FR 2836066 A1 20030822 FR 0202231 A 20020221 L'invention a pour objet principal des particules colloïdales magnétiques organisées sous forme de chaînes colloïdales permanentes. Elle vise également l'utilisation de ces chaînes pour détecter et/ou analyser des espèces spécifiques présentes dans un fluide. Des méthodes pour le tri et/ou l'analyse d'espèces contenues dans un échantillon liquide sont déjà connues. De manière générale, elles utilisent soit des réseaux d'hybridation disposés sur des surfaces à l'image des puces à ADN ou à protéines, soit des microbilles, soit une combinaison de ces deux approches. Toutefois, comme il ressort de l'analyse ci-après, ces techniques présentent des limitations. Dans les puces , les ligands biologiques considérés (ADN, oligonucléotides, protéines) sont déposés ou synthétisés in situ en des spots prédéterminés sur une surface. Chaque spot a une surface typique de 100 microns par 100 microns ou moins, ce qui permet de disposer d'un grand nombre de sites de reconnaissance sur une surface limitée, et donc d'effectuer un grand nombre d'analyses moléculaires avec une quantité d'échantillon réduite et en un temps limité. De tels systèmes, ainsi que des moyens pour les préparer, sont décrits par exemple dans US pat. 5,744, 305 (Affymetrix), Schena et coll., Science, 270,467-470, 1995. Toutefois, ces puces présentent une sensibilité qui demeure insuffisante pour certaines applications. Qui plus est, leur cinétique d'hybridation est significativement ralentie comparativement à une hybridation classique en solution. Enfin, elles présentent un défaut de reproductibilité. En l'occurrence, ces inconvénients reposent pour une large part sur des aspects physicochimiques des puces et des mécanismes d'hybridation (voir p. ex. M. S. Shchepinov, S. C. Case-Green, E. M. Southern, Nucleic Acid Res. 25,1155-61 (1997)) La seconde méthode considérée consiste à fixer les analytes à tester, en employant un réseau de microsphères disposées sur une surface. Selon cette technique, on peut préparer avantageusement des microsphères porteuses de différentes fonctionnalités accessibles à leur surface. Toutefois, la surface active d'une sphère demeure, bien entendu, du même ordre de grandeur que celle qu'elle occupe sur la surface du dispositif de test. En conséquence, cette méthode ne permet pas donc de gain significatif en termes de sensibilité. Des microbilles magnétiques ont également été proposées pour l'analyse d'oligonucléotides dans un canal microfluidique. Ces microbilles sont introduites dans un canal, et retenues en un endroit de celui-ci par un champ magnétique localisé : On constitue ainsi localement une zone essentiellement composée par un empilement compact de billes magnétiques. On fait ensuite circuler au travers de cet empilement le liquide contenant les espèces à analyser. L'hybridation de celles-ci est détectée par fluorescence. Grâce à la circulation des espèces, la cinétique est nettement plus rapide qu'avec les puces à ADN traditionnelles. Par ailleurs, le système est recyclable, puisqu'en supprimant le champ magnétique les billes retrouvent leur mobilité. Toutefois, les concentrations d'analytes utilisés pour démontrer le principe de la méthode sont nettement supérieures à celles réellement utilisées dans les puces, ce qui suggère que la sensibilité est faible. Ceci peut notamment s'expliquer par l'assemblage compact de billes. Les billes les plus près du détecteur font écran pour la transmission de la lumière vers les autres, et ce sont donc seulement les billes les plus près de la surface qui participent efficacement à la détection. Enfin, des microsphères sont également utilisées pour identifier ou analyser des espèces, et en particulier des espèces biologiques, dans des dispositions différentes de réseaux disposés sur un surface ou dans un canal microfluidique. Il s'agit en particulier des techniques dites de tri magnétique , qui peuvent être mises en oeuvre de façon analytique ou préparative. Dans une méthode très classique, on met en présence un liquide contenant les espèces à analyser (cellules, ADN, protéines) avec des particules magnétiques. La version actuelle de ces systèmes magnétiques consiste à introduire dans la solution initiale des billes magnétiques porteuses de fonctions spécifiques des cellules à isoler. Après fixation, les billes, et les espèces qui y sont attachées, sont culottées à l'aide d'un aimant tandis que le surnageant est prélevé. Cette méthode est proposée actuellement, essentiellement pour le tri binaire d'objets concentrés. Elle requiert ensuite une analyse en ligne pour produire de l'information. Simple à mettre en oeuvre, cette méthode magnétique présente cependant deux limitations importantes : une sélectivité imparfaite et un caractère purement binaire qui imposent tous deux de réitérer les procédures lorsque des espèces pures ou répondant à plusieurs critères sont recherchées. Le défaut de sélectivité trouve tout d'abord son origine dans le drainage du surnageant lors de la sédimentation des particules, les billes en mouvement déplaçant avec elles une partie du fluide et donc des objets biologiques environnants. Il faut ensuite prendre en compte les problèmes d'adhésion non-spécifique, la force de pression magnétique contribuant à ancrer fortement aux billes tout objet prisonnier du culot. Pour sa part, la présente invention vise à proposer un nouvel outil de diagnostic et/ou de préparation, d'identification, d'analyse ou de dosage d'espèces dans un échantillon liquide, permettant de donner satisfaction à la fois en termes de sensibilité, de cinétique et de reproductibilité. Plus précisément, la présente invention a pour premier objet un assemblage de particules colloïdales sous la forme d'une ou plusieurs chaînes caractérisé en ce que lesdites chaînes sont organisées de manière irréversible et sont porteuses d'au moins un site de reconnaissance pour une espèce, ledit site étant différent des ligands impliqués dans l'organisation linéaire desdites particules. Au sens de l'invention, on entend par chaîne de particules colloïdales, ou indifféremment fil colloïdal ou chaîne colloïdale , un assemblage essentiellement linéaire de particules colloïdales. Différentes organisations géométriques de tels assemblages peuvent être utilisées dans le cadre de l'invention. En particulier, on peut utiliser un assemblage en collier de perles , dans lequel la largeur de la chaîne est essentiellement celle d'une particule colloïdale ou un assemblage en colonnes , dans lequel chaque section de la chaîne comporte plusieurs particules. Les chaînes colloïdales selon l'invention présentent un rapport d'aspect (rapport de la longueur à la plus grande dimension d'une section) significativement supérieur à 1, typiquement supérieur à 3, et de préférence supérieur à 5. Pour de nombreuses applications, des rapports d'aspects nettement plus élevés, de 10 ou plus, voire supérieur à 100, peuvent toutefois s'avérer avantageux. Les chaînes colloïdales selon l'invention peuvent être relativement rigides (adoptant essentiellement la forme d'un bâtonnet), semi-rigides (capables de présenter un rayon de courbure comparable à leur longueur), ou flexibles (capables de présenter un rayon de courbure très inférieur à leur longueur). Dans le cas de chaînes flexibles, la longueur dans la description ci-dessus s'entend le long de l'abscisse curvilinéaire de ladite chaîne. Selon une variante privilégiée, elles sont semi-flexibles ou flexibles. En général, la section des chaînes colloïdales selon l'invention est essentiellement circulaire. Toutefois, elle peut également être de toute autre forme, dans la mesure où la plus grande dimension de cette section reste plus petite que la plus grande longueur de la chaîne colloïdale d'un facteur au moins 3. Pour certaines applications, il est possible d'utiliser une unique chaîne colloïdale d'un type donné, par analogie à ce qui se pratique déjà pour des molécules individuelles d'ADN, dans les techniques de molécule unique . Toutefois, il est généralement préférable d'utiliser un ensemble de chaînes colloïdales. Au sens de l'invention, on entend par particule colloïdale un objet tridimensionnel compact constitué d'une multitude d'atomes ou de molécules, et susceptible d'être maintenu en suspension dans un fluide. Les dimensions d'une particule colloïdale sont typiquement comprises entre quelques dizaines de nanomètres et quelques microns, plus rarement quelques dizaines de microns. A titre d'exemple, des sphères de latex, des microgels ou des billes magnétiques de dimension micronique ou submicronique, des nanocristaux ou des microcristaux constituent des particules colloïdales selon l'invention. De préférence, de telles particules sont maintenues en suspension par le mouvement Brownien. Cependant, des particules donnant lieu à une sédimentation peuvent aussi être considérées comme colloïdales au sens de l'invention, pourvu qu'il soit possible de les remettre en suspension au moment de leur utilisation, par exemple par agitation ou sonication. Les particules colloïdales mises en oeuvre pour constituer les chaînes de particules colloïdales selon l'invention sont de préférence de forme sphérique. Ces particules colloïdales peuvent être organiques, minérales ou organominérales. Selon une variante préférée elles sont en tout ou partie de nature organique, et de préférence de nature organominérale, c'est à dire présentant à la fois des constituants organiques et des constituants minéraux. De nombreux types de particules organominérales sont disponibles dans le commerce ou connues de l'homme de l'art. Elles permettent avantageusement de combiner des propriétés issues de la partie organique et des propriétés issues de la partie minérale, et donc de construire des chaînes colloïdales selon l'invention dotées de propriétés très diverses. En ce qui concerne la nature chimique de la partie minérale (ou de l'ensemble de la particule si elle est essentiellement minérale), elle peut également être très variée, et comporter notamment des grains métalliques tels que des micro ou nanoparticules d'or ou d'argent ou de titane, des oxydes de métaux semiconducteurs, oxydes métalliques, particules de carbone, quantum dots doués de propriétés spécifiques de fluorescence ou d'absorption de la lumière, et/ou des matériaux, diélectriques ou conducteurs. Les matériaux magnétiques, tels que les matériaux superparamagnétiques, ferrimagnétiques, ferromagnétiques ou antiferromagnétiques, ou encore les matériaux conducteurs ou semi-conducteurs conviennent tout particulièrement à l'invention. Cette partie minérale peut être soit emprisonnée au coeur des particules colloïdales constituant la chaîne colloïdale, soit présente à leur surface. Par exemple, pour obtenir des propriétés de conduction, on pourra, selon une première variante privilégiée, disposer d'une couche métallique sur la surface des particules. De façon commode, cette couche peut être obtenue par un procédé de dépôt de type argentique, comme il en est connu de nombreux chez l'homme de l'art (voir par exemple DNA-templated assembly and electrode attachment of a conducting silver wire, E. Braun, Y. Eichen, U. Sivan, G. Y. Ben-Yosph, Nature, 391,775-778 (1998)). Selon une autre variante privilégiée, on pourra inclure au sein de la chaîne colloïdale une fraction significative de grains métalliques ou semi-conducteurs. Dans le cas particulier d'une partie minérale magnétique, on privilégiera la localisation de celle-ci au coeur des particules colloïdales. En ce qui concerne la nature chimique de la partie organique, elle peut également être très diverse, et comporter en particulier, à titre d'exemple, des huiles végétales, d'origine pétrolière ou de synthèse, des polymères divers tels que les dérivés d'acrylamide, de polystyrène, de polycarbonate, réticulés ou non, et plus généralement tous les matériaux utilisés pour constituer des latex. En particulier, conviennent à l'invention des particules colloïdales comportant un coeur minéral, enveloppé par une couche organique de type polymère tels que par exemple, des polymères de type polystyrène, polycarbonate, ou dérivant de monomères de type acrylique comme le N-isopropylacrylamide, l'acrylate ou méthacrylate de glycidyl, le 2-hydroxyethylméthacrylate (HEMA), ou l'éthylène dimethacrylate (EDMA). Il peut également s'agir de polyméthylméthacrylate. Une enveloppe organique est particulièrement avantageuse dans la mesure où elle offre, via la présence de ses fonctions organiques de surface, des possibilités de greffage pour des sites de reconnaissance et/ou des composés annexes et des facilités pour l'organisation linéaire desdites particules. Toutes sortes de fonctions réactives, bien connues de l'homme de l'art, peuvent être utilisées en tant que fonctions réactives de surface. Il peut s'agir, à titre d'exemple et de façon non limitative, de fonctions carboxyliques, amine, alcool, thiol, de fonctions polymérisables comme des doubles ou triples liaisons, en particulier les fonctions allyle ou acrylique, ou encore des polyols, des hydrazines, des époxydes. Il peut également s'agir de ligands de type biologique, tels que la biotine, la streptavidine, l'avidine, la digoxygénine, l'antidigoxygénine, et plus généralement des anticorps ou antigènes couramment utilisés comme sites de greffage en biologie ou encore des sites de liaison forts pour des métaux de transition, tels que les cages histidines pour le nickel. Les assemblages de particules colloïdales revendiquées sont organisées linéairement de manière à former une chaîne irréversible ou un ensemble de chaînes irréversibles de particules colloïdales Au sens de la présente invention, on entend caractériser par le terme irréversible l'inaptitude des chaînes linéaires des particules colloïdales à se défaire spontanément et/ou à bref délai en l'absence de champ externe. En l'occurrence, sont exclues du domaine de l'invention des chaînes de particules dont l'organisation linéaire requiert le maintien en permanence d'un champ externe, magnétique ou électrique. Dans les chaînes colloïdales revendiquées, la cohésion entre les particules peut être dans une version privilégiée, maintenue par des liens covalents entre lesdites particules, le cas échéant résultant d'un pontage à l'aide de molécules ou de macromolécules. Ce lien covalent peut mettre en jeu des interactions spécifiques soit directement entre lesdites particules soit entre les particules et des molécules ou macromolécules, via des fonctions réactives présentes à la surface de ces particules. Les fonctions réactives peuvent être des fonctions amine, acide carboxylique, alcool, aldéhyde, thiol, époxyde, hydrazine et/ou des atomes d'halogène. La constitution et le maintien d'une organisation linéaire entre les particules colloïdales peuvent également mettre en jeu des interactions électrostatiques, hydrophobes ou de Van der Waals. On peut également, pour associer entre elles les particules colloïdales, mettre en jeu des interactions spécifiques entre lesdites particules, différentes de celles exercées vis-à-vis des espèces à analyser ou à séparer, soit directement soit par l'intermédiaire d'autres molécules ou macromolécules. L'assemblage de particules revendiqué est porteur d'au moins un site de reconnaissance pour une espèce, et de façon privilégiée de plusieurs sites de reconnaissance d'au moins un type donné.. Par site de reconnaissance, on entend une molécule, un ion, un élément de surface, ou encore une portion spécifique d'une molécule ou d'un ion, capable de donner lieu à une interaction attractive ou à une réaction chimique avec une espèce particulière ou une catégorie particulière d'espèces. Plusieurs types distincts de sites de reconnaissance peuvent être portés par une même chaîne ou sur des chaînes distinctes dans le cas où l'on met en oeuvre un ensemble de chaînes. Le nombre de types de sites peut notamment être supérieur à 5 ou à 10, voire dans certaines applications comme par exemple les puces à ADN ou à protéines, de plusieurs centaines à plusieurs dizaines de milliers. Les sites de reconnaissance caractérisant les chaînes colloïdales selon l'invention peuvent être choisis, de façon privilégiée, parmi les acides nucléiques (ADN, ARN, oligonucléotides), ou leurs analogues synthétiques (comme PNA, LNA, oligonucléotides thiolés ou méthylés), les peptides, polypeptides, protéines, complexes protéiques, protéoglycanes, polysaccharides. Ils peuvent également être choisis parmi des fragments de gènes, des anticorps, des antigènes, des enzymes ou parties d'enzymes, ou des parties de protéines biologiquement actives, des épitopes, des haptènes. Toutefois, comme précisé précédemment, le type de site de reconnaissance considéré en vue de la détection et/ou dosage d'une espèce, est différent des ligands spécifiques impliqués pour leur part dans l'organisation permanente des particules colloïdales sous forme de chaîne (s). Est ainsi exclue du domaine de l'invention une chaîne de particules colloïdales dont l'assemblage linéaire serait assuré par le couplage covalent d'un couple de ligands à l'image par exemple du couple biotine/avidine, et qui ne serait pas par ailleurs porteuse d'au moins un site de reconnaissance autre que les ligands spécifiques du couple considéré, à savoir dans l'exemple ci-dessus biotine ou avidine. Les sites de reconnaissance présents sur les chaînes de particules revendiquées peuvent également être choisis parmi des fonctions chimiques capables de reconnaître de façon spécifique d'autres espèces chimiques, par exemple en se liant à elles (comme, à titre d'exemple, des éthers couronnes capables de lier des métaux de transition ou réciproquement), ou en réagissant avec elles (comme, toujours à titre d'exemple, des trypsines ou alphachymotrypsines, capables de digérer des protéines). Ils peuvent également être constitués par des ligands spécifiques de métaux, des empreintes moléculaires, des sites catalytiques, des groupements hydrophobes, ou plus généralement les fonctionnalités utilisées en chromatographie pour donner à des colonnes une affinité spécifique pour certaines espèces. Au sens de l'invention, on entend par espèces des molécules ou macromolécules, particules, atomes, ions, objets d'origine organique naturelle ou artificielle, tels que des acides nucléiques, des protéines, des enzymes, des anticorps, des antigènes, des peptides, des polypeptides, des haptènes, des polysaccharides, des protéoglycanes, des organelles, des virus, des cellules, des ensembles de cellules, des microorganismes, des colloïdes. Il peut également s'agir de nano-ou micro-particules d'origine naturelle ou artificielle, des molécules organiques ou organominérales, des drogues, des médicaments, des polluants. Selon une variante privilégiée, une chaîne ou un ensemble de chaînes colloïdales selon l'invention est porteur d'au moins deux types distincts de sites de reconnaissance. En l'occurrence, un avantage tout à fait unique des chaînes colloïdales selon l'invention est que, de par leur nature linéaire, elles peuvent porter, le long de leur squelette, différents types de sites de reconnaissance. Selon une variante privilégiée et très spécifique de l'invention, ces différents types de sites sont disposés dans un ordre prédéterminé (ou séquencé) le long de la ou des chaîne (s) colloïdale (s) considérée (s). Etant donné la variété des sites de reconnaissance accessible, la capacité de distinguer des chaînes colloïdales portant les mêmes sites de reconnaissance dans un ordre différent autorise une combinatoire beaucoup plus riche que les particules colloïdales traditionnelles, qui ne peuvent pas faire intervenir de séquences. De plus, par rapport à des particules sphériques, les chaînes colloïdales selon l'invention présentent un meilleur rapport surface/volume, à volume de particule égal. En l'occurrence, en attachant les chaînes colloïdales sur une surface plane et/ou au sein d'un canal, on dispose d'une surface active plus grande comparativement à des sites de reconnaissance déposés sur une surface, et cette surface active peut notamment s'étendre sur plusieurs dizaines de microns au sein dudit canal. Cet aspect de l'invention est discuté de manière plus détaillée dans la description ci-après. Selon un mode préféré, les chaînes colloïdales selon l'invention sont porteuses également d'un ou plusieurs marqueurs identiques ou différents, notamment utiles pour leur détection. De nombreux marqueurs de ce type sont connus de l'homme de l'art. Une famille particulièrement avantageuse est celle des marqueurs capables d'interagir avec un rayonnement électromagnétique et, en particulier, avec la lumière visible, ultraviolette ou infrarouge, ou encore d'émettre de la lumière sous l'action d'un certain stimulus. Il peut s'agir de marqueurs capables d'absorber la lumière dans une certaine gamme de longueur d'onde, ou de marqueurs fluorescents ou phosphorescents, tels que des molécules, des complexes moléculaires ou des quantum dots . Il peut également être intéressant d'utiliser des chaînes colloïdales selon l'invention, porteuses de molécules capables de réactions électrochimiques (comme, à titre d'exemple, l'hydroquinone et ses dérivés), d'effets électroluminescents ou de chimiluminescence (composés électroactifs ou chimioactifs). A titre d'exemple, un certain nombre de marqueurs luminescents à base de peroxydase de raifort (horseradish peroxydase) sont bien connus de l'homme de l'art et peuvent être utilisés dans le cadre de l'invention. Avantageusement, les chaînes colloïdales selon l'invention, par opposition aux particules colloïdales traditionnelles, se prêtent à une fixation de un ou plusieurs marqueurs, identiques ou différents. Bien entendu, les modes de réalisation décrits ci-dessus peuvent également s'appliquer à des sites de reconnaissance différents ou à une combinaison de sites de reconnaissance et de marqueurs. Pour certaines applications, en particulier pour l'analyse d'espèces ou de fluides biologiques, il peut être intéressant que les chaînes colloïdales selon l'invention portent en outre sur leur surface des molécules capables d'éviter des phénomènes d'adsorption non spécifiques. De telles molécules sont bien connues de l'homme de l'art. Il peut s'agir en particulier de polymères hydrophiles tels que le polyxyéthylène, le polypropylène glycol, les polysaccharides et en particulier le dextrane ou encore le polyacrylamide, ou des polymères hydrophiles d'acrylamide, tels que le Duramide , le poly-N- acryloylamino-propanol, le poly-N-acryloylaminoéthanol, l'alcool polyvinylique, la polyvinyl-pyrrolidone, le polydimethylacrylamide ou les copolymères de dimethylacrylamide et d'allyl-glycidyl éther. De tels polymères peuvent être greffés sur la surface des chaînes colloïdales selon l'invention soit au cours de la préparation des particules initiales, soit après la formation desdites chaînes, en utilisant des fonctions réactives intégrées à la surface desdites particules, soit par adsorption directe. Sont particulièrement intéressants, dans le cadre de l'invention, les ensembles de chaînes colloïdales caractérisés en ce qu'ils se répartissent en plusieurs chaînes colloïdales, chaque chaîne portant un type donné de sites de reconnaissance ou de fonction réactive et le cas échéant au moins un type donné de marqueur. Selon les applications, on peut utiliser des ensembles de chaînes colloïdales présentant une longueur sensiblement identique ou, au contraire, des longueurs différentes. Selon une variante privilégiée, les chaînes colloïdales dans ledit ensemble présente une polydispersité en longueur inférieure à 1,5, et de préférence inférieure à 1,2. Les polydispersités s'entendent comme des moyennes en masse. Selon une autre variante privilégiée, on peut utiliser la longueur des chaînes colloïdales, comme critère de différenciation entre deux sous-familles, et donc utiliser, au sein d'un ensemble de chaînes colloïdales, plusieurs sous-familles de chaînes colloïdales de longueurs différentes, et essentiellement sans recouvrement de la distribution de tailles entre les différentes sous-familles. De façon privilégiée, dans cette variante, on établit une corrélation entre la taille d'une chaîne colloïdale et le ou les type (s) de sites de reconnaissances qu'elle porte. L'invention a pour second objet un procédé utile pour préparer un assemblage de particules colloïdales tel que revendiqué, caractérisé en ce qu'il comprend au moins : - l'assemblage de particules colloïdales sous forme d'un ou plusieurs objets linéaires, et - la mise en présence desdits objets avec au moins un agent capable de les ponter de façon irréversible. Selon une variante préférée, cette mise en présence consiste à faire migrer ledit agent au voisinage desdits objets. En l'occurrence, la première étape peut être réalisée en appliquant, de manière transitoire ou permanente, aux particules colloïdales un champ électrique ou magnétique. Ainsi, il est possible de conférer à des particules colloïdales en suspension un moment dipolaire, par l'intermédiaire d'un champ externe : les dipôles s'orientent dans la direction du champ, s'attirent le long de l'axe du champ et se repoussent dans la direction perpendiculaire, constituant ainsi des colonnes ou des colliers de perles . Selon une variante, on peut utiliser un champ électrique continu ou alternatif, et des particules en suspension dans un milieu, et présentant une polarisabilité électrique différente de celle dudit milieu. On peut également, selon une variante privilégiée, utiliser des particules magnétiques qu'on aligne dans un champ magnétique. Dans cette variante, les particules superparamagnétiques sont particulièrement avantageuses. Il est particulièrement commode d'effectuer l'alignement des particules colloïdales pour constituer des chaînes colloïdales selon l'invention, au sein d'une cellule microfluidique, et de préférence au sein d'un canal ou d'une chambre présentant au moins deux faces essentiellement parallèles. En ce qui concerne la direction du champ, différentes géométries sont possibles. Pour obtenir des chaînes colloïdales de longueur uniforme, il est intéressant que le champ servant à aligner les particules colloïdales soit essentiellement uniforme et perpendiculaire auxdites faces. Pour obtenir des chaînes colloïdales de grande longueur, cependant, on peut préférer une configuration dans laquelle le champ est parallèle à une direction dans laquelle la cavité au sein de laquelle s'effectue l'alignement présente une grande dimension. En particulier, il est dans ce cas intéressant que le champ soit parallèle à l'axe du canal dans lequel s'effectue l'alignement ou perpendiculaire à la fois à cet axe et à la plus petite dimension de sa section, s'il s'agit d'un canal parallélépipédique. Dans le cas où le champ est parallèle à l'axe du canal, il peut être intéressant d'ajuster la densité en particules colloïdales, de façon à ce qu'une section dudit canal ne contienne en moyenne qu'un objet selon l'invention ou moins. En ce qui concerne la seconde étape visant à rendre irréversible l'alignement de particules colloïdales, divers protocoles et/ou types de particules peuvent être considérés. Un premier protocole consiste à stabiliser des particules colloïdales superparamagnétiques avec un agent de pontage de type polymère, et en particulier un polyélectrolyte, par exemple du type acide polyacrylique. En l'absence de champ magnétique, ou en présence d'un champ faible, les particules présentent à courte portée une répulsion stérique due aux chaînes de polymère. Pour un champ magnétique supérieur à un champ seuil, les particules magnétiques sont pressées de plus en plus fortement les unes contre les autres : certaines chaînes peuvent franchir cette barrière stérique, et venir effectuer un pontage entre les particules, qui rendent leur association essentiellement irréversible ou au moins à très longue durée de vie. Un avantage des polyélectrolytes, outre leur capacité à interagir de façon forte avec des particules de charge opposée, est qu'on peut les mettre en présence des chaînes colloïdales par l'intermédiaire d'un champ électrique. Un second protocole implique l'assemblage des particules en colonnes à l'aide d'un champ externe au sein d'une cellule présentant une paroi semi-perméable et la diffusion, à travers cette paroi, d'un agent chimique capable de réticuler les particules entre elles. II est également possible d'utiliser des particules qui se lient entre elles de façon irréversible sous la simple action d'un champ externe, et sans qu'il soit nécessaire de faire intervenir des molécules adjuvantes. Des exemples de ce mode de réalisation sont donnés dans les exemples 8 et 9. On interprète cette cohésion comme la conséquence d'interactions hydrophobes entre les particules, qui peuvent entrer en jeu après franchissement d'une barrière de potentiel répulsive sous l'action du champ externe. Enfin, l'alignement des particules peut être rendu irréversible en utilisant des interactions électrostatiques : on peut, par exemple, organiser dans un champ magnétique des particules magnétiques négativement chargées (par exemple, carboxylées) en filaments, puis les mettre en présence de polycations (par exemple, en utilisant un champ électrique les mouvant en direction opposée) : les polycations, comme à titre d'exemple la poly-lysine ou la poly-histidine, se fixent sur les particules et pontent celles-ci de façon irréversible, effectuant une inversion de charge qui transforme la chaîne réversible anionique en une chaîne irréversible cationique. Le processus peut être répété avec un polyanion, comme l'acide polyacrylique ou polyglutamique, qui vient effectuer une seconde inversion de charge. Selon une variante particulièrement privilégiée, cette seconde inversion de charge peut être obtenue avec un acide nucléique, qui jouera en même temps le rôle de site de reconnaissance, et transformera donc la simple chaîne colloïdale irréversible en chaîne colloïdale selon l'invention, c'est-à-dire porteuse de sites de reconnaissance. Selon un autre mode de réalisation, le procédé revendiqué comprend au moins : - le mélange de particules colloïdales et/ou leur greffage avec au moins un agent de pontage ou un précurseur d'agent de pontage, - l'assemblage desdites particules colloïdales sous la forme d'un ou plusieurs objets linéaires et - le déclenchement du pontage entre lesdites particules maintenues dans une organisation linéaire. En l'occurrence, on peut commencer par constituer une chaîne colloïdale, puis ponter les particules à l'aide d'un rayonnement électromagnétique, par exemple dans le cadre d'une réaction photochimique. On peut, par exemple, utiliser le chlorure de 5- azidonaphtalene-1-sulphonyle, l'acide 4, 4'-diazidostilbene-2, 2'-disulfonique, ou plus généralement les agents de réticulation photoréactifs tels que ceux décrits dans le catalogue Molecular Probes , chapitre 5.3. On peut également utiliser une réaction photochimique de façon indirecte. Par exemple, on peut constituer un mélange de particules colloïdales magnétiques porteuses de fonctions carboxyliques, de chaînes de polyamine sous forme neutre (par exemple, de la poly-lysine à un pH supérieur à 10,2), et d'orthonitrobenzyle ou plus généralement de composés comportant des groupes nitro ou nitroso (voir par exemple H. Morrisson, The chemistry of the Nitro and Nitroso groups, Feuer H. Ed., Interscience, New York, 1969, partie 1, chapitre 4, ou R. Bressauer, J. P, Paris, in Advances in Photochemistry, W. A. Noyes, G. S. Hammond, J. N. Pitts editeurs, Interscience, New York, 1963, p. 275, ou encore, R. W. Yip et colI., J. Phys. Chem., 95, p 6078,1991) R53). Ces derniers composés, autrement connus comme cages à protons , sont capables sous l'action d'un rayonnement ultraviolet, de s'isomériser et de libérer un proton, créant une augmentation de pH suffisante pour transformer la chaîne polyamine neutre en polycation. L'avantage de cette méthode est qu'elle permet d'éviter toute agrégation entre particules tant que le milieu n'est pas soumis à la lumière, et donc d'avoir le temps d'effectuer le mélange entre les différents constituants, et d'organiser les particules colloïdales en chaînes, avant de faire agir la lumière qui créera l'attraction entre les polymères et lesdites particules, et le pontage de ces dernières dans la configuration linéaire recherchée. On peut également déclencher le pontage entre particules colloïdales par un changement de température et/ou une modification de pH. Enfin, on peut, si les particules initiales présentent spontanément un potentiel attractif à courte portée et un potentiel répulsif à longue portée, déclencher le pontage par une élévation du champ externe (champ magnétique pour des particules magnétiques, champ électrique pour des particules diélectriques). Selon un mode de réalisation particulier, le procédé revendiqué peut être mis en oeuvre dans une cellule microfluidique comportant, outre un canal 1, dans lequel s'effectue l'assemblage des particules colloïdales ou leur fonctionnalisation, un ou plusieurs d'alimentation annexes. L'organisation des particules colloïdales en chaîne peut être effectuée sur des particules préalablement porteuses de sites de reconnaissance et/ou de marqueurs identiques ou différents ou, au contraire, sur des particules non fonctionnalisées. Dans le premier cas, les différentes particules porteuses de sites de reconnaissance identiques ou différents et/ou de marqueurs identiques ou différents sont organisées pour constituer lesdits objets linéaires dans un ordre prédéterminé. Dans ce second cas, les particules organisées en chaînes linéaires sont dotées de sites de reconnaissance et éventuellement de marqueurs après constitution desdits objets. On peut bien entendu combiner les deux variantes ci-dessus, c'est-à-dire assembler dans une première étape des particules colloïdales porteuses de certains sites de reconnaissance et/ou de marqueurs, et venir rajouter sur ces dernières, dans un ordre prédéterminé ou non, d'autres sites de reconnaissance et/ou marqueurs. Quoiqu'il en soit, les particules colloïdales mises en oeuvre pour la séparation des chaînes colloïdales possèdent bien entendu les spécificités discutées précédemment. L'invention a pour troisième objet un élément de surface porteur d'un assemblage linéaire de particules colloïdales selon l'invention. En l'occurrence, il est particulièrement intéressant de disposer d'une surface présentant en des endroits prédéfinis des chaînes colloïdales selon l'invention assemblées de façon irréversible. Avantageusement, l'extension de ces chaînes colloïdales au-dessus de la surface permet d'accroître significativement, d'une part la surface spécifique pour la reconnaissance et, d'autre part, le volume de solution surnageante mis au contact des cibles. En l'occurrence, la superficie active desdites chaînes colloïdales est supérieure à la superficie de l'élément de surface portant lesdites chaînes et, de préférence, d'un facteur d'au moins 4. Par exemple, avec des chaînes colloïdales de 200 nanomètres de diamètre, équidistants de 1 micromètre et longs de 20 micromètres, la surface spécifique est de 12 micromètres carrés par micromètre carré de surface projetée. De façon privilégiée, les chaînes colloïdales sont fixées sur la surface par une de leurs extrémités. Cette fixation peut être obtenue par création d'une liaison covalente entre les chaînes et la surface, par pontage avec des molécules ou des macromolécules et/ou par des interactions de type électrostatique, hydrophobe ou de type Van der Waals. On peut également envisager des interactions spécifiques, différentes de celles exercées entre les sites de reconnaissance et les espèces. En fixant les chaînes colloïdales sur la surface par une de leurs extrémités, on constitue une brosse colloïdale . Cette brosse peut être étendue de façon active au sein de la solution surnageante, par exemple en appliquant un champ magnétique perpendiculaire à la surface de la puce si les chaînes comportent des matériaux magnétiques. Dans la majorité des applications, il est avantageux de rassembler les chaînes sur ladite surface en une multiplicité de domaines distincts, de préférence en des positions prédéterminées sur ladite surface. De préférence, la surface comprend au moins deux domaines distincts comportant des chaînes colloïdales porteuses de sites de reconnaissance différents. Divers procédés peuvent être utilisés pour constituer des surfaces porteuses d'un assemblage linéaire selon l'invention. Typiquement, ces procédés doivent comporter les étapes suivantes : - greffage sur les chaînes colloïdales ou sur au moins certaines des particules constituant lesdites chaînes, de sites de reconnaissance, et - fixation desdites chaînes colloïdales sur ladite surface. De façon privilégiée, l'étape de fixation des chaînes colloïdales sur la surface se fait en présence d'un champ externe capable d'aligner lesdites chaînes. Par exemple, si les chaînes portent un moment dipolaire électrique ou une polarisabilité électrique, on pourra utiliser à cet effet un champ électrique. Si elles portent un moment dipolaire magnétique ou une polarisabilité magnétique, on pourra utiliser un champ magnétique. De préférence, ledit champ présente une multiplicité de gradients locaux, qui dirigent les chaînes vers des endroits prédéterminés sur la surface. Par l'intermédiaire de ces champs externes, on peut également obtenir des surfaces sur lesquelles les chaînes colloïdales sont orientées plutôt perpendiculairement ou plutôt parallèlement à la surface, selon que ledit champ est plutôt perpendiculaire ou plutôt parallèle à la surface. Optionnellement, ces procédés peuvent en outre comporter une étape d'incorporation de marqueurs dans lesdites chaînes. L'ordre dans lequel ces différentes étapes sont effectuées peut varier selon la commodité de réalisation. En particulier, le greffage sur la surface peut être antérieur, simultané ou postérieur à la mise en place des sites de reconnaissance, postérieur, simultané ou antérieur à la mise en place des marqueurs. La mise en place des marqueurs, dans le cas où cette option est choisie, peut quant à elle être postérieure, simultanée ou antérieure à celle des sites de reconnaissance. Enfin, notons que l'assemblage des particules colloïdales en chaînes peut être antérieur ou simultané au greffage de celles-ci sur la surface. Quand cela est possible, la deuxième option est préférée, car elle diminue le nombre d'étapes nécessaires pour l'obtention de la surface finale. L'invention a également pour objet un réseau d'hybridation comportant un élément de surface porteur de chaînes colloïdales selon l'invention. Ce réseau peut être à basse densité, à moyenne densité ou à haute densité. Ces réseaux d'hybridation déposés sur une surface sont généralement désignés sous le nom de puces à ADN , puces à oligonucléotides ou puces à protéines . Dans ce type d'application, les chaînes sont groupées sur l'élément de surface considéré en une multiplicité de domaines distincts. De façon privilégiée, lesdits domaines occupent des positions prédéterminées ou repérables sur ladite surface. De façon privilégiée également, au moins deux domaines distincts comportent des fils colloïdaux porteurs de sites de reconnaissance différents. De préférence, on dispose d'une multiplicité de domaines distincts porteurs chacun d'un type de site de reconnaissance distinct. Dans certains cas, cependant, on peut souhaiter introduire une certaine redondance entre les domaines, à des fins de contrôle et/ou de mesure de la reproductibilité. Les puces constituées à partir de chaînes colloïdales selon l'invention présentent par rapport aux puces traditionnelles de nombreux avantages : d'une part, leur surface spécifique est augmentée, ce qui augmente la sensibilité, en particulier en cas de compétition avec des ligands non spécifiques. Le volume d'échantillon, et donc le nombre d'espèces contenues dans l'échantillon mis à proximité immédiate des sites de reconnaissance est également augmenté considérablement, ce qui accroît la cinétique et la sensibilité. Enfin, dans le cas de chaînes colloïdales magnétiques ou plus généralement de chaînes colloïdales sensibles à un champ externe, il est possible d'agiter ces chaînes colloïdales par rapport au milieu environnant, par exemple en les soumettant à un champ extérieur oscillant, magnétique ou électrique, ce qui permet d'accélérer la cinétique d'hybridation. L'utilisation de chaînes colloïdales selon l'invention, du type de celles sensibles à un champ extérieur, permet également d'obtenir des réseaux plus reproductibles : en effet, les chaînes colloïdales peuvent être calibrées en longueur, et leurs propriétés physiques d'auto-organisation imposent une distribution régulière et prédéfinie sur toute la surface du domaine. Par ailleurs, le greffage des sites de reconnaissance sur les filaments s'effectuant en batch , il peut être mieux contrôlé que dans le cas du dépôt ou spotting traditionnel, et peut faire l'objet d'un contrôle-qualité avant le dépôt sur la surface. L'invention a également pour objet un canal ou une cellule microfluidique ou un microrécipient contenant un assemblage de particules colloïdales selon l'invention. Par cellule microfluidique , on entend un dispositif comprenant un canal ou un ensemble de canaux dont l'une des dimensions est comprise entre 100 nm et 1 mm, et permettant le transport de fluides. Selon une variante privilégiée, lesdites chaînes sont organisées au sein du canal en une- multiplicité de- domaines distincts. Selon une autre variante privilégiée, non exclusive de la précédente, lesdites chaînes sont fixées sur une des faces du canal. Enfin, les chaînes colloïdales selon l'invention peuvent également être utilisées dans un dispositif de chromatographie, d'électrochromatographie ou d'électrophorèse d'affinité notamment afin d'y agir en tant que matrice de séparation. Dans ce cas, on introduit les analyses contenues dans un échantillon dans ledit dispositif. Ces analyses y sont transportées au sein d'un canal, par un champ approprié (champ de pression pour la chromatographie, champ électrique pour l'électrophorèse ou l'électrochromatographie). Les différents analytes interagissent différemment avec les sites de reconnaissance présents sur les chaînes colloïdales, et sont donc retenus ou plus ou moins retardés. On peut alors détecter, par des moyens bien connus de l'homme de l'art (tels que fluorescence, absorption UV, réfractométrie, électrochimie, etc. ), les différents analytes après ou pendant leur passage entre les chaînes colloïdales. Les différences de temps de passage renseignent sur les différentes affinités des analytes avec les chaînes colloïdales et, le cas échéant, sur leur nature. Cette méthode est particulièrement bien adaptée aux systèmes microfluidiques, de par les dimensions les plus courantes des chaînes colloïdales selon l'invention, dans la gamme micronique. Dans une autre série d'applications, les chaînes colloïdales selon l'invention peuvent être utilisées comme des microréacteurs . En l'occurrence, les sites de reconnaissance sont des sites catalytiques, qui permettent d'activer des réactions avec un très grand rapport surface/volume. Si les chaînes colloïdales sont utilisées en volume, elles peuvent par exemple être récupérées facilement par centrifugation ou par tri magnétique, et offrent ainsi un bon compromis entre les catalyseurs dissous, qui offrent une très bonne dispersion mais sont difficiles à récupérer, et les catalyseurs solides, qui sont faciles à recycler par lavage mais peu dispersés. Selon une autre variante particulièrement privilégiée, les chaînes colloïdales revendiquées utilisées comme microréacteurs sont attachées sur une surface, ce qui permet d'échanger les réactifs et de collecter les produits de réaction aussi facilement qu'avec un catalyseur solide, mais avec une mobilité et une dispersion beaucoup plus grande des sites de reconnaissance. Les chaînes colloïdales selon l'invention sont également avantageuses pour des applications de chimie combinatoire. En l'espèce, des chaînes colloïdales porteuses d'enzymes à titre de catalyseurs sont particulièrement intéressantes pour la chimie combinatoire ou le diagnostic. Ainsi, on peut à titre d'exemple et de façon non limitative, greffer sur des particules colloïdales magnétiques de la chymotrypsine, ou de l'alphachymotrypsine selon le protocole décrit dans Bilkova J., Chromatogr. A, 852,141- 149 (1999). Ces particules sont ensuite assemblées par l'un des procédés décrits dans les exemples 1 à 8. On peut également procéder d'abord à l'assemblage des chaînes colloïdales à partir de microsphères de type poly (HEMA-co-EDMA), les fonctionnaliser à l'hydrazide, comme décrit dans Bilkova J., Chromatogr. A, 852,141-149 (1999), puis les assembler en chaînes colloïdales selon l'un des protocoles décrits dans les exemples 1 à 8, et reprendre le protocole à l'étape 2.9 de Bilkova J., Chromatogr. A, 852,141-149 (1999). pour fixer la chimotrypsine de façon orientée. On obtient ainsi des chaînes colloïdales capables de digérer les protéines. L'invention a également pour objet un microrécipient ou dispositif de reconnaissance moléculaire, comportant des chaînes colloïdales selon l'invention ou une surface porteuse de telles chaînes colloïdales. En fait, de manière plus générale, les chaînes colloïdales selon l'invention s'avèrent particulièrement intéressantes pour un grand nombre d'applications, telles qu'analyse, isolation et/ou préparation d'espèces. C'est ainsi que la présente invention a également pour objet une méthode de diagnostic et/ou d'analyse, de séparation, de purification, de dosage ou d'identification ex vivo d'au moins une espèce, mettant en oeuvre au moins un assemblage de particules tel que revendiqué. Les espèces considérées sont celles identifiées précédemment. Ces méthodes de diagnostic et/ou d'analyse peuvent notamment être mises en oeuvre selon le protocole comprenant au moins les étapes consistant à : a) mettre en oeuvre au sein d'un canal ou d'un récipient un assemblage de particules colloïdales ; b) mettre en contact ledit assemblage avec au moins une espèce à détecter, séparer et/ou doser ; et c) mettre en oeuvre des moyens pour détecter l'hybridation éventuelle de l'espèce considérée avec ledit assemblage. Optionnellement, dans les applications préparatives, il peut être également intéressant de récupérer les produits ayant interagi avec les chaînes colloïdales, ou au contraire ceux n'ayant pas interagi. Optionnellement également, le processus comprend en outre une étape de lavage au cours de laquelle certains produits contenus dans l'échantillon et n'ayant pas hybridé avec les chaînes sont éliminés, ou au cours de laquelle les produits ayant réagi avec lesdites chaînes sont récupérés. Au titre de l'invention, on entend par"hybridation"toute interaction dans laquelle une espèce se lie de façon spécifique avec un site de reconnaissance. Dans le cas de la méthode revendiquée, les chaînes de particules colloïdales peuvent être disposées sous la forme de zones distinctes composées de plusieurs chaînes au sein d'un canal ou d'une surface. Dans un tel cas, la zone contenant lesdites chaînes colloïdales est généralement traversée par un fluide contenant au moins une espèce à analyser. L'invention est particulièrement avantageuse pour ce type d'opération : en effet, au cours du lavage, les chaînes colloïdales peuvent se coucher et opposer ainsi très peu de résistance à l'écoulement, permettant un lavage aisé et rapide. Dès l'arrêt de l'écoulement, elles peuvent se redresser (ce redressement peut optionnellement être activé par un champ magnétique, si les chaînes colloïdales sont magnétiques) et occuper à nouveau un grand volume. On peut ainsi combiner la facilité de lavage des tubes ouverts, avec la densité de sites obtenue avec des gels, mais sans la forte résistance à l'écoulement que présentent ces derniers. Parmi les moyens mis en oeuvre dans l'étape c), on peut de façon privilégiée utiliser la fluorescence, la phosphorescence, la chimiluminescence, l'absorption de lumière, la résonance plasmon de surface, la radioactivité. On peut également utiliser une méthode de détection mettant en jeu une mesure de courant, par exemple dans un ou plusieurs circuits inclus dans le dispositif de reconnaissance moléculaire, au voisinage des chaînes colloïdales. Cette dernière variante est particulièrement adaptée au cas de chaînes colloïdales conductrices du courant, ou à celles mettant en jeu des sites de reconnaissances capables de conduire à des produites détectables par une réaction électrochimique ou une méthode d'ampérométrie cyclique. On peut également utiliser un ou plusieurs éléments sensibles au champ magnétique ou un changement de champ magnétique. Cette dernière variante est particulièrement adaptée aux chaînes colloïdales dotées de propriétés magnétiques. En ce qui concerne la détection, selon une première variante, la détection peut s'effectuer in situ, au sein du canal ou du récipient dans lequel s'effectue l'hybridation ou plus généralement l'interaction entre certaines espèces contenues dans un fluide et les sites de reconnaissance portés par les chaînes colloïdales selon l'invention. Selon une seconde variante, cette détection peut s'effectuer dans un autre appareil, après la phase d'hybridation ou d'interaction. En particulier, on peut utiliser les réseaux d'hybridation conformes à l'invention de façon comparable aux puces à ADN ou ou puces à protéines conventionnelles, en effectuant dans un premier temps l'hybridation dans une chambre à hybridation, puis en effectuant la détection dans un lecteur de puces. Quand on souhaite effectuer simultanément une recherche de reconnaissance moléculaire impliquant une multiplicité de types de chaînes colloïdales, celles-ci peuvent être organisées en zones relativement compactes (typiquement circulaires) ou spots , ou au contraire en bandes, au sein d'un canal ou sur une surface. A titre d'exemple et de façon non limitative, les chaînes colloïdales selon l'invention, et les différents composants et dispositifs mettant en oeuvre ces chaînes colloïdales peuvent être utilisés pour le diagnostic ; la recherche et/ou préparation de molécules ou macromolécules, particules, atomes, ions, objets d'origine organique naturelle ou artificielle, tels que des espèces biologiquement actives comme des acides nucléiques, des protéines, des enzymes, des anticorps, des peptides, des polypeptides, des polysaccharides, des protéoglycanes, des organelles, des cellules cancéreuses, des cellules rares, des cellules épithéliales, de cellules endothéliales, des cellules pour le diagnostic prénatal, des OGM, des cellules pathogènes, des virus, des anticorps, des microorganismes ; la recherche de matières actives chimiques comme les produits toxiques, les drogues, les polluants ; la reconnaissance de variétés animales végétales ou microorganismes ; la détection de mutations ; la recherche d'allergies ; le génotypage ; la recherche de gènes impliqués dans des maladies ; la recherche et lou préparation de produits de réactions issus de protocoles de chimie combinatoire. Les exemples et figures ci-après sont présentés à titre illustratif et non limitatif du domaine de l'invention. Figure ta : Exemple de chaînes colloïdales du type collier de perles flexibles pontées par de l'acide polyacrylique, de façon irréversible à partir de particules magnétiques de diamètre moyen 1,3 micromètres plus ou moins 0,3 micromètres, préparées selon le protocole décrit dans l'exemple 1. Figure 1 b : Exemple de chaînes colloïdales rigides du type colonnes et de chaînes colloïdales semi-flexibles du type collier de perles , pontées par de l'acide polyacrylique, de façon irréversible à partir de particules magnétiques de diamètre 1,3 micromètres plus ou moins 0,3 micromètres, préparées selon le protocole décrit dans l'exemple 1. Figure 1 c : Exemple de chaînes colloïdales semi-flexibles du type collier de perles monodisperses de 70 micromètres de long organisées de façon irréversible, selon le protocole décrit dans l'exemple 2. Figure 2a : Exemple de chaînes colloïdales pontées par de la poly-lysine, préparées selon l'exemple 3. Figure 2b : Exemple de chaînes colloïdales pontées par de la poly-lysine et attachées sur une surface par leur extrémité, préparées selon l'exemple 4. Figure 3 : Exemple de chaînes colloïdales porteuses de molécules d'ADN : a/chaînes porteuses d'une molécule d'ADN par chaîne en moyenne, préparée selon l'exemple 6 ; b : chaîne colloïdale porteuse d'une couverture uniforme d'ADN Phi X 174 , préparée selon l'exemple 7. Figure 4 : Chaînes colloïdales porteuses d'anticorps : a/chaînes colloïdales porteuses d'anticorps anti-souris , préparées selon l'exemple 8 ; b/chaînes colloïdales préparées à partir de billes de 1 micromètre de diamètre, porteuses de streptavidine, préparées selon l'exemple 9a ; Exemple 1 : Préparation de chaînes colloïdales à partir de particules de diamètre 1,3 plus ou moins 0,3 micromètres, à l'aide de polyélectrolytes en présence d'un champ magnétique, dans un récipient macroscopique (tube à essais). a/On prépare des billes magnétiques constituées d'une émulsion inverse de ferrofluide à base d'Octane (Rhone Poulenc), stabilisée dans de l'eau par du dodécyl-sulfate de sodium, selon le protocole décrit dans"Emulsions : theory and practice", Becher, P., Rheinhold, New York, 1965). Une taille de particules de 1,3 micromètres plus ou moins 0,3 micromètres est sélectionnée par cristallisation fractionnée, selon le protocole décrit dans Bibette, J. Colloid Interface Sci., 147,474 (1991). Selon une variante, on peut utiliser directement des particules magnétiques disponibles commercialement, comme celles distribuées par les sociétés Bangs Laboratoires, Estapor, Merck, Eurolab, Prolabo Uptima ou Polysciences. bl On lave plusieurs fois (au moins 5 fois) l'émulsion avec une solution de Nonyl Phenol Ethoxylate ou NP10 (Sigma Aldrich) à 0. 1%,. Le lavage s'effectue commodément en rassemblant les gouttes magnétiques au fond du récipient avec un aimant, en remplaçant le surnageant par la solution de lavage, et en agitant vigoureusement (on peut éventuellement utiliser la sonication en cas d'agrégation légère des particules) après avoir retiré l'aimant. L'opération est répétée autant de fois que nécessaire. En fin de lavage, on ajoute une quantité de solution de NP10 afin d'atteindre une concentration en particules de l'ordre de 0. 1% en fraction volumique c/On ajoute une solution d'acide polyacrylique ou PAA (Sigma Aldrich, Mw=250 000) afin d'aboutir à une concentration en PAA de 0. 1%. Le pH doit être égal à 4. On laisse incuber sous agitation douce. d/On place le tube à essais contenant l'échantillon dans une bobine, et on augmente progressivement le champ magnétique Des chaînes se forment, et on laisse incuber sous champ de l'ordre de 5 à 15 mn. Quand on a dépassé un champ seuil, de l'ordre de 10 mT, les chaînes restent assemblées irréversiblement après suppression du champ magnétique. On peut régler leur longueur moyenne et leur diamètre en jouant sur l'amplitude du champ magnétique et sur la concentration des particules magnétiques. A titre d'exemple, les chaînes présentées dans la figure 1 a ont été obtenues avec un champ de 50 mT et une concentration de particules de 0. 1% en volume. (observation entre lame et lamelle, en l'absence de champ magnétique, dans un microscopie AXIOVERT 100 Zeiss, à l'aide d'un objectif à immersion 100X, 1.3. On obtient dans ces conditions une coexistence entre de chaînes de type collier de perles flexibles (fig. 1a), des chaînes de type collier de perles semi-flexibles (fig. 1b, à gauche), et des chaînes de type colonnes rigides (fig. 1 b, à droite). Pour des concentrations en particules plus faibles, on obtient essentiellement des colliers de perles, et pour des concentrations plus élevées essentiellement des colonnes. Ce procédé permet d'obtenir aisément de grandes quantités de chaînes colloïdales selon l'invention. Parc contre, celles ci sont assez polydisperses. Exemple 2 : Obtention de chaînes colloïdales de longueur calibrée et monodisperses. On procède comme dans l'exemple 1 jusqu'à l'étape c. Pour l'étape d, au lieu d'utiliser un tube à essais, on introduit la solution dans un canal d'épaisseur uniforme 100 micromètres, préparé par moulage de polydimethylsiloxane selon Xia, Y. Xia, G. M. Whitesides, Angew. Chem. Int. Ed. 37,550 (1998), puis on applique un champ magnétique de 50 mT, perpendiculaire à l'épaisseur du canal. On obtient, après suppression du champ magnétique, des chaînes semi-flexibles de longueur uniforme égale à l'épaisseur du canal (70 micromètres) (voir figure 1 c) (conditions d'observation identiques à celles de l'exemple 1). Exemple 3 : Préparation de chaînes colloïdales pontées par de la polylysin. a/On prépare des particules magnétiques selon le a/de l'exemple 1. b/Ces particules sont introduites dans un canal préparé comme dans l'exemple 2, par surpression ou capillarité, à une concentration pouvant varier selon les besoins entre 0,1 % et 20%. On applique un champ magnétique de l'ordre de 50 mT, perpendiculaire à l'épaisseur du canal. On obtient alors des chaînes colloïdales. Celles ci sont du type collier de perles si la concentration initiale de la suspension en billes magnétiques est faible (typiquement inférieure à 5%), et du type colonnes si cette concentration initiale est importante. c/On introduit, par électrophorèse, de la poly-L-lysine (solution 0. 1% w/v Sigma Aldrich) dans le canal. (Pour une fraction volumique de billes de 2%, on introduit de la poly-L-lysine de telle sorte que sa concentration dans le canal soit de 0.05% wt). Pour cela, on dispose deux électrodes dans deux réservoirs situés aux extrémités du canal. La poly-lysine est introduite sous forme de solution dans un des réservoirs, et l'électrode située dans ce réservoir est porté à un potentiel positif par rapport à celui de l'électrode située dans l'autre réservoir, de façon à maintenir au sein du canal un champ électrique de quelques V/cm. Des chaînes colloïdales irréversibles telles que celles observées dans la figure 2a sont obtenues. Exemple 4 : Préparation de chaînes colloïdales attachées par une de leurs extrémités sur une surface, pontées par de la poly-lysine (fig. 2b) a/On prépare ou on se procure des particules magnétiques comme dans l'étape a de l'exemple 1. b/On lave plusieurs fois (au moins 5 fois) l'émulsion avec une solution de Nonyl Phenol Ethoxylate ou NP10 (Sigma Aldrich) à 0. 1%,. Le lavage s'effectue commodément en rassemblant les gouttes magnétiques au fond du récipient avec un aimant, en remplaçant le surnageant par la solution de lavage, et en agitant vigoureusement (on peut éventuellement utiliser la sonication en cas d'agrégation légère des particules) après avoir retiré l'aimant. L'opération est répétée autant de fois que nécessaire. En fin de lavage, on ajoute une quantité de solution de NP10 afin d'atteindre une concentration en particules de l'ordre de 5 % en fraction volumique cI On remplace la phase continue par un mélange constitué de NP10 0. 1% wt, poly-Llysine 0.89 % wt. Pour cela on rassemble les billes magnétiques au fond du tube à l'aide d'un aimant et on prélève le surnageant que l'on remplace par le mélange souhaité. d/On introduit l'émulsion dans un canal. On applique un champ magnétique de 50 mT, perpendiculaire à l'épaisseur du canal. Après suppression du champ magnétique, on obtient une brosse de chaînes calibrées attachées sur la paroi inférieure du canal. Exemple 5 : Préparation de chaînes colloïdales attachées par une de leurs extrémités sur une surface, couplées par du polydimethylacrylamide. a/On prépare ou on se procure des particules magnétiques comme dans l'étape a de l'exemple 1. b/on prépare un canal d'épaisseur uniforme, par moulage de polydimethylsiloxane selon Xia, Y. Xia, G. M. Whitesides, Angew. Chem. Int. Ed. 37,550 (1998). On remplit ce canal par une solution de polydimethylacrylamide à 0,15% en masse, et on laisse incuber pendant 40 mn. c/On rince le canal avec une solution de Triton X405 à 2. 1g/L, puis on le remplit avec la suspension de particules magnétiques, préparée en a. d/On place le canal au centre d'une bobine, et après équilibrage des pressions aux extrémités du canal afin d'éviter les écoulements parasites, on applique un champ magnétique suffisant pour créer les colonnes (de l'ordre de une à quelques dizaines de mT), perpendiculaire à l'épaisseur du canal. Le champ est maintenu pendant une heure. e/Après suppression du champ magnétique, on obtient une brosse de chaînes colloïdales, attachées sur la paroi inférieure du canal. Exemple 6 : Préparation de chaînes colloïdales selon l'invention, porteuses d'une molécule d'ADN de phage lambda par chaîne en moyenne. a/On prépare des chaînes colloïdales selon le protocole décrit dans l'exemple 1. b/On rajoute une solution de Poly-L-lysine (solution à 0. 1% w/v Sigma Aldrich) de façon à obtenir dans le mélange une concentration de poly-L-lysine de 0. 002% w. On laisse incuber sous agitation douce à la température ambiante pendant 40 min c/En ajoutant de l'ADN à la suspension, celui-ci se fixe en certains points de la surface des chaînes colloïdales, selon un mécanisme vraisemblablement comparable à celui mis en oeuvre sur des surfaces planes (voir par exemple"The world of Microarrays, J. Boguslavsky, Drug Discovery and Development, S5-S32 (2001)). La concentration d'ADN sur les colonnes peut être variée grandement, en jouant sur la concentration de l'ADN ajouté à la solution, et sur sa taille. Dans la figure 3a, on a fixé environ une molécule d'ADN de grande taille (phage lambda, Amersham Pharmacia Biotech Inc) par chaîne colloïdale. Les chaînes colloïdales apparaissent en sombre, et les ADN marqués par un marqueur fluorescent (YOYO-1, Molecular Probes ; une molécule de YOYO pour dix paires de bases) apparaissent en clair (mesure effectuée par épifluorescence sur un microscope Zeiss Axiovert 100 équipé d'une lampe à mercure pour l'excitation et d'un objectif 100X). Exemple 7 : Préparation de chaînes colloïdales selon l'invention, porteuses d'une couverture uniforme de molécules d'ADN de type PhiX 174 liées aux chaînes colloïdales par l'intermédiaire de poly-lysine. On procède comme dans l'exemple 6, mais en utilisant une nature et une concentration d'ADN différentes pour l'étape c. On utilise un mélange d'ADN courts de type PhiX 174 ( a/On prépare un dispositif microfluidique comportant un canal d'épaisseur uniforme, par moulage de polydimethylsiloxane selon Xia, Y. Xia, G. M. Whitesides, Angew. Chem. Int. Ed. 37,550 (1998). b/On place le canal au centre d'une bobine, et après équilibrage des pressions aux extrémités du canal afin d'éviter les écoulements parasites, on applique un champ magnétique suffisant pour créer les colonnes (de l'ordre de une à quelques dizaines de mT), perpendiculaire à l'épaisseur du canal. Le champ est maintenu pendant une heure. ci Des billes Uptibeads anti-souris (0.3 um ; Uptima), à la concentration de la solution d'origine telle que vendue par le fabricant, sont soniquées pour défaire les agrégats présents dans l'échantillon initial, et introduits dans le canal du dispositif microfluidique préparé en a. Ce dispositif est lui-même placé au centre d'une bobine de façon à créer au sein du canal un champ magnétique essentiellement uniforme et orienté selon son épaisseur. Pour l'observation, le dispositif entouré de sa bobine est placé sur un microscopie AXIOVERT 100 Zeiss, et visualisé à l'aide d'un objectif à immersion 100X, 1.3. et d'une caméra CCD Cohu. Un champ magnétique de 50 mTesla est appliqué. A la suppression du champ magnétique, les particules restent groupées sous forme de colonnes fixées à la surface inférieure du canal par une de leurs extrémités, et qui peuvent tourner et s'orienter aléatoirement autour de leur point de fixation (figure a). Exemple 9 : Fabrication par pontage direct de chaînes colloïdales selon l'invention, du type colonnes , porteuses de fonctions streptavidine. Les billes Uptibeads Streptavidin (0. 88 um), à la concentration de la solution d'origine telle que vendue par le fabricant, sont soniquées pour défaire les agrégats présents dans l'échantillon initial, et placées dans une cellule microfluidique comme décrit dans l'exemple 8. A la suppression du champ magnétique, les particules restent groupées sous forme de colonnes (figure 4b). Exemple 10 : Fabrication de chaînes colloïdales à partir de particules magnétiques préalablement fonctionnalisées avec de la galactose oxydase de façon orientée. a/Préparation des particules magnétiques Des particules de HEMA-co-EDMA sont préparées par polymérisation en émulsion, puis activées à l'hydrazine, selon le protocole décrit dans Horak et coll., Biotechnol. Progr., 15 (1999). b/Préparation de la galactose oxydase activée (oxydée) Une solution de galactose oxydase de Dactylium dendroides (350 IU) (Sigma-Aldrich) est dissoute dans 2.5 ml de tampon acétate pH 5.5 0.1 M, contenant 2 mM CuS04 et 1 mM de D-Fucose (Acros Organics, Geel, Belgique). On ajoute 100 I. U. de catalase (Sigma-Aldrich). Après 10 min d'incubation à 37 C et 15 min à 4 C, 250 uL de NalO4 est ajoutée à la solution, et agitée pendant 30 min à 4 C, pour activer sélectivement les chaînes glycosides de la galactose oxydase. La réaction est stoppée par addition de 30 ilL d'éthylène glycol" et l'agitation est poursuivie pendant 10 min. Les composants de faible masse moléculaire sont éliminés par filtration sur une colonne Sephadex G-25. ci Fixation de la galactose oxydase oxydée et purifiée sur les particules magnétiques On rajoute à la solution purifiée de galactose oxydase, 1, 5 ml de solution de particules magnétiques activées, préparées en a, de façon à ce que la galactose oxydase soit en excès par rapport à la surface de particules. On incube sous agitation, pendant 24 h à 4 C. Le support est ensuite lavé avec du tampon acétate 0. 1 M, pH 4, NaCI 0.5M. On répète le lavage plusieurs fois avec un tampon 0. 1 M phosphate pH 6,2 mM CuS04, jusqu'à ce que l'activité enzymatique de l'éluant ne soit plus décelable. (L'activité oxydase est mesurée à l'aide d'un test basé sur l'oxydation de la D-galactose, comme décrit dans Avidad et coll., J. Biol. Chem., 237,2736 (1962)). On bloque alors les groupes hydrazine n'ayant pas réagi par incubation des particules dans une solution de 0.2 M acétaldéhyde en tampon acétate 0.1 M, pH 5.5 pendant 24 h. Enfin, on équilibre les particules dans une solution de tampon phosphate 0.1 M, pH6,2mM CuS04. d/Constitution des chaînes colloïdales On ajoute à un aliquot de la solution de particules préparées en c, de l'acide polyacrylique ou PAA (Sigma Aldrich, Mw=250 000) afin d'aboutir à une concentration en PAA de 0. 1%. Laisser incuber sous agitation douce. Placer le tube à essais contenant l'échantillon dans une bobine, et augmenter progressivement le champ magnétique (N. B. Si on dispose d'une bobine permettant d'appliquer un champ magnétique suffisant, on peut omettre d'ajouter le PAA, ce qui permet de laisser les fonctions galactose oxydase plus accessibles, et donc d'améliorer le rendement catalytique des chaînes colloïdales finales). Des chaînes se forment. et on laisse incuber sous champ de l'ordre de 15 min. On obtient après suppression du champ magnétique des chaînes colloïdales irréversibles porteuses d'une activité oxydase, démontrée par mesure spectrophotométrique à l'aide d'un test basé sur l'oxydation de la D-galactose, comme décrit dans Avidad et coll., J. Biol. Chem., 237,2736 (1962). Exemple 11 : Fonctionnalisation de chaînes colloïdales avec de la galactose oxydase. a/Préparation des particules magnétiques On prépare une solution de particules magnétiques colloïdales, par exemple des particules de HEMA-co-EDMA préparées selon Horak et colI., Botechnol. Progr., 15 (1999), ou des particules Ademtech. On ajoute alors de l'acide polyacrylique ou PAA (Sigma Aldrich, Mw=250 000) afin d'aboutir à une concentration en PAA de 0. 1%. Laisser incuber sous agitation douce. Placer le tube à essais contenant l'échantillon dans une bobine, et augmenter progressivement le champ magnétique. Des chaînes se forment et on laisse incuber sous champ de l'ordre de 15 mn. On obtient après suppression du champ magnétique des chaînes colloïdales irréversibles. (N. B. Si on dispose d'une bobine permettant d'appliquer un champ magnétique suffisant, on peut omettre d'ajouter le PAA, ce qui permet de laisser les fonctions galactose oxydase plus accessibles, et donc d'améliorer le rendement catalytique des chaînes colloïdales finales). On active alors celles-ci à l'hydrazine, selon le protocole décrit dans Horak et coll., Biotechnol. Progr., 15 (1999). b/Préparation de la galactose oxydase activée (oxydée) Une solution de galactose oxydase de Dactylium dendroides (350 IU) (Sigma-Aldrich) est dissoute dans 2.5 ml de tampon acétate pH 5.5 0.1 M, contenant 2 mM CuS04 et 1 mM de D-Fucose (Acros Organics, Geel, Belgique). On ajoute 100 I. U. de catalase (Sigma-Aldrich). Après 10 min d'incubation à 37 C et 15 min à 4 C, 250 uL de NalO4 sont ajoutés à la solution, et agités pendant 30 min à 4 C, pour activer sélectivement les chaînes glycosides de la galactose oxydase. La réaction est stoppée par addition de 30 uL d'éthylène glycol,, et l'agitation est poursuivie pendant 10 min. Les composants de faible masse moléculaire sont éliminés par filtration sur une colonne Sephadex G-25. c/Fixation de la galactose oxydase oxydée et purifiée sur les chaînes colloïdales. On rajoute à la solution purifiée de galactose oxydase, 1,5 ml de solution de particules magnétiques activées, préparées en a, de façon à ce que la galactose oxydase soit en excès par rapport à la surface de particules. On incube sous agitation, pendant 24 h à 4 C. Le support est ensuite lavé avec du tampon acétate 0. 1 M, pH 4, NaCI 0.5M. On répète le lavage plusieurs fois avec un tampon 0. 1 M phosphate pH 6,2 mM CuS04, jusqu'à ce que l'activité enzymatique de l'éluant ne soit plus décelable. On bloque alors les groupes hydrazine n'ayant pas réagi par incubation des particules dans une solution de 0.2 M acétaldéhyde en tampon acétate 0.1 M, pH 5.5 pendant 24 h. Enfin, on équilibre les chaînes colloïdales dans une solution de tampon phosphate 0.1 M, pH6, 2mM CuS04. L'activité oxydase est démontrée par mesure spectrophotométrique à l'aide d'un test basé sur l'oxydation de la D-galactose, comme décrit dans Avidad et coll., J. Biol. Chem., 237,2736 (1962). REVENDICATIONS 1. Assemblage de particules colloïdales sous la forme d'une ou plusieurs chaînes, caractérisé en ce que lesdites chaînes sont organisées de manière irréversible et sont porteuse (s) d'au moins un site de reconnaissance pour une espèce, ledit site étant différent des ligands impliqués dans l'organisation linéaire desdites particules. 2. Assemblage de particules colloïdales selon la revendication 1, caractérisé en ce que les dites chaînes sont flexibles ou semi-flexibles. 3. Assemblage selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce que ladite chaîne possède un rapport d'aspect supérieur à 1 et de préférence à 3. 4. Assemblage selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que lesdites particules sont en tout ou partie de nature organique, et de préférence organominérale. 5. Assemblage selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que lesdites particules sont à base d'un matériau ferromagnétique, ferrimagnétique, antiferromagnétique, superparmagnétique, conducteur ou semi-conducteur. 6. Assemblage selon l'une des revendications précédentes caractérisé en ce que les particules colloïdales comportent un coeur minéral enveloppé d'une couche organique polymérique. 7. Assemblage selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que la cohésion entre lesdites particules est maintenue par des liens covalents entre lesdites particules. 8. Assemblage selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que la cohésion entre les particules résulte d'un pontage à l'aide de molécules ou de macromolécules. 9. Assemblage selon la revendication 7 ou 8, caractérisé en ce que la cohésion entre les particules met en jeu des interactions spécifiques directement entre lesdites particules ou avec des molécules ou macromolécules, via des fonctions réactives présentes à la surface desdites particules. 10. Assemblage selon la revendication 9, caractérisé en ce que les fonctions réactives sont des fonctions amine, acide carboxylique, alcool, aldéhyde, thiol, époxyde, hydrazine et/ou des atomes d'halogène. 11. Assemblage selon l'une des revendications 1 à 6 ou selon la revendication 8, caractérisé en ce que la cohésion entre lesdites particules met en jeu des interactions de type électrostatique, hydrophobe ou Van der Waals. 12. Assemblage selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que le ou les sites de reconnaissance sont choisis parmi : des acides nucléiques ou leurs analogues de synthèse, des peptides, des polypeptides ou des protéines, des complexes protéiques, des protéoglycanes, des polysaccharides, des fragments de gènes, des anticorps, des antigènes, des enzymes, des épitopes, des haptènes, des fonctions chimiques capables de reconnaître de façon spécifique d'autres espèces chimiques, des ligands spécifiques de métaux, des sites catalytiques, des empreintes moléculaires, des groupements hydrophobes, des enzymes ou parties d'enzymes. 13. Assemblage selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que lesdites particules sont organisées sous la forme d'une unique chaîne ou d'un ensemble de chaînes colloïdales porteur d'au moins deux types distincts de sites de reconnaissance. 14. Assemblage selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que les différents types de sites de reconnaissance, ou de fonctions sont organisés dans un ordre prédéterminé le long de la ou des chaîne (s) considérée (s). 15. Assemblage selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que lesdites particules ou certaines d'entre elles sont porteuses d'un ou plusieurs marqueurs identiques ou différents. 16. Assemblage selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce qu'il est constitué de plusieurs chaînes, chaque chaîne portant un type donné de sites de reconnaissance ou de fonctions réactives et, le cas échéant, au moins un type donné de marqueur. 17. Assemblage selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que les chaînes présentent une polydispersité en longueur inférieure à 1,5. 18. Assemblage selon la revendication 17, caractérisé en ce que la polydispersité en longueur est inférieure à 1,2. 19. Procédé utile pour préparer un assemblage de particules colloïdales selon l'une des revendications 1 à 18, caractérisé en ce qu'il comprend au moins : - l'assemblage de particules colloïdales sous forme d'un ou plusieurs objets linéaires et - la mise en présence desdits objets avec au moins un agent capable de les ponter de façon irréversible. 20. Procédé selon la revendication 19, caractérisé en ce que la mise en présence est effectuée en faisant migrer ledit agent au voisinage desdits objets. 21. Procédé selon la revendication 19 ou 20, caractérisé en ce que l'agent de pontage est choisi parmi les polymères et de préférence des polyélectrolytes. 22. Procédé selon l'une des revendications 19 à 21, caractérisé en ce que l'agent de pontage est un polyélectrolyte mû par un champ électrique. 23. Procédé selon l'une des revendications 19 à 22, caractérisé en ce que l'assemblage linéaire desdites particules est obtenue par action transitoire ou permanente d'un champ magnétique ou d'un champ électrique. 24. Procédé selon l'une des revendication 19 à 23, caractérisé en ce que l'organisation desdites particules est effectuée en cellule microfluidique, ou au sein d'un canal ou d'une chambre présentant au moins deux faces essentiellement parallèles. 25. Procédé utile pour constituer un assemblage de particules colloïdales selon l'une des revendications 1 à 18, caractérisé en ce qu'il comprend au moins : - le mélange de particules colloïdales et/ou leur greffage avec au moins un agent de pontage ou un précurseur d'agent de pontage, - l'assemblage desdites particules colloïdales sous la forme d'un ou plusieurs objets linéaires, et - le déclenchement du pontage entre lesdites particules maintenues dans une organisation linéaire. 26. Procédé selon la revendication 25, caractérisé en ce que la troisième étape implique une modification de température, une application d'un rayonnement électromagnétique, d'un champ électrique ou magnétique, un changement de pH et/ou une réaction photochimique. 27. Procédé selon l'une des revendications 19 à 26, caractérisé en ce que ladite organisation est effectuée sur des particules préalablement porteuses de sites de reconnaissance et/ou de marqueurs. 28. Procédé selon l'une des revendications 19 à 27, caractérisé en ce que les différentes particules porteuses de sites de reconnaissance identiques ou différents et/ou de marqueurs identiques ou différents sont organisées pour constituer lesdits objets linéaires dans un ordre prédéterminé. 29. Procédé selon l'une des revendications 19 à 26, caractérisé en ce que lesdits objets linéaires sont fonctionnalisés à l'aide de sites de reconnaissance et/ou de marqueurs après constitution desdits objets. 30. Méthode de diagnostic et/ou d'analyse, de purification, d'identification, de séparation ou de dosage ex vivo d'au moins une espèce mettant en oeuvre au moins un assemblage de particules colloïdales selon l'une des revendications 1 à 18. 31. Méthode selon la revendication 30, caractérisée en ce que les espèces sont choisies parmi les protéines, les acides nucléiques, les équivalents de synthèse d'acides nucléiques, des protéoglycanes, des haptènes, des enzymes, des anticorps, des antigènes, des macromolécules synthétiques, des polluants, des organelles, des cellules, des virus, des microorganismes, des nano-ou des micro-particules d'origine naturelle ou artificielle, des molécules organiques ou organominérales, des drogues et des médicaments. 32. Méthode selon la revendication 30 ou 31, caractérisée en ce qu'elle comprend au moins : - la mise en oeuvre, au sein d'un canal ou d'un récipient, d'un assemblage de particules colloïdales sous forme de chaînes irréversibles ; - la mise en contact dudit assemblage avec au moins une espèce à séparer, détecter et/ou doser, et - la mise en oeuvre de moyens pour détecter l'hybridation éventuelle de l'espèce considérée avec ledit assemblage. 33. Méthode selon la revendication 32, caractérisée en ce qu'elle comprend en outre une étape de lavage au cours de laquelle les produits ne s'étant pas hybridés avec lesdites chaînes sont éliminés, ou au cours de laquelle les produits ayant réagi avec lesdites chaînes sont récupérés. 34. Méthode selon la revendication 32 ou 33, caractérisée en ce que les chaînes de particules colloïdales sont disposées sous la forme de plusieurs zones distinctes, au sein d'un canal ou sur une surface. 35. Méthode selon la revendication 34, dans laquelle la zone contenant lesdites chaînes est traversée par le fluide contenant au moins une espèce à analyser. 36. Utilisation d'un assemblage de particules colloïdales selon l'une des revendications 1 à 18 dans un dispositif de chromatographie, d'électrophorèse d'affinité, ou d'électrochromatographie. 37. Utilisation d'un assemblage de particules colloïdales selon l'une des revendications 1 à 18 à titre de microréacteurs. 38. Utilisation d'un assemblage de particules colloïdales selon la revendication 37, caractérisé en ce que le site de reconnaissance fixé sur lesdites particules est un site catalytique. 39. Utilisation d'un assemblage de particules colloïdales selon l'une des revendications 1 à 18 en chimie combinatoire. 40. Elément de surface porteur d'un assemblage de particules colloïdales selon l'une des revendications 1 à 18. 41. Elément de surface selon la revendication 40, caractérisé en ce que la superficie active desdites chaînes colloïdales est supérieure à la superficie de l'élément de surface portant lesdites chaînes. 42. Elément de surface selon la revendication 40 ou 41, caractérisé en ce que la superficie active desdites chaînes colloïdales est supérieure à la superficie de l'élément de surface portant lesdites chaînes d'un facteur d'au moins 4. 43. Elément de surface selon l'une des revendications 40 à 42 caractérisé en ce que lesdites chaînes sont liées à ladite surface par une de leurs extrémités. 44. Elément de surface selon la revendication 43, caractérisé en ce que la fixation desdites chaînes sur ladite surface est obtenue par création de liaison covalente entre les chaînes et la surface, pontage à l'aide de molécules ou de macromolécules, et/ou par des interactions électrostatiques de type hydrophobe ou Van der Waals. 45. Elément de surface selon l'une des revendications 40 à 44, caractérisé en ce que lesdites chaînes sont assemblées sur ladite surface en une multiplicité de domaines distincts. 46. Elément de surface selon l'une des revendications 40 à 45, caractérisé en ce qu'il comprend au moins deux domaines distincts comportant des chaînes colloïdales porteuses de sites de reconnaissance différents. 47. Réseau d'hybridation comportant un élément de surface selon l'une des revendications 40 à 46. 48. Canal ou cellule microfluidique comprenant un assemblage de particules colloïdales selon l'une des revendications 1 à 18.