FR 2777570 A1 19991022 FR 9805054 A 19980417 La présente invention a pour objet un polypeptide ayant une activité uracile phosphoribosyl transférase (UPRTase) dérivant d'une UPRTase native par mutation d'un ou plusieurs résidus de ladite UPRTase. Elle concerne également une séquence nucléotidique codant pour ce mutant UPRTase, un vecteur pour l'expression de cette dernière, une particule virale et une cellule hôte ainsi qu'une composition les comprenant. Enfin, elle vise également leur utilisation thérapeutique ainsi qu'une méthode de traitement les mettant en oeuvre. La présente invention est particulièrement utile dans le cadre de la thérapie par gènes suicides pour une application à l'égard notamment des maladies prolifératives et infectieuses. La thérapie génique se définit comme le transfert d'information génétique dans une cellule ou un organisme hôte. Le premier protocole appliqué à l'homme a été initié aux Etats Unis en septembre 1990 sur un patient génétiquement immunodéficient en raison d'une mutation affectant le gène codant pour l'Adénine Désaminase (ADA). Le succès relatif de cette première expérimentation a encouragé le développement de cette approche pour diverses maladies aussi bien génétiques (dans le but de corriger le dysfonctionnement d'un gène défectueux) qu'acquises (cancers, maladies infectieuses comme le SIDA...). Cette technologie a connu depuis lors de nombreux développements et parmi ceux-ci, la thérapie par "gènes suicides" qui utilise des gènes dont les produits d'expression sont capables de transformer une substance inactive (prédrogue) en substance cytotoxique, provoquant ainsi la mort cellulaire. En 1992, plusieurs équipes ont démontré l'intérêt de cette nouvelle approche pour traiter des tumeurs et inhiber la dissémination du virus HIV responsable du SIDA. A cet égard, le gène codant pour la thymidine kinase du virus herpès simplex de type 1 (TK HSV-1) constitue le prototype des gènes suicides (Caruso et al., 1993, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90, 7024-7028 ; Culver et al., 1992, Science 256, 1550-1552 ; Ram et al., 1997, Nat. Med. 3, 1354-1361). Le polypeptide TK n'est pas toxique en tant que tel mais il catalyse la transformation d'analogues de nucléosides tels que l'acyclovir ou le ganciclovir (GCV). Les nucléosides modifiés sont incorporés dans les chaînes d'ADN en élongation avec pour conséquence l'inhibition de la division cellulaire. De nombreux couples gène suicide/prédrogue sont actuellement disponibles. On peut citer plus particulièrement, le cytochrome p450 de rat et la cyclophosphophamide (Wei et al., 1994, Human Gene Therapy 5, 969-978), la purine nucleoside phosphorylase d'Escherichia coli (E. Coli) et la 6methylpurine deoxyribonucleoside (Sorscher et al., 1994, Gene Therapy 1, 233238), la guanine phosphoribosyl transférase d'E. coli et la 6- thioxanthine (Mzoz et Moolten, 1993, Human Gene Therapy 4, 589-595) et la cytosine désaminase (CDase) et la 5-fluorocytosine (5FC). La CDase intervient dans la voie métabolique des pyrimidines par laquelle la cytosine exogène est transformée par le biais d'une désamination hydrolytique en uracile. Des activités CDases ont été mises en évidence chez les procaryotes et les eucaryotes inférieurs (Jund et Lacroute, 1970, J. Bacteriol. 102, 607-615 ; Beck et al., 1972, J. Bacteriol. 110, 219-228 ; De Haan et al., 1972, Antonie van Leeuwenhoek 38,257-263 ; Hoeprich et al., 1974, J. Inf. Dis. 130, 112-118 ; Esders et Lynn, 1985, J. Biol. Chem. 260, 3915-3922) mais sont absentes chez les mammiferes (Koechlin et al., 1966, Biochem Pharmacol. 15, 435-446 ; Polak et al., 1976, Chemotherapy 22, 137-153). Les gènes FC'Y1 de Saccharomyces cerevisiae (S. cerevisiae) et codA d'E. coli codant respectivement pour la CDase de ces deux organismes sont connus et leurs séquences publiées (EP 402 108 ; Erbs et al., 1997, Curr. Genet. 31, 1-6 ; WO93/01281). La CDase désamine également un analogue de la cytosine, la 5fluorocytosine (5-FC) en 5-fluorouracile (5-FU) composé hautement cytotoxique quand il est converti en 5-fluoro-UMP (5-FUMP). Les cellules dépourvues d'activité CDase, en raison soit d'une mutation inactivante du gène codant pour I'enzyme, soit de leur déficience naturelle pour cette enzyme comme le sont les cellules mammifères, sont résistantes au 5-FC (Jund et Lacroute, 1970, J. Bacteriol. 102, 607-615 ; Kilstrup et al., 1989, J. Bacteriol. 1989 171, 2124-2127). Par contre, les cellules mammifères dans lesquelles ont été transférées les séquences codant pour une activité CDase ont acquis une sensibilité au 5-FC (Huber et al., 1993, Cancer Res. 53, 4619-4626 ; Mullen et al., 1992, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89, 33-37 ; WO 93/01281). De plus, les cellules avoisinantes non transformées deviennent également sensibles au 5-FC (Huber et al., 1994, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91, 8302-8306). Ce phénomène, appelé effet de voisinage (bystander en anglais), est dû à l'excrétion par les cellules exprimant l'activité CDase, de 5-FU qui intoxique les cellules voisines par simple diffusion à travers la membrane plasmique. Cette propriété de diffusion passive du 5-FU constitue un avantage par rapport au système de référence tk/GCV pour lequel l'effet de voisinage nécessite un contact avec les cellules qui expriment tk (Mesnil et al., 1996, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93, 1831-1835). On conçoit donc tous les atouts que présentent la CDase dans le cadre de la thérapie génique, notamment anticancéreuse. Cependant, la sensibilité au 5-FC varie beaucoup selon les lignées cellulaires. Une faible sensibilité est observée par exemple dans des lignées tumorales humaines PANC-1 (carcinome de pancréas) et SK-BR-3 (adénocarcinome du sein) transduites par un rétrovirus exprimant le gène codA d'E. Coli (Harris et al., 1994, Gene Therapy 1, 170-175). Ce phénomène indésirable pourrait s'expliquer par l'absence ou la faible conversion endogène du 5-FU formé par l'action enzymatique de la CDase en 5-FUMP cytotoxique. Cette étape, normalement assurée dans les cellules mammifères par l'orotate phosphorybosyl transférase (Peters et al., 1991, Cancer 68, 1903-1909), peut être absente dans certaines tumeurs et rendre ainsi la thérapie génique, basée sur la CDase, inopérante. Chez les procaryotes et eucaryotes inférieurs, l'uracile est transformée en UMP par l'action de l'uracile phosphoribosyl transférase (UPRTase). Cette enzyme convertit également le 5-FU en 5-FUMP. Ainsi des mutantsfurl de la levure S. cerevisiae sont résistants à de fortes concentrations de 5-FU (10 mM) et de 5-FC (10 mM) car en absence d'activité UPRTase, le 5-FU, provenant de la désamination du 5-FC par la CDase, n'est pas transformé en 5-FUMP cytotoxique (Jund et Lacroute, 1970, J. Bacteriol. 102, 607-615). Les gènes upp et FUR1 codant pour l'UPRTase respectivement d'E. coli et de S. cerevisiae ont été clonés et séquencés (Andersen et al., 1992, Eur. J. Biochem. 204, 51-56 ; Kern et al., 1990, Gene 88, 149-157). Pour remédier à ces inconvénients, le document de l'art antérieur Wu96/16183 préconise l'utilisation d'une protéine de fusion codant pour une enzyme à deux domaines ayant les activités CDase et UPRTase et démontre in vitro que le transfert d'un gène hybride codA::upp ou FCYl::FURl porté par un plasmide d'expression augmente la sensibilisation au 5-FC de cellules B16 transfectées. La présente invention est une amélioration de la technique antérieure en ce qu'elle utilise un gène FUR1 muté codant pour une UPRTase délétée dans sa partie N-terminale. La présente invention résulte de l'observation selon laquelle le gène FUR1 contient après le codon ATG initiateur, un deuxième codon ATG codant pour la méthionine en position 36 de la protéine native. On a maintenant construit un gène FUR1 dépourvu de 105 nucléotides en 5' de la partie codante permettant la synthèse d'une UPRTase délétée des 35 premiers résidus en position N-terminale et débutant à la méthionine en position 36 dans la protéine native. On a montré que le produit d'expression du gène mutant, désigné FUR1i1105, peut complémenter un mutantfurl de S. cerevisiae, ce qui démontre sa fonctionnalité. De manière surprenante, le mutant tronqué présente une activité UPRTase supérieure à celle de l'enzyme native, comme en témoignent les dosages enzymatiques réalisés sur des cellules COS7 transfectées par un plasmide d'expression du gène correspondant (gène FUR1j105 comparé au sauvage). Trois lignées tumorales humaines, choisies à cause de leur résistance au 5-FU ont été transduites par le gène mutant transporté par un vecteur adénoviral et présentent in vitro une sensibilité accrue au 5-FU. La sensibilité au 5-FC est également augmentée si les cellules sont coinfectées par des adénovirus exprimant respectivement les gènes FCY1 et FUR1i1105par rapport à une infection par un adénovirus exprimant FCY1 seul. De manière encore plus surprenante, la protéine de fusion produite par le gène hybride FCYl :FUR1Z1105 résultant de la fusion en phase des gènes FCY1 et FUR1 tronqué posséde une activité UPRTase conservée mais présentant une activité CDase augmentée d'un facteur 10 à 30 par rapport à celle mesurée avec le produit FCY1 natif. La forte activité CDase de la protéine bifonctionnelle permet la formation d'un pool de 5-FU générant un effet "bystander" important. Il est à noter qu'aucune amélioration de l'activité CDase n'a été démontrée pour la protéine de fusion CDase::UPRTase de WO 96/16183. La présente invention fournit un mutant plus efficace permettant d'augmenter la sensibilité des cellules à la 5-FC et d'améliorer les perspectives de thérapie génique par gènes suicides. Ce mutant est utile pour de nombreuses applications, notamment anticancéreuses, antivirales et toutes applications nécessitant la mort cellulaire. C'est pourquoi la présente invention a pour objet un polypeptide ayant une activité uracile phosphoribosyl transférase (UPRTase), caractérisé en ce qu'il dérive d'une UPRTase native au moins par mutation d'un ou plusieurs résidus de ladite UPRTase. Au sens de la présente invention, un polypeptide ayant une activité UPRTase désigne un polypeptide capable de convertir l'uracile ou un de ses dérivés en un analogue monophosphaté et, en particulier la 5-FU en 5-FUMP. Par "mutation", il faut entendre l'addition, la délétion et/ou la substitution d'un ou plusieurs résidus à un endroit quelconque dudit polypeptide. L'UPRTase native dont dérive le polypeptide selon l'invention peut être d'une origine quelconque, notamment procaryotique, fongique ou de levure. A titre illustratif, les UPRTases d'E. coli (Anderson et al., 1992, Eur. J. Biochem 204, 51 56), de Lactococcus lactis (Martinussen et Hammer, 1994, J. Bacteriol. 176, 64576463), de Mycobacterium bovis (Kim et al., 1997, Biochem Mol. Biol. Int 41, 11171124) et de Bacillus subtilis (Martinussen et al., 1995, J. Bacteriol. 177,271-274) peuvent être utilisées dans le cadre de l'invention. Mais on préfère tout particulièrement mettre en oeuvre une UPRTase de levure et notamment celle codée par le gène FUR1 de S. cerevisiae dont la séquence est divulguée dans Kern et al. (1990, Gene 88, 149-157). A titre indicatif, les séquences des gènes et celles des UPRTases correspondantes peuvent être trouvées dans la littérature et les banques de données spécialisées (SWISSPROT, EMBL, Genbank, Medline...). Selon un mode de réalisation particulièrement avantageux, le polypeptide selon l'invention est un mutant de délétion d'une UPRTase native. La délétion est de préférence localisée dans la région N-terminale de l'UPRTase d'origine. Elle peut être totale (concerner l'ensemble des résidus de ladite région N-terminale) ou partielle (concerner un ou plusieurs résidus continus ou non dans la structure primaire). D'une manière générale, un polypeptide est constitué d'une partie Nterminale, centrale et C-terminale, chacune représentant environ le tiers de la molécule. Par exemple, l'UPRTase de S. cerevisiae ayant 251 acides aminés, sa partie N-terminale est constituée des 83 premiers résidus débutant à la méthionine dite initiatrice située en première position de la forme native. Quant à l'UPRTase d'E. coli, sa partie N-terminale couvre les positions 1 à 69. Bien entendu, ce mode de réalisation préféré peut être combiné à une ou plusieurs autres mutation(s) à un endroit quelconque de la molécule. De préférence, la ou les modifications supplémentaires n'affectent pas de manière significative les propriétés enzymatiques UPRTase du polypeptide selon l'invention. On indique que l'activité biologique des mutants peut être testée notamment par les techniques décrites dans les exemples qui suivent. D'une manière tout à fait préférée, le polypeptide selon l'invention dérive d'une UPRTase native au moins par délétion de tout ou partie de la région Nterminale en amont du second codon ATG de ladite UPRTase native. La délétion totale de la région précitée est préférée. Par exemple, l'UPRTase codée par le gène FURI comprend un premier codon ATG (codon ATG initiateur) en position +1 suivi d'un second en position +36. Ainsi, la délétion des résidus +1 à 35 peut être envisagée dans le cadre de la présente invention, donnant un polypeptide débutant à la méthionine trouvée normalement en position +36 de la forme native. Un polypeptide préféré selon l'invention comprend une séquence en acides aminés sensiblement telle que représentée à l'identificateur de séquence IDS NO: 1, débutant au résidu Met en position 1 et se terminant au résidu Val en position 216. Le terme "sensiblement" fait référence à un degré d'identité avec ladite séquence IDS NO: 1 supérieure à 70%, avantageusement supérieur à 80%, de préférence, supérieure à 90% et, de manière tout à fait préférée, supérieur à 95%. Encore plus préférentiellement, il comprend la séquence en acides aminés représentée à l'identificateur de séquence IDS NO: 1. Comme mentionné ci-dessus, il peut comporter des mutations supplémentaires. On peut citer notamment la substitution du résidu sérine en position 2 (position 37 dans l'UPRTase native) par un résidu alanine. Avantageusement, le polypeptide selon l'invention présente une activité UPRTase sensiblement plus élevée que celle présentée par ladite UPRTase native. Les résultats présentés dans les exemples qui suivent mettent clairement en évidence une conversion plus rapide et/ou plus efficace de la 5-FU en 5-FUMP, se traduisant par une cytotoxicité supérieure à l'égard des cellules transfectées ou transduites. Avantageusement, l'activité UPRTase du polypeptide selon l'invention est supérieure à celle présentée par l'UPRTase native d'un facteur 2 à 100, de préférence 5 à 75 et, de manière tout à fait préférée 10 à 50. Selon un autre mode de réalisation, le polypeptide selon l'invention est un polypeptide de fusion dans lequel il est fusionné en phase avec au moins un second polypeptide. Bien que la fusion puisse avoir lieu à un endroit quelconque du premier polypeptide, les extrémités N ou C-terminales sont préférées et notamment l'extrémité N-terminale. Avantageusement, la fusion en phase met en oeuvre un second polypeptide présentant une activité cytosine désaminase (CDase) et dérivant d'une cytosine désaminase native, de sorte que le polypeptide de fusion selon l'invention présente les activités CDase et UPRTase. Une fusion FCYI::FURI (désignée ci-après FCUI) est préférée. Un tel polypeptide bifonctionnel permet d'améliorer la sensibilité des cellules cibles à la 5-FC et à la 5-FU. Par "activité cytosine désaminase", on entend couvrir la désamination de la cytosine ou d'un de ses analogues. De préférence, le second polypeptide selon l'invention est capable de métaboliser la 5-FC en 5-FU. Dans le cadre de la présente invention, on a recours à une CDase d'origine procaryote ou eucaryote inférieur. Encore plus préférentiellement, il s'agit d'une CDase de levure et en particulier celle codée par le gène FCYI de Saccharomyces cerevisiae. Le clonage et la séquence des gènes codant pour les CDases de différentes sources sont disponibles dans la littérature et les banques de données spécialisées. On indique que la séquence du gène FCYI est divulguée dans Erbs et al. (1997, Curr. Genet. 31, 1-6). il est bien entendu possible d'utiliser un mutant de CDase ayant une capacité de conversion comparable ou supérieure à celle de l'enzyme native. L'homme de l'art est capable de cloner les séquences CDase à partir des données publiées, de procéder à d'éventuelles mutations, de tester l'activité enzymatique des formes mutantes dans un système acellulaire ou cellulaire selon la technologie de l'art ou en suivant le protocole indiqué ci-après et de fusionner en phase les polypeptides d'activité CDase et UPRTase. Un exemple préféré est un polypeptide comprenant une séquence en acides aminés sensiblement telle que représentée à l'identificateur de séquence IDS NO: 2, débutant au résidu Met en position 1 et se terminant au résidu Val en position 373. Le terme "sensiblement" a la définition donnée précédemment. Un polypeptide comprenant la séquence en acides aminés telle que représentée à l'identificateur de séquence IDS NO: 2 convient tout particulièrement à la mise en oeuvre de l'invention. Selon un mode de réalisation avantageux, un polypeptide bifonctionnel selon l'invention présente une activité CDase sensiblement plus élevée que ladite CDase native. En effet, les exemples qui suivent mettent en évidence que le couplage des deux enzymes permet une sensibilisation accrue à la 5-FC des cellules cibles. Le facteur d'augmentation est avantageusement d'au moins 2, de préférence d'au moins 5 et, de manière tout à fait préférée, de 10 ou plus. D'une manière générale, un polypeptide selon l'invention peut être produit par les méthodes conventionnelles de synthèse chimique ou bien par les techniques de l'ADN recombinant (voir par exemple Maniatis et al., 1989, Laboratory Manual, Cold Spring Harbor, Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY). C'est pourquoi la présente invention couvre également un procédé de préparation selon lequel on introduit une séquence nucléotidique codant pour ledit polypeptide dans une cellule pour générer une cellule transformée, on cultive ladite cellule transformée dans des conditions appropriée pour permettre la production dudit polypeptide et on récolte ledit polypeptide à partir de la culture cellulaire. La cellule productrice peut être d'une origine quelconque et sans limitation, une bactérie, une levure ou bien une cellule de mammifère, dans la mesure où la séquence nucléotidique considérée est soit intégrée dans son génome soit intégrée dans un vecteur d'expression approprié capable de se repliquer. Bien entendu, la séquence nucléotidique est placée sous le contrôle de signaux de transcription et de traduction permettant son expression dans la cellule productrice. Vecteurs d'expression et signaux de contrôle sont connus de l'homme du métier. Quant au polypeptide, il peut être récupéré du milieu ou des cellules (après lyse de celles-ci) et soumises à des étapes de purifications classiques (par chromatographie, électrophorèse, filtration, immunopurification etc...). La présente invention concerne également une séquence nucléotidique codant pour un polypeptide selon l'invention. Il peut s'agir d'une séquence ADNc ou génomique ou de type mixte. Elle peut éventuellement contenir un ou plusieurs introns, ceux-ci étant d'origine native, hétérologue (par exemple l'intron du gène P-globine de lapin...) ou synthétiques afin d'augmenter l'expression dans les cellules hôtes. Comme déjà indiqué, ladite séquence peut coder pour un polypeptide dérivant de l'enzyme native ou un mutant présentant une activité comparable ou améliorée. Les séquences employées dans le cadre de la présente invention peuvent être obtenues par les techniques classiques de biologie moléculaire, par exemple par criblage de banque à l'aide de sondes spécifiques, par immunocriblage de banque d'expression, par PCR au moyen d'amorces adéquates ou par synthèse chimique. Les mutants peuvent être générés à partir des séquences natives par substitution, délétion et/ou addition d'un ou plusieurs nucléotides en mettant en oeuvre les techniques de mutagénèse dirigée, de PCR, de digestion par les enzymes de restriction et ligation ou encore par synthèse chimique. La fonctionnalité des mutants et des constructions peut être vérifiée par le dosage de l'activité enzymatique ou par la mesure de la sensibilité de cellules cibles aux 5-FC et/ou 5 FU. La présente invention a également trait à un vecteur recombinant portant une séquence nucléotidique selon l'invention placée sous le contrôle des éléments nécessaires à son expression dans une cellule hôte. Le vecteur recombinant peut être d'origine plasmidique, viral et éventuellement associé à une ou plusieurs substances améliorant l'efficacité transfectionnelle et/ou la stabilité du vecteur. Ces substances sont largement documentées dans la littérature accessible à l'homme de l'art (voir par exemple Felgner et al., 1987, Proc. West. Pharmacol. Soc. 32, 115-121 Hodgson et Solaiman , 1996, Nature Biotechnology 14, 339-342 ; Remy et al., 1994, Bioconjugate Chemistry 5, 647-654). A titre illustratif mais non limitatif, il peut s'agir de polymères, de lipides notamment cationiques, de liposomes, de protéines nucléaires ou encore de lipides neutres. Ces substances peuvent être utilisées seules ou en combinaison. Une combinaison envisageable est un vecteur recombinant plasmidique associé à des lipides cationiques (DOGS, DC-CHOL, spermine-chol, spermidine-chol etc...) et des lipides neutres (DOPE). Le choix des plasmides utilisables dans le cadre de la présente invention est vaste. Il peut s'agir de vecteurs de clonage et/ou d'expression. D'une manière générale, ils sont connus de l'homme de l'art et nombre d'entre eux sont disponibles commercialement mais il est également possible de les construire ou les modifier par les techniques de manipulation génétique. On peut citer à titre d'exemples les plasmides dérivés de pBR322 (Gibco BRL), pUC (Gibco BRL), pBluescript (Stratagène), pREP4, pCEP4 (Invitrogene) ou encore p Poly (Lathe et al., 1987, Gene 57, 193-201). De préférence, un plasmide mis en oeuvre dans le cadre de la présente invention contient une origine de replication assurant l'initiation de la replication dans une cellule productrice et/ou une cellule hôte (par exemple, on retiendra l'origine Colt 1 pour un plasmide destiné à être produit dans E. coli et le système oriP/EBNAl si l'on désire qu'il soit autoreplicatif dans une cellule hôte mammifère, Lupton et Levine, 1985, Mol. Cell. Biol. 5, 2533-2542 ; Yates et al., Nature 313, 812-815). Il peut en outre comprendre un gène de sélection permettant de sélectionner ou identifier les cellules transfectées (complémentation d'une mutation d'auxotrophie, gène codant pour la résistance à un antibiotique...). Bien entendu, il peut comprendre des éléments supplémentaires améliorant son maintien et/ou sa stabilité dans une cellule donnée (séquence cer qui favorise le maintien monomérique d'un plasmide (Summers et Sherrat, 1984, Cell 36, 1097-1103, séquences d'intégration dans le génome cellulaire). S'agissant d'un vecteur viral, on peut envisager un vecteur dérivant d'un poxvirus (virus de la vaccine, notamment MVA, canaripox... etc), d'un adénovirus, d'un rétrovirus, d'un virus de l'herpès, d'un alphavirus, d'un foamyvirus ou d'un virus associé à l'adénovirus. On aura de préférence recours à un vecteur non réplicatif et non intégratif. A cet égard, les vecteurs adénoviraux conviennent tout particulièrement à la mise en oeuvre de la présente invention. Les rétrovirus ont la propriété d'infecter et de s'intégrer majoritairement dans les cellules en division et à cet égard sont particulièrement appropriés pour l'application cancer. Un rétrovirus recombinant selon l'invention comporte généralement les séquences LTR, une région d'encapsidation et la séquence nucléotidique selon l'invention placée sous le contrôle du LTR rétroviral ou d'un promoteur interne tels que ceux décrits ci-après. Il peut dériver d'un rétrovirus d'une origine quelconque (murin, primate, felin, humain etc...) et en particulier du MoMuLV (Moloney murine leukemia virus), MVS (Murine sarcoma virus) ou Friend murine retrovirus (Fb29). Il est propagé dans une lignée d'encapsidation capable de fournir en trans les polypeptides viraux gag, pol et/ou env nécessaires à la constitution d'une particule virale. De telles lignées sont décrites dans la littérature (PA317, Psi CRIP GP + Am-12 etc...). Le vecteur rétroviral selon l'invention peut comporter des modifications notamment au niveau des LTR (remplacement de la région promotrice par un promoteur eucaryote) ou de la région d'encapsidation (remplacement par une région d'encapsidation hétérologue, par exemple de type VL30) (voir les demandes françaises 94 08300 et 97 05203). On aura de préférence recours à un vecteur adénoviral dépourvu de tout ou partie d'au moins une région essentielle à la réplication sélectionnée parmi les régions El, E2, E4 et L1-L5, afin d'éviter sa propagation au sein de l'organisme hôte ou l'environnement.Une délétion de la région El est préférée. Mais elle peut être combinée à d'autres modification(s)/délétion(s) touchant notamment tout ou partie des régions E2, E4 et/ou Ll-L5, dans la mesure où les fonctions essentielles défectives sont complémentées en trans au moyen d'une lignée de complémentation et/ou d'un virus auxilliaire. A cet égard, on peut avoir recours aux vecteurs de seconde génération de l'état de la technique (voir par exemple les demandes internationales Wu94/28152 et WO97/04119). A titre illustratif, la délétion de la majorité de la région El et de l'unité de transcription E4 est tout particulièrement avantageuse. Dans le but d'augmenter les capacités de clonage, le vecteur adénoviral peut en outre être dépourvu de tout ou partie de la région E3 non essentielle. Selon une autre alternative, on peut mettre en oeuvre un vecteur adénoviral minimal retenant les séquences essentielles à l'encapsidation, à savoir les ITRs (Inverted Terminal Repeat) 5' et 3' et la région d'encapsidation. Les différents vecteurs adénoviraux ainsi que leurs techniques de préparation sont connus (voir par exemple Graham et Prevect, 1991, in Methods in Molecular Biology, vol 7, p 109128 ; Ed : E.J. Murey, The Human Press Inc). Par ailleurs, l'origine du vecteur adénoviral selon l'invention, peut être variée aussi bien du point de vue de l'espèce que du sérotype. Il peut dériver du génome d'un adénovirus d'origine humaine ou animale (canine, aviaire, bovine, murine, ovine, porcine, simienne...) ou encore d'un hybride comprenant des fragments de génome adénoviral d'au moins deux origines différentes. On peut citer plus particulièrement les adénovirus CAV- 1 ou CAV-2 d'origine canine, DAV d'origine aviaire ou encore Bad de type 3 d'origine bovine (Zakharchuk et al., Arch. Virol., 1993, 128:171-176 ; Spibey et Cavanagh, J. Gen. Virol., 1989, 70:165-172 Jouvenne et al., Gene, 1987, 60: 21-28 ; Mittal et al., J. Gen. Virol., 1995, 76: 93102). Cependant, on préférera un vecteur adénoviral d'origine humaine dérivant de préférence d'un adénovirus de sérotype C, notamment de type 2 ou 5. Un vecteur adénoviral selon la présente invention peut être généré in vitro dans Escherichia coli (E. coli) par ligation ou recombinaison homologue (voir par exemple la demande internationale WO96/17070) ou encore par recombinaison dans une lignée de complémentation. Les éléments nécessaires à l'expression sont constitués par l'ensemble des éléments permettant la transcription de la séquence nucléotidique en ARN et la traduction de l'ARNm en polypeptide. Ces éléments comprennent notamment un promoteur qui peut être régulable ou constitutif. Bien entendu, le promoteur est adapté au vecteur retenu et à la cellule hôte. On peut citer, à titre d'exemples, les promoteurs eucaryotes des gènes PGK (Phospho Glycérate Kinase), MT (metallothioneine ; Mc Ivor et al., 1987, Mol. Cell Biol. 7, 838-848), a-l antitrypsine, CFTR, surfactant, immunoglobuline, P-actine (Tabin et al., 1982, Mol. Cell Biol. 2, 426-436), SRa (Takebe et al., 1988, Mol. Cell. Biol. 8, 466-472), le promoteur précoce du virus SV40 (Simian Virus), le LTR du RSV (Rous Sarcoma Virus), le promoteur TK-HSV- 1, le promoteur précoce du virus CMV (Cytomegalovirus), les promoteurs du virus de la vaccine p7.5K pH5R, pKlL, p28, pl 1 et les promoteurs adénoviraux EIA et MLP. Il peut également s'agir d'un promoteur stimulant l'expression dans une cellule tumorale ou cancéreuse. On peut citer notamment les promoteurs des gènes MUC- I surexprimé dans les cancers du sein et de la prostate (Chen et al., 1995, J. Clin. Invest. 96, 2775-2782), CEA (pour carcinoma embryonic antigen) surexprimé dans les cancers du colon (Schrewe et al., 1990, Mol. Cell. Biol. 10, 2738-2748), tyrosinose surexprimé dans les mélanomes (Vile et al., 1993, Cancer Res. 53, 3860-3864), ERB-2 surexprimé dans les cancers du sein et du pancréas (Harris et al., 1994, Gene Therapyl, 170-175) et a-fétoprotéine surexprimée dans les cancers du foie (Kanai et al., 1997, Cancer Res. 57, 461-465). Le promoteur précoce du Cytomégalovirus (CMV) est tout particulièrement préféré. Les éléments nécessaires peuvent, en outre, inclure des éléments additionnels améliorant l'expression de la séquence nucléotidique selon l'invention ou son maintien dans la cellule hôte. On peut citer notamment les séquences introniques, séquences signal de sécrétion, séquences de localisation nucléaire, sites internes de réinitiation de la traduction de type IRES, séquences poly A de terminaison de la transcription, leaders tripartites et origines de réplication. Ces éléments sont connus de l'homme de l'art. Le vecteur recombinant selon l'invention peut également comprendre un ou plusieurs autres gènes d'intérêt, ceux-ci peuvent être placés sous le contrôle des mêmes éléments de régulation (cassette polycistronique) ou d'éléments indépendants. On peut citer en particulier les gènes codant pour les interleukines IL2, IL-4, IL-7, IL- 10, IL- 12, les interférons, le facteur de nécrose des tumeurs (TNF), les facteurs stimulateurs des colonies (CSF) et notamment le GM-CSF, les facteurs agissant sur l'angiogénèse (par exemple PAI-1 pour plasminogen activator inhibitor). On peut également envisager d'associer la séquence nucléotidique selon l'invention à d'autres gènes suicides tels que le gène TK de HSV-I, la ricine, la toxine cholérique ...etc. La présente invention a également trait à une particule virale comprenant un vecteur recombinant selon l'invention. Une telle particule virale peut être générée à partir d'un vecteur viral selon toute technique conventionnelle dans le domaine de l'art. Sa propagation est effectuée dans une cellule de complémentation adaptée aux déficiences du vecteur. S'agissant d'un vecteur adénoviral, on aura par exemple recours à la lignée 293 établie à partir de cellules de rein embryonnaire humain, qui complémente efficacement la fonction El (Graham et al., 1977, J. Gen. Virol. 36, 59-72), la lignée A549-El (Imler et al., 1996, Gene Therapy 3, 75-84) ou une lignée permettant une double complémentation (Yeh et al., 1996, J. Virol. 70, 559-565 Krougliak et Graham, 1995, Human Gene Therapy 6, 1575-1586 ; Wang et al., 1995 Gene Therapy 2, 775-783 ; demande internationale WO 97/04119). On peut également employer des virus auxilliaires pour complémenter au moins en partie les fonctions défectives. Par cellule de complémentation, on entend une cellule capable de fournir en trans les facteurs précoces et/ou tardifs nécessaires à l'encapsidation du génome viral dans une capside virale pour générer une particule virale contenant le vecteur recombinant. Ladite cellule peut ne pas complémenter à elle seule toutes les fonctions défectives du vecteur et dans ce cas peut être transfectée/transduite par un vecteur/virus auxilliaire apportant les fonctions complémentaires. L'invention concerne également un procédé de préparation d'une particule virale, selon lequel: (i) on introduit un vecteur recombinant selon l'invention dans une cellule de complémentation capable de complémenter en trans ledit vecteur, de manière à obtenir une cellule de complémentation transfectée, (ii) on cultive ladite cellule de complémentation transfectée dans des conditions appropriées pour permettre la production de ladite particule virale, et (iii) on récupère ladite particule virale dans la culture cellulaire. Bien entendu, la particule virale peut être récupérée du surnageant de culture mais également des cellules. Une des méthodes couramment employée consiste à lyser les cellules par des cycles consécutifs de congélation/décongélation pour recueillir les virions dans le surnageant de lyse. Ceux-ci peuvent être amplifiés et purifiés selon les techniques de l'art (procédé chromatographique, ultracentrifugation notamment à travers un gradient de chlorure de césium...). La présente invention concerne également une cellule hôte comprenant une séquence nucléotidique, un vecteur recombinant selon l'invention ou infectée par une particule virale selon l'invention. Aux fins de la présente invention, une cellule hôte est constituée par toute cellule transfectable par un vecteur recombinant ou infectable par une particule virale, tels que définis ci-avant. Une cellule de mammifère et notamment humaine convient tout particulièrement. Elle peut comprendre ledit vecteur sous forme intégrée dans le génome ou non (épisome). Il peut s'agir d'une cellule primaire ou tumorale d'une origine quelconque, notamment hématopolétique (cellule souche totipotente, leucocyte, lymphocyte, monocyte ou macrophage...), musculaire (cellule satellite, myocyte, myoblaste, muscle lisse...), cardiaque, pulmonaire, trachéale, hépatique, épithéliale ou fibroblaste. La présente invention a également pour objet une composition comprenant un polypeptide, une séquence nucléotidique, un vecteur recombinant, une particule virale ou une cellule hôte selon l'invention en association avec un véhicule acceptable d'un point de vue pharmaceutique. La présente invention concerne également une composition comprenant un polypeptide selon l'invention présentant une activité UPRTase et un autre polypeptide d'intérêt, notamment un polypeptide de l'art antérieur présentant une activité CDase. La composition peut également être à base de séquences nucléotidiques permettant l'expression au sein de la cellule hôte des polypeptides précédents. Les séquences nucléotidiques peuvent être portées par un même vecteur d'expression ou par deux vecteurs indépendants. Bien entendu, ladite composition peut comprendre des particules virales générées à partir d'un ou des vecteurs viraux exprimant la (les) dite(s) séquence(s) nucléotidique(s). Une composition selon l'invention est plus particulièrement destinée au traitement préventif ou curatif de maladies par thérapie génique et s'adresse plus particulièrement aux maladies prolifératives (cancers, tumeurs, resténose...etc) et aux maladies d'origine infectieuse, notamment virale (induites par les virus de l'hépatite B ou C, le HIV, l'herpès, les rétrovirus....etc). Une composition selon l'invention peut être fabriquée de manière conventionnelle en vue d'une administration par voie locale, parentérale ou digestive. En particulier, on associe une quantité thérapeutiquement efficace de l'agent thérapeutique ou prophylactique à un support acceptable d'un point de vue pharmaceutique. Les voies d'administration envisageables sont multiples. On peut citer par exemple la voie intragastrique, sous-cutanée, intracardiaque, intramusculaire, intraveineuse, intrapéritonéale, intratumorale, intranasale, intrapulmonaire ou intratrachéale. Pour ces trois derniers modes de réalisation, une administration par aérosol ou instillation est avantageuse. L'administration peut avoir lieu en dose unique ou répétée une ou plusieurs fois après un certain délai d'intervalle. La voie d'administration et le dosage appropriés varient en fonction de divers paramètres, par exemple, de l'individu, de la maladie à traiter ou encore du ou des gène(s) d'intérêt à transférer. Les préparations à base de particules virales selon l'invention peuvent être formulées sous forme de doses comprises entre 104 et 10l4 ufp (unités formant des plages), avantageusement 105 et 10l3 ufp et, de préférence, 106 et 1012 ufp. Pour ce qui est du vecteur recombinant selon l'invention, des doses comprenant de 0,01 à 100 mg d'ADN, de préférence 0,05 à 10 mg et, de manière tout à fait préférée, 0,5 à 5 mg peuvent être envisagées. Une composition à base de polypeptides comprend de préférence de 0,05 à 10 g et, de manière tout à fait préférée, de 0,5 à 5 g dudit polypeptide. Bien entendu, les doses peuvent être adaptées par le clinicien. La formulation peut également inclure un diluant, un adjuvant ou un excipient acceptable d'un point de vue pharmaceutique, de même que des agents de solubilisation, de stabilisation, de préservation. Pour une administration injectable, on préfère une formulation en solution aqueuse, non-aqueuse ou isotonique. Elle peut être présentée en dose unique ou en multidose sous forme liquide ou sèche (poudre, lyophilisat...) susceptible d'être reconsituée de manière extamporanée par un diluant approprié. Elle peut également comprendre des quantités appropriées de prédrogues. La présente invention est également relative à l'utilisation thérapeutique ou prophylactique d'un polypeptide, d'un vecteur recombinant, d'une particule virale ou d'une cellule hôte selon l'invention pour la préparation d'un médicament destiné au traitement du corps humain ou animal par thérapie génique ou par administration de protéine produite par voie recombinante. Selon une première possibilité, le médicament peut être administré directement in vivo (par exemple par injection intraveineuse, dans une tumeur accessible, dans les poumons par aérosol, dans le système vasculaire au moyen d'une sonde appropriée...). On peut également adopter l'approche ex vivo qui consiste à prélever des cellules du patient (cellules souches de la moëlle osseuse, lymphocytes du sang périphérique, cellules musculaires...), de les transfecter ou infecter in vitro selon les techniques de l'art et de les réadminister au patient. Une utilisation préférée consiste à traiter ou prévenir les cancers, tumeurs et maladies résultant d'une prolifération cellulaire non désirée. Parmi les applications envisageables, on peut citer les cancers du sein, de l'utérus (notamment ceux induits par les papillomas virus), de la prostate, du poumon, de la vessie, du foie, du colon, du pancréas, de l'estomac, de l'oesophage, du larynx du système nerveux central et du sang (lymphomes, leucémie etc...). Elle est également utile dans le cadre des maladies cardiovasculaires, par exemple pour inhiber ou retarder la prolifération des cellules de muscles lisses de la paroi vasculaire (resténose). Enfin pour ce qui est des maladies infectieuses, l'application au SIDA peut être envisagée. L'invention s'étend également à une méthode pour le traitement des maladies par thérapie génique, caractérisé en ce que l'on administre à un organisme ou à une cellule hôte ayant besoin d'un tel traitement une séquence nucléotidique, un vecteur recombinant, une particule virale ou une cellule hôte selon l'invention. Lorsque la méthode de traitement met en oeuvre une séquence nucléotidique, un vecteur recombinant ou une particule virale permettant l'expression d'un polypeptide selon l'invention ayant une activité UPRTase, il peut être avantageux d'administrer en outre une seconde séquence nucléotidique codant pour un second polypeptide présentant une activité CDase, ladite seconde séquence nucléotidique étant portée par ledit vecteur recombinant ou particule virale ou par un vecteur ou une particule virale indépendante. Dans ce dernier cas, l'administration des séquences UPRTase et CDase peut être simultanée ou consécutive, l'ordre d'administration étant sans importance. Selon un mode de réalisation avantageux, l'utilisation thérapeutique ou la méthode de traitement comprend également une étape supplémentaire selon laquelle on administre à l'organisme ou la cellule hôte des quantités acceptables d'un point de vue pharmaceutique d'une prédrogue, avantageusement d'un analogue de cytosine et, en particulier de la 5-FC. A titre illustratif, une dose de 50 à 500 mg/kg/jour peut être employée avec une préférence pour 200 mg/kg/jour. Dans le cadre de la présente invention, la prédrogue est administrée selon les pratiques standards et ceci de manière préalable, concomittante ou encore postérieure à celle de l'agent thérapeutique selon l'invention. La voie orale est préférée. On peut administrer une dose unique de prédrogue ou des doses répétées pendant un temps suffisamment long pour permettre la production du métabolite toxique au sein de l'organisme ou de la cellule hôte. Par ailleurs, la composition ou la méthode selon l'invention peut être associée à une ou plusieurs substances potentialisant l'effet cytotoxique du 5-FU. On peut citer en particulier, les drogues inhibant les enzymes de la voie de biosynthèse de novo des pyrimidines (par exemple celles citées ci-après), les drogues telles que la Leucovorin (Waxman et al., 1982, Eur. J. Cancer Clin. Oncol. 18, 685-692) qui en présence du produit du métabolisme du 5-FU (5-FdUMP) augmente l'inhibition de la thymidylate synthase ce qui entraîne une diminution du pool de dTMP nécessaire à la réplication et enfin les drogues telles que le méthotréxate (Cadman et al., 1979, Science 250, 1135-1137) qui en inhibant la dihydrofolate réductase et en élevant le pool d'incorporation de PRPP (phosphoribosylpyrophosphate) provoque l'augmentation de 5-FU dans l'ARN cellulaire. La présente invention vise également l'utilisation des séquences ou vecteurs recombinants selon l'invention à titre de marqueur de sélection positive dans les cellules de mammifère. Avantageusement, les cellules sont transfectées puis le mélange cellulaire est cultivé en présence d'inhibiteurs de la voie de biosynthèse de novo des pyrimidines, tels que le PALA (N-(phosphonacétyl)-L-aspartate Moore et al., 1982, Biochem. Pharmacol. 31, 3317-3321), le A77 1726 (métabolite actif du Leflunomide ; Davis et al., 1996, Biochem. 35, 1270-1273) et le Brequinar (Chen et al., 1992, Cancer Res. 52, 3251-3257). La présence de tels inhibiteurs bloque la synthèse de novo d'UMP nécessaire à la synthèse d'ARN et d'ADN avec pour conséquence la mort cellulaire. Cet effet cytotoxique peut être circonvenu par l'expression de la séquence nucléotidique selon l'invention codant pour une activité UPRTase en présence d'uracile ou par la co-expression de cette dernière avec les séquences codant pour une activité CDase (éventuellement sous forme fusionnée) en présence de cytosine. En conséquence, seules les cellules transfectées (ayant incorporées les séquences UPRTase/CDase) seront aptes à pousser en présence d'inhibiteurs de la voie de synthèse des purimidines. Ainsi, l'utilisation selon l'invention permet d'identifier et/ou isoler efficacement une cellule transfectée dans un mélange cellulaire. La présente invention concerne également l'utilisation des séquences ou vecteurs recombinants selon l'invention à titre de marqueur de sélection négative dans les expériences d'interruption génique ("knock out" en anglais) des cellules souches embryonnaires qui sont à la base des procédés de préparation d'animaux transgéniques (voir par exemple Capecchi, 1989, Science 244, 1288-1292 ; Reid et al., 1990, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87, 4299-4303). Une telle utilisation, en association avec le gène de résistance à la néomycine par exemple peut permettre la sélection des cellules ayant subi un événement de recombinaison homologue qui seules seront aptes à pousser en présence de Généticine et des pyrimidines fluorés correspondants (5-FU si l'on met en oeuvre une séquence nucléotidique selon l'invention codant pour une activité UPRTase et 5-FC lorsque l'on met également en oeuvre une séquence nucléotidique codant pour une activité CDase). Les cellules ayant subi un événement de recombinaison non ciblé peuvent pousser en présence de Généticine mais pas des pyrimidines fluorés. Une autre utilisation potentielle à titre de marqueur de sélection négative se situe dans le domaine des plantes puisque tout comme les cellules mammifères, elles ne possèdent pas d'activité CDase endogène. Elles peuvent être sensibilisées à la 5-FC par transfection d'une séquence nucléotidique selon l'invention permettant l'expression d'une CDase exogène (voir par exemple Perera et al., 1993, Plant. Mol. Biol. 23, 793-799). EXEMPLES La présente invention est illustrée, sans pour autant être limitée, par les exemples suivants. Les constructions décrites ci-dessous sont réalisées selon les techniques générales de génie génétique et de clonage moléculaire, détaillées dans Maniatis et al., (1989, Laboratory Manual, Cold Spring Harbor, Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY) ou selon les recommandations du fabricant lorsqu'on utilise un kit commercial. Les étapes de recombinaison homologue sont de préférence réalisées dans la souche E. coli BJ 5183 (Hanahan, 1983, J. Mol. Biol. 166, 557-580). S'agissant de la réparation des sites de restriction, la technique employée consiste en un remplissage des extrémités 5' protubérantes à l'aide du grand fragment de l'ADN polymérase I d'E. coli (Klenow). Par ailleurs, les fragments de génome adénoviral employés dans les différentes constructions décrites ci-après, sont indiqués précisément selon leur position dans la séquence nucléotidique du génome de l'Ad5 telle que divulguée dans la banque de données Genebank sous la référence M73260. En ce qui concerne la biologie cellulaire, les cellules sont transfectées ou transduites et cultivées selon les techniques standards bien connues de l'homme du métier. Pour ce qui est des levures, on utilise les techniques conventionnelles, notamment décrites dans Guthrie et Fink (1991, Methods in Enzymology, Vol 194, Guide to Yeast genetics and Molecular Biology, Academic Press Inc). EXEMPLE 1: Construction du gène tronqué FURI Sl 05. Le fragment EcoRI-HindIII portant le gène FURI sauvage est isolé du plasmide pHX (Kern et al., 1990, Gene 88, 149-157) et inséré dans le plasmide intégratif levurien pRS306 (Sikorski et Hieter, 1989, Genetics 122, 19-27) digéré par ces mêmes enzymes, pour donner le plasmide pRS306FUR1. A partir de ce dernier, le gène FURI est recloné sous forme d'un fragment XhoI-EcoRI dans le plasmide centromérique levurien pRS314 ( Sikorski et hieter, 1989, Genetics 122, 19-27) traité par XhoI et EcoRI. On obtient le phagemide pRS314FUR1 à partir duquel on prépare du simple brin uracilé dans la souche E. coli CJ236 (dut, ung, thi, relA, pCJl05 (CmR) sur lequel on procède à une mutagenèse dirigée selon la technique de Kunkel (kit Muta-Gene phagemid, In vitro Mutagenesis Version 2; Biorad). La mutagénèse a pour but d'introduire des sites de restriction EcoRI et MluI respectivement en 5' de l'ATG initiateur et 3' du codon stop du gène FUR1 et de modifier le contexte de l'ATG initiateur selon les règles de Kozak, ce qui entraîne le changement du second codon Asn en Asp. Pour ce faire, on utilise les oligonucléotides reportés dans les IDS NO: 3 et 4. Le plasmide ainsi généré pRS314FURI+I est utilisé à titre de contrôle de l'activité UPRTase sauvage. En parallèle, la délétion des 105 premiers nt de la séquence codante FUR1 est obtenue par mutagénèse du plasmide pRS314FURI à l'aide des oligonucléotides reportés dans les IDS NO: 5 et 4. Le plasmide en résultant pRS314FURI+106 comporte les mêmes modifications que son équivalent complet, à savoir un site EcoRI en 5' du codon ATG (correspondant à la Met +36 de la protéine native), un consensus Kozak à ce niveau avec un changement du codon suivant Ser en Ala et un site MluI en 3' du codon stop. Le fragment EcoRI-SacI de pRS314FUR1+106 est recloné dans le plasmide pRS314FUR1+1 clivé par EcoRI et SacI pour donner le plasmide pRS314FUR1A105 portant un gène FUR1 exprimant une protéine délétée de ses 35 premiers résidus en N-terminal. EXEMPLE 2: Complémentation d'un mutant furl de S. cerevisiae La fonctionalité des produits d'expression FUR1 obtenus des constructions précédentes est évaluée par complémentation d'un mutant de S. cerevisiae fur 1-8 trpl-4 (Jund et Lacroute, 1970, J. Bacteriol. 102, 607-615) transformé par les différents plasmides de type pRS314. Les transformants sont cultivés soit classiquement (milieu minimum YNB) ou en présence de 5-FU à 5mM et on évalue leur capacité de croissance à 30 C et 370C. Les résultats sont présentés dans le tableau 1 où + représente la croissance et - L'absence de croissance témoignant d'une sensibilité au 5-FU et donc d'une activité UPRTase. Tableau 1 Milieu YNB +5-FU 5mM Transformants (minimum) 300C et 370C 30 C et 37 C pRS314 + + pRS314FUR1 + pRS314FUR1+1 + pRS314FUR1+106 + pRS3 14FUR15105 + Bien entendu, tous les transformants sont aptes à pousser en milieu conventionnel YNB. Par contre, en présence de 5-FU, seul le transformant comprenant le plasmide pRS314 "vide" ne comportant pas les séquences FUR 1 est apte à croître alors que ceux ayant reçu les plasmides comportant les séquences FURI natives (pRS314FUR1), mutées au niveau du premier codon ATG (pRS314FUR1+1), mutées au niveau du second codon ATG (pRS314FUR1+106) ou tronquées (pRS314FUR1#105) sont sensibles à la présence de 5-FU. Ces tests de complémentation démontrent que les différentes constructions produisent une enzyme UPRTase fonctionnelle et que la délétion des 35 résidus N-terminaux n'a pas d'effet négatif sur l'activité enzymatique. EXEMPLE 3 : Expression de FUR1 et FUR1#105 dans les cellules mammifères. Les fragments EcoRI-MluI de pRS314FUR1+1 et pRS314FUR1A105 portant les gènes FUR1 et FUR1#105 ont été introduit dans le plasmide d'expression eucaryote pCI-neo (Promega) pour donner respectivement les plasmides pCI-neoFUR1+1 et pCI-neoFUR1A105. Les cellules COS7 (ATCC CRL-1651) sont transfectées transitoirement par ces plasmides et on détermine l'activité enzymatique UPRTase sur les extraits cellulaires. Plus précisemment, 5x105 cellules COS7 sont ensemencées à 37 C dans des boites de culture de 60 mm contenant 5ml de milieu DMEM complémenté par du sérum de veau fétal (FCS) 10%. Le jour suivant, les cellules sont traitées par 20 p1 de lipofectine (Gibco BRL) en absence ou en présence de 5 g de plasmide et la culture poursuivie dans 2 ml de milieu DMEM. Après 16 heures d'incubation à 37 C, elles sont remises dans 5 ml de DMEM-FCS 10% pendant environ 48 heures. Les cellules sont alors lavées et resuspendues dans 30 Cll de tampon de lyse (Tris HCl pH 7,5 50 mM/NaCl 150 mM/EDTA 5 mM/DTT 1 mM/triton X-100 1%) pendant 30 minutes à 4 C. Le lysat cellulaire est recueilli, centrifugé et on dose l'activité enzymatique UPRTase sur le surnageant ainsi obtenu. Pour ce faire, 4 Cll de lysat sont incubés 10 minutes à 37 C en présence de 2 Cll de tampon réactionnel UPRTase (Tris-HCl pH 7,5 100 mM / MgC12 10 mM / 5-PRPP 10 mM (5phosphoribosylpyrophosphate) /[C'4]uracile 3 mM à 0.02 luCi/pl (NEN). Les réactions enzymatiques sont stoppées par chauffage à 100 C pendant 1 minute. Des aliquotes de 1 1ll sont déposés sur plaque TLC polyethylenimine-cellulose (Merck). L'uracile est séparé de l'UMP en utilisant l'eau comme solvant de migration. Après migration, la plaque TLC est scannée au PosphorImager (445 SI; Molecular Dynamics). La concentration en protéine est mesurée par la méthode de Bradford (protein Assay ; Biorad). L'activité UPRTase à été déterminée à partir de trois transfections indépendantes et les résultats présentés dans le Tableau 2. Tableau 2 plasmide transfecté Activité UPRTase (37 C) pmoles d'uracile transformées/minute/mg de protéine non détectable pCI-neo non détectable pCI-neoFUR1+1 91 +/- 15 pCI-neoFUR1A105 3150 +/- 420 La transformation de l'uracile en UMP n'est observée que dans les cellules transfectées par les plasmides exprimant un gène FUR1 complet (pCI-neoFUR1+1) ou tronqué (pCI-neoFUR 1 105). On note également que l'activité UPRTase codée par le gène tronqué est supérieure d'un facteur 30 par rapport à celle codée par le gène complet. EXEMPLE 4: Construction d'un vecteur adénoviral pour le transfert du gène tronqué FUR1#105 et infection de cellules tumorales humaines. 1. Construction de pTG6289 pour l'expression de FUR1 j105 Le fragment EcoRI-MluI de pCI-neoFUR1A105 renfermant le gène tronqué est isolé et introduit dans le vecteur pTG6600 clivé par ces mêmes enzymes, pour donner le vecteur de transfert pTG6288. A titre indicatif, pTG6600 est un vecteur p polyII (Lathe et al., 1987, Gene 57, 193-201) dans lequel sont insérées les séquences Ad5 1 à 458, le promoteur précoce CMV, les séquences d'épissage hybrides trouvées dans le plasmide pCI (Promega Corp, comprenant le site donneur d'épissage de l'intron 1 du gène ss-globine humaine et le site accepteur d'épissage du gène d'immunoglobuline de souris), les séquences de polyadénylation du virus SV40 et les séquences Ad5 3328-5788. Une telle construction est à la portée de l'homme de l'art notamment sur la base de la demande française 97 06757. Le vecteur adénoviral pTG6289 est reconstitué par recombinaison dans la souche E. coli BJ 5183 entre le fragment PacI-BstEII de pTG6288 et le vecteur pTG6624 (décrit dans la demande française 97 06757) linéarisé par ClaI. a titre indicatif, pTG6624 correspond au plasmoide p poly II portant le génome Ad5 délété des régions El (nt 459 à 3327) et E3 (nt 28592 à 30470)avec une cassette d'expression insérée à la place de El. La construction finale pTG6289 contient le génome Ad5 délété de l'essentiel des régions El (nt 459 à 3328) et E3 (nt 28249 à 30758) et en lieu et place de El, une cassette d'expression du gène FUR1A105 placé sous le contrôle du promoteur précoce CMV et des séquences d'épissage hybride P-globine/Ig. Les particules adénovirales sont générées par transfection dans une lignée de complémentation de la fonction El, par exemple la lignée 293 (ATCC CRL1573) selon les techniques de l'art (Graham et Prevec, 1991, Methods in Molecular Biology Vol 7, Gene Transfer and Expression Protocols ; Ed E.J. Murray, The Human Press Inc, Clinton, NJ). 2. Construction d'un vecteur pour l'expression du gène FCYI. On isole du simple brin uracilé à partir du phagemide d'expression pRS315FCYI (Erbs et al., 1997, Curr. Genet. 31, 1-6), lequel est modifié par mutagénèse dirigée (kit Muta-gene Phagemid, In vitro Mutagenesis version 2 Biorad). La mutagénèse met en oeuvre les oligonucléotides des IDS NO: 6 et 7 permettant d'introduire un site HindIII en 5' de l'ATG initiateur et un site EcoRI en 3' du codon stop du gène FCY1 et de modifier le contexte traductionnel selon les règles de Kozak. Le fragment HindIII-EcoRI ainsi modifié est inséré dans le plasmide pRS306 (Sikorski et Hieter, 1989, Genetics 122, 19-27) digéré par ces mêmes enzymes, pour donner pRS306FCYI. Le fragment X/zoI-XbaI de pRS306FCY1 est sous-cloné dans le vecteur pCI-neo (Promega) clivé par XhoI et XbaI. On obtient pcI-neoFCY1 comprenant le gène FCY1 avec une séquence consensus Kozak au niveau de son ATG initiateur. On génère un vecteur adénoviral pour l'expression du gène FCY1 de S. cerevisiae codant pour l'enzyme CDase. Le fragment Xh 2% sont incubées 30 minutes à 37 C en présence des adénovirus à tester (Ad.CMV FCYI, Ad.CMV-FURI ou leur mélange) à une MOI (multiplicité d'infection) de 20. A titre de témoin négatif, l'infection est réalisée avec du Mock ou un adénovirus de première génération dépourvu de gène d'intérêt (Ad vide). Les cellules infectées sont reprises dans 500 Cll de DMEM-FCS 10% et placées dans une boîte de culture de 35 mm à raison de 1 xl 06 cellules par boite. Après 48 heures d'incubation à 37 C, les différentes activités enzymatiques utilisant la 5-FC ou la 5-FU comme substrat, sont déterminées sur les lysats cellulaires. L'activité UPRTase est mesurée selon le protocole indiqué ci-avant, sur 4 1ll de lysat cellulaire incubés 20 minutes à 37 C en présence de 2 Ill de tampon réactionnel UPRTase ([C14j5-FU, Sigma). Pour l'activité CDase, on utilise 4 l de lysat cellulaire qui sont incubés 20 min à 37 C avec 2 l de tampon réactionnel CDase (Tris-HCl pH 7,5 100 mM / [H3]5-FC 3 mM à 0.25 Ci/ l, Sigma). La conversion de la 5-FC en 5-FUMP (activités CDase/UPRTase) est déterminée sur 4 l de lysat cellulaire incubés 20 min à 37 C en présence de 2 l de tampon réactionnel CDase/UPRTase (Tris-HCl pH 7,5 100 mM / MgC12 10 mM / 5-PRPP 10 mM / [H3]5-FC 3 mM à 0.25 pCi/l). Des aliquotes de 1 pl sont déposés sur plaque TLC PEI cellulose. La 5-FU est séparée de la 5-FC en utilisant l'eau comme solvant et la séparation de la 5-FUMP et de la 5-FU est réalisée en utilisant un mélange eau/butanol-l (14%/86%) comme solvant. Dans les trois types cellulaires, L'activité CDase est observée dans les extraits obtenus des cellules infectées avec l'adénovirus exprimant le gène FCY1 (Ad.CMV-FCYI) et de celles coinfectées avec les deux virus Ad.CMV-FCY1 et Ad.CMV-FURll05. Le dosage enzymatique montre une activité variant d'environ 80 à 100 p moles de 5-FC transformée/min/mg de protéine dans les cellules PANC1, SK-BR3 et SW480. Pour ce qui est de la transformation du 5-FU (activité UPRTase), on observe une activité endogène d'environ une centaine de p moles de 5-FU transformée/min/mg de protéine. L'activité est amplifié d'un facteur 7 à 8 lorsque l'infection est réalisée avec l'adénovirus Ad.CMV-FUR15105 seul ou dans le cas de la coinfection. Enfin, la conversion en 5-FUMP est mise en évidence dans les extraits infectés avec Ad-CMV-FCY1 (activité endogène) et dans le cas des coinfections. Par ailleurs on détermine les LD50 (dose léthale 50 %) de la 5-FC et de la 5-FU (pM) vis-à-vis des trois lignées tumorales humaines infectées par les virus précédents (Mock, Ad vide, Ad.CMV-FCY1, Ad.CMV-FURl105) ou coinfectés par les adénovirus exprimant les gènes FCY1 et FUR13105. Les cellules sont infectées à une MOI de 20 puis cultivées en présence ou en absence de drogues (5 FC ou 5-FU) à différentes concentrations. Après trypsination à J+6, on ajoute du bleu trypan. Les cellules vivantes ne prennent pas le bleu trypan alors que les cellules mortes sont colorées. On évalue au microscope le % de mortalité. Les valeurs reportées ci-après correspondent aux moyennes obtenues après quatre comptages. La LD50 à la 5-FC des lignées cellulaires infectées est comprise entre 5 et 10 pM (selon les lignées) lorsqu'il y a co-expression des deux gènes FCY1 et FUR1#105, alors qu'elle est de 100 à 500 I1M dans le cas de la seule expression du gène FCYI et de 5000 à 10000 pM pour les témoins négatifs (Mock, Ad vide) et l'Ad.CMV-FUR1A105. De même, la LD50 à la 5-FU est considérablement abaissée lorsque l'infection met en oeuvre le virus permettant l'expression du gène FUR121105 comparée aux témoins négatifs et à l'infection mettant en oeuvre l'Ad.CMV-FCYI seul. Ces résultats mettent en évidence l'intérêt d'utiliser en synergie les gènes FCY1 et FUR1#105 dans une approche gène "suicide" pour améliorer la conversion de la prédrogue 5-FC en 5-FUMP cytotoxique EXEMPLE 5 : Construction d'un gène hvbride codant pour une protéine de fusion portant les activités CDase et UPRTase 1. Construction du gène de fusion Le fragment EcoRI-NotI de pCI-neoFUR1#105 est inséré dans le plasmide pCI-neoFCY1 coupé par EcoRI-NotI pour donner le plasmide pCI neoFCY1+FUR1#105. A partir de ce plasmide simple brin uracilé, la fusion de FCY1 et FUR1#105 est réalisée par mutagenèse dirigée à l'aide de l'oligonucléotide oTG 11615 (IDS NO: 8). La modification consiste en une délétion du codon stop de FCY1 et du codon Met initiateur de FUR1 permettant la fusion en phase des séquences FCY1 et FUR1#105 sans espaceur (fusion désignée ci-après FCU1). 2. Caractérisation enzymatique de la protéine bifonctionnelle FCUI. Les activités CDase et UPRTase (10 minutes de réaction à 37 C) sont déterminées selon les techniques indiquées au préalable à partir de lysats cellulaires de cellules COS7 - non transfectées - transfectées par 10 g de pCI-neo (plasmide vide) - transfectées par 5 g de pCI-neofFCY1 + 5 g de pCI-neoFUR1A105 - transfectées par 5 g de pCI-neo + 5 g de pCI-neoFCU1 Les valeurs obtenues sont reportées dans le Tableau 3 suivant et correspondent aux moyennes de trois déterminations enzymatiques. Tableau 3 CDase UPRTase CDase/UPRTase COS7 pmoles de cytosine pmoles d'uracile pmoles d'UMP transformées/min/mg transformées/min/mg formées/min/mg de protéine de protéine de protéine non transfectées non détectable non détectable non détectable pCI-neo non détectable non détectable non détectable pCI-neoFCY1+ 626 +/- 106 3005 +/- 298 535 +/- 54 pCI-neoFUR1#105 pCI-neo+ 5373 +/- 268 2789 +/-310 2121 +/- 107 pCI-neoFCU1 On observe une activité UPRTase équivalente que le gène soit sous forme de fusion (pCI-neoFCU1) ou non (pCI-neoFUR1A105). De manière surprenante, L'activité CDase est augmentée d'un facteur 10 lorsque le gène est sous forme de fusion par rapport au gène FCY1 non fusionné. Ainsi, la forme fusionnée est bénéfique puisqu'elle provoque une augmentation de l'activité globale CDase UPRTase et donc de la formation de 5-FUMP à partir de 5-FC. La protéine de fusion codée par FCU1 présentant une activité UPRTase limitante par rapport à l'activité CDase, on met en évidence in vitro lors de la réaction CDase-UPRTase, la formation d'un pool d'uracile de l'ordre de 3000 pmoles d'uracile/min/mg de protéine. Ce pool d'uracile est inexistant dans les mêmes conditions lorsque la réaction met en oeuvre les protéines FCY1 et FURl ill 05. 3. Expression des gènes FCY1, FUR1 j105 et FCU1 clonés sur plasmide pCI-neo, dans les lignées B16(FO). L'efficacité du gène fusion FCU1 est évaluée par transfection de la lignée de mélanome de souris B16(F0) (ATCC CRL-6322). Pour ce faire, 2,5x105 cellules B16(F0) sont ensemencées à 37 C dans des boites de 60 mm contenant 5 ml de milieu DMEM-FCS 10%. Après 48 heures d'incubation, les cellules ont été traitées par 20 Ill de lipofectine (Gibco BRL) en présence de 5 g de plasmide et la culture poursuivie pendant 16 heures à 37 C dans 2 ml de milieu DMEM. 48 heures après, les cellules sont placées dans 5 ml de DMEM-FCS 10% puis diluées dans des boites de Pétri de 10 cm dans du milieu DMEM-FCS 10% contenant 1 mg/ml de G418. Au bout de 20 jours, des clones résistants au G418 sont visibles. Les clones pour chaque construction sont rassemblés, transférés dans des flasques T150 et cultivés dans le milieu sélectif. On détermine les activités CDase, UPRTase et CDase UPRTase à 37 C en présence de 5-FC ou de 5-FU comme substrat. Les valeurs indiquées sont les moyennes obtenues après trois déterminations enzymatiques (voir Tableau 4). Tableau 4 CDase UPRTase CDase/UPRTase pmoles de 5-FC pmoles de 5-FU pmoles de 5-FUMP B 1 6(F0) transformées/min/mg transformées/min/mg de formées/min/mg de protéine protéine de protéine non transfectées non détectable 310 +/- 77 non détectable pCI-neo non détectable 238 +/- 56 non détectable pCI-neoFCY1 3 +/- 0.4 292 +/- 93 2 +/- 0.4 pCI-neoFUR1#105 non détectable 813 +/- 47 non détectable pCI-neoFCU1 158 +/-9 834+i-67 41+î-5 Les résultats enzymatiques confirment ceux déterminés à partir des cellules COS7 transfectées, à savoir une activité UPRTase conservée mais une activité CDase fortement augmentée pour la protéine de fusion par rapport celle mesurée avec la protéine native FCY1. Pour les clones B16 transfectés par pCI-neoFCU1, il apparaît également in vitro un pool de 5-FU (120 pmoles/min/mg de protéine) qui est la conséquence de l'augmentation de l'activité CDase. Les sensibilités aux 5-FC et 5-FU des différents clones sont également testées après incubation en présence des drogues pendant 6 jours. Les valeurs suivantes sont les moyennes de quatre comptages (au bleu trypan) de la mortalité des cellules. La LD50 à la 5-FC est de 10 M pour les cellules transfectées avec le plasmide portant le gène de fusion (pCI-neoFCU 1) comparé à 100 pM avec pCIneoFCY1 et 1000 CIM avec les témoins négatifs (cellules non transfectées et pCIneo) et pCI-neoFUR15105. La LD50 à la 5-FU est de 0,03 pM lorsque la transfection est réalisée avec pCI-neoFUR1105 ou pCI-neoFCU1 contre 0,05 M dans tous les autres cas. Ces résultats montrent que l'expression du gène FCU1 sensibilise plus fortement les cellules au 5-FC que l'expression du gène FCY1. Cette différence de sensibilisation à la 5-FC est due à une activité CDase plus importante pour la protéine de fusion et non à la présence de l'activité UPRTase; cette activité UPRTase codée par le gène de S. cerevisiae a peu d'effet sur la toxicité à la 5-FU des B 16(F0) qui sont naturellement très sensibles à la 5-FU et qui présentent une activité UPRTase endogène importante. 4. Mise en évidence d'un effet "bystander" des B16(F0) transfectées par le gène FCU1. L'apparition d'un pool de 5-FU dans le dosage in vitro de l'activité CDase UPRTase de B16(FO) transfectées par FCU1 est à priori un avantage pour potentialiser l'effet bystander: plus ce pool intracellulaire est important, plus il y aura diffusion passive de la 5-FU dans le milieu, et plus grande sera la mortalité des cellules non transfectées. Pour mettre en évidence cet effet "bystander", des clones B16(F0) non transfectés ont été mélangés, à différentes proportions, à des clones B16(F0) transfectés par pCI-neoFCU1. Ces mélanges de clones ont été par la suite testés en présence de différentes concentrations de 5-FC. On évalue la mortalité cellulaire (au bleu trypan) après 4 jours de culture en présence de 5-FC Les résultats (moyennes de 4 déterminations) sont présentés dans le Tableau 5 suivant. Tableau 5 B16/B16 pCI-neoFCU1 LD50 ( M) en % + 5-FC 100%/0% 5000 95%/5% 500 90%/10% 300 75%/25% 200 50%/50% 100 0%/100% 50 On observe que la LD50 à la 5-FC est abaissée d'un facteur 10 dès que le mélange cellulaire contient 5% de cellules tranfectées par FCU], témoignant de l'existence d'un effet "bystander". Bien entendu, la LD 50 continue à décroître lorsque la proportion de cellules transfectées augmente. Dans le but de démontrer que cet effet "bystander" ne nécessite pas, à l'inverse du système tklganciclovir, un contact entre cellules grâce à la diffusion de la 5-FU dans le milieu, des cellules B 16 (non transfectées) ont été incubées pendant 4 jours dans du milieu (dilué au quart dans du milieu neuf) provenant de surnageants de culture de B16 (témoin négatif) ou B16 pCI-neoFCU1 incubées 48 heures en présence de différentes concentrations de 5-FC et la mortalité des cellules B 16 est évaluée au bleu de trypan. Les résultats démontrent un effet drastique sur la LD50 et mettent en évidence la présence de la 5-FU dans le milieu qui est la conséquence d'une forte activité CDase de la protéine fusion codée par le gène FCUI. LISTE DE SEQUENCES (1) INFORMATION GENERALE: (i) DEPOSANT: (A) NOM: TRANSGENE S.A. (B) RUE: 11 rue de molsheim (C) VILLE: Strasbourg (E) PAYS: France (F) CODE POSTAL: 67000 (G) TELEPHONE: (0)3 88 27 91 00 (H) TELECOPIE: (0)3 88 27 91 41 (ii) TITRE DE L' INVENTION: Mutant ayant une activite uracile phosphoribosyl transferase. (iii) NOMBRE DE SEQUENCES: 8 (iv) FORME LISIBLE PAR ORDINATEUR: (A) TYPE DE SUPPORT: Tape (B) ORDINATEUR: IBM PC compatible (C) SYSTEME D' EXPLOITATION: PC-DOS/MS-DOS (D) LOGICIEL: PatentIn Release &num;1.0, Version &num;1.25 (OEB) (2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO: 1: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 216 acides aminés (B) TYPE: acide aminé (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: protéine (iii) HYPOTHETIQUE: NON (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Saccharomyces cerevisiae (vii) SOURCE IMMEDIATE: (B) CLONE: mutant UPRTase delta 35 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 1: Met Ser Ser Glu Pro Phe Lys Asn Val Tyr Leu Leu Pro Gln Thr Asn 1 5 10 15 Gln Leu Leu Gly Leu Tyr Thr Ile Ile Arg Asn Lys Asn Thr Thr Arg 20 25 30 Pro Asp Phe Ile Phe Tyr Ser Asp Arg Ile Ile Arg Leu Leu Val Glu 35 40 45 Glu Gly Leu Asn His Leu Pro Val Gln Lys Gln Ile Val Glu Thr Asp 50 55 60 Thr Asn Glu Asn Phe Glu Gly Val Ser Phe Met Gly Lys Ile Cys Gly 65 70 75 80 Val Ser Ile Val Arg Ala Gly Glu Ser Met Glu Gln Gly Leu Arg Asp 85 90 95 Cys Cys Arg Ser Val Arg Ile Gly Lys Ile Leu Ile Gln Arg Asp Glu 100 105 110 Glu Thr Ala Leu Pro Lys Leu Phe Tyr Glu Lys Leu Pro Glu Asp Ile 115 120 125 Ser Glu Arg Tyr Val Phe Leu Leu Asp Pro Met Leu Ala Thr Gly Gly 130 135 140 Ser Ala Ile Met Ala Thr Glu Val Leu Ile Lys Arg Gly Val Lys Pro 145 150 155 160 Glu Arg Ile Tyr Phe Leu Asn Leu Ile Cys Ser Lys Glu Gly Ile Glu 165 170 175 Lys Tyr His Ala Ala Phe Pro Glu Val Arg Ile Val Thr Gly Ala Leu 180 185 190 Asp Arg Gly Leu Asp Glu Asn Lys Tyr Leu Val Pro Gly Leu Gly Asp 195 200 205 Phe Gly Asp Arg Tyr Tyr Cys Val 210 215 (2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO: 2: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 373 acides aminés (B) TYPE: acide aminé (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: protéine (iii) HYPOTHETIQUE: NON (iii) ANTI-SENS: NON (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Saccharomyces cerevisiae (vii) SOURCE IMMEDIATE: (B) CLONE: proteine de fusion fcyl::furl delta 35 (FCU1) (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 2: Met Val Thr Gly Gly Met Ala Ser Lys Trp Asp Gln Lys Gly Met Asp 1 5 10 15 Ile Ala Tyr Glu Glu Ala Ala Leu Gly Tyr Lys Glu Gly Gly Val Pro 20 25 30 Ile Gly Gly Cys Leu Ile Asn Asn Lys Asp Gly Ser Val Leu Gly Arg 35 40 45 Gly His Asn Met Arg Phe Gln Lys Gly Ser Ala Thr Leu His Gly Glu 50 55 60 Ile Ser Thr Leu Glu Asn Cys Gly Arg Leu Glu Gly Lys Val Tyr Lys 65 70 75 80 Asp Thr Thr Leu Tyr Thr Thr Leu Ser Pro Cys Asp Met Cys Thr Gly 85 90 95 Ala Ile Ile Met Tyr Gly Ile Pro Arg Cys Val Val Gly Glu Asn Val 100 105 110 Asn Phe Lys Ser Lys Gly Glu Lys Tyr Leu Gln Thr Arg Gly His Glu 115 120 125 Val Val Val Val Asp Asp Glu Arg Cys Lys Lys Ile Met Lys Gln Phe 130 135 140 Ile Asp Glu Arg Pro Gln Asp Trp Phe Glu Asp Ile Gly Glu Ser Ser 145 150 155 160 Glu Pro Phe Lys Asn Val Tyr Leu Leu Pro Gln Thr Asn Gln Leu Leu 165 170 175 Gly Leu Tyr Thr Ile Ile Arg Asn Lys Asn Thr Thr Arg Pro Asp Phe 180 185 190 Ile Phe Tyr Ser Asp Arg Ile Ile Arg Leu Leu Val Glu Glu Gly Leu 195 200 205 Asn His Leu Pro Val Gln Lys Gln Ile Val Glu Thr Asp Thr Asn Glu 210 215 220 Asn Phe Glu Gly Val Ser Phe Met Gly Lys Ile Cys Gly Val Ser Ile 225 230 235 240 Val Arg Ala Gly Glu Ser Met Glu Gln Gly Leu Arg Asp Cys Cys Arg 245 250 255 Ser Val Arg Ile Gly Lys Ile Leu Ile Gln Arg Asp Glu Glu Thr Ala 260 265 270 Leu Pro Lys Leu Phe Tyr Glu Lys Leu Pro Glu Asp Ile Ser Glu Arg 275 280 285 Tyr Val Phe Leu Leu Asp Pro Met Leu Ala Thr Gly Gly Ser Ala Ile 290 295 300 Met Ala Thr Glu Val Leu Ile Lys Arg Gly Val Lys Pro Glu Arg Ile 305 310 315 320 Tyr Phe Leu Asn Leu Ile Cys Ser Lys Glu Gly Ile Glu Lys Tyr His 325 330 335 Ala Ala Phe Pro Glu Val Arg Ile Val Thr Gly Ala Leu Asp Arg Gly 340 345 350 Leu Asp Glu Asn Lys Tyr Leu Val Pro Gly Leu Gly Asp Phe Gly Asp 355 360 365 Arg Tyr Tyr Cys Val 370 (2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO: 3: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 25 paires de bases (B) TYPE: acide nucléique (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (iii) HYPOTHETIQUE: NON (iii) ANTI-SENS: OUI (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Saccharomyces cerevisiae (vii) SOURCE IMMEDIATE: (B) CLONE: oligonucleotide de synthese (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 3: CGGGTCCATG GTTGAATTCG AAATG 25 (2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO: 4: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 19 paires de bases (B) TYPE: acide nucléique (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (iii) HYPOTHETIQUE: NON (iii) ANTI-SENS: NON (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Saccharomyces cerevisiae (vii) SOURCE IMMEDIATE: (B) CLONE: oligonucleotide de synthese (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 4: TGGTGTACGC GTGTGATTT 19 (2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO: 5: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 26 paires de bases (B) TYPE: acide nucléique (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (iii) HYPOTHETIQUE: NON (iii) ANTI-SENS: OUI (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Saccharomyces cerevisiae (vii) SOURCE IMMEDIATE: (B) CLONE: oligonucleotide de synthese (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 5: CGAAGCCATG GTTTGCAGAA TTCTAG 26 (2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO: 6: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 25 paires de bases (B) TYPE: acide nucléique (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (iii) HYPOTHETIQUE: NON (iii) ANTI-SENS: OUI (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Saccharomyces cerevisiae (vii) SOURCE IMMEDIATE: (B) CLONE: oligonucleotide de synthese (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 6: GTTAAAAGCT TCATAGGCCA TGGTG 25 (2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO: 7: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 21 paires de bases (B) TYPE: acide nucléique (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (iii) HYPOTHETIQUE: NON (iii) ANTI-SENS: NON (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Saccharomyces cerevisiae (vii) SOURCE IMMEDIATE: (B) CLONE: oligonucleotide de synthese (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 7: AGTAGAGAAT TCAGCACGCT G 21 (2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO: 8: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 26 paires de bases (B) TYPE: acide nucléique (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (iii) HYPOTHETIQUE: NON (iii) ANTI-SENS: OUI (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Saccharomyces cerevisiae (vii) SOURCE IMMEDIATE: (B) CLONE: oligonucleotide de synthese (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 8: ATGGTTCCGA AGCCTCACCA ATATCT 26 Revendications 1. Polypeptide ayant une activité uracile phosphoribosyl transférase (UPRTase), caractérisé en ce qu'il dérive d'une UPRTase native au moins par mutation. 2. Polypeptide selon la revendication 1, caractérisé en ce que ladite UPRTase native est de levure et en particulier celle codée par le gène FUR1 de Saccharomyces cerevisiae. 3. Polypeptide selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce qu'il dérive d'une UPRTase native au moins par délétion de tout ou partie de la région N terminale de ladite UPRTase native et, en particulier de la partie en amont du second codon ATG de ladite UPRTase native. 4. Polypeptide selon la revendication 2 ou 3, caractérisé en ce qu'il comprend une séquence en acides aminés sensiblement telle que représentée à l'identificateur de séquence IDS NO: 1, débutant au résidu Met en position 1 et se terminant au résidu Val en position 216. 5. Polypeptide selon la revendication 4, caractérisé en ce qu'il comprend une séquence en acides aminés telle que représentée à l'identificateur de séquence IDS NO: 1, débutant au résidu Met en position 1 et se terminant au résidu Val en position 216. 6. Polypeptide selon la revendication 4 ou 5, caractérisé en ce qu'il comprend en outre une substitution du résidu sérine en position 2 par un résidu alanine. 7. Polypeptide selon l'une des revendications l à 6, caractérisé en ce qu'il présente une activité UPRTase sensiblement plus élevée que celle présentée par ladite UPRTase native. 8. Polypeptide selon l'une des revendications 1 à 7, caractérisé en ce qu'il s'agit d'un polypeptide de fusion dans lequel ledit polypeptide est fusionné en phase avec au moins un second polypeptide. 9. Polypeptide selon la revendication 8, caractérisé en ce qu'il est fusionné en phase à un second polypeptide présentant une activité cytosine désaminase (CDase) et dérivant d'une cytosine désaminase native. 10. Polypeptide selon la revendication 8 ou 9, caractérisé en ce que la fusion avec le second polypeptide est réalisée à l'extrémité N-terminale dudit polypeptide. 11. Polypeptide selon l'une des revendications 8 à 10, caractérisé en ce que ladite CDase native est de levure et en particulier celle codée par le gène FCY1 de Saccharomyces cerevisiae. 12. Polypeptide selon la revendication 11, caractérisé en ce qu'il comprend une séquence en acides aminés sensiblement telle que représentée à l'identificateur de séquence IDS NO: 2, débutant au résidu Met en position 1 et se terminant au résidu Val en position 373. 13. Polypeptide selon la revendication 12, caractérisé en ce qu'il comprend une séquence en acides aminés telle que représentée à l'identificateur de séquence IDS NO: 2, débutant au résidu Met en position 1 et se terminant au résidu Val en position 373. 14. Polypeptide selon l'une des revendications 8 à 13, caractérisé en ce qu'il présente une activité CDase sensiblement plus élevée que ladite CDase native. 15. Séquence nucléotidique codant pour un polypeptide selon l'une des revendications 1 à 14. 16. Vecteur recombinant portant une séquence nucléotidique selon la revendication 15 placée sous le contrôle des éléments nécessaires à son expression dans une cellule hôte. 17. Vecteur recombinant selon la revendication 16, caractérisé en ce que ledit vecteur est choisi parmi le groupe constitué par les vecteurs plasmidiques et viraux éventuellement associé à une ou plusieurs substances améliorant l'efficacité transfectionnelle et/ou la stabilité du vecteur. 18. Vecteur recombinant selon la revendication 17, caractérisé en ce que ledit vecteur est un vecteur viral dérivant d'un poxvirus, d'un adénovirus, d'un rétrovirus, d'un virus de l'herpès, d'un alphavirus, d'un foamyvirus ou d'un virus associé à l'adénovirus. 19. Vecteur selon la revendication 17 ou 18, caractérisé en ce que ledit vecteur est un vecteur adénoviral dépourvu de tout ou partie d'au moins une région essentielle à la réplication sélectionnée parmi les régions El, E2, E4 et L1-L5. 20. Vecteur selon la revendication 19, caractérisé en ce que ledit vecteur est un vecteur adénoviral dépourvu en outre de tout ou partie de la région E3 non essentielle. 21. Vecteur recombinant selon l'une des revendications 16 à 20, caractérisé en ce que les éléments nécessaires à l'expression comprennent un promoteur et, en particulier le promoteur précoce du Cytomégalovirus (CMV). 22. Procédé de préparation d'une particule virale, selon lequel (i) on introduit un vecteur recombinant selon l'une des revendications 16 à 21 dans une cellule de complémentation capable de complémenter en trans ledit vecteur, de manière à obtenir une cellule de complémentation transfectée, (ii) on cultive ladite cellule de complémentation transfectée dans des conditions appropriées pour permettre la production de ladite particule virale, et (iii) on récupère ladite particule virale dans la culture cellulaire. 23. Particule virale comprenant un vecteur recombinant selon l'une des revendications 16 à 21 ou obtenue selon le procédé selon la revendication 22. 24. Cellule hôte comprenant une séquence nucléotidique selon la revendication 15, un vecteur recombinant selon l'une des revendications 16 à 21 ou infectée par une particule virale selon la revendication 23. 25. Composition comprenant un polypeptide selon l'une des revendications 1 à 14, une séquence nucléotidique selon la revendication 15, un vecteur recombinant selon l'une des revendications 16 à 21, une particule virale selon la revendication 23 ou une cellule hôte selon la revendication 24 en association avec un véhicule acceptable d'un point de vue pharmaceutique. 26. Composition selon la revendication 25, caractérisée en ce qu'elle comprend un polypeptide selon les revendications 1 à 7 et un second polypeptide d'intérêt, notamment un polypeptide présentant une activité CDase. 27. Composition selon la revendication 26, caractérisée en ce qu'elle comprend une séquence nucléotidique selon la revendication 15 codant pour un polypeptide selon l'une des revendications 1 à 7 et une seconde séquence nucléotidique d'intérêt, codant notamment pour un polypeptide présentant une activité CDase. 28. Utilisation thérapeutique ou prophylactique d'un polypeptide selon l'une des revendications 1 à 14, d'une séquence nucléotidique selon la revendication 15, d'un vecteur recombinant selon l'une des revendications 16 à 21, d'une particule virale selon la revendication 23 ou d'une cellule hôte selon la revendication 24 pour la préparation d'un médicament destiné au traitement du corps humain ou animal par thérapie génique ou par administration de protéine produite par voie recombinante. 29. Utilisation selon la revendication 28, pour la préparation d'un médicament destiné au traitement des cancers, tumeurs et maladies résultant d'une prolifération cellulaire non désirée. 30. Utilisation selon la revendication 28 ou 29, caractérisée en ce que ladite séquence nucléotidique, ledit vecteur recombinant et ladite particule virale permettent l'expression d'un polypeptide selon l'une des revendications 1 à 7, et en ce que le médicament comprend une seconde séquence nucléotidique codant pour un second polypeptide présentant une activité CDase, ladite seconde séquence nucléotidique étant portée par ledit vecteur recombinant ou ladite particule virale, ou par un vecteur ou une particule virale indépendante. 31. Procédé de préparation d'un polypeptide selon l'une des revendications 1 à 14, selon lequel: - on introduit une séquence nucléotidique selon la revendication 15 dans une cellule pour générer une cellule transformée - on cultive ladite cellule transformée dans des conditions appropriées pour permettre la production dudit polypeptide, et - on récolte ledit polypeptide de la culture cellulaire.