FR 2774698 A1 19990813 FR 9801715 A 19980212 UTILISATION D'ÉLÉMENTS DE RÉGULATION NEGATIVE POUR L'EXPRESSION NEUROSPECIFIQUE DE TRANSGENES La présente invention concerne de nouvelles méthodes et constructions permettant de contrôler 11 expression d'un acide nucléique. En particulier, l'invention concerne des méthodes et constructions permettant d'obtenir une expression ciblée de transgènes dans les cellules nerveuses in vivo ou ex vivo. L'invention est particulièrement adaptée à des applications de transfert de gènes in vivo, pour des approches thérapeutiques ou scientifiques par exemple. La thérapie génique in vivo ou ex vivo permet un transfert local et efficace de gènes codant pour des facteurs d'intérêt (transgènes), en particulier dans le système nerveux d'un organisme hôte. A cet égard, différents types de vecteurs ont été utilisés avec succès pour le transfert de différents types de transgènes dans les cellules nerveuses in vivo ou ex vivo. On peut citer notamment les vecteurs viraux de type adénovirus, AAV ou HSV, ou certain s vecteurs non-viraux de type polymères cationiques (polyéthylène imine par exemple). Ainsi, ces vecteurs ont permis un transfert efficacc et stable de transgènes dans des cellules du système nerveux in vivo (WO 94/08026, WO 93/09239, WO 96/02655). La possibilité d'effectuer ce type de transfert offre de nombreuses applications, notamment dans le domaine médical. Ainsi, ces vecteurs sont utilisables dans des approches de thérapie génique in vivo ou ex vivo. A cet égard, différentes études précliniques sont actuellement en cours concernant le transfert de facteurs trophiques dans le système nerveux. Ces vecteurs sont également utilisables pour la création d'animaux transgèniques permettant de tester des composés ou encore pour différentes études de marquage ou de biodisponibilité. Pour toutes ces applications, même si une bonne efficacité et une bonne stabilité du transfert semblent aujourd'hui atteintes, le contrôle de l'expression des transgènes est un impératif. A cet égard, différents systèmes ont été décrits pour tenter de restreindre l'expression de transgènes à certains tissus seulement, par exemple en utilisant des promoteurs dits "spécifiques de tissus" ou des systèmes chimériques complexes nécessitant l'emploi de plusieurs constructions et/ou de facteurs de régulation. A titre d'exemples de promoteurs spécifiques de tissus, on peut citer notamment le promoteur GFAP, qui est principalement actif dans les cellules nerveuses gliales. Toutefois, les systèmes de régulation disponibles ou validés à ce jour présentent certains inconvénients, et notamment une force et/ou une sélectivité pas toujours satisfaisantes. Ainsi, dans la grande majorité des systèmes connus, la sélectivité s'obtient généralement au détriment de la force du promoteur, et il est donc difficile d'avoir une expression à la fois importante, stable et spécifique. La présente invention fournit des méthodes et constructions permettant de remédier aux inconvénients de l'art antérieur. En particulier, la présente invention décrit un promoteur chimérique permettant le ciblage neuronal de l'expression. L'invention utilise à cet égard des éléments de régulation négative, empêchant l'expression des gènes dans les cellules non neuronales. Ce type de constructions présente plusieurs avantages par rapport aux systèmes antérieurs. D'une part les séquences de répression et les promoteurs ubiquitaires étant souvent courts et bien caractérisés, on peut facilement leur associer d'autres éléments de régulation. D'autre part ces éléments de régulation peuvent être associés en théorie à n'importe quel promoteur ubiquitaire et représentent donc un système astucieux permettant d'obtenir facilement une expression neurospécifique de transgènes d'intérêt. De nombreux travaux décrivent des séquences cis réprimant la transcription des gènes neuronaux dans des cellules non neuronales. Un type particulier de séquences doué de cette propriété est constitué des NRSE ("Neuron Restrictive Silencer Element"), encore appelé RE-1 (Repressor element-l). NRSE est une courte séquence, de 21 pb environ, mise en évidence en amont de plusieurs gènes neuronaux: SCG10 [1], canal sodique II [2] et synapsine I [3] par exemple. Par ailleurs, des séquences analogues ont été retrouvées en amont de nombreux autres gènes neuronaux1 même si leur fonctionnalité n'a pas toujours été démontrée à ce jour [4]. Ces séquences NRSE répriment l'expression non-neuronale des gènes en liant un facteur de transcription spécifique, la protéine NRSF (Neuron Restrictive Silencer Factor), encore appelée REST (RE-l Silencing Transcription factor), présente uniquement dans les cellules non neuronales [5]. Cctte protéine appartient à la famille des facteurs de transcription à doigts de zinc. Elle intervient au cours du développement pour initier la répression des gènes neuronaux dans les cellules non neuronales puis à l'âge adulte dans le maintien de cette répression. Les équipes ayant caractérisé la présence des séquences NRSE en amont des gènes neuronaux ont vérifié la capacité de ces séquences à diminuer l'expression de gènes rapporteurs après transfection dc cellules non neuronales. Ils ont dans ce but associé leur séquence NRSE à un promoteur hétérologue minimal, c'est-à-dire un promoteur ne permettant qu'une transcription basale. Ainsi, placée en amont du promoteur dc la thymidine kinase par exemple, une copie de la séquence NRSE du canal calcique II réduit l'expression du gène rapporteur de moitié dans les cellules non nerveuses [9]. De même, deux copies de la séquence NRSE de la synapsine I associées au promoteur minimal c-fos permettent de réduire de 75% I'expression dans les cellules nonnerveuses [3]. Par ailleurs, la présence d'une séquence NRSE a aussi permis de réguler l'activité du promoteur de SV40 dans les cellules non neuronales [10]. Toutefois, les séquences NRSE n'ont jamais été utilisées pour diriger l'expression d'un promoteur ubiquitaire fort, ni dans une perspective de thérapie génique. Ainsi, il n'a jamais été montré si de telles séquences étaient capables de supprimer l'expression induite par un promoteur fort. De même, il n'a jamais été montré si ces séquences, placées dans un environnement chimérique, étaient toujours actives in vivo. Plus généralement, l'activité de ces séquences combinées à des promoteurs hétérologues n'a jamais été démontrée in vivo Jusqu a présent. L'invention concerne des acides nucléiques recombinants permettant l'expression neurospécifique de gènes. Elle concerne également les vecteurs comprenant ces acides nucléiques, notamment d'origine virale, ainsi que les cellules contenant ces acides nucléiques et/ou vecteurs. L'invention concerne également des promoteurs chimériques particuliers, adaptés à l'expression neurospécifique de gènes dans le système nerveux in vivo. L'invention concerne encore des compositions comprenant ces éléments, et leur utilisation pour le transfert de gènes. Un premier aspect de l'invention réside donc dans un acide nucléique recombinant comprenant: - un promoteur - une ou plusieurs séquences NRSE, et - un gène thérapeutique. Les constructions selon l'invention comprennent donc une région de répression de I'expression active dans les cellules non-neuronales, constituée d'un ou plusieurs motifs NRSE. Le motif NRSE utilisé dans le cadre de la présente invention comprend avantageusement tout ou partie de la séquence de 21 pb suivante: TTCAGCACCACGGAGAGTGCC (SEQ ID n0 1) Cette séquence correspond à la séquence NRSE du gène SCG10 [2]. Néanmoins, il est entendu que le motif NRSE utilisé dans le cadre de l'invention peut comporter certaines variations par rapport à cette séquence, dans la mesure où il conserve les propriétés de répression sus-indiquées. Ainsi, des séquences de type NRSE présentant certaines variations ont été observées dans différents gènes, tels que décrits dans l'article de Schoenherr et al. [4], incorporé à la présente demande par référence. Sur la base des variants observés, une séquence NRSE consensus a été définie, correspondant à la séquence rencontrée le plus fréquemment. Cette séquence est TTCAGCACCACOOACAOCGCC (SEQ ID nO 2). Des variants préférés au sens de Invention comprennent des substitutions sur 1 à 5 paires de bases de la séquence SEQ ID n" 2 ci-dessus. Plus préférentiellement, ils comprennent des variations sur 1 à 3 paires de bases. A cet égard, les variations sont préférentiellement localisées sur les résidus 1, 2, 10, 11, 15, 18, 19 et/ou 20 de la séquence ci-dessus. Les substitutions peuvent correspondre à la suppression ou au remplacement de la base concernée par toute autre base. Ainsi, un motif NRSE peut être représenté plus généralement par tout ou partie de la séquence suivante : NNCAGCACCNNGGANAGNNNC (SEQ ID nO 3) dans laquelle N désigne une base choisie parmi A, T, C ou G. Des exemples particuliers de motifs NRSE utilisables dans le cadre de la présente invention sont notamment les suivants: TTCAGCACCACGGACAGCGCC (SEQ ID n0 2) TTCAGCACCACGGAGAGTGCC (SEQ ID nO 4) TTCAGCACCGCGGACAGTGCC (SEQ ID n" 5) TTCAGCACCTCGGACAGCATC (SEQ ID n" 6) TTCAOCACCGCOOAGAOCGTC (SEQ ID n 7) TCCAGCACCOTGGACAOAOCC C (SEQ ID n 8) TTCAGCACCOAOOACGOCGGA (SEQ ID n 9) ATCAGCACCACGGACAGCGGC (SEQ ID n 10) 1TCAGCACCTAGGACAGAGGC (SEQ ID n 11) En outre, ces motifs peuvent également comporter, à l'une ou l'autre ou aux deux extrémités, des bases supplémentaires n'interférant pas avec l'activité de répression susindiquée. En particulier, il peut s'agir de sites de restrictions, de séquences neutres ou de séquences provenant d'étapes de clonage et contenant par exemple des régions d'un plasmide ou d'un vecteur, ou de séquences bordant le motif NRSE dans le gène d'origine. Ces différents motifs peuvent être préparés par toutes les techniques connues de l'homme du métier pour la préparation d'acides nucléiques. Ainsi, ils peuvent être préparés par les techniques de synthèse automatique d'acides nucléiques en utilisant des synthétiseurs commerciaux. Ils peuvent également être obtenus par criblage de banques d'ADN, par exemple par hybridation avec des sondes spécifiques ou par des expériences de liaison à un facteur NRSF. En outre, tout autre variant de la séquence SEQ ID n 1 peut être identifié à partir de banques d'ADN par recherche d'homologies par exemple. Une fois synthétisé, le motif de type NRSE peut ensuite être testé fonctionnellement. Pour cela, un premier test consiste notamment à déterminer la capacité du motif à lier le facteur NRSF. Ceci peut être réalisé dans différentes conditions et par exemple par des expériences de retard de migration sur gel selon la technique décrite par Mori et al. [2] ou par Schoenherr et al. [5], incorporés à la présente par référence. Dans un second temps, la capacité du motif à réprimer l'expression peut être déterminée par insertion de ce motif dans un plasmide test contenant un gène rapporteur (CAT, Luc, LacZ, etc.) sous le contrôle d'un promoteur, et comparaison des niveaux d'expression dudit gène rapporteur dans des cellules nerveuses et dans des cellules non nerveuses. Ce type de méthodologie est décrit par exemple dans Schoenherr et al. [4,5] ainsi que dans les exemples. Préférentiellement, le motif est considéré comme fonctionnel lorsqu'il génère un différentiel d'expression entre des cellules nerveuses et nonnerveuses de 40% au moins. Plus préférentiellement, ce différentiel est de 50% au moins, avantageusement, de 60% au moins. Comme indiqué ci-avant, les acides nucléiques de l'invention peuvent comprendre un ou plusieurs motifs NRSE tels que définis ci-dessus. Il peut s'agir soit du même motif répété plusieurs fois, soit de plusieurs variants. Préférentiellement, les constructions de l'invention comprennent le même motif répété plusieurs fois. Avantageusement, le motif est répété de 2 à 20 fois, plus particulièrement de 2 à 15 fois. Comme illustré dans les exemples, des résultats intéressants ont été obtenus avec des répétitions de 3, 6 ou 12 motifs, les résultats étant particulièrement importants avec 6 et 12 répétitions. Les motifs NRSE peuvent être insérés dans les constructions de l'invention dans toute région non-transcrite ou non traduite ou dans un intron. Avantageusement, ils sont placés dans les régions 5' non-codantes, encore plus préférentiellement dans la région proximale du promoteur. Par ailleurs, l'activité de ces motifs étant indépendante de leur orientation, ils peuvent être insérés dans le sens de la transcription aussi bien que dans l'orientation opposée. Enfin, lorsque plusieurs motifs sont utilisés, ils sont préférentiellement insérés côte-à-côte, en une même région de la construction. Il est entendu qu'ils peuvent toutefois être insérés en des régions différentes. Le deuxième élément entrant dans la composition des acides nucléiques de l'invention est un promoteur, permettant l'expression du transgène dans la cellule visée. Avantageusement, il s'agit d'un promoteur actif dans les cellules ou tissus nerveux, notamment d'un promoteur eucaryote. A cet égard, il peut s'agir par exemple d'un promoteur ubiquitaire, c'est-à-dire fonctionnel dans la majorité des types cellulaires. Encore plus préférentiellement, il s'agit donc d'un promoteur ubiquitaire eucaryotc. Lc promoteur peut être autologue, c'est-à-dire provenant de la même espèce que la cellule dans laquelle l'expression est recherchée ou xénogénique (provenant d'une autre espèce). On peut citer à titre d'exemples avantageux des promoteurs ubiquitaires eucaryotes des promoteurs forts tels que le promoteur du gène de la phosphoglycerate kinase I (PGK). Chez les eucaryotes, PGK est une enzyme intervenant lors de la glycolyse. Chez la souris, le promoteur de ce gène, d'environ 500 pb, comporte une région dite "enhancer" (440/-120) et une région promotrice (-120/+80) contenant plusieurs sites d'initiation de la transcription [6]. L'efficacité de ce promoteur PGK a déjà été démontrée dans de précédentes expériences de transfert de gènes in vitro et in vivo [7,8]. Selon un mode de réalisation préféré, I'invention concerne un acide nucléique comprenant le promoteur PGK et une ou plusieurs séquences NkSE. Comme illustré dans les exemples, ce type de construction permet de diriger l'expression neurospécifique d'un transgène. A cet égard, I'invention concerne également un promoteur chimérique comprenant un promoteur ubiquitaire fort et une ou plusieurs séquences NRSE. L'invention montre en effet que ces séquences NRSE peuvent etre utilisées pour réprimer efficacement l'activité d'un promoteur fort, y compris in vivo. Ceci rend donc possible l'utilisation de ces promoteurs nouveaux dans des applications nombreuses. Un promoteur chimérique particulier au sens de l'invention est représenté par la désignation xNRSE-PGK dans lequel x est un nombre entier de 1 à 20. D'autres promoteurs eucaryotes ubiquitaires utilisables dans le cadre de la présente invention sont par exemple les promoteurs dirigeant l'expression des gènes du métabolisme cellulaire obligatoire (ces gènes sont dits "domestiques" ou "de ménage" et spécifient des protéines nécessaires à des fonctions communes à toutes les cellules). Il s'agit par exemple de gènes intervenant dans le cycle de krebs, dans la respiration cellulaire ou encore dans la réplication ou la transcription d'autres gènes. On peut citer comme exemples particuliers de ce type de promoteurs, le promoteur des gènes alantitrypsine, p-actine, vimentine, aldolase A ou Efla (facteur d'élongation). Le promoteur utilisé dans le cadre de l'invention peut encore être un promoteur eucaryote de type neurospécifique, permettant ainsi d'améliorer sa neurospécificité. On peut citer à titre d'exemple le promoteur des gènes NSE (Neuron Specific Enolase), NF (Neurofilament), TH (Tyrosinc Hydroxylase), DAT (Dopamine Transporter), chAT (Choline Acetyl Transferase), DBH (Dopaminc ss-Hydroxylase), TPH (Tryptophane Hydroxylase), GAD (Glutamic Acid Deshydrogenase) et, plus généralement, tous les promoteurs des enzymes de synthèse ou des transporteurs des neuromédiateurs ou tout autre promoteur de gènes dont l'expression est spécifique d'un type ou sous-typc neuronal ou glial donné. Enfin, on peut aussi envisager l'utilisation de promoteurs viraux, tels que par exemple les promoteurs CMV (Cytomégalovirus), RSV (Rous Sarcoma Virus), TK (Thymidine Kinase), SV40 (Simian Virus) et LTR (Long Terminal Repeat). Par ailleurs, les acides nucléiques de l'invention comprennent également un gène thérapeutique. On entend par gène thérapeutique au sens de la présente invention, tout acide nucléique comprenant au moins une phase ouverte de lecture codant un ARN ou un polypeptide thérapeutique ou vaccinal. L'acide nucléique peut être un ADN complémentaire, génomique, synthétique ou semi-synthétique. n peut être d'origine variées telles que mammifère, plante, virale, artificielle, etc. Le produit de transcription ou de traduction présente donc des propriétés thérapeutiques ou vaccinales. On peut citer à titre d'exemple particuliers des enzymes, facteurs de croissance (facteurs trophiques notamment), neurotransmetteurs ou leurs précurseurs, des facteurs toxiques (Thymidine Kinase par exemple), des anticorps ou fragments d'anticorps, etc. L'utilisation des constructions de Invention peut être envisagée pour diriger l'expression de un ou plusieurs gènes codant un ARN ou une protéine que l'on souhaiterait adresser au neurone dans le but d'établir des modèles animaux ou dans une perspective de thérapie étiologique ou symptomatique, substitutive ou suppressive. I1 peut s'agir par exemple dc gènes de la famille des facteurs trophiques, tels que par exemple les neurotrophines (NGF, BDNF, NT3, NT4-5, ...), les facteurs de croissance [famille des fibroblastes growth factors FGF (a et b), famille des epidermal growth factors EGF, famille des Insulin growth factors IGF (I et Il)], la superfamille des TGFss dont les familles des TGFss, GDNF/neurturine. Il peut également s'agir de gènes codant des cytokines, tels que par exemple le CNTF, LIF, Oncostatine M, Cardiotrophine 1, ou des protéines de la famille des interlcukines. I1 peut encore s'agir de gênes codant pour les récepteurs de ces différents facteurs ou codant pour les facteurs de transcription régulant l'expression de ces différents facteurs. Il peut également s'agir de gènes codant pour les enzymes de synthèse ou de dégradation des différents neurotransmetteurs et neuropeptides, ou des cofacteurs essentiels à cette synthèse ou ce catabolisme, ou encore des facteurs de transcription régulant ltexpression de ces protéines; ainsi que de gènes codant pour les récepteurs des neurotransmetteurs/neuropeptides (ou pour des sous-unités de ces récepteurs) et pour les protéines intervenant dans les voies de transduction. D'autres gènes d'intérêt dans le cadre de l'invention sont notamment des gènes codant pour des agents antioxydants tels que par exemple la SOD (Superoxyde Dismutase), la GPX (Glutathion Peroxydase), la Catalase ou une enzyme de la respiration cellulaire ainsi que les gènes de l'apoptose tels que ICE, Bc12, BAX,.... De façon plus générale, tout gène dont l'anomalie d'expression induit une pathologic du système nerveux peut être exprimé dans les constructions de l'invention, tels que des gènes dont la mutation est directement à l'origine de pathologies ou des gènes dont les produits intervicnnent dans la même voie métabolique. I1 peut encore s'agir de gènes toxiques, pour la thérapie anticancéreuse (par exemple la Thymidine Kinase), des ARN antisens, ribozymes, voire des gènes rapporteurs pour les études de développement, cinétique et/ou biodisponibilité, tels que les gènes B-Galactosidase, Lucifcrase, ou GFP (Green Fluorescent Protein). Il peut également s'agir des gènes impliqués dans les systèmes de recombinaison conditionnelle dans le système nerveux dans le but d'établir des modèles animaux, comme par exemple des animaux transgéniques y compris le système de knock out conditionnel. I1 est entendu que l'homme du métier peut aisément adapter le type de gène en fonction de l'utilisation recherchée. Dans les acides nucléiques de l'invention, les différents éléments sont agencés de sorte que promoteur contrôle l'expression du gène thérapeutique et la ou les séquences NRSE contrôlent l'activité du promoteur. Généralement, le gène est donc placé en aval du promoteur et en phase avec celui-ci. Par ailleurs, la région régulatrice est généralement placée en amont du promoteur, bien que, comme indiqué ci-avant, ce ne soit pas nécessaire à l'activité. La distance entre la région régulatrice (séquences NRSE) et le promoteur est variable selon la nature des séquences utilisées et le nombre de répétitions du motif NRSE. Avantageusement, les séquences régulatrices sont placée à une distance inférieure à 2 kb du promoteur, de préférence à une distance inférieure à lkb. La présente invention est également relative à des vecteurs comprenant un acide nucléique tel que défini ci-avant. Ce vecteur est avantageusement capable de transduire les cellules nerveuses de mammifère, notamment humaines. Il peut s'agir d'un vecteur de type plasmidique (plasmide, épisome, chromosome artificiel, etc.) ou viral. Parmi ces derniers, on peut citer de manière privilégiée les vecteurs dérivés des adénovirus, des AAV et des virus de l'herpès, dont le tropisme pour les cellules ct tissus nerveux a été fortement documenté dans l'art antérieur. On peut également citer d'autres virus tels que les rétrovirus ou les rhabdovirus. A cet égard, les exemples fournis ci-après démontrent que les séquences NRSE introduites dans des vecteurs viraux ont une activité très importante, apparemment supérieure à l'activité observée dans des vecteurs plasmidiques. Ainsi, de manière inattendue, lorsque des séquences NRSE ont été introduites dans un vecteur viral (adénovirus), elles induisent une réduction dc 91 à 98 % de l'expression d'un transgènc dans des cellules non-nerveuses in vitro et de 90 à 96% in vivo, comparée à une réduction de 60 à 80% dans un vecteur plasmidique in vitra. Un objet particulier de l'invention réside donc dans un virus recombinant défectif comprenant un acide nucléique d'intérêt sous le contrôle de séquences d'expression, caractérisé en ce que lesdites séquences d'expression comprennent un promoteur et une ou plusieurs séquences NRSE. Selon un mode de réalisation particulier de l'invention, le virus recombinant défectif est un adénovirus. Selon un autre mode de réalisation particulier de l'invention, le virus recombinant défectif est un AAV. Toujours selon un mode de réalisation particulier de l'invention, le virus recombinant défectif est un HSV. Selon un autre mode de réalisation particulier de l'invention, le virus recombinant défectif est un rétrovirus ou un rhabdovirus. Les virus recombinants de l'invention sont défectifs, c'est-à-dire incapables dc réplication autonome dans une cellule. Ainsi, la réplication de ces virus nécessite la présence d'une ou plusieurs fonctions de complémentation, qui ont été supprimées du génome viral. Il peut s'agir dans le cas d'un adénovirus recombinant défectif, des régions El et/ou E2 et/ou E4 par exemples. Dans le cas d'un AAV, il s'agit généralement de tout ou partie des régions Rep et/ou Cap. Des construction similaircs ont été décrites pour les virus de l'herpès. Chacun de ces virus peut alors être fabriqué dans des lignées cellulaires d'encapsidation possédant les dites fonctions déficientes. De telles lignées ont été décrites dans la littérature (293 et dérivés par exemple). D'une manière générale, la production de virus recombinants défectifs est connue dc Homme du métier, ainsi qu'illustré par exemple dans GRAHAM F. et PREVEC L, (In: Methods in Molecular Biology (1991) MURRAY E.J. (ed), the Humana Press Inc, Clifton, NJ, chapter 11, pp109-128). Comme indiqué ci-avant, la présente demande montre la possibilité d'utiliser des séquences NRSE pour réguler fexpression d'un gène in vivo. Elle montre également que les séquences NRSE sont capables, selon leur agencement (nombre de copies), de réguler efficacement l'activité d'un promoteur fort, ce qui permet des utilisations nombreuses et particulièrement avantageuses. L'invention montre cn outre de manière étonnante que l'activité des séquences NRSE semble être potentialisée lorsque cclles-ci sont insérées dans un vecteur d'origine virale. Ce dernier type de construction combinc donc des propriétés particulièrement attrayantes telles que l'efficacité du transfert et la sélectivité d'expression. L'invention concerne également toute cellule comprenant un acide nucléique ou un vecteur ou un virus tel que défini ci-avant. Avantageusement, cette cellule est une cellule nerveuse de mammifère. Il peut s'agir en particulier d'une cellule provenant d'une lignée établie ou d'une cellule provenant d'une culture primaire. Ces cellules peuvent être utilisées pour la production de polypeptides par exemple, ou pour tester l'activité de gènes. Elles peuvent également être utilisées dans des approches de thérapie cellulaire, par implantation ou injection chez un sujet. A cet égard, l'invention a aussi pour objet une composition comprenant un acide nucléique ou un vecteur ou un virus ou une cellule tels que définis ci-avant et un excipient. Avantageusement, il s'agit d'une composition pharmaceutique. Pour leur utilisation selon la présente invention, l'acide nucléique, le vecteur ou les cellules sont préférentiellement associés à un ou des véhicules pharmaceutiquement acceptables peut être formulé en vue d'administrations par voie topique ct notamment stéréotaxique, orale, parentérale, intranasale, intraveineuse, intramusculaire, sous cutanée, intraoculaire, transdermique, etc.... De préférence, l'acide nucléique, le vecteur ou les cellules sont utilisés sous une forme injectable. Il peut s'agir en particulier de solutions salines (phosphate monosodique, disodique, chlorure dc sodium, potassium, calcium ou magnésium, etc, ou des mélanges de tels sels), stériles, isotoniques, ou de compositions sèches, notamment lyophilisées, qui, par addition selon le cas d'eau stérilisée ou de sérum physiologique, permettent la constitution de solutés injectables. Les quantités de ces différents éléments peuvent être ajustés par l'homme du métier en fonction des applications envisagées et en fonction de différents paramètres, comme notamment le site d'administration considéré, le nombre d'injections, le gène à exprimer, ou encore la duréc du traitement recherchée. L'invention concerne encore l'utilisation, pour la préparation d'une composition destinée au transfert et à l'expression d'un acide nucléique d'intérêt dans un tissu ou cellule nerveuse, d'une construction comprenant: - un promoteur - une ou plusieurs séquences NRSE, et - ledit acide nucléique, agencés de sorte que l'expression dudit acide nucléique soit contrôlée par ledit promoteur et que l'activité dudit promoteur soit contrôlée par la ou lesdites séquences. L'utilisation des acides nucléiques de l'invention pour le transfert de gènes in vivo ou ex vivo, par exemple en thérapie génique, permet dc limitcr expression ectopique des transgènes d'intérêt et de cibler l'effet thérapeutique recherché aux populations neuronales. Elle empêche ainsi les effets délétères éventuels dus à la diffusion du transgène dans l'organisme. On peut envisager l'utilisation de ce système dans les diff atteignant spécifiquement des populations neuronales. En neurologie fondamentale, ce système devrait également permettre de préciser l'origine (neuronale ou gliale) des effcts observés in vitro et in vivo. L'invention concerne encore une méthode de régulation de l'expression de gènes in vivo comprenant l'insertion, en amont dudit gène, de séquences NRSE et l'administration de la construction résultante in vivo. La présente demande sera décrite plus en détails à l'aide des exemples qui suivent, qui doivent être considérés comme illustratifs et non limitatifs. Ces exemples décrivent dans un premier temps le clonage d'un nombre croissant de séquences NRSE en amont du promoteur PGK dans des plasmides contenant le gène rapporteur dc la luciférase, et la sélection des constructions permettant une diminution de l'expression de la luciférase après transfection de cellules non-neuronales. Dans un second temps, des constructions adénovirales correspondantes ont été générées et testées in vitro par infection de lignées cellulaires et de cultures primaires, puis in vivo après injection intramusculaire des adénovirus recombinants chez la souris. Les résultats présentés illustrent les avantages des acides nucléiques de l'invention. LÉGENDE DES FIGURES Figure 1: Représentation schématique des plasmides portant un promoteur chimérique de l'invention. Figure 2 : Etudc de fonctionalité des plasmides par transfection dans des cellules nerveuses (PC12) et non-nerveuses (3T3) puis mesure de l'activité luciférase. Figure 3 : Etude de fonctionalité des virus recombinants défectifs in vitro par infection de cellules nerveuses (PC 12) et non-nerveuses (3T3) puis mesure de l'activité luciférase. Figure 4: Etude de fonctionalité des virus recombinants défectifs in vitro sur cultures de cellules primaires nerveuses (infection de cultures primaires de ganglions cervicaux supérieurs) et non-nerveuses (cultures primaires de reins de rats nouveaux-nés) puis mesure de l'activité luciférase. Figure 5 : Etude de fonctionalité des virus recombinants défectifs in vivo par injection intramusculaire chez la souris et mesure de l'activité luciférase. EXEMPLES 1. Construction des promoteurs chimériques et des vecteurs Dlasniidiques Le plasmide pPGK-Luc comprend le gène Luc sous contrôle du promoteur eucaryote ubiquitaire PGK. Pour obtenir le plasmide pPGK-Luc, les 500 pb du promoteur PGK murin ont été insérés dans un plasmide commercial pUT 103 (CAYLA FRANCE) comportant le gène rapporteur luciférase fusionné à la zéocine et une séquence de polyadénylation de SV40 en configuration "early" (PolyA). Ensuite, une, deux, trois, six et douze copies de la séquence NRSE du gène SCGlO (TTCAGCACCACGGAGAGTGCC, SEQ ID n O 1) [2] ont été insérées dans une configuration antiparallele en amont du promoteur PGK. Pour cela, un fragment de 26 pb contenant la séquence NRSE décrite ci-dessus encadrée par 2 sites MluI a été construit par hybridation de 2 oligonucléotides synthétiques correspondants. Ce fragment a été inséré en une ou plusieurs copies au niveau du site MluI de pPGK-Luc et a permis l'obtention des plasmides comportant 1, 2 et 3 copies NRSE. Le plasmide comportant 6 copies NRSE a été obtenu à partir du plasmide en comportant 3 (pNRSE3-PGK-Luc) selon la stratégie suivante : un fragment BamHI / XhoI contenant 3 copies NRSE est extrait de pNRSE3-PGK-Luc et introduit au niveau du site XhoI de pNRSE3-PGK-Luc, ce qui génère p6NRSE-PGK-Luc. De même, le plasmide comportant 12 copies NRSE a été obtenu à partir du plasmide en comportant 6 (p6NRSE-PGK-Luc) en introduisant le fragment BamHI / XhoI en double copie dans p6NRSE-PGK-Luc. Enfin, la cassette d'expression PGK (avec ou sans NRSE)-Luc-PolyA des différents plasmides décrits ci-dessus a été introduite dans un plasmide navette utilisable pour la construction de virus recombinants défectifs, entre la séquence ITR gauche de l'adénovirus (Inverted Terminal Repeat, origine de réplication) et la séquence codant pour le polypeptide IX (protéine de la capside virale) (figure 1). Il est entendu que, selon le même protocole, tout autre plasmide peut être construit incorporant de 1 à 20 copies d'un motif NRSE, associé à un promoteur ubiquitaire eucaryote autre que PGK, sous le contrôle duquel peut être inséré tout transgène d'intérêt. 2. Analvse fonctionnelle par transfections de lienées cellulaires Les constructions plasmidiques décrites dans l'exemple 1 ont été testées par transfection transitoire (électroporation) de lignées neuronales PC 12 (phéochromocytome de rat) et non neuronales 3T3 (fibroblastes de rat). Quarante huit heures après électroporation, les cellules sont rincées par du PBS et récoltées dans 200 ,ul d'un tampon (Tris phosphate 25 mM pH 7,8 contenant 0,08 mM de Lucifénne, 0,1 mM d'ATP, 8 mM de MgC12, 1 mM de dithiothreitol, 1 mM d'EDTA, 15% de glycérol et 1 % de Triton) puis centrifugées. Les mesures de l'activité luciférase s'effectuent à l'aide d'un luminomètre LUMAT LB9501 (Berthold), à température ambiante, sur 50 pLl de surnageant. Les valeurs obtenues sont normalisées par rapport à l'activité CAT (Chloramphénicol Acétyl Transférase) mesurée dans une solution contenant 125 mM de Tris phosphate pH 7,8, 125 I1M de chloramphénicol et 0,12 pM d'acétylcoenzyme A radiomarqué. Les dosages sont réalisés en présence d'un fluide de scintillation Econofluor à l'aide d'un compteur KONTRON après une heure d'incubation à 37 C. Pour chaque construction plasmidique, 3 valeurs d'activité luciférase ont été déterminées et les moyennes et les erreurs standards obtenues sont présentées dans la figure 2. Les résultats obtenus montrent que les constructions comportant 6 et 12 copies NRSE sont capables de diminuer l'expression de la luciférase dc 66 et X2 % respectivement, dans les cellules non-nerveuses (3T3), soit une perte de près d'un logarithme d'expression par rapport à la construction pPGK-Luc. Les résultats montrent également que la présence des motifs NRSE dans les cellules nerveuses PC12 ne diminue pas l'expression de la luciférase, voire même est succeptible de l'augmenter. Une augmentation de 25% statistiquement significative est en effet observée entre p 1 2NRSE-PGK-Luc et pPGK-Luc. 3. Construction de virus recombinants défectifs Dans le but de compléter cette étude in vitro et in vivo, les trois constructions adénovirales correspondantes ont été générées : Ad-PGK-Luc, Ad-6NRSE-PGK-Luc et Ad-12NRSE-PGK-Luc. Ces virus recombinants ont été construits selon les techniques connues de biologic, par co-transfection, dans une lignée d'cncapsidation (cellules 293) des plasmides navettes décrits dans l'exemple 1 et d'un génome viral défectif. Les génomes recombinants encapsidés sont cnsuitc purifiés selon les techniques classiques. 4. Analyse fonctionnelle in vitro Les trois adénovirus construits dans l'exemple 3 ci-dessus ont été testés in vitro par infection de lignées cellulaires et de cultures primaires à une dose de 20 et 200 pfu/cellule respectivement. Les mesures sont effectuées comme décrit précédemment sur 50 ptl de surnageant et normalisées par rapport à la quantité de protéines totales, obtenue à l'aide d'un système Bio Rad protéin assay kit (Bio-Rad). Pour chaque adénovirus, 3 valeurs d'activité luciférase ont été déterminées sur des puits différents. Les valeurs moyennes et les erreurs standards obtenues sont illustrées figure 3 pour les lignées et figure 4 pour les cultures primaires. L'expression du gène rapporteur luciférase est diminuée de 97 % et 99 % respectivement avec les adénovirus recombinants Ad4NRSE-PGK-Luc et Ad12NRSE-PGK-Luc dans la lignée non-neuronale 3T3. Dans la lignée neuronale Pal2, I'activité luciférase des deux adénovirus comportant des séquences NRSE est supérieure à celle observée avec l'adénovirus Ad-PGK-Luc. De même, après infection de cultures primaires de ganglion cervical supérieur (GCS) de rats nouveaux-nés, I'activité luciférase est similaire pour les 3 constructions adénovirales (une analyse de variance globale à un facteur ANOVA ne montre pas de différence significative entre les trois groupes). En revanche, l'expression de la luciférase est diminuée de 91 à 98 % après infection des cultures primaires de reins de rats nouveaux-nés avec les adénovirus recombinants Ad-6NRSE-PGK-Luc et Adl2NRSE-PGK-Luc, soit une perte de 2 logarithmes d'expression de PGK en présence des 12 copies NRSE. Ces résultats sont particulièrement surprenants et remarquables dans la mesure où ils montrent (i) que les promoteurs chimériques de l'invention sont fonctionnels sur des cultures primaires, (ii) que les promoteurs sont fonctionnels dans un contexte viral et (iii) que l'activité de répression est plus grande dans le contexte adénoviral que dans le vecteur plasmidique correspondant (Cf figures 2 et 3). 5. Analvse fonctionnelle in vivo Compte tenu des résultats très encourageants décrits dans l'exemple 4, l'activité des constructions de l'invention a été testée in vivo, par mesure de l'expression de la luciférase après injection intramusculaire de ces 3 adénovirus recombinants chez la souns. Chaque construction adénovirale a été injectée en 3 points dans le muscle gastrocnémien droit de 7 souris à une dose de 2.109 pfu/muscle, sous un volume de 30 Zl. Les muscles injectés ont été prélevés 7 jours après l'injection et dissociés dans 1 ml de tampon en vue d'une détermination de l'activité luciférase réalisée sur 150 Ill de surnageant. Les moyennes et les erreurs standards des 7 valeurs d'activités luciférase obtenues, rapportées à la quantité de protéine, sont présentées sur la figure 5. Ces résultats montrent que l'expression de la luciférase est diminuée de 90 et 96 % avec les adénovirus recombinants Ad-6NRSE-PGK-Luc et Ad-12NRSE-PGK-Luc une semaine après les injections. L'expression de la luciférase après injection intra-musculaire de Ad-12NRSE-PGK Luc et de Ad-PGK-Luc a été comparée a plus long terme chez la souris. Une diminution de l'activité luciférase est toujours observée avec Ad-12NRSE-PGK-Luc un mois (95%) et trois mois (91%) après les injections. Une fois encore, ces résultats confirment la fonctionalité des constructions de l'invention in vivo, et font apparaitre un facteur de répression encore supérieur à ceux observés in vitro. BIBLIOGRAPHIE [1] Mori N., Stein R., Sigmund O. And Anderson D.J. Neuron, 4: 583-594 (1990) [2] Mori N., Schoenherr C., Vandenbergh D.J. And Anderson D.J. Neuron, 9 : 45-54 (1992) [3] Li L., Suzuki T., Mori N. And Greencard P. PNAS USA, 90: 1460-1464 (1993) [4] Schoenherr C.J., Paquette A.J. and Anderson D.J. PNAS USA, 93 : 9981-9886 (1996) [5] Schoenherr C.J. and Anderson D.J. Science, 267 : 1360-1363 (1995) [6] Adra C.N. Boer P.H. and McBurney M.W. Gene, 60 : 65-74 (1987) [7] Moullier P., Marechal V., Danos O. And Heard J.M. Transplantation, 56 : 427-432 (1993) [8] McDonald R.J., Lukason M.J., Raabe O.G., Canfield D.R., Burr E.A., Kaplan J.M., Wadsworth S.C. and St George J.A. Hum. Gene Ther., 8 : 411422 (1997) [9] Maue R.A., Kraner S.D., Goodman R.H. and Mandel G. Neuron, 4 : 223-231(1990). [10] Bessis A., ChamptiauxN., Chatelin L. and Changeux J.P. PNAS USA, 94: 5906-5911 (1997). REVENDICATIONS 1. Acide nucléique recombinant comprenant: - un promoteur - une ou plusieurs séquences NRSE, et - un gêne thérapeutique, agencés de sorte que l'expression dudit gène thérapeutique soit contrôlée par ledit promoteur et que l'activité dudit promoteur soit contrôlée par la ou lesdites séquences. 2. Acide nucléique recombinant selon la revendication 1 caractérisé en ce que le promoteur est un promoteur eucaryote ou viral actif dans les cellules ou tissus nerveux. 3. Acide nucléique recombinant selon la revendication 2 caractérisé en ce que le promoteur est un promoteur eucaryote ubiquitaire, neurospécifique ou spécifique à un type neuronal. 4. Acide nucléique recombinant selon la revendication 3 caractérisé en ce que le promoteur est un promoteur domestique. 5. Acide nucléique recombinant selon la revendication 4 caractérisé en ce que le promoteur est choisi parmi le promoteur des gènes PGK, Efla, patine, vimentine, aldolase A ou al-antitrypsine. 6. Acide nucléique recombinant selon la revendication I caractérisé en ce qu'il comprend de 1 à 20 séquences NRSE, de préférence de 2 à 15. 7. Acide nucléique recombinant selon la revendication 6 caractérisé en ce qu'il comprend de 3, 6 ou 12 séquences NRSE. 8. Acide nucléique recombinant selon la revendication 6 caractérisé en ce que la séquence NRSE comprend tout ou partie de la séquence SEQ ID n" 3 dans laquelle N vaut A, G, C ou T. 9. Acide nucléique recombinant selon la revendication 8 caractérisé en ce que la séquence NRSE est choisie parmi tout ou partie des séquences SEQ ID n" 1, 2, 4-11 ou de variants de celles-ci. 10. Acide nucléique recombinant selon l'une des revendications précédentes caractérisé en ce que la ou les séquences NRSE sont placées en amont du promoteur. 11. Acide nucléique recombinant selon la revendication 1 caractérisé en ce que le gène thérapeutique est un acide nucléique comprenant une phase ouverte de lecture codant pour un ARN ou un polypeptide thérapeutique ou vaccinal. 12. Acide nucléique recombinant selon la revendication 11 caractérisé en ce que le gène thérapeutique est un acide nucléique comprenant une phase ouverte de lecture codant pour un facteur trophique. 13. Acide nucléique recombinant selon la revendication il caractérisé en ce que le gène thérapeutique est un acide nucléique comprenant une phase ouverte de lecture codant pour un agent antioxydant. 14. Vecteur comprenant un acide nucléique selon l'une des revendications 1 - 13. 15. Vecteur selon la revendication 14 caractérisé en ce qu'il s'agit d'un vecteur viral. 16. Virus recombinant défectif comprenant un acide nucléique d'intérêt sous le contrôle de séquences d'expression, caractérisé cn ce que lesdites séquences d'expression comprennent un promoteur et une ou plusieurs séquences NRSE. 17. Virus selon la revendication 16 caractérisé en ce qu'il s'agit d'un adénovirus. 18. Virus selon la revendication 16 caractérisé en ce qu'il s'agit d'un AAV. 19. Virus selon la revendication 16 caractérisé en ce qu'il s'agit d'un HSV. 20. Virus selon la revendication 16 caractérisé en ce qu'il s'agit d'un rétrovirus. 21. Virus selon la revendication 16 caractérisé en ce qu'il s'agit d'un rhabdovirus. 22. Cellule comprenant un acide nucléique selon la revendication 1 ou un vecteur selon la revendication 14 ou un virus selon la revendication 16. 23. Cellule selon la revendication 22 caractérisée en ce qu'il s'agit d'une cellule nerveuse de mammifère. 24. Utilisation, pour la préparation d'une composition destinée au transfert et à l'expression d'un acide nucléique d'intérêt dans un tissu ou cellule nerveuse, d'une construction comprenant: - un promoteur - une ou plusieurs séquences NRSE, et - ledit acide nucléique, agencés de sorte que l'expression dudit acide nucléique soit contrôlée par ledit promoteur et que l'activité dudit promoteur soit contrôlée par la ou lesdites séquences. 25. Composition comprenant un acide nucléique selon la revendication 1 ou un vecteur selon la revendication 14 ou un virus selon la revendication 16. 26. Promoteur chimérique comprenant un promoteur ubiquitaire et une ou plusieurs séquences NRSE. 27. Promoteur chimérique xNRSE-PGK dans lequel x est un nombre entier de 1 à 20.