FR 2911608 A1 20080725 FR 0752837 A 20070123 La présente invention concerne le paludisme et, plus spécifiquement, un polypeptide destiné à la vaccination antipaludique, une composition pharmaceutique le contenant et l'utilisation d'un tel polypeptide pour la préparation d'une composition destiné au traitement prophylactique du paludisme. Le paludisme, qui résulte d'une infection par un parasite du genre Plasmodium, demeure à ce jour l'endémie majeure dans le monde avec près de 300 et 500 millions de cas et plus de 2,5 millions de morts par an, dont majoritairement des enfants de moins de cinq ans (World Health Organization Tropical Disease Research, TDR Twelfth Program Report, p. 57-76, 1997). Aujourd'hui, plus de 40% de la population mondiale vit dans les régions où sévit le paludisme. Différents traitements prophylactiques et thérapeutiques ont été développés contre ce parasite, les molécules les plus efficaces agissant lors de la phase d'infection des globules rouges. On peut citer ainsi la chloroquine (NIVAQUINE), l'halofantrine (HALFAN), la méfloquine (LARIAM) et la quinine ; la quinine restant à ce jour le médicament de référence. Toutefois, nombre de ces molécules présentent d'importants effets secondaires et on note l'apparition de résistances à certains médicaments antipaludiques développés par le parasite le plus dangeureux (Plasmodium falciparum) dans certaines zones géograpohiques. Les voies de recherche d'un vaccin antipaludique sont aujourd'hui nombreuses et près de 40 antigènes utilisables pour l'élaboration d'un vaccin ont pu être identifiés, lesdits antigènes étant fonction du stade de développement du parasite. On peut ainsi distinguer pour le stade intramoustique (stades sexués) : l'antigène Pfg27, Pfsl6, Pfs25, Pfs28, Pfs45/48 ou Pfs230 ; pour le stade intravasculaire (sporozoïte) : l'antigène CSP-1, STARP, SALSA ou SSP-2 ; pour le stade intrahépatique : l'antigène LSA-1, EXP-1, LSA-3, STARP, SALSA ou SSP-2 ; et pour le stade intraérythrocyte (mérozoïte) : l'antigène RAP-1, RAP-2, SERA-1, MSP-1, MSP-2, MSP-3, MSP-4, MSP-5, AMA-1, EMP-1, PG5, Pf55 ou EBA-175. À titre d'exemple d'antigène, on peut citer l'antigène membranaire apical 1 (AMA1 ; numéro d'accession CAD42016 à CAD41967, CAD35671 à CAD35504, CAD34791 à CAD34741 et CAD 31724 à CAD31720) qui correspond à une protéine transmembranaire identifiée à l'origine chez Plasmodium knowlesi (DEANS et al., Clin. Exp. Immunol., vol.49, p :297-309, 1982 ; DEANS et al., Mol. Biochem. Parasitol., vol.11, p :189-204;1984) et, ultérieurement, dans d'autres espèces appartenant au genre Plasmodium (WATERS et al., J. Biol. Chem., vol.265, p :17974-17979, 1990). Cette protéine est présente dans les organelles apicaux du mérozoïte du parasite de la malaria au stade schizonte tardif (HEALER et al., Infect. Immun., vol.70, p :5751-5758, 2002 ; BANNISTER et al., J. Cet/. Sci., vol.116, p :3825-3834, 2003) ou à la surface du mérozoïte au stade rupture du schizonte et invasion des érythrocytes (NARUM et THOMAS, Mol. Biochem. Parasitol., vol.67, p :59-68, 1994). Il a pu être démontré que la présence d'anticorps dirigés contre l'antigène AMA1 permet d'empêcher l'invasion d'érythrocytes (THOMAS et al., Mol. Biochem. Parasitol., vol.13, p :187-199,1984 ; KOCKEN et al., J. Biol. Chem., vol.273, p :15119-15124,1998 ; HODDER et al., Infect. Immun., vol.69(5), p :3286-94, 2001), suggérant un rôle critique associé à cet antigène de surface. De surcroît, il a été démontré que l'expression de la protéine AMA1 est vitale pour la survie du parasite (TRIGLIA et al., Mol. Microbiol., vol.38, p :706-718, 2000). Finalement, la production d'AMAl dans différents systèmes a été décrite, mais se révèle problématique du fait de quantités insuffisantes (baculovirus) ou de problèmes de repliement (E. coli) lié au grand nombre de ponts disulfures. On peut également citer l'antigène MSP1 (Merozoite Surface Protein 1 ; numéro d'accession BAA2624 à BAA2604, AAQ20930 à AAQ20923, et AAC69750 à AAC69718) qui est synthétisé au stade schizonte et qui est impliqué notamment dans l'invasion érythrocytaire par le parasite. Au cours de cette dernière, MSP1 subit plusieurs coupures protéolytiques au cours du processus de maturation du mérozoïte. Parmi ces produits de clivage, un fragment correspondant à l'extrémité C-terminale de MSP1 et présentant une masse moléculaire d'environ 42 kDa (MSP1-42 ; HOLDER et al., Parasitology, vol.94, p:199-208, 1987; LYON et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, vol.83, p:2989-2993, 1986). MSPl-42 reste accroché à la membrane du mérozoïte dans la phase précédent l'invasion. Au moment même de l'invasion, MSPl-42 est lui-même scindé en deux fragments : un fragment N-terminal d'environ 33 kDa et un fragment C-terminal d'environ 19 kDa (MSP1-19 ; BLACKMAN et al., Mol, Biochem. Parasitol., vol.50, p:307-316, 1992). Cette dernière coupure est essentielle pour le succès de l'invasion, bien que le mécanisme du processus n'ait pas encore été élucidé. En raison des difficultés à produire la protéine MSP1 du fait de sa taille importante (environ 200 kDa), les chercheurs ont étudié essentiellement la portion C-terminale qui présente certainement la fonction (inconnue à ce jour) la plus importante. Finalement, la production de protéines recombinantes comprenant la partie C-terminale de MSP1 a été décrite avec notamment une p19 et une p40 fusionnées chacune à une glutathione-S-transférase produite chez E. coli (BURGHAUS et al., Infection and Immunity, vol.64, p:3614-3619, 1996 ; KUMAR et al., Molecular Medicine, vol.l(3), p:325-332, 1995), ou une p19 fusionnée avec un polypeptide dérivé d'une anatoxine tétanique et portant des épitopes de cellules T auxiliaires produit chez S. cerevisiae (KUMAR et al., 1995, cité précédemment). Toutefois, ces différentes protéines recombinantes ont montré une efficacité variable en terme de production d'anticorps après injection chez le singe. Finalement, et malgré les efforts importants entrepris par la communauté scientifique internationale, les différents candidats vaccinaux testés n'ont montré qu'une efficacité relative et très limitée pour la protection contre le paludisme. De surcroît, le fait que le paludisme se localise essentiellement au niveau de pays en voie de développement imposent, pour un éventuel vaccin, de répondre à 3 critères essentiels de (1) efficacité immédiate, (2) administration facile et (3) coût faible. C'est dans ce contexte que les inventeurs ont développé une stratégie originale consistant en l'utilisation de l'amidon comme vecteur portant des épitopes de Plasmodium falciparum afin d'élaborer un vaccin. L'amidon, polymère de réserve par excellence du règne végétal, représente l'une des sources les plus importantes de polysaccharides présents sur terre et peut, notamment, être trouvé dans les plantes (maïs, pomme de terre, blé, riz, orge...), les algues, les microalgues, etc. L'amidon se présente sous forme de grains insolubles, dont la taille peut varier de 0,1 à plusieurs dizaines de m de diamètre, et se compose de deux sous-fractions polysaccharidiques dénommées amylose et amylopectine représentant environ 25 et 75% en poids du grain d'amidon respectivement. Composées uniquement de résidus de glucose liés par des liaisons alpha-1,4 et branchés en alpha-1,6, ces deux fractions diffèrent aussi bien d'un point de vue architectural que dans la nature des fonctions enzymatiques intervenant dans leur synthèse. Alors que l'amylopectine (la fraction majeure du grain d'amidon qui lui confère son caractère cristallin) nécessite un ensemble complexe d'enzymes pour son élaboration, la formation de l'amylose ne fait intervenir qu'une amidon synthétase particulière appelée GBSS (Granule Bound Starch Synthase). Plusieurs isoformes de GBSS ont été isolées chez le maïs, le pois, la pomme de terre ou encore le blé (MACDONALD et PREISS, Plant Physiology, vol.78, p: 849-852,1985 ; SMITH, Planta, vol.182, p: 599-604, 1990 ; DRY et al., The Plant Journal, vol.2(2), p: 193-202, 1992 ; DENYER et al., Planta, vol.196, p: 256-265, 1995). Dans tous les cas, c'est la GBSSI qui représente l'isoforme majeure; ladite iso forme étant impliqué dans la formation d'amylose lors la biogenèse du grain d'amidon (TSAI, Biochemical Genetics, vol.11(2), p:83-95, 1974 ; HOVENKAMPHERMELINK et al., Theorical and Applied Genetics, vol.75, p:217-221, 1987 ; DELRUE et al., Journal of Bacteriology, vol.174(11), p: 3612-3620, 1992 ; DENYER et al., 1995, précité) et les mutants déficients pour cette enzyme ne contenant que de l'amylopectine. L'enzyme GBSSI utilise de l'ADP-glucose afin de relier entre eux les résidus de glucose par des liaisons alpha-1,4 donnant naissance à de longues chaînes peu ramifiées caractéristiques de la fraction amylosique. Une particularité remarquable de cette enzyme repose sur la nécessité d'être liée à une matrice polysaccharidique pour effectuer la réaction enzymatique. Ainsi l'enzyme n'est observée que piégé au sein du grain d'amidon et elle représente à elle seule près de 1 % du poids sec de l'amidon dans des conditions de culture optimales à sa production. Cette abondance et la localisation atypique de l'enzyme engendrent de nombreux avantages technologiques. La GBSSI peut ainsi être très aisément purifiée à l'aide de protocoles utilisés en routine aussi bien à l'échelle du laboratoire qu'à celle de l'industrie. L'amidon purifié contenant la protéine peut également être conservé sans dégradation notable pendant des mois à température ambiante. La localisation particulière de la protéine d'intérêt (au sein même du grain d'amidon) permet également de s'affranchir de la présence d'allergènes végétaux souvent observés lors de la préparation de protéines recombinantes chez la plante. Un ADNc correspondant à la protéine Waxy (par abus de langage, on utilise le terme protéine Waxy pour désigner la GBSSI chez les plantes, la distinguant ainsi des autres GBSS) a été isolé chez le blé,l'orge, le maïs, le riz, la pomme de terre et le pois. Cette protéine d'environ 60 kDa possède une séquence hautement conservée dans le règne végétal (Ainsworth et al., Plant Mol Biol., vol.22(1), p:67-82, 1993). Une exception remarquable est cependant à noter dans le cas de l'algue verte unicellulaire Chlamydomonas reinhardtii, où l'enzyme présente une extension carboxy-terminale de 12 kDa de séquence non pertinente provenant certainement d'une fusion avec un autre gène (WATEFELD et al., Eur. J. Biochem., vol.269(15), p : 3810-20, 2002). Une souche mutante de Chlamydomonas isolée par 1' équipe de Steven Bali produit une protéine tronquée de 4 kDa de cette extension mais possède toujours sa capacité à se fixer à l'intérieur du grain d'amidon. Les inventeurs ont fusionné un peptide portant des épitopes de Plasmodium falciparum avec la protéine GBSSI de l'algue Chlamydomonas. Ils ont alors démontré que la protéine de fusion comprenant le peptide parasitaire MSP1 produite dans l'amidon de l'algue est très immunogénique chez les lapins et les souris conduisant à la production d'anticorps polyclonaux qui sont capables de reconnaître très spécifiquement l'antigène MSP1 natif ainsi que les parasites. Finalement, ces anticorps polyclonaux sont également capables d'inhiber complètement in vitro, la pénétration de Plasmodium falciparum à l'intérieur des hématies. Ces résultats ouvrent maintenant la voie vers l'expression d'autres antigènes de Plasmodium dans l'algue Chlamydomonas, en particulier des épitopes théoriquement invariants appartenant aux antigènes de structures apicales, ce qui devrait permettre la réalisation des tests de protection contre l'infection et la maladie chez des modèles murins. Dans la demande internationale PCT WO 00/71734, les inventeurs ont décrit le principe de protéines de fusion entre une protéine GBSSI tronquée ou non et un polypeptide d'intérêt. Pour autant, ce document ne fait aucun cas de l'utilisation de telle protéines de fusion à des fins vaccinales, pas plus que de la possibilité d'obtenir des protéines de fusion dans lesquelles le polypeptide correspondant à l'épitope présente un repliement correct. Dans tous les cas, ce document ne décrit ni ne suggère des protéines de fusion comprenant des épitopes d'un parasite du genre Plasmodium permettant d'obtenir une réponse immune ciblée après injection. En conséquence, un premier objet de l'invention concerne un polypeptide dont : la séquence N-terminale comprend la séquence polypeptidique de la GBSSI (Granule Bound Starch Synthase I), d'un dérivé ou d'un fragment de celle-ci, laquelle séquence polypeptidique présente la capacité de se fixer à l'amidon ; et (ii) la séquence C-terminale comprend une séquence polypeptidique codant pour au moins un épitope d'un antigène d'un parasite du genre Plasmodium. 10 La séquence de la GBSSI dans différentes espèces de plantes, d'algues ou de micro-algues fait partie des connaissances générales de l'homme du métier ou pourra être déterminée par de simples expériences de routine du fait de la conservation de sa séquence. Par séquence polypeptidique de la GBSSI, on entend la séquence 15 polypeptidique de la GBSSI mature, après clivage du peptide signal du précurseur de la GBSSI. La conservation de séquences de la protéine GBSSI entre les espèces apparaît clairement au regard de la figure 1 qui montre un alignement des séquences de GBSSI matures du blé (Triticum aestivum ; numéro d'accession : P27736), de 20 Chlamydomonas reihnarditii (numéro d'accession : AAL28128), du maïs (Zea mays ; numéro d'accession : PO4713), du pois (Pisum sativum ; numéro d'accession : Q43092), du riz (Oriza sativa ; numéro d'accession : P19395), de l'orge (Hordeum vulgare ; numéro d'accession : P09842) et de la patate (Solanum tuberosum ; numéro d'accession : Q00775). 25 Avantageusement, la séquence polypeptidique de la GBSSI est choisie dans le groupe comprenant la GBSSI de Chlamydomonas reinhardtii (SEQ ID NO :1), de blé (Triticum aestivum ; SEQ ID NO :2) , de maïs (Zea mays ; SEQ ID NO :3), de pois (Pisum sativum ; SEQ ID NO :4), de riz (Oriza sativa ; SEQ ID NO :5), d'orge (Hordeum vulgare ; SEQ ID NO :6), de patate (Solanum tuberosum ; SEQ ID (i) 5 NO :7), du soja (Glycine max; SEQ ID NO :8) et de haricot (Phaseolus vulgaris ; SEQ ID NO :9). De préférence, la séquence polypeptidique de la GBSSI correspond à la séquence polypeptidique de la GBSSI de Chlamydomonas reinhardtii (SEQ ID NO :1) et de manière particulièrement préférée à la séquence polypeptidique allant des positions 1 à 527 de la GBSSI de Chlamydomonas reinhardtii (SEQ ID NO :1) Par séquence dérivée, on entend une séquence présentant un pourcentage d'identité d'au moins 50 %, par exemple d'au moins 65%, de préférence d'au moins 80%, et de manière particulièrement préférée d'au moins 95% avec la séquence polypeptidique de la GBSSI (Granule Bound Starch Synthase I) ou d'un fragment de celle-ci. À titre d'exemple, la figure 1 montre que les différentes protéines GBSSI de blé, de maïs, de pois, de riz et de patate partagent une identité supérieure ou égale à 50% avec la GBSSI de Chlamydomonas reinhardtii. Par pourcentage d'identité entre deux séquences polypeptidiques, on entend le pourcentage d'acides aminés identiques, entre deux séquences devant être comparées, obtenu avec le meilleur alignement possible desdites séquences. Ce pourcentage est purement statistique et les différences entre les deux séquences sont réparties aléatoirement sur toute la longueur des séquences d'acides aminés. Par meilleur alignement possible ou alignement optimal, on entend l'alignement permettant d'obtenir le pourcentage d'identité le plus élevé. Les comparaisons de séquences entre deux séquences d'acides aminés sont habituellement réalisées en comparant lesdites séquences après que celles-ci aient été alignées selon le meilleur alignement possible ; la comparaison est alors réalisée sur des segments de comparaison de façon à identifier et comparer des régions de similarité. Le meilleur alignement possible pour effectuer une comparaison peut être réalisé en utilisant l'algorithme d'homologie globale développé par SMITH et WATERMAN (Ad. App. Math., vol.2, p:482, 1981), en utilisant l'algorithme d'homologie locale développé par NEDDLEMAN et WUNSCH (J. Mol. Biol., vol.48, p:443, 1970), en utilisant la méthode de similarité développé par PEARSON et LIPMAN (Proc. Natl. Acd. Sci. USA, vol.85, p:2444, 1988), en utilisant des programmes d'ordinateur basés sur de tels algorithmes (GAP, BESTFIT, BLAST P, BLAST N, FASTA, TFASTA, Genetics Computer Group, 575 Science Dr., Madison, WI USA), en utilisant les algorithmes d'alignement multiples MUSCLE (Edgar, Robert C., Nucleic Acids Research, vol. 32, p:1792, 2004 ). Pour obtenir le meilleur alignement possible, on utilisera de préférence le programme BLAST avec la matrice BLOSUM 62 ou la matrice PAM 30. Le pourcentage d'identité est déterminé en comparant les deux séquences alignées de façon optimale, lesdites séquences pourront comprendre des additions ou des délétions au regard de la séquence de référence de sorte d'obtenir le meilleur alignement possible entre ces deux séquences. Le pourcentage d'identité est calculé en déterminant le nombre de position identique entre les deux séquences, en divisant le nombre obtenu par le nombre total de positions comparées et en multipliant le résultat obtenu par 100 pour obtenir le pourcentage d'identité entre ces deux séquences. Par fragment de GBSSI, on entend un polypeptide d'au moins 50 acides aminés, à titre d'exemple d'au moins 100 ou 150 acides aminés, de préférence d'au moins 200 acides aminés, à titre d'exemple d'au moins 250 ou 350 acides aminés, et de manière particulièrement préférée un polypeptide d'au moins 400 acides aminés. À titre d'exemple, les inventeurs ont pu montrer que le fragment allant de la position 1 à la position 438 de la GBSSI mature chez Chlamydomonas reinharditii (SEQ ID NO :1). L'homme du métier est capable de déduire au regard de ses seules connaissances générales les fragments correspondants de GBSSI dans d'autres espèces. De préférence, des fragments de GBSSI capables de se lier à l'amidon sont choisis dans le groupe comprenant la séquence polypeptidique allant des positions 1 à 438 de la GBSSI de Chlamydomonas reinharditii (SEQ ID NO :1), 1 à 449 de la GBSSI de blé (Triticum aestivum ; SEQ ID NO :2) , 1 à 437 de la GBSSI de maïs (Zea mays ; SEQ ID NO :3), 1 à 432 de la GBSSI de pois (Pisum sativum ; SEQ ID NO :4), 1 à 436 de la GBSSI de riz (Oriza sativa ; SEQ ID NO :5), 1 à 437 de la GBSSI d'orge (Hordeum vulgare ; SEQ ID NO :6), 1 à 434 de la GBSSI de patate (Solanum tuberosum ; SEQ ID NO :7), 1 à 435 de la GBSSI de soja (Glycine max; SEQ ID NO :8) et 1 à 431 de la GBSSI de haricot (Phaseolus vulgaris ; SEQ ID NO :9). Par antigène, on entend par la présente un polypeptide capable de déclencher une réaction immunitaire à médiation humorale ou à médiation cellulaire. L'homme du métier pourra identifier simplement et au regard de ses connaissances générales un antigène d'un parasite du genre Plasmodium, notamment de Plasmodium falciparum, Plasmodium vivax, Plasmodium ovale ou Plasmodium malariae, de préférence un antigène de Plasmodium falciparum ou de Plasmodium vivax, et de manière particulièrement préférée un antigène de Plasmodium falciparum. À titre d'exemple de tels antigènes, on peut citer les antigènes suivants : Pfg27/25 (SEQ ID NO :10), Pfsl6 (SEQ ID NO :11), Pfs25 (SEQ ID NO :12), Pfs28 (SEQ ID NO :13), Pfs48/45 (SEQ ID NO :14), Pfs230 (SEQ ID NO :15), CSP-1 (SEQ ID NO :16), STARP (SEQ ID NO :17), SALSA (SEQ ID NO :18), SSP-2 (SEQ ID NO :19), LSA-1 (SEQ ID NO :20), EXP-1 (SEQ ID NO :21), LSA-3 (SEQ ID NO :22), RAP-1 (SEQ ID NO :23), RAP2 (SEQ ID NO :24), SERA-1 (SEQ ID NO :25), MSP-1 (SEQ ID NO :26), MSP-2 (SEQ ID NO :27), MSP-3 (SEQ ID NO :28), MSP-4 (SEQ ID NO :29), MSP-5 (SEQ ID NO :30), AMA-1 (SEQ ID NO :31), EMP-1 (SEQ ID NO :32) et EBA-175 (SEQ ID NO :33). Par épitope, on entend une structure présente à la surface de la molécule d'antigène et capable de se fixer à une seule molécule d'anticorps. Avantageusement, on entend par épitope une séquence polypeptidique dérivée de la séquence polypeptidique d'un antigène d'un parasite du genre Plasmodium. Avantageusement encore, on entend par épitope une séquence polypeptidique d'au moins 6 acides aminés, de préférence d'au moins 8 acides aminés, par exemple d'au moins 10 acides aminés, et de manière particulièrement préférée d'au moins 12 acides aminés. L'homme du métier, au regard de ses connaissances générales et de simples expériences de routine, sera capable d'identifier dans la séquence d'un antigène d'un parasite du genre Plasmodium, la séquence polypeptidique codant pour un épitope reconnu spécifiquement par un anticorps. À titre d'exemple, l'homme du métier pourra utiliser notamment le procédé décrit dans la demande internationale PCT WO02/30964. Par séquence dérivée, on entend une séquence polypeptidique présentant un pourcentage d'identité d'au moins 70 %, de préférence d'au moins 80% et de manière particulièrement préférée d'au moins 90% avec la séquence polypeptidique d'un antigène d'un parasite du genre Plasmodium. La séquence polypeptidique de l'épitope pourra ainsi comprendre des substitutions (1,2 ou 3) au regard de la séquence polypeptidique d'un antigène d'un parasite du genre Plasmodium, de sorte d'améliorer l'ancrage et ainsi la présentation du polypeptide correspondant audit épitope par les molécules du CMH de classe II. Selon un mode de réalisation préférée, la séquence polypeptidique dudit épitope présente une identité de 100% avec la séquence polypeptidique d'un antigène d'un parasite du genre Plasmodium. Selon un mode de réalisation préféré, ledit antigène correspond à l'antigène 15 MSP1 (SEQ ID NO :26). De préférence, la séquence polypeptidique codant pour au moins un épitope d'un antigène d'un parasite du genre Plasmodium est la séquence SEQ ID NO :34. Avantageusement, le polypeptide selon l'invention présente la séquence SEQ ID NO :35. 20 Selon un second mode de réalisation préféré, ledit antigène correspond à l'antigène AMA-1 (SEQ ID NO :31). De préférence, la séquence polypeptidique codant pour au moins un épitope d'un antigène d'un parasite du genre Plasmodium est la séquence SEQ ID NO :36. Avantageusement, le polypeptide selon l'invention présente la séquence SEQ 25 ID NO :37. Avantageusement, le polypeptide selon l'invention comprend une séquence polypeptidique de liaison entre les séquences N- et C-terminales. Un deuxième objet de l'invention porte sur un polynucléotide codant pour un polypeptide tel que décrit précédemment. Ledit polynucléotide correspond à une séquence d'ADN, de préférence ledit polynucléotide est une séquence d'ADN. Avantageusement, ledit polynucléotide code pour un polypeptide présentant en outre un peptide signal à son extrémité N-terminale, lequel peptide signal permet le transport intra-cellulaire dudit polypeptide vers les sites de biosynthèse des grains d'amidon. De préférence, ledit peptide signal correspond au peptide signal de GBSSI de l'organisme dans lequel est produit le polypeptide selon l'invention. À titre d'exemple, on pourra utiliser le peptide signal de GBSSI de Chlamydomonas reihnarditii (SEQ ID NO :38), lorsqu'il est envisagé de produire le polypeptide selon l'invention dans cet organisme. Avantageusement encore, le polynucléotide selon l'invention est lié de façon opérationnelle à une séquence d'expression génique dirigeant l'expression dudit polynucléotide dans une cellule eucaryote, de préférence dans une cellule de plante, d'algue ou de micro-algue. Ladite séquence d'expression génique correspond à toute séquence de régulation, telle qu'une séquence promotrice ou une combinaison entre une séquence promotrice et une séquence activatrice facilitant la transcription et la traduction efficace du polypeptide tel que décrit précédemment. Ladite séquence d'expression génique peut correspondre à une séquence promotrice virale ou eucaryote, constitutive ou inductible. A titre de séquences promotrices utilisables, on peut citer à titre d'exemples, des séquences promotrices eucaryotes de type végétaux supérieurs, tels que les promoteurs 35S et CaMV, ou des séquences promotrices eucaryotes de microalgues, tels que les promoteurs HSP70, Rubisco, ARG7 (arginosuccinate lyase) et NIT1 (nitrate réductase). Un troisième objet de l'invention concerne un vecteur comprenant le polynucléotide tel que décrit précédemment. À titre d'exemple de tels vecteurs, on peut citer les plasmides, les phages et les plasmides. Un quatrième objet de l'invention concerne une cellule transformée par un vecteur tel que décrit précédemment. De préférence, ladite cellule transformée est une cellule végétale contenant un ou plusieurs polynucléotides tels que décrits précédemment, intégrés dans leur génome ou maintenus de manière stable dans leur cytoplasme, lesdites cellules végétales étant choisies parmi les cellules de plantes, d'algues ou de micro-algues, capables de fabriquer de l'amidon. La transformation de cellules végétales peut être réalisée selon des techniques bien connues de l'homme du métier. À titre d'exemple, on peut citer la technique d'électroporation, de microinjection cytoplasmique ou nucléaire, de canon à gène ou de transformation à l'aide de bactéries transformée telle que Agrobacterium tumefaciens. Un cinquième objet de l'invention concerne également un organisme transformé tel qu'une plante, une algue ou une microalgue et comprenant une cellule 15 transformée telle que décrite précédemment. Parmi les plantes, algues ou micro-algues transformées dans le cadre de la présente invention, on peut citer principalement le blé, le maïs, la pomme de terre, le riz, l'orge, l'amarante, les algues du genre Chlamydomonas, notamment Chlamydomonas reinhardtii, les algues du genre Chlorella, notamment Chlorella 20 vulgaris. Un sixième objet de l'invention concerne une composition pharmaceutique comprenant un polypeptide tel que décrit précédemment, éventuellement associé à un support pharmaceutiquement acceptable. À titre d'exemple de support pharmaceutiquement acceptable, la composition 25 peut comprendre des émulsions, des microémulsions, des émulsions huile dans l'eau, des lipides anhydres et des émulsions eau dans l'huile, ou d'autres types d'émulsions. La composition selon l'invention peut comprendre en outre un ou plusieurs additifs tels que les diluants, les excipients, les stabilisateurs et les conservateurs. De 30 tels additifs sont bien connus de l'homme du métier et sont décrits notamment dans Ullmann 's Encyclopedia of Industrial Chemistry, 6th Ed. (différents éditeurs, 1989-1998, Marcel Dekker); et dans "Pharmaceutical Dosage Forms and Drag Delivery System "s (ANSEL et al., 1994, WILLIAMS & WILKINS). Le polypeptide selon l'invention peut être solubilisé dans un tampon, dans de l'eau ou incorporé dans des émulsions ou des microémulsions. À titre d'exemple de tampons utilisables, on peut citer le tampon phosphate salin (PBS), le sérum artificiel (150 mM NaCl dans de l'eau) et les tampons Tris. Il existe de nombreuses causes d'instabilité ou de dégradation des polypeptides telles que l'hydrolyse et la dénaturation, pouvant entraîner une diminution de l'induction de la réponse humorale ou cellulaire. Des stabilisateurs peuvent être ajouter pour diminuer ou prévenir de tels problèmes. À titre d'exemple de stabilisateurs, on peut citer les monosaccharrides, les disaccharrides, les polysaccharides, les détergents ioniques et non-ioniques, les sels de métaux alcalins, les phospholipides, les acides gras, les polyols et les peptides stabilisants comme la sérum albumine bovine. Avantageusement, ledit au moins un polypeptide estassocié à des grains d'amidon. Les inventeurs ont en effet montré que la production du polypeptide selon l'invention en association avec les grains d'amidon permettait d'augmenter sa 20 stabilité. La composition selon l'invention pourra se trouver alors sous une forme administrable par voie parentérale, notamment par voie intraveineuse, intrapéritonéale ou sous une forme administrable par voie orale. De préférence, la composition pharmaceutique susmentionnée administrable 25 par voie parentérale, est caractérisée en ce que le diamètre des grains d'amidon est compris entre 0,1 gm et plusieurs m, notamment entre environ 0,1 gm et 10 m. La proportion en poids dudit au moins un polypeptide dans ces grains d'amidon est alors comprise entre 0, 1 % et 1 % en poids. Des grains d'amidon tels que décrits ci-dessus dont les faibles diamètres sont compris entre 0,1 m et 10 m, et dans lesquels la proportion en poids dudit au moins un polypeptide tel que décrit précédemment est comprise entre environ 0,1 % et 1 %, sont avantageusement obtenus : -à partir d'algues ou micro-algues transformées dans le cadre de la présente invention, on peut citer principalement Chlamydomonas reinhardtii - à partir de plantes ou cellules de plantes transformées dans le cadre de la présente invention et choisies pour leur propriété à produire naturellement les grains d'amidon susmentionnés, lesdites plantes étant choisies notamment parmi le riz et l'amarante ; - à partir de parties de plantes transformées dans le cadre de la présente invention, lesdites parties de ces plantes produisant naturellement les grains d'amidon susmentionnés, telles que les feuilles des plantes ; - à partir de plantes ou cellules de plantes transformées dans le cadre de la présente invention, ces plantes étant choisies parmi des plantes comportant des mutations telles qu'elles produisent des grains d'amidon de faibles diamètres susmentionnés, notamment à partir des plantes mutantes décrites dans BULEON et al. (Mt. J. Biol. Macromolecules, vol.23, p :85-112, 1998) ; - à partir de plantes ou cellules de plantes transformées dans le cadre de la présente invention, ces plantes étant choisies parmi des plantes transformées à l'aide de séquences nucléotidiques antisens de tout ou partie du gène codant pour l'ADP-glucose pyrophosphorylase nécessaire à la synthèse d'ADP-glucose dans les cellules végétales, notamment à partir des plantes transformées décrites dans MÜLLERROBER et al. (EMBO J., vol.11(4), p :1229-1238,1992). Avantageusement, dans le cas d'une composition pharmaceutique administrable par voie parentérale, les grains d'amidon sont de préférence choisis parmi ceux de structure amorphe dans le cas où l'on souhaite obtenir une libération rapide du polypeptide tel que décrit précédemment qu'ils contiennent dans le sang du sujet, ou, au contraire parmi ceux de structure cristalline lorsque l'on souhaite libérer progressivement ledit polypeptide dans le sang. À titre d'illustration, des grains d'amidon amorphes peuvent être obtenus à partir de semences transformées selon l'invention en phase de germination, ou à partir de plantes mutantes particulières telles que décrites par SHANNON et GARWOOD (In starch : Chemistry and Technology, 2'' edition, Academic Press, San Diego, California, p :16-86, 1984), notamment à partir des cultivars mutants tels que"amylose extender"du maïs ou encore tous les cultivars mutants de plantes, algues ou micro-algues dont l'amidon est enrichi en amylose. À titre d'illustration encore, des grains d'amidon de structure cristalline présentent avantageusement 30 à 35% de cristaux et peuvent être obtenus à partir de semences de plantes, notamment de céréales, venant d'être récoltées et à maturité, ou à partir de plantes mutantes telles que décrites par SHANNON et GARWOOD (précité, 1984), notamment à partir des cultivars mutants tels que "waxy"du maïs ou encore tous les cultivars mutants de plantes, algues ou micro-algues dont l'amidon est dépourvu d'amylose. De tels grains d'amidon pourront être purifiés à partir des plantes, parties de plantes, algues ou micro-algues à l'aide de techniques bien connues de l'homme du métier. À titre d'exemple de telles techniques, on pourra citer les techniques décrites dans HARRIS (The Chlamydomonas Sourcebook. A Comprehensive Guide to Biology and Laboratory Use. Academic Press, San Diego,CA., 1989) et dans KINDLE (High-frequency nuclear transformation of Chlamydomonas reinhardtii. Genetics, 87, 1228-1232, 1990) Un septième objet de l'invention porte sur une méthode de traitement prophylactique d'une pathologie associée à un parasite du genre Plasmodium comprenant l'administration d'une quantité thérapeutiquement efficace d'une composition telle que décrite précédemment à un sujet. Tel qu'utilisé dans la présente demande, le terme sujet correspond à un mammifère tel qu'un rongeur, un félin, un canin, un primate ou un humain, de préférence ledit sujet est un humain. Par pathologie associée à un parasite du genre Plasmodium, on entend 30 notamment le paludisme. Par quantité thérapeutiquement efficace , on entend une quantité permettant d'induire la production d'anticorps neutralisants. L'homme du métier sera à même de déterminer ladite quantité thérapeutiquement efficace au regard de ses connaissances générales et/ou à l'aide de simples expériences de routine. Un huitième objet de l'invention porte sur l'utilisation d'une composition telle que décrite précédemment pour la fabrication d'un médicament destiné au traitement prophylactique d'un sujet d'une pathologie associée à un parasite du genre Plasmodium, de préférence du paludisme. Selon un mode de réalisation préféré, ladite composition est destiné à une administration par voie parentérale. Selon un autre mode de réalisation préféré, ladite composition est destinée à une administration par voie orale. Les exemples qui suivent sont fournis à titre d'illustration et ne sauraient limiter la portée de la présente invention. EXEMPLES : I- Production de protéines de fusion comprenant la GBSSI et des antigènes de parasite du genre Plasmodium I-1 Obtention d'épitopes dérivés des antigènes MSP1 et AMA-1 de parasites du genre Plasmodium Afin de valider ce concept de vaccination antipaludique, deux polypeptides provenant des antigènes majeurs MSP1 et AMA-1 issus de parasites du genre Plasmodium ayant prouvés leur efficacité dans des tests de protection contre le parasite ont été sélectionnés (JOHN et al., J. Immunol., vol.173, p :666-72, 2004 ; MALKIN et al., Infect. Immun., vol.73, p : 3677-85, 2005). Des réactions de PCR à l'aide d'amorces spécifiques ont permis d'amplifier les polynucléotides codant pour : - le peptide C-terminal de 19 kDa (dépourvu de la séquence glycolipidique GPI) de l'antigène majeur de surface MSP1 (merozoite surface protein 1) de Plasmodium falciparum (modèle d'infection humaine), et - la région centrale de l'antigène AMA-1 (apical major antigen 1) de 5 Plasmodium berghei (modèle d'infection murine). Plus spécifiquement, les amorces 3' utilisées présentaient un site de restriction XhoI et permettaient le clonage ultérieur en phase du polynucléotide obtenu avec la séquence polynucléotidique codant pour la GBSSI. Les amorces 5' présentaient un site de restriction BamHI. 10 Les fragments PCR MSP1 et AMA-1 de 312 et 336 pb respectivement (SEQ ID NO: 39 et SEQ ID NO:40) ont été purifié puis cloné dans le vecteur pCR2.1 à l'aide du kit TOPO TA CLONING (INVITROGEN) selon les instructions du fabricant pour obtenir les plasmides MSP1-pCR2.1 et AMA-1-pCR2.1 respectivment. 15 I-2 Extraction du • ene de résistance . aroR du lasmide SG2 de Chlamydomonas g de plasmide pSG2 a été digéré pendant 2 heures à 37 C avec l'enzyme de restriction XbaI. La bande d'ADN à 2300 pb qui correspond au fragment conférant la résistance à la paromomycine (paroR) a été excisée et purifiée. Le fragment 20 plasmidique restant pSG2 (200 ng) a été re-circularisé par la T4 DNA ligase (BIOLABS) à 4 C, une nuit, puis le 1/5ème du produit a servi à transformer des bactéries TOP10F' compétentes (INVITROGEN) selon les instructions du fabricant. Afin de vérifier que les bactéries comprennent effectivement le plasmide pKB101 (voir figure 2, laquelle indique l'emplacement de la GBSSI troquée et des sites de 25 clonage ; SEQ ID NO :41) et que le fragment paroR a bien été enlevé, 4 clones ont été choisis et remis en culture dans 5 mL de LB supplémenté en ampicilline (50 g/mL). L'ADN plasmidique a été extrait à l'aide du kit NUCLEOSPIN PLASMID (MACHEREY-NAGEL) selon les instructions du fabricant, puis digéré par l'enzyme XbaI, 2 heures à 37 C afin de vérifier l'absence du fragment paroR de 30 2300 pb dans le plasmide. I-3 Extraction des inserts MSP1 et AMA-1 des plasmides MSP1-pCR2.1 et AMA-1-pCR2.1 Les bactéries contenant le plasmide MSP1-pCR2.1 a été remises en culture dans 50 mL de LB contenant 50 g/mL d'ampicilline. Le plasmide a ensuite été extrait avec le kit HISPEED PLASMID MIDI (QIAGEN) selon les instructions du fabricant. 5 g de plasmides MSP1-pCR2.1 a été digéré 1 heure à 37 C par l'enzyme BamHI (BIOLABS), puis 1 heure à 37 C par Xhol (BIOLABS) selon les instructions du fabricant. Le produit de digestion a ensuite été déposé sur gel d'agarose et la bande d'ADN de 300pb correspondant au fragment MSP1 a été purifiée, puis ligaturée avec l'enzyme T4 DNA ligase, comme précédemment, dans le plasmide pSG2 préalablement digéré par Xhol/BamHI pour obtenir le plasmide MSP1-pSG2'. Un cinquième du produit de ligature a alors servi à transformer des bactéries TOP10F' compétentes (INVITROGEN) comme précédemment. Dans plusieurs clones positifs issus de cette transformation, la présence du 15 plasmide MSPl-pSG2' a été confirmé par PCR et séquençage direct de l'ADN. Le même protocole a été utilisé sur le plasmide AMA-1-pCR2.1 pour obtenir le plasmide AMAl-pSG2', lequel comprend un fragment de 312 pb correspondant à 104 acides aminés de AMA1 I-4 Insertion du gène de résistance à la paromomycine (paroR) dans les 20 plasmides MSPl-pSG2' et AMAl-pSG2' Le plasmide MSP1-pSG2' (5 g) a été digéré par l'enzyme de restriction Xbal pendant 2 heures à 37 C. La linéarisation complète du plasmide a été vérifiée en déposant un aliquote de la digestion sur gel d'agarose 1%. Le plasmide MSPl-pSG2' linéarisé a ensuite été traité à la phosphatase alcaline 25 (ROCHE) et le fragment paroR purifié précédemment (cf. I-2) a été inséré dans le plasmide MSPl-pSG2' pour obtenir le plasmide MSPl-pSG2 à l'aide de la T4 DNA ligase (BIOLABS) selon les instructions du fabricant. Un cinquième du produit de ligature a alors servi à transformer des bactéries TOP10F' compétentes (INVITROGEN) et quelques clones positifs ont été digérés par l'enzyme Xbal afin 30 de vérifier la présence d'un insert de 2300 pb. La même procédure a été utilisée pour la construction du plasmide AMAlpSG2 à partir du plasmide AMAl-pSG2'. I-5 Transformation de l'algue Chlamydomonas avec les plasmides MSPl-pSG2 et AMAl-pSG2 Une souche mutante de Chlamydomonas, dépourvue de GBSS endogène, a été transformée à l'aide de la technique des billes de verre avec 1 g de plasmide MSPl-pSG2 selon le protocole décrit dans KINDLE (1990, précité). Brièvement, 300 L d'une suspension cellulaire provenant d'une culture en TAP en phase exponentielle de croissance concentrée 100 fois est vortexée violement en présence d'un microgramme d'ADN pendant 15 secondes. Six cents microlitres de TAP sont ajoutés et la suspension cellulaire est étalée sur boite (TAP supplémenté de paromomycine à 10 g/mL) pour sélectionner les clones ayant intégré le plasmide MSP1-pSG2. Les clones résistants à la paromomycine apparaissent en une dizaine de jours à 23 degrés et sous lumière continue et sont ensuite criblés afin d'identifier les clones exprimant la protéine de fusion GBSSI- MSP1 (SEQ ID NO: 35). Le même protocole a été utilisé avec le plasmide AMAl-pSG2 pour obtenir des clones exprimant la protéine de fusion GBSSI-AMA-1 (SEQ ID NO: 37). II Expression des protéines GBSSI-MSP1 et GBSSI-AMA-1 L'amidon de différents clones résistants et susceptibles de comprendre la protéine de fusion GBSSI-MSP1 a été purifié comme décrit dans HARRIS (1989, précité). Brièvement, une culture de l'algue verte Chlamydomonas reinhardtii en milieu non carencé (TAP) est centrifugée à 3000 g pendant 10 minutes lorsque la densité cellulaire atteint 3 à 4 millions de cellules par mL. Le culot cellulaire est broyé à l'aide d'une presse de French (10000 PSI). Le lysat est par la suite centrifugé (13000 rpm, 15 minutes) et le culot obtenu contenant l'amidon et les débris cellulaires est conservé. Ce culot est resuspendu dans du percoll (GE HEALTHCARE) 90% puis soumis à une centrifugation (13000 rpm, 45 minutes). Le culot d'amidon obtenu est lavé par de l'eau milliQ deux fois (13000 rpm, 10 minutes). Le dosage de l'amidon s'effectue à l'aide du kit commercialisé par DIFFCHAMP (ENZYPLUS STARCH ) puis aliquoté par l0mg. L'amidon peut ainsi être conservé à 4 degrés plusieurs mois sans dégradation apparente. Les protéines sont ensuite extraites d'environ 1 mg d'amidon pour chaque clone avec 60 gl de tampon d'extraction ((3-mercaptoéthanol 5%(v/v), SDS 2% (p/v)) à 100 C pendant 5 minutes. Après centrifugation à 13000g pendant 10 minutes, le surnageant est récupéré et l'opération est renouvelée une fois avec le culot. Les deux surnageants sont réunis et sont chargés sur deux gels d'électrophorèse SDS-PAGE. A titre de contrôle, les mêmes opérations sont effectuées sur l'amidon d'une souche de Chlamydomonas reinhardtii exprimant la GBSSI sauvage. L'un des deux gels est coloré au bleu de Coomassie et l'autre est transféré sur membrane de nitrocellulose (SCHLEICHER & SCHUELL) selon les instructions du fabricant pour analyse en Western blot avec un anticorps polyclonal dirigé contre le peptide parasitaire de 19 KDa de MSP1 puis avec un anticorps polyclonal spécifique de la GBSSI de Chlamydomonas reinhardtii. Le gel coloré au coomassie a révélé l'existence d'une bande majoritaire à environ 70 kDa pour les algues mutantes transformées et à environ 70 kDa pour l'algue sauvage ce qui correspond à la taille attendue pour les protéines GBSSIMSP1 et GBSSI respectivement. En effet, le peptide C-terminal de la GBSS a été supprimé et est remplacé par le peptide MSP1, ce qui permet d'avoir une protéine recombinante de taille similaire. La différence entre les transformants exprimant la GBSSI-MSP1 et les souches résistantes ne l'exprimant pas peut être observée par la présence d'une protéine de 70 kDa extraite des grains d'amidon. En outre, les résultats ont montré que lesdites protéines sont bien reconnues par l'anticorps polyclonal dirigé contre la GBSSI. En revanche, seule la protéine majoriatire exprimée dans les souches mutantes et transformées par le vecetur MSPl-pSG2 est reconnue par l'anticorps polyclonal dirigé contre le peptide parasitaire de 19 KDa de MSP1. Les résultats ont également montré que la protéine de fusion GBSS-AMAl 30 était aussi exprimée avec succès dans l'amidon d'algues transformées par le vecteur AMAl -pSG2. III Production d'anticorps polyclonaux dirigés spécifiquement contre la protéine de fusion GBSS-MSP1-19: Une dizaine de milligrammes d'amidon, contenant la protéine de fusion GBSSMSP1 et purifié comme décrit précédemment, a été utilisé pour immuniser cinq souris Balb/c avec de l'adjuvant complet de Freund suivi de deux rappels avec de l'adjuvant incomplet à un mois d'intervalle chacun. Deux semaines après la dernière immunisation, les sérums des cinq souris ont été collectés. En parallèle, et à titre de contrôle négatif, une dizaine de milligrammes d'amidon contenant la GBSS sauvage et purifié comme précédemment, a été utilisé 10 pour immuniser cinq souris Balb/c selon le protocole décrit précédemment. L'existence d'anticorps dirigés contre la protéine de fusion GBSS-MSP1 dans le sérum collecté a été confirmé par une analyse par Western blot dont les résultats ont montré que les sérums obtenus chez les souris immunisées avec la GBSS-MSP1 reconnaissent spécifiquement et uniquement l'antigène majeur de surface MSP1 de 15 190 kDa ainsi que ses différents peptides protéolytiques, tels que les peptides de 70 kDa et de 42 kDa, ainsi que le fragment membranaire des mérozoïtes infectants, le peptide de 19 kDa. Comme attendu, les sérums produits contre la GBSS seule ne reconnaissent eux aucun antigène parasitaire, ce qui confirme la spécificité de la reconnaissance des antigènes parasitaires contenant les épitopes du peptide 19 kDa. 20 La spécificité du sérum polyclonal anti-GBSS-MSP1 à l'encontre du peptide de 19 kDa de MSP1 a également été confirmé par la technique d'immunofluorescence indirecte (IFA). En effet, et comme attendu, les résultats ont montré que ledit sérum reconnaissait spécifiquement la membrane et la surface de Plasmodium falciparum à l'intérieur des hématies infectées alors que les sérums anti-GBSS seuls sont 25 totalement négatifs. Finalement, l'expression d'une protéine de fusion dans l'amidon permet donc non seulement sa purification simple mais également de tester aisément son immunogénicité puisque par une simple absorption, l'amidon sera transformé dans l'organisme en glucose et les protéines antigéniques libérées lors de ce processus 30 deviendront donc accessibles au système immunitaire. IV Inhibition de l'invasion des hématies par Plasmodium falciparum: Une culture de Plasmodium falciparum synchrone contenant des schizontes a été utilisée. 900 microL d'hématies à 50% d'hématocrite et 1% de parasitémie contenant uniquement des schizontes a été resuspendu dans 20 mL de RPMI complet. Ensuite, 200 microL de la suspension a été distribué dans chaque puit d'une plaque de culture à 96 puits et 10, 15 ou 20 microL de sérum sain ou anti GBSSMSP1 a été rajouté dans des séries de puits contenant la suspension parasitaire. Pour chaque concentration, 4 puits ont été testés. Les résultats ont montré que les anticorps polyclonaux spécifiques de la GBSS- MSP1 ont complètement inhibé (100% d'inhibition) l'invasion des globules rouges par Plasmodium falciparum. En revanche, les anticorps polyclonaux dirigés contre l'amidon seul n'ont révélé aucune inhibition de l'invasion des globules rouges par Plasmodium falciparum. Finalement, ces résultats démontrent que l'amidon contenant la GBSS-MSP1 peut donc éliciter une réponse humorale contenant des anticorps polyclonaux qui neutralisent la pénétration du Plasmodium falciparum à l'intérieur des globules rouges. REVENDICATIONS 1. Un polypeptide dont : (i) la séquence N-terminale comprend la séquence polypeptidique de la GBSSI (Granule Bound Starch Synthase I), d'un dérivé ou d'un fragment de celle-ci, laquelle séquence polypeptidique présente la capacité de se fixer à l'amidon ; et (ii) la séquence C-terminale comprend une séquence polypeptidique codant pour au moins un épitope d'un antigène d'un parasite du genre Plasmodium. 2. Le polypeptide selon la revendication 1, caractérisé en ce que la séquence polypeptidique de la GBSSI est choisie dans le groupe comprenant la GBSSI de Chlamydomonas reinhardtii (SEQ ID NO :1), de blé (Triticum aestivum ; SEQ ID NO :2) , de maïs (Zea mays ; SEQ ID NO :3), de pois (Pisum sativum ; SEQ ID NO :4), de riz (Oriza sativa ; SEQ ID NO :5), d'orge (Hordeum vulgare ; SEQ ID NO :6), de patate (Solanum tuberosum ; SEQ ID NO :7), du soja (Glycine max; SEQ ID NO :8) et de haricot (Phaseolus vulgaris ; SEQ ID NO :9) 3. Le polypeptide selon l'une quelconque des revendications 1 ou 2, caractérisée en ce que la séquence polypeptidique de la GBSSI correspond à la séquence polypeptidique de la GBSSI de Chlamydomonas reinhardtii (SEQ ID NO :11. 4. Le polypeptide selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que les fragments de GBSSI capables de se lier à l'amidon sont choisis dans le groupe comprenant la séquence polypeptidique allant des positions 1 à 438 de la GBSSI de Chlamydomonas reinharditii (SEQ ID NO :1), 1 à 449 de la GBSSI de blé (Triticum aestivum ; SEQ ID NO :2) , 1 à 437 de la GBSSI de maïs (Zea mays ; SEQ ID NO :3), 1 à 432 de la GBSSI de pois (Pisum sativum ; SEQ ID NO :4), 1 à 436 de la GBSSI de riz (Oriza sativa ; SEQ ID NO :5), 1 à 437 de la GBSSI d'orge (Hordeum vulgare ; SEQ ID NO :6), 1 à 434 de la GBSSI de patate (Solanum tuberosum ; SEQ ID NO :7), 1 à 435 de la GBSSI de soja (Glycine max; SEQ ID NO :8) et 1 à 431 de la GBSSI de haricot (Phaseolus vulgaris ; SEQ ID NO :9). 5. Le polypeptide selon l'une quelconque des revendications précédentes caractérisé en ce que le parasite du genre Plasmodium est choisi dans le groupe comprenant Plasmodium falciparum, Plasmodium vivax, Plasmodium ovale et Plasmodium malariae. 6. Le polypeptide selon l'une quelconque des revendications précédentes caractérisé en ce que ledit antigène est choisi dans le groupe comprenant les antigènes Pfg27/25 (SEQ ID NO :10), Pfsl6 (SEQ ID NO :11), Pfs25 (SEQ ID NO :12), Pfs28 (SEQ ID NO :13), Pfs48/45 (SEQ ID NO :14), Pfs230 (SEQ ID NO :15), CSP-1 (SEQ ID NO :16), STARP (SEQ ID NO :17), SALSA (SEQ ID NO :18), SSP-2 (SEQ ID NO :19), LSA-1 (SEQ ID NO :20), EXP- 1 (SEQ ID NO :21), LSA-3 (SEQ ID NO :22), RAP-1 (SEQ ID NO :23), RAP-2 (SEQ ID NO :24), SERA-1 (SEQ ID NO :25), MSP-1 (SEQ ID NO :26), MSP-2 (SEQ ID NO :27), MSP-3 (SEQ ID NO :28), MSP-4 (SEQ ID NO :29), MSP-5 (SEQ ID NO :30), AMA-1 (SEQ ID NO :31), EMP-1 (SEQ ID NO :32) et EBA-175 (SEQ ID NO :33). 7. Le polypeptide selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que ledit épitope présente une séquence polypeptidique d'au moins 6 acides aminés, de préférence d'au moins 8 acides aminés, dérivée de la séquence polypeptidique d'un antigène d'un parasite du genre Plasmodium. 8. Le polypeptide selon la revendication 7, caractérisé en ce que ledit épitope consiste en une séquence polypeptidique présentant un pourcentage d'identité d'au moins 70 %, de préférence d'au moins 80%, avec la séquence polypeptidique d'un antigène d'un parasite du genre Plasmodium. 9. Le polypeptide selon la revendication 8, caractérisé en ce que la séquence polypeptidique de l'épitope comprend des substitutions au regard de la séquence polypeptidique d'un antigène d'un parasite du genre Plasmodium, de sorte d'améliorer l'ancrage et ainsi la présentation du polypeptide correspondant audit épitope par les molécules du CMH de classe II. 10. Le polypeptide selon la revendication 7, caractérisé en ce que ledit épitope consiste en une séquence polypeptidique présentant une identité de 100% avec la séquence polypeptidique d'un antigène d'un parasite du genre Plasmodium. 11. Le polypeptide selon la revendication 6, caractérisé en ce que ledit antigène correspond à l'antigène MSP1 (SEQ ID NO :26). 12. Le polypeptide selon la revendication 11, caractérisé en ce que la séquence polypeptidique codant pour au moins un épitope d'un antigène d'un parasite du genre Plasmodium est la séquence SEQ ID NO :34. 13. Le polypeptide selon la revendication 12, caractérisé en ce que ledit polypeptide présente la séquence SEQ ID NO :35. 14. Le polypeptide selon la revendication 6, caractérisé en ce que ledit antigène correspond à l'antigène AMA-1 (SEQ ID NO :31). 15. Le polypeptide selon la revendication 14, caractérisé en ce que la séquence polypeptidique codant pour au moins un épitope d'un antigène d'un parasite du genre Plasmodium est la séquence SEQ ID NO :36. 16. Le polypeptide selon la revendication 16, caractérisé en ce que ledit polypeptide présente la séquence SEQ ID NO :37. 17. Le polypeptide selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce qu'il comprend une séquence polypeptidique de liaison entre les séquences N- et C-terminales. 18. Le polypeptide selon la revendication 17, caractérisé en ce que ladite séquence de liaison comprend un site de clivage peptidique permettant de libérer l'épitope après purification dudit polypeptide selon l'invention. 19. Un polynucléotide codant pour un polypeptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 18. 20. Un vecteur comprenant un polynucléotide selon la revendication 19. 21. Une cellule transformée par un vecteur selon la revendication 20. 22. Un organisme transformé, caractérisé en ce qu'il comprend une cellule selon la revendication 21. 23. Une composition pharmaceutique comprenant au moins un polypeptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 18, éventuellement associé à un support pharmaceutiquement acceptable. 24. La composition selon la revendication 23, caractérisé en ce que ledit au moins un polypeptide est associé à des grains d'amidon. 25. Une utilisation d'un polypeptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 18 pour la fabrication d'un médicament destiné au traitement prophylactique d'un sujet d'une pathologie associée à un parasite du genre Plasmodium, de préférence du paludisme.