FR 2845691 A1 20040416 FR 0212606 A 20021010 NOUVELLES CELLULES ENDOTHÉLIALES, ANTICORPS DIRIGÉS CONTRE CES CELLULES ET LEUR UTILISATION, NOTAMMENT POUR LE CRIBLAGE DE SUBSTANCES INHIBANT L'ANGIOGENÈSE La présente invention concerne de nouvelles cellules endothéliales, ainsi que des anticorps dirigés contre ces cellules. La présente invention concerne également l'utilisation de ces cellules, notamment pour le criblage de substances inhibant l'angiogenèse. Les cellules endothéliales tapissent l'intérieur de tous les vaisseaux sanguins de l'organisme. Ces cellules ont un phénotype quiescent, elles ne prolifèrent quasiment pas (seulement 0,01% des cellules endothéliales sont engagées dans la division cellulaire à un moment donné). Le rôle physiologique des cellules endothéliales est très vaste, elles participent à de nombreux phénomènes vitaux pour l'organisme : coagulation sanguine, maintien de la pression artérielle, recrutement de cellules circulantes, synthèse de facteurs de croissance. Quand un territoire requiert un apport accru en oxygène et en nutriments il réagit en relarguant des facteurs solubles qui convertissent le phénotype des cellules endothéliales en un phénotype activé, et des facteurs mitogènes pour les cellules endothéliales de phénotype activé. Ces cellules endothéliales acquièrent enfin un phénotype angiogénique et deviennent capables d'effectuer le programme d'angiogenèse, c'est-à-dire le développement de nouveaux vaisseaux sanguins à partir du réseau préexistant. Ce phénomène est normal et contrôlé lors d'une blessure ou dans la maturation du corps jaune de l'ovaire ; en revanche, il devient dangereux dans des situations pathologiques où l'angiogenèse n'est plus contrôlée, par exemple dans la rétinopathie diabétique, la polyarthrite et le développement tumoral. Il est nécessaire qu'un agent thérapeutique s'attaque seulement aux cellules endothéliales participant à l'angiogenèse, c'est à dire aux cellules de phénotype angiogénique (Brooks et al., 1994), d'où l'importance de l'étude du phénotype angiogénique pour le développement de nouveaux outils afin de bloquer l'angiogenèse. Peu d'études ont jusqu'à maintenant été effectuées sur des cellules de phénotype angiogénique, une difficulté majeure étant l'impossibilité d'extraire des cellules de ce phénotype et de les maintenir différenciées en culture in vitro. Les cellules endothéliales sont classiquement cultivées en présence de FGF2, et donc comme toute cellule cultivée in vitro, elles perdent leur phénotype quiescent et acquièrent un phénotype activé lorsqu'elles prolifèrent dans une boîte de culture. En revanche le maintien du phénotype angiogénique pourrait être assuré par l'adjonction de FGF2 au milieu de culture (Boudreau et al., 1997 ; Battegay et al., 1994). Cependant, le rôle de FGF2 en pathologie est controversé. A ce jour, on ne dispose pas de modèles d'étude de cellules endothéliales qui, bien que proliférant, soit miment le phénotype non activé (phénotype non angiogénique), soit miment le phénotype angiogénique. La présente invention a pour but de fournir des cellules endothéliales dépendant exclusivement du VEGF. La présente invention a pour but de fournir un procédé de préparation desdites cellules cultivées sur un tapis de gélatine ou de collagène et incubées ou non dans un milieu de culture dont la teneur en hormones et en facteurs de croissance est contrôlée. La présente invention concerne l'utilisation d'un ensemble binaire comportant : - des cellules endothéliales de phénotype non angiogénique et - des cellules endothéliales de phénotype angiogénique, pour le criblage de substances angiogéniques vis-à-vis de cellules endothéliales de phénotype non angiogénique, n'affectant substantiellement pas les cellules endothéliales de phénotype angiogénique, ou de substances anti-angiogéniques vis-à-vis de cellules endothéliales de phénotype angiogénique, n'affectant substantiellement pas les cellules endothéliales de phénotype non angiogénique. La présente invention concerne l'utilisation d'un ensemble binaire comportant : - des cellules endothéliales de phénotype non angiogénique et - des cellules endothéliales de phénotype angiogénique, pour le criblage de substances anti-angiogéniques, vis-à-vis de cellules endothéliales de phénotype angiogénique, n'affectant substantiellement pas les cellules endothéliales de phénotype non angiogénique. Les constituants de 1"'ensemble binaire" désignent l'ensemble de chacun des phénotypes, qui en culture forment des tubes en réponse au FGF2, mais dont un seul des phénotypes répond au VEGF. L'expression "cellules endothéliales de phénotype non angiogénique" désigne des cellules incapables de s'organiser en tubes en culture dans un gel de collagène en présence de VEGF. L'expression "cellules endothéliales de phénotype angiogénique" désigne des cellules capables de s'organiser en tubes en culture dans un gel de collagène en présence de VEGF. L'expression "substances anti-angiogéniques" désigne toute substance naturelle ou synthétique qui, ajoutée au milieu de culture, inhibe l'activité cellulaire de l'un ou des 2 éléments du système binaire sus-décrit, lors de l'un au moins des 3 tests suivants (décrits ci-après dans les exemples) : prolifération, migration, angiogenèse in vitro, ou bien inhibe la tumorigenèse (décrite dans les exemples). L'expression "substances angiogéniques" désigne toute substance naturelle ou synthétique qui, ajoutée au milieu de culture, stimule l'activité cellulaire de l'un ou des 2 éléments du système binaire sus-décrit lors de l'un au moins des 3 tests suivants (décrits dans les exemples) : prolifération, migration, angiogenèse in vitro, ou bien stimule la tumorigenèse (décrite dans les exemples). L'expression "substances n'affectant substantiellement pas les cellules endothéliales de phénotype non angiogénique" désigne toute substance naturelle ou synthétique qui, ajoutée au milieu de culture, ne modifie pas l'activité des cellules de phénotype non angiogénique lors de l'un au moins des 3 tests suivants (décrits dans les exemples) : prolifération, migration, angiogenèse in vitro. L'expression "substances n'affectant substantiellement pas les cellules endothéliales de phénotype angiogénique" désigne toute substance naturelle ou synthétique qui, ajoutée au milieu de culture, ne modifie pas l'activité des cellules de phénotype angiogénique lors de l'un au moins des 3 tests suivants (décrits dans les exemples) : prolifération, migration, angiogenèse in vitro. La présente invention concerne également un procédé de criblage de substances susceptibles d'inhiber l'angiogenèse de cellules endothéliales de phénotype angiogénique, mais n'affectant substantiellement pas les cellules endothéliales de phénotype non angiogénique, comprenant les étapes suivantes : - la mise en culture, d'une part, de cellules endothéliales de phénotype non angiogénique et, d'autre part, de cellules endothéliales de phénotype angiogénique, pour obtenir respectivement une culture de cellules endothéliales de phénotype angiogénique et une culture de cellules endothéliales de phénotype non angiogénique, - l'addition, à chacune des cultures définies ci-dessus, d'un facteur mitogénique, notamment choisi parmi la famille des facteurs FGF, le PDGF, le VEGF ou l'EGF, et étant notamment le VEGF, et de la substance à tester, susceptible d'inhiber l'angiogenèse, et le maintien des cellules susmentionnées en culture pendant un temps suffisant pour qu'il y ait au moins un cycle de division cellulaire, - la comparaison de l'inhibition, par la substance à tester, de l'action mitogénique du facteur mitogénique, d'une part sur les cellules endothéliales de phénotype angiogénique et, d'autre part, sur les cellules endothéliales de phénotype non angiogénique, permettant de sélectionner parmi les susdites substances à tester celle qui inhibe la prolifération des cellules endothéliales de phénotype angiogénique, mais qui n'inhibe pas la prolifération des cellules endothéliales de phénotype non angiogénique. La présente invention concerne donc également un procédé de criblage de substances anti-angiogéniques vis-à-vis de cellules endothéliales de phénotype angiogénique. L'expression "facteur mitogénique" désigne une substance capable de déclencher la prolifération cellulaire. L'expression "maintien des cellules en culture pendant un temps suffisant pour qu'il y ait au moins un cycle de division cellulaire" correspond à une durée minimale de 24 à 48 heures, selon le phénotype cellulaire. L'expression "action mitogénique" désigne l'action d'un facteur mitogénique, à savoir la prolifération cellulaire. L'expression "inhibition de l'action mitogénique du facteur mitogénique" désigne l'action d'une substance inhibant l'activité d'un facteur mitogénique, à savoir la prolifération cellulaire. La comparaison de l'inhibition, par la substance à tester, de l'action mitogénique du facteur mitogénique, d'une part sur les cellules endothéliales de phénotype angiogénique et, d'autre part, sur les cellules endothéliales de phénotype non angiogénique s'effectue selon le test de prolifération induite par le facteur mitogénique sur des cellules de chaque phénotype. La présente invention concerne également un ensemble binaire comportant : - des cellules endothéliales de phénotype non angiogénique et - des cellules endothéliales de phénotype angiogénique, caractérisé en ce que les cellules endothéliales de phénotype non angiogénique présentent au moins l'une des propriétés suivantes : - elles restent confluentes lorsqu'elles sont mises en présence du facteur de croissance VEGF, sans former de tubules, - elles ne prolifèrent pas sous l'action du VEGF, - elles ne sont pas protégées de l'apoptose par le VEGF, et en ce que les cellules endothéliales de phénotype angiogénique présentent au moins l'une des propriétés suivantes : - elles forment des tubes lorsqu'elles sont mises en présence du facteur de croissance VEGF, - elles prolifèrent sous l'action du VEGF, - elles sont protégées de l'apoptose par le VEGF. Selon un mode de réalisation avantageux de l'invention, les cellules endothéliales de phénotype non angiogénique résistent à un traitement antiangiogénique inhibant la phosphorylation du VEGF-R2 (voir Figure 4). Selon un mode de réalisation avantageux de l'invention, les cellules endothéliales de phénotype angiogénique sont sensibles à un traitement antiangiogénique inhibant la phosphorylation du VEGF-R2 (voir Figure 4). Le terme "confluent" désigne l'état de cellules tapissant la surface du support de la boîte de culture sans laisser d'espace vide, ou cellules ,jointives sans solution de continuité. Le terme "facteur de croissance" désigne une substance induisant la prolifération ou la différenciation cellulaire. Le terme "tubules" désigne un allongement cellulaire suivi de l'organisation en 2 rangées parallèles de cellules délimitant un espace en forme de tube creux. L'expression "non protégées de l'apoptose" signifie que les cellules privées de sérum meurent au décours d'une cascade d'évènements se traduisant par la fragmentation des noyaux. Ce phénomène est mis en évidence par comptage de noyaux cellulaires fragmentés selon la technique décrite par Gavrieli (Gavrieli et al., 1992). L'apoptose peut être induite par exemple par la privation de sérum, ou par tout autre moyen connu de l'homme de l'art. Le terme "traitement angiogénique" désigne la mise en présence des cellules avec une substance déclenchant un effet angiogénique, notamment le VEGF. On vérifie que les cellules endothéliales de phénotype non angiogénique restent confluentes lorsqu'elles sont mises en présence du facteur de croissance VEGF, sans former de tubules, par le test d'angiogenèse in vitro. On vérifie que les cellules endothéliales de phénotype non angiogénique résistent à un traitement angiogénique, par le test de prolifération. On vérifie que les cellules endothéliales de phénotype non angiogénique ne sont pas protégées de l'apoptose par le VEGF, par le test de Gavrieli. On vérifie que les cellules endothéliales de phénotype angiogénique forment des tubes lorsqu'elles sont mises en présence du facteur de croissance VEGF, par le test d'angiogenèse in vitro. On vérifie que les cellules endothéliales de phénotype angiogénique sont sensibles à un traitement angiogénique, par le test de prolifération. On vérifie que les cellules endothéliales de phénotype angiogénique sont protégées de l'apoptose par le VEGF, par le test de Gavrieli. Selon un mode de réalisation avantageux, la présente invention concerne des cellules endothéliales de phénotype non angiogénique telles que définies ci-dessus. La présente invention concerne des cellules endothéliales de phénotype angiogénique telles que définies ci-dessus. La présente invention concerne des cellules endothéliales telles que définies cidessus, caractérisées en ce que ce sont des cellules endothéliales de vaisseau, notamment des cellules endothéliales d'aorte, de cortex surrénal, de peau, de cerveau, de rétine, de veine ou d'artère de cordon ombilical. La présente invention concerne également un procédé de préparation de cellules endothéliales de phénotype non angiogénique telles que définies ci-dessus, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : - l'incubation de cellules endothéliales, notamment prélevées d'une aorte, dans un milieu ne contenant ni #stradiol, ni facteur de croissance, notamment ni VEGF, afin d'obtenir des clones de cellules endothéliales de phénotype non angiogénique, - le prélèvement d'un clone à l'aide d'une micropipette, parmi les clones susmentionnés, de cellules endothéliales de phénotype non angiogénique, et la culture de ce clone jusqu'à l'obtention de la confluence des cellules, vérifiée par examen à l'aide d'un microscope à contraste de phase. - la sélection des cellules endothéliales de phénotype non angiogénique, par vérification du phénotype des cellules obtenues à l'étape précédente, à l'aide du test de prolifération et/ou de migration et/ou d'angiogenèse in vitro. On utilise un milieu ne contenant ni #stradiol, ni facteur de croissance pour ne pas stimuler la synthèse de VEGF (Concina et al., 2000). On utilise avantageusement le milieu décrit dans les exemples. Après l'étape d'incubation, on prélève tous les clones, on les teste par angiogenèse in vitro et on sélectionne ceux qui sont "non angiogéniques", c'est-à-dire ceux qui ne forment pas de tubes sous l'action du VEGF. On vérifie la confluence des cellules par observation au microscope. Le test de prolifération et le test de migration sont décrits dans la référence suivante : Jonca et al. (1997). Le test d'angiogenèse est décrit dans les exemples. On peut utiliser les trois tests pour caractériser les clones, mais le test d'angiogenèse in vitro peut suffire à la caractérisation. La présente invention concerne également un procédé de préparation de cellules endothéliales de phénotype angiogénique telles que définies ci-dessus, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : - l'incubation de cellules endothéliales, notamment prélevées d'une aorte dans un milieu contenant de l'#stradiol et un facteur de croissance, notamment le VEGF, afin d'obtenir des clones de cellules endothéliales de phénotype angiogénique, - le prélèvement d'un clone à l'aide d'une micropipette, parmi les clones susmentionnés, de cellules endothéliales de phénotype angiogénique, et la culture de ce clone jusqu'à l'obtention de la confluence des cellules, - la sélection des cellules endothéliales de phénotype angiogénique, par vérification du phénotype des cellules obtenues à l'étape précédente, à l'aide de tests de prolifération, de migration ou d'angiogenèse in vitro. L'expression "clones de cellules endothéliales de phénotype angiogénique" désigne un ensemble de cellules répondant aux critères requis. Après l'étape d'incubation, on prélève tous les clones, on les teste par angiogenèse in vitro et on sélectionne ceux qui sont "angiogéniques", c'est-à-dire ceux qui forment des tubes sous l'action du VEGF. La présente invention concerne également un anticorps polyclonal ou monoclonal dirigé contre les cellules endothéliales de phénotype angiogénique telles que définies ci-dessus, notamment anticorps monoclonal capable d'activer ou d'inhiber l' angiogenèse. Par "anticorps capable d'activer l'angiogenèse", on désigne un anticorps doué d'activité angiogénique, comme sus définie. Par "anticorps capable d'inhiber l'angiogenèse" on désigne un anticorps doué d'activité anti-angiogénique comme sus définie. La présente invention concerne également un anticorps polyclonal ou monoclonal dirigé contre les cellules endothéliales de phénotype non angiogénique telles que définies ci-dessus, notamment anticorps monoclonal capable d'activer ou d'inhiber l'angiogenèse. Selon un mode de réalisation avantageux de la présente invention, un anticorps monoclonal dirigé contre des cellules endothéliales de phénotype angiogénique de l'invention présente les caractéristiques suivantes : - il se lie à la surface des cellules endothéliales de phénotype angiogénique, et - il reconnaît un motif présent exclusivement sur les cellules endothéliales de phénotype angiogénique, notamment un récepteur membranaire. On vérifie que l'anticorps monoclonal dirigé contre des cellules endothéliales de phénotype angiogénique de l'invention se lie à la surface des cellules endothéliales de phénotype angiogénique par le test ELISA sur cellules ou de cytométrie, tels que définis dans les exemples. On vérifie que l'anticorps monoclonal dirigé contre des cellules endothéliales de phénotype angiogénique de l'invention reconnaît un motif présent exclusivement sur les cellules endothéliales de phénotype angiogénique, notamment un récepteur membranaire par les mêmes tests que ceux indiqués ci-dessus. La présente invention concerne également un procédé de préparation d'un anticorps monoclonal dirigé contre les cellules angiogéniques tel que défini ci-dessus, capable d'activer l'angiogenèse, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : - l'immunisation d'un animal par injection de cellules de phénotype angiogénique, - la fusion entre des myélomes d'un animal et des splénocytes d'un animal afin d'obtenir des hybridomes, - la mise en culture des hybridomes ainsi obtenus, - le clonage d'hybridomes, choisis parmi ceux obtenus à l'étape précédente et sécrétant des anticorps contre les cellules de phénotype angiogénique, - la vérification des propriétés d'activation de l'angiogenèse des anticorps susmentionnés vis-à-vis des cellules angiogéniques, notamment à l'aide du test de prolifération et/ou de migration et/ou d'angiogenèse in vitro. L'animal utilisé pour l'étape d'immunisation est notamment une souris ou un rat. Les myélomes utilisés pour la fusion proviennent notamment d'une souris ou d'un rat. Les splénocytes utilisés pour la fusion proviennent d'un animal de la même espèce que celle dont provient les myélomes, à savoir notamment d'une souris ou d'un rat. On choisit les hybridomes qui sécrètent les anticorps contre les cellules de phénotype angiogénique par ELISA, ou par cytométrie, et on met en évidence la fonction angiogénique par un test de prolifération et d'angiogenèse in vitro. La présente invention concerne également un procédé de préparation d'un anticorps monoclonal dirigé contre les cellules angiogéniques tel que défini ci-dessus, capable d'inhiber l'angiogenèse, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : - l'immunisation d'un animal par injection de cellules de phénotype angiogénique, - la fusion entre des myélomes d'un animal et des splénocytes d'un animal afin d'obtenir des hybridomes, - la mise en culture des hybridomes ainsi obtenus, - le clonage d'hybridomes, choisis parmi ceux obtenus à l'étape précédente et sécrétant des anticorps contre les cellules de phénotype angiogénique, - la vérification des propriétés d'inhibition de l'angiogenèse des anticorps susmentionnés vis-à-vis des cellules angiogéniques, notamment à l'aide du test de prolifération et/ou de migration et/ou d'angiogenèse in vitro. L'animal utilisé pour l'étape d'immunisation est notamment une souris ou un rat. Les myélomes utilisés pour la fusion proviennent notamment d'une souris ou d'un rat. Les splénocytes utilisés pour la fusion proviennent d'un animal de la même espèce que celle dont provient les myélomes, à savoir notamment d'une souris ou d'un rat. On choisit les hybridomes qui sécrètent les anticorps contre les cellules de phénotype angiogénique par ELISA, ou par cytométrie, et on met en évidence la fonction anti-angiogénique par un test de prolifération et d'angiogenèse in vitro. La présente invention concerne également des anticorps anti-idiotypiques dirigés contre des anticorps monoclonaux eux-mêmes dirigés contre des cellules endothéliales de phénotype non angiogénique telles que définies ci-dessus, ou contre des anticorps monoclonaux eux-mêmes dirigés contre des cellules endothéliales de phénotype angiogénique telles que définies ci-dessus, caractérisés en ce qu'ils sont capables d'activer ou d'inhiber les fonctions exercées (activation ou inhibition de l'angiogenèse) par les anticorps tels que définis ci-dessus. La présente invention concerne également des anticorps anti-idiotypiques dirigés contre des anticorps monoclonaux eux-mêmes dirigés contre des cellules endothéliales de phénotype angiogénique, caractérisés en ce qu'ils sont capables d'activer les fonctions exercées (activation ou inhibition de l'angiogenèse) par les anticorps tels que définis ci-dessus. Ces anticorps miment donc les structures des récepteurs et peuvent être considérés comme des récepteurs circulants, donc fonctionnant comme des anticorps anti-ligands. L'avantage réside en la construction d'anticorps anti ligands sans que la nature du ligand soit connue. La présente invention concerne également des anticorps anti-idiotypiques dirigés contre des anticorps monoclonaux eux-mêmes dirigés contre des cellules endothéliales de phénotype angiogénique, caractérisés en ce qu'ils sont capables d'inhiber les fonctions exercées (activation ou inhibition de l'angiogenèse) par les anticorps tels que définis ci-dessus. Ces anticorps miment donc les structures des récepteurs et peuvent être considérés comme des récepteurs circulants, donc fonctionnant comme des anticorps anti-ligands. L'avantage réside en la construction d'anticorps anti ligands sans que la nature du ligand soit connue. La présente invention concerne également des fragments Fab des anticorps monoclonaux ou polyclonaux, tels que définis ci-dessus, et des anticorps antiidiotypiques tels que définis ci-dessus, lesdits fragments étant capables d'activer ou d'inhiber l'angiogenèse. Les fragments Fab peuvent être obtenus par clivage de la chaîne lourde des anticorps, notamment par la papaïne. Ils se lient donc aux récepteurs de la même façon mais ne les dimérisent pas, donc ils exercent uniquement une activité de blocage du récepteur. La présente invention concerne également un complexe entre : - un anticorps, tel que défini ci-dessus, ou un fragment Fab, activateur de l'angiogenèse, tel que défini ci-dessus, et - un élément radioactif tel que l'iode 125 ou 131, l'indium, le yttrium ou tout autre composé contenant une particule ionisante. Se fixant à la cellule cible, ce complexe peut la détruire grâce à l'élément cytolytique qui lui est lié. La présente invention concerne également un complexe entre un anticorps, tel que défini ci-dessus, activateur de l'angiogenèse, et un composé cytolytique, en particulier une toxine. Se fixant à la cellule cible, ce complexe est ensuite internalisé à l'intérieur de la cellule et peut la détruire grâce au composé qui lui est lié. La présente invention concerne un procédé de préparation des anticorps antiidiotypiques tels que définis ci-dessus, dirigés contre des anticorps monoclonaux euxmêmes dirigés contre des cellules endothéliales de phénotype angiogénique, ledit procédé étant caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : - l'immunisation d'un animal par injection d'anticorps monoclonaux tels que définis ci-dessus, à savoir des anticorps anti-cellules angiogéniques, - la fusion entre des myélomes d'un animal et des splénocytes d'un animal, afin d'obtenir des hybridomes, - la mise en culture des hybridomes ainsi obtenus, - le clonage d'hybridomes, choisis parmi ceux obtenus à l'étape précédente et sécrétant des anticorps dirigés contre les anticorps monoclonaux susmentionnés, utilisés pour l'immunisation, lesdits anticorps monoclonaux étant dirigés contre les cellules de phénotype angiogénique, et - la vérification des propriétés d'inhibition des anticorps susmentionnés vis-àvis de la fonction d'activation ou d'inhibition de l'angiogenèse des anticorps tels que définis ci-dessus, notamment à l'aide du test de prolifération et/ou de migration et/ou d'angiogenèse in vitro. L'animal utilisé pour l'étape d'immunisation est notamment une souris ou un rat. Les myélomes utilisés pour la fusion proviennent notamment d'une souris ou d'un rat. Les splénocytes utilisés pour la fusion proviennent d'un animal de la même espèce que celle dont provient les myélomes, à savoir notamment d'une souris ou d'un rat. On choisit les hybridomes qui sécrètent des anticorps dirigés contre les anticorps monoclonaux utilisés pour l'immunisation par ELISA en utilisant les fragments Fab des anticorps ayant servi d'immunogène comme substrat de la réaction. La présente invention concerne également des anticorps anti-anti-idiotypiques dirigés contre des cellules endothéliales de phénotype angiogénique telles que définies ci-dessus, caractérisés en ce qu'ils sont capables d'activer ou d'inhiber l'angiogenèse. La présente invention concerne également des anticorps anti-anti-idiotypiques dirigés contre des cellules endothéliales de phénotype angiogénique telles que définies ci-dessus, caractérisés en ce qu'ils sont capables d'activer ou d'inhiber l'angiogenèse. Ces anticorps étant dirigés contre un anticorps mimant un récepteur, ils se comportent comme des mimes du ligand. L'avantage est donc d'obtenir des mimes du ligand, même en ne connaissant pas sa structure. La présente invention concerne également un procédé de préparation des anticorps anti-anti-idiotypiques tels que définis ci-dessus, dirigés contre des cellules endothéliales de phénotype angiogénique, ledit procédé étant caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : - l'immunisation d'un animal par injection d'anticorps anti-idiotypiques tels que définis ci-dessus, à savoir des anticorps anti-anticorps anti-cellules angiogéniques, - la fusion entre des myélomes d'un animal et des splénocytes d'un animal, afin d'obtenir des hybridomes, - la mise en culture des hybridomes ainsi obtenus, - le clonage d'hybridomes, choisis parmi ceux obtenus à l'étape précédente et sécrétant des anticorps anti-anti-idiotypiques dirigés contre les cellules de phénotype angiogénique, et - la vérification des propriétés d'inhibition ou d'activation de l'angiogenèse des anticorps anti-anti-idiotypiques susmentionnés, notamment à l'aide du test de prolifération et/ou de migration et/ou d'angiogenèse in vitro. L'animal utilisé pour l'étape d'immunisation est notamment une souris ou un rat. Les myélomes utilisés pour la fusion proviennent notamment d'une souris ou d'un rat. Les splénocytes utilisés pour la fusion proviennent d'un animal de la même espèce que celle dont provient les myélomes, à savoir notamment d'une souris ou d'un rat. On choisit les hybridomes qui sécrètent des anticorps anti-anti-idiotypiques dirigés contre les cellules de phénotype angiogénique par mesure de leur liaison aux fragments Fab de l'anticorps anti-idiotypique. La présente invention concerne également une composition pharmaceutique, caractérisée en ce qu'elle contient, à titre de substance active, un inhibiteur de l'angiogenèse, choisi parmi un anticorps tel que défini ci-dessus, un anticorps anti- idiotypique tel que défini ci-dessus, un fragment Fab tel que défini ci-dessus, ou un complexe tel que défmi ci-dessus, en association avec un vecteur pharmaceutiquement acceptable, ladite composition pharmaceutique étant susceptible d'être administrée à raison d'environ 0,01 à environ 20 mg/kg/injection. La présente invention concerne également une composition vaccinale, caractérisée en ce qu'elle comprend, à titre de substance active un anticorps monoclonal tel que défini ci-dessus, ou un anticorps anti-idiotypique tel que défini ci-dessus, ou des fragments Fab tels que définis ci-dessus, ou un anticorps anti-anti-idiotypique tel que défini ci-dessus, en association avec un adjuvant pharmaceutiquement acceptable. La présente invention concerne également l'utilisation d'un inhibiteur de l'angiogenèse, choisi parmi un anticorps tel que défini ci-dessus, un anticorps antiidiotypique tel que défini ci-dessus, un fragment Fab tel que défini ci-dessus, ou un complexe tel que défini ci-dessus, ou d'un anticorps anti-anti-idiotypique tel que défini ci-dessus, pour la préparation d'un médicament destiné au traitement de pathologies nécessitant l'inhibition de la prolifération endothéliale, notamment dans le cadre des pathologies suivantes : les cancers, la dégénérescence musculaire liée à l'âge, les rétinopathies diabétiques, la polyarthrite rhumatoïde, les angiomes, les angiosarcomes, en particulier la maladie de Castelman et le sarcome de Kaposi. La présente invention concerne également l'utilisation d'un inhibiteur de l'angiogenèse, choisi parmi un anticorps tel que défmi ci-dessus, un anticorps antiidiotypique tel que défini ci-dessus, un fragment Fab tel que défini ci-dessus, ou un complexe tel que défini ci-dessus, ou d'un anticorps anti-anti-idiotypique tel que défini ci-dessus, pour la préparation d'un médicament destiné au traitement de pathologies nécessitant l'inhibition de l'activation endothéliale, notamment dans le cadre des pathologies suivantes : le rejet d'allogreffe et de xénogreffe, les acrocyanoses, les sclérodermies, ou dans le cadre de la préparation de greffons entre le prélèvement et la transplantation. L'expression "l'inhibition de l'activation endothéliale" peut être déterminée par un test mesurant la présence à la surface cellulaire d'un marqueur d'activation (notamment ICAM-1, V-CAM). La présente invention concerne également l'utilisation d'un activateur de l'angiogenèse, notamment un anticorps tel que défini ci-dessus, un anticorps anti- idiotypique tel que défini ci-dessus, un fragment Fab tel que défmi ci-dessus, ou d'un anticorps anti-anti-idiotypique tel que défini ci-dessus, pour la préparation d'un médicament destiné à favoriser la cicatrisation notamment dans le cadre de blessures, la reconstruction tissulaire notamment dans le cadre de greffes musculaires et cutanées lors de la chirurgie reconstructive et esthétique, l'induction ovarienne, la reperfusion des territoires ischémiés lors de l'artérite des membres inférieurs ou de l'infarctus du myocarde. DESCRIPTION DES FIGURES Les Figures 1A, 1B, 1C et 1D représentent la morphologie des deux phénotypes cellulaires en culture, à savoir les cellules endothéliales d'aorte de f#tus de b#uf non angiogéniques (F/0) et les cellules endothéliales d'aorte de f#tus de b#uf angiogéniques (F/V). La Figure lA correspond à des cellules F/0 cultivées en absence de VEGF La Figure 1B correspond à des cellules F/0 cultivées en présence de VEGF La Figure 1 C correspond à des cellules F/V cultivées en absence de VEGF La Figure 1D correspond à des cellules F/V cultivées en présence de VEGF On constate que le VEGF maintient des phénotypes angiogéniques distincts. Seules les cellules F/V changent de morphologie sous l'action du VEGF. Les cellules F/O sont arrondies et plus grosses que les cellules F/V. L'ajout de VEGF ne modifie pas la morphologie des cellules F/O. Les cellules F/V cultivées sans VEGF ont une morphologie proche de celle des cellules F/O. En présence de VEGF, elles apparaissent étirées. Les Figures 2A, 2B et 2C représentent l' analyse de l' expression génique par transfert d'ARN (Northern blot). La Figure 2A correspond à la comparaison par transfert d'ARN de l'expression de VEGF-R2 (récepteur 2 du VEGF) dans les cellules F/0 et F/V. On utilise comme témoin l'actine, dont l'expression ne varie pas dans les cellules F/0 et F/V. Cette Figure démontre que l'expression de VEGF-R2 est fortement augmentée dans les cellules F/V par rapport aux cellules F/0. La Figure 2B correspond à la comparaison par transfert d'ARN de l'expression du collagène-1 dans les cellules F/0 et F/V. On utilise comme témoin l'actine, dont l'expression ne varie pas dans les cellules. Cette Figure démontre que l'expression du collagène-1 est supérieure dans les cellules F/0 par rapport à celle dans les cellules F/V. La Figure 2C correspond à la comparaison par transfert d'ARN de l'expression de la fibronectine dans les cellules F/0, F/V, BREC/0 (cellules endothéliales non angiogéniques de rétine) et BREC/V (cellules endothéliales angiogéniques de rétine)(Hutchings et al., 2002). On utilise comme témoin l'actine, dont l'expression ne varie pas dans les cellules. Cette Figure démontre que l'expression de la fibronectine est supérieure dans les cellules F/0 par rapport à celle dans les cellules F/V. De même que pour le VEGF-R2, il n'y a pas de différence significative d'expression de la fibronectine dans les cellules BREC/V et BREC/0. Dans toutes ces figures, la ligne "ratio" correspond au rapport entre l'expression du gène d'intérêt dans les deux types cellulaires. Les Figures 3A et 3B représentent l'angiogenèse in vitro sur Matrigel (Becton Dickinson). La Figure 3A représente l'absence de formation de tubules par les cellules F/O. Les cellules F/O demeurent en une monocouche régulière sur Matrigel. La Figure 3B représente la formation de tubules par les cellules F/V. Les cellules F/V se différencient sur Matrigel, elles s'alignent bout à bout pour reconstituer des pseudo-capillaires. La Figure 4 représente la sensibilité des cellules à des agents anti-angiogéniques particuliers, que sont : ME-2, FUMA et SU5416. Les colonnes blanches correspondent aux cellules endothéliales non angiogéniques F/0 et les colonnes noires correspondent aux cellules endothéliales angiogéniques F/V. "ME-2" correspond au méthoxyestradiol ; "FUMA" correspond à la fumagilline ; "SU 5416" est un inhibiteur de l'activité kinase du VEGF-R2. Les cellules F/0 et F/V sont identiquement sensibles à la fumagilline (FUMA) et au méthoxyestradiol (ME-2). En revanche, les cellules F/V sont beaucoup plus sensibles que les cellules F/0 à l'agent anti-angiogénique interférant avec le VEGF-R2 (SU 5416). Les Figures 5A, 5B et 6 illustrent les fonctions mitogènes des anticorps monoclonaux dirigés contre les cellules endothéliales angiogéniques. Certains anticorps sont anti-angiogéniques, c'est à dire capables d'inhiber de façon spécifique la prolifération des seules cellules endothéliales angiogéniques (appelés anticorps de type 3). D'autres anticorps ont une activité pro-angiogénique vis-à-vis des cellules endothéliales (appelés anticorps de type 5). Les Figures 5A et 5B montrent l'action anti-angiogénique des anticorps de type 3. La Figure 5A concerne en particulier l'action des anticorps de type 3 sur la prolifération des cellules F/V de phénotype angiogénique. La Figure 5B concerne l'action des anticorps de type 3 sur la prolifération des cellules non angiogéniques F/O. Le test effectué est un test de prolifération comme décrit dans les exemples. Les cellules sont cultivées dans du DMEM supplémenté de 5 % de sérum de veau nouveau-né auquel est ajouté soit aucun facteur angiogénique (condition 0), soit 2 ng/ml de VEGF (condition VEGF), soit 2 ng/ml de FGF-2 (condition FGF-2). L'anticorps est ajouté en même temps que les facteurs angiogéniques, à des concentrations variables (0, 1, 3 ou 7 g/ml). Les colonnes blanches correspondent à la prolifération des cellules sans anticorps. Les colonnes en pointillés correspondent à la prolifération des cellules en présence de 1 g/ml d'anticorps. Les colonnes hachurées correspondent à la prolifération des cellules en présence de 3 g/ml d'anticorps. Les colonnes noires correspondent à la prolifération des cellules en présence de 7 g/ml d'anticorps. On constate que les anticorps de type 3 inhibent de façon dose-dépendante la prolifération des cellules F/V sans affecter celle des cellules F/0. On constate que les anticorps de type 3 inhibent l'effet mitogène du VEGF et du FGF-2 vis-à-vis des cellules endothéliales angiogéniques. La Figure 6 montre l'action pro-angiogénique des anticorps de type 5. Le test effectué est un test de prolifération comme décrit dans les exemples. Les cellules sont cultivées dans du DMEM supplémenté de 5 % de sérum de veau nouveau-né. L'anticorps est ajouté en même temps que les facteurs angiogéniques, à des concentrations variables (0,50 ou 100 ug/ml). Les colonnes blanches correspondent à la prolifération relative des cellules F/O en présence de concentrations variables d'anticorps de type 5. Les colonnes noires correspondent à la prolifération relative des cellules F/V en présence de concentrations variables d'anticorps de type 5. On constate que les anticorps de type 5 stimulent la prolifération des cellules F/O. En revanche, ils n'ont pas d'effet sur la prolifération des cellules F/V. La Figure 7 représente la fonction des anticorps de type 3 en tumorigenèse. La courbe avec les losanges noirs correspond aux souris non traitées et la courbe avec les carrés noirs correspond aux anticorps de type 3. Cette Figure représente le volume tumoral moyen (6 souris par groupe) en mm3 en fonction du temps (en jours). On constate que les anticorps de type 3 sont capables d'inhiber de façon significative le développement de mélanomes B16F10 chez la souris C57BL/6. MATERIEL ET METHODES 1. Etablissement des clones de différents phénotypes Les cellules endothéliales d'aorte de foetus de b#uf (FBAE ou F) sont prélevées mécaniquement à partir de la lumière aortique à l'aide d'un grattoir et incubées sur des boîtes de culture préalablement tapissées de gélatine ou collagène I (10 ug/ml) préparé selon le paragraphe "angiogenèse in vitro" (0,2% en PBS, 24 h à 4 C) dans du milieu DMEM contenant 10% de sérum de veau nouveau-né (SVNN). Les boîtes sont soit supplémentées d'#stradiol (10-9 M) et de 1 ng/ml de VEGF (F/V) ou cultivées sans #strogène et sans VEGF (F/0). Le milieu est changé après 4 jours. Entre 6 et 10 jours, les clones de chacune des cultures sont isolés. Pour cela, les clones visualisés au microscope comme des foyers de 100 à 1000 cellules sont aspirés à l'aide d'une micropipette et transférés dans des puits de 2 cm2. Chacun des clones est cultivé dans le milieu correspondant (oestradiol + VEGF pour les cellules F/V ; sans #stradiol et sans VEGF pour les cellules F/0) puis une fois que la confluence est obtenue (environ 6 jours pour les F/V, 15 jours pour les F/0) les monocouches de cellules sont trypsinisées et réensemencées dans des boîtes de 5 cm de diamètre. Une fois la confluence obtenue, les cellules sont encore trypsinisées, une fraction aliquote est congelée, puis la validation (détermination de la réponse au VEGF dans l'un des tests suivants : migration, prolifération, angiogenèse) du clone est initiée. Facteurs utilisés Le VEGF (isoforme de 165 acides aminés) est produit par infection de cellules d'insecte SF9 par un baculovirus recombinant contenant l'ADNc correspondant (Plouët et al., 1997). 2. Techniques d'étude in vitro : validation des clones Migration La technique a été décrite précédemment par Jonca et al. (1997). Prolifération Des plaques de 12 puits sont ensemencées à faible densité (5000 à 10000 cellules/puits), dans du milieu DMEM à 8% de sérum. Après 24 heures, la prolifération des cellules est stimulée par ajout d'une gamme de facteur de croissance, de médicaments anti-angiogéniques (méthoxyestradiol, fumagilline, SU5416 ciblée sur le VEGF-R2 - Plouët et al., 2001) ou d'anticorps de la présente invention. Les cellules sont restimulées après 48 heures et puis après un total de cinq jours en culture les cellules sont trypsinisées et comptées avec un compteur Coulter. Angiogenèse in vitro Quatre queues de rat ont été dépiautées et disséquées pour récupérer les faisceaux blancs qui sont constitués en majeure partie de collagène de type I. Le collagène est extrait de ces fibres dans 50 ml d'acide acétique 0,5 M froid et agités sur une nuit. Le liquide est ensuite centrifugé à 5000g pendant 40 minutes et le surnageant est récupéré. L'extraction est refaite une fois avec 20 ml d'acide acétique, les surnageants sont mélangés et puis dialysés contre 1 1 d'acide acétique 0,2 M. La concentration en collagène est ajustée à 3 mg/ml par pesée. La préparation des gels pour l'angiogenèse in vitro s'effectue sur de la glace pour conserver la solution de collagène sous forme liquide. Un ml de collagène (5 mg/ml) est mélangé à 0,5 ml de DMEM 10X (contenant une concentration 10X en antibiotiques et en glutamine), 0,9 ml de H2O stérile et 0,1 ml de bicarbonate de sodium 1M. Une fois le pH ajusté à 7,4, il est ajouté un volume égal de matrigel (Becton Dickinson). Le gel est coulé dans des puits de culture (2 mm d'épaisseur) et incubé à 37 C pour se solidifier. Les cellules sont rajoutées après 15 minutes (100 000 cellules/cm2) sur la surface du gel. Après 2 heures, les différents facteurs solubles sont ajoutés et les cellules sont observées et photographiées après 24 heures. Transfert d'ARN (Northem blot) Les cellules F/0 ou F/V sont cultivées en milieu DMEM contenant 10% de SVNN jusqu'à la demi-confluence. Les cellules sont ensuite trypsinisées et centrifugées. Les ARN sont extraits à l'aide d'une solution de TRIZOL (Invitrogen). 2 g d'ARN poly A+ sont séparés par électrophorèse en gel d'agarose à 1,2% (p/vol) en conditions dénaturantes, transférés sur membrane de nylon (Hybond N Amersham) et fixés sous UV (0,5 J/cm2) selon la technique décrite par Sambrook et ses collaborateurs en 1989. L'hybridation est réalisée à 42 C dans le milieu réactionnel suivant : 50% formamide, 5X Denhardt's et 0,5% SDS (p/vol), contenant 0,2% d'ADN de sperme de hareng et lng/ml de sonde radioactive (activité spécifique comprise entre 108 et 109 cpm/g) marquée au 32P à l'aide du kit MegaprimeTM DNA labelling systems (Amersham). Les lavages sont réalisés à 45 C dans du SSPE 0,2X contenant 0,1 % de SDS. Les sondes utilisées correspondent au fragment 74/1268 de la séquence AF063658 (Genbank) pour le VEGF-R2, au fragment 4155/4624 de la séquence AB008683 (Genbank) pour le collagène-1 et au fragment 380/847 de la séquence M10905 (Genbank) pour la fibronectine. 3. Production d'anticorps monoclonaux spécifiques du phénotype FBAE V Immunisation soustractive des souris par les cellules FBAE Cinq souris Balbc de 6 semaines sont immunisées par une injection de 200 1 contenant 2 x 106 cellules F/0. Vingt-quatre et quarante-huit heures après, les souris reçoivent 200 mg/kg de poids corporel de cyclophosphamide afin de détruire les lymphocytes activés et rendre ainsi les souris tolérantes à l'endothélium de phénotype non angiogénique. Quinze jours après, les souris reçoivent une injection de 2 x 106 cellules F/V. L'opération est répétée au jour 30 et au jour 45. Les injections ont été effectuées par voie intrapéritonéale. L'évaluation de la réponse de chaque souris à l'immunisation est faite par cytométrie de flux à partir d'un prélèvement de sérum. Fusion La technique utilisée pour la réalisation des hybridomes dérive de celle mise au point par Kohler et Milstein (1975). La veille de la fusion, soit à J47, cinq souris Balbc non-immunisées sont sacrifiées pour l'obtention des macrophages servant de cellules nourricières aux hybridomes. Les macrophages sont récupérés par injection de 8 ml de milieu de culture ISCOVE dans le péritoine des souris. Le milieu est aspiré et refoulé 2 fois dans la cavité péritonéale puis récupéré et centrifugé. Après centrifugation, les macrophages sont repris dans du milieu ISCOVE contenant 20% de sérum de veau foetal (Biochrom, lot 5612). Ces cellules sont ensuite distribuées dans 20 plaques de 96 puits à raison de 100 l par puits (environ 3 x 104 cellules/puits). Le lendemain, soit à J 48, les souris présentant les titres les plus élevés d'anticorps dirigés contre les cellules F/V sont sacrifiées. Leurs rates sont prélevées et dilacérées dans du milieu ISCOVE pour libérer les splénocytes. Le tissu conjonctif est dégagé et les splénocytes sont centrifugés et comptés. En parallèle, la lignée de myélome de souris Ag8X63 a été cultivée depuis 10 jours dans du milieu ISCOVE (Invitrogen) à 20% de sérum Myoclone (Invitrogen). Ces cellules sont lavées et numérées. Les deux types cellulaires, splénocytes et myélomes, sont mélangés de façon à obtenir un rapport de 1 cellule de myélome Ag8X63 (Kearney et al., 1979) pour 6 splénocytes. La fusion s'effectue par ajout de 20 fois 50 l de polyéthylène glycol (PEG) à 30 secondes d'intervalle. Quatre ml de milieu ISCOVE préchauffé à 37 C sont alors ajoutés goutte à goutte sur la suspension cellulaire, puis après une période d'incubation de 4 minutes à 37 C, 4 ml sont ajoutés. La suspension est centrifugée puis le culot cellulaire est alors repris dans 100 ml de milieu ISCOVE complémenté avec 20% de sérum de veau f#tal et du milieu sélectif HAT IX (50X : Hypoxanthine 5 mM, Aminoptérine 20 M et Thymidine 0,8 mM) qui permet l'élimination des splénocytes et des cellules de myélome. La suspension est alors distribuée à raison de 100 l par puits sur les macrophages (environ 100 000 cellules). Après 5jours, 100 l de milieu HAT sont ajoutés, et entre 8 et 14jours le milieu conditionné de chaque hybridome est prélevé pour mesurer les anticorps dirigés contre les cellules endothéliales de différents phénotypes par ELISA. Les hybridomes sélectionnés par leur capacité à sécréter des anticorps dirigés contre les cellules F/0 ou F/V sont alors clonés (premier clonage), c' est-à-dire que les cellules sont ensemencées en condition de dilution limite (5 cellules/ml) sous un volume de 0,1 ml par puits. Le milieu (ISCOVE supplémenté de sérum et de HAT) est changé après 10 jours. Après 15 jours, certains puits contiennent des foyers de cellules qui se sont multipliées à partir de la cellule ensemencée au départ, donc toutes ces cellules sont identiques et sont issues du même clone. Quand la surface occupée par les cellules représente au moins la moitié de la surface totale du puits, le milieu est prélevé et analysé comme précédemment. A ce stade on peut sélectionner les clones producteurs d'anticorps et connaître leur spécificité pour les cellules F/0 ou F/V (deuxième clonage). Une fois les clones identifiés, leur nature monoclonale a été affirmée par l'opération classique consistant à ensemencer une plaque de 96 puits avec des cellules issues du même clone diluées en conditions limites comme précédemment. Les clones sécréteurs doivent donc tous sécréter un anticorps de même spécificité vis-à-vis des cellules F/V par rapport aux cellules F/0 (criblage par ELISA) pour que l'on déclare cet anticorps monoclonal. Un troisième clonage est alors effectué pour s'assurer que les clones sont bien monoclonaux dans des conditions identiques à celles indiquées ci-dessus. Méthode de criblage des clones Le criblage du sérum prélevé et des surnageants des hybridomes s'est effectué par ELISA et cytométrie de flux. ELISA 15000 cellules F/0 ou F/V sont ensemencées par puits dans des plaques 96 puits (100 l/puits) dans du milieu DMEM contenant 10% de sérum de veau nouveau-né. Après 36 h, les cellules sous-confluentes sont rincées 3 fois dans une solution de PBS contenant 0,005% de Tween 20. Les sites potentiels de liaison non spécifiques des anticorps sont saturés par incubation dans une solution de glycine 1 M, pH 8,1 (2h à température ambiante) suivie de 3 lavages (PBS/Tween 0,05%) et d'une incubation d'une nuit à 4 C dans une solution d'IgG irrelevantes à 10 g/ml dans du PBS. La solution de blocage est éliminée, puis les anticorps à tester sont ajoutés. Après 2 h d'incubation à température ambiante, les cellules sont lavées 3 fois en PBS / Tween 0,05% pour éliminer les anticorps non fixés. Les complexes cellules-anticorps sont incubés pendant 1 heure en présence d'un anti-corps secondaire anti-souris couplé à la peroxydase (Amersham NA 931) dilué au 1 / 4000 dans du PBS contenant 0,05% de Tween et 0,5% de BSA. Après 3 lavages (PBS / Tween 0,05%), le substrat de la peroxydase (OPD Sigma) est ajouté à raison de 100 l/puits. Après 10 à 30 min d'incubation à l'abri de la lumière, la réaction colorimétrique est arrêtée par ajout de 100 l de H2S04M. L'intensité du signal est mesuré par spectrophotométrie à 490 nm. Cytométrie Le surnageant (ou le sérum) à tester est incubé avec des cellules F/0 ou des cellules F/V pendant 45 minutes. Les cellules sont ensuite lavées 3 fois dans du PBSBSA 0,02%. Un deuxième anticorps anti-IgG de souris couplé à la fluorescéine isothiocyanate est ajouté sur les cellules (F-877, Sigma Immuno Chemicals). L'intensité de fluorescence des cellules est mesurée par cytométrie de flux et comparée entre les cellules F/0 et F/V. L'intensité de fluorescence est mesurée dans un cytomètre de flux ELITE. Isotypage La caractérisation isotypique de chaque clone est mesurée à l'aide d'un test rapide d'isotypage des anticorps murins MABTEST (Adiatec). Tumorigenèse 200 000 cellules de mélanome B16 sont injectées à des souris C57. Huit jours après, quand les tumeurs ont donné naissance à des nodules palpables, les anticorps sont injectés 2 fois par semaine par voie intrapéritonéale à la dose de 50 g dilué dans 200 l de PBS. Le volume de la tumeur est mesuré 2 fois par semaine au pied à coulisse et exprimé par la formule V= x L x 12 (L et 1 désignant respectivement la plus grande et la plus petite dimension). 4. Production d'anticorps anti-idiotypiques On injecte par voie sous-cutanée à des souris 10 l d'un anticorps monoclonal dirigé contre les cellules endothéliales non angiogéniques, ledit anticorps monoclonal étant obtenu selon le procédé décrit dans le paragraphe précédent, en association avec 100 l d'adjuvant de Freund (Sigma), l'anticorps étant purifié selon des méthodes standard par précipitation au sulfate d'ammonium puis par chromatographie d'échange d'ions. L'injection est répétée 15,30 et 45 jours après. Cinquante-cinq jours après la première injection, on injecte à des souris 10 g du même anticorps par voie intrapéritonéale. Cinquante-huit jours après, les souris sont sacrifiées et leurs rates sont prélevées et dilacérées dans du milieu ISCOVE pour libérer les splénocytes. Les splénocytes sont fusionnés avec des cellules de myélome de souris, notamment des cellules AG8X 63 (Kearney et al., 1979) et incubés à raison de 100 000 cellules/puits. La fusion s'effectue par ajout de 20 fois. 50 l de polyéthylène glycol (PEG) à 30 secondes d'intervalle. Quatre ml de milieu ISCOVE préchauffé à 37 C sont alors ajoutés goutte à goutte sur la suspension cellulaire, puis après une période d'incubation de 4 minutes à 37 C, 4 ml sont ajoutés. La suspension est centrifugée puis le culot cellulaire est alors repris dans 100 ml de milieu ISCOVE complémenté avec 20% de sérum de veau f#tal et du HAT IX (50X : Hypoxanthine 5 mM, Aminoptérine 20 M et Thymidine 0,8 mM) et distribuées à raison de 100 III par puits sur les macrophages. Après 5jours, 100 l de milieu HAT sont ajoutés, et entre 8 et 14jours le milieu conditionné de chaque hybridome est prélevé pour mesurer les anticorps dirigés contre les anticorps ayant servi d'agents immunogènes, c'est à dire dirigés contre des cellules endothéliales. Les hybridomes sélectionnés par leur capacité à sécréter des anticorps dirigés contre des anticorps monoclonaux dirigés eux-mêmes contre des cellules F/0 ou F/V sont alors clonés (premier clonage), c'est-à-dire que les cellules sont ensemencées en condition de dilution limite (5 cellules/ml) sous un volume de 0,1 ml par puits. Le milieu de culture HAT est changé après 10 jours. Après 15 jours, certains puits contiennent des foyers de cellules qui se sont multipliées à partir de la cellule ensemencée au départ, donc toutes ces cellules sont identiques et sont issues du même clone. Quand la surface occupée par les cellules représente au moins la moitié de la surface totale du puits, le milieu est prélevé et analysé comme précédemment par ELISA. A ce stade on peut sélectionner les clones producteurs d'anticorps et connaître leur spécificité pour les anticorps monoclonaux dirigés contre les cellules F/0 ou F/V (deuxième clonage). Une fois les clones identifiés, leur nature monoclonale est affirmée par l'opération classique consistant à ensemencer une plaque de 96 puits avec des cellules issues du même clone diluées en conditions limites comme précédemment. Les clones sécréteurs doivent donc tous sécréter un anticorps de même spécificité pour que l'on déclare cet anticorps monoclonal. Un troisième clonage est alors effectué pour s'assurer que les clones sont bien monoclonaux dans les conditions identiques à celles définies ci-dessus. Les anticorps anti-idiotypiques sont criblés par une batterie de tests, notamment par un test ELISA anti-idiotypique : les anticorps dirigés contre les cellules endothéliales de l'invention sont tapissés dans du tampon carbonate 50 mM pH 9 à une dilution de 10 g/ml. La surface des puits est ensuite incubée avec de la sérumalbumine à 0,5%. Les surnageants d'hybridomes sont ensuite incubés dans les boîtes et leur présence est révélée par les anticorps anti-immunoglobulines de souris conjugués à la peroxydase. On vérifie également que les anticorps anti-idiotypiques inhibent la fonction des anticorps monoclonaux contre lesquels ils sont dirigés vis-à-vis des cellules endothéliales, notamment qu'ils inhibent la prolifération des cellules F/V incubées avec ng/ml et 20 g/ml d'anticorps monoclonal anti-cellules endothéliales angiogéniques ou non. 5. Production d'anticorps anti-anti-idiotypiques On injecte par voie sous-cutanée à des souris 10 g d'un anticorps antiidiotypique, tel qu'obtenu selon le procédé décrit dans le paragraphe précédent, en association avec 100 III d'adjuvant de Freund. L'injection est répétée 15,30 et 45 jours après. Cinquante-cinq jours après la première injection, on injecte à des souris 10 mg d'anticorps anti-idiotypiques par voie intrapéritonéale. Cinquante-huit jours après, les souris sont sacrifiées et leurs rates sont prélevées et dilacérées dans du milieu ISCOVE pour libérer les splénocytes. Les splénocytes sont fusionnés avec des cellules de myélome de souris, notamment des cellules AG8X 63, et incubés à raison de 100 000 cellules/puits. La fusion s'effectue par ajout de 20 fois 50 l de polyéthylène glycol (PEG) à 30 secondes d'intervalle. Quatre ml de milieu ISCOVE préchauffé à 37 C sont alors ajoutés goutte à goutte sur la suspension cellulaire, puis après une période d'incubation de 4 minutes à 37 C, 4 ml sont ajoutés. La suspension est centrifugée puis le culot cellulaire est alors repris dans 100 ml de milieu ISCOVE complémenté avec 20% de sérum de veau f#tal et du HAT IX (50X : Hypoxanthine 5 mM, Aminoptérine 20 M et Thymidine 0,8 mM) et distribuées à raison de 100 l par puits sur les macrophages. Après 5 jours, 100 III de milieu HAT sont ajoutés, et entre 8 et 14 jours le milieu conditionné de chaque hybridome est prélevé pour mesurer les anticorps dirigés contre les anticorps anti-idiotypiques. Les hybridomes sélectionnés par leur capacité à sécréter des anticorps dirigés contre des anticorps anti-idiotypiques sont alors clonés (premier clonage), c'est-à-dire que les cellules sont ensemencées en condition de dilution limite (5 cellules/ml) sous un volume de 0,1 ml par puits. Le milieu de culture ISCOVE contenant 20% de sérum et de HAT est changé après 10 jours. Après 15 jours, certains puits contiennent des foyers de cellules qui se sont multipliées à partir de la cellule ensemencée au départ, donc toutes ces cellules sont identiques et sont issues du même clone. Quand la surface occupée par les cellules représente au moins la moitié de la surface totale du puits, le milieu est prélevé et analysé comme précédemment par ELISA. A ce stade on peut sélectionner les clones producteurs d'anticorps et connaître leur spécificité pour les anticorps anti-idiotypiques (deuxième clonage). Une fois les clones identifiés, leur nature monoclonale est affirmée par l'opération classique consistant à ensemencer une plaque de 96 puits avec des cellules issues du même clone diluées en conditions limites comme précédemment. Les clones sécréteurs doivent donc tous sécréter un anticorps de même spécificité pour que l'on déclare cet anticorps monoclonal. Un troisième clonage est alors effectué pour s'assurer que les clones sont bien monoclonaux identiques à celles décrites ci-dessus. Les anticorps anti-anti-idiotypiques sont criblés par une batterie de tests, notamment par un test ELISA anti-idiotypique : les anticorps anti-idiotypiques tels qu'obtenus précédemment sont tapissés dans du tampon carbonate 50 mM pH 9 à une dilution de 10 g/ml. La surface des puits est ensuite incubée avec de la sérumalbumine à 0,5%. Les surnageants d'hybridomes sont ensuite incubés dans les boîtes et leur présence est révélée par les anticorps anti-immunoglobulines de souris conjugués à la peroxydase. On vérifie également que les anticorps anti-anti-idiotypiques se lient aux cellules endothéliales angiogéniques ou non angiogéniques, selon les mêmes tests que ceux décrits dans le paragraphe 3. RESULTATS I. Etablissement des phénotypes des cellules F/O et F/V. Morphologie Le phénotype des souches F/0 et F/V est maintenu par l'adjonction de VEGF dans le milieu de culture à long terme. Quand on ôte le VEGF (cas de l'absence de VEGF), la morphologie de chacune des souches est différente : monocouche régulière pavimenteuse à confluence pour F/V, les F/0 sont des cellules plus grandes et arrondies. Quatre heures après l'adjonction du VEGF, seules les cellules F/V subissent un changement de morphologie : les cellules s'allongent, l'espace intercellulaire devenant important (voir Figures 1C et 1D). En revanche, les cellules F/0 ne changent pas de forme (Figures 1A et 1B). Expression de gènes L'expression de VEGFR-2 et du collagène I a été étudiée dans les cellules F/0 et F/V par Northem Blot. Il apparaît que l'expression de VEGFR-2 est augmentée de 4 fois dans les cellules F/V par rapport à F/0. En revanche l'expression de VEGFR-2 est identique dans BREC/O et BREC/V (Hutchings et al., 2002). De plus l'expression d'autres gènes a été comparée dans les couples 0 et V des cellules endothéliales de rétine de b#uf (BREC) et de cellules endothéliales de f#tus de boeuf (F) (voir Figure 2C) Par exemple, la fibronectine apparaît plus exprimée par les cellules F/0 que par les cellules F/V (rapport 3,5) alors que son expression est similaire dans les cellules BREC/0 et BREC/V. Angiogenèse in vitro en réponse au VEGF Les cellules F/0 ou F/V ensemencées sur un gel de collagène-matrigel sont incubées avec 50 ng/ml de VEGF et leur morphologie est examinée 24 heures après. Les cellules F/V stimulées par le VEGF s'organisent en faisceaux comportant une rangée de 3-4 cellules puis en structures tubulaires comme le montre la Figure 3B. En revanche les cellules F/0 restent disposées en amas, qu'elles soient ou non stimulées par le VEGF (Figure 3A). Réponse aux traitements anti-angiogéniques Les cellules F/V sont sensibles à l'action mitogène du VEGF (ED 50 = 0,3 ng/ml) alors que les cellules F/0 ne prolifèrent pas sous l'action du VEGF. Les cellules F/0 et F/V sont ensemencées à basse densité (5000) comme indiqué et trois drogues sont inoculées séparément dont 2 de mécanisme inconnu (Méthoxyestradiol-ME-2 et fumagilline - FUMA) et 1 interférant avec le VEGF-R2 (SU 5416 inhibant l'activité kinase. Il apparaît que les cellules F/0 et F/V sont également sensibles à la fumagilline et au méthoxyestradiol (Figure 4) alors que les cellules F/V sont plus sensibles au SU 5416. Il apparaît que l'IC50 de ces 2 composés est multipliée par 20 et 50 respectivement pour les cellules F/0. Ainsi donc l'utilisation de ces cellules permet de pratiquer un criblage de médicaments anti-angiogéniques qui n'affectent pas les cellules endothéliales des vaisseaux sains, non angiogéniques. II. Production d'anticorps monoclonaux spécifiques du phénotype angiogénique Reconnaissance spécifique des cellules F/V 4 fusions ont été effectuées et 426 hybridomes ont été obtenus. Après un criblage par ELISA, 15 clones ont été sous clonés et 1026 clones analysés dont 6 ont été sélectionnés par ELISA, correspondant à des anticorps monoclonaux se fixant sur F/0 ou F/V. La vérification de la spécificité de ces anticorps monoclonaux a été effectuée par cytométrie de flux. Il apparaît que certains anticorps se fixent sélectivement aux cellules F/V ou aux cellules F/0 (voir tableau ci-dessous représentant l'analyse de la spécificité des anticorps par cytométrie de flux). Le tableau ci-dessous indique les pourcentages de cellules reconnues par les différents types d'anticorps. type d'anticorps F/0 F/V BREC/0 BREC/V musculaire A 58 10 44,7 95,9 5,4 B 25 36 4,2 8,4 0 C 3 48 43 63,7 3,8 3 types d'anticorps peuvent être distingués : Marquage F/0 > F/V : type A Marquage F/V > F/0 : type B Marquage F/O absent : type C Prolifération L'étude de la fonction mitogène des anticorps permet de les classer en 2 catégories : les anticorps de type 3 inhibent la prolifération des cellules F/V sans affecter celle des cellules F/0 (Figures 5A et 5B) et les anticorps de type 5 stimulent la prolifération des cellules F/0 sans affecter celle des cellules F/V (Figure 6). Tumorigenèse La figure 7 montre que l'injection des anticorps de type 3 réduit le volume de la tumeur. RÉFÉRENCES Battegay, E.J., Rupp, J., Iruela-Arispe, L., Sage, E.H., Pech, M. (1994) PDGF-BB modulates endothelial prolifération and angiogenesis in vitro via PDGF b-receptors. J. Cell. Biol. 125,917-928. Boudreau, N., Andrews, C., Srebrow, A., Ravanpay, A., Cheresh, D. A. (1997) Induction of the angiogenis phenotype by Hox D3. J. Cell. Biol. 139, 257-264. Brooks, P.C., Lin, J., French, D. L., Quigley, J. P. (1993) Subtractive immunization yields monoclonal antibodies that specifically inhibit metastasis. J. Cell. Biol. 122, 1351-1359. Brooks PC., Clark RA., Cheresh DA. (1994) Requirement of vascular integrin alpha v beta 3 for angiogenesis. Science 264, 569-71. Concina P, Sordello S., Elhage N., Foumial P., Plouët J., Bayard F., Amal J-F. (2000) The mitogenic effect of 17 p-Estradiol on in vitro endothelial cell proliferation and on in vivo reendothelialization are both dependent on VEGF. J. Vase. Res. 37, 202- 208. Gavrieli Y., Sherman Y., Ben-Sasson SA. (1992) Identification of programmed cell death in situ via spécifie labeling of nuclear DNA fragmentation. J Cell. Biol. 119, 493-501. Hutchings, H., Maitre-Boube, M., Tomban-Tink, J., Plouët, J. (2002) Pigment epithelium-derived factor exerts opposite effects on endothelial cells of différent phenotypes. BBRC 294, 764-769. Jonca F., Ortéga N., Gleizes P.-E., Bertrand N., Plouët J. (1997) Cell release of bioactive fibroblast growth factor by exon 6 encoded séquence of vascular endothelial growth factor. J Biol. Chem. 272,24203-24209. Keamey JF., Radbruch A., Liesegang B., Rajewsky K. (1979) A new mouse myeloma cell line that has lost immunoglobulin expression but permits the construction of antibody-secreting hybrid cell lines. J. Immunol. 123,1548-50. Kohler et Milstein (1975) Continuous cultures of fused cells secreting antibody of predefined specificity. Nature, Aug 7 ; 495-7. Plouët J., Moro F., Bertagnolli S., Coldeboeuf N., Mazarguil H., Clamens S., Bayard F. (1997) Extracellular cleavage of the vascular endothelial growth factor 189amino acid form by urokinase is required for its mitogenic effect. J Biol. Chem. 272, 13390-96. Plouët et al. (2001) Angiogenesis, 3, 215-217 Sambrook K., Fritsch E, Maniatis T. (1989) Molecular cloning : a laboratory manual Cold Spring Harbor ed. (C. S. H. Laboratory, Ed. ) New York. REVENDICATIONS 1. Procédé de préparation de cellules endothéliales de phénotype non angiogénique ou de cellules endothéliales de phénotype angiogénique, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : - l'incubation de cellules endothéliales, notamment prélevées d'une aorte, dans un milieu ne contenant ni #stradiol, ni facteur de croissance, notamment ni VEGF, ou dans un milieu contenant de l'#stradiol et un facteur de croissance, notamment le VEGF, afin d'obtenir respectivement des clones de cellules endothéliales de phénotype non angiogénique ou des clones de cellules endothéliales de phénotype angiogénique, - le prélèvement d'un clone à l'aide d'une micropipette, parmi les clones susmentionnés, respectivement de cellules endothéliales de phénotype non angiogénique ou de cellules endothéliales de phénotype angiogénique, et la culture de ce clone jusqu'à l'obtention de la confluence des cellules, vérifiée par examen à l'aide d'un microscope à contraste de phase, - la sélection respectivement des cellules endothéliales de phénotype non angiogénique ou des cellules endothéliales de phénotype angiogénique, par vérification du phénotype des cellules obtenues à l'étape précédente, à l'aide du test de prolifération et/ou de migration et/ou d'angiogenèse in vitro. 2. Procédé de préparation de cellules endothéliales de phénotype non angiogénique selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : @ - l'incubation de cellules endothéliales, notamment prélevées d'une aorte, dans un milieu ne contenant ni #stradiol, ni facteur de croissance, notamment ni VEGF, afin d'obtenir des clones de cellules endothéliales de phénotype non angiogénique, - le prélèvement d'un clone à l'aide d'une micropipette, parmi les clones susmentionnés, de cellules endothéliales de phénotype non angiogénique, et la culture de ce clone jusqu'à l'obtention de la confluence des cellules, vérifiée par examen à l'aide d'un microscope à contraste de phase, - la sélection des cellules endothéliales de phénotype non angiogénique, par vérification du phénotype des cellules obtenues à l'étape précédente, à l'aide du test de prolifération et/ou de migration et/ou d'angiogenèse in vitro. 3. Procédé de préparation de cellules endothéliales de phénotype angiogénique selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : - l'incubation de cellules endothéliales, notamment prélevées d'une aorte, dans un milieu contenant de l'#stradiol et un facteur de croissance, notamment le VEGF, afin d'obtenir des clones de cellules endothéliales de phénotype angiogénique, - le prélèvement d'un clone à l'aide d'une micropipette, parmi les clones susmentionnés, de cellules endothéliales de phénotype angiogénique, et la culture de ce clone jusqu'à l'obtention de la confluence des cellules, vérifiée par examen à l'aide d'un microscope à contraste de phase, - la sélection des cellules endothéliales de phénotype angiogénique, par vérification du phénotype des cellules obtenues à l'étape précédente, à l'aide du test de prolifération, de migration ou d' angiogenèse in vitro. 4. Cellules endothéliales de phénotype non angiogénique telles qu'obtenues par le procédé selon la revendication 1 ou 2. 5. Cellules endothéliales selon la revendication 4, caractérisées en ce qu'elles présentent au moins l'une des propriétés suivantes : - elles restent confluentes lorsqu'elles sont mises en présence du facteur de croissance VEGF, sans former de tubules, - elles ne prolifèrent pas sous l'action du VEGF, - elles ne sont pas protégées de l'apoptose par le VEGF. 6. Cellules endothéliales de phénotype angiogénique telles qu'obtenues par le procédé selon la revendication 1 ou 3. 7. Cellules endothéliales selon la revendication 6, caractérisées en ce qu'elles présentent au moins l'une des propriétés suivantes : - elles forment des tubes lorsqu'elles sont mises en présence du facteur de croissance VEGF dans un gel de collagène, - elles prolifèrent sous l'action du VEGF, - elles sont protégées de l'apoptose par le VEGF. 8. Cellules endothéliales selon l'une des revendications 4 à 7, caractérisées en ce que ce sont des cellules endothéliales de vaisseau, notamment des cellules endothéliales d'aorte, de cortex surrénal, de peau, de cerveau, de rétine, de veine ou d'artère de cordon ombilical. 9. Utilisation des cellules endothéliales selon l'une des revendications 4 à 8, pour le criblage de substances angiogéniques vis-à-vis de cellules endothéliales de phénotype non angiogénique telles que définies dans les revendications 4 ou 5, n'affectant substantiellement pas les cellules endothéliales de phénotype angiogénique telles que définies dans les revendications 6 ou 7, ou de substances anti-angiogéniques vis-à-vis de cellules endothéliales de phénotype angiogénique telles que définies dans les revendications 6 ou 7, n'affectant substantiellement pas les cellules endothéliales de phénotype non angiogénique telles que définies dans les revendications 4 ou 5. 10. Utilisation selon la revendication 9, pour le criblage de substances antiangiogéniques, vis-à-vis de cellules endothéliales de phénotype angiogénique, telles que définies dans les revendications 6 ou 7, n'affectant substantiellement pas les cellules endothéliales de phénotype non angiogénique, telles que définies dans les revendications 4 ou 5. 11. Utilisation des cellules endothéliales selon l'une des revendications 4 à 8, pour la mise en oeuvre d'un procédé de criblage de substances susceptibles d'inhiber l'angiogenèse de cellules endothéliales de phénotype angiogénique telles que définies dans l'une des revendications 6 ou 7, mais n'affectant substantiellement pas les cellules endothéliales de phénotype non angiogénique telles que définies dans l'une des revendications 4 ou 5, comprenant les étapes suivantes : - la mise en culture, d'une part, de cellules endothéliales de phénotype non angiogénique telles que définies dans l'une des revendications 4 ou 5, et, d'autre part, de cellules endothéliales de phénotype angiogénique telles que définies dans l'une des revendications 6 ou 7, pour obtenir respectivement une culture de cellules endothéliales de phénotype angiogénique et une culture de cellules endothéliales de phénotype non angiogénique, - l'addition, à chacune des cultures définies ci-dessus, d'un facteur mitogénique, notamment choisi parmi la famille des facteurs FGF, le PDGF, le VEGF ou l'EGF, et étant notamment le VEGF, et de la substance à tester, susceptible d'inhiber l'angiogenèse, et le maintien des cellules susmentionnées en culture pendant un temps suffisant pour qu'il y ait au moins un cycle de division cellulaire, - la comparaison de l'inhibition, par la substance à tester, de l'action mitogénique du facteur mitogénique, d'une part sur les cellules endothéliales de phénotype angiogénique telles que définies dans l'une des revendications 6 ou 7, et, d'autre part, sur les cellules endothéliales de phénotype non angiogénique telles que définies dans l'une des revendications 4 ou 5, permettant de sélectionner parmi les susdites substances à tester celle qui inhibe la prolifération des cellules endothéliales de phénotype angiogénique telles que définies dans l'une des revendications 6 ou 7, mais qui n'inhibe pas la prolifération des cellules endothéliales de phénotype non angiogénique telles que définies dans l'une des revendications 4 ou 5.