FR 2897688 A1 20070824 FR 0753405 A 20070221 PROCEDE D'IMMOBILISATION D'HYDROGELS SUR DES MATERIAUX POLYMERES NON MODIFIES, BIOPUCE A BASE DE MATERIAUX POLYMERES NON MODIFIES ET PROCEDE DE FABRICATION DE CELLE-CI Domaine de l'invention L'invention concerne le domaine de la biologie moléculaire et de la chimie bio-organique et elle a trait à l'utilisation de matériaux polymères qui peuvent être utilisés sans modification chimique préliminaire pour la fabrication d'une biopuce ( biochip ) portant des oligonucléotides, des protéines, des acides nucléiques ou tout autre composé biologiquement actif, immobilisés dans un gel. L'invention concerne aussi un procédé de fabrication de biopuces de type gel en biologie moléculaire, tout en séquençant et en cartographiant l'ADN, en détectant des mutations, ainsi que dans de nombreuses applications médicales. Contexte de l'invention A l'heure actuelle, pour la fabrication de biopuces, on utilise des supports faits de verre (céramique), de métaux et de matériaux polymères. Avant la fabrication d'une biopuce de type microchip , le verre, le métal et, pour la plupart, les polymères sont modifiés chimiquement pour former sur la surface de ceux-ci certains groupes actifs qui sont capables de lier des composés biologiquement actifs. La plus courante est une surface portant, entre autres, des groupes carboxy [1], amino, mercapto [2], aldéhyde [3], isocyanate [4], méthacrylique [5]. Dans un certain nombre de cas, l'immobilisation de composés biologiquement actifs est réalisée sur 2 des membranes en nylon [4] et sur du polystyrène (6] sans modification supplémentaire. [1] Nathalie Zammatteo, Laurent Jeanmart, Sandrine Hamels, Stéphane Courtois, Pierre Louette, Laslo Hevesi, José Remacle, Analytical Biochemistry, 2000, 5 280, pages 143 ù 150. [2] Céline Adessi, Gilles Matton, Guidon Ayala, Gérardo Turcatti, Jean-Jacques Mermod, Pascal Mayer, Eric Kawashima, Nucleic Acids Research, 2000, volume 28, N 20, e87. [3] Edward N. Timofeev, Svetlana V. Kochetkova, Andréi D. Mirzabekov, 10 Vladimir L. Florentiev, Nucleic Acids Research, 1996, volume 24, N 16, pages 3142 3148. [4] Markus Beier, Jorg D. Hoheisel, Nucleic Acids Research, 1999, volume 27, N 9, pages 1970 1977. [5] Anil Kumar, Zicai Liang, Nucleic Acids Research, 2001, volume 29, Na 2, 15 e2. [6] Farah N. Rehman, Mark Audeh, Ezra S. Abrams, Philip W. Hammond, Mary Kenney, T. Christian Boles, Nucleic Acids Research, 1999, volume 27, N 2, pages 649 ù 655. On connaît des procédés de fabrication de biopuces à base d'hydrogels, dans 20 lesquelles le cycle opératoire comprend les étapes suivantes : (1) la modification chimique du support en verre, (2) la formation sur celui-ci d'une matrice de cellules en gel, (3) l'application de solutions de macromolécules biologiques sur les cellules selon un circuit de biopuce prédéterminé, (4) l'activation chimique des cellules pour immobiliser les molécules-sondes, (5) le lavage-nettoyage et le séchage des biopuces 25 ainsi obtenues. Afin de former la matrice de cellules en gel, on connaît un procédé d'ablation au laser d'une couche absorbant une lumière spécifique sous-jacente à la couche de gel continue et ayant une géométrie qui est complémentaire à la géométrie de faisceau de cellules définie [7]. [7] Ershov et al., brevet US N 5,570,721. 30 On connaît aussi des procédés de préparation de biopuces à base d'un gel, dans lesquelles l'étape de formation d'un arrangement de cellules et l'étape 3 d'immobilisation des molécules-sondes sont combinées en une seule étape par l'utilisation d'une technique de copolymérisation photo- ou chimico-induite [8, 9]. [8] A.V. Vasiliskov et al., Bio Techniques, 1999, volume 27, pages 592 û 606. [9] RU2216547 C2. Pour l'essentiel, ces procédés font appel à l'utilisation de compositions qui comprennent, en plus d'un monomère et d'un agent de réticulation, des macromolécules immobilisables, comprenant un groupe actif qui fournit une insertion de ces molécules dans le réseau de polymères dans l'hydrogel. Les matériaux utilisés à l'heure actuelle pour fabriquer des supports de biopuce, ainsi que les procédés de fabrication de biopuces sur ceux-ci, présentent un certain nombre d'inconvénients fondamentaux. Les inconvénients principaux des supports en verre peuvent englober les points suivants : o Une homogénéité chimique insuffisante de la surface du verre. Cette propriété du verre conduit, suite à une modification chimique, à la formation d'une surface constituée de sections ayant des qualités hydrophobes (hydrophiles) différentes, et ceci affecte fortement le caractère reproductible des propriétés physiques des biopuces, incluant le volume et la forme des cellules, ainsi que leur disposition les unes par rapport aux autres. o Une relative complexité de mise en oeuvre et de fabrication des biopuces ayant une configuration superficielle prédéterminée. o Une résistance mécanique insuffisante. o Un coût comparativement élevé du support présentant la qualité superficielle nécessaire. o Un traitement chimique mandataire de la surface du verre pour une immobilisation efficace de molécules biologiquement actives. Les inconvénients principaux des matériaux polymères utilisés de nos jours pour la fabrication de supports peuvent comprendre les points suivants : 30 ^ La surface du polymère nécessite une modification chimique préliminaire. 20 25 4 • La structure poreuse des filtres en nylon, utilisés de nos jours, impose réellement des limitations quant au nombre d'éléments de biopuce par unité de surface. • Les éléments de biopuce en gel, fabriqués sur du polystyrène sans modification chimique préalable de sa surface, sont faiblement fixés à la surface et, bien qu'étant lavés et hybridés, ils sont souvent soumis à une destruction. A l'heure actuelle, tous les procédés connus de fabrication de biopuces en gel sont basés sur l'utilisation d'un verre chimiquement modifié à titre de support, et ce 10 avec tous les inconvénients impliqués, qui affectent la productivité de la fabrication, ainsi que la qualité des biopuces en gel. Résumé de l'invention Selon un premier aspect, la présente invention a pour objet l'utilisation de 15 matériaux polymères, généralement non modifiés, utilisés sans modification préliminaire, pour la fabrication d'un support de biopuce, destiné à immobiliser des hydrogels sur sa surface. L'immobilisation des hydrogels sur la surface du support est réalisée lors de sa formation par un procédé de polymérisation. En ce qui concerne la fabrication d'un support de biopuce, les matériaux 20 polymères, qui sont utilisés, généralement sans modification préliminaire, sont choisis parmi les matériaux suivants : ABS (copolymère acrylonitrile-butadiène-styrène), ABS + PA (un mélange d'ABS et de polyamide), ABS + PBT (un mélange d'ABS et de poly(téréphtalate de butylène)), ABS + PC (un mélange d'ABS et de 25 polycarbonate), ABS + PMMA (un mélange d'ABS et de poly(méthacrylate de méthyle)), ABS + PVC (un mélange d'ABS et de poly(chlorure de vinyle)), ACS (un copolymère d'acrylonitrile, d'éthylène chloré et de styrène), COC (des copolymères de cyclo-oléfines), MABS (un copolymère de méthacrylate de méthyle, d'acrylonitrile, de butadiène et de styrène), PA 6 (polyamide 6), 30 PA 6-3-T (polyamide 6-3-T), PA 11 (polyamide 11), PA 12 (polyamide 12), PA 46 (polyamide 46), PA 66 (polyamide 66), PA 610 (polyamide 610), PA 612 (polyamide 612), PBT (poly(téréphtalate de butylène)), PBT + PC (un mélange de poly(téréphtalate de butylène) et de polycarbonate), PC + PET (un mélange de polycarbonate et de poly(téréphtalate d'éthylène)), PC + PMMA (un mélange de polycarbonate et de poly(méthacrylate de méthyle)), 5 PET ou PETP (poly(téréphtalate d'éthylène)), PETG (polytéréphtalate d'éthylène glycol)), PMMA (poly(méthacrylate de méthyle)), PPA (polyphtalamide, polyamide à température élevée), PVC (poly(chlorure de vinyle)) et/ou des mélanges de ceux-ci. L'invention propose aussi l'utilisation de matériaux polymères et/ou de 10 mélanges de tels matériaux, éventuellement en combinaison avec des charges. Les charges minérales, telles que l'amiante, la fibre de verre et/ou le talc, peuvent être utilisées comme charges. Selon un deuxième aspect, la présente invention fournit une biopuce fabriquée sur un support choisi parmi les matériaux polymères cités ci-dessus et/ou 15 des mélanges de ceux-ci, généralement non modifiés, une couche de gel étant immobilisée sur la surface du support. Les matériaux polymères spécifiés et/ou les mélanges de ceux-ci peuvent être aussi utilisés en combinaison avec des charges. Des charges minérales, y compris l'amiante, la fibre de verre et/ou le talc, peuvent être utilisées comme charges. Le gel immobilisé sur le support de polymère peut être 20 également agencé sous forme de cellules séparées les unes des autres. Ces cellules peuvent aussi constituer une structure régulière unidimensionnelle ou bidimensionnelle (faisceau). Les cellules en gel peuvent comprendre des composés biologiquement actifs immobilisés, et ensuite divers composés biologiquement actifs peuvent être 25 immobilisés à l'intérieur des différentes cellules en gel. Chaque cellule en gel d'une biopuce peut comprendre, en outre, un colorant fluorescent immobilisé, par exemple le Texas Red, la fluorescéine, et Cy 5, Cy 3, BODIPY. L'immobilisation des composés est réalisée lors de la formation du gel par une polymérisation initiée par voie thermique, chimique et photochimique. 30 Selon un troisième aspect, la présente invention a pour objet un procédé de fabrication de biopuces à gel, ce procédé comprenant l'immobilisation d'un hydrogel sur un support fabriqué à partir des matériaux polymères non modifiés, utilisés sans 6 modification chimique préliminaire, du type précité et/ou à partirir de mélanges de ceux-ci. Ces matériaux polymères et/ou leurs mélanges peuvent être aussi utilisés en combinaison avec des charges. Des charges minérales, y compris l'amiante, la fibre de verre et/ou le talc, peuvent être utilisées comme charges. Une polymérisation initiée thermiquement, chimiquement, ou photo-initiée peut être utilisée pour former le gel. Dans le cas de la polymérisation photo-initiée, on peut utiliser une polymérisation photo-initiée réalisée par une lumière dans les domaines de l'ultraviolet ou du spectre visible. Pour la formation du gel, on peut utiliser des compositions comprenant un monomère, un agent de réticulation et un solvant, compositions qui peuvent en outre contenir un composé biologiquement actif immobilisable et/ou un colorant fluorescent, par exemple Texas Red, la fluorescéine, Cy 5, Cy 3, BODIPY. De plus, les compositions spécifiées peuvent contenir un initiateur ou un promoteur de polymérisation. Pour la formation du gel, on peut aussi utiliser des compositions comprenant un oligomère réactif et un solvant. Ce type de composition peut de plus contenir un composé biologiquement actif immobilisable et/ou un colorant fluorescent, par exemple Texas Red, la fluorescéine, Cy 5, Cy 3, BODIPY. Dans un des modes de réalisation, l'oligomère réactif spécifié peut aussi contenir, en plus, dans sa structure un composé biologiquement actif De plus, les compositions précitées peuvent aussi contenir un initiateur ou un promoteur de polymérisation. Pour réaliser un transfert de compositions spécifiées sur le support de polymère, on peut utiliser un micro-distributeur, par exemple un micro-distributeur en tige (aiguille), de type stylo ou de type jet. Les supports comprenant des micro-gouttes de compositions incorporées peuvent être placés dans un récipient hermétique dans une atmosphère dépourvue d'oxygène. L'atmosphère dépourvue d'oxygène peut être réalisée avec de l'azote, de l'argon et du dioxyde de carbone gazeux. L'immobilisation des composés biologiquement actifs est réalisée lors de la 30 formation de l'hydrogel. Des supports fabriqués à partir des matériaux polymères ne sont soumis à aucune modification chimique avant la fabrication de la biopuce. 7 Après polymérisation, les biopuces peuvent être lavées avec des solutions tampons et ensuite avec de l'eau distillée. La qualité des biopuces obtenues peut être contrôlée par les diamètres des éléments de biopuce et/ou par le signal fluorescent du colorant immobilisé dans 5 chaque cellule en gel de la biopuce. Selon un quatrième aspect, la présente invention a pour objet un procédé d'immobilisation d'hydrogels sur des supports fabriqués à partir de matériaux polymères non modifiés du type précité et/ou de mélanges de ceux-ci, sans modification chimique préliminaire. Les matériaux polymères spécifiés et/ou les 10 mélanges de ceux-ci peuvent être aussi utilisés en combinaison avec des charges. Des charges minérales, y compris l'amiante, la fibre de verre et/ou le talc, peuvent être utilisées comme charges. Pour la formation du gel, on peut utiliser une polymérisation initiée thermiquement, chimiquement, ou photo-initiée. Dans le cas de la polymérisation 15 photo-initiée, on peut utiliser une polymérisation photo-initiée réalisée par une lumière dans les domaines de l'ultraviolet ou du visible du spectre. Les supports fabriqués à partir des matériaux polymères ne subissent aucune modification chimique de leur surface. Pour la formation du gel, on peut utiliser des compositions comprenant un 20 monomère, un agent de réticulation et un solvant, compositions qui peuvent de plus contenir un composé biologiquement actif immobilisable et/ou un colorant fluorescent, par exemple Texas Red, la fluorescéine, Cy 5, Cy 3, BODIPY. De plus, les compositions précitées peuvent aussi contenir un initiateur ou un promoteur de polymérisation. 25 Pour la formation du gel, on peut aussi utiliser des compositions comprenant un oligomère réactif et un solvant. De telles compositions spécifiée peuvent en outre contenir un composé biologiquement actif immobilisable et/ou un colorant fluorescent, par exemple Texas Red, la fluorescéine, Cy 5, Cy 3, BODIPY. Dans un des modes de réalisation, l'oligomère réactif spécifié peut aussi contenir, en plus, 30 dans sa structure un composé biologiquement actif. De plus, les compositions précitées peuvent aussi contenir un initiateur ou un promoteur de polymérisation. 8 Les hydrogels peuvent être produits sur les supports de polymère sous la forme d'une couche continue d'une épaisseur et d'une configuration variables. Les hydrogels peuvent être aussi agencés sur des supports de polymère sous forme de cellules en gel séparées les unes des autres. Après un transfert des compositions spécifiées sur le support de polymère, ce dernier peut être placé dans un récipient hermétique dans une atmosphère dépourvue d'oxygène. L'atmosphère dépourvue d'oxygène peut être réalisée avec de l'azote, de l'argon et du dioxyde de carbone gazeux. Après la polymérisation, les biopuces peuvent être lavées avec des solutions 10 tampons et ensuite avec de l'eau distillée. Description des dessins L'invention est illustrée par les figures suivantes : La figure 1 montre des photographies de biopuces produites sur du 15 poly(méthacrylate de méthyle) (PMMA) lors d'une polymérisation initiée thermiquement (A, D), chimiquement (B, E) et photo-initiée (C, F) initiée. Les compositions présentées dans l'exemple 1 sont réparties sous forme de gouttes sur une plaque de PMMA sans modification préliminaire, et elles sont ensuite irradiée avec des UV (2, = 350 nm). Les plaques de PMMA portant des éléments en 20 gel immobilisés sont lavées avec une solution tampon, de l'eau et elles sont ensuite séchées. Pour contrôler la qualité des éléments des biopuces, l'image des biopuces en termes de lumière transmise (A, B, C) et de lumière luminescente (D, E, F) est enregistrée. La figure 2 représente les résultats d'une hybridation d'oligonucléophile, 25 marqué avec un colorant fluorescent, obtenu sur la biopuce d'oligonucléotide, fabriquée à partir de divers supports de polymère et de verre. Les oligonucléotides 5'-AATTGGCTCAGCTGGCT- OCH2CH(CH2OH)(CH2)4-NH2 (A) et 5'-AATTGGCTCGGCTGGCT- OCH2CH(CH2OH)(CH2)4-NH2 (B) sont immobilisés dans un hydrogel selon 30 l'exemple 1-I, sur des supports fabriqués à partir de différents matériaux polymère : PMMA (1) ; PETP (2) ; PA6 (3) ; ABS (4) ; ABS + PBT (5) ; ACS (6) ; COC (7) ; MABS (8) ; PETG (9) ; ABS + PA (10) ; PPA (1l) ; PVC (12) ; ABS + PMMA (13) ; 9 PBT + PC (14) ; ABS + PC (15) ; ABS + PVC (16) ; PBT (17) ; PC + PET (18) ; PC + PMMA (19) ; verre (20). Selon l'exemple 2, les biopuces obtenues sont hybridées avec un oligonucléotide marqué avec un colorant fluorescent 3'-TTAACCGAGTCGACCGA-Cy5. Après l'hybridation, on observe le signal fluorescent le plus fort dans des cellules de biopuce qui contiennent l'oligonucléotide A immobilisé, qui est entièrement complémentaire de celui marqué par fluorescence. Description détaillée La présente invention a pour objet l'utilisation de matériaux polymères pour la fabrication d'un support de biopuce destiné à une immobilisation d'hydrogels sur sa surface, dans laquelle les matériaux polymères sont choisis parmi les matériaux suivants : ABS (copolymère acrylonitrile-butadiène-styrène), ABS + PA (un mélange d'ABS et de polyamide), ABS + PBT (un mélange d'ABS et de poly(téréphtalate de butylène)), ABS + PC (un mélange d'ABS et de polycarbonate), ABS + PMMA (un mélange d'ABS et de poly(méthacrylate de méthyle)), ABS + PVC (un mélange d'ABS et de poly(chlorure de vinyle)), ACS (un copolymère d'acrylonitrile, d'éthylène chloré et de styrène), COC (des copolymères de cyclo-oléfines), MABS (un copolymère de méthacrylate de méthyle, d'acrylonitrile, de butadiène et de styrène), PA 6 (polyamide 6), PA 6-3-T (polyamide 6-3-T), PA 11 (polyamide 11), PA 12 (polyamide 12), PA 46 (polyamide 46), PA 66 (polyamide 66), PA 610 (polyamide 610), PA 612 (polyamide 612), PBT (poly(téréphtalate de butylène)), PBT + PC (un mélange de poly(téréphtalate de butylène) et de polycarbonate), PC + PET (un mélange de polycarbonate et de poly(téréphtalate d'éthylène)), PC + PMMA (un mélange de polycarbonate et de poly(méthacrylate de méthyle)), PET ou PETP (poly(téréphtalate d'éthylène)), PETG (polytéréphtalate d'éthylène glycol)), PMMA (poly(méthacrylate de méthyle)), PPA (polyphtalamide, polyamide à température élevée), PVC (poly(chlorure de vinyle)) et/ou des mélanges de ceux-ci. Les matériaux polymères utilisés sont le plus souvent, et de préférence, des polymères non modifiés, utilisés sans modification préliminaire. 10 Par ailleurs, les matériaux polymères et/ou les mélanges de ceux-ci peuvent être utilisés en combinaison avec des charges, notamment des charges minérales, y compris l'amiante, la fibre de verre et/ou le talc. Par ailleurs, dans l'utilisation objet de l'invention, l'immobilisation d'un 5 hydrogel sur la surface de support est avantageusement réalisée lors de sa formation par un procédé de polymérisation. L'invention a également pour objet une biopuce fabriquée sur un support fabriqué à partir de matériaux polymères choisis parmi les matériaux suivants : ABS (copolymère acrylonitrile-butadiène-styrène), ABS + PA (un mélange d'ABS et 10 de polyamide), ABS + PBT (un mélange d'ABS et de poly(téréphtalate de butylène)), ABS + PC (un mélange d'ABS et de polycarbonate), ABS + PMMA (un mélange d'ABS et de poly(méthacrylate de méthyle)), ABS + PVC (un mélange d'ABS et de poly(chlorure de vinyle)), ACS (un copolymère d'acrylonitrile, d'éthylène chloré et de styrène), COC (des copolymères de cyclo-oléfines), MABS (un copolymère de 15 méthacrylate de méthyle, d'acrylonitrile, de butadiène et de styrène), PA 6 (polyamide 6), PA 6-3T (polyamide 6-3-T), PA 11 (polyamide 11), PA 12 (polyamide 12), PA 46 (polyamide 46), PA 66 (polyamide 66), PA 610 (polyamide 610), PA 612 (polyamide 612), PBT (poly(téréphtalate de butylène)), PBT + PC (un mélange de poly(téréphtalate de butylène) et de polycarbonate), PC + PET (un 20 mélange de polycarbonate et de poly(téréphtalate d'éthylène)), PC + PMMA (un mélange de polycarbonate et de poly(méthacrylate de méthyle)), PET ou PETP (poly(téréphtalate d'éthylène)), PETG (polytéréphtalate d'éthylène glycol)), PMMA (poly(méthacrylate de méthyle)), PPA (polyphtalamide, polyamide à température élevée), PVC (poly(chlorure de vinyle)) et/ou des mélanges de ceux-ci, une couche 25 de gel étant immobilisée sur la surface du support. Dans cette biopuce, les matériaux polymères sont le plus souvent, et de préférence, des matériaux non modifiés. Les biopuces objet de l'invention peuvent présenter une ou plusieurs des caractéristiques ci-après, selon toutes les combinaisons techniquement envisageables : - les matériaux polymères et/ou les mélanges de ceux-ci sont utilisés en combinaison 30 avec des charges, par exemple des charges minérales, y compris l'amiante, la fibre de verre et/ou le talc ; 11 - la couche de gel formée sur le support de polymère est agencée sous la forme de cellules séparées les unes des autres ; - les cellules de la biopuce forment une structure régulière unidimensionnelle ou bidimensionnelle (de type faisceau notamment) ; - les cellules en gel contiennent en outre les composés biologiquement actifs immobilisés et/ou les colorants fluorescents immobilisés, où, de préférence, les différents composés biologiquement actifs sont immobilisés à l'intérieur des cellules en gel et où le colorant fluorescent immobilisé est avantageusement choisi parmi le Texas Red, la fluorescéine, et Cy 5, Cy 3, BODIPY ; -l'immobilisation des composés biologiquement actifs dans le gel est réalisée lors de la formation du gel par une polymérisation initiée par voie thermique, chimique et photo-chimique. L'invention concerne par ailleurs, selon un autre aspect, un procédé de fabrication d'une biopuce à gel, comprenant l'immobilisation d'un hydrogel sur un support fabriqué à partir de matériaux polymères, caractérisé en ce que les matériaux polymères sont choisis parmi les matériaux suivants : ABS (copolymère acrylonitrile-butadiène-styrène), ABS + PA (un mélange d'ABS et de polyamide), ABS + PBT (un mélange d'ABS et de poly(téréphtalate de butylène)), ABS + PC (un mélange d'ABS et de polycarbonate), ABS + PMMA (un mélange d'ABS et de poly(méthacrylate de méthyle)), ABS + PVC (un mélange d'ABS et de poly(chlorure de vinyle)), ACS (un copolymère d'acrylonitrile, d'éthylène chloré et de styrène), COC (des copolymères de cyclo-oléfines), MABS (un copolymère de méthacrylate de méthyle, d'acrylonitrile, de butadiène et de styrène), PA 6 (polyamide 6), PA 6-3-T (polyamide 6-3-T), PA 11 (polyamide 11), PA 12 (polyamide 12), PA 46 (polyamide 46), PA 66 (polyamide 66), PA 610 (polyamide 610), PA 612 (polyamide 612), PBT (poly(téréphtalate de butylène)), PBT + PC (un mélange de poly(téréphtalate de butylène) et de polycarbonate), PC + PET (un mélange de polycarbonate et de poly(téréphtalate d'éthylène)), PC + PMMA (un mélange de polycarbonate et de poly(méthacrylate de méthyle)), PET ou PETP (poly(téréphtalate d'éthylène)), PETG (polytéréphtalate d'éthylène glycol)), PMMA (poly(méthacrylate de méthyle)), PPA (polyphtalamide, polyamide à température 12 élevée), PVC (poly(chlorure de vinyle)) et/ou des mélanges de ceux-ci, les matériaux polymères étant des matériaux non modifiés, utilisés sans modification chimique préliminaire. Ce procédé peut en outre comporter une ou plusieurs des caractéristiques préférentielles suivantes, selon toutes les combinaisons techniquement possibles : - les matériaux polymères et/ou leurs mélanges sont utilisés en combinaison avec des charges, notamment des charges minérales, incluant notamment l'amiante, la fibre de verre et/ou le talc ; - une polymérisation initiée par voie thermique est utilisée pour former le gel ; - une polymérisation initiée par voie chimique est utilisée pour former le gel ; - une polymérisation photo-initiée est utilisée pour former le gel ; - la polymérisation photo-initiée est utilisée dans les domaines de l'ultraviolet ou du spectre visible ; - des compositions comprenant un monomère, un agent de réticulation et un solvant sont utilisées pour former le gel ; - lesdites compositions comprennent en outre un composé biologiquement actif immobilisable et/ou un colorant fluorescent immobilisable et/ou un initiateur ou un promoteur de polymérisation, le colorant fluorescent immobilisé étant avantageusement choisi parmi Texas Red, la fluorescéine, Cy 5, Cy 3, et BODIPY ; - des compositions comprenant un oligomère et un solvant sont utilisées pour former le gel, où lesdites compositions comprennent de préférence, en outre, un composé biologiquement actif immobilisable et/ou un colorant fluorescent immobilisable et/ou un initiateur ou un promoteur de polymérisation, le colorant fluorescent immobilisé étant choisi parmi Texas Red, la fluorescéine, Cy 5, Cy 3 et BODIPY, et où le composé biologiquement actif constitue avantageusement la structure dudit oligomère réactif ; - un micro-distributeur est utilisé pour transférer lesdites compositions sur le support de polymère, ledit micro-distributeur étant de préférence choisi parmi un micro-distributeur de type à tige (aiguille), à stylo ou à jet, et où les supports comprenant les microgouttes de compositions transférées sont de préférence placés dans un récipient hermétique dans une atmosphère dépourvue d'oxygène, cette atmosphère 13 dépourvue d'oxygène étant avantageusement générée par de l'azote, de l'argon et du dioxyde de carbone gazeux ; - l'immobilisation des composés biologiquement actifs dans le gel est réalisée lors de la formation de l'hydrogel ; - les supports des matériaux polymères ne sont pas soumis à une quelconque modification chimique avant la fabrication de la biopuce ; - après la polymérisation, les biopuces sont lavées successivement avec des solutions tampons et ensuite avec de l'eau distillée ; - la qualité des biopuces obtenues est contrôlée par les diamètres des éléments des 10 biopuces ; - la qualité des biopuces obtenues est contrôlée par le signal fluorescent d'un colorant immobilisé dans chaque cellule en gel d'une biopuce. Enfin, l'invention concerne également, selon un autre aspect spécifique, un 15 procédé d'immobilisation d'hydrogels sur des matériaux polymères choisis parmi les matériaux suivants : ABS (copolymère acrylonitrile-butadiène-styrène), ABS + PA (un mélange d'ABS et de polyamide), ABS + PBT (un mélange d'ABS et de poly(téréphtalate de butylène)), ABS + PC (un mélange d'ABS et de polycarbonate), ABS + PMMA (un mélange 20 d'ABS et de poly(méthacrylate de méthyle)), ABS + PVC (un mélange d'ABS et de poly(chlorure de vinyle)), ACS (un copolymère d'acrylonitrile, d'éthylène chloré et de styrène), COC (des copolymères de cyclo-oléfines), MABS (un copolymère de méthacrylate de méthyle, d'acrylonitrile, de butadiène et de styrène), PA 6 (polyamide 6), PA 6-3T (polyamide 6-3-T), PA 11 (polyamide 11), PA 12 25 (polyamide 12), PA 46 (polyamide 46), PA 66 (polyamide 66), PA 610 (polyamide 610), PA 612 (polyamide 612), PBT (poly(téréphtalate de butylène)), PBT + PC (un mélange de poly(téréphtalate de butylène) et de polycarbonate), PC + PET (un mélange de polycarbonate et de poly(téréphtalate d'éthylène)), PC + PMMA (un mélange de polycarbonate et de poly(méthacrylate de méthyle)), PET ou PETP 30 (poly(téréphtalate d'éthylène)), PETG (polytéréphtalate d'éthylène glycol)), PMMA (poly(méthacrylate de méthyle)), PPA (polyphtalamide, polyamide à température 14 élevée), PVC (poly(chlorure de vinyle)) et/ou des mélanges de ceux-ci, où les matériaux polymères sont utilisés sans modification chimiquepréliminaire. Ce procédé d'immobilisation comporte avantageusement une ou plusieurs des caractéristiques préférentielles suivantes, selon toutes les combinaisons techniques possibles : - les matériaux polymères et/ou leurs mélanges sont utilisés en combinaison avec des charges, par exemple des charges minérales, y compris l'amiante, la fibre de verre et/ou le talc ; - une polymérisation initiée par voie thermique est utilisée pour former le gel ; 10 - une polymérisation initiée par voie chimique est utilisée pour former le gel ; - une polymérisation photo-initiée est utilisée pour former le gel ; - la polymérisation photo-initiée est réalisée dans les domaines de l'ultraviolet ou du du spectre visible ; - la surface des supports de matériaux polymères n'est pas soumise à une 15 modification chimique ; - des compositions comprenant un monomère, un agent de réticulation et un solvant sont utilisées pour former le gel, lesdites compositions comprenant de préférence, en outre, un composé biologiquement actif immobilisable et/ou un colorant fluorescent immobilisable et/ou un initiateur ou un promoteur de polymérisation, ledit colorant 20 fluorescent immobilisé étant par exemple choisi parmi Texas Red, la fluorescéine, et Cy 5, Cy 3, BODIPY ; - des compositions comprenant un oligomère réactif et un solvant sont utilisées pour former le gel, lesdites compositions comprenant de préférence, en outre, un composé biologiquement actif immobilisable et/ou un colorant fluorescent immobilisable et/ou 25 un initiateur ou un promoteur de polymérisation, ledit colorant fluorescent immobilisé étant par exemple choisi parmi Texas Red, la fluorescéine, et Cy 5, Cy 3, BODIPY, et ledit oligomère réactif contenant de préférence dans sa structure un composé biologiquement actif ; - les hydrogels sont créés sur les supports de polymère sous la forme d'une couche 30 continue d'épaisseur et de configuration variables ; - les hydrogels sont agencés sur les supports de polymères sous la forme de cellules séparées les unes des autres ; 15 - le support de polymère, après le transfert desdites compositions sur celui-ci, est placé dans un récipient hermétique dans une atmosphère dépourvue d'oxygène ; - l'atmosphère dépourvue d'oxygène est générée par de l'azote, de l'argon et du dioxyde de carbone gazeux ; - après la polymérisation, le gel formé est lavé successivement avec des solutions tampons et ensuite avec de l'eau distillée. Dans cette invention, il est proposé d'utiliser un certain nombre de matériaux 10 polymères bien connus et disponibles dans le commerce pour la fabrication de supports de biopuces à gel, et ce sans modification préliminaire. Les matériaux polymères sont choisis parmi les matériaux suivants : ABS (copolymère acrylonitrile-butadiène-styrène), ABS + PA (un mélange d'ABS et de polyamide), ABS + PBT (un mélange d'ABS et de 15 poly(téréphtalate de butylène)), ABS + PC (un mélange d'ABS et de polycarbonate), ABS + PMMA (un mélange d'ABS et de poly(méthacrylate de méthyle)), ABS + PVC (un mélange d'ABS et de poly(chlorure de vinyle)), ACS (un copolymère d'acrylonitrile, d'éthylène chloré et de styrène), COC (des copolymères de cyclo-oléfines), MABS (un copolymère de méthacrylate 20 de méthyle, d'acrylonitrile, de butadiène et de styrène), PA 6 (polyamide 6), PA 6-3-T (polyamide 6-3-T), PA 1l (polyamide 11), PA 12 (polyamide 12), PA 46 (polyamide 46), PA 66 (polyamide 66), PA 610 (polyamide 610), PA 612 (polyamide 612), PBT (poly(téréphtalate de butylène)), PBT + PC (un mélange de poly(téréphtalate de butylène) et de polycarbonate), PC + PET 25 (un mélange de polycarbonate et de poly(téréphtalate d'éthylène)), PC + PMMA (un mélange de polycarbonate et de poly(méthacrylate de méthyle)), PET ou PETP (poly(téréphtalate d'éthylène)), PETG (polytéréphtalate d'éthylène glycol)), PMMA (poly(méthacrylate de méthyle)), PPA (polyphtalamide, polyamide à température élevée), PVC (poly(chlorure de 30 vinyle)) et/ou des mélanges de ces matériaux polymères. 16 Les matériaux polymères précités et/ou leurs mélanges peuvent aussi être utilisés en combinaison avec des charges. Des charges minérales, telles que l'amiante, la fibre de verre et/ou le talc, peuvent être utilisées comme charges. Les matériaux polymères, utilisés sans modification préliminaire, sont destinés à la fabrication d'un support à la surface duquel seront immobilisés chimiquement des hydrogels lors de leur formation par une polymérisation qui est induite par voie thermique, chimique ou photochimique. Les supports précités sont destinés à la fabrication de biopuces, où des composés biologiquement actifs sont immobilisés dans un gel. Une biopuce est une couche de gel formée sur le support polymère et agencé sous la forme de cellules séparées les unes des autres, chaque cellule étant capable de contenir, ou de ne pas contenir, les composés biologiquement actifs immobilisés. Dans le même temps, les composés biologiquement actifs immobilisés dans différentes cellules peuvent posséder une nature et des propriétés différentes. Les cellules peuvent constituer une structure régulière unidimensionnelle ou bidimensionnelle (faisceau). L'application des compositions contenant les composés biologiquement actifs sur le support peut être réalisée par divers moyens, y compris l'utilisation d'un dispositif automatique (par exemple un robot) équipé d'un ou de plusieurs microdistributeurs de type jet ou tige/aiguille. L'immobilisation d'oligonucléotides, de protéines et d'acides nucléiques ou d'autres composés biologiquement actifs dans un gel peut être réalisée : • lors de la formation du gel, pendant la réalisation d'une polymérisation initiée par voie thermique, chimique ou photochimique ; • après formation d'un gel sur un support de polymère. Les composés biologiquement actifs peuvent comporter, au sein de leur structure, un groupe actif (pour l'immobilisation), incluant un des groupes suivants : amino, sulfhydrique, méthacrylamide, acrylamide, acrylate, méthacrylate, hydrazoture, etc. Alternativement, les composés biologiquement actifs peuvent être utilisés sous leur forme native, sans modification préliminaire. 17 En plus du composé biologiquement actif immobilisé, chaque cellule en gel d'une biopuce peut contenir un colorant fluorescent immobilisé utilisé pour contrôler la qualité de la biopuce et pour interpréter les résultats d'une hybridation sur la pastille. Un procédé de fabrication de biopuces en gel sur des supports de polymère fournis comprend les étapes suivantes : • la préparation de compositions pour former un gel ; • le transfert des compositions sur le support ; • la polymérisation des compositions dans une atmosphère dépourvue d'oxygène ; • le lavage-nettoyage de la biopuce ; • le contrôle de la qualité des éléments de la biopuce. Lors de la préparation des compositions pour former une solution homogène, tous les composants sont intimement mélangés et dégazés. Les compositions comprennent les composants suivants : • un monomère, constituant la base du gel formé et représentant un composé insaturé ; comme monomère, on utilise de l'acrylamide, du méthacrylamide, du N- [tris(hydroxyméthyl)méthyl]-acrylamide, du méthacrylate de 2-hydroxyéthyle, du méthacrylate de méthyle ou un monomère différent contenant plusieurs liaisons, au moins une liaison multiple devant être réactive lors de la polymérisation ; • un agent de réticulation représentant un composé insaturé comprenant deux liaisons multiples ou plus ; comme agent de réticulation, on peut utiliser du N,N'-méthylènebisacrylamide, du N,N'-méthylènebisméthacrylamide, du N,N'-(1,2-dihydroxyéthylène)bisacrylamide, du diacrylate de polyéthylène glycol, seuls ou en mélange, ou un agent de réticulation symétrique ou non symétrique différent comprenant deux liaisons multiples ou plus actives dans des réactions de polymérisation ; • un composé biologiquement actif immobilisable (un composant facultatif) ; 18 comme composé biologiquement actif, on peut utiliser un oligonucléotide, un acide nucléique, une protéine ou un composé significatif différent ; • un colorant fluorescent (un composant facultatif) ; comme colorant fluorescent, on peut utiliser du Texas Red, de la fluorescéine, Cy5, Cy3, BODIPY et d'autres colorants fluorescents ; • un solvant ; comme solvant, on peut utiliser de l'eau, du glycérol, du N,N-diméthylformamide, du diméthylsulfoxyde, des solvants polaires et non polaires différents, des solutions aqueuses tampons, des solutions de glycérol, des solutions de saccharose, des solutions de polyol, des solutions salines et non salines de solvants polaires et non polaires ; • un initiateur ou un promoteur de polymérisation (un composant facultatif) ; comme initiateur ou promoteur, on peut utiliser des composés contribuant à une initiation photochimique ou chimique de la polymérisation, solubles dans l'eau ou dans des milieux organiques, à savoir le persulfate d'ammonium, le persulfate de potassium, le peroxyde d'hydrogène, le peroxyde de benzoyle, l'azoisobutyronitrile (AIBN), les sels de fer ferreux, le bleu de méthylène, la fluorescéine, la N,N,N',N'-tétraméthyléthylène-diamine, la 4-(N,N-diméthylamino)pyridine, la triéthylamine, l'acétone, un initiateur de polymérisation différent qui est induit par voie photo-chimique ou chimique ; Lors de la préparation des compositions, à la place d'un monomère et/ou d'un agent de réticulation, on peut utiliser des oligomères réactifs contenant ou non dans leurs structures des composés biologiquement actifs. Lorsqu'on réalise une polymérisation initiée par voie thermique ou photo- initiée, on peut aussi omettre l'initiateur ou le promoteur de polymérisation. Pour réaliser un transfert des compositions sur le support de polymère, on peut utiliser des robots équipés de micro-distributeurs de divers types, y compris des 19 robots équipés de micro-distributeurs de type à tige (aiguille), de type à stylo et de type à jet. Pour réaliser la polymérisation, les supports portant des micro-gouttes de compositions sont placés à l'intérieur hermétique dans une atmosphère dépourvue 5 d'oxygène (azote, argon, dioxyde de carbone gazeux, etc.). La polymérisation initiée par voie thermique dans les micro-gouttes de solution est réalisée dans une atmosphère dépourvue d'oxygène à une température T de 60 à 80 C. Pour réaliser une polymérisation initiée par voie chimique à l'intérieur de 10 micro-gouttes de solution, ces dernières sont maintenues dans une atmosphère dépourvue d'oxygène à une température T de 60 à 80 C, en fonction de l'initiateur choisi. Le procédé de polymérisation photo-initiée est réalisé par un rayonnement UV avec une 7^, 312 mn. 15 Les biopuces obtenues sont lavées d'abord avec des solutions tampons et ensuite avec de l'eau distillée et elles sont ensuite utilisées. La qualité des biopuces obtenues est déterminée par l'erreur relative des diamètres des éléments de la biopuce ou des volumes de ceux-ci. Le volume des éléments de la biopuce est proportionnel au signal fluorescent d'un colorant 20 immobilisé à l'intérieur de chaque cellule en gel d'une biopuce. Un procédé d'immobilisation d'hydrogels sur des supports de polymère, lors de la formation des hydrogels, met en jeu la génération de liaisons covalentes entre les macromolécules des supports de polymère et les hydrogels, les liaisons covalentes étant générées à la surface des supports de polymère lors de la formation 25 du gel lors de la polymérisation initiée par voie thermique, chimique et photo- chimique. Les liaisons covalentes entre le support de polymère et l'hydrogel sont générées par l'une des voies possibles suivantes : a) La mise en jeu de plusieurs liaisons, existantes dans la structure des 30 molécules de polymère, dans la réaction de polymérisation avec des monomères qui forment un hydrogel lors de la réaction de polymérisation. 20 b) La mise en jeu de fragments des molécules de polymère de support dans des réactions de transfert de chaîne lors de la formation du gel lors de la polymérisation initiée. c) La modification de la surface du polymère par des réactifs bi- fonctionnels qui portent dans leur structure un fragment insaturé et qui font partie des compositions pour la formation d'un hydrogel. D'après la voie a), on peut aussi faire réagir des polymères et des compositions à base de ceux-ci, obtenus par le procédé de polymérisation, à savoir : ABS, ABS + PVC, PC + PMMA, ACS, COC, MABS, PMMA, PVC. Ceci est possible en raison de la nature de la réaction de polymérisation radicalaire, de sorte que des polymères sont obtenus, c'est-à-dire que dans l'étape de terminaison de chaîne, un procédé de formation de nombreuses liaisons terminales se déroule pendant une dismutation intermoléculaire [10]. [10] A.M. Shur, High-molecular Compounds, M.; The Higher School 15 Publishing House, 1981, pages 100 û 104 (en russe). D'après la voie a), on peut aussi faire réagir des polymères et des compositions à base de ceux-ci, obtenus par le procédé de polycondensation, à savoir : PBT, PBT + PC, PC + PET, PET ou PETP, PETG. La formation de plusieurs liaisons terminales dans des macromolécules de ces polymères est mise en évidence 20 par les procédés de déshydratation intramoléculaire qui se déroulent mettant en jeu des groupes alcool dans les conditions de la production de polymères [Il]. [11] Yu. S. Shabarov, Organic Chemistry V1, M.; Chemistry, 1996, pages 193 û 203 (en russe). D'après la voie b), on peut faire réagir tous les matériaux polymères spécifiés 25 [12], toutefois, les conditions de réalisation de la réaction dépendent fortement de la nature et de la structure des polymères. [12] A.M. Shur, High-molecular Compounds, M.; The Higher School Publishing House, 1981, pages 104 û 113 (en russe). Les polymères de polycondensation contenant des groupes amino terminaux, 30 à savoir : ABS + PA, PA6, PA6-3-T, PA11, PAl2, PA46, PA66, PA610, PA612, PPA, peuvent réagir selon la voie c). La condition nécessaire est la présence de dérivés bi-fonctionnels qui sont actifs dans une addition nucléophile ou dans des 21 réactions de substitution, par exemple le N,N-méthylènebisacrylamide [13] ou le N-hydroxysuccinamide-ester de l'acide 6-méthacryloylaminohexane, respectivement, dans la composition destinée à générer un hydrogel. [13] General organic Chemistry, volume 3, Nitrogen-containing compounds, sous la direction de N.K. Kochetkov, M: Chemistry, 1982, pages 61 ù 62 (en russe). Le concept de l'invention est décrit en détail en référence aux exemples de modes de réalisation individuels, qui ne seront pas considérés par le lecteur comme limitant le cadre des revendications de l'invention. Comme le montre la figure 2, les biopuces qui sont fabriquées sur divers supports de polymère, agissent lorsqu'ils sont hybridés de la même manière que dans le cas du verre couramment utilisé pour la fabrication d'une biopuce, et les résultats de l'hybridation ne sont pratiquement pas affectés par la nature de la surface du matériau polymère. Dans la mesure où la nature du support de polymère n'affecte pas les propriétés du gel, il est alors évident que des composés biologiquement actifs différents d'oligonucléotides, tels que les acides nucléiques, les protéines, les sucres, les lipides, etc., pouvant être immobilisés dans un gel, peuvent être aussi immobilisés selon la présente invention, en outre, ils ne perdraient pas leurs propriétés lorsqu'ils sont immobilisés dans un gel sur le support de polymère. Les exemples non limitatifs suivants sont des modes de réalisation illustratifs destinés entre autres à attester de la faisabilité de l'invention. L'homme du métier découvrira facilement d'autres modes de réalisation de l'invention, couverts par les revendications annexées. Exemple L Fabrication d'une biopuce sur un support de polymère, où des oligonucléotides sont immobilisés dans un gel. 1. Polymérisation photo-initiée A un mélange de méthacrylate de 2-hydroxyéthyle (m = 0,030 g), de N,N'-méthylènebisacrylamide (m = 0,007 g) et de méthacrylate de 2-acryloyloxyéthyle (m = 0,003 g), on verse une solution de N,N,N',N'-tétraméthyléthylène-diamine dans de 22 l'eau déminéralisée (V = 210 l, 1:1) contenant un colorant de type Texas Red (n = 40 nmoles), et on les mélange jusqu'à la dissolution complète des composants, puis on y verse du glycérol (V = 650 l). On ajoute une solution d'oligonucléotide dans de l'eau (v = 100 gl, C = 2 nmoles/cul) à la solution résultante. On soumet le mélange à une agitation vigoureuse. On applique la composition sur un support de polymère en utilisant un robot QArray ( Genetix , GB). On irradie le faisceau de gouttelettes obtenu avec une lumière UV (1 = 350 nm, t = 60 min, T = 55 C) dans une atmosphère d'argon sec, on le lave avec un tampon au phosphate (0,1 M, t = 15 min, T = 30 C) et ensuite avec de l'eau (t = 15 min, T = 60 C) et on le sèche à l'air (T = 25 C) dans une atmosphère dépourvue de poussière. En utilisant un équipement spécial équipé d'un appareil photographique à dispositif couplé à une charge (appareil photographique CCD) et un ordinateur, on obtient des photographies de biopuces dans le domaine de la lumière visible transmise (C) et de la lumière fluorescente. On détermine la qualité des éléments de la biopuce en utilisant un logiciel spécial basé sur l'erreur relative des diamètres ou des signaux fluorescents de tous les éléments de la biopuce. La figure 1 (C, F) présente les photographies d'une biopuce obtenue par le présent mode opératoire sur du poly(méthacrylate de méthyle) (PMMA) dans le domaine de la lumière transmise et de la lumière fluorescente. II. Polymérisation initiée thermiquement A un mélange de méthacrylate de 2-hydroxyéthyle (m = 0,075 g), de N,N'-méthylènebisacrylamide (m = 0,0175 g) et de méthacrylate de 2-acryloyloxyéthyle (m = 0,0075 g), on verse une solution de N,N,N',N'-tétraméthyléthylène-diamine dans de l'eau déminéralisée (V = 200 l, 1:1) contenant un colorant de type Texas Red (n = 40 nmoles), et on les mélange jusqu'à la dissolution complète des composants, puis on y verse du glycérol (V = 600 l). On ajoute une solution d'oligonucléotide dans de l'eau (v = 100 l, C = 2 nmoles/gl) à la solution résultante. On soumet le mélange à une agitation vigoureuse. On applique la composition sur un support de polymère en utilisant un robot QArray ( Genetix , GB). On maintient le faisceau de gouttelettes obtenu à une température de 80 C pendant 60 minutes dans une atmosphère d'argon sec, on le lave avec un tampon au phosphate (0,1 M, t = 15 min, T = 30 C) et ensuite avec de l'eau (t = 15 min, T = 60 C) et on le 23 sèche à l'air (T = 25 C) dans une atmosphère dépourvue de poussière. En utilisant un équipement spécial équipé d'un appareil photographique CDD (dispositif couplé à une charge) et un ordinateur, on obtient des photographies de la biopuce dans le domaine de la lumière visible transmise et de la lumière fluorescente. On détermine la qualité des éléments de la biopuce en utilisant un logiciel spécial basé sur l'erreur relative des diamètres ou des signaux fluorescents de tous les éléments de la biopuce. La figure 1 (A, D) présente les photographies d'une biopuce obtenue par le présent mode opératoire sur du poly(méthacrylate de méthyle) (PMMA) dans le domaine de la lumière transmise et de la lumière fluorescente. III. Polymérisation initiée chimiquement A un mélange de méthacrylate de 2-hydroxyéthyle (m = 0,075 g), de N,N'-méthylènebisacrylamide (m = 0,0175 g) et de méthacrylate de 2-acryloyloxyéthyle (m = 0,0075 g), on verse une solution tampon au phosphate (pH 11,6, C = 0,05 M, V = 190 l) contenant un colorant de type Texas Red (n = 40 nmoles) et du persulfate d'ammonium (m = 0,010 g), et on les mélange jusqu'à la dissolution complète des composants, puis on y verse du glycérol (V = 600 l). On ajoute une solution d'oligonucléotide dans de l'eau (v = 100 l, C = 2 nmoles/ l) à la solution résultante. On soumet le mélange à une agitation vigoureuse. On applique la composition sur un support de polymère en utilisant un robot QArray ( Genetix , GB). On place le faisceau de gouttelettes obtenu dans une chambre hermétique saturée avec des vapeurs de N,N,N',N'-tétraméthyléthylène-diamine dans une atmosphère d'argon et on le maintient à une température de 80 C pendant 60 minutes, on le lave avec un tampon au phosphate (0,1 M, t = 15 min, T = 30 C) et ensuite avec de l'eau (t = 15 min, T = 60 C) et on le sèche à l'air (T = 25 C) dans une atmosphère dépourvue de poussière. En utilisant un équipement spécial équipé d'un appareil photographique CCD (dispositif couplé à une charge) et un ordinateur, on obtient des photographies de la biopuce dans le domaine de la lumière visible transmise et de la lumière fluorescente. On détermine la qualité des éléments de la biopuce en utilisant un logiciel spécial basé sur l'erreur relative des diamètres ou des signaux fluorescents de tous les éléments de la biopuce. La figure 1 (B, E) présente les photographies d'une 24 biopuce obtenue par le présent mode opératoire sur du poly(méthacrylate de méthyle) (PMMA) dans le domaine de la lumière transmise et de la lumière fluorescente. Comme le montrent les résultats présentés sur la figure 1, les polymérisations thermiquement, chimiquement et photo-initiées fournissent effectivement un degré d'immobilisation d'un hydrogel identique sur le support, ou bien, en d'autres termes, la même qualité de biopuces. Exemple 2. Hybridation sur des biopuces d'oligonucléotide. On hybride une solution (1 M NaCl, 1 pM EDTA, 1 % Tween 20, 5 mM tampon au phosphate, pH 7,0, V = 35 l) contenant un oligonucléotide marqué par fluorescence (C = 10 mM) (t = 12 h, T = 37 C) avec une biopuce d'oligonucléotide fabriquée selon l'exemple I-1. On lave la biopuce avec une solution d'hybridation qui ne contient pas l'oligonucléotide marqué par fluorescence et on la sèche. On enregistre le signal fluorescent en utilisant un microscope fluorescent équipé d'un appareil photographique CDD et un ordinateur. Les résultats d'hybridation sont présentés sur la figure 2. Comme le montrent les résultats présentés sur la figure 2, le signal fluorescent le plus fort après l'hybridation est observé dans les cellules de biopuce qui contiennent l'oligonucléotide immobilisé A, entièrement complémentaire de l'oligonucléotide marqué par fluorescence et ne présentant pas de dépendance vis-à-vis de la nature du matériau polymère utilisé pour la fabrication du support. Domaine d'application industrielle Le procédé de fabrication d'une biopuce selon la présente invention est destiné à la fabrication de biopuces. Les biopuces selon la présente invention peuvent être utilisées comme articles auto supportés pour réaliser une recherche scientifique pour étudier diverses interactions de composés biologiquement actifs y compris : oligonucloétide-oligonucléotide, oligonucléotide-acide nucléique, protéine-protéine, protéine-acide nucléique, etc. • peuvent être incorporées dans des compositions de différents diagnostiques médicaux pour détecter et identifier rapidement un agent causal (vecteur) et/ou une maladie. Le procédé d'immobilisation d'hydrogels sur des supports de polymère • peut être utilisé pour fabriquer une biopuce pour diverses applications ; • peut être utilisé pour fabriquer des articles polymères ayant diverses applications, dont la surface doit être recouverte d'une couche d'hydrogel, par exemple, des électrodes et des capteurs différents, où la surface de travail est recouverte d'un hydrogel dans lequel est immobilisé un composé biologiquement actif. REVENDICATIONS 1. Biopuce fabriquée sur un support fabriqué à partir de matériaux polymères choisis parmi les matériaux suivants : ABS (copolymère acrylonitrile-butadiène-styrène), ABS + PA (un mélange d'ABS et de polyamide), ABS + PBT (un mélange d'ABS et de poly(téréphtalate de butylène)), ABS + PC (un mélange d'ABS et de polycarbonate), ABS + PMMA (un mélange d'ABS et de poly(méthacrylate de méthyle)), ABS + PVC (un mélange d'ABS et de poly(chlorure de vinyle)), ACS (un copolymère d'acrylonitrile, d'éthylène chloré et de styrène), COC (des copolymères de cyclo-oléfines), MABS (un copolymère de méthacrylate de méthyle, d'acrylonitrile, de butadiène et de styrène), PA 6 (polyamide 6), PA 6-3T (polyamide 6-3-T), PA 11 (polyamide 11), PA 12 (polyamide 12), PA 46 (polyamide 46), PA 66 (polyamide 66), PA 610 (polyamide 610), PA 612 (polyamide 612), PBT (poly(téréphtalate de butylène)), PBT + PC (un mélange de poly(téréphtalate de butylène) et de polycarbo- nate), PC + PET (un mélange de polycarbonate et de poly(téréphtalate d'éthylène)), PC + PMMA (un mélange de polycarbonate et de poly(méthacrylate de méthyle)), PET ou PETP (poly(téréphtalate d'éthylène)), PETG (polytéréphtalate d'éthylène glycol)), PMMA (poly(méthacrylate de méthyle)), PPA (polyphtalamide, polyamide à température élevée), PVC (poly(chlorure de vinyle)) et/ou des mélanges de ceux-ci, une couche de gel étant immobilisée sur la surface du support. 2. Biopuce selon la revendication 1, où les matériaux polymères sont des matériaux non modifiés. 3. Biopuce selon la revendication 1 ou 2, caractérisée en ce que les matériaux polymères et/ou les mélanges de ceux-ci sont utilisés en combinaison avec des charges. 4. Biopuce selon la revendication 3, caractérisée en ce que les charges sont des charges minérales, y compris l'amiante, la fibre de verre et/ou le talc. 5. Biopuce selon la revendication 1 ou 2, caractérisée en ce que la couche de gel formée sur le support de polymère est de plus agencée sous la forme de cellules séparées les unes des autres.35 6. Biopuce selon la revendication 5, caractérisée en ce que les cellules forment une structure régulière unidimensionnelle ou bidimensionnelle (faisceau). 7. Biopuce selon la revendication 3, caractérisée en ce que les cellules en gel 5 contiennent en outre des composés biologiquement actifs immobilisés et/ou les colorants fluorescents immobilisés. 8. Biopuce selon la revendication 7, caractérisée en ce que les différents composés biologiquement actifs sont immobilisés à l'intérieur des cellules en gel. 9. Biopuce selon la revendication 7, caractérisée en ce que le colorant fluorescent immobilisé est choisi parmi le Texas Red, la fluorescéine, et Cy 5, Cy 3, BODIPY. 10. Biopuce selon la revendication 5, caractérisée en ce que l'immobilisation des 15 composés biologiquement actifs dans le gel est réalisée lors de la formation du gel par une polymérisation initiée par voie thermique, chimique et photo-chimique. 11. Procédé de fabrication d'une biopuce à gel, comprenant l'immobilisation d'un hydrogel sur un support fabriqué à partir de matériaux polymères, caractérisé en ce que 20 les matériaux polymères sont choisis parmi les matériaux suivants : ABS (copolymère acrylonitrile-butadiène-styrène), ABS + PA (un mélange d'ABS et de polyamide), ABS + PBT (un mélange d'ABS et de poly(téréphtalate de butylène)), ABS + PC (un mélange d'ABS et de polycarbonate), ABS + PMMA (un mélange d'ABS et de poly(méthacrylate de méthyle)), ABS + PVC (un mélange d'ABS et de poly(chlorure de 25 vinyle)), ACS (un copolymère d'acrylonitrile, d'éthylène chloré et de styrène), COC (des copolymères de cyclo-oléfines), MABS (un copolymère de méthacrylate de méthyle, d'acrylonitrile, de butadiène et de styrène), PA 6 (polyamide 6), PA 6-3T (polyamide 6-3-T), PA 11 (polyamide 11), PA 12 (polyamide 12), PA 46 (polyamide 46), PA 66 (polyamide 66), PA 610 (polyamide 610), PA 612 (polyamide 612), PBT (poly(téréphtalate de 30 butylène)), PBT + PC (un mélange de poly(téréphtalate de butylène) et de polycarbonate), PC + PET (un mélange de polycarbonate et de poly(téréphtalate d'éthylène)), PC + PMMA (un mélange de polycarbonate et de poly(méthacrylate de méthyle)), PET ou PETP (poly(téréphtalate d'éthylène)), PETG (polytéréphtalate d'éthylène glycol)), PMMA (poly(méthacrylate de méthyle)), PPA (polyphtalamide, polyamide à température 35 élevée), PVC (poly(chlorure de vinyle)) et/ou des mélanges de ceux-ci, les matériaux 10polymères étant des matériaux non modifiés, utilisés sans modification chimique préli-minaire. 12. Procédé selon la revendication 11, caractérisé en ce que les matériaux poly-5 mères et/ou les mélanges de ceux-ci sont utilisés en combinaison avec des charges. 13. Procédé selon la revendication 12, caractérisé en ce que les charges sont des charges minérales, y compris l'amiante, la fibre de verre et/ou le talc. 10 14. Procédé selon la revendication 11, caractérisé en ce qu'une polymérisation initiée par voie thermique est utilisée pour former le gel. 15. Procédé selon la revendication 11, caractérisé en ce qu'une polymérisation initiée par voie chimique est utilisée pour former le gel. 16. Procédé selon la revendication 11, caractérisé en ce qu'une polymérisation photo-initiée est utilisée pour former le gel. 17. Procédé selon la revendication 16, caractérisé en ce que la polymérisation 20 photo-initiée est utilisée dans les domaines de l'ultraviolet et du visible du spectre. 18. Procédé selon la revendication 11, caractérisé en ce que des compositions comprenant un monomère, un agent de réticulation et un solvant sont utilisées pour former le gel. 19. Procédé selon la revendication 18, caractérisé en ce que lesdites compositions comprennent en outre un composé biologiquement actif immobilisable et/ou un colorant fluorescent immobilisable et/ou un initiateur ou un promoteur de polymérisation. 20. Procédé selon la revendication 19, caractérisé en ce que le colorant fluorescent immobilisé est choisi parmi Texas Red, la fluorescéine, Cy 5, Cy 3 et BODIPY. 21. Procédé selon la revendication 11, caractérisé en ce que des compositions 35 comprenant un oligomère et un solvant sont utilisées pour former le gel. 15 25 30 22. Procédé selon la revendication 21, caractérisé en ce que lesdites compositions comprennent en outre un composé biologiquement actif immobilisable et/ou un colorant fluorescent immobilisable et/ou un initiateur ou un promoteur de polymérisa- tion. 23. Procédé selon la revendication 22, caractérisé en ce que le colorant fluorescent immobilisé est choisi parmi Texas Red, la fluorescéine, Cy 5, Cy 3 et BODIPY. 24. Procédé selon la revendication 21, caractérisé en ce que le composé biologiquement actif constitue la structure dudit oligomère réactif. 25. Procédé selon la revendication 22, caractérisé en ce que le composé biologiquement actif constitue la structure dudit oligomère réactif. 26. Procédé selon la revendication 11, caractérisé en ce qu'un micro-distributeur est utilisé pour transférer lesdites compositions sur le support de polymère. 27. Procédé selon la revendication 26, caractérisé en ce que ledit micro-20 distributeur est choisi parmi un micro-distributeur de type à tige (aiguille), à stylo ou à jet. 28. Procédé selon la revendication 26, caractérisé en ce que les supports comprenant les microgouttes de compositions transférées sont placés dans un récipient 25 hermétique dans une atmosphère dépourvue d'oxygène. 29. Procédé selon la revendication 27, caractérisé en ce que ladite atmosphère dépourvue d'oxygène est générée par de l'azote, de l'argon et du dioxyde de carbone gazeux. 30. Procédé selon la revendication 11, caractérisé en ce que l'immobilisation des composés biologiquement actifs dans le gel est réalisée lors de la formation de l'hydrogel. 30 31. Procédé selon la revendication 11, caractérisé en ce que les supports des matériaux polymères ne sont pas soumis à une quelconque modification chimique avant la fabrication de la biopuce. 32. Procédé selon la revendication 11, caractérisé en ce que, après la polymérisation, les biopuces sont lavées successivement avec des solutions tampons et ensuite avec de l'eau distillée. 33. Procédé selon l'une quelconque des revendications 11 à 32, caractérisé en ce que la qualité des biopuces obtenues est contrôlée par les diamètres des éléments des biopuces. 34. Procédé selon l'une quelconque des revendications 11 à 32, caractérisé en ce que la qualité des biopuces obtenues est contrôlée par le signal fluorescent d'un co- lorant immobilisé dans chaque cellule en gel d'une biopuce.