Roledumab) par la lignée cellulaire de monocytes selon l’invention, en utilisant des concentrations croissantes d’anticorps anti-D (Roledumab), de 0,04 à 5 µg/ml et en présence d’IgIV à une concentration de 0,25 mg/ml. Les résultats sont obtenus par cytométrie de flux. La figure 4B représente l’intensité de fluorescence moyenne (MFI) associée à la quantité d’hématies ingérées par la lignée cellulaire de monocytes selon l’invention, en utilisant des concentrations croissantes d’anticorps anti-D (Roledumab) allant de 0,04 à 5µg/ml en présence de 0,25 mg/ml d’IgIV, lesdites hématies ayant été préalablement sensibilisées avec l’anticorps anti-D (Roledumab). Les résultats ont été obtenus par cytométrie de flux. La figure 4C représente le pourcentage de phagocytose des hématies sensibilisées avec l’anticorps anti-D (Roledumab) par la lignée cellulaire de monocytes selon l’invention, en l’absence d’anticorps anti-D (Roledumab),en présence d’anticorps anti-D (Roledumab ) à une concentration de 5 µg/ml ou en présence d’anticorps anti-D (Roledumab ) à une concentration de 5 µg/ml et de 5 µg/ml d’anticorps anti-CD16. Les résultats sont obtenus par cytométrie de flux. La figure 4D représente l’intensité de fluorescence moyenne (MFI) associée à la quantité d’hématies ingérées par la lignée cellulaire de monocytes selon l’invention, en l’absence d’anticorps anti-D (Roledumab),en présence d’anticorps anti-D (Roledumab ) à une concentration de 5 µg/ml ou en présence d’anticorps anti-D (Roledumab) à une concentration de 5 µg/ml et de 5 µg/ml d’anticorps anti-CD16. Les résultats sont obtenus par cytométrie de flux. La figure 5 représente les résultats du test de phagocytose des hématies sensibilisées avec un anticorps anti-D (RhD+RBC) par la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention (THP1 CD16+) avec des concentrations croissantes de 0,04 à 5 µg/ml d’anticorps anti-D (Roledumab) en présence de 0,25 mg/ml d’IgIV. Les graphiques A et B ont été obtenus avec une gamme de 50% d’anticorps anti-D et les graphiques C et D ont été obtenus avec une gamme de 150% d’anticorps anti-D. Les résultats sont présentés en pourcentage de phagocytose (A et C) et en intensité de fluorescence moyenne (B et D) et représente la moyenne d’une seule expérience réalisée en double. La figure 6 représente les résultats du test de phagocytose des hématies sensibilisées avec un anticorps anti-D (RhD+RBC) par la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention (THP1 CD16+) avec des concentrations croissantes de 0,04 à 5 µg/ml d’anticorps anti-D (Roledumab) en présence de 0,25 mg/ml d’IgIV. Les graphiques A et D ont été obtenus après application d’un stress thermique à 40°C pendant 3 mois, les graphiques B et E ont été obtenus après application d’un stress thermique à 50°C pendant 3 semaines, et les graphiques C et F après application d’un stress thermique à 50°C pendant 6 semaines. Les résultats sont présentés en pourcentage de phagocytose (A, B et C) et en intensité de fluorescence moyenne (D, E et F) et représente la moyenne d’une seule expérience réalisée en double. La figure 7 représente les résultats du test de phagocytose des hématies sensibilisées avec un anticorps anti-D (RhD+RBC) par la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention (THP1 CD16+) avec des concentrations croissantes de 0,04 à 5 µg/ml d’anticorps anti-D (Roledumab) en présence de 0,25 mg/ml d’IgIV. Les graphiques A et D ont été obtenus après application d’un stress chimique utilisant du H2O2 à une concentration de 10 mM, les graphiques B et E ont été obtenus après application d’un stress chimique utilisant du H2O2 à une concentration de 50 mM, et les graphiques C et F après application d’un stress chimique utilisant du H2O2 à une concentration de 10 mM. Les résultats sont présentés en pourcentage de phagocytose (A, B et C) et en intensité de fluorescence moyenne (D, E et F) et représente la moyenne d’une seule expérience réalisée en double. La figure 8 représente les résultats du test de phagocytose des hématies sensibilisées avec un anticorps anti-D (RhD+RBC) par la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention (THP1 CD16+) avec des concentrations croissantes de 0,04 à 5 µg/ml d’anticorps anti-D (Roledumab) en présence de 0,25 mg/ml d’IgIV. Les graphiques A et D ont été obtenus avec le DF5, les graphiques B et E ont été obtenus avec l’anticorps anti-D (Roledumab) traité avec l’EndoS2 pendant 2 heures à 37°C, et les graphiques C et F ont été obtenus avec l’anticorps anti-D (Roledumab, lot CB04) chauffé. Les résultats sont présentés en pourcentage de phagocytose (A, B et C) et en intensité de fluorescence moyenne (D, E et F) et représente la moyenne d’une seule expérience réalisée en double. La figure 9 (graphiques A et C) représente les résultats du test de phagocytose des hématies sensibilisées avec un anticorps anti-D (RhD+RBC) par la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention (THP1 CD16+) avec des concentrations croissantes de 0,04 à 5 µg/ml d’anticorps anti-D (Roledumab) en présence de 0,25mg/ml d’IgIV après 3 passages ou 29 passages de culture cellulaire. La figure 9 ( B et D) représente les résultats du test de phagocytose des hématies sensibilisées avec un anticorps anti-D (RhD+RBC) par la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention (THP1 CD16+) avec des concentrations croissantes de 0,04 à 5 µg/ml d’anticorps anti-D (Roledumab, lot 304) ayant réussi un ou deux cycles F/T en présence de 0,25 mg/ml d’IgIV. Les résultats sont présentés en pourcentage de phagocytose (A et B) et en intensité de fluorescence moyenne (C et D) et représente la moyenne d’une seule expérience réalisée en double. EXEMPLES Exemple 1 : Préparation d’une lignée cellulaire de monocytes (THP1 CD16+) Les cellules de monocytes humains THP1 ont été transfectée deux fois à MOI 100 avec 4µg/ml de polybrène en utilisant les vecteurs lentiviraux exprimant l’acide nucléique de SEQ ID No.1 (Figure 1).Les cellules ont été amplifiées et une sélection de clone a été réalisée par dilution limite. Les clones amplifiés ont été préalablement caractérisés. 1. Décongélation et début de la culture cellulaire Les cellules en culture ont été obtenues à partir d'une banque de cryotubes en décongelant rapidement à 37°C et en les diluant dans 10 ml de milieu de croissance préchauffé IMDM + 20% de FCS à 37°C. Le DMSO a été éliminé par centrifugation des cellules à 270 g pendant 5 minutes à température ambiante et le surnageant a été jeté. Les cellules ont ensuite été remises en suspension dans un milieu de culture frais à 0,5x10 6 cellules/ml et incubées à 37°C dans des incubateurs humidifiés avec une atmosphère de 5% de CO2 dans l'air. 2. Maintien et expansion des cellules Pour amplifier la lignée cellulaire THP1, les cellules ont été cultivées dans du milieu IMDM + 10% de FCS en les repiquant dans le volume de culture souhaité à 4x10 5 cellules/ml pendant 3 jours et à 3x10 5 cellules/ml pendant 4 jours. Les cultures de cellules ont été incubées à 37°C dans des incubateurs humidifiés avec une atmosphère de 5% de CO2 dans l'air. 3. Concentration cellulaire et viabilité cellulaire Les densités cellulaires totales et viables ont été déterminées par comptage automatique avec le système NC-200 de Chemometec. Un échantillon, éventuellement dilué, de 0,2 ml a été analysé par coloration automatisée au DAPI et à l'acridine orange, suivie d'une série de photographies. Une analyse au moyen du logiciel associé (NucleoView) a été réalisée permettant de déterminer les concentrations de cellules totales et viables. Le pourcentage de viabilité a été calculé en multipliant par 100 le nombre de cellules viables par rapport au nombre total de cellules (cellules vivantes et mortes). 4. Cryoconservation Des cellules en phase de croissance exponentielle précoce ou moyenne et une viabilité supérieure à 80% ont été utilisées. Les cellules ont été recueillies par centrifugation et remises en suspension dans un milieu de congélation (95% de SVF - 5% de DMSO), pré-refroidies à 4 °C. La suspension cellulaire a ensuite été distribuée dans le nombre approprié de tubes cryogéniques, avec 1 ml de suspension par tubes cryogéniques, contenant 5 x 10 6 cellules. Les tubes cryogéniques ont été immédiatement placés dans un congélateur à -80°C. Le lendemain, les cryotubes ont été transférés dans un cryoconteneur et stockées enazote liquide par immersion. 5. Immunophénotypage Les lignées cellulaires de monocytes humains THP1 CD16+ selon l’invention (durant 30 passages) ont été caractérisées par cytométrie de flux après une incubation de 15 minutes à la température ambiante, à l'abri de la lumière de 1x10 5 cellules avec différents anticorps spécifiques des FcγRs selon la combinaison suivante: CD16-FITC (20 µL) / CD32-PE (20 µL) / CD64-PC7 (10 µL). Des contrôles isotypiques (anticorps non pertinents du même isotype IgG et marqués du même fluorochrome) ont été réalisés dans les mêmes conditions expérimentales. La Figure 2 présente le profil d’expression des récepteurs CD16, CD32 et CD64 de la lignée cellulaire de monocytes humains THP1 CD16+. La lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention présente donc une expression stable des récepteurs membranaires CD16, CD32 et CD64. 6. Détermination du nombre de récepteurs CD16, CD32 et CD64 dans la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention . Le nombre de récepteurs CD16, CD32 et CD64 exprimés par la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention a été déterminé en utilisant le kit QIFIKIT de la société DAKO. A titre de comparaison, la présence de ces récepteurs CD16, CD32 et CD64 a également été testée dans les cellules THP 1 non transfectées (THP1 WT) et les monocytes classiques. Plus particulièrement, 100 μL d’une suspension de cellules à une concentration de 2x10 6 cellules/mL dans du PBS + 1%BSA ont été incubées à une température de 4°C pendant 30 à 60 minutes avec 1 µg of trois anticorps monoclonaux de souris primaires non-conjugués anti-CD16, anti-CD32 et anti-CD64 ou avec un anticorps monoclonal de souris non pertinent du même isotype et ajusté à la même concentration utilisé comme contrôle négatif. Les échantillons ont ensuite été lavés deux fois avec 3 mL de PBS + 1%BSA par centrifugation à 270 x g pendant 5 minutes. Dans le même temps, 100 µL de billes de montage et de calibration remises en suspension (vortex), respectivement, ont été placées dans deux tubes à essai séparés et lavées avec 3 mL de PBS + 1% de BSA par centrifugation à 270 x g pendant 5 minutes. Les culots de cellules et de billes ont été incubés dans l’obscurité à 4°C pendant 45 minutes avec 100 µL de conjugué FITC, dilués à 1/50 dans du PBS. Les échantillons sont lavés deux fois avec 3 mL de PBS + 1% de BSA par centrifugation à 270 x g pendant 5 minutes. Les culots sont resuspendus dans 500 μL of PBS + 1%BSA avant d’être analysés par cytométrie de flux. Les résultats sont présentés dans le tableau 1 ci-dessous. Cellules Lignée cellulaire THP1 selon l’invention (THP1 CD16+) THP1 WT Monocytes classiques Récepteurs FcγRs Nombre moyennant de récepteurs (n=7 du passage 5 (P5) au passage 25 (P25)) CD16 102 000 0 0 CD32 16 000 18 000 21 000 CD64 31 000 20 000 13 000 Tableau 1 : Détermination du nombre de récepteurs CD16, CD32 et CD64 4/ Stabilité de la lignée Afin de valider l'utilisation de la lignée cellulaire selon l’invention (THP1 CD16+) pour environ 30 passages de culture cellulaire, correspondant à 3 mois de culture cellulaire, un test a été réalisé pour comparer les cellules THP1 aux passages 3 (P3) et 29 (P29) (Figure 9 A / C). .Le pourcentage de phagocytose et le MFI en fonction de la concentration en CB04 ont été analysés pour comparer les valeurs EC50 et Top. Les résultats sont présentés à la figure 9. La figure 9 montre une activité de phagocytose comparable entre les cellules THP1CD16+ aux passages P3 et P29. Ces résultats valident l'utilisation de cellules THP1 CD16+ pour environ 30 passages de culture cellulaire Ces résultats montrent que la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’invention exprime de manière stable les CD16, CD32 et CD64. Exemple 2 : Inhibition de la phagocytose des plaquettes médiée par l’anticorps anti-CD41 1/ Préparation des plaquettes Les plaquettes ont été isolées à partir de sang périphérique de groupe sanguin O humain (EFS, Les Ulis) stocké à 22°C ±2°C toute la nuit puis marquées au PKH67 (Sigma) à une concentration finale de 2x10 -6 M et sensibilisées à 37 °C pendant 30 min sous agitation avec 1 µg/ml d'un anticorps monoclonal anti-CD41 (anticorps absolu) ou tampon de dilution (contrôle plaquettaire non sensibilisé) pour une suspension de plaquettes de 2x10 7 plaquettes/mL La lignée cellulaire de monocytes humains THP1 selon l’invention (lignée cellulaire THP1 CD16 +) (1x10 6 cellules) a été pré-incubée pendant 30 min à 37 °C avec des concentrations croissantes allant de 6,66x10 -5 M, 6,66x10 -6 M, 6,66x10 -7 M, à 6,66x10 -8 M d’IgIV à 10% (Iqymune, LFB) ou des fragments Fc recombinant obtenus selon la méthode décrite dans la demande internationale WO 2019/115773 (rFc AY068, rFc EY069 et rFc AY070), correspondant à 10, 1, 0,1 et 0,01 mg/mL pour d’IgIV à 10% (Iqymune, LFB) et 3,33 ; 0,33 ; 0,03 et 0,003 mg/mL pour les fragments Fc recombinant (rFc AY068, rFc EY069 et rFc AY070). Le fragment Fc recombinant (rFc AY070) a été produit dans une lignée de chèvre transgénique alors que les fragments Fc recombinants (rFc AY068 et rFc EY069) ont été produit dans des cellules CHO recombinantes. Les fragments ont été conçus avec plusieurs mutations afin d’augmenter leurs affinités pour les récepteurs FcRn et CD16. Les variant rFc AY068 et rFc AY070 contiennent 5 mutations (K334N; P352S; A378V; V397N; N434Y et 1-N glycosylation site (N297)). Le variant rFc EY069 contient 6 mutations (Y296W, K334N; P352S; A378V; V397N; N434Y, et 1-N glycosylation site (N297)). 2/ Phagocytose Les plaquettes marquées et sensibilisées avec un anticorps anti-plaquettes (2x10 7 plaquettes) ont été ajoutées à la lignée cellulaire de monocytes humains THP1 CD16+ (ratio 1:20) et incubées pendant 1 heure à 37°C. Après incubation, les cellules THP1 ont été incubées avec du bleu trypan pour masquer la fluorescence des plaquettes marquées qui ne seraient pas internalisées de plus, la lignée cellulaire de monocytes humains THP1 a été marquée avec un anticorps fluorescent anti-CD45 (Beckman Coulter). La phagocytose médiée par des anticorps anti-plaquettes a été mesurée par cytométrie de flux (cytomètre de flux Galios, Beckman Coulter). Les résultats sont présentés aux Figures 3A à 3F Lors de l'analyse du pourcentage de phagocytose, une moyenne de 20% de phagocytose des plaquettes non sensibilisées a été obtenue (données non présentées) et a été déduite des résultats de la phagocytose des plaquettes sensibilisées. Lorsque les plaquettes sont incubées avec 1 µg/mL d'anti-CD41, on observe en moyenne 55% de phagocytose spécifique. Les résultats ont été normalisés sur des graphiques afin de comparer l'efficacité du produit sur les trois donneurs indépendamment de la phagocytose initiale sans produit. Une inhibition dose-dépendante de la phagocytose a été observée de manière reproductible avec les produits testés. Ainsi la lignée cellulaire constitue un modèle cellulaire fiable précis, sensible et reproductible de la thrombocytopénie immunitaire associée au purpura (ITP) permettant de discréminer l’efficacité thérapeutique in vitro de différents produits. Exemple 3 : phagocytose des hématies médiée par l’anticorps anti-D 1/ Préparation des hématies Des hématies commerciales papainées (RBC) ont été lavés deux fois dans du NaCl à 0,9% pendant 5 minutes à 1730g et le culot a été mis en suspension dans 400µL de NaCl à 0,9%. La suspension est tout d’abord mélangé avec 2ml de diluent C et ensuite avec 2ml de solution de PKH67 à 4x10 -6 M dans le diluent C (concentration finale : 2x10 -6 M). Après un rapide mélange, la suspension a été incubée pendant 5 minutes dans l’obscurité. 4ml de sérum de veau fœtal (SVF) ont été ajoutés, le surnageant a été éliminé et le culot lavé trois fos dans du NaCL à 0,9%. Le marquage par PKH67 a été contrôlé par cytométrie. Toutes les hématies présentent une fluorescence. 2/ Phagocytose La phagocytose a été étudiée avec des hématies sensibilisées avec des quantités connues d’anticorps anti-D et des cellules THP1 CD16+. Les hématies (RBC) marquées avec le PKH67 sont lavées deux fois dans NaCl à 0,9% pendant 5 minutes à 1730 g et 50 µL d'une dilution 1 :30 de culots d’hématies dans du NaCl à 0,9% ont été mélangés avec 50 µl d’une suspension de microbilles fluorescentes (flowcount fluorospheres) et 2 ml de NaCl 0,9%. La concentration d’hématies est déterminée par cytométrie de flux. Les hématies ont ensuite été remises en suspension dans du NaCl 0,9% à 2x10 8 hématies/ml (± 15%). Les cellules THP1 CD16+ (lignée cellulaire de monocytes selon l’invention) sont comptées puis remises en suspension dans un milieu IMDM + 10% de sérum de veau fœtal (SVF) à 1 x 10 6 cellules/ml (± 15%). Les hématies à une concentration de 2x10 8 hématies/mL dans NaCl 0,9% sont incubées avec des préparations d'anticorps anti-D (Roledumab) à 0,04, 0,08, 0,16, 0,31, 0,62, 1,25, 2,5 et 5 µg/mL (v/v) ou avec du NaCl à 0,9% (hématies non sensibilisées (NS-RBC)) pendant 30 minutes à 37°C. Les échantillons sont lavés deux fois dans du milieu IMDM + 10% de FCS et les culots sont suspendus à 1x10 8 hématies/mL dans du milieu IMDM + 10% de SVF. 100 µL d’hématies à 1x10 8 hématies/mL sont mélangées à 100 µL de cellules THP1 CD16 + à 1x10 6 cellules/mL (soit un ratio cellule THP1/hématies de 1/100) en présence de 0,25 mg/mL d'immunoglobulines humaines normales (IVIG). Les essais ont été réalisés avec 10 échantillons, chacun en double exemplaire. Un échantillon de contrôle de la spécificité CD16 est réalisé avec des hématies sensibilisées en utilisant une concentration d’anti-D à 5 µg/mL et une concentration d'anticorps anti-CD16 à 5 µg/mL. L'incubation est effectuée à 37°C pendant 1 heure. À la fin de l'incubation, le marquage PKH67 est éteint en ajoutant 100 µL de bleu trypan, afin d’éliminerle signal des hématies collées aux cellules THP1 CD16+. Après une étape de lavage dans du NaCl 0,9%, les cellules THP1 CD16 + sont marquées avec un anticorps anti-CD45 fluorescent pendant 15 minutes à température ambiante et à l'abri de la lumière. Les échantillons sont lavés à nouveau et les hématies sont lysées avec 500 µL de solution de Versalyse Lysing pendant 20 minutes à la température ambiante, à l'abri de la lumière, afin d'éliminer les hématies non phagocytées (les hématies phagocytées par les cellules cibles ne sont pas sensibles à ces traitements). Les échantillons sont lavés à nouveau et fixés avec 500 µL de solution de fixation diluée au 1/40 avant analyse. Le pourcentage de cellules THP1 CD45+ contenant les hématies PKH67 (pourcentage de phagocytose) et leur intensité de fluorescence moyenne PKH67 (MFI) sont mesurés par cytométrie de flux avec un cytomètre Galios Flow de la société Beckman Coulter. Les résultats sont ensuite analysés avec le logiciel Kaluza Analysis. Les résultats sont présentés aux Figures 4A à 4D. Conclusions : L'activité de la phagocytose (pourcentage (Figure 4A) et MFI (Figure 4B)) est proportionnelle à la concentration en anti-D avec un maximum de 91% de phagocytose. Le contrôle négatif sans anti-D (NS-RBC) et avec l'anticorps anti-CD16 (S-RBC + Anti-CD16) présente respectivement 2% et 4% (Figure 4C) de phagocytose. Les signaux de phagocytose sont spécifiquement médiés par la liaison des hématies revêtus d'anti-D au récepteur CD16. La lignée cellulaire selon l’invention exprime donc, en plus des CD32 et CD64, des CD16 fonctionnels. Exemple 4 : Méthode de sélection d’anticorps à forte activité de phagocytose (ADCP) 1/ Sensibilité Une dégradation forcée a été effectuée sur l’anticorps anti-D (Roledumab, lot CB04), afin d'examiner la sensibilité de la méthode et de déterminer si elle indique la stabilité. Le lot a été fourni dans des seringues pré remplies à une concentration en protéines de 0,3 mg/mL dans la formulation suivante : citrate trisodique dihydraté (8,82 g / L) à pH 6,5, chlorure de sodium (3,25 g / L), mannitol (17 g / L). L) et Polysorbate 80 à 400 ppm. Les contraintes de dégradation se concentreront sur le stress thermique, l'oxydation et la déglycosylation. Les échantillons préparés sont décrits dans le tableau 2 ci-dessous. Stress appliqué Nature Conditions Paramètres Activité JCD16 Chauffage Thermique +40°C +50°C +50°C 3 mois 3 semaines 6 semaines 55 59 43 Oxydation Chimique H 2 O 2 10mM, 24 heures à +25°C 50mM, 24 heures à +25°C 100mM, 24 heures à +25°C 70 61 53 Déglycosylation Enzymatique EndoS2 2 heures à 37°C 0,1 Tableau 2 : Résumé de la dégradation forcée appliquée à l’anticorps anti-D (Roledumab, lot CB04). 1.1/ Sensibilité au stress thermique Le stress thermique est utilisé pour accélérer les phénomènes de dégradation chimique ou physique. Roledumab (anticorps anti-D - lot CB04) est connu pour être sensible à la température; un stress thermique induit une agrégation, une modification structurelle (fragmentation, modification chimique…) et une perte d'activité (activité de CD16). Les flacons de Rroledumab seront placés à + 40 ° C pendant 3 mois, à + 50 ° C pendant 3 semaines et 6 semaines. Le pourcentage de phagocytose et le MFI en fonction de la concentration en anticorps anti-D (Roledumab - lot CB04) ont été analysés pour comparer les valeurs EC50 et la valeur maximale de l'échantillon chauffé. Les résultats sont présentés à la figure 6. La figure 6 montre une diminution significative mais légère du pourcentage de phagocytose après chauffage pendant 6 semaines à + 50 ° C (EC50: 77%, en haut: 86%). En revanche, une diminution très importante du MFI Top a été observée après chauffage pour atteindre 40%, après 6 semaines à + 50 ° C. Le stress thermique et la dégradation associée semblent avoir un impact négatif significatif sur l'activité de la phagocytose, en particulier sur la quantité d’hématies ingérées. 1.2/ Sensibilité chimique : oxydation par H 2 O 2 La dégradation oxydative qui se produit dans les traitements biothérapeutiques est l’une des voies de dégradation chimiques des anticorps monoclonaux recombinants (AcM). Les anticorps monoclonaux sont exposés à des conditions de traitement et de stockage susceptibles d’influencer le taux et l’ampleur de ces modifications. L'oxydation de la méthionine (primaire), ainsi que de la cystéine, de l'histidine, du tryptophane et de la tyrosine peut être induite par une incubation avec des agents oxydants tels que H 2 O 2 . Les sources potentielles d'oxydation comprennent l'utilisation d'excipients contenant des quantités infimes d'espèces oxydantes (par exemple, le polysorbate 80) ou le contact de la substance médicamenteuse avec des résidus d'agents désinfectants ou dépyrogénisants possédant un certain potentiel oxydant. La contrainte d'oxydation a été réalisée en ajoutant 10 mM, 50 mM et 100 mM de H 2 O 2 avec une durée d'incubation de 24 heures à + 25 ° C. Un contrôle négatif avec le même volume que H 2 O 2 a été réalisé avec de l'eau. Le pourcentage de phagocytose et le MFI en fonction de la concentration en anticorps anti-D (Roledumab - lot CB04) ont été analysés pour comparer les valeurs EC50 et la valeur maximale de l'échantillon oxydé. Les résultats sont présentés à la figure 7. La figure 7 ne montre aucune diminution de l'activité de la phagocytose après un traitement avec H 2 O 2 10 mM. Une légère diminution du pourcentage de phagocytose (EC50) après un traitement à 50 mM et à 100 mM a été observée (respectivement 87% et 79%). En revanche, comme pour le stress thermique, une diminution plus importante et comparable du sommet MFI a été observée après traitement avec 50 mM et 100 mM de H 2 O 2 : 75% et 77% respectivement. Le stress d'oxydation et la dégradation associée (fragmentation, oxydation…) semblent avoir un impact négatif significatif sur l'activité de la phagocytose, en particulier sur la quantité de globules rouges ingérée. 1.3/ Déglycosylation DF5 est un anticorps monoclonal anti-D IgG1 produit par une lignée de cellules lymphoblastoïdes humaines. Cet anticorps hautement fucosylé présente une faible affinité de liaison pour FcγRIIIa (CD16a). La déglycosylation a été effectuée en ajoutant 3 µg d'EndoS2 à 150 µg d’anticorps anti-D (Roledumab, lot CB04, appelé « CB04 ») avec un temps d'incubation de 2 heures à + 37 ° C. Un contrôle négatif avec le même volume que H 2 O 2 est réalisé avec de l'eau. Le pourcentage de phagocytose et le MFI en fonction de la concentration en Aanti-D ont été analysés pour comparer les valeurs EC50 et Top de DF5 et de l’anticorps anti-D (Roledumab, lot CB04). Les résultats sont présentés à la figure 8. La figure 8 montre que l'anticorps hautement fucosylé DF5 présente une faible activité en phagocytose (A / D) et que l’anticorps anti-D (Roledumab, lot CB04) déglycosylé n'a pas été capable d’induire la phagocytose des hématies (B / E). Le contrôle négatif (C / F) est comparable à l’anticorps anti-D (Roledumab, lot CB04) non traité. La méthode permet donc la sélection d’anticorps selon leur capacité à phagocyter (ADCP : Antibody-Dependent Cell Phagocytosis). 2/ Précision La précision est l'étroite concordance entre les mesures d'échantillons multiples d'un échantillon homogène dans les conditions recommandées. La précision a été étudiée à l'aide de l’anticorps anti-D (Roledumab) lot CB04. Vingt-cinq dosages de deux séries indépendantes de 8 déterminations de l’anticorps anti-D (Roledumab) lot CB04 ont été effectués. L’EC50, le maximum de phagocytose et l’intensité de fluorescence moyenne (MFI) de chaque série (2 valeurs / paramètre / dosage, soit 50 valeurs / paramètre) sont utilisés pour calculer l'écart type (DS), le coefficient de variation (CV) et l'intervalle de confiance (IC) afin de déterminer la précision intermédiaire de la méthode (IP ou CVR). Pour cette étude, 3 cryotubes de lignée cellulaire THP1 CD16 +, 9 préparations de hématies (marquage PKH67) et différents lots de réactifs, dont 3 lots de kit PKH67, ont été utilisés. L'analyse statistique est présentée dans le tableau 3 ci-dessous. %Phagocytose MFI Paramètre EC50 (µg/mL) Top (%) EC50 (µg/mL) Top (MFI) Moyenne 0.4257 89.31 0.831 183.4 SD 0.0586 3.92 0.118 64.6 CVR%(IP) 14% 4% 14% 8%(CVr) CI Resultat ±0.1178 Resultat ±7.89 Resultat ±0.238 Resultat ±29.6 Légende: * Variance IP= S 2 R = S 2 r + S 2 g - CV R = S R /µ x 100 - CI = resultat ± t x S R La précision intermédiaire est de 14% pour le paramètre EC50 quel que soit le signal lu (% de phagocytose ou MFI) et de 4% pour le pourcentage maximum de phagocytose (%Top). Pour le MFI Top, ce signal étant directement dépendant de la fluorescence des hématies, cela diffère d’un test à l’autre, seule la répétabilité a été calculée, elle est de 8%. La méthode est donc suffisamment précise pour permettre de sélectionner des anticorps selon leur capacité ADCP. Conclusions : Le test de phagocytose développé pour les hématies sensibilisées par l’anticorps anti-D utilisant la lignée cellulaire de monocytes selon l’invention (cellules THP1 CD16 +) est: - Précis et reproductible : la variation maximale de 14% a été obtenue lors de l'analyse statistique de 25 analyses indépendantes. - Sensible , car une évolution de l’EC50 et du Top en fonction du type de la dégradation et proportionnelle à l'intensité de la dégradation a été observée, avec le paramètre Top de fluorescence, qui semble être le plus pertinent pour l'étude d'échantillons stressés/modifiés structurellement. Lignée cellulaire de monocytes humains exprimant de manière stable et fonctionnelle les récepteurs Fc gamma (FcγR) CD16, CD32 et CD64 humains à leur surface, dans laquelle la lignée cellulaire est obtenue par transduction rétrovirale avec un vecteur lentiviral comprenant au moins un acide nucléique de séquence SEQ ID No.1 ou un acide nucléique de séquence SEQ ID No.2. Lignée cellulaire de monocytes humains selon la revendication 1, dans laquelle la lignée cellulaire de monocytes humains est dérivée de la lignée de cellules THP1. Lignée cellulaire de monocytes humains selon l’une quelconque des revendications 1 à 2, dans laquelle le vecteur lentiviral comprend en outre un acide nucléique de séquence SEQ ID No.3. Lignée cellulaire de monocytes humains selon l’une des revendications 1 à 3, dans laquelle le vecteur lentiviral comprend : - un acide nucléique de séquence SEQ ID No.4 constitué de l’acide nucléique de séquence SEQ ID No.2 et l’acide nucléique de séquence SEQ ID No.3, ou - un acide nucléique de séquence SEQ ID No.5 constitué de l’acide nucléique de séquence SEQ ID No.1 et l’acide nucléique de séquence SEQ ID No.3. Lignée cellulaire de monocytes humains selon l’une quelconque des revendications 1 à 4, dans laquelle la lignée cellulaire a été obtenue par transduction rétrovirale avec un vecteur lentiviral comprenant au moins un acide nucléique de séquence SEQ ID No.6. Utilisation d’une lignée cellulaire de monocytes humains selon l’une quelconque des revendications 1 à 5, comme modèle de phagocytose splénique, en particulier de phagocytose dans la pulpe rouge de la rate. Procédé d’obtention de monocytes humains tels que décrits dans l’une quelconque des revendications 1 à 5, comprenant les étapes suivantes : a) isoler les monocytes humains du sang périphérique d’un patient atteint d’une leucémie aigüe myélo-monocytaire, b) transduction des monocytes humains avec un vecteur lentiviral comprenant un acide nucléique de séquence choisie parmi SEQ ID No.1, SEQ ID No.4, SEQ ID No.5, SEQ ID No.6 ou un acide nucléique de séquence SEQ ID No.2, c) sélectionner l’expression des monocytes humains avec un milieu de sélection, et d) vérifier les niveaux d’expression des récepteurs au CD16, CD32 et CD64. Procédé d’obtention de monocytes humains tels que décrits dans l’une quelconque des revendications 1 à 5, comprenant les étapes suivantes : a) obtenir une lignée monocytaire humaine établie b) transduction des monocytes humains avec un vecteur lentiviral comprenant un acide nucléique séquence choisie parmi SEQ ID No.1, SEQ ID No.4, SEQ ID No.5, SEQ ID No.6 ou un acide nucléique de séquence SEQ ID No.2, c) sélectionner l’expression des monocytes humains avec un milieu de sélection, et d) vérifier les niveaux d’expression des récepteurs au CD16, CD32 et CD64. Procédé d’évaluation in vitro de l’activité phagocytaire d’une lignée cellulaire de monocytes humains comprenant les étapes suivantes : a) marquage et sensibilisation des entités cibles avec des anticorps dirigés contre lesdites entités cibles, b) mise en contact des entités cibles issues de l’étape a) avec la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’une des revendications 1 à 5, c) mesure de l’activité phagocytaire médiée par les anticorps dirigés contre lesdites entités cibles par cytométrie de flux, et d) détermination de la phagocytose. Procédé d’évaluation in vitro de l’activité phagocytaire d’une lignée cellulaire de monocytes humains comprenant les étapes suivantes : a) marquage et sensibilisation des entités cibles avec des anticorps dirigés contre lesdites entités cibles, b) pré-incubation de la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’une des revendications 1 à 5 en présence d’un agent bloquant les récepteurs Fc gamma (FcγR) CD16, CD32 et/ou CD64 humains à la surface de la lignée cellulaire de monocytes, c) mise en contact des entités cibles issues de l’étape a) avec la lignée cellulaire de monocytes humains issue de l’étape b), d) mesure de l’activité phagocytaire médiée par les anticorps dirigés contre lesdits entités cibles par cytométrie de flux, et e) détermination de la phagocytose. Procédé d’évaluation in vitro de l’activité phagocytaire d’une lignée cellulaire de monocytes humains selon l’une quelconque des revendications 9 ou 10, dans lequel les entités cibles sont choisies parmi les organismes et les particules disposant d’un antigène de surface susceptible de fixer un anticorps. Procédé d’évaluation in vitro de l’activité phagocytaire d’une lignée cellulaire de monocytes humains selon la revendication 11, dans lequel lesdits organismes sont choisis parmi les organismes vivants et les organismes morts, lesdits organismes vivants ou morts contenant de l’ARN ou de l’ADN. Procédé d’évaluation in vitro de l’activité phagocytaire d’une lignée cellulaire de monocytes humains selon la revendication 12, dans lequel les organismes, sont choisis parmi les virus, les bactéries, les champignons, les mycoplasmes, les virions, les levures, les cellules vivantes, en particulier des cellules vivantes modifiées ou des cellules vivantes non modifiées, les précurseurs cellulaires, et les fragments de ceux-ci. Procédé d’évaluation in vitro de l’activité phagocytaire d’une lignée cellulaire de monocytes humains selon la revendication 13, dans lequel les cellules vivantes sont choisies parmi les plaquettes, les érythrocytes et les cellules cancéreuses. Procédé d’évaluation in vitro de l’activité phagocytaire d’une lignée cellulaire de monocytes humains selon la revendication 11, dans lequel les particules disposant d’un antigène de surface susceptible de fixer un anticorps sont des nanoparticules. Procédé d’évaluation in vitro de l’activité phagocytaire d’une lignée cellulaire de monocytes humains selon l’une des revendications 9 ou 10, dans lequel les anticorps dirigés contre lesdites entités cibles sont choisis parmi les anticorps anti-D, en particulier Roledumab, et les anticorps anti-plaquettes, en particulier l’anti-CD41. Procédé d’évaluation in vitro de l’activité phagocytaire d’une lignée cellulaire de monocytes humains selon la revendication 10, dans lequel l’agent bloquant les récepteurs Fc gamma (FcγR) humains CD16, CD32 et/ou CD64 à la surface de la lignée cellulaire de monocytes est choisi parmi une immunoglobuline G polyvalente et/ou un fragment Fc recombinant. Procédé de sélection d‘anticorps à forte activité ADCP médiée par les récepteurs Fc gamma (FcγR) CD16, CD32 et/ou CD64 humains comprenant les étapes suivantes : a) pré-incubation de la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’une des revendications 1 à 5 en présence d’un agent bloquant les récepteurs Fc gamma (FcγR) CD16, CD32 et/ou CD64 humains à la surface de la lignée cellulaire de monocytes, b) mise en contact de la lignée cellulaire de monocytes humains issue de l’étape a) avec lesdits anticorps à sélectionner, lesdits anticorps étant liés à leurs entités cibles c) détermination de la phagocytose, et d) sélection des anticorps à forte activité ADCP médiée par le CD16 et/ou CD32 et/ou CD64. Procédé de sélection d’un inhibiteur de l’ADCP médiée par les récepteurs Fc gamma (FcγR) CD16, CD32 et/ou CD64 humains comprenant les étapes suivantes : a) opsonisation des entités cibles avec un anticorps à forte activité ADCP dirigés contre lesdites entités cibles, b) mise en contact de la lignée cellulaire de monocytes humains selon l’une des revendications 1 à 5 avec les entités cibles opsonisées lors de l’étape a) et lesdits inhibiteurs à sélectionner, c) détermination de la phagocytose, et d) sélection des inhibiteurs de l’ADCP médiée par le CD16 et/ou CD32 et/ou CD64.