FR 2858621 A1 20050211 FR 0309697 A 20030806 La présente invention concerne un nouveau peptide interagissant avec Bel-XL et Bcl-2, ainsi que les méthodes de criblage permettant d'identifier des molécules capables de moduler cette interaction. La plupart des processus biologiques impliquent des interactions protéines-protéines. Un des objectifs fixés par la protéomique est la réalisation d'une carte de ces interactions. Celles-ci, impliquées dans la plupart des mécanismes de transductions de signal, sont des cibles de choix dans l'élaboration d'un médicament. Il existe de nombreuses méthodologies permettant d'identifier des interactions protéiques. Une des plus répandues est le système du double hybride initialement développée et décrite par Fields et col. (US5,283,173, US5,468,614, US5,667,973). Ce système consiste à la base en un test in vitro entre deux protéines recombinées. La première appelée protéine appât est une protéine chimérique fusionnée à un domaine de liaison de l'ADN (DNA binding domain/BD) capable de se lier en amont d'un gène reporter. Les domaines de liaison couramment utilisés sont ceux de Gal4 ou E.coli LexA. La seconde protéine est également une protéine chimérique communément appelée proie qui contient un domaine d'activation (activation domain/AD), en général provenant de Gal4. Cependant, ces méthodes conventionnelles ont leurs limites. Il est par exemple bien connu que de tels criblages peuvent conduire à des faux positifs et/ou faux négatifs et des confirmations biochimiques des résultats obtenus sont nécessaires. Une technique plus performante permettant de minimiser les faux positifs ou négatifs est décrite dans la demande de brevet W09942612 et utilise des levures haploïdes recombinantes contenant les polypeptides appât et proie . Ce système permet la détection d'un plus grand nombre de proies à partir d'un appât , de façon plus précise, plus reproductible et plus sensible que les autres méthodes conventionnelles utilisées dans le domaine. L'apoptose est un processus de mort cellulaire jouant un rôle crucial chez les organismes pluricellulaires. Il existe en effet deux formes de mort cellulaire : la nécrose et l'apoptose. La nécrose se rencontre lors de lésions tissulaires : les cellules gonflent, conduisant à la fuite des constituants cellulaires puis à la lyse de la cellule, ce qui provoque une inflammation des tissus alentours. Au contraire, l'apoptose est un processus physiologique programmé et régulé, dont on ne peut sous estimer l'importance puisque environ 109 de nos cellules meurent tous les jours par ce mécanisme. De nombreuses pathologies sont reliées à une dérégulation de l'équilibre existant entre la croissance, la survie et la mort cellulaire. On peut citer en particulier les maladies autoimmules, certaines maladies neurologiques et les cancers. Maintenir une cellule en vie ou programmer sa mort nécessite au moins dix familles de protéines différentes, parmi lesquelles la famille Bcl-2 joue un rôle majeur. Cette famille contient environ vingt protéines parmi lesquelles Bcl-2 et Bel-XL, protéines antiapoptotiques favorisant la survie de la cellule, à l'inverse de Bax, Bak et Bid qui sont des protéines pro-apoptotiques. Au cours de l'apoptose, il semblerait que les membres de la famille Bcl-2 modifient leurs interactions avec leurs partenaires de façon à induire des changements irréversibles dans la cellule conduisant à la mort cellulaire. Il est ainsi essentiel de pouvoir identifier des molécules capables de modifier ces interactions pour obtenir de réels candidats médicaments efficaces dans les pathologies impliquant des dérégulations de l'apoptose, notamment les maladies autoimmunes, certaines maladies neurodégénératives et les cancers. La demanderesse a présentement identifié un nouveau peptide interagissant avec les protéines anti-apoptotiques Bcl-2 et Bel-XL. Ce petit peptide de 22 acides aminés correspond au domaine précis d'interaction avec Bcl- 2 et/ou Bel-XL et possède les critères structuraux typiques d'un motif BH3 , domaine d'interaction permettant la formation d'homo- ou d'hétérodimères. La faible taille de ce peptide en fait un candidat idéal pour l'élaboration d'un test permettant le criblage hautement efficace de molécules capables de moduler les interactions entre ces protéines. On trouve dans la littérature de nombreux tests de criblage de modulateurs d'interactions protéines-protéines mais ils présentent souvent des limites quant à leur sensibilité et leur faisabilité à haut débit. Les méthodes couramment utilisées nécessitent la mise en #uvre d'outils complexes (protéines de fusion, protéines recombinantes...) peu compatible avec un criblage à haut débit. Elles génèrent le plus souvent un bruit de fond important et sont peu fiables d'un point de vue quantitatif : elles présentent une fenêtre de lecture réduite ne permettant pas un criblage optimal des molécules testées. La demanderesse a au contraire élaboré un test de criblage hautement efficace basé sur la polarisation de fluorescence (Owicki J. C. et al., Journal of Biomolecular Screening, 5, 2000,297-306). Cette technique permet par exemple de mesurer l'interaction entre un ligand marqué avec un fluorophore et un récepteur. Le principe consiste à mesurer une augmentation de la polarisation de fluorescence émise par le ligand fixé à son récepteur comparée à celle émise par le ligand libre. La polarisation de fluorescence du ligand libre est dépendante de son poids moléculaire et sera d'autant plus importante que le poids moléculaire sera élevé. Ainsi lorsque ce test est réalisé avec un ligand de fort poids moléculaire, ayant une forte polarisation de fluorescence intrinsèque, il sera difficile d'apprécier de façon fiable la différence de polarisation de fluorescence entre le ligand libre et le ligand fixé. L'utilisation d'un ligand le plus petit possible permettra au contraire d'exacerber cette différence, et par conséquent d'augmenter la précision de l'essai. Il sera ainsi possible de mieux évaluer la réelle activité d'une molécule, et d'effectuer ces criblages à haut débit. Plus particulièrement, la présente invention concerne le peptide comportant la séquence d'acides aminés de la figure 1 (SEQ ID N 1) ainsi que ses variants fonctionnels. Par variants fonctionnels , on entend tous fragments ou mutants ponctuels du peptide décrit dans la figure 1 capables d'interagir avec les protéines Bcl-2 et/ou Bcl-XL. Ce peptide a été identifié par la méthode du double hybride en utilisant Bcl-XL et Bcl-2 en tant que protéines appâts . Trois banques de cDNA humains (placenta, cerveau, lignée cellulaire CEMC7) ont été criblées, et ont permis l'identification de fragments proies correspondants à des séquences partielles de la séquence HC210RF80 (Numéro d'Accession NM~015227). Il a été ensuite déterminé expérimentalement par la technique du double hybride qu'un fragment de cette séquence est nécessaire et suffisant pour obtenir l'interaction avec BclXL et/ou Bcl-2, et correspond au fragment de 22 acides aminés décrit dans la figure 1. L'interaction avec les protéines Bcl-2 et Bcl-XL a été validée par des techniques biochimiques (co-immunoprécipitation, GST pull-down) et l'activité biologique de ce peptide a pu être confirmée par transfections et/ou microinjections dans des cellules où il a été montré qu'il induisait l'apoptose. La présente invention concerne également les séquences d'acides nucléiques déduites selon le code génétique de la séquence d'acides aminés de la figure 1 ainsi que de celles des variants fonctionnels décrits précédemment. Plus particulièrement, l'invention concerne la séquence d'acide nucléique de la figure 2 (SEQ ID N 2) codant pour le peptide décrit dans la figure 1. Par séquences d'acides nucléiques , il doit être compris une séquence nucléique isolée de son contexte naturel. Il s'agit notamment de séquences isolées, amplifiées et/ou purifiées et éventuellement modifiées par génie génétique. L'invention concerne aussi un vecteur recombinant comprenant une séquence d'acide nucléique selon l'invention. Par vecteur, il faut comprendre tout type de vecteur permettant l'introduction de la séquence d'acide nucléique dans une cellule-hôte et l'expression du polypeptide. La vecteur recombinant selon l'invention est caractérisé en ce qu'il comprend les séquences d'ADN nécessaires à l'expression des peptides selon l'invention et plus particulièrement du peptide décrit dans la figure 1. On peut citer en particulier les vecteurs dérivés des plasmides bactériens, les bactériophages, les plasmides et chromosomes de levure, les virus... L'invention porte aussi sur les cellules-hôtes transformées par les vecteurs recombinants. Ces cellules sont préférentiellement des bactéries ou des cellules eucaryotes. On peut citer à titre d'exemple Escherichia coli, les levures, les cellules d'insectes ou de mammifères. L'invention porte par ailleurs sur un procédé de criblage d'agents capables de moduler l'interaction entre les peptides selon l'invention et plus particulièrement le peptide décrit dans la figure 1, et des protéines anti-apoptotiques et plus particulièrement Bcl-2 et BclXL. Les agents modulateurs de ces interactions seront avantageusement des molécules synthétisées chimiquement ou issues de banques de produits. Le procédé de criblage selon l'invention contient les étapes suivantes : a) la préparation d'un peptide selon l'invention marqué avec un marqueur de fluorescence ; b) l'incubation avec le composé à tester ; c) l'ajout de la protéine de fusion contenant la protéine anti-apoptotique ; d) la mesure de la polarisation de fluorescence. L'invention concerne en particulier le procédé de criblage de molécules capables d'inhiber l'interaction entre le peptide et la protéine anti-apoptotique, comprenant les étapes suivantes : a) la préparation du peptide selon l'invention marqué avec un marqueur de fluorescence ; b) l'incubation ou non avec le composé à tester ; c) l'ajout de la protéine de fusion contenant la protéine anti-apoptotique ; d) la mesure de la polarisation de fluorescence avec et sans le composé à tester ; e) la sélection des molécules pour lesquelles l'augmentation de la polarisation de fluorescence observée avec le composé à tester est significativement inférieure à celle observée sans le composé à tester. L'invention concerne en particulier le procédé de criblage de molécules capables d'augmenter l'interaction entre le peptide et la protéine anti-apoptotique, comprenant les étapes suivantes : a) la préparation du peptide selon l'invention marqué avec un marqueur de fluorescence ; b) l'incubation ou non avec le composé à tester ; c) l'ajout de la protéine de fusion contenant la protéine anti-apoptotique ; d) la mesure de la polarisation de fluorescence avec et sans le composé à tester ; e) la sélection des molécules pour lesquelles l'augmentation de la polarisation de fluorescence observée avec le composé à tester est significativement supérieure à celle observée sans le composé à tester. Selon un mode de réalisation préféré des procédés précédemment décrits, le marqueur de fluorescence sera par exemple Oregon Green, Bodipy ou la fluorescéine, et plus particulièrement la fluorescéine. Le peptide selon l'invention utilisé dans les procédés de criblage sera préférentiellement le peptide décrit dans la figure 1. Avantageusement, les procédés selon l'invention seront réalisés avec les protéines antiapoptotiques Bcl-2 et Bcl-XL. Par conséquent, l'invention porte aussi sur l'utilisation des peptides selon l'invention pour le criblage selon les procédés de l'invention de molécules actives capables de moduler l'apoptose. Plus particulièrement, l'invention concerne l'utilisation des peptides selon l'invention pour le criblage selon les procédés de l'invention de molécules utiles dans le traitement des pathologies impliquant une dérégulation de l'apoptose. L'invention concerne donc l'utilisation des peptides selon l'invention pour le criblage selon les procédés de l'invention de molécules utiles dans le traitement des maladies autoimmunes, de certaines maladies neurologiques et des cancers. DESCRIPTION DES FIGURES Figure 1 : Séquence d'acides aminés du peptide interagissant avec Bcl-2 et Bel-XL (SEQ IDN 1) Figure 2 : Séquence d'acides nucléiques codant pour le peptide décrit dans la figure 1 (SEQ ID N 2) Les exemples suivants illustrent l'invention et ne la limitent en aucune façon : EXEMPLE 1 : Identification du peptide décrit dans la figure 1 Trois banques de cDNA humains ont été criblées (placenta, cerveau, lignée cellulaire CEMC7) par la technique du double hybride (Fields et col. ) chez la levure en utilisant le protocole de conjugaison (Legrain et col., Nature Genetics, 1997, 16, 277-282). 1) Préparation des appâts et proies a) Les appâts utilisés sont : - Bel-XL délétée de son extrémité C-terminale (1-209) fusionnée au domaine de liaison à l'ADN LexA - Bcl-2 délétée de son extrémité C-terminale (1-211) fusionnée au domaine de liaison à l'ADN LexA. Ils sont exprimés dans Saccharomyces cerevisiae (CG1945 ou L40AGal4) et mis en préculture à 30 C dans un milieu synthétique dépourvu de tryptophane (DO-Trp) jusqu'à obtention d'une DO600nm comprise entre 0,1 et 0,5. Cinquante ml d'une dilution de cette préculture (DO600nm =0,006) sont incubés à 30 C pendant une nuit. b) Une collection de levures contenant les plasmides exprimant les banques de cDNA fusionnés au domaine d'activation de la transcription Gal4 est obtenue par transformation après sélection sur un milieu dépourvu en leucine (DO-Leu). Ces levures sont aliquotées et conservées à -80 C. 2) Conjugaison La conjugaison est réalisée avec un ratio appât / proie égal à 2. Une quantité de cellules de levure-appâts obtenues au stade 1)a) correspondant à 50 unités DO600nm est mélangée aux levure-proies obtenues au stade l)b). Après centrifugation, le culot est resuspendu dans un milieu YPGlu, étalé sur des boîtes de culture YPGlu et incubé 4 heures 30 à 30 C. La sélection des levures conjuguées contenant un appât et une proie capables d'interagir ensembles est réalisée sur un milieu DO-Leu-Trp-His : l'absence de leucine et de tryptophane permet de maintenir une pression de sélection ne permettant qu'aux levures contenant les deux types de plasmides ( appâts / proies ) de pousser; l'absence d'histidine dans le milieu permet de sélectionner les levures conjugées contenant un plasmide appât et un plasmide proie capables d'interagir ensembles : cette interaction permet d'activer le gène HIS3 codant pour une enzyme impliquée dans la biosynthèse de l'histidine. 3) Identification des clones positifs Les fragments proie d'une colonie de levures sélectionnées selon 2) sont amplifiés par PCR à partir d'un lysat brut de cette colonie, en utilisant des amorces spécifiques du vecteur proie : ABS1 5'-GCTTTGGAATCACTACAGG-3' ABS2 5'-CACGATGCACGTTGAAGTG-3'. Les produits de PCR sont ensuite séquences et les séquences obtenues sont identifiées par comparaison avec des banques de données. Parmi les clones positifs obtenus, des fragments de 300 acides aminés environ-ont pu être identifiés comme étant des séquences partielles de la séquence HC210RF80 (Numéro d'Accession : NM~015227). 4) Identification du peptide décrit dans la figure 1 Des expériences de double hybride réalisées selon les stades 1), 2) et 3) précédemment décrits à partir de plus petits fragments de la séquence HC210RF80 ont permis d'identifier un petit peptide de 22 acides aminés comme étant nécessaire et suffisant pour obtenir l'interaction avec Bcl-XL et Bcl-2 : Asp-Thr-Arg-Arg-Ser-Met-Val-Phe-Ala-Arg-His-Leu-Arg-Glu-Val-Gly-Asp-Glu-Phe-Arg-Ser-Arg. EXEMPLE 2 : de l'interaction entre le peptide décrit dans l'Exemple 1 et Bel-2 et/ou Bel-XL 1) GST pull-down L'interaction entre le peptide obtenu dans l'Exemple 1 et Bcl-2 et/ou Bel-XL est validée par mesure du déplacement de l'interaction entre une protéine à motif BH3 Bid et la protéine de fusion GST-Bcl-2 ou GST-Bcl-XL. a) Synthèse de Bid radiomarquée La protéine marquée est obtenue en utilisant le kit TNT Quick Master (Promega). Quarante l de mélange TNT sont incubés pendant 90 minutes à 30 C avec 2 l (équivalent à 20 Ci) de 35S-méthionine (Amersham), 1 g d'ADN plasmidique codant pour Bid et de l'eau en quantité suffisante pour atteindre un volume de 50 l. Le nombre de fmoles/ l de protéine radioactive produite est calculé à partir du nombre de méthionines dans la protéine. b) GST pull-down Quatre fmoles de protéine Bid radioactive sont incubées à 4 C pendant 3 heures avec 3 g de la protéine de fusion glutation-S-transférase-Bcl-XL (GST-Bcl-XL) ou glutation- S-transférase-Bcl-2 (GST-Bcl-2) ou GST seule dans 300 l de tampon de liaison (142 mM KCI, 5 mM MgCl2, 10 mM tampon Hepes, 0,5 mM DTT, 1 mM EDTA, inhibiteur de protéases, pH 7,4) et 0,4% de Triton XI 00. Les billes de glutathione sepharose 4 fast flow (Amersham) sont lavées 3 fois dans le tampon de liaison et remises en suspension dans ce tampon de façon à obtenir une solution à 50%. 20 l sont ajoutés à chaque échantillon et incubés sous rotation à 4 C pendant 1 heure. Les billes sont ensuite lavées 3 fois dans le tampon de liaison, puis 25 l de tampon 2x SDS, Laemmli (Sigma) sont ajoutés. Les échantillons sont placés 5 minutes à 95 C puis déposés sur un gel à 12% Tris-Glycine (Invitrogen). Après électrophorèse, le gel est ensuite incubé dans une solution de séchage (Invitrogen) pendant 30 minutes, puis séché pendant 150 minutes à 70 C. Les protéines radioactives sont révélées par exposition d'un film Kodak BioMax MS-1 (Sigma). Pour effectuer le test de compétition avec le peptide à tester, celui-ci est ajouté à la solution initiale avec des concentrations allant de 1 à 100 M. c) Résultats Lorsqu'on ajoute à la solution initiale le peptide obtenu dans l'Exemple 1, le signal autoradiographique de Bid disparaît. Ce résultat montre que le peptide obtenu dans l'Exemple 1 inhibe l'interaction entre Bcl-2 et Bid et entre Bel-XL et Bid. 2) Polarisation defluorescence Une solution contenant 1 à 100 nM du peptide obtenu dans l'Exemple 1 marqué à la fluorescéine à l'extrémité N-terminale est mélangée à une solution contenant la protéine de fusion GST-Bcl-XL ou GST-Bcl-2 à la concentration de 0,1 à 1 M dans un tampon contenant Na2HP04 20 mM pH 7,4, de l'EDTA 1 mM, NaCl 50 mM, de l'acide pluronique F-68 0,05%. La polarisation de fluorescence est ensuite mesurée par l'appareil En Vision (Packard Perkin-Elmer). Résultats : Une augmentation significative de la polarisation de fluorescence est observée lorsque le peptide obtenu dans l'Exemple 1 est incubé avec les protéines de fusion contenant Bel-XL et Bcl-2 attestant de sa fixation sur ces protéines. EXEMPLE 3 : Test de criblage de molécules capables d'inhiber l'interaction entre Bcl-2 et/ou Bel-XL et le peptide obtenu dans l'Exemple 1 Les produits à tester sont distribués dans des plaques 384 puits (Corning Flat Bottom) à une concentration finale de 10 g/ml. Un puits est rempli avec une quantité équivalente de tampon/solvant sans composé à tester et constituera le témoin. Le peptide obtenu dans l'Exemple 1 marqué à la fluorescéine est ajouté dans chaque puits de manière à obtenir une concentration finale allant de 1 à 100 nM. La protéine de fusion GST-Bcl-XL ou GST-Bcl- 2 est ensuite ajoutée de façon à obtenir une concentration finale de 0,1 à 1 M dans un tampon contenant Na2HP04 20 mM pH 7,4, de l'EDTA 1 mM, NaCl 50 mM, de l'acide pluronique F-68 0,05%. La polarisation de fluorescence est ensuite mesurée par l'appareil En Vision (Packard Perkin-Elmer). Une diminution significative de la polarisation de fluorescence enregistrée dans l'essai réalisé avec le composé à tester comparée à celle obtenue sans le composé à tester (puits témoin) permet de conclure à une activité inhibitrice de la molécule. A l'inverse, une augmentation significative de la polarisation de fluorescence dans l'essai avec le produit à tester comparée au témoin permet de conclure à une activité activatrice de la molécule. REVENDICATIONS 1. Peptide interagissant avec les protéines anti-apoptotiques Bcl-2 et/ou Bcl-XL caractérisé par la séquence suivante (SEQ ID N 1): Asp-Thr-Arg-Arg-Ser-Met-Val-PheAla-Arg-His-Leu-Arg-Glu-Val-Gly-Asp-Glu-Phe-Arg-Ser-Arg. 2. Peptide caractérisé en ce qu'il correspond à un fragment ou à un mutant ponctuel du peptide selon la revendication 1 et en ce qu'il présente une interaction avec les protéines anti-apoptotiques Bcl-2 et/ou Bcl-XL . 3. Séquence d'acides nucléiques codant un peptide selon la revendication 1 caractérisée par la séquence suivante (SEQ ID N 2) : 5'-GATACCCGTCGCAGCATGGTGTTTGCCAGGCACCTGCGGGAGGTGGGAGA CGAGTTCAGGAGCAGA-3'. 4. Séquences d'acides nucléiques déduites selon le code génétique de la séquence d'acides aminés selon la revendication 1. 5. Séquences d'acides nucléiques déduites selon le code génétique de la séquence d'acides aminés selon la revendication 2. 6. Vecteur recombinant caractérisé en ce qu'il comprend une séquence d'acides nucléiques selon l'une des revendications 3 à 5. 7. Vecteur recombinant selon la revendication 6 caractérisé en ce que le vecteur est un plasmide comprenant les séquences nécessaires à l'expression du peptide dans une cellulehôte. 8. Cellule-hôte caractérisée en ce qu'elle est transformée par le vecteur recombinant selon l'une des revendications 6 ou 7. 9. Procédé d'identification de molécules capables de moduler l'interaction entre un peptide selon l'une des revendications 1 ou 2 et une protéine anti-apoptotique, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : a) la préparation d'un peptide selon l'une des revendications 1 ou 2 marqué avec un marqueur de fluorescence ; b) l'incubation avec le composé à tester ; c) l'ajout de la protéine de fusion contenant la protéine anti-apoptotique ; d) la mesure de la polarisation de fluorescence. 10. Procédé d'identification de molécules capables d'inhiber l'interaction entre un peptide selon l'une des revendications 1 ou 2 et une protéine anti-apoptotique, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : a) la préparation d'un peptide selon l'une des revendications 1 ou 2 marqué avec un marqueur de fluorescence ; b) l'incubation avec ou sans le composé à tester ; c) l'ajout de la protéine de fusion contenant la protéine anti-apoptotique ; d) la mesure de la polarisation de fluorescence ; e) la sélection des molécules pour lesquelles l'augmentation de la polarisation de fluorescence observée avec le composé à tester est significativement inférieure à celle observée sans le composé à tester. 11. Procédé d'identification de molécules capables d'augmenter l'interaction entre un peptide selon l'une des revendications 1 ou 2 et une protéine anti-apoptotique, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : a) la préparation d'un peptide selon l'une des revendications 1 ou 2 marqué avec un marqueur de fluorescence ; b) l'incubation avec ou sans le composé à tester ; c) l'ajout de la protéine de fusion contenant la protéine anti-apoptotique ; d) la mesure de la polarisation de fluorescence ; e) la sélection des molécules pour lesquelles l'augmentation de la polarisation de fluorescence observée avec le composé à tester est significativement supérieure à celle observée sans le composé à tester. 12. Procédé selon l'une des revendications 9 à 11 dans lequel le peptide utilisé est caractérisé par la séquence SEQ ID N 1. 13. Procédé selon l'une des revendications 9 à 11 dans lequel le marqueur de fluorescence utilisé est la fluorescéine. 14. Procédé selon l'une des revendications 9 à 11 dans lequel la protéine antiapoptotique est Bcl-2 ou Bel-XL. 15. Utilisation d'un peptide selon l'une des revendications 1 ou 2 pour l'identification selon le procédé d'une des revendications 9 à 11de molécules modulatrices de l'apoptose. 16. Utilisation d'un peptide selon l'une des revendications 1 ou 2 pour l'identification selon le procédé d'une des revendications 9 à 11de molécules utiles dans le traitement des pathologies impliquant une dérégulation de l'apoptose. 17. Utilisation d'un peptide selon l'une des revendications 1 ou 2 pour l'identification selon le procédé d'une des revendications 9 à 11de molécules utiles dans le traitement des maladies autoimmunes, de certaines maladies neurologiques et des cancers.