FR 2948681 A1 20110204 FR 0903756 A 20090730 La présente invention concerne de nouveaux substrats enzymatiques pour la détection d'activité nitroréductase. Ces substrats sont utilisables dans les applications comportant une étape de réduction enzymatique produisant un signal physico-chimique notamment en microbiologie, biochimie, immunologie, biologie moléculaire, histologie, etc. Il existe actuellement de très nombreux milieux permettant la détection de microorganismes. Cette détection peut être basée notamment sur l'utilisation de substrats particuliers, spécifiques d'une enzyme du microorganisme que l'on souhaite détecter. D'une manière générale, les substrats synthétiques d'enzymes sont constitués de telle façon que le substrat et le produit de son métabolisme par l'enzyme cible possèdent des propriétés physico-chimiques différentes, permettant de les distinguer et d'évaluer si tout ou partie du substrat a été converti en produit par l'enzyme. Par exemple le produit du métabolisme enzymatique peut être chromogène ou fluorescent. Ainsi dans le cas des bactéries, par le choix des substrats, selon qu'il y a réaction ou non, il est possible de caractériser la nature d'un microorganisme. Une activité nitroréductase peut notamment être utilisée pour révéler un groupe, un genre ou une espèce de bactéries. Il peut également être utilisé pour suivre le métabolisme réducteur de microorganismes, par exemple lié à leur croissance ou à l'inhibition de cette croissance. La capacité de certaines bactéries de réduire les composés nitro-aromatiques est connue depuis de nombreuses années. Asnis (1957) a rapporté l'isolation d'une flavoproteine à partir d'extraits d'E. colt qui était capable de réduire l'acide p-nitrobenzoique. Depuis ce rapport, l'activité nitroaryl-réductase a été identifiée dans diverses variétés d'organismes. Ceci inclut des aérobies strictes tels que Pseudomonas spp. (Won et al. 1974) et Nocardia spp. (Villanueva 1964), des anaérobies strictes tels que Clostridium spp. (Ancermaier & Simon 1983) et Veillonella spp. (McCormick et al. 1976), ou encore des champignons (Masuda & Ozaki 1993) et des parasites eucaryotes (Douch 1975). II existe une gamme de substrats qui ont été désignées comme étant susceptibles d'être réduits par des nitroaryl-reductases bactériennes. Il s'agit surtout de composés nitro-aromatiques tels que l'acide p-nitrobenzoique, le p-nitrophénol, la p-nitroaniline et le 2, 4, 6-trinitrotoluène (McCormick et al. 1976). D'une manière générale, la détection de l'activité enzymatique nitroréductase est réalisée par des méthodes indirectes telles que le suivi de la disparition du substrat ou d'un cofacteur. Par exemple, Kitamura et al. (1983) ont étudié la réduction du méthyl pnitrobenzoate et d'une gamme d'autres composés aromatiques nitrés avec des extraits d'E. coli. Toutefois, cette méthode est peu sensible et n'est pas adaptée à une détection en milieu hétérogène. On peut citer également la demande WO 00/28073 qui décrit un substrat fluorogène à base de nitrocoumarine pour la détection directe des activités nitroaryl-réductases. Ce type de composé nitro-aromatique est capable de produire, après réduction, un composé très fluorescent qui est donc facilement détectable. Toutefois ce substrat n'est pas bien adapté à une détection en milieu hétérogène. La présente invention se propose donc d'améliorer les substrats de nitroréductase permettant la détection de microorganismes. Comparativement aux substrats existants, ces nouveaux substrats sont de synthèse aisée, et peuvent être utilisés notamment en milieux gélifiés pour la détection de micro-organismes car ils produisent une coloration ne diffusant pas dans le milieu réactionnel. Avant d'aller plus avant dans la description de l'invention, les définitions ci dessous sont données afin de faciliter l'exposé de l'invention. Par substrat enzymatique, on entend un substrat pouvant être modifié par une enzyme en un produit permettant la détection, directe ou indirecte d'un microorganisme, d'une cellule ou d'une organelle. Dans le cas des substrats de nitroréductase, ce substrat comprend notamment une fonction nitrate qui est partiellement ou totalement réduite par l'activité enzymatique à révéler, la réduction de cette fonction nitrate modifiant certaines propriétés physicochimiques de la molécules, permettant de suivre cette réduction. Les substrats selon l'invention sont adaptés à une utilisation en cytométrie en flux, car le produit de la réduction restant principalement localisé dans la cellule exprimant l'activité enzymatique, il est possible de compter spécifiquement les cellules exprimant cette activité, voire de les séparer du reste de l'échantillon. Les substrats selon l'invention sont également bien adaptés à une utilisation en histoenzymologie, car le produit de la réduction restant principalement localisé sur le lieu de la réduction, il est possible d'identifier spécifiquement les cellules ou organelles exprimant cette activité au sein d'un tissu. Du fait de leur faible toxicité, les substrats selon l'invention sont bien adaptés au suivi d'activité nitroréductase de culture cellulaire. Les substrats selon l'invention sont particulierement bien adaptés à une utilisation en milieu de détection et/ou d'identification car ils produisent une coloration ou une fluorescence ne diffusant pas dans le milieu réactionnel. Dans la présente demande, le terme coloration est employé pour couvrir une coloration dans le spectre visible, absorption de lumière, ou une fluorescence, absorption à une longueur d'onde (,ex) et émission à une longueur d'onde supérieure (Xem, Xem > Xex). Les substrats de l'invention peuvent être salifiés, c'est à dire sous forme de sel tel que chlorure, bromure, iodure, potassium ou trifluoroacétate. Par nitroréductase, on entend une enzyme pouvant réduire totalement ou partiellement un groupement NO2. Par groupement alkyle, on entend une chaîne de groupements hydrocarbonés saturés, tel que notamment un alkyle en C1-C6, c'est a dire un alkyle droit ou ramifié ayant de 1 à 6 atomes de carbone. A titre d'exemple, on peut citer le méthyle, l'éthyle, le propyle, l'iso-propyle, le butyle, le t-butyle, le pentyle, l'iso-pentyle et l'hexyle. Par groupement aryle, on entend un groupement fonctionnel (ou substituant) qui dérive d'un noyau aromatique tel que notamment un noyau aromatique en C6-C10, notamment phényle, benzyle, 1-naphtyle ou 2-naphtyle. Par groupement carboxyle, on entend notamment un groupe fonctionnel composé d'un atome de carbone, lié par une double liaison à un premier atome d'oxygène, et par une liaison simple à un second atome d'oxygène, lui-même chargé négativement ou relié à un atome d'hydrogène. En fonction du pKa de la molécule et du pH du milieu, le groupement carboxyle peut être sous forme ionisée, c'est à dire sans H lié au second atome d'oxygène, qui est alors chargé négativement. Par milieu réactionnel, on entend un milieu comprenant tous les éléments nécessaires à l'expression d'un métabolisme et/ou à la croissance de microorganismes, d'une cellule ou d'une organelle. Ce milieu réactionnel peut être utilisé en cytométrie en flux, histoenzymologie, culture cellulaire ... ou en tant que milieu de détection et/ou d'identification de microorganismes. Le milieu réactionnel peut être solide, semi-solide ou liquide. Par milieu solide, on entend par exemple un milieu gélifié. L'agar est l'agent gélifiant traditionnel en microbiologie pour la culture des microorganismes, mais il est possible d'utiliser de la gélatine ou de l'agarose. Un certain nombre de préparation sont disponibles dans le commerce, comme par exemple l'agar Columbia, la gélose Trypcase-soja, la gélose Mac Conkey, la gélose Sabouraud ou plus généralement celles décrites dans le Handbook of Microbiological Media (CRC Press). Le milieu réactionnel peut comprendre un ou plusieurs éléments en combinaison, tels que des acides aminés, des peptones, des hydrates de carbone, des nucléotides, des minéraux, des vitamines, des antibiotiques, des tensioactifs, des tampons, des sels de phosphate, d'ammonium, de sodium, de métaux. Le milieu peut comprendre également un colorant. A titre indicatif, on peut citer comme colorant le bleu d'Evans, du rouge neutre, du sang de mouton, du sang de cheval, un opacifiant tel que l'oxyde de Titane, de la nitroaniline, du vert malachite, du vert brillant... Le milieu réactionnel peut être un milieu de détection et/ou d'identification, c'est à dire un milieu de révélation, ou un milieu de culture et de révélation. Dans le premier cas, la culture des microorganismes est effectuée avant ensemencement et, dans le deuxième cas, le milieu de détection et/ou d'identification constitue également le milieu de culture. Par échantillon biologique, on entend un échantillon clinique, issu d'un prélèvement de liquide biologique ou un échantillon alimentaire, issu de tout type d'aliment ou un échantillon cosmétique ou pharmaceutique issu de toute préparation cosmétique ou pharmaceutique. Cet échantillon peut être ainsi liquide ou solide et on peut citer d'une manière non limitative, un échantillon clinique de sang, de plasma, d'urines, de fécès, de prélèvements de nez, de gorges, de peaux, de plaies, de liquide céphalo-rachidien, un échantillon alimentaire d'eau, de boissons tels que le lait, un jus de fruits; de yaourt, de viande, d'oeufs, de légumes, de mayonnaise, de fromage ; de poisson..., un échantillon alimentaire issu d'une alimentation destinée aux animaux, tel que notamment un échantillon issu de farines animales. L'échantillon peut également être issu d'un prélèvement de l'environnement clinique, d'élevage ou de production alimentaire, cosmétique ou pharmaceutique. Par prélèvement d'environnement, on entend notamment un prélèvement de surface, de liquide, de matière première ou de produit. Par échantillon, on entend donc le prélèvement en lui même (écouvillon, selles, aliments, ...) aussi bien que des colonies de microorganismes issus dudit prélèvement (par exemple après isolement sur un milieu de culture gélifié, ou dans un bouillon d'enrichissement ensemencé avec ledit prélèvement). Au sens de la présente invention, le terme microorganisme recouvre les bactéries, notamment à Gram négatif et à Gram positif, les levures, les moisissures, et plus généralement, les organismes généralement unicellulaire, invisibles à l'oeil nu, qui peuvent être multipliés et manipulés en laboratoire. A titre de bactéries à Gram négatif, on peut citer les bactéries des genres suivants : Pseudomonas, Escherichia, Salmonella, Shigella, Enterobacter, Klebsiella, Serratia, Proteus, Campylobacter, Haemophilus, Morganella, Vibrio, Yersinia, Acinetobacter, Branhamella, Neisseria, Burkholderia, Citrobacter, Hafnia, Edwardsiella, Aeromonas, Moraxella, Pasteurella, Providencia, Actinobacillus, Alcaligenes, Bordetella, Cedecea, Erwinia, Pantoea, Ralstonia, Stenotrophomonas, Xanthomonas et Legionella. A titre de bactéries à Gram positif, on peut citer les bactéries des genres suivants : Aerococcus, Enterococcus, Streptococcus, Staphylococcus, Bacillus, Lactobacillus, Listeria, Clostridium, Gardnerella, Kocuria, Lactococcus, Leuconostoc, Micrococcus, Falkamia, Gemella, Pediococcus, Mycobacterium et Corynebacterium. A titre de levures, on peut citer les levures des genres suivants : Candida, 25 Cryptococcus, Saccharomyces et Trichosporon. Préférentiellement, le microorganisme est choisi parmi : Escherichia coli, Serratia marcescens, Pseudomonas aeruginosa, Yersinia enterocolitica, Salmonella typhimurium, Enterobacter cloacae, Providencia rettgeri, Bacillus subtilis, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium. 30 A ce titre, l'invention concerne l'utilisation d'un composé de la formule (I) suivante, comme substrat enzymatique pour la détection d'une activité nitroréductase : selon laquelle : • W1, W2, W3 et W4 sont indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, alkoxy, thiométhyle, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle (incluant ses esters ou amides) ou toute combinaison de ceux-ci • n=0, l ou2 • U est N ou N+R et V est CZ6 N ou N+R ou V est N ou N+R et U est CZ6, R étant H, alkyle, aralkyle, aryle, alcanoïque ou alkylsulfonique • Z1, Z2, Z3, Z4, Z5 et Z6 étant indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, aryle, alkoxy, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle, sulfonyle, incluant les esters ou amides de carboxyle ou sulfonyle et leurs sels Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, n = 1 Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, U est N ou N+R et V est CZ6, préférentiellement CH Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, V est N ou N+R et U est CZ6, préférentiellement CH Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, Wl, W2, W3 et W4 sont indépendamment H Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, Z1, Z2, Z3, Z4, Z5 et Z6 sont H 02N (I) Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, ledit composé est choisi parmi : 2-(4'-Nitrostyryl)-quinoline (2NSQ), 2-(4'-Nitrostyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide (2NSMQ+I), 2-(4'-Nitrophenyl)-butadienyl-N-methylquinolinium iodide (2NPBMQ+I), 4-(4'-Nitrostyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide (4NSMQ+I) et 4-(4'-Nitro- 2'-methoxystyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide (4NMSMQ+I), 4-(4'-Nitrophenyl)-2-méthyl-quinoline, 2-(4'-Nitrostyryl)-N-methyl-quinolinium TFA, 4-(4'-Nitrostyryl)-N-benzyl-quinolinium TFA, 4-(4'-Nitrostyryl)-N-methyl-quinolinium, chloride, 4-(4'-Nitrostyryl)-quinaldinium Hydrobromide, 4-(4'-Nitrostyryl)-quinaldinium Méthiodide, 4-(4'-Nitrostyryl)-quinoline TFA, 2-(2'-Pyridyl)-4-(4"-nitrostylryl)-quinoline, 4-(4'- Nitrostyryl)-N-methyl-quinolinium TFA. Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, ledit composé est choisi parmi 2-(4'-Nitrostyryl)-quinoline (2NSQ), 2-(4'-Nitrostyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide (2NSMQ+I), 2-(4'-Nitrophenyl)-butadienyl-N-methylquinolinium iodide (2NPBMQ+I), 4-(4'-Nitrostyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide (4NSMQ+I) et 4-(4'-Nitro- 2'-methoxystyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide (4NMSMQ+I). L'invention concerne également un procédé pour la détection chez des micro-organismes d'une activité nitroreductase, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes: a) disposer d'un milieu de détection et/ou d'identification comprenant un composé de formule I W3 W4 selon laquelle : ON (I) • W1, W2, W3 et W4 sont indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, alkoxy, thiométhyle, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle (incluant ses esters ou amides) ou toute combinaison de ceux-ci • n=0, 1 ou2 • U est N ou N+R et V est CZ6 N ou N+R ou V est N ou N+R et U est CZ6, R étant H, alkyle, aralkyle, aryle, alcanoïque ou alkylsulfonique • Z1, Z2, Z3, Z4, Z5 et Z6 étant indépendamment H, Br, Cl, F, 1, alkyle, aryle, alkoxy, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle, sulfonyle, incluant les esters ou amides de carboxyle ou sulfonyle et leurs sels. b) ensemencer le milieu avec un échantillon biologique à tester, c) laisser incuber, et d) révéler la présence d'au moins une activité nitroreductase Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, n = 1 Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, U est N ou N+R et V est CZ6, préférentiellement CH Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, V est N ou N+R et U est CZ6, préférentiellement CH Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, W1, W2, W3 et W4 sont indépendamment H Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, Z1, Z2, Z3, Z4, Z5 et Z6 sont H Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, ledit composé est choisi parmi : 2-(4'-Nitrostyryl)-quinoline (2NSQ), 2-(4'-Nitrostyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide (2NSMQ+I), 2-(4'-Nitrophenyl)-butadienyl-N-methylquinolinium iodide (2NPBMQ+I), 4-(4'-Nitrostyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide (4NSMQ+I) et 4-(4'-Nitro-2'-methoxystyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide (4NMSMQ+I), 4-(4'-Nitrophenyl)-2-méthyl-quinoline, 2-(4'-Nitrostyryl)-N-methyl-quinolinium TFA, 4-(4'-Nitrostyryl)-N-benzyl-quinolinium TFA, 4-(4'-Nitrostyryl)-N-methyl-quinolinium, chloride, 4-(4'-Nitrostyryl)-quinaldinium Hydrobromide, 4-(4'-Nitrostyryl)-quinaldinium Méthiodide, 4-(4'-Nitrostyryl)-quinoline TFA, 2-(2'-Pyridyl)-4-(4"-nitrostylryl)-quinoline, 4-(4'-Nitrostyryl)-N-methyl-quinolinium TFA Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, ledit composé est choisi parmi 2-(4'-Nitrostyryl)-quinoline (2NSQ), 2-(4'-Nitrostyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide (2NSMQ+I), 2-(4'-Nitrophenyl)-butadienyl-N-methylquinolinium iodide (2NPBMQ+I), 4-(4'-Nitrostyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide (4NSMQ+I) et 4-(4'-Nitro- 2'-methoxystyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide (4NMSMQ+I). L'ensemencement des microorganismes peut être réalisé par toutes les techniques d'ensemencement connues de l'homme du métier. Une étape d'incubation peut être réalisée à une température pour laquelle l'activité enzymatique que l'on souhaite détecter est optimale, que l'homme du métier peut choisir aisément selon l'activité enzymatique à détecter. L'étape d) peut s'effectuer par un examen visuel, par colorimétrie ou fluorimétrie. Lors de l'étape d), on peut révéler la présence de l'activité nitroreductase, seule ou en combinaison avec au moins une autre activité enzymatique. Préférentiellement, le microorganisme est choisi parmi : Escherichia coli, Serratia marcescens, Pseudomonas aeruginosa, Yersinia enterocolitica, Salmonella typhimurium, Enterobacter cloacae, Providencia rettgeri, Bacillus subtilis, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium. L'invention concerne également un milieu de détection et/ou d'identification de microorganismes comprenant un composé de la formule (I) suivante pour détecter une activité nitroreductase: selon laquelle : O2N (I) • W1, W2, W3 et W4 sont indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, alkoxy, thiométhyle, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle (incluant ses esters ou amides) ou toute combinaison de ceux-ci • n=0, l ou2 • U est N ou N+R et V est CZ6 N ou N+R ou V est N ou N+R et U est CZ6, R étant H, alkyle, aralkyle, aryle, alcanoïque ou alkylsulfonique • Z1, Z2, Z3, Z4, Z5 et Z6 étant indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, aryle, alkoxy, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle, sulfonyle, incluant les esters ou amides de carboxyle ou sulfonyle et leurs sels. Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, n = 1 Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, U est N ou N+R et V est CZ6, préférentiellement CH Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, V est N ou N+R et U est CZ6, préférentiellement CH Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, W1, W2, W3 et W4 sont indépendamment H Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, Z1, Z2, Z3, Z4, Z5 et Z6 sont H Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, ledit composé est choisi parmi : 2-(4'-Nitrostyryl)-quinoline (2NSQ), 2-(4'-Nitrostyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide (2NSMQ+I), 2-(4'-Nitrophenyl)-butadienyl-N-methylquinolinium iodide (2NPBMQ+I), 4-(4'-Nitrostyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide (4NSMQ+I) et 4-(4'-Nitro-2'-methoxystyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide (4NMSMQ+I), 4-(4'-Nitrophenyl)-2-méthyl-quinoline, 2-(4'-Nitrostyryl)-N-methyl-quinolinium TFA, 4-(4'-Nitrostyryl)-N- benzyl-quinolinium TFA, 4-(4'-Nitrostyryl)-N-methyl-quinolinium, chloride, 4-(4'-Nitrostyryl)-quinaldinium Hydrobromide, 4-(4'-Nitrostyryl)-quinaldinium Méthiodide, 4-(4'-Nitrostyryl)-quinoline TFA, 2-(2'-Pyridyl)-4-(4"-nitrostylryl)-quinoline, 4-(4'-Nitrostyryl)-N-methyl-quinolinium TFA Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, ledit composé est choisi parmi 2-(4'-Nitrostyryl)-quinoline (2NSQ), 2-(4'-Nitrostyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide (2NSMQ+I), 2-(4'-Nitrophenyl)-butadienyl-N-methylquinolinium iodide (2NPBMQ+I), 4-(4'-Nitrostyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide (4NSMQ+I) et 4-(4'-Nitro-2'-methoxystyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide (4NMSMQ+I). Préférentiellement, ledit milieu réactionnel est un milieu de détection et/ou d'identification de microorganismes, ledit milieu comprenant au moins une molécule utilisée à titre de substrat enzymatique telle que définie ci avant. Préférentiellement, ledit composé est à une concentration comprise entre 1 et 1000 mg/1, préférentiellement entre 10 et 500 mg/1. Selon un mode particulier de réalisation de l'invention, ledit milieu de détection et/ou d'identification selon l'invention comprend en outre au moins un autre substrat enzymatique, spécifique d'une activité enzymatique différente de l'activité nitroreductase détectée par la molécule selon l'invention. Le métabolisme enzymatique du ou des autres substrats génère un signal détectable, différent du signal généré par le composé selon l'invention utilisé à titre de substrat enzymatique, comme par exemple des produits colorés ou fluorescents différents, pour permettre la mise en évidence comme la détection et/ou l'identification et/ou la quantification d'un ou plusieurs microorganismes. A titre d'autre substrat spécifique, on peut utiliser tout autre substrat classiquement utilisé dans la détection des microorganismes. La concentration de l'autre substrat enzymatique spécifique est généralement comprise entre 0,01 et 1 g/1. L'homme du métier pourra déterminer facilement une telle concentration en fonction du substrat utilisé. A titre indicatif, il est possible de combiner les composés selon l'invention avec des substrats enzymatiques de peptidase, d'osidase, d'estérase ou de réductase. Préférentiellement, le microorganisme est choisi parmi : Escherichia coli, Serratia marcescens, Pseudomonas aeruginosa, Yersinia enterocolitica, Salmonella typhimurium, Enterobacter cloacae, Providencia rettgeri, Bacillus subtilis, Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium. Selon un mode particulier de réalisation de l'invention, ledit milieu de détection et/ou d'identification selon l'invention comprend en outre au moins un autre substrat enzymatique spécifique de l'activité nitroreducase. Par le choix particulier de substrats, il est alors possible d'identifier des groupes de microorganismes exprimant une même activité enzymatique. La concentration de l'autre substrat enzymatique spécifique est généralement comprise entre 0,01 et 1 g/1. L'homme du métier pourra déterminer facilement une telle concentration en fonction du substrat utilisé. Selon un mode particulier de réalisation de l'invention, ledit milieu de détection et/ou d'identification selon l'invention comprend en outre au moins un indicateur métabolique, spécifique d'une activité métabolique différente de celle détectée par le composé selon l'invention. Cet indicateur métabolique peut notamment être une source de Carbone ou d'Azote associée ou non à un réactif révélant son métabolisme. Les exemples ci dessous sont donnés à titre explicatif et n'ont aucun caractère limitatif. Ils permettront de mieux comprendre l'invention. EXEMPLES Exemple 1 - Synthèse de substrats La 2-(4'-Nitrostyrylquinoline) était préparée suivant la méthode de Skidmore and Tidd (S. Skidmoe et E. Tidd, Journal of the Chemical Society, 1959, 1641-1645). La N-Méthyle-4-(4'-nitrostyrylquinolinium) iodée était préparée à partir de N-Méthyle-4-methylquinolinium iodé suivant la méthode de Bahner et al. (C. Bahner, J. Dale, J. Fain, E. Franklin, J. Goan, W. Stump, M. West et J. Wilson, Journal of Organic Chemistry, 1957, 22, 1110). La N-Méthyle-2-(4'-nitrostyrylquinolinium) iodée était obtenue suivant une methode similaire [1H-NMR (d6-DMSO) : 8 9.20 (1H, d, J=7 Hz, ArH), 8.62 (2H, m, ArH), 8.42-8.18 (9H, m, ArH et >CH=), 4.62 (3H, s, NCH3)]. Autre exemples de substrats typiques obtenus d'une façon similaire à celle mentionnée ci-dessus: N-Méthyle-4-(4'-nitro-2'-methoxystyrylquinolinium) iodé : ce composé était préparé à partir de N-Méthyle-4-methylquinolinium iodée et 4-Nitro-2-methoxybenzaldehyde. 1 H-NMR (d6-DMSO) : ê 9.40 (1H, d, J 6 Hz, ArH), 8.88 (1H, d, J=8 Hz, ArH), 8.58- 7.90 (9H, m, ArH et >CH=), 4.58 (3H, s, NCH3), 4.08 (3H, s, -OCH3). N-Méthyle-2-(4'-nitrophenyl-1,3-butadienyl)quinolinium iodée : ce composé était préparé à partir de N-Méthyle-2-methylquinoléinium iodé et 4-Nitrocinnamaldehyde. 1H-NMR (d6-DMSO) : b 9.80 (1H, d, J=8 Hz, ArH), 8.52 (2H, m), 8.38-7.86 (8H, m, ArH et >CH=), 7.70 (2H, m, >CH=), 7.35 (1H, d, J=18 Hz, >CH=), 4.50 (3H, s, NCH3). Exemple 2 û Utilisation de substrats de formule I selon l'invention pour détecter une activité nitroréductase a) Substrats de nitroréductase Les composés 2-(4'-Nitrostyryl)-quinoline (2NSQ), 2-(4'-Nitrostyryl)-N-méthylquinolinium iodide (2NSMQ+I), 2-(4'-Nitrophenyl)-butadienyl-N-methylquinolinium iodide (2NPBMQ+I), 4-(4'-Nitrostyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide (4NSMQ+I) et 4-(4'-Nitro-2'-methoxystyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide (4NMSMQ+I) ont été synthétisés comme décrit à l'exemple 1. b) Préparation du milieu 40 mg de chacun des substrats ont été dissous dans 4ml de Diméthylsulfoxide et ajoutés à 400 ml de milieu Columbia préalablement autoclavé. Les 5 milieux ont été répartis en boîte de Petri de 90 mm de diamètre à raison de 20 ml par boîte. c) Ensemencement et incubation Dix-sept souches de micro-organismes issues de collections et appartenant à différentes espèces de bactéries et levures sont ensemencées en spot d'environ 10 000 unités formant colonies. Les milieux sont incubés 24 heures à 37°C, puis les colonies formées sont examinées visuellement et sous lampe UV à 365nm. d) Lecture des résultats Les résultats obtenus sont présentés dans le tableau 1. 14 Tableau 1 : Couleur des colonies en présence de substrats de nitroréductase selon l'invention Espèce 2NSQ 2NSMQ+I 2NPBMQ+I 4NSMQ+I 4NMSMQ+1 Numéro de collection Crois. Coul. Fluo. Crois. Coul. Crois. Coul. Crois. Coul. Fluo. Crois. Coul. Fluo. Escherichia coli 2 Bleue Pâle 2 Rouille 2 Rouille 2 Rouille Bleue Orange Jaune NCTC 10 418 - foncé foncé foncé Pâle 2 pâle Pâle Serratia marcescens 2 Bleue Pâle 2 Rouille 2 Rouille 2 Rouille Bleue Orange Jaune NCTC 10 211 - foncé foncé foncé Pâle 2 pâle Pâle Pseudomonas 2 - 2 Rouille 2 2 Rouille 1 aeruginosa foncé Orange _ _ foncé NCTC 10 662 Yersinia enterocolitica 2 - - 2 Rouille 1 Orange 1 Rouille - 2 - NCTC 11 176 pâle Salmonella Rouille Orange Marron typhimurium 2 - - 2 pâle 1 pâle 1 _ 1 pâle NCTC 74 2 Bleue Pâle 2 Rouille 2 2 Bleue Orange Jaune Enterobacter cloacae NCTC 11 936 - foncé Orange Rouille Pâle 2 pâle Pâle Providencia rettgeri 2 - - 2 Rouille 2 Orange 2 Rouille _ 0,5 - NCTC 7 475 e Bacillus subtilis 1 - _ 1 Rouille 0 5 - PdC 2 Orange NCTC 9 372 pâle - - pâle _ Enterococcus faecalis 1 - - 1 Rouille 1 Orange 1 Rouille 2 Orange NCTC 775 pâle pâle _ pâle _ Enterococcus faecium Rouille Orange NCTC 7 171 1 1 pâle 1 pâle 1 Rouille - 0,5 - .. Staphylococcus 1 - - 0,5 - 1 _ 1 _ _ 2 Orange _ epidermidis NCTC 11 047 pâle Staphylococcus aureus 1 - - PdC - PdC - PdC 2 Orange NCTC 6 571 _ _ pâle _ Staphylococcus aureus 1 - - PdC - PdC - PdC 2 Orange NCTC 11 939 - - pâle _ 15 Espèce 2NSQ 2NSMQ+I 2NPBMQ+I 4NSMQ+I 4NMSMQ+I Numéro de collection Crois. Coul. Fluo. Crois. Coul. Crois. Coul. Crois. Coul. Fluo. Crois. Coul. Fluo. Streptococcus pyogenes 1 - - 0,5 Rouille 1 - - NCTC 8 306 1 - - 1 pâle 0,5 .. PdC - - 2 - - Listeria monocytogenes 0,5 - - 0,5 Rouille 1 Orange 1 Rouille - 0,5 - - NCTC 11 994 1 - - PdC pâle pâle PdC - - Candida albicans - PdC - PdC .. - ATCC 90 028 - PdC .. 0,5 - - Candida glabrata NCPF 3 943 Crois : croissance, Fluo. : fluorescence des colonies, Coul. : couleur des colonies PdC : pas de croissance, 0,5 : croissance faible, 1 : croissance modérée, 2 : bonne croissance, - : pas de couleur / fluorescence, e) Conclusions Sur les milieux selon l'invention, il est possible de détecter une activité nitroréductase de micro-organismes grâce à la fluorescence ou à la coloration des colonies. Le plus souvent les substrats selon l'invention permettent la croissance de tout type de microorganismes : bactéries à Gram négatif, bactéries à Gram positif, levures, ... Par les différentes variations de structure des substrats de nitroréductase selon l'invention, il est possible de distinguer différents groupes de microorganismes et d'obtenir différentes couleurs de colonies. De plus, la coloration ne diffusant pas dans le milieu réactionnel, il est possible de distinguer et de compter les cellules ou colonies exprimant l'activité nitroreductase indépendamment de celles ne l'exprimant pas. REVENDICATIONS1. Utilisation d'un composé de la formule (I) suivante, comme substrat enzymatique pour la détection d'une activité nitroréductase : W3 W4 selon laquelle : • W1, W2, W3 et W4 sont indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, alkoxy, thiométhyle, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle (incluant ses esters ou amides) ou toute combinaison de ceux-ci 10 • n=0, l ou2 • U est N ou N+R et V est CZ6 N ou N+R ou V est N ou N+R et U est CZ6, R étant H, alkyle, aralkyle, aryle, alcanoïque ou alkylsulfonique • Z1, Z2, Z3, Z4, Z5 et Z6 étant indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, aryle, alkoxy, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle, sulfonyle, incluant les esters ou 15 amides de carboxyle ou sulfonyle et leurs sels. 2. Utilisation d'un composé de formule I selon la revendication 1 selon laquelle n = 1 20 3. Utilisation d'un composé de formule I selon l'une quelconque des revendications 1 à 2 selon laquelle W1, W2, W3 et W4 sont indépendamment H 02N 5 (1) 4. Utilisation d'un composé de formule I selon l'une quelconque des revendications 1 à 3 selon laquelle U est N ou N+R et V est CZ6 5. Utilisation d'un composé de formule I selon l'une quelconque des revendications 1 à 3 selon laquelle V est N ou N+R et U est CZ6 6. Utilisation d'un composé de formule I selon l'une quelconque des revendications 1 à 5 selon laquelle Z1, Z2, Z3, Z4 , Z5, et Z6 sont H 7. Utilisation d'un composé de formule I selon la revendication 1 selon ledit composé est ledit composé est choisi parmi : 2-(4'-Nitrostyryl)-quinoline (2NSQ), 2-(4'-Nitrostyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide (2NSMQ+I), 2-(4'-Nitrophenyl)-butadienyl-N-methylquinolinium iodide (2NPBMQ+I), 4-(4'-Nitrostyryl)-N-méthylquinolinium iodide (4NSMQ+I) et 4-(4'-Nitro-2'-methoxystyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide (4NMSMQ+I), 4-(4'-Nitrophenyl)-2-méthyl-quinoline, 2-(4'-Nitrostyryl)-N-methyl-quinolinium TFA, 4-(4'-Nitrostyryl)-N-benzyl-quinolinium TFA, 4-(4'- Nitrostyryl)-N-methyl-quinolinium, chloride, 4-(4'-Nitrostyryl)-quinaldinium Hydrobromide, 4-(4'-Nitrostyryl)-quinaldinium Méthiodide, 4-(4'-Nitrostyryl)-quinoline TFA, 2-(2'-Pyridyl)-4-(4"-nitrostylryl)-quinoline, 4-(4'-Nitrostyryl)-N- methyl-quinolinium TFA. 8. Procédé pour la détection chez des micro-organismes d'une activité nitroreductase, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes: a) disposer d'un milieu de détection et/ou d'identification comprenant un composé de formule Iselon laquelle : • Wb, W2, W3 et W4 sont indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, alkoxy, thiométhyle, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle (incluant ses esters ou 5 amides) ou toute combinaison de ceux-ci • n=0, l ou2 • U est N ou N+R et V est CZ6 N ou N+R ou V est N ou N+R et U est CZ6, R étant H, alkyle, aralkyle, aryle, alcanoïque ou alkylsulfonique • Z1, Z2, Z3, Z4, Z5 et Z6 étant indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, aryle, 10 alkoxy, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle, sulfonyle, incluant les esters ou amides de carboxyle ou sulfonyle et leurs sels. b) ensemencer le milieu avec un échantillon biologique à tester, c) laisser incuber, et 15 d) révéler la présence d'au moins une activité nitroreductase 9. Milieu de détection et/ou d'identification de microorganismes comprenant un composé de la formule (I) suivante pour détecter une activité nitroreductase: O2N (I)selon laquelle : • W1, W2, W3 et W4 sont indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, alkoxy, thiométhyle, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle (incluant ses esters ou 5 amides) ou toute combinaison de ceux-ci • n=0, l out • U est N ou N+R et V est CZ6 N ou N+R ou V est N ou N+R et U est CZ6, R étant H, alkyle, aralkyle, aryle, alcanoïque ou alkylsulfonique • Zl, Z2, Z3, Z4, Z5 et Z6 étant indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, aryle, 10 alkoxy, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle, sulfonyle, incluant les esters ou amides de carboxyle ou sulfonyle et leurs sels. ON (I)