FR 2826124 A1 20021220 FR 0108068 A 20010613 La polyarthrite rhumatoïde (PR) est le plus fréquent des rhumatismes inflammatoires chroniques. Il s'agit d'une maladie auto-immune systémique caractérisée par une inflammation des articulations qui affecte plus de 500 000 personnes en France et plus de 2 millions de personnes aux EtatsUnis. Le sérum des patients atteints contient des auto-anticorps dont certains sont spécifiques et peuvent constituer un marqueur de la maladie permettant son diagnostic même à un stade précoce. Des auto-anticorps spécifiquement présents chez les malades atteints de PR et réagissant avec un antigène épithélial oesophagien de rat ont été décrits pour la première fois par B. J. J. Young et al. dans Br. Med. J. 2 : 97-99 (1979). A l'époque ces auto-anticorps ont été dénommés anticorps anti-kératines (AKA), mais il a par la suite été montré que ces anticorps étaient en fait des auto-anticorps anti-filaggrine (AAF). Leurs antigènes sont les formes acido-neutres des filaggrines (Simon et al., J. Clin. Invest., 92, 1387, (1993)). La filaggrine est générée à partir de la profilaggrine, qui est une polyprotéine phosphorylée des granules kératohyalins d'épiderme. La profilaggrine a un poids moléculaire élevé (environ 400 000 chez l'homme), elle est soluble en présence de fortes concentrations de sels ou d'urée. Elle possède une forte teneur en acides aminés basiques (arginine et histidine), ainsi qu'en glycine, sérine et acide glutamique. Elle est pauvre en acides aminés non polaires et ne contient ni méthionine, ni cystéine, ni tryptophane. Elle est fortement phosphorylée sur des résidus sérine, ce qui lui confère un point isoélectrique proche de la neutralité. La profilaggrine est clivée en unités filaggrine au cours d'un processus complexe de maturation, impliquant une déphosphorylation, suivie d'un clivage par des protéases au niveau des segments interdomaines. Ce clivage génère d'abord des fragments de taille intermédiaire, puis les molécules fonctionnelles de filaggrine. Les filaggrines issues de la déphosphorylation et du clivage de la profilaggrine sont des protéines basiques dont le contenu en acides aminés est similaire à celui des profilaggrines. Elles participent à l'organisation des filaments de kératine, et subissent une maturation progressive au cours de laquelle les résidus arginine, basiques, sont convertis en résidus citrulline, neutres, sous l'action de la peptidylarginine déiminase (Harding C. R. et Scott I. R., J. Mol. Bol. 170, p. 651-673 (1983)). Ceci entraîne une réduction de leur affinité pour les kératines dont elles se détachent ; elles sont alors totalement dégradées sous l'action de diverses protéases. Les propriétés des filaggrines et des profilaggrines ont été particulièrement bien étudiées chez le rat, chez la souris et chez l'homme. La taille de la profilaggrine varie, selon les espèces, de 300 à 400 kD et celle des filaggrines de 27 à 64 kD. Le gène codant pour la profilaggrine se compose de sous-unités répétées dont chacune code pour une molécule de filaggrine, séparées par des portions codant pour les segments peptidiques interdomaines. Toutes les unités de répétition codant pour chacune des filaggrines humaines ont la même longueur (972 paires de base chez l'homme) ; cependant, chez l'homme, on observe des variations importantes (10-15%) de séquence d'une sous-unité à l'autre. Si la plupart sont conservatives, certaines de ces variations induisent des changements d'acides aminés et dans certains cas des changements de la charge électrique de la protéine. Ainsi les filaggrines humaines forment, indépendamment des modifications posttranscriptionnelles, une population hétérogène de molécules de taille similaire mais de séquences et de charges (pHi égal à 8, 3 t 1, 1) différentes (Gan et aL, Biochem. 29, p. 9432-9440 (1990)). Le polymorphisme observé chez l'homme entre les séquences des unités filaggrine à l'intérieur d'un même gène de profilaggrine n'apparaît pas chez le rat et la souris. Les filaggrines présentent en outre une grande variabilité inter et intra-spécifique au niveau de leur séquence. Cette variabilité n'affecte toutefois pas leurs propriétés fonctionnelles, ni leur composition globale en acides aminés, et leurs propriétés biochimiques. De même, les localisations tissulaires de la profilaggrine et des filaggrines sont identiques chez les différents mammifères étudiés. Les auto-anticorps (AAF) sont liés aux paramètres cliniques et biologiques qui définissent les formes les plus actives et les plus sévères de la maladie, et précéderaient l'apparition des signes cliniques. Leur détection s'avère donc une étape essentielle dans le diagnostic de la PR. Selon le document WO-A-98/08946 au nom de la Demanderesse, on a mis au point un procédé de détection des AAF, dans un échantillon biologique, basé sur la découverte selon laquelle la citrullination de la filaggrine était nécessaire à la détection des AAF présents dans des sérums de patients atteints de PR, cette citrullination générant des épitopes reconnus par les AAF. Ce procédé comprend les étapes suivantes. on met en contact l'échantillon biologique analysé avec une filaggrine recombinante citrullinée ou un fragment de celle-ci, dans des conditions appropriées pour la formation d'immuno-complexes avec les AAF, et on détecte les immuno-complexes éventuellement formés avec les AAF. Les résultats mettent en évidence une forte sensibilité du procédé, une majorité des sérums de patients atteints de PR reconnaissant la filaggrine recombinante citrullinée. On s'est cependant aperçu, au cours des étapes du diagnostic de la PR chez les patients dont les sérums se révélaient positifs dans ce procédé, que tous n'étaient pas des cas PR. Ce procédé conduit en effet à la détection de faux positifs, comme cela sera illustré dans les exemples qui suivront, et ne peut donc être utilisé de manière fiable, en raison d'une spécificité insuffisante. Les présents inventeurs ont maintenant mis au point un nouveau test ELISA pour le diagnostic de la PR chez des patients, qui possède une grande spécificité tout en conservant la forte sensibilité du procédé précité. Selon ce procédé, on détecte des auto-anticorps (AAF) spécifiques de la polyarthrite rhumatoïde (PR), dans un échantillon biologique susceptible de contenir lesdits auto-anticorps (AAF) et d'autres anticorps non spécifiques de la PR, comme suit : on dispose, d'une part, d'une filaggrine (FNC) ou d'un dérivé de la filaggrine (FNC) ou d'un peptide de la filaggrine (PFNC) comprenant au moins un résidu arginine, et d'autre part, de ladite filaggrine citrullinée (FC) ou d'un dérivé de ladite filaggrine citrullinée (FC) ou dudit peptide citrulliné (PFC), on met ledit échantillon biologique en contact avec, d'une part, ladite filaggrine (FNC) ou ledit dérivé de ladite filaggrine (FNC) ou ledit peptide (PFNC), et d'autre part, ladite filaggrine (FC) ou ledit dérivé de ladite filaggrine (FC) ou ledit peptide (PFC), dans des conditions appropriées pour la formation d'immuno-complexes avec les auto-anticorps (MF), on détecte et on quantifie les immuno-complexes formés entre les auto-anticorps (AAF) ou les autres anticorps présents dans l'échantillon et ladite filaggrine (FNC) ou ledit dérivé de ladite filaggrine (FNC) ou ledit peptide (PFNC), d'une part, et ladite filaggrine citrullinée (FC) ou ledit dérivé de ladite filaggrine citrullinée (FC) ou ledit peptide (PFC), d'autre part, cette quantification étant exprimée par une valeur respectivement XNc et Xc, on retranche la valeur de XNC à celle de Xc. Pour la mise en oeuvre du procédé de l'invention la filaggrine (FNC) ou le dérivé d'une filaggrine (FNC) ou le peptide (PFNC) est immobilisé sur un support solide et la filaggrine (FC) ou un dérivé de la filaggrine (FC) ou le peptide (PFC) est immobilisée sur un autre support solide. Il peut s'agir, entre autres, de deux puits d'une plaque de microtitration ou de deux cônes de l'appareil Vidas (marque enregistrée) commercialisé par la Demanderesse, mais également de bandelettes ou tout autre support approprié. Avant de décrire l'invention plus en détails et d'en présenter les variantes préférentielles, quelques termes employés dans la description et les revendications sont ci-après définis. La citrullination est la réaction de conversion d'un résidu arginine en citrulline par transformation du groupe-C (NH) NH2 de l'arginine en-CONHz . La réaction est avantageusement effectuée in vitro par l'enzyme peptidyl arginine déiminase (PAD). Cette enzyme peut être une PAD de muscle de lapin ; il est cependant à la portée de l'homme du métier de sélectionner une autre PAD appropriée. On peut bien évidemment envisager tout autre moyen de citrullination, tel que des réactifs chimiques, des microorganismes. Selon l'invention, lorsqu'il est fait référence à une filaggrine citrullinée, on entend qu'une proportion d'environ au moins 20% des résidus arginine ont été convertis en résidus citrulline, cette conversion étant effectuée au hasard. De préférence, ce taux est d'au moins 30%, et avantageusement d'au moins 50%. Il a été observé que l'immunoréactivité d'une filaggrine citrullinée dont le taux de citrullination est d'environ 80% est similaire à celle d'une filaggrine dont le taux de citrullination est d'environ 50%. Dans ces conditions, il n'est donc pas utile de chercher à atteindre des taux très élevés de citrullination. Si la citrullination n'est pas faite au hasard, mais est régiospécifique, et en particulier, si l'on peut limiter la réaction de conversion à un résidu arginine appartenant à un épitope de la filaggrine après citrullination, le taux de citrullination peut être plus faible que les valeurs précitées, sans que l'immunoréactivité de la filaggrine ainsi citrullinée en soit affectée. Par dérivé d'une filaggrine (FNC) ou dérivé citrulliné correspondant on entend : une filaggrine chimère qui consiste en une association de fragment (s) de séquences de filaggrine humaine et de rat et/ou une association de fragment (s) de séquences de filaggrine humaine et/ou de rat et de peptide (s) consensus. Pour la mise en oeuvre du procédé de l'invention, la filaggrine est de préférence choisie parmi la filaggrine humaine et une filaggrine d'origine animale. Elle consiste avantageusement en une filaggrine recombinante de rat, ayant la séquence SEQ ID NO : 1. A la place de la filaggrine, on peut choisir un peptide de la filaggrine (PFNC), dont la séquence comprend au moins un résidu arginine, et le peptide correspondant citrulliné (PFC) pour lequel ledit résidu arginine au moins de PFNC aura été converti en résidu citrulline. Selon une variante du procédé de l'invention, le peptide comporte un épitope de la filaggrine après citrullination. Ainsi, un peptide (PFNC) peut être notamment choisi parmi les peptides suivants : * le peptide S47S dont la séquence est représentée en SEQ ID NO : 2 correspondant aux acides aminés 71 à 119 de la séquence d'une unité de filaggrine humaine et comportant 6 résidus arginine, * le peptide E12H dont la séquence est représentée en SEQ ID NO : 3 telle que déterminée par référence aux séquences nucléotidiques du gène de la profilaggrine humaine décrites par Gan S. Q et al. (Biochemistry, 29 : 9432-9440, (1990)) et comprenant 1 résidu arginine, le peptide E12D dont la séquence est représentée en SEQ ID NO : 4 telle que déterminée par référence aux séquences nucléotidiques du gène de la profilaggrine humaine décrites par Gan S. Q et al. (Biochemistry, 29 : 9432-9440, (1990)) et comprenant 3 résidus arginine, * le peptide G22Q dont la séquence est représentée en SEQ ID NO : 5 correspondant à une séquence consensus d'une unité de filaggrine de rat comprenant 4 résidus arginine, * le peptide G26E dont la séquence est représentée en SEQ ID NO : 6 correspondant à une séquence consensus d'une unité de filaggrine de rat comprenant 10 résidus arginine. Comme dit précédemment, si l'on dispose d'une filaggrine (FNC) pour mettre en oeuvre le procédé de l'invention, la filaggrine citrullinée (FC) utilisée présente la séquence peptidique de la filaggrine (FNC) dans laquelle au moins 20%, de préférence au moins 30%, et mieux encore au moins 50% des résidus arginine de ladite FNC sont citrullinés. Les auto-anticorps (AAF) sont circulants, et un échantillon biologique à analyser selon le procédé de l'invention peut être choisi parmi le sang, le plasma, le sérum. La détection et la quantification des immuno-complexes formés sont réalisées par toutes techniques bien connues de l'homme du métier, et en particulier par l'utilisation d'une enzyme pour la détection et de son substrat colorimétrique ou fluorescent pour la quantification (exemples : phosphatase alcaline 1 4-méthylumbelliferyl phosphate, peroxydase 1 ortho-phénylène diamine). Comme cela sera illustré dans les exemples, on peut ainsi mettre en contact les immuno-complexes formés avec un conjugué constitué par un anticorps marqué dirigé contre les immunoglobulines humaines, dans des conditions appropriées pour la formation d'immuno-complexes marqués, puis on détecte et on quantifie les immuno-complexes marqués. Le conjugué est avantageusement un anticorps anti-immunoglobuline humaine, entier ou fragmenté (exemples : fragments Fab', Fab'2), marqué à la peroxydase ou à la phosphatase alcaline, puis on détecte et on quantifie la formation d'immunocomplexes marqués par colorimétrie ou fluorimétrie, la quantification étant exprimée en valeurs XNC et Xc de densité optique ou de fluorescence. Un test positif révélant la présence d'auto-anticorps (AAF) spécifiques de la PR, dans l'échantillon analysé, est caractérisé par la valeur Xc supérieure à la valeur XNC. L'invention est ci-après illustrée et ses caractéristiques et avantages mis en lumière. Exemple 1 : Obtention d'une filaggrine recombinante de rat A) Clonage du gène de la profilaggrine du rat Les travaux de Haydock et Dale, 1986 (J. Biol. Chem., 261,12520- 12525) et de Rothnagel et al., 1987 (J. Biol. Chem., 262,15643-15648) ont montré que le gène de la profilaggrine de rat était composé de 20 2 unités répétées d'environ 1200 paires de bases (pb) et ne disposait pas d'intron dans sa région codante, chaque unité de profilaggrine étant composée d'un domaine filaggrine et d'une séquence de liaison. D'autre part, la séquence codante pour deux unités de profilaggrine incomplètes a été publiée par Haydock et Dale, 1990 (DNA Cell Bol., 9, 251-261). A partir de ces données, on a conçu des oligonucléotides destinés à l'amplification par PCR de la séquence codante pour une unité profilaggrine de rat complète. La matrice ADN génomique de rat a été préparée à partir de sang total d'un rat Wistar. Trois produits de PCR différents ont été obtenus avec trois paires d'oligonucléotides différents. Ces produits de PCR ont été clonés dans un vecteur pCAPs (PCR cloning kit, Boehringer) et séquencés. Ils présentent entre eux un degré d'homologie élevé (de plus de 99%) ainsi qu'une homologie de 95 et 98% avec les deux unités de profilaggrine incomplètes publiées par Haydock et Dale, 1990. Ces données confirment la nature de l'ADN obtenu et suggèrent que les séquences disponibles sont représentatives des domaines filaggrine de rat existant, une certaine variabilité inter et intra individu étant attendue. Une des séquences obtenues a été clonée dans un vecteur d'expression pMR (Cheynet et al., 1993, Prot. Exp. Purif., 4, 367-372) en fusion avec une séquence codante pour 6 histidine en 5'. La construction identifiée sous l'appellation pOL041 a été utilisée pour transformer des bactéries E coli. Elle code pour une protéine de 399 acides aminés et de poids moléculaire théorique de 42 210 présentant la séquence SEQ ID NO : 1. B) Expression et purification de la filaggrine recombinante de rat Culture : Pour la mise en culture de la souche E coli transformée (BL21 ou DH5a), un isolement sur milieu gélosé avec ampicilline 0, 1 mg/ml est réalisé à partir de la banque conservée à-80 C. A partir d'une colonie isolée, une pré-culture est effectuée en milieu liquide (extrait de levure, glucose 2% et ampicilline 0,1 mg/ml) en Erlens, placés à +37 C et sous agitation orbitale (280 tours/min). Cette pré-culture permet ensuite l'ensemencement d'Erlens de culture, de 5 I, contenant chacun 1 1 du même milieu complété éventuellement par du PMSF 0,5 mM en final. Ces Eriens sont cultivés à +37 C sous agitation à 280 tours/min, jusqu'à l'obtention d'une DO à 600 nm de 0,8. A partir de cette valeur de DO, la culture est poursuivie sur une durée de 3 heures. La culture est alors arrêtée et centrifugée 25 minutes à 6000g. Les culots bactériens sont alors collectés et conservés à-25 C. Purification : La lyse du culot bactérien est réalisée par action du Iyzozyme en présence d'inhibiteur de protéases dans un tampon NaH2P04 0, 1 M/NaCI 0, 6M / Tween 0,2 % / Azide Na 1 mM/Imidazole 6mM pH 7,3 et par sonication. Ce Iysat est alors clarifié 30 minutes à 23700g et le surnageant conservé. La filaggrine recombinante est purifiée par chromatographie par chélation de métaux (Nickel) à +4 C. Brièvement après rééquilibrage du gel en tampon de lyse, le surnageant de lyse est injecté sur la colonne suivi d'un lavage (et du signal de détection UV 280 nm), par le tampon NaH2PO4 0,1M / NaCl 0,6M / Azide Na 1 mM 1 Imidazole 6mM pH 7,3, jusqu'au retour du signal de détection UV 280 nm à la ligne de base. La filaggrine recombinante (rFIg), adsorbée sur le gel, est éluée, par le tampon NaH2P04 1M/NaC ! 0. 6M/Azide Na 1mM / Imidazole 0,5M pH 7,15. La fraction ainsi obtenue est concentrée sur membrane de 10 kDa. La dernière étape de purification est effectuée par chromatographie de filtration sur gel sur un support Superdex 200, en tampon Tris 20mM / NaCl 0,3M pH 11. Le concentrat est injecté sur la colonne, les fractions étant collectées par le suivi du signal UV à 280 nm et 214 nm. Cette étape permet d'isoler et de récupérer la filaggrine recombinante d'intérêt, immunologiquement active, dans le second pic d'élution (PM ; te 42 000). Exemple 2 : Citrullination de la filaggrine recombinante Après dosage des protéines totales par la méthode de Bradford (réactifs Biorad), la citrullination est effectuée, par action de la Peptidyl Arginine Déiminase 4 heures, à +37 C, sous agitation magnétique à raison de 4 Unités enzymatiques/mg de protéines totales, en présence d'EDTA 0,1 M/ DTT 1 M 1 CaCb 0,5 M. Le taux de protéines totales est alors redosé sur la fraction déiminée. La filaggrine citrullinée est purifée par chromatographie Ni-NTA, puis chromatographie par filtration sur gel. Le taux de citrullination détecté est de 53%. Exemple 3 : A) Echantillons Les tests ont été effectués sur les échantillons suivants : 63 sérums témoins atteints des pathologies suivantes algodystrophie, goutte, hémopathie maligne, maladie de Paget, névralgie, pathologie mécanique, périartérite noueuse, polymyosite, rhumatisme lupique, rhumatisme psoriasique, sclérodermie, spondylarthrite ankylosant, spondylarthropathie, syndrome de Goujerot, syndrome de Sharp, vascularite. 65 sérums de patients atteints de polyarthrite rhumatoïde diagnostiquée cliniquement. B) Matériel Plaque Nunc Maxisorp 468667 Etuve à 35-39 C Laveur Axia microwasher U4402 Lecteur de plaques Biotek (marque de commerce) C) Protocole Dépôt dans les puits : 100 1-11 par puits de 2, 5 ug/ml de filaggrine, pendant 2 heures à 37 C en tampon PBS pH 7, 2 3 lavages avec 300 u) par puits de tampon PBS Tween 0,05% pH 7, 2 Passivation 1 heure à 37'C avec 250 1-11 par puits de tampon PBS BSA1% pH7, 2 3 lavages avec 300 nul par puits de tampon PBS Tween 0.05% pH 7,2 Incubation pendant 1 heure à 37 C avec 100 1-11 par puits de sérum dilué au 1/1 OOème en tampon Tris 10mM, NaCI 350mM, TritonXI00 1%, BSA 1 %, sérum de lapin 10% pH 7,6 3 lavages avec 300 1-11 par puits de tampon PBS Tween 0.05% pH 7,2 Incubation d'un conjugué anti-lgG humaine dilué en tampon Tris 10mM, NaCI 350mM, TritonX100 1%, BSA 1%, sérum de lapin 10% pH 7.6 ; 100 1-11 par puits 3 lavages avec 300 ut par puits de tampon PBS Tween 0.05% pH 7, 2 Révélation enzymatique : - 100 ut d'orthophénytènediamine (OPD) par puits - incubation 10 min à 18-25 C - blocage par 100 ut H2S04 - lecture à 492 nm Les échantillons sont dosés en parallèle sur une plaque revêtue de filaggrine non citrullinée et sur une autre plaque revêtue de filaggrine citrullinée. Les échantillons sont dosés en simple. Les résultats sont exprimés en densité optique. Les signaux indiqués à une densité optique de 3 sont égaux ou supérieurs à 3. D) Résultats Les résultats sont rassemblés dans les tableaux 1 et 2 ci-après. Avec les résultats obtenus sur filaggrine citrullinée selon WO-A- 98/08946 (tableau 1), les performances sont les suivantes : 100% spécificité seuil à 1,337 34% sensibilité (22/65) 98% spécificité seuil à 0,937 38% sensibilité (25/65) 95% spécificité seuil à 0,335 61,5% sensibilité (40/65) Avec les résultats obtenus sur filaggrine citrullinée-filaggrine non citrullinée selon l'invention (tableau 2), les performances sont les suivantes : 100% spécificité seuil à 0, 731 38% sensibilité (25/65) 98% spécificité seuil à 0,009 69% sensibilité (45/65) 95% spécificité seuil à-0, 004 77% sensibilité (50/65) Dans les deux cas, à 95% de spécificité 3 sérums sont des faux positifs. Tous les échantillons détectés sur la phase filaggrine citrullinée sont détectés avec le système différentiel à 100% et 98% de spécificité. Un seul sérum est détecté en plus avec le système différentiel. A 95% de spécificité, 7 échantillons sont détectés en plus avec le système différentiel. Le système différentiel est plus performant que la phase filaggrine citrullinée sur cette population avec 69% de sensibilité pour 98% de spécificité. Pour cette population, les performances des tests habituellement utilisés sont les suivantes : GIFOR (immunofluorescence sur coupe d'oesophage de rat) 98% spécificité seuil à 2 49% sensibilité (32/65) Gblot 98% spécificité seuil à 2,25 58% sensibilité (38/65) Les performances obtenues en ELISA sur filaggrine de rat sont meilleures que les techniques actuellement utilisées, GIFOR et GBlot. Tableau 1 Résultats en DO à 492nm des tests ELISA sur filaggrine citrullinée (FC) Témoins né2atifs FC Sérums PR FC 58 0. 050 78 0. 051 57 0. 056 76 0. 059 10 0. 058 72 0. 077 33 0. 060 74 0. 077 51 0. 062 81 0. 079 53 0. 062 79 0. 088 44 0. 064 73 0. 091 54 0.066 71 0. 098 47 0. 069 80 0. 102 49 0. 069 75 0. 109 38 0.070 65 0. 113 39 0. 070 86 0. 121 40 0. 071 66 0. 124 50 0. 072 83 0. 132 29 0. 073 69 0. 141 45 0. 073 77 0. 147 25 0. 076 84 0. 151 55 0. 076 85 0. 156 28 0. 079 90 0. 157 42 0. 083 67 0. 158 46 0. 083 68 0. 158 60 0. 085 70 0. 202 43 0. 087 89 0. 207 31 0. 088 88 0. 276 34 0. 088 92 0. 299 37 0. 090 93 0.387 41 0. 090 87 0. 409 16 0.092 64 0. 434 35 0. 092 82 0. 472 48 0. 092 95 0. 496 26 0. 093 98 0. 499 52 0.093 96 0. 524 17 0. 097 94 0535 61 0. 098 100 0. 611 27 0. 111 99 0. 659 19 0.113 91 0. 667 20 0.113 103 0. 726 4 0. 116 101 0. 729 22 0. 116 102 0. 801 36 0. 123 97 0. 853 18 0. 124 104 0. 939 24 0. 124 105 1. 203 14 0. 128 106 1. 240 12 0.129 107 1526 23 0. 130 108 1. 694 7 0. 133 109 1. 900 5 0. 134 110 2.076 9 0. 135 111 2. 387 30 0. 142 114 2. 593 Tableau 1 (suite) Témoins FC sérums PR FC négatifs 59 0. 146 112 2. 610 6 0. 158 113 3.000 21 0. 159 115 3. 000 11 0. 166 116 3.000 32 0. 167 117 3. 000 15 0. 169 118 3. 000 62 0. 193 119 3. 000 56 0. 222 120 3. 000 3 0. 253 121 3. 000 13 0. 269 122 3. 000 1 0. 335 123 3. 000 8 0. 369 124 3. 000 63 0. 937 125 3. 000 2 1. 337 126 3. 000 127 3. 000 128 3. 000 Tableau 2 Résultats en DO à 492nm des tests ELISA sur filaggrine citrullinée (FC) et non citrullinée (FNC) témoins négatifs FNC FC FC - FNC sérums PR FNC FC FC FNC 1 0. 780 0. 335-0. 445 64 0. 777 0. 434-0. 343 2 1. 747 1. 337-0. 410 65 0. 202 0. 113-0. 089 3 0.433 0. 253-0. 180 66 0. 204 0. 124-0. 080 4 0. 268 0. 116-0. 152 67 0. 222 0. 158-0. 064 5 0. 271 0. 134-0. 137 68 0. 221 0. 158-0. 063 6 0.294 0. 158-0. 136 69 0. 195 0. 141-0. 054 7 0. 262 0. 133-0. 129 70 0. 255 0. 202-0. 053 8 0. 492 0. 369-0. 123 71 0. 131 0. 098-0. 033 9 0. 231 0. 135-0. 096 72 0.109 0. 077-0. 032 10 0. 149 0. 058-0. 091 73 0. 115 0. 091-0. 024 11 0. 256 0. 166-0. 090 74 0. 099 0. 077-0. 022 12 0. 218 0. 129-0. 089 75 0. 131 0. 109-0. 022 13 0. 351 0. 269-0. 082 76 0. 072 0. 059-0. 013 14 0. 209 0. 128-0. 081 77 0. 157 0. 147-0. 010 15 0. 248 0. 169-0. 079 78 0. 055 0. 051-0. 004 16 0. 158 0. 092-0. 066 79 0. 090 0. 088-0. 002 17 0. 162 0. 097-0. 065 80 0. 104 0. 102-0. 002 18 0.188 0. 124-0. 064 81 0. 079 0. 079 0. 000 19 0. 174 0. 113-0. 061 82 0. 466 0.472 0. 006 20 0. 173 0. 113-0. 060 83 0. 124 0. 132 0. 008 21 0. 219 0. 159-0. 060 84 0. 137 0. 151 0. 014 22 0. 171 0. 116-0. 055 85 0.137 0. 156 0. 019 23 0. 179 0. 130-0. 049 86 0. 101 0. 121 0.020 24 0. 172 0. 124-0. 048 87 0. 372 0. 409 0. 037 25 0. 123 0. 076-0. 047 88 0. 236 0. 276 0. 040 26 0. 139 0. 093-0. 046 89 0.137 0. 207 0. 070 27 0. 153 0. 111-0. 042 90 0. 057 0. 157 0. 100 28 0. 120 0. 079-0. 041 91 0. 514 0. 667 0. 153 29 0. 113 0. 073-0. 040 92 0. 058 0. 299 0. 241 30 0. 181 0. 142-0. 039 93 0. 134 0. 387 0. 253 31 0. 126 0. 088-0. 038 94 0. 240 0. 535 0. 295 32 0. 204 0. 167-0. 037 95 0. 156 0. 496 0. 340 33 0.096 0. 060-0. 036 96 0. 122 0. 524 0. 402 34 0. 122 0. 088-0. 034 97 0. 424 0. 853 0. 429 35 0.125 0. 092-0. 033 98 0. 063 0. 499 0. 436 36 0. 156 0. 123-0. 033 99 0. 208 0. 659 0.451 37 0. 122 0. 090-0. 032 100 0. 117 0. 611 0. 494 38 0. 101 0. 070-0. 031 101 0. 207 0. 729 0. 522 39 0. 101 0. 070-0. 031 102 0. 165 0. 801 0. 636 40 0. 098 0. 071-0. 027 103 0. 072 0. 726 0. 654 41 0. 117 0. 090-0. 027 104 0. 142 0. 939 0. 797 42 0. 110 0. 083-0. 027 105 0. 231 1. 203 0. 972 43 0. 112 0. 087-0. 025 106 0. 087 1. 240 1. 153 44 0. 089 0. 064-0. 025 107 0. 118 1. 526 1. 408 45 0. 097 0. 073-0. 024 108 0. 268 1.694 1. 426 46 0. 107 0. 083-0. 024 109 0. 136 1. 900 1. 764 47 0. 092 0. 069-0. 023 110 0. 095 2. 076 1. 981 48 0. 113 0. 092-0. 021 111 0.127 2. 387 2. 260 49 0. 089 0. 069-0. 020 112 0. 256 2.610 2. 354 50 0. 091 0. 072-0. 019 113 0. 555 3. 000 2. 445 Tableau 2 (suite) témoins FNC FC FC - FNC sérums PR FNC FC FC-FNC négatifs 51 0. 081 0. 062-0. 019 114 0. 128 2.593 2. 465 52 0. 112 0. 093-0. 019 115 0. 518 3.000 2. 482 53 0. 081 0. 062-0. 019 116 0. 338 3. 000 2. 662 54 0. 083 0. 066-0. 017 117 0. 315 3. 000 2. 685 55 0. 092 0. 076-0. 016 118 0. 295 3. 000 2. 705 56 0.233 0. 222-0. 011 119 0. 224 3. 000 2. 776 57 0. 065 0. 056-0. 009 120 0. 184 3.000 2. 816 58 0. 058 0. 050-0. 008 121 0. 184 3.000 2. 816 59 0. 153 0. 146-0. 007 122 0. 181 3. 000 2. 819 60 0. 089 0. 085-0. 004 123 0. 171 3. 000 2. 829 61 0. 095 0. 098 0. 003 124 0. 160 3. 000 2. 840 62 0. 184 0. 193 0. 009 125 0. 145 3. 000 2.855 63 0. 206 0. 937 0. 731 126 0. 081 3. 000 2. 919 127 0. 062 3. 000 2. 938 128 0. 056 3. 000 2. 944 REVENDICATIONS 1. Procédé de détection d'auto-anticorps (AAF) spécifiques de la polyarthrite rhumatoïde (PR), dans un échantillon biologique susceptible de contenir lesdits auto-anticorps (AAF) et d'autres anticorps non spécifiques de la PR, selon lequel on dispose, d'une part, d'une filaggrine (FNC) ou d'un dérivé d'une filaggrine (FNC) ou d'un peptide de la filaggrine (PFNC) comprenant au moins un résidu arginine, et d'autre part, de ladite filaggrine citrullinée (FC) ou d'un dérivé de ladite filaggrine citrullinée (FC) ou dudit peptide citrulliné (PFC), on met ledit échantillon biologique en contact avec, d'une part, ladite filaggrine (FNC) ou ledit dérivé de la filaggrine (FNC) ou ledit peptide (PFNC), et d'autre part, ladite filaggrine (FC) ou ledit dérivé de ladite filaggrine (FC) ou ledit peptide (PFC), dans des conditions appropriées pour la formation d'immuno-complexes avec les auto-anticorps (MF), on détecte et on quantifie la formation d'immuno-complexes formés entre les auto-anticorps (AAF) ou d'autres anticorps présents dans l'échantillon et ladite filaggrine (FNC) ou ledit dérivé de la filaggrine (FNC) ou ledit peptide (PFNC), d'une part, et ladite filaggrine citrullinée (FC) ou ledit dérivé de ladite filaggrine (FC) ou ledit peptide (PFC), d'autre part, cette quantification étant exprimée par une valeur respectivement XNC et Xc, on retranche la valeur de XNC à celle de Xc. 2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que la filaggrine est choisie parmi la filaggrine humaine et la filaggrine de rat. 3. Procédé selon la revendication 2, caractérisé en ce que la filaggrine est une filaggrine recombinante de rat et a la séquence SEQ ID NO : 1. 4. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que le peptide comprend une séquence peptidique choisie parmi SEQ ID NO : 2 à SEQID NO : 6. 5. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que la filaggrine citrullinée (FC) ou le peptide citrulliné (PFC) est obtenu par action de la peptidyl arginine déiminase. 6. Procédé selon les revendications 1 et 5, caractérisé en ce qu'on dispose d'une filaggrine (FNC) et en ce qu'au moins 20% des résidus arginine de la FNC sont citrullinés pour obtenir ladite filaggrine citrullinée (FC). 7. Procédé selon la revendication 6, caractérisé en ce qu'au moins 30%, de préférence au moins 50% des résidus arginine de la FNC sont citrullinés. 8. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que l'échantillon biologique est choisi parmi le sang, le plasma, le sérum. 9. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'on met en contact les immuno-complexes formés avec un conjugué constitué par un anticorps marqué dirigé contre les immunoglobulines humaines, dans des conditions appropriées pour la formation d'immuno-complexes marqués, puis on détecte et on quantifie les immuno-complexes marqués. 10. Procédé selon la revendication 9, caractérisé en ce que le conjugué est un anticorps anti-immunoglobuline humaine marqué à la phosphatase alcaline ou à la peroxydase, puis on détecte et on quantifie la formation d'immuno-complexes marqués par colorimétrie ou fluorimétrie, la quantification étant exprimée en valeurs XNC et Xc de densité optique ou de fluorescence. 11. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que si la valeur Xc est supérieure à la valeur XNC, on a détecté et quantifié, dans ledit échantillon, des auto-anticorps (AAF) spécifiques de la PR.