FR 2766495 A1 19990129 FR 9709303 A 19970722 L'invention concerne une souche de Mycobacterium dont le gène erp est modifié et la composition vaccinale la contenant. La tuberculose est une maladie infectieuse causée dans la plupart des cas par l'inhalation de bactéries appartenant au complexe d'espèce Mycobacterium tuberculosis (M. africamrm, M. bovis, M. tuberculosis). Avec huit millions de nouveaux cas humains annuels causant trois millions de décès au niveau mondial, la tuberculose demeure un problème majeur de santé publique (Sudre et al., 1992). La découverte d'antibiotiques efficaces (Streptomycine, Isoniazide, Rifampicine,...) semblait permettre l'éradication de cette maladie. Cependant, on estime qu'actuellement seulement 50 % des malades sont dépistés et reçoivent un traitement. Ce traitement est souvent inapproprié ou mal suivi et conduit â l'apparition d'un nombre croissant de souches résistantes aux antibiotiques et même polychimiorésistantes (Dooley et al., 1992). Dans ce contexte, la mise au point d'une prophylaxie vaccinale apparaît comme une solution privilégiée pour le contrôle et l'éradication de la tuberculose. Le fait d'utiliser une bactérie pathogène atténuée en tant que composant d'un vaccin a été largement décrit et mis en oeuvre dans l'art antérieur. Les méthodes pour obtenir de telles bactéries atténuées comprennent la sélection au hasard de mutants induits chimiquement ou par irradiation, ou la production de bactéries recombinantes d'origine pathogène dans lesquelles un gène impliqué dans une voie métabolique a été inactivé par génie génétique. Straley et al. (1984) ont étudié la survivance de mutants avirulents de Yersinia pestis qui sont défectueux dans une ou plusieurs voies métaboliques. Noriega et al. (1994) ont fabriqué par génie génétique une souche de Shigella orale destinée à etre utilisée en tant que prototype vaccinal par l'introduction de délétions dans un gène (aroA) codant pour une protéine impliquée dans une voie métobolique d'un acide aminé arômatique et ils ont démontré que les souches de Shîgella résultantes recombinantes défectives étaient capables d'induire des anticorps protecteurs contre le pathogène de type sauvage. Un travail important a également été réalisé utilisant Salmonella comme modèle. Voir par exemple les rapports de Hoiseth et al. (1981), Levine et al. (1987), Oyston et ai (1995) et Curtiss (1990). Cependant, des travaux similaires n'ont pas encore été réalisés pour Mycobacterium tuberculosis, I'agent étiologique de la tuberculose (TB), qui infecte un tiers de la population mondiale et tue trois millions de personnes par an. La tuberculose est la plus importante cause de mortalité dans le monde occasionnée par un ensemble d'organismes infectieux (Bloom et Murray, 1992) regroupés sous l'appellation complexe M. tuberculosis . Selon le WHO, plus de personnes sont décédées de la tuberculose en 1995 qu'au cours d'une quelconque année antérieure. Il a été estimé que jusqu'à un demi milliard de personnes souffriront de tuberculose dans les 50 prochaines années. Cependant, en dépit de son importance, les déterminants génétiques de la virulence et de persistance de M. tuberculosis restent faiblement caractérisés. En effet, la virulence des mycobactéries pathogènes est associée à leur aptitude à croître et persister au niveau intracellulaire. Les bactéries du complexe M tuberculosis parasitent les cellules phagocitaires à l'intérieur desquelles elles résident et se multiplient dans un compartiment vacuolaire spécialisé, appelé le phagosome. Les phagosomes contenant des M. tuberculosis vivants n'acidifient pas et échappent à la fusion avec les lysosomes. Les mécanismes par lesquels les M. tuberculosis rendent leur phagosome plus hospitalier restent inconnus et les gènes mycobactériens affectant leur croissance et leur multiplication intracellulaire sont activement recherchés. L'extrême difficulté à créer des mutants définis de M. tuberculosis, soit par échange allélique ou par mutagénèse par transposon, a empêché l'identification de ces facteurs de virulence selon les postulats de Koch (Falkow, 1988 ; Jacobs, 1992). Des stratégies génétiques alternatives ont plutot été utilisées, incluant la complémentation d'une bactérie non pathogène (Arruda et al., 1993) et des mutants avirulents spontannés avec des bibliothèques d'ADN chromosomiques de M. tuherculosis (Pascopella et al. 1994) et M. bovis (Collins et al., 1995) virulents. Bien que ces études ait identifié des gènes potentiellement impliqués dans l'entrée à l'intérieur des cellules épithéliales et conférant un avantage de croissance in vivo, la grande majorité des gènes mycobactériens impliqués dans la virulence et la survie dans l'organisme hôte restent inconnus. Le développement de systèmes de mutagène efficace est donc la priorité pour la génétique mycobactérienne. Une méthode pour la création de mutants est la mutagénèse par échange allélique. Récemment, des échanges alléliques ayant lieu avec une faible fréquence ont été mis en évidence chez des bactéries du complexe M. tuberculosis utilisant un vecteur à effet suicide (Reyrat et al., 1995 Azad et al., 1996) et de nouveaux protocoles permettant une détection plus facile des mutants par échange allélique ont également été développés (Norman et al., 1995 ; Balasubramamian et al., 1996 Pelicic et al., FEMSMicrobiol. Let. 1996). Cependant, la détection d'événement par échange allélique très rare est empêchée par les faibles efficacités de transformations et la fréquence importante de recombinaisons illégitimes. Ainsi, de nombreux gènes de Mycobacterium restent encore réfractaires à l'échange allélique au moyen des technologies disponibles. Plus particulièrement, les systèmes de mutagénèse par échange allélique requièrent la mise en oeuvre de procédés plus efficaces. Les problèmes rencontrés peuvent être contournés par l'utilisation d'un vecteur replicatif qui est efficacement perdu de manière conditionnelle. La possibilité d'introduire de tels vecteurs permet d'éviter les problèmes résultant des faibles efficacités de transformation. Ainsi, dans des conditions de contre-sélection, les clones qui contiennent encore le vecteur sont éliminés permettant ainsi la détection d'événements génétiques très rares. Un tel système a récemment été développé. Utilisant un vecteur replicatif dans certaines conditions qui est perdu à 39"C chez M. smegmatis, la première bibliothèque de mutants insertionnels mycobactériens a été construite dans cette souche modèle à croissance rapide (Guilhot et al., 1994). Cependant, les vecteurs thermosensibles utilisés ne sont que faiblement thermosensibles dans des mycobactéries à croissance lente du complexe M. tuberculosis et donc ne peuvent pas être utilisés dans ces espèces pour la mutagénèse par échange allélique (donnée non publiée). Les inventeurs ont réussi à affecter la virulence et la persistance des souches de Mycobacterium dans les cellules hôtes. Ils ont en effet réalisé une souche de Mycobacterium dont un gène a été modifié de façon à en atténuer la virulence. Par gène modifié, on entend un gène ayant subi une modification abolissant la production de la protéine correspondante ou permettant la production d'une protéine différant d'au moins 20 % en terme d'activité par rapport à la protéine naturelle. Le BCG (Bacille de Calmette et Guérin), une souche avirulente dérivée de M.bovis, est très utilisée de par le monde comme vaccin contre la tuberculose. Cependant si le BCG peut être administré sans problème à des individus ne présentant pas de déficience immunitaire, il n'en est pas de même chez les individus immunodéprimés tels que les personnes infectées par le virus du SIDA, les personnes ayant subi une greffe de moëlle, les personnes atteintes d'un cancer, ou les personnes affectées dans le fonctionnement d'un des composants du système immunitaire. C'est la raison pour laquelle la présente invention concerne une souche de Mycobacterium dont la persistence est limitée Le gène modifié dans la souche de Mycobacterium conforme à l'invention est le gène erp. Il peut également s'agir d'un gène possédant une homologie (d'au moins 80 %) par complémentation avec le gène erp. L'analyse de la séquence protéique déduite du gène erp montre que celui-ci code pour une protéine dont la masse moléculaire calculée est de 28kDa. La présence d'une séquence signal d'exportation en situation N-terminal ainsi que l'existence d'une région hydrophobe en C-terminal suggèrent que la molécule puisse être ancrée dans la membrane plasmique ou localisée à la surface des bacilles. De plus, la région centrale de la protéine comporte deux régions répétées composées chacune de 6 exemplaires d'un motif P(G/A)LTS positionnés en tandem. Cette organisation rappelle celle trouvée chez de nombreuses protéines de surface, associées au peptidoglycane chez les bactéries à Gram positif et chez Plasmodium. Une méthodologie génétique permettant la sélection et l'identification de fragments d'ADN codant pour des protéines exportées, a été récemment adaptée à M. tuberculosis au laboratoire. Ce système repose sur la réalisation de banques de fragments d'ADN de M. tuberculosis fusionnés avec le gène de la phosphatase alcaline (phoA) de E. coli, dépourvu de ses signaux d'expression et d'exportation. La phosphatase alcaline (PhoA) ne possède d'activité enzymatique détectable qu'après exportation au travers de la membrane plasmique. En utilisant ce système, plusieurs fragments d'ADN permettant l'exportation de PhoA chez les mycobactéries ont été sélectionnés en présence de substrat chromogène, et partiellement séquencés. Une des fusions portée par le plasmide recombinant pExp53, présente des similarités de séquence avec un gène de M. Ieprae qui code pour une protéine de 28kDa, potentiellement localisée à la surface du bacille. De plus, cette protéine est un antigène majeur de M. Ieprae, reconnu par les sera des patients lépreux lépromateux (WO 9607745). Nous avons de plus déterminé par des expériences d'hybridation moléculaire que le gène erp est unique dans le génome de M. tuberculosis et qu'il est aussi présent dans le génome des autres membres de ce complexe d'espèce (M. africanrum, M: bovis, M. bovis BCG). Afin de permettre l'étude de ERP et de confirmer sa localisation à la surface, des anticorps spécifiques anti-ERP ont été produits. Pour cela, la protéine ERP en fusion avec la protéine liant le maltose (MalE/MBP) ou en fusion avec un peptide C-terminal contenant 6 résidus histidine a été produite. Cette stratégie a permis d'obtenir en grande quantité les protéines ERP-MalE et ERP(His)6 recombinantes, exprimées dans Escherichia coli. La purification de ces molécules a été réalisée en utilisant les techniques de chromatographie d'affinité sur résine d'amylose (système MaIE) ou de nickel chélaté (système Histidine). Le poids moléculaire relatif déterminé en électrophorèse PAGE-SDS est de 36K. La différence avec le poids moleculaire théorique peut etre attribuée a un retard de migration électrophorétique dû à la forte teneur (15%) en résidus proline. Un protocole d'immunisation de lapins, à l'aide des chimères ERP-MalE et ERP(His)6 purifiées, a permis d'obtenir des sera polyclonaux à haut titre, permettant la détection spécifique de la protéine ERP. A l'aide des anti-séra obtenus chez le lapin, la localisation de la protéine ERP chez Mycobacierium tuberculosis a été précisée. Des observations en microscopie électronique après un immunomarquage à l'or colloïdal ont permis de détecter la présence de la protéine ERP à la surface de bacilles tuberculeux issus de culture in vitro. De plus, des expériences similaires ont permis de mettre en évidence la protéine ERP dans des macrophages murins infectés par M. tuberculosis. Afin d'analyser la fonction de la protéine ERP, une souche de BCG dans laquelle le gène erp a été modifié par échange allélique a été construite. La survie de cette souche en comparaison avec la souche sauvage a été analysée dans le modèle souris. Il a été mis en évidence que la mutation du gène erp affecte sévèrement la persistence de M. bovis BCG. Cette diminution de la persistance est observée dans tous les organes testés (Rate, foie, Poumons). Outre le rôle du gène dans le processus de survie du BCG, ces observations impliquent que le gène erp soit exprimé durant la phase de croissance in vivo chez l'hôte. Plus particulièrement, la modification du gène erp est réalisée par mutation, insertion, délétion ou substitution; la modification d'au moins une paire de base est suffisante. Selon un mode de réalisation avantageux de la souche conforme à l'invention, le gène erp est modifié par insertion d'un nucléotide ou polynucléotide qui peut être un gène de sélection. Ce gène peut notamment coder pour la résistance à un antibiotique tel que la kanamycine, la spectinomycine ou l'hygromycine. Les souches de Mycobacterium préférées sont celles appartenant au genre Mycobacterium, préférentiellement au complexe de Mycobacterium tuberculosis et plus préférentiellement encore à l'espèce Mycobacterium tuberculosis ou à l'espèce Mycobacterium bovis. La présente invention concerne plus particulièrement la souche BCG erp::Kn (CNCM No I-1896) ou un variant incapable d'exprimer le produit du gène erp actif. L'invention concerne également une souche de Mycobacterium dont le gène erp est modifié et qui est capable de produire, suite à des événements de recombinaison, des épitopes ou des déterminants antigéniques susceptibles d'immuniser et/ou protéger contre des agents pathogènes tels que des agents infectieux ou des gènes de cancer, ou de produire des molécules conduisant à une modulation du système immunitaire telles que les cytokines, les chémokines, des récepteurs solubles de molécules interagissant avec des agents conduisant à une pathologie ou des inducteurs des réponses immunitaires tels que IL2, IL4, IL10 ou IL12 (chez l'homme ou l'animal). La présente invention concerne donc également une souche de Mycobacterium telle que précédemment décrite capable en outre d'exprimer un polynucléotide codant pour un antigène de mycobacterie d'une autre espèce que celle à laquelle ladite souche appartient. Le polynucléotide en question pouvant être étranger au genre Mycobacterium. L'invention a également pour object un polynucléotide purifié comprenant un gène erp modifié et un fragment d'au moins 60 nucléotides correspondant à tout ou partie d'un gène codant pour un antigène exporté du genre Mycobacterium ou codant pour un antigène étranger au genre Mycobacterium. La modification du gène erp peut être obtenue par exemple par addition, insertion ou modification de nucléotides. Dans le cadre de l'invention, la sélection de la souche de Mycobacterium dont le gène erp est ainsi modifié peut etre réalisée par amplification génique et séquençage nucléotidique ou RFLP de la région nucléique mutée dans ladite souche isolée sur gélose selon le protocole de contresélection en présence de sucrose (Pelicic et al., 1996) par exemple. Une alternative consiste à effectuer des hybridations dans des conditions de fortes stringences (Berthet et al., 1995) caractérisées par l'utilisation d'une sonde correspondant à tout ou partie du gène erp modifié génétiquement mais ayant conservé au moins 20 % de son activité et s'hybridant préférentiellement avec tout ou partie du gène modifié présent dans la souche recherchée. La modification du gène erp peut également être réalisée au moyen d'un vecteur recombinant comprenant le gène erp inactivé. Ce vecteur est utilisé pour la transformation d'une souche de Mycobacterium et doit permettre un échange allélique avec le gène erp sauvage dans le but de le modifier. Avantageusement, le vecteur conforme à l'invention comprend une origine de replication thermosensible chez les mycobactéries. Il peut comprendre également le gène de contre-sélection sacB avec, de façon facultative un gène permettant une sélection positive tel qu'un gène codant pour la résistance à un antibiotique. La modification du gène erp dans le vecteur conforme à l'invention peut être réalisée comme décrit ci-dessus. Plus particulièrement, ledit vecteur correspond au plasmide recombinant pIPX56 (CNCM No I-1895). En effet, ce plasmide consiste en un vecteur de clonage navette E. coli - mycobactéries du type pPR27 (déposé à la CNCM sous le numéro I-1730) comportant une origine de réplication thermosensible chez les mycobactéries, le gène de contre-sélection sacB et conferrant la résistance à la gentamycine. Dans le plasmide pIPX56, une insertion de 5,1 kb d'un fragment PstI a été réalisée au niveau du site unique PstI de pPR27. Ce fragment de 5,1 kb correspond à un fragment d'ADN de 3,9 kb de Ad tuberculosis comportant le gène erp, au niveau duquel a été inséré une cassette (1,2 kb) conférant la résistance à la kanamycine. Ce plasmide permet donc d'effectuer des expériences d'échange allélique au niveau du locus erp chez les mycobactéries. Dans le cadre de la présente invention, il est également intéressant de pouvoir disposer d'un vecteur dérivé de pIPX56 comprenant le gène erp non modifié. L'invention a donc également pour objet l'utilisation d'un vecteur recombinant tel que décrit ci-dessus pour la préparation d'une souche de Mycobacterium conforme à l'invention par échange allélique. Un autre objet de l'invention est un procédé pour la production d'une souche de Mycobacterium telle que ci-dessus décrite comprenant les étapes de - transformation avec un vecteur tel que décrit ci-dessus d'une souche de Mycobacterium propagée à une température permissive, - mise en culture des colonies résultant de la transformation sur un milieu supplémenté avec un produit de sélection et du saccharose, - isolement de la souche recombinante. Selon un mode de réalisation avantageux du procédé conforme à l'invention, le produit de sélection est un antibiotique tel que la kanamycine, la spectinomycine ou l'hygromycine. A titre d'exemple, une souche de Mycobacterium recombinant est produite conformément à l'invention comme suit: a) le plasmide pIPX56 est introduit par électroporation dans une souche du complexe Mycobacterium tuberculosis propagée à température permissive (32"C). Cette étape permet de disposer d'une population de bactéries dans laquelle chaque individu possède plusieurs copies de la cassette erp::Kn; b) une colonie résultant de la transformation est cultivée en milieu liquide à 32"C durant 10 jours, puis la culture est ensemencée sur des boîtes contenant de la Kanamycine (50 mg/ml) et du saccharose 2 % (poids/vol.) incubées à température non permissive à 390C. Cette étape permet d'enrichir en événements de double recombinaison homologue par contre-sélection et élimination des intégrations de vecteurs (simple recombinaison homologue ou recombinaison illégitime). L'invention concerne également une composition immunogène comprenant une souche de Mycobacterium conforme à l'invention ou obtenue par la mise en oeuvre du procédé ci-dessus mentionné. Elle concerne également une composition vaccinale comprenant une souche de Mycobacterium conforme à l'invention ou obtenue par la mise en oeuvre du procédé ci-dessus mentionné, en combinaison avec au moins un excipient pharmaceutiquement compatible. Cette composition vaccinale est destinée à l'immunisation des humains et des animaux contre une souche pathogène de mycobactéries et comprend une composition immunogène telle que décrite ci-dessus en combinaison avec un excipient pharmaceutiquement compatible (tel qu'un tampon salin), de façon facultative en combinaison avec au moins un adjuvant de l'immunité tel que l'hydroxyde d'aluminium ou un composé appartenant à la famille du peptide muramyl. Pour obtenir un effet adjuvant pour le vaccin, de nombreuses méthodes prévoient l'utilisation d'agents tels que l'hydroxyde ou le phosphate (alun) d'aluminium, communément utilisés en tant que solution titrant 0,05 à 0, 01 % dans un tampon salin de phosphate, mélangés avec des polymères synthétiques de sucre (Carbopol) en que solution à 0,25 %. Un autre composé adjuvant convenable est le DDA (bromure 2 diméthyldioctadécylammonium), ainsi que des substances immuno-modulantes telles que les lymphokines (par exemple gamma-IFN, IL-1, 1L-2 et 1La12) ou également des composés inducteurs de gamma-IFN tels que le poly I:C. La composition vaccinale conforme à la présente invention est de façon avantageuse préparée sous forme injectable, pour une administration orale ou par inhalation, soit en solution liquide soit en suspension, des formes solides convenables destinées à être mises en solution ou en suspension liquide avant l'injection peuvent également être préparées. De plus, la composition vaccinale peut contenir des composants mineurs de substance auxiliaire telle que des agents mouillant ou émulsifiant, des agents tamponnant le pH ou des adjuvants qui stimulent l'efficacité des vaccins. Les compositions vaccinales de l'invention sont administrées d'une façon compatible avec la formulation de dosage et en une quantité thérapeutiquement efficace et immunogène. La quantité à administrer dépend du sujet à traiter y compris par exemple la capacité individuelle de son système immunitaire à induire une réponse immunitaire. Le dosage du vaccin dépendra de la voie d'administration et variera selon l'âge du patient à vacciner et dans un moindre dégré de la taille de ce patient. De façon préférentielle, la composition vaccinale selon la présente invention est administrée par une voie intradermique en une seule fois ou par voie orale ou par aérosol. Dans certains cas, il sera nécessaire de procéder à de multiples administrations de la composition vaccinale conforme à la présente invention sans toutefois généralement dépasser six administrations, de préférence quatre vaccinations. Les administrations successives se feront normalement avec un intervalle de 2 à 12 semaines, préférentiellement de 3 à 5 semaines. Des rappels périodiques à des intervalles de 1 à 5 ans, préférentiellement 3 ans, sont souhaitables pour maintenir le niveau désiré de l'immunité protectrice. L'invention concerne également une méthode de diagnostic permettant de discriminer entre des individus d'une part ayant été vaccinés à l'aide d'une souche de Mycobacterium ne produisant plus ERP actif et d'autre part ceux ayant subis une infection naturelle ou une vaccination à l'aide d'une souche produisant la protéine ERP naturelle. En effet, les individus ayant subis une vaccination par une souche de Mycobacterium ne produisant plus la protéine ERP naturelle peuvent être distingués par l'absence à partir d'un échantillon biologique, tel que par exemple le sérum, d'anticorps dirigés contre ERP et/ou par l'absence de réactivité T (mesurée par exemple au cours d'un test de prolifération ou d'un test de sécrétion des cytokines ou de test CTL) contre la protéine ERP purifiée. Une alternative consiste également à rechercher une réactivité différentielle à l'aide d'anticorps dirigés contre la partie non modifiée de la protéine ERP naturelle en comparaison avec la partie de la protéine ERP mutée correspondante. La présente invention a donc également pour objet une méthode de dépistage des individus auxquels a été administrée une composition vaccinale conforme à l'invention comprenant la mise en évidence de l'absence, dans un échantillon biologique desdits individus, d'anticorps ou de cellules T dirigés contre tout ou partie de la protéine ERP purifiée, l'échantillon biologique pouvant être du sang. L'invention a également pour objet une composition comprenant la protéine ERP modifiée. La figure 1 représente l'obtention d'une souche de BCG dont le gène erp a été inactivé par insertion d'une cassette de résistance à la kanamycine. La figure 2 représente le nombre de cfu persistant dans chacun des organes concernés en fonction du nombre de jour suivant l'injection intraveineuse soit du BCG sauvage soit du BCG mutant (BCG erp::Kn aussi appelé BCG erp::aph). La figure 3 représente le nombre de cfu résultant de la multiplication du BCG parental (1173P2) et du BCG muté (erp::aph) dans des cultures de macrophages dérivés de précurseurs médullaires de souris BALB/C. L'invention ne se limite pas à la description ci-dessus et sera mieux comprise à la lumière des exemples. EXEMPLE 1: Génération de sera polyclonaux de lapins anti-ERP Quatre lapins Néozélandais femelles ont été immunisés une premiére fois avec 100 > g de protéine ERP(his)6. Des immunisations secondaires (rappels) ont été effectués tous les 15 jours avec 150, 200 puis 250 ug de protéine purifiée. A partir de deux mois après la première immunisation, les sera collectés avaient un titre suffisant pour être utilisés pour l'immunodétection en Western blot et par immunohistochimie en microscopie électronique. Pour les expériences d'immunohistochimie en microscopie électronique, les séra ont été purifiés par adsorption/élution sur des bandelettes de nitrocellulose contenant ERP. EXEMPLE 2 : Construction d'une souche de BCG erp: :Kn Un fragment d'ADN de M. tuberculosis de 3,9kbp contenant le gène erp a été obtenu par digestion PstI du plasmide pl:PX412 (CNCM No I-1463) (Berthet et al., 1995). Ce fragment a été introduit dans le vecteur de clonage pACYC177, donnant naissance au plasmide pPB1. Le plasmide pPB1 a été ensuite linéarisé par l'enzyme de restriction EcoRI, coupant une seule fois au niveau d'un site situé dans le gène erp. En parallèle, une cassette (aph) génétique de petite taille (1,3kbp), conferrant la résistance à l'antibiotique kanamycine, a été préparée par restriction du plasmide pUC4K par Pst I. Les fragments pACYC177/EcoRI et apMPst I ont été traités dans les conditions décrites par le fournisseur, par le fragment de Klenow de l'ADN polymerase I de Escherichia coli et par la polymerase du phage T4 respectivement, afin de générer des fragments aux extrémités franches. Ces deux fragments ont ensuite été ligaturés et transformés chez E. coli. Un plasmide recombinant ayant inséré la cassette aph au niveau du gène erp a été sélectionnée par hybridation sur colonies et dénommé pPB2. Le fragment contenant erp: :aph a ensuite été excisé de pPB2 par digestion Pstl et introduit dans le vecteur pJQ200 permettant éventuellement la contre sélection en présence de sucrose. Le plasmide résultant a été appelé pPB3. Le plasmide pPB3 (trois microgrammes) a été introduit dans la souche Mycobacterîum bovis BCG Pasteur 1173 P2 par électroporation (Gene pulser BioRad, 2500V, 200Q, 25 I1F). Les cellules transformées ont été incubées durant 24 heures à 37"C dans du milieu 7H9 (5ml) puis étalées sur des boites 7H11 contenant de la kanamycine (2Ouglml). Les boites ont été incubées durant 25 jours à 37"C et trente colonies de bactéries résistantes à la kanamycine ont été repiquées individuellement à la fois par PCR en utilisant un couple d'oligonucléotides flanquant le site EcoRI du gène erp, et par Southern blot en utilisant une sonde interne de erp. Un clone recombinant, dénommé BCG erp: :Kn, a été sélectionné sur les critères suivants: 1- Par PCR, disparition de la bande correspondant à l'allèle sauvage (500bp) pour le BCG erp: :Kn mutant. Obtention d'un fragment d'amplification PCR de 1800bp (500+1300) signant l'insertion de la cassette aph dans la copie génomique du gène erp 2- Par Southern blot, détection d'un signal d'hybridation à 5.2kbp avec l'ADN du BCG 13K au lieu de 3.9kbp pour le BCG sauvage. Perte du site EcoRI interne au géneerp::aph. EXEMPLE 3 : Test de la persistance du BCG ERP chez la souris. Un stock bactérien conservé à -70 C de la souche BCG erp: :Kn a été réalisé de la manière suivante: une colonie poussée sur 7H1 1+Kn (2011g/ml) a été ensemencée sur milieu pomme de terre/sauton en présence de kanamycine (20CLg/ml) jusqu'à formation d'un voile. Ce voile a Deutscher SA) 10% Vol.Nol., Surnageant de cellules L229 10%) dans des chambres LabtekTM 8 puits, à une densité cellulaire de 5.104 cellules dans 4001l1 de milieu. Les cellules ont été cultivées durant 7 jours avant d'être infectées durant quatre heures par du BCG 1173 P2 (souche parentale) ou du BCG erp::Kn (souche mutée) à une multiplicité d'infection de 1. A différents temps post-infection (Jour 0, Jour 1, Jour 5, Jour 12, Jour 17) les macrophages infectées ont été lysés dans un tampon préservant l'intégrité des mycobactéries et le lysat obtenu a été étalé sur des boites de milieu 7H11 à différentes dilution (de 100 à 10-6). Les boites de pétri ont été incubées à 37"C durant un mois afin de mesurer l'évolution du nombre d'unités formant des colonies représenté figure 3. EXEMPLE 5 : Etude de la réaction d'hypersensibilité retardée induite chez le cobaye par le BCG erp::kn. La réaction d'hypersensibilité retardée (DTH) reflète l'induction de réponses immunitaires dirigées contre des composantes mycobactériens. Une induration d'un diamètre supérieur à une valeur seuil, provoquée par l'injection intradermique de tubeiculine signe un contact au préalable avec des mycobactéries. Ce test permet un diagnostic rapide de l'infection tuberculeuse chez les sujets non vaccinés. Cependant ce test est difficilement utilisable chez les sujets vaccinés par le BCG qui sont alors positifs. Nous avons testé la capacité du BCG erp::Kn à induire une réaction DTH. Pour celà, deux groupes de 5 cobayes (mâles de 300gr, souche Dunkin Hartley) ont été immunisés par 5.105 unité viables de BCG 1173P2 ou erp: :Kn respectivement. Un mois plus tard, les mêmes animaux ont été immunisés par voie intradermique avec les préparation suivantes: * "Purified Protein derivative" (PPD)/ tuberculine (WEYBRIDGE) 2pg * Protéine 65kDa M. Ieprae purifiée 50',1g et i OOg Le diamètre de l'induration a été mesurée 48h après l'injection des différents antigènes sur chacun des 5 animaux constituant le groupe. Une induration positive supérieure à 8-10 mm est considérée comme positive. Il a été observé que le BCG erp: :Kn induisait une DTH après immunisation par la PPD et la protéine 65kD de M leprae. EXEMPLE 6 : Caractérisation génotypique et phénotypique du BCG erp::Kn. La caractérisation du mutant M bovis BCG erp: :Kn a été entreprise de deux manières. Dans un premier temps, l'ADN génomique du BCG mutant (M) a été extrait et analysé par la technique hybridation moléculaire de Southern (Berthet et al., 1995) en comparaison avec 1'ADN génomique de la souche de BCG parentale (P). Une digestion par EcoRI indique que le génome du BCG erp: :Kn a perdu un tel site, localisé dans le gène erp et détruit par l'insertion de la cassette kanamycine. De plus une digestion par PstI, indique que le fragment de restriction portant erp chez BCG erp:.Kn comporte une insertion de 1,3 kbp correspondant à la présence de la cassette kanamycine. Ces données confirment le remplacement de l'allèle sauvage erp par un allèle muté erp::Kn chez BCG erp::Kn. Dans un second temps, l'expression de la protéine ERP a été analysée chez le BCG sauvage et chez le BCG erp::Kn par immunodétection selon la méthode dite de Western blot (Sambrook et al., 1989) à l'aide d'un sérum de lapin anti ERP. La protéine ERP n'est plus détectable dans le surnageant du BCG erp::Kn. REFERENCES Arruda, S., Bornfim, G., Knights, R., Huima-Byron, T. & Riley, L. W. (1993) Science 261:1454-1457. Azad, A. K., Sirakova, T.D., Rogers, L. M. & Kolattukudy, P.B. (1996) Proc. Nat. Acad Sci. USA 93:4787-4792. 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Souche de Mycobacterium selon la revendication 5, caractérisée en ce que le polynucléotide inséré comprend un gène de sélection. 7. Souche de Mycobacterium selon la revendication 6, caractérisée en ce que le gène de sélection code pour la résistance à un antibiotique. 8. Souche de Mycobacterium selon la revendication 7, caractérisée en ce que l'antibiotique est la kanamycine, la spectinomycine ou l'hygromycine. 9. Souche de Mycobacterium selon l'une des revendications I à 8, caractérisée en ce qu'elle appartient au genre Mycobacterium, de préférence au complexe M. tuberculosis. 10. Souche de Mycobacterium selon la revendication 9, caractérisée en ce qu'elle appartient à l'espèce Mycobacterium tuberculosis ou à l'espèce Mycobacterium bois. 11. Souche de Mycobacterium selon la revendication 10, caractérisée en ce qu'elle correspond à la souche BCG erp::Kn (CNCM No I-1896) ou un variant incapable d'exprimer le produit du gène erp actif. 12. Souche de Mycobacterium selon l'une des revendications I à 10, caractérisée en ce qu'elle est capable d'exprimer un polynucléotide codant pour un antigène de mycobactérie. d'une autre espèce que celle à laquelle ladite souche appartient. 13. Souche de Mycobacterium selon l'une des revendications 1 à 10, caractérisée en ce qu'elle est capable d'exprimer un polynucléotide étranger au genre Mycobacterium. 14. Polynucléotide purifié comprenant un gène erp modifié et un fragment d'au moins 60 nucléotides correspondant à tout ou partie d'un gène codant pour un antigène exporté du genre Mycobacterium. 15. Polynucléotide purifié comprenant un gène erp modifié et un fragment d'au moins 60 nucléotides correspondant à tout ou partie d'un gène codant pour un antigène étranger au genre Mycobacterium. 16. Vecteur recombinant comprenant le gène erp modifié. 17. Vecteur recombinant selon la revendication 16, caractérisé en ce qu'il comprend une origine de replication thermosensible chez les mycobactéries. 18. Vecteur recombinant selon la revendication 16 ou 17, caractérisé en ce qu'il comprend le gène sacB. 19. Vecteur recombinant selon la revendication 16, caractérisé en ce que le gène erp est modifié par mutation, insertion, délétion ou substitution. 20. Vecteur recombinant selon la revendication 19, caractérisé en ce que la mutation, insertion, délétion ou substitution porte sur au moins une paire de bases. 21. Vecteur recombinant selon la revendication 19 ou 20, caractérisé en ce que le gène erp est modifié par insertion d'un nucléotide ou polynucléotide. 22. Vecteur recombinant selon la revendication 21, caractérisé en ce que le polynucléotide inséré comprend un gène de sélection. 23. Vecteur recombinant selon la revendication 22, caractérisé en ce que le gène de sélection code pour la résistance à un antibiotique. 24. Vecteur recombinant selon la revendication 23, caractérisé en ce que l'antibiotique est la kanamycine, la spectinomycine ou l'hygromycine. 25. Vecteur recombinant selon l'une des revendications 16 à 24, caractérisé en ce qu'il comprend un insert correspondant au gène erp modifié et qu'il s'agit de pIPX56 (CNCM No I-1895). 26. Vecteur recombinant selon l'une des revendications 16 à 24, caractérisé en ce qu'il s'agit d'un vecteur dérivé de pIPX56 (CNCM No 1-1895) comprenant le gène erp non modifié. 27. Utilisation d'un vecteur recombinant selon l'une des revendications 16 à 25 pour la préparation par échange allélique d'une souche de Mycobacterium selon l'une des revendications 1 à 13. 28. Procédé pour la production d'une souche de Mycobacterium selon l'une des revendications 1 à 13, comprenant les étapes de: - transformation avec un vecteur tel que décrit ci-dessus, d'une souche de Mycobacterium propagée à une température permissive, - mise en culture des colonies résultant de la transformation sur un milieu supplémenté avec un produit de sélection et du saccharose, - isolement de la souche ainsi sélectionnée. 29. Procédé selon la revendication 28, caractérisé en ce que le produit de sélection est un antibiotique choisi parmi la kanamycine, la spectinomycine et l'hygromycine 30. Composition immunogène comprenant une souche de Mycobacterium selon l'une des revendications 1 à 13 ou obtenue par la mise en oeuvre du procédé selon la revendication 28 ou 29. 31. Composition vaccinale comprenant une souche de Mycobacterium selon l'une des revendications 1 à 13 ou obtenue par la mise en oeuvre du procédé selon la revendication 28 ou 29, en combinaison avec au moins un excipient pharmaceutiquement compatible. 32. Méthode de dépistage des individus auxquels a été administrée une composition vaccinale selon la revendication 31 comprenant la mise en évidence de l'absence, dans un échantillon biologique desdits individus, d'anticorps dirigés contre tout ou partie de la protéine ERP purifiée. 33. Méthode de dépistage des individus auxquels a été administrée une composition vaccinale selon la revendication 31 comprenant la mise en évidence, dans un échantillon biologique desdits individus, de cellules T dirigées contre tout ou partie de la protéine ERP purifiée. 34. Composition comprenant la protéine ERP modifiée.