FR 2751225 A1 19980123 FR 9609339 A 19960719 FORMULE DE VACCIN POLYNUCLEOTIDIQUE AVIAIRE La présente invention a trait à une formule de vaccin permettant la vaccination des espèces aviaires, en particulier poulet. Elle a également trait à une méthode de vaccination correspondante. On a déjà proposé par le passé des associations de vaccins contre un certain nombre de virus responsables de pathologies chez le poulet. Les associations développées jusqu'à présent étaient réalisées à partir de vaccins inactivés ou de vaccins vivants. Leur mise en oeuvre pose des problèmes de compatibilité entre valences et de stabilité. Il faut en effet assurer à la fois la compatibilité entre les différentes valences de vaccin, que ce soit au plan des différents antigènes utilisés ou au plan des formulations elles-mêmes. I1 se pose également le problème de la conservation de tels vaccins combinés et de leur innocuité notamment en présence d'adjuvant. Ces vaccins sont en général assez coûteux. Les demandes de brevet WO-A-90 11092, WO-A-93 19183, WO-A94 21797 et WO-A-95 20660 ont fait usage de la technique récemment développée des vaccins polynucléotidiques. On sait que ces vaccins utilisent un plasmide apte à exprimer dans les cellules de l'hôte l'antigène inséré dans le plasmide. Toutes les voies d'administration ont été proposées (intrapéritonéale, intraveineuse, intramusculaire, transcutanée, intradermique, mucosale, etc.). Différents moyens de vaccination peuvent également être utilisés, tels que ADN déposé à la surface de particules d'or et projeté de façon à pénétrer dans la peau de l'animal (Tang et al,. Nature 356, 152-154, 1992) et les injecteurs par jet liquide permettant de transfecter à la fois dans la peau, le muscle, les tissus graisseux et les tissus mammaires (Furth et al., Analytical Biochemistry, 205, 365-368, 1992). Les vaccins polynucléotidiques peuvent utiliser aussi bien des ADN nus que des ADN formulés par exemple au sein de liposomes ou de lipides cationiques. L'invention se propose donc de fournir une formule de vaccin multivalent permettant d'assurer une vaccination contre un certain nombre de virus pathogènes aviaires. Un autre objectif de l'invention est de fournir une telle formule de vaccin associant différentes valences tout en présentant tous les critères requis de compatibilité et de stabilité des valences entre elles. Un autre objectif de l'invention est de fournir une telle formule de vaccin permettant d'associer différentes valences dans un même véhicule. Un autre objectif de l'invention est de fournir un tel vaccin qui soit de mise en oeuvre aisée et peu coûteuse. Un autre objectif, encore de l'invention est de fournir une méthode de vaccination des gallinacés qui permette d'obtenir une protection, y compris une protection multivalente, avec un niveau élevé d'efficacité et de longue durée, ainsi qu'une bonne innocuité et une absence de résidus. La présente invention a donc pour objet une formule de vaccin aviaire, comprenant au moins trois valences de vaccin polynucléotidique comprenant chacune un plasmide intégrant, de manière à l'exprimer in vivo dans les cellules hôtes, un gène d'une valence de pathogène aviaire, ces valences étant choisies parmi le groupe consistant en virus de la maladie de Marek (MDV), virus de la maladie de Newcastle (NDV), virus de la maladie de Gumboro (IBDV), virus de la bronchite infectieuse (IBV), virus de l'anémie infectieuse (CAV), virus de la laryngotrachéite infectieuse (ILTV), virus de l'encéphalomyélite (AEV ou encore virus de la leucose aviaire ALV), virus de la pneumovirose, et virus de la peste aviaire, les plasmides comprenant, pour chaque valence, un ou plusieurs des gènes choisis parmi le groupe consistant en gB et gD pour le virus de la maladie de Marek, HN et F pour le virus de la maladie de Newcastle, VP2 pour le virus de la maladie de Gumboro, S, M et N pour le virus de la bronchite infectieuse, C + NS1 pour le virus de l'anémie infectieuse, gB et gD pour le virus de la laryngotrachéite infectieuse, env et gag/pro pour le virus de l'encéphalomyélite, F et G pour le virus de la pneumovirose et HA, N et NP pour le virus de la peste aviaire. Par valence, dans la présente invention, on entend au moins un antigène assurant une protection contre le virus du pathogène considéré, la valence pouvant contenir, à titre de sous-valence, un ou plusieurs gènes naturels ou modifiés d'une ou plusieurs souches du pathogène considéré. Par gène d'agent pathogène, on entend non seulement le gène complet, mais aussi les séquences nucléotidiques différentes, y compris fragments, conservant la capacité à induire une réponse protectrice. La notion de gène recouvre les séquences nucléotidiques équivalentes à celles décrites précisément dans les exemples, c'est-à-dire les séquences différentes mais codant pour la même protéine. Elle recouvre aussi les séquences nucléotidiques d'autres souches du pathogène considéré, assurant une protection croisée ou une protection spécifique de souche ou de groupe de souche. Elle recouvre encore les séquences nucléotidiques qui ont été modifiées pour faciliter l'expression invivo par l'animal hôte mais codant pour la même protéine. De préférence, la formule de vaccin selon l'invention comprend trois valences choisies parmi Marek, Gumboro, Anémie infectieuse et Newcastle. On peut aussi y rajouter de préférence la valence bronchite infectieuse. Sur cette base de 3, 4 ou 5 valences, on pourra ajouter une ou plusieurs des valences peste aviaire, laryngotrachéite, pneumovirose et encéphalomyélite. En ce qui concerne la valence Marek, on peut mettre en oeuvre les deux gènes codant pour gB et gD, dans des plasmides différents ou dans un seul et même plasmide. On préfère toutefois n'utiliser que le gène gB. Pour la valence Newcastle, on utilise de préférence les deux gènes HN et F intégrés dans deux plasmides différents ou dans un seul et même plasmide. Pour la valence bronchite infectieuse, on préfère utiliser le gène S. Eventuellement, mais de façon moins préférée, on peut associer S et M dans un seul plasmide ou dans des plasmides différents. Pour la valence anémie infectieuse, on préfère associer les deux gènes C et NS1 dans le même plasmide. Pour la valence laryngotrachéite infectieuse, on préfère utiliser le gène gB seul. Eventuellement, mais de façon moins préférée, on peut associer les deux gènes gB et gD dans des plasmides différents ou dans un seul et même plasmide. Pour la valence pneumovirose, on préfère utiliser les deux gènes F et G, dans un seul plasmide ou dans des plasmides différents. Pour la valence peste aviaire, on préfère utiliser le gène HA. Eventuellement, mais de façon moins préférée, on peut utiliser des associations HA et NP ou HA et N dans des plasmides différents ou dans un seul et même plasmide. De préférence, on associe dans le même vaccin les séquences HA de plus d'une souche de virus influenza, en particulier des différentes souches rencontrées sur le terrain. En revanche, NP assure une protection croisée et l'on pourra donc se contenter de la séquence d'une seule souche du virus. Pour la valence encéphalomyélite, on préfère utiliser env. La formule de vaccin selon l'invention pourra se présenter sous un volume de dose compris entre 0,1 et 1 ml et en particulier entre 0,3 et 0,5 ml. La dose sera généralement comprise entre 10 ng et 1 mg, de préférence entre 100 ng et 500 Rg et préférentiellement entre 0,1 Fg et 50 Fg par type de plasmide. On utilisera de préférence des plasmides nus, simplement placés dans le véhicule de vaccination qui sera en général de l'eau physiologique ou analogue. On peut bien entendu utiliser toutes les formes de vaccin polynucléotidique décrites dans l'art antérieur et notamment formulés dans des liposomes. Chaque plasmide comprend un promoteur apte à assurer l'expression du gène inséré sous sa dépendance dans les cellules hôtes. Il s'agira en général d'un promoteur eucaryote fort et en particulier d'un promoteur précoce du cytomégalovirus CMV-IE, d'origine humaine ou murine, ou encore éventuellement d'une autre origine telle que rat, cochon, cobaye. De manière plus générale, le promoteur pourra être soit d'origine virale, soit d'origine cellulaire. Comme promoteur viral autre que CMV-IE, on peut citer le promoteur précoce ou tardif du virus SV 40 ou le promoteur LTR du virus du Sarcome de Rous. I1 peut aussi s'agir d'un promoteur du virus dont provient le gène, par exemple le promoteur propre au gène. Comme promoteur cellulaire, on peut citer le promoteur d'un gène du cytosquelette, tel que par exemple le promoteur de la desmine (Bolmont et al., Journal of Submicroscopic Cytology and Pathology, 1990, 22, 117-122 ; et ZHENLIN et al., Gene, 1989, 78, 243-254), ou encore le promoteur de l'actine. Lorsque plusieurs gènes sont présents dans le même plasmide, ceux-ci peuvent être présentés dans la même unité de transcription ou dans deux unités différentes. La combinaison des différentes valences du vaccin selon l'invention peut être effectuée, de préférence, par mélange de plasmides polynucléotidiques exprimant le ou les antigènes de chaque valence , mais on peut également prévoir de faire exprimer des antigènes de plusieurs valences par un même plasmide. L'invention a encore pour objet des formules de vaccin monovalent comprenant un ou plusieurs plasmides codant pour un ou plusieurs gènes de l'un des virus ci-dessus, les gènes étant ceux décrits plus haut. En dehors de leur caractère monovalent, ces formules peuvent reprendre les caractéristiques énoncées plus haut en ce qui concerne le choix des gènes, leurs combinaisons, la composition des plasmides, les volumes de dose, les doses, etc. Les formules de vaccin monovalent peuvent aussi être utilisées (i) pour la préparation d'une formule de vaccin polyvalent tel que décrit plus haut, (ii) à titre individuel contre la pathologie propre, (ici) associées à un vaccin d'un autre type (entier vivant ou inactivé, recombinant, sous-unité) contre une autre pathologie, ou (iv) comme rappel d'un vaccin comme décrit ci-après. La présente invention a en effet encore pour objet l'utilisation d'un ou de plusieurs plasmides selon l'invention pour la fabrication d'un vaccin aviaire destiné à vacciner des animaux primo-vaccinés au moyen d'un premier vaccin classique (monovalent ou multi-valent), du type de ceux de l'art antérieur, choisi notamment dans le groupe consistant en vaccin entier vivant, vaccin entier inactivé, vaccin de sous-unité, vaccin recombinant, ce premier vaccin présentant (c'est-à-dire contenant ou pouvant exprimer) le ou les antigène(s) codé(s) par le ou les plasmides ou antigène(s) assurant une protection croisée. De manière remarquable, le vaccin polynucléotidique a un effet de rappel puissant se traduisant par une amplification de la réponse immunitaire et l'instauration d'une immunité de longue durée. De manière générale, les vaccins de primo-vaccination pourront être choisis parmi les vaccins commerciaux disponibles auprès des différents producteurs de vaccins vétérinaires. L'invention a aussi pour objet un kit de vaccination regroupant une formule de vaccin selon l'invention et un vaccin de primo-vaccination tel que décrit ci-dessus. Elle a aussi trait à une formule de vaccin selon l'invention accompagnée d'une notice indiquant l'usage de cette formule comme rappel d'une primo-vaccination telle que décrite ci-avant. La présente invention a également pour objet une méthode de vaccination aviaire, comprenant l'administration d'une formule de vaccin efficace telle que décrit plus haut. Cette méthode de vaccination comprend l'administration d'une ou de plusieurs doses de formule de vaccin, ces doses pouvant être administrées successivement dans un court laps de temps et/ou successivement à des moments éloignés l'un de l'autre. Les formules de vaccin selon l'invention pourront être administrées, dans le cadre de cette méthode de vaccination, par les différentes voies d'administration proposées dans l'art antérieur dans le cadre de la vaccination polynucléotidique et au moyen des techniques d'administration connues. On visera en particulier les voies intramusculaire, in ovo, intra-oculaire, la nébulisation et l'eau de boisson. L'efficacité de la présentation des antigènes au système immunitaire varie en fonction des tissus. En particulier, les muqueuses de l'arbre respiratoire servent de barrière à l'entrée des pathogènes et sont associées à des tissus lymphoides qui supportent une immunité locale. En outre, l'administration d'un vaccin par contact avec les muqueuses, en particulier muqueuse buccale, pharyngée et région bronchique présente un intérêt certain pour la vaccination de masse. En conséquence, les voies d'administration mucosales font partie d'un mode d'administration préféré pour l'invention, utilisant notamment la nébulisation ou spray ou l'eau de boisson. Les formules de vaccin et méthodes de vaccination selon l'invention pourront être appliquées dans ce cadre. L'invention a encore pour objet la méthode de vaccination consistant à faire une primo-vaccination telle que décrite cidessus et un rappel avec une formule de vaccin selon l'invention. Dans une forme de mise en oeuvre préférée du procédé selon l'invention, on administre dans un premier temps, à l'animal, une dose efficace du vaccin de type classique, notamment inactivé, vivant, atténué ou recombinant, ou encore un vaccin de sous-unité de façon à assurer une primo-vaccination, et, après un délai de préférence de 2 à 6 semaines, on assure l'administration du vaccin polyvalent ou monovalent selon l'invention. L'invention va être maintenant décrite plus en détails à l'aide de modes de réalisation de l'invention pris en référence aux dessins annexés. Liste des figures Figure N 1 : Plasmide pVR1012 Figure N 2 : Plasmide pAB045 Figure N 3 : Plasmide pAB080 Figure N 4 : Séquence du gène NDV HN souche Texas GB Figure N 5 : Plasmide pAB046 Figure N 6 : Séquence du gène NDV F souche Texas GB Figure N 7 : Plasmide pAB047 Figure N 8 : Séquence du gène IBDV VP2 souche Faragher Figure N 9 : Plasmide pAB048 Figure N 10 : Séquence du gène IBV S souche Massachusetts 41 Figure N 11 : Plasmide pAB049 Figure N 12 : Séquence du gène IBV M souche Massachusetts 41 Figure NO 13 : Plasmide pABOSO Figure N 14 : Séquence du gène IBV N souche Massachusetts 41 Figure NO 15 : Plasmide pAB051 Figure N 16 : Plasmide pAB054 Figure N 17 : Plasmide pAB055 Figure NO 18 : Plasmide pAB076 Figure NO 19 : Plasmide pAB089 Figure N 20: Plasmide pAB086 Figure N 21: Plasmide pAB081 Figure NO 22 : Plasmide pAB082 Figure N 23 : Plasmide pAB077 Figure N 24 : Plasmide pAB078 Figure N 25 : Plasmide pAB088 Figure N 26 : Plasmide pAB079 Liste des séquences SEQ ID N SEQ ID N0 1: Oligonucléotide AB062 SEQ ID N 2 : Oligonucléotide AB063 SEQ ID NO 3 : Oligonucléotide AB148 SEQ ID NO 4 : Oligonucléotide AB149 SEQ ID NO 5 : Oligonucléotide AB072 SEQ ID N 6 : Oligonucléotide AB073 SEQ ID N 7 : Séquence du gène NDV HN souche Texas GB SEQ ID N 8 : Oligonucléotide AB091 SEQ ID NO 9 : Oligonucléotide AB092 SEQ ID N 10 : Séquence du gène NDV F souche Texas GB SEQ ID N 11 : Oligonucléotide AB093 SEQ ID N 12 : Oligonucléotide AB094 SEQ ID N 13 : Séquence du " gène " IBDV VP2 souche Faragher SEQ ID N 14: Oligonucléotide AB095 SEQ ID NO 15 : Oligonucléotide AB096 SEQ ID N 16 : Séquence du gène IBV S souche Massachusetts 41 SEQ ID N 17 : Oligonucléotide AB097 SEQ ID N 18 : Oligonucléotide AB098 SEQ ID N 19 : Séquence du gène IBV M souche Massachusetts 41 SEQ ID NO 20 : Oligonucléotide AB099 SEQ ID N 21 : Oligonucléotide AB100 SEQ ID N 22 : Séquence du gène IBV N souche Massachusetts 41 SEQ ID N 23 : Oligonucléotide CD064 SEQ ID N 24 : Oligonucléotide CD065 SEQ ID N 25 : Oligonucléotide CD066 SEQ ID N 26 : Oligonucléotide AB105 SEQ ID N 27 : Oligonucléotide AB140 SEQ ID N 28 : Oligonucléotide AB141 SEQ ID N 29 : Oligonucléotide AB164 SEQ ID N 30 : Oligonucléotide AB165 SEQ ID N 31 : Oligonucléotide AB160 SEQ ID N 32 : Oligonucléotide AB161 SEQ ID N 33 : Oligonucléotide AB150 SEQ ID N 34 : Oligonucléotide AB151 SEQ ID N 35 : Oligonucléotide AB152 SEQ ID N 36 : Oligonucléotide AB153 SEQ ID N 37 : Oligonucléotide AB142 SEQ ID N 38 : Oligonucléotide AB143 SEQ ID N 39 : Oligonucléotide AB144 SEQ ID N 40: Oligonucléotide AB145 SEQ ID N 41: Oligonucléotide AB156 SEQ ID N 42 : Oligonucléotide AB158 SEQ ID N 43 : Oligonucléotide AB146 SEQ ID N 44 : Oligonucléotide AB147 EXEMPLES Exemple i : Culture des virus Les virus sont cultivés sur le système cellulaire approprié jusqu'à obtention d'un effet cytopathique. Les systèmes cellulaires à utiliser pour chaque virus sont bien connus de l'homme du métier. Brièvement, des cellules sensibles au virus utilisé, cultivées en milieu minimum essentiel de Eagle (milieu "MEM) ou un autre milieu approprié, sont inoculées avec la souche virale étudiée en utilisant une multiplicité d'infection de 1. Les cellules infectées sont alors incubées à 370C pendant le temps nécessaire à l'apparition d'un effet cytopathique complet (en moyenne 36 heures). Exemple 2 : Extraction des ADNs génomiques viraux Après culture, le surnageant et les cellules lysées sont récoltées et la totalité de la suspension virale est centrifugée à 1000 g pendant 10 minutes à + 40C pour éliminer les débris cellulaires. Les particules virales sont alors récoltées par ultracentrifugation à 400000 g pendant 1 heure à + 40C. Le culot est repris dans un volume minimum de tampon (Tris 10 mM, EDTA 1 mM). Cette suspension virale concentrée est traitée par la protéinase K (100,ug/ml final) en présence de sodium dodecyl sulfate (SDS) (0,5% final) pendant 2 heures à 37 0C. L'ADN viral est ensuite extrait avec un mélange de phénol/chloroforme, puis précipité avec 2 volumes d'éthanol absolu. Après une nuit à - 200C, I'ADN est centrifugé à 10000 g pendant 15 minutes à + 40C. Le culot d'ADN est séché, puis repris dans un volume minimum d'eau ultrapure stérile. Il peut alors être digéré par des enzymes de restriction. Exemple 3 : Isolement des ARNs génomiques viraux Les virus à ARN ont été purifiés selon les techniques bien connues de l'homme du métier. L'ARN viral génomique de chaque virus a été ensuite isolé en utilisant la technique d'extraction "thiocyanate de guanidium/phénolchloroforme" décrite par P. Chomczynski et N. Sacchi (Anal. Biochem. 1987. 162. 156-159). Exemple 4 : Techniques de biologie moléculaire Toutes les constructions de plasmides ont été réalisées en utilisant les techniques standards de biologie moléculaire décrites par J. Sambrook et al. (Molecular Cloning: A Laboratory Manual. 2nd Edition. Cold Spring Harbor Laboratory. Cold Spring Harbor. New York. 1989). Tous les fragments de restriction utilisés pour la présente invention ont été isolés en utilisant le kit "Geneclean" (bol0101 Inc. La Jolla, CA). Exemple 5 : Technique de RT-PCR Des oligonucléotides spécifiques (comportant à leurs extrémités 5' des sites de restriction pour faciliter le clonage des fragments amplifiés) ont été synthétisés de telle façon qu'ils couvrent entièrement les régions codantes des gènes devant être amplifiés (voir exemples spécifiques). La réaction de transcription inverse (RT) et l'amplification en chaîne par polymérase (PCR) ont été effectuées selon les techniques standards (Sambrook J. et al. 1989). Chaque réaction de RT-PCR a été faite avec un couple d'amplimers spécifiques et en prenant comme matrice l'ARN génomique viral extrait. L'ADN complémentaire amplifié a été extrait au phénol/chloroforme/alcoolisoamylique (25:24:1) avant d'être digéré par les enzymes de restriction. Exemple 6 : plasmide pVR1012 Le plasmide pVR1012 (Figure NO 1) a été obtenu auprès de Vical Inc. San Diego, CA, USA. Sa construction a été décrite dans J. Hartikka ef al. (Human Gene Therapy. 1996. 7. 1205-1217). Exemple 7 : Construction du plasmide pAB045 (gène MDV gB) Une réaction de PCR a été réalisée avec l'ADN génomique du virus de la maladie de Marek (MDV) (Souche RBl B) (L. Ross et al. J. Gen. Virol. 1989. 70. 1789-1804), préparé selon la technique de l'exemple 2, et avec les oligonucléotides suivants: AB062 (37 mer) (SEQ ID NO 1) 5 ' AAAACTG CAGACTATG CACTATTTTAG G CGGAATTG C 3' AB063 (35 mer) (SEQ ID N 2) 5'GGAAGATCTTTACACAGCATCATCTTCTGAGTCTG 3' pour isoler le gène codant pour la glycoprotéine gB du virus MDV sous la forme d'un fragment Pstl-Bglll. Après purification, le produit de PCR de 2613 pb a été digéré par Pstl et Bg/II pour isoler un fragment Pstl-Bglll de 2602 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le vecteur pVR1012 (exemple 6), préalablement digéré avec Pstl et Bill, pour donner le plasmide pAB045 (7455 pb) (Figure NO 2). Exemple 8 : Construction du plasmide pAB080 (gène MDV gD) Une réaction de PCR a été réalisée avec 'ADN génomique du virus de la maladie de Marek (MDV) (Souche RB1 B) (L. Ross et al. J. Gen. Virol. 1991. 72. 949-954), préparé selon la technique de l'exemple 2, et avec les oligonucléotides suivants: AB148 (29 mer) (SEQ ID N 3) 5 ' AAACTG CAGATGAAAGTATTTTTTTTTAG 3' AB149 (32 mer) (SEQ ID N 4) 5'GGAAGATCTTTATAGGCGGGAATATGCCCGTC 3' pour isoler le gène codant pour la glycoprotéine gD du virus MDV sous la forme d'un fragment Pstl-Bglll. Après purification, le produit de PCR de 1215 pb a été digéré par Pstl et Bgill pour isoler un fragment Pstl-Bglll de 1199 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le vecteur pVR1012 (exemple 6), préalablement digéré avec Pstl et Bgill, pour donner le plasmide pAB080 (6051 pb) (Figure N 3). Exemple 9 : Construction du plasmide pAB046 (gène NDV HN) Une réaction de RT-PCR selon la technique de l'exemple 5 a été réalisée avec 'ARN génomique du virus de la maladie de Newcastle (NDV) (Souche Texas GB), préparé selon la technique de l'exemple 3, et avec les oligonucléotides suivants: AB072 139 mer) (SEQ ID N 5) 5'ATAAGAATGCGGCCGCCATGGACCGTGCAGTTAGCAGAG 3' AB073 (34 mer) (SEQ ID NO 6) 5' CGCG GATCCTTAAATCCCATCATCCTTGAGAATC 3' pour isoler le gène codant pour la glycoprotéine HN du virus NDV souche Texas GB (Figure NO 4 et SEQ ID NO 7) sous la forme d'un fragment Notl-BamHI. Après purification, le produit de RT-PCR de 1741 pb a été digéré par Notl et BamHI pour isoler un fragment Notl-BamHI de 1723 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le vecteur pVR1012 (exemple 6), préalablement digéré avec Notl et BamHI, pour donner le plasmide pAB046 (6616 pb) (Figure NO 5). Exemple 10 : Construction du plasmide pAB047 (gène NDV F) Une réaction de RT-PCR selon la technique de l'exemple 5 a été réalisée avec l'ARN génomique du virus de la maladie de Newcastle (NDV) (Souche Texas GB), préparé selon la technique de l'exemple 3, et avec les oligonucléotides suivants: AB091 (37 mer) (SEQ ID N 8) S'AGAATGCGG CCGCGATGGGCTCCAGATCITCTACCAG 3' AB092 (34 mer) (SEQ ID N 9) 5'TGCTCTAGATCATATTTTTGTAGTGGCTCTCATC 3' pour isoler le gène codant pour la glycoprotéine F du virus NDV souche Texas GB (Figure N 6 et SEQ ID N 10) sous la forme d'un fragment Notl-Xbal. Après purification le produit de RT-PCR de 1684 pb a été digéré par Notl et Xbal pour isoler un fragment Notl-Xbal de 1669 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le vecteur pVR1012 (exemple 6), préalablement digéré avec Notl et Xbal, pour donner le plasmide pAB047 (6578 pb) (Figure N 7). Exemple 11: Construction du plasmide pAB048 (gène IBDV VP2) Une réaction de RT-PCR selon la technique de l'exemple 5 a été réalisée avec 'ARN génomique du virus de la maladie de Gumboro (IBDV) (Souche Faragher), préparé selon a technique de l'exemple 3, et avec les oligonucléotides suivants: AB093 (33 mer) (SEQ ID N 11) 5 f TCAGATATCGATGACAAACCTGCAAGATCAAAC 3' AB094 (38 mer) (SEQ ID N 12) 5'AGAATGCGGCCGCTTACCTCCTTATAGCCCGGATTATG 3' pour isoler la séquence codant pour la protéine VP2 du virus IBDV souche faragher (Figure N 8 et SEQ ID N 13) sous la forme d'un fragment EcoRV Notl. Après purification, le produit de RT-PCR de 1384 pb a été digéré par EcoRV et Notl pour isoler un fragment EcoRV-Notl de 1367 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le vecteur pVR1012 (exemple 6), préalablement digéré avec EcoRV et Notl, pour donner le plasmide pAB048 (6278 pb) (Figure N 9). Exemple 12 : Construction du plasmide pAB049 (gène IBV S1) Une réaction de RT-PCR selon la technique de l'exemple 5 a été réalisée avec 'ARN génomique du virus de la bronchite infectieuse du poulet (IBV) (Souche Massachusetts 41), préparé selon a technique de l'exemple 3, et avec les oligonucléotides suivants: AB095 (32 mer) (SEQ ID N 14) 5 ' ACG CGTCGACATGTTG GTAACACCTCTTTTAC 3' AB096 (35 mer) (SEQ ID N 15) 5' GGAAGATCTTCATTAACGTCTAAAACGACGTGTTC 3' pour isoler la séquence codant pour la sous-unité S1 de la glycoprotéine S du virus IBV souche Massachusetts 41 (Figure N 10 et SEQ ID N 16) sous la forme d'un fragment Sall-Bglll. Après purification, le produit de RT-PCR de 1635 pb a été digéré par Sa/l et Bgill pour isoler un fragment Sall-Bglll de 1622 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le vecteur pVR1012 (exemple 6), préalablement digéré avec Sa/l et Bgiîl, pour donner le plasmide pAB049 (6485 pb) (Figure NO 11). Exemple 13 : Construction du plasmide pABO5O (gène IBV M) Une réaction de RT-PCR selon la technique de l'exemple 5 a été réalisée avec l'ARN génomique du virus de la bronchite infectieuse du poulet (IBV) (Souche Massachusetts 41), préparé selon la technique de l'exemple 3, et avec les oligonucléotides suivants: AB097 (37 mer) (SEQ ID N 17) 5'ATAAGAATGCGGCCGCATGTCCAACGAGACAAATTGTAC 3' AB098 (38 mer) (SEQ ID NO 18) 5'ATAAGAATGCGGCCGCTTTAGGTGTAAAGACTACTCCC 3' pour isoler le gène codant pour la glycoprotéine M du virus IBV souche Massachusetts 41 (Figure NO 12 et SEQ ID NO 19) sous la forme d'un fragment Notl-Notl. Après purification, le produit de RT-PCR de 710 pb a été digéré par Notl pour isoler un fragment Notl-Notl de 686 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le vecteur pVR1012 (exemple 6), préalablement digéré avec Notl, pour donner le plasmide pABOSO (5602 pb) qui contient le gène IBV M dans la bonne orientation par rapport au promoteur (Figure N 13). Exemple 14 : Construction du plasmide pABO5l (gène IBV N) Une réaction de RT-PCR selon la technique de l'exemple 5 a été réalisée avec l'ARN génomique du virus de la bronchite infectieuse du poulet (IBV) (Souche Massachusetts 41), préparé selon la technique de l'exemple 3, et avec les oligonucléotides suivants: AB099 (34 mer) (SEQ ID N 20) 5 'AAAACTGCAGTCATGGCAAGCGGTAAGGCAACTG 3' AB100 (33 mer) (SEQ ID N 21) 5 ' CGCGGATCCTCAAAGTTCATTCTCTCCTAGG G C 3' pour isoler le gène codant pour la protéine N du virus IBV souche Massachusetts 41 (Figure N 14 et SEQ ID N 22) sous la forme d'un fragment 5'TTCTTGCGGCCGCCATGGCAAGACGAGCTCGCAGACCGA 3' CD065 138 mer) (SEQ ID N 24) 5'TTCTTGCGGCCGCTCAGGGCTGCGTCCCCCAGTACATG 3' pour isoler le gène codant pour la protéine de la capside VP1 du CAV sous la forme d'un fragment Notl-Notl. Après purification, le produit de PCR de 1377 pb a été digéré par Not pour isoler un fragment Notl-Notl de 1359 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le vecteur pVR1012 (exemple 6), préalablement digéré avec Notl, pour donner le plasmide pAB054 (6274 pb) qui contient le gène CAV VP1 dans la bonne orientation par rapport au promoteur (Figure N 16). Exemple 17 : Construction du plasmide pAB055 (gène CAV VP2) Une réaction de PCR a été réalisée avec l'ADN génomique du virus de l'anémie du poulet (CAV) (Souche Cuxhaven-1) (B. Meehan et al. Arch. Virol. 1992. 124. 301-319), préparé selon la technique de l'exemple 2, et avec les oligonucléotides suivants: CD066 (39 mer) (SEQ ID N 25) 5'TTCTTGCGGCCGCCATGCACGGGAACGGCGGACAACCGG 3' AB105 (32 mer) (SEQ ID N 26) 5'CGCGGATCCTCACACTATACGTACCGGGGCGG 3' pour isoler le gène codant pour la protéine VP2 du virus CAV sous la forme d'un fragment Notl-BamHI. Après purification, le produit de PCR de 674 pb a été digéré par Notl et BamHI pour isoler un fragment Notl-BamHI de 659 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le vecteur pVR1012 (exemple 6), préalablement digéré avec Notl et BamHI, pour donner le plasmide pAB055 (5551 pb) (Figure N 17). Exemple 18 : Construction du plasmide pAB076 (gène ILTV gB) Une réaction de PCR a été réalisée avec I'ADN génomique du virus de la laryngotrachéite infectieuse du poulet (ILTV) (Souche SA-2) (K. Kongsuwan et ai. Virology. 1991. 184. 404-410), préparé selon la technique de l'exemple 2, et avec les oligonucléotides suivants: AB140 (38 mer) (SEQ ID N 27) 5 'TTCTTGCGGCCGCCATGGCTAGCTTGAAAATGCTGATC 3' AB141 (36 mer) (SEQ ID N5 28) 5'TTCTTGCGGCCGCTTATTCGTCTTCGCTTTCTTCTG 3' pour isoler le gène codant pour la glycoprotéine gB du virus ILTV sous la forme d'un fragment Notl-Notl. Après purification, le produit de PCR de 2649 pb a été digéré par Notl pour isoler un fragment Notl-Notl de 2631 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le vecteur pVR1012 (exemple 6), préalablement digéré avec Notl, pour donner le plasmide pAB076 (7546 pb) qui contient le gène ILTV gB dans la bonne orientation par rapport au promoteur (Figure N 18). Exemple 2O : Construction du plasmide pAB089 (gène ILTV gD) Une réaction de PCR a été réalisée avec l'ADN génomique du virus de la laryngotrachéite infectieuse du poulet (ILTV) (Souche SA-2) (M. Johnson et al. 1994. N d'accès séquence sur Genbank = L31965), préparé selon la technique de l'exemple 2, et avec les oligonucléotides suivants: AB164 (33 mer) (SEQ ID N 29) 5'CCGGTCGACATGGACCGCCATTTATTTTTGAGG 3' AB165 (33 mer) (SEQ ID N 30) S'GGAAGATCTT'-ACGATGCTCCAAACCAGTAGCC 3' pour isoler le gène codant pour la glycoprotéine gD du virus ILTV sous la forme d'un fragment Sall-Bglll. Après purification, le produit de PCR de 1134 pb a été digéré par Sa/l et Bg/ll pour isoler un fragment Sall-Bgill de 1122 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le vecteur pVR1012 (exemple 6), préalablement digéré avec Sall et Bill, pour donner le plasmide pAB089 (5984 pb) (Figure N 19). Exemple 21: Construction du plasmide pAB086 (gène AEV env) Une réaction de RT-PCR selon la technique de l'exemple 5 a été réalisée avec l'ARN génomique du virus de l'encéphalomyélite aviaire (AEV) (Type C) (E. Bieth et ai. Nucleic Acids Res. 1 992. 20. 367), préparé selon la technique de l'exemple 3, et avec les oligonucléotides suivants: AB160 (54 mer) (SEQ ID N 31) 5 'TTTGATATCATGGAAGCCGTCATTAAGGCATTTCTGACTGGATACCCTGG GAAG 3' AB161 (31 mer) (SEQ ID NO 32) 5'TTTGGATCCTTATACTATTCTGCTTTCAGGC 3' pour isoler la séquence codant pour la glycoprotéine Env du virus AEV sous la forme d'un fragment EcoRV-BamHI. Après purification, le produit de RT-PCR de 1836 pb a été digéré par EcoRV et BamHI pour isoler un fragment EcoRV BamHI de 1825 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le vecteur pVR1012 (exemple 6), préalablement digéré avec EcoRV et BamHI, pour donner le plasmide pAB086 (6712 pb) (Figure N 20). Exemple 22 : Construction du plasmide pAB081 (gène AEV gag/pro) Une réaction de RT-PCR selon la technique de l'exemple 5 a été réalisée avec l'ARN génomique du virus de I'encéphalomyélite aviaire (AEV) (Type C) (E. Bieth et ai. Nucleic Acids Res. 1992. 20. 367), préparé selon la technique de l'exemple 3, et avec les oligonucléotides suivants: AB150 (31 mer) (SEQ ID N 33) 57ACGCGTCGACATGGAAGCCGTCATTAAGGTG 3' AB151 (32 mer) (SEQ ID N 34) 5'TGCTCTAGACTATAAATTTGTCAAGCGGAGCC 3' pour isoler la séquence codant pour les protéines Gag et Pro du virus AEV sous la forme d'un fragment Sall-Xbal. Après purification, le produit de RT-PCR de 2125 pb a été digéré par Sall et Xbal pour isoler un fragment Sall-Xbal de 2111 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le vecteur pVR1012 (exemple 6), préalablement digéré avec Sall et Xbal, pour donner le plasmide pAB081 (6996 pb) (Figure N 21). Exemple 23 : Construction du plasmide pAB082 (gène Pneumovirus G) Une réaction de RT-PCR selon la technique de l'exemple 5 a été réalisée avec 'ARN génomique du virus de la rhinotrachéite de la dinde (TRV) (Souche 2119) (K. Juhasz et al. J. Gen. Virol. 1994. 75. 2873-2880), préparé selon la technique de l'exemple 3, et avec les oligonucléotides suivants: AB152 (32 mer) (SEQ ID N 35) 5'AAACTGCAGAGATGGGGTCAGAGCTCTACATC 3' AB153 (31 mer) (SEQ ID N 36) 5'CGAAGATCTTTATTGACTAGTACAGCACCAC 3' pour isoler le gène codant pour la glycoprotéine G du virus TRV sous la forme d'un fragment Pstl-Bglll. Après purification, le produit de RT-PCR de 1265 pb a été digéré par Pstl et Bg/ll pour isoler un fragment Pstl-Bglll de 1249 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le vecteur pVR1012 (exemple 6), préalablement digéré avec Pstl et Bill, pour donner le plasmide pAB082 (6101 pb) (Figure N 22). Exemple 24: Construction du plasmide pAB077 (gène Peste aviaire HA souche H2N2) Une réaction de RT-PCR selon la technique de l'exemple 5 a été réalisée avec l'ARN génomique du virus de la peste aviaire (AIV) (Souche H2N2 Postdam) (J. Schafer et a/. Virology. 1993. 194. 781-788), préparé selon la technique de l'exemple 3, et avec les oligonucléotides suivants: AB142 (33 mer) (SEQ ID N 37) 5'AAACTGCAGCAATGG CCATCATTTATCTAATTC 3' AB143 (31 mer) (SEQ ID N 38) 5 ' CGAAGATCTTCATATG CAGATTCTGCATTGC 3' pour isoler le gène codant pour la glycoprotéine HA du virus de la peste aviaire (souche H2N2) sous la forme d'un fragment Pstl-Bglll. Après purification, le produit de RT-PCR de 1709 pb a été digéré par Pstl et Bglll pour isoler un fragment Pstl-Bgill de 1693 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le vecteur pVR1O12 (exemple 6), préalablement digéré avec Pstl et Bg/II, pour donner le plasmide pAB077 (6545 pb) (Figure N 23). Exemple 25: Construction du plasmide pAB078 (gène Peste aviaire HA souche H7N7) Une réaction de RT-PCR selon la technique de l'exemple 5 a été réalisée avec I'ARN génomique du virus de la peste aviaire (AIV) (Souche H7N7 Leipzig) (C. Rohm et al. Virology. 1995. 209. 664-670), préparé selon la technique de l'exemple 3, et avec les oligonucléotides suivants: AB144 (31 mer) (SEQ ID N 39) 5'AAACTGCAGATGAACACTCAAATCCTGATAC 3' AB145 (31 mer) (SEQ ID N 40) 5 'TTTG GATCCTTATATACAAATAGTGCACCG C 3' pour isoler le gène codant pour la glycoprotéine HA du virus de la peste aviaire (souche H7N7) sous la forme d'un fragment Pstl-BamHI. Après purification, le produit de RT-PCR de 1707 pb a été digéré par Pstl et BamHI pour isoler un fragment Pstl-BamHI de 1691 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le vecteur pVR1012 (exemple 6), préalablement digéré avec Pstl et BamHI, pour donner le plasmide pAB078 (6549 pb) (Figure N 24). Exemple 26 : Construction du plasmide pAB088 (gène Peste aviaire NP souche H1N1) Une réaction de RT-PCR selon la technique de l'exemple 5 a été réalisée avec l'ARN génomique du virus de la grippe aviaire (AIV) (Souche H1 N1 Bavaria) (M. Gammelin et al. Virology. 1989. 170. 71-80), préparé selon la technique de l'exemple 3, et avec les oligonucléotides suivants: AB156 (32 mer) (SEQ ID N 41) 5'CCGGTCGACATGGCGTCTCAAGGCACCAAACG 3' AB158 (30 mer) (SEQ ID N 42) 5'CGCGGATCCTTAATTGTCATACTCCTCTGC 3' pour isoler le gène codant pour la nucléoprotéine NP du virus de la grippe aviaire sous la forme d'un fragment Sall-BamHI. Après purification, le produit de RT PCR de 1 51 5 pb a été digéré par SalI et BamHI pour isoler un fragment Sall BamHI de 1503 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le vecteur pVR1012 (exemple 6), préalablement digéré avec Sall et BamHI, pour donner le plasmide pAB088 (6371 pb) (Figure N 25). Exemple 27 : Construction du plasmide pAB079 (gène Peste aviaire N souche H7N1) Une réaction de RT-PCR selon la technique de l'exemple 5 a été réalisée avec I'ARN génomique du virus de la peste aviaire (AIV) (Souche H7N1 Rostock) (J. Mc Cauley 1990. N0 d'accès séquence sur Genbank = X52226), préparé selon la technique de l'exemple 3, et avec les oligonucléotides suivants: AB146 (35 mer) (SEQ ID NO 43) 5 ' CGCGTCGACATGAATCCAAATCAGAAAATAATAAC 3' AB147 (31 mer) (SEQ ID NO 44) 5 ' G GAAG ATCTCTACTTGTCAATGGTGAATG G C 3' pour isoler le gène codant pour la glycoprotéine N du virus de la peste aviaire (souche H7N1) sous la forme d'un fragment Sall-Bglll. Après purification, le produit de RT-PCR de 1361 pb a été digéré par SalI et Bglll pour isoler un fragment Sall-Bgill de 1350 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le vecteur pVR1012 (exemple 6), préalablement digéré avec Sall et Bglll, pour donner le plasmide pAB079 (6212 pb) (Figure NO 26). Exemple 28 : Préparation et purification des plasmides Pour la préparation des plasmides destinés à la vaccination des animaux, on peut utiliser toute technique permettant d'obtenir une suspension de plasmides purifiés majoritairement sous forme superenroulée. Ces techniques sont bien connues de l'homme de l'art. On peut citer en particulier la technique de lyse alcaline suivie de deux ultracentrifugations successives sur gradient de chlorure de césium en présence de bromure d'éthidium telle que décrite dans J. Sambrook et al. (Molecular Cloning: A Laboratory Manual. 2nd Edition. Cold Spring Harbor Laboratory. Cold Spring Harbor. New York. 1989). On peut se référer également aux demandes de brevet PCT WO 95/21250 et PCT WO 96/02658 qui décrivent des méthodes pour produire à l'échelle industrielle des plasmides utilisables pour la vaccination. Pour les besoins de la fabrication des vaccins (voir exemple 17), les plasmides purifiés sont resuspendus de manière à obtenir des solutions à haute concentration ( > 2 mg/ml) compatibles avec le stockage. Pour ce faire, les plasmides sont resuspendus soit en eau ultrapure, soit en tampon TE (Tris-HCI 10 mM; EDTA 1 mM, pH 8,0). Exemple 29 : Fabrication des vaccins associés Les divers plasmides nécessaires à la fabrication d'un vaccin associé sont mélangés à partir de leurs solutions concentrées (exemple 16). Les mélanges sont réalisés de telle manière que la concentration finale de chaque plasmide corresponde à la dose efficace de chaque plasmide. Les solutions utilisables pour ajuster la concentration finale du vaccin peuvent être soit une solution NACI à 0,9 % , soit du tampon PBS. Des formulations particulières telles que les liposomes, les lipides cationiques, peuvent aussi être mises en oeuvre pour la fabrication des vaccins. Exemple 30 : Vaccination des poulets Les poulets sont vaccinés avec des doses de 10, 50 ou 100 ijg par plasmide. Les injections peuvent être réalisées à l'aiguille par voie intramusculaire. Les sites d'injection sont le bréchet (pour les poulets de plus de 2 semaines) et la cuisse (pour les poulets âgés d' 1 jour et plus). Dans ce cas, les doses vaccinales sont administrées sous un volume de 0,1 à 0,3 ml. Chez le poulet adulte (âgé de plus de 20 semaines), les injections sont également réalisées par voie intramusculaire en utilisant un appareil d'injection à jet liquide (sans aiguille) qui a été spécifiquement conçu pour la vaccination des poulets (par exemple, appareil AVIJET). Dans ce cas, le volume injecté est de 0,3 ml. L'injection peut être effectuée au bréchet ou au niveau de la cuisse. De même, chez le poulet adulte, les injections peuvent être réalisées à l'aiguille par voie intramusculaire, au bréchet ou à la cuisse, sous un volume de 0,3 ml. L'injection des vaccins plasmidiques peut également se faire in ovo. Dans ce cas, des formulations particulières, telles que citées dans l'exemple 29 peuvent être utilisées. Le volume injecté dans l'oeuf embryonné de 1 8 jours est compris entre 50 jîl et 200 'il. REVENDICATIONS 1. Formule de vaccin aviaire, comprenant au moins trois valences de vaccin polynucléotidique comprenant chacune un plasmide intégrant, de manière à l'exprimer in vivo dans les cellules hôtes, un gène d'une valence de pathogène aviaire, ces valences étant choisies parmi le groupe consistant en virus de la maladie de Marek, virus de la maladie de Newcastle, virus de la maladie de Gumboro, virus de l'anémie infectieuse, les plasmides comprenant, pour chaque valence, un ou plusieurs des gènes choisis parmi le groupe consistant en gB et gD pour le virus de la maladie de Marek, MN et F pour le virus de la maladie de Newcastle, VP2 pour le virus de la maladie de Gumboro, C + NS1 pour le virus de l'anémie infectieuse. 2. Formule de vaccin selon la revendication 1, caractérisée en ce que, pour la valence du virus de la maladie de Marek, elle comprend le gène gB seul. 3. Formule selon la revendication 1, caractérisée en ce qu'elle comprend les gènes HN et F du virus de la maladie de Newcastle, dans le même plasmide ou dans des plasmides différents. 4. Formule de vaccin selon la revendication 1, caractérisée en ce que le plasmide pour le virus de l'anémie infectieuse comprend C + NS1 dans le même plasmide. 5. Formule de vaccin selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisée en ce qu'elle comporte en plus au moins une valence choisie parmi le groupe consistant en virus de la bronchite infectieuse, virus de la laryngotrachéite infectieuse, virus de l'encéphalomyélite, virus de la pneumovirose, et virus de la peste aviaire, les plasmides comprenant pour ces valences un ou plusieurs des gènes choisis parmi le groupe consistant en S, M et N pour le virus de la bronchite infectieuse, gB et gD pour le virus de la laryngotrachéite infectieuse, env et gag/pro pour le virus de l'encéphalomyélite, F et G pour le virus de la pneumovirose et HA, N et NP pour le virus de la peste aviaire. 6. Formule de vaccin selon la revendication 5, caractérisée en ce que, pour la valence virus de la bronchite infectieuse, elle comprend le gène S seul. 7. Formule de vaccin selon la revendication 5, caractérisée en ce que, pour la valence laryngotrachéite, la formule comprend le gène gB seul. 8. Formule de vaccin selon la revendication 5, caractérisée en ce que, pour la valence pneumovirose, la formule comprend les deux gènes F et G dans des plasmides différents ou dans un seul et même plasmide. 9. Formule de vaccin selon la revendication 5, caractérisée en ce que, pour la valence peste aviaire, la formule comprend le gène HA seul. 10. Formule de vaccin selon la revendication 5, caractérisée en ce que, pour la valence encéphalomyélite, la formule de vaccin comprend le gène env. 11. Formule de vaccin selon l'une quelconque des revendications 1 à 10, caractérisée en ce qu'il comprend de 10 ng à 1 mg, de préférence de 100 ng à 500 Fg plus préférentiellement encore de 0,1 Fg à 50 Fg de chaque plasmide. 12. Utilisation d'un ou de plusieurs plasmides tels que décrits dans l'une quelconque des revendications 1 à 11, pour la fabrication d'un vaccin aviaire destiné à vacciner les animaux primo-vaccinés au moyen d'un premier vaccin choisi dans le groupe consistant en vaccin entier vivant, vaccin entier inactivé, vaccin de sous-unité, vaccin recombinant, ce premier vaccin présentant le ou les antigène(s) codé(s) par le ou les plasmide(s) ou antigène(s) assurant une protection croisée. 13. Kit de vaccination regroupant une formule de vaccin selon l'une quelconque des revendications 1 à 11 et un vaccin aviaire choisi dans le groupe consistant en vaccin entier vivant, vaccin entier inactivé, vaccin de sous-unité, vaccin recombinant, ce premier vaccin présentant l'antigène codé par le vaccin polynucléotidique ou un antigène assurant une protection croisée, pour une administration de ce dernier en primo-vaccination et pour un rappel avec la formule de vaccin.