FR 2933411 A1 20100108 FR 0803802 A 20080704 2933411 UTILISATION DE 1,A PROTEINE IRAP POUR LA MISE EN îUVRE DE METHODES DE DIAGNOSTIC ET DE PRONOSTIQUE L'invention concerne l'utilisation de la protéine IRAP pour la mise en oeuvre de méthodes de diagnostic et de pronostique. La protéine IRAP (Insulin-Regulated AminoPeptidase ; EC 3.4.11.3) également connue sous le nom de Placental Leucine AminoPeptidase (P-LAP) et de Leucine-cystinyl aminopeptidase (L-CAP) est une protéine métalloprotéinase à zinc transmembranaire qui existe sous trois isoformes (Swiss-Prot: Q9UIQ6 :1, 2 et 3; représentées respectivement par les SEQ ID NO: 1 à 3). Lorsqu'elle est insérée au niveau de la membrane plasmique son domaine extracellulaire peut être clivé et sécrété. La partie sécrétée d'une isoforme non-spécifiée de la protéine IRAP a été dosée dans le sang par une méthode enzymatique en utilisant un substrat synthétique non spécifique, la L-leucine-nitroanilide en présence de méthionine (Mizutani, S., Yoshino, M., and Oya, M. (1976) Clin Biochem 9(1), 16-18). Utilisant cette méthode Mizutani, Oya et Tomoda ont mis en évidence une cystinylleucine aminopeptidase, dans le sérum de femmes enceintes, dont la concentration augmente au cours de la grossesse (Yamahara, N., Nomura, S., Suzuki, T., Itakura, A., Ito, M., Okamoto, T., Tsujimoto, M., Nakazato, H., and Mizutani, S. (2000) Lite Sci 66(15), 1401- 1410). Cette aminopeptidase est essentiellement d'orieine placentaire, raison pour laquelle elle a été appelée P-LAP (Tsujimoto, M., Mizutani, S., Adachi, H., Kimura, M., Nakazato, H., and Tomoda, Y. (1992) Arch Biochem Biophys 292(2), 388-392) et correspond au domaine sécrété de la protéine. Cette enzyme dégrade l'oxytocine (Naruki, M., Mizutani, S., Goto, K., Tsujimoto, M., 25 Nakazato, H., Itakura, A., Mizuno, K., Kurauchi, O., Kikkawa, F., and Tomoda, Y. (1996) Peptides 17(2), 257-261), la vasopressine (Wallis, M. G., Lankford, M. F., and Keller, S. R. (2007) Am J Physiol Endocrinol Metab 293(4), E1092-1102), l'angiotensine II et III (Matsumoto, H., Rogi, T., Yamashiro, K., Kodama, S., Tsuruoka, N., Hattori, A., Takio, K., Mizutani, S., and Tsujimoto, M. (2000) Eur J Biochem 267(1), 46-52) ainsi qu'une série d'autres peptides (Albiston, A. L., Peck, G. R., Yeatman, H. R., Fernando, R., Ye, S., and Chai, S. Y. (2007) Pharmacol Ther• 116(3), 417-427). Les concentrations sériques de cette aminopeptidase n'ont jamais été rapportées chez l'homme ni chez la femme non gravide. A l'occasion de son clonage, il est apparu que P-LAP correspond à la protéine IRAP ainsi qu'au récepteur de l'angiotensine IV (Keller, S. R., Scott, H. M., Mastick, C. C., Aebersold, R., and Lienhard, G. E. (1995) J Biol Chem 270(40), 23612-23618; Rogi, T., Tsujimoto, M., Nakazato, H., Mizutani, S., and Tomoda, Y. (1996) J Biol Chem 271(1), 56-61; Albiston, A. L., McDowall, S. G., Matsacos, D., Sim, P., Clune, E., Mustafa, T., Lee, J., Mendelsohn, F. A., Simpson, R. J., Connolly, L. M., and Chai, S. Y. (2001) J Biol Chem 276(52), 48623-48626). La demande de brevet WO 2005/038462 décrit un réactif pour le diagnostic et/ou une évaluation pronostique de carcinomes qui comprend un anticorps polyclonal anti-P-LAP, obtenu par immunisation avec la protéine P-LAP entière. Compte tenu de la forte homologie entre les différentes aminopeptidases, l'anticorps n'est vraisemblablement pas spécifique pour IRAP et va aussi reconnaître d'autres aminopeptidases. Il ne devrait donc pas permettre de diagnostiquer une pathologie liée de façon précise \ une modification de l'expression ou de la concentration plasmatique d'IRAP. GLUT4 est le transporteur de glucose qui permet la captation du glucose circulant par les muscles et le tissu adipeux en réponse à l'insuline. Dans des conditions non stimulées (conditions basales), GLUT4 est efficacement retenu à l'intérieur de la cellule dans des compartiments intracellulaires, par un mécanisme de rétention encore inconnu. En réponse à 2933411 J la stimulation insulinique, GLUT4 est transporté puis inséré à la membrane plasmique par une translocation accrue, permettant ainsi la captation cellulaire du glucose. IRAP co-localise avec le transporteur du glucose GLUT4 et est co-transloquée avec celui-ci de façon stoechiométrique (Keller, S. R. (2004) Biol Pharm Bull 27(6), 761-764). 5 Cette translocation vers la membrane plasmique est stimulée par l'insuline de la même façon que celle de GLUT4 (Karylowski, O., Zeigerer, A., Cohen, A., and McGraw, T. E. (2004) Mol Biol Cell 15(2), 870-882; Subtil, A., Lampson, M. A., Keller, S. R., and McGraw, T. E. (2000) JBiol Chem 275(7), 4787-4795). Par ailleurs l'expression d'IRAP conditionne l'expression de GLUT4 car chez les 10 animaux transgéniques IRAP-'-, les taux de GLUT4 sont réduits de 50 à 80 % (Keller, S. R., Davis, A. C., and Clairmont, K. B. (2002) JBiol Chem 277(20), 17677-17686). Chez le diabétique de type 2 on retrouve à la fois une réduction de l'expression et de la translocation de GLUT4 vers la membrane plasmique dans le muscle et le tissu adipeux (Kahn, B. B. (1992) JClin Invest 89(5), 1367-1374). 15 De même et bien que les taux cellulaires d'IRAP ne soient pas modifiés, sa translocation est également diminuée dans le muscle et le tissu adipeux des diabétiques de type 2 (Garvey, W. T., Maianu, L., Zhu, J. H., Brechtel-Hook, G., Wallace, P., and Baron, A. D. (1998) J Clin Invest 101(11), 2377-2386; Maianu, L., Keller, S. R., and Garvey, W. T. (2001) .I Clin Endocrinol Metah 86(11), 5450-5456). 20 Par ailleurs. il a été montré ^ne relation entre la protéine IRA P et le développement de la chimiorésistance aux médicaments anticancéreux (Kondo C. et al., Int J Cancer, 118, 1390-1394, 2006). Selon cet article, IRAP réduit en effet la sensibilité aux médicaments anticancéreux en inhibant l'expression du facteur de déclenchement de l'apoptose et augmente l'expression du facteur d'inhibition de l'apoptose. Le domaine extracellulaire d'IRAP est clivé par des métalloprotéases appartenant vraisemblablement à la famille des ADAM dont ADAM9 et ADAM12 (Ito, N., Nomura, S., Iwase, A., Ito, T., Kikkawa, F., Tsujimoto, M., Ishiura, S., and Mizutani, S. (2004) Biochem Biophys Res Commun 314(4), 1008-1013) et relargué dans la circulation sanguine. ADAM9 (MDC9) est exprimée notamment dans le cerveau, le foie, le coeur, les reins et les poumons (Hotoda, N., Koike, H., Sasagawa, N., and Ishiura, S. (2002) Biochem Biophys Res Commun 293(2), 800-805) et plusieurs autres membres de cette famille sont exprimés dans le muscle et le tissu adipeux. A ce jour, les seules relations établies entre la concentration du domaine extracellulaire d'IRAP dans un milieu biologique et une pathologie concernent la prééclampsie sévère ainsi que la menace d'accouchement prématuré. Dans ces deux pathologies les concentrations de P-LAP circulante sont inférieures à celles observées chez les femmes témoins d'âge gestationnel équivalent. Un des buts de la présente invention est de fournir une méthode de dosage in vitro de 15 la concentration en protéine IRAP dans du sérum ou du plasma ou des tissus d'un mammifère, spécifique du domaine extracellulaire de la protéine. Un autre but de l'invention est de fournir un anticorps monoclonal spécifique du domaine extracellulaire des différentes isoformes de la protéine IRAP. Un autre but de l'invention est de fournir une méthode de diagnostic de pathologies 20 dans lesquelles un excès ou un défaut de la concentration en protéine IRAP est impliqué. Un dernier but est de fournir un anticorps monoclonal spécifique du domaine extracellulaire des différentes isoformes de la protéine IRAP et inhibiteur de leur activité enzymatique dans une optique thérapeutique. Par conséquent, la présente invention concerne l'utilisation du domaine extracellulaire 25 de la protéine IRAP (� insulin responsive amino peptidase �), pour la mise en oeuvre d'une méthode de dosage in vitro de la concentration en protéine IRAP dans du sérum, du plasma ou des tissus d'un mammifère, notamment d'un humain. La protéine IRAP peut avoir différentes dénominations telles que : � Insulin responsive amino peptidase �, � Insulin-regulated membrane aminopeptidase �, � Leucyl- cystinyl aminopeptidase (L-CAP) �, � Placental leucine aminopeptidase (P-LAP)�, � Cystinyl aminopeptidase �, � Oxytocinase �, � O l ase � , � Vesicle protein of 165 kDa �, � Vpl 65 �, ou � GI'160 �. Ces différentes dénominations pourront être employées indifféremment clans la suite de la description et désignent la même protéine. La protéine IRAP, quelles que soient ses isoformes est constituée d'une partie N-terminale d'environ 110 acides aminés présente dans le cytoplasme, une partie transmembranaire d'environ 20 acides aminés et une partie C-terminale extracellulaire comportant les acides aminés restants. Comme indiqué plus haut, le domaine extracellulaire peut être clivé et sécrété. En conséquence, l'expression � domaine extracellulaire � comprend aussi bien le domaine extracellulaire encore lié à la membrane de la cellule et que l'on trouve par conséquent dans les tissus, que le domaine extracellulaire circulant, c'est-à-dire après clivage et sécrétion, que l'on trouve dans la circulation sanguine. Par � mammifère �, on entend un taxon inclus dans les vertébrés et qui regroupe près 20 de 5400 espèces. Lesdites espèces sont définies dans :Wilson, D. E., and Reeder, D. M. (eds). AJammal Species of the Woi 1d..Johns Hopkins University Press, 16/11/2005. L'un des avantages de la méthode de dosage in vitro de l'invention est donc de permettre le dosage spécifique du domaine extracellulaire de la protéine IRAP chez un mammifère, et plus particulièrement: 25 - soit le domaine extracellulaire circulant dans le sérum, ou le plasma - soit le domaine extracellulaire encore lié à la membrane dans les tissus. Dans un mode de réalisation avantageux, l'invention concerne l'utilisation du domaine extracellulaire de la protéine IRAP, dans laquelle ladite protéine IRAP correspond à l'une de ses isoformes, en particulier les isoformes définies par les SEQ ID N°1 à 3, ou à l'un de ses 5 variants, en particulier les variants définis par les SEQ ID NO :4 à 6, ledit domaine extracellulaire étant représenté par les SEQ ID NO : 7 à 1 1. La protéine I1ZAP peut exister sous au moins trois isoformes (Swiss-Prot: Q91. ilQ(, 1, 2 et 3; représentées par les SEQ Ill NO: 1 à 3 respectivement) ainsi que plusieurs variants de l'isoforme 1 : 031616 (S86P, serine remplacée par une proline en position 86), 012812 10 (A763T alanine remplacée par une thréonine en position 763) et 031617 (1963-\'; isoleucine remplacée par une valine en position 963) représentés par les SEQ ID NO: 4 à 6 respectivement. Le domaine extracellulaire de chaque isoforme 1 à 3 est représenté par les SEQ ID NO : 7 à 9 respectivement et le domaine extracellulaire des variants 031616. 0128412 et 15 031617 est représenté par les SEQ ID NO :7, 10 et 1 1 . Dans toute cette description, le terme IRAP peut être employé seul mais inclut également ses isoformes et/ou variants. Dans un mode de réalisation avantageux, l'invention concerne l'utilisation du domaine extracellulaire de la protéine IRAP définie ci-dessus et/ou de l'une de ses isoformes définie 20 ci-dessus et/ou de l'un de ses variants défini ci-dessus, pour le diagnostic et/ou le pronostic in vitro, ou le suivi in vitro de pathologies liées à des défauts de translocation du transporteur du glucose GLUT4 ou de protéines associées, incluant IRAP. Par � diagnostic in vitro� il faut entendre le raisonnement menant à l'identification in vitro de la cause (l'origine) d'une défaillance, d'un problème ou d'une maladie. Par � pronostic in vitro�, il faut entendre l'appréciation in vitro du degré de gravité et de l'évolution ultérieure d'une maladie y compris son issue. Comme précisé plus haut, IRAP co-localise avec le transporteur du glucose GLUT4 et est co-transloquée avec celui-ci de façon stoechiométrique. En conséquence, la détermination de la concentration la protéine IRAP ou de l'une de ses isoformes ou de l'un de ses variants défini ci-dessus présente dans le sérum ou le plasma ou les tissus est représentative de la translocation et dune de la quantité de transport du glucose. Un autre avantage de la méthode de dosage de l'invention est donc la détermination d'un défaut de transport du glucose et par conséquent l'identification de la cause d'une pathologie ou de son degré de gravité ou encore le suivi de la pathologie et de son évolution. Dans un mode de réalisation avantageux, la méthode de dosage définie ci-dessus permet l'évaluation d'un traitement dirigé contre cette maladie par comparaison des concentrations du domaine extracellulaire de protéine IRAP obtenues avant et après le traitement. Les pathologies liées au définit de transport du glucose peuvent être sans être limitées à cellesùci : l'insulino-résistance, le diabète de type 2, le diabète gestationnel, l'hypertension gravidique (prééclampsie), la menace d'accouchement prématuré. Selon un mode de réalisation plus avantageux, l'utilisation du domaine extracellulaire de la protéine IRAP définie ci-dessus et/ou de l'une de ses isoformes définie ci-dessus et/ou de l'un de ses variants défini ci-dessus, permet le diagnostic et/ou le pronostic in vitro de pathologies associées à la surexpression de IRAP et/ou de ses isoformes et/ou variants par rapport à un individu sain, ou le suivi in vitro de pathologies associées à la surexpression de IRAP et/ou de ses isoformes et/ou variants chez un patient, par rapport à un individu sain. Dans le cadre d'une surexpression de la protéine IRAP, la concentration du domaine extracellulaire de la protéine IRAP déterminée chez un patient, par la méthode de dosage de l'invention, sera supérieure à celle obtenue chez un individu sain, indiquant ainsi une surexpression de la protéine IRAP. Dans le cadre du suivi d'une pathologie liée à une surexpression de la protéine IRAP chez un patient, la diminution de la concentration du domaine extracellulaire de la protéine IRAP déterminée chez ledit patient en cours de traitement par la méthode de dosage de l'invention, par rapport à la concentration du domaine extracellulaire de la protéine IRAP déterminée avant traitement, permettra de montrer l'efficacité du traitement. A l'inverse, une augmentation ou une stabilisation de la concentration du domaine extracellulaire de la protéine IRAP déterminée chez ledit patient en cours de traitement, par rapport à la concentration du domaine extracellulaire de la protéine IRAP déterminée avant traitement, montrera l'inefficacité du traitement permettant ainsi une modification des doses ou du principe actif utilisé. Par conséquent, on considère qu'il y a surexpression de la protéine IRAP chez un individu lorsque la valeur maximum de la concentration en protéine IRAP ci-dessus indiquée est augmentée de 50% ou plus chez un patient. Des exemples de pathologies liées à la surexpression de la protéine IRAP sans être limités à ceux-ci peuvent être l'adénocarcinome ovarien, le cancer de l'endomètre, le choriocarcinome, le cancer du pancréas, le cancer du sein, le cancer de la prostate, le cancer de l'estomac, le cancer du rectum ou les cancers de la sphère ORL. Selon un mode de réalisation plus avantageux, l'utilisation du domaine extracellulaire de la protéine IRAP définie ci-dessus et/ou de l'une de ses isoformes définie ci-dessus et/ou de l'un de ses variants défini ci-dessus, permet le diagnostic et/ou le pronostic in vitro de pathologies associées à la sous-expression de IRAP et/ou de ses isoformes et/ou variants par rapport à un individu sain, ou le suivi in vitro de pathologies associées à la sous-expression de IRAP et/ou de ses isoformes et/ou variants chez un patient. Dans le cadre d'une sous-expression de la protéine IRAP, la concentration du domaine extracellulaire de la protéine IRAP déterminée chez un patient, par la méthode de dosage de 5 l'invention, sera inférieure à celle obtenue chez un individu sain, indiquant ainsi une sous expression de la protéine IRAP. Dans le cadre du suivi d'une pathologie liée à une sous expression de la protéine IRAI' chez un patient, l'augmentation de la concentration du domaine extracellulaire de la protéine IRAP déterminée chez ledit patient en cours de traitement par la méthode de dosage de 10 l'invention, par rapport à la concentration du domaine extracellulaire de la protéine IRAP déterminée avant traitement, permettra de montrer l'efficacité du traitement. A l'inverse, une diminution ou une stabilisation de la concentration du domaine extracellulaire de la protéine IRAP déterminée chez ledit patient en cours de traitement, par rapport à la concentration du domaine extracellulaire de la protéine IRAP déterminée avant 15 traitement, montrera l'inefficacité du traitement permettant ainsi une modification des doses ou du principe actif utilisé. On considère qu'il y a sous-expression de la protéine IRAP lorsque la valeur minimum de la concentration en protéine IRAP ci-dessus indiquée est diminuée de 50% ou plus. Dans un mode de réalisation avantageux, l'utilisation du domaine extracellulaire de la 20 protéine IRAP défini ci-dessus, et/ou de l'une de ses isoformes définie ci-dessus et/ou de l'un de ses variants défini ci-dessus, permet le diagnostic et/ou le pronostic in vitro de la chimiorésistance aux médicaments anticancéreux. Par le terme � chimiorésistance �, il faut comprendre une sensibilité réduite ou totalement perdue à un traitement anticancéreux lors d'une chimiothérapie par des médicaments anticancéreux, acquise ou inhérente, et qui restreint ou annihile complètement l'efficacité du traitement anticancéreux. Des' exemples de médicaments anticancéreux sans être limités à ceux-ci sont le paclitaxel (Taxol), le carboplatine... Par conséquent, le dosage du domaine extracellulaire d'IRAP et/ou de l'une de ses isoformes définie ci-dessus, et/ou de l'un de ses variants défini ci-dessus, montrant une surexpression de la protéine IRAI' chez un individu, notamment lorsque la valeur maximum de la concentration en protéine IRAP ci-dessus indiquée est augmentée de 50h ou plus chez un patient, permet le diagnostic et/ou le pronostic de la résistance à la chimiothérapie. Selon un mode de réalisation avantageux, l'utilisation du domaine extracellulaire de la protéine IRAP définie ci-dessus et/ou de l'une de ses isoformes définie ci-dessus, et/ou de l'un de ses variants défini ci-dessus, permet le diagnostic et/ou le pronostic in vitro, ou le suivi in vitro de pathologies liées à des défauts de translocation du transporteur du glucose GLUT4 et notamment à la sous expression de IRAP et/ou de ses isoformes et/ou variants, et qui sont parmi celles associées à l'insulino- résistance, le diabète de type 2, le diabète gestationnel, l'hypertension gravidique ( prééclampsie) et la menace d'accouchement prématuré. L'insulino-résistance se traduit par une moins bonne captation du glucose par l'organisme. Cette maladie évolue vers le diabète de type 2 qui apparaît lorsque le taux de glucose dans le sang (glycémie) dépasse les valeurs normales (110 mg/dL à jeun et 140 mg/dL 2 h après l'ingestion de 75 g de glucose). Cette augmentation du taux de glucose dans le sang hyper-stimule le pancréas, qui augmente la sécrétion d'insuline pour compenser l'augmentation de la glycémie. Le diabète gestationnel représente tout état d'intolérance au glucose, quelle que soit sa sévérité, apparu au cours de la grossesse chez une femme sans diabète sucré connu antérieurement. La prééclampsie est une maladie caractérisée par l'association d'une hypertension 5 artérielle, d'une protéinurie, d'une prise de poids avec oedèmes. La menace d'accouchement prématuré est caractérisée par des contractions utérines entraînant un raccourcissement et une ouverture du col pouvant provoquer un accouchement avant la fin de la 36 semaine de gestation. Par conséquent, un autre avantage de l'invention est de permettre le diagnostic et/ou le 10 pronostic in vitro, ou le suivi in vitro de pathologies liées à des défauts de translocation du transporteur du glucose GLUT4 aussi bien dans les tissus que dans le sérum ou le plasma. Selon un autre mode de réalisation avantageux, l'utilisation du domaine extracellulaire de la protéine IRAP définie ci-dessus et/ou de l'une de ses isoformes définie ci-dessus, et/ou de l'un de ses variants défini ci-dessus, permet le diagnostic et/ou le pronostic in vitro, ou le 15 suivi in vitro de pathologies liées à des défauts de translocation du transporteur du glucose GLUT4, notamment des cancers, en particulier ceux dans lesquels 1RAP et/ou ses isoformes et/ou variants sont surexprimés tel que l'adénocarcinome ovarien, le cancer de l'endomètre, le choriocarcinome, le cancer du pancréas, le cancer du sein, le cancer de la prostate, le cancer de l'estomac, le cancer du rectum ou les cancers de la sphère ORL, les maladies auto- 20 immunes ou inflammatoires. Le choriocarcinome est une tumeur hautement maligne faite de la juxtaposition d'éléments cellulaires de cytotrophoblaste et de syncytiotrophoblaste avec disparition complète des villosités choriales. Dans un mode de réalisation avantageux, la détection des cancers cités dans le document 25 WO 2005/038462 par la méthode de l'invention est effectuée dans le sérum. Par maladie auto-immune il faut comprendre des maladies dues à une hyperactivité du système immunitaire à l'encontre de substances ou de tissus qui sont normalement présents dans l'organisme, telles que les thyroïdites auto-immunes, la polyarthrite rhumatoïde, la spondylarthrite ankylosante, le syndrome de Goujerot-Sj6gren. Des exemples de maladies inflammatoires, mais sans être limités à ceux-ci, sont les suivants : la polyarthrite rhumatoïde, le lupus crythémateux , syndrome de Sjégrcu, la sclérodermie (sclérose systémique), la dermatomyosite, la polymyosite, la polymyalgia rheuinatica, l'ostéoarthrite, l'arthrite septique, la goutte, la pseudogoutte, la spondylarthropathies, la spondylite ankylosante, le syndrome de Reiter, l'arthropathie psoriatique, la spondylite entéropathique, l'arthropathie réactive, la maladie de Crohn, la sarcoïdose, ... Dans le cadre d'un traitement par un médicament anti-cancéreux, IRAP réduit la sensibilité à ces médicaments en inhibant l'expression du facteur de promotion de l'apoptose et en augmentant l'expression du facteur inhibant l'apoptose (Kondo et al., Int. J. Cancer : 118, 1390-1394, 2006). Selon un mode de réalisation plus avantageux, la mise en oeuvre d'une méthode de dosage in vitro au moyen du domaine extracellulaire de la protéine IRAP définie ci-dessus et/ou de l'une de ses isoformes définie ci-dessus, et/ou de l'un de ses variants défini ci-dessus est effectuée à l'aide d'un anticorps. Le terme "anticorps" est utilisé pour désigner des anticorps polyclonaux ou monoclonaux spécifiques du domaine extracellulaire de l'une des isoformes de la protéine IRAP et comprend aussi des fragments ou des molécules qui miment les anticorps monoclonaux spécifiques du domaine extracellulaire de la protéine IRAP, et en particulier un fragment se liant à un épitope. Des fragments ou des molécules peuvent être dérivés d'anticorps monoclonaux par des techniques d'ADN recombinant ou par des méthodes enzymatiques ou chimiques et peuvent présenter des caractéristiques de liaison similaires par rapport à un anticorps monoclonal pour un fragment d'antigène. Les anticorps de la présente invention comprennent à la fois toute la longueur des anticorps discutés ci-dessus, ainsi que des fragments de ceux-ci se liant aux épitopes. Telle qu'elle est utilisé ci-après, l'expression � des fragments d'anticorps� comprenC toute p~irtic d'un anticorps qui conserve la capacité de se lier à un épitope reconnu par toute la longueur de l'anticorps, généralement appelé � fragments se liant à un épitope �. Des exemples de fragments d'anticorps comprennent, mais ne se limitent pas à ceux-ci, Fab, Fab 'et F(ab')2, Fd, simple chaîne Fvs (scFv), des anticorps simple chaîne, des Fvs liés par des ponts disulfure et des fragments comprenant soit une région VL ou VH. Des fragments se liant à un épitope, y compris des anticorps simple chaîne, peuvent comprendre la (les) région(s) variable(s) seule(s) ou en combinaison avec la totalité ou une partie des éléments suivants: région charnière, les domaines CHI, CH2, et CH3. Ces fragments peuvent contenir un ou les deux fragments Fab ou le fragment F(ab')2. En outre, les fragments peuvent être ou peuvent combiner les membres de l'une quelconque des catégories suivantes immunoglobulines: IgG, IgM, IgA, IgD, ou IgE, et les sous-classes de celle-ci. Des fragments Fab et F(ab')2 peuvent être produits par clivage protéolytique, en utilisant des enzymes telles que la papaïne (fragments Fab) ou la pepsine (fragments F(ab')2). Les anticorps de l'invention peuvent être produits à l'aide de méthodes conventionnelles, comprenant l'immunisation d'un animal et la récupération des cellules spléniques de manière à produire des hybridomes par fusion cellulaire. Les anticorps de l'invention peuvent être utilisés avantageusement sous forme d'un mélange d'anticorps monoclonaux. Selon un mode de réalisation avantageux, ledit anticorps défini ci-dessus est un anticorps polyclonal. Par � anticorps polyclonal �, on entend un anticorps provenant de différentes lignées de cellules de lymphocyte B. Dans un mode de réalisation avantageux, ledit anticorps holyclonal défini ci-dessus est utilisé pour la mise en oeuvre d'une méthode de dosage in vitro de la concentration de la protéine 1RAP définie ci-dessus et/ou de l'une de ses isoformes définie ci-dessus, et/ou variants dans du sérum ou du plasma d'un mammifère, notamment d'un humain dans le cadre de l'insulino-résistance ou du cancer, ou dans des tissus d'un mammifère dans le cadre de l'insulino-résistance. Selon un autre mode de réalisation avantageux, ledit anticorps défini ci-dessus est un anticorps monoclonal. Par � anticorps monoclonal �. on entend un anticorps provenant d'un seul type de cellules, c'est-à-dire un hybridome. Dans un mode de réalisation avantageux, ledit anticorps monoclonal défini ci-dessus est utilisé pour la mise en œuvre d'une méthode de dosage in vitro de la concentration de la protéine IRAP définie ci-dessus et/ou de l'une de ses isoformes définie ci-dessus et/ou de l'un de ses variants, dans du sérum ou du plasma ou des tissus d'un mammifère. notamment d'un humain dans le cadre de l'insulino-résistance ou du cancer. Selon un mode de réalisation avantageux, l'anticorps monoclonal tel que défini ci-dessus est produit par un hybridome. Par "hybridome" il faut entendre une cellule de fusion qui produit continuellement des anticorps, c'est-à-dire des cellules tumorales qui peuvent se reproduire sans fin et qui sont fusionnées avec des cellules de mammifères. Selon un autre aspect, l'invention concerne un anticorps reconnaissant spécifiquement le domaine extracellulaire circulant, ou l'un des épitopes du domaine extracellulaire, de la protéine IRAP (insulin responsive amino peptidase) et/ou de l'une de ses isoformes, en particulier les isoforuics définies par les SQ ID N°1 à et/ou de l'un de ses variants, en particulier les variants définis par les SEQ ID NO : 4 à 6, ledit domaine extracellulaire étant défini par les séquences ID NO : 7 à 11. L'un des avantages de l'invention est donc de fournir un anticorps spécifique du domaine extracellulaire ou l'un de ses épitopes de la protéine IRAP et/ou de l'une de ses isoformes et/ou de l'un de ses variants, c'est-à-dire reconnaissant spécifiquement ledit domaine extracellulaire ou l'un des ses épitopes, que le domaine extracellulaire soit encore lié à la membrane de la cellule ou qu'il ait été clivé par des métalloprotéases appartenant ou non à la famille ADAM, notamment ADAM9 et ADAM 12, et soit donc circulant et qui ne reconnaît pas la partie transmembranaire ou la partie intracellulaire. Par conséquent, l'anticorps de l'invention reconnaît spécifiquement ledit domaine extracellulaire ou l'un des ses épitopes, après co-translocation avec le transporteur au glucose GLUT4, et permet donc une méthode de diagnostic et/ou de pronostic in vitro, ou de suivi in vitro de pathologies liées à des défauts de translocation du transporteur du glucose GLUT4 ou de protéines associées. Dans un mode de réalisation avantageux, l'anticorps défini ci-dessus est utilisé en tant que médicament, notamment pour le traitement des cancers, en particulier ceux dans lesquels IRAP et/ou ses isoformes et/ou variants sont surexprimés tel que l'adénocarcinome ovarien, le cancer de l'endomètre, le choriocarcinome, le cancer du pancréas, le cancer du sein, le cancer de la prostate, le cancer de l'estomac, le cancer du rectum ou les cancers de la sphère ORL, les maladies auto-immunes ou inflammatoires, ou pour le traitement de la résistance à la chimiothérapie. La diminution de l'expression d'IRAP, c'est-à-dire, le retour à une concentration sérique ou dans les tissus proche de la normale, c'est-à-dire avant apparition de la pathologie cancéreuse ou l'inhibition partielle ou totale de son activité avec les anticorps de l'invention permet donc le traitement des cancers. De même, la protéine IRAP étant impliquée dans la réduction de la sensibilité aux médicaments anticancéreux comme indiqué ci-dessus, les anticorps de l'invention permettent donc de réduire la concentration d'IRAP ou d'inhiber de façon partielle ou totale son activité et donc de supprimer la réduction à la sensibilité aux médicaments anticancéreux conduisant au traitement de la résistance à la chimiothérapie et par voie de conséquence à l'amélioration de l'efficacité des anticancéreux. Selon un mode de réalisation avantageux, l'anticorps défini ci-dessus est un anticorps polyclonal. Selon un mode de réalisation avantageux, l'anticorps défini ci-dessus est un anticorps monoclonal. Selon un mode de réalisation avantageux, l'anticorps monoclonal est marqué avec un composé choisi parmi un radionucléide, un fluorophore, un marqueur d'enzyme, un substrat d'enzyme, un co-facteur d'enzyme, un inhibiteur d'enzyme ou un haptène. Le marqueur particulier ou le groupe délectable utilisé dans l'essai n'est généralement pas un aspect critique de l'invention, tant qu'il n'interfère pas avec la liaison spécifique de l'anticorps utilisés dans le dosage. Le groupe détectable peut être n'importe ciel matériau ayant une propriété physique ou chimique détectable. De tels marqueurs détectables ont été bien développés dans le domaine des dosages immunologiques et, en général, presque tout marqueur utile dans de telles méthodes peut être appliqué à la méthode de la présente invention. Ainsi, un marqueur est toute composition détectable par des techniques spectroscopiques, photochimiques, biochimiques, immunochimiques, électriques, optiques, radiologiques ou des moyens chimiques. Des marqueurs utiles dans la présente invention incluent, mais ne se limitant pas à ceux-ci, sont des billes magnétiques (par exemple Dynabeadsl'M), des colorants fluorescents (par exemple, l'isothiocyanatc de fluorescéine, texas rouge. la rhodamine), des marqueurs radiomarqués (par exemple. '11, 's, ou 3'P), des enzymes (par exemple la peroxydase de raifort, de la phosphatase alcaline et d'autres couramment utilisés dans un test ELISA), et des marqueurs colorimétriques telles que l'or colloïdal, des billes de verre ou de plastique (par exemple le polystyrène, le polypropylène, latex, etc) colorées. Le marqueur peut être couplé directement ou indirectement à l'élément désiré de l'essai selon des méthodes bien connues dans l'art. Comme indiqué plus haut, une grande variété de marqueurs peut être utilisée, le choix du marqueur dépendant de la sensibilité nécessaire, la facilité de conjugaison avec le composé, des exigences de stabilité, les instruments disponibles et les conditions d'élimination. Des marqueurs radioactifs sont souvent attachés par des moyens indirects. En règle générale, une molécule ligand (par exemple, la biotine) est liée de façon covalente à l'anticorps. Le ligand se lie alors à une molécule anti-ligand (par exemple streptavidine), qui est soit elle-même détectable soit liée de façon covalente à un système de signal, comme une enzyme détectable, un composé fluorescent, ou un composé chimioluminescent. Un certain nombre de ligands et d'anti-ligands peuvent être utilisés. Lorsque un ligand a un anti-ligand naturel, par exemple, la biotine, la thyroxine, et le cortisol, il peut être utilisé en association avec l'anti-ligand naturel marqué. Alternativement, un composé hapténique ou antigénique peut être utilisé en combinaison avec un anticorps. Les anticorps peuvent aussi être conjugués directement à des composés générant un signal, par exemple, en conjugaison avec une enzyme ou un fluorophore. Les enzymes d'intérêt, utilisés comme marqueurs sont principalement des hydrolases, en particulier des phosphatases, des estérases et des glycosidases, ou des oxidoréductases, en particulier des péroxidases. Des composés fluorescents comprennent la fluorescéine et ses dérivés, la rhodamine et ses dérivés, le dansyl, l'umbelliferone, etc. Des composés chimioluminescent comprennent la luciférine, et les 2,3-dihydrophtalazinediones, par exemple, le luminol. Une revue des marqueurs ou d'autres systèmes de production du signal est disponible dans le brevet américain n° 4,391,904. Des moyens pour détecter les marqueurs sont bien connus dans l'art. Ainsi, par exemple, quand le marqueur est un marqueur radioactif, les moyens de détection comprennent un compteur à scintillation ou des films photographiques comme pour 1-autoradiographie. Lorsque le marqueur est un marqueur fluorescent, il peut être détecté par excitation du fluorophore aux longueurs d'onde de la lumière appropriées et détection de la fluorescence résultante. La fluorescence peut être détecté visuellement. par le biais d'un film photographique, par l'utilisation de détecteurs électroniques tels que les disposit:fs à couplage de charge (CCD) ou des photomultiplicateurs et les équivalents. De même, des marqueurs enzymatiques peuvent être détectés en fournissant les substrats appropriés à l'enzyme et en détectant le produit de réaction résultant. Enfin de simples marqueurs colorimétriques peuvent être détectés simplement en observant la couleur associée au marqueur.25 Selon un mode de réalisation avantageux, ledit anticorps monoclonal défini ci-dessus est un anticorps humanisé. Par � anticorps humanisé � il faut entendre un anticorps génétiquement modifié dans lequel la partie minimum d'un anticorps de souris est intégrée à un anticorps humain; 5 généralement les anticorps humanisés comprennent de 5-10% d'anticorps de souris et de 90 à 95% d'anticorps humain. Les anticorps humanises ont l'avantage de bloquer les réponses IIAMA (anticorps humains dirigés contre des anticorps de souris) et HACA (anticorps humains dirigés contre des anticorps chimériques) observées avec l'utilisation d'anticorps de souris ou chimériques 10 et qui ne présentent seulement qu'une réponse minimale ou pas de réponse du système immun humain contre eux. Selon un autre aspect, l'invention concerne un hybridome produisant un anticorps monoclonal tel que défini ci-dessus. Selon un autre aspect, l'invention concerne un procédé de dosage in vitro de la 15 concentration en protéine IRAP, et/ou de l'une de ses isoformes, et/ou de l'un de ses variants chez un mammifère comprenant une étape de détermination de la concentration du domaine extracellulaire de la protéine IRAP et/ou de l'une de ses isoformes et/ou de l'un de ses variants dans du sérum, du plasma ou des tissus d'un mammifère. Le procédé de l'invention permet donc le dosage spécifique du domaine extracellulaire 20 de la protéine IRAP après co-translocation avec le transporteur du glucose GLUT4 et permet donc de déterminer la surexpression ou la sous-expression de la protéine IRAP et/ou de l'une de ses isoformes et/ou de l'un de ses variants responsable de pathologies associées. Procédé de dosage selon la revendication 18, dans lequel le dosage est effectué soit par une méthode immuno-enzymatique soit par une méthode immuno-histochimique, soit par 25 RIA. Le dosage du domaine extracellulaire de la protéine IRAP peut être effectué soit par dosage immuno-enzymatique (exemple 3), soit par dosage immuno-histochimique (exemple 4), ou RIA (radio immuno-assay). Dans ce dernier cas, le dosage est effectué à l'aide, soit d'anticorps, soit de la protéine ou d'un fragment de celle-ci, marqués à l'iode 125 ou avec tout autre radioisotope approprié. Selon un autre aspect, l'invention concerne une méthode de diagnostic in vitro de pathologies associées à l'insulino-résistance ainsi que le diabète de type le diabète gestationnel, l'hypertension gravidique (prééclampsie), la menace d'accouchement prématuré et comprenant les étapes suivantes : a. la détermination in vitro de la concentration de domaine extracellulaire circulant de la protéine IRAP, et/ou de l'une de ses isoformes, et/ou de l'un de ses variants, chez un mammifère à l'aide d'un anticorps tel que défini ci-dessus, b. la comparaison de ladite concentration obtenue à l'étape a. avec celle obtenue in vitro chez un mammifère sain, c. la déduction à partir de l'étape b. précédente, du fait que le mammifère présente une insulino-résistance, si la concentration obtenue à l'étape a. est inférieure à celle de l'étape b., Un autre avantage de l'invention est donc de fournir une méthode diagnostic et/ou le pronostic in vitro, ou le suivi in vitro de pathologies dans lesquelles la protéine IRAP et/ou 20 l'une de ses isoformes et/ou de l'un de ses variants est sous-exprimée. Selon un autre aspect, la présente invention concerne une méthode de diagnostic in vitro de pathologies associées aux cancers, en particulier ceux dans lesquels IRAP, et/ou l'une de ses isoformes et/ou l'un de ses variants, est surexprimée tel que l'adénocarcinome ovarien, ou à des maladies auto immunes ou inflammatoires, ou à la résistance à la 25 chimiothérapie et comprenant les étapes suivantes : a. la détermination in vitro de la concentration de domaine extracellulaire circulant de la protéine IRAP, et/ou de l'une de ses isoformes, et/ou de l'un de ses variants, chez un mammifère à l'aide d'un anticorps tel que défini ci-dessus. b. la comparaison de ladite concentration obtenue à l'étape a. avec celle obtenue in 5 vitro chez un mammifère contrôle, c. la déduction à partir de l'étape b. précédente, du fait que le mammifère présente un cancer, si la concentration obtenue à l'étape a. est supérieure à celle de l'étape b., 10 Un autre avantage de l'invention est donc de fournir une méthode diagnostique et/ou le pronostic in vitro, ou le suivi in vitro de pathologies dans lesquelles la protéine IRAP, et/ou l'une de ses isoformes, et/ou de l'un de ses variants, est surexprimée. Selon encore un autre aspect, la présente invention concerne un kit pour la détermination in vitro de la concentration de domaine extracellulaire circulant de la protéine 15 IRAP, et/ou de l'une de ses isoformes et/ou variants, chez un mammifère comprenant au moins un tampon, et au moins un anticorps tel que défini ci-dessus. Dans un mode de réalisation préféré, le kit défini ci-dessus, comprend également un substrat de la protéine IRAP ainsi qu'un peptide reconnu par l'anticorps. Des exemples de substrat, sans être limités à ceux-ci sont la L-leucine-nitroanilide, la 20 vasopressine, l'ocytocine, les met-enkephalines.... Par � peptide reconnu par l'anticorps � il faut comprendre la protéine IRAP recombinante ou un fragment de celle-ci reconnu par l'anticorps. 25 EXEMPLES EXEMPLE 1 : Production de la protéine IRAP 1° Clonage : Le cDNA correspondant à la séquence circulante d'IRAP ou de l'une de ses isoformes ou de l'un de ses variants a été cloné dans un vecteur d'expression bactérien (par exemple pET, p Blues script, pGEX ou tous vecteur comprenant un promoteur de phage bactérien permettant l'expression dans les bactéries (1 3 , T7, SP6 ...) et sa conformité avec la séquence de la base de données Swiss-Prof (Q9UIQ6 : 1, 2 et 3 ; SEQ ID N°1 à 3) a été vérifiée. Elle a été modifiée en y ajoutant des séquences codant pour des tags poly-histidine en vue de la purification de la protéine exprimée. 2° Expression et purification de la séquence extracellulaire circulante d'IRAP ou de l'une de ses isoformes ou de l'un de ses variants. Trois méthodes différentes peuvent être utilisées : - 1° méthode : expression de la protéine IRAP ou de l'une de ses isoformes par une souche appropriée d'E. coli. La protéine IRAP ou l'une de ses isoformes sécrétée est ensuite purifiée par affinité sur matrice de Ni+-t ou Co++ Enfin, les séquences poly-His sont clivées à l'aide d'une protéase spécifique. - 2° méthode : expression de la protéine IRAP ou de l'une de ses isoformes ou de l'un de ses variants par des cellules Sf9 d'insecte après clonage du cDNA modifié dans Baculovirus. La protéine IRAP ou l'une de ses isoformes ou de l'un de ses variants sécrétée est ensuite purifiée par affinité sur matrice de Ni++ ou Co++. Enfin, les 25 séquences poly-His sont clivées à l'aide d'une protéase spécifique. 2933411 2i EXEMPLE 2 : Production des anticorps monoclaux Le protocole est issu de la technique de l'hybridome (protocole de Kôhler et Milstein, 1976) et se divise en 5 ,étapes : 5 - Etape-1 - Immunisation : injection sous-cutanée à des souris de plusieurs peptides correspondant à des séquences spécifiques communes de la partie extracellulaire des isoformes d'11ZA1' ou de l'un de ses variants. Ces séquences peptidiques ne. sont pas retrouvées dans les autres aminopeptidases de mammifères. Les antisérums sont testés contre la protéine recombinante purifiée IRAP ou 10 l'une de ses isoformes par ELISA. Les rates des souris répondantes sont utilisées pour la génération d'hybridomes. Les anticorps produits par ceux-ci sont ensuite retestés par ELISA contre la protéine IRAP ou de l'une de ses isoformes et du sérum de femmes enceintes et non gravides. 15 - Etape 2 - Fusion : prélèvement des cellules de rates et fusion de ces cellules avec des cellules de myélome en présence de polyéthylène glycol (agent chimique de fusion). Distribution du mélange dans des puits de microplaque à une dilution telle qu'en moyenne chaque puits contient moins d'une cellule hybride. Culture des cellules dans un milieu sélectif où seules les cellules hybrides se multiplient et perdurent, tandis que 20 les cellules myélomateuses et les plasmocytes de rate non fusionnés meurent rapidement. - Etape 3 - Criblage : recherche dans chaque puits d'anticorps dirigés contre la protéine IRAP ou de l'une de ses isoformes ou de l'un de ses variants recombinante.25 Etape 4 - Clonage et caractérisation : repiquage des cellules hydrides produisant des anticorps afin d'obtenir des clones cellulaires. Conservation d'une copie de chaque clone dans l'azote liquide. Isotypage des anticorps produits. - Etape 5 - Culture et production : deux modes possibles de culture des hybridomes pour produire les anticorps anti-IRAP ou de l'une de ses isoformes ou de l'un de ses variants: o culture in vitro des cellules (production des anticorps dans le milieu de culture) o culture in vivo par injection des cellules dans la cavité péritonéale de souris. Ceci provoque l'apparition d'une tumeur, d'une inflammation et d'une production de liquide d'ascite dans la zone d'injection. Prélèvement du liquide d'ascite qui contient les anticorps (1 à 10 mg/mL). EXEMPLE 3 : Dosage de la protéine IRAP et/ou de l'une de ses isoformes et/ou de l'un de ses variants par une méthode immuno-enzymatique dans le sérum ou le plasma La protéine IRAP et/ou l'une de ses isoformes recherchée dans le sérum ou le plasma est liée par l'anticorps spécifique adsorbé à des plaques multi-puits. La protéine IRAP ainsi que ses isoformes, voir l'un ou plusieurs de ses variants liés sont ensuite révélés et quantifiés par mesure de leur activité enzymatique en utilisant le L-leucine-paranitroanilide comme substrat en présence de 20 mM de L-methionine, cette dernière permettant d'éviter une réaction croisée avec d'éventuelles contaminations par d'autres aminopeptidases (Yamahara, N., Nomura, S., Suzuki, T., Itakura, A., Ito, M., Okamoto, T., Tsujimoto, M., Nakazato, H., and Mizutani, S. (2000) Life Sci 66(15), 1401-1410).25 EXEMPLE 4 : Dssagpde la protéine IRAP et/ou de l'une de ses isoformes et/ou de l'un de ses variants par une méthode immuno-histochimique dans les tissus humains. Le dosage immunohistochimique a été effectué en utilisant la technique avidine- biotine immunoperoxydase. Des coupes de tissus humains préalablement prélevés d'une 5 épaisseur de 4 �m ont été effectuées et marquées par la méthode streptavidine/biotine/peroxydase. Les coupes débarrassées de leur paraffine ont été placées dans un tampon citrate 0.01 M et été traitée trois fois pendant 5 min chacune à 90°C et 750 W dans un four à micro-ondes. 1 es coupes ont été ensuite incubées clans de l'eau oxygénée pendant 20 min et puis 10 incubées avec du sérum de l'animal hôte de l'anticorps secondaire à 10% pendant 10 min pour bloquer l'activité peroxydase endogène et la liaison aux immunoglobulines non spécifiques, respectivement. Un anticorps monoclonal de l'exemple 2 à une dilution de 1: 100 a été ajouté aux coupes de tissus et incubé pendant 1h dans une chambre humide à température ambiante pour 15 le dosage de IRAP et/ou de ses isoformes et/ou de l'un de ses variants. La liaison de l'anticorps a été révélée par un anticorps anti-Ig de souris biotinylé, suivi de streptavidine conjuguée à la peroxydase de raifort. Le développement chromogénique a été effectué par immersion des coupes dans du 3-amino-9-ethylcarbazole. 20 Les clichés ont été analysés par coloration de contraste avec de l'hématoxyline de Mayer. EXEMPLE 5 : Dosage de la protéine IRAP et/ou de l'une de ses isoformes et/ou de l'un de ses variants pour le pronostic de la chimiorésistance. 25 La chimiorésistance est la conséquence de la surexpression d'IRAP. Elle peut donc être dosée selon l'exemple 3 ou 4 ou par RIA. REVENDICATIONS1. Utilisation du domaine extracellulaire de la protéine IRAP (� insulin responsive amino peptidase �), pour la mise en oeuvre d'une méthode de dosage in vitro de la concentration en protéine IRAP dans du sérum, du plasma ou des tissus d'un mammifère, notamment d'un humain. 2. Utilisation du domaine extracellulaire de la protéine IRAP selon la revendication 1, dans laquelle ladite protéine IRAP correspond à l'une de ses isoformes, en particulier les isoformes définies par les SEQ ID N°1 à 3, ou à l'un de ses variants, en particulier les variants définis par les SEQ ID NO :4 à 6, ledit domaine extracellulaire étant représenté par les SEQ ID NO : 7 à 11. 3. Utilisation du domaine extracellulaire de la protéine IRAP et/ou de ses isoformes ou variants selon la revendication 2, dans laquelle ladite méthode permet le diagnostic et/ou le pronostic in vitro, ou le suivi in vitro de pathologies liées à des défauts de translocation du transporteur du glucose GLUT4 ou de protéines associées. 4. Utilisation du domaine extracellulaire de la protéine IRAP et/ou de ses isoformes ou variants selon la revendication 3, pour le diagnostic et/ou le pronostic in vitro de pathologies associées à la surexpression de IRAP et/ou de ses isoformes et/ou variants par rapport à un individu sain, ou le suivi in vitro de pathologies associées à la surexpression de IRAP et/ou de ses isoformes et/ou variants chez un patient, par rapport à un individu sain. 5. Utilisation du domaine extracellulaire de la protéine IRAP et/ou de ses isoformes et/ou variants selon la revendication 3, pour le diagnostic et/ou le pronostic in vitro de pathologies associées à la sous-expression de IRAP et/ou de ses isoformes et/ou variants par rapport à un individu sain, ou le suivi in vitro de pathologies associées à la sous expression de IRAP ou de ses isoformes ou variants chez un patient. 6. Utilisation du domaine extracellulaire de la protéine IRAP selon la revendication 3_ pour le diagnostic et/ou le pronostic in vitro de la chimiorésistance aux médicaments anticancéreux. 7. Utilisation du domaine extracellulaire de la protéine IRAP et/ou de ses isoformes et/ou variants selon l'une des revendications 1 à 3 ou 5, dans laquelle les pathologies sont parmi celles associées à l'insulino-résistance, le diabète de type 2, le diabète gestationnel, l'hypertension gravidique (prééclampsie) et la menace d'accouchement prématuré, 8. Utilisation du domaine extracellulaire de la protéine IRAP et/ou de ses isoformes et/ou variants selon l'une des revendications 1 à 4, dans laquelle les pathologies sont notamment les cancers, en particulier ceux dans lesquels IRAP et/ou ses isoformes et/ou variants sont surexprimés tel que l'adénocarcinome ovarien, le cancer de l'endomètre, le choriocarcinome, le cancer du pancréas, le cancer du sein, le cancer de la prostate, le cancer de l'estomac, le cancer du rectum ou les cancers de la sphère ORL, les maladies auto immunes ou inflammatoires. 9. Utilisation du domaine extracellulaire de la protéine IRAP et/ou de ses isoformes et/ou variants selon l'une des revendications 1 à 8, dans laquelle ledit dosage est effectué à l'aide d'un anticorps. 10. Utilisation du domaine extracellulaire de la protéine IRAP et/ou de ses isoformes et/ou variants selon la revendication 9, dans laquelle ledit anticorps est un anticorps polyclonal. 11. Utilisation du domaine extracellulaire de la protéine IRAP et/ou de ses isoformes et/ou variants selon la revendication 9, dans laquelle ledit anticorps est un anticorps monoclonal. 12. Utilisation du domaine extracellulaire de la protéine IRAP et/ou de ses isoformes et/ou variants selon la revendication 11, dans laquelle ledit anticorps monoclonal est produit par un hybridome. 13. Anticorps reconnaissant spécifiquement le domaine extracellulaire circulant, ou l'un des épitopes du domaine extracellulaire, de la protéine IRAP (insulin responsive amino peptidase) et/ou de l'une de ses isoformes, en particulier les isoformes définies par les SEQ ID NO :1 à 3, et/ou de l'un de ses variants, en particulier les variants définis par les SEQ ID NO : 4 à 6, ledit domaine extracellulaire étant défini par les séquences ID NO : 7 à 11. 14. Anticorps selon la revendication 13, pour une utilisation en tant que médicament, notamment pour le traitement des cancers, en particulier ceux dans lesquels IRAP et/ou ses isoformes et/ou variants sont surexprimés tel que l'adénocarcinomeovarien, le cancer de l'endomètre, le choriocarcinome, le cancer du pancréas, le cancer du sein, le cancer de la prostate, le cancer de l'estomac, le cancer du rectum ou les cancers de la sphère ORL, les maladies auto immunes ou inflammatoires, ou pour le traitement de la résistance à la chimiothérapie. 15. Anticorps selon la revendication 13 ou 14, ledit anticorps étant un anticorps polyclonal. 16. Anticorps selon la revendication 13 ou 14, ledit anticorps étant un anticorps 10 monoclonal. 17. Anticorps selon la revendication 16, ledit anticorps étant marqué avec un composé choisi parmi un radionucléide, un fluorophore, un marqueur d'enzyme, un substrat d'enzyme, un co-facteur d'enzyme, un inhibiteur d'enzyme ou un haptène. 18. Anticorps selon l'une des revendications 16 ou 17, ledit anticorps étant un anticorps humanisé. 19. Hybridome produisant un anticorps selon la revendication 16. 20 20. Procédé de dosage in vitro de la concentration en protéine IRAP et/ou de l'une de ses isoformes et/ou de l'un de ses variants, chez un mammifère comprenant une étape de détermination de la concentration du domaine extracellulaire de la protéine IRAP, et/ou de l'une de ses isoformes, et/ou de l'un de ses variants dans du sérum, 25 du plasma ou des tissus d'un mammifère. 15 21. Procédé de dosage selon la revendication 20, dans lequel le dosage est effectué soit par une méthode immuno-enzymatique soit par une méthode immunohistochimique, soit par RIA. 22. Méthode de diagnostic in vitro de pathologies associées à l'insulino-résistance, le diabète de type 2, le diabète gestationnel, l'hypertension gravidique (prééclanipsie) et la menace d'accouchement prématuré et comprenant les étapes suivantes : a. la détermination in vitro de la concentration de domaine extracellulaire circulant de la 10 protéine IRAP, et/ou de l'une de ses isoformes, et/ou de l'un de ses variants chez un mammifère à l'aide d'un anticorps selon l'une des revendications 13 ou 15 à 18, b. la comparaison de ladite concentration obtenue à l'étape a. avec celle obtenue in vitro chez un mammifère sain, c. la déduction à partir de l'étape b. précédente, du fait que le mammifère présente une 15 insulino résistance, si la concentration obtenue à l'étape a. est inférieure à celle de l'étape b., 23. Méthode de diagnostic in vitro de pathologies associées aux cancers. en particulier ceux dans lesquels IRAP, et/ou l'une de ses isoformes, et/ou l'un de ses variants est 20 surexprimée tel que l'adénocarcinome ovarien, ou à des maladies auto immunes ou inflammatoires, ou à la résistance à la chimiothérapie et comprenant les étapes suivantes : a. la détermination in vitro de la concentration de domaine extracellulaire circulant de la protéine IRAP et/ou de ses isoformes et/ou variants chez un mammifère à l'aide d'un 25 anticorps selon l'une des revendications 13 ou 15 à 18, 510b. la comparaison de ladite concentration obtenue à l'étape a. avec celle obtenue in vitro chez un mammifère contrôle, c. la déduction à partir de l'étape b. précédente, du fait que le mammifère présente un cancer, si la concentration obtenue à l'étape a. est supérieure à celle de l'étape b., 24. Kit pour la détermination in vitro de la concentration de domaine extracellulaire circulant de la protéine IRAP et/ou de l'une de ses isofornies et/ou variants chez un mammifère comprenant au moins un tampon, et au moins un anticorps selon l'une des revendications 13 ou 15 à 18. 25. Kit selon la revendication 24, comprenant également un substrat de la protéine IRAP ainsi qu'un peptide reconnu par l'anticorps.