FR 2794773 A1 20001215 FR 9907250 A 19990609 Nouveaux gènes de Candida albicans et les protéines codées par ces gènes. La présente invention concerne de nouveaux gènes de Candida albicans et les protéines codées par ces gènes ainsi que les polynucléotides (ARN, ADN) codant pour ces protéines ou pour les polypeptides analogues de ces protéines. La présente invention concerne également le procédé de préparation de ces polypeptides et polynucléotides, leur utilisation pour l'étude de mycètes pathogènes et notamment de Candida albicans et pour la préparation d'inhibiteurs des protéines codées par les gènes de la présente invention, ces inhibiteurs pouvant être utilisés comme agents antifongiques. La présente invention concerne également les compositions pharmaceutiques contenant de tels inhibiteurs. La présente invention concerne donc notamment de nouvelles protéines de Candida albicans et les séquences nucléotidiques codant pour ces protéines, leur préparation et leurs utilisations. Nous utiliserons également ci-après les abréviations suivantes : AA pour acides aminés, AN pour acides nucléiques, ARN pour acide ribonucléique, ARNm pour ARN messager, RNase pour ribonucléase, ADN pour acide désoxyribonucléique, ADNc pour ADN complémentaire, pb pour paires de bases, PCR pour réaction en chaîne par une polymérase, C. a. ou C. albicans pour Candida albicans, E. coli pour Escherichia coli et 5'. cerevisiae pour Saccharomyces cerevisiae. Le terme criblage utilisé ci-après correspond au terme anglosaxon screening. Le terme polynucléotides désigne ci-après les polynucléotides de la présente invention soit les séquences d'ADN et également ARN codant pour les protéines de la présente invention et leurs homologues codant pour des protéines de même fonction. Le terme polypeptides désigne ci-après les polypeptides de la présente invention soit les protéines de la présente invention et leurs analogues ou homologues fonctionnels tels que définis ci-après, ayant donc les mêmes fonctions. Le terme mycète désigne ci-après un organisme eucaryote, porteur de spores, dont la nutrition se fait par absorption, qui est dépourvu de chlorophylle et qui se reproduit de façon sexuée ou asexuée. Les mycoses sont des infections de l'homme ou des animaux qui peuvent être superficielles ou profondes, causées par des champignons pathogènes. Dans le cas de mycoses profondes, elles peuvent être très sévères et de pronostic grave. Des substances antimycotiques à effets fongistatiques ou fongicides sont utilisées dans le traitement des mycoses. Ce traitement est difficile car il existe peu de substances antifongiques disponibles pour la thérapeutique et qu'elles ont souvent des effets secondaires qui limitent leur utilisation. Par exemple, l'Amphotéricine B, qui représente le traitement de choix des mycoses profondes, a des effets secondaires néphrotoxiques. Il existe donc une forte demande pour de nouvelles substances efficaces contre les champignons pathogènes et susceptibles d'être utilisées en thérapeutique contre les infections fongiques. Ces substances pourront être utilisées soit en prophylaxie, dans le cas des états d'immunodépression graves soit en traitement curatif des infections fongiques. De plus, ces substances devront avoir un mode d'action spécifique, leur permettant d'inhiber la croissance ou de tuer les cellules de mycètes sans altérer les fonctions essentielles des cellules humaines. L'objet de la présente invention est de proposer des gènes pouvant constituer de nouvelles cibles pour l'identification de substances antifongiques et notamment de substances permettant de traiter les infections dues aux champignons du genre Candida. Ces gènes seront notamment des gènes essentiels indispensables à la survie et à la multiplication des cellules. Différentes méthodes peuvent être utilisées pour déterminer si le produit d'un gène est essentiel à la survie d'un mycète ou essentiel à l'établissement ou au maintien d'une infection. L'identification du caractère essentiel d'un gène apporte une information additionnelle concernant sa fonction et permet de sélectionner les gènes dont le produit constitue une cible intéressante pour une substance antifongique. Des exemples de ces méthodes sont résumés brièvement ci-après. Ces méthodes sont décrites dans les ouvrages suivants : - Guthrie C. and Fink G.R. Eds. Methods in Enzymology, Vol 194,1991, 'Guide to Yeast Genetics and Molecular Biology', Academic Press Inc. - Rose A.H., A. E. Wheals and J. S. Harrison Eds. The yeasts, Vol.6, 1995, 'Yeast Genetics' , Academic Press Inc. Ausubel F. et al. Eds. 'Short Protocols in Molecular Biology', 1995, Wiley. - Brown A. J.P. and Tuite M.F. (Eds)'Yeast Gene Analysis' Methods in Microbiology, Vol 26,1998, Academic Press Inc. Selon les cas, on utilisera l'une ou l'autre des méthodes décrites en fonction du résultat recherché. Notamment, on pourra procéder par une méthode d'inactivation directe du gène ou d'inactivation transitoire du gène. Dans la levure S. cerevisiae, la méthode la plus couramment utilisée consiste à inactiver le gène étudié dans le chromosome de la levure. L'allèle sauvage est inactivé par insertion d'un marqueur génétique (par exemple un gène d'auxotrophie ou un marqueur de résistance). Cette insertion est obtenue en général par la méthode de conversion génique à l'aide de cassettes de délétion linéaires préparées selon les méthodes connues telles que décrites dans Guthrie C. and Fink G. R. Eds. Methods in Enzymology, Vol 194,1991, 'Guide to Yeast Genetics and Molecular Biology', Academic Press Inc. ou dans Gultner et al. Nucleic Acid Research, 1996,24: 2519- 2524. L'inactivation se fait dans une souche diploïde puis la méiose est induite par des méthodes classiques comme par exemple la croissance en milieu pauvre en azote et les quatre spores issues d'asques individuels sont isolées par micromanipulation. L'inactivation d'un gène essentiel se traduit par une perte de viabilité des deux spores (sur quatre) qui ont acquis le marqueur de sélection. La viabilité de ces spores peut être restaurée par l'introduction dans la souche d'un plasmide centromérique ou réplicatif portant une copie du gène sauvage. On peut également procéder par inactivation transitoire du gène : l'utilisation de promoteurs régulables permet également de déterminer si un gène est essentiel à la survie d'une cellule. Pour ce faire, on remplace le promoteur natif du gène par un promoteur régulable directement sur le chromosome ou sur un plasmide extra-chromosomique. On peut par exemple utiliser le promoteur GAL ou ses dérivés ou le promoteur tetO (Mumberg et al. 1994, Nucleic Acid Research, 22 : 5767-5768 ; Belli et al. 1998, Yeast, 14 : 1127-1138). Le caractère essentiel du gène étudié peut ainsi être observé lorsque le promoteur utilisé est réprimé, soit dans les souches haploïdes chez la levure S. cerevisiae, soit après inactivation du deuxième allèle chez les micro-organismes diploïdes tels que C. albicans. A partir d'un gène essentiel connu dans une espèce, on peut procéder à l'identification de gènes homologues ou de même fonction dans une autre espèce de mycète : les méthodes connues peuvent être utilisées pour identifier les gènes homologues d'un gène étudié dans une autre espèce de mycète (gènes dits 'orthologues') ou les gènes de même fonction que le gène étudié. Des exemples de méthodes utilisables sont développées ci-après. Ces méthodes sont décrites dans les ouvrages suivants : Sambrook et al. 1989, Molecular Cloning, Cold Spring Harbor Laboratory Press. - Ausubel F. et al. Eds. 'Short Protocols in Molecular Biology', 1995, Wiley. - Guthrie C. and Fink G. R. Eds. Methods in Enzymology, Vol 194,1991, 'Guide to Yeast Genetics and Molecular Biology', Academic Press Inc. On peut procéder par exemple par criblage par homologie, par complémentation génique ou encore par amplification par PCR en utilisant des amorces spécifiques à partir de banques d'ADN génomique ou de banques d'ADN complémentaire (ADNc) des mycètes pathogènes. Les banques d'ADN génomique ou d'ADNc peuvent être préparées selon les méthodes connues et les fragments polynucléotidiques obtenus sont intégrés dans un vecteur d'expression, par exemple un vecteur tel que pRS423 ou ses dérivés qui sont utilisables aussi bien dans la bactérie E. coli que dans S. cerevisiae. Le criblage de la banque se fera par les méthodes classiques d'hybridation in situ sur une réplique des colonies bactériennes. Les conditions d'hybridation seront adaptées à la stringence voulue pour la réaction, de façon à identifier des fragments de plus ou moins grande homologie avec le gène étudié. Les gènes des autres espèces de mycètes peuvent également être identifiés par des méthodes connues dites de 'complémentation génique'. Par exemple, une souche de S. cerevisiae dans laquelle un gène essentiel identifié a été placé sous le contrôle d'un promoteur régulable peut être transformée par un échantillon représentatif d'une banque d'ADN ou d'ADNc correspondant au mycète étudié tel que C. albicans. Lorsque les levures sont cultivées dans des conditions telles que le promoteur est réprimé, seules peuvent survivre les levures portant un vecteur recombinant contenant une séquence du mycète étudié fonctionnellement équivalente au gène essentiel initial. La séquence du gène dans le mycète étudié est ensuite identifiée en isolant le vecteur recombinant et en le séquençant selon les méthodes connues. De la même façon, la méthode dite de 'plasmid shuffle' permet de sélectionner les levures ayant perdu l'expression du gène essentiel initial et contenant une séquence fonctionnellement équivalente provenant d'un autre mycète. L'étude peut être réalisée sur différentes espèces : les gènes fonctionnellement équivalents ou homologues en séquence à un gène essentiel peuvent être isolés dans d'autres mycètes et notamment dans les différents mycètes pathogènes pour l'homme. Pour cela peuvent être utilisés notamment les mycètes appartenant aux classes Zygomycètes, Basidiomycètes, Ascomycètes et Deutéromycètes. Tout particulièrement, les mycètes appartiendront aux sous-classes Candida spp., notamment Candida albicans, Candida glabrata, Candida tropicalis, Candida parapsilosis et Candida krusei. Les mycètes appartiendront également aux sous-classes Aspergillus fumigatus, Coccidioides immitis, Cryptococcus neoformans, Histoplasma capsulatum, Blastomycès dermatidis, Paracoccidioides brasiliensis et Sprorothrix schenckii. La présente invention concerne ainsi l'identification de substances antimycotiques telles que notamment de substances anti-Candida albicans. La présente invention concerne ainsi des inhibiteurs de protéines fongiques pouvant être utilisés comme agents antifongiques. On connaît ainsi des organismes pathogènes tels que la levure pathogène Candida albicans qui causent des maladies infectieuses dans l'organisme humain. Dans le but de trouver des moyens de traiter des maladies, on peut choisir des cibles telles que par exemple intracellulaires et l'une ou plusieurs des protéines de la présente invention codées par les gènes de la présente invention peut ou peuvent être l'une ou certaines de ces cibles. La présente invention a ainsi permis d'isoler des polynucléotides ADN et ARN codant pour des protéines de Candida albicans et de révéler leurs séquences nucléotidiques. Nous appellerons les gènes de la présente invention codant pour les protéines de Candida albicans de la présente invention comme suit : CaDR472, CaDR489, CaDR527 sous forme de deux allèles différents soit lCaDR527 et 2CaDR527, CaFL024, CaNL260 et CaDR361. Les séquences nucléotidiques de ces gènes (et des deux allèles pour CaDR527) sont donnés dans le listing de séquences ci-après et sont respectivement nommés comme suit : - SEQ ID N 1 pour CaDR472, - SEQ ID N 3 pour CaDR489, - SEQ ID N 5 pour le 1er allèle de CaDR527 soit lCaDR527, - SEQ ID N 7 pour le 2ème allèle de CaDR527 soit 2CaDR527, - SEQ ID N 9 pour CaFL024, - SEQ ID N 11 pour CaNL260 - et SEQ ID N 13 pour CaDR361. Les séquences polypeptidiques des protéines codées par les gènes de la présente invention sont respectivement nommées comme suit : - SEQ ID N 2 ou PCaDR472 pour la protéine codée par CaDR472, - SEQ ID N 4 ou PCaDR489 pour la protéine codée par CaDR489, - SEQ ID N 6 ou lPCaDR527 pour la protéine codée par lCaDR527, - SEQ ID N 8 ou 2PCaDR527 pour la protéine codée par 2CaDR527, - SEQ ID N 10 ou PCaFL024 pour la protéine codée par CaFL024, - SEQ ID N 12 ou PCaNL260 pour la protéine codée par CaNL260 - et SEQ ID N 14 ou PCaDR361 pour la protéine codée par CaDR361. La présente invention a donc pour objet des polynucléotides isolés contenant chacun une séquence nucléotidique choisie dans le groupe suivant : a) un polynucléotide ayant au moins 50 % ou au moins 60 % et de préférence au moins 70 % d'identité avec un polynucléotide codant pour un polypeptide ayant la même fonction et ayant une séquence en acides aminés homologue d'une séquence choisie parmi SEQ ID N 2, SEQ ID N 4, SEQ ID N 6, SEQ ID N 8, SEQ ID N 10, SEQ ID N 12 et SEQ ID N 14, telles que définies ci-dessus et ci-après, b) un polynucléotide complémentaire du polynucléotide a) c) un polynucléotide comprenant au moins 15 bases consécutives du polynucléotide défini en a) et b). La présente invention a ainsi pour objet les polynucléotides définis ci-dessus tels que ces polynucléotides sont des ADN. La présente invention a ainsi pour objet les polynucléotides définis ci-dessus tels que ces polynucléotides sont des ARN. La présente invention a plus précisément pour objet les polynucléotides tels que définis ci-dessus comprenant chacun une séquence de nucléotides choisie parmi SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 et SEQ ID N 13 telles que définies ci-dessus et ci-après. La présente invention a ainsi permis d'isoler les séquences d'ADN codant respectivement pour les protéines de Candida albicans PCaDR472, PCaDR489, lPCaDR527, 2PCaDR527, PCaFL024, PCaNL260, PCaDR361, telles que définies ci-dessus. La présente invention a également permis de révéler les séquences d'acides nucléiques des gènes de la présente invention et également les séquences d'acides aminés des protéines PCaDR472, PCaDR489, lPCaDR527, 2PCaDR527, PCaFL024, PCaNL260, PCaDR361, codées par ces gènes. La présente invention a ainsi pour objet les séquences d'ADN telles que définies par les polynucléotides ci-dessus, caractérisées en ce que ces séquences d'ADN sont celles des gènes codant respectivement pour des protéines de Candida albicans (ayant les mêmes fonctions que les protéines PCaDR472, PCaDR489, lPCaDR527, 2PCaDR527, PCaFL024, PCaNL260, PCaDR361) et contenant chacune une séquence de nucléotides choisie parmi SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 et SEQ ID N 13 telles que définies ci-dessus et ci-après. Une telle séquence SEQ ID N 1 de la présente invention comprend donc 747 nucléotides. ' Une telle séquence SEQ ID N 3 de la présente invention comprend donc 711 nucléotides. Une telle séquence SEQ ID N 5 de la présente invention comprend donc 1383 nucléotides. Une telle séquence SEQ ID N 7 de la présente invention comprend donc 1383 nucléotides. Une telle séquence SEQ ID N 9 de la présente invention comprend donc 2262 nucléotides. Une telle séquence SEQ ID N 11 de la présente invention comprend donc 447 nucléotides. Une telle séquence SEQ ID N 13 de la présente invention comprend donc 966 nucléotides. La présente invention a aussi pour objet les séquences d'ADN de gènes telles que définies ci-dessus codant chacune pour une séquence d'acides aminés choisie parmi SEQ ID N 2, SEQ ID N 4, SEQ ID N 6, SEQ ID N 8, SEQ ID N 10, SEQ ID N 12 et SEQ ID N 14. La séquence SEQ ID N 2 de la protéine PCaDR472 comprend donc 248 AA. La séquence SEQ ID N 4 de la protéine PCaDR489 comprend donc 236 AA. La séquence SEQ ID N 6 de la protéine lPCaDR527 comprend donc 460 AA. La séquence SEQ ID N 8 de la protéine 2PCaDR527 comprend donc 460 AA. La séquence SEQ ID N 10 de la protéine PCaFL024 comprend donc 753 AA. La séquence SEQ ID N 12 de la protéine PCaNL260 comprend donc 148 AA. La séquence SEQ ID N 14 de la protéine PCaDR361 comprend donc 321 AA. La présente invention a particulièrement pour objet les séquences d'ADN codant pour les protéines PCaDR472, PCaDR489, lPCaDR527, 2PCaDR527, PCaFL024, PCaNL260, PCaDR361 telles que définies ci-dessus ainsi que les séquences d'ADN qui hybrident avec celles-ci et/ou présentent des homologies significatives avec ces séquences ou des fragments de cellesci et codent pour des protéines'ayant les mêmes fonctions. La présente invention a également pour objet les séquences d'ADN telles que définies ci-dessus comprenant des modifications introduites par suppression, insertion et/ou substitution d'au moins un nucléotide codant pour des protéines ayant les mêmes activités que les protéines PCaDR472, PCaDR489, lPCaDR527, 2PCaDR527, PCaFL024, PCaNL260, PCaDR361 telles que définies ci-dessus. La présente invention a notamment pour objet les séquences d'ADN telles que définies ci-dessus ainsi que les séquences d'ADN qui ont une homologie de séquence nucléotidique d'au moins 50 % ou au moins 60 % et de préférence au moins 70 % avec lesdites séquences d'ADN. La présente invention a ainsi également pour objet les séquences d'ADN telles que définies ci-dessus ainsi que les séquences d'ADN qui codent pour des protéines de fonctions similaires dont les séquences respectives en AA ont une homologie d'au moins 40 % et notamment de 45 % ou d'au moins 50 %, plutôt au moins 60 % et de préférence au moins 70 % avec les séquences en AA codées par lesdites séquences d'ADN. Par séquences qui hybrident, on inclut les séquences d'ADN qui hybrident avec l'une des séquences d'ADN ci-dessus sous des conditions standard de stringence élevée, moyenne ou basse et qui codent pour un polypeptide ayant la même fonction. Les conditions de stringence sont celles réalisées dans les conditions connues de l'homme du métier telles que celles décrites par Sambrook et al, Molecular cloning, Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989. De telles conditions de stringence sont par exemple une hybridation à 65 C, pendant 18 heures dans une solution 5 x SSPE ; x Denhardt's ; 100 g/ml ADNss ; 1 % SDS suivie de 3 lavages pendant 5 minutes avec 2 x SSC ; 0,05 % SDS, puis 3 lavages pendant 15 minutes à 65 C dans 1 x SSC ; 0,1 % SDS. Les conditions de forte stringence comprennent par exemple une hybridation à 65 C, pendant 18 heures dans une solution 5 x SSPE ; x Denhardt ; 100 g/ml ADNss ; 1 % SDS suivie de 2 lavages pendant 20 minutes avec une solution 2 x SSC ; % SDS à 65 C suivis d'un dernier lavage pendant 45 minutes dans une solution 0,1 x SSC ; % SDS à 65 C. Les conditions de stringence moyenne comprennent par exemple un dernier lavage pendant 20 minutes dans une solution 0,2 x SSC, 0,1 % SDS à 65 C. Par séquences qui présentent des homologies significatives, on inclut les séquences ayant une identité modérée ou importante de séquence nucléotidique avec l'une des séquences d'ADN ci-dessus et qui codent pour une protéine ayant la même fonction. Par séquence d'ADN similaires, on entend ainsi des séquences d'ADN qui peuvent appartenir à d'autres mycètes que Candida albicans et notamment à S. c. et qui sont similaires ou identiques aux séquences d'ADN des gènes de Candida albicans tels que définis ci-dessus. Ces séquences d'ADN similaires ne sont pas forcément identiques aux séquences d'ADN des gènes tels que définis ci-dessus. L'homologie de séquence au niveau nucléotidique peut-être modérée ou importante. La présente invention concerne ainsi notamment les séquences d'ADN qui présentent une homologie de séquence nucléotidique d'au moins 50 %, de façon préférée d'au moins 60 % et de façon encore plus préférée d'au moins 70 % avec les séquences des gènes de la présente invention. De plus, ces séquences d'ADN similaires ne codent pas forcément pour des protéines identiques, au niveau des séquences en acides aminés'aux protéines codées par les gènes tels que définis ci-dessus. Ainsi la présente invention concerne notamment les séquences d'ADN qui codent pour des protéines dites homologues ayant une homologie de séquence en acides aminés d'au moins 40 %, notamment 45 %, de façon préférée au moins de 50 %, de façon plus préférée au moins de 60 % et de façon encore plus préférée au moins de 70 % avec les protéines codées par les gènes de la présente invention. Chaque gène de la présente invention est représenté comme une séquence ADN simple brin comme indiqué dans SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 et SEQ ID N 13 représentées respectivement dans le listing de séquences ci-après, mais il est entendu que la présente invention inclut la séquence ADN complémentaire de cette séquence ADN simple brin et inclut également la séquence ADN dite double brin constituée de ces deux séquences ADN complémentaires d'une de l'autre. Les séquences d'ADN telles que définies ci-dessus sont des exemples de combinaison de codons codant pour les acides aminés correspondant respectivement aux séquences d'acides aminés SEQ ID N 2, SEQ ID N 4, SEQ ID N 6, SEQ ID N 8, SEQ ID N 10, SEQ ID N 12 et SEQ ID N 14, telles que définies ci-dessus, mais il est entendu également que la présente invention inclut toute autre combinaison arbitraire de codons codant pour ces mêmes séquences d'acides aminés. Pour la préparation des polynucléotides et notamment des séquences d'ADN telles que définies ci-dessus, des séquences d'ADN modifiées comme indiqué ci-dessus ou encore des séquences d'ADN homologues telles que définies ci-dessus, on peut utiliser les techniques connues de l'homme du métier et notamment celles décrites dans l'ouvrage de Sambrook, J. Fritsh, E. F. ≈Maniatis, T. (1989) intitulé : 'Molecular cloning : a laboratory manual', Laboratory, Cold Spring Harbor NY. Les séquences d'ADN homologues telles que définies cidessus peuvent notamment être isolées selon les méthodes connues de l'homme du métier par exemple par la technique de PCR en utilisant des amorces nucléotidiques dégénérées pour amplifier ces ADN à partir de banques génomiques ou de banques d'ADNc des mycètes correspondants. Les ADNc peuvent également être préparés à partir d'ARNm isolés de mycètes d'espèces différentes étudiées dans le cadre de la présente invention telles que Candida albicans mais par exemple et tout aussi bien : Candida stellatoidea, Candida tropicalis, Candida parapsilosis, Candida krusei, Candida pseudotropicalis, Candida quillermondii, Candida glabrata, Candida lusianiae ou Candida rugosa ou encore des mycètes telles que Saccharomyces cerevisiae ou encore des mycètes du type Aspergillus ou Cryptococcus et notamment, par exemple, Aspergillus fumigatus, Coccidioides immitis, Cryptococcus neoformans, Histoplasma capsulatum, Blastomyces dermatitidis, Paracoccidioides brasiliens et Sporothrix schenckii ou encore des mycètes des classes des phycomycètes or eumycètes en particulier les sous-classes de basidiomycètes, ascomycètes, mehiascomycétales (levure) et plectascales, gymnascales (champignon de la peau et des cheveux) ou de la classe des hyphomycètes, notamment les sous-classes conidiosporales et thallosporales parmi lesquels les espèces suivantes : mucor, rhizopus, coccidioides, paracoccidioides (blastomyces, brasiliensis), endomyces (blastomyces), aspergillus, menicilium (scopulariopsis), trichophyton (ctenomyces), epidermophton, microsporon, piedraia, hormodendron, phialophora, sporotrichon, cryptococcus, candida, geotrichum, trichosporon ou encore toropsulosis. Les polynucléotides de la présente invention peuvent ainsi être obtenus en utilisant les méthodes usuelles de clonage et de criblage telles que celles de clonage et séquençage à partir de fragments d'ADN chromosomique extraits de cellules ou encore issus de banques de gènes. Par exemple, pour obtenir les polynucléotides de la présente invention, on peut partir d'une banque de fragments d'ADN chromosomique. On peut préparer une sonde correspondant à un oligonucléotide marqué par un élément radioactif, constituée de préférence de 17 nucléotides ou encore 20 ou plus et dérivée d'une séquence partielle. Les clones contenant un ADN identique à celui de la sonde peuvent être ainsi identifiés sous des conditions stringentes. Par le séquençage de clones individuels ainsi identifiés, en utilisant des amorces de séquençage issues de la séquence d'origine, il est alors possible de prolonger la séquence dans les deux directions pour déterminer la séquence du gène complet. De façon usuelle et efficace, un tel séquençage peut être réalisé en utilisant un ADN double brin dénaturé préparé à partir d'un plasmide. De telles techniques sont décrites par Maniatis, T. Fritsch, E. F. et Sambrook comme indiqué ci-dessus. (Laboratory Manual, Cold Spring Harbor, New York (1989) (notamment en 1. 90 et 13. 70 dans les chapitres de screening par hybridation et séquençage à partir d'ADN double brin dénaturé). Dans le cadre de la présente invention, on pourrait notamment utiliser une banque de fragments d'ADN chromosomique de Candida albicans comme indiqué ci-après dans les exemples décrits dans la partie expérimentale. Une description détaillée des conditions opératoires dans lesquelles a été réalisée la présente invention est donnée ci-après. L'invention a tout particulièrement pour objet les polypeptides ayant chacun une séquence d'acides aminés choisie parmi SEQ ID N 2, SEQ ID N 4, SEQ ID N 6, SEQ ID N 8, SEQ ID N 10, SEQ ID N 12 et SEQ ID N 14, codés par les séquences d'ADN telles que définies ci-dessus et les analogues de ces polypeptides. Par analogues de polypeptides, on entend les polypeptides dont la séquence d'acides aminés a été modifiée par substitution, suppression ou addition d'un ou plusieurs acides aminés mais qui conservent la même fonction biologique. De tels polypeptides analogues peuvent être produits spontanément ou peuvent être produits par modification post-transcriptionnelle ou encore par modification de la séquence ADN de la présente invention comme indiqué ci-dessus, en utilisant les techniques connues de l'homme du métier : parmi ces techniques, on peut citer notamment la technique de mutagénèse dirigée connue de l'homme du métier (Kramer, W., et al., Nucl. Acids Res., 12, 9441 (1984) ; Kramer, W. and Fritz, H. J., Methods in Enzymology, 154,350 (1987) ; Zoller, M. J. and Smith, M. Methods in Enzymology, 100,468 (1983)). La synthèse d'ADN modifiés peut être faite comme indiqué ci-dessus et notamment en utilisant des techniques de synthèse chimique bien connues telles que par exemple la méthode au phosphotriester [Letsinger, R. L and Ogilvie, K.K., K. Am. CHEM. Soc., 91,3350 (1969) ; Merrifield, R.B., Sciences, 150,178 (1968) ] ou la méthode à la phosphoamidite [Beaucage, S. L and Caruthers, M .H., Tetrahedron Lett., 22, 1859 (1981) ; McBRIDE, L. J. and Caruthers, M.H. Tetrahedron Lett., 24 245 (1983) ] ou encore par la combinaison de ces méthodes. Les polypeptides de la présente invention peuvent donc être préparés par les techniques connues de l'homme du métier, notamment partiellement'par synthèse chimique ou encore par la technique de l'ADN recombinant par expression dans une cellule hôte procaryote ou eucaryote comme indiqué ci-après. La présente invention a particulièrement pour objet le procédé de préparation de protéines recombinantes PCaDR472, PCaDR489, lPCaDR527, 2PCaDR527, PCaFL024, PCaNL260, PCaDR361 ayant respectivement les séquences d'acides aminés SEQ ID N 2, SEQ ID N 4, SEQ ID N 6, SEQ ID N 8, SEQ ID N 10, SEQ ID N 12 et SEQ ID N 14, telles que définies ci-dessus, comprenant, pour la préparation de chacune de ces protéines, l'expression dans un hôte approprié de la séquence d'ADN telle que définie ci-dessus codant pour cette protéine puis l'isolement et la purification de ladite protéine recombinante. Pour produire les polypeptides de la présente invention, on peut notamment utiliser les techniques de l'ADN recombinant en utilisant les méthodes de génie génétique et de culture cellulaire connues de l'homme du métier. On peut ainsi procéder par les étapes suivantes : d'abord préparation du gène approprié, puis incorporation de ce gène dans un vecteur, transfert du vecteur porteur du gène dans une cellule hôte appropriée, production du polypeptide par expression du gène, isolement du polypeptide, le polypeptide ainsi produit pouvant être ensuite purifié. Les polypeptides de la présente invention obtenus par l'expression des polynucléotides de la présente invention peuvent être purifiés à partir de cultures de cellules transformées par les méthodes bien connues de l'homme du métier telles que précipitation au sulfate d'ammonium ou à l'éthanol, extraction en conditions acides, chromatographie échangeuse d'anions ou de cations, chromatographie d'interaction hydrophobique, chromatographie d'affinité, chromatographie à l'hydroxylapatite et la chromatographie à haute performance liquide (HPLC). Des techniques bien connues de l'homme du métier peuvent être utilisées pour régénérer la protéine lorsque celle-ci est dénaturée durant son isolement ou sa purification. Les séquences d'ADN selon la présente invention et notamment SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 et SEQ ID N 13 peuvent être préparées selon les techniques connues de l'homme du métier notamment par synthèse chimique ou par criblage d'une banque génomique ou d'une banque d'ADNc à l'aide de sondes d'oligonucléotides de synthèse par les techniques connues d'hybridation, ainsi amplification d'ADN à partir de fragments isolés ou encore par réverse transcriptase à partir d'ARN messager (ARNm) . L'avantage de la technique comprenant d'abord l'isolement d'ARNm par extraction des ARN totaux puis la synthèse d'ADNc à partir de ces ARNm par réverse transcriptase réside notamment dans le fait que l'ARNm ne contient pas les introns alors que ces séquences non codantes peuvent être présentes dans l'ADN génomique. On peut procéder en utilisant les techniques usuelles de clonage connues de l'homme du métier et notamment décrites dans l'ouvrage de Sambrook, J. Fritsh, E. F. ≈Maniatis, T. (1989) intitulé : 'Molecular cloning : a laboratory manual', Laboratory, Cold Spring Harbor NY. Dans ces techniques, on peut procéder au clonage par insertion de fragment dans un plasmide qui peut être fourni avec un kit commercial adapté puis transformation d'une souche bactérienne par le plasmide ainsi obtenu. On peut utiliser notamment la souche E. coli XL1 Blue ou DH5 alpha. Les clones peuvent ensuite être cultivés pour extraire l'ADN plasmidique selon les techniques classiques de l'homme du métier référencées ci-dessus (Sambrook, Fritsh et Maniatis). On peut procéder au séquençage de l'ADN du fragment amplifié contenu dans l'ADN plasmidique. Les polypeptides de la présente invention peuvent être obtenus par expression dans une cellule hôte contenant un polynucléotide selon la présente invention et notamment une séquence d'ADN codant pour un polypeptide de la présente invention précédée d'une séquence promoteur convenable. La cellule hôte peut être une cellule procaryote, par exemple E. coli ou une cellule eucaryote telle que les levures comme par exemple les Ascomycètes parmi lesquels les Saccharomyces ou encore des cellules de mammifères comme par exemple des cellules Cos. La présente invention a particulièrement pour objet les vecteurs d'expression contenant pour chacun l'une des séquences d'ADN de la présente invention telles que définies ci-dessus. Dans chacun de ces vecteurs d'expression, une telle séquence d'ADN est donc ainsi notamment la séquence d'ADN d'un gène de la présente invention codant pour une protéine de Candida albicans et contenant une séquence de nucléotides choisie parmi SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 et SEQ ID N 13. Dans chacun de ces vecteurs d'expression, une telle séquence d'ADN est ainsi encore plus particulièrement celle des gènes tels que définis ci-dessus codant pour l'une des séquences d'acides aminés SEQ ID N 2, SEQ ID N 4, SEQ ID N 6, SEQ ID N 8, SEQ ID N 10, SEQ ID N 12 et SEQ ID N 14 telles que définies ci-dessus et ci-après. Dans chacun des vecteurs d'expression de la présente invention, une telle séquence d'ADN est ainsi une séquence d'ADN telle que définie ci-dessus codant pour l'une des protéines PCaDR472, PCaDR489, lPCaDR527, 2PCaDR527, PCaFL024, PCaNL260, PCaDR361 ainsi que les séquences d'ADN qui hybrident avec celle-ci et/ou présentent des homologies significatives avec cette séquence ou des fragments de celleci ou encore les séquences d'ADN comprenant des modifications introduites par suppression, insertion et/ou substitution d'au moins un nucléotide codant pour une protéine ayant la même activité. Dans chacun des vecteurs d'expression de la présente invention, une telle séquence d'ADN est notamment une séquence d'ADN telle que définie ci-dessus ainsi que les séquences d'ADN similaires qui ont une homologie de séquence nucléotidique d'au moins 50 % ou au moins 60 % et de préférence au moins 70 % avec ladite séquence d'ADN ou encore les séquences d'ADN similaires qui codent pour une protéine dont la séquence en AA a une homologie d'au moins 40 % et notamment de 45 % ou d'au moins'50 %, plutôt au moins 60 % et de préférence au moins 70 % avec la séquence en AA codée par ladite séquence d'ADN. Les vecteurs d'expression sont des vecteurs permettant l'expression de la protéine sous le contrôle d'un promoteur convenable. Un tel vecteur peut être un plasmide, un cosmide ou un ADN viral. Pour les cellules procaryotes, le promoteur peut être par exemple le promoteur lac, le promoteur trp, le promoteur tac, le promoteur P-lactamase ou le promoteur PL. Pour les cellules de levure, le promoteur peut être par exemple le promoteur PGK ou le promoteur GAL. Pour les cellules de mammifères, le promoteur peut être par exemple le promoteur SV40 ou les promoteurs de l'adénovirus. Des vecteurs type Baculovirus peuvent être aussi utilisés pour l'expression dans des cellules d'insectes. Les cellules hôtes sont par exemple des cellules procaryotes ou des cellules eucaryotes. Les cellules procaryotes sont par exemple E. coli, Bacillus ou Streptomyces. Les cellules hôtes eucaryotes comprennent des levures ainsi que des cellules d'organismes supérieurs, par exemple des cellules de mammifères ou des cellules d'insectes. Les cellules de mammifères sont par exemple des cellules CHO ou BHK de hamster ou des cellules Cos de singe. Les cellules d'insectes sont par exemple des cellules SF9. La présente invention concerne donc un procédé qui comprend l'expression d'un polynucléotide selon la présente invention codant pour l'une des protéines PCaDR472, PCaDR489, lPCaDR527, 2PCaDR527, PCaFL024, PCaNL260, PCaDR361 dans une cellule hôte transformée par un polynucléotide selon la présente invention et notamment une séquence d'ADN codant pour la séquence en acides aminés SEQ ID N 2, SEQ ID N 4, SEQ ID N 6, SEQ ID N 8, SEQ ID N 10, SEQ ID N 12 et SEQ ID N 14. Dans la réalisation d'un tel procédé, la cellule hôte est notamment une cellule eucaryote. Pour la réalisation de la présente invention, les vecteurs utilisés peuvent être par exemple pGEX ou pBAD et la cellule hôte peut être E. coli ou par exemple le vecteur pYX222 et la cellule hôte peut être notamment Saccharomyces cerevisiae. ' La présente invention a notamment pour objet la cellule hôte transformée avec un vecteur tel que défini ci-dessus et renfermant une séquence d'ADN selon la présente invention. La présente invention a ainsi pour objet le procédé de préparation d'une protéine recombinante selon la présente invention, tel que défini ci-dessus, dans lequel la cellule hôte est E. coli DH5 alpha ou E. coli XLl-Blue ou notamment Saccharomyces cerevisiae. Un exposé détaillé des conditions dans lesquelles peuvent être menées les opérations indiquées ci-dessus est donné ci-après dans la partie expérimentale. On a ainsi obtenu un plasmide dans lequel est inséré le gène de la présente invention et on obtient ainsi également ce plasmide introduit dans une cellule hôte en opérant selon les techniques usuelles connues de l'homme du métier. La présente invention a très précisément pour objet les 7 plasmides déposés le 25 mai 1999 à la Collection Nationale de Cultures de Microorganismes (CNCM) - INSTITUT PASTEUR - 25, rue du Docteur Roux - 75724 PARIS Cedex 15 sous les numéros suivants: 1-2214, 1-2215, 1-2216, 1-2217, 1-2211, I- 2212 et 1-2213. 1-2214 est le numéro d'enregistrement de la souche CaDR472. 10 constituée par la bactérie E. coli XLl-blue contenant un plasmide portant le gène de Candida albicans CaDR472 de la présente invention préparé comme indiqué à l'exemple 1 de la présente invention. Ce gène correspond donc à la séquence CaDR472 de SEQ ID N 1. 1-2215 est le numéro d'enregistrement de la souche CaDR489. 37 constituée par la bactérie E. coli XLl-blue contenant un plasmide portant le gène de Candida albicans CaDR489 de la présente invention préparé comme indiqué à l'exemple 2 de la présente invention. Ce gène correspond donc à la séquence CaDR489 de SEQ ID N 3. 1-2216 est le numéro d'enregistrement de la souche CaDR527. 2 constituée par la bactérie E. coli XLl-blue contenant un plasmide portant le gène de Candida albicans CaDR527 (allèle 1) de la présente invention préparé comme indiqué à l'exemple 3 de la présente invention. Ce gène correspond donc à la séquence 1CaDR527 de SEQ ID N 5. 1-2217 est le numéro d'enregistrement de la souche CaDR527. 3 constituée par la bactérie E. coli XLl-blue contenant un plasmide portant le gène de Candida albicans CaDR527 (allèle 2) de la présente invention préparé comme indiqué à l'exemple 3 de la présente invention. Ce gène correspond donc à la séquence 2CaDR527 de SEQ ID N 7. 1-2211 est le numéro d'enregistrement de la souche CaFL024. 4 constituée par la bactérie E. coli XL1-blue contenant un plasmide portant le gène de Candida albicans CaFL024 de la présente invention préparé comme indiqué à l'exemple 4 de la présente invention. Ce gène correspond donc à la séquence CaFL024 de SEQ ID N 9. 1-2212 est le numéro d'enregistrement de la souche CaNL260. 4 constituée par la bactérie E. coli XL1-blue contenant un plasmide portant le gène de Candida albicans CaNL260 de la présente invention préparé comme indiqué à l'exemple 5 de la présente invention. Ce gène correspond donc à la séquence CaNL260 de SEQ ID N 11. 1-2213 est le numéro d'enregistrement de la souche CaDR361. 3 constituée par la bactérie E. coli XL1-blue contenant un plasmide portant le gène de Candida albicans CaDR361 de la présente invention préparé comme indiqué à l'exemple 6 de la présente invention. Ce gène correspond donc à la séquence CaDR361 de SEQ ID N 13. La présente invention a ainsi très précisément pour objet l'un ou plusieurs des plasmides déposés sous les numéros 1-2214, 1-2215, 1-2216, 1-2217, 1-2211, 1-2212 et 1-2213. Les conditions opératoires dans lesquelles a été réalisée la présente invention sont décrites ci-après dans la partie expérimentale. La présente invention a ainsi pour objet un procédé de criblage de produits antifongiques caractérisé en ce qu'il comprend une étape où l'on mesure l'activité de l'une des protéines PCaDR472, PCaDR489, lPCaDR527, 2PCaDR527, PCaFL024, PCaNL260, PCaDR361 telles que définies ci-dessus en présence de chacun des produits dont on souhaite déterminer les propriétés antifongiques et l'on sélectionne les produits ayant un effet inhibiteur sur cette activité. En particulier, les gènes codant pour les protéines PCaDR472, PCaDR489, lPCaDR527, 2PCaDR527, PCaFL024, PCaNL260, PCaDR361 de la présente invention étant essentiels à la survie des cellules de Candida albicans, des substances inhibitrices de telles protéines PCaDR472, PCaDR489, lPCaDR527, 2PCaDR527, PCaFL024, PCaNL260, PCaDR361 pourraient être utilisables comme agents antifongiques, soit en tant que médicaments soit sur le plan industriel. Par exemple, pour cribler des substances antifongiques telles que des substances actives sur Candida albicans, on mesure l'activité d'une protéine codée par un gène de la présente invention ou de l'un de ses homologues fonctionnels et met la protéine en présence de chacun des produits dont on souhaite déterminer les propriétés antifongiques et l'on sélectionne ainsi les produits ayant un effet inhibiteur sur cette activité. On peut effectuer un tel criblage en mesurant l'activité de l'une des protéines PCaDR472, PCaDR489, lPCaDR527, 2PCaDR527, PCaFL024, PCaNL260, PCaDR361 de la présente invention en présence d'activateurs ou d'inhibiteurs potentiels à tester, par exemple par mesure in vitro dans un milieu réactionnel approprié. L'activité des protéines de la présente invention peut également être mesurée in vivo par un test cellulaire approprié. Par exemple, l'activité de PCaDR472, PCaDR489, lPCaDR527, 2PCaDR527, PCaFL024, PCaNL260, PCaDR361 peut être avantageusement mesurée dans des cellules d'un mutant de Saccharomyces cerevisiae transformées par l'un des gènes de la présente invention et n'exprimant pas la protéine homologue PYDR 472w, PYDR 489w, PYDR 577w, PYFL 024c, PYNL 260c et PYDR 361c de Saccharomyces cerevisiae. L'invention englobe également l'utilisation d'un produit sélectionné comme indiqué ci-dessus pour ses propriétés inhibitrices d'une des protéines de la présente invention pour l'obtention d'un agent antifongique. La présente invention sera mieux comprise à l'aide de la partie expérimentale qui suit et qui décrit le clonage des gènes CaDR472, CaDR489, lCaDR527, 2CaDR527, CaFL024, CaNL260 et CaDR361 de la présente invention. La présente invention a ainsi pour objet l'utilisation d'un produit sélectionné par le procédé de criblage de produits antifongiques tel que défini ci-dessus pour l'obtention d'un agent antifongique. La présente invention a également pour objet l'utilisation des gènes de Candida albicans de la présente invention ou des protéines codées par ces gènes tels que définis ci-dessus pour la sélection de produits ayant des propriétés antifongiques tels que définis ci-dessus et utilisés comme inhibiteurs des protéines de Candida albicans codées par ces gènes. La présente invention a également pour objet les compositions pharmaceutiques renfermant à titre de principe actif au moins un inhibiteur des protéines de Candida albicans de la présente invention telles que définies cidessus. De telles compositions peuvent notamment être utiles pour traiter les infections fongiques topiques et systémiques. Les compositions pharmaceutiques indiquées ci-dessus peuvent être administrées par voie buccale, rectale, par voie parentérale ou par voie locale en application topique sur la peau et les muqueuses ou par injection par voie intraveineuse ou intramusculaire. Ces compositions peuvent être solides ou liquides et se présenter sous toutes les formes pharmaceutiques couramment utilisées en médecine humaine comme, par exemple, les comprimés simples ou dragéifiés, les gélules, les granulés, les suppositoires, les préparations injectables, les pommades, les crèmes, les gels et les préparations en aérosols ; elles sont préparées selon les méthodes usuelles. Le principe actif peut y être incorporé à des excipients habituellement employés dans ces compositions pharmaceutiques, tels que le talc, la gomme arabique, le lactose, l'amidon, le stéarate de magnésium, le beurre de cacao, les véhicules aqueux ou non, les corps gras d'origine animale ou végétale, les dérivés paraffiniques, les glycols, les divers agents mouillants, dispersants ou émulsifiants, les conservateurs. La posologie sera variable selon le produit utilisé, le sujet traité et l'affection en cause. La présente invention a ainsi notamment pour objet l'utilisation des compositions telles que définies ci-dessus comme agents antifongiques. La présente invention a encore pour objet une méthode d'induction d'une réponse immunologique chez un mammifère comprenant l'inoculation à ce mammifère d'un polypeptide selon la présente invention tel que défini ci-dessus ou un fragment de ce polypeptide ayant la même fonction de façon à produire un anticorps permettant de protéger l'animal contre la maladie. La présente invention a ainsi pour objet des anticorps dirigés contre les polypeptides de la présente invention tels que définis ci-dessus ou contre un fragment de ces polypeptides ayant la même fonction et codés par les polynucléotides de la présente invention et notamment par une séquence d'ADN telle que définie ci-dessus. Les polypeptides de la présente invention peuvent ainsi être utilisés comme immunogènes pour produire des anticorps immunospécifiques de ces polypeptides. Le terme anticorps utilisé désigne les anticorps aussi bien monoclonaux que polyclonaux, chimériques, simple chaîne, les anticorps non humains et les anticorps humains, aussi bien que les fragments Fab, incluant ainsi les produits d'une banque d'immunoglobulines Fab. Les anticorps générés contre les polypeptides de la présente invention peuvent être obtenus par administration des polypeptides de la présente invention ou de fragments portant des épitopes, leurs analogues ou encore des cellules à un animal, de préférence non humain, en utilisant des protocoles de routine pour la préparation d'anticorps monoclonaux. De tels anticorps peuvent être préparés par les méthodes bien connues dans ce domaine telles que celles décrites dans l'ouvrage Antibodies, Laboratory manuel Ed. Harbow et David Larre, Cold Spring Harbor laboratory Eds, 1988. La présente invention a ainsi tout particulièrement pour objet un anticorps dirigé contre l'une quelconque des protéines PCaDR472, PCaDR489, lPCaDR527, 2PCaDR527, PCaFL024, PCaNL260, PCaDR361 de la présente invention ou un fragment de cette protéine. Un tel fragment a notamment la même fonction que la protéine dont il est issu. La présente invention a encore pour objet l'utilisation des gènes CaDR472, CaDR489, lCaDR527, 2CaDR527, CaFL024, CaNL260 et CaDR361 de la présente invention ou des protéines codées par ces gènes tels que définis ci-dessus pour la préparation de compositions utiles pour le diagnostic ou le traitement de maladies causées par la levure pathogène Candida albicans. La présente invention concerne aussi l'utilisation des polynucléotides de la présente invention comme réactifs de diagnostic. La détection d'un polynucléotide selon la présente invention codant pour l'une des protéines de Candida albicans de la présente invention ou de ses analogues chez un eucaryote en particulier un mammifère et plus particulièrement un être humain, peut constituer un moyen de diagnostic d'une maladie : ainsi, on peut détecter un tel polynucléotide selon la présente invention et notamment une séquence d'ADN par une grande variété de techniques chez un eucaryote en particulier un mammifère et plus particulièrement un être humain, infectés par un organisme contenant au moins l'un des polynucléotides de la présente invention. Les acides nucléiques pour une telle utilisation d'outil de diagnostic peuvent être détectés à partir de cellules ou de tissus infectés, tels que l'os, le sang, le muscle, le cartilage ou la peau. Pour cette détection, l'ADN génomique peut être utilisé directement ou encore être amplifié par PCR ou une autre technique d'amplification. Les ARN ou ADN et ADNc peuvent également être utilisés dans le même but. Par les techniques d'amplification, la lignée du mycète présent dans un eucaryote en particulier un mammifère et plus particulièrement un être humain, peut être caractérisée par l'analyse du génotype. Des délétions ou des insertions peuvent être détectées par le changement de taille du produit amplifié par comparaison avec le génotype de la séquence de référence. Les points de mutations peuvent être identifiés par hybridation de l'ADN amplifié avec les séquences, marquées par un élément radioactif, de polynucléotides de la présente invention. Des séquences parfaitement complémentaires peuvent ainsi être distinguées de duplex qui résistent mal à la digestion par des nucléases. Les différences de séquences d'ADN peuvent aussi être détectées par des altérations de la mobilité électrophorétique de fragments d'ADN dans des gels, avec ou sans agent dénaturant, ou par un séquençage direct d'ADN (référence : Myers et al. Science, 230 : 1242 (1985)). Des changements de séquences à des localisations spécifiques peuvent aussi être révélés par des expériences de protection contre des nucléases telles que RNase I et SI ou par des méthodes de clivage chimique (référence : Cotton et al., Proc Natl Acad Sci, USA, 85 : 4397-4401 (1985). Des cellules contenant l'un des polynucléotides de la présente invention portant des mutations ou des polymorphismes peuvent aussi être détectées par un grand nombre de techniques permettant notamment de déterminer le sérotype. Par exemple, la technique RT-PCR peut être utilisée pour détecter les mutations. Il est particulièrement préféré d'utiliser les techniques de RT-PCR en conjonction avec des systèmes de détection automatique, tels que par exemple dans la technique GeneScan. ARN et ADNc peuvent être utilisés dans les techniques PCR ou RT-PCR. Par exemple, des amorces complémentaires des polynucléotides codant pour les polypeptides de la présente invention peuvent être utilisées pour identifier et analyser les mutations. Des amorces peuvent ainsi être utilisées pour amplifier un ADN isolé de l'individu infecté. De cette façon des mutations dans la séquence d'ADN peuvent être détectées et utilisées pour diagnostiquer l'infection et déterminer le sérotype ou le classement de l'agent infectieux. De telles techniques sont usuelles pour l'homme du métier et sont décrites notamment dans le manuel 'Current Protocols in Molecular Biology, Ausubel et al, ed. John Wiley & sons, Inc., 1995). La présente invention concerne ainsi un procédé de diagnostic d'une maladie et de préférence d'une infection fongique provoquée par Candida albicans telles que des mycoses comme indiqué ci-dessus, ce procédé comprenant la détermination à partir d'un échantillon prélevé sur un individu infecté, d'une augmentation de la quantité de l'un des polynucléotides de la présente invention. Un tel polynucléotide peut notamment avoir l'une des séquences d'ADN de la présente invention telles que définies ci-dessus. Des augmentations ou des diminutions de la quantité de polynucléotides peuvent être mesurées par les techniques bien connues de l'homme du métier telles que notamment l'amplification, la PCR, RT-PCR, Northern blotting ou autres techniques d'hybridation. De plus, une méthode de diagnostic en accord avec la présente invention consiste en la détection d'une expression trop importante de polypeptides de la présente invention, par comparaison avec des échantillons de contrôle constitués de tissus normaux non infectés utilisés pour détecter la présence d'une infection. Les techniques qui peuvent être utilisées pour détecter ainsi les quantités de protéines exprimées dans un échantillon d'une cellule hôte sont bien connues de l'homme du métier. On peut ainsi citer par exemple les techniques de radioimmunoassay ou de competitive-binding, analyse par Western Blot et test ELISA (ref Ausubel indiqué ci-dessus). La présente invention a encore pour objet un kit pour le diagnostic d'infections fongiques comprenant une séquence d'ADN selon la présente invention telle que définie ci-dessus ou une séquence similaire ou un fragment de cette séquence, le polypeptide codé par cette séquence ou un fragment polypeptidique ayant la même fonction ou un anticorps dirigé contre un tel polypeptide codé par cette séquence d'ADN ou contre un fragment de ce polypeptide. Ce kit pourra ainsi contenir une séquence d'ADN selon la présente invention telle que définie ci-dessus soit par exemple la séquence d'ADN SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 ou SEQ ID N 13 ou un fragment de cette séquence. Un tel kit pourra de même contenir un polypeptide selon la présente invention ou un fragment de ce polypeptide et notamment l'une des protéines selon la présente invention ayant la séquence en AA SEQ ID N 2, SEQ ID N 4, SEQ ID N 6, SEQ ID N 8, SEQ ID N 10, SEQ ID N 12 et SEQ ID N 14 ou encore un anticorps tel que défini ci-dessus. Un tel kit peut-être préparé selon les méthodes bien connues de l'homme du métier. Le listing de séquences SEQ ID N 1 à SEQ ID N 32 et les figures 1 à 6 ci-après présentent les illustrations suivantes qui permettent de mieux décrire la présente invention. Les séquences SEQ ID N 1 à SEQ ID N 32 représentent les séquences nucléotidiques ou peptidiques indiquées dans la présente invention. Les séquences SEQ ID N 1 à SEQ ID N 14 décrivent les séquences nucléotidiques des gènes de Candida albicans de la présente invention et les séquences peptidiques des protéines déduites de ces gènes. Les séquences SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 ou SEQ ID N 13 décrivent ainsi respectivement les séquences nucléotidiques des gènes de Candida albicans de la présente invention : CaDR472, CaDR489, lCaDR527, 2CaDR527, CaFL024, CaNL260 et CaDR361. Les séquences SEQ ID N 2, SEQ ID N 4, SEQ ID N 6, SEQ ID N 8, SEQ ID N 10, SEQ ID N 12 et SEQ ID N 14 décrivent respectivement les séquences peptidiques des protéines déduites des gènes de la présente invention. Ainsi, par exemple, les séquences SEQ ID N 1 et SEQ ID N 2 représentent respectivement la séquence nucléotidique du gène CaDR472 et la séquence peptidique de la protéine déduite de ce gène soit PCaDR472. Les séquences SEQ ID N 15 à SEQ ID N 20 représentent respectivement les séquences des 6 sondes utilisées pour la préparation des gènes de Candida albicans de la présente invention comme indiqué ci-après dans la partie expérimentale. Les séquences SEQ ID N 21 à SEQ ID N 32 représentent respectivement les séquences des 2 x 6 oligonucléotides utilisés pour amplifier les sondes pour la préparation des gènes de Candida albicans de la présente invention comme indiqué ci-après dans la partie expérimentale. Les figures 1 à 6 ci-après se réfèrent chacune respectivement à une des 6 préparations des gènes de Candida albicans de la présente invention soit : CaDR472, CaDR489, lCaDR527/2CaDR527, CaFL024, CaNL260 et CaDR361, ces préparations étant décrites ci-après à la partie expérimentale aux exemples 1 à 6. Chacune des figures 1 à 6 décrit la comparaison de la protéine déduite de la sonde utilisée pour la préparation d'un des gènes de Candida albicans de la présente invention (les 6 sondes utilisées ayant les séquences SEQ ID N 15 à SEQ ID N 20) à la séquence du gène de S. c. pris comme point de départ de la préparation de ce gène de Candida albicans. Ainsi, se référant à l'exemple 1 de préparation du gène CaDR472 de la présente invention, la figure 33 représente la comparaison de la protéine déduite de la sonde de CaDR472 (SEQ ID N 15) à la protéine déduite du gène YDR472w de S. cerevisiae. La partie expérimentale ci-après permet de décrire la présente invention sans toutefois la limiter. Partie expérimentale EXEMPLE 1 : Clonage et séquençage du gène CaDR472 (méthode A) ' Le site Internet de Stanford (http: //candida.standford.edu/) permet d'accéder directement aux séquences préliminaires du génome de Candida albicans. L'une de ces séquences présente une homologie avec le gène YDR472w de S. cerevisiae. Deux oligonucléotides ont été choisis dans cette séquence soit : 5'CAATTTATTC ATGTTCGNAT CTGGAAATTG ATTTT3' nommé SEQ ID N 21 et 5'CCAAATCTCA AACTCTCTCT AATTAAAAC3' nommé SEQ ID N 22. Ces deux oligonucléotides sont utilisés pour amplifier le fragment de C. albicans. Après clonage, une séquence dite sonde de CaDR472 de 320 paires de bases proche de la séquence attendue a été obtenue : la sonde de CaDR472 est appelée SEQ ID NO 15. La protéine déduite de la sonde de CaDR472 (SEQ ID NO 15) a été comparée à celle de YDR472w ce qui met en évidence une identité de 48% entre ces deux séquences d'AA : cette comparaison est représentée à la figure 1. Le fragment de 320 paires de bases de C. albicans a été utilisé comme sonde pour criblage de la banque génomique de C. albicans : cette banque de C.a. a été préparée par digestion partielle de l'ADN génomique de C. albicans par Sau3AI et clonage dans le vecteur YEP24 au site de restriction BamHI. Les clones de la banque génomique ont ensuite été étalés à la densité de 2000 clones par boite : chaque boite est ensuite recouverte d'un filtre de nitrocellulose qui est successivement traité par : NaOH, 0. 5M, pendant 5 minutes ; Tris, 1M, pH 7. 7, pendant 5 minutes ; Tris , 0. 5M, pH 7.7, NaCl , 1. 25M, pendant 5 minutes. Après séchage, les filtres sont gardés pendant deux heures à 80 C. Préhybridation et hybridation sont réalisées dans un tampon de 40 % de formamide, 5xSSC, 20 mM Tris pH 7,7 lxDenhardt 0,1 % SDS. La sonde est ensuite marquée au P32 par le kit Rediprime et dCTP 32p de Amersham UK. L'hybridation est réalisée en 17 heures à 42 C. Les filtres sont ensuite lavés au lxSSC, 0,1 % SDS , trois fois pendant 5 minutes à la température ambiante et ensuite deux fois pendant 30 minutes à 60 C puis sont soumis à une autoradiographie pendant une nuit. Les colonies correspondant aux spots obtenus sont isolées par un nouvel étalement à faible densité suivi d'hybridation : 8 clones positifs sont ainsi obtenus (à partir de 60 000) qui sont alors séquences à l'aide d'un appareil ABI 377. Les séquences sont compilées à l'aide d'un software ABI puis analysées à l'aide d'un package software GCG. L'un des 8 clones s'est révélé contenir la séquence codante complète correspondant à la sonde utilisée : ce gène est appelé CaDR472 et cette séquence est dite SEQ ID NO 1. CaDR472 a 47. 5 % de nucléotides identiques à YDR472w de S. cerevisiae. Pour la traduction en acides aminés, il a été tenu compte du fait que dans C. albicans le codon CTG est traduit en sérine (il y a 1 codon CTG dans CaDR472). La protéine déduite du gène CaDR472 (SEQ ID N 1) soit SEQ ID N 2 (PCaDR472) a 52,4 % de similarité en acides aminés et 44 % d'identité en acides aminés avec la protéine déduite de YDR472w. La séquence complète du gène CaDR472 contient un codon CTG. EXEMPLE 2 : Clonage et séquençage du gène CaDR489 On procède comme à l'exemple 1 à partir de séquences préliminaires du génome de Candida albicans du site Internet de Stanford (http: //candida.standford.edu/). L'une de ces séquences présente une homologie avec le gène YDR489w de S. cerevisiae. Deux oligonucléotides ont été choisis dans cette séquence soit : 5'GTTCATGTTT GGTGACTCAG AGCGTCTCAA CTATATTG3' nommé SEQ ID N 23 et 5'TTTGATAAAC ACAGGCTGGT CTAAATCTGG CTC3' nommé SEQ ID N 24. Ces deux oligonucléotides sont utilisés pour amplifier le fragment de C. albicans. Après clonage, une séquence dite sonde de CaDR489 de 295 paires de bases proche de la séquence attendue a été obtenue : la sonde de CaDR489 est appelée SEQ ID N 16. La protéine déduite de la sonde de CaDR489 (SEQ ID N 16) a été comparée à celle de YDR489w ce qui met en évidence une identité de 41% entre ces deux séquences d'AA : cette comparaison est représentée à la figure 2. Le fragment de 295 paires de bases de C. albicans a été utilisé comme sonde pour criblage de la banque de gènes de C. albicans préparée par digestion partielle du DNA génomique de C. albicans en procédant comme à l'exemple 1. Le clonage est réalisé comme indiqué à l'exemple 1 et après préhybridation et hybridation réalisées comme indiqué à l'exemple 1, on obtient 4 clones positifs (à partir de 40 000). On procède au séquençage et l'analyse des séquences obtenues comme indiqué à l'exemple 1, et on obtient ainsi un clone se révélant contenir la séquence codante complète correspondant à la sonde utilisée : ce gène est appelé CaDR489 et cette séquence est dite SEQ ID N 4. CaDR489 a 48. 1 % de nucléotides identiques à YDR489w de 5. cerevisiae. La protéine déduite du gène CaDR489 (SEQ ID N 3) soit SEQ ID n 4 ou PcaDR489 a 50 % de similarité en acides aminés et 37 % d'identité en acides aminés avec la protéine déduite de YDR489. La séquence complète du gène CaDR489 contient un codon CTG. EXEMPLE 3 : Clonage et séquençage du gène CaDR527 On procède comme à l'exemple 1 à partir de séquences préliminaires du génome de Candida albicans du site Internet de Stanford (http: //candida.standford.edu/). L'une de ces séquences présente une homologie avec le gène YDR527w de S. cerevisiae. Deux oligonucléotides ont été choisis dans cette séquence soit : 5'ATCTCTGATA TGAGATTTGG CTTTAAAGGC GA3' nommé SEQ ID N 25 et 5'GGTCTTTTTT CCATCAGCTG CCTCTGTTAT TG3' nommé SEQ ID N 26. Ces deux oligonucléotides sont utilisés pour amplifier le fragment de C. albicans. Après clonage, une séquence dite sonde de CaDR527 de 392 paires de bases proche de la séquence attendue a été obtenue : la sonde de CaDR527 est appelée SEQ ID N 17. La protéine déduite de la sonde de CaDR527 (SEQ ID N 17) a été comparée à celle de YDR527w ce qui met en évidence une identité de 41% entre ces deux séquences d'AA : cette comparaison est représentée à la figure 3. Le fragment de 392 paires de bases de C. albicans a été utilisé comme sonde pour le criblage de la banque génomique de C. albicans préparée par digestion partielle du DNA génomique de C. albicans en procédant comme à l'exemple 1. Le clonage est réalisé comme indiqué à l'exemple 1 et après préhybridation et hybridation réalisées comme indiqué à l'exemple 1, on obtient 7 clones positifs (à partir de 40 000). On procède au séquençage et l'analyse des séquences obtenues comme indiqué à l'exemple 1. On obtient ainsi deux clones se révélant contenir chacun une séquence codante complète correspondant chacune à un allèle de la sonde utilisée : ce gène est appelé CaDR527 et les deux allèles sont ainsi appelés lCaDR527 et 2CaDR527 et leurs séquences respectives sont respectivement dites SEQ ID N 5 et SEQ ID N 7. On constate que les gènes des allèles lCaDR527 et 2CaDR527 (SEQ ID N 5 et SEQ ID N 7) diffèrent par 13 nucléotides. Le gène CaDR527 (1er allèle) a 53. 8 % de nucléotides identiques à YDR527w de S. cerevisiae. Les protéines déduites de ces allèles soit SEQ ID N 6 (PCaDR527) pour le 1er allèle lCaDR527 et SEQ ID N 8 pour le 2ème allèle 2CaDR527 diffèrent entre elles par 5 acides aminés. La protéine déduite du gène CaDR527 (SEQ ID N 6) a 58,9 % de similarité en acides aminés et 47,9 % d'identité en acides aminés avec la protéine déduite de YDR527. La séquence complète du gène CaDR527 ne contient pas de codon CTG. EXEMPLE 4 : Clonage et séquençage du gène CaFL024 (méthode B) Le site Internet de Stanford (http://candida.standford.edu/) permet d'accéder directement aux séquences préliminaires du génome de Candida albicans. L'une de ces séquences présente une homologie avec le gène YFL024c de S. cerevisiae. Deux oligonucléotides ont été choisis dans cette séquence soit : 5' ATTCCCACAC CGGACGCTTC 3' nommé SEQ ID N 27 et 5'GACAACTCCT CGTACGATAG 3' nommé SEQ ID N 28. Ces deux oligonucléotides sont utilisés pour amplifier le fragment de C. albicans. Après clonage, une séquence dite sonde de CaFL024 de 335 paires de bases proche de la séquence attendue a été obtenue : la sonde de CaFL024 est appelée SEQ ID N 18. La protéine déduite de la sonde de CaFL024 (SEQ ID N 18) a été comparée à celle de YFL024c ce qui met en évidence une similarité de 62 % et une identité de 58 % entre ces deux séquences d'AA : cette comparaison est représentée à la figure 4. Ce fragment de 335 paires de bases de C. albicans a été utilisé comme sonde pour criblage d'une banque génomique de C. albicans : cette banque de gènes de C. a. a été préparée par digestion partielle du DNA génomique de C. albicans par SauIIIA et clonage dans le vecteur YEP-24 au site de restriction BamHI. Les clones de la banque de gènes ont ensuite été étalés à la densité de 2000 clones par boite : chaque boite est ensuite recouverte d'un filtre de nitrocellulose qui est successivement traité par : 1. 5 M NaCl/ 0. 5 M NaOH pendant 5 minutes ; M NaCl/0. 5 M Tris-HCl pH 7. 2/1 mM EDTA pendant 3 minutes, à deux reprises. Le DNA est ensuite 'crosslinked' aux filtres (Amersham Life Science, ultraviolet crosslinker). La sonde (100 ng) est ensuite marquée au P32 par le kit Rediprime et dCTP (Amersham Life Science). Préhybridation et hybridation des filtres sont réalisées dans un tampon de 30% de formamide, 5 x SSC, 5 % de solution de Denhardt, 1 % SDS, 100 g/ml de DNA de sperme de saumon et une concentration de la sonde de 10(6) cpm/ml : l'hybridation est réalisée à 42 C pendant 16 heures. Les filtres sont ensuite lavés trois fois, pendant 5 minutes chaque fois, à la température ambiante au 2 x SSC/ 0,1 % SDS puis trois fois au 1 x SSC/ 0,1 % SDS pendant 20 minutes chaque fois à 60 C. Les filtres sont soumis à une autoradiographie pendant une nuit. Les colonies correspondant aux clones positifs (spots obtenus) sont isolées et soumis à un second criblage par un nouvel étalement à faible densité suivi d'hybridation : 6 clones sont ainsi obtenus (à partir de 144 000) qui sont alors séquences à l'aide d'un appareil ABI 377. Les séquences sont compilées à l'aide d'un software ABI puis analysées à l'aide d'un package software GCG. L'un des 6 clones s'est révélé contenir la séquence codante complète correspondant à la sonde utilisée : ce gène est appelé CaFL024 et cette séquence dite SEQ ID NO 9. CaFL024 a 49. 1 % de nucléotides identiques à YFL024c de S. cerevisiae. Il y a 2 codons CTG dans CaFL024. La protéine déduite du gène CaFL024 (SEQ ID N 9) soit SEQ ID n 10 (PCaFL024) a 51,8 % de similarité en acides aminés et 44,0 % d'identité en acides aminés avec la protéine déduite de YFL024c. EXEMPLE 5 : Clonage et séquençage du gène CaNL260 On procède comme à l'exemple 4 à partir de séquences préliminaires du génome de Candida albicans du site Internet de Stanford (http: //candida.standford.edu/). L'une de ces séquences présente une homologie avec le gène YN1260c de S. cerevisiae. Deux oligonucléotides ont été choisis dans cette séquence soit : 5' AGATAATGTATTAAATTTAG 3' nommé SEQ ID N 29 et 5'CTCTTAATTTATTTCTTGCC 3' nommé SEQ ID N 30. Ces deux oligonucléotides sont utilisés pour amplifier le fragment de C. albicans. Après clonage, une séquence dite sonde de CaNL260 de 326 paires de bases proche de la séquence attendue a été obtenue : la sonde de CaNL260 est appelée SEQ ID N 19. La protéine déduite de la sonde de CaNL260 (SEQ ID N 19) a été comparée à celle de YNL260c ce qui met en évidence une similarité de 56,7 % et une identité de 40,3 % entre ces deux séquences d'AA : cette comparaison est représentée à la figure 5. Le fragment de 326 paires de bases de C. albicans a été utilisé comme sonde pour criblage de la banque de gènes de C. albicans préparée par digestion partielle du DNA génomique de C. albicans en procédant comme à l'exemple 4. La préhybridation et hybridation sont réalisés comme indiqué à l'exemple 4, on obtient 2 clones positifs (à partir de 40 000). On procède au séquençage et l'analyse des séquences obtenues comme indiqué à l'exemple 4, et on obtient ainsi un clone se révélant contenir la séquence codante complète correspondant à la sonde utilisée : ce gène est appelé CaNL260 et cette séquence est dite SEQ ID N 11. CaNL260 a 47. 6 % de nucléotides identiques à YNL260c de S. cerevisiae. La protéine déduite du gène CaNL260 (SEQ ID N 11) soit SEQ ID N 12 (PCaNL260) a 50,7 % de similarité en acides aminés et 32,6 % d'identité en acides aminés avec la protéine déduite de YNL260c. Il n'y a pas de codon CTG dans CaNL260. EXEMPLE 6 : Clonage et séquençage du gène CaDR361 On procède comme à l'exemple 4 à partir de séquences préliminaires du génome de Candida albicans : Le site Internet de Stanford (http://candida.standford.edu/) permet d'accéder directement aux séquences préliminaires du génome de Candida albicans. L'une de ces séquences présente une homologie avec le gène YDR361c de S. cerevisiae. Deux oligonucléotides ont été choisis dans cette séquence soit : 5' CCTCAAATTGATTTCCATGC 3' nommé SEQ ID N 31 et 5'GTGGAATCACTTCAACTGGC 3' nommé SEQ ID N 32. Ces deux oligonucléotides sont utilisés pour amplifier le fragment de C. albicans. Après clonage, une séquence dite sonde de CaDR361 de 374 paires de bases proche de la séquence attendue a été obtenue : la sonde de CaDR361 est appelée SEQ ID N 20. La protéine déduite de la sonde de CaDR361 (SEQ ID N 20) a été comparée à celle de YDR361c ce qui met en évidence une similarité de 52,4 % et une identité de 40,0 % entre ces deux séquences d'AA : cette comparaison est représentée à la figure 6. Le fragment de 374 paires de bases de C. albicans a été utilisé comme sonde pour criblage de la banque de gènes de C. albicans préparée par digestion partielle du DNA génomique de C. albicans par Saull/A et clonage dans le vecteur YEP 24 (marqueur de sélection Trp) au site de restriction Bam HI. La préhybridation et hybridation réalisés comme indiqué à l'exemple 4, on obtient 4 clones positifs (à partir de 40 000). On procède au séquençage et l'analyse des séquences obtenues comme indiqué à l'exemple 4, et on obtient ainsi un clone se révélant contenir la séquence codante complète correspondant à la sonde utilisée : ce gène est appelé CaDR361 et cette séquence dite SEQ ID N 13. CaDR361 a 53. 9 % de nucléotides identiques à YDR361c de S. cerevisiae. CaDR361Il n'y a pas de codon CTG dans CaDR361. REVENDICATIONS 1) Polynucléotides isolés contenant chacun une séquence nucléotidique choisie dans le groupe suivant: a) un polynucléotide ayant au moins 50 % ou au moins 60 % et de préférence au moins 70 % d'identité avec un polynucléotide codant pour un polypeptide ayant la même fonction et ayant une séquence en acides aminés homologue d'une séquence choisie parmi SEQ ID N 2, SEQ ID N 4, SEQ ID N 6, SEQ ID N 8, SEQ ID N 10, SEQ ID N 12 et SEQ ID N 14 b) un polynucléotide complémentaire du polynucléotide a) c) un polynucléotide comprenant au moins 15 bases consécutives du polynucléotide défini en a) et b). 2) Polynucléotides selon la revendication 1 tels que ces polynucléotides sont des ADN. 3) Polynucléotides selon la revendication 1 tels que ces polynucléotides sont des ARN. 4) Polynucléotides tels que définis à la revendication 2 comprenant chacun une séquence de nucléotides choisie parmi SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 et SEQ ID N 13. 5) Séquences d'ADN telles que définies aux revendications 1, 2 et 4 caractérisées en ce que ces séquences d'ADN sont celles des gènes codant respectivement pour des protéines de Candida albicans (ayant les mêmes fonctions que les protéines PCaDR472, PCaDR489, lPCaDR527, 2PCaDR527, PCaFL024, PCaNL260, PCaDR361) et contenant chacune une séquence de nucléotides choisie parmi SEQ ID N 1, SEQ ID N 3, SEQ ID N 5, SEQ ID N 7, SEQ ID N 9, SEQ ID N 11 et SEQ ID N 13. 6) Séquences d'ADN de gènes selon la revendication 5 codant chacune pour une séquence d'acides aminés choisie parmi SEQ ID N 2, SEQ ID N 4, SEQ ID N 6, SEQ ID N 8, SEQ ID N 10, SEQ ID N 12 et SEQ ID N 14. 7) Séquences d'ADN codant pour les protéines PCaDR472, PCaDR489, lPCaDR527, 2PCaDR527, PCaFL024, PCaNL260, PCaDR361 selon les revendications 5 et 6 ainsi que les séquences d'ADN qui hybrident avec celles-ci et/ou présentent des homologies significatives avec ces séquences ou des fragments de celles- ci et codent pour des protéines ayant les mêmes fonctions. 8) Séquences d'ADN selon les revendications 5 à 7 comprenant des modifications introduites par suppression, insertion et/ou substitution d'au moins un nucléotide codant pour des protéines ayant les mêmes activités que les protéines PCaDR472, PCaDR489, lPCaDR527, 2PCaDR527, PCaFL024, PCaNL260, PCaDR361. 9) Séquences d'ADN selon l'une des revendications 5 à 8 ainsi que les séquences d'ADN qui ont une homologie de séquence nucléotidique d'au moins 50 % ou au moins 60 % et de préférence au moins 70 % avec lesdites séquences d'ADN. 10) Séquences d'ADN selon l'une des revendications 5 à 9 ainsi que les séquences d'ADN qui codent pour des protéines de fonctions similaires dont les séquences respectives en AA ont une homologie d'au moins 40 % et notamment de 45 % ou d'au moins 50 %, plutôt au moins 60 % et de préférence au moins 70 % avec les séquences en AA codées par lesdites séquences d'ADN. 11) Polypeptides ayant chacun une séquence d'acides aminés choisie parmi SEQ ID N 2, SEQ ID N 4, SEQ ID N 6, SEQ ID N 8, SEQ ID N 10, SEQ ID N 12 et SEQ ID N 14 codées par les séquences d'ADN selon l'une des revendications 5 à 10 et les analogues de ces polypeptides. 12) Procédé de préparation de protéines recombinantes PCaDR472, PCaDR489, lPCaDR527, 2PCaDR527, PCaFL024, PCaNL260, PCaDR361 ayant respectivement les séquences d'acides aminés SEQ ID N 2, SEQ ID N 4, SEQ ID N 6, SEQ ID N 8, SEQ ID N 10, SEQ ID N 12 et SEQ ID N 14 comprenant, pour la préparation de chacune de ces protéines, l'expression dans un hôte approprié de la séquence d'ADN codant pour cette protéine selon l'une des revendications 5 à 10 puis l'isolement et la purification de ladite protéine recombinante. 13) Vecteurs d'expression contenant pour chacun l'une des séquences d'ADN selon l'une des revendications 5 à 10. 14) Cellule hôte transformée avec un vecteur selon la revendication 13. 15) Procédé tel que défini à la revendication 12 dans lequel la cellule hôte est E. coli DH5 alpha ou E. coli XL1-Blue. 16) Procédé tel que défini à la revendication 13 dans laquelle la cellule hôte est Saccharomyces cerevisae. 17) L'un ou plusieurs des plasmides déposés à la CNCM sous les numéros 1-2214, 1-2215, 1-2216, 1-2217, 1-2211, 1-2212 et 1-2213. 18) Procédé de criblage de produits antifongiques caractérisé en ce qu'il comprend une étape où l'on mesure l'activité de l'une des protéines PCaDR472, PCaDR489, lPCaDR527, 2PCaDR527, PCaFL024, PCaNL260, PCaDR361, telles que définies à la revendication 11, en présence de chacun des produits dont on souhaite déterminer les propriétés antifongiques et l'on sélectionne les produits ayant un effet inhibiteur sur cette activité. 19) Utilisation d'un produit sélectionné par le procédé selon la revendication 18 pour l'obtention d'un agent antifongique. 20) Utilisation des gènes de Candida albicans ou des protéines codées par ces gènes selon l'une des revendications 5 à 11 pour la sélection de produits ayant des propriétés antifongiques selon la revendication 19 comme inhibiteurs des protéines de Candida albicans codées par ces gènes. 21) Compositions pharmaceutiques renfermant à titre de principe actif au moins un inhibiteur des protéines de Candida albicans tel que défini à la revendication 20. 22) Utilisation des compositions telles que définies à la revendication 21 comme agents antifongiques. 23) Utilisation d'un polypeptide tel que défini à la revendication 11 ou un fragment de ce polypeptide ayant la même fonction pour la préparation d'un médicament destiné à induire une réponse immunologique chez un mammifère par inoculation de ce médicament produisant un anticorps permettant de protéger ledit mammifère contre la maladie. 24) Anticorps dirigé contre un polypeptide tel que défini à la revendication 11 ou un fragment de ce polypeptide ayant la même fonction. 25) Anticorps tel que défini à la revendication 24 dirigé contre l'une quelconque des protéines PCaDR472, PCaDR489, lPCaDR527, 2PCaDR527, PCaFL024, PCaNL260, PCaDR361 ou un fragment de ces protéines. 26) Utilisation de l'un quelconque des gènes CaDR472, CaDR489, lCaDR527, 2CaDR527, CaFL024, CaNL260 et CaDR361 ou de l'une quelconque des protéines codées par ces gènes selon l'une des revendications 5 à 11 pour la préparation de compositions utiles pour le diagnostic ou le traitement de maladies causées par la levure pathogène Candida albicans. 27) Kit pour le diagnostic d'infections fongiques comprenant une séquence d'ADN tel que défini à l'une des revendications 5 à 10 ou une séquence ayant une fonction similaire ou un fragment fonctionnel de cette séquence, le polypeptide codé par cette séquence ou un fragment polypeptidique ayant la même fonction ou un anticorps dirigé contre un tel polypeptide codé par cette séquence d'ADN ou contre un fragment de ce polypeptide.