FR 2807437 A1 20011012 FR 0004517 A 20000407 La présente invention a trait à un nouveau gène, qui code pour une protéine, désignée Erbin, qui interagit avec le récepteur ERBB2/HER-2. ERBB2/HER-2 est un récepteur à activité tyrosine kinase de la famille des récepteurs à l'EGF impliqué dans les carcinomes (cancers épithéliaux) touchant de nombreux organes humains tels que le foie, le rein et le sein par exemple (Ross et al, 1999 ; Klapper et al, 2000). Cette implication est directement liée à l'activité enzymatique du récepteur (dite tyrosine kinase) et sa signalisation intracellulaire, comme de nombreuses études in vitro l'ont montré. Le gène erbb2 est amplifié dans environ 30% des cancers du sein et constitue un facteur de mauvais pronostic en terme de survie du patient. Le fait que ce récepteur soit surexprimé sur les cellules tumorales et qu'il présente une activité enzymatique exacerbée suscite un vif intérêt en thérapeutique humaine. Deux approches sont actuellement mises en #uvre pour cibler ce récepteur et diminuer son effet tumorigène chez l'homme. La première consiste à bloquer l'excès de ERBB2/HER-2 et donc la croissance des tumeurs grâce à une anticorps monoclonal appelé Herceptin ou Trastuzumab (commercialisé par GENENTECH) utilisé dans les cancers du sein. Mais ce médicament n'a été efficace que chez la moitié des femmes qui l'ont testé. La deuxième approche est l'utilisation d'inhibiteurs de l'activité enzymatique du récepteur. Aucun médicament mettant à profit cette approche n'est mis sur le marché actuellement. Il existe donc un besoin de disposer d'autres moyens susceptibles de moduler l'activité du récepteur et/ou son expression dans les tumeurs. Les auteurs de la présente invention sont maintenant parvenus à identifier de manière précise un nouveau gène qui code pour une protéine qui se fixe à la partie intracellulaire du récepteur, constitue un nouvel adaptateur spécifique de ERBB2, et est impliqué dans sa localisation sub-cellulaire. Cette nouvelle protéine a été dénommée Erbin, pour "Erbb2 Interacting protein". En annexe se trouve une liste de séquences, dans laquelle la séquence SEQ ID n 1 représente le fragment d'ADNc du gène de l'Erbin chez l'homme correspondant au cadre de lecture ouvert (ORF). Cet ORF (nucléotides 324 à 4436 sur SEQ ID n 1) code pour une protéine de 1371 acides aminés, dont la séquence est présentée SEQ ID n 2. Trois régions sont définies dans la protéine : - région amino-terminale (résidus 1 à 501) contenant des motifs LRR; - région carboxy-terminale (résidus 1279 à 1371) comprenant le domaine PDZ ; - région centrale (résidus 502 à 1278). C'est une région spécifique de l'Erbin, non conservée dans d'autres protéines, dont la fonction est de fixer d'autres protéines, à activité enzymatique (phosphatase, kinase...) ou sans activité enzymatique, impliquées dans la fonction de l'Erbin ou sa localisation. Ce fragment protéique ou les polypeptides comprenant ce fragment font également partie de l'invention. L'association peut être constitutive ou modulée par une modification post-traductionnelle de l'Erbin (phosphorylation....). Au regard de la séquence primaire de cette région, des domaines SH3 ou WW de protéines cytosoliques peuvent se fixer sur les résidus 971 à 977, les résidus 1100 à 1105, les résidus 1115 à 1121. Ces fragments protéiques ou les peptides ou polypeptides comprenant ces fragments font également partie de l'invention. La liste des séquences annexée comprend également un fragment d'ADNc du gène de l'Erbin chez la souris (SEQ ID n 3) dont la partie codante (nucléotides 1 à 1485 de SEQ ID n 3) code pour une protéine incomplète de 495 acides aminés, représentée par SEQ ID n 4. Cette séquence peptidique de souris est homologue à la séquence peptidique de l'Erbin humaine (plus de 80 % d'identité au niveau protéique et nucléotidique, entre le résidu 914 et le résidu 1371 de la séquence humaine SEQ ID n 2), à l'exception du peptide entre les résidus 296 et 334 de SEQ ID n 4 (correspondant aux nucléotides 889 à 1006 sur SEQ ID n 3), spécifique de la séquence de souris. Ces fragments spécifiques murins font également partie de l'invention. La séquence SEQ ID n 5 comprend une séquence partielle génomique de l'Erbin de souris. Elle contient le premier exon de l'Erbin (nucléotides 2347 à 2535 sur SEQ ID n 5, qui présentent une identité de 94 % avec la séquence humaine et codent pour les résidus 1 à 63 de l'Erbin de souris sur SEQ ID n 4, identiques à 100 % à la séquence humaine). L'acide nucléique isolé comprenant une séquence comprenant les nucléotides 2347 à 2535 sur SEQ ID n 5 fait également partie de l'invention. La séquence SEQ ID n 6 est une séquence nucléotidique que l'on retrouve insérée entre les nucléotides 3956 et 3957 de l'Erbin humaine (SEQ ID n 1), en conservant son cadre de lecture ouverte, chez un variant. Cette séquence SEQ ID n 6 code pour le peptide SEQ ID n 7, qui s'insère entre les acides aminés 1211et 1212 de SEQ ID n 2. La séquence SEQ ID n 8 est une sonde en 5' de la séquence humaine de l'Erbin (nucléotides 74 à 750 de SEQ ID n 1), tandis que la séquence SEQ ID n 9 est une sonde en 3' (nucléotides 4240 à 4600 de SEQ ID n 1). Les séquences SEQ ID n 10 à SEQ ID n 20 sont des amorces utiles pour amplifier l'ADNc de l'Erbin humaine par PCR, selon le tableau suivant: SEQ ID n correspondance de nucléotides sur SEQ ID n 1 10 136 à 166 11 174 à 205 12 327 à 350 13 2788 à 2809 14 2812 à 2840 15 2892 à 2922 16 2993 à 3036 17 3199 à 3230 18 3339 à 3371 19 4458 à 4486 20 4490 à 4518 La séquence SEQ ID n 21 représente les neuf derniers acides aminés carboxy-terminaux de ERBB2. La présente invention a donc pour objet un acide nucléique isolé, comprenant la séquence SEQ ID n 1, n 3 ou n 5. Il est entendu que sont également comprises les séquences homologues, définies comme : i) des séquences similaires à au moins 70 % de la séquence SEQ ID n 1, n 3 ou n 5 ; ou ii) des séquences hybridant avec la séquence SEQ ID n 1, n 3 ou n 5 ou sa séquence complémentaire, dans des conditions stringentes d'hybridation, ou iii) des séquences codant pour le polypeptide, dénommé Erbin, tel que défini précédemment. De préférence, une séquence nucléotidique homologue selon l'invention est similaire à au moins 75 % des séquences SEQ ID n 1, n 3 ou n 5, de préférence encore au moins 85 %, ou au moins 90 %. De manière préférentielle, une telle séquence nucléotidique homologue hybride spécifiquement aux séquences complémentaires de la séquence SEQ ID n 1, n 3 ou n 5 dans des conditions stringentes. Les paramètres définissant les conditions de stringence dépendent de la température à laquelle 50% des brins appariés se séparent (Tm). Pour les séquences comprenant plus de 30 bases, Tm est définie par la relation : Tm=81,5+0,41 (%G+C)+16,6Log(concentration en cations) - 0,63 (%formamide) -(600/nombre de bases) (Sambrook et al., 1989). Pour les séquences de longueur inférieure à 30 bases, Tm est définie par la relation : Tm= 4 (G+C) 2 (A+T). Dans des conditions de stringence appropriées, auxquelles les séquences aspécifiques n'hybrident pas, la température d'hybridation peut être de préférence de 5 à 10 C en dessous de Tm, et les tampons d'hybridation utilisés sont de préférence des solutions de force ionique élevée telle qu'une solution 6xSSC par exemple. Le terme "séquences similaires" employé plus haut se réfère à la ressemblance parfaite ou identité entre les nucléotides comparés mais aussi à la ressemblance non parfaite que l'on qualifie de similitude. Cette recherche de similitudes dans les séquences nucléiques distingue par exemple les purines et les pyrimidines. Une séquence nucléotidique homologue à l'ORF représentée à la SEQ ID n 1, n 3 ou n 5 inclut donc toute séquence nucléotidique qui diffère de la séquence SEQ ID n 1, n 3 ou n 5 par mutation, insertion, délétion ou substitution d'une ou plusieurs bases, ou par la dégénérescence du code génétique, pour autant qu'elle code pour un polypeptide présentant l'activité biologique de l'Erbin, comme définie plus bas. Parmi de telles séquences homologues, sont comprises les séquences des gènes de mammifères autres que l'homme, codant pour l'Erbin, de préférence d'un primate, d'un bovin, ovin ou porc, ou encore d'un rongeur, ainsi que les variants alléliques. La présente invention a également pour objet un polypeptide isolé, dénommé Erbin, comprenant la séquence d'acides aminés SEQ ID n 2 ou n 4. Il est entendu que sont également comprises les séquences homologues, définies comme i) les séquences similaires à au moins 70% de la séquence SEQ ID n 2 ou n 4 ; ou ii) les séquences codées par une séquence d'acide nucléique homologue telle que définie précédemment c'est-à-dire une séquence d'acide nucléique hybridant avec la séquence SEQ ID n 2 ou n 4 ou sa séquence complémentaire, dans des conditions stringentes d'hybridation. Là encore, le terme "similaires" se réfère à la ressemblance parfaite ou identité entre les acides aminés comparés mais aussi à la ressemblance non parfaite que l'on qualifie de similitude. Cette recherche de similitudes dans une séquence polypeptidique prend en compte les substitutions conservatives qui sont des substitutions d'acides aminés de même classe, telles que des substitutions d'acides aminés aux chaînes latérales non chargées (tels que l'asparagine, la glutamine, la serine, la thréonine, et la tyrosine), d'acides aminés aux chaînes latérales basiques (tels que la lysine, l'arginine, et l'histidine), d'acides aminés aux chaînes latérales acides (tels que l'acide aspartique et l'acide glutamique) ; d'acides aminés aux chaînes latérales apolaires (tels que la glycine, l'alanine, la valine, la leucine, l'isoleucine, la proline, la phénylalanine, la méthionine, le tryptophane, et la cystéine). Plus généralement, par séquence d'acides aminés homologue , on entend donc toute séquence d'acides aminés qui diffère de la séquence SEQ ID n 2 ou n 4 par substitution, délétion et/ou insertion d'un acide aminé ou d'un nombre réduit d'acides aminés, notamment par substitution d'acides aminés naturels par des acides aminés non naturels ou pseudoacides aminés à des positions telles que ces modifications ne portent pas significativement atteinte à l'activité biologique de l'Erbin. De préférence, une telle séquence d'acides aminés homologue est similaire à au moins 85 % de la séquence SEQ ID n 2 ou n 4, de préférence au moins 95 %. L'homologie est généralement déterminée en utilisant un logiciel d'analyse de séquence (par exemple, Sequence Analysis Software Package of the Genetics Computer Group, University of Wisconsin Biotechnology Center, 1710 University Avenue, Madison, Wl 53705). Des séquences d'acides aminés similaires sont alignées pour obtenir le maximum de degré d'homologie (i.e. identité ou similitude, comme défini plus haut). A cette fin, il peut être nécessaire d'introduire de manière artificielle des espaces ( gaps ) dans la séquence. Une fois l'alignement optimal réalisé, le degré d'homologie est établi par enregistrement de toutes les positions pour lesquelles les acides aminés des deux séquences comparées sont identiques, par rapport au nombre total de positions. "L'activité biologique de l'Erbin" se réfère à sa capacité de fixation sur la partie intracellulaire du récepteur ERBB2/HER-2 et à sa capacité de cibler le récepteur vers l'épithélium basolatéral, où il peut participer à la transduction de signaux. L'invention a également pour objet les variants de l'Erbin, tels que les deux variants suivants : - variant désigné "1302", comprenant la séquence SEQ ID n 1 avec une délétion des nucléotides 3957 à 4163, conservant le cadre de lecture ouverte. La protéine codée par ce variant a pour séquence la séquence SEQ ID n 2 délétée des résidus 1212 à 1280. Le polypeptide isolé comprenant la séquence des acides aminés 1212 à 1280 de SEQ ID n 2 fait également partie de l'invention. - variant désigné "1419", comprenant la séquence SEQ ID n 1 avec une insertion entre les nucléotides 3956 et 3957 de cette séquence du fragment SEQ ID n 6, qui code pour le peptide SEQ ID n 7. L'ensemble des références à la séquence nucléotidique SEQ ID n 1 ou à la séquence d'acides aminés SEQ ID n 2 dans la présente description s'étend à ces variants. L'invention a également pour objet le peptide de séquence SEQ ID n 7 et l'acide nucléique qui code pour ce peptide, tel que l'acide nucléique de séquence SEQ ID n 6. Le polypeptide de la présente invention peut être synthétisé par toutes les méthodes bien connues de l'homme du métier. Le polypeptide de l'invention peut par exemple être synthétisé par les techniques de la chimie de synthèse, telles que la synthèse de type Merrifield qui est avantageuse pour des raisons de pureté, de spécificité antigénique, d'absence de produits secondaires non désirés et pour sa facilité de production. Une protéine recombinante peut également être produite par un procédé, dans lequel un vecteur contenant un acide nucléique comprenant la séquence SEQ ID n 1 ou n 3 ou une séquence homologue est transféré dans une cellule hôte qui est mise en culture dans des conditions permettant l'expression du polypeptide correspondant. La protéine produite peut ensuite être récupérée et purifiée. Les procédés de purification utilisés sont connus de l'homme du métier. Le polypeptide recombinant obtenu peut être purifié à partir de lysats et extraits cellulaires, du surnageant du milieu de culture, par des méthodes utilisées individuellement ou en combinaison, telles que le fractionnement, les méthodes de chromatographie, les techniques d'immunoaffinité à l'aide d'anticorps mono- ou polyclonaux spécifiques, etc. La séquence d'acide nucléique d'intérêt, codant pour l'Erbin, peut être insérée dans un vecteur d'expression, dans lequel elle est liée de manière opérante à des éléments permettant la régulation de son expression, tels que notamment des promoteurs, activateurs et/ou terminateurs de transcription. Les signaux contrôlant l'expression des séquences nucléotidiques (promoteurs, activateurs, séquences de terminaison...) sont choisis en fonction de l'hôte cellulaire utilisé. A cet effet, les séquences nucléotidiques selon l'invention peuvent être insérées dans des vecteurs à réplication autonome au sein de l'hôte choisi, ou des vecteurs intégratifs de l'hôte choisi. De tels vecteurs seront préparés selon les méthodes couramment utilisées par l'homme du métier, et les clones en résultant peuvent être introduits dans un hôte approprié par des méthodes standard, telles que par exemple l'électroporation ou la précipitation au phosphate de calcium. Les vecteurs de clonage et/ou d'expression tels que décrits cidessus, contenant une séquence nucléotidique définie selon l'invention font également partie de la présente invention. L'invention vise en outre les cellules hôtes transfectées, de manière transitoire ou stable, par ces vecteurs d'expression. Ces cellules peuvent être obtenues par l'introduction dans des cellules hôtes, procaryotes ou eucaryotes, d'une séquence nucléotidique insérée dans un vecteur tel que défini ci-dessus, puis la mise en culture desdites cellules dans des conditions permettant la réplication et/ou l'expression de la séquence nucléotidique transfectée. Des exemples de cellules hôtes incluent notamment des cellules de mammifères, telles que les cellules COS-7,293, MDCK, des cellules d'insectes telles que les cellules SF9, des bactéries telles que E. coli et des souches de levures telles que L40 et Y90. Les séquences nucléotidiques de l'invention peuvent être d'origine artificielle ou non. Il peut s'agir de séquences d'ADN ou d'ARN, obtenues par criblage de banques de séquences au moyen de sondes élaborées sur la base de la séquence SEQ ID n 1, n 3, n 5 ou 6. De telles banques peuvent être préparées par des techniques classiques de biologie moléculaire, connues de l'homme de l'art. La séquence nucléotidique selon l'invention peuvent également être préparées par synthèse chimique, ou encore par des méthodes mixtes incluant la modification chimique ou enzymatique de séquences obtenues par criblage des banques. La séquence nucléotidique de l'invention permet la réalisation de sondes ou amorces, hybridant spécifiquement avec la séquence SEQ ID n 1, n 3, n 5 ou 6 selon l'invention, ou son brin complémentaire. Les conditions d'hybridation appropriées correspondent aux conditions de température et de force ionique usuellement utilisées par l'homme du métier, de préférence dans des conditions stringentes telles que définies précédemment. Ces sondes peuvent être utilisées comme outil de diagnostic in vitro pour la détection, par des expériences d'hybridation, notamment d'hybridation "in situ", de transcrits spécifiques du polypeptide de l'invention dans des échantillons biologiques ou pour la mise en évidence de synthèses aberrantes ou d'anomalies génétiques résultant d'un polymorphisme, de mutations ou d'un mauvais épissage. Les acides nucléiques de l'invention utiles comme sondes comportent au minimum 15 nucléotides, préférentiellement au moins 20 nucléotides, préférentiellement encore au moins 100 nucléotides. Les acides nucléiques utiles comme amorces comportent au minimum 15 nucléotides, de préférence au moins 18 nucléotides, et préférentiellement moins de 40 nucléotides. Plus précisément, la présente invention a pour objet un acide nucléique ayant au moins 15 nucléotides, qui hybride spécifiquement avec l'une des séquences d'acide nucléique SEQ ID n 1 ou son complémentaire, dans des conditions stringentes d'hybridation. On peut par exemple utiliser comme sonde les acides nucléiques constitués des séquences SEQ ID n 8 ou SEQ ID n 9. On peut également utiliser comme sondes les fragments d'acide nucléique allant des nucléotides 1 à 750 de SEQ ID n 1 et les fragments d'acide nucléique allant des nucléotides 4240 à 6412 de SEQ ID n 1. On peut par ailleurs utiliser comme amorce, pour une amplification (par exemple par PCR), les acides nucléiques constitués des séquences SEQ ID n 10 à SEQ ID n 20. Préférentiellement, les sondes ou amorces de l'invention sont marquées, préalablement à leur utilisation. Pour cela, plusieurs techniques sont à la portée de l'homme du métier comme par exemple le marquage fluorescent, radioactif, chimioluminescent ou enzymatique. Les méthodes de diagnostic in vitro dans lesquelles ces oligonucléotides sont mis en oeuvre pour la détection de mutations ou de remaniements génomiques, au niveau du gène de l'Erbin, sont incluses dans la présente invention. L'homme du métier connaît bien les méthodes standard pour analyser l'ADN contenu dans un échantillon biologique et pour diagnostiquer un désordre génétique. De nombreuses stratégies d'analyse génotypique sont disponibles (Antonarakis et al., 1989 ; Cooper et al., 1991). De préférence, on peut utiliser la méthode DGGE (Electrophorèse sur gel de gradient dénaturant), la méthode SSCP (Polymorphisme de conformation simple brin) ou la méthode DHPLC (Chromatographie liquide haute performance dénaturante ; Kuklin et al., 1997 ; Huber et al., 1995) pour détecter une anomalie dans le gène de l'Erbin. De telles méthodes sont de préférence suivies par un séquençage direct. Le procédé de RT-PCR peut être avantageusement mis en #uvre pour détecter des anomalies dans le transcript de l'Erbin, car il permet de visualiser les conséquences d'une mutation d'épissage provoquant la perte d'un ou plusieurs exons au niveau du transcrit, ou un épissage aberrant dû à l'activation d'un site cryptique. Ce procédé est également de préférence suivi d'un séquençage direct. Les procédés plus récemment développés utilisant des puces à ADN peuvent également être mis en #uvre pour détecter une anomalie dans le gène de l'Erbin (Bellis et al., 1997). Le clonage du gène de l'Erbin ainsi que l'identification de diverses mutations responsables du développement de tumeurs permettent d'envisager des diagnostics directs. La présente invention a donc pour objet l'utilisation d'au moins un acide nucléique tel que défini précédemment, pour la détection d'une anomalie dans le gène de l'Erbin, défini comme comprenant une séquence d'acide nucléique SEQ ID n 1, n 3, n 5 ou n 6 dans son transcrit. L'invention a, par suite, pour objet un procédé de diagnostic in vitro d'une tumeur ou d'une prédisposition à développer une tumeur, comprenant les étapes consistant à : - mettre en présence un échantillon biologique contenant de l'ADN ou de l'ARN avec des oligonucléotides spécifiques permettant l'amplification de tout ou partie du gène de l'Erbin ou de son transcrit, défini comme comprenant une séquence SEQ ID n 1, n 3, n 5 ou n 6 ; - amplifier ledit ADN ou ARN ; - détecter les produits d'amplification ; - comparer les produits d'amplification obtenus à ceux obtenus avec un échantillon contrôle, et détecter de cette manière une éventuelle anomalie dans ledit gène de l'Erbin ou dans son transcrit, indicatrice d'une prédisposition à développer une tumeur. L'échantillon biologique en question peut notamment être du sang, ou un fragment tissulaire prélevé chez un patient. L'expression de l'Erbin étant retrouvée sur des cellules cancéreuses, les méthodes d'évaluation de l'expression de cette protéine à partir de prélèvements de tissus suspects chez des patients sont également particulièrement avantageuses dans des tests diagnostiques, en anatomopathologie. Ces méthodes peuvent viser à détecter l'ARNm codant pour l'Erbin ou la protéine Erbin elle-même. Selon le premier mode de réalisation, l'invention concerne une méthode de diagnostic in vitro d'une tumeur ou d'une prédisposition à développer une tumeur, comprenant les étapes consistant à - mettre en présence un échantillon biologique contenant de l'ARNm obtenu à partir d'un prélèvement de cellules suspectes chez un patient, avec des oligonucléotides spécifiques permettant l'amplification de tout ou partie du transcrit du gène de l'Erbin, défini comme comprenant une séquence SEQ ID n 1, n 3, n 5 ou n 6 ; - amplifier ledit transcrit ; - détecter et quantifier les produits d'amplification ; une modification du taux de transcrit de l'Erbin par rapport au contrôle normal étant indicatrice d'une tumeur ou d'une prédisposition à développer une tumeur. Selon un deuxième mode de réalisation, l'invention concerne une méthode in vitro pour la détection ou la mesure du taux d'expression de l'Erbin dans un prélèvement biologique, comprenant la mise en contact d'au moins un anticorps dirigé contre l'Erbin avec ledit prélèvement biologique dans des conditions permettant la formation éventuelle de complexes immunologiques spécifiques entre l'Erbin et le ou lesdits anticorps et la détection des complexes immunologiques spécifiques éventuellement formés. L'invention concerne plus particulièrement la mise en #uvre de la méthode ci-dessus pour le diagnostic in vitro d'une tumeur ou d'une prédisposition à développer une tumeur sur un échantillon biologique obtenu à partir d'un prélèvement de cellules suspectes chez un patient. La présence de la protéine Erbin ou du gène transcrit du gène en quantités différentes de la normale peut être correlée à un pronostic plus ou moins grave, en terme d'agressivité de la tumeur par exemple. L'invention a également pour objet des anticorps dirigés contre le polypeptide Erbin tel que défini précédemment, ou contre les fragments spécifiques de celle-ci, tels que le fragment défini entre les résidus 502 à 1278 de la séquence SEQ ID n 2, ou de manière avantageuse contre le fragment défini entre les résidus 914 et 1371 de la séquence SEQ ID n 2. Il peut s'agir d'anticorps poly- ou monoclonaux ou de leurs fragments, d'anticorps chimériques, notamment humanisés ou immunoconjugués. Les anticorps polyclonaux peuvent être obtenus à partir du sérum d'un animal immunisé contre un polypeptide selon les modes opératoires usuels. Selon un mode de réalisation de l'invention, on peut utiliser comme antigène un fragment peptidique approprié, tel que défini plus haut, pouvant être couplé par l'intermédiaire d'un résidu réactif à une protéine ou un autre peptide. Des lapins sont immunisés avec l'équivalent de 1 mg de l'antigène peptidique selon la procédure décrite par Benoit et al. (1982). A des intervalles de quatre semaines, les animaux sont traités par des injections de 200 g d'antigène et saignés 10 à 14 jours plus tard. Après la troisième injection, l'anti-sérum est examiné pour déterminer sa capacité à se lier au peptide antigène radiomarqué à l'iode, préparé par la méthode chloramine-T et est ensuite purifié par une chromatographie sur colonne échangeuse d'ion carboxyméthyl cellulose (CMC). Les molécules d'anticorps sont ensuite recueillies dans les mammifères et isolées jusqu'à la concentration souhaitée par les méthodes bien connues de l'homme de l'art, par exemple, en utilisant DEAE Sephadex pour obtenir la fraction IgG. Afin d'augmenter la spécificité du sérum polyclonal, les anticorps peuvent être purifiés par une chromatographie d'immuno-affinité en utilisant des polypeptides immunisant en phase solide. L'anticorps est mis en contact avec le polypeptide immunisant en phase solide pendant une durée suffisante de façon à faire immuno-réagir le polypeptide avec la molécule d'anticorps afin de former un complexe immunologique en phase solide. Les anticorps monoclonaux peuvent être obtenus selon la méthode classique de culture d'hybridomes décrite par Kôhler et Milstein (1975). Les anticorps ou fragments d'anticorps de l'invention peuvent être par exemple des anticorps chimériques, des anticorps humanisés, des fragments Fab et F(ab')2. Ils peuvent également se présenter sous forme d'immunoconjugués ou d'anticorps marqués. Les anticorps de l'invention, en particulier les anticorps monoclonaux, peuvent notamment être utilisés pour l'analyse par immunohistochimie de l'Erbin sur des coupes de tissus spécifiques, par exemple par immunofluorescence, marquage à l'or, immunoperoxydase... Les anticorps ainsi produits peuvent être avantageusement mis en oeuvre dans toute situation où l'expression de l'Erbin doit être observée. L'invention a plus généralement pour objet l'utilisation d'au moins un anticorps ainsi produit pour la détection ou la purification d'un polypeptide tel que défini précédemment dans un échantillon biologique. L'invention a également pour objet un kit pour la mise en #uvre de cette méthode comprenant : - au moins un anticorps spécifique de l'Erbin, éventuellement fixé sur un support ; - des moyens de révélation de la formation de complexes antigènes/anticorps spécifiques entre l'Erbin et ledit anticorps et/ou des moyens de quantification de ces complexes. L'invention a également pour objet un procédé d'obtention d'animal non humain transgénique, de préférence une souris, dans lequel on invalide le gène de l'Erbin. L'animal susceptible d'être obtenu par ce procédé fait également partie de l'invention. Un tel animal, désigné "knock-out" pour ce gène, est un modèle utile pour étudier la susceptibilité à développer des tumeurs candidats pour supprimer des tumeurs, ou au contraire évaluer la cytotoxicité de certaines molécules. Le polypeptide de l'invention ou l'acide nucléique codant pour ce polypeptide sont utiles à titre de médicament, notamment pour le traitement des tumeurs, dans lesquelles on observe par exemple l'expression d'une Erbin modifiée, et pour le traitement desquelles on cherche à restaurer l'activité de l'Erbin sauvage. il peut s'agir de tout type de tumeur, dont les carcinomes mais aussi les tumeurs touchant le cerveau. L'invention a également pour objet une composition pharmaceutique comprenant un polypeptide tel que défini précédemment ou un acide nucléique codant pour ledit polypeptide, en association avec un véhicule pharmaceutiquement acceptable. Les modes d'administration, les posologies et les formes galéniques des compositions pharmaceutiques selon l'invention, contenant au moins un polypeptide, peuvent être déterminées de manière usuelle par l'homme du métier, notamment selon les critères généralement pris en compte pour l'établissement d'un traitement thérapeutique adapté à un patient, comme par exemple l'âge ou le poids corporel du patient, la gravité de son état général, la tolérance au traitement, et les effets secondaires constatés, etc. De manière générale, une quantité thérapeutiquement ou prophylactiquement efficace variant d'environ 0,1 g à environ 1 mg peut être administrée à des adultes humains. L'invention a également pour objet une composition pharmaceutique comprenant un acide nucléique tel que défini précédemment, codant pour l'Erbin et un véhicule pharmaceutiquement acceptable, ladite composition étant destinée à être utilisée en thérapie génique. L'acide nucléique de préférence inséré dans un vecteur généralement viral (tels que les adénovirus et les rétrovirus) peut être administré sous forme nue, exempt de tout véhicule favorisant le transfert à la cellule cible, tels que des liposomes anioniques, des lipides cationiques, des microparticules, par exemple des microparticules d'or, des agents de précipitation, par exemple du phosphate de calcium, ou tout autre agent facilitant la transfection. Dans ce cas, le polynucléotide peut être simplement dilué dans une solution physiologiquement acceptable, telle qu'une solution stérile ou une solution stérile tampon, en présence ou en l'absence d'un véhicule. De manière alternative, un acide nucléique de l'invention peut être associé à des agents qui facilitent la transfection. Il peut être, entre autres, (i) associé à un agent chimique qui modifie la perméabilité cellulaire tel que la bupivacaïne ; (ii) encapsulé dans des liposomes, éventuellement en présence de substances supplémentaires facilitant la transfection ; ou (iii) associé à des lipides cationiques ou des microparticules de silice, d'or ou de tungstène. Lorsque les constructions d'acide nucléique de l'invention recouvrent des microparticules, celles-ci peuvent être injectées par voie intradermique ou intraépidermique par la technique du canon à gènes, "gene gun" (WO 94/24263). La quantité à utiliser comme médicament dépend notamment de la construction d'acide nucléique elle-même, de l'individu auquel cet acide nucléique est administré, du mode d'administration et du type de formulation, et de la pathologie. De manière générale, une quantité thérapeutiquement ou prophylactiquement efficace variant d'environ 0,1 g à environ 1 mg, de préférence d'environ 1 g à environ 800 g et, de manière préférentielle d'environ 25 g à environ 250 pg, peut être administrée à des adultes humains. Les constructions d'acides nucléiques de l'invention peuvent être administrées par toute voie d'administration conventionnelle telle que notamment par voie parentérale. Le choix de la voie d'administration dépend en particulier de la formulation choisie. Une administration ciblée au site des tumeurs visées peut être particulièrement avantageuse. L'invention a donc enfin pour objet une méthode de traitement thérapeutique, dans laquelle on administre à un patient nécessitant un tel traitement, une quantité efficace d'un polypeptide Erbin tel que défini précédemment ou un acide nucléique codant pour ce polypeptide, dans le cadre d'une thérapie génique. Le patient visé est généralement un être humain, mais l'application peut également être étendue à tout mammifère le cas échéant. Un autre aspect de l'invention concerne les tumeurs cancéreuses dans lesquelles le récepteur ERBB2/HER-2 est impliqué, une surexpression de ce récepteur étant dans ces cas souvent observée. Parmi ces tumeurs, on peut citer plus particulièrement les carcinomes (cancers épithéliaux) touchant par exemple le foie, le rein, le sein ou le colon. Une stratégie peut être alors d'inhiber l'interaction entre l'Erbin et le récepteur pour le délocaliser. Une autre stratégie consiste à bloquer l'expression de l'Erbin native, par exemple au moyen d'oligonucléotides anti-sens empêchant la transcription de l'ARN nu du gène de l'Erbin. L'invention a donc en outre pour objet une méthode de criblage de telles molécules inhibant la liaison entre l'Erbin et le récepteur ERBB2, cette méthode comprenant la mise en contact d'une molécule à tester avec (i) un premier partenaire de liaison qui est le récepteur ERBB2/HER-2 ou un fragment de celui-ci qui se fixe à l'Erbin, et (ii) un deuxième partenaire de liaison qui est l'Erbin ou un fragment de celle-ci qui se fixe au récepteur, le(s)dit(s) premier et/ou deuxième partenaire(s) de liaison étant marqué (s) de manière à être détectés, et l'évaluation de l'inhibition de l'interaction entre lesdits partenaires de liaison par la molécule à tester. Pour mettre en oeuvre ces tests de liaison compétitifs, par exemple du type ELISA ou IRMA, on peut donc utiliser un fragment du récepteur ERBB2/HER-2 qui se fixe à l'Erbin. Ce fragment comprend au minimum les neuf derniers acides aminés C-terminaux du récepteur, à savoir la séquence EYLGLDVPV représentée par SEQ ID n 21. D'autre part, on peut utiliser l'Erbin recombinante ou un fragment de celle-ci, qui se fixe au récepteur, à savoir un fragment qui comprend le domaine PDZ de l'Erbin. L'un ou l'autre de ces partenaires de liaison est marqué de manière détectable, les moyens de marquage des protéines étant bien connus de l'homme du métier. Il peut s'agir d'un agent de marquage fluorescent qui se lie chimiquement aux protéines sans dénaturation pour former un fluorochrome colorant qui est un indicateur immunofluorescent utile. L'agent de marquage peut aussi être une enzyme, telle que la peroxydase (HRP) ou la glucose oxydase. Des éléments radioactifs peuvent être également utilisés comme agents de marquage. De manière préférentielle, on utilise une protéine (de préférence, l'Erbin) fusionnée ou couplée à une protéine de type biotine, glutathion-Stransferase, poly-histidine.... L'un ou l'autre des partenaires de liaison (de préférence, le récepteur) peut être immobilisé de manière avantageuse sur une phase solide (membrane, billes, plastique...). L'interaction entre les partenaires de liaison est donc ainsi mise en évidence par un test enzymatique, de fluorescence, ou par autoradiographie,... Les molécules présentant une activité inhibitrice sélectionnées par cette méthode peuvent ensuite être soumises à un test de précipitation du récepteur ERBB2/HER-2 produit dans des cellules de mammifères. Le récepteur est précipité à partir d'un lysat cellulaire grâce à la protéine recombinante comprenant le domaine PDZ de l'Erbin et révélé par Western Blot ou par toute autre méthode suffisamment sensible. Les molécules dont l'activité inhibitrice de l'interaction Erbinrécepteur est confirmée sont retenues pour être testées sur des cellules épithéliales polarisées, afin d'évaluer leur capacité à induire une délocalisation du récepteur. Alternativement, un test triple-hybride dans la levure peut être mis en #uvre à cette fin (Zhang J. et al, 1996). Les molécules ainsi criblées représentent d'excellents candidats dans une stratégie de thérapie anticancéreuse consistant à inhiber l'interaction entre Erbin et ERBB2 dans les cellules tumorales, afin de délocaliser le récepteur et le rendre inactif. A l'inverse, il peut être avantageux, dans le cas où un individu exprime une protéine Erbin altérée ou un récepteur ERBB2 muté, tels que l'interaction Erbin-récepteur est diminuée par rapport à un contrôle normal, de rechercher des activateurs de cette interaction. A cette fin, est proposée une méthode de criblage de molécules activant la liaison entre l'Erbin et le récepteur ERBB2, qui peut être aisément mise en #uvre sur le modèle de la méthode de criblage d'inhibiteurs décrite plus haut ou par la technique du triple hybride. L'invention a également pour objet un procédé d'identification des mutants de l'Erbin qui augmentent ou diminuent l'interaction entre cette protéine et ERBB2, dans lequel on effectue une mutation sur l'Erbin et on évalue l'effet de cette mutation sur l'interaction de celle-ci avec le récepteur ERBB2. La mutagénèse peut être ciblée ou réalisée au hasard selon les techniques connues de l'homme du métier. L'évaluation de l'effet de la mutation peut être réalisée par un test de précipitation de ERBB2 ou de double hybride tel que décrit dans les exemples, ou encore au moyen d'une banque d'expression. Dans cette dernière technique, le domaine PDZ muté est exprimé au moyen de phages ou de bactéries étalés sur des boîtes de culture. Après transfert des protéines produites sur membrane de type nitrocellulose, le peptide de ERBB2 marqué par radioactivité, biotinylation ou autre méthode est incubé avec la membrane. Les mutants qui abolissent l'interaction et ne fixent plus le peptide sont prélevés et la séquence nucléotidique est analysée pour connaître la mutation introduite. L'invention a également pour objet les mutants de l'Erbin, qui augmentent ou diminuent l'interaction entre le domaine PDZ de cette protéine et ERBB2. La mutation de l'histidine (position 1347) en leucine (mutant HL) ou la mutation des résidus leucine (position 1291) en méthionine et de la phénylalanine (position 1293) en isoleucine (mutant MI) provoquent en particulier une augmentation de l'interaction entre le domaine PDZ d'ERBIN et ERBB2. La mutation de l'histidine (position 1347) en tyrosine et de la glycine (position 1348) en acide aspartique (mutant YD) ou la mutation de la thréonine (position 1316) en asparagine et de l'arginine (position 1317) en sérine (mutant NS) provoquent par contre une diminution de l'interaction entre le domaine PDZ d'ERBIN et ERBB2. L'invention a également pour objet un procédé d'identification de mutants du récepteur ERBB2, qui inhibent ou qui augmentent l'interaction avec l'Erbin, dans lequel on effectue une mutation du récepteur ERBB2 et on évalue l'effet de cette mutation sur l'interaction de ce récepteur avec l'Erbin. La séquence du récepteur ERBB2 humain est accessible par exemple sur la base de données EMBL (numéro d'accès X03363). Un test double hybride dans la levure peut être particulièrement approprié à cette fin. Des mutations ont ainsi été introduites dans les 9 derniers acides aminés carboxy-terminaux de ERBB2 (peptide EYLGLDVPV) (SEQ ID n 21). Le changement de l'un des acides aminés soulignés dans le peptide, par exemple, en alanine, inhibe l'interaction avec le domaine PDZ de ERBIN. Les mutants de ERBB2 susceptibles d'être identifiés par ce procédé font également partie de l'invention. Les auteurs de la présente invention ont plus particulièrement déterminé que les mutants de ERBB2 mutés sur les positions 5 (L) et 6 (D) de SEQ ID n 21 sont incapables de lier l'Erbin, mais restent capables de lier d'autres domaines PDZ d'autres protéines, telles que PICK1. Ces mutants sont en particulier utiles pour discriminer des molécules inhibitrices de l'interaction du domaine PDZ de l'Erbin dans des procédés de criblage. Ces mutants de l'Erbin ou du récepteur ERBB2 peuvent être utilisés dans des tests de criblage d'autres composés inhibant ou activant l'interaction entre l'Erbin et le récepteur ERBB2. Ils peuvent également être mis à profit dans le cadre d'une thérapie, par administration de ces formes mutées ou des acides nucléiques codant pour ces formes mutées. En particulier, les formes activatrices de l'interaction Erbin-ERBB2 peuvent être mises à profit comme médicament utile chez un individu qui exprime une protéine Erbin altérée ou un récepteur ERBB2 muté, et chez lequel l'interaction Erbin-récepteur est diminuée par rapport à un contrôle normal. A l'inverse, les formes inhibitrices de l'interaction Erbin-ERBB2 peuvent être utiles comme médicament dans le cas par exemple d'une surexpression du récepteur. LEGENDE DES FIGURES - La figure 1 représente un Western Blot montrant l'interaction spécifique du domaine PDZ de l'Erbin avec ERBB2 mais pas avec EGF-R. Les protéines liées transférées sur nitrocellulose ont été révélées par des anticorps anti-ERBB2 et anti-EGF-R. Un dixième du lysat a été déposé sur le gel (lysat total TL). La GST seule ou le domaine GST-X11a PDZ (X11) ont été utilisés comme contrôle. Les polypeptides GST-Erbin utilisés sont : GST-Erbin (914- 1371) piste 1, GST-Erbin (914-1240) piste 2 et domaine PDZ de la GST-Erbin piste 3. - La figure 2 représente un transfert sur une membrane de nitrocellulose d'un gel SDS-PAGE dans lequel a été déposée une protéine de fusion formée des 9 derniers acides aminés des récepteurs apparentés à EGF-R fusionnés à la protéine GST. Le domaine PDZ de la GST-Erbin soluble marqué au 32P ou les protéines de fusion GST-LIN-7 ont été utilisés pour sonder la membrane. Après incubation, les membranes ont été lavées et les protéines liées ont été révélées par autoradiographie. La figure 3 représente un Western Blot de lysats totaux de différents tissus murins et lignées cellulaires soumis à une électrophorèse sur SDS-PAGE, transfert sur nitrocellulose et mise en contact avec un anticorps antiErbin purifié. L'Erbin est une protéine de 180 kD indiquée par les flèches. EXEMPLES EXEMPLE 1 : Clonage de l'Erbin, un gène codant pour une protéine à domaine PDZ interagissant avec le récepteur ERBB2. Les récepteurs ERBB reçoivent leurs ligands, venant du stroma, sur l'épithélium basolatéral où ils sont localisés (Klapper et al, 2000). L'analyse de la séquence peptidique carboxy-terminale des récepteurs ERBB a révélé que le récepteur ERBB2 contenait un site de liaison à un domaine PDZ conservé entre les humains, les souris, les cailles et les chiens (Songyang et al, 1997). Les auteurs de l'invention ont alors criblé une banque d'ADNc de rein de souris en utilisant le système à deux hybrides avec les 9 derniers acides aminés de ERBB2 fusionnés avec le domaine de liaison à l'ADN de GAL4 ("GALBD"). Procédure à deux hybrides Les neuf derniers acides aminés de ERBB2 ont été fusionnés à la sous-unité GAL4-BD en utilisant le vecteur pc97 qui porte LEU2. Une banque d'ADNc de rein embryonnaire de souris amorcée avec une séquence oligo-dT, clonée dans un vecteur pc86 qui porte le marqueur Trp1 comme marqueur de sélection a été criblée en utilisant l'appât GAL4-BD-ERBB2 et la souche de levure Y190 suivant le protocole au lithium-acétate. Approximativement, 106 transformants TRP+LEU+ ont été sélectionnés sur des plaques d'agar contenant un milieu déficient en tryptophane, leucine et histidine lors du criblage primaire et contenant 10 mM de 3-aminotriazole (3AT). L'activité ss-galactosidase a été testée en transférant les levures sur filtres lors du criblage secondaire. Après récupération, l'ADN des clones sélectionnés a été retransformé dans une levure Y190 contenant GAL4-BD-ERBB2 ou GAL4-BD fusionné à des peptides contrôles. De manière alternative, les 15 derniers acides aminés de ERBB2, de ERRB2 muté (mutant VA : chez lequel le résidu valine de l'extrémité C-terminale de ERBB2, résidu crucial pour l'interaction au domaine PDZ, a été muté en alanine) et de ERBB4 ont été fusionnés à la protéine LexA en utilisant le vecteur pBTM116 qui porte Trp1. Le domaine PDZ de l'Erbin a été fusionné à la région GAL4-AD codé par le vecteur pACT2 qui porte Leu. Des interactions ont été réalisées dans la souche de levure de L40. Procédures relatives aux protéines Les cellules ont été lavées deux fois avec une solution de tampon phosphate PBS froid et lysées dans un tampon de lyse (50 mM HEPES pH 7,5, 10 % glycérol, 150 mM NaCI, 1 % Triton X-100,1,5 mM MgCl2, 1 mM EGTA) complémenté avec 1 mM de PMSF (fluorure de phénylméthylsulfonyle), 10 g/ml d'aprotinine et 10 g/ml de leupeptine. De l'orthovanadate de sodium à 200 M de concentration finale a été ajouté au tampon de lyse lorsque les cellules ont été stimulées avec de l'EGF. Après centrifugation à 16,000 g pendant 20 minutes, la teneur en protéine du lysat était normalisée en utilisant le kit de dosage protéique de Bio-Rad. Pour l'immunoprécipitation, les lysats ont été incubés avec des anticorps une nuit à 4 C. De la protéine A-agarose a été ajoutée et les complexes immuns liés aux billes ont été récupérés après une heure, lavés trois fois dans du tampon HNTG (50 mM HEPES pH 7,5,10 % glycérol, 150 mM NaCI, 0,1 % Triton X-100), bouillis dans du tampon d'essai 1X et séparés par SDS-PAGE. Le transfert et l'immunoblot sur nitrocellulose en utilisant la méthode de chimioluminescence à l'aide des anticorps HRP anti-lapin ou HRP anti-souris ont été réalisés comme décrit par Borg et al, 1996. Pour les essais dits de "Far Western", la membrane a été incubée deux heures à température ambiante avec des protéines de fusion GST solubles marquées avec la protéine kinase A et du 32PyATP dilué dans du TBS-lait écrémé à 5 %, 1 mM DTT (106 cpm/ml). Après rinçage dans du tampon TBS- 0,1 % Triton X-100 et du tampon TBS, la GST liée était révélée par autoradiographie. La transfection cellulaire, la production de GST et les dosages de liaison du GST ont été réalisés comme décrit précédemment (Borg et al, 1996). Les lysats fractionnés ont été préparés comme suit : les cellules ont été lysées dans du tampon hypotonique (10 mM Tris-CI [pH 7,4], 0,2 mM MgCl2, 5 mM KCI) complémentées avec 1 mM de PMSF, 10 pg/ml d'aprotonine et 10 g/ml de leupeptine. La lyse a été complétée par 20 passages dans un homogénéisateur à froid (piston B). Du saccharose a été ajouté à l'homogénat, dénommé fraction cytoplasmique. Le culot a été resuspendu dans une volume de tampon de lyse (tel que décrit ci-dessus) équivalent au volume de fraction cytoplasmique. Après 30 minutes sur la glace, les débris insolubles ont été enlevés par centrifugation à 16 000 g pendant 30 minutes à 4 C. Le supernageant résultant a été dénommé fraction membranaire. Résultats : Les auteurs de l'invention ont ainsi isolé un clone d'ADNc partiel codant pour les 457 derniers acides aminés d'une nouvelle protéine désignée Erbin pour "ERBB2 Interacting protein". Le clone tiré de la banque de rein de GAL-4-BD-ERBB2 contient les résidus 914 à 1371 de l'Erbin murine et est appelé Erbin (914-1371). Les protéines de fusion avec GST sont produites en utilisant les séquences peptidiques de l'Erbin (914-1371), Erbin (914-1240) et Erbin (1240-1371). La protéine de fusion GST-Erbin (1240-1371) sera désignée dans le texte comme le domaine PDZ de GST-Erbin. La souche de levure Y190 cotransformée par des vecteurs codant pour l'appât fusionné à Lex A et la proie fusionnée à GAL4-BD a été ensemencée sur du milieu Trp-Leu-His contenant 10 mM de 3AT. Dans le tableau suivant, les signes + signifient croissance sur le milieu sélectif (-His) et activité ssgalactosidase positive. pACT-Erbin 914-1371 1240-1371 LexA ssgal -His ssgal -His ERBB2 + + + + ERBB2.VA - - - ERBB4 - - - Aucune interaction n'est observée avec ERBB2 mutée sur le résidu valine C-terminal. Le domaine PDZ trouvé à l'extrémité C-terminale de l'Erbin est suffisant pour se lier à ERBB2. Aucune liaison n'a été observée avec EPHB2, MUSK, PDGFRa et PDGFRp. Les protéines GST-Erbin (914-1371) et GST-Erbin PDZ se lient à la chimère EGF-R/ERBB2 (HER 1/2), mais pas à EGF-R, dans des essais "pulldown" de précipitation de protéines (figure 1). Les domaines GST-DLG, LIN-2 et X11a ne se lient pas à HER 1/2. La liaison directe du domaine PDZ de l'Erbin aux extrémités carboxy-terminales des récepteurs ERBB a été évaluée par essai "Far Western". Le domaine PDZ de l'Erbin radiomarqué se lie au peptide ERBB2 mais pas au peptide EGF-R, ERBB3 et ERBB4 et ne se lie que faiblement au peptide LET-23 (figure 2). Le domaine PDZ de LIN-7 se lie seulement à LET-23. Le domaine PDZ de l'Erbin présente une forte identité avec le domaine PDZ de DENSIN-180 (71 %) et une identité de 35 % avec les domaines PDZ de classe I (Songyang et al, 1997 ; Fanning et al, 1998) trouvée dans les protéines LIN-7 et PSD-95 selon l'alignement des séquences. La substitution d'un motif His-Gly présent dans l'hélice aB de l'Erbin en un motif Tyr-Asp présent dans le domaine PDZ de classe III de NOS inhibe l'interaction avec ERBB2. Ces résultats montrent que le domaine PDZ de l'Erbin interagit spécifiquement et directement avec ERBB2. Un ADNc de pleine longueur codant pour l'Erbin humaine a été cloné par RT-PCR à partir de Daudi, une lignée cellulaire de lymphocytes B humains, en utilisant le kit MARATHON, selon les recommandations du fabricant (Clontech). Un cadre de lecture ouverte précédé de codons stop dans les trois cadres code pour une protéine de 1371 acides aminés. L'Erbin contient 16 motifs LRR dans son extrémité amino-terminale (résidus 48-416) et un seul domaine PDZ C-terminal. Une large région intermédiaire de 863 acides aminés entre les domaines LRR et PDZ contient des extensions riches en proline qui peuvent représenter des sites de liaison ou des domaines SH3 et WW. EXEMPLE 2 : Caractérisation de l'Erbin, membre d'une nouvelle famille PDZ Une sonde de l'Erbin humaine spécifique a permis de détecter un transcrit de 7,2 kb dans la plupart des tissus humains et murins testés. Cette analyse a été réalisée par Northern Blot à l'aide de la technique "Multiple Tissues" de Clontech, à partir de 2 g d'ARNm poly(A)+ isolé à partir de divers tissus humains. Des anticorps spécifiques contre l'Erbin ont été préparés. Préparation des anticorps L'anticorps monoclonal anti-Mc 9E10 (Oncogene Research Products, Cambridge, MA) a été utilisé pour l'immunoprécipitation et l'immunoblot. Des anticorps monoclonaux de lapins anti-ERBB2 et anti-EGF-R ont été obtenus par injection des peptides à des lapins. L'anticorps monoclonal 408 anti-EGF-R a été utilisé pour l'immunoprécipitation. L'anticorps monoclonal anti-EGF-R (clone LA22) de Upstate Biotechnology (UBI) a été utilisé pour l'immunofluorescence. Les anticorps polyclonaux anti-SHC et monoclonal 4G10 mAb (anti-PY) ont été obtenus chez UBI. Des IgG de chèvre anti-lapin et antisouris couplées à une peroxydase de raifort ont été achetées auprès du Laboratoire Jackson et Dako, respectivement. Un anticorps polyclonal de lapin anti-Erbin a été produit en injectant une protéine de fusion GST-Erbin (914-1371). L'anticorps anti-Erbin a été en outre purifié par affinité avec une Erbin marquée par l'histidine (914-1371) lié à des billes d'agarose et de nickel (Qiagen). Ces anticorps spécifiques contre l'Erbin ont détecté une protéine de 180 kD sous la forme d'un doublet dans le cerveau, le foie, le rein, la rate, les intestins et les muscles squelettiques ainsi que dans les lignées cellulaires épithéliales Caco-2 et MDCK (figure 3). L'expression de l'ADNc de l'Erbin de pleine longueur dans les cellules COS a permis la production d'une protéine de taille similaire à la protéine détectée par l'anticorps en question dans les tissus et les extraits cellulaires. Culture cellulaire Les cellules COS-1 et MDCK sont cultivées dans du milieu DMEM (milieu de Eagle modifié par Dulbecco) contenant 100 U/ml de pénicilline et 100 g/ml de sulfate de streptomycine, complémenté avec du sérum de veau foetal à 10 % (FCS). Les cellules Caco-2 ont été maintenues dans du milieu DMEM complémenté avec 20 % de FCS et 1 % d'acides aminés non essentiels. Toutes les transfections cellulaires ont été réalisées en utilisant un réactif Fugene 6 selon les recommandations du fabricant (Boehringer Mannheim). L'homologie structurelle entre Erbin, DENSIN-180, VARTUL, KAA0147 et F26D11.11 ont conduit les auteurs de l'invention à considérer ces protéines comme des membres d'une nouvelle famille PDZ désignée LAP pour "LRR and PDZ domain proteins". EXEMPLE 3 : Interaction de l'Erbin avec un récepteur activé HER1/2 L'interaction in vivo entre l'Erbin et le récepteur ERBB2 a été testée par co-immunoprécipitation dans des cellules COS. 1) HER 1/2 a été coexprimé de manière transitoire avec les polypeptides Erbin, SAP97 ou PSD-95 fusionnés à l'épitope myc dans des cellules COS-1. Après une lyse, HER 1/2 été immunoprécipité avec l'anticorps anti-EGF-R (clone 408) et les protéines liées ont été révélées par des anticorps anti-myc et anti-ERBB2, respectivement. Seule l'Erbin était associée à HER 1/2. 2) HER 1/2 et EGF-R ont été coexprimés transitoirement avec l'Erbin dans les cellules COS-1. Après traitement à l'EGF, les cellules ont été lysées et une fraction aliquote d'un extrait protéique a été déposé sur SDSPAGE, soumis à une électrophorèse et transféré sur une membrane de nitrocellulose. Une quantité égale d'Erbin et de récepteur a été trouvée dans les lysats. Les récepteurs ont été immunoprécipités avec un anticorps anti-EGF-R, les protéines liées ont été soumises à un Western Blot et révélées avec des anticorps anti-Erbin et anti-récepteur. Seul HER 1/2 interagissait avec l'Erbin. Comme contrôle, la protéine p52 SHC a été imunoprécipitée de manière croissante avec HER 1/2 et EGF-R après stimulation par EGF. 3) HER 1/2 et EGF-R ont été exprimés transitoirement dans les cellules COS-1. Après 5 minutes de stimulation avec du milieu ne contenant pas de facteurs de croissance ou contenant 200 ng/ml d'EGF, les cellules ont été lysées, et des essais GST "pull down" de précipitation de protéines ont été réalisés en utilisant les domaines GST-SHC PTB ou GST-ERBIN PDZ fixés sur des billes d'agarose. Les protéines précipitées ont été révélées par une analyse en Western Blot en utilisant un anticorps anti-PY (panneaux supérieurs). Après déshybridation des anticorps, les membranes ont été révélées avec des anticorps anti-ERBB2 et anti-EGF-R respectivement (anti-RTK). Tandis que seuls les récepteurs phosphorylés se liaient au domaine SHC PTB, HER 1/2 non phosphorylé interagissait avec le domaine de PDZ de l'Erbin. 4) HER 1/2 contenant une mutation de la valine carboxy-terminale (mutant VA) ou un HER 1/2 "kinase-dead", c'est-à-dire dépourvu d'activité catalytique (mutant KA) ont été exprimés dans des cellules COS-1 et l'interaction avec les protéines de fusion avec GST a été testée comme décrit précédemment. La mutation VA dans HER 1/2 n'a pas affectée la phosphorylation sur résidus tyrosine au récepteur tandis que le mutant KA n'était pas phosphorylé sur tyrosines. Comme attendu, le mutant HER 1/2 KA ne s'est pas lié au domaine SHC PTB (figure 3d). D'un autre côté, le domaine PDZ de l'Erbin précipite de manière efficace HER 1/2 KA mais par HER 1/2 VA. Pris dans leur ensemble, ces résultats montrent que le domaine PDZ de l'Erbin interagit seulement avec le récepteur HER 1/2 non activé. Les auteurs de l'invention se sont donc demandé si les protéines se comportaient de manière identique in vivo, en coexprimant de l'Erbin marquée par myc avec HER 1/2 dans les cellules COS. Il a été trouvé que le pool de HER 1/2 associé avec l'Erbin n'était pas phosphorylé au site de la tyrosine après stimulation d'EGF. En revanche, les protéines SHC interagissaient avec le récepteur phosphorylé. L'Erbin est un substrat pour la kinase ERBB2 et aucune phosphorylation de l'Erbin n'a été trouvée lors de l'expression du récepteur HER 1/2 KA. Ces données montrent que l'Erbin interagit avec HER 1/2 non phosphorylé sur la tyrosine et identifient l'Erbin comme un substrat de la kinase ERBB2. Comme un site de liaison SHC PTB a été trouvé à l'extrémité Cterminale de ERBB2, deux résidus en amont du site de liaison au domaine PDZ (Borg et al, 1978), le recrutement des protéines SHC à ce site, après stimulation par EGF, pourrait empêcher la fixation du domaine PDZ de l'Erbin. La phosphorylation de la tyrosine en elle-même n'est pas suffisante pour altérer l'interaction du domaine HER 1/2 PDZ puisque le peptide phosphorylé au niveau de la tyrosine inhibe cette interaction aussi efficacement qu'un peptide non phosphorylé. L'interaction du domaine PDZ est donc susceptible d'être inhibé par compétition avec des modules protéiques de la machinerie de la signalisation. EXEMPLE 4 : La localisation basolatérale de ERBB2 dans les cellules épithéliales est dépendante du site d'interaction avec l'Erbin Afin d'étudier plus finement la localisation sub-cellulaire de ERBB2 et de l'Erbin, les auteurs de l'invention ont utilisé la lignée Caco-2, lignée cellulaire de carcinome de colon humain, exprimant les deux protéines à la fois. Le fractionnement des cellules Caco-2 a montré que l'Erbin était principalement présente dans la fraction membranaire tandis que les protéines SHC étaient prédominantes dans la fraction cytolosique. Une immunocoloration a alors été réalisée sur les cellules Caco-2 polarisées avec un anticorps anti-Erbin purifié. Pour cela, les cellules Caco-2 ont été ensemencées sur des lamelles de verre, fixées, perméabilisées et colorées avec les anticorps primaires indiqués, puis soumises à une coloration avec les anticorps secondaires conjugués à différents fluorochromes selon le protocole ci-après. Immunolocalisation et marquage des surfaces cellulaires Pour les procédures d'immunocoloration, les cellules MDCK ont été cultivées sur les lamelles de verre pendant trois jours après confluence et étaient marquées comme décrit dans Le Bivic et al, 1989 avec un anticorps monoclonal contre EGF-R et un anticorps polyclonal contre gp114 (marqueur apical des cellules MDCK) (Le Bivic et al, 1990). Les cellules Caco-2 ont été cultivées sur des lamelles de verre pendant 10 jours après confluence pour assurer une différenciation complète puis ont été soumises au même traitement que les cellules MDCK. L'anticorps contre Ag525 (marqueur basolatéral des cellules intestinales humaines) a été décrit précédemment (Le Bivic et al, 1988). Des sections congelées (0,5 à 1 m) de colon humain ont été obtenues comme décrit précédemment (Le Bivic et al, 1988). Pour la biotinylation des surfaces cellulaires, les cellules cultivées sur des filtres pendant trois jours après confluence ont été marquées une nuit avec du "35S-promix ready vue" de Amersham (18,5 MBq/ml) sur la face basolatérale. Les cellules ont été marquées avec Sulfo-NHS-LC-biotin (Pierce) pendant une chasse de 90 minutes dans du milieu normal soit sur la face apicale soit sur la face basolatérale et EGF-R ou les chimères ont été immunoprécipitées avec de la streptavidine comme décrit dans Le Bivic et al, 1989. Les échantillons ont été analysés par SDS-PAGE et visualisés par fluorographie. Les autoradiogrammes ont été quantifiés en utilisant Intelligent Quantifier de Biolmage (Ann Arbor, MI). L'Erbin a été trouvée sur la face basolatérale de la membrane plasmique de Caco-2 puisque la co-localisation a été obtenue par co-coloration avec l'anticorps monoclonal 525, marqueur spécifique de l'épithélium basolatéral. En outre, ERBB2 était également basolatéral et colocalisait avec l'Erbin. La coloration de section de colon humain avec l'anticorps anti-Erbin a confirmé la localisation basolatérale de la protéine dans ses tissus. Les auteurs de l'invention ont ensuite produit des cellules MDCK exprimant de manière stable EGF-R, HER 1/2 et HER 1/2. VA. MDCK exprimait de faibles niveaux de récepteurs EGF-R et ERBB2 endogènes contrairement aux populations cellulaires transfectées avec les construits, qui permettaient une expression de EGF-R et HER 1/2 (sauvage et mutant). Des expériences d'immunofluorescence ont été menées avec LA22, qui est un anticorps monoclonal anti-EGF-R humain spécifique. EGF-R et HER 1/2 étaient localisés sur la face basolatérale tandis que la mutation de HER 1/2 (HER 1/2.VA) empêchait la localisation basolatérale de HER 1/2. La biotinylation de la surface cellulaire a été réalisée sur les faces apicales et basolatérales des transfectants MDCK et les quantités de récepteurs ont été quantifiées par autoradiographie. Tandis que EGF-R et HER 1/2 étaient localisés à 82 % du côté basolatéral, le mutant HER 1/2.VA était seulement à 52 % basolatéral. Ainsi, l'élimination du site d'interaction de l'Erbin a conduit à une dépolarisation de ERBB2 dans les cellules épithéliales. EXEMPLE 5 : d'une souris "knock-out" La stratégie consiste à éliminer le premier exon du gène Erbin codant pour les 63 premiers acides aminés de l'Erbin et de le remplacer par une cassette codant pour le gène de résistance de la néomycine. La disparition du codon d'initiation de la traduction et des 62 acides aminés suivants provoque une perte d'expression de la protéine de l'Erbin fonctionnelle. Le vecteur de recombinaison homologue de type pPNT3 substitue des séquences du gène Erbin (exon 1) par une cassette de gène de résistance pour la néomycine. Il comprend : le gène de résistance à la néomycine (néor) muni de deux promoteurs reconnus dans les cellules eucaryotes et procaryotes. La cassette PGK-TK est constituée du promoteur minimal de la phosphoglycérate kinase (PGK) et de séquences codantes de la thymidine kinase du virus Herpes simplex. Le promoteur de la PGK est normalement activé dans les cellules ES et permet d'effectuer une sélection négative au cours de la sélection des clones recombinants. Cette cassette est placée en 5' des régions d'homologie de l'Erbin. Le vecteur de recombinaison est construit à partir de 6 kb de séquence génomique de l'Erbin : 1. 5 kb en amont du 1 er exon (bras 5') et 4.5 kb (bras 3') en aval du 1er exon. Le vecteur de recombinaison final présente les séquences d'ADN suivantes en enfilade : 5' Cassette PGK-TK---- bras 5' erbin--- -gène néor----bras 3' erbin 3'. Après linéarisation du vecteur de recombinaison, celui-ci est transféré par électroporation dans des cellules ES 129 (cellules souches embryonnaires) et les cellules transfectées sont sélectionnées par addition de généticine dans le milieu de culture, en suivant le protocole décrit dans " Gene targeting : a practical approach ", Editions A.L. Joyner 1993 IRL Press. Afin de mettre en évidence les clones dont le génome comporte l'événement de recombinaison homologue, une contre-sélection au ganciclovir est utilisée. Les clones sont vérifiés selon le protocole proposé dans " Gene targeting : a practical approach ", Editions A.L. Joyner 1993 IRL Press, par PCR et Southern blot, et Fiore et al., Int.J.Dev.Biol. 41 : 639-642 (1997). Les clones sélectionnés sont injectés dans des blastocystes de souris C57BL/6 prélevés à 3,5 jours de gestation. Les blastocystes sont réimplantés dans des souris SWISS pseudo-gestantes de 2,5 jours. La mise en évidence des chimères se fait par la couleur de leur pelage (noir et marron pour les chimères). Les mâles chimériques sont croisés avec des femelles C57BL/6 et les queues de nouveau-nés agouti sont prélevés et leur génotype analysé par southern blot pour détecter l'allèle recombiné. Le croisement de souris hétérozygotes entre elles permet d'obtenir les mutants homozygotes pour la mutation (génération F2) (vérification par southern blot). EXEMPLE 6 : Mutagénèse du domaine PDZ de l'Erbin Des mutations ponctuelles effectuées dans le domaine PDZ de l'Erbin ont des effets inverses sur l'interaction avec ERBB2/HER2. Pour montrer l'effet de ces mutations, on peut notamment mettre en #uvre les deux techniques suivantes : précipitation de ERBB2 par des protéines de fusion recombinantes et système à double hybride chez la levure. Des protéines de fusion recombinantes GST-PDZ ERBIN sauvages ou mutées fixées à une matrice solide sont incubées avec un lysat cellulaire contenant ERBB2/HER2. Après deux heures, les billes sont lavées et les complexes résolus par SDS-PAGE. Après transfert, ERBB2 est révélé par un anticorps spécifique (western blot). Pour le système à double hybride chez la levure, l'appât est constitué de LEXA-BD fusionné au peptide ERBB2. La proie est constituée de GAL4-AD fusionné au domaine PDZ de ERBIN sauvage ou muté. Ces deux tests ont donné des résultats identiques : les mutants PDZ YD (de l'histidine 1347 en tyrosine et de la glycine (position 1348) en acide aspartique) et NS (de la thréonine 1316 en asparagine et de l'arginine (position 1317) en sérine) présentent moins d'affinité pour le récepteur ERBB2 et les mutants HL (de l'histidine (position 1347) en leucine) et MI (de la leucine 1291 en méthionine et de la phénylalanine (position 1293) en isoleucine) présentent plus d'affinité pour ERBB2. REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES - Antonarakis S. E., Diagnosis of genetic disorders at the DNA level. N Engl J. Med. 320 :153-163 -Bellis et al., médecine/sciences, 13 :1317-24, (1997). - Benoit et al., PNAS USA, 79,917-921 (1982). - Borg et al (1996), The Phosphotyrosine Interaction Domains of X11and FE65 bind to distinct sites on the YENPTY motif of amyloid precursor protein. Molecular and Cellular Biology 16 : - Borg et al, (1998), Function of PTB domains. Curr. Top. Microbiol. 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Science 275 : 73-77. - Zhang et al, (1996) A yeast three-hybrid-method to clone ternary protein complex components, Analytical Biochemistry, 242,68-72. REVENDICATIONS 1. Polypeptide isolé, dénommé Erbin, comprenant une séquence d'acides aminés choisie parmi SEQ ID n 2 ou n 4, la séquence SEQ ID n 2 délétée des résidus 1212 à 1280, ou la séquence SEQ ID n 2 avec une insertion entre les acides aminés 1211 et 1212 du fragment de séquence SEQ ID n 7. 2. Acide nucléique isolé, comprenant une séquence nucléotidique codant pour un polypeptide selon la revendication 1. 3. Acide nucléique selon la revendication 2 comprenant la séquence choisie parmi SEQ ID n 1, SEQ ID n 3, la séquence SEQ ID n 1 avec un délétion des nucléotides 3957 à 4163, ou la séquence SEQ ID n 1 avec une insertion entre les nucléotides 3956 et 3957 du fragment de séquence SEQ ID n 6. 4. Acide nucléique isolé comprenant une séquence d'acide nucléique isolé choisie parmi la séquence SEQ ID n 5, ou la séquence comprenant les nucléotides 2347 à 2535 sur SEQ ID n 5. 5. Polypeptide isolé, comprenant une séquence choisie parmi : a) - les résidus 1 à 501 de SEQ ID n 2 ; - les résidus 1279 à 1371 de SEQ ID n 2 ; - les résidus 502 à 1278 de SEQ ID n 2 ; - les résidus 914 à 1371 de SEQ ID n 2 ; - les résidus 1212 à 1280 de SEQ ID n 2 ; - les résidus 296 à 334 de SEQ ID n 4 ; b) la séquence SEQ ID n 7 ; c) - la séquence SEQ ID n 2 avec une mutation de l'histidine 1347 en leucine ; la séquence SEQ ID n 2 avec une mutation de la leucine 1291 en méthionine et de la phénylalanine 1293 en isoleucine ; la séquence SEQ ID n 2 avec une mutation de l'histidine 1347 en tyrosine et de la glycine 1348 en acide aspartique ; et la séquence SEQ ID n 2 avec une mutation de la thréonine 1316 en asparagine et de l'arginine 1317 en sérine. 6. Acide nucléique isolé comprenant une séquence nucléotidique codant pour le polypeptide de la revendication 5. 7. Vecteur de clonage et/ou d'expression contenant un acide nucléique selon l'une quelconque des revendications 2,3, 4 ou 6. 8. Cellule hôte transfectée par un vecteur selon la revendication 7. 9. Utilisation d'un acide nucléique selon l'une des revendications 2, 3,4 ou 6 pour l'obtention de sondes ou d'amorces ayant au moins 15 nucléotides, qui hybrident spécifiquement avec la séquence d'acide nucléique des revendications 2,3, 4 ou 6 ou son complémentaire, dans des conditions stringentes d'hybridation. 10. Sonde nucléique dont la séquence est choisie parmi la séquence SEQ ID n 8 ou SEQ ID n 9. 11. Amorce nucléique dont la séquence est choisie parmi la séquence SEQ ID n 10 à SEQ ID n 20. 12. Procédé de production d'un polypeptide recombinant, dans laquelle un vecteur contenant un acide nucléique selon la revendication 2,3, 4 ou 6 est transféré dans une cellule hôte, qui est mise en culture dans des conditions permettant l'expression du polypeptide selon la revendication 1 ou 5, ou d'un polypeptide codé par une séquence d'acide nucléique telle que définie à la revendication 4. 13. Procédé de diagnostic in vitro d'une tumeur ou d'une prédisposition à développer une tumeur, comprenant les étapes consistant à : a1) mettre en présence un échantillon biologique contenant de l'ADN ou de l'ARN avec des oligonucléotides spécifiques permettant l'amplification de tout ou partie du gène de l'Erbin ou de son transcrit, comprenant une séquence telle que définie à l'une des revendications 2,3, 4 ou 6 ; b1) amplifier ledit ADN ou ARN ; c1) détecter les produits d'amplification ; d1) comparer les produits d'amplification obtenus à ceux obtenus avec un échantillon contrôle, et détecter de cette manière une éventuelle anomalie dans ledit gène de l'Erbin ou dans son transcrit, indicatrice d'une prédisposition à développer une tumeur, ou a2) mettre en présence un échantillon biologique contenant de l'ARNm obtenu à partir d'un prélèvement de cellules suspectes chez un patient, avec des oligonucléotides spécifiques permettant l'amplification de tout ou partie du transcrit du gène de l'Erbin, comprenant une séquence telle que définie à la revendication 2,3, 4 ou 6 ; b2) amplifier ledit transcrit ; c2) détecter et quantifier les produits d'amplification ; une modification du taux de transcrit de l'erbin par rapport au contrôle normal étant indicatrice d'une tumeur ou d'une prédisposition à développer une tumeur. 14. Anticorps dirigé contre le polypeptide tel que défini dans la revendication 1 ou 5. 15. Utilisation d'au moins un anticorps selon la revendication 14 pour la détection ou la purification d'un polypeptide tel que défini dans la revendication 1 ou 5 dans un échantillon biologique. 16. Méthode de diagnostic in vitro d'une tumeur ou d'une prédisposition à développer une tumeur, comprenant la mise en contact d'au moins un anticorps dirigé contre le polypeptide tel que défini dans la revendication 1 ou 5 avec un prélèvement biologique obtenu à partir d'un prélèvement de cellules suspectes chez un patient, dans des conditions permettant la formation éventuelle de complexes immunologiques spécifiques entre le polypeptide tel que défini dans la revendication 1 ou 5 et le ou lesdits anticorps et la détection et/ou la quantification des complexes immunologiques spécifiques éventuellement formés. 17. Kit comprenant : - au moins un anticorps selon la revendication 14, éventuellement fixé sur un support ; - des moyens de révélation de la formation de complexes antigènes/anticorps spécifiques entre le polypeptide de la revendication 1 ou 5 et ledit anticorps et/ou des moyens de quantification de ces complexes. 18. Composition pharmaceutique comprenant un acide nucléique selon l'une des revendications 2,3, 4 ou 6, un acide nucléique anti-sens de l'acide nucléique selon l'une des revendications 2,3, 4 ou 6, ou un polypeptide selon la revendication 1 ou 5, en association avec un véhicule pharmaceutiquement acceptable. 19. Utilisation d'un acide nucléique selon la revendication 2,3, 4 ou 6 ou d'un polypeptide selon la revendication 1 ou 5, pour la fabrication d'un médicament destiné au traitement des tumeurs. 20. Procédé d'obtention d'un animal transgénique non humain dans lequel on invalide le gène codant pour le polypeptide tel que défini à la revendication 1. 21. Animal transgénique non humain susceptible d'être obtenu par le procédé de la revendication 20. 22. Méthode de criblage de molécules inhibant ou activant la liaison entre l'Erbin et le récepteur ERBB2, comprenant : - la mise en contact d'une molécule à tester avec (i) un premier partenaire de liaison qui est le récepteur ERBB2/HER-2 ou un fragment de celui-ci capable de fixer le polypeptide de la revendication 1, et (ii) un deuxième partenaire de liaison qui est le polypeptide de la revendication 1 ou un fragment de celui-ci capable de fixer le récepteur ERBB2/HER-2, le(s)dit(s) premier et/ou deuxième partenaire(s) de liaison étant au besoin marqué (s) manière à être détectés, - l'évaluation de l'inhibition ou de l'activation de l'interaction entre lesdits partenaires de liaison par la molécule à tester. 23. Procédé d'identification de mutants de l'Erbin ou de mutants de ERBB2/HER2 qui augmentent ou diminuent l'interaction entre cette protéine et le récepteur ERBB2/HER2, dans lequel : - soit on effectue une mutation sur le polypeptide de la revendication 1 ou 5 et on évalue l'effet de cette mutation sur l'interaction dudit polypeptide avec le récepteur ERBB2/HER2 ; - soit on effectue une mutation sur le récepteur ERBB2/HER2 et on évalue l'effet de cette mutation sur l'interaction dudit récepteur avec le polypeptide de la revendication 1 ou 5.