FR 2797689 A1 20010223 FR 9910526 A 19990816 La présente invention concerne des composés synthétiques biépitopiques utilisables comme étalons dans les immunoessais, notamment pour le dosage de la troponine I, leur procédé de préparation, des compositions et des trousses contenant de tels composés ainsi que les procédés d'immunodosages mettant en oeuvre de tels composés. On sait que la troponine est un complexe protéique myofibrillaire, constitué de trois protéines, les troponines I, T et C. Ce complexe protéique permet de contribuer à la régulation de la contraction du muscle par l'ion Ca2+, en interagissant avec la myosine et l'actine. De façon plus précise, on sait que lorsqu'un influx nerveux arrive au niveau de la plaque motrice d'un muscle, il y a génération d'un potentiel d'action qui est transmis au réticulum sarcoplasmique. Le Ca2+ est alors libéré dans le cytosol et se fixe sur la troponine C, ce qui entraîne un renforcement de l'interaction entre la troponine # et la troponine C et, par suite, un changement de conformation du complexe troponine I, T, C. Il y a alors libération des sites d'interaction actine-myosine, ce qui permet le mouvement de contraction du muscle. Lorsque le muscle est endommagé, que ce soit le muscle cardiaque, lors d'une nécrose myocardique consécutive à un infarctus du myocarde, ou que ce soit le muscle squelettique lors d'efforts physiques prolongés, les troponines alors libérées apparaissent plus ou moins rapidement dans la circulation sanguine. Ainsi on a récemment préconisé le dosage de la troponine pour le diagnostic précoce de l'infarctus du myocarde, que ce soit celui de la troponine T dans Circulation (1991,) 83, pp. 902-912, ou de la troponine # dans Am. Heart J. (1987), 110, pp. 1333-1344, et Molecular lmmunology (1992), 29 (2), pp. 271-278. De même, on a proposé le dosage de la troponine T cardiaque pour mesurer le succès de la thérapie thrombolytique suite à un infarctus du myocarde dans Br. Heart J., (1994), 71, pp. 242-248, ainsi que le dosage de la troponine # squelettique pour la mesure du dommage des muscles squelettiques (abrégé n 35 de l'American Association for Clinical Chemistry, 46th National Meeting, New Orleans, July 17-21, 1994). Il est à noter que le dosage des différentes troponines cardiaques et squelettiques est aujourd'hui un moyen très utile pour le diagnostic de pathologies humaines et animales. Il est bien connu que les immunoessais pratiqués dans les laboratoires d'analyses biologiques nécessitent la fourniture par le fabricant, à côté des réactifs nécessaires au dosage (c'est-à-dire des anticorps, marqués ou non, des agents de révélation et des solutions de dilution), d'un étalon du composé à déterminer qui, mis en oeuvre dans des conditions analogues à celles de l'échantillon à étudier, servira de référence pour le calcul des résultats et/ou de témoin positif. Pour obtenir l'étalon et/ou le témoin du composé à déterminer, on peut utiliser ledit composé purifié sous forme lyophilisée (accompagné d'un solvant dans lequel le composé sera dissous par l'utilisateur avant l'emploi) ou prêt à l'emploi. Du fait que les réactifs biologiques sont instables, les solutions étalons ou témoins préparées à partir de lyophilisât sont congelées en doses unitaires et conservées à -80 C. On a constaté par ailleurs que ces solutions n'étaient pas stables plus de quelques heures à +4 C, même si des inhibiteurs de protéases ou des agents antibactériens y étaient ajoutés. Ceci oblige donc les utilisateurs à préparer extemporanément leurs solutions d'étalonnage. La demande de brevet publiée sous le numéro FR-A- 2 701 954, divulgue une composition stabilisée de troponine # ou T pour immunoessai caractérisée en ce qu'elle est constituée d'une solution aqueuse contenant de la troponine # ou de la troponine T, en mélange avec de la troponine C et notamment dans des proportions de 1 à 10 équivalents molaires de troponine C par équivalent de troponine # ou T, et du chlorure de calcium. Cette technique permet la conservation durant plusieurs jours à +4 C des solutions étalons, plus ou moins diluées, de troponine1 ou T. La demande de brevet publiée sous le numéro FR 2 734 267 décrit des solutions étalons de la troponine composées d'un complexe ternaire formé par la troponine I, la troponine T et la troponine C. Les matières premières utilisées pour obtenir ces étalons sont d'origine humaine ou animale, et les étalons ou témoins ainsi obtenus sont stables pendant environ un mois à +4 C. La demande WO 94/15217 décrit certains peptides synthétiques utiles comme immunogènes pour la préparation des anticorps reconnaissant le peptide N-terminal de la troponine I. Certains de ces peptides peuvent être utilisés comme étalons dans des immunodosages de la troponine I, mettant en oeuvre les anticorps objets de l'invention couverte par la demande WO 94/15217. De même, la demande de brevet WO 94/27156 porte sur un procédé de dosage de la troponine # cardiaque, mettant en oeuvre des anticorps spécifiques de la troponine # cardiaque. Ces anticorps peuvent être préparés à partir de fragments peptidiques ayant une séquence absente de la troponine # du muscle squelettique et donc spécifique de la troponine # cardiaque. Toutefois, cette demande ne divulgue ni ne suggère la possibilité d'utiliser certains fragments peptidiques comme étalons dans les immunodosages de la troponine I. On connaît également de la demande WO 96/27661 des solutions aqueuses pour stabiliser des protéines et des peptides. Ces solutions trouvent notamment leur application dans les tests diagnostiques de protéines ou peptides. Selon WO 97/27661, de telles solutions aqueuses permettent même d'augmenter la stabilité des fragments de la troponine # qui sont connus pour être moins stables que la troponine # entière. La demande EP-A-752 426 publiée le 8 janvier 1997 décrit aussi des étalons de la troponine # composés d'un ou de plusieurs peptides fixés sur une molécule porteuse telles que des protéines de haut poids moléculaire (>100 KD) ou des polymères. La demande EP-A-650 053 décrit des étalons synthétiques contenant des sites actifs pour un ou plusieurs récepteurs, reliés entre eux avec une structure arborescente. Cette demande décrit plus spécialement des étalons synthétiques de la troponine T qui ne sont stables en solution que pendant 3 semaines. WO 98/24 816 décrit des composés synthétiques biépitopiques utilisables comme étalons dans les dosages biologiques de la troponine I. Ces composés sont constitués de structures linéaires comprenant deux séquences peptidiques épitopiques différentes de la troponine # reliées entre elles par un groupe de liaison ("linker") formé d'un squelette hydrocarboné et/ou d'un squelette peptidique, dans lequel les deux épitopes peuvent en outre être liés respectivement par leurs extrémités N- et Cterminales à des séquences peptidiques additionnelles. Les composés synthétiques épitopiques ainsi obtenus présentent une excellente stabilité en solution, mais une courbe de dissolution non linéaire. Par "linéarité de dissolution", on entend la fonction représentant le signal obtenu en fonction de la dilution du composé de référence, laquelle doit idéalement être représentée par une droite. On connaît par ailleurs de WO 95/04 543 des structures synthétiques peptidiques constituées par une matrice de nature peptidique comprenant des ramifications formées par des peptides branchés sur les groupements latéraux du peptide matrice par l'intermédiaire d'une liaison dendritique. Ces structures peptidiques ramifiées sont utiles pour la conception de protéines présentant une topologie hélicoïdale déterminée. Les travaux des inventeurs ayant abouti à la présente invention ont permis de découvrir que des structures ramifiées du type décrit dans WO 95/04 543 comprenant des chaînes latérales branchées portant au moins deux séquences épitopiques différentes de la troponine # fournissaient des étalons pour des immunoessais pour le dosage de la troponine # présentant à la fois une stabilité élevée en solution à 4 C et une excellente linéarité de dissolution. L'invention a pour objet l'utilisation de composés synthétiques comprenant : - une molécule porteuse possédant une chaîne hydrocarbonée ayant au moins 10, avantageusement au moins 12, de préférence au moins 14 et au plus 300, avantageusement au plus 100, de préférence au plus 50 atomes choisis parmi C, N, 0, S, P et Si, et comprenant au moins deux fonctions réactives permettant le greffage de bras latéraux sur ladite chaîne ; et - au moins deux épitopes différents portés par lesdits bras latéraux greffés sur ladite molécule porteuse, comme étalons pour des immuno-dosages de molécules biologiques, notamment de polypeptides ou protéines. Le squelette hydrocarboné peut notamment être formé essentiellement d'enchaînements -(CH2)n- où n est un nombre entier compris entre 10 et 300, avantageusement entre 10 et 100, de préférence entre 10 et 50, le squelette étant interrompu par un ou plusieurs hétéroatomes ou hétérogroupes tels que 0, S, N, P et Si, notamment des hétérogroupes azotés, et/ou substitué par des atomes ou groupes tels que halogène, (C6-C12)alkyle, (C6-C12)aryle, (C6-C12)aryl-(CrCi2)alkyle, alkoxy, hydroxy, aldéhyde, alkyl(CC12)carbonyle, amino, thio, carboxy, oxo, hydroxy-(Cl-Cl2)alkyle, thio(Cr C12)alkyle, carboxy-(C-C2)alkyle, aminoalkyle(Cl-Cl2) ou des groupements hétérocycliques saturés ou insaturés en C3-C12 dans lesquels l'hétérocycle est notamment 0, S, =N, ou NR (R étant un atome d'hydrogène ou un groupe alkyle en C1-C12), sous réserve que soient présents en tant que maillons interrompant la chaîne hydrocarbonée ou substituants de la chaîne hydrocarbonée au moins 2 atomes ou groupes permettant le greffage sur ladite chaîne hydrocarbonée des bras latéraux portant les épitopes en question, notamment des groupes amino, hydroxy, thiol, carboxy, ou carbonyle. Il est souhaitable d'avoir un espacement minimal des fonctions latérales sur lesquelles sont greffés les épitopes. A cet égard, on préfère que les épitopes soient espacés d'au moins 40 , ce qui corresponde à un espacement d'au moins 9 atomes de la taille de l'atome de carbone, azote ou oxygène, ou encore au moins trois acides aminés dans le cas d'une chaîne hydrocarbonée de nature peptidique. La chaîne hydrocarbonée est avantageusement un polypeptide formé d'acides aminés naturels tels que ceux trouvés dans les protéines procaryotes ou eucaryotes ou encore d'acides aminés non naturels. Selon un premier mode de réalisation de l'invention, la chaîne hydrocarbonée est ouverte et tous les atomes de la chaîne hydrocarbonée, notamment du polypeptide forment des enchaînements libres en rotation, à savoir exocycliques. Selon un deuxième mode de réalisation de l'invention, la chaîne hydrocarbonée est ouverte et comprend au moins un enchaînement introduisant une rigidité dans la molécule de sorte que les enchaînements formés par les atomes de la chaîne hydrocarbonée ne soient plus tous en libre rotation. Il peut par exemple s'agir d'un atome de carbone sp2, par exemple lorsque la chaîne hydrocarbonée n'est pas ou pas exclusivement de nature peptidique, ou d'un atome de carbone d'un cycle. Lorsque la chaîne hydrocarbonée est de nature peptidique, la rigidité de la molécule porteuse peut être avantageusement conférée par un résidu de proline. Selon un troisième mode de réalisation de l'invention, la chaîne hydrocarbonée, notamment polypeptidique, est fermée de manière à former un cycle. On préfère que la molécule porteuse soit formée exclusivement par des enchaînements d'au moins 5, avantageusement d'au moins 7 acides aminés, et d'au plus 100, avantageusement 50, de préférence 30 acides aminés, plus particulièrement 20 acides aminés dans le cas d'une chaîne ouverte, et d'au moins 8, de préférence au moins 10 et d'au plus 100, avantageusement 50, de préférence 30, plus particulièrement 20 acides aminés dans le cas d'un cycle, et comprenne au moins deux résidus choisis parmi les acides aminés à chaînes latérales basiques, notamment la lysine, les acides aminés à chaînes latérales chargés négativement, notamment l'acide glutamique ou l'acide aspartique, les acides aminés à chaînes latérales hydroxylés, notamment la sérine et la thréonine, et les acides aminés à chaînes latérales contenant du soufre, notamment la cystéine, la lysine étant particulièrement préférée. Dans ce cas, les fonctions latérales réactives présentes sur la molécule porteuse sont avantageusement des groupes-NH2 d'un acide aminé basique, préférentiellement la lysine. Les épitopes peuvent consister en deux épitopes quelconques de la molécule biologique à doser pour lesquels existent des anticorps, de préférence des anticorps spécifiques. On peut citer pour la troponine # des anticorps décrits par Larue et al. (Molec. Immunology, (1992), vol. 20 n 29, pp. 271-278), Bodor et al. (Clin. Chem. (1992), vol 38 n 11, pp. 2203-2214), Granier et al (Protein Science, (1997), vol. 6 suppl. 1, p. 61) et dans la demande WO 94/15217. La majorité de ces anticorps sont disponibles dans le commerce (Hytest LTD-Turku, Finland). On préfère notamment les anticorps 11E12 et 8E1. Les épitopes sont dénommés ci-après par E1 et E2, E1 étant différent de E2. Les épitopes E1 et E2 peuvent être présents en un seul exemplaire chacun sur la molécule porteuse ou en plusieurs, notamment deux, trois ou quatre exemplaires. Dans ce dernier cas, les deux exemplaires du même épitope peuvent être présents sur le même bras latéral ou sur deux bras latéraux différents. On préfère toutefois qu'un même bras latéral ne comporte pas plus de deux épitopes identiques ou différents. Dans le cas où les épitopes sont présents à plus de deux exemplaires, on préfère que ceux-ci soient portés par autant de bras latéraux supplémentaires. Lorsqu'ils sont présents en deux exemplaires sur les même bras latéraux, les épitopes E1 et E2 sont avantageusement séparés les un des autres par un groupe de liaison Z ("linker") avantageusement constitué d'une chaîne hydrocarbonée comprenant au moins un atome de carbone éventuellement interrompue par au moins un hétéroatome choisi parmi N, 0, S, P et Si, qui peut être de nature peptidique ou non peptidique. Aussi, le groupe de liaison Z peut représenter : une séquence peptidique de 1 à 40, de préférence 3 à 20 acides aminés, à condition toutefois que l'enchaînement formé par les épitopes et le groupe de liaison Z ne forment pas ensemble une partie de la séquence de la molécule biologique à doser, notamment la troponine I; une chaîne aminoalkyl-(C1-C10) carbonyle linéaire ou ramifiée ; une construction mixte constituée d'au moins une séquence peptidique de 1 à 10 acides aminés et au moins une chaîne aminoalkyI(CrCio)carbonyle linéaire ou ramifiée. On considère que -E1-Z-E2- n'est pas une partie de la séquence de la molécule biologique à doser, notamment la troponine I, lorsque -Ei-Z-E2diffère d'un fragment donné de la séquence de la molécule à doser, par exemple la troponine # par substitution, délétion ou insertion non conservative d'au moins un acide aminé, de préférence de 2 acides aminés, plus particulièrement de 5 acides aminés. Z peut notamment représenter : une chaîne de formule : -N H-(CH2)m-CO- dans laquelle m représente un nombre entier de 1 à 10, # ou une construction mixte de formules : -[pepi-NH-(CH2)m-CO]p- -[pepi-NH-(CH2)m- CO-pep2]p- -[NH-(CH2)m-CO-pep2]p- dans lesquelles : - m représente un nombre entier de 1 à 10, - p représente un nombre entier de 1 à 5, et - pep1 et pep2 identiques ou différents représentent une chaîne peptidique comportant de 2 à 10 acides aminés. Les bras latéraux portant les épitopes comprennent de préférence aux extrémités N- et C-terminales des épitopes, ou de l'enchaînement formé par E1-Z-E2 des groupes supplémentaires respectivement Z1 et Z2. Avantageusement, Z1 représente : * un atome d'hydrogène, un groupement acétyle, une séquence peptidique de 1 à 10 acides aminés, une séquence peptidique de 1 à 10 acides aminés N- terminale a acétylée, un groupement cystéinyle, biotinyle ou biocytinyle, une séquence peptidique de 1 à 10 acides aminés portant un reste cystéinyle, amino, hydroxyle, halogéno, carboxyle, biotinyle ou biocytinyle, * une chaîne aminoalkyl(Ci-Clo)carbonyle linéaire ou ramifiée, * une chaîne aminoalkyl(CrCi0)carbonyle linéaire ou ramifiée N- a-acétylée, # une construction mixte constituée d'au moins une séquence peptidique de 1 à 10 acides aminés et au moins une chaîne aminoalkyl(C1C10)carbonyle linéaire ou ramifiée, ou # une construction mixte constituée d'au moins une séquence peptidique de 1 à 10 acides aminés et au moins une chaîne aminoalkyl(C1C10)carbonyle linéaire ou ramifiée, portant un reste amino, halogéno, hydroxyle, carboxyle, biotinyle, biocytinyle ou cystéinyle. Avantageusement Z2 représente : # un radical hydroxyle, un radical amino, une séquence peptidique de 1 à 10 acides aminés, une séquence peptidique de 1 à 10 acides aminés portant un groupement amino terminal, hydroxyle, carboxyle, halogéno, cystéinyle, biotinyle ou biocytinyle, #une chaîne aminoalkyl(C-Co)carbonyle linéaire ou ramifiée, #une chaîne aminoalkyl(C-Co)carbonyle linéaire ou ramifiée portant un radical hydroxyle ou un radical amino, # une construction mixte constituée d'au moins une séquence peptidique de 1 à 10 acides aminés et au moins une chaîne aminoalkyl(C1C10)carbonyle linéaire ou ramifiée, # une construction mixte constituée d'au moins une séquence peptidique de 1 à 10 acides aminés et au moins une chaîne aminoalkyl(C1C10)carbonyle linéaire ou ramifiée, portant un radical hydroxyle ou un radical amino. Les bras latéraux sont liés à la molécule porteuse soit directement, soit par l'intermédiaire d'un groupement bifonctionnel, comprenant à ses extrémités deux fonctions réactives choisies pour réagir avec les groupements réactifs portés respectivement par la molécule porteuse et Z1 ou Z2. On préfère que les bras latéraux comprennent des épitopes formés d'au plus 10, avantageusement au plus 6 acides aminés et que les groupes Z, et Z1 et Z2 soient formés d'acides aminés naturels et/ou non naturels. Les composés synthétiques biépitopiques de l'invention peuvent être obtenus par un procédé comprenant les étapes suivantes : étape A : fourniture d'une molécule porteuse comprenant au moins deux groupes réactifs permettant le greffage des chaînes latérales. étape B : éventuellement cyclisation de la molécule porteuse. étape C : de molécules formant les bras latéraux, comprenant au moins une fonction réactive avec le groupe réactif de la molécule porteuse. étape D : couplage des bras latéraux et de la molécule porteuse dans des conditions appropriées. Lorsque la molécule porteuse et les chaînes latérales sont de nature polypeptidique, les étapes ci-dessus décrites peuvent avantageusement constituer en : étape A : d'un peptide comprenant au moins deux résidus acides aminés comportant au moins deux groupes latéraux fonctionnels (par exemple : amino) identiques ou différents. Dans le cas d'un peptide cyclisé, les groupements fonctionnels sont choisis de façon à ce qu'il n'y ait pas d'interférence lors de la cyclisation ou alors ceux-ci sont protégés de façon temporaire à l'aide d'un groupe protecteur usuel. étape B : cyclisation éventuelle du peptide soit directement, soit par l'intermédiaire d'un agent de couplage. Par exemple, dans le cas de la formation d'une liaison amide, le couplage peut être réalisé par l'intermédiaire du couple hexafluorophosphate de benzotriazolyl-oxy-tris -(diméthylamine)phosphonium/1-hydroxybenzotriazole (BOP/HOBt) en présence d'une base. étape C : des peptides des branches latérales non protégés, chacun portant un groupement fonctionnel susceptible de réagir directement ou par l'intermédiaire d'un agent de couplage ; puis étape D : couplage de la molécule porteuse avec les peptides formant les branches latérales de manière à obtenir le composé synthétique biépitopique selon l'invention. Dans une forme de réalisation préférée, les groupements fonctionnels de la molécule porteuse sont des fonctions amino activées par l'intermédiaire d'un groupement SSMCC. Dans l'étape D, la liaison entre les branches latérales et la molécule porteuse est réalisée par une réaction de substitution nucléophile entre un résidu-SH du peptide de la branche latérale sur un groupement maléimide de la molécule porteuse. La molécule porteuse et les chaînes des bras latéraux sont obtenus par des procédés classiques de la synthèse organique et/ou de la chimie des peptides le cas échéant. Les peptides de la molécule porteuse et des bras latéraux portant les épitopes peuvent être obtenus par synthèse en phase solide selon des méthodes classiques décrits par R.B. Merrifield, J. Amer. Chem. Soc. (1963), 85, pp. 2149-2154; R. C. Sheppard, dans Peptides 1971 , Nesvadba H (ed.) North Holland, Amsterdam, pp. 111 ; E. Atherton et R.L. Sheppard, dans Solid phase peptide synthesis, a practical approach , IRL PRESS, (1989), Oxford University Press, pp. 25-34. Comme synthétiseur automatique, on peut utiliser le synthétiseur 9050 Plus Pep Synthesizer de Millipore, "Pioneer" de Perspective ou le synthétiseur "433A" de ABI. Les peptides peuvent également être obtenus par synthèse en phase homogène. Le support solide utilisé pour les synthèses doit être compatible avec la technique et la chimie utilisée. Par exemple, pour une synthèse sur le synthétiseur 9050 Plus pep. Synthesizer il est recommandé d'utiliser une résine adaptée à la technique dite en flot continu ;les résines PEG PS répondent à ces critères. Ces supports sont constitués d'un bras ( spacer ) à base de polyéthylène glycol (PEG) situé entre le groupement fonctionnel du polystyrène des billes et le point d'accrochage du premier acide aminé. La nature de ce point d'ancrage peut varier selon la fonction C-terminale choisie. Par exemple, pour un peptide sous forme d'amide, on pourra prendre une résine de type PAL PEG PS. Les résines de Novabiochem répondent aussi aux critères nécessaires à la synthèse en phase solide au flot continu. Elles présentent en outre l'avantage de pouvoir libérer le peptide après synthèse dans des conditions acides dites douces, ce qui permet d'obtenir des fragments peptidiques dont les chaînes latérales des acides aminés sont encore protégées par des groupements chimiques. La résine de départ et les acides aminés utilisés comme matière première sont des produits disponibles dans le commerce (PerSeptiveBiosystem, Perkin-Elmer, Novabiochem). Les groupements protecteurs de chaînes latérales qui peuvent être utilisés sont représentés au tableau 1: Tableau 1 : groupements protecteurs. Aminoacides Groupement protecteurs Arginine Pentaméthyl-2,2,4,6,7-dihydrobenzofuran-5-sulfonyle (Pbf) ~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~ Asparagine, Glutamine Trityle (Trt) Acide glutamique Ester tert-butyle (otBu) Thréonine, Tyrosine, Ether tert-butyle (tBu) Serine Lysine Tert-butyloxycarbonyle (Boc) La protection temporaire de la fonction amine primaire en a des aminoacides peut être effectuée à l'aide du groupement 9-fluorénylméthyloxylcarbonyle (Fmoc). La déprotection peut être effectuée par une solution de pipéridine à 20% dans le diméthylformamide. Pour le couplage, on utilise de préférence un excès de diisopropylcarbodiimide (DIPCDI) et de 1-hydroxy-benzotriazole (HOBt). Pour les peptides cycliques constituant la molécule porteuse, on utilise de préférence la résine Fmoc Ala Nova Syn Après synthèse, la résine est lavée avec des solvants organiques, (diméthylformamide puis dichlorométhane) séchée sous vide puis traitée par une solution à base d'acide. Les peptides ainsi isolés sont ensuite précipités et rincés à l'éther. Pour des molécules porteuses formées de peptides cycliques, on peut, par exemple, réaliser une cyclisation dite "tête queue". Pour cette étape, le peptide est dissous dans du DMF, l'agent de couplage étant le couple BOP/HOBt en présence d'une base comme la diisopropylènamine (DIEA), ou la N-méthylmorpholine (NMM). Après extraction, le peptide cyclisé est précipité puis lavé par une solution à base d'éther. Le peptide ainsi obtenu est ensuite traité par une solution d'acide trifluoroacétique puis de nouveau précipité et rincé à l'éther. Pour des molécules porteuses de nature peptidique non cycliques, on utilise une résine PALPEG PS. Après synthèse, la résine est lavée sur des solvants organiques, (diméthylformamide, dichlorométhane), séchée sous vide puis traitée par une solution à base d'acide trifluoroacétique refroidie à 0 C et contenant ses "scavengers" appropriés. On peut utiliser par exemple le réactif K contenant 82 % d'acide trifluoroacétique, 5 % de phénol, 5 % d'eau, 5 % de thioanisole et 39 % d'éthane dithiol. Les peptides formant les chaînes latérales peuvent être obtenus en particulier comme décrit dans WO 98/24 816. Les peptides synthétiques ainsi isolés sont ensuite précipités à l'éther. Les composés synthétiques cycliques ou linéaires sont ensuite purifiés par chromatographie liquide en phase inverse et leur pureté est déterminée par spectrométrie de masse. Comme phase, on peut utiliser, par exemple, la phase Bondapak C-18. Les peptides sont élués en réalisant un gradient linéaire entre deux solutions tampons, le premier essentiellement aqueux (par exemple eau-TFA 0,1 %) et le second plutôt organique (par exemple un mélange contenant de l'acétonitrile 60 %, eau 40 % et TFA 0,08 %). Les fractions pures collectées sont rassemblées, concentrées sous vide et lyophylisées. Les fonctions des chaînes latérales du polypeptide porteur sont ensuite activées par un groupement bifonctionnel permettant la liaison de façon spécifique ou non d'un ou plusieurs peptides (formant les bras latéraux). Comme exemple de chaîne latérale pouvant être utilisée dans ce type de liaison on peut citer les chaînes portant des groupes amino (primaire/secondaire), carboxyle, thiol, hydroxyde, aldéhyde, etc ... Comme exemple de composés comprenant des groupements bifonctionnels, on peut utiliser les composés suivants : - BS3 : bis(sulfosuccinimidyl)subérate ; - sSMCC : (sulfosuccinimidyl 4-N-maléimidométhyl) cyclo-hexane 1-carboxylate. - BMH : bis-maléido hexane - DSG : Disuccinimidyl glutarate - 5MBS : m-maleimidobenzoyl-N-hydroxy sulfo succimide ester - MPBH : 4-(4-N-maleimidophényl)butyric acide hydroxide - EDC : 1-ethyl-3-(3-diméthylaminopropylate) carbodiimide L'invention a également pour objet des composés de l'invention comprenant deux épitopes différents de la troponine # tels que définis précédemment. Comme épitopes, on peut citer notamment les séquences peptidiques TEPH, ALLGAR et FAEL. L'invention a également pour objet des compositions contenant les composés de l'invention comprenant deux épitopes de la troponine I. Il s'agit de préférence de solutions aqueuses ou de compositions constituées de composés synthétiques biépitopiques tels que décrits précédemment dans une solution tampon. Comme solution tampon, on peut utiliser, par exemple, une solution tampon phosphate (KH2PO4/K2HPO4 pH = 6,5 - 7,5) contenant du Kathon et du BSA ou du Kathon, du Régilait et d'EDTA, ou du Kathon, du Plasmion et éventuellement de l'EDTA, ou du Kathon, de la caséine et de l'EDTA. On peut utiliser également des solutions tampon succinate (pH = 5 - 6) ou Tris HCI (pH = 7,5 - 8,5) contenant du Kathon et du BSA ou du @Kathon, du Régilait et de l'EDTA ou du @Kathon, du #Plasmion et éventuellement de l'EDTA, ou du Kathon, de la Caséine et de l'EDTA. Des solutions tampons contenant de la glycine, du Kathon, du #Régilait et de l'EDTA peuvent être également utilisées. On préfère les solutions tampon succinate ou phosphate contenant du @Kathon, du Régilait et de l'EDTA. Le Kathon, agent anti-bactérien commercialisé par la Société Rhom et Haas, est constitué de 5-chloro 2-méthyl 4-isothiazolin-3-one et de 2méthyl 4-isothiazolin-3-one (1,5%). Le #Régilait est commercialisé par la société Régilait. Le Plasmion est commercialisé par les laboratoires Bellon et est constitué de gélatine fluide modifiée (30 g/l), NaCI (5,382 g/l), MgCI (143 mg/l), KCI (373 mg/l), lactate de sodium (3,360 g/l), dans l'eau. Les solutions tampons suivantes sont particulièrement préférées : - solution tampon succinate 0,1 M (pH = 6) contenant du Kathon (0,2%), du #Régilait (0,05 - 2%) et de l'EDTA 2mM, - solution tampon succinate 0,1M (pH = 6) contenant du Kathon (0,2%) de la caséine (0,01 - 0,5%) et de l'EDTA 2mM, - solution tampon phosphate KH2P04/K2HP04 0,1 M (pH = 7,5) contenant du Kathon (0,2%) du #Régilait (0,05 - 0,5%) et de l'EDTA 2mM, - solution tampon phosphate KH2P04/K2P04 0,1 M (pH = 7,5) contenant du Kathon (0,2%), de la caséine (0,01 - 0,1%) et de l'EDTA 2mM. Des compositions contenant du plasma et un composé de l'invention tel que défini ci-dessus, font aussi partie de la présente invention. Des procédés d'immunodosages utilisant comme étalons ou témoins les composés tels que définis ci-dessus font également partie de l'invention. Avantageusement, les procédés d'immunodosages mis en #uvre selon l'invention sont des immunodosages de type sandwich. L'invention vise aussi des trousses pour la mise en oeuvre d'immunodosages qui incluent un composé tel que défini ci-dessus ou une composition qui contient un peptide biépitopique tel que défini ci-dessus. Les exemples suivants illustrent l'invention et sont donnés à titre non limitatif. EXEMPLE 1 : Préparation de composés biépitopiques synthétiques selon l'invention. A. Préparation de la molécule porteuse. On prépare un peptide cyclique de formule : K GPGRAK GPGSAn (peptide 3) le code étant le code à une lettre. Ce peptide est synthétisé en phase solide par la technique mise au point en 1963 par Merrifield (J. Am. Chem. Soc. 1963,85, pp 2149-2154) comme décrit précédemment. Pour la synthèse du composé ci-dessus, ont été utilisés comme synthétiseur le synthétiseur 9050 Plus Synthetizer et comme résine, la résine Fmoc Ala Nova Syn. Les différentes étapes de la synthèse sont résumées dans le tableau Il suivant : Tableau Il : Etapes de la synthèse. Résidu acide Protection NH2 Protection Méthode de couplage Nbre aminé latérale d'équivalents Durée Nbre de couplage Ser Fmoc tBu DIPCDI/HOBt 5 eq/30'/Dc Gly " - " " Pro " - " " Gly " - " " Lys " Boc " " Ala " - " " Arg " Pbf " " Gly " " " " Pro " " " " Gly " " " " Lys " " " " A la fin de la synthèse, la résine est lavée avec du diméthylformamide, puis du dichlorométhane et séchée sous vide. Ensuite, la résine est traitée avec une solution contenant de l'acide acétique, du méthanol et du dichlorométhane (5/1/4 VNN). La résine est isolée du peptide en solution par filtration, le filtrat est concentré et le peptide isolé par précipitation à l'éther refroidi. On obtient ainsi 0,145 g du composé. Le peptide est ensuite cyclisé. 100 mg du composé sont dissous dans 18 ml de diméthylformamide auxquels sont ajoutés successivement 2 équivalents de BOP, 2 équivalents d'HOBt, 5 équivalents de DIEA. Après deux heures de réaction, le peptide cyclisé est extrait en ampoule à décanter. La phase organique est ensuite séchée sur Na2S04 puis concentrée au @Rotavapor. Le peptide cyclisé est ensuite précipité dans un mélange d'éther, d'acétate d'éthyle et d'hexane (6/3/1)V/V/V), pendant 15 heures à 0 C. On obtient 70 mg du peptide transporteur cyclisé. B. Préparation de composés synthétiques biépitopiques selon l'invention. 8 mg de peptide transporteur cyclisé dissous dans un mélange DMF/tampon (1/3 / 2/3) sont activés par 6 équivalents de SSMCC ajoutés goutte à goutte. La réaction est maintenue sous agitation pendant environ 45 minutes. Le peptide porteur activé est séparé de l'excès de SSMCC par HPLC. Les fractions pures sont rassemblées et lyophilisées. On obtient 4,5 mg de peptide transporteur activé (rendement 45 %) 2 mg de peptide porteur activé sont dissous dans un tampon PBS pH 6,5. A cette solution sont ajoutés 2 équivalents du peptide suivant : 1116 Ac Ac-GS S NYRAYA-(TE PH )-AKK-Hx-PLELAGLG-(FAEL}-QDLCRQ-N H2 soit 8 mg. Les séquences peptidiques entre parenthèses représentent des épitopes de la troponine I. La réaction est maintenue sous agitation pendant quatre heures. Le peptide porteur est ensuite dessalé (HPLC/dialyse). Le poids moléculaire est évalué par spectrométrie de masse. De la même manière, on a préparé les peptides 5,9 et 10 de formules suivantes : - peptide 5 : peptide 9 : peptide 10 : Les résultats de stabilité et de linéarité de dissolution sont donnés ci-après : EXEMPLE 2 : Stabilité des composés selon l'invention. La stabilité des composés PEP5, PEP9 et PEP10 a été évaluée et comparée à celle d'un composé de référence (TRP 1116 Ac). Les résultats sont représentés en tableau III ci-après. Tableau 3. COMPOSE DILUABILITE* STABILITE** LIQUIDE +4 C EN TAMPON. (TAMPON ***) JO + 24 H/JO JO + 1 mois/JO JO + 3 mois/JO JO + 6 mois/JO JO + 9 mois/JO JO + 12 mois/JO TRP 1116 Ac NON 0,81 PEP 5 OUI 0,94 0,89 1,06 1,04 1,03 PEP 9 OUI 1,01 0,94 ND ND ND PCP 10 OUI 1,13 ND ND ND ND * Normes d'acceptation des dilutions : Rapport signal exp./ signal théo. = 1.00 0. 2, diluable au dessus de 100 000 unités. ** Normes d'acceptation des stabilités : concentration en mg/ml : rapport / JO=1.00 0. 2. *** Tampon succinate 0. 1 M pH 6. 0 Kathon 0. 2% avec Régilait 0. 2% + EDTA 2mM ou bien avec BSA 1 %. ND = non déterminé (en cours) Le peptide 1116 Ac n'est pas stable à 24 H. Les peptides PEP5, PEP9 et PEP10 sont tous stables après 1 mois, voire après 12 mois pour PEP 5. EXEMPLE 3 : Résultats des linéarités des courbes de dissolution. Les résultats sont représentés au tableau 5 ci-après. Normes d'acceptation des dilutions : rapport signal expérimental / signal théorique = 1.00 0.2 Résultats exprimés en unités de signal Tableau 5 Dilution Signal Signal théorique Signal exp./signal expérimental théo. 1/10 000 Il 039 697 Peptide 1/20 000 3 779 387 5 519 849 0,68 TRP 1116 Ac 1/40 000 1 573 457 2 759 924 0 57 1/50 000 1 125 417 2 207 939 0,51 1/100 000 471 714 1 103 970 0,43 1/300000 132054 367990 0,36 Dilution Signal Signal théorique Signal exp. /signal expérimental théo. 1/50 000 6 175 137 Peptide 1/100 000 3 175 837 3 087 569 1,03 PEP 5 1/200 000 1 513 547 1 543 784 0,98 1/500 000 547 444 617 514 0,89 1/1000 000 251 103 308757 0,81 Dilution Signal Signal théorique Signal exp./signal expérimental théo. 1/50 000 6416384 Peptide 1/100 000 3 411 124 3 208 192 1,06 PEP 9 1/200 000 1 685 334 1 604 096 1,05 1/500 000 655 134 641 638 1,02 1/1000 000 321 101 320 819 1,00 Dilution Signal Signal théorique Signal exp./signal expérimental théo. 1/50 000 4 786 295 Peptide 1/100 000 2 433 915 2393 148 1,02 PEP 10 1/200 000 1 230 715 1 196 574 1,03 1/500 000 455 405 478 630 0,95 1/1000 000 215 853 239315 0,90 Les courbes de dissolution des PEP 5, PEP 9 et PEP 10 présentent encore une bonne linéarité même aux fortes dilutions, contrairement au peptide TRP 1116 Ac. REVENDICATIONS 1. Utilisation de composés synthétiques comprenant : - une molécule porteuse possédant une chaîne hydrocarbonée ayant au moins 10, avantageusement au moins 12, de préférence au moins 14 et au plus 300, avantageusement au plus 100, de préférence au plus 50 atomes choisis parmi C, N, 0, S, P et Si, et comprenant au moins deux fonctions réactives permettant le greffage de bras latéraux sur ladite chaîne ; et - au moins deux épitopes différents portés par lesdits bras latéraux greffés sur ladite molécule porteuse, comme étalons pour des immuno-dosages de molécules biologiques, notamment de polypeptides ou protéines. 2. Utilisation selon la revendication 1, caractérisée en ce que le squelette hydrocarboné est formé d'aminoacides liés entre eux par des liaisons amide, notamment un polypeptide naturel. 3. Utilisation selon la revendication 2, caractérisée en ce que les fonctions latérales réactives sur lesquelles sont greffés les épitopes sont espacées d'au moins 9 atomes, avantageusement au moins 3 acides aminés. 4. Utilisation selon l'une des revendications précédentes, caractérisée en ce que la chaîne hydrocarbonée, avantageusement le polypeptide forme une chaîne ouverte. 5. Utilisation selon la revendication 4, caractérisée en ce que les atomes de la chaîne hydrocarbonée, avantageusement du polypeptide forment des enchaînements libres en rotation. 6. Utilisation selon la revendication 4, caractérisée en ce que la chaîne hydrocarbonée, avantageusement le polypeptide comprend au moins un enchaînement non libre en rotation, notamment un maillon cyclique. 7. Utilisation selon la revendication 6, caractérisée en ce que la chaîne hydrocarbonée est de nature polypeptidique et comprend un résidu proline. 8. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisée en ce que la chaîne hydrocarbonée, avantageusement le polypeptide forme un cycle. 9. Utilisation selon l'une des revendications précédentes, dans laquelle ies épitopes portés sur un même bras latéral sont séparés l'un de l'autre par une chaîne hydrocarbonée comprenant au moins un atome de carbone, éventuellement interrompue par au moins un hétéroatome choisi parmi N, 0, S P et Si, ladite chaîne hydrocarbonée étant éventuellement formée par un enchaînement de 1 à 40 acides aminés à condition que l'enchaînement formé par le premier épitope, ladite séquence peptidique et le second épitope ne forment pas ensemble une partie de la séquence de la molécule biologique. 10. Composés biépitopiques synthétiques comprenant : - une molécule porteuse possédant une chaîne hydrocarbonée ayant au moins 10, avantageusement au moins 12, de préférence au moins 14 et au plus 300, avantageusement au plus 100, de préférence au plus 50 atomes choisis parmi C, N, 0, S, P et Si, et comprenant au moins deux fonctions latérales réactives permettant le greffage de bras latéraux sur ladite chaîne ; et au moins deux épitopes différents de la troponine 1 portés par lesdits bras latéraux greffés sur ladite molécule porteuse. 11. Composés biépitopiques synthétiques selon la revendication 10, caractérisés en ce que le squelette hydrocarboné est tel que défini à l'une des revendications 2, ou 4 à 8. 12. Composés biépitopiques selon la revendication 10 ou la revendication 11, caractérisés en ce que la chaîne hydrocarbonée est de nature peptidique, les fonctions réactives sur lesquelles sont greffées les séquences peptidiques comprenant les épitopes étant espacées d'au moins trois acides aminés. 13. Composés biépitopiques synthétiques selon l'une des revendications 10 à 12, caractérisés en ce que les épitopes minimums comprennent les séquences choisies parmi : - TEPH ; - ALLGAR ;et - FAEL. 14. Composés biépitopiques synthétiques selon l'une des revendications 10 à 12, caractérisés en ce que les fonctions latérales réactives sont des groupes NH2 d'un acide aminé basique, notamment la lysine. 15. Composés biépitopiques synthétiques selon l'une des revendications 10 à 14, caractérisés en ce que la molécule porteuse est un peptide ouvert comprenant de 5 à 50, avantageusement de 5 à 30, de préférence de 7 à 20 acides aminés ou un peptide cyclique comprenant de 8 à 50, avantageusement de 8 à 30, de préférence de 10 à 20 acides aminés. 16. Composition contenant un composé selon l'une quelconque des revendications 10 à 15 en solution dans l'eau, dans le plasma ou dans une solution tampon. 17. Composition selon la revendication 16 caractérisée en ce que la solution tampon est choisie parmi les solutions tampon phosphate, succinate ou Tris HCi. 18. Composition selon les revendications 16 et 17 caractérisée en ce que la solution tampon est une des solutions suivantes : - solution tampon succinate (pH = 5 - 6) contenant du Kathon, du Régilait et de l'EDTA, - solution tampon succinate (pH = 5 - 6) contenant du Kathon, de la caséine et de l'EDTA, - solution tampon phosphate (KH2P04/K2HP04 pH = 6,5 - 7,5) contenant du Kathon, du Régilait et de l'EDTA, - solution tampon phosphate (KH2PO4/K2HPO4 0,1 M pH = 6,5 - 7,5) contenant du Kathon, de la caséine et de l'EDTA. 19. Procédé d'immunodosage utilisant comme étalon ou témoin un composé biépitopique selon l'une quelconque des revendications 10 à 15. 20. Procédé selon la revendication 19 caractérisé en ce que l'immunodosage est de type sandwich. 21. Trousse pour la mise en oeuvre d'un immunodosage comprenant : un peptide biépitopique tel que défini à l'une quelconque des revendications 10 à 15, ou une composition selon l'une quelconque des revendications 16 à 18 ; des réactifs usuels pour la mise en #uvre d'un immunodosage.