FR 2816958 A1 20020524 FR 0014896 A 20001117 DESCRIPTION La présente invention concerne un procédé d'analyse de la prédisposition génétique d'un patient à au moins une maladie appelée le diabète insulino-dépendant. Le diabète de type 1 (ou diabète insulino-dépendant) est une maladie caractérisée par la disparition des cellules ss de Langerhans productrices d'insuline dans le pancréas, résultant d'un processus auto-immun qui se développe chez les individus génétiquement prédisposés. A côté de facteurs environnementaux, une composante génétique de prédisposition est observée, s. Chaque individu dispose d'un patrimoine génétique propre, hérité de ses ascendants. Ce contexte génétique particulier peut parfois activement participer à l'apparition et/ou au développement de certaines affections : infections par un agent pathogène (virus du SIDA par exemple), maladies autoimmunes (maladies rhumatismales par exemple). Les gènes du Complexe Majeur d'Histocompatibilité (CMH) notamment les gènes codant pour les antigènes HLA (Human Leukocyte Antigens), jouent un rôle prépondérant dans le développement des pathologies autoimmunes : non spécifiques d'organes, par exemple articulaires comme la polyarthrite rhumatoïde (Lawrence, 1970 ; Stastny, 1978 ; Khan, 1979 ; Stastny, 1983 ; Gregersen, 1986 ; Gregersen, 1987 ; Stastny, 1988 ; Todd, 1988 ; Wordsworth, 1989 ; Nepom, 1989 ; Hiraiwa, 1990 ; Nepom, 1991) ou la spondylarthrite ankylosante (Brewerton, 1973 ; Schlosstein, 1973 ; Benjamin, 1990), ou . spécifiques d'organes et plus précisément de glandes endocrines comme le pancréas associé au diabète insulino-dépendant (Komulainen, 1999 ; Kulmala, 2000). Une partie importante de la composante génétique de la susceptibilité au diabète insulino-dépendant a pu être associée au marqueur principal lié au locus HLA (IDDM1), et plus particulièrement aux gènes HLA-DQB 1. Les données de la littérature permettent actuellement de considérer les allèles les plus courants parmi les quarante-cinq (45) allèles HLA-DQB 1 décrits dans la nomenclature internationale, comme allèles de susceptibilité (allèles S), allèles de protection (allèles P), allèles neutres (allèles N) (www. anthonynolan. com/HIG/seq/nuc ; octobre 2000). Il s'agit essentiellement de données validées pour des populations caucasiennes. Pour le moment, l'explication moléculaire réside dans le polymorphisme observé au niveau de l'acide aminé 57 de la chaîne ss de la protéine HLA-DQ (Todd et al., 1988). Le tableau 1 ci-dessous résume le statut du diabète insulino-dépendant en fonction de la nature de cet acide aminé en position 57. Statut diabète insulino-Allèles HLA-DQB 1 * Acide aminé en position 57 dépendant 02 S Alanine (A) 0302 0301 P 0602 Acide aspartique (D) 0603 N Autres Valine (V) ou Sérine (S) Tableau 1 : Statut du diabète insulino-dépendant en fonction de la nature de l'acide aminé en position 57 Chaque génotype correspond à une combinaison de deux allèles. Ainsi, à chaque échantillon correspond un génotype de prédisposition au diabète de type 1 : SS, PP, NN, SP, SN ou NP. Cette explication moléculaire est également cohérente avec l'observation d'une sévérité graduelle de la maladie lorsque le génotype comprend aucun, un ou deux allèles de susceptibilité, communément appelée effet dose. Actuellement en ce qui concerne le diabète insulino-dépendant, un article de Cinek et al. , Screening for the IDDM high-risk genotype. A rapid microtitre plate method using serum as source of DNA)), Tissue Antigens, 2000, 56, 4, 344-349. Cette publication souligne l'intérêt de développer un test d'analyse de prédisposition génétique au diabète insulino-dépendant. Cette équipe a choisi une approche à partir de sérum avec une technique qui est complète vis-à-vis des allèles concernés (quelques allèles HLA-DQ7 mais aussi quelques allèles HLA-DQ7 et quelques allèles HLADRBl*04). L'utilisation de sérum est beaucoup moins pratique qu'un protocole à partir d'une tâche de sang séché. De plus, leur technique est complexe puisque : . ils réalisent une analyse en deux temps des allèles HLA-DQB1 et HLA-DQA, puis des allèles HLA-DRB1*04, . ils utilisent une technologie compliquée pour l'immobilisation des sondes de capture, avec une température d'hybridation à 63OC, des lavages à 63 C puis de 18 à 25 C et révélation en deux temps avec streptavidine péroxydase (SPOD). De même, cette technique ne permet absolument pas de détecter l'effet dose qui a pourtant une influence considérable sur la prédisposition génétique d'un patient au diabète insulino-dépendant. Enfin, ces tests ne peuvent être effectuées que par les centres spécialisés dans l'étude des gènes HLA, tels les centres de transfusions sanguines ou certains hôpitaux spécialisés. Cette identification nécessite donc l'envoi d'un échantillon et l'utilisation d'une technologie assez lourde. Les conséquences négatives sont donc nombreuses, telles que : * les risques de perte de l'échantillon, * la longue durée de cette identification, * le coût relativement élevé de ladite identification, et * l'absence de contrôle par le demandeur sur le prestataire de services. Le procédé d'analyse revendiqué permet une analyse simplifiée sur le plan pratique, plus rapide, moins de deux heures, après préparation des amplicons, et peu onéreuse. A cet effet, la présente invention concerne un procédé d'analyse de la prédisposition génétique d'un patient à une maladie auto-immune, consistant à mettre un échantillon liquide contenant au moins un type d'amplicons, issus de l'amplification d'au moins une région polymorphe d'intérêt en rapport avec la maladie recherchée, en présence simultanément de sondes choisies de la façon suivante : e au moins une sonde spécifique de la susceptibilité du patient vis-à-vis de la maladie, au moins une sonde spécifique de la protection dudit patient vis-à-vis de ladite maladie, et au moins une sonde spécifique de la neutralité dudit patient vis-à-vis de ladite maladie, et consistant à révéler les hybridations réalisées. Préférentiellement, ce procédé permet l'analyse de la prédisposition génétique d'un patient à un diabète insulino-dépendant. Selon une variante de réalisation, les sondes utilisées pour détecter le diabète insulino-dépendant sont définies comme suit : * au moins une sonde spécifique des allèles HLA-DQB 1*0201 et HLA-DQB 1*0202 et HLA-DQB1*0302 pour la susceptibilité, . au moins une sonde spécifique des allèles HLA-DQB1*0301, HLA-DQB1*0602 et HLA-DQB1*0603 pour la protection, et 'au moins une sonde spécifique des autres allèles associés au diabète insulinodépendant pour la neutralité. Selon une variante de réalisation, les sondes utilisées pour détecter le diabète insulino-dépendant sont définies comme suit : . au moins une sonde spécifique des allèles HLA-DQB1*0201, HLA-DQB1*0202, HLA-DQB1*0203, HLA-DQB1*0302, HLA-DQB1*0304, HLA-DQB1*0305, HLA-DQB1*0307 et HLA-DQB1*0308 pour la susceptibilité, 'au moins une sonde spécifique des allèles HLA-DQB1*03011, HLA-DQB1*03012, HLA-DQB 1*03032, HLA-DQB 1*03033, HLA-DQB 1*0304, HLA-DQB 1*0306, HLA-DQB 1*0308, HLA-DQB 1*0309, HLA-DQB 1*0310, HLA-DQB 1*0602, HLA-DQB1*0603, HLA-DQB1*0608, HLA-DQB1*0610, HLA-DQB1*06111, HLA-DQB1*06112, HLA-DQB1*0612, HLA-DQB1*0613, HLA-DQB1*0614 et HLA-DQB 1*0616 pour la protection, et au moins une sonde spécifique des allèles HLA-DQB 1*0306, HLA-DQB 1*0401, HLA-DQB1*0402, HLA-DQB1*05011, HLA-DQB1*05012, HLA-DQB1*0502, HLA-DQB1*05031, HLA-DQB1*05032, HLA-DQB1*06011, HLA-DQB1*06012, HLA-DQB1*06013, HLA-DQB1*06051, HLA-DQB1*06052, HLA-DQB1*0606, HLA-DQB1 *0609, HLA-DQB1 *06112 et HLA-DQB1*0612 pour la neutralité. Plus précisément et dans toutes les variantes précédemment citées, les sondes utilisées pour détecter la susceptibilité vis-à-vis du diabète insulino-dépendant sont définies comme suit : * une sonde spécifique des allèles HLA-DQB1*0201, HLA-DQB1*0202 et HLA- DQB 1 *0203, et . une sonde spécifique des allèles HLA-DQB1*0302, HLA-DQB1*0304, HLADQB 1*0305, HLA-DQB 1*0307 et HLA-DQB 1*0308 Selon ce dernier cas, les sondes utilisées pour détecter la susceptibilité vis-à-vis du diabète insulino-dépendant sont constituées d'au moins dix (10) acides aminés successifs pris dans les séquences suivantes. . SEQ ID NO 5 (TCTTgTgAgCAgAAgC), et . SEQ ID NO 6 (CCgCCTgCCgCCgA) Plus précisément et dans toutes les variantes précédemment citées, les sondes utilisées pour détecter la protection vis-à-vis du diabète insulino-dépendant sont définies comme suit : # une sonde spécifique des allèles HLA-DQB1*03011, HLA-DQB1*03012, HLA- DQB 1*0304 et HLA-DQB 1*0309, . une sonde spécifique des allèles HLA-DQB1*03011, HLA-DQB1*03012, HLADQB 1*03032, HLA-DQB 1*03033, HLA-DQB 1*0306, HLA-DQB 1*0309 et DQB*0310, et . une sonde spécifique des allèles HLA-DQB 1*0308, HLA-DQB 1*0602, HLADQB1*0603, HLA-DQB1*0608, HLA-DQB1*0610, HLA-DQB1*06111, HLA- DQB1*06112, HLA-DQB1*0612, HLA-DQB1*0613, HLA-DQB1*0614 et HLA- DQB1*0616. Selon ce dernier cas, les sondes utilisées pour détecter la protection vis-à-vis du diabète insulino-dépendant sont constituées d'au moins dix (10) acides aminés successifs pris dans les séquences suivants : # SEQ ID NO 7 (AggggACCCgggCggA), SEQ ID NO 8 (gACgTggAggTgTACC), et SEQ ID NO 9 (gCCgCCTgACgCCg). Plus précisément et dans toutes les variantes précédemment citées, les sondes utilisées pour détecter la neutralité vis-à-vis du diabète insulino-dépendant sont définies comme suit. . une sonde spécifique des allèles HLA-DQB1*0306, HLA-DQB1*0401 et HLA- DQB *0402, . une sonde spécifique des allèles HLA-DQB1*05011, HLA-DQB1*05012, HLA- DQB 1 *0502, HLA-DQB 1 *05031 et HLA-DQB 1*05032, # une sonde spécifique des allèles HLA-DQB1*06011, HLA-DQB1*06012 et HLA- DQB 1 *06013, et . une sonde spécifique des allèles HLA-DQB 1*06051, HLA-DQB 1*06052, HLA- DQB1*0606, HLA-DQB1*0609, HLA-DQB1*06112 etHLA-DQBl*0612. Selon ce dernier cas, les sondes utilisées pour détecter la neutralité vis-à-vis du diabète insulino-dépendant sont constituées d'au moins dix (10) acides aminés successifs pris dans les séquences suivants : # SEQ ID NO 10 (ggggCCCgggCgTC), . SEQ ID NO 11 (AggAggACgTgCgC), SEQ ID NO 12 (TCTTgTAACCAgATAC), et . SEQ ID NO 13 (ggTggACACCgTATgCAg) Dans tous les cas de figure, au moins une sonde de contrôle positif, capable de s'hybrider avec l'ensemble des gènes HLA-DQB1, est utilisée pour permettre la détection de tous les allèles HLA-DQB1 De plus, au plus 38,89 %, préférentiellement au plus 20 %, des bases d'une même sonde sont remplacées par au moins une base analogue, telle que l'inosine. De telles valeurs sont déductibles d'une précédente demande de brevet déposée par la demanderesse sous le numéro PCTFROO/01385 sous priorité des 20 juin 1999 et 6 décembre 2000 Une définition d'une base analogue est donnée dans la suite de la description. Préalablement au procédé d'analyse de la prédisposition génétique d'un patient à une maladie auto-immune, tel que décrit ci-dessus, au moins une amplification de la ou des régions polymorphes d'intérêt associées au HLA-DQB1 est effectuée. Préférentiellement, les amorces d'amplification sont biotinylées, de sorte que les amplicons sont également biotinylés. Préalablement à l'amplification, l'échantillon biologique prélevé, préférentiellement sous forme de tache de sang séché, est traité en vue de l'extraction des acides nucléiques. Cette extraction des acides nucléiques s'effectue dans un mélange réactionnel contenant déjà les désoxyribonucléotides triphosphates (dNTP), qui seront ensuite utilisés lors de l'amplification, et ce préalablement à l'incubation. Dans ce dernier cas, après l'incubation, on ajoute dans le mélange réactionnel, des désoxyribonucléotides triphosphates (dNTP), qui seront également utilisés lors de l'amplification ultérieure. L'invention concerne également un dispositif permettant la mise en oeuvre d'un procédé tel que décrit ci-dessus, où selon une première variante de réalisation, chaque type de sondes spécifiques est fixé dans un compartiment indépendant, tel qu'un puits d'une plaque de microtitration, indépendamment des autres sondes. Selon une deuxième variante de réalisation, chaque type de sondes utilisées pour détecter la susceptibilité ou la protection vis-à-vis du diabète insulino-dépendant est fixé dans un compartiment indépendant, tel qu'un puits d'une plaque de microtitration, indépendamment des autres sondes utilisées pour détecter cette susceptibilité ou cette protection, et toute ou partie des différents types de sondes utilisées pour détecter la neutralité vis-à-vis du diabète insulino-dépendant est fixée dans au moins un puits d'une plaque de microtitration. Selon une troisième variante de réalisation, au moins deux types de sondes spécifiques différentes sont fixés dans un même compartiment indépendant, tel qu'un même puits d'un plaque de microtitration, sans interaction entre elles. Selon une quatrième variante de réalisation, l'ensemble des types de sondes utilisées pour détecter la susceptibilité ou la protection ou la neutralité vis-à-vis du diabète insulino-dépendant est fixé dans un seul et même compartiment, tel qu'un puits d'une plaque de microtitration. Dans le cas où un compartiment, tel qu'un même puits d'un plaque de microtitration, ne contient qu'un seul type de sondes utilisées pour détecter la susceptibilité ou la protection, le procédé de révélation des hybridations réalisées avec le dispositif s'effectue par une révélation colorimétrique non localisée mettant en jeu une réaction enzymatique. Par exemple, il peut s'agir d'une révélation des hybridations réalisées entre chaque type de sonde et les amplicons par la péroxydase. Dans le cas où un compartiment, tel qu'un même puits d'un plaque de microtitration, contient au moins deux types de sondes utilisées pour détecter la susceptibilité ou la protection, le procédé de révélation des hybridations réalisées avec un dispositif s'effectue par une révélation localisée. Par exemple, il peut s'agir d'une révélation des hybridations réalisées entre chaque type de sonde et les amplicons par fluorescence ou radioactivité. L'invention concerne enfin un jeu d'amorces permettant l'amplification d'une séquence correspondant au gène HLADQB 1 en vue de son utilisation dans un procédé d'analyse de la prédisposition génétique d'un patient au diabète insulino-dépendant, qui consiste à utiliser une amorce SEQ ID NO 1 en combinaison avec une amorce SEQ ID NO 2. Préférentiellement, les amorces sont biotinylées en 5'. De plus, les sondes de capture permettant l'hybridation de séquences correspondant au gène HLA-DQB1, en vue de l'analyse de la prédisposition génétique d'un patient au diabète insulino-dépendant, sont fixées au fond d'un puits de plaque de microtitration ou sur une bille par l'intermédiaire d'un bras aminé ou de biotine situé (e) en position 5'des sondes. Les exemples ci-joint sont donnés à titre d'exemple explicatif et n'ont aucun caractère limitatif. Ils permettront de mieux comprendre l'invention. La présente invention concerne un procédé de détection de maladies génétiques qui est rapide et d'un faible coût. Cette nouvelle technologie peut être utilisée avec toutes les maladies génétiques et particulièrement avec la polyarthrite rhumatoïde, la spondylarthrite ankylosante, le diabète insulino-dépendant et d'autres maladies autoimmunes, telles que les connectivites (lupus, sclérodermie,...) également rencontrées lors de consultation de rhumatologie. Il s'agit d'un procédé dédié à l'analyse de prédispositions génétiques d'un individu à certaines maladies, par une technique de biologie moléculaire permettant l'analyse simultanée d'au moins un gène. Ce procédé peut être avantageusement appliqué à l'analyse des prédispositions génétiques cl'un individu, pour une maladie ou un ensemble de maladies apparentées, associée (s) à un ou plusieurs gènes. Ce procédé peut être appliqué à l'analyse des prédispositions génétiques d'un individu à certaines maladies auto-immunes, c'est-à-dire le diabète insulino-dépendant, relatif à un organe, dans le cas présent le pancréas. L'intérêt de ce procédé est d'obtenir en une étape, avec un test multiple mais unique, un ensemble complet d'informations pertinentes d'intérêt clinique (diagnostique, pronostique et d'orientation thérapeutique). Le procédé se décompose en plusieurs étapes : 1) extraction d'acides nucléiques à partir d'un prélèvement biologique de l'individu, 2) amplification des régions d'intérêt, pour lesquelles un polymorphisme associé à une prédisposition génétique à une pathologie a été décrit, et 3) analyse simultanée des amplicons, utilisant un ensemble de réactions d'hybridation mettant en oeuvre un jeu de sondes moléculaires permettant l'analyse précise d'allèles ou de groupes d'allèles donnés. 1-Définitions : Par compartiment, il faut comprendre tout support solide plan ou concave, c'est- à-dire formant cuvette, permettant de recevoir soit : dans un premier cas, une quantité d'un liquide sans que ce liquide n'ait d'interaction avec d'autres aliquotes de ce liquide ou d'autres liquides présents au niveau d'éventuel (s) compartiment (s) adjacent (s), . dans un second cas, plusieurs quantités égales ou différentes entre elles d'un même liquide ou de liquides différents sans que chacun de ce ou ces liquides n'ait d'interaction avec d'autres aliquotes de ce liquide ou d'autres liquides présents au niveau d'éventuel (s) compartiment (s) adjacent (s). Un dispositif permettant de réaliser ces dépôts de quantités de liquide (s), qui peuvent aller de quelques centaines de microlitre, dans le premier cas, à 0,5 nanolitre, dans le second cas, ainsi que le procédé mis en oeuvre par un tel dispositif et les supports réalisés avec le procédé par le dispositif sont déjà bien décrits dans une demande de brevet déposée le 15 novembre 2000 par la demanderesse, sous le numéro FROO/14691. Dans le second cas, les différentes quantités de liquide (s) réparties sur un seul compartiment sont de très faibles volumes, généralement inférieurs au microlitre et forment des spots à la surface dudit compartiment. Le volume de solution par goutte est compris entre 0,5 nanolitre et 1 microlitre, préférentiellement 1 nanolitre et 200 nanolitres. Le terme support solide, tel qu'utilisé dans la définition précédente, inclut tous les matériaux sur lesquels peut être immobilisé un analyte, et dans notre cas un acide nucléique. Des matériaux naturels, de synthèse, modifiés ou non chimiquement, peuvent être utilisés comme support solide, notamment des polymères tels que polychlorure de vinyle, polyéthylène, polystyrène, polyacrylate, polyamide, ou copolymères à base de monomères vinyl aromatiques, alkylesters d'acides a-insaturés ou ss-insaturés, esters d'acides carboxyliques insaturés, chlorure de vinylidène, diènes ou composés présentant des fonctions nitriles (acrylonitrile) ; des polymères de chlorure de vinyle et de propylène, polymère de chlorure de vinyle et acétate de vinyle, copolymères à base de styrènes ou dérivés substitués du styrène ; des fibres synthétiques telles que le nylon, la nitrocellulose ; des matériaux inorganiques tels que la silice, le verre, la céramique, le quartz ; des latex ; des particules magnétiques ; des dérivés métalliques. Le support solide selon l'invention peut être, sans limitation, sous la forme d'une plaque de microtitration, d'une feuille, d'un tube, d'un puits, de particules ou d'un support plan comme une pastille, généralement appelée wafer , de silice ou silicium. Préférentiellement, au moins une partie du support est plan comme un wafer de silicium ou le fond d'un puits d'une plaque de microtitration. Préférentiellement, ce compartiment est constitué par un puits de plaque de microtitration. Le support solide est hydrophile et/ou hydrophobe en fonction des applications et de la nature de la solution contenant le ou les analytes. Par exemple, des zones hydrophiles sont utilisées pour le dépôt, lesdites zones hydrophiles étant délimitées par des zones hydrophobes ce qui permet de mieux contrôler le diamètre des spots Par révélation d'une hybridation, il faut comprendre que l'on utilise un polynucléotide marqué par un réactif de marquage. Par réactif de marquage, on entend un traceur générant directement ou indirectement un signal détectable. Une liste non limitative de ces traceurs suit : les enzymes, comme la péroxydase de raifort, la phosphatase alcaline, la galactosidase, la glucose-6-phosphate déshydrogénase, qui produisent un signal détectable en présence d'un substrat adapté, qui est ajouté, par exemple par colorimétrie, fluorescence, luminescence, ou les chromophores comme les composés fluorescents, luminescents, colorants, ou les groupements à densité électronique détectable par microscopie électronique ou par leur propriété électrique comme la conductivité, l'ampérométrie, la voltamétrie, les mesures d'impédance, ou les groupements détectables par des méthodes optiques comme la diffraction, la résonance plasmon de surface, la variation d'angle de contact ou physiques comme la spectroscopie de force atomique, l'effet tunnel, ou les molécules radioactives comme le 32p, le 35S ou le 11. De préférence, le traceur est un composé fluorescent de faible encombrement stérique comme la fluorescéine, le dansyl, les chromophores du type IR (Li-COR Inc, Lincoln NE, USA), Cy5 et Cy3 (Randolph J. B. and al, Nucleic Acids Res., 25 (14), p2923-2929,1997) et leurs dérivés. Par faible encombrement stérique, on entend un poids moléculaire inférieur à 1000 g/mole. Le procédé de détection d'un acide nucléique cible dans un échantillon dans lequel on met en contact cet acide nucléique cible, éventuellement prétraité, avec en outre le nucléotide fonctionnalisé de manière à générer un polynucléotide fonctionnalisé, et à marquer ledit polynucléotide avec le réactif de marquage puis à détecter ledit polynucléotide marqué. Par prétraitement, on entend les différentes étapes de traitement de l'échantillon pour rendre accessible l'acide nucléique cible, comme par exemple, la lyse, la fluidification, la concentration. Par au moins une sonde spécifique des autres allèles associés au diabète insulino-dépendant pour la neutralité , il faut comprendre au moins une sonde spécifique de tout ou partie des allèles constituant le HLA-DQB1, allèles qui n'ont pas été définis comme constituant des allèles de susceptibilité ou de protection au diabète insulino-dépendant. Généralement, on les choisit les sondes en fonction de la prévalence des allèles reconnus ; ainsi plus un allèle est prévalent et plus on l'implique au niveau des sondes spécifiques de neutralité Par amplification, il faut comprendre que les polynucléotides fonctionnalisés sont générés par une réaction d'amplification enzymatique qui agit sur l'acide nucléique cible qui sert de matrice. Les articles de Lewis (1992. Genetic Engineering News, 12, p. 1-9) d'une part, et d'Abramson et Myers (1993. Curr. Opin. Biotechnol., 4, p. 41-47), d'autre part, donnent des exemples d'amplification de cible. La technique d'amplification enzymatique est par exemple choisie parmi les techniques NASBA (Nucleic Acid Sequence Based Amplification), TMA (Transcription Mediated Amplification) RT-PCR (Reverse Transcriptase-Polymerase Chain Reaction), PCR (Polymerase Chain Reaction), SDA (Strand Displacement Amplification) ou LCR (Ligase Chain Reaction). Par base analogue, il faut comprendre un nucléotide modifié qui est généralement incorporé dans un polynucléotide. Un polynucléotide est constitué d'un enchaînement d'au moins deux désoxyribonucléotides ou ribonucléotides comprenant éventuellement au moins un nucléotide modifié, par exemple au moins un nucléotide comportant une base modifiée, tel que l'inosine, la méthyl-5-désoxycytidine, la diméthylamino-5désoxyuridine, la désoxyuridine, la diamino-2,6-purine, la bromo-5-désoxyuridine, la nébularine ou toute autre base modifiée permettant l'hybridation. Ce polynucléotide peut aussi être modifié au niveau : . de la liaison internucléotidique, comme par exemple les phosphorothioates, les H- phosphonates, les alkyl-phosphonates, ou . du squelette, comme par exemple les a-oligonucléotides (FR-A-2.607. 507) ou les PNA (M. Egholm et al., J. Am. Chem. Soc., 114, pl895-1897, 1992 ou les 2'0- alkyl ribose. Chacune de ces modifications peut être prise en combinaison. Le polynucléotide peut être un oligonucléotide, un acide nucléique naturel ou un de ses fragments comme un ADN, un ARN ribosomique, un ARN messager, un ARN de transfert, un acide nucléique obtenu par une technique d'amplification enzymatique. II-Préparations de l'échantillon : 1 ) Extraction d'acides désoxvribonucléiques (ADNL Vribonucléiciues A-A partir d'un échantillon de sang total : Les différents protocoles classiques d'extraction d'ADN à partir d'échantillons de sang total prélevé sur un anticoagulant, comme EDTA (Ethylène diamine tétraacétique) ou citrate ou héparine, peuvent être utilisés. Ainsi, il peut s'agir d'un protocole avec une étape d'extraction au phénol ou avec étapes de lyses des cellules rouges puis des cellules blanches (Kimura et al., 1992). En pratique et selon un mode de réalisation, cette extraction est réalisée de manière tout à fait classique. En fait, on peut utiliser n'importe quelle technique d'extraction d'ADN, permettant d'obtenir du matériel susceptible d'être ultérieurement amplifié par un procédé d'amplification comme la Polymerase Chain Reaction (PCR). Ces techniques de lyse des cellules, avec extraction puis purification des acides nucléiques sont habituellement celles recommandées pour des analyses génétiques ou des techniques rapides utilisant des produits commerciaux, telles que QIAmp Blood Kit (Marque déposée) de QIAGEN S. A B-A partir de taches de sang séché : Différents protocoles d'extraction d'ADN à partir de sang séché sont décrits dans la littérature. Il y a tout d'abord une première technique de Jinks et al., Hum. Genet. 1989, 81 : 363-366. Celle-ci consiste à déposer du sang sur du papier Schleicher & Schuell no. 903. Les taches sont séchées à une température comprise entre 18 et 25OC, pendant plusieurs heures. On découpe quatre pastilles de 3 mm de diamètre, et on les place dans un tube de 1, 5 ml et on fixe par addition de 30 ul, de méthanol, puis on effectue une évaporation. Ensuite on ajoute 60 J. d'eau et on porte à ébullition pendant 15 minutes. Après on centrifuge 15 minutes à 10.000 g. Enfin on prélève le surnageant pour l'étape suivante, l'amplification par PCR. La deuxième technique est celle de Hezard et al., Thrombosis Research, 1997, 88,1, 59-66. On collecte le sang sur EDTA ou sur citrate ou sur héparine, et on le dépose sur un papier filtre (Guthrie). Une pastille de 1 mm de diamètre est directement placée dans 50 ni de mélange réactionnel pour l'amplification subséquente. On incube 15 minutes à 94Oc. Et enfin on additionne de la Taq polymérase, puis on amplifie par PCR. Enfin, depuis cette année 2000, la société Molecular Innovations Inc. commercialise un système d'extraction d'ADN, qui constitue la troisième technique, situé à l'intérieur même du tube d'amplification (Xtra Amp (marque déposée) Extraction System, Molecular Innovations Inc. Réf. 660). Nous avons évalué ce produit, en vue d'extraire l'ADN à partir de tache de sang. Le sang est collecté sur EDTA ou ACD, déposé sur papier Schleicher & Schuell réf 322187. Une pastille de 3 mm de diamètre est placée dans un microtube de 1,5 ml contenant 75 J. de Lyis Buffer. On incube 10 minutes à une température comprise entre 18 et 25Oc. Puis, on centrifuge 5 minutes à 12.000 g. On prélève ensuite le surnageant et on le transfère dans un tube Xtra Amp (marque déposée). On aspire et refoule plusieurs fois puis on élimine le surnageant. On lave trois fois avec 200 ul de Wash Buffer. Après on ajoute 45 J. de mélange réactionnel pour l'amplification PCR et 5 J. de Amp Enhance Buffer. Enfin on procède à l'amplification en ajoutant trois cycles au programme d'amplification habituel. Avec les trois protocoles décrits ci-dessus, nous avons observé une amplification du HLA-DQB1, avec de bons résultats exploitables pour le test ELOSA (Enzyme Linked OligoSorbent Assay) mis au point selon la présente invention, dans environ 50% des cas. Cette technique ELOSA est bien décrite dans le brevet EP-B-0.486. 661 de la demanderesse ou dans l'article de F. Mallet et al., Journal of Clinical Microbiology, June 1993, p. 1444-1449. Néanmoins, il convient de développer un protocole d'extraction à partir de taches de sang, protocole qui soit robuste et indispensable pour les applications d'analyse en routine. Une quatrième technique a donc été développé par la demanderesse qui consiste à : . collecter le sang sur EDTA, déposé sur papier Schleicher & Schuell no. 903 (réf. 322187), . découper la tache de sang à l'aide de la poinçonneuse de Schleicher & Schuell (pastille de 3 mm de diamètre), décontaminer la poinçonneuse à l'aide d'HCI 0,25 N pendant 5 minutes (dépurination de l'ADN), après chaque tache de sang, placer la pastille dans un tube PCR de 0.5 ml, ajouter 50 ut d'un mélange réactionnel contenant 5 pI de tampon d'amplification dix fois concentré (10 X), 0,5 Ill de mélange de dNTP (200 mM) et H20 qsp 50ut, incuber 15 minutes à 100 C (recommandé d'utiliser un thermocycleur), * retirer la pastille, * centrifuger brièvement à 1.000 g par une centrifugeuse de paillasse classique, et prélever 25 l de surnageant pour la réaction d'amplification. De manière surprenante, le milieu réactionnel qui vient reprendre le sang présent sur chaque pastille contient les désoxyribonucléotides triphosphates (dNTP), c'est-à-dire les dATP, dCTP, dGTP et dTTP. Il s'agit de molécules biologiques que l'homme du métier cherche plutôt à protéger de températures élevées. Or il s'avère que dans le protocole mis au point par la demanderesse, ledit milieu réactionnel subit ensuite une température de 100 C pendant 15 minutes. Les résultats d'amplification qui sont obtenus par la suite avec les acides nucléiques extraits selon notre technique sont beaucoup plus efficaces que ceux obtenus avec les trois première techniques exposées. 2 ) Préparation des amplicons ha éva Dans tous les cas de figure, les amorces utilisées sont des amorces décrites dans la littérature (XIth HLA Workshop Primers ; Kimura, 1992). Le tableau 2 ci-dessous expose les deux amorces qui permettent l'amplification du locus d'intérêt correspondant au gène HLA-DQB 1. Ces deux amorces encadrent donc ce gène. N de séquence Séquence (5' > 3') Appellation scientifique SEQ ID NO 1 CATgTgCTACTTCACCAACgg DQBAMP-A SEQ ID NO 2 CTggTAgTTgTgTCTgCACAC DQBAMP-B Tableau 2. Amorces pour amplifier le gène HLA-DQB 1 A-A partir d'un échantillon de sang total : Le mélange réactionnel contient les différents constituants suivants : * tampon 10X (Perkin Elmer, réf. N 808-0171)............. 5 1, * dNTP 200 mM (Pharmacia, réf. 27-2094)................. 0, 5 ul (0, 2 mM final), mélange d'amorces (30 uM de chaque) 0, 5 ul (0, 3 uM final), Taq Polymerase (AmpliTaq, Perkin Elmer, réf N 808-0171, 5U/1).... 0, 3 ul (1, 5 U), . ADN (environ 100 ng/1)................................... 5 III (environ 500 ng), et # H2O ... ................. q. s. p. 50 Ill. De plus, le programme d'amplification est le suivant : 2 minutes à 95 C, puis # 35 cycles successifs avec pour chaque cycle les étapes suivantes : * 30 secondes à 95 C, * 30 secondes à 55 C, et "30 secondes à 72 C, # 7 minutes à 72 C. Ensuite, si l'on veut conserver le produit de réaction, on maintient le tube contenant les amplicons qui viennent d'être obtenus à la température de 9 C. B-A partir de taches de sang séché : Le mélange réactionnel contient les différents constituants suivants : . tampon lOX (Perkin Elmer, réf. 27-2094)................... 5 Ill, . dNTPs 200 mM (Pharmacia, réf N 808-0171)............. 0, 5 Ill, mélange d'amorces (30 aM de chaque)....................... 0, 5 gel (0, 3 uM final), Taq Polymerase (AmpliTaq, Perkin Elmer, réf. N 808-0171, 5U/ !).......... 0, 3 gel (1, 5 U), . ADN 25 Ill, et . H20 q. s. p. 50 Ill. De plus, le programme d'amplification est le suivant : . 2 minutes à 95 C, puis # 35 cycles successifs avec pour chaque cycle les étapes suivantes : # 30 secondes à 95 C, * 30 secondes à 55 C, et * 30 secondes à 72 C, e 7 minutes à 72 C. Ensuite, si l'on veut conserver le produit de réaction, on maintient le tube contenant les amplicons qui viennent d'être obtenus à la température de 9 C. III - Analyse des amplicons obtenus selon l'invention : l lDjspQsitif d'analyse de la prédisposition génétique d'un patient au diabète insulino-dépendanLl Un dispositif basé sur le principe du test ELOSA a été réalisé pour l'analyse du marqueur HLA-DQB1, sous la forme d'une barrette de huit puits tirée d'une plaque de microtitration, avec une sonde de détection couplée à la péroxydase (POD) pour la révélation colorimétrique. A-Sondes de capture Dans chacun de ces huit puits des sondes spécifiques de capture ont été utilisées. Ces sondes sont en fait des oligonucléotides synthétisés avec un bras aminé en 5', telles que décrites dans les brevets US-A-5,510, 084 et. EP-B-0. 549.776 déposés par la Demanderesse C'est ce bras aminé en 5', de structure particulière, qui autorise la fixation des sondes en fond de plaque. Il faut donc comprendre que l'extrémité 5'des sondes utilisées possèdent ce bras, même s'il n'est pas précisé par la suite. La répartition des sondes de capture au niveau des puits est précisée en tableau 3, alors que les allèles cibles possibles pour chaque sonde de capture du tableau 3 sont précisés dans le tableau 4 ci-dessous. ? de séquence Séquence (5' > 3') Appellation bioMérieux SEQ ID NO 3 CgCTTCgACAgCgACgTgggg C+ SEQ ID NO 4 TATgAAACTTATggggATAC CSEQ ID NO 5 TCTTgTgAgCAgAAgC 26c SEQ ID NO 6 CCgCCTgCCgCCgA 57f SEQ ID NO 7 AggggACCCgggCggA 70b SEQ ID NO 8 gACgTggAggTgTACC 45a SEQ ID NO 9 gCCgCCTgACgCCg 57e SEQ ID NO 10 ggggCCCgggCgTC 70a SEQ ID NO 11 AggAggACgTgCgC 37b SEQ ID NO 12 TCTTgTAACCAgATAC 26b SEQ ID NO 13 ggTggACACCgTATgCAg 70c Tableau 3 : Répartition des sondes de capture au niveau des puits ? de séquence Spécificité HLA-DQB 1 * Sensibilité/maladie SEQ ID NO 3 Tous Néant SEQ ID NO 4 Aucun Néant SEQ ID NO 5 0201,0202, 0203 Susceptibilité SEQ ID NO 6 0302,0304, 0305,0307, 0308 Susceptibilité 0602,0603, 0608, 0610, 06111, SEQ ID NO 7 Protection 06112, 0612,0613, 0614,0616, 0308 SEQ ID NO 8 03011,03012, 0304,0309 Protection 03011,03012, 03032,03033, 0306, SEQ ID NO 9 Protection 0309,0310 SEQ ID NO 10 05011, 05012,0502, 05031,05032 Neutralité SEQ ID NO 11 06011,06012, 06013 Neutralité 06051,06052, 0606,0609, 06112, SEQ ID NO 12 Neutralité 0612 SEQ ID NO 13 0306, 0401,0402 Neutralité Tableau 4 : Allèles cibles possibles pour chaque sonde de capture Dans le tableau 3, le puits C+ comporte un contrôle positif (SEQ ID NO 3), qui autorise la détection de tous les allèles du gène HLA-DQB1*, ce qui permet de contrôler que l'amplification a bien concerné la région d'intérêt comprise entre les amorces SEQ ID NO 1 et SEQ ID NO 2 décrites dans le tableau 1. Le contrôle négatif (SEQ ID NO 4) n'a pas d'objectif diagnostic, il n'est présent que pour répondre à certaines normes Cette séquence n'est absolument pas spécifique du HLA, et correspond à une séquence aléatoire non retrouvée chez les gènes HLA. Les autres sondes, comprises entre SEQ ID NO 5 et SEQ ID NO 13, ont par contre un but diagnostique de la prédisposition génétique d'un patient à une maladie, et plus précisément au diabète insulino-dépendant. On remarque que la sonde SEQ ID NO 5 est une sonde qui détecte une susceptibilité à la maladie, c'est-à-dire au diabète insulino-dépendant. Elle est spécifique des allèles importants de cette susceptibilité à cette maladie, à savoir les allèles HLA- DQB 1*0201 et HLA-DQB 1*0202. Ces allèles importants sont représentés en gras dans le tableau 4. De même, la sonde SEQ ID NO 6 est une sonde qui détecte également une susceptibilité au diabète insulino-dépendant. Elle est spécifique d'un allèle important de cette susceptibilité à cette maladie, à savoir l'allèle HLA-DQB1*0302. La sonde SEQ ID NO 7 est une sonde qui détecte une protection contre la maladie, c'est-à-dire au diabète insulino-dépendant. Elle est spécifique des allèles importants de cette protection à cette maladie, à savoir les allèles HLA-DQB 1*0602 et HLA-DQB 1 *0603. De même, la sonde SEQ ID NO 8 est une sonde qui détecte également une protection contre le diabète insuline-dépendant. Elle est spécifique d'un allèle important de cette protection à cette maladie, à savoir l'allèle HLA-DQB 1*03 01, que celui-ci soit sous sa forme HLA-DQB 1*03011 et HLA-DQB 1*03012. La sonde SEQ ID NO 9 est une sonde qui détecte aussi une protection contre le diabète insulino-dépendant, puisqu'elle permet également de détecter l'allèle HLA- DQB1*0301, que celui-ci soit sous sa forme HLA-DQB 1*03011 ou HLA- DQB1*03012. L'intérêt de cette sonde est de permettre la détection de l'allèle HLA- DQB 1*03032, qui est assez fréquent et doit être protecteur au regard de sa séquence au niveau de la position 57. A noter que les deux sondes SEQ ID NO 6 et SEQ ID NO 7, l'une de susceptibilité et l'autre de protection vis-à-vis du diabète insulino-dépendant, permettent de détecter l'allèle HLA-DQB1*0308. Il convient de préciser que cet allèle est très rare Les chances de le trouver sont donc infimes et les chances de tomber sur un homozygote HLA-DQB1*0308 et HLA-DQB1*0308 sont quasi nulles. De même on peut appliquer le même raisonnement pour les deux sondes SEQ ID NO 6 et SEQ ID NO 8, l'une de susceptibilité et l'autre de protection vis-à-vis du diabète insulino-dépendant. Elles permettent toutes les deux de détecter l'allèle HLA-DQB1*0304. Cet allèle est également très rare. Dans ces deux cas, il n'y a aucun problème à ce que deux sondes, l'une de susceptibilité et l'autre de protection, puissent les détecter, car la prévalence est trop faible. .. B-Sondes de détection Il s'agit d'un oligonucléotide avec bras aminé en 5', couplée à la péroxydase (POD). Le tableau 5 précise sa structure ? de séquence Séquence (5' > 3') Appellation bioMérieux SEQ ID NO 14 TggAACAgCCAgAAggA D4-POD Tableau 5 : Sonde de détection adaptée aux sondes de capture utilisées Bien entendu cette sonde de détection est choisie pour être complémentaire de l'ensemble des amplicons cibles pouvant être accrochés par les sondes de capture SEQ ID NO 3 et SEQ ID NO 5 à SEQ ID NO 13 présentées aux tableaux 3 et 4 C-Mode opératoire : Premièrement, la préparation des cibles consiste à : * transférer la totalité des amplicons (50 ul) dans un microtube de 1, 5 ml, * ajouter 5 pI de réactif R2 (NaOH 2N), bien homogénéiser, incuber pendant 5 minutes à une température comprise entre 18 à 25OC, ajouter 1 ml de tampon d'hybridation, dont la constitution est précisée ci-après, ajouter 50 ul de sonde de détection, dont la constitution est précisée ci-après, et bien homogénéiser. Le tampon d'hybridation est constitué de : 0, 1 M phosphate de sodium pH 6,8, 0, 5 M NaCI, 2% (p/v) polyethylene glycol 4000, 0, 65% (p/v) tween 20,0, 1% (p/v) gélatine, 0, 14 g/L d'ADN soniqué de sperme de saumon, # 0, 2 g/L de BND (biocide ou Bromo-Nitro-Dioxane), et * 0, 01 g/L de ciprofloxacine. La sonde de détection SEQ ID NO 14 (D4-POD) est diluée en tampon phosphate 5 mM à un pH de 7,0, en présence de 0,5% (p/v) albumine sérique bovine et 0,5% (p/v) phénol. Deuxièmement, l'hybridation des cibles est réalisée de la manière suivante : répartir 100 ul du mélange, dans chacun des huit puits de la barrette RI, * recouvrir d'une feuille autocollante, et 'incuber pendant 1 heure à 37 C (37 i 1 C). Troisièmement, le lavage qui permet d'éliminer les cibles éventuelles qui ne se sont pas hybridées, et consiste à laver trois fois avec 500 ul de tampon de lavage Color 0, dilué au 1/20 en H2O. Par Color 0 , il faut comprendre une solution vingt (20) fois concentré de PBS, auquel on a ajouté 1 % (p/v) tween 20. Quatrièmement, la révélation a pour objet de déterminer quelles sondes de capture ont hybridées un oligonucléotide cible. Elle est réalisée de la façon suivante : * ajouter 100 l de solution de substrat préparé extemporanément-1 pastille de Color 1 dans 5 ml de Color 2, dans chacun des puits, * incuber pendant 20 minutes à une température de 18 à 25OC, à l'obscurité, 'ajouter 50 ul de Color 3, et 'lire l'absorbance à 492 nm. Par Color 1 , il faut comprendre O-phenylenediamine dihydrochloride (OPD) ; par Color 2 , il faut comprendre 0, 1 M phosphate de sodium, 0, 05 M acide citrique, 0,03% H202, et par Color 3 , il faut comprendre 1,8 N H2SO4. Cinquièmement, l'interprétation permet en fonction la révélation qui a été établie au chapitre précédent de déterminer la réelle prédisposition génétique d'un patient au diabète insulino-dépendant. Cette vérification propose de : * d'une part, vérifier la positivité du contrôle positif SEQ ID NO 3 (C+), où la Densité Optique (D. O. ) doit être supérieure à 0,8, et vérifier la négativité du contrôle négatif SEQ ID NO 4 (C-), où la D. O. doit être inférieure à 0,05), * d'autre part, déterminer le génotype correspondant aux deux allèles identifiés à l'aide des sondes SEQ ID NO 5 à SEQ ID NO 13. Dans le cas cité ci-dessus, la péroxydase est une enzyme qui permet de révéler pour chaque sonde si l'hybridation avec un oligonucléotide s'est réalisée si elle est en présence d'un substrat adéquat, l'OPD par exemple. Du fait que ce substrat est soluble, il y aura extension du signal. Dans ce cas, il faut, pour pouvoir déterminer si un patient est homozygote ou hétérozygote ou si ses allèles sont susceptibles, protecteurs et/ou neutre vis-à-vis du diabète insulino-dépendant, implanter un sonde de capture par compartiment ou, de manière plus aisée, par puits. Ceci est vrai pour les sondes concernées par la susceptibilité (SEQ ID NO 5 et 6) ou par la protection (SEQ ID NO 7,8 et 9) vis-à-vis du diabète insulino-dépendant. Alors que pour les sondes concernées par la neutralité (SEQ ID NO 10,11, 12 et 13) vis-à-vis de cette maladie, il est tout à fait possible de les regrouper. Ceci n'est pas vrai si le substrat utilisé est précipitant ou si la sonde de détection (SEQ ID NO 14) est fluorescente. Dans ces cas, plusieurs sondes peuvent être implantées dans un compartiment ou un puits identique, même si ce sont des sondes de susceptibilité (SEQ ID NO 5 et 6) et/ou de protection (SEQ ID NO 7,8 et 9). En fait, dans sa configuration la plus compacte, toutes les sondes de susceptibilité, de protection et de neutralité peuvent être dans le même compartiment ou puits, cela ne dépend que de la facilité avec laquelle l'opérateur est capable de grouper les différents types de sondes, sans qu'il y ait de chevauchement entre les plots d'oligonucléotides de capture. Comme précisé précédemment, un tel dispositif permettant de réaliser de tels supports est déjà bien décrit dans une demande de brevet déposée le 15 novembre 2000 par la demanderesse, sous le numéro FROO/14691. 2 ) Exemples d'analyses selon l'invention : A-Premier échantillon : Le tableau 6 qui suit présente les résultats obtenus avec une barrette RI où chaque puits a reçu un aliquote d'un échantillon d'un premier patient à tester. Barrette RI D. O. x 1000 +/SEQ ID NO 3 (C+) > 2500 + SEQ ID NO 4 (C-) 0 SEQ ID NO 5 (S) 1245 + SEQ ID NO 6 (S) 126 + SEQ ID NO 7 (P) 7 SEQ ID NO 8 (P) 9 SEQ ID NO 9 (P) 1 SEQ ID NO 10 à 13 (N) 8 Tableau 6. Résultats obtenus avec la barrette RI pour le premier échantillon L'analyse est la suivante : - la sonde SEQ ID NO 3 est positive : l'amplification du gène HLA-DQB1 et le test d'hybridation ont correctement fonctionné, - la sonde SEQ ID NO 5 est positive : un allèle HLA-DQB 1*0201 ou HLA- DQB 1 *0202 ou HLA-DQB 1 *0203 est présent, - la sonde SEQ ID NO 6 est positive : un allèle HLA-DQB1*0302 ou HLA- DQB1*0304 ou HLA-DQB 1*0305 ou HLA-DQB1*0307 ou HLA-DQB1*0308 est présent, et - les autres sondes sont négatives. En conclusion, il y a de forte chance que ce patient ait deux allèles de susceptibilité vis-à-vis du diabète insulino-dépendant. Par forte chance, il faut comprendre que la prévalence de l'allèle HLA-DQB1*0302 de susceptibilité est bien plus importante que celle des allèles HLA-DQB1*0304 ou HLA-DQB1*0305 ou HLA- DQB 1 *0307 ou HLA-DQB 1*0308, qui sont des allèles de neutralité. Ces deux allèles HLA-DQB 1 ont été identifiés au niveau générique, le typage HLA de ce premier échantillon est en fait. - HLA-DQB 1*02, et - HLA-DQB 1*0302. B-Deuxième échantillon' Le tableau 7 qui suit présente les résultats obtenus avec une barrette RI où chaque puits a reçu un aliquote d'un échantillon d'un deuxième patient à tester. Barrette RI D. 0. x 1000 +/SEQ ID NO 3 (C+) 1685 + SEQ ID NO 4 (C-) 5 SEQ ID NO 5 (S) 708 + SEQ ID NO 6 (S) 22 SEQ ID NO 7 (P) 7 SEQ ID NO 8 (P) 143 + SEQ ID NO 9 (P) 41 SEQ ID NO 10 à 13 (N) Il- Tableau 7 Résultats obtenus avec la barrette RI pour le deuxième échantillon L'analyse est la suivante : - la sonde SEQ ID NO 3 est positive : l'amplification du gène HLA-DQB1 et le test d'hybridation ont correctement fonctionné, - la sonde SEQ ID NO 5 est positive : un allèle HLA-DQB1*0201 ou HLA- DQB 1 *0202 ou HLA-DQB *0203 est présent, - la sonde SEQ ID NO 8 est positive : un allèle HLA-DQB1 *03011 ou HLA- DQB1*03012 ou HLA-DQB 1*03 04 ou HLA-DQB 1*03 09 est présent, et - les autres sondes sont négatives. En conclusion, il y a de forte chance que ce patient ait un allèle de susceptibilité et un allèle de protection vis-à-vis du diabète insulino-dépendant. Par forte chance, il faut comprendre que la prévalence des allèles HLA-DQB 1*03011 et HLADQB1*03012 de susceptibilité est bien plus importante que celle des allèles HLA- DQBl *0304 ou HLA-DQB 1*03 09, qui sont des allèles de neutralité. Ces deux allèles HLA-DQB1 ont été identifiés au niveau générique, le typage HLA de ce premier échantillon est en fait : - HLA-DQB *02, et - HLA-DQB 1*0301. C-Troisième échantillon : Le tableau 8 qui suit présente les résultats obtenus avec une barrette RI où chaque puits a reçu un aliquote d'un échantillon d'un troisième patient à tester. Barrette RI D. 0. x 1000 +/SEQ ID NO 3 (C+) > 2500 SEQ ID NO 4 (C-) 0 SEQ ID NO 5 (S) 1790 SEQID N06 (S) 27 SEQ ID NO 7 (P) 31 SEQ ID NO 8 (P) 19 SEQ ID NO 9 (P) 15 SEQ ID NO 10 à 13 (N) 829 Tableau 8. Résultats obtenus avec la barrette RI pour le troisième échantillon L'analyse est la suivante : - la sonde SEQ ID NO 3 est positive : l'amplification du gène HLA-DQB1 et le test d'hybridation ont correctement fonctionné, - la sonde SEQ ID NO 5 est positive : un allèle HLA-DQBI*0201 ou HLA- DQB 1 *0202 ou HLA-DQB 1 *0203 est présent, - les sondes SEQ ID NO 10 à 13 sont positives : un allèle HLA-DQB 1*03 06 ou HLADQB1*0401 ou HLA-DQB1*0402 ou HLA-DQB1*05011 ou HLA-DQB1*05012 ou HLA-DQB1*0502 ou HLA-DQB1*05031 ou HLA-DQB1*05032 ou HLADQB1*06011 ou HLA-DQB1*06012 ou HLA-DQB1*06013 ou HLA-DQB1*06051 ou HLA-DQB1*06052 ou HLA-DQB1*0606 ou HLA-DQB1*0609 ou HLADQB1*06112 ou HLA-DQB1*0612 est présent, et - les autres sondes sont négatives. En conclusion, il est certain que ce patient a un allèle de susceptibilité et un allèle de neutralité vis-à-vis du diabète insulino-dépendant. A partir du moment où l'on sait qu'il y a un allèle de neutralité, il n'y a que peu d'importance à le déterminer plus précisément dans le cadre de l'analyse selon la présente invention. Ces deux allèles HLA-DQB1 ont été identifiés au niveau générique, le typage HLA de ce premier échantillon est en fait : - HLA-DQB 1 *02, et - HLA-DQB 1 *0501. IV-Autres approches non limitatives pour améliorer de l'invention : j ) Utilisation d'amplicons PCR avec amorces biotinylées t A-Amorces biotinylées. Il est également possible d'exploiter le jeu de sondes spécifiques de capture utilisé pour le dispositif d'analyse de la prédisposition génétique d'un patient au diabète insulino-dépendant (Chapitre III, 1 )), avec des amplicons PCR biotinylés par incorporation d'amorces biotinylées en 5', voir le tableau 9 ci-dessous. NO de séquence Séquence (5' > 3') Appellation scientifique Biotine-SEQ Biotine-CATGTGCTACTTCACCAACGG DQBAMP-A-Biotine ID NO 1 Biotine-SEQ Biotine-CTGGTAGTTGTGTCTGCACAC DQBAMP-B-Biotine ID NO 2 Tableau 9 : Amorces biotinylées pour amplifier le gène HLA-DQB 1 Si les conditions d'amplification sont identiques à celles décrites plus haut, le mode opératoire est lui différent. B-Mode opératoire avec des amplicons biotinylés : Premièrement, la préparation des cibles consiste à : # transférer la totalité des amplicons (50 l) dans un microtube de 1,5 ml, ajouter 5 gel de réactifNaOH à 2N, : bien homogénéiser, incuber pendant 5 minutes à une température comprise entre 18 à 25OC, . ajouter 1 ml de tampon d'hybridation, dont la constitution a déjà été précisée cidessus, et 3 bien homogénéiser. Le tampon d'hybridation est constitué de : 0, 1 M phosphate de sodium pH 6,8, 0, 5 M NaCI, 2% (p/v) polyethylene glycol 4000, # 0, 65% (p/v) tween 20, 0,1% (p/v) gélatine, 0, 14g/L d'ADN soniqué de sperme de saumon, 0, 2 g/L de BND (biocide ou Bromo-Nitro-Dioxane), et # 0, 01 g/L de ciprofloxacine. La sonde de détection SEQ ID NO 14 (D4-POD) est diluée en tampon phosphate 5 mM à un pH de 7,0, en présence de 0,5% (p/v) albumine sérique bovine et 0,5% (p/v) phénol. Deuxièmement, l'hybridation des cibles est réalisée de la manière suivante : . répartir 100 pI du mélange, dans chacun des huit puits de la barrette RI, # recouvrir d'une feuille autocollante, et incuber pendant 1 heure à 37 C (37 1 C). Troisièmement, le lavage qui permet d'éliminer les cibles éventuelles qui ne se sont pas hybridées, et consiste à laver trois fois avec 500 ul de tampon de lavage Color 0, dilué au 1/20 en H20. Quatrièmement, la révélation a pour objet de déterminer quelles sondes de capture ont hybridées un oligonucléotide cible Elle est réalisée de la façon suivante : 'ajouter 100 l de solution de conjugué Streptavidine couplée à la péroxydase (SPOD, Roche, réf. 1089153) dilué au 1/10.000 en tampon PBS avec 0,1% Tween 20,0, 02% Albumine Sérique Bovine, à un pH de 7,2, 'incuber pendant 30 minutes à une température comprise entre 18 et 25OC, à l'obscurité, * laver trois fois avec 500 III de tampon de lavage-Color 0, dilué au 1/20ème en H2O, ajouter 100 III de substrat préparé extemporanément-1 pastille de Color 1 dans 5 ml de Color 2, dans chacun des puits . incuber pendant 20 minutes à une température comprise entre 18 et 25OC, à l'obscurité, ajouter 50 III de Color 3, et lire l'absorbance à 492 nm. Les Color 0 zu Color 1 , Color 2 et Color 3 sont identiques à ceux décrits dans la paragraphe précédent. Cinquièmement, l'interprétation permet en fonction la révélation qui a été établie au chapitre précédent de déterminer la réelle prédisposition génétique d'un patient au diabète insulino-dépendant. Cette vérification propose de : * d'une part, vérifier la positivité du contrôle positif SEQ ID NO 3 (C+), où la Densité Optique (D. O. ) doit être supérieure à 0, 8, et vérifier la négativité du contrôle négatif SEQ ID NO 4 (C-), où la D. O. doit être inférieure à 0,05), d'autre part, déterminer le génotype correspondant aux deux allèles identifiés à l'aide des sondes SEQ ID NO 5 à SEQ ID NO 13. Ce protocole est plus long et un peu plus complexe, puisqu'il y a une étape supplémentaire, mais des signaux plus intenses sont observés pour les sondes faibles, notamment pour SEQ ID NO 6. Le tableau 10 ci-dessous montre bien d'ailleurs les différences de résultats obtenus entre les amplicons biotinylés et non biotinylés. Sondes Amplicons non biotinylés Aplicons biotinylés SEQ ID NO 3 (C +) > 2500 > 2500 SEQ ID NO 4 (C-) 0 0 SEQ ID NO 5 (S) 1 14 SEQ ID NO 6 (S) 134 324 SEQ ID NO 7 (P) 15 54 SEQ ID NO 8 (P) 11 34 SEQ ID NO 9 (P) 19 35 SEQ ID NO 10 à 13 (N) 603 1322 Figure 10 : Valeurs de DO (x1000) obtenues avec une lignée hétérozygote HLA- DQB1*0302/0605 A noter qu'il n'y a plus d'utilisation, pour les amplicons biotinylés, de bras aminé en 5', qui autorise la fixation des sondes de détection en fond de plaque, comme précédemment décrit, puisque l'on utilise de la Streptavidine associée à la Péroxydase, qui va pouvoir se fixer à la Biotine présente sur les amplicons qui sont capturés. 2 ) Utilisation de sondes de capture adsorbées sur des billes : Afin d'augmenter les signaux spécifiques pour le puits où est présent, par exemple, la sonde de séquence SEQ ID NO 6, il est possible d'utiliser un revêtement, aussi appelé coating , avec une suspension de 100 ut de billes de polystyrène de 0,1 mm de diamètre. Ces billes proviennent de la société Polysciences (Warrington (PA) aux Etats-Unis d'Amérique-réf. : 00876), elles sont recouvertes par des molécules d'avidine fabriquées par la société Sigma (Saint-Louis (MO) aux Etats-Unis d'Amérique - réf. : A9275), sensibilisées par l'oligonucléotide spécifique de capture SEQ ID NO 6, préparé sous forme biotinylée en 5'. Dans ce cas, du fait de la présence de la biotine, l'oligonucléotide spécifique de capture SEQ ID NO6 ne comporte pas de bras de liaison. A-Préparation des billes : A-Préparation des billes : Il convient de : diluer 2,5 jl de solution d'avidine à la concentration de 5 mg/ml, dans 100 l de tampon de borate 50 mM à pH de 9,3, ajouter 7,4 III de suspension de billes, et incuber pendant 30 minutes à la température de 37C. 2-Préparation des kill$$ revêtues d'avidine et pqrtant des sondes de capture : Il faut en plus : . ajouter 5. 1015 molécules de sonde SEQ ID NO 6 biotinylée, et incuber pendant 30 minutes à la température de 37 C. B-Revêtement avec les billes revêtues d'avidine et portant des sondes de capture : Une dilution de la suspension de billes sensibilisées, au 1/10 en tampon derevêtement (3X PBS), est ensuite utilisée, à raison de 100 III par puits. Les conditions de revêtement utilisées pour des sondes aminées, c'est-à-dire 2 heures à une température de 37 C ou 15 heures à une température comprise entre 18 et 25 oC, restent inchangées par rapport à la fixation en fond de puits. Ce procédé permet également d'augmenter les signaux dans certains puits, par exemple, où est présent la sonde de séquence SEQ ID NO 6, et ainsi de faciliter l'analyse du puits concerné. D'ailleurs les valeurs de D. O. (x 1000) obtenues pour la sonde SEQ ID NO 6, avec une lignée homozygote HLA-DQB1*0302, donne les résultats suivants : # sans billes : 172, et avec billes : 689. 3 ) Utilisation d'un seul puits pour les sondes de captures spécifiques des allèles de neutralité vis-à-vis du diabète insulino-dépendant : Mais dans le cas de l'utilisation de la Péroxydase pour effectuer la révélation des hydridation d'oligonucléotides cibles sur les oligonucléotides de capture, le puits unique peut être utilisé pour la déterminationde neutralité des allèles vis-à-vis du diabète insulino-dépendant. Il comprend alors un ensemble de quatre sondes spécifiques de capture (SEQ ID NO 10 à 13) qui chacune individuellement, possède une bonne spécificité. Comme évoqué précédemment, le développement d'un procédé de dépôts multiples au fond d'un même puits d'une plaque de microtitration, par exemple en format quatre-vingt-seize (96) puits, permet de réaliser le dépôt séparé pour les quatre sondes ci-dessus mentionnées dans un seul et unique puits. 4 ) Utilisation d'un seul puits pour les sondes de captures spécifiques de l'ensemble des allèles concernés par le diabète insuline-dépendant : Le développement d'un procédé de dépôts multiples au fond d'un puits, d'une plaque de microtitration, permet le dépôt des onze (11) sondes non spécifiques (SEQ ID NO 3 et 4) et spécifiques (SEQ ID NO 5 à 13) de capture, décrites précédemment dans les tableaux 3 et 4, dans un même puits. La réalisation de l'étape d'hybridation des amplicons en un puits unique, apporte différents avantages : avantage de sécurité pour le test, puisque les onze (11) sondes rencontrent simultanément tous les amplicons de l'échantillon avec absence de risque de faux négatif, avantage de sensibilité pour le test, car les onze (11) sondes rencontrent la totalité des amplicons de l'échantillon, et avantage de pouvoir réaliser des grandes séries de test avec la possibilité de traiter quatre-vingt-seize (96) échantillons par plaque, ce qui est particulièrement intéressant pour les applications de dépistage. Comme évoqué précédemment, cette approche nécessite par contre une révélation ponctuelle des hybridations spécifiques au fond des puits. A titre d'exemple, il est possible d'utiliser la fluorescence pour la détection d'amplicons ayant incorporer une molécule fluorescente ou révélable à l'aide d'un marqueur fluorescent. Des essais de faisabilité d'exploitation de plusieurs dépôts en un même puits, ont également été réalisés, avec une révélation colorimétrique. A-Dépôts : Les essais avec quatre (4) dépôts manuels, de sondes spécifiques de capture (SEQ ID NO 10 à 13, en version aminée), avec des dépôts de 1 et 5 Ill, à 400-1000 pmoles/ml en tampon de revêtement ou coating (PBS 3X). On incube entre 15 minutes et 2 heures à la température de 37OC, ou pendant 15 heures à une température comprise entre 18 et 25OC. B-Lavage : Il s'effectue par Color 0 dilué. C-Préparation des cibles : Les amplicons PCR sont préparés comme décrit au paragraphe précédent (III- r)-C). Dans le tube d'amplification, on effectue les étapes suivantes : dénaturation des 50 III d'amplicons par addition de 1 III de 2N NaOH, * incubation pendant 5 minutes à une température comprise entre18 et 25OC, 'addition de 40 pI de tampon d'hybridation (SSPE 15X, 2% PEG 4000, 1, 5% tween 20,0, 22% gélatine, 0,032% ADN soniqué, biocides), addition de 6 III de solution de conjugué D4-POD (50 pmoles/ml ; tampon phosphate 5 mM pH 7.0-0, 5% (p/v) ASB-0,5% (p/v) phénol). D-Hybridation : On transfère la totalité du mélange réactionnel dans un puits sensibilisé avec les quatre (4) dépôts et on incube pendant une heure à la température de 37 C à 1 OC. E-Lavage : Il s'effectue par Color 0 dilué. F-Révélation : On effectue les étapes successives suivantes : . addition de 100 l de solution de substrat (Color 1 dilué en Color 2), développement sans perturbation, pendant 20 minutes, à une température comprise entre 18 et 25OC, à l'obscurité, observer l'apparition de coloration à l'endroit de la sonde positive, pour quantifier le signal, addition de 50 ul de Color 3, # homogénéiser en agitant doucement, et e lire à 492 nm. Références bibliographiques incorporées à la présente description, en tant que de besoin Benjamin, 1990 : Benjamin R, Parham P, Immunology Today, 1990, 11, 137-142, Guilt by association : HLA-B27 and ankylosing spondylitis Brewerton, 1973 : Brewerton DA, Caffrey M, Hart FD et al, Lancet, 1973, 1, 904-907. Ankylosing spondylitis and HL-A27 Gregersen, 1986 Gregersen PK, Shen M, Song QL, Merryman P, Degar S, Seki T, Maccari J, Goldberg D, Murphy H, Schwenzer J, Wang CY, Winchester RJ, Nepom GT, Silver J, Proc. Natl. Acad. Sci. 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Sci USA, 1989, 86, 10049-10053 Liste de séquences (voir fichier Patientin ci-joint) LISTE DE SEQUENCES bioMérieux SA Procédé d'analyse de la prédisposition génétique d'un patient au diabète insulino-dépendant, dispositif adapté à sa mise en oeuvre et jeu d'amorces d'amplification adapté à un tel procédé HLADID 14 PatentIn Ver. 2.1 1 21 ADN Homo sapiens 1 catgtgctac ttcaccaacg g 21 2 21 ADN Homo sapiens 2 ctggtagttg tgtctgcaca c 21 3 21 ADN Homo sapiens 3 cgcttcgaca gcgacgtggg g 21 4 20 ADN Homo sapiens 4 tatgaaactt atggggatac 20 5 16 ADN Homo sapiens 5 tcttgtgagc agaagc 16 6 14 ADN Homo sapiens 6 ccgcctgccg ccga 14 7 16 ADN Homo sapiens 7 aggggacccg ggcgga 16 8 16 ADN Homo sapiens 8 gacgtggagg tgtacc 16 9 14 ADN Homo sapiens 9 gccgcctgac gccg 14 10 14 ADN Homo sapiens 10 ggggcccggg cgtc 14 11 14 ADN Homo sapiens 11 aggaggacgt gcgc 14 12 16 ADN Homo sapiens 12 tcttgtaacc agatac 16 13 18 ADN Homo sapiens 13 ggtggacacc gtatgcag 18 14 17 ADN Homo sapiens 14 tggaacagcc agaagga 17 REVENDICATIONS 1. Procédé d'analyse de la prédisposition génétique d'un patient à une maladie auto-immune, consistant à mettre un échantillon liquide contenant au moins un type d'amplicons, issus de l'amplification d'au moins une région polymorphe d'intérêt en rapport avec la maladie recherchée, en présence simultanément de sondes choisies de la façon suivante : au moins une sonde spécifique de la susceptibilité u patient vis-à-vis de la maladie, au moins une sonde spécifique de la protection dudit patient vis-à-vis de ladite maladie, et au moins une sonde spécifique de la neutralité dudit patient vis-à-vis de ladite maladie, et consistant à révéler les hybridations réalisées. 2. Procédé, selon la revendication 1, dans lequel la maladie auto-immune est un diabète insulino-dépendant. 3. Procédé, selon l'une quelconque des revendications 1 ou 2, caractérisé en ce que les sondes utilisées pour détecter le diabète insulino-dépendant sont définies comme suit : au moins une sonde spécifique des allèles HLA-DQB 1*0201 et HLA-DQB 1*0202 et HLA-DQB1*0302 pour la susceptibilité, au moins une sonde spécifique des allèles HLA-DQB1*0301, HLA-DQB1*0602 et HLA-DQB 1*0603 pour la protection, et au moins une sonde spécifique des autres allèles associés au diabète insulinodépendant pour la neutralité. 4 Procédé, selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que les sondes utilisées pour détecter le diabète insulino-dépendant sont définies comme suit. a au moins une sonde spécifique des allèles HLA-DQB 1*0201, HLA-DQB 1*0202, HLA-DQB1*0203, HLA-DQB1*0302, HLA-DQB1*0304, HLA-DQB1*0305, HLA-DQB 1*0307 et HLA-DQB 1*0308 pour la susceptibilité, . au moins une sonde spécifique des allèles HLA-DQB1*03011, HLA-DQB1*03012, HLA-DQB1*03032, HLA-DQB1*03033, HLA-DQB1*0304, HLA-DQB1*0306, HLA-DQB1*0308, HLA-DQB1*0309, HLA-DQB1*0310, HLA-DQB1*0602, HLA-DQB1*0603, HLA-DQB1*0608, HLA-DQB1*0610, HLA-DQB1*06111, HLA-DQB1*06112, HLA-DQB1*0612, HLA-DQB1*0613, HLA-DQB1*0614 et HLA-DQB 1 *0616 pour la protection, et au moins une sonde spécifique des allèles HLA-DQB1*0306, HLA-DQB1*0401, HLA-DQB1*0402, HLA-DQB1*05011, HLA-DQB1*05012, HLA-DQB1*0502, HLA-DQB1*05031, HLA-DQB1*05032, HLA-DQB1*06011, HLA-DQB1*06012, HLA-DQB 1*06013, HLA-DQB 1*06051, HLA-DQB 1*06052, HLA-DQB 1*0606, HLA-DQB1*0609, HLA-DQB1*06112 et HLA-DQB1*0612 pour la neutralité. 5. Procédé, selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que les sondes utilisées pour détecter la susceptibilité vis-à-vis du diabète insulinodépendant sont définies comme suit * une sonde spécifique des allèles HLA-DQB 1*0201, HLA-DQBI*0202 et HLADQB 1 *0203, et * une sonde spécifique des allèles HLA-DQB 1 *0302, HLA-DQB 1 *0304, HLADQB 1*0305, HLA-DQB 1*0307 et HLA-DQB 1*0308 6. Procédé, selon la revendication 5, caractérisé en ce que les sondes utilisées pour détecter la susceptibilité vis-à-vis du diabète insulino-dépendant sont constituées d'au moins dix (10) acides aminés successifs pris dans les séquences suivantes : . SEQ ID NO 5 (TCTTgTgAgCAgAAgC), et SEQ ID NO 6 (CCgCCTgCCgCCgA) 7 Procédé, selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que les sondes utilisées pour détecter la protection vis-à-vis du diabète insulino- dépendant sont définies comme suit. * une sonde spécifique des allèles HLA-DQB1*03011, HLA-DQB1*03012, HLA- DQB 1 *0304 et HLA-DQB 1*0309, # une sonde spécifique des allèles HLA-DQB1*03011, HLA-DQB1*03012, HLA- DQB1*03032, HLA-DQB1*03033, HLA-DQB1*0306, HLA-DQB1*0309 et DQB1*0310, et 'une sonde spécifique des allèles HLA-DQB 1*0308, HLA-DQB 1*0602, HLADQB 1*0603, HLA-DQB 1*0608, HLA-DQB 1*0610, HLA-DQB 1*06111, HLA- DQB1*06112, HLA-DQB1*0612, HLA-DQB1*0613, HLA-DQB1*0614 et HLA- DQB1*0616. 8. Procédé, selon la revendication 7, caractérisé en ce que les sondes utilisées pour détecter la protection vis-à-vis du diabète insulino-dépendant sont constituées d'au moins dix (10) acides aminés successifs pris dans les séquences suivants : . SEQ ID NO 7 (AggggACCCgggCggA), . SEQ ID NO 8 (gACgTggAggTgTACC), et . SEQ ID NO 9 (gCCgCCTgACgCCg). 9. Procédé, selon l'une quelconque des revendications 1 à 8, caractérisé en ce que les sondes utilisées pour détecter la neutralité vis-à-vis du diabète insulino- dépendant sont définies comme suit. 'une sonde spécifique des allèles HLA-DQB1*0306, HLA-DQB1*0401 et HLA- DQB 1 *0402, 'une sonde spécifique des allèles HLA-DQB1 *05011, HLA-DQB1 *05012, HLADQB1*0502, HLA-DQB1*05031 etHLA-DQBl*05032, * une sonde spécifique des allèles HLA-DQB1 *06011, HLA-DQB1*06012 et HLADQB1*06013, et * une sonde spécifique des allèles HLA-DQB 1*06051, HLA-DQB 1*06052, HLADQB1*0606, HLA-DQB1*0609, HLA-DQB1*06112 etHLA-DQBl*0612. 10. Procédé, selon la revendication 9, caractérisé en ce que les sondes utilisées pour détecter la neutralité vis-à-vis du diabète insulino-dépendant sont constituées d'au moins dix (10) acides aminés successifs pris dans les séquences suivants : # SEQ IDNO 10 (ggggCCCgggCgTC), . SEQ ID NO 11 (AggAggACgTgCgC), . SEQ ID NO 12 (TCTTgTAACCAgATAC), et # SEQ ID NO 13 (ggTggACACCgTATgCAg). 11. Procédé, selon l'une quelconque des revendications 4 à 10, caractérisé en ce qu'au moins une sonde de contrôle positif, capable de s'hybrider avec l'ensemble des gènes HLA-DQB1, est utilisée pour permettre la détection de tous les allèles HLA- DQB1. 12. Procédé, selon l'une quelconque des revendications 6,8, 10 ou 11, caractérisé en ce qu'au plus 38,89 %, préférentiellement au plus 20 %, des bases d'une même sonde est remplacée par au moins une base analogue, telle que l'inosine. 13. Procédé, selon l'une quelconque des revendications 1 à 12, caractérisé en ce que, préalablement, au moins une amplification de la ou des régions polymorphes d'intérêt associées au HLA-DQB1 est effectuée. 14. Procédé, selon la revendication 13, caractérisé en ce que, les amorces d'amplification sont biotinylées, de sorte que les amplicons sont également biotinylés. 15. Procédé, selon l'une quelconque des revendications 13 ou 14, caractérisé en ce que, préalablement à l'amplification, l'échantillon biologique prélevé, préférentiellement sous forme de tache de sang séché, est traité en vue de l'extraction des acides nucléiques. 16. Procédé, selon la revendication 15, caractérisé en ce que l'extraction des acides nucléiques s'effectue dans un mélange réactionnel contenant déjà les désoxyribonucléotides triphosphates (dNTP), qui seront ensuite utilisés lors de l'amplification, et ce préalablement à l'incubation. 17. Procédé, selon la revendication 16, caractérisé en ce qu'après l'incubation, on ajoute dans le mélange réactionnel, des désoxyribonucléotides triphosphates (dNTP), qui seront également utilisés lors de l'amplification ultérieure. 18. Dispositif permettant la mise en oeuvre d'un procédé, selon l'une quelconque des revendications 1 à 17, caractérisé en ce que chaque type de sondes spécifiques est fixé dans un compartiment indépendant, tel qu'un puits d'une plaque de microtitration, indépendamment des autres sondes. 19. Dispositif, selon la revendication 18, caractérisé en ce que chaque type de sondes utilisées pour détecter la susceptibilité ou la protection vis-à-vis du diabète insulino-dépendant est fixé dans un compartiment indépendant, tel qu'un puits d'une plaque de microtitration, indépendamment des autres sondes utilisées pour détecter cette susceptibilité ou cette protection, et que toute ou partie des différents types de sondes utilisées pour détecter la neutralité vis-à-vis du diabète insulino-dépendant est fixée dans au moins un puits d'une plaque de microtitration. 20. Dispositif, selon l'une quelconque des revendications 18 ou 19, caractérisé en ce qu'au moins deux types de sondes spécifiques différentes sont fixés dans un même compartiment indépendant, tel qu'un même puits d'un plaque de microtitration, sans interaction entre elles. 21. Dispositif, selon l'une quelconque des revendications 18 ou 19, caractérisé en ce que l'ensemble des types de sondes utilisées pour détecter la susceptibilité ou la protection ou la neutralité vis-à-vis du diabète insulino-dépendant est fixé dans un seul et même compartiment, tel qu'un puits d'une plaque de microtitration. 22. Procédé de révélation des hybridations réalisées avec un dispositif, selon l'une quelconque des revendications 18 ou 20, caractérisé en ce que la révélation est une révélation colorimétrique non localisée mettant en jeu une réaction enzymatique, par exemple avec la péroxydase. 23. Procédé de révélation des hybridations réalisées avec un dispositif, selon l'une quelconque des revendications 19 à 21, caractérisé en ce que la révélation est une révélation localisée des hybridations réalisées entre chaque type de sonde et les amplicons, par exemple par fluorescence ou radioactivité. 24. Amorces permettant l'amplification d'une séquence correspondant au gène HLA-DQB1 en vue de son utilisation dans un procédé d'analyse de la prédisposition génétique d'un patient au diabète insulino-dépendant, qui utilise une amorce SEQ ID NO 1 en combinaison avec une amorce SEQ ID NO 2. 25. Amorces, selon la revendication 24, caractérisées par le fait qu'elles sont C biotinylées en 5'. 26. Sondes de capture permettant l'hybridation de séquences correspondant au gène HLA-DQB1 en vue de l'analyse de la prédisposition génétique d'un patient au diabète insulino-dépendant, qui sont fixées au fond d'un puits de plaque de microtitration ou sur une bille par l'intermédiaire d'un bras aminé ou de biotine situé (e) en position 5'des sondes.