FR 2903421 A1 20080111 FR 0606252 A 20060710 La présente invention se rapporte au domaine de la microbiologie médicale et clinique. Plus particulièrement, l'invention s'intéresse aux moyens permettant de détecter et/ou discriminer des espèces bactériennes responsables d'infections qui, parce qu'elles sont résistantes à un ou plusieurs antibiotiques, rendent nécessaire l'adaptation des traitements thérapeutiques. De manière plus précise, la présente invention concerne un milieu de culture solide pour la détection et/ou la discrimination, chez les entérocoques résistants aux glycopeptides, des groupes d'espèces E. faecalis et/ou E. faecium appartenant aux groupes de résistance aux glycopeptides VanA/VanB, et E. gallinarum/E. casseliflavus appartenant au groupe de résistance aux glycopeptides VanC, ledit milieu comprenant, dans un milieu de culture sélectif pour entérocoques, au moins un substrat chromogène de l'a-glucosidase et au moins un activateur de réaction colorée choisi parmi le méthyl-a-glucoside et le glucosyl-a-glucoside, ou leurs polymères. Des souches d'entérocoques résistantes à la vancomycine (VRE) et, plus largement aux glycopeptides, ont été pour la première fois isolées en clinique dans les années 80. Depuis, l'incidence des VRE en milieu hospitalier n'a cessé de croître. Ces bactéries sont généralement responsables d'infections nosocomiales préoccupantes pour le personnel médical. De plus, l'émergence de VRE multirésistants, c'est-à-dire des entérocoques résistants non seulement à la vancomycine, mais également à un ou plusieurs antibiotiques non glycopeptidiques, représente un vrai enjeu thérapeutique pour les cliniciens. En effet, la 2903421 2 multiplicité et la dissémination des caractères de résistance entre souches d'entérocoques ont rendu certaines d'entre elles invulnérables aux thérapies standard. A la différence des mécanismes qui confèrent une résistance à la 5 plupart des familles d'antibiotiques, la résistance aux glycopeptides ne dépend pas du produit d'un gène unique mais nécessite l'expression régulée et interactive d'un ensemble de gènes étroitement associés : les opérons de résistance aux glycopeptides van. A ce jour, plusieurs types (ou groupes) de résistance aux 10 glycopeptides ont été identifiés chez les entérocoques, parmi lesquels les types VanA (opéron vanA), VanB (opéron vanB) et VanC (opéron vanC) sont les plus fréquemment rencontrés (voir Tableau I ci-dessous). Certains de ces groupes de gènes sont transmissibles entre souches bactériennes (on parle de résistance acquise), alors que d'autres sont 15 intrinsèques et non transmissibles (Tableau I). En définitive, au sein des VRE, les espèces d'entérocoques les plus fréquentes peuvent généralement être réparties en espèces ou groupes d'espèces plus spécifiquement associé(e)s à un type de résistance aux glycopeptides donné (Tableau I). 20 Tableau 1 Type de résistance Espèces Origine des gènes de aux glycopeptides d'entérocoques résistance VanA E. faecium, acquise E. faecalis VanB E. faecium, acquise E. faecalis VanC E. gallinarum, intrinsèque E. casseliflavus 2903421 3 Comme le montre le Tableau II ci-dessous, les types de résistance aux glycopeptides chez les entérocoques se distinguent non seulement par les séquences génétiques responsables (séquences des opérons van), leur support (plasmidique ou chromosomique) et les mécanismes 5 d'expression et de régulation de l'expression mis en jeu (résistance inductible ou constitutive), mais aussi par les niveaux de résistance aux glycopeptides associés. Tableau II Type de résistance CMI aux glycopeptides Vancomycine Teicoplanine VanA 64 -> 1024 16 -> 512 VanB 4 -> 1024 0,5 - 1 VanC 2 -> 32 0,5 - 1 CMI : concentration minimale inhibitrice en mg/I Afin de détecter et/ou discriminer les bactéries, on utilise communément des méthodes fondées sur la recherche de caractères soit 15 phénotypiques, soit génotypiques. Plusieurs de ces méthodes peuvent d'ailleurs être avantageusement combinées pour augmenter le pouvoir discriminant de l'analyse, en améliorant la sélectivité et/ou la sensibilité et/ou la spécificité de la détection. Dans le domaine particulier de la détection des VRE, une méthode 20 phénotypique connue permet de discriminer, par coloration spécifique, les cultures de VRE VanC et les cultures de VRE non-VanC (qui ne se colorent pas). Cette méthode, mise en oeuvre en milieu liquide (tube ou puits), utilise une acidification du milieu liée à la présence de méthyl-a- 10 2903421 4 glucoside. Dans ce test, le sucre est utilisé à une concentration de 20 g/I, en présence d'un indicateur de pH servant à révéler l'acidification du milieu. Toutefois, le pouvoir discriminant de ce test demande encore à être 5 amélioré, tant en termes de sélectivité que de spécificité, et ce, d'une part afin d'éliminer les résultats faux-positifs ou faux-négatifs susceptibles d'être obtenus, d'autre part afin de permettre la détection des VRE au niveau de l'espèce, ce qui est impossible avec le test actuel. Il existe donc actuellement un besoin pour un test de détection des 10 VRE les plus fréquemment rencontrés en clinique, qui soit à la fois simple, rapide, sensible, sélectif, spécifique et fiable, pour permettre la détection discriminante des VRE au niveau de l'espèce et au niveau du type de résistance aux glycopeptides associé. C'est précisément à ce besoin que répond la présente invention en 15 proposant des moyens phénotypiques utilisables en milieu solide (sur boîtes) pour la détection efficace et discriminante des VRE. A cet égard, on notera que, comme le montrent l'exemple et le Tableau III ci-dessous, la technique du test en tube de l'état de la technique, si elle est appliquée telle quelle en milieu solide, ne conduit 20 qu'à peu de coloration des colonies, ce qui ne permet donc pas de discriminer ou différencier les VRE. Par ailleurs, il est ici montré (voir Tableau III infra) qu'un substrat chromogène utilisé en milieu solide ne permet pas, à lui seul, de détecter les VRE de manière satisfaisante. 25 Les résultats rapportés dans le cadre de l'invention montrent que la combinaison en tube du méthyl-a-glucoside et d'un indicateur de pH ne peut pas être simplement remplacée, en milieu solide, par un substrat chromogène de l'a-glucosidase, contrairement à ce que l'homme du métier aurait pressenti en partant de l'hypothèse vraisemblable que la 2903421 5 détection se faisait par simple mise en évidence de la présence ou de l'absence du gène codant l'enzyme a-glucosidase. En outre, la présente invention montre que des combinaisons différentes de deux substrats au moins de l'a-glucosidase, dont l'un est 5 chromogène, conduisent, en milieu solide, à des résultats tout à fait inattendus dans la mesure où la coloration s'inverse en fonction des substrats mis en oeuvre et de leurs combinaisons. On notera d'ailleurs que des substrats de l'a-glucosidase autres que ceux explicitement décrits ci-dessous, ont été testés, sans succès, par l'Inventeur. Par exemple, 10 contrairement au maltose visé ci-dessous, le tréhalose ne permet pas d'obtenir des résultats intéressants en termes de détection et différenciation des espèces ou groupes d'espèces de VRE (données non montrées). Finalement, les résultats obtenus dans le cadre de l'invention sont 15 non seulement surprenants et inattendus, mais aussi particulièrement avantageux car ils permettent de détecter de manière discriminante les VRE VanC par rapport aux VRE VanA/VanB (et réciproquement), ou bien l'espèce E. faecalis ou encore l'espèce E. faecium, par rapport aux autres espèces de VRE. 20 Ainsi, un premier aspect de la présente invention concerne un milieu de culture solide pour la détection et/ou la discrimination des groupes d'espèces d'entérocoques résistants aux glycopeptides : E. faecalis et/ou E. faecium, appartenant aux groupes de résistance aux glycopeptides VanA/VanB ; et 25 E. gallinarum/E. casseliflavus appartenant au groupe de résistance aux glycopeptides VanC, ledit milieu comprenant, dans un milieu de culture sélectif pour entérocoques, au moins un substrat chromogène de l'a-glucosidase et au 2903421 6 moins un activateur de réaction colorée choisi parmi le méthyl-a-glucoside ou ses polymères et le glucosyl-a-glucoside ou ses polymères. L'utilisation, dans un milieu solide, d'un substrat chromogène de l'aglucosidase associé à au moins un activateur de réaction colorée, telle 5 que cela est décrit pour la première fois ici, présente notamment l'avantage de permettre l'élaboration de milieux solides qui rendent possible la différenciation des espèces ou groupes d'espèces de VRE dès l'isolement, sans avoir à effectuer de tests supplémentaires. Par polymères du méthyl-a-glucoside , on désigne ici les 10 oligosides et polyosides adaptés à une utilisation dans un milieu de culture bactérienne solide et susceptibles de libérer, après rupture des liaisons osidiques (par exemple, par dégradation enzymatique), le méthyl-aglucoside. Un exemple typique d'un tel polymère est le méthyl-amaltoside. 15 Par polymères du glucosyl-a-glucoside , on désigne ici les oligosides et polyosides adaptés à une utilisation dans un milieu de culture bactérienne solide et susceptibles de libérer, après rupture des liaisons osidiques (par exemple, par dégradation enzymatique), le glucosyl-aglucoside, plus communément appelé maltose. 20 Un activateur de réaction colorée est, au sens de la présente invention, un composé qui a pour fonction d'améliorer la qualité de la réaction observée. Ce composé est choisi parmi le méthyl-a-glucoside ou ses polymères et le glucosyl-a-glucoside ou ses polymères. Comme il ressort des résultats détaillés dans le Tableau III (voir l'exemple ci- 25 dessous), la présence d'au moins un activateur de réaction colorée dans le milieu de culture solide selon la présente invention est essentielle pour détecter de manière discriminante les espèces ou groupes d'espèces de VRE. 2903421 7 La présente invention rend ainsi possible la détection et, avantageusement, l'identification au niveau de l'espèce ou du groupe d'espèces, une colonie colorée de VRE, même en présence de milliers d'autres colonies susceptibles de se développer sur le milieu sélectif 5 solide objet de l'invention. En fait, les colonies de VRE détectées par le milieu de l'invention sont colorées d'une certaine couleur tandis que les autres microorganismes apparaissent de couleurs différentes ou sont incolores. En outre, la détection des colonies de VRE est, dans le cadre de la 10 présente invention, directe en ce sens qu'elle ne nécessite aucun acte ou intervention, telle que l'utilisation d'un révélateur quelconque ou celle d'une lumière particulière, postérieurement à la culture des bactéries. Selon un mode de réalisation, le milieu de culture objet de la présente invention comprend au moins un substrat chromogène de l'a- 15 glucosidase et le méthyl-a-glucoside ou l'un de ses polymères, utilisé à titre d'activateur de réaction colorée à une concentration d'au moins 10 g/I environ, pour la détection et/ou la discrimination par coloration des espèces E. gallinarum/E. casseliflavus appartenant au groupe de résistance aux glycopeptides VanC. Dans ces conditions, c'est par la 20 coloration bien particulière et spécifique des colonies de E. gallinarum/E. casseliflavus que la différenciation est rendue possible. Cette couleur, amenée par le substrat chromogène, ne concernera que les colonies de E. gallinarum/E. casseliflavus, d'où la notion de spécificité de la coloration. De manière préférée, la concentration du méthyl-a-glucoside dans 25 le milieu est d'au moins 20 g/I environ. De préférence encore, cette concentration est de 20 g/I environ. Selon un autre mode de réalisation, le milieu de culture de l'invention comprend au moins un substrat chromogène de l'a-glucosidase et le glucosyl-a-glucoside (maltose) ou l'un de ses polymères, utilisé à titre 2903421 8 d'activateur de réaction colorée à une concentration d'au moins 0,1 g/I environ, pour la détection et/ou la discrimination par coloration de l'espèce E. faecalis appartenant aux groupes de résistance aux glycopeptides VanA/VanB. Ici, seules les colonies des souches de l'espèce E. faecalis 5 sont de la couleur amenée par le substrat chromogène sur les boîtes. De manière préférée, la concentration du maltose dans le milieu est d'au moins 0,2 g/I environ. De préférence encore, cette concentration est de 0,2 g/I environ. Selon encore un autre mode de réalisation, le milieu de culture de 10 l'invention comprend au moins un substrat chromogène de l'a-glucosidase et, à titre d'activateurs de réaction colorée, le méthyl-a-glucoside ou l'un de ses polymères, utilisé à une concentration d'au moins 10 g/1 environ, et le glucosyl-a-glucoside ou l'un de ses polymères, utilisé à une concentration d'au moins 0,1 g/I environ, pour la détection et/ou la 15 discrimination par l'absence de coloration de l'espèce E. faecium appartenant aux groupes de résistance aux glycopeptides VanA/VanB. Dans ce cas, les colonies des souches des espèces E. faecalis et E. gallinarum/E. casseliflavus sont colorées grâce au substrat chromogène sur les boîtes. Seules les colonies des souches de E. faecium ne sont pas 20 colorées grâce à ce substrat, ce qui permet une différenciation qualifiée de différenciation par défaut de coloration , c'est-à-dire par absence de la coloration amenée par le substrat chromogène, étant entendu que les colonies de E. faecium pourront apparaître d'une couleur différente si un ou plusieurs autres composants colorants sont ajoutés dans le milieu. 25 De manière préférée, les concentrations du méthyl-a-glucoside et du maltose dans le milieu sont respectivement d'au moins 20 g/1 environ et d'au moins 0,2 g/I environ. De préférence encore, ces concentrations sont respectivement de 20 g/I environ et 0,2 g/1 environ. 2903421 9 Ainsi, selon les modes de réalisation mis en oeuvre, le milieu de culture objet de l'invention permet de discriminer aisément une espèce ou un groupe d'espèces de VRE, par simple coloration ou coloration différente ou encore absence de coloration des colonies présentes sur le 5 milieu de culture solide. Le milieu de culture sélectif pour entérocoques comprend divers facteurs sélectifs pour entérocoques, bien connus de l'homme du métier. Par exemple, des inhibiteurs des bactéries à Gram négatif permettent d'améliorer les propriétés du milieu de culture et d'isoler plus facilement 10 les entérocoques (bactéries à Gram positif). Il peut en outre être intéressant, afin d'optimiser les résultats donnés par le milieu de culture selon l'invention, de rajouter des facteurs connus comme étant sélectifs pour VRE ; ces facteurs permettront d'obtenir un milieu de culture solide spécifique pour VRE. De préférence, 15 un tel milieu sélectif et spécifique pour VRE comprend au moins un antibiotique glycopeptidique. Dans un mode de réalisation, ledit antibiotique glycopeptidique est choisi parmi la vancomycine, la teicoplanine et leurs combinaisons. Avantageusement, la vancomycine est utilisée à une concentration 20 allant de 2 à 15 mg/I environ, de préférence à une concentration allant de 3 à 9 mg/I environ, de préférence encore à une concentration allant de 4 à 8 mg/I environ, avec une valeur particulièrement préférée à 6 mg/I environ. La teicoplanine est, quant à elle, utilisée à une concentration allant de 0,5 à 16 mg/I environ, de préférence à une concentration allant de 1 à 25 10 mg/I environ, de préférence encore à une concentration allant de 2 à 8 mg/I environ, avec une valeur particulièrement préférée à 5 mg/I environ. Bien entendu, l'homme du métier est en tous les cas capable de déterminer et, si nécessaire, tester les concentrations ou gammes de concentrations du ou des glycopeptide(s), appropriées pour mettre en oeuvre la présente invention (d'après ses connaissances générales, en 2903421 10 recherchant dans la littérature et/ou en se fondant sur le Tableau II qui précède).. L'agent chromogène substrat de l'a-glucosidase comprend de préférence un chromophore précipitable, qui est libéré par l'hydrolyse du 5 substrat par son enzyme. Ainsi, la colonie bactérienne se colore en fonction du chromophore libéré. Le chromophore libéré étant solide dans le milieu de culture, il reste donc localisé au niveau de la colonie où il a été libéré. De façon préférée, ledit chromophore est choisi parmi les dérivés 10 indoxyle, halogéno-indoxyle (bromo-indoxyle, chloro-indoxyle, fluoroindoxyle, iodo-indoxyle, dichloro-indoxyle, chloro-bromo-indoxyle, trichloro-indoxyle), le méthyl-indoxyle, ou hydroxy-quinoline. Des dérivés particulièrement préférés sont choisis parmi les dérivés suivants : 6-chloro-indoxyle, 5-bromo-indoxyle, 3-bromo-indoxyle, 6-fluoro-indoxyle, 5- 15 iodo-indoxyle, 4,6-dichloro-indoxyle, 6,7-dichloro-indoxyle, 5-bromo-4-chloro-indoxyle, 5-bromo-6-chloro-indoxyle, 4,6,7-trichloro-indoxyle, N-méthyl-indoxyle et 8-hydroxy-quinoline. Plus préférentiellement, le substrat chromogène de l'a-glucosidase est un 5-bromo-4-chloro-indoxyl-a-glucoside. 20 Le substrat chromogène est typiquement utilisé à une concentration allant de 0,01 à 0,5 g/I environ. Une concentration préférée se situe à 0,1 g/I environ. II est précisé que le substrat chromogène présent dans le milieu de culture selon la présente invention peut être remplacé, ou associé, à au 25 moins un substrat fluorogène. Ce substrat est formé par couplage d'un substrat de l'a-glucosidase avec un fluorophore tel que le 4-méthyl umbelliféryl. Un deuxième aspect de la présente invention concerne l'utilisation d'un milieu de culture tel que défini ci-dessus, pour la détection et/ou la 2903421 11 discrimination des groupes d'espèces d'entérocoques résistants aux glycopeptides : - E. faecalis et/ou E. faecium, appartenant aux groupes de résistance aux glycopeptides VanA/VanB ; et 5 E. gallinarum/E. casseliflavus appartenant au groupe de résistance aux glycopeptides VanC. Un troisième aspect de l'invention concerne un procédé de détection et/ou discrimination, dans un échantillon, des groupes d'espèces d'entérocoques résistants aux glycopeptides : 10 E. faecalis et/ou E. faecium, appartenant aux groupes de résistance aux glycopeptides VanA/VanB ; et E. gallinarum/E. casseliflavus appartenant au groupe de résistance aux glycopeptides VanC, caractérisé en ce qu'il comprend au moins les étapes suivantes : 15 a) l'inoculation d'un milieu de culture tel que défini ci-dessus, avec ledit échantillon ou un inoculum dérivé de celui-ci ; b) la détection, sur ledit milieu de culture, de la présence de groupes d'espèces d'entérocoques résistants aux glycopeptides E. faecalis/E. faecium et E. gallinarum/E. casseliflavus ; et 20 c) de façon optionnelle, la différenciation des espèces E. faecalis et/ou E. faecium et/ou E. gallinarum/E. casseliflavus, des autres microorganismes présents sur ledit milieu de culture. L'utilisation du milieu de culture conforme à l'invention peut être avantageusement précédée d'une étape d'enrichissement réalisée à l'aide 25 de méthodes connues de l'homme du métier. On peut utiliser en particulier de l'eau peptonée alcaline à 1 g % de NaCl (pH 8,6), ou de l'eau peptonée alcaline à 3 g % de NaCl. L'objet de la présente invention ne se limite pas à la description ci-dessus. D'autres modes de réalisation et avantages de la présente 30 invention pourront ressortir de l'exemple ci-dessous, fourni ici à titre 2903421 12 purement illustratif. Il est clair que ni l'objet ni la portée de la présente invention ne sont limités par cet exemple. EXEMPLE a) Base du milieu de culture solide (en ail) : - Peptone 10 - Extrait de levure 5 -Agar 15 10 b) Glvcopeptides : Plusieurs séries d'expériences ont été réalisées : certaines séries ont été mises en oeuvre sur un milieu sélectif pour entérocoques (dépourvu de glycopeptides), d'autres sur un milieu sélectif pour VRE, contenant 6 mg/I 15 de vancomycine. Les résultats rapportés dans le Tableau III ci-dessus reflètent les résultats moyens obtenus sur l'ensemble des séries. c) Autres inqrédients (en pl) : Voir le Tableau III ci-après. 20 X-a-glucoside : substrat chromogène de l'a-glucosidase. Les résultats rapportés dans le Tableau III suivant ont été obtenus après ensemencement des bactéries sur les milieux de culture indiqués, suivi dans tous les cas d'une incubation de 24 heures environ à 37 C 25 environ. 5 5 Tableau III SUBSTRAT(S) DE E. faecium VanA/VanB VanC RESULTATS L'a-GLUCOSIDASE PRESENT(S) E. faecalis DANS LE MILIEU E.casseliflavus E. gallinarum aW Technique Méthyl-a-glucoside - - +/- + Détection discriminante des VanC Ea versus les non VanC w connue 20 g/1 + indicateur PH Extension de la Glucosyl-a- + + + + Aucune discrimination technique Glucoside (maltose) - ni entre les espèces connue 20 g/1 + indicateur - ni entre les groupes de résistance pH Méthyl-a-glucoside 20 g/1 - - - - Discrimination médiocre ou nulle, + indicateur pH surtout pour les souches à croissance difficile X-a-glucoside 0,1 g/1 - +/- -Discrimination médiocre, voire nulle - entre les espèces - entre les groupes de résistance X-a-glucoside 0,1 g/1 - ++ - - Détection discriminante de l'espèce Glucosyl-a-Glucoside (maltose) 0,2 gll E. faecalis X-a-glucoside 0,1 g/1 - -- - Discrimination médiocre, voire nulle Méthyl-a-glucoside 0,1 g/1 - entre les espèces - entre les groupes de résistance X-a-glucoside 0,1 g/1 - - ++ + Détection des VanC mais pas Méthyl-a-glucoside 1 g/1 suffisamment discriminante X-a-glucoside 0,1 g/1 - - + + Détection discriminante des VanC Méthyl-a-glucoside 20 g/1 versus les non VanC X-a-glucoside 0,1 g/1 - ++ ++ + Détection discriminante de l'espèce Méthyl-a-glucoside 20 g/1 E. faecium Glucos 1-a-Glucoside maltose 0,2 1 + ;intensité de la coloration : pas de coloration REVENDICATIONS 1. Milieu de culture solide pour la détection et/ou la discrimination des groupes d'espèces d'entérocoques résistants aux glycopeptides : E. faecalis et/ou E. faecium, appartenant aux groupes de résistance aux glycopeptides VanANanB ; et E. gallinarum/E. casseliflavus appartenant au groupe de résistance aux glycopeptides VanC, ledit milieu comprenant, dans un milieu de culture sélectif pour entérocoques, au moins un substrat chromogène de l'a-glucosidase et au moins un activateur de réaction colorée choisi parmi le méthyl-a-glucoside ou ses polymères et le glucosyl-a-glucoside ou ses polymères. 2. Milieu de culture selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend au moins un substrat chromogène de l'a-glucosidase et le méthyl-a-glucoside ou l'un de ses polymères, utilisé à une concentration d'au moins 10 g/I environ, pour la détection et/ou la discrimination des espèces E. gallinarum/E. casseliflavus appartenant au groupe de résistance aux glycopeptides VanC. 3. Milieu de culture selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend au moins un substrat chromogène de l'a-glucosidase et le glucosyl-a-glucoside ou l'un de ses polymères, utilisé à une concentration d'au moins 0,1 g/I environ, pour la détection et/ou la discrimination de l'espèce E. faecalis appartenant aux groupes de résistance aux glycopeptides VanA/VanB. 4. Milieu de culture selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend au moins un substrat chromogène de l'a-glucosidase, le 2903421 15 méthyl-a-glucoside ou l'un de ses polymères, utilisé à une concentration d'au moins 10 g/I environ, et le glucosyl-a-glucoside ou l'un de ses polymères, utilisé à une concentration d'au moins 0,1 g/I environ, pour la détection et/ou la discrimination de l'espèce E. faecium appartenant aux 5 groupes de résistance aux glycopeptides VanA/VanB. 5. Milieu de culture selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que ledit milieu de culture sélectif pour entérocoques est un milieu sélectif pour entérocoques résistants aux glycopeptides 10 comprenant au moins un antibiotique glycopeptidique. 6. Milieu de culture selon la revendication 5, caractérisé en ce que ledit antibiotique glycopeptidique est choisi parmi la vancomycine, la teicoplanine et leurs combinaisons. 15 7. Milieu de culture selon la revendication 6, caractérisé en ce que la vancomycine est utilisée à une concentration allant de 2 à 15 mg/I environ, de préférence à une concentration allant de 3 à 9 mg/I environ, de préférence encore à une concentration allant de 4 à 8 mg/I environ, avec 20 une valeur particulièrement préférée à 6 mg/I environ 8. Milieu de culture selon la revendication 6, caractérisé en ce que la teicoplanine est utilisée à une concentration allant de 0,5 à 16 mg/I environ, de préférence à une concentration allant de 1 à 10 mg/I environ, 25 de préférence encore à une concentration allant de 2 à 8 mg/I environ, avec une valeur particulièrement préférée à 5 mg/I environ. 9. Milieu de culture selon l'une quelconque des revendications 1 à 8, caractérisé en ce que ledit substrat chromogène libère, par hydrolyse, un 2903421 16 chromophore précipitable choisi parmi les dérivés indoxyle, halogénoindoxyle (bromo-indoxyle, chloro-indoxyle, fluoro-indoxyle, iodo-indoxyle, dichloro-indoxyle, chloro-bromo- indoxyle, tri-chloro-indoxyle), méthylindoxyle, ou hydroxy-quinoline, en particulier les dérivés suivants : 6- 5 chloro-indoxyle, 5-bromo-indoxyle, 3-bromo-indoxyle, 6- fluoro-indoxyle, 5-iodo-indoxyle, 4,6-dichloro-indoxyle, 6,7-dichloro-indoxyle, 5-bromo-4-chloro-indoxyle, 5-bromo-6-chloro-indoxyle, 4,6,7-trichloro-indoxyle, N-méthyl-indoxyle ou 8-hydroxy-quinoline. 10 10. Milieu de culture selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, caractérisé en ce que ledit substrat chromogène de l'a-glucosidase est un 5-bromo-4-chloro-indoxyl-a-glucoside. 11. Utilisation d'un milieu de culture selon l'une quelconque des 15 revendications 1 à 10, pour la détection et/ou la discrimination des groupes d'espèces d'entérocoques résistants aux glycopeptides : E. faecalis et/ou E. faecium, appartenant aux groupes de résistance aux glycopeptides VanA/VanB ; et E. gallinarum/E. casseliflavus appartenant au groupe de 20 résistance aux glycopeptides VanC. 12. Procédé de détection et/ou discrimination, dans un échantillon, des groupes d'espèces d'entérocoques résistants aux glycopeptides : E. faecalis et/ou E. faecium, appartenant aux groupes de 25 résistance aux glycopeptides VanA/VanB ; et E. gallinarum/E. casseliflavus appartenant au groupe de résistance aux glycopeptides VanC, caractérisé en ce qu'il comprend au moins les étapes suivantes : 2903421 17 a) l'inoculation d'un milieu de culture tel que défini dans l'une quelconque des revendications 1 à 10 avec ledit échantillon ou un inoculum dérivé de celui-ci ; b) la détection, sur ledit milieu de culture, de la présence de 5 groupes d'espèces d'entérocoques résistants aux glycopeptides E. faecalis/E. faecium et E. gallinarum/E. casseliflavus ; et c) de façon optionnelle, la différenciation des espèces E. faecalis et/ou E. faecium et/ou E. gallinarum/E. casseliflavus, des autres microorganismes présents sur ledit milieu de culture. 10