FR 2837104 A1 20030919 FR 0203189 A 20020314 La présente invention se rapporte à l'utilisation pour la fabrication d'un vaccin d'un mélange comprenant au moins des lipopeptides, lesdits lipopeptides étant constitués d'un composé peptidique ayant été lié en solution, par un lien hydrazone, à au moins un vecteur lipophile de nature non peptidique. L'utilisation pour la fabrication de vaccins de lipopeptides a déjà été décrite : ainsi, la demande de brevet PCT/FR98/02605 décrit des micelles mixtes de lipopeptides pour l'induction d'une réponse immunitaire. Cette utilisation permet, à partir d'un produit de composition chimique déterminée, de délivrer au système immunitaire une collection diversifiée d'antigènes peptidiques qui seront présentés simultanément par les cellules présentatrices d'antigènes (CPA) en association avec les molécules du complexe majeur d'histocompatibilité (CMH) de classe I et de classe II. Il est ainsi possible d'activer des cellules spécifiques des antigènes présentés : cellules T auxiliaires (Lymphocytes T helper , HTL), cellules B productrices d'anticorps, ou cellules T cytotoxiques (Lymphocytes T cytotoxiques, CTL). Pour induire dans chaque individu vacciné une réponse immunitaire polyclonale protectrice, l'augmentation de la diversité épitopique de la composition vaccinale représente une des stratégies les plus prometteuses. Plusieurs expériences ont montré que des réponses cellulaires multiples peuvent être induites de manière assez efficace à la suite d'une immunisation avec plusieurs peptides présentant de multiples épitopes modifiés au niveau de leur position C-terminale par une N-s-palmitoyl lysine. Ainsi, par exemple, certains cocktails de lipopeptides comprenant de 7 à 8 constituants différents ont été utilisés pour induire des réponses de cellules T spécifiques à un virus chez les primates (Bourgault-Villada et collaborateurs, 1997, FEMS Immunol. Med. Microbiol., 19, 81- 87 ; Mortara et collaborateurs, 1999, J. Virol, 73, 4447- 4451 ; Mortara et collaborateurs, 2000, Virology, 278,551- 561) et chez l'homme (Gahéry-Ségard et collaborateurs, 2000, J. Virol., 74, 1694-1703 ; Pialoux et collaborateurs, 2001, AIDS, 15 1239 - 1249). L'étude de Pialoux et collaborateurs a montré qu'il était possible d'induire des réponses HTL et CTL chez une large majorité de volontaires sains ayant reçu une dose de 600 pg à 3 mg d'un mélange de 6 lipopeptides longs de 24 à 33 résidus (100 pg à 500 pg par peptide) dans le modèle d'infection par le Virus de l'Immunodéficience Humaine (Virus de type 1, VIH-1). La tolérance et l'immunogénicité du cocktail des 6 lipopeptides utilisés dans des essais de phase clinique de type I a confirmé que de telles formulations synthétiques représentent une approche alternative prometteuse aux vaccins conventionnels et recombinants. Les lipopeptides connus dans l'art antérieur sont assemblés par synthèse peptidique en phase solide au niveau de l'extrémité C-terminale ou N-terminale des peptides. Ces lipopeptides présentent un caractère lipophile, et de ce fait tendent à s'agréger en solution aqueuse. Par conséquent, la difficulté majeure rencontrée au cours de leur production à l'échelle industrielle est associée aux étapes de purification par RP-HPLC préparative, dont la résolution est très limitée. La séparation des produits souhaités à partir des produits secondaires peut être atteinte seulement avec une charge limitée sur la colonne. Par conséquent, pour la préparation d'un vaccin à l'échelle industrielle, et lorsqu'on considère les lipopeptides branchés en position C-terminale, une grande partie du coût du travail est consacrée à la répétition des étapes chromatographiques. Ainsi, les rendements de purification sont relativement faibles, typiquement de 10 au niveau du laboratoire, et vraisemblablement plus faible à l'échelle industrielle (10-100 mg), de 1 à 2% ou même moins lorsqu'on augmente la taille du lot de vaccin par un facteur 10. La demanderesse s'est donc fixé comme but de fabriquer des vaccins à l'échelle industrielle dont la fabrication ne présente pas les inconvénients de celle des vaccins de l'art antérieur. L'invention a donc pour objet l'utilisation pour la fabrication d'un vaccin d'un mélange comprenant au moins des lipopeptides, lesdits lipopeptides étant constitués d'un composé peptidique lié par un lien hydrazone, à au moins un vecteur lipophile de nature non peptidique, et sont de formule générale (I) suivante : [( (R1) (R2)i ) D -H]j - P (I) dans laquelle (R1) (R2)i D représente le vecteur lipophile, dans lequel: - i représente 0 ou 1, - dans le cas où i est égal à 0, D représente une liaison, - dans le cas où i est égal à 1, D représente un hétérocycle saturé, insaturé ou aromatique, mono- ou polycyclique, - R1 et R2, qui peuvent être identiques ou différents, représentent chacun un groupement de formule L-f-E-f' où L représente un résidu d'un lipide, E représente un bras espaceur, et f et f' représentent des fonctions liant, respectivement, L à E et E à D, et - P représente le composé peptidique, - H représente le lien hydrazone formé par la ligation en solution entre une fonction aldéhyde portée par le vecteur lipophile et une fonction dérivé d'hydrazine portée par le composé peptidique, - j représente 1 à 3. Lorsque j représente 2 ou 3, le mélange de lipopeptides doit former une solution ou suspension homogène en milieu aqueux et présenter un caractère immunogène souhaité. Dans un mode de réalisation préféré, l'utilisation d'au moins un mélange de lipopeptides selon la formule (I) est avantageusement tel que i est égal à 0, j est égal à 1 et en ce que le groupement L (dans la formule L-f-E-f' définie en rapport avec R1 et R2) représente par exemple un stérol, un dérivé de stérol (tel qu'un dérivé du cholestérol) ou une chaîne carbonée saturée ou insaturée, linéaire ou ramifiée, comprenant entre 4 et 30 atomes de carbone. Une telle chaîne carbonée constitue la partie lipophile d'un acide gras, tel que l'acide palmitique (lorsque L répond à la formule CH3- (CH2)14-) ou l'acide oléique (lorsque L répond à la formule CH3- (CH2) 7-CH=CH- (CH2) 7-) - Dans un mode de réalisation très préféré selon l'invention, le dérivé de stérol est un dérivé du cholestérol et la chaîne carbonée répond à la formule CH3-(CH2)14-. Par ailleurs, E représente avantageusement une chaîne carbonée linéaire, ramifiée ou cyclique, saturée ou insaturée, comportant de 1 à 18 atomes de carbone et, éventuellement, 1 à 16 hétéroatomes (par exemple de l'azote ou de l'oxygène) et/ou 1 à 7 groupements sélectionnés parmi les groupements carbonyles, les hétérocycles, les hétéroaryles, les carbocycles et les aryles. E peut éventuellement être substitué par 1 à 8 groupements hydroxyles ou amino et/ou 1 à 16 atomes d'halogène (tels que le chlore ou le fluor). De même, f représente avantageusement une liaison CO-NH- ou -CO-O- et f' représente une liaison-NH-CO- ou -0CO-. Au sens de la présente invention, on entend par : - carbocycle (aussi appelé cycloalkyle ) un cycle carboné mono- ou polycyclique, comprenant entre 3 et 8 atomes de carbone, tel que le cyclopentyle ou le cyclohexyle ; - aryle un cycle carboné aromatique, mono- ou polycyclique, comprenant entre 5 et 14 atomes de carbone, tel que le phényle, le naphtyle ou le crésyle ; - hétérocycle un carbocycle comprenant un ou plusieurs hétéroatomes choisis parmi l'azote, l'oxygène et le soufre, tel que la pipérazine ; - hétéroaryle un aryle comprenant un ou plusieurs hétéroatomes choisis parmi l'azote, l'oxygène et le soufre, tel que la pyridine, la pyrimidine ou la pyrazine. Des exemples de vecteurs lipophiles préférés conformes à l'invention répondent aux formules (II) et (III) ci-après : dans laquelle L est tel que défini précédemment et représente, par exemple une chaîne carbonée de formule CH3-(CH2)i4- (c'est- à-dire la partie lipophile de l'acide palmitique). Le composé peptidique P dans la formule (I) peut être sélectionné dans le groupe constitué par un ou plusieurs antigènes peptidiques et un ou plusieurs glycomimétiques dendrimériques de nature peptidique. Au sens de la présente invention, on entend par un ou plusieurs antigènes peptidiques ou glycomimétiques dendrimériques, le fait que le composé peptidique P puisse être constitué d'un seul ou de plusieurs antigènes peptidiques ou glycomimétiques dendrimériques liés entre eux, sans que l'activité du mélange de lipopeptides n'en soit modifiée. L'antigène peptidique est avantageusement choisi parmi le groupe constitué par les peptides et les dérivés de peptides comprenant les glycopeptides et les pseudopeptides. Au sens de la présente invention, on entend par peptide tout enchaînement de plusieurs acides aminés, quels que soient- leur nature et leur nombre ; le terme peptide désigne donc aussi bien des oligopeptides (dipeptides ou tripeptides) que des polypeptides ou des protéines. On entend par glycopeptides des peptides associés, par liaison covalente, avec des glucides, qu'il s'agisse de monosaccharides (tels que des oses neutres) ou de polysaccharides. Par pseudopeptides , on entend des peptides dont une ou plusieurs liaisons peptidiques (-CO-NH-) ont été remplacées par des liaisons non peptidiques (telles que les liaisons-CO-NH-NH-, -CH2-NH- ou -CO-NH-O-) . Au sens de la présente invention, on entend par glycomimétiques dendrimériques de nature peptidique , des glycomimétiques dont la structure est à base d'acides aminés ou de leurs dérivés et se présente sous une forme hautement ramifiée, de type arborescente. Le glycomimétique dendrimérique de nature peptidique répond à la formule générale (IV) ci-après : (B2M)m(XN)nA (IV) dans laquelle : B2 répond à une ou plusieurs formules générales (a) ou (b) ci-après : où R1, R2, R3 et R4 représentent, indépendamment les uns des autres, un atome d'hydrogène ou un groupe protecteur, et où W représente une liaison ou une chaîne carbonée linéaire, ramifiée ou cyclique, saturée ou insaturée, comprenant de 1 à 18 atomes de carbone et éventuellement de 1 à 12 atomes choisis parmi l'oxygène, le soufre et l'azote, ladite chaîne carbonée étant éventuellement substituée par 1 à 16 atomes d'halogène, - X représente le reste d'un oligopeptide X' comprenant de 1 à 6 acides aminés, - A représente le reste d'un composé A' au moins trifonctionnel comprenant un enchaînement d'acides aminés, identiques ou différents, sélectionnés dans le groupe constitué par la lysine, l'hydroxylysine, la sérine, la thréonine, la cystéine, l'ornithine, l'acide aspartique et l'acide glutamique - m est un nombre entier compris entre 1 et 32, - n est un nombre entier compris entre 0 et 32, et - M et N représentent chacun un groupe de liaison, respectivement entre B2et A quand n = 0 ou B2 et X quand n est différent de 0, et entre X et A quand n est différent de 0, et comprennent, indépendamment l'un de l'autre, une fonction choisie parmi les fonctions oxime, hydrazone, amide, ester, thioester, hydrazide, hydroxamate, éther, thioéther, amine, carbonate, carbamate, thiocarbonate, thiocarbamate, urée, thiourée et thiazolidine. Le composé de formule (IV) est décrit dans la demande de brevet internationale PCT/FROO/02194. Au sens de la présente invention, on entend par groupe protecteur un groupe protecteur d'une fonction hydroxyle ou d'un diol (auquel cas deux groupes choisis parmi R1, R2, R3 et R4 peuvent être reliés de façon covalente l'un à l'autre pour former ensemble un cycle), tel que défini dans l'ouvrage Protective Groups in Organic Synthesis, T. W. GREENE et P.G.M. WUTS, Seconde Edition 1991, J. WILEY and Sons. A titre d'exemples et de façon non-limitative, on peut citer les groupes triméthylsilyle, triéthylsilyle, triisopropylsilyle, tertiobutyldiméthylsilyle, tertiobutyldiphénylsilyle, triméthylsilyléthyléther, tert-butoxyméthyle, méthoxy-méthyle, benzyloxyméthyle, 2-méthoxyéthoxyméthyle, méthylthiométhyle, acétyle, ou 2',3'-diméthoxybutane-2',3'-diyle. A titre d'exemples et de façon non-limitative, dans les formules générales (a) et (b) : - des atomes d'halogène convenables sont le brome, le chlore et le fluor ; et - des chaînes carbonées convenables sont des groupes alkyles (méthyle, éthyle, propyle, isopropyle, tertiobutyle, pentyle, ...), des groupes alkényles (vinyle, allyle, butényle, pentényle, ...), des groupes alkynyles (éthynyle, propynyle, butynyle, pentynyle, ...), des groupes cycloalkyles (cyclopentyle, cyclohexyle, ...), des hétérocycles (pipérazine, ...), des groupes aryles (phényle, crésyle, ...), des groupes hétéroaryles (pyridine, pyrimidine, pyrazine, ...), des groupes polyéthylèneglycols ou encore des polyamines. Les formules (a) et (b) représentent les restes des acides quinique et shikimique et de certains de leurs dérivés, obtenus par protection des hydroxyles portés aux positions 1,3, 4 et/ou 5 du cycle. Dans un mode de réalisation préféré selon l'invention, le composé de formule générale (IV) est tel que m est un nombre entier compris entre 4 et 16, n est un nombre entier compris entre 2 et 8, X représente le reste d'un oligopeptide comprenant de 2 à 4 résidus d'acides aminés, tandis que A représente le reste d'un enchaînement comprenant de 2 à 8 résidus de lysine et se présentant sous la forme d'un dendrimère, et B2 représente un reste d'un ou plusieurs composés choisis parmi l'acide (-)-shikimique et l'acide (-)quinique. Dans le mélange de lipopeptides selon la formule (I), la présence de composés peptidiques selon la formule (IV) permet de vectoriser sélectivement les lipopeptides vers les cellules possédant des récepteurs du mannose ou des récepteurs de la famille des C-lectines apparentés au récepteur du mannose. Ainsi, le mélange de lipopeptides comprenant des composés peptidiques P constitués par un antigène peptidique et un glycomimétique dendrimérique selon la formule (IV) permettent de cibler ledit mélange de lipopeptides vers les cellules exprimant les récepteurs de la famille des C-lectines apparentés au récepteur du mannose. L'utilisation d'un mélange de lipopeptides selon la présente invention comprend avantageusement de 1 à 20 lipopeptides différents, de préférence de 1 à 10 lipopeptides différents. L'utilisation selon la présente invention de mélange de lipopeptides pour la fabrication de vaccins s'entend dans le sens de l'utilisation pour la fabrication de tous les types de vaccins, c'est à dire de manière classique les vaccins prophylactiques, mais également les vaccins à usage thérapeutique . Ces vaccins peuvent être dirigés contre les maladies infectieuses d'origine bactérienne, virale ou parasitaire ou contre différents types de cancers. L'utilisation selon l'invention permet aussi la fabrication de vaccins polyvalents comprenant le mélange d'antigènes peptidiques correspondant à différentes maladies infectieuses. Le composé peptidique est avantageusement constitué par des antigènes peptidiques dérivés d'un agent infectieux de type viral, tel que le VIH ou le VHC. L'utilisation pour la fabrication d'un vaccin d'un mélange comprenant au moins des lipopeptides selon l'invention est formulée de manière préférentielle pour l'administration par voie transmucosale ou par voie intra-musculaire. L'utilisation pour la fabrication d'un vaccin d'un mélange comprenant au moins des lipopeptides, selon la présente invention, comprend en outre des constituants à caractère amphiphile ou excipients capables d'assurer une bonne solvatation dans l'eau par une partie polaire et une interaction de type Van der Waals avec les lipopeptides à caractère hydrophobe. Ces excipients ou constituants amphiphiles peuvent être constitués, pour une majeure partie, d'acides aminés polaires ou chargés. Dans un mode de réalisation préféré selon l'invention, le mélange de lipopeptides comprend en outre un ou plusieurs excipients cliniquement acceptables. D'une manière particulièrement avantageuse, l'excipient cliniquement acceptable est le mannitol ou le Polysorbate 80, ou un mélange des deux. Dans encore un autre mode de réalisation préféré, l'utilisation selon l'invention comprend en tant que composés peptidiques P de l'agent infectieux VHC, les séquences peptidiques suivantes : - VHC 1 HzAc : H-K(COCH2NHNH2)GREILLGPADGMVSKGWRLLAPITAYAQQTR-NH2 - VHC 2 HzAc : H-K(COCH2NHNH2)GHAVGIFRAAVCTRGVAKAVDF-NH2 - VHC 3 HzAc : H-K(COCH2NHNH2)GAAWYELTPAETTVRLRAYMMTPGLPVAQD-NH2. L'invention concerne également les séquences natives : NS3 1007-1037 : H-KGREILLGPADGMVSKGWRLLAPITAYAQQTR-NH2 NS3 1174-1195 : H-KGHAVGIFRAAVCTRGVAKAVDF-NH2 NS3 1524-1553 : H-KGAAWYELTPAETTVRLRAYMNTPGLPVAQD-NH2, lesquelles présentent donc un caractère immunogène. Outre les dispositions qui précèdent, l'invention comprend encore d'autres dispositions qui ressortiront de la description qui va suivre, qui se réfère à des exemples de mise en #uvre de l'utilisation pour la fabrication d'un vaccin d'un mélange comprenant au moins des lipopeptides selon l'invention , ainsi qu'à la figure 1 qui illustre les résultats d'analyse de l'immunogénicité chez le macaque après l'injection de doses de vaccin (VIS) selon l'exemple 5. Dans les exemples qui suivent, les abréviations suivantes sont utilisées : eq. : équivalents ; Boc : tertbutyloxycarbonyle ; Fmoc : 9-fluorènyl-méthoxycarbonyle ; Mtt : 4-méthyl-trityle ; DMF : diméthylformamide ; TFA : acide trifluoroacétique ; CH2C12 . dichlorométhane ; MeOH : méthanol ; EtOH : éthanol ; THF : tétrahydrofurane ; AcOH : acide acétique ; AcOEt : acétate d'éthyle ; H2O : eau ; AcO- NH4+ : acétate d' ammonium ; CDC13 : chloroforme deutéré ; EDT : éthanedithiol ; TIS : triisopropylsilane ; DMSO-d6 : diméthylsulfoxyde-d6 (entièrement deutéré) ; NaI04 : periodate de sodium ; NaCl : chlorure de sodium ; Na2S04 . sulfate de sodium ; MgS04 . sulfate de magnésium ; KH2PO4 : dihydrogénophosphate de potassium ; PAL : peptide-amide linker ; BOP : benzotriazole-1-yl-oxytris(diméthylamino)phosphoniumhexafluorophosphate ; HOBt : Nhydroxybenzotriazole ; HBTU : N-oxyde d'hexafluorophosphate de N-[(lH-benzotriazol-1-yl) (diméthyl amino) méthylène] -N - méthylméthanaminium ; DIEA : diisopropyléthylamine ; TEAP : phosphate de triéthylamine ; HPLC : chromatographie liquide haute performance ; RP-HPLC : chromatographie liquide haute performance en phase inverse ; ES-MS : spectrométrie de masse par électronébulisation ; TOF-PDMS : spectrométrie de masse à désorption par plasma ; LC-MS : spectrométrie de masse couplée à une analyse par chromatographie liquide ; RMN 1H : résonance magnétique nucléaire du proton ; RMN 13C : résonance magnétique nucléaire du carbone. Exemple 1 : Préparation de doses de vaccin (lipopeptides HIVHzPAM) utilisables chez l'Homme, Modèle du Virus de l'Immunodéficience Humaine (VIH-1) 1) Synthèse des hydrazinopeptides Synthèse peptidique : Cinq peptides, dérivés des protéines Gag, Pol et Nef du virus HIV-1, fonctionnalisés par des groupes ahydrazinoacétiques au niveau de leur extrémité C-terminale, ont été préparés. Ces hydrazinopeptides ont été synthétisés en phase solide sous forme de sels de trifluoroacétate. Les stratégies Fmoc/tert-Butyl (conventionnelle), ainsi que le procédé qui a été récemment décrit N,N',N'-tri(tertbutyloxycarbonyl)-hydrazinoacetic acid) ont été employés pour introduire de manière ciblée un groupement hydrazinoacétyl sur un groupement s-amino déprotégé d'un résidu lysylamide en position C-terminale (BONNET D. et coll., J. Org. Chem, 2001 et demande de brevet PCT/FROO/02336). Selon les séquences, les rendements de synthèse sont compris entre 10 et 50 %. L'identité des peptides a été vérifiée par ES. MS. Les hydrazinopeptides sont soumis à une analyse de la composition en acides aminés après hydrolyse acide totale avec de l'acide chlorhydrique 6N HCl:phenol, 10 :1 à 110 C pendant 24h. Chromatographie Les hydrazinopeptides sont purifiés par RP-HPLC sur une colonne préparative C3 (colonne Zorbax : 300 , 5 uM, diamètre de 12,5 mm et longueur de 250 mm avec précolonne) sur une chaîne HPLC Shimatzu 6A. Les analyses par RP-HPLC sont réalisées sur une colonne préparative C3 (colonne Zorbax : 300 , 5 uM, diamètre de 4.6 et longueur de 250 mm) sur une chaîne HPLC Shimatzu 10A. Les solvants d'élution (solvants A et B) sont les suivants : solvant A : eau désionisée comprenant 0,05% de TFA, solvant B (purification) : 0,05% de TFA dans un mélange propan-2-ol / H20 (40:60). solvant B (suivi de réaction, Analyses) : 0,05% de TFA dans un mélange acétonitrile/ H20 (80: 20). Le débit d'élution est de lml/min en utilisant un gradient linéaire de 10 à 100 % de tampon B en 30 minutes, 100 % de tampon B pendant 10 minutes, 10 % de tampon B pendant 10 minutes (détection à 215 nm, température : 50 C). Les peptides obtenus sont représentés dans le Tableau I ci-après. Tableau I : Hydrazinopeptides dérivés de protéines du virus VIH-1 Peptides Hydrazinopeptides natifs Gag 17 - VIH 1 HzAc : EKIRLRPGGKKKYKLKHIV K(COCH2NHNH2)-NH2 35 Gag 253 - VIH 2 HzAc : NPPIPVGEIYKRWIILGLNKIVRMYSPTSILD K(COCH2NHNH2)-NH2 284 Pol 325 - VIH 3 HzAc : AIFQSSMTKILEPFRKQNPDIVIYQYMDDLY K(COCH2NHNH2)-NH2 355 Nef 66 - VIH 4 HzAc : VGFPVTPQVPLRPMTYKAAVDLSHFLKEKGGL K(COCH2NHNH2)-NH2 97 Nef 116 - VIH 5 HzAc : HTQGYFPDWQNYTPGPGVRYPLTFGWLYKLVP K (COCH2NHNH2) -NH2 147 Les temps d'élution des hydrazinopeptides obtenus sont représentés dans le Tableau II suivant. Tableau II Hydrazino Temps de [M+H]+ [M+H]+ rétention [M+H] + [M+H]+ peptides calculé trouvé (minutes) VIH 1 HzAc 6. 46 2490. 6 2490. 4 VIH 2 HzAc 17.15. 3896.2 3895.1 VIH 3 HzAc 15. 11 3966. 0 3966. 0 VIH 4 HzAc 13. 86 3695. 0 3695. 0 VIH 5 HzAc 14. 86 3800. 8 3800. 8 2) Synthèse du vecteur lipophile Pam (acide [3-(2-oxoacetylamino)-propyl]-amide Hexadecanoique, présent également sous forme "Vecteur Pam hydraté" : acide [3-(2,2-dihydroxy- acetylamino)-propyl]-amide Hexadecanoiue : La synthèse de ce vecteur, composé d'un groupement palmitoyl et d'un groupement glyoxylyl, a été décrite par MELNYK et collaborateurs dans la demande de brevet N PCT/FR01/02787 (exemple 4 : synthèse du vecteur lipophile IIIa ) et par Bonnet et collaborateurs (BONNET D et coll., Tetrahedron Letters, 2000). Dans un ballon de 500 ml, 10 g (66,6 mmoles) d'acide tartrique 1 sont dissous dans 200 ml d'éthanol absolu, en présence de 1% en masse de résine Amberlyst 15. Le ballon est muni d'un montage soxhlet contenant du tamis moléculaire activé 4 A. L'éthanol est porté à reflux durant 48h. Le milieu réactionnel est ensuite filtré sur verre fritté n 4 pour éliminer la résine. Le filtrat est concentré sous pression réduite et conduit à une huile jaune-clair. Le résidu 2 est séché une nuit sur P2O5 et utilisé sans autre forme de purification (m = 13,46 g, rendement = 98,0 %). L'analyse du composé 2, représenté ci-dessous, par chromatographie sur couche mince donne un indice de migration Rf = 0, 76 dans l' éluant CH2Cl2/MeOH/H2O/AcOH (90/10/0,1/0,05). RMN 1H (CDC13) : 1, 33 (t, 6H, H5,5', J5-4=7, 2 Hz) , 3, 28 (s, 2H, H1,1'), 4,33 (q, 4H, H4,4', J4-5=7,l Hz), 4,54 (s, 2H, H2,2'). RMN 13C : 14, 14 (C5,5'), 62, 48 (C4,4'), 72,08 (C2,2'), 171,62 (C3,3'). HO OH 1 HhO O CH3CH20 OCH2CH3 5 4 5' 13,46 mg (65,26 mmoles) du composé 2 sont dissous dans 155 ml d'éthanol absolu et ajoutés goutte à goutte à 56 ml (665,26 mmoles) de 1,3-diamino-propane. Le milieu réactionnel est ensuite agité 3h à température ambiante. L'excès de 1,3-diaminopropane est alors éliminé par évaporation sous pression réduite et entraînement azéotropique en présence d'éthanol (3 x 200 ml). L'huile jaune obtenue est séchée sur P2O5 pendant une nuit, puis reprise dans un mélange éthanol/toluène (1/1) et concentrée sous pression réduite (3 x 200 ml). Un composé jaune, sous une forme pâteuse, est ainsi obtenu. Ce composé est précipité dans 50 ml d'un mélange éther éthylique/éthanol (5/1), puis filtré, et le précipité blanchâtre est agité pendant lh30 à 0 C en présence d'éther éthylique. Il est alors filtré sur fritté et lavé 2 fois avec le minimum d'éther éthylique à froid. Le solide résiduel 3 est séché pendant une nuit sur P2O5 (m = 13,92 g, rendement = 81,3%) . L'analyse du composé 3, représenté ci-dessous, est la suivante : Rf = 0,34 dans THF/AcOH/H2O/AcO-NH4+ (35/20/10/1% massique). RMN 1H (DMSO-d6) : 1,48 (q, 4H, H6 et 6', J6-5,6,7 et 6'- 5',6',7'=6,65 Hz), 2,51 (m, 4H, H7-7'), 3,14 et 3,16 (t, 4H, Hs et 5', J5-6 et 5'-6'=6,3 Hz), 4,19 (s, 2H, H2,2'), 7,75 (t, 2H, H4,4-, J4,4.= 5,97 Hz). RMN 13C : 33,51 (C6,6'), 36, 98 (C7,7'), 40,06 (C5,5'), 73, 43 (C2,2') , 172, 87 (C5,5'). 996,9 mg (3,8 mmoles) du composé 3 sont dissous dans 15 ml d'eau. Le pH de la solution, égal à 8,5, est ramené à 3,25 à l'aide de 1,46 g d'acide citrique. 1,06 g (4,9 mmoles) de NaI04 solide sont alors ajoutés en quatre fois, pendant 5 minutes, au milieu réactionnel maintenu à température ambiante à l'aide d'un bain d'eau. Après 10 minutes d'agitation, 570 mg d'acide tartrique (3,8 mmoles) sont ajoutés pour neutraliser l'excès de NaI04 n'ayant pas réagi. Après 10 minutes d'agitation à température ambiante, le pH est ajusté à 8,6 avec 24 ml de N-méthyl-morpholine. Le milieu réactionnel est dilué avec 70 ml de 2-méthyl-propan-2ol et 20 ml d'eau. 2,16 g (1,6 eq.) de palmitoate de succinimidyle sont alors ajoutés à la solution qui est agitée une nuit à température ambiante. Le pH est ensuite ajusté à 3,5 avec 7,11 g d'acide citrique. Le milieu est dilué avec 40 ml d'une solution saturée en NaCl et extrait avec 140 ml de dichlorométhane, puis 100 ml de chloroforme. La phase organique est lavée avec deux fois 100 ml d'une solution saturée en KH2PO4, deux fois 100 ml d'une solution saturée en NaCl, puis séchée sur Na2SO4, filtrée et concentrée sous pression réduite. Le composé solide résiduel est purifié sur silice en utilisant comme éluant un mélange CH2Cl2/AcOEt/EtOH (70/22/5). 951,4 mg du vecteur lipophile (IIIa), soit un rendement de 42,3%, sont ainsi obtenus. L'analyse du composé (IIIa), représenté ci-dessous sous sa forme d'hydrate, est la suivante : RMN 1H (DMSO-d6): 0,87 (t, 3H, H1, Ji,2=5,31 Hz), 1,25 (m, 24H, H2) , 1,83 (m, 4H, H3, H8), 2,39 (m, 2H, H4), 3,57 (m, 4H, H7, H9) , 4, 41 (s, 2H, Hi4,i5), 5,50 (m, 1H, H12) . RMN 13C . 14,31 (Ci), 22,96 (C2), 26,35 (Ce) , 29,99 (C3) , 36,79 (C4) , 37,14 (C7) , 92,18 (C12) , 173,42 (C5) , 175,22 (C11). ES-MS : [M+H]+ calculé 387,5 ; trouvé 387,2. 3) Synthèse des lipopeptides Une première synthèse a été réalisée en utilisant 9,6 mg d'un mélange équimassique de chacun des 5 peptides VIH (VIH 1 HzAc; VIH 2 HzAc; VIH 3 HzAc; VIH 4 HzAc et VIH 5 HzAc), correspondant à une valeur de 2,22 micromoles de peptides (en tenant compte des contre-ions et de la teneur en peptides des lyophilisats). Ce mélange est imprégné de 85 l d'eau, ce qui conduit à la formation d'un gel. Le vecteur lipophile IIIa est alors ajouté (977 ug, 2,52 umoles) sous agitation magnétique avec des billes de verre de 5 mm de diamètre, soit 1,14 équivalent par rapport aux peptides, en solution dans 714 ml de 2-méthyl-propan-2-ol. Le volume total de milieu réactionnel (1,7 ml) est atteint par addition de 2méthyl-propan-2-ol. La disparition des hydrazinopeptides au cours du temps est suivie parallèlement à l'apparition des lipopeptides correspondants. Une expérience micropréparative est réalisée afin de permettre l'identification des produits : un échantillon est prélevé pour réaliser une séparation des constituants par RP-HPLC sur une colonne C3 (Zorbax, 4,6 mm x 250 mm), avec collecte des pics principaux afin de les identifier par spectrométrie de masse par MALDI-TOF (MALDI-TOF Voyager ABI 4192, mode positif, réflecteur 25 kV, délai d'extraction 300 ms, matrice acide a-cyano cinnmique) Après 4 heures la réaction est complète et le mélange est alors dilué dans l'eau, congelé et lyophilisé. Les lipopeptides obtenus se présentent sous forme de poudre blanche. Les temps de rétention (rét. ) des lipopeptides obtenus sont donnés dans le Tableau III suivant. TABLEAU III Lipopeptide Temps de [M+H]+ [M+H] VIH 1 HzPam 15. 99 2840. 5 2840. 7 VIH 2 HzPam 21. 6 4246. 2 4244. 0 VIH 3 HzPam 19. 96 4316. 0 4315. 6 VIH 4 HzPAM 18. 48 4045. 0 4044. 9 VIH 5 HzPAM 20. 82 4150. 9 4150. 2 4 ) Préparation des mélanges de lipopeptides Echange d'ions . Les lipopeptides sous forme de sels de TFA sont dissous dans une solution d' acide acétique aqueux à pH3, chargés sur colonne de RP-HPLC (colonne Nucleoprep C4,25 mm x 100 mm) puis lavés par le même solvant (lavages effectués avec un volume équivalent à celui de 5 colonnes) avant d'être élués par un passage sans transition vers un solvant acide acétique à pH3 dans l'eau/ propan-2-ol (60:40). Préparation finale: Le mélange de lipopeptides lyophilisés est dissous dans une solution d'acide acétique à 10 % avant d'être soumis à une filtration stérilisante sur membrane 0,22 micron (SLGV, Millipore). 5) Préparation des doses de vaccin: Après l'introduction d'excipients cliniquement acceptables (mannitol/ lipopeptides 10/1 (w/w) et Polysorbate 80/ lipopeptides 2/7 (w/w) ) la solution est diluée dans l'eau et aliquotée dans des ampoules de verre stériles avant lyophilisation finale. Les doses unitaires de vaccin préconisées pour un essai clinique de phase I chez l'homme sont de 2,5 mg de coktail lipopeptidique. Exemple 2 : Préparation de doses de vaccin (lipopeptides VHC HzPam) utilisables chez l'homme, Modèle du Virus de 1' Hépatite C (VHC) 1) Synthèse des hydrazinopeptides Synthèse peptidique . Trois peptides, dérivés de la protéine NS3 du virus VHC-1, fonctionnalisés par des groupes a-hydrazinoacétiques au niveau de leur extrémité N-terminale ont été préparés. Ces hydrazinopeptides ont été synthétisés en phase solide sous forme de sels de trifluoroacétate. Les stratégies Fmoc/tertButyl (conventionnelle), ainsi que le procédé récemment décrit (N,N',N'-tri(tert-butyloxycarbonyl)-hydrazinoacetic acid) ont été employés pour introduire de manière ciblée un groupement hydrazinoacétyl sur un groupement s-amino déprotégé d'un résidu lysylamide en position N-terminale comme dans l'exemple 1. Selon les séquences, les rendements de synthèse sont compris entre 10 et 50 %. L'identité des peptides a été vérifiée par ES.MS. Les hydrazinopeptides sont soumis à une analyse de la composition en acides aminés après hydrolyse acide totale avec de l'acide chlorhydrique 6N HCl:phenol, 10 :1 à 110 C pendant 24h. Chromatographie Les hydrazinopeptides sont purifiés par RP-HPLC sur une colonne préparative C3 (colonne Zorbax : 300 , 5 uM, diamètre de 12,5 mm et longueur de 250 mm avec précolonne) sur une chaîne HPLC Shimatzu 6A. Les analyses par RP-HPLC sont réalisées sur une colonne préparative C3 (colonne Zorbax : 300 , 5 uM, diamètre de 4. 6 et longueur de 250 mm) sur une chaîne HPLC Shimatzu 10A. Les solvants d'élution (solvants A et B) sont les suivants : - solvant A : eau désionisée comprenant 0,05% de TFA, - solvant B (purification) : 0,05% de TFA dans un mélange propan-2-ol / H20 (40:60). - solvant B (suivi de réaction) : 0,05% de TFA dans un mélange N propanol/ H20 (40:60). Le débit d'élution est de lml/min en utilisant un gradient linéaire de 0 à 100 % de tampon B en 30 minutes, 100 % de tampon B pendant 5 minutes, 0 % de tampon B pendant 10 minutes (détection à 215 nm, température : 50 C). Les hydrazinopeptides obtenus sont représentés dans le tableau IV ci-après. TABLEAU IV : Hydrazinopeptides dérivés de la protéine NS3 du virus VHC-1 Peptides Hydrazinopeptides natifs NS3 1007- VHC 1 HzAc : H-K(COCH2NHNH2)GREILLGPADGMVSKGWRLLAPITAYAQQTR-NH2 1037 NS3 1174- VHC 2 HzAc : H-K(COCH2NHNH2)GHAVGIFRAAVCTRGVAKAVDF-NH2 1195 NS3 1524- VHC 3 HzAc : H-K(COCH2NHNH2)GAAWYELTPAETTVRLRAYMNTPGLPVAQD-NH2 1553 Les temps de rétention des hydrazinopeptides sont indiqués dans le Tableau V ci-après. Tableau V Hydrazinopeptides Temps de [M+H]+ [M+H]+ rétention calculé trouvé (minutes) VHC 1 HzAc 17. 86 3567. 9 3567. 9 VHC 2 HzAc 13. 9 2444. 3 2444.3 VHC 3 HzAc 16. 66 3490. 7 3490. 8 2) Synthèse du vecteur Pam : La synthèse de ce vecteur IIIa, composé d'un groupement palmitoyl et d'un groupement glyoxylyl, est décrite dans l'exemple 1. 3) Synthèse des lipopeptides Une première synthèse a été réalisée en utilisant 41,8 mg d'un mélange équimassique de chacun des 3 hydrazinopeptides, correspondant à une valeur de 10,77 micromoles d'hydrazinopeptides (en tenant compte des contreions et de la teneur en peptides des lyophilisats). Ce mélange est imprégné de 415 l d'eau, ce qui conduit à la formation d'un gel. Le vecteur lipophile IIIa est alors ajouté (4757 ug, 12,28 umoles, représentant 1,14 équivalent par rapport aux peptides) sous agitation magnétique avec quelques billes de verre de 5 mm de diamètre, solubilisé dans 950 l de 2-méthylpropan-2-ol. Le volume total de milieu réactionnel (8. 290 ml) est atteint par addition de 2-méthyl-propan-2-ol. La disparition des hydrazinopeptides au cours du temps est suivie parallèlement à l'apparition des lipopeptides correspondants. Une expérience micropréparative est réalisée afin de permettre l'identification des produits : un échantillon est prélevé pour réaliser une séparation des constituants par RP-HPLC sur une colonne C3 (Zorbax, 4,6 mm x 250 mm), avec collecte des pics principaux afin de les identifier par spectrométrie de masse par MALDI-TOF (MALDI-TOF Voyager ABI 4192, mode positif, réflecteur, 25 kV, délai d'extraction 300 ms, matrice acide a-cyano cinnamique) Après 4 heures la réaction est complète et le mélange est alors dilué dans l'eau, congelé et lyophilisé. Les lipopeptides obtenus se présentent sous forme de poudre blanche. Les lipopeptides obtenus ont un temps de rétention présentés dans le Tableau VI ci-après. TABLEAU VI Lipopeptides Temps de [M+H]+ [M+H]+ rétention calculé trouvé VHC HzPam (minutes) VHC 1 HzPam 23. 9 3917. 9 3917.07 VHC 2 HzPam 25.1 2794.3 2793.9 VHC 3 HzPam 25.1 3840.7 3840.9 3') Synthèse des lipopeptides avec un glycomimétique branché : Cette synthèse est réalisée à partir du mélange des hydrazinopeptides VHC obtenus précédemment avec un glycomimétique branché à quatre valences (arbre tetraquinoylé) réalisé à partir d'un arbre de lysine synthétisé en stratégie Fmoc/tert Butyl sur lequel a été introduit un groupement hydrazinoacetyl sur le groupement s-amino déprotégé du résidu lysylamide C-terminale, selon la formule (IV) de l'invention. La synthèse de ce glycomimétique, appelé [(Qui)4AKHdz)], est décrite dans l'exemple 2 de la demande de brevet N PCT/FR01/02787). 8,9 mg d'un mélange équimassique de chacun des 3 hydrazinopeptides, correspondant à 2,14 micromoles d'hydrazinopeptides sont ajoutés à 2,3 mg (soit 1.6 umoles) du glycomimétique hydrazine. Au gel formé après humidification par 140 l d'eau est ajouté le vecteur lipophile IIIa (1640 microgrammes, soit 1,14 équivalent peptide) mis en solution dans le 2-méthyl-propan-2-ol (410 l), sous agitation magnétique avec quelques billes de verre de 5 mm de diamètre, le volume final est de 2,7 ml. La disparition des hydrazinopeptides au cours du temps est suivie parallèlement à l'apparition des lipopeptides correspondants. Après 3 heures, le mélange est dilué dans l'eau, congelé et lyophilisé. Les lipopeptides obtenus se présentent sous forme de poudre blanche. 4) et 4') Préparation des mélanges de lipopeptides Après échange d'ions comme décrit dans l' exemple 1, les mélanges de lipopeptides lyophilisés obtenus en 3) et 3') sont dissous dans une solution d'acide acétique à 10 % avant d'être soumis à une filtration stérilisante sur membrane 0,22 micron (SLGV, Millipore). 5) et 5') Préparation des doses de vaccin 5) Formulation mannitol - Tween . [3 lipopeptides, vecteur Pam] Après l'introduction d'excipients cliniquement acceptables (mannitol/ lipopeptides 10/1 (w/w) et Polysorbate 80/ lipopeptides 2/7 (w/w) ) la solution est diluée dans l'eau et aliquotée dans des ampoules de verre stériles avant lyophilisation finale. 5') Formulation mannitol - glycomimétique lipide [3 lipopeptides + glycomimétique, vecteur Pam] Le mélange lyophilisé de lipopeptides et glycomimétique lipidé [(Qui)4AKHdz)] est dissous dans une solution d'acide acétique à 10 % avant d'être soumis à une filtration stérilisante sur membrane 0,22 micron (SLGV, Millipore). Après l'introduction d'excipients cliniquement acceptables (mannitol/ lipopeptides 10/1 (w/w)), la solution est diluée dans l'eau dans un flacon stérile avant lyophilisation finale. Les doses unitaires de vaccin préconisées pour un essai clinique de phase I chez l'homme sont de 2,5 mg de cocktail lipopeptidique. Exemple 3 : Préparation de doses de vaccin (lipopeptides VHC HzCChol) utilisables chez l'homme, Modèle du Virus de l'Hépatite C (VHC) 1) Synthèse des hydrazinopeptides Synthèse peptidique La synthèse est la même que celle de l'exemple 2. Chromatographie Les hydrazinopeptides sont purifiés par RP-HPLC sur une colonne préparative C3 (colonne Zorbax : 300 Â, 5 pM, diamètre 12,5 mm et longueur de 250 mm avec précolonne) sur une chaîne HPLC Shimatzu 6A. Les analyses par RP-HPLC sont réalisées sur une colonne préparative C3 (colonne Zorbax : 300 Â, 5 uM, diamètre de 4. 6 et longueur de 250 mm) sur une chaîne HPLC Shimatzu 10A. Les solvants d'élution (solvants A et B) sont les suivants : - solvant A : eau désionisée comprenant 0,05% de TFA, - solvant B : 0,05% de TFA dans un mélange propan-2-ol/ H20 (40:60) . Le débit d'élution est de lml/min en utilisant un gradient linéaire de 0 à 100 % de tampon B en 30 minutes, 100 % de tampon B pendant 5 minutes, 0 % de tampon B pendant 10 minutes (détection à 215 nm, température : 50 C). 2) Synthèse du vecteur CChol (acide [3-(2,2-Dihydroxy- acetylamino)-propyl]-carbamique 17-(1,5-dimethyl-hexyl)-10,13dimethyl-2,3,4,7, 8,9,10,11,12,13,14,15,16,17-tetradecahydro- 1H-cyclopenta[a]phenanthren-3-yl ester, également sous forme "Vecteur Cchol hydraté" acide [3-(2-Oxo-acetylamino)-propyl]- carbamique 17-(1,5-dimethyl-hexyl)-10,13-dimethyl-2,3,4,7,8,- 9,10,11,12,13,14,15,16,17-tetradecahydro-1H-cyclopenta [a] phenan- thren-3-yl ester) La synthèse de ce vecteur a été décrite par MELNYK et collaborateurs dans la demande de brevet N PCT/FR01/02787, exemple 4 : synthèse du vecteur lipophile IIIc , correspondant dans la présente invention à la formule (II). 3) Synthèse des lipopeptides Une première synthèse a été réalisée en utilisant 12,2 mg d'un mélange équimassique de chacun des 3 peptides VHC (VHC 1 HzAc ; VHC 2 HzAc et VHC 3 HzAc ), correspondant à 2,96 micromoles de peptides (en tenant compte des contre-ions et de la teneur en peptides des lyophilisats) . Ce mélange est imprégné de 115 l d'eau, ce qui conduit à la formation d'un gel. Le vecteur lipophile II est alors ajouté (1926 g, 3. 374 umoles, représentant 1,14 équivalent par rapport aux peptides) sous agitation magnétique avec quelques billes de verre de 5 mm de diamètre, solubilisé dans 292 l de 2-méthyl-propan-2ol. Le volume total de milieu réactionnel (2. 3 ml) est atteint par addition de 2-méthyl-propan-2-ol. La disparition des hydrazinopeptides au cours du temps est suivie parallèlement à l'apparition des lipopeptides correspondants. Une expérience micropréparative est réalisée afin de permettre l'identification des produits : un échantillon est prélevé pour réaliser une séparation des constituants par RP-HPLC sur une colonne C3 (Zorbax, 4,6 mm x 250 mm), avec collecte des pics principaux afin de les identifier par spectrométrie de masse par MALDI-TOF (MALDI-TOF Voyager ABI 4192, mode positif, réflecteur, 25 kV, délai d'extraction 300 ms, matrice acide a-cyano cinnamique) Après 4 heures la réaction est complète et le mélange est alors dilué dans l'eau, congelé et lyophilisé. Les lipopeptides obtenus se présentent sous forme de poudre blanche. Le temps de rétention des lipopeptides obtenus sont représentés dans le Tableau VII ci-après. TABLEAU VII Lipopeptides Temps de [M+H]+ [M+H]+ rétention calculé trouvé VHC HzCChol (minutes) VHC 1 entre 32. 2 4091. 9 4091.9 HzCChol et 34.2min VHC 2 2968.3 2968.4 HzCChol VHC 3 4014. 7 4014.8 HzCChol 3') Synthèse des lipopeptides CChol avec un glycomimétique branché : Cette synthèse est réalisée à partir du mélange des hydrazinopeptides avec le glycomimétique branché à quatre valences [(Qui)4AKHdz)]. 12 mg d'un mélange équimassique de chacun des 3 hydrazinopeptides (vus en 3)), correspondant à 2,9 micromoles d'hydrazinopeptides sont ajoutés à 3,3 mg (soit 2,2 pmoles) du glycomimétique hydrazine. Au gel formé après humidification par 200 uL d'eau est ajouté le vecteur lipophile (II) (3360 microgrammes, soit 1,14 équivalent peptide) mis en solution dans le 2-méthyl-propan-2-ol (510 l), sous agitation magnétique avec quelques billes de verre de 5 mm de diamètre. Le volume réactionnel final est de 3.8 ml. La disparition des hydrazinopeptides au cours du temps est suivie parallèlement à l'apparition des lipopeptides correspondants. Après 4 heures, le mélange est dilué dans l'eau, congelé et lyophilisé. Les lipopeptides obtenus se présentent sous forme de poudre blanche. Pour les lipopeptides CChol (avec ou sans glycomimétique) selon 3) et 3'), une étape supplémentaire de purification est nécessaire afin d'éliminer une quantité non négligeable de précurseurs hydrazine n'ayant pas réagis. Cette purification du milieu réactionnel est réalisée par RP-HPLC sur un système Shimadzu 6A, avec une colonne C4 Deltapak WATERS 15 M 300 , 8 mm de diamètre et longueur 100 mm. Les solvants d'élution (solvants A et B) sont les suivants : - solvant A : eau désionisée comprenant 0,05% de TFA, - solvant B (purification) : 0,05% de TFA dans un mélange propan-2-ol / H20 (40: 60). Le débit d'élution est de 2ml/min en utilisant un gradient linéaire de 0 à 80 % de tampon B en 12 minutes, puis 100 % de tampon B. La fraction de lipopeptide éluée est congelée et lyophilisée. 4) et 4') Préparation des mélanges de lipopeptides Après échange d'ions comme décrit dans l' exemple 1, les mélanges de lipopeptides lyophilisés obtenus en 3) et 3') sont dissous dans une solution d'acide acétique à 10 % avant d'être soumis à une filtration stérilisante sur membrane 0,22 micron (SLGV, Millipore). 5) et 5') Préparation des doses de vaccin 5) Formulation mannitol - Tween . [3 lipopeptides, vecteur CChol] Après l'introduction d'excipients cliniquement acceptables (mannitol/ lipopeptides 10/1 (w/w) et Polysorbate 80/ lipopeptides 2/7 (w/w)) la solution de lipopetides est diluée dans l'eau dans un flacon stérile avant lyophilisation finale. 5') Formulation mannitol - glycomimétique lipide : [3 lipopeptides + glycomimétique, vecteur CChol] Après l'introduction d'excipients cliniquement acceptables (mannitol/ lipopeptides 10/1 (w/w)) la solution de lipopeptides et glycomimétique lipidé est diluée dans l'eau dans un flacon stérile avant lyophilisation finale. Les doses unitaires de vaccin préconisées pour un essai clinique de phase I chez l'homme sont de 2,5 mg de cocktail lipopeptidique. Exemple 4 : Evaluation chez la souris de la capacité des lipopeptides à potentialité vaccinale à induire une réponse immunitaire contre le virus de l' Hépatite C (VHC) (essais précliniques) A/ Réponse lympho-proliférative spécifique Trois peptides, dérivés de la protéine NS3 du virus VHC-1, fonctionnalisés par des groupes a-hydrazinoacétiques au niveau de leur extrémité N-terminale (voir exemple 2) ou de leur extrémité C-terminale (voir protocole de synthèse dans l'exemple 1), ont été lipidés par le vecteur Pam. L'immunogénicité de ces lipopeptides a été analysée sur des souris syngéniques Balb/c et C57bl/6 après injection sous-cutanée des 3 lipopeptides N-terminal ou C-terminal vecteur Pam (1,2 mg du mélange par souris, équivalent à 100 g de lipopeptides), soit 3 peptides natifs (100 ug par souris) + montanide ISA 720, soit 3 peptides natifs seuls (100 ug par souris). La mesure de la lymphoprolifération est effectuée après la mise en culture des cellules de rate murine, comme indiqué ci-dessous : Les rates sont récupérées et incubées à 4 C en milieu RPMI 1640 (GIBCO BRL). Les cellules sont ensuite écrasées sur membrane de nylon. Les cellules sont centrifugées à 1500 t/min durant 10 min à 4 C. La lyse des hématies est effectuée en présence de tampon de lyse durant 10 minutes à 4 C. Les cellules sont ensuite centrifugées et reprises en milieu HL-1 (Biowhittaker) contenant 4% de sérum de souris autologues. Les cellules sont ensuite réparties en plaques de cultures 96 puits en polystyrène fond U (Costar) à raison de 100 ul par puits. Les peptides synthétiques natifs (Néosystem) sont dilués en milieu HL-1 (Biowhittaker) ensuite ajoutés à raison de 100 l par puits pour une concentration finale de 25 ug/ml. Les plaques de culture sont incubées 72 heures à 37 C en atmosphère humide et 5% de C02. La méthyl-thymidine tritiée (Amersham) est diluée en milieu HL-1 (Amersham) et est ensuite ajoutée dans chaque puits à raison de 1 uCurie dans 25 l. Après 16 heures d'incubation, les cellules sont collectées sur filtre en fibre de verre (Wallac) avec le système TOMTEC. L'incorporation de thymidine tritiée est ensuite mesurée à l'aide d'un compteur béta (Wallac 140 microbeta). Les résultats de cette analyse sont exprimés dans le Tableau VIII ci-après. Tableau Villa et VIIIb :Mesure de lymphoprolifération (exprimé en index de stimulation) Tableau Villa : Lipopeptide N terminal Immunisation 3 lipopeptides 3 peptides 3 peptides + natifs natifs vecteur Pam /montanide seuls Balb/c C57 Balb/c C57 Balb/c C57 NS3 1007- 2,31 5,052 6,54 4,75 0,599 2,43 1037 NS3 1174- 1,406 2, 02 1,92 1,36 0, 664 1,38 NS3 1524- 6,428 2,65 14,9 1,76 0,83 2,19 Antigène(s) NS3 1007De restimulation 1037 In vitro + NS3 1174- 6,37 6,58 3,977 5,3 1,69 3,33 + NS3 1524- 1553 Contrôle 1 1 1 1 1 1 milieu Tableau VIIIb Lipopeptide C-terminal Immunisation 3 lipopeptides 3 peptides 3 peptides + natifs natifs vecteur Pam/montanide seuls Balb/c C57 Balb/c C57 Balb/c C57 NS3 1007- 1037 5,09 3,66 5,27 3,57 1,72 1,51 Antigène(s) NS3 1174- Antigène(s) 1195 3,34 - 3,05 3,06 5,17 2,23 2,99 De res t, lU 1 a t, lonNS3 1195 1524- 3,34 - 3,06 2jL l>16 2,99 In vitro Nus3 1524- 1553 1,99 2,57 2,03 5,15 2,6 2,15 Contrôle 1 1 1 1 1 1 milieu Les résultats de ces analyses indiquent que les deux types de constructions (position N-terminale et position Cterminale) injectées par voie sous-cutanée à des souris syngéniques Balb/c et C57bl/6 sont capables d'induire une réponse lympho-proliférative spécifique des séquences peptidiques du VHC. B/ Réponse humorale Les 3 lipopeptides en position N-terminale utilisés en A/ ont été testés pour induire une réponse humorale chez la souris. Les 3 peptides natifs et du montanide ISA 720 ont également été testés en témoin. Les souris ont été immunisées par administration suus-cutanée d'1,2 mg (équivalent à 100 ug de lipopeptides vecteur Pam + mannitol + Tween ou 100 g d'un mélange de peptides natifs en présence de montanide). Une immunisation suivie d'un rappel à J15 et à J29 ont été réalisé. Les séra ont été prélevés à J14, J28 et J42 après la première administration des antigènes Le dosage des immunoglobulines spécifiques d'antigènes a été effectué comme suit : Les antigènes peptidiques sont solubilisés en tampon phosphate 0,1 M pH 8,2 à la concentration de 10 ug/ml. 100 l de cette solution sont ajoutés par puits, dans une plaque 96 puits Maxisorb (NUNC). Après un nuit d'incubation à 4 C et deux lavages en tampon PBS-tween 0,01%, les puits sont saturés en présence d'un tampon PBS contenant 3% d' albumine bovine sérique (BSA). Après 2 heures d'incubation à température ambiante, 2 lavages des puits sont réalisés en tampon PBS-tween. 100 l de sérum, dilué au 1/100, sont ensuite ajoutés en incubés une nuit à 4 C. 3 lavages en PBStween sont ensuite effectués. L'anticorps secondaire marqué à la péroxidase (anti-IgG (H+L) de souris, Sanofi Pasteur) sont incubés en tampon PBS-BSA 1% à raison de 100 l par puits durant une heure à température ambiante. Après 4 lavages en PBS-tween, la révélation est effectuée en présence d'orthophényldiamine dihydrochloride (OPD, SIGMA) dilué en tampon de révélation (tampon phosphate-citrate avec perborate de sodium, SIGMA). Après 30 minutes d'incubation à l'abri de la lumière, la réaction est stoppée en présence d'HCL 1M à raison de 50 l par puits. La lecture est réalisée à une longueur d'onde de 492 nm. Les résultats sont représentés dans le Tableau IX ci-après. Tableau IX : Dosage des anticorps totaux sur souris Balb/c immunisées (résultats exprimés en densité optique). Immunisation Immunisation peptides Immunisation 3 peptides 3 lipopeptides , vecteur Pam natifs/montanide NS3 0,097 0,057 0,097 0,059 0,051 0,06 1007- 0,052 0,118 0,093 0,078 0,052 0,056 1037 0,05 0, 082 0,853 0,121 0, 062 0, 069 0,067 0,392 0,144 0,05 0,055 0,058 NS3 0,16 2,553 3,246 0,052 0,053 0,138 1174- 0,101 3,204 3,135 0,053 0,055 0,05 Antigène 1195 0,212 2,988 2,146 0,049 0,051 0,059 Antigène 0,349 2,052 2,873 0,05 0,047 0,053 LOdt6 Sur plaque NS3 0,881 2,901 2,901 0,052 0,056 0,091 plaque 1524- 0,364 3,204 3,204 0,048 0,051 0,06 1553 0,86 3,178 3,178 0,068 0,064 0,828 0,159 2,841 2,841 0,055 0,053 0,047 Témoin 0,05 0,05 0,047 0,059 0,047 0,051 négatif 0,056 0,056 0,079 0,078 0,079 0,071 negatit 0,049 0,049 0,048 0,063 0,048 0,014 0,051 0,051 0,047 0,069 0,047 0,069 Les résultats montrent que les lipopeptides utilisés sont incapables d'induire une réponse humorale caractérisée par la production d'anticorps spécifiques chez ces mêmes modèles murins consécutivement à une immunisation suivie de deux rappels. Ce résultat est d'autant plus original que ces mêmes séquences, lorsqu'elles sont administrées en présence d'un adjuvant huileux comme le Montanide ISA 720n induisent une réponse anticorps très importante, détectable dès la première immunisation. Ce résultat indique que les lipopeptides orientent très fortement l'immunité vers une réponse de type cellulaire. C/ Comparaison des vecteurs Pam et CChol L'immunogénicité de mélanges de lipopeptides a été évaluée chez la souris. Les différentes formulations indiquées dans les exemples 2 et 3 précédant (3 lipopeptides, vecteur Pam ; 3 lipopeptides + glycomimétique, vecteur Pam; 3lipopeptides, vecteur CChol ; lipopeptides + glycomimétique, vecteur CChol) ont été testées. 1) Protocole d'immunisation sublinguale Les souris sont immunisées par voie sublinguale avec 480 pg de chaque mélange lipopeptidique dissous dans 5 l d'eau pour préparation injectable (H20 ppi). Un rappel est effectué 14 jours après la première immunisation dans les mêmes conditions que précédemment. 14 jours après, les animaux sont sacrifiés, les rates sont prélevées et les cellules spléniques sont mises en culture en présence des différents peptides natifs, seuls ou en mélange, à la concentration de 10 ug/ml 2) Dosage de l'Interleukine-2 (IL-2) produite dans les surnageants de culture. Les anticorps primaires spécifiques de l'IL-2 murine (rat anti-mouse IL-2, Pharmingen 18161D) sont incubés en tampon phosphate 0,1M, pH 8,2 à la concentration de 2 ug/ml. 50 l par puits de cette solution sont ajoutés dans une plaque 96 puits Maxisorb (NUNC). Après un nuit d'incubation à 4 C et deux lavages en tampon PBS-Tween 0,01%, les puits sont saturés en présence d'un tampon PBS contenant 3% d'albumine bovine sérique (BSA). Après 2 heures d'incubation à température ambiante, 2 lavages sont réalisés en tampon PBSTween. 100 l de surnageant de culture sont ensuite ajoutés et incubés une nuit à 4 C. Une gamme de dilution d'IL-2 murine recombinante est préparée en PBS-BSA 1% (de 20 ng à 0,3 pg) et 100 l de cette préparation sont déposés par puits. 3 lavages en PBS-Tween sont ensuite effectués. L'anticorps secondaire biotinylé spécifique de l'IL-2 murines (biotin rat anti-mouse IL-2, Pharmingen 18172D) est incubé en tampon PBS-BSA 1% à raison de 100 l par puits durant une heure à température ambiante. Après 3 lavages en PBS-Tween, la streptavidine-péroxidase (Jackson Immunoresearch), diluée en PBS-Tween à lmg/ml, est ajoutée à chaque puits dans un volume de 100 l, durant 30 minutes à température ambiante. Après 4 lavages en PBS-Tween, la révélation est effectuée en présence d'orthophényldiamine dihydrochloride (OPD, SIGMA) dilué en tampon de révélation (tampon phosphate-citrate avec perborate de sodium, SIGMA). Après 30 minutes d'incubation à l'abri de la lumière, la réaction est stoppée en présence d'HCL 1M à raison de 50ul par puits. La lecture est réalisée à une longueur d'onde de 492 nm. 3) Autre protocole d'immunisation sublinguale Les souris (Balb/c) ont été immunisées par administration sublinguale de 5 l de mélange de lipopeptides (480 pg de poudre équivalent à 40 pg environ de lipopeptides). Un rappel a été effectué 14 jours après cette première immunisation, avec les mêmes quantités de mélange de lipopeptides. Des lots de 5 souris Balb/c (IFFA-CREDO) ont été constitués pour chacune des quatre formulations : [3 lipopeptides + glycomimétique, vecteur CChol] ; [ 3 lipopeptides, vecteur CChol] ; [3 lipopeptides + glycomimétique, vecteur Pam] ; [3 lipopeptides + glycomimétique, vecteur Pam]. Les souris sont sacrifiées 7 jours après le rappel, les rates sont prélevées et regroupées par lot d'animaux. Les cellules de chaque lot de souris sont restimulées par les différents peptides natifs, soit individuellement soit en mélange (concentration : lOug/ml). 24 heures après la mise en culture des cellules, les surnageants sont prélevés pour effectuer le dosage de leur contenu en IL-2. Les résultats sont exprimés en picogrammes d'IL-2 par ml de surnageant. Le Tableau X ci-après présente les résultats d'analyse de l'immunogénicité des différents mélanges lipopeptidiques chez la souris. Tableau X : d'IL2 après immunisation sublinguale. Immunisation sublinguale 3 lipopeptides 3 lipopeptides 3 lipopeptides + 3 lipopeptides + + glycomimétiques + glycomimétiques vecteur CChol + vecteur Pam + vecteur CChol vecteur Pam NS3 1007- 84,38 75,22 39,21 51,33 1037 NS31174-1195 28,02 28,32 0 0 Antigène(s) NS31524-1553 98,34 56,65 0 34,65 De NS3 1007-1037 restimulation NS3 1007-1037 In vitro NS3 1174-1195 157,97 167,79 54,36 87,17 + NS3 1524-1553 Contrôle 21,9 2 2 2 milieu Les résultats obtenus révèlent que les lipopeptides, résultant de la lipidation par le vecteur CChol, induisent une meilleure réponse que les lipopeptides résultant de la lipidation par le vecteur Pam. Ces lipopeptides CChol s'avère particulièrement immunogènes quand ils sont administrés par voie muqueuse et plus particulièrement par la voie sublinguale. Exemple 5 : Evaluation chez le Macaque de la capacité de vaccins lipopeptidiques à induire une réponse de type CTL contre le virus de l'immunodéficience simienne (VIS). 1) Synthèse des hydrazinopeptides L'exemple 1 de la demande de brevet PCT/FR01/02787 décrit la synthèse de peptides fonctionnalisés par des groupements a-hydrazinoacétiques, à partir de séquences peptidiques dérivées des protéines Nef et Gag du virus de l'Immunodéficience Simienne (SIV) . Les séquences peptidiques utilisées ici sont les mêmes que celles décrites dans la demande de brevet PCT/FR01/02787, à l'exception de la séquence SIV1 (voir nouvelle séquence dans le Tableau XI ci-après). Tableau XI : Peptides Hydrazinopeptides natifs ~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~ Nef 101-126 VIS 1 HzAc : H-SVRPKVPLRTMSYKLAIDMSHFIKEKK-(COCH2NHNH2)-NH2 Nef 125-147 VIS 2 HzAc : H-EKGGLEGIYYSARRHRILDMYLEK-(COCH2NHNH2)-NH2 Nef 155-178 VIS 3 HzAc : H-DWQDYTSGPGIRYPKTFGWLWKLVK-(COCH2NHNH2)- NH2 Nef 201-225 VIS 4 HzAc : H-SKWDDPWGEVLAWKFDPTLAYTYEAK- (COCH2NHNH2) -NH2 Nef 221-247 VIS 5 HzAc : H-YTYEAYARYPEELEASQACQRKRLEEGK- (COCH2NHNH2) -NH2 Gag 165-195 VIS 6 HzAc : H-KFGAEVVPGFQALSEGCTPYDINQMLNCVGDK (COCH2NHNH2)-NH2 Gag 246-282 VIS 7 HzAc : H-QIQWMYRQQNPIPVGNIYRRWIQLGLQKCVRMYNPTNK-( COCH2NHNH2)-NH2 * Comparativement à la séquence VIS 1 décrite dans la demande de brevet N PCT/FR01/02787 , la séquence VIS 1' présentée ici comporte deux mutations en position 110 et 112) 2) Synthèse du vecteur lipophile Le vecteur lipophile utilisé est le vecteur IIIa décrit dans l'exemple 1. 3) Synthèse des lipopeptides L'exemple 8 de la demande de brevet PCT/FR01/02787 décrit la méthode de couplage entre les hydrazinopeptides et le vecteur lipophile. Les appellations -et les poids moléculaires des lipopeptides ainsi synthétisés sont donnés dans le Tableau XII ci-après : Tableau XII : Lipopeptides Poids Moléculaire VIS 1 HzPam 3623.9 VIS 2 HzPam 3319.35 VIS 3 HzPam 3463.49 VIS 4 HzPam 3538. 465 VIS 5 HzPam 3803. 716 VIS 6 HzPam 3852.9 VIS 7 HzPam 5156.5 4) Préparation des mélanges de lipopetides Après échange d'ions comme décrit dans l'exemple 1 par RP-HPLC, en utilisant un gradient court, les mélanges de lipopeptides lyophilisés obtenus en 3) sont dissous dans une solution d'acide acétique à 5 % avant d'être soumis à une filtration stérilisante sur membrane 0,22 micron (SLGV, Millipore). 5) Préparation des doses de vaccin Formulation mannitol - Tween : Après l'étape 4), du mannitol a été introduit ainsi que du Tween 80 en quantité suffisante pour la préparation de 10 doses unitaires dont la composition par dose est la suivante : # 1 Dose représentant 3,5 mg équivalent peptide (0,5 mg par peptide), soit environ 4,2 mg de lipopeptide # Mannitol apyrogène : environ 42 mg par dose. # Polysorbate 80 : environ 1 mg par dose. # Quantité totale de poudre par dose : environ 47 mg # Conserver à -20 C La remise en solution des doses obtenues selon cette formulation fournit une solution légèrement opalescente. Formulation mannitol-glycomimétique lipide Le mélange a été préparé par lipidation simultanée (comme dans l'exemple 3, partie 3')) d'un mélange d'hydrazinopeptides (trifluoroacétate) (5,8 mg par hydrazinopeptide) auquel est ajouté un glycomimétique branché ([(Qui)4AKHdz)], 12,9 mg). Après lipidation, le mélange a été dilué puis lyophilisé. Le contre-ion trifluroracétate a été remplacé par un contre-ion acétate par RP-HPLC, en utilisant un gradient court. Après lyophilisation, la poudre est dissoute dans de l'eau et de l'acide acétique 5% ; avant de soumettre la préparation à la filtration stérilisante sur membrane 0,22 micron SLGV Millipore. Du mannitol a été introduit en quantité suffisante pour la préparation de 11 doses unitaires dont la composition par dose est la suivante : # 1 Dose représentant 3,4 mg équivalent peptide + glycomimétique (0,5 mg par peptide) soit environ 4,2 mg de lipopeptide # Mannitol apyrogène : environ 42 mg par dose. # Quantité totale de poudre par dose : environ 47 mg # Conserver à -20 C La remise en solution des doses obtenues selon celle formulation fournit une solution légèrement opalescente. 7) Etudes chez le Macaque de la Formulation mannitol-Tween : Une dose unitaire est utilisée par animal et par injection. La dose est diluée dans de l'eau pour préparation injectable (1 ml par dose) : on obtient une solution opalescente. Le produit (sans adjuvant) a été administré par voie intra-dermique en 10 points d'injection (100pl par point) (4 macaques), par voie intra-musculaire (4 macaques). Les 3 injections ont été effectuées à 3 semaines d'intervalle et un rappel a été pratiqué 2 mois après la dernière injection. La réponse immune a été testée sur des prélèvements de sang effectués en pré-immunisation, 15 jours après la 3ème immunisation et 14 jours après le rappel. L'efficacité de l'immunisation a été testée par évaluation du nombre d'effecteurs circulants et de leurs précurseurs sécrétant de l'Interféron gamma (IFN-y) par un test ELISPOT à la suite d'une restimulation préalable in vitro des cellules mononuclées de sang total (PBMC, Peripheral Blood Mononuclear Cells) par les peptides. Préparation des PBMC : Les PBMC sont isolés par centrifugation en gradient sur un milieu de séparation des lymphocytes (Flow Laboratories, Glasgow, UK ou Pharmacia, Uppsala, Suede) et sont utilisés immédiatement. Restimulation in vitro : Les PBMC (16.106 cellules) sont mises en milieu RPMI 1640 complet à 5 millions/ml; et aliquotés en 4 t-ubes de 4 millions de cellules qui seront incubées pendant une nuit à 37 C avec les lipopeptides (10 ug/ml). Plusieurs lignées sont établies : - lignée 0 : sans peptides ; - lignée 1 : avec VIS1 HzPam (LP1) et VIS2 HzPam (LP2) ; - lignée 2 : avec VIS3 HzPam (LP3), VIS4 HzPam (LP4) et VIS5 HzPam (LP5) ; - lignée 3 : avec VIS6 HzPam (LP6) et VIS7HzPam (LP7). Après 1 lavage le lendemain, les lignées sont placées en plaque 24 puits, à 2 millions de cellules par ml et à raison de 2 ml par puits. Aux jours 3 et 7, de l'Interleukine 2 (IL-2,10 UI/ mL) est ajoutée avec changement de milieu au jour 7. Ces effecteurs ont été testés après 12 jours de culture et lavés 2 fois juste avant le test. Test ELISPOT-IFN-: Des plaques 96 puits de nitrocellulose (Millipore) sont d'abord sensibilisées une nuit à 4 C avec un anticorps monoclonal de souris anti-IFN-y simien (clone GZ-4 mabtech) (dilution 1/1000 en tampon phosphate (PBS) : concentration 1 microgramme /ml en final). Après lavages avec du tampon PBS stérile et saturation par du milieu complet pendant 2 heures à 37 C en atmosphère C02, les cellules effectrices sont disposées en duplicate (100000 cellules par puits) avec les différents peptides (voir paragraphe suivant), sans IL-2, à la concentration finale de 5 microgrammes par ml, (ou sans peptide pour les contrôles négatifs). L'incubation est maintenue pendant 24 heures à 37 C. Les plaques sont alors lavées plusieurs fois avec du PBS puis du PBS-Tween 0,05 %. Après ces lavages, les plaques sont incubées, durant une nuit à 4 C ou 2 heures à 37 C, avec un anticorps monoclonal de souris anti anti-IFN-y simien biotinylé dilué à 1/1000 en PBS Tween 0,05% ; BSA 1% (clone 7-B6-1 mabtech, 1 microgramme/ml final). Après plusieurs lavages la révélation est réalisée au moyen d'Extravidine-phosphatase alcaline (SIGMA) à raison de 2,5 microgramme par ml (incubation lh à température ambiante). Après des lavages supplémentaires, on développe une coloration mesurable avec un substrat nitro-bleu tétrazolium (BioRad) pendant 15 à 30 minutes. Les plaques sont alors rincées à l'eau et séchées. La lecture du test est réalisée par comptage des spots (centre contrasté et contour diffus) par un stéréomicroscope x 40 (Leica MZ6). Chaque spot violet correspond à une cellule sécrétant de l'IFN-y, c'est à dire une SFC (Spot Forming Cell). Mélanges de petits peptides utilisés pour le test ELISPOT . (Mélanges de 9-15-mers) : L3.P1 (épitopes de nef 155-178) = 156-165 ; 168-177 ; 165-174 L3. P2 (épitopes de nef 155-178) = 157-165 ; 169-178 ; 166-174 L3.P3 (épitopes de nef 155-178) = 158-167 ; 162-171 ; 167-175 L4.Pl(épitopes de nef 201-225) = 201-211 ; 205-213 ; 211- 219 ; 215-225 L4.P2 (épitopes de nef 201-225) = 201-210 ; 205-212 ; 214- 223 ; 210-219 L4.P3 (épitopes de nef 201-225) = 203-211 ; 206-215 ; 215- 223 ; 204-212 L5.P1(épitopes de nef 221-247) = 222-229 ; 236-244 ; 225-233 L5.P2 (épitopes de nef 221-247) = 224-233 ; 239-247. Mix6 (épitopes de nef 201-225) = 201-211 ; 205-213 ; 211-219 ; 215-225 ; 201-210 ; 205-212 L7P1 (épitopes de gag 246-281) = 250-257 ; 255-263 ; 261-269 ; 268-276 ; 253-262 8) Résultats : Pour chaque animal sont indiqués dans le Tableau XIII ci-après les mélanges de peptides qui ont permis de détecter des SFC de manière significative 15 jours après la 3ème immunisation ou 14 jours après le rappel : TABLEAU XIII N SINGE IMMUNISATION pré-immun J15 après J14 après le Immunisation rappel 3 1051 Intra neg L4P1 L4P1 Musculaire 1053 Intra Dermo neg L4P1 neg 1059 Intra Dermo neg neg neg 1060 Intra Dermo neg neg neg 1062 Intra neg +/- L4P1 L4P1 Musculaire 1066 Intra Dermo neg MIX 6 neg 1068 Intra neg neg +/- L4P1 Musculaire 1077 Intra neg neg LP3;L4P1;L7P1 Musculaire Le 1er groupe (macaques 1053,1059, 1060,1066) a reçu le mélange des 7 lipopeptides administré par voie intradermique. Les résultats montrent des réponses positives chez 2 macaques (1053 et 1066) qui reconnaissent 1 pool de petits peptides chacun. Ces réponses sont visibles 15 jours après la dernière immunisation. Le 2ème groupe (macaques 1051,1062, 1068,1077) a reçu le mélange des 7 lipopeptides administré par voie intramusculaire. Trois des 4 macaques ont présenté des réponses CD8 contre 1 pool de petits peptides (2 macaques 1051 et 1062), le 3ème ayant des réponses dirigées contre 3 pools (macaque 1077). Ces réponses étaient visibles 15 jours après la dernière immunisation pour les macaques 1051 et 1062 et 15 jours après le rappel pour les macaques 1051,1062 et 1077. Les résultats détaillés obtenus avec la lignée 2 issue de l'animal 1051 sont représentés à la figure 1. REVENDICATIONS 1 ) Utilisation pour la fabrication d'un vaccin d'un mélange comprenant au moins des lipopeptides, caractérisée en ce que lesdits lipopeptides sont constitués d'un composé peptidique lié par un lien hydrazone à au moins un vecteur lipophile de nature non peptidique, et sont de formule générale (I) suivante : [( (Rl) (R2)i ) D -H] j - P (I) dans laquelle (R1) (R2)i D représente le vecteur lipophile, dans lequel: - i représente 0 ou 1, dans le cas où i est égal à 0, D représente une liaison, dans le cas où i est égal à 1, D représente un hétérocycle saturé, insaturé ou aromatique, mono- ou polycyclique, - R1 et R2, qui peuvent être identiques ou différents, représentent chacun un groupement de formule L-f-E-f' où L représente un résidu d'un lipide, E représente un bras espaceur, et f et f' représentent des fonctions liant, respectivement, L à E et E à D, et - P représente le composé peptidique, - H représente le lien hydrazone formé par la ligation en solution entre une fonction aldéhyde portée par le vecteur lipophile et une fonction dérivé d'hydrazine portée par le composé peptidique, - j représente 1 à 3. 2 ) Utilisation selon la revendication 1, caractérisée en ce que i est égal à 0, j est égal à 1 et en ce que L représente un stérol, un dérivé de stérol ou une chaîne carbonée saturée ou insaturée, linéaire ou ramifiée, comprenant entre 4 et 30 atomes de carbone. 3 ) Utilisation selon la revendication 2, caractérisée en ce que ledit dérivé de stérol est un dérivé du cholestérol et en ce que ladite chaîne carbonée répond à la formule CH3- (CH2) 14-- 4 ) Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisée en ce que E représente une chaîne carbonée linéaire, ramifiée ou cyclique, saturée ou insaturée, comportant de 1 à 18 atomes de carbone et, éventuellement, 1 à 16 hétéroatomes et/ou 1 à 7 groupements sélectionnés parmi les groupements carbonyles, les hétérocycles, les hétéroaryles, les carbocycles et les aryles. 5 ) Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisée en ce que f représente une liaison-CO-NH- ou -CO-0- et f' représente une liaison-NH-COou -0-CO-. 6 ) Utilisation selon la revendication 5, caractérisée en ce que le vecteur lipophile répond à la formule (II) : 7 ) Utilisation selon la revendication 5, caractérisée en ce que le vecteur lipophile répond à la formule (III) : dans laquelle L est tel que défini dans l'une quelconque des revendications 1 à 3. 8 ) Utilisation selon la revendication 7, caractérisée en ce que L représente une chaîne carbonée de formule CH3-(CH2)14- dans la formule (III) . 9 ) Utilisation selon la revendication 1, caractérisée en ce que le composé peptidique P est sélectionné dans le groupe constitué par un ou plusieurs antigènes peptidiques et un ou plusieurs glycomimétiques dendrimériques de nature peptidique. 10 ) Utilisation selon la revendication 9, caractérisée en ce que l'antigène peptidique est choisi parmi le groupe constitué par les peptides et les dérivés de peptides comprenant les glycopeptides et les pseudopeptides. 11 ) Utilisation selon la revendication 9, caractérisée en ce que le glycomimétique dendrimérique de nature peptidique répond à la formule générale (IV) ci-après : (B2M)m(XN)nA (IV) dans laquelle : - B2 répond à une ou plusieurs formules générales (a) ou (b) ci-après : où R1, R2, R3 et R4 représentent, indépendamment les uns des autres, un atome d'hydrogène ou un groupe protecteur, et où W représente une liaison ou une chaîne carbonée linéaire, ramifiée ou cyclique, saturée ou insaturée, comprenant de 1 à 18 atomes de carbone et éventuellement de 1 à 12 atomes choisis parmi l'oxygène, le soufre et l'azote, ladite chaîne carbonée étant éventuellement substituée par 1 à 16 atomes d'halogène, - X représente le reste d'un oligopeptide X' comprenant de 1 à 6 acides aminés, - A représente le reste d'un composé A' au moins trifonctionnel comprenant un enchaînement d'acides aminés, identiques ou différents, sélectionnés dans le groupe constitué par la lysine, l'hydroxylysine, la sérine, la thréonine, la cystéine, l'ornithine, l'acide aspartique et l'acide glutamique - m est un nombre entier compris entre 1 et 32, - n est un nombre entier compris entre 0 et 32, et - M et N représentent chacun un groupe de liaison, respectivement entre B2 et A quand n = 0 ou B2 et X quand n est différent de 0, et entre X et A quand n est différent de 0, et comprennent, indépendamment l'un de l'autre, une fonction choisie parmi les fonctions oxime, hydrazone, amide, ester, thioester, hydrazide, hydroxamate, éther, thioéther, amine, carbonate, carbamate, thiocarbonate, thiocarbamate, urée, thiourée et thiazolidine. 12 ) Utilisation selon la revendication 11, caractérisée en ce que le composé de formule générale (IV) est tel que m est un nombre entier compris entre 4 et 16, n est un nombre entier compris entre 2 et 8, X représente le reste d'un oligopeptide comprenant de 2 à 4 résidus d'acides aminés, tandis que A représente le reste d'un enchaînement comprenant de 2 à 8 résidus de lysine et se présentant sous la forme d'un dendrimère, et B2 représente un reste d'un ou plusieurs composés choisis parmi l'acide- (-)-shikimique et l'acide (-)quinique. 13 ) Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 12, caractérisée en ce que le mélange de lipopeptides comprend de 1 à 20 lipopeptides différents, de préférence de 1 à 10 lipopeptides différents. 14 ) Utilisation selon la revendication 9 ou 10, caractérisée en ce que le composé peptidique est constitué par un antigène dérivé d'un agent infectieux ou d'un cancer. 15 ) Utilisation selon la revendication 14, caractérisée en ce que l'agent infectieux est de type bactérien, parasitaire ou viral. 16 ) Utilisation selon la revendication 15, caractérisée en ce que l'agent infectieux de type viral est le VIH ou le VHC. 17 ) Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que le vaccin est formulé pour l'administration par voie transmucosale ou par voie intra-musculaire. 18 ) Utilisation selon la revendication 17, caractérisée en ce que le mélange comprend en outre un ou plusieurs excipients cliniquement acceptables. 19 ) Utilisation selon la revendication 18, caractérisée en ce que l'excipient est le mannitol ou le Polysorbate 80 ou un mélange des deux. 20 ) Utilisation selon la revendication 16, caractérisée en ce que les composés peptidiques P de l'agent infectieux VHC sont constitués par les séquences peptidiques suivantes : - VHC 1 HzAc : H-K(COCH2NHNH2)GREILLGPADGMVSKGWRLLAPITAYAQQTR- NH2 - VHC 2 HzAc : H-K(COCH2NHNH2)GHAVGIFRAAVCTRGVAKAVDF-NH2 - VHC 3 HzAc : H-K(COCH2NHNH2)GAAWYELTPAETTVRLRAYMNTPGLPVAQD- NH2.