FR 2912218 A1 20080808 FR 0700859 A 20070207 ANTIGENE DIGALACTOLIPIDIQUE EXPOSE A LA SURFACE DES PARASITES APICOMPLEXES ET SES APPLICATIONS DIAGNOSTIQUES ET THERAPEUTIQUES La présente invention concerne un antigène digalactolipidique, exposé à la surface des parasites apicomplexes sous la forme d'un digalactoglycérolipide de type végétal, et apte à induire la production d'anticorps spécifiques, capables d'inhiber la prolifération et/ou les facultés :invasives de ces parasites. Le phylurn des Apicomplexes compte plusieurs milliers de parasites unicellulaires, parmi lesquels des agents de pathologies majeures chez l'homme ou l'animal : - les agents du paludisme (malaria) chez l'homme (genre Plasmodium) : Plasmodium falciparum, Plasmodium vivax, Plasmodium ovale, et Plasmodium malariae, - les agents de la piroplasmose (genre Babesia), chez l'homme (Babesia microti), et l'animal, notamment B. divergens, B. bigemina, B. major et B. bovis (bovin), B. canin et B. gibsoni (chien), B. equi et B. caballi (cheval), - l'agent de la toxoplasmose humaine (Toxoplasma gondii), - l'agent de la néosporose chez le chiot et d'autres espèces animales, notamment les bovins (Neospora caninum), - les agents de la cryptosporidiose (genre Cryptosporidium), chez l'homme (Cryptosporidium hominis) et l'animal (C. parvum, par exemple), - les agents de la theilériose (genre Theileria), chez l'animal (bovin, ovin , caprin), notamment Theileria annulata et T. par-va, et -les agents d'autres maladies infectieuses chez les vertébrés et invertébrés, par exemple : Sarcocystis neurona (cheval), Eimeria tenella (poulet), et Gregarina niphandrodes (invertébrés). Tous les parasites du phylum des Apicomplexes (parasites apicomplexes ou apicomplexes) partagent un plan d'organisation cellulaire polarisé, avec un pôle basal et un pôle apical. La compartimentation membranaire présente des particularités par rapport à une cellule eucaryote de type levure ou mammifère (Figure 1). D'une part la membrane plasmique est associée à une double membrane, appelée complexe membranaire interne (Inner Membrane Complex ou IMC). L'ensemble 2 formé par le complexe membranaire interne et la membrane plasmique constitue la pellicule. D'autre part, dans la partie apicale, la cellule présente des organes sécrétoires uniques (rhoptries, micronèmes et granules denses), sécrétés lors de l'invasion d'une cellule hôte. Enfin, un organite végétal typique, un chloroplaste résiduel non photosynthétique appelé apicoplaste, se retrouve dans la cellule (McFadden et al., Nature, 1996, 381, 482; Kôhler et al., Science, 1997, 275, 1485-1489 ; revue dans Maréchal E. et M.F. Cesbron-Delauw, Trends Plant Sei., 2001, 6, 200-205). Ces parasites sont transmis par différents vecteurs. Par exemple, le vecteur du paludisme est le moustique femelle Anophèle (Figure 2). Le Plasmodium pénètre dans le corps par le sang, dans lequel il évolue sous forme libre appelée sporozoïte. Plus tard dans le cycle du parasite, Plasmodium passe par une forme intracellulaire dans les hépatocytes, puis par une forme de multiplication dans les globules rouges. Lors de son passage d'un globule rouge à un autre, transition qui se produit environ tous les 48 heures, au moment des crises de fièvre paludiques, le Plasmodium évolue sous une autre forme sanguine libre appelée merozoïte. La mise au point d'un vaccin sous-unitaire et d'un test d'immunodétection efficaces contre les infections par les parasites apicomplexes, et en particulier les infections par tous les Plasmodium responsables du paludisme, s'est révélée extrêmement difficile du fait de la présence de nombreux antigènes, de la spécificité de ces antigènes pour une espèce particulière de parasite et un stade particulier du cycle des parasites, ainsi que de l'existence de mécanismes d'échappement des parasites à la réponse immunitaire de l'hôte humain. Par exemple, les principaux tests d'immunodétection rapide du paludisme reposent sur la détection d'antigènes protéiques de surface (HRP-2) ou sécrétés (antigène soluble ; pLDH (plasmodium Lactate Dehydrogenase) et aldolase), par immunochromatographie (revue dans A. Moody, Clinical Microbiology Reviews, 2002, 15, 66-78). HRP-2 est un antigène exprimé à la surface des érythrocytes et spéci- fique des stades asexués et des jeunes gametocytes de P. falciparum ; les tests d'immunodétection d'HRP-2 permettent de détecter uniquement les infections par P. falciparum mais pas les infections par Plasmodium vivax, Plasmodium ovale, et Plasmodium malariae. 3 L'aldolase et la pLDH sont des enzymes glycolytiques solubles, exprimées par les quatre espèces de Plasmodium responsables de la malaria. Toutefois la sensibilité des tests d'immunodétection est faible vis-à-vis de Plasmodium ovale, et Plasmodium malariae, dans la mesure où les anticorps monoclonaux utilisés présentent une faible affinité pour les antigènes de ces deux espèces de Plasmodium. Un épitope invariant de la surface des cellules parasitaires et un anticorps dirigé contre cet épitope seraient intéressants tant du point de vue diagnostique que prophylactique et thérapeutique. Contrairement aux épitopes peptidiques qui sont soumis à une varia- tion génétique rapide, les épitopes non-peptidiques portés par des glycoprotéines ou des lipides (glycolipides, glycophospholipides) de surface des parasites sont plus stables et mieux conservés. Toutefois, parmi ces molécules de surface, seules quelques unes sont immunogènes chez l'animal. Par exemple, dans le cas des phospholipides classiques tels que la phosphatidylcholine et la phosphatidyléthanolamine il n'est pas possible d'éveiller le système immunitaire contre ces composés que l'on trouve chez tous les eucaryotes, et en particulier les mammifères. Ainsi, les principaux épitopes non-peptidiques de surface des para-sites apicomplexes qui ont été identifiés et caractérisés sont portés par des glyco- phospholipides, et en particulier les glycophosphatidylinositols (GPIs) de surface de Plasmodium. Il a notamment été montré que des anticorps dirigés contre une région conservée des groupements carbohydrate des GPIs de P. falciparum neutralisent les effets toxiques de ces GPIs. Ainsi, l'immunisation avec un GPI ou un carbohydrate synthétique dérivé d'un GPI de Plasmodium représente une stratégie vaccinale pour prévenir les formes sévères de la malaria (Schofield et al., Nature, 2002, 418, 785-789 ; Naik et al., Infect. Immun., 2006, 74, 1412-1415). Toutefois, cette stratégie vaccinale ne permet pas de prévenir l'infection par les Plasmodium. Les galactoglycérolipides et notamment les plus abondants tels que le monogalactosyldiacylglycérol (MGDG) et le digalactosyldiacylglycérol (DGDG) sont des lipides spécifiques des plastes végétaux, les organites cytoplasmiques des cellules végétales effectuant la photosynthèse. La structure du MGDG et du DGDG comprend une tête polaire avec un (MGDG) ou deux (DGDG) galactoses, en position 3 du 4 glycérol (Figure 3). A ce jour, ces deux galactoglycérolipides n'ont été détectés que chez les cyanobactéries (ancêtre des plastes) et dans les cellules d'eucaryotes porteurs de plastes (plantes, algues et protistes tels que les apicomplexes). Chez les parasites apicomplexes, les galactoglycérolipides sont peu abondants et indétectables par les méthodes classiques d'extraction des lipides et de séparation par chromatographie en couche mince à deux dimensions (Maréchal et al. Eukaryot. Cell., 2002, 1, 653-656). Toutefois, le marquage radioactif des galactoglycérolipides en présence d'UDP-[3H]galactose (Maréchal et al., 2002, précité) ou de [14C]acétate (Bisanz et al., Biochem. J., 2006, 394, 177-205) a permis de mettre en évidence la synthèse de deux types de galactoglycérolipides par les parasites api-complexes : un monogalactolipide de structure compatible avec un diradylglycérol, soit du MGDG, soit du MGAAG (monogalactosylalkylacylglycérol) et un digalactolipide de structure compatible avec un diradylglycérol, soit du DGDG, soit du DGAAG (di galactosylalkylacylglycérol). Les Inventeurs ont montré que le digalactolipide des parasites apicomplexes et plus particulièrement le digalactose porté par ce digalactolipide est un antigène utile pour le diagnostic et la vaccination des infections par l'ensemble des parasites apicomplexes. En effet, les anticorps anti-digalactolipide, notamment les anticorps anti-DGDG, reconnaissent spécifiquement l'ensemble des stades parasitaires des apicomplexes et sont donc utiles pour le diagnostic de l'ensemble des infections par ces parasites, chez l'homme ou l'animal. Des expériences d'immunomarquage des parasites apicomplexes (parasites libres), sans perméabilisation des membranes cellulaires des parasites, ont montré que la localisation du digalactolipide réagissant avec l'anticorps antidigalactolipide, notamment un anticorps anti-DGDG, n'était pas uniquement intracellulaire (plaste) mais également à la surface externe de la membrane plasmique des parasites apicomplexes. Cet antigène digalactolipidique qui est présent à la surface externe du parasite peut donc être détecté directement à la surface des parasites libres, sans étape de perméabilisation membranaire. De plus, le digalactolipide, notamment le DGDG, est capable d'induire la production d'anticorps protecteurs, aptes à inhiber la prolifération et les facultés invasives de ces parasites. Par conséquent, le digalactolipide, notamment le DGDG est un antigène utile pour la vaccination contre les infections par l'ensemble des parasites apicomplexes. De même les anticorps dirigés contre le digalactolipide, notamment le DGDG, sont utiles en immunothérapie passive (sérothérapie), contre l'ensemble de ces infections. En outre, des expériences complémentaires ont montré que la fraction antigénique du digalactoglycérolipide des parasites apicomplexes était constituée par la partie digalactose associée de façon covalente au lipide. En effet, l'absence de réactivité des sérums anti-DGDG avec le MGDG et le tri-DGD indique que les anticorps dirigés contre le DGDG reconnaissent spécifiquement le digalactoside. En outre, l'immunisation avec le MGDG, dans des conditions semblables à celles du DGDG, indique que le MGDG n'est pas capable d'induire une réponse anticorps spécifique. En conséquence, la présente invention a pour objet l'utilisation d'un antigène digalactosidique associé de façon covalente à un lipide, d'un anticorps dirigé corLtre ledit antigène ou d'un fragment fonctionnel dudit anticorps, pour la préparation d'un réactif destiné au diagnostic ou bien d'un vaccin ou d'un médicament destinés à la prévention ou au traitement, d'une infection par un parasite apicomplexe chez l'homme ou l'animal. Au sens de la présente invention on entend par antigène digalactolipidique un antigène comprenant un digalactose associé de façon covalente à un lipide ou une molécule appropriée dérivée d'un lipide, ledit antigène étant capable d'induire la production d'anticorps : (i) dirigés contre ce digalactose, (ii) reconnaissant spécifiquement un digalactolipide de parasite(s) apicomplexe(s), et (iii) capables d'inhiber la prolifération et/ou les facultés invasives de ce(s) parasite(s) apicomplexe(s) qui sont reconnus par ledit anticorps. L'inhibition de la prolifération et/ou des facultés invasives des para-sites apicomplexes peut-être mesurée in vitro par un test classique de croissance de :30 parasite(s) apicomplexe(s) en cellules humaines ou animales, notamment par un test colorimétrique ou test de fluorescence, selon le principe décrit pour Toxoplasma gondii (Mc Fadden et al., Antimicrob. Agents Chemother., 1997, 41, 1849-1853 ; 6 Seebert et al., Gene, 1996, 169, 39-45 ; Gubbels et al., Antimicrob. Agents Chemother., 2003, 47, 309-316). Alternativement, l'inhibition de la prolifération et/ou des facultés invasives des parasites apicomplexes peut-être mesurée in vitro par un test classique d'opsonisation (phagocytose par les macrophages), de façon à mettre en évidence des anticorps qui augmentent la phagocytose des parasites apicomplexes par les macrophages (anticorps opsonisants). L'antigène selon l'invention comprend un digalactose associé de façon covalente à un lipide ou à une molécule appropriée dérivée d'un lipide, de façon à induire la production d'anticorps spécifiques. Le digalactose peut notamment être couplé à une molécule hydlrophobe connue de l'homme du métier comme un lipide, ou bien inclus dans cette molécule hydrophobe (glycolipide). Le digalactose peut égale-ment être conjugué à tout support connu de l'homme du métier comme présentant des propriétés d'hydrophobicil:é propres aux lipides, selon les techniques conventionnelles de synthèse et de couplage moléculaires. Au sens de la présente invention, on entend par anticorps dirigé contre un antigène digalactosidique ou anticorps anti-digalactose, un anticorps produit par immunisation d'un vertébré, en particulier un mammifère, avec un antigène digalactolipique. Au sens de la présente invention on entend par fragment d'anticorps un fragment fonctionnel dudit anticorps comprenant au moins les domaines variables des chaînes lourdes et légères, tels que notamment les fragments Fab, Fv et scFv. Au sens de la présente invention, on entend par anticorps chimérique, relativement à un anticorps d'une espèce animale particulière ou d'une classe particulière d'anticorps, un anticorps comprenant tout ou partie d'une chaîne lourde et/ou d'une chaîne légère d'un anticorps d'une autre espèce animale ou d'une autre classe d'anticorps. Au sens de la présente invention, on entend par anticorps humanisé une immmunoglobuline humaine dans laquelle les résidus des CDRs (Complementary-Determining Regions) qui forment le site de liaison à l'antigène sont remplacés par ceux d'un anticorps monoclonal non-humain possédant la spécificité, l'affinité ou l'activité recherchées. 7 L'antigène digalactolipidique selon l'invention, qui est apte à induire la production d'anticorps spécifiques, capables d'inhiber la prolifération et/ou les facultés invasives des parasites apicomplexes est utilisé comme antigène pour la vaccination contre les infections par ces parasites. En outre cet antigène digalactolipidique qui est apte à être reconnu par des anticorps spécifiques des parasites apicomplexes est utilisé pour le diagnostic sérologique (diagnostic indirect) des infections par les parasites du phylum des Apicomplexes chez l'homme ou l'animal, notamment pour des études épidémiologiques ; les anticorps spécifiques éventuellement présents dans les sécrétions, notamment le sérum des individus, sont détectés par une technique d'immunochimie appropriée, notamment EIA, ELISA, RIA, immunofluorescence, immunoagglutination, immunochromatographie, immunocytochimie, immunohistochimie, immunoblot, ou immunoprécipitation, à l'aide d'antigène digalactolipidique purifié selon les techniques classiques connues de l'Homme du métier. Les anticorps et les fragrnents d'anticorps tels que définis ci-dessus, de préférence purifiés selon les techniques classiques connues de l'Homme du métier, sont utilisés pour traiter et détecter les infections par les parasites du phylum des Apicomplexes (diagnostic direct) chez l'homme ou l'animal. La détection des parasites est réalisée par une technique 20 d'immunochimie appropriée, notamment EIA, ELISA, RIA, immunofluorescence, immunoagglutination, immunochromatographie, immunocytochimie, immunohistochimie, immunoblot, ou immunoprécipitation, à partir d'un échantillon biologique (sang, sérum, fèces, urine, liquide céphalo-rachidien), prélevé chez un individu susceptible d'être infecté. Les anticorps dirigés contre l'antigène digalactolipidique selon l'invention, qui sont capables d'inhiber la prolifération et/ou les facultés invasives des parasites apicomplexes sont utilisés en sérothérapie (immunothérapie passive), pour traiter les infections par ces parasites. La sérothérapie humaine est de préférence réalisée avec des anticorps humanisés, tels que définis ci-dessus. Par comparaison avec les anticorps non-humains, les anticorps humanisés sont moins immunogènes et possèdent une demi-vie prolongée chez l'Homme car ils ne possèdent qu'une faible proportion de séquences non-humaines 25 30 8 étant donné que la quasi-totalité des résidus des régions FR (Framework) et de la région constante (Fc) de ces anticorps sont ceux d'une séquence consensus d'immunoglobulines humaines. L'invention englobe l'utilisation d'anticorps monoclonaux ou poly-5 clonaux, d'anticorps chimériques tels que les anticorps humanisés, ainsi que de leurs fragments (Fab, Fv, scFv). L'invention englobe le diagnostic et la vaccination spécifiques d'infections par des parasites apicompiexes (Apicomplexa), responsables d'une pathologie chez l'Homme ou l'animal (vertébré ou invertébré), tels que notamment : 10 - les agents du paludisme (malaria) chez l'homme (genre Plasmodium) : Plasmodium falciparum, Plasmodium vivax, Plasmodium ovale, et Plasmodium malariae, - les agents de la piroplasmose (genre Babesia), chez l'homme (Babesia micron , et l'animal, par exemple: B. divergens, B. bigemina, B. major et B. 15 bovis (bovin), B. canis et B. gibsoni (chien), B. equi, et B. caballi (cheval), - l'agent de la toxoplasmose humaine (Toxoplasma gondii), - l'agent de la néosporose chez le chiot et d'autres espèces animales, notamment les bovins (Neospora caninum), - les agents de la cryptosporidiose (genre Cryptosporidium), chez 20 l'homme (Cryptosporidiurn hominis) et l'animal (C. parvum,), - les agents de la theilériose (genre Theileria), chez l'animal (bovin, ovin , caprin), par exemple : Theileria annulata et T. parva, et - les agents d'autres maladies infectieuses chez les vertébrés et invertébrés, par exemple : Sarcocystis neurona (cheval), Eimeria tenella (poulet), et 25 Gregarina niphandrodes (invertébrés). Selon un mode de réalisation avantageux de ladite utilisation, ledit antigène digalactolipidique comprend le digalactose 6-O-(a-D-galactopyrannosyl)-(3-D-galactopyrannose, associé de façon covalente à un lipide. Selon un autre mode de réalisation avantageux de ladite utilisation, 30 ledit antigène digalactolipidique est un digalactosyldiradylglycéride de formule I : Rl - O - CH2 R2 - O -CH H2C --[- O - galactose I dans laquelle R1 et R2 représentent chacun, indépendamment l'un de l'autre, un alkyle, ou un acyle contenant 10 à 25 atomes de carbones et R3 représente un groupement hydroxyle ou sulphonate. Conformément à l'invention, les résidus R1 et R2 sont identiques ou différents et comprennent une chaîne hydrocarbonée, linéaire ou ramifiée, saturée ou non-saturée, substituée ou non-substituée. De préférence R1 et R2 comprennent chacun 0 à 6 doubles liaisons carbone-carbone. R1 et R2 sont notamment deux acyles ou un alkyle et un acyle. R1 et/ou R2 représentent en particulier la chaîne hydrocarbonée d'un d'acide gras naturel, saturé ou insaturé. Parmi les acides gras naturels on peut citer notamment des acides saturés comme l'acide palmitique (C15H31-COOH ; 16:0) et l'acide stéarique (C17H35-COOH ; 18:0), monoinsaturés comme l'acide oléique (C171-133-COOH ; 18:1) ou polyinsaturés comme l'acide linoléique (C17H31-COOH ; 18:2) et l'acide linolénique (C17H29-COOH ; 18:3). De préférence, R1 et/ou R2 représentent la chaîne carbonée de l'acide linolénique. Le digalactosyldiradylglycéride de formule I comprend en particulier le cligalactose 6-0-(a-D-galactopyrannosyl)-(3-D-galactopyrannose. Selon une disposition avantageuse de ce mode de réalisation, le digalactosyldiradylglycéride de formule I est le 1,2-diacyl-(a-D-galactopyranosyl-20 (1-->6)-(3-D-galactopyranosyl-(1'ù> 3)-sn-glycerol (DGDG). La présente invention a également pour objet un réactif de diagnostic d'une infection par un parasite apicomplexe, caractérisé en ce qu'il est constitué par un antigène digalactolipidique tel que défini ci-dessus, un anticorps dirigé contre ledit antigène ou un fragment dudit anticorps, tels que définis ci-dessus. 25 Les réactifs peuvent être couplés à des particules ou à un marqueur approprié. Les particules sont notamment des particules d'or, des liposomes (liposomes contenant un colorant) ou des érythrocytes (immunoagglutination). Le marqueur est une substance qui produit un signal détectable par les méthodes conven- 9 - CH2-]-R3 2 Io tionnelles ou qui réagit avec une autre substance, de façon à produire un signal détectable. Parmi les marqueurs utilisables dans les méthodes de diagnostic selon l'invention, on peut citer notamment, les chromophores, les substances fluorescentes ou chimioluminescentes, les enzymes, les isotopes radioactifs et les agents complexants (Protéine A, Protéine G, biotine, lectine). Les réactifs tels que définis ci-dessus peuvent également être immobilisés sur un support approprié, selon les méthodes classiques connues de l'homme du métier. Parmi les supports appropriés sur lesquels peuvent être immobilisés ces réactifs on peut citer notamment ceux en matière plastique (latex, polystyrène, poly- vinylchloride, polyuréthane, polyacrylamide, polyvinylacétate), en verre, ou en papier (nitrocellulose). Ces supports sont sous la forme de plaques (microplaques), de feuilles, de bandelette, ou de particules (billes). L'immobilisation des réactifs sur le support peut être réalisée par formation d'un pontage entre le réactif et une molécule qui est couplée au support (hydrazide, Protéine A, glutaraldéhyde, carboiimide ou lysine), selon les techniques conventionnelles. La présente invention a également pour objet une méthode in vitro de détection d'une infection par un parasite apicomplexe, à partir d'un échantillon biologique, laquelle méthode est caractérisée en ce qu'elle comprend au moins : (a) la mise en contact dudit échantillon biologique avec au moins un anticorps, un fragment d'anticorps ou un antigène digalactolipidique, tels que définis ci-dessus, et (b) la révélation des complexes antigène-anticorps formés en (a), par tout moyen approprié. L'invention englobe les méthodes d'immunochimie convention- :25 pelles, par exemple : EIA, ELISA, RIA, immunofluorescence, immunoagglutination, immunochromatographie, i mmunocytochirnie, immunohistochimie, immunoblot, et immunoprécipitation. Selon un mode de réalisation avantageux de ladite méthode, l'étape (a) comprend la mise en contact dudit échantillon biologique, successivement avec au 30 moins un premier anticorps de capture dirigé contre l'antigène digalactolipidique et au moins un second anticorps spécifique du parasite à détecter et différent du premier anticorps, ou bien avec un fragment du premier et/ou du second anticorps. I1 L'utilisation d'un deuxième anticorps spécifique de genre (Plasmodium, par exemple) ou d'espèce (P. falciparum ou P. vivax, par exemple) permet avantageusement de déterminer le genre ou l'espèce de parasite responsable de l'infection. Selon un autre mode de réalisation avantageux de ladite méthode, elle 5 comprend préalablement ou de façon concomitante à l'étape a), une étape de perméa- bilisation membranaire. La perméabilisation membranaire des cellules hôtes permet de détecter les stades intracellulaires du parasite. La perméabilisation membranaire des parasites permet de détecter les antigènes internes (non-exposés à la surface de la 10 membrane plasmique du parasite). La perméabilisation membranaire est effectuée dans les conditions standard, selon les méthodes classiques connues de l'Homme du métier. Elle peut notamment être effectuée en présence de détergent, comme le Triton-X100, à des concentrations de l'ordre de 0,1 %. 15 Ladite méthode est avantageusement une méthode ELISA d'i:mmunocapture dans laquelle : - l'étape (a) comprend : (ai) la mise en contact dudit échantillon biologique avec au moins un premier anticorps ou un fragment d'anticorps dirigé contre l'antigène digalacto- 20 lipidique tel que défini ci-dessus, qui est fixé sur un support approprié, notamment une microplaque, (a2) le lavage de la phase solide, et (a3) l'addition d'au moins un second anticorps ou un fragment d'anticorps, différent du premier, ledit anticorps ou fragment d'anticorps étant éven-25 tuellement marqué de façon appropriée, et - l'étape (,b) de révélation des complexes antigène-anticorps formés est réalisée, soit directement à l'aide d'un second anticorps marqué par exemple avec de la biotine ou une enzyme appropriée telle que la peroxydase ou la phosphatase alcaline, soit indirectement à l'aide d'un sérum anti-immunoglobulines marqué 30 comme ci-dessus. Les complexes ainsi formés sont révélés à l'aide d'un substrat approprié. 12 Par exemple : - l'étape (al) est réalisée avec au moins un premier anticorps monoclonal ou polyclonal ou un fragment de ceux-ci, dirigé contre l'antigène digalactolipidique, tel que défini ci-dessus et -l'étape (a3) est réalisée avec au moins un anticorps ou un fragment d'anticorps dirigé contre un autre antigène spécifique du parasite du phylum des Apicomplexes à détecter ; lorsqu'un anticorps ou un fragment d'anticorps dirigé contre un antigène interne est utilisé, le dit anticorps est incubé en présence de détergent, comme le Triton X-100 par exemple, à des concentrations de l'ordre de 0,1 %. Alternativement, ladite méthode est une méthode d'immunochromatographie. Dans une première étape, les parasites éventuellement présents dans l'échantillon biologique sont tout d'abord capturés en phase liquide par un anticorps ou un fragment d'anticorps de capture (par exemple un anticorps conju- gué à des particules d'or ou à des liposomes contenant un colorant à base de sélé15 niu.m), dirigé contre l'antigène digalactolipidique tel que défini ci-dessus. Dans une seconde étape, les complexes antigène-anticorps formés migrent le long de la bande- lette de nitrocellulose et sont ensuite capturés par un second anticorps et éventuelle- ment un troisième anticorps (dans le sens de la migration), spécifiques du parasite à détecter et différents du premier anticorps, qui sont immobilisés sur une bandelette de 20 nitrocellulose, d'où l'apparition d'une ligne colorée au niveau du second et éventuel- lement du troisième anticorps. L'utilisation de deux anticorps différents immobilisés sur la bande-lette de nitrocellulose, le premier ayant une spécificité supérieure ou égale au second, permet de typer le genre (Plasmodium, par exemple) et/ou l'espèce (P. falciparum ou 25 P. vivax, par exemple) de parasite qui est responsable de l'infection. Par exemple, le premier anticorps et le second anticorps sont respectivement : un anticorps spécifique de genre et un anticorps pan-spécifique ; un anticorps spécifique d'espèce (P. falciparum, par exemple) et un anticorps spécifique de genre (Plasmodium, par exemple) ; deux anticorps dirigés contre des espèces différentes (P. falciparum et 30 P.vivax, par exemple). En outre un anticorps contrôle, immobilisé en aval des anticorps précédents, permet de vérifier que les anticorps présents dans la phase liquide ont bien migré le long de la bandelette. 10 13 La présente invention a en outre pour objet un kit de détection d'une infection par un parasite du phylum des Apicomplexes, caractérisé en ce qu'il comprend au moins un antigène digalactolipidique ou au moins un anticorps ou un fragment d'anticorps, tels que définis ci-dessus. Le kit comprend avantageusement au moins un second anticorps tel que défini ci-dessus, de préférence un second anticorps spécifique du genre ou de :l'espèce du parasite à détecter. La présente invention a également pour objet un anticorps dirigé contre un antigène digalactolipidique ou un fragment dudit anticorps, tels que définis ci-dessus, pour utilisation comme médicament dans la prévention ou le traitement d'une infection par un parasite du phylum des Apicomplexes. La présente invention a également pour objet une composition pharmaceutique, caractérisée en ce qu'elllecomprend au moins un anticorps dirigé contre un antigène digalactolipidique ou un fragment dudit anticorps, tels que définis ci-dessus, un véhicule pharmaceutiquement acceptable et éventuellement une substance porteuse. La présente invention a également pour objet une composition immunogène ou vaccinale, caractérisée en ce qu'elle comprend un antigène digalactolipidique tel que défini ci-dessus, éventuellement associé à un ou plusieurs antigènes d'intérêt, notamment des antigènes spécifiques de parasites apicomplexes, un véhicule pharmaceutiquement acceptable et éventuellement un adjuvant ou une substance porteuse. Les compositions selon l'invention se présentent sous une forme galénique adaptée à une administration par voie parentérale (sous-cutanée, intramusculaire, intradermique, intraveineuse), entérale (orale, sublinguale), ou locale (nasale, rectale, vaginale). Les compositions selon l'invention comprennent une dose efficace d'antigène vaccinant ou d'anticorps. La dose efficace d'antigène est la dose nécessaire pour induire une réponse en anticorps spécifiques, capable de prévenir, d'atténuer ou de traiter l'infection parasitaire et les symptômes associés. La dose efficace d'anticorps est la dose capable de prévenir, d'atténuer ou de traiter l'infection parasitaire et les symptômes associés. La dose efficace dépend du type d'agent pathogène, de la voie d'administration et du rythme des administrations, du type de mammifère à traiter, ainsi que d'autres facteurs, connus de l'Homme du métier. Les véhicules pharmaceutiquement acceptables, les substances porteuses, et les adjuvants, sont ceux classiquement utilisés. Les adjuvants sont avantageusement choisis dans le groupe constitué par : l'hydroxyde d'alumine, le squalène, la saponine, des émulsions huileuses, des substances minérales, des extraits bactériens (BCG, PPD, toxoide), des cytokines.. Les substances porteuses sont avantageusement sélectionnées dans le groupe constitué par : les liposomes unilarnellaires ou multilamellaires, les ISCOMS, les virosomes, les pseudoparticules virales, les micelles de saponine, les microsphères solides de nature saccharidique (poly(lactide-co-glycolide)) ou aurifère, et les nanoparticules. La présente invention a également pour objet un anticorps mono- clonal ou chimérique ou un fragment dudit anticorps dirigé contre un antigène 15 digalactosidique tels que définis ci-dessus. De préférence, il s'agit d'un anticorps humanisé ou d'un fragment dudit anticorps. L'antigène digalactolipidique selon l'invention et les anticorps présentent les avantages suivants par rapport aux antigènes/anticorps de l'art antérieur : 20 - l'antigène est présent à tous les stades parasitaires, chez tous les parasites apicomplexes contenant des plastes. Il est détectable sur les parasites libres, sans étape de perméabilisation membranaire. La détection de l'antigène ou des anticorps dirigés contre cet antigène permet donc le diagnostic de l'ensemble des infections par les parasites apicomplexes, chez l'homme et l'animal, :25 - l'antigène induit une immunité contre l'infection par l'ensemble des parasites apicomplexes. Un seul vaccin comprenant cet antigène permet de réduire l'incidence des infections par l'ensemble des parasites apicomplexes et les pathologies associées, chez l'homme et chez l'animal. En outre, parmi ces antigènes, le DGDG présente l'avantage supplé- 30 mentaire d'être disponible en grande quantité chez les plantes et sa purification est simple, ce qui permet de limiter les coûts de production des réactifs de diagnostic et des vaccins. Ces différents réactifs sont préparés et utilisés selon les techniques classiques de biochimie et d'immunologie, en suivant les protocoles standards tels que ceux décrits dans Current Protocols in Irnmunology (John E. Cologan, 2000, Wiley and Son Inc. Library of Congress, USA) et dans Antibodies : A Laboratory Manual (E. Howell and D Lane, Cold Spring Harbor Laboratory, 1988). De manière plus précise : - le DCiDG est extrait à partir de plantes puis purifié selon les méthodes classiques telles que décrites notamment dans Andersson et al., Journal of Chromatography A, 1997, 785, 337-343 ; Deschamps et al., Journal of Chromato- graphy A, 2004, 1040, 115-121 ; Aro et al., Journal of Cereal Science, 2007, 45, 116-119. - les anticorps polyclonaux sont préparés par immunisation d'un animal approprié avec un antigène tel que défini ci-dessus, éventuellement conjugué à une protéine porteuse telle que la KLH ou à l'albumine et/ou associé à un adjuvant approprié tel que l'adjuvant de Freund (complet ou incomplet) ou l'hydroxyde d'alumine ; après obtention d'un titre en anticorps satisfaisant, les anticorps sont récoltés par prélèvement du sérum des animaux immunisés et enrichis en immunoglobulines par précipitation, selon les techniques classiques, puis les immunoglobulines spécifiques sont éventuellement purifiées par des techniques appropriées connues de l'Homme du métier, notamment par chromatographie sur une colonne sur laquelle est fixé de la protéine A ou l'antigène tel que défini ci-dessus, de façon à obtenir une préparation d'immunoglobulines monospécifiques. - les anticorps monoclonaux sont produits à partir d'hybridomes obtenus par fusion de lymphocytes B d'un animal immunisé par l'antigène tel que défini ci-dessus avec des myélomes, selon la technique de Kdhler et Milstein (Nature, 1975, 256, 495-497) ; les hybridomes sont cultivés in vitro, notamment dans des fermenteurs ou produits in vivo, sous forme d'ascite ; alternativement, lesdits anticorps monoclonaux sont produits par génie génétique comme décrit dans le brevet américain US 4,816,567. Par exemple, des animaux sont immunisés de façon forte et répétée avec l'antigène tel que défini ci-dessus, selon un protocole standard comprenant une première immunisation par injection sous-cutanéeé multisites de l'antigène dans un volume équivalent d'adjuvant complet de Freund puis 10 jours plus tard, une série de quatre immunisations de rappel à 2 semaines d'intervalle, cette fois avec de l'adjuvant incomplet de Freund ; les deux premières immunisations sont effectuées par injection sous-cutanée et intramusculaire et les deux dernières par injection intramusculaire et intraveineuse. Les anticorps monoclonaux sont produits selon un protocole standard comprenant le sacrifice des animaux deux semaines après le dernier rappel, le prélèvement de la rate, la mise en suspension des lymphocytes spléniques et la fusion de ces lymphocytes avec la lignée cellulaire SP2/0 (cette lignée murine ne produit aucun anticorps murin, est immortalisée, et possède toute la machinerie de sécrétion nécessaire à la sécrétion d'immunoglobulines). - les fragments d'anticorps sont produits à partir des régions VH et VL clonées, à partir des ARNm d'hybridomes ou de lymphocytes spléniques d'un animal immunisé avec l'antigène tel que défini ci-dessus; par exemple, les fragments Fvä scFv ou Fab sont exprimés à la surface de phages filamenteux selon la technique de Winter et Milstein (Nature, 1991, 349, 293-299) ; après plusieurs étapes de sélec- tion, les fragments d'anticorps spécifiques de l'antigène sont isolés et les ADNc correspondant auxdits fragments exprimés dans un système d'expression approprié, par les techniques classiques de clonage et d'expression d'ADN recombinant. - les anticorps humanisés sont produits par des méthodes générales comme celles décrites dans la Demande Internationale WO 98/45332. Les anticorps monoclonaux et polyclonaux ou leurs fragments tels que définis ci-dessus, sont purifiés par les techniques classiques connues de l'Homme du métier, notamment par chromatographie sur une colonne sur laquelle est fixé de la protéine A ou l'antigène digalactolipidique tel que défini ci-dessus. Outre les dispositions qui précèdent, l'invention comprend encore d'autres dispositions, qui ressortiront de la description qui va suivre, qui se réfère à des exemples de mise en oeuvre de l'objet de la présente invention, avec référence aux dessins annexés dans lesquels : - la figure 1 est un schéma de l'organisation d'une cellule apicomplexe. - la figure 2 illustre le cycle de Plasmodium falciparum, l'agent du paludisme. - la figure 3 illustre la structure du monogalactosyldiacylglycérol (MGDG) et du digalactosyldiacylglycéroi (DGDG), deux galactolipides majeurs des plastes de plantes et d'algues, et des membranes de cyanobactéries. Les acides gras estérifiés aux positions 1 et 2 du glycérol sont des exemples: les longueurs de chaînes ca:rbonées, et le nombre et position de doubles liaisons, ainsi que la présence éventuelle d'oxydation, peuvent varier. - la figure 4 illustre la spécificité d'un sérum obtenu par immunisation d'un lapin avec du DGDG purifié à partir de chloroplastes d'épinard. A. Le sérum dilué au 100eme a été testé sur une série de lipides purs et de lipides totaux d'enveloppe de chloroplastes d'épinard, ainsi que de lipides totaux extraits de Toxoplasma gondii et de Plasmodium falciparum, déposés sur une membrane de nitrocellulose. MGDG : monogalactosyldiacylglycérol. DGDG : digalactosyldiacylglycérol.. TriGDG : trigalactosyldiacylglycérol. DAG : diacylglycérol. PG : phosphatidylglycérol. PC : phosphatidylcholine. SL : sulfolipide. PE : phosphatidyléthanolamine. SM : sphingomyéline. B. La réactivité de l'anticorps est abolie après préincubation en présence de DGDG purifié à partir de chloroplastes d'épinard. - la figure 5 illustre l'immunomarquage de Toxoplasma gondii à l'intérieur de fibroblastes humains, à l'aide d'un sérum anti-DGDG. Les panneaux supérieurs (1 à 5) illustrent l'analyse du marquage par le sérum anti-DGDG, en microscopie de fluorescence. Les panneaux inférieurs représentent la visualisation des cellules en microscopie de phase. 1. Pénétration d'un Toxoplasma libre dans une cellule humaine (au niveau du point de constriction indiqué par des flèches). 2. Un Toxoplasma à l'intérieur d'un fibroblaste humain, préparant sa division. L'apex est riche en épitopes reconnus par le sérum anti-DGDG. Les deux cellules filles sont indiquées par des flèches et possèdent chacune un stock de galactolipides détecté en position apicale. 3. Deux Toxoplasma à l'intérieur d'un fibroblaste humain, préparant leur division. 4. Quatre Toxoplasma à l'intérieur d'un fibroblaste humain. 5. Plus de huit Toxoplasma à l'intérieur d'un fibroblaste humain. - la figure 6 illustre l'immunomarquage de cellules de Neospora caninum (1), Plasmodium falciparum (2) et Babesia divergeas (3) à l'aide d'un sérum de lapin immunisé avec du DGDG purifié de chloroplastes d'épinard (Anti-DGDG). Les trois immunomarquages sont présentés pour des stades intracellulaires des para-sites. Le marquage par la méthode de Hoechst présenté dans le cas de Plasmodium permet de repérer les noyaux des cellules parasitaires. Les cellules infectées par Babesia divergens sont visualisées, en parallèle, en microscopie de phase. - la figure 7 illustre l'immunomarquage de la forme libre de Toxoplasma gondii à l'aide d'un sérum de lapin immunisé avec du DGDG purifié de chloroplastes d'épinard. Les immunomarquages ont été effectués à l'aide d'un sérum anti-DGDG dilué au 25e1ne avec perméabilisation par le détergent Triton X-100 (images 1-3 à droite) ou sans perméabilisation (images 1-3 à gauche). - la figure 8 illustre l'immunoagglutination de mérozoites (formes sanguines libres) de Plasmodium falciparum à l'aide d'un sérum de lapin immunisé avec du DGDG purifié de chloroplastes d'épinard (Sérum anti-DGDG). Le sérum pré-immun ne montre aucune propriété agglutinante. - la figure 9 illustre l'immunoagglutination de formes libres de Toxoplasma gondii à l'aide d'un sérum de lapin immunisé avec du DGDG purifié de chloroplastes d'épinard (Sérum anti-DGDG). Le sérum pré-immun ne montre aucune propriété agglutinante. -la figure 10 illustre l'immunoagglutination de Toxoplasma à l'aide du kit Toxo-Screen DA de BIOMERIEUX. La partie supérieure montre le résultat de ce test pour des sérums contrôles, soit non-immunoagglutinant les toxoplasmes (Sérum contrôle (-) ; sédimentation des toxoplasmes en bouton ou en anneau), soit agglutinant des toxoplasmes sous forme de voile (sérum contrôle (-) ; puits encadrés). La partie inférieure montre un test réalisé en parallèle à l'aide de différentes dilutions de sérums de lapin (a-DGDG) ; le voile correspondant à une immunoagglutination est observé à partir de la dilution du sérum anti-DGDG. - la figure 11 illustre l'effet de l'anticorps anti-DGDG (aDGDG ; dilutions 1/40 à 1/1) sur l'invasion de cellules humaines par Toxoplasma gondii. Les cellules incubées avec Toxoplasma gondii, seul (Contrôle) ou en présence d'un sérum pré-immun ou d'anticorps dirigés contre l'antigène majeur de surface de Toxoplasma gondii SAG1 ou p30 (aSAG 1), servent de contrôles. - la figure 12 illustre le principe du test d'opsonisation de cellules de Toxoplasma gondii. Des toxoplasmes exprimant la protéine fluorescente jaune YFP (lignée recombinante RH-YFP) sont incubés avec des macrophages de rats et la phagocytose des cellules de toxoplasmes par les macrophages est observée. 1. microscopie de phase. 2 à 5 microscopie de fluorescence : 2. visualisation de l'émission de fluorescence (540 nm) par les toxoplasmes recombinants (RH-YFP) après excitation à 48.8 nm. 3. marquage des lysosomes des macrophages générés par la phagocytose, à l'aide d'une sonde fluorescente rouge (Lyso-Tracker red , INVITROGEN). 4. visualisation des noyaux des macrophages par la coloration d'Hoechst. 5. La super-position des fluorescences de la protéine YFP (fluorescence verte) et du Lyso-Tracker (fluorescence rouge) permet de détecter les parasites phagocytés par les macrophages (fluorescence jaune). - la figure 13 illustre l'effet de l'anticorps anti-DGDG (aDGDG ; dilutions 1/10, 1/5 et 1/1) sur l'opsonisation des cellules de Toxoplasma gondii. Les macrophages incubés avec Toxoplasma gondii, seul (Contrôle) ou Toxoplasma gondii préalablement incubé avec un sérum pré-immun ou des anticorps dirigés contre l'antigène majeur de surface de Toxoplasma gondii SAGI ou p30 (aSAG1), servent de contrôles. Exemple 1 : Production d'anticorps dirigés contre le DGDG 1) Matériel et méthodes a) Extraction et purification du DGDG Le DGDG est purifié à partir d'extraits de chloroplastes d'épinard, selon le protocole décrit dans Williams et al., J. Lipid Research, 1975, 16, 61-66 ou Jouhet et al., FEBS Letters, 2003, 544, 63-68. b) Immunisation des animaux avec le DGDG Deux lapins et un rat ont été immunisés avec du DGDG purifié (2,5 mg par immunisation), selon le protocole suivant : - une première immunisation (Jo) par voie souscutanée multisites (volume total de 1 ml) de 0,5 mg d'antigène dans 0,5 ml d'une solution de NaCl (0,9 %), émulsionné dans 0,5 ml d'adjuvant complet de Freund, :30 - une seconde immunisation (J1o) par voie sous-cutanée (1 ml) et intramusculaire (0,5 ml) de 0,5 mg d'antigène dans 0,75 ml d'une solution de NaCI (0,9 %), émulsionné dans 0,75 ml d'adjuvant de Freund incomplet, - - une troisième immunisation (J21) par voie sous-cutanée (1 ml) et intramusculaire (0,5 ml) de 0,5 mg d'antigène dans 0,75 ml d'une solution de NaCl (0,9 %), émulsionné dans 0,75 ml d'adjuvant de Freund incomplet, - une quatrième immunisation (J36) par voie intramusculaire (0,5 ml) et intraveineuse (0,5 ml) : 0,17 mg d'antigène dans 0,25 ml d'une solution de NaCl (0,9 %), émulsionné dans 0,25 ml d'adjuvant de Freund incomplet, injecté par voie intramusculaire, et 0,33 mg d'antigène dans 0,5 ml d'une solution de NaCl (0,9 %), injecté par voie intraveineuse, et - une cinquième immunisation (J50) par voie intramusculaire (0,5 ml) et intraveineuse (0,5 ml) : 0,17 mg d'antigène dans 0,25 ml d'une solution de NaCl (0,9 %), émulsionné dans 0,25 ml d'adjuvant de Freund incomplet, injecté par voie intramusculaire et 0,33 mg d'antigène dans 0,5 ml d'une solution de NaCl (0,9 %), injecté par voie intraveineuse, Les sérums ont été prélevés à J57; les sérum prélevés avant 15 l'immunisation (sérum pré-immuns) servent de contrôle. c) lmmunoblot Les lipides (extraits lipidiques ou lipides purifiés) dilués dans du chloroforme ou du butanol, sont déposés à la surface d'une membrane de nitrocellulose, incubés en présence des sérums dilués au 100'è', et les complexes antigène- 20 anticorps formés sont révélés à l'aide d'un anticorps secondaire couplé à la peroxidase et d'un substrat chimioluminescent (ECL, AMERSHAM), selon les protocoles classiques d'immunoblot. 2) Résultats L'immunisation des animaux avec le digalactolipide de plante, 25 DGDG, a permis d'obtenir des sérums actifs, contenant des anticorps reconnaissant le DGDG (Figure 4). L'immunisation d'un lapin avec l'autre galactolipide plastidial majeur des plantes, le MGDG, selon le même protocole, n'a pas permis d'obtenir de sérum actif. Exemple 2 : Analyse de la spécificité des anticorps anti- DGDG 30 1) Matériels et méthodes L'activité des sérums dirigés contre le digalactolipide plastidial (DGDG) est analysée par immunoblot, selon le protocole décrit à l'exemple 1. ) Résultats Tous les sérums immuns ont une activité de liaison au DGDG (Figure 4A). Les sérums reconnaissent le DGDG de plantes (extraits d'épinards) et de parasites Apicomplexes (Toxoplasma et Plasmodium ; Figure 4A) alors que les sérums pré-immuns ne présentent aucune activité de liaison au DGDG. L'activité de liaison des sérums immuns est spécifique du DGDG ; aucune liaison n'est détectée avec d'autres lipides (Figure 4A) et la liaison est abolie lorsque les sérums sont préalablement incubés en présence de DGDG (Figure 4B). En outre, l'absence de réactivité des sérums anti-DGDG avec le MGDG et le tri-DGD indique que les anticorps dirigés contre le DGDG reconnaissent spécifiquement la partie digalactoside associée de façon covalente à la partie glycérolipide. Exemple 3 : Détection et localisation du DGDG dans les membranes cellulaires des parasites Apicomplexes 1) Matériels et méthodes Les parasites apicomplexes, sous forme libre ou intracellulaire sont immunomarqués par les sérums anti-DGDG de l'exemple 1 (directement ou après perméabilisation des membranes à l'aide d'une faible concentration de Triton-X100) et/ou marqués par le colorant de Hoechst qui colore les noyaux. Le marquage des parasites libres ou intracellulaires est analysé par microscopie de fluorescence. 2) Résultats L'immunomarquage de parasites apicomplexes à l'aide des anticorps dirigés contre le digalactolipide plastidial (anticorps anti-DGDG de l'exemple 1) et la détection en microscopie de fluorescence, montrent que les cellules de parasites apicomplexes sont immunomarquées après perméabilisation des membranes à l'aide d'une faible concentration du détergent Triton-X100 (Figure 5). Le DGDG est toujours détecté dans les cellules de parasites et n'est jamais détecté sur la cellule hurnaine. Ces marquages montrent que le digalactolipide des parasites est localisé dans une structure qui se dédouble avant la division cellulaire (Figure 5, panneaux 2 et 3). Ce marquage est typique du complexe rnembranaire interne dont la fission précède la division cellulaire. Le marquage des parasites Apicomplexes est observé sur 21 l'ensemble des stades parasitaires, chez Toxoplasma (Figure 5), Plasmodium, Neospora et Babesia (Figure 6). L'immunomarquage des cellules parasitaires libres, avec ou sans perméation des membranes à l'aide du détergent Triton-X100 (Figure 7) montre dans les deux cas, un marquage en périphérie de la cellule, suivant le contour de la cellule lorsque le plan focal de l'observation est fixé de la partie la plus proche à la partie la plus lointaine de la cellule (voir schéma explicatif de la figure 8). Ces résultats indiquent que l'épitope reconnu par l'anticorps anti-DGDG est localisé, en plus du complexe membranaire interne, à la surface externe de la membrane plasmique des parasites Apicomplexes. Exemple 4 : Immunoagglutination de parasites Apicomplexes à l'aide de sérum anti-DGDG obtenu après immunisation à l'aide de digalactolipide de plantes 1) Matériels et méthodes a)_Agglutination des parasites apicomplexes vivants Des parasites vivants sont incubés avec différentes dilutions (1 :10 à 1 :1 dans du PBS) du sérum anti-DGDG ou du sérum pré-immun de l'exemple 1, préalablement inactivés 30 min à 37 C, et les parasites sont observés en microscopie optique. b) Agglutination directe d'antigènes apicomplexes sensibilisés Le test d"immunoagglutination de Toxoplasma gondii est décrit dans Desmonts, G. et J.S. Remington, J. Clin. Microbiol., 1980, 11: 562-568. Ce test est le test de référence pour la détection des IgG anti-toxoplasmes (kit Toxo-Screen DA , référence 75 481, BIOMERIEUX). L'antigène utilisé est une suspension de toxoplasmes formolés (souche Sabin), dilués dans un tampon albumine pH 8,95. Le kit comprend un sérum de chèvre positif, calibré par rapport à l'étalon OMS (CTR positif) et un sérum de chèvre négatif (CTR Négatif). L'agglutination est réalisée en plaques de microtitration à fond rond. Le test est réalisé en duplicat pour chaque sérum : absence d'agent réducteur (2-béta-Mercapto-Ethanol, 2-ME ou B-ME) sur la première ligne (-B-ME) ; présence de 2-ME sur la deuxième ligne (+ B-ME). L'agent réducteur permet de dénaturer les IgM et donc de rechercher leur présence dans le sérum. Les sérums sont dilués dans du PBS et répartis dans les cupules, le 2- ME (25 L; 0,2 mol/1) est ajouté dans les cupules de la deuxième ligne, puis la suspension d'antigène dilué au 1/5 (50 L) est ajoutée dans toutes les cupules. Après homogénéisation, la plaque est recouverte d'une feuille autocollante et incubée 5 à 18 heures à température ambiante à l'abri des vibrations. La lecture des plaques s'effectue de la façon suivante (Figure 10) : - témoin antigène : sédimentation des toxoplasmes en bouton ou en anneau, - réaction positive : agglutination des toxoplasmes sous forme de voile, - réaction négative : sédimentation des toxoplasmes en bouton ou en anneau, et - réaction limite : agglutination sous forme de voile tapissant la moitié du fond de la cupule. 2) Résultats Les propriétés agglutinantes des sérums obtenus après immunisation de lapins avec du DGDG purifié de plantes ont été testées sur des parasites apicomplexes vivants ou formolés. La figure 8 montre l'agglutination de mérozoites (forme libre) vivants de l'agent du paludisme (Plasmodium falciparum), avec un sérum anti-DGDG dilué au 5ière. La figure 9 montre l'agglutination de formes libres de Toxoplasma gondii avec un sérum anti-DGDG ; 1'immunoagglutination est visible dès la concentration 1 :10 et maximale à la dilution 1 :1. Le sérum préimmun ne montre aucune propriété agglutinante. La figure 10 montre l'agglutination de toxoplasmes formolés, avec un sérum anti-DGDG dilué au demi et au 201è' Ce sérum contient des IgM car le B-ME diminue l'agglutination de 50 %. Exemple 6: Les anticorps anti-DGDG inhibent l'infection des cellules humaines par Toxoplasma gondii. 1) Matériels et méthodes L'infection de cellules humaines par Toxoplasma gondii est analysée par un test de dosage de la béta-galactosidase dans des cellules de la lignée HFF (Human Foreskin Fibroblasts) infectées par une souche de toxoplasme recombinant comprenant le gène LacZ sous le contrôle du promoteur SAG1, selon la méthode décrite par McFadden, D.C. et al., Antimicrobial agents and chemotherapy, 1997, 41, 1849-1853 ; Seeber, F. and Boothroyd, J.C., Gene, 1996, 169, 39-45. L'effet des anticorps anti-DGDG sur l'infection des cellules HHF par Toxoplasma gondii est testé à des dilutions de 1 : 40 à 1 :1. Les cellules incubées avec Toxoplasma gondii, seul (Contrôle) ou en présence d'un sérum pré-immun ou bien d'anticorps dirigés contre l'antigène majeur de surface de Toxoplasma gondii SAG1 ou p30 (aSAG1) servent de contrôles. 2) Résultats La figure 11 montre que les anticorps anti-DGDG inhibent l'infection des cellules humaines par Toxoplasma gondii ; l'effet est visible dès la concentration 1 :20 et maximal à la dilution 1 :2. Le sérum préimmun est sans effet et les anticorps anti-SAG1 ont un effet très faible. Exemple 7 : Les anticorps anti-DGDG augmentent l'opsonisation de Toxoplasma gondii. 1) Matériels et méthodes Des toxoplasmes recombinants RH-YFP (Gubbels et al., Antimicrobial agents and Chemotherapy, 47, 309-306) sont incubés avec différents anticorps (anti-DGDG 1 :1, 1 :5 et 1 :10 ; sérum pré-immun (1 :1) et anticorps anti-SAG1 (1 :1)), pendant 30 min à 37 C, sous agitation (roue orbitale), centrifugés 10 min à 2000 rpm (lavage), puis comptés. Des macrophages de rat sont déposés sur des lamelles (5000 cellules/lamelle) recouvertes de polylysine (1 mg/ml) et incubés 2 h avec du Lysotracker Red DND-99 (dilution 1/20000 ; IN VITROGEN). Les macrophages sont ensuite infectés avec les toxoplasmes (50 toxoplasmalmacrophage), pendant 2 h à 4 h à 37 C (phagocytose/ invasion) en présence de Lysotracker, lavés puis fixés 20 min avec 5 % PFA et colorés au Hoechst (1/15000). Les fluorescences de la protéine YFP et du lysotracker sont analysés en microscopie confocale. 2) Résultats Le test d'opsonisation in vitro montre une stimulation de 20 % en présence d'anticorps anti-DGDG (figure 13).10 REVENDICATIONS 1 ) Utilisation d'un antigène digalactolipidique, d'un anticorps dirigé contre ledit antigène ou d'un fragment fonctionnel dudit anticorps, pour la préparation d'un réactif destiné au diagnostic ou bien d'un vaccin ou d'un médicament destinés à 5 la prévention ou au traitement, d'une infection par un parasite apicomplexe chez l'homme ou l'animal. 2 ) Utilisation selon la revendication 1, caractérisée en ce que ledit antigène comprend le digalactose 6-0-(a-D-galactopyrannosyl)-P-D-galactopyrannose associé de façon covalente à un lipide. 10 3 ) Utilisation selon la revendication 1 ou la revendication 2, caractérisée en ce que ledit antigène est un digalactosyldiradylglycéride de formule I : Ri ù O ùCH2 R2 ù O ùCH H.2C-O ù galactose ùCH2 R3 I dans laquelle Ri et R2 représentent chacun, indépendamment l'un de l'autre, un alkyle, ou un acyle contenant 10 à 25 atomes de carbones et R3 représente un groupement 15 hydroxyle ou sulphonate. 4 ) Utilisation selon la revendication 3, caractérisée en ce que RI et R2 représentent chacun un acyle. 5 ) Utilisation selon la revendication 3 ou la revendication 4, caractérisée en ce que Ri et/ou R2 représentent la chaîne hydrocarbonée de l'acide linolé-20 nique. 6 ) Utilisation selon l'une quelconque des revendications 3 à 5, caractérisée en ce que ledit antigène de formule I est le 1,2-diacyl-(a-D-galactopyranosyl-(1 '-f6')-(3-D-galactopyranosyl-(1'-> 3)-sn-glycerol. 7 ) Utilisation selon la revendication 1, caractérisée en ce que ledit 25 anticorps ou fragment d'anticorps est choisi parmi les anticorps monoclonaux, les anticorps polyclonaux, les anticorps chimériques et les fragments Fab, Fv et scFv des anticorps précédents.8 ) Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 7 caractérisée en ce que ledit antigène, anticorps ou fragment d'anticorps est couplé à un marqueur. 9 ) Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 7 caractérisée en ce que ledit antigène, anticorps ou fragment d'anticorps est immobilisé sur un support. 10 ) Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, caractérisée en ce que ledit parasite est un pathogène du genre Plasmodium, Babesia, Toxoplasma, Neospora, Cryptosporidium, Theileria, Sarcocystis, Eimeria ou Gregarina. 11 ) Utilisation selon la revendication 10, caractérisée en ce que ledit pathogène est un pathogène humain sélectionné dans le groupe constitué par : Plasmodium falciparum, Plasmodium vivax, Plasmodium ovale, Plasmodium malariae, Babesia microti, Toxoplasma gondii et Cryptosporidium hominis. 12 ) Utilisation selon la revendication 10, caractérisée en ce que ledit pathogène est un pathogène animal sélectionné dans le groupe constitué par : Babesia divergens, Babesia bigemina, Babesia major, Babesia bovis, Babesia canis, Babesia gibsoni, Babesia equi, Babesia caballi, Neospora caninum, Cryptosporidium parvum, Theileria annulata, Theileria par-va, Sarcocystis neurona, Eimeria tenella et Gregarina niphandrodes. 13 ) Méthode in vitro de détection d'une infection par un parasite apicomplexe, à partir d'un échantillon biologique, laquelle méthode est caractérisée en ce qu'elle comprend au moins : (a) la mise en contact dudit échantillon biologique avec au moins un antigène, un anticorps ou un fragment d'anticorps, tels que définis à l'une quelconque des revendications 1 à 9, et (b) la révélation des complexes antigène-anticorps formés en (a). 14 ) Méthode de détection selon la revendication 13, caractérisée en ce que l'étape (a) comprend la mise en contact dudit échantillon biologique, successi- veinent avec au moins un premier anticorps de capture dirigé contre l'antigène digalactolipidique tel que défini à l'une quelconque des revendications 1 à 6 et aumoins un second anticorps spécifique du parasite à détecter et différent du premier anticorps, ou un fragment du premier et/ou du second anticorps. 15 ) Méthode selon la revendication 14, caractérisée en ce que le second anticorps est un anticorps spécifique du genre ou de l'espèce du parasite à détecter. 16 ) Méthode de détection selon l'une quelconque des revendications 13 à 15, caractérisée en ce qu'elle comprend, préalablement ou de façon concomitante à l'étape a), une étape de perméabilisation membranaire. 17 ) Méthode de détection selon l'une quelconque des revendica- tions 13 à 16, caractérisée en ce qu'il s'agit d'une méthode ELISA d'immunocapture. 18 ) Méthode de détection selon l'une quelconque des revendications 13 à 16, caractérisée en ce qu'il s'agit d'une méthode d ' i rnmu n o chro m at o grap h i e. 19 ) Kit pour la détection d'une infection par un parasite apicomplexe, caractérisé en ce qu'il comprend au moins un antigène, un anticorps ou un fragment d'anticorps tels que définis à l'une des revendications 1 à 9. 20 ) Kit selon la revendication 19, caractérisé en ce qu'il comprend au moins un second anticorps tel que défini à la revendication 14 ou la revendication 15. 21 ) Composition pharmaceutique, caractérisée en ce qu'elle comprend au moins un anticorps ou un fragment dudit anticorps, tels que définis à la revendication 1 ou la revendication 7, et un véhicule pharmaceutiquement acceptable. 22 ) Composition immunogène ou vaccinale, caractérisée en ce qu'elle comprend un antigène tel que défini à l'une quelconque des revendications 1 à 6. 23 ) Composition immunogène ou vaccinale selon la revendication 22, caractérisée en ce qu'elle comprend également un autre antigène d'intérêt. 24 ) Composition immunogène ou vaccinale, selon la revendication 23, caractérisée en ce que l'antigène d'intérêt est un antigène spécifique d'un parasite apicomplexe. 25 ) Anticorps ou fragment d'anticorps tel que défini à l'une quelconque des revendications 1, 7, 8 et 9.