FR 2808805 A1 20011116 FR 0005850 A 20000509 PROCEDE DE DETECTION ET D'IDENTIFICATION DE LA PRESENCE DE MATIERES BIOLOGIQUES PROVENANT D'OISEAUX, ET OLIGONUCLEOTIDES POUR SA MISE EN OEUVRE La présente invention a pour objet un procédé de détection et d'identification de la présence de matières biologiques provenant d'oiseaux, notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes, dans un échantillon de matière organique. Elle a en outre pour objet les oligonucléotides pour la mise en #uvre de ce procédé, et les fragments d'ADN obtenus à l'aide desdits oligonucléotides. La valeur économique croissante de certaines espèces animales utilisées pour l'alimentation humaine est liée à un déséquilibre important entre l'offre et la demande du marché. Ceci a pour conséquence directe la mise en place d'une pratique accrue de l'adultération des aliments. L'un des modes d'adultération des aliments le plus courant consiste en la substitution de composants provenant d'espèces animales à haute valeur commerciale par ceux provenant d'espèces de moindre valeur, ou même par des composants d'origine végétale comme le soja. Ainsi par exemple les viandes de porc, de poulet ou même de cheval sont fréquemment utilisées en remplacement du boeuf, le mouton à la place de la viande de chèvre, ou le canard à la place de l'oie. L'adultération inter-spécifique des produits alimentaires est donc un problème à la fois économique, de santé publique et de préservation de l'environnement, qui concerne aussi bien les consommateurs, les distributeurs, les producteurs que les administrations chargées de l'Hygiène Alimentaire et de la Répression des Fraudes. Il est donc important de pouvoir non seulement déterminer la présence dans les aliments de matières biologiques provenant d'espèces animales, mais également d'identifier l'origine de ces matières biologiques présentes dans les aliments. Dans le domaine agro-alimentaire, la caractérisation d'espèces animales fait appel aux techniques biochimiques d'analyse des protéines (électrophorèse et immunoanalyse) ou aux techniques de la chimie (la chromatographie principalement). Ainsi, l'électrophorèse sur gel de polyacrylamide en conditions dénaturantes a été essentiellement développée pour l'analyse des aliments cuits (analyse de peptides ou de protéines dénaturés et coagulés par la cuisson (Patterson R. L.S., 1985, Biochemical identification of meat species, Elsevier ed)). Cette technique est à présent supplantée par l'électrophorèse en gradient de pH (focalisation isoélectrique ou IEF ), beaucoup plus résolutive ; cependant la focalisation isoélectrique est une technique délicate à mettre en oeuvre. Quant à l'immunoanalyse, de nombreux travaux ont été consacrés à l'utilisation d'anticorps spécifiques pour la mise en évidence de l'adultération de produits carnés par des protéines végétales, ainsi qu'à l'identification d'espèces animales dans les produits laitiers et les viandes (Hernandez et al., 1994, Food and Agricultural Immunology, 6,95-104). Des anticorps dirigés contre des protéines du sarcoplasme musculaire ont été par exemple utilisés pour caractériser diverses espèces domestiques telles que le porc, le boeuf, le cheval ou le poulet. L'immunoanalyse présente cependant elle aussi d'importantes limitations. Pour ce qui est de la chimie analytique, ce sont surtout les techniques de chromatographie en phase liquide ou gazeuse qui ont été utilisées pour le contrôle de produits carnés : dosage de peptides dans la viande (Barai et al., 1992, Trends in Food Science and Technology, 4, 395-401; Carnegie P.R. et al., 1983, Journal of chromatography, 261 : 153- 157) ou d'acides gras dans les graisses par exemple (Youssef M.K.E. et al., 1988, Food Chemical, 30 :167-180). Ces techniques sont cependant dépourvues d'une réelle spécificité et limitées aux espèces les plus communes telles que le porc. Si ces techniques restent utilisées pour l'identification dans les aliments d'espèces communes (en particulier les espèces domestiquées), la multiplication du nombre d'espèces sauvages concernées (gibiers, poissons, crustacées, coquillages, mollusques) fait que la plupart de ces techniques trouvent aujourd'hui leurs limites. L'analyse du génome au moyen de sondes nucléiques représente à l'évidence une nouvelle alternative pour l'identification d'espèces, encore peu développée à l'heure actuelle. En effet, les travaux menés sur l'ADN ancien (ou ADN fossile) depuis le début des années 1990 ont démontré que l'ADN est une molécule très stable après la mort, malgré l'action du temps et de l'environnement (Brown et al., 1994, Bioessays, 16 (10) : 719-26). Toutefois, quand il subsiste dans des substrats anciens, cet ADN est très dégradé et présent en petites quantités, sous formes de molécules abîmées et chimiquement modifiées (Pââbo et al., 1989, Journal of Biology Chemistry. 264,9709-9712). Ces caractéristiques sont dues essentiellement aux phénomènes d'hydrolyse et d'oxydation (Lindahl, 1993, Nature, 362, 709-715). Grâce à la technique de PCR ( Polymerase Chain Reaction ), qui constitue un outil d'une puissance analytique remarquable, il est possible de multiplier in vitro de façon quasi exponentielle un fragment donné d'ADN. En amplifiant de l'ADN d'une préparation alimentaire, qui a subi des modifications telles que la cuisson, le fumage des phénomènes d'hydrolyse et d'oxydation, il sera possible d'identifier chaque constituant d'origine animale ou végétale. La PCR a ainsi été récemment utilisée pour la caractérisation de la viande de porc cuite (Meyer et al., 1995, Journal of AOAC International, 78, (6) 1542 - 1551)), de mouton ou de chèvre (Chikuni et al., 1994, Animal Science and Technology, 65 (6), 571-579) par amplication de séquences spécifiques de l'espèce recherchée. De même, l'amplification de séquences spécifiques du chromosome Y a permis de déterminer le sexe de carcasses de boucherie d'origine bovine et ovine (Cotinot C, et al., 1991, Genomics. 10 (3) : 646-53, Apparao K. B.C., 1995, Meat Science, 39 (1) 123-126). La demande internationale WO 98/50401 a pour objet un procédé de détection de la présence de matières biologiques d'origine bovine dans un échantillon de matière organique. Le procédé décrit dans cette référence fait appel à la PCR à l'aide d'oligonucléotides appropriés. Cependant, le procédé décrit dans cette référence permet uniquement de détecter la présence ou l'absence d'une seule espèce bovine, à savoir l'espèce Bos taurus, et ainsi ne permet pas de détecter et d'identifier la présence de plusieurs espèces bovines. Les canards, oies, poulets, dindes, autruches sont des oiseaux très utilisés dans le domaine agro-alimentaire (foie gras, pâtés, viandes, graisses, plats cuisinés, oeufs etc....) et sont donc très exposés à l'adultération. Par exemple, le foie gras d'oie est plus cher et de meilleur goût que celui de canard et il existe une fraude importante à ce niveau. Par ailleurs, l'adultération des espèces susmentionnées peut concerner également des produits manufacturés (plumes, duvets, parures à bases de plumes etc...), des oeufs de collection, plumes de collection, des animaux vivants d'élevages ou sauvages, des animaux taxidermisés etc.... Les canards, oies, poulets, dindes, autruches etc... appartiennent à la classe des Aves qui regroupe l'ensemble des oiseaux ; les Aves forment deux divisions : les paléognathes et les néognathes. A titre d'exemple, les canards, oies et cygnes font partie de la famille des anatidés, et appartiennent à l'ordre des ansériformes qui fait partie des néognathes. Les poulets, cailles et dindes font partie la famille des gallinacés et appartiennent à l'ordre des galliformes, qui fait partie lui aussi des néognathes. Les autruches font partie de la famille des struthionidés et appartiennent à l'ordre des struthioniformes, qui fait partie des paléognathes. L'ADN mitochondrial (ADNmt) des oiseaux a la particularité de ne pas être organisé de la même façon que celui des mammifères. En effet, chez les oiseaux le gène ND6 qui code pour le composant 6 de la chaîne respiratoire se situe entre la région de contrôle de la réplication et le gène codant pour le cytochrome b, alors que chez les mammifères l'enchaînement est le suivant : région de contrôle de la réplication, gène codant pour le cytochrome b et gène ND6 (Desjardin et al., 1990, Current Genetic, 17, 515-518). L'ADNmt est un excellent marqueur d'espèces qui est souvent utilisé en phylogénie. En effet, selon l'espèce que l'on étudie, certaines portions de l'ADNmt permettent de différencier des espèces entre elles, d'autres ont un pouvoir de résolution plus fin et permettent de distinguer des populations différentes (races géographiques, sous-espèces) : région de contrôle de la réplication de l'ADNmt, régions codant pour le cytochrome b ou codant pour les ARN mitochondriaux (ARN 12S ou ARN 16S). D'un point de vue technique, des études ont été conduites sur l'ADNmt des anatidés. Chez les anatidés, l'ADNmt n'a été séquence en entier que pour une seule espèce sauvage : Aythya americana ; toutefois, il a été de nombreuses fois séquence au niveau des différentes régions décrites précédemment chez des espèces domestiques, comme le canard colvert (Anas platyrhynchos), le canard de barbarie (Cairina moschata), l'oie commune (Anser anser), mais aussi chez des espèces sauvages. La plupart de ces études proposent d'analyser la diversité génétique des espèces en comparant les séquences entres elles (Liu et al., 1996, Comp. Biochem. Physiol. 115B (2) : 209-214). D'autres études se basent sur une région précise de l'ADNmt et calculent des taux de divergence afin d'étudier l'évolution d'une espèce par rapport à une autre (Ramirez et al., 1993, Journal of Molecular Evolution, 37, : 296-310).Il est possible également de retracer l'histoire évolutive d'une espèce (Quinn et al., 1993, Journal of Molecular Evolution, 37 : 425; Shield et al., 1987, Evolution, 41 (3) : 662- 666), et d'apporter de nouveaux éléments quant à la place d'une espèce sur un arbre phylogénique (Sraml et al., 1996, Autraslian Journal of Zoology, 44 : 47-58 ; Quinn, 1992, Molecular Ecololy, 1 : 105-117, Johnson et al., 1998, Molecular Phylogenetics and Evolution, 10 : 82-84). Il ressort donc de l'étude de l'état de la technique que des travaux d'analyses de l'ADN de certaines espèces d'oiseaux, notamment d'anatidés, ont déjà été effectués. Néanmoins, aucun des documents de l'état de la technique ne décrit de méthode spécifique et sensible de détection et d'identification de la présence de matières biologiques provenant d'oiseaux dans un échantillon de matière organique, applicable à toutes les genres d'oiseaux, et notamment espèces d'oiseaux, dans des échantillons de matière organique présentant des compositions très variées. Le demandeur s'est donc attaché à développer une méthode sensible et fiable permettant de pallier à cette absence. L'un des buts de la présente invention est de fournir une méthode de détection de la présence de matières biologiques provenant d'oiseaux dans un échantillon de matière organique. L'un des autres buts de l'invention est de fournir une méthode d'identification du genre, notamment de l'espèce d'oiseau présente dans un échantillon de matière organique. Un autre but de l'invention est de fournir une méthode permettant de distinguer des espèces d'oiseaux phylogénétiquement proches mais de valeurs commerciales différentes. Un autre but de l'invention est de fournir une méthode d'identification du genre, notamment de l'espèce d'oiseau présente dans des aliments frais ou transformés (cuits, lyophilisés, séchés, saumurés, appertisés ...). La présente invention a pour objet un procédé de détection de la présence de matières biologiques provenant d'oiseaux, notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes dans un échantillon de matière organique, caractérisé en ce que l'on détermine la présence d'ADN provenant d'oiseaux, notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes dans ladite matière organique par amplification d'une séquence d'ADN spécifique du génome des oiseaux, notamment des ansériformes, des galliformes ou des struthioniformes, et contenue dans l'ADN extrait dudit échantillon, à savoir une séquence présente dans les génomes des oiseaux, et notamment des ansériformes, des galliformes ou des struthioniformes mais absente dans les génomes des autres genres animaliers, et notamment des autres espèces animales. La présente invention a en outre pour objet un procédé de détection de la présence de matières biologiques provenant d'oiseaux, et notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes dans un échantillon de matière organique et d'identification du genre, notamment de l'espèce d'oiseau, notamment d'ansériforme, de galliforme ou de struthioniforme présente dans ledit échantillon, caractérisé en ce que l'on détermine la présence d'ADN provenant d'oiseaux, et notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes dans ladite matière organique par amplification d'une séquence d'ADN spécifique du génome des oiseaux, et notamment des ansériformes, des galliformes ou des struthioniformes, et contenue dans l'ADN extrait dudit échantillon, à savoir une séquence présente dans les génomes des oiseaux, et notamment des ansériformes, des galliformes ou des struthioniformes mais absente dans les génomes des autres genres animaliers, notamment des autres espèces animales, et en ce qu'on l'on compare la séquence d'ADN spécifique du génome des oiseaux, notamment des ansériformes, des galliformes ou des struthioniformes ainsi amplifiée avec d'autres séquences d'ADN du génome des oiseaux, et notamment des ansériformes, des galliformes ou des struthioniformes, ladite séquence d'ADN spécifique du génome des oiseaux, notamment des ansériformes, des galliformes ou des struthioniformes ainsi amplifiée présentant au moins 50% d'identité, notamment 60% d'identité avec les autres susdites séquences d'ADN du génome des oiseaux, et notamment des ansériformes, des galliformes ou des struthioniformes. On entend par genre une catégorie obligatoire à laquelle toute espèce doit appartenir et qui contient une espèce ou un groupe d'espèces (Wily, 1981). On entend par espèce un groupe de population réellement ou partiellement capable de se croiser et qui est reproductivement isolé des autres groupes ayant la même propriété. L'espèce animale se divise en sous-espèces, races, variétés et souches ; plusieurs espèces voisines forment un genre qui est lui-même une subdivision de la famille. On entend par matière organique toute matière solide ou liquide que l'on suppose avoir au moins partiellement une origine organique. Le pourcentage d'identité concerne le résultat de la comparaison des acides nucléiques de la séquence d'ADN que l'on cherche à identifier, avec ceux des séquences d'ADN connues des oiseaux, notamment des ansériformes, des galliformes ou des struthioniformes. Ainsi, lorsque la séquence d'ADN spécifique du génome des oiseaux amplifiée présente au moins 50% d'identité, notamment 60% avec les autres séquences d'ADN connues du génome des oiseaux, on pourra en déduire que l'échantillon de matière organique à analyser contient des matières biologiques provenant d'oiseaux, notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes. Si la séquence d'ADN spécifique du génome des oiseaux amplifiée présente moins de 50% d'identité avec les autres séquences d'ADN connues du génome des oiseaux, on pourra donc en déduire que l'échantillon de matière organique à analyser ne contient pas de matières biologiques provenant d'oiseaux, notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes. Selon un mode de réalisation avantageux de l'invention, le procédé permet de détecter et/ou d'identifier la présence d'ansériformes, notamment d'anatidés choisis dans le groupe constitué par les canards tels que le canard pilet (Anas acuta), le canard mandarin (Aix galericulata), le canard souchet (Anas clypeata), la sarcelle d'été (Anas querquedula), l'eider à duvet (Somateria mollissima), les oies telles que l'oie naine (Anser erythropus), l'oie des neiges (Anser caerulescens), la bernache du Canada (Branta canadensis), et les cygnes tels que le cygne sauvage (Cygnus cygnus), le cygne noir (Cygnus atratus), le cygne commun (Cygnus color) et notamment les espèces domestiques de canards telles que le canard colvert (Anas platyrhynchos), le canard de barbarie (Cairina moschata) ou l'espèce domestique d'oie telle que l'oie commune (Anser anser). Selon un autre mode de réalisation avantageux de l'invention, le procédé permet de détecter et/ou d'identifier la présence de galliformes, notamment de gallinacés choisis dans le groupe constitué par les poulets, les cailles et les dindes, et notamment les espèces telles que Gallus gallus, Coturnix coturnix ou Meleagris gallopavo. Selon un autre mode de réalisation avantageux, le procédé permet de détecter et/ou d'identifier la présence de struthioniformes, notamment de struthionidés tels que les autruches, et notamment les espèces telles que Struthio camelus. Avantageusement, la séquence amplifiée du génome des oiseaux, notamment des ansériformes, des galliformes ou des struthioniformes, est d'origine mitochondriale. Le choix d'une séquence mitochondriale est particulièrement avantageux car, dans une cellule animale il y a environ 100 à 1000 copies d'ADN mitochondrial pour une copie d'ADN nucléaire. En cas de dégradation de l'ADN, la probabilité de détecter de l'ADN mitochondrial est donc beaucoup plus importante que la probabilité de détecter de l'ADN nucléaire. L'ADN mitochondrial peut donc être plus sûrement détecté dans des matières organiques dans lesquelles l'ADN est soumis à divers facteurs physiques (température, pression, ...) chimiques ou biochimiques tendant à sa dégradation. Selon un mode de réalisation avantageux du procédé de l'invention, l'ADN extrait de l'échantillon de matière organique est : -de l'ADN non dégradé provenant notamment d'un échantillon frais ou, - de l'ADN dégradé, provenant notamment d'un échantillon transformé, notamment cuit, lyophilisé, séché, saumuré, appertisé ou pasteurisé. Préférentiellement, l'amplification de la séquence d'ADN spécifique du génome des oiseaux, notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes est effectuée par la méthode d'amplification en chaîne par polymérase (PCR), comprenant une répétition du cycle des étapes suivantes : - chauffage de l'ADN extrait de l'échantillon de matière organique, de façon à séparer l'ADN en deux brins monocaténaires, - hybridation d'amorces oligonucléotidiques telles que définies ci-dessous aux brins d'ADN monocaténaires à une température adéquate et, - élongation desdites amorces oligonucléotidiques par une polymérase à une température adéquate, pour obtenir une séquence d'ADN ou un fragment d'ADN amplifié(e) spécifique du génome des oiseaux, notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes. Dans ce qui suit, les amorces oligonucléotidiques peuvent encore être appelées oligonucléotides ou amorces . La séquence d'ADN amplifiée obtenue à l'issue de la réaction de polymérisation en chaîne (PCR) à l'aide des amorces de l'invention, peut encore être dénommée dans ce qui suit fragment d'ADN amplifié , fragment d'ADN ou produit d'amplification . L'invention a également pour objet un procédé d'obtention d'un fragment d'ADN provenant d'oiseaux, notamment d'ansériformes et en particulier d'anatidés, présentant une taille et une séquence déterminées, spécifique des anatidés, notamment des genres Anas, Cairina et Anser, et en particulier des espèces Anas platyrhynchos, Cairina moschata et Anser anser, à partir d'un échantillon de matière organique, procédé par lequel on amplifie, par réaction de polymérisation en chaîne (PCR), une séquence déterminée du génome d'anatidés présente dans les génomes des anatidés mais absente dans les génomes des autres espèces animales. L'invention a également pour objet un procédé d'obtention d'un fragment d'ADN provenant d'oiseaux, notamment de galliformes et en particulier de gallinacés, présentant une taille et une séquence déterminées, spécifique des gallinacés, notamment des genres Gallus, Coturnix et Meleagris, et en particulier des espèces Gallus gallus, Coturnix coturnix et Meleagris gallopavo, à partir d'un échantillon de matière organique, procédé par lequel on amplifie, par réaction de polymérisation en chaîne (PCR), une séquence déterminée du génome des gallinacés, présente dans les génomes gallinacés mais absente dans les génomes des autres genres ou espèces animales. L'invention a également pour objet un procédé d'obtention d'un fragment d'ADN provenant d'oiseaux, notamment de struthioniformes, et en particulier des struthionidés présentant une taille et une séquence déterminées, spécifique des struthionidés, notamment du genre Struthio, et en particulier de l'espèce Struthio camelus, à partir d'un échantillon de matière organique, procédé par lequel on amplifie, par réaction de polymérisation en chaîne (PCR), une séquence déterminée du génome des struthionidés, présente dans les génomes des struthionidés mais absente dans les génomes des autres espèces genres ou animales. Selon un mode de réalisation avantageux du procédé de l'invention, la séquence amplifiée du génome des oiseaux, notamment des ansériformes, des galliformes ou des struthioniformes, est située dans la partie centrale de la région de contrôle de la réplication de l'ADN mitochondrial, délimitée par les nucléotides situés aux environs des positions 440 et 750, et~notamment aux environs des positions 450 et 700, et de préférence aux environs des positions 459 et 665 de la région de contrôle de la réplication de l'ADN mitochondrial, lesdites positions étant définies d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 599-634. Selon un autre mode de réalisation avantageux du procédé de l'invention, la séquence amplifiée du génome des oiseaux, notamment des ansériformes, des galliformes ou des struthioniformes est située dans la partie 5' de la région de contrôle de la réplication de l'ADN mitochondrial, délimitée par les nucléotides situés aux environs des positions 1 et 439, et notamment aux environs des positions 80 et 433, et de préférence aux environs des positions 150 et 433 de la région de contrôle de la réplication de l'ADN mitochondrial, ou dans la partie 3' de la région de contrôle de la réplication de l'ADN mitochondrial, délimitée par les nucléotides situés aux environs des positions 750 et 1227, et notamment aux environs des positions 780 et 1227, et de préférence aux environs des positions 800 et 1227 de la région de contrôle de la réplication de l'ADN mitochondrial, lesdites positions étant définies d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 599-634. L'invention a également pour objet les oligonucléotides choisis parmi ceux : (1) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 32 suivante (positions 455 à 479 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599- 634): ACG TGA CYA GCY TCA GGC CCA TAC G dans laquelle Y est C ou T, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 33 suivante (positions 465 à 479 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : CTT CAG GCC CAT ACG - ou constitués par la séquence SEQ ID N 1 suivante (positions 459 à 479 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : ACT AGC TTC AGG CCC ATA CG ou ceux, (2) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 34 suivante (positions 484 à 508 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599- 634) : CCC TAA ACC CCT CGC CCT CCT CAC A - ou comprenant la séquence SEQ ID N 35 suivante (positions 493 à 508 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : CTC GCC CTC CTC ACA - ou constitués par la séquence SEQ ID N 2 suivante (positions 488 à 508 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : AAC CCC TCG CCC TCC TCA CA ou ceux, (3) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 36 suivante (positions 537 à 561 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599- 634) : GGG CCA TCM ATT GGG TTC ACT CAC C dans laquelle M est A ou C, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 37 suivante (positions 547 à 561 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : TTG GGT TCA CTC ACC - ou constitués par la séquence SEQ ID N 3 suivante (positions 542 à 561 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : ATC AAT TGG GTT CAC TCA CC ou ceux, (4) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 38 suivante (positions 574 à 599 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599- 634) : GGT RRA VST MNT CCA CAG ATG CCA C dans laquelle R est A ou G, V est A, C ou G, N est A, C, G ou T, S est C ou G, M est A ou C, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 39 suivante (positions 584 à 599 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : TTC CAC AGA TGC CAC - ou constitués par la séquence SEQ ID N 4 suivante (positions 580 à 599 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : AAG TAT TCC ACA GAT GCC AC ou ceux, (5) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 40 suivante (positions 639 à 664 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599- 634) : CMG GAA RAR ADA ARW RGA ACC AGA G dans laquelle R est A ou G, D est A, G ou T, M est A ou C, W est A ou T, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 41 suivante (positions 648 à 664 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : A TAA AAA GAA CCA GAG - ou constitués par la séquence SEQ ID N 5 suivante (positions 645 à 664 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : AAA AAT AAA AGG AAC CAG AG ou ceux, (6) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 42 suivante (positions 797 à 820 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599- 634) : WVK CAY MYY KRY ACT GAT GCA CTT T dans laquelle Y est C ou T, K est G ou T, R est A ou G, M est A ou C, W est A ou T, V est A, C ou G, M est A ou C, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 43 suivante (positions 807 à 820 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : ACA CTG ATG CAC TTT - ou constitués par la séquence SEQ ID N 11suivante (positions 802 à 820 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : CCT TGA CAC TGA TGC ACT TT ou ceux, (7) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 44 suivante (positions 1220 à 1224 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599- 634) : GCY TTD DND KKR WRS WAT GTG GAC G dans laquelle Y est C ou T, D est A, G ou T, B est C, G ou T, K est G ou T, W est A ou T, N est A, C, G ou T, R est A ou G, et S estCouG, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 45 suivante (positions 1210 à 1224 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : TAA GCT ATG TGG ACG - ou constitués par la séquence SEQ ID N 12 suivante (positions 1205 à 1224 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : TGT GGT AAG CTA TGT GGA CG ou ceux, (8) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 46 suivante (positions 180 à 206 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599- 634) : MTN MHM BDN HMV HVN NCA TAC CCT A dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, H est A, C ou T, B est C, G ou T, D est A, G ou T, N est A, C, G ou T, W est A ou T, V est A, C ou G, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 47 suivante (positions 190 à 206 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : AAC GGA CAT ACC CTA - ou constitués par la séquence SEQ ID N 14 suivante (positions 185 à 206 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : CAT GTC AAC GGA CAT ACC CTA ou ceux, (9) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 48 suivante (positions 355 à 376 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599- 634) : CAT RAG NWA WKG KYG GGT GGA GAG G dans laquelle R est A ou G, N est A, C, G ou T, W est A ou T, K est G ou T, Y est C ou T, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 49 suivante (positions 365 à 376 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : GGG TGG GTG GAG AGG - ou constitués par la séquence SEQ ID N 15 suivante (positions 361 à 376 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : TAA TGG GTG GGT GGA GAG G ou ceux, (10) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 50 suivante (positions 833 à 855 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599- 634) : GTT AWK GYY MYN CTC CGC RGC CCT T dans laquelle W est A ou T, K est G ou T, Y est C ou T, M est A ou C, Y est C ou T, N est A, C, G ou T, R est A ou G, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 51 suivante (positions 843 à 855 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : TCC TCC GCA GCC CTT - ou constitués par la séquence SEQ ID N 16 suivante (positions 837 à 855 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : ATG CTC TCC TCC GCA GCC CTT ou ceux, (11) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 52 suivante (positions 1120 à 1150 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599- 634) : DTW ATG ATT HTY RTT ADA TTA CGC T dans laquelle D est A, G ou T, W est A ou T, H est A, C ou T, Y est C ou T, R est A ou G, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 53 suivante (positions 1130 à 1150 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : TCG TTA GAT TAC GCT - ou constitués par la séquence SEQ ID N 17 suivante (positions 1125 à 1150 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : GAT TGT CGT TAG ATT ACG CT ou ceux, (12) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 54 suivante (positions 249 à 272 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599- 634) : AAY GHA TGA AYG HYC AGN DAC CAT dans laquelle Y est C ou T, H est A, C ou T, N est A, C, G ou T, D est A, G ou T, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 55 suivante (positions 256 à 272 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : ATG TTC TAG GAC CAT - ou constitués par la séquence SEQ ID N 18 suivante (positions 252 à 272 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : ATG AAT GTT CTA GGA CCA T ou ceux, (13) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 56 suivante (positions 409 à 433 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599- 634) : CGG GTT CTG ATT TCA CGT GAG GAG T - ou comprenant la séquence SEQ ID N 57 suivante (positions 419 à 433 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : TTT CAC GTG AGG AGT - ou constitués par la séquence SEQ ID N 19 suivante (positions 414 à 433 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : TCT GAT TTC ACG TGA GGA GT. Les oligonucléotides ou amorces tels que définis ci-dessus permettent de détecter et d'identifier des fragments d'ADN provenant d'oiseaux appartenant à l'ordre des ansériformes, et en particulier à la famille des anatidés, ou à l'ordre des galliformes et en particulier à la famille des gallinacés. L'invention a également pour objet les couples d'amorces constitués : - par l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 1, SEQ ID N 32, SEQ ID N 33, SEQ ID N 2, SEQ ID N 34, SEQ ID N 35, SEQ ID N 3, SEQ ID N 36, SEQ ID N 37 et l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 4, SEQ ID N 38, SEQ ID N 39, SEQ ID N 5, SEQ ID N 40, SEQ ID N 41 tels que définis ci-dessus, - par l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 11, SEQ ID N 42, SEQ ID N 43 et l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 12, SEQ ID N 44, SEQ ID N 45 tels que définis ci-dessus, - par l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 14, SEQ ID N 46, SEQ ID N 47, et l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 15, SEQ ID N 48, SEQ ID N 49 tels que définis ci-dessus, - par l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 16, SEQ ID N 50, SEQ ID N 51, et l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 17, SEQ ID N 52, SEQ ID N 53 tels que définis ci-dessus, - par l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 18, SEQ ID N 54, SEQ ID N 55, et l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 19, SEQ ID N 56, SEQ ID N 57 tels que définis ci-dessus, et avantageusement constitués par le couple d'oligonucléotides choisis parmi les couples suivants : - SEQ ID N 1 et SEQ ID N 5, - SEQ ID N 2 et SEQ ID N 5, - SEQ ID N 1 et SEQ ID N 4, - SEQ ID N 2 et SEQ ID N 4, - SEQ ID N 3 et SEQ ID N 5, - SEQ ID N 11et SEQ ID N 12, - SEQ ID N 14 et SEQ ID N 15, - SEQ ID N 16 et SEQ ID N 17, - SEQ ID N 18et SEQ ID N 19. Les couples d'amorces tels que définis ci-dessus permettent d'obtenir, par réaction PCR, un fragment d'ADN provenant d'oiseaux appartenant à l'ordre des ansériformes, et en particulier à la famille des anatidés, présentant une taille et une séquence déterminées, spécifique des anatidés. En outre, le couple d'amorces (SEQ ID N 11, SEQ ID N 12) permet d'obtenir par réaction PCR, un fragment d'ADN provenant d'oiseaux appartenant à l'ordre des galliformes, et en particulier à la famille des gallinacés, présentant une taille et une séquence déterminées, spécifique des gallinacés. L'invention a également pour objet les oligonucléotides choisis parmi ceux : (1) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 58 suivante (positions 145 à 170 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599- 634) : ATA TGK MVN CGG CAT TAA CCT ATA T dans laquelle K est G ou T, M est A ou C, V est A, C ou G, N est A, C, G ou T, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 59 suivante (positions 155 à 170 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : GGC ATT AAC CTA TAT - ou constitués par la séquence SEQ ID N 23 suivante (positions 151 à 170 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : ATA CGG GCA TTA ACC TAT AT ou ceux, (2) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 60 suivante (positions 356 à 380 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599- 634) : GCG AGY ATA ACC AAA TSG GTT ACA T dans laquelle Y est C ou T, S est C ou G, - ~ou comprenant la séquence SEQ ID N 61 suivante (positions 366 à 380 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : CCA AAT GGG TTA CAT - ou constitués par la séquence SEQ ID N 24 suivante (positions 361 à 380 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : CAT AAC CAA ATG GGT TAC AT ou ceux, (3) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 62 suivante (positions 1014 à 1037 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599- 634) : TAC ATA CAW ACY MWC CGC ACA AAT A dans laquelle W est A ou T, Y est C ou T, M est A ou C, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 63 suivante (positions 1024 à 1037 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : CTC ACC GCA CAA ATA - ou constitués par la séquence SEQ ID N 25 suivante (positions 1019 à 1037 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : ACA AAC TCA CCG CAC AAA TA ou ceux, (4) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 64 suivante (positions 1167 à 1192 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599- 634) : TGT AAR TAW CAA TAT AAA TAA TAT A dans laquelle R est A ou G, W est A ou T, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 65 suivante (positions 1177 à 1192 d'après AAT ATA AAT AAT ATA - ou constitués par la séquence SEQ ID N 26 suivante (positions 1172 à 1191 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : TTA ACA ATA TAA ATA ATA TA ou ceux, (5) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 66 suivante (positions 879 à 898 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599- 634) : TGA ATG CTT GYY GGA CAT WAA TAC C dans laquelle Y est C ou T, W est A ou T, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 67 suivante (positions 888 à 898 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : CTG GAC ATA AAT ACC - ou constitués par la séquence SEQ ID N 27 suivante (positions 884 à 898 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : GCT TGC TGG ACA TAA ATA CC ou ceux, (6) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 68 suivante (positions 1077 à 1101 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599- 634) : CTA TAA TAK GRT GTG GGG CGT GTT G dans laquelle K est G ou T, R est A ou G - -ou comprenant la séquence SEQ ID N 69 suivante (positions 1087 à 1101 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : TTG TGG GGC GTG TTG - ou constitués par la séquence SEQ ID N 28 suivante (positions 1082 à 1101d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : ATA AGT TGT GGG GCG TGT TG Les oligonucléotides ou amorces tels que définis ci-dessus permettent de détecter et d'identifier des fragments d'ADN provenant d'oiseaux appartenant à l'ordre des galliformes, et en particulier à la famille des gallinacés, ou à l'ordre des struthioniformes, et en particulier à la famille des struthionidés. L'invention a également pour objet les couples d'amorces constitués : - par l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 23, SEQ ID N 58, SEQ ID N 59, et l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 24, SEQ ID N 60, SEQ ID N 61 tels que définis ci-dessus ou, - par l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 25, SEQ ID N 62, SEQ ID N 63, et l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 26, SEQ ID N 64, SEQ ID N 65 tels que définis ci-dessus ou, - par l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 27, SEQ ID N 66, SEQ ID N 67, et l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 28, SEQ ID N 68, SEQ ID N 69 tels que définis ci-dessus ou, et avantageusement constitués par le couple d'oligonucléotides choisis parmi les couples suivants : - SEQ ID N 23 et SEQ ID N 24, - SEQ ID N 25 et SEQ ID N 26, - SEQ ID N 27 et SEQ ID N 28. Les couples d'amorces (SEQ ID N 23, SEQ ID N 24) et (SEQ ID N 25, SEQ ID N 26) tels que définis ci-dessus permettent d'obtenir, par réaction PCR, un fragment d'ADN provenant d'oiseaux appartenant à l'ordre des galliformes, et en particulier à la famille des gallinacés, présentant une taille et une séquence déterminées, spécifique des gallinacés. Le couple d'amorces (SEQ ID N 27, SEQ ID N 28) tel que défini ci-dessus permet d'obtenir, par réaction PCR, un fragment d'ADN provenant d'oiseaux appartenant à l'ordre des struthioniformes, et en particulier à la famille des struthionidés, présentant une taille et une séquence déterminées, spécifique des struthionidés. L'invention a encore pour objet les fragments d'ADN susceptibles d'être obtenus selon le procédé tel que défini ci-dessus, comprenant environ 100 à environ 500 paires de bases. Le fragment d'ADN de l'invention présente avantageusement une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec : - un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, comprise dans la SEQ ID N 6 suivante : ACYAGCTTCA GGCCCATACG TTCCCCCTAA ACCCCTCGCC CTCCTCACAT TTTTGCGCCT CTGGTTCCTC GGTCAGGGCC ATCMATTGGG TTCACTCACC YCYMYTYGCC YTTCAAAGTG GCATCTGTGG ANKACBTYCA CCWYYYCRRT GCGTWATCGC GGCATBYTYM ASYWTTTWSM CGCCTYTGGT TCYMYTTHTY TYT dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, K est G ou T, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, S est C ou G, H est A, C ou T, N est A, C, G ou T, et notamment fragment de 203 paires de bases comprenant ou constitué par la SEQ ID N 6 définie ci-dessus, - ou un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, comprise dans la SEQ ID N 7 suivante : ACYAGCTTCA GGCCCATACG TTCCCCCTAA ACCCCTCGCC CTCCTCACAT TTTTGCGCCT CTGGTTCCTC GGTCAGGGCC ATCMATTGGG TTCACTCACC YCYMYTYGCC YTTCAAAGTG GCATCTGTGG ANKACBT dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, K est G ou T, B est C, G ouT, et notamment fragment de 137 paires de bases comprenant ou constitué par la SEQ ID N 7 définie ci-dessus, - ou un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, comprise dans la SEQ ID N 8 suivante : AACCCCTCGC CCTCCTCACA TTTTTGCGCC TCTGGTTCCT CGGTCAGGGC CATCMATTGG GTTCACTCAC CYCYMYTYGC CYTTCAAAGT GGCATCTGTG GANKACBTYC ACCWYYYCRR TGCGTWATCG CGGCATBYTY MASYWTTTWS MCGCCTYTGG TTCYMYTTHT YTYT dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, K est G ou T, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, S est C ou G, H est A, C ou T, et notamment fragment de 174 paires de bases comprenant ou constitué par la SEQ ID N 8 définie ci-dessus, - ou un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, comprise dans la SEQ ID N 9 suivante : AACCCCTCGC CCTCCTCACA TTTTTGCGCC TCTGGTTCCT CGGTCAGGGC CATCMATTGG GTTCACTCAC CYCYMYTYGC CYTTCAAAGT GGCATCTGTG GANKACBT dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, K est G ou T, B est C, G ou T, et notamment fragment de 108 paires de bases comprenant ou constitué par la SEQ ID N 9 définie ci-dessus, - ou un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, comprise dans la SEQ ID N 10 suivante : ATCMATTGGG TTCACTCACC YCYMYTYGCC YTTCAAAGTG GCATCTGTGG ANKACBTYCA CCWYYYCRRT GCGTWATCGC GGCATBYTYM ASYWTTTWSM CGCCTYTGGT TCYMYTTHTY TYT dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, K est G ou T, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, S est C ou G, H est A, C ou T, et notamment fragment de 123 paires de bases comprenant ou constitué par la SEQ ID N 10 définie ci-dessus, - ou un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, comprise dans la SEQ ID N 13 suivante : YMYYKRYACT GATGCACTTK GDYCDCATTY RGTTRWKGYY MYNTCCRCHV HYCYABNBWH WVRTGYTRYY NRGTGAATGC TYGHHGGACA TADYWYWAWM MAWHWWMHYW YYHWSYRYWW YYYHYRSRMH HHMNRAAYDM AACCARHRDW YTTYMDCHRW THWDHWWHMM WHYWYVTWDY RTMWWHYHHV HMHHHHMHWM HHBHAWWHHH HNHNHYNHWA YYBCHNNYHH HWAWYNYSYY WHHYNWBVHW HHNBYBDMDM DWCHDWMMNR WWHDMAYDDH DYVDHHYAWM HTTATTAKAG RAACWCCAGY ACYARVWHD VWHNHAMHYN RRHRWHHMYY AYWAHYYHVH YNTYNMNAMH HNBNVYHYRD HYHRYYARYB RMHYVHHHYR YYCDCMTWSY WYMMHNHH dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, K est G ou T, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, S est C ou G, D est A, G ou T, V est A, C ou G, H est A, C ou T, et notamment fragment de 408 paires de bases comprenant ou constitué par la SEQ ID N 13 définie ci-dessus ou, fragments résultants d'une ou plusieurs délétions de nucléotides contigus ou non contigus dudit fragment de 408 paires de bases comprenant ou constitué par SEQ ID N 13, et susceptible d'être obtenu par amplification d'ADNmt provenant d'oiseaux, à l'aide des oligonucléotides SEQ ID N 11 et SEQ ID N 12 tels que définis précédemment, et notamment fragments de 331 paires de bases, de 328 paires de bases ou 288 paires de bases, - ou un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, comprise dans la SEQ ID N 20 suivante : HWBDNHMRMG RNCATHHHHN NYHVHBDNAH NNNHCHHCCA WRMHHHNNV RTGMAYGHYC YHRNDVHHHH NHVNHWMHV VMHVNVHNHN NHHHNHVHW RWNMACMARR RCMMHDHNNR VTGAATGCTH NMHRRACAWR DMNYNDVHAH HMHTCYDDNB YYBHHTCCAC CCRMMCATWH dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, D est A, G ou T, V est A, C ou G, H est A, C ou T, et notamment fragment de 180 paires de bases comprenant ou constitué par la SEQ ID N 20 définie ci-dessus, - ou un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, comprise dans la SEQ ID N 21 suivante : WKGYYMYNTC CRCHVHYCYA BNBWHWVRTG YTRYYNRGTG AATGCTYGHH GGACATAMHH HMNRAAYDMA ACHRHYHHVH MHHHNHNHNH HNNYHHHWAY WBVHWHWCHD WMMNRWWHDM AYDDHDYVDH HYAWMHTTAT TAKAGRAACW CCAGYACYAR WVHDVWHNH AMHYNRRHRW HHMYYAYWAH Y dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, D est A, G ou T, V est A, C ou G, H est A, C ou T, K est G ou T, et notamment fragment de 190 paires de bases comprenant ou constitué par la SEQ ID N 21 définie ci-dessus, - ou un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, comprise dans la SEQ ID N 22 suivante : RTGAAYGHYC YHRNDVHHNH MVHNHNVMHV VNHNHHNHNH WVSWNMARD SCMNHNNTTM VTGAATGCTH NMHRRACAWD MNYNDVHAHH MHTCYNDNBH YBHHTCCACC CRMMCATWHM TYATGRAVYY NCGTAYCARR TGGATTTATT RRYCGTACWC CTCACGTGAA ATCAGC dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, D est A, G ou T, V est A, C ou G, H est A, C ou T, S est C ou G, et notamment fragment de 176 paires de bases comprenant ou constitué par la SEQ ID N 22 définie ci-dessus. Les fragments d'ADN tels que définis ci-dessus sont spécifiques d'oiseaux, notamment d'ansériformes ou des galliformes, et plus particulièrement d'anatidés et de gallinacés. A titre d'exemple, la séquence nucléotidique du fragment SEQ ID N 6 telle que définie ci-dessous, est spécifique du canard mandarin (Aix galericulata) et est obtenue par amplification à l'aide des amorces SEQ ID N 1 et SEQ ID N 5 : ACTAGCTTCA GGCCCATACG TTCCCCCTAA ACCCCTCGCC CTCCTCACAT TTTTGCGCCT CTGGTTCCTC GGTCAGGGCC ATCAATTGGG TTCACTCACC TCCTCCTTGC CTTTCAAAGT GGCATCTGTG GAAGACCTCC ACCATCTCAA TGCGTAATCG CGGCATCCTC CAGCTTTTTG GCGCCTCTGG TTCCTCTTAT TTT L'invention concerne également le fragment d'ADN présentant avantageusement une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec : - un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, comprise dans la SEQ ID N 29 suivante : KMAWVNGGHM WTVACHYATA TTCCMCWTYY CKYMCHAHVB MCHYTVDATG MAYSMTSHHR KRCMHVCTMH NTTHCVYDHM CCATAGABAG TTCCWAACHA CWATCRRKVM MCMTAACTAT GAATGGTTRC VGHACATAAA TCTCACTCTC ATGTTCTCCC CCCAACAAGT CACCTAACTA TGAATGGTTA CAGGACATAC ATTTDACTAY CATGTTCTAA CCSATTTGGT T dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, D est A, G ou T, V est A, C ou G, H est A, C ou T, S est C ou G, K est G ou T et notamment fragment de 231 paires de bases comprenant ou constitué par la SEQ ID N 29 définie ci-dessus, - ou un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, comprise dans la SEQ ID N 30 suivante : TACAWACYMW CGYAWWRRWD CCCTYAMAYY AYAHAAMCGY YTATCGYWTA DTATATATAC ATTRYWRYDY AYYMYAYMAT TATTAKAGAA ACYCCMCTAC CRAAACMAWC AWHARARRCW WAHADHWAHA TKCMRCDYAW VBYHCYTCAS AWRCMWWBRT KRTWTATATT GTTAA dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, D est A, G ou T, V est A, C ou G, H est A, C ou T, S est C ou G, K est G ou T, et notamment fragment de 175 paires de bases comprenant ou constitué par la SEQ ID N 30 définie ci-dessus, - ou un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, comprise dans la SEQ ID N 31 suivante : TGAATGCTTG YYGGACATWW TWYMAYYWAT TWTCACTTCC WCTGAYTTTY YTMACAMMAC YAGGAYWMAW YTYYTWYDTY DKTWYWAAYW YWTKWTTTVW TYAYWTYAAW MACATYTTTT AMYTAWAYTA MCYWTACAWA CYMWCMGYAY WRRWTDTYAM AYYAAHAAMC GYYCGYWTAD TATATATACA TARYWRYTGY RYYTMYAYCM ATTATT dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, R est A ou G, W est A ou T, D est A, G ou T, V est A, C ou G, H est A, C ou T, et notamment fragment de 216 paires de bases comprenant ou constitué par la SEQ ID N 31 définie ci-dessus. Les fragments d'ADN SEQ ID N 29 et SEQ ID N 30 tels que définis ci-dessus sont spécifiques d'oiseaux appartenant à l'ordre des galliformes, et plus particulièrement à la famille des gallinacés ; le fragment d'ADN SEQ ID N 31 tel que défini ci-dessus est spécifique d'oiseaux appartenant à l'ordre des struthioniformes, et plus particulièrement à la famille des struthionidés. Selon un mode de réalisation avantageux du procédé de l'invention, le fragment d'ADN amplifié obtenu est identifié : - par séquençage dudit fragment amplifié, - par électrophorèse sur gel des fragments obtenus après digestion à l'aide d'enzymes de restriction dudit fragment, - directement, par simple visualisation de la présence dudit fragment amplifié par électrophorèse sur gel. Selon un mode de réalisation avantageux de l'invention, la méthode d'identification par séquençage du fragment amplifié obtenu permet d'identifier les espèces d'oiseaux appartenant à l'ordre des ansériformes, et plus particulièrement à la famille des anatidés. La méthode d'identification par électrophorèse sur gel des fragments obtenus après digestion à l'aide d'enzymes de restriction permet d'identifier les genres d'oiseaux appartenant à l'ordre des ansériformes, et plus particulièrement à la famille des anatidés, et/ou à l'ordre des galliformes, et plus particulièrement à la famille des gallinacés. La méthode d'identification directe, par simple visualisation de la présence de la séquence amplifiée obtenue, permet d'identifier les espèces d'oiseaux appartenant à l'ordre des ansériformes, et plus particulièrement à la famille des anatidés, à l'ordre des galliformes, et plus particulièrement à la famille des gallinacés, et/ou à l'ordre des struthioniformes, et plus particulièrement à la famille des struthionidés. Chacune de ces trois méthodes d'identification est décrite plus en détails ci-dessous. 1) La méthode d'identification par séquençage de la séquence ou du fragment d'ADN amplifié(e) est dénommée dans ce qui suit stratégie globale , car elle permet de détecter et d'identifier la présence ou l'absence de tous les anatidés existants. La liste de tous les anatidés existants pouvant être détectés et identifiés par le procédé de l'invention est donnée dans le tableau 1 ci-après. Les amorces utilisées afin d'effectuer l'amplification par la méthode PCR d'une séquence d'ADN provenant d'anatidés, éventuellement présente dans un échantillon de matière organique à analyser, sont les 15 amorces listées ci-dessous et telles que définies cidessus : SEQ ID N 32, SEQ ID N 33, SEQ ID N 1, SEQ ID N 34, SEQ ID N 35, SEQ ID N 2, SEQ ID N 36, SEQ ID N 37, SEQ ID N 3, SEQ ID N 38, SEQ ID N 39, SEQ ID N 4, SEQ ID N 40, SEQ ID N 41, SEQ ID N 5, et plus particulièrement les 5 amorces SEQ ID N 1, SEQ ID N 2, SEQ ID N 3, SEQ ID N 4 et SEQ ID N 5. Chacun des oligonucléotides SEQ ID N 1à SEQ ID N 3 peut être utilisé en couple avec l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 4 et SEQ ID N 5. Selon un mode de mise en oeuvre particulièrement avantageux de la présente invention, une partie des étapes d'hybridation des cycles constituant la réaction d'amplification est effectuée à une température d'environ 50 C à environ 58 C. En outre, le Demandeur a trouvé qu'une température de 55 C était particulièrement appropriée pour obtenir une amplification spécifique. Un tel mode de mise en oeuvre permet d'obtenir une plus grande spécificité d'amplification. On notera à ce sujet que le Demandeur a résolu un certain nombre de problèmes techniques pour la mise en oeuvre de ce procédé. Tout d'abord, le choix des amorces constituait un réel problème, car il fallait sélectionner d'une part des séquences communes aux différentes espèces d'anatidés mais pas à d'autres espèces d'oiseaux, et d'autre part s'hybridant de manière stable, dans des conditions physico-chimiques très variables, représentatives de la grande variabilité des matières organiques susceptibles de contenir des matières biologiques provenant d'anatidés. Les températures des étapes de séparation des brins et d'élongation sont avantageusement respectivement d'environ 94 C et d'environ 72 C. Le procédé décrit ci-dessus est spécifique aux anatidés mais global entre toutes les espèces d'anatidés car il ne donne aucune réaction d'amplification détectable en présence d'ADN d'origine autre que les anatidés. Selon un mode de réalisation avantageux du procédé de l'invention, l'utilisation des couples d'amorces oligonucléotidiques suivants : - (SEQ ID N 1, SEQ ID N 5), - (SEQ ID N 2, SEQ ID N 5), - (SEQ ID N 1, SEQ ID N 4), - (SEQ ID N 2, SEQ ID N 4) et, - (SEQ ID N 3, SEQ ID N 5), permettent respectivement d'obtenir : - un fragment d'ADN SEQ ID N 6 de 203 paires de bases tel que défini ci-dessus, - un fragment d'ADN SEQ ID N 8 de 174 paires de bases tel que défini ci-dessus, - un fragment d'ADN SEQ ID N 7 de 137 paires de bases tel que défini ci-dessus, - un fragment d'ADN SEQ ID N 9 de 108 paires de bases tel que défini ci-dessus et, - un fragment d'ADN SEQ ID N 10 de 123 paires de bases tel que défini ci-dessus. Les produits d'amplification décrits ci-dessus peuvent être détectés même lorsqu'une fraction importante de l'ADN est dégradée, à savoir après action de facteurs physiques, chimiques et/ou biochimiques, et lors de transformations diverses des échantillons de matières organiques. L'expérimentateur recherche préférentiellement la présence de la séquence SEQ ID n 6 décrite ci-dessus à l'aide des amorces appropriées, et dans le cas où la détection serait négative, il recherche les fragments de taille inférieure et notamment ceux d'environ 174,137, 123 et 108 paires de bases. L'unicité des produits d'amplification représente un autre avantage de la présente invention, celle-ci permettant d'obtenir une sensibilité importante et facilitant grandement l'interprétation des résultats. Le procédé selon la présente invention présente un grand nombre d'avantages par rapport aux techniques d'identification déjà connues. Ainsi, le procédé décrit présente une grande simplicité d'interprétation, en raison de la production d'un seul et unique produit, spécifique de l'ADN d'anatidés et qui donc ne se retrouve pas dans les produits d'amplifications d'ADN d'autres espèces. Le produit d'amplification peut être mis en évidence par toute méthode connue de l'homme de métier, et en particulier par simple électrophorèse sur un gel d'agarose. La lecture des profils de migration des produits d'amplification obtenus avec le procédé de l'invention consiste donc simplement à déterminer la présence d'une seule et unique bande de migration dans un gel d'électrophorèse. En l'absence d'une telle bande, on peut considérer qu'il n'y a pas de traces détectables d'ADN d'anatidés. La présence d'une bande signifie au contraire que l'ADN d'anatidés est présent dans l'échantillon, et donc que l'échantillon en question contient de la matière biologique à base d'anatidés. Le produit d'amplification obtenu peut ensuite être séquence afin de déterminer sa séquence nucléotidique. La comparaison de cette séquence avec toutes les séquences nucléotidiques connues des anatidés permet de déterminer l'espèce d'anatidés présente dans l'échantillon de matière organique, et ainsi de différencier les espèces les unes par rapport aux autres. Le produit d'amplification obtenu, identifié à l'aide de la stratégie globale, est généralement situé dans la partie centrale de la région de contrôle de la réplication de l'ADN mitochondrial, délimitée par les nucléotides situés aux environs des positions 440 et 750, notamment aux environs des positions 450 et 700, et de préférence aux environs des positions 459 et 665 de la région de contrôle de la réplication de l'ADN mitochondrial, lesdites positions étant définies d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 599-634. 2) La méthode d'identification par électrophorèse sur gel des fragments obtenus à l'aide d'enzymes de restriction dudit fragment amplifié, est appelée stratégie intermédiaire , car elle permet de détecter et d'identifier les genres d'anatidés et de gallinacés les plus communs. La stratégie intermédiaire permet d'obtenir un résultat plus rapidement que la stratégie globale , car la phase de séquençage est évitée. Cette méthode d'identification consiste à mettre un produit d'amplification obtenu par PCR en présence d'enzymes de restriction. Les oligonucléotides sont choisis de façon à avoir un fragment d'amplification assez variable afin de pouvoir distinguer suffisamment de genres d'anatidés et de gallinacés après coupure enzymatique. Les amorces utilisées afin d'effectuer l'amplification par la méthode PCR d'une séquence d'ADN provenant d'anatidés ou de gallinacés, éventuellement présente dans un échantillon de matière organique à analyser, sont les 6 amorces listées ci-après et telles que définies ci-dessus : SEQ ID N 42, SEQ ID N 43, SEQ ID N 11, SEQ ID N 44, SEQ ID N 45 et SEQ ID N 12, et plus particulièrement les 2 amorces SEQ ID N 11 et SEQ ID N 12. Selon un mode de réalisation avantageux du procédé de l'invention, l'utilisation du couple d'oligonucléotides SEQ ID N'Il et SEQ ID N 12 permet d'obtenir un fragment d'amplification SEQ ID N 13 d'une taille variable, en fonction du genre d'anatidés ou de gallinacés présent dans l'échantillon de matière organique à analyser. Ainsi, un fragment d'amplification SEQ ID N 13 d'une taille de 408 pb, obtenu à l'aide du couple (SEQ ID N 11, SEQ ID N 12), est caractéristique de l'oie du genre Anser, et notamment de l'espèce Anser anser (oie commune). La séquence nucléotidique de ce fragment a été définie ci-dessus. Un fragment d'amplification SEQ ID N 13 d'une taille de 288 pb, obtenu à l'aide du couple (SEQ ID N'Il, SEQ ID N 12), est caractéristique du canard du genre Anas, et notamment de l'espèce Anas platyrhynchos (canard colvert) ou du genre Cairina, et notamment de l'espèce Cairina moschata (canard de barbarie), et présente la séquence nucléotidique suivante : YMYYKRYACT GATGCACTTK GDYCDCATTY RGTTRWKGYY MYNTCCRCHV HYCYABNBWH WVRTGYTRYY NRGTGAATGC TYGHHGGACA TAMHHHMNRA AYDMAACHRH YHHVHMHHHN HNHYNHHNNY HHHWAYWBVH WHWCHDWMMN RWWHDMAYDD HDYVDHHYAW MHTTATTAKA GRAACWCCAG YACYARVWH DVWHNHAMHY NRRHRWHHMY YAYWAHYYHV HYNTYNMNMH HNBNVYHYRD HYHRYYARYB RMHYVHHHYR YYCDCMTWSY WYMMHNHH dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, K est G ou T, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, S est C ou G, D est A, G ou T, V est A, C ou G, H est A, C ou T. Un fragment d'amplification SEQ ID N 13 d'une taille de 328 pb, obtenu à l'aide du couple (SEQ ID N 11, SEQ ID N 12), est caractéristique du cygne du genre Cygnus et notamment de l'espèce Cygnus cygnus (cygne sauvage), et présente la séquence nucléotidique suivante : YMYYKRYACT GATGCACTTK GDYCDCATTY RGTTRWKGYY MYNTCCRCHV HYCYABNBWH WVRTGYTRYY NRGTGAATGC TYGHHGGACA TAMHHHMNRA AYDMAACCAY DMAACHRHYH HVHMHHHNHN HYNHHNNYRH HWAYYBCHNN YHHWAWYMYS YYWHHYNWBV HWHNBYBDMD MDWCHDWMNR WWHDMAYDDH DYVDHHYAWM HTTATTAKAG RAACWCCAGY ACYARVWHD VWHNHAMHYN RRHRWHHMYY AYWAHYYHVH YNTYNMNAMH HNBNVYHYRD HYHRYYARYB RMHYVHHHYR YYCDCMTWSY WYMMHNHH dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, K est G ou T, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, S est C ou G, D est A, G ou T, V est A, C ou G, H est A, C ou T. Un fragment SEQ ID N 13 d'une taille de 331 pb, obtenu à l'aide du couple (SEQ ID N 11, SEQ ID N 12), est caractéristique du poulet du genre Gallus, et notamment de l'espèce Gallus gallus (poulet commun) et présente la séquence nucléotidique suivante : YMYYKRCTGA TGCACTTKGD YCDCATTYRG TTRWKGYYMY CCRCHVHYCY ABNBWHWVRT GYTRYYNRGT GAATGCTYGH HGGACATADY WYWAWMMAWH WMHYWYYHWS YRYWWYYYHY RSRMHHHMRA AYDMAACCAR HRDWYTTYMD CHRWTHDYRT MWWHYHVHMH HNHWAYYBCH NNYHDMDWCH DWMMRWWHDM AYDDHDYVDH HYAWHTTATT AKAGRAACWC CAGYACYARV WHDVWHNHA MHYNRRHRWH MYYAYWAHYY HVHYNTYNMN AMHHNBNVYH YRDHYHRYYA RYBRMHYVHH HYRYYCDCMT WSYWYMMHNH H dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, K est G ou T, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, S est C ou G, D est A, G ou T, V est A, C ou G, H est A, C ou T. En effet, les amorces SEQ ID N 11 et SEQ ID N 12 encadrent une partie de la région de contrôle de l'ADMmt qui varie du fait d'une délétion d'ADN respectivement chez le canard, le cygne et le poulet par rapport à l'oie. Selon un mode de mise en oeuvre particulièrement avantageux de la présente invention, une partie des étapes d'hybridation des cycles constituant la réaction d'amplification est effectuée à une température d'environ 50 C à environ 58 C. En outre, le demandeur a trouvé qu'une température de 55 C était particulièrement appropriée pour obtenir une amplification spécifique. Un tel mode de mise en oeuvre permet d'obtenir une plus grande spécificité d'amplification. Le fragment SEQ ID N 13 amplifié obtenu est soumis à différentes enzymes de restriction spécifiques de différents genre d'oiseaux de la famille des anatidés ou des gallinacés. Les enzymes ont été choisies afin d'avoir des sites de coupures différents sur les séquences des genres choisis. A titre d'exemple on pourra citer, lorsqu'il s'agit d'identifier une séquence d'ADN amplifiée provenant d'anatidés, les enzymes de restriction choisies dans le groupe constitué par Nsi I, Acc I, Hha 1 ou Nde 1 ou leurs mélanges. Les enzymes Nsi I, Ace I, Hha 1 et Nde 1 sont spécifiques des genres d'anatidés les plus fréquemment trouvés dans des échantillons de matière organique. Plus particulièrement, l'enzyme Nsi I est spécifique du genre Anas, regroupant notamment les espèces Anas platyrhynchos (canard pilet), Anas acuta (canard pilet), Anas querquedula (sarcelle) ; l'enzyme Acc I est spécifique du genre Cairina, englobant notamment l'espèce Cairina moschata (canard de barbarie) ; l'enzyme Hha I est spécifique du genre Anser, regroupant notamment l'espèce Anser anser (oie commune), Anser caerulescens (oie des neiges) ; l'enzyme Nde I est spécifique du genre Cygnus regroupant notamment les espèces Cygnus cygnus (cygne sauvage), Cygnus atratus (cygne noir). Lorsqu'il s'agit d'identifier une séquence d'ADN amplifiée provenant de gallinacés, on utilisera l'enzyme de restriction BsaJ I. L'enzyme BsaJ I est spécifique du genre de gallinacés le plus fréquemment trouvé dans un échantillon de matière organique, à savoir le genre Gallus, englobant notamment l'espèce Gallus gallus (poulet). On détermine ainsi, en fonction de la taille des fragments obtenus à l'aide des enzymes de restriction susmentionnées, l'espèce d'anatidés ou de gallinacés présente dans l'échantillon de matière organique, et on peut ainsi différencier les espèces les unes par rapport aux autres. A titre d'exemple on obtient, à l'aide de l'enzyme Nsi I, deux fragments d'une taille respective de 154 pb et 134 pb, caractéristiques du genre Anas. L'enzyme Ace I conduit à deux fragments d'une taille respective de 147 pb et 141 pb, caractéristiques du genre Cairina. L'enzyme Hha I conduit à trois fragments d'une taille respective de 11pb, 113 pb et 284 pb, caractéristiques du genre Anser. L'enzyme Nde I conduit à deux fragments d'une taille respective de 132 pb et 196 pb, caractéristiques du genre Cygnus. L'enzyme BsaJ I conduit à deux fragments d'une taille de 50 pb et 281 pb, caractéristiques du genre Gallus. 3) La méthode d'identification directe, par simple visualisation de la présence du fragment d'ADN amplifié à l'aide d'une électrophorèse sur gel, est dénommée dans ce qui suit stratégie spécifique , car elle permet de détecter et d'identifier directement des espèces d'anatidés, de gallinacés et de struthionidés bien spécifiques. Dans la stratégie spécifique , l'étape de détection et d'identification est une étape simultanée. En effet, cette méthode ne requiert pas, contrairement aux deux méthodes décrites cidessus, de procéder à une étape supplémentaire après l'obtention de la séquence amplifiée et permet ainsi de détecter et d'identifier directement après amplification certaines espèces d'oiseaux bien particulières, qui sont les espèces domestiques les plus courantes car les plus utilisées dans les préparations alimentaires ou autres. Ces espèces d'oiseaux spécifiques pouvant être directement détectées et identifiées sont : - le canard colvert ou commun (Anas platyrhynchos), le canard de barbarie (Cairina moschata) et l'oie commune (Anser anser) pour les oiseaux appartenant à la famille des anatidés (ordre des ansériformes), - le poulet (Gallus gallus) et la caille (Coturnix coturnix) pour les oiseaux appartenant à la famille des gallinacés (ordre des galliformes), - l'autruche (Struthio camelus) pour les oiseaux appartenant à la famille des struthionidés (ordre des struthioniformes). L'amplification de l'ADN est effectuée par la méthode d'amplification en chaîne par polymérase (PCR) comme décrit précédemment. La stratégie spécifique permettant de détecter et d'identifier la présence d'anatidés dans un échantillon de matière organique est décrite plus en détails ci-dessous. a) Stratégie spécifique permettant d'identifier les anatidés. Les amorces utilisées afin d'effectuer l'amplification par la méthode PCR d'une séquence d'ADN provenant d'anatidés, éventuellement présente dans un échantillon de matière organique à analyser, sont les 18 amorces listées ci-dessous et telles que définies cidessus : SEQ ID N 46, SEQ ID N 47, SEQ ID N 14, SEQ ID N 48, SEQ ID N 49, SEQ ID N 15, SEQ ID N 50, SEQ ID N 51, SEQ ID N 16, SEQ ID N 52, SEQ ID N 53, SEQ ID N 17, SEQ ID N 54, SEQ ID N 55, SEQ ID N 18, SEQ ID N 56, SEQ ID N 57 et SEQ ID N 19, et plus particulièrement les 6 amorces SEQ ID N 14, SEQ ID N 15, SEQ ID N 16, SEQ ID N 17, SEQ ID N 18 et SEQ ID N 19. Selon un mode de réalisation avantageux du procédé de l'invention, l'utilisation des couples d'oligonucléotides suivants : - (SEQ ID N 14, SEQ ID N 15), - (SEQ ID N 16, SEQ ID N 17) et - (SEQ ID N 18, SEQ ID N 19), permettent respectivement d'obtenir : - un fragment SEQ ID N 20 de 180 paires de bases tel que défini ci-dessus, - un fragment SEQ ID N 21 de 190 paires de bases tel que défini ci-dessus et, - un fragment SEQ ID N 22 de 176 paires de bases tel que défini ci-dessus. Selon un mode de mise en oeuvre particulièrement avantageux de la présente invention, une partie des étapes d'hybridation des cycles constituant la réaction d'amplification est effectuée à une température de 63 C qui est particulièrement appropriée pour obtenir une amplification spécifique. Un tel mode de mise en oeuvre permet d'obtenir une plus grande spécificité d'amplification. La présence des fragments SEQ ID N 20, SEQ ID N 21 et SEQ ID N 22 après amplification est détectée par simple visualisation par électrophorèse sur gel d'agarose. La visualisation du fragment SEQ ID N 20 permet de détecter et d'identifier la présence de canard colvert (Anas platyrhynchos). La visualisation du fragment SEQ ID N 21 permet de détecter et d'identifier la présence de canard de barbarie (Cairina moschata). La visualisation du fragment SEQ ID N 22 permet de détecter et d'identifier la présence d'oie commune (Anser anser). La stratégie spécifique permettant de détecter et d'identifier la présence de gallinacés ou de struthionidés dans un échantillon de matière organique est décrite plus en détails cidessous. b) Stratégie spécifique permettant d'identifier les gallinacés ou les struthionidés. Les amorces utilisées afin d'effectuer l'amplification par la méthode PCR d'une séquence d'ADN provenant de galliformes, éventuellement présente dans un échantillon de matière organique à analyser, sont les 12 amorces listées ci-dessous et telles que définies cidessus : SEQ ID N 58, SEQ ID N 59, SEQ ID N 23, SEQ ID N 60, SEQ ID N 61, SEQ ID N 24, SEQ ID N 62, SEQ ID N 63, SEQ ID N 25, SEQ ID N 64, SEQ ID N 65 et SEQ ID N 26, et plus particulièrement les 4 amorces SEQ ID N 23, SEQ ID N 24, SEQ ID N 25 et SEQ ID N 26. Selon un mode de réalisation avantageux du procédé de l'invention, l'utilisation des couples d'amorces oligonucléotidiques suivants : - (SEQ ID N 23, SEQ ID N 24), - (SEQ ID N 25, SEQ ID N 26) et, permettent respectivement d'obtenir : - le fragment SEQ ID N 29 de 231paires de bases tel que défini ci-dessus, - le fragment SEQ ID N 30 de 175 paires de bases tel que défini ci-dessus. Les amorces utilisées afin d'effectuer l'amplification par la méthode PCR d'une séquence d'ADN provenant de struthioniformes, éventuellement présente dans un échantillon de matière organique à analyser, sont les 6 amorces listées ci-dessous et telles que définies cidessus : SEQ ID N 66, SEQ ID N 67, SEQ ID N 27, SEQ ID N 68, SEQ ID N 69 et SEQ ID N 28, et plus particulièrement les amorces SEQ ID N 27 et SEQ ID N 28. Selon un mode de réalisation avantageux du procédé de l'invention, l'utilisation du couple d'oligonucléotides (SEQ ID N 27, SEQ ID N 28), permet d'obtenir le fragment SEQ ID N 31 de 216 paires de bases tel que défini ci-dessus. Selon un mode de mise en oeuvre particulièrement avantageux du procédé de l'invention, une partie des étapes d'hybridation des cycles constituant la réaction d'amplification est effectuée à une température de 55 C qui est particulièrement appropriée pour obtenir une amplification spécifique. Un tel mode de mise en oeuvre permet d'obtenir une plus grande spécificité d'amplification. La visualisation du fragment SEQ ID N 29 permet de détecter et d'identifier la présence de poulet (Gallus gallus). La visualisation du fragment SEQ ID N 30 permet de détecter et d'identifier la présence de caille (Coturnix coturnix). La visualisation du fragment SEQ ID N 31 permet de détecter et d'identifier la présence d'autruche (Struthio camelus). Le produit d'amplification obtenu, identifié à l'aide de la stratégie intermédiaire ou de la stratégie spécifique, est généralement situé dans la partie 5' de la région de contrôle de la réplication de l'ADN mitochondrial, délimitée par les nucléotides situés aux environs des positions 1 et 439, notamment aux environs des positions 80 et 433, et de préférence aux environs des positions 150 et 433 de la région de contrôle de la réplication de l'ADN mitochondrial, ou dans la partie 3' de la région de contrôle de la réplication de l'ADN mitochondrial, délimitée par les nucléotides situés aux environs des positions 750 et 1227, notamment aux environs des positions 780 et 1227, et de préférence aux environs des positions 800 et 1227 de la région de contrôle de la réplication de l'ADN mitochondrial, lesdites positions étant définies d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 599-634. L'invention a également pour objet l'utilisation de séquences nucléotidiques choisies parmi les amorces oligonucléotidiques telles que définies ci-dessus, ou les fragments d'ADN tels que définis ci-dessus, pour la mise en #uvre d'une méthode de détection de la présence de matières biologiques provenant d'oiseaux, notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes, et/ou d'identification de l'espèce d'oiseaux, notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes présente, dans un échantillon de matière organique susceptible de contenir de telles matières biologiques. A titre d'exemple d'échantillon de matière organique, on peut citer les produits agroalimentaires tels que le foie gras, les pâtés, les viandes, les graisses, les plats cuisinés, les oeufs etc...., les produits manufacturés tels que plumes, les duvets, les parures a bases de plumes etc..., les oeufs de collection, les plumes de collection, les animaux vivants d'élevages ou sauvages, les animaux taxidermisés etc.... L'invention a également pour objet l'utilisation telle que définie ci-dessus pour la mise en #uvre d'une méthode de détection de la présence de matières biologiques provenant d'oiseaux, notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes, et/ou d'identification de l'espèce d'oiseaux, notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes présente, dans des échantillons de matières organiques frais ou transformés tels que les produits agro-alimentaires, notamment le foie gras, les pâtés, les viandes, les graisses, les plats cuisinés, les #ufs, les produits manufacturés tels que ceux à base de plumes. Description des figures. La figure 1 représente un gel d'agarose coloré par du bromure d'éthidium. Un marqueur de taille de 100 paires de bases (pb) (M) est déposé sur le gel. Les ADN sont extraits à partir de différents échantillons de matières organiques tels que des plumes (puits 1), du sang (puits 2), des os (puits 3), de la mousse de canard (puits 4), des plats cuisinés (puits 5), et sont déposés sur le gel. La figure 2 représente un gel d'agarose coloré par du bromure d'éthidium. Un marqueur de taille de 100 pb (M) est déposé sur le gel. Les ADN de canard colvert (puits 1), de canard de barbarie (puits 2), de canard pilet (puits 3), d'eider (puits 4), d'oie (puits 5), de cygne (puits 6), de poulet (puits 7), de caille (puits 8), de dinde (puits 9) et d'autruche (puits 10) ont été amplifiés à l'aide des amorces SEQ ID N 1 et SEQ ID N 5. Le produit d'amplification obtenu SEQ ID N 6 migre en formant une bande de 203 paires de bases (pb). Le puits 11correspond à un témoin négatif d'amplification. La figure 3 représente des alignements de séquences nucléotidiques de 120 paires de bases (120 pb) de la région de contrôle de la réplication de l'ADN mitochondrial de différentes espèces d'oiseaux, notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes. Les séquences obtenues après séquençage sont alignées et comparées avec les séquences déjà connues. Les séquences des différentes espèces d'oiseaux représentées sont respectivement les suivantes (en allant de haut en bas de la figure) : canard colvert, canard pilet, canard de barbarie, fuligule, canard mandarin, sarcelle, harle, melanitta, bernache, oie cendrée, oie indicus, cygne, dendrocygne, poulet, caille et autruche. Les points représentent les bases conservées avec celles du canard colvert (séquence de référence). Les tirets représentent des délétions de bases. Les figures 4-a, 4-b, 4-c, 4-d, 4-e représentent les profils de migration attendus après digestion enzymatique du fragment SEQ ID N 13 et dépôt sur un gel d'agarose à 2% après coloration par du bromure d'éthidium. Un marqueur de taille de 100 bp (M) est déposé sur le gel. La figure 4-f représente le profil de migration obtenu après digestion enzymatique du fragment SEQ ID N 13 et dépôt sur un gel d'agarose à 2% après coloration par du bromure d'éthidium. Un marqueur de taille de 100 bp (M) est déposé sur le gel. Le fragment SEQ ID N 13 est obtenu à l'aide des amorces SEQ ID N'Il et SEQ ID N 12, par amplification d'ADNmt extrait d'un plat cuisiné dont on cherche à détecter et identifier le genre d'oiseau présent dans ledit plat. La figure 4-a représente plus particulièrement le profil attendu pour le genre Anas. Le fragment SEQ ID N 13 de 288 pb est déposé dans le puits 1 sans avoir été digéré, et sert donc de contrôle en le comparant avec les autres fragments mis en présence des différentes enzymes. Le puits 2 est le même fragment SEQ ID N 13 digéré avec l'enzyme Nsi I, spécifique du genre Anas : on observe une coupure engendrant deux fragments de 154 et 134 paires de bases, qui sont bien les fragments spécifiques du genre Anas. Le puits 3 est le même fragment SEQ ID N 13 digéré par l'enzyme Acc I, spécifique du genre Cairina : aucune coupure n'est observée, étant donnée que Ace 1 n'est pas spécifique du genre Anas. Le puits 4 est le même fragment SEQ ID N 13 digéré par l'enzyme Hha I, spécifique du genre Anser : aucune coupure n'est observée. Le puits 5 est le même fragment SEQ ID N 13 digéré par l'enzyme Nde I, spécifique du genre Cygnus : aucune coupure n'est observée. Le puits 6 est le même fragment SEQ ID N 13 digéré par l'enzyme BsaJ I, spécifique du genre Gallus : aucune coupure n'est observée. Le fragment SEQ ID N 13 obtenu après amplification est à chaque fois mis en présence de toutes les enzymes, car il peut arriver qu'il y ait un mélange de genres, et ainsi on peut obtenir un profil où l'enzyme spécifique du genre Anas coupe SEQ ID N 13, et l'enzyme spécifique du genre Cairina coupe aussi SEQ ID N 13. Les deux genres sont donc présents, il y a donc un mélange d'espèces dans l'échantillon de matière organique. La figure 4-b est le profil attendu pour le genre Cairina. Le fragment SEQ ID N 13de 288 pb est déposé dans le puits 1 sans avoir été digéré (contrôle). Le puits 2 est le fragment SEQ ID N 13 digéré avec l'enzyme Nsi I : aucune coupure n'est observée, étant donnée que Nsi I n'est pas spécifique du genre Cairina. Le puits 3 est le fragment SEQ ID N 13 digéré par l'enzyme Acc I: on observe une coupure engendrant deux fragments de 147 et 141 paires de bases, qui sont bien les fragments spécifiques du genre Cairina. Le puits 4 est le fragment SEQ ID N 13 digéré par l'enzyme Hha I : aucune coupure n'est observée. Le puits 5 est le fragment SEQ ID N 13digéré par l'enzyme Nde I : aucune coupure n'est observée. Le puits 6 est le fragment SEQ ID N 13digéré par l'enzyme BsaJ I: aucune coupure n'est observée. La figure 4-c est le profil attendu pour le genre Anser. Le fragment SEQ ID N 13 de 408 pb est déposé dans le puits 1 sans avoir été digéré (contrôle). Les puits 2 et 3 représentent respectivement le fragment SEQ ID N 13 digéré avec les enzymes Nsi I et Acc I : aucune coupure n'est observée. Le puits 4 représente le fragment SEQ ID N 13 digéré avec Hha I: on observe une coupure engendrant trois fragments de 11, 113 et 284 paires de bases, qui sont bien les fragments spécifiques du genre Anser. Les puits 5 et 6 représentent respectivement le fragment SEQ ID N 13digéré par l'enzyme Nde I et BsaJ I : aucune coupure n'est observée. La figure 4-d est le profil attendu pour le genre Cygnus. Le fragment SEQ ID N 13 de 328 pb est déposé dans le puits 1 sans avoir été digéré (contrôle). Les puits 2,3 et 4 représentent respectivement le fragment SEQ ID N 13 digéré avec les enzymes Nsi I, Acc I et Hha I: aucune coupure n'est observée. Le puits 5 représente le fragment SEQ ID N 13digéré avec Nde I : on observe une coupure engendrant deux fragments de 132 et 196 paires de bases, qui sont bien les fragments spécifiques du genre Cygnus. Le puits 6 représentent le fragment SEQ ID N 13digéré par l'enzyme BsaJ I : aucune coupure n'est observée. La figure 4-e est le profil attendu pour le genre Gallus. Le fragment SEQ ID N 13 de 331 pb est déposé dans le puits 1 sans avoir été digéré (contrôle). Les puits 2,3, 4 et 5 représentent respectivement le fragment SEQ ID N 13 digéré avec les enzymes Nsi I, Acc I, Hha I et Nde I : aucune coupure n'est observée. Le puits 6 représente le fragment SEQ ID N 13 digéré avec BsaJ I : on observe une coupure engendrant deux fragments de 50 et 281 paires de bases, qui sont bien les fragments spécifiques du genre Gallus. Dans la figure 4-f, l'exemple choisi est celui d'un plat cuisiné dont l'ADN a été extrait et amplifié à l'aide des amorces SEQ ID N 11et SEQ ID N 12. Le puits 1 correspond au fragment d'amplification SEQ ID N 13 non digéré, d'une taille de 288 pb (contrôle). Le profil obtenu à la figure 4-f, après amplification et digestion on obtient le profil 4-f, est comparé avec les différents profils attendus : on constate que le profil 4-f correspond à celui de la figure 4-a. Ainsi, le plat cuisiné analysé contient donc un oiseau du genre Anas, appartenant à la famille des anatidés. La figure 5 représente un gel d'agarose coloré par du bromure d'éthidium sur lequel est déposé un marqueur de taille de 100 pb (M). Les ADN de canard colvert (puits 1), de canard de barbarie (puits 2), d'oie (puits 3) et de poulet (puits 4) ont été amplifiés à l'aide des amorces SEQ ID N 14 et SEQ ID N 15, qui permettent d'obtenir un fragment d'ADN SEQ ID N 20 d'une taille de 180 pb. Seul un fragment d'amplification est observé pour le canard Colvert. Les ADN de canard colvert (puits 5), de canard de barbarie (puits 6), d'oie (puits 7) et de poulet (puits 8) ont été amplifiés à l'aide des amorces SEQ ID N 16 et SEQ ID N 17, qui permettent d'obtenir un fragment d'ADN SEQ ID N 21 d'une taille de 191 pb. Seul un fragment d'amplification est observé pour le canard de Barbarie. Les ADN de canard colvert (puits 9), de canard de barbarie (puits 10), d'oie (puits 11) et de poulet (puits 12) ont été amplifiés à l'aide des amorces SEQ ID N 18 et SEQ ID N 19, qui permettent d'obtenir un fragment d'ADN SEQ ID N 22 d'une taille de 176 pb. Seul un fragment d'amplification est observé pour l'oie commune. Le puits 13 représente un témoin négatif d'amplification. La figure 6 représente les positions, sur la région de contrôle de la réplication de l'ADN mitochondrial, lesdites positions étant définies par Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 599-634 : - des amorces oligonucléotidiques de l'invention, à savoir SEQ ID N l, SEQ ID N 2, SEQ ID N 3, SEQ ID N 4, SEQ ID N 5, SEQ ID N 11, SEQ ID N 12, SEQ ID N 14, SEQ ID N 15, SEQ ID N 16, SEQ ID N 17, SEQ ID N 18, SEQ ID N 19, SEQ ID N 23, SEQ ID N 24, SEQ ID N 25, SEQ ID N 26, SEQ ID N 27, SEQ ID N 28 et, - des fragments d'ADN amplifiés, à l'aide des amorces de l'invention, à savoir SEQ ID N 6, SEQ ID N 7, SEQ ID N 8, SEQ ID N 9, SEQ ID N 10, SEQ ID N 13, SEQ ID N 20, SEQ ID N 21, SEQ ID N 22, SEQ ID N 29, SEQ ID N 30 et SEQ ID N 31, Le tableau 1 ci-après représente la liste de tous les anatidés existants, pouvant être détectés et identifiés à l'aide du procédé de l'invention (Stratégie globale). Tableau 1 NOM LATIN NOM VERNACULAIRE Aix galericulata Canard Mandarin Aix sponsa Canard carolin Alopochen oegyptiacus Oie d'Egypte Amazonetta brasiliensis Sarcelle du Brésil Anas acuta Canard Pilet Anas americana Canard siffleur d'Amérique Anas aucklandica Sarcelle brune Anas bahamensis Canard Pilet des Bahamas Anas bernieri Sarcelle malgache Anas capensis Canard du Cap Anas castenea Sarcelle d'Australie Anas clypeata Canard souchet d'Europe Anas crecca Sarcelle d'hiver Anas cyanoptera Sarcelle à ailes bleues Anas discors Sarcelle soucrourou Anas erythrorhyncha Canard à bec rouge Anasfalcata Sarcelle à faucilles Anas avirostris Sarcelle mouchetée Anas formosa Sarcelle élégante Anas georgica Pilet de Georgie ou du Chili Anas gibberifrons Sarcelle grise Anas hottenta Sarcelle hottentote Anas laysanensis Canard de Laysan Anas luzonica Canard des Philippines Anas melleri Cahard de Meller Anas penelope Canard siffleur d'Europe Anas platalea Souchet roux Anas plathyrhynchos Canard Colvert Anas poecilorhyncha Canard à bec tacheté Anas querquedula Sarcelle d'été Anas rhynchotis Souchet d'Australie Anas rubripes Canard noirâtres Anas sibilatrix Siffleur du Chili Anas smithi Souchet du Cap Anas sparsa Canard tacheté Anas specularis Canard à ailes bronzées Anas strepera Canard chipeau Anas superciliosa Canard à sourcils Anas undulata Canard à bec 'aune Anas versicolor Sarcelle versicolore Anas waigiuensis Canard de Salvadori Anas wywilliana Canard des Hawaï Anseranas semipalmata Oie semi palmée Anser albifrons Oie a front blanc Tableau 1 (suite 1) NOM LATIN NOM VERNACULAIRE Anser anser Oie cendrée Anser brachyrhynchus Oie à bec court Anser caerulescens Oie des neiges Anser cygnoïdes Anser cygnoide Anser erythropus Oie naine Anser fabalis Oie des moissons Anser indicus Oie à tête barrée Anser rosii Oie de Ross Anser canagicus Oie empereur Anseranas semipalmata Oie semi-palmée Aythya affinis Petit milouinan d'Amérique Aythya americana Milouin d'Amérique Aythya australis Fuligule nycora du Sud Aythya baeri Fuligule nycora de Baer Aythya collaris Fuligule morillon à collier Aythyafulif{ula Fuligule morillon Aythya innotata Fuligule nycora de Madagascar Aythya marila Fuligule milouinan Aythya novoe-seelandioe Fuligule nycora de Nouvelle-Zélande Aythya nycora Fuligule nycora Aythya vasilineria Milouin à dos blanc Biziura lobata Erismature à barbillons Branta bernicla Bernache cravant Branta canadensis Bernache du canada Branta leucopsis Bernache nonnette Branta ruficollis Bernache à cou roux Branta sandvicensis Bernacge néné Bucephala albeola Garrot albéole Bucephala clangula Garrot à oeil d'or Bucephala islandica garrot d'Islande Cairina moschata Canard de Barbarie Cairina scutulata Canard musqué Calonetta leucophrys Sarcelle à collier Calonetta leucophrys Sarcelle à collier Cereopse novoe-hollandioe Oie cereopse Chauna torquota Kamichi à collier Chenonetta iubata Bernache à Crinière Chloëphaga hybrida Petite Bernache antarctique Chloëphaga melanoptera Bernache des Andes Chloëphaga picta Bernache de Magellan Chloëphaga poliocephala Bernache à tête grise Chloëphaga rubidiceps Bernache à tête rousse Clangula hyemalis Harelde de Miquelon Coscoroba coscoroba Cygne coscoroba Tableau 1 (suite 2) NOM LATIN NOM VERNACULAIRE Cyanochen cyanopterus Bernache à ailes bleues - Cygnus atratus Cygne noir Cygnus columbianus Cygne siffleur Cygnus cygnus Cygne sauvage Cygnus melanocoryphus Cygne à col noir Cygnus olor Cygne tuberculé Dendrocygna arborea Dendrocygne des Antilles Dendrocygna arcuata Dendrocygne à lunules Dendrocygna autumnalis Dendrocygne à ventre noir Dendrocygna bicolor Dendrocygne bicolore Dendrocygna eytoni Dendrocygne d'Eyton Dendrocygna guttata Dendrocygne tacheté DendrocYiZna iavanica Dendrocygne de l'Inde Dendrocygna viduata Dendrocygne veuf Erismature vittata Erismature d'Argentine Heteronetta atricapilla Hétéronette à tête noire Histrionicus histrionicus Garrot arlequin Hymenolaimus malacorhynchus Canard bleu de Nouvelle-Zélande Lophonetta specularoides Canard huppée Malacorhynchus membranaceus Canard à oreillons roses Marmaronetta angustirostris Sarcelle marbrée Melanittafusca Macreuse brune Melanitta nigra Macreuse noire Melanitta perspicillata Macreuse à lunettes Merganetta armata Merganette d'Amérique Mergus albellus Harle piette Mergus cucullatus Harle couronnée Mergus merganser Harle bièvre Mergus octosetaceus Harle du Brésil Mergus serrator Harle huppée Mergus squamatus Harle écaillé Neochen iubatus Oie de l'Orénoque Netta erythrophthalma Nette d'Amérique ou Afrique Netta peposaca Nette à bec rosé Netta rufina Nette rousse Nettapus auritus Anserelle naine Nettapus coromandelianus Anserelle de Coromandel Nettapus pulchellus Anserrele élégante Oxyura australis Erismature australe Oxyura dominica Erismature masquée Oxyura jamaicensis Erismature Rousse Oxyura leucocephala Erismature à tête blanche Tableau 1 (suite 3) NOM LATIN NOM VERNACULAIRE Oxyura maccoa Erismature d'Afrique Oxyura vittata Erismature d'Argentine Plectropterus gambensis Oie de Gambie Polysticta stelleri Eider de Steller Pteronetta hartlaubi Canard de Hartlaud Sarkidiornis melanotos Sarcidione d'Afrique et d'Amérique Somateria fischeri Eider à lunettes Somateria mollissima Eider à duvet Somateria spectabilis Eider à tête grise Stictonetta noevosa Canard moucheté Tachyeres brachypterus Canard vapeur des îles Falkland Tachyeres patachonicus Canard vapeur de Patagonie Tachyeres pteneres Canard vapeur magellanique Tadorna cana Tadorne du Cap Tadorna ferruginea Tadorne casarca Tadorna tadorna Tadorne de Belon Tadorna tadornoides Casarca d'Australie Tadorna radjah Tadorne radjah Tadorna variegata Tadorne de Paradis Thalassornis leuconotus Canard à dos blanc Les exemples ci-après illustrent l'invention. Ils ne la limitent en aucune façon. EXEMPLE 1 : d'ADN. Afin de pouvoir mettre au point une méthode de détection par amplification génique de matières biologiques provenant d'anatidés dans des produits utilisés en production agroalimentaire et dans tous les autres domaines utilisant de la matière organique, les expériences décrites dans ce premier exemple ont été réalisées avec divers types d'échantillons représentant des sources potentielles de présence de matières biologiques provenant d'anatidés. 1) Extraction d'ADN par la méthode au phénol/chloroforme Cette méthode s'adresse à tous les types d'échantillons susceptibles de contenir de la matière organique, tels que les plumes, les tissus frais, les produits transformés, le sang, les graisses, les os. Cette méthode fait appel à des techniques décrites dans les références HANNI et al., 1990, C. R. Acad. Sci.Paris., 310,365-370 et HÂNNI et al., 1995, Nucl.Acids Res., 23,881- 882, concernant l'extraction d'ADN à partir d'os et de dents. Une quantité d'environ 1 à 2 g d'échantillon de matière organique est incubée pendant deux heures à 37 C dans 400 l de tampon de lyse de composition suivante : - STE IX (NaCI 100mM, Tris lOmM à pH 7,4, EDTA (acide éthylènediaminetétraacétique) 1mM), - SDS 2%, - protéinase K à 0,5mg/ml. La protéinase K permet de dégrader les protéines et de libérer les acides nucléiques. Le lysat est ensuite extrait deux fois par un volume de phénol/chloroforme (1/1). On centrifuge pendant 15 minutes à 1000 g, la phase organique est éliminée ce qui permet de se débarrasser de la partie protéique du lysat. L'ADN est précipité par 1/10 de volume d'acétate de sodium 2M puis par 2,5 volumes d'isopropanol et centrifugé 30 minutes à 10 000 g. L'ADN est repris dans de l'eau : on obtient ainsi un extrait d'ADN. Le volume d'eau est fonction de la quantité d'ADN récupéré. La migration des ADN provenant des divers échantillons donne des traînées caractéristiques d'un ADN dégradé, qui est cependant parfaitement amplifiable (figure 1). 2) Extraction d'ADN par la méthode kit d'extraction Cette méthode est réalisée dans les conditions décrites par le fournisseur Qiagen. EXEMPLE 2 : Amplification d'ADN La PCR est effectuée avec le couple d'amorces SEQ ID N 1 et SEQ ID N 5 défini cidessus. Les amplifications sont réalisées dans un volume total de 50 l contenant : 200 g/ml de BSA (Sérum Albumine Bovine), 250 mM de dNTP (désoxynucléotide Triphosphate), 300 ng de chaque amorce, 1,5 mM de chlorure de magnésium (MgCl2), tampon de PCR 10X (lOOmM Tris-HCl pH 8,3 ; 500mM KC1), 1 unité de Taq Polymerase, qsp 50 l d'eau distillée stérile, 1 l d'extrait d'ADN. Le mélange réactionnel est effectué dans une pièce stérile sous hotte à flux horizontal, pour éviter autant que possible les contaminations. Les PCR sont effectuées sur un appareil PCR Ependorff. Chaque PCR est découpée comme suit : - 1 cycle initial à une température de 94 C pendant 2 minutes puis, - 40 cycles à une température de 94 C pendant 1 minute, à une température de 55 C à 63 C pendant 1 minute, à une température de 72 C pendant 2 minutes ; au dernier cycle on effectue une élongation terminale à une température de 72 C pendant 7 minutes. Les produits d'amplification sont analysés par électrophorèse sur gel d'agarose à 2 % sous tension constante de 100 V pendant 30 min, et à l'aide de bromure d'éthidium pour la visualisation des amplifications obtenues. La réaction de PCR utilisant le couple d'amorces SEQ ID N 1 et SEQ ID N 5 a été effectuée sur une série d'extraits d'ADN d'oiseaux. On observe un produit d'amplification unique (fragment SEQ ID N 6 d'une longueur de 203 paires de bases) pour les ADN d'ansériformes, et notamment d'anatidés. Par contre, aucune bande d'amplification n'est observée pour le poulet (puits 7), la caille (puits 8), la dinde (puits 9) et l'autruche (puits 10) : ainsi, les amorces SEQ ID N 1 et SEQ ID N 5 sont bien spécifiques des ansériformes (figure 2). La totalité du produit de PCR peut être purifiée directement grâce au système QIAquick PCR Purification Kit de Qiagen selon les conditions annoncées. La totalité du produit de PCR est passée sur une colonne de gel de silice. Les acides nucléiques sont retenus sur la colonne alors que les autres résidus de la PCR sont élués à la microcentrifugation. Les impuretés sont éliminées et l'ADN est élué par du tampon Tris ou de l'eau. L'ADN ainsi purifié est visualisé et quantifié sur gel d'agarose 1%. EXEMPLE 3 : Caractérisation des fragments par séquençage direct ( Stratégie globale ) Le séquençage automatique est effectué sur les produits de PCR purifiés. Les amorces utilisées sont celles qui ont servi à amplifier le fragment en question. Le Kit Perkin -Elmer est utilisé pour la réaction de PCR, qui est effectuée sur 25 cycles dans les conditions énoncées par le fournisseur. Les produits d'amplification obtenus à l'issue de la réaction PCR sont précipités à l'éthanol et déposés sur un gel de polyacrylamide. Les séquences obtenues sont alors comparées avec celles des banques ou avec les séquences déjà obtenues (figure 3). EXEMPLE 4 : Caractérisation des fragments extraits par digestion enzymatique ( Stratégie intermédiaire ) Une carte de restriction est construite pour chacun des genres les plus fréquemment utilisés dans la composition de substances organiques à base d'anatidés et de gallinacés. Les genres choisis comme références sont les suivants : - le genre Anas pour le canard colvert (Anas platyrhynchos), le canard pilet (Anas acuta) ou bien la sarcelle (Anas querquedula), - le genre Cairina pour le canard de barbarie (Cairina moschata), - le genre Anser pour l'oie commune (Anser anser), l'oie des neiges (Anser caerulescens), - le genre Cygnus pour le cygne sauvage (Cygnus cygnus), le cygne noir (Cygnus atratus), - le genre Gallus pour le poulet (Gallus gallus). L'exemple choisi est celui d'un plat cuisiné dont on veut détecter et identifier la présence de matières biologiques provenant d'oiseaux (cf figures 4-a à 4-f). L'ADN est extrait du plat cuisiné et est amplifié à l'aide des amorces SEQ ID N 11et SEQ ID N 12. Les enzymes ont été choisies afin d'avoir des sites de coupures différents et spécifiques des genres analysés pour le fragment SEQ ID N 13, obtenu à l'aide des amorces SEQ ID N 11et SEQ ID N 12 par amplification. Rappelons que la taille du fragment SEQ ID N 13 varie entre les genres d'anatidés ou de gallinacés, du fait d'insertions ou de délétions de quelques bases d'ADN pour le canard, l'oie, la cygne et le poulet. La spécificité des enzymes de restriction utilisées est rappelée dans le tableau 2 cidessous. Un dixième des réactions de PCR a été utilisé directement pour réaliser chaque digestion enzymatique avec les tampons spécifiques des enzymes citées (Sambrook et al., 1987). Les digestions ont été réalisées pendant 30 minutes à 37 C. Les produits de digestion ont été testés sur un gel d'agarose 3%. On obtient deux fragments d'une taille de 154 pb et 134 pb. Le plat cuisiné analysé contient donc du canard du genre Anas. Le même fragment SEQ ID N 13 est digéré par d'autres enzymes de restriction spécifiques d'autres genres : aucune coupure n'est observée pour les autres enzymes de restriction. Ainsi, le plat cuisiné est donc uniquement à base d'anas (figure 4-a à 4-f). Le tableau 2 ci-dessous représente la liste des enzymes de restrictions utilisées pour le fragment SEQ ID N 13 . anatidés Enzymes de Nombre de bandes Taille des bandes gallinacés restriction utilisées en paires de bases canard Nsi I 2 154 (genre Anas) 134 canard Acc 2 147 (genre Cairina) 141 oie Hha 3 11 (genre Anser) 113 284 cygne Nde I 2 132 (genre Cygnus) 196 poulet BsaJ 2 50 (genre Gallus) 281 EXEMPLE 5 : Stratégie spécifique La PCR est effectuée avec les couples d'amorces (SEQ ID N 14, SEQ ID N 15), (SEQ ID N 16, SEQ ID N 17) et (SEQ ID N 18, SEQ ID N 19). Les amplifications sont réalisées dans un volume total de 50 l contenant : 200g/ml de BSA, 250 mM de dNTP, 300 ng de chaque amorce, 1,5 mM de MgCl2, tampon de PCR 10X (lOOmM Tris-HCl pH 8,3; 500mM KCI), 1 unité de Taq Polymerase, qsp 50 (ni d'eau distillée stérile, lui d'extrait d'ADN Le mélange réactionnel est effectué dans une pièce stérile sous hotte à flux horizontal, pour éviter autant que possible les contaminations. Les PCR sont effectuées sur un appareil PCR Ependorff. Chaque PCR est découpée comme suit : - 1 cycle initial à une température de 94 C pendant 2 minutes puis, - 40 cycles à une température de 94 C pendant 1 minute, à une température de 63 C pendant 1 minute, à une température de 72 C pendant 2 minutes ; au dernier cycle on effectue une élongation terminale à une température de 72 C pendant 7 minutes. Les produits d'amplification sont analysés par électrophorèse sur gel d'agarose à 2 % sous tension constante de 100 V pendant 30 min, et à l'aide de bromure d'éthidium pour la visualisation des amplifications obtenues (figure 5). L'utilisation des amorces SEQ ID N 14 et SEQ ID N 15 permet d'obtenir un produit d'amplification SEQ ID N 20 qui migre en formant une bande de 180 paires de bases : ce fragment est bien spécifique du canard colvert (puits 1) puisque aucune autre bande n'est observée pour les autres espèces. Les amorces SEQ ID N 14 et SEQ ID N 15 sont donc bien spécifiques du canard Colvert. L'utilisation des amorces SEQ ID N 16 et SEQ ID N 17 permet d'obtenir un fragment d'amplification SEQ ID N 21 qui migre en formant une bande de 191 paires de bases : ce fragment est bien spécifique du canard de Barbarie (puits 6) puisque aucune autre bande n'est observée pour les autres espèces. Les amorces SEQ ID N 16 et SEQ ID N 17 sont donc bien spécifiques du canard de Barbarie. L'utilisation des amorces SEQ ID N 18 et SEQ ID N 19 permet d'obtenir un fragment d'amplification SEQ ID N 22 qui migre en formant une bande de 176 paires de bases : ce fragment est bien spécifique pour l'oie commune (puits 11) puisque aucune autre bande n'est observée pour les autres espèces. Les amorces SEQ ID N 18 et SEQ ID N 19 sont donc bien spécifiques de l'oie commune. Le poulet est témoin (puits 13) et permet de montrer que les trois couples d'amorces sont bien spécifiques des ansériformes (figure 5). REVENDICATIONS 1. Procédé de détection de la présence de matières biologiques provenant d'oiseaux, notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes dans un échantillon de matière organique, caractérisé en ce que l'on détermine la présence d'ADN provenant d'oiseaux, notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes dans ladite matière organique par amplification d'une séquence d'ADN spécifique du génome des oiseaux, notamment des ansériformes, des galliformes ou des struthioniformes, et contenue dans l'ADN extrait dudit échantillon, à savoir une séquence présente dans les génomes des oiseaux, notamment des ansériformes, des galliformes ou des struthioniformes mais absente dans les génomes des autres genres animaliers, et notamment des autres espèces animales. 2. Procédé de détection de la présence de matières biologiques provenant d'oiseaux, notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes dans un échantillon de matière organique et d'identification du genre, notamment de l'espèce d'oiseau, notamment d'ansériforme, de galliforme ou de struthioniforme présente dans ledit échantillon, caractérisé en ce que l'on détermine la présence d'ADN provenant d'oiseaux, notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes dans ladite matière organique par amplification d'une séquence d'ADN spécifique du génome des oiseaux, notamment des ansériformes, des galliformes ou des struthioniformes, et contenue dans l'ADN extrait dudit échantillon, à savoir une séquence présente dans les génomes des oiseaux, notamment des ansériformes, des galliformes ou des struthioniformes mais absente dans les génomes des autres genres animaliers, notamment des autres espèces animales, et en ce qu'on l'on compare la séquence d'ADN spécifique du génome des oiseaux, notamment des ansériformes, des galliformes ou des struthioniformes ainsi amplifiée avec d'autres séquences d'ADN du génome des oiseaux, notamment des ansériformes, des galliformes ou des struthioniformes, ladite séquence d'ADN spécifique du génome des oiseaux, notamment des ansériformes, des galliformes ou des struthioniformes ainsi amplifiée présentant au moins 50% d'identité, notamment 60% d'identité avec les autres susdites séquences d'ADN du génome des oiseaux, et notamment des ansériformes, des galliformes ou des struthioniformes. 3. Procédé selon la revendication 1 ou la revendication 2, caractérisé en ce qu'il permet de détecter et/ou d'identifier la présence d'ansériformes, notamment d'anatidés choisis dans le groupe constitué par les canards tels que le canard pilet (Anas acuta), le canard mandarin (Aix galericulata), le canard souchet (Anas clypeata), la sarcelle d'été (Anas querquedula), l'eider à duvet (Somateria mollissima), les oies telles que l'oie naine (Anser erythropus), l'oie des neiges (Anser caerulescens), la bemache du Canada (Branta canadensis), et les cygnes tels que le cygne sauvage (Cygnus cygnus), le cygne noir (Cygnus atratus), le cygne commun (Cygnus color) et notamment les espèces domestiques de canards telles que le canard colvert (Anas platyrhynchos), le canard de barbarie (Cairina moschata) ou l'espèce domestique d'oie telle que l'oie commune (Anser anser). 4. Procédé selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que la séquence amplifiée du génome des oiseaux, notamment des ansériformes, des galliformes ou des struthioniformes, est d'origine mitochondriale. 5. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que la séquence amplifiée du génome des oiseaux, notamment des ansériformes, des galliformes ou des struthioniformes, est située dans la partie centrale de la région de contrôle de la réplication de l'ADN mitochondrial, délimitée par les nucléotides situés aux environs des positions 440 et 750, et notamment aux environs des positions 450 et 700, et de préférence aux environs des positions 459 et 665 de la région de contrôle de la réplication de l'ADN mitochondrial. 6. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que la séquence amplifiée du génome des oiseaux, notamment des ansériformes, des galliformes ou des struthioniformes est située dans la partie 5' de la région de contrôle de la réplication de l'ADN mitochondrial, délimitée par les nucléotides situés aux environs des positions 1 et 439, et notamment aux environs des positions 80 et 433, et de préférence aux environs des positions 150 et 433 de la région de contrôle de la réplication de l'ADN mitochondrial, ou dans la partie 3' de la région de contrôle de la réplication de l'ADN mitochondrial, délimitée par les nucléotides situés aux environs des positions 750 et 1227, et notamment aux environs des positions 780 et 1227, et de préférence aux environs des positions 800 et 1227 de la région de contrôle de la réplication de l'ADN mitochondrial. 7. Oligonucléotides caractérisés en ce qu'ils sont choisis parmi ceux : (1) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 32 suivante (positions 455 à 479 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : ACG TGA CYA GCY TCA GGC CCA TAC G dans laquelle Y est C ou T, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 33 suivante (positions 465 à 479 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : CTT CAG GCC CAT ACG - ou constitués par la séquence SEQ ID N 1 suivante (positions 459 à 479 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : ACT AGC TTC AGG CCC ATA CG ou ceux, (2) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 34 suivante (positions 484 à 508 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : CCC TAA ACC CCT CGC CCT CCT CAC A - ou comprenant la séquence SEQ ID N 35 suivante (positions 493 à 508 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : CTC GCC CTC CTC ACA - ou constitués par la séquence SEQ ID N 2 suivante (positions 488 à 508 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : AAC CCC TCG CCC TCC TCA CA ou ceux, (3) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 36 suivante (positions 537 à 561 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : GGG CCA TCM ATT GGG TTC ACT CAC C dans laquelle M est A ou C, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 37 suivante (positions 547 à 561 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : TTG GGT TCA CTC ACC - ou constitués par la séquence SEQ ID N 3 suivante (positions 542 à 561 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : ATC AAT TGG GTT CAC TCA CC ou ceux, (4) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 38 suivante (positions 574 à 599 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : GGT RRA VST MNT CCA CAG ATG CCA C dans laquelle R est A ou G, V est A, C ou G, N est A, C, G ou T, S est C ou G, M est A ou C, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 39 suivante (positions 584 à 599 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : TTC CAC AGA TGC CAC - ou constitués par la séquence SEQ ID N 4 suivante (positions 580 à 599 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : AAG TAT TCC ACA GAT GCC AC ou ceux, (5) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 40 suivante (positions 639 à 664 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : CMG GAA RAR ADA ARW RGA ACC AGA G dans laquelle R est A ou G, D est A, G ou T, M est A ou C, W est A ou T, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 41 suivante (positions 648 à 664 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : A TAA AAA GAA CCA GAG - ou constitués par la séquence SEQ ID N 5 suivante (positions 645 à 664 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : AAA AAT AAA AGG AAC CAG AG ou ceux, (6) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 42 suivante (positions 797 à 820 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : WVK CAY MYY KRY ACT GAT GCA CTT T dans laquelle Y est C ou T, K est G ou T, R est A ou G, M est A ou C, W est A ou T, V est A, C ou G, M est A ou C, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 43 suivante (positions 807 à 820 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : ACA CTG ATG CAC TTT - ou constitués par la séquence SEQ ID N 11suivante (positions 802 à 820 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : CCT TGA CAC TGA TGC ACT TT ou ceux, (7) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 44 suivante (positions 1220 à 1224 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : GCY TTD DND KKR WRS WAT GTG GAC G dans laquelle Y est C ou T, D est A, G ou T, B est C, G ou T, K est G ou T, W est A ou T, N est A, C, G ou T, R est A ou G, et S est C ou G, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 45 suivante (positions 1210 à 1224 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : TAA GCT ATG TGG ACG - ou constitués par la séquence SEQ ID N 12 suivante (positions 1205 à 1224 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : TGT GGT AAG CTA TGT GGA CG ou ceux, (8) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 46 suivante (positions 180 à 206 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : MTN MHM BDN HMV HVN NCA TAC CCT A dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, H est A, C ou T, B est C, G ou T, D est A, G ou T, N est A, C, G ou T, W est A ou T, V est A, C ou G, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 47 suivante (positions 190 à 206 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : AAC GGA CAT ACC CTA - ou constitués par la séquence SEQ ID N 14 suivante (positions 185 à 206 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : CAT GTC AAC GGA CAT ACC CTA ou ceux, (9) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 48 suivante (positions 355 à 376 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634): CAT RAG NWA WKG KYG GGT GGA GAG G dans laquelle R est A ou G, N est A, C, G ou T, W est A ou T, K est G ou T, Y est C ou T, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 49 suivante (positions 365 à 376 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : GGG TGG GTG GAG AGG - ou constitués par la séquence SEQ ID N 15 suivante (positions 361 à 376 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : TAA TGG GTG GGT GGA GAG G ou ceux, (10) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 50 suivante (positions 833 à 855 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : GTT AWK GYY MYN CTC CGC RGC CCT T dans laquelle W est A ou T, K est G ou T, Y est C ou T, M est A ou C, Y est C ou T, N est A, C, G ou T, R est A ou G, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 51 suivante (positions 843 à 855 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : TCC TCC GCA GCC CTT - ou constitués par la séquence SEQ ID N 16 suivante (positions 837 à 855 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : ATG CTC TCC TCC GCA GCC CTT ou ceux, (11) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 52 suivante (positions 1120 à 1150 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : DTW ATG ATT HTY RTT ADA TTA CGC T dans laquelle D est A, G ou T, W est A ou T, H est A, C ou T, Y est C ou T, R est A ou G, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 53 suivante (positions 1130 à 1150 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : TCG TTA GAT TAC GCT - ou constitués par la séquence SEQ ID N 17 suivante (positions 1125 à 1150 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : GAT TGT CGT TAG ATT ACG CT ou ceux, (12) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 54 suivante (positions 249 à 272 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : AAY GHA TGA AYG HYC AGN DAC CAT dans laquelle Y est C ou T, H est A, C ou T, N est A, C, G ou T, D est A, G ou T, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 55 suivante (positions 256 à 272 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : ATG TTC TAG GAC CAT - ou constitués par la séquence SEQ ID N 18 suivante (positions 252 à 272 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : ATG AAT GTT CTA GGA CCA T ou ceux, (13) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 56 suivante (positions 409 à 433 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : CGG GTT CTG ATT TCA CGT GAG GAG T - ou comprenant la séquence SEQ ID N 57 suivante (positions 419 à 433 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : TTT CAC GTG AGG AGT - ou constitués par la séquence SEQ ID N 19 suivante (positions 414 à 433 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : TCT GAT TTC ACG TGA GGA GT. 8. Couples d'amorces caractérisés en ce qu'ils sont constitués : - par l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 1, SEQ ID N 32, SEQ ID N 33, SEQ ID N 2, SEQ ID N 34, SEQ ID N 35, SEQ ID N 3, SEQ ID N 36, SEQ ID N 37 et l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 4, SEQ ID N 38, SEQ ID N 39, SEQ ID N 5, SEQ ID N 40, SEQ ID N 41 selon la revendication 7 ou, - par l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 11, SEQ ID N 42, SEQ ID N 43 et l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 12, SEQ ID N 44s, SEQ ID N 45 selon la revendication 7 ou, - par l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 14, SEQ ID N 46, SEQ ID N 47, et l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 15, SEQ ID N 48, SEQ ID N 49 selon la revendication 7 ou, - par l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 16, SEQ ID N 50, SEQ ID N 51, et l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 17, SEQ ID N 52, SEQ ID N 53 selon la revendication 7 ou, - par l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 18, SEQ ID N 54, SEQ ID N 55, et l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 19, SEQ ID N 56, SEQ ID N 57 selon la revendication 7, et avantageusement constitués par le couple d'oligonucléotides choisis parmi les couples suivants : - SEQ ID N 1 et SEQ ID N 5, - SEQ ID N 2 et SEQ ID N 5, - SEQ ID N 1 et SEQ ID N 4, - SEQ ID N 2 et SEQ ID N 4, - SEQ ID N 3 et SEQ ID N 5, - SEQ ID N 11et SEQ ID N 12, - SEQ ID N 14 et SEQ ID N 15, - SEQ ID N 16 et SEQ ID N 17, - SEQ ID N 18 et SEQ ID N 19. 9. Oligonucléotides caractérisés en ce qu'ils sont choisis parmi ceux : (1) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 58 suivante (positions 145 à 170 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : ATA TGK MVN CGG CAT TAA CCT ATA T dans laquelle K est G ou T, M est A ou C, V est A, C ou G, N est A, C, G ou T, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 59 suivante (positions 155 à 170 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : GGC ATT AAC CTA TAT - ou constitués par la séquence SEQ ID N 23 suivante (positions 151 à 170 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : ATA CGG GCA TTA ACC TAT AT ou ceux, (2) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 60 suivante (positions 356 à 380 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : GCG AGY ATA ACC AAA TSG GTT ACA T dans laquelle Y est C ou T, S est C ou G, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 61 suivante (positions 366 à 380 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : CCA AAT GGG TTA CAT - ou constitués par la séquence SEQ ID N 24 suivante (positions 361 à 380 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212,599-634) : CAT AAC CAA ATG GGT TAC AT ou ceux, (3) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 62 suivante (positions 1014 à 1037 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : TAC ATA CAW ACY MWC CGC ACA AAT A dans laquelle W est A ou T, Y est C ou T, M est A ou C, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 63 suivante (positions 1024 à 1037 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : CTC ACC GCA CAA ATA - ou constitués par la séquence SEQ ID N 25 suivante (positions 1019 à 1037 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : ACA AAC TCA CCG CAC AAA TA ou ceux, (4) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 64 suivante (positions 1167 à 1192 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : TGT AAR TAW CAA TAT AAA TAA TAT A dans laquelle R est A ou G, W est A ou T, - ou comprenant la séquence SEQ ID N 65 suivante (positions 1177 à 1192 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : AAT ATA AAT AAT ATA - ou constitués par la séquence SEQ ID N 26 suivante (positions 1172 à 1191 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : TTA ACA ATA TAA ATA ATA TA ou ceux, (5) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 66 suivante (positions 879 à 898 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : TGA ATG CTT GYY GGA CAT WAA TAC C dans laquelle Y est C ou T, W est A ou T - ou comprenant la séquence SEQ ID N 67 suivante (positions 888 à 898 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : CTG GAC ATA AAT ACC - ou constitués par la séquence SEQ ID N 27 suivante (positions 884 à 898 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : GCT TGC TGG ACA TAA ATA CC ou ceux, (6) - présentant une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec un oligonucléotide constitué d'une séquence d'environ 15 à 25 nucléotides, notamment 20 à 25 nucléotides, comprise dans la séquence SEQ ID N 68 suivante (positions 1077 à 1101 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : CTA TAA TAK GRT GTG GGG CGT GTT G dans laquelle K représente G ou T, R est A ou G - ou comprenant la séquence SEQ ID N 69 suivante (positions 1087 à 1101 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : TTG TGG GGC GTG TTG - ou constitués par la séquence SEQ ID N 28 suivante (positions 1082 à 1101 d'après Desjardins et Morais, 1990, J. Mol. Biol., 212, 599-634) : ATA AGT TGT GGG GCG TGT TG 10. Couples d'amorces caractérisés en ce qu'ils sont constitués : - par l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 23, SEQ ID N 58, SEQ ID N 59, et l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 24, SEQ ID N 60, SEQ ID N 61 selon la revendication 9 ou, - par l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 25, SEQ ID N 62, SEQ ID N 63, et l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 26, SEQ ID N 64, SEQ ID N 65 selon la revendication 9 ou, - par l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 27, SEQ ID N 66, SEQ ID N 67, et l'un quelconque des oligonucléotides SEQ ID N 28, SEQ ID N 68, SEQ ID N 69 selon la revendication 9, et avantageusement constitués par le couple d'oligonucléotides choisis parmi les couples suivants : - SEQ ID N 23 et SEQ ID N 24, - SEQ ID N 25 et SEQ ID N 26, - SEQ ID N 27 et SEQ ID N 28. 11. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que l'amplification de ladite séquence d'ADN spécifique du génome des oiseaux, notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes est effectuée par la méthode d'amplification en chaîne par polymérase (PCR), comprenant une répétition du cycle des étapes suivantes : - chauffage de l'ADN extrait de l'échantillon de matière organique, de façon à séparer l'ADN en deux brins monocaténaires, - hybridation d'amorces oligonucléotidiques selon les revendications 7 à 10 aux brins d'ADN monocaténaires à une température adéquate, et - élongation des amorces oligonucléotidiques par une polymérase à une température adéquate, pour obtenir une séquence d'ADN ou un fragment d'ADN amplifié(e) spécifique du génome des oiseaux, notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes. 12. Procédé selon l'une des revendications 1 à 6 ou 11, caractérisé en ce que le fragment d'ADN amplifié obtenu est identifié : - par séquençage dudit fragment amplifié, - par électrophorèse sur gel des fragments obtenus après digestion à l'aide d'enzymes de restriction dudit fragment amplifié, - directement, par simple visualisation de la présence dudit fragment amplifié par électrophorèse sur gel. 13. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 6 ou 11 à 12, caractérisé en ce que l'ADN extrait de l'échantillon de matière organique est : - de l'ADN non dégradé provenant notamment d'un échantillon frais ou, - de l'ADN dégradé, provenant notamment d'un échantillon transformé, notamment cuit, lyophilisé, séché, saumuré, appertisé ou pasteurisé. 14. Fragment d'ADN tel qu'amplifié à l'issue du procédé selon l'une des revendications 1 à 6 ou 11 à 13, caractérisé en ce qu'il comprend environ 500 à environ 100 paires de bases. 15. Fragment d'ADN selon la revendication 14, caractérisé en ce qu'il présente une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec : - la SEQ ID N 6 suivante : ACYAGCTTCA GGCCCATACG TTCCCCCTAA ACCCCTCGCC CTCCTCACAT TTTTGCGCCT CTGGTTCCTC GGTCAGGGCC ATCMATTGGG TTCACTCACC YCYMYTYGCC YTTCAAAGTG GCATCTGTGG ANKACBTYCA CCWYYYCRRT GCGTWATCGC GGCATBYTYM ASYWTTTWSM CGCCTYTGGT TCYMYTTHTY TYT dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, K est G ou T, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, S est C ou G, H est A, C ou T, N est A, C, G ou T, ladite séquence SEQ ID N 6 comprenant 203 paires de bases, - ou la SEQ ID N 7 suivante : ACYAGCTTCA GGCCCATACG TTCCCCCTAA ACCCCTCGCC CTCCTCACAT TTTTGCGCCT CTGGTTCCTC GGTCAGGGCC ATCMATTGGG TTCACTCACC YCYMYTYGCC YTTCAAAGTG GCATCTGTGG ANKACBT dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, K est G ou T, B est C, G ou T, ladite séquence SEQ ID N 7 comprenant 137 paires de bases, - ou la SEQ ID N 8 suivante : AACCCCTCGC CCTCCTCACA TTTTTGCGCC TCTGGTTCCT CGGTCAGGGC CATCMATTGG GTTCACTCAC CYCYMYTYGC CYTTCAAAGT GGCATCTGTG GANKACBTYC ACCWYYYCRR TGCGTWATCG CGGCATBYTY MASYWTTTWS MCGCCTYTGG TTCYMYTTHT YTYT dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, K est G ou T, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, S est C ou G, H est A, C ou T, ladite séquence SEQ ID N 8 comprenant 174 paires de bases, - ou la SEQ ID N 9 suivante : AACCCCTCGC CCTCCTCACA TTTTTGCGCC TCTGGTTCCT CGGTCAGGGC CATCMATTGG GTTCACTCAC CYCYMYTYGC CYTTCAAAGT GGCATCTGTG GANKACBT dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, K est G ou T, B est C, G ou T, ladite séquence SEQ ID N 9 comprenant 108 paires de bases, - ou la SEQ ID N 10 suivante : ATCMATTGGG TTCACTCACC YCYMYTYGCC YTTCAAAGTG GCATCTGTGG ANKACBTYCA CCWYYYCRRT GCGTWATCGC GGCATBYTYM ASYWTTTWSM CGCCTYTGGT TCYMYTTHTY TYT dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, K est G ou T, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, S est C ou G, H est A, C ou T, ladite séquence SEQ ID N 10 comprenant 123 paires de bases, - ou la SEQ ID N 13suivante : YMYYKRYACT GATGCACTTK GDYCDCATTY RGTTRWKGYY MYNTCCRCHV HYCYABNBWH WVRTGYTRYY NRGTGAATGC TYGHHGGACA TADYWYWAWM MAWHWWMHYW YYHWSYRYWW YYYHYRSRMH HHMNRAAYDM AACCARHRDW YTTYMDCHRW THWDHWWHMM WHYWYVTWDY RTMWWHYHHV HMHHHHMHWM HHBHAWWHHH HNHNHYNHWA YYBCHNNYHH HWAWYNYSYY WHHYNWBVHW HHNBYBDMDM DWCHDWMMNR WWHDMAYDDH DYVDHHYAWM HTTATTAKAG RAACWCCAGY ACYARVWHD VWHNHAMHYN RRHRWHHMYY AYWAHYYHVH YNTYNMNAMH HNBNVYHYRD HYHRYYARYB RMHYVHHHYR YYCDCMTWSY WYMMHNHH dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, K est G ou T, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, S est C ou G, D est A, G ou T, V est A, C ou G, H est A, C ou T, ladite séquence SEQ ID N 13 comprenant 408 paires de bases, ou fragments résultants d'une ou plusieurs délétions de nucléotides contigus ou non contigus dudit fragment de 408 paires de bases comprenant ou constitué par SEQ ID N 13, et susceptible d'être obtenu par amplification d'ADNmt provenant d'oiseaux, à l'aide des oligonucléotides SEQ ID N 11 et SEQ ID N 12 tels que définis à la revendication 7, et notamment fragments de : - 331 paires de bases : YMYYKRCTGA TGCACTTKGD YCDCATTYRG TTRWKGYYMY CCRCHVHYCY ABNBWHWVRT GYTRYYNRGT GAATGCTYGH HGGACATADY WYWAWMMAWH WMHYWYYHWS YRYWWYYYHY RSRMHHHMRA AYDMAACCAR HRDWYTTYMD CHRWTHDYRT MWWHYHVHMH HNHWAYYBCH NNYHDMDWCH DWMMRWWHDM AYDDHDYVDH HYAWHTTATT AKAGRAACWC CAGYACYARV WHDVWHNHA MHYNRRHRWH MYYAYWAHYY HVHYNTYNMN AMHHNBNVYH YRDHYHRYYA RYBRMHYVHH HYRYYCDCMT WSYWYMMHNH H dans lequel Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, K est G ou T, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, S est C ou G, D est A, G ou T, V est A, C ou G, H est A, C ou T, - 328 paires de bases : YMYYKRYACT GATGCACTTK GDYCDCATTY RGTTRWKGYY MYNTCCRCHV HYCYABNBWH WVRTGYTRYY NRGTGAATGC TYGHHGGACA TAMHHHMNRA AYDMAACCAY DMAACHRHYH HVHMHHHNHN HYNHHNNYRH HWAYYBCHNN YHHWAWYMYS YYWHHYNWBV HWHNBYBDMD MDWCHDWMNR WWHDMAYDDH DYVDHHYAWM HTTATTAKAG RAACWCCAGY ACYARVWHD VWHNHAMHYN RRHRWHHMYY AYWAHYYHVH YNTYNMNAMH HNBNVYHYRD HYHRYYARYB RMHYVHHHYR YYCDCMTWSY WYMMHNHH dans lequel Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, K est G ou T, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, S est C ou G, D est A, G ou T, V est A, C ou G, H est A, C ou T, - ou 288 paires de bases : YMYYKRYACT GATGCACTTK GDYCDCATTY RGTTRWKGYY MYNTCCRCHV HYCYABNBWH WVRTGYTRYY NRGTGAATGC TYGHHGGACA TAMHHHMNRA AYDMAACHRH YHHVHMHHHN HNHYNHHNNY HHHWAYWBVH WHWCHDWMMN RWWHDMAYDD HDYVDHHYAW MHTTATTAKA GRAACWCCAG YACYARVWH DVWHNHAMHY NRRHRWHHMY YAYWAHYYHV HYNTYNMNMH HNBNVYHYRD HYHRYYARYB RMHYVHHHYR YYCDCMTWSY WYMMHNHH dans lequel Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, K est G ou T, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, S est C ou G, D est A, G ou T, V est A, C ou G, H est A, C ou T, - ou la SEQ ID N 20 suivante : HWBDNHMRMG RNCATHHHHN NYHVHBDNAH NNNHCHHCCA WRMHHHNNV RTGMAYGHYC YHRNDVHHHH NHVNHWMHV VMHVNVHNHN NHHHNHVHW RWNMACMARR RCMMHDHNNR VTGAATGCTH NMHRRACAWR DMNYNDVHAH HMHTCYDDNB YYBHHTCCAC CCRMMCATWH dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, D est A, G ou T, V est A, C ou G, H est A, C ou T, ladite séquence SEQ ID N 20 comprenant 180 paires de bases, - ou la SEQ ID N 21 suivante : WKGYYMYNTC CRCHVHYCYA BNBWHWVRTG YTRYYNRGTG AATGCTYGHH GGACATAMHH HMNRAAYDMA ACHRHYHHVH MHHHNHNHNH HNNYHHHWAY WBVHWHWCHD WMMNRWWHDM AYDDHDYVDH HYAWMHTTAT TAKAGRAACW CCAGYACYAR VWHDVWHNH AMHYNRRHRW HHMYYAYWAH Y dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, D est A, G ou T, V est A, C ou G, H est A, C ou T, K est G ou T, ladite séquence SEQ ID N 21 comprenant 190 paires de bases, - ou la SEQ ID N 22 suivante : RTGAAYGHYC YHRNDVHHNH MVHNHNVMHV VNHNHHNHNH VWSWNMARD SCMNHNNTTM VTGAATGCTH NMHRRACAWD MNYNDVHAHH MHTCYNDNBH YBHHTCCACC CRMMCATWHM TYATGRAVYY NCGTAYCARR TGGATTTATT RRYCGTACWC CTCACGTGAA ATCAGC dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, D est A, G ou T, V est A, C ou G, H est A, C ou T, S est C ou G, ladite séquence SEQ ID N 22 comprenant 176 paires de bases. 16. Fragment d'ADN selon la revendication 14, caractérisé en ce qu'il présente une identité de séquence d'au moins 80%, préférentiellement 90% et avantageusement 95% avec : - la SEQ ID N 29 suivante : KMAWVNGGHM WTVACHYATA TTCCMCWTYY CKYMCHAHVB MCHYTVDATG MAYSMTSHHRK RCMHVCTMHN TTHCVYDHMC CATAGABAGT TCCWAACHAC WATCRRKVMM CMTAACTATG AATGGTTRCVG HACATAAATC TCACTCTCAT GTTCTCCCCC CAACAAGTCA CCTAACTATG AATGGTTACAG GACATACATT TDACTAYCAT GTTCTAACCS ATTTGGTT dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, N est A, C, G ou T, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, D est A, G ou T, V est A, C ou G, H est A, C ou T, S est C ou G, K est G ou T ladite séquence SEQ ID N 29 comprenant 231 paires de bases, - ou la SEQ ID N 30 suivante : TACAWACYMW CGYAWWRRWD CCCTYAMAYY AYAHAAMCGY YTATCGYWTA DTATATATAC ATTRYWRYDY AYYMYAYMAT TATTAKAGAA ACYCCMCTAC CRAAACMAWC AWHARARRCW WAHADHWAHA TKCMRCDYAW VBYHCYTCAS AWRCMWWBRT KRTWTATATT GTTAA dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, B est C, G ou T, R est A ou G, W est A ou T, D est A, G ou T, V est A, C ou G, H est A, C ou T, S est C ou G, K est G ou T, ladite séquence SEQ ID N 30 comprenant 175 paires de bases, - ou la SEQ ID N 31 suivante : TGAATGCTTG YYGGACATWW TWYMAYYWAT TWTCACTTCC WCTGAYTTTY YTMACAMMAC YAGGAYWMAW YTYYTWYDTY DKTWYWAAYW YWTKWTTTVW TYAYWTYAAW MACATYTTTT AMYTAWAYTA MCYWTACAWA CYMWCMGYAY WRRWTDTYAM AYYAAHAAMC GYYCGYWTAD TATATATACA TARYWRYTGY RYYTMYAYCM ATTATT dans laquelle Y est C ou T, M est A ou C, R est A ou G, W est A ou T, D est A, G ou T, V est A, C ou G, H est A, C ou T, ladite séquence SEQ ID N 31 comprenant 216 paires de bases. 17. Utilisation de séquences nucléotidiques choisies parmi les amorces oligonucléotidiques selon l'une quelconque des revendications 7 à 10, ou de fragments d'ADN selon l'une quelconque des revendications 14 à 16, pour la mise en #uvre d'une méthode de détection de la présence de matières biologiques provenant d'oiseaux, notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes, et/ou d'identification de l'espèce d'oiseaux, notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes présente, dans un échantillon de matière organique susceptible de contenir de telles matières biologiques. 18. Utilisation selon la revendication 17 pour la mise en #uvre d'une méthode de détection de la présence de matières biologiques provenant d'oiseaux, notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes, et/ou d'identification de l'espèce, notamment d'ansériformes, de galliformes ou de struthioniformes, dans des produits frais ou bien transformés tels que les produits agro-alimentaires, notamment le foie gras, les pâtés, les viandes, les graisses, les plats cuisinés, les #ufs, les produits manufacturés tels que ceux à base de plumes.