FR 2731318 A1 19960913 FR 9602882 A 19960307 La présente invention concerne un insecticide anti-termites contenant un champignon entomopathogène ou une culture de celui-ci, ainsi qu'un procédé de lutte contre les termites qui utilise cet insecticide. Pour lutter contre les insectes nuisibles, on utilise des insecticides qui sont parfois nocifs pour l'homme et les animaux. De ce fait, on a tenté d'utiliser un ennemi naturel pour lutter contre les insectes nuisibles comme insecticide qui soit inoffensif pour l'homme et les animaux. L'utilisation d'un champignon entomopathogène est un exemple d'une telle tentative. Les demandes de brevet japonais mises à la disposition du public n 4-202104 et 63-258803 décrivent l'utilisation de champignons pour lutter contre un longicorne. Pour lutter contre les termites, on a largement utilisé des insecticides organophosphorés et à base de pyréthrinoïdes sous forme de solutions et émulsions huileuses qui sont appliquées en aspersion sur le sol ou le bois de construction ou qui sont injectées dans les structures en bois infestées. Récemment cependant, l'influence de ces insecticides chimiques sur l'homme et les animaux et sur l'environnement naturel a posé un problème croissant. Par ailleurs, les insecticides anti-termites sont habituellement appliqués sur une zone étroite, par exemple sous un plancher, ce qui présente des difficultés d'application et des risques pour la santé des personnes. Cest pourquoi, la présente invention a pour but de fournir un insecticide anti-termites et un procédé de lutte contre les termites qui soient inoffensifs pour l'homme et les animaux, qui aient moins d'influence sur l'environnement, qui soient de manipulation aisée et qui permettent l'éradication des termites. Des recherches approfondies ont e été faites pour atteindre le but cidessus et ont abouti à la constatation que des champignons de certains types ont une activité de destruction sélective des termites qui épargne les autres arthropodes tels que les blattes, les fourmis, les byrrhidés, les cloportes et les myriapodes (scolopendres). Le type de champignon entomopathogène utilisé dans la présente invention n'est pas limité à condition que le champignon puisse parasiter les termites et les tuer. fi peut s'agir par exemple de Beauveria brongniartii, Beauveria bassiana, Beauveria amorpha, Metarhizium anisopliae et Verticillium lecanii. Parmi les champignons ci-dessus, on préfere en particulier Beauveria brongniartii du fait de son activité importante contre les termites et de son effet rapide. On peut extraire ces champignons du cadavre d'un insecte qui a été tué dans son environnement naturel par l'activité parasitaire des champignons. Selon la présente invention, l'expression "culture de champignon entomopathogène" désigne un milieu de culture dans lequel est cultivé un champignon entomopathogène, et cette culture comprend le champignon et le milieu. Les milieux utilisés ne sont pas limités à condition que les champignons mentionnés ci-dessus puissent s'y développer. n est possible d'utiliser des milieux solides et des milieux liquides et les constituants qu'ils contiennent ne sont pas limités d'une manière particulière. On peut utiliser tous les constituants connus tels que ceux qui sont mentionnés ci-dessous. Les sources de carbone comprennent par exemple le glucose, le fructose, le saccharose, le lactose, le maltose, le glycérol, l'amidon, la cellulose et les mélasses. Les sources d'azote comprennent par exemple le sulfate d'ammonium, le chlorure d'ammonium et le nitrate d'ammonium.Les sels inorganiques autres que les sources d'azote comprennent le dihydrogénophosphate de potassium, le sulfate de magnésium, le sulfate de calcium et le sulfate de potassium. Les substances organiques naturelles comprennent les extraits et les poudres de tissus animaux comme les extraits de viande, les extraits de poisson et les crysalides de vers à soie, les extraits et poudres de tissus végétaux comme les poudres d'exsudats de pomme de terre, l'eau de trempage, l'huile de soja, les extraits de malt et la poudre de soja, les cellules de micro-organismes et leurs extraits tels que les levures sèches, les extraits de levure et la polypeptone.On peut préparer un milieu utilisé dans la présente invention en combinant de manière appropriée les constituants cidessus. Pour préparer un milieu solide, on ajoute une quantité appropriée de gélose de manière conventionnelle. On prépare la culture de champignon entomopathogène en cultivant un champignon entomopathogène sur le milieu préparé ci dessus, habituellement à 25.C pendant 3 à 7 jours, bien que les conditions de culture ne soient pas limitées de cette manière. Les termites cibles dans le cadre de la présente invention ne sont pas limités. n peut s'agir par exemple de Coptotermes sp., Reticulitermes sp., Cryptotermes sp., Incisitermes sp., Macrotermes sp. et Odontotermes sp. Plus spécifiquement, il peut s'agir des termites Coptotermes formosanus, Reticulitermes speratus, Reticulitermes hesperus, Reticulitermes tibialis, Reticulitermes flavipes, Reticulitermes lucifugus, Reticulitermes santonensis, Cryptotermes domesticus et Incisitermes minor. Le champignon entomopathogène, ou sa culture, peut être utilisé comme insecticide anti-termites sans subir aucun traitement. Ou bien encore, du fait que le champignon utilisé selon la présente invention peut être au stade de germination ou de spores quiescentes, il peut être traité pour se présenter sous une forme d'application appropriée telle qu'une poudre, des granules, des comprimés, un liquide, un aérosol, une bande, une feuille, des pastilles ou une crème. Lorsque l'on utilise des formes solides telles que des poudres, des granules, des comprimés, des bandes, des feuilles ou des pastilles, il est préférable d'utiliser des champignons secs pour favoriser les conidies. Les supports utilisés dans la préparation des formes d'application cidessus ne sont pas limités et on peut utiliser tout support connu. Les supports solides utilisés dans la préparation des poudres, des granules, des comprimés et des pastilles comprennent par exemple les poudres minérales (acide silicique, kaolin, charbon actif, bentonite, montmorillonite, terre de diatomées, talc, argile, carbonate de calcium, alumine, argile acide, poudre de talc, poudre d'agalmatolite, mica, sable siliceux, sulfate d'ammonium), les poudres végétales (poudre de bois, poudre de soja, farine de froment, poudre de tabac, amidon, cellulose cristalline) et les composés clathrates tels que la cyclodextrine, les supports utilisés dans la préparation des liquides et des aérosols peuvent être constitués par exemple par de l'eau, les supports utilisés dans la préparation des bandes et des feuilles peuvent être par exemple des fibres synthétiques (polyéthylène, Nylon, poly(chlorure de vinyle), poly(chlorure de vinylidène), polyester, polypropylène, Vinylon (marque déposée de fibres synthétiques à base d'acétal de poly(alcool vinylique) et d'un aldéhyde , des fibres animales et végétales et des fibres inorganiques (résine, soic, coton, laine, papier, tissu, non-tissé, tissé, cuir, aluminium) et les supports utilisés dans la préparation des crèmes sont par exemple des hydrocarbures (paraffine liquide, vaseline, paraffine), des produits à base de silicium (diméthylsiloxane, silice colloïdale, bentonite), des alcools (éthanol, alcool stéarylique, alcool laurylique), des polyols (polyéthylèneglycol, éthylèneglycol, glycérol), des acides carboxyliques (acide laurique, acide stéarique) et des esters (cire d'abeilles, lanoline). Dans le cadre de la présente invention, on utilise de préférence des bases de milieux préparées en mélangeant les supports et les constituants indiqués cidessus. Le nombre de cellules viables contenues dans chaque forme d'application (densité cellulaire) n'est pas limité d'une manière particulière et il est compris de préférence dans le domaine de 105 à 109 cellules/cm2 (105 à 109 cellules/g pour les formes solides) de préférence encore il est au moins égal à 108 cellules/cm2 (au moins égal à 108 cellules/g pour les formes solides). Beauveria brongniartii peut présenter une activité anti-termites élevée même pour une faible densité cellulaire (environ 106 cellules/cm2, ou 106 cellules/g pour les formes solides), ce qui procure différents avantages. Par exemple, ce champignon exige une plus courte durée pour sa culture et permet de préparer des formes d'application compactes telles que des feuilles plus minces. Le nombre de cellules viables par unité d'aire, unité de volume et unité de masse (densité cellulaire) peut être déterminé par la technique des boîtes de dilution selon laquelle diverses dilutions d'une suspension de cellules sont étalées en quantité déterminée sur des boîtes de culture, puis cultivées pendant une certaine durée, après quoi le nombre de colonies formées sur chaque boîte est déterminé. Le procédé de lutte contre les termites selon la présente invention peut être mis en oeuvre en plaçant l'insecticide anti-termites selon la présente invention au voisinage d'un nid de termites ou en pulvérisant ou injectant directement l'insecticide anti-termites selon la présente invention à l'endroit infesté de termites, ce qui permet de lutter simplement et efficacement contre les termites sans effet nocif pour l'homme et les animaux. La présente invention va être illustrée de manière plus précise au moyen des exemples non limitatifs suivants. EXEMPLE 1 Beauveria brongniartii a été étalé sur un milieu gélosé dans une boîte de Petri et cultivé à 25.C pendant S jours jusqu'à ce que la densité cellulaire atteigne 108 cellules/cm2, le milieu gélosé (fabriqué par la société Tissus Pharmaceutical K) contenant 0,4 % en masse de poudre d'exsudat de pomme de terre, 2 % en masse de glucose et 1,5 % en masse de gélose. Sur ce milieu de culture, on a laissé se déplacer pendant 1 min 10 termites ouvriers Coptotermes formosanus. Puis on a transféré les termites sur une autre boîte de Petri contenant du papier filtre et du coton imbibé d'eau. On a répété la même expérience avec trois autres groupes de termites.Puis, à des intervalles de temps déterminés, on a compté sur ces quatre groupes le nombre de termites morts et on a obtenu les résultats présentés dans le tableau 1 ci-dessous. A titre de groupe témoin non traité, on a laissé 10 termites se déplacer sur le même milieu dépourvu de Beauveria brongniartii, puis on les a traités de la même manière et on a évalué la mortalité. On a obtenu les résultats présentés également dans le tableau 1. Dans le tableau 1, les résultats sont exprimés en termes de mortalité cumulative (%) calculée d'après le nombre de termites morts. Beauveria brongniartii utilisé ici a été extrait de cadavres de longicornes tués par ce champignon dans leur environnement naturel. Les champignons utilisés dans les exemples suivants ont été obtenus de la même manière. TABLEAU 1 Jours Mortalité cumulative (%) suivant le Gaupes traités | Groupe non traitement 1 2 3 4 traité Jour O 0 O O O O 1 0 0 0 10 0 2 50 10 10 10 0 3 70 30 20 20 0 4 90 40 40 40 0 5 100 60 40 40 0 6 100 100 100 60 0 7 100 100 100 | 100 0 Comme le montre le tableau 1, tous les termites Coptotermes formosanus appartenant aux groupes traités de l'exemple 1 sont morts en 5 à 7 jours. Au contraire, aucun termite n'est mort dans le groupe témoin non traité pendant les 7 jours. Ces résultats montrent que les termites Coptotermes formosanus meurent par suite d'un contact direct avec le champignon ou sa culture. Ceci indique que Beauveria Brongniartii peut être utilisé comme insecticide antitermites. EXEMPLE 2 Avec Beauveria bassiana, on a évalué la mortalité des termites Coptotermes formosanus de la même manière que dans l'exemple 1. Le tableau 2 ci-dessous montre les résultats obtenus. TABLEAU 2 Jours Mortalité cumulative f%) suivant le Groupes traités Groupe non traitement 1 2 3 | 4 traité Jour O 0 O 0 O 0 1 O O O O O 2 0 10 10 O O 3 20 30 20 10 0 4 30 30 50 20 0 5 50 50 80 40 0 6 80 70 100 50 0 7 100 80 100 80 0 8 100 100 100 100 0 Comme le montre le tableau 2, tous les termites Coptotermes formosanus des groupes traités de l'exemple 2 sont morts en 6 à 8 jours. Au contraire, aucun termite n'est mort dans le groupe témoin non traité pendant ces 8 jours. Ces résultats montrent que les termites Coptotermes formosanus meurent par suite d'un contact direct avec le champignon ou sa culture. Ceci indique que Beauveria bassiana peut être utilisé comme insecticide anti-termites. EXEMPLE 3 Avec Metarhizium anisopliae, on a évalué la mortalité des termites Coptotermes formosanus de la même manière que dans l'exempte 1. Le tableau 3 ci-dessous montre les résultats obtenus. Comme le montre le tableau 3, tous les termites des groupes traités de l'exemple 3 sont morts en 13 à 14 jours. Au contraire, aucun termite n'est mort dans le groupe témoin non traité pendant ces 14 jours. Ces résultats montrent que les termites Coptotermes formosanus meurent par suite d'un contact direct avec le champignon ou sa culture. Ceci indique que Metarhizium anisopliae peut être utilisé comme insecticide anti-termites. TABLEAU 3 Jours Mortalité cumulative (%) suivant le Groupes traités Groupe non traitement 1 2 3 4 traité Jour O 0 0 0 0 0 1 0 0 O 0 0 2 0 0 0 0 0 3 0 0 10 0 0 4 0 10 20 10 0 5 10 10 20 20 0 6 20 30 30 20 0 7 20 30 30 20 0 8 30 30 50 30 0 9 30 40 50 40 0 10 50 60 60 40 0 11 70 80 80 60 0 12 90 90 80 80 0 13 100 100 100 90 0 14 100 100 100 100 0 EXEMPLE 4 Avec Verticillium lecanii, on a évalué la mortalité des termites Coptotermes formosanus de la même manière que dans l'exemple 1. Le tableau 4 ci-dessous montre les résultats obtenus. TABLEAU 4 Jours Mortalité cumulative % suivant le Groupe s traités Groupe non traitement 1 2 3 4 traité Jour O 0 0 O O O 1 0 0 0 O O 2 O 10 0 0 o 3 10 10 10 0 0 4 10 10 10 10 0 5 10 10 10 20 0 6 30 20 10 20 0 7 40 30 20 30 0 8 50 50 40 40 O 9 70 60 80 70 0 10 80 90 80 90 0 11 80 100 90 90 0 12 100 100 100 100 0 Comme le montre le tableau 4, tous les termites Coptotermes formosanus des groupes traités de l'exemple 4 sont morts en 11 à 12 jours. Au contraire, aucun termite du groupe témoin non traité n'est mort pendant ces 12 jours. Ces résultats montrent que les termites Coptotermes formosanus meurent par suite d'un contact direct avec le champignon ou sa culture. Ceci montre que Verticillium lecanii peut être utilisé comme insecticide anti-termites. EXEMPLE 5 Dans une boîte de Petri dans laquelle on a maintenu 10 termites ouvriers Coptotermes formosanus normaux avec du papier-filtre et du coton imbibé d'eau, on a placé 3 cadavres de termites Coptotermes formosanus qui sont morts après avoir été infectés avec Beauveria brongniartii dans l'exemple 1. Puis, à des intervalles de temps déterminés, on a évalué le nombre de morts parmi ces 10 termites. On a réalisé la même expérience avec 4 autres groupes de termites normaux, si bien que l'on a évalué la mortalité des termites sur 5 groupes au total, à différents intervalles de temps, après les avoir exposés aux cadavres. Les résultats obtenus sont présentés dans le tableau 5 ci-dessous.On a maintenu 10 termites de la même manière que ci-dessus, mais sans les exposer à des cadavres de termites et on a également évalué la mortalité sur ce groupe à titre de groupe témoin non traité. Le tableau S ci-dessous montre les résultats en termes de mortalité cumulative (%). TABLEAU S Mortalité cumulative (%) Jours I Groupe suivant le Groupes traités non traitement 1 2 3 4 5 traité Jour O 0 O 0 II 0 0 0 1 O 10 10 10 O O 2 0 10 10 10 20 0 3 0 10 20 10 20 0 4 0 30 20 - 20 40 0 5 0 30 20 20 50 0 6 6 30 70 30 30 60 0 7 100 100 50 50 70 10 8 100 100 50 50 80 10 9 100 100 50 50 80 10 10 100 100 70 60 80 10 11 100 100 90 100 100 10 12 100 100 100 100 100 10 Comme le montre le tableau 5, même en l'absence d'exposition directe au champignon ou à sa culture, il est possible de tuer des termites normaux en les infectant avec le champignon par mise en contact avec le cadavre d'un termite tué par le champignon. EXEMPLE 6 Sur un milieu de culture gélosé sur lequel on a cultivé Beauveria brongniartii de la même manière que dans l'exemple 1, on a laissé se déplacer librement pendant 5 min des blattes brunes (Periplaneta fuliginosa), des blattes germaniques (Blattella germanica), des termites (Coptotermes formosanus), des byrrhidés (Armadillidium vulgare), des cloportes (Porcellio scaber), des fourmis sans reine (Pristomyrmex pungens), des scolopendres (Scolopendra subspinipes mutilans) et des myriapodes à bouclier (rbereuonema hilgendorfi). On a maintenu chaque type d'insecte testé dans une capsule en polyéthylène avec du coton imbibé d'eau et de la nourriture et on l'a observé pendant 14 jours. Les résultats de cette observation sont présentés dans le tableau 6 ci-dessous.On a préparé pour chaque type d'insecte testé un groupe témoin non traité en suivant le même processus que ci-dessus, à ceci près que l'on a utilisé un milieu gélosé sans champignon. Les résultats sont présentés dans le tableau 7 ci-dessous. TABLEAU 6 Nombre cumulatif de morts Jours suivant Blattes le traitement Blattes brunes germaniques Termites Byrrhidés (Periplaneta (Blattella (Coptotermes (Armadillidium fuliginosa) germanica) formosanus) vulgare) Jour O O O O O 1 I O O 1 2 1 O O 1 3 1 1 6 1 4 1 1 14 1 5 1 1 29 1 6 1 1 30 1 7 1 1 30 1 8 1 1 30 1 9 1 1 30 1 10 1 1 30 1 13 1 1 30 1 14 1 2 30 1 Nombre d'insectes testés 10 10 30 20 Nombre cumulatif de morts Jours suivant Cloportes Fourmis sans Scolopendres Myriapodes à le traitement (Porcellio reine (Scolopendra bouclier scaber) (Pristomyrmex subspinipes (Thereuonema pungens) mutilans) hilgendorfi) Jour 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 2 1 0 0 0 3 1 0 0 0 5 1 2 0 0 6 1 2 0 0 7 1 2 0 0 8 1 2 0 0 9 1 2 0 0 10 1 3 0 0 13 1 3 0 0 14 1 3 0 0 Nombre d'insectes testés 20 50 10 10 TABLEAU 7 Nombre cumulatif dc morts Jours suivant Blattes le traitement Blattes brunes germaniques Termites Byrrhidés (Penplaneta (Blattella (Armadillidium fuliginosa) germanica) formosanus) vul Jour O 0 0 0 0 1 0 0 0 O 2 0 0 0 0 3 0 0 0 0 4 0 0 0 0 s O 1 0 O 6 0 1 0 1 7 0 1 0 i 8 0 1 0 1 9 0 1 0 i 10 0 1 0 1 13 0 1 0 1 14 0 1 0 1 Nombre d'insectes testés 10 10 30 20 Nombre cumulatif de morts Jours suivant Cloportes Fourmis sans Scolopendres Myriapodes à le traitement (Porcellio reine (Scolopendra bouclier scaber) (Pristomvrmex subspinipes (nlereuonema Duneens) mutilans) hileendorti) Jour O 0 0 0 0 1 0 O 0 O 2 1 1 0 0 3 1 1 0 0 4 1 1 0 0 5 1 1 0 O 6 1 1 0 0 7 1 2 0 0 8 1 2 0 0 9 1 2 0 0 10 1 2 0 0 13 1 2 0 0 14 1 3 0 0 Nombre d'insectes testés 20 50 10 10 Comme le montrent les tableaux 6 et 7, l'insecticide anti-termites selon la présente invention détruit de manière très sélective les termites Coptotermes formosanus sans avoir d'effet léthal sur les autres insectes testés. Ceci montre que l'insecticide anti-termites selon la présente invention est excellent du fait qu'il est peu nocif pour l'environnement étant donné qu'il n'est pas toxique pour les autres êtres vivants. EXEMPLE 7 On a cultivé à 250C pendant 2 semaines Beauveria brongniartii dans un milieu liquide de base que l'on a préparé en ajoutant à 1 l d'eau 40 g de glucose, 10 g de peptone et 2 g d'extrait de levure. Séparément, on a ajouté 21 d'eau à 1 kg de son de froment et on a stérilisé en autoclave à 1210C pendant 20 min, puis on a ajouté 1 à 5 ml du milieu liquide de culture de Beauveria brongniartii ci-dessus que l'on a cultivé à 25-C pendant 2 semaines. Ensuite, on a séché à l'air la culture pour obtenir une poudre ayant une densité cellulaire de 108 cellules/g. On a appliqué par saupoudrage à raison de 300 g la poudre ainsi obtenue sur un nid de termites extérieur contenant au moins 5000 termites Coptotermes formosanus actifs. On a appelé zone traitée la zone sur laquelle on a appliqué la poudre. Puis, on a observé périodiquement les termites dans le nid. Les résultats obtenus sont présentés daas le tableau 8 ci-dessous. On a préparé une zone non traitée de la même manière que ci-dessus, à ceci près que le milieu de culture ne contenait pas Beauveria brongniartii, et on a observé les termites dans le nid. Les résultats sont présentés dans le tableau 8 ci-dessous. TABLEAU 8 Jours suivant Nombre de termites actifs le traitement Zone Zone Zone Zone non traitée 1 traitée 2 traitée 3 traitée Jour 0 S +++ +++ +++ +++ 10 15 20 +++ ++ ++ 25 ++ ++ +++ 30 ++ ++ + 35 + + + 40 - + + 45 ~ ~ ~ +++ Remarque : +++ indique au moins 5000 termites actifs ; ++ indique 500 à 4999 termites actifs ; + indique moins de 500 termites actifs ; et - indique 0 termite actif. Comme le montre le tableau 8, on a constaté que tous les termites présents dans le nid situé à l'extérieur pouvaient être éradiqués en appliquant par saupoudrage la culture (poudre) de champignon sur le nid. Ceci révèle la grande efficacité du procédé de lutte contre les termites selon la présente invention. EXEMPLE 8 On a prélevé 300 termites (ouvriers et soldats) sur un nid actif situé à l'extérieur dans lequel vivaient au moins 1 000 termites Coptotermes formosanus. On a laissé ces termites se déplacer pendant 10 min sur un milieu de culture gélosé de Beauveria brongniartii de la même manière que dans l'exemple 1, puis on les a remis dans le nid d'où ils provenaient et on a appelé le nid "zone traitée". On a observé périodiquement les termites dans le nid. Les résultats de cette observation sont présentés dans le tableau 9 ci-dessous. On a préparé une zone non traitée en suivant le même processus que ce ci-dessus, à ceci près que l'on a laissé les termites se déplacer sur un milieu gélosé sans champignon, et on a observé les termites dans le nid. Les résultats sont présentés dans le tableau 9 cidessous. TABLEAU 9 Jours suivant Nombre de termites actifs le traitement Zone Zone Zone Zone non traitée 1 traitée 2 traitée 3 traitée Jour 0 +++ +++ +++ +++ 5 10 15 ++ +++ ++ 20 ++ ++ + 25 + ++ + 30 - + 35 +++ Remarque +++ indique au moins 1000 termites actifs ; ++ indique 300 à 999 termites actifs ; + indique moins de 300termites actifs ; et - indique 0 termite actif. Comme le montre le tableau 9, grâce au procédé selon la présente invention, le traitement d'une partie seulement des termites présents dans le nid avec la culture de champignon entraînait une éradication de tous les termites du nid, ce qui indique une efficacité marquée du procédé de lutte contre les termites selon l'invention. EXEMPLE 9 De la même manière que dans l'exemple 1, on a laissé se déplacer pendant 10 min 10 termites ouvriers Coptotermes formosanus sur un milieu gélosé dans lequel on a cultivé un champignon. Puis, on a placé ces 10 termites dans une capsule de polyéthylène où étaient maintenus 50 termites Coptotermes formosanus (ouvriers et soldats) normaux avec des copeaux de bois et du coton imbibé d'eau. On a déterminé le nombre de jours nécessaires pour que tous les termites présents dans la capsule meurent. On a réalisé la même expérience avec quatre autres groupes pour chaque champignon testé. Les résultats obtenus sont présentés dans le tableau 10 ci-dessous. On a préparé un groupe non traité pour chaque champignon en suivant les mêmes processus que ci-dessus, à ceci près que le milieu gélosé utilisé ne contenait pas de champignon. Les résultats pour le groupe non traité sont présentés également dans le tableau 10. TABLEAU 10 Type de Nombre de jours nécessaire pour atteindre champignon une mortalité de 100 % 1 2 3 4 5 Moyenne ** Beauveria 5 7 7 6 5 6 - brongniartii Beauveria 10 8 8 9 12 9,4 bassiana Beauveria 15 16 18 17 14 16 amorpha Metarhizium 18 14 15 17 15 15,8 anisooliae, Verticillium 19 15 17 21 18 18 ** : groupe non traité. Comme le montre le tableau 10, le traitement d'un cinquième seulement des termites Coptotermes formosanus avec chacun des champignons a entraîné une éradication de tout le groupe. Aucun termite n'est mort dans chaque groupe non traité. De ce fait, l'insecticide anti-termites selon la présente invention permet de lutter efficacement contre les termites même si tous les termites n'entrent pas directement en contact avec l'insecticide. Le nombre de jours nécessaires pour que tous les termites meurent était le plus petit dans le cas de Beauveria brongniartii, ce qui montre que ce champignon présente la plus grande efficacité anti-termites. EXEMPLE 10 Avec le termite Reticulitermes speratus, on a évalué le nombre de morts de la même manière que dans l'exempte 1 dans lequel les termites ont été traités avec Beauveria brongniartii. Les résultats obtenus sont présentés dans le tableau 11. TABLEAU 11 Jours Mortalité cumulative (%) suivant le Groupes traités Groupe non traitement 1 2 3 traité Jour 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 2 10 0 10 0 3 10 0 10 0 4 40 10 ~ 30 0 5 40 40 40 0 6 70 50 50 0 7 90 60 80 0 8 100 70 90 0 9 100 80 100 0 10 ~ 100 100 100 0 Comme le montre le tableau 11, tous les termites Reticulitermes speratus des groupes traités sont morts en 8 à 10 jours. Au contraire, aucun termite n'est mort dans le groupe non traité jusqu'au 10e jour, ce qui montre que Beauveria brongniartii peut être utilisé comme insecticide anti-termites. EXEMPLE 11 Avec le termite Reticulitermes speratus, on a évalué le nombre de termites morts de la même manière que dans l'exemple 2 dans lequel les termites ont été traités avec Beauveria bassiana. Les résultats obtenus sont présentés dans le tableau 12. TABLEAU 12 Jours T Mortalité cumulative (%) suivant le Groupes traités Groupe non traitement 1 2 3 traité Jour 0 0 0 0 0 1 0 0 O O 2 0 0 0 0 3 0 0 0 0 4 0 0 0 0 5 10 20 0 0 6 20 30 10 0 7 30 30 10 0 8 30 40 20 0 9 50 40 30 0 10 60 40 30 0 11 60 40 30 0 12 60 50 40 0 13 60 50 40 0 14 60 50 40 0 Comme le montre le tableau 12, la mortalité cumulative au jour 14 était de 40 à 60 % dans les groupes traités, tandis qu'aucun termite n'est mort dans le groupe non traité. EXEMPLE 12 Avec le termite Reticulitermes speratus, on a évalué le nombre de morts de la même manière que dans l'exemple 3 dans lequel les termites ont été traités avec Metarhizium anisopliae. Les résultats obtenus sont présentés dans le tableau 13. TABLEAU 13 Jours Mortalité cumulative (%) suivant le L Groupes traités Groupe non traitement 1 2 3 traité Jour 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 2 0 0 0 0 3 10 10 10 0 4 20 30 20 0 5 30 30 40 0 6 30 60 40 0 7 30 60 40 0 8 30 80 40 0 9 60 80 60 0 10 70 90 90 0 11 90 100 100 0 12 100 100 100 0 Comme le montre le tableau 13, tous les termites Reticulitermes speratus des groupes traités sont morts en 11 à 12 jours. Au contraire, aucun termite n'est mort jusqu'au 12e jour dans le groupe non traité. Ces résultats montrent qu'un contact direct avec le champignon ou sa culture entraîne la mort des termites. De ce fait, bien qu'il soit moins efficace que Beauveria brongniartii testé dans l'exemple 10, Metarhizium anisopliae peut aussi être utilisé comme insecticide anti-termites. EXEMPLE 13 Avec le termite Reticulitermes speratus, on a évalué le nombre de morts de la même manière que dans l'exempte 4 dans lequel les termites ont été traités avec Verticillium lecanii. Les résultast obtenus sont présentés dans le tableau 14. TABLEAU 14 Jours Mortalité cumulative (9t suivant le Groupes traités - Groupe non traitement 1 2 3 traité Jour 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 2 0 0 0 0 3 0 0 0 0 4 10 0 10 0 5 10 0 10 0 6 30 10 30 0 7 30 10 30 0 8 30 10 30 0 9 30 10 40 0 10 30 10 40 0 11 30 10 40 0 12 30 10 40 0 13 30 20 40 0 14 30 20 40 0 Comme le montre le tableau 14, la mortalité cumulative au jour 14 était de 20 à 40 % dans les groupes traités, tandis qu'aucun termite n'est mort dans le groupe non traité jusqu'au jour 14. EXEMPLE 14 Avec le termite Coptotermes formosanus, on a évalué le nombre de morts de la même manière que dans l'exemple 1, à ceci près que les termites ont été traités avec Beauveraia amorpha. Les résultats obtenus sont présentés dans le tableau 15. TABLEAU 15 Jours Mortalité cumulative (%) suivant le Groupes traités Groupe non traitement 1 2 3 7 4 traité Jour 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 O 2 0 0 0 0 0 3 10 0 0 0 0 4 20 10 10 20 0 5 20 30 30 30 0 6 40 30 30 40 0 7 60 30 50 40 0 8 80 60 50 60 0 9 90 80 60 70 0 10 90 80 80 90 0 11 100 80 90 100 0 12 100 100 100 100 0 Comme le montre le tableau 15, tous les termites Coptotermes formosanus des groupes traités sont morts en 1 1 à 12 jours, tandis qu'aucun termite n'est mort dans le groupe non traité jusqu'au jour 12. Ces résultats montrent qu'un contact direct avec le champignon ou sa culture entraîne la mort des termites. Bien que Beauveria amorpha soit moins efficace que Beauveria brongniartii (exemple 1) pour tuer les termites, Beauveria amorpha peut aussi être utilisé comme insecticide anti-termites. EXEMPLE 15 On a étalé Beauveria brongniartii, Beauveria bassiana et Beauveria amorpha sur un milieu gélosé dans des boîtes de Petri et on les a cultivés à 25in, le milieu gélosé (fabriqué par la société Nissui Pharmaceutical K. K.) contenant 0,4 % en masse de poudre d'exsudat de pomme de terre, 2 % en masse de glucose et 1,5 % en masse de gélose. On a contrôlé la durée de la culture (nombre de jours) de manière à obtenir trois niveaux de densité cellulaire, à savoir 106, 107 et 108 cellules/cm2. On a réalisé l'expérience de manière semblable à l'exemple 1. Les résultats obtenus sont présentés dans les tableaux 16 à 18 ci-dessous. On a obtenu la densité cellulaire en comptant le sombre de cellules par unité de surface à l'aide de la technique des boîtes de dilution. TABLEAU 16 Traitement avec Beauveria bronaartn Jours suivant le Mortalité cumulative (%) traitement 106 107* 1o8* Jour O 0 0 0 1 0 0 0 2 0 0 10 3 0 10 30 4 0 30 50 5 20 40 70 6 30 60 90 7 30 80 100 8 50 100 100 9 70 100 100 10 70 100 100 15 90 100 100 20 100 100 100 * densité cellulaire (cellules/cm2) TABLEAU 17 Traitement avec Beauveria bassiana Jours suivant le Mortalité cumulative (%) traitement lo6* 107* 1o8* Jour 0 0 0 0 1 O O O 2 0 0 10 3 0 0 30 4 0 0 30 5 0 10 50 6 0 10 70 7 10 20 80 8 10 20 100 9 10 20 100 10 20 30 100 15 20 40 100 20 20 40 100 * densité cellulaire (cellules/cm2). TABLEAU 18 Traitement avec Beauveria amorpha. Jours suivant le Mortalité cumulative (%) traitement 106* 107* 1o8* Jour 0 0 0 0 1 0 0 0 2 0 0 0 3 0 0 10 4 0 0 30 5 0 0 40 6 0 0 50 7 0 10 60 8 0 10 60 9 10 10 80 10 10 10 90 15 10 20 100 20 20 30 100 * densité cellulaire (cellules/cm2). Comme le montrent les tableaux 16 à 18, lorsque l'on a utilisé Beauveria brongniartii, on a obtenu une mortalité de 100 % chez les termites Coptotermes formosanus même lorsque la densité cellulaire du champignon était faible (106 cellules/cm2). Dans le cas de Beauveria bassiana ou Beauveria amorpha, on n'a pas pu obtenir une mortalité de 100 % avec des densités cellulaires inférieures à 108 cellules/cm2. Ainsi, comme Beauveria brongniartii permet d'obtenir une mortalité de 100 % avec une faible densité cellulaire, ce champignon est le plus efficace pour la lutte contre les termites. REVENDICATIONS 1. Insecticide anti-termites caractérisé en ce qu'il comprend un champignon entomopathogène ou une culture de celui-ci. 2. Insecticide anti-termites selon la revendication 1 caractérisé en ce que le champignon entomopathogène est Beauveria brongniartii. 3. Insecticide anti-termites selon la revendication 1 caractérisé en ce que le champignon entomopathogène est choisi dans le groupe consistant en Beauveria bassiana, Beauveria amorpha, Metarhizium anisopliae et Verticillium lecanii. 4. Insecticide anti-termites selon l'une quelconque des revendications précédentes caractérisé en ce que le champignon entomopathogène est à l'état de germination ou de spores quiescentes. 5. Insecticide anti-termites selon l'une quelconque des revendications précédentes caractérisé en ce que le champignon entomopathogène, ou sa culture, est contenu dans une forme d'application choisie dans le groupe consistant en les poudres, les granules, les comprimés, les liquides, les aérosols, les bandes, les feuilles, les pastilles et les crèmes. 6. Insecticide anti-termites selon la revendication 5 caractérisé en ce que la densité cellulaire du champignon entomopathogène dans la forme d'application est de 105 à 109 cellules/cm2 ou de 105 à 109 cellules/g. 7. Insecticide anti-termites selon l'une quelconque des revendications 1 à 6 caractérisé en ce que les termites cibles sont choisis dans le groupe consistant en Coptotermes sp., Reticulitermes sp., Cryptotermes sp., Incisitermes sp., Macrotermes sp. et Odontotermes sp. 8. Insecticide anti-termites selon la revendication 7 caractérisé en ce que les termites cibles sont choisis dans le groupe consistant en Coptotermes formosanus, Reticulitermes speratus, Reticulitermes hesperus, Reticulitermes tibialis, Reticulitermes flavipes, Reticulitermes lucifugus, Reticulitermes santonensis, Cryptotermes domesticus et Incisitermes minor. 9. Procédé de lutte contre les termites caractérisé en ce qu'il utilise l'insecticide anti-termite selon l'une quelconque des revendications 1 à 8.