FR 2953858 A1 20110617 FR 0958895 A 20091211 METHODE DE DETECTION DES LEPTOSPIRES PATHOGENES BASEE SUR LE GENE rpoB DOMAINE TECHNIQUE La présente invention s'inscrit dans la recherche de tests simples permettant le diagnostic des leptospires, dont les souches pathogènes provoquent la leptospirose. Il est proposer d'utiliser le gène rpoB, et notamment une région de celui-ci, pour 10 conclure à la présence d'une souche pathogène de leptospire. ETAT ANTERIEUR DE LA TECHNIQUE Les leptospires pathogènes sont responsables de la leptospirose, zoonose émergente 15 de répartition mondiale induite par des bactéries du genre Leptospira. Ces bactéries sont des spirochètes de forme hélicoïdale, extrêmement mobiles, essentiellement rencontrées en zones humides où elles sont entretenues par les rongeurs qui constituent leurs principaux réservoirs. 20 L'épidémiologie de cette zoonose est complexe, toutefois l'élimination rénale des leptospires par les animaux infectés, via leurs urines, est un élément clé pour leur persistance dans l'environnement. Une fois éliminées dans le milieu extérieur, les leptospires contaminent les sols et l'eau qui représentent alors une importante source de transmission indirecte de la maladie aux humains et aux animaux domestiques et 25 sauvages, ce qui rend difficile la lutte contre ces bactéries. Selon l'organisation mondiale de la santé, un demi-million de personnes par an sont diagnostiquées comme ayant été infectées par la leptospirose, principalement dans les zones tropicales et subtropicales mais aussi dans les zones tempérées. Dans les 30 pays occidentaux, le risque sanitaire est lié essentiellement à la pratique d'activités de loisirs en lien avec l'eau. Le diagnostic clinique de la leptospirose est complexe du fait de la diversité des symptômes liés à la fois aux souches infectantes, mais aussi aux espèces infectées. 35 En effet selon la classification sérologique, le genre Leptospira est constitué d'espèces saprophytes (Leptospira biflexa) et pathogènes (Leptospira interrogans), divisé en nombreux sérovars (au moins 250 sérovars) eux-mêmes regroupés selon5 leur parenté antigénique en 24 sérogroupes. Une autre classification, dite génomique, basée sur l'homologie génétique telle que l'hybridation ADN/ADN, divise le groupe des leptospires pathogènes en différentes espèces appelé genomospecies, telles que L. interrogans, L. borgpetersenii, L. weilii, L. meyeri, L. krischneri... Ainsi, chez l'homme, les manifestations cliniques peuvent aller de la simple forme grippale (fièvre, céphalées, myalgies) aux atteintes hépatiques et rénales, essentiellement induites par le sérogroupe ICTEROHAEMORRHAGIAE de Leptospira interrogans. 10 Chez le chien, la maladie se traduit par des troubles hépatiques et rénaux fréquemment mortels en l'absence d'antibiothérapie. La vaccination du chien est possible contre 2 sérovars uniquement : Icterohaemorrhagiae et Canicola. Les autres animaux, tels que les ruminants ou les porcs, développent essentiellement des formes 15 chroniques, se traduisant par des troubles de la reproduction, tandis que les chevaux présentent des pathologies diverses associées à des uvéites. Chez les rongeurs, réservoirs de la bactérie, la leptospirose est inapparente. Compte tenu de l'importance et de la diversité des formes pathologiques, toute 20 suspicion de leptospirose, qu'il s'agisse d'un cas clinique individuel ou d'un problème d'élevage, fait généralement l'objet de méthodes de confirmation expérimentale. Deux volets du diagnostic (et dépistage) peuvent ainsi être nécessaires, en fonction de la durée d'évolution de la maladie. Dans les cas aigus, la mise en évidence directe du germe est primordiale. Dans les cas chroniques, la mise en évidence de façon 25 indirecte par la réponse sérologique est généralement suffisante en terme de diagnostic, même si dans un deuxième temps, la reconnaissance des animaux porteurs de germes, et donc excréteurs, nécessite la mise en évidence du germe. Le diagnostic sérologique consiste à mettre en contact des antigènes représentés par 30 des souches avec le sérum testé, afin de mettre en évidence les anticorps témoins d'une infection leptospirosique. Le test de Microagglutination (MAT) est actuellement la méthode de référence. Cette technique hautement sensible et spécifique nécessite néanmoins une grande technicité, notamment pour la lecture des résultats et requiert le maintien régulier des cultures de leptospires qui sont souvent 35 exposées au risque de contaminations. De plus, les tests sérologiques ne peuvent pas fournir un diagnostic précoce, car les anticorps n'apparaissent qu'au bout de sept jours après l'apparition des symptômes.5 Le diagnostic bactériologique, quant à lui, repose sur l'isolement bactérien à partir du sang, au cours des cinq à sept premiers jours, et à partir du liquide-céphalo-rachidien et des urines après le 12ième jour suivant le début des symptômes. Cependant, l'isolement bactérien nécessite un délai de 10 jours à 2 mois avec une probabilité d'isolement du germe très faible, ce qui limite son intérêt particulièrement dans les formes graves. La méthode de la réaction en chaîne par polymérase (PCR pour « Polymerase Chain Reaction »), qui permet de détecter l'ADN des microorganismes présents dans les prélèvements, a été beaucoup rapportée du fait de sa sensibilité, spécificité et rapidité en diagnostic bactériologique. Le récent séquençage du génome des leptospires a marqué le début de l'ère post-génomique dans le diagnostic moléculaire de la leptospirose basé sur la PCR. A cet effet, différents outils moléculaires ont été développés : Ils sont basés sur l'amplification d'un ou de plusieurs gènes cibles universels telle que 16S, ligA, rrs, gyrB, lipL32 et secY. Toutefois, ces systèmes de PCR, classiques pour la plupart, ou de PCR en temps réel utilisant la fluorescence SYBR green présentent des limites de faible spécificité et sensibilité. En outre, la PCR en temps réel requiert une phase de courbe de fusion, afin de vérifier les températures de fusion des amplicons. De plus ils n'ont pas été concrètement validés sur les échantillons biologiques. Le document WO 99/424478 décrit une protéine de la membrane externe de 32 kDa, dénommée LipL32, exprimée spécifiquement chez les leptospires pathogènes. Il est proposé un kit de diagnostic contenant un acide nucléique codant LipL32 ou des anticorps capables de se lier à LipL32. Toutefois, il existe un besoin persistant de développer de nouveaux outils permettant le diagnostic fiable et rapide des souches pathogènes de Leptospires. DESCRIPTION DE L'INVENTION C'est dans ce cadre que s'est inscrit la démarche du présent Demandeur. La présente invention se distingue des solutions de l'art antérieur, notamment basées sur lipL32, puisqu'elle repose sur un gène appelé « gène de ménage », présent chez toutes les souches de leptospires. Il s'agit en l'occurrence du gène rpoB qui code la sous-unité 13 de l'ARN polymérase. A titre d'exemple, le gène rpoB de Leptospira interrogans serovar Copenhageni (genre : Leptospira ; espèce : interrogans ; sérogroupe : Icterohaemorrhagiae ; sérovar : Copenhageni) est situé aux positions 912196 à 915876 du génome et présente la séquence SEQ ID NO : 29. En pratique, le Demandeur a mis en évidence la présence d'une région de ce gène spécifique des espèces pathogènes. A noter que le gène rpoB a déjà été rapporté en rapport avec les leptospires mais 10 pour établir un arbre phylogénique et sur la base d'une autre région de 600 pb correspondant aux positions 1900 à 2500, par exemple de la séquence SEQ ID NO : 29 (La Scola et al., FEMS Microbiol. Lett. 263 (2006) 142-147) (Fig. 4). Ainsi et selon un premier aspect, la présente invention concerne l'utilisation du gène 15 rpoB pour diagnostiquer une souche pathogène de leptospire, avantageusement in vitro. Plus précisément, la présente invention concerne une méthode pour détecter la présence d'au moins une souche pathogène de leptospire dans un échantillon 20 biologique comprenant l'analyse de l'échantillon biologique pour une séquence correspondant à la séquence de la région 98-237 du gène rpoB de Leptospira interrogans serovar Copenhageni. La détection de ladite séquence indique la présence d'au moins une souche de leptospire pathogène dans l'échantillon. 25 En pratique, cette région de 140 pb présente la séquence SEQ ID NO : 2 chez Leptospira interrogans serovar Copenhageni. La séquence du gène rpoB pouvant être repérée sur les différents génomes des leptospires, la région correspondante est également aisément localisable. L'expression « séquence correspondant à la séquence de la région 98-237 du gène rpoB de Leptospira interrogans serovar Copenhageni » indique que la séquence n'est pas nécessairement strictement identique à ladite séquence SEQ ID NO : 2. 35 Ainsi, il a pu être mis en évidence dans le cadre de l'invention que cette région était hautement conservée parmi les sérovars connus de leptospires pathogènes avec une 30 identité au moins supérieure à 85%, avantageusement 90, voire 95%, voire 98%, voire même 99% d'identité avec la séquence SEQ ID NO : 2. En pratique, la séquence correspondante a pu être établie pour 24 de ces sérovars et 5 correspond aux séquences référencées SEQ ID NOS : 1 à 24. Au contraire, il a été montré dans le cadre de la présente invention que la région correspondante dans des leptospires non pathogènes (par exemple SEQ ID NO : 28) étaient beaucoup plus divergentes, avec un pourcentage d'identité inférieur à 75%. 10 L'expression « séquence correspondant à la séquence de la région 98-237 du gène rpoB de Leptospira interrogans serovar Copenhageni » indique également que l'échantillon biologique peut être investiguée pour une séquence de taille un peu différente, tout en permettant encore de discriminer les leptospires pathogènes des 15 non pathogènes. Ainsi, il s'avère notamment que l'ensemble des séquences SEQ ID NOS : 1 à 24 présentent en amont et en aval des séquences de très forte identité : en amont avec la séquence SEQ ID NO : 25 de 18 pb et en aval avec la séquence inverse 20 complémentaire de SEQ ID NO : 26 de 22 pb. Par conséquent, la région comprenant en outre ces 40 pb peut également être utilisée dans une méthode selon l'invention. La séquence totale présente alors une taille de 180 pb particulièrement bien adaptée pour la détection par PCR, notamment en temps réel. 25 De manière connue, l'échantillon biologique peut aussi bien être du sang, des urines, du liquide céphalo-rachidien, de l'humeur aqueuse, du sérum, que des organes tels que le rein et le foie. De manière avantageuse, le procédé est mis en oeuvre sur un échantillon de sang ou d'urine. 30 Par ailleurs, outre un échantillon biologique provenant d'un organisme vivant, avantageusement l'homme ou l'animal, l'échantillon biologique peut provenir de l'environnement. Il peut notamment s'agir d'eaux ou d'échantillons de l'environnement aquatique (boues, ...). 35 L'analyse de l'échantillon biologique pour la présence de la séquence telle que définie est avantageusement réalisée par la technique de PCR, encore plus avantageusement par PCR en temps réel. Ces techniques sont bien connues de l'homme du métier. Alternativement, il est envisageable de faire cette analyse par hybridation. Ainsi, il est possible de désigner une sonde s'hybridant à la région définie ci-dessus mais de manière spécifique vis-à-vis des leptopsires pathogènes. Une telle sonde peut par exemple avoir une séquence choisie parmi les séquences SEQ ID NO : 1 à 24 ou un fragment de celle-ci ne s'hybridant pas avec la SEQ ID NO : 28 dans les conditions expérimentales retenues. Cette analyse peut également être réalisée par séquençage directe de cette région. Un mode de réalisation privilégié selon l'invention concerne l'analyse de l'échantillon biologique par la technique de PCR à l'aide des séquences SEQ ID NO : 25 et SEQ ID NO : 26. Là encore, les amorces pouvant être utilisées dans ce cadre ne sont pas strictement limitées aux séquences SEQ ID NOS : 25 et 26 mais couvrent leurs dérivés fonctionnels c'est-à-dire des séquences de taille différente, homologues mais non identiques, mais qui permettent d'obtenir une amplification par PCR uniquement dans les cas de leptospires pathogènes. De manière encore plus privilégiée, l'analyse de l'échantillon biologique est réalisée par la technique de PCR en temps réel, avec en plus la mise en oeuvre d'une sonde marquée à l'aide de fluorophores. Ladite sonde présente avantageusement la séquence SEQ ID NO : 27. Selon un autre aspect, l'invention vise également un kit pour détecter la présence d'au moins une souche pathogène de leptospire dans un échantillon biologique contenant au moins un oligonucléotide comprenant : - une séquence d'ADN de séquence SEQ ID NO : 25 ou SEQ ID NO : 26 ou SEQ ID NO : 27 ; - une séquence d'ADN complémentaire à ces séquences ; - une séquence d'ARN correspondant à SEQ ID NO : 25 ou SEQ ID NO : 26 ou SEQ ID NO : 27 ; - une séquence d'ARN complémentaire à ces séquences. Dans un mode de réalisation privilégié, et notamment dans le cadre de diagnostics réalisés par PCR, voire par PCR en temps réel, un tel kit comprend des oligonucléotides de séquence SEQ ID NO : 25 et SEQ ID NO : 26, et éventuellement SEQ ID NO : 27. L'invention va maintenant être listée de manière non limitative par les exemples suivants, à l'appui des figures annexées. LEGENDES DES FIGURES La figure 1 représente l'analyse par Blast (« Basic Local Alignment Search Tool ») 10 des amorces rpoB désignées. La figure 2 représente l'analyse par Blast (« Basic Local Alignment Search Tool ») de la sonde rpoB désignée. La figure 3 illustre l'amplification par PCR en temps réel duplex du gène partiel rpoB des 24 souches de leptospires pathogènes et des 2 souches saprophytes. 15 La figure 4 schématise le génome de L. interrogans serovar Copenhageni et positionne la région d'intérêt pour le test diagnostic selon l'invention. La figure 5 illustre l'amplification par PCR en temps réel duplex du gène partiel rpoB de deux isolats de leptospires pathogènes et de 11 isolats bactériens. La figure 6 illustre l'amplification par PCR en temps réel duplex du gène partiel 20 rpoB des dilutions en série allant de 1x107 à 1x10' bactérie/mL de la souche L. interrogans serovar Icterohaemrrhagiae. EXEMPLES DE REALISATION 25 Matériels et méthodes 1/ Conception des amorces et de la sonde : Il a été procédé à une analyse bioinformatique par blast (« Basic Local Alignment 30 Search Tool ») des séquences du gène rpoB disponibles sur la database NCBI pour les souches L. interrogans (souche pathogène), L. borgpetersenii (souche pathogène) et L. biflexa (souche non pathogène). Une région d'environ 150 paires de bases (pb), communes aux deux espèces de leptospires pathogènes, a été sélectionnée. Des amorces et une sonde spécifique ont été désignées en utilisant le programme 35 Primer3. La spécificité des amorces (Figure 1) et de la sonde (Figure 2) a été vérifiée in silico par blast contre la base de donnée microbes sur NCBI (http :/, blast.ncbi.nlm.nih. gov/Blast.cgi) . 2/ Souches bactérienne et prélèvements cliniques : L'essai de PCR en temps réel a été réalisé sur les 24 souches de références de leptospires pathogènes disponibles au laboratoire, en plus des deux souches de leptospires saprophytes (L. biflexa serovar Patoc et L. meyeri serovar Semaranga) provenant de l'Unité de Biologie des Spirochètes de l'Institut Pasteur, Paris. L'ensemble de ces souches est listé dans le Tableau 1 ci-dessous : Sérogroupe Sérovar Séquence de la région rpoB associée ICTEROHAEMORRHAGIAE Icterohaemorrhagiae SEQ ID NO : 1 Copenhageni SEQ ID NO : 2 AUSTRALIS Muenchen SEQ ID NO : 3 Australis SEQ ID NO : 4 Bratislava SEQ ID NO : 5 AUTUMNALIS Autumnalis SEQ ID NO : 6 Bim SEQ ID NO : 7 BALLUM Castellonis SEQ ID NO : 8 BATAVIAE Bataviae SEQ ID NO : 9 CANICOLA Canicola SEQ ID NO : 10 GRIPPOTYPHOSA Grippotyphosa SEQ ID NO : 11 Vanderhoedoni SEQ ID NO : 12 HEBDOMADIS Kremastos SEQ ID NO : 13 PANAMA Panama cz214k SEQ ID NO : 14 Panama 374 SEQ ID NO : 15 Mangus SEQ ID NO : 16 POMONA Pomona SEQ ID NO : 17 PYROGENES Pyrogenes SEQ ID NO : 24 SEJROE Sejroe SEQ ID NO : 18 Saxkoebing SEQ ID NO : 19 Wolffi SEQ ID NO : 20 Hardjo SEQ ID NO : 21 TARASSOVI Tarassovi SEQ ID NO : 22 CYNOPTERI Cynopteri SEQ ID NO : 23 BIFLEXA (non pathogène) Patoc SEQ ID NO : 28 MEYERI (non pathogène) Semaranga Tableau 1 : Souches de leptospires pathogènes et saprophytes inclues dans l 'étude L'essai a ensuite été validé sur 32 prélèvements cliniques parmi lesquels : - 17 prélèvements de sang ; - 11 prélèvements d'urine ; et - 4 prélèvements d'organes (reins) / Extraction d'ADN bactérien : A partir des souches de leptospires, un volume de 300 µl de culture sur EMJH a été prélevé pour servir à l'extraction d'ADN à l'aide du kit QIAamp DNA kit (QIAGEN, Courtaboeuf, France) selon les instructions du fabricant. L'extraction d'ADN à partir de certains prélèvements cliniques est précédée d'un traitement des échantillons suivant leur nature. En effet pour les organes tels que le foie, rein ou coeur, des tissus de 25 mg sont découpés en petits morceaux, transférés dans un sachet filtre (Filter bags, Seward, Angleterre), puis lacérés et broyés en utilisant le stomacher (Stomacher 400 Circulator, Seward, Angleterre). L'extraction d'ADN est ensuite réalisée sur le broyat obtenu. Les prélèvements d'urine et d'eau sont centrifugés pendant 10 minutes et 30 minutes à 7500 rpm respectivement. Le culot obtenu sert à l'extraction d'ADN. 4/ Définition de la spécificité de l'essai : Afin de tester la spécificité de l'essai, parallèlement au test in silico décrit ci-dessus du blast des amorces et de la sonde, l'expérience de PCR en temps réel a été réalisée en présence d'une collection de souches microbiennes, et plus précisément sur les 11 isolats bactériens suivants : - Pasteurella aerogenes ; - Listeria monocytogenes ; - Salmonella enterica serovar Typhi ; - Enterococcus faecalis ; - Escherichia coli ; - Mycobacterium avium silvaticum ; - Pseumonas aeruginosa ; - Legionella pneumophila ; - Actinomyces pyogenes ; - Burkholderia pseudomallei ; et - Shigella boydii. Ces microorganismes sont susceptibles d'induire un tableau clinique similaire à la leptospirose ou complique le diagnostic de laboratoire par leur seule présence dans les échantillons et donc de donner de faux positifs dans certains tests diagnostics. 9 5/ Définition de la sensibilité de l'essai : La sensibilité de l'essai a été testée en utilisant une suspension bactérienne de la souche L. interrogans serovar Icterohaemorrhagiae. La suspension a été quantifiée par comptage bactérien (Numération en cellule de Petroff-Hauser) et le nombre de bactéries par millilitre a été calculé. Des dilutions en série ont ensuite été réalisées, allant de 1x107 à 1x101 bactéries/mL. Par ailleurs, la répétabilité et la reproductivité de l'essai ont été évaluées sur 3 reliquats pour les différentes dilutions. 6/ Réaction d'amplification en temps réel : Les ADN extraits ont été amplifiés en présence des amorces et la sonde spécifiques ciblant la zone partielle du gène rpoB, dont les séquences sont les suivantes : - une amorce « forward » de 18 pb : rpoB F 5'GTCTTGCCTTCCGAGTCG3' (SEQ ID NO : 25) ; - une amorce « reverse » de 22 pb : rpoB R 5'TCTGCAAGAGTTRTTGACCATC3' (SEQ ID NO : 26). A noter que la base dégénérée R est susceptible de reconnaître à la fois la base A et G ; - une sonde de 22 pb : Fam-5' CGCACGTCCGAGCATATCGTCG3'-Tamra (SEQ ID NO : 27), Fam et Tamra étant deux marqueurs de fluorescence. Le mélange réactionnel (mix) pour chaque échantillon est composé de : - 12.5 µL de « universal PCR Master mix 2x » (Applied Biosystems, Courtaboeuf, France) 2.5 µL de « exogenous internai positive control mix l0x » (Applied Biosystems) ; - 0.5 µL de « exogenous internai positive control DNA » ; - 200 nmol/L de chaque amorce ; - 100 nmol/L de sonde ; et - 1 µL d'ADN cible pour un volume final de 25µ1 ajusté avec de l'eau distillée stérile. La réaction de PCR en temps réel comprend une étape d'activation à 95°C pendant 10 minutes, suivie par 40 cycles d'amplification à 95°C pendant 15 secondes et 60°C pendant 1 minute. Un contrôle positif interne est utilisé comme contrôle, d'où l'appellation «PCR en temps réel en duplex de l'essai », et ceci pour évaluer les inhibiteurs de la PCR en présence de certains prélèvements biologiques, tels que les urines susceptibles de contenir beaucoup d'inhibiteurs. Des contrôles négatifs comprenant le mix sans la matrice sont également inclus dans la réaction. 7/ Diagnostic de référence : Afin de valider les résultats sur les prélèvements cliniques, il a été procédé, en parallèle à l'essai de PCR en temps réel duplex décrit ci-dessus, une analyse de référence par MAT (Microscopique Agglutination Test) effectué sur le sérum correspondant aux prélèvements cliniques, mais aussi à la mise en culture de ces prélèvements sur milieu Ellinghausen-McCullough-Johnson-Harris (EMJH) incubés à 30°C pendant 10 semaines. Résultats 1/ Essai de PCR en temps réel : Une amplification positive a été obtenue en présence des 24 souches de leptospires pathogènes. En revanche, aucun signal n'a été détecté avec les souches saprophytes ainsi que pour les contrôles négatifs (Figure 3). Ceci permet de conclure que le test est 100% spécifique des leptospires pathogènes. En analysant les séquences amplifiées entre les deux amorces rpoB F (SEQ ID NO : 25) et rpoB R (SEQ ID NO : 26), il a été possible d'obtenir la séquence exacte de cette région dans les différentes sérovars de leptospires pathogènes. Ces séquences, dénommées SEQ ID NO : 1 à 24, sont répertoriées dans le tableau 1 ci-dessus. Elles contiennent de 139 à 141 pb, la grande majorité de ces séquences (22 sur 24) ayant l40 bp. Toutes ces séquences sont flanquées en amont d'une séquence de 18 pb identique à la séquence de l'amorce rpoB F, à savoir la séquence SEQ ID NO : 25 et en aval d'une séquence de 22 pb correspondant à la séquence complémentaire inverse de l'amorce rpoB R, à savoir la séquence SEQ ID NO : 26. La séquence globale de ces régions a donc une taille d'environ 180 pb. Par ailleurs, la séquence de la sonde (SEQ ID NO : 27) est retrouvée à 2 bases près dans chacune de ces séquences SEQ ID NOS : 1 à 24, par exemple aux positions 114 à 135 de la SEQ ID NO : 1. Une comparaison de ces séquences entre elles révèle une grande homogénéité, avec un pourcentage de divergence entre les différents sérovars pathogènes (SEQ ID NOS : 1 à 24) qui varient de 100 à 87,4%. A titre d'exemple, cette région a pu être localisée sur le génome de L. interrogans serovar Copenhageni. Comme illustré à la figure 4, la séquence SEQ ID NO : 2 est localisée aux positions 98 à 237 par rapport au gène rpoB, ledit gène correspondant aux positions 912196 à 915876 du génome et présentant la séquence SEQ ID NO : 29. Par ailleurs, l'utilisation des deux amorces décrites ci-dessus a permis de localiser une région équivalente chez L. Biflexa mais qui n'est pas amplifiée dans le cadre du présent test diagnostic : il s'agit de la séquence SEQ ID NO : 28, dont le pourcentage de divergence avec les séquences des leptospires pathogènes est d'au moins 74.29%. 2/ Spécificité et sensibilité de l'essai : Afin de tester la spécificité du système, le même essai a été mis en oeuvre en présence d'une collection de 11 souches microbiennes. La PCR en temps réel n'a 20 permis de détecter aucun signal d'amplification sur ces isolats bactériens (Figure 5). Par ailleurs l'essai s'est avéré très sensible puisqu'il est possible de détecter des leptospires pathogènes jusqu'à une dilution minimale de 1x101 bactérie/mL (Figure 6). Enfin, les triplicats d'ADN de souches de leptospires pathogènes, amplifiés en essai de PCR en temps réel dans le même « run » ou dans des « runs » différents, donnent un signal positif avec une variation du nombre de cycles « thresholds » (Ct) allant de o à 0.5 Ct. 3/ Détection des leptospires pathogènes dans les prélèvements cliniques : L'essai de PCR en temps réel réalisé sur les prélèvements de sang, d'urine et d'organe a permis de détecter 18 positifs sur 32 échantillons. Ces résultats positifs 35 sont en corrélation avec l'analyse sérologique par MAT et la culture. Les prélèvements révélés négatifs par l'essai sont également négatifs en sérologie et en culture de 10 semaines. 25 30 Par ailleurs, concernant la sensibilité de l'essai sur les prélèvements cliniques, l'essai a permis de détecter jusqu'à lxl0' bactérie/mL. Toutefois, il a été noté des valeurs de Ct constantes pour les répliquats, mais élevées (avoisinant les 39 cycles), ce qui s'explique probablement par le potentiel inhibiteur que contiennent les prélèvements biologiques d'une façon générale. Pour les urines, l'effet d'inhibiteurs est plus prononcé puisque les prélèvements d'urine s'effectue à partir de valeurs de Ct de 40 cycles pour la cible rpoB, ce qui justifie la nécessité de centrifuger les urines afin de concentrer les leptospires avant l'extraction d'ADN. Conclusions Il a été mis au point et évalué un essai de PCR en temps réel avec une sonde Taqman ciblant la région partielle du gène rpoB pour la détection des leptospires pathogènes. L'essai s'est révélé parfaitement spécifique puisqu'il permet la détection des leptospires pathogènes, mais pas celle de leptospires saprophytes ou d'autres souches microbiennes susceptibles d'induire des faux positifs. Par ailleurs, le test est reproductible et permet de détecter jusqu'à lxl0' bactérie/mL, aussi bien dans les cultures que dans les prélèvements cliniques, avec des différences de Ct qui varient suivant la nature du prélèvement. 25 L'essai de PCR en temps réel est un apport important pour le diagnostic précoce de la leptospirose qui remplacerait la sérologie et la culture, particulièrement dans les cas de forme grave de la maladie ou dans les situations d'épidémie au sein d'un élevage animal ou chez l'homme. 30 REVENDICATIONS1/ Utilisation du gène rpoB pour diagnostiquer in vitro une souche pathogène de leptospire. 2/ Méthode pour détecter in vitro la présence d'au moins une souche pathogène de leptospire dans un échantillon biologique comprenant l'analyse de l'échantillon biologique pour une séquence présentant au moins 85% d'identité avec la séquence de la région 98-237 (SEQ ID NO : 2) du gène rpoB de Leptospira interrogans serovar Copenhageni, dans laquelle la détection de ladite séquence indique la présence d'au moins une souche de leptospire pathogène dans l'échantillon. 3/ Méthode selon la revendication 2 caractérisée en ce que l'échantillon biologique 15 est analysé pour une séquence présentant au moins 90%, voire 95%, voire 98%, voire même 99% d'identité avec la séquence SEQ ID NO : 2. 4/ Méthode selon la revendication 3 caractérisée en ce que l'échantillon biologique est analysé pour une séquence choisie dans le groupe des séquences SEQ ID NO : 1 à 20 24. 5/ Méthode selon l'une des revendications 2 à 4 caractérisée en ce que l'échantillon biologique est du sang, des urines, du liquide céphalo-rachidien, de l'humeur aqueuse, du sérum, des organes tels que le rein, avantageusement du sang. 6/ Méthode selon l'une des revendications 2 à 4 caractérisée en ce que l'échantillon biologique est de l'eau ou un échantillon de l'environnement aquatique. 7/ Méthode selon l'une des revendications 2 à 6 caractérisée en ce que l'échantillon 30 biologique est analysé par la technique de PCR, avantageusement par PCR en temps réel. 8/ Méthode selon la revendication 7 caractérisée en ce que l'échantillon biologique est analysé par la technique de PCR à l'aide des séquences SEQ ID NO : 25 et SEQ 35 ID NO : 26. 259/ Méthode selon la revendication 8 caractérisée en ce que l'échantillon biologique est analysé par la technique de PCR en temps réel, à l'aide des séquences SEQ ID NO : 25, SEQ ID NO : 26 et SEQ ID NO : 27. 10/ Kit pour détecter la présence d'au moins une souche pathogène de leptospire dans un échantillon biologique contenant au moins un oligonucléotide comprenant : - une séquence d'ADN de séquence SEQ ID NO : 25 ou SEQ ID NO : 26 ou SEQ ID NO : 27 ; - une séquence d'ADN complémentaire à ces séquences ; - une séquence d'ARN correspondant à SEQ ID NO : 25 ou SEQ ID NO : 26 ou SEQ ID NO : 27 ; - une séquence d'ARN complémentaire à ces séquences. 11/ Kit selon la revendication 10 caractérisé en ce qu'il comprend des 15 oligonucléotides de séquence SEQ ID NO : 25 et SEQ ID NO : 26, et éventuellement SEQ ID NO : 27.