FR 2932818 A1 20091225 FR 0854140 A 20080623 L'invention a pour objet une lignée d'adipocytes bruns humains fonctionnelle, dans laquelle l'expression de UCP1, CIDEA, CPT1B et Bc12 est supérieure, l'expression de Bax est inférieure, et l'expression de PPAR alpha, PGC1 alpha, PGC1 bêta et PRDM16 est similaire par rapport aux expressions correspondantes d'une lignée d'adipocytes blancs humains. L'invention concerne également un procédé de différenciation de cellules hMADS en la lignée d'adipocytes bruns humains fonctionnelle, un procédé de conversion d'une lignée d'adipocytes blancs humains en la lignée d'adipocytes bruns humains fonctionnelle, ainsi qu'une méthode de criblage de molécules susceptibles de moduler le poids corporel chez un sujet. Le tissu adipeux blanc (WAT) joue chez l'homme un rôle-clef dans le contrôle du bilan énergétique et de l'homéostasie glucido-lipidique (Ailhaud G. et al, Annu Rev Nutr, 1992. 12: p. 207-233 ; Rosen, E.D. et B.M. Spiegelman, Nature, 2006. 444(7121): p. 847-53). A l'opposé du WAT, le tissu adipeux brun (BAT) est spécialisé dans la thermogénèse adaptative au cours de laquelle la protéine découplante UCP1 joue un rôle déterminant. La présence de tissu adipeux brun est bien connue chez les rongeurs comme chez les mammifères nouveaux-nés de plus grande taille (Garruti, G. et D. Ricquier, Int J Obes Relat Metab Disord, 1992. 16(5): p. 383-90 ; Cannon, B. et J. Nedergaard, Physiol Rev, 2004. 84(1): p. 277-359). Fait particulièrement frappant, des données récentes permettent d'avancer l'existence de BAT fonctionnel chez l'homme adulte sain (Nedergaard, J. et al, Am J Physiol Endocrinol Metab, 2007. 293(2): p. E444-52). In vivo, l'apparition chez les rongeurs d'îlots d'adipocytes bruns au milieu des dépôts de WAT est connue (Timmons, J.A., et al., Proc Natl Acad Sci U S A, 2007. 104(11): p. 4401-6 ; Cousin, B., et al., J Cell Sci, 1992. 103 (Pt 4): p. 931-42 ; Xue, B., et al., Mol Cell Biol, 2005. 25(18): p. 8311-22), à la suite d'une exposition au froid ou d'un traitement par les agonistes des récepteurs 13-adrénergiques ((3-AR). De même, après un traitement par des ligands agonistes de PPARy, l'apparition de cellules 1 exprimant UCP1 dans des dépôts adipeux blancs a également été documentée chez les rongeurs et chez l'homme (Wilson-Fritch, L., et al., J Clin Invest, 2004. 114(9): p. 1281-9 ; Fukui, Y., et al., Diabetes, 2000. 49(5): p. 759-67 ; Bogacka, I., et al., Diabetes, 2005. 54(5): p. 1392-9). Toutefois, ces observations ne peuvent exclure l'existence préalable de précurseurs bruns dans de tels sites. Réciproquement, la conversion rapide du BAT en WAT chez le nouveau-né humain comme chez les nouveaux-nés ovins et bovins ne peut exclure l'existence préalable de précurseurs blancs (Casteilla, L., et al., Am J Physiol, 1987. 252(5 Pt 1): p. E627-36 ; Casteilla, L., et al., Biochem J, 1989. 257(3): p. 665-71 ; Casteilla, L., et al., Eur J Biochem, 1991. 198(1): p. 195-9). L'existence d'une cellule précurseur commune aux lignages blanc et brun reste à démontrer, dans la mesure où les préadipocytes obtenus ex-vivo à partir du WAT et du BAT ne donnent respectivement naissance qu'à des adipocytes blancs et bruns (Moulin, K., et al., Biochem J, 2001. 356(Pt 2): p. 659-64). Des travaux récents chez la souris favorisent cette possibilité en démontrant l'existence d'une signature transcriptomique myogénique des adipocytes bruns distincte de celle des adipocytes blancs (Timmons, J.A., et al., Proc Natl Acad Sci U S A, 2007. 104(11): p. 4401-6). Toutefois, d'autres travaux soulignent la possibilité de générer des adipocytes bruns à partir d'adipocytes blancs par transgénèse (Tiraby, C. et D. Langin, Trends Endocrinol Metab, 2003. 14(10): p. 439-41 ; Tiraby, C., et al., J Biol Chem, 2003. 278(35): p. 33370-6) et plusieurs co-activateurs et facteurs de transcription participent à la formation d'adipocytes bruns. Ainsi, PGC-la et PGC-113 jouent au cours de la différenciation un rôle essentiel et complémentaire dans la mitochondriogénèse et la respiration (Puigserver, P., et al., Mol Cell, 2001. 8(5): p. 971-82 ; Uldry, M., et al., Cell Metab, 2006. 3(5): p. 333-41). Cependant, contrairement à ces co-activateurs de PPARy, la protéine transcriptionnelle en doigt de zinc PRDM16 contrôle véritablement la détermination �brune� des préadipocytes blancs par induction de PGC-la, d'UCPl et de la triiodothyronine desiodinase de type 2 (Dio2) (Seale, P., et al., Cell Metab, 2007. 6(1): p. 38-54). Récemment nous avons isolé à partir de tissu adipeux humain des cellules souches mésenchymateuses (cellules hMADS). Ces cellules présentent à l'état clonal un caryotype normal, une forte capacité d'auto-renouvellement, et une absence de tumorigénicité. Les cellules hMADS se révèlent être capables de se différencier en 2 plusieurs lignages, en particulier ostéoblastique comme adipocytaire, et conduisent in vivo à une régénération osseuse et musculaire (Rodriguez, A.M., et al., Biochem Biophys Res Commun, 2004. 315(2): p. 255-63 ; Rodriguez, A.M., et al., J Exp Med, 2005. 201(9): p. 1397-405 ; Zaragosi, L.E., et al, Stem Cells, 2006. 24(11): p. 2412-9 ; Elabd, C., et al., Biochem Biophys Res Commun, 2007. 361(2): p. 342-8). Une fois différenciées en adipocytes, les cellules hMADS acquièrent les propriétés fonctionnelles des adipocytes blancs humains (sécrétion de leptine et d'adiponectine, réponses à l'insuline et aux agonistes 13-adrénergiques et, spécifique des primates, au facteur atrial natriurétique, Rodriguez, A.M., et al., Biochem Biophys Res Commun, 2004. 315(2): p. 255-63). Les cellules hMADS représentent donc un modèle cellulaire approprié pour étudier leur capacité éventuelle à se différencier également en adipocytes bruns. Nos résultats montrent qu'une activation chronique prolongée de PPARy suffit à promouvoir leur conversion in vitro et à augmenter leurs capacités respiratoire et découplante, et que les agonistes des récepteurs 13-adrénergiques, y compris les agonistes 133, modulent positivement l'expression d'UCPl. La différenciation des cellules hMADS aboutit à une lignée d'adipocytes bruns humains fonctionnelle qui peut être utilisée en tant que modèle cellulaire, notamment pour identifier des molécules susceptibles de moduler le poids corporel, et en particulier pour traiter le surpoids et/ou l'obésité. Ainsi, selon un premier aspect, la présente invention a pour objet une lignée d'adipocytes bruns humains fonctionnelle qui exprime simultanément les gènes suivants : - les gènes codant les protéines UCP1, CIDEA, CPT1B, Bc12, l'expression de ces gènes étant supérieure à celle d'une lignée d'adipocytes blancs humains, - le gène codant la protéine Bax, l'expression de ce gène étant inférieure à celle d'une lignée d'adipocytes blancs humains, et - les gènes codant les protéines PPAR alpha, PGC1 alpha, PGC1 bêta et PRDM16, l'expression de ces gènes étant similaire à celle d'une lignée d'adipocytes blancs humains. La lignée d'adipocytes bruns humains fonctionnelle selon la présente invention est issue d'une lignée de cellules souches adultes multipotentes issues du tissu adipeux 3 humain (cellules hMADS). Les cellules hMADS sont décrites notamment dans la demande internationale publiée le 12 février 2004 sous le numéro WO 2004/013275 et dans Rodriguez, A.M., et al., Biochem Biophys Res Commun, 2004. 315(2): p. 255-63. Ces cellules hMADS sont capables de se différencier en divers types cellulaires tels que des adipocytes, des ostéoblastes, des myocytes et des cellules endothéliales en fonction du milieu de culture utilisé. Les lignées de cellules hMADS présentent une capacité d'autorenouvellement conservée pendant un certain nombre de doublements de population, c'est-à-dire qu'elles sont viables à long terme et qu'elles peuvent se diviser sans altérer les caractéristiques cellulaires initiales. Avantageusement, les lignées cellulaires hMADS selon la présente invention présentent une capacité d' autorenouvellement conservée pendant au moins 130, encore plus avantageusement au moins 200 doublements de population. Dans la présente invention, les conditions permettant la différenciation de la lignée cellulaire hMADS en une lignée d'adipocytes bruns humains fonctionnelle ont été déterminées et sont décrites ci-après. Une lignée d'adipocytes bruns humains fonctionnelle a ainsi pu être établie. Par lignée d'adipocytes bruns humains � fonctionnelle � selon la présente invention on entend désigner une lignée possédant une activité respiratoire significativement supérieure par rapport à l'activité respiratoire de tout autre type cellulaire, notamment par rapport à l'activité respiratoire des adipocytes blancs. Cette activité respiratoire significativement supérieure est due à l'expression supérieure du gène codant UCP1 par rapport à l'expression d'UCPl dans des adipocytes blancs humains et à l'activité découplante de la protéine UCP1 résultant de cette expression, et qui est présente dans la membrane interne mitochondriale des adipocytes bruns humains. Une expression supérieure du gène codant UCP1 dans les adipocytes bruns humains ne conduira pas à une activité respiratoire significativement supérieure de ces adipocytes si la protéine UCP1 n'est pas localisée dans la membrane interne mitochondriale. La fonctionnalité des adipocytes bruns humains peut être vérifiée de différentes manières, décrites ci-après. Dans la présente invention, l'expression d'un gène par une lignée cellulaire signifie que le produit issu de cette expression est soit le produit de traduction dudit gène, à savoir la protéine codée par le gène, soit le produit de transcription dudit gène, à savoir l'ARNm codant la protéine. L'expression d'un gène est déterminée par quantification 4 soit du produit de traduction (protéine codée par le gène), par exemple en utilisant la technique d'immunoempreinte, soit du produit de transcription (ARNm codant la protéine), par exemple par RT-PCR quantitative et/ou par la technique du Northern-blot. Les techniques de quantification des produits d'expression des gènes sont bien connues de l'homme de l'art. L'expression des gènes codant les protéines UCP1, CIDEA, CPT1B, Bc12, Bax, PPAR alpha, PGC1 alpha, PGC1 bêta et PRDM16 par la lignée d'adipocytes bruns humains fonctionnelle est quantifiée puis comparée à l'expression de ces mêmes gènes par une lignée d'adipocytes blancs humains. Cette lignée d'adipocytes blancs humains est avantageusement issue d'une lignée de hMADS telle que décrite ci-dessus. Les conditions de culture permettant la différenciation des cellules hMADS en adipocytes blancs humains sont décrites notamment dans la demande internationale publiée le 12 février 2004 sous le numéro WO 2004/013275, page 17, ligne 36 à page 18, ligne 8, ou bien dans la partie Exemples de la présente demande de brevet. Avantageusement, la lignée d'adipocytes blancs humains est obtenue après stimulation d'une lignée cellulaire hMADS pendant 1 à 9 jours, avantageusement pendant 6 jours, par un agoniste spécifique du récepteur PPAR gamma tel qu'un composé de la famille des thiazolinediones, lequel composé est avantageusement choisi parmi la rosiglitazone, la ciglitazone, la pioglitazone, la darglitazone et la troglitazone. Dans la présente invention, on considère que l'expression d'un gène par la lignée d'adipocytes bruns humains fonctionnelle est supérieure ou inférieure à celle du même gène par une lignée d'adipocytes blancs humains, lorsque l'on observe une différence significative de cette expression. A l'inverse, une différence n'est pas significative lorsque l'expression d'un gène par la lignée d'adipocytes bruns humains fonctionnelle est � 0,20 fois identique à celle du même gène par une lignée d'adipocytes blancs humains. Avantageusement, l'expression du gène codant la protéine UCP1 est 10 à 1000 fois supérieure, de préférence de 20 à 500 fois supérieure à l'expression de ce même gène par la lignée d'adipocytes blancs humains, et/ou l'expression du gène codant la protéine CIDEA est 10 à 100 fois supérieure, de préférence 20 à 100 fois supérieure à l'expression de ce même gène par la lignée d'adipocytes blancs humains, 5 et/ou l'expression du gène codant la protéine CPT1B est 2 à 10 fois supérieure, de préférence 4 à 8 fois supérieure à l'expression de ce même gène par la lignée d'adipocytes blancs humains, et/ou l'expression du gène codant la protéine Bc12 est 1,5 à 4 fois supérieure, de 5 préférence 2 à 3 fois supérieure à l'expression de ce même gène par la lignée d'adipocytes blancs humains, et/ou l'expression du gène codant la protéine Bax est 0,25 à 2,5 fois inférieure, de préférence 0,5 à 2 fois inférieure à l'expression de ce même gène par la lignée d'adipocytes blancs humains, 10 et/ou l'expression des gènes codant les protéines PPAR alpha, PGC1 alpha, PGC1 bêta et PRDM16 est � 0,20 fois identique à l'expression de ces mêmes gènes par la lignée d'adipocytes blancs humains. Selon un mode de réalisation avantageux, l'expression du gène codant UCP1 est 15 augmentée après stimulation par un agoniste d'un récepteur bêta-adrénergique, avantageusement après stimulation par un agoniste du récepteur bêta3-adrénergique, avantageusement pendant une durée comprise entre 1 à 24 heures, avantageusement 6 heures. Avantageusement, l'expression du gène codant UCP1 est 1,5 à 4 fois supérieure par rapport à celle obtenue en l'absence de stimulation par un agoniste d'un récepteur 20 bêta-adrénergique. Tout agoniste spécifique d'un récepteur bêta-adrénergique peut être utilisé. Des exemples de tels agonistes sont notamment cités dans Carpene, C. Methods Mol Biol 2001. 155, 129-140. Avantageusement, l'agoniste spécifique d'un récepteur bêta-adrénergique est choisi parmi la dobutamine, la terbutaline, l'isoprotérénol, qui est un 25 pan-agoniste des récepteurs bêtal-, bêta2- et bêta3-adrénergiques, le composé CGP12177A, qui est un agoniste partiel du récepteur bêta3-adrénergique, et le composé CL316243, qui est un agoniste spécifique du récepteur bêta3-adrénergique. Avantageusement, l'agoniste spécifique d'un récepteur bêta-adrénergique est le composé CL316243. Les composés dobutamine, terbutaline isoprotérénol, et 30 CL316243 peuvent notamment être obtenus auprès de Sigma Chemical Company (St Louis, USA). Le composé CGP12177A peut être obtenu auprès de Research Biochemical (Natick, MA, USA). 6 Egalement avantageusement, la concentration en agoniste spécifique d'un récepteur bêta-adrénergique est comprise entre 1 nM et 1000 nM, avantageusement entre 1 nM et 500 nM, encore plus avantageusement entre 1 et 100 nM. L'invention a également pour objet l'utilisation d'un agoniste spécifique du récepteur bêta3-adrénergique pour augmenter l'expression du gène codant la protéine UCP1 dans une lignée d'adipocytes bruns humains telle que la lignée selon la présente invention. Avantageusement, l'invention a pour objet l'utilisation d'un agoniste spécifique du récepteur bêta3-adrénergique pour augmenter l'activité découplante de la protéine UCP1 dans une lignée d'adipocytes bruns humains telle que la lignée selon la présente invention. De préférence, l'agoniste est le composé CL316243, et est utilisé de manière préférée à une concentration comprise entre 1 nM et 1000 nM, avantageusement entre 1 nM et 500 nM, encore plus avantageusement entre 1 et 100 nM. Selon un deuxième aspect, la présente invention a pour objet un procédé de différenciation d'une lignée de cellules souches adultes multipotentes issues du tissu adipeux humain (cellules hMADS) en une lignée d'adipocytes bruns humains fonctionnelle telle que définie dans la présente invention, comprenant la stimulation desdites cellules hMADS par un agoniste spécifique du récepteur PPAR gamma, cette stimulation étant effectuée : - soit pendant une période d'une durée comprise entre 10 et 30 jours, avantageusement entre 13 et 20 jours, encore plus avantageusement entre 15 et 16 jours, - soit (i) pendant une première période de différenciation des cellules hMADS en adipocytes blancs d'une durée comprise entre 2 et 9 jours, avantageusement entre 3 et 7 jours, encore plus avantageusement de 6 jours, (ii) ladite première période étant suivie d'une seconde période d'une durée comprise entre 2 et 10 jours, avantageusement entre 4 et 7 jours, encore plus avantageusement de 5 jours, au cours de laquelle la stimulation est stoppée, (iii) ladite seconde période étant suivie d'une troisième période de stimulation d'une durée comprise entre 1 et 10 jours, avantageusement entre 1 et 6 jours, encore plus avantageusement de 2 jours. 7 Tout agoniste spécifique du récepteur PPAR gamma peut être utilisé dans le cadre de la présente invention. Avantageusement, l'agoniste spécifique du récepteur PPAR gamma est une thiazolinedione, laquelle thiazolinedione est avantageusement choisie dans le groupe constitué par la rosiglitazone, la ciglitazone, la pioglitazone, la darglitazone et la troglitazone. Les composés ciglitazone et troglitazone peuvent notamment être obtenus auprès de Cayman Chemical (Ann Arbor, MI, USA). Les composés pioglitazone et rosiglitazone peuvent être obtenus auprès de Sigma Chemical Co. (St Louis, MO, USA). La darglitazone peut être obtenue auprès de Medicinal Chemistry, AstraZeneca R&D (Molndal, Sweden). Avantageusement, lorsque l'agoniste spécifique du récepteur PPAR gamma est la rosiglitazone, la concentration en rosiglitazone est comprise entre 5 nM et 1 000 nM, avantageusement entre 10 nM et 500 nM, encore plus avantageusement entre 20 et 100 nM. Egalement avantageusement, lorsque l'agoniste spécifique du récepteur PPAR gamma est la pioglitazone, la concentration en pioglitazone est comprise entre 0,2 �M et 10 �M, avantageusement entre 0,4 �M et 5 �M, encore plus avantageusement entre 0,8 �M et 2 �M. Encore avantageusement, lorsque l'agoniste spécifique du récepteur PPAR gamma est la ciglitazone, la concentration en ciglitazone est comprise entre 0,5 �M et 20 �M, avantageusement entre 1 �M et 10 �M, encore plus avantageusement entre 2 �M et 4 �M. Encore avantageusement, lorsque l'agoniste spécifique du récepteur PPAR gamma est la darglitazone, la concentration en darglitazone est comprise entre 0,2 �M et 20 �M, avantageusement entre 0,5 �M et 10 �M, encore plus avantageusement entre 1 �M et 5 �M. Encore avantageusement, lorsque l'agoniste spécifique du récepteur PPAR gamma est la troglitazone, la concentration en troglitazone est comprise entre 0,2 �M et 10 �M, avantageusement entre 0,5 �M et 5 �M, encore plus avantageusement entre 1 �M et 4 �M. Les conditions générales de culture utilisées pour la multiplication et la différenciation de la lignée cellulaire hMADS sont connues de l'homme de l'art et sont notamment décrites dans la demande WO 2004/013275, ou bien dans la partie Exemples de la présente demande de brevet. Le milieu de culture utilisé pour la différenciation de la lignée cellulaire hMADS est changé régulièrement, de préférence tous les deux jours, avant utilisation des cellules. Ce milieu ne contient 8 avantageusement pas de sérum tel que du sérum de veau nouveau-né et est chimiquement défini. Dans un mode de réalisation préféré, le procédé de différenciation de la lignée cellulaire hMADS en une lignée d'adipocytes bruns humains selon la présente invention, comprend en outre la vérification de la fonctionnalité de la lignée d'adipocytes bruns humains obtenue, ladite vérification comprenant les étapes successives suivantes : - la stimulation de ladite lignée d'adipocytes bruns humains par un agoniste spécifique d'un récepteur bêta-adrénergique, avantageusement par un 10 agoniste spécifique du récepteur bêta3-adrénergique, - la quantification de l'expression du gène codant UCP1, et - la vérification que ladite lignée est fonctionnelle lorsque l'expression du gène codant UCP1 est augmentée par rapport à celle obtenue en l'absence de stimulation par l'agoniste spécifique d'un récepteur bêta-adrénergique. 15 De préférence, l'expression du gène codant UCP1 est 1,5 à 4 fois supérieure par rapport à celle obtenue en l'absence de stimulation par un agoniste d'un récepteur bêta-adrénergique. Avantageusement, l'agoniste spécifique d'un récepteur bêta-adrénergique est choisi parmi la dobutamine, la terbutaline, l'isoprotérénol et le composé CL316243, 20 avantageusement le composé CL316243. Egalement avantageusement, la concentration en agoniste spécifique d'un récepteur bêta-adrénergique est comprise entre 1 nM et 1000 nM, avantageusement entre 1 nM et 500 nM, encore plus avantageusement entre 1 et 100 nM. La fonctionnalité de la la lignée d'adipocytes bruns humains peut également être 25 vérifiée en quantifiant la consommation d'oxygène, par exemple à l'aide d'un respiromètre, et/ou l'activité découplante de ladite lignée. La quantification de l'activité découplante de la lignée d'adipocytes bruns humains peut être réalisée à l'aide d'un agent découplant tel que le carbonyl cyanide 3-chlorophénylhydrazone (CCCP). De telles techniques sont bien connues de l'homme de l'art. 30 9 Selon un troisième aspect, la présente invention a pour objet un procédé de conversion d'une lignée d'adipocytes blancs humains en une lignée d'adipocytes bruns humains fonctionnelle telle que définie dans la présente invention, comprenant la stimulation de ladite lignée d'adipocytes blancs humains par un agoniste spécifique du PPAR gamma pendant une durée comprise entre 1 et 10 jours, avantageusement entre 1 et 6, encore plus avantageusement de 2 jours. La lignée d'adipocytes blancs humains est telle que décrite ci-dessus. Le milieu de culture utilisé pour la conversion de la lignée d'adipocytes blancs humains est le même que celui utilisé pour la différenciation des cellules hMADS. De même, ce milieu est changé régulièrement, de préférence tous les deux jours, avant utilisation des cellules. L'agoniste spécifique du récepteur PPAR gamma est tel que défini ci-dessus. Avantageusement, l'agoniste spécifique du récepteur PPAR gamma est une thiazolinedione, laquelle thiazolinedione est avantageusement choisie dans le groupe constitué par la rosiglitazone, la ciglitazone, la pioglitazone, la darglitazone et la troglitazone. Avantageusement, lorsque l'agoniste spécifique du récepteur PPAR gamma est la rosiglitazone, la concentration en rosiglitazone est comprise entre 5 nM et 1 000 nM, avantageusement entre 10 nM et 500 nM, encore plus avantageusement entre 20 et 100 nM. Egalement avantageusement, lorsque l'agoniste spécifique du récepteur PPAR gamma est la pioglitazone, la concentration en pioglitazone est comprise entre 0,2 �M et 10 �M, avantageusement entre 0,4 �M et 5 �M, encore plus avantageusement entre 0,8 �M et 2 �M. Encore avantageusement, lorsque l'agoniste spécifique du récepteur PPAR gamma est la ciglitazone, la concentration en ciglitazone est comprise entre 0,5 �M et 20 �M, avantageusement entre 1 �M et 10 �M, encore plus avantageusement entre 2 �M et 4 �M. Encore avantageusement, lorsque l'agoniste spécifique du récepteur PPAR gamma est la darglitazone, la concentration en darglitazone est comprise entre 0,2 �M et 20 �M, avantageusement entre 0,5 �M et 10 �M, encore plus avantageusement entre 1 �M et 5 �M. Encore avantageusement, lorsque l'agoniste spécifique du récepteur PPAR gamma est la troglitazone, la concentration en troglitazone est comprise entre 0,2 �M et 10 �M, avantageusement entre 0,5 �M et 5 �M, encore plus avantageusement entre 1 �M et 4 �M. 10 Dans un mode de réalisation préféré, le procédé de conversion selon la présente invention comprend en outre la vérification de la fonctionnalité de la lignée d'adipocytes bruns humains obtenue après conversion de la lignée d'adipocytes blancs humains, ladite vérification comprenant les étapes successives suivantes : - la stimulation de ladite lignée d'adipocytes bruns humains par un agoniste spécifique d'un récepteur bêta-adrénergique, avantageusement par un agoniste spécifique du récepteur bêta3-adrénergique, - la quantification de l'expression du gène codant UCP1, et - la vérification que ladite lignée est fonctionnelle lorsque l'expression du gène codant UCP1 est augmentée par rapport à celle obtenue en l'absence de stimulation par l'agoniste spécifique d'un récepteur bêta-adrénergique. De préférence, l'expression du gène codant UCP1 est 1,5 à 4 fois supérieure par rapport à celle obtenue en l'absence de stimulation par un agoniste d'un récepteur bêta- adrénergique. Avantageusement, l'agoniste spécifique d'un récepteur bêta-adrénergique est choisi parmi la dobutamine, la terbutaline, l'isoprotérénol et le composé CL316243, avantageusement le composé CL316243. Encore avantageusement, la concentration en agoniste spécifique d'un récepteur 20 bêta-adrénergique est comprise entre 1 nM et 1000 nM, avantageusement entre 1 nM et 500 nM, encore plus avantageusement entre 1 et 100 nM. La présente invention a également pour objet la lignée d'adipocytes bruns humains obtenue par le procédé de différenciation ou le procédé de conversion tel que 25 défini dans la présente invention. Selon un autre aspect, la présente invention a pour objet l'utilisation d'une lignée d'adipocytes bruns humains fonctionnelle selon la présente invention en tant que modèle pour identifier une molécule ou une combinaison de molécules susceptible de 30 moduler le poids corporel chez un sujet, avantageusement pour identifier une molécule ou une combinaison de molécules susceptible de traiter le surpoids et/ou l'obésité chez un sujet. Avantageusement, le sujet est un être humain. 11 Avantageusement, la présente invention a pour objet une méthode d'identification d'une molécule ou combinaison de molécules susceptible d'agir sur l'activité respiratoire d'une lignée d'adipocytes bruns et/ou de moduler le poids corporel d'un sujet, comprenant les étapes successives suivantes : - la mise en présence de la lignée d'adipocytes bruns humains fonctionnelle selon la présente invention avec ladite molécule ou combinaison de molécules, - la quantification de l'expression du gène codant UCP1 et/ou de la consommation d'oxygène et/ou de l'activité découplante de ladite lignée d'adipocytes bruns humains, et - l'identification de ladite molécule ou combinaison de molécules comme étant susceptible d'agir sur l'activité respiratoire d'une lignée d'adipocytes bruns et/ou de moduler le poids corporel d'un sujet lorsque l'expression du gène codant UCP1 et/ou la consommation d'oxygène et/ou l'activité découplante est significativement différente de celle obtenue en l'absence de ladite molécule. Selon un mode de réalisation avantageux, lorsque l'expression du gène codant UCP1 et/ou la consommation d'oxygène et/ou l'activité découplante est supérieure à celle obtenue en l'absence de la molécule ou combinaison de molécules, ladite molécule ou combinaison de molécules est susceptible d'augmenter l'activité respiratoire d'une lignée d'adipocytes bruns et/ou de traiter le surpoids et/ou l'obésité chez un sujet. Egalement avantageusement, la présente invention a pour objet une méthode d'identification d'une molécule ou combinaison de molécules susceptible de favoriser la formation d'adipocytes bruns humains et/ou de traiter le surpoids et/ou l'obésité chez un sujet, comprenant les étapes successives suivantes : - la mise en présence d'une lignée de cellules hMADS avec ladite molécule ou combinaison de molécules, - l'identification de ladite molécule ou combinaison de molécules comme étant susceptible de de favoriser la formation d'adipocytes bruns humains et/ou de traiter le surpoids et/ou l'obésité chez un sujet lorsque la lignée de cellules hMADS exprime le phénotype d'une lignée d'adipocytes bruns humains fonctionnelle selon la présente invention. 12 On entend par phénotype d'une lignée d'adipocytes bruns humains fonctionnelle selon la présente invention le fait que ladite lignée exprime simultanément les gènes codant les protéines UCP1, CIDEA, CPT1B, Bc12, Bax, PPAR alpha, PGC1 alpha, PGC1 bêta et PRDM16 comme décrit plus haut. Egalement, ladite lignée possède une activité respiratoire élevée. Ce phénotype peut être déterminé comme décrit ci-dessus (immunoempreinte, Northern-blot, RT-PCR quantitative, respiromètre, etc...). Encore avantageusement, la présente invention a pour objet une méthode d'identification d'une molécule ou combinaison de molécules susceptible de favoriser la formation d'adipocytes bruns humains et/ou de traiter le surpoids et/ou l'obésité chez un sujet, comprenant les étapes successives suivantes : - la mise en présence d'une lignée d'adipocytes blancs humains avec ladite molécule ou combinaison de molécules, - l'identification de ladite molécule ou combinaison de molécules comme étant susceptible de favoriser la formation d'adipocytes bruns humains et/ou de traiter le surpoids et/ou l'obésité chez un sujet lorsque la lignée d'adipocytes blancs humains exprime le phénotype d'une lignée d'adipocytes bruns humains selon la présente invention. La lignée d'adipocytes blancs humains est telle que définie ci-dessus. Les exemples et figures qui suivent permettent d'illustrer la présente invention sans pour autant en limiter la portée. FIGURES Figure 1 : Effet de la rosiglitazone sur la différenciation adipocytaire des cellules hMADS-2 30 La différenciation adipocytaire des cellules hMADS-2 a été menée selon le protocole décrit dans la partie � Matériels et Méthodes �. La rosiglitazone a été ajoutée aux concentrations et aux jours indiqués. Au jour 16 ont été réalisées, A) la fixation des 13 cellules et leur coloration par l'huile rouge (Oil red O), B) la mesure de l'activité GPDH, et C) la détermination par RT-PCR quantitative des niveaux d'ARNm PPARy. Les résultats représentent la moyenne � SD de trois expériences indépendantes réalisées avec différentes séries de cellules ; 100% correspondent (C) à la valeur obtenue au jour 16 en présence de 500 nM rosiglitazone. Figure 2 : Effet de l'exposition à long terme des cellules hMADS-2 à la rosiglitazone sur l'expression de marqueurs d'adipocytes bruns La différenciation des cellules hMADS-2 a été réalisée comme décrit dans la Figure 1. Au jour 16, les niveaux d'ARNm UCP1 (A), UCP2 (C), CIDEA (D) et CPT1B (E) ont été déterminés par RT-PCR quantitative. Les résultats représentent la moyenne �SD de trois expériences indépendantes réalisées avec différentes séries de cellules ; ils sont exprimés en prenant pour 100% la valeur obtenue en présence de 500 nM rosiglitazone. Les niveaux de la protéine UCP1 (B) ont été déterminés par immunoempreinte sur deux séries différentes de cellules en utilisant TBP comme standard interne endogène. Figure 3 : Expression des récepteurs (33-adrénergiques et stimulation de l'expression d'UCP1 en réponse aux agonistes (3-adrénergiques A) la différenciation adipocytaire des cellules hMADS-2 a été réalisée en présence de 100nM rosiglitazone aux jours indiqués et les niveaux d'ARNm déterminés au jour 17 par RT-PCR quantitative. (B,C) la différenciation a été obtenue en présence de 100nM rosiglitazone entre les jours 3 et 16, en l'absence ou en la présence durant les 6 dernières heures d'agonistes (3-adrénergiques aux concentrations indiquées. Les résultats représentent la moyenne � SD de trois (A) et deux (B) expériences indépendantes réalisées avec différentes séries de cellules ; ils sont exprimés en prenant pour 100% les valeurs obtenues soit lors du traitement entre les jours 3 et 9 (A) soit en l'absence d'agonistes (3-adrénergiques (B,C). 14 Figure 4 : L'induction d'un phénotype brun à partir d'adipocytes blancs dépend de l'activation de PPARy Dans un premier temps, les cellules hMADS-2 ont été différenciées en adipocytes blancs avec 100nM rosiglitazone présente entre les jours 3 et 9. Une fois éliminé, le ligand est rajouté ou pas au jour 14 pendant les jours suivants aux concentrations indiquées. Au jour 16, ont été déterminés les niveaux d'ARNm de l'UCPl, de CIDEA et de CPT1B par RT-PCR quantitative (A) et la quantité de protéine UCP1 a été déterminée par immunoempreinte après exposition entre les jours 14 et 16 aux ligands spécifiques des PPARs (B). Les résultats sont exprimés en facteur de stimulation en prenant pour 1 les valeurs obtenues au jour 16 après exposition à 100nM rosiglitazone entre les jours 3 et 9 ; les valeurs représentent les moyennes � SD de deux expériences indépendantes réalisées avec différentes séries de cellules. Figure 5 : Effet du traitement à long-terme par la rosiglitazone sur les activités respiratoire et découplante des adipocytes blancs et bruns Les cellules hMADS-2 ont été induites à se différencier en présence de 100nM rosiglitazone soit pendant les jours 3 et 9 pour obtenir des adipocytes blancs, soit pendant les jours 3 et 20 pour obtenir des adipocytes bruns, soit enfin pendant les jours 3-9 suivi des jours 16-20. Au jour 20, la consommation d'oxygène et le découplage de la phosphorylation oxydative ont été mesurés selon le protocole décrit dans � Matériels et Méthodes �. Les résultats représentent les moyennes � SD de trois expériences indépendantes réalisées avec différentes séries de cellules. *P Figure 6 : Expression génique de facteurs et co-facteurs transcriptionnels en fonction de l'acquisition d'un phénotype blanc ou brun La différenciation adipocytaire des cellules hMADS-2 a été réalisée en présence soit de rosiglitazone à 100nM (A) soit aux concentrations indiquées (B). Les niveaux d'ARNm PRDM16, PGC1a, PGC113 et PPARy ont été déterminés par RT-PCR quantitative au jour 16 (A) et au jour 17 (B). Les résultats représentent les moyennes � SD de trois expériences indépendantes réalisées avec différentes séries de cellules ; ils 15 sont exprimés en prenant pour 100% les valeurs obtenues en présence de 100nM (A) ou de 500nM rosiglitazone (B). Figure 7: Expression de gènes associés à l'apoptose en fonction de 5 l'acquisition d'un phénotype blanc ou brun La différenciation adipocytaire des cellules hMADS-2 a été réalisée en présence de 100nM rosiglitazone. Au jour 16, les niveaux d'ARNm Bc12 et Bax ont été déterminés par RT-PCR quantitative. Les résultats représentent les moyennes � SD de trois expériences indépendantes réalisées avec différentes séries de cellules ; ils sont 10 exprimés en prenant pour 100% les valeurs obtenues lors du traitement par la rosiglitazone entre les jours 3 et 9. * P Figure 8 : Effet de la rosiglitazone sur la différenciation adipocytaire des cellules hMADS-1 15 Les cellules hMADS-1 ont été différenciées selon le protocole décrit dans la Figure 1. L'exposition à la rosiglitazone a été réalisée aux concentrations et aux jours indiqués. Au jour 16, les cellules ont été fixées et colorées à l'huile rouge (Oil Red O) (A), l'activité GPDH a été déterminée (B) ainsi que les niveaux d'ARNm UCP1 et CIDEA par RT-PCR quantitative (C). Les résultats représentent les moyennes � SD de 20 deux expériences indépendantes réalisées avec différentes séries de cellules et sont exprimés (C) en prenant pour 100% la valeur obtenue en présence de 100nM rosiglitazone au jour 16. EXEMPLES 25 Abréviations : cellules hMADS ("human multipotent adipose-derived stem cells"), cellules souches humaines multipotentes dérivées du tissu adipeux ; WAT (� white adipose tissue �), tissu adipeux blanc ; BAT (� brown adipose tissue �), tissu adipeux brun ; PPAR (� peroxisome proliferator-activated receptor �), récepteur activé par les 30 inducteurs de la prolifération des peroxysomes ; PPRE (� peroxisome proliferator- responsive element �), élément de réponse des inducteurs de la prolifération des peroxysomes ; UCP1 (� uncoupling protein 1 �), protéine découplante 1 ; UCP2 (� 16 uncoupling protein 2 �), protéine découplante 2 ; PGC-la (13) (� PPARy co-activator a(13) �), co-activateur a (13) du récepteur nucléaire PPAR gamma; CtBP-1 (� C-terminal-binding protein-1 �), protéine 1 de liaison C-terminale; AR (� adrenergic receptor �), récepteur adrénergique; CIDEA (� cell death-inducing DFF45-like effector A �), effecteur A de type DFF-45 induisant la mort cellulaire ; NAIP (� neuronal apoptosis inhibitory protein �), protéine d'inhibition de l'apoptose neuronale ; CTP-lB (� carnitine palmitoyltransferase-1B �), carnitine palmitoyltransférase-1B ; PKA (� protein kinase A �), protéine kinase A ; T3, 3,5,3'-tri-iodothyronine; TBP (� TATA-box binding protein �), protéine de liaison à la boîte TATA ; PRDM16 (� PR-domain zinc finger protein 16 �), protéine 16 contenant un domaine PR en doigt de zinc; Bax (� Bc1-2-associated X protein �), protéine X associée à Bd-2; Bd-2 (� B-cell CLL/lymphoma-2 �), lymphome-2/CLL à cellules B. 1. Matériels et Méthodes Culture cellulaire : L'établissement comme la caractérisation de la multipotence et de l'auto-renouvellement des cellules hMADS ont été décrits (Rodriguez, A.M., et al., Biochem Biophys Res Commun, 2004. 315(2): p. 255-63 ; Rodriguez, A.M., et al., J Exp Med, 2005. 201(9): p. 1397-405 ; Zaragosi, L.E. et al, Stem Cells, 2006. 24(11): p. 2412-9 ; Elabd, C., et al., Biochem Biophys Res Commun, 2007. 361(2): p. 342-8). Les cellules de la lignée hMADS-2 ont été établies à partir de tissu adipeux provenant de la région pubique d'un donneur âgé de 5 ans ; elles ont été utilisées entre les passages 16 à 35 (35 à 100 doublements de la population cellulaire). Les cellules ont été ensemencées à une densité de 4,500 cellules/cm2 dans un milieu DMEM (Dulbecco's modified Eagle's medium) enrichi par 10% de sérum de veau fétal, 2,5ng /ml hFGF2, 60�g/ml pénicilline et 50�g/ml streptomycine. Après un changement de milieu tous les deux jours, lorsque les cellules arrivent à confluence, hFGF2 est éliminé et les cellules induites à se différencier deux jours après, définissant le jour 0 de différenciation. Le milieu de différenciation adipocytaire est constitué de DMEM/H12 (1/1 :v/v) enrichi en 10�g/ml transferrine, 0 ,85�M insuline, 0,2nM T3, 11.tM dexamethasone (DEX) et 500�M isobutylmethylxanthine (IBMX). Trois jours plus tard, le milieu est changé (DEX et IBMX omis) et la rosiglitazone ajoutée aux concentrations et aux jours 17 indiqués. Le milieu est ensuite changé tous les deux jours avant utilisation des cellules. La détermination de l'activité glycérol-3 phosphate deshydrogénase (GPDH) et de la coloration des lipides par l'huile rouge (Oil Red O) ont été précédemment décrites (Negrel, R. et al, Proc Natl Acad Sci U S A, 1978. 75(12): p. 6054-8 ; Bezy, O., et al., J Biol Chem, 2005. 280(12): p. 11432-8). Purification et analyse des ARNs : L'extraction des ARNs, l'utilisation de la transcriptase inverse et la détermination des niveaux d'ARNm par RT-PCR quantitative en temps réel ont été décrites (Zaragosi, L.E. et al, Stem Cells, 2006. 24(11): p. 2412-9 ; Elabd, C., et al., Biochem Biophys Res Commun, 2007. 361(2): p. 342-8 ; Bezy, O., et al., J Biol Chem, 2005. 280(12): p. 11432-8). L'expression des gènes d'intérêt a été normalisée par rapport à celle du gène TBP et quantifiée à l'aide de la méthode comparative ACt. Les séquences des amorces oligonucléotidiques, obtenues à l'aide du Primer Express Software (Perkin Elmer Life Sciences), sont décrites dans le Tableau 1 ci-après. Tableau 1 : Séquence des amorces oligonucléotidiques pour l'analyse de l'expression génique Amorce sens Amorce anti-sens N° d'accession FABP4 TGTGCAGAAATGGGATGGAAA CAACGTCCCTTGGCTTATGCT NM 001442 SEQ ID N° 1 SEQ ID N°2 - UCP 1 GTGTGCCCAACTGTGCAATG CCAGGATCCAAGTCGCAAGA NM 021833 SEQ ID N°3 SEQ ID N°4 - UCP 2 GGCCTCACCGTGAGACCTTAC TGGCCTTGAACCCAACCAT NM 003355 SEQ ID N°5 SEQ ID N°6 - PPARy AGCCTCATGAAGAGCCTTCCA TCCGGAAGAAACCCTTGCA NM 005037 SEQ ID N°7 SEQ ID N°8 PPARa GGCGAACGATTCGACTCAAG TCCAAAACGAATCGCGTTGT NM 032644 SEQ ID N°9 SEQ ID N°10 - PGC la CTGTGTCACCACCCAAATCCTTAT TGTGTCGAGAAAAGGACCTTGA NM 013261 SEQ IDN°11 SEQ ID N°12 - PGC lb GCGAGAAGTACGGCTTCATCAC CAGCGCCCTTTGTCAAAGAG NM 133263 SEQ ID N° 13 SEQ ID N° 14 - PRDM16 GAAACTTTATTGCCAATAGTGAGATGA CCGTCCACGATCTGCATGT NM 022114 SEQ ID N° 15 SEQ ID N° 16 - R3 -AR GCCTTCGCCTCCAACATG AGCATCACGAGAAGAGGAAGGT NM 000025 SEQ ID N°17 SEQ ID N°18 CIDEA GGCAGGTTCACGTGTGGATA GAAACACAGTGTTTGGCTCAAGA NM 001279 SEQ ID N° 19 SEQ ID N°20 - CPT1B AAACAGTGCCAGGCGGTC CGTCTGCCAACGCCTTG NM 152246 SEQ ID N°21 SEQ ID N°22 18 Bax TGCCTCAGGATGCGTCCACCAA CGGCAATCATCCTCTGCAGCTCCAT NM 004324 SEQ ID N°23 SEQ ID N°24 ù Bd-2 GCCCCCGTTGCTTTTCC CCGGTTATCGTACCCTGTTCTC NM 000657 SEQ ID N°25 SEQ ID N°26 ù TBP CACGAACCACGGCACTGATT TTTTCTTGCTGCCAGTCTGGAC NM 003194 SEQ ID N°27 SEQ ID N°28 Analyse par immunoempreinte : Les lysats cellulaires totaux sont analysés par immunoempreinte comme décrit précédemment (Bezy, O., et al., J Biol Chem, 2005. 280(12): p. 11432-8). Les anticorps primaires obtenus chez le lapin anti-UCP1 humain et anti-TBP sont des produits de Santa-Cruz (Sant-Cruz, USA) et les anticorps secondaires (conjugués à la peroxydase de raifort) des produits de Promega (Charbonnières, France). Le système � Enhanced ChemiLuminescence � (Millipore, Saint-Quentin-Yvelines, France) a été utilisé pour la détection. Détermination de la consommation d'oxygène : La consommation d'oxygène a été mesurée à l'aide d'un respiromètre à 2 chambres d'injection équipé d'un thermostat Peltier, d'électrodes de type Clark et d'agitateurs magnétiques intégrés (Oxygraphe Oroboros, Insbriick, Autriche). Les mesures ont été faites à 37°C avec une agitation permanente dans un volume de 2m1 de milieu DMEM/F12 (1/1 : v/v) contenant 10% de sérum de veau foetal. Avant chaque mesure, le milieu présent dans les chambres a été équilibré avec l'air pendant 30min, puis les cellules fraîchement trypsinées transférées dans ce milieu. Après avoir atteint un état respiratoire stationnaire, l'ATP synthase a été inhibée à l'aide d'oligomycine (0,25-0,5mg/1) et l'activité respiratoire des cellules titrée en présence de l'agent découplant carbonyl cyanide 3-chlorophénylhydrazone (CCCP) aux concentrations optimales de 1-2�M. La chaîne respiratoire a été bloquée par 1�g/ml d'Antimycine A. La consommation d'oxygène a été calculée à l'aide du logiciel DataGraph (Oroboros Software). L'activité respiratoire basale correspond à la consommation d'oxygène sensible à l'Antimycine A. Analyse statistique : Les données sont exprimées en valeurs moyennes � SD et sont analysées par le test t de Student. Les différences sont considérées comme significatives pour P 0,05. 19 II. Résultats L'UCP1 et les marqueurs adipocytaires bruns sont exprimés au cours de la différenciation des cellules hMADS Comme décrit précédemment (Rodriguez, A.M., et al., Biochem Biophys Res Commun, 2004. 315(2): p. 255-63), l'activation de PPARy est nécessaire à la différenciation adipocytaire des cellules hMADS-2 (Fig.lA). Le traitement des cellules pendant 6 jours par des concentrations croissantes de rosiglitazone, entre les jours 3 et 9, conduit à une accumulation lipidique et à l'expression des gènes GPDH et PPARy. Un traitement d'une semaine supplémentaire n'apporte pas de changements dans l'expression des gènes GPDH et PPARy. Au jour 16, 20nM rosiglitazone suffisent à induire une réponse maximale, en accord avec l'affinité de PPARy pour ce ligand (Fig.lA-C). L'ensemble des résultats souligne qu'une exposition de 6 jours des cellules hMADS-2 à la rosiglitazone permet l'expression maximale des marqueurs-clefs des adipocytes blancs. Par contre, une telle exposition entre les jours 3 et 9 ne conduit qu'à une très faible expression de l'ARNm et de la protéine UCP1. Toutefois une exposition à 20nM entre les jours 3 et 16 entraîne leur forte expression (Fig.2A,B). A l'inverse de l'UCPl, une forte expression de l'ARNm UCP2 est déjà observée au jour 9 ; elle est augmentée par une exposition plus longue (Fig.2C) et la protéine UCP2 est alors détectée (B. Miroux et C. Ricquier, communication personnelle). Ces résultats suggèrent que la durée du traitement par la rosiglitazone permet de moduler l'expression du gène UCP1. De même, l'expression du gène CIDEA, rapportée comme étroitement associée à celle de l'UCPl, est augmentée (Fig.2D) (Zhou, Z., et al., Nat Genet, 2003. 35(1): p. 49-56). Comparés aux adipocytes blancs, les adipocytes bruns présentent une mitochondriogénèse très importante (Wilson-Fritch, L., et al., J Clin Invest, 2004. 114(9): p. 1281-9). Effectivement, le contenu en ARNm codant pour la carnitine palmitoyltransférase mitochondriale (CPT1B) est fortement accru lorsque les cellules hMADS-2 basculent du phénotype blanc au phénotype brun (Fig.2E). Fait inattendu, les niveaux de PPARa, PGC-la, PGC-1(3 et PRDM16 sont similaires chez les adipocytes exprimant les phénotypes blanc ou brun (Fig. 6). On sait que les adipocytes bruns de rongeurs sont plus susceptibles à l'apoptose que les adipocytes blancs in vitro comme in vivo. Ces adipocytes expriment à la fois la protéine anti-apoptotique Bd-2 et la protéine 20 20 pro-apoptotique Bax (Briscini et al., FEBS Lett 1998. 431, 80-84; Lindquist and Rehnmark, J Biol Chem1998. 273, 30147-30156; Nisoli et al., Cell Death Differ 2006. 13, 2154-2156). Contrairement au cas des rongeurs, les adipocytes blancs humains présentent une susceptibilité importante à l'apoptose qui paraît être liée à la faible expression des gènes anti-apoptotiques Bd-2 et NAIP (Papineau et al., Metabolism 2003. 52, 987-992). Fait inattendu, le passage des cellules hMADS du phénotype blanc au phénotype brun s'accompagne d'une augmentation de l'expression du gène antiapoptotique Bd-2 et d'une diminution de celle du gène pro-apoptotique Bax, le rapport Bc1-2/Bax passant de 1 à 3,7 (Figure 7) impliquant, selon les espèces, un patron d'expression différent des gènes associés à l'apoptose. Dans la mesure où l'UCPl (Fig.2), le récepteur (33-adrénergique (Fig.3A) et le récepteur (32-AR (résultat non montré) sont exprimés lorsque les cellules hMADS-2 sont exposées à la rosiglitazone entre les jours 3 et 16, la réponse fonctionnelle aux (3-agonistes a été analysée. Comme l'indiquent les Figs.3B et 3C, l'expression de l'ARNm UCP1 et celle de la protéine UCP1 sont significativement augmentées après une stimulation pendant 6h par l'isoprotérénol, un pan-agoniste des récepteurs (3, et par le composé CL316243, un agoniste 133 sélectif, pour des concentrations de 10 à 100nM. En résumé, une activation chronique prolongée de PPARy entraîne l'expression d'UCPl et l'acquisition d'une réponse fonctionnelle aux agonistes R. La régulation de l'expression d'UCP1 se produit dans les cellules hMADS préalablement différenciées en adipocytes blancs Les expériences précédentes ne permettent pas de savoir si un traitement à long terme des cellules hMADS est nécessaire pour l'acquisition d'un phénotype brun, ou si une brève exposition à la rosiglitazone des cellules hMADS déjà différenciées en adipocytes blancs permet leur transdifférenciation. Dans ce but, les cellules hMADS-2 ont préalablement été exposées à la rosiglitazone entre les jours 3 et 9, le ligand éliminé puis rajouté entre les jours 14 et 16. Les résultats montrent que ce traitement de deux jours des adipocytes blancs suffit à stimuler l'expression des gènes UCP1, CIDEA et CPT1B (Fig.4A). Cet effet est spécifique à PPARy, l'activation de PPAR(3/6 et de PPARa par les ligands spécifiques Wy14643 et L165041, respectivement, n'induisant pas l'expression de la protéine UCP1. Le remplacement de la rosiglitazone par des 21 acides gras polyinsaturés en tant qu'activateurs/ligands des PPARs (acides arachidonique, eicosapentaénoïque et docosahexaénoïque présents à 10�M) se révèle sans effet sur l'expression du gène UCP1 (résultats non montrés). L'ensemble de ces observations démontre qu'une activation spécifique de PPARy pendant une brève période est suffisante pour que les adipocytes blancs acquièrent un phénotype d'adipocytes bruns. Les effets de la rosiglitazone sur l'expression d'UCPl ne sont pas restreints aux cellules hMADS-2 ; ils sont également observés avec les cellules hMADS-1 et hMADS-3 (Rodriguez, A.M., et al., J Exp Med, 2005. 201(9): p. 1397-405), qui avaient été établies respectivement à partir du tissu adipeux de la région ombilicale d'une donneuse de 31 mois et de tissu adipeux pré-pubique d'un donneur de 4 mois (Fig. 8 et résultats non montrés). Consommation d'oxygène et découplage respiratoire des cellules hMADS différenciées en adipocytes blancs et bruns Une caractéristique majeure des adipocytes bruns est une activité respiratoire intense et un découplage important de la phosphorylation oxydative. La consommation d'oxygène, déterminée à l'aide d'une électrode oxygéno-sensible (Cannon, B. et J. Nedergaard, Physiol Rev, 2004. 84(1): p. 277-359) a permis de mesurer les vitesses relatives de respiration. Les résultats montrent l'effet important d'un traitement à long- terme par la rosiglitazone sur les activités respiratoire totale et découplée. Après 20 jours d'exposition chronique qui permettent l'acquisition du phénotype brun, comparés aux valeurs obtenues avec les cellules hMADS-2 exposées entre les jours 3 et 9 et exprimant le phénotype blanc, ces deux activités sont augmentées de 3 fois et 2,5 fois, respectivement (Fig.5). Lorsque les cellules hMADS-2 sont prélablement différenciées en adipocytes blancs, puis traitées ultérieurement entre les jours 16 et 20 par la rosiglitazone, l'augmentation des activités respiratoire totale et découplée est moindre mais reste très notable. Ces résultats montrent que l'acquisition du phénotype brun par les cellules hMADS-2 s'accompagne comme attendu d'une augmentation de la consommation d'oxygène et de l'activité découplante via UCP1, démontrant que les adipocytes bruns obtenus à partir des cellules hMADS sont fonctionnels. 22 III. Discussion La technique par émission de positrons à l'aide du fluorodeoxyglucose a permis de démontrer récemment, chez l'homme adulte sain, la présence de tissu adipeux brun actif dans les sites distincts du tissu adipeux blanc (Nedergaard, J., T. et al, Am J Physiol Endocrinol Metab, 2007. 293(2): p. E444-52). Ainsi, contrairement au consensus qui a prévalu au cours des dernières décennies, ces observations importantes suggèrent la possibilité de stimuler l'activité métabolique du BAT afin de moduler les dépenses énergétiques chez l'homme. En effet, le tissu adipeux brun joue chez les rongeurs un rôle important dans la thermogénèse adaptative, son ablation par transgénèse conduisant à l'obésité et un dysfonctionnement étant observé chez les rongeurs obèses (Cannon, B. et J. Nedergaard, Physiol Rev, 2004. 84(1): p. 277-359 ; Lowell, B.B., et al., Nature, 1993. 366(6457): p. 740-2), alors que chez l'homme le rôle du BAT reste controversé (Cinti, S., Nutr Metab Cardiovasc Dis, 2006. 16(8): p. 569-74). Sur le plan pharmacologique, prenant en compte l'ensemble de ces observations, le développement d'un modèle d'adipocytes bruns humains devrait donc se révéler de première importance. Nos résultats montrent pour la première fois que des cellules souches multipotentes humaines, établies à partir de tissu adipeux de jeunes donneurs et déjà connues pour se différencier en adipocytes blancs (Rodriguez, A.M., et al., Biochem Biophys Res Commun, 2004. 315(2): p. 255-63 ; Rodriguez, A.M., et al., J Exp Med, 2005. 201(9): p. 1397-405), sont également capables de donner naissance à des adipocytes bruns. Sur le plan biologique, nos résultats permettent d'avancer l'hypothèse selon laquelle les cellules hMADS sont des cellules souches immatures dont le lignage se situerait en amont des lignages blanc et brun. Une fois engagées dans le lignage brun, les cellules hMADS présentent toutes les caractéristiques des adipocytes bruns de rongeurs ; elles expriment les gènes UCP1, CIDEA, PGC-la, PGC-113 et PRDM16 ainsi que les trois membres de la famille des PPARs. Fait crucial, l'acquisition du phénotype brun s'accompagne d'une augmentation importante des activités respiratoires et découplante. La modulation positive de l'expression d'UCPl par l'isoprotérénol et par le composé CL316243 démontre que la voie de signalisation générée par les 23 23 récepteurs P, en particulier les récepteurs 133, est également fonctionnelle dans ces cellules. Jusqu'à ce jour, la présence et le rôle des récepteurs (33-adrénergiques chez l'homme est restée controversée (Lafontan, M. et M. Berlan, Trends Pharmacol Sci, 2003. 24(6): p. 276-83). Ainsi les adipocytes bruns des jeunes babouins expriment faiblement ces récepteurs mais aucune lipolyse n'est observée en réponse à quatre agonistes (33-adrénergiques (Viguerie-Bascands, N., et al., J Clin Endocrinol Metab, 1996. 81(1): p. 368-75). Par ailleurs, des adipocytes bruns humains immortalisés par transgénèse et exprimant des récepteurs (33-adrénergiques ne montrent qu'une faible activité lipolytique en réponse au CGP12177A, un agoniste partiel 133, et ces récepteurs n'apparaissent que faiblement couplés à l'adénylate cyclase (Zilberfarb, V., et al., J Cell Sci, 1997. 110 (Pt 7): p. 801-7 ; Jockers, R., et al., Endocrinology, 1998. 139(6): p. 2676-84). Dans les deux cas, aucune stimulation de l'expression d'UCPl et aucune activité respiratoire découplante n'avaient été rapportées en réponse à un agoniste spécifique 133, contrairement aux résultats de nos travaux. La rosiglitazone appartient à la famille des thiazolidinediones, une classe de molécules insulino-sensibilisantes utilisées dans le traitement du diabète de type 2 (Olefsky, J.M. et A.R. Saltiel, Trends Endocrinol Metab, 2000. 11(9): p. 362-8). Elle promeut la différenciation adipocytaire terminale en activant spécifiquement PPARy (Rodriguez, A.M., et al., Biochem Biophys Res Commun, 2004. 315(2): p. 255-63 ; Tai, T.A., et al., J Biol Chem, 1996. 271(47): p. 29909-14 ; Forman, B.M., et al., Cell, 1995. 83(5): p. 803-12). L'activation de PPARy se produit dans les préadipocytes blancs comme dans les préadipocytes bruns et conduit à leur différenciation en adipocytes blancs et bruns, respectivement (Nedergaard, J., et al., Biochim Biophys Acta, 2005. 1740(2): p. 293-304 ; Petrovic, N. et al., Am J Physiol Endocrinol Metab, (May 20, 2008). doi:10.1152/ajpendo.00035.2008). Fait notable, malgré la présence de rosiglitazone et malgré le fait que l'activation de la voie PKA par le � cocktail � DEX/IBMX se révèle indispensable pendant les trois premiers jours de la différenciation, cet effet stimulateur se révèle insuffisant et seule une différenciation en adipocytes blancs se produit. Après élimination de DEX/IBMX du milieu de culture, il est frappant de constater que l'acquisition d'un phénotype 24 d'adipocyte brun par les cellules hMADS ne dépend plus alors que de la durée d'activation de PPARy par la rosiglitazone alors même que PGC-la, PGC-1(3 et PRDM16 sont déjà pleinement exprimés dans les cellules exprimant le phénotype blanc. On sait que chez la souris, PRDM16 induit dans les adipocytes blancs l'expression d'UCPl cependant que l'activation de PPARy est nécessaire à l'expression de CIDEA et des composants mitochondriaux (Seale, P., et al., Cell Metab, 2007. 6(1): p. 38-54). Nos résultats sont en accord avec ces observations et avec la présence d'un élément de réponse aux PPARs dans le promoteur du gène CIDEA (Viswakarma, N., et al., J Biol Chem, 2007. 282(25): p. 18613-24). Toutefois il n'est pas exclu que, outre l'expression de PRDM16, PGC-la et PGC-1(3, une exposition prolongée à la rosiglitazone n'induise d'autres évènements moléculaires qui seraient également nécessaires à la pleine acquisition d'un phénotype brun. Une analyse transcriptomique différentielle entre cellules hMADS traitées brièvement ou longuement à la rosiglitazone devrait apporter des éléments de réponse à cette hypothèse. La rosiglitazone, tout en normalisant la glycémie et l'insulinémie, entraîne une augmentation du poids corporel chez l'animal comme chez de nombreux patients (Carmona, M.C., et al., Int J Obes (Lond), 2005. 29(7): p. 864-71 ; Goldberg, R.B., Curr Opin Lipidol, 2007. 18(4): p. 435-42 ; Home, P.D., et al., Diabet Med, 2007. 24(6): p. 626-34 ; Joosen, A.M., et al., Diabetes Metab Res Rev, 2006. 22(3): p. 204-10). Nos résultats n'excluent pas la possibilité que, chez l'homme, elle puisse également ûbien que de manière insuffisante- augmenter l'activité du BAT observé dans une proportion importante d'individus sains (Nedergaard, J. et al, Am J Physiol Endocrinol Metab, 2007. 293(2): p. E444-52). La contribution du BAT aux dépenses énergétiques, dans le cas de la thermogénèse non-frissonante ou induite par un régime hypercalorique, est bien établie chez les rongeurs. Chez l'homme, les différences de gain de poids observées entre individus paraissent liées aux différences dans leur capacité à augmenter les dépenses énergétiques en réponse aux ingesta (Lowell, B.B. et E.S. Bachman, J Biol Chem, 2003. 278(32): p. 29385-8). Si cette observation était liée à des capacités différentes entre individus à augmenter la masse et/ou l'activité du BAT, notre modèle d'adipocytes bruns humains devrait permettre le criblage de molécules capables d'augmenter la formation et les fonctions du BAT, en particulier en stimulant l'expression de PRDM16 25 5 et les capacités respiratoire et découplante des cellules. Parmi les possibilités, une augmentation de l'expression d'UCPl pourrait être envisagée grâce à la double activation de la voie PKA via les récepteurs 13-adrénergiques et via le récepteur TGR5 activé par les sels biliaires (Watanabe, M., et al., Nature, 2006. 439(7075): p. 484-9). 26 REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES Ailhaud, G., Grimaldi, P., and Negrel, R. (1992). 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Lignée d'adipocytes bruns humains selon la revendication 1, dans laquelle l'expression du gène codant UCP1 est augmentée après stimulation par un agoniste d'un récepteur bêta-adrénergique, avantageusement après stimulation par un agoniste du récepteur bêta3-adrénergique. 3. Procédé de différenciation d'une lignée de cellules souches adultes multipotentes issues du tissu adipeux humain (cellules hMADS) en une lignée d'adipocytes bruns humains fonctionnelle telle que définie dans la revendication 1 ou 2, comprenant la stimulation desdites cellules hMADS par un agoniste spécifique du récepteur PPAR gamma, cette stimulation étant effectuée : - soit pendant une période d'une durée comprise entre 10 et 30 jours, - soit (i) pendant une première période de différenciation des cellules hMADS en adipocytes blancs d'une durée comprise entre 2 et 9 jours, (ii) ladite première période étant suivie d'une seconde période d'une durée comprise entre 2 et 10 jours au cours de laquelle la stimulation est stoppée, (iii) ladite seconde période étant suivie d'une troisième période de stimulation d'une durée comprise entre 1 et 10 jours. 33 4. Procédé de différenciation selon la revendication 3, dans lequel l'agoniste spécifique du récepteur PPAR gamma est une thiazolinedione, laquelle thiazolinedione est avantageusement choisie dans le groupe constitué par la rosiglitazone, la ciglitazone, la pioglitazone, la darglitazone et la troglitazone. 5. Procédé de différenciation selon la revendication 4, dans lequel la concentration en agoniste spécifique du récepteur PPAR gamma est comprise entre 5 nM et 1 000 nM lorsque l'agoniste est la rosiglitazone, entre 0,2 �M et 10 �M lorsque l'agoniste est la pioglitazone, entre 0,5 �M et 20 �M lorsque l'agoniste est la ciglitazone, entre 0,2 et 20 �M lorsque l'agoniste est la darglitazone et entre 0,2 et 10 �M lorsque l'agoniste est la troglitazone. 6. Procédé de différenciation selon l'une des revendications 3 à 5, comprenant en outre la vérification de la fonctionnalité de la lignée d'adipocytes bruns humains obtenue après différenciation de la lignée de cellules hMADS, ladite vérification comprenant les étapes successives suivantes : - la stimulation de ladite lignée d'adipocytes bruns humains par un agoniste spécifique d'un récepteur bêta-adrénergique, avantageusement par un agoniste spécifique du récepteur bêta3-adrénergique, - la quantification de l'expression du gène codant UCP1, et - la vérification que ladite lignée est fonctionnelle lorsque l'expression du gène codant UCP1 est augmentée par rapport à celle obtenue en l'absence de stimulation par l'agoniste spécifique d'un récepteur bêta-adrénergique. 7. Procédé de différenciation selon la revendication 6, dans lequel l'agoniste spécifique d'un récepteur bêta-adrénergique est choisi parmi l'isoprotérénol, la dobutamine, la terbutaline et le composé CL316243, avantageusement le composé CL316243. 8. Procédé de différenciation selon la revendication 6 ou 7, dans lequel la concentration en agoniste spécifique d'un récepteur bêta-adrénergique est comprise entre 1 nM et 1000 nM. 34 9. Procédé de conversion d'une lignée d'adipocytes blancs humains en une lignée d'adipocytes bruns humains fonctionnelle telle que définie dans la revendication 1 ou 2, comprenant la stimulation de ladite lignée d'adipocytes blancs humains par un agoniste spécifique du PPAR gamma pendant une durée comprise entre 1 et 10 jours. 10. Procédé de conversion selon la revendication 9, dans lequel l'agoniste spécifique du récepteur PPAR gamma est une thiazolinedione, laquelle thiazolinedione est avantageusement choisie dans le groupe constitué par la rosiglitazone, la ciglitazone, la pioglitazone, la darglitazone et la troglitazone 11. Procédé de conversion selon la revendication 10, dans lequel la concentration en agoniste spécifique du récepteur PPAR gamma est comprise entre 5 nM et 1 000 nM lorsque l'agoniste est la rosiglitazone, entre 0,2 �M et 10 �M lorsque l'agoniste est la pioglitazone, entre 0,5 �M et 20 �M lorsque l'agoniste est la ciglitazone, entre 0,2 et 20 �M lorsque l'agoniste est la darglitazone et entre 0,2 et 10 �M lorsque l'agoniste est la troglitazone. 12. Procédé de conversion selon l'une des revendications 9 à 11, comprenant en outre la vérification de la fonctionnalité de la lignée d'adipocytes bruns humains obtenue après conversion de la lignée d'adipocytes blancs humains, ladite vérification comprenant les étapes successives suivantes : - la stimulation de ladite lignée d'adipocytes bruns humains par un agoniste spécifique d'un récepteur bêta-adrénergique, avantageusement par un 25 agoniste spécifique du récepteur bêta3-adrénergique, - la quantification de l'expression du gène codant UCP1, et - la vérification que ladite lignée est fonctionnelle lorsque l'expression du gène codant UCP1 est augmentée par rapport à celle obtenue en l'absence de stimulation par l'agoniste spécifique d'un récepteur bêta-adrénergique. 30 13. Procédé de conversion selon la revendication 12, dans lequel l'agoniste spécifique d'un récepteur bêta-adrénergique est choisi parmi l'isoprotérénol, la 35dobutamine, la terbutaline et le composé CL 316243, avantageusement le composé CL 316243. 14. Procédé de conversion selon la revendication 12 ou 13, dans lequel la concentration en agoniste spécifique d'un récepteur bêta-adrénergique est comprise entre 1 nM et 1000 nM. 15. Utilisation d'une lignée d'adipocytes bruns humains fonctionnelle selon la revendication 1 ou 2 en tant que modèle pour identifier une molécule ou une combinaison de molécules susceptible de moduler le poids corporel chez un sujet, avantageusement pour identifier une molécule ou une combinaison de molécules susceptible de traiter le surpoids et/ou l'obésité chez un sujet. 36