FR 2910003 A1 20080620 FR 0611005 A 20061218 1 Nouveaux peptides et polypeptides à stabilité améliorée utiles dans la régénération du système nerveux Domaine technique de l'invention La présente invention concerne de nouveaux composés peptidiques à stabilité améliorée dont la séquence dérive de l'un des domaines consensus conservés de la 10 SCO-spondine appelé répétition thrombospondine de type 1 ou TSR , ainsi que des compositions pharmaceutiques comprenant à titre de principe actif au moins l'un de ces nouveaux composés peptidiques. 15 Etat de la technique Les modulations d'adhésion des cellules entre elles ou des cellules au substrat, ainsi que les phénomènes d'attraction / répulsion, sont des mécanismes importants dans la migration des cellules, et particulièrement lors des étapes de croissance et de guidage 20 des axones pendant le développement du SNC (Tessier-Lavigne et Goodman, 1996; Varela-Echavarria et Guthrie, 1997). La fasciculation des neurites est une étape importante du développement puisqu'elle intervient dans le guidage correct des axones jusqu'à leur cible et sa modulation fait intervenir diverses molécules impliquées dans des phénomènes d'interaction cellule-cellule ou d'adhésion cellulaire comme les 25 molécules d'adhésion cellulaire des nerfs (N-CAMs), les N-cadhérines, les sémaphorines ou des molécules des matrices extracellulaires comme la laminine, la tenascine, les collagènes, la famille des thrombospondines, la fibronectine, la vitronectine, ou des protéoglycanes. Ces différentes molécules peuvent agir en tant qu'inducteurs ou en tant qu'inhibiteurs, le plus souvent par l'intermédiaire d'une 30 liaison ligand / récepteur. La glycoprotéine SCO-spondine est une protéine spécifique du système nerveux central (SNC) de tous les vertébrés. Elle est synthétisée naturellement par l'organe sous-commissural et fait partie de la fibre de Reissner présente dans le canal central de 35 la moelle épinière. La SCO-spondine fait partie de la superfamille des thrombospondines (voir S. Gobron et al., Journal of Cell Science, vol 109, p. 1053 û 2910003 2 1061 (1996) et J.C. Adams et al., Developmental Dynamics, vol. 218, p. 280 û 29 (2000)). Les thrombospondines sont produites par de nombreuses cellules saines. Elles comprennent trois chaînes de polypeptides reliées par deux ponts di-sulfide. La SCO-spondine possède des homologies avec des membres de cette superfamille des thrombospondines, dont certains sont aussi exprimés au niveau du SNC : les thrombospondines 1 et 2, certaines sémaphorines, les mindines ou la F-spondine par exemples (S. Gobron et al., Glia, vol 32, p. 177-191 (2000)). La séquence de toutes ces molécules comprend des motifs protéiques consensus appelés répétitions thrombospondine de type 1 (TSR). La SCO-spondine comprend environ 4500 acides aminés (4560 selon S. Gobron et al., Glia, vol 32, p. 177-191 (2000)), et sa structure montre un arrangement unique de plusieurs domaines conservés incluant vingt-six motifs TSR, neuf domaines de récepteurs de type A de lipoprotéines de faible densité (LDL-R), deux domaines de facteurs de croissance de l'épiderme (EGF), et, des domaines N-terminal et C-terminal du facteur von Willebrand (vWF) riches en cystéine qui sont tous des sites potentiels d'interactions protéine-protéine (S. Gobron et al., Glia, vol 32, p. 177-191 (2000)). La structure de la glycoprotéine SCO-spondine a été décrite par exemple par A. Meiniel (Microscopic Research and Technique, vol 52, p. 484-495 (2001)). Les thrombospondines sont des composants des matrices extracellulaires qui sont impliqués dans un grand nombre de processus physiologiques et qui présentent, d'une façon générale, des propriétés adhésives ou anti-adhésives in vitro, suggérant leur rôle sur le comportement des cellules in vivo. En effet, différentes parties de la molécule sont suspectées d'interagir avec d'autres molécules des matrices extracellulaires ainsi qu'avec différents récepteurs cellulaires modulant ainsi les contacts cellule-cellule (J. C. Adams et al., Molecular Biology Intelligence Unit û ed. R.G. Landes, Company - Springer Verlag, p. 1-188 (1995)). L'attachement direct de la thrombospondine-1 à différentes cellules de divers tissus tels que les cellules hématopoïetiques, les cellules neuronales, les cellules épithéliales, a également été montré ainsi que des modifications de son expression dans diverses pathologies, en particulier des cancers, et dans des processus de cicatrisation (Adams et al., 1995, cité ci-dessus, pour revue). De plus, différents types de neurones cultivés in vitro en présence de thrombospondine 2910003 3 1 ont montré des extensions neuritiques accrues, ce phénomène pouvant être lié à la présence d'une portion de la molécule comprenant des motifs protéiques particuliers appelés répétitions thrombospondine de type 1 ou TSR (K. O'Shea et al., Neuron, vol. 7 p. 231-237 (1991)). 5 En fait, la thrombospondine comporte entre autres trois de ces motifs TSR. La fonction de chacun d'entre eux a été bien étudiée (pour revue voir : H. Chen et al. Matrix Biology, vol. 19 p. 597û614 (2000)) et la cristallisation de ces motifs TSR a apporté des éclairages supplémentaires (K. Tan The Journal of Cell Biology, vol. 159 (2), 373û382 (2002)). Par exemple, il a été montré que des peptides provenant de trois 10 motifs TSR se lient à des composés glycoconjugués sulfatés incluant l'héparine ou la sulfatide (US 5 357 041) et se sont révélés utiles dans des compositions pharmaceutiques pour lier des composés glycoconjugués. Les motifs TSR sont des domaines protéiques d'environ 55 résidus, basés sur 15 l'alignement d'acides aminés conservés cystéine, tryptophane et arginine. Ces motifs ont tout d'abord été isolés dans la thrombospondine 1 qui est une molécule intervenant dans la coagulation, puis ont ensuite été décrits dans de nombreuses autres molécules aux fonctions biologiques diverses telles que l'attachement cellulaire, la mobilité, la prolifération, l'agrégation cellulaire, la modulation de protéases ou 20 l'inhibition de l'angiogénèse (Adams et al., 1995, pour revue). Ainsi, ces motifs ont été observés dans : la F-spondine, molécule sécrétée pendant le développement embryonnaire par les cellules de la lame basale du tube nerveux, ou "floor plate" (A. Klar et al., Cell, vol. 69, p. 95-110 1992), et impliquée dans des phénomènes d'adhésion 25 cellulaire et de pousse neuritique par l'intermédiaire de différentes régions de la protéine (Y. Feinstein et A. Klar, The International Journal of Biochemistry & Cell Biology, vol. 36 p. 975û980 2004, D. Schubert, A. Klar et al., Journal of Neurochemistry, vol. 96, p. 444-453 2006, pour revue); les sémaphorines F et G, membres d'une famille de protéines sécrétées dans le 30 milieu extracellulaire et membranaires, impliquées dans des phénomènes de guidage des axones, mais dont la fonction exacte n'est pas bien connue (A. Varela-Echavarria et S. Guthrie, Gene & Development, vol. 11 p. 545-557 1997, pour revue). 2910003 4 Ces motifs protéiques ont également été identifiés dans d'autres molécules exprimées en dehors du SNC, telles que la properdine, qui est une protéine de liaison du système du complément et qui possède six TSRs (D. Goundis et K. Reid, Nature, vol. 335 p. 82-85 1988). 5 Ces motifs TRS sont retrouvés dans différents organismes. Par exemple, dans la protéine CS, protéine exprimée par le plasmodium, sporozoïte vecteur de la malaria (K. Robson et al., Nature, vol. 335 p. 79-82 1988 ), il a été montré que la présence de ce motif TSR joue un rôle primordial dans l'étape de liaison du sporozoïte à la cellule hôte (Tewari R. et al., The Journal of Biological Chemistry, 10 vol. 277, p. 47613-47618, 2002). Aussi, dans une molécule intervenant dans la croissance axonale chez le nématode C. elegans, appelée Unc-5 (E. Hedgecock et al., Neuron, vol. 2, p. 61-85 (1990)), et pour laquelle la mutation de son gène conduit à des défauts dans le guidage des axones chez C.elegans (C. Leung-Hagesteijn et al., Cell, vol. 71, p. 289-299 1992). 15 Par ailleurs, il a été montré que la thrombospondine est particulièrement abondante dans les faisceaux de fibres en développement et dans les régions de croissance des axones, suggérant ainsi un rôle dans l'établissement d'un environnement favorable permettant la croissance des axones (K. S. O'Shea et V. M. Dixit, The Journal of Cell Biology, vol. 107 p. 2737-2748 (1988)). 20 Dans la thrombospondine, d'une façon générale, il a été montré que les motifs TSR peuvent être impliqués dans les mécanismes de modulation de l'adhésivité cellulaire ; ce phénomène peut jouer un rôle lors de la pousse neuritique et du guidage axonal. En ce qui concerne l'effet de la thrombospondine 1 sur l'induction des extensions 25 neuritiques, l'intervention de récepteurs spécifiques présents à la surface des cellules nerveuses a été suggérée. Ainsi, des anticorps dirigés spécifiquement contre l'intégrine a3(31 ont permis d'inhiber la croissance neuritique de neurones sympathiques cultivés sur la thrombospondine-1 (M. De Freitas et al., Neuron, vol. 15 p. 333-343 (1995)). 30 On sait que d'une manière générale certains fragments peptidiques de la thrombospondine, ainsi que certains peptides synthétiques dont la structure est analogue à celle de ces fragments peptidiques, montrent une activité biologique similaire à celle de la trombospondine. A titre d'exemples, les brevets US 6,239,110 2910003 5 (W.R. Grace & Co. û Conn. et Medical College of PA), US 5,840,692 (Allegheny University of the Health Sciences et W.R. Grace, Co. û Conn.), US 5,849,701 (The United States of America), US 5,491,130 et US 6,051,549 (The United States of America), US 5,190,918 et US 5,200,397 (W.R. Grace & Co. û Conn. et The Medical 5 College of Pennsylvania), et US 6,384,189 décrivent la structure et les effets biologiques de plusieurs de ces fragments peptidiques déduits de la thrombospondine et de ses analogues synthétiques. Mais on sait aussi que des peptides déduits spécifiquement de la SCO-spondine présentent une activité biologique sur les cellules nerveuses (demande de brevet WO 10 99/03890), et que la SCO-spondine agit sur les cellules par l'intermédiaire d'un récepteur cellulaire spécifique qui diffère de ceux décrits précédemment pour la thrombospondine (M. Bamdad et el., Cell & Tissue Research, vol. 315, 15-25 (2004)). Les caractéristiques détaillées de ces motifs TSR sont maintenant bien connues. 15 Ainsi, des propriétés de liaison cellulaire, de liaison à l'héparine, à la fibronectine ou au facteur de croissance transformant 13 (TGF(3) ont été rapportées pour certaines séquences spécifiquement présentes à l'intérieur du domaine TSR (Adams et al., 1995, pour revue). Les propriétés d'adhésion conférées par la séquence peptidique V-T-C-G (SEQ ID 20 N 11) ont également été montrées dans le cas de la protéine CS du plasmodium (K. Rich et al., Science, vol. 249 p. 1574-1577 1990), ou ses variantes, V-S-C-G (SEQ ID N 12) et A-T-C-G (SEQ ID N 13), dans la fonction biologique de la properdine (C. Prater et al., The Journal of Cell Biology, vol. 112 p. 1031-1040 1991). La séquence V-T-C-G (SEQ ID N 11) de la thrombospondine peut se lier au récepteur 25 CD 36 ou gpIV des plaquettes. La séquence R-G-D-A (SEQ ID N 14) peut se lier à l'intégrine aVli3 et le domaine carboxy terminal peut se lier au récepteur hétérodimérique 105/80 kDa. La séquence B-B-X-B (SEQ ID N 15) (où B est un acide-aminé basique et X n'importe quel acide aminé) peut se lier aux protéoglycanes (W. A. Frazier, Current 30 Opinion in Cell Biology, vol. 3, P. 792-799 1991, Adams et al., (1995)). On sait que les motifs W-S-X-W (SEQ ID N 16) C-S-X-X-C-G (SEQ ID N 17) ou V-T-C-G (SEQ ID N 11) ont chacun des activités biologiques distinctes. 2910003 6 Le motif W-S-X-W (SEQ ID N 16) a été montré comme capable de lier l'héparine et des protéoglycanes permettant ainsi un effet biologique variable suivant le type de cellules. Ce motif a également été montré comme intervenant dans le processus 5 d'activation du TGF(3 par la thrombospindine-1. Bien que cette activité ait été attribuée à une région située en amont de ce motif dans le domaine TSR, la présence de ce motif W-S-X-W (SEQ ID N 16) semble nécessaire, mais non suffisant à lui seul pour cette activation de la cytokine, qui pourra alors intervenir dans différents événements biologiques tels que l'inflammation, l'angiogénèse ou le développement 10 embryonnaire (G. D. Young et J. E. Murphy-Ullrich, The Journal of Biological Chemistry, vol. 279, p. 47633û47642 (2004)). Cette propriété de W-S-X-W (SEQ ID N 16) à avoir une affinité pour l'héparine ou les protéoglycanes semble également intervenir dans les propriétés anti-angiogéniques de la thrombospondine-1, puisque ce motif semble agir comme compétiteur de certains facteurs de croissance pro- 15 angiogéniques lors de leur liaison aux protéoglycanes présents à la surface des cellules endothéliales (T. Vogel et al., The Journal of Cellular Biochemistry, vol. 53 p. 74-84 (1993 )). En effet, une des activités des thrombospondines particulièrement étudiée est sa capacité à inhiber la néovascularisation. Différentes études ont cherché à identifier la région de la molécule qui était responsable de cette activité (pour revue voir M.L. 20 Iruela-Arispe, The International Journal of Biochemistry & Cell Biology, vol 36 p.1070-1078 (2004)). A titre d'exemple, on peut citer S.S. Tolsma et al. (The Journal of Cell Biology, vol. 122 p.497-511 (1993)) qui ont montré que l'activité antiangiogénique de la thrombospondine-1 était localisée dans deux régions distinctes. Ainsi, l'activité de la 25 molécule pouvait être reproduite in vitro et in vivo avec différents peptides synthétiques, dont en particulier deux séquences déduites du domaine TSR et qui présentent en position centrale le motif C-S-V-T-C-G (SEQ ID N 19). Des études ultérieures ont toutefois précisé que cette activité d'inhibition de la néovascularisation par la thrombospondine-1 pouvait se dérouler selon deux 30 mécanismes différents qui faisaient intervenir deux régions différentes du TSR : une région renfermant le motif W-S-X-W (SEQ ID N 16), et une autre région renfermant le motif C-S-V-T-C-G (SEQ ID N 19) (M.L. Iruela-Arispe, Circulation, vol. 100 p.1423-31 (1999)). 2910003 7 On sait également que dans le cas de peptides comportant le motif W-S-X-W (SEQ ID N 16), la constitution exacte de l'acide aminé variant (X) ou des acides aminés additionnels situés en amont ou en aval de ce motif est importante pour l'activité du 5 peptide. C'est le cas en particulier de l'efficacité de la liaison à l'héparine et de l'induction de l'adhésion cellulaire qui se sont trouvées augmentées pour un pentapeptide où X était la proline (P) ou des peptides plus grands comportant des acides aminés basiques autour du motif W-S-X-W (SEQ ID N 16) (N.H. Guo, The Journal of Biological Chemistry, vol. 267 p.19349-55 (1992)). 10 C'est le cas également de la liaison à la fibronectine qui est plus importante pour les peptides comportant deux résidus glycine (G) en amont du motif W-S-H-W (SEQ ID N 20) (J.M. Sipes, The Journal of Cell Biology, vol. 121 p.469-477 (1993)). Ainsi, les capacités des domaines TSR à intervenir sur les phénomènes d'adhésion cellulaire seraient essentiellement dues à la présence du motif W-S-X-W (SEQ ID 15 N 16) et non à C-S-X-X-C-G (SEQ ID N 17). Néanmoins, des résultats ont été obtenus concernant l'implication de ce dernier motif, C-S-X-X-C-G (SEQ ID N 17), dans la liaison des TSR aux cellules. Ainsi, Tuszynski et al. ont confirmé des travaux antérieurs, en montrant que C-S-V-T-C-G (SEQ ID N 19) et des dérivés étaient importants pour l'interaction dans des phénomènes 20 d'adhésion cellulaire (The Journal of Cell Biology, vol. 116 p.209-217 (1992)), alors que Gantt et al. ont montré que des acides aminés basiques situés en aval du motif CS-V-T-C-G (SEQ ID N 19), un variant de C-S-X-X-C-G (SEQ ID N 17) étaient nécessaires à la liaison directe du domaine TSR aux cellules (S.M. Gantt, The Journal of Biological Chemistry, vol. 272 p. 19205û19213 (1997)). Il est à noter que ces 25 derniers auteurs suggèrent également que le processus d'adhésion des molécules de thrombospondine par les domaines TSR se déroulerait en plusieurs étapes dont : - la première consisterait en une liaison de W-S-X-W (SEQ ID N 16) aux protéoglycanes présents à la surface cellulaire, et une deuxième consisterait en la reconnaissance par C-S-X-X-C-G (SEQ ID 30 N 17) d'un récepteur cellulaire spécifique. De plus, dans d'autres systèmes cellulaires : 2910003 8 le peptide W-S-P-W-S (SEQ ID N 18) peut influencer la croissance neuritique de neurones embryonnaires de rat in vitro (D. Osterhout et al., Annual Meeting - Washington (1993)), le peptide C-S-V-T-C-G (SEQ ID N 19) a clairement été montré comme 5 responsable du phénomène de liaison cellulaire de la protéine CS du plasmodium aux cellules hématopoïetiques (K.A. Rich, Science, vol. 249 p.1574-1577 (1990)), la région de la molécule comportant ce motif ayant même était considérée comme ayant un rôle critique dans l'infectivité du plasmodium in vivo (K. Tewari, The Journal of Biological Chemistry, vol. 10 27'7p. 47613û47618 (2002)). On peut en déduire que la présence du motif C-SX-X-C-G (SEQ ID N 17) serait bien nécessaire à la fixation et à l'activité du domaine TSR qui en découle. On sait également que toutes les activités biologiques des thrombospondines, et de la 15 thrombospondine 1 en particulier, ne sont pas seulement dues à la présence de ces domaines TSR puisque d'autres régions, et en particulier la région carboxy-terminale de cette protéine, comportent des motifs de nature différente, qui sont également impliquées dans les différents phénomènes d'adhésion, migration ou prolifération cellulaire (voir pour revue J. C. Adams, The International Journal of Biochemistry & 20 Cell Biology, vol. 36 p. 1102û1114 (2004)). Il en va de même pour les autres molécules comportant les motifs TSR pour lesquelles les activités ont finalement été reliées à d'autres domaines fonctionnels différents des TSR. Ainsi, par exemple, la F-spondine a tout d'abord montré des capacités à induire la croissance neuritique in vitro, capacités qui ont été suggérées par la caractérisation de motifs TSR dans sa 25 séquence (Klar et al 1992). Toutefois, des expérimentations ultérieures ont montré que des anticorps dirigés spécifiquement contre des domaines TSRs de la F-spondine ne bloquaient pas l'activité d'induction de la pousse neuritique observée lorsque des neurones sont cultivés en présence de F-spondine, alors que des anticorps dirigés contre un autre domaine de cette molécule et appelé spondine étaient quant à eux 30 bloquants (T. Burstyn-Cohen et al., The Journal of Neuroscience, vol. 18 p.8875û8885 (1998)), suggérant ainsi que la présence de ces motifs TSRs dans une molécule ne signifiait pas forcément une activité d'induction de pousse neuritique. 2910003 9 C'est le cas également d'Unc-5, pour laquelle le rôle exact des domaines TSRs n'est pas clairement établi, bien qu'ils apparaissent importants pour la fonction de la protéine native in vitro et in vivo (R.P. Kruger, The Journal of Neuroscience, vol. 24 p.10826 -10834 (2004)). Les motifs TSR étant très nombreux dans la séquence de la SCO-spondine, l'activité biologique d'un peptide de synthèse dont la séquence en acides aminés : W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-C-G (SEQ ID N 1), 10 correspond à la séquence la plus représentative d'un motif TSR de la SCO-spondine, a été testée sur des modèles de cultures de cellules nerveuses, à savoir des cellules B 104, issues d'un neuroblastome de rat. Les résultats obtenus montrent que le peptide W-SG-W-S-S-C-S-R-S-C-G (SEQ ID N 1) entraîne une différenciation cellulaire : il induit 15 la pousse neuritique et l'agrégation cellulaire (voir H. Monnerie et al., Cell Tissue Res., vol. 293, p. 407 û 418 (1998) ; voir F. El-Bitar et al., Cell Tissue Res., vol. 304, p. 361-369 (2001) ; voir la demande de brevet WO 99/03890 (Université d'Auvergne) et notamment la séquence SEQ ID N 8 de ce document). 20 En particulier, il a été démontré par Gobron et al. (Glia, vol. 32, p. 177-191 (2000)) que pour le modèle choisi, l'effet du peptide W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-C-G (SEQ ID N 1) sur la pousse neuritique est dépendant de la dose de peptide utilisée. Dans ces expériences, les cellules de la lignée B104 ont été ensemencées dans des puits de culture, puis mises en contact avec le peptide W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-C-G (SEQ ID 25 N 1) dans une gamme croissante de concentrations de peptide. Après 18 heures de culture, en l'absence de sérum, les cellules ont commencé à esquisser un ou deux prolongements neuronaux, et ceci indépendamment de la présence ou de l'absence de peptide. Après trois jours de culture, des pousses neuritiques importantes ont été observées 30 chez les cellules traitées par le peptide W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-C-G (SEQ ID N 1), alors que dans les cultures témoins (sans peptide), les cellules ne présentaient pratiquement pas d'excroissance neuritique. 5 2910003 10 Les auteurs ont constaté que cette réponse des cellules B 104 était proportionnelle à la concentration de peptide ajoutée au milieu. En effet, le nombre de neurites et la taille du neurite le plus long par cellule augmentait progressivement en suivant les concentrations croissantes de peptide. 5 L'observation morphologique de la pousse neuritique et de l'agrégation cellulaire décrite par F. El-Bitar et al. (Cell and Tissue Research vol. 304, 361-369 (2001)) a montré que le peptide W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-C-G (SEQ ID N 1) induit une augmentation : 10 - du nombre de neurites, ainsi que de la taille du neurite le plus long, tandis que dans les cultures témoins, aucun changement cellulaire n'a été observé. En effet, durant les premières vingt-quatre heures, les cellules B 104 sont restées étalées dans les cultures traitées et témoins. 15 Dans les puits traités avec le peptide W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-C-G (SEQ ID N 1), les auteurs ont remarqué, au bout de 2 jours de culture, que les cellules présentaient d'importantes extensions neuritiques. Ces extensions étaient encore plus marquées au 3ième jour de culture. Alors que dans les cultures témoins, les cellules ne montraient que peu de modifications morphologiques. 20 A partir de 3 ou 4 jours de culture en présence du peptide W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-CG (SEQ ID N 1), les auteurs ont pu observer l'apparition de regroupements de ces cellules B 104 différenciées, et il n'était plus possible de distinguer les neurites propres à chaque cellule. Puis, ces regroupements cellulaires se sont accentués à 5 jours de culture, et donnaient naissance à de petits amas denses, reliés entre eux par 25 des faisceaux neuritiques, après le 61ème jour de culture. Dans les cultures témoins, aucun regroupement cellulaire n'est apparu, les cellules constituant un tapis cellulaire homogène au fond des puits. Il apparaît donc que le peptide W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-C-G (SED ID N 1) présente des activités biologiques intéressantes sur les cellules du système nerveux, ce qui en 30 fait un bon candidat-médicament pour le traitement de certaines pathologies du système nerveux. Il a été montré que le peptide W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-C-G (SEQ ID N 1) agissait par l'intermédiaire d'un récepteur spécifique présent à la surface des cellules, celui-ci 2910003 11 activant une cascade intracellulaire aboutissant à des modifications morphologiques, dont en particulier l'induction de la pousse neuritique. Cette cascade fait intervenir, en fonction du temps, une cinétique de différents partenaires moléculaires successifs (tels que phosphorylases, constituants des microfilaments) aboutissant finalement à la 5 formation des extensions nerveuses. Cet effet du peptide W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-C-G (SEQ ID N 1) a également été montré comme dépendant de la dose employée : une dose optimale pouvant être caractérisée selon le système cellulaire (cellules nerveuses primaires ou cellules issues de lignées) utilisé. Toutefois, il est apparu qu'une optimisation de l'effet de ce peptide 10 pouvait être obtenue lorsque celui-ci était délivré régulièrement à la cellule cible. Ainsi, il est apparu que lorsque ce peptide est ajouté quotidiennement au milieu de culture de cellules nerveuses à sa dose optimale, l'effet observé était accentué. Cependant, le présent inventeur a trouvé que la stabilité du peptide W-S-G-W-S-S-C- 15 S-R-S-C-G (SEQ ID N 1), constitué de 12 acides aminés naturels, diminue en solution aqueuse avec le temps. Il est donc possible que le peptide devra être préparé extemporanément aux traitements. Dans certaines situations, cela pourrait compliquer l'administration du médicament aux patients, et d'une manière générale, présenter un certain inconvénient pour le 20 développement de concepts thérapeutiques basés sur ce peptide. La présente invention vise à améliorer la stabilité du peptide W-S-G-W-S-S-C-S-R-SC-G (SEQ ID N 1) en solution aqueuse. 25 Description des figures La figure 1 montre la pureté des peptides en % déterminée par HPLC après une durée de stockage déterminée à 22 C. 30 La figure 2 montre un résultat comparatif de l'activité biologique de trois peptides : Peptide A =le peptide de séquence SEQ ID N 2 qui se présente sous la forme : W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-NH2; Peptide TSR n 1 = le peptide de séquence SEQ ID N 1 qui se présente sous la forme : W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-C-G-OH; 2910003 12 Peptide TSR n 2 = le peptide de séquence SEQ ID N 1 qui se présente sous la forme : W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-C-G-NH2. Les concentrations de peptide sont exprimées pour un volume total de 200 L par puits. Le Témoin étant une culture de cellules en milieu dépourvu de sérum. 5 La figure 3 montre un résultat comparatif du nombre de sprouting par cellule après 3 jours de culture. La figure 4 montre un résultat comparatif du nombre de neurites par cellule après 3 jours de culture. La figure 5 montre la longueur de la pousse neuritique après 3 jours. 10 Dans les figures 3, 4 et 5, les concentrations de peptide sont exprimées pour un volume total de 200 L par puits. Le témoin représente une culture de cellules en milieu dépourvu de sérum. Objet de l'invention Un premier objet de la présente invention est un composé peptidique contenant au moins la séquence en acides aminés suivante : X2-G-W-S-S-Xl-S-X3 (SEQ ID N 10) dans lequel : Xl est C ou Abu ; X2 est W-S ou W-Abu ou L-Na12-S ; X3 est R-S, R-Abu ou K-(iPr)-S ; à l'exception du composé peptidique contenant la séquence : W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-C-G (SEQ ID N 1). Un second objet de l'invention est une composition pharmaceutique comprenant à titre de principe actif au moins un des composés peptidiques indiqués ci-dessus comme premier objet. Un troisième objet de l'invention est l'utilisation des composé peptidiques indiqués ci-dessus comme premier objet dans la régénération des cellules du système nerveux, ou pour la réalisation de médicaments, lesdits médicaments étant destinés au traitement 15 20 25 30 2910003 13 des maladies neurodégénératives et / ou à la régénération de la moelle épinière ou des nerfs périphériques après traumatismes. Un quatrième objet de l'invention est un additif pour les cultures cellulaires de cellules 5 nerveuses, caractérisé en ce qu'il comporte au moins un des composés peptidiques indiqués ci-dessus comme premier objet. Cet additif peut être utilisé dans un support pour la culture de cellules nerveuses, qui constitue le cinquième objet de l'invention. Le vecteur d'expression cellulaire qui comporte une séquence d'acide nucléique capable d'exprimer l'un des composés peptidiques indiqués ci-dessus comme premier objet constitue un sixième objet de la présente invention. 15 Description de l'invention 1. Définitions 20 Dans le cadre de la présente invention, nous entendons par acide aminé : les acides aminés naturels et les acidesaminés non naturels. Les acides aminés naturels comprennent la forme L des acides aminés qui peuvent être trouvés dans des protéines d'origine naturelle, c'est-à-dire : alanine (A), arginine 25 (R), asparagine (N), acide aspartique (D), cystéine (C), glutamine (Q), acide glutamique (E), glycine (G), histidine (H), isoleucine (I), leucine (L), lysine (K), méthionine (M), phénylalanine (F), proline (P), sérine (S), thréonine (T), tryptophane (W), tyrosine (Y) et valine (V). 30 Les acides aminés non naturels comprennent la forme D des acides aminés naturels, les formes homo de certains acides aminés naturels (tels que : arginine, lysine, phénylalanine et sérine), et les formes nor de la leucine et de la valine. Is comprennent aussi des acides aminés synthétiques, tels que : Abu = acide 2-aminobutyrique CH3-CH2-CH(COOH)(NH2) 10 iPr isopropyl-lysine (CH3)2C-NH-(CH2)4-CH(COOH)(NH2) 2910003 14 Aib = acide 2aminoisobutyrique F-trp = N-formyl-tryptophane Om = ornithine Na12 = 2-naphthylalanine 5 On entend par poussée neuritique : l'allongement, c'est-à-dire la croissance des prolongements des neurones, que ce soit le prolongement axonal ou dendritique. On entend par agrégation : le regroupement des cellules formant un amas. On entend par défasciculation : le résultat d'une diminution de l'adhésivité entre 10 neurites, conduisant à un réseau lâche de prolongements neuronaux. Les composés peptidiques comprennent notamment les peptides et les polypeptides. 15 2. Description détaillée de l'invention L'inventeur a trouvé qu'une modification de la séquence du peptide W-S-G-W-S-S-CS-R-S-C-G (SEQ ID N 1) peut conduire à l'amélioration de sa stabilité, tout en 20 gardant une activité biologique comparable ou même supérieure comparée à celle du peptide de départ. Plus précisément, la séquence : X2-G-W-S-S-Xl-S-X3 (SEQ ID N 10) dans laquelle : Xl signifie soit C soit Abu, et 25 - X2 signifie soit W-S, soit W-Abu, soit encore L-Nal2-S, et X3 signifie R-S, R-Abu ou K-(iPr)-S, montre par rapport à la séquence initiale (SEQ ID N 1) à la fois : une stabilité en solution améliorée, et une bonne activité biologique. 30 On préfère que : X2 soit W-S, et X3 soit R-S Ce mode de réalisation préféré correspond à la séquence suivante (SEQ ID N 9) : 35 2910003 15 W-S-G-W-S-S-XI-S-R-S (SEQ ID N 9). Il est entendu que dans le cadre de la présente invention, les composés peptidiques comportant la séquence X2-G-W-S-S-XI-S-X3 (SEQ ID N 10) ne comprennent pas 5 les composés peptidiques contenant la séquence connue W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-C-G (SEQ ID N 1). 2.1 Design de nouveaux peptides Sur la base de l'idée que l'instabilité du peptide W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-C-G (SEQ 10 ID N 1) pourrait être due à un changement de conformation, et en particulier liée aux interactions entre les deux unités de cystéine de la séquence, l'inventeur a tout d'abord conçu deux premiers peptides A et B : - Le peptide A a la séquence linéaire : W-S-G-W-S-S-C-S-R-S (SEQ ID N 2), 15 dans laquelle par rapport à la séquence initiale W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-C-G (SEQ ID N 1), les deux derniers acides aminés cystéine et glycine sont supprimés. Il a été préparé selon les standards habituels sous la forme : NH2-W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-000H. 20 -Le peptide B a la séquence linéaire : W-S-G-W-S (SEQ ID N 3), qui correspond à un motif protéique consensus décrit dans la littérature mais qui ne semble pas intervenir dans des phénomènes de pousse neuritique. Il a été préparé sous la forme NH2-W-S-G-W-S-cooH. 25 Il est à noter que le peptide A de séquence W-S-G-W-S-S-C-S-R-S (SEQ ID N 2) ne comporte plus le motif C-S-V-X-C-G (SEQ ID N 21) abondamment décrit comme intervenant dans des phénomènes d'adhésion cellulaire (Exemple malaria). 30 Deux manipulations concernant le peptide A ont également été effectuées et ont montré des résultats significatifs. 2910003 16 Elles ont en effet montré que ce peptide A, bien qu'étant tronqué de ces deux acides-aminés terminaux cystéine et glycine impliqués dans le motif consensus C-S-V-X-C-G (SEQ ID N 21), a conservé son activité biologique. Il semble donc que l'effet observé initialement par le peptide de séquence W-S-G-W- 5 S-S-C-S-R-S-C-G (SEQ ID N 1) fasse intervenir un mécanisme différent de celui classiquement décrit pour les molécules présentant des motifs de ce type et dans lesquelles le motif C-S-V-X-C-G (SEQ ID N 21) a été décrit comme responsable de l'activité biologique. 10 Puis, afin de comparer la stabilité des différents peptides dérivés du peptide W-S-GW-S-S-C-S-R-S-C-G (SEQ ID N 1), d'autres peptides de la séquence : X2-G-W-S-S-XI-S-X3 (SEQ ID N 10) ont été préparés : W-S-G-W-S-S-Abu-S-R-S (SEQ ID N 4) 15 W-S-G-W-S-S-C-S-R-Abu (SEQ ID N 5) W-S-G-W-S-S-C-S-K-(iPr)-S (SEQ ID N 6) W-Abu-G-W-S-S-C-S-R-S (SEQ ID N 7) L-Nal2-S-G-W-S-S-C-S-R-S (SEQ ID N 8) 20 Il est à noter que tous les composés peptidiques selon l'invention peuvent être obtenus par les différents modes de synthèse chimique des peptides, comme la synthèse sur support solide par exemple. Ils peuvent aussi être obtenus par des systèmes d'expression et de constructions génétiques comportant une séquence ou un fragment d'ADN pouvant coder pour des 25 composés peptidiques décrits selon l'invention. D'une manière générale, ces composés peptidiques ou polypeptidiques peuvent être obtenus au moyen de tout système procaryote ou eucaryote dans lequel une séquence en acides nucléiques correspondante, apte à exprimer lesdits peptides ou polypeptides, a été introduite de manière à pouvoir recueillir son produit d'expression. On préfère dans le cadre de la présente invention tout particulièrement des composés peptidiques ou polypeptidiques qui contiennent au plus 150 acides aminés, et encore 30 2910003 17 plus préférentiellement au plus 100 acides aminés, sauf si ledit peptide ou polypeptide contient : plusieurs fois une même séquence selon X2-G-W-S-S-XI-S-X3 (SEQ ID N 10), ou 5 différentes séquences selon X2-G-W-S-S-XI-S-X3 (SEQ ID N 10), ou une séquence dérivée de celle-ci, telle que la séquence. On peut aussi utiliser des peptides qui consistent en la séquence selon X2-G-W-S-SX1-S-X3 (SEQ ID N 10) ou en une séquence dérivée de celle-ci. 10 2.2 Détermination de la stabilité des peptides : Les peptides synthétiques ont été mis en solution aqueuse (1,5 mg de peptide dissout dans 1000 L d'eau stérile). Leur pureté a été testée par HPLC, elle était d'au moins 97,0%. Ces solutions ont ensuite été diluées : à 0,4 mL de chacune de ces solutions, on a 15 ajouté 1,1 mL d'eau purifiée. Ces solutions ont été placées en étuve à 22 C et 50% d'humidité relative, et analysées après : 0, 3, 7, 11 et 22 jours. L' analyse a été faite par HPLC en gradient de phase inverse à une concentration de 0,4 mg/mL, avec les paramètres suivants : 20 25 volume d'injection : 20 l de solution (soit 8 gg de peptide) gradient : A B 0 min 90% 10% 25 min 40% 60% 26 min 90% 10% min 90% 10% - cartouche Symetrie RP18 (Waters) 125 x 4,6 mm phases mobiles A : H2O + TFA 0.1 % (w/v) B : Acétonitrile + TFA 0. 1 % (v/v) - détection : 210 nm débit : 1 ml/min 2910003 18 Les échantillons ont été placés en étuve à 22 C, 50 % d'humidité relative et analysés à: 0 jours, 3 jours, 7 jours, 11 jours et 22 jours. Les résultats sont présentés dans le Tableau 1 et sur la Figure 1. 5 Le paramètre TR exprime le temps de rétention du peptide en minutes dans la colonne de HPLC. Le paramètre Pureté exprime la pureté du peptide en % tel que déterminé par HPLC. La colonne Impuretés : TR et % indique pour le pic supplémentaire le plus intense, 10 le temps de rétention en minutes et le pourcentage en masse. La colonne SEQ indique le numéro de la séquence (SEQ ID N X). Tableau 1 SEQ Après 0 jours Après 3 jours Après 7 jours TR Pureté TR Pureté Impuretés : TR Pureté Impuretés : [min] [%] [min] [%] TR [min] et % [min] [%] TR [min] et % SEQ 1 12,2 79,8 12,1 57,9 11,5 / 28,9% 12,3 22,4 11,6 / 61,4% SEQ 2 11,7 97,0 11,7 75,0 13,7 / 20,5% 11,8 50,9 13,7 / 40,4% SEQ 4 11,6 99,9 11,6 99,8 - 11,7 99,6 - SEQ 5 12,8 97,9 12,8 89,7 14,7 / 9,3% 12,9 72,5 14,8 / 22,5% SEQ 6 12,2 98,0 12,1 91,5 14,1 / 6,9% 12,3 78,5 14,2 / 16,7% SEQ 7 12,6 96,0 12,5 85,2 14,9 / 12,1% 12,7 66,3 15,1 / 26,2% SEQ 8 13,4 98,6 13,4 92,3 15,7 / 5,8% 13,5 79,4 15,8 / 15,7% 15 Tableau 1 (suite) Après 11 jours Après 22 jours SEQ TR Pureté Impuretés : TR Pureté Impuretés : [min] [%] TR [min] et % [min] [%] TR [min] et % SEQ 1 12,2 1,7 11,5 / 76,7% 12,0 0,21 11,5 / 80,9% 14,0 / 6,5% SEQ 2 11,9 35,7 13,9 / 52,8% 11,8 19,0 13,8 / 63,6% 2910003 19 SEQ 4 11,5 99,5 - 11,7 37,6 12,9 / 32,8% SEQ 5 12,8 61,4 14,7 / 29,5% 12,9 44,7 14,8 / 45,6% SEQ 6 12,1 63,2 14,0 / 28,2% 12,2 42,1 14,1 / 37,4% SEQ 7 12,6 60,5 14,9 / 33,0% 12,6 38,3 15,0 / 49,3% SEQ 8 13,4 63,4 15,6 / 27,5% 13, 5 38,1 15,7 / 47,3% Les résultats obtenus (Fig. 1) montrent clairement que les analogues sont généralement plus stables que le peptide de (SEQ ID N 1) qui se dégrade plus vite. Cette dégradation est principalement due à un changement de conformation 5 (cyclisation). 2.3 Détermination in vitro de l'activité biologique des peptides L'activité biologique des différents peptides a été analysée par ajout de chacun des peptides dans des cultures de cellules nerveuses et suivi des modifications 10 morphologiques de ces cellules. Parmi les peptides selon l'invention, la séquence W-S-G-W-S-S-Abu-S-R-S (SEQ ID N 4) a finalement été préférée de par le remplacement de l'acide aminé Cystéine par l'acide aminé acide 2-aminobutyrique (Abu) ; ce qui permettait d'empêcher les interactions possibles entre deux peptides par formation de liaisons interchaînes. 15 Synthétisé de façon standard sous la forme d'un peptide possédant les extrémités NII2-et -OOOH terminales, ce peptide ne s'est pas montré efficace sur l'induction de la pousse neuritique. Toutefois, et de façon surprenante, l'activité d'induction de cette séquence a été recouvrée lorsque l'extrémité carboxyterminale a été remplacée par une extrémité 20 aminée. Ainsi, le peptide de séquence NH2_W-S-G-W-S-S-Abu-S-R-S_NH2 s'est montré actif. Il est à noter que ce remplacement de l'extrémité carboxyterminale par une extrémité aminée n'a aucune incidence sur l'effet du peptide de W-S-G-W-S-S-C-S-RS-C-G (SEQ ID N 1). Les résultats sont portés sur la figure 2. 25 a) Matériel et méthodes Des cellules de la lignée B104, issues de neuroblastome de rat, sont cultivées à raison de 1000 cellules par puits dans des plaques de 48 puits préalablement recouverts de poly-lysine (fourni par Sigma-Aldrich), dans du milieu de Eagle modifié par Dubelco 2910003 20 (DMEM), supplémenté de glutamine et d'antibiotique, et additionné de 10% de sérum de veau foetal pendant la phase d'adhésion. Le milieu est ensuite remplacé par un nouveau milieu DMEM ne contenant pas de sérum et permettant la différenciation des cellules. Après traitement, c'est-à-dire après ajout du composé à tester, les cellules 5 sont maintenues en culture à 37 C sous une atmosphère à 10% de CO2. L'évolution de la morphologie cellulaire et la prolifération sont suivies par examen microscopique en contraste de phase chaque jour sur la période de culture. La différenciation cellulaire, et en particulier l'effet sur la pousse neuritique, est alors mesurée. 10 b) Effet sur l'adhésion cellulaire des peptides L'adhésion des neurones à leur substrat est une étape clé dans le processus de croissance neuritique. Il est important de noter que 24 heures après l'adjonction des peptides selon l'invention, l'étalement du corps cellulaire est favorisé dans les puits 15 traités avec les peptides alors que dans les cultures témoins, les cellules sont essentiellement fusiformes. De plus, on peut observer que cet effet est présent aussi bien pour les cellules traitées avec le peptide W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-C-G (SEQ ID N 1) que pour celles traitées avec le peptide W-S-G-W-S-S-C-S-R-S (SEQ ID N 2) et les peptides selon 20 l'invention. c) Effet dose-réponse Au bout de 24 heures de mise en culture, les cellules commencent à montrer l'ébauche d'un ou de deux prolongements neuronaux, indépendamment de la présence ou de 25 l'absence des peptides. Après 3 jours de culture, des pousses neuritiques importantes sont observées chez les cellules cultivées en présence des peptides W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-C-G (SEQ ID N 1), W-S-G-W-S-S-C-S-R-S (SEQ ID N 2) et les autres peptides selon l'invention, alors que les cultures témoins ne montrent que peu de pousses neuritiques durant cette 30 période de culture et se présentent sous forme de fuseau caractéristique . Pour les peptides biologiquement actifs, la réponse des cellules B 104 est proportionnelle à la concentration de peptide présente dans le milieu de culture, aussi 2910003 21 bien pour le peptide W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-C-G (SEQ ID N 1) de référence que pour le peptide W-S-G-W-S-S-C-S-R-S (SEQ ID N 2) et les autres peptides selon l'invention. En effet, le nombre de sprouting et de neurites, ainsi que la taille du neurite le plus 5 long par cellule augmentent avec la concentration de peptide actif. Dans les conditions de cet essai, le peptide W-S-G-W-S (SEQ ID N 3) n'a pas d'effet biologique. d) Mesure du nombre de sprouting par cellule 10 Les cellules traitées par les peptides selon l'invention ou par les peptides W-S-G-W-SS-C-S-R-S-C-G (SEQ ID N 1) et W-S-G-W-S-S-C-S-R-S (SEQ ID N 2), présentent une augmentation du nombre de sprouting, alors que peu de bourgeonnements d'extension neuritique sont observés dans la culture témoin. Au bout de 3 jours de culture, les cultures témoins présentent environ un sprouting par 15 cellule, alors que dans les cultures traitées avec le peptide W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-CG (SEQ ID N 1), les cellules présentent environ 1,5 sprouting en moyenne. De même, et par comparaison, le peptide W-S-G-W-S-S-C-S-R-S (SEQ ID N 2) semble aussi actif que le peptide W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-C-G (SEQ ID N 1). L'effet dose-réponse est également observé avec ce peptide (Figure 3). 20 Par contre, le peptide W-S-G-W-S (SEQ ID N 3) semble n'avoir aucune activité d'induction lors des expérimentations effectuées. e) Mesure du nombre de neurites par cellule Un effet inducteur de la pousse neuritique est observé en présence des peptides W-S-25 G-W-S-S-C-S-R-S-C-G (SEQ ID N 1), W-S-G-W-S-S-C-S-R-S (SEQ ID N 2) et d'autres peptides selon l'invention, par rapport au témoin. Aucun effet n'est observé en présence du peptide W-S-G-W-S (SEQ ID N 3). Ainsi, au bout de 3 jours de culture, les cellules traitées présentent en moyenne plus du double de neurites par cellule par rapport aux cultures témoins (Figure 4). 30 f) Mesure de la longueur de la pousse neuritique 2910003 22 La mesure des prolongements neuritiques montre une stimulation du phénomène de pousse neuritique chez les cellules traitées par les peptides par rapport aux cellules témoins. Ainsi, après 3 jours de culture, dans les cultures témoins, la taille du neurite le plus 5 long est de 0,148 mm 0,03 mm, alors que celle obtenue dans les cultures traitées avec les peptides biologiquement actifs, tels que les peptides selon l'invention, est significativement supérieur. Avec le peptide W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-C-G (SEQ ID N 1), la taille du neurite le plus long est de 0,181 mm 0,02 mm, et elle est de 0,196 mm 0,028 mm dans les 10 cultures traitées avec le peptide W-S-G-W-S-S-C-S-R-S (SEQ ID N 2) (Figure 5). 2.4 Activité in vivo Une première caractérisation in vivo des phénomènes de repousse neuritique et de survie neuronale a été effectuée sur deux modèles d'animaux différents dans le cas du 15 trauma de la moelle épinière (réparation de la moelle épinière après rupture). Ainsi, dans le cas de la souris avec lésion ischémique partielle entraînant une paralysie, qui peut avoir une évolution positive spontanée, on a observé une activité régénératrice du peptide W-S-G-W-S-S-C-S-R-S-C-G (SEQ ID N 1) et des composés peptidiques selon l'invention (évaluation fonctionnelle au niveau de la marche 20 notamment). Dans le cas de rats avec lésion au niveau de la moelle épinière (lésion provoquée par aspiration de la matière grise), on a observé qu'un tube de collagène rempli de peptide placé dans la cavité a montré une repousse des fibres nerveuses dans le tube (évaluation immnunohistochimique). 25 Ces résultats montrent que les composés peptidiques ou polypeptidiques selon l'invention peuvent être utilisés pour la préparation d'un médicament destiné à : stimuler la repousse neuritique, ou améliorer la survie neuronale en cas de trauma de moelle épinière, ou 30 être utilisé en tant que principe actif d'un tel médicament, seul ou en combinaison avec d'autres principes actifs. 2910003 23 Par ailleurs, les composés peptidiques selon l'invention peuvent être utilisés pour la préparation d'un médicament destiné à améliorer les symptômes ou à guérir des maladies dans lesquelles certains neurones (tels que les neurones cholinergiques, dopaminergique et motoneurones) sont atteints ou disparaissent, telles que la maladie 5 de Parkinson et l'amyotrophie latérale spinale, ou en tant que principe actif d'un tel médicament, seul ou en combinaison avec d'autres principes actifs. Sans être lié par cette théorie, les inventeurs pensent qu'un des effets des composés peptidiques selon l'invention est de permettre le rétablissement des contacts synaptiques entre neurones en cours de destruction. 10 En ce qui concerne le dosage des composés peptidiques selon l'invention, l'étude de leur effet sur des cellules O-2A (lignée cellulaire oligodendrocytaire) de rat en culture primaire montre que les indications sont différentes selon la quantité de peptide utilisée. A titre d'exemples : 15 à une dose de l'ordre de 251.tg, le peptide selon l'invention doit plutôt être employé pour étudier des phénomènes de prolifération, à une dose de l'ordre de 50 g, le peptide selon l'invention a un effet de survie meilleur qu'avec le cocktail de facteurs de croissance utilisé classiquement. Cependant, il conserve aussi un effet sur la prolifération des cellules. 20 Pharmacologiquement, une dose de l'ordre de 50 g convient notamment dans des cas de manipulation ex vivo de cellules, en vue de leur transplantation par exemple. - à une dose d'environ 75 ou 100 g, le peptide selon l'invention induit plutôt la survie, voire même la différenciation des neurones. 25 il convient de noter qu'à une dose d'environ 150 g, certains peptides selon l'invention montrent un effet létal (phénomène non observé avec les neurones). D'autres renseignements sur le dosage du peptide selon l'invention découlent des essais in vitro. 2.5 Expériences in vitro pour extrapolation in vivo Ces expériences ont eu pour objectif de pouvoir préciser les conditions d'injection des composés peptidiques selon l'invention chez l'animal lors des tests de validation de 30 2910003 24 l'activité in vivo. Ainsi, il est important de savoir le moment d'injection, la quantité et le mode d'administration. Il est également important de savoir si une injection unique est suffisante ou s'il doit être injecté à plusieurs reprises. 5 a) Plusieurs injections versus une seule injection On voit une augmentation du nombre de cellules avec un seul ajout de peptide (comme précédemment décrit), cet effet est amplifié avec 3 additions quotidiennes du composé peptidique selon l'invention. Cette amplification de l'effet est également observée pour la différenciation (taille du 10 neurite) avec des ajouts répétés. Ces résultats sont plutôt en faveur d'une injection répétée du composé peptidique selon l'invention. b) Retrait de peptide toutes les 24 heures 15 Au niveau de la survie et/ou prolifération, on trouve le profil attendu avec une légère augmentation du nombre de cellules en présence de peptide (10%). Avec le retrait, on voit la différence à partir de 24 heures seulement et pas 1 heure. Selon ces résultats, la fenêtre d'action du peptide est donc comprise entre 1 heure et 24 heures. 20 2.6 Autres effets biologiques des composés peptidiques selon l'invention Des expériences sur une autre population cellulaire, les oligodendrocytes, ont montré qu'à une concentration particulière, les composés peptidiques selon l'invention ont aussi un rôle sur ces cellules ; ils stimulent la survie et favorisent la différenciation avec synthèse de myéline. 25 Cette action sur ce type de cellule est intéressante à plusieurs titres et notamment dans les cas de rupture de la moelle épinière (celle-ci entraîne une démyélinisation qu'il faudra combler lors du phénomène de réparation). D'autre part, cela ouvre d'autres perspectives d'applications potentielles, par exemple pour les maladies de dégénérescence touchant d'autres cellules que les neurones, 2910003 25 comme la sclérose en plaque. La sclérose en plaques attaque en effet les cellules de synthèse de myéline, les oligodendrocytes. Elle se caractérise aussi par un vaste phénomène inflammatoire, avec une activation massive des astrocytes. Les composés peptidiques selon l'invention pourraient donc intervenir en complément d'une thérapie 5 anti-inflammatoire. REVENDICATIONS 1) Composé peptidique contenant au moins la séquence en acides aminés suivantes : X2ùGùWùSùSùXI ùSùX3 (SEQ ID N 10) dans lequel : Xl est C ou Abu ; X2 est W-SouWùAbuouLùNa12ùS; X3 est R ù S, R ù Abu ou K-(iPr)- S ; à l'exception du peptide présentant la séquence : WùSùGùWùSùS--CùSùRùS--CùG (SEQ ID N 1). 2) Composé peptidique selon la revendication 1, caractérisé en ce que la séquence (SEQ ID N 10) est sélectionnée dans le groupe constitué par les séquences : W ù S ù G ù W ù S ù S ù Abu ù S ù R ù S (SEQ ID N 4) WùS-GùWùSùSùCùSùRùAbu (SEQ ID N 5) WùSùGùWùSùSùCùSùK-(iPr)ùS (SEQ ID N 6) WùAbuùGùWùSùSùCùSùRùS (SEQ ID N 7) LùNa12ùSùGùWùSùSùCùSùRùS (SEQ ID N 8). 3) Composé peptidique selon la revendication 2, comportant la séquence (SEQ ID N 4) sous la forme N_W-S-G-W-S-S-Abu-S-R-S-NH2 . 4) Composition pharmaceutique comprenant à titre de principe actif au moins un composé peptidique selon l'une quelconque des revendications 1 à 3. 5) Utilisation de composés peptidiques selon l'une quelconque des revendications 1 à 3 dans la régénération des cellules du système nerveux. 6) Utilisation de composés peptidiques selon l'une quelconque des revendications 1 à 3 pour la réalisation de médicaments destinés au traitement des maladies neurodégénératives. 2910003 27 7) Utilisation de composés peptidiques selon l'une quelconque des revendications 1 à 3 pour la réalisation de médicaments destinés à la régénération de la moelle épinière ou des nerfs périphériques après traumatismes. 8) Additif pour les cultures cellulaires de cellules nerveuses, caractérisé en ce qu'il comporte au moins un composé peptidique selon l'une quelconque des revendications 1 à 3. 10 9) Support pour la culture de cellules nerveuses, caractérisé en ce qu'il comporte l'additif selon la revendication 8. 10) Vecteur d'expression cellulaire caractérisé en ce qu'il comporte une séquence d'acide nucléique capable d'exprimer un composé peptidique selon l'une 15 quelconque des revendications 1 à 3. 5