FR 2938338 A1 20100514 FR 0857709 A 20081113 L'invention concerne l'identification et l'utilisation de composés modulateurs de l'acétylcoenzyme A acyltransférase 1 (ACAA1) ou de l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 2 (ACAA2) pour le traitement de l'acné, d'une dermatite séborrhéique, ainsi que des désordres cutanés associés à une hyperséborrhée. Elle concerne aussi des méthodes de diagnostic in vitro ou pronostic in vitro de ces pathologies. Une peau grasse hyperséborrhéique est caractérisée par une sécrétion et une excrétion exagérées de sébum. Classiquement, un taux de sébum supérieur à 200�g/cm2 mesuré au niveau du front est considéré comme caractéristique d'une peau grasse. Une peau grasse est souvent associée à un défaut de desquamation, un teint luisant, un grain de peau épais. En plus de ces désordres esthétiques, l'excès de sébum peut servir de support au développement anarchique de la flore bactérienne saprophyte (P. acnes en particulier), et provoquer l'apparition de comédons et/ou de lésions acnéiques. Cette stimulation de la production de glandes sébacées est induite par les androgènes. L'acné est, de fait, une maladie chronique du follicule pilosébacé sous dépendance hormonale. Une thérapie hormonale contre l'acné est une possibilité de traitement pour les femmes, le but étant de s'opposer aux effets des androgènes sur la glande sébacée. Dans ce cadre on utilise généralement des oestrogènes, des anti-androgènes, ou des agents diminuant la production d'androgènes par les ovaires ou la glande surrénale. Les anti-androgènes utilisés pour le traitement de l'acné incluent notamment la spironolactone, l'acétate de cyprotérone, et le flutamide. Cependant, ces agents présentent des effets secondaires potentiellement sévères. Ainsi, toute grossesse doit être absolument empêchée, du fait notamment d'un risque de féminisation pour le foetus mâle. Ces agents sont prohibés chez les patients masculins. La dermite séborrhéique est une dermatose inflammatoire cutanée fréquente se présentant sous la forme de plaques rouges, recouvertes de squames grasses et jaunâtres, plus ou moins prurigineuses, prédominantes dans les zones séborrhéiques. Il existe pour ces maladies un besoin d'identifier des médiateurs en aval de l'action des hormones stéroïdiennes, et de les moduler, pour obtenir un profil thérapeutique similaire, mais avec des effets secondaires réduits. La demanderesse a maintenant découvert que les gènes codant pour l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 (ACAA1) ou pour l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 2 (ACAA2) étaient exprimés préférentiellement dans les glandes sébacées humaines en comparaison avec l'épiderme, et que leur expression était régulée in vitro par un cocktail favorisant la différenciation de précurseurs de sébocytes, contenant un androgène (R1881 encore appelé methyltrienolone à 1 nM) et un ligand PPARy (Rosiglitazone, qui est l'acide 6-(2-Methoxy-ethoxymethoxy)-naphthalene-2-carboxylique [4'-(2,4-dioxothiazolidin-5-ylmethyl)-biphenyl-3-ylmethyl]-methyl-amide, 100 nM), dans une culture primaire de sébocytes humains. Elle propose dès lors de cibler les gènes ACAA1 ou ACAA2 ou leur produit d'expression, pour prévenir et/ou améliorer l'acné, la dermatite séborrhéique ou les désordres cutanés associés à une hyperséborrhée, notamment l'aspect de peau grasse. La demanderesse démontre également que ces cibles sont présentes dans un modèle de pharmacologie animale (rat Fuzzy), modèle pertinent pour la pathologie acné et les hyperseborrhéee (Ye et al, 1997, Skin Pharmacol, 10(5-6) :288-97). 15 Il est par ailleurs connu que le traitement par un agoniste PPAR induit une forte diminution de la taille des glandes sébacées, et une réduction de l'hyperseborrhée induite par un androgène (WO2007/093747). Comme les cibles proposées sont en aval du récepteur PPAR, ce sont elles qui sont 20 responsables des effets observés au niveau des glandes sébacées et de l'excrétion en sébum. Ainsi les gènes identifiés, qui agissent en aval du récepteur PPAR, peuvent servir pour identifier les composés les plus actifs en tant que modulateurs PPAR, les classer, et les 25 sélectionner. Sur cette base, il est donc également proposé une utilisation des gènes ACAA1 ou ACAA2 ou de leur protéine ACAA1 ou ACAA2 comme marqueurs pour cribler des modulateurs PPAR candidats pour le traitement de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou des désordres cutanés associés à une hyperséborrhée. Plus précisément, on peut déterminer la capacité d'un modulateur PPAR à moduler 30 l'expression ou l'activité d'ACAAl ou d'ACAA2 ou l'expression de leur gène ou l'activité d'au moins un de leurs promoteurs. Par acné, on entend toutes les formes d'acné, à savoir notamment les acnés vulgaires, comédoniennes, polymorphes, les acnés nodulokystiques, conglobata, ou encore les 35 acnés secondaires telles que l'acné solaire, médicamenteuse ou professionnelle. La demanderesse propose également des méthodes de diagnostic ou pronostic in vitro, in10 vivo et clinique basées sur la détection du niveau d'expression ou d'activité d'ACAAl ou d'ACAA2. ACAA1 L'enzyme ACAA1 désigne l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 1, encore appelée oxoacyl-CoA thiolase mitochondriale 1 3-ketoacyl-CoA thiolase, peroxisomal precursor (EC 2.3.1.16) (Beta-ketothiolase) (Acetyl-CoA acyltransferase) (Peroxisomal 3-oxoacyl-CoA thiolase). Le gène de l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 a été identifié par Bout et al (1991, Biochim Biophys Acta, 1090(1):43-51) et code pour une enzyme clivant le 3-ketoacyl CoA en acétyl CoA et en Acyl CoA au cours du cycle de béta oxydation des acides gras se déroulant dans le peroxysome. Le gène codant l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 est appelé, dans le contexte de la présente demande, gène ACAA1. Dans le peroxysome, au moins deux enzymes thiolases catalysent la dernière étape de la béta oxydation: ACAA1 et SCP-2 (Antonenkov, 1997, 272(41); 26023-26031). Différentes études ont mis en évidence des symptômes associés à une déficience potentielle en ACAA1 (Schram et al, PNAS, 1987, 84(8):2494-6, Goldfinger et al, 1986, J Pediatr, 108(1):25-32). Finalement une étude plus récente menée en 2002 chez un patient présentant une accumulation d'acides gras à très longues chaînes, telles que décrites dans les études précédentes, n'a pas confirmé de déficience en ACAA1 (Ferdinandusse et al, 2002, Am. J. Hum. Genet. 70:1589-1593). ACAA2 L'enzyme ACAA2 désigne l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 2, encore 3-ketoacyl-CoA thiolase, mitochondrial (EC 2.3.1.16) (Beta-ketothiolase) (Acetyl-CoA acyltransferase) (Mitochondrial 3-oxoacyl-CoA thiolase). L'acétyl-coenzyme A acyltransférase 2 clive le 3-ketoacyl CoA en acétyl CoA et en Acyl CoA au cours du cycle de béta oxydation des acides gras se déroulant dans la mitochondrie. Le gène codant l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 2 est appelé, dans le contexte de la présente demande, gène ACAA2. Le gène ACAA2 a été proposé comme cible dans le traitement de l'insuffisance cardiaque (Lopaschuk, et al 2003, Circ Res. Aug 8;93(3):e33-7) en particulier dans le cas du diabète. Lors d'une insuffisance cardiaque, l'inhibition de l'ACAA2, par la trimétazidine par exemple, permettrait de diminuer un taux excessif d'oxydation des acides gras dans le myocarde et favoriserait ainsi la fonction contractile du coeur (Onay-Besikci A, et al, 2007, Can J Physiol Pharmacol.;85(5):527- 35). En outre il a été montré que les récepteurs PPARa activés peuvent augmenter l'expression d'enzymes de la béta oxydation dont l'ACAA2 (Aoyama et al, 1998, The Journal of Biological chemitry, Vol 276, pp 5678-84). Dans le contexte de l'invention, les termes � gène ACAA1 � ou � gène ACAA2 � et � acide nucléique ACAA1 � ou � acide nucléique ACAA2 � signifient les gènes ou les séquences d'acide nucléique qui codent pour l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 ou acétyl-coenzyme A acyltransférase 2. Si les cibles visées sont de préférence les gènes humains ou leur produit d'expression, l'invention peut également faire appel à des cellules exprimant une acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 ou acétyl-coenzyme A acyltransférase 2 hétérologue, par intégration génomique ou expression transitoire d'un acide nucléique exogène codant pour l'enzyme. Une séquence d'ADNc humain de l'ACAAl est reproduite en annexe (SEQ ID No.1). Il s'agit de la séquence NM_001607 (Genbank) dont le cadre de lecture ouvert contient 1695 paires de bases et code pour une séquence en acides aminés de 424 résidus. Une séquence d'ADNc humain de l'ACAA2 est reproduite en annexe (SEQ ID No.3). Il s'agit de la séquence NM_006111 (Genbank) dont le cadre de lecture ouvert contient 1191 paires de bases et code pour une séquence en acides aminés de 397 résidus. Applications diagnostiques Un objet de l'invention concerne une méthode in vitro de diagnostic ou de suivi de l'évolution de lésions acnéiques, d'une dermatite séborrhéique ou d'un désordre cutané associé à une hyperséborrhée chez un sujet, comprenant la comparaison de l'expression ou de l'activité des protéines acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 (ACAA1) ou acétyl- coenzyme A acyltransférase 2 (ACAA2), de l'expression de leur gène ou de l'activité d'au moins un de leurs promoteurs, dans un échantillon biologique d'un sujet par rapport à un échantillon biologique d'un sujet contrôle. L'expression des protéines peut être déterminée par un dosage de la protéine ACAA1 ou ACAA2 selon une des méthodes telles que le Western-Blot, l'immunohistochimie, l'analyse par spectrométrie de masse (Maldi-TOF et analyse LC/MS), le radioimmunoessai (RIA) ou l'ELISA ou toute autre méthode connue de l'homme du métier. Une autre méthode, notamment pour mesurer l'expression des gènes ACAA1 ou ACAA2, est de mesurer la quantité d'ARNm correspondant. Un dosage de l'activité des protéines ACAA1 ou ACAA2 peut être également envisagé. Dans le cadre d'un diagnostic, le sujet � contrôle � est un sujet � sain �. Dans le cadre d'un suivi de l'évolution des lésions acnéiques, d'une dermatite séborrhéique ou d'un désordre cutané lié à une hyperséborrhée, le � sujet contrôle � fait référence au même sujet à un temps différent, qui correspond de préférence au début du traitement (To). Cette mesure de la différence d'expression ou d'activité de ACAA1 ou ACAA2, ou d'expression de leur gène ou d'activité d'au moins un de leurs promoteurs, permet notamment de suivre l'efficacité d'un traitement, notamment un traitement par un modulateur de ACAA1 ou ACAA2, tel qu'envisagé plus haut, ou un autre traitement contre l'acné, une dermatite séborrhéique ou un désordre cutané associé à une hyperséborrhée. Un tel suivi peut conforter le patient quant au bien fondé, ou à la nécessité, de poursuivre ce traitement. Un autre aspect de la présente invention concerne une méthode in vitro de détermination d'une susceptibilité d'un sujet à développer des lésions acnéiques, une dermatite séborrhéique ou un désordre cutané associé à une hyperséborrhée, comprenant la comparaison de l'expression ou de l'activité des protéines acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 ou acétyl-coenzyme A acyltransférase 2 (ACAA1 ou ACAA2), de l'expression de leur gène ou de l'activité d'au moins un de leurs promoteurs, dans un échantillon biologique d'un sujet par rapport à un échantillon biologique d'un sujet contrôle. Là encore, l'expression des protéines ACAA1 ou ACAA2 peut être déterminée par un dosage de cette protéine par immunoessai, par exemple par dosage ELISA ou par toute autre méthode citée plus haut. Une autre méthode, notamment pour mesurer l'expression des gènes ACAA1 ou ACAA2, est de mesurer la quantité d'ARNm correspondant par toute méthode telle que décrit plus haut. Un dosage de l'activité d'ACAAl ou d'ACAA2 peut être également envisagé. Le sujet testé est ici un sujet asymptomatique, ne présentant aucun trouble cutané lié à une hyperséborrhée, une dermatite séborrhéique ou une acné. Le sujet � contrôle � dans cette méthode, signifie un sujet ou une population de référence � saine �. La détection de cette susceptibilité permet la mise en place d'un traitement préventif et/ou d'une surveillance accrue des signes liés à l'acné, une dermatite séborrhéique ou à un désordre cutané associé à une hyperséborrhée. Dans ces méthodes de diagnostic ou pronostic in vitro, l'échantillon biologique testé peut être n'importe quel échantillon de liquide biologique ou un échantillon d'une biopsie. De préférence l'échantillon peut être une préparation de cellules de la peau, obtenues par exemple par desquamation ou biopsie. Il peut également s'agir de sébum. Méthodes de criblage Un objet de l'invention est une méthode in vitro ou in vivo de criblage de composés candidats pour le traitement préventif et/ou curatif de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou tout désordre cutané associé à une hyperséborrhée, comprenant la détermination de la capacité d'un composé à moduler l'expression ou l'activité de l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 ou acétyl-coenzyme A acyltransférase 2 ou l'expression de leur gène ou l'activité d'au moins un de leurs promoteurs, ladite modulation indiquant l'utilité du composé pour le traitement préventif ou curatif de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou tout désordre cutané associé à une hyperséborrhée. La méthode permet donc de sélectionner les composés capables de moduler l'expression ou l'activité d'ACAAl ou d'ACAA2, ou l'expression de leur gène, ou l'activité d'au moins un de leurs promoteurs. Plus particulièrement, l'objet de l'invention est une méthode in vitro de criblage de composés candidats pour le traitement préventif et/ou curatif de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou des désordres cutanés associés à une hyperséborrhée, comprenant les étapes suivantes : a. préparation d'au moins deux échantillons biologiques ou mélanges réactionnels ; b. mise en contact d'un des échantillons ou mélanges réactionnels avec un ou plusieurs des composés à tester ; c. mesure de l'expression ou de l'activité des protéines acétyl-coenzyme A acyltransférasel ou 2, de l'expression de leur gène ou de l'activité d'au moins un de leurs promoteurs, dans les échantillons biologiques ou mélanges réactionnels ; d. sélection des composés pour lesquels une modulation de l'expression ou de l'activité des protéines acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 ou acétyl-coenzyme A acyltransférase 2, de l'expression de leur gène ou de l'activité d'au moins un de leurs promoteurs, est mesurée dans l'échantillon ou le mélange traité en b), par rapport à l'échantillon ou au mélange non traité. Une méthode de criblage in vivo peut être réalisée chez tout animal de laboratoire, par exemple un rongeur. Selon un mode de réalisation préféré, la méthode de criblage comprend l'administration à l'animal, de préférence par application topique, du composé à tester, puis éventuellement l'euthanasie de l'animal, et le prélèvement d'un feuillet épidermique, avant évaluation de l'expression du gène dans le feuillet épidermique, par toute méthode décrite ici. Par � modulation �, on entend tout effet sur l'expression ou l'activité de l'enzyme, l'expression du gène ou l'activité d'au moins un de ses promoteurs, à savoir éventuellement une stimulation, mais de préférence une inhibition, partielle ou complète. Ainsi, les composés testés à l'étape d) ci-dessus inhibent de préférence l'expression ou l'activité des protéines acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 ou acétyl-coenzyme A acyltransférase 2, l'expression de leur gène ou l'activité d'au moins un de leurs promoteurs. La différence d'expression obtenue avec le composé testé par rapport à un contrôle réalisé en l'absence du composé est significative à partir de 25% ou plus. Dans l'ensemble du présent texte, à moins qu'il ne soit spécifié autrement, par � expression d'un gène � on entend la quantité d'ARNm exprimé ; Par � expression d'une protéine �, on entend la quantité de cette protéine ; Par � activité d'une protéine �, on entend son activité biologique ; Par � activité d'un promoteur �, on entend la capacité de ce promoteur à déclencher la transcription de la séquence d'ADN codée en aval de ce promoteur (et donc indirectement la synthèse de la protéine correspondante). Les composés testés peuvent être de tout type. Ils peuvent être d'origine naturelle ou avoir été produits par synthèse chimique. Il peut s'agir d'une banque de composés chimiques structurellement définis, de composés ou de substances non caractérisés, ou d'un mélange de composés. En particulier, l'invention vise l'utilisation des gènes ACAA1 ou ACAA2 ou de leur protéine comme marqueur pour cribler des modulateurs PPAR ou AR (récepteur aux androgènes) candidats pour le traitement de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou un désordre cutané associé à une hyperséborrhée. Plus précisément, on détermine la capacité d'un modulateur PPAR ou AR à moduler l'expression ou l'activité d'ACAAl ou d'ACAA2 ou l'expression de leur gène ou l'activité d'au moins un de leurs promoteurs. De manière préférentielle, le modulateur est un modulateur PPARy. Le modulateur PPAR est un agoniste ou un antagoniste PPAR, de préférence un agoniste. Le modulateur AR est un agoniste ou un antagoniste AR, de préférence un agoniste. Différentes techniques peuvent être mises en oeuvre pour tester ces composés et identifier les composés d'intérêt thérapeutique, modulateurs de l'expression ou de l'activité de l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 ou acétyl-coenzyme A acyltransférase 2. Selon un premier mode de réalisation, les échantillons biologiques sont des cellules transfectées avec un gène rapporteur lié de manière opérante à tout ou partie du promoteur du gène codant pour l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 ou acétylcoenzyme A acyltransférase 2, et l'étape c) décrite ci-dessus consiste à mesurer l'expression dudit gène rapporteur. Le gène rapporteur peut notamment coder pour une enzyme qui, en présence d'un substrat donné, conduit à la formation de produits colorés, telle que CAT (chloramphenicol acétyltransférase), GAL (beta galactosidase), ou GUS (beta glucuronidase). Il peut également s'agir du gène de la luciférase ou de la GFP (Green Fluorescent Protein). Le dosage de la protéine codée par le gène rapporteur, ou de son activité, est réalisé classiquement, par des techniques colorimétriques, fluorométriques, ou de chimioluminescence, entre autres. Selon un deuxième mode de réalisation, les échantillons biologiques sont des cellules exprimant le gène codant pour l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 ou acétyl-coenzyme A acyltransférase 2, et l'étape c) décrite ci-dessus consiste à mesurer l'expression dudit gène. La cellule utilisée ici peut être de tout type. Il peut s'agir d'une cellule exprimant le gène ACAA1 ou ACAA2 de manière endogène, comme par exemple une cellule de foie, une cellule ovarienne, ou encore mieux un sébocyte. On peut également utiliser des organes d'origine humaine ou animale, comme par exemple la glande préputiale, clitoridienne, ou encore la glande sébacée de la peau. Il peut également s'agir d'une cellule transformée par un acide nucléique hétérologue, codant pour l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 ou acétyl-coenzyme A acyltransférase 2, de préférence humaine, ou de mammifère. Une grande variété de systèmes de cellules hôtes peut être utilisée, telle que par exemples les cellules Cos-7, CHO, BHK, 3T3, HEK293. L'acide nucléique peut être transfecté de manière stable ou transitoire, par toute méthode connue de l'homme du métier, par exemple par phosphate de calcium, DEAE-dextran, liposome, virus, électroporation, ou microinjection. Dans ces méthodes, l'expression des gènes ACAA1 ou ACAA2 ou du gène rapporteur peut être déterminée en évaluant le taux de transcription dudit gène, ou son taux de traduction. Par taux de transcription d'un gène, on entend la quantité de l'ARNm correspondant produite. Par taux de traduction d'un gène, on entend la quantité de protéine produite. L'homme du métier est familier des techniques permettant la détection quantitative ou semi-quantitative de l'ARNm d'un gène d'intérêt. Les techniques basées sur l'hybridation de l'ARNm avec des sondes nucléotidiques spécifiques sont les plus usuelles (Northern Blot, RT-PCR (Reverse Transcriptase Polymerase Chain Reaction), RT-PCR quantitative (qRT-PCR), protection à la RNase). Il peut être avantageux d'utiliser des marqueurs de détection, tels que des agents fluorescents, radioactifs, enzymatiques ou autres ligands (par exemple, avidine/biotine). En particulier, l'expression des gènes peut être mesurée par PCR en temps réel ou par protection à la RNase. Par protection à la RNase, on entend la détection d'un ARNm connu parmi les ARN-poly(A) d'un tissu qui peut se faire à l'aide d'une hybridation spécifique avec une sonde marquée. La sonde est un ARN complémentaire marqué (radioactif) du messager à rechercher. Elle peut être construite à partir d'un ARNm connu dont l'ADNc, après RT-PCR, a été cloné dans un phage. De l'ARN-poly(A) du tissu où la séquence est à rechercher est incubé avec cette sonde dans des conditions d'hybridation lente en milieu liquide. Il se forme des hybrides ARN:ARN entre l'ARNm recherché et la sonde antisens. Le milieu hybridé est alors incubé avec un mélange de ribonucléases spécifiques de l'ARN simple brin, de telle sorte que seuls les hybrides formés avec la sonde peuvent résister à cette digestion. Le produit de digestion est ensuite déprotéinisé et repurifié, avant d'être analysé par électrophorèse. Les ARN hybrides marqués sont détectés par autoradiographie. Le taux de traduction du gène est évalué par exemple par dosage immunologique du produit dudit gène. Les anticorps utilisés à cet effet peuvent être de type polyclonal ou monoclonal. Leur production relève de techniques conventionnelles. Un anticorps polyclonal antiûACAA1 ou antiûACAA2 peut, entre autres, être obtenu par immunisation d'un animal tel qu'un lapin ou une souris, à l'aide de l'enzyme entière. L'antisérum est prélevé puis épuisé selon des méthodes en soi connues de l'homme du métier. Un anticorps monoclonal peut, entre autres, être obtenu par la méthode classique de Kôhler et Milstein (Nature (London), 256: 495- 497 (1975)). D'autres méthodes de préparation d'anticorps monoclonaux sont également connues. On peut, par exemple, produire des anticorps monoclonaux par expression d'un acide nucléique clone à partir d'un hybridome. On peut également produire des anticorps par la technique d'expression sur phage ("phage display"), en introduisant des ADNc d'anticorps dans des vecteurs, qui sont typiquement des phages filamenteux qui présentent des banques de gènes V à la surface du phage (par exemple fUSES pour E.coli). Le dosage immunologique peut être réalisé en phase solide ou en phase homogène; en un temps ou en deux temps; en méthode sandwich ou en méthode compétitive, à titre d'exemples non limitatifs. Selon un mode de réalisation préféré, l'anticorps de capture est immobilisé sur une phase solide. On peut utiliser, à titre d'exemples non limitatifs de phase solide, des microplaques, en particulier des microplaques de polystyrène, ou des particules ou des billes solides, des billes paramagnétiques. Des dosages ELISA, des radioimmunoessais, ou toute autre technique de détection peuvent être mis en oeuvre pour révéler la présence des complexes antigènes-anticorps formés. La caractérisation des complexes antigène/anticorps, et plus généralement des protéines isolées ou purifiées mais également recombinantes (obtenues in vitro et in vivo) peut être réalisée par analyse en spectrométrie de masse. Cette identification est rendue possible grâce à l'analyse (détermination de la masse) des peptides générée par l'hydrolyse enzymatique des protéines (trypsine en générale). De façon générale, les protéines sont isolées selon les méthodes connues de l'homme du métier, préalablement à la digestion enzymatique. L'analyse des peptides (sous forme d'hydrolysat) est effectuée par séparation des peptides par HPLC (nano-HPLC) basé sur leur propriétés physico- chimique (phase inverse). La détermination de la masse des peptides ainsi séparés est réalisée par ionisation des peptides et soit par couplage direct au spectromètre de masse (mode electrospray ESI), soit après dépôt et cristallisation en présence d'une matrice connue de l'homme de l'art (analyse en mode MALDI). Les protéines sont ensuite identifiées grâce à l'utilisation d'un logiciel approprié (par exemple Mascot). Selon un troisième mode de réalisation, l'étape a) décrite ci-dessus consiste à préparer des mélanges réactionnels comprenant chacun une enzyme ACAA1 ou ACAA2 et un substrat de l'enzyme, et l'étape c) décrite ci-dessus consiste à mesurer l'activité enzymatique. Les enzymes ACAA1 ou ACAA2 peuvent être produites selon des techniques usuelles en utilisant les cellules Cos-7, CHO, BHK, 3T3, HEK293. Elles peuvent également être produites à l'aide de microorganismes tels que des bactéries (par exemple E. coli ou B. subtilis), des levures (par exemple Saccharomyces, Pichia) ou des cellules d'insecte, telles que Sf9 ou Sf21. Les enzymes peuvent également être purifiées à partir d'homogénats cellulaires, par exemple d'homogénats de foie. La détermination de l'activité enzymatique comprend de préférence la détermination de l'activité acyltransférase, par extraction des acides gras produits. Des dosages de l'activité enzymatique de l'ACAA2 sont décrits dans la littérature (voir par exemple Shindo Y et al, Biochem Pharmacol. 1978;27(23):2683-8 ou Venizelos et al, Pediatr Res. 1994;36:111-114). Ainsi, l'activité de l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 2 peut, par exemple, être évaluée de la manière suivante : Des foies non congelés sont homogénéisés dans quatre volumes de 0.25 M de sucrose contenant 1 mM d'EDTA. Approximativement 500 pg d'homogénat sont incubés dans un milieu de dosage de 0.2 ml de chloride de potassium à 150 mM, d'HEPES à 10Mm, pH 7.2, d'EDTA à 0.1 mM, de tampon phosphate de potassium à 1 mM, pH 7.2, du Tris Malonate à 5 mM, du chlorure de magnésium à 10 mM, de la carnitine à 1 mM, de la sérum-albumine bovine à 0.15%, de l'ATP à 5 mM et 50 mM de substrat (par exemple la 3-kétoacylCoA) substrat radioactif à 5.0 x 104 cpm. La réaction a lieu pendant 30 minutes à 25°C puis est stoppée par addition de 0.2 ml d'acide perchlorique à 0.6N. Le mélange est centrifugé à 2000g pendant 10 minutes et les acides gras n'ayant pas réagi dans le surnageant sont récupérés avec 2 ml de n-hexane en utilisant trois extractions. Les produits de dégradation radioactifs dans la phase aqueuse sont comptés. L'activité de béta oxydation des acides gras est exprimée en nmol/min/foie ou toute autre unité adaptée. Tout autre modèle de dosage de l'activité enzymatique est possible, notamment en utilisant d'autres substrats de l'enzyme, par exemple des acides gras à plus ou moins longues chaînes. Des telles méthodes de dosages de l'activité enzymatique peuvent être utilisées de manière similaire pour déterminer l'activité de l'enzyme ACAA1. Les composés sélectionnés par les méthodes de criblage définies ici peuvent ensuite être testés sur d'autres modèles in vitro et/ou in vivo (chez l'animal ou l'homme) pour leurs effets sur l'acné, la dermatite séborrhéique ou des désordres cutanés associés à une hyperséborrhée. Modulateurs de l'enzyme L'invention a également pour objet l'utilisation d'un modulateur de l'enzyme humaine ACAA1 ou ACAA2, susceptible d'être obtenu par l'une des méthodes ci-dessus, pour la préparation d'un médicament destiné au traitement préventif et/ou curatif de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou des désordres cutanés associés à une hyperséborrhée. Il est ainsi décrit ici une méthode de traitement préventif et/ou curatif de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou des désordres cutanés associés à une hyperséborrhée, méthode comprenant l'administration d'une quantité thérapeutiquement efficace d'un modulateur de l'enzyme humaine ACAA1 ou ACAA2, à un patient nécessitant un tel traitement. L'invention vise enfin l'utilisation cosmétique d'un modulateur de l'enzyme humaine ACAA1 ou ACAA2, pour le traitement esthétique des peaux grasses. De manière préférentielle, le modulateur est un inhibiteur de l'enzyme. Le terme � inhibiteur� se réfère à un composé ou une substance chimique qui élimine ou réduit substantiellement l'activité enzymatique d'ACAAl ou d'ACAA2. Le terme � substantiellement � signifie une réduction d'au moins 25%, de préférence d'au moins 35%, de préférence encore d'au moins 50%, et de manière plus préférée d'au moins 70% ou 90%. Plus particulièrement, il peut s'agir d'un composé qui interagit avec, et bloque, le site catalytique de l'enzyme, comme des composés du type inhibiteur compétitif ou non compétitif. Un inhibiteur préféré interagit avec l'enzyme en solution à des concentrations en inhibiteur de moins de 20�M, de préférence moins de 10�M, de préférence encore moins de 5�M, moins de 1 pM, moins de 0,1 pM, de préférence encore moins de 0,01 pM. Le composé modulateur peut être un anticorps inhibiteur anti- ACAA1 ou anti-ACAA2, de préférence un anticorps monoclonal. De manière avantageuse, un tel anticorps inhibiteur est administré en une quantité suffisante pour obtenir une concentration plasmatique d'environ 0.01�g par ml à environ 100�g/ml, de préférence d'environ 1�g par ml à environ 5�g/ml. Le composé modulateur peut également être un polypeptide, un polynucleotide antisens d'ADN OU d'ARN, un si-ARN, ou un PNA ("Peptide nucleic acid", chaîne polypeptidique substituée par des bases puriques et pyrimidiques, dont la structure spatiale mime celle de l'ADN et permet l'hybridation à celui-ci). Le composé modulateur peut également être un aptamère. Les aptamères sont des oligonucléotides ayant la capacité de reconnaître pratiquement toutes les classes de molécules cibles avec une haute affinité et spécificité. De tels ligands peuvent être isolés par évolution systématique de ligand par enrichissement exponentiel (SELEX) d'une banque de séquences aléatoires comme décrit par Tuerk et Gold, 1990. La banque de séquences aléatoires peut être obtenue par synthèse chimique combinatoire d'ADN. Dans cette banque, chaque membre est un oligomère linéaire, éventuellement chimiquement modifié, d'une séquence unique. De possibles modifications, utilisations et avantages de cette classe de molécules ont été revus dans Jayasena,1999, Clinical Chemistry 45(9):1628-1650. Différents inhibiteurs de l'ACAAl ou de l'ACAA2 peuvent être utilisés. A titre non limitatif, on peut citer l'acide 5-(1-hydroxy-2, 4, 6-heptatriynyl)-2-oxo-1,3-dioxolane-4-heptanoique comme inhibiteur de l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 2 et proposés comme traitement fongicide (US 4,921,844). L'invention comprend l'utilisation de tels composés inhibiteurs de l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 ou 2 pour le traitement préventif et/ou curatif de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou des désordres cutanés associés à une hyperséborrhée. D'autres composés modulateurs identifiés par la méthode de criblage décrite plus haut sont également utiles. Les composés modulateurs sont formulés au sein de composition pharmaceutique, en association avec un véhicule pharmaceutiquement acceptable. Ces compositions peuvent être administrées par exemple par voie orale, entérale, parentérale, ou topique. De préférence, la composition pharmaceutique est appliquée par voie topique. Par voie orale, la composition pharmaceutique peut se présenter sous forme de comprimés, de gélules, de dragées, de sirops, de suspensions, de solutions, de poudres, de granules, d'émulsions, de suspensions de microsphères ou nanosphères ou de vésicules lipidiques ou polymériques permettant une libération contrôlée. Par voie parentérale, la composition pharmaceutique peut se présenter sous forme de solutions ou suspensions pour perfusion ou pour injection. Par voie topique, la composition pharmaceutique est plus particulièrement destinée au traitement de la peau et des muqueuses et peut se présenter sous forme d'onguents, de crèmes, de laits, de pommades, de poudres, de tampons imbibés, de solutions, de gels, de sprays, de lotions ou de suspensions. Elle peut également se présenter sous forme de suspensions de microsphères ou nanosphères ou de vésicules lipidiques ou polymériques ou de patchs polymériques ou d'hydrogels permettant une libération contrôlée. Cette composition pour application topique peut se présenter sous forme anhydre, sous forme aqueuse ou sous la forme d'une émulsion. Dans une variante préférée, la composition pharmaceutique se présente sous la forme d'un gel, d'une crème ou d'une lotion. La composition peut comprendre une teneur en modulateur de l'ACAAl ou ACAA2 allant de 0,001 à 10 % en poids, notamment de 0,01 à 5 % en poids par rapport au poids total de la composition. 10 La composition pharmaceutique peut en outre contenir des additifs inertes ou des combinaisons de ces additifs, tels que - des agents mouillants; - des agents d'amélioration de la saveur; - des agents conservateurs tels que les esters de l'acide parahydroxybenzoïque; 15 - des agents stabilisants; - des agents régulateurs d'humidité; - des agents régulateurs de pH; - des agents modificateurs de pression osmotique; - des agents émulsionnants; 20 - des filtres UV-A et UV-B - et des antioxydants, tels que l'alpha-tocophérol, le butylhydroxyanisole ou le butylhydroxytoluene, la Super Oxyde Dismutase, l'Ubiquinol ou certains chelatants de métaux. 25 Les exemples suivants illustrent l'invention sans en limiter la portée. Exemples : A. DONNEES EXPERIMENTALES CONCERNANT L'ENZYME ACAA1 30 Exemple 1 : Expression de l'acétvl-coenzvme A acvltransférase 1 dans la glande sébacée humaine et dans l'épiderme humain Des glandes sébacées humaines ont été séparées de l'épiderme humain par traitement à la dispase et dissection sous une loupe binoculaire. Des échantillons d'ARN totaux ont été 35 préparés à partir des glandes sébacées et à partir de l'épiderme.5 L'expression des gènes a été analysée sur une station d'Affymetrix (module microfluidique; four à hybridation; scanner; ordinateur) en suivant les protocoles fournis par la société. En bref, l'ARN total isolé des tissus est transcrit en ADNc. A partir de l'ADNc double brin, on synthétise un ARNc marqué à la biotine en utilisant la polymérase T7 et un NTP précurseur conjugué à la biotine. Les ARNc sont ensuite fragmentés en fragments de petites tailles. Toutes les étapes de biologie moléculaire sont contrôlées en utilisant le système � Lab on a chip� d'Agilent pour confirmer les bonnes efficacités des réactions enzymatiques. La puce Affymetrix est hybridée avec l'ARNc biotinylé, rincée et ensuite marquée par fluorescence en utilisant un fluorophore conjugué à la Streptavidine. Après des lavages, la puce est scannée et les résultats sont calculés en utilisant le logiciel MAS5 fourni par Affymetrix. On obtient une valeur d'expression pour chaque gène ainsi que l'indication de la significativité de la valeur obtenue. Le calcul de la significativité de l'expression est basé sur l'analyse des signaux qui sont obtenus suite à l'hybridation de l'ARNc d'un gène donné avec un oligonucléotide hybridant parfaitement (� perfect match �) versus un oligonucléotide qui contient une mutation (� single mismatch �) dans la région centrale de l'oligonucléotide (voir tableau 1). Tableau 1 : mesure de l'expression de l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 dans l'épiderme et dans la glande sébacée humaine via l'utilisation de la technologie des puces affymetrix. Identifiant Nom du gène Expression Expression Significativité Significativité Affymetrix dans la dans de de glande l'épiderme l'expression* l'expression* sébacée humain dans la glande dans humaine sébacée épiderme humaine humain 202025_x_at acetyl- 200 113 1 1 Coenzyme A acyltransferase 1 (peroxisomal 3-oxoacyl- Coenzyme A thiolase) *Indicateur de la significativité de l'expression du gène analysé dans l'échantillon indiqué : présence (=1) ou absence (=0). Exemple 2 : Expression de l'acétvl-coenzvme A acyltransférase 1 dans l'épiderme 25 de rat après traitement par un agoniste PPARq Données d'expression sur feuillet (� split �) épidermique de rat Fuzzy Les études sont conduites chez le rat Fuzzy femelle (Hsd : FUZZY-fz) âgé de 10 semaines en début d'étude. Les animaux sont traités à la dose de 1% (agoniste PPARg Rosiglitazone en solution dans l'acétone) une fois par jour pendant 8 jours. 2 heures après le dernier traitement, les animaux sont euthanasiés et la peau du dos est prélevée. Après incubation dans de la dispase, l'épiderme portant les glandes sébacée est détaché du derme (feuillet épidermique). Après broyage des échantillons, l'ARNm est préparé à l'aide de colonnes Qiagen, en accord avec les instructions du fournisseur. Le matériel ainsi préparé est soumis à une analyse du transcriptome à large échelle sur une plate-forme Affymetrix. Les données sont ensuite normalisées et après analyse statistique les résultats rendus sont exprimés en unité arbitraire d'expression (voir ci-dessous) accompagné pour chaque donnée d'une valeur statistique de présence du transcrit (présence=1 ; absence=0). Tableau 2 : Mesure de l'expression de ACAA1 dans un feuillet épidermique après 8 jours de traitement topique de la femelle rat FUZZY par un agoniste PPARy (Rosiglitazone) à 1 %. Identifiant Nom du gène Expression Expression Significativité Significativité Affymetrix dans la après de de l'expression* condition traitement par l'expression* après traitement contrôle rosiglitazone dans la par (DMSO) 1% condition Rosiglitazone contrôle 1 % 1387783_a_ acetyl-Coenzyme 160 455 1 1 at A acyltransferase 1 *Indicateur de la significativité de l'expression du gène analysé dans l'échantillon indiqué : présence (=1) ou absence (=0). B. DONNEES EXPERIMENTALES CONCERNANT L'ENZYME ACAA2 Exemple 3 : Expression de l'acétvl-coenzvme A acvltransférase 2 dans la glande sébacée humaine et dans l'épiderme humain25 Des glandes sébacées humaines ont été séparées de l'épiderme humain par traitement à la dispase et dissection sous une loupe binoculaire. Des échantillons d'ARN totaux ont été préparés à partir des glandes sébacées et à partir de l'épiderme. L'expression des gènes a été analysée sur une station d'Affymetrix (module microfluidique; four à hybridation; scanner; ordinateur) en suivant les protocoles fournis par la société. En bref, l'ARN total isolé des tissus est transcrit en ADNc. A partir de l'ADNc double brin, on synthétise un ARNc marqué à la biotine en utilisant la polymérase T7 et un NTP précurseur conjugué à la biotine. Les ARNc sont ensuite fragmentés en fragments de petites tailles. Toutes les étapes de biologie moléculaire sont contrôlées en utilisant le système � Lab on a chip� d'Agilent pour confirmer les bonnes efficacités des réactions enzymatiques. La puce Affymetrix est hybridée avec l'ARNc biotinylé, rincée et ensuite marquée par fluorescence en utilisant un fluorophore conjugué à la Streptavidine. Après des lavages, la puce est scannée et les résultats sont calculés en utilisant le logiciel MAS5 fourni par Affymetrix. On obtient une valeur d'expression pour chaque gène ainsi que l'indication de la significativité de la valeur obtenue. Le calcul de la significativité de l'expression est basé sur l'analyse des signaux qui sont obtenus suite à l'hybridation de l'ARNc d'un gène donné avec un oligonucléotide hybridant parfaitement (� perfect match �) versus un oligonucléotide qui contient une mutation (� single mismatch �) dans la région centrale de l'oligonucléotide (voir tableau 3). Tableau 3: mesure de l'expression de l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 2 dans l'épiderme et dans la glande sébacée humaine via l'utilisation de la technologie des puces affymetrix. Identifiant Nom du gène Expression Expression Significativité Significativité Affymetrix dans la dans de de glande l'épiderme l'expression* l'expression* sébacée humain dans la dans humaine glande épiderme sébacée humain humaine 202003_s_at acétyl-Coenzyme 363 70 1 0 A acyltransférase 2 *Indicateur de la significativité de l'expression du gène analysé dans l'échantillon indiqué : présence (=1) ou absence (=0). Exemple 4 : Expression de l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 2 dans la qlande sébacée humaine et dans l'épiderme humain Les échantillons d'épiderme et de glande sébacée humaine ont été préparés par microdissection laser à partir de trois liftings de peaux humaines saines (donneurs 30 femmes). L'expression de l'ARN messager codant pour la protéine ACAA2 a été analysée par RTPCR quantitative (qRT-PCR) en utilisant la technologie des Microfluidics Cards développée par Applied Biosystems. Le Ct correspond au nombre de cycles de PCR permettant d'atteindre un même niveau de fluorescence pour tous les échantillons. Le niveau d'expression est représenté dans chaque tissu par la moyenne des Ct et l'écart type obtenus sur les trois donneurs. L'expression différentielle entre les deux tissus est mesurée par un facteur d'induction moyen (F.I) entre la glande sébacée et l'épiderme après normalisation des Ct par l'expression des trois gènes de ménage (ARN ribosomal 18S, Glyceraldehyde 3- phosphate deshydrogenase GAPDH, beta-actine). Tableau 4 : mesure par qRT-PCR de l'expression de l'acetyl-Coenzyme A acyltransferase 2 dans l'épiderme et la glande sébacée humaine via l'utilisation de la technologie des Microfluidic Cards (Applied Biosystems). Nom du gène Nombre de Ecart Nombre de Ecart Facteur d'induction cycles type cycles type moyen de l'expression nécessaire nécessaire dans la glande pour détecter pour détecter sébacée versus l'expression l'expression l'épiderme humain (Fi) moyen dans la moyen dans glande l'épiderme sébacée humain (Ct) humaine (Ct) acetyl- 25 0.76 30 2.17 35 Coenzyme A acyltransferase 2 Exemple 5: Expression de l'acétvl-coenzvme A acyltransférase 2 dans les sébocvtes humains en culture primaire a. Isolement et culture des sébocytes humains 20 La culture de sébocytes humains est réalisée à partir de liftings de donneurs sains humains d'après la méthodologie décrite par Xia et al. (J Invest Dermatol. 1989 Sep;93(3):315-21) après séparation de l'épiderme du derme sous l'action de la dispase et microdissection des glandes sébacées sous loupes binocculaire. 25 Les glandes sébacées sont ensemencées en plaque 6 puits sur une couche nourricière de fibroblastes 3T3 soumis à de la mitomycine en milieu DMEM-Ham's F12 (3:1) supplémenté en 10% Sérum Veau Foetal (SVF); 10ng/mI facteur de croissance de15 l'épiderme (EGF); 10-10M toxine cholerique (CT); 0.5pg/ml hydrocortisone (HC); 5pg/ml insuline (INS); 2mM L-Glutamine (Gln); 10001/ml de penicilline-streptomycine (PS). Les premiers foyers de sébocytes humains apparaissent 3 jours après ensemencement des glandes. Les cellules sont alors traitées pendant 6 jours par le cocktail sébogénique correspondant à l'association de l'agoniste PPARy Rosiglitazone (lpM) et de l'androgène R1881 (10nM), ou par le Dimethyl sulfoxide (DMSO) servant de véhicule. b. Données d'expression en PCR L'expression de l'ARN messager codant pour la protéine ACAA2 a été analysée par qRTPCR en utilisant la technologie des Microfluidics Cards développée par Applied Biosystems, comme décrit précédemment (exemple 2), sur une culture de sébocytes humains correspondant à un donneur. Le niveau d'expression (Ct) est représenté pour chaque condition de traitement. L'induction de l'expression de ACAA2 par le cocktail sébogénique est mesurée par un facteur d'induction (F.I) versus le contrôle DMSO après normalisation des Ct par l'expression des trois gènes de ménage (ARN ribosomal 18S, Glyceraldehyde 3-phosphate deshydrogenase GAPDH, beta-actine). Tableau 5 : mesure par qRT-PCR de l'expression de ACAA2 dans une primoculture de sébocytes humains traités 6 jours par le cocktail sébogénique (association agoniste PPARy Rosiglitazone l pM ; androgène R1881 10nM) ou par le DMSO, via l'utilisation de la technologie des Microfluidic Cards (Applied Biosystems). Nom du gène Niveau Niveau d'expression Facteur d'induction de d'expression dans les sébocytes l'expression dans la dans les humains traités par le condition traitée par le sébocytes cocktail sébogénique cocktail sébogénique humains traités (Ct) versus la condition par le DMSO DMSO (F.I) (Ct) acetyl-Coenzyme 30 27 7.4 A acyltransferase 2 Exemple 6 : Expression de l'acétvl-coenzvme A acvltransférase 2 dans la glande préputiale de rat Les cultures primaires de sébocytes de glandes préputiales de rat (Rosenfield et al., J. Invest. Dermatol. 1999;112:226-32) ont été utilisées pour évaluer des cocktails de différenciation tels que la combinaison de PPARy et d'un agoniste des récepteurs aux androgènes. Après l'ensemencement sur plaques 24 puits, les cellules préputiales sont cultivées pendant 3 jours en milieu DMEM contenant 10% de Sérum de Veau Foetal (SVF), 10-10M de toxine cholérique (CT), 10-10M de cortisol, 5pg/ml d'insuline et des antibiotiques. Les cellules sont ensuite cultivées dans un milieu sans sérum (milieu Cellgro complet) et traitées avec l'agoniste PPARy (Rosiglitazone, 100nM) et l'agoniste des récepteurs aux androgènes (R1181, 1nM) de 3 à 9 jours avec un changement de milieu tous les 2 jours. Les cellules sont récupérées au Sème jour et l'analyse à grande échelle de l'expression des gènes est réalisée grâce à des puces Affymetrix RAE230A. Tableau 6: mesure de l'expression de l'acetyl-Coenzyme A acyltransferase 2 dans les cellules de glandes préputiales en culture en réponse à un cocktail d'un androgène (R1881 à 1 nM) et d'un ligand PPARy (Rosiglitazone à 100 nM) via l'utilisation de la technologie des puces Affymetrix. Le mélange est connu pour induire la différenciation cellulaire caractérisée par l'augmentation de la lipogenèse. Identifiant Nom du gène Expression Expression Significativité Significativité Affymetrix dans la après de de condition traitement par l'expression* l'expression* contrôle R1881 et dans la après (DMSO) Rozigliatzone condition traitement par contrôle R1881 et rosiglitazone 1386880_at acetyl- 293 402 1 1 Coenzyme A acyltransferas e2 *Indicateur de la significativité de l'expression du gène analysé dans l'échantillon indiqué : 15 présence (=1) ou absence (=0). REVENDICATIONS1. Méthode in vitro ou in vivo de criblage de composés candidats pour le traitement préventif et/ou curatif de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou des désordres cutanés associés à une hyperséborrhée, comprenant la détermination de la capacité d'un composé à moduler l'expression ou l'activité de l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 (ACAA1) ou de l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 2 (ACAA2) ou l'expression de leur gène ou l'activité d'au moins un de leurs promoteurs. 2. Méthode in vitro de criblage de composés candidats pour le traitement préventif et/ou curatif de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou des désordres cutanés associés à une hyperséborrhée selon la revendication 1, comprenant les étapes suivantes : a. Préparation d'au moins deux échantillons biologiques ou mélanges 15 réactionnels ; b. Mise en contact d'un des échantillons ou mélanges réactionnels avec un ou plusieurs des composés à tester ; c. Mesure de l'expression ou de l'activité des protéines acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 ou acétyl-coenzyme A acyltransférase 2, de l'expression 20 de leur gène ou de l'activité d'au moins un de leurs promoteurs, dans les échantillons biologiques ou mélanges réactionnels ; d. Sélection des composés pour lesquels une modulation de l'expression ou de l'activité des protéines acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 ou acétylcoenzyme A acyltransférase 2, ou une modulation de l'expression de leur gène 25 ou une modulation de l'activité d'au moins un de leurs promoteurs, est mesurée dans l'échantillon ou le mélange traité en b) par rapport à l'échantillon ou au mélange non traité. 3. Méthode selon la revendication 2, caractérisée en ce que les composés 30 sélectionnés à l'étape d) inhibent l'expression ou l'activité des protéines acétyl- coenzyme A acyltransférase 1 ou acétyl-coenzyme A acyltransférase 2, l'expression de leur gène ou l'activité d'au moins un de leurs promoteurs. 4. Méthode selon la revendication 2 ou 3, caractérisée en ce que les échantillons 35 biologiques sont des cellules transfectées avec un gène rapporteur lié de manière opérante à tout ou partie du promoteur du gène codant pour l'acétyl-coenzyme Aacyltransférase 1 ou l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 2, et en ce que l'étape c) consiste à mesurer l'expression dudit gène rapporteur. 5. Méthode selon la revendication 2 ou 3, caractérisée en ce que les échantillons biologiques sont des cellules exprimant le gène codant pour l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 ou l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 2, et en ce que l'étape c) consiste à mesurer l'expression dudit gène. 6. Méthode selon la revendication 4 ou 5, dans laquelle les cellules sont des 10 sébocytes. 7. Méthode selon la revendication 5, dans laquelle les cellules sont des cellules transformées par un acide nucléique hétérologue, codant pour l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 ou l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 2. 8. Méthode selon l'une des revendications 2 à 7, dans laquelle l'expression du gène est déterminée en mesurant le taux de transcription dudit gène. 9. Méthode selon l'une des revendications 2 à 7, dans laquelle l'expression du gène 20 est déterminée en mesurant le taux de traduction dudit gène. 10. Méthode selon la revendication 2 ou 3, caractérisée en ce que l'étape a) consiste à préparer des mélanges réactionnels comprenant chacun une enzyme acétylcoenzyme A acyltransférase 1 ou acétyl-coenzyme A acyltransférase 2 et un 25 substrat de l'enzyme, et en ce que l'étape c) consiste à mesurer l'activité enzymatique. 11. Méthode selon la revendication 10, dans laquelle la détermination de l'activité enzymatique comprend la détermination de l'activité acyltransférase, par 30 extraction des acides gras produits. 12. Méthode in vitro de diagnostic ou de suivi de l'évolution d'une acné, d'une dermatite séborrhéique ou d'un désordre cutané associé à une hyperséborrhée 35 chez un sujet, comprenant la comparaison de l'expression ou de l'activité des protéines acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 ou acétyl-coenzyme A 15acyltransférase 2, de l'expression de leur gène ou de l'activité d'au moins un de leurs promoteurs, dans un échantillon biologique d'un sujet par rapport à un échantillon biologique d'un sujet contrôle. 13. Méthode selon la revendication 12, dans laquelle l'expression des protéines est déterminée par un dosage de cette protéine par immunoessai. 14. Méthode selon la revendication 13, dans laquelle l'immunoessai est un dosage ELISA. 15. Méthode selon la revendication 12, dans laquelle l'expression des gènes est déterminée par mesure de la quantité d'ARNm correspondant. 16. Méthode in vitro de détermination d'une susceptibilité d'un sujet à développer une 15 acné, une dermatite séborrhéique ou un désordre cutané associé à une hyperséborrhée, comprenant la comparaison de l'expression ou de l'activité des protéines acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 ou acétyl-coenzyme A acyltransférase 2, de l'expression de leur gène ou de l'activité d'au moins un de leurs promoteurs, dans un échantillon biologique d'un sujet par rapport à un 20 échantillon biologique d'un sujet contrôle. 17. Méthode selon la revendication 16, dans laquelle l'expression des protéines est déterminée par un dosage de cette protéine par un immunoessai. 25 18. Méthode selon la revendication 17, dans laquelle l'immunoessai est un dosage ELISA ou un radioimmunoessai. 19. Méthode selon la revendication 16, dans laquelle l'expression des gènes est déterminée par mesure de la quantité d'ARNm correspondant. 30 20. Utilisation d'un gène acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 ou acétyl-coenzyme A acyltransférase 2 ou d'une protéine acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 ou acétyl-coenzyme A acyltransférase 2 comme marqueur pour cribler des modulateurs PPAR candidats pour le traitement de l'acné, d'une dermatite 35 séborrhéique ou d'un désordre cutané associé à une hyperséborrhée.10 21. Utilisation selon la revendication 20, comprenant la détermination de la capacité d'un modulateur PPAR à moduler l'expression ou l'activité de l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 ou acétyl-coenzyme A acyltransférase 2 ou l'expression de leur gène ou l'activité d'au moins un de leurs promoteurs. 22. Utilisation selon la revendication 20 ou 21, dans laquelle le modulateur PPAR est un modulateur PPARy. 23. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 20 à 22, dans laquelle le 10 modulateur est un agoniste du récepteur PPAR. 24. Utilisation d'un gène acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 ou acétyl-coenzyme A acyltransférase 2 ou d'une protéine acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 ou acétyl-coenzyme A acyltransférase 2 comme marqueur pour cribler des 15 modulateurs AR (récepteur aux androgènes) candidats pour le traitement de l'acné, d'une dermatite séborrhéique ou d'un désordre cutané associé à une hyperséborrhée. 25. Utilisation selon la revendication 24, comprenant la détermination de la capacité 20 d'un modulateur AR à moduler l'expression ou l'activité de l'acétyl-coenzyme A acyltransférase 1 ou acétyl-coenzyme A acyltransférase 2 ou l'expression de leur gène ou l'activité d'au moins un de leurs promoteurs. 26. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 24 ou 25, dans laquelle le 25 modulateur est un agoniste du récepteur aux androgènes.5