FR 2819265 A1 20020712 FR 0100249 A 20010110 La présente invention est relative à des cellules issues du tissu adipeux extra-médullaire ainsi qu'à leurs applications dans la reconstitution des lignées hématopoïétiques, notamment pour le traitement des hémopathies génétiques ou acquises (cancer, chimiothérapie, irradiation). Les moyens existants pour reconstituer les lignées hématopoïétiques comprennent essentiellement : - la greffe de moelle osseuse, et - la greffe de cellules souches ou de précurseurs hématopoïétiques. Ces moyens présentent les inconvénients suivants : - la greffe de moelle osseuse dépend de l'existence d'un donneur compatible et est peu efficace en raison du pourcentage élevé de rejet de greffe, lié à la contamination du greffon par les lymphocytes du receveur (réaction du greffon contre l'hôte ou GvH), - la greffe de cellules souches ou de précurseurs hématopoïétiques (CD34+, Thyl+, Lin-) purifiés, qui dépend également de l'existence d'un donneur compatible, permet d'éviter les échecs liés aux rejets de greffe. Toutefois, en raison des capacités d'expansion limitées de ces cellules, il est difficile d'obtenir une quantité suffisante de cellules pour une greffe efficace. Par conséquent, il existe un réel besoin de disposer de nouveaux moyens et notamment de cellules aptes à reconstituer les différentes lignées hémato- poïétiques qui soient plus efficaces et plus simples à mettre en oeuvre que les moyens de l'art antérieur. Il a récemment été montré que des cellules souches de certains tissus non-hématopoïétiques étaient capables de reconstituer l'ensemble des lignées hématopoïétiques de souris, irradiées de façon létale, à savoir : . des cellules souches musculaires issues du muscle squelettique de souris adultes exprimant : - soit des marqueurs communs à toutes les cellules souches (Sca-1, c-Kit) mais pas le marqueur CD45, qui est spécifique des cellules souches hématopoïétiques (Jackson et al., PNAS, 1999,96, 14482-14486), - soit le récepteur de la protéine morphogénique du tissu osseux de type 2 (BMP2), (Pang, Blood, 2000,95, 1106-1108), et . des cellules souches neurales issues du cerveau de souris adulte (Bjomson et al., Science, 1999, 283, 534-537). Deux hypothèses ont été émises pour expliquer ces résultats : des cellules souches proches de la totipotence des cellules embryonnaires persisteraient dans le cerveau et le muscle de l'adulte et seraient capables de se différencier en diffé- rents types cellulaires, ou bien des cellules souches spécialisées du tissu musculaire ou nerveux posséderaient une très grande plasticité et seraient capables de se dé-différen- cier ou d'être reprogrammées (transdifférenciation). Ces résultats ont des conséquences importantes pour le traitement des déficits fonctionnels de la moelle osseuse (aplasie médullaire), le traitement de la contamination de la moelle osseuse par des cellules tumorales (neuroblastome) et pour la correction d'anomalies génétiques des cellules hématopoïétiques (manipulation génétique du tissu hématopoïétique). En effet, l'utilisation de cellules souches ou de précurseurs de tissus non-hématopoïétiques permettrait d'éviter les problèmes liés au rejet de greffe ou à une quantité insuffisante de cellules CD34+, dans la mesure où l'on pourrait envisager la reconstitution des lignées hématopoïétiques d'un individu adulte malade, par greffe de tissu nerveux ou musculaire autologue, prélevé chez ce même individu. Cependant, en pratique, la reconstitution effective des lignées hématopoïétiques à partir des cellules musculaires ou neurales précitées, est difficilement réalisable en raison des difficultés de prélèvement et des faibles quantités de tissus disponibles. Par conséquent, les Inventeurs se sont donnés pour but de pourvoir à des cellules aptes à reconstituer les lignées hématopoïétiques de façon durable, qui soient isolées à partir de tissus faciles à prélever et disponibles en quantités importantes. Le tissu adipeux existe sous différentes formes chez les mammifères : le tissu adipeux blanc qui représente le principal organe de réserve de l'organisme, le tissu adipeux brun thermogénique et le tissu adipeux médullaire dont le rôle exact n'est pas connu. Ce tissu adipeux est constitué par deux fractions cellulaires : - une fraction adipocytaire comprenant des cellules adipeuses diffé- renciées : adipocytes immatures (petites cellules adipeuses) et adipocytes matures qui représentent 30 % à 60 % des cellules du tissu adipeux. Cette fraction cellulaire est caractérisée par l'accumulation de triglycérides et l'expression de marqueurs tardifs et très tardifs comme la GPDH (glycérol-3-phosphate déshydrogénase), et - une fraction non-adipocytaire, appelée fraction du stroma vasculaire comprenant quelques cellules sanguines, endothéliales, des péricytes, des fibroblastes et des précurseurs adipocytaires, en particulier des préadipocytes caractérisés par l'absence de lipides dans leur cytoplasme et l'expression de marqueurs précoces comme la chaîne a2 du collagène VI (A2COL6/pOb24) et la lipoprotéine lipase (LPL). Ces deux fractions cellulaires peuvent être séparées par leur différence de densité, selon des procédés tels que ceux décrits par Bjômtorp et al. (J. Lipid Res., 1978,19, 316-324). De façon classique, la différenciation des adipocytes est schématisée de la façon suivante : cellule souche multipotente- > précurseur adipocytaire ou préadipocyte- > adipocyte immature adipocyte mature. Les précurseurs très précoces, à savoir des cellules souches multipotentes capables d'engendrer différents types de cellules mésenchymateuses comme des cellules adipocytaires et des cellules musculaires n'ont pas été identifiées. Toutefois, il a été montré que des lignées de cellules mésenchymateuses étaient capables de se différencier en adipocytes, chondrocytes ou en fibroblastes, spontanément (lignée de tératocarcinome T984) ou après traitement avec de la 5-azacytidine (lOT1/2, 3T3, CHEF-18). Des précurseurs adipocytaires ont été clonés à partir de ces lignées (lignée clonale 1246), à partir d'embryon de souris (3T3-L1, 3T3-F442A, A31T, TA1) ou de hamster (CHEF-18) ou bien à partir de souris adulte (ObI7, HFGu, BFC-l, ST13, MS3-2A, MC 3t3-G2/PA6). Ces précurseurs adipocytaires sont capables de se différencier en adipocytes, et ce in vitro ou in vivo (Ailhaud et al., Annu. Rev. Nutr., 1992,12, 207-233). En outre, dans des travaux antérieurs (Cousin et al., The FASEB Journal, 1999, 13, 305-312), les Inventeurs qui se sont intéressés à la relation entre les adipocytes et les macrophages dans l'obésité et la réponse inflammatoire ont montré que les préadipocytes (cultures primaires issues de la fraction du stroma vasculaire ou lignée 3T3-L1), comme des macrophages, possèdent une activité de phagocytose et que le marqueur MOMA-2 qui est spécifique des monocytes-macrophages est également exprimé par les préadipocytes et les adipocytes. Toutefois, il ressort de cet article que les préadipocytes sont différents des macrophages dans la mesure où par des techniques classiques, il est impossible de détecter la présence, à la surface de ces cellules, des marqueurs F4/80 et Macl qui sont spécifiques des macrophages matures. Le tissu adipeux a un potentiel de régénération qui persiste pendant toute la vie de l'individu et est lié au maintien d'une population de préadipocytes, au sein des différents dépôts adipeux. En effet, le nombre d'adipocytes présents dans un dépôt donné peut varier dans des proportions considérables selon les conditions physiologiques ou physiopathologiques. Ainsi, il a été montré que chez l'homme ou chez les rongeurs adultes, même âgés, les cellules de la fraction du stroma vasculaire du tissu adipeux qui comprennent une proportion importante de préadipocytes exprimant des marqueurs précoces de différenciation (A2COL6/pOb24, LPL, IGF-1....) sont capables de proliférer in vitro et de se différencier en adipocytes (Ailhaud et al., 1992, précité). De manière surprenante, les Inventeurs ont maintenant montré que les cellules de la fraction du stroma vasculaire du tissu adipeux extra-médullaire (ou fraction cellulaire du stroma vasculaire) sont capables de se différencier en lignées hématopoïétiques et de reconstituer l'hématopoïèse de mammifères, notamment de souris, irradiés de façon létale. La présente invention a, en conséquence, pour objet la fraction cellulaire du stroma vasculaire du tissu adipeux extra-médullaire comme médicament ; en effet, cette fraction permet, de manière surprenante la reconstitution des lignées hématopoïétiques. L'invention a également pour objet l'utilisation de ladite fraction pour la préparation d'un médicament destiné au traitement des maladies dans lesquelles on observe une déplétion médullaire induite ou constitutive, telles que les hémopathies malignes, les tumeurs de la moelle osseuse, les hémopathies d'origine génétique ou acquise et les troubles consécutifs à une irradiation ou à une chimio- thérapie. En effet, les cellules de la fraction du stroma vasculaire du tissu adipeux extra-médullaire sont capables de reconstituer les lignées myéloïdes qui engendrent les monocytes/macrophages, les polynucléaires basophiles, éosinophiles et neutrophiles, les plaquettes et les érythrocytes et/ou les lignées lymphoïdes qui engendrent les lymphocytes T et les lymphocytes B. Conformément à l'invention, la fraction cellulaire du stroma vasculaire est isolée par différence de densité, notamment selon le protocole décrit par Bjômtorp et al. (précité). La présente invention a également pour objet des cellules isolées et purifiées, aptes à reconstituer des lignées hématopoïétiques, caractérisées en ce qu'elles sont isolées à partir de la fraction cellulaire du stroma vasculaire du tissu adipeux extra-médullaire. Selon un mode de réalisation avantageux desdites cellules, elles sont susceptibles d'être obtenues par : a) prélèvement d'un échantillon de tissu adipeux extra-médullaire, b) isolement de la fraction cellulaire du stroma vasculaire, de préférence, par digestion de la matrice extracellulaire par des enzymes protéolytiques, et par séparation physique, notamment par différence de densité, et c) purification des cellules par séparation physique et/ou par immunosélection. Avantageusement : - la séparation physique est réalisée par différence d'adhésion sur un support solide approprié ou par différence de densité (centrifugation dans un gradient approprié, élutriation), - l'immunosélection est réalisée à l'aide d'au moins un anticorps spécifique d'un marqueur exprimé par lesdites cellules (sélection positive) et/ou d'au moins un anticorps spécifique d'un marqueur absent desdites cellules (sélection négative). Selon un autre mode de réalisation avantageux desdites cellules, elles expriment au moins un marqueur des cellules souches ou des précurseurs adipo- cytaires et/ou au moins un marqueur des cellules souches ou des précurseurs hémato- poïétiques. Dans le cadre de l'invention, les cellules souches et les précurseurs correspondent à des cellules multipotentes qui possèdent des propriétés d'expansion clonale et de différenciation tissulaire, et ces deux termes sont considérés comme équivalents. Selon une disposition avantageuse de ce mode de réalisation, le marqueur des précurseurs adipocytaires est sélectionné dans le groupe constitué par A2COL6/pOb24, LPL et Pref-1. Selon une autre disposition avantageuse de ce mode de réalisation, le marqueur des cellules souches ou des précurseurs hématopoïétiques est sélectionné dans le groupe constitué par : CD34, CD45, Thy-l, Sca-1, CD 117 et CD38. Des cellules conformes à l'invention sont constituées en particulier par des cellules qui expriment au moins A2COL6/pOb24, CD34 et CD45. De préférence, lesdites cellules telles que définies ci-dessus sont d'origine humaine. Par rapport aux moyens existants de reconstitution de lignées hématopoïétiques, les fractions cellulaires et les cellules isolées telles que définies cidessus présentent les avantages suivants : avantages techniques - facilité de prélèvement, - quantité de tissu et de cellules très importante avec expansion possible des cellules prélevées, favorable à une greffe homologue ou hétérologue, - possibilité de maintenir et de multiplier, voire d'immortaliser les cellules in vitro dans un milieu défini, favorable à une greffe homologue ou hétérologue, - possibilité de reconstituer la population sanguine de plusieurs individus à partir d'un seul, - possibilité de maintenir les cellules congelées, - cellules transfectables, - cellules à fort pouvoir sécréteur qui pourront être utilisées pour libérer des protéines d'intérêt thérapeutique. avantages économiques : - temps d'hospitalisation réduit (pas de conditionnement ni de cytaphérèse) avantages éthiques - prélèvements peu invasifs. La présente invention a également pour objet un procédé de préparation des cellules isolées et purifiées aptes à la reconstitution des lignées hématopoïétiques, telles que définies ci-dessus, lequel procédé est caractérisé en ce qu'il comprend au moins les étapes suivantes : a) prélèvement d'un échantillon de tissu adipeux extra-médullaire, b) isolement de la fraction cellulaire du stroma vasculaire, de préférence par digestion de la matrice extracellulaire par des enzymes protéolytiques, et par séparation physique, et c) purification des cellules par séparation physique et/ou par immunosélection. Avantageusement, la séparation physique est réalisée par différence d'adhésion sur un support solide ou par différence de densité et l'immunosélection est réalisée à l'aide d'au moins un anticorps spécifique d'un marqueur exprimé par lesdites cellules (sélection positive) et/ou d'au moins un anticorps spécifique d'un marqueur absent desdites cellules (sélection négative). Selon un mode de mise en oeuvre avantageux dudit procédé, il comprend une étape supplémentaire d) d'expansion des cellules in vitro. De manière avantageuse, pour la mise en oeuvre du procédé d'obtention des cellules isolées et purifiées selon l'invention : - le prélèvement (étape a) peut-être effectué au niveau d'un dépôt adipeux facilement accessible, comme un dépôt adipeux sous-cutané, - la fraction cellulaire du stroma vasculaire est isolée (étape b) par différence de densité, notamment selon le protocole décrit par Bjômtorp et al. (précité), - la purification des cellules (étape c) est réalisée soit par séparation sur tout support approprié (différence d'adhésion) ou bien par centrifugation dans un gradient approprié ou par élutriation (différence de densité), soit par immunosélection, selon les techniques classiques d'immunocytochimie, notamment les techniques de tri (positif ou négatif) de cellules immunomarquées en cytométrie de flux ou à l'aide de billes magnétiques, telles que décrites par exemple dans Current protocols in Immunology (John E. Coligan, 2000, Wiley and son Ine, Library of Congress, USA). - l'expansion des cellules in vitro (étape d) est réalisée dans un milieu de culture convenable, tel que par exemple, mais de manière non limitative, un milieu DMEM F12 comprenant soit du sérum de veau foetal, soit un substitut végétal du sérum. La présente invention a également pour objet des cellules modifiées, caractérisées en ce qu'elles sont constituées par des cellules telles que définies cidessus génétiquement modifiées. Selon un mode de réalisation avantageux desdites cellules modifiées, elles comprennent au moins une mutation d'un gène autologue. Au sens de la présente invention, on entend par mutation d'un gène, une insertion, une délétion ou une substitution d'au moins un nucléotide dudit gène. Par exemple, des gènes du CMH desdites cellules peuvent être mutés, afin de permettre une greffe hétérologue. Selon un autre mode de réalisation desdites cellules modifiées, elles contiennent au moins une copie d'un gène hétérologue, notamment un gène d'intérêt thérapeutique. Avantageusement, le produit dudit gène est sécrété par lesdites cellules modifiées. Par exemple, lesdites cellules expriment une interleukine ou un facteur agissant sur la coagulation sanguine. Conformément à l'invention, lesdites cellules modifiées sont obtenues selon des techniques qui sont connues en elles-mêmes de l'Homme du métier ; on peut citer notamment la recombinaison homologue, l'infection par un vecteur recombinant tel qu'un virus recombinant (rétrovirus, lentivirus, adénovirus ou virus associé à l'adénovirus (AAV)) ou la transfection par un plasmide recombinant, qui sont décrites dans Current Protocols in Molecular Biology, (1990-2000), John Wiley and Sons, Inc. New York. Selon la nature du vecteur recombinant, ledit gène hétérologue d'intérêt est intégré dans le génome desdites cellules ou bien il est présent sous forme extra-chromosomique. De préférence, lesdites cellules modifiées telles que définies cidessus sont d'origine humaine. La présente invention a également pour objet des lignées de cellules immortalisées issues des cellules humaines telles que définies ci-dessus. Conformément à l'invention, les lignées de cellules immortalisées sont obtenues par passages successifs, comme décrit dans Green et al., Cell, 1974,3, 127-133. La présente invention a également pour objet un médicament destiné à la reconstitution des lignées hématopoïétiques, caractérisé en ce qu'il comprend des cellules (isolées et/ou modifiées) ou des lignées telles que définies ci-dessus et au moins un véhicule pharmaceutiquement acceptable. De manière avantageuse, ledit médicament est administré par voie parentérale, de préférence par voie intraveineuse. La présente invention a également pour objet l'utilisation des cellules ou des lignées telles que définies ci-dessus pour la préparation d'un médicament destiné au traitement des maladies dans lesquelles on observe une déplétion médullaire induite ou constitutive, telles que définies ci-dessus. Outre les dispositions qui précèdent, l'invention comprend encore d'autres dispositions, qui ressortiront de la description qui va suivre, qui se réfère à des exemples de mise en oeuvre du procédé objet de la présente invention ainsi qu'aux dessins annexés, dans lesquels : - la figure 1 illustre la reconstitution des lignées hématopoïétiques, obtenue par injection de cellules du stroma vasculaire du tissu adipeux extra-médullaire ou de cellules de moelle osseuse (contrôle). La figure lA est un graphique de Kaplan-Meier représentant le pourcentage de survie des souris irradiées de façon létale (en ordonnée), sur une durée de 10 semaines suivant l'irradiation (en abscisse). Les souris irradiées non-reconstituées sont représentées par des cercles, les souris transplantées par des cellules de moelle osseuses par des carrés et les souris transplantées par des cellules du stroma vasculaire par des triangles. Chaque groupe comprend un nombre initial de 10 à 15 souris. Les figures 1 B et 1 C illustrent respectivement le nombre de plaquettes et de leucocytes chez des souris irradiées reconsti- tuées avec des cellules de moelle osseuse (en noir) ou des cellules du stroma vascu- laire du tissu adipeux (en blanc). Les résultats sont exprimés en pourcentage par rapport aux valeurs des témoins non-irradiés, et les valeurs indiquées représentent la moyenne : ! : erreur standard, obtenue sur des groupes de 5 à 15 souris. - la figure 2 illustre la détection par PCR du gène sry spécifique du chromosome Y dans la rate (panneau supérieur) et le sang (panneau inférieur) des souris femelles reconstituées, effectuée 10 semaines après la transplantation de cellules de moelle osseuse ou de cellules du stroma vasculaire. Panneau supérieur : la PCR est effectuée sur 50 ng (lignes 1 ; 5 et 6) ou 150 ng (lignes 2 à 4) d'ADN de rate. Un produit de 722 pb est détecté chez les souris reconstituées avec des cellules de moelle osseuse (ligne 1) ou du stroma vasculaire (lignes 2-4), issues d'une souris mâle. Aucun signal n'est détecté chez les souris femelles témoin (ligne 5). Un échantillon de sang d'une souris mâle est utilisé comme témoin positif (ligne 6). Un marqueur de poids moléculaire est indiqué en référence (MW). Panneau inférieur : la PCR est réalisée sur 50 ng d'ADN de sang. Un produit de 722 pb est détecté chez les animaux reconstitués avec des cellules de moelle osseuse (ligne 5) ou du stroma vasculaire (lignes (3-4), issues d'une souris mâle. Aucun signal n'est détecté chez les souris femelles témoin (ligne 2). Un échantillon de sang d'une souris mâle est utilisé comme témoin positif (ligne 1). Un marqueur de poids moléculaire est indiqué en référence (MW). - la figure 3 illustre l'analyse en cytométrie de flux des cellules du stroma vasculaire des souris C57BI/6 mâles. Panneau 1 : la région RI correspond à la population cellulaire sélectionnée pour l'analyse, en fonction des paramètres de granulométrie (FSC : Forwards Scatter), en abscisse et des paramètres de taille (SSC : Side Scatter), en ordonnée. Panneau 2 : répartition des cellules positives pour l'antigène A2COL6 spécifique des préadipocytes (en abscisse), en fonction de la des cellules (en ordonnée). Panneaux 3 et 4 : représentation d'un triple marquage pour l'antigène spécifique des préadipocytes (A2COL6) et pour deux antigènes spécifiques des cellules souches hématopoïétiques (CD45 et CD34). Le panneau 3 représente la répartition des cellules A2COL6+ (en abscisse) et CD34+ (en ordonnée) dans la population de cellules CD45+. Le panneau 4 représente la répartition des cellules A2COL6+ (en abscisse) et CD45+ (en ordonnée) dans la population de cellules CD34 - la figure 4 illustre la reconstitution des lignées hématopoïétiques obtenue par injection de la lignée préadipocytaire 3T3-L1 ou de cellules de moelle osseuse (contrôle). La figure lA est un graphique de Kaplan-Meier représentant le pourcentage de survie des souris irradiées de façon létale (en ordonnée), sur une durée de 10 semaines suivant l'irradiation (en abscisse). Les souris irradiées non-reconstituées sont représentées par des cercles, les souris transplantées par des cellules de moelle osseuses par des carrés et les souris transplantées par la lignée préadipocytaires 3T3-L1 par des triangles. Chaque groupe comprend un nombre initial de 10 à 15 souris. Les figures 4B et 4C représentent respectivement le nombre de plaquettes et de leucocytes chez des souris irradiées reconstituées avec des cellules de moelle osseuse (en blanc) ou avec la lignée préadipocytaire 3T3-L1 (en noir). Les résultats sont exprimés en pourcentage par rapport aux valeurs des témoins non-irradiés, et les valeurs indiquées représentent la moyenne : erreur standard, obtenue sur des groupes de 5 à 15 souris. EXEMPLE 1 : Matériels et méthodes. 1) Isolement de cellules de moelle osseuse Les cellules de moelle osseuse sont isolées à partir de fémurs de souris C57BI/6 mâles âgées de 6 semaines ; les globules rouges sont éliminés par traitement à l'aide d'une solution de chlorure d'ammonium à 9 % o dans de l'eau, puis les cellules sont centrifugées à 600 g pendant 10 minutes et remises en suspension dans du PBS, avant d'être comptées et injectées. 2) Isolement des cellules du stroma vasculaire (stroma-vascular fraction ou SVF) Les cellules sont isolées selon le protocole décrit par Bjômtorp et al., précité. De façon plus précise, le tissu adipeux inguinal est prélevé chez des souris C57BI/6 mâle âgées de 6 semaines et digéré à 37 C pendant 45 min, dans du tampon PBS contenant 0,2 % de BSA et 2 mg/ml de collagénase. Le produit de digestion est filtré successivement sur un filtre de 100 jj. m et de 25 f. Lm, puis il est centrifugé à 800 g pendant 10 minutes ; les cellules stromales ainsi isolées sont remises en suspension dans du tampon PBS, puis elles sont comptées et utilisées dans des expériences de transplantation ou pour des analyses immunologiques. 3) Culture de la lignée préadipocytaire La lignée de préadipocytes de souris 3T3-L1 (ATCC référence CL- 173) est cultivée dans du milieu DMEM contenant 10 % de sérum de veau foetal inactivé par la chaleur et 2 mM de L-glutamine. Les cultures de cellules 3T3-Ll confluentes sont récoltées par trypsination, comptées et utilisées pour des expériences de transplantation ou des analyses immunologiques. 4) Transplantation de cellules (moelle osseuse, stroma vasculaire lignée 3T3-L1) Le jour de la transplantation, des souris C57 BI/6 femelles âgées de 8 à 10 semaines reçoivent une irradiation létale de 10 Gy, en une seule dose, puis une injection de 5. 106 à 107 cellules, dans un volume de 400 f. LI, par voie intraveineuse dans la veine de la queue ou par voie intrapéritonéale. Les souris sont alimentées avec de l'eau acidifiée et de la nourriture autoclavée. Les animaux sont manipulés conformément aux directives relatives à l'expérimentation animale. 5) Analyse hématologique 4,8 ou 10 semaines après la transplantation, un échantillon de 200 f. Ll de sang périphérique est prélevé dans le plexus rétro-orbital des souris transplantées et immédiatement transféré dans un tube contenant de l'héparine. Des échantillons de sang périphérique prélevés chez des souris non-irradiées sont utilisés comme témoin positif et des échantillons de sang périphérique prélevés chez des souris irradiées nonreconstituées sont utilisés comme témoin négatif. Le comptage des cellules sanguines totales et la proportion des différents types de cellules nucléées est effectué automatiquement par un appareil d'analyse hématologique. 6) Analyse par réaction de polymérisation en chaîne (PCR) 10 semaines après la transplantation, l'ADN génomique total est extrait des cellules de moelle osseuse et de rate, selon les techniques classiques décrites dans Current Protocols in Molecular Biology, (1990-2000), John Wiley and Sons, Inc. New York. Les échantillons d'ADN sont amplifiés dans un volume de 50 f. LI contenant 20 pmoles de chacune des amorces spécifiques du chromosome Y, selon le protocole décrit dans Pang et al., précité ; on obtient un fragment de 722 pb, corres- pondant aux positions 256 à 978 du locus sry. Pour chaque série d'amplification, des échantillons provenant de souris mâles et femelles sont utilisés respectivement, comme témoin positif et négatif. 7) Analyse immunochimique Les cellules en suspension sont incubées avec un premier anticorps dilué dans du Tampon PBS contenant 0,1 % de BSA (anti-A2COL6 (C. Dani, UMRCNRS, Nice), anti-CD34 couplé à la biotine (Clinisciences) ou anti-CD45 (Clinisciences). Après des lavages et des centrifugations, les cellules sont incubées respectivement avec un anticorps secondaire (anti-immunoglobulines de souris couplées à l'isothyocyanate de fluorescéine (A2COL6), anti-immunoglobulines de rat couplées au rouge de Texas (CD45)] et de la streptavidine couplée au Cy-chrome, selon les protocoles classiques décrits dans Current Protocols in Molecular Biology, précité. Puis, les cellules sont fixées dans du tampon PBS contenant 0,037% de paraformaldéhyde et analysées par cytométrie de flux, ou bien elles sont fixées sur des lamelles par centrifugation et observées en microscopie de fluorescence. EXEMPLE 2 : Reconstitution des lignées hématopoïétiques à partir de cellules de moelle osseuse (contrôle) ou de cellules du stroma vasculaire, chez des souris femelles irradiées de façon létale. Les souris receveuses sont irradiées puis transplantées par voie intrapéritonéale, avec des cellules du stroma vasculaire ou bien avec des cellules de moelle osseuse (contrôle), selon les protocoles décrits à l'exemple 1. 1) Survie des animaux irradiés La figure lA illustre la survie des animaux analysée 10 semaines après l'irradiation, de façon à évaluer la reconstitution durable des lignées hématopoïétiques. Les résultats observés montrent que les souris non-reconstituées meurent dans les 3 semaines suivant l'irradiation. En revanche, une survie de 40 % est observée chez les animaux transplantées avec des cellules du stroma vasculaire ou bien avec des cellules de moelle osseuse. Etant donné que l'irradiation létale élimine la majorité des précurseurs hématopoïétiques endogènes, les résultats observés indiquent que la survie des animaux reconstitués est liée aux cellules greffées. 2) Analyse des lignée hématopoiëtiques Les figures 1 B et 1 C illustrent la reconstitution des différentes lignées hématopoïétiques, exprimée en pourcentage par rapport aux valeurs du témoin non-irradié. Chez les souris non-reconstituées, le nombre de plaquettes chute rapidement en une semaine, d'une valeur initiale de 551. 103 plaquettes/jl, à une valeur de 145 : 6. 103 plaquettes/p. 1. En revanche, chez les souris transplantées avec des cellules du stroma vasculaire ou des cellules de moelle osseuse, le nombre de plaquettes augmente progressivement pour atteindre des valeurs significatives à 4 semaines qui rejoignent quasiment celles du témoin à 10 semaines (figure 1C). Chez les souris reconstituées par les cellules du stroma vasculaire, les leucocytes sont presque indétectables une semaine après l'irradiation mais 7 semaines plus tard, ils retrouvent des valeurs identiques à celle du témoin. Les figures IB et 1C montrent également que la restauration du nombre de plaquettes et de leucocytes est plus rapide chez les souris reconstitués avec les cellules de moelle osseuse. L'analyse de la population de leucocytes montre que chez les souris reconstitués par des cellules de moelle osseuse ou des cellules du stroma vasculaire, les proportions de lymphocytes, de monocytes et de granulocytes sont équivalentes à celle des souris témoin non-irradiées. Par conséquent, ces résultats démontrent que l'injection intrapéritonéale de cellules du stroma vasculaire permet de maintenir en vie des souris irradiées de façon létale et permet la reconstitution des lignées myéloïdes et lymphoïdes avec une efficacité comparable à celle observée avec un nombre équivalent de cellules de moelle osseuse, mais avec un retard de quelques semaines. 3) Mise en évidence des cellules greffées chez les souris receveuses La présence de cellules mâles dérivées des cellules injectées dans les sites hématopoïétiques des souris femelles reconstituées a été analysée par PCR à l'aide d'amorces du gène sry, spécifique du chromosome Y. Aucune cellule mâle n'est détectée dans le groupe de souris nonreconstituées ou chez les souris femelles témoin. En revanche, un produit de 722 pb spécifique du locus sry est présent en quantité très importante, dans la rate et le sang des souris injectées avec des cellules de moelle osseuse issues de souris mâles (figure 2). Un produit de taille identique est également détecté dans la moelle osseuse et la rate des souris femelles, 10 semaines après la transplantation de cellules du stroma vasculaire, issues de souris mâles. Par conséquent, les résultats présentés à la figure 2 montrent que certaines cellules du stroma vasculaire ont la capacité de migrer de la cavité péritonéale vers les sites hématopoïétiques et de proliférer, permettant ainsi de reconstituer une hématopoïèse fonctionnelle chez les souris irradiées de façon létale. EXEMPLE 3 : Analyse phénotypique des cellules du stroma vasculaire. Dans la mesure où le stroma vasculaire est constitué d'une population cellulaire hétérogène, des expériences d'immunomarquage en cytométrie de flux ont été réalisées afin d'identifier les cellules du stroma vasculaire qui possèdent une activité hématopoïétique. La figure 3 montre que 35,3 : 3, 6 % de la population de cellules du stroma vasculaire expriment l'antigène A2COL6 qui est un marqueur spécifique des préadipocytes (panneau 2). En utilisant 2 antigènes spécifiques des cellules souches hématopoïétiques, des expériences d'immunomarquage indiquent que respectivement 35,8 : 6 % et 30,6 : 3, 1 % des cellules sont positives pour CD34 et CD45, ce qui démontre que les cellules du stroma vasculaire, isolées à partir du tissus adipeux sont une source inattendue de cellules souche hématopoïétiques aptes à se différencier en cellules des différentes lignées hématopoïétiques (lignées myéloïdes et lymphoïdes). Des expériences complémentaires de triple marquage révèlent que la majorité des cellules A2COL6 positives expriment également les antigènes CD34 et CD45 (figure 3 : panneaux 3 et 4) ce qui démontre que les préadipocytes peuvent être considérés comme des précurseurs hématopoïétiques. Ce triple marquage a également été obtenu avec la lignée préadipocytaire 3 T3- LI. EXEMPLE 4 : Reconstitution des lignées hématopoïétiques à partir de cellules de la lignée préadipocytaire 3T3-Ll, chez des souris femelles irradiées de façon létale. Les souris receveuses sont irradiées puis transplantées par voie intraveineuse ou intrapéritonéale, avec des cellules de la lignée préadipocytaire 3T3- LI, selon les protocoles décrits à l'exemple 1. Des expériences préliminaires ont montré que les greffes sont moins efficaces lorsque les cellules sont injectées par voie intrapéritonéale, vraisemblablement en raison de la lenteur de la migration des cellules, de la cavité péritonéale, vers les centres hématopoïétiques. Par conséquent les résultats des injections intraveineuses sont présentés à la figure 4. La figure 4A montre que 10 semaines après l'irradiation létale, 80 % des souris transplantées avec des cellules de moelle osseuse sont toujours vivantes alors que seulement 50 % des souris transplantées avec des cellules 3T3-L1 ont survécu à l'irradiation. La numération des cellules sanguines des deux groupes de souris transplantées montre une restauration partielle du nombre de plaquettes et de leucocytes dans les 4 semaines suivant l'irradiation (figure 4B et 4C). A 10 semaines le nombre de plaquettes retrouve des valeurs équivalentes à celles des témoins non-irradiés (figure 4B) pour les deux groupes de souris transplantées. En revanche, à 10 semaines les souris reconstituées avec des cellules de moelle osseuse retrouvent des valeurs équivalentes à celles des témoins non-irradiés alors que le nombre de leucocytes ne dépasse pas 50 % des valeurs des témoins chez les souris reconstituées avec des cellules 3T3-L1. L'analyse de la population de leucocytes montre que chez les souris reconstituées par des cellules 3T3-L1, les proportions de lymphocytes, de monocytes et de granulocytes sont équivalentes à celle des souris témoins non-irradiées. Par conséquent, ces résultats démontrent que comparativement aux cellules de moelle osseuse qui sont plus efficaces et permettent la reconstitution des lignées myéloïdes et lymphoïdes avec des valeurs comparables à celles des témoins non-irradiés, dès 8 semaines après l'irradiation, la lignée 3T3-L1 permet cependant une reconstitution partielle des lignées hématopoïétiques. Ainsi que cela ressort de ce qui précède, l'invention ne se limite nullement à ceux de ses modes de mise en oeuvre, de réalisation et d'application qui viennent d'être décrits de façon plus explicite ; elle en embrasse au contraire toutes les variantes qui peuvent venir à l'esprit du technicien en la matière, sans s'écarter du cadre, ni de la portée, de la présente invention. REVENDICATIONS 1 ) Fraction cellulaire du stroma vasculaire du tissu adipeux extra- médullaire comme médicament. 2 ) Utilisation de la fraction cellulaire du stroma vasculaire du tissu adipeux extra-médullaire, pour la préparation d'un médicament destiné au traitement des maladies dans lesquelles on observe une déplétion médullaire induite ou constitutive. 3 ) Cellules isolées et purifiées, aptes à reconstituer des lignées hématopoïétiques, caractérisées en ce qu'elles sont isolées à partir de la fraction cellulaire du stroma vasculaire du tissu adipeux extra-médullaire. 4 ) Cellules selon la revendication 3, caractérisées en ce qu'elles sont susceptibles d'être obtenues par : a) prélèvement d'un échantillon de tissu adipeux extra-médullaire, b) isolement de la fraction cellulaire du stroma vasculaire, de préférence, par digestion de la matrice extracellulaire par des enzymes protéolytiques et par séparation physique et c) purification des cellules par séparation physique et/ou par immunosélection. 5 ) Cellules selon la revendication 3 ou la revendication 4, caractérisées en ce qu'elles expriment au moins un marqueur des cellules souches ou des précurseurs adipocytaires et/ou au moins un marqueur des cellules souches ou des précurseurs hématopoïétiques. 6 ) Cellules selon la revendication 5, caractérisées en ce que ledit marqueur des précurseurs adipocytaires est sélectionné dans le groupe constitué par A2COL6/pOb24, LPL et Prey. 7 ) Cellules selon la revendication 5, caractérisées en ce que ledit marqueur des cellules souches ou des précurseurs hématopoïétiques est sélectionné dans le groupe constitué par : CD34, CD45, Thy-1, Sca-1, CD117 et CD38. 8 ) Cellules selon l'une quelconque des revendications 3 à 7, caractérisées en ce qu'elles expriment au moins A2COL6/pOb24, CD34 et CD45. 9 ) Cellules selon l'une quelconque des revendications 3 à 8, caractérisées en ce qu'elles sont d'origine humaine. 10 ) Cellules modifiées, caractérisées en ce qu'elles sont constituées par des cellules selon l'une quelconque des revendications 3 à 9 génétiquement modi- fiées. 11 ) Cellules modifiées selon la revendication 10, caractérisées en ce qu'elles comprennent au moins une mutation d'un gène autologue. 12 ) Cellules modifiées selon la revendication 10, caractérisées en ce qu'elles contiennent au moins une copie d'un gène hétérologue. 13 ) Cellules selon l'une quelconque des revendications 10 à 12, caractérisées en ce qu'elles sont d'origine humaine. 14 ) Lignées de cellules immortalisées issues des cellules humaines selon la revendication 9 ou la revendication 13. 15 ) Médicament destiné à la reconstitution des lignées hémato- poïétiques, caractérisé en ce qu'il comprend des cellules ou des lignées selon l'une quelconque des revendications 3 à 14 et au moins un véhicule pharmaceutiquement acceptable. 16 ) Utilisation des cellules ou des lignées selon l'une quelconque des revendications 3 à 14 pour la préparation d'un médicament destiné au traitement des maladies dans lesquelles on observe une déplétion médullaire induite ou constitutive. 17 ) Procédé de préparation des cellules isolées et purifiées aptes à la reconstitution des lignées hématopoïétiques selon l'une quelconque des revendications 3 à 9, lequel procédé est caractérisé en ce qu'il comprend au moins les étapes suivantes : a) prélèvement d'un échantillon de tissu adipeux extra-médullaire, b) isolement de la fraction cellulaire du stroma vasculaire, de préférence, par digestion de la matrice extracellulaire par des enzymes protéolytiques, et par séparation physique, et c) purification des cellules par séparation physique et/ou par immunosélection. 18 ) Procédé selon la revendication 17, caractérisé en ce qu'il comprend une étape supplémentaire d) d'expansion des cellules in vitro.