FR 2925960 A1 20090703 FR 0760410 A 20071228 METHODE DE QUANTIFICATION DES ODEURS CORPORELLES EMISES PAR UN SUBSTRAT DETERMINE ET INSTALLATION POUR LA MISE EN îUVRE DE LADITE METHODE La présente invention est dans le domaine technique des méthodes de 5 quantification des odeurs corporelles émises par un substrat déterminé, et des installations pour la mise en oeuvre desdites méthodes. La recherche du confort et du bien être a permis le développement de textiles à valeur ajoutée, et notamment de textiles présentant des propriétés antibactériennes, anti-fongicides, ou encore anti-acariens. Cependant, il est 10 encore difficile de quantifier, et de comparer précisément l'efficacité de tels traitements sur des vêtements. Dans ce but, EP 1.456.644 décrit une méthode pour déterminer les propriétés inhibitrices d'odeurs d'auxiliaires textiles. Ce procédé consiste à appliquer une substance gazeuse ou liquide à un textile puis à extraire ladite 15 substance, soit au moyen d'un solvant, soit par chauffage dudit textile, en sorte d'obtenir une désorption complète de celle-ci mais pas sa dégradation. On détermine ainsi la quantité de substance adsorbée par le textile puis extraite par des moyens analytiques du type chromatographe en phase gazeuse. La méthode de mesure permet ici d'évaluer la propension qu'a un textile donné, 20 sur lequel on a appliqué un ou plusieurs auxiliaires textiles, de retenir certaines substances considérées comme nauséabondes, telles que la nicotine et la sueur. Plus la quantité de substance adsorbée est élevée, moins les auxiliaires textiles sont efficaces pour empêcher l'adsorption par ledit textile des mauvaises odeurs. Cette méthode est utile pour évaluer les propriétés inhibitrices d'odeurs des 25 textiles d'ameublement tels que pour les canapés ou les rideaux, mais ne permet pas déterminer l'efficacité d'un traitement appliqué sur un textile d'habillement afin de ralentir l'émission des odeurs corporelles, notamment lors de la pratique d'un sport ou chez un sujet ayant une tendance à l'hyperhidrose. Une autre méthode de mesure consiste à maintenir dans différentes 30 boîtes de pétri dans des conditions de températures et d'oxygénation déterminées, une solution de sueur artificielle avec une ou plusieurs bactéries non nocives en contact avec le textile à tester. On observe alors à différents intervalles de temps la prolifération des bactéries mesurée en cm2. Cette méthode est qualitative et non quantitative, elle ne permet pas un classement fiable des traitements antibactériens. Une autre méthode consiste également à placer les textiles traités imbibés d'une dispersion de sueur artificielle dans des conditions déterminées, puis à tester olfactivement à intervalles réguliers les échantillons. Cette méthode, appelée le � sniff-test �, est intéressante mais également qualitative et basée sur le nez du technicien. Aucune des méthodes existant à ce jour, ne permet de déterminer la quantité et la vitesse d'émissions des mauvaises odeurs par un textile donné en fonction de son environnement lorsqu'il est porté, par exemple en contact avec de la sueur lors d'une activité sportive. La présente invention pallie aux problèmes précités en ce qu'elle a pour 15 objet une méthode comprenant de manière caractéristique les étapes suivantes : a. placer dans une enceinte ledit substrat dont la face extérieure est imbibée d'une suspension, dans de la sueur artificielle, d'une culture d'au moins un micro-organisme qui est représentatif de la flore cutanée et 20 connu pour produire en présence de la sueur artificielle et dans des conditions données une substance volatile identifiée comme malodorante et représentative des odeurs corporelles, b. maintenir lesdites conditions données à l'intérieur de l'enceinte de manière à obtenir la production de la substance volatile, 25 c. collecter ladite substance volatile au moyen d'un fluide collecteur, d. transférer, notamment de manière séquentielle, le fluide collecteur et la substance volatile collectée vers une installation analytique, e. déterminer, grâce au dispositif analytique, le niveau et/ou la cinétique de production de la substance volatile, paramètre(s) significatif(s) du 30 phénomène de production d'odeurs dudit substrat en contact avec le corps. L'intensité de la transpiration varie d'une personne à une autre et dépend de facteurs tels que l'activité physique, la température extérieure et le niveau de stress. La sueur est un liquide secrété par les glandes sudoripares afin de réguler la température du corps. La sueur elle-même n'a pas d'odeur, ce sont les bactéries qui vivent dans certains endroits du corps qui en sont la cause. La sueur produite aux endroits pileux par exemple contient certaines protéines dont les bactéries se nourrissent. Lors de la dégradation des nutriments et de l'eau contenue dans la sueur, les bactéries produisent des molécules volatiles considérées comme nauséabondes. Le micro-organisme dispersé dans la sueur artificielle a été sélectionné ici en fonction de son occurrence et de sa densité sur une zone corporelle considérée, par exemple les aisselles, et de sa capacité à produire des odeurs corporelles, notamment ladite substance volatile de référence faisant office de traceur représentatif des odeurs émises. La concentration cellulaire dudit micro-organisme est déterminée en sorte d'excéder le seuil nécessaire à la perception olfactive de production microbiologique d'odeurs corporelles. La vitesse d'émission ainsi que la quantité de substance volatile de référence produite par la suspension de la culture dudit micro-organisme sur le substrat à tester sont déterminées par le dispositif analytique. Les conditions de température et d'oxygénation, selon qu'il s'agit d'un micro-organisme aérobie ou anaérobie, sont sensiblement constantes et proches de celles que l'on retrouve sur certaines zones du corps. Dans une variante, la température et l'oxygénation du volume intérieur de l'enceinte sont déterminées et ajustées en continu selon la nature anaérobie ou aérobie dudit micro-organisme, notamment selon des conditions physiologiques déterminées. Dans une variante, ledit micro-organisme fait partie de la famille des actinomycètes ou des staphylocoques. Pour l'études des odeurs corporelles émises par des substrats portés dans des zones aérées et brassées, du type textile pour tee-shirt, ces familles de micro-organismes sont préférées, en particulier les micro-organismes aérobies non pathogènes présents naturellement en forte propension au niveau cutané et produisant des substances volatiles odorantes, ces dernières ont été parfaitement identifiées par la demanderesse afin d'en suivre leur émission au moyen du dispositif analytique. Dans une variante, la suspension présente une densité optique mesurée selon la norme ASQUAL� supérieure ou égale à 0,3. Dans une variante, le substrat est imbibé d'au moins 0,025 ml/cm2 de suspension. Il s'agit de la quantité minimale de suspension dont doit être imbibé le substrat. De préférence, le substrat est imbibé à saturation de ladite suspension. Dans une variante, la sueur artificielle est de la sueur grasse artificielle. La sueur grasse artificielle a de préférence un pH acide. Dans une variante, ledit substrat présente une surface suffisante, de préférence supérieure à 800 cm2 en sorte que la production de ladite substance volatile soit supérieure à la limite inférieure de détection du dispositif analytique. Dans une variante, le fluide collecteur est un gaz stérilisé assurant le maintien des conditions aérobies ou anaérobies dans l'enceinte, et notamment de l'azote de qualité R pour un micro-organisme anaérobie ou de l'air comprimé pour un micro-organisme aérobie. Le fluide collecteur est injecté dans l'enceinte afin d'assurer les conditions favorables à la prolifération dudit micro-organisme en fonction du milieu réel à reproduire et collecter les substances volatiles produites pour les acheminer vers le dispositif analytique. Dans une variante, la substance volatile produite est évacuée par ledit fluide collecteur de l'enceinte en passant à travers une membrane microporeuse, notamment en PTFE, en sorte d'entraîner avec lui la substance volatile au fur et à mesure de sa diffusion à travers la membrane. Ladite membrane est de préférence plane est disposée sur une grille 30 métallique. La porosité de la membrane est déterminée en sorte de laisser passer lesdites substances volatiles odorantes. Dans une variante, le débit du fluide collecteur est fixé et ajusté au moyen d'un débitmètre massique et d'une vanne de régulation, de préférence le débit est de l'ordre de 30 ml/min. Dans une variante, le dispositif analytique est un chromatographe en 5 phase gazeuse. Selon un deuxième aspect, la présente invention a pour objet une méthode comparative consistant à procéder aux étapes de la méthode selon l'une quelconque des variantes de réalisation décrites ci-dessus à partir de différents substrats et à comparer les résultats analytiques obtenus. 10 Dans une variante, les différents substrats ont un même matériau de base, notamment textile, et diffèrent les uns des autres par la présence et/ou la concentration d'au moins un agent anti-métabolique, moyennant quoi il est possible de déterminer l'efficacité dudit agent. Ladite méthode est ainsi menée sur des substrats ayant subi des 15 traitements bactériostatiques ou antibactériens différents. Les résultats obtenus permettent de classer de façon fiable lesdits traitements en fonction de leur capacité à ralentir à l'émission desdites substances volatiles et donc des odeurs corporelles. Selon un troisième aspect, la présente invention a pour objet une 20 installation, pour la mise en oeuvre de la méthode précitée de quantification d'une substance volatile produite par un substrat, notamment un textile, dans des conditions données comprenant : une enceinte apte à recevoir le substrat et à le maintenir dans lesdites conditions données, 25 - des moyens d'émission d'un fluide collecteur stérilisé, - un dispositif analytique de quantification de ladite substance, et des moyens de transfert, de préférence séquentiel, dans le dispositif analytique du fluide collecteur et de la substance volatile produite par le substrat et entraînée par le fluide collecteur. 30 Dans une variante, l'enceinte est fermée par une membrane microporeuse, apte à laisser passer la substance volatile, et les moyens d'émission du fluide collecteur alimentent l'enceinte, laquelle est agencée en sorte que ledit fluide traverse ladite membrane en entraînant les molécules volatiles. Dans une variante, l'enceinte est thermostatée et stérilisable, étant par 5 exemple en acier inoxydable double enveloppe et/ou dans un matériau synthétique inerte tel que du PTFE. Dans une variante, l'enceinte comprend une partie inférieure destinée à recevoir le substrat et une partie supérieure d'évacuation de la substance volatile ayant une forme générale de cône inversé. 10 La forme de la partie supérieure permet d'accumuler et de concentrer vers la membrane le fluide collecteur emportant les substances volatiles produites. Dans une variante, la partie inférieure présente un volume d'au moins 8500 cm3 pour une surface de substrat de l'ordre de 800 cm2. 15 Le volume d'oxygène, lorsqu'il s'agit d'un micro-organisme aérobie, doit être suffisant pour reproduire les conditions réelles et assurer une production de substances volatiles dépassant le seuil de détection du dispositif analytique puisque de la surface du substrat à tester dépend la quantité de suspension imbibée. 20 Dans une variante, ladite installation comporte une grille montée sur pieds supportant le substrat à tester. Dans une variante, le dispositif analytique est un chromatographe en phase gazeuse raccordé à l'enceinte par une vanne d'injection automatique de gaz alimentée par le fluide collecteur. 25 Dans une variante, les moyens de transfert comprennent une tubulure chauffée. La présente invention sera mieux comprise à la lecture des exemples de réalisation, illustrés dans les figures ci-après, et cités à titre non limitatif, et dans lesquels : - la figure 1 est une représentation schématique de l'installation pour la mise en oeuvre de la méthode de quantification selon la présente invention ; - la figure 2 est une vue en coupe longitudinale de l'enceinte représentee a la figure 1 ; -la figure 3 est une vue en coupe transversale, selon III-III, de l'enceinte représentée aux figures 1 et 2 ; - les figures 4 à 6 illustrent de façon schématique les séquences de fonctionnement selon laquelle les moyens de transfert du fluide collecteur sont opérés ; - la figure 7 est un graphique représentant la quantité d'une substance volatile odorante de référence émise en fonction du temps pour des substrats ayant des traitements inhibiteurs d'émission de ladite substance volatile différents. La méthode de quantification décrite à la figure 1 met en oeuvre notamment une enceinte 1 dans laquelle est placée le substrat 2 à tester, des moyens d'émission 3 d'un fluide collecteur stérilisé non représentés, un chromatographe en phase gazeuse 4 pour l'analyse des substances volatiles émises, des moyens de transfert séquentiel 5 dans le chromatographe en phase gazeuse 4 du fluide collecteur et de la substance volatile de référence produite par le substrat 2, une vanne d'injection automatique 6 et un boîtier électronique 7 de commande des débits de gaz. L'enceinte 1, représentée à la figure 2, est formée d'une partie inférieure 8, ayant une forme sensiblement cylindrique, d'une partie supérieure 9 ayant une forme générale de cône inversé, et d'un couvercle 10. La partie inférieure 8 présente un volume d'au moins 8500 cm3. La partie supérieure 9 est fermée par une membrane plane microporeuse 11, dans cet exemple précis en PTFE. La membrane microporeuse 11 peut être maintenue en position par pincement entre deux joints siliconés non représentés. La partie inférieure 8 est à double parois 8a,8b délimitant une enveloppe 12 sur la partie inférieure 8. Un fluide caloporteur, issu d'un cryothermostat fonctionnant en boucle externe grâce à une sonde de température, du type PtlOO disposée dans le volume de réactionnel de l'enceinte circule dans l'enveloppe 12 afin que le volume réactionnel 13 de l'enceinte soit parfaitement thermostaté. L'enceinte 1 est de préférence dans un ou plusieurs matériaux inertes, et notamment en acier inoxydable et en PTFE afin que l'enceinte 1, notamment l'intérieur, soit stérilisable. Une grille métallique 14, montée sur pieds 15, et disposée à l'intérieur de l'enceinte 1 sur le fond 16 de la partie inférieure 8. La grille 14 est agencée en sorte de ménager en son centre un évidement 17 de forme circulaire permettant à un ou plusieurs ventilateurs 18 (non représentés) de brasser l'air dans l'enceinte 1. Le ou les ventilateurs 18 sont de préférence actionnés par un entraînement magnétique ne nécessitant pas de passage de câble d'alimentation afin que le fond 16 de la partie inférieure 8 reste parfaitement étanche. Les moyens d'émission 3 du fluide collecteur sont disposés à l'extérieur de l'enceinte 1 et agencés en sorte d'amener le fluide collecteur au niveau de la partie supérieure 9 selon le sens de la flèche F1. Le débit du fluide collecteur est fixé et ajusté au moyen d'un débitmètre massique et d'une vanne de régulation. Le dispositif analytique est ici un chromatographe en phase gazeuse (désigné dans la suite de la description par l'abréviation CPG) raccordé à l'enceinte 1, via les moyens de transfert 5, par une vanne d'injection automatique 6 de gaz alimentée. La colonne 20 du CPG est chauffée afin d'éviter la formation de condensat, et comporte des moyens de détection et d'analyse des substances volatiles véhiculées dans ladite colonne 20. Les moyens de transfert 5 sont formés dans cet exemple précis par une première tubulure 19a raccordant l'enceinte 1 au boîtier électronique 7, une seconde tubulure 19b raccordant le boîtier électronique 7 à la vanne d'injection 6, une troisième tubulure 19c raccordant ladite vanne 6 au CPG 4, une quatrième tubulure 19d partant de la vanne d'injection 6 vers l'extérieur de l'installation pour évacuation, et une cinquième tubulure 19e partant de la seconde tubulure 19b au niveau du boîtier électronique 7 vers l'intérieur de l'enceinte 1. Les cinq tubulures 19a à 19e sont en PTFE chauffée, par exemple au moyen d'un ruban chauffant et isolant spiralé sur ladite tubulure. En fonctionnement, le substrat à tester 2, ici un textile, est préalablement neutralisé, c'est-à-dire stérilisé pour que des micro-organismes, notamment des bactéries autres que celles qui vont lui être appliquées n'interfèrent pas sur les résultats. Il présente une surface d'au moins 800 cm2 pour que la production de molécules volatiles de référence soit représentative des conditions réelles. Le textile neutralisé est disposé sur la grille 14 dans le volume réactionnel 13. Puis l'enceinte 1 subit un cycle de thermostatation ; une fois la température dans l'enceinte stabilisée, deux analyses chromatographiques sont réalisées de sorte d'obtenir une signature olfactive initiale, servant de blanc pour les analyses ultérieures. Ceci est nécessaire du fait que même si le textile a été neutralisé, il émet des odeurs et éventuellement des substances volatiles particulières. Puis, le textile neutralisé 2 est imbibé à saturation d'une suspension, dans de la sueur grasse artificielle, d'une culture d'au moins un micro-organisme qui est représentatif de la flore cutanée et connu pour produire en présence de la sueur grasse artificielle une substance volatile identifiée comme malodorante et représentative des odeurs corporelles. La sueur grasse artificielle utilisée comprend dans un exemple précis les composés suivants : NaCl, Acide lactique à 80%, acide citrique monohydraté, acide ascorbique, urée, glucose, vitamines, notamment de la vitamine F acide et une grande quantité d'eau. Le textile ainsi préparé étant disposé sur la grille 14 dans le volume réactionnel 18. L'enceinte 1 subit alors un nouveau cycle de thermostatation, et le niveau d'oxygénation est recontrôlé. La culture dudit micro-organisme sélectionné fait partie de préférence de la famille des actinomycètes ou des staphylocoques, et dans un exemple précis des actinomycètes aérobies. On a cherché dans cet exemple à se rapprocher des conditions réelles d'émission d'odeurs corporelles par des zones du corps brassées et aérées, par exemple lors du port d'un tee-shirt. La densité optique de la culture sélectionnée est supérieure ou égale à 0,3 (selon la norme ASQUAL�) afin que la production de substances volatiles de référence dépasse le seuil de détection du CPG et le seuil de détection olfactif. La quantité de substances volatiles de référence émises et la vitesse d'émission de celles-ci sont analysées par le CPG pendant 12 heures. Le fluide collecteur est dans cet exemple précis de l'air comprimé stérilisé et a un débit de l'ordre de 30 ml/min. Le fluide collecteur maintient ainsi des conditions de température et d'oxygénation déterminées dans le volume réactionnel et entraîne les substances volatiles de référence produites vers le CPG. Le fonctionnement de l'installation est le suivant. Pendant une première période les première 19a, seconde 19b et quatrième 19d tubulures, formant une première boucle, sont balayées par le fluide collecteur comprenant lesdites substances volatiles de référence, tel que représenté à la figure 4 selon la flèche F2. Le fluide collecteur n'est pas injecté dans le CPG. Puis, pendant une seconde période, le fluide collecteur comprenant lesdites substances volatiles de référence, traversant les première 19a, seconde 19b puis troisième 19c tubulures formant une seconde boucle, est injecté dans la colonne du CPG, tel que représenté à la figure 5 selon la flèche F3. Enfin, pendant une troisième période de recyclage, le fluide collecteur comprenant lesdites substances volatiles de référence circule dans une troisième boucle formée par les première 19a, seconde 19b et cinquième 19e tubulures, pour être réinjecté dans le volume réactionnel de l'enceinte 1 via une ouverture ménagée dans le couvercle 10 ou la partie supérieure 9 de l'enceinte 1 selon la flèche F4. De préférence, le fluide collecteur est ainsi alimenté vers le CPG de façon séquentielle, en reproduisant en continu les trois périodes ci-dessus pendant 12 heures. Des textiles ayant subi différents traitements bactériostatiques ou antibactériens ont été testés. Ils sont listés dans le tableau ci-après. Nom textile Traitement Échantillon 1 Aucun Echantillon 2 90% de fils traités avec le traitement X Echantillon 3 45% de fils traités avec le traitement X /45% de Polyamide non traité La figure 7 représente sur un graphique les résultats à la méthode de quantification selon la présente invention effectuée sur 3 textiles. Sur ce graphique, le temps écoulé en minutes est représenté en abscisse et la quantité de substances volatiles de référence émises, dans une unité arbitraire (UA), est représentée en ordonnée. Le traitement X est un traitement anti-bactérien donné appliqué à des fibres ou fils en polyamide. Par bactériostatique, on comprend tout traitement qui inhibe la multiplication des formes végétatives de bactéries dans des conditions définies. Par agent antibactérien, on comprend tout agent chimique ou formulation ayant une action de destruction ou d'inhibition de bactéries. Les échantillons 1 à 3 présentent tous une surface identique, de l'ordre de 800 cm2, une masse surfacique du même ordre, et sont dans du polyamide type Sesna�. L'échantillon 1 n'est pas traité. L'échantillon 2 comprend 90% de sa masse surfacique de fils polyamide traités avec le traitement X. L'échantillon 3 comprend 45% de sa masse surfacique de fils polyamide traités avec le traitement X et 45% de polyamide non traités. Les échantillons 1 à 3 correspondent respectivement aux courbes Cl à C3. Sur le graphe à la figure 7, on observe un plateau pour toutes les courbes durant environ 3 minutes correspondant au temps de rétention des 20 substances volatiles de référence avec le CPG utilisé. Les concentrations initiales en substances volatiles de référence au début du test sont très faibles, et inférieures à au moins deux unités arbitraires. La perception olfactive initiale est ainsi très faible et donc négligeable. Sur 12 heures, les courbes Cl à C3 se distinguent alors nettement les unes des autres. 25 La production des substances volatiles de référence est la plus importante pour l'échantillon 1 non traité. La production des substances volatiles de référence est ensuite réduite de moitié avec l'échantillon 2, et encore davantage avec l'échantillon 3. Ce graphique permet de classer de façon fiable le traitement le plus efficace mais également celui ralentissant l'émission des substances volatiles de référence et donc l'apparition des mauvaises odeurs. Cette méthode de quantification permet de caractériser le phénomène de production d'odeurs par des substrats, en particulier des textiles, et donc de comparer leur effet sur la limitation de la production de ces odeurs. Cette méthode est complémentaire des méthodes d'analyse sensorielle, telle que le � sniff-test �. De plus, cette méthode permet de reproduire à l'infini les conditions réelles au cours desquelles les mauvaises odeurs sont produites sur certaines zones du corps, en faisant varier notamment la température, la saturation en oxygène, le degré d'hygrométrie, le type de sueur grasse ou acide, et la culture du micro-organisme sélectionnée. 20 REVENDICATIONS 1. Méthode de quantification des odeurs corporelles émises par un substrat (2) déterminé, notamment un textile, caractérisée en ce qu'elle comprend les 5 étapes suivantes : a. placer dans une enceinte (1) ledit substrat (2) dont la face extérieure est imbibée d'une suspension, dans de la sueur artificielle, d'une culture d'au moins un micro-organisme qui est représentatif de la flore cutanée et connu pour produire en présence de la sueur artificielle et dans des 10 conditions données une substance volatile identifiée comme malodorante et représentative des odeurs corporelles, b. maintenir lesdites conditions données à l'intérieur de l'enceinte (1) de manière à obtenir la production de la substance volatile, c. collecter ladite substance volatile au moyen d'un fluide collecteur, 15 d. transférer, notamment de manière séquentielle, le fluide collecteur et la substance volatile collectée vers une installation analytique, e. déterminer, grâce au dispositif analytique (4), le niveau et/ou la cinétique de production de la substance volatile, paramètre(s) significatif(s) du phénomène de production d'odeurs dudit substrat (2) 20 en contact avec le corps. 2. Méthode selon la revendication 1, caractérisée en ce que la température et l'oxygénation du volume intérieur de l'enceinte (1) sont déterminées et ajustées en continu selon la nature anaérobie ou aérobie dudit micro-organisme, 25 notamment selon des conditions physiologiques déterminées. 3. Méthode selon l'une ou l'autre des revendications 1 et 2, caractérisée en ce que ledit micro-organisme fait partie de la famille des actinomycètes ou des staphylocoques. 4. Méthode selon l'une quelconque des caractéristiques 1 à 3, caractérisée en ce que la suspension présente une densité optique mesurée selon la norme ASQUAL� supérieure ou égale à 0,3. 5. Méthode selon l'une quelconque des caractéristiques 1 à 4, caractérisée en ce que le substrat (2) est imbibé d'au moins 0,025 ml/cm2 de suspension. 6. Méthode selon l'une quelconque des caractéristiques 1 à 5, caractérisée en ce que la sueur artificielle est de la sueur grasse artificielle. 7. Méthode selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisée en ce ledit substrat (2) présente une surface suffisante, de préférence supérieure à 800 cm2 en sorte que la production de ladite substance volatile soit supérieure à la limite inférieure de détection du dispositif analytique (4). 15 8. Méthode selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisée en ce que le fluide collecteur est un gaz stérilisé assurant le maintien des conditions aérobies ou anaérobies dans l'enceinte, et notamment de l'azote de qualité R pour un micro-organisme anaérobie ou de l'air comprimé pour un micro- 20 organisme aérobie. 9. Méthode selon l'une quelconque des revendications 1 à 8, caractérisé en ce que la substance volatile produite est évacuée par ledit fluide collecteur de l'enceinte (1) en passant à travers une membrane microporeuse (11), 25 notamment en PTFE, en sorte d'entraîner avec lui la substance volatile au fur et à mesure de sa diffusion à travers la membrane (11). 10. Méthode selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, caractérisé en ce que le débit du fluide collecteur est fixé et ajusté au moyen d'un débitmètre 30 massique et d'une vanne de régulation (6), de préférence le débit étant de l'ordre de 30 ml/min.10 11. Méthode selon l'une quelconque des revendications 1 à 10, caractérisé en ce que le dispositif analytique (4) est un chromatographe en phase gazeuse. 12. Méthode comparative consistant à procéder aux étapes de la méthode selon l'une quelconque des revendications 1 à 11 à partir de différents substrats (2) et à comparer les résultats analytiques obtenus. 13. Méthode comparative selon la revendication 12 caractérisée en ce que les différents substrats (2) ont un même matériau, notamment textile, de base et diffèrent les uns des autres par la présence et/ou la concentration d'au moins un agent anti-métabolique, moyennant quoi il est possible de déterminer l'efficacité dudit agent. 14. Installation, pour la mise en oeuvre de la méthode selon la revendication 1, de quantification d'une substance volatile produite par un substrat (2), notamment un textile, dans des conditions données comprenant : - une enceinte (1) apte à recevoir le substrat (2) et à le maintenir dans lesdites conditions données, - des moyens d'émission (3) d'un fluide collecteur stérilisé, - un dispositif analytique (4) de quantification de ladite substance, - et des moyens de transfert (5), de préférence séquentiel, dans le dispositif analytique (4) du fluide collecteur et de la substance volatile produite par le substrat (2) et entraînée par le fluide collecteur. 15. Installation selon la revendication 14 caractérisé en ce que l'enceinte (1) est fermée par une membrane microporeuse (11), apte à laisser passer la substance volatile, et en ce que les moyens d'émission (3) du fluide collecteur alimentent l'enceinte (1) en sorte que ledit fluide traverse ladite membrane (11) en entraînant les molécules volatiles.30 16. Installation selon l'une des revendications 14 ou 15, caractérisé en ce que l'enceinte (1) est thermostatée et stérilisable, étant par exemple en acier inoxydable double enveloppe et/ou dans un matériau synthétique inerte tel que du PTFE. 17. Installation selon l'une des revendications 14 à 16, caractérisé en ce que l'enceinte (1) comprend une partie inférieure (8) destinée à recevoir le substrat (2) et une partie supérieure (9) d'évacuation de la substance volatile ayant une forme générale de cône inversé. 10 18. Installation selon la revendication 17, caractérisé en ce que la partie inférieure (8) présente un volume d'au moins 8500 cm3, pour une surface de substrat (2) de l'ordre de 800 cm2. 15 19. Installation selon l'une quelconque des revendications 15 à 18, caractérisé en ce qu'il comporte une grille (14) montée sur pieds (15) supportant le substrat (2) à tester. 20. Installation selon l'une quelconque des revendications 14 à 19, caractérisé 20 en ce que le dispositif analytique (4) est un chromatographe en phase gazeuse raccordé à l'enceinte (1) par une vanne d'injection automatique (6) de gaz alimentée par le fluide collecteur. 21. Installation selon l'une des revendications 14 à 20 caractérisé en ce que les 25 moyens de transfert (5) comprennent une tubulure chauffée (19a,19b,19c, 19d,19e).5