FR 2843753 A1 20040227 FR 0307507 A 20030620 GENES IMPLIQUES DANS LA REGULATION DE L'ANGIOGENESE, PREPARATIONS PHARMACEUTIQUES LES CONTENANT ET LEURS APPLICATIONS. La présente invention appartient au domaine des compositions pharmaceutiques utiles pour le traitement de pathologies résultant d'une dérégulation du mécanisme de l'angiogénèse. Elle concerne des compositions comprenant d'une part des séquences de nouveaux gènes, dont la fonction n'était pas identifiée à ce jour et dont l'implication dans le mécanisme de l'angiogenese a été mis en évidence pour la première fois par la demanderesse et d'autre part des séquences de gènes, dont au moins une de leurs fonctions a été préalablement identifiée, mais dont leur implication, en tant que gènes constitutifs des cellules endothéliales, dans le mécanisme de l'angiogenese a été mise en évidence pour la première fois lors des travaux réalisés par la demanderesse dans le cadre de la présente invention. Ces gènes sont identifiés par leurs séquences nucléotidiques dans le listage de séquences en annexe. La présente invention concerne également les séquences polypeptidiques des facteurs codés par lesdits gènes qui trouvent leur application dans l'étude clinique du processus de l'angiogénèse, le pronostic, le diagnostic et le traitement de pathologies liées à ce processus ainsi que dans la mise en oeuvre des essais pharmacologiques, pharmacogénomiques, ou pharmacosignalitiques. L'angiogenèse est un processus fondamental par lequel de nouveaux vaisseaux sanguins se forment. Ce processus est essentiel dans plusieurs phénomènes physiologiques normaux tels que la reproduction, le développement ou encore la cicatrisation. Dans ces phénomènes biologiques normaux, l'angiogenèse est sous contrôle strict, c'est-à-dire qu'elle est déclenchée pendant une période courte, quelques jours, puis complètement inhibée. Cependant, plusieurs pathologies sont liées à une angiogenèse invasive et incontrôlée. L'arthrite, par exemple, est une pathologie due à l'endommagement des cartilages par les néovaisseaux invasifs. Dans la rétinopathie diabétique, l'invasion de la rétine par les néovaisseaux conduit à l'aveuglement des malades ; la néovascularisation de l'appareil oculaire présente la cause majeure de l'aveuglement et cette néovascularisation domine une vingtaine de maladies de l'#il. Enfin, la croissance et la métastase des tumeurs sont directement liées à la néovascularisation et sont dépendantes de l'angiogenèse. La tumeur stimule la croissance des néovaisseaux pour sa croissance elle-même. De plus, ces néovaisseaux présentent les voies d'échappement des tumeurs pour joindre la circulation sanguine et provoquer les métastases dans des sites à distance comme le foie, le poumon ou l'os. Dans d'autres pathologies telles que les maladies cardio-vasculaires, les maladies d'artères périphériques, les lésions vasculaires ou cérébrales, l'angiogenèse peut présenter une base thérapeutique importante. En effet, la promotion de l'angiogenèse dans les endroits endommagés peut conduire à la formation de néovaisseaux sanguins latéraux et alternatifs aux vaisseaux endommagés fournissant ainsi le sang et par conséquence l'oxygène et d'autres facteurs nutritifs et biologiques nécessaires aux survies des tissus concernés. La formation de néovaisseaux par les cellules endothéliales implique la migration, la croissance, et la différentiation des cellules endothéliales. La régulation de ces phénomènes biologiques est directement liée à l'expression génétique. En matière d'angiogénèse, un nombre sans cesse grandissant d'études montre que la régulation de l'angiogenèse se fait à travers un équilibre entre des facteurs agissant directement sur la cellule endothéliale. Ces facteurs peuvent être stimulants, d'une part, tels que, entre autres, le VEGF, le FGFs, l'IL-8, le HGF/SF, le PDGF. Ils peuvent aussi être inhibants, comme, entre autres, l'IL-10, l'IL-12, le gro-a et ss, le facteur plaquettaire 4, l'angiostatine, l'inhibiteur dérivé de chondrocyte humaine, la thrombospondine, le facteur inhibiteur de la leucémie.(Jensen, Surg. Neural., 1998,49, 189-195 ; Tamatani et al., Carcinogenesis, 1999,20, 957-962 ; Tanaka et al., Cancer Res., 1998,58, 3362-3369 ; Ghe et al., Cancer Res., 1997,57, 3733-3740 ; Kawahara et al., Hepatology, 1998,28, 1512-1517 ; Chandhuni et al., Cancer Res., 1997,57, 1814-1819 ; Jendraschak et Sage, Semin. Cancer Biol., 1996,7, 139-146 ; Majewski et al., J. Invest. Dermatol., 1996,106, 1114-1119). Le contrôle de l'angiogénèse représente donc un axe stratégique, à la fois de recherche fondamentale, afin d'améliorer notre compréhension des nombreux phénomènes pathologiques liés à l'angiogénèse, mais aussi une base pour l'élaboration des nouvelles thérapies destinées à traiter les pathologies liées à l'angiogénèse. Afin de contrôler l'angiogenèse, plusieurs groupes pharmaceutiques ont développé des stratégies thérapeutiques basées directement sur l'utilisation de signaux paracrines, les facteurs stimulateurs et inhibiteurs, comme agents pour promouvoir ou inhiber l'angiogenèse. Ces stratégies sont basées essentiellement sur l'utilisation de ces facteurs sous leur forme polypeptidique comme agents stimulateurs ou inhibiteurs de l'angiogenèse, ou encore plus récemment sous la forme de vecteurs d'expression codant pour les facteurs choisis. Un procédé permettant l'identification de nouveaux gènes impliqués dans la régulation de l'angiogenèse a été mis au point. Il a fait l'objet d'une demande de brevet français publiée sous le n FR 2798674 et d'une demande de brevet internationale PCT publiée sous le n WO 01/218312. Cette méthode a la particularité de traduire fidèlement le mécanisme intime régulant l'angiogenèse en prenant en compte tous les facteurs extracellulaires décrits comme agents régulateurs de l'angiogenèse, c'est-à-dire les facteurs angiogéniques, les facteurs angiostatiques, ainsi que les différents composants de la matrice extracellulaire. Cette méthodologie consiste à mettre en #uvre ces différents facteurs extracellulaires à travers quatre conditions expérimentales bien définies. Les cellules endothéliales sont cultivées sur une composante et/ou un mélange bien défini de plusieurs composantes de la matrice extracellulaire et placées sous les quatre conditions expérimentales à savoir : Une condition contrôle où les cellules endothéliales ne sont pas stimulées. Une condition angiogénique où les cellules endothéliales sont stimulées par un ou plusieurs facteurs angiogéniques. Une condition d'inhibition de l'angiogenèse où les cellules endothéliales sont stimulées par un ou plusieurs facteurs angiogéniques et mises en présence d'un ou plusieurs facteurs angiostatiques. Une autre condition de contrôle où les cellules endothéliales sont stimulées par un ou plusieurs facteurs angiostatiques. Ces quatre conditions permettent d'obtenir des préparations d'ARNm spécifiques de l'angiogenèse à savoir de l'état angiogénique et/ou l'inhibition de l'angiogenèse et permettent de déceler les gènes codant pour les constituants cellulaires impliqués dans la régulation de l'angiogénèse, incluant des régulateurs positifs et des régulateurs négatifs. Donc, le procédé ci-dessus décrit permet le criblage systématique de tous les facteurs angiogéniques et angiostatiques ainsi que des différentes composantes de la matrice extracellulaire dans le but de mettre en évidence et identifier les gènes codant pour les constituants cellulaires impliqués dans la régulation de l'angiogenèse. De plus, étant donné que l'expression génique peut être analysée tout au long de la cinétique de la formation des néovaisseaux par les cellules endothéliales, cette approche constitue une méthodologie in vitro permettant de relier l'expression génique aux paramètres fonctionnels biologiques de l'angiogenèse. L'identification des cinquante-quatre gènes rapportés ci-dessous a été effectuée selon la méthodologie décrite ci-dessus, en utilisant les facteurs angiogéniques et angiostatiques, ainsi que le collagène type I comme composant de la matrice extracellulaire pour reproduire les quatre conditions expérimentales. La Demanderesse a prouvé l'implication de ces cinquante-quatre nouveaux gènes identifiés par les séquences SEQ ID No. : 1 à SEQ ID No. : 53 et SEQ ID No. 225 dans la liste de séquences en annexe, dans le mécanisme de régulation de l'angiogènese. Plus particulièrement l'invention concerne une composition pharmaceutique active sur les phénomènes d'angiogenèse comprenant à titre d'agent actif au moins une substance choisie parmi : (i) une molécule d'acide nucléique d'un gène d'une cellule endothéliale, dont l'expression est induite par un facteur angiogénique et inhibée par un agent angiostatique, d'une séquence complémentaire ou d'un fragment de celle-ci, (ii) une séquence polypeptidique codée par ladite molécule d'acide nucléique, ou un fragment de celle-ci (iii) une molécule capable d'inhiber l'expression d'une molécule d'acide nucléique selon (i) ou de se fixer sur une séquence polypeptidique selon (ii). Selon un mode particulier de mise en #uvre, la composition pharmaceutique de l'invention comprend à titre de composé actif au moins une séquence nucléotidique sélectionnée parmi l'ensemble des séquences nucléotidiques identifiées sous les numéros SEQ ID No. : 1 à SEQ ID No. : 53, SEQ ID No. 225 et SEQ ID No. 284 à SEQ ID No. 290 dans la liste de séquences en annexe, leurs séquences complémentaires et leurs séquences antisens correspondantes, ou un de leurs fragments. Au sens de la présente invention, doivent être considérées comme des séquences équivalentes, des séquences nucléotidiques présentant des modifications structurelles, mineures, ne modifiant pas leur fonction, telles que délétions, mutations ou additions de bases, dont l'identité est d'au moins de 90% avec les séquences nucléotidiques identifiées sous les numéros SEQ ID No. : 1 à SEQ ID No. : 53, SEQ ID No. 225 et SEQ ID No. 284 à SEQ ID No. 290 dans la liste de séquences en annexe. Selon un autre mode particulier de mise en #uvre, la composition pharmaceutique, régulatrice de l'angiogénèse, comprend au moins une séquence inhibitrice de l'angiogènese. Selon un mode particulier de mise en #uvre, la composition pharmaceutique régulatrice de l'angiogenèse, comprend au moins une séquence stimulatrice de l'angiogenèse. Selon un mode particulier de mise en #uvre, la composition pharmaceutique de l'invention comprend une ou plusieurs séquences inhibitrices de l'angiogènese comprenant une séquence antisens d'au moins une séquence choisie parmi les SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 à SEQ ID N 15, SEQ ID N 17 à SEQ ID N 53, SEQ ID No. 225 et SEQ ID No. 284 à SEQ ID No. 290 dans la liste de séquences en annexe. De préférence, la composition pharmaceutique de l'invention comprend une ou plusieurs séquences antisens choisies parmi les SEQ ID N 103 à SEQ ID SEQ ID No. 107, SEQ ID No. 109, SEQ ID No. 111 et SEQ ID No. 113 à SEQ ID No. 148 dans la liste de séquences en annexe. Selon un deuxième mode de mise en #uvre, la composition pharmaceutique de l'invention comprend une ou plusieurs séquences stimulatrice(s) de l'angiogènese comprenant une séquence antisens d'au moins une séquence choisie parmi les séquences SEQ ID N 6, SEQ ID N 8, SEQ ID N 10 et SEQ ID N 16 dans la liste de séquences en annexe. De préférence la composition pharmaceutique de l'invention comprend des séquences antisens choisies parmi les séquences SEQ ID No. 108, SEQ ID No. 110 et SEQ ID No. 112 dans la liste de séquences en annexe. L'invention a également pour objet une composition pharmaceutique destinée au diagnostic et/ou au traitement de pathologies liées à l'angiogenèse caractérisée en ce qu'elle comprend au moins une séquence polypeptidique, sélectionnée parmi de séquences polypeptidiques identifiées sous les numéros SEQ ID No. : 54 à SEQ ID No. : 102 ou parmi de séquences polypeptidiques identifiées sous les numéros SEQ ID No. : 291 à SEQ ID No. : 297 dans la liste de séquences en annexe. Au sens de la présente invention, doivent être considérées comme des séquences équivalentes, des séquences polypeptidiques présentant des modifications structurelles, mineures, ne modifiant pas leur fonction, telles que délétions, mutations ou additions de résidus d'acides aminés, dont l'identité est d'au moins de 85%, de préférence d'au moins 90% avec les séquences polypeptidiques identifiées sous les numéros SEQ ID No. : 54 à SEQ ID No. : 102 ou avec les séquences polypeptidiques identifiées sous les numéros SEQ ID No. : 291 à SEQ ID No. 297 dans la liste de séquences en annexe. L'invention a également pour objet une composition pharmaceutique destinée au diagnostic et/ou au traitement de pathologies liées à l'angiogenèse comprenant au moins un antagoniste d'un ou plusieurs séquences polypeptidiques ci-dessus mentionnées. On entend par antagoniste tout composé inhibiteur de l'activité biologique des dites séquences polypeptidiques, dans le mécanisme de l'angiogenèse. A titre d'exemple de tels antagonistes, on peut citer un anticorps ayant une affinité pour ladite séquence polypeptidique. L'invention concerne aussi des anticorps ayant une affinité pour chacune des séquences polypeptidiques identifiées sous les numéros SEQ ID No. : 54 à SEQ ID No. : 102 ou avec les séquences polypeptidiques identifiées sous les numéros SEQ ID No. : 291 à SEQ ID No. : 297 dans la liste de séquences en annexe, ainsi que les compositions thérapeutiques les comprenant. Lesdits anticorps peuvent être obtenus par toute méthode d'immunisation in vivo ou in vitro, d'un animal, notamment d'un vertébré et de préférence d'un mammifère avec l'une quelconque des séquences polypeptidiques identifiées sous les numéros SEQ ID No. : 54 à SEQ ID No. : 102 ou avec les séquences polypeptidiques identifiées sous les numéros SEQ ID No. : 291 à SEQ ID No. : 297 dans la liste de séquences en annexe, ou l'un de leurs fragments conservant l'immunogénicité de la protéine totale. Les anticorps peuvent être des anticorps polyclonaux ou monoclonaux. (Kohler G. and Milstein C. Nature. 1975 Aug 7;256(5517):495-7.) L'invention concerne aussi une composition thérapeutique ou diagnostique comprenant un ou plusieurs anticorps ayant une affinité par une ou plusieurs des séquences polypeptidiques identifiées sous les numéros SEQ ID No. : 54 à SEQ ID No. : 102 ou avec les séquences polypeptidiques identifiées sous les numéros SEQ ID No. : 291 à SEQ ID No. : 297 ou par l'un de leurs fragments conservant cette affinité, ou préparés comme indiqué cidessus. Un autre objet de l'invention concerne les séquences nucléotidiques antisens des séquences nucléotidiques identifiées sous les numéros SEQ ID No : 1 à SEQ ID No : 53, SEQ ID No. 225 et SEQ ID No. 284 à SEQ ID No. 290 dans la liste de séquences en annexe. Dans le cadre de la présente invention on comprend par séquence antisens : séquence d'ADN, d'au moins 10 mers, complémentaire d'un ARNm qui en s'hybridant avec une portion de la séquence d' ARNm initial inhibe son expression, c'est-à-dire sa traduction en une protéine. Tout préférentiellement l'invention a pour objet les séquences antisens ayant une identité d'au moins 85%, de préférence de 95% avec une séquence choisie parmi les séquences identifiées sous les numéros SEQ ID N 103 à SEQ ID N 148 dans la liste de séquences en annexe. L'invention a également pour objet un vecteur d'expression de mammifère comprenant au moins une séquence antisens définie ci-dessus. Plus particulièrement ledit vecteur est choisi parmi le groupe de vecteurs GS-Vl à GS-V46, identifiés par leur séquence, portant les numéros SEQ ID N 149 à SEQ ID N 194 dans la liste de séquences an annexe. L'introduction desdites séquences SEQ ID N 103 à SEQ ID N 148 ou de l'un de leurs homologues dans des vecteurs d'expression de mammifère, et l'insertion ultérieure desdits vecteurs dans des cellules de mammifère permet l'obtention de lignées cellulaires sous-exprimant les gènes intervenant dans le mécanisme de l'angiogènese. Ces amorces particulièrement préférées sont indiquées sur le Tableau I ci-dessous et identifiées avec les numéros de séquences SEQ ID No. 195 à SEQ ID No. : 222, SEQ ID No. : 226 à SEQ ID No. : 283 et SEQ ID No. : 298 à SEQ ID No. : 299 dans la liste de séquences en annexe. L'invention a également pour objet un vecteur d'expression de mammifère, ledit vecteur comprenant au moins une séquence antisens d'au moins une des séquences identifiées sous les numéros SEQ ID No 1 à SEQ ID No 53, SEQ ID No 225 et SEQ ID No 284 à SEQ ID No 290 dans la liste de séquences en annexe, ainsi qu'un promoteur qui permet l'expression dudit ADN antisens. Pour la construction de ces vecteurs, des amorces spécifiques pour chacun des séquences identifiées, sont dessinées. Avantageusement, l'amplification du fragment du plasmide bactérien comprenant le gène cloné est effectuée au moyen d'amorces s'hybridant aux régions du plasmide encadrant le gène cloné. Elles comprennent également dans leurs extrémités les sites de restriction non contenus dans le fragment cloné et présents dans la région multisite du vecteur d'expression. Par exemple dans le cadre des fragments clonés mis en oeuvre dans la présente invention, les sites de restriction utilisés, avec le vecteur d'expression pCI, sont les sites sali et MluI. Ces deux sites de restriction peuvent être interchangés selon que le fragment ait été cloné dans le plasmide bactérien dans son orientation sens ou antisens. A titre d'exemple, les amorces GS-PGS-F (SEQ ID No. 223) et GS-PGM-R (SEQ ID No. 224) sont utilisés pour des fragments clonés en orientation sens dans le plasmide bactérien.(GS-N15) Ces amorces particulières peuvent être utilisées de façon universelle pour transférer tous les fragments clonés en orientation sens dans un vecteur bactérien pour intégrer le vecteur d'expression dans l'orientation antisens. Les amorces GS-PGM-F (SEQ ID No. 300) et GSPGS-R (SEQ ID No.301) sont utilisées pour des fragments clonés en orientation antisens dans le plasmide bactérien.(GS-N46). Ces amorces particulières peuvent être utilisées de façon universelle pour transférer tous les fragments clonés en orientation antisens dans un vecteur bactérien pour intégrer le vecteur d'expression dans l'orientation antisens. L'invention a également pour objet un vecteur d'expression de mammifère comprenant au moins une séquence nucléotidique choisie parmi l'ensemble de séquences identifiées sous les numéros SEQ ID. N 1 à SEQ ID. N 53, SEQ ID No. 225 et SEQ ID. N 284 à SEQ ID. N 290 dans la liste de séquences en annexe ou un de leurs fragments. Ces constructions sont utiles d'une part pour préparer des compositions thérapeutiques destinées au traitement, par thérapie cellulaire, de désordres angiogéniques et d'autre part pour vérifier l'efficacité d'un traitement d'un désordre angiogénique chez un mammifère, notamment chez un être humain, ou encore pour vérifier la fonctionnalité des gènes éventuellement impliquées dans le mécanisme de l'angiogénèse, dans ledit mammi f è re . Ainsi l'invention a également pour objet une cellule génétiquement modifiée, comprenant au moins l'un des vecteurs comprenant des séquences anti-sens, sousexprimant au moins une séquence nucléotidique choisie parmi les séquences SEQ ID No 1 à SEQ ID No 53, SEQ ID No 225 et SEQ ID No 284 à SEQ ID No 290 dans la liste de séquences en annexe. Un autre objet de l'invention concerne une méthode de préparation d'une lignée de cellules génétiquement modifiées exprimant de manière stable un vecteur d'expression, ledit vecteur comprenant au moins une séquence antisens d'au moins une des séquences identifiées sous les numéros SEQ ID No 1 à SEQ ID No 53, SEQ ID No 225 et SEQ ID No 284 à SEQ ID No 290 dans la liste de séquences en annexe, ainsi qu'un promoteur qui permet l'expression dudit ADN antisens comprenant les étapes suivantes : (a) on introduit un gène de résistance à au moins un antibiotique dans ladite cellule génétiquement modifiée, b) on cultive les cellules obtenues à l'étape (a) en présence dudit antibiotique, c) on sélectionne les cellules viables. L'invention concerne également une composition pharmaceutique destinée au diagnostic et/ou au traitement de pathologies liées à l'angiogenèse comprenant, à titre de principe actif, ladite cellule génétiquement modifiée. D'autre part, l'invention concerne également une cellule génétiquement modifiée comprenant au moins un vecteur comprenant une séquence nucléotidique choisie parmi l'ensemble de séquences identifiées sous les numéros SEQ ID. N 1 à SEQ ID. N 53, SEQ ID No. 225 et SEQ ID. N 284 à SEQ ID. N 290 dans la liste de séquences en annexe ou un de leurs fragments, surexprimant ladite séquence. Aussi l'invention concerne une méthode de préparation d'une lignée de cellules génétiquement modifiée exprimant de manière stable un vecteur d'expression, ledit vecteur comprenant au moins une des séquences identifiées sous les numéros SEQ ID No 1 à SEQ ID No 53, SEQ ID No 225 et SEQ ID No 284 à SEQ ID No 290 dans la liste de séquences en annexe ou un de leurs fragments, ainsi qu'un promoteur qui permet l'expression dudit ADN antisens, comprenant les étapes suivantes : (a) on introduit un gène de résistance à au moins un antibiotique dans ladite cellule génétiquement modifiée, b) on cultive les cellules obtenues à l'étape (a) en présence dudit antibiotique, c) on sélectionne les cellules viables. On peut donc envisager d'isoler des cellules humaines et de les transfecter in vitro avec au moins un des vecteurs ci-dessus définis, codant pour au moins un des gènes dont les séquences sont identifiées sous les numéros SEQ ID No. : 1 à SEQ ID No. : 53, SEQ ID No ; et SEQ ID No. 284 à SEQ ID No. 290 ou l'un de leurs fragments. Ces cellules génétiquement modifiées, pourront être ensuite administrées à un mammifère, de préférence un mammifère humain. Des compositions thérapeutiques contenant de telles cellules peuvent se présenter sous forme de simples suspensions cellulaires, mais elles peuvent également être encapsulées dans un dispositif adéquat, en utilisant par exemple des membranes semi-perméables. Un autre objet de l'invention est une méthode de préparation d'une protéine codée par au moins un des gènes dont les séquences sont identifiées sous les numéros SEQ ID No. : 1 à SEQ ID No. : 53, SEQ ID No : 225 et SEQ ID No. 284 à SEQ ID No. 290 dans la liste de séquences en annexe ou d'un de leurs fragments. Ces protéines identifiées par les séquences SEQ ID No. 54 à SEQ ID No. 102 et SEQ ID No. 291 à SEQ ID No. 297 dans la liste de séquences en annexe, ou leurs fragments peuvent être produites, sous forme de protéines recombinantes in vitro, en introduisant dans un hôte adéquat un vecteur d'expression correspondant adéquat, puis purifiées et utilisées ensuite comme agent thérapeutique. Une telle méthode de préparation d'une protéine recombinante comprend les étapes de : a) la construction d'un vecteur d'expression comprenant au moins une séquence parmi celles identifiées sous les numéros SEQ ID No. : 1 à SEQ ID No. : 53, SEQ ID No : 225 et SEQ ID No. 284 à SEQ ID No. 290 dans la liste de séquences en annexe ou d'un de leurs fragments. b) l'introduction dudit vecteur dans un hôte cellulaire, c) la culture desdites cellules dans un milieu adéquat, d) la purification des protéines exprimées ou d'un de leurs fragments. L'invention concerne également une protéine recombinante obtenue par la méthode ci-dessus. A titre d'exemple, des systèmes d'expression de protéines recombinantes chez les bactéries telles que E. Coli peuvent être utilisés pour exprimer de protéines ou polypeptides non glycosylés. La séquence codante ou une séquence partielle du gène d'intérêt est amplifiée par PCR en utilisant des amorces spécifiques de ce gène avec aux extrémités des sites d'enzymes de restriction de préférence différents pour permettre l'orientation du gène dans le vecteur d'expression. L'ADN amplifié est purifié puis digéré par les enzymes de restriction ensuite insérée par ligation au vecteur d'expression préalablement digéré par ces mêmes enzymes de restriction. Un grand nombre de vecteurs peut- être utilisé comme le vecteur pBR322 (Bolivar et al., Gene 2 (1977) 95-113) ou ses dérivés, contenant par exemple le promoteur de l'ARN polymérase du bactériophage T7 pour un haut niveau d'expression, comme le plasmide pET3a (Studier et Moffatt,1986, J Mol Biol, 189(1):113-30), contenant de préférence les séquences qui codent pour des marqueurs de sélection (résistance à des antibiotiques), un site multiple de clonages contenant les sites d'enzymes de restrictions adéquats pour l'insertion de l'ADN, le système cellule/hôte est de préférence un système inductible comme celui utilisé pour le radiomarquage in vivo du facteur de croissance FGF2 (Colin et al, 1997, Eur.J.Biochem., 249, 473-480) et déjà décrit par Patry et al (1994, FEBS Lett, 349(1):23-8), il peut également contenir une région codant pour une queue poly histidine en extrémité du polypeptide d'intérêt pour faciliter la purification. L'ADN amplifié est ligué dans le plasmide qui est transformé dans la bactérie selon la méthode décrite par Sambrook et al. (1989, Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2nd ed., Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY. ). Les cellules transformées sont étalées sur milieu LB agar contenant les antibiotiques, les colonies résistantes aux antibiotiques sont alors contrôlées par PCR puis analyse sur gel. L'ADN plasmidique peut être isolé puis séquence pour confirmer la construction. La production et la purification de la protéine recombinante peuvent être réalisées comme décrit ((Patry et al ,1994, FEBS Lett, 349(1):23-8),473- 480).Brièvement, une colonie isolée est inoculée dans le milieu de culture liquide tel que le milieu LB broth additionné des antibiotiques. Après une nuit d'incubation, la pré-culture peut être utilisée pour ensemencer une culture d'un plus grand volume. L'expression du polypeptide est alors induite, les cellules se développent pendant quelques heures puis sont récoltées par centrifugation. Le culot cellulaire peut être lysé par agents chimiques connus dans l'art ou mécaniquement par sonication par exemple. La protéine peut-être purifiée grâce à ses propriétés physicochimiques comme décrit pour la purification du FGF2 recombinant (Colin et al, 1997, Eur.J.Biochem., 249,473- 480) ou si la protéine est étiquetée avec une queue poly histidine, elle peut être purifiée via cette queue par immobilisation sur un support chélateur d'ions métalliques comme décrit (Tang et al, Protein Expr Purif 1997 Dec;11(3):279-83). A titre d'exemple, des systèmes d'expression de protéines recombinantes pour exprimer des polypeptides ayant des modifications post traductionnelles comme la glycosylation, tels que des systèmes eucaryotes (levures, plantes, insectes) peuvent être utilisés. Ainsi, la protéine recombinante peut être produite par exemple dans la levure Pichia Pastoris comme décrit par Sreekrishna et al (1988, J Basic Microbiol,28(4):265-78). L'ADN amplifié sera introduit de la même façon après digestion et ligation dans un vecteur d'expression de Pichia Pastoris, contenant de préférence une séquence codant pour un marqueur de sélection (Scorer et al, Biotechnology (N Y), 1994 Feb; 12(2) : 181-4). La protéine peut être soit intracellulaire soit sécrétée si le vecteur contient à 1 'extrémité du gène introduit une séquence codant pour une séquence signal de sécrétion comme par exemple le facteur prepropeptide de Saccharomyces cerevisiae (Cregg et al., 1993; Scorer et al., 1993). Une queue Histidine peut également être ajoutée à l'une des extrémités de la protéine recombinante pour faciliter la purification (Mozley et al, 1997, Photochem Photobiol, 66(5):710-5). De préférence, ledit hôte est choisi parmi : une bactérie, une levure, une cellule d'insecte et une cellule d'un mammifère, une cellule végétale. L'administration de compositions thérapeutiques comprenant de telles protéines peut se faire par exemple par voie topique, orale, intradermique, transdermique, intraveineuse. Les fragments desdites protéines peuvent être utilisés en tant qu'antagonistes de la protéine dont ils sont issus. Ainsi l'administration adéquate à un animal d'une composition thérapeutique comprenant de tels fragments est préconisée pour induire une diminution de l'activité de ladite protéine dans le mécanisme de l'angiogenèse dans une pathologie donnée. La présente invention concerne également une méthode de diagnostic d'une pathologie angiogénique chez un mammifère, notamment chez un être humain, consistant à détecter dans les cellules dudit mammifère la surexpression ou la sous-expression d'une ou plusieurs séquences nucléotidiques identifiées par les numéros SEQ ID N 1 à SEQ ID N 53, SEQ ID No. 225 et SEQ ID N 284 à SEQ ID N 290 dans la liste de séquences en annexe. Une telle méthode de diagnostic comprend les étapes suivantes : - la détection de l'expression d'une ou plusieurs desdites séquences nucléotidiques SEQ ID N 1 à SEQ ID N 53, SEQ ID No. 225 et SEQ ID N 284 à SEQ ID N 290 par une population cellulaire d'un mammifère, - la détection de l'expression de celle(s) même(s) séquence(s) par une population cellulaire de référence dont l'état angiogénique est connu, - l'identification des différences éventuelles du niveau d'expression de celle(s) même(s) séquence (s) par les deux populations cellulaires. La présente invention concerne également une méthode de diagnostic et de pronostic d'une pathologie angiogénique chez un mammifère, notamment chez un être humain, consistant à détecter dans les cellules dudit mammifère la surexpression ou la sous-expression d'une ou plusieurs séquences polypeptidiques identifiées par les numéros SEQ ID No. : 54 à SEQ ID No. : 102 ou avec les séquences polypeptidiques identifiées sous les numéros SEQ ID No. : 291 à SEQ ID No. : 297 dans la liste de séquences en annexe. Selon un mode de mise en #uvre préféré, ladite méthode comporte les étapes suivantes : a) la détection de l'expression d'une ou plusieurs desdites séquences polypeptidiques SEQ ID No. : 54 à SEQ ID No. : 102 ou avec les séquences polypeptidiques identifiées sous les numéros SEQ ID No. : 291 à SEQ ID No. 297 par une population cellulaire d'un mammifère, b) la détection de l'expression de celle(s) même (s) séquence (s) polypeptidique(s) par une population cellulaire de référence dont l'état angiogénique est connu, c) l'identification des différences éventuelles du niveau d'expression de celle(s) même (s) séquence(s) polypeptidique (s) par les deux populations cellulaires. Selon un mode particulier de mise en #uvre, dans la méthode de diagnostic de l'invention la détection de l'expression des séquences est effectuée après avoir mis les cellules endothéliales en présence d'un fluide biologique issu d'un patient. La présente invention concerne également une méthode de vérification de l'efficacité thérapeutique d'un traitement angiogénique chez un mammifère, notamment chez un être humain, par l'identification d'une population cellulaire chez ledit mammifère susceptible de surexprimer ou sous-exprimer une ou plusieurs séquences nucléotidiques identifiées par les numéros SEQ ID N 1 à SEQ ID N 53, SEQ ID No. 225 et SEQ ID N 284 à SEQ ID N 290 dans la liste de séquences en annexe. Une telle méthode de vérification de l'efficacité thérapeutique comprend les étapes suivantes : - la détection de l'expression d'une ou plusieurs desdites séquences nucléotidiques SEQ ID N 1 à SEQ ID N 53 et SEQ ID No. 225 par une population cellulaire d'un mammifère auquel est administrée une composition thérapeutique destinée à traiter un désordre angiogénique, - la détection de l'expression de celle(s) même(s) séquence(s) nucléotidiques par une population cellulaire de référence dont l'état angiogénique est connu, - l'identification des différences éventuelles du niveau d'expression de celle(s) même (s) séquence (s) nucléotidique(s) par les deux populations cellulaires. Selon des modes de réalisation préférés, la méthode de vérification est effectuée sur une population cellulaire d'un mammifère in vivo, ex-vivo, ou bien sur une population cellulaire isolée dudit mammifère in vitro Selon un mode particulier de mise en #uvre, dans la méthode de vérification de l'invention la détection de l'expression des séquences est effectuée après avoir mis les cellules endothéliales en présence d'un fluide biologique issu d'un patient. La présente invention concerne également une méthode de criblage de composés utiles pour le traitement angiogénique d'un mammifère, notamment d'un être humain. Selon un mode de mise en #uvre préféré, une telle méthode de criblage comprend les étapes suivantes : - la détection de l'expression d'une ou plusieurs desdites séquences nucléotidiques SEQ ID N 1 à SEQ ID N 53, SEQ ID No. 225 et SEQ ID N 284 à SEQ ID N 290 par une population cellulaire mise en présence d'un composé susceptible d'avoir un effet thérapeutique sur un désordre angiogénique, - la détection de l'expression celle(s) même (s) séquence (s) nucléotidique(s) par une population cellulaire de référence dont l'état angiogénique est connu, - l'identification des différences éventuelles du niveau d'expression celle(s) même (s) séquence (s) nucléotidique(s) par les deux populations cellulaires. Selon un autre mode de mise en #uvre préféré, une telle méthode de criblage comprend également les étapes suivantes : - la détection de l'expression d'une ou plusieurs desdites séquences polypeptidiques identifiées par les numéros SEQ ID No. : 54 à SEQ ID No. : 102 ou avec les séquences polypeptidiques identifiées sous les numéros SEQ ID No. : 291 à SEQ ID No. : 297 dans la liste de séquences en annexe par une population cellulaire mise en présence d'un composé susceptible d'avoir un effet thérapeutique sur un désordre angiogénique, - la détection de l'expression de celle ou celles mêmes séquences polypeptidiques par une population cellulaire de référence dont l'état angiogénique est connu, - l'identification des différences éventuelles du niveau d'expression de celle(s) même (s) séquence (s) polypeptidique (s) par les deux populations cellulaires. Selon un mode particulier de mise en #uvre, dans la méthode de criblage de l'invention la détection de l'expression des séquences est effectuée après avoir mis les cellules endothéliales en présence d'un fluide biologique issu d'un patient. Parmi les désordres angiogéniques, susceptibles d'être diagnostiqués ou traités avec les compositions pharmaceutiques de l'invention on peut citer : la vascularisation de tumeurs, les rétinopathies, l'arthrite rhumatoïde, la maladie de Crohn, l'athérosclérose, l'hyperstimulation de l'ovaire, le psoriasis, l'endométrie associée à la néovascularisation, la resténose due à l'angioplastie du ballon, la superproduction tissulaire due à la cicatrisation, la maladie vasculaire périphérique, l'hypertension, l'inflammation vasculaire, la maladie et les phénomènes de Raynaud, l'anévrisme, la resténose artérielle, la thrombophlébite, la lymphagyte, le lymphodème, la cicatrisation et la réparation tissulaire, l'ischémie, l'angine, l'infarctus de myocarde, la maladie chronique du c#ur, les insuffisances cardiaques telles que l'insuffisance cardiaque congestive, la dégénération maculaire liée à l'âge et l'ostéoporose. L'invention a également pour objet un dispositif comprenant un support comprenant une ou plusieurs sondes spécifiques d'une ou plusieurs séquences nucléotidiques identifiées sous les numéros SEQ ID No : 1 à SEQ ID No : SEQ ID No. 225 et SEQ ID No. 284 à SEQ ID No. 290, dans la liste de séquences en annexe pour la mise en #uvre de la méthode de criblage de l'invention. Dans le cadre de la présente invention on entend par sonde tout fragment d'ADN simple brin dont la séquence est complémentaire à une séquence recherchée : celle-ci pourra ainsi être décelée par hybridation avec la sonde marquée (par incorporation d'atomes radioactifs ou de groupements fluorescents), qui joue le rôle d'un "hameçon" moléculaire. Selon des modes de mise en #uvre préférés, le support dudit dispositif est choisi parmi une membrane de verre, une membrane métallique, une membrane polymère, une membrane de silice. De tels dispositifs sont par exemple des puces à ADN comprenant une ou plusieurs séquences nucléotidiques identifiées sous les numéros SEQ ID No : 1 à SEQ ID No : SEQ ID No. 225 et SEQ ID No. 284 à SEQ ID No. 290, dans la liste de séquences en annexe. L'invention a aussi pour objet une trousse destinée à la mesure de l'affichage différentiel de gènes impliqués dans des désordres angiogéniques comprenant un dispositif tel que précédemment décrit, des amorces spécifiques et les accessoires nécessaires à l'amplification des séquences extraites d'un échantillon, leur hybridation avec les sondes du dispositif et la réalisation des mesures de l'affichage différentiel. L'invention a aussi pour objet une trousse destinée à la mesure de l'affichage différentiel de gènes impliqués dans des désordres angiogéniques comprenant une lignée de cellules génétiquement modifiées exprimant de manière stable le vecteur exprimant au moins une des séquences nucléotidiques identifiées sous les numéros SEQ ID No : 1 à SEQ ID No : SEQ ID No. 225 et SEQ ID No. 284 à SEQ ID No. 290, dans la liste de séquences en annexe, ou un de leurs fragments en tant que population cellulaire de référence et les moyens nécessaires pour la mesure dudit affichage différentiel. L'invention a aussi pour objet une trousse destinée à la mesure de l'affichage différentiel de gènes impliqués dans des désordres angiogéniques comprenant une lignée de cellules génétiquement modifiées exprimant de manière stable le vecteur exprimant au moins une séquence antisens d'une des séquences nucléotidiques identifiées sous les numéros SEQ ID No : 1 à SEQ ID No : SEQ ID No. 225 et SEQ ID No. 284 à SEQ ID No. 290, dans la liste de séquences en annexe, ou un de leurs fragments, en tant que population cellulaire de référence et les moyens nécessaires pour la mesure dudit affichage différentiel. La vérification de l'implication des cinquantequatre gènes identifiés et de leurs homologues dans le mécanisme de l'angiogènese a été effectuée selon la méthodologie décrite dans la section Matériel et méthodes. Cette implication est illustrée à l'aide des figures 1 à 11 en annexe, dans lesquelles : La figure 1 montre que l'expression de GS-V1, GS-V2, GS-V4, GS-V5, GS-V15 dans les cellules endothéliales humaines inhibe la formation des tubes capillaires : cellules endothéliales transfectées avec 1A)GS-Vl codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N1; 1B)GS-V2 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N2; 1C) GS-V4 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N4 ; 1D)GS-V5 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N5 ; 1E)GS-V15 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N15; 2F) le vecteur vide (Contrôle). La figure 2 montre que l'expression de GS-V3, GS-V14 chez les cellules endothéliales humaines inhibe la formation des tubes capillaires : cellules endothéliales transfectées avec 2A)GS-V3 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N3; 2B)GS-V13 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N13; 2C) le vecteur vide (Contrôle). La figure 3 montre que l'expression de GS-V6, GS-V8, GS-V10 chez les cellules endothéliales humaines induit la formation des tubes capillaires : cellules endothéliales transfectées où 3A) GS-V6 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N6 ; GS-V8 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N8 ; 3C)GS-V10 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N10 et de son homologue GS-N54 ; 3D)le vecteur vide (Contrôle). La figure 4 montre que l'expression de GS-V7, GS-V9, GS-V11, GS-V12, GS-V14 chez les cellules endothéliales humaines inhibe la formation des tubes capillaires : cellules endothéliales transfectées avec 4A)GS-V7 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N7 ; 4B) GS-V9 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N9; 4C)GS-V11 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N11; 4D)GS-V12 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N12; 4E)GS-V14 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N14 et 4F) le vecteur vide (Contrôle). La figure 5 montre que l'expression de GS-V16, GS-V17, GS-V18, GS-V19, GS-V21 chez les cellules endothéliales humaines inhibe la formation des tubes capillaires : cellules endothéliales transfectées avec 5A)GS-V16 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N16; 5B)GS-V17 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N17; 5C)GS-V18 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N18; 5D)GS-V19 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N19 ; 5E) GS-V21 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N21 ; 5F)le vecteur vide (Contrôle). La figure 6 montre que l'expression de GS-V22, GS-V24, GS-V25, GS-V26, GS-V27 chez les cellules endothéliales humaines inhibe la formation des tubes capillaires : cellules endothéliales transfectées avec 6A)GS-V22 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N22 ; 6B) GS-V24 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N24 et de son homologue GS-N49 ; codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N25 et de son homologue GS-N50; 6D)GS-V26 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N26 ; codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N27 et son homologue GS-N51; 6F) le vecteur vide (Contrôle). La figure 7 montre que l'expression de GS-V28, GS-V29, GS-V30, GS-V31, GS-V32 chez les cellules endothéliales humaines inhibe la formation des tubes capillaires : cellules endothéliales transfectées avec 7A)GS-V28 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N28 ; 7B) GS-V29 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N29 et son homologue GS-N52; 7C)GS-V30 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N30; 7D)GS-V31 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N31 et son homologue GS-N53 ; 7E)GS-V32 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N32 ; 7F)le vecteur vide (Contrôle). La figure 8 montre que l'expression de GS-V33, GS-V34, GS-V35, GS-V37, GS-V38 chez les cellules endothéliales humaines inhibe la formation des tubes capillaires : cellules endothéliales transfectées avec 8A)GS-V33 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N33 ; 8B) GS-V34 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N34; 8C)GS-V35 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N35; 8D)GS-V37 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N37 ; codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N38 ; 8F) le vecteur vide (Contrôle). La figure 9 montre que l'expression de GS-V40, GS-V42, GS-V43, GS-V44, GS-V45 chez les cellules endothéliales humaines inhibe la formation des tubes capillaires : cellules endothéliales transfectées avec 9A) GS-V40 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N40 ; 9B) GS-V42 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N42 ; codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N43; 9D)GS-V44 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N44 ; codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N45 ; F)le vecteur vide (Contrôle). La figure 10 montre que l'expression de GS-V20, GS-V23, GS-V36 GS-V39 GS-V41 chez les cellules endothéliales humaines inhibe la formation des tubes capillaires : cellules endothéliales transfectées avec 10A) GS-V20 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N20 ; 10B)GS-V23 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N23 et ses homologues GS-N47 et GS-N48; 10C) GS-V36 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N36 ; 10D)GS-V39 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N39 ; codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N41; 10F) le vecteur vide (Contrôle). La figure 11 montre que l'expression de GS-V46, chez les cellules endothéliales humaines inhibe la formation des tubes capillaires : cellules endothéliales transfectées avec 11A)GS-V46 codant pour le transcrit antisens spécifique de GS-N46 ; 11B)le vecteur vide (Contrôle). MATÉRIEL ET METHODES 1.Culture des cellules et test d'angiogenèse Des cellules endothéliales de veines ombilicales (HUVEC) sous lesdites quatre conditions de culture sont alors utilisées pour identifier les gènes codant pour les constituants cellulaires impliqués dans la régulation de l'angiogenèse. Les cellules endothéliales sont maintenues en milieu complet (EGM-2 de Clonetics). Pour l'identification des gènes impliqués dans l'angiogenèse dans les test in vitro de l'angiogenèse selon le modèle de Montesano et al.(1986, Proc Natl Acad Sci U S A, 83(19):7297-301). Les cellules sont tout d'abord ensemencées sur un gel de Collagène type I en milieu complet jusqu'à confluence. Puis, les cellules HUVEC de référence sont cultivées en milieu appauvri en sérum et sans facteurs de croissance : EBM-2 + 2% de sérum et différents facteurs sont ajoutés dans les conditions test. Le FGF2 : à des concentrations comprises entre 5 ng/ml et 60 ng/ml, de préférence entre 10 et 40 ng/ml ; du VEGF : à des concentrations comprises entre 10 ng/ml et 60 ng/ml, de préférence comprises entre 30 ng/ml et 50 ng/ml ; du PF4 : à de concentrations comprises entre 0,1 et 5 jug/ml, de préférence comprises entre 0,5 g/ml et 1 g/ml ; du TNF-a à des concentrations comprises entre 20 ng/ml et 100 ng/ml, de préférence comprises entre 30 ng/ml et 60 ng/ml ; du IFN-y :à des concentrations comprises entre 50 ng/ml et 200 ng/ml, de préférence comprises entre 80 ng/ml et 120 ng/ml. Les cellules endothéliales humaines placées sous les quatre conditions de culture précitées sont alors utilisées pour identifier des gènes codant pour les constituants cellulaires impliqués dans la régulation de l'angiogenèse. 2. Facteurs angiogéniques et angiostatiques. Des facteurs angiogéniques et angiostatiques, ayant un effet sur l'expression des gènes identifiés en corrélation avec la formation de néovaisseaux ou l'inhibition de néovaisseaux respectivement, utilisés, à titre d'exemple, dans le cadre de la présente invention, sont illustrés ci-dessous. VEGF=Facteur de croissance endothélial vasculaire. FGF2=Facteur de croissance basique du fibroblaste. HGF=Facteur de croissance de l'hépatocyte. PF4=Facteur plaquettaire 4. IFN-y=Interféron gamma. TNF-a=Facteur de nécrose tumorale alpha L e T N F quoi- est un régulateur de l'angiogénèse, il peut induire l'angiogénèse in vivo mais également inhiber la formation des vaisseaux in vitro (Frater-Schroder et al, 1987 , Proc Natl Acad Sci U S A,84(15):5277-81; Fajardo et al, 1992, Am J Pathol Mar,140(3):539-44; Niida et al, 1995, Neurol Med Chir (Tokyo),35(4):209-14. Dans notre modèle d'angiogénèse in vitro, le TNF-a est utilisé dans des conditions d'inhibition de l'angiogénèse. 3. Comparaison des expressions géniques. Les expressions géniques peuvent être alors comparées en utilisant les puces d'ADN, le SAGE, une réaction d'amplification par PCR quantitative, les vecteurs viraux pour construire des banques soustractives, ou encore l'analyse par affichage différentiel. Dans le cadre des travaux expérimentaux ayant conduit à la présente invention, la Demanderesse a utilisé préférentiellement la technique d'affichage différentiel pour l'identification desdits gènes. Affichage différentiel Les ARN totaux sont préparés à partir des cellules HUVEC cultivées sur un gel de collagène en présence des différents facteurs utilisés, selon la méthode RNeasy Mini kit (Qiagen) en intégrant une étape de digestion à la DNase I selon le protocole préconisé par le fabricant. L'affichage différentiel à partir des ARNs totaux est réalisé selon la méthode décrite par Liang et Pardee (1992, Science, 14;257(5072):967-7)en utilisant l'aP33-ATP en dilution isotopique au cours de l'amplification par PCR pour la visualisation des bandes par autoradiographie des gels d'électrophorèse. Ainsi, les fragments d'ADN différentiellement présents sur le gel en fonction des conditions de culture analysées sont découpés, réamplifiés, clonés dans un plasmide PGEM easy vector, Promega), séquences et identifiés par questionnement de la banque BLAST. 4. Vérification de l'implication des gènes identifiés dans le mécanisme de l'angiogènese. Test de fonctionnalité des gènes Dans une deuxième étape, la fonctionnalité de chaque séquence identifiée est testée sur le modèle d'angiogenèse in vitro avec les cellules endothéliales transfectées avec un vecteur d'expression comprenant un oligonucléotide antisens de ladite séquence. Pour la construction de ces vecteurs, des amorces spécifiques pour chacun des séquences identifiées, sont dessinées. Ces amorces sont indiquées sur le Tableau I ci-dessous et identifiées avec les numéros de séquences SEQ ID No. 195 à SEQ ID No. : 222, SEQ ID No. : 226 à SEQ ID No. : 283 et SEQ ID No. : 298 à SEQ ID No. : 299 dans la liste de séquences en annexe. Tableau I SÉQ.ID Nom ~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~amorce SÉO ID # SÉQ.ID amorce amorce GVl-1 SEQ ID No 1 (GS-N1) GV1-2 GV2-1 SEQ ID No 2 (GS-N2) GV2-2 GV3-1 SEQ ID No 3 (GS-N3) GV3-2 GV4-1 SEQ ID No 4 (GS-N4) GV4-2 GV5-1 SEQ ID No 5 (GS-N5) GV5-2 GV6-1 SEQ ID No 6 (GS-N6) GV6-2 GV7-1 SEQ ID No 7 (GS-N7) GV7-2 GV8-1 SEQ ID No 8 (GS-N8) GV8-2 GV8-2 GV9-1 SEQ ID No 9 (GS-N9) GV9-2 GV9-2 GV10-1 SEQ ID No 10 (GS-N10) GV10-2 GV10-2 SEQ ID No 11 (GS-N11) GV11-2 GV11-2 GV12-1 SEQ ID No 12 (GS-N12) GV12-2 GV13-1 SEQ ID No 13 (GS-N13) GV13-2 GV14-1 SEQ ID No 14 (GS-N14) GV14-2 GV14-2 GS-PGS#F SEQ ID No 15 (GS-N15) GS-PGM-R GS-PGM-R GV10-1 SEQ ID No 16 (GS-N54) GV10-2 GV16-1 SEQ ID No 17 (GS-N16) GV16-2 GV16-2 SEQ ID No 18 (GS-N17) GV17-1 GV18-1 SEQ ID No 19 (GS-N18) GV18-2 GV18-2 ~~ G V 19 # SEQ ID No 20 (GS-N19) GV19-2 GV19-2 SEQ ID No 21 (GS-N20) GV20-2 GV20-2 SEQ ID No 22 (GS-N21) GV21-1 GV22-1 SEQ ID No 23 (GS-N22) GV22-2 GV22-2 GV23-1 SEQ ID No 24 (GS-N23) GV23-2 GV24-1 SEQ ID No 25 (GS-N24) GV24-2 GV25-1 SEQ ID No 26 (GS-N25) GV25-2 SÉQ.ID Nom amorce GV26-1 SEQ ID No 27 (GS-N26) GV26-2 GV27-1 SEQ ID No 28 (GS-N27) GV27-2 GV27-2 GV2 8 # SEQ ID No 29 (GS-N28) GV28-2 GV29-1 SEQ ID No 30 (GS-N29) GV29-2 SEQ ID No 31 (GS-N30) GV30-2 GV30-2 SEQ ID No 32 (GS-N31) GV31-2 GV32-1 SEQ ID No 33 (GS-N32) GV32-2 GV32-2 SEQ ID No 34 (GS-N33) GV33-2 GV33-2 SEQ ID No 35 (GS-N34) GV34-2 GV34-2 SEQ ID No 36 GS-N35) GV35-1 GV35-2 SEQ ID No 37 (GS-N36) GV36-2 GV36-2 SEQ ID No 38 (GS-N37) GV37-2 GV37-2 SEQ ID No 39 (GS-N38) GV38-2 GV39-1 SEQ ID N 40 (GS-N39) GV39-2 GV40-1 SEQ ID No 41 (GS-N40) GV40-2 GV40-2 SEQ ID No 42 (GS-N41) GV41-2 GV42-1 SEQ ID No 43 (GS-N42) GV42-2 GV43-1 SEQ ID No 44 (GS-N43) GV43-2 GV44-1 SEQ ID No 45 (GS-N44) GV44-2 GV45-1 SEQ ID No 46 (GS-N45) GV45-2 SEQ ID No 47 (GS-N46) GS-PGM-F GS-PGS-R GV23-1 SEQ ID No 48 (GS-N47) GV23-2 GV23-2 SEQ ID No 49 (GS-N48) GV23-2 GV24-1 SEQ ID No 50 (GS-N49) GV24-2 GV24-2 SEQ ID No 51 (GS-N51) GV27-2 GV27-2 SEQ ID No 52 (GS-N52) GV29-1 SÉQ.ID Nom amorce SEQ ID No 53 (GS-N53) GV31-1 GV31-2 SEQ ID No 225 (GS-N50) GV50-1 Ces amorces contiennent à chacune de leurs extrémités, un site d'une enzyme de restriction différente (SalI . GTCGAC ou MluI : ACGCGT). Des fragments amplifiés de chaque gène sont obtenus par PCR à partir des plasmides bactériens contenant le fragment du gène identifié en utilisant lesdites amorces. Ces fragments sont purifiés, digérés par les enzymes de restriction SalI et MluI et insérés dans un vecteur d'expression chez les mammifères du type pCi-neo vector, (Promega), lui-même digéré par ces deux enzymes de restriction. Chaque fragment est introduit dans l'orientation antisens. Dans le cas particulier des séquences GS-N15 et GS-N46, l'amplification du fragment cloné dans le plasmide bactérien est effectuée au moyen d'amorces particulières, choisies parmi les séquences GS-PGS-F, GS-PGM-R ou GS-PGM-F et GS-PGS-R s'hybridant aux régions du plasmide encadrant le gène cloné et comprenant également dans leurs extrémités les sites de restriction (sites SalI et MluI), non contenus dans le fragment cloné, et présents dans la région multisite du vecteur d'expression. Ces deux sites de restriction pouvant être interchangés selon que le fragment ait été cloné dans le plasmide bactérien dans son orientation sens ou antisens. Des contrôles effectués avec ces amorces, que l'on peut considérer comme des amorces universelles, en absence du gène cloné, (plasmide vide) ont montré que le fragment amplifié du plasmide (40 pb) lorsqu'il est intégré dans le vecteur d'expression n'altère pas la formation des néovaisseaux dans le test de fonctionnalité in vitro. Les résultats obtenus avec ce vecteur ainsi construit sont identiques à ceux obtenus avec le vecteur vide (Résultats non montrés) et montrent que ces paires de bases supplémentaires n'altèrent pas l'effet des fragments antisens spécifiques de la séquence identifiée. D'une façon générale, les vecteurs susceptibles d'être utilisés pour la mise en évidence de la fonctionnalité des gènes identifiés dans la présente invention dans le mécanisme de l'angiogénèse comprennent tout système de vecteurs d'expression chez les mammifères comprenant un promoteur qui permet l'expression d'un gène cloné, à titre d'exemple on peut citer le promoteur fort du cytomégalovirus humain (CMV). D'autres vecteurs d'expression constitutifs ou inductibles susceptibles d'être également utilisés, sont indiqués dans la liste non-exhaustive ci-après indiquée : Vecteurs commercialisés par la Société Promega ; des vecteurs avec un promoteur fort pour un haut niveau d'expression constitutif des gènes chez les cellules de mammifères (pCI Mammalian Expression vector, Expression Vector System cloning vector pALTER(R)*-MAX), des vecteurs commercialisés par la société Invitrogen : (pcDNA3 .1, -/hygro,-/Zeo, pcDNA4/HisMAx, -E, pBudCE4, pRcRSV, pRcCMV2, pSecTag2, - /hygro secretion vectors, les vecteurs pEBVHis A, B et C), des vecteurs d'expression chez le mammifère commercialisés par la société Clontech (pIRES, pIRES-EYFP pIRES2-EGFP, pCMV-Myc et pCMV-HA ), EpitopeTagged pTRE, les vecteurs VP16 Minimal Domain (ptTA 2, ptTA 3 et ptTA 4), les vecteurs d'expresion Tet bidirectionnels (pBI, pBI-EGFP, pBI-G, pBI-L), pRevTRE, pTRE2, pLEGFP-Nl Vecteur Retroviral pLEGFP-Cl, les systèmes d'expression adenoviraux Adeno-X , pCMS-EGFP, pdlEGFP-Nl, pd2ECFP-Nl, pd2EYFP-Nl, pEGFP(-Cl, -C2,-C3, -Ni, -N2, -N3), pEYFP-Cl, -NI. Chaque vecteur comprenant ledit fragment antisens est alors produit chez E. Coli, extrait, purifié et quantifié. Un g de chaque vecteur est incubé en présence d'un agent transfectant (effectene, Qiagen) en suivant le protocole préconisé par le fabricantavec les cellules endothéliales. Vingt-quatre heures après la transfection, les cellules endothéliales sont trypsinées et étalées sur la matrice extracellulaire contenant les facteurs angiogéniques en l'occurrence le matrigel selon le modèle décrit par Grant et al, (1989,Cell,58(5):933-43). Après 24h d'incubation, la formation de vaisseaux est observée et comparée aux cellules témoins transfectées avec le vecteur d'expression de mammifère vide. 5. Etablissement de la banque de lignées stables exprimant les vecteurs d'expression contenant les séquences des gènes ou leurs fragments ou les séquences antisens. Les systèmes d'expression peuvent comprendre un marqueur de sélection à un antibiotique (un gène de résistance à un antibiotique), pour sélectionner les cellules transfectées exprimant de façon stable le vecteur comprenant l'acide nucléique cloné dans ledit vecteur et ce, soit dans le même vecteur, soit dans un 2ème vecteur cotransfecté. Ce vecteur d'expression peut être un système d'expression constitutif ou inductible. Dans l'exemple particulier ci-dessous décrit, les lignées stables pour l'expression de l'oligonucléotide antisens correspondant à chaque gène identifié ont été obtenues avec un vecteur d'expression constitutif et après sélection en présence d'antibiotique. Pour ce faire, 24h après la transfection effectuée dans les conditions décrites ci-dessus, les cellules endothéliales BAEC sont trypsinées et ensemencées à raison de 80 000 cellules/puits en plaque de six puits en présence de 700 g/ml de l'antibiotique G418 (Promega). Un puit contrôle est ensemencé avec des cellules non transfectées. Le milieu est changé tous les trois jours avec une recharge de l'antibiotique. Les cellules contrôles sont éliminées après 8 à 10 jours, les cellules résistantes à l'antibiotique sont récoltées à confluence (après 2 à trois semaines) puis transférées en flacons de culture toujours en présence de l'antibiotique. Les lignées stables sont ensuite testées pour leur capacité à former ou non des vaisseaux dans le test d'angiogenèse in vitro. 6. Résultats 6. 1 Identification des gènes. Les séquences d'acide nucléiques nommés GS-N1, GS-N2, GS-N3, GS-N4, GS-N5, GS-N6, GS-N7, GS-N8, GS-N9, GSN10 (ou GS-N54), GS-Nll, GS-N12, GS-N13, GN-14 et GS-N15, et respectivement les protéines codées par lesdits acides nucléiques GS-Nl à GS-N13 et GS-N15 nommées : angioinducine, angiodockine, angioblastine, angioreceptine, angiodensine, angiopartnerine, vassoserpentine, angiosulfatine, vassoreceptine, angiokinasine, vassosubstratine, angiosignaline, angiofoculine, angiohélicine, angioacyline, n'ont pas été identifiées auparavant comme ayant un rôle biologique quelconque, et encore moins un dans le processus de l'angiogenèse ou la différentiation des cellules endothéliales en tubes capillaires. Ces protéines sont décrites ci-dessous. La méthode d'affichage différentielle ci-dessus décrite a permis l'identification des ARNm suivants : - GS-N1 : un ARNm de 1683pb identifié par la séquence SEQ ID No : 1 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST sur la base de séquences GENBANK permet de l'identifier sous le numéro d'accession BC008502. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 159 au nucléotide 458. Nous avons donc identifié une protéine GS-P1, résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine est composée de 99aa , identifiée sous le numéro SEQ ID No 54 dans la liste de séquences en annexe, appelée Angioinducine - GS-N2 ; un ARNm de 1649 pb, identifié par la séquence SEQ ID No : 2 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST sur la base de séquences GENBANK permet de l'identifier sous le numéro d'accession NM 022823. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 367 au nucléotide 1071. Nous avons donc identifié une protéine GS-P2, résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine est composée de 234 aa , identifiée sous le numéro SEQ ID No 55 dans la liste de séquences en annexe, appelée Angiodockine. - GS-N3 : un ARNm de 5766 pb, identifié par la séquence SEQ ID No : 3 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST sur la base de séquences GENBANK permet de l'identifier sous le numéro d'accession AB007963. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 978 au nucléotide 2465. Nous avons donc identifié une protéine GS-P3, résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine est composée de 495 aa , identifiée sous le numéro SEQ ID No 56 dans la liste de séquences en annexe, appelée Angioblastine. - GS-N4 : un ARNm de 5242 pb identifié par la séquence SEQ ID No : 4 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST sur la base de séquences GENBANK permet de l'identifier sous le numéro d'accession AB037835. La séquence de cet ARNm a une séquence codante partielle du nucléotide 1 au nucléotide 4762. Nous avons donc identifié une protéine GS-P4, résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine est composée de 1586 aa, identifiée sous le numéro SEQ ID No 57 dans la liste de séquences en annexe, appelée Angioreceptine - GS-N5 : un ARNm de 2153 pb identifié par la séquence SEQ ID No : 5 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST sur la base de séquences GENBANK permet de l'identifier sous le numéro d'accession AK025682. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 38 au nucléotide 691. Nous avons donc identifié une protéine GS-P5, résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine est composée de 217 aa, identifiée sous le numéro SEQ ID No 58 dans la liste de séquences en annexe, appelée Angiodensine. - GS-N6 : un ARNm de 3005 pb identifié par la séquence SEQ ID No : 6 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST sur la base de séquences GENBANK permet de l'identifier sous le numéro d'accession AK023284. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 90 au nucléotide 773. Nous avons donc identifié une protéine GS-P6, résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine est composée de 227 aa, identifiée sous le numéro SEQ ID No 59 dans la liste de séquences en annexe, appelée Vassoserpentine. - GS-N7 : unARNm de 4397 identifié par la séquence SEQ ID No : 7 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST sur la base de séquences GENBANK permet de l'identifier sous le numéro d'accession AB033073. La séquence de cet ARNm a une séquence codante partielle du nucléotide 286 au nucléotide 2943. Nous avons donc identifié une protéine GS-P7, résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine est composée de 885 aa, identifiée sous le numéro SEQ ID No 60 dans la liste de séquences en annexe, appelée Angiosulfatine. - GS-N8 : un ARNm de 5844pb identifié par la séquence SEQ ID No : 8 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST sur la base de séquences GENBANK permet de l'identifier sous le numéro d'accession AB023187:. La séquence de cet ARNm a une séquence codante partielle du nucléotide 1 au nucléotide 3456. Nous avons donc identifié une protéine GS-P8, résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine est composée de 1151 aa, identifiée sous le numéro SEQ ID No 61 dans la liste de séquences en annexe, appelée Vassoreceptine. - GS-N9 : un ARNm de 4266 pb identifié par la séquence SEQ ID No : 9 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST sur la base de séquences GENBANK permet de l'identifier sous le numéro d'accession AB014587. La séquence de cet ARNm a une séquence codante partielle du nucléotide 1 au nucléotide 3528. Nous avons donc identifié une protéine GS-P9, résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine est composée de 1175 aa, identifiée sous le numéro SEQ ID No 62 dans la liste de séquences en annexe, appelée Angiokinasine. L'angiokinasine est homologue avec la MAP4K4 (SEQ ID No. : 224 dans la liste de séquences en annexe), n accession : XM~038751 (Séquence nucléique:4197 bp, séquence protéique : 1141aa). L'un des mécanismes par lequel les cellules répondent au stimuli externe est le recrutement des chaînes constituées d'un ensemble de protéines qui assurent le relais du signal externe vers l'intérieur des cellules. En assurant la transduction du signal, cette chaîne change l'environnement intracellulaire contrôlant ainsi la transcription génique (revues: Avruch, 1998, Mol. Cell. Biochem., 182,31-48; Karin, 1998, Ann. N. Y. Acad. Sci. 851,139-146). Un nombre important de ces chaînes et par conséquent les voies de signalisation qui sont hautement conservées à travers l'évolution sont nommées collectivement les voix des protéines kinases activées par des agents mitogènes (MAPK)(Gupta et al, 1996, EMBO J., 15, 2760-2770; Madhani et Fink, 1998, Trends Genet. 14,151- 155). La voix MAPK classique est déclenchée par la liaison des facteurs de croissance à leur récepteur de la surface cellulaire conduisant à l'activation de la protéine Ras, GTPase. Cette voix résulte en l'activation des protéines kinases régulées par les signaux extracellulaires (ERKs) conduisant à la transcription génique et la prolifération cellulaire. Une voix parallèle de MAPK est stimulée par des facteurs de stress tels que le choc osmotique, les produits cytotoxiques, les radiations UV ou encore les cytokines inflammatoires. Cette voix résulte en l'activation des protéines kinase activées par le stress, connues sous le nom des kinases agissant sur le N-terminal de c-Jun (SAPK/JNKs) (Karin, 1998, Ann. N. Y. Acad. Sci. 851,139- 146). Une seconde voix activée par le stress conduit à l'activation de la MAPK p38. L'effet de l'activation par le stress couvre la prolifération, la différentiation ou encore la transcription génique conduisant à l'arrêt du cycle cellulaire et/ou l'apoptose tout dépend du type cellulaire et le stimulus (Karin, 1998, Ann. N. Y. Acad. Sci. 851, 139-146). Plusieurs études ont rapporté un rôle pour les MAPK 1 et 2 ainsi que la MAPK p38 dans les voix de transduction du signal provoquées par des facteurs angiogéniques ou anti-angiogéniques durant l'angiogenèse, cependant aucun rôle n'a été signalé pour la MAKP4 dans ce processus (Tanaka et al, 1999, Jpn J Cancer Res,90 : 654 ; et al, 2000, Cancer Res, 60:712-721; Gupta et al, 1999, Exp Cell Res, 247 :495-504; et al, 1998, Nature, 391 :24-25; et al, Oncogene,1997, 15 : 2169-2177 ; Shore et al, 1997, Placenta, 18:657-665). La MAPK 4 est un des membres de la famille des MAPK. Cette kinase phosphoryle directement et par conséquent active les kinases agissant directement sur le N-terminal c-Jun (JNK), en réponse aux stress et/ou aux cytokines inflammatoires. La MAPK 4 est exprimée dans différents tissus, cependant on note une abondance de l'expression de cette kinase dans les muscles squelettiques et le cerveau. Les souris déficientes du gène de la MAPK 4 développent des hépathogénèses anormales et meurent à l'état embryogénique au quatorzième jour. Cependant des lignées cellulaires déficientes en MAPK 4 ont été obtenues. Ces lignées se caractérisent par l'absence de transcription génique dépendante de JNK et du facteur de transcription AP-1. De plus, les lymphocytes T, déficients en MAPK 4 montrent un découplage de la production de 1' IL-2 suite à l'activation des récepteurs des cellules T suggérant un rôle clé pour MAPK4/JNK dans le processus inflammatoire. La mutation de la MAPK4 chez certains carcinomes indique qu'elle peut jouer un rôle de suppresseur de tumeurs. Bien que le contrôle de l'expression et l'activité de la MAPK4 fassent l'objet à l'heure actuelle d'intenses analyses et études, celles-ci sont dans une approche pour élaborer une thérapie anti-inflammatoire et anticancéreuse. Cependant, le rôle de la MAPK4 dans l'angiogenèse n'a pas été démontré jusqu'à nos jours. Pedram et al (Endocrinology, 2001,142:1578-86) ont montré que le peptide natriuretique supprime ou inhibe l'angiogenèse induite par le VEGF, et ils ont également montré que l'activation des kinases agissant directement sur le N-terminal de c-Jun est une étape importante dans l'induction de l'angiogenèse par le VEGF. A l'encontre, Jimenez et al, Oncogene, 2001,20: 3443-3448) ont rapporté que l'activation des kinases agissant sur le N-terminal de c-Jun est nécessaire pour l'inhibition de la néovascularisation par la thrombospondine 1. Dans un cas comme dans l'autre, ces deux récentes études ne se rapportent pas à un rôle spécifique de la MAP4K4 dans la régulation de l'angiogenèse. - GS-N10: un ARNm de 2034 bp identifié par la séquence SEQ ID No : 10 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST sur la base de séquences GENBANK permet de l'identifier sous le numéro d'accession XM 035658. Cette séquence est homologue de la séquence GSN54. GS-N54 : un ARNm de 4749 pb identifié par la séquence SEQ ID No : 16 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST sur la base de séquences GENBANK permet de l'identifier sous le numéro d'accession AK024248. Cet ARNm n'a pas de séquence codante. La séquence de ARNm GS-N10 a une séquence codante du nucléotide 618 au nucléotide 1787. Nous avons donc identifié une protéine GS-P10, résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine est composée de 389 aa, identifiée sous le numéro SEQ ID No 63 dans la liste de séquences en annexe, appelée Vassosubstratine. - GS-N11: un ARNm de 1817pb appelé identifié par la séquence SEQ ID No : 11 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST sur la base de séquences GENBANK permet de l'identifier sous le numéro d'accession NM 032181. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 439 au nucléotide 897. Nous avons donc identifié une protéine GS-P11, résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine est composée de 152 aa, identifiée sous le numéro SEQ ID No 64 dans la liste de séquences en annexe, appelée Angiosignaline. - GS-N12: un ARNm de 4131pb identifié par la séquence SEQ ID No : 12 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST sur la base de séquences GENBANK permet de l'identifier sous le numéro d'accession AB023233. La séquence de cet ARNm a une séquence codante partielle du nucléotide 1 au nucléotide 2384. Nous avons donc identifié une protéine GS-P12, résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine est composée de 793 aa, identifiée sous le numéro SEQ ID No 65 dans la liste de séquences en annexe, appelée Angiofoculine. - GS-N13: un ARNm de 2566pb identifié par la séquence SEQ ID No : 13 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST sur la base de séquences GENBANK permet de l'identifier sous le numéro XM~018273. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 426 au nucléotide 2345. Nous avons donc identifié une protéine GS-P13, résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine est composée de 639 aa, identifiée sous le numéro SEQ ID No 66 dans la liste de séquences en annexe, appelée Angiohélicine. - GS-N14: un ARNm de 1830pb identifié par la séquence SEQ ID No : 14 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST sur la base de séquences GENBANK permet de l'identifier sous le numéro d'accession AK022109. Cette séquence ne contient pas de séquence codante. - GS-N15: un ARNm de 6253 pb identifié par la séquence SEQ ID No : 15 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST sur la base de séquences GENBANK permet de l'identifier sous le numéro d'accession NM 014873. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 228 au nucléotide 1340. Il a été donc identifié une protéine GS-P15, résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine est composée de 370 aa, identifiée sous le numéro SEQ ID No 67 dans la liste de séquences en annexe, appelée angioacyline. Les séquences d'acide nucléiques nommés GS-N16 à GS-N53 identifiées par les numéros SEQ ID No : 17 à SEQ ID No : 53, et SEQ ID No. : dans la liste de séquences en annexe et respectivement les protéines codées par lesdits acides nucléiques, identifiées sous les numéros SEQ ID No. : à SEQ ID No. : dans la liste de séquences en annexe n' ont pas été identifiées auparavant comme ayant un rôle biologique dans le processus de l'angiogènese ou la différentiation des cellules endothéliales en tubes capillaires. Ces séquences sont décrites ci-dessous. -GS-N16: un ARNm de 3139 pb identifié sous le numéro de séquence SEQ ID No : 17 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession XM~011833 (Homo sapiens phosducin-like (PDCL) dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une région codante du nucléotide 167 au nucléotide 1072. Une protéine GS-P16 résultante de la traduction de cet ARNm a donc été identifiée. Cette protéine dont la séquence est identifiée sous le numéro SEQ ID No : 68 dans la liste de séquences en annexe est un analogue de la phosducine appelée PDCL, composée de 301 aa. Les protéines G (protéines liant la guanine) jouent un rôle majeur dans les voies de signalisations transmembranaires par transmission de signaux extracellulaires à travers des récepteurs transmembranaires vers leurs effecteurs intracellulaires appropriés (Gilman, 1987, Annu. Rev. Biochem., 56,615-649; Simon et al, 1991, Science, 252, 802-808). Après liaison du ligand, le récepteur catalyse l'échange du GDP pour un GTP sur la sous unité alpha de la protéine G hétérotrimérique qui provoque son activation et la dissociation de la sous unité alphaGTP des sous unités béta et gamma (Gilman, 1987, Annu. Rev. Biochem., . 56, 615-649). Les voies de signalisations dépendantes de la protéine G sont désignées pour amplifier et intégrer une multiplicité de réponses à la fois stimulatrices et inhibitrices et leur importance dans la fonction cellulaire est telle, qu'elles sont étroitement régulées. La PhLP (phosducin-like protein) est un de ces éléments régulateurs, elle appartient à la famille des phosducines et ses isoformes, protéines qui lient les sous unités béta/gamma de la protéine G, bloquant ainsi leur fonction (Lee et al, 1987, Biochemistry 26,3983-3990; Miles et al., 1993, Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A.,90, 10831-10835 ; Craft et al, 1998, Biochemistry 37,15758- 15772). La phosducine, fortement exprimée dans les cellules photoréceptrices de la rétine (.(Lee et al, 1987, Biochemistry 26,3983-3990; Wilkins et al, 1996, J. Biol. Chem., 271,19232-19237) a été proposée intervenir dans l'adaptation à la lumière (Willardson et al, 1996, Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A., 93,1475-1479). Par contre, la fonction de PhLP est moins connue, cette protéine est plus largement exprimée (Miles et al, 1993, Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 90,10831-10835) et lie également les sous unités beta/gamma de la protéine G avec une haute affinité (Schrôder et Lohse, 1996, Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A., 93,2100-2104; Thibault et al, 1997, J. Biol. Chem., 272, 12253-12256). Cette protéine est proposée représenter un homologue de la phosducine qui régule un certain nombre de voies dépendantes de la protéine G dans beaucoup de types cellulaires (Savage et al, 2000, J. Biol. Chem., Vol. 275, 39, 30399-30407). Mais à ce jour, aucun rôle de la PhLP n'a été décrit dans la régulation de l'angiogenèse. - GS-N17: un ARNm de 2326pb identifié sous le numéro de séquence SEQ ID No 18 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession BC011860 (Protéine Ribosomale L3 (RPL3)), dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 1030 au nucléotide 2241, identifiée sous le numéro SEQ ID No 69 dans la liste de séquences en annexe. Cette séquence polypeptidique de 403 aa est identique (100% d'identité) à la protéine ribosomale L3 humaine (RPL3) dont la séquence nucléique est plus courte, no accession BC006483 (SEQ ID N 285), BC012786 (SEQ ID N 286). La protéine ribosome L3 (RPL3) est une protéine hautement conservée (Herwig et al, 1992, Eur J Biochem, 207(3):877-85; Van Raay et al, 1996, Genomics:37(2):172-6) localisée dans la grosse sous unité ribosomale. Chez E. Coli, cette protéine est connue lier l'ARN ribosomal 23S et participer dans la formation du centre peptidyltransférase du ribosome (Noller, 1993, Bacteriol. 175 :5297-530039; Noller, 1997, Annu. Rev. Biochem. 66:679- 716). Bien que l'expression différentielle de la protéine ribosomale L3 a été démontrée dans plusieurs études : dans le muscle squelettique dans un modèle d'études de l'obésité chez la souris (Vicent et al, 1998 , Diabetes 47:1451-8), dans l'hypothalamus et le tissus adipeux brun chez la souris impliquant RLP3 dans la régulation de l'équilibre énergétique (Allan et al, 2000, Physiological Genomics, 3 :149-156), expression différentielle n'a été décrite durant l'angiogènese ni dans la régulation de l'angiogènese. - GS-Nl8:un ARNm de 3937 pb identifié sous le numéro de séquence SEQ ID No 19 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession XM~042798 (Protéine 20 RING finger protein 20 (RNF20)) dans la base de séquences GENBANK. Cet ARNm présente une séquence codante du nucléotide 89 au nucléotide 3016, sa traduction directe permet d'identifier une protéine homologue de la protéine RNF20 composée de 975 aa, (GS-P18), identifiée sous le numéro SEQ ID No 70 dans la liste de séquences en annexe. Cette séquence GS-P18 présente une identité totale avec la séquence protéique déduite de la séquence nucléotidique identifiée sous le numéro d'accession AF265230 dans la base GENBANK et sous le numéro SEQ ID No. 287 dans la liste de séquences en annexe. Les séquences nucléiques correspondant aux deux protéines présentent entre elles une homologie de 99%. la protéine RNF20 est encore peu connue, mais elle se caractérise par la présence du domaine RING FINGER. Les protéines Ring finger sont susceptibles de jouer un rôle dans la formation et l'architecture de larges complexes protéiques qui contribuent à divers processus cellulaires tels que la transduction du signal, l'oncogènese, l'apoptose, le développement, la différentiation, la régulation des gènes, l'ubiquination (Saurin et al, 1996, Trends Biochem. Sci. 21,208- 214;Borden, 2000, J. Mol. Biol., 295, 1103-1112 ; Topcu et al, 1999, Oncogene 18,7091-7100). A ce jour, il n'a pas été décrit que la protéine RNF20 soit impliquée dans la régulation de l'angiogènese. - GS-N19: un ARNm de 2167 pb identifié sous le numéro SEQ ID No 20 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession BC002781 (Protéine analogue du facteur d'épissage, arginine/serine-rich 4), dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm présente une région codante, du nucléotide 107 au nucléotide 1591. Une protéine GS-P19 résultante de la traduction de cet ARNm, présentée sous le numéro SEQ ID No 71 dans la liste de séquences en annexe a donc été identifiée. Cette protéine composée de 494aa est homologue du facteur d'épissage, arginine/serinerich 4 (SFRS4) également appelé SRp75 et présente les mêmes domaines caractéristiques. La SRp75 appartient à la famille des protéines SR du fait qu'elle contient en N-terminale un domaine conservé, RRM (motif de reconnaissance de l'ARN), une région riche en glycine, une région interne homologue au RRM et un long (315aa) domaine C-terminal composé essentiellement de résidus serine et arginine en alternance (domaine RS) (Zahler et al, Mol Cell Biol 1993 Jul;13(7):4023-8). Les protéines SR constituent une famille de phosphoprotéines nucléaires qui sont nécessaires pour l'épissage constitutif mais également influencent la régulation de l'épissage alternatif. Les protéines SR ont une structure en modules (un ou deux domaines RRM et un domaine RS). Chaque domaine dans les protéines SR est un module fonctionnel. L'action coordonnée des domaines RRM détermine leur spécificité de liaison aux ARNs, tandis que les domaines RS fonctionnent comme les activateurs d'épissage (Câceres et al., 1997, J. Cell Biol., 138,225- 238 ; Chandler et al., 1997, Proc. Natl Acad. Sci. USA, 94, 3596-3601 ; Mayeda et al., 1999, Mol. Cell. Biol., 19, 1853-1863 ; Graveley et Maniatis, 1998, Mol. Cell, 1,765- 771). Différents travaux ont permis de suggérer des fonctions uniques dans l'épissage alternatif des pré-ARNm pour des protéines SR particulières, d'autant qu'elles sont exprimées différentiellement dans une variété de tissus. Ces protéines SR sont ainsi présentées comme cruciales dans la régulation de l'épissage au cours du développement et de la différentiation des cellules (Zahler et al, Science 1993 Apr 9;260(5105):219-222 ; Fu, 1993, Nature, 365(6441):82- 8 ; Câceres et Krainer,1997, (ed. Krainer), Oxford University Press, Oxford, UK, pp. 174-212; Valcarcel et Green, 1996, Trends Biochem Sci, 21(8):296-301). Une étude récente montre un niveau d'expression variable de SRp75 dans différentes lignées cellulaires lymphoïdes (Dam et al, 1999, Biochim Biophys Acta ; 1446(3):317-33. A ce jour, aucun rôle dans la régulation de l' angiogènese n'est décrit ni pour SFRS4 ou SRp75 ni pour la protéine homologue de ce facteur. - GS-N20 : unARNm de 5801 pb identifié sous le numéro SEQ ID No 21 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession U65090 (Carboxypeptidase D) dans la base de séquences GENBANK La séquence de cet ARNm a une région codante du nucléotide 36 au nucléotide 4169. Une protéine GS-P21, issue de la traduction directe de cet ARNm, présentée sous le numéro SEQ ID No 72 dans la liste de séquences en annexe a donc été identifiée. Cette protéine appelée Carboxypeptidase D est composée de 1377 aa. La carboxypeptidase D (CPD de la famille S10 des sérines peptidases) est une protéine transmembranaire (180 kDa) qui mature les protéines dans le réseau trans- golgien et notamment les protéines sécrétées via la voie constitutive comme les facteurs de croissance et leurs récepteurs : récepteur de l'insuline, récepteur insulinelike des facteurs de croissance (Reznik et al, 1998, J ; Histochem. Cytochem., 46,1359). C'est une carboxypeptidase avec une activité identique à la carboxypeptidase E (CPElike) qui est largement distribuée dans les tissus. Les carboxypeptidases interviennent en éliminant les acides aminés basiques de la partie C-terminale du peptide pour générer soit le produit bioactif soit le précurseur pour la formation du groupement amide C-terminal (Fricker, 1988, Annu. Rev. Physiol., 50,309-321; Fricker, 1991, (ed) Peptide Biosynthesis and Processing, pp. 199-230, CRC Press, Boca Raton, FL). LA CPD est constituée, chez l'homme, de trois domaines carboxypoeptidase-like, d'un domaine transmembranaire et d'une petite queue cytosolique de 58 résidus (Novikova et al, 1999, J. Biol. Chem., 274,28887) capable de lier la Protéine Phosphatase A (PP2A) (Varlamov et al, 2001, J. Cell Science, 114,311). C'est une protéine hautement conservée entre les espèces avec des propriétés enzymatiques similaires. La CPD est grandement exprimée dans le placenta humain. On la trouve notamment dans les cellules endothéliales, les trophoblastes, les cellules épithéliales amniotiques, les cellules à villosités endothéliales chorioniques ou les cellules vasculaires de muscle lisse des cordons ombilicaux (Reznik et al, 1998, J ; Cytochem., 46,1359). CPE et CPD sont également impliquées dans l'élaboration du précurseur de l'endothéline 1 (ET-1). Ceci suggère que la CPE et la CPD sont impliquées dans l'élaboration de certains peptides ombilicaux et du placenta ayant des fonctions autocrine et/ou paracrine. A ce jour, aucun rôle régulateur de la protéine CPD dans l'angiogènese n'a été décrit. - GS-N21 : unARNm de 8171 pb identifié sous le numéro SEQ ID No 22 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession NM~004652 (Protéase 9 spécifique de l'ubiquitine) dans la base de séquences GENBANK La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 60 au nucléotide 7751. Il a été ainsi identifié une protéine résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée GS-P21, Protéase 9 spécifique de l'ubiquitine, est composée de 2563 aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 73 dans la liste de séquences en annexe La protéine USP9X appartient à la famille des UBPs (Ubiquitine protéases), groupe d'enzymes dont la fonction est d'inverser la réaction d'ubiquitination en enlevant le résidu ubiquitine de nombreux substrats impliqués dans la division cellulaire, la croissance, la différentiation, la signalisation ou l'activation de la transcription (Liu et al, 1999, Mol Cell Biol, 4,3029- 38 ;Zhu et al, 1996, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93 :3275- 3279 ; Verma et al, 1995, Genes Dev. 9:2723-2735) L'ubiquitination des protéines est un important phénomène de régulation des voies biologiques telles que la transduction activée par les cytokines (Baek et al, 2001, Blood, 98, 636-642). Les UBPs sont caractérisées par un domaine c#ur conservé avec des séquences divergentes environnantes et plus particulièrement à la partie Nterminale permettant la spécificité de substrat. Ces divergences en N terminale peuvent altérer la localisation et conférer des fonctions multiples aux différents membres de la grande famille des UBPs (Lin et al, 2001, J Biol Chem, 276(23):20357-63). Certaines protéases spécifiques de l'ubiquitine ont déjà été décrites ou suggérées impliquées dans certains processus biologiques, tels que l'UBP109 dans le développement embryonnaire (Parket al, 2000, Biochem J, ; 349, 443-53), l'UBP43 dans la différentiation des cellules hématopoïétiques (Liu et al, 1999, Mol Cell Biol, 4,3029- 38). La voie de l'ubiquitination est impliquée dans l'angiogènese (Ravi et al, 2000,14, 34-44 ; Sutter et al, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 97, Issue 9,4748-4753) mais l'USP9X n'a jamais décrit à ce jour comme régulateur de l'angiogènese. *- GS-N22 : unARNm de 3851 pb identifié sous le numéro SEQ ID No 23 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession NM~002525 (Nardilysine (N-arginine dibasic convertase) (NRD1)) dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 136 au nucléotide 3795. Il a été ainsi identifié une protéine GS-P22 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine Nardilysine est composée de 1219aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 74 dans la liste de séquences en annexe. La N-arginine dibasic convertase (NRD convertase ; nardilysine ; EC 3. 4.24.61) est une métalloendopeptidase de la famille des insulinases qui clive spécifiquement les peptides (particulièrement des peptides neuroendocrines tels que la somatosatine-28, la dynorphine-A, le facteur atrial natriuretique) du côté Nterminal d'un résidu Arginine au niveau des sites dibasiques in vitro (Cohen et al, 1995, Methods Enzymol., 248,703-716; Hospital et al, 1997, Biochem. J., 327,773- 779). In vivo, sa fonction exacte demeure encore mal connue mais beaucoup d'enzymes de la même famille sont impliquées dans la maturation des prohormones et des proprotéines (Winter et al, 2000, Biochem. J., 351,755-764). L'activité NRD convertase est présente principalement dans les tissus endocrines et majoritairement dans les testicules (Chesneau, et al, 1994, J. Biol. Chem., 269,2056-2061). Elle peut être localisée à la fois dans le cytoplasme et à la surface cellulaire (Hospital et al, 2000, Biochem. J., 349,587-597). Actuellement peu de choses sont connues sur la régulation de l'expression et de l'activité de la NRD convertase. L'activité semble être régulée par les amines qui lient le domaine acide (stretch) de l'enzyme (Csuhai et al, 1998, Biochemistry,37(11):3787-94). L'acide rétinoique a également été montré comme pouvant moduler l'expression de l'enzyme dans les lignées neuroblastiques humaines (Draoui et al, 1997, J. Neurooncol., 31,99-106). Chez le rat adulte, l'expression régulée de la NRD convertase durant la spermatogénèse et sa concentration dans le flagelle suggère un rôle de cette enzyme dans la différentiation des cellules germinales mâles (Chesneau, et al, 1996, J. Cell Sci. 109,2737-2745). Cette enzyme est également proposée jouer un rôle spécifique dans le développement neuronal (Fumagalli et al, 1998, Genomics 47, 238-245). Récemment, la NRD convertase a été décrite comme un nouveau récepteur spécifique du facteur de croissance type EGF liant l'héparine (HB-EGF) qui contrôle la migration cellulaire (Nishi et al, 2001, EMBO J,20(13):3342-50). Par contre, aucun rôle ne lui a été découvert, à ce jour, dans la régulation de l'angiogènese - GS-N23 : unARNm de 13107 pb identifié sous le numéro SEQ ID No 24 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession XM~016303(ARNm de myeloid/lymphoid or mixedlineage leukemia(MLL)) dans la base de séquences GENBANK. La séquence d'ARNm identifiée par le numéro SEQ ID No 24 a une séquence codante du nucléotide 1872 au nucléotide 10001. Il a été ainsi identifié une protéine GSP23 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée MLL est composée de 2709aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 75 dans la liste de séquences en annexe. Cette séquence GS-N23 présente au moins 86% d'homologie avec les séquences suivantes : - GS-N47 : unARNm de 14255 bp identifié sous le numéro SEQ ID No 48 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession L04731 dans la base de séquences GENBANK. Cette séquence d'ARNm n'a pas de séquence codante. Elle comprend la séquence GS-N23, avec une homologie de 90%. - GS-N48 : unARNm de 11910 bp identifié sous le numéro SEQ ID No 49 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession NM~005933 dans la base de séquences GENBANK. La séquence d'ARNm identifiée par le numéro SEQ ID No 48 a une séquence codante du nucléotide 1 au nucléotide 11910. Il a été ainsi identifié une protéine GSP48 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée MLL est composée de 3969aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 99 dans la liste de séquences en annexe. Le gène de la leucémie lymphoblastique aiguë-1 (ALL)-l ou Myeloid-lymphoid or Mixed-lineage Leukemia (MLL) ou encore appelé human tri-thorax (HRX) sur le chromosome humainll, bande q23 est le site de beaucoup d'altérations chromosomales regroupées localement (délétions, duplications partielles, translocations) associées avec plusieurs types de leucémies. Les protéines structurellement variantes dérivées du gène altéré est présumé causer la transformation maligne des cellules hématopoiétiques progénitrices (Nilson, Br J Haematol,1996, 93(4):966-72; Kobayashi et al, 1995, Leuk Lymphoma, 17(5- 6):391-9). La protéine MLL est une grosse protéine nucléaire avec des motifs en doigt de zinc et domaine SET, hautement conservé de 200aa localisé dans sa partie C-terminale. Cette protéine est largement exprimée pendant l'embryogenèse ; des études ont montré que cette protéine est un régulateur positif des gènes homeobox Hox (Yu, et al, 1995, Nature (London) 378,505-508). La protéine MLL est décrite comme étant impliquée dans la maintenance transcriptionnelle dans le développement qui fonctionne dans des processus morphogénétiques multiples (Yu et al, 1998, Vol. 95, Issue 18,10632-10636) . La protéine MLL est suggérée jouer un rôle dans la régulation à la fois de la prolifération cellulaire et la survie dans l'embryon en développement (Hanson et al, 1999, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 96, Issue 25,14372-14377). A ce jour aucun rôle n'a été décrit pour la protéine MLL dans la régulation de l'angiogènese. - GS-N24 : unARNm de 10330 identifié sous le numéro SEQ ID No 25 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession U72937 (Helicase et ATPase dépendante de l'ADN (ATRX), produit 2 de l'épissage alternatif) dans la base de séquences GENBANK. Cette séquence est homoloque, avec au moins 95% d'identité de la séquence : - GS-N49 : unARNm de 10452 bp identifié sous le numéro SEQ ID No 50 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession U72936 dans la base de séquences GENBANK. La séquence d'ARNm identifiée sous le numéro SEQ ID No 25 a une séquence codante du nucléotide 216 au nucléotide 7694. Il a été ainsi identifié une protéine GSP24 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée ATRX produit 2 est composée de 2492 aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 76 dans la liste de séquences en annexe. La séquence d'ARNm identifiée par le numéro SEQ ID No 50 a une séquence codante du nucléotide 950 au nucléotide 7816. Il a été ainsi identifié une protéine GSP49 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée ATRX produit 1 est composée de 2288aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 100 dans la liste de séquences en annexe. Les protéines identifiées par les numéros SEQ ID No 76 et 100 sont homologues à 90%. Depuis son identification en 1995, le gène ATRX (synonymes XNP, XH2) a été montré être le gène de nombreuses formes de maladies, différents syndromes de retard mental associé au chromosome X sont liés à des mutations de ce gène.(Revue: Gibbons et Higgs, 2000, Am J Med Genet,97(3):204-12). Ce gène code pour une protéine du sous-groupe SNF2 de la superfamille des hélicases et ATPases (Picketts et al, 1996, Hum Mol Genet 5 (12):1899- 907), ces domaines suggèrent que la protéine ATRX a un rôle dans la régulation transcriptionnelle via un effet sur la structure et/ou la fonction de la chromatine, mais son rôle exacte n'est pas encore connu. Aucun rôle dans la régulation de l'angiogènese n' a été décrit à ce jour. - GS-N25 : unARNm de 1777 pb identifié sous le numéro SEQ ID No 26 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession NM~006476 (Transporteur de l'acide sialiqueCMP, membre 1 (SLC35Al))dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 28 au nucléotide 1041. Il a été ainsi identifié une protéine GS-P25 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée Transporteur de l'acide sialique-CMP est composée de 337a. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 77 dans la liste de séquences en annexe. - GS-N50 : unARNm de 1874 bp identifié sous le numéro SEQ ID No 225 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession BC008372 dans la base de séquences GENBANK. La séquence d'ARNm identifiée par le numéro SEQ ID No 225 n'a pas de séquence codante. Le transporteur de CMP-acide sialique est impliqué dans le processus de maturation de la glycosylation et plus particulièrement la sialylation ; il permet la translocation de l'acide CMP-sialique cytosolique à travers la membrane de l'appareil de Golgi nécessaire pour la sialylation des protéines membranaires ou sécrétées aussi bien que les lipides dans ce compartiment. (Hirschberg et Snider, 1987, Annu. Rev. Biochem., 56,63- 88 ; Hirschberg, 1996, in Organellar Ion Channels and Transporters Society of General Physiologist, 49th Annual Symposium (Clapham, D. E., and Ehrlich, B. E., eds), pp. 105-120, Rockefeller University Press, New York). La régulation du transport du CMP- acide sialic est encore mal connue si ce n'est qu'une augmentation de sialylation a été observée à la surface des cellules tumorales (Santer et al, 1989, Eur. J. Biochem., 181,249-260; Saitoh et al, 1992, J. Biol. Chem., 267,5700-5711; Bresalier et al, 1996, Gastroenterology, 110,1354-1367; Gorelik et al, 1997, Cancer Res. 57,332-336) et que l'inhibition du transporteur de CMP-acide sialic réduit la croissance et les métastases des cellules tumorales (Harvey, B. E., and Thomas, P. (1993) Biochem. Biophys. Res. Commun. 190,571- 575). Mais à ce jour, aucune implication de ce transporteur n'a été rapportée dans la régulation de l'angiogènese. - GS-N26 : unARNm de 3982 pb identifié sous le numéro SEQ ID No 27 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession U26710 dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 323 au nucléotide 3271. Il a été ainsi identifié une protéine GS-P26 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée cbl-b est composée de 982aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 78 dans la liste de séquences en annexe. Cbl-b appartient à la famille des Cbl, hautement conservée à travers les espèces. Les protéines Cbl sont caractérisées dans leur partie N-terminale par un domaine putatif liant les phosphotyrosines et un motif doigt de RING dans la partie C-terminale, les protéines Cbl de mammifères contiennent une région riche en proline, des résidus tyrosines conservés et un motif leucine Zipper. Les protéines Cbl participent à la signalisation des protéines des récepteurs à tyrosine kinase, aussi bien que les antigènes et les récepteurs des cytokines en s'associant à leur queue cytoplasmique assurant la continuité du signal de ces récepteurs. La protéine Cbl est recrutée par le module tyrosine kinase de ces récepteurs et les tyrosines phosphorylées après l'activation cellulaire. Cbl fonctionne comme une protéine d'arrimage et s'associe avec les molécules contenant les domaines SH2 et SH3, incluant la famille des adaptateurs Crk et Vav. Les protéines Cbl sont proposées aussi bien comme des régulateurs négatifs de la signalisation des récepteurs tyrosines kinases (Smit et al, Crit Rev Oncog 1997;8:359-79) que des modulateurs positifs de la signalisation de récepteurs tels que la superfamille des récepteurs de TNF (Arron et al, J Biol Chem 2001 Aug 10;276:30011-7). La protéine Cbl-b, largement exprimée dans beaucoup de tissus et cellules incluant les cellules hématopoïétiques (Keane et al, Oncogene 1995 Jun 15;10(12):2367-77), est impliquée dans la mise en place du seuil d'activation des lymphocytes (Bachmaier et al, Nature 2000,403:211-6; Fang et al, J Biol Chem 2001;276:4872- 8). La sous unité régulatrice P85 de la phosphatidylinositol 3-kinase (PI3K) a été identifiée comme étant son substrat. La Cbl-b, par son activité ligase de la protéine ubiquitine E3 régule négativement cette sous unité régulatrice P85 (Fang D, Nat Immunol 2001 Sep;2(9):870-5). Cbl-b est également un régulateur négatif de la signalisation du récepteur du facteur de croissance épidermal, EGFR (Ettenberg et al, Oncogene 1999;18:1855-66; Ettenberg et al, J Biol Chem 2001;276:27677-84). Par contre à ce jour, il n'a pas été décrit que Cbl-b joue un rôle dans la régulation de l'angiogènese. - GS-N27 : un ARNm de 3385 pb identifié sous le numéro SEQ ID No 28 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession XM~39529 dans la base de séquences GENBANK. Cette séquence présente 86% d'homologie avec la séquence suivante : - un ADNc (DKFZp564D173) de 4461 pb identifié sous le numéro SEQ ID No 51 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession AL110212 dans la base de séquences GENBANK. Il n'y a pas de séquence codante correspondante. La séquence d'ARNm identifiée sous le numéro SEQ ID No 27 a une séquence codante du nucléotide 107 au nucléotide 451. Il a été ainsi identifié une protéine GSP27 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée Histone H2A.F/Z variant (H2AV) est composée de 114aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 79 dans la liste de séquences en annexe. L'unité de base de la chromatine chez les eucaryotes est le nucléosome. Un nucléosome est constitué d'une séquence d'ADN de 146pb enroulée autour d'un octamère de protéines, les histones H2A, H2B, H3, H4 (Lugeret al, 1997, Nature, 389,251-260). L'hétérogénéité dans la structure des nucléosomes peut être un mécanisme de régulation transcriptionnelle. Cette hétérogénéité est créée soit par modifications post-traductionnelles des histones telles que l'acétylation, la phosphorylation, la méthylation, l'ubiquitination (Mizzen et al, Cold Spring Harb Symp Quant Biol 1998;63:469-81 ; Workman et Kingston, 1998, Annu. Rev. Biochem., 67 :545-579) soit l'incorporation de variants d'histones dans le nucléosome. Les différentes variantes d'histones permettent la spécialisation de la structure du nucléosome dans des buts spécifiques ; les variantes d'histones spécifiques du sperme, par exemple, facilitent la compaction dramatique de l'ADN qui se produit lors de la spermatogénèse (Wolffe, 1998, Chromatin: Structure and Function , 3rd Ed. , Academic Press, San Diego ; Doenecke et al, 1997, Adv. Exp. Med. Biol., 424, 37-48). L'histone H2A.F/Z est une famille de variants de l'histone H2A qui est hautement conservée à travers les espèces et substantiellement divergente de l'histone H2A de la phase S dans des espèces données (Jackson et al, 1996, Trends Biochem. Sci., 221,466-467 ; Jiang et al, 1998, Biochem. Biophys. Res. Commun., 245,613-617 ). La fonction exacte de H2A.F/Z n'est pas encore connue, mais cette histone peut jouer un rôle dans la régulation transcriptionnelle car chez Tetrahymena, son expression est associée avec le macronoyau actif transcriptionnellement et chez Drosophila son incorporation dans la chromatine pendant le développement coïncide avec le début de l'expression du gène zygotique (Clarkson et al, 1999, DNA Cell Biol., 18,457-462 ; Stargell et al, 1993, Genes Dev., 7,2641-2651). Par contre, à ce jour, aucun rôle n'est connu pour l'histone H2A.F/Z dans la régulation de l'angiogènese. - GS-N28 : unARNm de 1128 pb identifié sous le numéro SEQ ID No 29 dans la liste de séquences en annexe . Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession NM~001320 dans la base de séquences GENBANK. Cette séquence a 77% d'homologie avec la séquence identifiée sous le numéro d'accession M30448 dans la base GENBANK et identifiée sous le numéro SEQ ID No. 289 dans la liste de séquences en annexe. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 97 au nucléotide 744. Il a été ainsi identifié une protéine GS-P28 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée Caseine kinase II, sous unité Beta est composée de 215 aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 80 dans la liste de séquences en annexe. La caséine kinase II (CKII) est une serine/thréonine kinase ubiquitaire qui est localisée aussi bien dans le cytosol que dans le noyau des cellules eucaryotes. La CKII phosphoryle plus de cent substrats, parmi lesquels beaucoup sont impliqués dans le contrôle de la division cellulaire et dans la transduction du signal (revue : Allende et Allende, 1995, The FASEB Journal, Vol 9,313-323). La CKII existe sous forme d'un tétramère composé de deux sous unités catalytiques alpha et/ou alpha' et deux sous unités régulatrices (béta). La sous unité béta semble agir pour stabiliser les sous unités alpha et/ou alpha' et influencer également la spécificité du substrat et les propriétés de cinétique de l'enzyme (Dobrowolska et al, 1999, Mol Cell Biochem, 191(1-2):3-12). Certaines études ont montré que l'activité de la caséine kinase est stimulée par des hormones ou facteurs de croissance tels que l'insuline, l'IGF-I, l'EGF (Sommercorn et al, 1987, Proc. Natl Acad Sci USA, 84,8834-8838; Klarlund et al, 1988, J.Biol. Chem, 263,1872-15875 ; Ackerman et Osheroff, 1989, J. Biol. Chem., 264,11958- 11965), cette activation résultant d'une augmentation de la phosphorylation de la sous unité béta de la caséine kinase (Ackerman et al, 1990, Proc. Natl Acad Sci USA, 87, 821-825). Différentes études ont montré une expression dérégulée de la CKII dans les tumeurs. Des récentes études ont mis en évidence que la surexpression de la CKII dans les cellules de tumeurs n'est pas seulement un reflet de la prolifération des cellules de tumeurs mais aussi elle peut refléter les caractéristiques pathobiologiques de la tumeur. La dérégulation de la CKII pourrait influencer l'activité apoptotique de ces cellules (revue : Tawfic et al, 2001, Histol Histopathol, 16(2):573- 82). Cette enzyme est décrite comme ayant un rôle possible dans l'oncogènese (Yu et al, J Cell Biochem, 1999,74(1):127-34). Par contre, aucune expression différentielle de la CKII ou de sa sous unité béta au cours de l'angiogènese n'a été décrite ni un rôle dans la régulation de l'angiogènese n'a été démontré. - GS-N29 : unARNm de 18207 bp identifié sous le numéro SEQ ID No 30 dans la liste de séquences en annexe . Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession AF156100 dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 230 au nucléotide 17140. Il a été ainsi identifié une protéine GS-P29 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée Hemicentine est composée de 5636aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 81 dans la liste de séquences en annexe. Cette séquence GS-29 comprend la séquence GSN52 ci-dessous, présentant une homologie de 99% avec celleci. GS-N52 : un ARNm de 8546 bp identifié sous le numéro SEQ ID No 52 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession AJ306906 dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une séquence codante pour une protéine GS-P52 de 2673aa identifiée sous le numéro SEQ ID No 101 dans la liste de séquences en annexe . Décrite récemment, l'hémicentine est une protéine de la matrice extracellulaire de la superfamille des Immunoglobulines, qui est impliquée dans l'attachement et la migration cellulaire sur la membrane basale (Vogel et Hedgecock, 2001,Development, 128(6):883-94). Son rôle dans la régulation de l'angiogènese n'est pas décrit à l'heure actuelle. Cette protéine contient la séquence de la fibulin-6 qui appartient à la famille des fibulines, protéines de la matrice extracellulaire et du sang dont les deux membres les plus étudiés sont la fibuline 1 et la fibulin 2 (Alexande et Detwiler, 1984, Biochem. J., 217,67- 71 ; Argraves, et al, 1990, J. Cell Biol., 111,3155-3164; Kluge et al, 1990, Eur. J. Biochem., 193,651-659 ; et al, 1993, J. Cell Biol., 123,1269-1277). Elles interagissent avec des protéines impliquées dans l'adhésion cellulaire comme la fibronectine, la laminine, le fibrinogène (Brown et al, 1994, J Cell Sci,107 ( Pt 1), 329-38 ; Tran et al, 1995, J Biol Chem, 270(33):19458-64 ; Godyna et al, 1995, Matrix Biol, 14(6):467-77) ou encore l'endostatine qui est un inhibiteur de l'angiogènese (Sasaki et al, 1998, EMBO J,17(15):4249-56) ce qui leur confère une fonction régulatrice dans divers processus biologiques. La fibuline 1, par exemple, a été décrite pouvant jouer un rôle dans la régulation de l'activité neurotrophique de la protéine précurseur amyloïde béta (Ohsawa et al, 2001, J Neurochem; 76(5):1411-20), dans l'homéostase et la thrombose (Tran et al, 1995, J Biol Chem, 270(33):19458-64). Par contre, la fonction de la fibuline 6 n'est pas encore connu, et en particulier, aucun rôle de cette protéine n'a été décrit jusqu'à nos jours dans la régulation de l'angiogènese. - GS-N30 : unARNm de 4325 pb identifié sous le numéro SEQ ID No 31 dans la liste de séquences en annexe . Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession NM~015180 dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 123 au nucléotide 3041. Il a été ainsi identifié une protéine GS-P30 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée SYNE-2 est composée de 1092aa.Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 82 dans la liste de séquences en annexe. La protéine Syne-2 est mal connue, elle a été décrite récemment avec une protéine homologue, la protéine Syne-1 (synaptic nuclear envelope-1). La protéine Syne-1 est associée avec les enveloppes nucléaires dans les cellules du muscle lisse, cardiaque et squelettique. Syn-1 est décrite comme la première protéine trouvée être associée sélectivement avec le noyau synaptique et est suggérée être impliquée dans la formation ou la maintenance des agrégats nucléaires dans la jonction musculaire (Appel et al, 2000, J. Biol. Chem., Vol. 275, Issue 41,31986- 31995). Syn-2 diffère de Syn-1 dans la distribution et par son niveau d'expression qui est plus faible. Les deux protéines homologues montrent des domaines répétés de la spectrine qui sont présents dans différentes protéines impliquées dans la structure du cytosquelette (Yan et al, Science 1993 Dec 24;262(5142):2027-30). A ce jour, aucun rôle de Syn-2 n'est décrit dans la régulation de l'angiogènese. - GS-N31 : unARNm de 4248 bp identifié sous le numéro SEQ ID No 32 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession AF261758 dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 100 au nucléotide 1650. Il a été ainsi identifié une protéine GS-P31 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée Seladine-1 est composée de 516aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 83 dans la liste de séquences en annexe. Cette séquence d'ARNm identifiée sous le numéro SEQ ID No 32 dans la liste de séquences en annexe est homologue d'une séquence de 4187 bp. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession D13643 dans la base de séquences GENBANK. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 53 dans la liste de séquences en annexe. Cet ARNm présente une séquence codante partielle. Une protéine GS-P53 de 528aa résultante de la traduction de cet ARNm est ainsi identifiée. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 102 dans la liste de séquences en annexe. Le gène seladin-1 a récemment été identifié dans le cerveau humain. La séladine-1 semble être un important facteur pour la protection des cellules contre la toxicité du peptide béta-amyloide et le stress oxydatif (Greeve et al, 2000, J Neuroscience, 20(19):7345-7352). Ces auteurs suggèrent que la séladine-1 peut être impliquée dans la régulation de la survie et la mort cellulaire et que l'expression diminuée de cette protéine dans des neurones spécifiques peut être une cause pour la vulnérabilité sélective dans la maladie D'Alzheimer. Par contre, à ce jour aucun rôle dans la régulation de l'angiogènese n'a été décrit pour la séladine-1. - GS-N32 : un ARNm de 7764 bp identifié sous le numéro SEQ ID No 33 dans la liste de séquences en annexe . Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession NM~001271 dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 708 au nucléotide 5927. Il a été ainsi identifié une protéine GS-P32 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée CHD2 est composée de 1739aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 84 dans la liste de séquences en annexe. La protéine CHD2 appartient à la famille des CHD protéines caractérisées par un chromodomaine. Le "chromo" (CHRromatin Organization Modifier) domaine est une région conservée d'environ 60 acides aminés trouvée dans une variété de protéines incluant les protéines HP1 de Drosophila melanogaster, qui se lie à l'hétérochromatine; 4 gènes de cette famille ont été identifiés dans le génome humain : CHD1, CHD2, CHD3 and CHD4 (Woodage et al., 1997, 94,11472-11477). Le chromodomaine confère à la protéine un rôle dans la compaction de la chromatine (Paro, 1990, Trends Genet. 6 :416-421; Singh et al, 1991, Nucleic Acids Res. 19:789-794; Aasland et Stewart, 1995,Nucleic Acids Res. 23 :3168-3173; et al, 1995, Nucleic Acids Res. 23 :4229-4233, Messner et al, 1992, Genes dev.,6,1241-1254; James et Elgin, 1986, Mol. Cell.Biol,6,3862-3872). Les CHD contient un deuxième domaine conservé, le domaine Myb qui est impliqué dans la liaison avec l'ADN (Klempnauer et Sippel, 1987, EMBO J., 6 :2719-2725). En plus de ces domaines, CHD2 contient le domaine SNF2, trouvé dans des protéines impliquées dans une variété de processus tels que la régulation de la transcription (ex: SNF2, STH1, brahma, MOT1), réparation de l'ADN (ex: ERCC6, RAD16, RAD5), recombinaison de l'ADN (e. g., RAD54)(revue: Eisen et al, 1995, Nucleic Acids Res , 23(14):2715-23) et enfin un domaine conservé de la superfamille des hélicases, les "DEAH box hélicases". Les hélicases sont impliquées dans le débobinement des acides nucléiques (Matson et KaiserRoger,.1990, Annu. Rev. Biochem. 59,289-329). Des DEAH box hélicases ont été proposées comme étant impliquées dans l'épissage des ARNm et dans la progression du cycle cellulaire (Ludgren et al , 1996, Mol. Biol. Cell 7, 1083-1094; Imamura et al, 1998, Nucleic Acids Res , 26 (9):2063-8). Les CHD peuvent jouer un rôle important dans la régulation de la transcription des gènes. (Delmas et al, 1993, Proc. Natl. Acad. Sci., 90,2414-2418; Woodage et al, 1997, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 94,11472-11477; Tran et al, 2000, The EMBO Journal, 19,2323-2331) Une récente étude a montré que CHD4 est induit lorsque les cellules endothéliales sont stimulées par le TNF-alpha (Murakami et al, 2000, J Atheroscler Thromb;7(1):39-44). Aucune étude ne montre une implication de CHD2 dans la régulation de l'angiogènese. - GS-N33 : un ARNm de 4693 pb identifié sous le numéro SEQ ID No 34 dans la liste de séquences en annexe . Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession XM~042555 dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 1702 au nucléotide 4107. Il a été ainsi identifié une protéine GS-P33 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée BRD2 est composée de 801aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 85 dans la liste de séquences en annexe. Le rôle de la protéine BRD2 n'est pas connu. Cette protéine se caractérise par deux bromodomaines. Le bromodomaine est une région conservée, identifiée la première fois comme une signature de 61-63 acides aminés, sa fonction n'étant pas connue (Haynes et al, Nucl. Acids Res., 1992,20, 2603). Par la suite, ce domaine a été identifié dans des facteurs de transcription, des coactivateurs et autres protéines sont impliquées dans la transcription ou le remodelage de la chromatine et ses bornes ont été étendues jusqu'à 110 acides aminés. Le nombre grandissant de protéines contenant ce domaine est plus d'une quarantaine (Jeanmougin et al, 1997, Trends Biochem. Sci. 22,151 - 153 ; Winston et Allis,1999, Nature Struct. Biol. 6,601 - 604). Certaines protéines ont une seule copie du domaine d'autres présentent deux copies du motif. La protéine BRD2 se caractérise par deux bromodomaines comme c'est le cas du facteur de transcription BDF1 (Tamkun , 1995, Curr. Opin. Genet. Dev, 5:473-477) ou encore la protéine TAFII250, la plus large sous-unité du complexe multiprotéique, TFIID impliqué dans l'initiation de la transcription (Jacobson et al, 2000, Science,288(5470):1422-5). La fonction exacte de ce domaine n'est pas encore connue mais il est pensé être impliqué dans les interactions protéine-protéines et peut être important pour l'assemblage ou l'activité des complexes multiples composants impliqués dans la modification de la chromatine et le contrôle transcriptionnel d'une large variété de gènes eucaryotes incluant ceux qui contrôlent la croissance. Une large variété de fonctions dirigées sur la chromatine, incluant mais ne se limitant pas à la phosphorylation, acétylation, méthylation, co-activation ou recrutement transcriptionnelle caractérise les complexes qui contiennent des motifs bromodomaines. Leur versatilité et ubiquité assurent des réponses transcriptionnelles diverses, rapide et flexible (revue: Denis, 2001, Frontiers in Bioscience 6, d849-852). L'expression différentielle de protéines contenant un bromodomaine a déjà été montré notamment celle d'une protéine homologue à la RING3 kinase dont l'expression est induite par le VEGF ou le bFGF chez les cellules endothéliales, cette protéine est suggérée comme une nouvelle cible de la voix de signalisation activée par le VEGF et le bFGF qui permet aux cellules endothéliales d'entrer dans la phase proliférative du processus d'angiogènese (BelAiba et al, 2001, Eur J Biochem, 268(16):4398-407). Par contre, la protéine BRD2 n'a jamais été décrite impliquée dans la régulation de l'angiogènese. - GS-N34 : unARNm de 2983 pb identifié sous le numéro SEQ ID No 35 dans la liste de séquences en annexe . Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession BC007429 dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 200 au nucléotide 1069. Il a été ainsi identifié une protéine GS-P34 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée Syntaxine 3A est composée de 289aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 86 dans la liste de séquences en annexe. La syntaxine 3A appartient à la famille des syntaxines/epimorphines qui se caractérise par une taille entre 30 et 40 kDa, une extrémité C-terminale hautement hydrophobe qui est probablement impliquée dans l'ancrage de la protéine dans la membrane et une région centrale bien conservée qui semble être dans une conformation " coiledcoil" . Le profil spécifique de cette famille est basé sur la région la plus conservée du domaine "coiled-coil". Les syntaxines sont impliquées dans le transport intracellulaire de vésicules et leur arrimage à la membrane plasmique. Des récents travaux suggèrent que différentes isoformes de syntaxines peuvent interagir avec un groupe défini de protéines de transport membranaires et ainsi réguler leur activité de transport (revue: Saxena et al, 2000, Curr Opin Nephrol Hypertens, 9(5):523-7). La syntaxine 3A est une des deux isoformes (3A et 3B) identifiées chez l'homme, issues d'un épissage alternatif d'un même gène. L'augmentation de l'expression de la syntaxine 3A a déjà été mise en évidence au cours de différents processus biologiques comme la différentiation neutrophile des cellules HL-60 ou dans les cellules granulaires de la Dentée (dentate granule cells) au cours de la propagation de la plasticité synaptique dans le système nerveux (Rodger et al, 1998, J Neurochem, 71(2):666-675; Martin-Martin et al, 1999, J Leukoc Biol, 65(3):397-406). Par contre, à ce jour aucune expression augmentée de la syntaxine 3A n'a été décrite au cours de l'angiogènese et donc aucune implication dans la régulation de l'angiogènese n'a été rapportée. - GS-N35 : unARNm de 12227pb identifié sous le numéro SEQ ID No 36 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession NM~015001 dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 205 au nucléotide 11199. Il a été ainsi identifié une protéine GS-P35 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée SHARP est composée de 3664aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 87 dans la liste de séquences en annexe. Sharp (SMART/HDAC1 Associated Repressor Protein) est un gène récemment isolé (Nagase et al, 1999, DNA Res, 6(1):63-70). SHARP est un répresseur potentiel de la transcription dont le domaine de répression (RD) interagit directement avec SMRT et au moins 5 membres du complexe NuRD ( nucleosome remodeling and histone deacetylase activities ) incluant les histones déacétylases HDAC1 et HDAC2. De plus, SHARP se lie au coactivateur ARS de l'ARN du récepteur des stéroïdes par un domaine intrinsèque liant l'ARN et supprime l'activité de transcription du récepteur de stéroïde. De cette façon, SHARP a la capacité de moduler à la fois les récepteurs nucléaires ligués et non ligués. L'expression de SHARP est elle-même inductible par les stéroïdes suggérant un simple mécanisme de retour ( feedback ) pour l'atténuation de la réponse hormonale (Shi et al, Genes Dev 2001 May 1;15(9):1140-51). Les histones déacétylases (HDAC) ont été montrées impliquées dans l'induction de l'angiogènese en supprimant l'expression des gènes suppresseurs de tumeurs (Kim et al, 2001, Nat Med, 7(4):437-43). Cependant, aucun rôle de la protéine SHARP n'a été décrit dans la régulation dans l'angiogènese. - GS-N36 : un ARNm de 5376 pb identifié sous le numéro SEQ ID No 37 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession AF352051 dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 92 au nucléotide 4962. Il a été ainsi identifié une protéine GS-P36 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée Protéine liée au potentiel de prolifération est composée de 1616aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 88 dans la liste de séquences en annexe. Cette séquence identifiée sous le numéro SEQ ID No 37 présente 92% homologie avec la séquence codant pour la protéine RPBB6 (retinoblastoma-binding protein 6) de 948aa identifiée sous le numéro SEQ ID No 288 dans la liste de séquences en annexe. La séquence nucléotidique correspondant à cette protéine comporte 2994bp et le numéro d'accession NM~006910 sur la base de séquences GENBANK. Le rôle exact de la Protéine liée au potentiel de prolifération (prolifération potential-related protein) identifiée n'est pas encore connu. Elle présente comme ses protéines homologues des domaines doigt de Zinc connus pour être impliqués dans l'interaction protéines-protéines. Cette protéine est homologue à un membre de la famille des protéines liant les protéines retinoblastoma (pRb), la retinoblastoma-binding protein 6 (RPBB6) , également appelée RBQ-1 (Sakai et al, 1995, Genomics, 30(1):98-101). La protéine pRb (suppresseur de la tumeur appelée rétinoblastome) agit pour contrôler la prolifération cellulaire, inhiber l'apoptose et induire la différentiation cellulaire et ce en s'associant à un grand nombre de protéines (revue : Morris et Dyson, 2001, Adv Cancer Res;82:1-54). Jusqu'à ce jour la protéine liée au potentiel de prolifération n'a jamais été décrite comme étant impliquée dans la régulation de l'angiogènese. - GS-N37 : unARNm de 6626 bp identifié sous le numéro SEQ ID No 38 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession XM~005338 dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 245 au nucléotide 2989. Il a été ainsi identifié une protéine GS-P37 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée Protéine HIP1 est composée de 914aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 89 dans la liste de séquences en annexe. La protéine HIPl ( Huntingtin interacting protein 1 ) est une protéine de 116 kDa qui lie la protéine Huntingtine, produit du gène muté dans la maladie de Huntington (Kalchman et al, 1997, Nat. Genet.,16, 44-53 ; The Huntington's Disease Collaborative Research Group, 1993, Cell 72,971-983). HIP1 est de façon prédominante exprimée dans le cerveau, mais est également détectée dans d'autres tissus (Wanker et al, 1997, Human Molecular Genetics, Vol 6,487-495). La fonction de HIP1 n'est pas encore bien connue mais elle partage des caractéristiques biochimiques et domaines conservés avec Sla2p, protéine essentielle pour la fonction du cytosquelette chez Saccharomyces cerevisiae (Kalchman et al.,1997, Nat. Genet. 16,44-53; Holtzman et al, 1993, J. Cell Biol. 122,635-644). HIP1 contient également un domaine leucine Zipper et est homologue dans sa partie Cterminale à la taline, protéine du cytosquelette impliquée dans les interactions cellules-substratum et cellulescellules (Rees et al, 1990, Nature; 347(6294):685- 9).Récemment, on a montré que la protéine HIP1 est impliquée dans l'apoptose (Hackam et al, 2000, J. Biol. Chem., Vol. 275, Issue 52,41299-41308). A ce jour, aucun rôle n'a été décrit pour l'HIP1 dans l'angiogènese. - GS-N38 : un ARNm de 2366 bp identifié sous le numéro SEQ ID No 39 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession BC000335 dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 12 au nucléotide 2237. Il a été ainsi identifié une protéine GS-P38 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée Nucleoporine 88kDa est composée de 741aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 90 dans la liste de séquences en annexe. La nucléoporine 88 (Nup88) est une protéine de la membrane nucléaire probablement impliquée dans le transport nucléocytoplasmique (Fornerod et al, 1997, EMBO J, 16 :807-816; et al, Oncogene 1996, 13:1801- 1808). La Nup88 a été trouvée être associée avec le domaine central de CAN/Nup214, un composant du complexe d'un pore nucléaire impliqué probablement dans l'importation de protéines nucléaires, l'exportation d'ARNm nucléaires et la régulation du cycle cellulaire (van Deursen et al, 1996, EMBO J, 15:5574-5583). La Nup 88 a été montrée largement distribuée et surexprimée dans les cellules et tissus cancéreux et f#taux (Martinez et al, 1999, Cancer Research 59,5408-5411; Gould et al, 2000, American Journal of Pathology, 157:1605-1613). A ce jour, la Nup88 n'a jamais été décrite comme étant impliquée dans la régulation de l'angiogènese. - GS-N39 :un ARNm de 1543 bp identifié sous le numéro SEQ ID No 40 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession XM~049486 dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 86 au nucléotide 412. Il a été ainsi identifié une protéine GS-P39 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée Proteine 1A liant FK506 est composée de 108aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 91 dans la liste de séquences en annexe. Les FKBPs (FK506 Binding Protein) sont des protéines majeures liant avec une haute affinité, chez les vertébrés, le médicament immunosuppresseur FK506 (1990, Tropschug et al, Nature 346 :674-677; Stein,1991,Curr. Biol. 1 :234-236; Siekierka et al, 1990, J. Biol. Chem. 265 :21011-21015). Plusieurs membres de la famille FKBP ont été identifiés dans beaucoup de tissus et dans divers compartiments cellulaires, la plus connue étant la FKBP12, une isoforme cytoplasmique (Galat et Metcalf, 1995, Prog. Biophys. Mol. Biol. 63,67-118; Kay, 1996, Biochem. J. 314, 361-385). Les FKBPs appartiennent à une grande famille de peptidyl propyl isomérases cis-trans, (PPIase or rotamase). La PPIase est une enzyme qui accélère le repliement de la protéine en catalysant l'isomérisation cis-trans des liaisons peptidiques impliquant le résidu proline (Fischer et Schmid, 1990, Biochemistry 29 :2205-2212). FKBPs sont connues être impliquées dans beaucoup de processus cellulaires, tels que la signalisation cellulaire, le transport protéique et la transcription. Des études d'interruption du gène codant pour les FKBPs chez les plantes et les animaux ont souligné l'importance de cette famille de protéines dans la régulation de la division cellulaire et la différentiation (revue:Harrar et al , 2001 Trends Plant Sci;6:426-31). Cependant, malgré qu'elles lient des récepteurs de surfaces et malgré leur activité PPiase, leur fonction physiologique reste encore à définir. Récemment, les PPiases ont été proposées jouer un rôle dans le réarrangement fonctionnel des composants dans les hétérocomplexes récepteurs (Schiene-Fischer et Yu, 2001, FEBS Lett, 495(1-2):1-6). A ce jour, il n'a pas été constaté que les protéines FKBP soient impliquées dans la régulation de l'angiogènese. - GS-N40 : un ARNm de 3824 pb identifié sous le numéro SEQ ID No 41 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession XM~042827 dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 115 au nucléotide 3663. Il a été ainsi identifié une protéine GS-P40 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée Proteine SALF est composée de 1182 aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 92 dans la liste de séquences en annexe. L'ADN complémentaire (ADNc) de la protéine SALF (stoned B/TFIIA-alpha/beta-like factor) a été récemment identifié à partir d'une banque d'ADNc issue du placenta humain (Ashok et al, 1999, J Biol Chem, Vol. 274, Issue 25,18040-18048). Le rôle de SALF n'est pas encore identifié cependant cet ADNc, qualifié de rare est identique à la séquence de la protéine ALF avec une séquence N-terminale plus étendue contenant un domaine homologue à la protéine Stone B de la Drosophile (Andrewe et al , .1996, Genetics 143, 1699-1711) et aux protéines adaptateurs de la Clathrine, 1 (AP47) et 2 (AP50) (Thurieau et al, 1988, DNA (N. Y.) 7,663-669; Nakayama et al,1991, Eur. J. Biochem. 202,569-574). La protéine ALF (TFIIA-alpha/beta-like factor) est également un nouveau facteur, qui est un homologue fonctionnel du facteur de transcription TFIIA alpha/beta qui, avec le facteur TFIIA gamma, peut stabiliser les interactions de l'élément TBP (TATA-binding protein)-TATA et maintenir la transcription in vitro dépendante de l'ARN polymérase II.. La protéine ALF est décrite comme un facteur de transcription général spécifiques des testicules (Ashok et al, 1999, J Biol Chem, Vol. 274, Issue 25,18040-18048). Le domaine d'homologie "Stoned B/clathrin APlike" de SALF révèle également une fonction potentielle dans le transport dépendant de la Clathrine des protéines membranaires. Chen et al (2001, Biochem Biophys Res Commun 23;281(2):475-82) ont montré que le gène du facteur SALF est induit par l'acide rétinoique ( ou les rétinoides) chez les cellules du muscle lisse cultivées. Par contre, aucune implication de SALF dans la régulation de l'angiogènese n'a été décrite à ce jour. - GS-N41 : unARNm de 1365 pb identifié sous le numéro SEQ ID No 42 dans la liste de séquences en annexe. Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession BC010862 dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 27 au nucléotide 758. Il a été ainsi identifié une protéine GS-P41 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine est composée de 243 aa et elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 93 dans la liste de séquences en annexe. La protéine P29, récemment décrite, est une protéine qui interagit avec la protéine GCIP (Grap2 cyclin-D interacting protein), elle-même interagissant avec la cycline D et la protéine Grap2. (Chang et al, Biochem Biophys Res Commun 2000 Dec 20;279(2):732-7). Grap2 est une protéine adaptatrice, spécifique des leucocytes des tissus immuns (Qiu et al, 1998, Biochem. Biophys. Res. Commun. 253,443-447). Les protéines adaptatrices jouent un rôle essentiel dans la formation de complexes de signalisation intracellulaire relayant les signaux extracellulaires de la membrane plasmique au noyau de la cellule, Grap2 est une protéine centrale de liaison dans la signalisation et l'activation des cellules immunitaires. Les cyclines de types D, elles, répondent à des signaux mitogéniques extracellulaires (Sherr, 1993, Cell 73,1059-1065). La protéine GCIP, qui est exprimée de façon ubiquitaire dans tous les tissus humains, interagit avec Grap2 et les cyclines D, son expression régule la phosphorylation de la protéine de rétinoblastome (Rb) et par voie de conséquence la voie de transcription contrôlée par le facteur de transcription E2F1, appartenant à une famille de facteurs qui joue un rôle majeur dans la prolifération, la différentiation, l'apoptose et la progression du cycle cellulaire (Nevins, 1998, Cell Growth Differ 9,585-593; Chellappan et al ,1998, Curr. Top. Microbiol. Immunol. 227, 57-103; Dyson, 1998, Genes Dev. 12,2245-2262). Ainsi, La GCIP est suggérée jouer un rôle dans le contrôle de la prolifération et la différentiation cellulaire à travers les voies de signalisation contrôlées par les protéines Grap2 et cycline D (Xia et al, 2000, J Biol Chem, 275(27):20942-8). La protéine, P29 qui a pu être localisée dans le noyau et présente dans de multiples tissus, a été trouvée être associée avec la GCIP et de ce fait, peut être impliquée dans la régulation fonctionnelle de GCIP (Chang et al, Biochem Biophys Res Commun 2000 Dec 20;279(2):732- 7). La protéine P29 semble donc jouer un rôle dans les voies de signalisation impliquées dans la prolifération et la différentiation cellulaire. Cependant aucun rôle dans la régulation de l'angiogènese n'a été mise en évidence à ce jour ni pour la protéine P29 ni pour la protéine homologue identifiée. - GS-N42 : unARNm de 6147 pb identifié sous le numéro SEQ ID No 43 dans la liste de séquences en annexe . Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession NM~013390 dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 149 au nucléotide 4300. Il a été ainsi identifié une protéine GS-P42 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée TMEM2 est composée de 1383aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 94 dans la liste de séquences en annexe. Le gène de TMEM2 a été décrit récemment (Scott et al , Gene 2000;246(1-2):265-74); de part la structure, la protéine codée TMEM2 a été suggérée être transmembranaire. La présence du motif RGD suggérant un rôle dans l'adhésion cellulaire est une implication dans des voies de signalisation cellulaire. A l'heure actuelle aucun rôle pour cette protéine n'a été décrit et en particulier aucun rôle dans la régulation de l'angiogènese n'a été mise en évidence. - GS-N43 : un ARNm de 4357 bp identifié sous le numéro SEQ ID No 44 dans la liste de séquences en annexe . Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession AB029316 dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 318 au nucléotide 2834. Il a été ainsi identifié une protéine GS-P43 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée Dorfine est composée de 838aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 95 dans la liste de séquences en annexe. La protéine appelée Dorfine est encore très peu étudiée, son gène a été récemment identifié. Cette protéine est ubiquitairement exprimée dans beaucoup d'organes.Elle se lie spécifiquement à des enzymes conjuguant l'ubiquitine, UbcH7 et UbcH8 à travers son domaine RINGfinger/IBR. La Dorfine est proposée comme un nouveau membre des ubiquitine ligases type RING Finger -@ Cette protéine est localisée dans le centrosome et agit probablement dans les centres d'organisations des microtubules (Niwa et al, 2001, Biochem Biophys Res Commun, 281(3):706-13). A ce jour, aucune expression différentielle de la Dorfine n'a été décrite ni un rôle dans la régulation de l'angiogénèse. - GS-N44 : un ARNm de 1801pb identifié sous le numéro SEQ ID No 45 dans la liste de séquences en annexe . Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession XM~032382 (membre 2 de la superfamille 4 transmembranaire) dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 81 au nucléotide 815. Il a été ainsi identifié une protéine GS-P44 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée TM4SF2 est composée de 244aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 96 dans la liste de séquences en annexe. La protéine TM4SF2 appartient à la superfamille transmembranaire de type 4 dont certains membres sont connus pour être impliqués dans l'angiogènese comme CD9 ou encore PETA-3/CD151(Klein-Soyer et al, 2000, Arterioscler Thromb Vasc Biol., 20 :360-9 ;Sincock et al,1999, J.Cell. Science,112, 833-844). Par contre, la fonction de TM4SF2 n'est pas encore connue. Cette protéine est homologue à la protéine TALLA-1, proposée comme un marqueur spécifique de surface de neuroblastomes et leucémie neuroblastiques (Takagi et al, Int J Cancer, 1995, 61(5):706-15). Aucun rôle pour la protéine TM4SF2 dans l'angiogènese n'a été décrit à ce jour. - GS-N45 : UnARNm de 2081 bp identifié sous le numéro SEQ ID No 46 dans la liste de séquences en annexe . Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession HSA133133 dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 184 au nucléotide 1737. Il a été ainsi identifié une protéine GS-P45 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine appelée Ecto-ATP diphosphohydrolase I est composée de 517aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 97 dans la liste de séquences en annexe. Les ecto-ATPases (ATPases de la surface cellulaire) sont des enzymes ubiquitaires chez les cellules qui hydrolysent l'ATP et l'ADP extracellulaires en AMP (revue: Plesner, 1995, Int Rev Cytol,158:141-214). La présence des ATPDases a été démontrée sur les cellules endothéliales aortiques et les cellules du muscle lisse et décrites comme pouvant jouer un rôle régulateur dans l'homéostase et la réactivité plaquettaire en hydrolysant l'ATP et l'ADP (Robson et al, 1997, J Exp Med, 185(1):153- 63). L'ATPDase vasculaire est étroitement homologue à la glycoprotéine CD39 dont le numéro d'accession dans la base GENBANK est S73813 et est identifiée sous le numéro SEQ ID No. 290 dans la liste de séquences en annexe, antigène de l'activation des cellules lymphoïdes, également exprimée par les cellules endothéliales humaines (Kaczmarek et al, 1996, J. Biol.Chem, 271,51, 33116-33122). Récemment, Goepfert et al, (2001, Circulation, n104 (25):3109-3115) en implantant des corps contenant du Matrigel chez des souris mutants caractérisées par la déficience de l'expression de CD39 ont montré l'absence de formation des néovaisseaux autour des corps implantés. Ces observations ont conduit ces auteurs à suspecter un rôle pour le CD39 dans le phénomène de l'angiogènese. Cependant, l'expérimentation décrite plaide plutôt pour un rôle mal défini de CD39 dans l'angiogènese que pour un rôle direct et incontestable. En effet, du fait que des souris mutantes déficientes en CD39 existent, il est possible que des embryons des souris déficientes en CD39 puissent se développer. Toutefois, sans angiogènese, il n'y a aucun développement embryonnaire possible. Par conséquent, soit le CD39 a un rôle dans l'angiogènese et de ce fait il n'y aura pas de souris mutantes déficientes en CD39 viables, soit le CD39 n'a aucun rôle dans l'angiogènese. Dans un autre article, Goepfert et al, (2001, Circulation,104 (25):3109-15) n'ont pas montré l'absence d'expression de CD39 chez les cellules endothéliales des souris mutantes utilisées. En somme, l'étude de Goepfert et al, (2001, Circulation,104(25):3109-15) n'apporte pas la preuve d'un quelconque rôle du CD39 dans l'angiogènese. Le CD39 et l'ecto-ATPDase I peuvent être deux formes résultant d'un épissage alternative d'un même gène. Le vecteur codant pour l'oligonucléotide antisens utilisé dans notre étude peut à la fois inhiber l'expression de CD39 et l'ecto-ATPDase I. Les résultats obtenus avec le vecteur GS-V45, dans le cadre de la présente invention, prouvent en revanche que le CD39 joue un rôle direct dans l'angiogènese. Il est à noter par ailleurs qu'aucun rôle n'a été décrit à ce jour pour l'ecto-ATPDase I dans la régulation de l'angiogènese. - GS-N46 : Un ARNm de 4332 bp identifié sous le numéro SEQ ID No 47 dans la liste de séquences en annexe . Une recherche BLAST permet de l'identifier sous le numéro d'accession AJ306399 dans la base de séquences GENBANK. La séquence de cet ARNm a une séquence codante du nucléotide 56 au nucléotide 1828. Il a été ainsi identifié une protéine GS-P46 résultante de la traduction de cet ARNm. Cette protéine est composée de 590aa. Elle est identifiée sous le numéro SEQ ID No 98 dans la liste de séquences en annexe. L'expression des ARNms ci-dessus identifiés est observée dans des cellules endothéliales humaines qui forment des tubes capillaires. La Demanderesse a mis donc en évidence que l'expression différentielle du gène correspondant à chacun de ces ARNms accompagne la formation de néovaisseaux par les cellules endothéliales. De plus, il est montré que l'induction de l'expression dudit gène durant l'angiogenèse est sensible à la présence de différents inhibiteurs. En effet, lorsque les cellules endothéliales humaines formant des néovaisseaux sont stimulées par un facteur angiogénique, (indiqués colonne 2 du tableau II) on observe une expression élevée de cet ARNm, tandis que lorsque les mêmes cellules endothéliales humaines sont stimulées par le même facteur angiogénique et mises en présence d'un facteur anti-angiogénique (indiqués colonne 3 du tableau II) (où l'angiogenèse est inhibée) on observe que l'expression de ce gène est également inhibée. Tableau II Inducteurs Inhibiteurs SÉQ.ID de de l'expression l'expression SEQ ID No 1 (GS-N1) VEGF PF4 SEQ ID No 2 (GS-N2) VEGF PF4 SEQ ID No 3 (GS-N3) FGF2 IFN-y SEQ ID No 4 (GS-N4) VEGF IFN-y SEQ ID No 5 (GS-N5) VEGF IFN-y SEQ ID No 6 (GS-N6) VEGF IFN-y SEQ ID No 7 (GS-N7) VEGF TNF-a SEQ ID No 8 (GS-N8) VEGF TNF-a SEQ ID No 9 (GS-N9) VEGF IFN-y SEQ ID No 10 (GS-N10) VEGF IFN-y SEQ ID No 11 (GS-N11) VEGF IFN-y SEQ ID No 12 (GS-N12) VEGF IFN-y SEQ ID No 13 (GS-N13) VEGF IFN-y SEQ ID No 14 (GS-N14) VEGF IFN-y SEQ ID No 15 (GS-N15) VEGF IFN-y SEQ ID No 17 (GS-N16) VEGF PF4 SEQ ID No 18 (GS-N17) VEGF TSP-1 SEQ ID No 19 (GS-N18) VEGF PF4 SEQ ID No 20 (GS-N19) VEGF PF4 SEQ ID No 21 (GS-N20) VEGF PF4 SEQ ID No 22 (GS-N21) VEGF PF4 SEQ ID No 23 (GS-N22) VEGF PF4 SEQ ID No 24 (GS-N23) FGF2 TNF-a SEQ ID No 25 (GS-N24) VEGF IFN-y SEQ ID No 26 (GS-N25) VEGF IFN-y SEQ ID No 27 (GS-N26) VEGF IFN-y SEQ ID No 28 (GS-N27) VEGF IFN-y SEQ ID No 29 (GS-N28) VEGF IFN-y SEQ ID No 30 (GS-N29) FGF2 Ang-2 SEQ ID No 31 (GS-N30) VEGF TNF-a SEQ ID No 32 (GS-N31) VEGF IFN-y SEQ ID No 33 (GS-N32) VEGF TNF-a SEQ ID No 34 (GS-N33) VEGF IFN-y SEQ ID No 35 (GS-N34) VEGF TNF-a SEQ ID No 36 GS-N35) VEGF IFN-y SEQ ID No 37 (GS-N36) VEGF IFN-y SEQ ID No 38 (GS-N37) FGF2 Ang-2 SEQ ID No 39 (GS-N38) VEGF IFN-y SEQ ID N 40 (GS-N39) VEGF IFN-y SEQ ID No 41 (GS-N40) VEGF IFN-y SEQ ID No 42 (GS-N41) VEGF IFN-y SEQ ID No 43 (GS-N42) VEGF Ang-2 SEQ ID No 44 (GS-N43) FGF2 PF4 SEQ ID No 45 (GS-N44) FGF2 IFN-y SEQ ID No 46 (GS-N45) VEGF IFN-y SEQ ID No 47 (GS-N46) FGF2 TNF-a SEQ ID No 48 (GS-N47) FGF2 TNF-a SEQ ID No 49 (GS-N48) FGF2 TNF-a SEQ ID No 50 (GS-N49) VEGF IFN-y SEQ ID No 51 (GS-N51) VEGF IFN-y SEQ ID No 52 (GS-N52) FGF2 Ang-2 SEQ ID No 53 (GS-N53) VEGF TNF-a Inducteurs Inhibiteurs SÉQ.ID de l'expression l'expression SEQ ID No 225 (GS- VEGF IFN-[gamma] SEQ ID No 16 (GS-N54) VEGF IFN-y Il apparaît ainsi qu'il existe une corrélation directe entre l'expression de chacun des gènes GS-N1 à GSN54 et l'éta angiogénique des cellules endothéliales humaines. 6.2 Vérification du rôle des gènes identifiés dans la régulation de l'angiogénèse. De plus, il a été également montré le rôle fonctionnel de ces gènes dans la formation de néovaisseaux par les cellules endothéliales humaines. En effet, un oligonucléotide spécifique de chacun des gènes identifiés, choisi parmi les oligonucléotides identifiés par les séquences SEQ ID No. : 103 à SEQ ID. : 148 dans la liste de séquences en annexe a été introduit dans le vecteur d'expression pCI-neo Vector dans l'orientation antisens. Les vecteurs résultants appelés GS-V1 à GS-V46 identifiés par leurs séquence SEQ ID No : 149 à SEQ ID No : 194 dans la liste de séquences en annexe ont été utilisés pour réprimer l'expression du gène codant pour cet ARNm chez les cellules endothéliales humaines suite à la transfection de ces dernières par ce vecteur. Les cellules endothéliales humaines ont été stimulées alors par des facteurs angiogéniques. Les résultats obtenus, pour chacune des séquences illustrées ci-dessous, en utilisant les séquences antisens et les vecteurs correspondants, indiqués dans le tableau III, montrent que : - la répression de l'expression des gènes SEQ ID N. 1 à SEQ ID No. 5, SEQ ID No. 7, SEQ ID No. 9, SEQ ID No. 11 à SEQ ID No. 15, SEQ ID No. 17 à SEQ ID No. 53 et SEQ ID No. 225 inhibe la formation de néovaisseaux par les cellules endothéliales humaines et que - la répression des gènes SEQ ID No. 6, SEQ ID No. 8, SEQ ID No. 10 et SEQ ID No. 16 stimule la formation la formation de néovaisseaux par les cellules endothéliales humaines et cela malgré la présence des différents facteurs angiogéniques. Ces résultats sont illustrés dans les figures correspondantes 1 à 11 en annexe. TABLEAU III MM Gènes Protéine Séquences Vecteur avec Fig NOM SÉQ.ID SEQ. ID antisens l'antisens Fig contrôle ~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~insère~~~~~~~~~~~~~~~~ SEQ ID No SEQ ID No 54 SEQ ID No SEQ ID No 149 (GS-N1) (GS-P1) 103 (GS-V1) lA 1F Angioinducine (257pb) (GS-V1 SEQ ID No SEQ ID No 55 SEQ ID No SEQ ID No 150 (GS-N2) (GS-P2) 104 (GS-V2) 1B 1F Angiodockine (202pb) SEQ ID No SEQ ID No 56 SEQ ID No SEQ ID No 151 3 (GS-N3) (GS-P3) 105 (GS-V3) 151 2A 2C (GS-N3) Angioblastine (242 pb) (GS-V3) SEQ ID No 4 SEQ ID No 57 SEQ ID No SEQ ID No 4 (GS-N4) (GS-P4) 106 152 1C 1F (GS-N4) Angioreceptine (211 pb) (GS-V4) SEQ ID No 5 SEQ ID No 58 SEQ ID No SEQ ID No 153 5 (GS-N5) (GS-P5) 107 (GS-V5) 1D 1F Angiodensine (191 pb) SEQ ID No 6 SEQ ID No 59 SEQ ID No SEQ ID No 154 6 (GS-N6) (GS-P6) 108 (GS-V6) 3A 3D Vassoserpentine (238 pb) '~~~~'~~~~~~~~~~~~ SEQ ID No 7 SEQ ID No 60 SEQ ID No SEQ ID No 155 7 (GS-N7) (GS-P7) 109 (GS-V7) 4A 4F ~~~~ (GS-N7) Angiosulfatine (205 pb) (GS-V7)~~~~~~~~~~~~ SEQ ID No 8 SEQ ID No 61 SEQ ID No SEQ ID No 156 8 (GS-N8) (GS-P8) 110 (GS-V8) 3B 3D Vassoreceptine (186 pb) SEQ ID No 9 SEQ ID No 62 SEQ ID No SEQ ID No 157 (GS-N9) (GS-P9) 111 (GS-V9) 4B 4F Angiokinasine (223pb) SEQ ID No 10 SEQ ID No 63 SEQ ID No SEQ ID No 158 (GS-N10) (GS-P10) 112 (GS-V10) ...., Vecteur avec .ï. Gènes Protéine Séquences vecteur avec -:# Fig NOM SÉQ.ID SEQ. ID antisens l'antisens Fig contrôle insere Vassosubstratin (247pb) SEQ ID No 11 SEQ ID No 64 SEQ ID No SEQ 159 11 SEQ ID No (GS-Pll) 113 SEQ ID No 159 4C 4F (GS-N11) Angiosignaline (162pb) (GS-V11) SEQ ID No 12 SEQ ID No 65 SEQ ID No SEQ ID No 160 12 (GS-N12) (GS-P12) 114 (GS-V12) 4D 4F Angiofoculine (166 pb) SEQ ID No 13 SEQ ID No 66 SEQ ID No SEQ ID No 161 13 (GS-N13) (GS-P13) 115 (GS-V13) 2B 2C Angiohélicine (135 pb) SEQ ID No SEQ ID No 14 116 SEQ ID No 16 2 (GS-N14) (136) (GS-V14) SEQ ID No 15 SEQ ID No 67 SEQ ID No SEQ ID No 163 15 (GS-N15) (GS-Pl5) 117 (GS-V15) lA 1F (GS N15) Angioacyline (152) @ SEQ ID No 16 SEQ ID No SEQ ID No 158 16 (GS-N54) (247 pb) (GS-V10) SEQ ID No 17 SEQ ID No 68 SEQ ID No SEQ ID No 164 17 (GS-N16) (GS-P16) 118 (GS-V16) 5A 5F PDCL (417 pb) SEQ ID No 18 SEQ ID No 69 SEQ ID No SEQ ID No 165 18 (GS-N17) (GS-P17) 119 (GS-V17) 5B 5F RPL3 (244 SEQ SEQ ID No 70 SEQ ID No SEQ 19 SEQIDNO 19 SE?Gfp; 7 SEQ12X;NO SEQIDNO 166 5C (GS-N18) (GS-P18) 120 (GS-V18) (GS-N18) homol.RNF20 (311 pb) (GS-V18) SEQ SEQ ID No 71 SEQ ID No SEQ 2Q SEQIDNO 20 (GS-P19) 121 SEQIDNo 167 5D (GS-N19) (GS-P19) 121 (GS-V19) (GS-N19) homol.SFRS4 (246 pb) (GS-V19) SEQ SEQ ID No 72 SEQ ID No SEQ SEQ ID No 21 (GS-P20) 122 SEQ ID No 168 10A (GS-N20) (GS-P20) 122 pb) (GS-V20) 10A (GS-N20) CPD (203 pb) (GS-V20) SEQ SEQ ID No 73 SEQ ID No SEQ 22 SEQ ID No 22 (GS-P21) 123 SEQ ID No 169 5E (GS-N21) (GS-P21) 123 (GS-V21) (GS-N21) USP9X (253 pb) (GS-V21) SEQ ID No 23 SEQ ID No 74 SEQ ID No SEQ ID No 23 (GS-N22) (GS-P22) 124 170 6A 6F (GS NRD1 (173 pb) (GS-V22) SEQ ID No 75 SEQ ID No SEQ ID No 24 (GS-P23) SEQ ID SEQ ID No 171 10B 10F (GS-N23) Homol. HRX , (228 5 (GS-V23) lOB ALL-1, MLL '~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~ SEQ SEQ ID No 76 SEQ ID No SEQ 25 SEQIDNO 25 (GS-P24) 1 SEQIDNO 172 6B 6F (GS-N24) (GS-P24) (381 pb) (GS-V24) SEQ ID No 77 SEQ ID No 26 SEQ ID No 26 (GS-P25) 127 SEQ ID No 173 6C 6F (GS-N25) transp.ac (395 pb) (GS-V25) sial.-CMP1 ' '~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~ SEQ SEQ ID No 78 SEQ ID No SEQ 27 SEQIDNO 27 SE%1DJ* 18 128 SEQIDNO 174 6D 27 (GS-N26) (GS-P26) 128 (GS-V26) 6D 6F (GS-N26) CBL-b (381 pb) (GS-V26) SEQ ID No SEQ ID No 79 SEQ ID No SEQ ID No175 28 (GS-N27) (GS-P27) 129 (GS-V27) 6E 6F (GS-N27) H2AV (298 pb) (GS-V27) SEQ SEQ ID No 80 SEQ ID No SEQ 2g SEQIDNO 29 SEQ#TB)S S"0 SEQIDNO 176 7A (GS-N28) (GS-P28) 130 (GS-V28) (GS-N28) CSNK2B (413 pb) (GS-V28) SEQ ID No 30 SEQ ID No 81 SEQ ID No SEQ ID No 177 7F (GS-N29) (GS-P29) 131 (GS-V29) Gènes Protéine Séquences Vecteur avec Fig NOM Gènes Protéine antisens l'antisens Fig contrôle NOM SÉQ. ID SEQ. ID antisens insere Fig contrôle ~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~insère~~~~~~~~~~~~~~~~ Hémicentine (564 pb) SEQ ID No SEQ ID No SEQ ID No SEQ ID No 178 SEQ ID No (GS-P30) 132 (GS-V30) 31 (GS-30) (GS SYNE-2 (414 pb) (414 SEQ ID No SEQ ID No SEQ ID No SEQ ID No 179 (GS-N31 (GS-P31) 133 (GS-V31) (GS-N31) Séladine (298 pb) (GS#V31) ~~~~'~~~~~' Séladine-1 (298 pb) ~~~~~ ~~~~~~~ SEQ ID No SEQ ID No SEQ ID No SEQ ID No 180 (GS-N32) (GS-P32) 134 (GS-V32) 33 (GS-N32) (GS CHD2 CHD2 (365 pb) (GS-V32) 34 SEQ ID No 34 SEQ ID No 85 SEQ ID No SEQ ID No 181 8A 8F (GS-N33) BRD2 (270 pb) (GS-V33) SEQ ID No SEQ ID No SEQ ID No SEQ ID No 182 (GS-N34) (GS-P34) 136 (GS-V34) (GS-N34) Syntaxine 3A (298 pb) (SEQ ID No SEQ ID No SEQ ID No SEQ ID No 183 36 (GS-P35) 137 8C 8F GS-N35) (GS-V35) SHARP (117 pb) SEQ ID No 88 SEQ ID nO SEQ ID No 37 SEQ ID nO 184 37 (GS-P36) 138 10C 10F (GS-N36) (GS-P36) 138 (GS-V36) 10C 37 (GS-N36) (GS-P36) PLPP (96 pb) (GS-V36) SEQ SEQ SEQ SEQ SEQ ID N038 SEQ ID No 89 SEQ ID No SEQ ID No 185 8D 8F (GS-N37) (GS-P37) 139 (GS-V37) (GS-N37) (GS-P37) (393 pb) (GS-V37) SEQ ID No SEQ ID No SEQ ID No SEQ ID No 186 (GS-N38) (GS-P38) 140 (GS-V38) (GS-N38) NUP88 (100 pb) (GS-V38) SEQ N040 SEQ N091 SEQ SEQ SEQ N 40 SEQ ID N 91 SEQ ID SEQ 187 10D SEQ ID N 40 (GS-P39) 141 (GS-V39) (GS-N39) FKPB1A (90 pb) (GS-V39) SEQ ID No SEQ ID N 92 SEQ ID No SEQ ID No 188 9A (GS-N40) (GS-P40) 142 (GS-V40) 41 (GS-N40) SALF (144 pb) (GS-V40) SALF (144 pb) '~~~~~'~~~~~~~~~~~~ SEQ SEQ N093 SEQ SEQ SEQ ID No 42 SEQ ID N 93 SEQ ID No SEQ ID No 189 10E lOF (GS-N41) (GS-p4l) 143 (GS-V41) 10E (GS-N41) Homol.P29 (113 pb) (GS-V41) SEQ ID No 43 SEQ ID N 94 SEQ ID No SEQ ID No 190 (GS-N42) (GS-P42) 144 (GS-V42) fG-N4? (GS s"tz; TMEM2 (180 r"Vd7 ~~~~~(GS-N42) TMEM2 (180 pb) (GS-V42)~~~~~~~~~~~~~~ SEQ SEQ Nc>95 SEQ SEQ SEQ ID N044 SEQ ID N 95 SEQ ID No SEQ ID No 191 9C (GS-N43) (GS-P43) 145 (GS-V43) (GS-N43) Dorfine (507 pb) (GS-V43) SEQ SEQ N-96 SEQ SEQ SEQ ID N045 SEQ ID N 96 SEQ ID No SEQ ID No 192 9D (GS-N44) (GS-P44) 146 (GS-V44) (GS-N44) (GS TM4SF2 (632 pb) (632 (GS-V44) SEQ SEQ N097 SEQ SEQ SEQ SEQ ID N 97 SEQ ID SEQ 193 (GS-N45 (GS-P45) 147 (GS-V45) (GS-N45) Ecto-ATPase I (704 pb) (GS-V45) SEQ ID N-98 SEQ SEQ (GS-P46) 148 SEQ ID No 194 11A SEQIDNo 47 (GS-P46) 148 (GS-V46) (GS-N46) Sélénoprotéine 14 pb) (GS-V46) 11A N SEQ ID No 48 SEQ ID No SEQ ID No 171 48 (GS-N47) - 125 (GS-V23) 10B 10F (228 SEQ SEQ ID N 99 SEQ ID No SEQ ID No 171 lOB 49 SEQ ID No 49 (GS-P48) 125 SEQ ID No 171 10B 10F (GS N48) MLL (228 SEQ 50 SEQ ID N 100 SEQ ID No SEQ ID No 172 50 SEQ ID No 50 (GS-P49) 126 SEQ ID No 172 6B 6F NOM Gènes Protéine Séquences Vecteur avec Fig NOM SÉQ.ID SEQ. ID antisens l'antisens Fig contrôle ~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~insère~~~~~~ SEQ ID No 51 SEQ ID No SEQ No175 ####### 51 (GS-N51)- 129 (GS-V27) 6E 6F (298 pb) (GS-V27) SEQ SEQ ID N 101 SEQ ID No SEQ SEQIDNo 52 (GS-P52) 131 SEQ ID No 177 52 (GS-N52) (GS-P52) 131 ( 7B 7F @ Fibuline 6 (564 pb) (GS-V29) SEQ ID No 53 SEQ ID N 102 SEQ ID No SEQ ID No 179 (GS-N53) (GS-P53) 133 fGS-V3H (GS-N53) (GS-P53) 133 (GS-V31) @ Séladine 1 (298 pb) (GS-V31) SEQ ID No 225 SEQ ID No SEQ ID No 173 (GS-N50) 127 (GS-V25) (GS-N50) (395 pb) (GS-V25) REVENDICATIONS 1. Composition pharmaceutique inhibitrice de l'angiogenèse caractérisée en ce qu'elle comprend à titre d'agent actif au moins une substance choisie parmi : (i) une molécule d'acides nucléiques d'un gène d'une cellule endothéliale, dont l'expression est induite par un facteur angiogénique et est inhibée par un agent angiostatique, choisie parmi les séquences SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 à SEQ ID N 15, SEQ ID N 17 à SEQ ID N 53, SEQ ID N 225 et SEQ ID N 284 à SEQ ID N 290 dans la liste de séquences en annexe, une séquence complémentaire ou un fragment de celle-ci, (ii) une séquence polypeptidique codée par ladite molécule d'acide nucléique, choisie parmi les séquences polypeptidiques identifiées sous les numéros SEQ ID N 54 à SEQ ID N 58, SEQ ID N 60, SEQ ID N 62, SEQ ID N :64 à SEQ ID N 67, SEQ ID N 68 à SEQ ID N 102 et SEQ ID N 291 à SEQ ID N 297 dans la liste de séquences en annexe, ou un fragment de celle-ci (iii) une molécule d'acide nucléique antisens de l'une des séquences identifiées sous les numéros SEQ ID N 6, SEQ ID N 8, SEQ ID N 10 et SEQ ID N 16 dans la liste de séquences en annexe, comprenant au moins 10 mers d'une séquence d'acide nucléique choisie parmi les séquences d'acides nucléiques identifiées sous les numéros SEQ ID N 108, SEQ ID N 110 et SEQ ID N 112 dans la liste de séquences en annexe, ou (iv) un anticorps capable de se fixer sur une séquence polypeptidique codée par l'une des séquences d'acides nucléiques identifiées sous les numéros SEQ ID N 6, SEQ ID N 8, SEQ ID N 10 et SEQ ID N 16 dans la liste de séquences en annexe. 2. Composition pharmaceutique selon la revendication 1 destinée au diagnostic et/ou au traitement de pathologies liées à l'angiogenèse. 3. Anticorps caractérisé en ce qu'il a une affinité pour une des séquences polypeptidiques identifiées sous les numéros SEQ ID N 54 à SEQ ID N 58, SEQ ID N 60, SEQ ID N 62, SEQ ID N :64 à SEQ ID N 67, SEQ ID N 68 à SEQ ID N 102 et SEQ ID N 291 à SEQ ID N 297 dans la liste de séquences en annexe. 4. Méthode de préparation d'un anticorps selon la revendication 3, caractérisée en ce qu'elle comprend l'immunisation in vivo ou in vitro, d'une cellule immunocompétente d'un animal, notamment d'un vertébré et de préférence d'un mammifère, avec au moins une des séquences polypeptidiques identifiées sous les numéros SEQ ID N 54 à SEQ ID N 58, SEQ ID N 60, SEQ ID N 62, SEQ ID N :64 à SEQ ID N 67 et SEQ ID N 68 à SEQ ID N 102 ou parmi les séquences polypeptidiques identifiées sous les numéros SEQ ID N 291 à SEQ ID N 297 dans la liste de séquences en annexe. 5. Anticorps selon la revendication 3, caractérisé en ce qu'il est un anticorps monoclonal. 6. Anticorps selon la revendication 3, caractérisé en ce qu'il est un anticorps polyclonal. 7. Composition pharmaceutique destinée au diagnostic et/ou au traitement de pathologies liées à l'angiogenèse, caractérisée en ce qu'elle comprend à titre de composé actif un ou plusieurs anticorps selon l'une quelconque des revendications 3,5 ou 6 ou préparé selon la méthode de la revendication 4, ou un de leurs fragments. 8. Séquence d'acide nucléique antisens de l'une des séquences d'acides nucléiques identifiées sous les numéros parmi les SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 à SEQ ID N 15, SEQ ID N 17 à SEQ ID N 53, SEQ ID N 225 et SEQ ID N 284 à SEQ ID N 290 dans la liste de séquences en annexe, comprenant au moins 10 mers d'une séquence d'acides nucléiques choisie parmi les séquences identifiées sous les numéros SEQ ID N 103 à SEQ ID SEQ ID N 107, SEQ ID N 109, SEQ ID N 111 et SEQ ID No.113 à SEQ ID N 148 dans la liste de séquences en annexe. 9. Séquence d'acide nucléique antisens selon la revendication 8 ayant une identité d'au moins 85%, de préférence de 95%, avec une séquence choisie parmi les séquences identifiées sous les numéros SEQ ID N 103 à SEQ ID SEQ ID N 107, SEQ ID N 109, SEQ ID N 111 et SEQ ID No.113 à SEQ ID N 148 dans la liste de séquences en annexe. 10. Vecteur d'expression de mammifère comprenant au moins une séquence antisens définie à l'une quelconque des revendications 8 ou 9. 11. Vecteur selon la revendication 10 caractérisé en ce qu'il est choisi parmi le groupe de vecteurs GS-V1 à GS-V5, GS-V7, GS-V9, GS-Vll à GS-V15, GSV16 à GS-V46, identifiés par leur séquence portant les numéros SEQ ID N 149 à SEQ ID N 153, SEQ ID N 155, SEQ ID N 157, SEQ ID N 159 à SEQ ID N 163 et SEQ ID N 164 à SEQ ID N 194 dans la liste de séquences en annexe. 12. Vecteur d'expression de mammifère comprenant au moins une séquence d'acides nucléiques choisie parmi l'ensemble de séquences identifiées sous les numéros SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 à SEQ ID N 15, SEQ ID N 17 à SEQ ID N 53, SEQ ID N 225 et SEQ ID N 284 à SEQ ID N 290 dans la liste de séquences en annexe, ou un de leurs fragments. 13. Méthode de préparation d'une cellule génétiquement modifiée, sur-exprimant ou sous-exprimant un gène impliqué dans un désordre angiogénique, caractérisée en ce qu'elle comprend l'insertion, dans une cellule de mammifère, d'un vecteur défini à l'une quelconque des revendications 10 à 12. 14. Cellule génétiquement modifiée, caractérisée en ce qu'elle sur-exprime au moins un gène impliqué dans l'angiogenèse identifiée par une séquence d'acides nucléiques choisie parmi les séquences identifiées sous les numéros SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 à SEQ ID N 15, SEQ ID N 17 à SEQ ID N 53, SEQ ID N 225 et SEQ ID N 284 à SEQ ID N 290 dans la liste de séquences en annexe ou un de leurs fragments. 15. Cellule génétiquement modifiée, caractérisée en ce qu'elle sous-exprime au moins un gène impliqué dans l'angiogenèse identifiée par une séquence d'acides nucléiques choisie parmi l'ensemble de séquences identifiées sous les numéros SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 à SEQ ID N 15, SEQ ID N 17 à SEQ ID N 53, SEQ ID N 225 et SEQ ID N 284 à SEQ ID N 290 dans la liste de séquences en annexe. 16. Méthode de préparation d'une lignée de cellules exprimant de manière stable un vecteur d'expression défini à l'une quelconque des revendications 11 ou 13 caractérisée en ce que : (a) on introduit un gène de résistance à au moins un antibiotique dans une cellule génétiquement modifiée selon les revendications 14 ou 15, b) on cultive les cellules obtenues à l'étape (a) en présence dudit antibiotique, c) on sélectionne les cellules viables. 17. Composition thérapeutique destinée au traitement et/ou au diagnostique d'un désordre angiogénique chez un mammifère, notamment chez un être humain, caractérisée en ce qu'elle comprend une cellule génétiquement modifiée selon l'une quelconque des revendications 14 ou 15 ou préparée selon la méthode de la revendication 16. 18. Méthode de préparation d'une protéine recombinante comprenant les étapes de : a) la construction d'un vecteur d'expression comprenant au moins une séquence d'acides nucléiques choisie parmi les séquences identifiées sous les numéros SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 à SEQ ID N 15, SEQ ID N 17 à SEQ ID N 53, SEQ ID N 225 et SEQ ID N 284 à SEQ ID N 290 dans la liste de séquences en annexe, ou d'un de leurs fragments. b) l'introduction dudit vecteur dans un hôte cellulaire, c) la culture desdites cellules dans un milieu adéquat, d) la purification des protéines exprimées ou d'un de leurs fragments. 19. Une protéine recombinante ou un fragment peptidique obtenu par le procédé selon la revendication 18. 20. Composition thérapeutique comprenant une protéine recombinante selon la revendication 19. 21. Composition thérapeutique selon l'une quelconque des revendications 1,2, 7,17 ou 20, caractérisée en ce que le désordre angiogénique est choisi parmi : la vascularisation de tumeurs, les rétinopathies, l'arthrite rhumatoïde, la maladie de Crohn, l'athérosclérose, l'hyperstimulation de l'ovaire, le psoriasis, l'endométrie associée à la néovascularisation, la resténose due à l'angioplastie du ballon, la superproduction tissulaire due à la cicatrisation, la maladie vasculaire périphérique, l'hypertension, l'inflammation vasculaire, la maladie et les phénomènes de Raynaud, l'anévrisme, la resténose artérielle, la thrombophlébite, la lymphagyte, le lymphodème, la cicatrisation et la réparation tissulaire, l'ischémie, l'angine, l'infarctus de myocarde, la maladie chronique du c#ur, les insuffisances cardiaques telles que l'insuffisance cardiaque congestive, la dégénération maculaire liée à l'âge et l'ostéoporose. 22. Méthode de diagnostic et/ou de pronostic d'une pathologie angiogénique chez un mammifère, notamment chez un être humain, caractérisée en ce que l'on détecte in vitro dans les cellules dudit mammifère la sur-expression ou la sous-expression d'une ou plusieurs séquences d'acides nucléiques identifiées sous les numéros SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 à SEQ ID N 15, SEQ ID N 17 à SEQ ID N 53, SEQ ID N 225 et SEQ ID N 284 à SEQ ID N 290 dans la liste de séquences en annexe. 23. Méthode selon la revendication 22 caractérisée en ce qu'elle comporte les étapes suivantes : - la détection de l'expression d'une ou plusieurs desdites séquences d'acides nucléiques, identifiées sous les numéros SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 à SEQ ID N 15, SEQ ID N 17 à SEQ ID N 53, SEQ ID N 225 et SEQ ID N 284 à SEQ ID N 290 dans la liste de séquences en annexe, par une population cellulaire d'un mammifère, - la détection de l'expression d'une ou plusieurs desdites séquences d'acides nucléiques identifiées sous les numéros SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 à SEQ ID N 15, SEQ ID N 17 à SEQ ID N 53, SEQ ID N 225 et SEQ ID N 284 à SEQ ID N 290 dans la liste de séquences en annexe, par une population cellulaire de référence dont l'état angiogénique est connu, - l'identification des différences éventuelles du niveau d'expression d'une ou plusieurs desdites séquences d'acides nucléiques parmi les SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 à SEQ ID N 15, SEQ ID N 17 à SEQ ID N 53, SEQ ID N 225 et SEQ ID N 284 à SEQ ID N 290 dans la liste de séquences en annexe par les deux populations cellulaires. 24. Méthode de diagnostic et/ou de pronostic d'une pathologie angiogénique chez un mammifère, notamment chez un être humain, consistant à détecter in vitro dans les cellules dudit mammifère la surexpression ou la sousexpression d'une ou plusieurs séquences polypeptidiques identifiées sous les numéros SEQ ID N 54 à SEQ ID N 58, SEQ ID N 60, SEQ ID N 62, SEQ ID N :64 à SEQ ID N 67, SEQ ID N 68 à SEQ ID N 102 et SEQ ID N 291 à SEQ ID N 297 dans la liste de séquences en annexe. 25. Méthode selon la revendication 24 caractérisée en ce qu'elle comprend : a) la détection de l'expression d'une ou plusieurs desdites séquences polypeptidiques identifiées sous les numéros SEQ ID N 54 à SEQ ID N 58, SEQ ID N 60, SEQ ID N 62, SEQ ID N :64 à SEQ ID N 67, SEQ ID N 68 à SEQ ID N 102 et SEQ ID N 291 à SEQ ID N 297 dans la liste de séquences en annexe, par une première population cellulaire d'un mammifère, b) la détection de l'expression d'une ou plusieurs desdites séquences polypeptidiques identifiées sous les numéros SEQ ID N 54 à SEQ ID N 58, SEQ ID N 60, SEQ ID N 62, SEQ ID N :64 à SEQ ID N 67, SEQ ID N 68 à SEQ ID N 102 et SEQ ID N 291 à SEQ ID N 297 dans la liste de séquences en annexe, par une deuxième population cellulaire de référence dont l'état angiogénique est connu, c) l'identification des différences éventuelles du niveau d'expression desdites séquences polypeptidiques identifiées sous les numéros SEQ ID N 54 à SEQ ID N 58, SEQ ID N 60, SEQ ID N 62, SEQ ID N :64 à SEQ ID N 67, SEQ ID N 68 à SEQ ID N 102 et SEQ ID N 291 à SEQ ID N 297 dans la liste de séquences en annexe, par lesdites première et deuxième populations cellulaires. 26. Méthode de diagnostic et/ou de pronostic selon une quelconque des revendications 22 à 25, caractérisée en ce que le désordre angiogénique est choisi parmi : la vascularisation de tumeurs, les rétinopathies, l'arthrite rhumatoïde, la maladie de Crohn, l'athérosclérose, l'hyperstimulation de l'ovaire, le psoriasis, l'endométrie associée à la néovascularisation, la resténose due à l'angioplastie du ballon, la superproduction tissulaire due à la cicatrisation, la maladie vasculaire périphérique, l'hypertension, l'inflammation vasculaire, la maladie et les phénomènes de Raynaud, l'anévrisme, la resténose artérielle, la thrombophlébite, la lymphagyte, le lymphodème, la cicatrisation et la réparation tissulaire, l'ischémie, l'angine, l'infarctus de myocarde, la maladie chronique du c#ur, les insuffisances cardiaques telles que l'insuffisance cardiaque congestive, la dégénération maculaire liée à l'âge et l'ostéoporose. 27. Méthode de diagnostic et/ou de pronostic selon une quelconque des revendications 22 à 26, caractérisée en ce que la détection de l'expression desdites séquences est effectuée après avoir mis les cellules endothéliales en présence d'un fluide biologique issu d'un patient. 28. Méthode de vérification de l'efficacité thérapeutique d'un traitement angiogénique chez un mammifère, notamment chez un être humain, caractérisée en ce qu'elle comporte l'identification in vitro dans une population cellulaire dudit mammifère, de la sur-expression ou de la sous-expression d'au moins un gène impliqué dans un désordre angiogénique identifié par une des séquences d'acides nucléiques identifiées sous les numéros SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 à SEQ ID N 15, SEQ ID N 17 à SEQ ID N 53, SEQ ID N 225 et SEQ ID N 284 à SEQ ID N 290 dans la liste de séquences en annexe. 29. Méthode de vérification de l'efficacité thérapeutique selon la revendication 28 caractérisée en ce qu'elle comporte les étapes suivantes : - la détection de l'expression d'une ou plusieurs desdites séquences d'acides nucléiques choisie parmi les séquences SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 à SEQ ID N 15, SEQ ID N 17 à SEQ ID $N 53, SEQ ID N 225 et SEQ ID N 284 à SEQ ID N 290 dans la liste de séquences en annexe, par une première population cellulaire d'un mammifère auquel est administrée une composition thérapeutique destinée à traiter un désordre angiogénique, - la détection d'une ou plusieurs desdites séquences d'acides nucléiques choisie parmi les séquences identifiées sous les numéros SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 à SEQ ID N 15, SEQ ID N 17 à SEQ ID N 53, SEQ ID N 225 et SEQ ID N 284 à SEQ ID N 290 dans la liste de séquences en annexe, par une deuxième population cellulaire de référence dont l'état angiogénique est connu, - l'identification des différences éventuelles du niveau d'expression d'une, ou plusieurs, desdites séquences d'acides nucléiques choisie parmi les séquences identifiées sous les numéros SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 à SEQ ID N 15, SEQ ID N 17 à SEQ ID N 53, SEQ ID N 225 et SEQ ID N 284 à SEQ ID N 290 dans la liste de séquences en annexe, par lesdites première et deuxième populations cellulaires. 30. Méthode de vérification de l'efficacité thérapeutique selon l'une quelconque des revendications 28 à 29, caractérisée en ce que le désordre angiogénique est choisi parmi : la vascularisation de tumeurs, les rétinopathies, l'arthrite rhumatoïde, la maladie de Crohn, l'athérosclérose, l'hyperstimulation de l'ovaire, le psoriasis, l'endométrie associée à la néovascularisation, la resténose due à l'angioplastie du ballon, la superproduction tissulaire due à la cicatrisation, la maladie vasculaire périphérique, l'hypertension, l'inflammation vasculaire, la maladie et les phénomènes de Raynaud, l'anévrisme, la resténose artérielle, la thrombophlébite, la lymphagyte, le lymphodème, la cicatrisation et la réparation tissulaire, l'ischémie, l'angine, l'infarctus de myocarde, la maladie chronique du c#ur, les insuffisances cardiaques telles que l'insuffisance cardiaque congestive, la dégénération maculaire liée à l'âge et l'ostéoporose. 31. Méthode de vérification selon une quelconque des revendications 28 à 30, caractérisée en ce que la détection de l'expression desdites séquences est effectuée après avoir mis les cellules endothéliales en présence d'un fluide biologique issu d'un patient. 32. Méthode de criblage de composés utiles pour le traitement d'un désordre angiogénique d'un mammifère, notamment d'un être humain, caractérisée en ce qu'elle comporte les étapes suivantes : a) la détection de l'expression d'une ou plusieurs desdites séquences d'acides nucléiques choisie parmi les séquences identifiées sous les numéros SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 à SEQ ID N 15, SEQ ID N 17 à SEQ ID N 53, SEQ ID N 225 et SEQ ID N 284 à SEQ ID N 290 dans la liste de séquences en annexe, par une première population cellulaire d'un mammifère mise en présence d'un composé susceptible d'avoir un effet thérapeutique sur un désordre angiogénique, b) la détection de l'expression d'une ou plusieurs desdites séquences d'acides nucléiques choisie parmi les séquences identifiées sous les numéros SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 à SEQ ID N 15, SEQ ID N 17 à SEQ ID N 53, SEQ ID N 225 et SEQ ID N 284 à SEQ ID N 290 dans la liste de séquences en annexe, par une deuxième population cellulaire de référence dont l'état angiogénique est connu, c) l'identification des différences éventuelles du niveau d'expression d'une ou plusieurs desdites séquences d'acides nucléiques choisie parmi les séquences identifiées sous les numéros SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 à SEQ ID N 15, SEQ ID N 17 à SEQ ID N 53, SEQ ID N 225 et SEQ ID N 284 à SEQ ID N 290 dans la liste de séquences en annexe, par lesdites première et deuxième populations cellulaires. 33. Méthode de criblage selon la revendication 32, caractérisée en ce que la détection de l'expression desdites séquences est effectuée après avoir mis les cellules endothéliales en présence d'un fluide biologique issu d'un patient. 34. Dispositif comprenant un support comprenant une ou plusieurs sondes spécifiques d'une ou plusieurs séquences d'acides nucléiques choisie parmi les séquences identifiées sous les numéros SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 à SEQ ID N 15, SEQ ID N 17 à SEQ ID N 53, SEQ ID N 225 et SEQ ID N 284 à SEQ ID N 290 dans la liste de séquences en annexe, pour la mise en #uvre d'une méthode de criblage selon les revendications 32 ou 33. 35. Dispositif selon la revendication 34 caractérisé en ce que le support est choisi parmi une membrane de verre, une membrane métallique, une membrane polymère, une membrane de silice. 36. Trousse destinée à la mesure de l'affichage différentiel de gènes impliqués dans des désordres angiogéniques comprenant un dispositif selon l'une quelconque des revendications 34 ou 35, des amorces spécifiques et les accessoires nécessaires à l'amplification des séquences extraites d'un échantillon, leur hybridation avec les sondes du dispositif et la réalisation des mesures de l'affichage différentiel. 37. Trousse destinée à la mesure de l'affichage différentiel de gènes impliqués dans des désordres angiogéniques comprenant une lignée stable de cellules génétiquement modifiées, selon les revendications 14 ou 15, en tant que population cellulaire de référence, une ou plusieurs sondes spécifiques des séquences choisie parmi les séquences identifiées sous les numéros SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 à SEQ ID N 15, SEQ ID N 17 à SEQ ID N 53, SEQ ID N 225 et SEQ ID N 284 à SEQ ID N 290 dans la liste de séquences en annexe, et les moyens nécessaires pour la détection et la mesure dudit affichage différentiel.