FR 2899902 A1 20071019 FR 0603410 A 20060418 L'invention concerne des protéines de fusion protéine N-protéine d'intérêt, éventuellement sous forme de complexes solubles protéine N-protéine d'intérêt/protéine P, les protéines N et P étant des protéines d'un virus de la famille des Paramyxoviridae. Lorsque la protéine d'intérêt est un antigène, l'invention concerne également des compositions vaccinales et des réactifs de diagnostic comprenant ces protéines de fusion protéine N-antigène ou ces complexes protéine N-antigène/protéine P. La fusion protéine N-protéine d'intérêt peut également être utilisée comme vecteur pour transporter, dans les cellules, des molécules d'intérêt thérapeutiques tels que des antiviraux ou des anticancéreux. Le virus respiratoire syncytial (VRS ou RSV en anglais) est responsable de la bronchiolite du nourrisson (500 000 enfants atteints chaque année en France). Il n'existe aucun traitement préventif (vaccin) ni d'antiviral réellement efficace contre cette maladie. La même maladie existe chez les bovins, atteignant 70% des veaux la première année, la mortalité pouvant atteindre 20%, et le VRS bovin est le principal agent responsable de maladies respiratoires graves chez le veau. Le tableau clinique est identique à celui de l'homme. Ce virus appartient à l'ordre des Mononegavirales, à la famille des Paramyxoviridae. Les particules virales sont entourées par une enveloppe lipidique contenant deux protéines majeures, la protéine de fusion (F) et la glycoprotéine (G). A l'intérieur des particules, on trouve un ARN simple brin de polarité négative d'environ 15 kb, associé à la protéine de nucléocapside (N). Ce complexe ARN-N constitue la matrice du complexe polymérase constitué de la protéine L (large fragment) qui est l'ARN polymérase ARN-dépendante, et son co-facteur P (phosphoprotéine) également présents dans les virions. Jusqu'alors, il n'était pas possible de purifier la protéine N sous forme soluble, car exprimée sous forme recombinante, elle s'associe spontanément et de façon non spécifique aux ARNs cellulaires, formant des structures de très haut poids moléculaire et non solubles (Méric et al. 1994 Virus Res. 31(2):187- 201 ; Bhella et al., 2002 Journal of General Virology; 83, 1831-1839). Les inventeurs ont mis au point un procédé d'obtention de la protéine de nucléocapside (N) du virus respiratoire syncytial (VRS) sous forme recombinante soluble ayant une structure en anneaux et son utilisation en tant que vaccin. La protéine N se présente sous la forme d'anneaux très réguliers d'environ 7 nm de diamètre, contenant 10 molécules de protéine N et un ARN d'origine bactérienne d'environ 70 bases. La protéine N est co-exprimée chez E. coli avec la phosphoprotéine (P) du VRS, plus particulièrement sa partie C-terminale, fusionnée à la glutathion-S-transferase (GST), qui permet de purifier les complexes par affinité avec des billes de sepharose-glutathion. Ces structures en anneaux induisent une forte réponse immunitaire chez la souris, notamment par administration intra-nasale, y compris en l'absence d'adjuvant. Ce procédé a fait l'objet d'une demande de brevet déposée en France le 29 avril 2005 sous le numéro FR 05 04 426. Les Inventeurs ont maintenant mis en évidence qu'il est possible d'utiliser ces structures en anneaux en tant que vecteur vaccinal. La faisabilité de cette technologie a été démontrée en fusionnant la protéine N à une autre protéine, la GFP (green fluorescent protein) par construction plasmidique. Elle a été co-exprimée chez E. coli avec la partie C-terminale de la protéine P (acides aminés 161-241) fusionnée à la GST. L'analyse des structures purifiées au microscope électronique a montré qu'ils se présentent à nouveau sous forme d'anneaux ayant un diamètre d'environ 10 nm. Les protéines de fusion N-GFP sont fluorescentes. Les anneaux N-ARN étant extrêmement immunogènes, les Inventeurs ont injecté ces structures à des souris afin de voir si elles pouvaient induire une forte réponse anticorps, notamment contre la GFP. Les réponses ont été comparées avec celles obtenues contre de la protéine GFP normale également purifiée sous forme recombinante à partir d'E. coll. Les résultats obtenus ont montré une réponse contre la GFP nettement plus forte (40 fois environ pour la première expérience) lorsqu'on utilise les structures en anneaux. La possibilité de fusionner une protéine d'intérêt à la protéine N et de purifier les complexes sous forme d'anneaux solubles à une échelle industrielle pour un coût modéré (notamment chez E. coli) pourra ainsi permettre de développer des vaccins contre tout type d'épitope peu ou pas immunogène lorsqu'il est injecté seul. Les Inventeurs ont en outre mis en évidence que ces structures protéine N-GFP/protéine P s'adsorbent et sont internalisées efficacement par différents types cellulaires. Ces résultats mettent donc en lumière l'intérêt de ces fusions protéine N-protéine d'intérêt, éventuellement sous forme de complexe protéine N-protéine d'intérêt/protéine P, en tant que vecteur d'antigène en vaccination, ou plus généralement de molécules d'intérêt thérapeutique. Définitions La famille des Paramyxoviridae regroupe les sous-familles des Paramyxovirinae et des Pneumovirinae. Les Paramyxovirinae incluent les gènes Respirovirus, dont le virus prototype est le virus de Sendai, Rubulavirus (notamment le virus des oreillons), Morbilivirus, tels que le virus de la rougeole. Chacun des genres Respirovirus et Rubulavirus regroupe des souches du virus parainfluenza. La sous-famille des Pneumovirinae regroupe deux genres, les Pneumovirus et les Metapneumovirus, ce dernier incluant le Metapneumovirus humain. Le virus respiratoire syncytial (VRS) humain constitue le virus prototype du genre Pneumovirus appartenant à la sous-famille des Pneumovirinae. Les Pneumovirus incluent également les souches bovine et murine du VRS. Sans autre précision, par virus respiratoire syncytial on entend d'une manière générale le VRS, quelle que soit la forme (humaine, bovine...), le sous-groupe (par exemple les sous-groupes A, B et S identifiés chez le VRS humain) ou la souche considérée. Par protéine N on désigne la protéine de nucléocapside des Paramyxoviridae qui forme des structures hélicoïdales pour entourer le génome viral. La protéine N du VRS humain souche Long présente une séquence de 391 acides aminés qui est décrite par SEQ ID NO:1. La protéine N du VRS bovin comporte également 391 acides aminés (voir SEQ ID NO: 2). Une protéine N du virus de Sendai (souche Hamamatsu), du virus de la rougeole (Souche Edmonston B), du virus des oreillons (souche SBL-1), et du Metapneumovirus humain (souche 00-1) sont également décrites dans la base de données Swissprot sous les numéros d'accès Q9DUE3 (SEQ ID NO:3), Q89933 (SEQ ID NO:4), P21277 (SEQ ID NO:5), et Q91 F57 (SEQ ID NO:6), respectivement. L'expression protéine P désigne la Phosphoprotéine ou protéine P faisant partie du complexe Polymérase d'un virus de la famille des Paramyxoviridae. La protéine P est un co-facteur de la polymérase (réplicase/transcriptase) virale et peut être phosphorylée. Les séquences de protéines P de Paramyxoviridae sont connues de l'homme du métier. Par exemple la protéine P du VRS humain souche Long présente une séquence de 241 acides aminés qui a été déposée dans la base de données Swissprot sous le numéro d'accès P12579. Cette séquence est montrée dans la séquence SEQ ID NO:7. La protéine P du VRS bovin comporte également 241 acides aminés (SEQ ID NO:8). Une protéine P du virus de Sendai (souche Harris), du virus de la rougeole (Souche Edmonston B), du virus de oreillons (souche SBL-1), et du Metapneumovirus humain (souche 00-1) sont également décrites dans la base de données Swissprot sous les numéros d'accès PO4859 (SEQ ID NO:9), CAA91364 (SEQ ID NO:10), P19717 (SEQ ID NO:11), et Q91KZ5 (SEQ ID NO:12), respectivement. L'expression protéine P peut désigner une protéine P entière, une protéine P tronquée ou un fragment de la protéine P. La protéine P des Paramyxoviridae forme des homo-oligomères, en particulier des homo-tétramères par exemple chez le virus de Sendai ou le VRS. Pour le VRS, un domaine de la protéine P capable de s'oligomériser (oligomérisation P-P) a été cartographié au niveau des acides aminés 120 à 150 de cette protéine (Castagné et al., 2004 ; Journal of General Virology ; 85 : 1643-1653). Ainsi, par exemple, le fragment constitué par les acides aminés 161 à 241 de la protéine P du VRS ne forme pas d'oligomères. Le domaine d'oligomérisation de la protéine P du virus de Sendai a été décrit par Tarbouriech et al. (2000; Nature Structural Biology ; 7, 777-781) comme étant constitué par les résidus 320 à 446 de la protéine P. D'autre part, la région d'oligomérisation P à été identifiée au niveau des acides arninés 304-376 pour la protéine P du virus de la rougeole (Johansson et al., 2003 ; Journal of Biological Chemistry ; 278, p 44567-44573). Les séquences des protéines P et N décrites ci-dessus ont un caractère illustratif, ces séquences étant susceptibles de présenter des variations en fonction de la souche particulière considérée pour un virus donné. Ainsi, les positions d'acides aminés mentionnées dans la suite de la demande sont indiquées par rapport à ces séquences de référence. L'homme du métier est tout à fait à même d'identifier les domaines correspondants dans des souches de virus autres que celles exemplifiées, notamment à l'aide d'alignements de séquence réalisés par exemple avec des logiciels tels que Clustalw. Les séquences codantes de ces protéines N et P de virus de la famille des Paramyxoviridae sont également connues de l'homme du métier. Par protéine étiquette , aussi appelée protéine tag , on désigne une protéine qui est utilisée en fusion avec une protéine d'intérêt pour en faciliter la purification. Des protéines étiquettes sont connues de l'homme du métier. Des exemples de protéines étiquette incluent la gluthation-S-transférase (GST) ou les tag histidine qui sont des séquences comprenant généralement un enchaînement de 4 à 10 résidus histidine. Une protéine d'intérêt désigne une protéine, un polypeptide ou un peptide (ces termes étant employés indifféremment l'un de l'autre) quelconque, comme par exemple une protéine marqueur, ou une protéine d'intérêt thérapeutique ou vaccinal. Une protéine d'intérêt peut être par exemple la protéine GFP ("Green Fluorescent Protein") codée par le gène rapporteur gfp. Une protéine d'intérêt thérapeutique peut par exemple être un polypeptide anti-angiogénique, par exemple RGD ou une séquence incluant RGD, l'endostatine, ou un polypeptide pro-apoptotique tel que l"'apoptosis inducing factor" (AIF), qui peuvent être utilisés comme agents anticancéreux, un polypeptide capable d'interagir spécifiquement avec des protéines virales et interférer avec les rnécanismes permettant la réplication d'un virus, ou une toxine. La protéine d'intérêt hétérologue peut être un antigène, en particulier une protéine antigénique d'intérêt vaccinal. Par antigène ou Ag , on entend une séquence de nature peptidique ou glycopeptidique susceptible d'induire une réponse immunitaire chez un hôte auquel elle est administrée. Ainsi, un antigène peut être une protéine ou une partie de protéine (polypeptide) ou encore un petit peptide correspondant potentiellement à un épitope. Un épitope est la partie d'un antigène qui est reconnue par un anticorps ou un récepteur lymphocytaire. Un épitope (linéaire) est généralement constitué d'une séquence de 7 à 15 acides aminés. Un antigène au sens de l'invention peut être constitué d'un épitope, comprendre un épitope, ou être une protéine antigénique. Préférentiellement, l'antigène est un antigène dérivé d'un microorganisme pathogène, tel qu'un virus, une bactérie, un champignon, ou un organisme métazoaire ou protozoaire parasite. Des exemples de virus incluent les virus de l'immunodéficience humaine (HIV), de l'hépatite B (HBV), de l'hépatite C (HCV), de l'herpès (Herpes simplex), de la grippe (virus influenza ou de la grippe aviaire), du Nil occidental, de la fièvre jaune, le cytomégalovirus, le papillomavirus (HPV), le virus d'Epstein-Barr (EBV), le VRS, le virus de la Dengue et le virus Chikungunya. Des exemples de parasites incluent les parasites responsables de la malaria (Plasmodium, en particulier P. falciparum, P. vivax, P. ovale et P. malariae), et de trypanosomiase (en particulier, maladie du sommeil (T. brucei) et maladie de Chagas (T. cruzi)). Le pathogène peut aussi être un champignon tel que Candida albicans, 25 responsable de la candidose. Des bactéries peuvent être par exemple Helicobacter pylori, Clostridium tetani, Mycobacterium tuberculosis, ou Mycobacterium bovin. Par exemple un antigène peut être la GFP, une glycoprotéine virale telle que la protéine de fusion (F) du RSV, l'hémagglutinine du virus de la grippe, ou 30 la protéine gp120 du VIH, une anatoxine bactérienne telle que l'anatoxine tétanique, ou un épitope de ceux-ci. Protéines de fusion protéine N-protéine d'intérêt et leur préparation L'invention concerne une protéine de fusion protéine N-protéine d'intérêt, comprenant une protéine N d'un virus de la famille des Paramyxoviridae et une protéine d'intérêt fusionnée en phase, en C-terminal de la protéine N. Ledit virus de la famille des Paramyxoviridae peut être un Paramyxovirinae ou un Pneumovirinae. En particulier, le virus peut être sélectionné dans le groupe constitué du virus des oreillons, du virus de la rougeole, du Metapneumovirus humain, et du virus parainfluenza. De préférence, le virus est un Pneumovirus, en particulier le virus respiratoire syncytial (VRS), humain ou bovin. La protéine d'intérêt peut être une protéine marqueur, une protéine d'intérêt thérapeutique ou d'intérêt vaccinal, sans s'y limiter. De préférence, la protéine d'intérêt est une protéine antigénique. La protéine d'intérêt peut en outre être, elle-même, une protéine de fusion. Il peut s'agir par exemple d'une construction comprenant la GFP fusionnée en phase, à son extrémité C-terminale, avec une protéine d'intérêt, la GFP étant elle-même fusionnée en phase en C-terminal de la protéine N (soit une protéine de fusion protéine N-GFP-protéine d'intérêt). La protéine d'intérêt peut être en particulier une protéine de fusion GFP-protéine antigénique ou GFP-protéine d'intérêt thérapeutique. II peut également s'agir d'une protéine chimère comprenant une "séquence de liaison" fusionnée à la protéine d'intérêt. La séquence de liaison est un polypeptide qui comprend typiquement jusqu'à 30 acides aminés, de préférence jusqu'à 20 acides aminé, de préférence encore jusqu'à 10 acides aminés, et qui joue un rôle d'espaceur entre la protéine N et la protéine d'intérêt, ce qui permet à chacune de ces protéines d'être correctement repliée. Ainsi, selon un mode de réalisation, la protéine d'intérêt est un antigène et la protéine de fusion selon l'invention est une fusion protéine N-antigène ( N-Ag ). De préférence, il s'agit d'une protéine de fusion de la protéine N du VRS humain ou bovin avec une protéine antigénique. Selon un autre mode de réalisation, la protéine d'intérêt est une protéine d'intérêt thérapeutique et la protéine de fusion selon l'invention est une fusion protéine N-protéine d'intérêt thérapeutique. De préférence, il s'agit d'une protéine de fusion de la protéine N du VRS humain ou bovin avec une protéine d'intérêt thérapeutique. Avantageusement, une étiquette (telle qu'un tag histidine) peut être fusionnée en N-terminal de la protéine N de manière à faciliter la purification des protéines de fusion protéine N-protéine d'intérêt. Alternativement, la purification des protéines de fusion protéine N-protéine d'intérêt peut être effectuée en co-exprimant ladite protéine de fusion avec une protéine P du virus Paramyxoviridae, en particulier une protéine P fusionnée à la GST, comme il sera détaillé plus loin. Pour produire les protéines de fusion selon l'inventiion, n'importe quelle technique conventionnelle de biologie moléculaire, de microbiologie ou d'ADN recombinant peut être employée. De telles techniques sont à la portée de l'homme du métier et ont été décrites, notamment dans Sambrook, Fritsch & Maniatis, Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Second Edition (1989) Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, New York ("Sambrook et al., 1989") ; DNA Cloning: A Practical Approach, Volumes I and II (D.N. Glover ed. 1985) ; Oligonucleotide Synthesis (M.J. Gait ed. 1984) ; Nucleic Acid Hybridization [B.D. Hames & S.J. Higgins eds. (1985)] ; Transcription and Translation [B.D. Hames & S.J. Higgins, eds. (1984)] ; Animal Oeil Culture [R.I. Freshney, ed. (1986)] ; Immobilized Cells and Enzymes [IRL Press, (1986)] ; B. Perbal, A Practical Guide To Molecular Cloning (1984) ; F.M. Ausubel et al. (eds.), Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, Inc. (1994). L'invention concerne donc également les acides nucléiques codant la protéine de fusion protéine N-protéine d'intérêt mentionnée ci-dessus Une séquence codante désigne une séquence nucléotidique qui, lorsqu'elle est exprimée, résulte en la production d'un ARN, d'un polypeptide, d'une protéine, etc. Une séquence codante d'une protéine contient généralement un codon d'initiation (ATG) et un codon stop. Exprimer ou expression signifie permettre ou faire en sorte que l'information contenue dans un gène ou une séquence d'ADN devienne manifeste, par exemple en produisant une protéine par activation des fonctions cellulaires impliquées dans la transcription et la traduction de la séquence génétique ou d'ADN correspondante. On parle de coexpression lorsque l'information contenue dans deux gènes ou séquences d'ADN est exprimée dans une même cellule hôte cellulaire. L'invention inclut donc des acides nucléiques (ADNc, ADN génomique, synthétique, ou ARN) codant les protéines de fusion protéine N-protéine d'intérêt. L'acide nucléique peut être double brin ou simple brin (c'est à dire un brin sens ou antisens). Les acides nucléiques ne sont pas limités à la séquence codant la protéine de fusion et peuvent inclure des séquences codantes ou non codantes en amont ou en aval de la séquence codant la protéine de fusion. La séquence codant la protéine de fusion selon l'invention est une séquence hybride ou chimère contenant au moins deux parties, consécutivement dans le sens 51-3' une partie codant la protéine N et une partie du côté 3' codant la protéine d'intérêt. Lorsque la protéine d'intérêt est elle- même une fusion ou qu'une étiquette est attachée à la protéine N, la séquence codante contient le nombre approprié de parties. Entre chacune des parties, des codons peuvent coder une séquence de liaison. L'invention concerne aussi des vecteurs d'expression contenant les acides nucléiques codant la protéine de fusion protéine N-protéine d'intérêt. De tels vecteurs peuvent contenir un élément régulateur de la transcription lié de manière fonctionnelle avec l'ADN. Une séquence codante est "liée de manière fonctionnelle avec" des séquences de contrôle transcriptionnel et traductionel lorsque une ARN polymérase transcrit la séquence codante en ARN, en particulier en ARNm, qui peut ensuite être épissé s'il contient des introns, et traduit en la protéine codée par la séquence codante. Les expressions "vecteur", "vecteur de clonage" et "vecteur d'expression" désignent le véhicule par lequel une séquence d'ADN ou d'ARN (par exemple un gène hétérologue) peut être introduite dans une cellule hôte de manière à transformer la cellule hôte et à promouvoir l'expression de la séquence introduite. Des exemples de vecteurs incluent les plasmides, les phages, les virus. Les vecteurs les plus communs sont les plasmides qui sont des unités de réplication autonomes, en général d'origine bactérienne, et qui peuvent être sous forme d'ADN double brin. Les plasmides peuvent intégrer facilement une séquence d'ADN exogène qui peut alors être facilement introduite dans un hôte approprié. Un vecteur plasmidique contient généralement une séquence d'ADN codante, une séquence d'ADN promotrice et présente un ou plusieurs sites de restriction permettant d'introduire un ADN exogène. Des exemples non limitatifs de plasmides incluent les plasmides pKK (Clonetech), pUC et pET (Novagen, Inc., Madison, WI), pRSET ou pREP (Invitrogen, San Diego, CA), pMAL (New England Biolabs, Beverly, MA), ou pGEX-4T-3 (Pharmacia). Des cellules hôtes contenant les vecteurs d'expression selon l'invention font également l'objet de l'invention. Ces cellules hôtes sont "transformées" avec lesdits vecteurs. Par "cellule hôte" ont entend n'importe quelle cellule ou organisme qui est sélectionné, modifié, cultivé ou manipulé, pour la production d'une substance par la cellule, par exemple l'expression par la cellule d'un gène, d'une séquence d'ADN ou d'ARN, d'une protéine ou d'une enzyme. Un "système d'expression" désigne une cellule hôte et un vecteur compatible utilisés dans des conditions appropriées pour produire une protéine codée par un ADN exogène porté par le vecteur et introduit dans la cellule hôte. Des systèmes d'expressions usuels incluent des cellules hôte E. col/ et des vecteurs plasmidiques, des cellules d'insecte et des vecteurs Baculovirus ou encore des cellules de mammifère et des vecteurs avec promoteurs forts d'origine virale (par exemple cytomégalovirus). Le système d'expression selon le procédé de l'invention est avantageusement un système d'expression bactérien, en particulier dans E. col/, avec par exemple comme vecteur pGEX-4T-3. Les systèmes bactériens sont en effet les systèmes d'expression qui permettent généralement d'obtenir les rendements de production les plus élevés. L'invention concerne donc également un procédé de production d'une protéine de fusion protéine N-protéine d'intérêt telle que définie plus haut qui comprend éventuellement la transformation d'une cellule hôte puis la culture de la cellule hôte transformée avec un vecteur comprenant un acide nucléique codant la protéine de fusion protéine N-protéine d'intérêt dans des conditions permettant l'expression de protéines de fusion protéine N-protéine d'intérêt, et éventuellement la purification des protéines de fusion protéine N-protéine d'intérêt exprimées. Les conditions de culture dépendent du système d'expression choisi (c'est-à-dire cellule hôte et vecteur) et la détermination des ces conditions est à la portée de l'homme du métier. Procédé de préparation de complexe protéine N-protéine d'intérêt/protéine P Les Inventeurs ont précédemment montré que la protéine N d'un virus de la famille des Paramyxoviridae peut être produite dans un système de coexpression avec la protéine P du même virus de la famille des Paramyxoviridae. Ce même système peut être utilisé pour exprimer la protéine de fusion protéine N-protéine d'intérêt sous forme d'un complexe avec la protéine P, puis éventuellement purifier la protéine de fusion à partir de ce complexe. L'invention concerne un procédé de préparation d'un complexe protéine N-protéine d'intérêt/protéine P, les protéines N et P étant des protéines d'un virus de la famille des Paramyxoviridae, ledit procédé cornprenant les étapes consistant à : a) coexprimer une protéine de fusion protéine N d'un virus de la famille des Paramyxoviridae-protéine d'intérêt, dans laquelle la protéine d'intérêt est fusionnée en phase en C-terminal de la protéine N, avec une protéine P du même virus de la famille des Paramyxoviridae ; b) recueillir les complexes protéine N-protéine d'intérêt/protéine P ainsi 25 formés. Comme spécifié plus haut, la protéine N peut porter, à son extrémité N-terminale, une étiquette telle qu'un tag histidine. En outre, la protéine d'intérêt peut elle-même être une construction fusion. Préférentiellement, ladite protéine P est une protéine P tronquée ("PO") 30 qui ne contient pas le domaine d'oligomérisation P et qui comprend un domaine de liaison à la protéine N. En effet, les Inventeurs ont précédemment montré que ce mode de réalisation permettait d'exprimer une grande quantité de complexes N-P sous forme soluble (demande de brevet FR 05 04 426). La solubilité est déterminée par centrifugation 30 minutes à 10 000 x g vis-à-vis d'un milieu aqueux, dépourvu de détergent, par exemple une solution saline telle que du PBS 1X (NaCl 140 mM, KCI 27 mM, Na2HPO4 8 mM, KH2PO4 1,5 mM, pH 7,4) ou un tampon Tris 10 mM pH 7,4, 150 mM NaCl. L'expression "protéine P tronquée" désigne une protéine P dans laquelle une ou plusieurs séquences d'acides aminés contigus ont été supprimées. II peut s'agir de la troncature d'une séquence C-terminale, d'une séquence N-terminale, d'une séquence interne par rapport à la structure primaire de la protéine P, ou d'une combinaison de ces troncatures. Les protéines P tronquées selon l'invention ne contiennent pas le domaine d'oligomérisation P et sont capable d'interagir avec la protéine N, c'est-à-dire qu'elles présentent un domaine de liaison à la protéine N. Comme le domaine d'interaction de la protéine P des Paramyxoviriciae avec la protéine N a été cartographié au niveau de l'extrémité C-terminale, des exemples de protéine P tronquée incluent préférentiellement un fragment C-terminal de la protéine P, ou une protéine P chimère constituée par la fusion d'un fragment C-terminal de la protéine P (capable d'interagir avec la protéine N) avec au moins une autre séquence d'acides aminés contigus de la protéine P. Ledit fragment C-terminal et ladite autre séquence de la protéine P ne sont pas eux-mêmes naturellement contigus, et ne présentent pas de recouvrement de séquence entre eux. Par exemple, une protéine P tronquée du VRS peut avoir la séquence constituée par les acides aminés 1 à 121 et 161 à 241 de la protéine P native. Un "fragment" d'un polypeptide de référence désigne n'importe quelle séquence d'acides aminés contigus trouvés dans la séquence du polypeptide de référence. Par "fragment C-terminal de la protéine P" ou "PLiN" on entend une protéine P dans laquelle un ou plusieurs acides aminés consécutifs ont été supprimés à partir de l'extrémité N-terminale. De préférence, un fragment C- terminal de la protéine P désigne un enchaînement d'acides aminés positionnés dans la moitié C-terminale de la structure primaire de la protéine P (lorsque le nombre d'acides aminés de la séquence est impair, on peut attribuer arbitrairement un acides aminé supplémentaire à la moitié C-terminale de la protéine par rapport à la moitié N-terminale). Par exemple, pour la protéine P du VRS qui comprend 241 acides aminés, PA161 N désigne un fragment C-terminal constitué par les acides aminés 161 à 241 de la protéine P. Par exemple également, pour la protéine P du virus de la rougeole (souche Edmonston B) qui comprend 507 acides aminés, PA386N désigne un fragment C-terminal constitué par les acides aminés 386 à 507 de la protéine P. Lorsque la protéine P tronquée est un fragment C-terminal de la protéine P, l'invention concerne alors un procédé de préparation d'un complexe soluble protéine N-protéine d'intérêt/fragment C-terminal de la protéine P ("complexe NPI/PAN") d'un virus de la famille des Paramyxoviridae, ledit procédé comprenant les étapes consistant à : a) coexprimer une protéine N d'un virus de la famille des Paramyxoviridae, fusionnée en phase à son extrémité C-terminale avec une protéine d'intérêt, avec un fragment C-terminal de la protéine P du même virus dela famille des Paramyxoviridae, ledit fragment C-terminal de la protéine P ne contenant pas le domaine d'oligomérisation P et étant capable d'interagir avec la protéine de fusion protéine N-protéine d'intérêt ; b) recueillir les complexes solubles N-PI/PAN ainsi formés. Ledit virus de la famille des Paramyxoviridae peut être un Paramyxovirinae ou un Pneumovirinae. En particulier, le virus peut être sélectionné dans le groupe constitué du virus des oreillons, du virus de la rougeole, du Metapneumovirus humai, virus parainfluenza et du virus respiratoire syncytial. De préférence, le virus est un Pneumovirus tel que le virus respiratoire syncytial (VRS), humain ou bovin. L'homme du métier connaît ou est à même de déterminer des protéines P tronquées, ou plus spécifiquement des fragments C-terminaux de la protéine P, qui sont capables d'interagir avec la protéine de fusion antigène-protéine N. Par exemple, la stratégie de co-expression des protéines N et P chez E. coli décrite par Castagné et al. (2004, Journal of General \/irology ; 85 : 1643-1653) peut être utilisée pour cartographier le domaine d'interaction entre P et N. Les Inventeurs ont ainsi montré que des fragments C-terminaux de la protéine P du VRS, comprenant un oligopeptide constitué par les 9 acides aminés C-terminaux de la protéine P (acides aminés 233 à 241), sont capables d'interagir avec la protéine N. Il a d'autre part été décrit, par exemple, que le domaine d'interaction de la protéine P du virus de Sendai, avec la protéine N sous forme de complexe ARN-N ou ribonucléoprotéine (RNP), appelé X-domain ou XD, est défini par les acides aminés 473 à 568 (Kolakofsky et al., 2004 ; Vwology ; 318(2):463-73). Les Inventeurs ont également mis en évidence que certains fragments C-terminaux de la protéine P du VRS, notamment le fragment PL161 N (acides aminés 161 à 241), permettaient de préparer de grandes quantités de protéine N, comparativement à la protéine P entière qui, en pratique, ne permet pas d'obtenir des rendements suffisants à une échelle industrielle. Les mutants de délétion plus petits, jusqu'à PA233N (acides aminés 233 à 241) qui ne contient plus que 9 acides aminés, permettent d'obtenir des rendements comparables à ceux de PA161 N. Ces fragments plus petits que PA161 N correspondent à des fragments de la protéine du VRS capables d'interagir avec la protéine N et qui ne sont plus capables de s'oligomériser, donc ne contiennent plus le domaine d'oligomérisation P. Le domaine minimum d'oligomérisation P du VRS serait en effet défini par les acides aminés 120 à 150 de la protéine P. Cette même stratégie a permis aux inventeurs de montrer qu'un fragment C-terminal de la protéine P du virus de la rougeole, constitué par les résidus d'acides aminés 386-507 (PA386N), interagissait avec la protéine N de ce virus et permettait sa purification. En revanche une délétion de la partie N-terminale de la protéine P, jusqu'à hauteur du résidu 456 (inclus ; fragment PM457N), ne permet pas de purifier la protéine N. La structure de la région C-terminale de la protéine P interagissant avec la ribonucléocapside a été déterminée par Johansson et al. (2003 Journal of Biological Chemistry vol. 278 p 44567-44573). La région d'oligomérisation P a été déterminée par délétion et prédiction comme étant définie par les acides aminés 304-376. L'utilisation de fragments C-terminaux de la protéine P qui contiennent le domaine d'interaction avec la protéine N sous forme de RNP mais dans lesquels le domaine d'oligomérisation P a été délété permet donc à la fois l'interaction des fragments de la protéine P avec la protéine N, la formation de complexes solubles N-PON, et la production de ces complexes avec un rendement élevé. Sans vouloir se restreindre à un mécanisme particulier, il est supposé que l'absence du domaine d'oligomérisation P évite des problèmes d'insolubilité des complexes N- APN liés à des interactions entre protéines P de ces complexes. Ainsi, selon un mode de réalisation, le procédé de préparation de complexe N-PI-PAN implique l'expression d'un fragment C-terminal de la protéine P du VRS qui comprend les 9 derniers acides aminés C-terminaux de la protéine P du VRS et qui est dépourvu au moins des 119, de préférence, des 149, de préférence encore des 160 acides aminés N-terminaux de la protéine P du VRS. Plus spécifiquement, dans le procédé selon l'invention on peut coexprimer avec la protéine de fusion protéine N-protéine d'intérêt du VRS : a) un fragment C-terminal de la protéine P du VRS qui comprend la séquence d'acides aminés 233 à 241 de la protéine P du VRS humain souche LONG telle que montrée dans SEQ ID NO:1, et qui s'étend en direction N-terminale jusqu'à un résidu d'acide aminé compris entre les positions 233 et 120, de préférence 150, de préférence encore 161, de la séquence de la protéine P du VRS telle que montrée dans SEQ ID NO:1, ou b) un fragment C-terminal, homologue du fragment défini en a), d'une protéine P issue d'une autre souche du VRS humain ou d'une souche du VRS bovin. Le fragment C-terminal de la protéine P du VRS peut par exemple être sélectionné dans le groupe constitué de PL120N (acides aminés 120 à 241 de P), P0150N (acides aminés 150 à 241 de P), P0161 N (acides aminés 161 à 241 de P), PM 80N (acides aminés 180 à 241 de P), P0200N (acides aminés 200 à 241 de P), PL220N (acides aminés 220 à 241 de P), PA230N (acides aminés 230 à 241 de P) et PL233N (acides aminés 233 à 241 de P). L'invention concerne également un procédé dans lequel on coexprime, avec la protéine de fusion protéine N-protéine d'intérêt du VRS, une protéine P tronquée comprenant un fragment C-terminal de la protéine P du VRS tel que décrit ci-dessus, qui comprend les 9 derniers acides aminés C-terminaux de la protéine P du VRS et qui est dépourvu au moins des 119, de préférence des 149, de préférence encore les 160 acides aminés N-terminaux de la protéine P du VRS. Par exemple, la protéine P tronquée comprenant un fragment C-terminal de la protéine P peut être constituée par la fusion des 122 derniers acides aminés N-terminaux avec les 80 derniers acides aminés C-terminaux de la protéine P du VRS ; elle peut par exemple être constituée par l'enchaînement des acides aminés 1 à 121 et 161 à 241 de la protéine P du VRS humain souche LONG telle que montrée dans SEQ ID NO:7. Selon un autre mode de réalisation, le Paramyxoviricfae est le virus de la rougeole et le procédé de préparation de complexe N-PI-PAN implique l'expression d'un fragment C-terminal de la protéine P du virus de la rougeole comprenant au plus les 122 acides aminés C-terminaux de la protéine P ou étant constitué de ceux-ci. En particulier, il peut s'agir d'un fragment C-terminal constitué par les acides 386 à 507 de la protéine P (P0386N) du virus de la rougeole souche Edmonston B, telle que montrée dans SEQ ID NO:10, ou d'un fragment C-terminal, homologue à celui défini pour la protéine P de la souche Edmonston, d'une protéine P issue d'une autre souche de virus de la rougeole. Dans le contexte de l'invention, le terme homologue a trait à la relation existant entre des protéines qui possèdent une même origine évolutive, par exemples des protéines homologues appartenant à différentes espèces, ou dans le cas de virus, de souches virales. De telles protéines (et leurs gènes codant), présentent des homologies de séquence, reflétées par leur similarité de séquences, que ce soit en terme de pourcentage de similitude ou en terme de présence de résidus ou motifs spécifiques au niveau de postions conservées. L'expression similarité de séquences désigne le degré d'identité entre des séquences d'acides nucléiques ou d'acides aminés de protéines qui peuvent ou non partager une même origine évolutive. De manière usuelle, on utilise indistinctement les termes homologie ou similarité. Deux séquences d'acides aminés sont essentiellement homologues lorsque leurs acides aminés sont identiques à au moins 80%, ou similaires (c'est-à-dire fonctionnellement identiques) à au moins 90 %. Des séquences similaires ou homologues peuvent être identifiées par alignement, en utilisant par exemple les programmes BLAST ou FASTA. Avantageusement, la protéine P, par exemple la protéine P tronquée et en particulier le fragment C-terminal de la protéine P, est exprimé sous forme de fusion avec une protéine facilitant la purification des complexes N-protéine d'intérêt/protéine P, notamment une protéine utilisable en chromatographie d'affinité. Il peut s'agir d'une protéine étiquette telle que la gluthation-S-transférase (GST), auquel cas la protéine de fusion protéine P-GST peut être isolée par chromatographie sur un support solide couplé au glutathion. D'autres étiquettes ou Tag peuvent être utilisés comme le poly-histidine ou His-Tag . On obtient ainsi des complexes protéine N-protéine d'intérêt/protéine P-protéine étiquette (GST ou autre protéine étiquette en fusion avec la protéine P), dans lesquels la protéine étiquette peut être éliminée par clivage enzymatique. Par exemple, la GST peut être éliminée par clivage à la thrombine, ou par tout autre enzyme appropriée lorsque la fusion comprend une protéine autre que la GST. Des exemples spécifiques de construction de vecteurs permettant de mettre en oeuvre le procédé selon l'invention sont décrits dans les exemples ci- dessous. Selon un mode de réalisation, la protéine d'intérêt est un antigène et le procédé selon l'invention conduit à la formation de complexes solubles protéine N-antigène/protéine P (complexe N-Ag/P), de préférence protéine N-antigène/protéine P tronquée (complexe N-Ag/PA) et de préférence encore protéine N-antigèneffragment C-terminal de la protéine P (N-Ag/PAN). Séparation des protéines de fusion à partir des complexes protéine N-protéine d'intérêt/protéine P Le procédé de préparation d'un complexe protéine N-protéine d'intérêt/protéine P, la protéine P pouvant être tronquée et être en particulier un fragment C-terminal de la protéine P, tel que décrit ci-dessus permet aisément d'obtenir des complexes protéine N-protéine d'intérêt/protéine P sous forme isolée ou purifiée. L'invention concerne donc également un complexe protéine N-protéine d'intérêt/protéine P, les protéines N et P étant des protéines d'un virus de la famille des Paramyxoviridae, susceptibles d'être obtenus par un procédé de préparation tel que décrit ci-dessus. L'invention concerne en particulier un complexe soluble protéine N-protéine d'intérêt/protéine P tronquée (complexe N-PI/PA), et plus spécifiquement un complexe soluble protéine N-protéine d'intérêt/fragment C- terminal de la protéine P (complexe N-PI/PAN), N et P étant des protéines d'un virus de la famille des Paramyxoviridae. A partir de ces complexes protéine N-protéine d'intérêt/protéine P, ou plus spécifiquement N-PI/PO ou encore N-PI/PAN, la protéine de fusion protéine N-protéine d'intérêt peut être aisément isolée sous forme d'anneaux, avec leur ARN, par exemple par chromatographie d'exclusion de taille (gel filtration). Cette séparation peut être mise en oeuvre, le cas échéant, après séparation, par clivage enzymatique, de la protéine P et de la protéine étiquette à laquelle la protéine P est éventuellement fusionnée. L'invention concerne donc en outre un procédé de préparation de protéines de fusion protéine N d'un virus de la famille des Paramyxoviridaeprotéine d'intérêt, ledit procédé comprenant les étapes consistant à : a) préparer un complexe protéine N-protéine d'intérêt/protéine P par un procédé tel que défini plus haut ; et b) séparer les protéines de fusion protéine N-protéine d'intérêt des complexes protéine N-protéine d'intérêt/protéine P. Préférentiellement, la protéine P est une protéine tronquée, de préférence encore est un fragment C-terminal de la protéine P. L'invention concerne plus particulièrement un procédé de préparation de protéines de fusion solubles protéine N-protéine d'intérêt d'un virus de la famille des Paramyxoviridae, ledit procédé comprenant les étapes consistant à : a) préparer un complexe soluble protéine N-protéine d'intérêt/fragment C-terminal de la protéine P (complexe N-PI/PAN) par un procédé tel que défini plus haut ; et b) séparer les protéines de fusion protéine N-protéine d'intérêt des complexes solubles N-PI/PAN. L'invention concerne également les protéines de fusion protéine Nprotéine d'intérêt susceptibles d'être obtenues par le procédé ci-dessus. La protéine d'intérêt peut être une protéine d'intérêt thérapeutique ou vaccinal. Préférentiellement, la protéine d'intérêt est un antigène. Compositions immunogènes, vaccinales ou thérapeutiques Les Inventeurs ont précédemment montré que la protéine N du VRS structurée en anneau, isolée ou sous forme de complexe protéine N-fragment C-terminal de la protéine P (N-PAN), est fortement immunogène, et qu'elle permet notamment de stimuler une réponse locale par exemple au niveau de la muqueuse respiratoire. Les Inventeurs ont désormais mis en évidence que ces structures en anneaux peuvent être utilisées en tant que vecteur de protéines thérapeutiques ou vaccinales. L'invention concerne donc l'utilisation d'une protéine N d'un virus de la famille des Paramyxoviridae comme vecteur de molécules ou protéines d'intérêt thérapeutique ou vaccinale. Selon un mode de réalisation, une protéine thérapeutique ou vaccinale est fusionnée à la protéine N, comme décrit plus haut. Selon un autre mode de réalisation, une molécule thérapeutique ou vaccinale est couplée chimiquement à la protéine N. En effet, en ajoutant une cystéine en C-terminal de la protéine N, on crée un site permettant de coupler chimiquement diverses molécules de nature protéique ou non protéique (organique ou minérale). On peut greffer une protéine portant également une cystéine par pont disulfure. Le maléimide couplé lui-même à diverses molécules peut ainsi être greffé sur cette cystéine par une liaison covalente. Le maléimide peut être couplé à toutes sortes de molécules organiques, telles que le dextron, la biotine, l'or, ou toute protéine. L'invention concerne donc aussi un conjugué de la protéine N d'un virus de la famille des Paramyxoviridae avec une molécule d'intérêt, en particulier une molécule thérapeutique ou vaccinale. L'invention porte également sur une méthode d'administration d'une molécule ou protéine thérapeutique ou vaccinale à un sujet, comprenant l'administration de ladite molécule thérapeutique ou vaccinale liée de manière covalente à une protéine N d'un virus de la famille des Paramyxoviridae audit sujet, ou comprenant l'administration de ladite protéine sous forme d'une protéine de fusion avec la protéine N d'un virus de la famille des Paramyxoviridae, la protéine thérapeutique ou vaccinale étant fusionnée en phase, en C-terminal de la protéine N. L'invention propose également une composition pharmaceutique, comprenant une protéine de fusion protéine N-protéine d'intérêt, éventuellement sous forme de complexe protéine N-protéine d'intérêt/protéine P, les protéines N et P étant d'un même virus de la famille des Paramyxoviridae, dans un véhicule pharmaceutiquement acceptable Ledit virus de la famille des Paramyxovirid'ae peut être un Paramyxovirinae ou un Pneumovirinae. En particulier, le virus peut être sélectionné dans le groupe constitué du virus des oreillons, du virus de la rougeole, et du virus parainfluenza. De préférence, le virus est un Pneumovirus, en particulier le virus respiratoire syncytial (VRS), par exemple humain ou bovin. La protéine d'intérêt peut être une protéine d'intérêt thérapeutique ou vaccinal. Selon un mode de réalisation, la composition pharmaceutique est adaptée à un usage thérapeutique. Selon ce mode de réalisation, la protéine d'intérêt est une protéine d'intérêt thérapeutique. Les Inventeurs ont en effet déterminé que la protéine de fusion protéine N-protéine d'intérêt pénètre dans les cellules et que la protéine N constitue donc à ce titre un vecteur potentiel pour des molécules ou protéines d'intérêt thérapeutique, comme par exemple un polypeptide anti-angiogénique ou pro-apoptotique. Selon un mode de réalisation, la composition pharmaceutique est adaptée à un usage immunogène ou vaccinal. Selon ce mode de réalisation, la protéine d'intérêt est une protéine antigénique, de préférence un antigène dérivé d'un microorganisme pathogène, tel qu'un virus, une bactérie, un champignon, ou un organisme métazoaire ou protozoaire parasite. Les Inventeurs ont en effet montré que la réponse d'un hôte vis-à-vis d'un antigène est très significativement augmentée lorsque cet antigène est présenté sous forme de protéine de fusion avec la protéine N. Les protéines de fusion protéine N-antigène sont capables de stimuler la réponse immunitaire par voie cellulaire comme humorale. Les protéines de fusion solubles protéine N-antigène peuvent être utilisées en vaccination sous forme de complexe avec la protéine P sans effet défavorable. En conséquence, une composition immunogène ou vaccinale selon l'invention peut comprendre un complexe soluble protéine N-antigène/protéine P, en association avec un véhicule pharmaceutiquement acceptable. Par "véhicule pharmaceutiquement acceptable", on entend tout solvant, milieu de dispersion, agents retardant l'absorption etc, qui ne produit pas de réaction secondaire, par exemple allergique, chez l'humain ou l'animal. Des exemples de véhicules physiologiquement acceptables sont connus de l'homme du métier. Des exemples de véhicules liquides incluent des solutions aqueuses stériles qui ne contiennent aucun matériau autre que les actifs et de l'eau, ou qui contiennent un tampon tel que du phosphate de sodium à une valeur de pH physiologique, à une salinité physiologique, ou aux deux tel qu'une solution saline tamponnée au phosphate (PBS). Les véhicules aqueux peuvent contenir plus d'un sel tampon, de même que des sels tels que du chlorure de sodium ou potassium, du dextrose, du polyéthylène glycol et d'autres solutés. Les compositions sont administrées de manière compatible avec la formulation galénique et en quantité thérapeutiquement efficace. La quantité à administrer dépend du sujet à traiter, de la capacité du système du sujet à utiliser le principe actif, et le degré d'effet thérapeutique désiré. Les quantités précises de protéine de fusion que nécessite l'administration dépendent du choix du praticien et des particularités de chaque individu. Avantageusement, lorsque la composition pharmaceutique est une composition immunogène ou vaccinale, elle peut en outre comprendre un adjuvant. Un "adjuvant" désigne un produit qui augmente, stimule, active, renforce, ou module la réaction immunitaire au niveau cellulaire ou humoral dirigée contre un antigène administré simultanément. Des exemples d'adjuvants classiques incluent des adjuvants contenant des antigènes bactériens, tels que l'adjuvant complet de Freund, le LPS et ses dérivés, les toxines bactériennes (toxine cholérique et entérotoxine) et leurs mutants détoxifiés (par exemple LT(R192G)), des séquences oligonucléotidiques contenant des motifs CpG, des adjuvants minéraux tels que l'hydroxyde d'aluminium (Alum), le phosphate de calcium ou le phosphate de potassium, des émulsions huileuses et agents émulsifiants (saponines, par exemple QS21), des cytokines. Les compositions immunogènes selon l'invention permettent d'induire une réponse immunitaire contre l'antigène chez le sujet vacciné, ou plus spécifiquement contre le pathogène dont dérive l'antigène. Les compositions vaccinales selon l'invention permettent de conférer une protection vis-à-vis d'une infection par un pathogène comportant l'antigène, c'est-à-dire une réduction de la gravité des effets d'une telle infection par rapport à un sujet non immunisé avec la composition vaccinale. L'invention concerne également l'utilisation d'une composition vaccinale telle que définie plus haut dans une méthode de vaccination contre le pathogène dont dérive l'antigène. L'invention porte donc sur une méthode de vaccination comprenant au moins une administration d'une composition vaccinale selon l'invention à un sujet. De préférence, la méthode de vaccination comprend une première administration à un sujet d'une composition vaccinale, et au moins une administration de rappel de ladite composition vaccinale au même sujet. Les administrations de rappel, en réexposant le patient à l'antigène, induisent une réponse immunitaire secondaire plus forte. La composition vaccinale est avantageusement administrée en une quantité efficace pour induire une réponse immunitaire protectrice ou thérapeutique vis-à-vis d'une infection par le pathogène dont dérive l'antigène. La posologie dépend naturellement de l'actif considéré, du mode d'administration, de l'âge du sujet et de son état. La quantité de complexe N- Ag-P, N-Ag-PL, ou N-Ag-PAN, ou de protéine de fusion N-Ag par dose peut être comprise entre 0,1 et 200 pg, et préférablement comprise entre 10 et 100 pg par dose vaccinale. La composition pharmaceutique, immunogène ou vaccinale peut être administrée par n'importe quelle voie, en particulier par voie mucosale (par exemple oculaire, intranasale, orale), ou par voie parentérale (par exemple sous-cutanée, intradermique, intramusculaire, intraveineuse, ou intrapéritonéale). L'expression "sujet" désigne un humain ou un anirnal non-humain, par exemple un oiseau ou un mammifère tel qu'un bovin, un ovin, un rongeur, un canidé en particulier un chien, un félin en particulier un chat, un porc, un singe, exposé ou susceptible d'être exposé à une infection par un virus Paramyxoviridae ou par toute autre pathologie. Préférentiellement un sujet au sens de l'invention est un humain ou un bovin. Applications diagnostiques La fusion d'un antigène comprenant au moins un épitope avec la protéine N d'un virus des Paramyxoviridae constitue par ailleurs un réactif susceptible d'être utilisé dans des applications diagnostiques pour la détection d'anticorps dirigés contre au moins un desdits épitopes portés par la protéine de fusion. L'invention concerne donc en outre un réactif diagnostic comprenant une protéine de fusion protéine N-antigène comprenant un antigène fusionné en phase en C-terminal d'une protéine N d'un virus de la famille des Paramyxoviridae, telle que décrite plus haut. Un kit diagnostic comprenant ledit réactif et des moyens de détection appropriés est également dans la portée de l'invention. Ledit antigène comprend au moins un épitope, et peut également comprendre deux ou plus de deux épitopes identiques ou différents. L'invention propose également l'utilisation d'une protéine de fusion protéine N-antigène pour la détection, in vitro ou in vivo, d'anticorps dirigés contre ledit antigène de la protéine de fusion. Lorsque l'antigène comprend un unique épitope, les anticorps détectés sont alors spécifiques de cet épitope. Lorsque l'antigène comprend deux ou plus de deux épitopes différents, les anticorps détectés peuvent être spécifiques d'un, deux ou plus de deux des épitopes dudit antigène. L'invention concerne aussi une méthode de détection d'anticorps spécifiques d'un antigène, dans un échantillon biologique, comprenant les étapes consistant à a) mettre en contact ledit échantillon biologique avec une protéine de fusion N-antigène comprenant un antigène fusionné en phase en C-terminal 20 d'une protéine N d'un virus de la famille des Paramyxoviridae, b) détecter les complexes protéine de fusion N-antigène/anticorps formés, la présence de tels complexes étant révélatrice de la présence d'anticorps spécifiques de l'antigène dans l'échantillon biologique. 25 L'échantillon biologique peut être un échantillon de tissu obtenu par exemple par biopsie musculaire, hépatique, cardiaque, cérébrale, etc, ou un échantillon liquide, par exemple un liquide biologique tel que le sang, le plasma, ou le liquide céphalorachidien. La détection des complexes peut être réalisée par des moyens usuels 30 bien connus de l'homme du métier tels que la chromatographie (d'exclusion de taille, d'affinité, etc) ou l'électrophorèse en conditions non dénaturantes. La détection des complexes N-antigène/anticorps peut par ailleurs être facilitée en marquant les protéines N de manière détectable. Les exemples et figures suivantes illustrent l'invention sans en limiter sa portée. FIGURES La figure 1 montre la capture des complexes N-GFP-PAN par des cellules HEp2 ou RAW. Les cellules HEp-2 (A ; C) ou RAW (B ; D) sont incubées en présence de DX-FITC (A ; B) ou N-GFP-PAN (C ; D). L'incubation dure une heure à 4 C (courbes en trait pointillé) ou deux heures à 4 C (courbes en trait continu épais), ou une heure à 37 C (courbes en trait continu) ou deux heures à 37 C (courbes en trait pointillé épais). La fluorescence (FITC ou GFP) est analysée en cytométrie en flux sur 100 000 évènements. La figure 2 montre que les complexes N-GFP-PAN sont internalisées dans les cellules RAW. Les cellules RAW sont incubées pendant une heure en présence de N-GFP-PAN à 4 C (courbes en trait continu épais) ou à 37 C (courbes en trait pointillé). La protéine N est détectée par immunomarquage indirect en cytométrie en flux sur des cellules non perméabilisées (A) ou des cellules perméabilisées (B). L'autofluorescence des cellules est donnée par le signal des cellules incubées à 37 C en PBS (courbes en trait continu). La fiqure 3 montre l'augmentation de la réponse anticorps par la vectorisation de la GFP sur les complexes N-PAN. Des souris BALB/c sont immunisées à JO par voie nasale, avec l'adjuvant seul (témoin), le complexe N- GFP-PAN, N-PLN ou la GFP, toujours en présence d'adjuvant. Un rappel est réalisé après deux semaines (J14). Les animaux sont euthanasiés deux semaines après le rappel (J28). Le sérum est collecté à JO. J14 et J28 (A et B). Les lavages broncho-alvéolaires sont réalisés à J28 (C). Le titre en anticorps anti N-PAN (B et C) et anti-GFP (A et C) est déterminée par ELISA. Les données sont exprimées comme la moyenne erreur standard à la moyenne (n=8 pour les groupes témoin et GFP, n=6 pour le groupe N-GFP-P0, n=4 pour le groupe N-PO) et représentées selon une échelle logarithrnique. La figure 4 illustre l'absence de réponse T mémoire contre la GFP, y compris sous sa forme vectorisée par N-PLN. Des souris BALB/c sont immunisées à JO par voie nasale avec l'adjuvant seul (témoin), les complexes N-GFP-PAN, N-PAN ou la GFP, toujours en présence d'adjuvant. Un rappel est réalisé après deux semaines (J14). Les animaux sont autopsiés deux semaines après le rappel (J28) pour prélever les rates et les ganglions loco-régionaux. Les suspensions cellulaires sont traitées individuellement pour les rates (losanges) et en pool par groupe pour les ganglions (ronds). Les cellules sont restimulées pendant 72h avec GFP (losanges et ronds blancs) ou N-PAN (losanges et ronds noirs). La sécrétion d'IFN-y est mesurée par ELISA. Quand les cellules sont cultivées dans du milieu seul, le niveau basal d'IFN-y est inférieur à 15 pg/ml. EXEMPLES Exemple 1 : Construction des plasmides contenant la région C-terminale de la phosphoprotéine du VRS et la protéine N du VRS fusionnée à la GFP. La protéine P du VRS souche Long est composée de 241 résidus d'acides aminés. Séquences des amorces oligonucléotidiques (de 5' vers 3') utilisées pour amplifier la partie C-terminale de la protéine P du VRS (les sites de restriction BamHl sont soulignés ; le codon de démarrage ( start ) ATG du gène P est figuré en caractères gras) : LONG-PBam+ : GAGGGATCCATCATGGAAAAGTTTGCTCCTG (SEQ ID NO:13) LONG-P- : CTGTTGGTGTTGTGTGTTGAAGTGCAG (SEQ ID NO:14) P161 B+ : GAGGGATCCTCTGCTAGGGATGGTATAAGAG (SEQ ID NO:15) P180B+ : GAGGGATCCAAAATCAGAACTGAAGCATTAATGACC (SEQ ID NO:16) P201 B+ : GAGGGATCCGAGGAAAGTGAAAAGATGGCAAAAG (SEQ ID NO:17) P221 B+ : GAGGGATCCGAGAAATTGAACAACCTGTTGG (SEQ ID NO:18) P23ONB+ : GATCCAATGATAGTGACAATGATCTATCACTTGAAGATTTCTGA (SEQ ID NO:19) P230N- : TCAGAAATCTTCAAGTGATAGATCATTGTCACTATCATTG (SEQ ID NO:20) L'ADNc du gène P du VRS souche Long a été amplifié par RT-PCR à partir de cellules Hep-2 infectées par la souche Long du VRS humain en utilisant les amorces LONG-PBam+ et LONG-P- (Castagné et al., 2004 ; Journal of General Virology ; 85 : 1643-1653). Le produit de PCR a été digéré par l'enzyme de restriction BamHl et cloné dans le plasmide pGEX-4T-3 (Pharmacia) aux sites BamHl-Smal en phase avec le gène codant pour la Glutathion-S-Transferase ou GST. Le plasmide s'appelle pGEX-P. • Clonaqe de P161-241 (PM61 N) La région C-terminale de P (acides aminés 161-241) a été amplifiée par PCR à partir du plasmide pGEX-P dans les conditions suivantes : Amorces de PCR : P161B+ et LONG-P- 100 ng chaque (Ipi chaque) ADN matrice pGEX-P : 10 ng (1 pl) Enzyme : Pfu Turbo marque Stratagene (2,5 U par pl) : 1 pl dATP : 0.2 mM final dGTP : 0.2 mM final dCTP : 0.2 mM final dTTP : 0.2 mM final Tampon Pfu 1X final (Stratagene) Volume final : 100 pl La PCR a été réalisée dans les conditions suivantes : cycles : 15 secondes à 94 C, 2 minutes à 40 C, 1 minute à 72 C ; 25 cycles : 15 secondes à 94 C, 1 minutes à 55 C, 1 minute à 72 C L'ADN amplifié a été extrait par un volume (100 pI) de 5 phénol/chloroforme (1vol/1 vol), puis par un volume de chloroforme, enfin précipité par ajout d'un dixième de volume de NaCl 5M (10 pl) et deux volumes d'éthanol à 100% (200 pI). L'ADN a été centrifugé 20 minutes à 13000 g, lavé avec un volume d'éthanol à 70%, séché, resuspendu dans un volume d'eau de 90 pl. Après ajout de 10 pl de tampon 10X pour l'enzyme BamHl, l'ADN a été digéré 2 heures à :37 C en présence de 10 unités d'enzyme BamHl. L'ADN digéré a été déposé sur un gel d'agarose à 1,5 % dans du tampon Tris-Borate-EDTA (TBE) 1X en présence de bromure d'éthidium et mis à migrer par électrophorèse. La bande correspondant à l'ADN de P161-241 a été découpée et l'ADN extrait par électroélution. Il a été à nouveau extrait avec un volume de phénol-chloroforme, un volume de chloroforme et précipité à l'éthanol. II a été ligaturé avec le vecteur pGEX-4T-3 digéré par BamHl et Smal après purification en gel d'agarose à 1 % : ADN pGEX4T-3 : 100ng ADN P161-241 : 100 ng Tampon ligase 1X final Ligase (5U/pl) : 1 pI Volume final 20 pI L'ensemble a été incubé une nuit à 14 C. Le lendemain des bactéries DH5-alpha TM (Life Technologies) compétentes ont été transformées avec 10 pl de produit de ligation et étalées sur boîte de Pétri contenant du milieu LB-agar supplémenté avec 100 pg/ml d'ampicilline final. Les colonies de bactéries recombinantes ont été criblées par mini préparation de plasmide et digestion par les enzymes de restriction BamHl et Xhol. Les plasmides recombinants montrent alors deux bandes en gel d'agarose, une correspondant au vecteur (4,9 kb) et la seconde correspondant à la partie C-terminale de P (246 pb). Les plasmides recombinants ont été entièrement séquencés. • Clonage de P180-241, P201-241, P221-241 Les fragments de P correspondants aux parties d'acides aminés 180-241, 200-241, 220-241 ont été obtenus par PCR à partir du plasmide pGEX-P en utilisant les amorces suivantes : P180-241 : amorces P180B+ et LONG-P P200-241 : amorces P201 B+ et LONG-P- P220-241 : amorces P221 B+ et LONG-P- Ils ont été amplifiés et clonés de la même façon que P161-241 (voir au- dessus). • Clonage du gène codant pour la protéine de nucléocapside du VRS souche Long. Le gène codant pour la protéine N du VRS humain souche Long a été obtenu par RT-PCR à partir de cellules Hep-2 infectées par ce virus. Les amorces utilisées étaient : LONG-Nbam+ : GAGGGATCCATGGCTCTTAGCAAAGTCAAGTTG (SEQ ID NO:21) LONG-N- : TTAACTCAAAGCTCTACATCATTATCTTTTGG (SEQ ID 20 NO:22) Les produits de PCR ont été digérés par BamHl et clonés dans le plasmide pGEX-4T-3 aux sites BamHI-Smal. La région codant pour N a été sous-clonée par digestion du plasmide pGEX-N par BamHl Xhol et sous-clonée dans le plasmide pET28a+ (Novagen ). 25 • Mutagenèse du plasmide pET-N et création d'un site de restriction unique Sal en amont du codon STOP Un site de restriction Sac/ a été introduit juste avant le codon stop de la protéine N du VRS humain (souche long) par mutagenèse dirigée en utilisant 30 les oligonucléotides : Nfinsac+ CCAAAAGATAATGATGTAGAGCTCTGACTCGAGCACCACCACC (SEQ ID NO: 23) Nfinsac- GGTGGTGGTGCTCGAGTCAGAGCTCTACATCATTATCTTTTGG (SEQ ID NO: 24) Ceci a permis d'obtenir le plasmide pET-N-Sac. Obtention de la protéine N fusionnée à la GFP La GFP a été sortie du plasmide pEGFPNI par digestion par l'enzyme de restriction Eagl, puis traitement à la Klenow en présence de nucléotides pour obtenir des bouts francs sur l'ADN, puis digéré par Sac/. Le plasmide pETN-Sac a été digéré par l'enzyme Xhol, traité à la Klenow en présence de nucléotides puis digéré par Sal. La GFP a ainsi été insérée dans le plasmide pET-N-Sac et a permis d'obtenir le plasmide pET-N-GFP • Obtention de la protéine N-épitopes F Des épitopes mimotope et heptad de la protéine F du RSV ont été clonés en C-terminal de la protéine N par insertion d'oligonucléotides double brins. Epitope Mimotope : F-Flag-HWSISKPQ+ : CATGGACTACAAGGACGACGATGACAAGCACTGGTCTATCTCTAAACCGC AGTAG (SEQ ID NO: 25) F-FIag-HWSISKPQ- : TCGACTACTGCGGTTTAGAGATAGACCAGTGCTTGTCATCGTCGTCCTTGT AGTCCATGAGCT (SEQ ID NO: 26) Ces oligonucléotides hybridés entre eux ont été insérés aux sites Sacl- Sall dans le plasmide pET-N-GFP. Epitope Heptad. Les oligonucléotides suivants ont été hybridés entre eux : FheptadAge + : CCGGTCTCTACTAACAAAGCTGTTGTTTCTCTGAGCTAGT (SEQ ID NO: 27) (STNKAWSLS) (SEQ ID NO: 28) FheptadAge- : CCGGACTAGCTCAGAGAAACAACAGCTTTGTTAGTAGAGA (SEQ ID NO: 29) Ils ont été clonés au site Agel dans le plasmide pET-N-GFP • Clonaqe de P231241 Les amorces suivantes ont été dénaturées par chauffage à 94 C, pendant 5 minutes, puis refroidies à température ambiante : P231 NB+ : GATCCGATAGTGACAATGATCTATCACTTGAAGATTTCTGA (SEQ ID NO:30) P231 N-:TCAGAAATCTTCAAGTGATAGATCATTGTCACTATCG (SEQ ID NO:31) Après hybridation, 10 ng d'oligonucléotides double brin ont été ligaturés avec 100 ng d'ADN de plasmide pGEX-4T-3 digéré par les enzymes BamHl et Smal et purifié par électrophorèse en gel d'agarose. Les plasmides recombinants ont été vérifiés par séquençage au niveau du gène N. Exemple 2 : Expression et purification des complexes Des bactéries BL21 (DE3) (Novagen) compétentes ont été transformées avec 1 pg d'ADN pGEX-PL et 1 pg d'ADN pET-N puis étalées sur boîte de Pétri contenant du milieu LB-agar supplémenté avec 100 pg/ml final d'ampicilline et 50 pg/ml final de Kanamycine. Une colonie a été repiquée et mise à pousser une nuit à 37 C dans 2 ml de milieu LB contenant Ampicilline et Kanamycine à 100 pg/ml et 50 pg/ml respectivement. Le lendemain matin 1 ml de culture saturée a servi à ensemencer 1 litre de milieu LB additionné des antibiotiques et mis à pousser jusqu'au soir. Le soir, un volume de milieu frais LB contenant de l'IPTG (qui induit l'expression des protéines) à une concentration de 160 pg/ml est ajouté à la culture et le tout est mis à pousser sur la nuit à 28 C. Le lendemain, les bactéries sont centrifugées 15 minutes à 5000 tpm et le culot est repris dans 100 ml du tampon suivant : 50 mM Tris pH 7,8 60 mM NaCl 2mMDTT 1 mM EDTA 4 mM Benzamidine Antiprotéases 1X (Complete EDTA-free protease inhibitor cocktail, ref. Roche n 11 873 580 001) soit une tablette pour 50 ml de tampon de lyse 0,1% Triton-X100 10 ml du même tampon additionné de Lysozyme à 10mg/ml (lmg/ml final) sont ajoutés. Les bactéries sont incubées 1 heure clans la glace (lyse). Quand le tout devient visqueux, l'ensemble est soniqué 3 fois 1 minute en utilisant une sonde plongeant dans le mélange, dans la glace en laissant reposer 5 minutes entre chaque sonication. L'ensemble est centrifugé 30 minutes à 10 000 g à 4 C puis le surnageant est récupéré. Le surnageant est recentrifugé 30 minutes à 10 000 g à 4 C puis le nouveau surnageant est récupéré. 4 ml de billes de sepharose 4B-glutathion (Amersham-Pharmacia) sont lavés en prélevant 8 ml de mélange billes tampon (vol/vol) avec le tampon de lyse. Les billes sont laissées dans un volume équivalent de tampon, ajoutées au lysat bactérien clarifié, et mises à tourner à 4 C sur la nuit. Le lendemain les billes sont centrifugées à 2000 rpm pendant 3 minutes, puis le surnageant est éliminé, et les billes lavées trois fois avec le tampon de lyse dépourvu d'antiprotéases, trois fois en tampon PBS 1X. Les billes son clivées au site thrombine en utilisant de la thrombine biotinylée (Novagen) à raison d'1 pl (1U) de thrombine ("Thrombin Cleavage Capture Kit", Novagen N 69022-3FRZ) pour 1 ml de billes. Les billes sont incubées sur la nuit à 20 C et, le lendemain, centrifugées 3 minutes à 2000 rpm, laissées à décanter 15 minutes pour récupérer le surnageant. Un volume équivalent de PBS 1X est ajouté sur les billes ; le mélange est agité, laissé décanter. Le surnageant est à nouveau récupéré et rajouté au surnageant prélevé précédemment. Au surnageant récupéré sont ajoutées des billes d'agarose Streptavidine (Novagen ref. 69203) à raison de 16 pl de résine (soit 32 pl de mélange résine/tampon (vol/vol). Le mélange est laissé sous agitation pendant une heure, puis centrifugé 3 minutes à 2000 rpm et le surnageant est récupéré. On obtient une concentration en protéines de 2 mg/ml. 10 pl du surnageant contenant les produits de clivage sont dénaturés en tampon de Laemmli 1X, mis à bouillir et déposés sur un gel de polyacrylamide à 12% en tampon Tris-Glycine SDS 0,1%, puis colorés au bleu de Coomassie après électrophorèse pour visualiser les protéines. Exemple 3 : Séparation de N-GFP et PM161 N (P161-241) et purification des anneaux de N-GFP Les protéines présentes dans le surnageant peuvent être séparées par chromatographie d'exclusion de taille (gel filtration) en PBS 1X. Exemple 4 : Capture des complexes N-PAN par différentes lignées cellulaires : étude à l'aide de la protéine de fusion N--Green Fluorescent Protein (GFP). 1. Matériel et méthodes 1.1 Liqnées cellulaires et tests de phaqocytose: - HEp-2: lignée épithéliale humaine de larynx (Cancer Res 1955;15:598), cultivées en monocouche en EMEM (Eagle's Minimum Essential Medium) + 10% SVF+ L-glutamine+ PS (pénicilline, streptomycine). - RAW : lignée de monocytes-macrophages péritonéaux murins (J. Immunol 1977;119:950) cultivée en monocouche en DMEM (Dulbecco's Minimum Essential Medium) + 10% SVF + L-glutamine + PS. Les lignées cellulaires sont dissociées en D-PBS (Dulbecco's Phosphate Buffered Saline) + 0,33% lidocaïne + 5 mM EDTA. Les cellules isolées sont lavées, reprises à une concentration de 107 cellules/ml en PBS + 2%SVF et incubées sous agitation douce dans des tubes de 5 ml à fond rond en présence de : - P161-241 + N-GFP (N-GFP-PAN) à 20 pg/ml - GFP à 6,5 pg/ml - Dextran-FITC (DX-FITC) à 1 mg/ml (Ref : D-1844, Molecular Probes). Les incubations sont faites en parallèle à 4 C, température à laquelle les mécanismes d'endocytose sont inhibés et à 37 C, température permissive pour l'internalisation. Après une heure ou deux heures d'incubation, les cellules sont lavées trois fois et reprises en PBS + 2%SVF 1.2 Analyse de l'adsorption/internalisation par cytométrie en flux On compare, par cytométrie en flux (FACSCalibur, Becton), la fluorescence (FL1) associée aux cellules (HEp-2, RAW) incubées avec des molécules fluorescentes (DX-FITC ou N-GFP-PAN) à 4 C ou 37 C. Le niveau d'autofluorescence des cellules est donné par des cellules incubées deux heures à 37 C en l'absence de molécules fluorescentes. 1.3 Analyse de l'adsorption/internalisation en microscopie à fluorescence Après incubation, 105 cellules sont déposées par cytocentrifugation sur des lames superfrost plus (SFPLUS-42, Milian). Les lames sont séchées 15 minutes et montées en PERTEX (Ref : 00814, Histolab). Le niveau de fluorescence est regardé au microscope (Axiovert200M, Zeiss). La prise de vues est réalisée avec une caméra (Coolsnap HQ) en utilisant le logiciel Metavue. 1.4 Immunodétection de la protéine N après perméabilisation des cellules. L'objectif est de comparer, par immunodétection de la protéine N, le signal détecté sur les cellules non perméabilisées (complexe N-GFP-PAN extracellulaire), au signal détecté sur cellules perméabillisées (complexe NGFP-PAN intra et extracellulaire). Les cellules sont fixées pendant 15 minutes en tampon A (Ref : GAS-003, Caltag) et lavées. Dans le cas des cellules non perméabilisées, le marquage se fait en tampon Cell Wash (Becton) +5%SVF. Pour perméabiliser les cellules pendant le marquage, le tampon B (Ref : RGAS-003, Caltag) est employé. Les récepteurs Fc sont saturés pendant 20 minutes par un anticorps anti-CD16/CD32 (Ref : 553141, Becton) dilué au 1/100. Puis les cellules sont incubées 30 minutes avec un sérum de lapin dirigé contre la protéine N, dilué au 1/1000. La détection des Ig de lapins se fait par une incubation de 30 minutes avec un anticorps biotinylé (Ref : BA-1000, Vector) dilué au 1/200. L'utilisation de streptavidine couplée à I'APC (554067, Becton) au 1/500 permet la détection indirecte sur le canal FL4 de la protéine N en cytométrie en flux (FACSCalibur, Becton). Il. Résultats : II-1 Analyse de l'interaction des complexes N-GFP-F'AN avec les cellules RAW (macrophages) et HEp2 (epithéliales): Les cellules RAW sont une lignée de monocytes-macrophages. Ils ont une capacité de phagocytose que l'on peut observer en mettant à leur contact un polymère fluorescent, le DX-FITC. La capture du DX-FITC est fortement augmentée à 37 C par rapport à 4 C (fig. 1B). La lignée HEp-2 est une lignée épithéliale. Elle n'a pas de capacité de phagocytose, c'est pourquoi la fluorescence liée à l'interaction entre le DX-FITC et ces cellules est peu différente entre les incubations à 4 C et à 37 C (fig. 1A). Lorsque les complexes N-GFPPAN sont mis en contact avec les cellules RAW et HEp-2 on observe une forte augmentation du niveau de fluorescence par rapport au niveau basal (PBS) (fig. 1 C, D). Cela indique une adsorption efficace à la membrane de ces cellules. Après incubation à 37 C, la fluorescence détectée en présence de N-GFP-PAN diminue dans les deux types cellulaires, mais reste néanmoins supérieure au niveau basal (fig. 1 C, D). Lorsque les cellules sont incubées avec de la GFP recombinante, le signal de fluorescence reste au niveau basal (données non montrées). Ceci indique que les phénomènes de capture observés sont liés aux anneaux de N-PAN et non à la GFP. La capture des anneaux de N-GFP-PAN dans les lignées RAW et HEp-2 a été confirmé en microscopie. La fluorescence spécifique de la GFP fusionnée à la protéine N est retrouvée sous forme de granules à l'intérieur des cellules HEp-2 ou RAW. Cette fluorescence n'est pas retrouvée dans le cas où l'incubation est faite avec de la GFP recombinante. Les complexes N-GFP-PAN sont donc adsorbés et/ou internalisés dans la lignée macrophagique RAW et dans la lignée épithéliale HEp-2. 11.2 Internalisation des complexes N-GFP-PAN par les cellules RAW Afin de comprendre le devenir des complexes N-GFP-PAN dans les cellules RAW à 37 C versus 4 C, les cellules sont perméabilisées et la présence de la protéine N est révélée par immunomarquage et analyse en cytométrie en flux (fig. 2). En absence de perméabilisation, la quantité de N détectée (signal de fluorescence) est plus faible à 37 C qu'à 4 C (fig. 2A). En revanche, après perméabilisation, le niveau du signal redevient identique entre les conditions d'incubation 37 C et 4 C (fig. 2B). Les complexes N-GFP-PAN sont donc internalisés lors de l'incubation à 37 C. En conclusion, l'ensemble des expériences réalisées avec les complexes N-GFP-PAN, en cytométrie en flux et en microscopie, a permis de mettre en évidence des propriétés originales de ces structures protéiques. Les assemblages en anneaux de la nucléoprotéine ont la capacité de s'adsorber et d'être internalisés efficacement par des types cellulaires variés comme les macrophages, les cellules épithéliales et les cellules dendritiques (données non montrées). Ces propriétés sont particulièrement intéressantes pour l'utilisation de ces structures comme vecteur d'antigène en vaccination.30 Exemple 5 : Evaluation des propriétés de vecteur antigénique de la protéine N en anneau vis à vis de la Green Fluorescent Protein (GFP) exprimée en fusion I. Matériel et méthodes 1.1 Souris : BALB/c femelles de 8-10 semaines, élevées à l'Unité Expérimentale Animalerie Rongeur (INRA, Jouy-en-Josas). 1.2 Antigènes P161-241 + N-GFP (N-GFP-PAN) concentration à 0,1064 pg/pl GFP concentration à 0,5 pg/pl P161-241+N (N-PAN) concentration à 1 pg/pl 1.3 Adjuvant : - LT(R192G) lymphotoxine détoxifiée de E. Coli, 1 mg/ml (lot envoyé par John Clements ; Choi et al., 2004, Protein Expression and Purification 38, pp 205) 20 1.4 Immunisation: Administration par voie intra-nasale (i.n.) sous anesthésie avertine (300 i.p.) du mélange suivant (60 l / souris) : - 54 de LT(R192G) 25 5 g N-GFP-PAN ou 1.7 g de GFP soluble ou 3.3 pg N-PAN (quantités en GFP ou en N-PAN correspondantes à celles présentes dans 5 g de N-GFP-PAN) 30 - qsp 60 l avec sérum physiologique apyrogène Toutes les solutions sont passées sur filtre 0,22 pm avant injection. 15 Groupes JO J14 J32 Primo-injection rappel autopsie témoin LT(R192G) LT(R192G) Serum i.n. i.n. Rate serum serum LBA gg drainants GFP GFP GFP Serum + LT( R192G) + LT(R192G) Rate i.n. i.n. LBA serum serum gg drainants N-PAN N-PAN Serum + LT(R192G) + LT(R192G) Rate N-PAN i.n. i.n. LBA serum serum gg drainants NGFP-PAN NGFP-PAN Serum N-GFP- + LT(R192G) + LT(R192G) Rate PAN i.n. i.n. LBA serum serum gg drainants LBA: lavage broncho-alvéolaire gg: ganglions avec 1 ml de PBS 1 mM EDTA) 1.5 Production d'anticorps anti N-PAN et anti GFP : Les anticorps anti-N-PAN ou anti-GFP (IgH+L et IgA) sont recherchés dans les sérums et les LBA par ELISA : - Les sérums sont collectés à partir des prélèvements de sang (1 nuit d'exsudation à 4 C) puis congelés à -20 C. Les LBA sont centrifugés 5 min à 1700 rpm, les surnageants sont collectés (environ 1 ml) et congelés à -20 C. Des plaques de 96 puits (Immulon 2HB, TherrnoLabsystems) sont sensibilisées une nuit à 4 C avec le complexe N-PAN ou la protéine GFP recombinante (200 ng par puit, 100 .il par puit) en tampon bicarbonate 0,1 M pH 9,5. Les plaques sont lavées 5 fois avec 200 l par puit de PBS 0,05% tween 20 (utilisation d'un automate Wellwash, Labsystems). Les plaques sont ensuite saturées pendant 1 h à 37 C avec 150 l par puit de tampon PBS 0,05% tween 20 et 5% sérum de veau foetal (PBS-T-SVF). Après 5 lavages, les échantillons à titrer sont dilués en PBS-T-SVF (sept dilutions successives de raison 3 en partant d'une première dilution au 301emepour les sérums et au tiers pour les LBA). Les plaques sont incubées pendant 2h à 37 C. Après 5 lavages, l'anticorps secondaire dilué en PBS-T-SVF est distribué à raison de 100 l par puit. Les anticorps secondaires utilisés sont conjugués à la peroxydase et dirigés contre les immunoglobulines de souris : Ig(H+L) (4000ième, P.A.R.I.S.) ou IgA (1000ième Caltag). Les plaques sont incubées pendant 2 h à 37 C et lavées 5 fois. Les plaques sont ensuite incubées avec le substrat de la peroxydase (TMB, 100 l par puit) pendant 10 min à l'obscurité. La réaction enzymatique est arrêtée par l'ajout de 50 l de H3PO4 2M. Les densités optiques (DO) sont lues à 450 nm (lecteur Dynex). La courbe DO45o=f(dilution) est modélisée par la courbe de régression y=(b+cx)/(1+ax) à l'aide du logiciel Origin. Le titre en anticorps est déterminé comme la valeur de dilution donnant deux fois la DO450 d'un échantillon témoin (JO) à sa plus grande dilution. 1.6 Production d'IFN-y/IL-5/IL-10 par des lymphocytes T spécifiques de N-PAN ou de GFP La rate et les ganglions drainant le tractus respiratoire (faciaux, cervicaux et médiastinaux) sont traités selon le même protocole. Les rates sont traitées individuellement et les ganglions sont groupés par lot expérimental. Les organes lymphoïdes sont émincés puis broyés délicatement sur filtre (tamis cellulaire 100 m, BD Falcon) en milieu RPMI et PS. La suspension cellulaire est centrifugée à 1700 rpm pendant 10 min à 4 C. Les cellules sont remises en suspension dans 1 ml de tampon de lyse des érythrocytes (tampon salin hypotonique) et incubées pendant 5 min à température ambiante. La réaction de lyse est arrêtée par ajout de 10 ml de RPMI complet (PS, 2 mM L-glutamine et 10% SVF). Les débris membranaires sont décantés et les cellules sont lavées trois fois par centrifugation (1700 rpm pendant 10 min à 4 C). Les suspensions cellulaires sont dénombrées à l'aide d'une cellule de Malassez. Les cellules sont mises en culture dans des microplaques de 96 puits traitées pour la culture cellulaire (Falcon) à raison de 400 000 cellules par puit dans 200 l de milieu RPMI complet. Quatre conditions de culture sont testées en triplicat sur chaque suspension cellulaire : - PMA (Phorbol 12-myristate 13-acétate, Sigma) 10 ng/ml et ionomycine (Sigma) 1 pg/ml (témoin positif, activation polyclonale) - RPMI complet (témoin négatif) - N-PAN 10 g/ml - GFP 10 .ig/ml. Après 48h (IL-5 et IL-10) ou 72h (IFN-y) de culture à 37 C avec 5% CO2, les surnageants de culture sont collectés et congelés à -20 C jusqu'à titration des cytokines par ELISA : Des plaques de 96 puits (Immulon 2HB, ThermoLabsystems) sont sensibilisées une nuit à 4 C avec l'anticorps de capture anti-cytokine de souris à 4 pg/ml (IFN-y) ou 2 pg/ml (IL-5/IL-10) en tampon Bicarbonate 0,1M pH 9,5 (100 l/puit). Les plaques sont lavées 5 fois avec 200 l par puit de PBS 0,05% tween 20 (utilisation d'un automate Wellwash, Labsystems). Les plaques sont ensuite saturées pendant 2 h à 37 C avec 150 l par puit de tampon PBS 0,05% tween 20 et 2% d'albumine sérique bovine (PBS-T-BSA). Après 5 lavages, la référence cytokine de souris recombinante et les échantillons à titrer sont dilués en PBS-T-BSA par dilutions successives au demi. Quatre dilutions successives au demi sont réalisées sur les échantillons purs. La plaque est alors incubée pendant une nuit à 4 C. Après 5 lavages, l'anticorps de détection biotinylé est distribué (1 pg/ml pour IFN-y/IL-10 ou 0,5 g/nnl pour IL-5 en PBST-BSA, 100 l/puit) et incubé 3 h à 4 C. Après 5 lavages, le conjugué Streptavidine-Peroxydase (Pierce) est distribué (1 dag/ml en PBS-T-BSA, 100 l/puit) et incubé 1 h à 4 C. Après 5 lavages, le substrat de la peroxydase (ABTS+H2O2) est distribué dans les puits. Après 45 minutes d'incubation, les densités optiques sont lues à 405 nm (Lecteur ELISA Dynex). Le calcul de la concentration en IFN-y/IL-5/IL-10 dans les échantillons se fait par rapport à la gamme étalon en utilisant le logiciel d'analyse Révélation couplé au lecteur. Références des anticorps (BD Bioscience) : - IFNy : anticorps de capture : clone R4-6A2 (BD Bioscience, 551216) - Anticorps de détection : clone XMG1.2 (BD Bioscience, ref 554410) - mIFN-y recombinant : R&D systems 485-Ml - IL-5 : anticorps de capture : clone TRFK5 (BD Bioscience, 554393) - Anticorps de détection : clone TRFK4 (BD Bioscience, ref 554397) - mIL-5 recombinant : BD Bioscience 554581 - IL-10 : anticorps de capture : clone JES5-2A5 (BD Bioscience, 551215) - Anticorps de détection : clone SXC-1 (BD Bioscience, ref 554423) - mIL-10 recombinant : BD Bioscience 550070 -Streptavidin peroxydase Immunopure (Pierce 21126) 1.7 Analyses statistiques : Les groupes sont comparés deux par deux en réalisant un test U de Mann-Whitney (http://eatworms.swmed.edu/ûleon/stats/utest.html). Une valeur p muqueux (par lavages broncho-alvéolaires) et (ii) la réponse cellulaire via la production de cytokines (IFN-y, IL-5 et IL-10) par des lymphocytes T mémoires isolés de la rate ou des ganglions drainant le tractus respiratoire. II-1 Les anneaux de N sont un vecteur efficace pour cibler des anticorps contre un antigène exogène, exemple de la GFP Les complexes N-PAN sont très fortement immunogènes par voie systémique et par voie mucosale (brevet FRO5O4426). La fusion de la GFP avec la protéine N n'altère pas l'intensité de la réponse Ac anti N-PAN, que ce soit au niveau sérique (fig. 3B) et mucosal (fig. 3C) : il n' y a pas de différence significative entre les groupes N-GFP-PAN et N-PAN. La GFP administrée par voie nasale induit une réponse Ac systémique (fig. 3A ; GFP versus témoin, p=0,003) mais pas de réponse locale (fig. 3C ; GFP versus témoin, non significatif). Par contre, l'association de la GFP aux complexes N-PAN augmente fortement le taux d'anticorps anti-GFP par rapport à la GFP seule. Le niveau des anticorps anti-GFP est multiplié par un facteur 4 au niveau sérique (N-GFPPAN versus GFP, p=0,039) et par un facteur 100 au niveau des LBA (N-GFPPAN versus GFP, p=0,014). Il-2 La vectorisation de la GFP sur les anneaux de N n'augmente pas la réponse T spécifique : En plus de leur forte capacité à stimuler la réponse anticorps, les N-PAN stimulent efficacement la réponse T mémoire mise en évidence par une synthèse d'IFN-y antigène-dépendante au niveau systémique (brevet FRO5O4426 et Figure 4, rates N-PAN versus témoin, p=0,01) mais également locale (fig. 4, ganglions loco-régionaux). La fusion d'un antigène exogène tel que la GFP sur la N ne perturbe pas l'établissement de ces réponses T que ce soit au niveau de la rate (N-GFP-PAN versus N-PAN, non différent) ou au niveau des ganglions (Figure 4). Par contre, quel que soit le mode de présentation de la GFP (seule oufusionnée à N) aucune réponse T spécifique de la GFP, mesurée par la production d'IFN-y (Fig. 4) ou d'IL-5/IL-10 (non montré) n'est observée : il n'y a pas de différence significative entre les groupes témoin, N-GFP-PAN et GFP. En conclusion, l'exemple de la GFP a permis de montrer que les complexes N-PAN sont des vecteurs d'antigène très puissants pour stimuler des réponses anticorps, en particulier au niveau mucosal. Par contre ils s'avèrent peu efficaces pour stimuler une réponse T mémoire contre ces mêmes antigènes. Il est important de noter que la fusion d'un antigène exogène n'a pas altéré l'immunogénicité propre aux complexes N-PAN. Ces résultats permettent d'envisager l'utilisation des complexes N-PAN comme vecteur d'antigène dans le but de stimuler de fortes réponses anticorps. Dans le cadre de la vaccination contre le VRS, les résultats obtenus montrent que l'on peut tirer avantage à la fois de la réponse cellulaire contre la nucléoprotéine et d'une réponse anticorps contre des antigènes/épitopes du VRS connus pour être la cible des anticorps neutralisants. Ces deux facettes des défenses immunitaires sont critiques pour obtenir une immunité stérilisante contre le VRS. De manière générale, pour de nombreux pathogènes (en particulier les virus), les épitopes ou antigènes cibles des anticorps neutralisants sont bien décrits dans la littérature et participent au contrôle efficace de l'infection. De nouveaux vecteurs pour stimuler efficacement ces réponses sont donc très recherchés en vaccination. Les complexes N-PAN présentent en plus l'avantage d'être des structures inertes non réplicatives donc sans risques pour l'hôte et l'environnement. REVENDICATIONS 1. Protéine de fusion protéine N-protéine d'intérêt, où la protéine N est une protéine N d'un virus de la famille des Paramyxoviridae et la protéine d'intérêt est fusionnée en phase, en C-terminal de la protéine N. 2. Protéine de fusion selon la revendication 1, dans laquelle le virus de la famille des Paramyxoviridae est sélectionné dans le groupe constitué du virus des oreillons, du virus de la rougeole, du Metapneumovirus humain, du virus parainfluenza et du virus respiratoire syncytial. 3. Protéine de fusion selon la revendication 1 ou 2, dans laquelle le virus de la famille des Paramyxoviridae est le virus respiratoire syncytial humain ou bovin. 4. Protéine de fusion selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, dans laquelle la protéine d'intérêt est une protéine marqueur, ou une protéine d'intérêt thérapeutique ou vaccinal. 20 5. Protéine de fusion selon la revendication 4, dans laquelle la protéine d'intérêt vaccinal est un antigène dérivé d'un microorganisme pathogène. 6. Protéine de fusion selon la revendication 4, dans laquelle protéine d'intérêt est une construction comprenant la GFP fusionnée en phase, à son 25 extrémité C-terminale, avec une protéine thérapeutique ou vaccinal. 7. Acide nucléique codant une protéine de fusion selon l'une quelconque des revendications 1 à 6. 30 8. Vecteur d'expression comprenant un acide nucléique selon la revendication 7.15 9. Cellule hôte contenant un vecteur d'expression selon la revendication 8. 10. Procédé de production d'une protéine de fusion protéine N-protéine d'intérêt où la protéine N est une protéine N d'un virus de la famille des Paramyxoviridae et la protéine d'intérêt est fusionnée en phase, en C-terminal de la protéine N, ledit procédé comprenant la culture d'une cellule hôte selon la revendication 9, dans des conditions permettant l'expression de protéines de fusion protéine N-protéine d'intérêt, et éventuellement la purification des protéines de fusion protéine N-protéine d'intérêt exprimées. 11. Procédé de préparation d'un complexe protéine N-protéine d'intérêt/protéine P, les protéines N et P étant des protéines d'un virus de la famille des Paramyxoviridae, ledit procédé comprenant les étapes consistant à : a) coexprimer une protéine N d'un virus de la famille des Paramyxoviridae, dans laquelle la protéine d'intérêt est fusionnée en phase en C-terminal de la protéine N, avec une protéine P du même virus de la famille des Paramyxoviridae ; b) recueillir les complexes protéine N-protéine d'intérêt/protéine P ainsi formés. 12. Complexe protéine N-protéine d'intérêt/protéine P, les protéines N et P étant des protéines d'un virus de la famille des Paramyxoviridae, susceptible d'être obtenu par le procédé selon la revendication 11. 13. Procédé de préparation d'une protéine N d'un virus de la famille des Paramyxoviridae, fusionnée en phase à son extrémité C-terminale avec une protéine d'intérêt, ledit procédé comprenant la séparation de la protéine de fusion protéine N-protéine d'intérêt à partir du complexe protéine N-protéine d'intérêt/protéine P selon la revendication 12. 14. Protéine de fusion protéine N-protéine d'intérêt, où la protéine N est une protéine N d'un virus de la famille des Paramyxoviridae et la protéine d'intérêt est fusionnée en phase, en C-terminal de la protéine N, susceptible d'être obtenue par le procédé selon la revendication 13. 15. Composition pharmaceutique comprenant une protéine N d'un virus de la famille des Paramyxoviridae fusionnée avec une protéine d'intérêt telle que définie dans l'une quelconque des revendications 1 à 6 et 14, dans un véhicule pharmaceutiquement acceptable. 16. Composition pharmaceutique selon la revendication 15, comprenant un complexe protéine N-protéine d'intérêt/protéine P tel que défini dans la revendication 12, dans un véhicule pharmaceutiquement acceptable. 15 17. Composition selon la revendication 15 ou 16, qui est une composition immunogène ou vaccinale. 18. Utilisation d'une protéine N d'un virus de la famille des Paramyxoviridae pour la fabrication d'un vecteur de molécules ou protéines d'intérêt thérapeutique ou vaccinal. 19. Utilisation selon la revendication 18, dans laquelle le virus de la famille des Paramyxoviridae est sélectionné dans le groupe constitué du virus des oreillons, du virus de la rougeole, du virus parainfluenza et du virus respiratoire syncytial. 20. Conjugué comprenant une molécule d'intérêt thérapeutique ou vaccinal couplé chimiquement à une protéine N d'un virus de la famille des Paramyxoviridae. 30 21. Réactif diagnostic comprenant une protéine de fusion comprenant un antigène fusionné en phase en C-terminal d'une protéine N d'un virus de la famille des Paramyxoviridae. 10 20 25 22. Utilisation d'une protéine de fusion comprenant un antigène fusionné en phase en C-terminal d'une protéine N d'un virus de la famille des Paramyxoviridae pour la détection in vitro d'anticorps dirigés contre ledit antigène de la protéine de fusion. 23. Méthode de détection d'anticorps spécifiques d'un antigène, dans un échantillon biologique, comprenant les étapes consistant à : a) mettre en contact ledit échantillon biologique avec une protéine de 10 fusion comprenant un antigène fusionné en phase en C-terminal d'une protéine N d'un virus de la famille des Paramyxoviridae, b) détecter les complexes protéine de fusion N-antigènelanticorps formés, la présence de tels complexes étant révélatrice de la présence d'anticorps 15 spécifiques de l'antigène dans l'échantillon biologique.