FR 2772787 A1 19990625 FR 9716726 A 19971224 Promoteur H3C4 de mais associé au premier intron de l'actine de riz, gène chimère le comprenant et plante transformée La présente invention concerne une nouvelle séquence de régulation en 5' permettant l'expression dans les plantes monocotylédones d'une séquence hétérologue à ladite séquence de régulation codant pour une protéine d'intérêt. La présente invention concerne également un gène chimère comprenant ladite séquence de régulation, une séquence hétérologue codant pour une protéine d'intérêt et une séquence de régulation en 3' permettant l'expression de la protéine d'intérêt dans une cellule végétale de plante monocotylédone, ainsi qu'une plante monocotylédone transformée comprenant ledit gène chimère et les moyens nécessaires à la transformation des cellules végétales et des plantes. Différents promoteurs permettant l'expression de séquences codant pour des protéines d'intérêt dans les plantes sont connus, décrits dans la littérature, et ont déjà permis le développement à un stade commercial de plantes modifiées par génie génétique. Il s'agit de séquences promotrices de gènes s'exprimant naturellement dans les plantes en particulier des promoteurs d'origine bactérienne, virale ou végétale tels que, par exemple, celui d'un gène de la petite sous unité de ribulose-bisphosphate carboxylase/oxygénase (US 4,962,028) ou d'un gène de virus de plante tel que, par exemple, celui de la mosaïque du choux fleur (US 5,352,605). Des promoteurs permettant l'expression de gènes hétérologues dans les plantes sont notamment décrits dans les brevets et demandes de brevet suivants: US 5,086l69, EP 0 353 908 US 5,139,954, US 5,378,619, US 5,563,328, US 5,589,583, US 5,633,363, US 5,633,439, US 5,633,440, US 5,633,447, US 5,635,618, US 5,639,948 et US 5,639,952. Toutefois, certains de ces promoteurs, et plus particulièrement les promoteurs d'origine végétale ne sont pas fonctionnels dans les monocotylédones. On connaît par exemple des promoteurs d'histone d'Arabidopsis sp. décrits dans la demande de brevet EP 0 507 698, particulièrement efficaces pour permettre l'expression d'un gène hétérologue dans des plantes dicotylédones comme le tabac, le colza ou le soja, qui ne sont pas fonctionnels dans les monocotylédones comme le maïs. Le promoteur de l'actine de riz est un promoteur connu pour permettre l'expression de gènes hétérologues dans les plantes monocotylédones (US 5,641,876). Toutefois, le problème subsiste d'identifier de nouvelles séquences de régulation en 5' fonctionnelles pour l'expression de séquences hétérologues dans les plantes monocotylédones. La présente invention concerne une nouvelle séquence d'ADN, élément de régulation en 5 permettant l'expression d'un gène hétérologue dans une cellule végétale de plante monocotylédone, la dite séquence d'ADN comprenant dans le sens de la transcription une première séquence d'ADN, fragment fonctionnel de la séquence du promoteur H3C4 de maïs, et une deuxième séquence d'ADN, fragment fonctionnel de la séquence du premier intron de l'actine de riz. La séquence du promoteur H3C4 de maïs est notamment décrite par Brignon & coll. (Plant. Mol. Biol., 22:1007-1015, 1993). I1 s'agit du fragment Alul du promoteur H3C4 de maïs, d'environ I kb, correspondant aux bases -7 à -1029 relatives à 1'ATG de la séquence codant pour l'histone H3C4 de maïs. La séquence du premier intron de l'actinie de riz est notamment décrite dans le brevet US 5,641,876. Par fragment fonctionnel, on entend selon l'invention toute séquence d'ADN issue de la séquence du promoteur H3C4 de mais ou de la séquence du premier intron de l'actine de riz, reproduisant la fonction de la séquence d'où elle est issue. Selon un mode de réalisation de linvention, le fragment fonctionnel de la séquence du promoteur H3C4 de maïs comprend la séquence d'ADN décrite par l'identificateur de séquence nO I (SEQ ID Nô:1) ou une séquence homologue de ladite séquence. De manière préférentielle, le fragment fonctionnel de la séquence du promoteur H3C4 de maïs consiste en la séquence d'ADN décrite par l'identificateur de séquence n" 1. Selon un mode de réalisation de l'invention le fragment fonctionnel du premier intron de l'actine de riz comprend la séquence d'ADN décrite par l'identificateur de séquence n" 2 (SEQ ID NO:2) ou une séquence homologue de ladite séquence. De manière préférentielle, le fragment fonctionnel du premier intron de 1' actine de riz consiste en la séquence d'ADN décrite par l'identificateur de séquence n" 2. La séquence d'ADN, élément de régulation en 5' selon l'invention peut comprendre en outre entre la première et la deuxième séquence d'ADN, des fragments d'ADN neutres, généralement nécessaires à la construction de la séquence selon l'invention. Il s'agit de fragments d'ADN comprenant jusqu'à 30 paires de bases, préférentiellement jusqu'à 20 paires de bases. Par fragments d'ADN neutres, on entend selon l'invention des fragments d'ADN qui ne viennent pas modifier de manière substantielle les fonctions respectives des première et deuxième séquences d'ADN de la séquence selon l'invention. Selon un mode préférentiel de réalisation de l'invention, la séquence d'ADN selon l'invention comprend la séquence d'ADN représentée par l'identificateur de séquence n" 3 (SEQ ID NO:3) ou une séquence homologue de ladite séquence. Plus préférentiellement, la séquence selon l'invention consiste en la séquence d'ADN représentée par l'identificateur de séquence n" 3. Par " homologue", on entend selon l'invention une séquence d'ADN présentant une ou plusieurs modifications de séquence par rapport à la séquence d'ADN de référence décrite par les identificateurs de séquence n" 1, 2 ou 3, et reproduisant la fonction des séquences précitées. Ces modifications peuvent être obtenues selon les techniques usuelles de mutation, ou encore en choisissant les oligonucléotides synthétiques pouvant être employés dans la préparation de ladite séquence par hybridation. De manière avantageuse, le degré d'homologie sera d'au moins 70 % par rapport à la séquence de référence, de préférence d'au moins 80 %, plus préférentiellement d'au moins 90 %. La présente invention concerne également un gène chimère (ou cassette d'expression) comprenant une séquence codante ainsi que des éléments de régulation en position 5' et 3' hétérologues pouvant fonctionner dans les cellules végéales de plantes monocotylédones, dans laquelle les éléments de régulation en 5' comprennent la séquence d'ADN selon l'invention définie ci-dessus. Par "cellule végétale", on entend selon l'invention toute cellule issue d'une plante monocotylédone et pouvant constituer des tissus indifférenciés tels que des cals, des tissus différenciés tels que des embryons, des parties de plantes monocotylédones, des plantes monocotylédones ou des semences. On entend par "plante monocotylédone" selon l'invention, tout organisme multicellulaire différencié capable de photosynthèse, plus particulièrement des plantes de culture destinées ou non à l'alimentation animale ou humaine, comme par exemple le blé, l'orge, l'avoine, le riz, le maïs, le sorgho, la canne à sucre, etc. Selon l'invention, on peut également utiliser, en association avec la séquence de régulation promotrice selon l'invention, d'autres séquences de régulation, qui sont situées entre le promoteur et la séquence codante, telles les séquences codant pour des peptides de transit, soit simples, soit doubles, et dans ce cas éventuellement séparés par une séquence intermédiaire, c'est à dire comprenant, dans le sens de la transcription, une séquence codant pour un peptide de transit d'un gène végétal codant pour une enzyme à localisation plastidiale, une partie de séquence de la partie mature Nterminale d'un gène végétal codant pour une enzyme à localisation plastidiale, puis une séquence codant pour un second peptide de transit d'un gène végétal codant pour une enzyme à localisation plastidiale constituée d'une partie de séquence de la partie mature N-terminale d'un gène végétal codant pour une enzyme à localisation plastidiale, tels que décrit dans la demande EP 0 508 909. Comme peptide de transit, on peut également citer le peptide signal du gène PR-la du tabac décrit par Cornelissen & coll. Comme séquence de régulation terminatrice ou de polyadénylation on peut utiliser toute séquence correspondante d'origine bactérienne comme par exemple le terminateur nos d'Agrobacterium tumefaciens, ou encore d'origine végétale, comme par exemple un terminateur d'histone tel que décrit dans la demande EP 0 633 317. La séquence codante du gène chimère selon l'invention peut comprendre toute séquence codant pour une protéine d'intérêt que l'on souhaite exprimer dans une cellule végétale ou une plante monocotylédone. Il peut s'agir d'un gène codant pour un marqueur de sélection comme d'un gène conférant à la plante monocotylédone transformée de nouvelles propriétés agronomiques, ou d'un gène d'amélioration de la qualité agronomique de la plante monocotylédone transformée. Parmi les gènes codant pour des marqueurs de sélection, on peut citer les gènes de résistance aux antibiotiques, les gènes de tolérance aux herbicides (bialaphos, glyphosate ou isoxazoles), des gènes codant pour des enzymes facilement identifiables comme l'enzyme GUS, des gènes codant pour des pigments ou des enzymes régulant la production de pigments dans les cellules transformées. De tels gènes marqueurs de sélection sont notamment décrits dans les demandes de brevet WO 91/02071 et WO 95/06128. Parmi les gènes conférant de nouvelles propriétés agronomiques aux plantes monocotylédones transformées, on peut citer les gènes conférant une tolérance à certains herbicides, ceux conférant une tolérance à certains insectes ceux conférant une tolérance à certaines maladies, etc. De tels gènes sont notamment décrits dans les demandes de brevet WO 91/02071 et WO 95/06128. Comme séquence de régulation terminatrice ou de polyadénylation, on peut utiliser toute séquence correspondante d'origine bactérienne, comme par exemple le terminateur nos d'Agrobacterium tumefaciens, ou encore d'origine végétale, comme par exemple un terminateur d'histone tel que décrit dans la demande EP 0 633 317. La présente invention est particulièrement appropriée pour l'expression de gènes conférant une tolérance à certains herbicides aux cellules végétales et aux plantes monocotylédones transformées. Parmi les gènes conférant une tolérance à certains herbicides, on peut citer le gène Bar conférant une tolérance au bialaphos, le gène codant pour une EPSPS appropriée conférant une résistance aux herbicides ayant l'EPSPS comme cible comme le glyphosate et ses sels (US 4,535,060, US 4,769,061, US 5,094,945, US 4,940,835, US 5,188,642, US 4,971,908, US 5,145,783, US 5,310,667, US 5,312,910, US 5,627,061, US 5,633,435, FR 2 736 926), le gène codant pour la glyphosate oxydoréductase (US 5,463,175), ou encore un gène codant pour une HPPD conférant une tolérance aux herbicides ayant pour cible l'HPPD comme les isoxazoles, notamment l'isoxafitole (FR 95 06800. FR 95 13570) * les dicétonitriles (EP 496 630, EP 496 631) ou les tricétones, notamment la sulcotrione (EP 625 505, EP 625 508, US 5,506,195). De tels gènes codant pour une HPPD conférant une tolérance aux herbicides ayant pour cible l'HPPD sont décrits dans la demande de brevet WO 96/38567 et dans la demande de brevet non publiée FR 97 14264, déposée le 7 novembre 1997 novembre 1997, dont le contenu est incorporé ici par référence. Parmi les gènes codant pour une EPSPS appropriée conférant une résistance aux herbicides ayant l'EPSPS comme cible, on citera plus particulièrement le gène codant pour une EPSPS végétale, en particulier de maïs, présentant deux mutations 102 et 106, décrit dans la demande de brevet FR 2 736 926, dénommé ci-dessous EPSPS double mutant, ou encore le gène codant pour une EPSPS isolée d'Agrobacterium décrit par les séquences ID 2 et ID 3 du brevet US 5,633,435, dénommé ci-dessous CP4. Parmi les gènes codant pour une HPPD conférant une tolérance aux herbicides ayant pour cible 1'HPPD, on citera plus particulièrement l'HPPD de Pseudomonas et celle d'Arabidopsis, décrites dans la demande de brevet WO 96/38567. Dans les cas des gènes codant pour EPSPS ou HPPD, et plus particulièrement pour les gènes ci-dessus, la séquence codant pour ces enzymes est avantageusement précédée par une séquence codant pour un peptide de transit, en particulier pour le peptide de transit dit peptide de transit optimisé décrit dans les brevets US 5,510,471 ou US 5,633,448 dont le contenu est incorporé ici par référence. Selon un mode préférentiel de réalisation de l'invention, le gène chimère selon l'invention comprend dans le sens de la transcription, une séquence de régulation en 5 selon l'invention telle que définie ci-dessus, liée de manière fonctionnelle à une séquence codant pour une protéine de fusion peptide de transit/protéine d'intérêt, lié de manière fonctionnelle à une séquence de régulation en 3', les différents éléments du gène chimère étant définis ci-dessus, la protéine d'intérêt étant de préférence une enzyme conférant une tolérance à certains herbicide, plus préférentiellement les enzymes de type EPSPS ou HPPD définis ci-dessus. Des séquences codant pour des protéines de fusion peptide de transit/EPSPS, et plus particulièrement OTP/EPSPS double mutant sont notamment décrites dans les brevets US 4,940,835, US 5,633,448 et FR 2 736 926. Pour la protéine de fusion OTP/CP4, l'homme du métier saura construire le gène correspondant en prenant la séquence codant pour le CP4 décrite dans le brevet US 5,633,435 et en suivant le mode opératoire décrit dans les brevets US 4,940,835, US 5,633,448 et FR 2 736 926 ou dans les exemples ci-dessous. La présente invention concerne également un gène chimère comprenant dans le sens de la transcription, une séquence de régulation en 5' appropriée pour assurer l'expression d'un gène hétérologue dans une cellule végétale liée de manière fonctionnelle à une séquence codant pour une protéine de fusion OTP/CP4, liée de manière fonctionnelle à une séquence de régulation en 3'. Les éléments de régulation en 5 comprennent non seulement les éléments de régulation en 5 selon l'invention défini ci-dessus mais également tous les éléments de régulation appropriés pour permettre l'expression de gènes hétérologues dans les cellules végétales de plantes monocotylédones ou dicotylédones connus de l'homme du métier ou à venir, et notamment ceux décrits plus haut. Les séquences codant pour des protéines de fusion peptide de transit/HPPD sont décrites dans la demande de brevet WO 96/38567. La présente invention concerne également un vecteur de clonage ou d'expression pour la transformation d'une cellule végétale ou d'une plante monocotylédone, les cellules végétales et plantes transformées contenant au moins un gène chimère tel que défini ci-dessus. Le vecteur selon l'invention comprend outre le gène chimère ci-dessus, au moins une origine de réplication. Ce vecteur peut être constitué par un plasmide, un cosmide, un bactériophage ou un virus, transformés par l'introduction du gène chimère selon l'invention. De tels vecteurs de transformation de cellules végétales et de plantes monocotylédones sont bien connus de l'homme du métier et largement décrits dans la littérature. De manière préférentielle, le vecteur de transformation des cellules végétales ou des plantes selon l'invention est un plasmide. L'invention a encore pour objet un procédé de transformation des cellules végétales par intégration d'au moins un fragment d'acide nucléique ou un gène chimère tels que définis ci-dessus, transformation qui peut être obtenue par tout moyen connu approprié avec le vecteur selon l'invention. Une série de méthodes consiste à bombarder des cellules ou des tissus cellulaires avec des particules auxquelles sont accrochées les séquences d'ADN. Une autre série de méthodes consiste à utiliser comme moyen de transfert dans la plante un gène chimère inséré dans un plasmide Ti d'Agrobacterium tumefaciens ou Ri d'Agrobacterium rhizogenes. D'autres méthodes peuvent être utilisées telles que la micro-injection ou l'électroporation, ou encore la précipitation directe au moyen de PEG. L'homme du métier fera le choix de la méthode appropriée en fonction de la nature de la cellule végétale ou de la plante. La présente invention a encore pour objet les cellules végétales ou plantes, transformées et contenant au moins un gène chimère selon l'invention défini ci-dessus. La présente invention a encore pour objet les plantes contenant des cellules transformées, en particulier les plantes régénérées à partir des cellules transformées. La régénération est obtenue par tout procédé approprié qui dépende de la nature de l'espèce. Pour les procédés de transformation des cellules végétales et de régénération des plantes monocotylédones, on citera notamment Gordon-Kamm, W.J. et al. (Transformation of Maize Cells and Regeneration of Fertile Transgenic Plants, The Plant Cell, vol. 2, 603-618, July 1990), dont le contenu est incorporé ici par référence, et les brevets et demandes de brevet suivants: US 5,177,010, US 5,187,073, EP 267,159, EP 604 662, EP 672 752, US 4,945,050, US 5,036,006, US 5,100,792, US 5,371,014, US 5,478,744, US 5,484,956, US 5,508,468, US 5,538,877, US 5,554,798, US 5,489,520, US 5,510,318, US 5,204,253, US 5,405,765, EP 442 174, EP 486 233, EP 486 234, EP 539 563, EP 674 725, WO 91/02071 et WO 95/06128. La présente invention concerne également les plantes transformées issues de la culture et/ou du croisement des plantes régénérées ci-dessus, ainsi que les graines de plantes transformées. Dans le cas où le gène chimère selon l'invention comprend une séquence codant pour une enzyme conférant une tolérance à un herbicide particulier, la présente invention concerne également un procédé de contrôle des mauvaises herbes dans une surface d'un champ comprenant des graines ou des plantes transformées avec le dit gène chimère selon l'invention, lequel procédé consiste à appliquer dans la dite surface du champ une dose dudit herbicide particulier toxique pour les dites mauvaises herbes, sans toutefois affecter de manière substantielle les graines ou plantes transformée avec le dit gène chimère selon l'invention comprenant la dite séquence codant pour une enzyme conférant une tolérance au dit herbicide particulier. La présente invention concerne également un procédé de culture des plantes transformées selon l'invention avec un gène chimère selon l'invention comprenant une séquence codant pour une enzyme conférant une tolérance à un herbicide particulier défini ci-dessus, lequel procédé consiste à planter les graines des dites plantes transformées dans une surface d'un champ approprié pour la culture des dites plantes, à appliquer sur la dite surface du dit champ une dose toxique pour les mauvaises herbes du dit herbicide particulier en cas de présence de mauvaises herbes, sans affecter de manière substantielle les dites graines ou les dites plantes transformées, puis à récolter les plantes cultivées lorsqu'elles arrivent à la maturité souhaitée et éventuellement à séparer les graines des plantes récoltées. Dans les deux procédés ci-dessus, I'application de l'herbicide particulier peut être faite selon l'invention, tant en présemis, en prélevée qu'en postlevée de la culture. De manière avantageuse, l'enzyme de tolérance à un herbicide est une EPSPS appropriée, et dans ce cas l'herbicide est le glyphosate ou ses sels, ou l'enzyme est une HPPD et l'herbicide est choisi parmi les isoxazoles, notamment l'isoxafutole, les dicétonitriles ou les tricétones, notamment la sulcotrione Les exemples ci-après permettent d'illustrer l'invention sans chercher à en limiter la portée. 1. Construction d'un gène chimère avec une séquence codant pour une HPPD: Les plasmides ci-dessous sont préparer de manière à créer une cassette d'expression comprenant un promoteur histone H3C4 de maïs associé avec la région 5 non traduite du premier intron du gène d'actine de riz (Actl) décrit par Mc Elroy D. et al. (Plant Molecular Biology 15: 257-268 (1990)) conduisant l'expression du gène OTP HPPD de Pseudomonasfluorescens. nRPA-RD-195 Le plasmide pRPA-RD-195 est un dérivé du plasmide pUC-19 qui contient un site de clonage multiple modifié. Les oligonucléotides complémentaires 1 et 2 cidessous sont hybridés à 65"C pendant 5 minutes, suivi d'un refroidissement lent jusqu'à 30"C pendant 30 minutes.: Oligo 4 : AGGGCCCCCT AGGGTTTAAA CGGCCAGTCA GGCCGAATTC GAGCTCGGTA CCCGGGGATC CTCTAGAGTC GACCTGCAGG CATGC 3' Oliao 5: 5'CCCTGAACCA GGCTCGAGGG CGCGCCTTAA TTAAAAGCTT GCATGCCTGC AGGTCGACTC TAGAGG 3' Les oligonucléotides hybridés sont rendus double brins en employant le fragment klenow de la DNA polymérase 1 de E. coli pour étendre les extrémités 3' de chaque oligo en employant les conditions standard recommandées par le fabriquant (New England Biolabs). L'oligo double brins obtenu est ensuite lié dans le plasmide pUC-19 préalablement digéré avec les enzymes de restriction EcoRI et Hindlll et rendus bords franc en employant le fragment klenow de la DNA polymérase lde E. coli. On obtient ainsi un vecteur de clonage comprenant un site de clonage multiple de manière à faciliter l'introduction de cassettes d'expression dans un vecteur plasmide d'Agrobacterium tumefaciens (figure 1). pRPA-RD-2010: Insertion de la séquence "promoteur H4A748-OTP-gène d'EPSPS double mutant" de pRPA-RD-159 dans le plasmide pRPA-RD-195. Le plasmide pRPA-RD-195 est digéré avec l'enzyme de restriction iSacl et déphosphorylé avec de la phosphatase alcaline des intestins de veau (New England Biolabs). Le plasmide pRPA-RD-173 (décrit dans le brevet FR 2 736 926) est digéré avec l'enzyme de restriction Sacl et le fragment d'ADN contenant le gène d'EPSPS est purifié est lié dans le plasmide pRPA-RD-195 préparé précédemment. Le colone obtenu contient plusieurs sites de restriction uniques encadrant le gène d'EPSPS double mutant. pRPA-RD-1002 Création d'une cassette d'expression OTP-HPPD pour usage dans les monocotylédones. Le plasmide pRP-P contients le peptide de transit optimisé (OTP) lié à l'HPPD de Pseudomonas fluorescens suivi par le site de polyadénylation de la nopaline synthase tel que décrit dans la demande de brevet WO 96/38567. Les éléments du plasmide pRP-P sont les suivants: - le peptide de transit optimisé (OTP) décrit dans les brevets US 5,510,471 et US 5633,448; cet OTP étant constitué des 171 pb du peptide de transit de la petite sous unité de la Ribulose 1,5 bisphosphate carboxylase /oxygénase d'Helianthus annuus (Waksman G. et al 1987. Nucleics acids Res. 15: 7181) suivies des 66 pb de la partie mature de la petite sous unité de la Ribulose 1,5 bisphosphate carboxylase /oxygénase de Zea mays (Lebrun et al 1987. Nucleics acids Res. 15: 4360) elles mêmes suivies des 150 pb du peptide de transit de la petite sous unité de la Ribulose 1,5 bisphosphate carboxylase/ oxygénase de Zea mays (Lebrun et al 1987. Nucleics acids Res. 15: 4360); L'ensemble fait donc 387 pb; - la région codante de l'HPPD de Pseudomonas fluorescens décrite dans la demande de brevet WO 96/38567; et - le terminateur du gène de la nopaline synthase (nos) (zone de polyadenylation du gène nos isolé de pTi 37, 250 pb ; Bevan M. et al. Nucleics Acids Res. 11: 369-385). Le plasmide pRP-P est digéré avec l'enzyme de restriction BstEII, traité avec le fragment klenow de la DNA polymerase I de E. coli pour rendre le fragment à bords francs, et suivi par une digestion avec l'enzyme de restriction Nicol. Le fragment d'ADN obtenu contenant la région codante OTP-HPPD d'environ 1,5 kb est ensuite purifié. Le plasmide pRPA-RD-2010 obtenu précédemment est digéré avec l'enzyme de restriction BlpI, traité avec le fragment klenow de la DNA polymérase I de E. coli pour obtenir un fragment à bords francs, puis digéré avec l'enzyme de restriction Nicol. Le fragment d'ADN obtenu comprenant les séquences du vecteur plasmide, le promoteur H3C4 associé avec la région 5'non traduite et le premier intron du gène d'actine de riz est purifié et le site de polyadénylation NOS est purifié. Les deux fragments d'ADN purifiés sont liés de manière à créer une cassette d'expression OTP-HPPD comprenant le promoteur d'histone H3C4 de maïs (Brignon & coll) associé avec la région non traduite en 5' et le premier intron du gène d'actine de riz (acte) (Actl 5. UTR + intron 1) pour contrôler l'expression de la région codante OTP-HPPD incorporant le site de polyadénylation NOS (NOS polyA) (figure 2). 2. Construction d'un gène chimère avec une séquence codant pour l'EPSPS double mutant: pRPA-RD-1010: Création d'une cassette d'expression OTP-EPSPS double mutant pour usage dans les monocotylédones. Le plasmide pRPA-RD-109 contient le gène de B-glucuronidase(GUS) de E. coli contrôlé par le promoteur d'histone H3C4 de maïs (Brignon & coll) associé avec la région non traduite en 5' et le premier intron du gène d'actine de riz (acte) décrit par Mc Elroy D. et al. (Plant Molecular Biology 15: 257-268, 1990). Un diagramme de ce plasmide est représenté sur la figure 3. Le plasmide pRPA-RD-109 est digéré avec les enzymes de restriction NcoI et EcoRI, et le grand fragment d'ADN (environ 5 kb) contenant la séquence vecteur, le gène GUS et le site de polyadénylation NOS est purifié. Le plasmide pRPA-RD-2010 est digéré avec les enzymes de restriction Nicol et EcoRI, et le fragment d'ADN (environ 1.6 kb) contenant le promoteur H3C4 associé avec la région non traduite en 5' et le premier intron du gène d'actine de riz (acte) est purifié. Les deux fragments d'ADN purifiés sont liés pour créer une cassette d'expression OTP-EPSPS double mutant comprenant le promoteur d'histone H3C4 de mais (Brignon & coll) associé avec la région non traduite en 5' et le premier intron du gène d'actine de riz (Actl) pour contrôler l'expression de la région codante OTP-EPSPS double mutant incorporant le site de polyadénylation NOS. 3. construction d'un gène chimère de tolérance à la phosphinothricine (gène bar): La phosphinothricine acetyl tranferase (PAT) codée par le gène bar est une enzyme qui inactive un herbicide, la phosphinothricine (PPT). La PPT inhibe la synthèse de glutamine et provoqie une accumulation rapide d'ammoniaque dans les cellus conduisant à leur mort (Tachibana et al. 1986). Le plasmide utilisé pour introduire la tolérance à la phosphinothricine comme agent de sélection est obtenu par insertion du gène chimère pDM 302 dans le vecteur pSP72 de 2462 pb, commercialisé par Promega Corp. (Genbank/ DDBJ database accession number X65332) et contenant le gène de résistance à l'amplicilline. Le plasmide pDM 302 de 4700pb a été décrit par Cao, J., et al. Plant Cell Report 11: 586-591(1992). Les différents éléments de ce plasmide sont: - le promoteur du gène actine de riz décrit par Mc Elroy D. et al. Plant Molecular Biology 15: 257-268 (1990) constitué de 840 pb; - le premier exon du gène actine de riz constitué de 80 pb; - le premier intron du gène actine de riz constitué de 450 pb;- la région codante du gène bar de 600 pb excisée du plasmide pIJ41404 décrit par White J. et al. Nuc. Acids res. 18 : 1862 (1990); - le terminateur du gène de la nopaline synthase (nos) (z de côtés. Ces barquettes sont alors arrosées par de l'eau et maintenant hydratées par apport d'une solution nutritive constituée de 5ml de Quinoligo (La Quinoléine) par litre d'eau. Vingt graines de maïs sont placées sur les barquettes, qui sont alors traitées à l'isoxaflutole par pulvérisation à raison de 1 00g de matière active par hectare (300 g de matière active par barquette). Les barquettes sont ensuite placées en culture en serre. La phytotoxicité est déterminée 14 après la plantation. Selon les conditions ci-dessus, les plantes non transformées présentent 100 % de phytotoxicité alors que les plantes transformées ne présentent pas de phytotoxicité. Une étude comparative a été réalisée avec 20 lignées de maïs transformé selon l'invention et 20 lignées de maïs transformé avec un gène correspondant pour lequel la séquence codant pour le premier intron de l'actine de riz a été remplacée par la séquence codant pour l'intron adh I de maïs. Après traitement par pulvérisation de très fortes doses d'isoxafutole à raison de 200 g de matière active par hectare (600 ug de matière active par barquette), on obtient les résultats suivants Intron actine de riz selon l'invention : 8/20 lignées sont tolérantes Intron adh I de maïs : 3/20 lignées sont tolérantes Les résultats ci-dessus démontrent que l'association du promoteur H3C4 de maïs avec le premier intron de l'actine de riz selon l'invention améliore de manière substantielle l'expression d'une protéine d'intérêt dans les plantes monocotylédones transformées par rapport à l'association du même promoteur H3C4 de maïs avec un autre intron de l'état de la technique. LISTE DE SEQUENCES (iii) NOMBRE DE SEQUENCES: 5 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 1: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 1021 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (ix) CARACTERISTIQUE: (A) NOM/CLE: promoteur H3C4 de maïs (B) EMPLACEMENT:1..1021 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 1: CTTATGTGCA CCATTTACTG TAATGCATAA TCATTTAATT GAATAGCAAA CTTTTCTATT 60 ACTTCTTTAC TAACATAATT CTTGGTTTTA AAATTCAGTC CTCAACATTC ATTGCTCAAG 120 TATAAGTTGA GACTGTCARA ATTTACTATT TTATTTCTTC ATATTTTTTT TCCTTATACA 180 CATTTTGGGC CTTACAATCC ATCATCTATA TCCATCCTTT CCGGTGTCCT CTAAAAGATT 240 CCATCCTCTG AATCTTATTC CTCTCCAATA ACGTTCTCTA AATCAGGTCT CTATAAGCAA 300 TACCTATATT AGAGACATTT TTTATTTTTT GTACATACAT ATTTGTCATA CTCTCAAATG 360 CATTATACAT ATTTAGTTTT ACTAAACCGA TTATTTAAAG TATTCAAACG GATGAAGAAC 420 TGTTTAGATA AATTCTATAT ATAGAGAATC CAGTAGCGTT CTCTAAATTT AGATGATTAT 480 TTAGAGGACG CTGTTAGAAA ACGTAAAAAA TTCTTTGATT ATTTATATTT AGGGTAGAGT 540 AGCCTTTATG CTTTATAGAT CTTTGGTGGA CCCAGCCTTA TACCGGTTAT TTTCGCGATT 600 GCGCCTCTCA TTTTCACTCC AGCGCCCCAC ATTTTCACGT TTTCACCGAA GCGCCCAGCC 660 TGCCTAACCA ACAAATTGGT ACGGTGGCGC GGTTTTCAAA AGAAGTCGGA AACCATCTGC 720 ACCCACCGAC TAGTAGGCCC TCGGATCCTC CCTGATTAAG TCCTAGCCAA TAGGAGCCCA 780 GAACCACCCA TCACGCGGAT CGTCCCTACG CTTCCACCTC ATCGGCGCCG TCCATCTCCA 840 TCCAACACCT ATTCCGTTAC CTTGCCCATC CTCCGAAAAA ATTCTCGGCT CGCGCTCCGC 900 ACCTACTACA AATACCCATC CCATCACGAC GCATCGCATC ACTGCCAAAT CCCCCAGAAA 960 ATCAACACCT CCCAATTCCA CGCTGCCACC AACTCGCCGT CCTCCGCGCC AAGCACCAAA 1020 G 1021 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 2: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 454 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (ix) CARACTERISTIQUE: (A) NOM/CLE: intron 1 de l'actine de riz (B) EMPLACEMENT:1..454 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 2: GTAACCACCC CGCCCCTCTC CTCTTTCTTT CTCCGTTTTT TTTTTCGTCT CGGTCTCGAT 60 CTTTGGCCTT GGTAGTTTGG GTGGGCGAGA GCGGCTTCGT CGCCCAGATC GGTGCGCGGG 120 AGGGGCGGGA TCTCGCGGCT GGCGTCTCCG GGCGTGAGTC GGCCCGGATC CTCGCGGGGA 180 ATGGGGCTCT CGGATGTAGA TCTGATCCGC CGTTGTTGGG GGAGATGATG GGGCGTTTAA 240 AATTTCGCCA TGCTAAACAA GATCAGGAAG AGGGGAAAAG GGCACTATGG TTTATATTTT 300 TATATATTTC TGCTGCTGCT CGTCAGGCTT AGATGTGCTA GATCTTTCTT TCTTCTTTTT 360 GTGGGTAGAA TTTGAATCCC TCAGCATTGT TCATCGGTAG TTTTTCTTTT CATGATTTGT 420 GACAAATGCA GCCTCGTGCG GAGCTTTTTT GTAG 454 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 3: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 1565 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (ix) CARACTERISTIQUE: (A) NOM/CLE: promoteur H3C4 du mais (B) EMPLACEMENT:27..1047 (ix) CARACTERISTIQUE: (A) NOM/CLE: intron 1 de l'actine de riz (B) EMPLACEMENT:1102..1555 (ix) CARACTERISTIQUE: (A) NOM/CLE: site de clonage synthétique (B) EMPLACEMENT:1..26 (ix) CARACTERISTIQUE: (A) NOM/CLE: séquence de liaison synthétique (B) EMPLACEMENT:1048. 1069 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 3: GAATTCCTGC AGGTCGACGG ATCCCCCTTA TGTGCACCAT TTACTGTAAT GCATAATCAT 60 TTAATTGAAT AGCAAACTTT TCTATTACTT CTTTACTAAC ATAATTCTTG GTTTTAAAAT 120 TCAGTCCTCA ACATTCATTG CTCAAGTATA AGTTGAGACT GTCAAAATTT ACTATTTTAT 180 TTCTTCATAT TTTTTTTCCT TATACACATT TTGGGCCTTA CAATCCATCA TCTATATCCA 240 TCCTTTCCGG TGTCCTCTAA AAGATTCCAT CCTCTGAATC TTATTCCTCT CCAATAACGT 300 TCTCTAAATC AGGTCTCTAT AAGCAATACC TATATTAGAG ACATTTTTTA TTTTTTGTAC 360 ATACATATTT GTCATACTCT CAAATGCATT ATACATATTT AGTTTTACTA AACCGATTAT 420 TTAAAGTATT CAAACGGATG AAGAACTGTT TAGATAAATT CTATATATAG AGAATCCAGT 480 AGCGTTCTCT AAATTTAGAT GATTATTTAG AGGACGCTGT TAGAAAACGT AAAAAATTCT 540 TTGATTATTT ATATTTAGGG TAGAGTAGCC TTTATGCTTT ATAGATCTTT GGTGGACCCA 600 GCCTTATACC GGTTATTTTC GCGATTGCGC CTCTCATTTT CACTCCAGCG CCCCACATTT 660 TCACGTTTTC ACCGAAGCGC CCAGCCTGCC TAACCAACAA ATTGGTACGG TGGCGCGGTT 720 TTCAAAAGAA GTCGGAAACC ATCTGCACCC ACCGACTAGT AGGCCCTCGG ATCCTCCCTG 780 ATTAAGTCCT AGCCAATAGG AGCCCAGAAC CACCCATCAC GCGGATCGTC CCTACGCTTC 840 CACCTCATCG GCGCCGTCCA TCTCCATCCA ACACCTATTC CGTTACCTTG CCCATCCTCC 900 GAAAAAATTC TCGGCTCGCG CTCCGCACCT ACTACAAATA CCCATCCCAT CACGACGCAT 960 CGCATCACTG CCAAATCCCC CAGAAAATCA ACACCTCCCA ATTCCACGCT GCCACCAACT 1020 CGCCGTCCTC CGCGCCAAGC ACCAAAGGAA TTGGCCGCCA CCGCGGTGGA GCTCCTCCCC 1080 CCTCCCCCTC CGCCGCCGCC GGTAACCACC CCGCCCCTCT CCTCTTTCTT TCTCCGTTTT 1140 TTTTTTCGTC TCGGTCTCGA TCTTTGGCCT TGGTAGTTTG GGTGGGCGAG AGCGGCTTCG 1200 TCGCCCAGAT CGGTGCGCGG GAGGGGCGGG ATCTCGCGGC TGGCGTCTCC GGGCGTGAGT 1260 CGGCCCGGAT CCTCGCGGGG AATGGGGCTC TCGGATGTAG ATCTGATCCG CCGTTGTTGG 1320 GGGAGATGAT GGGGCGTTTA AAATTTCGCC ATGCTAAACA AGATCAGGAA GAGGGGAAAA 1380 GGGCACTATG GTTTATATTT TTATATATTT CTGCTGCTGC TCGTCAGGCT TAGATGTGCT 1440 AGATCTTTCT TTCTTCTTTT TGTGGGTAGA ATTTGAATCC CTCAGCATTG TTCATCGGTA 1500 GTTTTTCTTT TCATGATTTG TGACAAATGC AGCCTCGTGC GGAGCTTTTT TGTAGGTAGA 1560 CC ATG 1565 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 4: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 85 paires de bases (B) TYPE: oligonucléotide synthétique (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 4: AGGGCCCCCT AGGGTTTAAA CGGCCAGTCA GGCCGAATTC GAGCTCGGTA CCCGGGGATC 60 CTCTAGAGTC GACCTGCAGG CATGC 85 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 5: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 66 paires de bases (B) TYPE: oligonucléotide synthétique (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 5: CCCTGAACCA GGCTCGAGGG CGCGCCTTAA TTAAAAGCTT GCATGCCTGC AGGTCGACTC 60 TAGAGG 66 REVENDICATIONS 1. Séquence d'ADN, élément de régulation en 5'permettant I'expression d'un gène hétérologue dans une cellule végétale de plante monocotylédone, caractérisée en ce qu'elle comprend dans le sens de la transcription une première séquence d'ADN, fragment fonctionnel de la séquence du promoteur H3C4 de maïs, et une deuxième séquence d'ADN, fragment fonctionnel de la séquence du premier intron de l'actine de riz. 2. Séquence selon la revendication 1, caractérisé en ce que la séquence du promoteur H3C4 de maïs est le fragment Alul du promoteur H3C4 de mais. 3. Séquence selon la revendication 1, caractérisée en ce que le fragment fonctionnel de la séquence du promoteur H3C4 de maïs comprend la séquence d'ADN décrite par l'identificateur de séquence n" 1 (SEQ ID NO: 1) ou une séquence homologue de ladite séquence. 4. Séquence selon la revendication 3, caractérisée en ce que le fragment fonctionnel de la séquence du promoteur H3C4 de maïs consiste en la séquence d'ADN décrite par l'identificateur de séquence n" 1. 5. Séquence selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisée en ce que le fragment fonctionnel du premier intron de l'actine de riz comprend la séquence d'ADN décrite par l'identificateur de séquence n" 2 (SEQ ID NO:2) ou une séquence homologue de ladite séquence. 6. Séquence selon la revendication 5, caractérisée en ce que le fragment fonctionnel du premier intron de l'actine de riz consiste en la séquence d'ADN décrite par l'identificateur de séquence n" 2. 7. Séquence selon l'une des revendication 1 à 6, caractérisée en ce qu'elle comprend entre la première et la deuxième séquence d'ADN, un fragment d'ADN neutre. 8. Séquence d'ADN élément de régulation en 5' permettant l'expression d'un gène hétérologue dans une cellule végétale de plante monocotylédone, caractérisée en ce qu'elle comprend la séquence d'ADN représentée par l'identificateur de séquence n" 3 (SEQ ID NO:3) ou une séquence homologue de ladite séquence. 9. Séquence d'ADN selon la revendication 8, caractérisée en ce qu'elle consiste en la séquence d'ADN représentée par l'identificateur de séquence ne 3. 10. Gène chimère comprenant une séquence codante ainsi que des éléments de régulation en position 5' et 3' hétérologues pouvant fonctionner dans les cellules végéales de plantes monocotylédones ou les plantes monocotylédones, caractérisé en ce que les éléments de régulation en 5' comprennent la séquence d'ADN selon l'une des revendications 1 à 9. 11. Gène chimère selon la revendication 10. caractérisé en ce que la séquence codante est choisi parmi un gène codant pour un marqueur de sélection, un gène conférant à la plante monocotylédone transformée de nouvelles propriétés agronomiques, et un gène d'amélioration de la qualité agronomique de la plante monocotylédone transformée. 12. Gène chimère selon la revendication 11, caractérisé en ce que le gène conférant de nouvelles propriétés agronomiques aux plantes monocotylédones transformées, est choisi parmi un gène conférant une tolérance à certains herbicides, un gène conférant une tolérance à certains insectes et un gène conférant une tolérance à certaines maladies. 13. Gène chimère selon la revendication 12, caractérisé en ce que le gène conférant une tolérance à certains herbicides, est choisi parmi le gène Bar conférant une tolérance au bialaphos, un gène codant pour une EPSPS appropriée conférant une résistance aux herbicides ayant l'EPSPS comme cible, le gène codant pour la glyphosate oxydoréductase et un gène codant pour une HPPD conférant une tolérance aux herbicides ayant pour cible 1'HPPD. 14. Gène chimère selon la revendication 13, caractérisé en ce que le gène conférant une tolérance à certains herbicides est choisi parmi un gène codant pour une EPSPS et un gène codant pour une HPPD. 15. Gène chimère selon la revendication 14, caractérisé en ce que le gène codant pour une EPSPS est choisi parmi 1'EPSPS double mutant et le CP4. 16. Gène chimère selon l'une des revendications 14 ou 15, caractérisé en ce que la séquence codant pour une EPSPS ou une HPPD est précédée par une séquence codant pour un peptide de transit. 17. Gène chimère selon la revendication 16, caractérisé en ce que le peptide de transit est le peptide de transit optimisé. 18. Gène chimère caractérisé en ce qu'il comprend dans le sens de la transcription, une séquence de régulation en 5' définie selon l'une des revendications 1 à 9, liée de manière fonctionnelle à une séquence codant pour une protéine de fusion peptide de transit/protéine d'intérêt, liée de manière fonctionnelle à une séquence de régulation en 3'. 19. Gène chimère selon la revendication 16, caractérisé en ce que la protéine d'intérêt est une enzyme conférant une tolérance à certains herbicide selon l'une des revendications 13 à 15. 20. Gène chimère selon la revendication 18, caractérisé en ce que la séquence codant pour une protéine de fusion peptide de transit/protéine d'intérêt est choisi parmi la séquence codant pour la protéine de fusion OTP/EPSPS double mutant et la séquence codant pour la protéine de fusion OTP/CP4. 21. Séquence d'ADN codant pour une protéine de fusion OTP/CP4. 22. Protéine de fusion OTP/CP4. 23. Gène chimère caractérisé en ce qu'il comprend dans le sens de la transcription, une séquence de régulation en 5' appropriée pour assurer l'expression d'une séquence codante dans les plantes, liée de manière fonctionnelle à une séquence codant pour une protéine de fusion OTP/CP4, liée de manière fonctionnelle à une séquence de régulation en 3'. 24. Vecteur de clonage ou d'expression pour la transformation d'une cellule végétale ou d'une plante, caractérisé en ce qu'il comprend outre le gène chimère selon l'une des revendications 10 à 20 ou 23, au moins une origine de réplication. 25. Vecteur selon la revendication 24, caractérisé en ce qu'il est un plasmide. 26. Procédé de transformation des cellules végétales caractérisé en ce que l'on intègre un gène chimère selon l'une des revendications 10 à 20 ou 23. 27. Cellule végétale caractérisée en ce qu'elle contient au moins un gène chimère selon l'une des revendications 10 à 20 ou 23. 28. Plante transformée, caractérisée en ce qu'elle comprend des cellules selon la revendication 27. 29. Plante transformée selon la revendication 28, caractérisée en ce qu'elle est régénérée à partir des cellules selon la revendication 27. 30. Plante transformée selon la revendication 28, caractérisée en ce qu'elle est issue de la culture et/ou du croisement d'une plante transformée selon l'une des revendications 28 ou 29. 31. Graine de plante transformée selon l'une des revendications 28 à 30. 32. Procédé de contrôle des mauvaises herbes dans une surface d'un champ comprenant des graines ou des plantes transformées avec un gène chimère comprenant une séquence codant pour une enzyme conférant une tolérance à un herbicide particulier, lequel procédé consiste à appliquer dans la dite surface du champ une dose dudit herbicide particulier toxique pour les dites mauvaises herbes, sans toutefois affecter de manière substantielle les graines ou plantes transformée avec le dit gène chimère, caractérisé en ce que le dit gène chimère est défini selon l'une des revendications 13 à 20 ou 23. 33. Procédé de culture des plantes transformées avec un gène chimère comprenant une séquence codant pour une enzyme conférant une tolérance à un herbicide particulier défini selon l'une des revendications 13 à 20 ou 23, caractérisé en ce que le procédé consiste à planter les graines des dites plantes transformées dans une surface d'un champ approprié pour la culture des dites plantes, à appliquer sur la dite surface du dit champ une dose toxique pour les mauvaises herbes du dit herbicide particulier en cas de présence de mauvaises herbes, sans affecter de manière substantielle les dites graines ou les dites plantes transformées, puis à récolter les plantes cultivées lorsqu'elles arrivent à la maturité souhaitée et éventuellement à séparer les graines des plantes récoltées. 34. Procédé selon la revendication 33, caractérisé en ce qu'on applique l'herbicide particulier en présemis, en prélevée ou en postlevée de la culture.