FR 2798386 A1 20010316 FR 9911493 A 19990910 La présente invention concerne le domaine des techniques de détection et/ou d'amplification et de séquençage, à l'aide de sondes ou d'amorces oligonucléotidiques, et l'application de ces sondes ou amorces pour détecter la présence ou identifier les bactéries de l'ordre des Spirochaetales (spirochètes). Dans le cadre de certains tests de diagnostic, notamment lors d'une recherche d'infection humaine ou animale dans le système nerveux ou d'une recherche après piqûre d'arthropode par exemple, il est souvent nécessaire d'obtenir une réponse rapide concernant la présence de bactéries, et plus précisément de spirochètes, dans un échantillon. Toutefois, les techniques couramment développées, telles qu'un examen direct après coloration de Gram ou une mise en culture, sont souvent mises en échec par l'absence de prise de colorant de Gram et l'absence de croissance dans les milieux de culture. Dans le cas des spirochètes, qui constituent une famille de bactéries regroupant les espèces Leptospira, Borrelia, Treponema et Serpulina et étant responsables de maladies infectieuses, telles que la méningoencéphalite, la mise en culture n'est pas possible. L'identification des spirochètes n'a donc pas encore été résolue. Etant donné l'accroissement de ces maladies infectieuses ces vingt dernières années et les conséquences dramatiques de ces états pathologiques infectieux, il est nécessaire de mettre au point une méthode rapide et spécifique de détection des pathogènes infectieux que sont les spirochètes. Une solution possible, permettant de palier à l'impossibilité d'une mise en culture des bactéries, réside dans l'utilisation des technologies relatives aux acides nucléiques et au matériel génétique, notamment des méthodologies PCR (Polymerase Chain Reaction), afin de déterminer si un gène, une partie de gène ou une séquence nucléotidique est présent chez un organisme vivant, un extrait cellulaire de cet organisme ou un échantillon. Etant donné que tout gène ou partie de gène est caractérisé par une séquence spécifique de bases nucléotidiques, il est par conséquent possible de rechercher directement la présence de tout ou partie de ladite séquence spécifique au sein d'un échantillon contenant un mélange de polynucléotides. Différents types de méthodes de détection des acides nucléiques sont décrits dans la littérature. Ces méthodes reposent sur les propriétés d'appariement purine- pyrimidine des brins complémentaires d'acides nucléiques dans les duplex ADN-ADN et ARN-ARN. Ce processus d'appariement s'effectue par l'établissement de liaisons hydrogène entre les bases adénine-thymine (A-T) et guanine-cytosine (G-C) de l'ADN double brin. Des paires de bases adénine-uracile (A-U) peuvent également se former par liaison hydrogène dans les duplex ADN-ARN ou ARN-ARN. L'appariement de brins d'acide nucléique pour la détermination de la présence ou de l'absence d'une molécule d'acide nucléique donnée est communément appelé " hybridation d'acides nucléiques " ou simplement " hybridation ". Un exemple de méthodologie PCR comprend la détermination d'une séquence sur la base de l'ARNr 16S. Toutefois, cette méthode présente des limites liées aux problèmes potentiels de contaminations qui gênent le diagnostic. Pour pallier à cet inconvénient, de nouveaux marqueurs génétiques permettant la détection spécifique de bactéries appartenant à l'ordre des spirochètes dans tout échantillon, sans étape préalable de culture bactérienne, ont été trouvés. Ces nouveaux marqueurs, qui sont des oligonucléotides, constituent un objet de l'invention. La détermination de ces nouveaux marqueurs repose sur l'utilisation de séquences spécifiquement définies dans le gène rpoB des spirochètes codant pour la sous-unité (3 de l'ARN polymérase bactérienne. En effet, on a trouvé sur l'ADN codant pour la sous-unité (3 de l'ARN polymérase bactérienne, des zones qui sont variables selon les familles bactériennes, mais qui apparaissent conservées parmi l'ordre des spirochètes, ce qui permet de discriminer cette famille bactérienne parmi d'autres familles bactériennes. L'observation selon laquelle il existe dans lesdites zones conservées des variations mineures de séquences entre certaines espèces de spirochètes a permis de mettre au point ces marqueurs spécifiques de l'ordre des spirochètes. Selon Lazcano et al. [J. Mol. Evol. (1988) 27 :365-376], ARN polymérases sont divisées en deux groupes selon leur origine, l'un constitué par les ARN polymérases virales ARN- ou ADN-dépendantes, et l'autre constitué par les ARN polymérases ADN-dépendantes d'origine eucaryote ou procaryote (archaebactéries et eubactéries). Les ARN polymérases ADN-dépendantes eubactériennes sont caractérisées par une constitution multimérique simple et conservée notée " core enzyme ", représentée par [alpha]ssss', ou " holoenzyme " représentée par [alpha]ssss'# [Yura and Ishihama, Ann. Rev. Genet. (1979) 13 : De nombreux travaux ont mis en évidence le rôle fonctionnel, au sein du complexe enzymatique multimérique, de la sous-unité P de l'ARN polymérase eubactérienne. Les ARN polymérases archaebactérienne et eucaryote présentent, pour leur part, une structure plus complexe pouvant atteindre une dizaine, voire une trentaine de sous-unités [Pühler et al . Proc. Natl. Acad. Sci. USA (1989) 86 :4569- 4573]. Les gènes qui codent pour les différentes sous-unités [alpha]ssss# de l'ARN polymérase ADN-dépendante chez les eubactéries, respectivement les gènes rpoA, rpoB, rpoC et rpoD, sont classés en différents groupes comprenant des gènes codant pour des protéines constitutives des sous-unités ribosomiques ou pour des enzymes impliquées dans la réplication et la réparation du génome [Yura and Yshihma, Ann. Rev. Genet. (1979) 13 :59-97]. Certains auteurs ont montré que les séquences nucléiques des gènes rpoB et rpoC pouvaient être utilisées afin de construire des arbres phylogénétiques [Rowland et al., Biochem. Soc. Trans. (1992) 21:40s] permettant de séparer les différents embranchements et sous-embranchements parmi les règnes du vivant. Avant d'exposer plus en détail l'invention, différents termes, utilisés dans la description et les revendications, sont définis ci-après : - par " acide nucléique extrait de bactéries " on entend soit l'acide nucléique total, soit l'ADN génomique, soit les ARN messagers, soit encore l'ADN obtenu à partir de la transcription inverse des ARN messagers ; - un " fragment nucléotidique " ou un " oligonucléotide " sont deux termes synonymes désignant un enchaînement de motifs nucléotidiques caractérisé par une séquence informationnelle des acides nucléiques naturels (ou éventuellement modifiés) et susceptibles de s'hybrider, comme les acides nucléiques naturels, avec un fragment nucléotidique complémentaire ou sensiblement complémentaire, dans des conditions prédéterminées de stringence stricte. L'enchaînement peut contenir des motifs nucléotidiques de structure différente de celle des acides nucléiques naturels. Un fragment nucléotidique (ou oligonucléotide) peut contenir par exemple jusqu'à 100 motifs nucléotidiques. Il contient généralement au moins 10, et en particulier au moins 12 motifs nucléotidiques et peut être obtenu à partir d'une molécule d'acide nucléique naturelle et/ou par recombinaison génétique et/ou par synthèse chimique, - un motif nucléotidique est dérivé d'un monomère qui peut être un nucléotide naturel d'acide nucléique dont les éléments constitutifs sont un sucre, un groupement phosphate et une base azotée choisie parmi l'adénine, la guanine, l'uracile, la cytosine, la thymine ; ou bien le monomère est un nucléotide modifié dans l'un au moins des trois éléments constitutifs précédents ; à titre d'exemple, la modification peut intervenir soit au niveau des bases, avec des bases modifiées telles que l'inosine, la méthyl-5-désoxycytidine, la désoxyuridine, la diméthylamino-5-désoxyuridine ou toute autre base modifiée capable d'hybridation, soit au niveau du sucre, par exemple le remplacement d'au moins un désoxyribose par un polyamide [PE Nielsen et al., Science, (1991) 254 :1497-1500], soit encore au niveau du groupement phosphate, par exemple par remplacement par des esters choisis notamment parmi les diphosphates, les alkyl- et arylphosphonates et les phosporothioates, - par " séquence informationnelle ", on entend toute suite ordonnée de motifs de type nucléotidique, dont la nature chimique et l'ordre dans un sens de référence constituent une information analogue à celle donnée par la séquence des acides nucléiques naturels, - par " hybridation ", on entend le processus au cours duquel, dans des conditions appropriées, deux fragments nucléotidiques ayant des séquences suffisamment complémentaires sont susceptibles de s'associer par des liaisons hydrogène stables et spécifiques, pour former un double brin. Les conditions d'hybridation sont déterminées par la " stringence ", c'est-à-dire la rigueur des conditions opératoires. L'hybridation est d'autant plus spécifique qu'elle est effectuée à plus forte stringence. La stringence est fonction notamment de la composition en bases d'un duplex sonde/cible, ainsi que par le degré de mésappariement entre deux acides nucléiques. La stringence peut également être fonction des paramètres de la réaction d'hybridation, tels que la concentration et le type d'espèces ioniques présentes dans la solution d'hybridation, la nature et la concentration d'agents dénaturants et/ou la température d'hybridation. La stringence des conditions dans lesquelles une réaction d'hybridation doit être réalisée dépend notamment des sondes utilisées. Toutes ces données sont bien connues et les conditions appropriées peuvent éventuellement être déterminées dans chaque cas par des expériences de routine. En général, selon la longueur des sondes utilisées, la température pour la réaction d'hybridation est comprise entre environ 20 et 65 C, en particulier entre 35 et 65 C dans une solution saline à une concentration d'environ 0,8 à 1M, - une " sonde " est un fragment nucléotidique comprenant par exemple de 10 à 100 motifs nucléotidiques, notamment de 12 à 35 motifs nucléotidiques, possédant une spécificité d'hybridation dans des conditions déterminées pour former un complexe d'hybridation avec un acide nucléique ayant, dans le cas présent, une séquence nucléotidique comprise soit dans un ARN messager, soit dans un ADN obtenu par transcription inverse dudit ARN messager, produit de transcription ; sonde peut être utilisée à des fins de diagnostic (notamment sondes de capture ou de détection ) ou à des fins de thérapie, - une " sonde de capture " est immobilisée ou immobilisable sur un support solide par tout moyen approprié, par exemple par covalence, par adsorption, ou par synthèse directe sur un solide. Des exemples de supports comprennent les plaques de microtitration et les puces à ADN, - une " sonde de détection " peut être marquée au moyen d'un agent marqueur choisi par exemple parmi les isotopes radioactifs, les enzymes, en particulier les enzymes susceptibles d'agir sur un substrat chromogène, fluorigène ou luminescent (notamment une peroxydase ou une phosphatase alcaline), les composés chimiques chromophores, les composés chromogènes, fluorigènes ou luminescents, les analogues de bases nucléotidiques et les ligands tels que la biotine, - une " sonde d'espèce " est une sonde permettant l'identification de l'espèce d'une bactérie, - une " sonde de genre " est une sonde permettant l'identification du genre d'une bactérie, - une " amorce est une sonde comprenant par exemple de 10 à 100 motifs nucléotidiques et possédant une spécificité d'hybridation dans des conditions déterminées pour l'initiation d'une polymérisation enzymatique, par exemple dans une technique d'amplification telle que la PCR, dans un procédé de séquençage, dans une méthode de transcription, etc. Un premier objet de la présente invention est un oligonucléotide monocaténaire choisi parmi les oligonucléotides ayant une séquence d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans l'une des séquences SEQ ID N 1à SEQ ID N 4 décrites dans le listage de séquences en fin de description et parmi les oligonucléotides complémentaires de ces oligonucléotides. En particulier, un oligonucléotide selon la présente invention possède au moins 12 motifs tels que décrits ci-dessus et au plus 50 motifs. Plus particulièrement, un oligonucléotide selon la présente invention possède de 12 à 35 motifs. Un oligonucléotide préféré a une séquence choisie parmi les séquences SEQ ID N 1 à 4. La séquence SEQ ID N 1, qui est la séquence de l'amorce appelée amorce n 1, possède 20 acides. La séquence SEQ ID N 2, qui est la séquence de l'amorce appelée amorce n 2, possède 21 acides nucléiques. La séquence SEQ ID N 3, qui est la séquence de l'amorce appelée amorce n 3, possède 20 acides nucléiques. Enfin, la séquence SEQ ID N 4, qui est la séquence de l'amorce appelée amorce n 4, possède 17 acides nucléiques. Lesdites amorces n 1 à 4 sont consensuelles entre les spirochètes, sont spécifiques des spirochètes et encadrent une zone dont la séquence est spécifique de l'espèce et du genre serovar dans une espèce de spirochète. Les séquences SEQ ID N 1à 4 peuvent être préparées par synthèse chimique en utilisant les techniques bien connues de l'homme du métier et décrites par exemple dans l'article de Itakura K. et al. [(1984) Annu. Rev. Biochem. 53:323]. Une première application d'un oligonucléotide de l'invention est son utilisation comme sonde pour la détection, dans un échantillon biologique, de bactéries appartenant à l'ordre des spirochètes qui comprend une séquence nucléotidique d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans l'une des séquences SEQ ID N 1à SEQ ID N 4, et leurs séquences complémentaires. Dans la suite de la description, une telle sonde de l'invention sera appelée sonde de genre. Les sondes selon l'invention peuvent être utilisées, à des fins de diagnostic, dans la recherche de la présence ou de l'absence d'un acide nucléique cible dans un échantillon, selon toutes les techniques d'hybridation connues et notamment les techniques de dépôt ponctuel sur filtre, dites " DOT-BLOT " [Maniatis et al. (1982) Molecular Cloning, Cold Spring Harbor], les techniques de transfert d'ADN dites " SOUTHERN BLOT " [Southern. E. M., J. Mol. Biol. (1975) 98:503], les techniques de transfert d'ARN dites " NORTHERN BLOT ", ou les techniques dites " sandwich " [Dunn A. R., Hassel J.A. (1977) Cell 12:23]. On utilise en particulier la technique " sandwich ", avec une sonde de capture et/ou une sonde de détection, lesdites sondes étant capables de s'hybrider avec deux régions différentes de l'acide nucléique cible, et l'une au moins desdites sondes (généralement la sonde de détection) étant capable de s'hybrider avec une région de la cible qui est spécifique de l'espèce ou du groupe d'espèces recherché, étant entendu que la sonde de capture et la sonde de détection doivent avoir des séquences nucléotidiques au moins partiellement différentes. L'acide nucléique à détecter (cible) peut être de l'ADN ou de l'ARN (l'un ou l'autre éventuellement obtenu après amplification par PCR). Dans le cas de la détection d'une cible de type acide nucléique double brin, il convient de procéder à la dénaturation de ce dernier avant la mise en #uvre du procédé de détection. L'acide nucléique cible peut être obtenu par extraction selon les méthodes connues des acides nucléiques d'un échantillon à examiner. La dénaturation d'un acide nucléique double brin peut être effectuée par les méthodes connues de dénaturation chimique, physique ou enzymatique, et en particulier par chauffage à une température appropriée, supérieure à 80 C. Pour mettre en oeuvre les techniques d'hybridation précitées, et en particulier les techniques " sandwich ", une sonde de l'invention, appelée sonde de capture, est immobilisée sur un support solide, et une autre sonde de l'invention, appelée sonde de détection, est marquée avec un agent. Les exemples de support et d'agent marqueur sont tels que définis précédemment. Un autre objet de l'invention est un procédé de détermination de la présence ou de l'absence d'au moins un spirochète, dans un échantillon contenant ou susceptible de contenir des acides nucléiques d'au moins une telle bactérie, comprenant les étapes consistant à mettre en contact ledit échantillon avec au moins une sonde de genre de l'invention, puis à déterminer de façon connue en soi la formation ou l'absence de formation d'un complexe d'hybridation entre ladite sonde et l'acide nucléique de l'échantillon. Des exemples de détection de la formation ou l'absence de formation d'un complexe d'hybridation entre ladite sonde et l'acide nucléique comprennent les techniques décrites ci-dessus, à savoir les techniques "DOT-BLOT", "SOUTHERNBLOT" et "sandwich". Selon une mise en oeuvre particulière de ce procédé pour la détermination de la présence ou l'absence d'une espèce ou d'un groupe d'espèces de spirochète, on utilise d'une part une sonde de genre de l'invention et d'autre part une sonde d'espèce de l'invention, étant entendu que lesdites sondes de genre et d'espèce sont capables de s'hybrider avec des régions non chevauchantes d'un acide nucléique correspondant au gène rpoB des spirochètes. De manière avantageuse, la sonde de genre est immobilisée sur un support solide, et la sonde d'espèce est marquée avec un agent marqueur. La présente invention a aussi pour objet l'application du procédé de l'invention pour déterminer la présence d'une espèce de spirochète déterminée. En effet, les résultats des recherches, mettant en évidence les alignements de séquences conservées chez les espèces de spirochètes, selon la méthode d'alignement CLUSTAL [Higgins D. G. & Sharp P. M. (1989) Gene 73 :237-244], lesdites séquences ayant 1170 bases situées entre les positions 1730 et 2900 du gène rpoB en faisant référence à la numérotation du gène rpoB de Escherichia coli ATCC 25290, permettent de détecter la présence ou l'absence d'au moins une bactérie quelconque de l'ordre des spirochètes. L'utilisation de sondes contenant des zones mutées pour une espèce particulière (par rapport à l'espèce de référence, ici E. coli), rend possible la détection directe d'une telle espèce. Dans les techniques d'hybridation sandwich, utilisant deux sondes en combinaison (sonde de capture et sonde de détection), on utilisera par exemple en combinaison une sonde spécifique de la famille des spirochètes et une sonde spécifique de l'espèce considérée. On peut aussi utiliser en combinaison deux sondes spécifiques de ladite espèce, lorsqu'elles existent, ces deux sondes étant complémentaires de régions non chevauchantes du gène rpoB. Une autre application d'un oligonucléotide de l'invention est son utilisation comme amorce nucléotidique comprenant un oligonucléotide monocaténaire choisi parmi les oligonucléotides ayant une séquence d'au moins 12 motifs nucléotidiques incluse dans l'une des séquences SEQ ID N 1à 4, qui est utilisable dans la synthèse d'un acide nucléique en présence d'une polymérase par un procédé connu en soi, notamment dans des méthodes d'amplification utilisant une telle synthèse en présence d'une polymérase (PCR, RT-PCR, etc. ). En particulier, une amorce de l'invention peut être utilisée pour la transcription inverse spécifique d'une séquence d'ARN messager d'au moins une espèce ou d'au moins un groupe d'espèces de spirochètes pour obtenir une séquence d'ADN complémentaire correspondante. Une telle transcription inverse peut constituer le premier stade de la technique RT-PCR, le stade suivant étant l'amplification par PCR de l'ADN complémentaire obtenu. On peut également utiliser les amorces de l'invention pour l'amplification spécifique par réaction de polymérisation en chaîne de la séquence de l'ADN du gène rpoB d'au moins une espèce ou d'au moins un groupe d'espèces de spirochètes. Selon un cas particulier, ladite amorce comprenant un oligonucléotide de l'invention comprend en outre la séquence sens ou anti-sens d'un promoteur reconnu par une ARN polymérase (promoteurs T7, T3, SP6 par exemple [Studier FW, BA Moffatt (1986) J. Mol. Biol. 189:113] : de telles amorces sont utilisables dans des procédés d'amplification d'acide nucléique faisant intervenir une étape de transcription, tels que, par exemple, les techniques NASBA ou 3SR [Van Gemen B. et al. Abstract MA 1091, 7th International Conference on AIDS (1991) Florence, Italy] Un autre objet de l'invention est une amorce nucléotidique comprenant un oligonucléotide monocaténaire choisi parmi les oligonucléotides ayant une séquence d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans l'une des séquences SEQ ID n 1 à SEQ ID N 4 qui est utilisable pour le séquençage total ou partiel du gène rpoB chez une quelconque des espèces de spirochètes. En particulier, l'amorce nucléotidique est utilisable pour le séquençage d'un acide nucléique amplifié. En effet, les amorces oligonucléotidiques objets de l'invention permettent l'amplification puis le séquençage du gène rpoB chez tout spirochète, et l'identification de tout spirochète par analyse bio-informatique de cette séquence et la reconnaissance de nouvelles espèces de spirochètes inconnues. Le séquençage est l'obtention de la séquence totale ou partielle du gène ropB par un procédé connu en soi, polymérisation absortive utilisant des di-déoxynucléotides [Sanger F., Coulson A.R. (1975) J. Mol. Biol. 94 :441] ou hybridations multiples utilisant les puces à ADN. Enfin, un dernier objet de l'invention est une sonde de thérapie génique pour traiter les infections provoquées par au moins une espèce ou un groupe d'espèces de spirochètes, ladite sonde comprenant un oligonucléotide tel que défini précédemment. Cette sonde de thérapie génique, capable de s'hybrider sur l'ARN messager et/ou sur l'ADN génomique desdites bactéries, peut bloquer les phénomènes de traduction et/ou de transcription et/ou de réplication. Le principe des méthodes de thérapie génique est connu et repose notamment sur l'utilisation d'une sonde correspondant à un brin anti-sens : la formation d'un hybride entre la sonde et le brin sens est capable de perturber au moins l'une des étapes du décryptage de l'information génétique. Les sondes de thérapie génique sont donc utilisables comme médicaments antibactériens, permettant de lutter contre les infections causées par des spirochètes. L'invention va maintenant être décrite en détail à l'aide de l'exposé expérimental ci-après. La description ci-après sera mieux comprise à l'aide des figures 1 et 2 sur lesquelles : - la figure 1 est une photographie d'un gel d'électrophorèse mettant en évidence la détection des spirochètes à partir d'une suspension mixte bactérienne en utilisant les sondes de l'invention ; et - la figure 2 est une photographie d'un gel d'électrophorèse mettant en évidence l'amplification spécifique par PCR de fragments du gène rpoB des spirochètes en utilisant les amorces de l'invention. Les souches de spirochètes utilisées dans les exemples ci-après, à savoir Borrelia burgdorferi, Borrelia recurrentis, Treponema pallidum, Leptospira biflexa serovar patoc (appelée ci-après Leptospira biflexa), Leptospira interrogans serovar icterohaemmorragiae (appelée ci-après Leptospira icterohaemmorragiae) et Leptospira interrogans serovar australis (appelée ci-après Leptospira australis), ont toutes été obtenues de la collection ATCC, à l'exception de Borrelia recurrentis qui est disponible auprès du Centre National de référence, Institut Pasteur Paris (France). Le numéro ATCC de Borrelia burgdorferi est 35210, celui de Treponema Pallidum 27087, celui de Leptospira biflexa 23582, celui de Leptospira icterohaemmorragiae 43642 et celui de Leptospira australis 23605. Les souches Borrelia et Leptospira ont été cultivées à 30 C sur les milieux BSKII et EMJH, respectivement [Barbour A.G. (1984) Yale J. Biol. Med. 57:521]. Comme T. pallidum ne peut pas être cultivée in vitro, cette bactérie pathogène a été propagée par injections dans les testicules d'un lapin. Les autres souches de bactéries utilisées, Escherichia coli, Staphylococcus aureus, Streptococcus salivarius et Pseudomonas aeruginosa, ont été isolées cliniquement de patients hospitalisés à Marseille. EXEMPLE 1 : Détection spécifique des spirochètes à l'aide des sondes de l'invention Cette expérience a été réalisée avec les souches de spirochètes suivantes : Borrelia burdorferi, Treponema pallidum, Leptospira biflexa, Leptospira. Icterohaemmorragiae, Leptospira australis et Borrelia recurrentis, ainsi qu'avec Staphylococcus aureus. On a préparé une suspension bactérienne mixte en mélangeant un ADN de spirochète avec un extrait de Staphylococcus aureus. On a réalisé une méthode PCR en utilisant la trousse QIAamp tissue kit (Qiagen) et la Taq Polymérase de Gibco (Gibco BRL, USA). Après une première étape de dénaturation (94 C pendant 2 min), on a répété 35 fois un cycle de 3 étapes à 94 C pendant 30 s, 52 C pendant 30 s et 72 C pendant 1 min. On a terminé le programme PCR, on a purifié et séquence les amplicons résultants comme indiqué précédemment. Les résultats sont indiqués sur la figure 1, sur laquelle la bande 1 correspond aux marqueurs de masse moléculaire (Boehringer), la bande 2 correspond à S. aureus seul, la bande 3 correspond à B. burgdorferi + S. aureus, la bande 4 correspond à B. recurrentis + S. aureus, la bande 5 correspond à T. pallidum + S. aureus, la bande 6 correspond à L. biflexa + S. aureus, la bande 7 correspond à L. australis + S. aureus, la bande 8 correspond à L. icterohaemmorragiae + S. aureus. Les amorces utilisées étaient : panneau A : amorces d'ARNr 16S FD1 et RD3 [Weisburg et al. J. Bacteriol. (1991) 173 :697-703] panneau B : les amorces 1730D et 2900R de l'invention. L'amorce 1730D a la séquence SEQ ID N 1dans laquelle "n" est l'inosine et l'amorce 2900R a la séquence SEQ ID N 2 dans laquelle "n" est l'inosine. Les résultats montrent que les amorces de l'invention n'ont pas été capables d'amplifier l'ADN de S. aureus seul, et donc de détecter S. aureus, mais ont été capables d'amplifier celui des spirochètes, et donc de le détecter, même en présence de S. aureus (panneau B), contrairement aux amorces 16S qui ont été capables d'amplifier l'ADN de S. aureus seul (panneau A). EXEMPLE 2 : Amplification spécifique de fragments de gène rpoB à l'aide des amorces de l'invention Cette expérience a été réalisée avec les souches de spirochètes suivantes : Borrelia burdorferi, Treponema pallidum, Leptospira biflexa, Leptospira icterohaemmorragiae, Leptospira australis et Borrelia recurrentis, ainsi qu'avec les autres souches non spirochètes Escherichia coli, Staphylococcus aureus, Streptococcus salivarius et Pseudomonas aeruginosa. La séquence du gène rpoB de Treponema pallidum utilisée est celle décrite par Weinstock et al. [(1998) The genome of Treponema pallidum : new light on the agent of syphilis. FEMMicrobiol. Rev. 22:323-332]. La séquence du gène rpoB de Borrelia burgdorferi utilisée est celle décrite par Alekshun et al. [(1997) Molecular cloning and characterization of Borrelia burgdorferi rpoB. Gène 186 :227-235]. Les séquences d'ADN du gène rpoB de Leptospira biflexa, Leptospira icterohaemmorragiae, Leptospira australis et Borrelia recurrentis ont été obtenues par PCR de la façon suivante : L'ADN génomique de Leptospira biflexa a été extrait en suivant les procédures standards au phénol/chloroforme [Sambrook et al. (1989) Molecular Cloning : A Laboratory Manual. Cold Spring Harbor, NY]. Dans cette première étape d'expériences, on a réalisé les amplifications par PCR avec les amorces SEB1 (5'-AAC CAG TTC CGC GTT GGC CTG G-3') et SEB2 (5'-CCT GAA CAA CAC GCT CGG A-3') (SEB pour Staphylococcus aureus, Escherichia coli et Borrelia subtilis) et la Taq ADN polymérase de Eurogentec (de la société Seraing, Belgique) en utilisant 5 l d'ADN pour un volume final de 50 (il. Après une première étape de dénaturation (95 C pendant 1,5 min), on a répété 35 fois un cycle à 3 étapes de 95 C pendant 20 s, 50 C pendant 30 s et 72 C pendant 1 min. On a terminé le programme PCR par une seule étape d'extension de 3 min à 72 C (modèle de cycle thermique Peltier PTC 200, MJ Research, Watertown, MA, USA). On a ensuite séparé les amplicons obtenus par électrophorèse sur gel d'agarose à 1% et on les a visualisés par coloration avec du bromure d'éthidium. On a réalisé le séquençage du gène par purification des échantillons avec le kit de purification PCR QIAquick (Qiagen, Hilden, Allemagne) et on les a mis à réagir avec le tampon de réaction dRhodamine Terminator Cycle Sequencing Ready Reaction buffer (kit de séquençage d'ADN, Perkin-Elmer). Enfin, on a effectué une électrophorèse des produits réactionnels avec le séquenceur d'ADN automatique Applied Biosystems model ABI 310 (Perkin-Elmer). La séquence de l'extrémité 5' du gène rpoB a été obtenue en utilisant la trousse Universal Genome WalkerTM (Clontech, Palo Alto, CA, USA) de la façon suivante. Cinq regroupements de fragments d'ADN génomique appelés "banques" Genome Walker ont été construits en utilisant les enzymes de restriction Dral, EcoRV, PvuII, ScaI et Stul. Ces banques ont été utilisées pour un séquençage en amont de l'ADN génomique en utilisant, d'une part, une amorce spécifique du gène dont la séquence correspond à la région aussi proche que possible de l'extrémité 5' connue du gène et, d'autre part, une amorce d'adaptation fournie dans la trousse. On a purifié les fragments amplifiés et on a utilisé une source d'ADN pour une deuxième PCR emboîtée. On a ensuite traité les amplicons obtenus comme décrit précédemment pour le séquençage automatisé. Le gène rpoB de Leptospira biflexa obtenu a la séquence SEQ ID N 5 et possède 3876 acides nucléiques. Le gène rpoB de Leptospira icterohaemorragiae obtenu a la séquence SEQ ID N 6 et possède 914 acides nucléiques. Le gène rpoB de Leptospira australis obtenu a la séquence SEQ ID N 7 et possède 949 acides nucléiques. Enfin, le gène rpoB de Borrelia recurrentis obtenu a la séquence SEQ ID N 8 et possède 800 acides nucléiques. Les séquences d'ADN du gène rpoB de Escherichia coli, Staphylococcus aureus, Streptococcus salivarius et Pseudomonas aeruginosa sont décrites dans la littérature (Gen Bank). Les fragments du gène rpoB à amplifier étaient constitués de 949 pb. Les amplifications par PCR des fragments du gène rpoB ont été réalisées comme dans l'exemple 3, à ceci près qu'on a utilisé chaque espèce séparément. Les résultats sont indiqués sur la figure 2, sur laquelle : la bande 1 correspond aux marqueurs de masse moléculaire (Boehringer), la bande 2 correspond à B. burgdorferi, la bande 3 correspond à B. recurrentis, la bande 4 correspond à T. pallidum, la bande 5 correspond à L. biflexa, la bande 6 correspond à L. australis, la bande 7 correspond à L. icterohaemmorragiae, la bande 8 correspond à E. coli, la bande 9 correspond à S. aureus, la bande 10 correspond à Str. salivarius, la bande 11correspond à Ps. aeruginosa, la bande 12 correspond à un témoin négatif sans ADN. Les amorces utilisées étaient : panneau A : l'amorce 1730D et l'amorce 2900R de l'invention, panneau B : l'amorce 1730D et l'amorce 3800R de l'invention et panneau C : les amorces d'ARNr 16S RDIet FD3. L'amorce 3800R a la séquence SEQ ID N 4 dans laquelle "n" est l'inosine. Les résultats montrent que les amorces de l'invention ont permis uniquement l'amplification des fragments de l'ADN des spirochètes (panneaux A et B), tandis que les amorces 16S ont tout amplifié (panneau C). LISTAGE DE SEQUENCES Raoult, Didier Oligonucléotides monocaténaires, sondes, amorces et procédé de détection des spirochètes 8 PatentIn Ver. 2.1 1 20 ADN Séquence artificielle Description de la séquence artificielle : amorce n 1 1 cttggnccng gnggactttc 20 2 21 ADN Séquence artificielle Description de la séquence artificielle : amorce n 2 2 agaaatnaan atngcatcct c 21 3 20 ADN Séquence artificielle Description de la séquence artificielle : amorce n 3 3 gggtgnattt tntcatcnac 20 4 17 ADN Séquence artificielle Description de la séquence artificielle : amorce n 4 4 gcttcnagng cccanac 17 5 3876 ADN Leptospira biflexa 5 gctgatatta agaaaaaact ncgaaggtnt tgggnctcaa gtagaagttg ctggctgccc 60 ggttaatcgg ttgcccaatt tttaaaccca gtcttcaaaa acttagaggc agggaggccg 120 taggcgtccc cacctctatt ttttcgttta tcataccatc tattattttg acgtctctag 180 ggagagtatt ccatgcatac ccgaatgcaa attagaaacc gggtaaattt cggtaaaatt 240 accgacctca atttacttcc taatcttatc tacgtacaga aaaaatcctt tgattggttc 300 ctccagtcgg aagtgaaaga tccgacgaaa cgtttgaacc aagggttgga agcggtattc 360 cgcgaatcat tcccaatcga atcaccaaac aacgatatgg tcatggaata tggccattac 420 gttttgggag agccgaaacg cgatccccaa gagtgcaaag acactgattc ttcttttgct 480 gttccactga aagcagtcat ccgtctcatc atcaaagaca ccggtgaaat ccgcgaacaa 540 gtcgtctaca tgggtgacct tcctgtgatg acagaccacg gaactttcat catcaatggt 600 gccgaaaggg tagtggtaag ccagttacac cgatctcctg gtattttctt ttcgtatgac 660 caagtacgag atacattttc tgcccgagtg attccttatc gtggatcatg gttagaattc 720 gagatggaca acaagggaat cctcgttgcc aaaatcgacc gtaagaaaaa attcccagcg 780 actctccttg tgaaagccat gggtatggga acaaacgaag aagtacttcg ccttttctac 840 ggatctagca aaatgaaaat cgctggtgcc aatccaaaag acctcaaacg tctgattggc 900 cgccgaacca ttgcggatat tatcaatatg gaaaccggtg aggtaatgct cgatgctggt 960 tccaaaatta acgaagacaa tatctccatc cttcgtgaaa tgaaggtaaa agaagtggat 1020 gtcatcgaat ttccaaaagg aaaagacaat ccagttctca tcaattgcct agaaaaagac 1080 ggagtgaacg actacgagga tgcagtgaaa aaatttcaca cgatcatgcg tccaggggaa 1140 ccttctacga ttgaaaacgc ggaagctgag ttaaaacgcc tctttttctc tccaaaaacg 1200 tttgatttag gaattgttgg tcgttacaaa atcaatagca aattcgagtt caacaatcca 1260 aaagaattct caaaagcaga tgatcgggtt ctccgaaaac aagacatcat cgaaaccgtt 1320 cgttaccttg tgatgcttat gtcagaagcg gaaaattatt acccagatga cattgaccac 1380 ttaggaaaca gaaggatccg ttcggtgggg gaactcatcg ctaaccaatt gaaacttggt 1440 ttttccagag tggaacgagt catcaaagaa aggatgacag tacaggagcc ggaacaacaa 1500 actcctcagc ttcttatctc catcaaacca atcacagcag tgatcaatga gttttttgga 1560 tcttcgcaac tctctcagtt tatggaccaa accaatccct tggcagaact tacgcacaaa 1620 cgtaggttaa acgctcttgg gcctggtgga ctttctcgtg atagagcagg ttttgaggtt 1680 cgtgacgttc attattctca ctacggtcgt atgtgcccca ttgaaacacc ggaaggtcca 1740 aacattggtc tcattctttc catgtctagt tttgcacgtg tgaacgatta tggattcatt 1800 gaaactccat accgccttgt aaagaatgga aaagtccaaa aacaagtgga atacctcact 1860 gcggacaaag aagaatacca ttatatggcg cagtcaaatt cgactgtgga tgagaaggga 1920 gaattcactt ccaaactcat ttccactcgt catagagggg atttcccttt ccgtagccca 1980 gctgaaatcc aatacatgga tcttgctccc ttgcaagtgg tctcagtttc cacagctctc 2040 attccgttct tagaacatga tgacgcgaac cgtgccctca tgggttccaa catgcaacgc 2100 caagcggtac cactcttaac agaagaggct ccttttgtcg gaactggtat ggaagctcgt 2160 gcggcttatg acgcaggggt ttgtatcgtt gcgaaaaaag atggtgtggt ttccaaagtg 2220 gatgcaacag gtgtttggat caaagaagac caatccaaag agattgtcca ttacccactc 2280 attaaattca aaaaaaccaa ccaaggtact tgttttaacc aaaaaccaaa cgtatccatg 2340 ttacacacca caactggtgg caaggtaagt aaggtttcga aagaacgtgt cgaagtgaca 2400 actcctaacg gagaaaaaga aactcatgaa cttcttcttt ctgatgaagt tcagttccat 2460 gctgttgtca aagaaggaca agaggtagga attggagctc cagttgccgg acaaatcatc 2520 aaaggggaaa aatacggtga cttcggtcag atccttcaaa aaggaactgt cctagccaac 2580 gggccatcca ctgacgctgg gtatttggca cttggacgaa atgttctcgt tgcctttatg 2640 ccttgggaag gatacaactt tgaggatgcg attttaattt ctgaacgaat catcaaagac 2700 gatgttttct cttccatcca cattgaagaa ttcgaaatcc aagctcggga aacgaaactc 2760 ggacaagaac aaatcactcg tgacattcca aacctttcgg acaaagcgtt ccgtgatttg 2820 gatgagtctg gtgtgatccg tgtgggtgca 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agaagccgat tgtaggagtg gttcactccg 660 agatcaatgg aaaggtttcc aaggtttcca aagaaaaaat cgaagtcact ggtgaaaacg 720 gtgaactgaa agaatatgtt cttcaaatcg gaagcaaaca atattctccg atcgtctctg 780 caggcgaaga agtaaaaaga ggatcgactc tcgcaggaca agttgttgta ggtgagaagt 840 tggatgagat gggaaatatc ctcgtaaaag gaaccgttct tgctgatggt cctgcggtcg 900 acaacggagt tctc 914 7 949 ADN Leptospira australis 7 gtgacgttca ctattctcac tacggtagaa tgtgtccgat tgaaactccg gaaggtccga 60 acatcggtct gattctttcc atgtcttctt acgctcgtgt gaatgactac ggattcttgg 120 aaactcctta cagaaccgtg aagaacggta aagttaccgg tcagatcgag caccttaccg 180 cagacaaaga agaatatcat tacatcgctc aagcttccgg cgtgatcgat gaaaaaggcg 240 agctcaaaaa caaattgatt tccacgcgtc acagagggga tttccctttc cgtaacccga 300 gcgagattca gtatatggac ttggctcctc tacaagtcgt ttcggtttcc acggcgctga 360 ttccgttcct tgaacacgac gacgcgaacc gcgccctcat gggttccaac atgcaacgtc 420 aggcggttcc tcttcttcgt gaagaagctc cttttgtcgg aaccggtatg gaaaccagag 480 ccgcttacga ttccagaatt tgtatcgtaa acaaacacga cggtgtcgta acttccgtcg 540 atgcggaaaa catcgttgta gaaagaaagg gcggaaaaga atccgatacg tatcaactta 600 cgaaattcaa aaagacaaac caaggaacct gctttaatca gaagccgatt gtaggagtgg 660 ttcactccga gattaacgga aaggtttcca aggtctccaa agaaaaaatc gaagtcactg 720 gtgaaaacgg tgaactaaaa gaatatgttc ttcaaatcgg aagcaaacaa tattctccga 780 tcgtctccgc aggcgaagaa gtaaaacgag gatcgactct cgcaggacaa gttgttgtag 840 gtgagaagtt ggatgagatg ggaaatatcc tcgtaaaagg aaccgttctt gctgatggtc 900 ctgcggtcga caacggagtt ctcgctctgg gaagaaacgt tctcgcggc 949 8 800 ADN Borrelia recurrentis 8 aagggatcga gcagctttga agtaagatat gtacattata cccattatgg taggatgtgt 60 cctattgaaa ctcctgaagg cccaaatatt ggacttattg tttctttggc tacttattca 120 aaagttaatg attatggttt cttagaaact ccttatagga aggtgattga tggtaaggtg 180 accgatgata ttgaatattt gtctgctatt gatgaggaaa aaaaatgtat tgcgcaagca 240 aatgcttctg ttagttctga tggtaattat actgatgatt tggtgtctgt taggatttct 300 ggggattata ctacaatgat gcctaaaaat atcgattaca tggatgtttc gcctagacaa 360 ttaatatctg tctcttcggc gttaatactt ttcttgaaca taatgatgca aatcgtgctc 420 ttatgggttc gaatatgcaa cgtcaggcag ttcttattat ttccacagcc acctattgtt 480 ggtacaggta tggagaggat agttgcaaaa gactctggtg ttgttattaa agcaaaaaga 540 cctggtagag ttgtcttagc cacaaacaaa aagatagtta ttaaacctga taatgcaact 600 tctgaacgag atttagatga atatgaactt tataaatatg agaggacaaa ccaggatact 660 tctttcaatc attcagtttt ggtgaagaat ggccaaattg ttaataagga tgagataata 720 gcagatggtc ctgctactag atatggagaa ttggcgcttg gtaataattt attagttgtt 780 ttattccgtg gaatggattt 800 REVENDICATIONS 1. Oligonucléotide monocaténaire choisi parmi les oligonucléotides ayant une séquence d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans l'une des séquences SEQ ID N 1à SEQ ID N 4 et parmi les oligonucléotides complémentaires de ces oligonucléotides. 2. Sonde pour la détection, dans un échantillon biologique, de bactéries appartenant à l'ordre des Spirochaetales caractérisée en ce qu'elle comprend une séquence nucléotidique d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans l'une des séquences SEQ ID N 1à SEQ ID N 4 et leurs séquences complémentaires. 3. Sonde selon la revendication 2, caractérisée en ce qu'elle est immobilisée sur un support solide. 4. Sonde selon la revendication 2, caractérisée en ce qu'elle est marquée avec un agent traceur. 5. Procédé de détermination de la présence ou de l'absence d'au moins un spirochète dans un échantillon contenant ou susceptible de contenir des acides nucléiques d'au moins un telle bactérie, caractérisé en ce qu'on met en contact ledit échantillon avec au moins une sonde selon l'une quelconque des revendications 2 à 4, puis on détermine la formation ou l'absence de formation d'un complexe d'hybridation entre ladite sonde et l'acide nucléique de l'échantillon. 6. Amorce nucléotidique utilisable pour la synthèse d'un acide nucléique en présence d'une polymérase, caractérisée en ce qu'elle comprend un oligonucléotide selon la revendication 1. 7. Amorce nucléotidique utilisable pour le séquençage total ou partiel du gène rpoB chez l'une quelconque des espèces de spirochètes, caractérisée en ce qu'elle comprend un oligonucléotide tel que défini à la revendication 1. 8. Amorce nucléotidique utilisable pour le séquençage d'un acide nucléique amplifié, caractérisée en ce qu'elle comprend un oligonucléotide tel que défini à la revendication 1. 9. Sonde de thérapie génique, caractérisée en ce qu'elle comprend un oligonucléotide tel que défini à la revendication 1.