FR 2895087 A1 20070622 FR 0512948 A 20051220 La presente invention concerne une methode de detection, de discrimination et de comptage d'elements biologiques presents dans un liquide, utilisant les principes de la cytometrie en flux, adaptable aux appareils utilises en routine en hematologie. Les analyseurs automatiques en hematologie (automates d'hematologie), presents sur le marche apportent de plus en plus de possibilites d'analyses et de classifications des elements analyses. La mesure de fluorescence, deja largement repandue en cytometrie en flux, est principalement utilisee pour la classification des elements par immunophenotypage. Dans les automates d'hematologie utilises en routine, elle est surtout dediee a la mise en evidence de colorants supra vitaux utilises comme sondes moleculaires pour la quantification des acides nucleiques ou autres composants cellulaires. L'utilisation de sondes immunologiques en hematologie de routine n'est pas encore generalisee bien que quelques essais embryonnaires aient deja vu le jour chez differents constructeurs. Par exemple, la societe BAYER (Bayer Diagnostics, Tarrytown, New York, USA), au travers du BAYER-TECHNICON H* 1 a ete la premiere a proposer, dans le typage lymphocytaire, l'utilisation de cocktails d'anticorps pour la determination des differents types de lymphocytes. Dans ce cas, la mesure des expressions antigeniques se faisait non pas par fluorescence mais par la mesure d'absorbance lumineuse generee par un compose d'avidine-peroxydase presentant une grande affinite pour la biotine, ellememe couplee sur un anticorps. Ledit anticorps est specifique des antigens cibles des molecules de surface specifiques des types cellulaires caracterises (CD4, CD8, CD2, CD 19). L'ABBOTT CD4000, de la societe ABBOTT (Abbott Laboratories, Abbott Park, Illinois, USA), propose une analyse en utilisant deux longueurs d'onde de fluorescence pour la realisation, entre autres, d'immunophenotypages. Le brevet WO 98/02727 de la societe Abbott Laboratories decrit un appareillage de ce type, permettant de realiser le marquage avec un anticorps sur un echantillon de sang total. ABBOTT decrit de facon detainee dans le brevet un appareillage destine a la realisation de reactions anticorps - antigen sur un echantillon de sang total. Une methode de phenotypage simple, rapide, efficace et specifique doit pouvoir etre utilisee dans des automates tres simples, de type automates d'hematologie, permettant de travailler avec un nombre limite de detecteurs. Meme si les technologies sont sensiblement les memes, les automates de routine utilises en hematologie presentent des caracteristiques differentes des cytometres en flux, notamment en terme de nombre de parametres de mesure qui sont reduits au strict necessaire, particulierement dans les mesures de routine. De plus, le cart etant un facteur limitant tres important, la simplification des appareils et des analyses quills permettent d'effectuer ne peuvent qu'aller dans le sens de 1' economie globale. La cytometrie en flux est une technologie permettant de mesurer simultanement de multiples parametres correspondants a differentes caracteristiques physiques d'un element biologique comme par exemple une cellule ou un organite cellulaire. Les elements biologiques sont entrains dans un flux liquide et 1'appareil enregistre le comportement de chacun d'eux quand ils passent dans la cuve de mesure devant une source lumineuse. Cette technologie est en fait la combinaison de trois systemes 1) Systeme fluidique : Flux laminaire qui permet aux elements biologiques en suspension de passer un a un devant la lumiere dans la cuve de mesure. 2) Systeme optique : Rayon laser ou autre source lumineuse et differents filtres qui permettent de selectionner les longueurs d'ondes appropriees tant en excitation qu'en emission. 3) Systeme electronique : PMT (photomultiplicateur) ou photodiode, qui capte la lumiere anise, permettant sa transformation en signal electrique puis en signal numerique. En resume, la source lumineuse permet de generer une lumiere qui va passer a travers des lentilles et eclairer les elements biologiques defiant dans une cuve de mesure. Au contact de 1'element biologique, une partie de la lumiere est diffusee. Cette lumiere passe au travers de plusieurs lentilles et autres diaphragmes et est focalisee sur un capteur de type photodiode pour generer la mesure de FSC (Forward Scatter). Cette mesure, dans la gamme d'angles choisie, donne une indication sur la taille de 1'element biologique. Une autre partie de la lumiere est device de fawn orthogonale et passe au travers d'un autre ensemble de lentilles, et d'un jeu de miroirs semi-reflechissants, pour titre mesuree au niveau d'un capteur pour generer le signal SSC (Side Scatter). Cette mesure de lumiere orthogonale, donne une indication sur la densite de 1'element biologique ainsi que sur sa granularite (structure). Enfin, des mesures de 1'intensite lumineuse peuvent etre realisees grace a autant de tubes photomultiplicateurs ou de photodiodes que de longueurs d'onde et de signaux optiques a analyser. Le passage des elements biologiques dans un cytometre necessite au prealable une etape au cours de laquelle 1'element biologique est rendu detectable, et donc marque, par une sonde, specifique d'une structure ou d'une fonction dudit element biologique, ladite sonde ayant elle-meme prealablement ete rendue detectable. Lorsque le marqueur de la sonde est une molecule fluorescente celle-ci peut absorber un photon dans une gamme de longueur d'onde qui lui est specifique (spectre d'excitation). Ainsi excitee, la molecule fluorescente, va retourner a son etat fondamental, et restituer un photon avec une energie plus faible. Une molecule fluorescente possede donc un spectre de longueurs d'onde d'excitation qui lui est propre et dans lequel elle va absorber de 1'energie pour la re emettre sous forme de fluorescence (fluorescence emise), selon un spectre d'emission egalement caracteristique. La longueur d'onde de la fluorescence emise est toujours plus grande (frequence plus faible) que la longueur d'onde d'excitation. Les signaux de diffusion (FSC, SSC) et de fluorescence vont etre transformes en signaux electriques par les detecteurs adaptes, puis analyses par un systeme informatique. Ainsi en cytometrie en flux, it est communement associe une bande de longueurs d'onde de fluorescence a chaque sonde ou cocktail de sondes utilise(s). Chaque sonde est donc couplee avec un fluorochrome (marqueur fluorescent), dont les signaux sont mesures sur un seul canal de fluorescence, que ledit fluorochrome soit greffe sur un ou plusieurs types de sondes. La diminution des coats pourrait passer par la mise en routine de parametres d'immunophenotypage avec un nombre restreint de canaux de mesure de fluorescence en plus des parametres physiques classiques choisis parmi la diffusion dans 1'axe (Forward Scatter ou FSC), la diffusion orthogonale (Side Scatter ou SSC), le volume par impedancemetrie, etc. La possibilite de sommer les reponses de fluorescence permettrait d'exprimer plusieurs marquages differents sur un meme canal de mesure et ainsi de multiplier les capacites d'analyse d'un systeme et donc son rapport prix/performance, sans pour autant augmenter la complexite de 1'appareil par 1'ajout de canaux de mesure. La difficulte lorsque plusieurs sondes sont conjuguees au meme fluorochrome, est que 1'expression des caracteristiques biologiques reconnues respectivement par les differentes sondes, va directement influencer la quantite de fluorescence totale emise. Ainsi, par exemple, si une caracteristique biologique est fortement presente (par exemple un antigen a la surface d'une cellule) la quantite de sondes marqueeset fixees, sera proportionnelle a la quantite de ladite caracteristique biologique. En consequence la quantite de fluorescence emise par ladite sonde, elle-meme proportionnelle a la quantite de caracteristiques biologiques ayant fixees ladite sonde marquee, sera elevee. Parallelement, si une autre caracteristique biologique du meme echantillon est faiblement representee, la quantite de fluorescence emise par la sonde correspondante, conjuguee au meme fluorochrome, sera trop faible et pourra passer inapercue car marquee par la fluorescence de la premiere sonde. Bien entendu, les memes difficultes sont rencontrees lors de 1'utilisation d'autres types de marquages. L'un des buts de la presente invention est precisement de permettre la detection nette et sans ambiguite d'au moins trois sondes par 1'utilisation de seulement deux moyens de detection. Cela implique dons qu'au moins deux sondes soient detectees par un seul et meme moyen de detection. Ceci peut etre realise si 1'on utilise trois sondes differentes, chacune reconnaissant et se fixant a Pun des elements biologiques a detester ou a dune des caracteristiques de (ou des) 1'element(s) biologique(s), chacune des sondes etant elle- meme rendue detectable par un marqueur different, deux desdits marqueurs presentant deux spectres d'emission ayant au moins une partie commune (spectres d'emission couvrants) et le troisieme presentant un spectre d'emission n'ayant essentiellement aucune partie commune avec les deux autres (spectre non couvrant). Les deux (ou n) marqueurs ayant un spectre d'emission couvrant sont mesures par un premier moyen de detection, le marqueur ayant le spectre d'emission non couvrant etant lui mesure par un second moyen de detection. Ainsi, la presente invention consiste : (1) - a equilibrer les differences d'expression antigenique ou de caracteristique cellulaire par le rendement d'emission de n sondes couplees a n marqueurs mesures en 30 une seule et meme bande de detection ; (2) - a creer un rapport entre les signaux issus du second moyen de detection d'une part, et les signaux issus du premier moyen de detection d'autre part, afin de l'utiliser comme axe constitutif d'une matrice ; (3) - a combiner en deux dimensions le rapport issu de l'item (2) d'une part, et les signaux issus du premier moyen de detection d'autre part, dans le but d'ameliorer la representation graphique, et done d'ameliorer la caracterisation et la quantification des elements biologiques d'interet. Par "element biologique" on entend selon l'invention par exemple une cellule eucaryote ou procaryote, un groupe de cellules, un fragment cellulaire. Par "caracteristique biologique", on entend un composant specifique de 1'element biologique etudie, par exemple, un composant biologique de la cellule tel qu'un organite cellulaire, une protein, un lipide, un glucide, ou encore un acide nucleique (ARN ou ADN). Par "sonde", selon 1'invention on entend tout moyen permettant d'identifier specifiquement une caracteristique biologique ou chimique presente dans ou sur les elements biologiques etudies. Lesdits moyens utilisables selon l'invention sont parfaitement connus en particulier dans les domaines de la biologie cellulaire, de la biologie moleculaire, de 1'immunologie et de la cytometrie en flux. On peut citer sans titre limitatif, les anticorps, les acides nucleiques (ADN ou d'ARN), les composes chimiques, particulierement les composes chimiques intercalants, ceux reactifs a 1'environnement ionique (H+, Ca++, etc.), les lectines, ligands ou autres colorants de viabilite cellulaire. Par "marqueur de la sonde" on entend tout compose qui de par sa nature est directement detectable soit visuellement, soit a 1'aide d'un appareil adequat, soit detectable apres excitation. Un tel compose une fois couple a la sonde rend celle-ci detectable. On peut citer les molecules fluorescentes qu'il s'agisse par exemple de composes chimiques ou de molecules biologiques comme des proteins. Tous ces produits sont disponibles sur le marche et proposes par la plupart des distributeurs de produits chimiques de laboratoire, comme par exemple les societes Sigma, Aldrich, Fluka, Riedel de Haen, etc... Il est notable que dans une meme experience de discrimination de populations d'elements biologiques utilisant la methode selon l'invention, it soit possible d'utiliser des sondes de natures differentes (anticorps conjugues et acides nucleiques marques ou viabilite cellulaire par exemple) des lors que leur detection puisse titre realisee selon les criteres definis selon l'invention (au moins deux spectres d'emission couvrants et un spectre non couvrant). Par "moyen de detection", on entend selon l'invention tout moyen de detecter, voire de quantifier, le marqueur de la sonde. Ledit moyen de detection est bien entendu caracteristique de la methode utilisee pour rendre la sonde detectable. Ledit moyen de detection est dans tous les cas, compose de 1'ensemble des composants physiques capables de detester le marqueur d'une sonde particuliere. Par exemple, s'il s'agit d'un marqueur emettant de la fluorescence, le moyen de detection sera 1'ensemble compose des lentilles optiques d'observation de 1'echantillon, des filtres spatiaux (diaphragme, "pin hole", etc), des filtres spectroscopiques (dichroiques, interferentiels) specialement arranges pour ne laisser passer vers le capteur que la partie du spectre dite "bande de detection" specifique du ou des marqueurs a mesurer et du capteur opto-electronique lui meme (photodiode, tube photomultiplicateur...). Ce capteur sera ensuite connecte electroniquement a la chaine d'acquisition electronique qui realisera le traitement du signal en analogique oulet numerique et enfin le traitement informatique des donnees via un ordinateur. Il peut aussi s'agir par exemple d'un detecteur de fluorescence si la sonde est marquee a 1'aide d'un marqueur fluorescent ou si la sonde est elle meme fluorescente, ou encore d'un spectrophotometre si la sonde est un marqueur absorbant dans une partie specifique du spectre chromatique de la lumiere d'excitation. Par "spectre d'emission" on entend selon l'invention la repartition de 1'intensite de fluorescence en fonction de la longueur d'onde dans une bande caracteristique du marqueur ou de la sonde elle meme. Generalement un tel spectre presente un pic d'intensite correspondant au maximum d'emission. La detection pourra se faire dans une plage comprise entre deux longueurs d'ondes, encadrant generalement une longueur d'onde intermediaire donnee correspondant au pic de fluorescence maximale anise (pie de detection maximale). Par "bande de detection" on entend une gamme de longueurs d'onde choisie dans le spectre d'emission du ou des marqueurs consideres (Par exemple, s'il s'agit d'un marqueur emettant de la fluorescence, la bande de detection sera une bande choisie de preference autour du pic maximal d'emission de fluorescence). Cette bande de detection est define par le filtrage spectral incorpore dans le moyen de detection, par 1'intermediaire d'au moins un filtre interferentiel ou passe bande eventuellement assemble derriere un ou plusieurs miroirs dichroiques. Par "spectres d'emission couvrants", on entend que, dans un meme moyen de detection, pour deux marqueurs differents, leurs spectres d'emission presentent une zone commune. Par exemple s'il s'agit de deux marqueurs emettant de la fluorescence, leurs spectres d'emission seront dit spectres d'emission couvrants lorsqu'ils presenteront une plage d'emission commune comprise entre deux longueurs d'onde communes a leurs deux spectres d'emission. Generalement de tels spectres presentent des pics d'emission maximale distincts. Par "spectre d'emission essentiellement non couvrant", on entend que pour trois marqueurs differents dont deux presentent des spectres d'emission couvrants, le troisieme presente un spectre d'emission n'ayant aucune zone de recouvrement significative avec aucun des spectres des deux autres marqueurs. A la lecture de ce qui precede on comprend donc que si Pon utilise trois sondes qui reconnaissent trois caracteristiques biologiques differentes, marquees de trois marqueurs ayant chacun un spectre d'emission differents, mais dont deux sont couvrants et un non couvrant, la methode n'utilise que deux moyens de detection dans la mesure ou les marqueurs a spectres couvrants ont une bande de detection commune. C'est cela qui fait la grande originalite de la methode objet de Pinvention par rapport aux methodes connues dans Part anterieur qui pour detecter trois caracteristiques biologiques utilisent trois sondes presentant trois spectres d'emission independants qui sont analyses par trois moyens de detection differents. Pour les marqueurs couvrants, le choix judicieux des marqueurs dans leur aspect detection, conduira a choisir deux marqueurs pouvant repondre, Pun plus efficacement que l'autre, dans la meme bande de detection. Selon une variante de l'invention, le rendement d'emission dans la bande de detection pourra titre choisi pour titre inversement proportionnel a 1'expression des caracteristiques biologiques considerees. Le choix de la bande de detection sera aussi determine en fonction de cette expression pour ne pas masquer une expression positive faible (c'est la premiere phase d'equilibrage de l'invention). Ainsi, par exemple, pour un antigen peu exprime on choisira un marqueur presentant un rendement d'emission eleve dans la bande de detection choisie et pour un antigene tres exprime on choisira un marqueur presentant un rendement d'emission peu eleve dans la meme bande de detection. Cela permet de controler les quantites de marqueurs mesures afin d'equilibrer les emissions en proportion inverse du niveau d'expression des antigens ou sondes consideres. La methode selon Pinvention permet de discriminer et compter des elements biologiques de facon simple, rapide, efficace. Elie permet en outre d'utiliser des appareils simples, ce qui a pour consequence une diminution des couts tant de fabrication que d'utilisation et de maintenance. De plus 1'analyse automatisee est facilitee. Ainsi 1'invention a pour objet une methode de discrimination d'au moins deux populations d'elements biologiques porteuses de caracteristiques specifiques, eventuellement presentes dans un echantillon, comprenant le marquage simultane desdites populations d'elements biologiques par trois sondes differentes, detectables ou rendues detectables par trois marqueurs differents, dont deux desdits marqueurs (marqueurs couvrants ou MC) presentent chacun un spectre d'emission, lesdits spectres d'emission se recouvrant et le troisieme (marqueur non couvrant ou MnC) presente un spectre d'emission ne recouvrant essentiellement pas les spectres des deux autres marqueurs (spectre d'emission non couvrant) ; la mesure par tout moyen approprie, de la quantite totale de marqueur non couvrant (qMnC), en une bande de detection choisie dans le spectre d'emission dudit marqueur non couvrant ; la mesure par tout moyen approprie, de la quantite totale de marqueur couvrant (qMC) en une bande de detection commune aux spectres d'emission desdits marqueurs couvrants, 1'etablissement pour chaque element biologique analyse, du rapport (R) de la quantite totale de marqueur non couvrant par rapport a la quantite totale de marqueur couvrant [R = (qMnC) / (qMC)] 1'etablissement par tout moyen d'un diagramme presentant le rapport (R) en fonction de la quantite d'elements biologiques marques par les marqueurs couvrants [R = f(qMC)] et/ou la quantification par tout moyen approprie, generalement un ordinateur, des elements biologiques identifies sur le ou les dits diagrammes et des donnees statistiques correspondantes. La methode selon 1'invention est une methode qui permet la discrimination et le comptage d'elements biologiques repondant positivement ou non a un critere donne. La methode n'a pas pour but de quantifier le nombre de sondes fixees par element biologique. La methode permet de mettre en evidence sans ambiguite, dans un echantillon, particulierement un echantillon biologique, des populations d'elements biologiques presentant la (ou les) caracteristique(s) recherchee(s). Conformement a la derniere etape de la methode selon 1'invention,1'analyse d'une matrice bi-parametrique d'ordonnee R et d'abscisse qMC permet d'ameliorer la representation graphique, et donc d'ameliorer la caracterisation et la quantification des elements biologiques d'interet. Selon l'invention, 1'echantillon peut titre un echantillon biologique naturel, particulierement un echantillon biologique naturel liquide. I1 peut egalement titre une suspension cellulaire non naturelle, comme par exemple un milieu de culture. On peut citer sans titre limitatif, comme liquide biologique naturel le sang, l'urine, un tissu dissocie, la moelle osseuse, le liquide cephalo-rachidien, du liquide pleural ou du liquide synovial, le produit resultant d'un procede d'apherese ou comme suspension cellulaire synthetique, un milieu de culture de cellules ou de microorganismes. Selon l'invention les elements biologiques contenus dans 1'echantillon peuvent titre des cellules, eucaryotes ou procaryotes, ou un melange des deux, ou des fragments desdites cellules, des organites. Les sondes utilisables selon la methode de 1'invention peuvent titre, identiques ou differentes, des anticorps, des acides nucleiques (ADN ou ARN), ou encore toute sonde moleculaire comme par exemple des colorants reconnaissant specifiquement des acides nucleiques, les substrats enzymatiques ou encore des marqueurs specifiques de proteines, des ligands de recepteurs, des molecules sensibles a 1'environnement ionique (sondes a pH, Ca++, etc.) ou tout autre molecule specifique de la caracteristique biologique ciblee. Lorsque les sondes sont des anticorps, ceuxûci peuvent titre des anticorps monoclonaux ou polyclonaux, naturels ou recombinants, humains ou animaux. Les sondes, si elles ne sont pas detectables naturellement, devront, pour titre detectables, titre conjuguees a un marqueur pouvant titre reconnu par le moyen de detection, dans la bande de detection choisie. Selon l'invention, les marqueurs servant a rendre detectable la sonde, peuvent titre des composes chimiques detectables aptes a titre greffes sur les sondes, des marqueurs intercalants ou non des acides nucleiques, ou encore des marqueurs specifiques de proteines ou de tout autre molecule specifique de la caracteristique biologique ciblee. A cet egard on peut citer des colorants fluorescents ou encore absorbants tel que : 1'Alexa Fluor 350, 1'Alexa Fluor 488, l'Alexa Fluor 532, l'Alexa Fluor 633, l'Alexa Fluor 647, 1'Alexa Fluor 660, 1'Alexa Fluor 680, 1'allophycocyanine, 1'aminomethylcoumarine acetic acid, le Cy2 , le Cy 5.1 , le Cy 5 , le Cy 5.5 , le dichlorofluoresceine (DCFH), le dihydrorhodamine (DHR), "1'enhanced GFP" (EGFP), le Fluo-3, le FluorX , la fluoresceine, la 5-maleimide fluoresceine, l'isothiocyanate de fluorescein (FITC), le PerCP, la r-Phycoerythrine (PE), le tandem r-Phycoerythrine-Cyanine 5 ou SpectralRed ou CyChrome , la r-Phycoerythrine-Cyanine 5.5 (PE-CY 5.5 ), la r-Phycoerythrine-Cyanine 7 (PE-CY 7 ), la r-Phycoerythrine-Texas Red-x , le Red 613 , la Rhodamine 110, la Rhodamine 123, le S65L, le S65T, 1'Isothiocyanate de tetramethylerhodamine, le Texas-Red-x8, le TruRed , l'indo 1, les nano cristaux (Quantum Dots), le Fura 2, le Fura 3, le quin, le DS Red ainsi que les marqueurs specifiques notamment des acides nucleiques (quills soient sous forme d'ADN ou d'ARN), comme par exemple des intercalants ou autres colorants de viabilite cellulaire tels que le bromure d'ethidium ou encore le thiazole orange, le thiazole blue et leurs derives, la thioflavine S, la thioflavine T, la thioflavine TCN , le diethyl-quinolythocyanine iodide (DEQTC), le TOTO-1 , le TO-PRO-1 , ou encore le YOYO-1 , 1'Hoechst 33258, 1'Hoechst 33342, 1'Hoechst 34580, le diamidino phenylindole (DAPI), 1'iodure de propidium, la pyronine Y, la 7-Aminoactinomycine D (7AAD), 1'acridine orange, 1'auramine 0, la calceine, le New Methylene Blue, 1'olamin-O, 1'Oxazine 750, le bleu astra, , le SYTOX Green, le SYTO 11 , le SYTO 12 , le SYTO 13 , le SYTO 16 , le SYTO 18 , le SYTO 80 , le SYTO 81 Dans une forme particuliere de realisation de l'invention, lorsque des caracteristiques cellulaires, par exemple des antigenes, sont reconnues par des sondes rendues detectables par des marqueurs couvrants, on peut choisir une premiere caracteristique cellulaire dite generique, c'est-a-dire presente et caracteristique de tous les elements biologiques consideres. L'expression de cette caracteristique cellulaire etant normalement elevee dans les elements biologiques, le marqueur qui sera greffe a la sonde le reconnaissant pourra titre celui qui repondra plus faiblement dans la bande de detection commune aux deux marqueurs couvrants (MC). Une telle sonde permet de verifier que 1'on s'interesse bien aux bonnes populations cellulaires. La seconde caracteristique cellulaire reconnue par une sonde rendue detectable par 1'autre marqueur couvrant, pourra titre une caracteristique cellulaire moins exprimee sur une population seulement des elements biologiques etudiees. Le marqueur qui sera greffe a ladite sonde devra titre un marqueur qui repondra plus fortement dans la bande de detection commune aux deux marqueurs couvrants (MC). A la troisieme caracteristique cellulaire etudiee, correspond une sonde marquee par un troisieme marqueur qui lui est non couvrant (MnC) et qui sera detecte dans une deuxieme bande de detection, differente de la premiere. La methode selon l'invention peut etre mise en oeuvre dans tout appareil permettant la detection des marqueurs. On citera a cet egard a titre d'exemple la detection de fluorescence qu'elle soit emise par un colorant conjugue a une sonde moleculaire telle qu'un anticorps ou directement par un colorant supravital fluorescent tel qu'un colorant intercalant ou non, specifique des acides nucleiques, ou encore la detection d'absorbance ou de diffusion lumineuse notamment a une gamme de longueurs d'onde definie du spectre, que ces mesures soient faites par extinction ou diffusion de la gamme de longueurs d'onde ou par spectrometrie d'une bande choisie de 1'ultraviolet a l'infrarouge. Cette absorbance pouvant etre celle generee soit par un colorant conjugue a une sonde moleculaire telle qu'un anticorps ou directement par un colorant supravital tel qu'un colorant intercalant ou non, specifique des acides nucleiques. L'invention a aussi pour objet 1'utilisation de la methode decrite precedemment pour discriminer au moins deux populations cellulaires porteuses de caracteristiques specifiques et eventuellement presentes dans un echantillon. Une application de la methode peut etre envisagee dans le diagnostic medical, comme par exemple dans le domaine des leucemies lymphoIdes chroniques (LLC) et des leucemies aigues (LA) a 1'aide d'anticorps anti-CD45, anti-CD19 et anti-CD5 ; dans le domaine de la detection de la maladie residuelle (Minimum Residual Desease, MRD) et de la differenciation leucocytaire a 1'aide d'anticorps anti-CD45, anti-CD16 et anti-CD11b ; dans le domaine des progeniteurs hematopoietiques a 1'aide d'anticorps anti-CD45, anti-CD34, anti-CD33 et 7-AAD ou DAPI ou autre marqueur de viabilite ; dans le domaine de 1'inflammation et de 1'activation cellulaire a 1'aide d'anticorps anti-CD45, anti-CD64 et anti-CD163 ; dans le domaine de la detection ou du suivi d'infection au virus HIV a 1'aide d'anticorps anti-CD45, anti-CD8 ou anti-CD4 et antiCD3 ; dans le domaine de la Leucemie Aigue Lymphoblastique de type b (LALb) de 1'enfant ; dans le domaine de 1'observation de la moelle osseuse a 1'aide d'anticorps anti-CD45, anti-CD19 et anti-CD10 ou encore le domaine de la differenciation des precurseurs des lymphocytes B (hematogones) a 1'aide d'anticorps anti-CD19, anti-CD10 et anti-CD38. Ces descriptions n'etant ni exhaustives ni limitatives puisque dans 1'etat actuel des connaissances medicales. D'autres caracteristiques de l'invention apparaitront a la lecture des figures et des exemples qui suivent et qui ne sont donnes qu'a titre illustratif sans limitation de l'invention. Ainsi la Figure 1 est une representation schematique de phenotypes d'elements biologiques dans laquelle A et B sont des marqueurs couvrants et C est un marqueur non couvrant, qui correspondent respectivement a des sondes (SA, SB et SC), rendues detectables qui reconnaissent des caracteristiques particulieres (CPA, CPB et CPC) des elements biologiques consideres. La partie IA montre une representation graphique classique en cytometrie en flux de la fluorescence de A+B (qMC) en fonction de la fluorescence de C (qMnC). La partie 1B montre une representation graphique obtenue selon l'invention en cytometrie en flux du rapport de la fluorescence de C (qMnC) rapportee a la fluorescence totale de A+B (qMC) [qMnC/qMC] en fonction de la fluorescence totale de A+B (qMC) [qMnC/qMC = f(qMC)]. La mise en ceuvre de l'invention permet une distinction sur un meme axe de fluorescence (1'axe des abscisses) entre les elements biologiques exprimant (A+ B+) d'une premiere part, (A- B-) d'une deuxieme part, et (A+ B-) ou (A- B+) d'une troisieme part. La Figure 2 presente la methode selon I'invention appliquee a 1'analyse des leucocytes sanguins dans un echantillon de sang normal (2a) et dans un echantillon de sang de patient atteint de leucemie aigue (2b) apres marquage avec un anticorps anti- CD45 couple a la r-phycoerythrine (PE), un anticorps anti-CD5 couple a la phycoerythrine-cyanine 5 (PC5) et un anticorps anti-CD 19 couple a la FITC. L'expression du CD45 seul permet d'identifier les blastes presents dans cette pathologic. La figure 3 represente des echantillons de sang normal et de sang de malade atteint de leucemie lymphoIde chronique (A2 et B2). Les Figures 3A1 et 3A2 presentent les 25 resultats de 1'analyse par cytometrie en flux, les Figures 3B I et 3B2 presentent les memes resultats apres application de la methode selon 1'invention. La Figure 4 presente la methode selon I'invention appliques a 1'analyse des lymphocytes T sanguins apres marquage avec un anticorps anti-CD45 couple a la PE, un anticorps anti-CD3 couple au PC5 et un anticorps anti-CD8 couple a la FITC. La Figure 30 3A presente les resultats de 1'analyse par cytometrie en flux, la Figure 3B presente les memes resultats apres application de la methode selon l'invention. Exemple 1 : Les pathologies les plus frequentes en onco-hematologie sont les differents types de leucemies aigues (LA) et les hemopathies lymphoIdes B dont la leucemie lymphoide chronique (LLC) presente une incidence en constante progression (30/106). La leucemie aigue (LA) peut etre caracterisee par un envahissement medullaire par proliferation de cellules hematopoietiques malignes. La leucemie lymphoide chronique (LLC) peut, elle, etre caracterisee par une proliferation de cellules lymphocytaires monoclonales, cellules lymphoides de la lignee B atypiques. Les blastes leucemiques des LA sont caracterises par une expression moderee du CD45 comparee a celle des lymphocytes et monocytes normaux du sang. Les lymphocytes anormaux de la LLC de type B sont caracterises par la co-expression aberrante des antigenes CD5 et CD19 sur la meme cellule alors que les lymphocytes normaux expriment soit le CD5 (lymphocytes de la lignee T) soit le CD19 (lymphocytes de la lignee B). Les phenotypes de ces cellules peuvent etre resumes sur le tableau ci-dessous : Antigenes CD19 CD45 CD5 Lymphocytes T normaux - ++ ++ Lymphocytes B normaux + ++ Blastes de LA +/- Lymphocytes B de LLC + ++ + Jusqu'a present, 1'analyse et 1'identification de ces differentes populations dans un echantillon sanguin par cytometrie en flux necessitent 1'emploi de trois anticorps differents diriges contre les trois antigenes CD5, CD19 et CD45 et de la diffusion orthogonale SSC. Pour cette analyse, chaque anticorps est couple a un fluorochrome different et chaque expression est mesuree a une longueur d'onde differente 1'aide de photomultiplicateurs differents. L'application de la methode selon 1'invention permet de proposer un systeme de 25 marquage et d'analyse par cytometrie permettant de detecter et de quantifier dans un meme echantillon de sang et lors d'une meme mesure, la presence eventuelle de cellules leucemiques a 1'aide de deux photomultiplicateurs seulement et de la diffusion orthogonale SSC. Sur un cytometre en flux, le filtrage optique des signaux lumineux est optimise pour un fluorochrome donne de fawn a mesurer sa fluorescence dans une bande de longueurs d'onde centree sur son maximum d'emission : la fluorescein (FITC) est generalement analysee a 525 nm, la rphycoerythrine (PE) a 575 nm et le tandem rphycoerythrine-cyanine 5 (PC5) a 675 nm, ceci pour des largeurs de bande d'environ 30 nm. Les spectres d'emission de PE et de PC5 sont couvrants. Its ont par exemple en commun la longueur d'onde 675 nm a laquelle la PE a un rendement de fluorescence beaucoup plus faible que le PC5.L'une des originalites de la methode selon l'invention reside dans la mesure de la fluorescence de Fun des fluorochromes (PE) a une longueur d'onde differente de celle de son maximum d'emission, ici la mesure de PE a 675 nm. Ainsi, a cette longueur d'onde, it devient possible, en jouant sur des efficacites differentes du systeme de mesure visa vis de deux fluorochromes choisis a cet effet, de compenser des differences importantes dans 1'expression des antigenes analyses. Ce principe est applique a 1analyse des leucocytes sanguins apres marquage avec un anticorps anti-CD45 couple a la PE (Xmax = 575nm), un anticorps anti-CD5 couple au PC5 (Xmax = 675nm) et un anticorps anti-CD 19 couple a la FITC (Xmax = 525nm). Ces marquages sont analyses dans une premiere bande de detection centree a 675 nm qui est la longueur d'onde d'emission maximale de PC5. Le spectre de la PE recouvre celui de PC5. L'analyse a 675 nm determinera donc la quantite totale de fluorescence emise par PC5 et PE (qMC). D'autre part, on analyse la quantite de fluorescence emise par 1'anticorps anti- 25 CD19 couple a la FITC a 525 nm (qMnC). Les polynucleaires et les monocytes sont exclus de 1analyse par fenetrage sur leurs proprietes de diffusion lumineuse. Protocole : 1) Dans un echantillon de sang total peripherique, on preleve une aliquote de sang 30 de quelques microlitres (5 a 50) que l'on melange avec une aliquote de quelques microlitres (3 a 50) de la solution des trois anticorps conjugues ci-dessus decrits. 2) Le melange est mis en incubation a temperature ambiante ou a temperature regulee, a 1'abri de la lumiere, pendant une periode de quelques minutes (1 a 30). 3) Apres la periode d'incubation, le melange est additionne d'un reactif de lyse des globules rouges, pour obtenir une solution finale de sang a une concentration specifique voulue (1/40, 1/80, 1/100, etc..). 4) La solution de sang lyse ainsi obtenue est laissee a incuber pendant quelques secondes dependamment du reactif de lyse et de la temperature d'incubation (typiquement 15 a 30 secondes). 5) Puis la solution est injectee dans un ensemble de mesure du type cytometre en flux pour mesurer sur chaque cellule traversant un faisceau optique (le plus souvent un laser 488nm pour les colorants specifies), les parametres de diffusion dans 1'axe FSC, diffusion orthogonale SSC, fluorescence verte a 525 nm (FL1) et fluorescence rouge a 675 nm (FL2). Les etapes 3 a 5 peuvent titre realisees automatiquement sur un appareil semi automatique de cytometrie en flux ou un automate d'hematologie specialement concu et les etapes 1 a 5 peuvent titre automatisees sur un appareil automatique de cytometrie en flux specialement concu. L' analyse de la fluorescence A. 675 nm (FL 1) en fonction de la diffusion orthogonale SSC (voir Figure 2 A) permet de discriminer: • une population tres peu fluorescente correspondant aux blastes de LA exprimant peu le CD45, • une population d'une fluorescence intermediaire correspondant aux lymphocytes exprimant le CD45 mais n'exprimant pas le CD5 (lymphocytes B et cellules NK) et • une population tits fluorescente correspondant aux lymphocytes exprimant en 25 plus le CD5 (lymphocytes T et cellules de LLC). Dans cette derniere population, 1'analyse de la fluorescence a 525 nm permet d'identifier les cellules de LLC exprimant aussi le CD19. L'application de la methode selon l'invention permet de discriminer les lymphocytes non T, les lymphocytes T et les cellules de LLC en prenant en compte, pour 30 chaque cellule, le rapport de la fluorescence a 525 nm sur la fluorescence a 675 nm (qMnC/qMC). Ce rapport s'exprime selon la table de verite ci-dessous : CD19 CD45 CD5 Rapport CD19/CD45+CD5 (qMnC/qMC) - ++ ++ - + ++ - ++ + ++ + +/- L'histogramme de distribution obtenu selon l'invention [(qMnC) / (qMC) = f(gMC)] (voir Figure 2C) permet d'identifier, de separer et de quantifier trois populations tres distinctement separees. • Les lymphocytes T normaux (L.T.) ne fluorescent pas a 525 nm mais fluorescent beaucoup a 675 nm ils presentent donc un rapport tres faible. • Les lymphocytes B normaux (L.B.) fluorescent a 525 nm avec une fluorescence intermediaire a 675 nm, ils ont donc un rapport eleve. • Les cellules de LLC expriment a la fois le CD5, le CD45 et le CD19, fluorescent a 525 nm et a 675 nm et leur rapport est donc intermediaire (Figure 2). • Les cellules NK qui n'expriment ni le CD5 ni le CD19 sont exclues de 1'analyse sur la base de leur fluorescence a 675nm (CD45+, CD5- et CD19-). Ainsi a partir d'un echantillon de sang, apres marquage par trois anticorps fluorescents et lyse des hematies it est possible, en une seule analyse, de discriminer et de compter les lymphocytes T, les lymphocytes B, et les cellules NK par la mesure a deux longueurs d'onde de fluorescences seulement. L'application de la methode selon l'invention permet de discriminer les lymphocytes T et les cellules LLC (figure 2B) qui apparaissaient sous la forme d'un seul nuage dans le diagramme obtenu selon une analyse conventionnelle (figure 2A). I1 en est de meme pour les lymphocytes B et les cellules NK. De plus, la presence eventuelle de blastes de leucemie aigue ou de cellules de leucemie lymphoide chronique peut etre detectee et ces cellules peuvent etre denombrees. L'utilisation de la methode selon Pinvention peut s'appliquer au diagnostic et au suivi des pathologies lymphoIdes chroniques B, des leucemies aigues, et au suivi de la maladie residuelle au cours du traitement. Exemple 2 : La methode selon 1'invention peut aussi etre appliquee a 1'analyse des lymphocytes T sanguins apres marquage avec un anti-CD45 couple A. la PE, un anti-CD3 couple au PC5 et un anti-CD8 couple a la FITC. (Figure 3). 1) Dans un echantillon de sang total peripherique, on preleve une aliquote de sang de quelques microlitres (5 a 50) que Pon melange avec une aliquote de quelques microlitres (3 a 50) de la solution des trois anticorps conjugues ci-dessus decrits. 2) Le melange est mis en incubation a temperature ambiante ou a temperature regulee, a l'abri de la lumiere, pendant une periode de quelques minutes (1 a 30). 3) Apres la periode d'incubation, le melange est additionne d'un reactif de lyse des globules rouges, pour obtenir une solution finale de sang a une concentration specifique voulue (1/40, 1/80, 1/100, etc..). 4) La solution ainsi obtenue est laissee a incuber pendant quelques secondes dependantes du reactif de lyse et de la temperature d'incubation (typiquement 15 a 30 secondes). 5) Puis la solution est injectee dans un ensemble de mesure du type cytometre en flux pour mesurer sur chaque cellule passant au travers d'un faisceau optique (le plus souvent un laser 488nm pour les colorants specifies), les parametres de diffusion dans 1'axe FSC, diffusion laterale SSC, fluorescence verte a 525 nm (FL1) et fluorescence rouge a 675 nm (FL2). Les etapes 3 a 5 peuvent titre realisees automatiquement sur un appareil semi automatique de cytometrie en flux ou un automate d'hematologie specialement concu et les etapes 1 a 5 peuvent titre automatisees sur un appareil automatique de cytometrie en flux specialement conru. Les marquages a la PE et au PC5 sont analyses a 675 nm (qMC). Le marquage a la FITC est analyse a 525 nm (qMnC). Les polynucleaires et les monocytes sont exclus de 1'analyse par leurs proprietes de diffusion orthogonale SSC. Le diagramme obtenu selon les methodes classiques (Figure 3A) de la fluorescence a 675 nm en fonction de la diffusion orthogonale SSC permet de mettre en evidence un nuage representant les populations moyennement fluorescentes de lymphocytes exprimant le CD45 mais n'exprimant pas le CD3 (lymphocytes B et cellules NK) et une population tres fluorescente correspondant aux lymphocytes exprimant en plus le CD3 (lymphocytes T). L'application de la methode selon l'invention permet de parfaitement discriminer les differentes populations (Figure 3 B). En particulier cela permet d'identifier, dans la population tres fluorescente correspondant aux lymphocytes exprimant en plus le CD3, les lymphocytes CD8+. Les lymphocytes T CD4+ ne fluorescent pas a 525 nm mais fluorescent beaucoup a 675 nm et ne presentent qu'un rapport 525/675 tres faible. Les lymphocytes T CD8+ fluorescent a 525 nm et a 675 nm, ils ont donc un rapport plus eleve. Les cellules NK et les cellules B qui n'expriment pas le CD3 sont identifiees sur la base de leur fluorescence model-6e a 675nm (Non T). REVENDICATIONS 1.) Methode de discrimination et de comptage d'au moins deux populations d'elements biologiques porteuses de caracteristiques biologiques specifiques, eventuellement presentes dans un echantillon, comprenant - le marquage simultane desdites populations d'elements biologiques par trois sondes differentes, detectables ou rendues detectables par trois marqueurs differents, dont deux desdits marqueurs (marqueurs couvrants ou MC) presentent chacun un spectre d'emission, lesdits spectres d'emission se recouvrant et le troisieme (marqueur non couvrant ou MnC) presente un spectre d'emission ne recouvrant pas les spectres des deux autres marqueurs (spectre d'emission non couvrant) ; - la mesure par tout moyen approprie, de la quantite totale de marqueur non couvrant (qMnC), en une bande de detection choisie dans le spectre d'emission dudit marqueur non couvrant ; - la mesure par tout moyen approprie, de la quantite totale de marqueurs couvrants (qMC) en une bande de detection commune aux spectres d'emission desdits marqueurs couvrants, 1'etablissement du rapport (R) de la quantite totale de marqueurs non couvrants a la quantite totale de marqueurs couvrants [R = (qMnC) / (qMC)] ; 1'etablissement par tout moyen d'un diagramme presentant le rapport (R) en fonction de la quantite totale d'elements biologiques marques par le marqueur couvrant [R = f(qMC)] etlou la quantification par tout moyen des populations des elements biologiques presents sur ledit diagramme. 2.) Methode selon la revendication 1, caracterisee en ce que le liquide biologique naturel est du sang, de 1'urine, un tissu dissocie, de la moelle osseuse, du liquide cephalorachidien, du liquide pleural, du liquide synovial, du produit resultant d'un procede d' apherese. 3.) Methode selon Tune quelconque des revendications 1 ou 2, caracterisee en ce que les elements biologiques eventuellement presents clans le liquide sont des cellules eucaryotes ou des cellules procaryotes, ou un melange des deux, ou des fragments desdites cellules. 4.) Methode selon rune quelconque des revendications 1 a 3, caracterisee en ce que les sondes, identiques ou differentes, sont des anticorps ou des acides nucleiques (ADN ou ARN) ou des colorants specifiques des acides nucleiques ou des substrats enzymatiques ou encore des marqueurs specifiques de proteines, des ligands de recepteurs ou des marqueurs sensibles a 1'environnement ionique ou une autre molecule caracteristique de 1'element biologique cible. 5.) Methode selon la revendication 4, caracterisee en ce que les anticorps sont des anticorps monoclonaux ou polyclonaux, naturels ou recombinants, humains ou animaux. 6.) Methode selon l'une quelconque des revendications 1 a 5, caracterisee en ce que les marqueurs servant a rendre detectables la sonde, sont des marqueurs, intercalants ou non, des acides nucleiques, ou encore des marqueurs specifiques de proteines ou de une autre molecule caracteristique de 1'element biologique cible. 7.) Methode selon 1'une quelconque des revendications 1 a 6, caracterisee en ce que les marqueurs sont des colorants fluorescents ou absorbants". 8.) Methode selon rune quelconque des revendications 6 ou 7, caracterisee en ce que le marqueur est choisi parmi 1'Alexa Fluor 350, 1'Alexa Fluor 488, 1'Alexa Fluor 532, 1'Alexa Fluor 633, 1'Alexa Fluor 647, 1'Alexa Fluor 660, 1'Alexa Fluor 680, 1'allophycocyanine, 1'aminomethylcoumarine acetic acid, le Cy2 , le Cy 5.1 , le Cy 5 , le Cy 5.5 , le dichlorofluoresceine (DCFH), le dihydrorhodamine (DHR), "1'enhanced GFP" (EGFP), le Fluo-3, le FluorX , la fluoresceine, la 5-maleimide fluoresceine, 1'isothiocyanate de fluoresceine (FITC), le PerCP, la r-Phycoerythrine (PE), le tandem r-Phycoerythrine-Cyanine 5 ou SpectralRed ou CyChrome , la r-Phycoerythrine-Cyanine 5.5 (PE-CY 5.5 ), la r-Phycoerythrine-Cyanine 7 (PE-CY 7 ), la r-Phycoerythrine-Texas Red-x , le Red 613 , la Rhodamine 110, la Rhodamine 123, le S65L, le S65T, 1'Isothiocyanate de tetramethylerhodamine, le Texas-Red-x , le TruRed , l'indo 1, les nano cristaux (Quantum Dots), le Fura 2, le Fura 3, le quin, le DS Red, les composes intercalants tel le bromure d'ethidium ou encore le thiazole orange, le thiazole blue, la thioflavine S, la thioflavine T, la thioflavine TCN , le diethyl-quinolythocyanine iodide (DEQTC), le TOTO-1 , le TO-PRO-1 , ou encore le YOYO-1 , 1'Hoechst 33258, 1'Hoechst 33342, 1'Hoechst 34580, le diamidino phenylindole (DAPI), 1'iodure de propidium, la pyronine Y, la 7-Aminoactinomycine D (7AAD), 1'acridine orange, 1'auramine 0, la calceine, le New Methylene Blue,1'olamin-O, 1'Oxazine 750, le bleu astra, , le SYTOX Green, le SYTO 11 , le SYTO 12 , le SYTO 13 , le SYTO 16 , le SYTO 18 , le SYTO 80 , le SYTO 81 . 9.) Utilisation de la methode selon l'une quelconque des revendications precedentes pour discriminer au moins deux populations d'elements biologiques porteuses de caracteristiques specifiques et eventuellement presentes clans un echantillon.