FR 2896881 A1 20070803 FR 0600851 A 20060131 La présente invention concerne le domaine de la cancérologie. Plus particulièrement, la présente invention a pour objet un procédé de diagnostic in vitro du cancer du sein chez un patient humain par détermination de la présence du précurseur du facteur de croissance nerveux (ProNGF) dans un échantillon biologique issu de ce patient, ledit procédé pouvant être utilisé tant dans le diagnostic précoce, le dépistage, le suivi thérapeutique, le pronostic, que dans le diagnostic des rechutes dans le cadre du cancer du sein. De plus, du fait de la capacité des cellules du cancer du sein à produire du ProNGF, la présente invention concerne également la thérapie. Chez la femme, le cancer du sein est la première cause de mortalité par cancer dans to les pays industrialisés. Il est estimé que la taille minimale d'une tumeur repérable par mammographie est de quelques mm. Les cancers du sein se développent lentement. Néanmoins, cette tumeur de petite taille présente un passé évolutif de 8 ans en moyenne lors du diagnostic. L'étiologie du cancer du sein n'est pas bien définie. Des prédispositions familiales ont été mises en évidence. L'âge est le facteur de risque le plus important. Ainsi, le 15 risque augmente de 0,5% par année d'âge dans les pays occidentaux. D'autres facteurs de risques sont connus tels que le nombre des grossesses et l'âge de la première grossesse, l'allaitement, l'âge de la puberté et de la ménopause, les traitements oestrogéniques après la survenue de la ménopause, le stress et la nutrition. Le test disponible et utilisé en dépistage de masse pour le cancer du sein est une 20 technique d'imagerie : la mammographie. Grâce à cette technique, la mortalité due aux cancers du sein a fortement diminué (30% de réduction de mortalité), ce qui souligne l'importance du dépistage des tumeurs en terme de santé publique. Néanmoins, les techniques de dépistage souffrent d'un certain nombre de handicaps. La mammographie nécessite un matériel performant et du personnel qualifié ce qui est coûteux dans le cadre d'un dépistage 25 de masse. En pratique clinique, la caractérisation d'une tumeur en terme de malignité est réalisée après sa découverte par des méthodes histologiques dans des laboratoires spécialisés. Un ensemble de paramètres tels que la taille de la tumeur, son grade histopathologique, l'inflammation associée et l'invasion ganglionnaire sont utilisés pour décider de la thérapeutique et pour estimer le pronostic de la maladie. Des marqueurs qui permettent de distinguer les cellules tumorales des cellules saines sont recherchés et étudiés depuis des années pour le cancer du sein. Ils permettraient de diagnostiquer précocement la maladie, d'en établir le pronostic et la sensibilité au traitement, et d'en surveiller l'évolution. Jusqu'à présent les marqueurs candidats qui ont été identifiés et étudiés ont été des oncogènes, des marqueurs tissulaires et des marqueurs associés à l'angiogénèse ou aux capacités métastatiques de la tumeur. Actuellement les marqueurs de cancer du sein identifiés servent principalement pour le suivi thérapeutique. Il n'existe pas de test biologique validé pour le diagnostic précoce, ni pour le dépistage du cancer du sein. Seule la détection des récepteurs aux oestrogènes sur le tissu tumoral permet de déterminer si les tumeurs seront ou non hormono-sensibles. La détection du récepteur HER-2/neu permet de savoir si la tumeur est sensible à l'Herceptine. Un nombre limité de marqueurs antigéniques, en particulier le CA 15-3 (Basuyau, J. P., M. P. Blanc-Vincent, J. M. Bidart, A. Daver, L. Deneux, N. Eche, G Gory-Delabaere, M. F. Pichon, and J. M. Riedinger. 2000. [Standards, Options and Recommendations (SOR) for tumor marker; in breast cancer. SOR Working Group]. Bull Cancer. 87:723-37.) a été identifié dans le cas des cellules mammaires cancéreuses. Ce marqueur est utilisé en pratique courante pour le suivi des patientes, en particulier pour la détection de récidive, mais, en raison de sa faible sensibilité, il n'est pas proposé en test de dépistage ni de diagnostic. Depuis plusieurs années des travaux portant sur les antigènes associés au cancer du sein ont été développés non pas pour rechercher des marqueurs, mais pour rechercher des cibles pour une immunothérapie. Ceux-ci vont de la mise en évidence d'une immunité humorale contre les antigènes T/Tn (Springer, G. F. 1997. Immunoreactive T and Tn epitopes in cancer diagnosis, prognosis, and immunotherapy. J Mol Med. 75:594-602.), jusqu'à la découverte plus récente d'anticorps et de réponses des cellules T dirigés contre p53 (Gnjatic, S., Z. Cai, M. Viguier, S. Chouaib, J. G. Guillet, and J. Choppin. 1998. Accumulation of the p53 protein allows recognition by human CTL of a wild-type p53 epitope presented by breast carcinomas and melanomas. J Immunol. 160:328-33) et HER-2/neu (Disis, M. L., and M. A. Cheever. 1997. HER-2/neu protein: a target for antigen-specific immunotherapy of human cancer. Adv Cancer Res. 71:343-71). Plus récemment, une série de nouveaux antigènes potentiels a été mise en évidence par l'approche SEREX (serological expression cloning), reposant sur la construction de librairies d'ADNc de cellules tumorales et un screening par le sérum autologue. Un screening sérologique de librairie de cancer du sein a ainsi permis la mise en évidence de l'antigène ING1 (Jager, D., E. Stockert, M. J. Scanlan, A. O. Gure, E. Jager, A. Knuth, L. J. Old, and Y. T. Chen. 1999. Cancer-testis antigens and ING1 tumor suppressor gene product are breast cancer antigens: characterization of tissue-specific ING1 transcripts and a homologue gene. Cancer Res. 59:6197-204.), puis d'un nouvel antigène de différenciation NY-BR-1, l0 exprimé selon les auteurs dans 80% des cancers du sein et induisant la production d'anticorps IgG chez les patientes (Jager, D., E. Stockert, A. O. Gure, M. J. Scanlan, J. Karbach, E. Jager, A. Knuth, L. J. Old, and Y. T. Chen. 2001. Identification of a tissue-specific putative transcription factor in breast tissue by serological screening of a breast cancer library. Cancer Res. 61:2055-61). Ce type d'approche, qui a principalement servi à la recherche de cibles 15 potentiellement utilisables pour le développement de vaccins, n'exclut pas a priori les antigènes présents dans le tissu normal (c'est le cas de NY-BR-1), ni ceux reconnus par un nombre limité de sérums de patientes (2/14 pour INGI ), ils ne sont donc pas exploitables pour une stratégie de dépistage ou de diagnostic précoce. Par la même approche, d'autres antigènes induisant une réponse immunitaire humorale chez des patientes ont été signalés 20 comme NY-BR-62, NY-BR-85 et la protéine D52. Ces antigènes seraient surexprimés respectivement dans 60%, 90% et 60% des cancers du sein (Scanlan, M. J., and D. Jager. 2001. Challenges to the development of antigen-specific breast cancer vaccines. Breast Cancer Res. 3:95•-8.). Les phénomènes moléculaires conduisant au développement d'un cancer du sein 25 impliquent des modifications de la structure et de l'expression d'oncogènes (tel que ras) et de gènes suppresseurs de tumeurs comme p53. La croissance des cellules tumorales dans la plupart des cancers du sein est dépendante des hormones cestrogéniques (oestradiol et progestérone) et de facteurs de croissance qui contrôlent la prolifération, la migration et l'apoptose. Ces facteurs de croissance soit stimulent, soit inhibent la prolifération, migration et différentiation des cellules tumorales de manière à agir de concert pour favoriser la croissance du cancer et les métastases. Par exemple, les facteurs de croissance de type insuline, le facteur de croissance de transformation a (TGF-a) et les facteurs de croissance du fibroblaste (FGF) peuvent tous stimuler la prolifération des cellules du cancer du sein, tandis que l'inhibiteur du facteur de croissance dérivé du sein (MDGI) et le facteur de croissance de transformation t3 (TGF-(3) inhibent leur croissance. Dans la demande de brevet W02004/040312, les Demanderesses ont décrit l'utilisation du NGF en tant que marqueur tumoral et à titre de cible thérapeutique. Ainsi le NGF est produit par les cellules du cancer du sein, tandis que des cellules épithéliales to mammaires nornxtles correspondantes n'en produisent pas. De plus, le NGF stimule la survie et la prolifération des cellules épithéliales mammaires cancéreuses alors qu'il est sans effet sur les cellules épithéliales mammaires normales. Le gène du NGF code un précurseur protéique appelé le ProNGF (26 kDa) qui, par clivage enzymatique, génère du NGF (13,6 kDa) (Seidah et al., 1996, Biochem J., 314 : 15 951-960). La principale source de NGF chez les mammifères est la glande sous maxillaire qui renferme uniquement du NGF et très peu de ProNGF. Pendant longtemps, le seul rôle accordé au ProNGF était un rôle de précurseur métabolique à durée de vie très transitoire. Plus récemment, il a été montré dans différents tissus que le ProNGF était trouvé en quantité souvent supérieure à celle du NGF (Bierl et al., 2005, Neurosci Lett, 380: 133- 20 137). Hasan et al, ont décrit que le ProNGF peut être sécrété, ce qui signifie qu'il peut potentiellement agir de manière autocrine, paracrine ou même endocrine (2003, J Neurobiol, 57 : 38-53). Enfin, récemment, il a été démontré que le ProNGF possède à la surface des cellules neuronales un site de fixation de haute affinité par lequel il a des effets propres, différents de ceux du NGF. Ainsi, le ProNGF est capable de se lier à la Sortiline, une 25 glycoprotéine de 100 kDa (Mazella et al., 1998, J Biot Chem, 273: 26273-26276), et d'induire l'apoptose de cellules neuronales in vitro (Nykjaer et al., 2004, Nature, 427 : 843-848). Il lui a aussi été attribué une activité pro-apoptotique in vivo (Pedraza et al., 2005, Am J Pathol, 166 : 533-543). Les Demanderesses ont maintenant mis en évidence de façon surprenante que les cellules épithéliales du cancer du sein produisent et secrètent elles-mêmes du ProNGF, et ce en quantité notable, tandis que des cellules épithéliales mammaires normales correspondantes n'en produisent pas, de sorte que le ProNGF peut être utilisé à titre de marqueur tumoral ou bien à titre de cible thérapeutique. Ainsi, la présence invention a pour premier objet un procédé de diagnostic in vitro du cancer du sein par détermination de la présence de ProNGF dans des échantillons biologiques issus de patients suspectés d'être atteints du cancer du sein. Le procédé de l'invention permet donc de diagnostiquer le cancer du sein par un test simple consistant à rechercher la présence de ProNGF dans un échantillon biologique prélevé to d'un patient. Les Demanderesses ont montré de façon inattendue que des cellules cancéreuses produisaient du ProNGF, tandis que les cellules correspondantes non cancéreuses en étaient incapables, comme cela sera mis en évidence de façon plus détaillée ci-après. Ainsi, la détermination de la présence de ProNGF dans l'échantillon permet de conclure à la pathologie recherchée, l'absence de ProNGF permettant de conclure à 15 l'absence de pathologie. On entend par détermination de la présence de ProNGF soit la détection directe du ProNGF, soit la culture de cellules sensibles au ProNGF, ou tout autre procédé de détermination de la présence d'une protéine dans un échantillon, connu de l'homme du métier. La détermination de la présence de ProNGF par détection directe du proNGF 20 constitue un mode de réalisation particulier de l'invention. Par détection directe du ProNGF, on entend la mise en évidence du ProNGF lui-même dans l'échantillon biologique. La détection directe du ProNGF dans l'échantillon biologique peut être mise en oeuvre par tout rnoyen connu de l'homme du métier, comme par exemple par test 25 immunologique ou par spectrométrie de masse, ce qui constitue un mode de réalisation particulier de l'invention. Le test immunologique peut être tout test largement connu de l'homme du métier impliquant des réactions immunologiques, à savoir des réactions entre le ProNGF et un partenaire de liaison spécifique du ProNGF. Les partenaires de liaison spécifiques du ProNGF sont tout partenaire susceptible de se lier au ProNGF. A titre d'exemple, on peut citer les anticorps, les fractions d'anticorps, les récepteurs et toute autre molécule capable de se lier au ProNGF. Les anticorps partenaires de liaison sont par exemple soit des anticorps polyclonaux, soit des anticorps monoclonaux. Les anticorps polyclonaux peuvent être obtenus par immunisation d'un animal avec du ProNGF, suivie de la récupération des anticorps recherchés sous forme purifiée, par prélèvement du sérum dudit animal, et séparation desdits anticorps des autres constituants du sérum, notamment par chromatographie d'affinité sur une colonne sur laquelle est fixé un antigène spécifiquement reconnu par les anticorps, notamment le ProNGF. Les anticorps monoclonaux peuvent être obtenus par la technique des hybridomes dont le principe général est rappelé ci-après. Dans un premier temps, on immunise un animal, généralement une souris, (ou des cellules en culture dans le cadre d'immunisations in vitro) avec du ProNGF, dont les lymphocytes B sont alors capables de produire des anticorps contre ledit antigène. Ces lymphocytes producteurs d'anticorps sont ensuite fusionnés avec des cellules myélomateuses "immortelles" (mu fines dans l'exemple) pour donner lieu à des hybridomes. A partir du mélange hétérogène des cellules ainsi obtenu, on effectue alors une sélection des cellules capables de produire un anticorps particulier et de se multiplier indéfiniment. Chaque hybridome est multiplié sous la forme de clone, chacun conduisant à la production d'un anticorps monoclonal dont les propriétés de reconnaissance vis-à-vis du ProNGF pourront être testées par exemple en ELISA, par immunotransfert en une ou deux dimensions, en immunofluorescence, ou à l'aide d'un biocapteur. Les anticorps monoclonaux ainsi sélectionnés, sont par la suite purifiés notamment selon la technique de chromatographie d'affinité décrite ci- dessus. Les anticorps monoclonaux peuvent être également des anticorps recombinants obtenus par génie génétique, par des techniques bien connues de l'homme du métier. Des exemples d'anticorps anti-ProNGF sont connus et sont disponibles notamment dans le catalogue de Chemicon. Les partenaires de liaison spécifiques du ProNGF pourront être marqués pour la révélation de la liaison ProNGF/partenaire de liaison lorsque le partenaire de liaison est utilisé comme réactif de détection, et donc pour la détection directe du ProNGF dans l'échantillon biologique. Par marquage des partenaires de liaison, on entend la fixation d'un marqueur capable de générer directement ou indirectement un signal détectable. Une liste non limitative de ces marqueurs consiste en : • les enzymes qui produisent un signal détectable par exemple par colorimétrie, fluorescence, luminescence, comme la péroxydase de raifort, la phosphatase alcaline, la a-galactosidase, la glucose-6-phosphate déshydrogénase, • les chromophores comme les composés fluorescents, luminescents, colorants, • les molécules radioactives comme le 32P, le 35S ou le 125I, et • les molécules fluorescentes telles que l'alexa ou les phycocyanines. Des systèmes indirects peuvent être aussi utilisés, comme par exemple des ligands capables de réagir avec un anti-ligand. Les couples ligand/anti-ligand sont bien connus de l'homme du métier, ce qui est le cas par exemple des couples suivants : biotine/streptavidine, haptène/anticorps, antigène/anticorps, peptide/anticorps, sucre/lectine, polynucléotide/complémentaire du polynucléotide. Dans ce cas, c'est le ligand qui porte le partenaire de liaison. L'anti-ligand peut être détectable directement par les marqueurs décrits au paragraphe précédent ou être lui-même détectable par un ligand/anti ligand. Ces systèmes indirects de détection peuvent conduire, dans certaines conditions, à une amplification du signal. Cette technique d'amplification du signal est bien connue de l'homme du métier, et l'on pourra se reporter aux demandes de brevet antérieures FR98/10084 ou WO-A-95/08000 de l'une des Demanderesses ou à l'article J. Histochem. Cytochem. 45 : 481-491, 1997. Selon le type de marquage utilisé, l'homme du métier ajoutera des réactifs permettant la visualisation du marquage. A titre d'exemple de tests immunologiques tels que définis ci-dessus, on peut citer les méthodes sandwiich telles qu'ELISA, IRMA et RIA, les méthodes dites de compétition et les méthodes d'immunodétection directe comme l'immunohistochimie, l'immunocytochimie, le Western-blot et le Dot-blot. Dans le cas des méthodes dites de compétion, le ProNGF est marqué comme décrit précédemment pour le partenaire de liaison. La spectrométrie de masse peut également être utilisée pour la détection directe du ProNGF dans l'échantillon biologique. Le principe de la spectrométrie est largement connu de l'homme du métier et est décrit par exemple dans Patterson, S., 2000, Mass spectromety and proteomics. Physiological Genomics 2, 59-65. Pour ce faire, l'échantillon biologique préalablement traité ou non est passé dans un spectromètre de masse et on compare le spectre obtenu avec celui du ProNGF. Un exemple de traitement préalable de l'échantillon consiste à le faire passer sur un support d'immunocapture., comportant un des partenaires de liaison du ProNGF, par exemple un anticorps dirigé contre le ProNGF. Un autre exemple de traitement préalable de l'échantillon peut être le pré-fractionnement de l'échantillon biologique, afin de séparer entre elles les protéines de l'échantillon. Dans des techniques bien connues de l'homme du métier, on peut par exemple tout d'abord dépléter les protéines majoritaires de l'échantillon. L'échantillon biologique utilisé pour la détection directe du ProNGF, susceptible de contenir du ProNGF en tant que tel, peut être constitué par du fluide biologique ou un tissu provenant de la biopsie de la tumeur ou des métastases du patient considéré. A titre de fluide biologique, on peut citer le sang total ou ses dérivés tels que le sérum ou le plasma, la moelle osseuse, le lait, le liquide céphalo-rachidien, les urines et les épanchements. On préfère le sang ou ses dérivés. Pour la détection du ProNGF, le fluide biologique, qui constitue un mode de réalisation particulier de l'invention, peut nécessiter un traitement particulier. En effet, le fluide biologique peut contenir le ProNGF en tant que tel, ou bien il peut contenir des cellules tumorales circulantes qui contiennent du ProNGF, et/ou des cellules tumorales circulantes qui sont capables de sécréter le ProNGF. Ainsi, selon un mode de réalisation de l'invention, le fluide biologique est préalablement traité pour isoler les cellules tumorales circulantes contenues dans le dit fluide. Par isoler les cellules tumorales circulantes, on entend obtenir une fraction cellulaire enrichie en cellules tumorales circulantes. Le traitement du fluide pour isoler les cellules tumorales circulantes peut être effectué par tri cellulaire dans un cytomètre de flux, par enrichissement sur Ficoll, par enrichissement par billes magnétiques recouvertes d'anticorps spécifiques, ou par toute autre méthode d'enrichissement spécifique connue de l'homme du métier. Dans le cas du sang ou de la moelle à titre de fluide biologique, les cellules tumorales circulantes peuvent être isolées grâce à une technique de séparation cellulaire sur Ficoll associée à une déplétion des cellules sanguines utilisant des anticorps anti-CD45 couplés à Io des billes magnétiques (Dynal Biotech ASA, Norvège). La détection directe du ProNGF peut alors être effectuée directement à partir de cellules tumorales circulantes isolées du fluide biologique, par exemple par marquage irnmunocytochimique de ces cellules avec un anticorps anti-ProNGF, après avoir déposé les cellules tumorales circulantes sur une lame par cytospin. La détection directe du ProNGF 15 peut également être effectuée directement dans les cellules tumorales circulantes en utilisant la méthode de cytométrie de flux telle que décrite dans Métézeau P, Ronot X, Le Noan-Merdrignac G, Ratinaud MH, La cytométrie en flux pour l'étude de la cellule normale ou pathologique (Tome I), Eds Medsi-MacGrawhill. Dans ces conditions, lesdites cellules circulantes peuvent être traitées dans des 20 conditions permettant le blocage du ProNGF à l'intérieur desdites cellules. Un tel traitement est décrit par exemple dans Intracellular Flow Cytometry, Applied reagents and Techniques, pp 1-21, BD Phanningen. La détection du ProNGF se fait alors après avoir rendu perméable la membrane des cellules pour faire rentrer les partenaires de liaison spécifique du ProNGF. 25 La détection directe du ProNGF à partir des cellules circulantes peut également être effectuée à l'aide du procédé décrit dans la demande de brevet WO03/076942 déposée par l'une des Demanderesses. La détection directe du ProNGF dans les cellules tumorales peut encore être effectuée dans le milieu de culture desdites cellules après les avoir cultivées dans des conditions telles qu'elles sécrètent du ProNGF. Ces conditions de culture sont des conditions classiques telles que 37 C sous atmosphère humide et à 5% de CO2. Lorsque l'échantillon biologique à tester est du tissu provenant de la biopsie de la 5 tumeur ou des métastases du patient, ce qui constitue un mode de réalisation particulier de l'invention, la détection directe du ProNGF est effectuée directement sur les coupes obtenues, sans traitement préalable dudit tissu. Un autre mode de détection de la présence du ProNGF consiste en la culture, en présence de l'échantillon biologique, de cellules sensibles au ProNGF, ce qui constitue un to mode de réalisation particulier de l'invention. Dans ce cas, la détection de la présence du ProNGF dans in échantillon biologique est mise en évidence par la réaction des cellules sensibles au ProNGF. Par cellules sensibles au ProNGF, on entend toute cellule stimulée en présence de ProNGF (croissance, apotose, etc.). 15 A titre de cellules sensibles au proNGF, on peut citer les cellules d'origine neuronale, telles par exemple que les cellules PC12 (Pedraza et al. Am. J Pathol. 2005, 166, 533-543). L'échantillon biologique que l'on peut utiliser pour la détection de la présence du ProNGF par culture de cellules sensibles au ProNGF peut être tout échantillon tel que décrit précédemment. 20 Ainsi, l'échantillon biologique peut être constitué de fluide biologique, le cas échéant préalablement traité pour isoler les cellules tumorales circulantes, elles-mêmes pouvant ensuite être cultivées en conditions telles qu'elles sécrètent du ProNGF, comme décrit précédemment. Le procédé de l'invention peut être utilisé tant pour le diagnostic précoce, que pour le 25 dépistage, le suivi thérapeutique, le pronostic et le diagnostic des rechutes dans le cadre du cancer du sein puisque seules les cellules cancéreuses produisent du ProNGF et que cette production est fonction du grade du cancer. Ainsi, un autre objet de l'invention consiste en l'utilisation du procédé de l'invention dans le diagnostic précoce, le dépistage, le suivi thérapeutique, le pronostic et le diagnostic des rechutes dans le cadre du cancer du sein. Outre un rôle de marqueur tumoral, le ProNGF peut également avoir un rôle de cible thérapeutique. En effet, du fait de la capacité des cellules du cancer du sein à produire du ProNGF, tandis que les cellules normales n'en produisent pas, la dissémination à distance des cellules du cancer du sein et l'invasion des cellules peuvent être bloquées par un inhibiteur du ProNGF susceptible de bloquer l'activité du ProNGF. Les inhibiteurs du ProNGF peuvent donc être utilisés comme médicaments. Ainsi, la présente invention a également pour objet l'utilisation d'un inhibiteur du ProNGF pour la préparation d'un médicament, en particulier dans le traitement du cancer et 1 0 plus particulièrement le cancer du sein. Selon un mode de réalisation particulier de l'invention, ledit médicament est utile pour bloquer la migration cellulaire ou l'invasion des cellules tumorales chez les patients atteints du cancer du sein. On entend par migration cellulaire la dissémination à distance chez les patients atteints 15 du cancer du sein (métastases) et on entend par invasion la pénétration locale des cellules cancéreuses. Les compositions pharmaceutiques comprenant à titre de principe actif au moins un inhibiteur du ProNGF, éventuellement en association avec un excipient pharmaceutiquement acceptable, sont également incluses dans l'invention. 20 Les compositions pharmaceutiques utiles contre le cancer du sein comprennent, à titre de principe actif, au moins un inhibiteur du ProNGF susceptible de bloquer migration cellulaire ou l'invasion. Par inhibiteur du ProNGF, on entend les inhibiteurs directs du ProNGF, c'est-à-dire les inhibiteurs bloquant l'activité biologique de la protéine, tels que les partenaires de liaison 25 du ProNGF, ainsi que les inhibiteurs des récepteurs au proNGF exprimés par les cellules du sein ou tout inhibiteur des voies de signalisation du proNGF. Un exemple de récepteur au ProNGF exprimé par les cellules épithéliales du sein, tant tumorales que normales, comprend la Sortiline Les partenaires de liaison du ProNGF spécifiques appropriés à titre de principe actif sont notamment tels que définis précédemment dans les tests immunologiques et peuvent être tout autre partenaire connu de l'homme du métier capable de bloquer la migration ou invasion cellulaire. Selon un mode de réalisation particulier, le partenaire spécifique susceptible de bloquer la migration ou invasion de cellules de cancer du sein est un anticorps anti-ProNGF. Un autre exemple d'inhibiteur direct du ProNGF comprend les analogues, sous forme soluble, de récepteurs au ProNGF, tel que les analogues de la Sortiline sous forme soluble, ce qui constitue également un mode de réalisation de l'invention. Par inhibiteur de récepteurs au ProNGF exprimés par les cellules épithéliales du sein, tant tumorales que normales, on entend toutes molécules qui bloquent l'activité du ProNGF par exemple soit via ledit récepteur ou en bloquant sa production. Le blocage de l'activité du ProNGF via ledit récepteur peut être mis en oeuvre en empêchant la liaison du ProNGF audit récepteur, comme par exemple à l'aide d'un agent capable de se lier audit récepteur, prenant ainsi la place du ProNGF. Un exemple d'un tel inhibiteur comprend un peptide dérivé du ProNGF ayant conservé les propriétés de liaison au dit récepteur ou un anticorps dirigé contre le récepteur. On peut également bloquer l'activité du ProNGF en bloquant la production dudit récepteur à l'aide d'inhibiteurs de l'ARNm dudit récepteur ou du gène codant pour ledit récepteur. A titre d'inhibiteur de l'ARNm du récepteur, on peut utiliser un fragment synthétique de cet ARNm. En effet, la technologie du ARN interférence (Small Interference RNA ou SiRNA) est basée sur l'utilisation d'un oligonucléotide ARN double brin correspondant à une courte séquence de l'ARNm cellulaire à inhiber. Cet oligonucléotide en duplex (introduit ou non dans un plasmide), après entrée dans la cellule, est pris en charge par le système enzymatique Dicer/Risc, ce qui va entraîner la dégradation de l'ARNm cellulaire correspondant (Dvkxhoorn D et al., 2003, Nature Reviews, vol. 4, p457-467). A titre d'inhibiteur du gène codant pour le récepteur, on peut citer un oligonucléotide anti-sens dudit récepteur. Cet oligonucléotide peut être facilement préparé par l'homme du métier (Lefrançois S et al. Biot. Proced. online. 2005, 7(l):17-25. Selon un mode de réalisation particulier de l'invention, l'inhibiteur du ProNGF est un SiRNA du récepteur au ProNGF. Par inhibiteur des voies de signalisation du ProNGF, on entend tomolécule qui bloque l'activité biologique du ProNGF telle que son activité sur la migration et l'invasion cellulaire. Pour cibler l'action thérapeutique des différents inhibiteurs, ces derniers peuvent être 5 mis en conditions telles qu'ils pénètrent spécifiquement dans les cellules d'intérêt, telles que les cellules tumorales, ce qui constitue un autre mode de réalisation de l'invention. A cet effet, ils peuvent par exemple être fixés à un partenaire qui permet une telle pénétration, comme par exemple une molécule porteuse, un polymère tel que les polymères utilisés en thérapie génique ou bien un vecteur viral tel que les adénovirus et les poxvirus, 10 également utilisés en thérapie génique. Par exemple, dans le cadre du cancer du sein, la molécule porteuse peut être un anticorps anti-MUC1 ou un anticorps anti-cellule épithéliale, ou bien encore un anticorps anti-HER-2/neu. De préférence, lorsque la composition pharmaceutique comprend à titre de principe 15 actif un inhibiteur du ProNGF tel qu'un inhibiteur direct ou un inhibiteur des voies de signalisation du ProNGF, ces derniers sont mis en conditions telles qu'ils pénètrent spécifiquement dans les cellules tumorales d'intérêt, les inhibiteurs de l'ARNm du ProNGF et les inhibiteurs du gène codant pour le NGF ayant la capacité de pénétrer naturellement dans lesdites cellules. 20 La quantité et la nature de l'excipient peuvent être facilement déterminées par l'homme du métier. Elles sont choisies selon la forme pharmaceutique et le mode d'administration souhaités. Les compositions pharmaceutiques de l'invention conviennent pour l'administration orale, sublinguale, sous-cutanée, intramusculaire, intratumorale, intraveineuse, topique, locale, 25 intratrachéale, intranasale, transdermique, rectale, intraoculaire, intra-auriculaire, ledit principe actif pouvant être administré sous forme unitaire d'administration. Les formes unitaires d'administration peuvent être par exemple des comprimés, des gélules, des granules, des poudres, des solutions ou suspensions orales injectables, des timbres transdermiques ( patch ), des formes d'administration sublinguale, buccale, intratrachéale, intraoculaire, intranasale, intra-auriculaire, par inhalation, des formes d'administration topique, transdermique, sous-cutanée, intramusculaire, intratumorale ou intraveineuse, des formes d'administration rectale ou des implants. Pour l'administration topique, on peut envisager des crèmes, gels, pommades, lotions ou collyres. Ces formes galéniques sont préparées selon les méthodes usuelles des domaines considérés. Lesdites formes unitaires sont dosées pour permettre une administration journalière de 0,001 à 10 mg de principe actif par kg de poids corporel, selon la forme galénique. Il peut y avoir des cas particuliers où des dosages plus élevés ou plus faibles sont to appropriés ; de tels dosages ne sortent pas du cadre de l'invention. Selon la pratique habituelle, le dosage approprié à chaque patient est déterminé par le médecin selon le mode d'administration, le poids et la réponse du patient. Selon un autre mode de réalisation, la présente invention concerne également une méthode de traitement du cancer du sein qui comprend l'administration, à un patient, d'une 15 dose efficace d'un partenaire de liaison du ProNGF ou d'un inhibiteur du ProNGF. L'invention sera mieux comprise à l'aide des exemples suivants donnés à titre illustratif et non limitatif, ainsi qu'à l'aide des figures 1 à 5 annexées, sur lesquelles : - la figure 1 représente une photographie de Western-blot montrant la production de ProNGF par les cellules épithéliales mammaires cancéreuses (MCF-7, T47-D, BT-20 et 20 MDA-MB-231) mais pas par des cellules normales (cellules CEMN), l'actine ayant été utilisée à titre de témoin positif, - la figure 2 représente une photographie de Wester -blot la présence de ProNGF dans les biopsies mammaires cancéreuses (ST-1 à -4) mais pas dans les biopsies normales (SS-1 à - 4), l'actine ayant été utilisée à titre de témoin de normalisation, 25 - la figure 3 représente une photographie de Western-blot montrant : • figure 3A : la sécrétion du ProNGF par les cellules cancéreuses MCF- 7 (piste milieu conditionné concentré), les 2 pistes de droite étant des pistes témoins, • figure 3B : que l'unité de concentration/dessalage utilisé pour l'expérience de la figure 3A était capable de retenir le NGF, - la figure 4 représente une photographie de Westerrrblot montrant la présence de ProNGF dans les sérums de souris injectées avec des cellules cancéreuses et sin absence dans les sérums de souris normales, - la figure 5 représente des graphes de détection par spectrométrie de masse de ProNGF 5 dans le milieu conditionné par les MCF-7 (figures 5A, 5C et 5E) ou de ProNGF recombinant (figures 5B et 5D), donnant l'abondance relative en fonction de la masse, - la figure 6 représente une photographie de Western-blot montrant la présence de Sortiline dans les cellules épithéliales mammaires cancéreuses (MCF-7, T47-D, BT-20 et MDA-MB-231) et les cellules normales (cellules CEMN), l'actine ayant été utilisée à titre de témoin 10 positif, - la figure 7 représente un graphe donnant le pourcentage de migration cellulaire à partir de cellules MCF-7 baignant soit dans du milieu de sevrage seul, soit dans du milieu de sevrage complémenté avec 200ng/ml de ProNGF, soit dans du milieu de sevrage complémenté avec 200ng/ml de ProNGF et 20 gM de galardine, soit dans du milieu de sevrage complémenté 15 avec 20.tM de galardine, soit dans du milieu de sevrage complémenté avec 200ng/ml de NGF, et - la figure 8 représente un graphe donnant l'index d'invasion à partir de cellules MCF-7 baignant soit dans du milieu de sevrage seul, soit dans du milieu de sevrage complémenté avec 200ng/ml de ProNGF, soit dans du milieu de sevrage complémenté avec 200ng/ml de 20 ProNGF et 20 M de galardine, soit dans du milieu de sevrage complémenté avec 20 tM de galardine, soit dans du milieu de sevrage complémenté avec 200ng/ml de NGF. Exemple 1 : Culture des cellules 1.1. Matériel 25 Les cellules utilisées sont des lignées établies de cellules de cancer du sein (BT-20, MCF-7, MDA-MB-231, T-47D) obtenues auprès de l'ATCC (American Type Culture Collection) et des CEMN (Cellules Epithéliales Mammaires Normales) en primoculture obtenues auprès de patientes ayant subies une mammoplastie au Centre Oscar Lambret de Lille. Les MCF- 7, les MDA-MB-231 et les T-47D sont des cellules épithéliales qui proviennent d'effusions pleurales chez des patientes atteintes d'adénocarcinome ; les BT-20, quant à elles, proviennent d'un carcinome primaire. MCF-7 et T-47D sont dites hormonosensibles car elles expriment des récepteurs aux oestrogènes, alors que les BT-20 et les MDA-MB-23 1 sont dites hormono-insensibles car elles n'en expriment pas. Les biopsies proviennent de patientes ayant subi une mammoplastie de tissu non malin (Professeur Pellerin CHRU, Lille) ou une exérèse de tissu cancéreux (Docteur Laurent, Croisé Laroche, Marcq en Baroeul). Des souris femelles SCID (Severe Combined ImmunoDeficiency) de 6 semaines ont été obtenues auprès de Iffa Credo (France) et acclimatées pendant au moins 2 semaines. Ces souris sont élevées à 20-22 C en maintenant une alternance jour/nuit de 12 h (lumière de 6H00 à 18H00) et nourries ad libitum dans le respect des directives fixées par l'Institutional Animal Care. Le ProNGF utilisé est du recombinant humain commercialisé par SCIL proteins (Allemagne). L'EGF, l'HGF et le NGF recombinant ont été obtenus chez R&D systems (France). Le cortisol, l'insuline, le DMSO (DiMethyl SulfOxide), la toxine cholérique, la transfenine, l'analogue du céramide C2 (N-acetyl-D-sphingosine), le Hoechst 33258 (BisBenzimide), ont été obtenus auprès de Sigma (France). EMEM (Eagle's Minimum Essential Medium), DMEM/F12 (Dulbecco's Modified Eagle's Medium), trypsine-EDTA (Ethylène-Diamine-Tetra-Acétate), HEPES (acide N-2-Hydroxy-Ethyl-Piperazine-N'-2'- Ethan-Sulfonique). L-glutamine, acides aminés non essentiels, pénicilline/streptomycine, gentamycine sont commercialisés par Cambrex (France). Le SVF (Sérum de Veau Foetal) est commercialisé par Gibco Invitrogen Corporation (France). Les différents plastiques utilisés : cryotubes 1 mL, tubes à centrifuger de 15 et 50 mL, boîtes Pétri de 100 mm de diamètre, boîtes 75 cm2, boîtes 175 cm2 et plaques 6 puits (puits de 35 mm de diamètre) sont commercialisés par Starstedt (Allemagne). Les transwell sont obtenus auprès de Costar (France). La fibronectine est obtenue chez Becton Dickinson (France). Le glycergel est commercialisé par Dako (France). La galardine est obtenue auprès de Tebu-Bio (France). Le collagène de type 1 est vendu par Upstate (Etats-Unis d'Amérique). 1.2. Décongélation et entretien des cellules Les cryotubes de cellules sont sortis de l'azote liquide et décongelés 2 minutes à 37 C. La suspension est ensuite récupérée et transférée dans un tube à centrifuger de 50 mL contenant 19 mL de MEM (Minimum Essential Medium). L'ensemble est centrifugé à 200 g (15 minutes) pour enlever les traces de DMSO (DiMethyl SulfOxide). Le culot cellulaire est récupéré puis repris avec 10 mL de milieu complet (composition ci-dessous) et transféré dans une boîte 75 cmz. Le milieu est changé après 24 heures et 24 heures plus tard les cellules sont passées. Les cellules sont ensuite entretenues pendant 2 semaines avant toute expérimentation. to Les lignées cancéreuses sont entretenues dans des boîtes de 75 cmz sur lesquelles elles adhèrent et poussent en monocouche dans un milieu complet : EMEM supplémenté de 10% de SVF, 20 mM d'HEPES, 2g/L de bicarbonate de sodium, 2mM de L-glutamine, 1% d'acides-aminés non essentiels, 40 u/mL de pénicilline/streptomycine et de 50 gg/mL de gentamycine. Les CEMN sont entretenues dans des boîtes de 75 cmz sur lesquelles elles 15 adhèrent et poussent en monocouche dans du milieu complet : DMEM/F12 supplémenté de 5% de SVF, 10 u/mL d'insuline, 5 gM de cortisol, 2 ng/mL d'EGF, 0,01 ng/mL de toxine cholérique, 100 gg/mL de pénicilline et 45 gg/mL de gentamycine. Les cellules sont cultivées en atmosphère humide à 37 C et à 5% de CO2. Le milieu d'entretien est changé tous les 2 jours et les cellules sont passées à confluence. 20 Exemple 2 : Détection du ProNGF 2.1. Méthodologie Lyse des cellules et des biopsies mammaires : extraction protéique Les cellules sont ensemencées dans 3 boîtes Pétri de diamètre 100 mm, puis à 95% 25 de confluence les cellules sont rincées 2 fois sur glace au PBS (Phosphate Buffered Saline) : KC1 107 mM, K1-12PO4 59 mM, NaCl 137 mM, Na2HPO4 56 mM, lysées avec 100 gL/boîte d' un tampon de lyse contenant : 50 mM de Tris-HC1 pH 7,5, 150 mM de NaCl, 1% de Nonidet P-40, 1% de SDS (Sodium Dodecyl Sulfate), et des inhibiteurs d'activité protéasique : 1 mM de Phenyl-methyl-sulfonide-fluoride, 1 mM d'orthovanadate, 1 mM de Na4P2O7, 10 g/mL de leupeptine, 10 gg/mL d'aprotinine. Les boîtes sont congelées 12 heures puis raclées et les lysats sont poolés, chauffés 5 min à 100 C et centrifugés à 10 000 g (10 min à 4 C) et le surnageant est récupéré. Les biopsies sont pesées et placées avec 10 fois leur volume de tampon de lyse (précédemment décrit) sur roue (1 heure à 4 C). Elles sont ensuite broyées, sur glace, au dounce, congelées (20 minutes à -80 C) et décongelées sur glace. Enfin, elles sont centrifugées à 13 000 g (10 minutes à 4 C), une galette lipidique est éliminée et le surnageant est récupéré. Les surnageants sont dosés par la méthode à l'acide Bicinchoninique comparé à une Io gamme de sérumalbumine bovine puis, aliquoté en 50 gL avant congélation. Obtention de milieu conditionné et de sérum Les MCF-7 sont ensemencées dans du milieu complet dans des boîtes 175 cm2. A 90% de confluence, ces boîtes sont rincées 2 fois dans du milieu de sevrage puis les cellules sont sevrées 24 heures avec 14 mL de milieu de sevrage. Après ce délai, le milieu conditionné 15 par les cellules est récupéré et centrifugé à 1000 g (15 minutes à 4 C). Le surnageant est ensuite directement utilisé ou congelé à -20 C. Des unités de concentration/dessalage avec un seuil de coupure de 10 kDa (Centricon Plus 20 Millipore, France) sont chargées chacune avec 14 mL de milieu conditionné par les MCF- 7 puis centrifugées à 4000 g (15 minutes à 4 C). Ces mêmes unités ont été rechargées encore 3 fois avec 14 mL de milieu conditionné 20 (ce qui aboutit à une concentration d'un facteur 4 du milieu de départ). Puis les unités sont dessalées à l'eau de qualité mQ (18,2 osm) par chargement de 14 mL et centrifugation à 4 000 g (15 minutes à 4 C), ceci 2 fois selon les recommandations du fabricant. Enfin le concentrat est récupéré par inversion de l'unité et centrifugation à 1 000 g (4 minutes à 4 C) ; 250 gL sont récupérés. Le milieu conditionné concentré est ensuite aliquoté en 50 L et 25 congelé à -20 C. On aboutit alors à un facteur de concentration de 4x14 000/250 soit 224 fois. Les MDA.-MB-231 (3x106) sont resuspendues dans du PBS, puis injectées de manière sous-cutanée dans les flancs de souris SCID agées de 8 semaines. Le volume de la tumeur est mesuré après deux semaines tous les deux jours. Après 7 semaines, les souris sont anesthésiées à l'éther, puis le sang est collecté par prélèvement intracardiaque, avant le sacrifice des animaux. Le sang est laissé une nuit à 4 C pour permettre la coagulation, le sérum étant récupéré après centrifugation, dosé et congelé à -20 C. SDS-PAGE Les aliquots (50 L) sont décongelés avant utilisation, repris avec 12,5 L de tampon Laëmmli 5x : 5% SDS, 5% 13-mercapto-éthanol, 50% glycérol, 50 mM Tris pH 6,8, 0,3% bleu de bromophénol. Les protéines sont déposées dans les puits d'un gel de polyacrilamide de 12,5%. Après migration (sous 30 mA, pendant 5 heures) et transfert sur membrane de nitrocellulose (sous 200 mA, pendant 1 heure), la qualité du transfert est appréciée par une coloration au rouge Ponceau. Immunodétection Les membranes sont saturées par de la sérum-albumine bovine à 4% dans une solution de TBS (Tris Buffered Saline) 0,1% Tween20 (17.54 g NaCl, 2.42 g Tris, 2 mL tween20, QSP 2 L, pH ajusté à 7.4) à température ambiante pendant 2 heures. Après saturation, les membranes sont incubées pour la nuit à 4 C avec les différents anticorps primaires : anti-ProNGF (AB9040 de chez Chemicon) au 1 : 2 000, anti-NGF (SC-548 de chez Sigma) au ]l : 2 000 ou anti-Actine (A-2066 de chez Sigma) au 1: 5 000 dans la solution de saturation. Après rinçages au TBS 0,1% Tween20, les membranes sont incubées 1 heure à température ambiante avec un anticorps secondaire au 1 : 20 000, anti-lapin (A-1949 de chez Sigma, France) dans la solution de saturation, couplé à une peroxydase de raifort. Après rinçage, la révélation est réalisée avec le système ECL (Pierce Interchim, France) suivant les données d'utilisation recommandées. Spectrométrie de masse (SM) Le milieu conditionné par les MCF-7 est injecté sur une nano colonne LC (Liquid Chromatography) C4 (Dionex, France) qui permet de séparer les protéines entières en fonction d'un gradient d'hydrophobicité croissant. Ainsi les protéines les plus hydrophobes sont éluées en dernier. Une fois séparées, les protéines entières sont ionisées par nanoESl (ElectroSpray Ionization), puis elles sont analysées dans une trappe ionique (Station LCQ Deca XP+TM de Thermo Electron) en fonction de leur masse (m) et de leur charge (z). Nous avons utilisé la technique du SIM (Selected Ion Monitoring) scan qui permet de scanner uniquement certains ions d'intérêt. Ces ions multichargés, caractéristiques du ProNGF recombinant, ont été déterminés au préalable en nanoLC-nanoESIISM. Une fois détectés dans le milieu conditionné à l'aide du SIM du ProNGF, le spectre de masse multichargé correspondant est déconvolué pour retrouver la masse de la protéine qui a généré ce spectre. 2.2. Résultats Détection à partir des cellules épithéliales 50 gg d'extraits protéiques totaux de cellules épithéliales mammaires sont déposés sur gel pour une SDS-PAGE. Après transfert sur membrane de nitrocellulose, une immunodétection avec l'anticorps AB9040 et l'anticorps A-2066 (contrôle d'équicharge) est réalisée. CEMN : cellules épithéliales mammaires normales, BT-20, MCF-7, MDA-MB-231, T-47D sont des lignées de cellules épithéliales mammaires cancéreuses. Les résultats sont indiqués sur la figure 1 qui représente une photographie de Western-blot montrant la production de ProNGF par les cellules épithéliales mammaires cancéreuses (MCF-7, T47-D, BT-20 et MDA-MB-231) mais pas par des cellules normales (cellules CEMN), l'actine ayant été utilisée à titre de témoin positif. Détection à partir de biopsies mammaires 50 gg d'extraits protéiques de biopsies sont déposés sur gel pour une SDS-PAGE. Après transfert sur membrane de nitrocellulose, une immunodétection avec l'anticorps AB9040 et l'anticorps A.2066 (contrôle d'équicharge) est réalisée. SS-x : biopsie de sein sain numéro x, ST-x : biopsie de sein tumoral numéro x. Les résultats sont indiqués sur la figure 2 qui représente une photographie de Western-blot la présence de ProNGF dans les biopsies mammaires cancéreuses (ST-1 à -4) mais pas dans les biopsies normales (SS-1 à -4), l'actine ayant été utilisée à titre de témoin positif. Sécrétion du ProNGF Afin de déterminer si le ProNGF est sécrété, nous avons concentré du milieu conditionné par des MCF-7. Pour ce faire, 100 gL de milieu conditionné concentré 224 fois sont soumis, après électrophorèse et transfert, à une immunodétection avec l'anticorps SC-548. En contrôles, le NGF et le ProNGF recombinants ont été analysés. Les résultats sont indiqués sur la figure 3A qui représente une photographie de Western-blot montrant la sécrétion du ProNGF par les cellules cancéreuses MCF-7 et l'absence de sécrétion de NGF (piste milieu conditionné concentré), les 2 pistes de droite étant des pistes témoins. On peut noter qu'on n'observe ici aucune sécrétion de NGF parce que l'expérience est arrêté trop tôt pour observer du NGF du fait de l'abondance de ProNGF. En poursuivant l'expérience, on observe également une bande pour le NGF. Cela met en évidence que, non seulement le ProNGF est un marqueur tumoral, mais il est t o également sécrété en grande quantité. Pour vérifier que l'unité de concentration/dessalage utilisée, avec un seuil de coupure de 10 kDa, était capable de retenir le NGF (13,6 k)a), nous avons concentré un mélange de ProNGF et de NGF recombinants dans les mêmes conditions expérimentales : 20 ng de ProNGF et 20 ng de NGF ont été ajoutés à du milieu non conditionné puis ont subi les 15 mêmes conditions que le milieu conditionné. Les résultats (Fig. 3.B) prouvent que l'unité de concentration/dessalage est capable de retenir le NGF et le ProNGF. Détection dans le sérum 100 g d'extraits protéiques de sérums de souris sont déposés sur gel pour une 20 SDS-PAGE. Après transfert sur membrane de nitrocellulose, une immunodétection avec l'anticorps AB9040 est réalisée. En contrôle d'équicharge une bande visible à 24 kDa sur la membrane après coloration au Ponceau est présentée. Cancéreuses : 6 sérums de souris injectées avec des MDA-MB-231, Saines : 2 sérums de souris injectée avec du PBS. Les résultats sont indiqués sur la figure 4 qui montre qu'une bande immunoréactive 25 pour le ProNGF apparaît à 26 kDa (poids du ProNGF) dans 5 sérums de souris injectées avec des cellules cancéreuses sur 6 ; et aucune bande n'a été détectée dans les sérums des animaux contrôles. Détection par spectrométrie de masse Nous avons procédé comme indiqué précédemment. Les résultats sont indiqués sur la figure 5 qui représente des graphes de détection par spectrométrie de masse de ProNGF dans le milieu conditionné par les MCF-7 (figures 5A, 5C et 5E) ou de ProNGF recombinant (figures 5B et 5D), donnant l'abondance relative en fonction de la masse. Les figures 5A et B correspondent à la fraction protéique de la nanoLC répondant au SIM d'au moins un des trois ions caractéristiques du ProNGF. La figure 5C correspond au spectre de masse de la protéine éluée à 29,43 min en A. La figure 5D correspond au spectre de masse du ProNGF recombinant avec ses 3 ions caractéristiques en rouge. Enfin, la figure 5E montre la déconvolution du spectre de masse de la protéine éluée à 29,43 min en A. to Ces résultats montrent qu'il apparaît dans le milieu conditionné par les MCF-7, une protéine répondant au SIM (Selected Ion Monitoring) du ProNGF, qui est éluée en même temps (29,43 min, Fig.5.A) que le ProNGF recombinant (30,17 min, Fig. 5.B). Cette protéine, une fois ionisée, génère les mêmes ions multichargés (998,2, 1039,9, 1083,4, Fig. 5.C) que le ProNGF recombinant (996,2, 1037,5, 1082,6, Fig. 5.D). De plus, le calcul 15 par déconvolution de la masse de la protéine donne une valeur de 25 971 Da (Fig. 5.E). Ainsi, ces résultats montrent que d'une part que nous avons bien identifié du ProNGF dans le milieu conditionné par les MCF-7, et que d'autre part la détection de ProNGF par spectrométrie de ruasse est possible. 20 Exemple 3 : Cible thérapeutique du ProNGF 3.1. Méthodologie Expression de la Sortiline, récepteur du ProNGF Les méthodes de réalisation de l'extraction des protéines sont identiques à celles décrites pour le ProNGF (voir point 2.1 ci-dessus). 25 Pour le Western-blot les membranes sont saturées par de la sérum-albumine bovine à 4% dans une solution de TBS (Tris Buffered Saline) 0,1% Tween20 (17.54 g NaCl, 2.42 g Tris, 2 mL tween20, QSP 2 L, pH ajusté à 7.4) à température ambiante pendant 2 heures. Après saturation, les membranes sont incubées pour la nuit à 4 C avec les différents anticorps primaires : anti- Sortiline (BD612101 de chez BD Biosciences) au 1 : 2 000, anti-Actine (A-2066 de chez Sigma) au 1 : 5 000 dans la solution de saturation. Après rinçages au TBS 0,1% Tween20, les membranes sont incubées 1 heure à température ambiante avec un anticorps secondaire au 1 : 20 000 anti- lapin (A-1949 de chez Sigma, France), dans la solution de saturation, couplé à une peroxydase de raifort. Après rinçage, la révélation est réalisée avec le système ECL (Pierce Interchim, France) suivant les données d'utilisation recommandées. Mesures d'activités biologiques du ProNGF On a utilisé un milieu dit de sevrage qui désigne un milieu identique au milieu complet mais sans sérum et supplémenté de 2gg/mL de fibronectine et de 30 gg/mL de transferrine. Pour les différentes mesures d'activités biologiques, c'est à ce milieu de sevrage que sont ajoutées les différentes molécules à tester (ProNGF, NGF et galardine). Lors des traitements, les milieux sont renouvelés toutes les 24 heures. Migration et invasion Les tests de migration et d'invasion sont réalisés comme précédemment décrits par 15 Bracke et al. (1999, J Natl Cancer Inst, 91 : 354-359). Les protocoles d'utilisation des chambres de Boyclen et d'invasion en gel de collagène sont décrits ci-dessous. Chambre de Boyden (transwell ) Des plaques 12 puits contenant des transwell avec un diamètre de pores de 12 m sont équilibrées avec du milieu de sevrage et placées à 37 C sous 5% de CO2 pendant 2 20 heures. Puis le milieu est aspiré et remplacé dans la chambre inférieure par du milieu de sevrage avec les différentes molécules à tester, alors que dans la chambre supérieure 40 000 cellules sont ensemencées dans du milieu de sevrage seul. Après 24 heures, les transwell sont rincés au PBS, la face supérieure est raclée puis un marquage au Hoechst est réalisé (comme décrit pour le test de survie), de façon à visualiser les cellules ayant traversé la 25 membrane. Les transwell sont montés entre lame et lamelle au moyen d'une goutte de glycergel chauffé à 55 C, puis les lames sont conservées à 4 C à l'obscurité jusqu'au comptage. Chaque condition est réalisée en duplicate, un minimum de 40 champs est compté pour chaque condition. Les données représentent la moyenne pondérée par les écart-types des comptages sur ces 40 champs. Elles sont présentées en pourcentage de migration où 100% de migration sont attribués à un témoin HGF à 50 ng/mL. Test d'invasion en gel de collagène Le gel de collagène de type I est préparé de la façon suivante : 2,1 mL de collagène de Type I, 0,8 rnL de EMEM (10x), 4,6 mL de PBS, 0,8 mL de NaHCO3 à 0,25 M, 0,15 mL de NaOH 1 M. 1,25 mL sont déposés dans les puits d'une plaque 6 puits. Une fois le gel solidifié, 100 000 cellules sont ensemencées avec du milieu de sevrage et les différentes molécules à tester pour 24 heures. Les cellules sont ensuite comptées et l'index d'invasion est déterminé (nombre de cellules en profondeur rapporté au nombre de cellules à la surface). Chaque condition est réalisée en triplicate et un minimum de 45 champs est compté par condition. 3.2. Résultats Expression de la sortiline, récepteur du ProNGF 50 gg d'extraits protéiques totaux de cellules épithéliales mammaires sont déposés sur gel pour une SDS-PAGE. Après transfert sur membrane de nitrocellulose, une immunodétection avec l'anticorps BD612101 et l'anticorps A-2066 (contrôle d'équicharge) est réalisée. CEMN : cellules épithéliales mammaires normales, BT-20, MCF-7, MDA-MB-231, T-47D sont des lignées de cellules épithéliales mammaires cancéreuses. Les résultats sont donnés sur la figure 6 qui représente une photographie de Westernblot montrant la présence de Sortiline dans les cellules épithéliales mammaires cancéreuses (MCF-7, T47-D,. BT-20 et MDA-MB-231) et les cellules normales (cellules CEMN), l'actine ayant été utilisée à titre de témoin positif. La Sortiline apparaît donc dans toutes les cellules. En revanche, cette bande apparaît plus intense dans les cellules cancéreuses que dans les cellules normales, alors que le témoin de charge, l'actine, ne varie pas. On peut donc penser qu'il y a moins de Sortiline dans les cellules épithéliales mammaires normales que dans les cancéreuses. Migration Les effets du ProNGF sur la migration des cellules épithéliales mammaires ont été appréhendés par des tests en chambre de Boyden (transwell ). Chaque condition est réalisée en duplicate et un minimum de 40 champs est compté. Les MCF-7 sont ensemencées dans du sevrage à la face supérieure du transwell alors que la face inférieure baignent dans du milieu de sevrage seul ou avec 200 ng/mL de ProNGF, ou avec 20 M de galardine avec ou sans 200 ng/mL de ProNGF, ou avec 200 ng/mL de NGF. Les cellules ayant traversées le transwell sont ensuite comptées. *p Les résultats sont indiqués sur la figure 8 qui représente un graphe donnant l'index d'invasion à partir de cellules MCF-7 baignant dans les différents milieux. Ces tests montrent que le ProNGF stimule l'invasiondes MCF-7. 10 REVENDICATIONS 1. Procédé de diagnostic in vitro du cancer du sein, caractérisé en ce qu'il 5 consiste à déterminer la présence de ProNGF dans un échantillon biologique issu d'un patient suspecté d'être atteint du cancer du sein. 2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que la présence de ProNGF est mise en évidence par détection directe du ProNGF dans ledit échantillon biologique. 3. Procédé selon la revendication 2, caractérisé en ce que la détection du ProNGF est mise en oeuvre par un test immunologique ou par spectrométrie de masse. 4. Procédé selon l'une des revendications 2 ou 3, caractérisé en ce que ledit 15 échantillon biologique est constitué de fluide biologique ou d'un tissu provenant de la biopsie de la tumeur ou de métastases. 5. Procédé selon la revendication 4, caractérisé en ce que l'échantillon biologique est constitué d'un tissu provenant de la biopsie de la tumeur ou des 20 métastases du patient. 6. Procédé selon la revendication 4, caractérisé en ce que l'échantillon biologique est constitué de fluide biologique, de préférence préalablement traité pour isoler les cellules tumorales circulantes contenues dans ledit fluide. 7. Procédé selon la revendication 6, caractérisé en ce que les cellules tumorales circulantes sont ensuite cultivées en conditions telles qu'elles sécrètent du ProNGF. 25 8. Procédé selon l'une des revendications 6 ou 7, caractérisé en ce que les cellules tumorales circulantes sont également cultivées dans des conditions permettant le blocage du ProNGF à l'intérieur desdites cellules. 9. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que la détection de ProNGF est mise en évidence par culture, en présence dudit échantillon biologique, de cellules sensibles au ProNGF. 10. Procédé selon la revendication 9, caractérisé en ce que ledit échantillon biologique est constitué d'un échantillon de fluide biologique, de préférence préalablement traité pour isoler les cellules tumorales circulantes contenues dans ledit fluide. 11. Procédé selon la revendication 10, caractérisé en ce que les cellules 15 tumorales circulantes sont ensuite cultivées en conditions telles qu'elles sécrètent du ProNGF. 12. Utilisation du procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 11 dans le diagnostic précoce, le dépistage, le suivi thérapeutique, le pronostic et le 20 diagnostic des rechutes dans le cadre du cancer du sein.