FR 2960542 A1 20111202 FR 1054106 A 20100527 La présente invention se rapporte à une composition pharmaceutique comprenant au moins un peptide particulier pour son application comme médicament dans le traitement du cancer. Pour traiter le cancer, il existe conventionnellement trois sortes de thérapies : la chirurgie qui vise à retirer la tumeur, la radiothérapie qui vise à détruire la tumeur par des rayons, et les traitements médicaux (chimiothérapie). La chirurgie et la radiothérapie sont des traitements lourds difficiles à supporter pour le malade. En outre, ces trois traitements doivent être le plus souvent associés, car complémentaires. Ils doivent être combinés dans le cadre d'une stratégie programmée. En ce qui concerne les traitements médicaux, ils ont pour but de traiter non seulement l'organe atteint, mais aussi l'organisme tout entier par l'administration de médicaments anticancéreux. Ainsi, à la différence de la chirurgie ou de la radiothérapie qui ne traitent la tumeur que localement, seuls les traitements médicaux ont une action générale permettant de traiter une tumeur qui a déjà disséminé ou qui est en voie de le faire. Il existe plusieurs types de traitements médicaux : la chimiothérapie cytotoxique et l'hormonothérapie sont les plus classiques ; l'immunothérapie, la thérapie génique et les thérapies non cytotoxiques sont encore du domaine de la recherche. Malgré une recherche approfondie dans ce domaine, il n'existe pas encore à l'heure actuelle un médicament qui soit à la fois efficace dans le traitement de cancers et qui préserve les cellules saines d'un organisme humain ou animal. La chimiothérapie d'aujourd'hui entraîne toujours des effets secondaires d'une gravité plus ou moins grande. La présente invention a pour but de proposer un nouveau peptide choisi parmi SEQ. 1( EZ 6 ) à SEQ. 25 ( EZ 25 ) et une nouvelle composition pharmaceutique qui évitent tout ou partie de ces effets secondaires. A cet effet, l'invention a pour objet un peptide choisi parmi : i) un peptide de séquence SEQ. 1 à SEQ. 25, ii) ou un de leurs mélanges Les séquences des peptides agissant en tant que principe actif pour traiter le cancer sont les suivantes (tableau I) :35 Numéro de Séquences Nombre d'acides séquence SEQ aminés (code EZ) 1 (EZ 6) INWLKIAKKVAGML-NH2, soit 14 Ile Asn Trp Leu Lys Ile Ala Lys Lys Val Ala Gly Met Leu - NH2 2 (EZ 7) 1NWLKIAKKVAGML, soit 14 Ile Asn Trp Leu Lys Ile Ala Lys Lys Val Ala Gly Met Leu 3 (EZ 8) 1NWLAIAKKVAGML-NH2, soit 14 Ile Asn Trp Leu Ala Ile Ala Lys Lys Val Ala Gly Met Leu-NH2 4 (EZ 9) 1NWLAIAAKVAGML-NH2, soit 14 Ile Asn Trp Leu Ala Ile Ala Ala Lys Val Ala Gly Met Leu-NH2 (EZ 10) 1NWLKIAAAVAGML-NH2, soit 14 Ile Asn Trp Leu Lys Ile Ala Ala Ala Val Ala Gly Met Leu-NH2 6 (EZ 11) 1NWLAIAAAVAGML-NH2, soit 14 Ile Asn Trp Leu Ala Ile Ala Ala Ala Val Ala Gly Met Leu-NH2 7 (EZ 12) 1NWKKIAKKVAGML-NH2, soit 14 Ile Asn Trp Lys Lys Ile Ala Lys Lys Val Ala Gly Met Leu-NH2 8 (EZ 13) 1NWLKIKKKVAGML-NH2, soit 14 Ile Asn Trp Leu Lys Ile Lys Lys Lys Val Ala Gly Met Leu-NH2 9 (EZ 14) 1NWLKIAKKVKGML-NH2, soit 14 Ile Asn Trp Leu Lys Ile Ala Lys Lys Val Lys Gly Met Leu-NH2 (EZ 15) 1NWKKIKKKVAGML-NH2, soit 14 Ile Asn Trp Lys Lys Ile Lys Lys Lys Val Ala Gly Met Leu-NH2 11 (EZ 16) 1NWKKIKKKVKGML-NH2, soit 14 Ile Asn Trp Lys Lys Ile Lys Lys Lys Val Lys Gly Met Leu-NH2 12 (EZ 17) LKIAKKVAGML-NH2, soit 11 Leu Lys Ile Ala Lys Lys Val Ala Gly Met Leu- NH2 13 (EZ 18) LKIAKKVAGML, soit 11 Leu Lys Ile Ala Lys Lys Val Ala Gly Met Leu 14 (EZ 19) KIAKKVAGML-NH2, soit 10 Lys Ile Ala Lys Lys Val Ala Gly Met Leu-NH2 (EZ 20) KIAKKVAGML, soit 10 Lys Ile Ala Lys Lys Val Ala Gly Met Leu 16 (EZ 1) Biotin-1NWLKIAKKVAGML-NH2, soit 14 Biotin-Ile Asn Trp Leu Lys Ile Ala Lys Lys Val Ala Gly Met Leu-NH2 Numéro de Séquences Nombre séquence SEQ d'acides aminés ( code EZ) 17 (EZ 2) FITC-INWLKIAKKVAGML-NH2, soit 14 Phe Ile Thr Cys Ile Asn Trp Leu Lys Ile Ala Lys Lys Val Ala Gly-NH2 18 (EZ 3) 1NWLKIAKKVAGM-NH2, soit 13 Ile Asn Trp Leu Lys Ile Ala Lys Lys Val Ala Gly Met-NH2 19 (EZ 4) 1NWLKIAKKVAG-NH2, soit 12 Ile Asn Trp Leu Lys Ile Ala Lys Lys Val Ala Gly-NH2 20 (EZ 5) 1NWLKIAKKVA-NH2, soit 11 Ile Asn Trp Leu Lys Ile Ala Lys Lys Val Ala- NH2 21 (EZ 21) 1NALKIAKKVAGML-NH2, soit 14 Ile Asn Ala Leu Lys Ile Ala Lys Lys Val Ala Gly Met Leu-NH2 22 (EZ 22) 1NALKIAKKVAGML, soit 14 Ile Asn Ala Leu Lys Ile Ala Lys Lys Val Ala Gly Met Leu 23 (EZ 23) 1NKLKIAKKVAGML-NH2, soit 14 Ile Asn Lys Leu Lys Ile Ala Lys Lys Val Ala Gly Met Leu-NH2 24 (EZ 24) 1NKLKIAKKVAGML, soit 14 Ile Asn Lys Leu Lys Ile Ala Lys Lys Val Ala Gly Met Leu 25 (EZ 25) KLKIAKKVAGML-NH2, soit 12 Lys Leu Lys Ile Ala Lys Lys Val Ala Gly Met Leu-NH2 Tableau I Les travaux du demandeur sur ces peptides de SEQ.1 à SEQ.25 ont permis de mettre en évidence, de manière surprenante, que ces peptides présentent une activité cytotoxique contre des cellules cancéreuses tout en étant non ou très faiblement toxiques pour les cellules de l'hôte à traiter. Les peptides actifs selon l'invention altéreraient de manière spécifique les microtubules des cellules cancéreuses mais également leur membranes plasmiques et n'induiraient pas ces mêmes altérations dans les cellules saines de l'organisme hôte.. Ces principes actifs ne comprenant que 10 à 14 acides aminés présentent aussi l'avantage d'être très faciles à synthétiser. De préférence, le ou les peptides cités dans le tableau 1 sont appliqués comme médicament pour le traitement du cancer et en particulier, pour le traitement du cancer du poumon, du mélanome, de la leucémie, du cancer du sein, du pancréas et du glioblastome. Selon une autre caractéristique de l'invention, les peptides de séquences SEQ.1 à SEQ.25 sont produits par synthèse chimique. Un autre but de la présente invention concerne une composition pharmaceutique comprenant un des peptides tels que définis ci-dessus. Avantageusement, la composition se présente sous forme d'une solution, d'une suspension aqueuse, ou à l'état sec sous forme de comprimés nus ou enrobés, comme les pilules, les gélules, les capsules ou les poudres. Si la composition pharmaceutique est à l'état sec, elle peut être mélangée à un ou plusieurs diluants inertes tels que l'amidon, la cellulose, le saccharose, le lactose ou la silice, etc. Elle peut également comprendre d'autres substances à l'état sec comme un ou plusieurs lubrifiants tels que le stéarate de magnésium ou le talc, un colorant, un enrobage (dragées) ou un vernis. Si la composition pharmaceutique selon l'invention est sous fome liquide, elle peut comprendre des solutions, des suspensions, des émulsions, des sirops et des élixirs pharmaceutiquement acceptables contenant des diluants inertes tels que l'eau, l'éthanol, le glycérol, les huiles végétales ou l'huile de paraffine. La composition pharmaceutique peut comprendre d'autres substances liquides autres que les diluants, par exemple des produits mouillants, édulcorants, épaississants, aromatisants ou stabilisants. De manière préférée, la composition, associée éventuellement à un excipient ou véhicule inerte non toxique pharmaceutiquement acceptable, est caractérisée en ce qu'elle est administrable par voie topique sous forme d'application cutanée, transcutanée ou percutanée ; orale ; parentérale ; nasale ou bronchique. La composition pharmaceutique pour administration parentérale peut être de préférence une solution aqueuse ou non aqueuse, une suspension ou une émulsion. Comme solvant ou véhicule, on citera l'eau, le propylèneglycol, des huiles végétales, en particulier l'huile d'olive ou l'huile de sesame, des esters organiques injectables, par exemple l'oléate d'éthyle ou d'autres solvants organiques convenables. La composition pharmaceutique peut également contenir des adjuvants, en particulier des agents mouillants, isotonisants, émulsifiants, dispersants et stabilisants. Pour l'administration par voie topique, les médicaments seront administrés avantageusement sous forme de pommades, crèmes, gels ou de patchs. En particulier, la composition pharmaceutique est stérile. La stérilisation peut se faire de plusieurs façons, par exemple par filtration aseptisante, en incorporant à la composition des agents stérilisants, par irradiation ou par chauffage. Elles peuvent également être préparées sous forme de compositions solides stériles qui peuvent être dissoutes au moment de l'emploi dans de l'eau stérile ou tout autre milieu stérile injectable. La composition pharmaceutique pourra de plus être utilisée seule 15 ou en association, dans un traitement donné avec d'autres médicaments, ou associée à de la radiothérapie ou de la chirurgie. L'invention sera mieux comprise, et d'autres buts, détails, caractéristiques et avantages de celle-ci apparaîtront plus clairement au cours de la description suivante d'un mode de réalisation particulier de 20 l'invention, donné uniquement à titre illustratif et non limitatif, en référence aux dessins annexés. Des exemples des essais pharmaceutiques sont en outre proposés afin d'illustrer, mais en aucun cas ils ne sauraient être interprétés comme limitant la portée de l'invention. 25 Sur ces dessins : - la figure 1 représente l'effet du peptide de SEQ.1 sur la polymérisation de microtubules d'un cerveau de rat sain à des doses de 23,3 µM, 46,6 µM, 70 µM et 93,3 µM ainsi 30 que l'effet d'un échantillon témoin n'ayant pas été soumis au peptide de SEQ.1 ; en particulier la figure 1 représente l'évolution de la polymérisation in vitro de microtubules de cerveau de rat, quantifiée par des mesures de densité optique à 345 nM de longueur d'onde, en fonction du temps 35 en minutes et en présence ou non de peptide de SEQ. 1 ; - la figure 2 représente l'effet du peptide de SEQ. 1 aux doses de 46,6 uM, 70 uM, 93,3 uM et 116 uM sur la stabilité des microtubules de cerveau de rat sain, évaluée par le pourcentage de dépolymérisation microtubulaire induit par un traitement de 30 min à 4°C des microtubules préalablement assemblés à 37°C pendant 15 min. - la figure 3 représente quatre graphiques représentant la viabilité des cellules de différentes lignées : T, lignée de rein Cos ; G, lignée de poumon A549 ; C, lignée de foie HepG2 ; R, lignée pancréatique PANC1 ; S, lignée pancréatique MiaPaCa ; X, lignée surréalienne H2 95 R ; Y, lignée de mélanome MNT-1 ; lignées lymphocytaires leucémiques L 1, HL 60 ; L 3, U 937 ; L 4, NB 4 ; L 5, MénoMac6, et une lignée de lymphocytes normaux, en fonction de la concentration du peptide de SEQ. 1 - la figure 4 représente des photos de la lignée cellulaire A549 (cancer du poumon) traitée avec le peptide de SEQ.1 à 15 µM et non traitée avec ce peptide (contrôle), de la lignée cellulaire NMT-1 traitée avec le peptide de SEQ. 1 à 15 uM et non traitée avec ce peptide (contrôle) et de la lignée cellulaire PANC-1 (cancer du pancréas) traitée avec le peptide de SEQ.1 à 15 µM et non traitée avec ce peptide (contrôle) . - la figure 5 représente des photos de lignées cellulaires non tumorales, FIBRO 1 et FIBRO 2 (cellules fibroplastiques) traitées avec le peptide de SEQ.1 à 15 µM et non traitées avec ce peptide (contrôle). A) MATERIELS ET METHODES Al) Synthèse des peptides SEQ.1 à SEQ .25 et purification Les peptides sont préparés par une synthèse sur phase solide 35 fractionnée manuellement en utilisant le N-9-fluorophénylméthoxy- 25 30 carbonyle avec une résine TGS Novasyn. Les chaînes latérales protègent les groupes incluant t-butyle pour la sérine et t-butoxycarbonyle pour la lysine. Pour préparer les peptides présentant un résidu N-terminal acétylé, après le couplage du dernier résidu d'acide aminé, de l'acide anhydrique a été ajouté aux complexes résine-peptide et maintenu sous agitation pendant 1 heure pour promouvoir l' acétylation. Le clivage des complexes résine-peptide a été réalisé par traitement avec l'acide trifluoroacétique / 1,2-éthanedithiol / anisole / phénol / eau (82,5 :2,5 :5 :5 :5 par volume) à une concentration de 10 mL.g-1 à température ambiante pendant 2 heures. Une filtration a ensuite été effectuée pour éliminer la résine. Puis, de l'éther éthylique à 4°C a été ajouté, provoquant la précipitation des peptides bruts qui ont été ensuite collectés après une centrifugation à 1 000 g pendant 15 minutes à température ambiante. Les peptides bruts ont ensuite été solubilisés dans de l'eau et chromatographiés sous RP-HPLC en utilisant une colonne semi-préparative (250 mm* 10,0 mm ; 5 µm) C-18 de Shiseido sous une élution isocratique avec 40% (v/v) d'acétonitrile contenant 0,1% (v/v) de TFA à un taux de 2 mL/min. L' élution a été régulée à 215 nm avec un détecteur UV-DAD (détecteur ultraviolet à barettes de diodes) (Shimadzu, modèle SPD-M10A) et chaque fraction éluée a été manuellement collectée dans une fiole en verre de 2 mL. Les séquences des peptides synthétisés (les acétylés comme les non acétylés) ont été déterminées par analyses HPLC et ESI-MS. A2) Peptides de SEQ. là SEQ.25 Ainsi, après que les peptides ont été synthétisés, purifiés et examinés, des tests ont été effectués pour déterminer leurs activités biologiques. La plupart d'entre eux se sont avérés présenter une activité antibactérienne. De plus, il est apparu de manière surprenante et inattendue que les peptides selon l'invention présentaient des propriétés contre les microtubules de cellules cancéreuses, et notamment le peptide SEQ.1 pour lequel les résultats sont décrits ci-dessous. Ce peptide est un peptide court de 14 acides aminés. Ce peptide présente la séquence d'acides aminés suivante : INWLKIA KKVA GML - NH2 (SEQ.1). Les peptides de séquence SEQ.2 à SEQ .25 sont des variants ou homologues du peptide de SEQ.1. Ces variants diffèrent du peptide SEQ.1 par un à trois acides aminés (absence, ou ajout d'un ou plusieurs acides aminés). Ces variants se sont avérés soit tout aussi efficaces que le peptide de SEQ.1, soit ont montré une efficacité un peu moindre que le peptide de SEQ.1 mais sont très susceptibles d'être plus actifs sur des types de cancers qui répondent moins bien au peptide SEQ 1. Constituants d'un des trois réseaux de filaments du cytosquelette, les microtubules sont des polymères complexes et instables dont l'unité de base est le dimère de tubulines a et B. Ils sont à l'origine de multiples mouvements cellulaires, transport axonal, ou motilité par exemple et surtout ils fournissent le matériau de base pour la constitution du fuseau mitotique. Les microtubules sont des tubes creux de longueur variable et en perpétuelle reformation. Ainsi, en perturbant la dynamique des microtubules des cellules cancéreuses, les peptides selon l'invention agissent également en tant qu'anti-mitotiques empêchant la prolifération des cellules cancéreuses (ralentissement ou arrêt de la mitose des cellules cancéreuses). B) TESTS EXPERIMENTAUX BI) Analyse de l'effet du peptide de séquence SEQ 1 sur les propriétés des microtubules. Des microtubules purifiés de cerveau de rat ont été préparés par un procédé in vitro dépendant de la température d'assemblage à 37°C et de désassemblage à 4°C en présence de GTP (guanosine triphosphate) décrit par FELLOUS et al. (1977). La polymérisation in vitro des microtubules a été suivie par la mesure des changements de turbidité à 345 nM toutes les 30 secondes au cours d'une période d'incubation de 15 min. Les mesures de densité optique ont été effectuées avec un spectrophotomètre UVICON thermostaté à 37°C et équipé d'un chargeur automatique pouvant accueillir 6 cuves. Le même type d'expériences utilisant la même technologie a été 35 réalisé pour évaluer la stabilité des microtubules formés en présence de concentrations croissantes du peptide de SEQ.1. Cette stabilité est indiquée par la capacité de ces microtubules à se dépolymériser après un traitement à 4°C pendant 30 min. B2) Lignées de cellules analysées Les lignées cellulaires suivantes ont été analysées pour déterminer et quantifier l'activité du peptide de SEQ.1. Sur le tableau II qui suit, les fibroblastes M et N ne sont pas tumoraux, les lymphocytes L.1, L.3, L.4 et L.5 sont leucémiques alors que les lymphocytes L.6 sont des lymphocytes normaux. Type de tissu Lignée cellulaire Code choisi pour la lignée cellulaire Cancer du poumun A549 G Cancer du foie HepG2 C Glioblastome U 87 -M 6 P Cancer du pancréas MiaPaCa S Cancer du pancréas PANC- 1 R Neuroblastome SK N F 1 P Glande surrénale H2.95 R X Mélanome MNT-1 Y Chorio-épithéliome JEG D Chorio-épithéliome BEWO E Cancer de la prostate DU 145 L Cancer de la prostate LnCaP K Cancer du sein T 47 B Cancer du colon HT 29 F Fibroplastes IVG FIBRO 1 M Fibroplastes N 12 FIBRO 2 N Lymphocytes HL 60 L. 1 Leucémiques Lymphocytes U 937 L. 3 Leucémiques i0 Type de tissu Lignée cellulaire Code choisi pour la lignée cellulaire Lymphocytes NB 4 L. 4 leucémiques Lymphocytes MenoMac 6 L. 5 Leucémiques Lymphocytes L. 6 normaux Tableau II B3) Mesure de la prolifération et de la viabilité cellulaires figures 3 et 4) Environ 10 000 cellules ont été ensemencées dans un volume de 0,2 ml par puit dans des microplaques de 96 puits pendant 24 heures avant traitement par le peptide de SEQ.1. Les cellules ont été incubées de 48 à 72 heures à 37°C dans un incubateur CO2 en présence ou non du peptide de SEQ.1 à différentes concentrations. Suite à cette incubation, du réactif MTT ou bromure de 3-(4,5 diméthyl-2-yl)-2,5 diphényl tétrazolium (0,5 mg/ml dans un volume de 0,1 ml) a été ajouté à chaque puits et incubé pendant 2 heures à 37°C. L'anneau de tétrazolium que contient le MTT est alors réduit par la succinate deshydrogénase des cellules vivantes en formazan Ensuite, le surnageant a été retiré et 0,1 ml de tampon de lyse (isopropanol contenant 10 % de triton X 100 et 10 % d'HC1 1N) a été ajouté pour dissoudre le précipité bleu-violet de formazan formé Après quelques minutes, l'absorbance a été déterminée à température ambiante en utilisant un lecteur de microplaque à une longueur d'onde test de 562 nm. Des puits ne comprenant pas de peptide de SEQ.1 ont été utilisés de manière à contrôler la viabilité de cellules de contrôle. Des valeurs d'IC 50 (concentration de peptide de SEQ.1 provoquant 50 % de cytotoxycité sur ces lignées cellulaires) pour chaque variété de cellule ont été évaluées par le rapport de l'absorbance des cellules traitées sur l'absorbance des cellules de contrôle. Une autre méthode de mesure de la viabilité cellulaire a été utilisée. Cette méthode consiste à effectuer un comptage direct visuel du nombre de cellules, en s'aidant d'une cellule de Malassez, dans 2960542 Il diverses conditions de traitement. Cette méthode permet de mieux évaluer le rapport des cellules mortes aux cellules qui ont démarré un processus de mort cellulaire. 5 B4) Marquage par immunofluorescente de la structure en réseau de microtubules dans les cellules traitées avec le peptide de SEQ.1 figures 4 et 5) Des cellules de différentes lignées ont été incubées sur des lames de verre avec différentes concentrations du peptide de SEQ.1 pendant 4 10 heures à 37° C. Ensuite, les cellules ont été fixées avec du PFA, lavées au PBS et incubées dans un tampon PBS (tampon phosphate salin) contenant 1% de BSA, 0,1% de Triton X 100 pendant 30 minutes à 37°C. Après lavage avec du PBS, les cellules ont été incubées avec un anticorps monoclonal d'anti-bêta tubuline durant la nuit dans une 15 chambre froide. Ensuite les lames de verre ont été lavées avec du PBS et les cellules ont été incubées avec un anticorps de chèvre antisouris couplé à de l'isothiocyanate de fluorescéine (FITC) pendant 60 minutes à la température ambiante. Après lavage au PBS, les cellules marquées ont été visualisées avec un microscope de fluorescence. La technique de 20 coloration par le dapi a été employée pour marquer les noyaux en bleu. B5) Effets du peptide de SEQ 1 sur la structure de la membrane plasmique 25 Un marqueur fluorescent PKH26 (produit SIGMA) se liant aux lipides membranaires a été utilisé pour analyser l'organisation des structures membranaires et leur altération sous l'effet du peptide SEQ.1 et de ses analogues. C) RESULTATS Cl) Effet du peptide de SEQ.1 sur la formation de microtubules in vitro Tel que représenté sur la figure 1, le peptide de SEQ.1 induit une augmentation importante de la turbidité pendant le processus de la polymérisation de microtubules par rapport à l'échantillon témoin ne comprenant pas le peptide de SEQ.1 et servant de contrôle de la polymérisation de microtubules. L'efficacité du peptide de SEQ. 1 va de paire avec l'augmentation de sa concentration et peut atteindre un niveau très élevé. Ces données impliquent ainsi la formation de structures de microtubules anormaux ou d'agrégats non organisés de tubuline en présence du peptide de SEQ.1. Cette polymérisation de microtubules anormaux ressemble à la polymérisation de microtubules qui a lieu en présence d'un fort taux d'un anticancéreux déjà connu : le Taxol. Un autre argument qui suggère fortement que le peptide de SEQ.1 et le Taxol présentent une certaine similitude dans leur mécanisme d'action est démontré à la figure. 2. Les microtubules formés en présence de concentrations très élevées du peptide de SEQ.1 perdent en effet leur capacité à se dépolymériser lorsqu'ils sont soumis pendant 30 min à une température de 4°C. Le fait que le peptide de SEQ.1 présente un mécanisme d'action très proche de celui du Taxol est un avantage certain de la présente invention. Il faut également ajouter que les observations du demandeur démontrant l'effet irréversible du peptide de SEQ. 1 sur les propriétés microtubulaires lui donnent un avantage majeur par rapport à d'autres peptides anti-microtubulaires comme les dolostatines dont l'effet sur les microtubules est réversible. C2) Prolifération des cellules et viabilité des essais en présence du 30 peptide SEQ.1 Des analyses d'inhibition de la croissance et viabilité cellulaire (méthode de MTT et comptages cellulaires avec la cellule de Malassez )) ont été employées pour déterminer si le peptide de SEQ.1 a une activité anticancéreuse. L'effet du peptide de SEQ.1 a été vérifié en grande série 35 sur des variétés de cellules cancéreuses et également sur quelques cellules non tumorales (voir le paragraphe bl ci-dessus). 12 Tel que cela est représenté sur la figure 3, le peptide de SEQ.1 empêche la prolifération des cellules tumorales. Plus la dose du peptide de SEQ.1 est augmentée et plus la prolifération de cellules cancéreuses est empêchée. Il a été observé que les doses de peptide SEQ.1 toxiques pour les cellules cancéreuses ne le sont pas pour des cellules normales comme les lymphocytes normaux. ou les fibroblastes. Il a également été observé que la sensibilité des différentes variétés de cellules tumorales varie. Le tableau III ci-dessous prouve que la valeur d'IC 50 est très basse pour les cellules tumorales très sensibles, telle que la variété de cellule A 549 (cancer du poumon). La valeur d'IC 50 est plus haute pour des variétés de cellules moins sensibles telles que les cellules pancréatiques (variété de cellules PANC 1) ou de variétés de cellules prostatiques (variété de cellules DU 145) ou de variétés de cellules de glioblastome (U87- M6). Dans ce dernier cas, la sensibilité dépend du temps d'exposition des cellules de gliobastome avec le peptide de SEQ.1. Cette observation suggère que le peptide de SEQ.1 pourrait présenter une action et une efficacité différente selon le type de cellules cancéreuses . Une modulation de la dose ou de la longueur du traitement peut alors être envisagée pour agir efficacement sur certains types de cancers. L'ensemble des résultats du tableau III montre bien que le peptide de SEQ 1 a une très large activité antitumorale qui pourrait être plus importante que celle du taxol pour combattre différents types de cancers. Le tableau III montre aussi la très faible toxicité du peptide SEQ.1 25 sur différents types de cellules normales comme les lymphocytes ou les fibroblastes. 30 35 Mesure de la viabilité cellulaire - après 48 heures de traitement par le peptide de SEQ.1 Type de cellules Code des lignées IC50 cellulaires A 549 (Tumeur de poumon humain) G 4,40 COS (Tumeur du rein de singe) T 16,48 MiaPaCa (Tumeur du pancréas humain) S 23,10 PANC 1 (Tumeur du pancréas humain) R 14,35 H2 95R(Tumeur de la médullosurrénale) X 5,40 MNT-1 ( Mélanome humain) Y 8,30 U87 M6 ( Glioblastome) P 15,26 HepG2 (Hépatome) C 35,60 SK-N-F1 (Neuroblastome) 0 2,88 Lignée cellulaire de leucémie aiguë L.1 7,90 promyélocytaire Lignée cellulaire de leucémie L.3 4,10 Lignée cellulaire de leucémie aiguë L.4 52,40 promyélocytaire Lignée cellulaire monocytique L.5 4,50 Lymphocytes normaux L.6 > 10 Fibroblastes M 17,80 Fibroblastes N 22 Après 72 heures de traitement par le peptide de SEQ.1 Type de cellules Lignée Code des IC50 cellulaire lignées cellulaire Glioblastome U87-M6 P 6,00 Fibro 1 et 2/ > 25 Tableau III Ce tableau montre que le peptide de SEQ.1 présente une activité 10 sur un grand panel des cellules cancéreuses. C3) Effet du peptide de SEQ.1 sur des structures microtubulaires de cellules (figures 4 et 5 ) Pour vérifier l'hypothèse que le peptide de SEQ.1 pourrait empêcher la prolifération de cellules cancéreuses en altérant le réseau de microtubules (c'est-à-dire en ayant un mécanisme d'action proche de celui du (« mécanisme taxol-like »), des expériences de marquage par immunofluorescence des structures de microtubules des cellules traitées ou pas par le peptide de SEQ.1 ont été réalisées en employant le procédé décrit ci-dessus dans le paragraphe b3). Tel que représenté sur la figure 4, lorsque les cellules A 549 du cancer du poumon sont traitées par le peptide de SEQ.1, et ce même pendant un court laps de temps, il y a formation d'agrégats de tubuline très denses. Lorsque ces cellules ne sont pas traitées avec le peptide de SEQ.1, le réseau de microtubules est très organisé et non perturbé. La figure 4 montre aussi l'effet du peptide de SEQ.1 sur deux autres de variétés de cellules cancéreuses, les cellules de mélanome MNT-1 et les cellules pancréatiques PANC 1. Lorsque ces cellules sont traitées avec le peptide SEQ.1, leur réseau microtubulaire est également altéré comme le montre l'augmentation significative de la fluorescence par rapport à la fluorescence des cellules non traitées. Cependant l'altération microtubulaire observée dans les cellules MNT-1 et PANC 1 traitées est moins importante que dans les cellules A549. . Ceci peut s'expliquer par le fait que la période du traitement n'était pas suffisante ou par le fait que les tubulines des lignées MNT-1 et PANC 1 présentent des différences dans leur structure moléculaire par rapport aux tubulines des cellules A 549 capables d'induire une réduction de leur affinité pour le peptide SEQ.1. Avec ces essais au niveau cellulaire, il est confirmé que le peptide de SEQ 1 a un mécanisme d'action similaire à celui du Taxol . Ces essais montrent en effet que le peptide de SEQ 1 augmente de façon anormale et irreversible la concentration intracellulaire de tubuline polymérisée et /ou aggrégée induisant ainsi un blocage du processus de mitose. Cependant le peptide de SEQ 1 ne semble pas se lier sur le même site de la tubuline que le Taxol car plusieurs lignées obtenues à partir de tumeurs du sein résistantes au taxol et qui ont gardé cette propriété de résistance en culture ce lcellules in vitro ont montré une grande sensibilité au peptide de SEQ 1 et à quelques analogues de ce peptide. Une telle observation est majeure car il sera possible d'envisager une thérapie efficace avec nos peptides à des patients qui ne répondent pas ou ne répondent plus à un traitement par le Taxol L'activité spécifique du peptide de SEQ.1 sur les cellules cancéreuses et non sur les cellules saines a été confirmée par les expériences montrées sur la figure 5. Deux variétés de cellules fibroblastiques non tumorigènes : FIBRO 1 et FIBRO 2 ont été mises en contact avec le peptide de SEQ.1 afin de voir si le réseau de microtubules de cellules saines était également perturbé par le peptide. Or, la figure 5 démontre que les fibroblastes humains qui représentent une variété de cellules normales ne répondent pas du tout au peptide de SEQ.1 (pas de modification de densité de la tubuline polymérisée), tout au moins à des concentrations en peptide de SEQ.1 utilisées pour les cellules cancéreuses. Cette observation représente une avancée importante de la présente invention. Très peu d'agents antitumoraux présentent une cytotoxicité pour des cellules cancéreuses et une non cytotoxicité pour les cellules saines de l'organisme hôte. Ce dernier point a deux conséquences importantes : il est en effet très probable que peu d'effets secondaires apparaîtront quand le peptide de SEQ.1 et ses analogues seront employés comme agent thérapeutique. De plus, il est possible d'augmenter de manière significative l'efficacité du peptide de SEQ.1 et de ses analogues en augmentant son dosage, notamment pour les tumeurs moins sensibles aux peptides de la présente invention (par exemple, augmenter le dosage de SEQ.1 pour traiter des tumeurs moyennement sensibles comme certaines tumeurs pancréatiques dont les cellules tumorales sont proches des cellules PANC-1. Parmi les analogues du peptide de SEQ.1, certains ont montré une bonne activité anti-proliféraive des lignées cancéreuses en culture, telles que la lignée A 549 : ce sont les peptides de SEQ. 4 (EZ 9 ) et de SEQ. 7 (EZ 12 ) avec des IC 50 variant entre 5 et 8 µM ). D'autres analogues comme les peptides de SEQ. 18 (EZ 3 ), de SEQ. 19 (EZ 4 ), de SEQ. 2 (EZ 7 ) et de SEQ. 3 (EZ 8 ) ont montré une activité anti-proliférative moyenne (IC 50 Les analogues de SEQ. 5 (EZ 10 ), de SEQ. 6 (EZ 11 ) , de SEQ. 8 à SEQ. 15 (EZ 13 à EZ 20) , de SEQ. 20 (EZ 5 ) et de SEQ. 21 A SEQ. 25 ) (EZ 21 à EZ 25 ) sont inactifs sur les lignées cancéreuses analysées mais seront testés sur d'autres types de cellules cancéreuses qui pourraient réagir à ces Peptides. C4) Effet du peptide de SEQ.1 sur les propriétés menbranaires des cellules cancéreuses. Le peptide de SEQ 1 et certains variants de ce peptide n'ont pas seulement une action sur les microtubules. Par leur charges positives de polycations elles altèrent les propriétés de la membrane plasmique des cellules cancéreuses riches en phospholipides de charge négative, induisant une réduction de l'adhésion de cellules au substrat et très souvent une altération de la morphologie des cellules avec des extensions cytoplasmiques importante. Ces altérations membranaires sont responsables de morts cellulaires importantes. Donc le peptide de SEQ 1 et certains variants exercent un double effet, cytostatique ( inhibition des mitoses ) et cytotoxique ( morts cellulaires ). Ce double effet amplifie l'action antitumorale de ces peptides. Le peptide de SEQ.1 et certains analogues peuvent ne pas altérer seulement les membranes de cellules cancéreuses. Ils peuvent altérer les membranes d `autres types cellulaires comme par exemple des cellules bactériennes ou fongiques. On sait par exemple que les membranes de bactéries partagent avec la cellule cancéreuse des propriétés de charge négative. Enfin, suivant les indications d'Expériences préliminaires, le peptide de SEQ.1 et ses analogues présenteraient l'avantage de ne pas 30 induire un processus rapide de résistance. Bien que l'invention ait été décrite en liaison avec un mode de réalisation particulier, il est bien évident qu'elle n'y est nullement limitée et qu'elle comprend tous les équivalents techniques des moyens décrits 35 ainsi que leurs combinaisons si celles-ci entrent dans le cadre de l'invention.