FR 2908414 A1 20080516 FR 0609882 A 20061113 1 DOMAINE DE L'INVENTION L'invention se situe dans le domaine de l'immobilisation de protéines membranaires sur un support. Elle concerne un produit comprenant un support et au moins une protéine membranaire fixée à sa surface, caractérisé en ce que ladite protéine membranaire est fixée sur ledit support par l'intermédiaire d'une molécule amphiphile avec laquelle ladite protéine membranaire est complexée. Elle concerne également un procédé de préparation d'un tel produit, ainsi que différentes applications dans les domaines du diagnostic, du drug design et des biotechnologies. Elle concerne enfin un kit, ainsi qu'une molécule amphiphile fonctionnalisée, pour préparer un produit selon l'invention comprenant un support et une molécule amphiphile, où la molécule amphiphile et le support interagissent par une liaison hydrophobe, une liaison ionique, une liaison spécifique ou une liaison covalente. ART ANTERIEUR Les protéines membranaires intégrales représentent environ 30% des séquences codantes des génomes eucaryotes. L'importance de leurs fonctions, et notamment celles des protéines qui sont insérées dans la membrane plasmique des cellules et exposées au milieu extérieur, en fait des cibles privilégiées dans les domaines du biomédical ou de la pharmacologie. On estime en effet qu'elles sont la cible d'au moins 60% des agents thérapeutiques actuellement sur le marché. Les protéines membranaires constituent notamment des sites de liaisons, des points d'attaches ou des cibles privilégiées pour de multiples interactions. Celles-ci vont de la reconnaissance de petits ligands, tels que des neuromédiateurs ou des hormones, à l'association de cellules entre elles pour constituer des tissus. Les protéines membranaires sont aussi le plus souvent la première cible des virus, bactéries pathogènes ou parasites, ou encore des anticorps lors de la défense immunitaire ou des maladies auto-immunes. Elles peuvent également être impliquées • 2908414 2 dans les associations membranes/ADN ou membrane/cytosquelette, dans la régulation ou dérégulation de la division cellulaire (cancers), ou encore sont reconnues par des effecteurs macromoléculaires comme les protéines G ou les kinésines. Du fait de leur importance dans les domaines du biomédical et de la 5 pharmacologie, il est essentiel de disposer d'outils d'étude des protéines membranaires et de leurs ligands. Notamment, il est important d'être capable de détecter la liaison d'un ligand à une protéine membranaire d'intérêt. En effet, un procédé de détection de la liaison d'un ligand a plusieurs applications très importantes : dans le cas où la protéine membranaire est issue de la membrane d'un agent pathogène, un tel procédé peut permettre de détecter dans un échantillon biologique obtenu d'un sujet la présence ou l'absence d'anticorps dirigés contre cette protéine membranaire, et donc la présence ou l'absence d'une exposition du sujet à l'agent pathogène ; dans le cas d'un récepteur membranaire humain ou animal démontré comme impliqué dans la pathogenèse d'une maladie et constituant donc une cible thérapeutique pour le traitement de cette maladie, un tel procédé peut permettre de réaliser un criblage de banques de composés de façon à identifier des composés agonistes ou antagonistes de ce récepteur membranaire. 20 Pour mettre en oeuvre un procédé de détection de liaison d'un ligand à une protéine membranaire, il est très utile de disposer de cette protéine membranaire sous une forme immobilisée sur un support. On sait depuis longtemps réaliser la fixation ou immobilisation de protéines sur un support. Toutefois, le problème est plus complexe 25 s'agissant de protéines membranaires. En effet, les protéines membranaires possèdent nécessairement une région fortement hydrophobe leur permettant d'interagir avec la membrane, ce qui rend leur manipulation difficile, en particulier du fait qu'il est généralement nécessaire d'utiliser des doses importantes de détergents pour les isoler de la membrane et pour les solubiliser. Par rapport aux protéines cytosoliques, leur manipulation et donc leur immobilisation sur un support est rendue beaucoup plus ardue du fait de leur hydrophobie. 10 15 2908414 3 Différentes techniques d'immobilisation ont été mises au point pour déposer des protéines membranaires à la surface d'un support. Par exemple, on peut, par modification génétique ou chimique de la protéine, insérer un groupement fonctionnel à l'une des extrémités de la protéine pour favoriser l'adhésion de la protéine à la surface 5 d'un support fonctionnalisé (par exemple, en introduisant une extrémité His-Tag sur la protéine, elle interagira avec un support greffé de groupements NTA ligandant des ions Ni' ou co") (1,2). Toutefois, une telle technique repose sur la possibilité de manipuler génétiquement ou chimiquement la protéine d'intérêt, et est donc difficile ou impossible 10 à mettre en oeuvre pour une protéine membranaire sur laquelle on ne dispose que de peu d'information. De plus, elle peut être lourde et fastidieuse à mettre en oeuvre, la modification génétique ou chimique d'une protéine impliquant de nombreuses étapes. Enfin, sa mise au point doit être renouvelée pour chaque protéine d'intérêt et cette technique ne peut donc en aucun cas être utilisée de façon routinière, ou bien 5 simultanément pour un grand nombre de protéines membranaires. Dans une autre technique, on peut, en maintenant la protéine dans sa membrane cellulaire d'origine, ou en l'insérant dans une membrane artificielle (vésicule par exemple), favoriser l'adhésion de la protéine sur un support greffé de chaînes hydrophobes par le biais d'interactions entre les chaînes et la membrane (3-5). Encore 20 une autre technique consiste à utiliser les propriétés de charge des domaines extramembranaires de la protéine, ou des têtes hydrophiles des lipides de la membrane dans laquelle la protéine est insérée, pour favoriser de simples interactions électrostatiques avec un support chargé. Toutefois, pour ces deux techniques, soit la protéine est extraite de la membrane, 25 et il est généralement indispensable de travailler en présence de détergent, ce qui rend les protocoles d'immobilisation beaucoup plus complexes, tant parce que les propriétés des solutions sont modifiées (par exemple par diminution de la tension de surface des solutions, qui peut rendre le spotting des protéines à la surface des puces peu précis) que parce que la présence de détergent affecte la stabilité de bon nombre de protéines 30 membranaires (en particulier des complexes membranaires), soit des protéines insérées dans des membranes, naturelles ou synthétiques (vésicules lipidiques) sont utilisées, et 2908414 4 la technique est alors complexe et pose un problème de sensibilité : la faible densité de protéine d'intérêt peut diminuer le rapport signal/bruit de l'expérience et la présence plus ou moins importante de composants indésirables dans le cas des membranes naturelles (autres protéines, grande variété de lipides naturels, cofacteurs divers) peut 5 introduire un parasitage du signal expérimental avec des réactions indésirables et du bruit de fond. Au total, les protocoles existants d'immobilisation (ou fixation) de protéines membranaires sur des supports sont clairement insatisfaisants. Il existe donc un besoin pour un procédé de fixation de protéines membranaires sur des supports dans lequel les 10 inconvénients précédemment cités seraient éliminés, c'est-à-dire pour un procédé possédant les caractéristiques suivantes : procédé permettant de maintenir les protéines membranaires sous forme hydrosoluble et biochimiquement stabilisée en l'absence totale de détergent, simplifiant ainsi le protocole et évitant une déstabilisation des protéines membranaires, procédé universel, pouvant s'appliquer à n'importe quelle protéine membranaire, sans adaptation particulière du protocole expérimental à chaque protéine et sans nécessité d'aucune modification de la protéine, pouvant donc être utilisé y compris lorsque la protéine est mal connue, ou que sa biochimie et sa génétique ne sont pas contrôlées, et procédé permettant de fixer les protéines membranaires à la surface d'un support avec une haute densité, favorisant de meilleurs rendements et une meilleure sensibilité des résultats expérimentaux et donc une meilleure interprétation des données. Les amphipols sont des amphiphiles polymériques présentant une bonne solubilité, de nombreuses chaînes latérales hydrophobes, et des dimensions moléculaires et une flexibilité leur permettant de s'associer en de multiples points avec la surface 30 transmembranaire hydrophobe des protéines (Figure 1, EP0946875 et référence 6). Le principe de l'attachement multi-point est d'assurer une cinétique de désorption très lente, rendant l'association entre la protéine membranaire et 1'amphipol quasi-irréversible. 1.5 20 25 2908414 5 De plus, il a été montré que l'approche est universelle, en ce sens que toutes les protéines membranaires testées à ce jour, soit plus d'une vingtaine, peuvent être maintenues en solution sous forme de complexes avec les amphipols (6,7). En outre, les protéines ainsi piégées conservent leur structure native, restent solubles en l'absence de 5 tensioactif libre dans la solution (6-8) et voient leur stabilité au pire égalée mais le plus souvent améliorée par rapport à un maintien en solution en détergent (6,7,9). Enfin, lorsque le piégeage d'un mélange est effectué dans des conditions appropriées, toutes les protéines membranaires du mélange sont piégées séparément (7). Ces molécules représentent donc un outil permettant de stabiliser en solution 10 n'importe quelle protéine membranaire, quelles que soient sa structure, sa fonction et/ou son origine. Toutefois, elles n'ont été utilisées à ce jour que pour solubiliser les protéines membranaires et les manipuler en solution ou pour les stabiliser de façon temporaire, et aucune étude n'a jamais décrit ni suggéré la possibilité de les utiliser en outre comme intermédiaires médiant la fixation de protéines membranaires sur un l.5 support. Au contraire, jusqu'à présent, les amphipols n'ont été utilisés que dans le but d'obtenir des complexes hydrosolubles, pouvant se mouvoir librement en solution, à partir de protéines membranaires naturellement insolubles en milieux aqueux, pour stabiliser temporairement de telles protéines membranaires dans des expériences de reconstitution de membrane lipidique (10), ou pour stabiliser de telles protéines 20 membranaires biotinylées fixées par l'interaction usuelle biotine/avidine sur un support solide, l'amphipol ne servant qu'à stabiliser la protéine et n'étant absolument pas impliqué dans l'association de la protéine membranaire au support solide (7). DESCRIPTION DE L'INVENTION Les inventeurs ont trouvé qu'il était en outre possible d'utiliser un amphipol 25 complexé à une protéine membranaire comme intermédiaire pour fixer cette protéine membranaire sur un support, la liaison au support étant réalisée au niveau de l'amphipol. L'utilisation de l'amphipol comme intermédiaire pour la liaison au support présente de nombreux avantages par rapport aux techniques connues. Le premier 301 avantage majeur est que ce procédé est applicable sans modification du protocole à 2908414 6 n'importe quelle protéine membranaire, quelle que soit son origine ou les informations disponibles sur cette protéine. En particulier, le procédé est applicable même à une protéine membranaire dont on ignore l'identité. De plus, le procédé est simple à mettre en oeuvre, notamment du fait de l'absence de nécessité de détergent à l'étape de la 5 fixation du complexe protéine membranaire/amphipol sur le support. Ce procédé permet également de fixer les protéines membranaires à la surface d'un support avec une haute densité, favorisant ainsi de meilleurs rendements et surtout une meilleure sensibilité des résultats d'analyse de liaison de ligands sur la protéine membranaire immobilisée. Enfin, la présence des amphipols complexés aux protéines membranaires assure 10 leur stabilisation biochimique, permettant ainsi également une plus grande précision et reproductibilité des résultats d'analyse de liaison de ligands sur la protéine membranaire immobilisée. Le procédé mis au point par les inventeurs permet donc de réaliser facilement, avec une haute densité, des produits comprenant un support et une ou plusieurs 15 protéines membranaires quelconques, connues ou non, fixées à sa surface, les protéines membranaires étant de plus biochimiquement stabilisées en milieu aqueux, facilitant ainsi grandement les expériences d'analyse de liaison de ligands sur les protéines membranaires immobilisées qui peuvent être mises en oeuvre grâce au produit réalisé. 20 Ainsi, l'invention concerne un produit comprenant un support et au moins une protéine membranaire fixée à sa surface, caractérisé en ce que ladite protéine membranaire est fixée sur ledit support par l'intermédiaire d'une molécule amphiphile avec laquelle ladite protéine membranaire est complexée. 25 Par amphiphile , on entend une molécule organique qui présente à la fois des propriétés hydrophiles et hydrophobes médiées par des parties différentes de la molécule. Ainsi, une molécule amphiphile contient généralement un ou plusieurs groupements hydrophiles et un ou plusieurs groupements hydrophobes. Dans le cas présent, les groupements hydrophobes de la molécule amphiphile la 30 lient à la protéine membranaire, dont la surface transmembranaire est elle-même 2908414 7 hydrophobe, et les groupements hydrophiles permettent de solubiliser l'ensemble du complexe molécule amphiphile/protéine membranaire. De préférence, la molécule amphiphile comprend de nombreuses chaînes latérales hydrophobes, de façon à s'associer en de multiples points avec la surface transmembranaire hydrophobe des 5 protéines membranaires, cet attachement multiple conduisant à une cinétique de désorption très lente, rendant l'association quasi-irréversible. Avantageusement, le nombre de chaînes latérales hydrophobes est supérieur à 10. De plus, la molécule amphiphile comprend de préférence également de nombreux groupements hydrophiles permettant de solubiliser le complexe molécule 10 amphiphile/protéine membranaire. Avantageusement, le nombre de groupements hydrophiles est supérieur à 20. De préférence, le rapport du nombre de chaînes latérales hydrophobes au nombre de groupement hydrophiles est compris entre 0,25 et 2,5 ; de préférence entre 0,25 et 2 ; entre 0,25 et 1,5 ; entre 0,25 et 1 ; voire entre 0,25 et 0,5. 15 Avantageusement également, les molécules amphiphiles utilisées pour obtenir un produit selon l'invention possèdent des dimensions moléculaires et une flexibilité leur permettant de s'associer en de multiples points avec la surface transmembranaire hydrophobe des protéines. De ce fait, des molécules amphiphiles convenables pour mettre en oeuvre la présente invention comprennent notamment les polymères 20 amphiphiles de toutes sortes. Dans ce cas, la structure de base du polymère devrait être substituée par différents groupements ayant des propriétés hydrophiles ou hydrophobes, ou encore eux-mêmes amphiphiles. Ainsi, un polymère amphiphile acceptables devrait posséder une ou plusieurs chaînes latérales hydrophiles, ainsi que une ou plusieurs chaînes latérales hydrophobes ou amphiphiles. De préférence, le rapport du nombre de 25 chaînes latérales hydrophobes ou amphiphiles au nombre de chaînes latérales hydrophiles devrait être compris entre 0,25 et 2,5 ; de préférence entre 0,25 et 2 ; entre 0,25 et 1,5 ; entre 0,25 et 1 ; voire entre 0,25 et 0,5. Les polymères amphiphiles acceptables incluent en particulier les polymères vinyliques amphiphiles, les polypeptides amphiphiles, les polysaccharides amphiphiles, 30 et les dendrimères amphiphiles. Ainsi, dans un mode de réalisation avantageux d'un produit selon l'invention, la molécule amphiphile est choisie parmi un polymère 2908414 8 vinylique amphiphile, un polypeptide amphiphile, un polysaccharide amphiphile, ou un dendrimère amphiphile. Par polymère vinylique , on entend un polymère composé de motifs de type ù 5 (CH2-)n CRaRbù, où Ra et Rb sont des substituants variés et n est un nombre entier ajustable supérieur ou égal à 1. Avantageusement, n est compris entre 1 et 3, plus avantageusement, n = 1. Dans un mode de réalisation préféré, la molécule amphiphile est un polymère vinylique amphiphile, c'est-à-dire un polymère vinylique dont un ou plusieurs des 10 substituants ont un caractère hydrophile et un ou plusieurs autres un caractère hydrophobe. De préférence, la molécule amphiphile est un polymère vinylique de formule *ù(CH2 ral)x ù ù(CH2-çRan)xn Rb1 IIRbn 15 dans laquelle : Rat à Raä identiques ou différents sont l'atome d'hydrogène, ou le radical méthyle : Rb1 à Rbä sont différents et choisis parmi : - un groupe hydrophile choisi parmi • un radical carboxylate -COO- M+, un radical sulfonate ùSO3-M+, ou un 20 radical phosphonate ùPO3-M+, M+ étant un contre-ion cationique, • un radical (C1-05) alkylcarboxylate, un radical (C1-05) alkylsulfonate, ou un radical (C1-05) alkylphosphonate • un phényl sulfonate • CONRc1Rc2, Rcl et Rc2, identiques ou différents étant un radical (- 25 C(CH2ORd1)(CH2ORd2)(CH2ORd3)) avec Rdl, Rd2, Rd3 représentant indépendamment l'atome d'hydrogène, un reste sucre, polyoxyalkylène, notamment polyoxyéthylène, ayant de 4 à 10 unités d'oxyde d'alkylène, un radical zwitterionique, un 2908414 9 hydroxyalkyl -(CH2) mOH primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4, un radical (C1-05) alkylcarboxylate, un radical (C1-05) alkylsulfonate ou un radical (C1-05) alkylphosphonate, un reste sucre • COORe, Re étant un reste sucre, un hydroxyalkyl -(CH2)mOH primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4, un polyoxyalkylène, notamment polyoxyéthylène, ayant 4 à 10 unités d'oxyde d'alkylène, un radical (CH2)t-NRflRf2, t nombre entier de 1 à 5, Rfl, Rf2 identiques ou différents, étant l'atome d'hydrogène ou un radical (C1-C4) alkyle, • un hydroxyle • un hydroxyalkyl -(CH2)mOH primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4, • une amine primaire, secondaire, tertiaire • un ammonium quaternaire • N-formamide, N-alkylformamide, • N-acétamide, N-alkylacétamide, • N-pyrrolidonyle, • CONRg1Rg2, Rgl et Rg2, identiques ou différents étant l'atome d'hydrogène, un reste sucre, polyoxyalkylène, notamment polyoxyéthylène, ayant de 4 à 10 unités d'oxyde d'alkylène, un radical zwitterionique, un hydroxyalkyl -(CH2)mOH primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4, • COORh ou CONRkR1, Rh étant un radical (C1-05) alkyle, un alkylsulfonate, ou ayant l'une des significations de Re ou de Rgl à l'exception d'un atome d'hydrogène, et Rk et Rl ayant indépendamment l'une des significations de Rh et en plus l'un des deux pouvant correspondre à l'atome d'hydrogène ; -un groupe hydrophobe choisi parmi : 30 • un atome d'hydrogène, • un atome d'halogène, 5 10 15 20 25 2908414 10 • un radical -CONH(-C(CH2ORm1)(CH2ORm2)(CH2ORm3)) avec Rml, Rm2, Rm3 étant indépendamment un alkyle, un alcényle ou alcynyle linéaire ou ramifié de 3 à 50 atomes de carbone, un carbamoyle d'alkyle (O=C-NH-Rn) ou un acyle (0=C-Ro) avec Rn et 5 Ro étant des radicaux alkyle, alcényle ou alcynyle linéaire ou ramifié de 3 à 50 atomes de carbone, • COORp, CORp, COSRp, C-NH-Rp ou CONRg1Rg2, où Rp est un radical alkyle, alcynyle ou alcényle linéaire ou ramifié et/ou cyclique comprenant de 3 à 50 atomes de carbone, et Rql et Rq2 identiques ou 10 différents ont l'une des significations de Rp, et de plus l'un des deux peut correspondre à l'atome d'hydrogène, • un radical ùRr, ùORr, ou ùSRr où Rr représente un groupe alkyle, alcényle ou alcynyle linéaire ou ramifié et/ou cyclique comprenant de 3 à 50 atomes de carbone ; ou 15 un groupe amphiphile choisi parmi : • un radical alkyl ù(CH2)m-Rs avec m compris entre 6 et 20, Rs signifiant un groupement hydrophile de type carboxylate, sulfonate, phosphonate, sulfate, phosphate, zwitterion, ammonium, poly(oxyéthylène), sucre, 20 • un radical poly(oxyethylene)-O-alkyl (ù(CH2CH2O)m-Rt) avec Rt un radical alkyle, alcényle, alcynyle linéaire, ramifié ou cyclique de 6 à 20 atomes de carbone, • un radical COORu, CORu, COSRu, CONRvRw, Ru signifiant un radical poly(oxyethylene)-O-alkyl (ù(CH2CH2O)m-Rt) avec Rt un 25 radical alkyle, alcényle, alcynyle linéaire, ramifié ou cyclique de 6 à 20 atomes de carbone, un radical glycosylalkyl, Rv pouvant signifier l'atome d'hydrogène ou ayant une des significations de Ru, Rw ayant une des significations de Ru, • un radical -CONH(-C(CH2ORx1)(CH2ORx2)(CH2ORx3)), 30 avec Rxl, Rx2, Rx3 étant tels qu'un ou deux de ces groupements aient une des significations de Rml, Rm2, Rm3 et qu'un ou deux de ces 2908414 11 groupements soient différents de l'atome d'hydrogène et aient une des significations de Rdl, Rd2, Rd3, Ru, ou bien Rxl, Rx2, Rx3 différents ou identiques et tels qu'au moins l'un des groupement soit différents de l'atome d'hydrogène et ayant 5 une des significations de Ru, n est un nombre entier supérieur ou égal à 2, de préférence compris entre 2 et 10, entre 2 et 8, entre 2 et 6, entre 2 et 4, avantageusement n égal 3 ; n xi à xä correspondent aux pourcentages respectifs des motifs (Exi =100% ), où le i=1 rapport du pourcentage total de groupes où Rb; est un groupe hydrophobe ou amphiphile 10 au pourcentage total de groupes où Rb; est un groupe hydrophile Ex. + Ex) / Exk est compris entre 0,25 et 2,5 ; de préférence entre 0,25 et Rb;hydrophobe Rbja nphiphile Rbkhvdrophile 2 ; entre 0,25 et 1,5 ; entre 0,25 et 1 ; voire entre 0,25 et 0,5 ; et la masse molaire moyenne est comprise entre 500 et 100000, avantageusement entre 1000 et 50000, entre 2000 et 25000, plus avantageusement entre 4000 et 15000, entre 15 6000 et 12000, et de préférence entre 8000 et 10000, voire entre 9000 et 10000 g.mol-1. Par contre ion cationique , on entend selon l'invention, un cation apte à neutraliser la charge négative portée par l'atome d'oxygène chargé négativement du 20 groupe COO- de R1 quand R1 est COO-M+. Ce contre-ion peut notamment être un cation alcalin. Par reste sucre , on entend selon l'invention un radical mono ou hétéro ou homopolysaccharide, notamment mais pas seulement de formule (CfH2n_2On 1)m. Si m = 1 le monosaccharide peut être un radical glucosyle, galactosyle, mannosyle, etc. Si m = 25 2 le disaccharide peut-être un radical maltosyle, lactosyle, saccharosyle, etc. Par polyoxyalkylène , on entend selon l'invention un radical de formule (CnH2nO)m, où n est un nombre entier entre 1 et 6 et m est un nombre entier supérieur ou égal à 2. Cela inclut notamment le polyoxyéthylène où n=2. 2908414 12 Par radical zwittérionique , on entend selon l'invention on entend selon l'invention un groupement porteur d'une charge positive et d'une charge négative tel qu'un groupement carboxybétaïne de formule générale ù(CH2)ä-N+RylRy2-(CH2)m CO2-, un groupement sulfobétaïne de formule générale ù(CH2)ä-N+Rz1Rz2-(CH2),r SO35 où Ryl, Ry2 Rzl et Rz2 sont des radicaux alkyle, alcényle ou alcyle linéaires, ramifiés ou cycliques et n un entier supérieur ou égal à 1 et m un entier variant de 2 à 4. Par alkylsulfonate , on entend selon l'invention un radical de formule générale ù(CH2)ä-SO3-M+ où M+ est tel que défini précédemment Dans tous les cas ci-dessus et ci-dessous où il est fait référence à un alkyle, un 10 alcényle ou un alcynyle linéaire ou ramifié de 3 à 50 atomes de carbone, le radical alkyle, alcényle ou alcynyle linéaire ou ramifié possède avantageusement de 3 à 40, de 3 à 30, de 3 à 25, de 3 à 20, voire de 3 à 18 atomes de carbone. Avantageusement, le polymère vinylique est plus précisément de formule (II) : ù(CH2-Ra1 ) x1 ù (CH2 CRa2)x2 ù(CH2-CRa3)x3 , ù * Il ~ ~ Rb1 Rb2 Rb3 dans laquelle : Ral, Rat et Rai identiques ou différents sont l'atome d'hydrogène, ou le radical méthyle ; Rbl est un groupe hydrophile choisi parmi: • un radical carboxylate -COO- M+, un radical sulfonate ùSO3-M+, ou un radical phosphonate ùPO3-M+, M+ étant un contre-ion cationique, • un radical (C1-05) alkylcarboxylate, radical (C1-05) alkylsulfonate, ou un radical (C1-05) alkylphosphonate • un phényl sulfonate • CONRc1Rc2, Rcl et Rc2, identiques ou différents étant un radical (-C(CH2ORdl)(CH2ORd2)(CH2ORd3)) avec Rdl, Rd2, Rd3 représentant indépendamment l'atome d'hydrogène, un reste sucre, polyoxyalkylène, notamment polyoxyéthylène, ayant de 4 à 10 unités d'oxyde d'alkylène, un radical zwitterionique, un 15 20 25 10 15 20 25 30 2908414 13 hydroxyalkyl -(CH2)mOH primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4, un radical (C1-05) alkylcarboxylate, un radical (C1- 05) alkylsulfonate ou un radical (C,-05) alkylphosphonate, un reste sucre 5 Rbz est : - un groupe hydrophobe choisi parmi: • un atome d'hydrogène, • un atome d'halogène, • un radical -CONH(-C(CH2ORm1)(CH2ORm2)(CH2ORm3)) avec Rml, Rm2, Rm3 étant indépendamment un alkyle, un alcényle ou alcynyle linéaire ou ramifié de 3 à 50 atomes de carbone, un carbamoyle d'alkyle (O=C-NH-Rn) ou un acyle (0=C-Ro) avec Rn et Ro étant des radicaux alkyle, alcényle ou alcynyle linéaire ou ramifié de 3 à 50 atomes de carbone, • COORp, CORp, CSRp, C-NH-Rp ou CONRg1Rg2, où Rp est un radical alkyle, alcynyle ou alcényle linéaire ou ramifié et/ou cyclique comprenant de 3 à 50 atomes de carbone, et Rql et Rq2 identiques ou différents ont l'une des significations de Rp, et de plus l'un des deux peut correspondre à l'atome d'hydrogène, • un radical ùRr, ùORr, ou ùSRr où Rr représente un groupe alkyle, alcényle ou alcynyle linéaire ou ramifié et/ou cyclique comprenant de 3 à 50 atomes de carbone ; ou - un groupe amphiphile choisi parmi: • un radical alkyl ù(CH2)m-Rs avec m compris entre 6 et 20, Rs signifiant un groupement hydrophile de type carboxylate, sulfonate, phosphonate, sulfate, phosphate, zwitterion, ammonium, poly(oxyéthylène), sucre, • un radical poly(oxyethylene)-O-alkyl (ù(CH2CH2O)m-Rt) avec Rt un radical alkyle, alcényle, alcynyle linéaire, ramifié ou cyclique de 6 à 20 atomes de carbone, • un radical COORu, CORu, COSRu, CONRvRw, Ru signifiant un radical poly(oxyethylene)-O-alkyl (ù(CH2CH2O)m-Rt) avec Rt un 2908414 14 radical alkyle, alcényle, alcynyle linéaire, ramifié ou cyclique de 6 à 20 atomes de carbone, un radical glycosylalkyl, Rv pouvant signifier l'atome d'hydrogène ou ayant une des significations de Ru, Rw ayant une des significations de Ru, • un radical -CONH(-C(CH2ORx1)(CH2ORx2)(CH2ORx3)), avec Rxl, Rx2, Rx3 étant tels qu'un ou deux de ces groupements aient une des significations de Rml, Rm2, Rm3 et qu'un ou deux de ces groupements soient différents de l'atome d'hydrogène et aient une des significations de Rdl, Rd2, Rd3, Ru, ou bien Rxl, Rx2, Rx3 différents ou identiques et tels qu'au moins l'un des groupement soit différents de l'atome d'hydrogène et ayant une des significations de Ru, Rb3 est un groupe hydrophile choisi parmi: • COORe, Re étant un reste sucre, un hydroxyalkyl -(CH2)mOH 15 primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4, un polyoxyalkylène, notamment polyoxyéthylène, ayant 4 à 10 unités d'oxyde d'alkylène, un radical (CH2)t-NRflRf2, t nombre entier de 1 à 5, Rfl, Rf2 identiques ou différents, étant l'atome d'hydrogène ou un radical (C1-C4) alkyle, 20 • un hydroxyle • un hydroxyalkyl -(CH2)mOH primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4, • une amine primaire, secondaire, tertiaire • un ammonium quaternaire 25 •N-formamide, N-alkylformamide, • N-acétamide, N-alkylacétamide, • N-pyrrolidonyle, • CONRg1Rg2, Rgl et Rg2, identiques ou différents étant l'atome d'hydrogène, un reste sucre, polyoxyalkylène, notamment 30 polyoxyéthylène, ayant de 4 à 10 unités d'oxyde d'alkylène, un radical 5 10 2908414 15 zwitterionique, un hydroxyalkyl -(CH2)mOH primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4 (R3), • COORh ou CONRkR1, Rh étant un radical (C1-05) alkyle, un alkylsulfonate, ou ayant l'une des significations de Re ou de Rgl à 5 l'exception d'un atome d'hydrogène, et Rk, Rl ayant indépendamment l'une des significations de Rh et en plus l'un des deux pouvant correspondre à l'atome d'hydrogène ; xl, x2, x3 correspondent aux pourcentages respectifs des motifs, avec -xl compris entre 20 et 90 % 10 - x2 compris entre 10 et 80 % - x3 compris entre 0 et 60 %, et - x2/x1 +x3 compris entre 0,25 et 2,5 ; de préférence entre 0,25 et 2 ; entre 0,25 et 1,5 ; entre 0,25 et 1 ; voire entre 0,25 et 0,5 ; et la masse molaire moyenne étant comprise entre 500 et 100000, avantageusement entre 15 1000 et 50000, entre 2000 et 25000, plus avantageusement entre 4000 et 15000, entre 6000 et 12000, et de préférence entre 8000 et 10000, voire entre 9000 et 10000 g.mol-l. Avantageusement, dans un polymère vinylique amphiphile de formule (II) : Rai, Rat et Rai identiques ou différents sont l'atome d'hydrogène, ou le radical méthyle ; 20 Rbi représente C00- M+, M+ étant un contre-ion cationique ; Rb2 représente CONRg1Rg2, où Rql et Rq2 représentent indépendamment un radical alkyle, alcynyle ou alcényle linéaire ou ramifié et/ou cyclique comprenant de 3 à 50 atomes de carbone, et de plus l'un des deux peut correspondre à l'atome d'hydrogène ; Rb3 représente CONRkR1, où Rk et Rl représentent indépendamment un radical (C1-05) 25 alkyle, un alkylsulfonate, un reste sucre, un hydroxyalkyl -(CH2)mOH primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4, un polyoxyalkylène, notamment polyoxyéthylène, ayant 4 à 10 unités d'oxyde d'alkylène, un radical zwitterionique, un radical (CH2)t-NRflRf2, t nombre entier de 1 à 5, Rfl, Rf2 identiques ou différents 2908414 16 étant l'atome d'hydrogène ou un radical (C1-C4) alkyle, et de plus l'un des deux de Rk et Rl peut correspondre à l'atome d'hydrogène. Plus précisément, dans un mode de réalisation particulier avantageux d'un polymère vinylique de formule (II) : 5 Rai, Ra2 et Ra3 identiques ou différents sont l'atome d'hydrogène, ou le radical méthyle ; Rb' représente COO- M+, M+ étant Na+ ou K+; Rb2 représente CONRq 1 Rq2, où Rql est un n-octyle, et Rq2 est H ; xl est compris entre 70 et 80 %, x2 est compris entre 20 et 30 %, et x3 est 0 % ; et la masse molaire moyenne est comprise entre 2000 et 50 000 g.mol-i. 10 Dans un autre mode de réalisation particulier avantageux d'un polymère vinylique de formule (II) : Rai, Ra2 et Ra3 identiques ou différents sont l'atome d'hydrogène, ou le radical méthyle ; Rbi représente C00- M+, M+étant un contre-ion cationique ; 15 Rb2 représente CONRq 1 Rq2, où Rql est un n-octyle, et Rq2 est H ; Rbi est tel que défini précédemment dans la formule (II), c'est-à-dire représente CONRkR1, où Rk et RI représentent indépendamment un radical (C1-05) alkyle, un alkylsulfonate, un reste sucre, un hydroxyalkyl -(CH2)mOH primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4, un polyoxyalkylène, notamment polyoxyéthylène, 20 ayant 4 à 10 unités d'oxyde d'alkylène, un radical zwitterionique, un radical (CH2)t-NRfl Rf2, t nombre entier de 1 à 5, Rfl, Rf2 identiques ou différents étant l'atome d'hydrogène ou un radical (C1-C4) alkyle, et de plus l'un des deux de Rk et Rl peut correspondre à l'atome d'hydrogène ; xl est compris entre 30 et 40 %, x2 est compris entre 20 et 30 %, et x3 est compris entre 25 30et50%;et la masse molaire moyenne est comprise entre 2000 et 50 000 g.mol-l. Dans un autre mode de réalisation, la molécule amphiphile est un polymère amphiphile de type polypeptide amphiphile, c'est-à-dire un polymère amphiphile 2908414 17 d'acide aminés. Pour être amphiphile, un polypeptide devrait comporter un mélange d'acides aminés hydrophobes et d'acides aminés hydrophiles dans les proportions indiquées précédemment. Alternativement, un peptide hydrophile peut être modifié par greffage de chaînes latérales hydrophobes et ainsi gagner un caractère amphiphile. 5 Dans encore un autre mode de réalisation, la molécule amphiphile est un polymère amphiphile de type polysaccharide amphiphile. Par polysaccharide on entend un polymère formé d'un certain nombre de monosaccharides, un monosaccharide étant un glucide simple. Dans encore un autre mode de réalisation, la molécule amphiphile est un 10 polymère amphiphile de type dendrimère amphiphile. Par dendrimère , on entend un polymère arborescent ayant une structure branchée régulière construits par des processus itératifs d'ajout de monomères branchés possédant au moins trois sites réactifs, permettant ainsi d'obtenir une structure arborescente régulière. En outre, pour être amphiphile, un dendrimère devrait être composé de motifs comprenant pour 15 certains des groupements hydrophiles et pour d'autres des chaînes latérales hydrophobes. Dans un mode de réalisation avantageux d'un quelconque produit selon l'invention tel que décrit précédemment, le support est un support solide. En effet, ce mode de 20 réalisation particulier est avantageux pour un certain nombre d'applications, notamment pour la réalisation de puces porteuses de protéines membranaires, de billes revêtues de protéines membranaires, de membranes revêtues de protéines membranaires, de fibres ou de nanotubes revêtus de protéines membranaires. Ainsi, de préférence, le support solide est choisi parmi une puce, une bille, une membrane poreuse ou non poreuse, une 25 fibre, ou un nanotube. Par puce , on entend une petite plaque ou lame d'un matériau solide à la surface de laquelle on peut greffer des biomolécules telles que des acides nucléiques ou des protéines. Par bille , on entend une particule globulaire, par exemple sphérique. Une 30 telle bille peut de plus posséder toute caractéristique utile pour l'application envisagée, 2908414 18 par exemple elle peut être magnétique de façon à pouvoir être aisément séparée du milieu dans lequel elle se trouve. Par membrane poreuse , on entend une mince couche de matériau poreux et flexible, la taille des pores du matériau permettant le passage des molécules de 5 dimension inférieure à une certaine valeur, et interdisant le passage des molécules de dimension supérieure. Par membrane non poreuse , on entend une mince couche de matériau flexible, éventuellement façonnée en faisceaux de tubes minces, mille-feuilles, ou autres dispositifs permettant d'en multiplier la surface. 10 Par fibre , on entend une formation élémentaire d'aspect filamenteux, se pré-sentant généralement sous forme de faisceaux. Les fibres peuvent être naturelles , c'est-à-dire préexistant dans la nature, ou chimiques , c'est-à-dire préparées par l'homme. Des exemples de fibres naturelles incluent les fibres végétales telles que coton, lin, chanvre, ramie, jute, abaca, alfa, kapok, coco, genet, henequen, kenaf, 15 maguey, sisal, bambou, les fibres animales telles que laine, alpaga, chameau, cachemire, guanaco, lapin angora, mohair, vigogne, yack, soie, et les fibres d'origine minérale tel que l'amiante. Des exemples de fibres chimiques incluent les fibres artificielles d'origine végétale cellulosiques telles que viscose, cupro, modal, non cellulosiques comme l'alginate, les fibres d'origine animale comme la chitine, les fibres synthétiques 20 d'origine organique telles que polyamides, polyesters, chlorofibres, acryliques, modacryliques, polypropylène, élastodiène, élasthanne, polyuréthane, vinylal, et les fibres synthétiques d'origine minérale telles que aramide, verre, et textile. Par nanotube , on entend une structure cristalline particulière, de forme tubulaire, creuse, composée d'atomes disposés régulièrement en forme de polygones, 25 notamment de pentagones, hexagones et/ou heptagones, obtenue à partir de certains matériaux, en particulier le carbone et nitrure de bore. Différents types de nanotubes, en particulier de nanotubes de carbone, sont bien connus de l'homme du métier. Dans un autre mode de réalisation d'un quelconque produit selon l'invention tel- 30 le que décrit précédemment, le support: est une macromolécule ou particule soluble choisie parmi les polymères, les dendrimères, les vésicules, ou les micelles. 2908414 19 Par vésicule , on entend un assemblage de molécules amphiphiles constitué d'une (ou plusieurs) bicouche(s) ou rnembrane(s) refermée(s) sur elle(s)-même(s) et délimitant une (ou plusieurs) cavité(s) interne(s) aqueuse(s) isolée(s) du milieu extérieur. 5 Par micelle , on entend un agrégat globulaire, discoïdal ou linéaire de molécules possédant une tête polaire hydrophile dirigée vers le solvant et une chaîne hydrophobe dirigée vers l'intérieur. Quel que soit le support, il faut que celui-ci puisse interagir avec la molécule 10 amphiphile telle que décrit précédemment pour former une liaison entre le support et la protéine membranaire complexée à la molécule amphiphile. Différents types de liaisons peuvent être formées entre le support et la molécule amphiphile. Ainsi, dans un mode de réalisation d'un produit quelconque selon l'invention tel que décrit précédemment, la fixation de la molécule amphiphile sur le support est 15 médiée par une liaison hydrophobe, une liaison ionique, une liaison spécifique de type récepteur-ligand entre au moins un groupement fonctionnel de la molécule amphiphile et au moins un groupement fonctionnel à la surface du support, ou une liaison covalente entre au moins un groupement fonctionnel réactif de la molécule amphiphile et au moins un groupement fonctionnel réactif à la surface du support. 20 En effet, la molécule amphiphile possédant de nombreuses chaînes latérales hydrophobes, certaines de ces chaînes peuvent interagir avec un support lui-même hydrophobe, que celui-ci soit fait d'un matériau hydrophobe ou soit revêtu de groupements hydrophobes, tels par exemple que des groupements alkyles, par exemple octyles ou stéaryles (silice, verre, quartz, or, résine ou autre support, greffé en C,,, où n varie 25 entre 4 et 30). Alternativement, la liaison entre le support et la molécule amphiphile peut être une liaison ionique entre des groupements chargés de la molécule amphiphile et des groupements chargés du support. Par exemple, dans le cas où la molécule amphiphile est un polymère vinylique de formule (II) quelconque tel que décrit précédemment, les 30 groupements CO2- du polymère vinylique peuvent former une liaison ionique avec des groupements chargés positivement présents sur le support, soit naturellement, soit après • 2908414 20 traitement du support ou après greffage de groupements chargés positivement sur le support (par exemple le groupement ammonium quaternaire utilisé pour la synthèse de résines anioniques telles que QAE polyoside). Encore une autre possibilité de liaison entre le support et la molécule amphiphile 5 consiste en une liaison spécifique de type récepteur-ligand entre au moins un groupement de la molécule amphiphile et au moins une molécule à la surface du support, ou vice-versa. En effet, il existe de nombreux couples de molécules de type récepteur-ligand, c'est-à-dire capables d'interagir spécifiquement l'une avec l'autre. Ainsi, si un ou plusieurs groupements fonctionnels représentant la première moitié d'un 10 couple de molécules récepteur-ligand sont greffés sur la molécule amphiphile, et qu'un ou plusieurs groupements fonctionnels. représentant la deuxième moitié du couple de molécules récepteur-ligand sont greffés ou adsorbés ou fixés d'une façon quelconque sur le support, alors une liaison spécifique peut être formée entre le support et la molécule amphiphile. 15 Ainsi, dans un mode de réalisation avantageux d'un produit quelconque selon l'invention tel que décrit précédemment, le produit est caractérisé en ce que : a) la molécule amphiphile comprend en outre au moins un groupement fonctionnel constituant la première moitié d'un couple de molécules récepteur-ligand, 20 b) le support comprend en outre au moins un groupement fonctionnel fixé à sa surface constituant la deuxième moitié dudit couple de molécules récepteur-ligand, et c) la fixation de la molécule amphiphile sur le support est médiée par une liaison spécifique de type récepteur-ligand entre le(s) groupement(s) fonctionnel(s) 25 de la molécule amphiphile et le(s) groupement(s) fonctionnel(s) fixé(s) sur le support. Comme indiqué précédemment, il existe de nombreux couples de molécules de type récepteur-ligand capables d'interagir spécifiquement l'une avec l'autre. Par exemple, des couples (groupement fonctionnel de la molécule amphiphile/groupement 30 fonctionnel fixé sur le support) appropriés pour un produit selon l'invention où l'interaction entre le support et la molécule amphiphile est médiée par une liaison 2908414 21 spécifique de type récepteur-ligand peuvent être choisis parmi les couples utilisés classiquement en chromatographie d'affinité, et notamment parmi : - les couples ayant une interaction de type enzyme-substrat constitués d'une petite molécule reconnue par une protéine ayant une forte affinité 5 pour ce substrat, tels que les couples (biotine/avidine), (glutathion/glutathion S-transférase, protéines fixant le glutathion, ou protéines de fusion incluant la glutathion S-transférase), (calmoduline/ ATPase, protéine kinase, phosphodiestérase, ou neurotransmetteur), (L-arginine ou p-aminobenzamidine/protéase à sérine), (L-lysine/plasminogène (et activateur) ou ARNr), (AMP, ADP, ou ATP/enzyme à cofacteurs), (lectine/protéine glucannée, glucolipide, ou polysaccharide), (héparine/facteur de croissance et de coagulation, récepteur stéroïdien, endonucléase, lipoprotéine, ou lipase), ou (Cibacron blue /enzymes à cofacteurs NAD ou NADP, albumine, facteur de coagulation, ou interféron), ainsi que les couples inversés correspondants - les couples de type (antigène/anticorps) ou (haptène/anticorps), ou inversement de type (anticorps/antigène) ou (anticorps/haptène), les couples ayant une interaction de type chélation, constitués d'un groupement impliquant des chélations avec des métaux de transition, tels que (acide nitrilotriacétique (NTA)/métal de transition), (EDTA/ métal de transition), les couples de type (acide nucléique/acide nucléique complémentaire) et notamment (oligonuc:léotide/oligonucléotide complémentaire), et 25 les couples d'affinité de type (acide phénylboronique (APB)/acide salicylhydroxamique (ASH)). Avantageusement, le couple (groupement fonctionnel de la molécule amphiphile/groupement fonctionnel fixé sur le support) est choisi parmi (biotine/avidine), (avidine/biotine), (glutathion/glutathion S-transférase), (glutathion/S30 transférase glutathion), (antigène/anticorps), (haptène/anticorps), (anticorps/antigène), (anticorps/haptène), (oligonucléotide/oligonucléotide complémentaire). 10 15 20 2908414 22 Ainsi, dans les produits selon la présente invention où la molécule amphiphile et le support sont liés par une liaison spécifique de type récepteur-ligand entre le(s) groupement(s) fonctionnel(s) de la molécule amphiphile et le(s) groupement(s) fonctionnel(s) fixé(s) sur le support, il est particulièrement avantageux d'utiliser comme 5 molécule amphiphile un polymère vinylique de formule (I) ou (II) telles que définies précédemment, de façon générale ou tel que dans les modes de réalisations avantageux des polymères de formule (I) ou (II) précédemment décrits, qui comprenne en outre un pourcentage compris entre 0 et 4% d'un monomère de formule * ù(CF-12-CRaa)ù * Rbb 10 dans laquelle : Raa est l'atome d'hydrogène ou le radical méthyle ; Rbb représente un groupe COORcc, ou ••COSRcc ou ûCORcc ou CONRccRdd, où Rcc représente le groupement fonctionnel de la molécule amphiphile constituant la première moitié du couple récepteur-ligand, et 15 Rdd représente un radical (C1-05) alkyle, un alkylsulfonate, l'atome d'hydrogène, un reste sucre, un hydroxyalkyl -(CH2)mOH primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4, un polyoxyalkylène, notamment polyoxyéthylène, ayant 4 à 10 unités d'oxyde d'alkylène, un radical zwitterionique, un radical (CH2)t-NRflRf2, t nombre entier de 1 à 5, Rfl, Rf2 identiques ou différents étant l'atome d'hydrogène ou un radical 20 (C1-C4) alkyle. Dans ces produits particulièrement avantageux, le couple (groupement fonctionnel de la molécule amphiphile/groupement fonctionnel fixé sur le support) est avantageusement choisi parmi ceux décrits précédemment. 25 Enfin, on peut envisager de fixer la molécule amphiphile sur le support par le biais d'une liaison covalente entre au moins un groupement fonctionnel réactif de la molécule amphiphile et au moins un groupement fonctionnel réactif du support (11-14). Ainsi, si un ou plusieurs groupements fonctionnels sont greffés sur la molécule 2908414 23 amphiphile et qu'un ou plusieurs groupements fonctionnels pouvant réagir chimiquement avec le ou les groupement de la molécule amphiphile sont adsorbés ou greffés d'une façon quelconque sur le support, on peut envisager de faire réagir chimiquement entre eux les différents groupements dans des conditions favorables à la 5 formations d'une liaison covalente entre le support et la molécule amphiphile. Concernant le groupement fonctionnel réactif de la molécule amphiphile et le groupement fonctionnel réactif du support capables de former dans des conditions favorables une liaison covalente, on parlera alors de couple réactif chimique . Ainsi, dans un mode de réalisation avantageux d'un produit quelconque selon 10 l'invention tel que décrit précédemment, le produit est caractérisé en ce que : a) la molécule amphiphile comprend en outre au moins un groupement fonctionnel constituant la première moitié d'un couple réactif chimique, b) le support comprend en outre au moins un groupement fonctionnel fixé à sa surface constituant la deuxième moitié dudit couple réactif chimique, et 15 c) la fixation de la molécule amphiphile sur le support est effectuée par réaction chimique entre le(s) groupement(s) fonctionnel(s) de la molécule amphiphile et le(s) groupement(s) fonctionnel(s) fixé(s) sur le support. A titre d'exemple, il serait possible d'envisager l'utilisation d'un procédé connu pour sa grande sélectivité qui consiste à adsorber à la surface un dérivé quinonique qui, 20 dans certaines conditions compatibles avec nos expériences, pourra réagir suivant un mécanisme type Diels-Aldert de manière spontanée avec un groupement cyclopentadienyle fixé sur la molécule amphiphile. Les liaisons formées sont covalentes. De même, il est possible d'envisager le même type de réaction sélective entre un 25 support comportant à sa surface des groupements azotures (N3) et un polymère amphiphile comportant un groupement alkynyle (triple liaison). De même, on peut envisager de fonctionnaliser la molécule amphiphile par un groupement alkoxylamine (ou un groupement carbonyle) pouvant se condenser très sélectivement sur une fonction carbonyle (ou un groupement alkoxylamine) fixé à la 30 surface du support. La liaison formée (alkoxylimine) est covalente. 2908414 24 Ainsi, dans les produits selon la présente invention où la molécule amphiphile et le support sont liés par une liaison covalente entre le(s) groupement(s) fonctionnel(s) réactif(s) de la molécule amphiphile et le(s) groupement(s) fonctionnel(s) réactif(s) fixé(s) sur le support, il est particulièrement avantageux d'utiliser comme molécule 5 amphiphile un polymère vinylique de formule (I) ou (II) telles que définies précédemment, de façon générale ou tel que dans les modes de réalisations avantageux des polymères de formule (I) ou (II) précédemment décrits, qui comprenne en outre un pourcentage compris entre 0 et 4% d'un monomère de formule : * ù(CH2-CRaaa)ù * Rbbb 10 dans laquelle : Raaa est l'atome d'hydrogène ou le radical méthyle ; Rbbb représente un groupe COORccc, ou -COSRccc ou ûCORccc ou CONRcccRddd, où Rccc représente le groupement fonctionnel réactif de la molécule amphiphile 15 constituant la première moitié d'un couple réactif chimique, et Rdd représente un radical (Ci-Cs) alkyle, un alkylsulfonate, l'atome d'hydrogène, un reste sucre, un hydroxyalkyl -(CH2)mOH primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4, un polyoxyalkylène, notamment polyoxyéthylène, ayant 4 à 10 unités d'oxyde d'alkylène, un radical zwitterionique, un radical (CH2)t-NRflRf2, t nombre 20 entier de 1 à 5, Rfl, Rf2 identiques ou différents étant l'atome d'hydrogène ou un radical (C1-C4) alkyle. Dans ces produits particulièrement avantageux, le couple (groupement fonctionnel réactif de la molécule amphiphile/groupement fonctionnel réactif fixé sur le support) est avantageusement choisi parmi ceux décrits précédemment. Les produits selon l'invention décrits précédemment peuvent comprendre, fixée à leur surface par l'intermédiaire de la molécule amphiphile, n'importe quelle protéine membranaire. C'est un des grands avantages des produits selon l'invention, puisque 25 2908414 25 n'importe quelle protéine membranaire, quelle que soit sa structure, sa fonction, et qu'elle soit connue ou non, peut être immobilisée sur un support sous la forme d'un produit selon l'invention. Dans certains modes de réalisation, la (ou les) protéine(s) membranaire(s) immobilisée(s) à la surface du support est (sont) choisie(s) parmi un 5 antigène, un anticorps, une enzyme, un récepteur cellulaire, un canal ionique, ou une protéine membranaire d'origine virale, bactérienne, ou eucaryote. La ou les protéine(s) membranaire(s) immobilisée(s) à la surface du support peut (peuvent) être choisie(s) en fonction de l'application envisagée pour le produit selon l'invention. 10 L'invention concerne également un procédé de préparation d'un produit selon l'invention tel que décrit précédemment, comprenant : a) la fourniture d'au moins une protéine membranaire, d'un support et d'une molécule amphiphile telle que décrite précédemment dans un quelconque mode de réalisation, 15 b) la formation d'un complexe entre la molécule amphiphile et la protéine membranaire, et c) la fixation de la molécule amphiphile du complexe sur le support par une liaison hydrophobe, une liaison ionique, une liaison spécifique de type récepteur-ligand entre au moins un groupement fonctionnel de la molécule 20 amphiphile et au moins un groupement fonctionnel à la surface du support, ou une liaison covalente entre au moins un groupement fonctionnel réactif de la molécule amphiphile et au moins un groupement fonctionnel réactif à la surface du support. 25 A titre d'exemple, la formation du complexe entre la molécule amphiphile et la protéine membranaire (étape b) peut être réalisée de la façon suivante (6,7,8,9) : à une solution de protéine(s) membranaire(s) maintenue(s) soluble(s) par l'utilisation de détergent à une concentration supérieure à sa concentration micellaire critique, on ajoute une masse de molécule 30 amphiphile égale à 0,5 à 10 fois la masse de protéine. 2908414 26 Après 15 min d'incubation à 4 C, on élimine le détergent soit par adsorption sur des Bio-beads , soit par dialyse, soit en diluant sous la concentration micellaire critique du détergent puis en concentrant la préparation sur un système filtrant laissant passer le détergent mais non la protéine (système Centricori ou Amicon , par exemple), soit en précipitant le détergent, etc. On peut aussi utiliser successivement plusieurs de ces procédures pour s'assurer d'une totale élimination du détergent. A ce stade et selon la nature et la taille de la protéine utilisée, on peut ensuite laver les complexes de l'excès de molécule amphiphile soit en centrifugeant la préparation sur un gradient de sucrose, soit en séparant les complexes des molécules amphiphiles sur tamis moléculaire ou colonne d'affinité. Alternativement, la formation des complexes protéine(s) membranaire(s)/molécule amphiphile peut être réalisée par diverses autres voies telles que l'extraction directe, aidée ou non par la présence de détergent, des protéines des préparations de départ (membranes biologiques, corps d'inclusion etc.), le piégeage lors d'un protocole de renaturation, la synthèse acellulaire etc. 20 La fixation de la molécule amphiphile du complexe sur le support (étape c) peut être réalisée de différentes façons : ainsi, à titre d'exemple, dans le cas de supports solides, on peut déposer des solutions d,e complexe entre la(les) protéine(s) membranaire(s) et la molécule amphiphile sur le support, en respectant les conditions optimales de formation de l'interaction entre la molécule amphiphile et le support (par exemple, pour 25 une interaction de type avidine/biotine, en tampon NaCl et pH = 7,4) : le temps d'incubation dépendra et de la nature du support, et du type d'interaction la molécule amphiphile/support choisi. Les produits selon l'invention, obtenus par les procédés décrits ci-dessus, ont de 30 nombreuses applications possibles, notamment en terme de diagnostic, de drug design, ou de biotechnologies. 5 10 15 2908414 27 Ainsi, l'invention concerne notamment l'utilisation d'un produit selon l'invention comprenant un support et au moins une protéine membranaire fixée à sa surface tel que décrit précédemment pour détecter la présence ou l'absence dans un échantillon biologique d'un ligand de ladite au moins une protéine membranaire. 5 Par échantillon biologique , on entend tout type d'échantillon comprenant de la matière biologique. En particulier, un tel échantillon biologique peut être choisi parmi un échantillon sanguin, un échantillon de lymphe, de sérum, d'urine, de selles, de salive, un échantillon de tissu, une biopsie. L'échantillon peut provenir de tout type d'organisme, notamment d'un être humain, d'un animal, d'un microorganisme, d'un 10 virus ou d'une plante. L'échantillon brut, prélevé à partir de l'organisme d'intérêt, peut ensuite avoir été transformé pour le rendre acceptable pour l'analyse à suivre. Ce ne sera pas le cas lorsque la molécule à détecter est directement accessible dans l'échantillon. En revanche, si la molécule à détecter n'est pas directement accessible dans l'échantillon, il conviendra de transformer l'échantillon pour qu'elle le devienne. 15 Par exemple, si l'échantillon comprend des cellules mais que celles-ci ne sont pas en solution et que le ligand à détecter est lui-même membranaire, l'échantillon peut être transformé pour donner une solution de cellules, à la surface desquelles le ligand est directement détectable. Si le ligand à détecter est une molécule intracellulaire, l'échantillon devrait être transformé pour que le ligand soit directement accessible. Par 20 exemple si le ligand à détecter est une protéine intracellulaire, de nombreuses techniques bien connues de l'homme du métier existent pour extraire les protéines à partir d'un échantillon biologique. Si le ligand à détecter est un acide nucléique, de nombreuses techniques bien connues de l'homme du métier existent également pour extraire les acides nucléiques à partir d'un échantillon biologique. Même chose pour 25 d'autres types de ligands comme des lipides ou des sucres. La détection de la présence ou de l'absence du ligand de la protéine membranaire dans l'échantillon biologique peut être réalisée par différentes techniques connues de l'homme du métier. Par exemple, la détection de la liaison du ligand sur la protéine membranaire peut être réalisée en utilisant la technique de résonance de 30 plasmon de surface, qui permet la détection et le suivi en temps réel desinteractions entre des molécules circulantes et une ou des molécule(s) immobilisée(s), grâce à l'observation en continu d'une modification de résonance de plasmon de surface induite 2908414 28 par l'interaction des molécules circulantes avec la puce servant de support d'analyse. Mais la liaison du ligand à la protéine rnembranaire immobilisée peut aussi être détectée par d'autres techniques. En particulier, si le ligand dont la présence est testée est connu, il est possible d'utiliser des techniques bien connues de type ELISA, où le ligand fixé 5 sur la protéine membranaire est détecté grâce à une troisième molécule se liant spécifiquement à ce ligand (par exemple un anticorps spécifique, ou si le ligand peut lier plusieurs protéines membranaires à la fois, une seconde protéine membranaire sous forme soluble), cette troisième molécule étant détectable par une émission de fluorescence, une réaction enzymatique, sa radioactivité, ou tout autre moyen 10 conventionnellement utilisé dans ce type de technique. Plus précisément, une telle utilisation d'un produit selon l'invention pour détecter la présence ou l'absence dans un échantillon biologique d'un ligand de ladite au moins une protéine membranaire peut être appliquée pour le diagnostic de la présence ou de l'absence du ligand d'une protéine membranaire dans un échantillon biologique. 15 Notamment, dans le cas où ladite au moins une protéine membranaire est un antigène membranaire d'un agent pathogène, un produit selon l'invention comprenant un support et cet antigène membranaire d'un agent pathogène fixé à sa surface tel que décrit précédemment peut être utilisé pour diagnostiquer chez un sujet la présence ou l'absence d'une exposition à cet agent pathogène, en détectant la présence ou l'absence 20 d'anticorps dirigés contre ledit antigène dans le sérum de ce sujet. Ainsi, dans un mode de réalisation avantageux d'une telle utilisation, ladite au moins une protéine membranaire est un antigène membranaire d'un agent pathogène, ledit échantillon biologique est un échantillon de sérum, et ledit ligand à détecter est un anticorps dirigé contre ledit antigène. 25 L'invention concerne également l'utilisation d'un produit selon l'invention comprenant un support et au moins une protéine membranaire fixée à sa surface tel que décrit précédemment pour cribler une banque de composés à la recherche de ligands de ladite au moins une protéine membranaire. 30 En effet, une telle utilisation est très utile en pharmacologie pour des protéines membranaires constituant des cibles thérapeutiques. Pour chaque nouvelle cible 2908414 29 membranaire identifiée, on réalise généralement un criblage de banques de composés pour identifier différents ligands candidats médicaments potentiels, agonistes ou antagonistes, de la cible en question, ces candidats étant ensuite optimisés en terme d'efficacité et d'absence de toxicité. 5 Comme indiqué précédemment., l'avantage des produits selon l'invention pour une telle application est que les protéines membranaires immobilisées sur le support, du fait qu'elles sont complexées avec la molécule amphiphile, sont complètement solubles en solution aqueuse, et stabilisées biochimiquement dans leur conformation naturelle. Ainsi, la détection peut être réalisée en milieu aqueux tout en conservant la structure 10 native de la protéine membranaire, permettant ainsi non seulement de simplifier le protocole de détection de la liaison, mais aussi de s'assurer que la protéine membranaire étudiée est bien dans son état natif, et donc susceptible de lier, avec la même affinité, les mêmes composés qu'au sein de l'organisme vivant. Dans ce cas, outre les techniques de détection de la liaison d'un ligand à la 15 protéine membranaire décrites précédemment, il est possible d'utiliser des composés tests directement détectables par fluorescence, colorimétrie ou tout autre type de détection. L'invention concerne en outre l'utilisation d'un produit selon l'invention 20 comprenant un support et au moins une protéine membranaire fixée à sa surface tel que décrit précédemment, dans lequel ladite au moins une protéine est une enzyme, pour la transformation du substrat de ladite enzyme dans des conditions contrôlées. En effet, un produit selon l'invention peut notamment être une membrane fonctionnalisée, c'est-àdire une membrane sur laquelle est immobilisé un tapis d'enzyme membranaire, 25 cette répartition plus ou moins régulière d'enzyme sur la membrane ayant été réalisée grâce à un procédé selon l'invention. En effet, cela permet notamment de transformer une solution d'un substrat de cette enzyme membranaire en une solution du produit généré après action de l'enzyme sur ce substrat par simple filtration de la solution au travers de la membrane ainsi fonctionnalisée, ou passage de la solution au travers d'un 30 faisceau de tubes à la surface interne desquels l'enzyme membranaire est fixée selon l'invention. 2908414 30 L'invention repose d'une manière générale sur le principe d'utiliser des molécules amphiphiles pour immobiliser des protéines membranaires quelconques sur un support, en absence de détergent ou à des concentrations de détergent inférieures à la 5 concentration micellaire critique (C1vMC), et dans des conditions où la protéine membranaire est biochimiquement stabilisée. L'invention concerne donc également un kit pour la mise en oeuvre d'un procédé de préparation d'un produit selon l'invention tel que décrit précédemment, comprenant un support et une molécule amphiphile, caractérisé en ce que ladite molécule 10 amphiphile et ledit support interagissent par une liaison hydrophobe, une liaison ionique, une liaison spécifique de type récepteur-ligand entre au moins un groupement fonctionnel de la molécule amphiphile et au moins un groupement fonctionnel à la surface du support, ou une liaison covalente entre au moins un groupement fonctionnel réactif de la molécule amphiphile et au moins un groupement fonctionnel réactif à la 15 surface du support. Le support et la molécule amphiphile peuvent être tout type de support ou de molécule amphiphile tels que décrit précédemment, sous réserve que les deux entités du kit, support et molécule amphiphile, interagissent par une liaison hydrophobe, une liaison ionique, une liaison spécifique de type récepteur-ligand entre au moins un groupement fonctionnel de la molécule amphiphile et au moins un 20 groupement fonctionnel à la surface du support, ou une liaison covalente entre au moins un groupement fonctionnel réactif de la molécule amphiphile et au moins un groupement fonctionnel réactif à la surface du support. Dans un mode de réalisation avantageux d'un tel kit selon l'invention, le support 25 et la molécule amphiphile interagissent par une liaison spécifique de type récepteur-ligand entre au moins un groupement fonctionnel de la molécule amphiphile et au moins un groupement fonctionnel à la surface du support. Plus précisément, de préférence, le kit est caractérisé en ce que : a) la molécule amphiphile comprend en outre au moins un groupement 30 fonctionnel constituant la première moitié d'un couple de molécules récepteur-ligand, 2908414 31 b) le support comprend en outre au moins un groupement fonctionnel fixé à sa surface constituant la deuxième moitié dudit couple de molécules récepteur-ligand, et c) la fixation de la molécule amphiphile sur le support est médiée par une 5 liaison spécifique de type récepteur-ligand entre le(s) groupement(s) fonctionnel(s) de la molécule amphiphile et le(s) groupement(s) fonctionnel(s) fixé(s) sur le support. Avantageusement, le couple (groupement fonctionnel de la molécule 10 amphiphile/groupement fonctionnel fixé sur le support) est choisi parmi les couples (biotine/avidine), (glutathion/glutathion S-transférase, protéines fixant le glutathion, ou protéines de fusion incluant la glutathion S-transférase), (calmoduline/ATPase, protéine kinase, phosphodiestérase, ou neurotransmetteur), (L-arginine ou paminobenzamidine/protéase à sérine), (L-lysine/plasminogène (et activateur) ou ARNr), 15 (AMP, ADP, ou ATP/enzyme à cofacteurs), (lectine/protéine glucannée, glucolipide, ou polysaccharide), (héparine/facteur de croissance et de coagulation, récepteur stéroïdien, endonucléase, lipoprotéine, ou lipase), ou (Cibacron blue /enzymes à cofacteurs NAD ou NADP, albumine, facteur de coagulation, ou interféron), ou les couples inversés correspondants, (antigène/anticorps), (haptène/anticorps), (anticorps/antigène), 20 (anticorps/haptène), (acide nitrilotriacétique (NTA)/métal de transition), (EDTA/ métal de transition), (acide phénylboronique (APB)/acide salicylhydroxamique (ASH)), ou (oligonucléotide/oligonucléotide complémentaire). Dans un kit selon la présente invention où la molécule amphiphile et le support sont liés par une liaison spécifique de type récepteur-ligand entre le(s) groupement(s) 25 fonctionnel(s) de la molécule amphiphile et le(s) groupement(s) fonctionnel(s) fixé(s) sur le support, il est particulièrement avantageux d'utiliser comme molécule amphiphile un polymère vinylique de formule (I) ou (II) telles que définies précédemment, de façon générale ou tel que dans les modes de réalisations avantageux des polymères de formule (I) ou (II) précédemment décrits, qui comprenne en outre un pourcentage compris entre 30 0 et 4% d'un monomère de formule : 290841.4 32 *ù(CH2-CRaa) * Rbb dans laquelle : Raa est l'atome d'hydrogène ou le radical méthyle ; Rbb représente un groupe COORcc, ou -COORcc ou ûCORcc ou CONRccRdd, où 5 Rcc représente le groupement fonctionnel de la molécule amphiphile constituant la première moitié du couple récepteur-ligand, et Rdd représente un radical (C1-05) alkyle, un alkylsulfonate, l'atome d'hydrogène, un reste sucre, un hydroxyalkyl -(CH2)mOH primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4, un polyoxyalkylène, notamment polyoxyéthylène, ayant 4 à 10 unités 10 d'oxyde d'alkylène, un radical zwitterionique, un radical (CH2)t-NRflRf2, t nombre entier de 1 à 5, Rfl, Rf2 identiques ou différents étant l'atome d'hydrogène ou un radical (C1-C4) alkyle. Dans ce cas, le couple (groupement fonctionnel de la molécule amphiphile/groupement fonctionnel fixé sur le support) est avantageusement choisi 15 parmi ceux décrits précédemment. Dans un autre mode de réalisation avantageux d'un kit selon l'invention, le support et la molécule amphiphile interagissent par le biais d'une liaison covalente entre au moins un groupement fonctionnel réactif de la molécule amphiphile et au moins un groupement fonctionnel réactif du support. Plus précisément, de préférence, le kit est 20 caractérisé en ce que : a) la molécule amphiphile comprend en outre au moins un groupement fonctionnel constituant la première moitié d'un couple réactif chimique, b) le support comprend en outre au moins un groupement fonctionnel fixé à sa surface constituant la deuxième moitié dudit couple réactif chimique, et 2.5 c) la fixation de la molécule amphiphile sur le support est effectuée par réaction chimique entre le(s) groupement(s) fonctionnel(s) de la molécule amphiphile et le(s) groupement(s) fonctionnel(s) fixé(s) sur le support. 2908414 33 Dans un kit selon la présente invention où la molécule amphiphile et le support sont liés par une liaison covalente entre le(s) groupement(s) fonctionnel(s) réactif(s) de la molécule amphiphile et le(s) groupement(s) fonctionnel(s) réactif(s) fixé(s) sur le support, il est particulièrement avantageux d'utiliser comme molécule amphiphile un 5 polymère vinylique de formule (I) ou (II) telles que définies précédemment, de façon générale ou tel que dans les modes de réalisations avantageux des polymères de formule (I) ou (II) précédemment décrits, qui comprenne en outre un pourcentage compris entre 0 et 4% d'un monomère de formule : *ù(CH2-CRaaa)ù * Rbbb 10 dans laquelle : Raaa est l'atome d'hydrogène ou le radical méthyle ; Rbbb représente un groupe COORccc, ou -COSRccc ou ûCORccc ou CONRcccRddd, où Rccc représente le groupement fonctionnel réactif de la molécule amphiphile 15 constituant la première moitié d'un couple réactif chimique, et Rdd représente un radical (C1-05) alkyle, un alkylsulfonate, l'atome d'hydrogène, un reste sucre, un hydroxyalkyl -(CH2)mOH primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4, un polyoxyalkylène, notamment polyoxyéthylène, ayant 4 à 10 unités d'oxyde d'alkylène, un radical zwitteriionique, un radical (CH2)t-NRflRf2, t nombre 20 entier de 1 à 5, Rfl, Rf2 identiques ou différents étant l'atome d'hydrogène ou un radical (C1-C4) alkyle. Dans ces kits, le couple (groupement fonctionnel réactif de la molécule amphiphile/groupement fonctionnel réactif fixé sur le support) est avantageusement choisi parmi ceux décrits précédemment. L'invention concerne en outre l'utilisation d'une molécule amphiphile pour complexer une protéine membranaire et la fixer sur un support. Ladite molécule amphiphile, ladite protéine membranaire et ledit support peuvent être quelconques 2 5 2908414 34 parmi l'ensemble des molécules amphiphiles, protéines membranaires et supports décrits précédemment. Enfin, l'invention concerne également une molécule amphiphile quelconque 5 telle que définie précédemment, comprenant en outre au moins un groupement fonctionnel constituant la première moitié d'un couple de molécules récepteur-ligand ou la première moitié d'un couple réactif chimique. Dans un premier mode de réalisation, la molécule amphiphile comprend en outre au moins un groupement fonctionnel constituant la première moitié d'un couple de 10 molécules récepteur-ligand. Une telle molécule amphiphile fonctionnalisée permet de fixer une protéine membranaire quelconque sur un support comprenant au moins un groupement fonctionnel fixé d'une façon quelconque à sa surface constituant la deuxième moitié dudit couple de molécules récepteur-ligand par une liaison spécifique de type récepteur-ligand entre le(s) groupement(s) fonctionnel(s) de la molécule 15 amphiphile et le(s) groupement(s) fonctionnel(s) fixé(s) sur le support. Avantageusement, le(s) groupement(s) fonctionnel(s) de la molécule amphiphile sont choisis parmi la biotine, l'avidine, le glutathion, la glutathion S-transférase, la calmoduline, une ATPase, une protéine kinase, une phosphodiestérase, un neurotransmetteur, la L-arginine, la p-aminobenzamidine, une protéase à sérine, la L- 20 lysine, le plasminogène (et activateur), un ARNr, l'AMP, l'ADP, l'ATP, une enzyme à cofacteurs, une lectine, une protéine glucannée, un glucolipide, un polysaccharide, l'héparine, un facteur de croissance et de coagulation, un récepteur stéroïdien, une endonucléase, une lipoprotéine, une lipase, du Cibacron blue , une enzyme à cofacteurs NAD ou NADP, l'albumine, un facteur de coagulation, un interféron, un 25 antigène, un haptène, un anticorps, l'acide nitrilotriacétique (NTA), l'EDTA, l'acide phénylboronique (APB), l'acide salicylhydroxamique (ASH) ou, un oligonucléotide, un groupement cyclopentadienyle, un groupement alkynyle ou un groupement alkoxylamine. De préférence, le(s) groupement(s) fonctionnel(s) de la molécule amphiphile sont choisis parmi la biotine, l'avidine, le glutathion, la glutathion S- 30 transférase, un antigène, un haptène, un anticorps, l'acide nitrilotriacétique (NTA), l'EDTA ou un oligonucléotide. 2908414 En outre, la molécule amphiphile est avantageusement un polymère de formule (I) ou (II) comprenant en outre un pourcentage compris entre 0 et 4% d'un monomère *ù(CH2-CRaa)* (III) de formule Rbb , dans laquelle Raa et Rbb sont tels que définis précédemment. 5 Dans un deuxième mode de réalisation, la molécule amphiphile comprend en outre au moins un groupement fonctionnel constituant la première moitié d'un couple réactif chimique. Une telle molécule amphiphile fonctionnalisée permet de fixer une protéine membranaire quelconque sur un support comprenant au moins un groupement fonctionnel réactif fixé d'une façon quelconque à sa surface constituant la deuxième 10 moitié dudit couple réactif chimique pair une liaison covalente entre le(s) groupement(s) fonctionnel(s) réactif(s) de la molécule amphiphile et le(s) groupement(s) fonctionnel(s) réactif(s) fixé(s) sur le support. Avantageusement, le(s) groupement(s) fonctionnel(s) réactif(s) de la molécule amphiphile sont choisis parmi ceux décrits précédemment. En outre, la molécule amphiphile est avantageusement un polymère de formule 15 (I) ou (II) comprenant en outre un pourcentage compris entre 0 et 4% d'un monomère (IV) de formule *ù(CH2-CRaaa)ù * Rbbb , dans laquelle Raaa et Rbbb sont tels que définis précédemment. DESCRIPTION DES FIGURES 20 Figure 1. Amphipols et complexes protéine membranaire/amphipols. A, structure chimique d'un amphipol (APo1). Une molécule d'amphipol A8-35 a un poids moléculaire moyen d'environ 10 kDa. Elle contient environ 18 chaînes octyles, qui lui confèrent son hydrophobie et son affinité très élevée pour la surface de la protéine. B, modélisation du complexe formé par l'association d'amphipols avec le cytochrome bel, 25 complexe protéique membranaire de 500 kDa. La couronne d'amphipol qui s'est associée à la protéine contient environ 8 molécules d'A8-35 (7). 2908414 36 Figure 2. Principe de la méthode développée. Etape a. La protéine (rectangle gris clair) est solubilisée en détergent. Etape b. La protéine est piégée par un amphipol biotinylé (BAPoI), et le détergent est éliminé. Etape c. Le complexe protéine/BAPoI interagit par le biais d'un couplage biotine/avidine avec un support solide greffé d'avidi- 5 ne. Etape d. Un ligand (losange gris sombre) reconnaît la protéine cible. Figure 3. structures chimiques de l'amphipol universel (UAPoI) et de l'amphipol biotinylé (BAPoI). Détail de la réaction de biotinylation. 10 Figure 4. Comparaison de l'adsorption d'amphipols - l'un biotinylé (BAPoI), l'autre non (HApol) sur une puce porteuse d'avidine, suivie par résonance de plasmon de surface (RPS). Enregistrements obtenus au cours d'injections sur deux canaux distincts de 50 l d'HAPol (gris pointillé) ou de BAPoI (noir) dilué à 10 M dans un tampon NaCI-HEPES (NaCl 150 mM, HEPES 10 mM, 15 pH = 7,4). Ce même tampon circule en continu sur la puce en dehors des périodes d'injection, à 10 l/min. La différence d'amplitude des plateaux observés après injection, matérialisés par les flèches verticales, reflète le fait que l'adhésion des polymères sur la puce est médiée par la biotine. 20 Figure 5. Adhésion de complexes protéine membranaire/amphipol sur puce porteuse d'avidine suivie par RPS. Enregistrements obtenus au cours d'injection de 100 l de solutions de BAPoI, tOmpA/BAPoI, BR1BAPo1, b6fBApol et bc1/BAPoI à une concentration fixe en BAPoI de 30 M sur différents canaux d'une puce porteuse d'avidine. Tampon circulant : NaCl-HEPES. 25 Figure 6. Détection par résonance plasmonique de surface (RPS) de la liaison d'anticorps sur des protéines membranaires immobilisées à la surface d'une puce porteuse d'avidine par l'intermédiaire d'un amphipol biotinylé. On injecte successivement 10 gl de sérums purifiés pré-immun (pré-i.), puis post-immuns dirigés 30 contre tOmpA (Post-i.-OA), contre la BR (Post-i.-BR), contre le b6f (Post-i.-b6f), puis 2908414 37 contre le bel (Post-i.-bcl), sur des canaux où ont été préalablement déposés du BAPoI ou des protéines piégées en BAPoI. Les injections sont indiquées par des flèches. Chaque enregistrement est obtenu sur un canal où a été déposé un échantillon différent : l'enregistrement en trait noir épais pour le canal où sont immobilisés les complexes 5 tOmpA/BAPo1, noir fin petit pointillé pour le canal BR/BAPo1, noir fin grand pointillé pour le canal b6f/BAPol, noir fin pour le canal bcl/BAPoI, et gris épais pour le canal de l'échantillon témoin BAPoI seul. Tampon circulant : NaCI-HEPES. Figure 7. Détection par RPS de la liaison d'anticorps sur une protéine 10 déposée à la surface d'une puce porteuse d'avidine après piégeage en HAPoI ou en BAPoI. Enregistrements obtenus lors d'une injection de sérum post-immun dirigé contre la BR sur des canaux sur lesquels a été déposée la BR après piégeage soit par de l'HAPol (gris pointillé), soit par du BAPoI (noir). Tampon circulant : NaCl-HEPES. L'expérience met en évidence l'accroissement du signal lorsque l'adsorption est médiée 15 par un amphipol fonctionnalisé. EXEMPLES EXEMPLE 1. Immobilisation de protéines membranaires à la surface de puces porteuses de streptavidine à l'aide d'un amphipol biotinylé 20 1.1 Principe Le principe expérimental développé pour immobiliser les protéines membranaires à la surface de supports solides est le suivant (Figure 2) : la protéine membranaire est solubilisée en détergent (étape a) puis piégée par un amphipol biotinylé et débarrassée du détergent (étape b) ; le complexe formé est mis en contact avec un support greffé 25 de groupements streptavidine auquel il peut s'associer par le biais d'une interaction spécifique biotine/streptavidine (étape c). On peut alors faire circuler un ligand de la protéine sur le support et observer l'interaction ligand/protéine (étape d). Le suivi expérimental de l'immobilisation a été effectué par la technique de résonance plasmonique de surface (RPS). Cette technique permet la détection et le 2908414 38 suivi en temps réel des interactions entre des molécules circulantes et une ou des molécule(s) immobilisée(s), grâce à l'observation en continu d'une modification de résonance de plasmon de surface induite par l'interaction des molécules circulantes avec le support d'analyse. Le résultat d'une expérience de RPS permet de suivre au 5 cours du temps la quantité de matériel interagissant avec le support. 1.2 Synthèse d'un amphipol biotinylé (BApol) et comportement en solution 1.2.1 Synthèse d'un amphipol biotinylé (BApol) La structure du BAPoI est décrite dans la Figure 3. 10 Le protocole de synthèse du BAPoI est dérivé de celui des amphipols non fonctionnalisés (6, 15-16). Il consiste à former des liaison amides avec les fonctions acide carboxylique d'un acide polyacrylique de bas poids moléculaire et des alkylamines judicieusement choisies, 1"isopropylamine et 1'octylamine, ainsi que, dans ce cas précis, une faible proportion d'éthylènediamine sélectivement monoprotégée. 15 Après déprotection de la fonction amine non liée au polymère, on obtient un amphipol fonctionnalisé (amphipol "universel, ou "UAPol" ; Fig. 2), que l'on peut ensuite faire réagir sur n'importe quel substrat suffisamment activé. Ainsi, le BAPoI est obtenu par réaction de la fonction amine de l'UAPol sur le succinimidyl ester de la D-biotine (Fig. 3). 20 1.2.2 Analyse Les BAPols présentent des caractéristiques en solution identiques à celle des APols non biotinylés. Ils forment en particulier des particules de même taille et de même dispersité. De plus, les protéines membranaires piégées par les BAPols sont correctement 25 maintenues en solution (elles n'agrègent pas en l'absence de détergent), de la même façon qu'avec les amphipols non biotinylés. En résumé, malgré le greffage d'une molécule de biotine, les BAPols présentent les mêmes caractéristiques physico-chimiques et biochimiques que les APols dépourvus de biotine, excepté pour leur capacité à se lier spécifiquement à l'avidine ou 2908414 39 streptavidine. Ils permettent donc également de complexer les protéines membranaires et de les rendre hydrosolubles en absence de détergent, puis de les associer à un support. 1.3 Interaction des amphipols avec le support greffé de groupements streptavidine 5 Des solutions d'amphipol non-biotinylé (HAPoI) et d'amphipol biotinylé (BAPoI) ont été injectées séparément sur deux canaux distincts du support greffé de groupements streptavidine (support SA). Les résultats obtenus montrent que les deux polymères adhèrent au support SA après injection (Figure 4), mais que la masse de BAPoI liée est environ trois fois plus 10 élevée que celle de HAPoI. Seul le greffage de la biotine différenciant les deux polymères, cette expérience indique que c'est bien la présence de cette dernière qui permet une adsorption importante d'amphipol sur la puce. 1.4 Dépôt de protéines membranaires piégées en BAPo1 et test de leur 15 reconnaissance par des ligands Quatre protéines membranaires modèles dont la biochimie est bien connue et dont le comportement en APo1 a déjà été étudié ont été utilisées pour tester le procédé d'immobilisation de protéines membranaires selon l'invention : le domaine transmembranaire de la protéine OmpA (tOmpA), la bactériorhodopsine (BR), le 20 cytochrome b6f (b6 f) et le cytochrome bc1 (bcl). De plus, des sérums de lapin contenant des anticorps dirigés contre chacune de ces quatre protéines ont été préparés pour servir de ligands dans le suivi des interactions protéines membranaires/ligands par RPS. 1.4.1 Protocole de fixation des protéines membranaires sur le support SA 25 Les quatre protéines ont été piégées en BAPoI : tOmpA est disponible en solution à une concentration de 1,2 g/l en présence de détergent octyltetraoxyéthylène (C8E4) à 6 g/l. Le piégeage est effectué en ajoutant 18 pi d'une solution de BAPoI à 100 g/1 dans l'eau à 500 i de solution de protéine (soit 4 g de BAPoI par g de 2908414 40 tOmpA). Après une incubation de 15 min, 30 mg de Bio-beads sont ajoutés et on laisse incuber sous agitation pendant 3 h à 4 C avant de récupérer la solution et enlever les Bio-beads. La solution de BR en détergent octyl thio-glucoside (OTG) est à 1 g/1 de protéine, 100 mM d'OTG. On ajoute 23 l de solution à 100 g/1 de BAPo1 dans l'eau à 450 l de solution de protéine (soit 5 g de BAPo1 par g de BR). Après une incubation de 15 min, 30 mg de Bio-beads sont ajoutés et on laisse incuber sous agitation pendant 3 h à 4 C avant de récupérer la solution et enlever les Bio-beads. La solution de b6 f en détergent lauryl maltoside (LM) est à 0,27 g/1 de protéine et 0,1 g/1 LM. On ajoute 1,2 pl de solution à 100 g/1 de BAPo1 dans l'eau à 150 l de solution de protéine (soit 3 g de BAPo1 par g de b6f). Après une incubation de 15 min, 140 mg de Bio-beads sont ajoutés et on laisse incuber sous agitation pendant 3 h à 4 C avant de récupérer la solution et enlever les Bio-beads. La solution de bel en LM est à 35 g/1 de protéine et 0.1 g/1 de LM. On ajoute 119 gl de solution de BAPo1 à 100 g/1 dans l'eau à 225 gl de solution de protéine (soit 1,5 g de BAPo1 par g de bel). Après une incubation de 15 min, 90 mg de Bio- beads sont ajoutés et on laisse incuber sous agitation pendant 3 h à 4 C avant de récupérer la solution et enlever les Bio-beads. Ensuite, les complexes protéineslBAPol ainsi formés et le BAPo1 seul ont été déposés sur des canaux distincts d'un support SA : toutes les solutions sont ajustées à une concentration de 30 gM de BAPo1 en les diluant avec du tampon NaCl-HEPES 25 (NaCl 150 mM, HEPES 10 mM à pH 7,4), puis sont injectées à raison de 100 l chacune sur un appareil de type Biacore 2000 de manière à faire passer chaque solution sur des canaux distincts de supports SA. Entre les injections, on fait circuler le tampon NaCl-HEPES. Le flux de circulation est fixé à 10 gl/min pendant et hors des injections. L'expérience montre qu'il y a fixation effective et irréversible de matériel sur les 30 supports (Figure 5). 5 10 15 20 2908414 41 1.4.2 Analyse de la liaison d'un ligand sur les protéines membranaires immobilisées sur le support SA par le BApol Les expériences de reconnaissance anticorps/matériel immobilisé ont ensuite été conduites avec des sérums purifiés dont seuls les anticorps, quel qu'ils soient, ont été 5 conservés, dilué 100 fois dans le tampon NaCI-HEPES. Brièvement, on injecte successivement 10 pl de sérums purifiés, pré-immun (pré-i.) puis post-immun dirigés contre tOmpA (Post-i.-OA), contre la BR (Post-i.-BR),contre le bd (Post-i.-b6f) puis contre le bcl (Post-i.-bcl) sur des canaux où ont été préalablement déposés du BAPo1 ou des protéines piégées en BAPo1. Les injections 10 durent 60 s et leur temps zéro est indiqué par une flèche. En dehors des injections, le tampon NaCl-HEPES (NaCl 150mM, HEPES 10mM pH=7,4) circule sur le support. Chaque enregistrement est obtenu sur un canal où a été déposé un échantillon différent. Toutes les réponses observées sont spécifiques (voir Figure 6) : globalement, les résultats montrent que le signal RPS reste élevé après injection uniquement lorsque ce 15 sont les sérums post-immuns qui sont testés et à condition qu'ils circulent sur le canal porteur de la protéine ayant servi à l'immunisation (contre laquelle des anticorps du sérum ont été produits). Ceci signifie que les protéines membranaires ont bien été immobilisées sur les canaux des supports. Cela montre aussi que l'on peut parfaitement utiliser le procédé 20 mis au point pour suivre des interactions entre des protéines membranaires et des ligands. En outre, la même expérience a été effectuée avec des séra non purifiés et a mené à la même conclusion, montrant ainsi qu'un ligand spécifique peut être détecté même au sein du milieu extrêmement complexe que constitue un sérum non purifié 25 (résultats non montrés). 1.5 Détermination de l'agent de médiation de l'immobilisation de la protéine sur le support. Lors d'une expérience de contrôle, la réponse obtenue selon que la protéine-test a été déposée sur la puce après piégeage soit en HAPo1 (non-biotinylé), soit en BAPo1 30 (biotinylé) a été comparée, afin de vérifier dans quelle mesure la fixation de la protéine I 2908414 42 sur le support SA est bien médiée par la biotine fixée de façon covalente sur le polymère, par le biais de la liaison spécifique biotine/streptavidine. Les résultats (voir Figure 7) montrent que l'anticorps ne se lie de manière significative, donc ne reconnaît la protéine déposée sur le support SA, que si celle-ci a 5 été piégée en BAPoI. 1.6 Conclusion. Ces résultats démontrent la validité et la puissance du procédé selon l'invention pour immobiliser des protéines membranaires sur un support. En effet, ils montrent que, dérivés chimiquement de façon appropriée (ici, par un greffage de biotine, mais de mul- 10 tiples autres modes de dérivation sont concevables), les amphipols peuvent être utilisés facilement, sans mise au point significative, pour immobiliser une protéine membranaire quelconque à la surface d'un support solide. En outre, les résultats obtenus indiquent que les protéines ainsi immobilisées peuvent être utilisées pour étudier des interactions avec des ligands (ici, pour détecter 15 des anticorps circulants). Les produits selon l'invention comprenant un support et une ou plusieurs protéines membranaires fixées à sa surface peuvent donc être utilisés pour détecter la présence ou l'absence dans un échantillon biologique d'un ligand d'une protéine membranaire immobilisée à la surface du support, différents types d'applications étant alors possibles, comme par exemple : 20 détection d'anticorps circulants dirigés contre un antigène membranai- re, comme présenté ici, ou criblage d'une banque de composés à la recherche de ligands d'un récepteur membranaire d'intérêt pharmacologique, en vue d'identifier des agonistes ou antagonistes de ce récepteur. 25 En outre, les résultats obtenus indiquent que les protéines ainsi immobilisées peuvent être utilisées pour la réalisation de réacteurs enzymatiques : les produits selon l'invention comprenant un support (billes, membranes, fibres, nanotubes etc.) et une ou plusieurs protéines membranaires fixées à sa surface peuvent en effet être utilisés pour exposer aux dites protéines des produits circulant dans la solution, sur lesquels les dites 30 protéines agiront enzymatiquement 2908414 43 BIBLIOGRAPHIE 1. Giess F. et coll. (2004). The protein-tethered lipid bilayer: a novel mimic of the biological membrane. Biophys. J. 87(5), 3213-20. 2. Pal P. et coll. (2005). A novel immobilisation method for single protein spFRER 5 studies. Biophys. J. 89(2), L11-3 3. Hoffman T.L. et coll. (2000) A biosensor assay for studying ligand-membrane receptor interactions : binding of antibodies and HIV-1 Env to chemokine receptors. PNAS, 97, 11215-11220. 4. Minic J. et coll. (2005). Immobilization of native membrane-bound rhodopsin on 10 biosensor surfaces. Biochim. Biophys. Acta, 1724(3), 324-32 5. Cooper M.A (2002) Optical biosensor in drug discovery. Nat. rev. Drug Discov. 1, 515-528 6. Tribet, C., Audebert, R. & Popot, J.-L. (1996). Amphipols: polymers that keep membrane proteins soluble in aqueous solutions. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93, 15 15047-15050. 7. Popot, J.-L., Berry, E. A., Charvolin, D., Creuzenet, C., Ebel, C., Engelman, D. M., Flôtenmeyer, M., Giusti, F., Gohon, Y., Hervé, P., Hong, Q., Lakey, J. H., Leonard, K., Shuman, H. A., Timmins, P., Warschawski, D. E., Zito, F., Zoonens, M., Pucci, B. & Tribet, C. (2003). Amphipols: polymeric surfactants 20 for membrane biology research. Cell. Mol. Life Sci. 60, 1559-1574. 8. Zoonens, M., Catoire, L. J., Giusti, F. & Popot, J.-L. (2005). NMR study of a membrane protein in detergent-free aqueous solution. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 102, 8893-8898. 9. Picard, M., Dahmane, T., Garrigos, M., Gauron, C., Giusti, F., le Maire, M., 25 Popot, J.-L. & Champeil, P. (2006). Protective and inhibitory effects of various types of amphipols on the Cal±ATPase from sarcoplasmic reticulum: a comparative study. Biochemistry 45, 1861-1869. 2908414 44 10. Nagy, J. K., Kuhn Hoffmann, A., Keyes, M. H., Gray, D. N., Oxenoid, K. & Sanders, C. R. (2001). Use of amphipathic polymers to deliver a membrane protein to lipid bilayers. FEBS Lett. 501, 115-120. 11. Q. Xu, K. S. 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Well-defined nanoparticles formed by hydrophobie 20 assembly of a short and polydisperse random terpolymer, amphipol A8-35. Langmuir 22, 1281-1290. REVENDICATIONS 1. Produit comprenant un support et au moins une protéine membranaire fixée à sa surface, caractérisé en ce que ladite protéine membranaire est fixée sur ledit support par l'intermédiaire d'une molécule amphiphile avec laquelle ladite protéine membranaire est complexée. 2. Produit selon la revendication 1, caractérisé en ce que la molécule amphiphile est choisie parmi un polymère vinylique amphiphile, un polypeptide amphiphile, un 10 polysaccharide amphiphile, ou un dendrimère amphiphile. 3. Produit selon la revendication 2, caractérisé en ce que la molécule amphiphile est un polymère vinylique de formule (I) : ù(CH2-çRa1)x1 ù ù(CH2-?Ran)xn IIRb1 IIRbn dans laquelle : Rai à Raä identiques ou différents sont l'atome d'hydrogène, ou le radical méthyle : Rb i à Rbä sont différents et choisis parmi : 20 - un groupe hydrophile choisi parmi • un radical carboxylate -COO- M+, un radical sulfonate -SO3"M+, ou un radical phosphonate -PO3-M+, M+ étant un contre-ion cationique, • un radical (C1-05) alkylcarboxylate, un radical (Ci-05) alkylsulfonate, ou un radical (C1-05) alkylphosphonate 25 • un phényl sulfonate * (1) 15 2908414 46 • CONRc1Rc2, Rcl et Rc2, identiques ou différents étant un radical (-C(CH2ORd1)(CH2ORd2)(CH2ORd3)) avec Rdl, Rd2, Rd3 représentant indépendamment l'atome d'hydrogène, un reste sucre, polyoxyalkylène, notamment polyoxyéthylène, ayant de 4 à 10 unités 5 d'oxyde d'alkylène, un radical zwitterionique, un hydroxyalkyl - (CH2)mOH primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4, un radical (C1-05) alkylcarboxylate, un radical (Ci-05) alkylsulfonate ou un radical (C1-05) alkylphosphonate, un reste sucre • COORe, Re étant un reste sucre, un hydroxyalkyl -(CH2)mOH primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4, un polyoxyalkylène, notamment polyoxyéthylène, ayant 4 à 10 unités d'oxyde d'alkylène, un radical (CH2)t-NRflRf2, t nombre entier de 1 à 5, Rfl, Rf2 identiques ou différents, étant l'atome d'hydrogène ou un radical (C 1-C4) alkyle, • un hydroxyle • un hydroxyalkyl -(CH2)mOH primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4, • une amine primaire, secondaire, tertiaire • un ammonium quaternaire • N-formamide, N-alkylfoimamide, • N-acétamide, N-alkylacétamide, • N-pyrrolidonyle, • CONRg1Rg2, Rgl et Rg2, identiques ou différents étant l'atome d'hydrogène, un reste sucre, polyoxyalkylène, notamment polyoxyéthylène, ayant de 4 à 10 unités d'oxyde d'alkylène, un radical zwitterionique, un hydroxyalkyl -(CH2)mOH primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4, • COORh ou CONRkRI, Rh étant un radical (C1-05) alkyle, un alkylsulfonate, ou ayant l'une des significations de Re ou de Rgl à l'exception d'un atome d'hydrogène, et Rk et Rl ayant indépendamment l'une des significations de Rh et en plus l'un des deux pouvant correspondre à l'atome d'hydrogène ; 30 2908414 47 - un groupe hydrophobe choisi parmi : • un atome d'hydrogène, • un atome d'halogène, • un radical -CONH(-C(CH2ORm1)(CH2ORm2)(CH2ORm3)) avec Rml, Rm2, Rm3 étant indépendamment un alkyle, un alcényle ou alcynyle linéaire ou ramifié de 3 à 50 atomes de carbone, un carbamoyle d'alkyle (0=C-NH-Rn) ou un acyle (0=C-Ro) avec Rn et Ro étant des radicaux alkyle, alcényle ou alcynyle linéaire ou ramifié de 3 à 50 atomes de carbone, • COORp, CORp, COSRp, C-NH-Rp ou CONRg1Rg2, où Rp est un radical alkyle, alcynyle ou alcényle linéaire ou ramifié et/ou cyclique comprenant de 3 à 50 atomes de carbone, et Rql et Rq2 identiques ou différents ont l'une des significations de Rp, et de plus l'un des deux peut correspondre à l'atome d'hydrogène, • un radical ùRr, ùORr, ou ùSRr où Rr représente un groupe alkyle, alcényle ou alcynyle linéaire ou ramifié et/ou cyclique comprenant de 3 à 50 atomes de carbone ; ou - un groupe amphiphile choisi parmi : • un radical alkyl ù(CH2)m-Rs avec m compris entre 6 et 20, Rs 20 signifiant un groupement hydrophile de type carboxylate, sulfonate, phosphonate, sulfate, phosphate, zwitterion, ammonium, poly(oxyéthylène), sucre, • un radical poly(oxyethylene)-O-alkyl (ù(CH2CH2O)m-Rt) avec Rt un radical alkyle, alcényle, alcynyle linéaire, ramifié ou cyclique de 6 à 20 atomes de carbone, • un radical COORu, CORu, COSRu, CONRvRw, Ru signifiant un radical poly(oxyethylene)-O-alkyl (ù(CH2CH2O)m-Rt) avec Rt un radical alkyle, alcényle, alcynyle linéaire, ramifié ou cyclique de 6 à 20 atomes de carbone, un radical glycosylalkyl, Rv pouvant signifier l'atome d'hydrogène ou ayant une des significations de Ru, Rw ayant une des significations de Ru, • un radical -CONH(-C(CH2ORx1)(CH2ORx2)(CH2ORx3)), 5 10 15 25 30 2908414 48 avec Rxl, Rx2, Rx3 étant tels qu'un ou deux de ces groupements aient une des significations de Rml, Rm2, Rm3 et qu'un ou deux de ces groupements soient différents de l'atome d'hydrogène et aient une des significations de Rdl, Rd2, Rd3, Ru, 5 ou bien Rxl, Rx2, Rx3 différents ou identiques et tels qu'au moins l'un des groupement soit différents de l'atome d'hydrogène et ayant une des significations de Ru, n est un nombre entier supérieur ou égal à 2, de préférence compris entre 2 et 10, entre 2 et 8, entre 2 et 6, entre 2 et 4, avantageusement n égal 3 ; 10 xi à xä correspondent aux pourcentages respectifs des motifs (lxi =100%), où le i=, rapport du pourcentage total de groupes où Rb; est un groupe hydrophobe ou amphiphile au pourcentage total de groupes où Rb; est un groupe hydrophile E xi + xi / E xk est compris entre 0,25 et 2,5 ; et Rbihydrophobe Rbjamphiphile / Rbk hydrophile la masse molaire moyenne est comprise entre 500 et 100000, avantageusement entre 15 500 et 50 000. 4. Produit selon la revendication 3, caractérisé en ce que n égal 3 et le polymère vinylique est de formule (II) : ù(CH2-ÇRa1)x1 ù(CH2-CRa2)x2ù(CH2-CRa3)x3,ù * Il i i Rb1 Rb2 Rb3 dans laquelle : Rai, Rat et Rai identiques ou différents sont l'atome d'hydrogène, ou le radical méthyle ; Rb, est un groupe hydrophile choisi parmi: un radical carboxylate -COO- M+, un radical sulfonate -SO3-M+, ou un 25 radical phosphonate -PO3-M+, M+ étant un contre-ion cationique, 20 2908414 49 • un radical (C1-05) alkylcarboxylate, radical (C1-05) alkylsulfonate, ou un radical (C1-05) alkylphosphonate • un phényl sulfonate • CONRc1Rc2, Rcl et Rc2, identiques ou différents étant un radical (- 5 C(CH2ORd1)(CH2ORd2)(CH2ORd3)) avec Rdl, Rd2, Rd3 représentant indépendamment l'atome d'hydrogène, un reste sucre, polyoxyalkylène, notamment polyoxyéthylène, ayant de 4 à 10 unités d'oxyde d'alkylène, un radical zwitterionique, un hydroxyalkyl - (CH2)mOH primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4, 10 un radical (C1-05) alkylcarboxylate, un radical (C1-05) alkylsulfonate ou un radical (C1-05) alkylphosphonate, un reste sucre Rb2 est : un groupe hydrophobe choisi parmi: • un atome d'hydrogène, 15 • un atome d'halogène, • un radical -CONH(-C(CH2ORm1)(CH2ORm2)(CH2ORm3)) avec Rml, Rm2, Rm3 étant indépendamment un alkyle, un alcényle ou alcynyle linéaire ou ramifié de 3 à 50 atomes de carbone, un carbamoyle d'alkyle (O=C-NH-Rn) ou un acyle (0=C-Ro) avec Rn et 20 Ro étant des radicaux alkyle, alcényle ou alcynyle linéaire ou ramifié de 3 à 50 atomes de carbone, • COORp, CORp, CSRp, C-NH-Rp ou CONRg1Rg2, où Rp est un radical alkyle, alcynyle ou alcényle linéaire ou ramifié et/ou cyclique comprenant de 3 à 50 atomes de carbone, et Rql et Rq2 identiques ou 25 différents ont l'une des significations de Rp, et de plus l'un des deux peut correspondre à l'atome d'hydrogène, • un radical ùRr, ùORr, ou ùSRr où Rr représente un groupe alkyle, alcényle ou alcynyle linéaire ou ramifié et/ou cyclique comprenant de 3 à 50 atomes de carbone ; ou - un groupe amphiphile choisi parmi: • un radical alkyl ù(CH2)m-Rs avec m compris entre 6 et 20, Rs signifiant un groupement hydrophile de type carboxylate, sulfonate, 2908414 50 phosphonate, sulfate, phosphate, zwitterion, ammonium, poly(oxyéthylène), sucre, • un radical poly(oxyethylene)-O-alkyl (ù(CH2CH2O)m-Rt) avec Rt un radical alkyle, alcényle, alcynyle linéaire, ramifié ou cyclique de 6 à 5 20 atomes de carbone, • un radical COORu, CORu, COSRu, CONRvRw, Ru signifiant un radical poly(oxyethylene)-O-alkyl (ù(CH2CH2O)m-Rt) avec Rt un radical alkyle, alcényle, alcynyle linéaire, ramifié ou cyclique de 6 à 20 atomes de carbone, un radical glycosylalkyl, Rv pouvant signifier 10 l'atome d'hydrogène ou ayant une des significations de Ru, Rw ayant une des significations de Ru, • un radical -CONH(-C(CH2ORx1)(CH2ORx2)(CH2ORx3)), avec Rxl, Rx2, Rx3 étant tels qu'un ou deux de ces groupements aient une des significations de Rml, Rm2, Rm3 et qu'un ou deux de ces 15 groupements soient différents de l'atome d'hydrogène et aient une des significations de Rdl, Rd2, Rd3, Ru, ou bien Rxl, Rx2, Rx3 différents ou identiques et tels qu'au moins l'un des groupement soit différents de l'atome d'hydrogène et ayant une des significations de Ru, 20 Rb3 est un groupe hydrophile choisi parmi: • COORe, Re étant un reste sucre, un hydroxyalkyl -(CH2)mOH primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4, un polyoxyalkylène, notamment polyoxyéthylène, ayant 4 à 10 unités d'oxyde d'alkylène, un radical (CH2)t-NRflRf2, t nombre entier de 1 à 25 5, Rfl, Rf2 identiques ou différents, étant l'atome d'hydrogène ou un radical (C1-C4) alkyle, • un hydroxyle • un hydroxyalkyl -(CH2)mOH primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4, 30 • une amine primaire, secondaire, tertiaire • un ammonium quaternaire • N-formamide, N-alkylformamide, 2908414 51 • N-acétamide, N-alkylacétamide, • N-pyrrolidonyle, • CONRg1Rg2, Rgl et Rg2, identiques ou différents étant l'atome d'hydrogène, un reste sucre, polyoxyalkylène, notamment polyoxyéthylène, ayant de 4 à 10 unités d'oxyde d'alkylène, un radical zwitterionique, un hydroxyalkyl -(CH2)mOH primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4 (R3), • COORh ou CONRkR1, Rh étant un radical (C1-05) alkyle, un alkylsulfonate, ou ayant l'une des significations de Re ou de Rgl à l'exception d'un atome d'hydrogène, et Rk, RI ayant indépendamment l'une des significations de Rh et en plus l'un des deux pouvant correspondre à l'atome d'hydrogène ; xl, x2, x3 correspondent aux pourcentages respectifs des motifs, avec - xl compris entre 20 et 90 % 15 - x2 compris entre 10 et 80 % - x3 compris entre 0 et 60 %, et - x, /x, + x3 compris entre 0,25 et 2,5 ; et la masse molaire moyenne étant comprise entre 500 et 100000, avantageusement entre 500 et 50 000. 5 10 20 2908414 52 5. Produit selon la revendication 4, caractérisé en ce que : Rai, Rat et Rai identiques ou différents sont l'atome d'hydrogène, ou le radical méthyle ; Rb' représente COO" M+, M+ étant contre-ion cationique ; Rb2 représente CONRg1Rg2, où Rql et Rq2 représentent indépendamment un radical 5 alkyle, alcynyle ou alcényle linéaire ou ramifié et/ou cyclique comprenant de 3 à 50 atomes de carbone, et de plus l'un des deux peut correspondre à l'atome d'hydrogène ; Rb3 représente CONRkR1, où Rk et Rl représentent indépendamment un radical (C1-05) alkyle, un alkylsulfonate, un reste sucre, un hydroxyalkyl -(CH2)mOH primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4, un polyoxyalkylène, notamment 10 polyoxyéthylène, ayant 4 à 10 unités d'oxyde d'alkylène, un radical zwitterionique, un radical (CH2)t-NRflRf2, t nombre entier de 1 à 5, Rfl, Rf2 identiques ou différents étant l'atome d'hydrogène ou un radical (C1-C4) alkyle, et de plus l'un des deux de Rk et Rl peut correspondre à l'atome d'hydrogène. 15 6. Produit selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisé en ce que le support est un support solide. 7. Produit selon la revendication 6, caractérisé en ce que le support est choisi parmi une puce, une bille, une membrane, une fibre, ou un nanotube. 8. Produit selon la revendication 6, caractérisé en ce que le support est une macromolécule ou particule soluble choisie parmi les polymères, dendrimères, vésicules, ou micelles. 25 9. Produit selon l'une quelconque des revendications 1 à 8, caractérisé en ce que la fixation de la molécule amphiphile sur le support est médiée par une liaison hydrophobe, une liaison ionique, une liaison spécifique de type récepteur-ligand entre au moins un groupement fonctionnel de la molécule amphiphile et au moins un groupement fonctionnel à la surface du support, ou une liaison covalente entre au moins 20 2908414 53 un groupement fonctionnel réactif de la molécule amphiphile et au moins un groupement fonctionnel réactif à la surface du support. 10. Produit selon la revendication 9, caractérisé en ce que : 5 a. la molécule amphiphile comprend en outre au moins un groupement fonctionnel constituant la première moitié d'un couple de molécules récepteur-ligand, b. le support comprend en outre au moins un groupement fonctionnel fixé à sa surface constituant la deuxième moitié dudit couple de molécules 10 récepteur-ligand, et c. la fixation de la molécule amphiphile sur le support est médiée par une liaison spécifique de type récepteur-ligand entre le(s) groupement(s) fonctionnel(s) de la molécule amphiphile et le(s) groupement(s) fonctionnel(s) fixé(s) sur le support. 15 11. Produit selon la revendication 10, caractérisé en ce que le couple récepteur-ligand (groupement fonctionnel de la molécule amphiphile / un groupement fonctionnel fixé sur le support) est choisi parmi les couples (biotine/avidine), (glutathion/glutathion S-transférase, protéines fixant le glutathion, ou protéines de fusion incluant la glutathion 20 S-transférase), (calmoduline/ ATPase, protéine kinase, phosphodiestérase, ou neurotransmetteur), (L-arginine ou p-aminobenzamidine/protéase à sérine), (L-lysine/plasminogène (et activateur) ou ARNr), (AMP, ADP, ou ATP/ Enzyme à cofacteurs), (lectine/protéine glucannée, glucolipide, ou polysaccharide), (héparine/facteur de croissance et de coagulation, récepteur stéroïdien, endonucléase, 25 lipoprotéine, ou lipase), ou (Cibacron blue / enzymes à cofacteurs NAD ou NADP, albumine, facteur de coagulation, ou interféron), (antigène/anticorps), (haptène/anticorps), (anticorps/antigène), (anticorps/haptène), (acide nitrilotriacétique (NTA)/métal de transition), (EDTA/ métal de transition), (acide phénylboronique (APB)/acide salicylhydroxamique (ASH)), ou (oligonucléotide/oligonucléotide 30 complémentaire) ou les couples inversés correspondants. 2908414 54 12. Produit selon la revendication 1l, caractérisé en ce que la molécule amphiphile est un polymère de formule (I) ou (II) comprenant en outre un pourcentage compris *ù(CH2 CRaa) .* (III) entre 0 et 4% d'un monomère de formule Rbb 5 dans laquelle : Raa est l'atome d'hydrogène ou le radical méthyle ; Rbb représente un groupe COORcc, ou -COSRcc ou ûCORcc ou CONRccRdd, où Rcc représente le groupement fonctionnel de la molécule amphiphile constituant la première moitié du couple récepteur-ligand, et 10 Rdd représente un radical (Ci-Cs) alkyle, un alkylsulfonate, l'atome d'hydrogène, un reste sucre, un hydroxyalkyl -(CH2)mOH primaire, secondaire ou tertiaire, avec m variant de 1 à 4, un polyoxyalkylène, notamment polyoxyéthylène, ayant 4 à 10 unités d'oxyde d'alkylène, un radical zwitterionique, un radical (CH2)t-NRflRf2, t nombre entier de 1 à 5, Rfl, Rf2 identiques ou différents étant l'atome d'hydrogène ou un radical 15 (C1-C4) alkyle. 13. Produit selon la revendication 9, caractérisé en ce que : a. la molécule amphiphile comprend en outre au moins un groupement fonctionnel constituant la première moitié d'un couple réactif 20 chimique, b. le support comprend en outre au moins un groupement fonctionnel fixé à sa surface constituant la deuxième moitié dudit couple réactif chimique, et c. la fixation de la molécule amphiphile sur le support est effectuée par 25 réaction chimique entre le(s) groupement(s) fonctionnel(s) de la molécule amphiphile et le(s) groupement(s) fonctionnel(s) fixé(s) sur le support. 2908414 55 14. Produit selon l'une quelconque des revendications 1 à 13, caractérisé en ce que ladite au moins une protéine membranaire est choisie parmi un antigène, un anticorps, une enzyme, un récepteur cellulaire, un canal ionique, ou une protéine membranaire 5 d'origine virale, bactérienne, ou eucaryote. 15. Procédé de préparation d'un produit selon l'une quelconque des revendications 1 à 14, comprenant : a) la fourniture d'au moins une protéine membranaire, d'un support et d'une 10 molécule amphiphile telle que définie dans l'une quelconque des revendications 2 à 5, et 10 à 13, b) la formation d'un complexe entre la molécule amphiphile et la protéine membranaire, et c) la fixation de la molécule amphiphile du complexe sur le support par une 15 liaison hydrophobe, une liaison ionique, une liaison spécifique de type récepteur-ligand entre au moins un groupement fonctionnel de la molécule amphiphile et au moins un groupement fonctionnel à la surface du support, ou une liaison covalente entre au moins un groupement fonctionnel réactif de la molécule amphiphile et au moins un groupement fonctionnel réactif à la 20 surface du support. 16. Utilisation d'un produit selon l'une quelconque des revendications 1 à 14 pour détecter la présence ou l'absence dans un échantillon biologique d'un ligand de ladite au moins une protéine membranaire. 17. Utilisation selon la revendication 16, caractérisée en ce que ladite au moins une protéine membranaire est un antigène membranaire d'un agent pathogène, ledit échantillon biologique est un échantillon de sérum, et ledit ligand à détecter est un anticorps dirigé contre ledit antigène. 25 5 2908414 56 18. Utilisation d'un produit selon l'une quelconque des revendications 1 à 14 pour cribler une banque de composés à la recherche de ligands de ladite au moins une protéine membranaire. 19. Utilisation d'un produit selon l'une quelconque des revendications 1 à 14, dans lequel ladite au moins une protéine est une enzyme, pour la transformation du substrat de ladite enzyme dans des conditions contrôlées. 10 20. Kit pour la mise en oeuvre du procédé selon la revendication 15, comprenant un support et une molécule amphiphile, caractérisé en ce que ladite molécule amphiphile et ledit support interagissent par une liaison hydrophobe, une liaison ionique, une liaison spécifique de type récepteur-ligand entre au moins un groupement fonctionnel de la molécule amphiphile et au moins un groupement fonctionnel à la surface du support, ou 15 une liaison covalente entre au moins un groupement fonctionnel réactif de la molécule amphiphile et au moins un groupement fonctionnel réactif à la surface du support. 21. Kit selon la revendication 20, caractérisé en ce que : a) la molécule amphiphile comprend en outre au moins un groupement 20 fonctionnel constituant la première moitié d'un couple de molécules récepteur-ligand, b) le support comprend en outre au moins un groupement fonctionnel fixé à sa surface constituant la deuxième moitié dudit couple de molécules récepteur-ligand, et 25 c) la fixation de la molécule amphiphile sur le support est médiée par une liaison spécifique de type récepteur-ligand entre le(s) groupement(s) fonctionnel(s) de la molécule amphiphile et le(s) groupement(s) fonctionnel(s) fixé(s) sur le support. 2908414 57 22. Kit selon la revendication 21, caractérisé en ce que le couple récepteur-ligand (groupement fonctionnel du polymère vinylique amphiphile / groupement fonctionnel fixé sur le support) est choisi parmi les couples (biotine/avidine), (glutathion/glutathion S-transférase, protéines fixant le glutathion, ou protéines de fusion incluant la glutathion 5 S-transférase), (calmoduline/ ATPase, protéine kinase, phosphodiestérase, ou neurotransmetteur), (L-arginine ou p-aminobenzamidine/protéase à sérine), (L-lysine/plasminogène (et activateur) ou ARNr), (AMP, ADP, ou ATP/ Enzyme à cofacteurs), (lectine/protéine glucannée, glucolipide, ou polysaccharide), (héparine/facteur de croissance et de coagulation, récepteur stéroïdien, endonucléase, 10 lipoprotéine, ou lipase), ou (Cibacron blue /enzymes à cofacteurs NAD ou NADP, albumine, facteur de coagulation, ou interféron), ou les couples inversés correspondants, (antigène/anticorps), (haptène/anticorps), (anticorps/antigène), (anticorps/haptène), (acide nitrilotriacétique (NTA)/métal de transition), (EDTA/métal de transition), (acide phénylboronique (APB)/acide salicylhydroxamique (ASH)), ou 15 (oligonucléotide/oligonucléotide complémentaire). 23. Kit selon la revendication 22, caractérisé en ce que la molécule amphiphile est un polymère de formule (I) ou (II) comprenant en outre un pourcentage compris entre 0 et * ù(CH2 CRaa)ùRbb 4% d'un monomère de formule (III) 20 dans laquelle Raa et Rbb sont tels que définis dans la revendication 12. 24. Kit selon la revendication 20, caractérisé en ce que : a) la molécule amphiphile comprend en outre au moins un groupement fonctionnel constituant la première moitié d'un couple réactif 25 chimique, b) le support comprend en outre au moins un groupement fonctionnel fixé à sa surface constituant la deuxième moitié dudit couple réactif chimique, et 2908414 58 c) la fixation de la molécule amphiphile sur le support est effectuée par réaction chimique entre le(s) groupement(s) fonctionnel(s) de la molécule amphiphile et le(s) groupement(s) fonctionnel(s) fixé(s) sur le support. 25. Utilisation d'une molécule amphiphile tel que définie dans l'une quelconque des revendications 2 à 5, et 10 à 13 pour complexer une protéine membranaire et la fixer sur un support. 10 26. Molécule amphiphile telle que définie dans l'une quelconque des revendications 2 à 5, comprenant en outre un groupement fonctionnel constituant la première moitié d'un couple de molécules récepteur-ligand. 27. Molécule amphiphile selon la revendication 26, caractérisée en ce que le 15 groupement fonctionnel est choisi parmi la biotine, l'avidine, le glutathion, la glutathion S-transférase, la calmoduline, une ATPase, une protéine kinase, une phosphodiestérase, un neurotransmetteur, la L-arginine, la p-aminobenzamidine, une protéase à sérine, la L-lysine, le plasminogène (et activateur), un ARNr, l'AMP, l'ADP, l'ATP, une enzyme à cofacteurs, une lectine, une protéine glucannée, un glucolipide, un polysaccharide, 20 l'héparine, un facteur de croissance et de coagulation, un récepteur stéroïdien, une endonucléase, une lipoprotéine, une lipase, du Cibacron blue , une enzyme à cofacteurs NAD ou NADP, l'albumine, un facteur de coagulation, un interféron, un antigène, un haptène, un anticorps, l'acide nitrilotriacétique (NTA), l'EDTA ou un oligonucléotide. 25 28. Molécule amphiphile selon la revendication 26, caractérisée en ce que la molécule amphiphile est un polymère de formule (I) ou (II) comprenant en outre un pourcentage *ù(CHZ-CRaa)* (III) compris entre 0 et 4% d'un monomère de formule Rbb 5 2908414 59 dans laquelle Raa et Rbb sont tels que définis dans la revendication 12. 29. Molécule amphiphile telle que définie dans l'une quelconque des revendications 2 à 5, comprenant en outre un groupement fonctionnel constituant la première moitié d'un 5 couple réactif chimique.