FR 2857374 A1 20050114 FR 0308350 A 20030708 GLUTAMINE :FRUCTOSE-6-PHOSPHATE AMIDOTRANSFERASE (GFAT) COMPRENANT UNE ETIQUETTE DE PURIFICATION INTERNE, ET SON UTILISATION POUR LE CRIBLAGE DE COMPOSES La présente invention concerne une glutamine:fructose-6-phosphate amidotransférase modifiée, purifiable rapidement et en quantités suffisantes pour le criblage de composés modifiant son activité. Les glutamine:fructose-6-phosphate amidotransférases (GFAT), EC 2.6.1.16, également appelées glucosamine-6-phosphate synthases ou 2-déoxy-glucose-6phosphate cétol isomérases, sont impliquées dans la voie de biosynthèse des hexosamines. La GFAT catalyse la première étape, limitante, de cette voie de biosynthèse selon la réaction : L-Glutamine + fructose-6-phosphate # L-Glutamate + glucosamine-6-phosphate par transfert de l'azote amidique de la L-Glutamine sur la fonction cétone du fructose-6phosphate. Les GFAT contrôlent donc le flux de glucose dans la voie des hexosamines, via le fructose-6-phosphate, et par conséquent la formation des hexosamines produites. Une forme bactérienne recombinante de la GFAT, la glucosamine-6-phosphate synthase d'Escherichia coli, a été purifiée à homogénéité et étudiée de façon exhaustive. Les propriétés et le mécanisme enzymatique du transfert de l'amide ont notamment été largement décrits (pour revue Teplyakov et al., Nat. Prod. Rep. (2002) 19 :60). En particulier, cette enzyme, dont la structure cristalline a été résolue (Teplyakov et al., J. Mol. Biol. (2001) 313:1093), est formée de deux domaines, l'un ayant une activité hydrolase (glutaminase) et l'autre une activité isomérase. Par ailleurs, des GFAT d'eucaryotes ont été caractérisées, dont notamment celle de foie de rat (Huynh et al., Arch. Biochem. Biophys. (2000) 379 :307) celle de la levure Candida albicans (Milewsky et al., J. Biol. Chem. (1999) 274:4000). Chez l'homme, des études préliminaires ont montré la présence d'une activité GFAT dans le foie (Ghosh et al., J. Biol. Chem. (1960) 235 :1265). GFAT sont désormais connues. GFAT1, la forme principale, GFAT2, qui est exprimée préférentiellement dans le système nerveux central, et GFAT1Alt, une isoforme de GFAT1, exprimée essentiellement dans les muscles striés. Les séquences peptidiques de GFAT1 et GFAT2 possèdent 75% d'identités de séquences entre elles, et celles de GFAT1 et GFAT1Alt sont identiques excepté pour une insertion de 18 acides aminés dans la séquence de GFAT1Alt. Les séquences de GFAT sont donc très conservées chez l'homme, mais également entre les espèces, puisque les séquences peptidiques de la GFAT1 humaine et de la GFAT d'E. coli ou de la GFAT1 de souris présentent respectivement 35% et 99% d'identités. Le gène de la GFAT1 humaine a été cloné en 1992 (McKnight et al., J. Biol. Chem. (1992) 267 :25208). code une protéine de 77 kDa formée de deux domaines distincts (Teplyakov et al., Nat. Prod. Rep. (2002) 19:60). L'augmentation de la production de l'UDP-NAc-GlcNH2, le produit final de la voie de biosynthèse des hexosamines, et son accumulation dans les tissus ont récemment été impliquées dans le développement de la résistance à l'insuline (Marshall et al., FASEB J. (1991) 5:3031, Yki-Jarvinen et al., Diabetes (1996) 45:302, Thompson et al., J. Biol. Chem. (1997) 272 : 7759,Hawkins et al., J. Clin. Invest. (1997) 99:2173, Robinson et al., Diabetes (1993) 42:1333, Daniels et al., J. Clin. Invest. (1995) 96:1235, Baron et al., J. Clin. Invest. (1995) 96:2792). Ainsi, il a été montré qu'une augmentation du niveau cellulaire d'UDP-NAcGlcNH2 par une modeste surexpression de GFAT1, ou un apport de glucosamine exogène, peut induire une résistance à l'insuline à la fois in vivo et dans des adipocytes en culture (Robinson et al., Diabetes (1993) 42:1333, Daniels et al., J. Clin. Invest. (1995) 96:1235, Baron et al., J. Clin. Invest. (1995) 96:2792, Hebert et al., J. Clin. Invest. (1996) 98:930). En effet, l'insuline active sa voie de transduction en se fixant à son recepteur, ce qui induit la translocation des transporteurs de glucose, tels que le récepteur GLUT4, stockés dans la cellule, vers la membrane, et augmente l'afflux de glucose. Le glucose entre ainsi dans la voie de la glycolyse et est converti en glucose-6-phosphate puis en fructose-6-phosphate. Lorsque l'afflux de glucose est excessif, le fructose-6-phosphate entre dans la voie de biosynthèse des hexosamines et est converti en glucosamine-6- phosphate par la GFAT. Plusieurs observations indiquent que les métabolites de la glucosamine-6-phosphate empêchent la translocation des recepteurs au glucose vers la membrane cellulaire, diminuant ainsi l'afflux du glucose cellulaire (Marshall et al., FASEB J. (1991) 5:3031, Giacarri et al., Diabetologia (1995) 38 :518, et al., J. Biol. Chem. (1991) 266:4706, Paterson et al., Endocrinology (1995) 136:2809). Le mécanisme par lequel les métabolites de la glucosamine-6-phosphate exercent leurs effets physiologiques n'est pas clair. Une hypothèse a cependant été proposée : une concentration cytosolique élevée d'UDP-NAc-GlcNH2 entraînerait l'hyperglycosylation des sites de phosphorylation Ser ou Thr, conduisant de la sorte à l'arrêt de la voie de signalisation de l'insuline (Comer et al., J. Biol. Chem. (2000) 275 :29179). L'activité GFAT est donc considérée comme étant l'une des causes des hauts niveaux de glucose sanguin ; par ailleurs elle est connue pour être élevée chez les patients atteints de diabète sucré non-insulino dépendant ou diabète de type II (YkiJarvinen et al., Diabetes (1996) 45:302). L'obtention d'inhibiteurs de la GFAT permettrait d'abaisser la glycémie en particulier chez les individus atteints de pathologies liées à une hyperglycémie, telles que le diabète de type II, l'acidose et/ou la cétose diabétique, par exemple. Des inhibiteurs de la GFAT de plante ou de champignon pourraient également permettre d'obtenir respectivement des fongicides et des herbicides. Toutefois, malgré l'obtention de formes recombinantes de GFAT, l'instabilité des préparations enzymatiques obtenues, leur faible quantité, et leur niveau de purification insuffisant, n'ont pas permis d'obtenir des inhibiteurs efficaces de GFAT. Un objet de l' invention est donc de fournir une GFAT modifiée dont l' activité est stable et pouvant être obtenue en grande quantité, avec un haut niveau de pureté et d'activité. La présente invention concerne une protéine enzymatiquement active comprenant : - une séquence de GFAT et au moins une séquence d'une étiquette de purification, la séquence de l'étiquette de purification étant insérée entre deux acide aminés consécutifs de la séquence de GFAT, ou - une séquence dérivant de la séquence précédente par suppression, insertion ou mutation d'au moins un acide aminé, sous réserve que ladite protéine présente une activité enzymatique, ou - une séquence présentant au moins 35 %, notamment au moins 90 %, d'identité de séquence et/ou au moins 44 %, notamment au moins 95 %, de similarité de séquence avec l'une des séquences précédentes, sous réserve que ladite protéine présente une activité enzymatique. On désigne par GFAT une enzyme de la classe E.C. 2.6.1.16 catalysant la réaction suivante : L-Glutamine + fructose-6-phosphate # L-Glutamate + glucosamine-6-phosphate notamment dans les conditions expérimentales telles qu'elles sont décrites dans l'exemple qui suit ou dans Broschat et al., J. Biol. Chem. (2002) 277:14764. GFAT est désignée sous le nom de glutamine:fructose-6-phosphate amidotransférase, ou également glucosamine-6-phosphate synthase ou 2-déoxy-glucose- 6-phosphate cétol isomérase. On désigne par protéine enzymatiquement active une protéine ayant une action catalytique. Avantageusement, la protéine enzymatiquement active possède une activité GFAT. On désigne par étiquette de purification une séquence peptidique susceptible de se lier spécifiquement à un ligand donné. Avantageusement la liaison dudit ligand à l'étiquette de purification permet de former un complexe entre la protéine portant l'étiquette de purification et ledit ligand, ledit complexe pouvant être spécifiquement isolé. Avantageusement les étiquettes de purification selon l'invention ne sont pas placées en bout de chaîne peptidique, à l'extrémité N-terminale ou C-terminale, mais à l'intérieur de la chaîne peptidique. On désigne par identité de séquence le pourcentage d'acides aminés identiques entre deux séquences alignées, notamment à l'aide d'algorithmes tels que celui défini par Altschul et al., Nucleic Acids Res. (1997) 25 :3389, exemple. On désigne par similarité de séquence le pourcentage d'acides aminés similaires, c'est-à-dire d'acides aminés dont les chaînes latérales possèdent des propriétés physico-chimiques proches, entre deux séquence alignées, notamment à l'aide d'algorithmes tels que celui défini par Altschul et al., Nucleic Acids Res. (1997) 25 :3389, par exemple. La présente invention concerne en particulier une protéine telle que définie cidessus, dans laquelle la séquence de GFAT correspond à une séquence de GFAT de bactérie ou d'eucaryote, notamment de plante, de champignon ou d'animal, en particulier d'insecte ou de mammifère, plus particulièrement d'homme. L'invention concerne plus particulièrement une protéine telle que définie cidessus, dans laquelle la séquence de l'étiquette de purification est insérée entre deux acides aminés consécutifs de la séquence de GFAT, lesdits acides aminés étant compris dans : - une partie de la séquence de la GFAT correspondant à la séquence s'étendant entre le feuillet ss2 et le feuillet ss3 de la GFAT d'Escherichia coli, ou - une partie de la séquence de la GFAT correspondant à la séquence s'étendant entre le feuillet ss13et le feuillet ss14 de la GFAT d'Escherichia coli, ou - une partie de la séquence de la GFAT correspondant à la séquence s'étendant entre le feuillet ss15 et l'hélice [alpha]6 de la GFAT d'Escherichia coli. La structure de la GFAT d'Escherichia coli est décrite en particulier par Teplyakov et al., J. Mol. Biol. (2001) 313 :1093 entière), par Isupov et al., Structure (1996) 4 :801 glutaminase) et par Teplyakov et al., Structure (1998) 6:1047 (domaine isomérase). La structure de la protéine complète est notamment consultable à l'aide du fichier de coordonnées atomiques 1JXA déposé auprès de la Protein Data Bank (http://www.pdb.org). La séquence peptidique de la GFAT d'E. coli est définie par SEQ ID NO :13. La séquence s'étendant entre le feuillet ss2 et le feuillet ss3 correspond à la séquence s'étendant approximativement entre les acides aminés 30 à 80 de la GFAT d'E. coli, situés dans le domaine glutaminase. La séquence s' étendant entre le feuillet ss13 et le feuillet ss14 correspond à la séquence s'étendant approximativement entre les acides aminés 220 à 230 de la GFAT d'E. coli, situés dans le domaine glutaminase. La séquence s'étendant entre le feuillet ss15 et l'hélice [alpha]6 correspond à la séquence s'étendant approximativement entre les acides aminés 235 à 250 de la GFAT d'E. coli, situés dans le domaine isomérase. L'identification des parties de séquences d'une GFAT correspondant à des structures secondaires de la GFAT d'E. coli peut être obtenue en alignant la séquence de ladite GFAT avec celle de la GFAT d'E. coli, notamment à l'aide d'un algorithme tel que celui défini par Altschul et al., Nucleic Acids Res. (1997) 25:3389, par exemple. L'invention concerne notamment une protéine ci-dessus, dans laquelle la séquence de GFAT correspond à : - SEQ ID NO : 2, correspondant à la séquence de la GFAT1 humaine, - SEQ ID NO : 4, correspondant à la séquence de la GFAT2 humaine, - SEQ ID NO : 6, correspondant à la séquence de la GFAT1Alt humaine. La séquence de la GFAT1 humaine est notamment décrite dans McKnight et al., J Biol. Chem. (1992) 267 :25208, correspond à la séquence nucléotidique SEQ ID NO: 1. La séquence de la GFAT2 humaine est notamment décrite dans Oki et al., Genomics (1999) 57 :227, correspond à la séquence nucléotidique SEQ ID NO : 3. La séquence de la GFATlAlt humaine est notamment décrite dans DeHaven et al, Diabetes (2001) 50 :2419, correspond à la séquence nucléotidique SEQ ID NO : 5. L'invention concerne en particulier une protéine ci-dessus, dans laquelle la séquence de l'étiquette de purification est insérée entre deux acides aminés consécutifs, lesdits acides aminés étant compris entre les acides aminés : - 43 à 47, 298 à 306, et/ou 342 à 347 de SEQ ID NO : 2, - 42 à 45, 299 à 307, et/ou 343 à 348 de SEQ ID NO : 4 - 43 à 47, 316 à 324, et/ou 360 à 365 de SEQ ID NO : 6 Les acides aminés 43 à 47 de SEQ ID NO : 2,42 à 45 de SEQ ID NO : 4 et 43 à 47 de SEQ ID NO : 6 correspondent à la partie de la séquence de la GFAT d'E. coli s'étendant entre le feuillet ss2 et le feuillet ss3. Les acides aminés 298 à 306 de SEQ ID NO : 2,299 à 307 de SEQ ID NO : 4 et 325 à 330 de SEQ ID NO : 6 correspondent à la partie de la séquence de la GFAT d'E. coli s'étendant entre le feuillet ss13et le feuillet ss14. Les acides aminés 342 à 347 de SEQ ID NO : 2,343 à 348 de SEQ ID NO : 4 et 360 à 365 de SEQ ID NO : 6 correspondent à la partie de la séquence de la GFAT d'E. coli s'étendant entre le feuillet ss15 et l'hélice [alpha]6. L'invention concerne plus particulièrement une protéine ci-dessus, dans laquelle la séquence de l'étiquette de purification est insérée entre les acides aminés : - 299 et 300 de SEQ ID NO : 2, - 300 et 301 de SEQ ID NO :4, - 317 et 318 de SEQ ID NO : 6. L'invention concerne notamment une protéine ci-dessus, dans laquelle l'étiquette de purification correspond à une séquence d'environ 2 à environ 10 acides aminés, notamment d' environ 4 à environ 8 acides aminés. Des étiquettes de purification préférées selon l'invention concernent notamment des étiquettes dites FLAG (Sigma-Aldrich, France). Ces étiquettes se lient spécifiquement à un paratope donné, ledit paratope pouvant appartenir à un anticorps ou à un fragment d'anticorps par exemple. Un exemple particulier d'étiquette FLAG est constitué par la séquence peptidique Asp-Tyr-Lys-Asp-Asp-Asp-Asp-Asp-Lys (SEQ ID NO :18) par exemple. D'autres étiquettes préférées selon l'invention sont des étiquettes formées de plusieurs histidines. Ces étiquettes peuvent former des complexes avec des cations métalliques divalents tels que Ni2+ ou Co2+ par exemple. L'invention concerne en particulier une protéine telle que définie ci-dessus, dans laquelle l'étiquette de purification est une hexa-histidine. On désigne par hexa-histdine la séquence His-His-His-His-His-His (SEQ ID NO : 19). L'invention concerne plus particulièrement une protéine telle que définie cidessus correspondant aux séquences : - SEQ ID NO : 8, correspondant à la séquence SEQ ID NO : 2 dans laquelle une hexa-histidine est insérée entre les acides aminés 299 et 300, - SEQ ID NO : 10, correspondant à la séquence SEQ ID NO : 4 dans laquelle une hexa-histidine est insérée entre les acides aminés 300 et 301, et - SEQ ID NO : 12, correspondant à la séquence SEQ ID NO : 6 dans laquelle une hexa-histidine est insérée entre les acides aminés 317 et 318. La présente invention concerne également un acide nucléique comprenant ou étant constitué d'une séquence codant pour une protéine telle que définie ci-dessus. L'invention concerne plus particulièrement un acide nucléique comprenant ou étant constitué de la séquence nucléotidique : - SEQ ID NO : 7 codant pour la protéine SEQ ID NO : 8, ou - SEQ ID NO : 9 codant pour la protéine SEQ ID NO : 10, ou - SEQ ID NO :11 codant pour la protéine SEQ ID NO : 12, ou de son complémentaire, ou étant dérivé de ladite séquence par mutation, insertion ou délétion d'au moins un nucléotide, sous réserve que ladite séquence nucléotidique code pour une protéine enzymatiquement active. Selon un autre mode de réalisation, la présente invention concerne également un vecteur eucaryote ou procaryote comprenant un acide nucléique tel que défini ci-dessus. Ces vecteurs permettent notamment de synthétiser les protéines selon l'invention dans un organisme eucaryote ou procaryote. Avantageusement l'invention concerne un vecteur d'expression de type baculovirus permettant la synthèse des protéines selon l'invention dans des cellules d' insecte. La présente invention concerne également un procédé de purification d'une protéine telle que définie ci-dessus, à partir d'une solution comprenant ladite protéine, comprenant une étape de mise en présence de ladite solution avec un composé se liant spécifiquement à l'étiquette de purification de ladite protéine et une étape de séparation du complexe formé par la liaison de ladite protéine audit composé des autres constituants de la solution. Le composé peut être fixé sur un support solide de sorte que le complexe formé entre ledit composé et ladite protéine peut être récupéré par centrifugation ou filtration. Optionnellement ledit composé fixé sur son support peut être disposé dans une colonne à travers laquelle ladite solution est éluée. Avantageusement, le procédé ci-dessus peut également comprendre une étape de dissociation du complexe formé par la liaison de ladite protéine audit composé afin de récupérer la protéine purifiée. L'invention concerne plus particulièrement un procédé de purification tel que défini ci-dessus, comprenant une étape de mise en présence d'une solution comprenant une protéine telle que définie ci-dessus avec un composé comprenant un cation métallique divalent tel que Ni2+ ou Co2+, notamment Ni'+, et une étape de séparation du complexe formé par la liaison de la protéine audit composé des autres constituants de la solution. Avantageusement, le procédé ci-dessus peut également comprendre une étape de dissociation du complexe formé par la liaison de ladite protéine audit composé comprenant un cation métallique divalent, notamment à l'aide d'imidazole, afin de récupérer la protéine purifiée. Selon un autre mode de réalisation la présente invention concerne un procédé de conservation d'une protéine telle que définie ci-dessus sous une forme enzymatiquement active, notamment à -80 C ou à 4 C, comprenant l'adjonction de ladite protéine à une solution comprenant : - d'environ 1 mM à environ 10 mM de fructose 6-phosphate, notamment environ 1 mM, - d'environ 1 mM à environ 5 mM de Tris(2-carboxyethyl)phosphine, notamment environ 1 mM, - d'environ 5 % à environ 20 % de glycérol, notamment environ 10%. Le fructose-6-phosphate est un substrat de ladite protéine. Le Tris (2-carboxyethyl)phosphine estun composé réducteur permettant avantageusement de maintenir les propriété de résines portant des ions Ne+ ou Co2+. Avantageusement le glycérol est un agent cryoprotectant. A ce titre la présente invention concerne également une composition comprenant une protéine GFAT active, le cas échéant liée à une étiquette de purification, telle qu'une protéine telle que définie ci-dessus, ladite protéine étant susceptible de pouvoir être conservée sous une forme enzymatiquement active, durant au moins 8 jours à une température de 2 C à 10 C, notamment environ 4 C, et durant au moins 12 mois à une température de -100 C à -20 C, notamment environ -80 C, ladite protéine étant en association avec : - environ 1 mM à environ 10 mM de fructose 6-phosphate, notamment environ 1 mM, - environ 1 mM à environ 5 mM de Tris(2-carboxyethyl)phosphine, notamment environ 1 mM, - environ 5 % à environ 20 % de glycérol, notamment environ 10%. La présente invention concerne également l'utilisation d'une protéine telle que définie ci-dessus, pour le criblage de composés modifiant l'activité de ladite protéine, en particulier pour le criblage d'inhibiteur de ladite protéine. L'activité des protéines selon l'invention peut être en particulier mesurée à l'aide des méthodes suivantes : - la méthode radiométrique décrite par Broschat et al., Analytical Biochem. (2002) 305:10-15, - la méthode dite au Nitro Bleu Tétrazolium décrite par Nakata et al., J. Antibio. (2001) 54:737-743. - la méthode Morgan-Elson décrite par Ghosh et al., Method. Enzymol. (1960) 5 :414 et détaillée dans l'exemple qui suit. - la méthode APAD décrite par Badet et al., Biochemistry (1987) 26 :1940 détaillée dans l'exemple qui suit. Avantageusement ces méthodes peuvent être utilisées pour le criblage, notamment à haut débit, de composés modifiant l'activité des protéines selon l'invention. L'invention concerne en particulier l'utilisation telle que définie ci-dessus, pour le criblage de composés utiles dans le cadre du traitement ou de la prévention du diabète, notamment du diabète de type II, de l'obésité, de l'acidose, de la cétose, de l'arthrite, des cancers, ou de l'ostéoporose. DESCRIPTION DE LA FIGURE 1 La Figure 1 représente le plasmide pFastBac-gfat-His6 de poids moléculaire 6,89 kb. La cassette Ampr représente un gène de résistance à l'ampicilline, la cassette ori représente une origine de réplication bactérienne, la cassette Gmr représente un gène de résistance à la gentamicine, la cassette Polh Pr représente le promoteur de la polyhédrine, la cassette gfat-his6 représente le gène gfatl modifié par l'insertion d'une séquence codant pour une étiquette hexahistidine. Les sites de restriction Xbal en position 4,11kb, et EcoRI en positions 4,56 kb et 6,60 kb sont également représentés. EXEMPLE 1 1. Synthèse et clonage du gène gfat1-His6 Le fragment EcoRI d'un ADNc correspondant au gène gfatl humain a été cloné dans le site EcoR 1 du vecteur pCRII (Invitrogen) pour former le plasmide pCRII-gfatl. La séquence nucléotidique d'une étiquette de purification interne composée de 6 résidus histidine a été introduite en position 898 de la séquence du gène gfatl cloné dans pCRII par PCR avec la Platinum pfx polymerase (Roche) et la paire d'amorces appropriées : - Start Aat II-His6 : 5'TGGACGTCTTTCTATCCATCGAATTAAACGAACTGCAGGACATCACC ATCACCATCACGATCACCCCGGACG 3' (SEQ ID NO : 14) - End Hinc II : 5' CAAAGTTGACTCTTCCTCTCATTGTGTTCACGACAGACTCTGGC 3' (SEQEDNO: 15) selon le protocole suivant : 94 C, 2min puis 30 cycles (94 C 45 sec, 55 C 1 min, 72 C 5 min) suivis d'une polymérisation de 5 min à 72 C et retour à 4 C. Après digestion par AatII et Hindi puis purification sur gel d'agarose Seaplaque 1,5% (Tebu), l'amplicon (170 bp) a été inséré au niveau des sites de restriction correspondants dans la construction pCRII-gfatl. L'insert de 170 pb a été introduit par ligation dans la construction avec un rapport 3:1 à 16 C pendant la nuit en présence de T4 DNA ligase (Nebs). Le mélange de ligation (20 ).il) ainsi obtenu a permis de transformer une souche d'E. coli JM109. Ensuite, le fragment XbaI- HindIII du plasmide recombinant pCRII-gfatl-His6 a été cloné dans le plasmide donneur pFastBacl (Life @ Technologies Ltd). Le plasmide pFastBac-gfat-His6 ainsi généré (Ligure 1) a été vérifié par digestions multiples: SmaI, AccIlDraI, PstElabaI, et par séquençage. En vue d'améliorer la construction, la séquence en amont du codon de démarrage a été mutée sur deux positions par PCR, avec la paire d'amorces suivante, afin d'enlever deux phases de lecture ouvertes en amont du gène gfatl : - Start Xbal 5' AATCTAGATTCATGCTCGAGCGGCCGCCAGTGTGATTGATATC 3' (SEQIDNO: 16) - End Afel 5' ATTTTTATCAGAGCGCTGGGGGTGGCTATTGACAGG 3' (SEQ ID NO : 17) selon le protocole : 94 C 2 min, puis 30 cycles (94 C 15 sec, 55 C 30 sec, 68 C 1 min) suivis d'une polymérisation de 1 min à 68 C et retour à 4 C. Le fragment de PCR obtenu, contenant les deux mutations, a été purifié sur gel SeaPlaque (Tebu) à 0,7% puis digéré par XbaI et AfeI pour remplacer son homologue dans pFastBac-gfat-His6 afin de donner le plasmide donneur pFastBac-gfat-His6-2orf servant à la transposition dans les cellules DHlOBac (Life Technologies Ltd). La construction a été vérifiée par digestions SmaI, XballPstEI, XbaIlHihdIII, et par séquençage. Un bacmide recombinant a été isolé après transposition dans les cellules DHlOBac et utilisé pour transfecter des cellules d'insecte Sf9 en présence de Lipofectin (Life Technologies Ltd). Les baculovirus obtenus ont été amplifiés dans les cellules Sf9 et le titre viral a été mesuré à 5.107 pfulml. 2. Production de la protéine GFAT1-His6 Des cellules d'insectes Sf9 ont été cultivées à 28 C en présence de milieu SF900II (Life Technologies Ltd) en fioles de 5 L sous agitation à 100 rpm. Les cellules à une densité de 2.109 cellules /L ont été infectées par le baculovirus recombinant obtenu cidessus avec une multiplicité d'infection de 2 (pfu/cellule), puis cultivées durant 72 h. Les cellules et le surnageant ont été séparés par centrifugation (2500 g, 10 min à 4 C). Les culots cellulaires ont été lavés en présence de tampon Tris-HCl 20 mM, pH 7, centrifugés (4000 g, 45 min à 4 C) et congelés à -80 C. @ 3. Purification de la protéine GFAT1-His6 Le culot cellulaire (20 g) a été repris dans 50 ml de tampon de lyse (NaP04 50mM pH 7,5, NaCl 300 mM, imidazole 10 mM, fructose-6-phosphate (fructose-6P) 1 mM, TCEP (Tris(2-carboxyethyl) phosphine) 1 mM, PMSF 1 mM (fluorure de phénylmethylsulfonyl), 10% glycérol et 1 tablette de cocktail d'inhibiteurs de protéases sans EDTA (Roche Applied Sciences) et soumis à un broyage au DynoMill à 4500 trs/min (4 cycles de 30 sec) en présence de 40 g de microbilles de 0,2 mm de diamètre. L'ensemble a été refroidi par circulation d'ethylène glycol/eau réglé à -15 C. L'extrait brut obtenu (100 ml, 445 mg de protéines totales) a été centrifugé à 4 C pendant 20 min à 12000 tpm. Le surnageant a été soumis à une ultracentrifugation à 4 C (350000 tpm, 1h). Le surnageant ainsi obtenu a été mélangé à 5 ml de matrice 50% Ni-NTA (Qiagen) pendant 2 h à 4 C. Le mélange a été coulé dans une colonne vide puis rincé avec 40 ml de tampon de lavage (NaP04 50 mM pH 7,5, NaCl 300 mM, imidazole 40 mM, fructose-6P 1 mM, TCEP 1 mM, PMSF 1 mM et 1 tablette de cocktail d'inhibiteurs de protéases sans EDTA (Roche Applied Sciences). L'élution a été réalisée par paliers successifs à 125 et 500 mM imidazole dans le même tampon que précédemment. 12 mg de GFATl-His6 fonctionnelle (dosage protéique selon la méthode de Bradford ont ainsi été obtenus. 4. Conservation de l'enzyme GFATl-His6 L'enzyme a alors été stockée en fractions de 100 fil en présence de 1 mM fructose-6P, 1mM TCEP et 10% glycérol à -80 C. La stabilité de l'enzyme est de plusieurs mois à -80 C et supérieure à 8 jours à 4 C. 5. Dosage de l'activité de l'enzyme GFAT1-His6 Différents tests de dosage de l'activité enzymatique de la GFAT1-His6 ont été utilisés. Ces tests peuvent être également utilisés afin de cribler des composés modifiant, et notamment inhibant, l'activité de la GFAT1-His6. Il est possible des les adapter aisément à un criblage à haut débit. Dosage de Morgan-Elson : Dans ce cas l'activité enzymatique est suivie par un test colorimétrique dont le @ principe est le suivant : la D-glucosamine-6P libérée par l'enzyme est N-acétylée par l'anhydride acétique en milieu alcalin (Ghosh et al., Method. Enzymol. (1962) 5:414), puis La solution est traitée par le réactif d'Ehrlich (para-diméthyl-amino-benzaldéhyde, PDAB) en milieu acide concentré ; le composé rose formé absorbe à 585 nm. La réaction enzymatique se déroule pendant 30 min à 37 C en présence de : - 0,2 ml de fructose-6P à 100 mM - 0,25 ml de L-Glutamine à 60 mM - 0,25 ml de tampon KP04 à 150 mM pH 7 - 0,1ml d'EDTA (éthylène diamine tétra-acétate) à 25 mM, pH 7 -jusqu'à 200 l d'échantillon (à compléter avec H2O si nécessaire) La réaction est stoppée par immersion 4 minutes dans un bain d'eau à 100 C puis centrifugée. 0,8 ml du surnageant sont prélevés pour le dosage de la glucosamine-6P suivant le protocole suivant : - addition de 0,1ml de NaHC03 saturé, - addition de 0,1 ml d'une solution d'anhydride acétique à 5 % dans l'eau préparée extemporanément, - agitation et incubation 5 min à température ambiante, -incubation 5 min dans un bain à 100 C, - addition de 0,2 ml de borate de potassium 0,8 M pH 9,1 (à ajuster avec KOH ION). -agitation et incubation 7 min dans un bain à 100 C. -addition de 3 ml de réactif d'Ehrlich dilué 10 fois dans l'acide acétique, préparé extemporanément, sur la solution refroidie dans la glace, - incubation 20 min à 37 C. L'activité de la GFAT à été déterminée comparativement à une courbe étalon établie en utilisant la D-glucosamine comme standard dans une gamme de concentration de 0 à 200 nmoles. L'activité spécifique de la GFAT1-His6 obtenue a été ainsi mesurée à 1,7 U/mg. Ce qui est supérieur à la valeur de 0,4 U/mg obtenue par Broschat et al., J. Biol. Chem. (2002) 277 :14764, la purification d'une GFAT1 humaine recombinante. Ceci traduit une activité supérieure de la GFATl-His6 et/ou une pureté plus importante de la préparation enzymatique selon l'invention. Les paramètres cinétiques de la GFAT1-His6 ont été caractérisés vis-à-vis de la glutamine (KmGln- 0,2 mM) et du fructose-6P (F6P) (KmF6P = 0,006 mM) par un dosage spectrophotométrique couplé à la glutamate déshydrogénase selon le test APAD. Ce qui est conforme aux valeurs citées dans l'art antérieur (KmGln= 0,26 mM et KmF6P = 0,007 mM pour Broschat et al., J. Biol. Chem. (2002) 277:14764). Dosage APAD Il s'agit d'un dosage spectrophotométrique dans l'ultraviolet de l'activité GFAT. Il est basé sur la détermination, en continu, de la quantité de L-glutamate formé à l'aide de la GFAT et d'un analogue du NAD (nicotinamide adénine dinucléotide), l'APAD (3acetylpyridine adenine dinucleotide), selon la réaction suivante (catalysée par la glutamate déshydrogénase (GDH)) : L-Glu + APAD GDH a- cétoglutarate + NH4+ + APADH La mesure s'effectue à 365 nm, à 37 C. Dans ces conditions une unité d'absorbance correspond à 0,11 mole d'APADH formé. L'essai comprend : - 100 1 APAD 3 mM (2 mg/ml) - 25 1 KCl 2M - 100 l de tampon KP04 1 M pH 7,2 - 100 l de Fructose-6P 100 mM (30,41 mg/ml) - 100 l de L-Glutamine 60 mM purifiée (8,77 mg/ml) - H20 qsp 1 ml (en tenant compte des volumes à rajouter ci-après) - 50 l GDH - échantillon à doser : 0,5 g Il est également possible d'utiliser d'autres procédés de dosage, tels que le dosage radiométrique décrit par Broschat et al., Analytical Biochem. (2002) 305 :10-15 le dosage dit Nitro Bleu Tétrazolium décrit par Nakata et al., J. Antibio. (2001) 54:737- 743. REVENDICATIONS 1. Protéine correspondant à une glutamine:fructose-6-phosphate amidotransférase (GFAT) modifiée enzymatiquement active d'origine humaine, ladite GFAT étant modifiée de telle sorte qu'elle comprend au moins une séquence d'une étiquette de purification correspondant à une séquence peptidique d'environ 2 à environ 10 acides aminés, notamment d'environ 4 à environ 8 acides aminés, susceptible de se lier spécifiquement à un ligand donné, ce qui permet la formation d'un complexe entre la GFAT portant l'étiquette de purification et ledit ligand, ledit complexe pouvant être spécifiquement isolé, la séquence de l'étiquette de purification étant insérée entre deux acide aminés consécutifs de la séquence de GFAT, ces deux acides aminés étant compris entre les acides aminés : - 43 à 47, 298 à 306, et/ou 342 à 347 de SEQ ID NO : 2 de la GFAT1 humaine, - 42 à 45, 299 à 307, et/ou 343 à 348 de SEQ ID NO : 4 de la GFAT2 humaine, - 43 à 47, 316 à 324, et/ou 360 à 365 de SEQ ID NO : 6 de la GFATlAlt humaine. 2. Protéine selon la revendication 1, dans laquelle la séquence de l'étiquette de purification est insérée entre les acides aminés : - 299 et 300 de SEQ ID NO : 2. - 300 et 301 de SEQ ID NO : 4 - 317 et 318 de SEQ ID NO : 6 3. Protéine selon la revendication 1 ou 2, dans laquelle l'étiquette de purification est une hexa-histidine. 4. Protéine selon l'une des revendications 1 à 3 correspondant aux séquences : - SEQ ID NO : 8, correspondant à la séquence SEQ ID NO : 2 dans laquelle une hexa-histidine est insérée entre les acides aminés 299 et 300, - SEQ ID NO : 10, correspondant à la séquence SEQ ID NO : 4 dans laquelle une hexa-histidine est insérée entre les acides aminés 300 et 301, et - SEQ ID NO : 12, correspondant à la séquence SEQ ID NO : 6 dans laquelle une hexa-histidine est insérée entre les acides aminés 317 et 318. 5. Acide nucléique comprenant ou étant constitué d'une séquence codant pour une protéine selon l'une des revendications 1 à 3. 6. Acide nucléique comprenant ou étant constitué de la séquence nucléotidique : - SEQ ID NO : 7 codant pour la protéine SEQ ID NO : 8, ou - SEQ ID NO : 9 codant pour la protéine SEQ ID NO : 10, ou - SEQ ID NO : 11codant pour la protéine SEQ ID NO : 12, ou de son complémentaire, ou étant dérivé de ladite séquence par mutation, insertion ou délétion d'au moins un nucléotide, sous réserve que ladite séquence nucléotidique code pour une protéine enzymatiquement active. 7. Vecteur eucaryote ou procaryote comprenant un acide nucléique selon la revendication 5 ou 6. 8. Procédé de purification d'une protéine selon l'une des revendications 1 à 3, à partir d'une solution comprenant ladite protéine, comprenant une étape de mise en présence de ladite solution avec un composé se liant spécifiquement à l'étiquette de purification de ladite protéine et une étape de séparation du complexe formé par la liaison de ladite protéine audit composé des autres constituants de la solution. 9. Procédé de purification selon la revendication 10, comprenant une étape de mise en présence d'une solution comprenant une protéine selon la revendication 3 avec un composé comprenant un cation métallique divalent tel que Ni2+ ou Co2+, notamment Ni2+, et une étape de séparation du complexe formé par la liaison de la protéine audit composé des autres constituants de la solution. 10. Procédé de conservation d'une protéine selon l'une des revendications 1 à 3 sous une forme enzymatiquement active, notamment à -80 C ou à 4 C, comprenant l'adjonction de ladite protéine à une solution comprenant : - d'environ 1 mM à environ 10 mM de fructose 6-phosphate, notamment environ 1 mM, - d'environ 1 mM à environ 5 mM de Tris(2-carboxyethyl)phosphine, notamment environ 1 mM, - d'environ 5 % à environ 20 % de glycérol, notamment environ 10%. 11. Composition comprenant une protéine GFAT active liée à une étiquette de purification selon l'une des revendication 1 à 3, ladite protéine étant susceptible de pouvoir être conservée sous une forme enzymatiquement active, durant au moins 8 jours à une température de 2 C à 10 C, notamment environ 4 C, et durant au moins 12 mois à une température de -100 C à -20 C, notamment environ -80 C, ladite protéine étant en association avec : - environ 1 mM à environ 10 mM de fructose 6-phosphate, notamment environ 1 mM, - environ 1 mM à environ 5 mM de Tris (2-carboxyethyl)phosphine, environ 1 mM, - environ 5 % à environ 20 % de glycérol, notamment environ 10%. 12. Utilisation d'une protéine selon l'une des revendications 1 à 3, pour le criblage de composés modifiant l'activité de ladite protéine, en particulier pour le criblage d'inhibiteur de ladite protéine. 13. Utilisation selon la revendication 12, pour le criblage de composés utiles dans le cadre du traitement ou de la prévention du diabète, notamment du diabète de type II, de l'obésité, de l'acidose, de la cétose, de l'arthrite, des cancers, ou de l'ostéoporose.