FR 2748479 A1 19971114 FR 9605854 A 19960510 POLYPEPTIDE COMPORTANT UN NOUVEAU DOMAINE COHESINE DE TYPE II, COMPOSITION ENZYMATIQUE EN COMPORTANT ET FRAGMENTS D'ADN CODANT POUR CES POLYPEP?'IDES La présente invention concerne des domaines protéiques susceptibles d'interagir de façon non covalente et permettant d'agencer en complexes multiprotéiques définis des polypeptides d'intérêt biochimique ou biologique pour les faire agir ensemble simultanément ou de manière séquentielle afin de potentialiser leur synergie. Elle concerne également les fragments d'ADN codant pour lesdits fragments protéiques. La présente invention concerne enfin des compositions enzymatiques permettant d'associer plusieurs enzymes pour les faire agir ensemble simultanément ou de manière séquentielle afin de potentialiser leur synergie. Par exemple, dans le cas d'une action séquentielle, plusieurs types d'enzymes à activité différente peuvent agir successivement sur un me me mélange de substrats. Les cellulases de plusieurs bactéries cellulolytiques sont organisées en complexe enzymatique comportant des sous-unités à activité catalytique interagissant avec un polypeptide sans activité catalytique appelé "protéine de charpente". Cette interaction se réalise via des domaines des sous-unités à activité catalytique appelés "domaines dockerine" et des domaines répétés de la protéine de charpente appelés "domaines cohésine" de taille plus importante que les domaines dockerine des unités catalytiques. A ce jour, seuls les domaines cohésine des protéines de charpente ont été identifiés, ces domaines sont appelés dans la présente description, domaines cohésine de type I. En particulier, Clostridium thermocellum, une bactérie Gram positive, thermophile et anaérobie, produit un complexe cellulolytique à masse moléculaire élevée dénommé cellulosome (15, 16, 21). Ce complexe est initialement fixé à la surface cellulaire et est ensuite libéré dans le milieu. Le cellulosome est composé d'au moins 15 polypeptides différents, comprenant de nombreuses a-1 ,4-endoglucanases, au moins une cellobiohydrolase (23) et plusieurs hémicellulases (R-1,4-xylanases, lichénases) (22). Les composants catalytiques sont liés de manière non covalente à une sous-unité de charpente non catalytique, dénommée CipA (pour Cellulosome Integrating Protein) (37). La protéine CipA et des composants similaires identifiés dans les complexes cellulolytiques d'autres Clostridium cellulolytiques sont des protéines de charpente ou "scaffoldines" (2). Le mode de fixation des sous-unités catalytiques à la protéine Cip A a été élucidé (références n" 8, 33). Chaque sous-unité catalytique contient un segment dupliqué et conservé de 23 résidus, constituant un domaine dockerine (2). Les domaines dockerine entrent en interaction avec un ensemble de domaines de liaison complémentaires, ou domaines cohésine (2). Ces domaines, dont neuf copies sont présentes dans la séquence de CipA, sont très semblables entre eux, particulièrement les domaines 4 à 8, qui possèdent plus de 95 % de résidus identiques ( 1 1). Il a été montré que l'on peut greffer un domaine dockerine sur une protéine ne faisant pas partie du cellulosome, par exemple l'endoglucanase CelC de C. thermocellum, et que celle-ci acquiert de ce fait la capacité de se fixer sur CipA (32). Cette observation a suggéré la possibilité d'utiliser l'affinité entre domaines cohésine et domaines dockerine afin de créer des complexes artificiels incorporant diverses protéines fusionnées à des domaines dockerine adéquats, interagissant avec les domaines cohésine de la protéine de charpente (2, 32). De tels complexes pourraient trouver diverses applications biotechnologiques. En modifiant de manière contrôlée, la composition de cellulosomes naturels, il pourrait être possible d'optimiser leur activité vis-à-vis de substrats cellulosiques définis. On peut également envisager d'améliorer le processus de dégradation d'autres substrats complexes et insolubles, faisant appel à des enzymes de spécificité complémentaire, et dont l'action synergique serait potentialisée par une association en complexes multienzymatiques. De même, I'association physique d'enzymes effectuant des réactions séquentielles permet d'accélérer celles-ci lorsque la vitesse de diffusion du produit de la première réaction vers le deuxième site réactionnel est limitante (L. Bülow et K. Mosbach, Multienzyme systems obtained by gene fusion, Trends in Biotechnol. 9, 226-23 i). Par ailleurs, I'utilité de complexes multiprotéiques n'est pas limitée à l'association d'enzymes. La construction de complexes protéiques multifonctionnels est en effet susceptible de donner lieu à une grande variété d'applications, discutées dans la référence (2). Cependant, la construction de complexes de stoechiométrie et de topologie définies se heurte à une difficulté importante. Tous les domaines cohésine connus jusqu'à présent sont très semlables quant à leur séquence et à leur spécificité de liaison. Par exemple, il a été montré que CelS, une des sous-unités catalytiques du cellulosome, peut se lier de façon équivalente aux domaines cohésine (18b) 1, 2, et 9 de CipA, et vraisemblablement à tous les autres domaines cohésine de celle-ci. En conséquence, il n'est pas possible de programmer la liaison d'une protéine de fusion, porteuse d'un domaine dockerine, à un domaine cohésine défini de la protéine de charpente. Les domaines cohésine connus jusqu'à ce jour, possédant une forte similitude de séquence et de spécificité de liaison, ont été groupés sous le nom de domaines cohésine de type 1. De même, les domaines dockerine portés par les sous-unités catalytiques du cellulosome, et capables de se lier aux domaines cohésine de type I, sont appelés domaines dockerine de type 1. Il existe cependant à l'extrémité COOH-terminale de CipA un domaine présentant une similitude de séquence éloignée avec les domaines dockerine de type I, mais incapable de se lier aux domaines cohésine de type I. Il permet aux protéines qui le portent de se fixer à trois polypeptides exocellulaires de C. thermocellum. La structure et la fonction de ces polypeptides sont inconnues (29). L'invention repose sur la caractérisation d'un gène, sdbA ("scaffolding dockerin binding protein"), qui a été cloné et séquencé, dont le produit SdbA est capable de se fixer spécifiquement au domaine COOHterminal de CipA, à l'exclusion des domaines dockerine de type I portés par les sous-unités catalytiques du cellulosome. La caractérisation du polypeptide SdbA montre qu'il comporte une région spécifique responsable de la liaison avec le domaine COOH-terminal de CipA, et dont la séquence est très différente de celle des domaines cohésine de type I. Cette région, ainsi que les segments polypeptidiques de séquence et de spécificité d'interaction similaire, sont nouveaux et appelés domaines cohésine de type II. De même, la région COOH-terminale de CipA est appelée domaine dockerine de type II. L'utilisation de domaines cohésine et dockerine de type II, éventuellement en conjonction avec des domaines cohésine et dockerine de type différent (par exemple de type I) permet de construire des complexes protéiques mieux définis. L'intérêt des domaines cohésine de type Il selon la présente invention est de présenter une spécificité de reconnaissance différente de celle des domaines cohésine de protéine de charpente connus précédemment, notamment ceux de la protéine CipA. La présente invention concerne plus particulièrement des domaines cohésine de type II ainsi que des domaines dockerine de type II. La présente invention concerne notamment des composés sur lesquels sont capables de se fixer de façon covalente ou non au moins un domaine cohésine de type II ou un domaine dockerine de type II. Plus particulièrement ces composés sont des peptides, polypeptides ou protéines, mais il peut s'agir de lipides ou de glycosides ou bien de molécules de type mixte telles que protéoglycane, lipopolysaccharide par exemple. I1 est possible de prévoir d'autres types de molécules notamment des marqueurs ou par exemple des molécules chimiques thérapeutiques ou non. Un domaine cohésine de type II est un domaine protéique qui se lie de façon spécifique avec le domaine dockenne de CipA correspondant au domaine dockerine de type Il tel qu'il sera défini ci-après. De préférence l'affinité du complexe ainsi formé sera au moins de 105 M/L tel que mesuré par la méthode décrite dans SALAMITOU et al (réf. 28). La séquence du domaine dockerine de CipA est celle correspondant à l'IDS n" 4. Un domaine cohésine de type II peut correspondre à des séquences naturelles, il peut notamment s'agir de domaine provenant de bactéries cellulolytiques notamment des Clostridium comme cela sera décrit ci-après pour SdbA. Mais de tels domaines sont également présents sur les protéines OlpB et ORF2p. La notion de domaine cohésine de type II incorpore également des séquences protéiques non naturelles pour autant qu'elles puissent se lier avec le domaine dockerine de type Il de CipA. Il peut alors s'agir notamment de domaines homologues aux domaines naturels ou de fragments de ces domaines mais il est possible de prévoir également des domaines entièrement synthétiques obtenus par exemple en utilisant certains acides aminés non naturels, ou bien en utilisant des éléments améliorant l'affinité. Par "protéine homologue" ou "séquence homologue" on entend selon la présente invention toute protéine, polypeptide ou peptide présentant une homologie de séquence d'au moins 25 % par rapport au domaine cohésine de type Il notamment celui correspondant à SdbA, ladite séquence conservant les propriétés de liaison spécifique au domaine dockerine concerné, notamment au domaine dockerine de CipA. Par "fragment de protéines" ou "fragment de séquences" on entend un fragment d'au moins 50 acides aminés conservant les propriétés de liaison spécifique au domaine dockerine concerné, notamment au domaine dockerine de CipA. Il faut rappeler qu'un domaine cohésine de type II doit présenter une bonne affinité pour le domaine dockérine correspondant mais ne doit présenter que pas ou peu d'affinité pour le domaine dockérine de type différent notamment de type I. La présente invention concerne également les composés comportant un domaine dockérine de type II, c'est à dire un domaine protéique qui se lie de façon spécifique avec un domaine cohésine de type II et ce avec une affinité d'au moins 105 M/L mesuré comme précédemment. Cette définition n'est pas redondante, en effet il faut bien comprendre qu'à partir du domaine dockérine de type II de CipA il est possible de définir un certain nombre de domaines cohésine de type II, lesquels peuvent permettre de définir de nouveaux domaines dockerine de type II lesquels comme précédemment peuvent être d'origine naturelle mais peuvent être constitués de fragments de domaines de séquences homologues ou bien éventuellement comme cela a été indiqué précédemment, comporter des séquences entièrement synthétiques avec éventuellement des acides aminés non naturels. La liaison entre un domaine cohésine et un domaine dockerine de type II sera dénommée ci-après par simplification interaction C/D de type II, le complexe ainsi formé étant dénommé soit complexe C/D de type II lorsqu'il ne comporte qu'une seule interaction C/D de type II soit complexe multimérique lorsqu'il comporte au moins une interaction C/D autre que de type II, interaction C/D de type I par exemple et/ou d'autres formes d'interactions : avidine/biotine, antigène/anticorps par exemple. De préférence, les complexes multimérique selon l'invention comportent essentiellement des interactions de type C/D. Ainsi la présente invention, grâce à ces différentes interactions, permet de cibler l'intégration dans un complexe d'enzymes différentes et de fournir un complexe artificiel utilisant notamment une protéine de charpente comportant des domaines dockerine de spécificité de liaisons différentes afin d'agencer de manière spécifique diverses protéines porteuses de domaines cohésine correspondants. Plus particulièrement, la présente invention fournit un polypeptide ayant un domaine cohésine de type II, selon l'invention, caractérisé en ce qu'il est capable de se fixer au domaine dockerine COOHterminal de la protéine de charpente CipA du complexe cellulolytique de Clostridium thermocellum. Toute protéine ou peptide présentant ou comportant une séquence ayant plus de 25 % de résidus d'acides aminés identiques avec un domaine cohésine de type II de SdbA entre dans la définition de l'invention. En particulier, il s'agit d'une protéine de Clostridium thermocellum ou d'un fragment de celle-ci. Dans un mode plus particulier de réalisation, la présente invention a pour objet une protéine SdbA ("scaffolding dockerin binding protein") de Clostridium thermocellum de poids moléculaire apparent de 68kDa (+ 10 %) comportant un domaine cohésine qui est capable de se fixer avec un domaine dockerine de type Il notamment de la protéine CipA de Clostridium thermocellum. Le polypeptide SdbA du complexe cellulolytique de Clostridium thermocellum, a une séquence de 631 acides aminés substantiellement telle que représentée sur l'IDS n"l. La présente invention a permis d'identifier le domaine de la protéine SdbA capables de se fixer au domaine dockerine de CipA. En particulier, le domaine cohésine comprend une séquence de la région Nterminale de la protéine de 184 acides aminés substantiellement telle que représentée dans l'IDS n 1 de l'acide aminé n 27 à l'acide aminé n 210 de la séquence de la protéine ou une séquence homologue ou un fragment de cette séquence ou d'une séquence homologue capable de se fixer à un domaine dockerine de la protéine CipA, par exemple, un fragment de ces séquences d'au moins 50 acides aminés capable de se fixer à un domaine dockerine de la protéine CipA. La présente invention a permis d'identifier des domaines cohésine de type II d'autres protéines de Clostridium thermocellum, en particulier des protéines OlpB et ORF2p (9, 17). SdbA présente une homologie de séquence avec les séquences répétées N-terminale de OlpB et ORF2p. Le segment polypeptidique comprenant les résidus 26-199 de la protéine OlpB, qui présente une forte similitude de séquence avec les résidus 27-191 de SdbA, peut également fixer le domaine C-terminal de CipA Ainsi outre des fragments de la protéine SdbA ou d'une protéine homologue interagissant avec un domaine dockerine d'une protéine de charpente selon l'invention, la présente invention a donc également pour objet des fragments de OlpB et ORF2p, de séquences similaires au domaine cohésine de type II de SdbA. La présente invention a donc pour objet tout polypeptide comprenant comme domaine cohésine la séquence correspondant substantiellement à l'une des séquences de la protéine OlpB choisies parmi la séquence des acides aminés n 28 au n 192, la séquence des acides aminés n" 207 au n" 363, la séquence des acides aminés n 409 au n" 565 et la séquence des acides aminés n" 607 au n 763 de L'IDES n" 2 ou une séquence homologue à l'une de ces séquences ou un fragment de ces séquences d'au moins 50 acides aminés, capable de se fixer à un domaine dockerine de la protéine CipA. La présente invention a également pour objet tout polypeptide comprenant un domaine cohésine qui a substantiellement pour séquence en acides aminés, une séquence de la protéine ORF2p choisie parmi la séquence des acides aminés n" 38 à 195 et la séquence des acides aminés n" 209 à 365 de L'IDES n 3, ou une séquence homologue à ces séquences ou un fragment de ces séquences d'au moins 50 acides aminés capable de se fixer à un domaine dockerine de la protéine CipA. La présente invention a également pour objet tout polypeptide qui comporte un segment de séquence de plus de 50 acides aminés, présentant plus de 25 % de résidus identiques avec l'un des segments de l'IDS n 1, de 1'IDES n 2, ou de L'IDES n 3 décrits ci-dessus, et capable de fixer le domaine dockerine de CipA. Parmi les composés selon la présente invention comportant un domaine cohésine de type II ou dockenne de type II il faut citer par exemple les enzymes, les récepteurs, les antigènes, les anticorps ou un de leurs fragments comportant entre 20 et 100 acides aminés. Dans le cas particulier où la protéine est une enzyme, il s'agira par exemple d'une cellulase permettant une meilleure hydrolyse de substrat cellulosique ou tout autre type d'enzyme hydrolytique. Dans le cas où le composé selon l'invention est essentiellement une protéine, les parties de la protéine peuvent être fusionnées audit domaine cohésine ou dockerine par l'intermédiaire d'un fragment polypeptidique. La liaison peut être également une liaison non covalente, par exemple une liaison conformationnelle. La présente invention a également pour objet un fragment d'ADN codant pour un composé selon l'invention lorsque celui-ci est un polypeptide ou codant pour la protéine SdbA ou un fragment de celle-ci, lorsque le composé selon l'invention comporte d'autres éléments que le polypeptide ou la protéine l'invention concerne également le fragment d'ADN codant pour le polypeptide ou la protéine. La présente invention repose en partie sur le clonage moléculaire et le séquençage du gène dénommé sdbA, dont le produit se fixe spécifiquement au domaine dockerine porté par CipA. Des segments du gène ont été sous-clonés et exprimés séparément, pour permettre d'identifier la région du polypeptide responsable de la fixation du domaine dockerine de CipA. Il s'agit du fragment d'ADN comprenant un cadre de lecture ouvert de 1 893 nucléotides, et codant pour le polypeptide de 63 1 aminoacides dénommé SdbA, ayant une masse moléculaire calculée de 68 577 Da. La présente invention a donc également pour objet un fragment d'ADN représenté substantiellement par la séquence 1 à 1893 de L'IDES n" 1 codant pour la protéine SdbA ainsi qu'une souche de E. coli déposée à la CNCM de l'institut Pasteur sous le n I-1684 transformée par le plasmide PCT1830 comportant un fragment d'ADN correspondant à cette séquence codant pour la protéine SdbA. La présente invention a en outre pour objet un fragment d'ADN qui a pour séquence essentiellement les nucléotides 82 à 573 dans l'IDS n" 1 codant pour le domaine cohésine de la protéine SdbA ainsi qu'une souche de E. coli déposée à la CNCM de l'Institut Pasteur sous le n 1-1683 transformée par le plasmide pCT1801 comportant un fragment d'ADN correspondant à cette séquence de 1893 pb. De même la présente invention a également pour objet un fragment d'ADN caractérisé en ce qu'il a substantiellement pour séquence l'une des séquences codant pour un domaine cohésine de la protéine OlpB choisies parmi la séquence des nucléotides 85 à 570, la séquence des nucléotides 619 à 1095, la séquence des nucléotides 1225 à 1689 et la séquence des nucléotides 1819 à 2189 dans L'IDES n 2 ainsi qu'un fragment d'ADN caractérisé en ce qu'il a substantielle ment pour séquence l'une des séquences codant pour un domaine cohésine de ORF2 choisies parmi la séquence des nucléotides 109 à 582 et la séquence des nucléotides n" 625 à 1092 dans l'IDS n" 3. La présente invention a également pour objet des fragments d'ADN qui ont pour une séquence une séquence complémentaire ou homologue ou complémentaire de l'homologue d'un des fragments d'ADN tels que définis ci-dessus. Par "fragment d'ADN homologue" on entend des fragments qui codent pour des polypeptides homologues comme cela a été décrit précédemment. La présente invention a également pour objet des fragments d'ADN capables de s'hybrider dans des conditions faiblement stringentes (19) avec un fragment d'ADN selon l'invention tel que défini précédemment. La présente invention concerne également des complexes comportant au moins un composé tel que décrit précédemment lié par une interaction C/D de type II avec un composé comportant au moins un domaine dockerine de type II, chaque composé constituant un élément du complexe. Il s'agit notamment d'un complexe multimérique caractérisé en ce que au moins deux des "éléments" du complexe sont liés par une interaction C/D de type II. De préférence le complexe comportera au moins trois "éléments" dont deux des "éléments" sont liés par une interaction autre que C/D de type II par exemple par une interaction C/D de type I. Par "élément" on désignera un composé selon l'invention qui pourra éventuellement comporter un autre domaine de liaison : interaction C/D de type I par exemple, ou bien un composé comportant un seul domaine de liaison différent de l'interaction C/D de type II mais capable de se fixer sur un composé selon l'invention. En utilisant judicieusement les divers types d'interactions, il est possible d'obtenir des complexes ayant des structures variées. La structure du complexe multimérique ou la structure du complexe de type II selon l'invention peuvent être ainsi de type linéaire ou greffée ou bien de type mixte. Un complexe multimérique de type linéaire comprend un enchaînement de composés selon l'invention, ne comportant que deux domaines de liaison chacun. Un tel complexe est représenté à la figure I B. Au contraire, une structure greffée comporte en général une molécule de structure avec un certain nombre de domaines de liaison et des greffons protéines par exemple, ne comportant qu'un seul domaine, ce type de structure est schématisé à la figure 1A et 1C. Bien entendu, il est possible de prévoir des structures qui combinent ces deux structures de base, on peut même prévoir des structures cycliques. En effectuant une fixation de façon séquentielle on peut ainsi obtenir un complexe de structure bien défini, ce qui est particulièrement intéressant pour obtenir des complexes enzymatiques. Les composés selon la présente invention peuvent être obtenus par génie génétique lorsqu'il s'agit de protéines. Lorsque les composés comportent des éléments non protéiques, ceux-ci peuvent être greffés par des moyens connus notamment par réactions chimiques pour les liaisons covalentes ou par des liaisons non covalentes. Une première façon de mettre en oeuvre l'invention consiste à fusionner au moyen du génie génétique des domaines cohésine respectivement dockerines de type différent, de façon à construire des protéines de charpente comportant ces domaines en nombre et en ordre définis. Parallèlement, des domaines dockerines respectivement cohésines adéquats sont greffés sur des protéines étrangères, par exemple des enzymes, que l'on désire associer dans un ordre choisi le long de la protéine de charpente, on obtient ainsi une structure greffée correspondant à la figure 1A ou C. Ce type de mise en oeuvre conduit à des complexes se rapprochant du cellulosome naturel. Ces complexes selon l'invention pourront comprendre de préférence pour chaque composé des segments peptidiques de jonction, de longueur et de séquence appropriées. Par exemple, les constructions reprendront les segments de jonction naturels riches en proline et/ou hydroxy amino acides présents dans les polypeptides naturels. L'incorporation des protéines que l'on désire associer s'effectue par l'intermédiaire d'un domaine cohésine ou dockerine greffée par exemple au moyen du génie génétique. Dans le complexe selon la présente invention, le nombre d'éléments du multimère est compris entre 1 et 50 éléments associés entre eux et de préférence 1 et 20. Dans un mode de réalisation, chaque élément du complexe comprend des domaines cohésines ou des domaines dockerine. Mais il est possible de prévoir des éléments comportant des domaines cohésines et dockerines. La présente invention a également pour objet un fragment d'ADN codant pour un élément du complexe selon l'invention. D'une manière générale, la présente invention a également pour objet les vecteurs d'expression comprenant un fragment d'ADN selon l'invention placé sous le contrôle d'éléments assurant son expression dans une cellule hôte de type eucaryote ou dans un hôte bactérien tel qu'une souche de E.coli transformée par un vecteur d'expression selon l'invention, et un procédé de préparation d'un polypeptide selon l'invention ou d'une protéine selon l'invention caractérisé en ce qu'on réalise la culture de cellules hôtes transformées à l'aide d'un vecteur d'expression selon l'invention ou par culture d'une souche de E.coli selon l'invention. Enfin la présente invention fournit une composition enzymatique comprenant plusieurs enzymes réunis afins de les faire agir ensemble et le cas échéant potentialiser leur synergie, par l'intermédiaire d'un complexe multimérique sur chacun desquels est couplé une enzyme différente. La présente invention concerne des compositions comportant au moins un complexe multimérique présentant au moins un domaine d'interaction C/D de type II. En particulier, une composition enzymatique selon l'invention peut comprendre deux enzymes réunies afin de les faire agir ensemble et le cas échéant potentialiser leur synergie, par l'intermédiaire d'un complexe selon l'invention comportant une première enzyme, et une seconde enzyme liée par interaction C/D de type II. Dans une variante avantageuse de réalisation, ledit complexe comporte un polypeptide comprenant un domaine cohésine selon l'invention, couplé à un domaine dockerine de la protéine Cip A couplé à un premier enzyme, et un deuxième élément comprend un domaine dockerine d'une sous unité catalytique du complexe cellulolytique de Clostridium thermocellum couplé à une seconde enzyme, qui se liera au domaine cohésine. Les complexes multimériques selon l'invention sont plus particulièrement utilisables lorsque lesdits complexes multimériques potentialisent la synergie des éléments des complexes, notamment lorsqu'il s'agit d'une composition enzymatique. La présente invention concerne également un procédé de détection d'un antigène ou d'un anticorps par la mise en contact d'un complexe multimérique selon l'invention avec une solution contenant un anticorps ou un antigène d'intérêt et la révélation de la réaction entre le complexe multimérique et l'antigène ou l'anticorps. La révélation peut se faire par marquage radioactif du complexe anticorps ou antigène ou par visualisation en utilisant des marquages non isotopiques, par exemple de type avidine - biotine ou tout autre marquage équivalent. D'autres caractéristiques et avantages de la présente invention apparaîtront à la lumière de la description détaillée qui va suivre. Cette description fait référence aux figures 1 à 6. La figure 1 schématise la structure de complexe multimérique selon l'invention. La figure 2 représente une carte de restriction de la région comprenant le gène sdbA, et construction de pCT1830, pCT1831 et pCT1832, codant pour SdbA-N, SdbA-C et SdbA, respectivement. E: EcoRI; K: Kpnl; P: PstI; Sa: Sali; Sc: Sac I; Sp: SphI; SCM: site de clonage multiple. Les positions des segments codant pour les diverses régions identifiées dans SdbA sont indiquées par des cadres de dessins différents. Les nombres se réfèrent à la séquence nucléotidique (figure 3). Les nucléotides qui ont été changés dans la séquence amplifiée par PCR sont indiqués en gras. L'ADN du vecteur POUR30 est indiqué par un trait mince. La La figure 3 représente une séquence nucléotidique de la région codant pour le gène sdbA. Le site de liaison ribosomique supposé est souligné. Les diverses régions identifiées dans SdbA sont indiquées par des cadres de même dessin que sur la figure 2. SLR: site de liaison ribosomique. La figure 4 représente l'alignement du domaine cohésine de SdbA et des domaines cohésine de OlpB et ORF2p (9). Les résidus qui sont identiques ou similaires à la majorité des séquences représentées sont indiqués sur un fond ombré. La numérotation des résidus commence avec des codons d'initiation supposés. Les aminoacides similaires sont: F, I, V, L et M; R et K; S et T; D et E; N et Q; et F, Y et W. La figure 5 représente la similarité entre les résidus 264 à 275 de SdbA et d'un motif présent dans les protéines M de Streptococcus ovoBenes. M1: (numéro de dépôt GenBank x72752), M9 (24), PAM (3), M12 (26). Pour chaque protéine, la numérotation commence avec le codon d'initation supposé. Les résidus qui sont identiques ou similaires dans la majorité des séquences représentées sont indiqués sur un fond ombré. Les critères de similarité sont les mêmes que pour la figure 4. La figure 6 représente l'alignement des segments répétés COOHterminaux de SdbA avec les séquences similaires d'autres protéines de suface cellulaire. OlpA: protéine A de couche externe de C. thermocellum (9); OlpB: protéine B de couche externe de C. thermocellum (9); Pul: pullulanase de T. thermosulfurinenes EM1 (20); Bsph: protéine de couche S de 13. sohaericus (4). Pour chaque protéine, la numérotation commence au niveau du codon d'initiation supposé. Les résidus qui sont semblables ou identiques dans au moins huit segments sont indiqués sur fond ombré. Les critères de similarité sont les mêmes que pour la figure 4. 1. MATERIEL ET MéTHODES 1. Souches bactériennes. plasmides et conditions de culture Les souches bactériennes et les plasmides utilisés dans cette étude sont récapitulés dans le tableau 1. La souche TG1 d'Escherichia coli a été utilisée pour le clonage et le séquencage. Les protéines ont été produites dans E. coli M15 (pREP4). C. thermocellum a été cultivé dans des conditions anaérobies, à 60"C dans du milieu CM3-3 complété avec 5 g de cellobiose par litre (31). On a cultivé E. coli à 37"C, dans du milieu de Luria Bertani (19). On a ajouté des antibiotiques en fonction des plasmides présents dans l'hôte: 100 Fg/ml de ticarcilline, 30 crg/ml de chloramphénicol, 25 yg/ml de kanamycine. 2. Manipulations d'ADN L'ADN génomique de C. thermocellum a été purifié par la méthode de Marmur modifiée par Quiviger et coll. (25). D'autres manipulations d'ADN ont été effectuées selon Ausubel et coll. (1). On a utilisé les enzymes de restriction en suivant les recommandations des fournisseurs. Les amorces oligonucléotidiques ont été synthétisées par Eurogentec SA (Sering, Belgique) ou Genset SA (Paris, France). On a effectué l'amplification par PCR selon Saiki et coll. (27), en utilisant 100 pmoles de chaque amorce oligonucléotidique dans un mélange réactionnel de 100 Crl. MgC12 a été ajouté jusqu'à une concentration finale de 2 mM. On a effectué 35 cycles d'amplification. Les paramètres étaient les suivants: hybridation: 1 minute à 65"C; extension: 1 minute à 72"C; et dénaturation: 1 minute à 94"C. On a toujours vérifié la séquence des fragments clonés obtenus par PCR. 3. Construction de la banaue rrénomiaue de C. thermocellum L'ADN de C. thermocellum a été partiellement digéré par Sau3AI, et les fragments ont été séparés sur un gradient de saccharose. Des fragments de plus de 12 kb ont été insérés dans le plasmide pUC18 coupé par BamHI, et traités par de la phosphatase alcaline bactérienne (Ready-to-go, Pharmacia). Des cellules de E. coli TG1 ont été transformées par électroporation et étalées en présence de 0,8 mg de S-bromo-4-chloro-3-indolyl-ss-D-galactoside par plaque et 0,2 mg d'isopropyl-ss-D-thiogalactoside (IPTG) par plaque. 4. Criblage de colonie et repérage de protéines transférées sur membrane On a criblé comme décrit (8) les clones recombinants, en recherchant la fixation de CelC-DsCipA marquée au 125il Pour identifier les polypeptides porteurs de domaines cohésine de type II, on a analysé les protéines par SDS-PAGE (14) et on les a tranférées sur une membrane en Nylon (Hybond-N+, Amersham) (1). La membrane a été mise à incuber avec CelC-DsCelD et CelC-DsCipA marquées au 125I, lavée et autoradiographiée comme décrit précédemment (29, 32). 5. Séquences d'ADN et analvse des séquences Les fragments de restriction appropriés de pCT1801 ont été sous-clonés dans le plasmide pBCSK, et on a engendré des délétions emboîtées en utilisant de lsexonucléase III et de la nucléase S1 (nécessaire Erase-a-base, Promega), comme indiqué par le fournisseur. On a séquencé les matrices monocaténaires conformément à la méthode de terminaison de chaîne didésoxy de Sanger et coll. (30), en utilisant les nécessaires Sequenase et Taquence (USB-Amersham). La séquence a été déterminée au moins une fois sur chaque brin. L'analyse par ordinateur des données des séquences a été effectuée au moyen du logiciel Sequence Analysis Software Package de Genetic Computer Group, version 7 (University of Wisconsin) (6). 6. Construction de clones d'expression et purifications de nrotéine En utilisant le vecteur pQE-30, on a construit des clones produisant en excès des formes de SdbA intactes ou comprenant des délétions. Ainsi, on a fait fusionner la séquence codant pour le polypeptide recherché avec un segment codant pour 6 résidus His, pour faciliter la purification (13). Afin de cloner le fragment codant pour le domaine NH2-terminal de SdbA, on a synthétisé par PCR un fragment de 670 pb encadré par BamHI et PstI (figure 1). L'amorce directe était 5'-CTG CCG GCG GGA TCC GCA AGG GCA GAT-3' et l'amorce inverse était 5'-ACT TIT GCA GAA TIT TCT GCA GGC G3'. Le fragment a été inséré entre les sites BamHI et Pstl de pQE30, pour donner pCT1830. Le polypeptide codé par pCT1830 a été dénommé SdbA-N. Pour cloner la région codant pour les domaines COOI-lterminaux de SdbA, on a fait digérer par BamHI le plasmide pCT1801. Les extrémités ont été complétées et converties en extrémités franches à l'aide du fragment de Klenow de l'ADN polymérase. Après nouvelle coupure par PstI, le fragment de 1,4 kb, codant pour les domaines COOH-terminaux, a été purifié et inséré dans le vecteur pQE-30 qui avait été digéré par Hindlll, traité par le fragment de Klenow de l'ADN polymérase et digéré à nouveau par Pst I. Le plasmide résultant a été dénommé pCT1831, et le polypeptide codé a été dénommé SdbA-C. Le plasmide pCT1832, exprimant la séquence complète de SdbA, a été construit par insertion du fragment Bamll-Pstl de 670 pb (voir plus haut) dans le plasmide pCT1831 digéré par BamHI et Pstl. La production et la purification des protéines ont été effectuées au moyen du système Qjaexpress (OlAGEN Inc.). Des cultures de 1 litre ont été mises à incuber à 37"C jusqu'à une DO600 de 0,7. On y a ensuite ajouté de l'IPTG jusqu'à une concentration finale de 0,3 mM, et les cultures ont été mises à nouveau à incuber pendant 5 heures à 37 C. On a remis les cellules en suspension dans 80 ml de Tris.HC1 50 mM, pH 7,5 (tampon A) et on les a lysées au moyen d'une presse de French Aminco, sous une pression de 100 MPa. On a centrifugé l'extrait à 9 000 g pendant 20 minutes afin d'éliminer les débris cellulaires. On a injecté le surnageant dans une colonne de 8 ml de résine Ni-NTA équilibrée avec du tampon A, on a lavé la colonne avec du tampon A et on l'a éluée avec le même tampon contenant 250 mM d'imidazole. Les fractions éluées ont été dialysées pendant une nuit à 4"C, contre 1 litre de tampon A. Les protéines purifiées ont été conservées à -80 C. 7. Détermination de séquence amino-terminale d'aminoacides 50 pmoles de chaque polypeptide à séquencer ont été séparées par SDS-PAGE et transférées pendant une nuit, à la température ambiante, à 850 mA sur une membrane en PVDF [poly(chlorure de vinylidène)] hydrophobe (Problott, Applied Biosystem) traitée par du méthanol à 100 %, au moyen d'un système Trans-Blot Cell (BioRad) contenant 50 mM de Tris (base), 50 mM de tampon acide borique. On a coloré les bandes au noir amide à 0,003 96, on les a excisées, et on a déterminé la séquence amino-terminale des polypeptides par la méthode d'Edman, en utilisant un appareil de séquencage 473A ou Procise HT (Applied Biosystem). Il. RESULTATS 1. Clonage d'un gène codant pour un polvpeptide se fixant spécifiquement au domaine dockerine de CiDA On a criblé 1 600 clones recombinants en recherchant la fixation de CelC-DsCipA marquée au 1251. Huit clones indépendants ont été marqués spécifiquement. Les contrôles effectués avec de la CelC-DsCelD marquée au 125I ont indiqué que la fixation était spécifique pour le domaine dockerine de CipA (figure 2). Tous les segments clonés s'hybrident avec la même région du génome de C. thermocellum (données non représentées), dont la carte est représentée sur la figure 1. Ces cartes de restriction sont en accord avec les fragments de restriction révélés par analyse Southern blot dans l'ADN de C thermocellum (données non représentées). Les segments ne s'hybridaient pas et nlont pas de fragments de restriction en commun avec la région comprenant cipA et olpA (9). Dans la région couverte par les fragments clonés, un segment de 1,6 kb, compris entre le site Pstl et la limite gauche de l'insert porté par pCT1801 (figure 1), est nécessaire et suffisant pour coder pour un polypeptide capable de fixer le domaine dockerine de CipA. Le gène correspondant a été dénommé sdbA. 2. Analvse de la séquence La séquence du gène de la SdbA est représentée sur la figure 3. La séquence codante comprend 1 893 nucléotides. Le codon d'initiation ATG est précédé d'un site de liaison ribosomique supposé. Le polypeptide codé, composé de 631 aminoacides, a une masse moléculaire calculée de 68 577 Da. La structure de domaines de la protéine est représentée sur les figures 1 et 3. Un peptide signal supposé de 26 résidus aminoacide est localisé à l'extrémité NH2-terminale du polypeptide (36). Des alignements avec d'autres protéines indiquent la présence de trois régions distinctes dans SdbA. La région N-terminale, composée de 156 résidus aminoacide, est semblable aux segments N-terminaux répétés de OlpB (dénommé précédemment ORFlp) et ORF2p de C. thermocellum, deux polypeptides dont les gènes sont localisés immédiatement en aval de cipA (9) ( figure 4). Un espaceur de 56 résidus, riche en Pro/Thr/Ser, sépare cette région du reste de la protéine. La région centrale est composée de 215 aminoacides, avec de nombreux résidus Lys. Cette région comprend une courte séquence d'aminoacides semblable à un segment présent dans les protéines M de Streptococcus pyogenes (figure 5). La région COOH-terminale est composée de ces segments répétés qui sont très semblables aux segments dénommés SLH (S-layer homologous = homologues à la couche S), présents dans plusieurs protéines localisées sur la surface cellulaire de diverses bactéries (9, 18) (figure 6). 3. Identification du domaine responsable de la fixation du domaine dockerine de CipA Afin d'identifier le domaine responsable de la fixation du domaine dockerine de CipA, on a comparé les propriétés de liaison de polypeptides dérivés de SdbA. Le gène sdbA et des sous-fragments appropriés ont été fusionnés avec le vecteur d'expression pC9-30 codant pour His6, et les polypeptides correspondants ont été purifiés par chromatographie d'affinité à Ni (24). Les masses moléculaires apparentes de la protéine SdbA intacte et du fragment contenant les régions centrale et C-terminale sont de 60 kDa et 36 kDa, respectivement, en accord avec les masses prédites à partir de la séquence (figure 7A). La masse moléculaire apparente du domaine NH2-terminal était égale à 35 kDa, et était supérieure à la masse moléculaire calculée à partir de la séquence (22 715 Da). Toutefois, le fragment comprend le segment de jonction riche en résidus Pro, ce qui peut expliquer une lente migration dans la SDS-PAGE (10). Les préparations de SdbA intacte et du polypeptide COOH-terminal contenaient l'une et l'autre un second polypeptide de 24 kDa. Dans les deux cas, la séquence NH2-terminale de ce polypeptide est SKYAVSY, ce qui indique qu'elle est dérivée de la région COOH-terminale contenant les segments SLH répétés de SdbA. Etant donné que les segments SLH répétés ne contiennent pas de groupement de résidus histidine, le fragment COOH-terminal est probablement lié aux polypeptides intacts. En effet, il a été rapporté que des polypeptides contenant des segments SLH répétés s'auto-associent (17). L'analyse du criblage de colonies, en utilisant comme sonde CelC-DsCipA marquée au 125I, a confirmé que le produit du gène sdbA se fixait au domaine dockerine de CipA (figure 7B). La fixation au fragment NH2-terminal est moins intense, mais décelable. On n'a pas pu déceler de fixation au fragment C-terminal. Etant donné que la région NH2-terminale de SdbA est semblable aux segments NH2-terminaux répétés d'OlpB, on a contrôlé si CelC-DsCipA se fixait à MalE-ORFlp-N, une protéine chimère comprenant le premier segment NH2-terminal répété d'OlpB fusionné à la protéine de fixation du maltose, tvlalE (17). La colonne 5 de la figure 7B indique que MalE-ORFlp-N a été marquée. Aucune fixation n'a été observée avec MalEORFlp-C, qui consiste en les segments SLH C-terminaux d'OlpB fusionnés à MalE Ni SdbA, ni ORFlp-N, ni ORFlp-C n'ont été marquées après incubation avec CelC-DsCelD marquée au 1251 (données non représentées). Des protéines portant des domaines dockerine peuvent être marquées au 1251 et utilisées comme sondes pour la détection de protéines contenant des domaines cohésine complémentaires (29, 32). Ainsi, on peut isoler des clones exprimant des polypeptides contenant des domaines cohésine, et on peut identifier les domaines cohésine (8). Dans la présente invention, on a appliqué la même stratégie pour cloner le gène sdbA et pour identifier le domaine cohésine responsable de la fixation du domaine dockerine de CipA. On a obtenu un seul gène. Il se peut que d'autres gènes codant pour des protéines ayant des propriétés similaires aient échappé à la détection, en raison d'une absence d'expression spontanée. Sur les trois polypeptides, p170, plI6 et p60, qui se sont précédemment révélés fixer le domaine dockerine de CipA (29), pl70 et pll6 sont trop longs pour être codés par sdbA, même en tenant compte de modifications post-traductionnelles, telles qu'une glycosylation. Le polypeptide p60 se révèle le seul candidat possible. La figure 7 indique que le domaine cohésine se trouve dans la région NH2-proximale de SdbA. Le signal détecté avec le fragment NH2-terminal est plus faible qu'avec la protéine entière; toutefois, on n'a pu détecter aucun signal en utilisant une quantité semblable du fragment COOH-terminal. Le fait de tronquer SdbA peut avoir affecté l'affinité ou la stabilité du polypeptide NH2-terminal résiduel. Ou encore, la fixation à la nitrocellulose peut altérer la conformation du domaine cohésine, tandis que la fixation de la protéine intacte à la membrane peut être médiée par des régions du polypeptide non requises pour la fixation de la sonde marquée. Contrairement au domaine dockerine de CipA, qui est clairement apparenté aux domaines dockerine présents dans les sous-unités catalytiques, le domaine cohésine de SdbA ne présente pas de similarité évidente avec les domaines cohésine de CipA et OlpA. Toutefois, il est semblable aux segments répétés localisés à l'extrémité NH2-terminale de OlpB et ORF2p (9). En effet, CelC-DsCipA marquée au 125I se fixe spécifiquement au premier segment répété NH2-terminal d'OlpB. Ainsi, les domaines NH2-terminaux de SdbA, OlpB et très probablement ORF2p représentent un nouveau type de domaine cohésine. C'est pourquoi, selon la présente invention on les dénomme "domaines cohésine de type II", et "domaines cohésine de type I" les domaines cohésine rencontrés dans CipA et à l'extrémité NH2-terminale d'OlpA. Les trois protéines Olp B, ORF2p et SdbA, qui sont connues comme contenant les domaines cohésine de type II, portent également des segments répétés SLH. Dans tous les cas étudiés jusqu'à présent, les segments répétés SLH se rencontrent dans des protéines qui sont associées à la surface cellulaire de bactéries, et des preuves biochimiques indiquent qu'ils se fixent à des composants de l'enveloppe cellulaire (17). Ainsi, SdbA peut être localisée sur la surface cellulaire, au même titre qu'OlpA (28) et OlpB (17). La similarité entre la région centrale de SdbA et une région présente dans les protéines M de Streptococcus vient à l'appui de cette hypothèse. Il a été supposé que dans les protéines M, cette région peut entrer en interaction avec des glucides de la paroi cellulaire (34). Prises dans leur ensemble, ces considérations suggèrent que SdbA, OlpB et éventuellement ORF2p sont des composants de l'enveloppe cellulaire qui sont impliqués dans la fixation de cellulosomes à la surface cellulaire. Alors que SdbA ne porte qu'un seul domaine cohésine, ces domaines sont répétés deux fois dans ORF2p et quatre fois dans OlpB. Ainsi, jusqu'à quatre molécules de CipA portant des sous-unités catalytiques fixées pourraient être groupées autour d'une molécule d'OlpB. Toutefois, ce fait seul ne suffit pas pour rendre compte de la formation d'agrégats très volumineux (polycellulosomes) allant jusqu'à 80 MDa, comme rapporté dans la référence (5). De tels agrégats doivent impliquer d'autres interactions, éventuellement au niveau des segments répétés SLH, qui sont reconnus se lier entre eux (17). TABLEAU 1 Souches bactériennes et plasmides Souches et plasmides Caractères significatifs Source de Référence Souches Escherichia coli TG1 [A(lac-pro) thi supE hsdD5/ (12) F tra-36proA+B+lacIqlacZ#M15] M15 (pREP4) (7,35), nécessaire QIAexpress# QIAGEN Inc. Clostridium thermocellum NCIB 10682 Plasmides pUC18 (38) pBCSK- StratageneS pQE-30 nécessaire QIAexpress# QIAGEN Inc. pCT1801 dérivé de pUC18 contenant n CNCM un fragment Sau3A codant 1-1684 pour SdbA pCT1830 dérivé de pQE-30 codant pour n CNCM le domaine cohésine de SdbA I-1684 soudé à 6 résidus His pCT1831 dérivé de pQi-30 codant pour les régions centrale et COOH- la présente terminale de SdbA soudées étude à 6 résidus ISis pCT1832 dérivé de pQE-30 codant pour SdbA soudé à 6 résidus His BIBLIOGRAPHIE 1. F. M. AUSUBEL, R. BRENT, R. E. KINGSTON, D. D. MOORE, J. G. SEIDMAN, J. A. SMITH, and K. STRUHL, 1990, Current Protocols in Molecular Biology, Greene Publishing and Wiley Interscience, New York. 2. E.A. BAYER, E. MORAG, and R. LAMED, 1994, The cellulosome - a treasuretrove for biotechnology. Trends in Biotechnol. 12:379-386. 3. A. BERGE and U. SJOBRING, 1993, PAM, A novel plasminogen-binding protein from Streptococcus pyogenes. J. Biol. Chem. 268:25417-24. 4. R.D. BOWDITCH, P. 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BEGUIN, and j: MILLET (ed.), FEMS Symposium LISTE DE SEQUENCES (1) INFORMATIONS GENERALES: (i) DEPOSANT: (A) NOM: INSTITUT PASTEUR (B) RUE: 28 Rue du Docteur Roux (C) VILLE: PARIS (E) PAYS: FRANCE (F) CODE POSTAL: 75724 CEDEX 15 (ii) TITRE DE L' INVENTION: "POLYPEPTIDE COMPORTANT UN DOMAINE COHESINE, COMPOSITION ENZYMATIQUE EN COMPORTANT ET FRAGMENTS D'ADN CODANT POUR CES POLYPEPTIDES" (iii) NOMBRE DE SEQUENCES: 4 (iv) FORME DECHIFFRABLE PAR ORDINATEUR: (A) TYPE DE SUPPORT: Floppy disk (B) ORDINATEUR: IBM PC compatible (C) SYSTEME D' EXPLOITATION: PC-DOS/MS-DOS (D) LOGICIEL: PatentIn Release &num;1.0, Version &num;1.3 (OEB) (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 1: (t) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 1893 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (ix) CARACTERISTIQUE: (A) NOM/CLE: SdbA de Clostridium thermocellum (B) EMPLACEMENT:1..1893 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 1: ATG AGG AAG AAA AAA AGA TTA ATA TCA TTA CTG CTT GCG GTT TH ATC 48 Met Arg Lys Lys Lys Arg Leu île Ser Leu Leu Leu Ala Val Phe Ile 1 5 10 15 GCC GTT GCA TGT CTG CCG GCG GGA ATT GCA AGG GCA GAT AAA GCC TCG 96 Ala Val Ala Cys Leu Pro Ala Gly Ile Ala Arg Ala Asp Lys Ala Ser 20 25 AGC ATT GAG CTT AAG TTT GAC CGC AAT AAG GGA GAA GTT GGA GAT ATA 144 Ser Ile Glu Leu Lys Phe Asp Arg Asn Lys Gly Glu Val Gly Asp Ile 35 4 45 CTT ATT GGT ACC GTA AGG ATA AAC AAT ATC AAG AAT TTC GCA GGA TTT 192 Leu île Gly Thr Val Arg Ile Asn Asn Ile Lys Asn Phe Ala Gly Phe se 55 6 CAG GTA AAC ATT GTA TAT GAT CCA AAA GTC TTA ATG GCT GTT GAC CCT 24 Gln Val Asn Ile Val Tyr Asp Pro Lys Val Leu Met Ala Val Asp Pro 65 7 75 8 GAA ACG GGG AAA GAA TTT ACT TCT TCA ACA TTT CCG CCA GGA CGC ACT 288 Glu Thr Gly Lys Glu Phe Thr Ser Ser Thr Phe Pro Pro Gly Arg Thr 85 9 95 GTA CTG AAA AAC AAT GCT TAC GGC CCA ATA CAG ATT GCG GAC AAT GAT 336 Val Leu Lys Asn Asn Ala Tyr Gly Pro Ile Gln Ile Ala Asp Asn Asp 100 105 110 CCG GAA AAA GGG ATA CTG AAC TTC GCG CTT GCA TAT TCA TAT ATT GCG 384 Pro Glu Lys Gly Ile Leu Asn Phe Ala Leu Ala Tyr Ser Tyr Ile Ala 115 120 125 GGA TAC AAA GAA ACA GGA GTA GCG GAG GAA AGC GGC ATA AH GCG AAA 432 Gly Tyr Lys Glu Thr Gly Val Ala Glu Glu Ser Gly Ile Ile Ala Lys 130 135 140 ATT GGA TTT AAA ATA CTC CAG AAA AAG AGC ACT GCC GTA AAA TTC CAG 480 Ile Gly Phe Lys Ile Leu Gîn Lys Lys Ser Thr Ala Val Lys Phe Gîn 145 150 155 160 GAT ACA TTA AGC ATG CCC GGA GCT ATT TCG GGA ACA CAG CTG TTT GAC 528 Asp Thr Leu Ser Met Pro Gly Ala Ile Ser Gly Thr Gln Leu Phe Asp 165 170 175 TGG GAC GGA GAA GTT ATT ACC GGA TAT GAG GTA ATA CAG CCG GAT GTG 576 Trp Asp Gly Glu Val Ile Thr Gly Tyr Glu Val Ile Gln Pro Asp Val 180 185 190 CTG AGT TTG GGT GAC GAG CCT TAT GAG ACA CCG GGA ACG GAT ATT CCG 624 Leu Ser Leu Gly Asp Glu Pro Tyr Glu Thr Pro Gly Thr Asp Ile Pro 195 200 205 ATA TCC GAC AAT CCG GCA GCA ACT CCG TCA TCC ACG CCG TCA GTT ACT 672 Ile Ser Asp Asn Pro Ala Ala Thr Pro Ser Ser Thr Pro Ser Val Thr 210 215 220 CCT TCA CCG GAA GTT AAA CCG ACT CAG ACG CCT TCG CCT GCA GAA AAT 720 Pro Ser Pro Glu Val Lys Pro Thr Gîn Thr Pro Ser Pro Ala Glu Asn 225 230 235 240 TCT GCA AAA GTG GAG CTT GAA CCT GTG TTG GAT AAT GCA ACA GGA GAA 768 Ser Ala Lys Val Glu Leu Glu Pro Val Leu Asp Asn Ala Thr Gly Glu 245 250 255 GCA AAG GCG GCA ATA GAT GAA GAA AAA TTA AAC AAG GCT CTT GAT GAA 816 Ala Lys Ala Ala île Asp Glu Glu Lys Leu Asn Lys Ala Leu Asp Glu 260 265 270 GCG AAA AAA TCG GAA GAT GAC AAA CTT GTG GAA CTT AAC ATA AAG AAG 864 Ala Lys Lys Ser Glu Asp Asp Lys Leu Val Glu Leu Asn Ile Lys Lys 275 280 285 GTT GAA AAT GCC GAT GCT TAC ATA CAA CAG CTT CCG GCG AAA TTC CTG 912 Val Glu Asn Ala Asp Ala Tyr île Gîn Gln Leu Pro Ala Lys Phe Leu 290 295 300 ATA AAA AGT GAC GCC GAA TAT AAG CTG AGA ATA GCT ACA GAG CAG GGA 960 Ile Lys Ser Asp Ala Glu Tyr Lys Leu Arg Ile Ala Thr Glu Gîn Gly 305 310 315 320 AH ATA GAA GTA CCG GCC AAC ATG CTG AAT ACT GCG GAT ATT TCA AAG 1008 Ile Ile Glu Val Pro Ala Asn Met Leu Asn Thr Ala Asp Ile Ser Lys 325 330 335 CTT GTA AAA AAT GAC TCC GTT GTT GAA TTC GTC ATA AGA AAA GTA AAA 1056 Leu Val Lys Asn Asp Ser Val Val Glu Phe Val Ile Arg Lys Val Lys 340 345 350 GTC GAT GAA CTT GGT GCA GAG CTC AAA GAG AAG ATA GGC AAC AGG CCG 1104 Val Asp Glu Leu Gly Ala Glu Leu Lys Glu Lys Ile Gly Asn Arg Pro 355 360 365 GTG ATT GAC ATA AGC GTG GH GTT GAC GGC AAA AAA GTT GAA TGG AGC 1152 Val Ile Asp île Ser Val Val Val Asp Gly Lys Lys Val Glu Trp Ser 370 375 380 AAT TAC AAA GCC AAG GTT AAA ATA TCA ATT CCT TAC AAG CCT GAT GCA 1200 Asn Tyr Lys Ala Lys Val Lys Ile Ser île Pro Tyr Lys Pro Asp Ala 385 390 395 400 AAA GAG CTG GAG AAC CAC GAG CAT ATT GTT GTA CTC CAT ATT GAT GAC 1248 Lys Glu Leu Glu Asn His Glu His Ile Val Val Leu His Ile Asp Asp 405 410 415 GCC GGC AAG GCA GH TCC GTA CCC AGC GGA AAA TAT GAA CCT TCT TTG 1296 Ala Gly Lys Ala Val Ser Val Pro Ser Gly Lys Tyr Glu Pro Ser Leu 420 425 430 GGC GTC GTT ACG TTT GAG ACG AAT CAT TTA AGC AAG TAT GCG GTT TCA 1344 Gly Val Val Thr Phe Glu Thr Asn His Leu Ser Lys Tyr Ala Val Ser 435 440 445 TAT GTT TAC AAG ACT TTC GCG GAT ATT GGT TCA TAT GCC TGG GCT AAA 1392 Tyr Val Tyr Lys Thr Phe Ala Asp Ile Gly Ser Tyr Ala Trp Ala Lys 450 455 460 AAG CAG ATA GAG GTT TTG GCT TCC AAA GGA GTA ATT AAC GGT ACA TCC 1440 Lys Gln île Glu Val Leu Ala Ser Lys Gly Val île Asn Gly Thr Ser 465 470 475 480 GAT ACC ACT HT ACG CCC CAG GCA GAC ATA ACA AGG GCG GAT TTC ATG 1488 Asp Thr Thr Phe Thr Pro Gin Ala Asp Ile Thr Arg Ala Asp Phe Met 485 490 495 ATA CTT CTT GTA AAG GCA CTG GGA TTG ACT GCC GAG GTT ACT TCC AAT 1536 île Leu Leu Val Lys Ala Leu Gly Leu Thr Ala Glu Val Thr Ser Asn 500 505 510 TTT GAT GAT GTG TCC GAA AAA GAC TAC TAT TAT GAA TAC GTG GGA ATT 1584 Phe Asp Asp Val Ser Glu Lys Asp Tyr Tyr Tyr Glu Tyr Val Gly île 515 520 525 GCA AAA GAG CTT GGA ATT ACG ACA GGA GTC GGA AAC AAC AAG TTC AAT 1632 Ala Lys Glu Leu Gly île Thr Thr Gly Val Gly Asn Asn Lys Phe Asn 530 535 540 CCG AAA GCC AAA ATT ACA AGA CAG GAT ATG ATG GTA CTT ACA ACA AAT 1680 Pro Lys Ala Lys lie Thr Arg Gln Asp Met Met Val Leu Thr Thr Asn 545 550 555 560 GCT CTC AGG ATT GCA GGA AAA ATA TCG AGC ACA GGA ACC CGC GCT GAT 1728 Ala Leu Arg lie Ala Gly Lys île Ser Ser Thr Gly Thr Arg Ala Asp 565 570 575 GTT GAA AGA TTT TCG GAC AAG GAC CAG ATA GCT TCA TAT GCG GTT GAA 1776 Val Glu Arg Phe Ser Asp Lys Asp Gln Ile Ala Ser Tyr Ala Val Glu 580 585 590 GGC GTT GCA ACC TTG GTA AAA GAA GGT ATT GTA GTG GGA AGC GGC GAT 1824 Gly Val Ala Thr Leu Val Lys Glu Gly Ile Val Val Gly Ser Gly Asp 595 600 605 ATT ATA AAT CCA AGG GGA AAT GCT TCA AGA GCC GAA CTT GCA GCA ATC 1872 île île Asn Pro Arg Gly Asn Ala Ser Arg Ala Glu Leu Ala Ala Ile 610 615 620 ATA TAC AAG ATT TAC TAC AAG 1893 Ile Tyr Lys Ile Tyr Tyr Lys 625 630 (3) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 2: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 4992 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (ix) CARACTERISTIQUE: (A) NOM/CLE: OlpB de Clostridium thermocellum (B) EMPLACEMENT:1..4992 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 2: ATG AAA CGA AAA AAT AAA GTA TTA TCA ATT TTG TTA ACT CTG CTG CTA 48 Met Lys Arg Lys Asn Lys Val Leu Ser île Leu Leu Thr Leu Leu Leu 1 5 10 15 ATA ATC TCT ACC ACA TCC GTA AAC ATG TCT TTT GCT GAA GCA ACT CCA 96 Ile île Ser Thr Thr Ser Val Asn Met Ser Phe Ala Glu Ala Thr Pro 20 25 30 AGT ATT GAA ATG GTT CTT GAT AAA ACT GAA GTC CAT GTA GGA GAT GTA 144 Ser Ile Glu Met Val Leu Asp Lys Thr Glu Val His Val Gly Asp Val 35 40 45 ATA ACG GCC ACA ATA AAA GTC AAT AAC ATT AGA AAA TTG GCG GGA TAT 192 Ile Thr Ala Thr Ile Lys Val Asn Asn Ile Arg Lys Leu Ala Gly Tyr 50 55 60 CAG CTA AAT ATC AAA TTT GAC CCT GAA GTT TTA CAG CCG GTA GAC CCT 240 Gîn Leu Asn Ile Lys Phe Asp Pro Glu Val Leu Gln Pro Val Asp Pro 65 70 75 80 GCA ACA GGA GAG GAA TTT ACT GAT AAG TCC ATG CCG GTA AAT AGG GTT 288 Ala Thr Gly Glu Glu Phe Thr Asp Lys Ser Met Pro Val Asn Arg Val 85 90 95 TTG CTG ACA AAC AGC AAA TAT GGA CCT ACT CCT GTG GCG GGT AAC GAT 336 Leu Leu Thr Asn Ser Lys Tyr Gly Pro Thr Pro Val Ala Gly Asn Asp 100 105 110 ATA AAG TCA GGA AH ATT AAT TTT GCT ACG GGA TAT AAC AAT TTA ACA 384 Ile Lys Ser Gly île île Asn Phe Ala Thr Gly Tyr Asn Asn Leu Thr 115 120 125 GCG TAC AAA TCC AGC GGA ATA GAC GAA CAT ACA GGA ATA ATA GGA GAG 432 Ala Tyr Lys Ser Ser Gly Ile Asp Glu His Thr Gly Ile île Gly Glu 130 135 140 ATT GGT TTT AAA GTT TTA AAG AAA CAA AAT ACG TCT ATT AGG TTT GAA 480 Ile Gly Phe Lys Val Leu Lys Lys Gîn Asn Thr Ser Ile Arg Phe Glu 145 150 155 160 GAT ACA TTA TCG ATG CCC GGG GCA ATA TCG GGA ACA AGT TTG TTT GAC 528 Asp Thr Leu Ser Met Pro Gly Ala île Ser Gly Thr Ser Leu Phe Asp 165 170 175 TGG GAT GCA GAA ACT ATA ACA GGA TAT GAG GTA ATA CAG CCG GAT CTT 576 Trp Asp Ala Glu Thr île Thr Gly Tyr Glu Val île Gln Pro Asp Leu 180 185 190 ATA GTT GTA GAG GCA GAA CCG TTA AAA GAC GCC AGC GTG GCT CTG GAA 624 Ile Val Val Glu Ala Glu Pro Leu Lys Asp Ala Ser Val Ala Leu Glu 195 200 205 CTG GAT AAG ACG AAG GTA AAA GTA GGG GAC ATA ATA ACA GCG ACG ATA 672 Leu Asp Lys Thr Lys Val Lys Val Gly Asp île Ile Thr Ala Thr île 210 215 220 AAG ATA GAG AAC ATG AAG AAT TTT GCA GGG TAC CAG TTG AAT ATC AAG 720 Lys île Glu Asn Met Lys Asn Phe Ala Gly Tyr Gln Leu Asn Ile Lys 225 230 235 240 TAT GAC CCG ACC ATG TTG GAG GCA ATA GAA CTG GAG ACA GGA AGT GCG 768 Tyr Asp Pro Thr Met Leu Glu Ala Ile Glu Leu Glu Thr Gly Ser Ala 245 250 255 ATA GCG AAG AGG ACA TGG CCG GTT ACA GGA GGT ACT GTT CTG CAA AGT 816 Ile Ala Lys Arg Thr Trp Pro Val Thr Gly Gly Thr Val Leu Gîn Ser 260 265 270 GAC AAT TAT GGA AAG ACG ACT GCG GTA GCG AAT GAT GTA GGA GCA GGT 864 Asp Asn Tyr Gly Lys Thr Thr Ala Val Ala Asn Asp Val Gly Ala Gly 275 280 285 ATA ATA AAC TTT GCT GAG GCA TAC TCG AAC CTT ACC AAA TAC AGA GAG 912 Ile Ile Asn Phe Ala Glu Ala Tyr Ser Asn Leu Thr Lys Tyr Arg Glu 290 295 300 ACA GGT GTG GCA GAG GAG ACA GGT ATA ATA GGA AAG ATA GGC TTC AGA 960 Thr Gly Val Ala Glu Glu Thr Gly Ile Ile Gly Lys Ile Gly Phe Arg 305 310 315 320 GTA CTG AAG GCA GGA AGT ACG GCT ATA AGA TTT GAG GAT ACG ACA GCG 1008 Val Leu Lys Ala Gly Ser Thr Ala Ile Arg Phe Glu Asp Thr Thr Ala 325 330 335 ATG CCG GGA GCA ATA GAA GGA ACA TAC ATG TTC GAC TGG TAT GGC GAG 156 Met Pro Gly Ala Ile Glu Gly Thr Tyr Met Phe Asp Trp Tyr Gly Glu 340 345 350 AAC ATC AAA GGG TAT AGC GTA GTA CAG CCT GGG GAA ATA GTG GCA GAA 114 Asn île Lys Gly Tyr Ser Val Val Gîn Pro Gly Glu Ile Val Ala Glu 355 360 365 GGA GAA GAG CCG GGT GAA GAG CCG ACA GAA GAG CCT GTA CCG ACA GAG 1152 Gly Glu Glu Pro Gly Glu Glu Pro Thr Glu Glu Pro Val Pro Thr Glu 370 375 380 ACA CCA GTA GAT CCC ACA CCG ACA GTG ACA GAA GAG CCT GTA CCT TCA îzee Thr Pro Val Asp Pro Thr Pro Thr Val Thr Glu Glu Pro Val Pro Ser 385 390 395 400 GAG CTT CCA GAT TCC TAT GTA ATA ATG GAA CTG GAT AAG ACG AAG GTA 1248 Glu Leu Pro Asp Ser Tyr Val île Met Glu Leu Asp Lys Thr Lys Val 405 410 415 AAA GTA GGG GAC ATA ATA ACA GCG ACG ATA AAG ATA GAG AAC ATG AAG 1296 Lys Val Gly Asp Ile île Thr Ala Thr Ile Lys île Glu Asn Met Lys 420 425 430 AAT HT GCA GGG TAC CAG TTG AAT ATC AAG TAT GAC CCG ACC ATG TTG 1344 Asn Phe Ala Gly Tyr Gln Leu Asn Ile Lys Tyr Asp Pro Thr Met Leu 435 440 445 GAG GCA ATA GAA CTG GAG ACA GGA AGT GCG ATA GCG AAG AGG ACA TGG 1392 Glu Ala île Glu Leu Glu Thr Gly Ser Ala Ile Ala Lys Arg Thr Trp 450 455 460 CCG GTT ACA GGA GGT ACT GTT CTG CAA AGT GAC AAT TAT GGA AAG ACG 1440 Pro Val Thr Gly Gly Thr Val Leu Gln Ser Asp Asn Tyr Gly Lys Thr 465 470 475 480 ACT GCG GTA GCG AAT GAT GTA GGA GCA GGT ATA ATA AAC TTT GCT GAG 1488 Thr Ala Val Ala Asn Asp Val Gly Ala Gly Ile île Asn Phe Ala Glu 485 490 495 GCA TAC TCG AAC CTT ACC AAA TAC AGA GAG ACA GGT GTG GCA GAG GAG 1536 Ala Tyr Ser Asn Leu Thr Lys Tyr Arg Glu Thr Gly Val Ala Glu Glu 500 505 510 ACA GGT ATA ATA GGA AAG ATA GGC TTC AGA GTA CTG AAG GCA GGA AGT 1584 Thr Gly île île Gly Lys île Gly Phe Arg Val Leu Lys Ala Gly Ser 515 520 525 ACG GCT ATA AGA TTT GAG GAT ACG ACA GCG ATG CCG GGA GCA ATA GAA 1632 Thr Ala Ile Arg Phe Glu Asp Thr Thr Ala Met Pro Gly Ala Ile Glu 530 535 540 GGA ACA TAC ATG TTC GAC TGG TAT GGC GAG AAC ATC AAA GGG TAT AGC 1680 Gly Thr Tyr ket Phe Asp Trp Tyr Gly Glu Asn Ile Lys Gly Tyr Ser 545 550 555 560 GTA GTA CAG CCT GGG GAA ATA GTG GCG GAA GGA GAA GAG CCG ACA GAA 1728 Val Val Gîn Pro Gly Glu Ile Val Ala Glu Gly Glu Glu Pro Thr Glu 565 570 575 GAG CCT GTA CCG ACA GAG ACA CCA GTA GAT CCC ACA CCG ACA GTG ACA 1776 Glu Pro Val Pro Thr Glu Thr Pro Val Asp Pro Thr Pro Thr Val Thr 580 585 590 GAA GAG CCT GTA CCT TCA GAG CTT CCA GAT TCC TAT GTG ATA ATG GAA 1824 Glu Glu Pro Val Pro Ser Glu Leu Pro Asp Ser Tyr Val Ile Met Glu 595 600 605 TTG GAT AAG ACG AAG GTA AAA GAA GGC GAC GTA ATA ATA GCA ACA ATA 1872 Leu Asp Lys Thr Lys Val Lys Glu Gly Asp Val Ile Ile Ala Thr Ile 610 615 620 AGA GTA AAT AAC ATA AAG AAT CTT GCC GGA TAT CAG ATA GGC ATC AAA 1920 Arg Val Asn Asn île Lys Asn Leu Ala Gly Tyr Gln île Gly île Lys 625 630 635 640 TAT GAC CCG AAA GTA TTA GAG GCA TTT AAT ATC GAG ACA GGG GAC CCA 1968 Tyr Asp Pro Lys Val Leu Glu Ala Phe Asn Ile Glu Thr Gly Asp Pro 645 650 655 ATA GAT GAA GGA ACA TGG CCT GCA GTA GGG GGA ACA ATA CTG AAG AAT 2016 Ile Asp Glu Gly Thr Trp Pro Ala Val Gly Gly Thr île Leu Lys Asn 660 665 670 AGA GAT TAC CTG CCG ACT GGG GTA GCA ATA AAC AAT GTA TCT AAA GGA 2064 Arg Asp Tyr Leu Pro Thr Gly Val Ala Ile Asn Asn Val Ser Lys Gly 675 680 685 ATA CTG AAT TTT GCT GCT TAT TAC GTT TAC TTC GAT GAC TAT AGA GAG 2112 île Leu Asn Phe Ala Ala Tyr Tyr Val Tyr Phe Asp Asp Tyr Arg Glu 690 695 700 GAA GGA AAG TCA GAA GAT ACA GGA ATT ATA GGA AAT ATA GGC TTT AGA 2160 Glu Gly Lys Ser Glu Asp Thr Gly Ile Ile Gly Asn Ile Gly Phe Arg 705 710 715 720 GTA CTG AAG GCG GAA GAT ACA ACG ATA AGA TTT GAA GAG CTG GAG TCA 2208 Val Leu Lys Ala Glu Asp Thr Thr île Arg Phe Glu Glu Leu Glu Ser 725 730 735 ATG CCG GGT TCA ATA GAC GGA ACA TAT ATG TTG GAT TGG TAT CTT AAT 2256 Met Pro Gly Ser Ile Asp Gly Thr Tyr Met Leu Asp Trp Tyr Leu Asn 740 745 750 AGA ATC TCT GGC TAT GTA GTA ATA CAA CCG GCG CCT ATA AAG GCG GCT 2304 Arg Ile Ser Gly Tyr Val Val île Gln Pro Ala Pro Ile Lys Ala Ala 755 760 765 AGT GAC GAA CCA ATA CCA ACG GAT ACA CCA TCA GAT GAA CCG 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GAT GAA CCG ACT CCG TCA GAG 2688 Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Glu 885 890 895 ACA CCT GAG GAG CCG ATA CCG ACG GAT ACA CCA TCA GAT GAA CCG ACA 2736 Thr Pro Glu Glu Pro île Pro Thr Asp Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr 900 905 910 CCG TCA GAC GAG CCA ACG CCA TCT GAC GAA CCA ACA CCG TCT GAT GAG 2784 Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu 915 920 925 CCA ACA CCG TCA GAT GAA CCG ACT CCG TCA GAG ACA CCT GAG GAG CCG 2832 Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Glu Thr Pro Glu Glu Pro 930 935 940 ATA CCG ACG GAT ACA CCA TCA GAT GAA CCG ACA CCG TCA GAC GAG CCG 2880 île Pro Thr Asp Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro 945 950 955 960 ATA CCA TCT GAC GAA CCA ACA CCG TCA GAC GAG CCA ACG CCA TCT GAC 2928 Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp 965 970 975 GAA CCG ACA CCG TCT GAT GAG CCA ACA CCA TCT GAT GAA CCG ACT CCG 2976 Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro 980 985 990 TCA GAG ACA CCT GAG GAG CCG ATA CCG ACG GAT ACA CCA TCA GAT GAA 3024 Ser Glu Thr Pro Glu Glu Pro Ile Pro Thr Asp Thr Pro Ser Asp Glu 995 1000 1005 CCG ACA CCG TCA GAC GAG CCG ACA CCA TCT GAC GAA CCA ACA CCG TCA 3072 Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser 1010 1015 1020 GAC GAG CCA ACG CCA TCT GAC GAA CCG ACA CCG TCT GAT GAG CCA ACA 3120 Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr 1025 1030 1035 1040 CCA TCT GAT GAA CCG ACT CCG TCA GAG ACA CCT GAG GAG CCG ATA CCG 3168 Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Glu Thr Pro Glu Glu Pro île Pro 1045 1050 1055 ACG GAT ACA CCA TCA GAT GAA CCG ACA CCG TCA GAC GAG CCG ACA CCA 3216 Thr Asp Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro 1060 1065 1070 TCT GAC GAA CCA ACA CCG TCT GAT GAG CCA ACA CCG TCA GAT GAA CCG 3264 Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro 1075 1080 1085 ACT CCG TCA GAG ACA CCT GAG GAG CCG ATA CCG ACG GAT ACA CCA TCA 3312 Thr Pro Ser Glu Thr Pro Glu Glu Pro île Pro Thr Asp Thr Pro Ser 1090 1095 1100 GAT GAA CCG ACA CCG TCA GAC GAG CCA ACG CCA TCT GAC GAA CCG ACA 3360 Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr 1105 1110 1115 1120 CCG TCT GAT GAG CCA ACA CCG TCA GAT GAA CCG ACT CCG TCA GAG ACA 3408 Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Glu Thr 1125 1130 1135 CCT GAG GAG CCG ATA CCG ACG GAT ACA CCA TCA GAT GAA CCC ACA CCC 3456 Pro Glu Glu Pro Ile Pro Thr Asp Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro 1140 1145 1150 TCA GAC GAG CCA ACG CCA TCT GAC GAA CCG ACA CCG TCT GAT GAG CCA 3504 Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro 1155 1160 1165 ACA CCG TCA GAT GAA CCG ACT CCG TCA GAG ACA CCT GAG GAG CCG ATA 3552 Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Glu Thr Pro Glu Glu Pro lie 1170 1175 1180 CCG ACG GAT ACA CCA TCA GAT GAA CCG ACA CCA TCA GAC GAG CCA ACG 3600 Pro Thr Asp Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr 1185 1190 1195 1200 CCA TCT GAT GAA CCA ACA CCG TCT GAT GAG CCA ACA CCA TCT GAT GAA 3648 Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu 1205 1210 1215 CCG ACT CCG TCA GAG ACA CCT GAG GAG CCG ATA CCG ACG GAT ACA CCA 3696 Pro Thr Pro Ser Glu Thr Pro Glu Glu Pro île Pro Thr Asp Thr Pro 122 1225 1230 TCA GAT GAA CCG ACA CCG TCA GAC GAG CCA ACG CCA TCT GAC GAA CCA 3744 Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro 1235 1240 1245 ACA CCG TCT GAT GAG CCA ACA CCG TCA GAT GAA CCG ACT CCG TCA GAG 3792 Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Glu 1250 1255 1260 ACA CCT GAG GAG CCG ATA CCG ACG GAT ACA CCA TCA GAT GAA CCG ACA 3840 Thr Pro Glu Glu Pro île Pro Thr Asp Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr 1265 1270 1275 1280 CCG TCA GAC GAG CCG ACA CCA TCT GAC GAA CCA ACA CCG TCA GAC GAG 3888 Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu 1285 1290 1295 CCA ACG CCA TCT GAC GAA CCG ACA CCG TCT GAT GAG CCA ACA CCA TCT 3936 Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser 1300 1305 1310 GAT GAA CCG ACT CCG TCA GAG ACA CCT GAG GAG CCG ATA CCG ACG GAT 3984 Asp Glu Pro Thr Pro Ser Glu Thr Pro Glu Glu Pro lie Pro Thr Asp 1315 1320 1325 ACA CCA TCA GAT GAA CCG ACA CCG TCA GAC GAG CCG ACA CCA TCT GAC 4032 Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp 1330 1335 1340 GAA CCA ACA CCG TCA GAC GAG CCA ACG CCA TCT GAC GAA CCG ACA CCG 4080 Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro 1345 1350 1355 1360 TCT GAT GAG CCA ACA CCA TCT GAT GAA CCG ACT CCG TCA GAG ACA CCT 4128 Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Asp Glu Pro Thr Pro Ser Glu Thr Pro 1365 1370 1375 GAG GAG CCG ACA CCG ACT ACT ACA CCG ACA CCA ACA CCG TCG ACA ACG 4176 Glu Glu Pro Thr Pro Thr Thr Thr Pro Thr Pro Thr Pro Ser Thr Thr 1380 1385 1390 CCT ACA AGT GGC AGC GGA GGC AGT GGT GGA AGC GGT GGT GGC GGC GGA 4224 Pro Thr Ser Gly Ser Gly Gly Ser Gly Gly Ser Gly Gly Gly Gly Gly 1395 14e0 145 GGT GGT GGA GGA ACT GTA CCT ACA TCT CCA ACA CCG ACA CCG ACA TCT 4272 Gly Gly Gly Gly Thr Val Pro Thr Ser Pro Thr Pro Thr Pro Thr Ser 1410 1415 1420 AAA CCG ACG TCT ACA CCT GCA CCG ACA GAA ATC GAA GAG CCT ACA CCA 4320 Lys Pro Thr Ser Thr Pro Ala Pro Thr Glu île Glu Glu Pro Thr Pro 1425 1430 1435 1440 TCT GAT GTG CCT GGT GCA ATC GGT GGA GAA CAT AGA GCA TAC TTA AGA 4368 Ser Asp Val Pro Gly Ala Ile Gly Gly Glu His Arg Ala Tyr Leu Arg 1445 1450 1455 GGA TAT CCG GAT GGA AGC TTC AGG CCT GAA AGA AAT ATA ACA AGA GCT 4416 Gly Tyr Pro Asp Gly Ser Phe Arg Pro Glu Arg Asn Ile Thr Arg Ala 1460 1465 1470 GAA GCG GCG GTA ATC HT GCT AAG TTG CTT GGA GCC GAT GAA AGC TAT 4464 Glu Ala Ala Val lie Phe Ala Lys Leu Leu Gly Ala Asp Glu Ser Tyr 1475 1480 1485 GGA GCT CAG TCT GCA AGT CCA TAT AGT GAT TTG GCT GAT ACT CAC TGG 4512 Gly Ala Gin Ser Ala Ser Pro Tyr Ser Asp Leu Ala Asp Thr His Trp 1490 1495 1500 GCT GCA TGG GCA ATC AAA TTT GCA ACA AGC CAG GGC TTG TTC AAA GGA 4560 Ala Ala Trp Ala lie Lys Phe Ala Thr Ser Gln Gly Leu Phe Lys Gly 1505 1518 1515 1520 TAT CCG GAC GGT ACG HT AAA CCT GAT CAG AAC ATA ACG AGA GCG GAA 4608 Tyr Pro Asp Gly Thr Phe Lys Pro Asp Gin Asn île Thr Arg Ala Glu 1525 1530 1535 TTC GCA ACT GTG GTA CTC CAC TTC CTG ACA AAA GTT AAG GGT CAG GAA 4656 Phe Ala Thr Val Val Leu His Phe Leu Thr Lys Val Lys Gly Gln Glu 1540 1545 1550 ATA ATG AGC AAG CTT GCA ACA ATA GAT ATA AGT AAT CCG AAG HT GAC 4704 île Met Ser Lys Leu Ala Thr île Asp île Ser Asn Pro Lys Phe Asp 1555 1560 1565 GAT TGT GTC GGA CAT TGG GCA CAA GAG HT ATT GAG AAA TTG ACA AGC 4752 Asp Cys Val Gly His Trp Ala Gin Glu Phe Ile Glu Lys Leu Thr Ser 1570 1575 1580 TTG GGT TAT ATT AGT GGC TAT CCT GAC GGA ACG TTC AAG CCG CAA AAC 48 Leu Gly Tyr île Ser Gly Tyr Pro Asp Gly Thr Phe Lys Pro Gin Asn 1585 1590 1595 1600 TAT ATT AAA CGT TCC GAA AGT GTG GCA CTG ATT AAC AGA GCT CTG GAG 4848 Tyr île Lys Arg Ser Glu Ser Val Ala Leu île Asn Arg Ala Leu Glu 1605 1610 1615 AGA GGT CCG CTT AAT GGA GCG CCG AAG CTC TTC CCG GAT GTT AAC GAA 4896 Arg Gly Pro Leu Asn Gly Ala Pro Lys Leu Phe Pro Asp Val Asn Glu 1620 1625 1630 TCA TAC TGG GCA TTT GGC GAC ATT ATG GAC GGT GCT CTC GAC CAC AGT 4944 Ser Tyr Trp Ala Phe Gly Asp île Met Asp Gly Ala Leu Asp His Ser 1635 1640 1645 TAC ATT ATC GAA GAT GAG AAA GAA AAA TTC GTT AAA TTG CTC GAA GAT 4992 Tyr Ile lie Glu Asp Glu Lys Glu Lys Phe Val Lys Leu Leu Glu Asp 1650 1655 1660 (4) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 3: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 2064 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (ix) CARACTERISTIQUE: (A) NOM/CLE: ORF2p de Clostridium thermocellum (B) EMPLACEMENT:1..2064 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 3: ATG AAA AAA AAC AAT GTA TTA ACA ATA GCA GCT ATG ATA GCG CTT CTT 48 Met Lys Lys Asn Asn Val Leu Thr île Ala Ala Met île Ala Leu Leu 1 5 10 15 CTA ACC AGC TTA CTT ACA AGT ATA ACT TTT GGG GAG ACT TCG AGT ATA 96 Leu Thr Ser Leu Leu Thr Ser île Thr Phe Gly Glu Thr Ser Ser île 20 25 30 CCT TCA AGA ATA TCT ATG GAG CTT GAC AAG ACA AAA GCA AAC ATA GGC 144 Pro Ser Arg île Ser Met Glu Leu Asp Lys Thr Lys Ala Asn île Gly 35 40 45 GAC ATA ATT ATA 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AGA GAA TAT AAT CCG TTG TTA ACA GCA GTT AAT GAC ATA AAT TCC 864 Asn Arg Glu Tyr Asn Pro Leu Leu Thr Ala Val Asn Asp île Asn Ser 275 280 285 GGC ATT ATA AAT TAT GCA TCT TGT TAT GTA TAT TGG GAT TCC TAC AGA 912 Gly Ile île Asn Tyr Ala Ser Cys Tyr Val Tyr Trp Asp Ser Tyr Arg 290 295 300 GAA TCA GGA GTA TCT GAA AGC ACC GGA ATA ATT GGA AAG GTT GGC HT 960 Glu Ser Gly Val Ser Glu Ser Thr Gly Ile Ile Gly Lys Val Gly Phe 305 310 315 320 AAA GTG CTG AAA GCT GCC AAC ACC ACA GTA AAA CTG GAA GAA ACA AGA 1008 Lys Val Leu Lys Ala Ala Asn Thr Thr Val Lys Leu Glu Glu Thr Arg 325 330 335 HT ACA CCA AAT TCG ATA GAC GGT ACT TTG GTA ATT GAT TGG TAT GGC 1056 Phe Thr Pro Asn Ser Ile Asp Gly Thr Leu Val lie Asp Trp Tyr Gly 340 345 350 CAA CAG ATA GTT GGT TAT AAA GTA ATA CAG CCC GAC AAA ATT ACT GTG 1104 Gin GAA ATA GAA GAA CCC GAA CCT GAA ATA CCG GGC ACT GTT GGA ATA CAT 1440 Glu Ile Glu Glu Pro Glu Pro Glu Ile Pro Gly Thr Val Gly Ile His 465 470 475 480 TAT TCA TAC CTG ACA GGT TAT CCG GAC AAA ATG TTC AGA CCT 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ATT GAA CAG CTG TCA GAC CTT 1824 Thr Lys Gly His Trp Ala Gln Gln Phe Ile Glu Gîn Leu Ser Asp Leu 595 600 605 GGA TAC ATC AAC GGA TAT CCT GAT GGT ACA TTC AAG CCC AAC AAC AAT 1872 Gly Tyr Ile Asn Gly Tyr Pro Asp Gly Thr Phe Lys Pro Asn Asn Asn 610 615 620 ATC AAA CGA TCA GAA AGT GTT GCC CTG ATA AAC AGA GCT ATG GGA AGA 1920 île Lys Arg Ser Glu Ser Val Ala Leu Ile Asn Arg Ala Met Gly Arg 625 630 635 640 GGG CCT TTG CAT GGC GCA CCG CAG GTA TTC GAG GAT GTT CCT CAG ACA 1968 Gly Pro Leu His Gly Ala Pro Gîn Val Phe Glu Asp Val Pro Gln Thr 645 650 655 CAC TGG GCT TTC AAA GAT ATT GCA GAG GGC GTG CTC AAT CAC AGA TAC 2016 His Trp Alo Phe Lys Asp île Ala Glu Gly Val Leu Asn His Arg Tyr 660 665 670 AAA CTG GAC AAT GAG GGC AAA GAA CAA TTG CTG GAG ATA ATT GAT AAC 2064 Lys Leu Asp Asn Glu Gly Lys Glu Gln Leu Leu Glu Ile Ile As 675 680 685 DESCRIPTION DE LA SEQUENCE : SEQ ID NO: 4: SEQUENCE NUCLEOTIDIQUE DE LA PROTEINE CipA ATGAGAAAAGTCATCAGTATGCTCTTAGTTGTGGCTATGCTGACGACGATTTTTGCGGCGATGATAC CGC 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AATGTACTTGAGATAATAGAGATAGAACCGGGAGAATTGATAGTTGACCCGAATCCTACCAAGAGC TTTG ATACTGCAGTATATCCTGACAGAAAGATGATAGTATTCCTGTTTGCGGAAGACAGCGGAACAGGAG CGTA TGCAATAACTGAAGATGGAGTATTTGCTACGATAGTAGCGAAAGTAAAATCCGGAGCACCTAACGG ACTC AGTGTAATCAAAHTGTAGAAGTAGGCGGATTTGCGAACAATGACCTTGTAGAACAGAAGACACAG TTCT HGACGGTGGAGTAAATGTTGGAGATACAACAGAACCTGCAACACCTACAACACCTGTAACAACAC CGAC AACAACAGATGATCTGGATGCAGTAAGGATTAAAGTGGACACAGTAAATGCAAAACCGGGAGACA CAGTA AGAATACCTGTAAGATTCAGCGGTATACCATCCAAGGGAATAGCAAACTGTGACTTTGTATACAGC TATG ACCCGAATGTACTTGAGATAATAGAGATAGAACCGGGAGACATAATAGTTGACCCG AATCCTGACA AGAG C m GATACTGCAGTATATCCTGACAGAAAGATAATAGTATTCCTGTTTGCAGAAGACAGCGGAAC GGGA GCGTATGCAATAACTAAAGACGGAGTATTTGCTACGATAGTAGCGAAAGTAAAAGAAGGAGCACC TAACG GACTCAGTGTAATCAAATTTGTAGAAGTAGGCGGATTTGCGAACAATGACCTTGTAGAACAGAAGA CACA GTTCTTTGACGGTGGAGTAAATGrFGGAGATACAACAGTACCTACAACATCGCCGACAACAACACC GCCA GAGCCGACGATAACTCCGAACAAGTTGACACTTAAGATAGGCAGAGCAGAAGGAAGACCTGGAGA CACGG 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DPNVLEVTEVKPGSIIKDPDPSKSFDSAIYPDRKMIVFLFAEDSGRGTYA ITQDGVFATI VATVKSAAAAP ITLLEVGAFADNDLVEISTTFVAGGVNLGSSVPTTQPNVPSDGVVVEIGKVTGSVGTTVEIPVYFRGVPS KGIANCDFVFRYDPNVLEIIGIDPGDIIVDPNPTKSFDTAIYPDRKIIVFLFAEDSGTGAYAITKDGVFAKIR ATVKSSAPGYITFDEVGGFADNDLVEQKVSFI DGGVNVGNATPTKGATPTNTATPTKSATATPTRPSVPT NTPTNTPANTPVSGNLKVEFYNSNPSDTTNSINPQFKVTNTGSSAIDLSKLTLRYYYTVDGQKDQTFWC DHAAIIGSNGSYNGITSNVKGTFVKMSSSTNNADTYLEISFTGGTLEPGAHVQ IQGRFAKNDWSNYTQS NDYSFKSASQFVEWDQVTAYLNGVLVWGKEPGGSVVPSTQPVTTPPATTKPPAHKPPAHIPPSDDPN AIKIKVDTVNAKPGDTVNIPVRFSGIPSKGIANCDFVYSYDPNVLEIIEIKPGELIVDPNPDKSFDTAVYPD RKIIVFLFAEDSGTGAYAITKDGVFATIVAKVKSGAPNGLSVIKFVEVGGFANNDLVEQRTQFFDGGVN VGDTTVPTTPTTPVTTPTDDSNAVRIKVDTVNAKPGDTVRIPVRFSGIPSKGIANCDFVYSYDPNVLEIIEI EPGDIIVDPNPDKSFDTAVYPDRKIIVFLFAEDSGTGAYAITKDGVFATIVAKVKSGAPNGLSVIKFVEVG GFANNDLVEQKTQFFDGGVNVGDTTEPATPTTPVTTPTTTDDLDAVRIKVDTVNAKPGDTVRIPVRFSG IPSKGIANCDFVYSYDPNVLEIIEIEPGDIIVDPNPDKSFDTAVYPDRKIIVFLFAEDSGTGAYAITKDGVFA TIVAKVKSGAPNGLSVIKFVEVGGFANNDLVEQKTQFFDGGVNVGDTIEPATPTTPVTTPTTTDDLDAV RIKVDTVNAKPGDTVRIPVRFSGIPSKGIANCDFVYSYDPNVLEIIEIEPGDIIVDPNPDKSFDTAVYPDRKI lVFLFAEDSGTGAYAlTKDGVFATlVAKVKEGAPNGLSVlKFVEVGG FANNDLVEQKTQFFDGGVNVGD TTEPATPTTPVTTPTTTDDLDAVRIKVDTVNAKPGDTVRIPVRFSGIPSKGIANCDFVYSYDPNVLEIIEIEP GELIVDPNPTKSFDTAVYPDRKMIVFLFAEDSGTGAYAITEDGVFATIVAKVKSGAPNGLSVIKFVEVGG FANNDLVEQKTQFFDGGVNVGDTTEPATPTTPVTTPEDDLDAVRIKVDTVNAKPGDTVRIPVRFSGIP SKGIANCDFVYSYDPNVLEIIEIEPGDIIVDPNPDKSFDTAVYPDRKIIVFLFAEDSGTGAYAITKDGVFATI VAKVKEGAPNGLSVIKFVEVGGFANNDLVEQKTQFFDGGVNVGDTTVPTTSPTTTPPEPTITPNKLTLKI GRAEGRPGDTVEIPVNLYGVPQKGIASGDFVVSYDPNVLEIIEIEPGELIVDPNPTKSFDTAVYPDRKMIV FLFAEDSGTGAYAITEDGVFATIVAKVKEGAPEGFSAIEISEFGAFADNDLVEVETDLINGGVLVTNKPVI EGYKVSGYILPDFSFDATVAPLVKAGFKVEIVGTELYAVTDANGYFEITGVPANASGYTLKISRATYLDR VIANVVVTGDTSVSTSQAPIMMWVGDIVKDNSINLLDVAEVIRCFNATKGSANYVEELDINRNGAINMQ DIMIVHKHFGATSSDYDAQ REVENDICATIONS 1. Composé sur lequel est capable de se fixer de façon covalente ou non au moins un domaine cohésine de type II. 2. Composé selon la revendication 1, caractérisé en ce que le domaine cohésine de type II provient d'une bactérie cellulolytique. 3. Composé selon la revendication 2, caractérisé en ce que le domaine cohésine de type II provient d'une souche de Clostridium, et notamment de Clostridium thermocellum. 4. Composé selon la revendication 3, caractérisé en ce que le domaine cohésine de type II provient d'une protéine de Clostridium thermocellum ou d'un fragment de celle-ci compris entre 50 et 600 acides aminés. 5. Composé selon la revendication 3, caractérisé en ce que le domaine cohésine de type II provient d'une protéine de Clostridium thermocellum choisie parmi SdbA, OlpB et ORF2p ou d'une protéine homologue. 6. Composé selon la revendication 5, caractérisé en ce qu'il comprend la séquence de 165 acides aminés substantiellement telle que représentée dans l'IDS n" 1 de l'acide aminé n" 27 à l'acide aminé ne210 de la séquence de la protéine SdbA ou une séquence homologue ou un fragment de cette séquence ou d'une séquence homologue ayant une activité cohésine de type II. 7. Composé selon la revendication 5, caractérisé en ce qu'il comprend comme domaine cohésine de type II l'une des séquences de la protéine OlpB choisies parmi la séquence des acides aminés n 28 au n" 190, la séquence des acides aminés n" 207 au n" 362, la séquence des acides aminés n" 409 au n" 564 et la séquence des acides aminés n 607 au n 762 de l'IDS n 2 ou une séquence homologue à l'une de ces séquences ou un fragment de ces séquences d'au moins 50 acides aminés ayant une activité cohésine de type II. 8. Composé selon la revendication 5, caractérisé en ce qu'il a un domaine cohésine de type II, une séquence de la protéine ORF2p choisie parmi la séquence des acides aminés n 38 à 194 et la séquence des acides aminés n 209 à 364 de l'IDS n 3, ou une séquence homologue à ces séquences ou un fragment de ces séquences d'au moins 50 acides aminés ayant une activité cohésine de type II 9. Composé selon l'une des revendications 1 à 8, caractérisé en ce qu'il s'agit essentiellement d'un polypeptide ou d'une protéine. 10. Composé selon la revendication 9, caractérisé en ce qu'il s'agit d'une protéine à activité enzymatique. 11. Composé selon l'une des revendications 1 à 10, caractérisé en ce qu'il comporte au moins un autre domaine cohésine qui n'est pas de type II et/ou un domaine dockerine. 12. Protéine SdbA de Clostridium thermocellum, dont la séquence en acides aminés est la séquence complète de 631 acides aminés substantiellement telle que représentée sur l'IDS n" 1. 13. Fragment d'une protéine selon l'une des revendications 1 à 12 ou d'une protéine homologue, caractérisé en ce qu'il s'agit d'un domaine cohésine de type II. 14. Composé selon l'une des revendications 1 à 11, caractérisé en ce qu'il comporte au moins un fragment non protéique. 15. Fragment d'ADN, caractérisé en ce qu'il comporte au moins une séquence codant pour un domaine cohésine de type II. 16. Fragment d'ADN selon la revendication 15, codant pour la protéine SdbA ou fragment de celle-ci. 17. Fragment d'ADN, selon la revendication 15, caractérisé en ce qu'il comporte pour séquence substantiellement les nucléotides 82 à 573 dans 1'IDS n" 1 codant pour le domaine cohésine de type II de SdbA. 18. Fragment d'ADN selon la revendication 15, comportant substantiellement la séquence de nucléotides 1 à 1893 de l'IDS n" 1 codant pour la protéine SdbA. 19. Fragment d'ADN selon la revendication 15, caractérisé en ce qu'il a substantiellement pour séquence l'une des séquences codant pour un domaine cohésine de OlpB choisies parmi la séquence des nucléotides 85 à 570, la séquence des nucléotides 619 à 1095 et la séquence des nucléotides 1225 à 1689 et la séquence des nucléotides 1819 à 2189 dans l'lDS n" 2. 20. Fragment d'ADN selon la revendication 15, caractérisé en ce qu'il a substantiellement pour séquence l'une des séquences codant pour un domaine cohésine de ORF2 choisies parmi la séquence des nucléotides 109 à 582 et la séquence des nucléotides n 625 à 1092 dans L'IDES n 3. 21. Fragment d'ADN caractérisé en ce qu'il a pour séquence une séquence complémentaire ou homologue ou complémentaire de l'homologue d'un fragment selon l'une des revendications 15 à 20. 22. Fragment d'ADN caractérisé en ce qu'il est capable de s'hybrider dans des conditions faiblement stringentes avec un fragment selon l'une des revendications 15 à 21. 23. Souche de E.coli déposée à la CNCM de l'institut Pasteur sous le n" I-1683 transformée par le plasmide pCT 1801. 24. Souche de E.coli déposée à la CNCM de l'institut Pasteur sous le n I-1684 transformée par le plasmide pCT 1830. 25. Composé caractérisé en ce qu'il comporte au moins un domaine dockerine de type il. 26. Complexe comportant au moins un composé selon l'une des revendications 1 à 14 lié par une interaction C/D de type II avec un composé comportant au moins un domaine dockerine de type II, chaque composé constituant un élément du complexe. 27. Complexe selon la revendication 26, caractérisé en ce que l'affinité du complexe est au moins égal à 105 M. 28. Complexe selon l'une des revendications 26 et 27, caractérisé en ce qu'il comporte au moins trois éléments dont deux sont liés par une interaction C/D autre que de type II. 29. Complexe selon la revendication 28, caractérisé en ce que deux éléments sont liés par une interaction C/D de type I. 30. Complexe multimérique selon les revendications 28 et 29 caractérisé en ce qu'il comprend entre 1 et 50 éléments associés entre eux et de préférence 1 et 20. 31. Complexe selon la revendication 30 caractérisé en ce qu'il comprend au moins deux domaines d'interaction C/D de type II. 32. Complexe selon la revendication 30 caractérisé en ce qu'il comprend au moins une interaction C/D de type I associé à une interaction C/D de type II. 33. Complexe multimérique selon l'une des revendications 28 à 32, caractérisé en ce que les éléments du complexe sont essentiellement des protéines. 34. Complexe selon l'une des revendications 26 à 33, caractérisé en ce qu'au moins l'un des éléments comprend un fragment protéique riche en proline et/ou en hydroxy amino acide. 35. Complexe multimérique selon l'une des revendications 33 et 34, caractérisé en ce que certains des éléments du complexe sont des enzymes. 36. Vecteur d'expression comprenant un fragment d'ADN selon l'une des revendications 15 à 22, placé sous le contrôle d'éléments assurant son expression dans une cellule hôte. 37. Souche de E.coli transformée par un vecteur selon la revendication 36. 38. Procédé de préparation d'un polypeptide selon l'une des revendications 1 à 14, caractérisé en ce qu'on réalise la culture de cellules hôtes transformées à l'aide d'un vecteur selon la revendication 36 ou par culture d'une souche selon la revendication 37. 39. Composition enzymatique comprenant un complexe selon l'une des revendications 26 à 35. 40. Composition enzymatique selon la revendication 39, comprenant deux enzymes liées par une interaction C/D de type II. 41. Composition selon les revendications 39, caractérisée en ce que le complexe multimérique comporte un composé selon l'une des revendications 1 à 11 liée à un domaine dockerine de la protéine CipA, lié à une première enzyme, et le second composé comprenant un domaine dockerine d'une sous unité catalytique du complexe cellulytique de Clostridium thermocellum lié à une seconde enzyme. 42. Utilisation du complexe multimérique selon l'une des revendications 26 à 35, caractérisée en ce que ledit complexe multimérique potentialise la synergie des éléments du complexe. 43. Utilisation du complexe multimérique selon l'une des revendications 39 à 42, caractérisée en ce que ledit complexe assure la potentialisation de la composition enzymatique. 44. Procédé de détection d'un antigène ou d'un anticorps, caractérisé par la mise en contact d'un complexe multimérique selon l'une des revendications 26 à 35 avec une solution contenant un anticorps ou un antigène d'intérêt et la révélation de la réaction entre le complexe multimérique et l'antigène ou l'anticorps.