FR 2949472 A1 20110304 FR 0904093 A 20090828 La Borréliose de Lyme (LB) est une maladie infectieuse non contagieuse, due à un spirochète appelé Borrelia burgdorferi, transmis à l'homme par une piqûre de tique du genre Ixodes. La LB entraîne, sans traitement, des troubles pathologiques divers (dermatologiques, arthritiques, cardiaques, neurologiques et parfois oculaires). C'est la .maladie à vecteur la plus fréquente aux USA et dans certains pays tempérés de l'hémisphère Nord. Plusieurs espèces de borrélies, actuellement désignées sous le terme de groupe burgdorferi ou Borrelia burgdorferi sensu lato (incluant Borrelia burgdorferi sensu stricto, B. garinii et B. afzelii) sont impliquées dans cette infection. Ces espèces sont pathogènes pour l'homme. Aux Etats-Unis, l'espèce infectieuse impliquée est Borrelia burgdorferi sensu stricto. En Europe, à cette espèce, s'ajoutent B. garinii et B. afzelii. En Asie, les espèces impliquées sont B. garinii et B. afzelii. Aux Etats-Unis, environ 10.000 cas annuels sont déclarés. En Europe les taux d'incidence varient de moins de 5 pour 20 100.000. La Borreliose de Lyme évolue en passant par trois phases distinctes, de l'infection précoce à la phase tardive. Le stade précoce (Stade I), peut être asymptomatique ou se traduire par un tableau pseudo-grippal. Dans 50-80o des cas, 25 on note l'apparition d'un rash cutané inflammatoire plusieurs jours après la morsure de la tique, d'aspect très particulier nommé érythème migrant (EN). En l'absence de traitement, la dissémination des Borrelia par voie sanguine se traduit quelques semaines plus tard par la survenue d'arthrites 30 inflammatoires, d'atteintes neurologiques (neuroborréliose) et méningées, de manifestations cutanées et cardiaques (Stade II). Après plusieurs mois ou années, la maladie évolue vers une forme chronique atrophiante, encéphalopathie, encéphalomyélite et arthrite chronique (Stade III). Il existe un tropisme organique particulier à chacune des espèces de Borrelia burgdorferi. Si le premier stade d'érythème migrant est indistinctement lié aux trois espèces, l'évolution vers une forme neurologique est préférentiellement associées à l'espèce B. garinii, les arthrites plutôt à B. burgdorferi sensu stricto, l'acrodermatite chronique atrophiante est spécifique de B. afzelii. La ressemblance des symptômes cliniques entre la borréliose de Lyme et d'autres maladies non liées ainsi que la variabilité des manifestations rend le diagnostic clinique difficile. Le diagnostic de la borréliose peut être particulièrement difficile sur la base d'observations cliniques, si les preuves d'anamnèse sont absentes (morsure de tique ou EM). Le stade précoce de la maladie peut être inapparent jusqu'au moment ou elle atteint des stades cliniques très avancés. C'est pourquoi le diagnostic de LB est basé sur des signes cliniques mais aussi sur la détection des anticorps spécifiques des borrelia burgdorferi pathogènes dans le sérum, le plus souvent par ELISA (Enzyme Linked ImmunoSorbent Assay) ou encore EIA, IFA. Les anticorps IgM anti-borrelia burgdorferi apparaissent en général quelques jours ou semaines après le début de l'infection et peuvent persister pendant l'évolution de la maladie. La réponse IgG est plus tardive. La plupart des patients ont des IgG environ un mois après le début de l'infection active et ces IgG peuvent aussi persister des années après l'exposition initiale et la résolution des symptômes. En Europe, l'évaluation de la réponse sérologique est compliquée du fait de l'existence de trois espèces pathogènes et de la variabilité inter-espèces pour les antigènes immunodominants majeurs. Les antigènes actuellement utilisés en routine pour la détection des IgGs et IgMs de LB sont des échantillons cellulaires traités aux ultra sons de Borrelia burgdorferi sensu lato. Les performances des essais sérologiques avec ces antigènes en terme de spécificité et de sensibilité sont grandement variables. Ainsi, en raison d'une spécificité insuffisante, impliquant des réactivités croisées avec des anticorps associés à différentes bactéries pathogènes notamment Treponema pallidium (agent étiologique de la syphilis), des spirochètes, rickettisies, erchilia, ou Helicobacter pylori, le diagnostic d'échantillons testés positifs en ELISA doit être confirmé par immunoblot. La sensibilité est également un facteur majeur. En effet, Borrelia burgdorferi sensu lato exprime différentes protéines de surface par adaptation à divers micro-environnements, de sorte que la diversité génétique et l'expression différentielle des gènes de Borrelia burgdorferi chez les patients ont des implications importantes pour le développement de tests sérologiques de LB. La lipoprotéine OspC (Outer-surface protein C) et la protéine DbpA (Decorinbinding protein A) font partie de ces protéines. DbpA apparaît principalement exprimée chez le mammifère après infection. Ces protéines présentent une grande variabilité de séquences selon les espèces de Borrelia burgdorferi et inter-espèce. Les protéines DbpA sont particulièrement variables et se répartissent dans quatre groupes : un groupe correspondant à la génoespèce Borrelia afzelli, un autre groupe correspondant à la génoespèce Borrelia sensu stricto et deux groupes correspondant à la génoespèce Borrelia burgdorferi garinii. L'identité de séquences en acides aminés inter-espèce entre les protéines DbpA n'est que de 40-44%. Elle est de 54-72% pour les protéines OspC. Il est donc nécessaire de développer un kit qui réponde aux critères de spécificité et de sensibilité attendus et en particulier qui améliore la détection des IgMs, en terme de sensibilité, dans le cas d'infection récente. La présente invention se propose de résoudre l'ensemble des inconvénients de l'état de la technique, par de nouvelles protéines recombinantes chimériques, facilement synthétisables et purifiables, et présentant une forte immunoréactivité vis-à-vis de sérums de patients susceptibles d'être infectés par une ou plusieurs espèces pathogènes de Borrelia burgdorferi. Ces protéines de fusion chimériques permettent de pallier les problèmes de sensibilité et de spécificité liés : à la présence de plusieurs espèces pathogènes de Borrelia burgdorferi, à la grande variabilité des séquences des antigènes de surface de Borrelia burgdorferi et à la nécessité d'utiliser plusieurs antigènes représentatifs des espèces B. garinii, B. burgdorferi sensu stricto et B. afzelii pour élaborer un test de diagnostic de la borreliose de Lyme basé au moins sur la détection des anticorps anti-OspC et anti-DbpA. Les protéines de fusion chimériques de l'invention permettent par ailleurs de résoudre des difficultés techniques rencontrées pour exprimer certains antigènes sous forme recombinante à un taux élevé. En effet, les protéines OspC sont faiblement exprimées sous forme recombinante dans E. coli (moins de 30 mg de protéine purifiée par litre de culture en flasks), alors que les protéines DbpA peuvent être exprimées dans les même conditions avec des rendements élevés (plus de 100 mg par litre). Aussi, afin d'améliorer les niveaux d'expression les inventeurs ont conçu des protéines chimériques de fusion DbpA-OspC. Un autre avantage des protéines chimériques de l'invention est de limiter le nombre de protéines recombinantes dans la constitution d'un kit de diagnostic de la Borréliose de Lyme. Aussi, la présente invention a pour objet une protéine, non naturelle, de synthèse, c'est à dire obtenue par génie génétique (protéine recombinante) ou par synthèse peptidique, ladite protéine étant choisie dans le groupe consistant en : (a) une protéine dont la séquence en acides aminés comprend (ou consiste en) la séquence SEQ ID NO : 1 et la séquence SEQ ID NO : 2 ou une séquence qui présente au moins 40% d'identité avec SEQ ID NO : 1 et une séquence qui présente au moins 50% d'identité avec SEQ ID NO : 2, (b) une protéine dont la séquence en acides aminés comprend (ou consiste en) la séquence SEQ ID NO : 3 et la séquence SEQ ID NO : 4 ou une séquence qui présente au moins 40% d'identité avec SEQ ID NO : 3 et une séquence qui présente au moins 50% d'identité avec SEQ ID NO : 4, (c) une protéine, dont la séquence en acides aminés comprend (ou consiste en) une séquence choisie parmi : (i) la séquence SEQ ID NO : 5 et la séquence SEQ ID NO : 7 ou une séquence qui présente au moins 40% d'identité avec SEQ ID NO : 5 et une séquence qui présente au moins 50% d'identité avec SEQ ID NO : 7, (ii) la séquence SEQ ID NO : 6 et la séquence SEQ ID NO : 7 ou une séquence qui présente au moins 40% d'identité avec SEQ ID NO : 6 et une séquence qui présente au moins 50% d'identité avec SEQ ID NO : 7, (iii) la séquence SEQ ID NO 5, la séquence SEQ ID NO : 6 et la séquence SEQ ID NO : 7 ou une séquence qui présente au moins 40% d'identité avec SEQ ID NO : 5, une séquence qui présente au moins 40% d'identité avec SEQ ID NO : 6 et une séquence qui présente au moins 50% d'identité avec SEQ ID NO : 7 (d) une protéine dont la séquence en acides aminés comprend (ou consiste en) une séquence choisie parmi SEQ ID NOs : 8, 9, 10, 11, 12, 13 et 14. Chacune des protéines identifiées ci-dessus comprend au moins une séquence du domaine extracellulaire d'une protéine DbpA d'une espèce de borrélia choisie parmi B. afzelii (SEQ ID 10 NO : 1), B. burgdorferi sensu stricto (SEQ ID NO : 3) et B. garinii (groupe III SEQ ID NO : 5) (groupe IV : SEQ ID NO : 6) ou une séquence présentant au moins 40% d'identité avec lesdites séquences et au moins une séquence d'une protéine OspC de B. afzelii (SEQ ID NO : 2), B. burgdorferi sensu 15 stricto (SEQ ID NO : 4) et B. garinii (SEQ ID NO : 7) ou une séquence qui présente au moins 50% d'identité avec lesdites séquences. Préférentiellement, la (les) séquence(s) DbpA est (sont) placée(s) côté N-terminal de la protéine recombinante et la séquence OspC est placée côté C-terminal de la protéine 20 recombinante. Une séquence d'au moins 6 Histidine peut être ajoutée au niveau de l'extrémité N-terminale ou C-terminale de la protéine pour permettre sa purification sur résine métal- 25 chélate. La séquence 6 histidine, identifiée en SEQ ID NO : 22, est placée préférentiellement côté N-terminal de la construction. Ceci est illustré, à titre d'exemple, par les séquences SEQ ID NOs : 9, 11, 13 et 14 qui comprennent côté N-terminal une queue poly-His(6). La queue poly-His peut être 30 codée par l'une quelconque des séquences identifiées en SEQ ID NOs : 23, 24 et 25 Des acides aminés additionnels peuvent être présents en amont de la queue poly-His du fait de l'insertion dans la séquence d'ADN codante d'une petite séquence qui permet de faciliter le clonage de la séquence d'intérêt dans le plasmide d'expression. C'est le cas notamment dans les séquences SEQ ID NOs : 9, 11, 13 et 14 comportant un motif � MRGS � (SEQ ID NO : 26) en amont de la queue poly-His. Le motif � MRGS � est codé par ATGAGGGGATCC (SEQ ID NO : 27). Une région de liaison, peut être introduite entre chacune des séquences DbpA et OspC qui compose une protéine recombinante chimérique. Ce type de région correspond à une région d'espacement, flexible, assurant une meilleure accessibilité des anticorps potentiels à chacun des domaines. Elle est riche en acides aminés Gly et Ser, acides aminés décrits comme apportant une flexibilité dans la structure tertiaire de la protéine. Il est aussi possible d'introduire dans une séquence d'intérêt codante un bras ADN (ou linker) pour favoriser la liaison entre les séquences codantes pour deux protéines d'intérêt. C'est le cas notamment dans la séquence SEQ ID NO : 14 qui comprend un motif � GSGG � (SEQ ID NO : 28) codé par la séquence GGTTCCGGGGGT (SEQ ID NO : 29) qui agit comme bras de liaison entre les protéines DbpA groupe IV et OspC de B. garinii. Les protéines préférées sont identifiées en SEQ ID NOs : 8, 9, 10, 11, 12 13 et 14. Elles sont respectivement codées par les séquences ADN correspondantes identifiées en SEQ ID NOs : 15, 16, 17, 18, 19, 20 et 21. L'invention a également pour objet les séquences ADN codant les protéines telles que définies précédemment et en particulier les séquences identifiées SEQ ID NOs : 15, 16, 17, 18, 19, 20 et 21. L'invention a aussi pour objet une cassette d'expression qui est fonctionnelle dans une cellule dérivée d'un organisme procaryote (exemple : Escherichia coli) ou eucaryote, tel qu'une levure (exemple : Pi chia, Schizosaccharomyces) permettant l'expression de l'acide nucléique décrit ci-dessus (ADN), lorsqu'elle est placée sous le contrôle des éléments permettant son expression, ainsi que le vecteur comprenant une telle cassette. Les protéines de l'invention sont notamment utilisables pour le diagnostic d'une infection à borrelia. Ainsi, la présente invention a pour objet un procédé pour le diagnostic 10 in vitro d'une Borréliose de Lyme dans un échantillon biologique (par exemple un échantillon de sérum, de sang, de plasma, etc...), selon lequel on met en contact l'échantillon biologique avec au moins une protéine telle que définie ci-dessus et on détermine si il y a formation d'un complexe 15 immunologique entre ladite protéine et des anticorps de l'échantillon biologique (IgGs et/ou IgMs), par exemple par addition d'au moins une anti-immunoglobuline humaine marquée par tout marqueur approprié. Par marqueur, on entend un traceur capable d'engendrer un signal. Une liste non 20 limitative de ces traceurs comprend les enzymes qui produisent un signal détectable par exemple par colorimétrie, fluorescence ou luminescence, comme la peroxydase de raifort, la phosphatase alcaline, la R-galactosidase,la glucose-6-phosphate déshydrogénase; les chromophores comme les composés 25 fluorescents, luminescents ou colorants; les groupements à densité électronique détectables par microscopie électronique ou par leurs propriétés électriques comme la conductivité, par les méthodes d'ampérométrie ou de voltamétrie, ou par des mesures d'impédance ; les groupements détectables par des 30 méthodes optiques comme la diffraction, la résonance plasmon de surface, la variation d'angle de contact ou par des méthodes physiques comme la spectroscopie de force atomique, l'effet tunnel, etc. ; les molécules radioactives comme 32p, 35S 125 ou I. De préférence, la ou les protéine(s) est (sont) immobilisés sur un support solide qui peut être le cône d'un appareil Vidas�, le puits d'une plaque de microtitration, un gel, une particule etc... Dans un mode de réalisation de l'invention, l'échantillon biologique est de plus mis en contact avec au moins une protéine chimérique VisE, telle que décrite ci-après. La protéine VlsE (surface expressed lipoprotein with 10 Extensive antigenic Variation) est principalement exprimée in vivo, de façon transitoire et rapidement après infection de l'hôte. Elle est très immunogénique chez l'hôte infecté impliquant la production d'IgGs et d'IgMs. Le locus Vis est localisé sur un plasmide linéaire de 28 kb (Ip28-1) présent 15 chez les trois génoespèces de borrelia responsables de Lyme et composé de cassettes silencieuses et d'un site d'expression (VisE). In vivo des recombinaisons aléatoires entre cassettes d'expression et cassettes silencieuses surviennent au cours de l'infection et sont à l'origine de la variabilité antigénique 20 de VlsE. La protéine VlsE est composée de six régions variables VR1-VR6, situées en surface de la protéine V1sE, espacées de régions dites invariables IR1-IR6. La protéine VlsE chimérique comprend (oû consiste 25 essentiellement en) . (i) au moins une séquence choisie parmi les séquences identifiées en SEQ ID NOs : 30, 31, 32, 33 et 34 et les séquences qui présentent au moins 50% d'identité, de préférence 60% ou 70% d'identité et avantageusement au moins 30 80% ou 85% d'identité avec SEQ ID NOs 30, 31, 32, 33 et 34, et (ii) au moins une séquence comprenant la séquence SEQ ID NO : 35 ou une séquence qui présente au moins 80% d'identité, de préférence au moins 85% d'identité et avantageusement au moins 90% d'identité avec SEQ ID NO : 35, la séquence SEQ ID NO : 36 ou une séquence qui présente au moins 80% d'identité, de préférence au moins 85% d'identité et avantageusement au moins 90% d'identité avec SEQ ID NO : 36, la séquence SEQ ID NO : 37 ou une séquence qui présente au moins 80% d'identité, de préférence au moins 85% d'identité et avantageusement au moins 90% d'identité avec SEQ ID NO : 37, et facultativement la séquence SEQ ID NO : 43. La protéine chimérique VlsE, de préférence comprend la séquence SEQ ID NO : 43. 10 Comme décrit précédemment, une queue poly-histidine(x6) peut être ajoutée au niveau de l'extrémité N-terminale de la protéine chimérique pour permettre sa purification sur résine métal-chélate ainsi que des acides aminés additionnels en 15 amont de la queue poly-His. Une protéine chimère préférée comprend (ou consiste essentiellement en ou encore consiste en) . (i) la séquence SEQ ID NO : 30 ou une séquence qui 20 présente au moins 50% d'identité, de préférence au moins 60% ou 70% d'identité et avantageusement au moins 80 ou 85% d'identité avec SEQ ID NO : 30 ; et (ii) la séquence comprenant la séquence SEQ ID NOs : 35 ou une séquence qui présente au moins 80% d'identité, de 25 préférence au moins 85% d'identité et avantageusement au moins 90% d'identité avec SEQ ID NOs : 35, la séquence SEQ ID NO :36 ou une séquence qui présente au moins 80% d'identité, de préférence au moins 85% d'identité et avantageusement au moins 90% d'identité avec SEQ ID NOs : 36, la séquence SEQ ID NO : 30 37 ou une séquence qui présente au moins 80% d'identité, de préférence au moins 85% d'identité et avantageusement au moins 90% d'identité avec SEQ ID NO : 37, et la séquence SEQ ID NO : 43. La protéine chimère préférée comprend (ou consiste essentiellement en ou encore consiste en : (i) la séquence SEQ ID NO 30 ; et (ii) la séquence comprenant les séquences SEQ ID NOs : 35, 36, 37 et 43. La protéine comprend ou consiste en une séquence identifiée comme SEQ ID NO : 38 SEQ ID NO : 30 correspond à la séquence du domaine 10 extracellulaire de V1sE de B. garinii (souche pBi) amputé de sa séquence signal (aa 1-19) et de la région C-terminale de la protéine mature située après le domaine IR6. 15 SEQ ID NO extracellulaire de sa séquence signal mature située après SEQ ID NO extracellulaire de sa séquence signal31 correspond à la séquence du domaine V1sE de B. garinii (souche pBr) amputé de et de la région C-terminale de la protéine le domaine IR6. 32 correspond à la séquence du domaine V1sE de B. garinii (souche pLi) amputé de et de la région C-terminale de la protéine 20 mature située après le domaine IR6. SEQ ID NO extracellulaire de sa séquence signal33 correspond à la séquence du domaine V1sE de B. afzelli (souche pKo) amputé de et de la région C-terminale de la protéine mature située après le domaine IR6. 25 SEQ ID NO : 34 correspond à la séquence du domaine extracellulaire de V1sE de B. burgdorferi sensu stricto (souche B31) amputé de sa séquence signal et de la région C- terminale de la protéine mature située après le domaine IR6. SEQ ID NO : 35 correspond à la séquence du domaine IR6 de 30 B. burgdorferi sensu stricto (souche B31). SEQ ID NO : 36 correspond à la séquence du domaine IR6 de B. afzelii (souche ACA-1). SEQ ID NO : 37 correspond à la séquence du domaine IR6 de B. garinii (souche Ip90). SEQ ID NOs : 43 correspond à la séquence de la région variable VR6 de B. burgdorferi sensu stricto (souche B31). L'invention a encore pour objet une trousse pour le diagnostic in vitro d'une Borréliose de Lyme comprenant au moins une protéine chimérique DbpA-OspC telle que définie ci-dessus, de préférence comprenant au moins une antiimmunoglobuline humaine marquée par tout marqueur approprié répondant aux définitions données ci-dessus. La trousse peut de plus comprendre une protéine VlsE chimérique telle que définie précédemment. Les exemples suivants sont donnés à titre illustratif et n'ont aucun caractère limitatif. Ils permettent de mieux comprendre l'invention. L'ordre des séquences codant les différentes régions épitopiques immunodominantes des protéines recombinantes chimériques peut être éventuellement modifié. Les épitopes peuvent également présenter des variations par rapport aux séquences décrites dans les exemples selon l'espèce de Borrelia burgdorferi et la ou les souches qu'ils représentent. La longueur des régions de liaison peut également être modifiée pour améliorer la flexibilité entre deux domaines. Enfin, les régions de fixation peuvent être insérées au sein des régions de liaisons. Exemples Exemple 1: préparation des constructions plasmidiques codants pour les protéines recombinantes chimériques DpbA-30 OspC. Les séquences ADN codant pour les différentes séquences DpbA et OspC décrites sont identifiées dans le tableau 1. Les séquences ADN ont été optimisées pour favoriser l'expression dans E. Coli en utilisant GeneOptimizerTM et synthétisées respectivement par GenScript corporation (Scotch Plains, NJ, USA) ou GeneArt GmbH Regensburg, Allemagne). Tableau 1 : origine des séquences Espèces de B. burgdorferi Isolat; acides-aminés (aa); `**No d'accession GenBank protéine B. sensu stricto B. afzelii B. garinii DbpA *B31; **aa 2-192; *PKo; **aa 2-150; *40; **aa 2-187; ***AF069269 ***AJ131967 ***AF441832 *PBi; **aa 2-176 ; ***AJ841673 OspC *B31; **aa 26-210; *PKo; **aa 2-212; *PEi **aa 32-208; ***X73622 ***X62162 ***AJ749866 Chaque protéine recombinante chimérique comprend au moins un région épitopique correspondant au domaine extracellulaire d'une séquence DbpA de Borrelia burgdorferi sensu stricto ou B. afzelii ou B. garinii et au moins une région épitopiques correspondant au domaine extracellulaire d'une séquence OspC de Borrelia burgdorferi sensu stricto ou B. afzelii ou B. garinii. Les associations de différentes séquences nucléotidiques codant pour des séquences DbpA et/ou OspC ainsi que les modifications de séquences nucléotidiques, telles que délétions, addition de séquence de liaison ou addition de séquence linker ont été réalisées par génie génétique en utilisant les techniques de PCR bien connues de l'homme du métier et décrites par exemple dans Sambrook J. et al., Molecular Cloning : A Laboratory Manual, 1989. Les séquences d'ADN codant pour les protéines chimériques d'intérêt ont été introduites dans le vecteur d'expression pMR [2] entre le site de restriction BamHI en 5' et le site EcoRI ou HindIII en 3'. Les constructions plasmidiques et les protéines correspondantes citées en exemple (bLYM114, bLYM120 et bLYM121) sont décrites dans le tableau 2. La présence de MRGS en N-terminal des protéines recombinantes et la séquence nucléotidique ATG AGG GGA TCC correspondante a été introduite par la technique de clonage utilisée dans le vecteur d'expression pMR. Seul le codon d'initiation ATG et par conséquent l'acide aminé Met est vraiment indispensable dans cette séquence. Une séquence poly-Histidine (6xHis) a été introduite côté N-terminal de chaque protéine recombinante. Cette séquence permet la purification des protéines recombinantes sur colonne d'affinité métal-chélate. C'est une région de fixation sur le gel Ni-NTA qui permet de faciliter ultérieurement l'étape de purification de la protéine recombinante chimérique. Ce peptide HHHHHH (SEQ ID NO : 22) est codé par les séquences nucléotidiques CATCATCATCATCATCAT (SEQ ID NO : 23) ou CATCATCATCATCATCAC (SEQ ID NO : 24) ou CATCATCACCACCATCAT (SEQ ID NO : 25) ou par toute autre séquence codant pour la séquence SEQ ID NO : 22. Cette région de fixation particulière, comprenant une succession d'histidine, permet notamment la fixation orientée de la protéine recombinante sur un support constitué de silice ou d'oxydes métalliques. Tableau 2: constructions plasmidiques et protéines correspondantes Caractéristiques des protéines recombinantes Caractéristiques des constructions plasmidiques Nom N-terminal Séquence B. burgdorferi Vecteur site d'insertion dans le Tag parental vecteur de la séquence insert bLYM114 B. afzelii strain PKo SEQ ID 6 x His DbpA aa 2-150 + pMR78* 5'BamHI / 3'EcoRI NO: 9 OspC aa 2-212 bLYM120 6 x His B.sensu stricto strain B31 pMR78* 5'BamHI / 3'Hindlll SEQ ID DbpA aa 28-192 + NO: 11 OspC aa 26-210 bLYM121 6 x His B. garinii pMR78* 5'BamHI / 3'HindIII SEQ ID DbpA III aa 25-187 strain 40 NO: 14 + DbpA IV aa 24-176 strain PBi + OspC aa 32-208 strain PEi [2]25 Exemple 2 : Expression des protéines recombinantes bLYM114, bLYM120 et bLYM121 de l'exemple 1 et purification. Une construction plasmidique correspondant à une séquence SEQ ID NO 16, 18 ou 21 insérée dans un vecteur d'expression (pMR) a été utilisée pour transformer une bactérie E. coli (souche BL21) selon un protocole classique connu de l'homme du métier. Les bactéries transformées ont été sélectionnées grâce. à leur résistance à l'ampicilline portée par le vecteur pMR. Un clone de bactérie recombinante a alors été sélectionné pour ensemencer une pré-culture de 40 ml de milieu 2xYT (tryptone 16 g/1 ; extrait de levure 10 g/l ; NaCl 5 g/l, pH 7,0) contenant 100 pg/ml ampicilline. Après 15 à 18 heures d'incubation à 30°C sous agitation à 250 tpm, cette pré-culture a été utilisée pour ensemencer 1 litre de milieu 2xYT contenant 2 % glucose et 100 pg/ml ampicilline. Cette culture a été incubée à 30°C sous agitation à 250 tpm jusqu'à ce que la DO à 600 nm atteigne 1,0/1,2. La culture a été maintenue pendant 3 heures 30 min. ou 4 heures à 30°C en ajoutant de l'isopropyl-(3-D-thiogalactopyranoside (IPTG) 0.4mM et récoltée par centrifugation à 6000 g pendant 30 min. Le culot cellulaire a été stocké à -60°C. Pour la purification, la biomasse humide a été décongelée et re-suspendue dans un tampon de lyse contenant des inhibiteurs des protéases sans EDTA (Roche) et de la benzonase nuclease (Novagen) et soumise à une rupture cellulaire à 1,6 kBar dans un destructeur de cellules (Constant System Ltd, Daventry, ROYAUME-UNI). Le lysat a été ensuite centrifugé à 10,000 tpm. pendant 45 min. à 2-8°C. Le surnageant obtenu contient les protéines solubles. Ce surnageant a été filtré sur filtre 0,45 p et purifié par chromatographie d'affinité sur une colonne de chélation de métaux (matrice nickel-nitrilotriacetic acid (Ni-NTA, Qiagen). Pour ce faire, le surnageant a été déposé (1 ml/min) à 18-25°C sur une colonne de 8 ml de gel Ni-NTA équilibrée en tampon A (voir tableau 3). La colonne a été ensuite lavée en tampon A, jusqu'à obtention en sortie de colonne d'une D028onm=0. L'élution de la protéine recombinante est obtenue par application d'un tampon B,. suivant les indications reportées dans le tableau 3, et la protéine purifiée a été dialysée en cassette de dialyse 10000 ou 20000 MWCO (Slide-A-Lyser�, Pierce) contre un tampon de dialyse. Les conditions de purifications sur gel Ni-NTA sont décrites dans le tableau 3. Tableau 3: purification des protéines recombinantes Protéine bLYM114 bLYM120 bLYM121 SEQ ID NO :14 SEQ ID NO : 11 SEQ ID NO : 14 Tampon de lyse et de Tampon A 1 lavage Tampon d'élution Tampon B 2 Elution étape 1 90% Tampon A + 92% Tampon A + 100 % Tampon B 10% Tampon B (4CV) 8% Tampon B (4CV) Elution étape 2 100 % Tampon B 100 % Tampon B NA Rendement de 12 13 20 purification mg protéine /g biomasse humide Rendement de 80 122 245 purification mg protéine /L de culture 1Sodium phosphate 50 mM, Imidazole 30 mM, NaCl 500 mM, Tween 20 0,1 %, Glycerol 5 %, pH = 7,8 2Sodium phosphate 50 mM, Imidazole 325 mM, NaCL 500 mM, Glycerol 5 %, pH = 7,5 Les échantillons ont été analysés sur NuPAGE� Novex�4-12% dans un tampon NuPAGE� MES-SDS, selon les instructions du fabricant (Invitrogen). Les protéines ont été soit colorées au 15 bleu brillant de Coomassie ou ont été transférées électrophorètiquement sur une membrane de nitrocellulose. La membrane a été bloquée avec du lait sec 5% (w/v) dans du PBS et incubée avec un anticorps anti-pentahistidine (Qiagen) dans du PBS contenant du Tween 20 0,05%. Un conjugué IgG anti- 20 souris de chèvre marqué à la peroxydase de raifort (Jackson Immunoresearch laboratories) dans du PBS/Tween a été utilisé comme anticorps secondaire.10 La détermination de la concentration en protéines a été effectuée en utilisant le kit Bradford. (Pierce Coomassie Plus, Perbio Science) avec la BSA comme standard protéique. Exemple 3 :Détection des IgGs et des IgMs humaines avec les protéines recombinantes chimériques par une technique Line Immunoblot Chaque protéine recombinante a été déposée sur une membrane de difluorure de polyvinylidene (PVDF, Immobilon, Millipore, Bedford, Mass. USA) selon le protocole suivant : La concentration en protéine a été ajustée à 1 mg/ml dans du PBS pH 7.2 et diluée dans le PBS pH 7.2 additionné de Tween 20 0,03% (dilution 1/200ème). La membrane PVDF a été humidifiée dans du méthanol, lavée dans de l'eau déminéralisée et couchée sur un papier de blot humide. Une règle en plastique a été plongée dans la dilution de protéines et fixée sur la membrane PVDF. Après dépôt des protéines et séchage des membranes, les membranes ont été coupées verticalement en bandelettes. Avant utilisation, les bandelettes ont été incubées avec de la gélatine 5% dans du TBS pH 7,5 pendant 1 heure à 37°C. Les protocoles d'immunoblot ont été réalisés à température ambiante comme décrit par Bretz A.G. et al. [3]. Les bandelettes ont été incubées pendant 2 heures avec des sérums humains dilués au 1/200ème dans du TBS avec de la gélatine 1%, lavées et incubées avec un anticorps anti-IgG ou anti-IgM humaines marqué à la phosphatase alcaline (Sigma, St-Louis, USA) diluées au 1/1000ème dans du TBS avec de la gélatine 1%. Après lavage, les bandelettes ont été incubées avec le substrat BCIP-NBT de la phosphatase alcaline (KPL, Gaithersburg, MD, USA) pendant 30 min., puis lavées dans de l'eau distillée et séchées. Panel de sérums testés Les sérums humains ont été collectés à partir de patients LB typiques bien définis cliniquement correspondant aux différent stades de LB (22 avec un érythème migrans [EM], 5 avec une cardite, 20 avec une neuroborreliose [NB], 20 avec de l'arthrite de Lyme [LA], 20 avec une acrodermatite chronica athrophicans [ACA] et 10 avec avec un lymphocytome cutis benigna [LCB]). Des IgGs anti-Lyme ont été trouvés par immunoblot, décrit précédemment et utilisant des lysats de cellules entières [4], dans les sérums de patients avec LA, ACA et cardite. EM, NB et LCB ont été identifiés cliniquement, mais tous les sérums correspondants n'ont pas été trouvés positifs par immunoblot maison [4], ni par les kits disponibles commercialement (VIDAS� Lyme (biomérieux), Borrelia IgG, (Diasorin�) et Borrelia IgM (r-biopharm�). Par contre, tous les cas de NB inclus dans l'étude avaient des anticorps détectables dans le liquide céphalo-rachidien [LCR] (index s'étendant de 2 à 27,1 par VIDAS� Lyme (biomérieux). La présence d'IgM n'a été recherchée que dans les cas cliniques de stade I et II et pas dans les stades chroniques. Le groupe contrôle négatif consistait en 31 sérums antérieurement trouvés comme étant négatifs pour la présence d'anticorps anti-Lyme dans les essais classiques. De plus, 64 sérums de donneurs de sang sains résidant dans une région endémique pour Lyme (Monthley, Valais, Suisse) ont été testés avec la protéine recombinante. L'intensité de la réaction a été évaluée comme suit : [+], [++], [+++], [-] ou résultats équivoques. Les résultats équivoques ont été considérés comme négatifs. Les résultats sont présentés dans le tableau 4. Tableau 4: Réactivité en Line immunoblot des sérums humains de patients avec borréliose de Lyme avec 3 protéines recombinantes chimériques bLYM114 (SEQ ID NO : 9), bLYM120 (SEQ ID NO : 11) et bLYM121 (SEQ ID NO : 14) Protéine IgG IgM Stade Stade Stade Stade Stade I II III I II EM NB Carditis LA ACA LCB EM NB Carditis (n=22) (n=20) (n=5) (n=19) (n=20) (n=10) (n=22) (n=20) (n=5) bLYM114 5 10 0 7 12 2 7 7 2 bLYM120 6 7 0 8 6 0 11 7 2 bLYM121 2 10 5 9 8 0 7 7 2 bLYM 9 13 5 18 17 2 11 7 2 114+120+121 sérums , 40.9% 59.1% 100% 94.7% 85% 20% 50% 35% 40% positifs 1[+++] 8[+++] 4[+++] 7[+++] 8[+++] 1[++] 1[+++] 5[++] 2[++] (%) 4[++] 2[++] 1[+] 8[++] 5[++] 1[+] 7[++] 2[+] et 4[+] 3[+] 3[+] 4[+] 5[+] Intensité de la réaction Total 66.7% 42.5% positifs 28[�++] 1[+++] et 20[++] 14[++] intensité 16[+] 7[+] de la réaction La spécificité est de 100% sur la base de 31 sérums provenant de sujets sains déterminés Lyme négatifs par les tests commercialisés standards. Détection des IgGs Les résultats indiquent que les protéines de fusion chimériques recombinantes sont des outils de diagnostic 15 sensibles à tous les stades de l'infection pour les IgG et les IgM. Ils mettent en évidence un effet complémentaire des trois protéines recombinantes basées respectivement sur des séquences de Borrelia afzelii, B. sensu stricto et B . garinii pour la détection des IgG. L'utilisation combinée des trois 20 protéines recombinantes chimériques permet au stade I de l'infection de détecter des IgG chez 9 cas des patients avec un EM sur 22 (soit 40,9% de sensibilité). 10 Détection des IgMs Des IgM anti-protéines chimères sont trouvés dans 11 cas sur 22 (soit 50% de sensibilité). Ces protéines chimères détectent donc plus souvent les IgMs que les IgGs dans les sérums de patients LB aux stades I. Les tests effectués en contrôle : immunoblot maison [4], et le kit commercialisé Borrelia IgM (r-biopharm�) ne détectent pas davantage de sérums IgM positifs. De plus 3 sérums trouvés négatifs par le test immunoblot et Borrelia IgM (r-biopharm�) sont détectés par les trois protéines chimériques citées en exemple (3/3) ou par une des trois protéines cités en exemple (1/3). L'utilisation combinée des trois protéines recombinantes permet d'améliorer en stade I de l'infection de 13,È% la sensibilité de détection des IgM. Exemple 4 : Préparation des constructions plasmidiques codants pour les protéines recombinantes chimériques V1sE Les séquences ADN codant les différentes séquences de protéine sont identifiées dans le tableau 5. Tableau 5 : Origine des séquences Espèces de B. burgdorferi *Isolat ; **acides aminés (sa) ; ***N° d'accession GenBank protéine B. sensu stricto B. afzelii B. garinii *PBi ; **aa 20-293; V1sE - - ***AJ630106 (GenScript Corp) *B31; **aa 274-305; *ACA-1; **aa 172-188; *Ip90; **as 167-191; IR6 ***U76405 ***U76405 ***AAN87834 (GeneArt GmbH) (GeneArt GmbH) (GeneArt GmbH) Les séquences ont été optimisées pour leur expression dans E. Coli en utilisant GeneOptimizerTM et synthetisées respectivement par GenScript corporation (Scotch Plains, NJ, USA) ou GeneArt GmbH (Regensburg, Alemagne). Des modifications supplémentaires à l'ADN, délétions ou associations de différentes séquences ont été réalisées par PCR par génie génétique en utilisant les techniques de PCR bien connues de l'homme du métier et décrites par exemple dans Sambrook J. et al., Molecular Cloning : A Laboratory Manual, 1989. Les séquences d'ADN ont été liées dans le vecteur d'expression pMR [2] ou pET-3d (Novagen�. Les constructions 10 plasmidiques et les protéines correspondantes citées en exemple (bLYM110, bLYM125) sont décrites dans le tableau 6. Tableau 6: Constructions plasmidiques et protéines correspondantes Caractéristiques des protéines Caractéristiques des recombinantes constructions plasmidiques nom N-terminal Séquence B. burgdorferi Vecteur Site d'insertion dans le Tag parental vecteur de la séquence insert bLYM110 6 x His VlsE garinii pBi aa 20-293 + pMR78 5'BamHI / 3'HindIII SEQ ID 3 IR6 [sensu stricto B21 aa NO : 39 274-305 + afzelii ACA-laa 172-188 + garinii Ip90 aa 167-191] bLYM125 8 x His pET-3d 5'NcoI / 3'BamHI SEQ ID NO: 41 Exemple 5 : Expression des protéines recombinantes de l'exemple 4 et purification. Une construction plasmidique décrite dans l'exemple 4 a 20 été utilisée pour transformer une bactérie E. coli (souche BL21) selon un protocole classique connu de l'homme du métier. Les bactéries transformées ont été sélectionnées grâce à leur résistance à l'ampicilline portée par le vecteur pMR ou pET. Un clone de bactérie recombinante a alors été sélectionné 25 pour ensemencer une pré-culture de 40 ml de milieu 2xYT (tryptone 16 g/1 ; extrait de levure 10 g/1 ; NaCl 5 g/l, pH 7,0) contenant 100 pg/ml ampicilline. Après 15 à 18 heures 15 d'incubation à 30°C sous agitation à 250 rpm, cette pré-culture a été utilisée pour ensemencer 1 litre de milieu 2xYT contenant 2 % glucose et 100 }ig/ml ampicilline. Cette culture a été incubée à 30°C sous agitation à 250 rpm jusqu'à ce que la DO à 600 nm atteigne 1,0/1,2. La culture a été maintenue pendant 3 heures 30 min. ou 4 heures à 30°C en ajoutant de l'isopropyl-(3-D-thiogalactopyranoside (IPTG) 0.4mM et récoltée par centrifugation à 6000 g pendant 30 min. Le culot cellulaire a été stocké à -60°c. Pour la purification, la biomasse humide a été re-suspendue dans un tampon de lyse contenant des inhibiteurs des protéases sans EDTA (Roche) et de la benzonase nuclease (Novagen�) et soumise à une rupture cellulaire à 1,6 kBar dans un destructeur de cellules (Constant System Ltd, Daventry, ROYAUME-UNI). Le lysat a été alors centrifugé à 10,000 rpm. pendant 45 minutes à 2-8°C. Après filtration sur un filtre de 0.22 }gym, le surnageant a été chargé sur une colonne NiNTA (Quiagen�) équilibrée dans un tampon de lyse. La résine a été alors lavée avec le même tampon jusqu'à ce que l'A28onm ait atteint la ligne de base. Une élution a été effectuée avec le tampon d'élution et la protéine purifiée a été dialysée sur une Cassette Pierce de dialyse Slide-A-Lyser� 10000 ou 20000 MWCO contre le tampon de dialyse. Les conditions de purifications sur gel Ni-NTA sont décrites dans le tableau 7. Tableau 7: purification des protéines recombinantes Protéine bLYM110 39 bLYM125 SEQ ID NO : SEQ ID NO : 41 Tampon de lyse et de lavage Tampon A Tampon A 1+ Urée 2M Tampon d'élution Tampon B 2 Tampon B 2 modifié avec 600 mM Imidazole Elution étape 1 86% Buffer A + 14% Buffer B 92% Buffer A + 8% Buffer B (4CV) (4CV) Elution étape 2 100 % Buffer B 100 % Buffer B Rendement de purification 0,5 0,8 mg protéine /g biomasse humide Rendement de purification 8,7 17 mg protéine /L de culture 'Sodium phosphate 50 mM,Imidazole 30 mM, NaCl 500 mM, Tween 20 0,1 %, Glycerol 5 %, pH = 7,8 2Sodium phosphate 50 mM,Imidazole 325 mM, NaCl 500 mM, Glycerol 5 %, pH = 7,5 Les échantillons ont été analysés sur NuPAGE� Novex�4-12% dans un tampon circulant NuPAGE� MES-SDS, selon les instructions du fabricant (InvitrogenTM). Les protéines ont été soit colorées au bleu brillant de Coomassie ou ont été transférées électrophorètiquement sur une membrane de nitrocellulose. La membrane a été bloquée avec du lait sec 5% (w/v) dans du PBS et incubée avec un anticorps anti-pentahistidine (Qiagen�) dans du PBS contenant du Tween 20 0,05%. Un conjugué IgG anti- souris de chèvre marqué à la peroxydase de raifort (Jackson Immunôresearch laboratories) dans du PBS/Tween a été utilisé comme anticorps secondaire. La détermination de la concentration en protéines a été effectuée en utilisant le Bradford Assay Kit (Pierce Coomassie 15 Plus, Perbio Science) avec la BSA comme standard protéique. Exemple 6 :Détection des IgGs et des IgMs humaines avec la protéine recombinante chimérique bLYM110 de l'exemple 5 par une technique Line Immunoblot 20 la protéine recombinante a été déposée sur une membrane de difluorure de polyvinylidene (PVDF, Immobilon, Millipore�, Bedford, Mass. USA) selon le protocole suivant La concentration en protéine a été ajustée à 1 mg/ml dans du PBS pH 7.2 et diluée dans le PBS pH 7.2 additionné de Tween 20 25 0,03% (dilution 1/200eme). La membrane PVDF a été humidifiée dans du méthanol, lavée dans de l'eau déminéralisée et couchée sur un papier de blot humide. Une règle en plastique a été plongée dans la dilution de protéines et fixée sur la membrane PVDF. Après dépôt des protéines et séchage des membranes, les membranes ont été coupées verticalement en bandelettes. Avant utilisation, les bandelettes ont été incubées avec de la gélatine 5% dans du TBS pH 7,5 pendant 1 heure à 37°C. Les protocoles d'immunoblot ont été réalisés à température ambiante comme décrit par Bretz A.G. et al. [3]. Les bandelettes ont été incubées pendant 2 heures avec des sérums humains dilués au 1/200ème dans du TBS avec de la gélatine 1%, lavées et incubées avec des IgGs ou IgMs anti-humaines marquées à la phosphatase alcaline (SigmaTM, St-Louis, USA) diluées au 1/1000ème dans du TBS avec de la gélatine 1%. Après lavage, les bandelettes ont été incubées avec le substrat BCIP-NBT (KPL, Gaithersburg, MD, USA) pendant 30 minutes, lavées dans de l'eau distillée et séchées. Panel de sérums testés Les sérums humains ont été collectés à partir de patients LB typiques bien définis cliniquement correspondant aux différent stades de LB (22 avec un érythème migrans [EM], 5 avec une cardite, 20 avec une neuroborreliose [NB], 20 avec de l'arthrite de Lyme [LA], 20 avec une acrodermatite chronica athrophicans [ACA] et 10 avec un lymphocytome cutis benigna [LCB]). Des IgGs anti-Lyme ont été trouvés par immunoblot, décrit précédemment utilisant des lysats de cellules entières [4], dans les sérums de patients avec LA, ACA et cardite. EM, NB et LCB ont été identifiés cliniquement, mais tous les sérums correspondants n'ont pas été trouvés positifs par l'immunoblot [4], ni par les kits disponibles commercialement (VIDAS� Lyme (biomérieux�), Borrelia IgG, (Diasorin�) et Borrelia IgM (r-biopharm�)). Par contre, tous les cas de NB inclus dans l'étude avaient des anticorps détectables dans le liquide céphalo-rachidien [LCR] (index s'étendant de 2 à 27,1). Le groupe contrôle négatif consistait en 31 sérums antérieurement trouvés comme étant négatifs pour la présence d'anticorps anti-Lyme dans les essais classiques. De plus, 64 sérums de donneurs de sang sains résidant dans une région endémique pour Lyme (Monthley, Valis, Suisse) ont été testés avec la protéine recombinante. L'intensité de la réaction a été évaluée comme suit : [+], [++], [+++], [-] ou résultats équivoques. Les résultats équivoques ont été considérés comme négatifs. Les résultats sont présentés dans le tableau 8 ci-dessous. Tableau 8 IgG Stade I Stade II Stade III Donneurs EM NB Cardite LA ACA Lymph. (n=22) (n=20) (n=5) (n=19) (n=20) (n=10) (n=64) 17 20 5 19 20 9 6 77,3% 100% 100% 100% 100% 90% 9,4% 12[+++] 11[+++] 4[+++] 13[+++] 20[+++] 3[+++] 6[+] 4[++] 7[++] 1[++] 4[++] 2[++] 1[+] 2[+] 2[+] 4[+] Total positifs IgG 93,7% IgM EM NB Cardite (n=64) (n=22) (n=20) (n=5) 4 2 1 22% 20% 40% 1,5% 1[++] 2 [++] 1 [++] 1[+] 4[+] 1[+] 1[+] Total positifs IgM 23,4% Détection des IgGs Les résultats indiquent que la protéine recombinante bLYM110 est un antigène de diagnostic hautement sensible à tous les stades de l'infection pour les IgGs. Au stade I de l'infection les IgG ont été détectées dans 17 cas des patients avec un EM sur 22 (soit 77,3% de sensibilité). Cinq des patients avec EM qui sont trouvés négatifs avec la protéine recombinante le sont également avec l'immunoblot maison et avec les kits disponibles dans le commerce. Sept sérums EM trouvés positifs avec la protéine recombinante n'étaient pas détectés en immunoblot, ce qui représente une amélioration de 31,8% de la sensibilité avec la protéine recombinante. Au stade primaire de l'infection, en l'absence de rougeur caractéristique, le diagnostic peut être difficile puisque les autres manifestations cliniques de la maladie de Lyme ne sont pas spécifiques. De plus, seulement quelques patients ayant un EM sont détectés par les tests classiques. Donc, la protéine de l'invention améliore la détection des IgGs au stade I de l'infection en portant leur détection à plus de 77% chez les patients présentant un EM. Détection des IgMs Des IgMs anti-protéine chimère sont trouvés dans 23,4% des sérums LB. La protéine détecte plus souvent les IgGs que les IgMs dans les sérums de patients LB aux stades I et II. Exemple 7 : Evaluation et validation des protéines recombinantes chimériques bLYM114, bLYM120, bLYM121 et bLYM125 dans un test VIDAS� (bioMérieux) Cette validation est réalisée en test VIDAS� par l'utilisation : 1) des protéines chimériques recombinantes bLYM114, bLYM120 et bLYM121, obtenues selon les exemples 1, 2, pour la détection des IgMs, et 2) des protéines chimériques recombinantes bLYM114, bLYM120, obtenues selon les exemples 1, 2, et de la protéine chimérique bLYM125, obtenue selon les exemples 4,5, pour la détection des IgGs. Le principe du test VIDAS� est le suivant: un cône constitue le support solide qui sert également de système de pipetage pour les réactifs présents dans la barrette. La ou les protéines recombinantes sont fixées sur le cône. Après une étape de dilution, l'échantillon est aspiré et refoulé plusieurs fois à l'intérieur du cône. Ceci permet aux immunoglobulines anti-Lyme de l'échantillon de se lier aux protéines recombinantes. Les composants non liés sont éliminés par lavage. Un anticorps anti-immunoglobulines humaines conjugué à la phosphatase alcaline (PAL) est incubé dans le cône où il se fixe aux immunoglobulines anti-Lyme. Des étapes de lavage éliminent le conjugué non fixé. Pendant la dernière étape de révélation, le substrat de la phosphatse alcaline (PAL), le 4-méthyl-umbelliferyl phosphate, est hydrolysé en 4-méthyl-umbelliferone dont la fluorescence émise à 450 nm est mesurée. L'intensité de la fluorescence est mesurée par le système optique du Vidas� et est proportionnelle à la présence d'immunoglobulines anti-Lyme présentes dans l'échantillon. Les résultats sont analysés automatiquement par le VIDAS� et exprimés en RFV (Relative Fluorescent Value). 255 sérums positifs (sérums équivoques + sérums positifs) et 20 298 sérums négatifs (équivoques + négatifs) ont ainsi été dosés avec le système Vidas�. Les cônes Vidas� Lyme IgG sont sensibilisés par 300 pL de solution comprenant les protéines bLYM114, bLYM120 et bLYM125 25 de l'invention à une concentration de 1 ùg/mL chacune dans une solution de sensibilisation commune. Dans la première étape, les sérums sont incubés pendant 5,3 min. pour la formation des complexes antigènes-anticorps. Dans la seconde étape, des anti-IgG humaines marquées à la PAL sont 30 incubés pendant 5,3 min. Les résultats sont donnés en indice par rapport à un seuil de positivité positionné à 135 RFV dans le protocole. - Parmi les 255 sérums positifs testés, 246 sont positifs et 9 sont faussement négatifs, ce qui correspond à une sensibilité de 96.5 %. - Parmi les 298 sérums négatifs testés, 284 sont négatifs et 5 14 sont faussement positifs , ce qui correspond à une spécificité de 95,3%. Références bibliographiques 1. Gôttner G. et al., Int. J. Microbiol. 293, Suppl. 37, 172-173 (2004) 2. Arnaud N. et al., Gene 1997; 199:149-156. 10 3. Bretz A.G., K. Ryffel, P. Hutter, E. Dayer and O. Péter. Specificities and sensitivities of four monoclonal antibodies for typing of Borrelia burgdorferi sensu lato isolates. Clin. Diag. Lab. Immunol. 2001 ; 8 : 376-384. 15 4. Ryffel K., Péter O., Rutti B. and E. Dayer. Scored antibody reactivity by immunoblot suggests organotropism of Borrelia burgdorferi sensu stricto, B. garinii, B. afzelii and B. valaisiana in human.J. Clin. Microbiol. 1999 ; 37:4086-92 20 10 15 20 25 30 REVENDICATIONS1. Protéine chimérique de fusion DbpA-OspC de Borrelia, choisie dans le groupe consistant en : (a) une protéine dont la séquence en acides aminés comprend la séquence SEQ ID NO : 1 et la séquence SEQ ID NO : 2 ou une séquence qui présente au moins 40% d'identité avec SEQ ID NO : 1 et une séquence qui présente au moins 50% d'identité avec SEQ ID NO : 2, (b) une protéine dont la séquence en acides aminés comprend la séquence SEQ ID NO : 3 et la séquence SEQ ID NO : 4 ou une séquence qui présente au moins 40% d'identité avec SEQ ID NO : 3 et une séquence qui présente au moins 50% d'identité avec SEQ ID NO : 4, (c) une protéine, dont la séquence en acides aminés comprend une séquence choisie parmi : (i)la séquence SEQ ID NO : 5 et la séquence SEQ ID NO : 7 ou une séquence qui présente au moins 40% d'identité avec SEQ ID NO : 5 et une séquence qui présente au moins 50% d'identité avec SEQ ID NO : 7, (ii) la séquence SEQ ID NO : 6 et la séquence SEQ ID NO : 7 ou une séquence qui présente au moins 40% d'identité avec SEQ ID NO : 6 présente au moins 50% d'identité (iii)la séquence SEQ ID NO 5, la 6 et la séquence présente au moins une séquence qui présente avec SEQ ID NO : 6 et une moins 50% d'identité avec SEQ ID NO : 7, SEQ ID NO : 7 40% d'identité et une séquence qui avec SEQ ID NO : 7, séquence SEQ ID NO : ou une séquence qui avec SEQ ID NO : 5, au moins 40% d'identité sequence qui présente au(d) une protéine dont la séquence en acides aminés comprend une séquence choisie parmi SEQ ID NOs : 8, 9, 10, 11, 12, 13 et 14. 2. Acide nucléique codant pour une protéine telle que définie dans la revendication 1. 3. Cassette d'expression qui est fonctionnelle dans une cellule dérivée d'un organisme procaryote ou eucaryote, 10 permettant l'expression d'un acide nucléique tel que défini dans la revendication 2, placée sous le contrôle des éléments nécessaires à son expression. 4. Vecteur comprenant une cassette d'expression, telle que 15 définie dans la revendication 3. 5. Procédé pour le diagnostic in vitro d'une Borréliose de Lyme dans un échantillon biologique, selon lequel on met en contact l'échantillon biologique avec au moins une protéine 20 telle que définie dans la revendications 1 et on détermine si il y a formation d'un complexe immunologique entre ladite protéine et des anticorps de l'échantillon biologique. 6. Procédé selon la revendication 5, dans lequel les anticorps 25 de l'échantillon biologique sont des IgGs et/ou des IgMs 7. Procédé selon la revendication 6, dans lequel la formation du complexe immunologique est déterminée par addition d'au moins une anti-immunoglobuline humaine marquée par tout 30 marqueur approprié. 8. Procédé selon l'une quelconque des revendications 5 à 7, dans lequel la protéine est immobilisée sur un support solide. 9. Procédé selon l'une quelconque des revendications 5 à 8, selon lequel on met en contact l'échantillon biologique avec au moins une protéine comprenant : (i) au moins une séquence choisie parmi les séquences identifiées en SEQ ID NOs : 30, 31, 32, 33 et 34 et les séquences qui présentent au moins 50% d'identité avec SEQ ID NOs : 30, 31, 32, 33 et 34, et (ii) au moins une séquence comprenant la séquence SEQ ID NO : 35 ou une séquence qui présente au moins 80% d'identité avec SEQ ID NO : 35, la séquence SEQ ID NO : 36 ou une séquence qui présente au moins 80% d'identité avec SEQ ID NO : 36, la séquence SEQ ID NO : 37 ou une séquence qui présente au moins 80% d'identité avec SEQ ID NO 37, et facultativement la séquence SEQ ID NO : 43. 10. Trousse pour le diagnostic in vitro d'une Borréliose de Lyme comprenant au moins une protéine telle que définie dans la revendication 1. 11. Trousse selon la revendication 10, comprenant au moins une protéine telle que définie dans la revendication 9. 12. Trousse selon la revendication 10 ou 11, comprenant au moins une anti-immunoglobuline humaine marquée par tout 25 marqueur approprié.