FR 2953841 A1 20110617 FR 0906090 A 20091216 ANTICORPS DIRIGES CONTRE LE RECEPTEUR DE LA TRANSFERRINE ET LEURS UTILISATIONS POUR L'IMMUNOTHERAPIE DES TUMEURS QUI DEPENDENT DU FER La présente invention a pour objet une nouvelle famille d'anticorps dirigés contre le récepteur de la transferrine (anticorps anti-récepteurs de la transferrine) entièrement humains et cytotoxiques, induisant la mort des cellules cancéreuses hématopoïétiques humaines. La transferrine (Tf) est une protéine sérique de 80 kDa dont le rôle est de fixer le fer soluble. Elle est endocytée dans les cellules suite à sa liaison avec le récepteur de la transferrine (TfR). L'acidification de l'endosome induit un changement conformationnel qui relargue le fer dans le cytosol. Le complexe Tf/TfR est ensuite reexporté à la membrane où le retour à un pH physiologique provoque une dissociation du complexe Tf/TfR. Le récepteur de la transferrine humaine (TfR), un marqueur de prolifération cellulaire, joue un rôle prépondérant dans l'absorption cellulaire du fer et dans la régulation de la croissance cellulaire. Il a longtemps été considéré comme une cible intéressante pour diverses pathologies, dont le cancer (car il est surexprimé sur de nombreuses cellules fortement proliférantes) et les maladies cérébrales (car il est exprimé sur la barrière hémato-encéphalique), pour des approches thérapeutiques ou diagnostiques. Ainsi, au cours des 25 dernières années, un certain nombre d'anticorps monoclonaux (AcM) murins anti-récepteurs de la transferrine (anti-TfR) ont été élaborés au moyen de la technologie des hybridomes, et ils ont été testés pour leur effet inhibiteur in vitro et parfois in vivo sur des modèles murins de cancer (Daniels et al., The transferrin receptor part I or part II, Clin Immunol., 2006) ou en tant que véhicules pour un ciblage du cerveau (Pardridge, Drug targeting to the brain, Pharm res 24 : 1733, 2007). En théorie, l'utilisation d'anticorps monoclonaux anti-récepteurs de la transferrine (AcM anti-TfR) cytotoxiques pour l'immunothérapie du cancer aurait dû être limitée par les effets indésirables induits sur les cellules dépendantes du fer telles que les lignées hématopoïétiques fortement proliférantes. Cependant, un essai de phase I réalisé avec l'AcM 42/6 qui induit une déplétion en fer s'est révélé encourageant car aucun effet secondaire sur les patients n'a été observé lors de l'administration de l'anticorps (Brooks et al., Clin Cancer Res 1 : 1259, 1995). Toutefois aucune réponse au cancer n'a été observée chez les patients avec l'anticorps 42/6. Il est probable que l'échec de cet essai clinique ait été dû au statut étranger (murin) de l'anticorps humain anti-souris (HAMA) qui a initié la réponse immunitaire chez les patients, et à la rapide dégradation de l'anticorps qui s'en est suivie après les injections répétées. L'anticorps murin A24, qui est un AcM anti-TfR inhibiteur de croissance, est actif sur des échantillons de formes aiguës et chroniques de leucémie / lymphome à cellules T chez l'adulte in vitro (Moura et al., Blood 103: 1838, 2004 ; Callens et al., Leukemia 22 :42, 2008) ainsi que sur l'établissement de lymphomes du manteau chez la souris (Lepelletier et al., Cancer Res 67 : 1145, 2007). L'AcM A24 interfère avec le ligand naturel du TfR de la transferrine diferrique chargée ou holotransferrine (holo-Tf). L'A24 diminue l'endocytose de l'holo-Tf et par conséquent l'entrée de fer dans les cellules. De plus, l'AcM A24 réduit l'expression des TfR en perturbant le recyclage des TfR à la surface des cellules. Parmi les anticorps monoclonaux AcM anti-TfR décrits comme cytotoxiques dans la littérature, tous n'inhibent pas la liaison de la transferrine au TfR. Leur action antiproliférative ou cytotoxique résulte soit d'un pontage entre plusieurs récepteurs induisant la dégradation du TfR ou bien par l'enclenchement d'ADCC (cytotoxicité cellulaire dépendante des anticorps) et de CDC (cytotoxicité dépendante du complément) (Daniels et al., The transferrin receptor part I or part II, Clin Immunol., 2006). Sachant que le TfR est exprimé à la surface de certaines cellules quiescentes (cellules de la lignée érythroïde, cellules de l'endothélium vasculaire cérébral, hépatocytes, cellules tubulaires rénales), le mode d'action de ces anticorps peut présenter une certaine cytotoxicité envers ces types cellulaires. L'ensemble des anticorps anti-TfR existants à ce jour sont des anticorps issus d'immunisations d'animaux. En tant qu'agents thérapeutiques ils présentent donc une immunogénicité potentielle non négligeable qui limite leur utilisation. Il n'existe pas à l'heure actuelle d'anticorps monoclonal anti-TfR sur le marché. II existe toutefois des études précliniques en cours pour le développement d'un anticorps chimérique anti-TfR développé par la société MAT Biopharma appliqué au mélanôme métastatique. Cependant l'activité anti-tumorale de cet anticorps s'exerce par recrutement d'ADCC (cytotoxicité cellulaire dépendante des anticorps) et de CDC (cytotoxicité dépendante du complément). Ainsi, les traitements utilisés à ce jour dans les hémopathies malignes reposent en partie sur l'utilisation de chimiothérapies et d'inhibiteurs pharmacologiques dirigés contre l'activité tyrosine kinase de certains récepteurs. Les chimiothérapies sont adaptées en fonction des pathologies et du stade et grade des tumeurs. Les effets secondaires sont importants et sont liés au manque de spécificité du traitement. Les inhibiteurs pharmacologiques s'avèrent être plus spécifiques mais présentent tout de même une toxicité causée par leur liaison à plusieurs familles de récepteurs ou molécules de signalisation intracellulaire à activité enzymatique. De plus on constate chez certains patients l'apparition de résistances en cours des traitements reliée à l'acquisition de mutations. Ainsi, il est encore et toujours nécessaire à ce jour de proposer de nouvelles solutions au traitement du cancer. Un des buts de l'invention est donc de mettre à disposition de nouveaux anticorps thérapeutiques qui ciblent le récepteur de la transferrine humaine (TfR) et qui présentent un haut potentiel pour le traitement du cancer, en particulier de type lymphôme ou leucémie. Un autre but de l'invention est de mettre à disposition de nouveaux anticorps thérapeutiques qui ciblent le récepteur de la transferrine humaine et qui puissent être utilisés pour le traitement de maladies auto-immunes. Un autre but de l'invention est de proposer de nouveaux anticorps ciblant le récepteur de la transferrine humaine qui puissent être utilisés pour la vectorisation de molécules biologiquement actives, et plus particulièrement d'agents cytotoxiques, au sein de cellules tumorales surexprimant le TfR. Un autre but de l'invention est de proposer de nouveaux anticorps ciblant le récepteur de la transferrine humaine qui puissent être utilisés pour la vectorisation de molécules diagnostiques, et plus particulièrement pour l'imagerie cérébrale. Les nouveaux anticorps objets de la présente invention s'avèrent être des molécules à haut potentiel thérapeutique pour les raisons exposées ci-après et répondent à l'ensemble des buts susmentionnés. En effet les Inventeurs de la présente invention ont mis au point de nouveaux anticorps monoclonaux entièrement humains et cytotoxiques, spécifiques du récepteur de la transferrine (TfR), qui inhibent la liaison de la transferrine (Tt) au récepteur de la transferrine (TfR), et qui privent ainsi les cellules en fer. De façon particulièrement avantageuse les anticorps humains objets de la présente invention présentent une activité antiproliférative et cytotoxique envers des cellules cancéreuses d'origine hématopoïétique in vitro ainsi qu'in vivo. La présente invention a plus particulièrement pour objet une nouvelle construction moléculaire caractérisée en ce qu'elle comprend au moins une séquence en acides aminés choisie parmi : SEQ ID NO : 1, SEQ ID NO : 2, SEQ ID NO : 3, SEQ ID NO : 4, SEQ ID NO : 5, SEQ ID NO : 6, SEQ ID NO : 7, SEQ ID NO : 8, SEQ ID NO : 9, SEQ ID NO : 10, SEQ ID NO : 11, SEQ ID NO : 12, SEQ ID NO : 13, SEQ ID NO : 14, SEQ ID NO : 15, SEQ ID NO : 16, SEQ ID NO : 17, SEQ ID 4 NO : 18, SEQ ID NO : 19, SEQ ID NO : 20, SEQ ID NO : 21, SEQ ID NO : 22, SEQ ID NO : 23, SEQ ID NO : 24, SEQ ID NO : 25, SEQ ID NO : 26, SEQ ID NO : 27, SEQ ID NO : 28, SEQ ID NO: 29, SEQ ID NO : 30, SEQ ID NO : 31, SEQ ID NO: 32, SEQ ID NO : 33, SEQ ID NO : 34, SEQ ID NO : 35 et SEQ ID NO : 36, ladite séquence en acides aminés correspondant à une région déterminant la complémentarité avec l'antigène ("CDR" : « complementarity determining region ») du domaine variable de la chaîne lourde (CDR-H) ou de la chaîne légère (CDR-L) d'un anticorps ciblant le récepteur de la transferrine humaine (TfR). Par construction moléculaire on entend toute construction (telle que par exemple une molécule, un anticorps ou un fragment d'anticorps ou autre), qui pourrait être préparée par l'homme du métier et qui comprendrait une des quelconques séquences en acides aminés SEQ ID NO : 1 à 36 telles que définies dans la présente demande. La construction moléculaire de l'invention est plus particulièrement constituée par au moins l'une des séquences en acides aminés choisie parmi : SEQ ID NO : 3, SEQ ID NO : 6, SEQ ID NO : 9, SEQ ID NO : 12, SEQ ID NO : 15, SEQ ID NO : 18, SEQ ID NO : 21, SEQ ID NO : 24, SEQ ID NO : 27, SEQ ID NO : 30, SEQ ID NO : 33 et SEQ ID NO : 36. Les séquences ainsi définies correspondent plus particulièrement aux CDR qui se trouvent en 20 position numérotée 3 dans chaque chaîne lourde (CDR3-H) ou dans chaque chaîne légère (CDR3-L) d'un anticorps ciblant le récepteur de la transferrine humaine (TfR). Plus particulièrement, les séquences SEQ ID NO : 3, SEQ ID NO : 9, SEQ ID NO : 15, SEQ ID NO : 21, SEQ ID NO : 27 et SEQ ID NO : 33 correspondent aux « CDR3-H » et les séquences SEQ ID NO : 6, SEQ ID NO : 12, SEQ ID NO : 18, SEQ ID NO : 24, SEQ ID NO : 30 et SEQ ID 25 NO : 36 correspondent aux « CDR3-L ». Selon l'invention, l'une au moins des séquences SEQ ID NO: 1 à SEQ ID NO: 36 de la construction moléculaire est comprise dans l'une des séquences en acides aminés choisies parmi: 30 SEQ ID NO: 37, SEQ ID NO : 38, SEQ ID NO: 39, SEQ ID NO : 40, SEQ ID NO : 41, SEQ ID NO : 42, SEQ ID NO : 43, SEQ ID NO : 44, SEQ ID NO : 45, SEQ ID NO : 46, SEQ ID NO : 47 et SEQ ID NO : 48, chacune desdites séquences SEQ ID NO: 37 à SEQ ID NO: 48 correspondant au domaine variable de la chaîne lourde (VH) ou de la chaîne légère (VL) d'un anticorps ciblant le récepteur de 35 la transferrine humaine (TfR), ladite séquence SEQ ID NO : 37 comprenant les séquences SEQ ID NO : 1, SEQ ID NO : 2 et SEQ ID NO : 3, ladite séquence SEQ ID NO : 38 comprenant les séquences SEQ ID NO : 4, SEQ ID NO : 5 et SEQ ID NO : 6, ladite séquence SEQ ID NO : 39 comprenant les séquences SEQ ID NO : 7, SEQ ID NO : 8 et SEQ ID NO : 9, ladite séquence SEQ ID NO : 40 comprenant les séquences SEQ ID NO : 10, SEQ ID NO : 11 et SEQ ID NO : 12, ladite séquence SEQ ID NO : 41 comprenant les séquences SEQ ID NO : 13, SEQ ID NO : 14 et SEQ ID NO : 15, ladite séquence SEQ ID NO : 42 comprenant les séquences SEQ ID NO : 16, SEQ ID NO : 17 et 10 SEQ ID NO : 18, ladite séquence SEQ ID NO : 43 comprenant les séquences SEQ ID NO : 19, SEQ ID NO : 20 et SEQ ID NO : 21, ladite séquence SEQ ID NO : 44 comprenant les séquences SEQ ID NO : 22, SEQ ID NO : 23 et SEQ ID NO : 24, 15 ladite séquence SEQ ID NO : 45 comprenant les séquences SEQ ID NO : 25, SEQ ID NO : 26 et SEQ ID NO : 27, ladite séquence SEQ ID NO : 46 comprenant les séquences SEQ ID NO : 28, SEQ ID NO : 29 et SEQ ID NO : 30, ladite séquence SEQ ID NO : 47 comprenant les séquences SEQ ID NO : 31, SEQ ID NO : 32 et 20 SEQ ID NO : 33, ladite séquence SEQ ID NO : 48 comprenant les séquences SEQ ID NO : 34, SEQ ID NO : 35 et SEQ ID NO : 36. De même selon l'invention, l'une au moins des séquences SEQ ID NO : 37 à SEQ ID NO : 48 est 25 comprise dans l'une des séquences en acides aminés choisies parmi : SEQ ID NO : 49, SEQ ID NO : 50, SEQ ID NO : 51, SEQ ID NO : 52, SEQ ID NO : 53 et SEQ ID NO: 54, chacune desdites séquences SEQ ID NO : 49 à SEQ ID NO : 54 comprenant le domaine variable de la chaîne lourde (VH) et de la chaîne légère (VL) d'un anticorps ciblant le récepteur de la 30 transferrine humaine (TfR), ladite séquence SEQ ID NO : 49 comprenant les séquences SEQ ID NO : 37 et SEQ ID NO : 38 reliées entre elles par le peptide de liaison présentant une séquence en acides aminés SEQ ID NO : 109, ladite séquence SEQ ID NO : 50 comprenant les séquences SEQ ID NO : 39 et SEQ ID NO : 40 35 reliées entre elles par le peptide de liaison SED ID NO : 109, ladite séquence SEQ ID NO : 51 comprenant les séquences SEQ ID NO : 41 et SEQ ID NO : 42 reliées entre elles par le peptide de liaison SED ID NO : 109, ladite séquence SEQ ID NO : 52 comprenant les séquences SEQ ID NO : 43 et SEQ ID NO : 44 reliées entre elles par le peptide de liaison SED ID NO : 109, ladite séquence SEQ ID NO : 53 comprenant les séquences SEQ ID NO : 45 et SEQ ID NO : 46 reliées entre elles par le peptide de liaison SED ID NO : 109, ladite séquence SEQ ID NO : 54 comprenant les séquences SEQ ID NO : 47 et SEQ ID NO : 48 reliées entre elles par le peptide de liaison SEQ ID NO : 109. Les différentes séquences SEQ ID NO : 37 à SEQ ID NO : 48 susmentionnées pourraient aussi être liées entres elles par un peptide qui présenterait une séquence différente de SEQ ID NO : 10 109. Si la taille du peptide de liaison est par exemple diminuée, on obtiendrait alors des molécules de type « diabodies », Cependant on peut également envisager d'augmenter la taille du peptide de liaison. 15 Les séquences SEQ ID NO : 49 à SEQ ID NO : 54 comprennent chacune la totalité du domaine variable de la chaîne lourde et de la chaîne légère d'un anticorps ciblant le récepteur de la transferrine humaine (TfR). Les séquences SEQ ID NO : 37, SEQ ID NO : 39, SEQ ID NO : 41, SEQ ID NO : 43, SEQ ID NO : 45 et SEQ ID NO : 47 définissent chacune la totalité du domaine variable de la chaîne lourde (VH) 20 d'un anticorps ciblant le récepteur de la transferrine humaine (TfR). Les séquences SEQ ID NO : 38, SEQ ID NO : 40, SEQ ID NO : 42, SEQ ID NO : 44, SEQ ID NO : 46 et SEQ ID NO : 48 définissent chacune la totalité du domaine variable de la chaîne légère (VL) d'un anticorps ciblant le récepteur de la transferrine humaine (TfR). Les SEQ ID NO : 1 à 3, 7 à 9, 13 à 15, 19 à 21, 25 à 27 et 31 à 33 définissent chacune une région 25 déterminant la complémentarité avec l'antigène du domaine variable de la chaîne lourde (CDR-H) d'un anticorps ciblant le récepteur de la transferrine humaine (TfR). Les SEQ ID NO : 4 à 6, 10 à 12, 16 à 18, 22 à 24, 28 à 30 et 34 à 36 définissent chacune une région déterminant la complémentarité avec l'antigène du domaine variable de la chaîne légère (CDR-L) d'un anticorps ciblant le récepteur de la transferrine humaine (TfR). 30 Ainsi, les séquences SEQ ID NO: 1 à SEQ ID NO: 54 concernent la totalité ou une partie seulement du domaine variable de la chaîne lourde et/ou légère d'un anticorps ciblant le récepteur de la transferrine humaine (TfR). 35 Selon un mode de réalisation avantageux de l'invention, la construction moléculaire telle que définie ci-dessus se présente sous la forme d'un monomère. Selon un autre mode de réalisation avantageux de l'invention, la construction moléculaire telle que définie ci-dessus se présente sous la forme d'un dimère. Selon encore un autre mode de réalisation avantageux de l'invention, la construction moléculaire telle que définie ci-dessus comporte en outre un fragment Fc. De façon préférée selon l'invention, la construction moléculaire telle que définie ci-dessus est plus particulièrement un anticorps ou un fragment d'anticorps. Les séquences SEQ ID NO : 49 à SEQ ID NO : 54 telles que définies dans la présente demande définissent plus précisément des fragments d'anticorps et non des anticorps « complets » puisque ces séquences ne comprennent pas le domaine constant retrouvé dans les anticorps natifs (immunoglobines). De manière générale, un anticorps diffère d'un autre par la séquence primaire de son domaine variable de la chaîne lourde (VH) et de la chaîne légère (VL). La séquence du domaine constant est identique pour une classe ou une sous-classe donnée d'anticorps. Ainsi, pour être tout à fait précis, le terme « anticorps » tel qu'utilisé ci-dessus et ci-dessous pour définir l'objet de la présente invention doit plus particulièrement être compris comme « fragment d'anticorps ». Les anticorps ou fragments d'anticorps de l'invention sont tous spécifiques du TfR mais n'ont pas les mêmes séquences primaires (voir SEQ ID NO : 49 à SEQ ID NO: 54). Lesdits anticorps diffèrent par leur paratope, à savoir la zone de contact de l'épitope sur l'antigène, en l'occurrence le TfR. La présente invention a également pour objet les séquences nucléotidiques caractérisées en ce qu'elles codent respectivement pour les séquences en acides aminés SEQ ID NO : 1 à SEQ ID NO : 36 telles que définies ci-dessus et en ce qu'elles sont représentées respectivement par les séquences SEQ ID NO : 55 à SEQ ID NO : 90. Ainsi SEQ ID NO : 55 représente la séquence nucléotidique codant pour la séquence en acides aminés SEQ ID NO : 1 et ainsi de suite (SEQ ID NO : 56 codant pour SEQ ID NO : 2, SEQ ID NO : 57 codant pour SEQ ID NO : 3, SEQ ID NO : 58 codant pour SEQ ID NO : 4, SEQ ID NO : 59 codant pour SEQ ID NO : 5, SEQ ID NO : 60 codant pour SEQ ID NO : 6, SEQ ID NO : 61 codant pour SEQ ID NO : 7, SEQ ID NO : 62 codant pour SEQ ID NO : 8, SEQ ID NO : 63 codant pour SEQ ID NO : 9, SEQ ID NO : 64 codant pour SEQ ID NO : 10, SEQ ID NO : 65 codant pour SEQ ID NO : 11, SEQ ID NO : 66 codant pour SEQ ID NO : 12, SEQ ID NO : 67 codant pour SEQ ID NO : 13, SEQ ID NO : 68 codant pour SEQ ID NO : 14, SEQ ID NO : 69 codant pour SEQ ID NO : 8 2953841 15, SEQ ID NO : 70 codant pour SEQ ID NO : 16, SEQ ID NO : 71 codant pour SEQ ID NO : 17, SEQ ID NO : 72 codant pour SEQ ID NO : 18, SEQ ID NO : 73 codant pour SEQ ID NO : 19, SEQ ID NO : 74 codant pour SEQ ID NO : 20, SEQ ID NO : 75 codant pour SEQ ID NO : 21, SEQ ID NO : 76 codant pour SEQ ID NO : 22, SEQ ID NO : 77 codant pour SEQ ID NO : 23, SEQ ID NO : 5 78 codant pour SEQ ID NO : 24, SEQ ID NO : 79 codant pour SEQ ID NO : 25, SEQ ID NO : 80 codant pour SEQ ID NO: 26, SEQ ID NO : 8lcodant pour SEQ ID NO: 27, SEQ ID NO : 82 codant pour SEQ ID NO : 28, SEQ ID NO : 83 codant pour SEQ ID NO : 29, SEQ ID NO : 30 codant pour SEQ ID NO : 84, SEQ ID NO : 31 codant pour SEQ ID NO : 85, SEQ ID NO : 32 codant pour SEQ ID NO : 86, SEQ ID NO : 33 codant pour SEQ ID NO : 87, SEQ ID NO : 34 10 codant pour SEQ ID NO : 88, SEQ ID NO : 35 codant pour SEQ ID NO : 89 et SEQ ID NO : 36 codant pour SEQ ID NO : 90). La présente invention a également pour objet les séquences nucléotidiques caractérisées en ce qu'elles codent respectivement pour les séquences en acides aminés SEQ ID NO : 37 à SEQ ID 15 NO : 48 telles que définies ci-dessus et en ce qu'elles sont représentées respectivement par les séquences SEQ ID NO : 91 à SEQ ID NO : 102. Ainsi SEQ ID NO : 91 représente la séquence nucléotidique codant pour la séquence en acides aminés SEQ ID NO : 37 et ainsi de suite (SEQ ID NO : 92 codant pour SEQ ID NO : 38, SEQ ID NO : 93 codant pour SEQ ID NO : 39, SEQ ID NO : 94 codant pour SEQ ID NO : 40, SEQ ID NO : 20 95 codant pour SEQ ID NO : 41, SEQ ID NO : 96 codant pour SEQ ID NO : 42, SEQ ID NO : 97 codant pour SEQ ID NO : 43, SEQ ID NO : 98 codant pour SEQ ID NO : 44, SEQ ID NO : 99 codant pour SEQ ID NO : 45, SEQ ID NO : 100 codant SEQ ID NO : 46, SEQ ID NO : 101 codant pour SEQ ID NO : 47, SEQ ID NO : 102 codant pour SEQ ID NO : 48). 25 L'invention concerne aussi les séquences nucléotidiques caractérisées en ce qu'elles codent respectivement pour les séquences en acides aminés SEQ ID NO : 49 à SEQ ID NO : 54 telles que définies ci-dessus et en ce qu'elles sont représentées respectivement par les séquences SEQ ID NO: 103àSEQIDNO: 108, ladite SEQ ID NO : 103 comprenant les séquences SEQ ID NO°: 91 et SEQ ID NO°: 92 reliées 30 entre elles par le peptide de liaison présentant une séquence nucléotidique SEQ ID NO : 110, ladite SEQ ID NO : 104 comprenant les séquences SEQ ID NO°: 93 et SEQ ID NO°: 94 reliées entre elles par SEQ ID NO : 110, ladite SEQ ID NO : 105 comprenant les séquences SEQ ID NO°: 95 et SEQ ID NO°: 96 reliées entre elles par SEQ ID NO : 110, 35 ladite SEQ ID NO : 106 comprenant les séquences SEQ ID NO°: 97 et SEQ ID NO°: 98 reliées entre elles par SEQ ID NO : 110, ladite SEQ ID NO : 107 comprenant les séquences SEQ ID NO°: 99 et SEQ ID NO°: 100 reliées entre elles par SEQ ID NO : 110, ladite SEQ ID NO : 108 comprenant les séquences SEQ ID NO°: 10 et SEQ ID NO°: 102 reliées entre elles par SEQ ID NO : 110. SEQ ID NO: 103 représentant la séquence nucléotidique codant pour la séquence en acides aminés SEQ ID NO : 49 et ainsi de suite (SEQ ID NO : 104 codant pour SEQ ID NO : 50, SEQ ID NO : 105 codant pour SEQ ID NO : 51, SEQ ID NO : 106 codant pour SEQ ID NO : 52, SEQ ID NO : 107 codant pour SEQ ID NO : 53 et SEQ ID NO : 108 codant pour SEQ ID NO : 54). L'invention concerne encore une molécule d'acide nucléique isolée comprenant au moins une des 10 séquences nucléotidiques SEQ ID NO : 55 à SEQ ID NO : 108 telles que définies ci-dessus. De même l'invention a encore pour objet : - un vecteur d'expression comprenant une molécule d'acide nucléique telle que définie ci-dessus, - une cellule hôte ou un organisme comprenant un vecteur d'expression tel que défini ci-dessus. 15 Un autre objet de l'invention réside dans une composition pharmaceutique comprenant une quantité thérapeutiquement efficace d'au moins une construction moléculaire telle que définie ci-dessus en association avec un véhicule pharmaceutiquement acceptable. Ainsi que décrit ci-dessus, la construction moléculaire est de préférence un anticorps ou un 20 fragment d'anticorps. Selon un mode de réalisation avantageux, la construction moléculaire est utilisée dans ladite composition pharmaceutique pour vectoriser une (ou plusieurs) molécule(s) biologiquement active(s). 25 Les anticorps de l'invention possèdent des propriétés internalisantes (voir exemple I) qui en font un outil intéressant pour jouer le rôle de vecteurs de délivrance desdites molécules biologiquement actives à l'intérieur de cellules cancéreuses surexprimant le TfR. Selon un autre mode de réalisation avantageux, la construction moléculaire est utilisée dans ladite 30 composition pharmaceutique pour le ciblage de liposomes (formation « d'immunoliposomes ») ou de nanoparticules chargés d'un (ou plusieurs) agent(s) cytotoxique(s) et/ou d'un (ou plusieurs) agent(s) à visée diagnostique. L'invention concerne encore une composition pharmaceutique telle que définie ci-dessus pour son 35 utilisation comme médicament dans le traitement de pathologies présentant une sur-expression du TfR. A titre d'exemple de pathologies présentant une sur-expression du TfR, on pourra citer le cancer, et en particulier du type lymphôme ou leucémie. Selon un mode de réalisation avantageux de l'invention, le traitement contre le cancer se fait plus particulièrement : - par action antiproliférative et cytotoxique des anticorps de l'invention envers les cellules cancéreuses in vitro et/ou in vivo, et/ou - par induction des anticorps de l'invention de la mort des cellules cancéreuses (en les déprivant de fer). La présente invention a encore pour objet une méthode pour inhiber la prolifération cellulaire de cellules cancéreuses et/ou pour induire la mort desdites cellules, caractérisée en ce qu'elle comprend l'administration à un patient d'au moins substance choisie parmi : - une construction moléculaire telle que définie ci-dessus, - une composition pharmaceutique telle que définie ci-dessus, afin de lier ladite substance auxdites cellules cancéreuses et ainsi de causer l'inhibition de la prolifération et/ou d'induire la mort des cellules cancéreuses. Un autre objet de la présente invention réside dans une méthode de traitement du cancer caractérisée en ce qu'il comprend l'administration à un patient d'au moins substance choisie parmi: - une construction moléculaire telle que définie ci-dessus, - une composition pharmaceutique telle que définie ci-dessus, afin de lier ladite substance au récepteur de la transferrine des cellules cancéreuses et ainsi de causer l'inhibition de la prolifération et/ou d'induire la mort des cellules cancéreuses. A titre d'exemple de cellules cancéreuses, on pourra citer les cellules d'origine hématopoïétique. Un autre exemple de pathologies présentant une sur-expression du TfR est celui des pathologies auto-immunes. En effet, dans ce cas de figure ce sont les effecteurs cellulaires qui présentent une sur-expression du TfR. La figure 1 représente la séquence en acides aminés (SEQ ID NO: 49) et la séquence nucléotidique (SEQ ID NO : 103) du domaine variable de la chaîne lourde (VH) et de la chaîne légère (VL) du fragment monovalent de l'invention dénommé « scFv-3TF12 », la chaîne lourde et légère étant reliées entre elles par un peptide de liaison. Chaque ligne du dessus représente SEQ ID NO : 49 et chaque ligne du dessous représente SEQ ID NO : 103. Les 3 régions « CDR » de la chaîne lourde (CDR1-H à CDR3-H : SEQ ID NO : 1 à SEQ ID NO : 3) et les 3 régions « CDR » de la chaîne légère (CDR1-L à CDR3-L : SEQ ID NO : 4 à SEQ ID NO : 5 6) de la séquence SEQ ID NO : 49 sont entourées et représentées en gras. La chaîne lourde (VH) comprend l'acide aminé n°1 à l'acide aminé n°119 (SEQ ID NO : 37). La chaîne légère (VL) comprend l'acide aminé n°135 à l'acide aminé n°245 (SEQ ID NO : 38). Le peptide de liaison (SEQ ID NO: 109) comporte 15 acides aminés n° 120 à 134 qui sont représentés en italique et soulignés (S G G G G S G G G G S G G G G). 10 La séquence nucléotidique SEQ ID NO : 110 qui code pour SEQ ID NO : 109, est en italique, soulignée et est en caractère minuscule. La figure 2 représente la séquence en acides aminés (SEQ ID NO: 50) et la séquence nucléotidique (SEQ ID NO : 104) du domaine variable de la chaîne lourde (VH) et de la chaîne 15 légère (VL) du fragment monovalent de l'invention dénommé « scFv-3TF2 », la chaîne lourde et légère étant reliées entre elles par un peptide de liaison. Chaque ligne du dessus représente SEQ ID NO : 50 et chaque ligne du dessous représente SEQ ID NO : 104. Les 3 régions « CDR » de la chaîne lourde (CDR1-H à CDR3-H : SEQ ID NO : 7 à SEQ ID NO : 9) 20 et les 3 régions « CDR » de la chaîne légère (CDR1-L à CDR3-L : SEQ ID NO : 10 à SEQ ID NO : 12) de la séquence SEQ ID NO : 50 sont entourées et représentées en gras. La chaîne lourde (VH) comprend l'acide aminé n°1 à l'acide aminé n°118 (SEQ ID NO : 39). La chaîne légère (VL) comprend l'acide aminé n°134 à l'acide aminé n°243 (SEQ ID NO : 40). Le peptide de liaison (SEQ ID NO : 109) est tel que défini à la figure 1 : il comprend 15 acides 25 aminés allant de l'acide aminé n°119 à 133. La figure 3 représente la séquence en acides aminés (SEQ ID NO: 51) et la séquence nucléotidique (SEQ ID NO : 105) du domaine variable de la chaîne lourde (VH) et de la chaîne légère (VL) du fragment monovalent de l'invention dénommé « scFv-3GH9 », la chaîne lourde et 30 légère étant reliées entre elles par un peptide de liaison. Chaque ligne du dessus représente SEQ ID NO : 51 et chaque ligne du dessous représente SEQ ID NO : 105. Les 3 régions « CDR » de la chaîne lourde (CDR1-H à CDR3-H : SEQ ID NO : 13 à SEQ ID NO : 15) et les 3 régions « CDR » de la chaîne légère (CDR1-L à CDR3-L : SEQ ID NO : 16 à SEQ ID 35 NO : 18) de la séquence SEQ ID NO : 51 sont entourées et représentées en gras. La chaîne lourde (VH) comprend l'acide aminé n°1 à l'acide aminé n°118 (SEQ ID NO : 41). La chaîne légère (VL) comprend l'acide aminé n°134 à l'acide aminé n°242 (SEQ ID NO : 42). Le peptide de liaison (SEQ ID NO : 109) est tel que défini à la figure 1 : il comprend quinze acides aminés allant de l'acide aminé n°119 à 133. La figure 4 représente la séquence en acides aminés (SEQ ID NO: 52) et la séquence nucléotidique (SEQ ID NO : 106) du domaine variable de la chaîne lourde (VH) et de la chaîne légère (VL) du fragment monovalent de l'invention dénommé « scFv-C3.2 », la chaîne lourde et légère étant reliées entre elles par un peptide de liaison. Chaque ligne du dessus représente SEQ ID NO : 52 et chaque ligne du dessous représente SEQ ID NO : 106. Les 3 régions «CDR » de la chaîne lourde (CDR1-H à CDR3-H : SEQ ID NO : 19 à SEQ ID NO : 21) et les 3 régions «CDR» de la chaîne légère (CDR1-L à CDR3-L : SEQ ID NO : 22 à SEQ ID NO : 24) de la séquence SEQ ID NO : 52 sont entourées et représentées en gras. La chaîne lourde (VH) comprend l'acide aminé n°1 à l'acide aminé n°118 (SEQ ID NO : 43). La chaîne légère (VL) comprend l'acide aminé n°134 à l'acide aminé n°243 (SEQ ID NO : 44). Le peptide de liaison (SEQ ID NO : 109) est tel que défini à la figure 1 il comprend 15 acides aminés allant de l'acide aminé n°119 à 133. La figure 5 représente la séquence en acides aminés (SEQ ID NO: 53) et la séquence nucléotidique (SEQ ID NO : 107) du domaine variable de la chaîne lourde (VH) et de la chaîne légère (VL) du fragment monovalent de l'invention dénommé « scFv-3TG9 », la chaîne lourde et légère étant reliées entre elles par un peptide de liaison. Chaque ligne du dessus représente SEQ ID NO : 53 et chaque ligne du dessous représente SEQ ID NO : 107. Les 3 régions « CDR » de la chaîne lourde (CDR1-H à CDR3-H : SEQ ID NO : 25 à SEQ ID NO : 25 27) et les 3 régions « CDR » de la chaîne légère (CDR1-L à CDR3-L : SEQ ID NO : 28 à SEQ ID NO : 30) de la séquence SEQ ID NO : 53 sont entourées et représentées en gras. La chaîne lourde (VH) comprend l'acide aminé n°1 à l'acide aminé n°117 (SEQ ID NO : 45). La chaîne légère (VL) comprend l'acide aminé n°133 à l'acide aminé n°241 (SEQ ID NO : 46). Le peptide de liaison (SEQ ID NO : 109) est tel que défini à la figure 1 : il comprend de l'acide 30 aminé n°118 à 132. La figure 6 représente la séquence en acides aminés (SEQ ID NO: 54) et la séquence nucléotidique (SEQ ID NO : 108) du domaine variable de la chaîne lourde (VH) et de la chaîne légère (VL) du fragment monovalent de l'invention dénommé « scFv-3GH7 », la chaîne lourde et 35 légère étant reliées entre elles par un peptide de liaison. Chaque ligne du dessus représente SEQ ID NO : 54 et chaque ligne du dessous représente SEQ ID NO : 108. Les 3 régions «CDR » de la chaîne lourde (CDR1-H à CDR3-H : SEQ ID NO : 31 à SEQ ID NO : 33) et les 3 régions « CDR » de la chaîne légère (CDR1-L à CDR3-L : SEQ ID NO : 34 à SEQ ID NO : 36) de la séquence SEQ ID NO : 54 sont entourées et représentées en gras. 47). La chaîne lourde (VH) comprend l'acide aminé n°1 à l'acide aminé n°119-(SEQ ID NO La chaîne légère (VL) comprend l'acide aminé n°135 à l'acide aminé n°243 (SEQ ID NO : 48). Le peptide de liaison (SEQ ID NO : 109) est tel que défini à la figure 1 : il comprend 15 acides aminés allant de l'acide aminé n°120 à 134. La figure 7 illustre la spécificité des six anticorps de l'invention pour le TfR de séquence SEQ ID N° 49 à SEQ ID N°54, tels que définis précédemment et décrits dans les figures 1 à 6 précédentes. Des cellules LS-174T ont été incubées une heure à 4°C avec différentes concentrations d'holotransferrine (Sigma) aux concentrations indiquées. La liaison des phages-scFv anti-TfR ou du phage scFv-F5 contrôle spécifique du récepteur ErBb2, présent sur les cellules LS-174T, est quantifiée à l'aide d'un anticorps de souris dirigé contre la protéine p8 de la capside phagique (anti-M13, GE healthcare) puis mesurée par FACS à l'aide d'un anticorps fluorescent reconnaissant les immunoglobulines de souris. Le signal MFI (%) représente l'intensité moyenne de fluorescence (MFI) rapportée à la MFI obtenue en absence de transferrine compétitrice. La figure 8 représente la cartographie épitopique des épitopes des six anticorps anti-TfR de l'invention (scFvs anti-TfR) de séquence SEQ ID N° 49 à SEQ ID N°54. Des cellules tumorales LS-174T surexprimant le TfR ont été incubées en présence de 10 pg/ml d'anticorps solubles anti-TfR ou d'un anticorps contrôle dirigé contre la toxine botulique (Bot) pendant une heure à 4°C. 1011 cfu/ml de phages anticorps (phages-scFv) ont ensuite été ajoutés aux cellules pendant une heure à 4°C. La liaison des phages-scFv anti-TfR ou du phage scFv-F5 contrôle spécifique du récepteur ErBb2 est quantifiée de la même manière que décrit dans la figure 7. Le signal MFI (%) représente l'intensité moyenne de fluorescence (MFI) rapportée à la MFI obtenue en absence d'anticorps compétiteur. La figure 9 illustre l'inhibition de la liaison Tf/TfR par les six anticorps « scFvs anti-TfR » de l'invention. Les cellules LS-174T ont été incubées en présence d'anticorps scFv anti-TfR à la concentration de 20 pg/ml pendant une heure à 4°C. Alternativement, un anticorps scFv non spécifique du TfR est utilisé (Bot) ou encore une incubation dans du PBS seulement. Cinq cent nM d'holo-transferrine fluorescente (Tf-FITC) ont ensuite été rajoutés pendant une heure à 4°C. Après un lavage, la Tf-FITC liée aux cellules a été mesurée par FACS. Le signal a été représenté en pourcentage de MFI rapporté à la MFI des cellules incubées sans anticorps (PBS). La figure 10 illustre le test de prolifération sur la lignée Jurkat (issue d'un lymphome T humain) pendant 3 jours en présence des six anticorps « scFvs anti-TfR » de l'invention. La figure 11 illustre les tests de viabilité sur plusieurs lignées cancéreuses hématopoïétiques en présence de scFvs anti-TfR, à savoir 3TF12 et 3GH7. Figures 10 et 11 : une plaque de 96 puits a été ensemencée avec 5 000 cellules Jurkat par puits en sixplicate en milieu RPMI/SVF10% contenant 10 pg/ml d'anticorps solubles. Les cellules ont été incubées en chambre humide CO2 5% à 37°C pendant 3 jours. Le nombre de cellules viables a été quantifié à l'aide d'un test MTT (CeIlTiter 96 Aqueous One Solution Cell Proliferation Assay, Promega). La figure 12 (voir figures 12-a, 12-b, 12-c et 12-d) illustre les résultats obtenus lors de la conversion du format monovalent des anticorps 3TF12 et 3GH7 en format bivalent F12CH et H7CH. Figures 12-a et 12-b : production d'anticorps scFvCH bivalents (à savoir F12CH et H7CH) à partir du vecteur d'expression bactérien pSYN-HIS-CYS offert par Bin Liu (UCSF). Plus particulièrement la figure 12-a représente le chromatogramme FPLC Superdex 75 représentant un profil d'élution par gel filtration d'anticorps purifiés par chromatographie d'affinité Ni-NTA. La figure 12-b représente une analyse sur gel SDS-PAGE des fractions d'anticorps dimériques isolées après gel filtration (fractions d'environ 55 kDa au niveau du pic à 1500 secondes), en conditions réductrices (+DTT) ou non réductrices (-DTT). Figures 12-c et 12-d : comparaison des formats dimériques et monomériques des anticorps pour inhiber la liaison de l'holo-Tf aux cellules Raji. Des cellules Raji sont incubées avec des anticorps monovalents (figure 12-c) ou bivalents (figure 12-d) pendant une heure à 4°C aux concentrations indiquées. 500 nM d'holo-Tf-FITC sont ensuite rajoutés aux cellules pendant une heure à 4°C. Après un lavage, la fluorescence est mesurée par FACS. La figure 13 illustre l'effet anti-prolifératif du format bivalent. Figure 13-a : plusieurs lignées cellulaires d'origine hématopoïétique sont incubées pendant plusieurs jours en présence d'anticorps solubles bivalents à 10 pg/ml. La viabilité cellulaire est quantifiée à l'aide d'un test MTT (CeIlTiter 96 Aqueous One Solution Cell Proliferation Assay, Promega) (OD 490nm). Figure 13-b : des cellules ERY-1 sont incubées pendant trois jours avec des anticorps anti-TfR solubles monovalents (à gauche) ou bivalents (à droite) aux concentrations indiquées. La viabilité est quantifiée par un test MTT. La figure 14 illustre l'induction de la mort cellulaire des lignées Raji et ERY-1 par les anti-TfR F12CH et H7CH. Plus particulièrement, la figure 14-a illustre le marquage de la translocation des phosphatidylsérines. Les lignées Raji (graphique du haut) et ERY-1 (graphique du bas) sont traitées respectivement pendant 4 et 2 jours avec les anticorps F12CH, H7CH et le contrôle négatif Bot à 10 pg/mI. Les cellules ont été lavées puis marquées à l'iodure de propidium (PI) et à l'annexine-VFITC. Le marquage annexine-V positif, PI négatif correspond aux cellules apoptotiques alors qu'un marquage annexine-V positif, PI positif correspond aux cellules nécrotiques. La figure 14-b illustre le marquage de la dépolarisation de la membrane mitochondriale. Les lignées cellulaires Raji (graphique du haut) et ERY-1 (graphique du bas) sont traitées de la même façon qu'en 14-a. Après un lavage, les cellules sont marquées avec du 3,3'-dihexyloxacarbocyanine (DIOC6). Une chute d'intensité de fluorescence corrèle avec une chute du potentiel mitochondrial. La figure 15 illustre le mécanisme d'action des anti-TfR F12CH et H7CH. Dans la figure 15-a de gauche, des cellules Raji, fixées ou non fixées, sont incubées en présence de 500 nM de Tf-FITC pendant trois heures à 37°C ou 4°C. Après un lavage, la fluorescence est mesurée par FACS. Figure 15-a de droite : des cellules Raji sont incubées avec des anticorps aux concentrations 20 indiquées pendant une heure à 37°C avant d'être incubées en présence de 500 nM de Tf-FITC pendant 3 heures. Après un lavage la fluorescence est mesurée par FACS. Figure 15-b de gauche : des cellules Raji sont incubées pendant 4 jours avec des anticorps à la concentration de 10 pg/mI. Les cellules sont ensuite lavées en tampon glycine (glycine 50 mM, NaCl 500 mM, pH 2.8) avant d'être fixées et marquées par de la Tf-FITC (500 nM) pendant 3 25 heures à 37°C. Figure 15-b de droite : des cellules Raji sont incubées pendant 4 jours avec des anticorps à 10 pg/ml. Des extraits protéiques sont ensuite réalisés à l'aide d'un tampon de lyse (Tris-Hcl pH 7.5 50 mM, NaCl 250 mM, EDTA pH 8 10 mM, DTT 1 mM, NP40 1%, inhibiteurs de protéases (Roche)). Après migration sur gel SDS-PAGE les protéines sont transférées sur membrane de 30 nitrocellulose. L'expression du TfR et de l'actine (cette dernière servant de contrôle de charge du gel) est quantifiée à l'aide d'un anticorps de souris anti-TfR (Zymed) et d'un anticorps de chèvre anti-alpha actine (Santa-Cruz). La détection est réalisée grâce à deux anticorps couplés à l'enzyme HRP reconnaissant les immunoglobulines de souris pour le TfR et les immunoglobulines de chèvre pour l'actine. 35 Figure 15-c de gauche : des cellules Raji sont traitées avec les anticorps F12CH ou Bot à 10 pg/ml pendant 4 jours en présence de citrate d'ammonium ferrique (FAC) aux concentrations indiquées. Les cellules sont ensuite lavées et des extraits protéiques sont réalisés de la même façon que précédemment. Après migration sur gel SDS-PAGE et transfert sur membrane, le TfR est quantifié à l'aide d'un anticorps de souris anti-TfR (Zymed) et l'alpha tubuline (contrôle de charge du gel) à l'aide d'un anticorps de souris anti-alpha tubuline (Santa-Cruz). Figure 15-c de droite : des cellules ERY-1 sont traitées avec des anticorps à 5 pg/ml en présence de citrate d'ammonium ferrique (FAC) ou de sulfate de zinc (ZnSO4) à 25 pM. La viabilité cellulaire est quantifié à l'aide d'un test MTT (CellTiter 96 Aqueous One Solution Cell Proliferation Assay, Promega). La figure 16 illustre une étude in vivo de l'anticorps F12CH. Figure 16-a : des souris nudes athymiques sont irradiées à 4 Gy avant l'injection sous-cutanée de 2 millions de cellules ERY-1 à chaque animal. Une fois que les tumeurs ont atteint un volume moyen de 200 mm3, les souris sont réparties dans trois cages contenant chacune cinq souris. Un volume de 200 pl de PBS ou contenant 200 pg d'anticorps est ensuite injecté deux fois par semaine par voix intra-péritonéale à chaque souris dans le côté opposé au site de localisation de la tumeur à Jo. La croissance tumorale est mesurée à l'aide d'un pied à coulisse selon la formule : volume = (n/6) x (longueur+largeur)3. Les souris sont sacrifiées à J25. Les différences de moyenne entre les groupes sont analysées à l'aide d'un test de Mann-Whitney (* pour p Figure 16-b : après prélèvement, les tumeurs sont fixées puis marquées à l'hématoxyline-éosinesafran (HES). Figure 16-c : des cellules FMA3, P815 (lignées P815 et FMA3 dérivées d'un mastocytôme murin) et ERY-1 sont incubées avec de I'holo-transferrine de souris biotinylée (Tfm) (Rockland) aux concentrations indiquées pendant une heure à 4°C. La liaison de la Tfm aux cellules est détectée à l'aide de streptavidine couplée à de la phycoérythrine (BD Pharmingen). Après un lavage, la fluorescence est mesurée par FACS. Figure 16-d gauche : des cellules FMA3 sont incubées avec l'anticorps 3TF12 (monomérique) ou l'anticorps Bot à la concentration de 50 pg/ml pendant une heure à 4°C. La liaison des anticorps aux cellules est mesurée à l'aide d'un anticorps secondaire dirigé contre le tag myc (anti c-myc, Sigma) des anticorps 3TF12 et Bot puis d'un anticorps anti-immunoglobuline de souris couplé à la phycoérythrine (BD Pharmingen). Après un lavage, la fluorescence est mesurée par FACS. La courbe grise pleine correspond à la fluorescence du marquage Bot alors que la courbe transparente correspond à celle du marquage 3TF12. Figure 16-d droite : des cellules FMA3 sont incubées avec l'anticorps F12CH (dimérique) ou l'anticorps Bot à la concentration de 50 pg/ml pendant une heure à 4°C. La liaison des anticorps aux cellules est mesurée à l'aide d'un anticorps secondaire dirigé contre le tag histidine (penta-His antibody, Qiagen) des anticorps F12CH et Bot puis d'un anticorps anti-immunoglobuline de souris couplé à la phycoérythrine (BD Pharmingen). Après un lavage, la fluorescence est mesurée par FACS. La courbe grise pleine correspond à la fluorescence du marquage Bot alors que la courbe transparente correspond à celle du marquage F12CH. Les exemples ci-dessous illustrent l'invention, ils ne la limitent en aucune façon. EXEMPLES : Exemple I : Six anticorps anti-TfR différents issus d'une sélection fonctionnelle. 10 Les anticorps anti-TfR ont été obtenus in vitro par phage display sous un format scFv (format simple chaîne fragment variable) et ont été sélectionnés pour leur capacité à être endocytés (internalisés) spécifiquement à l'intérieur de cellules tumorales mammaires (SKBR3). Cette sélection a permis d'obtenir 6 anticorps d'un poids moléculaire de 28 kDa chacun, 15 dénommés respectivement 3TF12 (SEQ ID NO : 49), 3TF2 (SEQ ID NO : 50), 3GH9 (SEQ ID NO : 51), C3.2 (SEQ ID NO : 52), 3TG9 (SEQ ID NO : 53) et 3GH7 (SEQ ID NO : 54). Ces fragments variables simples chaîne (scFv) sont encore appelés fragments monovalents et représentent la forme monomère. 20 Les anticorps de l'invention sont spécifiques du TfR : la liaison de chaque phage-scFv anti-TfR est inhibée de façon dose- dépendante par la présence d'holo-transferrine (figure 7). Ils reconnaissent des épitopes proches ou communs : la liaison de chaque phage-scFv anti-TfR est inhibée par la présence d'un scFv anti-TfR soluble (figure 8). Ils chevauchent le site de liaison de l'holotransferrine (holo-Tf) au TfR : chaque scFv anti-TfR inhibe la liaison de l'holo-Tf au TfR de façon 25 plus ou moins prononcée avec un maximum d'inhibition pour 3TF12 et 3GH7 (figure 9). Exemple II : Effets anti-prolifératifs des anticorps anti-TfR et étude de leur mécanisme d'action. Les cellules cancéreuses d'origine hématopoïétique possèdent des besoins en fer élevé. Un test 30 de prolifération a été effectué sur la lignée Jurkat développée à partir d'une leucémie aigüe lymphoblastique T pendant 3 jours en présence des six scFvs anti-TfR. Seuls les anticorps 3TF12 et 3GH7 présentent une activité anti-proliférative faible mais reproductible (figure 10) sur la lignée Jurkat. Les anticorps qui présentent un effet anti-prolifératif sur la lignée Jurkat, c'est-à-dire 3TF12 et 35 3GH7, sont également ceux qui inhibent le mieux la liaison de la Tf au TfR. Afin de déterminer si cet effet anti-prolifératif est propre aux anticorps ou bien propre à l'origine de la lignée cellulaire utilisée, la viabilité de cinq autres lignées cancéreuses d'origine hématopoïétique a été testée sur plusieurs jours en présence des anticorps 3TF12 ou 3GH7 à 10 pg/ml (figure 11). Des effets anti-prolifératifs marqués sont observés (jusqu'à 80% d'inhibition sur les lignées Raji et ERY-1) dépendant du type cellulaire testé. Le changement de format monomérique des anticorps en format dimérique (F12CH pour 3TF12 et H7CH pour 3GH7) a permis d'augmenter l'affinité des anticorps pour le TfR : le format bivalent des anticorps améliore l'inhibition de la Tf au TfR (figures 12-a à 12-d). L'effet anti-prolifératif est amélioré. 10 Le poids moléculaire des fragments variables dimériques ou bivalents est d'environ 55 kDa. Ce changement de format a permis de potentialiser l'effet anti-prolifératif des scFvs monovalents (figure 13) sur toutes les lignées testées, ainsi que de diminuer l'IC50 relative à chaque anticorps (tableau 1). 15 Tableau 1 : comparaison des IC50 obtenues pour chaque anticorps par un test de prolifération sur la lignée ERY-1 incubée en présence d'anticorps, sous format monomérique ou dimérique, pendant trois jours. Anticorps IC50 (pg/ml) Monomères 0,35 3TF12 4,86 3GH7 Dimères 0,10 F12CH 0,09 H7CH Le format bivalent d'anticorps améliore l'effet antiprolifératif des anti-TfR 3GH7 et 3TF12. Cet effet 20 est observé sur toutes les lignées testées (figure 13). De plus, les anti-TfR F12CH et H7CH induisent la mort cellulaire par apoptose (pour la lignée ERY-1) ou par autophagie (pour la lignée Raji) (figure 14). En effet, les anti-TfR induisent le déclenchement d'une mort cellulaire de type apoptotique passant 25 par la voie mitochondriale pour la lignée ERY-1. Après la lignée Raji, on observe après traitement une translocation des phosphatidyl-serines sans chute du potentiel mitochondrial. De plus la granularité des cellules traitées augmente (figure 14-a en haut) ce qui signifierait que ce phénomène de mort cellulaire est relié à un processus autophagique pour celle lignée. 19 2953841 Les Inventeurs de la présente invention ont ensuite découvert le mécanisme d'action responsable de la cytotoxicité de ces anticorps. Sachant que les anticorps inhibent la liaison de la Tf au TfR à 4°C, les Inventeurs ont voulu 5 déterminer si cette inhibition est maintenue à 37°C. De cette façon il est possible de savoir si l'internalisation de l'holo-Tf est bloquée par les anti-TfR bivalents dans un contexte dynamique. La Tf-FITC associée aux cellules a d'abord été quantifiée après trois heures d'incubation à 37°C (figure 15-a à gauche). Afin de distinguer le signal relatif à la Tf-FITC internalisée du signal de la Tf-FITC simplement liée en surface, la même expérience a été répétée sur des cellules préalablement incubées dans une solution de fixation (paraformaldéhyde 4% préparé extemporanément ou solution commerciale de fixation, BD). Une réduction du signal de 50% est observée lorsque les cellules sont fixées par rapport aux cellules non fixées. Une partie de la fluorescence associée aux cellules correspond donc à une localisation intracellulaire. Lorsque des cellules sont préalablement incubées avec F12CH ou H7CH à diverses concentrations (0,2 à 20 pg/ml), une inhibition dose-dépendante du signal est observée. Ce résultat permet de conclure que les anticorps F12CH et H7CH bloquent efficacement l'internalisation de l'holo-Tf dans les cellules. Les Inventeurs ont ensuite voulu déterminer si la fixation des anticorps F12CH et H7CH sur des cellules cancéreuses entraîne une modification du taux d'expression du TfR. Pour cela, des cellules Raji sont incubées pendant 4 jours avec les anti-TfR F12CH ou H7CH à 10 pg/ml. Les cellules sont ensuite lavées en tampon glycine (pH 2) pour éliminer les anticorps scFv liés à la surface cellulaire, puis incubées avec de la Tf-FITC pour quantifier l'expression membranaire du TfR (figure 15-b à gauche) à la surface cellulaire. On constate que les cellules traitées surexpriment le TfR. Lorsque des extraits protéiques sont réalisés à partir des mêmes cellules et que l'expression du TfR est analysée par western-blot (figure 15-b à droite), cette surexpression est également retrouvée dans les extraits traités comparés aux extraits témoins. II y a donc une augmentation globale de l'expression du TfR. L'expression du TfR est régulée par la présence de motifs IRE (iron responsive éléments) présents sur l'ARNm du TfR qui le stabilisent lorsque la concentration en fer dans les cellules est faible. Inversement, en cas d'excès de fer, l'ARNm du TfR est dégradé et le TfR n'est plus synthétisé (Daniels et al., The transferrin receptor part I or part II, Clin Immunol., 2006). Pour cette raison, les Inventeurs ont voulu déterminer si la surexpression du TfR observée suite à l'action des anticorps F12CH ou H7CH est liée à une déplétion en fer induite par les anticorps ou bien reliée à un autre mécanisme. Pour cela, les cellules Raji sont traitées avec l'anticorps contrôle Bot et l'anticorps F12CH pendant 4 jours en présence de fer soluble (FAC, citrate d'ammonium ferrique) dans le milieu de culture à diverses concentrations (figure 15-c à gauche). On constate que la présence de fer réprime l'expression du TfR dans les deux cas (Bot et F12CH) ce qui prouve que la surexpression du TfR observée pour F12CH est bien liée à une déplétion en fer induite par blocage d'endocytose de la transferrine. Enfin, les Inventeurs ont voulu déterminer si la cytotoxicité des anticorps est liée à la déplétion en fer qu'ils induisent. La lignée cellulaire la plus sensible (ERY-1) est traitée pendant 3 jours en présence d'anticorps supplémentés par des cations métalliques (fer ou zinc, ce dernier utilisé comme contrôle négatif) et la viabilité cellulaire est quantifiée à l'aide d'un test MTT (figure 15-c à droite). On constate qu'un apport exogène de fer soluble annule la cytotoxicité des anticorps. En conclusion, la surexpression du TfR par les cellules observée suite à l'action de F12CH est bien liée à une déplétion en fer induite par F12CH. Cette propriété mécanistique est unique par comparaison au mode d'action d'autres anticorps de souris anti-TfR préalablement décrits. En effet, contrairement aux anticorps de l'invention, ces derniers nécessitent un format multivalent pour exercer leur action cytotoxique, qui corrèle avec une diminution d'expression du TfR au niveau membranaire (IgG A24, (Lepelletier et al., Cancer Res 67 : 1145, 2007 ; Moura et al., Blood 103: 1838, 2004 ), IgA 42/6 (Taetle et al., Cancer Res 46, 1759-63, 1986), « avidine-fused IgG3 » (Ng et al., Blood 108, 2745-54, 2006), IgM R17 208 (Lesley et Schutle, Mol Cell Biol 5, 1814-21, 1985)). Exemple III : Etude d'un modèle murin de tumeur humaine xénogreffée. Il a été montré dans les exemples précédents que les anticorps F12CH et H7CH possèdent une activité anticancéreuse prononcée sur plusieurs lignées cellulaires d'origine hématopoïétique in vitro. Afin de déterminer si cette activité anticancéreuse de l'anticorps F12CH est maintenue dans un environnement tumoral in vivo, un modèle de xénogreffe sous-cutanée a été développé chez la souris nude à partir de la lignée cellulaire ERY-1. Une fois la prise de greffe réalisée (volume tumoral moyen de 200 mm3), 200 pg d'anticorps F12CH ou Bot ont été injectés à chaque animal deux fois par semaine. La croissance tumorale a été mesurée sur 25 jours et est représentée sur la figure 16-a. 21 2953841 On constate que l'anticorps F12CH ralentit la croissance tumorale en comparaison du véhicule contrôle (injection de tampon PBS seul) et du contrôle isotypique (injection d'un anticorps non spécifique produit dans les mêmes conditions). Dans les coupes de tumeurs des souris traitées (figure 16-b), on peut noter la présence de fibrose 5 et de cellules pré-nécrotiques. L'effet observé est d'autant plus pertinent physiologiquement qu'il a été démontré que l'holo Tf murine, présente dans l'hôte à des concentrations de l'ordre de 10 mM, présente une réactivité croisée pour le TfR humain (figure 16-c) et que l'anticorps F12CH présente une réactivité croisée avec le TfR de souris (figure 16-d), présent sur certaines cellules de l'hôte. 10 Le modèle animal utilisé pour tester ces anticorps reflète donc une partie des interactions possibles qui surviendraient lors d'une administration de l'anticorps F12CH chez l'homme. Il est important de noter qu'au format utilisé, l'anticorps F12CH est dépourvu de fragment Fc et ne peut donc recruter les effecteurs du système immunitaire pour entraîner de réponse anti-tumorale 15 de type ADCC (cytotoxicité cellulaire dépendante des anticorps) ou CDC (cytotoxicité dépendante du complément), ce qui montre que l'effet observé est propre au mode d'action de l'anticorps. Ainsi, leur mode particulier de cytotoxicité, à savoir cytotoxicité indépendante des fonctions effectrices naturelles des anticorps de type ADCC ou CDC et associée à une augmentation du TfR 20 à la surface des cellules cibles, rend les anticorps de l'invention particulièrement avantageux comme anticorps thérapeutiques à haut potentiel pour le traitement de cancers. CONCLUSION GENERALE 25 Six anticorps différents spécifiques du récepteur de la transferrine reconnaissant des épitopes voisins sur le TfR et capables d'inhiber le ligand naturel du TfR, l'holotransferrine, ont été sélectionnés par présentation d'anticorps à la surface de phages pour leur capacité à être endocytés par des cellules cancéreuses vivantes, par endocytose médiée par récepteurs. Cette sélection fonctionnelle a permis d'obtenir six fragments d'anticorps monovalents anti-TfR humains 30 (scFv anti-TfR), à savoir les fragments variable simple chaîne (scFv) d'un poids moléculaire d'environ 28 kD. Les six fragments d'anticorps de type ligand fonctionnels scFv anti-TfR obtenus dans cette sélection interfèrent tous avec le ligand naturel holotransferrine (holo-Tf), qui se lie aux TfR, et perturbent donc tous la liaison de l'holo-Tf aux TfR. Les fragments scFv anti-TfR qui présentent la plus grande affinité pour les TfR, à savoir 3TF12 (SEQ ID N°49) et 3GH7 (SEQ ID N°54), inhibent la prolifération de diverses lignées de cellules cancéreuses hématopoïétiques, et possèdent des propriétés anti-cancéreuses particulièrement intéressantes. Le potentiel d'inhibition de la prolifération cellulaire des anticorps 3TF12 et 3GH7 a été amélioré en élaborant des formats d'anticorps bivalents de 55 kD présentant une affinité améliorée, à savoir F12CH et H7CH, du fait de la bivalence. Ce changement de format (du monovalent au bivalent) a permis d'améliorer l'IC50 relative à chaque anticorps. Le mécanisme de cytotoxicité de ces anticorps endocytables à grande affinité est différent de celui des anticorps monoclonaux murins anti-TfR inhibiteurs de croissance décrits précédemment dans la littérature. En effet, F12CH et H7CH induisent une augmentation du nombre de TfR au niveau de la surface des cellules (au lieu de le réduire en augmentant leur dégradation), tout en inhibant considérablement l'absorption cellulaire d'holo-Tf et en induisant la mort cellulaire par apoptose et/ou autophagie. Ces propriétés ont permis de définir une nouvelle famille de fragments d'anticorps anti-TfR entièrement humains, appropriés pour l'immunothérapie des tumeurs qui dépendent du fer pour proliférer durablement et qui expriment un grand nombre de TfR. Le fait que les anticorps de l'invention soient issus d'une banque d'anticorps humains est très avantageux puisqu'ils ne nécessitent donc pas d'étape d'humanisation pour leur transfert vers le développement préclinique. Les six anticorps de l'invention (que ce soit dans leur format monovalent ou bivalent) sont susceptibles de cibler des épitopes légèrement différents (chaque épitope partageant des motifs avec le site de liaison du ligand naturel Tf) et présentent des affinités différentes pour leur cible. Une utilisation alternative de l'un ou l'autre de ces anticorps en clinique pourrait s'avérer particulièrement avantageuse car elle permettrait d'éviter des phénomènes de résistance induite par le traitement. Les anticorps de l'invention fonctionnent selon un mécanisme unique, encore jamais décrit à ce jour. Ils induisent la mort cellulaire des cellules cancéreuses en les privant en fer sans besoin de format multivalent agglutinant le TfR à la surface cellulaire. Par ailleurs, une incubation de quelques jours, in vitro, en présence des anticorps entraîne une augmentation de TfR à la surface cellulaire. Si cette observation est reproduite in vivo, cette propriété unique augmentera la « visibilité » des cellules à cibler. Le format anticorps utilisé in vivo est celui d'un scFv-dimérique bivalent, de 55 kDa environ. Afin d'augmenter les propriétés anti-tumorales des anticorps de l'invention (aussi bien sous leur format monovalent que bivalent), on peut prévoir une modification du format de l'anticorps par 5 ajout d'un fragment Fc pour obtenir un anticorps complet ou par pégylation, ce qui permettrait d'augmenter le temps de demi-vie des anticorps. La présence de régions Fc pourrait, en outre, permettre le recrutement des effecteurs du système immunitaire et augmenter l'effet anti-tumoral de l'anticorps. Les anticorps de l'invention (aussi bien sous leur format monovalent que bivalent), du fait de leur spécificité pour le TfR, de leur mode particulier de cytotoxicité et de leur faible immunogénicité liée à leur origine humaine, s'avèrent donc être des molécules thérapeutiques à haut potentiel pour le traitement du cancer. 10 24 REVENDICATIONS1. Construction moléculaire caractérisée en ce qu'elle comprend au moins une séquence en acides aminés choisie parmi : SEQ ID NO : 1, SEQ ID NO : 2, SEQ ID NO : 3, SEQ ID NO : 4, SEQ ID NO : 5, SEQ ID NO : 6, SEQ ID NO : 7, SEQ ID NO : 8, SEQ ID NO : 9, SEQ ID NO : 10, SEQ ID NO : 11, SEQ ID NO : 12, SEQ ID NO : 13, SEQ ID NO : 14, SEQ ID NO : 15, SEQ ID NO : 16, SEQ ID NO : 17, SEQ ID NO : 18, SEQ ID NO : 19, SEQ ID NO: 20, SEQ ID NO : 21, SEQ ID NO : 22, SEQ ID NO : 23, SEQ ID NO : 24, SEQ ID NO : 25, SEQ ID NO: 26, SEQ ID NO : 27, SEQ ID NO : 28, SEQ ID NO: 29, SEQ ID NO : 30, SEQ ID NO : 31, SEQ ID NO: 32, SEQ ID NO : 33, SEQ ID NO : 34, SEQ ID NO : 35 et SEQ ID NO : 36, ladite séquence en acides aminés correspondant à une région déterminant la complémentarité avec l'antigène ("CDR" complementarity determining region) du domaine variable de la chaîne lourde (CDR-H) ou de la chaîne légère (CDR-L) d'un anticorps ciblant le récepteur de la transferrine humaine (TfR). 2. Construction moléculaire selon la revendication 1, caractérisée en ce qu'elle est constituée par au moins l'une des séquences en acides aminés choisie parmi : SEQ ID NO : 3, SEQ ID NO : 6, SEQ ID NO : 9, SEQ ID NO : 12, SEQ ID NO : 15, SEQ ID NO : 18, SEQ ID NO : 21, SEQ ID NO : 24, SEQ ID NO : 27, SEQ ID NO : 30, SEQ ID NO : 33 et SEQ ID NO : 36. 3. Construction moléculaire selon la revendication 1, caractérisée en ce que l'une au moins des séquences SEQ ID NO : 1 à SEQ ID NO : 36 est comprise dans l'une des séquences en acides aminés choisies parmi : SEQ ID NO: 37, SEQ ID NO: 38, SEQ ID NO: 39, SEQ ID NO: 40, SEQ ID NO: 41, SEQ ID NO : 42, SEQ ID NO : 43, SEQ ID NO : 44, SEQ ID NO : 45, SEQ ID NO : 46, SEQ ID NO : 47, SEQ ID NO : 48, chacune desdites séquences SEQ ID NO: 37 à SEQ ID NO: 48 correspondant au domaine variable de la chaîne lourde ou de la chaîne légère d'un anticorps ciblant le récepteur de la 30 transferrine humaine (TfR), ladite séquence SEQ ID NO : 37 comprenant les séquences SEQ ID NO : 1, SEQ ID NO : 2 et SEQ ID NO : 3, ladite séquence SEQ ID NO : 38 comprenant les séquences SEQ ID NO : 4, SEQ ID NO : 5 et SEQ ID NO : 6, 35 ladite séquence SEQ ID NO : 39 comprenant les séquences SEQ ID NO : 7, SEQ ID NO : 8 et SEQ ID NO : 9, ladite séquence SEQ ID NO : 40 comprenant les séquences SEQ ID NO : 10, SEQ ID NO : 11 et SEQ ID NO : 12,ladite séquence SEQ ID NO : 41 comprenant les séquences SEQ ID NO : 13, SEQ ID NO : 14 et SEQ ID NO : 15, ladite séquence SEQ ID NO : 42 comprenant les séquences SEQ ID NO : 16, SEQ ID NO : 17 et SEQ ID NO : 18, ladite séquence SEQ ID NO : 43 comprenant les SEQ ID NO : 21, ladite séquence SEQ ID NO : 44 comprenant les SEQ ID NO : 24, ladite séquence SEQ ID NO : 45 comprenant les SEQ ID NO : 27, ladite séquence SEQ ID NO : 46 comprenant les SEQ ID NO : 30, ladite séquence SEQ ID NO : 47 comprenant les SEQ ID NO : 33, ladite séquence SEQ ID NO : 48 comprenant les SEQ ID NO : 36. 4. Construction moléculaire selon la revendication 3, caractérisée en ce en ce que l'une au moins des séquences SEQ ID NO : 37 à SEQ ID NO : 48 est comprise dans l'une des séquences en 20 acides aminés choisies parmi : SEQ ID NO : 49, SEQ ID NO : 50, SEQ ID NO: 51, SEQ ID NO : 52, SEQ ID NO : 53, SEQ ID NO: 54, chacune desdites séquences SEQ ID NO : 49 à SEQ ID NO : 54 comprenant le domaine variable de la chaîne lourde et de la chaîne légère d'un anticorps ciblant le récepteur de la transferrine 25 humaine (TfR), ladite séquence SEQ ID NO : 49 comprenant les séquences SEQ ID NO : 37 et SEQ ID NO : 38 reliées entre elles par le peptide de liaison présentant une séquence en acides aminés SEQ ID NO : 109, ladite séquence SEQ ID NO : 50 comprenant les séquences SEQ ID NO : 39 et SEQ ID NO : 40 30 reliées entre elles par le peptide de liaison SED ID NO : 109, ladite séquence SEQ ID NO : 51 comprenant les séquences SEQ ID NO : 41 et SEQ ID NO : 42 reliées entre elles par le peptide de liaison SED ID NO : 109, ladite séquence SEQ ID NO : 52 comprenant les séquences SEQ ID NO : 43 et SEQ ID NO : 44 reliées entre elles par le peptide de liaison SED ID NO : 109, 35 ladite séquence SEQ ID NO : 53 comprenant les séquences SEQ ID NO : 45 et SEQ ID NO : 46 reliées entre elles par le peptide de liaison SED ID NO : 109, ladite séquence SEQ ID NO : 54 comprenant les séquences SEQ ID NO : 47 et SEQ ID NO : 48 reliées entre elles par le peptide de liaison SED ID NO : 109. 15 séquences SEQ ID NO : 19, SEQ ID NO : 20 et séquences SEQ ID NO : 22, SEQ ID NO : 23 et séquences SEQ ID NO : 25, SEQ ID NO : 26 et séquences SEQ ID NO : 28, SEQ ID NO : 29 et séquences SEQ ID NO : 31, SEQ ID NO : 32 et séquences SEQ ID NO : 34, SEQ ID NO : 35 et 5. Construction moléculaire selon la revendication 4, caractérisée en ce qu'elle se présente sous la forme d'un monomère. 6. Construction moléculaire selon la revendication 4, caractérisée en ce qu'elle se présente sous la forme d'un dimère. 7. Construction moléculaire selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisée en ce qu'elle comporte en outre un fragment Fc. 8. Construction moléculaire selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisée en ce qu'il s'agit d'un anticorps ou d'un fragment d'anticorps. 9. Séquences nucléotidiques caractérisées en ce qu'elles codent respectivement pour les 15 séquences en acides aminés SEQ ID NO: 1 à SEQ ID NO: 36 telles que définies à la revendication 1 et en ce qu'elles sont représentées respectivement par les séquences SEQ ID NO : 55 à SEQ ID NO : 90. 10. Séquences nucléotidiques caractérisées en ce qu'elles codent respectivement pour les 20 séquences en acides aminés SEQ ID NO: 37 à SEQ ID NO: 48 telles que définies à la revendication 3 et en ce qu'elles sont représentées respectivement par les séquences SEQ ID NO : 91 à SEQ ID NO : 102. 11. Séquences nucléotidiques caractérisées en ce qu'elles codent respectivement pour les 25 séquences en acides aminés SEQ ID NO: 49 à SEQ ID NO: 54 telles que définies à la revendication 4 et en ce qu'elles sont représentées respectivement par les séquences SEQ ID NO : 103 à SEQ ID NO : 108, ladite SEQ ID NO : 103 comprenant les séquences SEQ ID NO°: 91 et SEQ ID NO°: 92 reliées entre elles par le peptide de liaison présentant une séquence nucléotidique SEQ ID NO : 110, 30 ladite SEQ ID NO : 104 comprenant les séquences SEQ ID NO°: 93 et SEQ ID NO°: 94 reliées entre elles par SEQ ID NO : 110, ladite SEQ ID NO : 105 comprenant les séquences SEQ ID NO°: 95 et SEQ ID NO°: 96 reliées entre elles par SEQ ID NO : 110, ladite SEQ ID NO : 106 comprenant les séquences SEQ ID NO°: 97 et SEQ ID NO°: 98 reliées 35 entre elles par SEQ ID NO : 110, ladite SEQ ID NO : 107 comprenant les séquences SEQ ID NO°: 99 et SEQ ID NO°: 100 reliées entre elles par SEQ ID NO : 110,10ladite SEQ ID NO : 108 comprenant les séquences SEQ ID NO°: 10 et SEQ ID NO°: 102 reliées entre elles par SEQ ID NO : 110. 12. Molécule d'acide nucléique isolée caractérisée en ce qu'elle comprend au moins une des 5 séquences nucléotidiques SEQ ID NO: 55 à SEQ ID NO: 108 telles que définies à l'une quelconque des revendications 9 à 11. 13. Vecteur d'expression caractérisé en ce qu'il comprend une molécule d'acide nucléique telle que définie à la revendication 12. 14. Cellule hôte ou organisme caractérisé en ce qu'il comprend un vecteur d'expression tel que défini à la revendication 13. 15. Composition pharmaceutique comprenant une quantité thérapeutiquement efficace d'au moins 15 une construction moléculaire telle que définie selon l'une quelconque des revendications 1 à 8 en association avec un véhicule pharmaceutiquement acceptable. 16. Composition selon la revendication 15, dans laquelle la construction moléculaire est utilisée pour vectoriser une (ou plusieurs) molécule(s) biologiquement active(s). 17. Composition selon la revendication 15, dans laquelle la construction moléculaire est utilisée pour le ciblage de liposomes et/ou de nanoparticules chargés d'un (ou plusieurs) agent(s) cytotoxique(s) et/ou d'un (ou plusieurs) agent(s) à visée diagnostique. 25 18. Composition selon l'une quelconque des revendications 15 à 17 pour son utilisation comme médicament dans le traitement de pathologies présentant une sur-expression du TfR. 19. Composition selon la revendication 18, dans laquelle la pathologie est un cancer. 30 20. Composition selon la revendication 19, dans laquelle le cancer est du type lymphôme ou leucémie. 21. Composition selon la revendication 18, dans laquelle la pathologie est une pathologie auto-immune. 10 20 35