FR 2889534 A1 20070209 FR 0508320 A 20050804 1 Art antérieur et introduction La présente invention se rapporte à un anticorps monoclonal antiidiotypique dirigé contre un anticorps inhibiteur du facteur VIII se liant au domaine A2 du facteur VIII, ainsi qu'à une lignée cellulaire produisant cet anticorps monoclonal anti-idiotypique, à l'utilisation de cet anticorps monoclonal anti- idiotypique comme médicament, et plus particulièrement à son utilisation pour la fabrication d'un médicament destiné au traitement de l'hémophilie A. L'hémophilie A est une affection héréditaire liée à une anomalie du chromosome X, qui se traduit par une incapacité à coaguler chez les personne atteintes. Cette maladie est le résultat de mutations sur le gène d'une protéine intervenant dans la coagulation, le facteur VIII (FVIII), qui déterminent soit une absence totale du facteur VIII dans le sang, soit un déficit partiel. L'hémophilie A est la plus commune des déficiences affectant la coagulation sanguine: elle touche en France 1 homme sur 5000, ce qui représente 80% des patients atteints d'hémophilie. L'autre type d'hémophilie, l'hémophile B, touche 20% des patients atteints d'hémophilie; elle est causée par une déficience en un autre facteur de coagulation, le facteur IX. Le traitement actuel de l'hémophilie (de type A ou B) consiste à administrer par voie intraveineuse le facteur de coagulation déficient ou manquant. En France, le facteur VIII destiné au traitement des hémophiles est disponible sous forme de médicaments dérivés du sang fournis par le Laboratoire Français du Fractionnement et des Biotechnologies (LFB) ou des laboratoires pharmaceutiques internationaux, ainsi que sous forme de médicaments recombinants issus du génie génétique. En effet, l'ADN codant pour le facteur VIII a été isolé et exprimé dans des cellules de mammifères (Wood et al., Nature (1984) 312: 330-337), et sa séquence en acides aminés déduite à partir de l'ADNc. Le facteur VIII (FVIII) sécrété est une glycoprotéine de masse moléculaire de 300 Kda (2332 acides aminés) jouant un rôle clé dans l'activation de la voie intrinsèque de la coagulation. Le FVIII inactif est constitué de six domaines: Al (résidus 1-372), A2 (résidus 373-740), B (résidus 741-1648), A3 (résidus 1690-2019), Cl (résidus 2020-2172), et C2 (résidus 2173-2332), de l'extrémité N-terminale à l'extrémité C- terminale. Après sécrétion, le FVIII interagit avec le facteur von Willebrand (vWF) qui le protège des protéases plasmatiques. Le FVIII se dissocie du vWF après clivage par la thrombine. Ce clivage aboutit à l'élimination du domaine B et à la formation d'un hétérodimère. C'est sous cette forme que le FVIII circule dans le plasma. Cet hétérodimère est constitué d'une chaîne lourde (Al, A2) et d'une chaîne légère (A3, Cl, C2). Lorsqu'il est perfusé à un patient hémophile, le facteur VIII se fixe sur le facteur von Willebrand dans la circulation sanguine du patient.Le facteur VIII activé agit comme cofacteur du facteur IX activé, accélérant la conversion du facteur X en facteur X activé. Le facteur X activé convertit la prothrombine en thrombine. La thrombine convertit alors le fibrinogène en fibrine et un caillot apparaît. Le problème majeur rencontré lors de l'administration de facteur VIII est l'apparition chez le patient d'anticorps dirigés contre le facteur VIII, appelés anticorps inhibiteurs . Ces anticorps neutralisent l'activité procoagulante du facteur VIII, qui est rendu inactif dés qu'il est perfusé. Ainsi, le facteur de coagulation administré est détruit avant d'avoir pu enrayer l'hémorragie, ce qui constitue une complication grave de l'hémophilie, le traitement devenant inefficace. De plus, certains patients non hémophiles génétiquement peuvent développer des inhibiteurs contre le facteur VIII endogène: il s'agit d'une hémophilie acquise. Des études ont montré que la réponse immune anti-facteur VIII est de type IgG polyclonale appartenant majoritairement à la sous-classe IgG4 et IgGl et plus rarement IgG2. Les IgG3 ne sont jamais représentées. La chaîne légère est souvent de type Kappa. La surreprésentation des IgG4 est plus accentuées chez les hémophiles qui ont un inhibiteur installé depuis longtemps. Les domaines C2 et A2 de la molécule de FVIII sont les cibles privilégiées de la réponse immune bien que dans certains cas on détecte des anticorps dirigés contre le domaine A3. En passant le plasma de patients hémophiles au travers d'une colonne d'immunoadsorption sur laquelle est immobilisé du FVIII, il est possible de purifier les anticorps totaux anti-FVIII. Les quantités récoltées dépassent souvent 100pg par 10mg d'IgG totales (Gilles JG et al. (1993) Blood; 82: 24522461). Un modèle animal a été développé pour étudier la formation d'inhibiteurs du facteur VIII; des rats immunisés avec du facteur VIII humain recombinant montrent une réponse immune rapide, de type polyclonale (Jarvis et al. Thromb Haemost. 1996 Feb;75(2):318-25). Les mécanismes par lesquels les anticorps anti-facteur VIII interfèrent avec la fonction du facteur VIII sont nombreux, et incluent l'interférence dans le clivage protéolytique du facteur VIII et dans l'interaction du facteur VIII avec différents partenaires comme le facteur Von Willebrand (vWF), les phospholipides (PL), le facteur IX, le facteur X activé (FXa) ou l'APC (Activated Protein C). Il existe plusieurs traitements permettant d'atténuer les conséquences de cette réponse immune, comme par exemple les traitements impliquant la desmopressine qui est une hormone synthétique stimulant la production de facteur VIII, les agents promoteurs de la coagulation comme les concentrés de complexes prothrombiques ou les concentrés de complexes prothrombiques activés, le facteur VIIa recombinant, la plasmaphérèse et les infusions de quantités importantes ou intermédiaires de facteur VIII. Toutefois, ces méthodes restent très coûteuses et peu efficaces. Du fait de la complexité de l'analyse in vivo de cette réponse immune polyclonale, des équipes ont isolé des anticorps monoclonaux dirigés contre certains domaines du facteur VIII. Ainsi, un anticorps humain monoclonal de type IgG4kappa, LE2E9, a été isolé. Cet anticorps est dirigé contre le domaine Cl du facteur VIII et inhibe l'activité cofacteur du facteur VIII et sa liaison au facteur Von Willebrand (Jacquemin et al. (2000) Blood 95:156-163). De la même façon, un anticorps monoclonal humain dirigé contre le domaine C2 du facteur VIII, nommé BO2C11 (IgG4kappa), produit à partir d'un répertoire de cellules B mémoire d'un patient atteint d'hémophilie A avec inhibiteurs, a été isolé (Jacquemin et al. Blood 1998 Jul 15;92(2):496-506). BO2C11 reconnaît le domaine C2 du facteur VIII et inhibe sa liaison au facteur Von Willebrand et aux phospholipides. Il inhibe complètement l'activité procoagulante du facteur VIII natif et activé. Un autre exemple d'anticorps monoclonal est l'anticorps BOIIB2, dirigé contre le domaine A2 du facteur VIII. L'anticorps BOIIB2 inhibe à 99% l'activité du facteur VIII. En se liant au domaine A2, il peut interférer et inhiber la fixation du FIXa qui possède un site de fixation de faible affinité dans cette région du FVIII et dès lors inhiber l'activité enzymatique du FIXa. Le deuxième mode d'action envisageable est son interférence dans l'équilibre entre la forme hétéro-dimère (A2:A1 et A3:C1:C2) du FVIII et la forme hétéro- trimère (A2 et Al et A3:C1:C2) du FVIII en accélérant la dissociation du domaine A2 de ces complexes les rendant non fonctionnels. (Ananyeva NM et al (2004) Blood Coagul Fibrinolysis. Mar;15(2):109-24. Review). Grâce à ces nouveaux outils, une autre stratégie de lutte contre les anticorps inhibiteurs du facteur VIII, plus récente, envisage l'administration d'anticorps anti- idiotypiques (anticorps ayant la capacité d'interagir avec la région variable d'autres anticorps) neutralisant les anticorps inhibiteurs (Saint-Rémy JM et al. (1999) Vox Sang; 77 (suppl 1) : 21-24). Un anticorps anti- idiotypique murin, le 14C12, décrit dans le document WO 2004/014955, neutralise in vivo de façon dose-dépendante les propriétés inhibitrices de l'anticorps anti- facteur VIII cible (l'anticorps monoclonal BO2C11), qui est dirigé contre le domaine C2 du facteur VIII. Toutefois, la réponse immune anti-facteur VIII est polyclonale, et les anticorps inhibiteurs du facteur VIII développés par un patient ne sont pas nécessairement tous dirigés contre le domaine C2 du facteur VIII. Un traitement consistant en l'administration d'anticorps 14C12 seuls ne pourrait neutraliser que de façon partielle la réponse immune anti-facteur VIII développée chez le patient. Une autre catégorie prépondérante d'anticorps inhibiteurs du facteur VIII rencontrés chez les patients atteints d'hémophilie A ayant développé des inhibiteurs est constituée par les anticorps inhibiteurs dirigés contre le domaine A2 du facteur VIII. Le domaine A2 est un domaine de 43 kD. Sa fonction demeure peu connue, mais il a été démontré que des anticorps inhibiteurs dirigés contre le domaine A2 du facteur VIII inhibent la fonction du facteur VIIIa par inhibition de la conversion du complexe FXase/FX à l'état de transition (Lollar et al. J Clin Invest. 1994 Jun; 93(6):2497-504, Fay et al. J Biol Chem. 1996; 271(11) : 6027-6032)- Ainsi, les anticorps inhibiteurs dirigés contre le domaine A2 du facteur VIII sont très importants dans la réponse immune dirigée contre le facteur VIII, cette réponse étant mixte et faisant intervenir de manière prépondérante des anticorps dirigés contre le domaine A2 et des anticorps dirigés contre le domaine C2 du facteur VIII. Or, il n'existe pas d'outil permettant la neutralisation d'anticorps inhibiteurs dirigés contre le domaine A2 du facteur VIII. C'est pourquoi le Demandeur a cherché, dans un premier temps, à mettre au point un nouvel outil de traitement de l'hémophilie A permettant la neutralisation d'anticorps inhibiteurs dirigés contre le domaine A2 du facteur VIII. Dans un deuxième temps, le Demandeur a cherché à mettre au point un nouvel outil permettant de neutraliser l'effet inhibiteur de la majeure partie des anticorps inhibiteurs développés par un patient atteint d'hémophilie A avec inhibiteurs. Ainsi, le Demandeur a fabriqué un nouvel anticorps antiidiotypique dirigé contre un anticorps inhibiteur du facteur VIII, cet anticorps inhibiteur se liant au domaine A2 du facteur VIII. De manière surprenante, le Demandeur a constaté que l'utilisation de l'anticorps anti-idiotypique selon l'invention simultanément avec un anticorps anti-idiotypique dirigé contre un inhibiteur se liant au domaine C2 du facteur VIII a un effet neutralisant de l'effet inhibiteur de la réponse immune anti-facteur VIII, et en particulier la réponse immune induite par les anticorps inhibiteurs dirigés contre le domaine A2 et par les anticorps inhibiteurs dirigés contre le domaine C2 du facteur VIII. Description détaillée de l'invention Un premier objet de l'invention se rapporte ainsi à un anticorps monoclonal anti-idiotypique dirigé contre un anticorps humain inhibiteur du facteur VIII, l'anticorps inhibiteur étant dirigé contre le domaine A2 du facteur VIII. Par anticorps inhibiteurs ou inhibiteurs du facteur VIII, on entend désigner les anticorps qui inhibent l'activité procoagulante du facteur VIII, notamment en s'y fixant, et particulièrement un anticorps anti-facteur VIII dont l'épitope est situé sur le facteur VIII. De manière avantageuse, l'anticorps selon l'invention possède la capacité de neutraliser au moins 50%, avantageusement au moins 60%, et de manière encore plus avantageuse au moins 70%, 80%, 90%, 99% ou 100% de l'activité inhibitrice de la coagulation des anticorps inhibiteurs dirigés contre le domaine A2 du facteur VIII, cibles des anticorps monoclonaux antiidiotypiques selon l'invention. Cette capacité de neutraliser l'activité inhibitrice de la coagulation des anticorps inhibiteurs peut être déterminée en mesurant l'activité du facteur VIII en présence d'un anticorps inhibiteur et d'un anticorps anti-idiotypique dans un test tel que le factor VIII chromogen test (Jacquemin et al. (1998) Blood 92, 494-506). L'anticorps monoclonal anti-idiotypique selon l'invention peut être d'origine humaine ou animale. De plus, il peut être obtenu de différentes manières. Par exemple, des cellules produisant des anticorps antiidiotypiques peuvent être obtenues à partir de lymphocytes de sang périphérique de patients présentant des anticorps inhibiteurs antifacteur VIII ou à partir d'individus sains. Ces cellules peuvent être immortalisées par des techniques bien connues de l'homme du métier et sélectionnées par rapport à la capacité des anticorps anti-idiotypiques produits de neutraliser les anticorps inhibiteurs dirigés contre le facteur VIII. Un autre moyen de produire l'anticorps anti-idiotypique monoclonal selon l'invention est l'immunisation d'animaux, avantageusement des souris, par injection d'anticorps inhibiteurs du facteur VIII dirigés contre le domaine A2 du facteur VIII, puis la fusion des lymphocytes de rate avec une lignée cellulaire de myélome, avantageusement de myélome de souris, suivie par l'identification et le clonage de cultures cellulaires produisant les anticorps anti- idiotypiques dirigés contre les anticorps inhibiteurs du facteur VIII. Dans un aspect particulier de l'invention, l'anticorps anti-idiotypique selon l'invention est dirigé contre des anticorps inhibiteurs dont le domaine variable de la chaîne lourde s'apparente à la lignée germinale DP71 De tels anticorps inhibiteurs peuvent être obtenus à partir d'êtres humains (par exemple du sérum de patients présentant des anticorps inhibiteurs) ou d'autres espèces animales comme la souris, le cheval, la chèvre, des primates non humains, cette liste n'étant pas limitative, par immunisation avec le facteur VIII ou des fragments dérivés du facteur VIII, et plus particulièrement avec un fragment comprenant tout ou partie du domaine A2. Avantageusement, l'anticorps inhibiteur cible de l'anticorps antiidiotypique selon l'invention reconnaît l'épitope localisé entre les acides aminés 484 à 508 du facteur VIII. Plus précisément, l'épitope reconnu est un épitope conformationnel comprenant les résidus 484 à 508 et les résidus acide glutamique 389, 390 et 391 du facteur VIII. En effet, le domaine A2 du facteur VIII comprend les acides aminés 373-740 du facteur VIII. Ce domaine est impliqué dans la reconnaissance du facteur VIII par le facteur IX, qui se lie aux domaines A2 et A3 du facteur VIII, et dans l'inactivation du facteur VIII, ce domaine étant l'un des principaux épitopes reconnus par les anticorps inhibiteurs. De manière préférentielle, l'anticorps inhibiteur cible de l'anticorps anti-idiotypique selon l'invention est l'anticorps BOIIB2, déposé à la Belgian Coordinated Collections of Microorganisms, sous le numéro LMBP 6422CB. L'anticorps BOIIB2 est un anticorps monoclonal humain IgG4 dirigé contre le domaine A2 du facteur VIII produit au départ de lymphocytes d'un patient présentant une hémophilie A sévère avec un taux d'inhibiteurs élevé. Cet anticorps appartient à la sous classe IgG4 et est issu de la lignée germinale DP-7l. L'épitope qu'il reconnaît sur le facteur VIII se situe au niveau des résidus 484 à 508. Plus précisément, l'anticorps BOIIB2 reconnaît un épitope conformationnel comprenant les résidus 484 à 508 et les résidus acide glutamique 389, 390 et 391. L'anticorps BOIIB2 inhibe à 99% l'activité du facteur VIII en interférant dans la fonction du complexe tenase soit en inhibant la fixation du FIXa et / ou du FX au complexe tenase, soit en accélérant la dissociation du domaine A2. Dans un aspect particulier de l'invention, la région variable de chacune des chaînes légères de l'anticorps monoclonal anti-idiotypique de l'invention est codée par une séquence d'acide nucléique possédant au moins 70% d'identité avec la séquence d'acide nucléique SEQ ID NO: 2, et la région variable de chacune des chaînes lourdes de l'anticorps monoclonal anti-idiotypique est codée par une séquence d'acide nucléique possédant au moins 70% d'identité avec la séquence d'acide nucléique SEQ ID NO: 1. De manière particulièrement avantageuse, l'identité des séquences est d'au moins 80%, et de manière préférée d'au moins 95 à 99% d'identité. Le pourcentage d'identité est calculé en alignant 2 séquences à comparer et en comptant le nombre de positions possédant un nucléotide identique, ce nombre étant divisé par le nombre de nucléotides total de la séquence. La dégénérescence du code génétique peut être à l'origine du fait qu'un même acide aminé puisse être codé par plusieurs triplets de nucléotides différents. En tout état de cause, ces différences de séquences n'affectent en rien l'affinité de l'anticorps monoclonal pour sa cible, ni sa capacité à neutraliser l'activité inhibitrice des anticorps inhibiteurs cibles. Dans un aspect préféré de l'invention, la région variable de chacune des chaînes légères de l'anticorps monoclonal anti-idiotypique est codée par la séquence d'acide nucléique SEQ ID NO: 2, et la région variable de chacune des chaînes lourdes l'anticorps monoclonal antiidiotypique est codée par la séquence d'acide nucléique SEQ ID NO: 1. De manière avantageuse, la séquence peptidique de chacune des régions variables des chaînes légères de l'anticorps selon l'invention est une séquence possédant au moins 70% d'identité, et de manière avantageuse au moins 80% ou 90%, et de manière encore plus avantageuse au moins 99% d'identité avec la séquence SEQ ID NO: 4. De manière avantageuse, la séquence peptidique de chacune des régions variables des chaînes lourdes de l'anticorps selon l'invention est une séquence possédant au moins 70% d'identité, et de manière avantageuse au moins 80% ou 90%, et de manière encore plus avantageuse au moins 99% d'identité avec la séquence SEQ ID NO: 3. De manière particulièrement avantageuse, la séquence peptidique de chacune des chaînes légères de l'anticorps selon l'invention est une séquence possédant au moins 70% d'identité, et de manière avantageuse au moins 80% ou 90%, et de manière encore plus avantageuse au moins 99% d'identité avec la séquence SEQ ID NO: 4, et la séquence peptidique de chacune des chaînes lourdes de l'anticorps selon l'invention est une séquence possédant au moins 70% d'identité, et de manière avantageuse au moins 80% ou 90%, et de manière encore plus avantageuse au moins 99% d'identité avec la séquence SEQ ID NO: 3. De manière préférée, la séquence peptidique de chacune des chaînes légères de l'anticorps selon l'invention est 20 la séquence SEQ ID NO: 4. De manière préférée, la séquence peptidique de chacune des chaînes légères de l'anticorps selon l'invention est la séquence SEQ ID NO: 3. La séquence peptidique déduite de la séquence SEQ ID NO: 2 est la séquence SEQ ID NO: 4 et la séquence peptidique déduite de la séquence SEQ ID NO: 1 est la séquence SEQ ID NO: 3. De manière préférentielle, la région variable de chacune des chaînes légères de l'anticorps monoclonal anti-idiotypique selon l'invention possède la séquence peptidique SEQ ID NO: 4 et la région variable de chacune des chaînes lourdes de l'anticorps monoclonal anti-idiotypique selon l'invention possède la séquence peptidique SEQ ID NO: 3. L'anticorps selon l'invention s'entend aussi de tout anticorps modifié répondant aux caractéristiques de l'invention, dans lequel un ou plusieurs acides aminés ont été substitué(s) ou délété(s). Une telle substitution ou délétion peut être localisée à n'importe quelle position dans la molécule. Dans le cas où plusieurs acides aminés ont été substitués ou délétés, toute combinaison de substitution ou de délétion peut être considérée. De telles altérations de la séquence des régions variables de l'anticorps selon l'invention peuvent être effectuées dans le but d'augmenter le nombre de résidus susceptibles d'entrer en contact entre l'anticorps anti-idiotypique selon l'invention et l'anticorps inhibiteur cible. Dans un mode de réalisation de l'invention, l'anticorps anti-idiotypique est un anticorps murin. Avantageusement, cet anticorps monoclonal anti- idiotypique murin est une IgGlkappa. De manière préférée, l'anticorps monoclonal selon l'invention est un anticorps chimérique. On entend par anticorps chimérique un anticorps dont les régions variables des chaînes légères et des chaînes lourdes appartiennent à une espèce différente des régions constantes des chaînes légères et des chaînes lourdes. Ainsi, l'anticorps selon l'invention possède en outre des régions constantes de ses chaînes légères et lourdes appartenant à une espèce non-murine. A cet égard, toutes les familles et espèces de mammifères non-murins sont susceptibles d'être utilisées, et en particulier l'homme, le singe, les muridés (sauf la souris), les suidés, les bovidés, les équidés, les félidés, les canidés, par exemple, ainsi que les oiseaux. Les anticorps chimériques selon l'invention peuvent être construits en utilisant les techniques standard de l'ADN recombinant, bien connues de l'homme du métier, et plus particulièrement en utilisant les techniques de construction des anticorps chimériques décrites par exemple dans Morrison et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A., 81, pp. 6851-55 (1984), où la technologie de l'ADN recombinant est utilisée pour remplacer la région constante d'une chaîne lourde et/ou la région constante d'une chaîne légère d'un anticorps provenant d'un mammifère non-humain avec les régions correspondantes d'une immunoglobuline humaine. Dans un aspect particulier de l'invention, l'anticorps selon l'invention est un anticorps hybride humain, c'est-à-dire un anticorps chimérique dont la partie constante est humaine. Ce mode de réalisation de l'invention permet de diminuer l'immunogénicité de l'anticorps chez l'homme et par là même d'améliorer son efficacité lors de son administration thérapeutique chez l'homme. Avantageusement, l'anticorps selon l'invention est un anticorps humanisé. Un tel anticorps peut être obtenu par association d'une ou plusieurs région(s) CDR (complementarity determining region) d'un anticorps monoclonal d'une espèce non-humaine avec des régions framework (régions très conservées des régions variables, nommées aussi "charpente") humaines, un tel procédé d'obtention étant bien enseigné dans l'état de la technique (Jones et al., Nature (1986) 321:522; Riechmann et al., Nature (1988) 332:323). De manière avantageuse, l'anticorps monoclonal anti- idiotypique selon l'invention est l'anticorps 30D1 produit par l'hybridome 30D1 déposé sous le numéro d'enregistrement CNCM I-3450 à la Collection Nationale de Cultures de Microorganismes (CNCM). La région variable de chacune des chaînes légères l'anticorps monoclonal anti-idiotypique 30D1 est codée par la séquence d'acide nucléique SEQ ID NO: 2, et la région variable de chacune des chaînes lourdes l'anticorps monoclonal antiidiotypique 3OD1 est codée par la séquence d'acide nucléique SEQ ID NO: 1. La méthode d'obtention de l'hybridome 30D1 est décrite dans la partie Exemples du présent document. L'anticorps monoclonal anti-idiotypique selon l'invention s'entend aussi de tout anticorps comprenant des fragments de l'anticorps 30D1, et plus particulièrement tout anticorps comprenant la région variable de la chaîne légère et/ou la région variable de la chaîne lourde de l'anticorps 30D1, ou tout fragment de la région variable de la chaîne légère et/ou la région variable de la chaîne lourde de l'anticorps 30D1. Par fragments on entend désigner un fragment F(ab')2 ou un fragment Fab' ou un fragment Fab ou une région CDR ( complementarity determining region) ou toute version modifiée de l'un quelconque de ces fragments ou région. Dans un mode de réalisation particulier de l'invention, l'anticorps monoclonal anti-idiotypique selon l'invention est un fragment F(ab')2 ou un fragment Fab' ou un fragment Fab ou une région CDR (complementarity determining region) ou toute version modifiée de l'un quelconque de ces fragments ou région. La digestion enzymatique des immunoglobulines par la papaïne génère 2 fragments identiques, qu'on appelle fragment Fab (Fragment Antigen Binding), et un fragment Fc (fraction cristallisable). Le fragment Fc est le support des fonctions effectrices des immunoglobulines. Par digestion à la pepsine, un fragment F(ab')2 est généré, où les deux fragments Fab restent liés par deux ponts disulfure, et le fragment Fc est scindé en plusieurs peptides. Le fragment F(ab')2 est formé de deux fragments Fab' (un fragment Fab' consistant en un Fab et une région charnière), liés par des ponts disulfure intercaténaires pour former un F(ab')2. De tels fragments, qui contiennent le site de liaison de l'anticorps, peuvent avoir perdu un certain nombre de propriétés de l'anticorps entier duquel ils sont issus, comme la capacité d'activer le complément ou de lier les récepteurs Fcgamma. Toutefois, ces fragments n'ont pas perdu la capacité de l'anticorps entier de neutraliser l'anticorps inhibiteur. Ainsi, l'invention s'entend aussi des fragments F(ab')2, Fab', Fab, de la région CDR ou toute version modifiée de l'un quelconque de ces fragments ou région, de l'anticorps 30D1. En particulier, ces fragments ont conservé la capacité de l'anticorps entier de neutraliser les anticorps B0IIB2. Un autre objet de l'invention est une lignée cellulaire stable produisant un anticorps tel que décrit précédemment. La lignée cellulaire stable selon l'invention peut être d'origine humaine ou animale. La lignée cellulaire stable selon l'invention peut provenir de cellules humaines immortalisées. Dans un autre mode de réalisation de l'invention, cette lignée peut provenir de cellule d'origine animale, par exemple de souris, immortalisées. Un exemple préféré d'une lignée issue de ce mode de réalisation de l'invention est la lignée 30D1, déposée à la CNCM sous le numéro I-3450. Dans un autre mode de réalisation, la lignée cellulaire stable selon l'invention est une lignée qui a intégré une construction génétique permettant l'expression de l'anticorps selon l'invention à l'endroit désiré du génome. L'étape qui consiste à obtenir une telle cellule est une transfection stable. Cette étape peut être appliquée sur n'importe quel type de cellules pourvu qu'elles puissent être maintenues en culture in vitro. La transfection stable nécessite l'intégration de la construction génétique, qui peut être effectuée par recombinaison homologue ou peut se faire de manière aléatoire. C'est la présence d'une cassette de sélection positive dans la construction génétique comportant le gène d'intérêt qui confère à la cellule la résistance à un antibiotique par exemple qui atteste de l'insertion du transgène dans le génome cellulaire. A l'issue d'une étape de sous-clonage, on obtient une lignée cellulaire productrice à long terme de l'anticorps de l'invention, par exemple 3OD1, pouvant être maintenue en culture in vitro. La lignée cellulaire stable exprimant un anticorps selon l'invention peut être choisie parmi le groupe consistant en une lignée cellulaire humaine, une lignée de rongeur, par exemple une lignée murine, SP2/0, YB2/0, IR983F, un myélome humain comme Namalwa ou toute autre cellule d'origine humaine comme PERCE, les lignées CHO, notamment CHO-K-1, CHO-LeclO, CHOLecl, CHO-Lecl3, CHO Pro-5, CHO dhfr- (CHO DX B11, CHO DG44), ou d'autres lignées choisies parmi Wil-2, Jurkat, Vero, Molt-4, COS-7, 293-HEK, BHK, K6H6, NSO, SP2/0-Ag 14 et P3X63Ag8.653. Un autre objet particulier de l'invention est l'hybridome 30D1 déposé sous le numéro d'enregistrement CNCM I-3450 à la Collection Nationale de Cultures de Microorganismes (CNCM). La région variable de chacune des chaînes légères de l'anticorps monoclonal anti-idiotypique produit par l'hybridome 30D1 est codée par la séquence d'acide nucléique SEQ ID NO: 2, et la région variable de chacune des chaînes lourdes de l'anticorps monoclonal antiidiotypique produit par l'hybridome 30D1 est codée par la séquence d'acide nucléique SEQ ID NO: 1. L'anticorps produit par l'hybridome 30D1 est l'anticorps 30D1, et une méthode d'obtention de l'hybridome 30D1 est décrite dans la partie Exemples du présent document. Un autre objet de l'invention est un fragment d'ADN de séquence SEQ ID NO: 1 codant pour la région variable de la chaîne lourde de l'anticorps selon l'invention tel que décrit précédemment. Ce fragment d'ADN peut être inséré dans un vecteur permettant l'expression d'un polypeptide, préférentiellement d'un anticorps, dont la région variable de la chaîne lourde est codée par la séquence d'acide nucléique SED ID NO: 1, dont la séquence peptidique déduite est la séquence SEQ ID NO: 3, afin de l'introduire et de le maintenir dans une cellule hôte. Ce vecteur permet l'expression de ce fragment d'acide nucléique étranger dans la cellule hôte car il possède des séquences indispensables (promoteur, séquence de polyadénylation, gène de sélection) à cette expression. De tels vecteurs sont bien connus de l'homme du métier, et peuvent être un adénovirus, un rétrovirus, un plasmide ou un bactériophage, cette liste n'étant pas limitative. De plus, toute cellule de mammifère peut être utilisée comme cellule hôte, c'est-à-dire comme cellule exprimant le polypeptide ou l'anticorps selon l'invention, par exemple SP2/0, YB2/0, IR983F, un myélome humain comme Namalwa ou toute autre cellule d'origine humaine comme PERCE, les lignées CHO, notamment CHO-K-1, CHO-LeclO, CHOLecl, CHO-Lecl3, CHO Pro-5, CHO dhfr- (CHO DX B11, CHO DG44), ou d'autres lignées choisies parmi Wil-2, Jurkat, Vero, Molt-4, COS-7, 293-HEK, BHK, K6H6, NSO, SP2/0-Ag 14 et P3X63Ag8.653. Un autre objet de l'invention est un fragment d'ADN de séquence SEQ ID NO: 2 codant pour la région variable de la chaîne légère d'un anticorps selon l'invention tel que décrit précédemment. Ce fragment d'ADN peut être inséré dans un vecteur permettant l'expression d'un polypeptide, préférentiellement d'un anticorps, dont la région variable de la chaîne légère est codée par la séquence d'acide nucléique SED ID NO: 2, dont la séquence peptidique déduite est la séquence SEQ ID NO: 4, afin de l'introduire et de le maintenir dans une cellule hôte. Ce vecteur permet l'expression de ce fragment d'acide nucléique étranger dans la cellule hôte car il possède des séquences indispensables (promoteur, séquence de polyadénylation, gène de sélection) à cette expression. De tels vecteurs sont bien connus de l'homme du métier, et peuvent être un adénovirus, un rétrovirus, un plasmide ou un bactériophage, cette liste n'étant pas limitative. De plus, toute cellule de mammifère peut être utilisée comme cellule hôte, c'est-à-dire comme cellule exprimant le polypeptide ou l'anticorps selon l'invention, par exemple SP2/0, YB2/0, IR983F, un myélome humain comme Namalwa ou toute autre cellule d'origine humaine comme PERCE, les lignées CHO, notamment CHO-K-1, CHO-LeclO, CHO-Lecl, CHO-Lecl3, CHO Pro-5, CHO dhfr- (CHO DX B11, CHO DG44), ou d'autres lignées choisies parmi Wil-2, Jurkat, Vero, Molt-4, COS-7, 293-HEK, BHK, K6H6, NSO, SP2/0-Ag 14 et P3X63Ag8.653. Un autre objet de l'invention est une composition pharmaceutique comprenant un anticorps selon l'invention et au moins un excipient et/ou au moins un véhicule pharmaceutiquement acceptable. De manière préférentielle, l'anticorps monoclonal anti-idiotypique contenu dans la composition pharmaceutique selon l'invention est l'anticorps 30D1, un fragment ou région dérivée d'30D1, ou encore un anticorps chimérique ou humanisé comportant les régions variables d'30D1 et tel que décrit précédemment dans le présent document. La composition pharmaceutique selon l'invention peut être formulée dans tout excipient qu'un patient à traiter peut tolérer. Des exemples de tels excipients incluent l'eau, les solutions salines, la solution de Ringer, les solutions de dextrose, et toute autre solution aqueuse physiologique appropriée. L'excipient peut aussi contenir de faibles quantités d'additifs tels que des substances qui augmentent l'isotonicité et la stabilité de la composition. De tels excipients incluent le tampon phosphate, le tampon bicarbonate, et le tampon Tris. De tels excipients sont bien connus de l'homme du métier. Des formulations standard peuvent se présenter sous forme de liquides injectables ou de formulations solides qui peuvent être re-suspendues dans un liquide approprié avant administration. Les véhicules pouvant être utilisés pour la préparation de la composition pharmaceutique selon l'invention ont avantageusement pour fonction d'augmenter la demi-vie de la composition thérapeutique dans l'animal ou le patient, ou pour permettre le relargage contrôlé du principe actif. De tels véhicules peuvent être des polymères organiques et synthétiques et d'autres composés chimiques qui peuvent disséminer les médicaments à une cadence normale ou les disséminer seulement dans certains environnements, ainsi que des liposomes, cette liste n'étant pas limitative. Avantageusement, la composition pharmaceutique selon l'invention comprend en outre au moins un anticorps anti-idiotypique dirigé contre un anticorps inhibiteur se liant à un domaine autre que le domaine A2 du facteur VIII. Cet autre anticorps peut être un anticorps antiidiotypique dirigé contre un anticorps inhibiteur se liant au domaine Al, ou A3, ou B, Cl ou C2 du facteur VIII. En effet, un patient atteint d'hémophilie A ayant développé des anticorps inhibiteurs présente le plus souvent plusieurs types d'anticorps inhibiteurs. De plus, les quantités et la nature des différents types d'anticorps inhibiteurs ne sont pas fixes mais peuvent changer au cours de la vie du patient. Les différents anticorps inhibiteurs d'un même patient étant ainsi dirigés contre des domaines différents du facteur VIII, il est particulièrement avantageux de traiter le patient non pas avec un, mais avec plusieurs types d'anticorps anti-idiotypiques, dirigés contre des anticorps inhibiteurs différents. De manière préférentielle, la composition pharmaceutique comporte un anticorps monoclonal anti-idiotypique dirigé contre un anticorps inhibiteur se liant au domaine C2 du facteur VIII et l'anticorps monoclonal selon l'invention. En effet, les domaines A2 et C2 représentent les cibles principales de la réaction immunitaire anti- facteur VIII. Ainsi, une composition pharmaceutique comportant un mélange d'anticorps anti-idiotypiques dirigés contre des anticorps inhibiteurs se liant au domaine A2 du facteur VIII et d'anticorps anti-idiotypiques dirigés contre des anticorps inhibiteurs se liant au domaine C2 permet la neutralisation d'au moins 70%, et avantageusement au moins 80% ou 90% de la totalité des anticorps inhibiteurs présents chez un patient Dans un mode de réalisation préféré de l'invention, la composition pharmaceutique selon l'invention comporte l'anticorps 14C12 (déposé sous le numéro LMBP 5878CB à la Belgian Coordinated Collections of Microorganisms) et l'anticorps 30D1. Dans un autre mode de réalisation préféré de l'invention, la composition pharmaceutique comporte l'anticorps 14C12 et un anticorps chimérique ou humanisé dérivé de l'anticorps 3OD1, c'est-à- dire un anticorps comportant les régions variables de l'anticorps 30D1 Un autre objet de l'invention est l'utilisation de l'anticorps selon l'invention pour son utilisation comme médicament. Un autre objet de l'invention est l'utilisation de l'anticorps selon l'invention pour la fabrication d'un médicament. Avantageusement, un tel médicament est utilisé pour réduire et/ou prévenir et/ou traiter les saignements chez un patient atteint d'hémophilie comportant des anticorps inhibiteurs dirigés contre le domaine A2 du facteur VIII. Un autre objet de l'invention est l'utilisation de l'anticorps selon l'invention pour la fabrication d'un médicament destiné au traitement de l'hémophilie de type A. Avantageusement, l'hémophilie de type A ainsi traitée est une hémophilie avec inhibiteurs. Ce type d'hémophilie traitée par l'anticorps selon l'invention peut être innée ou acquise. L'anticorps selon l'invention, en neutralisant les anticorps inhibiteurs, rend au traitement par injection de facteur VIII au patient son efficacité, l'activité du facteur VIII n'étant plus inhibée par les anticorps inhibiteurs. Un autre objet de l'invention est l'utilisation de l'anticorps selon l'invention pour neutraliser in vitro ou in vivo l'activité inhibitrice d'un anticorps inhibiteur dirigé contre le domaine A2 du facteur VIII. Ce procédé peut être mis en uvre pour dépléter le sang d'un patient de ses anticorps inhibiteurs dirigés contre le domaine A2 du facteur VIII, le sang étant ensuite réinjecté audit patient. Un autre objet de l'invention est l'utilisation de l'anticorps pour adsorber les anticorps inhibiteur, à titre d'exemple afin de purifier des anticorps inhibiteurs du facteur VIII. Enfin, un autre objet de l'invention est l'utilisation de l'anticorps selon l'invention pour la détection et/ou la purification d'anticorps inhibiteurs du facteur VIII. Les procédés de mise en oeuvre de telles méthodes de détection et de purification sont bien connues de l'homme du métier. On peut citer comme exemple l'utilisation à cet effet d'une colonne d'immuno-purification contenant des billes à la surface desquelles est greffé l'anticorps selon l'invention. Seules les molécules reconnues par l'anticorps vont se fixer sur les billes. Les autres vont traverser la colonne. Pour récupérer la molécule, il suffit d'augmenter la force ionique du solvant. D'autres aspects et avantages de l'invention seront décrits dans les exemples qui suivent, qui doivent être considérés comme illustratifs et ne limitent pas l'étendue de l'invention. Description des Figures Figure 1: Evaluation de la capacité de l'anticorps BOIIB2 à inhiber le facteur VIII dans un essai 20 fonctionnel. Figure 2: épitope mapping de l'anticorps BOIIB2. Figure 3: Réponse immune des souris injectées avec l'anticorps BOIIB2 en fonction de la saignée par mesure de la densité optique. Figure 4: Fixation directe des anticorps antiidiotypiques aux anticorps BOIIB2 insolubilisés. Figure 5: Inihibition de la fixation de l'anticorps BOIIB2 au facteur VIII recombinant insolubilisé. Figure 6: Neutralisation de l'activité inhibitrice anti- facteur VIII de l'anticorps BOIIB2. Figure 7: Neutralisation de l'effet inhibiteur du mélange de l'anticorps B02C11 et de l'anticorps BOIIB2 par les anticorps anti-idiotypiques 14012 et 30D1. Exemples Exemple 1: Production d'un anticorps monoclonal humain dirigé contre le domaine A2 du facteur VIII ( anticorps anti-A2 ) Des anticorps humains monoclonaux possédant la spécificité et les caractéristiques désirés sont produits par transformation de lymphocytes B obtenus à partir de sang périphériques d'individus, préférentiellement de patients souffrant d'hémophilie A ou d'hémophilie acquise. Les cellules B sont transformées par infection avec le virus d'Epstein-Barr et activation d'antigènes de surface grâce à des techniques bien connues de l'homme du métier (Madec et al. (1996) J Immunol 156:3541-3549). Les surnageants cellulaires contenant les anticorps désirés sont identifiés par des tests spécifiques. Ainsi, les anticorps dirigés contre le facteur VIII sont identifiés en faisant réagir le surnageant avec des plaques de polystyrène coatées avec du facteur VIII ou avec un complexe facteur VIII/facteur Von Willebrand. La liaison des anticorps spécifiques est détectée par l'addition d'une IgG anti-humain couplée avec une enzyme. L'addition d'un substrat enzymatique converti en un composé coloré en présence d'une enzyme permet la détection d'anticorps spécifiques. De telles méthodes, désignées par le terme ELISA (Enzyme-Linked ImmunoSorbent Assays), sont bien connues de l'homme du métier. Une description détaillée est disponible dans l'ouvrage Current Protocols in Immunology, Chapter 2, John Wiley & Sons, Inc, 1994 . Les cellules B produisant les anticorps anti-facteur VIII sont ensuite expandues et clonées par dilutions limites. Des méthodes pour le clonage sont décrites, par exemple, dans l'ouvrage Current Protocols in Immunology, Chapter 2, John Wiley & Sons, Inc, 1994 . Les anticorps anti-facteur VIII possédant les caractéristiques désirées, à savoir la capacité d'inhiber l'activité procoagulante du facteur VIII, sont identifiés grâce aux kits d'essais chromogéniques commercialement disponibles, et suivant les recommandations du fabriquant. Des anticorps qui inhibent la fonctionnalité du facteur VIII et qui présentent une affinité de liaison pour le facteur VIII suffisante sont sélectionnés. La figure 1 montre la faculté d'un anticorps, nommé BOIIB2, spécifique du domaine A2 du facteur VIII, à inhiber le facteur VIII dans un essai fonctionnel. Le test fonctionnel utilisé est un test chromogénique dans lequel le facteur VIII activé par la thrombine agit comme un cofacteur au facteur IXa dans la conversion du facteur X en facteur Xa. Brièvement, 20 gl de facteur VIII recombinant (recFVIII) dilué dans une solution de PBSBSA (1 IU/ml) est mélangé avec un volume égal d'une diultion sérielle de l'anticorps BOIIB2 dans la même solution de PBS-BSA et incubé pendant 1 heure à 37 C. 20 gl du mélange sont ensuite incubés pendant 3 minutes à température ambiante dans un puits de micortitrage avec 20 pl du réactif 1 (facteur X) et 20 pl de réactif 2 (facteur IXa) avant addition de 100 pl de réactif 3 (substrat chromogénique et tampon d'arrêt). Des expérimentations de contrôle incluant le recFVIII incubé sans anticorps spécifiques ou avec la même concentration d'anticorps non-relevants sont effectuées. La densité de coloration du substrat est directement mesurée à 405 nm avec une référence à 450 nm. Le pourcentage d'inhibition est calculé en comparaison avec le contrôle positif recFVIII 1 IU/ml. La courbe indique que le BOIIB2 inhibe le FVIII à 99% à une concentration de 0.1 pg/ml. Alternativement, des anticorps possédant les caractéristiques requises peuvent être produits par immunisation d'animaux. Dans ce cas, le facteur VIII humain est injecté à des souris avec un adjuvant. Les anticorps monoclonaux anti-humain sont ensuite obtenus par fusion de lymphocytes de rate avec une lignée cellulaire de myélome de souris. Les surnageants cellulaires produisant les anticorps anti-facteur VIII sont identifiés et clonés par dilution limite. Une description générale de telles méthodes peut être trouvée d'inhibiteurs possédant les caractéristiques désirées sont décrites ci-dessous. Des anticorps produits par des souris sont humanisés. Ainsi, les séquences des parties variables murines des chaînes lourdes et légères sont alignées avec les régions variables d'immunoglobuline humaine de manière à identifier un anticorps humain possédant la meilleure homologie des régions framework (FR). Le fragment d'ADN codant pour les régions variables humanisées sont ensuite synthétisées par la méthode PCR-based CDR grafted, telle que décrite dans Sato K et al. (1993) ; Cancer Research 53: 851-856. Exemple 2: Caractérisation de la spécificité et de l'affinité des anticorps anti-A2 La spécificité des anticorps dirigés contre le domaine A2 du facteur VIII est caractérisée en utilisant un système de transcription-traduction combiné au moyen de réticulocytes de lapins. A cet égard, une banque de plasmides contenant des fragments variés du domaine A2 est construite. La construction plasmidique pSP64-FVIII (ATCC, Rockville, MD) contenant un ADNc complet de 7,2Kb est utilisé comme matrice pour générer tous les fragments par PCR. Les fragments d'ADNc portant des mutations ou délétions sont produits par SOE-PCR (Splicing by Overlap Extension-PCR). Pour les fragments de facteur VIII de moins de 15 acides aminés, une séquence tag est ajoutée incluant l'ubiquitine et/ou l'épitope tag T7 pour la reconnaissance spécifique par des anticorps anti-tag, ainsi qu'une séquence complémentaire de cystéines pour marquage. Les fragments polypeptidiques de facteur VIII sont produits par la méthode TNT coupled Reticulocyte Lysate Systems (Promega), selon les instructions du fabriquant. L'immunoprécipitation des gènes transcrits est effectuée comme suit. Des dilutions des échantillons contenant les anticorps spécifiques sont mélangés à 40 pl de Protéine A Sépharose (Pharmacia) dans 500 p1 d'un tampon approprié, et le mélange est doucement agité pendant 1 heure à 4 C. Les anticorps non liés sont éliminés par une série de centrifugations et de lavages. Le complexe anticorps-Protéine A Sépharose est resuspendu dans 300 pl de tampon supplémenté par 3 pl de polypeptides de facteur VIII marqués in vitro à la méthionine L-(35S) pour une incubation à 4 C pendant 2 heures. Les complexes antigènes/anticorps sont élués des billes par ébullition pendant 3 minutes dans 30 pl de tampon dénaturant et la radioactivité comptée. Un second aliquot est analysé par SDS-PAGE et visualisé en autoradiographie. La figure 2 montre les résultats d'une telle expérimentation pour l'anticorps BOIIB2. Les résidus portant la séquence tag des régions 379546, 379-546Mut (R484A, Y487A, R489A, P492A) et 461-531 ont été marquées et produites par des lysats de réticulocytes. Les fragments ont été immunoprécipités par l'anticorps humain BOIIB2 lié à la Protéine-A Sépharose. Après lavage, le complexe a été élué et la radioactivité mesurée (en CPM) par scintillation et chargés sur SDS-PAGE, suivi d'une autoradiographie. La liaison de BOIIB2 au domaine A2 incluant les résidus 379-546 est montrée. En tout état de cause, la liaison a été abolie quand 4 mutations ont été introduites dans la région ou quand la région a été tronquée de sa partie N-terminale (461-531). L'anticorps anti-c-myc 9E10 et le plasma humain ont été utilisés comme contrôles positifs et négatifs respectivement. Un site de liaison dans la région comportant les résidus 389-510 est identifié dans le domaine A2,. Cependant, un tracé plus précis de l'épitope est difficile à cause du fait que l'enlèvement des parties amino-terminale ou carboxy-terminale de tels fragments abolit rapidement la liaison de l'anticorps. Nous avons donc procédé par une approche par étapes dans laquelle des mutations uniques ont été introduites dans le site de liaison présumé, à savoir 484-509. La figure 2 montre que des mutations uniques dans un tel site abolit la liaison de l'anticorps. Par ailleurs, des mutations uniques ont été introduites dans la séquence de 3 acides glutamiques situés en 389-391, qui résulte aussi dans une perte de liaison. On peut ainsi en conclure que le site de liaison est situé à l'intérieure de la séquence en acides aminés 484-509, mais que 3 résidus d'acide glutamique sont requis à une certaine distance pour une liaison efficace de l'anticorps. L'affinité de l'anticorps est calculée en utilisant un système de Surface Plasmon Resonance . Ainsi, la cinétique d'interaction entre le facteur VIII et l'anticorps humain en temps réel est analysée en utilisant un instrument Pharmacia Biosensor BlAcoreTm (Pharmacia Biosensore AB) L'anticorps BOIIB2 purifié (20 pg/ml dans 10mM de tampon acétate de sodium pH5.0) est 2889534 31 immobilisé sur une surface activée d'une puce CM5 sensor chip , selon les indications du fabricant. Toutes les expérimentations ont été effectuées en HBS à flot constant de 10 pl/min. Le facteur VIII en HBS est infusé à différentes concentrations à travers des ECR immobilisés sur une sonde de surface. A la fin de chaque cycle, la surface est régénérée par rinçage avec du HCl, pH2, pendant 36 sec. Les constantes d'association et de dissociation sont déterminées au moyen d'un logiciel d'évaluation BIA, selon des modèles supposant la liaison d'un analyte à un ou deux ligands immobilisés. Le kdiss de BOIIB2 a été évalué à 1.10-8 s 1 et le kass de BOIIB2 a été évalué à 1.103 M 1 s-l. Exemple 3: séquençage de l'anticorps BOIIB2 L'isolation de l'ARN de lignées cellulaires humaines B immortalisées par l'EBV sont produites au moyen de réactif TRIzol selon les indications du fabricant (Life Technologies). L'ADNc est synthétisé avec le système de pré-amplification SuperScript pour la synthèse du premier brin d'ADNc. L'ADNc codant la région la région variable de la chaîne lourde (VH) de l'anticorps est amplifiée par PCR au moyen d'amorces spécifiques de la séquence leader des familles VH et pour le premier exon de la région CH, comme décrit dans Jacquemin et al. (2000); Blood. Jan 1;95(1):156-63. L'appariement est effectué à 60 C pendant 40 cycles de PCR. Les produits PCR de taille appropriée (460bp) sont isolés à partir de 1.5% de gel d'agarose et clonés au moyen du Kit TA Cloning (Invitrogen BV, Leek, The Nederlands). Un screening PCR au moyen des couples d'amorces correspondant à la famille du gène VH d'intérêt est effectué sur des cultures de colonies randomisées. L'ADN plasmidique des colonies positives est isolé au moyen du Wizard Plus Minipreps (Promega, Menlo park, CA) et séquencé dans les 2 directions avec la Sequenase (United States Biochemical, Cleveland, OH), selon les instructions du fabriquant. L'analyse des séquences du gène de la région variable est effectuée au moyen de V BASE Sequence Directory (Tomlinson et al., MRC Centre for protein Engineering, Cambridge, UK). Le gène VH de BOIIB2 appartient au groupe VH4 et est homologue de DP-71. Le segment J est homolgue de JH6c. Le séquençage du gène de la chaîne légère clonée a identifié le VL comme un VLIII et le segment J comme un JL5. La séquence nucléotidique de la chaîne lourde du BOIIB2 est la séquence SEQ ID NO: 5, et la séquence nucléotidique de la chaîne légère de l'anticorps BOIIB2 est la séquence SEQ ID NO: 6. La séquence peptidique correspondant à la séquence SEQ ID NO: 5 est la séquence SEQ ID NO: 7 et la séquence peptidique correspondant à la séquence SEQ ID NO: 6 est la séquence SEQ ID NO: 8. Exemple 4: Production de l'anticorps anti-idiotypique 30D1 1. Immunisation des souris Quatre souris Balb/c femelles âgées de 6 semaines ont été injectées en sous-cutané (SC) dans les coussinets plantaires à trois reprises avec 10 pg de l'anticorps humain anti-domaine A2 du FVIII BOIIB2 suspendu dans un adjuvant complet de Freund (ACF) (lère immunisation) puis incomplet (AIF). Une première saignée (saignée 0) a été effectuée avant immunisation (saignée à JO), puis les injections et 10 saignées se sont succédées comme suit: Ji: Injection N 1 (10 pg d'anticorps BOIIB2 en présence d'adjuvant complet de Freund) J15: Saignée N 1 J16: Injection N 2 (10 pg d'anticorps BOIIB2 en présence 15 d'adjuvant incomplet de Freund) J28: Saignée N 2 J29: Injection N 3 (10 pg d'anticorps BOIIB2 en présence d'adjuvant incomplet de Freund) J44: Saignée N 3 II. Evaluation de la réponse immune des souris De manière à évaluer la présence d'anticorps anti-BOIIB2 dans les différentes saignées, un test ELISA en fixation directe est pratiqué. Dans ce but, l'anticorps BOIIB2 à 3 pg/ml, 50 pl/puits, dans du Tampon Glycine, ON (over night) à 4 C (Tampon Glycine = Glycine 0.1M, NaCl 0.17M, pH 9.2) est insolubilisé. Trois lavages avec du PBS/Tween sont effectués (PBS = NaCl 140.0 mM, KC1 2.6 mM, KH2PO4 1.4 mM, Na2HPO4.2H2O 8.1 nM, pH 7.4). Le système est laissé à saturation pendant 30 minutes à température ambiante (RT) avec 100 pl/puits de Magic Buffer (Magic Buffer = Tris 50mM, Nacl 0.17M, BSA 1%, pH 7.2). Les saignées sont ensuite diluées à 1/10, 1/50, 1/250 et 1/1250 dans le Magic Buffer et incubées pendant 2 heures à température de chambre (RT) (50p1/puits). Puis 3 lavages sont effectués dans du PBS/Tween. Le système est ensuite incubé avec une solution d'anticorps polyclonaux de chèvre anti-IgG de souris marqués à la HRP (horseradish peroxidase) (Bio-Rad) à 1 pg/ml pendant 2 heures à température ambiante (RT) (50pl/puits) (dilution dans le Magic Buffer). Le système est ensuite lavé 3 fois avec du PBS/Tween, puis on effectue une révélation avec un chromogène (Ortho-phényl diamine) et lecture de l'intensité de la coloration obtenue par un lecteur avec les filtres correspondant aux longueurs d'ondes 490/650 nm ( lecteur Emax Molecular Devices, Sunnyvale, CA). Résultat des densités optiques obtenues: Dilution 250X Souris 1 Souris 2 Souris 3 Souris 4 Saignée 0 0.012 0.013 0.006 0.016 saignée 1 0.255 0.273 0.245 0.254 Saignée 2 0.357 0.388 0.366 0.386 saignée 3 0.362 0.34 0.334 0.357 Les résultats obtenus sont reportés dans la figure 7. Conclusion: chaque souris a répondu correctement et de façon similaire à l'injection de l'anticorps BOIIB2. De façon arbitraire, la souris N 2 a été sélectionnée pour effectuer la fusion. III. Fusion et criblage Les lymphocytes de la rate de la souris n 2 ont été fusionnés avec les cellules du myélome SP2/0. La fusion a été réalisée de manière classique pour l'homme du métier (J.G. Gilles et al., Blood (2004) 103: 2617-23; P. Cornelis, Les anticorps monoclonaux , Revue IRE, vol. 7, N 4, 1983). Les cellules ont été expandues successivement en milieu DMEM (Dulbecco's Modified Eagle Medium) contenant de l'hypoxanthine et de la thymidine selon le principe des dilutions limites et les clones testés positifs détectés par un test en fixation directe ELISA tel que décrit précédemment au point II. La spécificité de la fixation a été confirmée au moyen d'un anticorps IgG4 humain de spécificité non relevante anti-Der P2 (AK6A3, anticorps dirigé contre un des allergènes majeurs de l'acarien Dermatophagoïdes Pteronisinus (DPT)) disponible dans notre laboratoire. Il est évident pour l'homme du métier que tout autre anticorps d'isotype autre qu'IgG4 peut être utilisé comme contrôle négatif. Afin de déterminer si les hybridomes sont stables, nous avons répété le test (tests 1 à 3) au cours de l'expansion des clones, dans différents volumes de milieu allant de 200 ul à 5 ml. Test 1 = mesure dans puits de 200 pl Test 2 = mesure dans puits de 1 ml Test 3 = mesure dans bouteille de 5 ml Résultat des densités optiques obtenues: clone Test 1 Test 2 Test 3 BOIIB2 IgG4 BOIIB2 IgG4 BOIIB2 IgG4 (AK6A3) (AK6A3) (AK6A3) lOCll 0,353 0,094 clone clone clone clone mort mort mort mort 10H7 0,436 0,093 clone clone clone clone mort mort mort mort 11F5 0,134 0,040 clone clone clone clone mort mort mort mort 12F5 0, 291 0,087 0,024 0,002 0,012 0,002 14E7 0,231 0,077 0,234 0,006 0,216 0, 003 25F7 0,362 0,071 0,205 0,003 0,178 0,002 27B5 0,333 0,046 0,238 0,003 0,259 0,003 28C5 0,125 0,077 clone clone clone clone mort mort mort mort 30D1 0,324 0,093 0,311 0,003 0,293 0,002 Conclusion: 4 clones sont positifs en fixation directe à l'anticorps BOIIB2: 14E7, 25F7, 27B5, 30D1. Ces clones 5 sont stables dans les trois tests. IV. Test d'inhibition avec les surnageants de culture Afin d'effectuer la sélection d'un clone producteur d'anticorps anti-idiotypiques (Ac anti-Id) qui reconnait précisément un déterminant épitopique localisé au niveau du paratope de l'anticorps BOIIB2 parmi les 4 clones retenus au point III, les anticorps anti-Id ont été testés dans un test ELISA d'inhibition defixation du BOIIB2 au FVIII insolubilisé. Le facteur VIII recombinant (recFVIII) (Baxter) à 2 pg/ml dans un tampon glycine, 50 pl/puits, a été insolubilisé puis laissé pendant 2 heures à température de chambre. L'anticorps BOIIB2 (ou une IgG4 non relevante) à 0,4 pg/ml final a été pré-incubé pendant 2 heures avec les surnageants de culture des anticorps 14E7, 25F7, 27B5, 3OD1 à la dilution 1/1, 1/2 et 1/4 dans le Magic Buffer. Un lavage des puits à 3 reprises est effectué avec un tampon PBS/Tween, puis une saturation avec 100 pl/puits de Magic Buffer (30 min à température de chambre) est effectuée. On incube ensuite avec 50 pl BOIIB2 (ou IgG4 non relevante) et le surnageant de culture (2H, RT, Magic Buffer), puis trois lavages sont effectués. Les anticorps BOIIB2 fixés au recFVIII insolubilisé sont détectés par ajout de 50 pl/puits d'une solution à 1 pg/ml dans le Magic Buffer d'anticorps polyclonaux de souris anti-IgG humaines marqués-HRP (Southern Biotechnology). Trois lavages successifs sont effectués avec du PBS/Tween, puis on effectue la révélation avec un chromogène (OPD ortho-phényl diamine) et une lecture de l'intensité de la coloration obtenue par un lecteur avec les filtres correspondant aux longueurs 490/650 nm ( lecteur Emax Molecular Devices, Sunnyvale, CA). L'inhibition se calcule comme suit: I(%) = 1-(signal avec anticorps antiidiotypique/signal sans anticorps anti-idiotypique) Résultats obtenus: Clones Inihibition (%), dilution 1/1 14E7 0 30D1 73 27B5 0 25F7 0 Conclusions: seul un clone (30D1) est capable d'inhiber spécifiquement la fixation de l'anticorps BOIIB2 au recFVIII insolubilisé. V. Production des 4 clones producteurs des anticorps anti-BOIIB2 de façon extensive Afin de disposer de quantités d'anticorps supérieures permettant de confirmer la spécificité des anticorps 14E7, 25F7, 27B5, 30D1 de l'exemple IV, nous avons produit ces anticorps anti-idiotypiques en milieu de culture DMEM suivi d'une purification sur colonne d'affinité Protéine G qui permet de purifier puis de concentrer les anticorps et ainsi de s'assurer plus avant de la spécificité des anticorps anti- idiotypiques obtenus. La concentration d'anticorps purifiés a été déterminée par photométrie, de manière classique pour l'homme du 20 métier. 30D1: production de 4 ml à 3,23 mg/ml 27B5: production de 7,5 ml à 3,24 mg/ml 14E7: production de 4 ml à 2,74 mg/ml 25F7: production de 5 ml à 0, 392 mg/ml Les quantités obtenues des différents anticorps sont alors: 30D1: 12.92 mg 27B5: 24.3 mg 14E7: 10.96 mg 25F7: 1.96 mg VI. Evaluation de la spécificité Les différentes préparations sont évaluées en ELISA suivant le même protocole que celui décrit au point II et IV. 6.1 Test ELISA: fixation directe des anticorps anti- idiotypiques 14E7, 25F7, 27E5, 30D1_aux anticorps BOIIB2 insolubilisés Les résultats sont donnés dans la figure 6. Les quatre anticorps se lient de façon dosedépendante à l'anticorps BOIIB2 insolubilisé sur plaque. Les résultats suggèrent une affinité différente des quatre anticorps, qui est décroissante dans l'ordre 30D1, 27B5, 14E7, 25F7. 6.2. Test ELISA: inhibition de la fixation de l'anticorps BOIIB2 au recFVIII insolubilisé Le protocole suivi est le même que le protocole décrit au point IV. La concentration de BOIIB2 utilisée est égale à 0.4 pg/ml, qui est la concentration capable d'inhiber environ 90% de l'activité d'une unité de FVIII. L'inhibition est calculée comme suit: I(%) = 1-(signal avec anticorps anti-idiotypique/signal sans anticorps anti-idiotypique) Pourcentage d'inhibition Conc. pg/ml 30D1 27B5 14E7 25F7 94.8 86.9 0 0 16.7 94.8 62.7 0 0 5.56 94.8 42.8 0 0 1.85 92.7 14.4 0 0 0.62 90.6 17.1 0 0 0.21 46 16.5 0 0 0.07 28 16.7 0 0 0.023 17.5 16.8 0 0 0.0076 0 0 0 0 0.0025 0 0 0 0 Les résultats sont donnés dans la figure 7. Les anticorps 30D1 et 27B5 montrent un effet inhibiteur tandis que les anticorps 14E7 et 25F7 sont négatifs. Les effets inhibiteurs des anticorps 30D1 et 27B5 se distinguent quantitativement. Tandis que le 30D1 provoque une inhibition à de très faibles doses (90% d'inhibition à 0.6 pg/ml et un maximum de 94. 8% à moins de 6 pg/ml), il faut utiliser environ 10 pg/ml pour atteindre 50% d'inhibition. 6.3. Test fonctionnel: mesure de la neutralisation de l'activité inhibitrice (anti-FVIII) de l'anticorps BOIIB2 En fonction, des résultats obtenus dans l'exemple précédent, seul l'anticorps 30D1 est évalué. L'anticorps BOIIB2 est incubé à différentes concentrations (de 1.6 à 0.05 pg/ml) avec l'anti-Id 30D1 (courbe de dilution allant de 1.25 à 0.02 pg/ml final) dans du Magic Buffer est effectuée. Après 30 min, le FVIII Kogenate (Bayer) à 0.5 U/ml final est ajouté puis une incubation complémentaire de 30 min à 37 C est effectuée. Les échantillons sont dilués 30X dans le Magic Buffer, puis les réactifs du test Chromogénique DADE (facteur VIII chromogénique, Dade Behring Gmbh, Marburg, Germany) sont ajoutés selon le mode d'emploi du producteur. Résultats. BOIIB2 (pg/ml) 0.2 pg/ml 0.1 pg/ml 0.05 pg/ml 30D1 (pg/ml) 100 100 100 1. 25 0.63 100 100 100 0.32 100 100 100 0.16 54.6 90.5 100 0.08 0.9 61.9 100 0.04 0 17.6 62 0.02 0 3.9 37.3 Les résultats sont repris dans la figure 6. Les résultats montrent que l'anticorps 30D1 neutralise l'activité inhibitrice du BOIIB2 de façon dose-dépendante. L'inhibition est calculée comme suit: I(%) = 1-(signal avec anticorps anti-idiotypique/signal sans anticorps anti-idiotypique) 6.4 Mesure de la cinétique de fixation de l'anticorps anti-Id 30D1 par la méthode Surface plasmon resonance BlAcore La cinétique de fixation de l'anticorps anti-idiotypique 30D1 sur l'anticorps inhibiteur BOIIB2 a été évaluée par la méthode Surface plasmon resonance Biacore en utilisant le Pharmacia Biosensor BlAcore (Pharmacia Biosensor AB, Uppsala, Suède). Les anticorps BOIIB2 ont été immobilisés sur une surface activée d'une sonde CM5. Les anticorps anti-idiotypqies 30D1 ont été infusés avec plusieurs concentrations de BOIIB2 immobilisés sur la surface de la sonde. Les constantes d'association et de dissociation ont été déterminées: Ka (M-1S1) = 6.104 Kd (S-1) = 1-10-5 KD: 1.10-5/6.104=0.17.10-9 M. 6.5 Caractérisation de la sous-classe de l'anticorps 30D1 Afin de déterminer la sous-casse de l'ac 30D1, le système IsoStrip de Roche a été utilisé (languette colorimétrique). L'anticorps 30D1 est une IgGl, Kappa. 6.6 Séquence Pour le séquençage, l'ARNm des hybridomes produisant l'anticorps anti-idiotypique 30D1 a été isolée en utilisant le Quick Prep Micro mRNA Purification Kit (Amersham Pharmacia Biotech, Uppsala, Suède). L'ADNc a été synthétisé au moyen du First-strand cDNA Synthesis Kit (Amersham Pharmacia Biotech). L'ADNc codant pour la chaîne lourde (VH) et pour la chaîne légère (VL) a été amplifié par PCR (Polymerase Chain Reaction) au moyen d'amorces spécifiques correspondant aux différentes familles de gènes potentiellement rencontrées chez la souris. Les produis de la PCR ont été isolés d'un gel d'agarose 1.5% au moyen du QIA quick Gel Extraction Kit (Qiagen, Hilden, Germany) et clonés au moyen du pGEM-T Easy Vector system Promega, Madison, WI). L'ADN plasmidique des colonies positives a été isolé au moyen de High Pure Plasmid Isolation Kit (Roche Diagnostics, Mannheim, Germany) et séquencé dans les deux sens avec la Seqenase (US Biochemical, Cleveland, OH). Exemple 5: Neutralisation de l'effet inhibiteur du mélange de l'anticorps BO2C11 et de l'anticorps BOIIB2 20 par les anticorps anti-idiotypiques 14C12 et 30D1. Un essai Bethesda a été effectué au moyen des anticorps monoclonaux BO2C11 et BOIIB2 afin d'évaluer la capacité des anticorps anti- idiotypiques 30D1 et 14C12 (anticorps dirigé contre un anticorps inhibiteur se liant au domaine C2 du facteur VIII, décrit dans le document brevet WO 2004/014955) à neutraliser la capacité d'inhibition des anticorps humains anti-FVIII. La concentration en anticorps BO2C11 (0, 03pg/ml) + BOIIB2 (0,013pg/ml) est définie comme la concentration inhibant 80% de l'activité du FVIII dans le test Bethesda. L'effet de la neutralisation est évalué : 1 pour chaque anticorps antiidiotypique ajouté séparément (14C12 --É-- et 30D1 -- --) à concentration croissante (de 0,0063 à 6,4 pg/ml) au mélange BO2C11 + 5 BOIIB2. 2 pour l'association des 2 anticorps anti-idiotypique 14C12 et 3OD1 (--^-) ajoutés aux mêmes concentrations au mélange BO2C11 + BOIIB2. l0 La figure 7 montre que l'utilisation d'une combinaison de 2 anticorps anti-idiotypiques ciblant des anticorps inhibiteurs dirigés contre des domaines différents du FVIII (domaines A2 et C2) possède un effet supérieur à l'utilisation d'un seul anticorps anti-idiotypique. Revendications 1. Anticorps monoclonal anti-idiotypique dirigé contre un anticorps humain inhibiteur du facteur VIII, caractérisé en ce que ledit anticorps inhibiteur est dirigé contre le domaine A2 du facteur VIII. 2. Anticorps selon la revendication 1, caractérisé en ce que ledit anticorps inhibiteur reconnaît l'épitope localisé entre les acides aminés 484 à 508 du facteur VIII. 3. Anticorps selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce que l'anticorps inhibiteur est l'anticorps BOIIB2 (déposé à la Belgian Coordinated Collections of Microorganisms sous le numéro LMBP 6422CB). 4. Anticorps selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que la région variable de chacune de ses chaînes légères est codée par une séquence d'acide nucléique possédant au moins 70% d'identité avec la séquence d'acide nucléique SEQ ID NO: 2, et en ce que la région variable de chacune de ses chaînes lourdes est codée par une séquence d'acide nucléique possédant au moins 70% d'identité avec la séquence d'acide nucléique SEQ ID NO: 1. 5. Anticorps selon l'une quelconque des revendications 30 précédentes, caractérisé en ce que la région variable de chacune de ses chaînes légères est codée par la séquence d'acide nucléique SEQ ID NO: 2, et en ce que la région variable de chacune de ses chaînes lourdes est codée par la séquence d'acide nucléique SEQ ID NO: 1. 6. Anticorps selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que la séquence peptidique de la région variable de chacune de ses chaînes légères est une séquence possédant au moins 70% d'identité avec la séquence SEQ ID NO: 4, et la séquence peptidique de la région variable de chacune de ses chaînes lourdes est une séquence possédant au moins 70% d'identité avec la séquence SEQ ID NO: 3. 7. Anticorps selon l'une quelconque des revendications 4 ou 5, caractérisé en ce que la séquence peptidique déduite de la séquence SEQ ID NO 2: est la séquence SEQ ID NO: 4 et en ce que la séquence peptidique déduite de la séquence SEQ ID NO: 1 est la séquence SEQ ID NO: 3. 8. Anticorps selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que ledit anticorps antiidiotypique est un anticorps murin. 9. Anticorps selon la revendication 8, caractérisé en ce 25 que ledit anticorps anti-idiotypique est une IgGlkappa lO.Anticorps selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisé en ce que ledit anticorps est un anticorps chimérique. il. Anticorps selon la revendication 10, caractérisé en ce que ledit anticorps est un anticorps hybride humain. 12. Anticorps selon l'une quelconque des revendications 1 5 à 7, caractérisé en ce que ledit anticorps est un anticorps humanisé. 13. Anticorps selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce qu'il s'agit d'un fragment F(ab')2, d'une fragment Fab', d'un fragment Fab, d'une région CDR ou toute version modifiée de l'un quelconque de ces fragments ou région. 14. Anticorps selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, caractérisé en ce qu'il est susceptible d'être produit par l'hybridome 30D1 déposé sous le numéro d'enregistrement CNCM I-3450 à la Collection Nationale de Cultures de Microorganismes (CNCM). 15. Lignée cellulaire stable produisant un anticorps selon l'une quelconque des revendications 1 à 13. 16. Lignée cellulaire stable selon la revendication 15 choisie parmi le groupe consistant en: SP2/0, YB2/0, IR983F, le myélome humain Namalwa, PERC6, les lignées CHO, notamment CHO-K-1, CHO-LeclO, CHO-Lecl, CHO-Lecl3, CHO Pro-5, CHO dhfr-, Wil-2, Jurkat, Vero, Molt-4, COS-7, 293-HEK, BHK, K6H6, NSO, SP2/0-Ag 14 et P3X63Ag8.653. 17. Hybridome 30D1 déposé sous le numéro d'enregistrement CNCM I-3450 à la Collection Nationale de Cultures de Microorganismes (CNCM). 18. Fragment d'ADN de séquence SEQ ID NO: 1 codant pour la région variable de la chaîne lourde d'un anticorps selon l'une quelconque des revendications 1 à 14. 19. Fragment d'ADN de séquence SEQ ID NO: 2 codant pour 10 la région variable de la chaîne légère d'un anticorps selon l'une des revendications 1 à 14. 20. Composition pharmaceutique comprenant un anticorps selon l'une quelconque des revendications 1 à 14 et au moins un excipient et/ou au moins un véhicule pharmaceutiquement acceptables. 21. Composition selon la revendication 20, caractérisée en ce qu'elle comprend au moins un anticorps anti- idiotypique dirigé contre un domaine autre que le domaine A2 du facteur VIII. 22. Composition selon l'une quelconque des revendications 20 ou 21, caractérisée en ce qu'elle comprend un anticorps anti-idiotypique dirigé contre le domaine C2 du facteur VIII. 23. Utilisation d'un anticorps selon l'une quelconque des revendications 1 à 14, pour la fabrication d'un 30 médicament. 24. Utilisation d'un anticorps selon l'une quelconque des revendications 1 à 14, pour la fabrication d'un médicament destiné au traitement de l'hémophilie de type A. 25. Utilisation selon la revendication 24, caractérisée en ce que l'hémophilie de type A est une hémophilie avec inhibiteurs. 26. Utilisation d'un anticorps selon l'une quelconque des revendications 1 à 14, pour neutraliser in vitro l'activité inhibitrice d'un anticorps inhibiteur dirigé contre le domaine A2 du facteur VIII. 27. Utilisation d'un anticorps selon l'une quelconque des revendications 1 à 14, pour la détection et/ou la purification d'anticorps inhibiteurs du facteur VIII.