FR 2809404 A1 20011130 FR 0013407 A 20001019 La présente invention concerne une bactériocine de Lactobacillus sakei et plus particulièrement de Lactobacillus sakei 2512 , une séquence nucléotidique codant pour cette bactériocine, et l'utilisation industrielle de cette bactériocine comme agent actif contre des flores pathogènes ou indésirables dans la préparation de produits alimentaires. Les bactéries lactiques sont utilisées intensivement dans les fermentations alimentaires afin, non seulement d'améliorer la saveur et la texture des aliments mais surtout pour allonger leur durée de conservation. De nombreuses bactéries lactiques ont en effet la faculté d'inhiber la croissance de certaines bactéries à Gram positif, dont des souches pathogènes comme Listeria monocytogenes, grâce à l'excrétion de molécules antagonistes, parmi lesquelles des composés peptidiques. Ces composés peptidiques, appelés bactériocines, présentent donc un potentiel intéressant pour la préservation qualitative et sanitaire de produits alimentaires fermentés. A titre représentatif de ces bactériocines, on peut notamment citer celles formant la sous-classe de polypeptides dénommés bactériocines anti-Listeria, bactériocines de classe IIa (Ennahar S. et al., 2000, FEMS Microbiol. Rev., 24 : 85-106) et cystibiotiques (Jack R. et al., 1995, Microbiol. Rev., 59 (2) :171-200). Il a été fait récemment état de l'utilisation potentielle d'une de ces bactériocines de classe IIa, la divercine V41, pour empêcher la croissance de Listeria monocytogenes dans du saumon fumé (Duffes F. et al., 1999, J. Food Prot., 62 (12) Les séquences de ces polypeptides présentent de fortes similitudes dans leur partie N-terminale, avec en particulier la présence d'un pont disulfure. La partie C-terminale hydrophobe est beaucoup plus variable, toutefois certaines de ces bactériocines, dites de type pédiocine (pédiocine PA-1, entérocine A et divercine V41), se caractérisent par une taille supérieure à 40 résidus et la présence d'un deuxième pont disulfure du coté C-terminal. Les auteurs de la présente invention ont mis en évidence une nouvelle bactériocine de classe IIa produite à partir d'une souche spécifique de Lactobacillus sakei, qui s'avère particulièrement efficace pour inhiber la croissance de Listeria, plus particulièrement de Listeria monocytogenes. En accord avec Tagg J.R. et al. , Bacteriol. Rev., 40 ; (1976), le terme " Bactériocine " au sens de l'invention fait référence à un polypeptide produit, par synthèse ribosomique, à partir de microorganismes, capable d'inhiber spécifiquement la croissance d'autres bactéries. La présente invention a donc pour premier objet un polypeptide issu de la souche Lactobacillus sakei 2512, doté d'une activité bactériocine. La souche Lactobacillus sakei 2512 a été déposée le 25 mai 2000 auprès de la Collection Nationale des Cultures de Microorganismes où elle est enregistrée sous le numéro de dépôt I - 2479. La bactériocine objet de la présente invention a été dénommée Sakacine G. Il s'agit d'un polypeptide possédant une masse moléculaire de l'ordre de 3700 à 3900 et préférentiellement d'environ 3834 Da déterminée par spectrométrie de masse. Elle possède un spectre d'inhibition bactérienne très apparenté à celui des bactériocines de classe IIa. C'est ainsi qu'elle s'avère particulièrement efficace contre les souches de Lactobacillus sakei autres que le Lactobacillus sakei 2512, Pediococcus cerevisiae, l'ensemble des souches Listeria et contre les Enterococcus faecalis et durans. En revanche, elle s'avère inactive contre les autres espèces de Lactobacillus comme par exemple le Lactobacillus debrueckii, le Lactobacillus plantarum, le Lactobacillus brevis, le Lactobacillus casei, et une souche d'Enterococcus faecium. A l'image des bactériocines anti-Listeria de type pédiocine, la Sakacine G possède dans sa structure peptidique avantageusement deux ponts disulfures. Une analyse des déterminants génétiques de plusieurs bactériocines de classe IIa a montré que les gènes impliqués dans leurs production, transport et immunité, sont organisés en une ou plusieurs structures de type opéron. Ces opérons ont une localisation souvent plasmidique et possèdent généralement au moins deux gènes codant pour des protéines, homologues à un ABC-transporteur et une protéine accessoire, probablement impliquée dans l'export des bactériocines. Le clonage du fragment nucléotidique (SEQ ID N 9) contenant le gène de la Sakacine G a révélé l'existence de deux cadres ouverts de lecture complets skgAl (SEQ ID N 1) et skgA2 (SEQ ID N 3) et de deux autres tronqués skgI (SEQ ID N 5) et skgD (SEQ ID N 7) situés aux deux extrémités du fragment cloné dont une représentation schématique est présentée en figure 1. Les produits des gènes skgAl et skgA2, appelés pré-bactériocines, peuvent subir une maturation au cours de laquelle leurs peptides leaders respectifs sont clivés entre les résidus 18 et 19, libérant ainsi la Sakacine G active (résidus 19-55). La présente invention a donc également pour objet un polypeptide isolé correspondant à une bactériocine, caractérisé en ce qu'il comprend la séquence ID N 2 et/ou la séquence ID N 4. La séquence de la bactériocine mature comprend la séquence ID N 12. Le cadre de lecture appelé skgI code une protéine de 54 résidus. La comparaison de cette séquence avec celle des banques de données montre de fortes similitudes de SkgI avec des protéines dites d'immunité. Elle code vraisemblablement pour la protéine d'immunité protégeant la bactérie productrice de la Sakacine G. La présente invention s'étend également à un polypeptide isolé comprenant la séquence ID N 6 correspondant au cadre de lecture skgI. En ce qui concerne le dernier gène skgD, il code pour une portion de protéine qui présente une homologie avec des protéines de la famille des ABCtransporteurs, et plus particulièrement du transporteur de la pédiocine PA-1. Le gène skgD code vraisemblablement pour l'ABC-transporteur spécifique de la Sakacine G. La présente invention s'étend également au polypeptide isolé comprenant la séquence ID N 8 correspondant à ce gène dit skgD. Il est entendu que sont également comprises les séquences homologues, définies comme i) les séquences similaires à au moins 70% de la séquence SEQ ID N 2, N 4, N 6, N 8 ou N 12 ; ou ii) les séquences codées par une séquence d'acide nucléique homologue telle que définie ci-après c'est-à-dire une séquence d'acide nucléique hybridant avec la séquence SEQ ID N 1, N 3, N 5, N 7 ou N 9 ou sa séquence complémentaire, dans des conditions stringentes d'hybridation. Là encore, le terme "similaires" se réfère à la ressemblance parfaite ou identité entre les acides aminés des séquences homologues comparées mais aussi à la ressemblance non parfaite que l'on qualifie de similitude. Cette recherche de similitudes dans une séquence polypeptidique prend en compte les substitutions conservatives qui sont des substitutions d'acides aminés de même classe, telles que des substitutions d'acides aminés aux chaînes latérales non chargées (tels que l'asparagine, la glutamine, la serine, la thréonine, et la tyrosine), d'acides aminés aux chaînes latérales basiques (tels que la lysine, l'arginine, et l'histidine), d'acides aminés aux chaînes latérales acides (tels que l'acide aspartique et l'acide glutamique) ; d'acides aminés aux chaînes latérales apolaires (tels que la glycine, l'alanine, la valine, la leucine, l'isoleucine, la proline, la phénylalanine, la méthionine, le tryptophane, et la cystéine). Plus généralement, par " séquence d'acides aminés homologue ", on entend donc toute séquence d'acides aminés qui diffère de la séquence SEQ ID N 2, N 4, N 6, N 8 ou N 12 par substitution, délétion et/ou insertion d'un acide aminé ou d'un nombre réduit d'acides aminés, notamment par substitution d'acides aminés naturels par des acides aminés non naturels ou pseudo-acides aminés à des positions telles que ces modifications ne portent pas significativement atteinte à l'activité biologique du polypeptide isolé et de préférence de la Sakacine G. De préférence, une telle séquence d'acides aminés homologue est similaire à au moins 85 % de la séquence SEQ ID N 2, N 4, N 6, N 8 ou N 12, de préférence au moins 95 %. L'homologie est généralement déterminée en utilisant un logiciel d'analyse de séquence (par exemple, Séquence Analysis Software Package of the Genetics Computer Group, University of Wisconsin Biotechnology Center, 1710 University Avenue, Madison, WI 53705). Des séquences d'acides aminés similaires sont alignées pour obtenir le maximum de degré d'homologie (i.e. identité ou similitude, comme défini plus haut). A cette fin, il peut être nécessaire d'introduire de manière artificielle des espaces (" gaps ") dans la séquence. Une fois l'alignement optimal réalisé, le degré d'homologie est établi par enregistrement de toutes les positions pour lesquelles les acides aminés des deux séquences comparées sont identiques, par rapport au nombre total de positions. L'activité biologique du polypeptide isolé et notamment de la Sakacine G se réfère à sa capacité à inhiber la croissance de souches bactériennes indésirables et/ou pathogènes, de préférence de bactéries Listeria et plus particulièrement de bactéries Listeria monocytogenes. La présente invention a également pour objet un acide nucléique isolé, codant pour un polypeptide tel que défini précédemment. Plus précisément, la présente invention a pour objet un acide nucléique isolé comprenant la séquence ID N 1 et/ou la séquence ID N 3. La séquence nucléotidique complète de la région impliquée dans l'expression de la Sakacine G (2042 pb) a été déterminée, et est représentée en séquence ID N 9. La présente invention vise également un acide nucléique comprenant une telle séquence. Comme décrit précédemment, cette séquence possède deux cadres ouverts de lecture complets skgAl et skgA2 et de deux autres tronqués, skgl et skgD situés aux deux extrémités du fragment cloné. Les gènes supposés skgAl (SEQ ID N 1), skgA2 (SEQ ID N 3) et skgl (SEQ ID N 5) y sont orientés en sens inverse par rapport à skgD (SEQ ID N 7). Sont également revendiqués dans le cadre de la présente invention, l'acide nucléique comprenant la séquence ID N 5 ainsi que l'acide nucléique comprenant la séquence ID N 7. Il est entendu que sont également comprises les séquences homologues, définies comme : i) des séquences similaires à au moins 70 % de la séquence SEQ ID N 1, N 3, N 5, N 7 ou N 9 ; ou ii) des séquences hybridant avec la séquence SEQ ID N 1, N 3, N 5, N 7 ou N 9 ou leur séquence complémentaire, dans des conditions stringentes d'hybridation, ou iii) des séquences codant pour le polypeptide dénommé Sakacine G, tel que défini précédemment. De préférence, une séquence nucléotidique homologue selon l'invention est similaire à au moins 75 % des séquences SEQ ID N 1, N 3, N 5, N 7 ou N 9, de préférence encore au moins 85 %, ou au moins 90 %. De manière préférentielle, une telle séquence nucléotidique homologue hybride spécifiquement aux séquences complémentaires de la séquence SEQ ID N 1, N 3, N 5, N 7 ou N 9 dans des conditions stringentes. Les paramètres définissant les conditions de stringence dépendent de la température à laquelle 50% des brins appariés se séparent (Tm). Pour les séquences comprenant plus de 30 bases, Tm est définie par la relation (Sambrook et al., 1989,NY : Cold Spring Harbor Laboratory) : Tm = 81,5 + 0,41(%G+C) - 16,6 Log(concentration en cations) - 0,63(%formamide) - (600/nombre de bases) Pour les séquences de longueur inférieure à 30 bases, Tm est définie par la relation : Tm = 4(G+C) + 2 (A+T). Dans des conditions de stringence appropriées, auxquelles les séquences aspécifiques n'hybrident pas, la température d'hybridation peut être de préférence de 5 à 10 C en dessous de Tm, et les tampons d'hybridation utilisés sont de préférence des solutions de force ionique élevée telle qu'une solution 6xSSC par exemple. Le terme "séquences similaires" employé plus haut se réfère à la ressemblance parfaite ou identité entre les nucléotides comparés mais aussi à la ressemblance non parfaite que l'on qualifie de similitude. Cette recherche de similitudes dans les séquences nucléiques distingue par exemple les purines et les pyrimidines. Une séquence nucléotidique homologue aux cadres ouverts de lecture représentés en SEQ ID N l, N 3, N 5, N 7 ou N 9 inclut donc toute séquence nucléotidique qui diffère de la séquence SEQ ID N 1, N 3, N 5, N 7 ou N 9 par mutation, insertion, délétion ou substitution d'une ou plusieurs bases, ou par la dégénérescence du code génétique, pour autant qu'elle code pour un polypeptide présentant l'activité biologique de la Sakacine G, comme définie ci-après. Parmi de telles séquences homologues, sont comprises les séquences des gènes de bactéries autres que Lactobacillus, codant pour la Sakacine G. Les polypeptides de la présente invention peuvent être synthétisés par toutes les méthodes bien connues de l'homme du métier. Les polypeptides de l'invention peuvent par exemple être synthétisés par les techniques de la chimie de synthèse, telles que la synthèse de type Merrifield qui est avantageuse pour des raisons de pureté, de spécificité antigénique, d'absence de produits secondaires non désirés et pour sa facilité de production. La présente invention a également pour objet un procédé de production d'un polypeptide recombinant dans lequel un vecteur comprenant un acide nucléique conforme à la présente invention est transféré dans une cellule hôte qui est mise en culture dans des conditions permettant l'expression d'un polypeptide conforme à la présente invention ou d'un polypeptide codé par une séquence d'acide nucléique conforme à la présente invention. La bactériocine recombinante peut également être produite par un procédé, dans lequel un vecteur contenant un acide nucléique comprenant une séquence nucléotidique conforme à l'invention et de préférence les séquences SEQ ID N 1 et/ou N 3 où une séquence homologue est transférée dans une cellule hôte qui est mise en culture dans des conditions permettant l'expression du polypeptide correspondant. La protéine produite peut ensuite être récupérée et purifiée. Les procédés de purification utilisés sont connus de l'homme du métier. Le polypeptide recombinant obtenu peut être purifié à partir de lysats et extraits cellulaires, du surnageant du milieu de culture, par des méthodes utilisées individuellement ou en combinaison, telles que le fractionnement, les méthodes de chromatographie, les techniques d'immunoaffinité à l'aide d'anticorps mono- ou polyclonaux spécifiques, etc. La séquence d'acide nucléique d'intérêt, codant pour la Sakacine G, peut être insérée dans un vecteur d'expression, dans lequel elle est liée de manière opérante à des éléments permettant la régulation de son expression, tels que notamment des promoteurs, activateurs et/ou terminateurs de transcription. Les signaux contrôlant l'expression des séquences nucléotidiques (promoteurs, activateurs, séquences de terminaison...) sont choisis en fonction de l'hôte cellulaire utilisé. A cet effet, les séquences nucléotidiques selon l'invention peuvent être insérées dans des vecteurs à réplication autonome au sein de l'hôte choisi, ou des vecteurs intégratifs de l'hôte choisi. De tels vecteurs seront préparés selon les méthodes couramment utilisées par l'homme du métier, et les clones en résultant peuvent être introduits dans un hôte approprié par des méthodes standard, telles que par exemple l'électroporation ou la précipitation au phosphate de calcium. Les vecteurs de clonage et/ou d'expression tels que décrits ci-dessus, contenant une séquence nucléotidique définie selon l'invention font également partie de la présente invention. L'invention vise en outre les cellules hôtes transformées, de manière transitoire ou stable, par ces vecteurs d'expression. Ces cellules peuvent être obtenues par l'introduction dans des cellules hôtes, de préférence procaryotes, d'une séquence nucléotidique insérée dans un vecteur tel que défini ci-dessus, puis la mise en culture desdites cellules dans des conditions permettant la réplication et/ou l'expression de la séquence nucléotidique transférée. Des exemples de cellules hôtes incluent notamment des bactéries telles que Lactococcus, Lactobacillus, Leuconostoc, Streptococcus, Pediococcus, Escherichia et les levures. Les séquences nucléotidiques de l'invention peuvent être d'origine artificielle ou non. Il peut s'agir de séquences d'ADN ou d'ARN, obtenues par criblage de banques de séquences au moyen de sondes élaborées sur la base des séquences SEQ ID N l, N 3, N 5, et/ou N 7 ou N 9. De telles banques peuvent être préparées par des techniques classiques de biologie moléculaire, connues de l'homme de l'art. Les séquences nucléotidiques selon l'invention peuvent également être préparées par synthèse chimique, ou encore par des méthodes mixtes incluant la modification chimique ou enzymatique de séquences obtenues par criblage des banques. La présente invention se rapporte également à un procédé pour inhiber la croissance de Listeria, plus particulièrement de Listeria monocytogenes dans un environnement qui peut être alimentaire ou non et qui est susceptible d'être contaminé avec les Listeria monocytogenes. Les Listeria monocytogenes sont des microorganismes pathogènes qui sont à l'origine de sévères maladies chez les êtres humains et animaux et qui peuvent notamment être facilement transmissibles par des aliments contaminés, plus spécialement au moyen de viandes, de produits carnés, de produits marins, de lait et de produits dérivés. La présente invention propose donc un procédé pour inhiber la croissance de Listeria monocytogenes dans un aliment susceptible de contenir des Listeria monocytogenes à titre de contaminant, ledit procédé comprenant l'addition d'un polypeptide conforme à l'invention dans ledit aliment en une quantité suffisante pour inhiber la croissance de Listeria monocytogenes. Les bactériocines conformes à l'invention sont de préférence utilisées dans tout système alimentaire en une quantité comprise entre 1 et 100000 unités arbitraires (AU) de bactériocines par gramme d'aliment. Une AU de bactériocines est définie comme 5 (il de la dilution la plus élevée du surnageant de culture conduisant à une zone définie d'inhibition de croissance par rapport à une souche témoin d'une bactérie à Gram positif sur un milieu agar. Bien que les aliments soient les plus concernés par une contamination par Listeria monocytogenes, les produits vétérinaires et médicaux peuvent également être contaminés avec ce type de bactéries, de même que les produits cosmétiques ou produits apparentés. Les bactériocines conformes à la présente invention, et notamment la Sakacine G, sont donc également utiles pour inhiber la croissance de ce type de pathogènes dans ces produits. La présente invention a ainsi pour objet l'utilisation d'une bactériocine conforme à la présente invention comme agent actif contre des flores pathogènes ou indésirables notamment dans la préparation de produits alimentaires et plus précisément pour inhiber la croissance et la propagation de Listeria, plus particulièrement de Listeria monocytogenes, dans les produits alimentaires. Le polypeptide peut être incorporé tel quel dans le produit alimentaire considéré ou encore y être produit à partir de la souche Lactobacillus Sakei 2512. La présente invention a ainsi également pour objet l'utilisation de la souche Lactobacillus Sakei 2512 dans un produit alimentaire pour y générer un polypeptide bactériocine conforme à l'invention. L'invention concerne encore une composition bactériocine, caractérisée en ce qu'elle comprend au moins un polypeptide conforme à la présente invention, c'est-à-dire issue de la souche Lactobacillus Sakei 2512 ou comprenant la séquence SEQ ID N 2, ou N 4 ou N 12 ou la souche Lactobacillus Sakei 2512. L'invention s'étend également à l'utilisation de la souche Lactobacillus sakei 2512 destinée à produire un polypeptide tel que défini plus haut, pour inhiber la croissance et la propagation de Listeria, plus particulièrement de Listeria monocytogenes, dans des produits alimentaires ainsi que les compositions comportant de telle souche. Les exemples et la figure ci-après sont présentés à titre illustratif et non limitatif de l'objet de la présente invention. FIGURE: Figure 1 : schématique du locus génétique impliqué dans la production de la sakacine G. MATERIELS ET METHODES # Souches bactériennes et milieux de culture. Lactobacillus sakei 2512 est cultivée à 30 C en milieu MRS (DIFCO Laboratories) stérilisé 12 min à 110 C. Les souches indicatrices sont cultivées en milieu BHI ("brain-heart infusion"; DIFCO Laboratories) à 37 C. # Test d'activité. Du milieu BHI, gélosé à lOg/1, est ensemencé à 1% par une préculture de souche indicatrice en phase stationnaire avant d'être coulé en boite de Pétri. Cinquante microlitres de solution de sakacine G sont déposés dans des puits creusés dans la gélose refroidie à l'emporte pièce. L'activité bactériocine se traduit par l'apparition de zones d'inhibition autour des puits après incubation une nuit à 37 C. # Analyse protéique. La sakacine G est analysée en spectrométrie de masse sur un appareil Perkin-Elmer Sciex API 165 équipé d'une source d'ionisation par Ionspray. Après lyophilisation, la fraction HPLC active est reprise avec une solution acétonitrile / eau (1:1) contenant 0,1% d'acide formique puis injectée par infusion à un débit de 5 l/min. La concentration protéique est déterminée par la méthode à l'acide bicinchoninique au moyen du kit BCA (Sigma) selon les instructions du fabriquant. Les comparaisons de séquences protéiques sont réalisées grâce au programme BLAST (1), accessible à partir du serveur ExPASy du "Swiss Institute of Bioinformatics". # Clonage moléculaire et transformation. Les plasmides sont extraits et purifiés à partir de souches d'Escherichia. coli et de Lactobacillus sakei 2512 selon les méthodes décrites précédemment par Sambrook et al., 1989, NY : Cold Spring Harbor Laboratory et Muriana et Klaenhammer, 1987, Appl. Environ. Microbiol., 53 : 553-560 respectivement. Les enzymes de restriction et de modification de l'ADN sont utilisées selon les indications du fournisseur (Gibco-BRL). Les électrophorèses en gel d'agarose, analytique et préparative, sont conduites en tampon Tris/borate/EDTA (pH 8,3) selon les méthodes décrites par Sambrook et al., 1989, NY : ColdSpring Harbor Laboratory. Les fragments d'ADN digérés sont purifiés à partir des gels d'agarose en utilisant le kit "Prep-a-Gene" (Bio-Rad). Les clonages dans les plasmides pGEM-T (Promega) et pZER02 (Invitrogen) sont réalisés selon les recommandations des fournisseurs. Le transfert de type Southern est réalisé sur membrane de nylon (Hybond-N+, Amersham) selon Sambrook et al., 1989, NY : Cold Spring Harbor Laboratory. Le transfert est suivi d'une hybridation avec une sonde radioactive obtenue par marquage au 32P à l'aide du kit "random primers DNA labelling system" (Gibco-BRL). Les bactéries E. coli sont rendues compétentes et transformées selon la méthode de Hanahan, 1983. J. Mol. Biol. 166:557-80. La Taq polymérase (Gibco-BRL) est utilisée selon les recommandations du fournisseur. L'amplification du fragment d'ADN codant la Sakacine G a été réalisée à l'aide d'un appareil "Geneamp 9700" (Perkin-Elmer) selon les conditions suivantes : 35 cycles de dénaturation à 94 C pendant 30 s, hybridation à 45 C pendant 30 s et élongation à 72 C pendant 1 min suivis d'un cycle supplémentaire d'élongation à 72 C pendant 5 min. Le fragment d'ADN portant le locus sakacine G est séquence à l'aide d'un séquenceur automatique ABI Prism 310# (Perkin-Elmer) en utilisant le kit de séquençage "Big-dye terminator" (Perkin-Elmer) et les amorces nucléotidiques appropriées. EXEMPLE 1 : Isolement et purification de la Sakacine G. Une culture de 16 h de Lactobacillus. sakei 2512 (100 ml) est centrifugée à 6000g pendant 15 min. Le surnageant de culture est ensuite chauffé à 70 C pendant 20 min. Le surnageant refroidi est ensuite dilué avec 1 volume d'eau (le pH de la solution diluée doit être inférieur à 6, par addition d'HCl 1M si nécessaire) avant d'être passé sur une colonne (2. 5 x 18 cm) contenant une résine échangeuse de cations (carboxy-methyl cellulose; Cellufine C-200, Amicon) équilibrée avec de l'eau. Après des lavages successifs avec de l'eau (100 ml) puis une solution de NaCl 0,1M (150 ml), la Sakacine G est éluée avec une solution de NaCl 0,5M (200 ml). Le pH de toutes les solutions doit être inférieur à 6. La fraction active est ensuite déposée sur cartouche d'extraction en phase solide (Seppak plus CI 8, Waters) équilibrée dans l'eau. Après lavages successifs avec 5 ml de solutions d'acétate d'ammonium 20 mM contenant 0,10, 20 et 30% d'acétonitrile, la Sakacine G est éluée avec 10 ml d'acétate d'ammonium 20 mM contenant 80% d'acétonitrile. Après lyophilisation, l'extrait est solubilisé dans 1 ml de solution aqueuse d'acétonitrile à 40% puis injecté sur une colonne HPLC analytique de phase inverse en C8 (Kromasil, 5 m, 100 , 4. 6 x 250 mm, A.I.T.). L'HPLC a été réalisée sur un appareillage comprenant une pompe Perkin-Elmer séries 200 LC connectée à un détecteur Perkin-Elmer 785A. Le chromatogramme en absorption est enregistré à 220 nm. La séparation est réalisée, à un débit de 0,8 ml/min selon le gradient suivant : Solvant A = eau/acide trifluoroacétique 0,1%; solvant B = acétonitrile/eau/ acide trifluoroacétique 0,07%. Après un lavage de 5 min avec 20% de solvant B, l'élution est réalisée par un gradient de 20 de 40% de solvant B en 10 min puis de 40 à 55% de solvant B en 20 min. La fraction correspondant au pic à 23 min s'étant révélée active contre Listeria ivanovii BUG 496 a été analysée en spectrométrie de masse en ionisation "ionspray". La molécule apparaît pure à au moins 95% et possède une masse moléculaire de 3834,32 0,31 Da. La quantité de Sakacine G ainsi purifiée a été estimée à 120 g à partir de 100 ml de culture. Le rendement de purification a été estimé à 55% d'activité retrouvée. Une partie de la séquence primaire de la Sakacine G a été déterminée par microséquençage et deux oligonucléotides dégénérés ont été établis à partir de cette séquence. EXEMPLE 2 : Clonage du locus génétique impliqué dans la production de la sakacine G. Par génétique inverse, les deux oligonucléotides dégénérés SakGOl (5' AARTATTATGGNAAYGGNGT 3') (SEQ ID N 10) et SakG02 (5' ACATGATGNCCNCCRTTNGC 3') (SEQ ID N ll) ont été choisis afin d'amplifier le fragment d'ADN correspondant au gène de structure de la Sakacine G mature (SEQ ID N 12) par réaction de polymérisation en chaîne (PCR). L'amplifiat ainsi obtenu, d'une taille approximative de 100 pb a été cloné dans le plasmide pGEM-T pour former le plasmide pJMBYCOl. Le fragment de restriction PvuII de 560 pb issu de pJMBYC01, incluant le fragment inséré, a servi de sonde d'hybridation, lors d'un transfert de type Southern, pour localiser le gène de structure sur le génome de Lactobacillus sakei 2512. A partir d'un extrait plasmidique de Lactobacillus sakei 2512 digéré par les enzymes de restriction HindIII et EcoRI, la sonde a révélé des fragments de tailles respectives d'environ 2,1 et 9 kpb. Le fragment HindIII de 2,1 kpb a été purifié puis inséré dans le vecteur pZER02 pour donner le plasmide pJMBYC02. La présence du gène de structure de la Sakacine G dans pJMBYC02 a été démontrée par amplification PCR avec les amorces SakGOl et SakG02 puis par séquençage nucléotidique du fragment inséré dans pJMBYC02. La séquence nucléotidique complète (2042 pb) du fragment de restriction HincIIII inséré dans pJMBYC02 a été déterminée. L'analyse de cette séquence a révélé l'existence de deux cadres ouverts de lecture complets skgAl et skgA2 et de deux autres tronqués, skgI et skgD situés aux deux extrémités du fragment cloné. Les gènes supposés skgAlskgA2 et skgI sont orientés en sens inverse par rapport à skgD. Chacun des cadres ouverts de lecture est précédé d'un site potentiel de fixation des ribosomes. Les gènes skgAl et skgA2 codent tous les deux des protéines de 55 résidus d'acides aminés dont les séquences 19-55 sont totalement identiques. La séquence 19-52 correspond à la séquence de la sakacine G obtenue par microséquençage. La présence supposée de 3 résidus cystéine en positions 9, 14 et 24 est confirmée et trois résidus supplémentaires de glycine, valine et cystéine apparaissent en extrémité C-terminale. Les séquences 1-18 des protéines SkgAl et SkgA2 ne diffèrent que de 3 résidus et présentent de fortes similitudes avec les peptides "leader" des bactériocines de classe II, qui sont impliquées dans le transport de ces peptides par des ABC-transporteurs spécifiques. En particulier le motif GG terminal (17-18) est caractéristique de ces séquences leader et constitue le site de maturation de ces bactériocines. La comparaison des séquences nucléotidiques des gènes skgAl et skgA2 montre également une identité de séquence de plus de 95% pour la partie des gènes codant la bactériocine mature. Le cadre de lecture ouvert incomplet appelé skgl code une protéine de 54 résidus. La comparaison de cette séquence avec celles des banques de données montre de fortes homologies de SkgI avec les protéines dites d'immunité LccI et MesI. L'implication de MesI dans la protection vis à vis de la mésentéricine Y105 a été démontrée. On peut supposer que skgI code la protéine d'immunité à la sakacine G. Le dernier gène skgD code une portion de protéine de 394 acides aminés. D'après les banques de données, SkgD est très homologue de protéines de la famille des ABC-transporteurs et plus particulièrement des transporteurs de la pédiocine PA-1 : PedD ou PapD (Marugg J.D. et al., 1992, Appl. Environ. Microbiol. 58(8) :2360-7 ; Motlagh A. et al., 1994, Lett. Appl. Microbiol. 18(6) :305-12),de la sakacine P : SppT (Huhne K. et al., 1996, Microbiology. 142(Pt6):1437-48), de la sakacine A : SapT (Axelsson L. et al., 1995, J. Bacteriol. 117(8) :2125-37) et de la mésentéricine Y105 : MesD (Fremaux C. et al., 1995, Microbiology. 141 (Pt 7) :1637-45). EXEMPLE 3 : Spectre d'inhibition. La sensibilité à la Sakacine G de 17 souches bactériennes a été testée par la méthode de test en puits (cfMatériels et Méthodes). Les résultats sont présentés dans le tableau 1 ci-après : TABLEAU 1 Rayon des halos d'inhibition (mm) Le. lactis ATCC11454 0 Ln. Parâmes enter vides DSM 20288 0 Ln. Mesenteroides DSM 20484 0 Ln. Mesenteroides DSM 20240 0 Lb. delbrueckii DSM 20081 0 Lb. plantarum DSM 20174 0 Lb brevis DSM 20054 0 Lb. casei DSM 20011 0 Lb. sakei 2515 1 P. acidilactici ENSAIA 583 0 P. cerevisiae IP 5492 1 E. faecium ENSAIA 631 0 E. faecalis IP 5430 2 E. faecalis ENSAIA 636 1 E. durans ENSAIA 630 2 L. inocua 8811 3 L. ivanovi BUG 496 6 Le spectre d'inhibition de cette bactériocine apparaît comme assez étroit et limité aux souches de Lactobacillus sakei et Pediococcus cerevisiae pour les bactéries lactiques. Ce peptide apparaît, comme les autres bactériocines de classe IIa, actif contre toutes les souches de Listeria testées, ainsi que contre les Enterococcus faecalis et durans mais pas contre Enterococcus faecium. REVENDICATIONS 1. Polypeptide isolé, caractérisé en ce qu'il s'agit d'une bactériocine, dénommée Sakacine G, issue de Lactobacillus sakei 2512. 2. Polypeptide isolé selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il s'agit d'une bactériocine de classe IIa. 3. Polypeptide isolé, caractérisé en ce qu'il comprend la séquence ID N 2 et/ou la séquence ID N 4. 4. Polypeptide isolé, caractérisé en ce qu'il comprend la séquence ID N 12. 5. Acide nucléique comprenant une séquence nucléotidique codant un polypeptide selon l'une des revendications 1 à 4. 6. Acide nucléique selon la revendication 5, comprenant la séquence ID N 1et/ou la séquence ID N 3. 7. Acide nucléique selon la revendication 5 ou 6, comprenant la séquence d'acide nucléique SEQ ID N 9. 8. Polypeptide isolé, caractérisé en ce qu'il comprend la séquence ID N 6. 9. Polypeptide isolé, caractérisé en ce qu'il comprend la séquence ID N 8. 10. Acide nucléique comprenant la séquence ID N 5. 11. Acide nucléique comprenant la séquence ID N 7. 12. Vecteur de clonage et/ou d' expression comprenant un acide nucléique selon l'une des revendications 5 à 7,10 ou 11. 13. Cellule hôte transformée par un vecteur selon la revendication 12. 14. Cellule hôte selon la revendication 13, caractérisée en ce qu'il s'agit d'un microorganisme choisi parmi les Lactococcus, Lactobacillus, Leuconostoc, Streptococcus, Pediococcus, Escherichia ou d'une levure. 15. Procédé de production d'un polypeptide recombinant dans lequel un vecteur comprenant un acide nucléique selon l'une des revendications 5 à 7,10 ou 11 est transféré dans une cellule hôte qui est mise en culture des conditions permettant l'expression d'un polypeptide selon l'une des revendications 1 à 4,8 ou 9 ou d'un polypeptide codé par une séquence d'acide nucléique telle que définie dans l'une des revendications 5 à 7,10 ou 11. 16. Utilisation d'un polypeptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 comme agent actif contre des flores pathogènes ou indésirables dans la préparation de produits alimentaires. 17. Utilisation selon la revendication 16, caractérisée en ce que ledit polypeptide est mis en #uvre pour inhiber la croissance et la propagation de Listeria, plus particulièrement de Listeria monocytogenes, dans les produits alimentaires. 18. Utilisation selon la revendication 16 ou 17, caractérisée en ce que ledit polypeptide est produit dans le produit alimentaire à partir de la souche Lactobacillus Sakei 2512. 19. Utilisation de la souche Lactobacillus Sakei 2512 dans des produits alimentaires pour y produire un polypeptide bactériocine selon l'une des revendications 1 à 4. 20. Composition bactériocine caractérisée en ce qu'elle comprend au moins un polypeptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 ou la souche de Lactobacillus Sakei 2512.