FR 2906889 A1 20080411 FR 0608734 A 20061005 1 La présente invention concerne l'utilisation d'un polypeptide et d'un polynucléotide dans le domaine du diagnostic sérologique d'infections à Mycoplasma pneumoniae. Mycoplasma pneumoniae est une bactérie à croissance intracellulaire dépourvue de paroi et qui envahit les cellules de l'épithélium respiratoire. Elle est responsable d'infections respiratoires aiguës fréquemment rencontrées chez l'enfant à partir de cinq ans et chez l'adulte jeune. Il peut s'agir de pneumonies atypiques à évolution favorable parfois associées à d'autres manifestations ORL, cutanées, hématologiques, neurologiques ou plus souvent de trachéobronchites. Mycoplasma pneumoniae serait responsable de 15 à 20% des pneumopathies communautaires se manifestant à l'état endémique avec de petites poussées épidémiques tous les quatre à sept ans. (Bébéar C, Bébéar C.M et de Barbeyrac B. dans Freney J, Renaud F, Hansen W, Bollet C, Précis de bactériologie clinique, ed. ESKA, Paris, 200)). Il a également été observé une association clinique entre M. pneumoniae et asthme chez les enfants, même si la nature de la corrélation n'est pas encore clairement établie. (Hansbro PM et al., Role of atypical bacterial infection of the lung in predisposition/protection of asthma. Pharmacology et Therapeutics (2004), 101 : 193-210) . Il semblerait qu'il existe une sous-estimation fréquente des infections aiguës, voire chroniques, à M. pneumoniae chez les enfants à travers des pathologies telles que l'asthme ou les pneumopathies communautaires. Mycoplasma pneumoniae pénètre dans l'organisme par voie aérienne (inhalation de gouttelettes, contacts directs avec des sujets infectés) en adhérant aux cellules de l'épithélium respiratoire. Ce contact engendre un stress oxydatif à l'origine de l'altération du mouvement ciliaire et la formation de lésions cellulaires. Une réaction inflammatoire locale se forme. La réaction immunologique peut entraîner l'apparition d'infiltrats et parfois même d'auto-anticorps. Certains antigènes membranaires de M. pneumoniae sont en effet semblables à des antigènes retrouvés au niveau du cerveau et du pancréas. (Waites KB, 2906889 2 Talkington DF. Mycoplasma pneumoniae and its rote as a human pathogen, Clin Microbiol Rev, 2004) . De nombreux agents infectieux, qu'ils soient viraux ou bactériens, peuvent être à l'origine d'une pneumonie et 5 la symptomatologie respiratoire ne permet guère de différencier les infections à M. pneumoniae de celles provoquées par d'autres agents de pneumonies atypiques. Le début de la maladie est progressif après une incubation de 15 à 20 jours. La maladie se manifeste par de la fièvre, un 10 malaise, des céphalées, des myalgies et rachialgies et surtout une toux sèche et opiniâtre. L'état général est peu altéré et l'examen physique pauvre en symptômes, contrastant avec l'importance des images radiologiques des poumons. La maladie est généralement régressive avec le 15 temps, cependant la convalescence est longue et la toux persistante. M. pneumoniae peut également causer diverses complications extrapulmonaires en se dispersant au niveau d'autres organes : pleurésies, éruptions cutanées, sinusites, myocardites, péricardites, atteintes 20 articulaires, anémie hémolytique, manifestations nerveuses, infections génitales. (Waites KB, Talkington DF. Mycoplasma pneumoniae and its rote as a human pathogen, Clin Microbiol Rev, 2004) . Le traitement des infections à Mycoplasma pneumoniae repose sur un choix probabiliste en fonction de l'âge, 25 surtout chez les enfants, et de critères cliniques et radiologiques dont aucun n'est ni très spécifique ni sensible. L'absence de paroi rend cette bactérie insensible à la pénicilline et autres beta-lactamines habituellement 30 prescrites en cas de pneumonie d'origine bactérienne. Ainsi, les antibiotiques fréquemment utilisés dans les infections à M. pneumoniae sont les tétracyclines, les fluoroquinolones, les macrolides et apparentés. Cependant des cas de résistance aux fluoroquinolones et macrolides 35 ont déjà pu être observés (Matsuoka, et al. Characterization and Molecular analysis of Macrolide-Resistant Mycoplasma pneumoniae clinical isolates obtained in Japan. Antimicrob Agents Chemother, 2004, 48, 12 : 4624-4630 ; Gruson D. et al. In vitro developpement 2906889 3 of resistance to six and four fluoroquinolones in Mycoplasma pneumoniae and Mycoplasma hominis respectively. Antimicrob Agents Chemother, 2005, 49, 3: 1190-1193) . Ces problèmes de résistance rendent le diagnostic d'infection à M. pneumoniae essentiel pour que l'antibiothérapie soit 5 appropriée et administrée précocement. A l'heure actuelle, le diagnostic direct est réalisée par culture ou réaction de polymérisation en chaîne (PCR) ; quant au diagnostic indirect, des tests sérologiques existent tels que les agglutinines froides, la réaction de 10 fixation du complément, l'immunofluorescence indirecte, l'agglutination passive et les tests ELISA. Toutefois, il n'existe pas de test de diagnostic de référence pour la détection d'infections à M. pneumoniae. La culture de M. pneumoniae peut être réalisée à 15 partir de prélèvements de gorge, d'aspirations nasopharyngées chez l'enfant et de lavages bronchoalvéolaires, mais elle est longue (2 à 3 semaines) et fastidieuse. Rarement pratiquée en routine, elle est plutôt réservée aux laboratoires de référence. Cependant, 20 lorsqu'elle est positive, elle est spécifique à 100%. La persistance de la bactérie pouvant aller jusqu'à plusieurs semaines après l'infection, des tests complémentaires, comme le dosage d'anticorps spécifiques, sont nécessaires pour confirmer le diagnostic d'une infection active. 25 L'amplification génique par PCR, à partir de prélèvements du tractus respiratoire, est une méthode plus rapide et plus sensible que la culture (sur 100 prélèvements positifs en PCR, seulement 60 sont positifs en culture). Différents systèmes ont été proposés, 30 amplification de séquences au hasard, amplification du gène de l'adhésine ou encore du gène codant l'ARN 16S. Cette approche est sensible (78-92%), permettant la détection de 10 à 100 cfu avec une bonne spécificité (92-100%) (Loens K, Goossens H and leven M., Molecular Diagnosis of Mycoplasma pneumoniae respiratory tract 35 infections, J. Clin. Microbiol., 2003) . Cependant, aucun kit de détection n'est commercialisé, la technique n'étant donc pas standardisée et restant très coûteuse et trop complexe à 2906889 4 utiliser en routine dans la plupart des laboratoires de microbiologie clinique. Les sérologies sont les méthodes les plus utilisées dans le diagnostic d'infection à M. pneumoniae, notamment 5 en cas d'absence de prélèvements. A la suite d'une infection à M. pneumoniae, le système immunitaire d'un individu non immunodéprimé répond rapidement par la production d'anticorps atteignant un pic au bout de 3 à 6 semaines pour ensuite décliner graduellement sur une 10 période allant de quelques mois à quelques années. La production d'immunoglobulines M (IgM), spécifiques de M. pneumoniae, apparaît 7 à 10 jours après le début de l'infection. Leur mise en évidence est souvent la preuve d'une infection récente, surtout chez les jeunes enfants 15 qui n'ont pas eu d'expositions répétées à la bactérie. Cependant, chez l'adulte ayant eu une exposition répétée, l'infection à M. pneumoniae ne provoque pas de montée rapide d'IgM et, dans ce cas, les tests sérologiques commercialisés mettant en évidence une réponse IgM peuvent 20 être pris en défaut. De même, la réponse IgM pouvant persister pendant des mois, voire des années, le taux d'anticorps IgM ne reflète pas forcément une infection récente. Dans certains cas, la réinfection conduit à une augmentation du taux d'IgG et c'est pourquoi il est 25 préconisé de rechercher en parallèle une réponse IgG et IgM. Les IgA sont produits tôt au cours de l'infection mais leur niveau de production décroît plus rapidement que celui des IgG et des IgM. Ils peuvent être de bons indicateurs d'une infection récente pour toutes les classes d'âges, 30 même après de multiples réinfections (Waites K.B., C.M. Bébéar, J.A. Robertson, D.F. Talkington, and G.E. Kenny. Laboratory diagnosis of mycoplasmal infections. Cumitech of American Society for Microbiology, coordinating editor : F.S. Nolte., 2001, ASM press : 1-30) . Il existe différentes techniques sérologiques, 35 souvent complémentaires, pour diagnostiquer une infection à M. pneumoniae. Les principaux tests sont la recherche d'agglutinines froides, la réaction de fixation du 2906889 5 complément, l'immunofluorescence indirecte, les tests d'agglutination passive et les tests ELISA. La présence d'agglutinines froides, évocatrice à un taux >64, est parfois constatée dans les infections à 5 M. pneumoniae mais elle n'est ni constante ni caractéristique. Cette technique autrefois utilisée n'est donc plus recommandée dans la recherche d'infection à M. pneumoniae. La réaction de fixation du complément (RFC), 10 utilisant une préparation antigénique effectuée à partir du micro-organisme entier, a longtemps été utilisée. Le test mesure le taux d'IgM et d'IgG simultanément, sans les différencier. Un titre >64, est évocateur d'une infection. La technique est lourde, peu sensible et peut donner lieu à 15 des réactions croisées ou à des résultats ininterprétables (sérums " anticomplémentaires "). La recherche d'anticorps spécifiques peut se faire par immunofluorescence indirecte. Le sérum à tester, mis au contact d'antigènes de M. pneumoniae, est révélé par des 20 anticorps anti-IgM ou anti-IgG humaines, conjugués à un fluorochrome. Cette technique existe sous forme de kit commercialisé mais nécessite un microscope à fluorescence. La lecture des lames est longue et fastidieuse et l'interprétation des résultats reste délicate. 25 Des tests d'agglutination passive pour la détection d'IgM et/ou d'IgG sont commercialisés. Ils mettent en évidence une reconnaissance par des anticorps, contenus dans le sérum du patient, d'antigènes (extraits de M. pneumoniae) fixés à des particules de latex, de gélatine 30 ou encore d'érythrocytes dans le cas du test d'hémagglutination indirecte (IHA) . La technique nécessite au moins deux sérums pour mettre en évidence une augmentation du titre d'anticorps et ne présente pas d'avantages par rapport à la technique ELISA (Waites K.B., C.M. 35 Bébéar, J.A. Robertson, D.F. Talkington, and G.E. Kenny. Laboratory diagnosis of mycoplasmal infections. Cumitech of American Society for Microbiology, coordinating editor : F.S. Nolte, 2001, ASM press : 1-30) . 2906889 6 Les techniques ELISA permettent de détecter indépendamment des IgG ou des d'IgM. Des préparations d'extraits bactériens, de protéines purifiées comme l'adhésine P1, de glycolipides, de peptides synthétiques 5 ont été utilisés, fixés au support solide. Le sérum des patients est incubé avec la phase solide antigénique, et des anticorps anti-IgG ou anti-IgM humaines conjugués à un enzyme réagissent avec les anticorps liés à l'antigène. Le complexe est mis en évidence par l'hydrolyse d'un substrat 10 de l'enzyme aboutissant à un produit coloré. Le choix de l'ELISA (IgM et/ou IgG) dépend de l'âge du patient et du nombre de sérums pouvant être testés. La présence d'IgM est très évocatrice chez l'enfant et l'adolescent mais plus rarement observée chez l'adulte. Il est préférable de 15 rechercher des anticorps spécifiques sur deux sérums prélevés à 10-15 jours d'intervalle, pour mettre en évidence une séroconversion (augmentation x 4 du titre d'anticorps). En résumé, les pratiques courantes ne répondent 20 toujours pas aux attentes médicales pour établir de façon certaine le diagnostic d'infections à M. pneumoniae chez l'enfant ou l'adulte. Bien que les tests sérologiques semblent être les plus adaptés, dans de nombreux cas le diagnostic d'une infection active reste difficile à 25 différencier de celui d'une infection passée (Waites K.B., C.M. Bébéar, J.A. Robertson, D.F. Talkington, and G.E. Kenny. Laboratory diagnosis of mycoplasmal infections. Cumitech of American Society for Microbiology, coordinating editor : F.S. Nolte., 2001, ASM press : 1-30, Talkington DF, Shott S, Fallon MT, Schwartz SB and Thacker WL. Analysis of eight commercial enzyme immunoassay tests for detection of antibodies to Mycoplasma 30 pneumoniae in human serum, Clin. Diagn. Lab. Immunol., 2004) . La présente invention a notamment comme objectifs de résoudre les déficiences des tests sérologiques actuels et de permettre un diagnostic sensible et spécifique des infections à Mycoplasma pneumoniae. C'est dans ce cadre que 35 les inventeurs de la présente invention ont identifié, à partir du génome de M. pneumoniae, un polypeptide appelé 7F4, de séquence polypeptidique ID SEQ N 2 dont les 2906889 7 utilisations possibles, dont celle indiquée ci-dessous, sont décrites ci-après. La protéine 7F4 est une protéine membranaire impliquée dans l'activité métabolique et retrouvée chez d'autres micro-organismes. 5 Définitions Les définitions suivantes sont données afin de faciliter la compréhension de certains termes utilisés dans cette description. On entend par "polynucléotide", un polyribonucléotide 10 ou un polydésoxyribonucléotide qui peut être un ADN ou un ARN modifié ou non. Le terme polynucléotide inclut, sans limitation, un ADN simple brin ou double brin, un ADN composé d'un mélange d'une ou plusieurs région(s) simple brin et d'une ou 15 plusieurs région(s) double brin, un ADN qui est un mélange de régions simple brin, double brin et/ou triple brin, un ARN simple brin ou double brin, un ARN composé d'un mélange d'une ou plusieurs région(s) simple brin et d'une ou plusieurs région(s) double brin et les molécules hybrides 20 comprenant un ADN et un ARN qui peuvent comprendre des régions simple brin, double brin et/ou triple brin ou un mélange de régions simple brin et double brin. Le terme polynucléotide peut aussi comprendre un ARN et/ou un ADN comprenant une ou plusieurs régions triple brin. Les brins 25 dans de telles régions peuvent provenir de la même molécule ou de molécules différentes. Par conséquent les ADN ou ARN, ayant des squelettes modifiés pour la stabilité, ou d'autres raisons, sont inclus dans le terme polynucléotides. On entend également par polynucléotide, 30 les ADNs et ARNs contenant une ou plusieurs bases modifiées. On entend par "base modifiée", par exemple, les bases inhabituelles telles que l'inosine. Le terme polynucléotide vise également les polynucléotides de forme modifiée chimiquement, enzymatiquement ou métaboliquement. 35 Les polynucléotides comprennent également les polynucléotides courts tels que les oligonucléotides. 2906889 8 On entend par "polypeptide", un peptide, un oligopeptide, un oligomère ou une protéine comprenant au moins deux acides aminés joints l'un à l'autre par une liaison peptidique normale ou modifiée. 5 Le terme polypeptide comprend les chaînes courtes, appelées peptides, oligopeptides et oligomères, et les chaînes longues, appelées protéines. Un polypeptide peut être composé d'acides aminés autres que les 20 acides aminés codés par les gènes 10 humains. Un polypeptide peut également être composé d'acides aminés modifiés par des processus naturels, tels que le processus de maturation post-traductionnel ou par des procédés chimiques, qui sont bien connus de l'homme du métier. Le même type de modification peut être présent à 15 plusieurs endroits du polypeptide et n'importe où dans le polypeptide : dans le squelette peptidique, dans la chaîne d'acides aminés ou encore aux extrémités carboxy- ou aminoterminales. Un polypeptide peut être ramifié suite à une 20 ubiquitination ou être cyclique avec ou sans ramification. Ce type de modifications peut être le résultat de processus de post-traduction naturels ou synthétiques, qui sont bien connus de l'homme du métier. On entend, par exemple, par modifications d'un 25 polypeptide, l'acétylation, l'acylation, l'ADP- ribosylation, l'amidation, la fixation covalente de flavine, la fixation covalente d'un hème, la fixation covalente d'un nucléotide ou d'un dérivé nucléotidique, la fixation covalente d'un lipide ou d'un dérivé lipidique, la 30 fixation covalente d'un phosphatidylinositol, la réticulation covalente ou non-covalente, la cyclisation, la formation de pont disulfure, la déméthylation, la formation de cystéine, la formation de pyroglutamate, la formylation, la gamma-carboxylation, la glycosylation, la formation 35 d'ancre au GPI, l'hydroxylation, l'iodisation, la méthylation, la myristoylation, l'oxydation, le processus protéolytique, la phosphorylation, la prénylation, la 2906889 9 racémisation, la sénéloylation, la sulfatation, l'addition d'acides aminés, telle que l'arginylation ou l' ubiquitination . (PROTEINS STRUCTURE AND MOLECULAR PROPERTIES, 2nd Ed., T.E. Creighton, W.H. Freeman and Company, New York (1993) and Wold, F., 5 Posttranslational Protein Modifications : Perspectives and Prospects, pgs 1-12 in POSTTRANSLATIONAL COVALENT MODIFICATION OF PROTEINS, B.C. Johnson, Ed., Academic Press, New York (1983) ; Seifter et al., Meth. Enzymol. 182: 626-646 (1990) and Rattan et al., Protein Synthesis : Posttranslational Modifications and Aging, Ann. N.Y. Acad. Sci. 663 : 48-62 (1992)) . 10 On entend par "isolé", modifié par la main de l'homme à partir de l'état naturel, c'est-à-dire que le polynucléotide ou le polypeptide présent dans la nature a été modifié ou isolé de son environnement naturel, ou les deux. Par exemple, un polynucléotide ou un polypeptide 15 naturellement présent dans un organisme vivant n'est pas "isolé", mais le même polynucléotide ou polypeptide séparé des matériaux coexistants dans son état naturel est "isolé". On entend par "pourcentage d'identité" entre deux 20 séquences polynucléotidiques ou polypeptidiques le pourcentage de nucléotides ou d'acides aminés identiques entre les deux séquences à comparer, obtenu après le meilleur alignement, ce pourcentage étant purement statistique et les différences entre les deux séquences 25 étant réparties au hasard et sur toute leur longueur. Les comparaisons entre deux séquences polynucléotidiques ou polypeptidiques sont traditionnellement réalisées en comparant ces séquences après les avoir alignées de manière optimale, ladite comparaison étant réalisée par segment ou 30 par "fenêtre de comparaison" pour identifier et comparer les régions locales de similarité de séquence. Cette comparaison peut être réalisée grâce à un programme, par exemple le programme EMBOSS-Needle (alignement global Needleman-Wunsch) à l'aide de la matrice BLOSUM62/Open Gap 35 10.0 et Extension Penalty de 0,5 (Needleman, S.B. and Wunsch, C.D. (1970), J. Mol. Biol. 48, 443-453 et Kruskal, J.B. (1983), An overview of sequence comparison, In 2906889 10 D. Sankoff and J.B. Kruskal, (ed), Time warps, strind edits and macromolecules : the theory and practice of sequence comparison, pp. 1-44 Addison Wesley) . Le pourcentage d'identité est calculé en déterminant le nombre de positions identiques pour lesquelles le 5 nucléotide ou l'acide aminé est identique entre les deux séquences, en divisant ce nombre de positions identiques par le nombre total de positions dans la fenêtre de comparaison et en multipliant le résultat obtenu par 100. Un polypeptide ayant, par exemple, une identité d'au 10 moins 95% avec le polypeptide ID SEQ N 2 est un polypeptide comportant, au plus, 5 acides aminés modifiés sur 100 acides aminés, par rapport à ladite séquence. En d'autres termes jusqu'à 5% des acides aminés dans la séquence ID SEQ N 2 peuvent être délétés ou substitués par 15 un autre acide aminé ou la séquence peut comporter jusqu'à 5% d'acides aminés en plus par rapport au nombre total d'acides aminés de la séquence ID SEQ N 2. Ces altérations de la séquence peuvent être situées aux positions aminoet/ou carboxy-terminales de la séquence d'acides aminés ou 20 à un endroit quelconque entre ces positions terminales, en un ou plusieurs emplacements. (Computational Molecular Biology, Lesk, A.M., ed., Oxford University Press, New York, 1988; Biocomputing: Informatics and Genome Projects, Smith, D.W., ed., Academic Press, New York, 1993 ; Computer Analysis of Sequence Data, Part I, Griffin, A.M., and Griffin, H.G., eds., Humana Press, New Jersey, 1994 ; Sequence Analysis in 25 Molecular Biology, von Heinje, G., Academic Press, 1987) . Par analogie, un polynucléotide ayant, par exemple, une identité d'au moins 95% avec le polynucléotide ID SEQ N 1 est donc un polynucléotide comportant, au plus, 5 nucléotides modifiés sur 100 nucléotides, par rapport à 30 la séquence dudit polynucléotide. En d'autres termes jusqu'à 5% des nucléotides du polynucléotide ID SEQ N 1 peuvent être délétés ou substitués par un autre nucléotide, ou un polynucléotide peut comporter jusqu'à 5% de nucléotides en plus par rapport au nombre total de 35 nucléotides du polynucléotide ID SEQ N 1. Ces modifications peuvent être positionnées aux extrémités 3' et/ou 5', ou à 2906889 11 un endroit quelconque entre ces extrémités, en un seul ou plusieurs emplacements. On entend par "fragment de polypeptide" un polypeptide comprenant au moins "n" acides aminés 5 consécutifs issus du polypeptide ID SEQ N 2, où, selon les séquences, n sera égal à 7 acides aminés ou plus (par exemple, 8, 10, 12, 14, 16, 18, 20, 30, 40, 50 ou plus acides aminés). Préférentiellement, lesdits fragments comportent un épitope de la séquence ID SEQ N 2. Ces 10 épitopes de type B ou T peuvent être déterminés par un logiciel (par exemple, PEOPLE [Alix, 1999] , PREDITOP [Pellequer et Westhof, 1993] ou TEST [Zao et al., 2001 ]) ou expérimentalement par des techniques classiques [par exemple, épitope mapping (cartographie d'épitope) ou protéolyse ménagée]. 15 On entend par "fragment de polynucléotide" un polynucléotide comprenant au moins "n" nucléotides consécutifs issus du polynucléotide ID SEQ N 1, où, selon les séquences, n sera égal à 21 nucléotides ou plus (par exemple, 22, 23, 24, 25, 30, 36, 42, 48, 54, 60, 90, 120, 20 150 ou plus nucléotides). On entend par "cellule hôte", une cellule qui a été transformée ou transfectée, ou est capable de transformation ou de transfection, par une séquence polynucléotidique exogène. 25 On entend par "amorces spécifiques" de courtes séquences nucléotidiques capables de s'hybrider de façon spécifique, grâce à la complémentarité des bases, sur le brin d'ADN ou sur son brin complémentaire. On entend par "milieu de culture", le milieu dans 30 lequel on purifie le polypeptide de l'invention. Ce milieu peut être constitué par le milieu extracellulaire et/ou le lysat cellulaire. Des techniques bien connues de l'homme du métier permettent également à ce dernier de redonner la conformation active au polypeptide, si la conformation 35 dudit polypeptide a été altérée lors de l'isolation ou de la purification. 2906889 12 On entend par "fonction", l'activité biologique d'un polypeptide ou d'un polynucléotide. La fonction d'un polypeptide conforme à l'invention est celle d'un antigène de M. pneumoniae, et la fonction d'un polynucléotide 5 conforme à l'invention est celle de coder ce polypeptide. On entend par "antigène", tout composé qui, seul ou en association avec un adjuvant ou porteur, est capable d'induire une réponse immunitaire spécifique. Cette définition comprend également tout composé présentant une 10 analogie structurale avec ledit antigène capable d'induire une réponse immunologique dirigée contre ledit antigène. On entend par "analogie structurale" une analogie aussi bien de la structure primaire (séquence) que de la structure secondaire (éléments structuraux), de la 15 structure tertiaire (structure tridimensionnelle) ou de la structure quaternaire (association de plusieurs polypeptides dans un même complexe) (BIOCHEMISTRY, 4ème Ed, L. Stryer, New York, 1995) . On entend par "variant" d'un polynucléotide dit 20 initial ou d'un polypeptide dit initial, respectivement, un polynucléotide ou un polypeptide qui en diffère par au moins un nucléotide ou un acide aminé, mais qui garde les mêmes propriétés intrinsèques, c'est-à-dire la même fonction. 25 Une différence dans la séquence polynucléotidique du variant peut altérer ou non la séquence d'acides aminés du polypeptide qu'il code, par rapport à un polypeptide initial. Néanmoins, par définition, ces variants doivent conférer la même fonction que la séquence polynucléotidique 30 initiale, par exemple, coder un polypeptide ayant une fonction antigénique. Le polynucléotide ou le polypeptide variant diffère généralement du polynucléotide initial ou du polypeptide initial par une (ou plusieurs) substitution(s), 35 addition(s), délétion(s), fusion(s) ou troncation(s) ou plusieurs de ces modifications, prises en combinaison. Un variant non-naturel d'un polynucléotide initial ou d'un 2906889 13 polypeptide initial peut être obtenu, par exemple, par mutagenèse dirigée ou par synthèse directe. On définit comme "séquence polynucléotidique complémentaire à la séquence polynucléotidique", un 5 polynucléotide qui peut être hybridé avec cette séquence polynucléotidique dans des conditions stringentes. On entend généralement, mais pas nécessairement, par "conditions stringentes" les conditions chimiques qui permettent une hybridation lorsque les séquences 10 polynucléotidiques ont une identité d'au moins 80%. Ces conditions peuvent être obtenues selon les méthodes bien connues de l'homme du métier. On entend par "anticorps", les anticorps monoclonaux, polyclonaux, chimériques, simple chaîne, humanisés, ainsi 15 que les fragments Fab, incluant les produits d'un Fab ou d'une banque d'expression d'immunoglobulines. Un anticorps immunospécifique peut être obtenu par administration à un animal d'un polypeptide donné, suivie d'une récupération des anticorps produits par ledit animal 20 par extraction depuis ses fluides corporels. On peut également administrer à l'animal un variant dudit polypeptide, ou des cellules hôtes exprimant ce polypeptide. Le terme "immunospécifique" appliqué au terme 25 anticorps, vis-à-vis d'un polypeptide donné, signifie que l'anticorps possède une meilleure affinité pour ce polypeptide que pour d'autres polypeptides connus de l'art antérieur. Par "affinité", on entend à la fois une 30 complémentarité structurale et une complémentarité des liaisons de faible énergie entre deux molécules au sens d' une définition communément admise (voir, par exemple, Klotz IM. Ligandprotein binding affinities. In Protein Function, a Practical Approach (T. E. Creighton, Ed.). 1989; 25-35. IRL Press, Oxford, ou encore Ajay, Murcko MA. Computational methods to predict 35 binding free energy in ligand-receptor complexes.J Med Chem. 1995 ; 38:4953-67). L'affinité peut être mesurée par les techniques classiques 2906889 14 de la biochimie (ELISA, compétition, fluorescence...) bien connues de la personne du métier. Par sérum "positif" on entend un sérum contenant des anticorps, produits à la suite d'une infection à 5 M. pneumoniae, identifiés par leur liaison avec le polypeptide (antigène) de l'invention. On entend par "sensibilité" la proportion de malades infectés, diagnostiqués selon l'art antérieur et donnés positifs par le diagnostic selon l'invention. 10 On entend par "spécificité" la proportion de donneurs de sang, testés comme témoins, soumis au diagnostic selon l'invention et donnés négatifs par le diagnostic selon l'invention. On entend par "kit de diagnostic" un ensemble 15 contenant au moins l'un des produits selon l'invention (polypeptide, polynucléotide, anticorps) et un diluant convenable, rassemblés dans un contenant approprié fait dans un matériau adapté. Ce contenant peut rassembler les différents moyens complémentaires nécessaires au test 20 sérologique (par exemple, des réactifs marqués, des tampons, des solutions qui contiennent des ionsadaptés, etc...) ainsi que les instructions requises pour réaliser le test. Comme indiqué plus haut, l'invention a pour objet 25 l'utilisation dans le domaine du diagnostic in vitro d'infections à M. pneumoniae et/ou dans la production de vaccins contre M. pneumoniae, de polypeptides selon l'invention, de polynucléotides codant pour lesdits polypeptides, de vecteurs d'expression comprenant lesdits 30 polynucléotides, de cellules hôtes comprenant lesdits vecteurs d'expression et d'anticorps immunospécifiques des polypeptides selon l'invention. Utilisation de polypeptides L'identification du polypeptide selon l'invention est 35 le résultat d'un crible et d'études approfondies que les séquences issues des programmes de génomique de M. pneumoniae ne laissaient pas envisager. 2906889 15 La présente invention a ainsi pour objet l'utilisation d'un polypeptide isolé comprenant la séquence d'acides aminés ID SEQ N 2 (appelée protéine 7F4), codée par la séquence polynucléotidique ID SEQ N 1, pour 5 détecter, in vitro, dans des échantillons biologiques, la présence d'anticorps produits à la suite d'une infection à Mycoplasma pneumoniae. La présente invention vise également l'utilisation d'un polypeptide isolé comprenant : a) un fragment de la séquence d'acides aminés 10 ID SEQ N 2 ayant la même fonction que la séquence ID SEQ N 2, ou b) une séquence d'acides aminés ayant au moins 60% d'identité, de préférence au moins 80% d'identité, et mieux au moins 90% d'identité, avec la séquence d'acides aminés 15 ID SEQ N 2, ou avec le fragment de séquence défini sous a), et ayant la même fonction que la séquence ID SEQ N 2. La présente invention a également pour objet un procédé de préparation d'un polypeptide tel que défini ci-dessus, dans lequel une cellule hôte définie précédemment 20 est cultivée et ledit polypeptide est isolé du milieu de culture. Le polypeptide peut être purifié à partir des cellules hôtes, selon les méthodes bien connues de l'homme du métier telles que la précipitation à l'aide d'agents 25 chaotropiques comme les sels, en particulier le sulfate d'ammonium, l'éthanol, l'acétone ou l'acide trichloroacétique, ou de moyens tels que l'extraction à l'acide, la chromatographie échangeuse d'ions, la chromatographie sur phosphocellulose, la chromatographie 30 par interaction hydrophobe, la chromatographie d'affinité, la chromatographie sur hydroxylapatite ou les chromatographies d'exclusion. Utilisation de polynucléotides La présente invention a notamment pour objet 35 l'utilisation pour détecter, in vitro, dans des échantillons biologiques, la présence d'anticorps produits à la suite d'une infection à Mycoplasma pneumoniae, d'un 2906889 16 polynucléotide isolé comprenant la séquence polynucléotidique ID SEQ N 1, codant pour le polypeptide comprenant la séquence d'acides aminés ID SEQ N 2. L'invention vise également l'utilisation d'un 5 polynucléotide isolé comprenant : a) un fragment de la séquence ID SEQ N 1 ayant la même fonction que la séquence ID SEQ N 1, ou b) une séquence polynucléotidique ayant au moins 60% d'identité, de préférence au moins 80% d'identité, et mieux 10 au moins 90% d'identité, avec la séquence polynucléotidique ID SEQ N 1, ou avec le fragment de séquence tel que défini sous a), et ayant la même fonction que la séquence ID SEQ N 1, ou c) une séquence polynucléotidique complémentaire à la 15 séquence polynucléotidique ID SEQ N 1 ou au fragment de séquence défini sous a) ou à la séquence définie sous b). Ainsi, des polynucléotides conformes à l'invention peuvent comprendre des variants ou des fragments de la séquence polynucléotidique ID SEQ N 1. 20 Les polynucléotides de l'invention peuvent être obtenus par les méthodes standard de synthèse d'ADN ou d'ARN. Les polynucléotides conformes à l'invention peuvent également comprendre des séquences polynucléotidiques comme 25 les séquences 5' et/ou 3' non-codantes, telles que, par exemple, des séquences transcrites, des séquences non-traduites, des séquences signal d'épissage, des séquences polyadénylées, des séquences de liaison avec des ribosomes ou encore des séquences qui stabilisent l'ARNm. 30 Utilisation de vecteurs d'expression et de cellules hôtes La présente invention a aussi pour objet l'utilisation du polypeptide selon l'invention préparé par culture d'une cellule hôte comprenant un vecteur 35 recombinant ayant, inséré, un polynucléotide codant pour ledit polypeptide conforme à l'invention. 2906889 17 De nombreux systèmes d'expression peuvent être utilisés comme, par exemple, les chromosomes, les épisomes, les virus dérivés. Plus particulièrement, les vecteurs recombinants utilisés peuvent être dérivés de plasmides 5 bactériens, de transposons, d'épisome de levure, d'éléments d'insertion, d'éléments chromosomiques de levures, de virus tels que les baculovirus, les papillonna virus comme SV40, les vaccinia virus, les adénovirus, les fox pox virus, les pseudorabies virus, les rétrovirus. 10 Ces vecteurs recombinants peuvent également être des dérivés de cosmides ou de phagemides. La séquence polynucléotidique peut être insérée dans le vecteur recombinant d'expression par les méthodes bien connues de l'homme du métier. 15 Le vecteur recombinant peut comprendre des séquences polynucléotidiques de contrôle de la régulation de l'expression du polynucléotide ainsi que des séquences polynucléotidiques permettant l'expression et la transcription d'un polynucléotide de l'invention et la 20 traduction d'un polypeptide de l'invention, ces séquences étant choisies en fonction des cellules hôtes mises en oeuvre. L'introduction du vecteur recombinant dans une cellule hôte peut être effectuée selon les méthodes bien 25 connues de l'homme du métier telles que la transfection par phosphate de calcium, la transfection par lipides cationiques, l'électroporation, la transduction ou l'infection. Les cellules hôtes peuvent être, par exemple, des 30 cellules bactériennes telles que des cellules de streptocoques, de staphylocoques, d'Escherichia coli ou de Bacillus subtilis, des cellules de champignons telles que des cellules de levure et des cellules d'Aspergillus, des cellules de Streptomyces, des cellules d'insectes telles 35 que des cellules de Drosophilia S2 et de Spodoptera Sf9, des cellules animales, telles que les cellules CHO, COS, HeLa, C127, BHK, HEK 293 ou encore des cellules végétales. 2906889 18 Le polypeptide peut être purifié à partir des cellules hôtes, selon les méthodes bien connues de l'homme du métier, telles que la précipitation à l'aide d'agents chaotropiques comme les sels, en particulier le sulfate 5 d'ammonium, l'éthanol, l'acétine ou l'acide trichloroacétique, ou de moyens tels que l'extraction à l'acide, la chromatographie échangeuse d'ions, la chromatographie sur phosphocellulose, la chromatographie par interaction hydrophobe, la chromatographie d'affinité, 10 la chromatographie sur hydroxylapatite ou les chromatographies d'exclusion. Utilisation des anticorps selon l'invention L'invention vise également l'utilisation d'anticorps, selon l'invention, pour détecter, in vitro, dans des 15 échantillons biologiques la présence d'antigènes issus d'une infection à M. pneumoniae. L'invention vise, en outre, l'utilisation d'anticorps selon l'invention, pour détecter, périodiquement, in vitro, les antigènes de M. pneumoniae et ainsi suivre l'évolution 20 de la pathologie et de l'effet d'un traitement appliqué à un patient. Les anticorps immunospécifiques peuvent être obtenus par administration d'un polypeptide selon l'invention, d'un de ses fragments, d'un analogue ou d'un fragment épitopique 25 ou d'une cellule exprimant ce polypeptide, à un mammifère, de préférence non humain, selon les méthodes bien connues de l'homme du métier. Pour la préparation d'anticorps monoclonaux, on peut utiliser des méthodes usuelles de production d'anticorps, à 30 partir de lignées cellulaires, telles que la technique des hybridomes, la technique des triomes, la technique des hybridomes de cellules B humaines et la technique des hybridomes EBV. Sérologie 35 Les échantillons biologiques testés peuvent être du sang, de l'urine, de la salive, du liquide de ponction de sérologie (par exemple liquide céphalo-rachidien, liquide 2906889 19 pleural ou liquide articulaire) ou l'un de leurs constituants (par exemple, le sérum). Les vaccins La présente invention concerne également une 5 composition pharmaceutique, utilisable comme vaccin, renfermant à titre de principe actif au moins un des polypeptide, polynucléotide, vecteur recombinant ou cellule hôte selon l'invention, et un excipient pharmaceutiquement acceptable (par exemple, une solution stérile aqueuse ou 10 non, pouvant contenir un antioxydant ou un tampon ou un soluté rendant la composition isotonique pour les fluides corporels). Les kits L'invention a également pour objet des kits de 15 diagnostic in vitro comprenant, d'une part : . au moins l'un des polypeptides conformes à l'invention, ou • au moins l'un des polynucléotides codant pour lesdits polypeptides, ou 20 • au moins l'un des anticorps conformes à l'invention, et, d'autre part, au moins un diluant (par exemple, un tampon, une solution saline...) et une notice d'instructions d'utilisation. 2906889 20 Partie expérimentale A) Protocole d'obtention des antigènes A.l) Clonage de la séquence codant pour le 5 polypeptide ID SEQ N 2 Le gène codant pour la séquence du polypeptide 7F4 selon l'invention, qui est antigénique, est obtenu par amplification par PCR à partir de l'ADN génomique de la bactérie M. pneumoniae (souche M129-B7, ATCC 29342) en 10 utilisant comme couple d'amorce : l'oligonucléotide sens contenant la séquence : 5'-AAAAAGGAAAACATTACATACG -3' ; et l'oligonucléotide antisens contenant la séquence : 5'-TTTCTCCTCAACAGTAG-3'. 15 Le fragment correspondant, ainsi amplifié, est cloné dans un vecteur selon les techniques classiques bien connues de l'homme du métier. Ce vecteur permet la production de la protéine clonée sous contrôle d'un promoteur inductible par l'isopropyl-thiogalactoside (en 20 abrégé, IPTG). La protéine clonée correspond à la séquence d'acides aminés ID SEQ N 2. A.2) Expression de la protéine Une souche d'Escherichia coli est transformée par le vecteur d'expression précédemment décrit. Les bactéries 25 sélectionnées sont mises en culture une nuit à 30 C sous agitation dans 50 ml de milieu Luria Bertani (LB, J.Miller, A short course in Bacteria Genetics , Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1992) contenant de l'ampicilline et du chloramphénicol tous deux à une concentration finale de 100 pg/ml. Le lendemain, la culture 30 est diluée au 1/50ème dans un volume final de 1 litre de milieu LB auquel on a ajouté ampicilline et chloramphénicol tous deux à une concentration finale de 100 pg/ml et incubée à 30 C sous agitation. Lorsque la turbidité de la culture atteint une valeur d'absorbance à 600 nm (en 35 abrégé, A600) d'environ 0,7, la production de la protéine est induite par l'isopropyl-thiogalactoside (IPTG) à une concentration finale de 0,5 mM. Les bactéries sont 2906889 21 récoltées par centrifugation (6 minutes à 5240 rpm à 4 C) lorsque la turbidité de la culture atteint une A600 d'environ 1,5. A.3) Purification 5 Après centrifugation, les cellules sont remises en suspension dans un tampon Tris-HC1 20 mM pH 8 contenant du sucrose à 0,5 mM, puis traitées avec du lysozyme (0,1 g/50 ml) en présence d'acide éthylènediaminotétraacétique (EDTA) 250 mM. La suspension 10 est incubée 30 minutes à 4 C puis centrifugée 10 minutes à 4 C à 15500x g. Le culot est congelé à -20 C pendant au moins une nuit. Après décongélation, les bactéries sont reprises dans un tampon Mes [acide 2-(N-morpholino)éthane sulfonique] 15 25 mM à pH 6,0, puis soniquées 4 fois 20 secondes dans la glace. Après centrifugation à 15500 g à 4 C pendant 30 minutes, les culots sont repris dans 10 ml de tampon Mes 25 mM à pH 6,0, urée 8 M, (3 mercaptoéthanol 20 mM). Puis la suspension est centrifugée 20 minutes à 14 000 rpm à 20 température ambiante (TA). Le surnageant est à nouveau centrifugé 30 minutes à TA à 14000 rpm, puis filtré sur membrane de porosité 0,22 pm. Le filtrat est alors déposé sur une colonne échangeuse de cations (par exemple, SPSépharose 12 ml, Amersham Biosciences). Après lavage de la 25 colonne, la protéine est éluée par un gradient linéaire de 0 à 1 M de NaCl dans du tampon Mes 25 mM à pH 6,0, urée 8 M, p mercaptoéthanol 20 mM en 20 volumes de colonne. Les fractions contenant la protéine sont rassemblées, dialysées sur la nuit contre du tampon Mes 25 mM à pH 6,0, urée 8 M, 30 (3 mercaptoéthanol 20 mM puis redéposé sur cette même colonne. La protéine est ensuite éluée par un nouveau gradient de NaCl optimisé pour la protéine 7F4. Les fractions choisies contenant la protéine sont rassemblées puis dialysées sur la nuit contre du tampon Na2HPO4/NaH2PO4 35 50 mM pH 8,0 contenant du NaCl 100 mM puis déposées sur une colonne de gel de filtration (par exemple, Superdex HR75-10/30, Amersham). Les fractions éluées contenant la 2906889 22 protéine sont rassemblées et conservées à température ambiante jusqu'à leur utilisation dans les tests. Les concentrations protéiques sont déterminées à partir des coefficients d'absorption molaire calculés par 5 la méthode de Pace (Pace CN, Vajdos F., Fee L., Grismley G. et Gray T., (1995), Protein Science 4, 2411-2423) . La pureté des protéines est vérifiée par analyse par électrophorèse SDS-PAGE. B) Test de diagnostic in vitro Il a été utilisé des sérums provenant de patients 10 enfants et adultes ayant eu une infection documentée à M. pneumoniae (collection du laboratoire ; c'est-à-dire titre IgM et/ou IgG et/ ou RFC positifs et/ou PCR positif et /ou culture positive). Les sérums témoins correspondent à des sérums de 15 donneurs de sang (collection du laboratoire). La fixation, sur la protéine recombinante purifiée 7F4 (obtenue comme décrit précédemment), des anticorps présents dans les sérums a été évaluée soit par des tests en Western Blot soit par la technique ELISA. 20 Exemple B.1 : Protocole de test pour les polypeptides selon l'invention en Western Blot Après transfert sur une membrane de nitrocellulose de la protéine purifiée 7F4, la membrane est saturée pendant 45 minutes à l'aide d'une solution de tampon salin 25 phosphate (PBS) contenant 3% de lait demi-écrémé. Après trois lavages par du PBS contenant du polyoxyéthylène sorbitan (Tween) à 0,05%, la membrane est mise en présence du sérum testé à la dilution adéquate (1/500) dans du tampon PBS contenant 3% de lait demi-écrémé pendant 30 45 minutes. Après trois nouveaux lavages, des anticorps anti-immunoglobulines G et A et M humaines de chèvre (par exemple 170 -1042, Biorad) marqués à la phosphatase alcaline sont ajoutés pendant une période de 45 minutes après avoir été dilués, selon le protocole du fournisseur, 35 dans du tampon PBS contenant 3% de lait demi-écrémé. Trois nouveaux lavages sont effectués puis du phosphate de 5-bromo-4-chloro-3-indolyle et du nitroblue tetrazolium sont 2906889 23 ajoutés selon les indications du fournisseur jusqu'à l'obtention du résultat. Un résultat " positif " correspond à la fixation de l'anticorps anti-immunoglobuline humaine à un complexe composé du polypeptide selon l'invention fixé à 5 la membrane et de l'anticorps sérique humain le reconnaissant spécifiquement, ce qui se traduit par une coloration localisée au niveau dudit complexe. Exemple B.2 : Protocole du test ELISA Les plaques ELISA sont laissées pendant une nuit à 10 température ambiante en présence de 0,5 pg d'antigène purifié (protéine 7F4 recombinante) dans du tampon salin phosphate (PBS) - urée 6 M. Après quatre lavages par du PBS contenant du polyoxyéthylène sorbitan (Tween) à 0,05%, les plaques sont saturées une heure et demie à 37 C par du PBS- 15 Tween contenant 4% d'albumine de sérum bovin (BSA) (250 pl par puits). Quatre nouveaux lavages sont réalisés puis 100 pl de chaque sérum à tester sont ajoutés à la dilution 1/100 dans du tampon PBS-BSA 4% dans chaque puits. La plaque est ensuite incubée à 37 C pendant 30 minutes. Après 20 quatre nouveaux lavages, des anticorps anti- immunoglobulines G et/ou A et/ ou M humaines marqués à la peroxydase (par exemple 31415, Pierce) sont ajoutés (simultanément et / ou indépendamment) pendant 30 minutes à 37 C après avoir été dilués, selon le protocole du 25 fournisseur, dans du tampon PBS-BSA 4%. Quatre nouveaux lavages sont réalisés puis 100 pl de substrat tétrabenzimidine (TMB) (par exemple HD979505, Pierce) sont ajoutés par puits. Après incubation pendant environ 15 minutes, 100 pl d'acide sulfurique est ajouté dans 30 chaque puits. L'absorbance à 450 nm de chaque puits est alors mesurée après 5 minutes. Sont considérés comme " positif " en ELISA, les sérums identifiés par leur liaison avec les polypeptides (antigènes) de l'invention. 2906889 24 C) Résultats et interprétations Un résultat type obtenu est présenté dans le tableau ci-après. Les sérums de patients (enfants et/ou adultes) 5 considérés comme positifs sont ceux contenant des anticorps dirigés contre M. pneumoniae, identifiés par ELISA par leur liaison avec les polypeptides (antigènes) de l'invention. Tableau de résultats (ELISA) obtenus chez des 10 patients adultes et/ou enfants, en utilisant des anti-IgM comme anticorps secondaires Nombre de sérums " positifs " parmi les 62 sérums de patients 32 (soit 51.6%) (enfants et adultes) infectés par M. pneumoniae diagnostiqués selon l'art antérieur et soumis au diagnostic selon l'invention Nombre de sérums " positifs " parmi les 34 sérums de patients 24 (soit 70,6%) enfants infectés par M. pneumoniae diagnostiqués selon l'art antérieur et soumis au diagnostic selon l'invention Nombre de sérums " positifs " 8 (soit 28,5%) parmi les 28 sérums de patients adultes infectés par M. pneumoniae diagnostiqués selon l'art antérieur et soumis au diagnostic selon l'invention Nombre de sérums " négatifs " 92 (soit 95,8%) parmi les 96 sérums de donneurs de sang témoins Des résultats significatifs peuvent également être 15 obtenus en utilisant des anticorps anti-IgA comme anticorps 2906889 25 secondaires. De même des résultats similaires peuvent être obtenus par Western Blot. D'après le tableau de résultats, on constate que, par le test ELISA, il est possible d'identifier in vitro au 5 moins 51,6 % des infections à M. pneumoniae quel que soit l'âge du patient, au moins 70,6% des infections à M. pneumoniae chez des patients enfants, et au moins 28,5% des infections à M. pneumoniae chez des patients adultes grâce à l'antigène selon l'invention. 10 Il est donc démontré, d'une part, l'existence chez l'homme d'une réponse anticorps significative (la probabilité associée à un test de x2 est inférieure à 0,05) vis-à-vis de la protéine 7F4 au cours des infections à M. pneumoniae et, d'autre part, que la protéine 7F4 est 15 pertinente pour le diagnostic sérologique de ce type d'infection, en particulier chez les enfants. REVENDICATIONS 1. Utilisation du polypeptide de séquence d'acides aminés ID SEQ N 2 pour détecter, in vitro, dans des échantillons biologiques, la présence d'anticorps produits à la suite d'une infection à Mycoplasma pneumoniae. 2. Utilisation pour détecter, in vitro, dans des échantillons biologiques, la présence d'anticorps produits à la suite d'une infection à Mycoplasma pneumoniae, d'un polypeptide comprenant : a) un fragment de la séquence d'acides aminés du polypeptide identifié dans la revendication 1 et ayant la même fonction que ledit polypeptide, ou b) une séquence d'acides aminés ayant au moins 60% d'identité avec la séquence d'acides aminés du polypeptide identifié dans la revendication 1 ou avec un fragment de séquence identifié sous a), et ayant la même fonction que ledit polypeptide. 3. Utilisation selon la revendication 1 ou 2, caractérisée en ce que le polypeptide est préparé par culture d'une cellule hôte comprenant un vecteur recombinant ayant, inséré, un polynucléotide codant pour ledit polypeptide et par isolement dudit polypeptide du milieu de culture. 4. Utilisation selon la revendication 3, quand elle 25 dépend de la revendication 1, caractérisée en ce que le polynucléotide est de séquence ID SEQ N 1. 5. Utilisation d'un polynucléotide de séquence ID SEQ N 1 pour détecter, in vitro, dans des échantillons biologiques, la présence d'anticorps produits à la suite d'une 30 infection à Mycoplasma pneumoniae. 6. Utilisation pour détecter, in vitro, dans des échantillons biologiques, la présence d'anticorps produits à la suite d'une infection à Mycoplasma pneumoniae, d'un polynucléotide comprenant 2906889 27 a) un fragment de la séquence du polynucléotide identifié dans la revendication 5 et ayant la même fonction que ledit polynucléotide, ou b) une séquence polynucléotidique ayant au moins 60% 5 d'identité avec la séquence du polynucléotide identifié dans la revendication 5 ou avec un fragment de séquence identifié sous a), et ayant la même fonction que ledit polynucléotide, ou c) une séquence polynucléotidique complémentaire à une 10 des séquences polynucléotidiques identifiées dans la revendication 5 ou sous les points a) ou b) ci-dessus. 7. Utilisation d'anticorps pour détecter, in vitro, dans des échantillons biologiques, la présence d'antigènes issus d'une infection à Mycoplasma pneumoniae, caractérisée en ce 15 que lesdits anticorps sont immunospécifiques pour un polypeptide identifié dans les revendications 1 à.2. 8. Kit de diagnostic pour détecter, in vitro, dans des échantillons biologiques, la présence d'anticorps produits à la suite d'une infection à Mycoplasma pneumoniae, caractérisé 20 en ce qu'il comprend au moins un polypeptide ou un polynucléotide codant pour ledit polypeptide, tel qu'identifié dans l'une quelconque des revendications 1 à 6, associé à au moins un diluant et à une notice d'utilisation. 9. Kit de diagnostic pour détecter, in vitro, dans des échantillons biologiques, la présence d'antigènes issus d'une infection à Mycoplasma pneumoniae, caractérisé en ce qu'il comprend au moins un anticorps, tel qu'identifié dans la revendication 7, associé à au moins un diluant et à une notice d'utilisation.