FR 2754270 A1 19980410 FR 9612204 A 19961007 La présente invention conceme des gènes de glycosyle hydrolases pour la production biotechnologique d'oligosaccharides, notamment d'oligocarraghénanes sulfatés, plus particulièrement d'oligo-iota-carraghénanes par biodégradation des carraghénanes. Les galactanes sulfatés des Rhodophycées, tels que les agars et les carraghénanes, représentent les polysaccharides majeurs des Rhodophycées et sont très largement utilisés en tant qu'agents gélifiants ou épaississants dans diverses branches d'activité, notamment l'agro-alimentaire. Environ 6000 tonnes d'agars et 22000tonnes de carraghénanes sont extraits annuellement des algues rouges marines à cet effet. Les agars sont commercialement produits par des algues rouges des genres Gelidium et Gracilaria. Les carraghénanes sont quant à eux largement extraits des genres Chondrus, Gigartina et Eucheuma. Les carraghénanes sont constitués par la répétition d'unités de Dgalactose alternativement liées par des liaisons ss 1- > 4 et a 1- > 3. Selon le nombre et la position de groupements ester-sulfate sur le dissacharide de répétition de la molécule, on distingue ainsi plusieurs types de carraghénanes à savoir: les kappacarraghénanes qui possèdent un groupement ester-sulfate, les iota-carraghénanes qui possèdent deux groupements ester-sulfate et les lambda-carraghénanes qui possèdent trois groupements ester-sulfate. Les propriétés physico-chimiques et les utilisations de ces polysaccharides en tant que gélifiants reposent sur leur capacité à établir des transitions conformationnelles pelote-hélice en fonction de l'environnement thermique et ionique [Kloareg et al. Oceanography and Marine Biology - An annual review 26 :259-315(1988)] Par ailleurs, les carraghénanes sont des analogues structuraux des polysaccharides sulfatés de la matrice extracellulaire animale (héparine, chondroitine, kératane, dermatane) et ils présentent des activités biologiques qui s'apparentent à certaines fonctions de ces glycosaminoglycanes. En particulier, les carraghénanes sont connus: (i) - pour leur action sur le système immunitaire en provoquant la sécrétion d'interleukine ou de prostaglandines, (ii) - pour leur action antivirale sur les virus du sida HIV1, de l'herpès HSV1 et de l'hépatite A, (iii) - en tant qu'antagonistes de la fixation des facteurs de croissance des cellules humaine et aussi, (iv) - pour leur action sur la prolifération des kératinocytes et leur action sur le pouvoir contractile des fibroblastes. Par ailleurs, les oligocarraghénanes agissent sur l'adhérence, la division et la synthèse protéique de cultures de cellules humaines, sans doute en tant qu'analogues structuraux de la partie glycosylée des protéines de la matrice extracellulaire. Dans les plantes, les oligocarraghénanes élicitent très significativement des activités enzymatiques marqueurs de la croissance (amylase) ou du métabolisme phénolique de défense (laminarinase, phénylalanineammonium lyase). Les carraghénanes sont extraits des algues rouges marines par des procédés classiques, tels que l'extraction aqueuse à chaud et les oligocarraghénanes sont obtenus à partir de carraghénanes par hydrolyse chimique ou de préférence par hydrolyse enzymatique. La production d'oligo-carraghénanes par hydrolyse enzymatique comprend généralement les étapes de: 1)production d'une glycosyle hydrolase par culture d'une bactérie marine; 2) hydrolyse enzymatique du carraghénane par la glycosyle hydrolase ainsi obtenue; 3) fractionnement et purification des oligo-carraghénanes obtenus. Des microorganismes produisant des enzymes capables d'hydrolyser les iota- et kappa-carraghénanes ont été isolées par Bellion et al. en 1982 [Can. J. Microbiol. 28 : 874-80, (1982)]. Certaines sont spécifiques pour le K- ou le Lcarraghénane et d'autres sont capables d'hydrolyser les deux substrats. Un autre groupe de bactéries capables de dégrader les carraghénanes a été caractérisé par Sarwar et al. en 1983 [J. Gen. Appl. Microbiol. 29: 145-55, (1983)]. Ces bactéries de couleur jaune-orange sont assignées au groupe des bactéries de type Cytophaga et certaines de ces bactéries ont la propriété d'hydrolyser à la fois l'agar et les carraghénanes. La production d'oligo-carraghénanes pourrait être nettement améliorée si l'on disposait d'enzymes spécifiques et d'outils pour leur obtention par génie génétique. La Demanderesse a maintenant trouvé de nouveaux gènes de glycosyle hydrolases, qui permettent d'obtenir de manière spécifique des oligo-iotacarraghénanes. Ainsi, la présente invention concerne des nouveaux gènes qui codent pour des glycosyle hydrolases ayant un score HCA avec la iota-carraghénase d'Alteromonas fortis qui est supérieur ou égal à 65 %, de préférence supérieur ou égal à 70 % et avantageusement supérieur ou égal à 75 %, sur le domaine s'étendant entre les acides aminés 164 et 311 de la séquence [SEQ ID N 2] de la iota-carraghénase d'Alteromonas fortis. La présente invention concerne plus particulièrement la séquence nucléique [SED ID NOl] qui code pour une iota-carraghénase telle que définie cidessus dont la séquence en acides aminés est la séquence [SEQ ID N 2]. Les gènes de glycosyle hydrolases de l'invention sont obtenus par le procédé qui consiste à sélectionner des protéines qui ont un score HCA avec la iota-carraghénase d'Alteromonas fortis qui est supérieur ou égal à 65 %, de préférence supérieur ou égal à 70 % et avantageusement supérieur ou égal à 75 %, sur le domaine s'étendant entre les acides aminés 164 et 311 de la séquence [SEQ ID N 2] de la iota-carraghénase d'Alteromonas fortis et à séquencer les gènes ainsi obtenus selon les techniques classiques bien connues de l'homme du métier. Enfin, la présente invention concerne l'utilisation des gènes de glycosyle hydrolases ci-dessus pour l'obtention de glycosyle hydrolases par génie génétique, lesquelles sont utiles pour la production biotechnologique d'oligocarraghénanes. Les glysosyle hydrolases selon l'invention sont donc caractérisées par le score HCA qu'elles possèdent avec un domaine particulier de la séquence en acides aminés de la iota-carraghénase dAlteromonas fortis. La méthode HCA de l'anglais "Hydrophobic Cluster Analysis" est une méthode d'analyse des séquences de protéines représentées en structure bidimensionnelle, qui a été décrite par Gaboriaud et al. [FEBS Lettes 224 149155 (1987)]. On sait que la structure tridimensionnelle d'une protéine conditionne ses propriétés biologiques, la production d'une protéine active exigeant un repliement correct. On sait aussi que la structure primaire de protéines varie de façon beaucoup plus importante que les structures d'ordre supérieur et que les protéines peuvent être regroupées en familles montrant des structures secondaires et tertiaires similaires ayant parfois des séquences primaires si divergentes que la parenté de telles protéines entre elles n'est pas évidente. Le code reliant structure primaire et structure secondaire apparaît donc très dégénéré puisque des structures primaires très différentes peuvent aboutir à des structures secondaires et tertiaires similaires [Structure 3, 853-859 (1995) et Proc. Natl. Acad. Sci. USA 92(1995)]. L'utilisation de la méthode HCA a montré que la répartition, la taille et la forme de ces amas hydrophobes le long des séquences d'acides aminés sont représentatifs du repliement 3D des protéines étudiées. De plus, Woodcock et al. [Protein. Eng. 5, 629-635, (1992)] ont démontré que les amas hydrophobes définis par le diagramme 2D a-hélicoïdal sont statistiquement centrés sur les structures secondaires régulières (hélices a, brins ss), que le diagramme 2D basé sur l'hélice a porte la plus grande quantité d'information structurale et que la correspondance entre amas hydrophobes et éléments de structure secondaire est de même qualité pour tout type de repliement (tout a, tout ss, a/(3 et a + 13), démontrant ainsi que la méthode HCA peut être utilisée quel que soit le type de protéine. L. Lemesle-Varloot et al. [Biochimie 72, 555-574, (1990)] ont montré que lorsque deux protéines présentent une distribution similaire des amas hydrophobes sur un domaine d'au moins 50 résidus, leurs structures tridimensionnelles dans ce domaine sont considérées comme superposables et leurs fonctions analogues. La représentation bidimensionnelle utilisée dans la méthode HCA est une hélice a où, par traitement informatique, les acides aminés sont disposés à raison de 3,6 résidus par révolution. Afin d'obtenir une image plane facile à lire, l'hélice est coupée dans le sens longitudinal. Enfin, pour obtenir dans leur intégralité les amas hydrophobes qui sont situés sur les bords de l'image, le diagramme est dupliqué. La méthode utilise un code qui ne reconnaît que deux états: l'état hydrophobe et l'état hydrophile. Les acides aminés reconnus comme étant hydrophobes sont identifiés et regroupés en figures géométriques caractéristiques. L'utilisation de ces deux états permet de s'affranchir de la tolérance que montrent les structures bi- et tridimensionnelles vis-à-vis de la variabilité des séquences primaires. De plus, cette représentation permet d'observer rapidement des interactions sur une courte ou une moyenne distance puisque le premier acide aminé et le second acide aminé voisin d'un résidu donné sont localisés sur un segment de 17 acides aminés. Enfin, aucune "fenêtre" de longueur prédéfinie n'est utilisée, contrairement aux méthodes d'analyses basées sur les structures primaires ou secondaires des protéines. La caractéristique fondamentale de la représentation en hélice a est que, pour une protéine globulaire donnée ou seulement un domaine de cette protéine, la distribution des résidus hydrophobes sur le diagramme n'est pas aléatoire. Les résidus hydrophobes (VIUwMY) forment des amas de géométrie et de taille variées. Sur le diagramme, les faces hydrophiles et hydrophobes des hélices amphiphiles sont très reconnaissables. Ainsi, un amas en diamant horizontal correspond à la face hydrophobe d'une hélice a, les hélices internes apparaissent comme de grands amas hydrophobes horizontaux et les brins ss comme des amas hydrophobes assez courts et verticaux. La méthode permet d'identifier les résidus hydrophobes formant le coeur des protéines globulaires et de localiser les éléments de structure secondaire que sont les hélices a et les brins ss, indépendamment de toute connaissance de la structure secondaire de la protéine étudiée. Le score HCA entre deux protéines se calcule de la façon suivante: pour chaque amas: score HCA = 2CR/(RC1 + RC2) x 100 % où - RC1 et RC2 représentent respectivement le nombre de résidus hydrophobes dans l'amas de la protéine 1 (amas 1) et l'amas de la protéine 2 (amas 2). - CR représente le nombre de résidus hydrophobes dans l'amas 1 qui sont en correspondance avec les résidus hydrophobes dans l'amas 2. La valeur moyenne obtenue pour l'ensemble des amas le long des séquences protéiques comparées donne le score final HCA. Sur les profils HCA, les acides aminés sont représentés par leur code standard à une seule lettre à l'exception de la proline (P), la glycine (G), la sérine (S), la thréonine ( En effet, du fait de leurs propriétés particulières, ces résidus sont représentés par les symboles spéciaux indiqués ci-après afin de faciliter leur identification visuelle sur les diagrammes HCA (voir liste des abbréviations). La proline introduit de fortes contraintes dans la chaîne polypeptidique et est considérée de manière systématique comme une interruption dans les amas. En effet, les résidus proline stoppent ou déforment les hélices et les feuillets. La glycine possède une flexibilité conformationnelle très importante en raison de l'absence de chaîne latérale dans cet acide aminé. La sérine et la thréonine sont normalement hydrophiles, mais on peut aussi les rencontrer dans des environnements hydrophobes, tels que les hélices a, dans lesquels leur groupe hydroxyle perd leur caractère hydrophile du fait de la liaison hydrogène formée avec le groupe carbonyle de la chaîne principale. Au sein des feuillets ss hydrophobes, la thréonine est susceptible de remplacer parfois des résidus hydrophobes, grâce au groupe méthyle de sa chaîne latérale. On peut distinguer quatre groupes d'acides aminés selon leur hydrophobicité: (i) - les résidus fortement hydrophobes : V, I, L et F, (ii) - les résidus moyennement hydrophobes : W, M et Y, W W apparait à des sites de surface plus souvent que F, M est rencontré à des sites divers, internes ou non; Y Y peut s'accommoder des environnements hydrophobes internes et est souvent trouvé dans des boucles; (iii) - les résidus peu hydrophobes : A et C sont quasiment insensibles au caractère hydrophobe de leur environnement; (iv) - les résidus hydrophiles : D, E, N, Q, H, K et R. Grâce à cette méthode HCA, la Demanderesse a trouvé que des protéines qui ont un score HCA avec la iota-carraghénase d'Alteromonas fortis supérieur ou égal à 65 % sur le domaine s'étendant entre les acides aminés 164311 de ladite iota-carraghénase sont des enzymes de type glycosyle hydrolase et plus particulièrement des iota-carraghénases appropriées pour la production d'oligo-iota-carraghénanes à partir de carraghénanes. Les protéines qui ont un score HCA supérieur ou égal à 70 %, de préférence supérieur ou égal à 75 %, avec le domaine 164-311 ci-dessus, sont particulièrement préférées aux fins de l'invention. Un exemple particulier de glycosyle hydrolase obtenue avec un gène selon l'invention est la protéine ayant la séquence en acides aminés [SEQ ID N 2] extraite d'Alteromonasfortis. Un autre exemple particulier de glycosyle hydrolase obtenue avec un gène selon l'invention est la protéine ayant la séquence en acides aminés [SEQ ID N 4] extraite de Cytophaga drobachiensis. Les protéines ci-dessus sont avantageusement extraites de bactéries marines. Comme indiqué précédemment, les gènes codant pour les glycosyle hydrolases selon l'invention peuvent être obtenus par séquençage du patrimoine génétique des bactéries qui produisent les glycosyle hydrolases, telles que définies ci-dessus, selon les méthodes classiques bien connues de l'homme du métier. L'invention concerne également les vecteurs d'expression qui portent, avec les moyens pour leur expression, les séquences nucléiques selon l'invention. Ces vecteurs d'expression peuvent être utilisés pour transformer des microorganismes procaryotes, en particulier Escherichia coli ou des cellules eucaryotes, telles que des levures ou des champignons. L'invention va être maintenant décrite plus en détail par l'exemple illustratif et non limitatif ci-après. Les méthodes utilisées dans ces exemples sont des méthodes, bien connues de l'homme du métier, qui sont décrites en détail dans l'ouvrage de Sambrook, Fristsch et Maniatis intitulé "Molecular cloning: a laboratory manual" publié en 1989 par les éditions Cold Spring Harbor Press à New-York (2ème édition). La description ci-après sera mieux comprise à l'aide des figures 1 et 2 qui représentent respectivement: Fig. 1: L'alignement d'après la similitude maximale selon la méthode de Needleman et Wunsch, [J. Mol. Biol. 48, 443-453 (1970)] de la séquence en acides aminés de la iota-carraghénase Alteromonas fortis (partie supérieure) et de la iota-carraghénase de C. drobachiensis (partie inférieure). Fig. 2: Les profils HCA des séquences en acides aminés des iotacarraghénases de Cytophaga drobachiensis et d'Alteromonasfortis. Les abréviations ou symboles spéciaux utilisés dans les exemples ci-après pour les acides aminés sont les suivants: Glycine: Proline: * Thréonine: Sérine: Alanine: A Valine:V Leucine : L Isoleucine:1 Méthionine: M Phénylalanine : F Tryptophane: W Cystéine: C Asparagine: N Glutamine: Q Tyrosine: Y Aspartate: D Glutamate: E Lysine: K Arginine:R Histidine: H EXEMPLE Les iota-carraghénases de Cytophaga drobachiensts et d'Alteromonas fortis SECTION 1: Clonage des gènes des iota-carraghénases de Cytophaga drobaèhiensu et d'Alteromonas fortis Cytophaga drobachiensis a été isolée par la Demanderesse à partir de l'algue rouge Delesseria sanguinea ZEur. J. Biochem. 201 : 241-247 (1991)ç. Alteromonas fortis (ATCC43554) a été obtenue auprès de l'American Type Culture Collection. Les souches ont été cultivées sur un milieu de Zobell à 25*C. On a constitué des banques génomiques d'ADN de C. drobachiensis et di. fortifs. La souche utilisée pour réaliser ces banques, qui est Escherichia coli DHSa (RecA, endA1, gyrA96, thil, hsdR17 [rk- mk+], supE44, relA1, lacZM15) a été cultivée sur milieu de Luria-Bertani (milieu LB) à 37 C ou sur un milieu appelé Zd (Bacto tryptone 5 g/l, extrait de levure 1 g/l, NaCl 10 g/l; pH = 7,2) à 22iC auquel on a ajouté 2 % de K-carraghénane. Les milieux de culture gélosés ou non ont été additionnés d'ampicilline (50 ssg/ml) ou de tétracycline (15 jug/ml), à partir de solutions stock préparées dans 50 % d'éthanol (pour éviter la prise en masse à la température de stockage, - -20 C) sauf pour la souche DH5a non recombinante. Le vecteur d'expression utilisé est le plasmide pAT153 décrit dans Nature 283: : 216 (1980). Ce plasmide contient deux gènes de résistance aux antibiotiques: un gène de résistance à la tétracycline et un gène qui code pour une (3-lactamase, enzyme de la membrane cytoplasmique qui dégrade l'ampicilline. L'ADN total de C. drobachiensis et l'ADN total de A. fortis ont été préparés selon le mode décrit par Barbeyron et al. [J. Bacteriol. 160. 586-590 (1984)]. Les ADN génomiques de C. drobachiensis et A. fortis ont été coupés avec les endonucléases de restriction, respectivement Ndell et Sau3AI. En effet, dans le cas de C. drobachiensis, l'endonucléase de restrictionNdell a été utilisée de façon préférentielle du fait que l'ADN de cette bactérie est méthylé sur le résidu C de la séquence GATC. Les fragments purifiés d'ADN de 5000 à 10 000 pb ont été clonés sur le site BamHI du plasmide pAT153, qui coupe le gène de résistance à la tétracycline. Dans chacune des banques génomiques, 6 000 clones ont été obtenus. Les cinq clones positifs C. drobachiensis et les deux clones positifs A. fortis, qui ont creusé un trou dans le l-carraghénane après une semaine de culture à 22 C, sont respectivement référencés pIC1 à pICS et pIP1 à pIP2. 1. Clonage à partir de C. drobachiensis Le clonage de ce gène est décrit en détail par T. Barbeyron dans la Thèse de Doctorat de l'Université Pierre et Marie Curie, Roscoff, soutenue le 28 Octobre 1993. L'ADN plasmidique a été isolé des cinq clones ci-dessus par la méthode de la lyse alcaline [Nucleic Acid. Res 7: 1513 (1979)]. Les tailles et la cartographie des inserts montrant une activité Lcarraghénase ont été déterminées par électrophorèse sur gel d'agarose après simple et double digestion de leurs plasmides à l'aide de diverses enzymes de restriction. Les fragments d'ADN ont été extraits de l'agarose par la méthode sur laine de verre. Tous les plasmides obtenus contiennent un fragment identique Pvull de 3,3 kb. Ce fragment a été sous-cloné dans le phagemide pbluescript KSII (Stratagene) (pICP07 et pICP16). De même, le fragment interne NdeI et un fragment Hindi comprenant partiellement le fragment Pvull ont été sous-clonés et on a obtenu respectivement les sous-clones (pICN22 et pICH42). Afin de localiser le gène L-carraghénase, on a réalisé des banques à partir des sous-clones pICPO7 et pICP16 dans le phagemide pbluescript à l'aide de l'exonucléase m de E. coli en utilisant le kit "Exom" de chez Pharmacia. Les sous-clones et les clones Exode obtenus ont été étalés sur milieu Zd solidifié avec du L-carraghénane. Seuls les clones pICP16, pICP07 et les clones Exode pICP074 et pICP0712 (obtenus par dégradation avec l'ExoIII pendant 4 minutes et 12 minutes respectivement à partir du clone pICPO7) sont l-carraghénases positifs. 2. Clonage à partir d'Alteromonasfortis L'ADN des clones pIP1 et pIP2 ont montré des inserts de 10,45 kb et 4,125 kob, respectivement ayant un fragment commun de 3kb. Ces clones ont montré une activité L-carraghénase positive. Différents fragments ont été sousclonés et étalés tels que décrits ci-dessus. Cependant, aucun des sous-clones obtenus ne s'est révélé l-carraghénase positif. SECTION 2: Détermination des séquences nucléotidiques des gènes codant pour les l-carraghénases de Cytophaga drobachiensis et d 'Alteromonas fortis 1. Séquence du gène de C > tophaga drobachiensis Le plasmide pICP0712 a été utilisé pour déterminer la séquence nucléotidique du gène responsable de l'activité l-carraghénase de C. drobachiensis [SEQ ID N 3]. Cette séquence nucléotidique est composée de 1 837 pb. La traduction des six cadres de lecture n'a révélé qu'une seule phase ouverte appelée cgiA. Le codon d'initiation potentiel se situe 333 pub au-delà de l'extrémité 5'P de la séquence. La séquence protéique déduite lSEQ ID N04] de la séquence de cgt4 est composée de 391 acides aminés, ce qui correspond à une masse moléculaire théorique de 53,4 kDa. Le profil hydropathique de cette protéine montre une région hydrophobe couvrant les 24 premiers acides aminés. La présence d'un acide aminé chargé positivement (Lys) suivi d'un corps hydrophobe, puis d'un segment polaire de six acides aminés suggère que ce domaine pourrait être un peptide signal. Selon les analyses effectuées selon la méthode de Von Heijne [J. Mol. Biol. 184 : 99-105 (1985)], la signal-peptidase couperait entre la valine (Val24) et la thréonine (Thr25). La protéine mature dénuée de son peptide signal aurait une masse moléculaire théorique de 50,7 kDa. L'identité du gène cgiA a été confirmée par la détermination des acides aminés du côté NH2 de la protéine partiellement purifiée. La séquence obtenue est conforme à celle déduite de la séquence nucléotidique. Le premier acide aminé se situe à 14 résidus de l'extrémité NH2 générée par la signal-peptidase. La présence des deux prolines qui suivent les acides aminés déterminés par microséquençage ayant perturbé légèrement l'ordre d'apparition des résidus N-terminaux, la séquence d'un oligopeptide interne, purifié par HPLC après coupure à la trypsine, a été établie. La séquence NH2ATYKCOOH obtenue se situe vers l'extrémité C-terminale de la iotase (résidus 396 à 399). 2. Séquence du gène d'Alteromonasfortis Les plasmides pIHP1S et pIHPX17 sousclonés à partir de pIP1 et pIP2 ont été utilisés afin de déterminer la séquence nucléotidique du gène responsable de l'activité L-carraghénase d'Alteromonas fortis SEQ ID N 1. Le fragment de 2085 pb contient une seule phase ouverte de lecture de 1 473 pb appelée cgiX. La séquence située en amont du codon initiateur (ATG211) n'est pas codante. La séquence protéique déduite de la séquence du gène L-carraghénase d'A. fortis [SEQ ID N 2] est constituée de 491 acides aminés, ce qui correspond à une masse moléculaire théorique de 54,802 kDa. Dans le cas présent, également, la partie N-terminale de la protéine présente une grande hydrophobicité suggérant que ce domaine pourrait être un signal peptide, le site de clivage hypothétique se situerait entre la glycine (Gly26) et l'alanine (Ala27). La protéine mature dénuée de son peptide signal aurait une masse moléculaire théorique de 51,95 kDa, ce qui correspond à une valeur similaire à la masse moléculaire obtenue avec la protéine purifiée par SDS-PAGE de 57 kDa. SECTION 3: Comparaison des séquences protéiques des L carraghénases de Cytophaga drobachiensis et deAlteromonaçfoztis Après élimination du peptide signal de chaque séquence, on a pu constater que la l-carraghénase de C. drobachiensis présente des similarités de séquence avec la L-carraghénase d'A. fortis. En effet, les deux séquences de iota-carraghénase sont similaires à 43,2 % sur l'ensemble de l'alignement en séquences linéaires. Cette similitude est particulièrement forte (57,8 %) entre les acides aminés 164 et 311 (numérotation de la iota-carraghénase d'Alteromonasfortis (Fig. 1). Parallèlement, une analyse HCA a permis de constater que le score HCA entre les deux protéines est de 82 % sur un domaine de 293 acides aminés et atteint 90,5 % dans le cas dudit domaine 164-311 (Fig. 2). Aucune similarité significative n'a pu être mise en évidence avec d'autres polysaccharidases connues à ce jour. Ces deux enzymes constituent donc une nouvelle famille de glycosyle hydrolases. LISTE DE SEQUENCES (1) INFORMATIONS GENERALES: (i) DEPOSANT: (A) NOM: LABORATOIRES GOEMAR S.A. (B) RUE: La Madeleine B.P. 55 (C) VILLE: Saint-Malo (E) PAYS: France (F) CODE POSTAL: 35413 Cedex (G) TELEPHONE: 99 21 53 70 (H) TELECOPIE: 99 82 56 17 (ii) TITRE DE L' INVENTION: Gènes de glycolyse hydrolases et leur utilisation pour la production d'enzymes de biodégradation de carraghénanes (iii) NOMBRE DE SEQUENCES: 4 (iv) FORME DECHIFFRABLE PAR ORDINATEUR: (A) TYPE DE SUPPORT: Floppy disk (B) ORDINATEUR: IBM PC compatible (C) SYSTEME D' EXPLOITATION: PC-DOS/MS-DOS (D) LOGICIEL: PatentIn Release #1.0, Version &num;1.30 (OEB) (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 1: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 2085 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (iii) HYPOTHETIQUE: NON (ix) CARACTERISTIQUE: (A) NOM/CLE: CDS (B) EMPLACEMENT:join(211. .1683, 1880..2083) (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 1: AAGCTTTCCG ATTCTATCAT CGAAGTCATA GGAGTGGGTA AACAAAAAAG CATGAAACTA 60 14 GCTTTTTAAA ATACAGACTT TCAATATAGG TCGCACACAA TATTAACGAA TAAATAAGCA 120 AATCATATAC ATAATCATTG CTTTAAATAT GTTTTAATAC AGATATAAAC ATAGTATGTT 180 TGTGT m TG GTATCTATCG GAGTGAAAAC ATG CGC TTA TAT TTT AGA AAG TTG 234 Met Arg Leu Tyr Phe Arg Lys Leu 1 5 TGG TTA ACA AAT TTA TTT TTA GGC GGA GCA CTG GCC TCT TCA GCT GCG 282 Trp Leu Thr Asn Leu Phe Leu Gly Gly Ala Leu Ala Ser Ser Ala Ala 10 15 20 ATA GGG GCT GTC TCC CCC AAG ACT TAT AAG GAC GCA GAT TTT TAT GTT 330 Ile Gly Ala Val Ser Pro Lys Thr Tyr Lys Asp Ala Asp Phe Tyr Val 25 30 35 40 GCC CCT ACT CAA CAA GAT GTT AAC TAT GAT TTA GTT GAT GAT m GGC 378 Ala Pro Thr Gln Gln Asp Val Asn Tyr Asp Leu Val Asp Asp Phe Gly 45 50 55 GCT AAT GGA AAC GAC ACT AGT GAT GAC AGT AAT GCT TTA CAA AGA GCA 426 Ala Asn Gly Asn Asp Thr Ser Asp Asp Ser Asn Ala Leu Gln Arg Ala 60 65 70 ATT AAT GCT ATT AGT AGA AAA CCG AAT GGG GGC ACT TTA CTA ATA CCG 474 île Asn Ala île Ser Arg Lys Pro Asn Gly Gly Thr Leu Leu Ile Pro 75 80 85 AAT AAT TAC AAA ATT TCC AAT TTT ACC ATT GAT GAT AAT AAA ACC ATA TTT 762 Asn Tyr Lys Ile Ser Asn Phe Thr île Asp Asp Asn Lys Thr Ile Phe 170 175 180 GCC TCA ATT TTA GTG GAC GTA ACA GAA CGT AAT CGC CGG TTA CAT TGG 810 Ala Ser île Leu Val Asp Val Thr Glu Arg Asn Gly Arg Leu His Trp 185 lgo 195 200 TCG CGT AAT GGA ATT ATC GAA AGA ATA AAA CAA AAT AAC GCT TTG TTC 858 Ser Arg Asn Gly Ile Ile Glu Arg Ile Lys Gln Asn Asn Ala Leu Phe 205 210 215 GGC TAC GGC CTT ATT CAA ACC TAT GGC GCA GAT AAT ATT TTG TIT AGG 906 Gly Tyr Gly Leu Ile Gln Thr Tyr Gly Ala Asp Asn Ile Leu Phe Arg 220 225 230 AAC CTC CAT TCG GAA GGC GGA ATT GCG TTA CGG ATG GAA ACT GAC AAC 954 Asn Leu His Ser Glu Gly Gly Ile Ala Leu Arg Met Glu Thr Asp Asn 235 240 245 TTA CTT ATG AAA AAT TAT AAG CAA GGC GGA ATA AGA AAC ATC TTT GCT 1002 Leu Leu Met Lys Asn Tyr Lys Gln Gly Gly île Arg Asn Ile Phe Ala 250 255 260 GAT AAT ATC AGA TGT AGC AAA GGA CTT GCG CCC GTC ATG TTT GGC CCA 1050 Asp Asn Ile Arg Cys Ser Lys Gly Leu Ala Ala Val Met Phe Gly Pro 265 270 275 280 CAT TTT ATG AAG AAT GGA GAT GTG CAA GTG ACC AAT GTC AGC TCA GTT 1098 His Phe Met Lys Asn Gly Asp Val Gln Val Thr Asn Val Ser Ser Val 285 290 295 AGT TGC GGT TCG GCT GTA CGA AGT GAT AGT GGA TTT GTC GAA CTC TTT 1146 Ser Cys Gly Ser Ala Val Arg Ser Asp Ser Gly Phe Val Glu Leu Phe 300 305 310 AGC CCC ACA GAC GAA GTA CAT ACG CGT CAA AGT TGG AAA CAA GCC GTT 1194 Ser Pro Thr Asp Glu Val His Thr Arg Gln Ser Trp Lys Gln Ala Val 315 320 325 GAA AGT AAA TTC GGC CGA CGC TGT CCC CAA ACC CCT TAT GCT AGA GGT 1242 Glu Ser Lys Leu Gly Arg Gly Cys Ala Gln Thr Pro Tyr Ala Arg Gly 330 335 340 AAT GGT GGT ACA CGG TGG GCG GCT CGC GTA ACA CAA AAA GAC GCG TGT 1290 Asn Gly Gly Thr Arg Trp Ala Ala Arg Val Thr Gln Lys Asp Ala Cys 345 350 355 360 TTA GAT AAA GCA AAA CTG GAA TAT GGA ATA GAG CCT GGT TCA TTT GGC 1338 Leu Asp Lys Ala Lys Leu Glu Tyr Gly Ile Glu Pro Gly Ser Phe Gly 365 370 375 ACG GTT AAA GTC TTT GAT GTT ACA GCG CGT TTT GGT TAT AAC GCA GAT 1386 Thr Val Lys Val Phe Asp Val Thr Ala Arg Phe Gly Tyr Asn Ala Asp 380 385 390 CTT AAA CAG GAC CAG CTA GAC TAC TTT TCT ACA TCC AAC CCT ATG TGC 1434 Leu Lys Gln Asp Gln Leu Asp Tyr Phe Ser Thr Ser Asn Pro Met Cys 395 400 405 AAG CGT GTA TGC CTT CCT ACA AAA GAA CAA TGG AGT AAG CAA GGC CAA 1482 Lys Arg Val Cys Leu Pro Thr Lys Glu Gln Trp Ser Lys Gln Gly Gln 410 415 420 ATT TAC ATT GGT CCG TCA TTA GCT GCA GTA ATT GAT ACC ACA CCT GAA 1530 Ile Tyr Ile Gly Pro Ser Leu Ala Ala Val île Asp Thr Thr Pro Glu 425 430 435 440 ACT TCA AAA TAC GAT TAT GAT GTG AAA ACT TTT AAC GTC AAA AGA ATA 1578 Thr Ser Lys Tyr Asp Tyr Asp Val Lys Thr Phe Asn Val Lys Arg Ile 445 450 455 AAT TTT CCT GTA AAT TCA CAC AAG ACT ATC GAC ACG AAT ACT GAA AGT 1626 Asn Phe Pro Val Asn Ser His Lys Thr Ile Asp Thr Asn Thr Glu Ser 460 465 470 AGC CGT GTC TGC AAT TAT TAC GGT ATG TCC GAA TGC TCC AGC AGT CGA 1674 Ser Arg Val Cys Asn Tyr Tyr Gly Met Ser Glu Cys Ser Ser Ser Arg 475 480 485 TGG GAG CGA TAGATTAAGC CGCTATATTC ATTTACTAGG TAAAACTTCA 1723 Trp Glu Arg 1190 AGCCGCATTC GAAGAACTAT CGAACGCGGC TTTTTTGTTA AGAGCGCCTA TGACTCAGTA 1783 TATTTTGTAT AAATATAATT TTACATCTTG TTAAAGTAAA CATCATATGT TTATATAGGT 1843 GCAATCTAAT TTGTTAATAT AGTGTTGGAG ATAGGT ATG AAA GGT GTT TCT ACG 1897 Met Lys Gly Val Ser Thr 495 AAA AAT GCT CTT TTA TTT GCA GGC TTT TCG TTA AGT CTA GTT GCA CAG 1945 Lys Asn Ala Leu Leu Phe Ala Gly Phe Ser Leu Ser Leu Val Ala Gln 500 505 510 TCA GTT AGT GCA CAA GAA GCA AAA CAG CCT GAA AAA GAA GAA AAA GAT 1993 Ser Val Ser Ala Gln Glu Ala Lys Gln Pro Glu Lys Glu Glu Lys Asp 515 520 525 GTT GAG GTG ATT TTG GTA TCG GCA CAA AAG CGT GAG CAA GCG CTT AAA 2041 Val Glu Val île Leu Val Ser Ala Gln Lys Arg Glu Gln Ala Leu Lys 530 535 540 545 GAA GTG CCT GTA TCA ATT GAA GTT ATT CAA GGC GAC CTT CTA GA 2085 Glu Val Pro Val Ser Ile Glu Val Ile Gln Gly Asp Leu Leu 550 555 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 2: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 559 acides aminés (B) TYPE: acide aminé (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: protéine (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 2: Met Arg Leu Tyr Phe Arg Lys Leu Trp Leu Thr Asn Leu Phe Leu Gly 1 5 10 15 Gly Ala Leu Ala Ser Ser Ala Ala Ile Gly Ala Val Ser Pro Lys Thr 20 25 30 Tyr Lys Asp Ala Asp Phe Tyr Val Ala Pro Thr Gln Gln Asp Val Asn 35 40 Tyr Asp Leu Val Asp Asp Phe Gly Ala Asn Gly Asn Asp Thr Ser Asp 50 55 60 Asp Ser Asn Ala Leu Gln Arg Ala Ile Asn Ala Ile Ser Arg Lys Pro 65 70 75 80 Asn Gly Gly Thr Leu Leu Ile Pro Asn Gly Thr Tyr His Phe Leu Gly 85 90 95 Ile Gln Met Lys Ser Asn Val His Ile Arg Val Glu Ser Asp Val Ile 100 105 110 Ile Lys Pro Thr Trp Asn Gly Asp Gly Lys Asn His Arg Leu Phe Glu 115 120 125 Val Gly Val Asn Asn Ile Val Arg Asn Phe Ser Phe Gln Gly Leu Gly 130 135 140 Asn Gly Phe Leu Val Asp Phe Lys Asp Ser Arg Asp Lys Asn Leu Ala 145 150 155 160 Val Phe Lys Leu Gly Asp Val Arg Asn Tyr Lys Ile Ser Asn Phe Thr 165 170 175 Ile Asp Asp Asn Lys Thr Ile Phe Ala Ser Ile Leu Val Asp Val Thr 180 185 190 Glu Arg Asn Gly Arg Leu His Trp Ser Arg Asn Gly Ile Ile Glu Arg 195 200 205 île Lys Gln Asn Asn Ala Leu Phe Gly Tyr Gly Leu Ile Gln Thr Tyr 210 215 220 Gly Ala Asp Asn Ile Leu Phe Arg Asn Leu His Ser Glu Gly Gly Ile 225 230 235 240 Ala Leu Arg Met Glu Thr Asp Asn Leu Leu Met Lys Asn Tyr Lys Gln 245 250 255 Gly Gly île Arg Asn Ile Phe Ala Asp Asn Ile Arg Cys Ser Lys Gly 260 265 270 Leu Ala Ala Val Met Phe Gly Pro His Phe Met Lys Asn Gly Asp Val 275 280 285 Gln Val Thr Asn Val Ser Ser Val Ser Cys Gly Ser Ala Val Arg Ser 290 295 300 Asp Ser Gly Phe Val Glu Leu Phe Ser Pro Thr Asp Glu Val His Thr 305 310 315 320 Arg Gln Ser Trp Lys Gln Ala Val Glu Ser Lys Leu Gly Arg Gly Cys 325 330 335 Ala Gln Thr Pro Tyr Ala Arg Gly Asn Gly Gly Thr Arg Trp Ala Ala 340 345 350 Arg Val Thr Gln Lys Asp Ala Cys Leu Asp Lys Ala Lys Leu Glu Tyr 355 360 365 Gly Ile Glu Pro Gly Ser Phe Gly Thr Val Lys Val Phe Asp Val Thr 370 375 380 Ala Arg Phe Gly Tyr Asn Ala Asp Leu Lys Gln Asp Gln Leu Asp Tyr 385 390 395 400 Phe Ser Thr Ser Asn Pro Met Cys Lys Arg Val Cys Leu Pro Thr Lys 405 410 415 Glu Gln Trp Ser Lys Gln Gly Gln Ile Tyr île Gly Pro Ser Leu Ala 420 425 430 Ala Val île Asp Thr Thr Pro Glu Thr Ser Lys Tyr Asp Tyr Asp Val 435 440 445 Lys Thr Phe Asn Val Lys Arg Ile Asn Phe Pro Val Asn Ser His Lys 450 455 460 Thr Ile Asp Thr Asn Thr Glu Ser Ser Arg Val Cys Asn Tyr Tyr Gly 465 470 475 480 Met Ser Glu Cys Ser Ser Ser Arg Trp Glu Arg Met Lys Gly Val Ser 485 490 495 Thr Lys Asn Ala Leu Leu Phe Ala Gly Phe Ser Leu Ser Leu Val Ala 500 505 510 Gln Ser Val Ser Ala Gln Glu Ala Lys Gln Pro Glu Lys Glu Glu Lys 515 520 525 Asp Val Glu Val Ile Leu Val Ser Ala Gln Lys Arg Glu Gln Ala Leu 530 535 540 Lys Glu Val Pro Val Ser Ile Glu Val Ile Gln Gly Asp Leu Leu 545 550 555 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 3: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 1997 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (iii) HYPOTHETIQUE: NON (ix) CARACTERISTIQUE: (A) NOM/CLE: CDS (B) EMPLACEMENT:join(333..1805, 1866..1997) (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 3: CCCTAAAAAC TATTCTTCAT ACCCTTTGAT GTATACGTTT AAACTATAGG GAGTTAATCT 60 GGTTTTGGTG CAATTCTAGT TTAATAAATG AAGCCTTCTT TTTTGACTTA CATTTTATTA 120 ACCTCTTGAA TTCTTGGGGC TTGCTAATTA TAAAATACTT AATATCAGGT GGTTGTGTAA 180 AAGAGGTGGA AGGGTATAGG ACCGTTACTT ATAATTGGCC CCTGTCGGAA GGGGGGTTAA 240 AGGTAAAATA GTGTTTAAGT GTATTAATTA ACTTCTATAT AAGTAGGAAA ATACACTATA 300 TATTGCGACA TTATTAACCT TAAATTCTTA CA ATG AAA TTA CAA TTT AAA CCT 353 Met Lys Leu Gln Phe Lys Pro 1 5 GTT TAT TTA GCG TCA ATT GCC ATA ATG GCA ATA GGA TGC ACC AAA GAA 401 Val Tyr Leu Ala Ser Ile Ala lie Met Ala Ile Gly Cys Thr Lys Glu 10 15 20 GTG ACG GAA AAC GAT ACC TCC GAA ATT TCG GAA GTT CCA ACT GAA TTG 449 Val Thr Glu Asn Asp Thr Ser Glu Ile Ser Glu Val Pro Thr Glu Leu 25 30 35 AGG GCC CCC GCT TCT TCA TTT TAT ACC CCA CCC GGT CAG AAT GTA CGG 497 Arg Ala Ala Ala Ser Ser Phe Tyr Thr Pro Pro Gly Gln Asn Val Arg 40 45 50 55 GCC AAT AAA AAA AAC CTG GTC ACG GAT TAC GGT GTT AAC CAC AAT GAT 545 Ala Asn Lys Lys Asn Leu Val Thr Asp Tyr Gly Val Asn His Asn Asp 60 65 70 CAG AAC GAT GAT AGT AGC AAA TTA AAC CTG GCT ATC AAA GAT TTA TCG 593 Gln Asn Asp Asp Ser Ser Lys Leu Asn Leu Ala Ile Lys Asp Leu Ser 75 80 85 GAT ACC CGT GGT ATA CTG ACC CTT CCT AAC GGA AAG TAC TAT TTG ACC 641 Asp Thr Gly Gly Ile Leu Thr Leu Pro Lys Gly Lys Tyr Tyr Leu Thr 90 95 100 AAA ATT AGA ATC CGC TCT AAT GTA CAT CTT GAA ATA GAA AAC GGA ACG 689 Lys lie Arg Met Arg Ser Asn Val His Leu Glu lie Glu Lys Gly Thr 105 110 115 GTA ATC TAT CCG ACC AAC CGC TTG ACT CCT CCC AAC AAT CAC AGA ATT 737 Val Ile Tyr Pro Thr Lys Gly Leu Thr Pro Ala Lys Asn His Arg Ile 120 125 130 135 TTT GAT TTT GCC AGT AAA ACA GAG GAA AAA ATA GAA AAC GCC AGT ATA 785 Phe Asp Phe Ala Ser Lys Thr Glu Glu Lys Ile Glu Asn Ala Ser Ile 140 145 150 GTC GGT AAA GGA GGT AAG TTT ATA GTA GAC CTA AGA CCC AAC AGT TCT 833 Val Gly Lys Gly Gly Lys Phe Ile Val Asp Leu Arg Gly Asn Ser Ser 155 160 165 AAA AAC CAA ATT GTA GCC GAT GTT GGT AAC GTA ACC AAC TTT AAA ATA 881 Lys Asn Gln Ile Val Ala Asp Val Gly Asn Val Thr Asn Phe Lys île 170 175 180 TCG AAT TTT ACG ATC AAG GAT GAA AAA ACC ATC TTT GCT TCG ATA TTC 929 Ser Asn Phe Thr Ile Lys Asp Glu Lys Thr Ile Phe Ala Ser Ile Leu 185 190 195 GTA AGC TTT ACG GAT AAC GCA CCC AAT GCT TCC CCA CAT AAA GGT ATT 977 Val Ser Phe Thr Asp Lys Ala Gly Asn Ala Trp Pro His Lys Gly Ile 200 205 210 215 ATT GAG AAT ATA GAC CAG GCG AAT GCC CAT ACG GGA TAT CCC CTC ATA 1025 Ile Glu Asn île Asp Gln Ala Asn Ala His Thr Gly Tyr Gly Leu Ile 220 225 230 CAG GCG TAC GCG GCA GAT AAC ATT CTG TTC AAC AAT CTA AGT TCT ACG 1073 Gln Ala Tyr Ala Ala Asp Asn île Leu Phe Asn Asn Leu Ser Cys Thr 235 240 245 GGC CCC GTA ACC TTC CGT TTA GAA ACC GAC AAC CTC GCT ATG AAA ACC 1121 Gly Gly Val Thr Leu Arg Leu Glu Thr Asp Asn Leu Ala Met Lys Thr 250 255 260 GCT AAA AAA CCC CCC GTA AGG GAT ATT TTT GCC ACA AAC ATC AAC AAT 1169 Ala Lys Lys Gly Gly Val Arg Asp Ile Phe Ala Thr Lys Ile Lys Asn 265 270 275 ACC AAT CCC TTC ACC CCC GTA ATC TTC TCT CCC CAT TTT ATC GAA AAC 1217 Thr Asn Gly Leu Thr Pro Val Met Phe Ser Pro His Phe Met Glu Asn 280 285 290 295 GGT AAA GTG ACC ATA GAT GAT GTA ACC GCC ATC GGT TCT GCA TAT GCC 1265 Gly Lys Val Thr Ile Asp Asp Val Thr Ala Ile Gly Cys Ala Tyr Ala 300 305 310 GTA CGT GTA GAG CAC GGT TTT ATA GAG ATT TTC GAT AAC CCC AAT AGG 1313 Val Arg Val Glu His Gly Phe Ile Glu île Phe Asp Lys Gly Asn Arg 315 320 325 GCA AGT GCC GAC GCT TTC AAG AAC TAT ATT GAA GGT ATT CTA GGA GCT 1361 Ala Ser Ala Asp Ala Phe Lys Asn Tyr Ile Glu Gly Ile Leu Gly Ala 330 335 340 CCC TCG GTA GAA GTC GTC TAC AAA CGT AAT AAC GGA AGA ACA TCG CCC 1409 Gly Ser Val Glu Val Val Tyr Lys Arg Asn Asn Gly Arg Thr Trp Ala 345 350 355 GCA CGT ATC GCA AAC GAC TTT AAC CAA CCC CCC TAT AAC CAC TCC AAT 1457 Ala Arg Ile Ala Asn Asp Phe Asn Glu Ala Ala Tyr Asn His Ser Asn 360 365 370 375 CCT GCC GTT AGC GGA ATC AAA CCA CCC AAA TTC GCC ACA TCT AAG GTA 1505 Pro Ala Val Ser Gly Ile Lys Pro Gly Lys Phe Ala Thr Ser Lys Val 380 385 390 ACC AAT GTT AAG GCA ACC TAT AAG GGT ACT GGC GCC AAA CTC AAG CAG 1553 Thr Asn Val Lys Ala Thr Tyr Lys Gly Thr Gly Ala Lys Leu Lys Gln 395 400 405 GCA TTC TTA TCC TAT TTA CCC TGT TCG GAA CGT TCT AAG GTT TGT CGG 1601 Ala Phe Leu Ser Tyr Leu Pro Cys Ser Glu Arg Ser Lys Val Cys Arg 410 415 420 CCA GGT CCA GAT CCC TTC GAG TAT AAC GGA CCC TCC TTC GGA GTT ACC 1649 Pro Gly Pro Asp Gly Phe Glu Tyr Asn Gly Pro Ser Leu Gly Val Thr 425 430 435 ATC GAT AAC ACG AAA AGG GAC AAC AGC CTT GGC AAT TAT AAC GTC AAT 1697 île Asp Asn Thr Lys Arg Asp Asn Ser Leu Gly Asn Tyr Asn Val Asn 440 445 450 455 GTA AGC ACC TCC AGT GTT CAG CCC TTT CCC AAT AAT TAC GTT TTA AAC 1745 Val Ser Thr Ser Ser Val Gln Gly Phe Pro Asn Asn Tyr Val Leu Asn 460 465 470 GTA AAC TAT AAT ACC CCT AAA GTA TGT AAC OAA AAT CTA GGT AGT ATT 1793 Val Lys Tyr Asn Thr Pro Lys Val Cys Asn Gln Asn Leu Gly Ser île 475 480 485 ACT TCG TGT AAC TGATCACGAA ACAATTTGTA AATAAAAAGC AGCTGTCCCT 1845 Thr Ser Cys Asn 490 TATTACGGGC GGCTGCTTTT ATG TCT TTA AGC CAT GTC GTC ATT TAT TCG 1895 Met Ser Leu Ser His Val Val Ile Tyr Trp 495 500 CGA CTT TTC ATA AAG GCT TCG ATT TCT TCC CCC GTA AAT ATC GGA TTC 1943 Arg Leu Leu Ile Lys Ala Trp Ile Ser Ser Gly Val Asn Ile Gly Leu 505 510 515 GCC CCT TCC CTA CCC GCT ACC ATA GCT CTA TGC TCC TAT GCA CAG CCC 1991 Ala Pro Ser Leu Pro Ala Thr Ile Ala Leu Cys Ser Tyr Ala Gln Ala 520 525 530 AAA TCT 1997 Lys Ser 535 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 4: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 535 acides aminés (B) TYPE: acide aminé (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: protéine (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 4: Met Lys Leu Gln Phe Lys Pro Val Tyr Leu Ala Ser Ile Ala Ile Met 1 5 10 15 Ala Ile Gly Cys Thr Lys Glu Val Thr Glu Asn Asp Thr Ser Glu Ile 20 25 30 Ser Glu Val Pro Thr Glu Leu Arg Ala Ala Ala Ser Ser Phe Tyr Thr 35 40 Pro Pro Gly Gln Asn Val Arg Ala Asn Lys Lys Asn Leu Val Thr Asp 50 55 60 Tyr Gly Val Asn His Asn Asp Gln Asn Asp Asp Ser Ser Lys Leu Asn 65 70 75 80 Leu Ala île Lys Asp Leu Ser Asp Thr Gly Gly Ile Leu Thr Leu Pro 85 90 95 Lys Gly Lys Tyr Tyr Leu Thr Lys Ile Arg Met Arg Ser Asn Val His 100 105 110 Leu Glu île Glu Lys Gly Thr Val Ile Tyr Pro Thr Lys Gly Leu Thr 115 120 125 Pro Ala Lys Asn His Arg Ile Phe Asp Phe Ala Ser Lys Thr Glu Glu 130 135 140 Lys Ile Glu Asn Ala Ser Ile Val Gly Lys Gly Gly Lys Phe île Val 145 150 155 160 Asp Leu Arg Gly Asn Ser Ser Lys Asn Gln île Val Ala Asp Val Gly 165 170 175 Asn Val Thr Asn Phe Lys île Ser Asn Phe Thr Ile Lys Asp Glu Lys 180 185 190 Thr Ile Phe Ala Ser île Leu Val Ser Phe Thr Asp Lys Ala Gly Asn 195 200 205 Ala Trp Pro His Lys Gly Ile île Glu Asn île Asp Gln Ala Asn Ala 210 215 220 His Thr Gly Tyr Gly Leu Ile Gln Ala Tyr Ala Ala Asp Asn Ile Leu 225 230 235 240 Phe Asn Asn Leu Ser Cys Thr Gly Gly Val Thr Leu Arg Leu Glu Thr 245 250 255 Asp Asn Leu Ala Met Lys Thr Ala Lys Lys Gly Gly Val Arg Asp Ile 260 265 270 Phe Ala Thr Lys Ile Lys Asn Thr Asn Gly Leu Thr Pro Val Met Phe 275 280 285 Ser Pro His Phe Met Glu Asn Gly Lys Val Thr Ile Asp Asp Val Thr 290 295 300 Ala Ile Gly Cys Ala Tyr Ala Val Arg Val Glu His Gly Phe Ile Glu 305 310 315 320 île Phe Asp Lys Gly Asn Arg Ala Ser Ala Asp Ala Phe Lys Asn Tyr 325 330 335 Ile Glu Gly Ile Leu Gly Ala Gly Ser Val Glu Val Val Tyr Lys Arg 340 345 350 Asn Asn Gly Arg Thr Trp Ala Ala Arg Ile Ala Asn Asp Phe Asn Glu 355 360 365 Ala Ala Tyr Asn His Ser Asn Pro Ala Val Ser Gly Ile Lys Pro Gly 370 375 380 Lys Phe Ala Thr Ser Lys Val Thr Asn Val Lys Ala Thr Tyr Lys Gly 385 390 395 400 Thr Gly Ala Lys Leu Lys Gln Ala Phe Leu Ser Tyr Leu Pro Cys Ser 405 410 415 Glu Arg Ser Lys Val Cys Arg Pro Gly Pro Asp Gly Phe Glu Tyr Asn 420 425 430 Gly Pro Ser Leu Gly Val Thr île Asp Asn Thr Lys Arg Asp Asn Ser 435 440 445 Leu Gly Asn Tyr Asn Val Asn Val Ser Thr Ser Ser Val Gln Gly Phe 450 455 460 Pro Asn Asn Tyr Val Leu Asn Val Lys Tyr Asn Thr Pro Lys Val Cys 465 470 475 480 Asn Gln Asn Leu Gly Ser Ile Thr Ser Cys Asn Met Ser Leu Ser His 485 490 495 Val Val Ile Tyr Trp Arg Leu Leu Ile Lys Ala Trp Ile Ser Ser Gly 500 505 510 Val Asn Ile Gly Leu Ala Pro Ser Leu Pro Ala Thr Ile Ala Leu Cys 515 520 525 Ser Tyr Ala Gln Ala Lys Ser 530 535 REVENDICATIONS 1. Gènes qui codent pour des glycosyle hydrolases, ayant un score HCA avec la iota-carraghénase dAitemmonas fortis qui est supérieur ou égal à 65 %, sur le domaine s'étendant entre les acides aminés 164 et 311 de la séquence protéique SEQ ID N 2 de ladite iota-carraghénase. 2. Gènes selon la revendication 1, caractérisés en ce que le score HCA est supérieur ou égal à 70 %. 3. Gènes selon la revendication 1, caractérisés en ce que le score HCA est supérieur ou égal à 75 %. 4. Gène selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il code pour la L-carraghénase dAlteromonas fortis et qu'il comprend la séquence nucléique SEQ Ide*1. 5. Utilisation des gènes selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, pour l'obtention de glycosyle hydrolases par génie génétique. 6. Utilisation du gène selon la revendication 4 pour l'obtention de la iota-carraghénase d'Alteromonasfortis par génie génétique.