FR 2942690 A1 20100910 FR 0901063 A 20090309 DESCRIPTION DE L'INVENTION TITRE SEMENCES AZOTOBACTERISEES D'ESPECES NON-LEGUMINEUSES FOURRAGERES POUR LA BIOFERTILISATION DES GRANDES CULTURES (BRR) DOMAINE TECHNIQUE DE L'INVENTION Le domaine technique de l'invention concerne la biofertilisation bactérienne, notamment azotobactérienne des prairies. Il est question de production et d'utilisation inocula bactériens et de valorisation des biomasses racinaires résiduelles au moment de l'ensemencement et/ou la rénovation de prairies existantes. ÉTAT DE LA TECHNIQUE LA BIOFERTILISATION À L'AIDE DE BFCP AZOTOBACTÉRIENNES Les BFCP (bactérie favorisant la croissance des plantes) jouent rôle important dans la croissance des plantes. Elles colonisent, outre les racines de certaines cultures, les résidus de cultures (pailleux), les engrais organominéraux et/ou les biomasses racinaires résiduelles. Les mécanismes responsables de l'amélioration de la croissance comprennent : (i) la production de sidérophores extracellulaires (agents microbiens de transport du fer) qui peuvent s'associer de manière efficace avec le fer présent dans l'environnement en le rendant moins disponible pour certaines microflores naturelles non-phytogènes, (ii) l'antibiose contre des bactéries et des champignons pathogènes, (iii) la production de substances favorisant la croissance, et iv) la solubilisation des phosphates organiques et inorganiques. Les BFCP appartiennent à plusieurs genres, y compris Agrobacterium, Alcaligenes, Arthrobacter, Azotobacter, Bacillus, Cellulomonas, Erwinia, Flavobacterium, Pseudomonas, (Brady)rhizobium et Xanthomonas. Le genre Azotobacter est composé d'au moins 6 espèces: Azotobacter armeniacus, Azotobacter beijerinckii, Azotobacter chroococcum, Azotobacter nigricans, Azotobacter paspali et Azotobactervinelandi. La biofertilisation azotobactérienne consiste en l'utilisation d'inocula BFCP diazotrophes, avantageusement du genre Azotobacter de la famille des Azotobaceracea. Les bactéries membre de la famillie Azotobacteracea sont de bactéries libres, aérobies et capables de fixer l'azote de manière non symbiotique. Leurs populations peuvent varier dans le sol mais ne dépasse que très rarement 102 à 103 par gramme de sol. ALIMENTATION EN SUBSTRATS CARBONÉS DES BFCP : LE RÔLE DES BRR ET DES CHAUMES Pour croître et survivre in situ (en sols arables) les bactéries favorisant la croissance des plantes (BFCP) azotobactériennes (AZB (Azotobacteraceae)) ont besoins de substrats carbonés. Traditionnellement, ces substrats proviennent d'exsudats racinaires, d'où le développement d'un secteur industriel destiné à la fabrication d'inocula BFCP dits � rhizobactériens �, voire symbiotiques dans le cas des BFCP de la famille des Rhizobiacea. Or, cette alimentation des BFCP stimule elle-même cette exsudation et contribue donc à ponctionner d'autant plus le flux photosynthétique ; cette bactérisation des rhizosphères s'avère donc, à terme, contreproductive et peut en annuler les bienfaits (eg. diazotrophie, production de phytohormones, etc.). C'est pourquoi nous avons, dans le cadre de nos précédentes inventions et publications (Claude et Fillion 2004, Claude et Giroux 2006) proposé le développement d'inocula BFCP destinés à la valorisation des résidus de culture au sol et/ou d'engrais organominéraux, sources alternative de substrats carbonés évitant aux BFCP d'avoir à ponctionner le flux photosynthétique. La production de pailles récoltables (i.e. résidus de culture pailleux au sol) en production céréalière équivaut à peu près au rendement en grain ; soit en France aux environs de 7,5 tonnes (Mg) par hectare. Or, dans les faits, les résidus de culture céréalières dans leur ensemble sont bien supérieures aux rendements en grain. En effet, selon les calculs de Johnson et al. 2006, entres autres, et cela pour les blés d'hivers aux USA, les résidus de culture pailleux au sol, y compris les chaumes en principe non-récoltables représentent 125% des rendements en grains, tandis que la production de biomasse végétale y compris les racines û et les � rhizodépots � qui en émanent, représentent jusqu'à 250% des rendements en grains, soit deux fois plus que la masse des pailles récoltables. En effet, selon ces calculs, le rendement en grains ne représente qu'à peine 25 à 33% de l'ensemble de la biomasse végétale produite par hectare par une céréale d'hiver. En d'autre mots ; même si les pailles récoltables sont enlevées d'une parcelles, les résidus de culture au sol et en surface (10 cm) du sol restant équivalent à environs 125% de la masse de la récolte en grain. Or, en principe il existe donc in situ une autre source de substrat carboné pour les BFCP ; les matières organiques d'origine racinaire en surface des sols, notamment sous praires au moment de leurs rénovation. L'essentiel, soit de 60 à 90%, de la productivité primaire (NPP, � net primary productivity �) d'une prairie est à terme souterraine. Les prairies et gazons produisent donc d'importantes quantités de biomasses racinaires éventuellement accessibles entant que substrats carbonés pour les BFCP azotobactériennes. Ces biomasses racinaires en milieux tempérés peuvent varier de 10 000 à 30 000 kg par hectare, auxquelles peuvent s'ajouter les tiges et chaumes (voire Kucharik et al 2006 et Wang et al 2007). A noter que ces chiffres sont supérieurs aux quelques 8 à 15 000 kg par hectare de résidus pailleux provenant de cultures céréalières ou de maïs-grain. II n'est donc pas surprenant que dans l'ensemble cette biomasse puisse contribuer à l'activité diazotrophe in situ et l'alimentation en N de la prairie ; selon Boddey et Victoria 1986, plus de 1/3 du bilan azoté de certaines praires est ainsi attribuable à ce type de diazotrophie, soit l'équivalent de près de 50 kg de N par hectare et par année. -3- La bactérisation des biomasses résiduelles pailleuses n'est pas en soi nouvelle et à fait l'objet, entre autres, de nos précédentes inventions (FR 01/15542, FR 06/10583, FR 05/05753, FR 06/00014) et publications (Claude et Fillion 2004 et Claude de Giroux 2006). Cela dit, l'applicabilité de ces approches technologiques aux susdites biomasses résiduelles racinaires, notamment au moment de la rénovation des prairies, est limitée. D'une part, les biomasses racinaires résiduelles ne sont pas facilement accessibles aux BFCP azotobactériennes par voie d'inoculation aérienne (pulvérisation) comme c'est le cas avec des résidus de culture au sol (Claude et Fillion 2004). De plus, l'application d'une fumure de fond organo-minéral (Claude et Giroux 2006), à hauteur de quelques centaines de kg par hectare s'il le faut, n'est pas généralement recommandée ou recommandable lors de la rénovation des prairies. Il n'existe pas, à ma connaissance, de protocole pour la valorisation microbiologique par inoculation des BRR. SEMENCES FOURRAGÈRES : DES PROPAGULES MAL VALORISÉE EN AGRICULTURE De façon général, les semences Poaceae (alias Gramineae) fourragères et gazonières sont petites, soit de l'ordre de 1 à 6 mg selon l'espèce ; les doses-hectare (dose-hectare) nécessaires à l'implantation ou à la rénovation d'une prairie ou d'un gazon comporte donc un grand nombre de propagules, soit de l'ordre de 15-30 millions par hectare ; pour comparaison, une dose-hectare de semences de maïs comporte au plus 100 000 propagules, de soja environ 400 000, et de céréales environ 2 millions. Or, environs 80 à 90% de ces semences Poaceae (alias Gramineae) germeront in situ, et û grosso modo, la moitié de celles-ci émergeront. Parmi les semences émergées, la moitie û cette proportion peut varier appréciablement, donneront lieu à un plantule définitivement établie (voir Ehrenreich 1954, Kitchen et Monsen 1994, Winkel et al. 1991 et Ries et Hofmann 1991). Lors de implantation d'une prairie environs 3 à 5 millions de plantules seront établis, et plus de 80%, voire 90% des semences Poaceae (alias Gramineae) ne seront pas véritablement valoriser autrement que comme � remplisseur �. Les Cipan (culture intermédiaires pièges à nitrates) sont des cultures, généralement fourragères et avantageusement crucifères (eg. moutarde et radis fourrager) implantées après la récolte d'une culture d'hiver et avant le semis d'une culture le printemps suivant, i.e. au moment de l'interculture. La croissance aérienne et souterraine de ces culture, en prélevant l'azote nécessaire à cet effet, permet d'effectivement de le � piéger � temporairement, lui évitant ainsi d'être lessivé vers la nappe phréatique et/ou les eaux souterraines. Pourtant, des quelques 2 000 000 d'hectare de terres arables en grandes cultures en France pouvant bénéficier aujourd'hui de l'implantation de CIPAN, à peine 10% font l'objet d'une telle pratique culturale. Pour l'essentiel il s'agit de grandes cultures de printemps, notamment les maïs, le tournesol, la betterave et/ou la pomme de terre ayant eu généralement comme précédents culturaux une céréale. Cette impopularité des Cipan est en partie attribuable à leurs faibles pouvoirs fertilisants du fait d'un rapport C/N de leurs biomasses trop élevé, généralement supérieurs à 15. En effet, plus leurs rapports C/N sont faibles, plus elle a piégé d'azote et plus la part de l'azote libérée dans cette première phase sera importante. Le reste de l'azote est libéré plus lentement que dans les mois qui suivent. Or, ces restitutions d'azote sont généralement trop faibles pour rendre l'utilisation de Cipan attractive. Définitions Amélioration des prairies : pratiques culturales destinées à remettre à niveau la production de la parcelle par des techniques simples et une exploitation adaptée. La modification de la flore se fera progressivement sur plusieurs années. Sur-semis : semis effectué sur une prairie en place, avec ou sans désherbage sélectif. Dans ce cas, la 10 production de la prairie ne sera pas - ou peu ù interrompue. Rénovation des prairies : pratiques culturale consistant en un semis est pour remplacer totalement et rapidement une végétation où les espèces moyennes ou médiocres prédominent. Dans ce cas il sera nécessaire d'interrompre momentanément la production en détruisant la prairie pour repartir sur un sol propre (source GNIS). 15 Résidosphère (ou résidusphère) : Volume ou zone du sol entourant immédiatement les résidus de culture pailleux, engrais organominéraux et/ou biomasses racinaires résiduelles, et plus ou moins influencé par ceux-ci. II est aussi question d'un � noyau � où se situe la décomposition desdits résidus de culture. A noter que les microorganismes responsables de la décomposition occupent généralement moins de 1% de l'ensemble du sol et sont particulièrement présents et actifs dans la résidusphère. 20 Germination : la décomposition de la structure interne et externe de la semence donnant lieu à l'apparition des radicelles et des coléoptiles. In vitro le taux de germination peut atteindre plus de 98-99%. Émergence : l'apparition à la surface du sol des coléoptiles et/ou premières feuilles d'une plantule. In situ, a peine 40 à 50% des semence germées sont associé à l'émergence d'un plantule. Établissement : l'installation définitive, in situ d'un plantule émergé ; 40 à 50% des plantules émergé 25 s'établissent. Semences candidates : l'ensemble (100%) des semences apportées par hectare. Dans le cas de graminées fourragères, une dose hectare de semences comporte de 15 à 30 millions de semences candidates. Semences élues : les semences candidates ayant donné lieu à l'établissement d'un plantule (voir définition) ; in situ, de 5 à 20% des semences candidates sont élues. 30 Biomasse racinaires résiduelles (BRR) : l'ensemble des racines laissée dans la partie supérieur de la zone racinaire d'une prairie et qui ce sont accumulée de la sorte au cour de temps. Les BRR sont donc comme de raison importantes, soit entre 10 et 30 000 kg par hectare, pour les prairies anciennes, ou du moins existantes, ayant plus de 5 ans d'implantation. 35 DIVULGATION DE L'INVENTION Problème technique La bactérisation des biomasses racinaires résiduelles est problématique du fait qu'elles 40 sont peu ou pas directement accessibles par voie de pulvérisation liquide d'inocula azotobactériens. Cette inaccessibilité est préjudiciable au secteur de la biofertilisation et prive les Azotobacteraceae ainsi réintroduites d'une abondante source de substrats carbonés facilement assimilables. D'autre part, la bactérisation des semences Poaceae (alias Gramineae) fourragères et/ou gazonières est peu efficace du fait que la majorité des semences individuellement ne donnent pas lieu à l'établissement d'un plantules définitif ; pire, si établissement d'un plantule il y a, les supposées BFCP colonisant sa rhizosphère ponctionneront excessivement son flux photosynthétique est s'avéreront donc contreproductives en termes agronomique. En effet, et malgré leur relative abondance par rapport aux résidus de culture au sol les BRR sont plus difficilement accessible à l'inoculation (azoto)bactérienne, ou plus généralement microbienne, du fait de leurs situation souterraine. Enfin, la trop faible valeur fertilisante des Cipan rend celles-ci peu attractives pour l'agriculteur. Solution technique Les semences Poaceae (alias Gramineae) et/ou Brassicacea peuvent en principe véhiculer les cellules azotobactériennes placées à leurs surfaces dans le sol lors du développement des rhizosphères. En effet, du fait de leurs petites tailles, les semences fourragères, Poaceae (alias Gramineae) et/ou Brassicaceae, et notamment le dactyle et la moutarde blanche, sont nombreuses et leurs répartition uniforme au semis à la surface des sols, et donc en proximité des BRR et/ou des résidus de culture pailleux laissée au sol une fois les pailles enlevées, permettra effectivement de véhiculer effectivement des cellules (azoto)bactériennes vers ses sources potentielles de substrats carbonés, et donc sans nécessairement coloniser les racines de plantes établit, colonisation source d'une importante ponction du flux photosynthétique. Comme nous l'avons entrevue ci-dessus, ces résidus de culture représentent près de 125% de la masse du rendement en grain et du coup l'équivalent, voire plus dans le cas de praires, de la masse des pailles récoltables. Donc, et dans le cadre de cette solution technique, deux cas de figure s'imposent ; (i) les Cipan et (ii) les graminées fourragères en praire et pâtures. Environs 20% des quelques 20 à 25 millions de semences apportées par hectare donnent lieu effectivement à un plantule définitivement établit ; les 80% qui ne le font pas pourront maintenant véhiculer des cellules biofertilisantes (azoto)bactériennes vers la surface du sol, et û par entraînement, vers les BRR lors du développement de leurs rhizosphères La présente invention permettra de mieux valoriser ces semences, avortées en un sens, entant que propagules pour la bactérisation des matières organiques résiduelles qui les avoisinent. Or, c'est précisément cette (azoto)bactérisation des BRR (biomasses racinares résiduelles) û autrement indisponibles pour une telle valorisation microbiologique (i.e. biofertilisation), qui pourra compenser pour une éventuelle ponction contreproductive du flux photosynthétique par ces mêmes BFCP. En effet, dans les deux cas de figure, la vocation des semences, et donc des rhizosphères qui en sont issues, n'est plus traditionnelle mais nouvelle. Il s'agit en sorte de � sacrifier � ces semences Cipan et/ou fourragères candidates à l'implantation d'un plantule définitifs mais non-élues (ne donnant pas lieu au dits plantules, pour en faire des véhicules, des � vecteurs � en sorte, pour les Azotobacters phytogènes et biofertiliants. Du coup, les BRR et autres résidosphères souterraines normalement difficilement atteignables par inoculation peuvent maintenant être valorisées en ce sens. Paradoxalement, nous ferrons ici appel au traitement de semences, non -6 pas pour l'éventuellement bactérisation par colonisation des rhizosphères comme c'est habituellement le cas pour les traitements BFCP de semences légumineuses, mais bien pour la bactérisation des résidusphères qui leur sont proximales in situ (Figure 1). Cette utilisation des semences fourragères et/ou gazoniéres comme véhicules pour la bactérisation de substrats carbonés au-delà de la rhizosphère est nouvelle. La solution technique proposée consiste donc à utiliser des BFCP rhizo-imcompétente pour la bactérisation des semences Poaceae (alias Gramineae) ne donnant pas nécessairement lieu à un plantule définitif. Dans le cadre de la présente invention, les plantules Poaceae (alias Gramineae) canditats mais non-élus peuvent néanmoins contribuer d'autant plus à l'inoculation des AZB (Azotobacteraceae) sans pour autant ponctionner le flux photosynthétique ; cette meilleure implantation des AZB (Azotobacteraceae) leurs permettra par la suite de mieux valoriser les biomasses racinaire résiduelle et les résidus de culture non-récoltables laissés au sol après la récolte. En ce sens, il s'agit d'utiliser les semences Poaceae (alias Gramineae) fourragères ne donnant pas nécessairement lieu à l'établissement d'un plantule définitif, soit plus de 80% des semences d'une dose-hectare habituelle pour ce type de semences, comme véhicules pour les BFCP. La proximité de ces quelques 25 millions de semences et des biomasses racinaires résiduelles (BRR) en fait d'excellents � véhicules � pour les BFCP azotobactériennes les mieux adaptées à la vie dans les sols. Conceptuellement, des quelques 20-25 millions de semences fourragères par dose û hectare, quelques 250 à 500 plantules par m2 établis définitivement apparaitront, soit un taux d'implantation d'à peine 10 à 20% (Figure 1). C'est ce qu'indiquent effectivement les données de Evers et Nelson 2000 et Hall et al. 2004. Plus particulièrement, et en terme volumétriques, il y aura une semence, avec ou sans établissement des plantules, par 4 cm2 sur environ 2 cm de profondeur (selon le type de pratique culturale utilisée pour le semis), soit une semence par 8 cm3 de volume de sol arable, soit environ 10 g de sol (Figure 2). Par exemple, chaque dose-hectare d'inocula AZB (Azotobacteraceae) véhiculée par les 2,5x10' semences comporte 5 x 1012 AZB (Azotobacteraceae), soit environ 1 x105 cellules par semence. Une semence disposée au centre de ce volume est donc à environ 2,2 à 2,3 cm de sa périphérie. Or, selon les données disponibles pour les résidus pailleux incorporés au sol (Gaillard et al. 1999, 2003 ; Moritsuka et al. 2004), les métabolites carbonés issus de la dégradation de ces résidus de culture influence la microflore bactérienne située dans une périphérie d'au plus 0,8 cm de rayon, soit de 3 à 4 mm de part et d'autre desdits résidus pailleux. La granulométrie des biomasses racinaires résiduelles étant beaucoup plus fine ; elles sont du coup beaucoup mieux (plus) répandues au du volume de sol concerné. En d'autre mots, pour des résidus de culture pailleux initialement intègres, la zone d'influence des métabolites issues de leur dégradation est plus limitée, soit de l'ordre de 6 à 8 mm (Figure 3-a), au plus (Gaillard et al. 1999, 2003 ; Moritsuka et al. 2004) ; pour les biomasses racinaires cette zone est plus étendue, soit de l'ordre de 10, 12 voire 16 mm (Figure 3-b). L'invention valorise donc le fait que lors de la germination des semences candidates, qu'elles établissent éventuellement un plantule définitif ou non, le volume û v, de sol initialement occupé par cette propagule individuelle augmentera appréciablement û V, du fait d'une augmentation du diamètre de quelques mm initialement au moment du semis à quelques cm 2 à 4 jours post-semis (Figure 4). Ce volume, V maintenant partiellement occupé par des BFCP azotobactériennes entrera d'autant plus facilement en contacte avec les biomasses racinaires résiduelles que l'on cherche à valoriser comme substrat carboné pour ce type de biofertilisation. Les biomasses racinaires résiduelles lors de la germination des semences individuelles, qu'elles donnent lieu à un plantule définitif ou non, entraîneront dont un certains nombre de cellules azotobactériennes au-delà d'une certain volume de sol (v) vers un plus grand volume de sol (V). Cet entraînement de cellules BFCP par les radicelles est déjà établit pour des BFCP Pseudomonodaceae (Dandurand et al. 1997). Or, et encore une fois, puisque la majorité des semences germent, bien que seulement -20% établissent des plantules définitifs, ce phénomène permettra d'entraîner la quasi-totalité des Azotobacteraceae apportées vers les biomasses racinaire résiduelles (BRR) et/ou résidus de culture préalablement enfouis. L'invention permet donc de valoriser les semences qui normalement contribuer peu ou pas à l'implantation de la prairie en les transformant en � porteurs � de BFCP. L'invention concerne un inoculum bactérien pour utilisation lors de l'implantation de cultures fourragères constitué d'une dose hectare de semences fourragères choisies parmi un groupe constitué d'espèces Poaceae (alias Gramniae), Fabaceae (alias Leguminoseae) ou Brassicaceae. Lesdites semences pèsent chacune en moyenne de 1 à 6 mg, plus particulièrement de 2 à 5 mg, et préférablement environs 3 à 4 mg, et/ou leurs doses (nombres) par hectare sont compris entre 8 et 48 kg, plus particulièrement entre 16 et 36 kg, et avantageusement d'environs 24-25 kg. Cet inoculum peut être avantageusement constitué de cellules de la famille Azotobacteraceae, la dose - hectare de telles cellules bactériennes viables étant comprise entre 1 x 1011 et 1 x 1014 cellules, plus particulièrement entre 1 x 10'2 et 1 x 1013 cellules, et avantageusement d'environ 2,5 x 1012 cellules. II s'agit aussi de l'utilisation d'un tel inoculum bactérien afin que lesdites semences fourragères agissent comme vecteurs (véhicules) pour des BFCP Azotobacteraceae phytogènes vers les biomasses racinaires résiduelles (BRR) normalement peu/pas accessibles à ce type d'inoculation du fait de leurs positionnement souterrain, les rhizosphères émanant desdites semences pouvant de la sorte entraîner ces BFCP vers ces BRR avantageusement issues d'une culture céréalière et/ou d'une prairie ancienne en cours de rénovation. Avantages apportés L'invention permet de valoriser tant les biomasses racinaires résiduelles ET une majorité de semences individuelles Poaceae (alias Gramineae) fourragères qui autrement ne servent essentiellement à rein si ce n'est que de remplisseur volumétrique pour les semences � élues � (i.e. ayant données lieu à un plantule définitif). Ces semences, dont la plupart germent néanmoins, sont maintenant valorisées comme vecteurs et porteurs de BFCP vers la biomasse racinaire résiduelle, qui elle aussi maintenant peut être valorisée, un peu à la façon des résidus de culture -8- pailleux au sol, en tant que substrat carboné pour les Azotobacteraceae. Idem pour les Cipan fourragères implantées sur biomasses racinaires résiduelle et/ou résidus de culture pailleux, le rapport C/N de celles-ci ù du fait d'un plus grand prélèvement d'azote, améliorant ainsi leur valeur fertilisantes. L'invention permet une meilleur fertilisation azoté et implantation de la praire � nouvelle � sur les restes de la praire ancienne lors de sa rénovation. Normalement, les susdites biomasses racinaires résiduelles, très abondantes sous d'anciennes praires devant être rénovées, ne fait que contribuer à l'immobilisation de l'azote par l'ensemble de flore bactérienne du sol ; l'arrière effet agronomique de cette immobilisation peut s'avérer conséquente. Enfin, l'invention est utile en ce sens qu'elle réconcilie, dans le cas particulier de la rénovation de prairies anciennes, biofertilisation azotobactérienne des cultures non-légumineuses et traitement bactérien des semences ; normalement, tel que mentionné dans mes précédentes invention, ce type de bactérisation est contreproductif du fait d'une éventuelle ponction du flux photosynthétique de la Poaceae (alias Gramineae). BRÈVE DESCRIPTION DES DESSINS ET FIGURES Figure 1 : Des quelques 20-25 millions de semences fourragères par dose ù hectare, quelques 250 à 500 plantules établis définitivement apparaitront, soit un taux d'implantation d'à 20 peine 10 à 20%. Figure 2 : En terme volumétriques, il y aura une semence, avec ou sans établissement des plantules, par 4 cm2 sur environ 2 cm de profondeur, soit une semence par 8 cm3 de volume de sol arable, soit environ 10 g de sol. Chaque dose-hectare d'inocula AZB (Azotobacteraceae) véhiculée par les 2,5x10' semences comporte 5 x 1012 AZB 25 (Azotobacteraceae), soit environ 2 x105 cellules par semence. Une semence disposée au centre de ce volume est donc en moyenne à 2 cm de sa périphérie, et les métabolites carbonés issus de la dégradation de ces résidus de culture influence la microflore bactérienne située dans une périphérie d'au plus 0,8 cm de rayon. Figure 3 : Pour des résidus de culture pailleux initialement intègres, la zone d'influence des 30 métabolites issues de leur dégradation est plus limitée, soit de l'ordre de 5 à 8 mm (Figure 3-a), au plus ; pour les biomasses racinaires cette zone est nettement plus étendue, soit de l'ordre de 10, 12 voire 15 mm (Figure 3-b). Figure 4 : Le volume ù v, de sol initialement occupé par une propagule individuelle (semence) augmentera appréciablement ù V, du fait d'une augmentation du diamètre de quelques 35 mm initialement au moment du semis à quelques cm 2 à 4 jours post-semis. Ce volume, V maintenant partiellement occupé par des BFCP azotobactériennes entrera d'autant plus facilement en contacte avec les biomasses racinaires résiduelles. Figure 5 : Prélèvement de l'azote (en mg-N par pot ; ppds = 5,76, Newman-Keuls (a = 5%)) par la phytomasse (ou MSPA ù matière sèche des partie aériennes) de Lolium multiflorum 40 récoltée lors des première et deuxième coupes (c12) selon le taux de semis (s1, s2), la 2942690 9- présence de BRR, et/ou d'Azotobacteraceae (AZB) sur les semences au semis. A noter la réduction de la phytomasse produite avec BRR, vraisemblablement du fait d'une forte immobilisation des reliquats d'azote minéral, et du coup aussi une vraisemblable plus grande efficacité d'AZB (Azotobacteraceae) en de telles situations. 5 Figure 6 : Prélèvement de l'azote (en mg-N par plant ; ppds = 0,026, Newman-Keuls (a = 5%)) par la phytomasse (ou MSPA û matière sèche des partie aériennes) de Lolium multiflorum récoltée lors des première et deuxième coupes (c12) selon le taux de semis (si, s2) qu'en présence de BRR, et avec ou sans la présence d'Azotobacteraceae (AZB) sur les semences au semis. A noter encore une fois la réduction de la phytomasse produite par 10 plant avec s2, vraisemblablement du fait d'un plus grand nombre de plantules établis par pot, soit environ 2 à 2,4 fois plus pour être plus précis ; ce plus grand nombre de plantules établis ne semble pas affecter l'efficacité relative des Azotobacteraceae cependant. Figure 7 : Efficacité relative des Azotobacteracea (er AZB) présentes sur les semences au semis 15 en terme de q MSPA Lolium multiflorum produite par pot récoltée lors des première et deuxième coupes (c12), et selon le type de semis (s1 ou s2) et/ou la présence des BRR (avec ou sans). A noter que seule la présence des BRR, pourtant pas directement mise en contacte avec les Azotobacteraceae, permet à celles-ci d'afficher une efficacité relative appréciablement positive (ppds = 0,078, Newman-Keuls (a = 5%)). Figure 8 : Efficacité relative des Azotobacteraceae (er AZB) présentes sur les semences au semis en terme de q MSPA Lolium multiflorum produite par plant récoltée lors des première et deuxième coupes (c12), et selon le type de semis (s1 ou s2) et/ou la présence des BRR (avec ou sans). A noter que seule la présence des BRR, pourtant pas directement mise en contacte avec les Azotobacteraceae, permet à celles-ci d'afficher une efficacité relative positive (ppds = 0,071, Newman-Keuls (a = 5%)). Figure 9 : Efficacité relative des Azotobacteraceae (er AZB) présentes sur les semences au semis en terme de mq-N prélevés par la MSPA Lolium multiflorum par plant récoltée lors des première et deuxième coupes (c12), et selon le type de semis (s1 ou s2) et/ou la présence des BRR (avec ou sans). A noter que seule la présence des BRR, pourtant pas directement mise en contacte avec les Azotobacteraceae, permet à celles-ci d'afficher une efficacité relative positive (ppds = 0,061, Newman-Keuls (ci = 5%)). MODE DE REALISATION PREFERE DE L'INVENTION L'invention est réalisée en deux temps ; (i) l'obtention des souches azotobactérienne (Azotobacteraceae) et leur formulation/conditionnement entant qu'inocula, et (ii) leur utilisation pour les traitements azotobactériens de semences Poaceae (alias Gramineae) fourragères, avantageusement pour fin de restauration des prairies anciennes. (i) obtention des souches et préparation des inocula : Lesdites souches Azotobacteraceae d'origine telluriques sont produites par fermentation à l'état solide directement -10- au sein de la formulation solide si celle-ci le permet ; voir en ce sens FR 06/00014 et FR05/05753. Il est aussi possible de les produire en partie par fermentation à l'état liquide et de les introduire dans lesdites formulations solides par après fin d'en augmenter les biomasses. Les souches azotobactériennes sont obtenues en prenant soin de maintenir le rapport C/N des cultures mères et des milieux de cultures subséquents le plus haut possible, soit d'au moins 20 à 25. Si possible, il est avantageux d'utiliser comme substrat carboné, outre ceux mentionnés dans les précédentes inventions, des biomasses racinaires de Poaceae (alias Gramineae), soit récoltés de sols arables, soit produites par cultures hydroponiques. Les souches azotobactériennes ainsi obtenues peuvent être formulées et conditionnées selon les règles de l'art destiné à la préparation d'inocula BFCP, y compris celui généralement mis en oeuvre pour la préparation d'inocula Rhizobiaceae. Il est donc loisible, voire avantageux, de procéder tel que décrit dans ma précédente invention ù FR 06/00014, c'est-à-dire par voie de fermentation à l'état solide à même le substrat carboné et matriciel utilisée pour la formulation solide des inocula, i.e. des résidus pailleux, y compris du son de blé ou de céréale, ou encore un co-produit issue d'un procédé bio-industriel dont le rapport C/N n'est pas trop faible. Il est aussi possible d'utiliser une formulation solide à base de tourbe comme c'est actuellement le cas avec les inocula Rhizobiaceae, ou encore des charbon activés et/ou tout autre liant ou composés pouvant faciliter le pelliculage des semences. (ii) traitements azotobactériens des semences Poaceae (alias Gramineae) : Le poids de mille grains des semences est donc d'environ 1 à 6 mg, et la dose-hectare comprends avantageusement de 15 à 35 millions de semences individuelles permettant d'établir de 250 à 500 plantules définitifs par m2. Ces semences seront enduites d'une préparation inoculante apportant l'équivalent d'environ de 2,5 x 1012 cellules azotobactériennes (Azotobacteraceae) par hectare. Il est avantageux d'apporter cette préparation en formulation solide capable d'adhérer aux semences, i.e. de les pelliculer. En principe, un volume de formulation de 250 à 400 g par dose- hectare, soit environs 1010 cellules azotobactériennes par gramme de préparation est avantageux, bien que d'autres proportions inoculum / semences sont possible selon les circonstances. Selon les règles de l'art, les semences et/ou la formulation, s'il s'agit d'une formulation solide sont légèrement mouillés afin d'assurer une adhésion de l'inoculum. Pour fin expérimental et/ou de démonstration toute forme de production, de formulation et/ou de conditionnement d'inocula (azoto)bactériens sont permis, par exemple par fermentation à l'état solide et par simple mise en contacte des semences avec la préparation inoculant résultante. Dans le cas présent, nous avons simplement mise en contacte l'équivalent d'une dose-hectare de semences Lolium multiflorum Lam. avec l'équivalent d'une dose-hectare des cellules azotobactériennes produites selon le mode opératoire en (i). APPLICATIONS BIOINDUSTRIELLES ET AGRONOMIQUES Les cellules Azotobacteraceae utilisées ici sont obtenues du sol alsacien dont les caractéristiques physico-chimiques sont décrites au Tableau A, et cela avantageusement via le 40 protocole décrit dans FR 01/15542 ; elles sont par la suite appliquées au dites semences Lolium 2942690 - ll - multiflorum à hauteur d'environ 100 000 cellules viables par semences, soit environ 2,5 x 1012 Azotobacteraceae par hectare pour 2,5 x 10' semences (propagules) par hectare. -------------------------------------------------------------------------- --------------------------------------------------------- 5 TABLEAU A : ANALYSE PHYSICO-CHIMIQUE DU SOL ALSACIEN UTILISE CEC (cmol) 121 pH 6,7 MO (%) 1,84 P205 (Dyer) 0,190 P205 (Joret-Hebert) 0.069 Texture A-L-S (g/kg-sol) 218-673-84 K20 (g/kg-sol) 0,12 MgO (g/kg-sol) 0,16 CaO (g/kg-sol) 3,2 Na2O (g/kg-sol) 0,025 Fe (mg/kg-sol) 73,3 Mn (mg/kg-sol) 28,7 Zn (mg/kg-sol) 2,8 Cu (mg/kg-sol) 2,5 B (mg/kg-sol) 0,44 Dans des pots de 500 ml, 350g de sol Tableau A reconstitué sont mélangé à hauteur de 6% un mélange d'un tiers de résidus de culture pailleux (eg. blé d'hiver) et de deux tiers de biomasses racinaires Poaceae. Ces biomasses sont préalablement séchées et broyées (2 mm). 25 Afin de simuler un semis in situ pour fin de rénovation d'une prairie, et compte tenu de la superficie du pot (i.e. environ 200 cm2, soit 2% d'un m2), une quarantaine de graines Poaceae (alias Gramineae) (semences de Lolium multiflorum Lam. par exemple) sont déposées, tassées, irriguées et fertilisées (Nb. au plus 35 mg d'azote fertilisant 21 jours post semis cependant) selon les règles de l'art de façon à assurer, en principe, leur germination dans les 5 à 7 jours post-semis. 30 Afin de simuler les différents rapports plantule / racines (rhizosphères) pouvant apparaître lors de l'implantation de Poaceae fourragères, nous avons installé deux taux (types) de semis ; s1, soit plantules / rhizosphères = 1,00, soit environ une rhizosphère par plantule établit, et s2,soit plantules / rhizosphères = 0,40, soit environ 2,5 rhizosphère par plantule établit. Pour obtenir s1, nous avons apporté 0,200 g de semences Lolium multiflorum, soit environ une quarantaine de 35 propagules (semences) par pot ; celles-ci donnèrent effectivement lieu à une quarantaine de plantules établis par pots. Pour obtenir s2, nous avons apporté 1,000 g du même type de semence et placé un disque perforé (i.e. le fond découpé d'un pot à fleur de 750 ml de façon à permettre la levée que d'une fraction de ces quelques 200 graines, soit environs 80 à 80 dans les faits, soit un d'implantation d'environ 40%. A noter que pour ces deux type (taux) de semis û ou plutôt rapport plantules / rhizosphères, la même dose-hectare d'Azotobacteracea a été utilisée, soit environs l'équivalent de 1 kg d'une préparations au sens entendu ci-haut, et contenant donc 2,5 x 1012 cellules Azotobacteraceae ; le taux d'inoculation et de co-formulation par hectare (ou ici par pot) est donc le même pour s1 et s2, avec et sans BRR. Des semences selon s1 et s2, avec et sans Azotobacteraceae (AZB) ont été déposées sur 45 deux types de sols reconstitués û soit avec et sans biomasses racinaires et résidus de culture pailleux enfouis au sens entendu ci-haut (i.e. BRR, soit 1/3 résidus pailleux et 2/3 de racines de - 12 - Lolium multiflorum). L'unité expérimentale de base est ici constituée de deux pots, avec et sans AZB. Ces quatre types de modalités expérimentales unitaires avec et sans AZB (soit s1 et 2 avec et sans BRR) sont disposées en carré latin, soit un total de 16 x 2 = 32 pots contenant chacun 350 g de sol constitué. L'efficacité relative des rhizosphères de Lolium ainsi (azoto)bactérisés (er AZB) à entraîner les BFCP Azotobacteraceae vers leurs substrats carbonés que sont maintenant en principe les BRR et résidus pailleux enfouis, sera calculé comme le rapport des la MSPA produite et/ou le prélèvement d'azote par celle-ci (g MSPA x % Ntota,) avec et sans AZB. Nous avons appliqué dès le semis 50 ml de la solution nutritive au Tableau B par pot sans N, avantageusement après chaque coupe, c1, c2, etc., et surtout avec 35 mg-N / kg-sol dès cl. II faut toujours irriguer les pots en apportant ces solutions par la bas via la soucoupe afin d'éviter à tout prix le lessivage vers le bas des Azotobacteraceae qui pourrait contribuer à brouiller le susdit effet d'entraînement des Azotobacteraceae par les rhizosphères. -------------------------------------------------------------------------- --------------------------------------------------------- TABLEAU B : Préparation des solutions nutritives 1. Ca(NO3)2.4HZO 236.1 g/1 2. KNO3 101.1 g/1 3. KH2PO4 136.1 g/1 4. MgSO4.7H2O 246.5 g/1 Deux solutions oligo-élémentaire, soit pour 1 L ; 25 Une solution de Fe-EDTA (pH 5,5) ; 10.4 g EDTA.2Na 30 7.8 g FeSO4.7H2O 56.1 g KOH Pour prépare 1 L de solution nutritive, dite de � Hoagland � ; 7 ml Ca(NO3)2 35 5 ml KNO3 2 ml KH2PO4 2 ml MgSO4 1 ml oligo-éléments (avec ou sans Mo) 40 1 ml FeEDTA Les MSPA des plantules de Lolium multiflorum ainsi établis peuvent être récoltées 28 jours post-semis (jps ; cl) à l'aide de ciseaux, séchées, et pesées. II est avantageux de réaliser une deuxième (c2) voire une troisième (c3) coupe à 56 et et 84 jps, respectivement selon la santé et la 45 vigueur des plants. La matière sèche des parties aériennes (MSPA) et sont prélèvement d'N sont déterminés. Pour les espèces à forte repousse, comme le Lolium par exemple, des coupes multiples (c1, c2 ... cn) peuvent être effectuées dès 28 jps ; généralement il est possible d'effectuer entre 2 et 3 coupes à 28 jours d'intervalle. La MSPA peut être exprimée pour chaque coupe individuellement ou comme leurs sommes ; les effets traitements sont donc numériquement plus 50 appréciables avec les sommes, mais aussi mois précise et plus difficilement détectables. Une première analyse de variance (Anova) des dispositifs en carrés latins pour le prélèvement d'azote en mg-N / plant par la somme des MSPA des premières et deuxièmes coupes 20 Quatre solutions molaires (1M) pour les apports de N/P/K/S/Mg H3BO3 2.8 g MnC12.4H2O 1.8 g ZnSO4.7H2O 0.2 g CuSO4.5H2O 0.1 g, et, le cas échéant, NaMoO4 0.025 g - 13 (c12) de Lolium multiflorum selon le mode de semis, la présence des BRR et/ou d'Azotobacteraceae (AZB) à la surface des semences au semis révèle clairement qu'au-delà d'un effet appréciable des sous-blocs, ici les BRR (Figure 5), le facteur AZB est significatif. Tableau 1 : Analyse de variance pour le prélèvements d'azote en mg-N / plant par la somme des MSPA des premières et deuxièmes coupes (c12) de Lolium multiflorum selon le mode de semis, la présence des BRR et/ou d'Azotobacteraceae (AZB) à la surface des semences au semis S.C.E DDL C.M. TEST F PROBA E.T. C.V. VAR.TOTS-BLOC 1,712829 15 0,114189 VAR.FACTEUR 1 1,614393 3 0,538131 53,01764 0,00001 VAR.BLOCS 7,09E-03 3 2,36E-03 0,23269 0,87167 VAR.RESIDUELLE 1 9,14E-02 9 1,02E-02 0,100747 20,67% Notes - SCE : somme des carré des écarts ; DDL : degrés de liberté ; CM : carrés moyens ; PROBA : Probabilité pour a = 5% ; E.T. : écart-type ; C.V.: coefficient de variabilité 10 En effet, une comparaison des prélèvements moyens d'azote en mg-N / plant par la somme des MSPA des premières et deuxièmes coupes (c12) de Lolium multiflorum selon le mode de semis, la présence des BRR et/ou d'AZB (Azotobacteraceae) à la surface des semences au semis (Tableau2) démontre clairement l'effet positif des AZB, si et seulement si il y a des BRR 15 sous-jacentes ; cette apparente efficacité des AZB en présence de BRR est mise en évidence à la Figure 6. Tableau 2 : Prélèvements d'azote en mg-N / plant par la somme des MSPA des premières et deuxièmes coupes (c12) de Lolium multiflorum selon le mode de semis, la présence des BRR 20 et/ou d'AZB (Azotobacteraceae) à la surface des semences au semis (ppds, ou plus petite différence significative = 0.026 mg-N / plant) ; les moyennes des er AZB (Azotobacteraceae) associées au mêmes lettre de diffèrent pas statistiquement, test de Newman-Keuls (a = 5%) Modalité LIBELLES Mg-N / plant, c12 GROUPES 1 2 s1 sans BRR avec AZB (Azotobacteraceae) 0,875586 A 1 1 s1 sans BRR sans AZB (Azotobacteraceae) 0,853492 A 2 2 s1 avec BRR avec AZB (Azotobacteraceae) 0,455445 A 21 31 32 42 41 Une deuxième analyse de variance, mais cette fois de l'efficacité relative des 25 Azotobacteraceae (er AZB) en terme de prélèvement d'azote (mg-N / plant) par la somme des MSPA des premières et deuxièmes coupes (c12) (Tableau 3), nous indiquent encore une fois la dépendance de cette efficacité relative sur la présence sous-jacente des BRR (Facteur 1). Tableau 3 : Analyse de variance pour l'efficacité relative des Azotobacteraceae (er AZB) en terme 30 de prélèvement d'azote (mg-N / plant) par la somme des MSPA des premières et deuxièmes coupes (c12) S.C.E DDL C.M. TEST F PROBA E.T. C.V. VAR.TOTALE 0,122137 15 8,14E-03 VAR.FACTEUR 1 7,78E-02 3 2,59E-02 17,77716 0,00273 VAR.LIGNES 1,78E-02 3 5,93E-03 4,065146 0,06828 VAR.COLONNES 1,78E-02 3 5,93E-03 4,065146 0,06828 VAR.RESIDUELLE 1 8,75E-03 6 1,46E-03 3,82E-02 3,54% Notes - SCE : somme des carré des écarts ; DDL : degrés de liberté ; CM : carrés moyens ; PROBA : Probabilité pour a = 5% ; E.T.: écart-type ; C.V.: coefficient de variabilité s1 avec BRR sans AZB (Azotobacteraceae) s2 sans BRR sans AZB (Azotobacteraceae) s2 sans BRR avec AZB (Azotobacteraceae) s2 avec BRR avec AZB (Azotobacteraceae) s2 avec BRR sans AZB (Azotobacteraceae) 0,393707 0,387788 0,385326 0,292157 0,256267 B A A A B -14= En ce sens, une deuxième comparaison des moyennes, mais cette fois-ci de celles des efficacités relatives (er) des AZB (Azotobacteraceae) en terme de prélèvements d'azote (mg-N / plant) par la somme des MSPA des premières et deuxièmes coupes (c12) (Tableau 4) démontre clairement que l'efficacité relative d'AZB est positive, appréciable et significative que si les BRR, ici valorisés au sens de la présente invention, sont présents. Tableau 4 : Efficacité relative des Azotobacteracea (er AZB (Azotobacteraceae)) en terme de prélèvements d'azote (mg-N / plant) par la somme des MSPA des premières et deuxièmes coupes (c12, ppds = 0.066) ; les moyennes des er AZB (Azotobacteraceae) associées au mêmes lettre de diffèrent pas statistiquement selon ce test de Newman-Keuls (a = 5%) er AZB (Azotobacteraceae) (témoins = 1.00) GROUPES HOMOGENES 1,157428 A 1,138019 A 1,02824 B 0,993911 B Afin de mieux illustrer cette valorisation des BRR par AZB, permettant du coup d'en augmenter l'efficacité relative, nous avons rapporté graphiquement à la Figure 7, l'efficacité relative des AZB (Azotobacteraceae) présentes sur les semences au semis en terme de g MSPA produite par pot, et selon le type de semis (s1 ou ss2) et/ou la présence des BRR (avec ou sans). A noter que seule la présence des BRR, pourtant pas directement mise en contacte avec les Azotobacteraceae, permet à celles-ci d'afficher une efficacité relative appréciablement positive. De plus, notez à la Figure 8 que l'efficacité relative des Azotobacteraceae (er AZB) présentes sur les semences au semis en terme de g MSPA produite par plant, et selon le type de semis (s1 ou ss2) et/ou la présence des BRR (avec ou sans) dépend fortement de la présence des BRR, pourtant pas directement mise en contacte avec les Azotobacteraceae. Enfin, à la Figure 9 est rapportée cette même l'efficacité relative des Azotobacteraceae (er AZB) mais en terme de mg-N prélevés par la MSPA par plant ; a noter encore une fois que seule la présence des BRR, pourtant pas directement mise en contacte avec les Azotobacteraceae, permet à celles-ci d'afficher une efficacité relative positive. Pour conclure, l'efficacité relative d'Azotobacteraceae) attribuable au traitement des semences Poaceae (alias Gramineae) avec celles-ci est nettement supérieure en présence de BRR ; à vrai dire elle n'est significative et/ou positive qu'en présence de BRR. Pourtant, ces Azotobacteraceae n'ont par été appliquées aux BRR, mais bel et bien aux semences ; ce sont nécessairement les rhizosphères qui, au sens de la présente invention ont entraînées lesdites Azotobacteraceae vers les BRR, valorisant du coup celles-ci comme substrats carbonés pour la diazotrophie azotobactérienne. Ce constat est appuyé par le fait que cette plus grande efficacité relative d'AZB est particulièrement appréciable en terme de prélèvement d'azote par la MSPA. Le taux d'implantation simulé par s2 est d'environs 40 à 50%, soit de 80 à 90 plantules par pot pour quelques 200 semences (données obtenues par comptage, mais pas rapportées ici). Par comparaison ce taux d'implantation est d'environs 100% avec s1, soit une quarantaine de plantules établis pour autant de semences. Or, en pot du moins, cette différence entre s1 et s2 en terme de taux d'implantation, et donc du nombre de rhizosphères par plantules établis (Nb. Toutes Modalité LIBELLES 2 sl + BRR 4 s2 + BRR 1 s1 - BRR 3 s2 - BRR -15- les semences germent et donneront lieu à une rhizosphère, plus ou moins développée selon l'implantation ou non du plantule.), ne semble pas affecter sensiblement er AZB ; d'une façon ou d'une autre, la valorisation des BRR par l'entraînement rhizosphérique des Azotobacteraceae au lieu. L'invention est donc susceptible d'être appliquée pour la valorisation des semences fourragères et cela indépendamment du susdit taux d'implantation, plutôt faible dans le cas de prairies et plutôt élevé dans le cas de Cipan fourragère, par exemple. D'une façon ou d'une autre il est ici possible de valoriser les BRR comme substrats carbonés pour les Azotobacteraceae ainsi apportées aux semences, valorisation qui serait difficile, voire impossible autrement. A noter enfin que le peuplement Lolium en pot est ici supérieur ù même pour s1, qu'il ne le serait in situ au champ. Nous considérons néanmoins maintenant acquise que la démonstration que cet entraînement rhizosphérique des Azotobacteraceae vers les BRR est susceptible d'être appliqué en agriculture. Références, bibliographie et brevets pertinents 15 Kitchen, Stanley G. et Stephen B. Monsen. 1994. Germination Rate And Emergencel Success ln Bluebunch Wheatgrass. J. Range Manage. 47:145-150, March 1994 Ehrenreich , John H.. 1954. Effects Of Certain Fungicides On Seed Germination And Seedling Establishment Of Range Forage Plants. 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Germination Rate And Emergence Success ln Bluebunch Wheatgrass. J. Range Manage.47:145-150. REVENDICATIONS1. Inoculum bactérien pour utilisation lors de l'implantation de cultures fourragères constitué d'une dose-hectare de semences fourragères des dites cultures. 2. Inoculum bactérien selon la revendication 1 caractérisé en ce que les cultures fourragères sont choisies parmi un groupe constitué d'espèces Poaceae (alias Gramniae), Fabaceae (alias Leguminoseae) ou Brassicaceae, 3. Inoculum bactérien selon les revendications 1 et 2 caractérisé en ce que lesdites semences pèsent chacune en moyenne de 1 à 6 mg, plus particulièrement de 2 à 5 mg, et préférablement environs 3 à 4 mg. 4. Inoculum bactérien selon les revendications 1, 2 et 3 caractérisé en ce que les doses - hectare desdites semences sont comprises entre 8 et 48 kg, plus particulièrement entre 16 et 36 kg, et avantageusement d'environs 24-25 kg. 5. Inoculum bactérien selon une quelconque des revendications précédentes caractérisé en ce qu'il est constitué de cellules de la famille Azotobacteraceae. 6. Inoculum bactérien selon une quelconque des revendications précédentes caractérisé en ce que la dose-hectare de cellules bactériennes viables comprise entre 1 x 1011 et 1 x 1014 cellules, plus particulièrement entre 1 x 1012 et 1 x 1013 cellules, et avantageusement d'environ 2,5 x 1012 cellules. 7. Utilisation d'inoculum bactérien selon l'une quelconque des revendications précédentes caractérisée en ce que desdites semences fourragères agissent comme vecteurs (véhicules) pour des BFCP Azotobacteraceae phytogènes vers les biomasses racinaires résiduelles (BRR) normalement peu/pas accessibles à ce type d'inoculation du fait de leurs positionnement souterrain, les rhizosphères émanant desdites semences pouvant de la sorte entraîner ces BFCP vers ces BRR avantageusement issues d'une culture céréalière et/ou d'une prairie ancienne en cours de rénovation. -17-