FR 2913685 A1 20080919 FR 0753864 A 20070315 La présente invention a pour objet de nouveaux amino-acides gras insaturés, ainsi que leur utilisation dermocosmétologique. Plus particulièrement, la présente invention a pour objet des dérivés d'aminoacides gras insaturés répondant à la formule générale (I) : O OR Rn R (I) ainsi que leurs sels d'addition d'acides pharmaceutiquement acceptables, dans laquelle : • Rn représentent indépendamment les uns des autres un atome d'hydrogène ou un groupement alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un atome d'halogène, en particulier de fluor ; • R1 représente un atome d'hydrogène, de fluor, de chlore, ou de brome, ou bien un groupement ûCF3 ou bien un groupement alkyle linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone ; • R représente un atome d'hydrogène ou un groupement alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué 15 par un atome d'halogène, en particulier de fluor ; et • n est un entier compris entre 2 et 14 ; à l'exception de l'acide 6-amino-2-hexènoïque, son chlorhydrate et son trifluoroacétate et du trifluoroacétate d'acide 8-amino-2-octènoïque. 20 Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) répondent aux critères suivants : • Rn représentent un atome d'hydrogène sur tous les carbones de la chaîne carbonée sauf sur un où Rn représente un groupement alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un 25 atome d'halogène, en particulier de fluor ; • R représente un atome d'hydrogène ou un groupement alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un atome d'halogène, en particulier de fluor ; R représente de préférence un atome d'hydrogène ; et • n et R1 sont tels que définis précédemment. Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) répondent aux critères suivants : • Rn et R représentent un atome d'hydrogène ; et • n et R1 sont tels que définis précédemment. 10 Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) répondent aux critères suivants : • Rn et R représentent un atome d'hydrogène ; • n est tel que défini précédemment ; et • R1 représente un atome d'hydrogène ou de fluor. Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) répondent aux critères suivants : • Rn et R représentent un atome d'hydrogène ; • R1 représente un atome d'hydrogène ou de fluor ; et 20 • n est compris entre 2 et 10. Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) répondent aux critères suivants : • Rn et R représentent un atome d'hydrogène ; 25 • R1 représente un atome d'hydrogène ou de fluor ; et • n est compris entre 3 et 10. Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) répondent aux critères suivants : 15 30 • Rn et R représentent un atome d'hydrogène ; • R1 représente un atome d'hydrogène ou de fluor ; et • n est compris entre 3 et 5. Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) répondent aux critères suivants : • Rn et R représentent un atome d'hydrogène ; • RI représente un atome d'hydrogène ou de fluor ; et • n est compris entre 9 et 14. Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) répondent aux critères suivants : • Rn et R représentent un atome d'hydrogène ; • RI représente un atome d'hydrogène ou de fluor ; et • n est égale à 3. Les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I), tels que définis précédemment, peuvent se présenter sous forme d'isomères Z ou E, ou d'un mélange d'isomères Z et d'isomères E, en toutes quantités. Au sens de la présente invention, les "sels d'addition d'acides pharmaceutiquement acceptables" signifie les sels formés par addition d'un acide sur le composé, qui sont non toxiques et qui possèdent l'activité pharmacologique du composé parent. Les sels d'addition d'acides peuvent être formés, à partir d'acides inorganiques tels que l'acide chlorhydrique, l'acide bromhydrique, l'acide sulfurique, l'acide nitrique ou l'acide phosphorique, ou bien à partir d'acides organiques tels que l'acide acétique, l'acide benzènesulfonique, l'acide benzoïque, l'acide camphresulfonique, l'acide citrique, l'acide ethane-sulfonique, l'acide fumarique, l'acide glucoheptonique, l'acide gluconique, l'acide glutamique, l'acide glycolique, l'acide hydroxynaphtoïque, l'acide 2-hydroxyéthanesulfonique, l'acide lactique, l'acide maléique, l'acide malique, l'acide mandélique, l'acide méthanesulfonique, l'acide muconique, l'acide 2- naphtalènesulfonique, l'acide propionique, l'acide salicylique, l'acide succinique, l'acide dibenzol-L-tartrique, l'acide tartrique, l'acide p-toluènesulfonique, l'acide triméthylacétique ou l'acide trifluoroacétique. Les sels pharmaceutiquement acceptables préférés sont les sels formés à partir d'acide chlorhydrique. Les composés, objet de la présente invention, se présentent de préférence sous forme de sels de chlorhydrate. La présente invention a également pour objet les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) : O OR Rn R (I) ainsi que leurs sels d'addition d'acides pharmaceutiquement acceptables, dans laquelle : • Rn représentent indépendamment les uns des autres un atome d'hydrogène ou un groupement alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un atome d'halogène, en particulier de fluor ; • RI représente un atome d'hydrogène, de fluor, de chlore, ou de brome, ou bien un groupement ùCF3 ou bien un groupement alkyle linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone ; • R représente un atome d'hydrogène ou un groupement alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un atome d'halogène, en particulier de fluor ; et • n est un entier compris entre 2 et 14 ; à titre de médicaments. La présente invention a également pour objet les compositions dermatologiques comprenant à titre de principe actif au moins un dérivé d'amino-acides gras de formule générale (I), tel que défini précédemment, en association avec un excipient dermocosmétologiquement acceptable. La présente invention a également pour objet l'utilisation des dérivés aminoacides gras insaturés de formule générale (I) tels que définis précédemment pour la préparation d'une composition dermatologique antiradicalaire, anti-inflammatoire, anti-purigineuse et/ou destinée au traitement du vieillissement cutané, et/ou destinée à traiter des troubles de la kératinisation et de la pigmentation et/ou à améliorer la cicatrisation. Les dérivés amino-acides gras insaturés de formule générale (I) sont plus particulièrement destinés à des compositions destinées au traitement du psoriasis, du prurit et/ou de la dermite atopique, ainsi qu' à la repigmentation des cheveux ou de la peau, notamment des taches de vieillesse blanches. Selon la présente invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) sont plus particulièrement destinés à des compositions destinées à provoquer un éclaircissement de la peau ou à traiter les taches de vieillesse brunes. En raison de leur activité anti-radicalaire, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) sont également utiles pour éviter ou limiter la photocarcinogénèse cutanée à des stades précoces et donc peuvent être utilisés dans la prévention et le traitement de diverses maladies tumorales de la peau. Les amino-acides gras insaturés objets de la présente invention peuvent être préparés grâce à la mise en oeuvre de réactions de type Wittig-Hôrner à partir d'un phosphonate (fluoré ou non) ou de type Wittig à partir d'un triphényl phosphonium sur l'alpha hydroxy amine cyclisé provenant du lactame correspondant dont la fonction amine sera préalablement protégée (voir schéma de synthèse développé ci-après).. S'en suit éventuellement une réaction de saponification de l'amino-ester protégé pour obtenir un amino-acide qui sera déprotégé par une hydrolyse acide pour donner l'amino acide gras insaturé de formule générale : H2N OH O n' = n + 2 et R1= H, halogène, ou alkyle La réaction de Wittig-Hôrner est une réaction décrite dans le document Modem Synthetic Reaction, Second edition, Herbet O.House, Wittig Hôrner reaction p.682-709, 30 et toute condition expérimentale décrite dans l'état de la technique peut être utilisée25 dans le cadre de la présente invention. A titre d'exemple, la réaction de Wittig-Hôrner peut être effectuée en présence de triéthylphosphonoacétate et de carbonate de potassium en milieu éthanolique. La méthode de protection de la fonction amine est une méthode classique utilisée communément pour son avantage de ne pas être hydrolysable dans les conditions basiques (conditions de déprotection de la fonction ester) et inerte vis à vis d'autres réactifs nucléophiles. (Références : T.Kunieda, T.Higuchi, Y.Abe, and M. Hirobe, Chem. Pharm. Bull., 32, 2174, 1984 ; I. Grapsas, Y.J.Cho, and S.Mobashery, J. Org. Chem., 59, 1918; 1994). L'étape de réduction partielle du lactame est effectuée en présence d'un agent réducteur tel que le diisobutyl aluminium hydrure. En fin de réaction, les sels d'aluminium sont éliminés par formation d'un complexe soluble dans l'eau en présence de sels de Rozen (Reagents for organic synthesis, vo1.I, Louis Fieser and Mary Fieser, p. 36). O IOH ~NBoc rNBoc ,. BocHN BocHN i OH O BocHN OùO O Un exemple de synthèse de dérivé où Rn=Méthyle peut être illustré par un enchaînement de réactions de protection, déprotection, Wittig-Hôrner et Gabriel à partir d'une hydroxy cétone. Après protection de la fonction alcool est réalisée une succession de réactions de Wittig Hôrner. La déprotection de la fonction alcool en milieu acide, suivie d'une réaction de Gabriel génèrera la fonction amine. La présente invention sera illustrée dans le cadre des exemples de synthèse donnés ci-après : 1) Synthèse des composés selon l'invention 10 1.1) Composé n 12 H3N Cl O OH 12 15 Stade 1 Dans un tricol sous flux d'azote, 10.0g de Caprylolactame (70.8mmol) sont solubilisés dans 150m1 de Tétrahydrofurane. 10.06m1 (1.01 eq) de Triéthylamine sont additionnés ainsi que 8.74g (1.01 eq) de 4-Diméthylaminopyridine, et enfin 30.91g (2 eq) de di- terButyl di-carbonate. Le milieu réactionnel est agité toute la nuit à température 20 ambiante. Un suivi CCM permet de contrôler la fin de la réaction. Le milieu réactionnel est concentré, repris par de l'eau et de l'acétate d'éthyle. Le mélange est extrait par trois fois avec de l'acétate d'éthyle, les phases organiques rassemblées sont lavées par une solution d'acide chlorhydrique 5%, puis par une solution saturée de NaCl. Les phases organiques sont séchées sur Na2SO4, filtrées et concentrées sous vide, pour conduire à 25 une huile rouge. Caractérisations : m= 24.0g 100% rdt Rf = 0.8 (DCM / MeOH 99/1) RMN ('H, CDC13): 1.50 (s, 9H); 1.53 (m, 6H); 1.67 (m, 2H); 1.82 (m, 2H); 2.87 (m, 30 2H), 2.78 (t, 2H). Stade 2 Dans un tricol sous flux d'azote, 17.1g de Caprylolactame protégé par un groupement Boc (70.8mmol) sont solubilisés dans 170ml de toluène. Le milieu est refroidi à -78 C et 59.2 ml d'une solution de Dibal-H à 20% dans le toluène (1.01 eq) sont coulés goutte à goutte, sur 1 heure, en maintenant la température du milieu entre -80 C et -75 C. Un suivi CCM permet de contrôler la fin de la réaction. A -78 C, 480m1 d'une solution saturée de tartrate double sont coulés lentement et le milieu est agité vigoureusement pendant une nuit. La phase organique est extraite. La phase aqueuse est extraite à l'acétate d'éthyle par trois fois. Les phases organiques rassemblées sont lavées par une solution saturée de NaCl, séchées sur MgSO4, filtrées et concentrées sous vide, pour conduire à un solide orange. Caractérisations : m= 20.0g 99% rdt Rf = 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 7/3) RMN (IH, CDC13) : 1.40-1.80 (m, 20H) ; 2.85-2.89 (m, 2H) ; 3.75-3.79 (m, 2H). Stade 3 Dans un tricol sous flux d'azote, 2.0g (8.22mmol) de composé du stade 2 sont solubilisés dans 20m1 d'éthanol. 1.70g (1.5eq) de carbonate de potassium sont ajoutés au milieu et 1.96m1 (1.2eq) de Triéthylphosphonoacétate sont coulés lentement. Le mélange est alors chauffé à 45 C pour une nuit. Un suivi CCM permet de contrôler la fin de la réaction. Le milieu réactionnel est concentré puis le résidu est repris par de l'acétate d'éthyle et de l'eau. La phase aqueuse est extraite par de l'acétate d'éthyle par trois fois. Les phases organiques rassemblées sont lavées par une solution saturée de NaCl, séchées sur MgSO4, filtrées et concentrées sous vide. Le produit brut obtenu est purifié par chromatographie sur gel de silice (gradient heptane/ AcOEt), pour conduire à une huile jaune. Caractérisations : m= 1.60g 62% rdt Rf = 0.4 (Heptane / Acétate d'éthyle 7/3) RMN ('H, CDC13, 300 MHz) : 8 1.28-1.46 (m, 22H) ; 2.16-2.19 (m, 2H) ; 3.10 (m, 2H) ; 4.20 (q, 2H) ; 5.82 (dt, 1H, J=15.6Hz) ; 6.97 (dt, 1H, J=15.6Hz). Stade 4 Dans un ballon, 1.60g (5.10mmol) de composé du stade 3 sont mis en solution dans 16ml de THF. 6.40m1 (2.5eq) d'une solution de NaOH 2M sont ajoutés et le milieu réactionnel est chauffé à 65 C pendant une nuit. Un suivi CCM permet de contrôler la fin de la réaction. Le pH du mélange est alors ajusté à 4 par ajout d'acide chlorhydrique. Le milieu est concentré, repris par AcOEt / eau. La phase aqueuse est extraite par de l'acétate d'éthyle (trois fois) ; les phases organiques rassemblées sont lavées par une solution saturée de NaCl, séchées sur Na2SO4, filtrées et concentrées sous vide, pour conduire à un solide beige. Caractérisations : m= 1.2g 82% rdt Rf = 0.2 (Heptane / Acétate d'éthyle 7/3) RMN (1H, CDC13, 300 MHz) : 8 1.30-1.46 (m, 19H) ; 2.20-2.27 (m, 2H) ; 3.13 (m, 2H) ; 5.80-5.86 (dt, 1H, J=15.6Hz) ; 7.0 (dt, 1H, J=15.6Hz). Stade 5 Dans un ballon sous baudruche d'azote, 1.2g (4.28mmol) de composé du stade 4 sont solubilisés dans 7.5ml (3.5eq) d'une solution de HC1 dans l'éther 2M. Le milieu est agité toute une nuit à 35 C. Le suivi CCM permet de contrôler la fin de la réaction. Le milieu est concentré sous vide, repris dans du dichlorométhane, filtré et lavé par du dichlorométhane, séché sous vide, pour conduire à un solide blanc. Ce solide est plusieurs fois recristallisé dans l'éthanol. Caractérisations m= 0.59g 82% rdt Rf = 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5) RMN (1H, MeOD, 300 MHz) : 8 1.50-1.69 (m, 10H) ; 2.21-2.28 (q, 2H) ; 2.93 (t, 2H) ; 30 5.80 (d, 1H, J=15.6Hz) ; 6.95 (dt, 1H, J=15.6Hz) Spectrométrie de masse : [M+H]+ = 186 (calculé 185) 10 .2) Composé n 13 OH 13 Les stades 1 et 2 sont conduits de la même façon que précédemment, sur le Caprylolactame. Stade 3 Dans un tricol sous flux d'azote, 2.0g (8.22mmol) de composé du stade 2 sont solubilisés dans 20ml d'éthanol. 1.70g (1.5eq) de carbonate de potassium sont ajoutés au milieu et 2.06g (1.leq) de Triéthylphosphonofluoroacétate sont coulés lentement. Le mélange est alors chauffé à 45 C pour une nuit. Un suivi CCM permet de contrôler la fin de la réaction. Le milieu réactionnel est concentré puis le résidu est repris par de l'acétate d'éthyle et de l'eau. La phase aqueuse est extraite par de l'acétate d'éthyle par trois fois. Les phases organiques rassemblées sont lavées par une solution saturée de NaCl, séchées sur MgSO4, filtrées et concentrées sous vide. Le produit brut obtenu est purifié par chromatographie sur gel de silice (gradient heptane/ AcOEt), pour conduire à une huile jaune pâle. Caractérisations : m= 1.70g 65% rdt Rf = 0.5 (Heptane / Acétate d'éthyle 7/3) RMN (IH, CDC13, 300MHz): ô 1.32-1.39 (m, 22H) ; 2.21 (m, 2H) ; 3.11 (m, 2H) ; 4.30 25 (q, 2H) ; 5.89-5.96 (dt, 0.5H, J=21.9Hz, forme E) ; 6.06-6.18 (dt, 0.5H, J=33.3Hz, forme Z). Les stades 4 et 5 sont conduits comme précédemment et conduisent aux caractérisations suivantes : 30 Caractérisations stade 4 : m= 1.4g 87% rdt Rf = 0.2 (Heptane / Acétate d'éthyle 7/3) RMN (1H, CDC13) : 1.23-1.46 (m, 19H) ; 2.26-2.55 (m, 2H) ; 3.12 (m, 2H), 5.98-6.32 (ddt, 1H, forme E et Z). Caractérisations stade 5 : m=0.9g 95%rdt Rf = 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5) RMN (1H, MeOD) : 8 1.41-1.53 (m, 8H) ; 1.65-1.70 (m, 2H), 2.24-2.29 (m, 1H forme Z) ; 2.53-2.56 (m, 1H, forme E) ; 2.91-2.96 (t, 2H), 5.90-6.03 (dt, 0.5H, J=21.6Hz, forme E) ; 6.08-6.25 (dt, 0.5H, J=33.3Hz, forme Z). Spectrométrie de masse : [M+H]+ = 204 (calculé 203) 1.3) Composé n 7 7 20 Le protocole général est appliqué à l'a-caprolactame, pour conduire à l'acide (E)-8-amino-oct-2-ènoïque. Rf= 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5) RMN (1H, MeOD) : 81.41-1.57 (m, 4H) ; 1.67-1.75 (m, 2H) ; 2.24-2.31 (m, 2H) ; 2.93-2.98 (m, 2H) ; 5.86 (dd, 1H) ; 6.98 (dt, 1H). 25 Spectrométrie de masse : [M+H]+ = 158 (calculé 157) 1.4) Composé n 8 O Cl H3N OH OH 8 Le protocole général est appliqué à l'oenantholactame pour conduire à l'acide (E)-9-amino-non-2-ènoïque. Rf = 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5) RMN ('H, DMSO-d6) : 8 1.29-1.54 (m, 8H) 2.16-2.23 (m, 2H) ; 2.71-2.76 (m, 2H) ; 5.77 (dd, 1H, J=18Hz) ; 6.81 (dt, 1H, J=18Hz). Spectrométrie de masse : [M+H]+ = 172 (calculé 171) Point de fusion : 104 C 10 1.5) Composé n 9 Cl H3N OH 9 Le protocole général est appliqué à l'oenantholactame pour conduire à l'acide 9-amino-15 2-fluoro-non-2-ènoïque. Rf = 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5) RMN ('H, MeOD) :.51.40-1.71 (m, 8H) ; 2.30-2.35 (m, 2H) ; 2.91-2.96 (m, 2H) ; 5.92-6.05 (dt, 0.5H, J=21.9Hz, forme E) ; 6.09-6.26 (dt, 0.5H, J=33.3Hz, forme Z). Spectrométrie de masse : [M-H]- = 188 (calculé 189) 20 Point de fusion : 120 C 1.6) Composé n 11 OH 25 11 Le protocole général est appliqué à l' azacyclodécanone pour conduire à l'acide (E)-14-amino-tétradéc-2-ènoïque. Rf = 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5) RMN ('H, MeOD) : ^51.31-1.69 (m, 18H) ; 2.20-2.27 (m, 2H) ; 2.90-2.95 (m, 2H) ; 5.80 (dd, 1H, J=15.6Hz) ; 6.96 (dt, 1H, J=15.6Hz). Spectrométrie de masse : [M+H]+ = 242 (calculé 241) Point de fusion : 153 C 1.7) Composé n 10 OH 25 10 Le protocole général est appliqué à l' azacyclodécanone pour conduire à l'acide 14-amino-2-fluoro-tétradéc-2-ènoïque. Rf = 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5) RMN ('H, MeOD) : ^5 1.34-1.67 (m, 18H) ; 2.21-2. 26 (m, 1H forme Z) ; 2.48-2.54 (m, 1H, forme E) ; 2.92 (t, 2H), 5.91-6.04 (dt, 0.5H, J=21.9Hz, forme E) ; 6.09-6.25 (dt, 0.5H, J=33.3Hz, forme Z). Spectrométrie de masse : [M+H]+ = 260 (calculé 259) Point de fusion : 148.5 C 1.8) Composé n 1 1 Le protocole général est appliqué à la 2-pyrrolidone pour conduire à l'acide (E)-6-amino-hex-2-ènoïque. Rf = 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5) OH RMN ('H, MeOD) : b 1.81-1.91 (m, 2H) ; 2.32-2.40 (m, 2H) ; 2.95-3.00 (m, 2H) ; 5.90 (dd, 1H, J 15.6Hz) ; 6.96 (dt, 1H, J=15.6Hz). Spectrométrie de masse : [M+H]+ = 130 (calculé 129) 1.9) Composé n 2 et Composé n 3 F OH 2 3 Le protocole général est appliqué à la 2-pyrrolidone pour conduire à l'acide (Z)-6-amino-2-fluoro-hex-2-ènoïque (n 3) et à l'acide (E)-6-amino-2-fluoro-hex-2-ènoïque (n 2), qui ont été dans ce cas séparés. Forme Z Rf = 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5) RMN ('H, MeOD) : b 1.80-1.90 (m, 2H) ; 2.33-2.42 (m, 2H) ; 2.95-3.00 (m, 2H) ; 6.12-6.28 (dt, 1H, J=32.7Hz, forme Z). Spectrométrie de masse : [M+H]+ = 148 (calculé 147) Forme E Rf= 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5) RMN (1H, MeOD) : 8 1.77-1.89 (m, 2H) ; 2.60-2.68 (m, 2H) ; 2.94-2.99 (m, 2H) ; 5.96-6.08 (dt, 1H, J=21.0Hz, forme E). Spectrométrie de masse : [M+H]+ = 148 (calculé 147) 1.10) Composé n 4 OH O 4 10 Le protocole général est appliqué à la 8-Valérolactone pour conduire à l'acide (E)-7-amino-hept-2-ènoïque. Rf = 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5) RMN (1H, MeOD) : 8. 1.56-1.74 (m, 4H) ; 2.28-2.34 (m, 2H) ; 2.94-2.99 (m, 2H) ; 5.84 (dd, 1H, J=15.6Hz) ; 6.97 (dt, 1H, J=15.6Hz). Spectrométrie de masse : [M+H]+ = 144 (calculé 143) 1.11) Composé n 5 et Composé n 6 O O Cl OH H3N Cl H3N F OH 5 6 Le protocole général est appliqué à la 8-Valerolactone pour conduire à l'acide (Z)-7-15 amino-2-fluoro-hept-2-ènoïque (n 6) et au mélange d'acide (Z+E)-7-amino-2-fluorohept-2-ènoïque (n 5). Forme Z Rf = 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5) RMN (1H, MeOD) : â. 1.55-1.71 (m, 4H) ; 2.32-2.35 (m, 2H) ; 2.93-2.98 (m, 2H) ; 20 6.11-6.28 (dt, 1H, J=33.3Hz, forme Z). Spectrométrie de masse : [M+H]+ = 162 (calculé 161) Forme E +Z Rf = 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5) RMN (1H, MeOD) : b 1.54-1.75 (m, 4H) ; 2.30-2.41 (m, 0.6H) ; 2.56-2.64 (m, 1.4H, 25 forme E) ; 2.94-2.99 (m, 2H) ; 5.95-6.08 (dt, 0.7H, J=21.6Hz, forme E) ; 6.12-6.28 (dt, 0.3H, J=33.3Hz, forme Z). Spectrométrie de masse : [M+H]+ = 162 (calculé 161). 30 2) Effet anti-inflammatoire analysé au niveau des médiateurs lipidiques de l'inflammation Le kératinocyte, cellule la plus représentée au niveau de l'épiderme, libère, en réponse à de nombreux facteurs extracellulaires présents dans son environnement, des médiateurs biologiquement actifs, notamment des prostaglandines et les leucotrienes qui jouent un rôle important dans l'initiation et la modulation des réactions inflammatoires cutanées et qui interviennent également dans la régulation de la réponse immune. La prostaglandine PG6KFlalpha, est un des métabolites majeurs produits par le kératinocyte stimulé, et représentatif de la modulation de la production des métabolites du métabolisme de l'acide arachidonique issus de la voie de la cyclo-oxygénase. 2.1) PROTOCOLE : La suspension de kératinocytes dans le DMEM 10% SVF est distribuée dans des plaques 6 puits (1,2 106 cellules/puits), et incubée pendant 16 heures à 37 C dans une atmosphère à 5% CO2. Les kératinocytes sont alors rincés avec du PBS pour éliminer les cellules non-adhérentes puis exposés aux produits à tester inclus dans du DMEM sans SVF (qui pourrait interférer dans le dosage). La concentration testée en culture est de 3 g/ml. Elle a été retenue après un test préliminaire d'évaluation de la cytotoxicité (rouge neutre) et n'est pas cytotoxique. Pour chaque traitement, 3 puits sont réalisés. Les cellules sont pré-incubées pendant 60 mn avec les produits à tester puis un agent stimulant de la cascade de l'acide arachidonique, le ionophore calcique, est ajouté pendant 5 heures: le ionophore calcique A23187 est utilisé à la concentration 1 M. Après ces 5 heures de culture, les milieux de culture de chacun des puits sont 25 récupérés, centrifugés à 3000 tr/mn et conservés à -80 C. La production de prostaglandine 6KFla pour chacun des essais est mesurée par Kit Elisa EUROMEDEX. 2.2) RESULTATS : 30 Les résultats sont rassemblés dans le tableau 1 et sont exprimés en pourcentage d'activité / contrôle stimulé. Tableau 1 Composés de formule I % d'activité inhibitrice des molécules évaluées sur la production de PG6KFla N n R Rä Rl Sel 1 2 H H H HCl + 2 2 H H F HC1 3 2 H H F HC1 22 4 3 H H H HC1 18 3 H H F HC1 41 6 3 H H F HCl 25 7 4 H H H HC1 36 8 5 H H H HC1 8 9 5 H H F HC1 17 10 H H F HCl 38 11 10 H H H HC1 40 La synthèse des données obtenues permet de mettre en évidence les potentialités anti-inflammatoires en particulier des composés n 11, 5, 7 et 10, avec une dose efficace 5 45 (DE45) pour le composé n 11 de 10 g/ml et 25 g/ml pour le composé n 5. 3) Propriété anti-inflammatoire : inhibition de la synthèse d'une cytokine pro-inflammatoire IL8 La fonction barrière de la peau permet d'assurer une protection vis à vis de 10 l'environnement extérieur, et les kératinocytes de l'épiderme peuvent directement répondre à une large variété d'agents irritants ou allergènes et participer activement aux processus inflammatoires et immunitaires cutanés, en particulier à travers la génération de cytokines pro-inflammatoires, médiateurs d'origine protéique. Parmi ces molécules biologiquement actives, l'ILlu (Interleukine 1 a) et le TNFa (Tumor Necrosis Factor a) sont considérées comme des cytokines primaires, leur libération étant suffisante pour induire l'inflammation en vertu de leur induction de molécules d'adhésion au niveau des cellules endothéliales et de leur induction de facteurs chimiotactiques tels que les chemokines. Le système des chemokines contrôle le trafic leucocytaire pendant la réponse inflammatoire et est nécessaire aux interactions des réponses immunes innées et adaptatives. Dans l'étude présente nous nous sommes plus spécifiquement intéressés à la chemokine û Interleukine 8 û qui est fortement impliquée dans l'amplification de la réponse inflammatoire et dont la fonction principale est de recruter et activer les polynucléaires neutrophiles notamment en stimulant leur libération de molécules pro-inflammatoires. Dans cette étude, réalisée sur des plaques 96 puits, nous avons évalué l'activité des acides amino alcènes, sur la production d'interleukine 8 induite au niveau du kératinocyte par le phorbol ester PMA et le ionophore calcique A23187. 3.1) PROTOCOLE : La suspension de kératinocytes dans le KSFM complémenté est distribuée dans des plaques 96 puits (3.104 cellules/puits), et incubée pendant 16 heures à 37 C dans une atmosphère à 5% CO2. Les kératinocytes sont alors rincés avec du PBS pour 20 éliminer les cellules non-adhérentes puis exposés aux produits à tester inclus dans du KSFM non complémenté (qui pourrait interférer dans le dosage). La concentration testée en culture est de 3 g/ml. Elle a été retenue après un test préliminaire d'évaluation de la cytotoxicité (rouge neutre) et n'est pas cytotoxique. Pour chaque traitement, 3 puits sont réalisés. Les cellules sont pré-incubées 25 pendant 60 mn avec les produits à tester puis stimulées, parallèlement à des contrôles négatifs sans stimulant : Phorbol Myristate Acétate (PMA) 1 M + Ionophore calcique (A23187) 0, l gM. Incubation pendant 6 heures à 37 C en atmosphère humide d'air contenant 5% de CO2. 5 10 Les milieux de culture de chacun des puits sont récupérés, centrifugés à 3000 tr/mn et conservés à -80 C. Dosage des cytokines : l'IL8 est dosée par une méthode immunoenzymatique en kit ELISA (Immunotech). 3.2) RESULTATS : Les résultats sont rassemblés dans le tableau 2 et sont exprimés en pourcentage d'activité / contrôle stimulé. Tableau 2 Composés de formule I % d'activité inhibitrice des molécules évaluées sur la production d'IL8 N n R Rä Rl Sel 1 2 H H H HC1 2 2 H H F HCl 3 2 H H F HC1 4 3 H H H HC1 3 H H F HCl + 6 3 H H F HC1 + 7 4 H H H HC1 8 5 H H H HC1 14 9 5 H H F HC1 20 10 H H F HC1 8 11 10 H H H HC1 22 La synthèse des données obtenues permet de mettre en évidence les potentialités anti-inflammatoires en particulier du composé n 11 et 9, avec une dose efficace 50 (DE 50) de 11 gg/ml pour le composé n 11. 4) Etude de l'effet anti-radicalaire sur espèces actives de l'oxygène (EAO) Durant le métabolisme cellulaire normal, lors d'exposition occasionnelle de la peau à des agents stressants ou au cours de pathologiesdermatologiques, des espèces oxygénées réactives encore appelées Espèces Activées de l'Oxygène (EAO) sont générées (Y. M. W. Janssen et al, 1993). Ces EAO, décrites comme des métabolites très réactifs, jouent un rôle important dans bon nombre de processus tels que l'inflammation, le vieillissement et la promotion tumorale. Les EAO sont considérées comme les seconds messagers dans la signalisation cellulaire du stress oxydatif et donc comme les médiateurs précoces de l'inflammation (A. Van Der Vliet and A. Bast, 1992). Leur surproduction induit d'importants dommages au sein de la cellule. Certains constituants cellulaires sont alors les cibles majeures d'un tel stress oxydatif : les composants lipidiques de la membrane plasmique (lipoperoxydation), les protéines (dénaturation et dégradation) et le matériel génétique ou ADN (mutations) peuvent être altérés. Les cellules sont capables de limiter ces dommages oxydatifs grâce à différents systèmes de défense antiradicalaire (antioxydants enzymatiques et non enzymatiques) (B. P. Yu, 1994 ; H. Steiling et al, 1999). Cependant, dans certaines conditions, les EAO sont produites en quantité telle que l'activité antioxydante cellulaire est insuffisante ; ces EAO deviennent alors des facteurs inducteurs de pathologies inflammatoires et du vieillissement tissulaire (Y. Miyachi et al, 1986 ; M. Kress et al, 1995). Il existe différents agents chimiques (ex : H202) ou physiques (ex : UVA) capables de générer in vitro un stress oxydatif. Ainsi les EAO produites vont altérer diverses cibles cellulaires (Membranes, ADN ou Protéines) dont l'altération peut-être analysée par des méthodologies biochimiques largement utilisées comme le dosage des TBARS pour la lipoperoxydation lipidique, ou le dosage in vitro des EAO intracellulaires à l'aide de la sonde H2DCF-DA. Nous avons mis en place un modèle d'étude in vitro du stress oxydatif induit par H2O2 / Fer, H2O2 qui génère massivement des EAO intracellulaires par une réaction en chaîne déclenchée par l'oxydation des lipides membranaires. Cette technique est basée sur l'utilisation d'une sonde fluorescente, la 6-carboxy- 2',7'-dichlorodihydro fluorescéine diacétate, di (acétoxyméthyle ester) (H2DCF-DA), qui, une fois qu'elle a pénétré dans la cellule, est désacétylée par les estérases intracellulaires formant alors du H2DCF. Ce produit est oxydé par les EAO intracellulaires en un composé hautement fluorescent: la 2',7'-dichlorofluorescein (DCF) (Suematsu M et al., 1996, Free Radicals Pratical Approach, Punchard ed. p83-99). Les matériel et méthodes utilisés pour le dosage in vitro des EAO intracellulaires sont indiqués ci-après. a) Outil cellulaire: Lignée cellulaire de fibroblastes murins cutanés L929. b) Matériel: - Microplaque 96 puits à fond plat - Cytofluorimètre Cytofluor II : Réf. PERSEPTIVE BIOSYSTEMS c) Réactifs : Réactifs de culture cellulaire : Milieu de culture Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) Sérum de veau foetal (SVF) Tampon phosphate PBS pH 7, 4 Trypsine EDTA (1X) Sonde fluorescente : -6-carboxy-2',7'-dichlorodihydrofluorescein diacétate, di(acétoxyméthyle ester) (PM. 675,43) Produits de stimulation des cellules : Peroxyde d'Hydrogène (H2O2) 3% : Réf. GIFRER (Laboratoire Gifrer Barbezat) Ferrous Ammonium Sulfate (Fe2+) Ferric Ammonium Sulfate (Fe3+) d) Produits testés : Les concentrations testées sont des concentrations non cytotoxiques. La cytotoxicité a été réalisée par la méthode du rouge neutre, après incubation du produit durant 3 heures. Le produit anti-radicalaire de référence est la vitamine E ou a-tocophérol (PM : 430.7) (SIGMA, réf : T-1539). La solution mère est préparée à 400mg/ml dans du DMSO et conservée à -20 C. La solution de pré-traitement est préparée extemporanément à 400 g/ml dans du milieu de culture sans SVF. Pour l'évaluation des dérivés d'amino-acides gras insaturés, les dilutions sont préparées dans du milieu de culture extemporanément, pour une gamme de concentrations de 0.02, 0.2, 2 et 20 ng/ml. e) Protocole : Ensemencement des cellules : Les cellules de la lignée de fibroblastes L929 sont ensemencées dans des microplaques de 96 puits à fond plat dans 10011l de DMEM supplémenté de 10% de SVF, puis elles sont incubées une nuit à 37 C en atmosphère humide à 5% de CO2. Le blanc de plaque sans cellules est évalué sur 6 puits. Pré-traitement des cellules : Les dilutions des produits à tester et molécule de référence sont réalisées dans le milieux de culture sans SVF, puis déposées dans 7 puits à raison de l00 1 par puits. Les cellules sont alors incubées pendant 3 heures à 37 C en atmosphère humide à 5% de CO2. Les cellules Témoin (fluorescence naturelle des cellules), Contrôle 25 (production basale de EAO) et Stimulées (production de EAO après traitement oxydatif) sont recouvertes avec 100 l de DMEM. Les cellules Contrôle sont incubées avec la sonde mais ne sont ni prétraitées ni traitées. Les cellules Stimulées sont incubées avec la sonde et sont traitées mais pas 30 prétraitées. Les cellules Témoin ne sont ni pré-traitées, ni incubées avec la sonde, ni traitées. 20 Incubation des cellules avec la sonde et stress oxydatif : Les cellules sont rincées au PBS 1X à raison de l00111 par puits. Puis elles sont mises à incuber 30 minutes à 37 C en atmosphère humide à 5% de CO2 avec 50 l de sonde H2DCF-DA à 5 M. Après 30 minutes au contact de la sonde seule, les cellules sont mises à incuber 30 minutes à 37 C en atmosphère humide à 5% de CO2 avec un ajout de 25111 d'H2O2 à 800 M et 25 l de solution de fer ferreux et ferrique à 8mM, pour avoir des concentrations finales de 200 M d'H2O2 et 2mM de fer ferreux et ferrique. Les cellules sont ensuite rincées au PBS 1X à raison de 100 l par puits, puis incubées 30 minutes à 37 C en atmosphère humide à 5% de CO2 avec l00111 de PBS 1X. Ces 1 h 30 minutes d'incubation à 37 C permettent aux estérases intracellulaires de désacétyler la sonde en H2DCF, oxydable par les EAO intracellulaire en DCF : composé fluorescent dont la formation est proportionnelle à la quantité d'EAO intracellulaires. L'intensité de fluorescence est lue au cytofluorimètre à ?excitation = 485nm et Rémission = 530nm. Elle reflète la quantité d'EAO intracellulaires produite. Schéma du protocole d'étude : Incorporation sonde Stress Incubation Pré-traitement produit H2DCF-DA H2O2/Fer PBS I I I 1 1 3h 30 min 30 min 30 min to=0 to+3h to+3h30min to+4h to+4h30min Lecture Calcul du % de protection contre la production d'EAO intracellulaires : Le rapport ci-dessous permet de calculer pour chaque concentration de produit testé le % de protection contre la production d'EAO intracellulaires (puisque l'Intensité de Fluorescence ou IF exprime la libération intracellulaire d'EAO). [IF Oxydant (H2O2/Fer) - IF (Oxydant + Produit)] x 100 IF Oxydant (H2O2/Fer) - IF Contrôle Les valeurs indiquées dans le tableau 3 sont les pourcentages d'inhibition de 10 production d'EAO intracellulaire suite à un stress oxydatif exogène, par rapport aux cellules témoin (100%) et aux cellules stimulé (0%). Les pourcentages moyens de protection, pour les 13 molécules testées à 4 concentrations sur la lignée L929 sont présentés dans le tableau 3 ci-dessous. 15 Tableau 3 Composés de formule (I) Doses N n R Rn Rl Sel 0,02 0,2 2 20 ng/ml ng/ml ng/ml ng/ml 1 2 H H H HC1 12 13 5 1 2 2 H H F HC1 14 19 14 -13 3 2 H H F HCl 15 11 5 1 4 3 H H H HC1 13 12 8 -14 3 H H F HC1 18 23 26 23 6 3 H H F HC1 31 30 21 26 7 4 H H H HC1 31 33 26 32 8 5 H H H HC1 22 25 20 19 9 5 H H F HC1 18 20 23 18 10 H H F HC1 20 25 18 15 11 10 H H H HC1 20 19 22 19 Produit antiradicalaire de référence Dose = 400 g/ml Vitamine E 31 Conclusion : In vitro, à l'échelle cellulaire, un stress exogène par le H2O2 / Fe2+ -Fe3+ est 20 capable d'induire une production d'EAO intracellulaires détectés à l'aide de la sonde fluorescente. 5 - La vitamine E (molécule anti-radicalaire de référence) présente une protection moyenne de 31 % à 400 g/ml. - Les dérivés amino-acides gras insaturés selon l'invention à courte chaîne (C7 à C9), en particulier, les composés n 8, 7 et 6, présentent des propriétés anti-radicalaires (activité > à 25 %). 5) Etude de l'effet anti-radicalaire. Analyse de la péroxydation lipidique Par ailleurs, durant le métabolisme cellulaire normal, lors d'exposition occasionnelle de la peau à des agents stressants ou au cours de pathologies dermatologiques, des espèces oxygénées réactives encore appelées Radicaux Libres Oxygénés (RLO) sont générées (Y. M. W. Janssen et al, 1993). Ces RLO, décrits comme des métabolites très réactifs, jouent un rôle important dans bon nombre de processus tels que l'inflammation, le vieillissement et la promotion tumorale. Les RLO sont considérés comme les seconds messagers dans la signalisation cellulaire du stress oxydatif et donc comme les médiateurs précoces de l'inflammation (A. Van Der Vliet and A. Bast, 1992). Leur surproduction induit d'importants dommages au sein de la cellule. Certains constituants cellulaires sont alors les cibles majeures d'un tel stress oxydatif : les composants lipidiques de la membrane plasmique (lipoperoxydation), les protéines (dénaturation et dégradation) et le matériel génétique ou ADN (mutations) peuvent être altérés. Les cellules sont capables de limiter ces dommages oxydatifs grâce à différents systèmes de défense antiradicalaire (antioxydants enzymatiques et non enzymatiques) (B. P. Yu, 1994 ; H. Steiling et al, 1999). Cependant, dans certaines conditions, les RLO sont produits en quantité telle que l'activité antioxydante cellulaire est insuffisante ; ces RLO deviennent alors des facteurs inducteurs de pathologies inflammatoires et du vieillissement tissulaire (Y. Miyachi et al, 1986 ; M. Kress et al, 1995). Afin de valoriser l'activité anti-radicalaire des différents dérivés selon l'invention, nous avons analysé leur pouvoir protecteur vis à vis de l'altération des membranes cellulaires induite par un stress oxydatif (chimique), en comparaison avec un antioxydant de référence, la vitamine E. La membrane plasmique constitue la principale et la première cible des RLO et, étant riche en lipides, elle est le site d'une peroxydation accrue (A. W. Girotti, 1985). Les peroxydes générés au cours de cette oxydation lipidique sont aussi très réactifs et capables de dégrader le matériel protéique et génomique. Pour évaluer l'altération membranaire, nous avons mesuré la peroxydation lipidique par un dosage in vitro des complexes entre les produits d'oxydation lipidique et l'acide thiobarbiturique. Ces complexes sont appelés TBARS (pour Thiobarbituric Acid Reactive Substances) et donnent le nom au test : Test des TBARS. Afin de mimer un stress oxydatif chimique, nous avons traité la lignée de fibroblastes, L929, par un complexe composé de peroxyde d'hydrogène (H2O2) et de fer (Fe2+/Fe3+) reconstituant ainsi la réaction de Fenton, source de RLO et plus particulièrement de radical hydroxyle (OH ) (D.A Vessey et al, 1992) : H2O2 + Fe2+ 4 OH + OH-+ Fe3+ Les produits ont été évalués sur la lignée de fibroblastes murins L929. Les cellules sont prétraitées avec les différentes concentrations de produits pendant 16 heures et sont ensuite stimulées avec le complexe H2O2-Fe2+/Fe3+ (200 M-lmM) pendant 1 heure. Solutions mères : 100 mg/ml, éthanol, 4 C. Solutions finales : 0,02 ng/ml. La peroxydation des lipides membranaires est analysée en mesurant les TBARS (Protocole Réf. PLN 2, selon Morlière et al, 1991). Principe du test : En milieu acide, à 95 C, se forment des complexes, notés TBARS pour Thio Barbituric Acid Reactive Substance, entre les produits d'oxydation lipidiques (malondialdéhyde ou MDA) et l'acide thiobarbiturique (TBA) qui peuvent être dosés en fluorescence par rapport à une gamme étalon avec le MDA. Le dosage des TBARS est alors exprimé en pmole/ g de protéines. Les protéines et TBARS sont dosés dans le milieu intracellulaire. Calcul du pourcentage de protection des membranes cellulaires : A partir du calcul des TBARS en pmole/ g protéines, nous avons calculé l'efficacité protectrice des différents produits contre l'oxydation des lipides membranaires. % de protection : fTBARS Contrôle] - FTBARS (+produits)] x 100 TBARS Contrôle Sept expériences indépendantes ont été réalisées. Durant ces expériences, divers composés ont été évalués (le test ne permet pas d'évaluer plus de 10 molécules en même temps). Les composés évalués plusieurs fois ont été choisis en fonction des résultats obtenus dans l'autre test mesurant également une activité anti-radicalaire (test de dosage des espèces actives de l'oxygène, EAO). Le modèle utilisé dans cette expérience (réaction de Fenton) induit une peroxydation lipidique importante dans les fibroblastes L929. Cette décharge massive de radical hydroxyle OH- génère donc un stress oxydatif au niveau cellulaire et notamment au niveau des membranes. Cependant, dans ce type de réaction oxydative, les produits issus de la peroxydation lipidique sont internalisés dans les cellules et les TBARS sont alors dosés dans le milieu intracellulaire. La vitamine E à 400 g/ml, diminue la peroxydation lipidique induite par le complexe H2O2-Fe2+/Fe3+, et protège très efficacement les membranes cellulaires. Dans le tableau 4, sont présentés les résultats des 7 expériences. Tableau 4 Composés selon l'invention % de protection des lipides membranaires Dose = 0,02 ng / ml N n R Rä Rl Sel Nbre Moyenne Expériences 1 2 H H H HC1 3 13,41 2 2 H H F HC1 3 7,63 3 2 H H F HC1 3 - 4,00 4 3 H H H HC1 3 8,75 5 3 H H F HC1 3 36,27 6 3 H H F HC1 5 49,82 7 4 H H H HC1 4 48,30 8 5 H H H HC1 5 56,61 9 5 H H F HC1 3 27,49 10 10 H H F HC1 3 23,91 11 10 H H H HC1 2 - 26,31 Conclusion : Le module in vitro présenté dans cette étude reflète les conséquences dues à un stress oxydatif majeur sur la principale cible cellulaire qui est la membrane plasmique. Ainsi, le dosage de la peroxydation lipidique constitue un bon marqueur du stress oxydatif et permet l'évaluation de l'action antioxydante, vis-à-vis du radical hydroxyle, de principes actifs au niveau de la membrane cellulaire. Dans nos conditions expérimentales, nous observons que les composés n 8, 9, 10, 7, 5 et 6 présentent une activité antiradicalaire importante et protègent très 10 efficacement les membranes des cellules. Les composés n 8, 7 et 6 présentent l'activité antiradicalaire et la protection des membranes les plus importantes. 6) Effet des dérivés d'amino-acides gras insaturés selon l'invention sur la 15 synthèse de mélanine in vitro Les mélanocytes sont des cellules d'aspect étoilé, présentes en minorité dans la couche basale de l'épiderme. Leur fonction principale est d'assurer la mélanogenèse, processus par lequel la mélanine est synthétisée dans des organites spécialisés, les mélanosomes, puis transportée et distribuée aux kératinocytes voisins via leurs 20 prolongements dendritiques. Ce contact avec les kératinocytes permet la pigmentation cutanée, mécanisme de protection de l'épiderme contre les effets mutagènes des rayons ultraviolets. Chaque mélanocyte est en relation avec environ trente six kératinocytes, formant ainsi une unité épidermique de mélanisation . La mélanogenèse consiste en une série de réactions enzymatiques et spontanées, 25 dont le précurseur est la tyrosine. Trois enzymes principales participent à ce processus : la tyrosinase, et les tyrosinase-related protein 1 et 2 (TRP 1 et 2) (Jimbow et al., 2000). La tyrosinase catalyse la transformation de la tyrosine en dopaquinone. A partir de là, deux voies de synthèse sont alors possibles : l'eumélanogenèse et la phéomélanogenèse. La conversion de dopaquinone en eumélanine se fait par une série de réactions successives d'oxydations faisant intervenir TRP-1 et TRP-2. L'eumélanine correspond au pigment brun noir, à faible teneur en soufre, et assure le pouvoir photoprotecteur. Dans la phéomélanogenèse, des molécules à forte teneur en soufre s'incorporent à la dopaquinone pour donner la phéomélanine, de couleur jaune-orangé, présente dans les peaux des sujets roux. Le stimulus physiologique de la synthèse de mélanine est le soleil, ce qui entraîne une augmentation du nombre des mélanocytes, une néosynthèse de mélanine, et des modifications morphologiques des mélanocytes, associant un accroissement de leur dendricité à une augmentation du transfert des mélanosomes aux kératinocytes. Au niveau moléculaire, l'exposition au soleil stimule la synthèse et la sécrétion d'alpha mélanocyte stimulating hormone. L'a-MSH augmente la concentration intramélanocytaire en AMPc, activant le facteur de transcription, Mitf, qui stimule à son tour l'activité transcriptionnelle des gènes codant pour la tyrosinase, TRP-1 et TRP-2 . Certaines molécules exogènes sont également connues pour réguler négativement la mélanogenèse. L'hydroquinone inhibe la synthèse de mélanine en se présentant comme substrat de la tyrosinase afin de détourner son activité (Curto et al., 1999). La vitamine C inhibe la tyrosinase mais ne comporte également comme un réducteur puissant en empêchant la coloration de la mélanine par oxydation. 6.1) L'effet modulateur des dérivés d'amino acides gras insaturés, sur la mélanogénèse a été analysé. Pour cela une mesure de la synthèse de mélanine par dosage colorimétrique est effectuée sur une lignée cellulaire de mélanomes murins : la lignée B 16-F 10. L'effet des produits est investigué en situation basale et après stimulation de la mélanogénèse par a MSH pour déterminer le pouvoir dépigmentant. Dosage de la mélanine : Le taux de mélanine extracellulaire et intracellulaire est alors mesuré par spectrophotométrie à une longueur d'onde de 405 nm selon le protocole (Meun, Y. J. et al.). La quantité de pigment est déterminée grâce à une gamme étalon de mélanine et l'analyse sur le logiciel Microwin (Berthold Biotechnologies). Un dosage de protéines totales est effectué pour les échantillons de mélanine intracellulaire par la méthode BCA-Copper à 540nm. La gamme étalon est réalisée avec une protéine standard, la BSA (Serum Albumine Bovine). 6.2) RESULTATS : En situation basale l'alpha MSH à 1 M augmente de plus de 100% la production de mélanine par rapport aux cellules témoins. Cette augmentation de mélanine est contrée par les agents dépigmentants, tels l'hydroquinone à 1 g/ml ou la vitamine C à 40 g/ml, qui inhibent près de 60% la 10 mélanogénèse. • Molécule dépigmentante : A 30 gg/ml, la molécule n 11 inhibe faiblement la quantité de mélanine intra et extracellulaire respectivement à hauteur environ de 45 % et de 30 %. Toutefois, la molécule n 11 reste sans effet sur la synthèse de la mélanine à 10 gg/ml. 15 • Molécules pigmentantes : A 3, 10 et 30 gg/ml, la molécule n 6 augmente la quantité de mélanine intracellulaire à hauteur d'environ 100 %. La molécule n 5 semble également avoir un effet pigmentant, mais il est plus faible que celui de la molécule n 6. 20 Bibliographie : - Janssen Y, M, W, et al (1993) Lab, Invest, 69 :261-74 - Van Der Vliet A, and Bast A, (1992) Chem, Biol, Interactions 85 : 95-116 - Yu B, P, (1994) Physiol, Rev, 74: 139-62 - Steiling H, et al (1999) Exp. Cell, Res, 247 :484-94 25 - Miyachi Y, et al (1986) J, Clin, Lab, Immunol, 19: 11-4 - Kress M, et al (1995) Pain 62 : 87-94 - Girotti A, W, (1985) J, Free Radic, Biol, Med, 1 : 87-95 - Vessey D, A et al (1992) J, Invest, Dermatol, 99 : 859-63 - Morlière P, et al, (1991) Biochim, Biophys, Acta, 1084 : 261-268 30 - Emonet E et al (1997) J. Photochem. Photobiol 40 : 84-90 - Meun, Y. J. et al. (2004) Biol. Pharm. Bull. June, 27 (n 6) : 806 - 809 - Curto EV., Kwong C., Hermersdôrfer H., Glatt H., Santis C., Virador V., Hearing VJ., Dooley TP. Inhibitors of mammalian melanocyte tyrosinase: in vitro comparisons of alkyl esters of gentisic acid with others putative inhibitors (1999) Biochemical Pharmacology 57: 663-672 -Jimbow K., Hua C., Gomez P., Hirosaki K., Shinoda K., Salopek T., Matsusaka H., Jin H., Yamashita T. Intracellular vesicular trafficking of tyrosinase gene family protein in 5 eu- and pheomelanosome biogenesis (2000) Pigment cell res. 13: 110-117 REVENDICATIONS 1. Dérivés d'amino-acides gras insaturés répondant à la formule générale (I) : O OR Rn R (I) ainsi que leurs sels d'addition d'acides pharmaceutiquement acceptables, dans laquelle : • Rn représentent indépendamment les uns des autres un atome d'hydrogène ou un groupement alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un atome d'halogène, en particulier de fluor ; • RI représente un atome d'hydrogène, de fluor, de chlore, ou de brome, ou bien un groupement ûCF3 ou bien un groupement alkyle linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone ; • R représente un atome d'hydrogène ou un groupement alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué 15 par un atome d'halogène, en particulier de fluor ; et • n est un entier compris entre 2 et 14 ; à l'exception de l'acide 6-amino-2-hexènoïque, son chlorhydrate et son trifluoroacétate et du trifluoroacétate d'acide 8-amino-2-octènoïque. 20 2. Dérivés d'amino-acides gras insaturés selon la revendication 1, caractérisés en ce que • Rn et R représentent un atome d'hydrogène ; et • n et RI sont tels que définis dans la revendication 1. 25 3. Dérivés d'amino-acides gras insaturés selon la revendication 2, caractérisé en ce que RI représente un atome d'hydrogène ou de fluor. 4. Dérivés d'amino-acides gras insaturés selon la revendication 3, caractérisé en ce que n est compris entre 2 et 10. 5. Dérivés d'amino-acides gras insaturés selon la revendication 3, caractérisé en ce que n est compris entre 3 et 5. 6. Dérivés d'amino-acides gras insaturés selon la revendication 3, caractérisé en ce que n est compris entre 9 et 14. 7. Dérivés d'amino-acides gras insaturés selon la revendication 3, caractérisé en ce que n est égal à 3. 8. Dérivés d'amino-acides gras insaturés selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisés en ce qu'ils se présentent sous forme d'isomères Z ou E, ou d'un mélange d'isomères Z et d'isomères E, en toutes quantités. 15 9. Dérivés d'amino-acides gras insaturés selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisés en ce qu'ils présentent sous forme de sels d'acide phaimaceutiquement acceptables formés à partir de l'acide chlorhydrique, l'acide bromhydrique, l'acide sulfurique, l'acide nitrique, l'acide phosphorique, l'acide acétique, l'acide benzènesulfonique, l'acide benzoïque, l'acide camphresulfonique, 20 l'acide citrique, l'acide ethane-sulfonique, l'acide fumarique, l'acide glucoheptonique, l'acide gluconique, l'acide glutamique, l'acide glycolique, l'acide hydroxynaphtoïque, l'acide 2-hydroxyéthanesulfonique, l'acide lactique, l'acide maléique, l'acide malique, l'acide mandélique, l'acide méthanesulfonique, l'acide muconique, l'acide 2-naphtalènesulfonique, l'acide propionique, l'acide salicylique, l'acide succinique, 25 l'acide dibenzol-L-tartrique, l'acide tartrique, l'acide p-toluènesulfonique, l'acide triméthylacétite ou l'acide trifluoroacétique. 10. Dérivés d'amino-acides gras insaturés répondant à la formule générale (I) : O H2N OR Rn R (I) 30 ainsi que leurs sels d'addition d'acides pharmaceutiquement acceptables, dans laquelle :• Rn représentent indépendamment les uns des autres un atome d'hydrogène ou un groupement alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un atome d'halogène, en particulier de fluor ; • RI représente un atome d'hydrogène, de fluor, de chlore, ou de brome, ou bien un groupement ùCF3 ou bien un groupement alkyle linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone ; • R représente un atome d'hydrogène ou un groupement alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un atome d'halogène, en particulier de fluor ; et • n est un entier compris entre 2 et 14 ; à titre de médicaments. 11. Compositions dermatologiques comprenant à titre de principe actif au moins un dérivé d'amino-acide gras insaturé selon la revendication 10, en association avec un 15 excipient dermatologiquement acceptable. 12. Utilisation d'un dérivé d'amino-acide gras insaturé selon la revendication 10, pour la préparation d'une composition dermocosmétologique antiradicalaire, anti-inflammatoire, anti-prurigineuse, et/ou destinée au traitement du vieillissement cutané, 20 et/ou destinée au traitement des troubles de la kératinisation et de la pigmentation, et/ou à améliorer la cicatrisation. 13. Utilisation selon la revendication 12, caractérisée en ce que ladite composition est destinée au traitement du psoriasis, du prurit et/ou de la dermite atopique. 14. Utilisation selon la revendication 12, caractérisée en ce que ladite composition est destinée à repigmenter les cheveux ou la peau, notamment les taches de vieillesse blanches. 30 15. Utilisation selon la revendication 12, caractérisée en ce que ladite composition est destinée à provoquer un éclaircissement de la peau ou à traiter les taches de vieillesse brunes. 25