FR 2963010 A1 20120127 FR 1003136 A 20100726 NOUVEAUX PEPTIDES AVEC DES EFFETS ANALGESIQUES ET INHIBANT LES CANAUX ASIC DESCRIPTION 5 Domaine technique La présente invention se rapporte à de nouveaux peptides qui induisent une analgésie et qui inhibent les canaux ASIC (Acid Sensing Ion Channels), plus précisément les canaux homomériques ASIC1a, 10 homomériques ASIClb, hétéromériques ASIC1a+2a, et hétéromériques ASIC1a+1b, aux polynucléotides codant pour lesdits peptides, ainsi qu'aux compositions pharmaceutiques, cellules hôtes et vecteurs les comprenant. En particulier lesdits peptides sont isolés du venin de serpent Dendroaspis polylepis (mamba noir). Plus particulièrement lesdits peptides présentent la 15 séquence en acides aminés SEQ ID NO : 1 dans la liste de séquences annexée. Il s'agit notamment des deux peptides de 57 acides aminés, ASICalgine-1 et ASICalgine-2. La présente invention se rapporte également à leur utilisation pour l'obtention d'un outil de diagnostic ou d'un médicament, en particulier d'un 20 analgésique, ainsi que pour l'identification de molécules analgésiques ou inhibant les canaux ASIC. La présente invention trouve notamment une application dans la prévention ou le traitement de la douleur, notamment celle associée à l'activation des canaux ASIC (par exemple les douleurs inflammatoires, 25 neuropathiques, cancéreuses, post-opératoires, musculo-squelettiques, viscérales, etc.), des maladies neurologiques centrales (par exemple le stress post-traumatique, la dépression, l'anxiété, les accidents vasculaires cérébraux, l'épilepsie, la sclérose en plaques, les inflammations cérébrales, les maladies neurodégénératives, etc.), et des pathologies 30 dans lesquelles l'implication des canaux ASIC a été proposée (par exemple les inflammations, les cancers, les fibromyalgies, le syndrome du colon irritable, etc.). Dans la description ci-dessous, les références entre crochets ([1) renvoient à la liste des références présentées à la fin du texte. Etat de la technique La prise en compte et le traitement de la douleur sont des aspects essentiels de l'amélioration de la qualité de vie des patients. La douleur touche un nombre considérable de personnes, de l'ordre de 60 millions en Europe chaque année, ce qui représente un coût annuel de 1 milliard de dollars en médicaments analgésiques pour son traitement. Les dépenses effectuées annuellement dans le monde en médicaments analgésiques peuvent être évaluées à environ 25 milliards de dollars, et devraient atteindre 42 milliards en 2010. La douleur se divise en deux catégories : la douleur aigüe et la douleur chronique. La douleur aigüe correspond à une douleur rapide et brève, limitée dans le temps. A l'opposé, la douleur chronique est une douleur persistante qui peut être liée, par exemple à une hyperalgésie, et qui constitue un énorme fardeau de la maladie, touchant environ 20% des adultes et 50% de la population la plus âgée. Le traitement de la douleur repose essentiellement sur la prescription d'anti-inflammatoires, qu'ils soient non stéroïdiens (AINS) ou stéroïdiens (corticoïdes), et d'opiacés faibles ou forts. Les AINS forment la classe thérapeutique la plus prescrite au monde, du fait de leur grande efficacité tant sur l'inflammation que sur la douleur elle-même. Ils sont utilisés dans tous les types de douleurs inflammatoires qu'elles soient aigües ou chroniques [Bertin et Vergne-Salle, 2007] [1]. Lorsque les AINS et/ou les corticoïdes ne suffisent pas à soulager une douleur inflammatoire, le prescripteur associe un antalgique non anti-inflammatoire, par exemple du paracétamol, des opioïdes faibles (codéine, tramadol), et si la douleur résiste encore au traitement, des opioïdes forts (morphine, oxycodone, fentanyl) [Gutstein & Akil, 2006] [2]. Si les AINS sont très efficaces, ils n'en restent pas moins de grands pourvoyeurs d'effets secondaires indésirables. Parmi les effets secondaires indésirables les plus classiques, les effets digestifs sont très fréquents et limitent l'utilisation des AINS dans de nombreuses situations cliniques. Il existe également des effets secondaires indésirables rénaux, cutanés, muqueux, allergiques et respiratoires, hématologiques, hépatiques et enfin neurosensoriels et psychiques [Bertin et Vergne-Salle, 2007, précité] [1]. En outre, les AINS ne sont pas efficaces dans tous les types de douleur. Les opioïdes jouent un rôle majeur dans la lutte contre la douleur mais peuvent provoquer des phénomènes hallucinatoires et des dépressions cardio-respiratoires. Les analgésiques peuvent aussi être source de dépendance, comme par exemple la dépendance à la morphine, la méthadone, etc... Il existe aussi des cas d'accoutumance aux analgésiques, c'est-à-dire que la dose nécessaire pour obtenir un effet constant doit être augmentée. Cette accoutumance croit dans le temps et entraîne donc la nécessité d'augmenter les doses et peut entraîner l'inefficacité du médicament. En effet, la dose nécessaire pour soulager la douleur peut devenir supérieure à la dose toxique dudit médicament. Enfin le traitement par des opioïdes peut aussi être associé à des effets indésirables comme une constipation sévère ou une hyperalgésie à l'arrêt du traitement (douleur post-opératoire par exemple) [Gutstein & Akil, 2006, précité ; Bannister & Dickenson, 2010] [2, 3]. Malgré la diversité de l'arsenal thérapeutique existant, de nombreuses douleurs restent peu sensibles aux analgésiques connus, comme les douleurs neuropathiques consécutives à une atteinte du système nerveux (50% des patients ne sont pas soulagés), les douleurs viscérales chroniques telles que le syndrome du colon irritable ou les maladies inflammatoires chroniques de l'intestin, la fibromyalgie, les douleurs liées au cancers et métastases osseuses, etc. [Yennurajalingam et al., 2004; Mizoguchi et al., 2009] [4, 5]. Dans ce contexte, la découverte de nouveaux analgésiques ou antalgiques palliant ces défauts et inconvénients et/ou de nouvelles cibles analgésiques devrait donc représenter un réel progrès. Les recherches de l'industrie pharmaceutique sur la douleur n'ont conduit ces dernières années qu'à quelques développements limités. On peut citer par exemple les tryptans pour la migraine et certains nouveaux médicaments dont l'usage reste encore limité comme l'association de tétrahydrocannabinol et cannabidiol pour les douleurs cancéreuses et neuropathiques. En fait, les progrès réalisés au cours des deux dernières décennies proviennent essentiellement d'une meilleure utilisation et d'ajustements de dosage des antalgiques disponibles. Aucune des grandes familles de ces antalgiques n'a un rapport bénéfice/risque qui soit optimal, à cause d'une efficacité limitée et/ou d'effets secondaires importants. Parmi les cibles moléculaires identifiées ces dernières années, les canaux ioniques tiennent une place particulièrement importante car ils sont directement impliqués dans la détection et la transmission des signaux douloureux par les neurones sensoriels et centraux. Les canaux ASIC (Acid Sensing Ion Channels) sont des canaux cationiques activés par des acidifications du milieu extracellulaire (acidose extracellulaire) [Waldmann & Lazdunski, 1998; Wemmie et al., 2006 ; Lingueglia et al., 2007] [6, 7, 8]. Jusqu'à présent, quatre gènes codant pour au moins sept sous-unités (ASIC1a, ASIC1b, ASIC1b2, ASIC2a, ASIC2b, ASIC3 et ASIC4) ont été identifiés chez les mammifères. Des canaux ASIC fonctionnels résultent de l'association de différentes sous-unités ASIC en trimères [Jasti et al., 2007] [9] conduisant à des canaux homomères ou hétéromères [Lingueglia et al., 1997 ; Benson et al., 2002 ; Hesselager et al., 2004] [10, 11, 12]. Les canaux ASIC sont essentiellement exprimés dans les neurones sensoriels nocicepteurs du système nerveux périphérique et dans les neurones du système nerveux central [Waldmann et al., 1997a; Lingueglia et al., 2007, précité ; Noel et al., 2010] [13, 8, 14]. Alors que les isoformes ASIC1a et ASIC2 sont présents à la fois dans les systèmes nerveux central et périphérique, l'expression des isoformes ASIC1 b et ASIC3 est restreinte aux neurones sensoriels [Waldmann et al., 1997b ; Bassler et al., 2001 ; Chen et al., 1998] [15, 16, 17]. II a été postulé que les canaux ASIC exprimés par les neurones sensoriels, et notamment le canal ASIC3, sont capables de détecter les acidifications extracellulaires susceptibles de se développer lors d'une ischémie, d'une inflammation, d'un hématome, d'une fracture, d'une lésion, d'une intervention chirurgicale (douleur post-opératoire), ou du développement de certaines tumeurs [Reeh et Steen, 1996] [18]. Or il est connu depuis plusieurs années maintenant que l'acidose extracellulaire génère de la douleur [Steen et al., 1995a ; Issberner et al., 1996] [19, 20], et des expérimentations réalisées sur des volontaires humains sains [Ugawa et al., 2002 ; Jones et al., 2004] [21, 22] ont montré l'implication des canaux ASIC dans la douleur cutanée acide à l'aide de l'amiloride et de certains AINS, des inhibiteurs non spécifiques des canaux ASIC [Waldmann et al., 1997a, précité ; Voilley et al., 2001] [13, 23]. Il a été également démontré le rôle important de certains canaux ASIC exprimés dans les neurones du système nerveux central dans l'activité neuronale (plasticité synaptique de l'hippocampe, de l'amygdale) et la neuromodulation de la transmission de l'information douloureuse (canaux ASIC1a homomériques) par les neurones de la moelle épinière [Noel et al., 2010] [14]. Jusqu'à récemment, le répertoire des ligands actifs capables d'inhiber les canaux ASIC était principalement limité à l'amiloride, à certains AINS et au composé A-317567 [Dubé et al., 2005] [24]. Cependant aucune de ces molécules n'est absolument spécifique des canaux ASIC ou d'une sous-unité ASIC particulière. Dans le but d'identifier des effecteurs spécifiques des canaux ASIC, un très grand nombre de venins de scorpion, d'abeille, d'araignée, de serpent ou d'anémone de mer a été criblé. Récemment deux toxines peptidiques animales, PcTxl et APETx2, ont été identifiées qui inhibent spécifiquement les canaux ASIC1a homomériques et les canaux contenant la sous-unité ASIC3, respectivement [Escoubas et al., 2000 ; Diochot et al., 2004] [25, 26]. L'injection périphérique (sous-cutanée) d'APETx2 induit un effet analgésique sur la douleur inflammatoire et acide chez le rat [Deval et al., 2008] [27], alors que l'injection centrale de PcTxl induit un effet analgésique puissant chez la souris [Mazzuca et al., 2007] [28]. Les effets analgésiques de ces ceux toxines ont permis de démontrer l'implication des canaux ASIC dans la perception et la transmission de l'information douloureuse. Il existe donc un réel besoin d'identifier d'autres effecteurs spécifiques des canaux ASIC ou d'une sous-unité ASIC particulière, susceptibles de présenter un effet analgésique tout en palliant les défauts, inconvénients et obstacles des analgésiques de l'art antérieur. Description de l'invention Les Inventeurs ont maintenant découvert et identifié à partir du venin du serpent Dendroaspis polylepis (mamba noir), de nouveaux peptides qui induisent une analgésie et qui inhibent les canaux ASIC (Acid Sensing Ion Channels), plus précisément les canaux homomériques ASIC1a, homomériques ASIC1 b, hétéromériques ASIC1 a+2a, et hétéromériques ASIC1a+1b. Il s'agit en particulier des peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2 qui, après injection centrale (intrathécale et intracérébroventriculaire) in vivo chez la souris, présentent un effet analgésique puissant sur des modalités douloureuses différentes (chimique, thermique, inflammatoire), qui est comparable à celui de la morphine mais largement indépendant de l'activation des récepteurs aux opiacés. En outre, ces peptides ne présentent pas d'effets neurotoxiques lorsqu'ils sont injectés par voie centrale. Par injection périphérique sous-cutanée, ces peptides exercent également un effet analgésique avec réversion d'une hyperalgésie inflammatoire. Ces deux peptides sont les premiers peptides extraits du venin de Dendroaspis polylepis (mamba noir) à présenter un effet analgésique. Sans se trouver limité par cette explication, le mécanisme d'action le plus probable de ces peptides résulterait de l'inhibition des canaux ioniques ASIC qui jouent un rôle important dans la perception, la transmission et la modulation de l'information douloureuse. En effet ces peptides inhibent avec efficacité les canaux ASIC1a et ASIC1b homomériques ainsi que les canaux ASIC1a+ASIC1b et ASIC1a+ASIC2a hétéromériques de rat et humains. Ces deux peptides sont les premiers inhibiteurs connus des canaux ASIC1b, ASIC1a+ASIC1b et ASICIa+ASIC2a. Les peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2 inhibent également les courants ASIC natifs présents dans les neurones sensoriels et dans les neurones centraux. Ils n'ont pas d'effet sur le courant TRPV1 activé par la capsaïcine et par la chaleur et lui aussi impliqué dans la perception de la douleur. Ils ne modifient pas les propriétés électriques des neurones à l'état basal mais réduisent l'excitabilité neuronale en réponse à une acidification extracellulaire capable d'activer les canaux ASIC. Les peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2 possèdent donc chez le rongeur des propriétés analgésiques de puissance comparable à celles de la morphine, qui continuent à être observées lorsque les récepteurs aux opiacés sont bloqués, et qui pourraient être expliquées par leur capacité à inhiber spécifiquement certains canaux ASIC de rongeurs et humains. Leur injection par voie centrale n'induit aucune toxicité (neurotoxicité, convulsions...), ni aucun effet sur l'activité motrice (test du rotarod accéléré). Les peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2 peuvent donc être envisagés comme de nouvelles molécules ayant un potentiel thérapeutique contre la douleur (par exemple la douleur cancéreuse, neuropathique, post-opératoire, etc...) chez l'homme. La présente invention a donc pour objet un peptide fonctionnant en tant que bloqueur des canaux homomériques ASIC1a et ASIC1b, et des canaux hétéromériques ASIC1a+ASIC1b et ASICIa+ASIC2a. On entend par « bloqueur » au sens de la présente invention, un peptide capable d'inhiber de façon concentration-dépendante le courant produit par les canaux susnommés. Par exemple, il s'agit d'un peptide qui comme la PcTxl [Escoubas et al., 2000, précité] [25] est capable d'inhiber à une concentration de 1 nM, 50% du courant produit par les canaux ASIC1a homomériques, ou qui, comme APETx2 [Diochot et al., 2004, précité] [26], est capable d'inhiber à une concentration de 2 1.1M, 50% du courant produit par les canaux ASIC1a+ASIC3 hétéromériques de rat. De préférence ledit peptide selon l'invention est extrait du venin du serpent Dendroaspis polylepis. Par exemple, il est isolé du venin par fractionnement séquentiel à l'aide d'une chromatographie liquide à haute performance à polarité de phase inversée (RP-HPLC). Ledit peptide peut également être préparé par des procédés de recombinaison ADN ou par synthèse chimique. De préférence ledit peptide selon l'invention comprend une séquence en acides aminés : LKCX4QHGKVVTCHRDMKFCYHNTGMPFRNLKLILQGCSSSCSETENNK CCSTDRCNK (SEQ ID NO : 1) où X4 représente n'importe quel acide aminé, ou une séquence dérivée de SEQ ID NO : 1. On entend par « peptide comprenant une séquence dérivée » au sens de la présente invention, un peptide comprenant une séquence naturelle ou synthétique présentant une identité d'au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO: 1, de préférence d'au moins 80%, tout préférentiellement d'au moins 98%, et conservant les propriétés biologiques des peptides comprenant la séquence SEQ ID NO : 1 telle que décrite ci-dessus. De préférence, ledit peptide selon l'invention comprend le peptide ASICalgine- 1 ou ASICalgine-2 présentant la séquence SEQ ID NO: 1 où X4 représente Y ou F, respectivement (SEQ ID NO : 2 et 3, respectivement). La présente invention a encore pour objet un polynucléotide comprenant une séquence en nucléotides codant pour un peptide selon l'invention. De préférence ledit polynucléotide selon l'invention comprend une séquence en nucléotides : atgaaaactctgctgctgaccttgctggtggtgacaatcgtgtgcctagacttaggatactccctgaaatgt 73txx75caacatggtaaagttgtgacttgtcatcgagatatgaagttttgctatcataacactggcatgcct tttcgaaatctcaagctcatcctacagggatgttcttcttcgtgcagtgaaacagaaaacaataagtgttg ctcaacagacagatgcaacaaatag (SEQ ID NO : 4) où 73txx75 représente tac, tat ou ttt, ttc. De préférence ledit polynucléotide selon l'invention comprend une séquence en nucléotides telle qu'il peut s'hybrider en conditions stringentes avec la séquence en nucléotides SEQ ID NO: 4 ou une séquence complémentaire de celle-ci. La présente invention a encore pour objet un vecteur comprenant un polynucléotide selon l'invention. De préférence ledit vecteur selon l'invention est un vecteur d'expression. La présente invention a encore pour objet une cellule hôte comprenant un ou plusieurs peptide selon l'invention, polynucléotide selon l'invention, ou vecteur selon l'invention. La présente invention a encore pour objet une composition pharmaceutique comprenant un ou plusieurs peptide selon l'invention, polynucléotide selon l'invention, vecteur selon l'invention, ou cellule hôte selon l'invention. Une composition pharmaceutique selon l'invention peut également comprendre un ou plusieurs véhicule pharmaceutiquement acceptable (carbonate de calcium, amidon, talc lactose, stéarate de magnésium, gomme d'acacia, etc.), et se présenter sous forme de solution, suspension, pâte, gélule, comprimé, capsule, poudre, granule, lyophilisé, système à libération contrôlée, microparticule, micro- ou nanosphère, liposome, etc.. Une composition pharmaceutique selon l'invention peut être administrée par voie orale, intramusculaire, intraveineuse, sous-cutanée, topique, pulmonaire, intranasale, buccale, rectale, sublingale, intradermique, intrapéritonéale, intrathécale, etc.. La quantité efficace de principe actif (peptide, polynucléotide, vecteur, ou cellule hôte selon l'invention), dans une composition pharmaceutique selon l'invention, peut varier de sorte qu'une dose efficace soit obtenue et qu'une quantité analgésique soit administrée à un mammifère. Le dosage administré à un mammifère particulier dépend de plusieurs facteurs : la voie d'administration, la durée du traitement, la taille et la condition physique du mammifère, la puissance du principe actif et la réponse du mammifère audit principe actif. Par exemple, une quantité analgésique efficace de principe actif administré par voie intrathécale va généralement d'environ 5 ng/kg à 500 µg/kg de poids corporel du mammifère, de préférence d'environ 50 ng/kg à 50 µg/kg de poids corporel du mammifère, tout préférentiellement d'environ 500 ng/kg à 5 µg/kg de poids corporel du mammifère. Les quantités efficaces de principe actif peuvent varier lorsque d'autres voies d'administration sont utilisées. Une quantité analgésique efficace peut être estimée en testant le principe actif dans un ou plusieurs test de souffrance cité ci-après à une dose pouvant varier selon un ou plusieurs critères cité ci-dessus afin de déterminer la quantité efficace de principe actif à administrer à un mammifère. La présente invention a encore pour objet une substance choisie parmi un peptide selon l'invention, un polynucléotide selon l'invention, un vecteur selon l'invention, une cellule hôte selon l'invention, ou une composition pharmaceutique selon l'invention, pour son application comme médicament. De préférence ledit médicament est un analgésique, par exemple destiné à la prévention ou au traitement d'une douleur impliquant l'activation des canaux ASIC, en particulier des canaux homomériques ASIC1a et ASIC1b, et des canaux hétéromériques ASIC1a+ASIC1b et ASIC1a+ASIC2a. Par exemple, la douleur peut (i) résulter de l'activation des canaux ASIC centraux ou périphériques ou (ii) induire leur activation. Par exemple, il s'agit de douleurs, notamment celles associées à l'activation des canaux ASIC, choisies dans le groupe comprenant les douleurs inflammatoires, neuropathiques, cancéreuses, post-opératoires, musculo-squelettiques, viscérales, etc.. De préférence ledit médicament est destiné à la prévention ou au traitement d'une pathologie impliquant l'activation des canaux ASIC, en particulier des canaux homomériques ASIC1a et ASIC1b, et des canaux hétéromériques ASIC1a+ASIC1b et ASIC1a+ASIC2a. Par exemple, il s'agit des pathologies choisies dans le groupe comprenant les inflammations, les cancers, les fibromyalgies, le syndrome du colon irritable, etc... De préférence ledit médicament est destiné à la prévention ou au traitement d'une maladie neurologique centrale, par exemple choisie dans le groupe comprenant le stress post-traumatique, la dépression, l'anxiété, les accidents vasculaires cérébraux, l'épilepsie, les inflammations centrales, la sclérose en plaque, les maladies neurodégénératives, etc... De préférence ledit médicament est administré par voie parentérale, à savoir loco-régionale ou centrale (intrapéritonéale, péridurale, intrathécale, intracérébroventriculaire, intradermique, etc.) et générale (intramusculaire, intraveineuse, sous-cutanée, etc...), voie orale, voie locale (trans-cutanée, etc...) ou voie respiratoire (inhalation, instillation, etc...). Tout préférentiellement, ledit médicament est administré par voie intrathécale, péridurale, intracérébroventriculaire, intrapéritonéale ou sous-cutanée. La présente invention a encore pour objet une substance choisie parmi un peptide selon l'invention, un polynucléotide selon l'invention, un vecteur selon l'invention, une cellule hôte selon l'invention, ou une composition pharmaceutique selon l'invention, pour son application comme outil diagnostic. La présente invention a encore pour objet un procédé d'identification d'un composé mimant l'activité analgésique d'un peptide selon l'invention, comprenant les étapes suivantes : a) déterminer l'activité analgésique d'un peptide selon l'invention ; b) déterminer l'activité analgésique d'un composé candidat ; c) comparer les activités analgésiques obtenues aux étapes a) et b) ; d) sélectionner le composé candidat présentant une activité analgésique équivalente ou supérieure à celle d'un peptide selon l'invention. La présente invention a encore pour objet un procédé d'identification d'un composé mimant l'activité analgésique d'un peptide selon l'invention, comprenant les étapes suivantes : a) mettre en contact un peptide selon l'invention avec un échantillon, et mesurer la liaison dudit peptide avec ledit échantillon ; b) ajouter un composé candidat, et évaluer l'effet dudit composé sur la liaison dudit peptide avec ledit échantillon ; c) sélectionner le composé candidat capable de moduler la liaison dudit peptide avec ledit échantillon. On entend par « composé mimant l'activité analgésique d'un peptide selon l'invention » au sens de la présente invention, un composé candidat capable d'induire une analgésie, de lier les canaux ASIC auxquels les peptides selon l'invention se lient ou encore d'agir d'une manière physiologique identique ou similaire à celle des peptides selon l'invention, à savoir de moduler (inhiber ou stimuler) de façon réversible et concentration-dépendante le courant produit par les canaux homomériques ASIC1a et ASIC1b, et les canaux hétéromériques ASIC1a+ASIC1b et ASIC1a+ASIC2a. Par exemple, il s'agit d'un peptide qui comme la PcTxl [Escoubas et al., 2000, précité] [25] est capable d'inhiber à une concentration de 1 nM, 50% du courant produit par les canaux ASIC1a homomériques, ou qui, comme APETx2 [Diochot et al., 2004, précité] [26], est capable d'inhiber à une concentration de 2 µM, 50% du courant produit par les canaux ASICIa+ASIC3 hétéromériques de rat. On entend par « échantillon » au sens de la présente invention, des cellules ou tissu préalablement isolés à partir de l'organisme entier ou de lignées cellulaires immortalisées, d'insectes ou de mammifères. Par « activité analgésique », il est fait référence à la capacité d'un peptide selon l'invention à traiter la douleur chez un mammifère, ou d'atténuer la douleur comme mis en évidence par un ou plusieurs modèle de laboratoire conventionnel pour tester la douleur ou évaluer l'analgésie, tels que ceux décrits ci-après. Ainsi, l'activité analgésique d'un peptide selon l'invention peut être déterminée par exemple à l'aide d'un ou plusieurs des tests in vivo suivants : i) latence du retrait de la queue/patte (mesure de la nociception thermique) [Abott et al., 1982 ; Cridland et Henry, 1992] [29, 30], ii) seuil sur plaque chaude/froide (mesure de la nociception thermique) [Woolfe et Macdonald, 1944 ; Ankier, 1974] [31, 32], iii) seuil sur filament vonFrey ou test de Randall-Selitto ou test de la pince instrumentée (mesure de l'activité nociceptive mécanique) [Kim et al., 1993] [33], iv) test de distribution pondérale dynamique (mesure de l'activité nociceptive liée à la posture), v) mesure des comportements nociceptifs spontanés et/ou d'un ou plusieurs tests in vitro : par exemple le criblage de composés candidats par compétition où un peptide selon l'invention marqué (par exemple avec un radiomarqueur tel que C14, H3, 1125, une enzyme telle que la péroxydase, la phosphatase alcaline ou acide, un marqueur fluorescent tel que FITC, rhodamine, un anticorps, un antigène, biotine, ion paramagnétique, une particule de latex, etc...) est mis en contact avec un échantillon dans des conditions permettant sa liaison audit échantillon, la liaison dudit peptide marqué lié à l'échantillon est mesurée, et où les composés mimant l'activité dudit peptide marqué entrent en compétition avec ledit peptide pour la liaison aux sites sur le récepteur (canaux homomériques ASIC1a et ASIC1b, et canaux hétéromériques ASIC1a+ASIC1b et ASIC1a+ASIC2a). Ainsi une quantité plus faible de marquage détectable est mesurée lorsque les composés test miment l'activité dudit peptide en se liant au récepteur que lorsque les composés test ne miment pas l'activité dudit peptide et ne lient pas le récepteur, ou se lient avec une moindre affinité. En alternative, le criblage par compétition peut être réalisé avec le marquage du composé candidat au lieu de celui du peptide selon l'invention. Ainsi une quantité plus élevée de marquage détectable sera mesurée lorsque les composés test miment l'activité dudit peptide en se liant au récepteur que lorsque les composés test ne miment pas l'activité dudit peptide et ne lient pas le récepteur, ou se lient avec une moindre affinité. Des exemples de procédés d'identification de composés mimant l'activité analgésique de peptides sont décrits (sans se trouver limité par cette description), par exemple dans le Brevet US 5,877,026 [34]. D'autres avantages pourront encore apparaître à l'homme du métier à la lecture des exemples ci-dessous, illustrés par les figures annexées, donnés à titre illustratif. Brève description des figures - La figure 1 représente (A) la séquence en acides aminés des peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2 isolés du venin du serpent Dendroaspis polylepis (SEQ ID NO: 2 et 3, respectivement) (B) la séquence de nucléotides de l'ADN complémentaire (ADNc) codant pour ASICalgine-1 (SEQ ID NO : 5). La séquence signal (en italique), le peptide final (en gras) (cf. SEQ ID NO : 6), le codon stop (*) sont indiqués. La séquence de l'extrémité 5' non codante n'est pas représentée (correspondant à la SEQ ID NO : 9). - La figure 2 représente l'effet analgésique des peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2 in vivo après injection intrathécale chez la souris. Douleur chimique (formol) : (A) cinétique du comportement douloureux spontané mesuré par intervalle de 5 minutes (B) Durée totale de la phase I (0-10 minutes) de douleur aigüe et de la phase II (10-45 minutes) de douleur inflammatoire. Douleur aigüe thermique : (C) cinétique de la latence de retrait de la queue (D) moyenne des aires sous la courbe (AUC) mesurées pour chaque animal. Hyperalgésie inflammatoire : (E) cinétique de la latence de retrait de la patte. Significativité de l'hyperalgésie par rapport à la valeur contrôle: #, p 0,05; *, p 0,05; *, p valeurs moyennes ± sem sont figurées. Le nombre (n) d'animaux testés est mentionné dans les légendes. Significativité par rapport à l'injection du véhicule: *, p Les valeurs moyennes ± sem sont indiquées, avec n de 4 à 15 expériences. Des traces originales de courants inhibés par ASICalgine-1 (674 nM) et ASICalgine-2 (852 nM) sont montrées en miniature. (F) Traces originales de courant montrant l'inhibition du courant hétéromérique ASIC1 a+ASIC2a (ratio 2 :1) humain par ASICalgine-1 (674 nM). Potentiel de repos : -60 mV, barres blanches : saut de pH de 7,4 à 5,5, barres noires : application du peptide. - La figure 6 représente l'inhibition par les peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2 des courants ASIC natifs des neurones sensoriels et centraux en culture. (A) Inhibition moyenne du courant ASIC des neurones sensoriels (n=34) par ASICalgine-2 (852 nM, D) et ASICalgine-1 (674 nM, ^). A droite, exemples de courants originaux enregistrés au potentiel de repos de -50 mV et activés par un saut de pH de 7,4 à 6 (barre blanche). Dans les neurones sensoriels, le courant ASIC total résulte d'un mélange de courant ASIC1a homomérique, de courant de type ASIC1b et de courant de type ASIC3. (B) Inhibition moyenne du courant ASIC des neurones de moelle dorsale (n=18) par ASICalgine-2 (852 nM, D) et ASICalgine-1 (674 nM, ^). A droite, exemple de courants originaux enregistrés au potentiel de repos de -50 mV et activés par un saut de pH de 7,4 à 6 (barre blanche). (C) Inhibition moyenne du courant ASIC des neurones d'hippocampe (n=26) par ASICalgine-2 (293 nM, 852 nM et 2,9 µM, ^) et ASICalgine-1 (224 nM et 2,2 µM, ^). A droite, exemple de courants originaux enregistrés au potentiel de repos de -50 mV et activés par un saut de pH de 7,4 à 5,5 (barre blanche). Dans les neurones centraux (moelle et hippocampe), le courant ASIC total résulte d'un mélange de courant ASIC1a homomérique et de courant ASIC1a+ASIC2a hétéromérique. Les valeurs moyennes ± sem sont indiquées. - La figure 7 représente l'effet des peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2 sur le potentiel de membrane de neurones de moelle épinière dorsale de souris. (A) Potentiel membranaire d'un neurone où les potentiels d'action spontanés traduisent une activité synaptique (ligne pointillée : 0 mV). L'activation du courant ASIC par un saut de pH de 7,4 à 6 induit une dépolarisation dont le pic déclenche un potentiel d'action (agrandissement). L'application du peptide ASICalgine-1 (674 nM) ne modifie pas le potentiel de repos du neurone ni l'activité spontanée. En revanche, la dépolarisation induite par le saut de pH acide est réduite et n'induit plus de potentiel d'action. (B) Potentiel d'action évoqué par une stimulation électrique (créneaux de courant figurés au dessus). Quatre réponses sont superposées (panneau de gauche) : deux dépolarisations infraliminaires et deux autres déclenchant un potentiel d'action (ligne pointillée : 0 mV). L'application d'ASICalgine-2 (852 nM, panneau de droite) ne modifie pas l'excitabilité du neurone. EXEMPLES EXEMPLE 1 : ISOLEMENT DE DEUX PEPTIDES, ASICALGINE-1 ET 30 ASICALGINE-2, A PARTIR DU VENIN DU SERPENT DENDROASPIS POLYLEPIS Venin et purification des toxines peptidiques Le venin lyophilisé provient de la société Latoxan (Valence, France). Le venin a été dilué dans l'acide acétique (1%) et fractionné par passage sur une colonne contenant une résine Sephadex G50. La fraction peptidique a été récupérée et ensuite fractionnée sur un système de Chromatographie Liquide Haute Pression (HPLC) : 1) La fraction peptidique a été chargée et éluée sur une colonne échangeuse de cations avec un gradient de pH avec les solvants (acide acétique 1% pH3,0 et acétate d'ammonium 1M pH6,8). La fraction contenant les ASICalgines a 1 o été éluée à partir de 60% d'acétate d'ammonium. 2) Cette fraction peptidique a été chargée sur une colonne de phase inverse C18 et ses composants ont été élués par un gradient d'hydrophobicité entre les solvants eau-TFA 0,1% et Acétonitrile-TFA 0,1%. Les peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2 ont été élués purs à 26 et 27% d'acétonitrile 15 respectivement. Caractérisation des peptides Analyse en acides aminés ASICalgine-1 et ASICalgine-2 sont deux isopeptides basiques présentant une séquence de 57 acides aminés contenant 8 cystéines 20 formant 4 ponts disulfures (Figure 1A, SEQ ID NO: 2 et 3, respectivement), et précédée d'une séquence signal de 21 acides aminés (Figure 1B, cf. SEQ ID NO : 6). Ils ne diffèrent l'un de l'autre que par un acide aminé en position 4 de SEQ ID NO : 1, 2 ou 3 (= position 25 de SEQ ID NO : 6). 25 Détermination de la séquence en acides aminés par clonaqe La séquence complète (Figure 1B) d'ASICalgine-1 a été déterminée par clonage de l'ADNc par PCR, à partir des ARN messagers (ARNm) présents à l'état de traces dans le venin brut. 25 mg de venin de serpent Dendroaspis polylepsis (Sigma) ont été resuspendus dans du tampon de 30 lyse : 500 mM LiCI, 10 mM EDTA, 1% (w/v) LiDS, et 5 mM dithiothréitol dans 100 mM de tampon Tris-HCI, pH 7,5. Les ARN messagers ont été capturés grâce à des billes magnétiques greffées d'oligonucléotides dT25 (Dynal, UK). Ces oligonucléotides ont été directement utilisés comme amorces pour réaliser la transcription inverse de I'ARNm en ADNc avec la transcriptase inverse PrimeScriptTM (TaKaRa Bio Inc., Japan). La banque d'ADNc en phase solide ainsi obtenue a été utilisée pour réaliser une PCR dégénérée avec les oligonucléotides sens (TGITTYCARCAYGGIAARGT, SEQ ID NO : 7) et antisens (YTTIARRTTICGRAAIGGCAT, SEQ ID NO : 8) définis à partir de la séquence protéique partielle de la toxine déterminée par séquençage N-terminal direct. Pour exclure toute erreur due à la polymérase, trois PCR indépendantes ont été réalisées qui ont produit des fragments à la taille espérée (89 paires de bases), ensuite sous-clonés dans le vecteur pGEMTeasy (Promega) et séquencés. Grâce à ces séquences, un oligonucléotide-sens spécifique additionné d'un site de restriction EcoRl a été synthétisé (ACAC(GAATTC)GCTATCATAACACTGGCATG, SEQ ID NO: 9), ainsi qu'un oligonucléotide-antisens non-spécifique poly-dT30 également additionné d'un site EcoRl (ACAC(GAATTC)dT30, SEQ ID NO : 10). Ces deux oligonucléotides ont permis d'amplifier par PCR toute l'extrémité 3'-codante et 3' non-codante à fin d'identification. Trois PCR indépendantes ont généré une bande d'environ 400 paires de bases et son sous-clonage dans le vecteur pGEMTeasy au site de restriction ECoRI a permis son séquençage en excluant toute erreur générée par la polymérase. A partir des séquences 3'- et 5'- non-codantes, un oligonucléotidesens (ACAC(GAATTC)TCCAGAGAAGATCGCAAGATG, SEQ ID NO : 11) et antisens (ACAC(GAATTC)ATTTAGCCACTCGTAGAGCTA, SEQ ID NO : 12) encadrant la séquence codante ont été synthétisés. Quatre PCR indépendantes ont été faites sur la banque de cDNA en phase solide et les produits de PCR ont été à nouveau sous-clonés dans le vecteur pGEMTeasy pour obtenir la séquence nucléotidique complète du précurseur de la toxine ASICalgine-1. Séquençage peptidique La séquence a été confirmée jusqu'à l'acide aminé Asp4O par séquençage N-terminal direct des peptides réduits et alkylés sur séquenceur automatique (LC491, Applied Biosystems, USA). Clivage enzymatique Pour confirmer les séquences, les peptides ont été soumis aux traitements enzymatiques suivants: (a) protéase V8 avec une séparation des peptides digérés sur une colonne HPLC de phase inverse C18. Le clivage en position D15 et E43 et la séparation sur HPLC de 2 peptides de masse moléculaire 1786.9 Da (peptide 1-15), entièrement re-séquencé, et 3194.5 Da (peptide 16-43), séquence partielle, permettent de confirmer la séquence N-terminale. (b) digestion à la trypsine avec analyse directe par spectrométrie de masse. Les fragments tryptiques confirment aussi la séquence N-terminale ainsi que d'autres parties de la séquence peptidique des ASICalgines. Les peptides tryptiques détectés et séquencés par analyse MS/MS sont présentés dans le tableau 1 ci-dessous Tableau 1 Position Séquence peptidique Mw (Da) 3-8 CFQHGK (SEQ ID NO: 13) 775.27 3-8 CYQHGK (SEQ ID NO: 14) 791.27 3-14 CFQHGKVVTCHR (SEQ ID NO: 15) 1527.58 3-14 CYQHGKVVTCHR (SEQ ID NO: 16) ND 9-14 VVTCHR (SEQ ID NO: 17) 770.31 15-28 DMKFCYHNTGMPFR (SEQ ID NO: 18) 1803.57 32-48 LILQGCSSSCSETENNK (SEQ ID NO: 19) 1925.63 49-54 CCSTDR (SEQ ID NO: 20) 797.24 32-54 LILQGCSSSCSETENNKCCSTDR (SEQ ID NO: 21) 2705.78 Spectrométrie de masse (MALDI-TOF) Dans tous les cas l'analyse de spectrométrie de masse a été réalisée sur un spectromètre 4800 MALDI-TOF-TOF (Applied Biosystems, USA). Les protéines natives ont été analysées en mode linéaire ion positif avec une matrice d'acide sinapinique (Sigma Aldrich, USA) en utilisant une calibration interne avec un mélange de protéines de masse moléculaire connues. La masse moléculaire mesurée est de 6554.8 Da pour ASICalgine-1, et de 6538.4 pour ASICalgine-2. Elle est en parfait accord avec les masses moléculaires calculées par la séquence 6554.58Da et 6538.58 Da, respectivement, sur le logiciel GPMAW protein analysis. Ces résultats suggèrent une extrémité C-terminale acide carboxylique libre. L'absorbance moléculaire calculée à 280 nm est de E= 3040 (pour ASICalgine-1) et = 1760 (pour ASICalgine-2). Recherche d'homologues dans les bases de données ASICalgine-1 et ASICalgine-2 ne figurent pas dans les bases de données et ne présentent aucune identité de séquence totale avec d'autres peptides ou toxines déjà connues. Le programme d'alignement de séquence BLAST montre que ASICalgine-1 et ASICalgine-2 présentent néanmoins 47 à 55% d'identité de séquence (63 à 66% d'homologies de séquence) avec les peptides CM 1 b, CM-3 et CM-2a purifiés à partir de venins de diverses espèces de serpents Cobra (Naja et Ringhals). EXEMPLE 2 : EFFET ANALGESIQUE DES PEPTIDES ASICALGINE-1 ET ASICALGINE-2 IN VIVO APRES INJECTION INTRATHECALE Le comportement douloureux des souris (C57B16J, mâles de 7 à 11 semaines) a été évalué après injection intrathécale (IT) des peptides entre les vertèbres L5 et L6, selon le protocole de Hylden et Wilcox [1980] [35]. Les effets d'une injection IT de 10 de solution contenant 34 µM d'ASICalgine-1 (0,34 nmole) ou de 20 µM d'ASlcalgine-2 (0,2 nmole) ont été comparés avec les effets d'une injection IT de 10 pl de solution contenant 3,1 mM de morphine (31 nmole) ou de 10 pi de solution saline véhicule (145 mM NaCl, 5 mM KCI, 2 mM CaCl2, 10 mM HEPES, pH 7,4, 0,05% albumine sérique bovine). Dans certaines séries d'expériences, la naxolone, un inhibiteur des récepteurs aux opioïdes (surtout de type p), a été injectée par voie sous-cutanée à 2 mg/kg dans 50 .tl de NaCI 0,9%, dix minutes avant l'injection IT du peptide ASICalgine. Toxicité L'injection intrathécale des peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2 n'induit aucune modification du comportement de type troubles moteurs, troubles de l'équilibre, apathie, paralysie ou convulsions, ni aucun décès chez la souris. Douleur chimique aigüe et inflammatoire L'injection sous-cutanée de formol (15 µl à 2% dans une solution de NaCI 0,9%) dans la voute plantaire de la patte arrière d'une souris induit une douleur présentant deux phases : une phase I de douleur chimique aigüe pendant 10 minutes et une phase Il de douleur inflammatoire de 15 à 45 minutes (Figure 2A). La douleur est mesurée en observant le comportement douloureux spontané de l'animal, c'est-à-dire en comptant le temps pendant lequel la souris lève la patte injectée, la lèche, la mordille ou la secoue (comportement volontaire intégré). L'injection IT d'ASICalgine-1 réduit significativement de 40% la douleur de la phase I et de 70% la douleur de la phase II. Cet effet analgésique est similaire à celui de la morphine (Figure 2B). L'injection IT d'ASICalgine-2 produit un effet identique à ASICalgine-1. Le prétraitement à la naxolone, un inhibiteur des récepteurs aux opiacés n'a aucun effet sur l'effet analgésique d'ASICalgine-1, que ce soit sur l'une ou l'autre des deux phases douloureuses I et Il (Figure 2B). Les peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2 sont les premiers peptides analgésiques extraits du venin de Dendroaspis polylepis. Douleur thermique aigüe La douleur thermique a été étudiée chez la souris en mesurant la latence de retrait de la queue plongée dans de l'eau à 46°C (mouvement réflexe, l'animal est soumis à une contention), avec une durée limite de 30 s. Le peptide ASICalgine-1 induit un effet analgésique aussi puissant que celui de la morphine (7 minutes après l'injection IT) mais qui est plus transitoire (Figure 2C). L'effet analgésique d'ASICalgine-1 n'est pas significativement inhibé par un prétraitement à la naxolone (Figure 2D). Hyperalgésie inflammatoire L'injection sous-cutanée de carragénine 2% dans la voute plantaire de la patte arrière des souris, entraîne le développement d'une inflammation tissulaire et d'une hyperalgésie, mesurée par la latence de retrait de la patte arrière immergée dans de l'eau à 46°C (mouvement volontaire intégré, l'animal est soumis à une contention) avec une durée limite de 30 s, deux heures après l'injection de carragénine (Figure 2E, #). L'injection IT d'ASICalgine-1 entraine une analgésie rapide, comparable à celle de la morphine et persistant toute la durée de l'expérience (67 minutes, Figure 2E). L'effet analgésique d'ASICalgine-1 n'est que légèrement inhibé de 20% par un prétraitement à la naxolone (Figure 2F). Activité motrice Les effets du peptide ASICalgine-1 sur l'activité motrice ont été évalués grâce au test du Rotarod accéléré. Les souris ont été placées sur un axe tournant à 4 rotations par minute (rpm) qui subit une accélération constante de 5 rpm par minute jusqu'à 40 rpm. La latence de la chute est mesurée, avec une limite maximale de 300 s. L'injection IT du peptide ASICalgine-1 n'induit aucun effet significatif (test ANOVA) sur les performances des souris quant à l'activité motrice par rapport à une injection de solution véhicule. EXEMPLE 3 : EFFET ANALGESIQUE DU PEPTIDE ASICALGINE-1 IN VIVO APRES INJECTION INTRACEREBROVENTRICULAIRE L'injection intracérébroventriculaire (ICV) du peptide ASICalgine-1 a été réalisée dans le troisième ventricule du cerveau de souris (C57B16J, mâles de 7 à 11 semaines) anesthésiées à l'isoflurane (1,5%) grâce aux coordonnées stéréotaxiques suivantes : -2,4 mm sous la surface corticale, -0,5 mm dans l'axe antéro-postérieur et +1,6 mm dans l'axe médio-latéral par rapport au bregma. Les effets d'une injection ICV de 5 µl de solution contenant 34 µM d'ASICalgine-1 (0,34 nmole) ont été comparés avec les effets de 5 µl de solution saline véhicule (145 mM NaCl, 5 mM KCI, 2 mM CaCl2, 10 mM HEPES, pH 7,4, 0,05% sérum albumine bovine). La naxolone, un inhibiteur des récepteurs aux opioïdes (surtout p), a été injectée par voie sous-cutanée à 2 mg/kg dans 50 p.l de NaCI 0,9%, dix minutes avant l'injection ICV du peptide ASICalgine-1. Toxicité L'injection ICV du peptide ASICalgine-1 n'induit aucune modification du comportement de type troubles moteurs, troubles de l'équilibre, apathie, paralysie ou convulsions, ni aucun décès chez les souris, même après 3 jours. Douleur thermique aigüe La douleur thermique a été étudiée chez la souris en mesurant la latence de retrait de la queue plongée dans de l'eau à 46°C (mouvement réflexe, l'animal est soumis à une contention) avec une durée limite de 30 s. L'injection ICV du peptide ASICalgine-1 induit un effet analgésique puissant et soutenu durant toute la durée de l'expérience (67 min, Figure 3), effet qui n'est pas modifié par un prétraitement à la naloxone. L'effet analgésique persiste plusieurs heures avant que la valeur de la latence de retrait de la queue ne retourne à sa valeur contrôle. EXEMPLE 4 : EFFET ANALGESIQUE DU PEPTIDE ASICALGINE-1 IN 30 VIVO APRES INJECTION SOUS-CUTANEE L'effet d'une injection sous-cutanée (SC) du peptide ASICalgine-1 a été testé sur l'hyperalgésie inflammatoire induite par la carragénine. L'injection SC de carragénine 2% dans la voute plantaire de la patte arrière des souris (C57B16J, mâles de 7 à 11 semaines), entraîne le développement d'une inflammation tissulaire et d'une hyperalgésie, mesurée par la latence de retrait de la patte arrière immergée dans de l'eau à 46°C (mouvement volontaire intégré, l'animal est soumis à une contention) avec une durée limite de 30 s, deux heures après l'injection de carragénine. Lorsque le peptide ASICalgine-1 (10 µl de solution contenant 34 µM d'ASICalgine-1 (0,34 nmole) dans du NaCl 0,9%, 0,05% albumine sérique bovine) est co-injecté avec la carragénine, aucune hyperalgésie inflammatoire thermique n'est constatée. Dans ces conditions, une seconde injection SC du peptide ASICalgine-1 deux heures après ne produit aucun effet significatif supplémentaire (Figure 4, ^). Si le peptide ASICalgine-1 n'a pas été co-injecté avec la carragénine, son injection SC lorsque l'inflammation est déjà installée, deux heures après l'injection de carragénine seule, réverse l'hyperalgésie inflammatoire et produit de plus une analgésie significative par rapport à la condition contrôle, avant l'injection de carragénine (Figure 4, ^ et #). EXEMPLE 5: ACTIVITE DES PEPTIDES ASICALGINE-1 ET ASICALGINE-2 SUR LES COURANTS ASIC Les peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2 inhibent les courants générés par les canaux ASIC exprimés de façon hétérologue dans la lignée cellulaire COS et enregistrés par la technique du patch-clamp en configuration « cellule entière » (mode « potentiel-imposé »). Les peptides sont appliqués à pH 7,4, 30 secondes avant le saut de pH extracellulaire de 7,4 à 6 ou 5,5. Les peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2 ont le même effet, et inhibent le courant généré par les canaux homomériques ASIC1a de rat avec une concentration produisant 50% d'inhibition (CI50) de 49 nM (Figure 5A), et le courant généré par les canaux homomériques ASIC1a humain avec une CI50 de 127nM (Figure 5B). Le courant généré par les canaux homomériques ASIC1b de rat est inhibé avec une IC50 de 650 nM (Figure 5C), les canaux hétéromériques ASIC1a+ASIC2a de rat et humain avec une CI50 de 308 nM (Figure 5E), et les canaux hétéromériques ASIC1a+ASIC1b de rat avec une CI50 de 223 nM (Figure 5D) (le canal ASIC1b n'a pas été décrit chez l'homme). Les peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2 n'inhibent pas les canaux homomériques ASIC2a et ASIC3 de rat et humain, ni les canaux hétéromériques ASICIa+ASIC3 et ASIC1b+ASIC3 de rat. Les effets des peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2 sont réversibles à l'arrêt de l'application des peptides (Figure 5). Les peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2 sont les seuls peptides décrits à ce jour capables d'inhiber les canaux homomériques ASIC1b et les canaux hétéromériques ASIC1 a+ASIC1 b et ASIC1 a+ASIC2a. Par contre, le peptide ASICalgine-1 (2 pM) n'inhibe pas le courant produit par les canaux TRPV1 de rat activés par la capsaïcine (1 pM), canaux également impliqués dans la transduction de la douleur par les terminaisons nerveuses sensorielles. Sans se trouver limité à cette explication, les effets analgésiques des peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2 apparaissent comme mettant en jeu l'inhibition des canaux ASIC1 a homomériques et ASIC1 a+ASIC2a hétéromériques dans les neurones du système nerveux central (injections IT et ICV), et l'inhibition des canaux ASIC1 a et ASIC1b homomériques et ASIC1a+ASIC1b hétéromériques dans les neurones sensoriels (injection sous-cutanée, injection IT sous réserve que ASIC1a et ASIC1b homomériques et ASIC1a+ASICIb hétéromériques soient présents dans les terminaisons centrales des neurones sensoriels au niveau de la corne dorsale de la moelle épinière). EXEMPLE 6: ACTIVITE DES PEPTIDES ASICALGINE-1 ET ASICALGINE-2 SUR LES COURANTS ASIC NATIFS DES NEURONES CENTRAUX ET DES NEURONES SENSORIELS Les peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2 inhibent de façon réversible les courants ASIC enregistrés par la technique du patch-clamp en configuration « cellule entière » (mode « potentiel-imposé ») dans des neurones en culture primaire isolés à partir de ganglions rachidiens de rat adulte (Figure 6A), de moelle épinière dorsale d'embryons de souris (Figure 6B), et d'hippocampe de nouveaux-nés de souris (2 jours) (Figure 6C). L'effet inhibiteur partiel des peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2 sur le courant ASIC total des neurones sensoriels s'explique par la part importante de courant de type ASIC3 (non inhibé par les peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2) dans les neurones sensoriels, alors que les courants ASIC centraux (hippocampe et moelle) sont composés d'un mélange de courants homomérique ASIC1a et hétéromérique ASIC1a+ASIC2a (tous deux inhibés par les peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2). EXEMPLE 7 : ACTIVITE DES PEPTIDES ASICALGINE-1 ET ASICALGINE-2 SUR LES NEURONES Les peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2 appliqués sur les neurones spinaux en culture, n'induisent aucune modification du niveau de courant basal, ni de variations du potentiel de repos (Figure 7A) enregistrés par la technique du patch-clamp en configuration « cellule entière ». L'application des peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2 ne modifie pas l'activité électrique synaptique spontanée des neurones spinaux en culture, ni la forme ou le seuil de potentiels d'action évoqués par une stimulation électrique (mode « courant-imposé » du patch-clamp) (Figure 7B). Les résultats montrent que les peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2 n'ont pas d'effet sur les propriétés d'excitabilité intrinsèques des neurones, sur la fonction synaptique ou sur les courants dépendants du potentiel impliqués dans la genèse (canaux Na+) ou la repolarisation (canaux K+) des potentiels d'action. En revanche, l'inhibition spécifique des canaux ASIC par les peptides ASICalgine-1 et ASICalgine-2 réduit l'excitabilité des neurones en réponse à un saut de pH acide (de 7,4 à 6,0), la dépolarisation produite par le courant ASIC n'étant alors pas suffisante pour déclencher de potentiel d'action (Figure 7A). Liste de références 1. 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Polynucléotide comprenant une séquence en nucléotides 20 codant pour un peptide tel que défini dans l'une quelconque des revendications 1 à 4. 6. Polynucléotide selon la revendication 5, comprenant la séquence en nucléotides : 25 atgaaaactctgctgctgaccttgctggtggtgacaatcgtgtgcctagacttaggatactccctgaaatgt 73txx75caacatggtaaagttgtgacrtgtcatcgagatatg aagttttgctatcataacactggcatgcct tttcgaaatctcaagctcatcctacagggatgttcttcttcgtgcagtgaaacagaaaacaataagtgttg ctcaacagacagatgcaacaaatag (SEQ ID NO : 4) où 73txx75 représente tac, tat, ttt, ou ttc. 15 30 7. Polynucléotide selon la revendication 5, où ledit polynucléotide s'hybride en conditions stringentes avec la séquence en nucléotides SEQ ID NO : 4 ou une séquence complémentaire de celle-ci. 8. Vecteur comprenant un polynucléotide tel que défini dans l'une quelconque des revendications 5 à 7. 9. Vecteur selon la revendication 8, où ledit vecteur est un vecteur d'expression. 10. Cellule hôte comprenant un ou plusieurs peptide tel que défini dans l'une quelconque des revendications 1 à 4, polynucléotide tel que défini dans l'une quelconque des revendications 5 à 7, ou vecteur tel que défini dans l'une quelconque des revendications 8 ou 9. 15 11. Composition pharmaceutique comprenant un ou plusieurs peptide tel que défini dans l'une quelconque des revendications 1 à 4, polynucléotide tel que défini dans l'une quelconque des revendications 5 à 7, vecteur tel que défini dans l'une quelconque des revendications 8 ou 9, 20 ou cellule hôte telle que définie dans la revendication 10. 12. Substance choisie parmi : un peptide tel que défini dans l'une quelconque des revendications 1 à4; 25 un polynucléotide tel que défini dans l'une quelconque des revendications 5 à 7 ; un vecteur tel que défini dans l'une quelconque des revendications 8 ou 9 ; ou une cellule hôte telle que définie dans la revendication 10 ; 30 - une composition pharmaceutique selon la revendication 11 ; pour son application comme médicament.10 13. Substance selon la revendication 12, où ledit médicament est un analgésique. 14. Substance selon la revendication 13, où l'analgésique est destiné à la prévention ou au traitement d'une douleur ou d'une pathologie impliquant l'activation des canaux ASIC. 15. Substance selon la revendication 14, où la douleur et la pathologie impliquant l'activation des canaux ASIC est choisie dans le groupe comprenant les douleurs inflammatoires, neuropathiques, cancéreuses, post-opératoires, musculo-squelettiques et viscérales, les inflammations, les cancers, les fibromyalgies, et le syndrome du colon irritable. 16. Substance selon la revendication 12, où ledit médicament est destiné à la prévention ou au traitement d'une maladie neurologique centrale choisie dans le groupe comprenant la dépression, l'anxiété, les attaques cérébrales, l'épilepsie, les inflammations centrales et les maladies neurodégénératives. 17. Substance selon l'une quelconque des revendications 12 à 16, où ledit médicament est administré par voie centrale, sous-cutanée, trans-cutanée, systémique, orale, ou respiratoire. 18. Substance choisie parmi : un peptide tel que défini dans l'une quelconque des revendications 1 à4; un polynucléotide tel que défini dans l'une quelconque des revendications 5 à 7 ; un vecteur tel que défini dans l'une quelconque des revendications 8 ou 9 ; ou une cellule hôte telle que définie dans la revendication 10 ; une composition pharmaceutique selon la revendication 11 ; pour son application comme outil diagnostic. 19. Procédé d'identification d'un composé mimant l'activité analgésique d'un peptide tel que défini dans l'une quelconque des revendications 1 à 4, comprenant les étapes suivantes : a) déterminer l'activité analgésique d'un peptide tel que défini dans l'une quelconque des revendications 1 à 4 ; b) déterminer l'activité analgésique d'un composé candidat ; c) comparer les activités analgésiques obtenues aux étapes a) et b); d) sélectionner le composé candidat présentant une activité analgésique équivalente ou supérieure à celle dudit peptide. 20. Procédé d'identification d'un composé mimant l'activité analgésique d'un peptide tel que défini dans l'une quelconque des revendications 1 à 4, comprenant les étapes suivantes : a) mettre en contact un peptide tel que défini dans l'une quelconque des revendications 1 à 4 avec un échantillon, et mesurer la liaison dudit peptide avec ledit échantillon ; b) ajouter un composé candidat, et évaluer l'effet dudit composé sur la liaison dudit peptide avec ledit échantillon ; c) sélectionner le composé candidat capable de moduler la liaison dudit peptide avec ledit échantillon.