FR 2829498 A1 20030314 FR 0111736 A 20010911 La présente invention a trait au facteur de croissance IGF-1 félin, à un polynucléotide codant pour cet IGF-1 et à des vecteurs d'expression le contenant. L'invention a aussi pour objet l'utilisation de l'IGF-1 comme adjuvant de vaccination chez l'espèce féline en particulier pour les vaccins contre les rétrovirus félins. L'IGF-1 est un médiateur endocrinien pour la croissance. Il s'agit du principal effecteur de l'hormone de croissance. L'IGF-1 joue également un rôle dans le système complexe de la régulation de l'immunité et de l'inflammation aux côtés de cytokines, d'hormones (notamment le cortisol, l'hormone de croissance). US-A-5,202, 119 décrit l'utilisation thérapeutique de l'IGF-1 humain comme stimulant de l'immunité chez l'homme et plus particulièrement chez les sujets immunodéprimés. Une application particulière est l'association de l'IGF1 humain à un immunogène pour stimuler la production d'anticorps vis-à-vis de cet immunogène. Ce brevet propose d'étendre l'application aux mammifères en général et à l'espèce aviaire, sans cependant décrire des séquences IGF-1 animales ni fournir aucun résultat expérimental chez l'animal. La déposante a observé que l'IGF-1 stimule plus particulièrement la réponse cellulaire en général. Ce profil de réponse s'avère particulièrement bien adapté dans le cas des rétrovirus félins. Il stimule aussi l'immunité mucosale. Par ailleurs, jusqu'à l'invention, le gène codant pour l'IGF-1 félin n'était pas disponible. La déposante a réussi à isoler et séquencer le gène de l'IGF-1 provenant de cellules mononucléées du sang périphérique (PBMC) de chat. Ce gène a été isolé après amplification en chaîne par polymérase (ACP ou PCR) avec l'aide des oligonucléotides décrits dans les exemples. Le gène IGF-1 félin a une taille de 462 nucléotides (SEQ ID NO : 1) et code pour une protéine de 153 acides aminés (SEQ ID NO : 2). En N-terminal de la protéine telle que définie dans la SEQ 1 D NO : 2 il y a une séquence peptide signal de 48 acides aminés (de 1 à 48 dans la séquence SEQ ID NO : 2) servant à la sécrétion de la protéine, ce peptide signal étant secondairement clivé. La protéine mature (SEQ 1 D NO : 3) de 105 acides aminés, correspond aux acides aminés 49 à 153 de la SEQ ID NO : 2. La présente invention concerne aussi bien la séquence ADN codant pour l'IGF1 félin et son brin complémentaire que la séquence ARN correspondante, et les séquences équivalentes obtenues par dégénérescence du code génétique. Un premier objet de l'invention est donc un polynucléotide (par définition ADN ou ARN) isolé comprenant la séquence nucléotidique identifiée SEQ ID NO : 1 et la même séquence avec substitutions des T en U. Elle a aussi pour objet le polynucléotide isolé ayant cette séquence. La présente invention a aussi pour objet un polynucléotide isolé codant pour la séquence en acides aminés identifiée SEQ ID NO : 2 ou 3. Par définition la notion d'IGF-1 selon l'invention couvre les IGF-1 d'origine féline et les protéines ayant une homologie égale ou supérieure à 98,5 % et de préférence à 99,0 % avec la SEQ ID NO : 2. Les polynucléotides codant pour ces protéines d'origine féline ou pour les homologues ainsi définis font partie de l'invention. Les polynucléotides selon l'invention peuvent être obtenus par synthèse chimique ou par expression au moyen de vecteurs d'expression appropriés. La présente invention a également pour objet les protéines ou polypeptides IGF-1 félins isolés sous forme mature ou leur précurseur. L'invention a donc en particulier pour objet un polypeptide comportant la séquence SEQ ID NO : 2 ou SEQ ID NO : 3. Les protéines selon l'invention peuvent aussi être définies comme étant codées par la séquence nucléotidique SEQ ID NO : 1 ou exprimées par les polynucléotides selon l'invention. La protéine ou le polypeptide IGF-1 peut être exprimé et isolé sous forme mature dans un système cellulaire permettant sa sécrétion et le clivage du peptide signal en 5'. Il peut aussi être exprimé et isolé sous forme de précurseur. La présente invention a aussi pour objet les vecteurs d'expression comportant comme insert un polynucléotide tel que défini ci-dessus. La séquence nucléotidique peut être insérée dans des vecteurs d'expression in vitro classiques, notamment d'origine virale telle que Baculovirus ou d'origine plasmidique. Ces vecteurs sont ensuite utilisés pour infecter ou transfecter des systèmes cellulaires appropriés, comme les cellules d'insectes, des cellules d'origine procaryote (par exemple Escherichia colt) ou eucaryote, en particulier des levures, notamment Saccharomyces cerevisiae, des cellules de mammifères, notamment des cellules de hamster (par exemple les cellules CHO) et des cellules de chat (par exemple les cellules CRFK). On préfère utiliser le Baculovirus (US-A- 4,745, 051 ; ViatardJ. ea/., J. Virol., 1990,64 (1), 37-50 ; Verne A., Virology, 1988, 167,56-71), e. g. Autographa california Nuclear Polyhedrosis Virus AcNPV, comme vecteur pour exprimer l'IGF-1 dans des cellules d'insectes, notamment cellules de Spodoptera frugiperda Sf9 (dépôt ATCC CRL 1711). L'homme du métier connaît et peut mettre en oeuvre les méthodes de production de protéines adaptées au système choisi, et ainsi obtenir et isoler la protéine IGF-1. L'invention couvre donc également ces vecteurs d'expression in vitro comprenant un polynucléotide selon l'invention, la protéine IGF-1 félin ainsi produite, et son usage en tant qu'adjuvant de vaccin et de stimulant non spécifique de l'immunité. De manière préférée, le polynucléotide selon l'invention est introduit dans des vecteurs d'expression in vivo dans des conditions permettant l'expression chez l'hôte d'une protéine IGF-1 félin fonctionnelle. Ces vecteurs d'expression peuvent être des plasmides, des vecteurs viraux, tels que les poxvirus, par exemple des mutants atténués du virus de la vaccine, e. g. le MVA (souche Ankara) (Stickl H. et Hochstein-Mintzel V., Munch. Med. Wschr., 1971, 113, 1149-1153 ; Sutter G. et a/., Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A., 1992, 89, 10847-10851), le NYVAC (souche modifiée génétiquement par délétion de régions non essentielles du génome codant pour des facteurs de virulence), les avipox (en particulier canarypox, folwpox), le swinepox, le raccoonpox, les adénovirus (en particulier CAV-2) et les herpèsvirus, tels que le virus herpès félin FHV. Parmi les vecteurs viraux, canarypox et FHV sont préférés. Pour les poxvirus, l'homme du métier peut se reporter à WO-A-90/12882, et plus particulièrement pour le virus de la vaccine à US-A-4,769, 330 ; US-A- 4,722, 848 ; US-A-4,603, 112 ; US-A-5,110, 587 ; US-A-5,494, 807 ; US-A-5,762, 938 ; pour le fowlpox à US-A-5,174, 993 ; US-A-5,505, 941 ; US-A-5,766, 599 ; pour le canarypox à US-A-5,756, 103. Lorsque le vecteur d'expression est un virus de la vaccine, les sites d'insertion du (des) polynucléotide (s) à exprimer sont en particulier le gène de la thymidine kinase (TK), le gène de l'hémagglutinine (HA), la région du corps d'inclusion de type A (ATI). Lorsqu'il s'agit d'un canarypox, les sites d'insertion sont en particulier situés dans, ou constitués par, les cadres ouverts de lecture (COLs) C3, C5 et C6. Lorsqu'il s'agit d'un fowlpox, les sites d'insertion sont en particulier situés dans, ou constitués par, les COLs F7 et F8. Selon l'un des modes préférés de l'invention, le vecteur d'expression poxvirus est un ALVAC ou un virus canarypox (par exemple de la souche Rentschler) qui a été atténué, notamment par plus de 200 passages sur cellules de fibroblastes d'embryons de poulet (CEF). Un virus canarypox de souche ALVAC a été déposé le 14 novembre 1996 auprès de l'American Type Culture Collection (ATCC) sous le numéro d'accès VR-2547. D'autres poxvirus atténués peuvent être utilisés, notamment des fowlpox atténués (e. g. TROVAC) ou des virus de la vaccine atténués (e. g. NYVAC). Sur les poxvirus TROVAC et NYVAC, l'homme de l'art peut se reporter au brevet WO-A-96/40241. De préférence, lorsque le vecteur d'expression est un poxvirus, le polynucléotide à exprimer est inséré sous le contrôle d'un promoteur spécifique des poxvirus, notamment le promoteur vaccine 7,5 kDa (Cochran et al., J. Virology, 1985,54, 30-35), le promoteur vaccine 13L (Riviere et a/., J. Virology, 1992,66, 3424-3434), le promoteur vaccine HA (Shida, Virology, 1986,150, 451-457), le promoteur cowpoxATI (Funahashi et a/., J. Gen. Virol., 1988,69, 35-47), ou encore le promoteur vaccine H6 (Taylor J. eta/. Vaccine, 1988,6, 504-508 ; Guo P. et al. J. Virol., 1989,63, 4189-4198 ; Perkus M. et al. J. Virol., 1989,63, 3829-3836). Lorsque le vecteur d'expression est un FHV, les sites d'insertion du (des) polynucléotide (s) à exprimer sont en particulier les cadres ouverts de lecture (COLs) COL2 et COL5 (US-A-6,074, 649). De préférence, lorsque le vecteur d'expression est un virus herpès, le polynucléotide à exprimer est inséré sous la dépendance de signaux régulateurs de la transcription et notamment de promoteurs, de préférence apportés lors de l'insertion, par exemple le promoteur précoce du cytomégalovirus ou CMV-IE (Cytomegalovirus Immédiate Early), notamment d'origine humaine (hCMV-IE), du rat, du cobaye ou de préférence d'origine murine (mCMV IE), les promoteurs précoce et tardif du virus SV40 (Simian Virus 40), les promoteurs tardifs de glycoprotéines, notamment de gB, gC et gD, d'herpèsvirus alpha, notamment de l'herpèsvirus félin (FHV). Par définition, un plasmide comprend au moins une unité de transcription comprenant un polynucléotide d'intérêt par exemple celui codant pour IGF-1 et les éléments nécessaires à son expression in vivo. On préfère la forme plasmide circulaire, superenroulée ou non. La forme linéarisée entre également dans le cadre de cette invention. Chaque plasmide comprend un promoteur. Il s'agit de préférence du promoteur précoce du cytomégalovirus (promoteur CMV-IE), d'origine humaine ou murine, ou encore éventuellement d'une autre origine telle que rat, cobaye. Le promoteur CMV-IE peut comprendre la partie promoteur proprement dite, associée ou non à la partie activatrice (enhancer). On peut se référer à EP-A-260, 148, EP-A- 323, 597, US-A-5, 168, 062, US-A-5, 385, 839, US-A-4, 968, 615, WO-A-87/03905. On préfère le CMV-IE humain (Boshart M. et al., Cell., 1985, 41, 521-530) ou murin. De manière plus générale, le promoteur est soit d'origine virale, soit d'origine cellulaire. Comme promoteur viral autre que CMV-IE, on peut citer le promoteur précoce ou le promoteur tardif du virus SV40 ou le promoteur LTR du virus du Sarcome de Rous. Comme promoteur cellulaire, on peut citer le promoteur d'un gène du cytosquelette, tel que par exemple le promoteur de la desmine (Kwissa M. et a/., Vaccine, 2000,18 (22), 2337-2344), ou encore le promoteur de l'actine (Miyazaki J. et a/., Gene, 1989,79 (2), 269-277). Lorsque plusieurs gènes sont présents dans le même plasmide, ceux-ci peuvent être présentés dans la même unité de transcription ou dans plusieurs unités différentes. Par équivalence, les sous-fragments de ces promoteurs, conservant une activité promotrice adéquate sont compris dans la présente invention : e. g. les promoteurs CMV-IE tronqués selon WO-A-98/00166. La notion de promoteur selon l'invention inclut donc les dérivés et sous-fragments conservant une activité promotrice adéquate, de préférence substantiellement similaire à celle du promoteur proprement dit dont ils sont issus. Pour le CMV-IE, cette notion comprend la partie promoteur proprement dite et/ou la partie activatrice et les dérivés et sousfragments. Les plasmides peuvent également comprendre d'autres éléments de régulation de transcription, tels que par exemple des séquences stabilisatrices du type intron, de préférence intron Il du gène de la ss-globine de lapin (van Ooyen et al. Science, 1979,206 : 337-344), et/ou séquence signal de la protéine codée par le gène de l'activateur du plasminogène tissulaire (tPA ; Montgomery et al. Cell. Mol. Biol. 1997,43 : 285-292), et/ou signal de polyadénylation (polyA), notamment du gène de l'hormone de croissance bovine (bGH) (US-A-5,122, 458) ou du gène de la ss-globine du lapin. Conformément à l'invention, l'IGF-1 félin peut être utilisé comme adjuvant de vaccin en particulier pour augmenter la réponse immunitaire cellulaire dirigée contre un ou plusieurs immunogènes, notamment immunogènes de rétrovirus félin tel que virus de l'immunodéficience féline (FIV) et virus de la leucémie féline (FeLV). Des IGF-1 d'autres espèces peuvent aussi être utilisés à cet effet, bien que l'IGF-1 félin soit préféré. Conformément à l'invention, l'IGF-1 félin peut en variante ou simultanément être utilisé comme adjuvant de vaccin pour augmenter la réponse immunitaire mucosale dirigée contre un ou plusieurs immunogènes, notamment immunogènes de rétrovirus félin tel que FIV et FeLV. Des IGF-1 d'autres espèces peuvent aussi être utilisés à cet effet, bien que l'IGF-1 félin soit préféré. L'invention concerne ainsi les compositions destinées à induire chez un membre de l'espèce féline, notamment un chat, une réponse immunitaire contre un pathogène félin. Les compositions immunogènes ou vaccinales selon l'invention comprennent une protéine IGF-1 de préférence IGF-1 félin selon l'invention ou un vecteur recombinant exprimant cet IGF-1 in vivo, au moins un immunogène de FIV et/ou de FeLV, ou un vecteur recombinant exprimant cet immunogène in vivo, et un excipient ou véhicule acceptable sur le plan vétérinaire. La notion de composition immunogène recouvre ici toute préparation susceptible, une fois administrée au félin, notamment au chat, d'induire une réponse immunitaire dirigée contre le pathogène considéré, réponse qui est augmentée par la présence de la protéine IGF-1. Il s'agit de préférence d'une composition vaccinale capable d'induire une protection efficace ou un certain degré de protection contre ce pathogène, degré de protection qui est ici accru par la présence de la protéine IGF-1 félin. Les compositions immunogènes et vaccinales visées dans l'invention recouvrent tous les types connus, à savoir inactivées, vivantes atténuées, de sousunités et vecteurs recombinants. Comme on l'a vu plus haut, la protéine IGF-1 peut être ajoutée telle quelle à l'immunogène pour former, en présence d'un excipient ou véhicule acceptable sur le plan vétérinaire, une composition prête à être administrée. On peut aussi prévoir de combiner la protéine IGF-1 à un système de libération prolongée conçu pour libérer graduellement la protéine. Suivant une modalité particulière de l'invention, on peut exprimer la protéine IGF-1 in vivo en utilisant un vecteur d'expression in vivo, ou vecteur recombinant, tel que décrit ci-dessus. Dans ce cas, on préfère aussi que l'immunogène soit exprimé à l'aide d'un vecteur recombinant, de même type ou de type différent, que celui exprimant la protéine IGF-1. On peut aussi prévoir d'utiliser un même vecteur d'expression in vivo, comprenant et exprimant au moins un immunogène et la protéine IGF-1. Par immunogène exprimé par un vecteur, on entend un peptide, polypeptide ou protéine capable d'induire chez l'hôte une réaction immunitaire contre un agent pathogène. Il peut s'agir d'une protéine ou d'une glycoprotéine entière, ou d'un fragment immunologiquement actif. La présente invention couvre donc de préférence les compositions immunogènes et les vaccins comprenant : - un vecteur d'expression in vivo contenant un polynucléotide codant pour un IGF- 1 de préférence félin, dans des conditions permettant l'expression chez le félin, notamment chez le chat, d'une protéine IGF-1 fonctionnelle, - au moins un vecteur d'expression in vivo contenant au moins un polynucléotide codant pour un immunogène de FIV et/ou de FeLV, ce vecteur pouvant être aussi celui exprimant IGF-1, et - un véhicule ou excipient acceptable au plan vétérinaire. Pour les vaccins de sous-unités et les vaccins recombinants, les immunogènes sont de préférence, pour le virus FELV, la glycoprotéine d'enveloppe (env) ou la protéine gag/pol, ou les associations de ces immunogènes de FeLV, et, pour FIV, les protéines env, gag/pro, rev, tat, ou leurs associations, de préférence env et gag, éventuellement associés à rev et/ou tat. Pour les vaccins recombinants, une séquence nucléotidique codant pour l'immunogène considéré est insérée dans le vecteur d'expression sous la dépendance des signaux nécessaires à son expression in vivo. Les avantages de l'utilisation de l'IGF-1 lors des vaccinations sont notamment l'augmentation des réponses cellulaires et mucosales, la diminution de la dose d'immunogène ou de vecteur recombinant utilisée. De plus, chez certains animaux non répondeurs après administration d'un vaccin usuel, l'utilisation de l'IGF-1 en association avec le vaccin usuel permet la stimulation de la réponse immunitaire et son augmentation jusqu'à un niveau protecteur. Une particularité avantageuse de l'invention est l'utilisation d'un vecteur pour exprimer in vivo l'IGF-1 ce qui permet d'augmenter la durée d'action d'IGF-1. Le recours à un vecteur d'expression in vivo pour IGF-1 est préféré quelle que soit la forme de l'immunogène. Suivant une modalité particulière, l'invention couvre les compositions comprenant un plasmide codant et exprimant l'IGF-1 de préférence félin selon l'invention et au moins un autre plasmide codant et exprimant au moins un immunogène félin. Des exemples de constructions de plasmides contenant des immunogènes félins conformes à l'invention sont donnés dans WO-A-98/03660 et WO-A-00/77043. L'invention couvre également les compositions comprenant un plasmide codant et exprimant simultanément l'IGF-1 de préférence félin et au moins un immunogène félin. On a vu que l'invention s'applique aux rétrovirus félins (virus de l'immunodéficience féline (FIV) et virus de la leucémie féline (FeLV). Elle peut néanmoins être aussi appliquée à d'autres pathogènes félins, tels que virus de la pan leucopénie féline (FPV), virus de la péritonite infectieuse féline (PIF ou FIPV), virus herpès félin (FHV), calicivirus félin (FCV), virus de la rage et Chlamydia. Comme on l'a vu plus haut, les vaccins peuvent être des vaccins atténués, des vaccins inactivés, des vaccins de sous-unités ou des vaccins recombinants. Pour les vaccins de sous-unités et les vaccins recombinants, les immunogènes félins sont de préférence choisis parmi la protéine de capside VP2 pour FPV, les glycoprotéines S, M, N et leurs combinaisons pour FIPV, les glycoprotéines g8, gC, gD et leurs combinaisons pour FHV, la protéine de capside C pour FCV, et la glycoprotéine G pour le virus de la rage. Entre aussi dans le cadre de cette inventions les compositions dans lesquelles la préparation immunogène ou vaccinale comprend un immunogène de deux ou plus de ces pathogènes, ou plus particulièrement un immunogène de l'un ou plusieurs de ces pathogènes et un immunogène de FIV et/ou de FeLV. Les compositions selon l'invention peuvent aussi comprendre un ou plusieurs autres adjuvants de l'immunité, notamment choisis parmi ceux habituellement utilisés en vaccination féline pour la ou les valences considérées. Les compositions classiques (vaccins inactivés, vivants atténués, sous-unités) peuvent ainsi comprendre à titre d'adjuvant classique des composés de type carbomère, de l'hydroxyde d'alumine, ou être formulés sous forme d'émulsion huile-dans-l'eau ou eau-dans-l'huile-dans-l'eau. Pour les compositions à base de vecteur d'expression viral, on peut citer les composés de type carbomère et les émulsions huile-dansl'eau ou eau-dans-l'huile-dans-l'eau. Les compositions plasmidiques peuvent être avantageusement formulées avec un lipide cationique contenant un sel d'ammonium quaternaire. Ces lipides sont de préférence ceux qui répondent à la formule suivante : dans laquelle R1 est un radical aliphatique linéaire, saturé ou insaturé, ayant de 12 à 18 atomes de carbone, Rz est un autre radical aliphatique, renfermant 2 ou 3 atomes de carbone, et X un groupement hydroxyle ou amine. Parmi ces lipides cationiques, on préfère le DMRIE (N- (2-hydroxyéthyl) -N, N- diméthyl-2, 3-bis (tetradécyloxy) -1-propanammonium ; WO-A-96/34109), de préférence associé avec un lipide neutre, de préférence le DOPE (dioléoylphosphatidyl-éthanolamine ; Behr J. P., 1994, Bioconjugate Chemistry, 5,382-389), pour former le DMRIE-DOPE. De préférence, le mélange plasmide avec cet adjuvant se fait de manière extemporanée et l'on préfère, avant son administration, laisser le temps au mélange ainsi constitué de se complexer, par exemple pendant une durée allant de 10 à 60 minutes, notamment de l'ordre de 30 minutes. Lorsque du DOPE est présent, le ratio molaire DMRIE : DOPE va de préférence de 95 : 5 à 5 : 95, plus particulièrement de 1 : 1. Le ratio pondéral plasmide : adjuvant DMRIE ou DMRIE-DOPE peut aller notamment de 50 : 1 à 1 : 10, en particulier de 10 : 1 à 1 : 5, et de préférence de 1 : 1 à 1 : 2. La présente invention a aussi pour objet des méthodes d'immunisation et de vaccination des félins, notamment des chats, en particulier contre les rétrovirus félins FIV et FeLV. Ces méthodes comprennent l'administration d'une quantité efficace d'une composition immunogène ou d'un vaccin selon l'invention. Cette administration peut se faire notamment par la voie parentérale, e. g. par administration sous-cutanée, intradermique, intramusculaire, ou par la voie orale et/ou nasale. Ces méthodes peuvent notamment viser l'augmentation de la réponse immunitaire cellulaire et/ou mucosale vis-à-vis du ou des immunogènes associés, en particulier vis-à-vis de FIV et/ou de FeLV. La présente invention a encore pour objet des compositions stimulantes non spécifiques de l'immunité, c'est-à-dire utilisables comme stimulant général de l'immunité. Ces compositions sont administrées en présence comme en l'absence de pathologie déclarée, en général indépendamment de tout vaccin, afin de renforcer les défenses immunitaires notamment du félin, de préférence du chat. Ces compositions comprennent des vecteurs recombinés viraux ou plasmidiques exprimant in vivo de l'IGF-1 selon l'invention et un excipient ou véhicule acceptable sur le plan vétérinaire, ces compositions permettant une production prolongée d'IGF-1 dans l'organisme. Les caractéristiques de ces vecteurs ont déjà été décrites. Ces compositions peuvent aussi comprendre un ou plusieurs adjuvants tels que décrits ci-dessus. Les différentes compositions et vaccins peuvent être injectés par un injecteur à jet liquide sans aiguille. Les compositions immunogènes et les vaccins selon l'invention comprennent une quantité efficace de plasmide ou de vecteur viral, la détermination de ces quantités étant à la portée de l'homme du métier. La déposante recommande : - dans le cas des compositions immunogènes ou des vaccins à base de plasmide, une dose peut comporter de 1 pug environ à 2000 ig environ, notamment de 50 fl9 environ à 1000 Ftg environ. Les volumes de dose peuvent être compris entre 0,1 et 2 ml, de préférence entre 0,2 et 1 ml. - dans le cas des compositions immunogènes ou des vaccins à base de poxvirus, une dose peut être comprise entre environ 103 pfu et environ 109 pfu. Lorsque le vecteur est le virus canarypox, la dose est plus particulièrement comprise entre environ 105 pfu et environ 109 pfu, de préférence entre environ 106 pfu et environ 108 pfu. Lorsque le vecteur est le virus herpès félin, la dose est plus particulièrement comprise entre environ 102 DtCCso et environ 107 DICC50. Les volumes de dose des compositions immunogènes et des vaccins félins à base de vecteurs viraux sont en général compris entre 0,1 et 2,0 ml, de préférence entre 0,2 et 1,0 ml. Lorsque l'IGF-1 est apporté sous forme protéique la dose va de 20 à 2000 fl9 et de préférence de 100 à 500 jj. g. L'invention va être maintenant décrite plus en détail à l'aide de modes de réalisation pris à titre d'exemples non limitatifs dans lequel : EXEMPLES Toutes les constructions de plasmides ont été réalisées en utilisant les techniques standards de biologie moléculaire (digestion par les enzymes de restriction, synthèse d'un ADN complémentaire simple brin, amplification en chaîne par polymérase, élongation d'un oligonucléotide par une ADN polymérase...) décrites par Sambrook J. et al. (Molecular Cloning : A Laboratory Manual. 2nd Edition. Cold Spring Harbor Laboratory. Cold Spring Harbor. New York. 1989). Tous les fragments de restriction utilisés pour la présente invention, ainsi que les divers fragments d'amplification en chaîne par polymérase (= ACP ou PCR), ont été isolés et purifiés en utilisant le kit"Genedean" (B ! 0101 tnc. La Jolla, CA). Exemple 1 : Préparation de l'ARN total de lymphocytes de chat Du sang de chat a été récolté sur un tube héparine par une prise de sang à la veine jugulaire. Les cellules mononucléées, en absence de toute stimulation, ont été récoltées par centrifugation sur un gradient de Ficoll. L'ARN total de ces cellules contenu dans 100 ml de suspension a été extrait en utilisant le kit High pure RNA isolation kit (Roche Molecular Biochemical, Cat &num; 1 828 665) en suivant les instructions du fournisseur pour les étapes d'extraction. Le culot d'ARN obtenu à la fin de l'extraction est resuspendu avec 1 à 2 ml d'eau distillée stérile sans RNase. Exemple 2 : Isolement du gène codant pour l'IGF-1 félin L'ADN complémentaire (ADNc) de l'IGF-1 félin est synthétisé avec le kit Gene Amp RNA PCR Kit (Cat &num; N 808 0017, Perkin-Elmer, Norwalk, CT 06859, USA) en utilisant les conditions données par le fournisseur. Une réaction de transcription inverse, suivie d'une réaction d'amplification en chaîne (Réaction RT-PCR ) est réalisée avec 50 ! de la suspension d'ARN félin (exemple 1), la Pfu polymérase (Stratagène, Cat &num; 600154) et avec les oligonucléotides suivants : EL490 (39 mer) (SEQ ID NO : 4) 5'ACGCCGTCGACATGGGAAAAATCAGCAGTCTTCCAACCC 3' et FC124 (42 mer) (SEQ ID NO : 5) 5'CGCGGATCCCTACATTCTGTAGTTCTTGTTTCCCGCACTCCC 3'. Ce couple d'oligonucléotides permet l'incorporation d'un site de restriction Sail, d'un site de restriction BamHI, d'un codon ATG initiateur en 5'de l'insert et d'un codon stop en 3'de l'insert. La synthèse du premier brin d'ADNc se fait par élongation de l'hexamer du kit, après hybridation de ce dernier à la matrice d'ARN. Les conditions de synthèse du premier brin d'ADNc sont une température de 420C pendant 20 min, puis de 99 C pendant 5 min, et enfin de 4 C pendant 5 min. Les conditions de la réaction PCR en présence du couple d'oligonucléotides EL490 et FC124 sont une température de 95 C pendant 2 min, puis 40 cycles (95 C pendant 30 sec, puis 55 C pendant 45 sec, et 72 C pendant 1 min), et enfin 72 C pendant 10 min en présence de la Taq DNA polymérase (Gibco BRL, Cleveland, OH, USA, Cat &num; 18038-26) pour produire un fragment de 481 paires de bases (pb). Ce fragment est ensuite inséré dans le plasmide pCR2 (plasmide présent dans le kit"Topo TA cloning kit", InVitrogen, Cat &num; K4550-40). Le plasmide ainsi obtenu a une taille de 4432 pb et est nommé pPB476. L'ensemble de ces opérations est répétée encore deux fois afin d'obtenir 3 "populations"de plasmides pPB476. Les inserts de ces plasmides sont ensuite séquencés. La séquence consensus (SEQ ID NO : 1), établie à partir de ces 3 "populations" plasmides pPB476, a une taille de 462 pb et code pour une protéine de 153 acides aminés (SEQ ID NO : 2). Cette protéine est le facteur IGF-1 du chat (= IGF-1 félin). Exemple 3 : construction du plasmide pPB477 Le plasmide pPB476 (exemple 2) a été digéré par BamHI et Sali et le fragment BamHI-Sall de 468 pb ainsi obtenu a été ligaturé avec le plasmide pVR1012 (figure 1 et exemple 7 de WO-A-98/03199 ; Hartikka J. et al. Human Gene Therapy. 1996.7. 1205-1217), préalablement digéré avec BamHI et Sali, pour donner le plasmide pPB477 (5334 pb). Ce plasmide contient, sous le contrôle du promoteur précoce du cytomégalovirus humain ou hCMV-IE (human Cytomegalovirus Immediate Early), un insert codant pour l'IGF-1 félin. Exemple 4 : Activité biologique in vitro du produit du gène IGF-1 félin Des cellules CHO-K1 (cellules ovariennes de hamster, accessible auprès de la souchothèque American Type Culture Collection sous le numéro d'accès CCL-61) sont mises en culture en milieu essentiel minimum ou MEM (Gibco-BRL) dans des boîtes de Petri de 60 mm de diamètre et transfectées avec 5 g pjasmide pPB477 (exemple 3), préalablement complexés avec 10 J.. LI de LipofectAmine PLUS&commat; (Cat&num; 10964-013, Gibco-BRL, Cleveland, OH, USA). Les conditions de formation des complexes ADN/LipofectAmine&commat; et de transfection des cellules ont été celles recommandées par le fournisseur (Gibco-BRL). 48 heures après la transfection, les surnageants des cultures sont récoltés et congelés. Des cellules CRFK sont mises en culture dans des plaques de 96 puits à raison de 100 000 cellules par puits en milieu MEM additionné de 0, 1% de BSA et de 1 % de sérum de veau foetal. 24 heures plus tard, le milieu de culture est retiré et les cultures sont alors additionnées avec du surnageant dilué ou non de culture des cellules CHO-K1 transfectées avec le plasmide pPB477. Chaque dilution du surnageant (1/1,1/5, 1/10 et 1/100) est testé en triplicate en milieu MEM. Le contrôle négatif est constitué par un surnageant de culture CHO-K1 sans sérum et sans transfection avec pPB477. Après 24 heures de culture, les cellules CRFK sont incubées à 37 C en présence de thymidine tritiée les 8 dernières heures de culture (concentration finale en thymidine tritiée : 2,5 jCi/ml). Les plaques de culture sont stockées à-20 C. La radioactivité est mesurée par lecture sur un compteur p MicroBeta trilux (Wallac). Les surnageants de cellules CHO-K1 transfectées avec le plasmide pPB477 ont donné les résultats suivants : Dilution surnageant Nombre de Radioactivité Ecart-type Indice de puits moyenne prolifération Témoin négatif 3 2123 327 0% 1/100 3 2872 657 135% 1/10 3 8444 646 397% 1/5 3 8990 912 423% 1/1 3 9533 1091 449% Les résultats de chaque essai sont exprimés par leur indice de prolifération correspondant au rapport des valeurs de radioactivité moyenne pour l'échantillon et le témoin négatif exprimé en pourcentage. Ces résultats montrent que le produit du gène IGF-1 félin exprimé par le plasmide pPB477 possède une activité biologique sur cellules in vitro. Exemple 5 : Culture du virus FIV Pour leur amplification, des virus de l'immunodéficience féline de souche Villefranche IFFA 1/88 (Steffan A. M. et al., J. Gen. Virol., 1994,75, 3647-3653) ou de souche Petaluma sont cultivés sur cellules de lymphocytes T auxiliaires félins (par exemple Q201 ; Willet B. et al., J. Gen. Virol., 1997,78, 611-618). Les cellules Q201 sont mises en culture en Falcon 25 cm2 avec du milieu Eagle-MEM supplémenté de 2 mM de glutamin, de 10 % de sérum de veau, de 100 Ul/ml de pénicilline, de 100 jj. g/mt de streptomycine et de 100 Ul/ml d'interleukine-2 humaine recombinée, contenant environ 100 000 cellules par ml. Les cellules sont cultivées à +37 C. Après 3 jours la couche cellulaire arrive à confluence. Le milieu de culture est alors remplacé et le virus FIV est ajouté à raison de 5 pfu/cellule. Lorsque l'effet cytopathogène (CPE) est complet (généralement 48-72 heures après le début de la mise en culture), les suspensions virales sont récoltées, puis clarifiées par centrifugation et congelées à-80 C. 3 à 4 passages successifs sont généralement nécessaires à la production d'un lot viral. Le lot viral est stocké à- 80 C. Exemple 6 : Extraction de l'ARN viral de FIV L'ARN viral contenu dans 100 ml de suspension virale de la souche FIV Villefranche est extrait après décongélation avec les solutions du kit High Pure TM Viral RNA Kit (Cat &num; 1 858 882, Roche Molecular Biochemical), en suivant les instructions du fournisseur pour les étapes d'extraction. Le culot d'ARN obtenu à la fin de l'extraction est resuspendu avec 1 à 2 ml d'eau distillée stérile sans RNase. Exemple 7 : Construction du plasmide pPB371 L'ADN complémentaire (ADNc) de FIV est synthétisé avec le kit Gene Amp RNA PCR Kit (Cat &num; N 808 0017, Perkin-Elmer, Norwalk, CT 06859, USA) en utilisant les conditions données par le fournisseur. Une réaction de transcription inverse, suivie d'une réaction d'amplification en chaîne (Réaction RT-PCR ) est réalisée avec 50 gel de la suspension d'ARN viral de FIV (exemple 6) et avec les oligonucléotides suivants : FC116 (36 mer) (SEQ ID NO : 6) 5'TTTTTTCTGCAGCAATAAGAATGGCAGAAGGATTTG 3' et FC117 (36 mer) (SEQ ID NO : 7) 5'TCGCACCTGAAACATCTCGAGTGTTTCCACATGTAT 3'. Ce couple d'oligonucléotides permet l'incorporation d'un site de restriction Pstl, d'un site de restriction Xhol et d'un codon ATG initiateur en 5'de l'insert. La synthèse du premier brin d'ADNc se fait par élongation de l'oligonucléotide FC117, après hybridation de ce dernier à la matrice d'ARN. Les conditions de synthèse du premier brin d'ADNc sont une température de 42 C pendant 15 min, puis de 99 C pendant 5 min, et enfin de 4 C pendant 5 min. Les conditions de la réaction PCR en présence du couple d'oligonucléotides FC116 et FC117 sont une température de 95 C pendant 2 min, puis 40 cycles (95 C pendant 30 sec, puis 500C pendant 45 sec, et 72 C pendant 3 min), et enfin 720C pendant 7 min pour produire un fragment de 1476 pb. Ce fragment est digéré par l'enzyme de restriction Pst ! puis par l'enzyme de restriction Xhoi pour isoler, après électrophorèse en gel d'agarose, le fragment Pstl- Xhol d'environ 1450 pb. Ce fragment est appelé fragment A. Une deuxième réaction de transcription inverse, suivie d'une réaction d'amplification en chaîne (Réaction RT-PCR ) est réalisée avec 50 J de la suspension d'ARN viral de FIV (exemple 6) et avec les oligonucléotides suivants : FC118 (36 mer) (SEQ ID NO : 8) 5'ATACATGTGGAAACACTCGAGATGTTTCAGGTGCGA 3' et FC119 (54 mer) (SEQ ID NO : 9) 5'TTTTTTGGATCCCCCGGGCTGCAGGAATTCTGAGATACTTCATCATTC ( TCCTC 3'. Ce couple d'ofigonudéotides permet l'incorporation d'un site de restriction Xhol, d'un site de restriction BamHI et d'un codon stop en 3'de l'insert. La synthèse du premier brin d'ADNc se fait par élongation de l'oligonucléotide FC118, après hybridation de ce dernier à la matrice d'ARN. Les conditions de synthèse du premier brin d'ADNc sont une température de 42 C pendant 15 min, puis de 99 C pendant 5 min, et enfin de 40C pendant 5 min. Les conditions de la réaction PCR en présence du couple d'oligonucléotides FC118 et FC119 sont une température de 95 C pendant 2 min, puis 40 cycles (95 C pendant 130 sec, puis 500C pendant 45 sec, et 72 C pendant 3 min), et enfin 72 C pendant 7 min pour produire un fragment de 1193 pb. Ce fragment est digéré par l'enzyme de restriction Xhol puis par l'enzyme de restriction BamHI pour isoler, après électrophorèse en gel d'agarose, le fragment Xhol-BamHI d'environ 1170 pb. Ce fragment est appelé fragment B. Les fragments A et B sont ligaturés avec le plasmide d'expression eucaryote pVR1012 préalablement digéré parXbal et EcoRI, pour donner le plasmide pPB371 (7467 pb). Ce plasmide contient, sous le contrôle du promoteur précoce du cytomégalovirus humain ou hCMV-IE (human Cytomegalovirus Immediate Early), un insert codant pour la protéine env de FIV. Exemple 8 : Construction du plasmide pPB374 L'ADN complémentaire (ADNc) de FIV est synthétisé avec le kit Gene Amp RNA PCR Kit (Cat &num; N 808 0017, Perkin-Elmer, Norwalk, CT 06859, USA) en utilisant les conditions données par le fournisseur. Une réaction de transcription inverse, suivie d'une réaction d'amplification en chaîne (Réaction RT-PCR ) est réalisée avec 50 lli de la suspension d'ARN viral de FIV (exemple 6) et avec les oligonucléotides suivants : PB670 (37 mer) (SEQ ID NO : 10) 5'TTTGTCGACAAGGTAGGAGAGATTCTACAGCAACATG 3' et PB674 (40 mer) (SEQ ID NO : 11) 5'TTTGCGGCCGCGTTATTGAGCCATTACTAACCTAATATTG 3'. Ce couple d'oligonucléotides permet l'incorporation d'un site de restriction Sali, d'un site de restriction Notl, d'un codon ATG initiateur en 5'et d'un codon stop en 3'de l'insert. La synthèse du premier brin d'ADNc se fait par élongation de l'oligonucléotide PB674, après hybridation de ce dernier à la matrice d'ARN. Les conditions de synthèse du premier brin d'ADNc sont une température de 42 C pendant 15 min, puis de 99 C pendant 5 min, et enfin de 4 C pendant 5 min. Les conditions de la réaction PCR en présence du couple d'oligonucléotides PB670 et PB674 sont une température de 95 C pendant 2 min, puis 40 cycles (95 C ! t pendant 30 sec, puis 500C pendant 45 sec, et 720C pendant 3 min), et enfin 72 C pendant 7 min pour produire un fragment de 1758 pb. Ce fragment est digéré par l'enzyme de restriction Sail puis par l'enzyme de restriction Notl pour isoler, après électrophorèse en gel d'agarose, le fragment Sall- Notl d'environ 1750 pb. Ce fragment est ligaturé avec le plasmide d'expression pVR1012 préalablement digéré par Sali et Notl, pour donner le plasmide pPB374 (6633 pb). Ce plasmide contient, sous le contrôle du promoteur précoce hCMV-IE un insert codant les protéines gag/pro de FIV. Exemple 9 : Construction du plasmide pPB375 L'ADN complémentaire (ADNc) de FIV est synthétisé avec le kit Gene Amp RNA PCR Kit (Cat &num; N 808 0017, Perkin-Elmer, Norwalk, CT 06859, USA) en utilisant les conditions données par le fournisseur. Une réaction de transcription inverse, suivie d'une réaction d'amplification en chaîne (Réaction RT-PCR ) est réalisée avec 50 pI de la suspension d'ARN viral de FIV (exemple 6) et avec les oligonucléotides suivants : FC116 (36 mer) (SEQ ID NO : 6) et FC120 (48 mer) (SEQ ID NO : 12) 5' TTTTTACCTGCATTTCCTTCTTCCAGTTTTACCTCTTGAATTTCGTTC 3'. Ce couple d'oligonucléotides permet l'incorporation d'un site de restriction Pstl, d'un site de restriction BspMI et d'un codon ATG initiateur en 5'de l'insert. La synthèse du premier brin d'ADNc se fait par élongation de l'oligonucléotide FC120, après hybridation de ce dernier à la matrice d'ARN. Les conditions de synthèse du premier brin d'ADNc sont une température de 42 C pendant 15 min, puis de 99 C pendant 5 min, et enfin de 4 C pendant 5 min. Les conditions de la réaction PCR en présence du cou pie d'oligonucléotides FC116 et FC120 sont une température de 95 C pendant 2 min, puis 40 cycles (95 C pendant 30 sec, puis 50 C pendant 45 sec, et 72 C pendant 3 min), et enfin 72 C pendant 7 min pour produire un fragment de 265 pb. Ce fragment est digéré par l'enzyme de restriction Pstl puis par l'enzyme de restriction BspMI pour isoler, après électrophorèse en gel d'agarose, le fragment Pstl-BspMI d'environ 240 pb. Ce fragment est nommé fragment C. Une deuxième réaction de transcription inverse, suivie d'une réaction d'amplification en chaîne (Réaction RT-PCR ) est réalisée avec 50 ut de la suspension d'ARN viral de FIV (exemple 6) et avec les oligonucléotides suivants : PB672 (48 mer) (SEQ ID NO : 13) 5'TTTACTGGAAGAAGGAAATGCAGGTAAAAGGAAAAGACAAAGAAGAAG 3' et PB673 (36 mer) (SEQ ID NO : 14) 5' TTTAGATCTTTAGTCCATAAGCATTCTTTCTATTTC 3'. Ce couple d'oligonucléotides permet l'incorporation d'un site de restriction BspMI, d'un site de restriction Bglll et d'un codon stop en 3'de l'insert. La synthèse du premier brin d'ADNc se fait par élongation de l'oligonucléotide PB673, après hybridation de ce dernier à la matrice d'ARN. Les conditions de synthèse du premier brin d'ADNc sont une température de 420C pendant 15 min, puis de 99 C pendant 5 min, et enfin de 4 C pendant 5 min. Les conditions de la réaction PCR en présence du couple d'oligonucléotides PB672 et PB673 sont une température de 950C pendant 2 min, puis 40 cycles (95 C pendant 30 sec, puis 50 C pendant 45 sec, et 72 C pendant 3 min), et enfin 720C pendant 7 min pour produire un fragment de 246 pb. Ce fragment est digéré par l'enzyme de restriction BspMI puis par l'enzyme de restriction Bglll pour isoler, après électrophorèse en gel d'agarose, le fragment BspMI-BgIII d'environ 230 pb. Ce fragment est nommé fragment D. Les fragments C et D sont ligaturés avec le plasmide d'expression pVR1012 préalablement digéré par les enzymes de restriction Pstl et Bglll, pour donner le plasmide pPB375 (5316 pb). Ce plasmide contient, sous le contrôle du promoteur précoce hCMV-IE un insert codant pour la protéine rev de FIV. Exemple 10 : Construction du plasmide pPB383 L'ADN complémentaire (ADNc) de FIV est synthétisé avec le kit Gene Amp RNA PCR Kit (Cat &num; N 808 0017, Perkin-Elmer, Norwalk, CT 06859, USA) en utilisant les conditions données par le fournisseur. Une réaction de transcription inverse, suivie d'une réaction d'amplification en chaîne (Réaction RT-PCR ) est réalisée avec 50 pI de la suspension d'ARN viral de FIV (exemple 6) et avec les oligonucléotides suivants : PB680 (29 mer) (SEQ ID NO : 15) 5'TTTCTGCAGATGGAAGACATAATAGTATT 3', et PB681 (32 mer) (SEQ ID NO : 16) 5'TTTAGATCTCTAAGCAGTAGTTATTGATAATG 3'. Ce couple d'oligonucléotides permet l'incorporation d'un site de restriction Bglll, d'un site de restriction Pstl, d'un codon ATG initiateur en 5'et d'un codon stop en 3'de l'insert. La synthèse du premier brin d'ADNc se fait par élongation de l'oligonucléotide PB681, après hybridation de ce dernier à la matrice d'ARN. Les conditions de synthèse du premier brin d'ADNc sont une température de 420C pendant 15 min, puis de 99 C pendant 5 min, et enfin de 4 C pendant 5 min. Les conditions de la réaction PCR en présence du couple d'oligonucléotides PB680 et PB681 sont une température de 950C pendant 2 min, puis 40 cycles (95 C pendant 30 sec, puis 50 C pendant 45 sec, et 72 C pendant 1 min), et enfin 72 C pendant 7 min pour produire un fragment de 254 pb. Ce fragment est digéré par l'enzyme de restriction Pstl puis par l'enzyme de restriction Bglll pour isoler, après électrophorèse en gel d'agarose, le fragment Pstl- Bgill d'environ 240 pb. Ce fragment est ligaturé avec le plasmide d'expression pVR1012 préalablement digéré par Pstl et Bglll, pour donner le plasmide pPB383 (5089 pb). Ce plasmide contient, sous le contrôle du promoteur précoce hCMV-IE, un insert codant pour la protéine tat de FIV. Exemple 11 : Extraction de l'ARN viral de FeLV Des virus FeLV de type A (souche Glasgow-1) (Stewart M. et a/., J. Virol., 1986,58, 825-834) ont été purifiés selon les techniques bien connues de l'homme du métier. L'ARN viral génomique de chaque virus a été ensuite isolé en utilisant la technique d'extraction thiocyanate de guanidium/phénolchloroforme décrite par P. Chomczynski et N. Sacchi (Anal. Biochem., 1987,162, 156-159). Exemple 12 : Construction du plasmide pPB179 L'ADN complémentaire (ADNc) de FeLV est synthétisé avec le kit Gene Amp RNA PCR Kit (Cat&num; N 808 0017, Perkin-Elmer, Norwalk, CT 06859, USA) en utilisant les conditions données par le fournisseur. Une réaction de transcription inverse, suivie d'une réaction d'amplification en chaîne (Réaction RT-PCR ) est réalisée avec 50 pLI de la suspension d'ARN viral de FeLV (exemple 11) et avec les oligonucléotides suivants : PB247 (29 mer) (SEQ ID NO : 17) 5'TTTGTCGACCATGGAAAGTCCAACGCACC 3', et PB249 (28 mer) (SEQ ID NO : 18) 5'TTTGGATCCTCATGGTCGGTCCGGATCG 3'. Ce couple d'oligonucléotides permet l'incorporation d'un site de restriction Sail, d'un site de restriction BamHI, d'un codon ATG initiateur en 5'et d'un codon stop en 3'de l'insert. La synthèse du premier brin d'ADNc se fait par élongation de l'oligonucléotide PB249, après hybridation de ce dernier à la matrice d'ARN. Les conditions de synthèse du premier brin d'ADNc sont une température de 42 C pendant 15 min, puis de 99 C pendant 5 min, et enfin de 4 C pendant 5 min. Les conditions de la réaction PCR en présence du couple d'oligonucléotides PB247 et PB249 sont une température de 950C pendant 2 min, puis 40 cycles (95 C pendant 30 sec, puis 50 C pendant 45 sec, et 720C pendant 1 min), et enfin 72 C pendant 7 min pour produire un fragment de 1947 pb. Ce fragment est digéré par l'enzyme de restriction Sali puis par l'enzyme de restriction BamHI pour isoler, après électrophorèse en gel d'agarose, le fragment Sall-BamHI d'environ 1935 pb. Ce fragment est ligaturé avec le plasmide d'expression pVR1012 préalablement digéré par Sali et BamHI, pour donner le plasmide pPB179 (6804 pb). Ce plasmide contient, sous le contrôle du promoteur précoce hCMV-IE, un insert codant pour la protéine env de FeLV-A. Exemple 13 : Construction du plasmide pPB181 L'ADN complémentaire (ADNc) de FeLV est synthétisé avec le kit Gene Amp RNA PCR Kit (Cat &num; N 8080017, Perkin-Elmer, Norwalk, CT 06859, USA) en utilisant les conditions données par le fournisseur. Une réaction de transcription inverse, suivie d'une réaction d'amplification en chaîne (Réaction RT-PCR ) est réalisée avec 50 jj. ! de la suspension d'ARN viral de FeLV (exemple 11) et avec les oligonucléotides suivants : PB283 (33 mer) (SEQ ID NO : 19) 5'TTGTCGACATGTCTGGAGCCTCTAGTGGGACAG 3', et PB284 (40 mer) (SEQ ID NO : 20) 5'TTGGATCCTTATTTAATTACTGCAGTTCCAAGGAACTCTC 3'. Ce couple d'oligonucléotides permet l'incorporation d'un site de restriction Sall, d'un site de restriction BamHI, d'un codon ATG initiateur en 5'et d'un codon stop en 3'de l'insert. La synthèse du premier brin d'ADNc se fait par élongation de l'oligonucléotide PB284, après hybridation de ce dernier à la matrice d'ARN. Les conditions de synthèse du premier brin d'ADNc sont une température de 42 C pendant 15 min, puis de 99 C pendant 5 min, et enfin de 4 C pendant 5 min. Les conditions de la réaction PCR en présence du couple d'oligonucléotides PB283 et PB284 sont une température de 95 C pendant 2 min, puis 40 cycles (95 C pendant 30 sec, puis 50 C pendant 45 sec, et 72 C pendant 1 min), et enfin 72 C pendant 7 min pour produire un fragment de 3049 pb. Ce fragment est digéré par l'enzyme de restriction Sali puis par l'enzyme de restriction BamHi pour isoler, après électrophorèse en gel d'agarose, le fragment Sali-BamHI d'environ 3039 pb. Ce fragment est ligaturé avec le plasmide d'expression pVR1012 préalablement digéré par Sali et BamHI, pour donner le plasmide pPB181 (7908 pb). Ce plasmide contient, sous le contrôle du promoteur précoce hCMV-IE, un insert codant pour la protéine gag/pro de FeLV-A. Exemple 14 : Préparation des plasmides Pour la préparation des plasmides destinés à la vaccination des chats, on peut utiliser toute technique permettant d'obtenir une suspension de plasmides purifiés. Ces techniques sont bien connues de l'homme du métier. La production des plasmides se fait par culture de bactéries Escherichia coli K12 transformées avec les plasmides selon l'invention. On peut citer en particulier la technique de lyse alcaline suivie de deux ultracentrifugations successives sur gradient de chlorure de césium en présence de bromure d'éthidium telle que décrite dans Sambrook J. et al. (Molecular Cloning : A Laboratory Manual. 2nd edition. Cold Spring Harbor Laboratory. Cold Spring Harbor. NY. 1989). On peut se référer également aux demandes de brevet WO-A-95/21250 et WO-A-96/02658 qui décrivent des méthodes pour produire à l'échelle industrielle des plasmides utilisables pour la vaccination. Pour les besoins de la fabrication des vaccins, les plasmides sont resuspendus de manière à obtenir des solutions à haute concentration ( > 2 mg/ml) compatibles avec le stockage. Pour ce faire, les plasmides sont resuspendus soit en eau ultrapure, soit en tampon TE (Tris-HCI 10 mM ; EDTA 1 mM ; pH 8.0). Exemple 15 : Fabrication des vaccins et administration Le stock de plasmide pPB477 est dilué en tampon TE, en eau physiologique ou en tampon PBS, et mélangé à divers plasmides vaccinaux exprimant des immunogènes, en particulier pPB371 (exemple 7) et/ou pPB374 (exemple 8) et/ou pPB375 (exemple 9) et/ou pPB383 (exemple 10) et/ou pPB179 (exemple 12) et/ou pPB181 (exemple 13). Ces plasmides peuvent également être, par exemple, ceux cités dans les exemples de WO-A-98/03660 et WO-A-00/77043. Les différents mélanges de plasmides immunogènes et du plasmide pPB477 ainsi obtenus sont co-administrés à chaque chat par voie intramusculaire. Dans ce cas, les doses vaccinales sont injectées sous un volume de 1 ml. Exemple 16 : Formulation des plasmides Le mélange de plasmides immunogènes et du plasmide pPB477 (exemple 15) est dilué en tampon TE, en eau physiologique ou en tampon PBS de façon à obtenir une concentration de 1 mg/ml. Une solution de DMRIE-DOPE à 0,75mM est préparée par reprise d'un Iyophilisat de DMRIE-DOPE par un volume adapté d'H20 stérile. La formation des complexes ADN plasmidique-lipide est réalisée par dilution à parties égales de la solution de DMRIE-DOPE 0,75 mM par la solution d'ADN à 1 mg/ml. La solution d'ADN est introduite progressivement à l'aide d'une aiguille sertie 26G le long de la paroi du flacon contenant la solution de lipide cationique de façon à éviter la formation de mousse. On procède à une agitation douce dès que les deux solutions ont été mélangées. On obtient en final une composition comprenant 0,375 mM de DMRIE-DOPE et 500 g/mt d'ADN. Il est souhaitable que l'ensemble des solutions utilisées soit à température ambiante pour l'ensemble des opérations décrites ci-dessus. On laisse la complexation ADN/DMRIE-DOPE se mettre en place à température ambiante pendant 30 minutes avant de procéder à l'immunisation des animaux comme cela est décrit dans l'exemple 15. Il doit être bien compris que l'invention définie par les revendications annexées n'est pas limitée aux modes de réalisation particuliers indiqués dans la description ci-dessus, mais englobe les variantes qui ne sortent ni du cadre ni de l'esprit de la présente invention. Revendications 1. Polynucléotide isolé comprenant la séquence nucléotidique SEQ ID NO : 1. 2. Polynucléotide isolé codant pour la séquence en acides aminés SEQ ID NO : 2 ou 3. 3. Polynucléotide isolé ayant la séquence nucléotidique SEQ ID NO : 1. 4. Polypeptide IGF-1 félin isolé. 5. Polypeptide IGF-1 félin isolé ayant la séquence en acides aminés SEQ ID NO : 2 ou 3. 6. Vecteur d'expression in vitro comprenant un polynucléotide selon la revendication 1,2 ou 3. 7. Vecteur d'expression in vivo comprenant un polynucléotide selon la revendication 1,2 ou 3. 8. Vecteur selon la revendication 7, caractérisé en ce que le vecteur est un plasmide. 9. Vecteur selon la revendication 7, caractérisé en ce que le vecteur est un vecteur viral. 10. Vecteur selon la revendication 9, caractérisé en ce que le vecteur viral est choisi dans le groupe consistant en poxvirus, adénovirus et herpèsvirus. 11. Vecteur selon la revendication 10, caractérisé en ce que le poxvirus est choisi dans le groupe consistant en virus de la vaccine, canarypox, fowlpox, swinepox et raccoonpox. 12. Vecteur selon la revendication 10, caractérisé en ce que le vecteur est FHV. 13. Vecteur selon la revendication 11, caractérisé en ce que le vecteur est un canarypox. 14. Composition destinée à induire chez un membre de l'espèce féline, notamment un chat, une réponse immunitaire contre un pathogène félin, cette composition comprenant une protéine IGF-1 de préférence IGF-1 félin ou un vecteur recombinant exprimant in vivo cet IGF-1, et au moins un immunogène de pathogène félin ou un vecteur recombinant exprimant in vivo cet immunogène et un excipient ou véhicule acceptable sur le plan vétérinaire. 15. Composition selon la revendication 14, caractérisée en ce que le pathogène félin est FIV et/ou FeLV. 16. Composition selon la revendication 14 ou 15, caractérisée en ce qu'elle comprend un plasmide exprimant l'IGF-1. 17. Composition selon l'une quelconque des revendications 14 à 16, caractérisée en ce qu'elle comprend un plasmide exprimant l'immunogène de pathogène félin. 18. Composition selon la revendication 14 ou 15, caractérisée en ce qu'elle comprend un vecteur viral, de préférence poxvirus, adénovirus ou herpèsvirus, exprimant l'IGF-1. 19. Composition selon la revendication 14, ~15 ou 18, caractérisée en ce qu'elle comprend un vecteur viral, de préférence poxvirus, adénovirus ou herpèsvirus, exprimant l'immunogène de pathogène félin. 20. Composition selon la revendication 18 ou J 9, caractérisée en ce que le vecteur viral est choisi parmi virus de la vaccine, canarypox, fowlpox, swinepox, raccoonpox et FHV. 21. Composition selon la revendication 14 ou 15, dans laquelle l'immunogène est choisi dans le groupe consistant en immunogène inactivé, immunogène vivant atténué et sous-unités. 22. Composition selon la revendication 21, caractérisée en ce qu'elle comprend une protéine IGF-1. 23. Composition selon la revendication 14 ou 15, caractérisée en ce qu'elle comprend un vecteur d'expression in vivo selon l'une des revendications 7 à 13. 24. Composition selon l'une quelconque des revendications 14 à 23, caractérisée en ce qu'elle comprend un immunogène de FPV, de FIPV, de FHV, de FCV, du virus de la rage et/ou de Chlamydia, ou un vecteur exprimant un tel immunogène. 25. Composition stimulante de l'immunité comprenant un vecteur recombinant, de préférence plasmide ou vecteur viral, exprimant IGF-1 in vivo et un véhicule ou excipient acceptable au plan vétérinaire.