FR 2968313 A1 20120608 FR 1004709 A 20101203 Procédé de préparation d'une levure industrielle, levure industrielle et application à la production d'éthanol à partir d'au moins un pentose s La présente invention se rapporte au domaine des procédés d'obtention de souches de levure productrices d'éthanol, des levures ainsi produites, et de la production industrielle d'éthanol à partir desdites levures. Plus spécialement la présente invention concerne dans son aspect le plus général, io un procédé de préparation de levures à partir de souches de Saccharomyces cerevisiae dites industrielles, lesdites levures et leur application à la production industrielle d'éthanol à partir de milieux industriels contenant au moins un pentose. ls ART ANTERIEUR Le point commun de la plupart des approches de l'art antérieur du domaine consiste en des procédés visant l'amélioration de souches au patrimoine génétique connu et/ou construit et dont les aptitudes à produire de l'éthanol sont 20 étudiées en général dans des milieux et dans des conditions « idéales » de laboratoire. En effet, la littérature scientifique ainsi que les documents brevet analysés par la Demanderesse enseignent, le plus souvent, des procédés d'obtention de souches haploïdes ou 25 diploïdes, faiblement tolérantes aux stress notamment aux fortes concentrations d'éthanol et/ou aux températures élevées et/ou aux inhibiteurs de fermentation. En outre, ces procédés nécessitent pour la plupart d'avoir recours, pour ces souches, à l'utilisation de marqueurs d'auxotrophie et/ou de marqueurs de 30 résistance à des antibiotiques qui peuvent les disqualifier pour une utilisation ultérieure en milieu industriel pour des raisons évidentes de coût voire quelquefois de santé ou de respect de l'environnement. Les propriétés de croissance des souches développées antérieurement sont en général insuffisantes et ces souches n'ont jamais été confrontées aux impératifs de production de biomasse à l'échelle industrielle, à savoir pour n'en citer que trois : fort taux s de croissance, aptitude au séchage, stabilité en conservation. Si des performances dites fermentaires (aptitude à la production anaérobie d'éthanol) sont obtenues dans des milieux synthétiques ou définis dits de laboratoire avec ces souches antérieures, elles ne sont pas transposables en général, dans des io milieux industriels comportant des mélanges complexes issus par exemple de résidus de traitement de la cellulose qui renferment des composés toxiques pouvant inhiber à différents niveaux la machinerie cellulaire de la levure, notamment furfural, HMF, dérivés phénoliques, acide acétique. En outre, l'aptitude au ls « scale up » ou transposition d'échelle de ces procédés antérieurs de production d'éthanol est rarement documentée. Le document WO 2008/133665 enseigne la production d'alcool à partir d'une souche de levure au « contexte génétique » 20 de type : - Gène STP15 muté (F117S, Y195H, K218R) (texte et revendications) - Gènes XI / XR / XDH ou XK exogènes mais sans décrire précisément leur origine lorsqu'ils sont en association 25 (texte + revendication 1 combinée avec revendication 15) De même le document WO 2005/113774 décrit une levure pouvant contenir un opéron recombinant comprenant deux séquences d'acide nucléique codant respectivement une XI d'E. coli et une XDH de Trichoderma reesei mais pour la production de 30 xylitol. Dans ce cas, l'enzyme XDH est utilisée comme xylulose réductase. Le document Plos Genetics de Gavin Sherlok et al., publié le 13 mai 2010, enseigne que : 2 - Le gène XDH1 endogène est responsable chez certaines S. cerevisisiae de l'activité xylitol déshydrogénase - La délétion des 3 xylitol déshydrogénases (codées s respectivement par les gènes SOR1, SOR2, et XYL2) accroît le phénotype xylose + - La délétion XKS1 est fatale pour le phénotype xylose + De ce même document il ressort que rien ne permet de « relier » XDH1 à l'aptitude à fermenter le xylose. io Certes du document au nom de Dawid Brad, Eckard Boles et Beate Wiedemannn AEM d'avril 2009 Vol 75, N°8, p. 2304-2311, il est décrit une souche de levure industrielle S. cerevisiae apte à produire de l'éthanol à partir de xylose et présentant le contexte génétique particulier suivant, notamment (se reporter ls p.2305, Tableau 1) : - Toutes les enzymes de la partie non oxydative de la voie des pentoses phosphate, la xylulokinase (XKS1) et la perméase gal2 surexprimées - Gène codant la XI de la bactérie Clostridium 20 phytofermentans exprimé de manière fonctionnelle après mise en oeuvre du plasmide YEp-opt-XI-Clos-K Et - Aptitude à croître sur et à fermenter le xylose après évolution dirigée de 28 jours (cf. p. 2309 col de gauche) 25 (rendement 0,43g d'éthanol par g de xylose consommé) pour la souche industrielle exemplifiée BWY10Xyl (ex Barra Grande). Il est précisé que la délétion du gène GRE3 n'a pas été 30 possible sur de telles souches industrielles mais l'intérêt réel de cette délétion est discuté. 3 Il ressort de cette revue des documents de l'art antérieur, ainsi que des travaux des inventeurs de la présente invention, qu'étant donné les contextes/patrimoines génétiques très différents des souches de levures Saccharomyces cerevisiae s mises en oeuvre dans le but de croître sur et/ou fermenter le xylose, les conséquences par exemple, d'une surexpression et/ou d'une délétion de gènes natifs et/ou de l'introduction d'un ou de plusieurs gènes hétérologues ne se peuvent prédire. io Aussi, La Demanderesse étudiant de nombreuses souches de type alcool, brassicoles et de boulangerie, a constaté de manière surprenante que l'introduction de cassettes d'expression ou de délétion déterminées de sorte à y exprimer une voie métabolique XI-XDH, dans une famille particulière de levures de ls sa collection interne, rendait celles-ci particulièrement performantes dans la production d'éthanol. De plus, la demanderesse a constaté que l'introduction de l'acide nucléique codant XI n'est pas suffisante pour la fermentation du Xylose De manière générale, la demanderesse a constaté que 20 l'introduction de cassettes d'expression d'un gène codant pour une enzyme apte à transformer tout hydrate de carbone en xylulose et d'un gène codant pour une enzyme apte à transformer tout pentol en xylulose en une seule étape, rendait toutes souches ainsi modifiées particulièrement performantes dans la 25 croissance sur et/ou la fermentation du xylose. En effet, la demanderesse a confirmé que contrairement à la voie dite fongique associant XR et XDH, la voie bactérienne d'isomérisation (C. phytofermentans) quand elle est mise en oeuvre n'implique pas de co-substrats. De plus, cette voie permet 30 d'éviter l'accumulation de xylitol qui est un intermédiaire métabolique présent dans la voie fongique et qui peut réduire de manière significative le rendement de production d'éthanol. 4 Très récemment, sur certaines souches de S. cerevisiae, notamment celles utilisés pour la vinification, un gène XDH1 a été identifié comme étant essentiel pour le métabolisme du xylose desdites souches (PLoS genetics 2010, 6, 1-17). Aussi, la s demanderesse a constaté que même en supprimant GRE3 des souches modifiées, il existe d'autres activités parasites qui peuvent transformer le xylose en xylitol (activité aldose réductase). Ce qui est néfaste pour l'activité XI réduisant ainsi le rendement en éthanol recherché. io Les travaux réalisés par la demanderesse montrent que le renforcement de l'activité Xylitol DésHydrogénase se traduit par l'absence d'inhibition de la XI et donc par la stimulation de cette voie. Ce qui permet la production d'éthanol, à partir d'un milieu comportant au moins du xylose, avec un bon rendement cinétique. ls Ainsi, la présente invention a pour premier objet un procédé de préparation d'une souche de levure Saccharomyces cerevisiae apte à produire de l'éthanol à partir d'un milieu comportant au moins un pentose et qui comprend les étapes suivantes 20 consistant à (i) Sélectionner une souche de levure Saccharomyces cerevisiae (ii) Intégrer les cassettes d'expression suivantes dans le génome de la levure de l'étape (i), 25 a. L'association du type cadre ouvert de lecture (ORF) d'un gène codant pour une enzyme apte à transformer tout hydrate de carbone en xylulose sous la dépendance d'un promoteur et d'un terminateur de Saccharomyces 30 cerevisiae, la dite cassette étant flanquée en amont et en aval de régions recombinogéniques permettant son intégration ciblée dans le génome,5 b. L'association du type cadre ouvert de lecture (ORF) d'un gène codant pour une enzyme apte à transformer en une seule étape tout pentol en xylulose sous la dépendance d'un s promoteur et d'un terminateur de Saccharomyces cerevisiae, la dite cassette étant flanquée en amont et en aval de régions recombinogéniques permettant son intégration ciblée dans le génome, io (iii) Induire l'expression d'au moins un gène de chaque étape de la partie non oxydative de la voie des pentoses phosphate ainsi qu'au moins un gène codant la xylulokinase (XKS1) en les plaçant sous la dépendance d'un promoteur d'un gène non réprimé ni par par l'anaérobiose nin par la ls répression catabolique et fortement exprimé lors d'une fermentation alcoolique, et (iv) Déléter au moins deux copies du cadre ouvert de lecture (ORF) du gène de Saccharomyces cerevisiae GRE3 codant pour une aldose déshydrogénase. 20 De manière préférentielle, le gène de l'étape (ii)a est un gène XI codant pour l'enzyme xylose isomérase choisi parmi ceux présents dans les génomes de bactéries, préférentiellement les bactéries des genres Clostridium, Pyromyces, Bactéroïdes, 25 Streptomyces, Haemophilus, Burkholderia, Enterococcus, Thermotoga, Fusobacterium, Geobacillus, Arthrobacter, Ciona, Physcomitrella, Cellvibrio, Chitinophaga, Saccharopolyspora, Salinibacter. Le gène XI est de préférence choisi parmi un gène de 30 Clostridium phytofermentans Saccharopolyspora erythraea, Salinibacter ruber ou de Piromyces sp. E2. 6 Selon la présente invention par « transformer tout pentol en xylulose en une seule étape » on entend une oxydation directe du xylitol en xylulose et cela par une seule et même enzyme. Préférentiellement le gène de l'étape (ii)b, est un gène de Pichia stipitis XDH codant pour l'enzyme xylitol déshydrogénase. De manière préférentielle, la souche de levure de l'étape (i) présente une activité xylitol déshydrogénase XDH io endogène inférieure à 150 mKat / g de protéines. II est connu que, lors du traitement de la biomasse destinée à la fermentation alcoolique, certains inhibiteurs de fermentation apparaissent parmi eux on peut citer les tels 15 produits phénoliques, le furfural ou encore l'acide acétique. Il est connu aussi que ces inhibiteurs sont néfastes pour les performances voire la survie de la levure. Pour résoudre ce problème additionnel, la demanderesse propose de sélectionner la souche de l'étape i 20 parmi les souches industrielles présentant une résistance aux dérivés phénoliques. Un autre avantage de la voie XI c'est la possibilité de « greffer en parallèle la voie arabinose bactérienne » comme décrit par exemple dans EP 1 499 708 B1 ou encore dans WO 25 2008/041840 Al cette combinaison permettant alors d'augmenter le degré d'alcool final en cas de présence d'arabinose dans les milieux à fermenter. Le procédé de préparation de la levure de la présente 30 invention tient compte à la fois des contraintes du levurier et dans le même temps de celles d'un utilisateur final dans ses applications notamment en termes de production industrielle d'éthanol à faible coût et haut rendement. 7 Le procédé selon l'invention présente, en particulier, les avantages suivants : Pour le levurier, il permet : la construction d'une souche de levure Saccharomyces s cerevisiae aneu/polyplo'ide, prototrophe afin de permettre la production de biomasse sur des sources simples de carbone, azote, phosphore dans des milieux peu chers tels que les sous-produits de l'industrie sucrière comme la mélasse par exemple, io - de disposer d'une souche de levure Saccharomyces cerevisiae présentant un taux de croissance maximum (p max) compris entre 0.37 h-1 et 0.5 h-' - de disposer d'une souche de levure Saccharomyces cerevisiae qui, lorsqu'elle est produite selon un procédé tel ls que décrit dans le livre de référence « Yeast Technology » (2ème édition, 1991, G. Reed et T.W. Nagodawithana, publié par Van Nostrand Reinhold , ISBN 0-442-31892-8), permet d'obtenir un rendement de production de biomasse d'au moins 45g de matières sèches levure pour 100g 20 d'équivalent saccharose mis en oeuvre, - de disposer d'une souche de levure Saccharomyces cerevisiae résistante au procédé de séchage tel que décrit dans les documents brevets EP 511108 et US 5 741 695, la perte d'activité fermentative après séchage ne devant pas 25 excéder 30%. - la production en conditions industrielles (en particulier milieu peu cher, bon rendement de biomasse, levure sèche prête à l'emploi) d'une levure fraîche ou sèche à partir d'une souche de levure Saccharomyces cerevisiae génétiquement 30 stable, robuste car notamment tolérante aux concentrations élevées d'éthanol et apte à produire, à partir par exemple de biomasses hémi-cellulosiques, de l'éthanol à au moins 8 g/L et ce à une température élevée de l'ordre de 30 à 40°C. Selon une autre variante préférée du procédé selon s l'invention, lorsqu'à l'étape (ii) la cassette d'expression ou de délétion consiste en l'association du type cadre ouvert de lecture (ORF) du gène XI codant pour l'enzyme xylose isomérase de Piromyces sp. E2 / promoteur et terminateur de Saccharomyces cerevisiae, la dite cassette étant io flanquée en amont et en aval de régions recombinogéniques permettant son intégration ciblée dans le génome, ledit procédé comporte alors en outre une étape de Saccharification et de Fermentation Simultanée (SSF) en présence de polymères d'hexoses, majoritairement ls constitués de glucose, et d'au moins une enzyme apte à les hydrolyser. Par ailleurs, pour le producteur d'éthanol, l'avantage du procédé selon l'invention est encore de disposer d'une 20 levure active (fraîche - liquide ou comprimée, compressée ou sèche), obtenue selon un procédé de production tel que décrit dans l'ouvrage « Yeast Technology », à partir d'une souche de levure Saccharomyces cerevisiae telle que définie au paragraphe précédent qui est : 25 - capable, dans les conditions de SSF décrites dans le document brevet WO 2004/046333, de fermenter à 32°C un hydrolysat de céréales jusqu'à une concentration en éthanol de 16% (p/p) minimum - capable, dans les conditions de SSF décrites dans le 30 document brevet WO 2004/046333, de fermenter à 35°C un hydrolysat de céréales jusqu'à une concentration en éthanol de 14,5% (p/p) minimum. 9 Les résultats du procédé selon l'invention sont d'autant plus remarquables qu'ils ont été obtenus à partir d'une souche dite industrielle, aneu/polyplo'ide prototrophe et de fait ayant un matériel génétique nettement plus complexe que celui d'une souche dite de laboratoire, rendant pour le moins imprévisibles les conséquences de modifications de ladite souche industrielle. Ce fond génétique complexe, spécifique aux souches industrielles, rend d'autant plus difficile l'obtention de souches génétiquement modifiées exemptes io au final de marqueurs de résistance à des antibiotiques, en particulier lorsque de nombreuses cibles génétiques doivent être modifiées. Des souches exemptes de marqueurs de résistance aux antibiotiques sont de toute évidence préférables pour des raisons de santé et d'environnement. 15 Les souches prototrophes selon l'invention présentent l'avantage de croître sur des sources simples de carbone, d'azote et de phosphore. Mais cette caractéristique fait que les vecteurs de 20 transformation disponibles dans la communauté scientifique (vecteurs utilisant des marqueurs d'auxotrophie) sont inopérants. II est donc nécessaire d'avoir à disposition des outils/vecteurs utilisant des marqueurs de résistance à des 25 antibiotiques, ces dits outils/marqueurs étant avantageusement construits pour permettre in fine l'excision de ces marqueurs. La construction des levures conformes à l'invention a nécessité par exemple l'emploi de 4 marqueurs positifs différents conférent des résistances à 5 30 antibiotiques différents (généticine, phléomycine, hygromycine, blasticidine et nourseothricine). io Les souches conformes à l'invention sont aneu/polyplo'ides c'est une caractéristique généralement rencontrée dans les levures industrielles qui sont issues du milieu naturel. Le passé phylogénétique de ces souches est à l'origine de s cette particularité. Mais c'est une difficulté supplémentaire rencontrée lorsque l'on souhaite disrupter/inactiver toutes les copies d'un gène donné. Toutefois, ce caractère d'aneu/polyplo'idie est en général à l'origine de beaucoup de propriétés d'intérêt des io levures industrielles (taux de croissance, résistance à différents stress, stabilité phénotypique). En outre, la demanderesse après de longues recherches a constaté avec surprise qu'avec le procédé selon l'invention, ls mis en oeuvre à partir de la souche sélectionnée : - l'introduction de cassettes d'expression et de délétion ne fragilisait aucunement la levure modifiée qui voit son patrimoine génétique amélioré. 20 En particulier, les inventeurs ont montré qu'avec ladite souche il est possible de réaliser : - La délétion d'au moins deux copies du gène GRE3 de S. cerevisiae (l'enzyme Gre3p étant une aldose réductase qui consomme du NADPH;H+ qui est produit en 25 grande partie via la partie oxydative de la voie des pentoses) dans ladite souche industrielle selon l'invention a permis de réduire d'autant la consommation de NADPH ;H+ par la dite enzyme, 30 En variante préférée, ledit au moins un gène de chaque étape de la partie non oxydative de la voie des pentoses phosphate de l'étape (iii) est choisi dans le groupe constitué par RPE1, RKl1, TKL1 et TAL1 et que ledit promoteur d'un il gène de la glycolyse fortement exprimé lors d'une fermentation alcoolique est choisi dans le groupe constitué par le promoteur TDH3 pour RPE1, RKl1 et TKL1 et PGK1 pour TAL 1. s Selon des caractéristiques complémentaires ou alternatives, dans le procédé de préparation d'une souche de levure Saccharomyces cerevisiae conforme à l'invention : le promoteur de Saccharomyces cerevisiae est choisi dans 10 le groupe comprenant les promoteurs des gènes codant les enzymes de la glycolyse et ceux codant pour les enzymes alcool déhydrogénase et de préférence choisi dans le groupe constitué par ADH1, ADH2, PGK1, TDH3, PDC2 et GAL1/10, de préférence ADH1. Le terminateur de Saccharomyces cerevisiae est constitué 15 par CYC1 ou par le terminateur propre du gène modifié. Il est prévu une étape ultérieure d'évolution dirigée comportant les étapes successives suivantes consistant à soumettre la levure obtenue à 20 (i) une mutagenèse, (ii) une croissance en cultures cycliques sous 02 limité dans un milieu comportant ledit au moins un pentose, et une sélection par croissance aérobie sur milieu 2s solide contenant comme seule source de carbone du glycérol, de sorte à procurer des mutants non-déficients respiratoires de ladite levure qui présentent une croissance en anaérobiose en présence d'un milieu comportant ledit au 30 moins un pentose. De manière préférée dans cette variante, la mutagenèse de l'étape (i) est réalisée en conditions 12 « douces », à savoir mutagenèse modérée avec 100 à 500J/cm2 et, de préférence encore, 300J/cm2 d'Ultra-violets à 254nm. Ces conditions n'entrainent qu'une mortalité de 7% à 160/0 de la population soumise aux Ultra-violets. Les inventeurs ont ainsi montré de manière surprenante, qu'avec une si faible mortalité contrôlée, il est permis de réduire d'un facteur 10 la durée de l'étape d'évolution dirigée par cultures cycliques nécessaire à l'obtention de mutants capables de fermenter ledit au moins lo un pentose. Le taux de survie est déterminé en étalant sur boites de milieu dont la source de carbone est du glucose, un volume identique de la suspension cellulaire avant et après mutagenèse. Le nombre de colonies est déterminé après 48h de croissance. 15 De manière préférée, la limitation en 02 de l'étape (ii) de cette variante est réalisée grâce à une surpression partielle dans l'équipement utilisé (par exemple, fioles ou fermenteurs) due à une surpression consécutive à la production de CO2 produit. 20 Les cultures cycliques selon cette variante, dans les conditions de fermentation, permettent d'enrichir la population en mutants capables de fermenter ledit pentose et cela en un temps de 2 à 6 semaines et de préférence de 3 à 4 semaines ce qui est relativement court et très 25 intéressant comparé à ce qui serait obtenu par chémostat comme décrit par Kuyper et al. (2004) 4, 655-664. Bien que le phénotype déficient respiratoire « petite » puisse concorder avec les critères de fermentation dudit au moins un pentose, dans cette variante les présents 30 inventeurs ont réalisé une étape d'élimination des levures « petites » car ce phénotype est incompatible avec les procédés de production de levures industrielles au sens de l'invention. 13 La présente invention a encore pour objet la souche de levure industrielle Saccharomyces cerevisiae EG6 directement obtenue par le procédé selon l'invention après l'étape d'évolution s dirigée et qui consiste en la souche de levure déposée le 23 novembre 2010 à la C.N.C.M (Collection Nationale de Cultures de Microorganismes de l'Institut Pasteur) sous le N°I-4399 dans les conditions du traité de Budapest. La présente invention a également pour objet la souche de 10 levure industrielle Saccharomyces cerevisiae EG7 directement obtenue par le procédé selon l'invention après l'étape d'évolution dirigée déposée le 23 novembre 2010 à la C.N.C.M (Collection Nationale de Cultures de Microorganismes de l'Institut Pasteur) sous le N°I-4400 dans les conditions du traité de Budapest. 15 De préférence encore, la souche de levure Saccharomyces cerevisiae obtenue est pratiquement ou totalement exempte de marqueurs notamment de résistance à des antibiotiques. 20 Les souches de levure Saccharomyces cerevisiae préparées conformément à la présente invention, selon les critères ci-dessus définis, ont conservé, après introduction des modifications génétiques et autres mutations générées lors 25 de l'étape d'évolution dirigée, leurs caractéristiques génotypiques et phénotypiques après un process industriel complet de production. En particulier, les levures produites présentent une cinétique de production d'alcool, une cinétique de consommation de xylose et/ou d'arabinose et 30 une quantité maximale d'alcool produite rigoureusement identiques à la souche de levure avant l'application d'un process industriel complet. 14 Par ailleurs, les caractéristiques industrielles de la souche choisie avant manipulation telles que décrites précédemment (taux de croissance, rendement de production, aptitude au séchage) demeurent inchangées. La présente invention a encore pour objet un procédé de production d'éthanol, à partir d'un milieu comportant au moins un pentose, par fermentation à l'aide d'une levure selon l'invention, mentionnée ci-dessus, ou telle qu'obtenue io par un procédé conforme à l'invention comme il vient d'être décrit. De manière préférée, le procédé de production d'éthanol présente les caractéristiques alternatives et/ou complémentaires suivantes : 15 ledit au moins un pentose est le xylose ou un mélange de xylose et d'arabinose, ledit milieu est choisi dans le groupe constitué par, les hydrolysats de lignine, de cellulose, d'hémicellulose, de dextrines ou d'amidon. 20 Dans le cas d'une SSF les vitesses moyennes de libération des hexoses, majoritairement du glucose, sont de l'ordre de 2,8 à 5,6g/L/h avec une concentration extracellulaire en hexose, majoritairement en glucose, nulle. 25 Les concentrations en sucres mises en oeuvre (70g/kg de Xylose ou 150g/kg de Xylose) sont à la connaissance de la Demanderesse, les concentrations maximum que l'on peut rencontrer sur le terrain. Tous les essais publiés faisant référence à la fermentation du xylose ont été réalisés avec des 30 concentrations nettement inférieures en sucres totaux. D'autres caractéristiques et avantages de l'invention apparaîtront encore mieux à la lecture de la description détaillée 15 qui va suivre, comportant des exemples de réalisation avec tableaux de résultats qui sont donnés à titre purement illustratif et non limitatif, et pour la compréhension de laquelle on se reportera aux dessins annexés dans lesquels : s - la Figure 1 illustre un vecteur de surexpression de la XDH de Pichia stipitis, - la Figure 2 est un vecteur de surexpression de la XI de Clostridium phytofermentans, - la Figure 3 est un graphe illustrant la production d'éthanol en 10 fonction du temps de fermentation à 32°C de deux souches de levure conformes à l'invention après évolution dirigée et de l'éthanol red TM. Les clones testés ont été inoculés à raison de 5g de masse sèche/L dans un milieu YF + xylose à 70 g/L, - la Figure 4 est un graphe illustrant la production d'éthanol en 15 fonction du temps de fermentation à 32°C de deux souches de levure, l'une conforme à l'invention après évolution dirigée, l'autre souche découlant de la première mais après substitution de la copie du gène XDH par un marqueur de résistance à la kanamycine (KanMX4). Les clones testés ont été inoculés à 20 raison de 5g de masse sèche/L dans un milieu YF + xylose à 70g/L. EXEMPLES 2s EXEMPLE 1 La sélection de la souche est telle que décrite dans la description ci-dessus. Toutes les séquences d'ADN qui ont été utilisées pour les 30 différentes transformations visant la surexpression d'un gène ont été obtenues à partir d'un vecteur-type connu (type pUC) dans lequel ont été déclinés : - les cibles d'intégration ; 16 les promoteurs/terminateurs choisis par gène d'intérêt et les marqueurs de résistance qui seront éliminés par la suite (voir ci-dessous). Un exemple de vecteur utilisé pour la surexpression de la s XDH de Pichia stipitis est illustré à la Figure 1. Un exemple de vecteur utilisé pour la surexpression de la XI de Clostridium phytofermentans est illustré à la Figure 2. Pour la disruption des copies du gène GRE3 de la souche industrielle sélectionnée, les inventeurs ont utilisé des amplifiats 10 PCR à partir d'un plasmide de type pUG6 (Güldener U, Heck S, Fielder T, Beinhauer J, Hegemann JH. Nucleic Acids Res. 1996 Jul 1;24(13):2519-24). L'étape de transformation de la levure a été mise en oeuvre d'après Gietz, R.D. and R.A. Woods, (2002) TRANSFORMATION 15 OF YEAST BY THE Liac/SS CARRIER DNA/PEG METHOD. Methods in Enzymology 350: 87-96. Les souches de levure selon l'invention, respectivement EG6 et EG7 ont été déposées à la CNCM en date du 23 novembre 2010 et il leur a été attribué le N°I-4399 et le 20 N°I-4400, respectivement. Les souches conformes à l'invention : possèdent le génotype suivant : Ethanol RedTM, Delta GRE3, BUD5::pADH1-XKS1-tCYC1, TAL1::pPGK1-TAL1-tCYC1, TKL1::pTDH3- 25 TKL 1-tCYC 1, RPE1:: pTDH3-RPE1-tCYC 1, RKI1::pTDH3-RKl1-tCYC1, HO::PsXYL2-HYGRO, BUD5:: CpXI-BLAST sont dépourvues de tout marqueur résiduel (par action de la cre recombinase). 30 17 EXEMPLE 2 La mutagenèse des souches obtenues à l'Exemple précédent a été réalisée de manière modérée à savoir de 100 à 500J/cm2 et de préférence à 300J/cm2 d'Ultra-violets à 254nm. Après une semaine de culture à 32°C dans un milieu type YE (Yeast Extract 0,5%) contenant 7% de Xylose sous agitation, sans aération - la limitation en 02 étant réalisée grâce à une surpression partielle dans les fioles due au CO2 produit lors de la fermentation - un ml de la culture est utilisé pour ré-ensemencer io le même milieu. Cette opération est répétée 6 fois. Les cellules sont finalement étalées sur milieu gélosé YE Glucose à 20g/L. Des colonies isolées sont prélevées puis cultivées successivement sur : YE Glycérol à 20g/L et en aérobiose pour éliminer les 15 mutants «petite » i.e. déficients respiratoires ; YE Glucose pour vérifier leur vitesse de croissance ; YE Xylose pour identifier les clones les plus intéressants. EXEMPLE 3 20 Après obtention de la souche EG6, la copie du gène XDH qui a été ajouté à l'exemple 1 à été substitué par le gène de résistance à la kanamycine. La nouvelle souche obtenue est nommée EG6 - XDH. La capacité de la souche en question à fermenter le xylose a été comparée à celle de la souche EG6. Le résultat de cette 25 comparaison est présenté sur la figure 4. 18 REVENDICATIONS1. Procédé de préparation d'une souche de levure Saccharomyces cerevisiae apte à produire de l'éthanol à partir d'un milieu comportant au moins un pentose et qui comprend les étapes suivantes consistant à (i) Sélectionner une souche de levure Saccharomyces cerevisiae (ii) Intégrer les cassettes d'expression suivantes dans le génome de la levure de l'étape (i), a. L'association du type cadre ouvert de lecture (ORF) d'un gène codant pour une enzyme apte à transformer tout hydrate de carbone en xylulose sous la dépendance d'un promoteur et d'un terminateur de Saccharomyces cerevisiae, la dite cassette étant flanquée en amont et en aval de régions recombinogéniques permettant son intégration ciblée dans le génome, b. L'association du type cadre ouvert de lecture (ORF) d'un gène codant une enzyme apte à oxyder en une seule étape tout pentol en xylulose sous la dépendance d'un promoteur et d'un terminateur de Saccharomyces cerevisiae, la dite cassette étant flanquée en amont et en aval de régions recombinogéniques permettant son intégration ciblée dans le génome (iii) Induire l'expression d'au moins un gène de chaque étape de la partie non oxydative de la voie des pentoses phosphate ainsi qu'au moins un gène codant la xylulokinase (XKS1) en les plaçant sous la dépendance d'un promoteur d'un gène non réprimé ni par l'anaérobiose ni par la répression catabolique induite par une quelconque source de carbone, et fortement exprimé lors de la fermentation alcoolique, et 19(iv) Déléter au moins deux copies du cadre ouvert de lecture (ORF) du gène de Saccharomyces cerevisiae GRE3 codant pour une aldose réductase. 2. Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que le gène codant une enzyme apte à transformer tout hydrate de carbone en xylulose est de préférence un gène XI codant pour l'enzyme Xylose Isomérase choisi parmi ceux présents dans les génomes de bactéries, préférentiellement les bactéries des genres Clostridium, Piromyces, Bactéroïdes, Streptomyces, Haemophilus, Burkholderia, Enterococcus, Thermotoga, Fusobac_terium, Geobacillus, Arthrobacter, Ciona, Physcomitrella, Cellvibrio, Chitinophaga, . Saccharopolyspora, Salinibacter. 3. Procédé selon la revendication 2 caractérisé en ce que ledit gène XI est de préférence choisi parmi un gène de Clostridium phytofermentans ou de Piromyces sp. E2. 4. Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que le gène apte à transformer tout pentol en xylulose est un gène de Pichia stipitis XDH codant pour l'enzyme xylitol déshydrogénase. 5. Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que la souche de levure de l'étape (i) présente une activité xylitol déshydrogénase XDH endogène inférieure à 150mKat/g de protéines. 6. Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que la souche de levure de l'étape (i) est sélectionnée parmi les souches industrielles présentant une résistance aux inhibiteurs de fermentation issus de l'hydrolyse de la biomasse tels que produits phénoliques, furfural ou acide acétique. 7. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que le promoteur de Saccharomyces cerevisiae de l'étape (iii) est choisi dans le groupe comprenant les promoteurs des gènes codant les enzymes de la glycolyse et ceux codant pour les enzymes alcool déshydrogénase 8. Procédé selon la revendication 7 caractérisé en ce que ledit groupe est constitué par ADH1, PGK1, TDH3, PDC2 et GAL1/10, de préférence ADH1, et en ce que le terminateur de Saccharomyces 20cerevisiae est constitué par CYC1 ou par le terminateur propre du gène modifié. 9. Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que la souche de l'étape (i) est une souche industrielle choisie parmi les souches aptes à produire de fortes concentrations d'éthanol, d'au moins 170/0 v/v, sur un hydrolysat de céréales, en conditions de Saccharification et fermentation Simultanée (SSF) et à 32°C. 10. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce qu'il comprend une étape ultérieure d'évolution dirigée comportant les étapes successives suivantes consistant à soumettre la levure obtenue à (i) une mutagenèse, (ii) une croissance en cultures cycliques sous 02 limité dans un milieu comportant ledit au moins un pentose, et (iii) une sélection par croissance aérobie sur milieu solide contenant comme seule source de carbone du glycérol, de sorte à procurer des mutants non-déficients respiratoires de ladite levure qui présentent une croissance en anaérobiose en présence d'un milieu comportant ledit au moins un pentose. 11. Souche de levure Saccharomyces cerevisiae EG6 déposée à la CNCM, sous le N° 1-4399 susceptible d'être obtenue par le procédé des revendications 1 à 9. 12. Souche de levure Saccharomyces cerevisiae EG7 déposée à la CNCM, sous le N°I-4400, susceptible d'être obtenue par le procédé des revendications 1 à 9. 13. Souche de levure telle qu'obtenue par un procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, caractérisée en ce qu'elle est exempte de marqueurs de résistance à des antibiotiques. 14. Procédé de production d'éthanol, à partir d'un milieu comportant au moins un pentose, par fermentation d'une levure selon l'une quelconque des revendications 11 à 13, ou telle qu'obtenue par un procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 9. 21. Procédé selon la revendication précédente caractérisé en ce que ledit au moins un pentose est soit le xylose soit un mélange xylose et arabinose. 16. Procédé selon l'une des revendications 14 à 15 caractérisé en ce que ledit milieu est choisi dans le groupe constitué par, les hydrolysats de lignine, de cellulose, d'hémicellulose, de l'amidon. 17. Procédé selon l'une des revendications 14 à 16 caractérisé en ce que le rendement moyen d'éthanol produit sur xylose consommé est de 0,4g d'éthanol par l g de xylose consommé. 22