FR 2811665 A1 20020118 FR 0009248 A 20000713 PEPTIDES ANTIFONGIQUES ET/OU ANTIBACTÉRIENS, LEURS PRÉPARATIONS ET LES COMPOSITIONS LES CONTENANT. La présente invention à pour objet de nouveaux peptides ayant des propriétés antibactériennes et antifongiques. L'invention concerne également la préparation de ces peptides et les compositions les contenant utilisables en agriculture et en thérapie humaine ou animale. On a décrit dans l'art antérieur de nombreuses substances d'origine naturelle, notamment des peptides présentant des propriétés anti-microbiennes, plus particulièrement bactéricides ou fongicides. De tels peptides sont utiles pour le traitement des maladies fongiques tant chez les plantes que chez l'homme (De Lucca et al., 1999, Antimicrob. Agents Chemother. 43,1-11). En santé humaine, on peut rappeler que l'incidence des infections fongiques opportunistes a connu une progression très nette au cours des dernières années. Les mycoses invasives sont des infections très graves qui sont provoquées par des champignons répandus dans la nature et qui deviennent pathogènes chez des sujets immunodéprimés. L'immunosuppression peut-être le résultat de différentes causes : corticothérapie, chimiothérapie, transplantations, infection par le VIH. Les infections fongiques opportunistes représentent à l'heure actuelle une cause importante de mortalité chez l'homme. Elles peuvent être causées par des levures, principalement du genre Candida, ou des champignons filamenteux, principalement du genre Aspergillus. Chez les patients immunodéprimés, il est fréquent d'observer l'échec des traitements antifongiques en raison de la toxicité de ceux-ci, par exemple le traitement par l'amphotéricine B, ou de l'apparition de champignons résistants, par exemple la résistance de Candida albicans aux dérivés azolés. Il est donc essentiel de développer de nouveaux médicaments anti-fongiques dérivés de molécules innovantes. La production de peptides antimicrobiens représente, chez une grande variété d'espèces animales et végétales, un mécanisme essentiel de défense immunitaire contre les infections. En particulier, les insectes présentent une résistance très efficace contre les bactéries et les champignons. Cette réponse repose pour une large part sur la synthèse rapide de plusieurs familles de peptides antimicrobiens à large spectre d'activité (Bulet et al. (1999) Dev. Comp. Immunol. 23,329-344). Cette synthèse est induite par une blessure septique ou par l'injection d'une faible dose de bactéries (Hoffmann et al. (1999) Science 284, 1313-1318). A ce jour, les peptides antimicrobiens d'insectes ont été surtout caractérisés à partir d'insectes ayant une métamorphose complète pendant le développement, par exemple les diptères, lépidoptères et coléoptères. Parmi les peptides anti-microbiens induits chez ces insectes, on peut distinguer les quatre groupes suivants : - Des peptides cationiques de 4 kDa, formant deux hélices a amphipathiques. Dans ce groupe, on classe en particulier les cécropines. - Des peptides cationiques riches en proline, de taille comprise entre 2 kDa et 4 kDa qui peuvent-être glycosylés, comme par exemple, la drosocine, la pyrrhocoricine, et les lébocines, ou non glycosylés comme par exemple, les apidaecines et les métalnikowines. - Plusieurs polypeptides distincts, ayant un poids moléculaires de 8 à 27 kDa, pour la plupart cationiques et fréquemment riches en résidus glycine comme par exemple les attacines, les sarcotoxines II, les diptéricines et la coléoptéricine. - Des peptides comprenant des ponts disulfures intramoléculaires. Dans ce groupe, on classe les défensines d'insecte 4 kDa, 3 ponts disulfure), la drosomycine (4 kDa, 4 ponts disulfure) et la thanatine (2 kDa, 1 pont disulfure) . Parmi ceux-ci, la présente invention s'intéresse à des peptides présentant une structure tridimensionnelle du type comportant une hélice a et un feuillet (3 antiparallèle reliés par trois ponts disulfures, également désignée structure CS[alpha]ss. Ces peptides présentent une activité antifongique utile dans le traitement d'infection chez l'homme et l'animal ainsi que chez les plantes. L'invention concerne tout particulièrement l'héliomicine qui est un peptide isolé à partir de l'hémolymphe de lépidoptère Heliothis vires cens. La séquence et les propriétés de l'héliomicine sont décrites dans la demande de brevet internationale PCT publiée sous le No. WO 9953053. Dans les séquences peptidiques rapportées ciaprès, les acides aminés sont représentés par leur code à une lettre, mais ils peuvent être aussi représentés par leur code à trois lettres selon la nomenclature ci-dessous. A Ala alanine C Cys cystéine D Asp acide aspartique E Glu acide glutamique F Phe phénylalanine G Gly glycine H His histidine I Ile isoleucine K Lys lysine L Leu leucine M Met méthionine N Asn asparagine P Pro proline Q Gln glutamine R Arg arginine S Ser sérine T Thr thréonine V Val valine W Trp tryptophane Y Tyr tyrosine L'héliomicine est un peptide amphiphile présentant une structure tridimensionnelle du type CS[alpha]ss. La séquence en acides aminés de l'héliomicine représentée dans la liste de séquence sous le numéro SEQ ID NO : 1 est la suivante : 1 10 20 30 DKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGG 40 H C G S F A N V N C W C E T ( SEQ ID NO : 1) La Demanderesse a maintenant isolé à partir de l'hémolymphe de larves immunisées du lépidoptère Archeoprepona demophoon un homologue de l'héliomicine. Ce peptide, désigné Ardl, a été caractérisé par séquençage et mesure de masse. La séquence en acides aminés de Ard1 est représentée dans la liste de séquence sous le numéro SEQ ID NO :2 1 10 20 30 DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGG 40 H C G S F A N V N C W C E T ( SEQ ID NO : 2) La séquence de Ard1 diffère de celle de l'héliomicine en 2 positions : un acide aspartique (Asp) en position 17 dans l'héliomicine est remplacé par une asparagine (Asn) et une glycine (Gly) en position 20 est remplacée par une alanine (Ala). Les codons correspondants ont été modifiés dans le vecteur d'expression de l'héliomicine pSEA2 et le peptide Ardl a été produit et sécrété par la levure S.cerevisiae. pSEA2 est un vecteur d'expression de levure porteur du promoteur MF[alpha]1 et des séquences pré de BGL2 et pro de MF[alpha]1 permettant la sécrétion du peptide dans le milieu de culture (Lamberty et al., 1999, J. Biol. Chem., 274,9320-9326) Après purification par HPLC, l'activité antifongique (activité anti Candida albicans et anti Aspergillus fumigatus) de Ard1 a été comparée à celle de l'héliomicine. L'activité anti Candida albicans de Ard1 est de 4 à 8 fois supérieure à celle de l'héliomicine. L'activité anti Aspergillus fumigatus de Ard1 est 2 fois supérieure à celle de l'héliomicine. La demanderesse a analysé la charge et l'hydrophobicité de l'héliomicine et du peptide Ardl. Le profil d'hydrophobicité représenté à la figure 1 en annexe a été réalisé par la méthode de Kyte et Doolittle (1982, J. Mol. Biol.,157, 105-132). L'héliomicine et son homologue Ard1 possèdent deux régions à caractère plutôt hydrophobe séparées par une région à caractère plutôt hydrophile. Les régions N et C terminales présentent un caractère plutôt hydrophile. En outre, la région centrale à caractère hydrophile présente une charge nette positive. La figure 1 indique la charge des acides aminés de la séquence de l'héliomicine. Le remplacement de l'acide aspartique de l'héliomicine en asparagine (position 17) dans l'homologue naturel Ard1 augmente le caractère cationique du peptide (+1 par rapport à l'héliomicine). D'autres mutations visant à augmenter la charge positive et l'hydrophobicité ont été réalisées dans l'héliomicine et son homologue Ard1 par mutagénèses dirigées générées par PCR ou par clonage de fragments synthétiques. Les travaux de recherche réalisés dans le cadre de la présente invention ont donc consisté à effectuer des mutations notamment dans les régions hydrophobes et chargés de façon à augmenter la charge et/ou l'hydrophobicité des peptides sans modifier ou en améliorant leur caractère amphiphile, et ainsi disposer de peptides présentant des propriétés antifongiques et/ou antibiotiques améliorées par rapport à l'héliomicine. Ce but est atteint grâce à un peptide dérivé de l'héliomicine de formule SQ ID No. 1 : DKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET par substitution de un à plusieurs acides aminés. Les peptides de l'invention répondent à la formule (I), où X représente un acide aminé : X1 X2 X3 X4 X5 X6 C7 X8 X9 X10 X11 X12 X13 X14 X15 X16 X17 C18 X19 X20 X21 C22 X23 X24 X25 X26 X27 X28 X29 X30 X31 C32 X33 X34 X35 X36 X37 X38 X39 C40 X41 C42 X43 X44 ( I ) dans laquelle : - X1, X17, X21, X43 sont des acides aminés acides, - X16, X44 sont des acides aminés polaires petits, - X19 est un acide aminé polaire large, - X36 est un acide aminé petit ou faiblement hydrophobe, - X38 est un acide aminé faiblement hydrophobe ou petit, lesdites substitutions étant telles que : - l'un au moins des X1, X17, X21, X43 est un acide aminé basique ou polaire avantageusement polaire large, et/ou - l'un au moins des acide aminés X16, X44 est un acide aminé basique ou un acide aminé polaire large, et/ou - X19 est un acide aminé basique, et/ou - l'un au moins des acide aminés X36, X38 est un acide aminé fortement hydrophobe, et dans laquelle, les autres acides aminés (X) ont les significations suivantes : - X13, X37, X39 représentent des acides aminés polaires larges, - X6' X15, X34 représentent des acides aminés polaires petits, - X2, X23, X24, X25, X28, X31 représentent des acides aminés basiques, - X3, X4, X8, X12 représentent des acides aminés hydrophobes, - X9, X14, X27, X35, X41 représentent des acides aminés hydrophobes aromatiques, - X51 X10 Xlll X20, X26' X29, X30' X33 représentent des acides aminés petits, - C7' C18, C22, C32, C40, C42 représentent des cystéines. Ainsi, dans les peptides de l'invention de formule (I), lorsque : - tout ou partie des X1, X17 X21, X43 n'est pas un acide aminé basique ou polaire avantageusement polaire large, il (s) (sont) un (des) acide (s) aminé(s)acide(s), - tout ou partie des X16, X44 n'est pas un acide aminé basique ou polaire large, il(s) est (sont) un (des) acide (s) aminé (s) polaire (s) petit (s), - X19 n'est pas un acide aminé basique, il est un acide aminé polaire large, X36 n'est pas un acide aminé fortement hydrophobe, il est un acide aminé petit ou faiblement hydrophobe, - X38 n'est pas un acide aminé fortement hydrophobe, il est un acide faiblement hydrophobe ou petit. Les peptides de l'invention possèdent la structure CS[alpha]ss de l'héliomicine, car les substitutions ne concernent pas les cystéines C7, C18, C22, C32, C40, C42. Un premier groupe préféré de peptides selon l'invention est celui dans lequel l'un au moins des X1, X17, X43 est un acide aminé basique ou polaire avantageusement polaire large, et X21 est un acide aminé acide capable d'établir des liaisons ioniques avec l'un au moins des X23, X24 et X25 qui sont des acides aminés basiques. En effet, ces liaisons sont susceptibles de participer à la stabilisation de la structure CS[alpha]ss des peptides de l'invention. Un deuxième groupe préféré de peptides selon l'invention est celui dans lequel l'un au moins des X36 et X38 est un acide aminé fortement hydrophobe non aromatique. Un troisième groupe préféré de peptides selon l'invention est celui dans lequel X17 est l'asparagine ou l'arginine, X43 est l'acide glutamique et dans lequel . - X36 est la leucine ou l'isoleucine, et/ou - X19 est l'arginine, et/ou - X16 est l'arginine. Un quatrième groupe préféré de peptides selon l'invention est celui dans lequel X17 est l'acide aspartique, X43 est l'acide glutamique et dans lequel : - X36 est la leucine ou l'isoleucine, et/ou - X19 est l'arginine, et/ou - X16 est l'arginine. Un cinquième groupe préféré de peptides selon l'invention est celui dans lequel X43 est la glutamine, X17 est l'asparagine et dans lequel : - X36 est la leucine ou l'isoleucine, et/ou - X19 est l'arginine. Un sixième groupe préféré de peptides selon l'invention est celui dans lequel X43 est la glutamine et X17 est l'acide aspartique. Un septième groupe préféré de peptides selon l'invention est celui dans lequel X43 est la glutamine, X17 est l'acide aspartique et dans lequel : - X1 est l'asparagine, et/ou - X36 est la leucine ou l'isoleucine. On entend plus particulièrement par : - acides aminés basiques : l'arginine, la lysine ou l'histidine, - acides aminés hydrophobes : . non aromatiques : la méthionine, la valine, la leucine, l'isoleucine, étant entendu que la leucine et l'isoleucine sont des acides aminés fortement hydrophobe et que la méthionine et la valine sont des acides aminés faiblement hydrophobes, . aromatiques : la phénylalanine, la tyrosine, ou le tryptophane, qui sont des acides aminés fortement hydrophobes, - acides aminés acides : l'acide aspartique ou l'acide glutamique, - acides aminés polaires larges : la glutamine ou l'asparagine, - acides aminés polaires petits : la sérine ou la thréonine, - acides aminés polaires : acides aminés polaires petits et larges, - acides aminés petits : la glycine ou l'alanine. Les peptides de l'invention peuvent être préparés par synthèse chimique ou par génie génétique par des techniques bien connues de l'homme du métier. Trois types de mutations ont plus particulièrement été générées : - des acides aminés acides ont été remplacés par des acides aminés polaires, comme les mutations Aspl en Asn, Aspl7 en Asn, Glu43 en Gln, et - des acides aminés polaires de préférence polaires larges ont été remplacés par des acides aminés basiques, comme les mutations Asnl3 en Arg, Serl6 en Arg, Asn 17 en Arg (Ard1), Asn 19 en Arg, Thr 44 en Arg. - des mutations visant à augmenter l'hydrophobicité ont également été générées, comme les mutations GlylO en Leu, Ala 36 en Leu ou Ile et Val 38 en Ile. Des peptides préférés dérivés de l'héliomicine selon l'invention présentent les séquences en acide aminés suivantes : Hélio : DKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET Ardl : DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM37 : NKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM38 : DKLIGTCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM43 : DKLIGSCVWGAVNYTTDCNGECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM42 : DKLIGSCVWGAVNYTRDCNGECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM44 : DKLIGSCVWGAVNYTSDCRGECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM22 : DKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFINVNCWCET pEM23 : DKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFANNCWCET pEM25 : DKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFLNVNCWCET pEM24 : DKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFLNINCWCET pEM7 : DKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCER pEM21 : DKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCOT pEM39 : NKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCT pEM61 : NKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFLNVNCWCQT pEM62 : NKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFINVNCWCT Des peptides préférés dérivés de Ardl selon l'invention présentent les séquences en acide aminés suivantes : Ardl : DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM40 : NKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM50 : DKLIGSCVWGAVNYTRNCNAECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM56 : DKLIGSCVWLAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM52 : DKLIGSCVWGAVNYTSRCNAECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM51 : DKLIGSCVWGAVNYTSNCRAECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM32 : DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFINVNCWCET pEM33 : DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFANINCWCET pEM34 : DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFLNINCWCET pEM35 : DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFLNVNCWCET pEM31 : DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCQT pEM30 : DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCER pEM46 : DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFLNVNCWCT pEM47 : DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFINVNCWCQT pEM48 : DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFLNVNCWCER pEM49 : DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFINVNCWCER pEM54 : DKLIGSCVWLAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFLNVNCWCET pEM57 : DKLIGSCVWLAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCT pEM55 : DKLIGSCVWLAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFLNVNCWCT L'invention concerne aussi des équivalents fonctionnels des peptides ci-dessus. Il s'agit par exemple de fragments des peptides ci-dessus ou de modifications résultant des processus postraductionnels comme des glycosylation ou des modifications chimiques telles que l'amidation, l'acétylation, l'acylation, le couplage avec des lipides ou des sucres, le couplage avec des nucléotides, etc. Les équivalents fonctionnels comprennent également des peptides de l'invention dont un ou plusieurs des acides aminés des acides aminés sont des énantiomères, des diastéréoisomères, des acides aminés naturels de conformation D, des acides aminés rares notamment l'hydroxyproline, la méthyllysine, la diméthyllysine et les acides aminés synthétiques, notamment l'ornithine, la norleucine, la cyclohexylalanine et les oméga-aminoacides. L'invention couvre également les rétropeptides et les rétro-inversopeptides. Les peptide de formule (I) peuvent comprendre également à l'une ou l'autre de leurs extrémités N ou C terminale un ou plusieurs acides aminés qui n'interfèrent pas avec la structure de la formule (I). En effet, l'invention vise bien entendu des peptides présentant une structure tridimensionnelle du type comportant une hélice a et un feuillet P antiparallèle reliés par trois ponts disulfures, comme l'héliomicine. Le tableau 1 ci-dessous rapporte des mutations effectuées sur les acides aminés en positions 1,6, 13,16, 19,36, 38,43 et 44 de l'héliomicine, ainsi que l'activité antifongique sur C.albicans (C. a) et A.fumigatus (A.f) des peptides obtenus. Tableau 1 position 1 6 13 16 19 36 38 43 44 Héliomicine D S N S N A V E T Activité+ Mutants C.a A. f pEM37 N 2pEM38 T 1 1 pEM45 R 0,5 #1 pEM43 T 1 2 pEM42 R 8 1 pEM44 R 8 2 pEM22 1-2 4-8 pEM23 1 2 pEM25 L 10 6 pEM24 L I 4 8 pEM7 R 4-8 1 pEM21 Q 2 10-20 pEM39 N Q 2 4-8 pEM61 N L Q 5-10 3-6 pEM62 N I Q 3-6 2-4 + activité relative par rapport à l'héliomicine. Le tableau 2 ci-dessous rapporte des mutations effectuées sur les acides aminés en positions 1, 10,16, 17, 19, 36, 38, 43 et 44 du peptide Ardl, ainsi que l'activité antifongique sur C.albicans (C. a) et A.fumigatus (A.f) des peptides obtenus. Tableau 2 position 1 10 16 17 19 36 38 43 44 Ardl D G S N N A V E T Activité+ Mutants C.a A.f pEM40 N 2 1 pEM50 R 1-2 2 pEM56 L 1-2 0,5 pEM52 R 1-2 0,5 pEM51 R 2-4 1 pEM32 1 2 pEM33 1 1 pEM34 L I 4 4 pÉM35 L 4 2-4 pEM31 Q 2 4-8 pEM30 R 4 0,5-1 pEM46 L Q 4-8 6-8 pEM47 I Q 2-4 8 pEM48 L R 6-12 1-2 pPEM49 R 3 1-2 pEM54 L L 1 1 pEM57 L Q 1 8 pEM55 L L Q 1-2 2-7 + activité relative par rapport à Ardl. Les différents mutants ont été produits dans la levure S.cerevisiae, purifiés par HPLC et leur activité antifongique (C.albicans et A.fumigatus) a été comparée à celle de l'héliomicine ou du peptide Ardl. Les tableaux 1 et 2 ci-dessus montrent un gain d'activité sur au moins un des deux champignons testés pour tous les mutants d'augmentation de charge positive à l'exception du mutant Asn 13 en Arg (pEM45). Les autres mutants sont tous localisés dans des régions hydrophiles. La majorité des mutants ont une activité accrue sur C.albicans (Serl6 en Arg, Asn 17 en Arg (Ard1), Asn 19 en Arg, Thr 44 en Arg). Une seule mutation (Glu43 en Gln) permet un gain d'activité significativement important sur A. fumigatus. En ce qui concerne les mutations d'augmentation d'hydrophobicité, la modification de l'Ala 36 en Leu (pEM35) permet le meilleur gain d'activité sur C.albicans et A.fumigatus. Les mutations GlylO en Leu et Val 38 en Ile n'ont pas d'effet significatif sur l'activité antifongique de l'héliomicine et de Ardl. Les mutants les plus actifs d'augmentation d'hydrophobicité ont été associés aux mutants d'augmentation de charge. Des effets cumulatifs ont ainsi été observés. L'invention a aussi pour objet l'utilisation des peptides ci-dessus, pour prévenir ou traiter une infection fongique et/ou bactérienne tant chez l'homme et l'animal que chez les plantes. L'invention a donc pour objet une composition, plus particulièrement pharmaceutiques antifongiques et/ou antibactériennes, comprenant à titre d'agent actif au moins un peptide tel que défini précédemment, avantageusement associé dans ladite composition avec un véhicule acceptable. Le véhicule est choisi en fonction du type d'application de la composition à titre pharmaceutique ou agronomique. L'invention concerne tout particulièrement les applications pharmaceutiques chez l'homme et l'animal de ces peptides et des compositions les contenant, mais elle s'intéresse aussi aux applications agronomiques. En effet, les peptides de l'invention sont utiles pour rendre des plantes résistantes contre des maladies notamment fongiques et bactériennes. Une première forme de mise en #uvre de cette application agronomique, consiste à appliquer sur les plantes une quantité efficace de peptide ou d'une composition les contenant. Une seconde forme de mise en oeuvre de cette application agronomique consiste à transformer des cellules végétales ou des plantes avec une séquence d'acide nucléique capable d'exprimer le peptide de l'invention de façon à conférer aux plantes une résistance aux maladies. D'autres avantages et caractéristiques de l'invention apparaîtront des exemples qui suivent concernant la préparation du peptide Ardl et d'analogues de l'héliomicine et de Ardl et leur activité antifongique. Exemple 1 : Isolement de Ardl à partir de l'hémolymphe prélevée chez des larves immunisées du lépidoptère A. demophoon. 1) Induction de la synthèse biologique d'une substance antifongique dans l'hémolymphe d' A. demophoon. Les larves matures de 4ème stade du lépidoptère A. demophoon ont été immunisées par deux injections de 20 ul d'une solution de PBS contenant des bactéries à Gram positif (M. luteus et S. aureus) et à Gram négatif (P. aeruginosa), des spores de champignon filamenteux (A. fumigatus) et des levures (C. albicans). Les bactéries sont préparées à partir de cultures réalisées en milieu de Luria-Bertani durant 12 heures à 37 C. Les levures sont préparées à partir de cultures réalisées en milieu de Sabouraud durant 12 heures à 30 C. Les spores d'A. fumigatus sont prélevées d'un stock congelé à -80 C. Les animaux ainsi infectés ont été conservés pendant 24 heures sur leur plante hôte, dans un espace ventilé. Avant le prélèvement de l'hémolymphe, les larves ont été refroidies sur de la glace. 2) Préparation du plasma. L'hémolymphe (environ 160 l par larve, pour un total de 81 specimens) a été collectée par excision d'un appendice abdominal et recueillie dans des tubes de microcentrifugation en polypropylène de 1,5 ml refroidis dans de la glace et contenant de l'aprotinine comme inhibiteur de protéases (20 ug/ml en concentration finale) et de la phénylthiourée comme inhibiteur de la mélanisation (concentration finale de 40uM). L'hémolymphe (13 ml) ainsi collectée à partir des larves immunisées a été centrifugée à 8 000 rpm pendant 1 min à 4 C afin d'éliminer les hémocytes. Le surnageant de centrifugation a été alors centrifugé à 12000 rpm. L'hémolymphe dépourvue des cellules sanguines a été conservée à - 80 C jusqu'à son utilisation. 3) Acidification du plasma. Après décongélation rapide, le plasma d'A. demophoon a été acidifié jusqu'à pH 3 avec une solution d'acide trifluoroacétique à 1% (volume à volume) contenant de l'aprotinine (20 ug/ml en concentration finale) et la phénylthiourée (concentration finale de 40pM). L'extraction en condition acide du peptide a été réalisée pendant 30 min sous agitation légère dans un bain d'eau glacée. L'extrait obtenu a été ensuite centrifugé à 4 C pendant 30 min à 10 000g. 4) Purification des peptides. a) Prépurification par extraction en phase solide. Une quantité d'extrait équivalente à 5 ml d'hémolymphe a été déposée sur un support de 2 g de phase inverse, tel que commercialisé sous la forme de cartouche (Sep-PakTM C81, Waters Associates), équilibré avec de l'eau acidifiée (TFA 0,05 %). Les molécules hydrophiles ont été éliminées par un simple lavage avec de l'eau acidifiée. L'élution du peptide a été réalisée par une solution d'acétonitrile à 60 % préparée dans le TFA 0,05%. La fraction éluée à 60% d'acétonitrile a été séchée sous vide dans le but d'éliminer l'acétonitrile et le TFA puis elle a été reconstituée dans de l'eau acidifiée (TFA 0,05%) stérile avant d'être soumise à la première étape de purification. b) Purification par chromatographie liquide à haute performance (HPLC) sur colonne de phase inverse. - première étape : la fraction contenant le peptide a été analysée par chromatographie de phase inverse sur une colonne préparative Aquapore RP-300 C8 (BrownleeTM, 220 x 10 mm, 300 ), l'élution a été réalisée par un gradient d'acétonitrile dans le TFA 0,05% de 2% à 10% en 5 minutes, puis de 10 à 25% en 30 minutes, puis de 25% à 35% en 40 minutes, puis de 35% à 60% en 50 minutes, pour une durée totale de 125 minutes à un débit constant de 2,5 ml/min. Les fractions ont été collectées manuellement en suivant la variation de l'absorbance à 225 nm. Les fractions recueillies ont été asséchées sous vide, reconstituées avec de l'eau ultrapure et analysées pour leur activité antifongique en utilisant le test décrit cidessous. seconde étape : la fraction antifongique éluée à 27% d'acétonitrile correspondant au peptide a été analysée sur une colonne analytique de phase inverse Aquapore RP-300 C8 (BrownleeTM, 220 x 4,6 mm, 300 ), en utilisant un gradient linéaire diphasique d'acétonitrile de 2% à 23% en 5 min et de 23 à 31% en 50 min dans le TFA 0,05% avec un débit constant de 0,8 ml/min. Les fractions ont été collectées manuellement en suivant la variation de l'absorbance à 225 nm. Les fractions recueillies ont été asséchées sous vide, reconstituées avec de l'eau ultrapure et analysées pour leur activité antifongique dans les conditions décrites ci-dessous. - troisième étape : la fraction antifongique contenant le peptide a été purifiée jusqu'à homogénéité sur une colonne de phase inverse Narrowbore Delta-PakTM HPI C18 (Waters Associates, 150 x 2 mm) en utilisant un gradient linéaire diphasique d'acétonitrile de 2% à 22% en 5 min et de 22 à 30% en 50 min dans le TFA 0,05% avec un débit constant de 0,25 ml/ min à une température contrôlée de 30 C. Les fractions ont été collectées manuellement en suivant la variation de l'absorbance à 225 nm. Les fractions recueillies ont été asséchées sous vide, reconstituées avec de l'eau ultrapure filtrée et analysées pour leur activité antifongique. Exemple 2 Caractérisation structurale du peptide de ArdI. 1) Vérification de la pureté par Spectrométrie de masse Maldi-TOF (Matrix Assisted Laser Desorption Ionization-Time Of Flight). Le contrôle de pureté a été effectué sur un spectromètre de masse MALDI-TOF Bruker Biflex (Bremen, Allemagne) en mode linéaire positif (voir section 3 cidessous). 2) Détermination du nombre des cystéines : réduction et S-pyridyléthylation. Le nombre de résidus cystéine a été déterminé sur le peptide natif par réduction et S-pyridyléthylation. 400 pmoles de peptide natif ont été réduites dans 40 ul de tampon Tris/HCl 0,5 M, pH 7,5 contenant 2 mM d'EDTA et 6 M de chlorure de guanidinium en présence de 2 l de dithiothréitol 2,2 M. Le milieu réactionnel a été placé sous atmosphère d'azote. Après 60 min d'incubation à l'obscurité, 2 l de 4-vinylpyridine fraîchement distillée ont été ajoutés à la réaction qui a été alors incubée durant 10 min à 45 C à l'obscurité et sous atmosphère d'azote. Le peptide pyridyléthylé a été ensuite séparé des constituants du milieu réactionnel par chromatographie de phase inverse sur une colonne analytique de phase inverse Aquapore RP-300 C8 (BrownleeTM, 220 x 4,6 mm, 300 ), en utilisant un gradient linéaire d'acétonitrile en présence de TFA 0,05% de 2 à 52% pendant 70 minutes. 3) Détermination de la masse du peptide natif, du peptide S-pyridyléthylé et des fragments de protéolyse par spectrométrie de masse MALDI-TOF (Matrix Assisted Laser Desorption Ionization-Time Of Flight). Les mesures de masses ont été effectuées sur un spectromètre de masse MALDI-TOF Bruker Biflex (Bremen, Allemagne) en mode linéaire positif. Les spectres de masse ont été calibrés de façon externe avec un mélange standard de peptides de m/z connues, respectivement 2199,5 Da, 3046,4 Da et 4890,5 Da. Les différents produits à analyser ont été déposés sur une fine couche de cristaux d'acide [alpha]- cyano-4-hydroxycinnamique obtenue par une évaporation rapide d'une solution saturée dans l'acétone. Après séchage sous un léger vide, les échantillons ont été lavés par une goutte d'acide trifluoroacétique à 0,1% avant d'être introduits dans le spectromètre de masse. 4) Séquençage par dégradation d'Edman. Le séquençage automatique par dégradation d'Edman du peptide natif, du peptide S-pyridyléthylé et des différents fragments obtenus après les différents clivages protéolytiques et la détection des dérivés phénylthiohydantoines ont été réalisés sur un séquenceur ABI473A (PEApplied Biosystems division de Perkin Elmer). 5) Clivages protéolytiques. Confirmation de la séquence peptidique dans la région C-terminale. 200 pmoles de peptide réduit et Spyridyléthylé ont été incubées en présence de 5 pmoles d'endoprotéinase-Lys-C (Acromobacter protease I, clivage spécifique des résidus lysine du côté C-terminal, Takara, Otsu) selon les conditions préconisées par le fournisseur (Tris HCl 10 mM pH 9 en présence de Tween 20 à 0,01%). Après arrêt de la réaction avec du TFA 1%, les fragments peptidiques ont été séparés par HPLC en phase inverse sur une colonne de type Narrowbore Delta-PakTM HPIC18 (Waters Associates, 150 x 2 mm) dans un gradient linéaire d'acétonitrile de 2 à 60% en 80 min dans le TFA 0,05% avec un débit de 0,2 ml/min et une température constante de 37 C. Les fragments obtenus ont été analysés par spectrométrie de masse MALDI-TOF et le peptide correspondant au fragment C-terminal a été séquence par dégradation d'Edman. Exemple 3 : Production du peptide Ardl dans la levure S. cerevisiae. 1) Construction du vecteur pEM2 permettant l'expression et la sécrétion par la levure S.cerevisiae de l'analogue Ardl. A partir du vecteur d'expression de l'héliomicine pSEA2 décrit par Lamberty et al. (1999, J. Biol. Chem., 274,9320-9326), une mutagénèse dirigée a été réalisée par PCR pour modifier les codons Aspl7 en Asn et Gly 20 en Ala. Un fragment porteur du promoteur MF[alpha]1, des séquences pre BGL2 et pro MF[alpha]1 et de la séquence codante de l'héliomicine jusqu'au site SacII a été amplifié par PCR avec les oligonucléotides EM 72 et EM 89. Les mutations des codons 17 et 20 ont été introduites dans l'oligonuclétide EM89. EM72 5' GTAAATGCATGTATACTAAACTCACA 3' SacII EM89 5' TTTTTTCC GCG GCG CTT GCA CTC GGC GTT GCA GTT ACT (3' CGC CGC GAA CGT GAG CCG CAA CGT CAA TGA Arg Arg Lys Cys Glu Ala Asn Cys Asn Ser AGT GTA GTT GAC GGC GC 3' TCA CAT CAA CTG CCG CG 5') Thr Tyr Asn Val Ala Le fragment amplifié par PCR a été digéré par les enzymes de restriction SphI et SacII et cloné dans le plasmide pSEA2 digéré par les mêmes enzymes et traité à la phosphatase alcaline. Le plasmide résultant pEM2 a été contrôlé par analyse de restriction et séquençage. 2) Transformation d'une souche de levure S.cerevisiae par le plasmide pEM2. La souche de levure TGY48.1 (MATa, ura3-#5, , his, pral,prbl,prcl,cpsl, Reichhart et al., 1992, Invert.Reprod.Dev. 21,15-24) a été transformée par le plasmide pEM2. Les transformants ont été sélectionnés sur milieu sélectif YNBG supplémenté de 0,5% de casamino acides. Exemple 4 : Préparation des analogues de l'héliomicine pEM22, pEM24, pEM30, pEM31, pEM34, pEM35, pEM37, pEM46 et pEM48. 1) Construction des vecteurs pEM22 et pEM24. Un fragment synthétique constitué des oligonucléotides EM25 et EM26 préalablement hybridés (chauffage à 100 C et diminution lente de la température jusqu'à 25 C) a été cloné dans le vecteur pSEA2 digéré par BamHI et SalI (remplacement de l'extrémité 3' de la séquence codant pour l'héliomicine, codon Ser34 jusqu'au codon stop). Ce fragment synthétique BamHI-SalI contient les sites de restriction XhoI et Nhel. Le vecteur résultant pEG01 a été contrôlé par analyse de restriction et séquençage. Un fragment synthétique BamHI-SalI constitué des oligonucléotides EM119 et EM120 préalablement hybridés a été cloné dans le vecteur pEGOl. La réaction de ligation a été digérée par XhoI afin d'éliminer les plasmides n'ayant pas inséré le fragment synthétique EM119/EM120. Le plasmide résultant pEM22 a été contrôlé par analyse de restriction et séquençage. Une stratégie de clonage identique a été utilisée pour la construction de pEM24 en utilisant le couple d'oligonucléotides EM127 et EM128. EM119 5'GA TCC TTC ATT AAC GTT AAC TGT TGG TGT GAA ACC TGA TAG G 3' Ser Phe Ile Asn Val Asn Cys Trp Cys Glu Thr EM120 5'TC GAC CTA TCA GGT TTC ACA CCA ACA GTT AAC GTT AAT GAA G 3' EM12 7 5'GA TCC TTC TTG AAC ATT AAC TGT TGG TGT GAA ACC TGA TAG G 3' Ser Phe Leu Asn Val Asn Cys Trp Cys Glu Thr EM128 5'TC GAC CTA TCA GGT TTC ACA CCA ACA GTT AAT GTT CAA GAA G 3' 2) Construction des vecteurs pEM30, pEM3l, pEM34, pEM35, pEM46 et pEM48. Un fragment synthétique constitué des oligonucléotides EM25 et EM26 préalablement hybridés (chauffage à 100 C et diminution lente de la température jusqu'à 25 C) a été cloné dans le vecteur pEM2 digéré par BamHI et SalI (remplacement de l'extrémité 3' de la séquence codant pour Ardl, codon Ser34 jusqu'au codon stop). Ce fragment synthétique BamHI-SalI contient les sites de restriction XhoI et Nhel. Le vecteur résultant pEMl6 a été contrôlé par analyse de restriction et séquençage. Un fragment synthétique BamHI-SalI constitué des oligonucléotides EM135 et EM136 préalablemment hybridés a été cloné dans le vecteur pEMl6. La réaction de ligation a été digérée par XhoI afin d'éliminer les plasmides n'ayant pas inséré le fragment synthétique EM135/EM136. Le plasmide résultant pEM30 a été contrôlé par analyse de restriction et séquençage. Une stratégie de clonage identique a été utilisée pour les constructions de pEM31 (EM117 /EM118), pEM34 (EM127/EM128), pEM35 (EM129/EM130), pEM46 (EM158/EM159), pEM48(EM162/EM163) . EM117 5'GA TCC TTC GCT AAC GTT AAC TGT TGG TGT CAA ACC TGA TAG G 3' Ser Phe Ala Asn Val Asn Cys Trp Cys Gln Thr EM118 5'TC GAC CTA TCA GGT TTG ACA CCA ACA GTT AAC GTT AGC GAA G 3' EM12 9 5'GA TCC TTC TTG AAC GTT AAC TGT TGG TGT GAA ACC TGA TAG G 3' Ser Phe Leu Asn Val Asn Cys Trp Cys Glu Thr EM130 5'TC GAC CTA TCA GGT TTC ACA CCA ACA GTT AAC GTT CAA GAA G 3' EM135 5'GA TCC TTC GCT AAC GTT AAC TGT TGG TGT GAA AGA TGA TAG G 3' Ser Phe Ala Asn Val Asn Cys Trp Cys Glu Arg EM13 6 5'TC GAC CTA TCA TCT TTC ACA CCA ACA GTT AAC GTT AGC GAA G 3' EM158 5'GA TCC TTC TTG AAC GTT AAC TGT TGG TGT CAA ACC TGA TAG G 3' Ser Phe Leu Asn Val Asn Cys Trp Cys Gln Thr EM159 5'TC GAC CTA TCA GGT TTG ACA CCA ACA GTT AAC GTT CAA GAA G 3' EM162 5'GA TCC TTC TTG AAC GTT AAC TGT TGG TGT GAA AGA TGA TAG G 3' Ser Phe Leu Asn Val Asn Cys Trp Cys Glu Arg EM163 5'TC GAC CTA TCA TCT TTC ACA CCA ACA GTT AAC GTT CAA GAA G 3' 3) Construction du vecteur d'expression pEM37. A partir du vecteur d'expression de l'héliomicine pSEA2 une mutagénèse dirigée a été réalisée par PCR pour modifier le codon Aspl en Asn. Un fragment porteur de la fin de la séquence pro de MF[alpha]1 et de la séquence codante de l'héliomicine a été amplifié par PCR avec les oligonucléotides EM 137 et EM53. La mutation du codon Aspl en Asn a été introduite dans l'oligonucléotide EM137. EM53 5' CCTGGCAATTCCTTACCTTCCA 3' HindIII EM137 5' TTTTTTA AGC TTG GAT AAA AGA AAC AAG TTG ATT GGC AG 3' Ser Leu Asp Lys Arg Asn Lys Leu Ile Gly Le fragment amplifié par PCR a été digéré par les enzymes de restriction HindIII et Sali et cloné simultanément avec un fragment SphI-HindIII de 1,2 kb porteur du promoteur MF[alpha]1, de la séquence pre de BGL2 et de la séquence pro de MF[alpha]1 jusqu'au site HindIII dans le vecteur pTG4812 (Michaud et al., 1996, FEBS Lett., 395,6- 10) digéré par SphI et SalI et traité à la phosphatase alcaline. Le plasmide résultant pEM37 a été contrôlé par analyse de restriction et séquençage. Exemple 5 : de criblage réalisés sur les analogues de l'héliomicine. 1) Cultures. Les clones de levure transformés par les plasmides d'expression de l'héliomicine et de ses analogues ont été cultivés en milieu sélectif (50 ml de YNBG + 0,5% de casamino acide) pendant 72 heures sous agitation à 29 C. Après centrifugation à 4000g pendant 30 min à 4 C, les surnageants ont été acidifiés à pH 3 avec de l'acide acétique. Les surnageants ont ensuite été déposés sur un support de 360 mg de phase inverse Sep-PakTM C18 (Waters Associates), équilibré avec de l'eau acidifiée (TFA 0,05 %). Les molécules hydrophiles ont été éliminées par un simple lavage avec de l'eau acidifiée. Les peptides ont été élues par une solution d'acétonitrile à 60 % préparée dans le TFA 0,05%. La fraction éluée à 60% d'acétonitrile a été séchée sous vide dans le but d'éliminer l'acétonitrile et le TFA puis elle a été reconstituée dans 1 ml de l'eau TFA 0,05% avant d'être soumise à la purification. 2) Purification par chromatographie liquide à haute performance (HPLC) sur colonne de phase inverse. Selon le niveau de production obtenu pour chaque analogue, l'équivalent de 5 à 20 ml de surnageant prépurifié a été analysé par chromatographie de phase inverse sur une colonne semi-préparative Aquapore RP-300 C8 (BrownleeTM, 220 x 7 mm, 300 ), l'élution a été réalisée par un gradient d'acétonitrile dans le TFA 0,05% de 2% à 22% en 5 minutes, puis de 22 à 40% en 30 minutes après un isocratique de 2 minutes en 22%, à un débit constant de 1,4 ml/min. Les fractions éluées entre 27% et 38% d'acétonitrile ont été collectées manuellement en suivant la variation de l'absorbance à 225 nm. 3) Contrôle de masse de l'analogue. 1 l des fractions majoritaires est dilué 2 fois dans de l'eau acidifiée par du TFA 0,05% et analysé en spectrométrie de masse Maldi-TOF. La fraction dont la masse mesurée correspond à la masse théorique a été asséchée sous vide, et reconstituée par ajout d'un volume d'eau ultrapure calculé comme décrit au paragraphe suivant. 4) Quantification de l'analogue en vue des tests d'activité. Une courbe de calibration de la colonne semipréparative Aquapore RP-300 C8 est réalisée par injection de 5, 10,20 et 25 g d'héliomicine. L'intégration, le calcul des aires et de la pente de la droite est effectué par le logiciel Millenium (Waters). Par la suite, la quantification des analogues (en ug) est calculée par intégration automatique du pic du chromatogramme correspondant à l'analogue, par ce logiciel. Le volume de reprise de l'échantillon après évaporation est calculé en fonction de la quantification ainsi obtenue de manière à ajuster la concentration en peptide à 1 ug/ul. 5) Tests d'activité anti- Candida albicans et anti- Aspergillus fumigatus. Les activités anti-Candida albicans et antiAspergillus fumigatus des différents analogues sont évaluées par un test d'inhibition de croissance en milieu liquide réalisé en microplaques de 96 puits. L'activité des peptides purifiés est testée pour différentes dilutions de chaque peptide et elle est comparée à celles de l'héliomicine et de Ard I quantifiée dans les mêmes conditions. - Test anti-Candida albicans. Le test d'activité est réalisé directement sur des levures issues d'un stock congelé à -80 C, dans du milieu Sabouraud contenant 15% de glycérol. La densité des levures dans le stock est ajustée à une densité optique de 0,4 DO à 600 nm. Après décongélation lente à température ambiante, la suspension de levures est ramenée par dilution à une densité optique de 1 mDO à 600nm dans du milieu Sabouraud et 90 l de cette dilution sont déposés dans des puits de plaques de microtitration en présence de 10 l d'échantillon à tester. Des cultures témoins sont réalisées systématiquement dans lesquelles 10 l d'échantillons sont remplacés par 10 l d'eau stérile. La stérilité des milieux est contrôlée en incubant 10 l d'eau stérile en présence de 90 l de milieu. Les échantillons sont incubés à 30 C pendant 40 h sous agitation faible et l'activité antifongique est quantifiée par la mesure de la densité optique à 600 nm. - Test anti-Aspergillus fumigatus. Les spores d'Aspergillus fumigatus proviennent d'un stock de congélation à -80 C, titré à 107 spores/ml dans une solution de glycérol à 25%. Après décongélation lente à température ambiante, les spores sont mises en suspension dans un milieu de culture PDB (12 g de milieu Potato Dextrose Broth, Difco, pour 1 1 d'eau déminéralisée. On dépose 10 l de chaque échantillon dans des puits de plaques de microtitration en présence de 90 l de milieu de culture PDB, supplémenté avec de la tetracycline (100 g/ml) et du cefotaxime (1 g/ml), et contenant les spores (à une concentration finale de 1000 spores/puit). Des cultures témoins sont réalisées systématiquement dans lesquelles 10 l d'échantillons sont remplacés par 10 l d'eau stérile. La stérilité des milieux est contrôlée en incubant 10 l d'eau stérile en présence de 90 l de milieu. Les échantillons sont incubés à 37 C pendant 24 h à 48 h en atmosphère humide et l'activité antifongique est quantifiée par un score de 0 à 9 prenant en compte la germination, la taille et la morphologie des hyphes sont déterminées sous la loupe binoculaire. La CMI correspond à un score de 4. 6) Contrôle de quantification. Les solutions de peptides utilisées pour les tests d'activité sont systématiquement soumises à un contrôle de quantification par injection de 10 ul en HPLC, sur une colonne Narrowbore Delta-packTM HPI Ci 8 préalablement étalonnée avec 2,5, 7,5 et 10 ug d'héliomicine. La quantité de peptides effectivement déposée dans les puits est réajustée si besoin, lors de l'interprétation des résultats. Exemple 6 : Efficacité in vivo. 1) Méthode. L'Héliomicine et ses analogues ont été testés pour leur activité antifongique in vivo dans un modèle d'infection disséminée à Candida albicans, léthale chez la souris. L'agent pathogène Candida albicans (souche IHEM 8060) est inoculé par voie intraveineuse (i. v.) à une dose de 2,5 x 106 CFU/souris. Les peptides sont administrées par voie i. v. en 4 injections à 6 h, 24 h, 48 h et 72 h après l'infection Les critères d'évaluation de l'activité utilisés sont l'étude de la survie et de la morbidité à 7 jours. Les scores de morbidité, qui prennent en compte l'état de santé générale (état du poil, mobilité, hydratation...) sont établis pour chaque souris par des valeurs comprises entre 0 à 5 et définies ci -après : 0 = morte, 1 = moribonde, 2 = très malade, 3 = malade, 4 = légèrement malade, 5 = saine. La somme des scores individuels est calculée pour chaque groupe, un score de 50 pour un groupe de 10 souris signifiant que toutes les souris sont saines. 2) Comparaison des activités de Ard 1 et de l'Héliomicine. Dans un protocole type, des groupes de 10 souris mâles Swiss OF1 de 12 g sont infectées par voie i.v. par une dose 2,5 x 106 CFU/souris. L'Héliomicine et Ard1 sont administrées par voie i. v. en 4 injections, 6h, 24h, 48h et 72 h après l'infection. Pour chaque peptide, 2 doses sont testées : 10 mg/kg et 33 mg/kg. Un groupe placebo est injecté avec le solvant des peptides du chlorure de sodium à 0,9%. Les figures 2 et 3 en annexe représentent respectivement le pourcentage de survie et les scores de morbidité (10 souris) par rapport aux jours post-infection. Dans ce modèle d'infection très sévère, léthale à 100 % au jour 4 post-infection, 60 % des souris du groupe placebo sont mortes dès le premier jour suivant l'infection. On observe que l'Héliomicine, administrée à 10 et 30 mg/kg n'a pas d'effet significatif sur l'évolution de la survie, bien que les courbes soient toujours au dessus de la courbe relative au groupe placebo. La mortalité médiane intervient, respectivement pour les groupes traités avec des doses de 10 et 30 mg/kg d' Héliomicine, à 48 h et 60 h après l'infection , et les scores de morbidité sont de 0/50 et 5/50 au jour 7. Dans ces conditions, le peptide Ardl administré à la dose de 30 mg/kg retarde de 24 h l'apparition du premier décès. 5 souris sur 10 sont encore vivantes au jour 7, avec un score de morbidité de 16/50. La comparaison des courbes de survie (Meier-Kaplan) par le test statistique du logrank permet de conclure à une différence significative entre le groupe placebo et le groupe traité avec Ardl à 30 mg/kg (p Ardl administré à la dose de 10 mg/kg ne permet pas d'améliorer la survie et l'état général des souris, 50 % des souris étant mortes 2 jours après l'infection. 3) Comparaison des activités de Ardl et des analogues pEM24, pEM30, pEM31 et pEM35. Les figures 4 et 5 en annexe représentent respectivement le pourcentage de survie et les scores de morbidité (10 souris) par rapport aux jours post-infection. Dans cette expérience, l'inoculation des souris avec 2,5.106 CFU/souris est léthale à 50 % au jour 5, dans le cas du groupe ayant reçu le traitement placebo. Les premiers décès ont lieu au jour 2,5 post-infection et la mortalité médiane se situe au jour 5 post infection. Au jour 7,5 souris sont vivantes et le score de morbidité de 15/50. Ardl à la dose de 10 mg/kg retarde de 1,5 jours l'apparition du premier décès. 8 souris sont encore vivantes au jours 7 post-innoculation. La courbe de survie n'est cependant pas statistiquement différente de celle du groupe placebo (p= 0,2516). Les quatre peptides testés à la dose de 10 mg/kg, pEM24 (H5), pEM30 (Al), pEM31 (A2) et pEM35 (A6), sont plus actifs que Ardl : respectivement les délais d'apparition du 1er décès et le nombre de souris vivantes au jour 7, sont de 3 jours et 7 souris pour le groupe traité avec le pEM24 (H5), 4 jours et 7 souris pour le groupe traité avec le pEM30 (Al), 5,5 jours et 8 souris pour le groupe traité avec le pEM31 (A2) et de 7 jours et 9 souris pour le groupe traité avec le pEM35 (A6). Chacun de ces peptide permet de maintenir les souris en bon état général pendant les 3 premiers jours, les scores de morbidité étant compris entre 42 et 48/50 au jour 3, comparé à 22/50 pour le groupe ayant reçu le placebo. L'état des souris décline 24 h après la 4ème injection. Seul le groupe traité avec le pEM31 conserve un score de morbidité supérieur à 40/50 pendant 5 jours. La comparaison statistique des courbes de survie avec celle du groupe placebo fait apparaître une différence significatives pour le groupe traité avec le pEM35 avec un p égale 0,041. La comparaison statistique des courbes de survie avec celle du groupe placebo fait apparaître une différence significative pour les groupe traité avec le pEM31 au jour 8 avec un p égale à 0,0195. Les activités relatives des peptides sont les suivantes : pEM31#pEM35>pEM30>pEM24#Ard1 4) Comparaison des activités de Ard1 et des analogues pEM31, pEM35, pEM37, pEM46 et pEM51 administrés à 5 mg/ml. Les figures 6 et 7 en annexe représentent respectivement le pourcentage de survie et les scores de morbidité (10 souris) par rapport aux jours post-infection. Dans cette expérience, l'inoculation de souris Swiss OF1 de 15 g avec 3.106 CFU de Candida albicans induit, pour le groupe traité par le placebo, une mortalité de 50% au jour 4 après l'infection. Les 1er décès interviennent 2,5 jours après l'infection, et 100 % des souris sont mortes au jour 5,5. Le traitement par Ard1 ainsi que par le pEM31 et le pEM46, administré en trois injections i. v. à la dose de 5 mg/kg n'augmente pas de façon significative la survie des souris par rapport au traitement placebo. Toutefois, le traitement par le pEM46 retarde la dégradation de l'état de santé des souris avec un indice de morbidité de 31/50,3 jour après l'infection, comparé à 9/50 pour les souris du groupe placebo. A cette dose, les traitements par le pEM51 et le pEM35 retardent de 1,5 jours l'apparition du 1er décès ; la mortalité médiane intervient à 5 et 6 jours post infection, respectivement, pour les groupes traités avec le pEM51 et le pEM35. Statistiquement, l'analyse des courbes de survie au jour 7, montre une différence significative par rapport au groupe placebo, avec un p égale à 0,015 pour le groupe traité avec le pEM51 et un p égale à 0,0004 pour le groupe traité avec le pEM35. L'état de santé général des souris traitées par le pEM35 est meilleur que celui des souris ayant reçu les autres traitements, avec un score de morbidité qui se maintient à 28/50 jusqu'au jour 5 après l'infection comparé à un score de 11/50 pour les souris ayant reçu le pEM51 et un score de 1/50 pour les souris ayant reçu le placebo. Globalement, dans ce modèle de Candidose disséminée, l'activité antifongique du pEM35 est supérieure à celle du pEM51, elle même supérieure à l'activité du pEM46. A la dose de 5 mg/kg utilisée, les molécules Ard1 et le pEM31 ne sont pas efficaces. Exemple 7 : Spectre de l'activité antifongique de Ard1 et des analogues pEM31, pEM35, pEM46, pEM48 et pEM51. 1) Test de détection d'activité contre les champignons filamenteux. L'activité antifongique a été détectée par un test d'inhibition de croissance en milieu liquide. Les champignons filamenteux (A. fumigatus, A. flavus et A. terreus; don du Dr H. Koenig, Hopital Civil, Strasbourg) sont ensemencés sur une gélose inclinée de Malt-Agar (Biomérieux) et incubés 7 jours à 37 C. Les spores sont ensuite récoltées avec 10 ml de milieu YPG contenant 0,05% de Tween 20 et filtrées à travers une gaze. Les spores sont centrifugées 10 minutes à 1700 rpm, le culot est repris dans du YPG (lg de Yeast extract, 1g de Peptone, 3g de Glucose pour 11). La suspension est comptée grâce à une cellule de comptage (Coverslide) et ajustée à 104 spores/ml. lOOul des dilutions de peptides (concentration de 50 à 0,097 pg/ml de peptide) sont déposées dans des plaques de microtitrations. 100 l à 104 spores/ml de champignons filamenteux soit 1000 spores sont ensuite ajoutées. Les plaques de test sont incubées 48h à 37 C. La détermination des concentrations minimales inhibitrices (CMI) se fait par observation du pourcentage de recouvrement du puits. La CMI est établie pour un recouvrement de 50 % du puits. 2) Test de détection d'activité contre les levures. Les levures du genre Candida (C. albicans, C. glabrata, C. dubliensis, C. tropicalis, C. kefyr, C. krusei et C. parapsilosis ; don du Dr H. Koenig, Hôpital Civil, Strasbourg) et Cryptoccocus neoformans (don du Dr H. Koenig, Hôpital Civil, Strasbourg) sont ensemencées sur des géloses inclinées de Sabouraud-Cloramphénicol Agar (Biomérieux) et mises à incuber pendant 24 h à 30 C (Candida sp . ) et pendant 72 h à 37 C (Cryptoccocus neoformans). Quelques colonies de levures sont mises en suspension dans du milieu Sabouraud liquide (Biomérieux) afin d'obtenir une concentration finale de 0.1 DO à 600 nm correspondant à 2,5.106 levures/ml. La suspension de levures est ajustée à 5.103 levures/ml dans du milieu Sabouraud. lOOul des dilutions de peptides (concentration de 50 à 0,097 pg/ml de peptide) sont déposées dans des plaques de microtitrations. Après addition de 100 ul d'une suspension de levure à 5.103 levures/ml soit 500 levures, les plaques de test sont incubées 24 h à 30 C (genre Candida) sous agitation lente ou 72h à 37 C (genre Cryptoccus) . La détermination des concentrations minimales inhibitrices (CMI) se fait par la mesure de l'absorbance à 600 nm à l'aide d'un spectrophotomètre lecteur de plaque de microtitration. La CMI est établie pour un pourcentage d'inhibition de pousse de 50 %. 3) Test de détection d'activité contre les phytopathogènes : Alternaria brassicola et Neurospora crassa. lOOul des dilutions de peptides (concentration de 50 à 0,097 ug/ml de peptide) sont déposées dans des plaques de microtitrations. Après addition de 100 l de spores congelées à 104 spores/ml d'A. brassi cola et de N. crassa (don du Dr. Bullet, IBMC, Strasbourg), les plaques de test sont incubées 48h à 30 C. La détermination des concentrations minimales inhibitrices (CMI) se fait par observation du pourcentage de recouvrement du puits. La CMI est établie pour un recouvrement de 50 % du puits. Le tableau 3 ci-dessous représente les CMI de Ard1 et de ses analogues (ug/ml). Tableau 3 levures Ard-1 pEM 31 pEM 48 pEM 51 pEM 46 pEM 35 C. albicans 3. 125- 3. 125- 1. 56 1. 56- 1. 56- 1.56 6. 25 6. 25 3.125 3.125 C. tropicalis 6. 25- 6. 25 3. 125 3. 125 3. 125 1.56 12. 5 C. glabrata > 25 > 25 > 25 > 25 > 25 > 25 C. parapsilosis 3. 125- 1. 56 0. 78 0. 78- 0. 78- 0. 78- 6. 25 1. 56 1. 56 1. 56 C. dubliensis 1.56- 6. 25 1.56- 1.56- 3. 125 0. 78- 3. 125 3. 125 3. 125 1. 56 C. kefyr > 25 > 25 25 > 25 > 25 > 25 C. krusei 3. 125 3. 125 1. 56 1. 56 1. 56 1.56 C. neoformans 12. 5- 12. 5 3. 125- 1. 56 6. 25 6. 25 25 6.25 Chp. fltx A. fumigatus 12. 5 6. 25- 6. 25- 6. 25- 3. 125 6.25 12. 5 12. 5 12. 5 A. flavus 6. 25- > 25 6. 25- 6. 25 12. 5- 3.125 12. 5 12. 5 25 A. terreus 1. 56- 3. 125- 3. 125- 3. 125 6. 25 6.25 3. 125 6. 25 6. 25 A. brassicola > 25 > 25 12. 5 > 25 25 > 25 N. Crassa 0. 097 0. 39 0. 195 0. 195 0. 048 0.048 REVENDICATIONS 1) Peptide dérivé de l'héliomicine par substitution de un à plusieurs acides aminés, caractérisé en ce que lesdits peptides répondent à la formule (I) : X1 X2 X3 X4 X5 X6 C7 X8 X9 X10 X11 X12 X13 X14 X15 X16 X17 C18 X19 X20 X21 C22 X23 X24 X25 X26 X27 X28 X29 X30 X31 C32 X33 X34 X35 X36 X37 X38 X39 C40 X41 C42 X43 X44 ( I ) dans laquelle : - X1, X17, X21, X43 sont des acides aminés acides, - X16, X44 sont des acides aminés polaires petit, - X19 est un acide aminé polaire large, - X36 est un acide aminé petit ou faiblement hydrophobe, - X38 est un acide aminé faiblement hydrophobe ou petit, lesdites substitutions étant telles que : - l'un au moins des X1, X17, X21, X43 est un acide aminé basique ou polaire avantageusement polaire large, et/ou - l'un au moins des acide aminés X16, X44 est un acide aminé basique ou un acide aminé polaire large, et/ou - X19 est un acide aminé basique, et/ou - l'un au moins des acide aminés X36, X38 est un acide aminé fortement hydrophobe, et dans laquelle, les autres acides aminés (X) ont les significations suivantes : - X13, X37, X39 représentent des acides aminés polaires larges, - X6, X15, X34 représentent des acides aminés polaires petits, - X2, X23, X24, X25, X28, X31 représentent des acides aminés basiques, - X3, X4, X8, X12 représentent des acides aminés hydrophobes, - X9, X14, X27, X35, X41 représentent des acides aminés hydrophobes aromatiques, - X5, X10, X11, X20, X26, X29, X30, X33 représentent des acides aminés petits, - C7, C18, C22, C32, C40, C42 représentent des cystéines. 2) Peptide selon la revendication 1, caractérisé en ce que l'un au moins des X1, X17, X43 est un acide aminé basique ou polaire avantageusement polaire large, et X21 est un acide aminé acide. 3) Peptide selon la revendication 1, caractérisé en ce que l'un au moins des X36 et X38 est un acide aminé fortement hydrophobe non aromatique. 4) Peptide selon la revendication 1, caractérisé en ce que X17 est l'asparagine ou l'arginine, X43 est l'acide glutamique et dans lequel : - X36 est la leucine ou l'isoleucine, et/ou - X19 est l'arginine, et/ou - X16 est l'arginine. 5) Peptide selon la revendication 1, caractérisé en ce que X17 est l'acide aspartique, X43 est l'acide glutamique et dans lequel : - X36 est la leucine ou l'isoleucine, et/ou - X19 est l'arginine, et/ou - X16 est l'arginine. 6) Peptide selon la revendication 1, caractérisé en ce que X43 est la glutamine, X17 est l'asparagine et dans lequel : - X36 est la leucine ou l'isoleucine, et/ou - X19 est l'arginine. 7) Peptide selon la revendication 1, caractérisé en ce que X43 est la glutamine et X17 est l'acide aspartique. 8) Peptide selon la revendication 1, caractérisé en ce que X43 est la glutamine, X17 est l'acide aspartique et dans lequel : - X1 est l'asparagine, et/ou - X36 est la leucine ou l'isoleucine. 9) Peptide selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que les acides aminés basiques sont choisis parmi : l'arginine, la lysine ou l'histidine, 10) Peptide selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que les acides aminés hydrophobes sont : . non aromatiques, et alors choisi parmi : la méthionine, la valine, la leucine, l'isoleucine, étant entendu que la leucine et l'isoleucine sont des acides aminés fortement hydrophobe et que la méthionine et la valine sont des acides aminés faiblement hydrophobes, ou aromatiques, et alors choisi parmi : la phénylalanine, la tyrosine, ou le tryptophane, qui sont des acides aminés fortement hydrophobes, 11) Peptide selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que les acides aminés acides sont choisis parmi : l'acide aspartique ou l'acide glutamique, 12) Peptide selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que les acides aminés polaires larges sont chsoisis la glutamine ou l'asparagine. 13) Peptide selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que les acides aminés polaires petits sont choisis la sérine ou la thréonine. 14) Peptide selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que les acides petits sont choisis parmi la glycine ou l'alanine. 15) Peptide selon l'une quelconque des revendications précédentes, répondant à l'une des séquences suivantes : Hélio : DKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET Ard1 :DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM37 :NKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM38 : DKLIGTCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM43 : DKLIGSCVWGAVNYTTDCNGECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM42 : DKLIGSCVWGAVNYTRDCNGECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM44 : DKLIGSCVWGAVNYTSDCRGECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM22 : DKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFINVNCWCET pEM23 : DKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFANINCWCET pEM25 : DKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFLNVNCWCET pEM24 : DKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFLNINCWCET pEM7 : DKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCER pEM21 : DKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCT pEM39 :NKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCQT pEM61 : NKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFLNVNCWCQT pEM62 : NKLIGSCVWGAVNYTSDCNGECKRRGYKGGHCGSFINVNCWCQT 16) Peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 14, répondant à l'une des séquences suivantes : Ard1 : DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM40 NKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM50 DKLIGSCVWGAVNYTRNCNAECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM56 DKLIGSCVWLAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM52 DKLIGSCVWGAVNYTSRCNAECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM51 DKLIGSCVWGAVNYTSNCRAECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCET pEM32 : DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFINVNCWCET pEM33 : DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFANINCWCET pEM34 : DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFLNINCWCET pEM35 : DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFLNVNCWCET pEM31 : DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCQT pEM30 : DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCER pEM46 : DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFLNVNCWCQT pEM47 : DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFINVNCWCQT pEM48 : DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFLNVNCWCER pEM49 : DKLIGSCVWGAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFINVNCWCER pEM54 : DKLIGSCVWLAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFLNVNCWCET pEM57 : DKLIGSCVWAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFANVNCWCOT pEM55 : DKLIGSCVWLAVNYTSNCNAECKRRGYKGGHCGSFLNVNCWCQT 17) Composition antifongique et/ou antibactérienne, caractérisé en ce qu'elle comprend à titre d'agent actif au moins un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 16, avantageusement associé dans ladite composition avec un véhicule acceptable. 18) Composition selon la revendication 17 pour être utilisée chez l'homme ou l'animal. 19) Composition selon la revendication 17 pour être utilisée chez les plantes.