FR 2825363 A1 20021206 FR 0107184 A 20010531 L'hépatite C est la cause principale des hépatites acquises par transfusion. L'hépatite C peut également être transmise par d'autres voies percutanées, par exemple par injection de drogues par voie intraveineuse. Le risque de contamination des professionnels de la santé n'est par ailleurs pas négligeable. L'hépatite C se distingue des autres formes de maladies du foie associées à des virus, telles que les hépatites A, B ou D. Les infections par le virus de l'hépatite C (VHC ou HCV) sont souvent chroniques avec pour résultante des maladies du foie, telles que hépatite, cirrhose et carcinome dans un grand nombre de cas (5 à 20%). Bien que le risque de transmission du virus par transfusion ait diminué du fait de la mise en place de tests de criblage dans les années 1990, la fréquence des hépatites C reste élevée. A titre d'exemple, une étude récente indique qu'il y aurait encore aujourd'hui 15 000 nouveaux cas d'infection par an en France (S. Deuffic et al., Hepatology 1999 ; 29 : 1596-1601). Actuellement, environ 170 millions de personnes à travers le monde sont infectées de manière chronique par le VHC. Les populations à risque élevé sont principalement le personnel hospitalier et les utilisateurs de drogues intraveineuses, mais il existe des donneurs de sang asymptomatiques qui n'appartiennent pas à ces groupes à risque élevé et chez lesquels des anticorps antiVHC circulants ont été retrouvés. Pour ces derniers, la voie de l'infection n'a encore pas été identifiée. Le VHC a été le premier virus hépatotrope isolé au moyen des techniques de biologie moléculaire. Les séquences du génome viral ont été clonées avant que la particule virale ait été visualisée. Du fait de son organisation génomique et de son mode présumé de réplication, le VHC a été classifié récemment dans un nouveau genre de la famille des Flaviviridae, les hepacivirus. Le genre hepacivirus regroupe actuellement les virus de l'hépatite C et de l'hépatite G (GBV-C et les virus GBV-A et GBV-B). Le VHC est un virus à ARN simple brin positif, de 9,5 kb, qui se réplique par une copie d'ARN complémentaire et dont le produit de la traduction est un précurseur d'une polyprotéine unique d'environ 3 000 acides aminés. L'extrémité 5'du génome du VHC correspond à une région non traduite adjacente aux gènes qui codent pour les protéines structurales, la protéine core de la nucléocapside et les deux glycoprotéines d'enveloppe, El et E2. La région non traduite 5'et le gène core sont relativement bien conservés dans les différents génotypes. Les protéines d'enveloppe E1 et E2 sont codées par des régions plus variables d'un isolat à un autre. L'extrémité 3'du génome du VHC contient les gènes qui codent pour les protéines non structurales (NS2, NS3, NS4, NS5) et pour une région 3'non codante possédant un domaine bien conservé. Des études cliniques ont montré que des anticorps spécifiquement dirigés contre les régions conservées de la nucléocapside apparaissent précocement après infection par le VHC. D'autres études ont par ailleurs mis en évidence l'existence de plusieurs antigènes immunodominants qui constituent de bons marqueurs pour la réalisation de tests diagnostiques des infections à VHC. Dans la recherche de polypeptides plus spécifiques, la Demanderesse a apporté une solution qui fait l'objet du document WO-A-00/31130, en déterminant des polypeptides dits mimotopes à même de se substituer aux antigènes précités Selon la présente invention, on a mis au point une solution alternative plus avantageuse au problème posé par les antigènes et mimotopes ci-dessus, en déterminant des polypeptides plus spécifiques que lesdits antigènes et induisant une réponse immunitaire plus élevée que lesdits mimotopes. Ces polypeptides sont suffisamment immunoréactifs pour être utilisés de manière courante dans des tests de diagnostic, lesdits polypeptides étant capables de réagir spécifiquement avec les anticorps de patients infectés par le virus VHC. En effet, la Demanderesse a montré que les polypeptides de l'invention étaient capables d'être reconnus à la fois par l'anticorps monoclonal de souris 19D9D6 et par des sérums humains individuels VHC positifs. Les polypeptides de l'invention sont des mimotopes, c'est à dire des polypeptides qui sont capables de mimer fonctionnellement un site de liaison pour un anticorps monoclonal. Les séquences de ces mimotopes sont par définition des séquences qui ne s'identifient pas à une séquence native linéaire continue ou qui n'apparaissent pas de quelle que manière que ce soit dans la protéine naturelle Le polypeptide de l'invention, capable de réagir spécifiquement avec les anticorps de patients infectés par le virus VHC, doit en outre répondre à au moins une des définitions suivantes : - sa séquence peptidique comprend au moins une séquence choisie parmi SEQ ID NO : 2 à SEQ ID NO : 17 et SEQ ID NO : 19 à SEQ ID NO. 29, et les séquences équivalentes de SEQ ID NO : 2 à SEQ ID NO : 17 et SEQ ID NO : 19 à SEQ ID NO 29, ou - sa séquence peptidique consiste en une séquence choisie parmi SEQ ID NO : 2 à SEQ ID NO. 17 et SEQ ID NO : 19 à SEQ ID NO : 29, et les séquences équivalentes de SEQ ID NO : 2 à SEQ ID NO : 17 et SEQ ID NO : 19 à SEQ ID NO : 29. De préférence,-sa séquence peptidique comprend ou consiste en une séquence choisie parmi SEQ ID NO : 2 à SEQ ID NO : 6, SEQ ID NO : 9 à SEQ ID NO : 14 et SEQ ID NO : 26 à SEQ ID NO : 29. Une séquence équivalente d'une séquence de référence est une séquence qui conserve les propriétés immunoréactives de cette séquence de référence, et qui (a) présente, par rapport à cette séquence de référence, au moins une substitution d'un acide aminé par un acide aminé équivalent et/ou (b) est structurellement modifiée. Ainsi, les séquences équivalentes de l'une quelconque des SEQ ID NO : 2 à SEQ ID NO : 17 et SEQ ID NO : 19 à SEQ ID NO : 29 sont des séquences sélectionnées parmi les séquences qui conservent les propriétés immunoréactives de ladite séquence de référence choisie parmi SEQ ID NO : 2 à SEQ ID NO : 17 et SEQ ID NO : 19 à SEQ ID NO : 29 et qui (a) présentent, par rapport à l'une quelconque des SEQ ID NO : 2 à SEQ ID NO : 17 et SEQ ID NO : 19 à SEQ ID NO : 29, au moins une substitution d'un acide aminé par un acide aminé équivalent et/ou (b) sont structurellement modifiées. Sont considérés comme équivalents, des acides aminés appartenant au même groupe, parmi les six groupes suivants : Groupe 1: alanine, proline, glycine. Groupe 2: acide aspartique, acide glutamique. Groupe 3 histidine, lysine, arginine. Groupe 4 : asparagine, glutamine, sérine, thréonine. Groupe 5: : phénylalanine, tyrosine, tryptophane. Groupe 6: : isoleucine, leucine, valine, méthionine. Cette équivalence a été déterminée à partir des informations contenues dans l'article de Kramer A. et al (Molecular Immunology, Vol. 32, N'7, pp 459-465 (1995)). Ces auteurs ont constitué des banques dans lesquelles pour réduire le problème de l'explosion combinatoire du nombre de molécules, ils ont utilisé des groupes d'acides aminés constitués d'acides aminés ayant des propriétés physico-chimiques similaires et les acides aminés regroupés dans chacun de ces six groupes, listés cidessus, sont considérés comme équivalents dans la présente invention. Une séquence peptidique, dite structurellement modifiée, est aussi considérée comme équivalente de l'une des SEQ ID NO : 2 à SEQ ID NO : 17 et SEQ ID NO : 19 à SEQ ID NO : 29 si, dans la mesure où elle conserve les propriétés immunoréactives de ladite SEQ ID NO : 2 à SEQIDNO : 17 et SEQ ID NO : 19 à SEQ ID NO : 29, elle présente, par rapport à celle-ci, au moins l'une quelconque des modifications suivantes : Remplacement d'un ou plusieurs acides aminés de la série L par un acide aminé de la série D, et vice-versa, Introduction d'une modification des chaînes latérales des acides aminés, telle qu'une acétylation des fonctions amines, une carboxylation des fonctions thiols, une estérification des fonctions carboxyliques, Modification des liaisons peptidiques telles que par exemple des liaisons carba, rétro, inverso, retro-inverso, réduites et méthylène-oxy. Il est aussi possible de définir l'équivalence d'une séquence peptidique par rapport à une séquence peptidique de référence par son identité ou son homologie, exprimée en pourcentage, avec ladite séquence de référence. Ce pourcentage est déterminé, pour une suite d'un nombre donné d'acides aminés contigus, par alignement des deux séquences, déplacement de l'une par rapport à l'autre, et comparaison des acides aminés dans les deux séquences. Le pourcentage d'identité est déterminé à partir du nombre d'acides aminés qui sont identiques à des acides aminés de la séquence de référence, dans la même position. Le pourcentage d'homologie est déterminé à partir du nombre d'acides aminés qui sont équivalents à des acides aminés de la séquence de référence, dans la même position. Avant d'exposer l'invention plus en détails, on définit ci-après différents termes employés dans la description et les revendications. Par polypeptide , on désigne un peptide, à l'état isolé, présentant un enchaînement d'un nombre variable d'acides aminés, tel qu'un oligopeptide, une protéine, une protéine de fusion, un peptide de fusion, un peptide de synthèse. Un polypeptide peut être obtenu par différentes techniques bien connues de l'homme du métier, et notamment par synthèse chimique ou par des techniques de recombinaison génétique. Les polypeptides selon l'invention peuvent être obtenus par des méthodes de synthèse classique, par exemple avec un synthétiseur automatique de peptides, ou par les techniques de génie génétique comprenant l'insertion d'une séquence d'ADN codant pour ledit polypeptide dans un vecteur d'expression tel qu'un plasmide ou un virus, et la transformation de cellules avec ce vecteur d'expression et culture de ces cellules. Un polypeptide de l'invention comporte avantageusement au plus 50 acides aminés, préférentiellement au plus 30 acides aminés, ou mieux encore au plus 21 acides aminés, voire au plus 15 acides aminés. Par échantillon biologique , on entend notamment le sang, le sérum, le plasma, les cellules d'hépatocytes primaires, les lymphocytes T, les lymphocytes B, des extraits tissulaires, en particulier de foie. En effet, il est connu que le VHC est hépatotrope et il a été plus récemment montré qu'il était également lymphotrope. Outre les polypeptides définis ci-dessus, la présente invention concerne également un réactif pour la détection et/ou la quantification d'anticorps anti-VHC dans un échantillon biologique prélevé chez un patient infecté par le VHC qui comprend au moins un, avantageusement au moins deux polypeptides de l'invention tels que définis ci-dessus, ainsi qu'un kit pour la détection et/ou la quantification d'anticorps anti-VHC dans un échantillon biologique prélevé chez un patient infecté ou suspecté avoir été infecté par le virus VHC qui comprend un réactif de l'invention. L'invention se rapporte également à plusieurs procédés pour la détection et/ou la quantification d'anticorps anti-VHC dans un échantillon biologique prélevé chez un patient infecté ou susceptible d'avoir été infecté par le virus VHC qui sont décrits plus en détail ci-dessous. Le premier procédé est un procédé dénommé sandwich qui peut être réalisé en une ou plusieurs fois et qui comprend au moins les étapes suivantes : - un mélange est préparé comprenant : (i) un réactif tel que défini précédemment, qui est ou qui sera immobilisé sur une phase solide, (ii) l'échantillon devant être testé et comprenant s'ils sont présents des anticorps anti-VHC, (iii) un ligand marqué qui sera capable de réagir avec les anticorps anti- VHC de l'échantillon ; - le mélange est incubé pendant un temps prédéterminé ; la phase solide est séparée de la phase liquide ; et - la présence potentielle d'anticorps anti-VHC dans l'échantillon est révélée en mesurant le degré de marquage dans la phase solide Le ligand est alors soit la protéine Core ou un fragment de ladite protéine, soit un polypeptide de synthèse dont la séquence peptidique comprend ou consiste en la séquence de ladite protéine Core ou en un fragment de ladite protéine, soit un des polypeptides de l'invention marqué dans le cas où le réactif ne comprenait qu'un seul polypeptide de l'invention immobilisé sur la phase solide, soit une antiimmunoglobuline. Le deuxième procédé est dénommé test par compétition et comprend au moins les étapes suivantes : un mélange est préparé comprenant : (i) un réactif tel que défini précédemment, qui est ou qui sera immobilisé sur une phase solide, (ii) l'échantillon devant être testé et comprenant s'ils sont présents des anticorps anti-VHC, (iii) des anticorps anti-VHC marqués qui seront capables de réagir avec le réactif ; - le mélange est incubé pendant un temps prédéterminé ; - la phase solide est séparée de la phase liquide ; et - la présence potentielle d'anticorps anti-VHC dans l'échantillon est révélée en mesurant le degré de marquage dans la phase solide. Les polypeptides de l'invention sont immunogènes et sont donc utilisés pour la production d'anticorps monoclonaux ou polyclonaux ou de fragments desdits anticorps par réaction immunologique avec un organisme animal, de préférence une souris un rat ou un lapin à un agent immunogène qui consiste en un polypeptide de l'invention tel que défini précédemment. Par anticorps, on entend les anticorps polyclonaux, les anticorps monoclonaux, les anticorps transmembranaires et les anticorps humanisés ou des fragments desdits anticorps. La production d'anticorps polyclonaux et monoclonaux fait partie des connaissances générales de l'homme du métier. On peut citer à titre de référence Köhler G. et Milstein C. (1975) : Continuous culture of fused cells secreting antibody of predefined specificity, Nature 256 : 495-497 et Galfre G. et al. (1977) Nature, 266 522-550 pour la production d'anticorps monoclonaux et Roda A., Bolelli G. F. : Production of high-titer antibody to bile acids, Journal of Steroid Biochemistry, Vol. 13, pp. 449-454 (1980) pour la production d'anticorps polyclonaux. Pour la production d'anticorps monoclonaux, l'immunogène peut être couplé à de l'hémocyanine de Lymphet Keyhole (peptide KLH) comme support pour l'immunisation ou à de l'albumine sérique (peptide SA). Les animaux sont soumis à une injection d'immunogène en utilisant de l'adjuvant complet de Freund. Les sérums et les surnageants de culture d'hybridome issus des animaux immunisés sont analysés pour leur spécificité et leur sélectivité en utilisant des techniques classiques, telles que par exemple des tests ELISA ou de Western Blot. Les hybridomes produisant les anticorps les plus spécifiques et les plus sensibles sont sélectionnés. Des anticorps monoclonaux peuvent également être produits in vitro par culture cellulaire des hybridomes produits ou par récupération de liquide d'ascite, après injection intrapéritonéale des hybridomes chez la souris. Quel que soit le mode de production, en surnageant ou en ascite, les anticorps sont ensuite purifiés. Les méthodes de purification utilisées sont essentiellement la filtration sur gel échangeur d'ions et la chromatographie d'exclusion ou la chromatographie d'affinité (protéine A ou G). Un nombre suffisant d'anticorps sont criblés dans des tests fonctionnels pour-identifier les anticorps les plus performants. La production in vitro d'anticorps, de fragments d'anticorps ou de dérivés d'anticorps, tels que des anticorps chimères produits par génie génétique est bien connue de l'homme du métier. Par anticorps transmembranaire, on entend un anticorps dont au moins la région fonctionnelle capable de reconnaître et de se fixer à son antigène spécifique est exprimée à la surface des cellules cibles pour permettre lesdites reconnaissance et fixation. Plus particulièrement, les anticorps selon la présente invention consistent en des polypeptides de fusion comprenant les amino acides définissant ladite région fonctionnelle et une séquence d'amino acides (polypeptide transmembranaire) permettant l'ancrage au sein de la double couche lipidique membranaire de la cellule cible ou à la surface externe de cette bi-couche. Les séquences nucléiques codant pour de nombreux polypeptides transmembranaires sont décrites dans la littérature. Les formes"humanisées"d'anticorps non humains, par exemple murins, sont des anticorps chimères qui comprennent une séquence minimale dérivée d'une immunoglobuline non humaine. Pour la plupart, les anticorps humanisés sont des immunoglobulines humaines (anticorps récepteur) dans lesquelles des résidus d'une région hypervariable du récepteur sont remplacés par des résidus d'une région hypervariable d'une espèce donneur (anticorps donneur) non humaine, telle que souris, rat, lapin ou primate non humain, ayant la spécificité, l'affinité et la capacité souhaitées. Dans certains cas, les résidus (FR) de la région Fv de l'immunoglobuline humaine sont remplacés par des résidus correspondants non humains. De plus, les anticorps humanisés peuvent comprendre des résidus qui ne sont pas trouvés dans l'anticorps receveur ou dans l'anticorps donneur. Ces modifications sont effectuées pour améliorer les performances de l'anticorps. En général, l'anticorps humanisé comprendra au moins et de préférence deux domaines variables, dans lesquels tout ou à peu près tout des boucles hypervariables correspondent à une immunoglobuline non humaine et tout ou à peu près tout des régions FR seront celles d'une immunoglobuline humaine. Les anticorps humanisés facultativement pourront aussi comprendre au moins une partie d'une région constante (Fc) d'une immunoglobuline, telle qu'une immunoglobuline humaine (Jones et al., Nature 321 : 522-525 (1986) ; Reichmann et al., Nature 332 : 323-329 (1988) ; et Presta et al., Curr. Op. Struct. Biol. 2 : 593-596 (1992). Par fragment d'anticorps on entend les fragments F (ab) 2, Fab, Fab', scFv (Blazar et al., 1997, Journal of Immunology 159 : 5821-5833 et Bird et al., 1988, Science 242 : 423-426) d'un anticorps natif et par dérivé on entend, entre autres, un dérivé chimérique d'un anticorps natif (voir par exemple Arakawa et al, 1996, J. Biochem 120 : 657-662 et Chaudray et al., 1989, Nature 339 : 394-397). L'invention se rapporte donc aussi à un réactif pour la détection d'une infection par le virus VHC qui comprend au moins un anticorps monoclonal ou un anticorps polyclonal ou leurs fragments tel (s) que défini (s) ci-dessus et un kit comprenant au moins un tel réactif, ainsi que l'utilisation desdits anticorps monoclonaux ou polyclonaux dans plusieurs procédés pour la détection et/ou la quantification de la protéine Core dans un échantillon biologique prélevé chez un patient infecté ou susceptible d'avoir été infecté par le VHC. Les deux premiers procédés sont dénommés sandwich et sont décrit plus en détail ci-dessous. Il convient par ailleurs de noter que dans certains cas dans lesquels la protéine Core circulante dans le plasma ou le sérum n'est pas en quantité suffisante pour permettre un test de détection suffisamment sensible il est possible de prétraiter un échantillon biologique pour lyser les cellules ou dissocier les complexes et libérer la protéine. Le premier procédé sandwich de l'invention comprend au moins les étapes suivantes : - un mélange est préparé comprenant : (i) un réactif qui consiste en au moins un anticorps monoclonal ou un fragment d'anticorps monoclonal tel que défini précédemment, qui est ou qui sera immobilisé sur une phase solide, (ii) l'échantillon devant être testé et comprenant si elle est présente la protéine Core, (iii) un ligand marqué qui sera capable de réagir avec la protéine Core de l'échantillon ; - le mélange est incubé pendant un temps prédéterminé ; - la phase solide est séparée de la phase liquide ; et la présence potentielle de la protéine Core dans l'échantillon est révélée en mesurant le degré de marquage dans la phase solide. Le ligand est un anticorps monoclonal ou un anticorps polyclonal ou un fragments desdits anticorps. Le deuxième procédé sandwich comprend au moins les étapes suivantes : - un mélange est préparé comprenant : (i) un réactif-qui consiste en au moins un anticorps polyclonal ou un fragment dudit anticorps tel que défini précédemment, qui est ou qui sera immobilisé sur une phase solide, (ii) l'échantillon devant être testé et comprenant si elle est présente la protéine Core, (iii) un ligand marqué qui sera capable de réagir avec la protéine Core de l'échantillon ; - le mélange est incubé pendant un temps prédéterminé ; - la phase solide est séparée de la phase liquide ; et - la présence potentielle de la protéine Core dans l'échantillon est révélée en mesurant le degré de marquage dans la phase solide. Le ligand est un anticorps monoclonal ou un anticorps polyclonal ou leurs fragments. Le troisième procédé est un procédé par compétition qui comprend au moins les étapes suivantes : - un mélange est préparé comprenant : (i) un réactif qui comprend au moins un anticorps monoclonal ou un anticorps polyclonal ou des fragments desdits anticorps de l'invention qui est ou qui sera immobilisé sur une phase solide, (ii) l'échantillon devant être testé et comprenant si elle est présente la protéine Core, (iii) un ligand marqué qui sera capable de réagir avec le réactif (i) et qui consiste en un polypeptide de l'invention tel que défini précédemment ; - le mélange est incubé pendant un temps prédéterminé ; - la phase solide est séparée de la phase liquide ; et - la présence potentielle de la protéine Core dans l'échantillon est révélée en mesurant le degré de marquage dans la phase solide. Un autre procédé pour la mise en évidence de la protéine Core dans un échantillon biologique comprend au moins les étapes suivantes : - on prélève chez un individu suspecté avoir été infecté par le VHC un extrait tissulaire, par exemple de foie, par biopsie, et on met en contact ledit extrait tissulaire avec au moins un anticorps monoclonal ou polyclonal marqué de l'invention. Généralement, la présence du VHC est mise en évidence par immunofluorescence directe sur l'extrait à tester. En raison du pouvoir immunogène des polypeptides de l'invention qui induisent une forte réponse immune ces derniers sont utilisables individuellement ou en combinaison comme composant (s) actif (s) de la réponse immune. Donc un objet de l'invention est également une composition immunothérapeutiquement active, notamment une préparation vaccinale, qui comprend au moins un polypeptide de l'invention comme ingrédient actif, et éventuellement un support pour le ou lesdits polypeptide (s) et/ou un excipient et/ou un adjuvant et/ou un diluant pharmaceutiquement acceptable. Une telle composition immunothérapeutiquement active et en particulier une composition vaccinale préparée est injectable, c'est-à-dire en solution liquide ou en suspension. En option, la préparation peut aussi être émulsifiée. La molécule antigénique, c'est à dire le ou les polypeptides de l'invention, peut être mélangée avec des excipients qui sont pharmaceutiquement acceptables et compatibles avec l'ingrédient ou principe actif Des exemples d'excipients favorables sont l'eau, une solution saline, le dextrose, le glycérol, l'éthanol ou des équivalents et leurs combinaisons. Si désiré, le vaccin peut contenir des quantités mineures de substances auxiliaires comme des agents mouillants ou émulsifiants, des agents qui tamponnent le pH ou des adjuvants comme l'hydroxyde d'aluminium, le dipeptide muramyl ou leurs variations. Le vaccin est administré conventionnellement par injection, par exemple intramusculaire. Par véhicule pharmaceutiquement acceptable on entend les supports et véhicules administrables à l'être humain ou à un animal, tels que décrits par exemple dans Remington's Pharmaceutical Sciences 16th ed., Mack Publishing Co. Le véhicule pharmaceutiquement acceptable est de préférence isotonique, hypotonique ou présente une faible hypertonicité et a une force ionique relativement basse. Les définitions des excipients et adjuvants pharmaceutiquement acceptables sont également données dans Remington's Pharmaceutical Sciences précité. La quantité d'ingrédient actif est fonction du fait qu'un adjuvant ou non est ajouté à la composition. Généralement, elle est comprise entre 10 et 50/lg/ml d'ingrédient actif et usuellement de 20 ug/0, 5 ml chez les adultes et de 10 gag/0, 5 ml chez les enfants sont administrés par dose. La composition vaccinale peut de plus comprendre des protéines qui favorisent la réponse immunitaire. L'invention se rapporte donc également à un procédé pour la vaccination d'un individu selon lequel une composition vaccinale qui répond aux définitions cidessus est administrée à l'individu, de préférence par injection, et à un procédé pour le traitement ou pour la prévention d'une infection par le VHC dans lequel une composition immunothérapeutiquement active répondant aux définitions ci-dessus est administrée à un individu. Enfin, l'invention concerne l'utilisation d'un polypeptide de l'invention, pour fixer dans un échantillon biologique des anticorps caractéristiques et/ou spécifiques de l'infection par le VHC. Les caractéristiques et avantages des objets de l'invention sont ci-après mis en évidence dans les exemples suivants et à l'appui des figures 1 à 6 La figure 1 représente l'immunoréactivité du polypeptide de SEQ ID NO : 26 avec des sérums négatifs c'est-à-dire prélevés sur des patients non infectés par le VHC. En abscisse, sont représentés les numéros des sérums des individus sains. En ordonnée, est représentée la DO x 1000, à 492 nm. Les histogrammes représentent les résultats obtenus avec chaque sérum. La figure 2 représente l'immunoréactivité du polypeptide de SEQ ID NO : 13 avec un pool de sérums négatifs prélevés sur des patients sains [pool (-)] et des sérums positifs (séries p et h) prélevés sur des patients infectés par le VHC En abscisse, sont représentés les numéros des sérums des individus sains En ordonnée, est représentée la DO x 1000, à 492 nm. Les histogrammes représentent les résultats obtenus avec chaque sérum ou pool de sérums La figure 3 représente l'immunoréactivité du polypeptide de SEQ ID NO : 6 avec un pool de sérums négatifs prélevés sur des patients sains [pool (-)] et des sérums positifs (séries p et h) prélevés sur des patients infectés par le VHC. En abscisse, sont représentés les numéros des sérums des individus sains. En ordonnée, est représentée la DO x 1000, à 492 nm Les histogrammes représentent les résultats obtenus avec chaque sérum ou pool de sérums. La figure 4 représente l'immunoréactivité du polypeptide de SEQ ID NO : 26 avec un pool de sérums négatifs prélevés sur des patients sains [pool (-)] et des sérums positifs (séries p et h) prélevés sur des patients infectés par le VHC En abscisse, sont représentés les numéros des sérums des individus sains. En ordonnée, est représentée la DO x 1000, à 492 nm Les histogrammes représentent les résultats obtenus avec chaque sérum ou pool de sérums La figure 5 représente l'immunoréactivité du polypeptide de SEQ ID NO : 11 avec un pool de sérums négatifs prélevés sur des patients sains [pool (-)] et des sérums positifs (séries p et h) prélevés sur des patients infectés par le VHC. En abscisse, sont représentés les numéros des sérums des individus sains. En ordonnée, est représentée la DO x 1000, à 492 nm. Les histogrammes représentent les résultats obtenus avec chaque sérum ou pool de sérums. La figure 6 représente l'immunoréactivité du polypeptide de SEQ ID NO : 13 avec un pool de sérums négatifs prélevés sur des patients sains [T (-)] et des sérums positifs (séries p et h) prélevés sur des patients infectés par le VHC. En abscisse, sont représentés les numéros des sérums des individus sains. En ordonnée, est représentée la DO x 1000, à 492 nm. Le polypeptide est testé sous trois formes : sous forme biotinylée à l'extrémité C-terminale (peptide B), avec une queue polylysine en position C-terminale (KKK) et sous forme de peptides branchés quatre fois (MAP4). Les histogrammes représentent les résultats obtenus avec chaque sérum ou pool de sérums. Les histogrammes en blanc correspondent au peptide B, les histogrammes en gris correspondent au peptide KKK et les histogrammes en noir correspondent au peptide MAP4. Exemple 1 : Sélection de nouveaux clones de phage codant pour un dodecapeptide réagissant spécifiquement avec l'anticorps monoclonal anti-VHC core 19D9D6. Une banque de dodécapeptides exprimés à la surface d'un phage M13 (Ph. D.-12TM Phage display Peptide Library Kit, New England BioLabs Inc) a été criblée par l'anticorps monoclonal de souris 19D9D6. Cet anticorps reconnaît spécifiquement un épitope conformationnel de la protéine Core Quatre sélections successives ont été effectuées avec des quantités décroissantes d'anticorps 19D9D6 suivant les instructions du manuel d'utilisation de la banque fourni par New England BioLabs. Les phages de la quatrième sélection sont ensuite clones e ; 14 clones choisis de façon aléatoire sont amplifiés et leur ADN séquencé. Parmi ceux-ci, on a sélectionné deux clones phagiques, respectivement de séquences SEQ ID NO : 1 et SEQ ID NO : 2, qui ont été significativement reconnus par l'anticorps 19D9D6 et par un pool de sérums humains. L'immunoréactivité des clones phagiques a été testée selon les indications fournies dans le manuel d'utilisation de la banque de dodécapeptides. Les résultats sont rassemblés dans le tableau 1 ci-dessous. Tableau 1 Séquence du clone Nombre de DO 19D9D6 DO Ser + clones DO anti-OSPA DO Ser SEQ ID NO : 1 1/14 0, 835a 0, 345b SEQ ID NO : 2 1/14 0, 647 0, 320 a) les résultats sont exprimés par la densité optique moyenne des valeurs de triplicates obtenus avec l'anticorps monoclonal 19D9D6 contre 2,5 x 1010 phages moins la densité optique moyenne de triplicates obtenus avec l'anticorps contrôle antiBorrelia burgorferi OSPA contre le même nombre de phages. b) les résultats sont exprimés par la densité optique moyenne des valeurs de triplicates obtenus avec un pool de 10 sérums humains VHC positifs contre 2,5 x 1010 phages moins la densité optique moyenne de triplicates obtenus avec un pool de 10 sérums négatifs contre le même nombre de phages. Exemple 2 : Optimisation des séquences reconnues par l'anticorps 19D9D6. Dans le but de déterminer les acides aminés responsables de l'interaction des clones phagiques avec l'anticorps monoclonal 19D9D6, les motifs sélectionnés pour leur immunoréactivité avec l'anticorps 19D9D6 et le pool de sérums humains positifs pour la protéine Core, ont été synthétisés sur membrane de nitrocellulose selon la méthode précédemment décrite (C. Jolivet-Reynaud et al., 1998, J. Med. Virol. 56 : 300-309). Pour cela la séquence correspondant au motif sélectionné allongée en N et C terminal des 2 séquences flanquantes de la protéine PIII a été reproduite sous forme de dodécapeptides chevauchants d'un acide aminé. L'immunoréactivité des peptides synthétisés sur membrane de nitrocellulose a été analysée par un test immunoenzymatique avec l'anticorps 19D9D6 dilué à la concentration finale de 50 ug/ml. Après développement de la réaction colorimétrique avec du 5-bromo-4-ch1oro-3-indoy1-ss-d-ga1actopyranoside et du ferricyanure de potassium, les spots correspondant aux polypeptides immunoréactifs produisent une couleur bleue dont l'intensité relative est évaluée sur une échelle allant de 0 à 5. Les résultats sont rassemblés dans les tableaux 2 à 5 suivants. Tableau 2 Les acides aminés correspondant au peptide aléatoire inséré dans la protéine III du phage (HKHAHNYRLPFS) sont indiqués en gras Séquences Intensité des spots LWPFYSHSHKH 0 VVPFYSHSHKHA, SEQ ID NO : 3 3 VPFYSHSHKHAH, SEQ ID NO : 4 3 PFYSHSHKHAHN, SEQ ID NO : 5 4 FYSHSHKHAHNY, SEQ ID NO : 6 4 YSHSHKHAHNYR, SEQ ID NO : 7 2,5 SHSHKHAHNYRL 0 HSHKHAHNYRLP 0 SHKHAHNYRLPF 0 HKHAHNYRLPFS 0 Tableau 3 Les acides aminés correspondant au peptide aléatoire inséré dans la protéine III (GNAKQIVTTKST) du phage sont indiqués en gras Séquences Intensité des spots LVVPFYSHSGNA 0 VVPFYSHSGNAK, SEQ ID NO : 8 2,5 VPFYSHSGNAKQ, SEQ ID NO : 9 4 PFYSHSGNAKQI, SEQ ID NO : 10 4 FYSHSGNAKQIV, SEQ ID NO : 11 5 YSHSGNAKQIVT, SEQ ID NO : 12 4 SHSGNAKQIVTT 0 HSGNAKQIVTTK 0 SGNAKQIVTTKS 0 GNAKQIVTTKST 0 Ainsi que le montrent ces tableaux, l'anticorps 19D9D6 ne reconnaît pas les dodécapeptides correspondant aux motifs HKHAHNYRLPFS (tableau 2) et GNAKQIVTTKST (SEQ ID NO 1) (tableau 3) seuls Cependant une immunoréactivité maximale est obtenu par les dodécapeptides de SEQ ID NOs 6 et 11 comprenant aussi 5 acides aminés de la protéine III située en amont des motifs Tableau 4 Les acides aminés correspondant au peptide aléatoire inséré dans la protéine III du phage (GHIHSMRHHRPT, SEQ ID NO 18) sont indiqués en gras Séquences Intensité des spots L VVPFYSHSGHI 0 VVPFYSHSGHIH 0 VPFYSHSGHIHS 0 PFYSHSGHmSM 0 FYSHSGHmSMR, SEQ ID NO : 13 3 YSHSGHmSMRH, SEQ ID NO : 14 3 SHSGHIHSMRHH, SEQ ID NO : 15 1 HSGHIHSMRHHR, SEQ ID NO : 16 1 SGHIHSMRHHRP, SEQ ID NO : 17 2 GHIHSMRHHRPT, SEQ ID NO : 18 2 HIHSMRHHRPTG, SEQ ID NO : 19 2 IHSMRHHRPTGG, SEQ ID NO : 20 2 HSMRHHRPTGGG, SEQ ID NO : 21 2 SMRHHRPTGGGS, SEQ ID NO : 22 1 MRHHRPTGGGSA, SEQ ID NO : 23 1 RHHRPTGGGSAE 0 Tableau 5 Les acides aminés correspondant au peptide aléatoire inséré dans la protéine III du phage (LNWPQIGSRMTP, SEQ IDS NO : 27) sont indiqués en gras. Séquences Intensité des spots FYSHSLNWPQIG 0 YSHSLNWPQIGS 0 SHSLNWPQIGSR, SEQ ID NO : 24 1 HSLNWPQIGSRM, SEQ ID NO : 25 2 SLNWPQIGSRMT, SEQ ID NO : 26 3 LNWPQIGSRMTP, SEQ ID NO : 27 1 NWPQIGSRMTPG 0 L'immunoréactivité du motif GHIHSMR du dodécapeptide de SEQ ID NO : 18 est augmentée par l'ajout de la séquence FYSHS (cf. tableau 4 ci-dessus) et l'immunoréactivité du motif LNWPQIGSRMT du dodécapeptide SEQ ID NO : 27 est augmentée par l'apport d'au moins une sérine en NH2 terminal conformément au résultat obtenu pour le dodécapeptide de SEQ ID N026 présenté dans le tableau 5 cidessus. Ces résultats indiquent que l'anticorps 19D9D6 reconnaît le motif ou une partie du motif sélectionné mais qu'il reconnaît aussi des acides aminés présents sur la protéine III du phage M13. Exemple 3 : Immunoréactivité des peptides synthétiques biotinylés vis à vis de sérums de patients VHC positifs. Les séquences immunoréactives vis à vis de l'anticorps 19D9D6 et définies dans l'exemple 2 ont été reproduites sous forme de peptides synthétiques biotinylés en position C-terminal. Dans un premier temps, les peptides biotinylés ont été testés vis à vis de 18 sérums d'individus sains et la réponse individuelle de ces sérums a été comparée à celle obtenue avec le pool des mêmes 18 sérums. Les sérums étaient dilués au 1/50 et les peptides testé étaient biotinylés en position C-terminale et fixés au fond de puits de plaques d'ELISA par l'intermédiaire de la streptavidine. La réponse du pool de sérums négatifs est très faible et est représentative des réponses individuelles des sérums (figure 1) permettant de calculer, pour chaque peptide, une valeur seuil correspondant à la moyenne des réponses individuelles + 3 déviations standard. Dans un second temps, les peptides biotinylés ont été testés vis à vis de 14 sérums VHC positifs contenant des anticorps anti-Core. Les résultats obtenus montrent que 11 sérums sur 14 reconnaissent le peptide FYSHSGHIHSMR (SEQ ID NO : 13) avec un signal supérieur au seuil (figure 2), 13 sérums sur 14 reconnaissent le peptide FYSHSHKAHNY (SEQ ID NO : 6), 12/14 avec un signal supérieur au seuil et 1/14 avec un signal égal au seuil (figure 3). Les peptide SLNWPQIGSRMT (SEQ ID NO. 26) et FYSHSGNAKQIV (SEQ ID NO : 11) sont tous 2 les reconnus par 12 sérums sur 14 avec un signal supérieur au seuil (figures 4 et 5). Il est à noter que les 2 sérums donnant une valeur en dessous du seuil pour les 4 peptides sont cependant au dessus de la valeur du pool négatif. Exemple le 4 : : Optimisation de la réponse des sérums VHC positifs contre les mimotopes Core synthétiques Les mimotopes synthétisés avec une queue polylysine en position C-terminale et sous forme de peptides branchés 4 fois (MAP4 pour Multiple Antigen Peptide 4) donnent une réponse fortement augmentée et augmente aussi la spécificité de reconnaissance. Ainsi que le montre la figure 6 le mimotope FYSHSGHIHSMR (SEQ ID NO 13) qui donnait la plus faible réponse sous forme de peptide biotinylé (FYSHSGHIHSMR) présenté avec l'intermédiaire d'une queue polylysine en Cterminal ou sous forme de peptides branchés est maintenant reconnu avec un signal significativement supérieur au seuil par les 14/14 sérums VHC positifs Dans une application à la détection dans un réactif ou un procédé de l'invention tel que décrit précédemment, on utilisera avantageusement les polypeptides de l'invention présentés par l'intermédiaire d'une queue poly-lysine (poly-K) ou sous forme de peptides branchés par exemple sous forme MAP4 (cf Lu YA, Clavijo P, Galantino M, Shen ZY, Liu W, Tam JP. Chemically unambiguous peptide immunogen : preparation, orientation and antigenicity of purified peptide conjugated to the multiple antigen peptide system : Molecular Immunology (1991) vol. 28, N 6, 623-630). REVENDICATIONS 1. Polypeptide capable de réagir spécifiquement avec les anticorps de patients infectés par le virus VHC et dont la séquence peptidique comprend au moins une séquence choisie parmi SEQ ID NO : 2 à SEQIDNO : 17 et SEQ ID NO : 19 à SEQ ID NO : 29, les séquences équivalentes de SEQ ID NO. 2 à SEQ ID NO. 17 et SEQ ID NO : 19 à SEQ ID NO. 29 celles-ci étant sélectionnées parmi les séquences qui conservent les propriétés immunoréactives de SEQ ID NO 2 à SEQ ID NO : 17 et SEQ ID NO : 19 à SEQ ID NO : 29, et : présentent, par rapport à l'une quelconque des séquences SEQ ID NO : 2 à SEQ ID NO : 17 et SEQ ID NO : 19 à SEQ ID NO : 29, au moins une substitution d'un acide aminé par un acide aminé équivalent, étant considérés comme équivalents les acides aminés retenus au sein d'un même groupe parmi les groupes suivants Groupe 1 : alanine, proline, glycine. Groupe 2 : acide aspartique, acide glutamique. Groupe 3 : histidine, lysine, arginine. Groupe 4 asparagine, glutamin, sérine, thréonine. Groupe 5 : phénylalanine, tyrosine, tryptophane. Groupe 6 : isoleucine, leucine, valine, méthionine, et/ou sont structurellement modifiées. 2. Polypeptide selon la revendication 1, caractérisé en ce que sa séquence peptidique consiste en une séquence choisie parmi SEQ ID NO : 2 à SEQ ID NO : 17 et SEQ ID NO : 19 à SEQ ID NO : 29 et les séquences équivalentes de SEQ ID NO. 2 à SEQ ID NO : 17 et SEQ ID NO : 19 à SEQ ID NO : 29. 3. Polypeptide selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce que sa séquence peptidique comprend ou consiste en une séquence choisie parmi SEQ ID NO : 2 à SEQ ID NO : 6, SEQ ID NO : 9 à SEQ ID NO : 14 et SEQ ID NO. 26 à SEQ ID NO : 29. 4. Réactif pour la détection et/ou la quantification d'anticorps anti-VHC dans un échantillon biologique prélevé chez un patient infecté par le virus VHC, caractérisé en ce qu'il comprend au moins un polypeptide tel que défini à l'une quelconque des revendications 1 à 3. 5. Réactif pour la détection et/ou la quantification d'anticorps anti-VHC dans un échantillon biologique prélevé chez un patient infecté par le virus VHC, caractérisé en ce qu'il comprend au moins deux polypeptides tels que définis à l'une quelconque des revendications 1 à 3. 6. Kit pour la détection et/ou la quantification d'anticorps anti-VHC dans un échantillon biologique prélevé chez un patient infecté par le virus VHC, caractérisé en ce qu'il comprend un réactif selon la revendication 4 ou 5. 7. Procédé pour la détection et/ou la quantification d'anticorps anti-VHC dans un échantillon biologique prélevé chez un patient infecté ou supposé être infecté par le virus VHC qui comprend au moins les étapes suivantes : - un mélange est préparé comprenant : (i) un réactif tel que défini à la revendication 4 ou 5, qui est ou qui sera immobilisé sur une phase solide, (ii) l'échantillon devant être testé et comprenant s'ils sont présents des anticorps anti-VHC, (iii) un ligand marqué qui sera capable de réagir avec les anticorps anti- VHC de l'échantillon ; - le mélange est incubé pendant un temps prédéterminé ; - la phase solide est séparée de la phase liquide ; et - la présence potentielle d'anticorps anti-VHC dans l'échantillon est révélée en mesurant le degré de marquage dans la phase solide. 8. Procédé selon la revendication 7, dans lequel le ligand marqué est choisi parmi la protéine Core ou un fragment de ladite protéine, un polypeptide de synthèse dont la séquence peptidique comprend ou consiste en la séquence de ladite protéine Core ou en un fragment de ladite protéine, un des polypeptides de l'une quelconque des revendications 1 à 3, et une anti-immunoglobuline. 9. Procédé pour la détection et/ou la quantification d'anticorps anti-VHC dans un échantillon biologique prélevé chez un patient infecté ou supposé être infecté par le virus VHC, qui comprend au moins les étapes suivantes : - un mélange est préparé comprenant : (i) un réactif tel que défini à la revendication 4 ou 5, qui est ou qui sera immobilisé sur une phase solide, (ii) l'échantillon devant être testé et comprenant s'ils sont présents des anticorps anti-VHC, (iii) des anticorps anti-VHC marqués qui seront capables de réagir avec le réactif ; - le mélange est incubé pendant un temps prédéterminé ; - la phase solide est séparée de la phase liquide ; et la présence potentielle d'anticorps anti-VHC dans l'échantillon est révélée en mesurant le degré de marquage dans la phase solide. 10. Procédé pour la production d'anticorps monoclonaux ou polyclonaux ou de fragments desdits anticorps, selon lequel on injecte un agent immunogène consistant en au moins un polypeptide tel que défini à l'une quelconque des revendications 1 à 3, à un organisme mammifère choisi parmi une souris, un rat et un lapin, et - on obtient les anticorps monoclonaux à partir de cultures d'hybridome obtenues à partir de l'animal ainsi immunisé, ou - on prélève les anticorps polyclonaux dans le sérum de l'animal ainsi immunisé. Il. Anticorps monoclonal ou polyclonal ou leurs fragments susceptible (s) d'être obtenu (s) par le procédé de la revendication 10. 12. Réactif pour la détection d'une infection par le virus VHC qui comprend au moins un anticorps monoclonal ou un anticorps polyclonal ou leurs fragments tel (s) que défini (s) dans la revendication 11. 13. Kit pour la détection d'une infection par le virus VHC qui comprend au moins un réactif tel que défini dans la revendication 12. 14. Procédé pour la détection et/ou la quantification de protéine Core dans un échantillon biologique prélevé chez un patient infecté ou supposé être infecté par le virus VHC qui comprend au moins les étapes suivantes : - un mélange est préparé comprenant : (i) un réactif qui consiste en au moins un anticorps monoclonal ou un fragment d'anticorps monoclonal tel que défini dans la revendication 11, qui est ou qui sera immobilisé sur une phase solide, (ii) l'échantillon devant être testé et comprenant si elle est présente la protéine Core, (iii) un ligand marqué qui sera capable de réagir avec la protéine Core de l'échantillon ; - le mélange est incubé pendant un temps prédéterminé ; - la phase solide est séparée de la phase liquide ; et - la présence potentielle de la protéine Core dans l'échantillon est révélée en mesurant le degré de marquage dans la phase solide. 15. Procédé selon la revendication 14, dans lequel le ligand marqué est un anticorps monoclonal ou un anticorps polyclonal ou un fragments desdits anticorps. 16. Procédé pour la détection et/ou la quantification de protéine Core dans un échantillon biologique prélevé chez un patient infecté ou supposé être infecté par le virus VHC qui comprend au moins les étapes suivantes : - un mélange est préparé comprenant : (i) un réactif qui consiste en au moins un anticorps polyclonal ou un fragment dudit anticorps tel que défini dans la revendication 11, qui est ou qui sera immobilisé sur une phase solide, (ii) l'échantillon devant être testé et comprenant si elle est présente la protéine Core, (iii) un ligand marqué qui sera capable de réagir avec la protéine Core de l'échantillon ; - le mélange est incubé pendant un temps prédéterminé ; - la phase solide est séparée de la phase liquide ; et - la présence potentielle de la protéine Core dans l'échantillon est révélée en mesurant le degré de marquage dans la phase solide. 17. Procédé selon la revendication 16, dans lequel le ligand marqué est un anticorps monoclonal ou un anticorps polyclonal ou leurs fragments. 18. Procédé pour la détection et/ou la quantification de protéine Core dans un échantillon biologique prélevé chez un patient infecté ou supposé être infecté par le virus VHC qui comprend au moins les étapes suivantes : - un mélange est préparé comprenant : (i) un réactif selon la revendication 12, qui est ou qui sera immobilisé sur une phase solide, (ii) l'échantillon devant être testé et comprenant si elle est présente la protéine Core, (iii) un ligand marqué qui sera capable de réagir avec le réactif (i) et qui consiste en un polypeptide tel que défini à l'une quelconque des revendications 1 à 3 ; - le mélange est incubé pendant un temps prédéterminé ; - la phase solide est séparée de la phase liquide ; et - la présence potentielle de la protéine Core dans l'échantillon est révélée en mesurant le degré de marquage dans la phase solide. 19. Procédé pour la détection de la protéine Core dans un échantillon biologique comprenant au moins l'étape selon laquelle on met en contact ledit échantillon avec au moins un anticorps monoclonal ou plyclonal selon la revendication Il marqué. 20. Composition immunothérapeutiquement active, notamment préparation vaccinale, caractérisée en ce qu'elle comprend comme ingrédient actif au moins un polypeptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, et éventuellement un support pour ledit polypeptide et/ou un excipient et/ou un adjuvant et/ou un diluent pharmaceutiquement acceptable. 21. Utilisation d'un polypeptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, pour fixer dans un échantillon biologique des anticorps caractéristiques et/ou spécifiques de l'infection par le VHC.