FR 2932062 A1 20091211 FR 0803082 A 20080604 La présente invention concerne des plantes du genre Eruca, et plus particulièrement de l'espèce Eruca sativa, porteuses d'une stérilité mâle cytoplasmique, les graines et les cellules issues de ou donnant naissance à ces plantes, ainsi que leur procédé d'obtention. 10 Les plantes de l'espèce Eruca sativa sont connues sous l'appellation générique � roquette �. Cependant, le terme roquette représente en réalité deux genres différents qui n'ont de point commun que celui d'appartenir à la même famille des Brassicacées, à savoir la roquette � cultivée �, Eruca sativa L. (aussi appelée Eruca vesicaria subsp. 15 sativa) et la roquette � sauvage �, Diplotaxis tenuifolia L. La roquette est consommée depuis très longtemps en Europe mais l'espèce dite sauvage n'était pas cultivée mais simplement récoltée dans la nature, d'où les termes � sauvage � et � cultivée � provenant des techniques de production anciennes. La présente invention concerne plus particulièrement la roquette dite � cultivée � Eruca 20 sativa. Il s'agit d'un légume feuille consommé en tant que salade, parfois en mélange comme dans le traditionnel Mesclun. La culture de la roquette dite � cultivée � est donc particulièrement importante pour de nombreux marchés internationaux (comme le Brésil, l'Egypte, la Turquie...) et les pays anglo-saxons (Etats-Unis et Royaume-Uni notamment). 25 Du fait de l'évolution de la production de la roquette, et notamment de l'espèce Eruca sativa, l'amélioration de ces plantes est devenue un objectif important des producteurs et des semenciers. Les plantes du genre Eruca, et notamment de l'espèce Eruca sativa, étant préférentiellement allogames, la meilleure solution pour aboutir à des améliorations 30 substantielles au bénéfice des producteurs consiste à créer des variétés dites � hybride F1 �. Les plantes hybrides présentent en effet de meilleurs caractères d'homogénéité aux champs, permettant notamment d'obtenir une récolte uniforme, elles sont aussi plus vigoureuses que les variétés population (ou OP pour � Open pollinated �). De plus, la production d'hybrides permet l'amélioration variétale, des améliorations qualitatives 35 (forme de la feuille, port de la plante, couleur de la feuille, goût...) et des gains de rendement par une meilleure productivité. Elle permet également d'introduire et de 2932062 ;2 cumuler des résistances à certains pathogènes ou prédateurs qui affectent la culture, ainsi que des tolérances à des stress abiotiques. Cependant, de telles plantes dites � F1 � n'existent pas chez Eruca sativa et ne sont pas mentionnées dans la littérature. 5 En effet, la production de plantes hybrides F1 n'est économiquement envisageable qu'avec la possibilité de produire des semences commerciales à un coût raisonnable. Ainsi, la pollinisation manuelle (un opérateur prélève le pollen du parent mâle et le dépose sur les organes reproducteurs du parent femelle, tout en s'assurant de la non autopollinisation de la femelle) est d'emblée exclue, ainsi que l'émasculation des fleurs (nécessaire pour assurer l'absence d'autopollinisation). Concernant la pollinisation entomophile, celle ci n'étant pas dirigée, il faut donc pouvoir disposer d'un système biologique permettant de forcer la pollinisation croisée entre lignées parentales. Par ailleurs, elle suppose également l'émasculation manuelle préalable des fleurs, incompatible avec une production industrielle. Les présents inventeurs ont donc cherché à apporter des améliorations à la culture de la roquette, grâce à l'obtention de plantes du genre Eruca porteuses d'une stérilité mâle cytoplasmique, et de plantes hybrides F1. Il existe deux catégories de systèmes naturels utilisables chez les Brassicaceae pour 20 obtenir des plantes hybrides, l'auto-incompatibilité et la stérilité mâle. Le premier (auto-incompatibilité) est bien connu chez les Brassicacées ; il comporte cependant certaines limites d'utilisation ; sur les Brassicas, l'auto-incompatibilité a été longtemps utilisée cependant ce phénomène n'est pas fiable et les lots de semences produits sont souvent des mélanges de graines F1 et de semences issues 25 d'autofécondations. Le deuxième est basé sur l'absence de pollen viable (stérilité mâle) sur l'une des lignées parentales, ce qui permet l'obtention de lots de semences hybrides à 100%. Cette stérilité peut être de deux types, génique ou cytoplasmique. La stérilité génique, récessive ou dominante, est parfois utilisée, mais elle est d'une utilisation technique 30 difficile. De plus, la seule stérilité connue chez E. sativa est une stérilité génique récessive, qui en tant que telle ne peut être facilement utilisée dans un programme de sélection ou dans un système de production d'hybride. Les présents inventeurs ont donc eu l'idée d'utiliser une stérilité cytoplasmique pour produire des hybrides F1. Cette technique a été utilisée pour produire des hybrides F1, 35 notamment chez le Radis, la Carotte, le Céleri, la Betterave, l'Oignon, le Tournesol, le Fenouil, etc.... Mais pour Eruca sativa, aucune stérilité cytoplasmique n'a été trouvée au sein des cultivars existants ou dans les populations sauvages, contrairement aux plantes citées plus haut. Une autre possibilité est d'importer dans le genre Eruca des stérilités cytoplasmiques 5 venant d'espèces � apparentées �. Cependant, d'après la littérature, il n'existe pas d'espèces du genre Eruca qui soient porteuses d'une stérilité mâle cytoplasmique bien caractérisée qui puisse convenir pour l'importation dans d'autres espèces du genre Eruca. Les inventeurs ont donc utilisé la stérilité cytoplasmique provenant de plantes d'un genre 10 � apparenté �, et non d'une espèce apparentée, en l'occurrence provenant de plantes de l'espèce Brassica rapa, par croisement en suivant des protocoles originaux. Cette approche est hautement inventive car elle implique d'une part des croisements intergénériques, et il est bien connu de l'homme du métier que de tels croisements sont rarement viables, notamment quand le nombre de chromosomes est différent, ce qui est 15 le cas dans la présente espèce, Brassica rapa ayant 2n=20 chromosomes et Eruca sativa ayant 2n=22 chromosomes. De plus, de tels croisements, quand ils sont viables, sont encore plus rarement fertiles. D'autre part, cette approche implique la cohabitation, dans une même cellule, de génomes chloroplastique et nucléaire provenant de genres différents. En effet, le génome 20 chloroplastique provient du genre dit � apparenté � qui apporte la stérilité mâle cytoplasmique en tant que parent femelle, alors que le génome nucléaire est du genre Eruca. Or chez les crucifères (Brassicacées), le brevet EPO 549 726 enseigne que l'association dans la même cellule de génomes nucléaire et chloroplastique de genres différents entraîne un phénomène de chlorose. 25 Dans une publication de 1999, Matsuzawa et al décrivent le croisement entre une plante de l'espèce E. sativa (parent femelle) et une plante de l'espèce B. rapa (parent mâle), par sauvetage d'embryons, suivis de différents croisements avec des plantes B. rapa. Les plantes obtenues s'avèrent être mâles stériles. II est cependant à noter qu'elles ne sont ni du genre Eruca, ni porteuses d'une stérilité mâle cytoplasmique. 30 La présente invention concerne des plantes du genre Eruca mâles stériles, par le biais d'une stérilité mâle cytoplasmique, leurs différents constituants notamment cellules, les graines issues ou provenant de ces plantes, ainsi que leurs procédés d'obtention. Dans le cadre de la présente invention, les termes qui suivent ont plus particulièrement la 35 signification suivante : Croisement en retour, ou rétro croisement, ou backcross, désigne le croisement d'un hybride avec l'un des deux (2) types parentaux qui ont servi à le former. Pourcentage d'identité de deux séquences : le degré ou pourcentage d'identité entre deux séquences (protéiques ou nucléiques) est déterminé notamment en alignant les deux séquences afin de maximiser les points de concordance tout en minimisant les espaces (� gap �) ; il est obtenu en divisant le nombre d'acides aminés ou d'acides nucléiques communs par la longueur de la plus longue des deux séquences. La présente invention est dirigée vers une plante du genre Eruca, caractérisée en ce 10 qu'elle est porteuse d'une stérilité mâle cytoplasmique. Eruca est un genre de plantes à fleurs, de la famille des Brassicacées, originaire du bassin Méditerranéen. Par stérilité mâle pour une plante allogame, on entend que ladite plante ne peut pas être parent mâle lors d'un croisement, mais éventuellement parent femelle. Bien qu'il soit 15 parfois fait référence à une plante � mâle � ou � femelle �, il est à noter que c'est par abus de langage; dans le cas d'une stérilité mâle, il s'agit en fait d'une fleur hermaphrodite qui a des organes mâles déficients (ou inopérants) et donc qui ne peut être utilisée que comme fleur femelle. Une stérilité mâle selon la présente invention se caractérise de préférence par l'absence 20 de pollen viable pouvant féconder des organes femelles (organes mâles déficients). Une plante mâle stérile ne peut donc pas participer à un croisement en tant que parent mâle. Une plante mâle stérile selon la présente invention est de préférence parfaitement femelle fertile, c'est-à-dire qu'elle peut participer à un croisement, en tant que parent femelle, avec le même taux de fécondation qu'une plante qui serait mâle fertile. 25 Une stérilité mâle cytoplasmique est une stérilité mâle portée par le cytoplasme de la plante ou cellule, et plus particulièrement codée par son génome mitochondrial. Le cytoplasme (et donc le génome mitochondrial) étant hérité du parent femelle, toute plante issue du croisement entre une plante selon l'invention comme parent femelle (c'est-à-dire porteuse d'une stérilité mâle cytoplasmique), et d'un parent mâle quel qu'il soit, sera 30 également porteuse de la stérilité mâle cytoplasmique (ou CMS pour � Cytoplasmic Male Sterility �) du parent femelle. Comme une plante selon l'invention ne peut pas être parent mâle dans un croisement, du fait de sa stérilité mâle, toute plante issue par croisement d'une plante selon l'invention, est également porteuse d'une stérilité mâle cytoplasmique. Il s'agit donc d'un caractère dont nécessairement toute la descendance d'une plante ou 35 graine de l'invention héritera. La stérilité mâle cytoplasmique selon l'invention est une stérilité stable et fiable, c'est-à-dire que l'ensemble de la descendance d'une plante selon l'invention est mâle stérile. De manière préférentielle, l'invention concerne une plante de l'espèce Eruca sativa (ou Eruca vesicaria subsp sativa), qui est l'espèce la plus répandue du genre Eruca. Il s'agit d'une salade à la saveur piquante et légèrement amère, communément appelée � roquette cultivée � (ou bien, selon les pays, Garden Arugula (Eruca vesicatoria (L.) Cav. subsp. sativa), Rugula, Garden Rocket, Rocket, Rocketsalad, Rucola, Rugola, Rauke, Rokka, Rucula, Ruchette, Rughetta, ràbano-silvestre, oruga comûn etc...). Une plante selon l'invention présente de préférence un phénotype parfaitement normal, c'est-à-dire un phénotype essentiellement identique à celui d'une plante de la même espèce mâle fertile, la seule différence étant le caractère mâle stérile ou fertile. Pour le sélectionneur, il ne doit pas y avoir de différence phénotypique décelable, statistiquement significative, notamment au niveau de la forrne, de la taille, de la couleur ou de la saveur des feuilles. En particulier, une plante selon la présente invention ne présente aucun symptôme de chlorose en conditions normales de culture, notamment lorsque la température est inférieure à 10°C. Par chlorose, on entend une décoloration plus ou moins prononcée des feuilles due à un manque de chlorophylle. En vue d'une commercialisation pour la consommation, il est donc important qu'une plante selon l'invention ne soit pas atteinte de chlorose à quelque stade de développement de la plante que ce soit, dans des conditions normales de culture, spécialement lors de l'abaissement des températures. Par conditions normales de culture, on entend des conditions de culture qui n'entraînent aucun symptôme de chlorose chez une plante de l'espèce Eruca sativa ordinaire (mâle et 25 femelle fertile). Selon une mise en oeuvre préférée de l'invention, la plante selon l'invention, porteuse de la stérilité mâle cytoplasmique, est homozygote pour l'ensemble de son génome (nucléaire), ou au moins à plus de 90%, voire plus de 95% ou plus de 99%. Selon une autre mise en oeuvre préférée de l'invention, la plante dont il est question est 30 une plante hybride dite F1. Elle provient de préférence du croisement de deux plantes de la même espèce, de préférence Eruca sativa, qui proviennent de deux lignées phénotypiquement différentes. Quoi qu'il en soit, le parent femelle d'une plante hybride F1 selon l'invention est une plante du genre Eruca, de préférence de l'espèce Eruca sativa, porteuse de la stérilité 35 mâle cytoplasmique. La stérilité mâle cytoplasmique est connue à l'état naturel chez l'espèce Raphanus sativus (radis) et cette stérilité mâle a déjà été exploitée sous le nom de stérilité mâle cytoplasmique Ogura. Elle a notamment été transmise à différentes espèces du genre Brassica, comme montré dans le brevet EPO 549 726. Elle se caractérise par la séquence d'ADN comprise entre les nucléotides 928 et 2273 de la figure 1 (SEQ ID N°1) ou une séquence ayant au moins 50% d'identité avec ladite séquence et conférant une stérilité mâle cytoplasmique quand elle est présente dans le génome mitochondrial d'une plante. De préférence, la stérilité mâle cytoplasmique selon la présente invention est une stérilité issue de la stérilité mâle cytoplasmique de Raphanus sativus, ce qui se traduit par la présence dans le génome mitochondrial d'une plante de l'invention, de séquences originaires de R. sativus, de préférence originaires du génome mitochondrial de R. sativus. Lesdites séquences provenant du génome mitochondrial de Raphanus sativus représentent de préférence au moins 50% du génome mitochondrial selon l'invention, ou sont d'une longueur d'au moins 50, voire d'au moins 100, 200, 500 ou 1000 paires de bases consécutives. Dans une mise en oeuvre préférée, le génome mitochondrial d'une plante de l'invention comprend la séquence d'ADN comprise entre les nucléotides 928 et 2273 de la figure 1 (SEQ ID N°1) ou une séquence ayant au moins 50% d'identité avec ladite séquence et conférant la stérilité mâle cytoplasmique. De préférence, le génome mitochondrial d'une plante selon l'invention comprend une séquence ayant au moins 70%, de préférence au moins 80% d'identité, voire au moins 90% ou 95% d'identité ou même au moins 99% d'identité avec la séquence d'ADN comprise entre les nucléotides 928 et 2273 de la figure 1 (SEQ ID N°1), il comprend par exemple une séquence différant de la séquence d'ADN comprise entre les nucléotides 928 et 2273 de SEQ ID N°1 par la délétion de la guanine 1195. Selon une mise en oeuvre préférée, une plante selon l'invention comprend donc une séquence d'ADN dite stérilité Ogura, telle que décrite dans le brevet européen EPO 549 726. Il est à noter que des variants de la séquence SEQ ID N°1 mentionnée dans le brevet 30 EP 0 549 726 et liée à la CMS Ogura, ont été décrits, notamment sous les numéros d'accession Z12626 et Z18896. Par ailleurs, dans un mode de réalisation préféré de la présente invention, une plante telle que décrite porteuse d'une stérilité mâle cytoplasmique se distingue également au niveau du génome chloroplastique, d'une autre plante qui ne serait pas porteuse de ladite stérilité. 35 De préférence, une plante de l'invention cornporte dans ses chloroplastes, au niveau de l'ADN chloroplastique, des séquences qui ne sont pas du genre Eruca. Par exemple, au moins 500 paires de bases du génome chloroplastique ne sont pas du genre Eruca, de préférence au moins un millier de bases. Dans une situation préférée, l'intégralité du génome chloroplastique n'est pas celui du genre Eruca. La partie du génome chloroplastique qui n'est pas du genre Eruca peut notamment être du genre Brassica, de préférence Brassica ripa ou Brassica oleracea, ou bien des deux. De manière particulièrement préférée, il s'agit de séquences provenant du génome chloroplastique de Brassica oleracea. II peut également s'agir de séquences provenant de Raphanus sativus. Comme précisé plus haut, lesdites séquences s'entendent de séquences d'ADN comprenant au moins 50, voire au moins 100, 200 ou au moins 500 paires de bases consécutives. Selon un mode de réalisation plus particulièrement illustré dans la partie expérimentale de cette demande, une plante selon l'invention se caractérise par des cellules qui possèdent l'ADN génomique d'Eruca sativa, la séquence d'ADN stérilité Ogura dans l'ADN mitochondrial et l'ADN chloroplastique de Brassica oleracea. Des protocoles permettant la détermination de séquences au sein du génome mitochondrial et chloroplastique d'une cellule de plantes sont décrits dans la partie expérimentale (voir exemple 2). Ils peuvent être mis en oeuvre pour déterminer si une plante donnée, mâle stérile de manière cytoplasmique, comprend la stérilité dite Ogura dans son ADN mitochondrial et comprend de l'ADN chloroplastique de Brassica oleracea. Une plante selon l'invention se caractérise de préférence par un fragment amplifié de taille comprise entre 502 et 522 paires de bases quand les amorces oligo 37 et oligo 38 (respectivement SEQ ID N°2 et 3) sont utilisées pour amplifier par PCR le génome mitochondrial et/ou par un fragment amplifié de taille comprise entre 390 et 410 paires de bases quand les amorces TRNAFM-6100 et TRNAFM-987L (respectivement SEQ ID N°4 et 5) sont utilisées pour amplifier par PCR le génome mitochondrial. Lesdites amorces sont en effet présentes dans les différentes séquences répertoriées comme étant liées à la stérilité Ogura (ce sont des séquences communes), et la présence d'un fragment amplifié de taille attendue caractérise la stérilité mâle cytoplasmique Ogura, comme il est ressort de l'exemple 2 et de la figure 3. Pour déterminer si une plante mâle stérile est porteuse d'une stérilité cytoplasmique ou génique, un protocole de test simple consiste à faire des croisements avec une plante fertile et à déterminer la proportion de la descendance qui est également mâle stérile. Dans le cas d'une stérilité mâle cytoplasmique, toute plante issue de ce croisement est également mâle stérile, ainsi que toute plante issue de ce croisement par backcross avec la plante fertile. Dans le cas d'une stérilité génique récessive, en règle générale, aucune plante issue de ce croisement n'est mâle stérile. Dans le cas d'une stérilité génique dominante, la moitié des plantes issues de ce croisement sont également mâles stériles. En effet, si la stérilité génique est dominante, le parent femelle ne peut être qu'hétérozygote pour ce gène de stérilité et donc ne transmettre ce trait qu'à la moitié de la descendance. La ségrégation s'effectue donc de façon mendélienne dans la descendance dans le cas d'une stérilité génique, alors qu'il n'y a pas de ségrégation dans le cas d'une stérilité cytoplasmique, l'hérédité étant femelle. Il est à noter que la distinction entre une plante mâle stérile (cytoplasmique) selon l'invention et une plante mâle fertile, peut être réalisée à l'ceil nu ; en effet, les plantes sont phénotypiquement différentes du fait de l'absence de pollen dans le cas des plantes mâles stériles. Les figures 2A et 2B illustrent ce point. La présente invention concerne également des graines du genre Eruca, et plus particulièrement des graines porteuses d'une stérilité mâle cytoplasmique. L'invention concerne notamment des graines qui, après germination, permettent d'obtenir une plante telle que décrite plus haut, c'est-à-dire du genre Eruca et porteuse d'une stérilité mâle cytoplasmique. Elle concerne également des graines issues du croisement d'une plante telle que décrite plus haut, avec une autre plante du genre Eruca, qui soit mâle fertile. Comme indiqué plus haut, toute graine issue du croisement d'une plante selon l'invention et d'une autre plante du genre Eruca donnera également naissance à une plante du genre Eruca, porteuse d'une stérilité mâle cytoplasmique. Il a déjà été défini plus haut ce qu'il faut entendre par � stérilité mâle cytoplasmique �, dans le cadre des plantes de l'invention, et les définitions et mises en oeuvres préférées sont les mêmes pour ce qui concerne les graines selon l'invention. Il est à noter que la stérilité mâle cytoplasmique dont il est fait référence est une stérilité stable et fiable. De manière tout particulièrement préférée, cette stérilité mâle ne s'accompagne pas d'une stérilité femelle. En effet, des graines et plantes préférées dans le cadre de la présente invention sont femelle-fertiles. Préférentiellement, une graine du genre Eruca selon l'invention est une graine de l'espèce 30 Eruca sativa. Selon une mise en oeuvre préférée, une graine selon l'invention comprend dans son ADN mitochondrial des séquences provenant de Raphanus sativus, comme c'est le cas pour les plantes de l'invention, et plus particulièrement des séquences du génome mitochondrial de R. sativus. En effet, la stérilité mâle cytoplasmique est de préférence 35 issue de la stérilité mâle cytoplasmique de R. sativus, ce qui se traduit par la présence dans le génome mitochondrial d'une graine de l'invention, de séquences originaires de R. sativus. Lesdites séquences provenant du génome mitochondrial de Raphanus sativus représentent de préférence au moins 50% du génome mitochondrial d'une graine selon l'invention, de préférence au moins 80%, ou sont d'une longueur d'au moins 50, voire d'au moins 100, 200, 500 oul000 paires de bases consécutives. Dans une mise en oeuvre préférée, le génome mitochondrial d'une graine comprend la séquence d'ADN comprise entre les nucléotides 928 et 2273 de la figure 1 (SEQ ID N°1) ou une séquence ayant au moins 50% d'identité avec ladite séquence et conférant la stérilité mâle cytoplasmique. De préférence, le génome mitochondrial d'une graine selon l'invention comprend une séquence ayant au moins 70%, au moins 80%, voire au moins 90% ou 95% d'identité ou au moins 99% d'identité avec ladite séquence d'ADN, il comprend par exemple une séquence différant de la séquence d'ADN comprise entre les nucléotides 928 et 2273 de SEQ ID N°1 par la délétion de la guanine 1195. La stérilité mâle cytoplasmique est alors dite stérilité mâle Ogura telle que mise en oeuvre dans le brevet EPO 549 726 de l'INRA. II est à noter que des variants de la séquence SEQ ID N°1 mentionnée dans le brevet EP 0 549 726 et liée à la CMS Ogura, ont été décrits, notamment sous les numéros d'accession Z12626 et Z18896. Une graine selon l'invention se caractérise également par un fragment amplifié de taille comprise entre 502 et 522 paires de bases quand les amorces oligo 37 (SEQ ID N°2) et oligo 38 (SEQ ID N°3) sont utilisées pour amplifier par PCR le génome mitochondrial de ladite graine et/ou par un fragment amplifié cle taille comprise entre 390 et 410 paires de bases quand les amorces TRNAFM-610U (SEQ ID N°4) et TRNAFM-987L (SEQ ID N°5) sont utilisées (voir exemple 2). Par ailleurs, dans un mode de réalisation préféré, une graine telle que décrite porteuse d'une stérilité mâle cytoplasmique se distingue également au niveau du génome chloroplastique, d'une autre graine qui ne serait pas porteuse de ladite stérilité. De préférence, une graine de l'invention comporte dans ses chloroplastes, au niveau de l'ADN chloroplastique, des séquences qui ne sont pas du genre Eruca. Par exemple, au moins 50 paires de bases du génome chloroplastique ne sont pas du genre Eruca, de préférence au moins 100, voire au moins 200 ou 500, de préférence encore au moins un millier de bases. Dans une situation préférée, l'intégralité du génome chloroplastique n'est pas celui du genre Eruca. La partie du génome chloroplastique qui n'est pas du genre Eruca peut notamment être du genre Brassica, de préférence Brassica rapa ou Brassica oleracea, ou bien des deux. De manière particulièrement préférée, il s'agit de séquences provenant du génome chloroplastique de Brassica oleracea. Il peut également s'agir de séquences provenant de Raphanus sativus. Comme précisé plus haut, lesdites séquences s'entendent de séquences d'ADN comprenant au moins 50 paires de bases consécutives, de préférence au moins 100, au moins 200 voire au moins 500 paires de bases. La présente invention concerne aussi des cellules de plantes, du genre Eruca, qui soient porteuses d'une stérilité mâle cytoplasmique. De préférence, une cellule selon la présente invention est issue d'une plante ou bien d'une graine telles que décrites précédemment. Il peut s'agir d'une cellule à tout stade de développement ou de différenciation. Il peut s'agir de cellules reproductrices, de cellules de cal, du système racinaire, foliaire, de l'apex, du méristème, ou de toute autre partie de la plante. La cellule en question peut être isolée, en amas ou au sein d'un tissu. Elle peut être en suspension ou sur un milieu solide. De préférence, une cellule dans le cadre de l'invention 15 est une cellule de l'espèce Eruca sativa. Comme explicité plus haut en rapport avec les plantes et les graines, une cellule selon une mise en oeuvre préférée de l'invention comprend dans son génome mitochondrial des séquences provenant de R. sativus, de préférence des séquences provenant du génome mitochondrial de R. sativus. Lesdites séquences provenant du génome mitochondrial de 20 R. sativus représentent de préférence au moins 50% du génome mitochondrial d'une cellule selon l'invention, de préférence au moins 80%, ou sont d'une longueur d'au moins 50, voire d'au moins 100, 200, 500 ou 1000 paires de bases consécutives. Dans une mise en oeuvre préférée, le génome mitochondrial d'une cellule comprend la séquence d'ADN comprise entre les nucléotides 928 et 2273 de la figure 1 (SEQ ID N°1) 25 ou une séquence ayant au moins 50% d'identité avec ladite séquence et conférant la stérilité mâle cytoplasmique. De préférence, le génome mitochondrial d'une cellule selon l'invention comprend une séquence ayant au moins 70%, 80%, voire au moins 90% ou 95% d'identité ou au moins 99% d'identité avec ladite séquence d'ADN, c'est-à-dire qu'elle possède la stérilité mâle cytoplasmique dite stérilité mâle Ogura telle que mise en 30 oeuvre dans le brevet EPO 549 726 de l'INRA. Il comprend par exemple une séquence différant de la séquence d'ADN comprise entre les nucléotides 928 et 2273 de SEQ ID N°1 par au moins la délétion de la guanine 1195. Il est à noter que des variants de la séquence SEQ ID N°1 mentionnée dans le brevet EP 0 549 726 et caractéristique de la CMS Ogura, ont depuis été décrits, notamment 35 sous les numéros d'accession Z12626 et Z18896. Une cellule selon l'invention se caractérise également par un fragment amplifié de taille comprise entre 502 et 522 paires de bases quand les amorces oligo 37 (SEQ ID N°2) et oligo 38 (SEQ ID N°3) sont utilisées pour arnplifier par PCR le génome mitochondrial de ladite cellule et/ou par un fragment amplifié de taille comprise entre 390 et 410 paires de bases quand les amorces TRNAFM-610U (SEQ ID N°4) et TRNAFM-987L (SEQ ID N°5) sont utilisées (voir exemple 2). Par ailleurs, dans un mode de réalisation préféré, une cellule de plante telle que décrite porteuse d'une stérilité mâle cytoplasmique se distingue également au niveau du génome chloroplastique, d'une autre cellule qui ne serait pas porteuse de ladite stérilité. Notamment, une cellule de l'invention comporte de préférence dans son ADN chloroplastique, des séquences qui ne sont pas du genre Eruca. Comme déjà explicité en rapport avec les plantes et graines de l'invenlion, il peut s'agir par exemple, d'au moins 50 paires de bases du génome chloroplastique qui ne sont pas du genre Eruca, de préférence au moins 100, voire au moins 200 ou 500, de préférence encore au moins un millier de bases. Dans une situation préférée, l'intégralité du génome chloroplastique n'est pas celui du genre Eruca. La partie du génome chloroplastique qui n'est pas du genre Eruca peut notamment être du genre Brassica, de préférence Brassica rapa ou Brassica oleracea, ou bien des deux. De manière particulièrement préférée, il s'agit de séquences provenant du génome chloroplastique de Brassica oleracea. Il peut également s'agir de séquences provenant de Raphanus sativus. Comme précisé plus haut, lesdites séquences s'entendent de séquences d'ADN comprenant au moins 50 paires de bases consécutives, voire au moins 100, 200 ou 500. La présente invention se rapporte également à différents procédés permettant d'obtenir des plantes, cellules ou graines telles que décrites dans les parties précédentes. L'invention a notamment trait à un procédé d'obtention d'une plante ou d'une graine, de préférence de l'espèce Eruca sativa, comprenant : a) le croisement intergénérique d'une plante Brassica rapa, porteuse d'une stérilité mâle cytoplasmique, comme parent femelle, et d'une plante Eruca sativa mâle fertile, comme parent mâle ; b) l'obtention d'une plante issue du croisement précédent par sauvetage d'embryons ; c) le croisement d'une plante issue de l'étape b), comme parent femelle, avec une plante Eruca sativa mâle fertile, comme parent mâle ; d) l'obtention d'une plante issue du croisement c), éventuellement par sauvetage d'embryons. Des plantes Brassica rapa porteuses d'une stérilité mâle cytoplasmique, sont disponibles dans le commerce (par exemple : navet obtention Clause, variété Plessi). II en est de même des plantes E. sativa (mâle fertile), permettant de réaliser le premier croisement intergénérique. Les inventeurs ont démontré qu'un tel croisement intergénérique, peut conduire à l'obtention d'hybrides viables, et mâles stériles. Au fin d'une telle obtention, il est toutefois nécessaire, après fécondation, de prélever les siliques puis les ovules et de les mettre en culture in vitro, c'est-à-dire de procéder à une étape de sauvetage d'embryons. Par cette technique, il est ainsi possible d'obtenir et de développer une plante correspondant au croisement intergénérique d'une plante Brassica rapa, porteuse d'une stérilité mâle cytoplasmique, comme parent femelle, et d'une plante Eruca sativa mâle fertile, comme parent mâle. II est toutefois à noter que l'obtention d'une plante issue de ce croisement peut nécessiter de réaliser un nombre important de croisements et de mises en culture d'ovules. Les inventeurs ont toutefois répété plusieurs fois ce croisement intergénérique et ont montré la faisabilité, la viabilité et la fertilité (femelle) d'un tel croisement (voir exemple 1). Il est à noter à ce propos que les deux espèces ne possèdent pas le même nombre de chromosomes (2n=22 pour E. sativa et 2n=2CI pour B. rapa). Le procédé comprend ensuite un nouveau croisement en retour (backcross) avec une plante de l'espèce E. sativa utilisée comme parent mâle, et de nouveau l'obtention d'une plante issue de ce croisement. A ce stade également il peut être nécessaire de procéder à un sauvetage d'embryons dans le cas où aucun ovule ne se développe in vivo. Ces étapes de rétro-croisement et obtention d'une plante (étapes c et d du procédé) peuvent être répétées plusieurs fois. Elles sont de préférence mises en oeuvre au moins deux voire au moins trois fois, afin que la plante obtenue soit phénotypiquement de l'espèce E. sativa, ou bien qu'il s'agisse d'une graine également de l'espèce E. sativa, et que son nombre de chromosomes soit équivalent à celui de E. sativa, c'est-à-dire 2n=22. Après la première ou deuxième mise en oeuvre des étapes c et d, il est généralement inutile de procéder au sauvetage d'embryons pour obtenir une plante viable. Les plantes obtenues par ce procédé ou bien les graines qui en sont issues, sont porteuses de la stérilité mâle cytoplasmique. L'invention concerne également les plantes et graines qui sont susceptibles d'être obtenues par la mise en oeuvre du procédé tel que décrit. Concernant le sauvetage d'embryons, il s'agit d'une technique bien connue de l'homme du métier et régulièrement pratiquée dans le cas de croisements intergénériques ou plus couramment interspécifiques. Cette technique est plus particulièrement décrite dans la publication Rahman (2004) et sa mise en oeuvre est détaillée dans la section expérimentale de la demande (exemple 1). Les différents milieux, conditions et temps de culture, pour la mise en oeuvre de cette technique, sont décrits dans la littérature et peuvent être adaptés ou modifiés si 5 nécessaire. Des exemples en sont donnés dans la partie expérimentale. La présente invention concerne également l'utilisation d'une plante telle que décrite dans le cadre de la présente demande, comme partenaire femelle dans un croisement avec une autre plante du genre Eruca mâle fertile. Par exemple, une plante de l'espèce E. sativa, telle que décrite dans la demande, peut être croisée avec une plante du genre 10 Eruca, qui ne soit pas mâle stérile. Ainsi, grâce à l'utilisation d'une plante E. sativa porteuse d'une stérilité mâle cytoplasmique, il est possible par exemple, par des programmes de sélection, d'obtenir pour chaque sous-espèce ou variété d'E. sativa connue, une sous-espèce ou variété équivalente qui soit mâle stérile. II est également possible d'obtenir des plantes du genre 15 Eruca mais d'autres espèces que E. sativa, en réalisant un premier croisement interspécifique, suivi de différents croisements en retour. La stérilité mâle cytoplasmique d'une plante selon l'invention peut donc être utilisée comme vecteur de la stérilité mâle cytoplasmique chez une autre plante d'Eruca, ou chez une plante Eruca sativa d'une autre sous-espèce ou variété. 20 L'invention concerne également l'utilisation d'une plante de l'espèce Brassica rapa, porteuse d'une stérilité mâle cytoplasmique, comme vecteur de la stérilité mâle cytoplasmique chez une plante d'Eruca, de préférence chez une plante Eruca sativa. Comme démontré dans la partie expérimentale qui suit, de manière surprenante, les inventeurs ont en effet découvert qu'il était possible de transférer la stérilité mâle 25 cytoplasmique connue de Brassica rapa chez des plantes du genre Eruca, grâce à un croisement intergénérique uniquement, et sans recours à la fusion de protoplastes. Ils ont par ailleurs démontré que les plantes obtenues n'étaient pas atteintes de chlorose, et ce contrairement à l'enseignement du brevet EP 0 549 726 qui correspond au préjugé répandu chez les personnes travaillant dans le domaine de l'invention. 30 Les inventeurs ont donc obtenu pour la première fois une plante de la famille des Brassicacées mais d'un genre autre que Brassica, qui soit porteuse d'une stérilité mâle cytoplasmique issue de Raphanus sativus, et dont le génome chloroplastique soit en partie celui de Brassica oleracera, c'est-à-dire qu'il comprend au moins 50 paires de bases consécutives de Brassica oleracera, ide préférence au moins 100, 200 ou 500, et 35 ce sans être atteinte de chlorose, notamment à des températures inférieures à 10°C. Légende des figures. Figure 1 : Cette figure illustre la séquence SEQ ID N°1 telle que décrite dans le brevet EPO 549 726 relatif à la stérilité cytoplasmique Ogura. Les fragments en gras soulignés correspondent aux amorces explicitées dans l'exemple 2 de la partie expérimentale. II est à noter que des variants de la séquence SEQ ID N°1 mentionnée dans le brevet EP 0 549 726 ont depuis été décrits, notamment sous les numéros d'accession Z12626 et Z18896. Figures 2A et 2B : Ces figures sont des photographies représentant à gauche une fleur d'une plante E. sativa mâle fertile, et à droite une fleur d'une plante E. sativa selon l'invention porteuse d'une stérilité mâle cytoplasmique et donc dépourvue de pollen. Figure 3: Cette figure illustre le résultat de la migration électrophorétique sur gel d'agarose de différents échantillons d'ADN. Le premier puits (a) correspond à un échantillon d'ADN provenant de B. oleracea porteur de la stérilité mâle cytoplasmique dite Ogura telle que mise en oeuvre dans le brevet EP 0 549 726, le second (b) correspond à un échantillon d'ADN provenant de B. oleracea fertile, le 3ème puits (c) correspond à un échantillon d'ADN provenant de B. rapa porteur de la stérilité mâle cytoplasmique dite Ogura ; les puits 4 à 6 (d, e et f) correspondent à des échantillons d'ADN provenant de différentes lignées d'Eruca sativa fertiles ; les puits 7 à 9 (g, h, i) correspondent à des échantillons d'ADN Eruca sativa de différentes lignées porteuses de la stérilité mâle cytoplasmique selon l'invention. PARTIE EXPERIMENTALE Exemple 1 : obtention de plantes E. sativa mâles stériles (cytoplasmique) Résumé des travaux Les inventeurs ont croisé des plantes de l'espèce Brassica rapa porteuses d'une stérilité mâle cytoplasmique (dite stérilité Ogura, telle que mise en oeuvre dans le brevet EPO 549 726, INRA) avec des plantes fertiles de l'espèces Eruca sativa. Après plusieurs rétro croisements, ils ont ainsi obtenu des plantes du genre Eruca, et plus particulièrement de l'espèce Eruca sativa qui soient mâles stériles (par le biais d'une stérilité mâle cytoplasmique) et qui puissent donc être utilisées comme parents femelles pour l'obtention d'hybrides. 14 Plus précisément, les inventeurs ont effectué des croisements entre des plantes de l'espèce Brassica rapa comme parent femelle, porteuses de la stérilité mâle cytoplasmique dite Ogura, obtenues conformément à l'enseignement du brevet EP0 549 726 et disponibles commercialement, avec des plantes de l'espèce Eruca sativa (fertiles) comme parent mâle. Ils ont ainsi obtenu une plante F1, résultant de ce croisement intergénérique. Dans une seconde étape, les inventeurs ont réalisé un premier rétro croisement (backcross 1 ou BC1) entre les plantes F1 obtenues (Brassica rapa x Eruca sativa) et des plantes de l'espèce Eruca sativa, c'est-à-dire le schéma suivant : (Brassica rapa x Eruca sativa) x Eruca sativa (en adoptant la convention internationale selon laquelle le parent femelle est mentionné du côté gauche de la croix et le parent mâle du côté droit). Deux plantes ont été obtenues qui étaient mâles stériles (CR2E1 et CR2E2). Les inventeurs ont ensuite procédé à un second rétro croisement (BC2) selon le schéma 15 suivant : ((Brassica rapa x Eruca sativa) x Eruca sativa) x Eruca sativa. Une unique plante a été obtenue, par sauvetage d'embryons, également mâle stérile (CR3E). Un troisième rétro croisement a été réalisé, toujours avec une plante de l'espèce Eruca 20 sativa, ce qui a permis d'obtenir plus de 200 plantes, toutes mâles stériles, sans qu'il soit nécessaire de faire appel à la technique de sauvetage d'embryons. Quatre plantes parmi 50 ont été utilisées pour le quatrième rétro croisement (BC4). A l'issue de ce quatrième rétro croisement, les plantes obtenues présentaient l'ensemble des caractères phénotypiques caractérisant l'espèce Eruca sativa et ont pu être utilisées 25 dans des programmes de sélection, sans qu'il soit nécessaire d'avoir recours au sauvetage d'embryons. Les inventeurs ont ensuite poursuivi ce travail de sélection jusqu'à l'obtention de lignées cellulaires parentales porteuses d'une stérilité mâle cytoplasmique prêtes pour la production d'hydrides. Les inventeurs ont par ailleurs réalisé des croisements B. Oleracea (stérilité mâle 30 cytoplasmique Ogura) x E. sativa qui n'ont pas permis d'obtenir des hybrides viables et femelles fertiles. Description plus détaillée des différentes étapes : 1. Protocole pour les croisements intergénériques ou interspécifiques : 35 Hybridation des fleurs : Aucune particularité, le protocole usuel décrit dans la littérature a été utilisé. Les croisements ont été du type B. rapa x E. sativa, B. oleracea x E. sativa, (B. oleracea x E. sativa ) x E. sativa, (B. rapa x E. sativa) x E. sativa, etc.... Prélèvement des ovaires : Les siliques sont prélevées avant leur jaunissement (mort) sur la plante, pour mise en culture (entre 4 jours et un mois après le croisement). Sur les siliques prélevées, seules les siliques longues de plus de 20 mm avec un plus grand diamètre et des boursouflures sont utilisées. Désinfection : Les siliques sont mises dans des boules à thé. Elles sont passées à l'alcool pendant 5 minutes. Elles sont ensuite passées dans le bayrochlor 3cp/L d'eau stérile avec quelques gouttes de Tween 20 (polyoxyéthylène sorbitan monolaurate) pendant 30 minutes, en agitant régulièrement la boule à thé. Elles sont ensuite rincées trois fois de suite à l'eau stérile, en agitant de temps en temps la boule à thé. Mise en culture des ovules : Sur les siliques mises en culture, seules celles ayant évoluées sont ouvertes. Ce sont les 20 siliques de plus de 20 mm et avec un plus grand diamètre. L'ouverture des ovaires se fait le long de la fente de déhiscence, à l'aide d'une aiguille à dissocier lancéolée. Les ovules bien bombés et blanchâtres sont: prélevés. Ils sont mis en culture de façon à ce que le hile soit en contact avec la gélose afin de permettre le développement de 25 l'embryon. Les ovules mis en culture sont observés régulièrement et repiqués tous les 15 jours. Les ovules qui noircissent et/ou qui deviennent plats (ce qui est synonyme d'avortement) sont éliminés. 30 Conditions de culture pour les cultures d'ovaires et d'ovules Milieu N6, en lumière diffuse avec une photopériode de 16 heures, avec une température de 22°C durant les périodes de jour et 20°C durant les périodes de nuit. La composition de ce milieu N6 est détaillée dans les publications Chu, 1978 et Chu et aI, 1975. 35 2. Développement et multiplication des plantules obtenues à partir des embryons. Composition des différents milieux de culture pour le développement et la multiplication des plantules obtenues : Les milieux 01, E, I et M sont composés d'une base de Murashige et Skoog (Macro et micro éléments), avec soit des vitamines B5 de Gamborg soit des vitamines de Morel, avec ou sans hormones. Ces milieux sont décrits dans la littérature, et plus particulièrement dans Cao et Earle (2003). Développement des embryons : Les embryons apparaissent entre 1 mois et 1 mois et demi après la mise en culture des ovules. Les embryons sont placés en lumière directe avec une photopériode de 16 heures, avec une température de 22°C durant les périodes de jour et 20°C durant les périodes de nuit. Les embryons peuvent évoluer de deux façons : soit ils forment une plantule, soit il y a formation d'un cal, régénérant différentes plantules. En effet, les ovules mis en culture n'ont pas donné tout de suite des plantules, il y a eu formation de cals, avec parfois des bourgeons dessus. Les plantules sont isolées sur un milieu de développement, le milieu 01 (ou Mi 01). Multiplication des expiants Pour les cals : Les cals sont repiqués sur un milieu d'induction Mi I, pour régénérer des bourgeons. Après 15 jours sur ce milieu, il faut vérifier si les cals qui ont régénéré quelques bourgeons ont tendance à vitrifier. Les bourgeons sont repiqués sur le milieu Mi 01. Pour les bourgeons : Tous les bourgeons issus des cals ont subi des subcultures sur le milieu de développement Mi 01, puisque sur ce milieu les bourgeons ont formé de belles plantules. Celles-ci sont bien vertes avec un bon développement des feuilles, parfois il y a eu multiplication et apparition de nouveaux bourgeons. Par contre, les racines ont du mal à apparaître. Les plantules sont alors mises en culture sur un milieu d'enracinement Mi E. Comme mentionné plus haut, si les cals ont régénéré des bourgeons peu développés, ceux-ci sont d'abord mis en culture sur un milieu de multiplication Mi M. L'éventuel problème de vitrification est résolu par une subculture sur milieu Mi 01 (milieu 35 de développement) des plantules. Les plantules ne présentent ensuite plus de vitrification et se développent par la suite normalement. Comme la vitrification peut être réversible par cette subculture sur Mi 01, le milieu de multiplication Mi M peut donc être utilisé pour la multiplication des bourgeons. Toutefois, il est préférable de ne faire qu'une seule culture d'un mois environ sur ce milieu. Récapitulatif : pour le développement et la multiplication des expiants, deux cas de figure sont possibles : 1) II y a un passage par cal. La culture de cals s'effectue sur un milieu d'induction. Les cals régénèrent des bourgeons. 2) On dispose de bourgeons qui peuvent être directement developpés. Cette culture 10 s'effectue sur un milieu de développement Mi 01. Afin de multiplier ces plantules, si la plantule n'a pas de problème de développement, la culture de noeuds est utilisée sur milieu Mi 01. Ces noeuds (ou bourgeons axillaires) se développent en plantules. Si la plantule est chétive et/ou a des problèmes de développement, elle est 15 repiquée sur un milieu de multiplication Mi M. Le milieu M provoque un phénomène de vitrification, mais celui-ci est réversible par une subculture des plantes sur milieu 01. Enracinement des plantules : 20 Pour enraciner les plantules multipliées, en vue d'une acclimatation, une culture sur un milieu d'enracinement Mi E ou sur un milieu N6 sans hormones est réalisée. Les plantules se trouvant sur le milieu E sont bien vertes, n'ont pas de cals à leur base et s'enracinent mieux que sur le milieu Mi 01. 25 Acclimatation : Les inventeurs ont ensuite procédé à l'acclimatation dès que les plantules avaient des racines bien développées. La culture in vitro a été poursuivie jusqu'à l'obtention de telles racines. Les plantes sont acclimatées en godets individuels avec un substrat horticole Klasmann 30 Potgrong H, et maintenues sous mini serre pendant une semaine. Au bout d'une semaine, les inventeurs ont obtenu de belles plantes avec un bon enracinement, qui ont été sorties des mini serres. Au bout de trois semaines, les plantes présentaient un bon système racinaire et un bon développement foliaire. Les plantes ont été ensuite été plantées en pleine terre, sous 35 tunnel. Le phénotypage des plantes ainsi obtenues est réalisé afin de sélectionner celles dont les caractéristiques phénotypiques sont les plus proches de E. sativa, tout en étant porteuses de la stérilité mâle cytoplasmique (détectable phénotypiquement du fait de l'absence de pollen). 3. Résultats Premier croisement interqénérique La première année, pour le croisement intergénérique, les inventeurs ont suivi la technique décrite dans Agnihotri et al 1990, qui décrit la technique de culture d'ovaires 10 (siliques) puis d'ovules, après avoir cultivé les ovaires in vitro. Les inventeurs ont réalisé 14 mises en culture. Ils ont mis environ 120 ovaires (siliques) du croisement B. rapa porteur de la stérilité mâle cytoplasmique (CMS) x Eruca sativa. Les inventeurs ont réalisé que, contrairement à ce qui était décrit dans la publication, les ovaires grossissaient sans avoir réellement d'ovules développés à l'intérieur. Ils ont donc 15 ouvert les ovaires pour mettre directement les ovules en culture, pour les mises en culture 9 à 14. Les inventeurs ont ainsi obtenu 2 plantules d'un même ovule qu'ils ont considéré comme une origine ainsi qu'une structure (cal) issue d'un autre croisement ; cette dernière n'a pas donné de bourgeons. 20 Les deux plantules ont été développées sur Mi 01. Les inventeurs ont obtenu 9 plantes au total. Premier croisement en retour : Le tableau 1 récapitule le nombre de siliques prélevées, d'ovules avortés ou viables et le 25 nombre d'embryons obtenus par type de croisement, la seconde année. La première ligne de ce tableau correspond au premier rétro-croisement entre une plante résultant du croisement intergénérique de l'année précédente (B. rapa X E. sativa) avec une plante du genre E. sativa. La seconde ligne correspond à la répétition du croisement intergénérique précédemment 30 obtenu (B. rapa X E. sativa), afin de confirmer sa reproductibilité. La troisième ligne correspond au premier rétro-croisement entre une plante résultant du croisement intergénérique (B. oleacera X E. sativa) avec une plante du genre E. sativa. Colonne A : type de croisement, 35 Colonne B : Nombre de croisements réalisés, Colonne C : nombre de siliques prélevées, 20 Colonne D : nombre d'ovules avortés à l'ouverture de la silique, Colonne E : nombre total d'ovules mis en culture, Colonne F : nombre d'embryons germés Tableau 1 : A B C D E F (B rapa x E. sativa) x 10 5006 230 213 1 ovule ayant donné E. sativa. deux embryons (B. rapa) x E. sativa 1 521 204 150 2 ovules donnant chacun un embryon (B. oleracea x E. 8 125 22 36 aucun sativa) x E. sativa Pour le croisement (B rapa x E. sativa) x E. sativa, les inventeurs ont obtenu un ovule qui s'est développé et a donné deux embryons bien distincts (voir première ligne du tableau 1). Chaque embryon a par la suite donné plusieurs plantules. La codification suivante a été adoptée : lève plantule issue du 1er embryon : notée 1.1 ; 2ème plantule issue du 1 er embryon : notée 1.2 ; etc... 1 ère plantule issue du 2nd embryon : notée 2.1, etc.... Pour le croisement B. rapa X E. sativa, deux ovules se sont développés, donnant chacun 15 un embryon. Ils ont été notés ainsi : lets plantule de l'ovule 1 : 3.1 ; lère plantule d,e l'ovule 2 : 4.1, etc.... Tableau 2 récapitulant, pour chaque croisement, la codification adoptée : croisement codification (B rapa x E. sativa) x E. sativa 1 1.1 Ovule 1 ; embryon 1 1 2 1.3 1.4 (B rapa x E. sativa) x E. sativa 2 2.1 Ovule 1 ; embryon 2 2 2 2.3 2.4 2.5 croisement codification B rapa x E. sativa 3 3.1 Ovule 1 ; embryon 3 3.2 3.3 B rapa x E. sativa Ovule 2 ; embryon 4 4 4.1 L'embryon 4.1 s'est avéré ne pas avoir de capacité à se développer, à régénérer et à se multiplier, contrairement aux embryons 1, 2 et 3. Récapitulatif des BC1 : Croisement (B rapa x E. sativa) x E. sativa : à partir d'un même ovule, obtention de deux embryons. Pour le 1ef embryon, obtention initialement de 4 plantes, non pas par multiplication végétative, mais par prolifération sur cal. Au sein d'une plante, les inventeurs ont obtenu différentes plantules par multiplication végétative. Pour le deuxième embryon, cinq plantes ont été obtenues initialement sur cal (voir tableau 2) mais deux seulement ont survécu, et pour chacune, les inventeurs ont obtenu différentes plantules par multiplication végétative. Tableau 3 récapitulant le nombre de plantules obtenues: croisement codification plantules (B rapa x E. sativa) x E. sativa 1 Plante 1 1 plantule Ovule 1 ; embryon 1 Plante 2 4 plantules identiques Plante 3 5 plantules identiques Plante 4 2 plantules identiques (B rapa x E. sativa) x E. sativa 2 Plante 2 5 plantules identiques Ovule 1 ; embryon 2 Plante 5 2 plantules identiques Les plantes issues du premier embryon du croisement (B rapa x E. sativa) x E. sativa sont dénommées de façon générique CR2E1 (signifiant 2ème croisement, donc 1& rétro-croisement, embryon 1). Les plantes issues du second embryon du croisement (B rapa x E. sativa) x E. sativa sont 20 dénommées de façon générique CR2E2 (signifiant 2ème croisement, donc 1& rétro-croisement, embryon 2). Second croisement en retour : L'année suivante, les inventeurs ont dé nouveau croisé les plantes obtenues précédemment, issues du croisement (B rapa x E. sativa) x E. sativa, en tant que parents femelles, dans un croisement avec E. sativa en tant que parents mâles. Les caractéristiques des différents croisements sont les suivantes : Tableau 4 : Origine de la femelle Nb de siliques Nb d'ovule mis Nb d'embryons prélevées en culture obtenus CR2E1 2 0 0 CR2E1 2 0 0 CR2E1 19 1 0 CR2E1 28 0 0 CR2E1 32 0 0 CR2E2 31 0 0 CR2E2 34 8 0 CR2E2 25 4 0 CR2E2 31 7 1= CR3E CR2E2 28 7 0 CR2E2 30 9 0 CR2E2 22 1 0 CR2E2 31 1 0 CR2E2 31 0 0 CR2E2 28 4 0 CR2E2 39 10 0 CR2E2 31 0 0 CR2E2 27 0 0 CR2E2 32 5 0 CR2E2 29 10 0 CR2E2 27 13 0 Du seul embryon obtenu (CR3E), les inventeurs ont pu régénérer 4 plantules génétiquement identiques, dénommées CR3-A, CR3-B, CR3-C et CR3-D. Elles sont cultivées en pots de 12 litres, dans un mélange terreau de semis avec un terreau sableux. Les plantes CR2, CR3 et Eruca sativa sont arrosées avec une solution fertilisante deux fois par semaine. Des traitements phytosanitaires sont également réalisés de manière périodique pour éradiquer les pucerons. Dès que les plantes CR3 sont devenues plus vigoureuses, un nouveau croisement en retour avec E. sativa a été réalisé, donc les caractéristiques sont les suivantes : Nombre de boutons et fleurs fécondés : 332 ; Nombre de siliques prélevés : 264 siliques, Nombre d'ovules mis en culture : 843 ovules, Les siliques ayant l'air de bien se développer après fécondation, sont disséquées sur paillasse et les ovules ont été directement placés sur papier buvard humide, ce qui correspond à une germination in vivo. Les ovules ont germé normalement et les inventeurs ont ainsi obtenu des plantules qui 15 ont ensuite été mises en terre et cultivées en serre pépinière. Les quatre plantes issues de CR3E (CR3-A, CR3-B, CR3-C et CR3-D) sont bouturées in vitro, dans le but d'une sauvegarde de génotype in vitro, suivant le protocole suivant : passages des bourgeons axillaires dans de l'alcool à 70° ; puis 30 minutes dans une solution de Bayrochlor (3 cp/litre) et 3 rinçages à 20 l'eau stérile, mise en culture sur milieu 01 en tube. Obtention d'embryons à partir d'ovules issus du croisement CR3E X E. sativa. Les inventeurs ont obtenu 51 embryons viables qui se sont développés en plantules, à 25 partir des ovules mis en culture in vitro. Ils ont aussi obtenu 73 plantules à partir des mises en culture sur papier buvard (in vivo). Récapitulatif : Nombre d'ovules mis en culture in vitro : 654. 30 Nombre d'embryons obtenus : 51, soit un pourcentage de réussite : 7,8% ; Nombre d'ovules mis en culture in vivo sur papier buvard : 189, Nombre d'embryons obtenus : 73, soit un pourcentage de réussite : 38,6% ; Ces plantes, issues du croisement CF3E x E. sativa sont dénommées CR4E. Sur les 73 plantules CR4E (obtenues par mises en culture in vivo des ovules) devenues 35 plantes, 4 plantes (CR4E-11, CR4E-12, CR4E-28 et CR4E-30) ont été retenues, sur la base d'une sélection phénotypique. Afin d'obtenir le sauvetage de ces plantes, celles-ci sont bouturées in vitro et in vivo. Bouturaqe in vitro : Protocole : désinfection des axillaires et apex dans une solution de bayrochlor à 4 cp/litre, agitation pendant 25 minutes, suivi de 3 rinçages successifs à l'eau stérile. Les axillaires ou apex sont ensuite mis en culture sur du milieu 01. CR4E-11 : 10 expiants mis en culture; CR4E-12 : 13 expiants mis en culture, CR4E-28 : 11 expiants mis en culture et CR4E-30 : 15 expiants mis en culture. Bouturaqe in vivo : Protocole : les apex ou axillaires sont mis dans des petits pots remplis de substrat de semis et placés à l'étouffée en pépinière. CR4E-11 : 6 boutures; CR4E-12 : 8 boutures, CR4E-28 : 2 boutures et CR4E-30 : 7 boutures. Résultats du bouturage in vitro : CR4E-11 : reste 1 expiant sain; CR4E-12 : restent 4 explants sains, CR4E-28 : restent 3 explants sains et CR4E-30 : restent 5 expiants sains. II est cependant à noter que ce sauvetage est à titre conservatoire et qu'il n'est pas strictement nécessaire; en effet, des graines ont été obtenues sur les plantes initiales, assurant déjà les sauvegardes génétiques el: rendant donc le sauvetage superflu. Suite à ce quatrième croisement, les plantes obtenues et sélectionnées sont phénotypiquement de l'espèce E. sativa, elles sont mâles stériles, et peuvent maintenant entrer dans des programmes de sélection pour l'amélioration des plantes E. sativa. Exemple 2: Caractérisation des génomes chloroplastique et mitochondrial de plantes Eruca sativa. Les génomes mitochondriaux et chloroplastiques se caractérisent par une hérédité maternelle chez les Brassicaceae. Les inventeurs ont utilisé trois gènes mitochondriaux décrits dans le brevet EP 0 549 726 et des marqueurs microsatellites (ou SSR pour � simple sequence repeat �) chloroplastiques décrits dans la publication Flannery et al (2006), afin de caractériser le cytoplasme mâle stérile (CMS) chez des plantes Eruca sativa selon l'invention. En effet, il est rappelé qu'une plante Eruca sativa selon l'invention comprend dans son génome mitochondrial des séquences provenant de Raphanus sativus telles que décrites dans le brevet EP 0 549 726, et dans son génome chloroplastique des séquences provenant de Brassica oleracea. Les oligonucleotides définis au sein du gène orf138 et les amorces définies au sein de l'ARNt de transfert formylméthionine perrnettent, respectivement, l'amplification d'un fragment d'environ 512 et 398 paires de bases, uniquement dans les plantes qui comprennent la stérilité Ogura ou la stérilité Ogura telle que mise en oeuvre dans le brevet EPO 549 726. L'amplification au sein du gène cox I (petite sous-unité 1 de la cytochrome oxydase) d'un fragment du génome mitochondrial de 655 paires de bases, sert de contrôle, dans la 15 mesure où ce fragment doit être amplifié dans toutes les lignées testées. En fonction de la présence ou de l'absence d'amplification de fragments de séquences mitochondriales à l'aide de ces amorces, il est possible de caractériser les différentes plantes utilisées dans la présente invention quant à leur stérilité mâle cytoplasmique. La variation allélique des marqueurs microsatellites SSR chloroplastiques testés permet 20 également de caractériser la provenance du génome chloroplastique des plantes Eruca sativa de l'invention, plus particulièrement la présence de séquences chloroplastiques caractéristiques de Brassica oleracea. A. Analyse des marqueurs mitochondriaux et conditions de PCR. 25 L'ADN total (génomes nucléaires et cytoplasmiques) de plantes E. sativa fertiles et mâle-stériles selon l'invention, a été isolé à partir des feuilles de plantes âgées de 8 semaines, selon le protocole de Dellaporta (1983). - Utilisation de marqueurs spécifiques de orf138 and T-ARNt afin de détecter la stérilité mâle cytoplasmique Ogura : 30 Orf138 Amorce `sens' : oligo 37 : 5'-GCATCACTCTCCCTGTCGTTATCG-3' (8pM) (SEQ ID N°2) ; Amorce 'antisens' : oligo38 : 5'-ATTATTTTCTCGGTCCATTTTCCA-3' (8pM) (SEQ ID N°3). T-ARNt 35 Amorce 'sens': TRNAFM-610U : 5'-ACGTGTAGCCCTGTATGGACT-3' (8pM) (SEQ ID N°4); Amorce 'antisens': TRNAFM-987L : 5'-GGTATTGTCACTTCCCGTTTC-3' (8pM) (SEQ ID N°5). La position de ces différentes amorces est illustrée sur la figure 1. - Utilisation de marqueurs spécifiques pour amplifier un contrôle mitochondrial positif dans 5 toutes les plantes testées : Amorce 'sens': COX1-244U : 5'-GGTAATTGGTTTGTTCCGATT-3' (8pM) (SEQ ID N°6) ; Amorce 'antisens': COX1-805L : 5'-CATGCCTAGATACCCGAAGAC-3' (8pM) (SEQ ID N°7). 10 - La réaction PCR pour ces marqueurs consistent en échantillon de 20pl comprenant : 5.0 pl de l'ADN total dilué (2 à 10 ng/pl) 2.0 pl du tampon PCR 10 x (Takara) 1,5 pl de mélange de dNTP (2mM de chaque dNTP; SIGMA) 0.5 pl Amorce `sens' (8pM) 15 0.5 pl Amorce 'antisens' (8pM) 0.3 pl ADN polymerase Ex-Taq 5U/pl (Takara) 10.2 pl H2O. Le profil des thermocycles de PCR est le suivant : - pour l'amplification de ORF138 et T-ARNt 20 3 minutes à 94°C; puis 30 cycles de (30 sec à 94°C, 30 sec à 68,5°C, 1 min à 72°C); 7 min à 72°C puis retour à 4°C, sur un système PCT GeneAmp� 2700 (Applied Biosystems). - pour l'amplification de COX1 : 3 minutes à 94°C; puis 30 cycles de (30 sec à 94°C, 30 sec à 67°C, 1 min à 72°C); 7 min 25 à 72°C puis retour à 4°C, sur un système PCT GeneAmp� 2700 (Applied Biosystems). Une partie des produits PCR est vérifiée sur un gel d'agarose à 1,5% et le restant est soumis à séquençage selon la méthode de Sanger. La figure 3 montre une bande correspondant à l'amplification de COX1 pour tous les 30 échantillons. Les bandes d'amplification représentant les fragments de ORF138 et TARNt ne sont quant à elles présentes que dans les colonnes a, c et g-i, correspondant à l'ADN mitochondrial de plantes porteuses de la stérilité mâle cytoplasmique Ogura. L'échelle de taille présente dans la partie la plus à gauche du gel confirme que les fragments amplifiés sont de taille conforme aux prédictions, i.e. environ 512 paires de 35 bases pour ORF138, environ 398 pour T-ARNt et environ 655 pour COX1. Les inventeurs ont également réalisé un séquençage de ces deux fragments amplifiés (ORF138 et T-ARNt), qui a permis de confirmer que leur taille était conforme aux tailles attendues, mais également que la séquence des fragments amplifiés était quasi identique à au moins une des séquences répertoriées comme étant liées à la CMS Ogura, à savoir celle divulguée dans EPO 549 726, Z12626 ou Z18896. Ceci permet de conclure que le génome mitochondrial des plantes Eruca sativa mâle stériles selon la présente invention est bien celui du parent femelle dans le croisement intergénérique (B. rapa CMS), lui-même issu de B. oleracea CMS, et correspond à la stérilité mâle cytoplasmique dite Ogura originaire de Raphanus sativus CMS. B. Analyse des marqueurs chloroplastiques et conditions de PCR. -Utilisation de SSR (répétion d'une séquence simple ou marqueur microsatellite) pour distinguer entre des plantes fertiles et des plantes porteuses de la stérilité mâle cytoplasmique Ogura telle que mise en oeuvre dans le brevet EP0 549 726. Les marqueurs utilisés sont répertoriés dans le tableau 5. L'analyse des polymorphismes des marqueurs SSR est réalisée sur un système d'analyse ADN MegaBACE�, à l'aide d'une matrice de séparation LPA haute résolution, avec une résolution d'une unique base (General Electrics Healthcare Inc). Ces marqueurs SSR sont amplifiés en utilisant la queue M13 universelle qui permet l'amplification de nombreux fragments SSR ciblés à l'aide d'une unique amorce M13 marquée (différents colorants disponibles tels que FAM, HEX ou NED) et de nombreuses amorces `sens'-M13. - Le milieu réactionnel pour la PCR consiste en un échantillon de 10pL comprenant : 5.0 pl de l'ADN total dilué (2 à 10 ng/pl) 1.0 pl du tampon PCR10 x (Invitrogen) 1.0 pl MgCl2 25mM (Invitrogen) 1.0 pl de mélange de dNTP (2mM de chaque dNTP; SIGMA) 0.6 pI Amorce `sens'-M13 (2pM) 0.6 pl Amorce `antisens' (8pM) 0.12 pI Amorce M13 marquées avec FAM, HEX ou NED (8pM) 0.12 pl ADN polymerase Taq 5U/pI (Invitrogen) 0.56 pl H2O. Le profil des thermocycles de PCR est le suivant : 3 minutes à 94°C; puis 35 cycles de (15 sec à 94°C, 20 sec à 50°C, 15 sec à 72°C); 7 min 35 à 72°C puis retour à 4°C, sur un système PCT GeneAmp� 2700 (Applied Biosystems). amorce séquence SEQ ID MF1 M13F 5'-CACGACGTTGTAAAACGACTCAATTGCACATTCTAGAATTCTAAG-3' SEQ ID N°8 MF1 R MF2 M13F MF2 R MF3 M13F MF3 R MF4_M 13F MF4_R MF5 M13F MF5 R gène Gène trnL-F Gène RPL16 Gène trnE-trnT Gène psaA-ycf3 Gène trnT-rpoC2 Gène atpB-rbcL Gène TrnM-atpE Gène rbcL-accD Gène ndhB-rps7 5'-CAATTCAATATG GTTATATATTAG AG-3' 5'-CACGACGTTGTAAAACGACGGTTCCGTCGTTCCCATCGC-3' 5'-CATAATAATTAGATAAATCTGTTCC-3' 5'-CACGACGTTGTAAAACGACAATG GTATGACTAGCTTATAAG G-3' 5'-CTTAACAATGAGATGAG G CAATC-3' 5'-CACGACGTTGTAAAACGACCGGATCTATTATGACATATCC-3' 5'-GAAATATGAATACACTAGATTAGG-3' 5'-CACGACGTTGTAAAACGACCCTGGCGGTATCAAGATGCCACT-3' 5'-G CCATAATG GTACAGAACTAT-3' MF6 M13F 5'-CACGACGTTGTAAAACGACGAAGGAATAGTCGTTTTCAAG-3' MF6 R 5'-CATAATTAGAGTTCCATTTCGG-3' MF7 M13F 5'-CACGACGTTGTAAAACGACCGGCAGGAGTCATTGGTTCAAA-3' MF7 R 5'-GATTTTGTAACTAGCTGACG-3' MF8 M13F 5'-CACGACGTTGTAAAACGACCTTATATTCATAAGCGAAGAAC-3' MF8 R 5'-AATAACAATAGATGAATAGTCA-3' MF9 M13F 5'-CACGACGTTGTAAAACGACGGGCCGTTATGCTCATTACG-3' MF9_R 5'-TCCTATTCATGGGGATTCCG-3' SEQ ID N°9 SEQ ID N°10 SEQ ID N°11 SEQ ID N°12 SEQ ID N°13 SEQ ID N°14 SEQ ID N°15 SEQ ID N°16 SEQ ID N°17 SEQ ID N°18 SEQ ID N°19 SEQ ID N°20 SEQ ID N°21 SEQ ID N°22 SEQ ID N°23 SEQ ID N°24 SEQ ID N°25 Tableau 5 : amorces utilisées pour le génotypage chloroplastique. L'analyse de génotypage est réalisée sur MegaBACE�. Quatre à six produits SSR sont dilués au vingtième et multiplexé dans le même capillaire avec 5 pl de ET-400 ROX (échelle standard pour la taille). Les conditions d'utilisation sont les suivantes : Temps d'injection : 110 secondes ; Voltage à l'injection : 3 kV ; Temps de parcours : 65 minutes Voltage durant le parcous : 9kV Filtres : set de colorants II Le programme MegaBACE� Fragment Profiler 1.0 permet de convertir les données brutes en données relatives à la taille. Le tableau 6 contient les allèles SSR obtenus sur différentes plantes fertiles et mâle-stériles selon la présente invention. L'analyse a été effectuée sur 4 lignées différentes d'Eruca sativa fertiles et sur 3 lignées d'Eruca sativa selon la présente invention, ainsi que sur une lignée de B. oleracea fertile et une autre porteuse de la stérilité mâle cytoplasmique Ogura, et sur une lignée de B. rapa fertile et une autre porteuse de la stérilité mâle cytoplasmique Ogura. Tableau 6: résultats du génotypage avec 9 SSR chloroplastiques. Les nombres 20 représentent la taille des allèles en nombre de bases. MF1 MF2 MF8 MF7 MF9 MF4 MF3 MF5 MF6 B. oleracea CMS 184 190 265 170 328 160 306 218 178 (brevet EP 0549 726) B. rapa CMS 184 190 265 170 328 160 306 218 Eruca sativa 1 184 191 269 179 328 164 300 218 177 Eruca sativa 2 184 191 269 179 328 164 300 218 178 Eruca sativa 3 185 190 270 185 328 164 299 218 177 Eruca sativa 4 185 190 270 182 328 164 299 218 ? CMS Eruca 1 184 190 265 170 328 160 306 218 178 CMS Eruca 2 184 190 265 170 328 160 306 218 178 CMS Eruca 3 184 190 265 170 328 160 306 218 178 B. oleracea Fertile 184 190 265 170 328 160 306 218 B. rapa Fertile 184 190 265 172 327 163 306 218 178 Il est rappelé que les chloroplastes d'une plante Eruca sativa selon l'invention proviennent de B. oleracea, ces mêmes chloroplastes étant également présents dans les lignées B. 25 rapa porteuses de la stérilité mâle cytoplasmique. Les résultats du tableau 6 confirment que les longueurs des fragments amplifiés sont identiques pour les 3 lignées d'Eruca sativa selon la présente invention (c'est-à-dire CMS), ces longueurs sont également identiques à celles des fragments amplifiés pour les lignées de B. oleracea fertile et mâle-stérile, ainsi que pour la lignée de B. rapa porteuse de la stérilité mâle cytoplasmique Ogura. Ceci permet de conclure que le génome chloroplastique des plantes Eruca sativa mâle stériles selon la présente invention est bien originaire de B. rapa porteuse de la stérilité mâle cytoplasmique Ogura (utilisée comme parent femelle dans le croisement intergénérique), lui-même originaire de B. oleracea. Les résultats obtenus relatifs au génome mitochondrial et chloroplastique confirment que le cytoplasme des plantes de l'invention correspond au cytoplasme mâle stérile dit Ogura tel que décrit dans le brevet EPO 549 726. REFERENCES: Agnihotri A. et al. Plant Breeding 104, 281-289 (1990); Cao J. et Earle, E.D. Plant Cell Report 21 :789-796 (2003). Chu C.0 The N- medium and its application to anther culture of Cereal crops Proc. Symp. Plant Tissue culture, Peking 43 (1978). Chu C.0 et al Establishement of an efficient medium for anther culture of Rice through comparative experiments on the nitrogen sources, Scienta Sinic, 18 , 659 (1975). Flannery M.L. et al. Plastid genome characterisation in Brassica and Brassicaceae using a new set of nine SSRs. Theor Appl Genet 113:1221-1231 (2006). Matsuzawa et al. Male sterility in alloplasmic Brassica rapa L. carrying Eruca sativa cytoplasm. Plant Breeding 118, 82-84 (1999). Rahman, M.H. Optimum age of siliques for rescue of hybrid embryos from crosses between Brassica oleracea, B. rapa and B. carinata. Canadian Journal of Plant Science 84 (4) : 965-969 (2004). Revendications1. Plante du genre Eruca, caractérisée en ce qu'elle est porteuse d'une stérilité mâle cytoplasmique. 2. Plante selon la revendication 1, caractérisée en ce qu'il s'agit d'une plante de l'espèce Eruca sativa. 3. Plante selon la revendication 1, caractérisée en ce qu'elle ne présente aucun symptôme de chlorose en conditions normales de culture, notamment pas de décoloration des feuilles due à un manque de chlorophylle. 4. Plante selon la revendication 2, caractérisée en ce qu'il s'agit d'une plante hybride. 5. Plante selon la revendication 1, caractérisée en ce qu'elle comprend dans son génome mitochondrial des séquences provenant de Raphanus sativus. 6. Plante selon la revendication 5, caractérisée en ce qu'elle comprend une séquence d'ADN stérilité Ogura, de préférence la séquence d'ADN comprise entre les nucléotides 928 et 2273 de SEQ ID N°1 ou une séquence ayant au moins 70% d'identité avec cette séquence d'ADN. 7. Plante selon la revendication 1, caractérisée en ce qu'elle comporte dans son génome chloroplastique des séquences qui ne sont pas du genre Eruca. 8. Plante selon la revendication 7, caractérisée en ce qu'elle comporte dans son génome chloroplastique des séquences provenant du génome chloroplastique de Brassica oleracea, de préférence d'une longueur d'au moins 50 paires de bases consécutives. 9. Plante selon l'une des revendications 1 à 8, caractérisée en ce que ses cellules possèdent l'ADN génomique d'Eruca sativa, la séquence d'ADN stérilité Ogura dans l'ADN mitochondrial et l'ADN chloroplastique de Brassica oleracea. 10. Graine du genre Eruca, caractérisée en ce qu'elle est porteuse d'une stérilité mâle cytoplasmique. 31 11. Graine du genre Eruca selon la revendication 10, caractérisée en ce qu'il s'agit d'une graine de l'espèce Eruca sativa. 12. Graine selon la revendication 10, caractérisée en ce qu'elle comprend dans son génome mitochondrial des séquences provenant de Raphanus sativus, d'une longueur d'au moins 50 paires de bases consécutives. 13. Graine selon la revendication 10, caractérisée en ce qu'elle comporte dans son génome chloroplastique des séquences provenant du génome chloroplastique de Brassica oleracea, de préférence d'une longueur d'au moins 50 paires de bases consécutives. 14. Cellule d'une plante du genre Eruca caractérisée en ce qu'elle est porteuse d'une stérilité mâle cytoplasmique. 15. Cellule selon la revendication 14, issue d'une plante selon l'une quelconque des revendications 1 à 9 ou bien d'une graine selon l'une quelconque des revendications 10 à 13. 16. Cellule selon la revendication 14, caractérisée en ce qu'il s'agit d'une cellule d'Eruca sativa. 17. Cellule selon la revendication 14, caractérisée en ce qu'elle comprend dans son génome mitochondrial des séquences provenant de Raphanus sativus d'une longueur d'au moins 500 paires de bases consécutives. 18. Cellule selon la revendication 14, caractérisée en ce qu'elle comporte dans son génome chloroplastique des séquences qui ne sont pas du genre Eruca. 19. Procédé d'obtention d'une plante selon la revendication 2 ou d'une graine selon la revendication 11, comprenant : a) le croisement intergénérique d'une plante Brassica rapa, porteuse d'une stérilité mâle cytoplasmique, comme parent femelle, et d'une plante Eruca sativa mâle fertile, comme parent mâle ; b) l'obtention d'une plante issue du croisement précédent par sauvetage d'embryons ;c) le croisement d'une plante issue de l'étape b), comme parent femelle, avec une plante Eruca sativa mâle fertile, comme parent mâle ; d) l'obtention d'une plante issue du croisement c), éventuellement par sauvetage d'embryons, les étapes c) et d) étant répétées au moins jusqu'à l'obtention d'une plante ou d'une graine de l'espèce Eruca sativa, porteuse de la stérilité mâle cytoplasmique. 20. Plante du genre Eruca sativa, susceptible d'être obtenue par la mise en oeuvre du procédé selon la revendication 19. 21. Utilisation d'une plante de l'espèce Brassica rapa, porteuse d'une stérilité mâle cytoplasmique, comme vecteur de la stérilité mâle cytoplasmique chez une plante d'Eruca, de préférence chez une plante Eruca sativa.