FR 2962551 A1 20120113 FR 1055597 A 20100709 DISPOSITIF DE DETECTION DE MOLECULES D'INTERET, SON PROCEDE DE FABRICATION ET SON UTILISATION La présente invention a pour objet un dispositif de détection de molécules d'intérêt, son procédé de fabrication et son utilisation. Depuis plusieurs années, les biopuces sont utilisées pour leur capacité à générer un nombre très important de données tout en utilisant de faibles quantités de molécules de capture et d'échantillons biologiques. Des biopuces à peptides ont ainsi été réalisées et développées sur des substrats (lames de verre ou silicium) pour le dépistage d'anticorps dirigés contre des pathogènes comme le virus de l'hépatite C ou B. De façon à améliorer les tests diagnostics, l'immobilisation de sondes peptidiques doit conduire à une forte densité de peptides liés de manière stable aux supports sans modifier leur bioréactivité. Les biopuces sont constituées d'un microréseau de sondes d'ADN ou de peptides c'est-à-dire d'un arrangement bidimensionnel de biomolécules sondes déposées de façon contrôlée sur une surface telle que du verre ou toute autre matière (plastique, nitrocellulosique, métallique, ...) de telle sorte que ces sondes soient accessibles aux cibles présentes en solution. L'accroche des sondes se fait habituellement en créant, sur la surface du capteur, de petits "spots" localisés (de quelques centaines de micromètres carrés) porteurs de fonctions chimiques aptes à greffer les sondes. La disposition régulière des spots permet ensuite la lecture (le plus souvent optique) du résultat. Les techniques de formation de ces spots sont communément rangées dans deux catégories : impression avec contact et sans contact ("contact printing" et "non-contact printing"). L'impression avec contact est la technologie la plus largement utilisée car elle permet une excellente reproductibilité. Toutefois, les technologies d'impression sans contact, plus récentes, sont plus prometteuses (gravure photochimique, laser, jet d'encre, électrospray,...). Des techniques de modification de surface basées sur la construction de spots d'oligodéoxynucléotides (ODN) sondes directement sur une surface plane (de type plaque de verre) ont été développées. On trouve parmi ces techniques la synthèse in situ de séquences d'ODN par photoactivations-désactivations successives, ou le dépôt local (par micro-robots) d'ODN modifiés sur des surfaces pré-activées (verre, silice, polymères,...). Ces deux approches sont développées ci-dessous : Surfaces pré-activées : Brockman et al. (Annu. Rev. Phys.Chem., 2000, 51, 41) ont montré la possibilité de former, sur des surfaces d'or, des réseaux de plots d'alkylthiols fonctionnalisés par un groupe amine terminal. La "tête" thiol se greffe sur l'or tandis que la "queue" amine reste disponible. Les brins d'ODN sondes sont ensuite greffés sur ces spots. D'autres configurations sont possibles, comme celles de Shumaker-Parry et al. (Anal. Chem., 2004, 76, 918) en utilisant par exemple l'enchaînement biotine - avidine - biotine. L'avantage majeur de ces techniques est qu'elles conduisent à des couches parfaitement définies pour lesquelles les séquences d'ODN, greffées après leur synthèse, ont été préalablement purifiées. Le désavantage est qu'elles nécessitent au moins deux étapes : pré-activation de la surface, puis greffage des séquences sondes. Synthèse in-situ / Photoactivation : une approche plus simple est la synthèse directe des séquences sondes sur la surface de la puce, en exploitant le principe développé par Fodor et al. (Nature, 1993, 364, 555 ; Science, 1991, 251, 767) et utilisé commercialement par Affymetrix. Le concept repose sur la modification successive d'une surface portant des groupements photolabiles activables-désactivables à volonté. L'usage de masques permet le dessin des "spots" sur la surface de la puce, chacun des spots étant porteur d'un et d'un seul type de séquence sonde. Chaque étape du processus nécessite l'utilisation d'un masque photolithographique différent. La nécessité de fabriquer un nouvel ensemble de masques photographiques pour chaque spot rend la méthode extrêmement chère et peu adaptée à l'automatisation. La méthode est complexe et longue car chaque étape de synthèse nécessite le déplacement, le remplacement et le réalignement mécaniques d'un masque photolithographique. Ainsi, synthétiser un grand nombre de bibliothèques de spots avec cette méthode est un processus peu efficace et peu économique. Les procédures électrochimiques (« electro-printing ») semblent très prometteuses. Ainsi il a été démontré que des techniques comme la Microscopie Electrochimique à Balayage (SECM) permettent l'électrodéposition locale d'ADN, par exemple par l'électropolymérisation sous forme de spots de motifs pyrroles modifiés par des brins d'oligonuléotides (Livache et al. Nucleic Acids Res., 1994, 22, 2915.; Szunerits et al. Langmuir, 2004, 20, 9236 ; E. Fortin et al., Electronalysis, 2005, 17, 495). Il est en effet d'ores et déjà démontré que les polymères conducteurs tels que le polypyrrole ou le polythiophène sont des substrats appropriés pour l'immobilisation de brins d'ODN sonde (Cha, et al. Biosens. Bioelectron., 2003, 18, 1241; Garnier et al. Synth. Met., 1999, 100, 89). Une autre méthode consiste à déprotéger localement par électrochimie une fonction chimique qui par la suite réagira avec une sonde présente dans le milieu. Néanmoins ces différentes méthodes ne sont pas satisfaisantes et il existe un besoin de mettre à la disposition des spécialistes, une méthode qui permette un adressage non manuel et direct des différentes sondes biologiques sur des microélectrodes individuelles. Aussi la présente invention a-t-elle pour objet un dispositif de détection comprenant : - au moins un transducteur, comprenant une fonction amine primaire liée à une quinone, ou à un dérivé de quinone, par un atome de carbone ou un hétéroatome d'une chaîne carbonée, - au moins un récepteur possédant une fonction amine primaire, - éventuellement un nanotube de carbone fonctionnalisé, et - un support conducteur électrique, et dans lequel ledit au moins un transducteur et ledit au moins un récepteur sont respectivement liés de façon 15 covalente au support ou au nanotube de carbone, par au moins une de leurs fonctions amine primaire, et ledit nanotube de carbone est lié de façon covalente au support. Dans un mode de réalisation avantageux de l'invention, le dispositif de détection comprend : 20 - au moins un transducteur, comprenant une fonction amine primaire liée à une quinone, ou à un dérivé de quinone, par un atome de carbone ou un hétéroatome d'une chaîne carbonée, - au moins un récepteur possédant une fonction amine primaire, - un nanotube de carbone fonctionnalisé, et 25 - un support conducteur électrique, et dans lequel ledit au moins un transducteur et ledit au moins un récepteur sont respectivement liés de façon covalente au nanotube de carbone, par au moins une de leurs fonctions amine primaire, et ledit nanotube de carbone est lié de façon covalente au support. 30 Dans un autre mode de réalisation avantageux, le dispositif de détection selon l'invention comprend : - au moins un transducteur, comprenant une fonction amine primaire liée à une quinone, ou à un dérivé de quinone, par un atome de carbone ou un hétéroatome d'une chaîne carbonée, - au moins un récepteur possédant une fonction amine primaire, - un nanotube de carbone fonctionnalisé, et - un support conducteur électrique, et dans lequel ledit au moins un récepteur est lié de façon covalente au nanotube de carbone, par au moins une des fonctions amine primaire, ledit au moins un transducteur est lié de façon covalente au support, par au moins une des fonctions amine primaire, et ledit nanotube de carbone est lié de façon covalente au support. Dans un autre mode de réalisation avantageux de l'invention, le dispositif de détection comprend : - au moins un transducteur, comprenant une fonction amine primaire liée à une quinone, ou un dérivé de quinone , par un atome de carbone ou un hétéroatome d'une chaîne carbonée, - au moins un récepteur possédant une fonction amine primaire, - un nanotube de carbone fonctionnalisé, et - un support conducteur électrique, et dans lequel ledit au moins un transducteur est lié de façon covalente au nanotube de carbone, par au moins une des fonctions amine primaire, ledit au moins un récepteur est lié de façon covalente au support, par au moins une des fonctions amine primaire, et ledit nanotube de carbone est lié de façon covalente au support. Dans un autre mode de réalisation avantageux de l'invention, le dispositif de détection comprend : - au moins un transducteur, comprenant une fonction amine primaire liée à une quinone, ou à un dérivé de quinone, par un atome de carbone ou un hétéroatome d'une chaîne carbonée, - au moins un récepteur possédant une fonction amine primaire, et - un support conducteur électrique, et dans lequel ledit au moins un transducteur et ledit au moins un récepteur sont respectivement liés de façon covalente au support par au moins une de leurs fonctions amine primaire. Conformément à l'invention, le transducteur peut être un composé correspondant à la formule I suivante : dans laquelle n est égal à 0 ou 1, m est égal à 0 ou 1, R1, R2, R3, R4, R5, et R8 indépendamment les uns des autres, sont choisis parmi : H, O, S, NH2, NO2, NH, OH, COOH, SH, et un groupement de 1 à 10 atomes de carbones, linéaire, ramifié, cyclique ou aromatique, R6 et R7 indépendamment l'un de l'autre sont choisis parmi : - H, O, S, NH2, NO2, NH, OH, COOH, SH, - un groupement de 1 à 10 atomes de carbones, linéaire, ramifié, cyclique ou aromatique, ou - un groupe H N X~ 2 P avec p représentant les un entier variant de 0 à 12 et X étant choisi parmi CH2, O, NH, S, et nombre liaisons , indépendamment les unes des autres, représentent des liaisons covalentes selon simples selon la nature des groupements R1, R2, R3, R4, R5, R6, R7 et R8 et ou doubles m et n. les valeurs de Dans un mode de réalisation avantageux de l'invention, le transducteur correspond à la formule II suivante : (I) dans laquelle R1, R2, R3, et R4, indépendamment les uns des autres, sont choisis parmi : H, O, S, NH2, NO2, NH, OH, COOH, SH et un groupement de 1 à 10 atomes de carbones, linéaire, ramifié, cyclique ou aromatique, R9 et R10 indépendamment l'un de l'autre sont choisis parmi : - H, O, S, NH2, NO2, NH, OH, COOH, SH, - un groupement de 1 à 10 atomes de carbones, linéaire, ramifié, cyclique ou aromatique ou, - u n groupe H N X 2 P avec p représentant un nombre entier variant de 0 à 12 et X étant choisi parmi CH2, O, NH, S, et 15 les liaisons indépendamment les unes des autres, représentent des liaisons covalentes simples ou doubles selon la nature des groupements R1, R2, R3, R4, R5, R6, R7, R9 et R10. Au sens de la présente invention, on entend par dérivé de quinone, un dérivé de l'une au moins des quinones choisies notamment dans le groupe comprenant les quinones 20 suivantes : 1,4-benzoquinone, 1,4-naphtoquinone et anthraquinone, notamment ceux choisis dans le groupe comprenant l'acide benzoquinonetétracarboxylique, le bicarbonate de tétrahydroxy-1,4-benzoquinone, le bisoxalate de tétrahydroxy-1,4-benzoquinone, le coenzyme Q10, le dianhydride 1,4-benzoquinonetétracarboxylique, la duroquinone, l'idarubicine, la juglone, la plastoquinone, la 5-amino-1,4-naphtoquinone, la tétrahydroxy-1,4- 25 benzoquinone et la vitamine K. Au sens de la présente invention, on entend par « un atome de carbone ou un hétéroatome d'une chaîne carbonée », soit un atome de carbone, soit un atome d'azote, de soufre ou d'oxygène appartenant à une chaîne carbonée comprenant entre 1 et 12 atomes de carbone. 30 Au sens de la présente invention, on entend par groupement de 1 à 10 atomes de carbones, linéaire, ramifié, aromatique ou cyclique une chaîne choisie dans le groupe comprenant notamment le méthyle, l'éthyle, le propyle, l'isopropyle, le n-butyle, l'isobutyle, le t-butyle, le n-pentyle, le n-héxyle, l'heptyle, l'octyle, le nonyle, et le décyle. Ces chaînes carbonées peuvent contenir une ou plusieurs doubles liaisons et on obtient alors des chaînes 1010 alcényles droites ou ramifiées. Elles peuvent également être cycliques et comprendre dans la chaîne un cycle choisi parmi les groupes cyclopropyle, cyclobutyles, cyclopentyle et cyclohexyle, ou aromatique et comprendre dans la chaîne un groupe aromatique, comme par exemple un group aryle, en particulier un groupe phényle. Dans un mode de réalisation avantageux de l'invention, le composé de formule (II) correspond aux composés de formules (IIIal) à (IIIa3) suivantes : 15 dans lesquelles p est un nombre entier variant de 0 à 12, notamment égal à 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11 ou 12. 20 Dans un autre mode de réalisation avantageux de l'invention, le composé de formule (II) correspond aux composés de formules (IIIbl) à (IIIb3) suivantes: 10 dans lesquelles p est un nombre entier variant de 0 à 12, notamment égal à 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11 ou 12. Dans un mode de réalisation particulièrement avantageux de l'invention, le transducteur correspond à un des composés de formule (IVal) à (IVa3) suivantes : H2N,- 15 O OH (IVal) ou JugThioNH2, ou 3-mercaptoéthylamine-5-hydroxy-1,4-naphtoquinone H2N,- OH (IVa3) Dans un autre mode de réalisation particulièrement avantageux de l'invention, le 5 transducteur correspond à un des composés de formule (IVbl) à (IVb3) suivantes : O OH (IVbl) ou JugNH2, ou 3-éthylamino-5-hydroxy-1,4-naphtoquinone 10 Les composés de formule (I), (II), (IIIal) à (IIIa3), (IIIb1) à (IIIb3), (IVal) à (IVa3) et (IVbl) à (IVb3) peuvent être synthétisés par des méthodes connues de l'homme du métier à partir de composés décrits dans la littérature ou disponibles dans le commerce. Conformément à l'invention, la concentration de transducteur en surface du support, ou du nanotube de carbone, peut être d'environ 10-12 à 10.8 mol.cm 2, notamment environ 10-12 à 10-10 mol.cm2, notamment d'environ 10-10 à 10-' mol.cm2. Les transducteurs de l'invention permettent de transférer les électrons à des potentiels extrêmement bas, d'environ 0,2 à -1,6 V / ECS (électrode au calomel saturé), notamment d'environ 0 à -1,5 V / ECS, notamment d'environ -0,2 à -1,2 V / ECS, c'est-à-dire des potentiels auxquels les molécules biologiques ne sont ni oxydées, ni réduites. Cela permet d'éliminer tout risque d'interférence comme par exemple les risques d'oxydation ou de réduction parasites de molécules à doser. Conformément à l'invention, le récepteur est un composé susceptible d'entrer dans un processus d'association sélectif avec un ligand, ledit ligand étant choisi parmi les peptides, les protéines (protéines de structure qui permettent à la cellule de maintenir son organisation dans l'espace, protéines de reconnaissance comme par exemple des antigènes (par exemple l'ovalbumine dans le couple ovalbumine/anti-ovalbumine, ou le couple HPV/anti-HPV détaillé plus loin) ou les protéines à activité catalytique comme les enzymes, les lipides, les oligosaccharides, les polysaccharides, les oligonucléotides naturels ou artificiels, les oligonucléotides aptamères, les polynucléotides naturels ou artificiels, les acides ribonucléiques, des petites molécules immunogènes comme par exemple des allergènes d'origine protéique ou de bas poids moléculaire tels que les haptènes (isocyanates ou anhydrides), et les petites molécules organiques comme par exemple des produits pharmacologiquement actifs, par exemple des drogues comme les amphétamines, des produits phytosanitaires, comme les herbicides (atrazine etc....) ou des polluants. Le récepteur fixé sur le support est spécifique du ligand à détecter, avec lequel il forme avantageusement un couple anti-ligand/ligand. Conformément à l'invention, la concentration de récepteur en surface du support, ou du nanotube de carbone, est d'environ 10-13 à 10-9 mol.cm2, notamment environ 10-13 à 10-11 30 mol.cm 2, notamment environ 10-11 à 10-9 mol.cm 2. Les dispositifs selon la présente invention permettent de détecter un ligand dans tout type d'échantillon. Dans un mode de réalisation particulier de l'invention, l'échantillon est un échantillon biologique. Avantageusement, cet échantillon peut avoir été prélevé sur un patient à des fins de diagnostic et peut-être dans ce cas par exemple, de l'urine, du sang, du sérum, du plasma, des extraits cellulaires ou un fluide corporel. L'échantillon peut être également de l'eau dans laquelle ont été dilués les échantillons biologiques. Dans un mode de réalisation avantageux de l'invention, le dispositif de détection comprend un nanotube de carbone fonctionnalisé avec au moins une fonction amine primaire. Dans un autre mode de réalisation avantageux de l'invention, le nanotube de carbone fonctionnalisé a un diamètre d'environ 5 à 50 nm, notamment d'environ 5 à 20 nm, notamment d'environ 20 à 50 nm, et une longueur 50 à 500 nm. Conformément à l'invention, la concentration de nanotube de carbone fonctionnalisé à la surface du support est d'environ 10-10 à 10-14 mol.cm 2, notamment d'environ 10-10 à 10-12 10 mol.cm 2, notamment d'environ 10-12 à 10-14 mol.cm 2. Conformément à l'invention, le nanotube de carbone fonctionnalisé peut être un nanotube simple- ou multi- paroi, contenant ou pas un catalyseur, de diamètre 5 à 10 nm et de longueur 50 à 200 nm. Ainsi le nanotube de carbone fonctionnalisé peut être un nanotube simple paroi, 15 contenant un catalyseur, de diamètre 5 à 10 nm et de longueur 50 à 200 nm ou un nanotube simple paroi, ne contenant pas de catalyseur, de diamètre 5 à 10 nm et de longueur 50 à 200 nm ou un nanotube multi paroi, contenant un catalyseur, de diamètre 5 à 10 nm et de longueur 50 à 200 nm ou un nanotube multi paroi, ne contenant pas de catalyseur, de diamètre 5 à 10 nm et de longueur 50 à 200 nm. 20 Conformément à l'invention, tout support conducteur électrique connu de l'homme du métier peut être utilisé, en particulier ceux en matériau conducteur ou semi-conducteur ayant une résistivité comprise entre 106 et 10-10 Ohm.m, notamment 104 et 10-8 Ohm.m, notamment 103 et 10-8 Ohm.m. Dans un mode de réalisation avantageux de l'invention, le support est 25 macroscopiquement plan et macroscopiquement lissé, poreux ou rugueux. Il peut être rigide ou souple et être constitué d'un seul matériau (support massif) ou de plusieurs matériaux (support multi matériaux). Conformément à l'invention, ce support peut être obtenu par toute technique connue de l'homme du métier, notamment par impression sérigraphiée, ou par toute méthode de 30 dépôt d'un conducteur électrique sur une surface quelconque. Le support peut être choisi parmi les métaux, le carbone vitreux, les encres conductrices déposées sur support et les métaux déposés sur support. On peut notamment citer à titre d'exemples de supports, les électrodes métalliques massives et les électrodes obtenues par dépôt d'un conducteur électrique sur un support isolant, notamment les électrodes obtenues par procédés d'imprimerie, notamment de lithographie, de sérigraphie ou de jet d'encre. L'invention a également pour objet, un procédé de préparation d'un dispositif de détection comprenant un support, un transducteur, un récepteur, et éventuellement un nanotube de carbone fonctionnalisé, et caractérisé en ce que ledit procédé comprend : - au moins une étape de greffage du transducteur sur le support ou le nanotube de carbone fonctionnalisé, ledit greffage étant la création d'une liaison covalente entre une amine primaire fonctionnalisant ledit transducteur, et respectivement ledit support ou ledit nanotube de carbone fonctionnalisé, par réaction d'oxydation électrochimique dans un solvant, - au moins une étape de greffage du récepteur sur le support ou le nanotube de carbone fonctionnalisé, ledit greffage étant la création d'une liaison covalente entre une amine primaire fonctionnalisant ledit récepteur, et respectivement ledit support ou ledit nanotube de carbone fonctionnalisé, par réaction d'oxydation électrochimique dans un solvant, et - éventuellement une étape de greffage du nanotube de carbone fonctionnalisé sur le support, ledit greffage étant la création d'une liaison covalente entre une amine primaire fonctionnalisant ledit nanotube de carbone fonctionnalisé, et ledit support, par réaction d'oxydation électrochimique dans un solvant. Lorsque le dispositif selon l'invention ne comprend pas de tube de carbone, alors le procédé de préparation d'un tel dispositif comprenant un support, un transducteur et un 20 récepteur, comprend : - au moins une étape de greffage du transducteur sur le support, ledit greffage étant la création d'une liaison covalente entre une amine primaire fonctionnalisant ledit transducteur, et ledit support, par réaction d'oxydation électrochimique dans un solvant, - au moins une étape de greffage du récepteur sur le support, ledit greffage étant la 25 création d'une liaison covalente entre une amine primaire fonctionnalisant ledit récepteur, et ledit support, par réaction d'oxydation électrochimique dans un solvant. Lorsque le transducteur est greffé sur le nanotube, alors le procédé de préparation d'un dispositif de détection selon l'invention comprenant un support, un transducteur, un récepteur, et un nanotube de carbone fonctionnalisé, comprend : 30 - au moins une étape de greffage du transducteur sur le nanotube de carbone fonctionnalisé, ledit greffage étant la création d'une liaison covalente entre une amine primaire fonctionnalisant ledit transducteur, et ledit nanotube de carbone fonctionnalisé, par réaction d'oxydation électrochimique dans un solvant, - au moins une étape de greffage du récepteur sur le support, ledit greffage étant la création d'une liaison covalente entre une amine primaire fonctionnalisant ledit récepteur, et ledit support, par réaction d'oxydation électrochimique dans un solvant, et - au moins une étape de greffage du nanotube de carbone fonctionnalise sur le support, ledit greffage étant la création d'une liaison covalente entre une amine primaire fonctionnalisant ledit nanotube de carbone fonctionnalisé, et ledit support, par réaction d'oxydation électrochimique dans un solvant. Lorsque le récepteur est greffé sur le nanotube, alors le procédé dé préparation d'un dispositif de détection comprenant un support, un transducteur, un récepteur, et un nanotube 10 de carbone fonctionnalisé comprend : - au moins une étape de greffage du transducteur sur le support, ledit greffage étant la création d'une liaison covalente entre une amine primaire fonctionnalisant ledit transducteur, et ledit support, par réaction d'oxydation électrochimique dans un solvant, - au moins une étape de greffage du récepteur sur le nanotube de carbone 15 fonctionnalisé, ledit greffage étant la création d'une liaison covalente entre une amine primaire fonctionnalisant ledit récepteur, et ledit nanotube de carbone fonctionnalisé, par réaction d'oxydation électrochimique dans un solvant, et - au moins une étape de greffage du nanotube de carbone fonctionnalisé sur le support, ledit greffage étant la création d'une liaison covalente entre une amine primaire 20 fonctionnalisant ledit nanotube de carbone fonctionnalisé, et ledit support, par réaction d'oxydation électrochimique dans un solvant. Lorsque le récepteur et le transducteur sont greffés sur un nanotube, alors le procédé de préparation d'un dispositif comprenant un support, un transducteur, un récepteur, et un nanotube de carbone fonctionnalisé, comprend : 25 - au moins une étape de greffage du transducteur sur le nanotube de carbone fonctionnalisé, ledit greffage étant la création d'une liaison covalente entre une amine primaire fonctionnalisant ledit transducteur, et ledit nanotube de carbone fonctionnalisé, par réaction d'oxydation électrochimique dans un solvant, - au moins une étape de greffage du récepteur sur le nanotube de carbone 30 fonctionnalisé, ledit greffage étant la création d'une liaison covalente entre une amine primaire fonctionnalisant ledit récepteur, et ledit nanotube de carbone fonctionnalisé, par réaction d'oxydation électrochimique dans un solvant, et - au moins une étape de greffage du nanotube de carbone fonctionnalisé sur le support, ledit greffage étant la création d'une liaison covalente entre une amine primaire fonctionnalisant ledit nanotube de carbone fonctionnalisé, et ledit support, par réaction d'oxydation électrochimique dans un solvant. Conformément à l'invention, le solvant utilisé dans le procédé mentionné précédemment peut être un solvant aqueux acide ou neutre, notamment une solution aqueuse acide tamponnée ou non, en particulier une solution aqueuse saline neutre tamponnée ou non. A titre d'exemple de solvant, on peut citer notamment le PBS (tampon phosphate salin - phosphate buffer saline), le tampon TRIS (trihydroxyméthylaminométhane), ou le tampon HEPES (acide 4-(2-hydroxyéthyl)-l-pipérazine éthane sulfonique). Conformément à l'invention, le solvant utilisé dans le procédé mentionné précédemment peut être un solvant organique choisi dans le groupe comprenant l'acétonitrile, le diméthylformamide (DMF), le tétrahydrofurane (THF), le dimétylsulfoxyde (DMSO) et le chloroforme. Dans un mode de réalisation particulier de l'invention, le solvant peut être un mélange d'au moins un solvant aqueux et d'au moins un solvant organique. Le solvant aqueux ou organique peut être additionné d'ions électrolytiques choisis dans le groupe comprenant K+, Li+, C1O4-, NBu4+, BF4-, Na+, Cl-, 5042-, HSO4-, H2PO4-, HPO42-, PO43-, Mg2+ Les réactions de greffage sont avantageusement réalisées à une température comprise entre environ 5°C et environ 40°C, notamment entre environ 10°C et environ 35°C, en 20 particulier entre environ 15°C et environ 25°C. Dans un mode de réalisation avantageux du procédé de l'invention, la concentration de transducteur par rapport à la surface du support, est d'environ 10.8 à 10-12 mol.cm2, notamment d'environ l0_8 à 10-10 mol.cm2, notamment d'environ 10-10 à 10-12 mol.cm2, lors de l'étape de greffage du transducteur respectivement sur le support, ou sur le nanotube de 25 carbone fonctionnalisé. Dans un autre mode de réalisation avantageux du procédé de l'invention la concentration de récepteur par rapport à la surface de support, ou de nanotube de carbone fonctionnalisé, est d'environ 10-13 à 10-9 mol.cm2, notamment d'environ 10-13 à 10-11 mol.cm 2, notamment d'environ 10-11 à 10-9 mol.cm 2, lors de l'étape de greffage du récepteur 30 respectivement sur le support, ou sur le nanotube de carbone fonctionnalisé. Dans un mode de réalisation avantageux du procédé de l'invention, la concentration de nanotube de carbone fonctionnalisé par rapport à la surface de support est d'environ 10-11 à 10-14 mol.cm 2, notamment d'environ 10-11 à 10-12 mol.cm 2, notamment d'environ 10-12 à 10-14 mol.cm 2, lors de l'étape de greffage du nanotube de carbone fonctionnalisé sur le support. Dans un mode de réalisation avantageux de l'invention, le potentiel d'oxydation électrochimique appliqué au support, ou au nanotube de carbone fonctionnalisé, lors de l'étape de greffage du transducteur respectivement sur ledit support, ou sur ledit nanotube de carbone fonctionnalisé, est d'environ 0 à 1,5 V/ECS, notamment d'environ 0 à 1 V/ECS, notamment d'environ 0,3 à 0,7 V/ECS. Dans un autre mode de réalisation avantageux de l'invention, le potentiel d'oxydation électrochimique appliqué au support, ou au nanotube de carbone fonctionnalisé, lors de l'étape de greffage du récepteur respectivement sur ledit support, ou sur ledit nanotube de carbone fonctionnalisé, est d'environ 0 à 1,5 V/ECS, notamment d'environ 0 à 1 V/ECS, notamment d'environ 0,3 à 0,7 V/ECS. Dans un autre mode de réalisation avantageux de l'invention, le potentiel d'oxydation électrochimique appliqué au support, lors de l'étape de greffage du nanotube de carbone fonctionnalisé sur ledit support, est d'environ 0 à 1,5 V/ECS, notamment d'environ 0 à 1 V/ECS, notamment d'environ 0,3 à 0,7 V/ECS. La durée d'application du potentiel d'oxydation électrochimique appliqué au support, ou au nanotube de carbone fonctionnalisé, lors des différentes étapes de greffage, relève des connaissances générales de l'homme du métier qui saura l'adapter en fonction des potentiels utilisés. A titre d'exemple la durée d'application peut être d'environ 0,1 à 3600 secondes, notamment d'environ 0,1 à 600 secondes, notamment d'environ 5 à 60 secondes. Dans un mode particulièrement avantageux de l'invention, le procédé de préparation d'un dispositif de détection comprenant un support, un transducteur, et un récepteur, est caractérisé en ce que le support est une électrode sérigraphiée, et en ce que les étapes de greffage du récepteur et du transducteur sur ladite électrode sérigraphiée sont réalisés - durant environ 10 secondes à environ 120 secondes, notamment environ 30 secondes à environ 90 secondes, particulièrement environ 60 secondes, - à un potentiel d'environ 0,1 V à environ 2 V, notamment environ 0,5 V à environ 1 V, particulièrement environ 0,7 V, et - à une température d'environ 10°C à environ 35°C, notamment d'environ 15°C à environ 25°C, particulièrement environ 20°C. La présente invention a également pour objet un dispositif de détection susceptible d'être obtenu selon la mise en oeuvre d'un procédé selon l'invention. La présente invention a également pour objet l'utilisation d'un dispositif de détection tel que décrit précédemment pour la mise en oeuvre d'une méthode de détection d'un ligand du récepteur dans un milieu de détection, par observation d'une modification significative de l'électro-activité du transducteur par une méthode de mesure électrochimique. Au sens de la présente invention, le milieu de détection peut être tout type de solution, par exemple de l'urine, du sang, du sérum, du plasma, des extraits cellulaires, un fluide corporel ou de l'eau dans laquelle ont été dilués les échantillons biologiques. Au sens de la présente invention, une modification significative de l'électro-activité du transducteur correspond à un rapport signal sur bruit de 3 ou plus. Dans un mode de réalisation avantageux de l'invention, la méthode de détection d'un ligand comprend : - une étape de mise en contact dudit ligand avec un dispositif de détection tel que décrit précédemment dans un milieu de détection, - une étape d'application d'un potentiel électrique au dit dispositif de détection et - une étape de détection, par une méthode de mesure électrochimique de la présence dudit ligand dans le milieu de détection, par observation d'une modification de l'électroactivité du transducteur compris dans le dispositif de détection. Dans un mode de réalisation avantageux de l'invention, le milieu de détection comprend une solution aqueuse, notamment une solution aqueuse neutre tamponnée ou non. La mesure électrochimique peut être réalisée par toute technique connue de l'homme du métier, notamment par une méthode choisie dans le groupe comprenant la chronoampérométrie, la voltamétrie cyclique, la voltamétrie à vagues carrées et toute autre voltamétrie pulsée. Dans un mode de réalisation avantageux de l'invention, la détection est effectuée par le transducteur contenu dans le dispositif de détection, sans ajout de réactif dans le milieu de détection et sans modification du ligand, On parle alors de transduction directe. La méthode de détection selon l'invention permet de détecter un ligand choisi parmi : - un peptide, - une protéine de structure - une protéine de reconnaissance (Antigène/Anticorps) - une protéine à activité catalytique (enzyme) - un oligonucléotide, - un polynucléotide, - un oligonucléotide aptamère, - un acide ribonucléique, - un oligosaccharide, - un polysaccharide, - un composé pharmacologiquement actif, - un composé phytosanitaire, - une petite molécule immunogène. Elle permet de détecter un ligand présent à une concentration d'environ 300 fmol.L-' à environ 1 mmo 1. L-' , notamment d'environ 1 pmo 1. L-' à environ 1 µmo 1. L-' , notamment d' environ 10 pmo 1. L-' à environ 100 nmo 1. L-' Dans un mode de réalisation avantageux de l'invention, le potentiel appliqué au support lors de la détection d'un ligand est d'environ 0,2 à -1,6 V / ECS, notamment 10 d'environ 0 à -1,5 V / ECS, notamment d'environ -0,2 à -1,2 V / ECS. Les exemples 1 à 7 et les figures 1 à 17 qui suivent illustrent l'invention. La figure 1 illustre le courant enregistré lors de l'application d'un potentiel de +0,7 V / ECS à l'électrode WORK pendant 30 s conformément à l'exemple 2. La figure 2 représente le courant enregistré lorsque l'électrode WORK est balayée par 15 un potentiel de 0 à +0,7 V / ECS conformément à l'exemple 2. La figure 3 est un voltammogramme cyclique d'une électrode modifiée par électrogreffage par JugThioNH2 (courbe a), et d'une électrode n'ayant pas subi d'électro-greffage (courbe b) conformément à l'exemple 2. La figure 4 représente la caractérisation électrochimique d'une électrode modifiée par 20 une monocouche de JugThioNH2, en milieu PBS selon l'exemple 2. (a) Tracés des courants de pics anodique et cathodique en fonction de la vitesse de balayage ; (b) Tracés des courants de pics anodique et cathodique en fonction de la racine carrée de la vitesse de balayage. La figure 5 est le spectre PM-IRRAS effectué sur une électrode après oxydation dans une solution de JugThioNH2. (b) Spectre IRTF classique réalisé par transmission sur une 25 pastille de JugThioNH2 dans KBr. La figure 6 représente les voltammogrammes cycliques d'une électrode modifiée par électro-greffage de HPV-16-L1-311-325, pour différentes concentrations de cet oligopeptide en solution. (a) 10.10-6 M ; (b) 1.10-6 M ; (c) 5.10-' M ; (d) 2,5.10-' M ; (e) pas d'oligopeptide en solution conformément à l'exemple 3. 30 La figure 7 représente les voltammogrammes cycliques : (a) d'une électrode modifiée par électro-greffage de HPV-16-L1-311-325 à une concentration 2,5.10-' M puis incubée dans une solution de PBS contenant l'anticorps anti-HPV-16 ; (b) même électrode, avant incubation avec l'anticorps ; (c) même électrode, avant électro-greffage de l'oligopeptide conformément à l'exemple 4. La figure 8A représente les voltammogrammes obtenus par voltamétrie à vagues carrées (SWV) d'une électrode modifiée par JUGNH2 5.10-4M (trait plein) ; sur laquelle est ensuite greffée la sonde HPV-16-L1 5.10-8M à +0,5 V pendant 50s (trait discontinu) ; puis incubée dans du PBS pendant 4h à 37°C (pointillés) conformément à l'exemple 4. La figure 8B représente les voltammogrammes obtenus par voltamétrie à vagues carrées SWV d'une électrode modifiée par JUGNH2 5.10-4M (trait plein) ; sur laquelle est ensuite greffée la sonde HPV-16-L1 5.10-8M à +0,5 V pendant 50s (trait discontinu) ; puis incubée dans une solution de PBS + antiHPV à 5,4.10-10M pendant 4h à 37°C (pointillés) conformément à l'exemple 4. La figure 9 illustre la sensibilité du système. 9A représente la courbe de calibration en échelle linéaire, et 7B représente la courbe de calibration en échelle logarithmique, mesurée dans les conditions de l'exemple 4. La figure 10 représente les voltammogrammes cycliques entre 0 V et +0,6 V/ECS d'une électrode plongée dans une solution de PBS contenant 5.10-6 M d'ODN GEM-C6-NH2 conformément à l'exemple 5. La figure 11 représente les voltammogrammes cycliques entre -0,2 V et +0,4 V/ECS d'une électrode plongée dans une solution de PBS contenant le couple ferri-ferro, soit K4Fe(CN)6 10-3M et K3Fe(CN)6 10-3M conformément à l'exemple 5. La courbe (a) correspond à une électrode modifiée par électro-greffage de l'ODN GEM-C6-NH2. La courbe (b) correspond à une électrode ayant seulement été trempée dans la solution de GEM-C6-NH2, sans électro-greffage. La figure 12 représente les voltammogrammes obtenus par voltamétrie à vagues carrées (SWV) d'une électrode (a) modifiée par JugThioNH2, et (b) modifiée à la fois par JugThioNH2 et par GEM-C6-NH2 conformément à l'exemple 6. La figure 13 représente les voltammogrammes obtenus par voltamétrie à vagues carrées (SWV) d'une électrode modifiée par JUG-NHz et par GEM-C6-NH2. (GEM) : avant hybridation ; (HIV) : après hybridation avec le brin cible complémentaire ; (MHIV) : après ajout d'un brin cible non-complémentaire conformément à l'exemple 6. La figure 14 représente le voltammogramme cyclique d'une électrode initialement nue, puis sur laquelle sont greffés les CNT-JUG-NHz conformément à l'exemple 7. Vitesse de 30 balayage = 50 mV.s-1. Milieu PBS, pH 7,2. La figure 15 représente les voltammogrammes cycliques d'une électrode modifiée par SWCNT-JUG-NHz avant (trait plein) et après (trait pointillé) greffage par la sonde oligonucléotidique GEM conformément à l'exemple 7. La figure 16 représente les voltammogrammes obtenus par voltamétrie à vagues carrées (SWV) d'une électrode modifiée par SWCNT-JUG-NH2 et par la sonde GEM conformément à l'exemple 7. Trait continu : avant hybridation ; Trait pointillé : après hybridation avec le brin cible complémentaire HIV. La figure 17 représente les voltammogrammes obtenus par voltamétrie à vagues carrées (SWV) d'une électrode modifiée par SWCNT-JUG-NH2 et par la sonde GEM conformément à l'exemple 7. Trait continu : avant hybridation ; Trait pointillé : après incubation avec le brin non-complémentaire RAND. EXEMPLE 1: SYNTHESE DE LA 3-[(2-AMINOETHYL)SULFANYL)]-5-HYDROXY-1,4-NAPHTOQUINONE HS 45 'C Et.OH OH 0 OH 0 NH2 , .NH2 Cystéamine 5-amino-1,4- (2-aminoethanethiol naphtoquinone3-[(2-aminoethyl)sulfanyl)]-5- hydroxy- 1,4-naphtoquinone 450 mg (2,6. 10-3 moles) de 5-hydroxy-1,4-naptoquinone (Juglone) sont dissous dans 25 mL d'éthanol. La solution est placée sous ultrasons pendant 10 minutes puis chauffée sous agitation jusqu'à 45°C. Une solution contenant 174 mg (2,26 .10-3 moles) de cystéamine (2-aminoethanethiol) dans 10 mL d'éthanol est alors ajoutée. Après 10 minutes de réaction, le chauffage et l'agitation sont arrêtés. La solution est ensuite placée à -18°C pendant 48 heures, puis lavée par de l'éthanol froid (-18°C) sous filtration sous vide, et le solide récupéré. On obtient 250 mg environ de produit sous forme d'un solide de couleur orangée. Le produit est ensuite purifié par recristallisation dans l'éthanol, puis analysé par RMN. On obtient en 'H RMN (CDC13)S ppm : 14,54 (1 H) ; 7,59 - 7,40 - 7,16 (3Har) ; 6,60 (lHar) ; 4,31 (2H-CH2) ; 3,00 (2H-CH2) ; amine non visible en RMN mais visible en IRTF (Figure 5).25 EXEMPLE 2 : ELECTRO-GREFFAGE DE LA 3-[(2-AMINOETHYL)SULFANYL)]-5-HYDROXY-1,4-NAPHTOQUINONE (JugThioNH2) 2.1. Greffage 2.1.1. Mode opératoire La 3-[(2-aminoethyl)sulfanyl)]-5-hydroxy-1,4-naphtoquinone (JugThioNH2) est dissoute à la concentration de 5.10-4 M dans 20 mL d'une solution d'acétonitrile (ACN) ou de diméthylformamide (DMF) + LiC1O4 5.10-2 M. La solution est introduite dans une cellule électrochimique classique à 3 électrodes (référence (REF), auxiliaire (AUX), de travail (WORK)). La REF est une électrode à calomel saturé (ECS). Un potentiel de +0,7 V / ECS ou un balayage de potentiel entre 0 et 0,7 V, à 50 mV.s-' est imposé à la WORK pendant 30 s, et le courant est enregistré. A l'issue de l'un ou l'autre de ces traitements, l'électrode WORK est rincée à l'acétonitrile ou au diméthylformamide (DMF), puis séchée par un courant d'argon. 2.1.2. Résultats Ils sont donnés dans les figures 1 et 2. La figure 1 correspond au courant mesuré pendant l'électrooxydation potentiostatique à +0,7 V, dans les conditions décrites au point 2.1.2, et présente l'allure caractéristique de ce type de procédure. La figure 2 correspond quant à l'oxydation par 6 balayages cycliques de potentiels, dans les conditions décrites au point 2.1.2. On note la présence d'un courant d'oxydation décroissant régulièrement, témoignage du dépôt progressif de la JugThioNH2 sur la surface. 2.2. Mise en évidence du greffage 2.2.1. Caractérisations électrochimiques 2.2.1.1. Mode opératoire L'électrode WORK (figure 3, courbe a) modifiée par électrooxydation, comme indiqué dans l'exemple 1.1.2 est introduite dans une cellule électrochimique classique à 3 électrodes contenant une solution de tampon phosphate (PBS, Phosphate Buffer Saline) de pH 7,4, puis un balayage de potentiel aller-retour est imposé entre 0 V et -0,65 V/ECS à 50 mV.s-l. Le courant est enregistré et représenté sur la figure 3, courbe (a). Comme référence, la courbe (b) correspond à une autre électrode WORK (notée b) auparavant trempée dans une solution de JugThioNH2 mais n'ayant été soumise à aucun potentiel d'oxydation (tout autre paramètre étant identique par ailleurs). 2.2.1.2. Résultats Ils sont donnés dans les figures 3 à 5. L'électrode non soumise à un potentiel ne donne qu'un signal capacitif et aucun signal faradique (figure 3, courbe b). En revanche, les résultats montrent l'électroactivité bien définie de l'électrode préparée selon l'invention (figure 3, courbe a) dans la zone d'électroactivité de la JugThioNH2.Ceci montre le greffage de JugThioNH2 sur la surface de l'électrode. La densité surfacique de JugThioNH2 électroactive a été mesurée par intégration des courants faradiques, et est égale à 1,9+0,3 X 10-10 mol cm-2. Cette valeur est à comparer avec celle obtenue dans le cas de la formation de monocouches auto-assemblées de juglone modifée par un groupement alkylthiol (G. March et al, JACS 2008, 130,15752), pour lesquelles la densité surfacique a été mesurée à 2,2+0,3 X 10-10 mol cm-2. La couche électrodéposée de JugThioNH2 est donc assimilable à une monocouche. Une dernière caractérisation électrochimique permet de confirmer que la surface est modifiée par une monocouche de JugThioNH2. En effet, les potentiels des pics (anodique, à -0,5 V/ECS et cathodique à -0,55 V/ECS) sont indépendants de la vitesse de balayage. D'autre part, leurs intensités varient linéairement avec la vitesse de balayage (cf. Figure 4 a) et non pas linéairement en fonction de la racine carrée de la vitesse de balayage (cf. Figure 4 b), ce qui est un comportement classique d'une électrode modifiée par une monocouche. Le courant est limité par le transfert électronique entre la monocouche électroactive et le substrat d'électrode, et non par la diffusion d'une espèce à l'intérieur de la couche organique. 2.2.2. Caractérisation spectroscopique 2.2.2.1. Mode opératoire Une analyse de surface par spectroscopie infrarouge à modulation de polarisation (PM-IRRAS) a été utilisée afin de démontrer la présence de JugThioNH2 sous forme de monocouche à la surface de l'électrode (Figure 5, courbe a) En référence, la courbe b montre le spectre infrarouge de la molécule JugThioNH2, avant greffage. 2.2.2.2. Résultats Ils sont donnés dans la figure 5. La similarité entre les 2 spectres (a) et (b) démontre l'intégrité de la JugThioNH2 greffée en surface. Les 2 différences marquées concernent la chaîne alkyle, particulièrement visible entre 3000 et 2800 cm-1 sur le spectre PM-IRRAS (ceci probablement du fait de l'orientation de cette chaîne perpendiculairement à la surface d'électrode) et un pic centré à 1100 cm-', attribuable à la présence d'anions perchlorate C104- utilisés comme électrolyte lors de l'électro-oxydation. EXEMPLE 3 : ELECTRO-GREFFAGE D'UN OLIGOPEPTIDE. APPLICATION A 5 LA PROTEINE HPV-16-L1. La protéine L1 est une protéine majeure du virus HPV de type 16. Il est maintenant connu que l'infection par le HPV est un facteur de risque au développement de cancer du col de l'utérus, notamment par les types 16 et 18. L'infection par le HPV-16 engendre la production d'anticorps spécifiques anti-HPV-16. La protéine L1 faisant partie de la capside, 10 enveloppe du génome du virus, les anti-HPV-16 présentent une affinité spécifique pour cette protéine. Cette spécificité est conservée pour certaines séquences courtes de cette protéine, et notamment pour une séquences de 15 acides aminés nommées 311-325, dont la séquence est présentée ci-dessous (N-terminal à gauche): 15 HPV-16-L1-311-325: Asn-Leu-Ala-Ser-Ser-Asn-Tyr-Phe-Pro-Thr-Pro-Ser-Gly-Ser-Met L'amine terminale de l'asparagine (Asn) peut ainsi être utilisée pour l'électro-greffage sur une électrode. Aucun autre acide aminé de cette séquence ne porte d'amine aliphatique disponible. 20 3.1. Greffage 3.1.1. Mode opératoire La séquence HPV-16-L1-311-325 est dissoute à la concentration de 5.10-' M dans 20 mL d'une solution aqueuse neutre de PBS. La solution est introduite dans une cellule 25 électrochimique classique à 3 électrodes (REF, AUX, WORK). La REF est une électrode à calomel saturé (ECS). Un potentiel de +0,5 V / ECS est imposé à la WORK pendant 600 s. A l'issue de ce traitement, l'électrode WORK est rincée à l'eau puis séchée sous un courant d'argon. 30 3.2 Mise en évidence du greffage 3.2.1. Mode opératoire Différentes concentrations de l'oligopeptide ont été utilisées, de 0,25.10-6 M à 10.10-6 M. L'électrode WORK modifiée est introduite dans une cellule électrochimique classique à 3 électrodes contenant une solution (appelée ferri/ferro) de K4Fe(CN)6 10-3M et K3Fe(CN)6 10- 3M dans le PBS, puis lui est imposé un balayage de potentiel entre -0,4 V et +0,5 V/ECS à 50 mV.s-1 et le courant enregistré. Une électrode WORK non modifiée est également utilisée dans les mêmes conditions. 3.2.2. Résultats Ils sont donnés dans la figure 6. Ils montrent un blocage électrochimique partiel de l'électrode traitée par la protéine L1, dépendant de la concentration en protéine dans la solution d'électro-greffage, tous paramètres égaux par ailleurs. Ceci démontre le greffage de la protéine L1 à la surface de l'électrode (figure 6 courbes a à d). L'électrode non modifiée (figure 6, courbe e) concserve, elle, l'électroactivité typique de la sonde ferri/ferro mise en solution. EXEMPLE 4 : CO-ELECTRO-GREFFAGE DE L'OLIGOPEPTIDE HPV-16-L1 ET DU MARQUEUR REDOX JUG-THIO-NH2. APPLICATION A LA DETECTION 15 D'UN ANTICORPS ANTI-HPV-16. 4.1. Détection indirecte de l'anticorps anti-HPV-16 4.1.1. Mode opératoire L'anticorps anti-HPV-16 utilisé est un anticorps monoclonal de souris (AbD Serotec, 20 Morphosys, Allemagne). L'électrode préalablement traitée par électro-greffage de l'oligopeptide HPV-16-L1-311-325 (comme indiqué dans l'Exemple 3) a été incubée 1 h à 37°C dans 5 mL de PBS dans lequel a été ajouté 0,1 µg d'anticorps anti-HPV-16. A l'issue de ce traitement, l'électrode est brièvement rincée au PBS à 37°C, puis plongée dans une solution de K4Fe(CN)6 10-3M et 25 K3Fe(CN)6 10-3M dans le PBS. On impose un balayage de potentiel entre -0,4 V et +0,5 V/ECS à 50 mV.s-1 et le courant enregistré. 4.1.2. Résultats Ils sont donnés dans la figure 7. La courbe (a) présente la signature rédox du couple ferri-ferro après incubation avec 30 l'anticorps anti-HPV-16, comme exposé ci-dessus. Deux témoins sont présentés pour comparaison : la même électrode portant l'oligopeptide avant incubation avec l'anti-HPV-16 (courbe b), et la même électrode avant modification par l'oligopeptide HPV-16-L1 (courbe c). La diminution des courants rédox après incubation avec l'anticorps anti-HPV-16 démontre la complexation de l'anticorps sur la surface (par blocage stérique partiel), 4.2. Détection directe de l'anticorps anti-HPV-16 4.2.1. Mode opératoire Le co-électro-greffage de la sonde HPV-16-L1 et du transducteur JUG est réalisé en deux temps. Premièrement, l'électrode WORK est modifiée par JugThioNH2, comme décrit dans l'exemple 2. Deuxièmement, cette même électrode est à nouveau modifiée par HPV-16-L 1, comme décrit dans l'exemple 3. Cette fois-ci, aucun couple rédox (ferri/ferro) n'est rajouté en solution, puisque c'est le transducteur immobilisé JUG-Thio-NHz qui joue ce rôle. La voltamétrie à vague carrée (SWV) a été utilisée pour caractériser ces greffages successifs. 4.2.2. Résultats Ils sont donnés dans les figures 8A et 8B. Figure 8A, la courbe en trait plein montre la réponse électrochimique d'une l'électrode (dans le domaine d' électroactivité du transducteur JUG-Thio-NH2) non modifiée par la sonde HPV-16-L1. La courbe en trait discontinu montre le résultat obtenu après électrogreffage de la sonde HPV-16-L1 (mais sans anticorps). La courbe en trait pointillé montre le résultat obtenu après incubation d'une électrode non modifiée par HPV-16-L1 avec l'anti-HPV 16, à la concentration de 1.10.8 M. Cette courbe montrent l'absence de complexation de l'anticorps anti-HPV-16, lorsque la sonde de complexation est absente. Figure 8B, la courbe en trait plein montre le résultat obtenu après électrogreffage de la sonde HPV-16-L1 (mais sans anticorps). La courbe en trait discontinu montre le résultat obtenu après incubation de l'électrode modifiée par HPV-16-L1 avec l'anti-HPV 16, à la concentration de 1.10-11 M. La courbe en trait pointillé montre le résultat obtenu après incubation de l'électrode modifiée par HPV-16-L1 avec l'anti-HPV 16, à la concentration de 1.10-8 M. La méthode selon l'invention permet donc de mettre en évidence la complexation de l'anticorps sur l'antigène correspondant, sélectivement avec une sensibilité satisfaisante. 4.3. Sensibilité 4.3.1. Mode opératoire Les conditions sont reprises des résultats ci-dessus. On utilise, pour l'étape d'incubation, l'anti-HPV-16 à des concentrations croissantes allant de 1.10-n M à 1.10.8 M 4.3.2. Résultats Ils sont donnés dans les figures 9, donnant la variation de courant relative en fonction de la quantité d'anticorps spécifiques ajoutée. Compte-tenu de ces résultats, la sensibilité de la méthode est de l'ordre de 0,1 nM. EXEMPLE 5: ELECTRO-GREFFAGE D'UN OLIGONUCLEOTIDE AMINOMODIFIE 5.1. Greffage 10 5.1.1. Mode opératoire On utilise l'oligonucléotide GEM-C6-NH2 portion de gène TAG du virus HIV et dans lequel une amine aliphatique primaire est disponible en position terminale 3', sur un espaceur aliphatique C6 (Eurogentec, Belgique). Il est représenté par la séquence suivante : 15 5' -TCG CAC CCA TCT CTC TCC TTC TAG CCT- 3'-C6 - NH2 L'oligonucléotide (ODN) est dissous à la concentration de 5.10-6 M dans 20 mL d'une solution aqueuse neutre de tampon phosphate salin (PBS). La solution est introduite dans une cellule électrochimique classique à 3 électrodes (référence (REF), auxiliaire (AUX), de travail 20 (WORK)). La REF est une électrode à calomel saturé (ECS). Un potentiel de +0,5 V / ECS est imposé à la WORK pendant 300 s. Une autre méthode consiste à imposer un balayage de potentiel en 0 V et 0,6 V/ECS, pendant quelques cycles. 5.1.2. Résultats 25 Ils sont donnés dans la figure 10. Un pic irréversible d'oxydation est clairement visible lors du premier balayage (ler cycle), avec un maximum de courant vers +0,43 V/ECS. Lors des cycles suivants, les potentiels de pic se décalent vers la droite et les courants diminuent. Ceci témoigne de l'électro-greffage progressif de l'ODN en surface de l'électrode. 30 A l'issue de ce traitement, l'électrode WORK est rincée à l'eau puis séchée sous un courant d'argon. 5.2. Mise en évidence du greffage 52.1. Mode opératoire5 L'électrode WORK modifiée comme indiqué ci-dessus est introduite dans une cellule électrochimique classique à 3 électrodes contenant une solution de K4Fe(CN)6 10-3M et K3Fe(CN)6 10-3M dans le PBS, puis lui est imposé un balayage de potentiel entre -0,2 V et +0,4 V/ECS à 50 mV.s-' , et le courant est enregistré. Une électrode WORK sur laquelle l'ODN sonde n'a pas été électrooxydé est également utilisée dans les mêmes conditions. 5.2.2. Résultats Les résultats sont donnés dans la figure 11. Ils montrent un blocage électrochimique partiel de l'électrode traitée par l'ODN (figure 12, courbe a), tandis qu'aucun blocage n'est visible pour l'électrode non traitée par l'ODN (figure 12, courbe b). Ceci témoigne du greffage de l'ODN sur la surface de l'électrode. EXEMPLE 6: CO-ELECTRO-GREFFAGE D'UN OLIGONUCLEOTIDE AMINO-15 MODIFIE (GEM-C6-NH2) ET DU TRANSDUCTEUR JUG-THIO-NH2 . APPLICATION COMME BIOCAPTEUR ELECTROCHIMIQUE A ADN. Comme pour l'exemple 4, il est possible de co-immobiliser deux molécules différentes. Par exemple, une biomolécule (l'ODN) et une molécule électroactive susceptible 20 de jouer le rôle de transducteur lors d'une reconnaissance moléculaire. La JugThioNH2 est une molécule électroactive susceptible de jouer le rôle de transducteur lors d'une hybridation entre le brin sonde GEM-C6-NH2 et un brin cible complémentaire. 6.1. Co-greffage 25 6.1.1. Mode opératoire Le co-électro-greffage est réalisé en deux temps. Premièrement, l'électrode WORK est modifiée par JugThioNH2, comme décrit dans l'exemple 2. Deuxièmement, cette même électrode est à nouveau modifiée par GEM-C6-NH2, comme décrit dans l'exemple 5. La voltamétrie à vague carrée (SWV) a été utilisée pour caractériser ces greffages 30 successifs. 6.1.2. Résultats Ils sont donnés dans la figure 12. La courbe (a) de la figure 12 correspond à une électrode modifiée uniquement par JugThioNH2 (sans ODN sonde), tandis que la courbe (b) de la figure 12 correspond à l'électrode portant à la fois la sonde GEM-C6-NH2 et la JugThioNH2. Les résultats montrent que le greffage du GEM-C6-NH2 modifie légèrement l'électroactivité de la JugThioNH2, qui diminue sensiblement. 6.2. Hybridation et caractérisation 6.2.1. Mode opératoire L'hybridation d'un brin cible complémentaire sur le brin sonde greffé peut être signée par la modification de l'électroactivité du rapporteur électroactif JugThioNHz. Le brin complémentaire est ici noté HIV. Un brin portant un mésappariement a également été utilisé, noté MHIV. HIV : 3' -C GTG GGT AGA GAG AGG AAG A- 5' 15 MHIV : 3' -C GTG GGT AAA GAG ATG AAG A- 5' Les conditions d'hybridation sont les suivantes : brins cibles à 0,1.10-6 M dans PBS pendant 2h à 55°C, puis la température est laissée retomber jusqu'à l'ambiante (pour le HIV et le brin MHIV). Les électrodes sont ensuite rincées dans PBS à 37°C pour éliminer 20 l'adsorption non spécifique. 6.2.2. Résultats Ils sont donnés dans la figure 13. La courbe notée GEM correspond à l'électrode avant hybridation. Après hybridation 25 avec le brin complémentaire HIV, on observe une augmentation du courant de pic (courbe du haut), tandis que l'ajout d'un brin mésapparié n'engendre pas de variation significative (courbe notée MHIV). Le brin cible complémentaire est donc reconnu sélectivement, par un signal positif. 30 EXEMPLE 7 : ELECTRO-GREFFAGE DE NANOTUBES DE CARBONE (CNT) 7.1. Mode opératoire 7.1.1. Modification chimique Les nanotubes de carbone utilisés sont de type mono-parois (SWNT, dia.2-10 nm, longueur 1-5 microns). Les SWNT sont oxydés dans le mélange d'acide sulfurique et nitrique (3:1) afin d'en réduire la longueur et d'y introduire des fonctions -COOH. Les nanotubes obtenus (SWNT- COOH) sont ensuite traités par SOC12 pour transformer les fonctions -COOH en fonctions -0001 (chlorure d'acyle). Les SWNT-0001 sont ensuite dispersés dans un mélange de Jug-NH2 et NH2-(CH2)3-NH2 (10-3M), pour y greffer ces deux molécules. Le schéma réactionnel de la synthèse des CNT-JUG-NHz est le suivant : HNO3 / H2SO4 HOOQ OOH CIOC OCI SOC12 \ HOOC COOH A CIOG LOCI NH2RNH2 / JUG-NH2 JUG JUG H2N NH2 Plusieurs amines aliphatiques sont donc disponibles en surface des CNT. 7.1.2. Greffage et Mise en évidence du 2reffa2e 2 mg de CNT-JUG-NHz sont mis en suspension dans 20 mL d'une solution de DMF + 20 LiC1O4 10-1 M. La solution est introduite dans une cellule électrochimique classique à 3 électrodes (REF, AUX, WORK). La REF est une électrode à calomel saturé (ECS). Un potentiel de +0,5 V / ECS est imposé à la WORK pendant 600 s. A l'issue de ce traitement, l'électrode WORK est rincée dans le DMF et l'EtOH, puis séchée sous un courant d'argon. L'électrode est ensuite caractérisée par voltamétrie cyclique, dans un milieu PBS. 25 7.1.3. Application : détection électrochimique de l'hybridation d'ADN Les SWCNT-JUG-NHz sont utilisés comme des nanoélectrodes individuelles, pour y greffer une sonde d'hybridation, selon une approche sensiblement équivalente à celle 30 exposée dans l'Exemple 6 (les mêmes séquences sonde et cibles sont utilisées : sonde GEM représentée par la séquence suivante : 5' -TCG CAC CCA TCT CTC TCC TTC TAG CCT-3', cibles HIV et non-complémentaire). 15 Les conditions de greffage sont différentes ; la sonde GEM restant native (n'étant pas modifiée par un groupement amine), on exploite alors la réactivité du groupe phosphate terminal, pour un couplage avec l'amine portée par les SWCNT. L'électrode est plongée dans une solution aqueuse de 2-méthyl-imidazole (MIA) (v/v 5 =1/1) avec 10-3M EDC et 10-6M d'ODN GEM, pendant 12h à 60 °C. L'électrode est ensuite rincée dans le PBS pendant 30 min. La caractérisation de l'hybridation se fait ensuite par voltammétrie à vague carrée (SWV) Les conditions d'hybridation sont les suivantes : brins cibles à 0,1.10-6 M dans PBS 10 pendant 2h à 55°C, puis la température est laissée retomber jusqu'à l'ambiante. Les électrodes sont ensuite rincées dans PBS à 37°C pour éliminer l'adsorption non spécifique. Un contrôle est systématiquement réalisé, en considérant la réponse après incubation dans une solution contenant non pas le brin complémentaire, mais une séquence non-complémentaire aléatoire (RAND). Les conditions d'hybridation sont identiques à celles 15 décrites précédemment. 7.2. Résultats Ils sont donnés dans les figures 14 à 17 Après électrogreffage des nanotubes de carbone fonctionnalisés par JUG-NHz, il 20 apparaît un couple rédox fin et réversible entre -0,8 V et -0,35 V, typique du groupe JUG (figure 14). On observe une nette différence entre le voltammo gramme avant (figure 15, courbe en trait plein) et après (figure 15 courbe en trait pointillé), greffage de la sonde GEM. Ceci témoigne des interactions entre la sonde GEM et le transducteur JUG-NHz. 25 La figure 16 présente le résultat obtenu après hybridation avec le brin complémentaire HIV, caractérisé par voltammétrie à vague carrée (SWV), La courbe en trait continu présente la réponse de l'électrode avant hybridation, tandis que la courbe pointillée présente la réponse après hybridation, pour laquelle observe une nette augmentation du courant de pic(signal positif). En revanche (résultats exposés sur la figure 17),on n'observe 30 aucune augmentation du courant de pic après incubation avec le brin non complémentaire RAND (courbe en trait plein, avant incubation : courbe en trait pointillé, après incubation). Ceci montre qu'il n'y a pas hybridation. On peut donc dire, d'après les figure 16 et 17, que le brin cible complémentaire est reconnu sélectivement, tandis que le brin non complémentaire n'est pas reconnu. REVENDICATIONS1. Dispositif de détection comprenant : - au moins un transducteur, comprenant une fonction aminé primaire liée à une quinone, ou à un dérivé de quinone, par un atome de carbone ou un hétéroatome d'une chaîne carbonée, - au moins un récepteur possédant une fonction amine primaire, - éventuellement un nanotube de carbone fonctionnalisé, et - un support conducteur électrique, et dans lequel ledit au moins un transducteur et ledit au moins un récepteur sont respectivement liés de façon covalente au support ou au nanotube de carbone, par au moins une de leurs fonctions amine primaire, et ledit nanotube de carbone est lié de façon covalente au support. 2. Dispositif de détection selon la revendication 1, caractérisé en ce que le transducteur est un composé correspondant à la formulé I suivante : dans laquelle n est égal à 0 ou 1, m est égal à 0 ou 1, R1, R2, R3, R4, R5, et R8 indépendamment les uns des autres, sont choisis 25 parmi : H, O, S, NH2, NO2, NH, OH, COOH, SH, et un groupement de 1 à 10 atomes de carbones, linéaire, ramifié, cyclique ou aromatique, R6 et R7 indépendamment l'un de l'autre sont choisis parmi : - H, O, S, NH2, NO2, NH, OH, COOH, SH, - un groupement de 1 à 10 atomes de carbones, linéaire, ramifié, 30 cyclique ou aromatique, (I)un groupe H2N p X avec p représentant un nombre entier variant de 0 à 12 et X étant choisi parmi CH2, O, NH, S, et les liaisons I; , indépendamment les unes des autres, représentent des liaisons covalentes simples ou doubles selon la nature des groupements R1, R2, R3, R4, R5, 10 R6, R7 et R8 et selon les valeurs de m et n. 3. Dispositif de détection selon l'une des revendications 1 et 2, caractérisé en ce que le transducteur correspond à la formule II suivante : O R1 dans laquelle R1, R2, R3, et R4, indépendamment les uns des autres, sont choisis parmi : H, O, S, NH2, NO2, NH, OH, COOH, SH et un groupement de 1 à 10 atomes de carbones, linéaire, ramifié, cyclique ou aromatique, R9 et R10 indépendamment l'un de l'autre sont choisis parmi : H, O, S, NH2, NO2, NH, OH, COOH, SH, un groupement de 1 à 10 atomes de carbones, linéaire, ramifié, cyclique ou aromatique, ou 25 - un groupe H2N P X avec p représentant un nombre entier variant de 0 à 12 et X étant choisi parmi CH2, O, NH, S, et 30 les liaisons indépendamment les unes des autres, représentent des liaisons 15 20covalentes simples ou doubles selon la nature des groupements R1, R2, R3, R4, R9 et R10. 4. Dispositif dé détection selon la revendication 1, caractérisé en ce que le récepteur est un composé susceptible d'entrer dans un processus d'association sélectif avec un ligand, ledit ligand étant choisi parmi les peptides, les protéines, les polynucléotides naturels ou artificiels et les petites molécules organiques d'intérêts biologiques. 5. Dispositif de détection selon la revendication 4, caractérisé en ce que le ligand est un composé choisi parmi : - un peptide, - une protéine de structure - une protéine de reconnaissance (Antigène/Anticorps) - une protéine à activité catalytique (enzyme) - un oligonucléotide, - un polynucléotide, - un oligonucléotide aptamère, - un acide ribonucléique, - un oligosaccharide, - un polysaccharide, - un composé pharmacologiquement actif, - un composé phytosanitaire, - une petite molécule immunogène. 6. Dispositif de détection selon la revendication 1 caractérisé en ce que le nanotube de carbone fonctionnalisé est fonctionnalisé avec au moins une fonction amine primaire. 7. Dispositif de détection selon la revendication 1, caractérisé en ce que le support est un matériau conducteur ou semi-conducteur ayant une résistivité comprise entre 106 et 10'10 30 Ohm.m, notamment 104 et 10-8 Ohm.m, notamment 103 et 10-8 Ohm.m. 8. Dispositif de détection selon l'une des revendications 1 à 7, caractérisé en ce que le support est choisi parmi les métaux, le carbone vitreux, les encres conductrices déposées sur support et les métaux déposés sur support. 9. Procédé de préparation d'un dispositif de détection comprenant un support, un transducteur, un récepteur, et éventuellement un nanotube de carbone fonctionnalisé, et caractérisé en ce que ledit procédé comprend : - au moins une étape dé greffage du transducteur sur le support ou le nanotube de carbone fonctionnalisé, ledit greffage étant la création d'une liaison covalente entre une amine primaire fonctionnalisant ledit transducteur, et respectivement ledit support ou ledit nanotube de carbone fonctionnalisé, par réaction d'oxydation électrochimique dans un solvant, - au moins une étape de greffage du récepteur sur le support ou le nanotube de carbone fonctionnalisé, ledit greffage étant la création d'une liaison covalente entre une amine primaire fonctionnalisant ledit récepteur, et respectivement ledit support ou ledit nanotube de carbone fonctionnalisé, par réaction d'oxydation électrochimique dans un solvant, et - éventuellement une étape de greffage du nanotube de carbone fonctionnalisé sur le support, ledit greffage étant la création d'une liaison covalente entre une amine primaire fonctionnalisant ledit nanotube de carbone fonctionnalisé, et ledit support, par réaction d'oxydation électrochimique dans un solvant. 10. Procédé de préparation d'un dispositif de détection selon la revendication 9, caractérisé en ce que la concentration de récepteur par rapport à la surface de support, ou de nanotube de carbone fonctionnalisé, est d'environ 10-13 à 10-9 mol.cm 2, notamment d'environ 10-13 à 10-11 mol.cm 2, notamment d'environ 10-11 à 10-9 mol.cm 2, lors de l'étape de greffage du récepteur respectivement sur le support, ou sur le nanotube de carbone fonctionnalisé. 11. Procédé de préparation d'un dispositif de détection selon la revendication 9, caractérisé en ce que la concentration de nanotube de carbone fonctionnalisé par rapport à la surface de support est d'environ 10-11 à 10-14 mol.cm2, notamment d'environ 10-11 à 10-12 mol.cm2, notamment d'environ 10-12 à 10-14 mol.cm2, lors de l'étape de greffage du nanotube de carbone fonctionnalisé sur le support. 12. Procédé de préparation d'un dispositif de détection selon la revendication 9 caractérisé en ce que le potentiel d'oxydation électrochimique appliqué au support, ou au nanotube decarbone fonctionnalisé, lors de l'étape de greffage du transducteur respectivement sur ledit support, ou sur ledit nanotube de carbone fonctionnalisé, est d'environ 0 à 1,5 V/ECS, notamment d'environ 0 à 1 V/ECS, notamment d'environ 0,3 à 0,7 V/ECS. 13. Procédé dé préparation d'un dispositif de détection selon la revendication 9 caractérisé en ce que le potentiel d'oxydation électrochimique appliqué au support, ou au nanotube de carbone fonctionnalisé, lors de l'étape de greffage du récepteur respectivement sur ledit support, ou sur ledit nanotube de carbone fonctionnalisé, est d'environ 0 à 1,5 V/ECS, notamment d'environ 0 à 1 V/ECS, notamment d'environ 0,3 à 0,7 V/ECS. 14. Procédé de préparation d'un dispositif de détection selon la revendication 9 caractérisé en ce que le potentiel d'oxydation électrochimique appliqué au support, lors de l'étape de greffage du nanotube de carbone fonctionnalisé sur ledit support, est d'environ 0 à 1,5 V/ECS, notamment d'environ 0 à 1 V/ECS, notamment d'environ 0,3 à 0,7 V/ECS. 15. Procédé de préparation d'un dispositif de détection selon l'une quelconque des revendications 10, 12 et 13 comprenant un support, un transducteur, et un récepteur, caractérisé en ce que le support est une électrode sérigraphiée, et en ce que les étapes de greffage du récepteur et du transducteur sur ladite électrode sérigraphiée sont réalisés - durant environ 10 secondes à environ 120 secondes, notamment environ 30 secondes à environ 90 secondes, particulièrement environ 60 secondes, - à un potentiel d'environ 0,1 V à environ 2 V, notamment environ 0,5 V à environ 1 V, particulièrement environ 0,7 V, et - à une température d'environ 10°C à environ 35°C, notamment d'environ 15°C à environ 25°C, particulièrement environ 20°C. 16. Dispositif de détection susceptible d'être obtenu selon la mise en oeuvre d'un procédé selon l'une quelconque des revendications 9 à 15. 17. Utilisation d'un dispositif de détection selon l'une quelconque des revendications 1 à 8 pour la misé en oeuvre de la détection d'un ligand du récepteur dans un milieu de détection, par observation d'une modification significative de l'électro-activité du transducteur par une méthode de mesure électrochimique. 18. Utilisation d'un dispositif de détection selon la revendication 17, caractérisé en ce que le ligand détecté est choisi parmi : - un peptide, - une protéine de structure - une protéine de reconnaissance (Antigène/Anticorps) - une protéine à activité catalytique (enzyme) - un oligonucléotide, - un polynucléotide, - un oligonucléotide aptamère, - un acide ribonucléique, - un oligosaccharide, - un polysaccharide, - un composé pharmacologiquement actif, - un composé phytosanitaire, - une petite molécule immunogène. 19. Utilisation d'un dispositif de détection selon l'une quelconque des revendications 17 et 18, caractérisé en ce que le ligand à détecter est présent à une concentration d'environ 300 fmo 1. L-' à environ 1 mmo l . L-' , notamment d'environ 1 pmo 1. L-' à environ 1 µmo 1. L-' , notamment d' environ 10 pmol.L-' à environ 100 nmol.L-' 20. Utilisation d'un dispositif de détection selon l'une quelconque des revendications 17 à 19 caractérisé en ce que le potentiel appliqué au support lors de la détection d'un ligand est d'environ 0,2 à -1,6 V / ECS, notamment d'environ 0 à -1,5 V / ECS, notamment d'environ -0,2 à -1,2 V / ECS.