FR 2814755 A1 20020405 FR 0012399 A 20000929 L'invention est relative à la production de particules pseudovirales du virus de l'hépatite C (VHC). Le virus de l'hépatite C a été identifié en 1989 [CHOO et al., Science, 244,359-362, (1989)] par des techniques de biologie moléculaire. Ce n'est qu'ultérieurement que les particules virales ont été caractérisées [KAITO et al., J. Gen. Virol., 75,1755-1760, (1994)] ; il s'agit de particules sphériques de 45 à 65 nm de diamètre, dont la densité en gradient de saccharose est de 1,03 à 1,2 g/ml. Le VHC appartient à la famille des Flaviviridae son génome est constitué d'un ARN monocaténaire de polarité positive d'environ 9,6 kb, comprenant successivement : une région 5'non codante (5'NCR) d'environ 340 nucléotides, un unique cadre ouvert de lecture codant pour une polyprotéine d'approximativement 3000 acides aminés, et une région 3'non codante (3'NCR) de 200 à 240 nucléotides. L'organisation du génome peut être schématisée comme suit : 5'NCR-C-EI-E2-p7-NS2-NS3-NS4A-NS4B-NS5A-NS5B-3'NCR. Les protéines de structure C (protéine de capside), El, et E2 (protéines d'enveloppe), sont codées par la portion 5'du cadre de lecture ouvert ; le reste du cadre de lecture ouvert code la protéine p7, qui est un peptide hydrophobe de fonction inconnue, et les protéines non-structurales NS2 à NS5B, qui sont impliquées dans la réplication du génome et la maturation de la polyprotéine. La région 5'non codante représente la séquence la plus conservée du génome du VHC ; sa longueur varie entre 341 et 349 nucléotides selon le génotype. Elle peut se replier pour former une structure secondaire complexe qui comprend quatre domaines : l (nucléotides 1-42), II (nucléotides 47-67), III (nucléotides 125-323), et IV (nucléotides 331-354), ainsi qu'un pseudo-noeud (nucléotides 305-311 et 325-331) et une structure en hélice [RIJNBRAND et LEMON, Curr. Top. Microbiol. Immunol., 242,85-116, (2000)]. Elle possède en outre un nombre variable (de 3 à 6 selon le génotype) de codons AUG dont 2, situés aux positions 85 et 215, sont très conservés entre différents isolats de VHC, et également avec les pestivirus. Cette structure fonctionne comme un site interne d'entrée des ribosomes (IRES), et il a été observé [TSUKIYAMA-KOHARA et al., J. Virol., 66, 1476-1483, (1992) ; WANG et al., J. Virol., 67,3338-3344, (1993) ; REYNOLDS et al., EMBO J., 14, 6010-6020, (1996)] qu'elle permettait d'initier la traduction de la polyprotéine dans plusieurs systèmes in vitro et in vivo. L'étude du VHC, notamment dans le cadre du développement de vaccins ou de réactifs de diagnostic, est freinée par la difficulté d'obtention d'antigènes viraux en quantité suffisante. Bien que l'on parvienne à répliquer ce virus in vitro dans certaines cellules de mammifères (notamment des lymphocytes ou des hépatocytes), le taux de réplication demeure très faible. Divers systèmes d'expression hétérologues ont donc été utilisés, et parmi ceux-ci, le système baculovirus/cellules d'insectes. Ce système, qui présente de nombreux avantages (notamment niveau d'expression élevé, innocuité vis-à-vis des vertébrés, et modifications co-et post-traductionnelles pour la plupart similaires à celles des cellules de mammifères), a été proposé pour l'expression de protéines de différents virus, ainsi que pour la production de particules pseudovirales non infectieuses. Dans le cas du VHC, le système baculovirus/cellules d'insectes a été utilisé pour l'étude de l'expression de diverses protéines, structurales [MATSUURA et al., J. Virol., 66,1425-1431, (1992) ; Virology, 205, 141-150, (1994) ; HSU et al., Hepatology 17,763-771, (1993) ; LANDFORD et al., Virology, 197,225-235, (1993) ; HÜSSY et al., Virus Res., 45,45-57, (1996) ; J. Hepatol., 26,1179-1186, (1997)], ou non-structurales [HIROWATARI et al., Arch. Virol., 133,349-356, (1993) ; NISHIHARA et al., Gene, 129,207-214, (1993) ; OVERTON et al., J. Gen. Virol., 76,3009-3019, (1995) ; SUZUKI et al., J. Gen. Virol., 76, 3021-3029, (1995) ; HWANG et al., Virology, 227, 439-446, (1997)]. Il a également été utilisé pour la production d'antigènes du VHC à des fins d'études immunologiques [CHIBA et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 88,4641-4645, (1991) ; CHIEN et al., Proc. Nad. Acad. Sci. USA, 89, 10011-10015, (1992) ; l NOUE et al., J. Gen. Virol., 73, 2151-2154, (1992) ; BASSET et al., J. Virol,. 73,1118-1126, (1999)] ainsi que pour l'étude des interactions protéiques et de leur assemblage [WANG et al., Arch. Virol., 142,2211-2223, (1997)] ; ces derniers auteurs ont notamment observé que l'IRES de la région 5'non-codante n'était pas fonctionnel dans les cellules d'insectes. Cependant, les protéines virales ainsi obtenues ne s'assemblent pas en particules pseudovirales, et ne reproduisent donc pas certains des déterminants antigéniques du VHC natif. Des travaux récents [BAUMERT et al., J. Virol., 72,3827-3836, (1998) ; Demande PCT WO 98/21338], décrivent l'obtention de particules pseudovirales de VHC par l'expression dans un système baculovirus/cellules d'insectes, d'une construction comprenant une partie (les 81 derniers nucléotides) de la région 5'non-codante, ainsi que les séquences codant les protéines de structure C, El et E2 d'un VHC de génotype lb. Les particules pseudovirales reconnues par des anticorps anti-VHC sont localisées dans les cellules infectées, où elles sont enfermées dans des vésicules intracytoplasmiques ; elles ont un aspect polymorphe, un diamètre variable de 40 nm à 60 nm, et après purification à partir des lysats de cellules infectées, une densité de 1, 14 g/cm3 à 1, 18 g/cm3. Aucune sécrétion des particules pseudovirales dans le milieu de culture n'a été observée. BAUMERT et al. indiquent qu'il est possible, mais improbable que la portion de la 5'NCR contenue dans ces constructions joue un rôle dans l'efficacité de l'assemblage des particules et qu'il est plus probable que celle-ci dépend de l'isolat de VHC à partir duquel a été obtenu l'ADNc exprimé. La présente invention a pour but de fournir des moyens reproductibles de production de particules pseudovirales de VHC dans un système baculovirus/cellules d'insectes. Pour atteindre ce but, les Inventeurs ont entrepris de rechercher les régions du génome de VHC potentiellement impliquées non seulement dans l'expression des protéines virales, mais également dans leur assemblage en particules pseudovirales. Dans un premier temps, pour étudier l'influence de la région 5'non-codante sur l'expression des protéines du VHC, les Inventeurs ont construit des baculovirus recombinants portant des inserts d'ADNc de VHC comprenant la séquence codant pour la partie structurale de la polyprotéine, précédée ou non par la région 5'non-codante. Ils ont observé que : - l'insert d'ADNc dépourvu de la région 5' non-codante est traduit en protéines, mais il n'y a pas d'autoassemblage de celles-ci ; - l'insert d'ADNc contenant la région 5' non-codante est transcrit normalement en ARNm, mais n'est pas traduit, ce qui confirme les résultats rapportés par WANG et al., (1997, précité). Les Inventeurs ont ensuite co-exprimé dans une même cellule, 2 constructions différentes : l'une comprenant la séquence codant pour les protéines structurales, et dépourvue de la séquence de la région 5'non-codante, et pouvant donc être traduite en protéines de structure de VHC, et l'autre comprenant la séquence codant pour les protéines structurales précédée de la séquence de la région 5' non-codante, et ne pouvant donc pas être traduite en protéines de structure de VHC. Ils ont alors constaté que de manière surprenante, cette expression en trans de la 5'NCR et des protéines structurales produit, à l'intérieur de la cellule, des particules pseudovirales de morphologie et de densité similaires à celles du VHC, ce qui permet de supposer que la région 5'non-codante joue un rôle dans l'assemblage des particules pseudovirales. Les Inventeurs ont alors cherché à modifier la région 5'non-codante de manière à supprimer des codons AUG présents dans cette région et susceptibles d'interférer avec la traduction de la polyprotéine, permettant ainsi de rétablir la traduction des protéines de structures de VHC, sans altérer la fonction de la 5'NCR dans l'assemblage des particules pseudovirales. Dans ce but, ils ont réalisé une construction comprenant une 5'NCR modifiée par suppression des codons AUG présents dans cette région (en effectuant leur mutation en codons non-AUG), placée en amont de la séquence codant pour les protéines structurales. Ils ont constaté que l'expression de cette construction dans le système baculovirus/cellules d'insectes permettait également d'obtenir la traduction des protéines structurales de VHC ainsi que leur association en particules pseudovirales ; de plus ils ont constaté que de façon surprenante, une partie de ces particules pseudovirales était sécrétée dans le milieu extra cellulaire. Les résultats obtenus par les Inventeurs montrent donc que des particules pseudovirales de VHC peuvent être obtenues par l'expression simultanée, dans une même cellule d'insecte, de séquences de la région 5'non-codante, et de séquences codant pour les protéines structurales, à condition que cette expression s'effectue dans un contexte ne permettant pas la traduction des séquences codant pour les protéines structurales à partir d'un codon d'initiation situé sur la région 5'non-codante. Ces résultats permettent de proposer de nouvelles méthodes et de nouveaux outils utilisables pour l'obtention de particules pseudovirales de VHC dans des cellules d'insectes. La présente invention concerne ces méthodes et outils, qui comportent plusieurs variantes. Selon une première variante de la présente invention, on obtient des particules pseudovirales de VHC en exprimant sur des transcrits séparés, dans une même cellule d'insecte, la région 5'non-codante et la séquence codant pour les protéines structurales. Conformément à cette première variante, la présente invention a ainsi pour objet un procédé d'obtention de particules pseudovirales de VHC, caractérisé en ce qu'il comprend l'expression simultanée, dans une même cellule d'insecte, et sous forme de transcrits séparés, des séquences nucléotidiques suivantes : - une séquence non-codante choisie parmi : a) la région 5'non-codante d'un VHC ; a') une séquence dérivée de la séquence a) par élimination d'un ou plusieurs des codons d'initiation de la traduction présents dans ladite séquence ; a'') une séquence constituée par au moins une portion de la séquence a) ci-dessus ; a''') une séquence constituée par au moins une portion de la séquence a') ci-dessus ; - une séquence (b) codant au moins pour les protéines C, El, et E2 d'un VHC, et dépourvue de la région 5' non-codante dudit VHC ; et la récupération des particules pseudovirales de VHC à partir de ladite cellule. Selon une autre variante de la présente invention, on obtient des particules pseudovirales de VHC en exprimant sur un même transcrit, la région 5'non-codante d'un VHC ou une portion de celle-ci, préalablement modifiée par élimination des codons d'initiation de la traduction. Conformément à cette deuxième variante, la présente invention a pour objet un procédé d'obtention de particules pseudovirales de VHC, caractérisé en ce qu'il comprend l'expression, dans une cellule d'insecte, d'une séquence nucléotidique comprenant, d'amont en aval : une séquence non-codante choisie parmi une séquence (a') ou (a''') telles que définies ci-dessus ; - une séquence (b) telle que définie ci-dessus ; et la récupération des particules pseudovirales de VHC à partir de ladite cellule ou de son milieu de culture. La présente invention peut être mise en oeuvre pour l'obtention de particules pseudovirales de VHC de différents génotypes, ainsi que pour l'obtention de particules pseudovirales associant des séquences issues de VHC de différents génotypes, par exemple une région 5'noncodante et une séquence structurale provenant de génotypes différents. Les régions 5'non-codantes des VHC sont en effet très conservées d'un génotype à l'autre et contiennent toutes des codons AUG susceptibles d'interférer avec la traduction de la polyprotéine. A partir des séquences 5'non-codantes des VHC de différents génotypes disponibles dans la littérature (cf. par exemple BURATTI et al. FEES Letters, 411,275-280, 1997) et sur les bases de données, l'homme du métier peut sans difficulté localiser les codons d'initiation de la traduction, et les supprimer par toute méthode, connue en elle-même, de mutagenèse dirigée. L'élimination d'un codon d'initiation de la traduction peut être effectuée notamment par délétion de tout ou partie dudit codon, et éventuellement d'un ou de quelques nucléotides adjacents, par insertion dans ledit codon ou d'un ou de quelques nucléotides, ou par remplacement dudit codon par un codon différent. Selon un mode de mise en oeuvre préféré de la présente invention, la séquence (b) code au moins pour les protéines C, El, E2 et p7 d'un VHC. Selon une disposition préférée de ce mode de mise en oeuvre, ladite séquence (b) code en outre pour une partie de la protéine non structurale NS2. Pour la mise en oeuvre de la première variante de l'invention, l'expression dans la cellule d'insecte est effectuée à l'aide de 2 cassettes d'expression séparées, l'une comprenant une séquence (a), (a'), (a'') ou (a''') sous contrôle transcriptionnel d'un premier promoteur fonctionnel dans ladite cellule, la seconde comprenant une séquence (b) sous contrôle transcriptionnel d'un second promoteur fonctionnel dans ladite cellule, qui peut être identique au premier ou différent de celui-ci. Ces 2 cassettes peuvent être portées par 2 vecteurs d'expression différents ou par un même vecteur. Pour la mise en oeuvre de la deuxième variante de l'invention, l'expression dans la cellule d'insecte est effectuée à l'aide d'une seule cassette d'expression, comprenant une séquence (a') ou (a''') suivie d'une séquence (b) placées sous contrôle transcriptionnel d'un promoteur fonctionnel dans ladite cellule. Des vecteurs d'expression utilisables pour la mise en oeuvre de la présente invention sont notamment des baculovirus recombinants, permettant l'expression d'une ou plusieurs séquence (s) exogène sous contrôle d'un ou plusieurs promoteur (s) de baculovirus. Différents systèmes baculovirus/cellules d'insectes, permettant l'expression de gènes d'intérêt ainsi que les outils de clonage et d'expression de séquences exogènes dans ces différents systèmes sont bien connus de l'homme de l'art, et sont décrits par exemple dans BACULOVIRUS EXPRESSION VECTORS : A LABORATORY MANUAL [O'REILLY et al., Freeman and Cie, New York, (1994)], ainsi que dans un grand nombre de Brevets ou Demandes de Brevets, tels que, par exemple, la Demande EP 0 345 152, la Demande EP 0 651 815, la Demande EP 0 638 647 ou la Demande PCT WO 95/20672. Selon un mode de mise en oeuvre préféré du procédé conforme à l'invention, il comprend l'infection d'une cellule d'insecte avec : un baculovirus recombinant comprenant une séquence (a') ou (a''') suivie d'une séquence (b) placées sous contrôle transcriptionnel d'un promoteur dudit baculovirus ; ou bien un baculovirus recombinant comprenant une séquence (a), (a'), (ail) ou (ai'') sous contrôle transcriptionnel d'un premier promoteur dudit baculovirus et une séquence (b) sous contrôle transcriptionnel d'un second promoteur dudit baculovirus identique au premier ou différent de celui-ci, ou bien ; - un premier baculovirus recombinant comprenant une séquence (a), (a'), (a'') ou (a''') sous contrôle transcriptionnel d'un promoteur dudit baculovirus, et un second baculovirus recombinant comprenant une séquence (b) sous contrôle transcriptionnel d'un promoteur dudit baculovirus ; la culture de la cellule infectée et la récolte des particules pseudovirales de VHC à l'issue de ladite culture, à partir de ladite cellule ou de son milieu de culture. Selon une disposition préférée de ce mode de mise en oeuvre, pour obtenir des particules pseudovirales en quantité plus importante, on effectue la récolte des particules pseudovirales après au moins 48 heures de culture, de préférence après 72 heures de culture. Pour la récolte des particules pseudovirales de VHC à partir de la cellule infectée, on procède à la lyse de ladite cellule, et à la purification des particules pseudovirales à partir du lysat obtenu. L'identification de la ou des fraction (s) contenant les particules pseudovirales peut s'effectuer aisément à l'aide d'anticorps anti-VHC. On peut traiter le lysat par un détergent, avantageusement un détergent non-ionique, à une concentration comprise de préférence entre 0,5 et 1%, afin de séparer les particules pseudovirales des membranes qui leurs sont associées. Pour la purification des particules pseudovirales, on utilisera des méthodes classiques telles que des centrifugations successives et/ou une centrifugation sur gradient de saccharose ou tout autre procédé équivalent. Par exemple, lorsque la purification est effectuée sans traitement du lysat cellulaire par un détergent, les particules pseudovirales de VHC peuvent être récupérées après centrifugation à l'équilibre sur gradient de saccharose, dans une fraction dont la densité est d'environ 1,15 à 1,18 g/ml ; ces particules comprennent, outre la protéine de capside, les protéines d'enveloppe El et E2. Lorsque la purification est effectuée après traitement du lysat cellulaire par un détergent, (par exemple NP40 à 1% final), les particules pseudovirales de VHC peuvent être récupérées après centrifugation à l'équilibre sur gradient de saccharose, dans une fraction dont la densité est d'environ 1,23 à 1,26 g/ml ; ces particules sont dépourvues des protéines d'enveloppe El et E2. Leur densité est similaire à celle de la nucléocapside du VHC qui a été estimée à 1,25 g/ml [MIYAMOTO et al., J. Gen. Virol., 73,715-718, (1992)], après traitement au NP40 de particules virales extraites d'échantillons de plasma provenant de patients infectés. Avantageusement, dans le cadre de la deuxième variante de la présente invention, on peut récolter les particules pseudovirales de VHC à partir du milieu de culture ; du fait qu'il n'est pas nécessaire de procéder à la lyse préalable des cellules, l'extraction et la purification des particules pseudovirales sont facilitées, et peuvent s'effectuer dans des conditions moins drastiques, assurant une meilleure préservation de leurs caractéristiques morphologiques, biochimiques et antigéniques. Pour la récolte des particules pseudovirales de VHC à partir du milieu de culture, on procède à la collecte dudit milieu, et à la purification des particules pseudovirales à partir de celui-ci. La collecte du milieu de culture peut s'effectuer par tous moyens connus en eux-mêmes, permettant de séparer ledit milieu des cellules infectées, par exemple par centrifugation ou filtration. Préalablement à la purification des particules pseudovirales de VHC, on peut traiter le milieu de culture ainsi collecté par un détergent, comme indiqué ci-dessus pour la purification à partir du lysat. La purification des particules pseudovirales s'effectue ensuite également par des méthodes classiques, similaires à celles mentionnées cidessus. L'identification de la ou des fraction (s) contenant les particules pseudovirales peut s'effectuer à l'aide d'anticorps anti-VHC comme indiqué ci-dessus. Comme dans le cas des particules pseudovirales obtenues à partir du lysat cellulaire, celles obtenues à partir du milieu de culture peuvent être récupérées après centrifugation à l'équilibre sur gradient de saccharose, sous forme de particules possédant les protéines d'enveloppe El et E2, et dans une fraction dans une fraction dont la densité est d'environ 1,15 à 1,18 g/ml lorsque le milieu n'a pas été traité par un détergent, et sous forme de particules dépourvues des protéines d'enveloppe El et E2, et dans une fraction dont la densité est d'environ 1, 23 à 1, 26 g/ml lorsque le milieu a été traité par un détergent. Des particules pseudovirales de VHC dépourvues des protéines d'enveloppe El et E2 peuvent également être obtenues en traitant par un détergent non-ionique des particules pseudovirales possédant ces protéines ; dans ce cas, on utilisera ledit détergent à une concentration plus faible que celle employée pour le traitement du lysat cellulaire ou du milieu de culture. Avantageusement, on utilisera une concentration en détergent de l'ordre de 0,1 à 0, 5%. La présente invention a également pour objet les particules pseudovirales de VHC susceptibles d'être obtenues par un procédé conforme à l'invention, et notamment des particules pseudovirales présentant les caractéristiques suivantes : - une nucléocapside de morphologie icosaédrique, et de diamètre de 30 nm environ ; une densité sur gradient de saccharose d'environ 1,15 à 1,18 g/ml lorsqu'elles sont obtenues à partir d'un milieu de culture ou d'un lysat cellulaire n'ayant pas été traité par un détergent ; une densité sur gradient de saccharose d'environ 1,23 à 1,26 g/ml lorsqu'elles sont obtenues à partir d'un milieu de culture ou d'un lysat cellulaire ayant été traité par un détergent. La présente invention a également pour objet des outils de production des particules pseudovirales de VHC conformes à l'invention, et notamment : - toute séquence d'acide nucléique comprenant une séquence (a') ou ta''') suivie d'une séquence (b) telles que définies ci-dessus, ainsi que toute cassette d'expression ou vecteur d'expression comprenant ladite séquence placée sous contrôle transcriptionnel d'un promoteur de baculovirus ; - tout vecteur recombinant contenant une cassette d'expression comprenant une séquence (a), (a'), (a'') ou (a''') sous contrôle transcriptionnel d'un premier promoteur de baculovirus, et une cassette d'expression comprenant une séquence (b) sous contrôle transcriptionnel d'un second promoteur de baculovirus ; toute cellule d'insecte exprimant soit une séquence (a') ou (a''') suivie d'une séquence (b) sous contrôle transcriptionnel d'un même promoteur de baculovirus, soit une séquence (a), (a'), (a'') ou (a''') sous contrôle transcriptionnel d'un premier promoteur de baculovirus, et une séquence (b) sous contrôle transcriptionnel d'un second promoteur de baculovirus. Les particules pseudovirales de VHC conformes à l'invention peuvent être utilisées notamment pour la préparation de vaccins anti-VHC, ainsi que pour la préparation de réactifs de diagnostic, par exemple pour détecter la présence d'anticorps anti-VHC dans des échantillons de sérum. Elles peuvent également être utilisées pour la production d'anticorps anti-VHC. La présente Invention sera mieux comprise à l'aide du complément de description qui va suivre, qui se réfère à des exemples non-limitatifs de construction et de mise en oeuvre de vecteurs d'expression conformes à l'Invention. Les protocoles utilisés dans les exemples qui suivent font appel à des techniques classiques du génie génétique, telles que celles décrites par SAMBROOK et al. [Molecular cloning : A Laboratory Manual ; Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory, (1989)], ou par O'REILLY et al. [Baculovirus Expression Vectors : A Laboratory Manual ; Freeman and Cie, New York, (1994)] pour la manipulation de l'ADN de baculovirus. Les conditions particulières à chaque expérimentation sont, s'il y a lieu, précisées dans l'exemple correspondant. EXEMPLE 1 : EFFET DE LA SEQUENCE 5'NON CODANTE SUR LA TRADUCTION DE LA REGION STRUCTURALE DE LA POLYPROTEINE DE VHC Pour étudier le rôle de la région 5'non codante (5'NCR) de VHC sur la morphogénèse des particules virales, 2 baculovirus recombinants dénommés respectivement AcSLP10-5'NCR-El et AcSLP10-C-El ont été construits. Le baculovirus AcSLP10-5'NCR-El comprend la séquence codant les protéines C et El de VHC ainsi que la région 5'NCR ; le baculovirus AcSLP10-C-El comprend uniquement la région codant les protéines C et El de VHC et est dépourvu de la région 5'NCR. Ces baculovirus ont été construits à partir du plasmide pMINK, qui comprend l'ADNc de la souche VHC-H génotype la [INCHAUSPE et al., Proc Natl Acad Sci USA, 88, 10292-10296, (1991)]. L'organisation de la région du génome de la souche VHC-H qui comprend les séquences codant pour les protéines structurales est illustrée par la Figure 1 ; les positions des sites de clivage de la polyprotéine par les signalases cellulaires sont indiquées sous le diagramme. Dans les exemples qui suivent, les positions des nucléotides du génome de VHC-H sont indiquées par référence au site d'initiation de la traduction de polyprotéine, le A du codon d'initiation représentant la position +1. Les baculovirus AcSLP10-5'NCR-El et AcSLP10-C-El ont été construits à l'aide des vecteurs de transfert pll8 dérivés du plasmide pGm8022 [CHAABIHI et al., J. Virol., 67, 2664-2671, (1993)]. Construction du baculovirus AcSLPIO-C-El : Plasmide pll8-C-El : La séquence comprenant les nucléotides-26 à +267 par rapport à l'ATG de la protéine C de VHC-H a été amplifiée en utilisant les amorces suivantes : Amorce sens : 5'-CCGGGAGCTCTCGTAGATCTTGCACC-3' (les nucléotides qui ont été mutés pour créer un site SacI et un site BglI sont indiqués en caractères gras). Amorce antisens : 5'-CTCATTGCCATAGAGGGGCC-3' et le plasmide pMINK comme matrice. Après digestion avec BglII et Asp718, le fragment résultant (qui comprend les nucléotides +1 à +239) a été cloné dans un plasmide pUC modifié (un site BglII a été inséré à la place du site SacI), pour donner le plasmide pUC-cA. Un fragment Asp718-SalII (nucléotides +240 à +1141) codant pour la portion C-terminale de la capside et pour les 191 premiers acides aminés de El a été excisé de pMINK et inséré dans les sites Asp718-AslI du plasmide pUC-CA. Le dernier codon de El et un codon stop ont été enfin insérés par l'intermédiaire d'un lieur SalI avant le sous-clonage dans le vecteur de transfert pll8. Le lieur SalI a été reconstitué par hybridation des 2 oligonucléotides suivants : 5'-GTCGACGCGTAAAGATCTGAGCT-3'et 5'-CAGATCTTTACGCGTCGACAGCT-3'. Le plasmide résultant, dénommé pll8-C-El, code pour la capside et pour la totalité de la glycoprotéine El (nucléotides +1 à +1146). Construction du baculovirus AcSLP1O-5'NCR-El : Plasmide pll8-5'NCR-El : Un fragment BamHI de 1369 pb contenant la région 5'non-codante (341 nucléotides), ainsi que la séquence codant la protéine de capside et 149 acides aminés de la glycoprotéine El (nucléotides +1 à +1016) de VHC a été inséré dans le site unique BglII du plasmide pll8 stop (pll8 avec un codon stop situé en aval du site BglII) pour donner un plasmide dénommé pll8-5'NCR-El. Les plasmides pll8-C-El et pll8-5'-NCR-El sont schématisés sur la Figure 2. Les virus recombinants sont préparés par recombinaison entre pll8-C-El ou pll8-5'-NCR-El et de l'ADN purifié du baculovirus modifié AcSLP10 [CHAABIHI et al., 1993, précité]. Le baculovirus AcSLP10 est un baculovirus modifié qui possède un seul promoteur tardif fort (P10) suivi par la séquence codant la polyédrine. La sélection et la purification des virus recombinants est effectuée selon la procédure classique décrite par SUMMERS et SMITH [Texas Agric. Exp. Stat. Bull., 1555,1-56, (1987)]. Des cellules de Spodoptera frugiperda (cellules Sf9, VAUGHN et al., In Vitro Cell Dev. Biol., 13,213-217, 1977) sont cultivées à 28 C dans du milieu TC100 (GIBCO) supplémenté avec 5% de sérum de veau foetal. Pour l'infection, les cellules (4 x 106 par flacon de 25 cm2) sont inoculées avec la suspension virale à raison de 1 à 10 unités formant plage (UFP) par cellule. Après 1 heure d'adsorption à température ambiante, l'inoculum viral est enlevé, et du milieu de culture frais est ajouté. Les cellules sont ensuite incubées à 28OC. Les protéines exprimées par les cellules Sf9 infectées avec AcSLP10-C-El, AcSLP10-5'NCR-El ou avec le virus AcMNPV de type sauvage ont été analysées par électrophorèse et immuntransfert selon le protocole suivant : Les cellules infectées sont récoltées 48 h p. i. (post-infection), lavées avec du tampon PBS froid (phosphate-buffered Saline), et resuspendues dans du tampon d'électrophorèse [LAEMMLI, Nature, 277,680-684, (1970)]. Les échantillons de protéines sont déposés sur un gel de polyacrylamide à 12, 5%, en conditions dénaturantes, et en présence de dodécyl sulfate de sodium. Les protéines sont alors transférées sur un filtre de nitrocellulose (SCHLEICHER et SCHUELL ; BAS 85,0, 45, um). La membrane est colorée au rouge Ponceau (Ponceau-S ; SIGMA, St Louis, Mo), puis bloquée avec une solution de TBS (0,05 M Tris-HCl (pH 7,4) 0,2 M NaCl) contenant 0, 05% de TWEEN 20 et 5% de poudre de lait écrémé (TBS sat). La protéine de capside de VHC est détectée en utilisant l'anticorps monoclonal de souris anti-capside 27D5C5 (1 : 500 en TBS-sat) ou le sérum polyclonal de lapin anti-capside #57 (1 : 500 en TBS-sat) comme anticorps primaire et un sérum de lapin anti-immunoglobuline G de souris conjugué à la peroxydase (SIGMA) ou un sérum de chèvre anti-immunoglobuline de lapin conjugué à la peroxydase (SIGMA) comme anticorps secondaire (1 : 1000 en TBS-sat). Les glycoprotéines El et E2 sont détectées en utilisant un sérum polyclonal de lapin anti-El (1 : 200 en TBS-sat) ou un sérum polyclonal de lapin anti-E2 (1 : 500 en TBS-sat) comme anticorps primaire et un sérum de chèvre anti-immunoglobuline de lapin conjugué à la peroxydase comme anticorps secondaire (1 : 10000 en TBS sat). Les transferts ont également été révélés en utilisant des sérums humains anti-VHC (1 : 500 en TBS-sat) contenant des anticorps contre les 3 protéines structurales et un sérum de chèvre anti-immunoglobuline humaine conjuguée à la phosphatase alcaline (SIGMA) comme anticorps secondaire (1 : 10000 en TBS-sat). Les bandes immunoréactives ont été visualisées en utilisant comme agent chromogène soit du 1-amino-3-éthyl carbazole, soit un mélange de sel de Nitrobleu de Tétrazolium et de sel de5-bromo-4-chloro-3-indolyl phosphate toluidine. Les résultats de cette analyse sont les suivants : L'analyse des protéines exprimées dans les cellules infectées avec AcSLP10-C-El montre la présence d'une protéine de 21 kDa, et en moindre quantité, d'une protéine de 23 kDa qui correspond probablement à la protéine de capside non clivée à son extrémité C-terminale. 3 produits additionnels mineurs de poids moléculaire plus faible (16 et 18 kDa) ou plus élevé (22 kDa), sont révélés avec le sérum humain anti-VHC. On observe aussi l'accumulation d'un produit de 42-55 kDa qui résulte probablement d'une maturation inefficace de la polyprotéine précurseur CE-1. En fait, ce précurseur est marqué avec l'anticorps anti-El. L'analyse des protéines exprimées dans les cellules infectées avec AcSLP10-5'NCR-El ne révèle aucune production de la capside ou de la glycoprotéine El. Dans les cellules témoins infectées par le baculovirus AcMNPV de type sauvage, on n'observe aucune production de protéines reconnues par des anticorps dirigés contre les protéines de VHC. Pour vérifier si l'absence d'expression des protéines de VHC dans les cellules infectées avec AcSLPlO-5'NCR-El est due à une déficience au niveau de la transcription ou bien au niveau de la traduction, les ARN messagers produits par les constructions AcSLP10-C-El et AcSLP10-5'NCR-El ont été analysés par transfert de Northern selon le protocole suivant : L'ARN total a été isolé à partir des cellules infectées 48 h après infection, en utilisant le réactif TRIZOL (GIBCO BRL), suivant le protocole préconisé par le fabricant. Après extraction au chloroforme et précipitation à l'alcool isopropylique, l'ARN total est resuspendu dans de l'eau dépourvue de RNAse et quantifié par spectrophotométrie. Après addition de tampon d'échantillon ARN (PROMEGA), 10 Ag de chaque échantillon sont soumis à une électrophorèse sur gel d'agarose 1% en conditions non-dénaturantes et transférés sur membrane de nylon (ROCHE). Les transferts sont hybridés avec une sonde de 417 bp (nucléotides 369 à 785 de la séquence codant la polyprotéine de VHC) radio-marquée au 32p. Cette sonde recouvre la séquence codant la partie C-terminale de la capside et la partie N-terminale de El. Un transcrit de la taille attendue (environ 750 nucléotides) est détecté, aussi bien dans les cellules infectées avec AcSLPlO-5'NCR-El, que dans celles infectées avec AcSLP10-C-El. Ces données indiquent que la non-expression des protéines de VHC dans les constructions contenant la région 5'NCR reflète une déficience au niveau de la traduction de l'ARNm en protéines. L'état de glycosylation des protéines de VHC produites par AcSLP10-C-El a été étudié en cultivant les cellules infectées en présence de tunicamycine, un antibiotique d'origine fongique qui bloque la N-glycosylation. La tunicamycine (concentration finale : 10 g/ml) a été ajoutée au milieu de culture des cellules 7 h après l'infection. Les cellules infectées sont récoltées 52 h après l'infection, et les échantillons de protéines sont analysés par immuntransfert comme décrit ci-dessus. A titre de contrôle, des cellules infectées ont été cultivées dans les mêmes conditions, mais sans tunicamycine. Dans ces conditions, les formes de haut poids moléculaire de El et de C-El ne sont plus observées. Dans tous les cas, ces protéines de structure ne sont pas non plus retrouvées dans les milieux de culture des cellules. L'observation au microscope électronique de cellules Sf9 infectées par AcSLPIO-C-El révèle un matériel réticulé dense, à répartition périnucléaire caractéristique des protéines associées au réticulum endoplasmique. Le marquage de cellules avec le sérum humain anti-VHC montre une colocalisation de ces matériaux immunoréactifs avec des structures intracytoplasmiques denses, ce qui indique que les protéines exprimées sont retenues dans le réticulum endoplasmique. En revanche, les cellules infectées avec AcSLPlO-5'NCR-El ne montrent que les caractéristiques des cellules infectées par un baculovirus recombinant, c'est-à-dire : une hypertrophie nucléaire, la présence de grandes quantités de virus dans le noyau, et l'absence de structures de type polyédrine ou P10. Aucune rétention réticulée cytoplasmique ou formation d'agrégat n'est observée, et aucune protéine intracellulaire n'est marquée avec le sérum humain anti-VHC, ce qui confirme les résultats de l'immuntransfert. EXEMPLE 2 : EFFETS EN TRANS DE LA REGION 5'NON-CODANTE SUR LA MULTIMERISATION DE LA PROTEINE DE CAPSIDE DE VHC Une éventuelle interaction entre la 5'NCR et la protéine de capside a été étudiée par co-expression des 2 baculovirus AcSLP10-5'NCR-El et AcSLP10-C-El, combinant ainsi un transcrit non traduisible en protéines de structure de VHC contenant une 5'NCR avec un transcrit traduisible en protéines de structure de VHC dépourvu de 5'NCR. Des cellules Sf9 ont été infectées avec AcSLP10-C-El seul, ou bien co-infectées avec AcSLPIO-C-El et AcSLP10-5'NCR-El, selon le protocole décrit à l'Exemple 1 ci-dessus. 48 ou 72 h après l'infection, les cellules sont resuspendues dans du tampon faiblement salin (10 mM HEPES, pH 7,9, 10 mM KCl, 1,5 mM MgCl2, 0,5% NP40) froid, en présence d'un cocktail d'inhibiteurs de protéases (0-COMPLETE, ROCHE), et broyées dans un potter (BIOBLOCK SCIENTIFIC). Après centrifugation à faible vitesse (10 x 103g pendant 10 minutes à 4OC), le surnageant est déposé sur un gradient linéaire de saccharose (20 à 60% en poids dans du tampon TEN : 50 mM Tris HCl pH 7,4, 100 mM NaCl, 5 mM EDTA) et soumis à une centrifugation isopycnique pendant 24 h à 4 C et 150 000 g. Pour certaines expériences, 1% de NP40 ont été ajoutés aux extraits bruts de protéines avant leur dépôt sur le gradient de saccharose. Des fractions de 500 ml sont collectées et analysées par immuntransfert, comme décrit à l'Exemple 1 ci-dessus. Les résultats de l'analyse par centrifugation isopycnique sur gradient de saccharose, montrent que la distribution de la protéine de capside et du polypeptide C-E1 sur le gradient diffère selon que les extraits ont été préparés à partir des cellules infectées avec AcSLP10-C-El seul ou bien à partir des cellules co-infectées avec AcSLP10-C-El et AcSLPlO-5'NCR-El. Quand elles sont exprimées dans des cellules infectées uniquement avec AcSLP10-C-El, les protéines C et C-El sont présentes dans les fractions sédimentant à une densité de 1,21 à 1,26 g/ml ; quand elles sont exprimées dans les cellules co-infectées avec les 2 constructions, elles sont présentes dans les fractions sédimentant à une densité de 1,15 à 1,18 g/ml. Lorsque l'extrait brut est traité avec un détergent nonionique doux (NP-40,1%) préalablement à son analyse sur gradient de saccharose, les protéines C et C-E1 sont présentes dans les fractions sédimentant à une densité plus élevée : 1,24-1, 26 g/ml. L'analyse en microscopie électronique de cellules co-infectées avec AcSLPlO-5'NCR-El et AcSLP10-C-El montre une distribution réticulée du matériel dense similaire à celle décrite ci-dessus. L'observation à fort grossissement de la région cytoplasmique des cellules aux phases tardives de l'affection montre des particules pseudo-virales de taille et de forme variables. Ces particules sont entourées de protubérances qui peuvent être constituées soit de complexes de protéines structurales, soit de structures pseuso-ribosomales associées. Le marquage avec un anticorps polyclonal anti-capside de cellules infectées préalablement perméabilisées au détergent montre une colocalisation de la protéine de capside de VHC avec ces particules. Des cellules infectées avec le baculovirus de type sauvage ou avec d'autres baculovirus recombinants exprimant une ou deux protéines de VHC sans la protéine de capside ne montrent jamais de distribution similaire. Ces résultats confirment que la protéine de capside de VHC est capable de s'auto-assembler dans les cellules Sf9 lorsqu'elle est exprimée avec seulement une partie de l'ARN VHC, pourvu qu'il comporte tout ou partie de la 5'NCR. EXEMPLE 3 : EFFETS DE LA MUTATION DES CODONS AUG DE LA REGION 5'NON-CODANTE DE VHC SUR LA TRADUCTION DES PROTEINES DE STRUCTURE ET LA FORMATION DE PARTICULES PSEUDO-VIRALES Pour étudier le rôle potentiel de la 5'NCR sur l'assemblage des protéines structurales lorsqu'elle est placée en position cis, un baculovirus recombinant dénommé AcPH-5'NCRm-NS2A a été construit. Ce baculovirus comprend la séquence codant pour la totalité des protéines de structure de VHC, précédé par une 5'NCR mutée par suppression de 5 codons AUG silencieux. Construction du baculovirus pGmAc5'NCRm-NS2A Ce virus est construit en utilisant le vecteur de transfert pGmAcll8. Ce vecteur possède un lieur BglII inséré dans une délétion au niveau du gène de la polyhédrine s'étendant des nucléotides-10 à +483 (la position +1 correspondant au 1er nucléotide du codon d'initiation ATG de la polyhédrine). La délétion dans la séquence du promoteur de la polyhédrine permet d'atténuer le niveau d'expression du gène hétérologue. Construction du plasmide pGmAc-5'NCRm-NS2A : Un fragment d'ADN de 256 bp contenant une région 5'NCR modifiée de VHC présentant des mutations dans les 5 codons AUG silencieux est construit en utilisant un ensemble de 14 oligonucléotides se recouvrant. La position du ler nucléotide de chaque codon AUG dans la région 5'non-codante de VHC est respectivement de-328,-310,-257,-246 et-127 par rapport au A (+l) du codon d'initiation de la polyprotéine de VHC. Les mutations ont été choisies de manière à créer des sites commodes pour d'éventuelles étapes de clonage ultérieures ; en revanche, il n'a pas été tenté de préserver la structure secondaire de la région 5'NCR. Les positions des mutations sont indiqués dans le Tableau Ici-dessous : Tableau 1 position AUG Séquence originale Séquence mutée - 328 ugAUGgg ugAUCgg - 310 cc AUG aa cc AUC aa -257 cc AUG gc cc UAG gc -246 gu AUG ag gu AUC ag - 127 ca AUG cc cg AGG cc Un fragment NheI-BglII de 2987 bp (nucléotides - 92 à +2895) contenant 93 bp de la 5'NCR de VHC de type sauvage, ainsi que les séquences codant pour les protéines C, El, E2-P7 et les 158 premiers acides aminés de NS2, a été introduit en aval de la 5'NCR mutée dans le vecteur de transfert pGmAcllS. Un lieur BglII inséré dans le gène NS2 a introduit un codon stop en phase. Le plasmide résultant est dénommé pGmAc-5'NCRm-NS2A. Ce plasmide est schématisé sur la Figure 3. Pour la préparation du baculovirus AcPH5'NCRm-NS2A, des cellules Sf2 sont co-transfectées avec l'ADN du plasmide pGmAc-5'NCRm-NS2A et l'ADN de baculovirus de type sauvage AcNMPV, par lipofection (DOTAP ; ROCHE). Des cellules SF9 sont infectées avec le virus AcPH5'NCRm-NS2A, et cultivées selon le protocole décrit à l'Exemple 1 ci-dessus. Des lysats cellulaires ont été préparés 72 h après l'infection et les protéines de ces lysats ont été analysées par immun-transfert, selon le protocole décrit à l'Exemple 1 ci-dessus, en utilisant ou bien l'anticorps monoclonal anti-capside de VHC 27D5C5, ou bien le sérum polyclonal anti-E1, ou bien le sérum polyclonal anti-E2, ou bien le sérum humain anti-VHC. Les résultats de cette analyse montrent que la traduction des protéines structurales est restaurée. Deux produits immuno-réactifs majeurs avec des poids moléculaires de 21 et 23 kDa, correspondant aux deux formes différentes de la protéine de capside sont révélés par l'anticorps anti-capside. Deux espèces mineures de 16 et 28 kDa sont également détectées en plus faible quantité. L'anticorps polyclonal anti-E1 réagit avec plusieurs bandes comprises entre 21 et 35 kDa correspondant probablement à des variants de glycosylation de la glycoprotéine El. Des bandes additionnelles distribuées entre 35 et 110 kDa peuvent représenter des polypeptides CE-1, E1-E2 ou C-E1-E2 non clivés et partiellement glycosylés. Des variants de glycosylation de la glycoprotéine E2 ont été révélés en utilisant un anticorps polyclonal anti-E2, dans une zone de poids moléculaire allant de 40 à 66 kDa. Les deux glycoprotéines El et E2, et dans une moindre mesure la protéine de capside ont également été détectées dans le gel de tassement, sous forme d'agrégats insolubles. L'observation en microscopie électronique des cellules infectées avec le baculovirus recombinant AcPH-5'NCRm-NS2A montre un cercle périnucléaire de matériel très dense résultant probablement de l'accumulation de protéines de structure de VHC associées au réticulum endoplasmique. L'immunomarquage avec le sérum humain anti-VHC de cryo-sections de cellules infectées confirme la localisation des protéines de VHC dans cette zone du cytoplasme. Un faible marquage est également observé dans le noyau. L'analyse par centrifugation isopycnique sur gradient de saccharose, selon le protocole décrit à l'Exemple 2 ci-dessus, montre que les protéines reconnues par le sérum humain anti-VHC sédimentent dans des fractions de densité 1,14 à 1,18 g/ml. Dans ces conditions, le produit principalement détecté est la protéine de capside, essentiellement sous forme mature p21. Le traitement des extraits cellulaires avec du NP40 (concentration finale de 1% dans le tampon de lyse cellulaire) provoque un déplacement de la densité des particules, de 1,14-1, 18 g/ml à 1,23-1, 26 g/ml. L'observation en microscopie électronique, après coloration négative, de ces fractions reconnues par l'anticorps anti-VHC montre la présence de particules icosaédriques d'environ 30 nm de diamètre. EXEMPLE 4 : EFFET DE LA MUTATION DES CODONS AUG DE LA REGION 5'NON-CODANTE DE VHC SUR LA FORMATION DE PARTICULES PSEUDOVIRALES EXTRACELLULAIRES Des surnageants de cultures de cellules co-infectées avec AcSLP10-5'NCR-El et AcSLP10-C-El, ou infectées avec AcPH-5'NCRm-NS2A seul, ont été concentrés par centrifugation à 150000 g et analysés par centrifugation isopycnique sur gradient de saccharose selon le protocole suivant : Les particules virales présentes dans le surnageant de culture sont isolées comme suit : après une centrifugation à faible vitesse (10 min. à 4 C et 1000 g), le surnageant est récupéré et soumis à une seconde centrifugation de 1 à 2 h à 4 C et à 150000 g. Le culot de cette deuxième centrifugation est resuspendu dans du tampon TEN (contenant des inhibiteurs de protéase) et soumis à une centrifugation isopycnique sur gradient de saccharose. Dans ces conditions, le surnageant est concentré de 20 à 100 fois. Des fractions de 500 pl sont récoltées à partir du sommet du gradient et analysées comme décrit dans l'Exemple 2 ci-dessus. Aucun produit réagissant avec les anticorps anti-VHC n'est détecté dans les surnageants de culture de cellules co-infectées avec AcSLP10-5'NCR-El et AcSLPIO-C-El ; en revanche, dans les surnageants de cellules infectées avec AcPH-5'NCRm-NS2A on détecte des fractions réagissant avec les anticorps anti-VHC. La principale fraction réagissant avec les anticorps anti-VHC sédimente à une densité d'environ 1,18 g/ml et réagit également avec les anticorps anti-capside et dans une moindre mesure, avec les anticorps anti-El et anti-E2. Le fait que le signal obtenu avec les deux anticorps anti-enveloppe soit plus faible que celui observé avec les anticorps anti-capside peut refléter une incorporation plus faible des glycoprotéines El et E2 dans ces particules. Le traitement des particules par du NP40 1% préalablement à la centrifugation sur gradient de saccharose provoque le même déplacement de densité (de 1, 18 à 1, 25 g/ml) que celui observé dans le cas des particules obtenues à que ce L partir des extraits cytoplasmiques. REVENDICATIONS 1) Procédé d'obtention de particules pseudovirales de VHC, caractérisé en ce qu'il comprend l'expression simultanée, dans une même cellule d'insecte, et sous forme de transcrits séparés, des séquences nucléotidiques suivantes : - une séquence non-codante choisie parmi : a) la région 5'non-codante d'un VHC ; a') une séquence dérivée de la séquence a) par élimination d'un ou plusieurs des codons d'initiation de la traduction présents dans ladite séquence ; a'') une séquence constituée par au moins une portion de la séquence a) ; a''') une séquence constituée par au moins une portion de la séquence a') ; - une séquence (b) codant au moins pour les protéines C, El, et E2 d'un VHC, et dépourvue de la région 5' non-codante dudit VHC ; et la récupération des particules pseudovirales de VHC à partir de ladite cellule. 2) Procédé d'obtention de particules pseudovirales de VHC, caractérisé en ce qu'il comprend l'expression, dans une cellule d'insecte, d'une séquence nucléotidique comprenant, d'amont en aval : une séquence non-codante choisie parmi une séquence (a') ou (a''') telles que définies dans la revendication 1 ; - une séquence (b) telle que définie dans la revendication 1 ; et la récolte des particules pseudovirales de VHC à partir de ladite cellule ou de son milieu de culture. 3) Procédé selon une quelconque des revendications 1 ou 2, caractérisé en ce que la séquence (b) code au moins pour les protéines C, El, E2 et p7 d'un VHC. 4) Procédé selon la revendication 3, caractérisé en ce que ladite séquence (b) code en outre pour une partie de la protéine non structurale NS2 d'un VHC. 5) Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que l'expression dans ladite cellule d'insecte est effectuée en utilisant un seul vecteur d'expression contenant une cassette d'expression d'une séquence (a), (a'), (a'') ou (a''') sous contrôle transcriptionnel d'un premier promoteur, et une cassette d'expression d'une séquence (b) sous contrôle transcriptionnel d'un second promoteur. 6) Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que l'expression dans ladite cellule d'insecte est effectuée en utilisant un vecteur d'expression contenant une cassette d'expression d'une séquence (a), (a'), (a'') ou (a''') sous contrôle transcriptionnel d'un premier promoteur, et un vecteur d'expression contenant une cassette d'expression d'une séquence (b) sous contrôle transcriptionnel d'un second promoteur. 7) Procédé selon la revendication 2, caractérisé en ce que l'expression dans ladite cellule d'insecte est effectuée à l'aide d'un vecteur d'expression contenant une cassette d'expression, comprenant une séquence (a') ou (a''') suivie d'une séquence (b) placées sous contrôle transcriptionnel d'un promoteur. 8) Procédé selon une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisé en ce que l'on utilise comme vecteur d'expression un baculovirus recombinant. 9) Procédé selon une quelconque des revendications 1 à 8, caractérisé en ce qu'il comprend l'infection d'une cellule d'insecte avec : un baculovirus recombinant comprenant une séquence (a') ou (a''') suivie d'une séquence (b) placées sous contrôle transcriptionnel d'un promoteur dudit baculovirus ; ou bien un baculovirus recombinant comprenant une séquence (a), (a'), (ait) ou (alto) sous contrôle transcriptionnel d'un premier promoteur dudit baculovirus et une séquence (b) sous contrôle transcriptionnel d'un second promoteur dudit baculovirus identique au premier ou différent de celui-ci, ou bien ; - un premier baculovirus recombinant comprenant une séquence (a), (a'), (a'') ou (a''') sous contrôle transcriptionnel d'un promoteur dudit baculovirus, et un second baculovirus recombinant comprenant une séquence (b) sous contrôle transcriptionnel d'un promoteur dudit baculovirus ; la culture de la cellule infectée, et la récolte des particules pseudovirales de VHC à l'issue de ladite culture, à partir de ladite cellule ou de son milieu de culture. 10) Procédé selon la revendication 9, caractérisé en ce que l'on effectue la récolte des particules pseudovirales après au moins 48 heures de culture, de préférence après au moins 72 heures de culture. 11) Procédé selon une quelconque des revendications 1 à 10, caractérisé en ce que l'on effectue la purification des particules pseudovirales de VHC à partir d'un lysat de la cellule infectée. 12) Procédé selon une quelconque des revendications 1 à 10, caractérisé en ce que l'on effectue la purification des particules pseudovirales de VHC à partir du milieu de culture des cellules infectées. 13) Procédé selon une quelconque des revendications 11 ou 12, caractérisé en ce qu'il comprend en outre le traitement dudit lysat ou dudit milieu de culture par un détergent non-ionique. 14) Particules pseudovirales de VHC, caractérisées en ce qu'elles sont susceptibles d'être obtenues par un procédé selon une quelconque des revendications 1 à 13, et en ce qu'elles ont une nucléocapside de morphologie icosaédrique, et de diamètre de 30 nm environ. 15) Particules pseudovirales selon la revendication 14, caractérisées en ce qu'elles sont susceptibles d'être obtenues par un procédé selon une quelconque des revendications 1 à 12, et en ce que leur densité déterminée par centrifugation à l'équilibre sur gradient de saccharose est d'environ 1,15 à 1,18 g/ml. 16) Particules pseudovirales selon la revendication 14, caractérisées en ce qu'elles sont susceptibles d'être obtenues par un procédé selon la revendication 13, et en ce que leur densité déterminée par centrifugation à l'équilibre sur gradient de saccharose est d'environ 1,23 à 1,26 g/ml 17) Séquence d'acide nucléique comprenant une séquence (a') ou (a''') suivie d'une séquence (b) telles que définies dans la revendication 1. 18) Cassette d'expression comprenant une séquence d'acide nucléique selon la revendication 17 placée sous contrôle transcriptionnel d'un promoteur de baculovirus. 19) Vecteur d'expression, constitué par un baculovirus recombinant comprenant une séquence d'acide nucléique selon la revendication 17 placée sous contrôle transcriptionnel d'un promoteur dudit baculovirus. 20) Vecteur d'expression constitué par un baculovirus recombinant comprenant une séquence (a), (a'), (a'') ou (a''') telles que définies dans la revendication 1, sous contrôle transcriptionnel d'un premier promoteur dudit baculovirus, et une cassette d'expression comprenant une séquence (b) telle que définie dans la revendication 1, sous contrôle transcriptionnel d'un second promoteur dudit baculovirus ; 21) Cellule d'insecte contenant une cassette d'expression selon la revendication 18. 22) Cellule d'insecte contenant une cassette d'expression comprenant une séquence (a), (a'), (a'') ou (a''') telles que définies dans la revendication 1, sous contrôle transcriptionnel d'un premier promoteur de baculovirus, et une séquence (b) telle que définie dans la revendication 1, sous contrôle transcriptionnel d'un second promoteur de baculovirus. 23) Utilisation de particules pseudovirales de VHC selon une quelconque des revendications 14 à 16 pour la préparation d'un vaccin. 24) Utilisation de particules pseudovirales de VHC selon une quelconque des revendications 14 à 16 pour la préparation d'un réactif de diagnostic. 25) Utilisation de particules pseudovirales de VHC selon une quelconque des revendications 14 à 16 pour la préparation d'anticorps anti-VHC.