FR 2814177 A1 20020322 FR 0011989 A 20000920 L'invention concerne un procédé de propagation, in vitro, de l'agent responsable des encéphalopathies spongiformes transmissibles (ESTs), ou prion, permettant de conserver le pouvoir infectant du prion. Les ESTs regroupent principalement la tremblante du mouton (ou scrapie), l'encéphalopathie spongiforme bovine, la maladie de CreutzfeldtJakob et le Kuru chez l'homme. Ces maladies neurodégénératives sont caractérisées par l'apparition d'une forme anormale de la protéine PrPc naturellement présente à la surface de certaines cellules, et notamment des neurones. La protéine Prpc ou protéine du prion est une sialoglycoprotéine de la surface cellulaire qui joue un rôle primordial dans les encéphalopathies spongiformes transmissibles chez l'homme et l'animal. Dans ces maladies, la PrPc est convertie en une forme pathogène dénommée PrPsc, qui serait une isoforme anormale de Prpc, qui s'est avérée être indispensable à l'infectivité et que l'on considère aujourd'hui être l'agent infectieux de ces maladies. Le processus de transformation de la Prpc en PrPsc reste indéterminé et on dispose actuellement de peu d'outils pour étudier le mécanisme d'action de cet agent infectieux, notamment en vue de sa détection et de la recherche de traitements thérapeutiques pour traiter les maladies qu'il entraîne. Selon la publication de C. Lemaire-Vieille et ai., PNAS, Vol. 97, N 10 du 09/05/2000, Epithelial and endothelial expression of the green fluorescent protein reporter gene unc/er e confro/of jbowne pnon proe/n ('PrP gene regulatory sequences in transgenic mice, les auteurs des travaux ont obtenu plusieurs lignées de souris transgéniques qui expriment le gène reporter d'une protéine fluorescente (gfp), sous le contrôle de séquences de régulation du gène de la protéine PrP bovine. L'exposition à un rayonnement UV de coupes histologiques issues d'organes prélevés sur ces souris, permet de localiser la production de la fluorescence, et donc d'identifier les cellules capables d'exprimer le gène PrP. Les auteurs ont ainsi observé que les sites de production étaient les cellules de Purkinje cérébelleuses, les lymphocytes, les cellules épithéliales de la région médullaire du thymus, les kératinocytes et les cellules endothéliales des capillaires sanguins des villosités intestinales. Ces travaux ont donc permis de disposer d'un modèle d'étude à partir duquel il est alors possible de déterminer les lieux d'expression du gène du prion. Les auteurs de la présente invention ont découvert que les cellules gliales, et en particulier les cellules de Schwann, constituent un site approprié pour la propagation, in vitro, du prion. On ne connaît à ce jour que très peu de lignées cellulaires capables de perpétuer le pouvoir infectieux de l'agent responsable des ESTs ; il s'agit de la lignée cellulaire N2a dérivée de cellules de neuroblastome de souris [Butler, J. Virol. (1988) 62, 1558-1564], de la lignée cellulaire PC12 dérivée de cellules de phéochromocytome de rat [Rubenstein, J. Gen. Virol. (1984) 65, 2191-2198], de la lignée cellulaire GT1 dérivée de cellules neuronales issues de l'hypothalamus [Schatz, J. Virol. (1997) 11, 8821-8831] et de la lignée cellulaire 1 C11 issue de cellules de neuroectoderme [Mouillet- Richard, Microbes Infect. (1999) 12, 969-976]. Aucune n'est d'origine gliale. Ces cellules sont des cellules neuronales et la découverte selon la présente invention est surprenante en ce que les cellules gliales ne sont pas des cellules neuronales et que l'infectivité qui s'y développe, comme cela est montré ciaprès, est forte. Ainsi, un premier objet de l'invention est un procédé de propagation, in vitro, du prion, selon lequel on dispose d'une culture ou d'une lignée de cellules gliales et on infecte la culture ou la lignée par l'agent responsable des ESTs ou prion. Plus particulièrement, ledit agent est d'origine murine. Avantageusement, les cellules gliales sont des cellules de Schwann. Avant de décrire l'invention plus en détails, certains termes employés dans la description et les revendications sont ci-après définis. Par propagation du prion dans une culture cellulaire, on comprend selon l'invention, qu'après infection, ou infestation, d'au moins une cellule de la culture cellulaire de départ ou de la lignée cellulaire de départ, on conserve le pouvoir infectieux du prion dans les cellules dérivées, c'est-à-dire les cellules résultant de sous-cultures. Le prion utilisé pour infecter la culture ou lignée de départ est choisi parmi les souches de prion telles que la souche Chandler ou la souche RML (Rocky Mountain Laboratory), ou parmi les cellules d'une culture primaire, c'est-à-dire des cellules directement prélevées à partir d'un tissu infecté. A titre d'exemple, il peut s'agir de tissus cérébraux prélevés post-mortem sur des souris. Des variantes préférentielles du procédé ci-dessus et d'autres objets de l'invention sont maintenant présentés. Le procédé est avantageusement mis en oeuvre à partir d'une culture ou d'une lignée de cellules de Schwann d'origine murine ; une lignée préférée est la lignée MSC-80. L'invention concerne aussi une lignée de cellules gliales infectées par le prion, capable de propager le prion ; les cellules de la lignée sont avantageusement dérivées de cellules de Schwann, et plus particulièrement dérivées de cellules de la lignée de cellules de Schwann murine, MSC-80, après infection par le prion. Un autre objet de l'invention est un procédé d'évaluation de l'efficacité d'une molécule, d'un agent ou d'une composition, pour diminuer ou inhiber l'infectiosité du prion, procédé selon lequel on met en contact une culture de cellules gliales infectées par le prion ou une lignée cellulaire de l'invention, ou un extrait de celles-ci, avec ladite molécule, ledit agent ou ladite composition, à des doses prédéterminées, et on détecte la diminution ou l'inhibition de l'infectiosité du prion. L'étape de détection peut être réalisée chez des souris Tga 20. L'invention apporte aussi un procédé pour la détection, et éventuellement la quantification du prion, dans un échantillon biologique, selon lequel on met ledit échantillon en contact avec une culture ou une lignée de cellules gliales, dans des conditions permettant l'infection de cette dernière, et on détecte l'infection ou la non infection de ladite lignée par ledit échantillon. De préférence, les cellules gliales sont des cellules de Schwann et en particulier la lignée de cellules gliales est la lignée MSC-80. Encore un autre objet de l'invention est l'utilisation de la lignée cellulaire MSC-80 pour propager, in vitro, le prion. La présente invention est ci-après illustrée par les exemples suivants. Exemple 1 : Infection de la lignée MSC-80 et mise en évidence de cette infection Des cellules de Schwann murines MSC-80 sont cultivées en boîte de six puits (2x105 cellules par puits), 48 heures avant l'infection, dans un milieu de culture consistant en du milieu de Eagle modifié par Dulbecco (DMEM) complété avec 10% de sérum de veau foetal (Life Technologies, Paisley, UK), de la L-glutamine 2 mM final (Life Technologies) et 100 U/ml de pénicilline/100 pg de streptomycine (SEROMED). Un homogénat à 10% (poids/volume) de cerveaux de souris infectés par la souche de prion RML (Rocky Mountain Laboratory) est obtenu par broyage mécanique dans le milieu de culture précédemment décrit, suivi d'un passage à travers des aiguilles de 16, puis 22 gauges, et chauffé à 80 C pendant 20 minutes. Les cellules MSC-80 sont ensuite mises en contact avec 1 ml par puits d'homogénat dilué à 2%, à 37 C pendant 72 heures. L'inoculum et le milieu ainsi utilisés sont renouvelés toutes les 24 heures. Après 72 heures, le surnageant du milieu de culture est remplacé par 2 ml de milieu de culture frais. Les cellules sont cultivées jusqu'à confluence. Le contenu de chaque puits est alors réparti dans des flasques de culture de 75 cm2, puis de 150 cm2, et est repiqué au 1/1 Oème dans des flasques de 150 cm2 tous les 7 jours. La présence de la protéine Prpsc est détectée par Western-Biot. Les cellules (8x106) sont Iysées dans 200 ! JI de tampon (Triton-DOC) pendant 15 minutes sur de la glace. La quantité de protéines du surnageant est dosée et ajustée à 1 mg/ml avec du tampon de lyse. Un milligramme de protéines totales est alors digéré par 20 pg de protéinase K (BOEHRINGER MANNHEIM, Meylan, France) à 37 C pendant 30 minutes, de manière à détruire les protéines Prpc (normales). La réaction est arrêtée pendant 5 minutes sur la glace, après l'ajout à 2 mM final de fluorure de phényl-méthyl-sulfonyle (SIGMA, St Louis, MO). Le produit de digestion est centrifugé pendant 45 minutes à 14 000g. Le culot est repris dans 20 ut de tampon de Laemmli, chauffé 5 minutes à 100 C, et déposé sur un gel de polyacrylamide 12%. Après la migration dans un tampon Tris-Glycine à 50 mA pendant 2 heures, le gel est électrotransféré sur une membrane de nitrocellulose pendant 2 heures. La protéine Prpsc est alors détectée en utilisant un mélange à équivalence de trois anticorps monoclonaux (SAF60, SAF69 et SAF70 ; GRASSI, CEA Saclay, France). La présence de ces anticorps est révélée par un anticorps anti-immunoglobuline de souris couplé à la peroxydase qui permettra la révélation par chémiluminescence (Kit ECL, AMERSHAM LIFE SCIENCE, Little Chalfont, UK). Exemple 2 : Mise en évidence de la propagation du prion Le pouvoir infectieux du prion propagé selon l'Exemple 1 a été analysé par inoculation intracérébrale de souris Tga20, disponibles à !'institut de Neuropathologie de Zürich (S. Brander et al., Nature (1996) 379, 339-343 ; M. Fisher et al., EMBO J., (1996) 15,1255-1264). Un premier lot de souris Tga20 a été inoculé avec la souche de prion de Chandler, un second lot de souris a été inoculé par des cellules de Schwann murines témoin MSCct, et un troisième lot de souris a été inoculé avec des cellules de Schwann infectées MSCCh, décrites à l'Exemple 1. Ce troisième lot a été obtenu par inoculation des souris par des extraits de cellules infectées de l'Exemple 1, résultant du septième passage. Au dernier stade de la maladie, la Prpsc est identifiée par WesternBlot après digestion partielle avec de la protéinase K (cf. exemple 1). Le profil obtenu dans les extraits de cerveaux des souris inoculées avec les cellules MSCCH est identique à celui obtenu chez les souris inoculées avec la souche Chandler. L'analyse immunohistochimique avec des anticorps dirigés contre la protéine gliale fibrillaire acide (GFAP) révèle, dans le tégument du mésencéphale des souris inoculées avec les cellules MSCCh, une hyperplasie et une hypertrophie astrocytaire. Ces cerveaux présentent aussi une vacuolisation du neurophile visible après coloration à l'hématoxiline-éosine. 88 jours après l'inoculation, les souris infectées précitées présentent une hyperactivation et une perte de l'équilibre. Elles meurent au bout de 91,5 i 5 jours. Les mêmes observations ont été observées en remplaçant ce troisième lot, par un quatrième lot obtenu par inoculation des souris par des extraits de cellules infectées de l'Exemple 1, résultant du vingt-deuxième passage. REVENDICATIONS 1. Procédé de propagation, in vitro, de l'agent responsable des encéphalopathies spongiformes transmissibles (ESTs), ou prion, caractérisé en ce qu'on dispose d'une culture de cellules gliales ou d'une lignée de cellules gliales et en ce qu'on infecte la culture ou la lignée par l'agent responsable des encéphalopathies spongiformes transmissibles (ESTs) ou prion. 2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que les cellules gliales de ladite culture ou lignée sont des cellules de Schwann. 3. Procédé selon la revendication 2, caractérisé en ce que les cellules de Schwann de ladite culture ou lignée sont d'origine murine. 4. Procédé selon la revendication 3, caractérisé en ce que la lignée est la lignée MSC-80. 5. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'on infecte ladite culture ou ladite lignée par l'agent scrapie murin. 6. Lignée de cellules gliales infectées par le prion, capable de propager le prion. 7. Lignée selon la revendication 6, caractérisée en ce que les cellules sont des cellules de Schwann. 8. Lignée selon la revendication 7, caractérisée en ce que les cellules de la lignée sont dérivées de cellules de la lignée de cellules de Schwann murine, MSC-80, après infection par le prion. 9. Procédé d'évaluation de l'efficacité d'une molécule, d'un agent ou d'une composition pour diminuer ou inhiber l'infectiosité du prion, caractérisé en ce qu'on met en contact une culture de cellules gliales infectées par le prion ou une lignée cellulaire selon l'une quelconque des revendications 6 à 8, ou un extrait de celles-ci, avec ladite molécule, ledit agent ou ladite composition, à des doses prédéterminées, et on détecte la diminution ou l'inhibition de l'infectiosité du prion. 10. Procédé selon la revendication 9, caractérisé en ce qu'on détecte la diminution ou l'inhibition de l'infectiosité du prion chez des souris Tga 20. 11. Procédé pour la détection, et éventuellement la quantification du prion, dans un échantillon biologique, caractérisé en ce qu'on met ledit échantillon en contact avec une culture ou une lignée de cellules gliales, dans des conditions permettant l'infection de cette dernière, et en ce qu'on détecte l'infection ou la non infection de ladite lignée par ledit échantillon. 12. Procédé selon la revendication 11, caractérisé en ce que les cellules gliales sont des cellules de Schwann. 13. Procédé selon la revendication 12, caractérisé en ce que la lignée est la lignée MSC-80. 14. Utilisation de la lignée cellulaire MSC-80 pour propager, in vitro, le prion.