FR 2787714 A1 20000630 FR 9816328 A 19981223 La présente invention concerne l'utilisation des insaponifiables d'huiles végétales, notamment d'huiles d'avocat, de soja et/ou de lupin, pour la préparation d'un médicament stimulant l'expression du TGF-(3 ou l'expression de l'inhibiteur PAI-1 de l'activateur du plasminogène, ainsi qu'une méthode de traitement cosmétique selon laquelle on applique sur la peau, les muqueuses voisines et/ou les phanères une composition à base d'insaponifiables d'huiles végétales. Par " TGF-P" on entend selon l'invention les différentes isoformes du TGF-P c'est-à-dire les isoformes du facteur ? de croissance transformant ("Transforming Growth Factor-p"). Les isoformes du TGF-P constituent une famille de polypeptides homodimériques d'environ 25 kD de poids moléculaire. Parmi les 5 isoformes connues, les mieux caractérisées sont les TGF-P1 et TGF-p2 (Sporn et al (1987), J. Cell Biol. 105, 1039-1045 ; Roberts et Sporn (1990), Handbook of Exp. Pharmacol, 35, 419-472, Springer Verlag, Heidelberg). Bien que ces deux isoformes ne montrent que 71% d'homologie, elles semblent avoir beaucoup d'activités communes. Le TGF-P1 a d'abord été isolé à partir des plaquettes humaines, mais on sait désormais que la plupart des cellules sont capables de l'exprimer. Le TGF-ss2 a été purifié à partir des plaquettes, de l'os bovin et de cellules de glioblastome. On sait que le TGF-P est impliqué dans des mécanismes complexes d'évolution de diverses pathologies et qu'il est souhaitable de renforcer l'action du TGF-P, en d'autres termes d'augmenter son expression par les cellules elles-mêmes impliquées dans les mécanismes desdites pathologies, pour une évolution favorable de ces dernières. Ainsi, par exemple, il est connu que le TGF-p exprimé par les chondrocytes articulaires est impliqué dans des mécanismes de réaction anaboliques, c'est-à-dire de restauration, du cartilage articulaire observés aux premiers stades de l'arthrose et qui tendent à compenser la dégradation du cartilage résultant de l'activité de métalloprotéases sécrétées de manière excessive par les chondrocytes sous l'effet des cytokines, telles que que l'interleukine-1(IL-1). Il serait donc souhaitable, par exemple dans le cas de l'arthrose, de freiner la progression de cette pathologie non seulement en bloquant l'activité de l'interleukine-1 par des moyens connus mais aussi en favorisant l'expression du TGF-p. Par ailleurs, il est connu que le TGF-P est favorablement impliqué dans les mécanismes de remodelage osseux qui interviennent au cours de l'ostéoporose. Ceci a été montré en particulier par Boyce et al de l'Université du Texas ((1996), Nature Med. (2), 10, 1132-1136.). Enfin, le TGF-p joue également un rôle favorable dans certains mécanismes de différenciation de cellules nerveuses induits par le facteur de croissance des nerfs (NGF ou "Nerve Growth Factor") ainsi que dans de nombreux aspects de la réparation tissulaire, en particulier cutanée. Compte tenu de ce qui précède, il était donc hautement souhaitable de pouvoir obtenir un effet de stimulation de l'expression du TGF-p, en particulier pour améliorer le traitement des pathologies décrites ci-dessus. Par ailleurs, par "inhibiteur PAI-1 de l'activateur du plasminogène" on entend selon l'invention l'inhibiteur spécifique PAI-1 qui, avec l'autre inhibiteur PAI-2, régule de manière connue l'activité de la forme tissulaire (tPA) et du type urokinase (uPA) de l'activateur du plasminogène PA. Les deux formes de PA, le tPA et l'uPA, sont produites par deux gènes différents et ont des poids moléculaires ainsi qu'une réactivité immunologique différents (Dano et al, (1985) Adv. Cancer Res. 44,139-166 ; Hart et al, (1988), Comp. Bioch. Physiol. 90 B, 691- 708). Les inhibiteurs PAI-1 et PAI-2 forment des complexes stables avec le tPA et l'uPA. PAI-1est la forme majoritaire dans le plasma et est produit par les cellules endothéliales, les plaquettes et les cellules de l'articulation telles que les cellules synoviales et les chondrocytes (Hart et al, 1988 ; et al, 1991 ; et al, 1992). Il serait particulièrement avantageux de pouvoir stimuler l'expression de l'inhibiteur PAI-1de l'activateur du plasminogène, dans la mesure où l'on obtiendrait ainsi une inhibition de l'action des métalloprotéases et donc, en particulier, une contribution à l'action du TGF-P pour une évolution favorable des pathologies citée ci-dessus. On a maintenant constaté de manière tout à fait surprenante et inattendue que l'utilisation d'insaponifiables d'huile végétable permet d'obtenir non seulement un effet de stimulation de l'expression du TGF- P mais aussi un effet de stimulation de l'expression de l'inhibiteur PAI-1 de l'activateur du plasminogène. Ainsi, la présente invention concerne l'utilisation d'au moins un insaponifiable d'huile végétale pour la préparation d'un médicament destiné à stimuler l'expression du TGF-P ou l'expression de l'inhibiteur PAI-1de l'activateur du plasminogène. En particulier, l'utilisation selon l'invention est caractérisée par le fait que le médicament est destiné à stimuler l'expression du TGF-p, et plus particulièrement l'expression des isoformes TGF-plet TGF-p2. Plus particulièrement, comme cela ressort clairement de l'exemple 1 ci-après, l'utilisation selon l'invention est caractérisée par le fait que le médicament est destiné à stimuler l'expression du TGF-p par l'intermédiaire des séquences d'ADN situées entre-1132 et-732 paires de bases (pb) du promoteur du TGF-p et notamment du promoteur de l'isoforme TGF-pl. L'utilisation selon l'invention est également caractérisée par le fait que le médicament est destiné à stimuler l'expression de l'inhibiteur PAI-1de l'activateur du plasminogène. D'une manière générale, l'insaponifiable est la fraction d'un corps gras qui, après action prolongée d'une base alcaline, reste insoluble dans l'eau et peut être extraite par un solvant organique. Cinq grands groupes de substances sont présents dans la plupart des insaponifiables d'huiles végétales : hydrocarbures saturés ou insaturés, alcools aliphatiques ou terpéniques, stérols, tocophérols, les pigments caroténoïdes et xanthophiles. De préférence, l'insaponifiable d'huile végétale utilisée selon l'invention est choisi dans le groupe constitué par l'insaponifiable d'huile d'avocat, l'insaponifiable d'huile de soja, l'insaponifiable d'huile de lupin et les mélanges de ces derniers. La comparaison des teneurs en insaponifiables de différentes huiles végétales : soja, coton, noix de coco, olive et avocat montre un taux très important d'insaponifiable de l'huile d'avocat obtenue par extraction suivant divers procédés connus. Typiquement, les teneurs obtenues s'échelonnent de 2 à 7% d'insaponifiable dans l'huile d'avocat contre 0,5% dans l'huile de coco, 1% dans l'huile de soja, 1% dans l'huile d'olive. La teneur plus importante en insaponifiable dans l'huile d'avocat par rapport aux autres huiles végétales telles que celles mentionnées cidessus s'explique en particulier par la présence, dans l'insaponifiable d'huile d'avocat, de constituants que l'on ne retrouve généralement pas dans l'insaponifiable de nombreuses autres huiles végétales tels que des composés furaniques et des alcools gras polyhydroxylés et qui, à eux seuls, représentent plus de 50% de l'insaponifiable. Les produits propres à cet insaponifiable d'avocat peuvent être répartis en deux fractions chimiques appelées "fraction I" et "fraction H". Les composés actifs pour l'utilisation selon l'invention se trouvent présents dans la fraction H et ses précurseurs. La fraction H apparaît en premier lieu sur un chromatographe en phase gazeuse de l'insaponifiable d'huile d'avocat. L'insaponifiable d'huile d'avocat utilisé selon l'invention peut être obtenu à partir du fruit frais mais, de préférence, l'insaponifiable d'huile d'avocat utilisé selon l'invention est l'insaponifiable d'huile d'avocat séché (c'est-à-dire l'insaponifiable obtenu à partir de l'huile du fruit avocat séché). Concernant l'insaponifiable d'huile de soja, on peut remarquer que cet insaponifiable est principalement composé de stérols (40 à 65%) et de tocophérols (# 10%). Les principaux stérols sont le p-sitostérol (40 à 70% des stérols totaux), le campéstérol (15 à 30% des stérols totaux) et le stigmastérol (10 à 25% des stérols totaux). Les tocophérols sont présents sous la forme d'un mélange de a-tocophérol (5 à 35% des tocophérols totaux), de y-tocophérol (45 à 70% des tocophérols totaux) et de 5-tocophérol (10 à 43% des tocophérols totaux). L'huile de lupin peut être extraite à partir de farines et/ou de graines de lupin. Le lupin est un proche parent du pois, de la fève, du soja et du haricot. La graine est traditionnellement employée en alimentation humaine pour sa forte teneur en protéines. Il est également incorporé dans l'alimentation des ruminants sous forme de la plante entière ou de ses graines et aussi fréquemment utilisé comme engrais vert. Plus particulièrement, quatre espèces de lupin présentent un réel intérêt agronomique : le lupin blanc (lupinus albus), le lupin bleu (lupinus angustifolius), le lupin jaune (lupinus luteus) et le lupin changeant (lupinus mutabilis). On a constaté que l'huile de lupin possède une teneur particulièrement élevée en dérivés polyphénoliques, (3-carotène et tocophérol. Plusieurs procédés ont été décrits dans l'art antérieur pour extraire la fraction insaponifiable d'une huile végétale. On peut citer en particulier le procédé de préparation d'insaponifiable d'huile d'avocat tel que décrit et revendiqué dans le brevet FR-2 678 632 au nom des Laboratoires Pharmascience. Ce procédé permet d'obtenir un insaponifiable d'avocat riche en fraction H en comparaison aux procédés classiques de préparation d'insaponifiable d'avocat. On peut également citer le procédé de préparation d'insaponifiable d'huile de soja, obtenu à partir d'un concentrat d'insaponifiable d'huile de soja. Ledit concentrat d'insaponifiable est préparé par distillation moléculaire selon un procédé tel que décrit pour l'huile de lupin dans la demande de brevet FR-2 762 512, mais adapté à l'huile de soja. Dans ce procédé, l'huile de soja est distillée dans un distillateur moléculaire de type centrifuge ou à film raclé, à une température comprise entre environ 210 et 250 C et sous un vide poussé, compris entre 0. 01 et 0. 001 millimètres de mercure (soit 0,13 à 1,3 Pa). Le distillat obtenu présente une teneur en insaponifiable comprise entre 5 et 30% en poids et constitue donc un concentrat d'insaponifiable d'huile de soja. Le même concentrat est ensuite saponifié selon un procédé classique de saponification, en présence de potasse éthanolique. Le mélange obtenu est extrait par le dichloroéthane dans une colonne à contre-courant. La phase solvant est enfin désolvantée par passage dans un évaporateur à film tombant afin de récupérer l'insaponifiable de soja. Comme exemple de procédé de préparation d'insaponifiable d'huile de lupin, on peut citer celui décrit dans la demande de brevet FR- 2 762 512. On se référera en particulier à l'exemple 3 de cette demande. Selon un mode de réalisation préféré de la présente invention, l'insaponifiable d'huile végétale est un mélange d'insaponifiables d'huiles d'avocat et de soja, le rapport pondéral d'insaponifiable d'huile d'avocat à l'insaponifiable d'huile de soja étant compris entre environ 0,1 et environ 9, et de préférence compris entre environ 0,25 et environ 0,6. En particulier, on peut avantageusement utiliser le mélange d'insaponifiables d'huiles d'avocat et de soja tel que commercialisé par la société Laboratoires Pharmascience sous la dénomination "Piascledine 300#11 qui consiste en un mélange de 33,3% en poids d'insaponifiable d'avocat et de 66,6% en poids d'insaponifiable de soja, par rapport au poids total du mélange (les 0,1% restants étant constitués de silice colloïdale et de butylhydroxytoluène). De préférence, on utilise l'insaponifiable d'huile végétale selon l'invention de telle sorte qu'il soit présent dans le médicament selon une proportion comprise entre environ 1 et environ 80% en poids, par rapport au poids total du médicament. Le médicament préparé par l'utilisation selon la présente invention peut ainsi comprendre en outre un excipient pharmaceutiquement acceptable, de préférence adapté à une administration par voie orale, topique externe, entérale ou parentérale. Plus particulièrement, ce médicament comprend un excipient adapté à une administration par voie orale. Le médicament préparé par l'utilisation selon l'invention, du fait de son action stimulant l'expression du TGF-P et de son action stimulant l'expression de l'inhibiteur PAI-1 de l'activateur du plasminogène, est donc avantageusement destiné aux traitements des pathologies pour lesquels l'une au moins de ces actions est recherchée. En particulier, l'utilisation selon l'invention est caractérisée par le fait que le médicament est destiné au traitement des affections des articulations, plus particulièrement au traitement de l'arthrose et au traitement des arthrites (c'est à dire l'arthrite rhumatoïde, l'arthrite psoriasique, l'arthrite de Lyme et/ou toute autre type d'arthrite). L'utilisation selon l'invention est également caractérisée par le fait que le médicament peut être destiné au traitement des affections parodontales, et en particulier au traitement de la périodontite. L'utilisation selon l'invention est par ailleurs caractérisée par le fait que le médicament peut être destiné au traitement de l'ostéoporose. En outre, l'utilisation selon l'invention est caractérisée par le fait que le médicament peut être destiné à moduler la différenciation des cellules nerveuses induites par le NGF. Par "moduler", on entend selon l'invention l'action d'augmenter ou de diminuer la différenciation des cellules nerveuses induites par le NGF. Enfin, l'utilisation selon l'invention est caractérisée par le fait que le médicament peut être destiné à la réparation tissulaire, et en particulier à la réparation tissulaire cutanée, notamment dans le cadre d'une application dermatologique. La présente invention concerne enfin également une méthode de traitement cosmétique de la peau, des muqueuses voisines et/ou des phanères, caractérisée par le fait que l'on applique sur la peau, les muqueuses voisines et/ou les phanères, une composition cosmétique comprenant au moins un insaponifiable d'huile végétale tel que défini ci-dessus, et au moins un véhicule cosmétiquement acceptable tel que les véhicules généralement utilisés dans le domaine des produits cosmétiques. De préférence, il s'agit d'une méthode de traitement cosmétique des cicatrices de la peau, du vieillissement intrinsèque de la peau (c'est- à-dire du vieillissement de la peau ne résultant pas majoritairement d'une action extérieure à la peau) et d'une méthode de traitement cosmétique de la peau ayant été soumise à un rayonnement actinique, notamment à un rayonnement ultra-violet. De préférence, l'insaponifiable d'huile végétale est présent dans la composition cosmétique selon une proportion comprise entre environ 0,1 et environ 10 % en poids, par rapport au poids total de la composition cosmétique. Enfin, la présente invention concerne l'utilisation d'au moins un insaponifiable d'huile végétale tel que défini ci-dessus en tant qu'additif dans un aliment pour l'être humain et/ou l'animal, l'insaponifiable d'huile végétale étant présent dans l'aliment selon une proportion de préférence comprise entre environ 0,1et environ 20 % en poids, par rapport au poids total de l'aliment. La présente invention va maintenant être illustrée à l'aide d'exemples qui ne doivent en aucun cas être interprétés comme pouvant en limiter la portée. La figure 1 représente un cliché d'une expérience de northernblot (figure 1.A montrant l'expression accrue de l'ARNm de TGF-ss1 dans les cellules traitées aux insaponifiables d'avocat et de soja (Piasclédine 300# ; référencé "IAS" dans les figures 1 à 6) ainsi qu'un histogramme (figure l.B) correspondant à un dosage protéique montrant l'expression protéique accrue de TGF-pl dans les cellules traitées avec Piasclédine 300# (le témoin est référencé "T" dans les figures 1 à 6). La figure 2 montre les effets des insaponifiables d'avocat et de soja seuls, du TGF-ss1 seul et de la combinaison [insaponifiables d'avocat et de soja et TGF-01] sur l'expression des ARNm des isoformes TGF-ss1 et TGF-p2 comme expliqué à la fin de l'exemple 1 ci-après, paragraphe 2.1. En particulier, les clichés de northern-blot (figure 2.A) montrent l'expression de l'ARNm de TGF-pl, TGF-ss2 et de la (3-actine prise comme témoin. Les résultats de l'expression des ARNm respectivement des isoformes TGF-pl et TGF-ss2 sont représentés sous forme des histogrammes respectifs (figure 2.B). La figure 3 illustre les effets au cours du temps et selon les doses utilisées des insaponifiables d'avocat et de soja (Piasclédine 300) sur l'expression de TGF-pl. La figure 3.A est une photographie d'un gel d'électrophorèse de produit d'amplification RT-PCR à partir d'ARNm de TGF-plde cellules traitées par différentes quantités d'insaponifiables d'avocat et de soja (Piasclédine 300). Les résultats sont normalisés et exprimés sous forme d'histogramme (figure 3. B). La figure 3. C est une photographie d'un gel d'électrophorèse de produit d'amplification RTPCR à partir d'ARNm de TGF-pl de cellules traitées à des temps différents par les insaponifiables d'avocat et de soja (Piasclédine 300). Les résultats sont normalisés et exprimés sous forme d'histogramme (figure 3.D). La figure 4 montre les effets des insaponifiables d'avocat et de soja (Piasclédine 300) sur l'expression de la luciférase en fonction de différentes constructions de promoteur de TGP-pl. La figure 5 est une photographie d'un gel d'électrophorèse de produit d'amplification RT-PCR à partir d'ARNm des récepteurs TGF-ss1 et TGF-P2 et à partir d'ARNm de P-actine prise comme témoin, provenant de cellules traitées par les insaponifiables d'avocat et de soja (Piasclédine 300). La figure 6 illustre l'effet des insaponifiables d'avocat et de soja (Piasclédine 300) sur l'expression de l'inhibiteur PAI-1 de l'activateur du plasminogène. La figure 6. A représente une photographie d'un gel d'électrophorèse de protéine obtenu par extraction à partir de cellules traitées par Piasclédine 300# ou par TGF-ss, La figure 6. B est une photographie de northern-blot montrant l'expression d'ARN de PAI-1 dans les cellules traitées par Piasclédine 300#, Les résultats de l'expérience de northern-blot sont normalisés et exprimés sous forme de l'histogramme à la figure 6.C. Exemple 1 : Effet des insaponifiables d'avocat et de soja sur l'expression du TGF-pl et TGF-p2 et sur l'expression du PAI-1 1.1. Matériels et Méthodes 1. 1.1. Culture et traitement de chondrocytes articulaires Les chondrocytes sont isolés à partir de cartilages de veaux comme décrit dans l'article de Benya et al ("The progeny of articular chondrocytes synthesize collagen typesI et 11 trimer,but nottype 11. Vérification by cyanogen bromide peptide analysis", Biochemistry 1977 ; 16 : 865-872). Descultures primaires de chondrocytes sont utilisées afin de minimiser les changements phénotypiques. Les cultures sont étalées à raison de 6,0 x 106 cellules par boîtes de 175 cm2 (pour l'extraction d'ARN) à raison de 5,0 x 105 cellules par puits dans des plaques à 6 puits (9,6 cm2) (pour le marquage du PAI-1) et à raison de 1,2 x 106 cellules dans des boîtes de Pétri de 100 mm (transfection). Les cultures sont incubées dans du milieu complet DMEM (DMEM pour "Dulbecco's modified Eagle's medium") contenant 10% de sérum de veau foetal (FCS) et des antibiotiques à 35 C dans une atmosphère à 5% de C02 et 95% d'air, jusqu'à atteindre la confluence (à l'exception des essais de transfection). Les cultures sont incubées en présence d'insaponifiables d'avocat et de soja sous la forme du produit "Piasclédine 300" (commercialisé par la société Laboratoires Pharmascience) qui contient 33,3% d'insaponifiable d'huile d'avocat et 66,6% d'insaponifiable d'huile de soja. La concentration de Piasclédine 300 étant de 10 g/ml, et en présence de TGF-pl à raison de 1 ng/ml (commercialisé par la société R & D Systems) pendant les temps indiqués. Dans la mesure où Piasclédine 300 est dissout dans du diméthylformamide (DMF), on inclut dans tous les essais des témoins contenant la même concentration en DMF. 1.1.2. Extraction d'ARN L'ARN total est extrait par la méthode de solubilisation différentielle au phénol/chloroforme en utilisant le kit commercial RNAXel de la société Eurobio. Les concentrations en ARN sont déterminées par la mesure de la valeur de la densité optique à 260 nm (D026o). Les rapports DO260/Do280 sont supérieurs à 1,8. L'intégrité des échantillons d'ARN est contrôlée par électrophorèse sur gel d'agarose à 1% en présence de bromure d'éthidium. Dans le cas d'une contamination d'ADN génomique, on effectue une précipitation supplémentaire avec du chlorure de lithium LiCl 6M pour obtenir des échantillons purs d'ARN. 1. 1.3. Hybridation de l'ARN (Northern-blot) On fait passer 10 g d'échantillons d'ARN dénaturé sur un gel d'agarose formaldéhyde à 1%. L'ARN est transféré par capillarité sur une membrane nylon (Pall Biodyne, Gelman Sciences) et immobilisé par irradiation aux ultra-violets (Bioblock UV Crosslinker, France). On utilise trois sondes différentes pour évaluer les valeurs d'ARNm pour le TGF-p, le PAI-1, le p-actine : (a) on génère une sonde d'ADNc à 336 paires de bases (pb) pour le TGF-ss1 par RT-PCR (reverse transcription et réaction en chaîne à la polymérase) en utilisant les amorces indiquées ci-dessous, (b) un fragment d'ADNc de 3000 pb correspondant au PAI-1 humain (fourni par le laboratoire du Dr J-P Pelletier, Montréal, Canada) et (c) une sonde de 548 pb de ss-actine générée par RT-PCR avec les amorces spécifiques énumérées cidessous. Les sondes d'ADNc sont radiomarquées en utilisant le kit de marquage aléatoire des amorces (Gibco BRL, France) et [32P]-dCTP en tant que radiomarqueur (Amersham, France). Chaque sonde est hybridée séparément à 55 C et lavée deux fois pendant 20 minutes à température ambiante et une fois à 55 C avec un tampon 2 x SSC contenant du SDS à 0,1%. On détecte les signaux par autoradiographie à contact de film en utilisant un film Kodak (X-OMAT AR5) avec des écrans intensifiants. La densité optique relative des signaux autoradiographiques est normalisée vis-à-vis des valeurs de la p-actine en utilisant la technique de densitométrie par balayage laser à deux dimensions et le logiciel ImageQuaNt (Molecular Dynamics, France). 1. 1.4. Analyse RT-PCR Des échantillons de 1 g d'ARN total sont reverse transcrits en ADNc en présence d'une amorce antisens 100pM, 10 unités de "RNasin" (un inhibiteur de ribonucléase commercialisé par la société Promega), 10 mM de dithiotréitol, 0,5 mM de chaque triphosphate désoxynucléotide (dNTPs) (Life Technologies), un premier tampon "Strand" 5X et 60 unités de reverse transcriptase du virus Moloney de la leucémie murine (Life Technologies). La réaction est réalisée à 42 C pendant une heure. L'amplification de l'ADNc généré est réalisée dans un thermocycleur Omni E Hybaid en utilisant le kit PCR de Life Technologies, en présence des amorces sens et antisens : TGF-ss1, sens 5'- GCC CTG GAC ACC AAC TAT TGC-3'/antisens 5'- GCT GCA CTT GCA GGA GGG CAC-3' (Lupparello et al, "Transforming Growth Factor- ss1, -p2 and -ss3, urokinase and parathyroid hormone-related peptide expression in 8701-Bc breast cancer cell and clones, Differenciation, 1993 ; 55 : 73-80) ; TpR-1, sens 5'-ATT GCT GGA CCA GTG TGC TTC GTC-3'/antisens 5'- TAA GTC TGC AAT ACA GCA AGT TCC ATT CTT-3' (Franzen et al), "Cloning of TGF-P type I receptor that forms a heteromeric complex with the TGF-p type II receptor" Cell, 1992 ; 75 : 681-692); TssR-II, sens 5'- CGC TTT GCT GAG GTC TAT AAG GCC- 3'/antisens 5'- GAT ATT GGA GCT CTT GAG GTC CCT-3' (Lin Hy et al, "Expression cloning of the TGF-P type II receptor, a functional transmembrane serine/threonine kinase" Cell, 1992 ; 775-785); ss- actine, sens 5'- GTG GGG CGC CCC AGG CAC CA-3'/antisens 5'- CTC CTT AAT GTC ACG CAC GAT TTC-3' (Lupparello et al référencé cidessus). On a effectué 35 cycles en utilisant les conditions suivantes : 95 C pendant 30 secondes, 55 C pendant 30 secondes et 72 C pendant 1 minute. Ensuite, on inclue une étape supplémentaire à 72 C pendant 10 minutes. Le nombre de cycles est choisi dans la phase exponentielle de la courbe d'amplification établie précédemment. Les transcrits ont été analysés par électrophorèse sur gel d'agarose à 2% et visualisés par coloration au bromure d'éthidium. Les réactions d'amplification ont fourni des tailles attendues de transcrit TGF-pl : 336 pb, TPR-I: 668 pb, TssR-II: 454 pb, P-actine: 548 pb). L'identité des produits de la PCR est également confirmée par digestion par endonucléase de restriction et par Southern-blot, en utilisant les sondes humaines respectives qui correspondent, pour le TssR-I et TssR-II, à la longueur totale des ADNc et pour TGF-ss1 (3-actine aux fragments générés par RT-PCR. Après photographie des gels avec un film polaroïd 665, l'intensité des bandes correspondantes est quantifiée par balayage densitométrique réalisé avec le logiciel ImageQuaNt (Molecular Dynamics) et normalisée vis-à-vis des valeurs d'ARNm p-actine. 1. 1.5. Mesure du TGF-ss1 mature secrété Afin de mesurer la quantité de TGF-ss1 actif dans le milieu conditionné par les cellules témoins contrôle ou les cellules traitées aux insaponifiables d'avocat et de soja, les cellules monocouches confluantes dans les plaques de culture à 6 puits sont incubées pendant 24 heures dans le milieu contenant du FCS à 10%, avec ou sans 10 g de Piasclédine 300#, Les cellules sont lavées à trois reprises avec un milieu exempt de sérum supplémenté avec 200 g/ml de BSA (sérum-albumine bovine) pendant 5,30 et 60 minutes, et incubées dans 1 ml du milieu exempt de sérum pendant 6 heures supplémentaires. Le milieu conditionné est ensuite recueilli dans des tubes siliconés pour microcentrifugation, centrifugés et la quantité de TGF-pl mature, activé, est déterminée dans le surnageant par immunodosage du TGF- ss1 en utilisant le kit Quantikine (Quantikine R&D Systems, U.S.A.) selon les instructions du fabricant. 1.1.6. Radiomarquage pour la synthèse de PAI-1 Les cultures confluentes dans des plaques à 6 puits (9,6 cm2) sont marquées à la méthionine [35S] (40 Ci/ml, Amersham, France) en présence de Piasclédine 300 (10 g/ml) et de TGF-pl (1 ng/ml) pendant 24 heures. L'extraction des protéines radiomarquées et la caractérisation du PAI-1par électrophorèse sont réalisées comme décrit dans l'article de Laiho M et al " Transforming Growth Factor-p induction of type-1 plasminogen activator inhibitor" J. Biol. Chem. 1987 ; 262:17467-17474) avec quelques modifications. Brièvement, les milieux sont retirés et les couches de cellules sont raclées dans 1 ml de tampon à pH 8 Tris-HCI à 10 mM, contenant 0,5% de déoxycholate de sodium et 1 mM de fluorure de phénylméthane-sulfonyle. Les échantillons sont centrifugés à 4 C. 10 000g pendant 10 minutes. Les surnageants sont absorbés avec de la concanavaline A (Con A)-Sépharose (Pharmacia) (50 l de 50% (v/v) de suspension dans du PBS). La Con A-Sépharose est lavée à trois reprises avec un mélange PBS/Tween 80 (0,01%) et les protéines fixées sont dissoutes dans du tampon de Laemmli (Laemmli et al, "Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4" Nature, 1970 ; 680-685) contenant 10% de 2- mercaptoéthanol. Les protéines fixées sur la concanavaline A sont soumises à une électrophorèse sur gel de polyacrylamide 10% en présence de dodécyl-sulfate de sodium polyacrylamide (SDS-PAGE) suivi d'une fluorographie. L'ovalbumine (Mr 46 000) et l'anhydrase carbonique (Mr 29 000) sont utilisées comme marqueur de poids moléculaire. La bande à 46 kD est déterminée comme correspondant au PAI-1 par immunoblotting précédent en utilisant un anticorps anti-PAI- 1 polyclonal de lapin (Dako, Copenhague, Danemark) tel que décrit dans l'article de Laiho M et al référencé ci-dessus. 1.1.7. Transfection cellulaire et essai d'activité à la luciférase Pour les transfections transitoires, on étale les cellules dans des boites de Petri de 100 mm et on les fait croître jusqu'à 70-80% de confluence. Les cellules sont ensuite cotransfectées par la méthode de coprécipitation au phosphate de calcium (Bradford et al, "A rapid and sensitive method for the quantification of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding", Anal. Biochem, 1976 ; 72 : 248-254), avec 9 g de plasmides appropriés et 3 g de pSV40-P Gai (Promega), un vecteur d'expression de la p-galactosidase utilisé en tant que témoin interne pour normaliser l'efficacité de la transfection. Après 24 heures, le milieu est remplacé par un milieu contenant du DMF (1:1000) en l'absence ou en présence de Piasclédine 300# (10 g/ml). Les cellules sont récoltées 48 heures après l'addition d'ADN et les extraits sont testés quant à l'activité à la luciférase. Brièvement, les boîtes de Petri sont lavées à deux reprises avec du PBS, et les cellules sont lysées avec 300 (il de tampon de lyse (0,45 mM Tris-HCI, pH 7,5). Les lysats sont soumis à trois cycles de congélation-décongélation. Après centrifugation, on mesure la luminescence d'un aliquot de 50 l de lysat de chaque boîte de Petri dans un luminomètre (Berthold Lumat 9501) pendant 20 secondes après addition de luciférine (Luciférase Assay System, société Proméga). Afin de normaliser l'activité de la luciférase, on détermine la concentration de protéine et l'activité de la P- galactosidase. La concentration de protéine de lysats cellulaires de 4[il de chaque boîte de Petri est mesurée selon Bradford tel que référencé ci- dessus. Les lysats cellulaires sont testés quant à l'activité de la P- galactosidase en utilisant la résofurine ss-D galactopiranoside en tant que substrats et on mesure la DO à 572 nm. 1.1.8. Construction des plasmides Les constructions contenant le promoteur du TGF-ss1 sont générées à partir du plasmide phTG2 (Kim et al, "Characterization of the promotor region of the human transforming growth factor-ssgène", J. Biol. Chem. 1989 ; 402-408) fourni par le docteur S. J. Kim (Laboratoire de Chemoprevention, NIH/NCI ; La digestion du plasmide phTG2 avec les enzymes HindIII et XlaI respectivement génère des fragments d'ADN correspondant aux séquences promotrices respectives-1132 à +11 et-732 à + 11. Après remplissage des extrémités cohésives par le fragment de Klenow, les fragments d'ADN sont digérés par Kpnl et sont ensuite clonés dans le plasmide reporter standard pGL2 au site SmaI/KpnI (Promega) codant pour le gène de la luciférase sans séquence promotrice. La construction contenant la région promotrice -454/+Il correspond au clonage d'une séquence d'ADN obtenue par digestion de phTG2 par HindII- et Kpnl dans un site SmaI-KpnI du plasmide reporter standard pGL2. 2. Résultats 2. 1. Effet des insaponifiables d'avocat et de soja (Piasclédine 300) sur l'expression du TGF-ss 1 et TGF-ss2 L'effet de Piasclédine 300# sur les chondrocytes articulaires bovins est déterminé dans des cultures primaires confluentes incubées pendant 24 heures en présence ou en absence de Piasclédine 300 (10 g/ml), les témoins contenant la même concentration de diméthylformamide (DMF 1:1000) qui est utilisé comme solvant de l'extrait. Aucun changement morphologique ou détachement cellulaire n'a été obversé avec les concentrations jusqu'à 100 g/ml, comme examiné par microscopie à contraste de phase. Toutefois, la concentration de 10 g/ml a été sélectionnée pour la plupart des essais dans la mesure où la valeur de DMF dans les échantillons à 100 g/ml aurait été trop élevée et potentiellement nuisible pour les cellules. L'expression des TGF-ss1et TGF-p2 a été déterminée après extraction de l'ARN total par northern-blot. Comme le montre la figure 1, le traitement de BAC (Bovine Articular Chondrocytes) avec Piasclédine 300# à 10 g/ml a provoqué une augmentation notable du niveau d'ARNm TGF-pl par rapport aux témoins, lorsque le message était à peine détectable. Deux transcrits de 1,9 et 2,4 kb ont été observés sur les northem-blots. Cette expression augmentée du gène TGF-plinduit par Piasclédine 300 est spécifique puisque l'expression de l'ARNm de P-actine qui correspond à un gène de ménage, n'a pas changée de manière significative sous les mêmes conditions expérimentales. Afin de déterminer si cet effet de transcription est accompagné d'une augmentation de la synthèse des protéines TGF-P, un dosage ELISA permet d'estimer la concentration de TGF-ss1 libéré dans les milieux des cultures cellulaires traitées par Piasclédine 300#. La figure 1 montre que la production de TGF-ss1 immunodétectable est augmentée par une exposition de 24 heures à Piasclédine 300 10 g/ml. Bien que l'essai ne permet pas de distinguer le TGF-p latent du TGF-P activé, il résulte clairement qu'il existe une corrélation entre l'effet des insaponifiables d'avocat et de soja sur la transcription et la traduction et sur l'expression du TGF-P 1. Dans une seconde série d'expérience, on a examiné les effets de Piasclédine 300# sur la valeur de l'expression tant du TGF-pque TGFp2 en présence ou en l'absence de TGF-P1 exogène. Comme le montre la figure 2, l'expression du TGF-P2 a été également stimulée par Piasclédine 300. De manière intéressante, dans le cas du TGF-ss1, on a observé un effet de synergie montrant que des boucles d'amplification peuvent survenir dans le système. 2. 2. Effet (temps- et doses- dépendances) des insaponifiables d'avocat et de soja sur l'expression du TGF-P 1 en fonction du temps et des doses Puisque ces résultats montrent que Piasclédine 300# induit une augmentation de l'expression du TGF-P, on a voulu déterminer les effets de concentrations différentes des insaponifiables d'avocat et de soja et des temps d'incubation différents sur le taux d'expression des ARNm de TGF-ss1. Dans la mesure où le signal détecté par la méthode northern-blot est relativement faible pour les chondrocytes témoins non traités (voir la figure 1), on a préféré utiliser la méthode RT-PCR pour réaliser ces essais. Le traitement de chondrocytes au Piasclédine 300 à des concentrations croissantes (5, 10 et 25 g/ml) permet d'observer une réponse à la stimulation pour des concentrations en Piasclédine 300 de 10 et 25 g/ml avec un effet plus important pour une concentration de 10 g/ml. La concentration de 5 g/ml est probablement trop faible pour produire un effet quelconque (voir la figure 3). Le traitement de chondrocytes au Piasclédine 300# à une concentration de 10 g/ml pendant des périodes de 12,24 ou 48 heures, permet d'observer une augmentation du taux d'expression des ARNm de TGF-01 à toutes les périodes d'incubation avec un maximum à 48 heures (voir la figure 3). 2. 3. Effet des insaponifiables d'avocat et de soja sur l'expression cellulaire dirigée par la région 5' flanquantes du gène TGF-ss 1 D'après les résultats précédents qui montrent que les insaponifiables d'avocat et de soja peuvent stimuler l'activité de transcription du promoteur du gène TGF-pl, l'objet de cet essai est de délimiter les séquences en cis du gène TGF-ss1 susceptibles de médier cet effet. Une série de fragments de la région 5'- du promoteur du gène humain du TGF-ss1 fusionnés au gène de la luciférase sont transfectés dans des chondrocytes bovins ensuite traités pendant 24 heures avec Piasclédine 300 à 10 g/ml. L'expression de l'activité luciférase est ensuite testée pour chaque plasmide. Comme le montre la figure 4, la contruction la plus longue utilisée (-1132 à +11) induit une expression d'activité luciférase 8 fois supérieure à celle du témoin. Les autres séquences correspondant à la région la plus en aval (-732 à +11) ne produisent pas de changement significatif quant à l'expression de la luciférase comparée à celle des témoins. Ces résultats montrent que les séquences d'ADN répondant à la stimulation des insaponifiables d'avocat et de soja sur l'expression du gène de TGF-ss 1 sont situées entre -1132 et-732. 2. 4. Effet des insaponifiables d'avocat et de soja sur l'expression des récepteurs du TGF-P Dans la mesure où l'activité biologique du TGF-P est médiée via sa liaison aux récepteurs membranaires cellulaires, on se propose d'étudier les effets des insaponifiables d'avocat et de soja sur l'expression des récepteurs du TGF-P en mesurant les niveaux d'ARNm correspondants. Comme le montre la figure 5, le traitement au Piasclédine 300 n'induit aucune variation du taux d'expression des ARNm de TssR-I et de TssR-II. L'analyse de ces données par balayage densitrométrique et normalisation par rapport au signal de la p-actine montre que le rapport relatif pour le TssR-I établi avec l'amplification à 35 cycles, est de 1,16 dans les cultures traitées en comparaison avec la valeur de 1,23 dans les témoins et la valeur de 0,83 pour le TPR-II vis-àvis de 0,70 dans les témoins. 2. 5. Effet des insaponifiables d'avocat et de soja sur l'expression du PAI-1 Dans les cultures monocouches confluentes des chondrocytes utilisés dans ces essais, des essais précédents ont montré que le PAI-1 produit par les cellules a été essentiellement trouvé dans la couche de cellule, qui comprend une matrice environnante abondante. On a constaté que le milieu contenait seulement des quantités mineures de PAI-1 néosynthétisé. Par conséquent, on a extrait le PAI-1marqué à la méthionine- 35S à partir de la fraction cellules + matrice sans distinguer entre la partie intracellulaire et la partie extracellulaire du PAI-1total produit. Comme le montre la figure 6, lorsque l'on a traité des cultures de chondrocytes de bovin avec du TGF-ss1 pendant 24 heures, la fraction de PAI-1 isolée par électrophorèse sur gel a été significativement plus importante que celle des cultures témoins. Ce résultat a fourni la preuve que les cellules répondaient au TGF-ss1 en terme d'expression du PAI-1 et a validé le système utilisé pour déterminer l'effet des insaponifiables d'avocat et de soja. Dans les mêmes conditions, il est clair que les extraits d'avocat et de soja ont pu augmenter la synthèse de PAI-1, pratiquement selon un même degré que l'a fait le TGF-ss1 (voir la figure 6). Afin de déterminer si l'effet de stimulation des insaponifiables de soja et d'avocat sur la synthèse de PAI-1 s'exerce au niveau transcriptionnel on a réalisé un northern-blot à partir d'ARN total isolé à partir de cultures traitées de la même manière que pour le marquage de la protéine PAI-1. L'hybridation avec la sonde ADNc de PAI-1 marquée au phosphore 32 a démontrée que la quantité d'ARNm codant pour PAI-1 est augmentée pendant les 24 heures du traitement aux insaponifiables d'avocat et de soja, révélant la corrélation existant entre le taux d'expression de l'ARNm et le niveau de protéine (voir la figure 6). Il est ainsi suggéré que les insaponifiables d'avocat et de soja sont capables d'augmenter la synthèse de PAI-1au niveau transcriptionnel. REVENDICATIONS 1. Utilisation d'au moins un insaponifiable d'huile végétale pour la préparation d'un médicament destiné à stimuler l'expression du TGF- P ou l'expression de l'inhibiteur PAI-1de l'activateur du plaminogcnc. 2. Utilisation selon la revendication 1, caractérisée par le fait que le médicament est destiné à stimuler l'expression du TGF-p. 3. Utilisation selon la revendication 1 ou 2, caractérisée par le fait que le médicament est destiné à stimuler l'expression des isoformes TGF-ss1 et TGF-ss2 4. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée par le fait que le médicament est destiné à stimuler l'expression du TGF-P par l'intermédiaire des séquences d'ADN situées entre -1132 et-732 pb du promoteur du TGF-ss. 5. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée par le fait que le médicament est destiné à stimuler l'expression du TGF-P par l'intermédiaire des séquences d'ADN situées entre -1132 et-732 pb du promoteur de l'isoforme TGF-ss1 6. Utilisation selon la revendication 1, caractérisée par le fait que le médicament est destiné à stimuler l'expression de l'inhibiteur PAI-1 de l'activateur du plaminogène. 7. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée par le fait que l'insaponifiable d'huile végétale est choisi dans le groupe constitué par l'insaponifiable d'huile d'avocat, l'insaponifiable d'huile de soja, l'insaponifiable d'huile de lupin et les mélanges de ces derniers. 8. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée par le fait que l'insaponifiable d'huile végétale est l'insaponifiable d'huile d'avocat. 9. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée par le fait que l'insaponifiable d'huile végétale est l'insaponifiable d'huile d'avocat séché. 10. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisée par le fait que l'insaponifiable d'huile végétale est l'insaponifiable d'huile de soja. 11. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisée par le fait que l'insaponifiable d'huile végétale est l'insaponifiable d'huile de lupin. 12. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisée par le fait que l'insaponifiable d'huile végétale est un mélange d'insaponifiable d'huile d'avocat et d'insaponifiable d'huile de soja, le rapport pondéral d'insaponifiable d'huile d'avocat à l'insaponifiable d'huile de soja étant compris entre environ 0,1 et environ 9. 13. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé par le fait que l'insaponifiable d'huile végétale est présent dans le médicament selon une proportion comprise entre environ 1 et environ 80% en poids, par rapport au poids total du médicament. 14. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé par le fait que le médicament comprend en outre un excipient, pharmaceutiquement acceptable, adapté à une administration par voie orale, topique externe, entérale ou parentérale. 15. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé par le fait que le médicament comprend en outre un excipient, pharmaceutiquement acceptable, adapté à une administration par voie orale. 16. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 15, caractérisé par le fait que le médicament est destiné au traitement des affections des articulations. 17. Utilisation selon la revendication 16, caractérisé par le fait que le médicament est destiné au traitement de l'arthrose. 18. Utilisation selon la revendication 16, caractérisé par le fait que le médicament est destiné au traitement des arthrites. 19. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 15, caractérisé par le fait que le médicament est destiné au traitement des affections parodontales. 20. Utilisation selon la revendication 19, caractérisé par le fait que le médicament est destiné au traitement de la périodontite. 21. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 15, caractérisé par le fait que le médicament est destiné au traitement de l'ostéoporose. 22. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 15, caractérisé par le fait que le médicament est destiné à moduler la différenciation des cellules nerveuses induite par le NGF. 23. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 15, caractérisé par le fait que le médicament est destiné à la réparation tissulaire. 24. Utilisation selon la revendication 23, caractérisé par le fait que le médicament est destiné à la réparation tissulaire cutanée. 25. Méthode de traitement cosmétique de la peau, des muqueuses voisines et/ou des phanères, caractérisée par le fait que l'on applique sur la peau, les muqueuses voisines et/ou les phanères, une composition cosmétique comprenant au moins un insaponifiable d'huile végétale et au moins un véhicule cosmétiquement acceptable. 26. Méthode selon la revendication 25, caractérisée par le fait que l'insaponifiable d'huile végétale est tel que défini à l'une quelconque des revendications 7 à 12. 27. Méthode selon la revendication 25 ou 26, pour le traitement cosmétique des cicatrices de la peau. 28. Méthode selon la revendication 25 ou 26, pour le traitement cosmétique du vieillissement intrinsèque de la peau. 29. Méthode selon la revendication 25 ou 26, pour le traitement cosmétique de la peau ayant été soumise à un rayonnement actinique. 30. Méthode selon l'une quelconque des revendications 25 à 29, caractérisée par le fait que l'insaponifiable d'huile végétale est présent dans la composition cosmétique selon une proportion comprise entre environ 0,1 et environ 10% en poids, par rapport au poids total de la composition cosmétique. 31. Utilisation d'au moins un insaponifiable d'huile végétale en tant qu'additif dans un aliment pour l'être humain et/ou l'animal. 32. Utilisation selon la revendication 31, caractérisée par le fait que l'insaponifiable d'huile végétale est tel que défini à l'une quelconque des revendications 7 à 12. 33. Utilisation selon la revendication 31 ou 32, caractérisée par le fait que l'insaponifiable d'huile végétale est présent dans l'aliment selon une proportion comprise entre environ 0,1et environ 20 % en poids, par rapport au poids total de l'aliment.