FR 2732037 A1 19960927 FR 9503214 A 19950320 PROCEDE DE DETECTION DE MICROORGANISMES PAR SEPARATION ET CULTURE SUR UN SYSTEME GELIFIE, SYSTEME GELIFIE ET NECESSAIRE DE DOSAGE POUR METTRE EN OEUVRE CE PROCEDE, UTILISATION EN MICROBIOLOGIE Domaine de l'invention La présente invention a trait à un nouveau procédé pour détecter la présence ou l'absence de microorganismes appartenant à l'ensemble des bactéries et des levures. Ce procédé met en oeuvre une technique de séparation, de culture et de révélation sur un même système gélifié. Elle concerne également ledit système gélifié en tant que produit industriel nouveau, d'une part, et le nécessaire, kit ou trousse de dosage permettant de mettre en oeuvre ledit procédé, d'autre part. Elle concerne enfin l'utilisation dudit procédé et dudit système gélifié en microbiologie (notamment en bactériologie ou mycologie), en particulier dans le domaine de la détection des infections bactériennes (plus particulièrement celle des infections urinaires et des septicémies). Art antérieur Quand on veut apprécier la présence ou l'absence de microorganismes tels que les bactéries et les levures, notamment selon une méthode colorimétrique, on doit tenir compte des résultats suivants - les vrais positifs (TP), - les faux positifs (FP), - les vrais négatifs (TN), et - les faux négatifs (FN). D'un point de vue pratique, à partir des résultats TP, FP, TN et FN théoriquement possibles, quatre valeurs (exprimées en pourcentages) ont été définies, à savoir - la sensibilité (Sen), - la spécificité (Spe), - la valeur prédictive positive (PPV), et - la valeur prédictive négative (NPV), telles que Sen = 100.TP/(TP+FN), Spe = 100.TN/(TN+FP), PPV = 100.TP/(TP+FP), et NPV = 100.TN/(TN+FN), pour évaluer le caractère significatif ou la pertinence des mesures. On sait que l'on a déjà préconisé ou utilisé une technique de détection ou de filtration colorimétrique pour apprécier la présence ou l'absence de bactéries dans l'urine, d'une part, et une technique de séparation sur gel pour mettre en évidence des agglutinats érythrocytaires, d'autre part. En ce qui concerne la détection colorimétrique, on connaît de la publication EP-A-0 496 409 un procédé de révélation de bactéries Gramnégatif. Ce procédé comprend la filtration d'un échantillon biologique (notamment l'urine) contenant des bactéries sur un support poreux (diamètre des pores 0,75-1,2 im) pour retenir les bactéries sur ledit support, puis la détection des bactéries Gram-négatif par la réaction de leurs déhydrogénases avec un réactif coloré d'oxydo-réduction (notamment un sel de tétrazolium ou la résazurine) en inhibant au moyen d'un agent caotrope et d'un détergent non-ionique du type alkyl-glucoside les réactions de réduction induites par les bactéries Gram-positif. En ce qui concerne la technique de filtration colorimétrique, on connaît notamment des tests commercialisés par la société dite VITEK SYSTEMS (Hazlewood, Mo.) sous les nomenclatures de "Bac-T-ScreenB" (test semi-automatique) et de "FiltraCheckB-UTI" (test manuel). La mise en oeuvre de ces tests comprend la filtration d'un échantillon d'urine sur un filtre en papier imprégné d'un révélateur pour retenir et colorer les bactéries éventuellement présentes dans l'échantillon la filtration est réalisée avec une différence de pression, aussi un appareillage relativement compliqué est requis ; la principale source d'erreurs (résultats FP et FN) est due à la présence possible dans l'urine d'un grand nombre d'érythrocytes, de leucocytes et/ou de cellules épithéliales (la présence d'érythrocytes et/ou de leucocytes dans l'urine est déjà en soi un signe de dysfonctionnement) . Selon la littérature, voir à cet effet (a) les pages 272 (tableau 3) et 274 (chapitre "Colorimetric Filtration") de l'article de M. PEZZLO, Clin. Microbiol. Rev., 1988, 1 (No 2), 268-280, et (b) la page 86 (alinéa "Système coloration filtration" et tableaux) de l'article de F.W. GOLDSTEIN, Méd. Mal. Infect., 1991, 21, 83-88, les tests Bac-T-ScreenR et FiltraCheckR-UTI sont (i) rapides (1-2 minutes), (ii) efficaces quand la population bactérienne est 2 105 CFU/ml, mais (iii) insatisfaisants quand ladite population bactérienne est inférieure à 105 CFU/ml. Globalement pour l'ensemble de ces deux tests on a selon les deux articles précités, lors de screenings urinaires, pour des populations bactériennes de 2 105 CFU/ml : Sen = 93-95%, Spe = 76-77%, PPV = 32%, et NPV = 97-99 %; > 104 CFU/ml : Sen = 85-89%, Spe = 81%, et NPV = 84-86%; et 2 103 CFU/ml : Sen = 76-84%, et NPV = 67-72%. Il existe donc un besoin d'améliorer la fiabilité des mesures pour des populations bactériennes inférieures à 105 CFU/ml. En ce qui concerne la technique de séparation sur gel des érythrocytes pour apprécier l'agglutination érythrocytaire on connaît les publications FR-A-2 577 321 et EP-A-0 454 509. Selon FR-A-2 577 321, la formation ou la présence d'agglutinats érythrocytaires sont mises en évidence par (1) dépôt d'un milieu liquide contenant des érythrocytes sur un gel (i) disposé dans un tube de centrifugation à fond conique, et (ii) laissant passer les globules libres plus facilement que les agglutinats [notamment un gel commercialisé sous le nom de "SephadexB G 100 Ultrafine" par la société dite PHARMACIA FINE CHEMICAL (Uppsala, Suède)], puis (2) centrifugation doucie. Selon EP-A0 454 509, on opère de façon sensiblement analogue par centrifugation douce en remplaçant le gel de FR-A-2 577 321 par un système gélifié constitué par un mélange de deux gels de dextrane (voir notamment page 3 lignes 2-4 et page 4 lignes 6-7 de EP-A-O 454 509): le produit "SephadexB G 100 Ultrafine" précité qui, à l'état sec, se présente sous la forme de particules ayant un diamètre de 20 à 50 ym, et le produit "SephadexB HP Ultrafine" qui, à l'état sec, se présente sous la forme de particules ayant un diamètre de 13 à 23 ym. Eu égard aux indications fournies dans EP-A-0 454 509 (page 3 lignes 24 et 4243, et page 4 lignes 14-15), il semble clair que le système gélifié de EP-A-0 454 509 ne comporte qu'une seule phase. Telle que décrite dans FR-A-2 577 321 et EP-A-0 454 509, la technique de séparation sur gel par centrifugation n'est pas directement transposable à la détection de la présence ou l'absence de microorganismes. En particulier les gels préconisés, à savoir les produits "SephadexB G 100 Ultrafine" et "SephadexB HP Ultrafine", ne permettent pas le passage des microorganismes tels que les bactéries et les levures lors de la centrifugation douce (i.e. sous une intensité inférieure à 1000g, notamment de 400-500 g, et en particulier selon EP-A-0 454 509 page 4 ligne 49 de 430 g) ni la séparation des bactéries des autres cellules. But de l 'invention Selon l'invention on se propose de fournir une nouvelle solution technique pour détecter dans un échantillon d'un matériau biologique la présence ou l'absence de microorganismes appartenant à l'ensemble des bactéries et des levures, cette nouvelle solution technique donnant des résultats plus fiables pour des populations microbiennes inférieures à 105 germes/ml (dans ce qui suit on considérera par commodité que 1 bactérie/ml ou 1 levure/ml correspond approximativement à 1 CFU/ml) que les tests "Bac-T-ScreenB" et "FiltraCheckB-UTI" précités relatifs à l'évaluation des infections urinaires bactériennes. Cette nouvelle solution technique met en oeuvre une technique particulière de séparation des microorganismes sur un système gélifié contenant un milieu de culture, qui est différente de celle proposée par les publications FR-A-2 577 321 et EP-A-0 454 509 précitées, et qui évite de mettre en oeuvre l'isolement des microorganismes sur un système gélosé standard ou la mise en culture nécessaire à leur multiplication, avant centrifugation . Objet de l tinvention Ce but est obtenu en faisant appel à un système gélifié qui sépare sélectivement les microorganismes éventuellement présents dans un échantillon d'un matériau biologique des autres composants notamment les cellules, les peptides et les protéines, d'une part, et qui permet la pousse desdits microorganismes in situ pendant la centrifugation puis le cas échéant après ladite centrifugation et leur révélation, d'autre part. Selon un premier aspect de l'invention, on préconise un nouveau procédé de détection de la présence ou de l'absence de microorganismes appartenant à l'ensemble des bactéries et des levures dans un échantillon liquide d'un matériau biologique susceptible de contenir des cellules autres que celles desdits microorganismes, ledit procédé, qui met en oeuvre une technique de séparation sur gel, étant caractérisé en ce qu'il comprend les étapes consistant à (1 ) faire appel à un système gélifié qui (i) sépare en fonction de leur taille les microorganismes, éventuellement présents dans ledit échantillon liquide et qui proviennent dudit matériau biologique, des autres composants solides que peut contenir ledit échantillon liquide, (ii) est essentiellement imperméable à l'eau pouvant être présente dans ledit échantillon liquide et aux substances dissoutes éventuellement présentes dans ledit échantillon liquide, et (iii) comporte au moins (a) une première phase, dite de révélation, qui est un gel comportant un milieu de culture de microorganismes et un réactif induisant une variation de mesure optique détectable en présence de microorganismes, ledit gel étant un mélange intime d'eau et de particules polymériques absorbant l'eau, qui ont été gonflées de telle façon que dans ledit mélange intime lesdites particules polymériques aient une concentration en poids sec comprise entre 0,05 et 0,2 g/ml et un diamètre à l'état gonflé compris entre 90 et 320 clam, l'eau dudit mélange intime provenant en totalité ou en partie dudit milieu de culture; (2 ) introduire ledit échantillon liquide dans un tube de centrifugation au dessus dudit système gélifié préalablement disposé dans ledit tube de centrifugation; (3 ) centrifuger le contenu dudit tube résultant ; et, (4 ) révéler la présence ou l'absence de microorganismes dans ledit échantillon liquide provenant dudit matériau biologique, au niveau de ladite première phase du système gélifié, par ledit réactif induisant une variation de mesure optique détectable. Si les microorganismes sont à une concentration trop faible dans ledit échantillon liquide, la révélation de l'étape (4 ) intervient après multiplication des microorganismes dans ledit milieu de culture, à une température comprise entre la température ambiante et 45"C, en au plus 44 h (de préférence en 1-2 h) pour les bactéries et en au plus 36 h (de préférence en 24-30 h) pour les levures. Selon un second aspect de l'invention, on préconise, en tant que produit industriel nouveau, ledit système gélifié qui (i) sépare en fonction de leur taille les microorganismes, éventuellement présents dans ledit échantillon liquide et qui proviennent dudit matériau biologique, des autres composants solides que peut contenir ledit échantillon liquide, (ii) est essentiellement imperméable à l'eau pouvant être présente dans ledit échantillon liquide, et (iii) comporte au moins (a) une première phase, dite de révélation, qui est un gel comportant un milieu de culture de microorganismes et un réactif induisant une variation de mesure optique détectable en présence de microorganismes, ledit gel étant un mélange intime d'eau et de particules polymériques absorbant l'eau, qui ont été gonflées de telle façon que dans ledit mélange intime lesdites particules polymériques aient une concentration en poids sec comprise entre 0,05 et 0,2 g/ml et un diamètre à l'état gonflé compris entre 90 et 320 clam, I'eau dudit mélange intime provenant en totalité ou en partie dudit milieu de culture. Selon encore un autre aspect de l'invention, on préconise un nécessaire, kit ou trousse de dosage comprenant notamment - ledit système gélifié ou les phases le constituant, et - le cas échéant, des souches de microorganismes de référence lyophilisées et/ou leurs milieux de culture pour permettre de réaliser des échantillons étalons. Selon enfin un autre aspect de l'invention, on préconise l'utilisation dudit procédé et dudit système gélifié en microbiologie, notamment dans (i) la détection des infections bactériennes (en particulier telles que les infections urinaires et les septicémies), (ii) l'identification des souches de microorganismes, et (iii) l'évaluation de la résistance de souches de microorganismes vis-à-vis des antibiotiques. Brève description des dessins Les dessins annexés joints en annexe représentent de façon schématique des tubes de centrifugation garnis chacun d'un système gélifié selon l'invention - la figure 1 représente un tube de centrifugation, comportant un système gélifié constitué d'une seule phase, à savoir la phase dite de révélation - les figures 2a et 2b représentent un tube de centrifugation comportant un système gélifié constitué de deux phases qui sont, du bas vers le haut, la phase de révélation et la phase de protection, et montré avant (Fig. 2a) et après (Fig. 2b) centrifugation - la figure 3 représente un tube de centrifugation, comportant un système gélifié constitué de deux phases qui sont, du bas vers le haut la phase de révélation et la phase d'absorption ;; - les figures 4a et 4b représentent un système gélifié analogue à celui de la figure 3, qui comporte en outre la phase de protection et est vu avant (figure 4a) et après (figure 4b) centrifugation - la figure S représente un tube de centrifugation, comportant un système gélifié constitué de trois phases qui sont du bas vers le haut la phase barrière, la phase de révélation et la phase d'absorption - les figures 6a et 6b représentent un système gélifié analogue à celui de la figure 5, qui comporte en outre la phase de protection et qui est montré avant (figure 6a) et après (figure 6b) centrifugation ; et, - les figures 7 et 8 représentent chacun un système gélifié préféré selon l'invention où la phase de révélation a une épaisseur faible. Abréviations Par commodité, les abréviations et acronymes suivants ont été utilisés dans le texte de la présente invention Ala alanyle BT bleu de tétrazolium CFU unité formant colonie (en anglais : "colony-forming unit") DIC coagulation intravasculaire disséminée EDTA acide éthylènediaminotétraacétique FN faux négatifs (en anglais : "false négatives") FP faux positifs (en anglais : "false positives") Hyp hydroxyprolyle, Hyp représente 3Hyp (3-hydroxyprolyle) et/ou 4Hyp (4-hydroxyprolyle) INT iodonitrotétrazolium Leu leucyle Lys lysyle MA 4-méthylcoumarinyl-7-amino MUG 4-méthylumbelliféryl-ss-D-glucuronide MW poids moléculaire NA -naphtylamino NADH nicotinamide-adénine dinucléotide hydrogéné NBT nitrobleu de tétrazolium NPV valeur prédictive négative (en anglais : "negative predictive value") NTC chlorure de néotétrazolium OM mesure optique Phe a-phénylalanyle Phg a-phénylglycyle pNA p-nitroanilino PPV valeur prédictive positive (en anglais :"positive predictive value") Pro prolyle RT température ambiante (15-20"C) Sen sensibilité (en anglais : "sensitivity") Spe spécificité (en anglais : "specificity") TN vrais négatifs (en anglais : "true negatives") TP vrais positifs (en anglais : "true positives") TTC chlorure de triphényltétrazolium YNB source d'azote commercialisée sous la nomenclature commerciale "YEAST NITROGEN BASE" Description détaillée de l'invention Par "matériau biologique" on entend ici - un liquide corporel humain ou animal, qui est aqueux, notamment l'urine, le sang, le plasma, le liquide rachidien, le liquide pleural, le lait;; - une eau quelconque, notamment l'eau vive (sources, rivières), l'eau stagnante (mares, réservoirs, piscines), l'eau industrielle (eau du robinet, eau des canalisations et circuits intervenant en particulier en tant que fluide thermique ou énergétique, eau usée), l'eau de boisson - une boisson, notamment d'origine agro-alimentaire et à base d'eau telle que les jus de fruits, les sodas, le lait précité, le vin, la bière - un aliment d'origine animale et/ou végétale ou une préparation alimentaire; - un extrait de plante notamment un extrait aqueux, alcoolique ou hydroalcoolique, en particulier un jus de pression ou un extrait aqueux;; - un produit solide ou visqueux, tel que notamment le pus, les biopsies, les feces, le crachat, la salive, une plante, une partie de plante, un sol, le sable, ledit produit pouvant contenir ou non de l'eau dans sa composition ; et, - d'une manière générale, I'environnement de l'homme (notamment le sol et l'eau précités, d'une part, et l'atmosphère ambiante, d'autre part) ; des exemples sont donnés ci-après pour l'évaluation de la qualité bactériologique et mycologique de l'atmosphère des blocs opératoires. En bref, ledit matériau biologique sera choisi parmi l'ensemble constitué par les liquides corporels, les aliments, les boissons et les produits de l'environnement (y compris les plantes et leurs extraits). En pratique, il est recommandé mais non essentiel que ledit matériau biologique soit un produit aqueux ; il suffit pour mettre en oeuvre le procédé de détection de l'invention de façon optimale que ledit matériau biologique soit transformé (notamment par broyage, dilacération, extraction et/ou addition d'eau) en un échantillon liquide ou soit déjà sous forme liquide pour être testé. De façon avantageuse ledit échantillon liquide sera un échantillon aqueux liquide. Par "cellule" on entend ici toute cellule biologique qui n'est pas une bactérie ni une levure. Par "matériau cellulaire" on entend ici un matériau choisi parmi (i) les cellules, (ii) les fragments desdites cellules (notamment les fragments de paroi cellulaire), (iii) le contenu desdites cellules logé à l'intérieur de la paroi et (iv) leurs mélanges. Le matériau biologique selon l'invention, dans lequel on veut déterminer la présence ou l'absence de microorganismes, et son échantillon liquide peuvent contenir un matériau cellulaire. A titre d'information, l'urine d'un patient peut contenir: (A) des microorganismes en cas d'infection urinaire, tels que - les bactéries Gram-négatif, notamment les Escherichia coli, Kiebsiella (en particulier Rlebsiella aerogenes, Klebsiella pneumoniae), Proteus (en particulier Proteus vulgaris, Proteus mirabilis), Pseudomonas (en 12 particulier Pseudomonas aeruginosa), Serratia (en particulier Serratia marcescens) et/ou Enterobacter (en particulier Enterobacter aerogenes), - les bactéries Gram-positif, notamment les Staphylococcus (en particulier Staphylococcus aureus, Staphylococcus epidemidis, Staphylococcus saprophyticus), Streptococcus (en particulier Streptococcus faecalis, Streptococcus faecium), Enterococcus et/ou Corynebacterium, et/ou - les levures notamment les Candida albicans, Candida glabrata (ancienne nomenclature :Torulopsis glabrata), Candida tropicalis et/ou Candida krusei, qui sont susceptibles d'être pathogènes (ces souches peuvent induire des septicémies et des DIC), d'une part ; et, (B) un matériau cellulaire comprenant des cellules (en particulier érythrocytes, leucocytes et/ou cellules épithéliales), des enzymes cellulaires (en particulier urokinase urinaire, leucocyte estérase et/ou phosphatase), des antibiotiques pouvant perturber ou fausser la détection des microorganismes présents dans l'urine), des peptides, des protéines, des pigments et/ou des fragments de paroi cellulaire, d'autre part. Selon l'invention, on va faire migrer, à travers le système gélifié, les particules non dissoutes dans l'échantillon liquide dudit matériau biologique, de façon à séparer en fonction de leur taille les microorganismes des autres composants solides et non dissous provenant dudit matériau biologique par centrifugation, d'une part, puis on va en général faire pousser in situ lesdits microorganismes, d'autre part, afin de les détecter. Par "réactif induisant une variation de mesure optique détectable" (autre nomenclature : "réactif colorimètrique"), on entend ici un produit qui, en présence d'un microorganisme appartenant à l'ensemble des bactéries et des levures, provoque une variation de OM appréciée soit à l'oeil nu soit au moyen d'un colorimètre. En d'autre terme le réactif changeant de couleur en présence de microorganismes induit un changement de couleur dans le spectre visible ou un changement de fluorescence ou de luminescence notamment dans le domaine UV. Un tel "réactif colorimètrique" peut-être (i) un indicateur coloré de pH, tel que le rouge de phénol, (ii) un indicateur coloré d'oxydoréduction, tel que notamment le dichloroindophénol, la résazurine ou un sel de tétrazolium (par exemple BT, INT, NBT, NTC ou TTC), (iii) un substrat chromogène, tel que H-L-Ala-pNA, H-L-Leu-pNA, H-L-Phe-pNA, H-L Pro-pNA, H-L-Lys-pNA, H-L-Hyp-pNA, un substrat fluorogène, tel que H L-Ala-NA, H-L-Leu-NA, H-L-Phe-NA, H-L-Pro-NA, H-L-Lys-NA, H-L Hyp-NA, H-L-Ala-MA, H-L-Leu-MA, H-L-Phe-MA, H-L-Pro-MA, H-L Lys-MA, H-L-Hyp-MA, MUG phosphate, (iv) un substrat clivable par une osidase des microorganismes telle que la ss-D-glucosidase ou mieux la ss-D- galactosidase, ou (v) un substrat chimioluminescent, tel un composé de luciférine. Les indicateurs colorés d'oxydo-réduction sont principalement des composés oxydants qui révèlent la présence de microorganismes par réaction avec au moins une substance réductrice provenant desdits microorganismes, telle que notamment NADH et les déhydrogénases. Le mécanisme est analogue à celui illustré ci-après pour la résazurine résazurine + NADH o résorufine + NAD+ Les substrats chromogènes et fluorogènes que l'on préfere selon l'invention, à savoir H-L-Ala-pNA, H-L-Leu-pNA, H-L-Phe-pNA, H-L-Pro-pNA, H-L-Lys-pNA, H-L-Hyp-pNA, H-L-Ala-NA, H-L-Leu-NA, H-L-Phe-NA, H-L-Pro-NA, H-L-Lys-NA et H-L-Hyp-NA sont clivés par les aminopeptidases produites par les microorganismes.D'autres substrats peptidiques clivables par lesdites aminopeptidases, qui sont décrits dans la demande PCT publiée WO-A-90/03726, sont également utilisables dans la présente invention. Comme indiqué ci-dessus le système gélifié selon l'invention, qui intervient à l'étape (1") du procédé préconisé, comporte au moins une couche gélifiée, à savoir la "phase de révélation" également désignée ici par commodité "première phase" ou "première couche". La phase de révélation est constituée d'une substance polymérique (notamment du type dextrane ou analogue) préalablement gonflée avec de l'eau de façon à former un gel retenant dans sa masse (ou au niveau de sa face inférieure pour les plus grosses particules), lors de la centrifugation, les particules non solubles contenues dans ledit échantillon liquide et ayant une taille se situant entre 0,5 et 8 clam. Il est important que, à l'état gonflé, ladite substance polymérique de la phase de révélation soit à une concentration en poids sec de 0,05 à 0,2 g/ml (de préférence à une concentration de 0,1 g/ml) et se présente (dans le gel) sous la forme de particules gonflées ayant un diamètre de 90 à 320 clam, pour retenir dans sa masse ou au voisinage de sa face inférieure les bactéries (longueur : 0,5 à 5 cru ; diamètre : 0,1 à 2 m) et la majeure partie des levures (diamètre : 5 à 12 m) mais ne pas retenir les cellules. De façon pratique, la substance polymérique de la phase de révélation sera préalablement gonflée avec le milieu de culture destiné à la pousse des microorganismes, ledit milieu de culture contenant le réactif colorimétrique précité induisant une variation de OM. Le système gélifié selon l'invention peut en outre comporter pour la mise en oeuvre de l'étape (1") du procédé préconisé (b) une seconde phase, dite d'absorption, essentiellement imperméable à l'eau pouvant être présente dans ledit échantillon liquide et aux substances qui y sont dissoutes, qui retient dans sa masse les particules non solubles contenues dans ledit échantillon liquide et ayant une taille inférieure à 5 ym mais laisse passer les particules ayant une taille supérieure ou égale à 5 ym lors de la centrifugation, et qui est constituée (i) d'un gel ou (ii) de particules de silice ou de silicate ayant une granulométrie inférieure à 0,1 ym, ladite seconde phase reposant sur ladite première phase, ledit mélange intime étant essentiellement imperméable à l'eau pouvant être présente dans ledit échantillon liquide. Selon une variante de réalisation, la "phase d'absorption" ou "deuxième phase" ou encore "deuxième couche" est un gel constitué par un mélange intime d'eau et de particules polymériques absorbant l'eau, qui ont été gonflées de telle façon que dans ledit mélange intime lesdites particules polymériques aient (a) une concentration en poids sec comprise entre 0,2 et 1 g/ml et (ss) un diamètre à l'état gonflé compris entre 160 et 530 ym. Dans ce cas la phase d'absorption est constituée d'une substance polymérique (notamment du type dextrane ou analogue) préalablement gonflée avec de l'eau de façon à former un gel, comme ladite première phase, mais de façon à retenir dans sa masse (ou au niveau de sa face inférieure pour les plus grosses particules), lors de la centrifugation, les particules non solubles contenues dans ledit échantillon liquide et ayant une taille plus faible se situant entre 0,1 et 0,5 ym, d'une part, et les particules non solubles ne traversant pas ladite première phase (i.e. taille inférieure à 5 Hum), d'autre part. Selon une autre variante, la phase d'absorption est une couche particulaire constituée d'une matière minérale, micronisée de façon à avoir à l'état sec une granulométrie inférieure à 0,1 ttm, d'une part, et ne gonflant essentiellement pas en présence d'eau, d'autre part. Cette matière minérale sera avantageusement choisie parmi l'ensemble constitué par la silice (notamment le sable, le quartz ou le verre) et les silicates tels que les aluminosilicates. Parmi les silicates, on recommande plus particulièrement le kaolin qui est une argile non gonflante en présence d'eau. On a en effet constaté que les substances minérales telles que la silice et le kaolin ayant une granulométrie inférieure à 0,1 ym permettent le passage des microorganismes et retiennent l'eau ainsi que les substances dissoutes susceptibles d'être présentes dans ledit échantillon liquide. Ainsi la phase d'absorption va empêcher le passage des particules solides non dissoutes dans ledit échantillon liquide telles que l'hémoglobine, les pigments (notamment les pigments urinaires quand on cherche à détecter la présence ou l'absence de microorganismes dans l'urine en cas d'infection urinaire), les enzymes, les inhibiteurs, et va retenir les particules non dissoutes comme les fragments de cellules lysées. A titre d'exemple, ces fragments sont retenus après traitement avec un agent lytique ou en présence d'un agent lytique. Cet agent lytique peut être un détergent tel que la saponine pour la lyse des érythrocytes. I1 est important que, (1) ladite substance polymérique de la phase d'absorption, à l'état gonflé, soit à une concentration en poids sec de 0,2 à 1 g/ml (de préférence à une concentration de 0,35 g/ml) et se présente (dans le gel) sous la forme de particules gonflées ayant un diamètre de 160 à 530 ym, et que (2) les particules minérales telles que la silice et le kaolin micronisés aient un diamètre homogène. Quand elle est présente dans ledit système gélifié, ladite seconde phase renferme avantageusement une ou plusieurs substances inhibant les éventuels contaminants ou lysant les cellules (notamment les érythrocytes et/ou les leucocytes) et/ou éliminant les lipides (cas de la clarification des échantillons de lait à tester), qui sont contenus dans ledit échantillon liquide provenant dudit matériau biologique et susceptibles d'interférer à l'étape (4 ) en réagissant avec ledit réactif induisant une variation de mesure optique détectable en présence de microorganismes. Quand ladite seconde phase n'est pas présente dans le système gélifié de l'invention, il est recommandé que la ou lesdites substances (inhibitrices, lysantes et/ou éliminantes) soient incluses dans ladite première phase. Le système gélifié selon l'invention peut en outre comporter pour la mise en oeuvre de l'étape (1") du procédé préconisé (c) une troisième phase, dite barrière, infranchissable lors de la centrifugation de l'étape (3 ), par les microorganismes éventuellement présents, ladite troisième phase étant disposée sous la première phase de telle façon que ladite première phase repose sur ladite troisième phase. Ladite troisième phase (ou "troisième couche") est soit une paraffine soit un gel d'une substance polymérique. Quand elle est une paraffine, il s'agit d'une paraffine solide fondant à une température supérieure à la température de multiplication des microorganismes, par exemple - une paraffine fondant à une température supérieure ou égale à 30"C, quand la culture pour la pousse des microorganismes intervenant à l'étape (4 ) est réalisée à RT, - une paraffine fondant à une température supérieure ou égale à 45"C, quand la culture pour la pousse des microorganismes intervenant à l'étape (4 ) est réalisée à 370C, ou - une paraffine fondant à une température supérieure ou égale à 50-55"C, quand la culture pour la pousse des microorganismes intervenant à l'étape (4 ) est réalisée à 450C. De préférence, on fera appel à une paraffine fondant à une température supérieure ou égale à 50"C qui sera introduite à l'état fondu dans le tube de centrifugation. Quand la phase barrière est un gel, ledit gel sera constitué par un mélange intime d'eau et de particules polymériques absorbant l'eau, qui ont été gonflées de telle façon que dans ledit mélange intime lesdites particules polymériques aient (a) une concentration en poids sec comprise entre 0,04 et 0,2 g/ml et (ss) un diamètre à l'état gonflé compris entre 30 et 130 ym. Ledit gel est constitué d'une substance polymérique (notamment du type dextrane ou analogue) préalablement gonflée avec de l'eau de façon à former un gel, comme ladite première phase, mais de façon à retenir dans sa masse ou au niveau de sa face supérieure, lors de la centrifugation, les particules non solubles, contenues dans ledit échantillon liquide et ayant une taille plus importante (i.e. taille supérieure ou égale à 5 ou 8 Hum). Ainsi la phase barrière va retenir à sa surface supérieure (cas de la paraffine solide) ou dans sa masse (cas du gel) les cellules, notamment les érythrocytes ayant en moyenne une taille de 5-8 clam, les leucocytes ayant en moyenne une taille de 10-12 ym, les cellules épithéliales (en particulier dans le cas de l'urine) ayant en moyenne une taille de 20-50 Hm, les cylindres ayant en moyenne une taille supérieure à 40 clam, les cristaux ayant en moyenne une taille de 20-200 ym et des fragments de paroi cellulaire, lorsque les cellules n'auront pas été lysées lors de la traversée durant la centrifugation de la première phase ou de l'ensemble deuxième phase/première phase. De façon pratique, quelle que soit la nature de la phase barrière, les particules solides les plus lourdes contenues dans ledit échantillon liquide vont se répartir selon un gradient : les plus petites (i.e. les moins lourdes d'entre elles) au-dessus des plus grandes (i.e. les plus lourdes d'entre elles). Quand le système gélifié ne comporte pas la phase barrière, il est important que ledit système gélifié soit disposé dans un tube de centrifugation à fond conique (comme envisagé dans les documents FR-A-2 577 321 et EP-A-0 454 509 précités). Dans ce cas, la répartition des particules solides les plus lourdes est réalisée au fond du tube de centrifugation comme indiqué ci-dessus, les microorganismes étant disposés juste au-dessus des cellules. I1 est important que, à l'état gonflé, ladite substance polymérique du gel de la phase barrière soit à une concentration en poids sec de 0,04 à 0,2 g/ml (de préférence à une concentration de 0,14 g/ml) et se présente sous la forme de particules gonflées ayant un diamètre de 30 à 130 tcm. Quand la phase barrière est présente dans le système gélifié selon l'invention, ledit système gélifié peut être logé dans un tube de centrifugation quelconque, notamment un tube à fond rond ou sphérique. La présence de la phase d'absorption est avantageuse en ce sens qu'elle permet d'éviter que le liquide (principalement l'eau) dudit échantillon liquide soit en contact avec la phase de révélation avant et après la centrifugation. La présence simultanée de la phase d'absorption et de la phase barrière est avantageuse en ce sens qu'elle autorise l'utilisation d'une phase de révélation de faible épaisseur. Par suite les microorganismes présents dans la masse ou au niveau de la face inférieure de ladite phase de révélation seront plus concentrés dans un volume donné et par suite plus facilement détectables lors de la révélation colorimétrique (soit à l'oeil nu soit au moyen d'un colorimètre). Le système gélifié selon l'invention qui comprend ladite première phase seule ou associée avec au moins l'une desdites seconde phase et troisième phase est imperméable au liquide dudit échantillon liquide. Lors de la centrifugation, ledit liquide et les ingrédients qui y sont dissous ne traversent pas ledit système gélifié, en revanche les ingrédients non dissous dans ledit échantillon liquide migrent dans l'épaisseur dudit système gélifié et sont séparés en fonction de leurs tailles comme expliqué ci-dessus. Le système gélifié selon l'invention peut en outre comporter pour la mise en oeuvre de l'étape (1") du procédé préconisé (d) une quatrième phase, dite de protection, qui (i) est une huile inerte de densité inférieure à celle de l'eau, de préférence une huile de paraffine, (ii) avant centrifugation, repose sur ladite première phase en l'absence de la seconde phase, ou ladite seconde phase quand celle-ci est présente dans ledit système gélifié, et (iii) après centrifugation selon l'étape (3 ), repose sur l'eau dudit échantillon liquide. L'huile de la phase de protection est nécessairement inerte vis-àvis des constituants du système gélifié et des composants de l'échantillon liquide. On recommande plus particulièrement une huile qui fond à une température inférieure à RT et qui a un point d'ébullition supérieur à 50"C voire supérieur à 55"C. Convient en particulier une huile de paraffine. de façon pratrique, on introduira un volume de 0,25 à 1 ml de la phase de protection dans un tube de centrifugation de 5 ml. Selon l'invention, la phase de protection remplit avantageusement deux fonctions : elle évite la déshydratation et la contamination du système gélifié, lors du stockage, d'une part, et elle permet de ne pas dégrader, lors de l'introduction dudit échantillon liquide dans le tube de centrifugation par coulée, la couche dudit système gélifié sur laquelle elle repose, d'autre part. On recommande de façon préférée, à l'étape (1 ) de faire appel soit à un système gélifié comprenant, de haut en bas, dans un tube de centrifugation à fond conique - ladite quatrième phase, - ladite seconde phase, et - ladite première phase, soit à un système gélifié comprenant, de haut en bas, dans un tube de centrifugation à fond rond ou sphérique: - ladite quatrième phase, - ladite seconde phase, - ladite première phase, et - ladite troisième phase. La centrifugation de l'étape (3 ) est une centrifugation supérieure à 500g et se situant dans l'intervalle de 1000 g à 5000 g (soit approximativement, selon les dispositifs de centrifugation usuels, à une vitesse angulaire de 2200 à 4500 tours/minute). Cette centrifugation a une durée d'au moins 5 minutes et de préférence une durée de 10 à 30 minutes. De façon avantageuse, la centrifugation selon l'invention sera réalisée à 20004000g pendant 15 minutes. Ladite centrifugation selon l'invention est en général effectuée à RT. On peut, si cela est requis, réaliser ladite centrifugation à une température comprise entre RT et 450C (de préférence entre RT et 370C), c'est-à-dire à une température analogue à celle de la culture prévue à l'étape (4 ) pour la pousse des microorganismes pouvant être présents dans ledit échantillon liquide, mais l'utilisation d'une température supérieure à RT n'est pas essentielle pendant la centrifugation. Quand la phase de protection est présente dans le système gélifié de l'invention, le liquide dudit échantillon liquide migre à travers ladite phase de protection au cours de la centrifugation ; après ladite centrifugation ledit liquide dépourvu des constituants solides non-dissous qui ont également migré se trouve situé entre ladite phase de protection et la phase d'absorption (si celle-ci est présente) ou la phase de révélation (en l'absence de la phase d'absorption dans ledit système gélifié). La révélation prévue à l'étape (4") intervient pendant la centrifugation, d'une part, et le cas échéant après culture des microorganismes à une température comprise entre RT et 450C, d'autre part. La durée de la culture requise pour la pousse des microorganismes est en général fonction de la concentration initiale desdits microorganismes (bactéries et/ou levures) dans ledit échantillon liquide. En pratique, pour un échantillon liquide ayant une concentration initiale en bactéries inférieure au seuil de détection (i.e. 103 germes/ml), il faut prévoir une durée de culture d'au plus 24h (de préférence une durée de 1-2h), sauf pour les souches de Staphylococcus aureus qui ont une multiplication relativement lente (pour lesdites souches de Staphylococcus il faut compter environ 24 h de culture). Pour un échantillon liquide ayant une concentration initiale en levures inférieure au seuil de détection (i.e. 103 germes/ml), il faut prévoir une durée d'au plus 36 h (de préférence une durée de 24-30 h). Pour favoriser la détection desdite levures, il est recommandé d'incorporer un antibactérien tel que décrit dans le document WO-A-90/03726 précité, notamment la gentamycine, dans la phase d'absorption et/ou la phase de révélation, afin d'inhiber la croissance des bactéries ou de détruire lesdites bactéries. Le milieu de culture utilisé pour gonfler la phase de révélation comporte une source de carbone, une source d'azote et des oligoéléments, par exemple une peptone (5 à 20 g/l), un sucre (1 à 20 g/l, de préférence 5 g/l), un extrait de levure (1 à 5 g/l) et des vitamines (10 à 20 ml) avec un tampon pour stabiliser le pH à une valeur se situant entre 6,0 et 8,0. Pour les bactéries, ce milieu est constitué par un exemple d'un bouillon coeur-cervelle additionné d'un sucre. Pour les levures ce milieu peut être soit identique à celui des bactéries soit différent, par exemple : un milieu YNB+glucose, un milieu Sabouraud, un milieu YNB+maltose (qui sont décrits dans WO-A90/03726 précité). Pour les bactéries Gram-négatif, on utilisera avantageusement comme milieu de culture le bouillon coeur-cervelle+sucre contenant en tant que réactif préféré induisant une variation de mesure optique détectable - la résazurine, à la concentration finale de 0,05 g/ml (0,2 mM), - le rouge de phénol, à la concentration finale d'environ 0,065 g/ml (0,17 mM), - le substrat chromogène H-L-Ala-pNA, à la concentration finale d'environ 0,50 g/l (2 mM), ou - le substrat fluorogène H-L-Ala-NA (environ 2 mM), ce milieu étant tamponné à pH 6,5-8,0 au moyen d'un tampon phosphate ou Tris (0,1 M), et pouvant contenir le cas échéant - un activateur appartenant à l'ensemble des cations divalents, notamment Mg2+, Ca2+ ou Mn2+ (par exemple une solution de MnC12 ou MnSO4 à 30 mg/l environ), - un réactif de diazotation tel que le p-diméthylaminocinnamaldéhyde ou le Fast Blue BB, et/ou - un ou plusieurs inhibiteurs des réactions parasites liées notamment à la présence d'enzymes dans ledit échantillon liquide à tester (par exemple dans le cas du screening des urines l'aprotinine pour inhiber l'urokinase urinaire et l'EDTA pour inhiber les phosphatases). Le ou les inhibiteurs peuvent en pratique être disposés dans la phase de révélation et/ou la phase d'absorption. Pour les bactéries Gram-positif, on utilisera avantageusement le milieu décrit cidessus relativement aux bactéries Gram-négatif avec comme réactif préféré induisant une variation de mesure optique détectable - la résazurine à la concentration finale d'environ 0,05 g/ml, - le substrat chromogène H-L-Leu-pNA à la concentration finale d'environ 2 mM, ou - le substrat fluorogène H-L-Leu-NA à la concentration finale de 2 mM, le pH étant tamponné à 6,0-8,0, ledit milieu pouvant comporter le cas échéant un activateur, un réactif de diazotation et/ou un ou plusieurs inhibiteurs comme indiqué cidessus. Pour les levures, on utilisera avantageusement un milieu YNB+sucre tamponné à pH 6,5-8,0, avec comme réactif préféré induisant une variation de mesure optique détectable, le substrat chromogène H-L-Pro pNA ou un substrat équivalent, un inhibiteur essentiel étant un antibiotique tel que la gentamycine, la streptomycine ou le chloramphénicol pour inhiber la croissance des bactéries. Ledit inhibiteur essentiel peut également être présent dans la phase d'absorption. D'autres avantages et caractéristiques de l'invention seront mieux compris à la lecture de la description qui va suivre des dessins et d'exemples de réalisation. Bien entendu l'ensemble de ces éléments n'est nullement limitatif mais est donné à titre d'illustration. Le système gélifié 10 selon l'invention est logé dans un tube de centrifugation à fond conique 6a ou à fond sphérique 6b. Ledit système gélifié 10 comprend au moins une couche, à savoir la phase de révélation 1 qui est un gel préalablement gonflé au moyen d'un milieu aqueux de culture de microorganismes, et le cas échéant une ou plusieurs autres couches, à savoir la phase d'absorption 2 qui est soit un gel préalablement gonflé avec de l'eau et pouvant contenir un ou plusieurs inhibiteurs (tels que l'aprotinine et 1'EDTA), soit une couche particulaire (silice ou kaolin) micronisée à une granulométrie inférieure à 0,1 iim, la phase barrière 3 qui est un gel préalablement gonflé avec de l'eau ou une couche de paraffine solide dans les conditions de centrifugation et de culture, et/ou la phase de protection 4 qui est une couche de paraffine liquide dans lesdites conditions. La figure 1 a trait à un système gélifié 10 selon l'invention comportant une seule couche, la phase de révélation 1, logée dans un tube de centrifugation à fond conique 6a. L'échantillon liquide 5 est versé audessus de ladite phase de révélation 1. Par centrifugation les particules non dissoutes dans ledit échantillon liquide migrent dans l'épaisseur de la phase de révélation, en revanche le liquide dudit échantillon liquide 5 et les ingrédients dissous ne traversent pas la phase de révélation. Après ladite centrifugation, les particules les plus grosses qui sont les plus lourdes se trouvent réparties au fond du tube 6a en fonction de leurs tailles, au fond les cellules et, au-dessus desdites cellules, les microorganismes qui sont situés au voisinage de la partie inférieure de la phase de révélation 1. Le système gélifié selon la figure 1 donne de bons résultats, cependant il n'est pas totalement satisfaisant en ce sens que le gel de la phase de révélation 1 (i) est au contact dudit échantillon liquide 5 pendant la centrifugation et la culture, et (ii) peut par suite être dilué par ledit échantillon liquide 5. Les figures 2a et 2b ont trait au même système gélifié 10 avant (fig. 2a) et après (fig. 2b) centrifugation. Par rapport au système gélifié de la figure 1, le système gélifié des figures 2a et 2b comporte en outre une couche d'huile (paraffine liquide) constituant la phase de protection. On verse dans le tube 6a la phase de révélation 1 puis la phase de protection 4, procède à une centrifugation (2000-3000 g pendant 10-20 minutes) pour tasser ledit système gélifié 10. On verse ensuite dans le tube 6a échantillon liquide 5 à tester. Ledit échantillon liquide 5 se répartit au-dessus de la phase de protection 4 (voir figure 2a) avant centrifugation. Lors de la centrifugation ledit échantillon liquide 5 migre à travers la phase de protection 4 avec les ingrédients solubles qu'il contient. Ses particules solides migrent à travers la phase de révélation 1, les plus lourdes desdites particules se répartissent au fond du tube comme indiqué ci-dessus pour la figure 1. Après centrifugation, le liquide de l'échantillon liquide 5 est situé entre la phase de protection 4 et la phase de révélation 1 (voir figure 2b). Le système gélifié des figures 2a et 2b est certes meilleur que celui de la figure 1, il présente néanmoins l'inconvénient d'un contact de l'échantillon liquide 5 avec la phase de révélation 1 après centrifugation pendant l'étape dite de culture. La figure 3 a trait à un système gélifié 10 selon l'invention comprenant deux couches : la phase de révélation 1 et la phase d'absorption 2. On verse dans le tube de centrifugation à fond conique 6a la phase de révélation 1 puis la phase d'absorption 2, centrifuge (1000-3000 g pendant 10-20 minutes) pour tasser ledit système gélifié 10. On verse ensuite dans le tube 6a l'échantillon liquide 5 à tester. Ledit échantillon liquide 5 se répartit au-dessus de la phase d'absorption. Lors de la centrifugation de l'étape (3 ), les particules solides contenues dans l'échantillon liquide 5 migrent en fonction de leurs tailles à travers la phase d'absorption 2 et/ou la phase de révélation 1, en revanche le liquide dudit échantillon liquide 5 et les ingrédients qui y sont dissous ne traversent pas la phase d'absorption 2. Après la centrifugation de l'étape (3 ), on retrouve au fond du tube 6a les particules les plus grosses et lourdes dudit échantillon liquide 5 selon la répartition donnée ci-dessus pour les figures 1 et 2a-2b. Le fait que la phase de révélation 1 soit isolée du liquide dudit échantillon liquide 5 par la phase d'absorption 2, après la centrifugation de l'étape (3 O), d'une part, et que la phase d'absorption 2 absorbe les particules de faible taille, d'autre part, constitue un avantage. Les figures 4a [avant centrifugation] et 4b [après centrifugation selon l'étape (3 )] ont trait à un système gélifié 10 selon l'invention analogue à celui de la figure 3 mais comportant en plus, dans un tube de centrifugation à fond conique 6a, une couche d'huile (huile de paraffine), à savoir la phase de protection 4. On verse dans le tube 6a la phase de révélation 1, la phase d'absorption 2 puis la phase de protection 4, procède à une centrifugation (1000-3000 g pendant 10-20 minutes) pour tasser ledit système gélifié 10. On verse ensuite dans le tube 6a l'échantillon liquide 5 à tester. Ledit échantillon liquide 5 se répartit audessus de la phase de protection 4 (voir figure 4a). Lors de la centrifugation de l'étape (3 ) l'échantillon liquide 5 migre à travers la phase de protection 4, et les particules solides qu'il contient migrent également en fonction de leur taille à travers la phase d'absorption 2 et/ou la phase de révélation 1, en revanche le liquide dudit échantillon liquide 5 et les ingrédients qui y sont dissous ne traversent pas la phase d'absorption 2. Après centrifugation, les particules les plus grosses et les plus lourdes se trouvent réparties au fond du tube 6a comme indiqué plus haut. La figure 5 a trait à un système gélifié 10 selon l'invention comportant trois couches, à savoir de bas en haut : la phase barrière 3, la phase de révélation 1 et la phase d'absorption 2, la couche 1 étant un gel, la couche 2 étant soit un gel soit une phase particulaire, et la couche 3 étant soit un gel soit une paraffine solide. Dans un tube à fond sphérique 6b, on verse successivement la phase barrière 3 (préalablement fondue, si elle est constituée par une paraffine solide à une température de RT à 50-55"C, puis refroidie), la phase de révélation 1 puis la phase d'absorption 2. On procède à une centrifugation (1000-3000 g pendant 10-20 minutes) pour tasser ledit système gélifié 10. On verse ensuite dans le tube 6b l'échantillon liquide 5 à tester. Ledit échantillon liquide 5 se répartit au-dessus de la phase d' absorption 2 avant la centrifugation de l'étape (3 ). Lors de la centrifugation de l'étape (3 ) le liquide dudit échantillon liquide 5 et les constituants dissous qu'il contient ne migrent pas à travers la phase d'absorption 2 ; seules migrent à travers le système gélifié 10 constitué par l'ensemble phase d'absorption/phase de révélation/phase barrière, en fonction de leur taille, les particules solides dudit échantillon liquide 5. Quand la phase barrière 3 est une paraffine solide toutes les particules grosses et lourdes ne traversent pas son épaisseur mais se répartissent en fonction de leur taille au niveau de l'interface phase de révélation/phase barrière. La configuration des couches 2, 1 et 3 selon la figure 5 (il en est de même pour le système gélifié des figures 6a et 6b) offre l'avantage de pouvoir diminuer l'épaisseur de la phase de révélation 1 prise en sandwich entre la phase d'absorption 2 et la phase barrière 3 et d'améliorer ainsi la lecture de la variation de OM soit à l'oeil nu (changement de couleur) soit au moyen d'un colorimètre. Les figures 6a [avant la centrifugation de l'étape (3 )] et 6b [après la centrifugation de l'étape (3 )] ont trait à un système gélifié 10 selon l'invention, qui est analogue à celui de la figure 5, mais comportant en outre une couche d'huile 4 (huile de paraffine) constituant la phase de protection. La répartition des particules solides de l'échantillon liquide 5 s'effectue comme indiqué pour la figure 5, la phase de protection 4 permettant la migration dudit échantillon liquide 5 lors de la centrifugation de l'étape (3 ). Les substances polymériques qui interviennent à l'état gonflé dans les gels (de haut en bas) de la phase d'absorption 2, de la phase de révélation 1 et de la phase barrière 3, sont avantageusement des particules de dextrane. Conviennent en particulier les produits de la gamme Sephadex G commercialisés par la société dite PHARMACIA FINE CHEMICALS (Uppsala, Suède), à savoir - pour la phase d'absorption 2, le produit G 25C, - pour la phase de révélation 1, les produits G 25 à G 100 de granulométrie dite grossière à moyenne, tels que G 25M, G 50C, G 50M, G 75 et G 100 (le produit préféré étant G 100), - pour la phase barrière 3, les produits G 150 à G 200 de granulométrie dite moyenne à superfine, tels que les G 150, G 150S, G 200 et G 200S (les produits préférés étant G 200 et surtout G 200S). Les caractéristiques de ces produits du type dextrane sont consignées dans le tableau I ci-après. TABLEAU I Phase Gel (A) Domaine de fractionnement (MW) (B) (C) Absorption G 25C 100-300 1000-5000 100-5000 G 25M 50-150 1500-30000 500-10000 G 50C 100-300 1500-30000 500-1000 Révélation G 50M 50-150 1500-30000 500-10000 G 75 40-120 3000-80000 1000-50000 G100 40-120 4000-150000 1000-100000 G 150 40-120 5000-300000 1000-150000 Barrière G 150S 10-40 5000-150000 1000-150000 G 200 40-120 5000-600000 1000-200000 G 200S 1040 5000-250000 1000-200000 Notes: (A) : diamètre en m des particules à l'état sec (B) : peptides et protéines globulaires (C) : dextranes G 25C: "SephadexR G 25 Coarse" G 25M: "SephadexR G 25 Medium" G SOC: "SephadexR G 50 Coarse" G 50M: "SephadexR G 50 Medium" G 75 : "SephadexR G 75" G 100 : "SephadexR G 100" G 150 : "Sephadex) G 150 Superfine" G 200 : "SephadexR G 200" G 200S: "SephadexR G 200 Superfine" Dans les tableaux II et III ci-après, on a donné pour les gels préférés, les caractéristiques relatives à la granulométrie à l'état gonflé et à la concentration, qui sont importantes selon l'invention. TABLEAU II Phase Gel Diamètre des grains ( m) à l'état gonflé (A) (B) Absorption G 25C 160-530 172-516 Révélation G 100 90-320 103-311 Barrière G 200S 30-130 32-129 Notes: |(A): domaine de l'invention (B) : domaine préféré TABLEAU HI Phase Gel | Concentration (g/ml) (A) (B) (C) Absorption G 25C 0,2 0,35 1 Révélation G 100 0,05 0,1 0,2 Barrière G 200S 0,04 0,14 0,2 Notes: (A) : concentration minimale selon l'invention (B) : concentration préférée selon l'invention (C): concentration maximale selon l'invention En se référant aux concentrations minimales et maximales des gels fournis dans le tableau III, il convient de remarquer que: (1) si le gel en contact avec le liquide de l'échantillon liquide 5 (i.e. couche 1 de la figure 1 ou couche 2 des figures 3 et 5) est plus concentré, il y a un risque de passage dudit échantillon liquide 5 à travers ledit gel pendant la centrifugation (2) si tous les gels sont plus concentrés, la détection de la présence ou de l'absence de microorganismes est gravement perturbée; (3) si l'un au moins des gels est plus dilué, on peut avoir des échanges de liquide entre l'échantillon liquide et le gel sous jacent, d'une part, ou entre deux gels adjacents, d'autre part, ce qui fausse ladite détection. On peut supprimer la phase barrière 3, comme cela est illustré par les figures 1, 2a-2b, 3 et 4a-4b, lorsque les grosses particules (érythrocytes, leucocytes, autres cellules) n'ont pas d'activité sur le réactif induisant une variation de mesure optique détectable. Cela est notamment le cas quand ledit réactif est la résazurine. On peut supprimer la phase d'absorption 2 et la phase barrière 3 comme cela est illustré par les figures 1 et 2a-2b, quand aucune substance (dissoute ou particulaire) présente dans l'échantillon liquide 5 n'a d'activité sur ledit réactif induisant une variation de mesure optique détectable ou lorsque toute interférence possible peut être inhibée pendant la révélation de l'étape (4 ) Si la concentration des microorganismes éventuellement présents dans l'échantillon liquide 5 à tester et qui ont migré lors de la centrifugation de l'étape (3 ) pour se trouver dans la phase de révélation 1 (soit dans l'épaisseur de ladite phase 1, soit au-dessus de l'interface phase 1/phase 3 ou phase 1/paroi inférieure du tube 6a), est supérieure au seuil de détection du réactif de la phase de révélation 1, induisant une variation de mesure optique détectable il n'y a pas lieu de procéder à la multiplication des microorganismes par culture in situ à l'étape (4"). En revanche, si après ladite centrifugation la concentration des microorganismes est inférieure au seuil de détection, il est requis d'entreprendre ladite multiplication par culture in situ dans le tube de centrifugation au niveau de ladite phase de révélation 1, de préférence à une température de 37"C. Le tube de centrifugation 6a ou 6b est réalisé en un matériau transparent (plastique ou verre). En variante, ledit tube peut être transparent sur au moins une partie de sa surface périphérique en regard de zone garnie avec la phase de révélation 1. Selon l'invention, le seuil de détection des microorganismes, rapporté à la concentration initiale desdits microorganismes dans ledit échantillon liquide 5, est de 103 germes/ml, c'est-à-dire nettement inférieur au seuil de 105 germes/ml des techniques antérieures illustrées notamment par les tests Bac-T-ScreenB et FiltraCheckB-UTI précités. Cette amélioration est due au fait que, selon l'invention, on (a) concentre les microorganismes de l'échantillon liquide 5, qui ont migré lors de la centrifugation, dans la phase de révélation 1, puis (ss) le cas échéant les fait multiplier dans le milieu nutritif. Pour concentrer les microorganismes dans la phase de révélation, il est recommandé selon l'invention de faire appel à une phase de révélation 1 ayant un volume et une épaisseur les plus faibles possibles. Par suite, la forme du tube de centrifugation sera choisie de telle façon que le facteur de concentration des microorganismes, qui est directement proportionnel au rapport volume de l'échantillon à tester/volume de la phase de révélation, soit maximal. Le volume de la phase de révélation est déterminé par la formule V = wR2h (où V est exprimé en ml, R le rayon et h la hauteur sont exprimés en cm). Plus le diamètre du tube est faible, plus le facteur de concentration augmente. A titre d'exemple, le facteur de concentration peut être un multiple de 103 quand le rayon du tube est divisé par 10. Les figures 7 et 8 montrent des systèmes gélifiés préférés selon l'invention, tels qu'ils se présentent après centrifugation. Le tube de la figure 7, qui a un contenu similaire à celui de la figure 4b, comporte une phase de révélation 1 de volume plus faibles que ceux de la phase 2 et de l'échantillon 5, qui est logée au fond dudit tube de centrifugation 6a dans la portion inférieure de la partie conique. Le tube 6b de la figure 8, qui a un contenu similaire à celui de la figure 6b, présente un fond sphérique (qui peut avoir un diamètre plus petit que celui du reste du tube) où est logé la phase barrière 3 et la phase de révélation 1. Ce fond est tel que la phase de révélation 1 prise en sandwich entre la phase barrière 3 inférieure et la phase d'absorption 2 supérieure ait un volume et une épaisseur letplus faibles possibles. A titre d'exemple, si on fait appel à un tube en plastique transparent, selon la figure 8, ayant un volume de 12 ml, un diamètre intérieur de 1,35 cm et dans lequel on introduit un volume de 6 ml d'échantillon d'urine à tester, pour obtenir la phase de révélation 1 sous la forme d'un anneau de 0,2 cm de hauteur, il faut que le volume de ladite phase 1 à utiliser ait pour valeur de V = 7t.(l,35/2)2.0,2 i.e., environ 0,3 ml. Le facteur de concentration (F) des microorganismes de l'urine est alors de 6/0,3 = 20 pour qu'un anneau coloré soit visible.Comme la réaction positive débute par un point représentant moins du dixième du diamètre du tube, le volume réactionnel utile de la phase de révélation 1 devient alors de 0,003 ml, ce qui conduit à un facteur de concentration de 6/0,003 = 2000, soit une augmentation du seuil de sensibilité du facteur de concentration d'un multiple de 103 visé ci divisée par 10 ; soit 0,135 cm de diamètre), V devient 0,3 x 10-2 ml, soit une augmentation de 102 du facteur F pour un anneau et une augmentation de 103 dudit facteur F pour un point. Exemple 1 Dans un tube de centrifugation en plastique transparent, d'un volume de S ml et d'un diamètre intérieur de 1,10 cm on introduit successivement - 0,5 ml d'un gel G 200S/eau distillée, dans lequel G 200S est à une concentration en poids sec de 0,2 g/ml et a une granulométrie à l'état gonflé de 40-100 ym, pour former la phase barrière - 0,25 ml d'un gel G 100/milieu de culture aqueux, dans lequel G 100 est à une concentration en poids sec de 0,2 g/ml et a une granulométrie à l'état gonflé de 120-300 ym, ledit milieu de culture aqueux ayant la composition suivante bouillon de coeur-cervelle 37 g/l glucose 5 g/l agarose (type IX) 0,33 g/l pH 7,4 + 0,1 et contenant 0,05 g/ml de résazurine, pour former la phase de révélation; et, - 0,5 ml d'un gel G 25C/eau distillée, dans lequel G 25C est à une concentration en poids sec de 1 g/ml et a une granulométrie à l'état gonflé de 40-110 ym, pour former la phase d'absorption. On procède à une centrifugation (1000-3000 g pendant 10-20 minutes à RT) pour tasser le système gélifié résultant. En variante, ladite centrifugation de tassage peut être effectuée après l'introduction de chacune desdites phases avant d'introduire la phase suivante. On dispose d'un système gélifié prêt à l'emploi. Exemple 2 On introduit, au-dessus du système gélifié préparé selon l'exemple 1 ci-dessus, 1 ml d'huile de paraffine en tant que phase de protection. On obtient ainsi un dispositif pour détecter la présence ou l'absence de microorganismes dans un échantillon d'un matériau biologique, ledit dispositif étant stable au stockage. Exemple 3 Dans un tube de centrifugation en plastique transparent, d'un volume de 5 ml et d'un diamètre intérieur de 1,10 cm, on introduit successivement - 0,5 ml de paraffine fondant à une température supérieure ou égale à 50 C (l'introduction de cette paraffine est effectuée à l'état fondu), pour former (après refroidissement jusqu'à RT) la phase barrière - 0,25 ml d'un gel G 100/milieu de culture aqueux, dans lequel G 100 est à une concentration en poids sec de 0,2 g/ml et a une granulométrie à l'état gonflé de 103-311 ym, ledit milieu de culture aqueux ayant la composition suivante bouillon de coeur-cervelle 37 g/l glucose 5 g/l agarose (type IX) 0,33 g/l pH 7,4#0,1 et contenant 2 mM de H-L-Ala-NA en tampon phosphate (0,1 M) à pH 8,0, pour former la phase de révélation ; et, - 0,5 ml d'un gel G 25C/eau distillée dans lequel G 25C est à une concentration en poids sec de 1 g/ml et a une granulométrie à l'état gonflé de 32-129 m, l'eau distillée utilisée pour élaborer ce gel contenant 0,06 g/ml d'EDTA, pour former la phase d'absorption. On procède à une centrifugation (1000-3000 g pendant 10-20 minutes à RT) pour tasser le système gélifié résultant. En variante, ladite centrifugation de tassage peut être effectuée après l'introduction de chacune desdites phases avant d'introduire la phase suivante. On dispose d'un système gélifié prêt à l'emploi. Exemple 4 On introduit, au-dessus du système gélifié préparé selon l'exemple 3 ci-dessus, 0,25 ml d'huile de paraffine en tant que phase de protection. On obtient ainsi un dispositif pour détecter la présence ou l'absence de microorganismes dans un échantillon d'un matériau biologique, ledit dispositif étant stable au stockage. Exemple 5 On procède comme indiqué à l'exemple 3 avec la différence que le milieu de culture aqueux utilisé pour le gonflement de G100 en vue d'obtenir la phase de révélation contient en outre un réactif de diazotation, le pdiméthylaminocinnamaldéhyde. Exemple 6 Dans un tube de centrifugation en plastique transparent ayant un fond conique, un diamètre intérieur (dans sa portion cylindrique) de 1 cm et un volume de 5 ml, on introduit successivement - 0,20 ml d'un gel G 100/milieu de culture aqueux, dans lequel G 100 est à une concentration en poids sec de 0,2 g/ml et a une granulométrie à l'état gonflé de 103-311 clam, ledit milieu de culture aqueux ayant la composition suivante YNB 6,7 g/l maltose 20,0 g/l gentamycine 0,05 g/l cycloheximide 0,5 g/l pH 6,0 et contenant 1 mM de H-L-Pro-pNA (ce milieu de culture contenant un substrat spécifique des souches de Candida albicans permettant de distinguer lesdits Candida albicans des autres Candida), pour former la phase de révélation ; et, - 0,5 ml de kaolin micronisé et ayant une granulométrie homogène de 0,055-0,060 ym, pour former la phase d'absorption. On tasse le système gélifié résultant par centrifugation à 2000 g pendant 15 minutes à RT. On dispose ainsi d'un système gélifié prêt à l'emploi, qui est spécifiquement destiné à l'identification des Candida albicans parmi un ensemble de souches non isolées de Candida. Exemple 7 On introduit au-dessus du système gélifié préparé selon l'exemple 6, 1 ml d'huile de paraffine, pour former la phase de protection et on centrifuge à 2000 g pendant 15 minutes à RT pour tasser le système gélifié résultant. Exemples 8 et 9 On procède comme indiqué à l'exemple 6 ciVessus mais en utilisant comme milieu nutritif 0,20 ml du milieu nutritif de l'exemple 1 contenant de la résazurine pour l'obtention de la phase de révélation afin de préparer un système gélifié spécifique de la détection des bactéries (exemple 8). A partir du système gélifié ainsi obtenu, on prépare selon l'exemple 7 un système gélifié prêt à l'emploi qui est pourvu de la phase de protection (exemple 9). Exemples 10 et il On procède comme indiqué à l'exemple 6 ci-dessus mais en utilisant comme milieu nutritif 0,20 ml d'un milieu nutritif spécifique des souches d'Aspergillus pour l'obtention de la phase de révélation afin de préparer un système gélifié spécifique de la détection de ces levures (exemple 10). A partir du système gélifié ainsi obtenu, on prépare selon l'exemple 7 un système gélifié prêt à l'emploi qui est pourvu de la phase de protection (exemple 11). Exemple 12 On a introduit dans les tubes contenant les systèmes gélifiés préparés selon les exemples 1 et 5, un volume de 1 à 4 ml d'urine stérilisée (où on a introduit différentes concentrations de souches d'Escherichia colt? ou d'urine d'un patient atteint d'infection urinaire provoquée par des souches d'Escheridia coli. Après 20 minutes de centrifugation à 3000-5000 g et à RT on observe, avec un échantillon d'urine d'infection urinaire contenant des souches d'Escheridia coli à la concentration de 105 CFU/ml, un point rose avec la résazurine (i.e. système gélifié préparé selon l'exemple 1) et un point rouge avec le mélange H-L-Ala-NA/réactif de diazotation (i.e. système gélifié préparé selon l'exemple 5).Ces points colorés situés au niveau de la phase de révélation s'étendent et forment chacun un anneau coloré après quelques heures à RT ou 37"C. Les résultats obtenus avec la résazurine ont été consignés ci-après dans le tableau IV. TABLEAU IV Détection de souches d 'Escherichia coli avec la résazurine Lecture Bactéries/ml en urine d'infection urinaire 108 107 106 105 104 103 àt=0,5h +++ +++ +++ ++ + +/ àt=2h +++ +++ +++ +++ +++ +++ Exemple 13 Des essais complémentaires ont été réalisés sur des lots d'urine provenant de 50 personnes (35 personnes étant atteintes d'infection urinaire bactérienne, 15 personnes utilisées pour contrôle ne souffrant pas d'infection urinaire).Les systèmes gélifiés des exemples 1-5 ont été utilisés simultanément pour chaque échantillon d'urine testé 2 ml d'urine ont été introduits dans chacun des tubes de centrifugation. Après centrifugation à 3000-5000 g pendant 15 minutes à RT puis culture in situ à 37"C pendant 24 h, on a observé avec ces échantillons d'urine une amélioration des Sen, Spe et NPV (pour de faibles concentrations bactériennes) avec les systèmes gélifiés selon l'invention par rapport aux tests Bac-T-Screen8 et FiltraCheckB-UTI précités. Une partie des résultats obtenus est consignée ci-après pour une concentration dans les échantillons d'urine de 103 bactéries/ml Sen = 95-98% Spe = 93-97% NPV = 91-94% Exemple 14 Le système gélifié de l'exemple 2 a été utilisé pour apprécier la présence ou l'absence de bactéries dans 8 blocs opératoires. Les tubes (d'un volume de 15 ml), garnis dudit système gélifié et pourvus ou non d'une collerette du type entonnoir au niveau de leur orifice supérieur, ont été disposés pendant 24 h dans des blocs opératoires au voisinage des arrivées de gaz, à une hauteur de 1,50 m et à une distance de 1 m du mur le plus proche. Avec une pipette, on a fait couler de l'eau distillée pour rincer la partie exposée de chaque tube et de chaque collerette présente. Après centrifugation (30 minutes à 3000 g) et culture in situ à 37 C pendant 24 h, on a pu détecter dans l'un des blocs opératoires la présence de bactéries dans l'atmosphère ambiante (principalement des souches de Staphylococcus). Le bloc opératoire contaminé a été stérilisé. Exemple 15 On a découpé puis finement dilacéré les filtres (membranes cellulosiques) des conduits d'aération de 6 blocs opératoires. Le matériau ainsi obtenu a été trituré avec de l'eau distillée ; le surnageant résultant a été introduit à raison de 1 à 2 ml dans des tubes obtenus selon le procédé des exemples 2 et 11. Après centrifugation à 3000-5000 g pendant 15 minutes à RT puis culture in situ à 37"C pendant 24 h, on a pu détecter dans l'un des six blocs opératoires la présence de bactéries (principalement des souches de Pseudomonas) et dans un autre desdits blocs opératoires la présence de levures (dans le cas d'espèce des souches d'Aspergillus). Les deux blocs opératoires contaminés ont été stérilisés. Exemple 16 Du lait "clarifié" (i.e. délipidé) et stérilisé a été contaminé avec des souches de Candida (à une concentration supérieure ou égale à 105 germes/ml) et réparti à raison de 2,5 ml dans des lots de tubes de centrifugation (5 tubes par lot) préparés selon le procédé de l'exemple 7 - le lot A contenant des souches isolées de Candida albicans, - le lot B contenant des souches isolées de Candida glabrata, - le lot C contenant des souches isolées de Candida krusei, - le lot D contenant des souches non isolées de divers Candida (i.e. des souches de Candida albicans associées à d'autres souches de Candida), et - le lot témoin étant constitué par ledit lait clarifié et stérilisé. Après centrifugation à 3500-4000 g pendant 20 minutes à RT, puis culture in situ à 370C pendant 1-2h, on a constaté que le système gélifié de l'exemple 7 donnait une réaction colorée positive avec les tubes des lots A et D et ne donnait aucune réaction colorée positive avec les lots B et C et le lot témoin. Exemple 17 Un échantillon d' hémoculture (provenant d'un patient infecté) préalablement mis en contact avec de la saponine (pour lyser les érythrocytes présents) est introduit à raison de 1 à 3 ml dans un tube de centrifugation garni du système gélifié préparé selon le procédé de l'exemple 4. On centrifuge à 3000-5000 g pendant 15 minutes à RT. Après culture in situ à 37"C pendant 1-2 h, on observe une réaction colorée positive dans ledit tube de centrifugation, ceci indiquant la présence de bactéries Gram-négatif dans l'hémoculture. En variante en introduisant dans la phase de révélation ou dans l'ensemble phase de révélation/phase d'absorption un antibiotique de façon à avoir un jeu de plusieurs tubes contenant chacun un antibiotique différent, on peut apprécier la résistance des bactéries contenues dans des hémocultures vis-à-vis d'antibiotiques usuels. Exemple 18 On découpe et dilacère finement de la viande boeuf. Au matériau ainsi obtenu, on ajoute du sérum physiologique et des bactéries (107 germes/ml de souches de Staphylococcus epidennidis). On recueille le surnageant et l'introduit à raison de 1-2 ml dans un tube contenant le système gélifié préparé selon le procédé de l'exemple 2. On centrifuge à 3000-5000 g pendant 15 minutes à RT culture in situ à 37"C pendant 24 h. On observe le changement de couleur à la partie inférieure de la phase de révélation ce qui confirme la présence de bactéries dans l'échantillon testé. Selon l'invention, on préconise un nécessaire, kit ou trousse de dosage qui comporte (1) au moins un tube de centrifugation à fond conique 6a contenant un système gélifié constitué, de haut en bas, de la phase de protection 4, la phase d'absorption 2 et de la phase de révélation 1, ou un tube de centrifugation à fond sphérique 6b contenant un système gélifié constitué, de haut en bas, de la phase de protection 4, de la phase d'absorption 2, de la phase de révélation et de la phase barrière 3, ou (2) des flacons contenant les matériaux constitutifs (i.e. le ou les gels, la substance particulaire, la paraffine solide et/ou la paraffine liquide) desdites phases, le réactif induisant une variation de mesure optique détectable en présence de microorganismes, et au moins le milieu de culture pour le gonflement de ladite phase de révélation 1. On préconise également l'utilisation du procédé et du système gélifié selon l'invention pour détecter la présence ou l'absence de bactéries dans un échantillon de sang ou d'urine, notamment dans le domaine du screening des hémocultures et du screening urinaire; - identifier une souche de microorganisme dans un échantillon biologique en utilisant au niveau de la phase de révélation (a) un réactif induisant une variation de mesure optique détectable et (ss) un milieu de culture, qui sont spécifiques de ladite souche, ou - déterminer la résistance de souches de microorganismes vis-à-vis d'un ensemble antibiotiques usuels. REVENDICATIONS 1. Procédé de détection de la présence ou de l'absence de microorganismes appartenant à l'ensemble des bactéries et des levures dans un échantillon liquide (5) d'un matériau biologique susceptible de contenir des cellules autres que celles desdits microorganismes, ledit procédé, qui met en oeuvre une technique de séparation sur gel, étant caractérisé en ce qu'il comprend les étapes consistant à (1 ) faire appel à un système gélifié (10) qui (i) sépare en fonction de leur taille les microorganismes, éventuellement présents dans ledit échantillon liquide (5) et qui proviennent dudit matériau biologique, des autres composants solides que peut contenir ledit échantillon liquide, (ii) est essentiellement imperméable à l'eau pouvant être présente dans ledit échantillon liquide et aux substances dissoutes éventuellement présentes dans ledit échantillon liquide, et (iii) comporte au moins (a) une première phase (1), dite de révélation, qui est un gel comportant un milieu de culture de microorganismes et un réactif induisant une variation de mesure optique détectable en présence de microorganismes, ledit gel étant un mélange intime d'eau et de particules polymériques absorbant l'eau, qui ont été gonflées de telle façon que dans ledit mélange intime lesdites particules polymériques aient (a) une concentration en poids sec comprise entre 0,05 et 0,2 g/ml et (ss) un diamètre à l'état gonflé compris entre 90 et 320 ;;m, l'eau dudit mélange intime provenant en totalité ou en partie dudit milieu de culture (2 ) introduire ledit échantillon liquide (5) dans un tube de centrifugation (6a, 6b) au-dessus dudit système gélifié (10) préalablement disposé dans ledit tube de centrifugation; (3 ) centrifuger le contenu dudit tube (6a, 6b) résultant ; et, (4 ) révéler la présence ou l'absence de microorganismes dans ledit échantillon liquide (5) provenant dudit matériau biologique, au niveau de ladite première phase (1) du système gélifié (10), par ledit réactif induisant une variation de mesure optique détectable. 2. Procédé suivant la revendication 1, caractérisé en ce que la révélation de l'étape (4 ) intervient après multiplication des microorganismes sur ledit milieu de culture, à une température comprise entre la température ambiante et 450C, en au plus 24 h (de préférence en 1-2 h) pour les bactéries et en au plus 36 h (de préférence en 24-30 h) pour les levures. 3. Procédé suivant la revendication 1, caractérisé en ce que la centrifugation de l'étape (3 ) est réalisée à 1000-5000 g. 4. Procédé suivant la revendication 1, caractérisé en ce que, à l'étape (1 ), ledit système gélifié comporte en outre (b) une seconde phase (2), dite d'absorption, essentiellement imperméable à l'eau pouvant être présente dans ledit échantillon liquide et aux substances qui y sont dissoutes, qui retient dans sa masse les particules non solubles contenues dans ledit échantillon liquide et ayant une taille inférieure à 5 ym mais laisse passer les particules ayant une taille supérieure ou égale à 5 ym lors de la centrifugation, et qui est constituée (i) d'un gel ou (ii) de particules de silice ou de silicate ayant une granulométrie inférieure à 0,1 ym, ladite seconde phase reposant sur ladite première phase, ledit mélange intime étant essentiellement imperméable à l'eau pouvant être présente dans ledit échantillon liquide. 5. Procédé suivant la revendication 4, caractérisé en ce que ladite seconde phase (2) est un gel constitué par un mélange intime d'eau et de particules polymériques absorbant l'eau qui ont été gonflées de telle façon que dans ledit mélange intime lesdites particules polymériques aient (a) une concentration en poids sec comprise entre 0,2 et 1 g/ml et (ss) un diamètre à l'état gonflé compris entre 160 et 530 llm. 6. Procédé suivant la revendication 4, caractérisé en ce que ladite seconde phase (2) est une couche constituée d'une matière minérale micronisée de façon à avoir à l'état sec une granulométrie inférieure à 0,1 ym, d'une part, et ne gonflant essentiellement pas en présence d'eau, d'autre part. 7. Procédé suivant la revendication 6, caractérisé en ce que ladite matière minérale est choisie parmi l'ensemble constitué par la silice et les silicates, notamment le kaolin. 8. Procédé suivant la revendication 4, caractérisé en ce que ladite seconde phase (2) renferme une ou plusieurs substances (i) inhibant les éventuels contaminants, (ii) lysant les cellules et/ou (iii) éliminant les lipides, qui sont contenus dans ledit échantillon liquide (5) provenant dudit matériau biologique et susceptible d'interférer à l'étape (4 ) en réagissant avec ledit réactif induisant une variation de mesure optique détectable en présence de microorganismes. 9. Procédé suivant la revendication 1, caractérisé en ce que, à l'étape (1 ), ledit système gélifié comporte en outre (c) une troisième phase (3), dite barrière, infranchissable lors de la centrifugation de l'étape (3 ), par les microorganismes éventuel lement présents, ladite troisième phase étant disposée sous la première phase (1) de telle façon que ladite première phase (1) repose sur ladite troisième phase (3). 10. Procédé suivant la revendication 9, caractérisé en ce que ladite troisième phase (3) est une paraffine solide fondant à une température supérieure à la température de multiplication des microorganismes. 11. Procédé suivant la revendication 9, caractérisé en ce que ladite troisième phase (3) est un gel constitué par un mélange intime d'eau et de particules polymériques absorbant l'eau, qui ont été gonflées de telle façon que dans ledit mélange intime lesdites particules polymériques aient (a) une concentration en poids sec comprise entre 0,04 et 0,2 g/ml et (ss) un diamètre à l'état gonflé compris entre 30 et 130 zm. 12. Procédé suivant la revendication 1, caractérisé en ce que, à l'étape (1"), ledit système gélifié comporte en outre (d) une quatrième phase (4), dite de protection, qui (i) est une huile inerte de densité inférieure à celle de l'eau, de préférence une huile de paraffine, (ii) avant centrifugation, repose sur (a) ladite première phase (1) en l'absence de la seconde phase (2), ou (ss) ladite seconde phase (2) quand celle-ci est présente dans ledit système gélifié (10), et (iii) après centrifugation selon l'étape (3 ), repose sur l'eau dudit échantillon liquide (5). 13. Procédé suivant l'une quelconque des revendications 1 et 4 à 12, caractérisé en ce que, à l'étape (1"), on fait appel à un système gélifié comprenant, de haut en bas, dans un tube de centrifugation à fond conique (6a): - ladite quatrième phase (4), - ladite seconde phase (2), et - ladite première phase (1). à un système gélifié comprenant, de haut en bas, dans un tube de centrifugation à fond rond ou sphérique (6b) - ladite quatrième phase (4), - ladite seconde phase (2), - ladite première phase (1), et - ladite troisième phase (3); où ladite première phase (1) a un volume plus faible que ceux de ladite seconde phase (2) et dudit échantillon liquide (5) pour concentrer les microorganismes lors de la centrifugation. 14. Système gélifié (10) utilisable suivant le procédé de la revendication 1, ledit système gélifié, étant caractérisé en ce qu'il comporte au moins (a) une première phase (1), dite de révélation, qui est un gel comportant un milieu de culture de microorganismes et un réactif induisant une variation de mesure optique détectable en présence de microorganismes, ledit gel étant un mélange intime d'eau et de particules polymériques absorbant l'eau, qui ont été gonflées de telle façon que dans ledit mélange intime lesdites particules polymériques aient (a) une concentration en poids sec comprise entre 0,05 et 0,2 g/ml et (ss) un diamètre à l'état gonflé compris entre 90 et 320 clam, l'eau dudit mélange intime provenant en totalité ou en partie dudit milieu de culture. 15. Système gélifié suivant la revendication 14, caractérisé en ce qu'il comporte en outre (b) une seconde phase (2), dite d'absorption, essentiellement imperméable à l'eau pouvant être présente dans ledit échantillon liquide et aux substances qui y sont dissoutes, qui retient dans sa masse les particules non solubles contenues dans ledit échantillon liquide et ayant une taille inférieure à 5 ,um mais laisse passer les particules ayant une taille supérieure ou égale à 5 ym lors de la centrifugation, et qui est constituée (i) d'un gel ou (ii) de particules de silice ou de silicate ayant une granulométrie inférieure à 0,1 Hm, ladite seconde phase reposant sur ladite première phase, ledit mélange intime étant essentiellement imperméable à l'eau pouvant être présente dans ledit échantillon liquide. 16. Système gélifié suivant la revendication 15, caractérisé en ce que ladite seconde phase 2 est un gel constitué par un mélange intime d'eau et de particules polymériques absorbant l'eau qui ont été gonflées de telle façon que dans ledit mélange intime lesdites particules polymériques aient (a) une concentration en poids sec comprise entre 0,2 et 1 g/ml et (ss) un diamètre à l'état gonflé compris entre 160 et 530 clam. 17. Système gélifié suivant la revendication 15, caractérisé en ce que ladite seconde phase 2 est une couche constituée d'une matière minérale micronisée de façon à avoir à l'état sec une granulométrie inférieure à 0,1 ym, d'une part, et ne gonflant essentiellement pas en présence d'eau, d'autre part. 18. Système gélifié suivant la revendication 14, caractérisé en ce qu'il comporte en outre (c) une troisième phase (3), dite barrière, infranchissable après centrifugation, par les microorganismes éventuellement présents, ladite troisième phase étant disposée sous la première phase (1) de telle façon que ladite première phase (1) repose sur ladite troisième phase (3). 19. Système gélifié suivant la revendication 18, caractérisé en ce que ladite troisième phase (3) est une paraffine solide fondant a une température supérieure à la température de multiplication des microorganismes. 20. Système gélifié suivant la revendication 18, caractérisé en ce que ladite troisième phase est un gel constitué par un mélange intime d'eau et de particules polymériques absorbant l'eau, qui ont été gonflées de telle façon que dans ledit mélange intime lesdites particules polymériques aient (a) une concentration en poids sec comprise entre 0,04 et 0,2 g/ml et (ss) un diamètre à l'état gonflé compris entre 30 et 130 ttm. 21. Système gélifié suivant la revendication 18, caractérisé en ce qu'il comporte en outre (d) une quatrième phase (4), dite de protection, qui (i) est une huile inerte de densité inférieure à celle de l'eau, de préférence une huile de paraffine, (ii) avant centrifugation, repose sur (a) ladite première phase (1) en l'absence de la seconde phase (2), ou (ss) ladite seconde phase (2) quand celle-ci est présente dans ledit système gélifié (10), et (iii) après centrifugation, repose sur l'eau dudit échantillon liquide (5). 22. Nécessaire de dosage, utile dans la mise en oeuvre du procédé suivant l'une quelconque des revendications 1 à 13, caractérisé en ce qu'il comporte (A) au moins un tube de centrifugation à fond conique (6a) contenant un système gélifié constitué, de haut en bas, de la phase de protection (4), la phase d'absorption (2) et de la phase de révélation (1), ou un tube de centrifugation à fond sphérique (6b) contenant un système gélifié constitué, de haut en bas, de la phase de protection (4), de la phase d'absorption (2), de la phase de révélation (1) et de la phase barrière (3), ou (B) des flacons contenant les matériaux constitutifs desdites phases, le réactif induisant une variation de mesure optique détectable en présence de microorganismes, et au moins le milieu de culture pour le gonflement de ladite phase de révélation (1). 23. Utilisation du procédé suivant l'une quelconque des revendications 1 à 13, ladite utilisation étant caractérisée en ce qu'elle comprend - la détection de la présence ou de l'absence de bactéries dans un échantillon de sang ou d'urine, notamment dans le domaine du screening des hémocultures et du screening urinaire - l'identification d'une souche de microorganisme dans un échantillon biologique en utilisant au niveau de la phase de révélation (a) un réactif induisant une variation de mesure optique détectable et (ss) un milieu de culture, qui sont spécifiques de ladite souche, ou - la détermination de la résistance de souches de microorganismes vis-à vis d'un ensemble antibiotiques usuels.