FR 2781802 A1 20000204 FR 9810084 A 19980731 La présente invention a pour objet de nouveaux dérivés de l'abiétane, de nouveaux conjugués dérivés de l'abiétane et leurs utilisations. Les nouveaux dérivés comprennent le squelette de base de l'abiétane qui répond à la formule ci-dessous ladite molécule comprenant en position 18 un groupement fonctionnel réactif Z. Les nouveaux dérivés de l'abiétane sont utilisables dans un grand nombre d'analyses. A titre d'exemple, ils peuvent être utilisés directement ou indirectement pour le développement de nouveaux tests de diagnostic ; dans le suivi d'une infection, par exemple d'une infection virale ; dans le suivi et/ou le dosage de produits chimiques et en particulier de produits potentiellement polluants. Dans des tests de diagnostic, ils peuvent être utilisés soit comme marqueurs, soit pour constituer une phase solide universelle, soit pour la production d'anticorps monoclonaux ou polyclonaux utilisables à des fins diagnostiques. A ce titre, ils peuvent avantageusement se substituer à la biotine pour développer de nouveaux tests de diagnostic. En effet, il s'agit de molécules chimiques que l'on ne retrouve pas chez l'être humain, en particulier dans le sérum, ce qui signifie qu'ils permettent d'éviter de potentielles interactions avec des molécules biologiques. Dans le dosage et/ou le suivi de produits chimiques, les dérivés de l'abiétane selon l'invention étant chimiquement relativement inertes, ils peuvent être utilisés comme marqueurs dans de nombreux tests de dosage de composés chimiques sans perturber les propriétés physiques et/ou chimiques et/ou physico-chimiques de ces derniers. Sur le plan de la synthèse, étant monofonctionnels, ils sont aisément synthétisables de façon chimiospécifique. A titre d'exemple, on développera maintenant quelques applications des nouveaux dérivés de l'abiétane dans des tests de dosages immunologiques : Utilisation desdits dérivés comme marqueurs dans un test de diagnostic : Les nouveaux dérivés de l'abiétane peuvent être utilisés comme marqueurs dans un test d'immunoanalyse par exemple pour le dosage et/ou la quantification d'anticorps spécifiques d'un antigène dans un échantillon biologique par technique de compétition. A cet effet, l'antigène est fixé sur une phase solide, telle que par exemple représentée par un puits d'une plaque de microtitration. L'échantillon biologique à doser et une quantité déterminée d'un anticorps conjugué à un dérivé de l'abiétane sont ajoutés à la phase solide, et on détecte la formation de complexes antigène/anticorps conjugués à un dérivé de l'abiétane à l'aide d'un anticorps dirigé contre le dérivé de l'abiétane, ledit anticorps étant marqué par tout marqueur approprié. De manière similaire, les dérivés de l'abiétane peuvent être utilisés comme marqueurs dans un test pour le dosage et/ou la quantification d'un antigène dans un échantillon biologique par technique de compétition. Dans ce cas, un anticorps spécifique de l'antigène à doser est fixé sur une phase solide et on ajoute à la phase solide ainsi constituée à la fois l'échantillon biologique susceptible de contenir l'antigène recherché et une quantité prédéterminée d'un dérivé de l'antigène conjugué à un dérivé de l'abiétane. La formation des complexes anticorps/dérivé de l'antigène conjugué à un dérivé de l'abiétane est ensuite mise en évidence par l'addition d'un anticorps dirigé contre le dérivé de l'abiétane, ledit anticorps étant marqué par tout marqueur approprié. De même, les dérivés de l'abiétane sont utilisables comme marqueurs dans une technique sandwich pour la recherche d'un antigène ou d'un anticorps dans un échantillon. A cet effet, le complexe immun anticorps/antigène de l'échantillon est mis en évidence par complexation avec un second anticorps conjugué à un dérivé de l'abiétane ou par complexation avec un second antigène conjugué à un dérivé de l'abiétane et la révélation est effectuée à l'aide d'un anticorps dirigé contre le dérivé de l'abiétane marqué, ledit anticorps étant marqué par tout marqueur approprié. Les dérivés de l'abiétane précités sont couplés à une molécule biologique, telle qu'une protéine choisie parmi les anticorps, les antigènes et les polypeptides, directement ou indirectement. Indirectement, ils sont couplés par l'intermédiaire de composés ayant au moins deux fonctions réactives, identiques ou différentes, tels que des bras espaceurs ou des polymères naturels ou de synthèse définis plus en détail ci-après. Les dérivés de l'abiétane ainsi couplés sont utilisés dans un réactif pour le diagnostic. Ainsi, la présente invention a aussi pour objet un réactif comprenant en outre un dérivé de l'abiétane couplé à une protéine choisie parmi les polypeptides, les antigènes et les anticorps, l'utilisation d'un tel réactif dans un test de diagnostic et une composition comprenant en outre un réactif tel que défini ci-dessus. Utilisation des dérivés de l'abiétane pour la constitution d'une phase solide universelle : A titre d'exemple, des anticorps dirigés contre un dérivé de l'abiétane sont immobilisés sur une phase ou support solide, directement ou indirectement, et un polypeptide ou un oligonucléotide est modifié par fixation à une de ses extrémités d'un dérivé de l'abiétane. Le complexe anticorps dirigé contre le dérivé de l'abiétane/dérivé de l'abiétane-polypeptide ou le complexe anticorps dirigé contre le dérivé de l'abiétane/dérivé de l'abiétane-oligonucléotide est ensuite utilisé selon les techniques usuelles sandwich ou par compétition. La phase solide universelle est constituée par l'ensemble phase solide/anticorps dirigé contre un dérivé de l'abiétane. La présente invention a donc également pour objet un dispositif comprenant outre la phase ou support solide un anticorps polyclonal ou monoclonal dirigé contre un dérivé de l'abiétane, ledit anticorps étant immobilisé directement ou indirectement sur ladite phase ou support solide. De préférence, l'anticorps est un anticorps monoclonal obtenu selon des techniques connues, à titre de référence celle décrite dans l'exemple 10. Les dérivés de l'invention peuvent être utilisés pour le dosage et/ou le suivi de produits chimiques dans un milieu liquide, en particulier dans un milieu aqueux, par technique sandwich ou par technique de compétition comme décrit précédemment pour les tests de diagnostic. Aussi, la présente invention a pour objet de nouveaux dérivés saturés ou insaturés de l'abiétane répondant à la formule générique (I) : dans laquelle Z est choisi dans le groupe consistant en -COOR , -CONR1R2, -COONR3R4, -COR6,-CON, -COOR5, -CHOHR, -SR8, -OR8, - CN,-CNO, -CNS,-NCO, -NCS, -R1R2CR9 ; dans lesquels R , R , R et R , indépendamment les uns des autres représentent un atome d'hydrogène, un radical alkyle comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical aryle de préférence comprenant de 6 à 20 atomes de carbone, éventuellement substitué ; radical alcène comprenant de 7 à 10 atomes de carbone ; radical alcyne comprenant de 1 à 10 atomes de carbone ; radical aminoacyle ou peptidyle éventuellement substitué, ou R1 et R ou R3 et R4 ensemble peuvent former un cycle ou un hétérocycle ; R5 représente un atome d'hydrogène, un radical alkyle comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcène comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcyne comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical aryle, éventuellement substitué, comprenant de 6 à 20 atomes de carbone; Rreprésente un atome d'hydrogène, un halogène, un radical alkyle comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcène comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcyne comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical aryle, éventuellement substitué, comprenant de 6 à 20 atomes de carbone; Rreprésente un atome d'hydrogène, un radical alkyle comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcène comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcyne comprenant de 1 à 10 atomes de carbone ; Rreprésente un atome d'hydrogène, un radical alkyle comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcène comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcyne comprenant de 1 à 10 atomes de carbone ; etR est choisi parmi -CN,-CNO, -CNS,-NCO et-NCS ; à la condition que si ledit dérivé de l'abiétane est un dérivé insaturé, Z ne représente pas un radical acide carboxylique. Par dérivé saturé de l'abiétane, on entend un dérivé ayant le squelette de l'abiétane précité dans lequel les trois cycles et le groupe latéral en position 13 ne comportent aucune insaturation, indépendamment de la définition de Z. Par dérivé insaturé, on comprend un dérivé ayant le squelette de l'abiétane dans lequel au moins l'un des trois cycles et/ou le groupe latéral en position 13 comporte une insaturation. A titre d'exemple de dérivé insaturé, on peut citer ceux dont le squelette est choisi parmi les squelettes de l'acide abiétique, de l'acide déhydroabiétique, de l'acide néoabiétique, indépendamment de la définition de Z. Les radicaux alkyles mentionnés ci-dessus comprennent de préférence de 1 à 6 atomes de carbone. Ils peuvent être linéaires ou ramifés. De préférence, ce sont des radicaux linéaires. Un radical alkyle peut être interrompu par un ou plusieurs hétéroatomes et/ou substitué ou non substitué. Les radicaux aryles mentionnés précédemment comprennent de préférence de 6 à 14 atomes de carbone. Il peut s'agir de composés cycliques ou hétérocycliques, éventuellement substitués, en particulier par des hétéroatomes ou des groupes d'hétéroatomes, tels que des groupements nitro, sulfonique et sulfonate. Avantageusement, -COONR3R4 représente un ester de Nhydroxysuccinimide, -COR représente un chlorure d'acide, CONR1R2 représente un groupement amide N-substitué dans lequel R1 et R2 indépendamment l'un de l'autre représente un atome d'hydrogène ou un radical polyéthylèneglycol et avantageusement un radical tétra ou hexaéthylèneglycol ou encore un radical peptidyle éventuellement substitué comprenant de 2 à 6 résidus aminoacyles. De préférence, le radical peptidyle est un radical glycyl-glycine et avantageusement le radical glycyl-glycine est substitué par la N-hydroxysuccinimide ; -COOR de préférence représente un ester de polyéthylèneglycol et avantageusement un ester de tétra ou hexaéthylèneglycol. La présente invention a aussi pour objet de nouveaux conjugués dérivés de l'abiétane qui répondent à la formule générale (II) dans laquelle, Z représente un radical tel que défini dans la formule (I) précédente ; X représente un bras espaceur choisi parmi une chaîne aliphatique (CH2)n dans laquelle n est un nombre entier compris entre 0 et 10 et de préférence égal à 6, un éthylène glycol ou un polyéthylèneglycol, de préférence un tétra ou hexaéthylèneglycol, un résidu aminoacyle ou peptidyle et en particulier une chaîne peptidique comprenant de 2 à 10 acides aminés; Y représente un polymère choisi parmi les protéines, les polypeptides, les polynucléotides ou oligonucléotides et les polymères chimiques ; à la condition que si ledit conjugué comprend un dérivé insaturé de l'abiétane Y ne soit pas la BSA. Par polymère, on entend une molécule ou une macromolécule constituée d'au moins deux unités monomères. Ainsi, une protéine, est une macromolécule, d'origine naturelle ou obtenue par voie de synthèse ou par technique de recombinaison génétique, présentant une masse moléculaire moyenne d'environ au moins 200 daltons. Un polypeptide correspond à un enchaînement d'au moins deux acides aminés, de préférence de 2 à 20 acides aminés et ses équivalents ; lesdits polypeptides étant obtenus et/ou par voie de synthèse chimique et/ou par fragmentation d'une protéine native à l'aide d'enzymes de restriction appropriées et/ou par recombinaison génétique. Un polypeptide est dit équivalent par rapport à un polypeptide de référence s'il présente sensiblement les mêmes propriétés, et notamment les mêmes propriétés antigéniques, immunologiques, enzymologiques et/ou de reconnaissance moléculaire. Est notamment équivalent à un polypeptide de référence : tout polypeptide possédant une séquence dont au moins un acide aminé est substitué par un acide aminé analogue, c'est à dire un acide aminé qui présente sensiblement les mêmes caractéristiques physico-chimiques qu'un acide aminé de référence ; tout polypeptide présentant une séquence peptidique équivalente, obtenue par variation naturelle ou induite du polypeptide de référence et/ou du fragment nucléotidique codant pour ledit polypeptide ; un mimotope, tout polypeptide dans la séquence duquel un ou plusieurs acides aminés de la série L sont remplacés par un ou plusieurs acides aminés de la série D et vice versa ; tout polypeptide dans la séquence duquel on a introduit une modification des chaînes latérales d'au moins un acide aminé, telle que par exemple une acétylation des fonctions amines, une carboxylation des fonctions thiols, une estérification des fonctions carboxyliques ; tout polypeptide dans la séquence duquel une ou des liaisons peptidiques ont été modifiées, comme par exemple les liaisons carba, rétro, inverso, rétro-inverso, méthylène-oxy et tout polypeptide dont au moins un antigène est reconnu par un anticorps dirigé contre un peptide de référence. Un polynucléotide ou oligonucléotide correspond à un enchaînement d'au moins deux unités monomères, en particulier d'au moins cinq monomères et, de préférence de 5 à 22 monomères, avantageusement de 18 à 22 monomères et préférentiellement de 20 monomères, caractérisé par la séquence informationnelle des acides nucléiques naturels, susceptible de s'hybrider dans des conditions prédéterminées à un fragment nucléotidique, l'enchaînement pouvant contenir des monomères de structures différentes et être obtenu par voie de synthèse chimique et/ou par fragmentation d'un acide nucléique naturel et/ou par recombinaison génétique. Ainsi, un monomère peut être un nucléotide naturel d'acide nucléique dont les éléments constitutifs sont une base azotée, un sucre et un groupement phosphate, ou un nucléotide modifié dans l'un au moins des trois éléments constitutifs ; à titre d'exemple la modification peut intervenir au niveau des bases, générant des bases modifiées telles que l'inosine, la methyl-5-désoxycytidine, la désoxyuridine,, la diméthylamino-5-désoxyuridine, la diamino- 2,6-purine, la bromo-5-désoxyuridine ou tout autre base modifiés permettant l'hybridation ; au niveau du sucre par exemple par le remplacement d'au moins un désoxyribose par un polyamide (P.E. Nielsen et al., Science, 254,1497-1500 (1991)) ; au niveau du groupement phosphate par exemple par son remplacement par des esters choisis parmi les esters de diphosphate, d'alkyl et arylphosphonate et de phosphorothioate. Ces modifications peuvent être prises en combinaison. Par séquence informationnelle , on entend toute suite ordonnée de monomères, dont la nature chimique et l'ordre dans un sens de référence constituent une information correspondant à celle des acides nucléiques naturels. Un polymère chimique correspond à l'enchaînement d'au moins deux unités monomères, identiques ou différentes. De préférence, il présente une masse moléculaire moyenne comprise entre 1000 et 100 000. Ce polymère est de préférence choisi parmi les homopolymères d'anhydride maléique, les copolymères à base d'anhydride maléique, les copolymères à base de Nvinylpyrrolidone et les polysaccharides. En particulier, le polymère est choisi parmi les poly (anhydride maléique- éthylène), les poly (anhydride maléique-propylène), les poly (anhydride maléique-méthyl-vinyléther) (AMVE) ; le N-vinyl pyrrolidone-N-acryloxysuccinimide (NVP-NAS) et les polysaccharides. Selon l'invention, X est avantageusement choisi parmi une chaîne aliphatique (CH2)n dans laquelle n est un nombre entier égal à 6, un éthylène glycol, un tétra ou hexaéthylèneglycol, un résidu peptidyle comprenant de 2 à 10 acides aminés ; Y représente un polymère choisi parmi la BSA, les oligonucléotides de 18 à 22 mers, les homopolymères d'anhydride maléique, les copolymères à base d'anhydride maléique, les copolymères à base de N-vinylpyrrolidone, les polysaccharides. En particulier, le polymère est choisi parmi les oligonucléotides de 20 mers et en particulier l'oligonucléotide dénommé sous la référence SEQ ID NO 2 et décrit ultérieurement dans l'exemple 5, les poly (anhydride maléique-éthylène), les poly (anhydride maléique-propylène), les poly (anhydride maléique-méthyl-vinyléther) (AMVE) et le N-vinyl pyrrolidone-Nacryloxysuccinimide (NVP-NAS). Avantageusement, le polymère est couplé à au moins une protéine et/ou un polypeptide et/ou un oligonucléotide. Les nouveaux conjugués dérivés de l'abiétane sont utilisables dans un grand nombre d'analyses. A titre d'exemple, lesdits conjugués dérivés de l'abiétane sont utilisés dans des tests de diagnostic, tels que des essais immunologiques ou dans des essais utilisant la technologie des sondes ; dans le suivi d'une infection, par exemple d'une infection virale ; dans le suivi et/ou le dosage de produits chimiques et en particulier de produits potentiellement polluants. A titre d'exemple, ils peuvent être utilisés dans un test de diagnostic immunologique comme marqueurs comme décrit au préalable pour les dérivés de l'abiétane ou dans des essais utilisant la technologie des sondes pour la détection et/ou la quantification d'un fragment d'acide nucléique dans un échantillon biologique. Dans la technologie des sondes, ils peuvent être utilisés indifféremment comme sondes de capture et/ou de détection. Ainsi dans la technologie dite sandwich, ils peuvent être utilisés comme sonde de détection selon le protocole suivant : une sonde de capture est immobilisée sur un support solide, la phase de capture ainsi constituée est mise en contact avec la séquence cible de l'échantillon et avec un conjugué dérivé de l'abiétane qui consiste en un oligonucléotide couplé à un dérivé de l'abiétane. Le complexe éventuellement formé est ensuite détecté par addition d'un anticorps dirigé contre le dérivé de l'abiétane, ledit anticorps étant marqué par tout marqueur approprié. Ils peuvent être également utilisés comme sonde de capture. A cet égard, le conjugué dérivé de l'abiétane qui consiste en un oligonucléotide couplé à un dérivé de l'abiétane est immobilisé sur un support solide. La phase de capture ainsi constituée est mise en contact avec la séquence cible de l'échantillon et le complexe éventuellement formé est détecté par une sonde de détection marquée par tout marqueur approprié. La capture peut être réalisée directement ou indirectement, c'est à dire soit le conjugué est immobilisé directement sur le support solide, soit il est immobilisé indirectement par couplage à un anticorps dirigé contre le dérivé de l'abiétane, fixé au préalable sur le support solide. Bien entendu, la technique sandwich peut être effectuée en une étape ou deux étapes. De même, les conjugués de l'invention peuvent être utilisés pour la détection d'une séquence cible dans un échantillon à la fois comme sonde de capture et de détection. Il est à la portée de l'homme de l'art de définir la séquence et la longueur de l'oligonucléotide du conjugué en fonction de la séquence de la cible recherchée dans l'échantillon. Il est également à la portée de l'homme de l'art de définir des sondes de capture et/ou de détection spécifiques de la cible recherchée. La présente invention a donc également pour objet un réactif et une composition diagnostiques .comprenant en outre un conjugué tel que défini précédemment et l'utilisation dudit réactif dans un test de diagnistic. Les conjugués de l'invention peuvent être utilisés également pour développer des phases de capture universelles. Par exemple, des anticorps dirigés contre un dérivé de l'abiétane sont immobilisés, directement ou indirectement, sur une phase ou un support solide et l'oligonucléotide du conjugué de l'invention est modifié par fixation à une de ses extrémités, de préférence au niveau de l'extrémité 5', d'un dérivé de l'abiétane. La phase solide universelle est constituée par l'ensemble phase solide/anticorps dirigé contre un dérivé de l'abiétane. Un autre objet de l'invention est donc un dispositif comprenant outre la phase ou le support solide un anticorps polyclonal ou monoclonal immobilisé directement ou indirectement sur la phase ou le support solide. L'anticorps est de préférence un anticorps monoclonal obtenu selon des techniques connues et en particulier selon la technique décrite dans l'exemple 10. Un conjugué de l'invention comprenant un polymère chimique peut également être utilisé comme marqueur ou pour développer une phase de capture universelle, comme décrit précédemment. Un conjugué de l'invention peut être utilisé comme immunogène, pour l'immunisation d'organismes appropriés, tels que des animaux, pour la production d'anticorps monoclonaux ou polyclonaux. L'invention a donc aussi pour objet un réactif et une composition diagnostiques comprenant en outre lesdits anticorps monoclonaux ou polyclonaux et de préférence des anticorps monoclonaux obtenus selon des techniques connues, comme celle décrite à l'exemple 10. L'invention comprend également l'utilisation dudit réactif dans un test de diagnostic. Par ailleurs, un conjugué de l'invention peut être utilisé pour le dosage et/ou le suivi de produits chimiques, par technique de compétition ou par la technique dite sandwich. Ainsi, la présente invention a également pour objet une composition comprenant en outre un conjugué de l'invention et un anticorps polyclonal ou monoclonal obtenu par immunisation d'organismes appropriés à l'aide de l'immunogène précité, de préférence un anticorps monoclonal anti-acide abiétique obtenu par immunisation d'un animal selon des techniques connues, telles que celle décrite ultérieurement dans l'exemple 10. L'invention se rapporte également à l'utilisation d'une composition telle que définie précédemment pour le dosage et/ou le suivi de produits chimiques. La figure annexée représente les signaux obtenus lors la détection en ELISA de l'antigène alpha foeto-protéine soit par utilisation d'un anticorps polyclonal anti- alpha foetoprotéine (symboles ronds), soit par utilisation d'un conjugué de l'invention AMVE/acide abiétique hydrazide/ anticorps polyclonal anti-alpha foeto-protéine (symboles carrés). En abscisse sont représentées les quantités d'alpha foeto-protéine en ng/ml et en ordonnée les DO à 492 nm. Exemple 1 : synthèse de l'ester N-hydroxysuccinimide de l'acide abiétique Dans un ballon monocol de 100 ml sous atmosphère d'azote, 1 gramme d'acide abiétique (3,3 mmol-1 équivalent (1 eq)) est dissout dans 40 ml de CH2Cl2 à la température de 0 C. 1,1 eq de N-hydroxysucciminide est ajouté. 1 eq de DDC est ensuite ajouté goutte à goutte, soit 0,825 ml d'une solution à 4 mol/1 dans du CH2Cl2 anhydride. La réaction est effectuée pendant 5 h à -20 C, puis le milieu est dilué dans 200 ml d'éther et ensuite précipité pendant 24 h à -20 C. Après filtration sur verre fritté, les eaux mères sont évaporées. La purification est effectuée sur 75 fois le poids de silice en éluant avec le mélange pentane/AcEtOH/CHC13 (65/25/10). 0,0998 gramme de l'ester C24H3304N est récupéré, soit un rendement de 75%. C24H3304N Mw=399. 54 g/mole. IR : (cm-1) 2957 (CH3, CH2, CH) 1777 (C=O cycle NHS); 1740 (C=O amide). RMN: 1H (ppm) 5,74 (s, CH); 5,3 (d, CH); 2,79 (s, CH2, NHS); 1,29 (s, CH3) ; 1,01 (d, CH3) ; 0,98 (d, CH3); 0,82 (s, CH3) . lic (ppm) 173,5 (C=O); 169,2 (C=O); 145 (C quater.) ; (C quater.) ; 122,4 (CH=); 120,4 (CH=); 25,6 (CH2 du NHS). Exemple 2 : synthèse d'un dérivé glycyl-glycine activé de l'acide abiétique La synthèse est effectuée selon le schéma réactionnel décrit ci-dessous : Synthèse du chlorure d'acide (i): L'acide abiétique est recristallisé avant de synthétiser le chlorure. Dans un ballon tricol de 100 ml sous atmosphère d'azote, 1,2 gramme d'acide abiétique (3,97 mmol-leq) sont dissous dans 10 ml de toluène anhydre et refroidi à 0 C. 3 eq soit 1ml de chlorure d'oxalyle sont additionnés en solution dans 3 ml de toluène anhydre . Après 15 min à 0 C, la réaction est laissée 2 h à température ambiante. Le milieu est cannulé dans un ballon monocol et le toluène est éliminé sous vide partiel, puis séché 2 h sous vide. Le produit sera utilisé tel quel pour l'étape suivante. La disparition totale de l'acide est contrôlée en chromatographie sur couche mince (pentane/AcEtOH/CHC13 : 65/25/10). Par infrarouge, l'apparition d'une bande à 1775 cm'montre la présence de chlorure d'acide (O=C-Cl), ce qui confirme la disparition de la bande acide à 1700 cm et de la bande OH à 3000 cm-1. Le rendement est quantitatif. Couplage de l'ester éthylique du glycyl-glycine (ii) : 1,95 gramme de l'ester éthylique du glycyl-glycine sous la forme d'hydrochlorure (9,92 mmol-1 eq) est dissous en présence de triéthylamine (2 eq) dans 30 ml de diclorométhane anhydre (distillé sur hydrure de calcium) dans un flacon tricol de 100 ml sous azote. Le chlorure de l'acide abiétique (9,92 mmol-leq) solubilisé dans 15 ml de dichlorométhane anhydre est additionné lentement à la solution précédente. Lar réaction, elle est laissée 7 h à température ambiante. Les sels d'amodium sont précipités dans 200 ml d'éther, puis filtrés sur verre fritté. Des lavages sont effectués avec HC1 0,1M, puis la phase organique est lavée par une solution saturée de NaCl avant d'être séchée sur Na2SO4. Après filtration, le solvant est éliminé sous vide partiel. Le rendement global sur les deux étapes est de 83%. Saponification de l'ester éthylique du glycyl-glycine (iii) : La saponification est réalisée en dissolvant environ 2 grammes d'ester dans 30 ml d'éthanol et en ajoutant lentement environ 5 ml de NaOH. Au bout de 2 h, l'ester a totalement disparu, ce qui est confirmé par les spots de Rf sur silice (éluant 70/30 : éther/acétone) (Rf ester=0,6 Rf acide=0). Le milieu est dilué dans 250 ml d'eau puis lavé trois fois avec 50 ml d'éther. Après acidification par HC1 2N, le composé est extrait par trois fois avec 50 ml d'éther. La phase éthérée est lavée avec du NaCl saturé, séchée sur Na2S04, puis filtrée. Le rendement brut est de 86%. Activation du dérivé glycyl-glycine sous forme d'ester Nhydroxysuccinimide (iv) : 0,2645 gramme de l'acide obtenu dans l'étape précédente (0,635 mmoles-1 eq) est dissous dans 40 ml de CH2Cl2, puis 0,111 gramme de N-hydroxysuccinimide est ajouté. Le milieu est refroidi sous atmosphère d'azote à 0 C et 0,63 ml de DCC en solution à 1M dans CH2Cl2 est versé en une fois. La réaction est maintenue à température ambiante pendant 5 h et la dicyclohexylurée est précipitée à -20 C pendant 24 h. Le produit (C28H39O6N3) est filtré sur 20 fois le poids de silice en éluant par un mélange éther/acétone (80/20). Le rendement est de 20%. SM (FAB+) C28H3906N3 MH+ (calc. )= 514. 29169 g/mole. MH+ (exp. )= 514. 29171 g/mole. IR: (cm-1) 1643 (C=0 amide II) 1740 (C=O amide) 1784,1823 (C=O NHS) 2937 (CH3, CH2, CH) 3389 (NH amide) RMN : 1H: (ppm) 0.79 (s, CH3), 0.95 (d, J=1.6 Hz, CH3), 0.98 (d, J=1.4 Hz, CH3), 1. 25 (s, CH3), 2. 79 ( CH2, N-hydroxysuccinimide), 4. 34 (d, J=5. 6 Hz, CH2), 5. 3 (CH), 5. 74 (s, CH). 13C: (ppm) Exemple 3 : Synthèse d'un dérivé hydrazide de l'acide abiétique L'acide abiétique est activée au préalable sous forme de chlorure, comme décrit dans l'exemple 3.0,53 g d'hydrazide tBOC (4 mmoles) est dissout dans 10 ml de toluène anhydride auquel sont ajoutées 0,6 ml (2 eq) de triéthylamine sous atmosphère d'azote. 1 eq de chlorure d'acide en solution dans le toluène sont ajoutés au goutte à goutte à la température de 0 C. La réaction est laissée pendant 18 h à température ambiante. Après quoi, on observe l'apparition d'un précipité. Le milieu est acidifié par ajout de 4 ml de HC1 1 N, le précipité est filtré sur verre fritté. Le milieu est dilué dans 50 ml d'éther et après séchage sur Na2S04, la phase organique est évaporée sous vide et séchée à la pompe. Le produit est filtré sur 20 fois le poids de silice en éluant avec un mélange héxane/acétone (80/20). Le produit est isolé avec un rendement de 47 %. L'hydrazide t-BOC est clivé dans le dioxanne anhydre par une solution d'HCl anhydre à 4M dans le dioxane-anhydre. Après 20 h à température ambiante, un précipité apparaît. Un bullage d'azote permet d'entraîner l'HCl restant. L'évaporation au rotavap élimine l'acide et le dioxanne. Le résidu est ensuite repris dans de l'éther puis filtré sur verre fritté. Le rendement en brut est de 54 %. Exemple 4 : Synthèse d'un dérivé glycyl-glycine hydrazide de l'acide abiétique 1 ml d'hydrate d'hydrazine (19 mmole-21 eq) en solution dans 5 ml de dioxanne anhydre sont agités vigoureusement. 0,4777 g d'ester obtenu selon l'exemple 3 (0,93 mmol-1 eq) en solution dans 45 ml de dioxanne anhydre sont ajoutés en 1 h 30. Un précipité apparaît après 50 min de réaction. Après 4 h de réaction, le milieu est précipité dans 250 ml d'éther, la filtration permet d'isoler un composé qui est repris dans CHC13 puis séché sous vide après concentration. La dissolution dans CHCl3 est suivie d'une reprécipitation dans l'éther et 200 mg de produit sont isolés, soit un rendement de 49 %. IR: (cm-1) 1655 (C=0 amide II) 2932 (CH3, CH2, CH) 3319 (NH, NH2 bande large) Exemple 5 : couplage de l'ester N-hydroxysuccinimide de l'acide abiétique sur un oligonucléotide Des oligonucléotides sont synthétisés sur un appareil automatique 394 de la société APPLIED BIOSYSTEMS en utilisant la chimie des phosphoramidites selon le protocole du constructeur. Pour permettre le couplage d'un oligonucléotide à l'ester N-hydroxysuccinimide de l'acide abiétique sur une position bien déterminée, des fonctions réactives sont introduites sur l'oligonucléotide par l'intermédiaire de bras de liaison compatibles avec la synthèse automatique, comme décrit dans le brevet FR 93 07093 dont l'enseignement est inclus à titre de référence. Les oligonucléotides suivants ont été synthétisés : SEQ ID NO Nucléotide (*) Tr (**) 1 bêta 19,54 2 bêta 18,45 3 bêta 19,85 4 alpha 23,21 5 alpha 20,04 SEQ ID NO 1 : ACTAAAAACT AGTAATGCAA AG 22 mers SEQ ID NO 2 : ATGTCACGAG CAATTAAGCG 20 mers SEQ ID NO 3 : ACTAAAAACT AGNAATGCAA AG 22 mers SEQ ID NO 4 : ACCCCGAGAT TTACGTTATG T 21 mers SEQ ID NO 5 : TTTTTTTTTT TTTTTTTTTT 20 mers (*) les nucléotides bêta sont des nucléotides naturels (la liaison glycosidique est sous la forme anomérique bêta). Les nucléotides alpha sont des nucléotides non naturels (la liaison glycosidique est sous la forme anomérique alpha). Les oligonucléotides contenant les nucléotides alpha ont été préparés selon la technique décrite dans la demande de brevet PCT W088/04301, dont le contenu est incorporé à titre de référence. (**) Tr représente le temps de rétention en minutes de l'oligonucléotide dans les conditions décrites dans le brevet FR 93 07093 cité précédemment. 200 g de l'oligonucléotide de synthèse SEQ ID NO 2 sont dissous dans 25 /il de tampon carbonate, 0,2 M/NaCl 0,15 M, pH=8,8. 500 l d'une solution de l'ester C24H3304N à 2,5 mg/ml dans du DMSO anhydre sont ajoutés à la solution de l'oligonucléotide. Le mélange est agité vigoureusement puis laissé pendant 4 h à 50 C sur un thermo-mixeur. 10 l NH4C1 1M pH=6 sont ajoutés en fin de réaction. Le milieu est séché au speed-vac, puis repris dans de l'eau. Trois extractions par du buthanol sont effectuées pour éliminer ce qui n'a pas réagi. Après lyophilisation, le l'oligonucléotide est repris dans de l'eau bidistillée et analysé par HPLC en phase inverse sur une colonne RP300 avec l'éluant suivant : TEAA 0,1M - TEAA O,1M/CH3CN (50/50). Le profil du chromatogramme montre la présence d'oligonucléotide non modifié et un massif de pics plus hydrophobes contenant l'oligonucléotide couplé à l'ester. Le rendement estimé par intégration de l'aire des pics et en considérant que les coefficients d'extinction moléculaire sont identiques est de 40%. Exemple 6 : Couplage de l'ester C28H39O6N3 sur un oligonucléotide Le protocole est identique à celui décrit dans l'exemple 5.20% de rendement en produit isolé sont obtenus après les extractions au butanol. La purification est effectuée en HPLC. Exemple 7 : Couplage du dérivé glycyl-glycine hydrazide sur le polymère AMVE 100 l (1 mg) d'une solution à 10 mg/ml d'AMVE dans le DMSO anhydre sont mis à réagir avec 200 /il (0,2 mg) d'hydrazide glycyl-glycine d'acide abiétique en présence de 20 l de DIEA et 680 ml de DMSO. La réaction est laissée 17 h à 37 # C. Exemple 8 : Couplage de l'ester C24H3304N sur la BSA 20 mg de BSA (fraction 5-Sigma) sont dissous dans 1 ml de tampon carbonate 0,2 M/NaCl 0,5 M, pH = 8,2. A 40 l de cette solution (1,212 x 10-8 mol) sont ajoutés 960 /ni d'une solution d'ester obtenu selon l'exemple 1 à 1 mg/ml (soit 200 eq) dans le DMSO anhydre. Après agitation vive, l'épendorf est agité pendant 5 h à 37 C sur un thermomixeur. Le mélange est dilué dans un grand volume d'eau, puis filtré sur Centricom (nom commercial) PM30 à 7 TPM. L'opération est répétée 3 fois pour éliminer l'ester n'ayant pas réagi et les produits d'hydrolyse, ainsi que pour entraîner le DMSO. Le résidu est séché au speedvac puis repris dans un volume de 1 ml d'eau bidistillée. Le conjugué est dosé après dilution en mesurant la DO à 280 nm. Le conjugué obtenu sera injecté à des souris pour induire une réponse immunitaire et la production d'anticorps monoclonaux, comme décrit dans l'exemple 10. Exemple 9 : Couplage de l'ester C28H39O6N3 sur la BSA Le protocole est identique à celui décrit dans l'exemple précédent. Le couplage met en jeu 40 ou 80 eq d'esters NHS. Les conjugués obtenus seront injectés à des souris pour induire une réponse immunitaire et la production d'anticorps monoclonaux, comme décrit dans l'exemple qui suit. Exemple 10 : Obtention d'anticorps monoclonaux anti-acide abiétique Un antigène de l'acide abiétique couplé sur de la BSA comme décrit respectivement dans les exemples 10 et 11 est utilisé comme immunogène. Chacun des antigènes a été injecté à des souris femelles de l'espèce BALB/C et de la souche BALB/C BYJICO. Les souris sont immunisées à 15 jours d'intervalle à l'aide de trois injections par voie intrapéritonéale associant respectivement 50 g d'antigène et de l'adjuvant complet de Freund pour la 1 ère injection et de l'adjuvant incomplet de Freund pour les autres injections. La fusion est réalisée avec la lignée myélomateuse SP2/0-AG14, selon la technique classique décrite par Kôlher et Milstein (Nature 256,495-497 1975). Les cellules ont été cultivées en utilisant un milieu de base : Iscove's Modified Dulbecco Medium (IMDM) additionné de bicarbonate de sodium (3024 mg/1), de 10% de sérum de veau foetal (SVF) , pH 6,7 à 7,3. Les réactifs additionnels suivants ont été ajoutés : 4 mg/1, 2-mercaptoéthanol (10 M), éthanolamine (20 M), pénicilline (100 U/ml), et streptomycine (50 g/ml). Les cellules hétérolploïdes obtenues ont été subcultivées tous les deux ou trois jours et congelées dans le milieu IMDM additionné de 10% de sérum de veau foetal (SVF) et 10% de diméthylsulfoxide (DMSO commercialisé par Sigma) d'abord à. -80 C pendant 24 à 72 heures, puis conservées dans de l'azote liquide à -180 C. La concentration cellulaire est de 3,6 x 10 cellules par ampoule (2 x 10 cellules/ml). La production d'anticorps in vivo a été effectuée par injection intrapéritonéale des lignées d'hybridomes obtenues dans des souris femelles ayant de 4 à 6 semaines, de l'espèce BALB/C, de la souche BALB/C BYJICO. Exemple 11 : Criblage des anticorps anti-acide abiétique Un criblage a été effectué par la technique ELISA indirect comme suit : des plaques de polystyrène Maxisorb NUNC (commercialisées par la société Polylabo Paul Block sous la référence 4-39454) sont sensibilisées avec 100 l d'acide abiétique couplé à un oligonucléotique (ODN) comme décrit dans l'exemple 2 à 0,25 g/ml d'acide abiétique-ODN dans du tampon PBS x 3 (NaCl 0,45 M ; phosphate de sodium 0,15 M ; pH7,0). Les plaques ont été incubées une nuit à 22 C ou une heure à 37 C. Les plaques ont été saturées avec 100/il de tampon PBS (50mM phosphate et 150mM NaCl, pH 7,2) additionné de 1% d'extrait de lait lyophilisé (Régilait) durant 1 heure à 37 C. 100 l d'anticorps, dilués dans du PBS-Tween 20 à 0,05 % ont été ajoutés et incubés une heure à 37 C. 100 /ni d'immunoglobulines anti-Ig totales de souris conjuguées à la phosphatase alcaline (Jackson Laboratories référence 115-055-062) dilués au 1/2000 dans du tampon PBS-BSA 1% (phosphate buffer saline-bovine sérum albumine) ont été ajoutés et incubés pendant une heure à 37 C. La révélation a été effectuée par addition de 100 [il de pnitrophénylphosphate ((pNPP), commercialisé par bioMérieux, référence 60002990) à la concentration de 2 mg/ml dans de la DEA-HC1 (commercialisé par bioMérieux, référence 60002989), pH 9,8, et incubation pendant 30 minutes à 37 C. La réaction a ensuite été bloquée avec 100 /il de NaOH 1N. Trois lavages ont été effectués entre chaque étape avec 300 l de PBS-Tween 20 à 0,05 % et un lavage supplémentaire a été réalisé en eau distillée avant d'ajouter le pNPP. Exemple 12 : Couplage de l'ester C28H3906N3 sur un anticorps anti-alpha-foeto-protéine (anti-AFP) Le dérivé N-hydroxysuccinimide est couplé à un anticorps monoclonal anti-AFP dans un mélange tampon borate de sodium 0,1M pH 9,2 contenant 8% en volume de diméthylsulfoxide. Le rapport molaire anticorps/dérivé est 1/45. Le milieu réactionnel est agité 4 heures à température ambiante, avant d'être dialysé contre du PBS. - Mise en en évidence immunologique du greffage du dérivé de l'acide abiétique sur l'anticorps. Les puits d'une plaque de microtitration NUNC MAXISORB sont sensibilisés pendant deux heures à 37 C avec une solution de l'anticorps obtenu précédemment dilué à 10 g/ml dans un tampon carbonate 50 mM.. Après lavage au PBS- 0. 5% Tween 20, des solutions d'anticorps anti-acide abiétique marqués à la peroxydase dilués dans du PBS-Tween contenant 10% en volume de sérum de cheval sont incubées une heure à 37 C. Après lavages, on ajoute le substrat enzymatique, o-phénylène diamine, la réaction colorimétrique est stoppée par ajout d'acide sulfurique 1N. L'intensité de la coloration est lue à 492 nm sur un lecteur Axia Micro-reader, bioMérieux. Les signaux spécifiques obtenus sont de 2500 milliabsorbances. Exemple 13 : Couplage du dérivé glycyl-glycine hydrazide sur polymère et greffage sur anticorps anti-alpha foeto protéine (AFP) 10 /il (150 g) d'une solution à 15 mg/ml d'AMVE dans du DMSO anhydre sont mis à réagir avec 10 l (2 g) d'hydrazide glycyl-glycine de l'acide abiétique en présence de 980 /ni de DMSO anhydre. Le mélange est agité vivement pendant 5 min, puis 15 /il de ce milieu sont additionnés à 1 ml d'anticorps anti-AFP polyclonal à 0,5 mg/ml dans un tampon Tris 50 mM, pH = 9,2. Le couplage est effectué pendant 1 nuit à 37 C. Exemple 14 : Couplage de l'acide abiétique et d'un anticorps polyclonal de lapin anti-alpha foeto-protéine sur la copolymère AMVE Dans 1 ml de diméthylsulfoxide (DMSO), sont dissoutes successivement 22 nmoles de copolymère AMVE (masse molaire 67 000 g/mole) puis 16 moles du dérivé hydrazide issu de l'exemple 3. Après 20 minutes d'agitation du mélange réactionnel à température ambiante, 15 /il de la solution sont prélevés et ajoutés à 1 ml de solution d'anticorps à 0,5 g/1 dans un tampon Tris-HCl 50 mM pH 9,2. Le milieu réactionnel est agité à température ambiante pendant 12 heures. Les conjugués sont conservés en l'état à +4 C. Le greffage de l'acide abiétique et de l'anticorps polyclonal sur le copolymère AMVE est contrôlé par un test immunologique comme suit : Un anticorps monoclonal de souris dirigé contre l'acide abiétique obtenu selon l'exemple 10 est dilué à la concentration de 10 jug/ml dans un tampon carbonate 50 mM. Les puits d'une plaque de microtitration NUNC MAXISORB sont sensibilisés avec cet anticorps pendant deux heures à 37 C. Après lavages au PBS (Phosphate Buffer Saline) - 0. 5% Tween 20, des solutions de complexes AMVE/anticorps polyclonal de lapin anti-alpha foeto-protéine/dérivé hydrazide de l'acide abiétique dilués dans du PBS-Tween contenant 10% en volume de sérum de cheval sont incubées une heure à 37 C. Deux possibilités de détection sont possibles à ce niveau de l'expérience : - Détection de la fixation du dérivé hydrazide de l'acide abiétique Après trois lavages au PBS-Tween, on incube une heure à 37 C avec un anticorps monoclonal anti-acide abiétique conjugué à la Peroxydase dilué au 1/1500 dans du PBS-Tween contenant 10% en volume de sérum de cheval. Après lavages, on ajoute le substrat enzymatique, o-phénylène diamine, la réaction colorimétrique est stoppée par ajout d'acide sulfurique 1N. L'intensité de la coloration est lue à 492 nm sur un lecteur Axia Micro-reader, bioMérieux. Les valeurs de Densité Optique obtenues sont de 2500 milliAbsorbance pour les échantillons et de 170 pour le contrôle négatif, prouvant ainsi que le dérivé hydrazide de l'acide abiétique s'est bien fixé sur le polymère. - Détection de la fixation de l'anticorps polyclonal sur le copolymère AMVE. Après trois lavages au PBS-Tween, on incube une heure à 37 C avec un anticorps anti-anticorps de chèvre conjugué à la Peroxydase dilué au 1/3000 dans du PBS-Tween contenant 10% en volume de sérum de cheval. Après lavages, on ajoute le substrat enzymatique, o-phénylène diamine, la réaction colorimétrique est stoppée par ajout d'acide sulfurique 1N. L'intensité de la coloration est lue à 492 nm sur un lecteur Axia Micro-reader, bioMérieux. Les valeurs de Densité Optique lues sont de 2500 milliAbsorbance pour les échantillons et de 25 pour le contrôle négatif, prouvant ainsi que l'anticorps polyclonal anti AFP s'est bien fixé sur le polymère. Cet exemple montre que l'on peut détecter par une technique sandwich des polymères porteurs de l'acide abiétique. Exemple 15 : Amplification du signal de détection de l'antigène alpha foeto-protéine par les complexes mixtes AMVE/dérivé hydrazide de l'acide abiétique/anticorps polyclonal anti-alpha foeto-protéine. Un anticorps monoclonal de souris dirigé contre l'alfa fto-protéine (AFP) est dilué à la concentration de 10 g/ml dans un tampon carbonate 50 mM. Les puits d'une plaque de microtitration NUNC MAXISORB sont sensibilisés pendant deux heures à 37 C avec cet anticorps. Après lavage au PBS- 0.5% Tween 20, des solutions d'antigène AFP dilué dans du PBS-Tween contenant 10% en volume de sérum de cheval sont incubées une heure à 37 C. A ce stade deux procédés de détection sont envisageables, soit d'une façon non amplifiée, soit en utilisant le complexe mixte précédemment obtenu pour accroître le niveau de signal. - Détection simple de l'antigène AFP Après trois lavages au PBS-Tween, on incube une heure à 37 C l'anticorps polyclonal anti - AFP conjugué à la Peroxydase dilué au 1/3000 dans du PBS-Tween contenant 10% en volume de sérum de cheval. Après lavages, on ajoute le substrat enzymatique, o-phénylène diamine, la réaction colorimétrique est stoppée par ajout d'acide sulfurique 1N. L'intensité de la coloration est lue à 492 nm sur un lecteur Axia Micro-reader, bioMérieux. Les valeurs de densité optique (DO), lues à 492 nm sur l'Axia micro-reader de bioMérieux, pour les échantillons sont rapportées dans la figure annexée. - Détection amplifiée par le polymère de l'antigène AFP Après trois lavages au PBS-Tween, on fait incuber une heure à 37 C le conjugué mixte polymère/acide abiétique hydrazide/ anticorps polyclonal anti-AFP dilué au 1/50 dans du PBS-Tween contenant 10% en volume de sérum de cheval. Après lavages, on incube pendant une heure à 37 C un anticorps anti-acide abiétique marqué à la peroxydase. Après lavages, on ajoute le substrat enzymatique, o-phénylène diamine. La réaction colorimétrique est stoppée par ajout d'acide sulfurique 1N. L'intensité de la coloration est lue à 492 nm sur un lecteur Axia Micro-reader, bioMérieux. Les valeurs de DO, lues à 492 nm sur l'Axia micro-reader de bioMérieux, pour les échantillons sont rapportées dans la figure annexée. Les résultats montrent que l'utilisation de polymère permet d'amplifier les signaux de détection lors de l'utilisation d'une technique ELISA. Exemple 16 : Essai en compétition avec des hormones naturelles Un test ELISA en compétition a été effectué selon la technique décrite dans le brevet FR 93 07093 cité précédemment en utilisant les hormones naturelles T3, T4, progestérone, testostérone et oestradiol. Bien que les hormones stéroïdiennes présentent une analogie de structure avec l'acide abiétique, il ne faut pas que les anticorps développés présentent des réactions croisées avec ces hormones. La phase antigène a été obtenue comme décrit dans l'exemple 11, puis on incube une heure à 37 C des concentrations croissantes d'hormone dissoute dans une solution à 5 g/ml d'un anticorps anti-acide abiétique dans du PBS-Tween contenant 10% en volume de sérum de cheval. Après lavages au PBS Tween, un anticorps anti-anticorps de souris couplé à la peroxydase en solution dans du PBS Tween - cheval est incubé une heure à 37 C. Après lavages, on ajoute le substrat enzymatique, o-phénylène diamine La réaction colorimétrique est stoppée par ajout d'acide sulfurique 1N. L'intensité de la coloration est lue à 492 nm sur un lecteur Axia Micro-reader, bioMérieux. Les résultats montrent qu'il n'y a pas d'inhibition avec les hormones stéroïdiennes telles que oestradiol, testostérone et progestérone. Par contre on observe une réaction croisée avec les hormones thyroïdiennes T3 et T4. On obtient 25% d'inhibition pour une concentration de 0,33 mole/ml d'hormone ce qui est bien au delà des concentrations physiologiques en hormone totale (c'est à dire libre et liée) qui sont respectivement de 2 - 4 nmole/1 pour la T3 et 50 - 100 nmole/1 pour la T4. Ces résultats permettent de conclure que les anticorps anti-acide abiétique sont très spécifiques et peuvent être utilisés dans le domaine de l'analyse sans risque de réaction croisée. REVENDICATIONS 1. Dérivé saturé ou insaturé de l'abiétane de formule générale (I) dans laquelle Z est choisi dans le groupe consistant en -COORS, -CONR1R2, -COONR3R4, -COR6,-CON, -COOR5, -CHOHR, - SR8, -OR8, -CN,-CNO, -CNS, -NCO, -NCS, -R1R2CR9 ; dans lesquels R , R , R et R , indépendamment les uns des autres représentent un atome d'hydrogène, un radical alkyle comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical aryle de préférence comprenant de 6 à 20 atomes de carbone, éventuellement substitué ; un radical alcène comprenant de 7 à 10 atomes de carbone ; un radical alcyne comprenant de. 1 à 10 atomes de carbone ; radical aminoacyle ou peptidyle éventuellement substitué, ou R et R ou R et R ensemble peuvent former un cycle ou un hétérocycle ; R représente un atome d'hydrogène, un radical alkyle comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcène comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcyne comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical aryle, éventuellement substitué, comprenant de 6 à 20 atomes de carbone; R6 représente un atome d'hydrogène, un halogène, un radical alkyle comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcène comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcyne comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical aryle, éventuellement substitué, comprenant de 6 à 20 atomes de carbone; R représente un atome d'hydrogène, un radical alkyle comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcène comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcyne comprenant de 1 à 10 atomes de carbone ; R8 représente un atome d'hydrogène, un radical alkyle un radical alkyle comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcène comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcyne comprenant de 1 à 10 atomes de carbone ; etR est choisi parmi-CN, -CNO,-CNS, -NCO et-NCS ; à la condition que si ledit dérivé de l'abiétane est un dérivé insaturé, Z ne représente pas un radical acide carboxylique. 2. Dérivé selon la revendication 1, dans lequel le radical alkyle comprend 6 atomes de carbone et la radical aryle comprend de 6 à 14 atomes de carbone. 3. Dérivé selon les revendications 1 et 2, dans lequel -COONR3R4 représente un ester de N-hydroxysuccinimide, -COR représente un chlorure d'acide, -CONR R représente un groupement amide N-substitué dans lequel R1 et R indépendamment l'un de l'autre représente un atome d'hydrogène, un radical polyéthylèneglycol, un radical peptidyle éventuellement substitué comprenant de 2 à 6 résidus aminoacyles et -COORest un ester de polyéthylèneglycol. 4. Dérivé selon la revendication 3, dans lequel R et R2 indépendamment l'un de l'autre représente un atome d'hydrogène, un radical tétraéthylèneglycol, un radical hexaéthylèneglycol ou un radical glycyl-glycine et -COOR est choisi parmi les esters de tétraéthylèneglycol et d'hexaéthylèneglycol. 5. Dérivé selon la revendication 4, dans lequel le radical glycyl-glycine est substitué par la N- hydroxysuccinimide. 6. Conjugué dérivé de l'abiétane selon la formule (II) dans laquelle Z est choisi dans le groupe consistant en -COORS, -CONR1R2, -COONR3R4, -COR6,-CON, -COORS, -CHOHR, - SR8, -OR, -CN,-CNO, -CNS, -NCO, -NCS, -R1R2CR9 dans lesquels R1, R , Ret R , indépendamment les uns des autres représentent un atome d'hydrogène, un radical alkyle comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical aryle comprenant de 6 à 20 atomes de carbone, éventuellement substitué ; un radical alcène comprenant de 7 à 10 atomes de carbone ; un radical alcyne comprenant de 1 à 10 atomes de carbone ; un radical aminoacyle ou peptidyle éventuellement substitué, ou R et R2 ou Ret R4 ensemble peuvent former un cycle ou un hétérocycle ; R représente un atome d'hydrogène, un radical alkyle comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcène comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcyne e comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical aryle, éventuellement substitué, comprenant de 6 à 20 atomes de carbone; R représente un atome d'hydrogène, un halogène, un radical alkyle comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcène comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcyne comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical aryle, éventuellement substitué, comprenant de 6 à 20 atomes de carbone; R représente un atome d'hydrogène, un radical alkyle comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcène comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcyne comprenant de 1 à 10 atomes de carbone ; Rreprésente un atome d'hydrogène, un radical alkyle comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcène comprenant de 1 à 10 atomes de carbone, un radical alcyne comprenant de 1 à 10 atomes de carbone ; etR est choisi parmi -CN,-CNO, -CNS,-NCO et-NCS ; X est choisi parmi une chaîne aliphatique (CH2)n dans laquelle n est un nombre entier compris entre 0 et 10, un éthylène glycol ou un polyéthylèneglycol" un résidu aminoacyle ou peptidyle; Y représente un polymère choisi parmi les protéines, les polypeptides, les oligonucléoties ou polynucléotides et les polymères chimiques ; à la condition que si ledit conjugué comprend un dérivé insaturé de l'abiétane Y ne soit pas la BSA. 7. Conjugué selon la revendication 6, dans lequel COONR3R4 représente un ester de N-hydroxysuccinimide, -COR représente un chlorure d'acide, -CONR R représente un groupement amide N-substitué dans lequel R1 et R2 indépendamment l'un de l'autre représente un atome d'hydrogène ou un radical peptidyle éventuellement substitué comprenant de 2 à 6 résidus aminoacyles. 8. Conjugué selon la revendication 6, dans lequel le radical peptidyle est un radical glycyl-glycine et avantageusement le radical glycyl-glycine est substitué par la N-hydroxysuccinimide. 9. Conjugué selon l'une quelconque des revendications 6,7 ou 8, dans lequel X est choisi parmi (CH2)6, un éthylèneglycol, un polyéthylèneglycol, un radical peptidyle comprenant de 2 à 10 résidus aminoacyles et Y représente un polymère choisi parmi la BSA, les oligonucléotides de 18 à 22 mers, les homopolymères d'anhydride maléique, les copolymères à base d'anhydride maléique, les copolymères à base de Nvinylpyrrolidone et les polysaccharides. 10. Conjugué selon la revendication 9, dans lequel le polymère est choisi parmi les oligonucléotides de 20 mers et avantageusement l'oligonucléotide SEQ ID NO 2, les poly (anhydride maléique-éthylène), les poly (anhydride maléiquepropylène), les poly (anhydride maléique-méthyl-vinyléther) (AMVE) et le N-vinyl pyrrolidone-N-acryloxysuccinimide (NVPNAS) . 11. Conjugué selon la revendication 10, dans lequel le polymère est couplé à au moins une protéine et/ou un polypeptide et/ou un oligonucléotide. 12. Procédé pour l'obtention d'anticorps monoclonaux ou polyclonaux, selon lequel on immunise un organisme approprié, selon des techniques connues, avec un conjugué tel que défini dans les revendications 6 à 11. 13. Réactif, comprenant en outre un dérivé tel que défini selon les revendications 1 à 5, ledit dérivé étant couplé à une protéine choisie parmi les polypeptides, les antigènes et les anticorps. 14. Réactif, comprenant en outre un anticorps monoclonal ou polyclonal obtenu selon le procédé de la revendication 12, ledit anticorps étant immobilisé sur un support solide et/ou marqué par tout marqueur approprié. 15. Utilisation d'un réactif tel que défini selon les revendications 13 et/ou 14 dans un test de diagnostic. 16. Composition diagnostique comprenant en outre un réactif tel que défini selon les revendications 13 et/ou 14. 17. Réactif, comprenant en outre un conjugué tel que défini selon les revendications 6 à 11. 18. Utilisation d'un réactif tel que défini selon les revendications 14 et/ou 17 dans un test de diagnostic. 19. Composition diagnostique comprenant en outre un réactif tel que défini selon les revendications 14 et/ou 17. 20. Dispositif comprenant outre un support solide un anticorps monoclonal ou polyclonal obtenu selon le procédé de la revendication 12 immobilisé directement ou indirectement sur ledit support solide. 21. Composition pour le dosage et/ou le suivi de produits chimiques comprenant en outre un conjugué tel que défini dans les revendications 6 à 11 et un anticorps obtenu selon le procédé de la revendication 12. 22. Composition selon la revendication 21, dans laquelle ledit conjugué comprend un polymère tel que défini dans l'une des revendication 10 et 11. 23. Utilisation d'une composition selon les revendications 21 et 22 dans un test pour le dosage et/ou le suivi de produits chimiques.