FR 2736915 A1 19970124 FR 9508729 A 19950719 VARIANTS DE LA PROTEINE P53 ET UTILISATIONS THERAPEUTIQUES La présente invention concerne des protéines dérivées du produit du gène suppresseur de tumeurs p53, possédant des fonctions améliorées en vue d'une utilisation thérapeutique. Elle concerne avantageusement des protéines possédant des fonctions suppresseur de tumeurs et inducteur de mort cellulaire programmée supérieures à celle de la protéine p53 de type sauvage, plus particulièrement dans des contextes pathologiques de prolifération dans lesquels la protéine p53 de type sauvage est inactivée. Elle concerne également les acides nucléiques codant pour ces molécules, les vecteurs les contenant et leurs utilisations thérapeutiques, notamment en thérapie génique. Les produits de l'invention sont particulièrement adaptés à la restauration des fonctions de p53 dans des contextes pathologiques tels que notamment les cancers. La protéine p53 sauvage intervient dans la régulation du cycle cellulaire et dans le maintien de l'intégrité du génome de la cellule. Cette protéine, dont la fonction principale est d'être un activateur de la transcription de certains gènes, est susceptible, par un processus non encore bien défini, de bloquer la cellule en phase G1 du cycle cellulaire lors de l'apparition de mutations au cours de la réplication du génome, et d'enclencher un certains nombre de processus de réparation de l'ADN. De plus, en cas de mauvais fonctionnement de ces processus de réparation ou en cas d'apparition d'évènements mutationnels trop nombreux pour être corrigés, cette protéine est capable d'induire le phénomène de mort cellulaire programmée, appelé apoptose. De cette façon, ia protéine p53 agit comme un supresseur de tumeur, en éliminant les cellules anormalement différenciées ou dont le génome a été endommagé. Cette principale fonction de la p53 dépend de sa fonction de facteur de transcription, soit en d'autre termes de sa double capacité à reconnaître des séquences spécifiques au niveau de 'ADN génomique et à recruter la machinerie générale de transcription. La protéine p53 comporte 393 acides aminés, qui définissent 5 domaines fonctionnels (voir Figure 1): - le domaine activateur de la transcription, constitué par les acides aminés 1 à 73, capable de lier certains facteurs de la machinerie générale de transcription comme la protéine TBP. Ce domaine est aussi le siège d'un certain nombre de modifications post-traductionnelles. II est également le siège d'interactions nombreuses de la protéine p53 avec de nombreuses autres protéines et notamment avec la protéine cellulaire mdm2 ou la protéine EBNA5 du virus d'Epstein-Barr (EBV), capables de bloquer la fonction de la protéine sauvage. De plus, ce domaine possède des séquences d'acides aminés dites PEST de susceptibilité à la dégradation protéolytique. - le domaine de liaison à I'ADN, localisé entre les acides aminés 73 et 315. La conformation de ce domaine central de p53 régule la reconnaissance de séquences d'ADN spécifiques de la protéine p53. Ce domaine est le siège de deux types d'altérations affectant la fonction de la protéine sauvage: (i) I'interaction avec des protéines bloquant la fonction de la p53 comme l'antigène 'grand T' du virus SV40 ou les protéines virales E6 des virus HPV16 et HPV18 capables de provoquer sa dégradation par le système de l'ubiquitine. Cette dernière interaction ne peut se faire qu'en présence de la protéine cellulaire E6ap (enzyme E3 de la cascade de l'ubiquitinilation). (ii) les mutations ponctuelles qui affectent la fonction de la p53 et dont la quasi-totalité sont localisées dans cette région. - le signal de localisation nucléaire, constitué des acides aminés 315 à 325, indispensable au bon adressage de la protéine dans le compartiment où elle va exercer sa principale fonction. - le domaine d'oligomérisation, constitué des acides aminés 325 à 355. Cette région 325 à 355 forme une structure de type; feuillet ss (326-334)coude (335-336)-hélice a (337-355). Les altérations de fonctions localisées dans cette région sont essentiellement dues à l'interaction de la protéine sauvage avec les différentes formes mutantes qui peuvent conduire à des effets variables sur la fonction de la protéine sauvage. - le domaine de régulation, constitué des acides aminés 365 à 393, qui est le siège d'un certain nombre de modifications post-traductionnelles (glycosylations, phosphorylations, fixation d'ARN,...) qui modulent la fonction de la protéine p53 de façon positive ou négative. Ce domaine joue un rôle extrèmement important dans la modulation de l'activité de la protéine sauvage. Le fonctionnement de la protéine p53 peut être perturbé de différentes façons. - blocage de sa fonction par un certain nombre de facteurs comme par exemple l'antigène 'grand T' du virus SV40, la protéine EBNA5 du virus d'Epstein-Barr, ou la protéine cellulaire mdm2. - déstabilisation de la protéine par augmentation de sa susceptibilité à la protéolyse, notamment par interaction avec la protéine E6 des virus du papillome humain HPV16 et HPV18, qui favorise l'entrée de la p53 dans le cycle d'ubiquitinilation. Dans ce cas l'interaction entre ces deux protéines ne peut se faire que par la fixation préalable d'une protéine cellulaire, la protéine E6ap dont le site de fixation est mal connu. - mutations ponctuelles au niveau du gène de la p53. - délétion d'un ou des deux allèles de la p53 Les deux derniers types de modifications sont retrouvés dans environ 50% des différents types de cancer. A cet égard, les mutations du gène de la p53 repertoriées dans les cellules cancéreuses touchent une très grande partie du gène codant pour cette protéine, et ont pour résultats des modifications variables du fonctionnement de cette protéine. On peut cependant noter que ces mutations sont en grande majorité localisées dans la partie centrale de la protéine p53 dont on sait qu'elle est la région de contact avec les séquences génomiques spécifiques de la protéine p53. Ceci explique pourquoi la plupart des mutants de la protéine p53 ont comme principale caractéristique de ne plus pouvoir se fixer aux séquences d'ADN que reconnait la protéine sauvage et ainsi de ne plus pouvoir exercer leur rôle de facteur de transcription. Par ailleurs, certains mutants semblent avoir acquis de nouvelles fonctions telles que l'activation de certains gènes au niveau transcriptionnel. On regroupe actuellement l'ensemble de ces modifications dans trois catégories: - les mutants dits faibles, dont le produit est une protéine nonfonctionnelle, qui, dans le cas de mutation sur un seul des deux allèles, n'affecte pas le fonctionnement de la protéine sauvage codée par l'autre allèle. Les principaux représentants de cette catégorie sont les mutants H273 et W248, ce dernier étant spécifique du syndrome familial de Li-Fraumeni d'hypersensibilité aux affections cancéreuses. - les mutants dominant-négatifs, dont le produit est une protéine nonfonctionnel le, qui, dans le cas de mutation sur un seul des deux allèles et par intéraction avec la protéine sauvage, est capable de bloquer le fonctionnement de celle-ci par formation d'oligomères mixtes non-actifs qui ne peuvent plus se fixer aux séquences d'ADN spécifiques de la protéine sauvage. Le principal représentant de cette catégorie est le mutant G281. - les mutants dominant-oncogéniques, dont le produit est une protéine qui est capable d'une part de bloquer la fonction de la protéine sauvage comme les mutants de la catégorie précédente, et d'autre part, de favoriser par des mécanismes mal connus le développement tumoral, présentant ainsi un gain de fonction. Le principal représentant de cette catégorie est le mutant H175. Compte tenu de ses propriétés anti-tumorales et apoptotiques et de son implication dans nombreuses pathologies de type hyperprolifératives, le gène p53 sauvage a été utilisé dans des approches de thérapie génique et cellulaire. II a en particulier été proposé de traiter certaines pathologies hyperprolifératives, et notament des cancers, par administration in vivo du gène p53 sauvage, par restauration des fonctions de p53. L'administration peut être réalisée préférentiellement par des vecteurs viraux et notamment adénoviraux (W094/24297) ou rétroviraux (W094/06910). II a ainsi été montré que l'introduction d'un acide nucléique codant pour la protéine p53 sauvage permettait de restaurer partiellement une régulation normale de la croissance cellulaire. Cependant, si ces résultats sont encourageants, l'efficacité de ces approches est limitée par l'efficacité thérapeutique de la protéine p53 après transfert et expression in vivo dans les cellules hyperprolifératives. En effet, les situations pathologiques hyperproliférative telles que les cancers proviennent du déréglement de l'équilibre qui s'établit dans un réseau de contrôles négatifs et positifs de la croissance cellulaire.L'inactivation du contrôle négatif exercé par la protéine p53 sauvage par l'apparition d'un mutant p53 dominant négatif à partir de l'un des deux allèles, la surexpression d'un partenaire cellulaire inactivant p53 comme par exemple mdm2, voir la présence d'un inactivateur viral suite à une infection, constituent un contexte non tavorable pour une thérapie basée sur la réintroduction d'une protéine p53 sauvage qui risque fort d'être également inactivée. II est donc particulièrement important de pouvoir disposer de protéines de type p53 ayant des propriétés thérapeutiques accrues. Notamment, il serait particulièrement avantageux de disposer de molécules p53 actives constitutivement et non sensibles aux effets inactivateurs des mutants dominant-négatifs et oncogéniques ou d'autres protéines cellulaires ou virales telles que E6 de HPV18 et HPV16, MDM2, EBNA5 de EBV, etc rencontrés dans les cellules tumorales. Certaines modifications de la protéine p53 ont été décrites dans l'art antérieur. Ainsi, la demande W095/06661 décrit des modifications sur certains résidus des régions homologues de la protéine p53, c'est-à-dire dans les régions 343-351, 372-380 et 381-393. Cependant, ces modifications sont très mineures et ne permettent pas aux produits résultant d'échapper aux mécanismes d'inactivation de la protéine p53 in vivo. De plus, ces protéines ne semblent pas présenter d'activité améliorée par rapport à la protéine p53 sauvage. Hupp et al. (Cell Vol 71 (1992) 875) ont décrit un dérivé de p53 comprenant une délétion des 30 résidus C-terminaux (p53C-ter30). Toutefois, si cette protéine conserve une capacité à lier l'ADN, ses propriétés apoptotiques ne sont pas démontrées. De plus, elle n'est pas résistante à l'inactivation par les mutants dominants négatifs. Pietenpol et al (PNAS 91 (1994) 1998) ont décrit des molécules chimériques dérivées de la protéine p53, notamment une protéine VP16-p53 (80-343)-GCN4. Cependant, cette molécule possède une capacité de liaison à 'ADN et de transactivation nettement diminuées par rapport à la protéine p53 sauvage (40%). Par ailleurs, elle possède une région d'oligomérisation non sélective, risquant d'interagir avec d'autres composant cellulaires et ainsi d'induire une réponse cellulaire non spécifique. Par ailleurs, ses propriétés de résistance aux mécanismes d'inactivation ne sont pas indiquées. La présente invention décrit de nouveaux variants de la protéine p53 présentant des propriétés thérapeutiques améliorées. Elle décrit en particulier des variants adaptés à une utilisation en thérapie génique, notamment anti-cancéreuse. Les variants de l'invention dérivent de la protéine p53 par modification(s) structurale(s), conservent une activité de type p53 et, exprimés dans des cellules hyperprolifératives, présentent au moins une propriété accrue par rapport à la protéine p53. II peut s'agir en particulier de l'activité anti-proliférative etlou apoptotique. Les variants de l'invention possèdent avantageusement une activité anti-proliférative etlou apoptotique accrue, ou plus spécifique des cellules hyperprolifératives, ou moins sensible aux différentes altérations auxquelles est sujette la p53 sauvage. Un premier objet de l'invention concerne plus particulièrement un variant de la protéine p53 dans lequel tout ou partie du domaine d'oligomérisation est délété et remplacé par un domaine leucine zipper artificiel. Comme indiqué ci-avant, la protéine p53 est inactivée par certains mutants, et notamment les mutants dominant-négatifs et oncogéniques, rencontrés dans les cellules tumorales. Cette inactivation est le résultat de la formation d'oligomères mixtes non actifs entre la protéine p53 sauvage et le mutant, qui ne peuvent plus se fixer aux séquences spécifiques reconnues par la protéine p53 sauvage.La présente invention décrit maintenant des variants de la protéine p53 résistant à l'effet dominant négatif de certains mutants, c'est-à-dire des variants actifs dans un contexte cellulaire présentant un ou deux allèles mutés, ce qui est le cas de près de 90% des cancers humains p53 dépendants. Dans les variants selon l'invention, tout ou partie du domaine d'oligomérisation naturel de la protéine, qui ne fait pas la distinction entre les formes sauvage et mutante, est ainsi remplacé par un domaine équivalent possédant une capacité d'oligomérisation spécifique. Cette modification est effectuée en utilisant un leucine-zipper artificiel optimisé pour former un dimère. Les molécules selon l'invention comportant un tel leucine-zipper artificiel sont particulièrement avantageuses car forment des oligomères uniquement avec d'autres molécules portant le même leucine-zipper. Elles ne forment donc pas d'oligomères avec les mutants dominant négatifs ou oncogéniques de la protéine p53, susceptibles de les inactiver.Elles ne forment pas non plus d'oligomères avec d'autres protéines cellulaires portant des domaines d'oligomérisation, susceptibles également de les inactiver ou d'induire des effets indésirables. Elles ne peuvent former que des homooligomères et possèdent donc une sélectivité importante, assurant une meilleure activité dans un contexte de pathologie hyperproliférative. Selon la présente invention, le domaine leucine zipper artificiel est donc avantageusement un domaine non présent à l'état naturel, assurant une sélectivité d'oligomérisation. Tout préférentiellement, le domaine d'oligomérisation est représenté par la séquence SEQ ID n" 1. Dans un mode de réalisation préféré de l'invention, les variants comportent une délétion de tout ou partie du domaine d'oligomérisation et de tout ou partie du domaine de régulation. Comme indiqué précédemment, le domaine d'oligomérisation est localisé entre les résidus 325-355 inclus et le domaine de régulation entre les résidus 365-393 inclus. Ce type de variant est tout à fait avantageux car est dépourvu de tout ou partie des effets de régulation négative exercée par l'intermédiaire de la partie C-terminale (aa 365-393). Ces variants constituent des protéines potentiellement constitutivement actives, présentant une activité non modulable et éventuellement accrue. La région de régulation est avantageusement supprimée dans sa totalité. Les variants préférés selon l'invention comportent une délétion de la partie Cterminale de la protéine p53, à partir du résidu 326 ou 337 inclus. Des exemples d'intermédiaires utilisés pour la construction de ces variants sont notamment: pECi 07 (75-325-lz) possédant une délétion de la partie C-terminale de la protéine p53, à partir du résidu 326, substituée par un domaine d'oligomérisation artificiel de séquence SEQ ID n 1. pEC110 (75-336-lz) possédant une délétion de la partie C-terminale de la protéine p53, à partir du résidu 337, substituée par un domaine d'oligomérisation artificiel de séquence SEQ ID n 1. Selon un mode de réalisation avantageux, dans les variants de l'invention, le résidu cystéine en position 182 de la protéine p53 est remplacé par une histidine. Cette mutation permet avantageusement d'augmenter l'affinité du variant pour les séquences nucléotidiques spécifiques de liaison. L'introduction de cette modification supplémentaire permet donc d'obtenir une molécule ayant en plus un potentiel transactivateur augmenté. Des exemples précis de constructions intermédiaires pour la préparation de variants selon l'invention combinant ces différentes modifications sont notamment: pEC139 (75-325(H182)-lz) possédant une délétion de la partie Cterminale de la protéine p53, à partir du résidu 326, substituée par un domaine d'oligomérisation artificiel de séquence SEQ ID n 1, et une histidine en position 182. pEC140 (75-336(H182)-lz) possédant une délétion de la partie Cterminale de la protéine p53, à partir du résidu 337, substituée par un domaine d'oligomérisation artificiel de séquence SEQ ID n"l, et une histidine en position 182. Avantageusement, dans les variants selon l'invention, tout ou partie du domaine transactivateur est également délété et remplacé par un domaine transactivateur hétérologue. II a été indiqué ci-avant que les fonctions transactivatrices de p53 sont essentielles à son activité de suppresseur de tumeur ou d'inducteur d'apoptose. De manière à augmenter le potentiel thérapeutique des variants selon l'invention, il est particulièrement avantageux de substituer le domaine transactivateur naturel par un domaine transactivateur hétérologue puissant. Ces variants présentent ainsi de nombreux avantages. Ils possèdent bien entendu une activité transactivateur élevée. Mais ils sont également rendus insensibles aux effets de régulation négative exercés par l'intermédiaire de la partie N-terminale (aa 1-73).En effet cette région contient les séquence PEST responsables de sa dégradation protéolytique. La substitution de cette région par un domaine transactivateur hétérologue dépourvu de séquences PEST permet de diminuer cette régulation négative. Ces variants sont également caractérisés par la diminution, voire la suppression, de toute interaction avec la protéine E6 du virus du papillome humain (HPV) qui est susceptible d'induire leur dégradation. Ils sont également moins sensibles aux interactions avec d'autres protéines cellulaires telles que MDM2 et EBNA qui affectent l'activité de la protéine p53 sauvage. Les variants ainsi obtenus possèdent donc une stabilité accrue.La suppression des domaines sensibles à une régulation négative (domaines régulateur et transactivateur) conduit de manière particulièrement avantageuse à des molécules qui ne sont plus la cible de protéines induisant leur protéolyse ou leur inactivation. Avantageusement, dans les variants de l'invention, le domaine transactivateur est supprimé par délétion des résidus 1 à 74. Les constructions intermédiaires utilisées pour la réalisation de telles molécules sont notamment pEC107 (75-325-lz), pEC110 (75-336-lz), pEC139 (75325(H 182)-lz) et pEC140 (75-336(H182)-lz). Selon un premier mode de réalisation, le domaine transactivateur hétérologue est le domaine transactivateur de VP16.11 est avantageusement constitué des résidus 411 à 490 de VP16, dont la séquence est donnée SEQ ID n" 2. Des exemples précis de variants selon l'invention combinant ces différents modifications sont notamment:: pEC114 (VP16-75-325-lz) possédant une délétion de la partie Nterminale de la protéine p53 comprenant les résidus 1-74, substituée par le domaine transactivateur de VP16 de séquence SEQ ID nO 2 et une délétion de la partie C-terminale de la protéine p53, à partir du résidu 326, substituée par un domaine d'oligomérisation artificiel de séquence SEQ ID n 1. La séquence complète du variant pEC114 est représentée SEQ ID n" 25. . pEC116 (VP16-75-336-lz) possédant une délétion de la partie Nterminale de la protéine p53 comprenant les résidus 1-74, substituée par le domaine transactivateur de VP16 de séquence SEQ ID n" 2 et une délétion de la partie C-terminale de la protéine p53, à partir du résidu 337, substituée par un domaine d'oligomérisation artificiel de séquence SEQ ID n 1 La séquence complète du variant pECi 16 est représentée SEQ ID nO 26. pEC147 (VP16-75-325(H182)-lz) possédant une délétion de la partie N-terminale de la protéine p53 comprenant les résidus 1-74, substituée par le domaine transactivateur de VP16 de séquence SEQ ID n" 2; une délétion de la partie C-terminale de la protéine p53, à partir du résidu 326, substituée par un domaine d'oligomérisation artificiel de séquence SEQ ID n 1, et une histidine en position 182. pEC149 (VP16-75-336(H1 82)-lz) possédant une délétion de la partie N-terminale de la protéine p53 comprenant les résidus 1-74, substituée par le domaine transactivateur de VP16 de séquence SEQ ID n" 2; une délétion de la partie C-terminale de la protéine p53, à partir du résidu 337, substituée par un domaine d'oligomérisation artificiel de séquence SEQ ID n 1, et une histidine en position 182. En raison des modifications mentionnées ci-avant, les variants de l'invention ont également des propriétés 'tueuses' que sont l'arrêt du cycle cellulaire et l'apoptose potentiellement améliorées. La combinaison des modification mentionnées, incluant la présence d'un domaine d'oligomérisation sélectif et un pouvoir transactivateur amélioré par substitution du domaine d'origine et par la présence d'une histidine en 182 confèrent en effet aux variants de l'invention des potentialités thérapeutiques nettement améliorées. En outre, les variants selon l'invention permettent d'éviter l'apparition de certains mutants (dominants oncogéniques). Les gains de fonction de certains mutants de p53 sont encore mal définis tant au niveau de leur mécanismes qu'au niveau des domaines de la protéine p53 impliqués. Il est fort probable que certaines de ces nouvelles fonctions vont dépendre de l'association à certains partenaires cellulaires effecteurs. L'élimination des domaines impliqués dans ces interactions, et dont les propriétés transformantes ont été mises en évidence, au sein des molécules décrites dans la présente demande sont de nature à empêcher l'apparition de ces gains de fonctions oncogéniques. Ainsi les mutations qui apparaitraient de façon aléatoire lors de la préparation des lots cliniques de plasmides codant pour les polypeptides décrits ou lors de la production de lots cliniques de vecteurs viraux ou chimiques codant pour ces mêmes polypeptides ne créeraient pas une sous-population de molécules oncogéniques. Par ailleurs, en raison de la suppression de certains domaines de p53 indispensables pour la fixation de certaines molécules inhibitrices de sa fonction, les variants de l'invention présentent également une activité thérapeutique plus élevée et plus stable. Finalement, I'existence de motifs étrangers dans les différentes constructions de l'invention (protéine Net ou AS murine par exemple, domaine d'oligomérisation artificiel, etc) est susceptible de déclencher une réaction immunitaire lors de la mort des cellules transfectées et du relargage dans le milieu extracellulaire des ces différents fragments, augmentant ainsi la capacité du système immunitaire à lutter contre les cellules tumorales. Selon un autre mode de réalisation, le domaine transactivateur hétérologue est un domaine transactivateur actif préférentiellement dans les cellules transformées et non dans les cellules saines avoisinantes. La présente invention décrit en effet également des molécules dont la fonction s'exerce essentiellement dans des cellules transformées et non dans les cellules saines avoisinantes. Bien qu'il semble que l'expression exogène d'une p53 sauvage au sein d'une cellule différenciée comportant de la p53 sauvage endogène ait peu ou pas d'effet sur la viabilité, il est néanmoins avantageux de pouvoir disposer d'une protéine qui ne serait fonctionnelle qu'au sein de la cellule ciblée.Cette spécificité de la cellule tumorale versus la cellule normale est actuellement beaucoup travaillée au niveau de la spécificité du ciblage du vecteur viral ou de la conception de systèmes d'expression spécifiques. La présente invention décrit maintenant des dérivés de p53 dont un des domaines fonctionnels est éteint en l'absence d'un activateur cellulaire présent essentiellement dans les cellules transformées. Ainsi, un autre objet de l'invention concerne un variant de la protéine p53 actif préférentiellement dans les cellules transformées, dans lequel un au moins des domaines fonctionnels de p53 est délété en tout ou en partie et est substitué par un domaine hétérologue actif préférentiellement dans les cellules transformées. Préférentiellement, le domaine fonctionnel de p53 concerné est le domaine transactivateur. Ainsi, un objet particulièrement préféré de l'invention concerne un variant de la protéine p53 actif préférentiellement dans les cellules transformées, dans lequel le domaine transactivateur naturel est délété en tout ou en partie et est substitué par un domaine transactivateur actif préférentiellement dans les cellules transformées. Avantageusement, le domaine transactivateur naturel est délété par suppression des résidus 1-74 inclus de p53. L'invention concerne plus particulièrement des variants de p53 qui sont fonctionnels spécifiquement en présence d'une protéine Ras oncogénique ou d'un mutant de p53. Ces molécules sont obtenues notamment par remplacement du domaine transactivateur de la protéine p53 sauvage par un domaine protéique capable de lier spécifiquement un transactivateur ou un complexe transactivateur présent dans une cellule transformée. Le domaine protéique capable de lier spécifiquement le transactivateur transcriptionnel ou le complexe transactivateur transcriptionnel présent dans les molécules de l'invention peut être de différents types. II peut s'agir en particulier d'un domaine d'oligomérisation dans le cas où le transactivateur ou le complexe transactivateur ciblé comporte également un tel domaine. II peut également s'agir de tout domaine synthétique ou naturel connu pour interagir avec ledit transactivateur ou complexe transactivateur. II peut encore s'agir d'un anticorps ou d'un fragment ou dérivé d'un anticorps dirigé contre le transactivateur ou complexe transactivateur. Avantageusement, le domaine hétérologue est constitué par un anticorps ou un fragment ou dérivé d'anticorps. Les fragments ou dérivés d'anticorps sont par exemple les fragments Fab ou F(ab)'2, les régions VH ou VL d'un anticorps ou encore des anticorps simple chaine (ScFv) comprenant une région VH liée à une région VL par un bras. La construction de séquences d'acides nucléiques codant pour de tels anticorps modifiés selon l'invention a été décrite par exemple dans le brevet US4,946,778 ou dans les demandes W094/02610, W094/29446. Une construction préférée selon la présente invention comprend un ScFv dirigé contre un mutant de la protéine p53. Ces mutants apparaissent dans les cellules transformées et possèdent un domaine transactivateur. Leur recrutement par un variant selon l'invention crée une molécule chimère active sélectivement dans les cellules transformées. Selon un autre mode préféré, le ScFv est dirigé contre un complexe transactivateur, c'est à dire un complexe entre une molécule cible présente sélectivement dans les cellules transformées, mais dépourvue d'activité transactivateur transcriptionnel (par exemple un ras oncogénique), et une molécule portant un domaine transactivateur. Cette dernière comporte avantageusement un domaine transactivateur et un domaine de liaison séléctif à ladite molécule cellulaire (par exemple un ScFv anti-ras). La fixation de cette molécule permet la formation d'un complexe binaire transactivateur transcriptionnel, lequel complexe étant alors recruté par le variant de l'invention. Tout autre type de modification conduisant à cette spécificité d'activité peut bien entendu être utilisée dans le cadre de la présente invention, telle que notamment tout domaine transactivateur spécifique d'un type de cellule. Ces variants sélectifs comportent avantageusement des modifications supplémentaires dans la partie C-terminale comme indiqué ci-avant pour améliorer encore leurs propriétés. Ainsi, ils comportent avantageusement une délétion de tout ou partie du domaine d'oligomérisation, qui peut être remplacé par tout domaine d'oligomérisation hétérologue. II s'agit plus préférentiellement d'un domaine d'oligomérisation artificiel, tel que défini ciavant. Des exemples précis de variants selon l'invention actifs préférentiellement dans les cellules transformées sont notamment: ScFv.antip53*-75-325-lz, possédant une délétion de la partie Nterminale de la protéine p53 comprenant les résidus 1-74, substituée par un domaine protéique capable de lier spécifiquement un mutant de la protéine p53 présent dans une cellule transformée, et une délétion de la partie C terminale de la protéine p53, à partir du résidu 326, substituée par un domaine d'oligomérisation artificiel de séquence SEO ID n 1. ScFv.antip53"-75-325(H1 82)-lz, comprenant en plus une mutation Hisi 82. . ScFv.antip53*-75-336-lz, possédant une délétion de la partie Nterminale de la protéine p53 comprenant les résidus 1-74, substituée par un domaine protéique capable de lier spécifiquement un mutant de la protéine p53 présent dans une cellule transformée, et une délétion de la partie Cterminale de la protéine p53, à partir du résidu 337, substituée par un domaine d'oligomérisation artificiel de séquence SEQ ID n 1. . ScFv.antip53*-75-336(H182)-lz, comprenant en plus une mutation His182. - ScFv.antip53*-75-393, possédant une délétion de la partie Nterminale de la protéine p53 comprenant les résidus 1-74, substituée par un domaine protéique capable de lier spécifiquement un mutant de la protéine p53 présent dans une cellule transformée. - ScFv.antip53*-75-393(H182), comprenant en plus une histidine en position 182. - ScFv.antip53*-75-367, possédant une délétion de la partie Nterminale de la protéine p53 comprenant les résidus 1-74, substituée par un domaine protéique capable de lier spécifiquement un mutant de la protéine p53 présent dans une cellule transformée; et une délétion de la partie Cterminale, à partir du résidu 368. - ScFv.antip53*-75-367(H182), comprenant en plus une histidine en position 182, - ScFv.antip53*-75-AS, possédant une délétion de la partie Nterminale de la protéine p53 comprenant les résidus 1-74, substituée par un domaine protéique capable de lier spécifiquement un mutant de la protéine p53 présent dans une cellule transformée; et une délétion de la partie Cterminale, à partir du résidu 367, additionnée des 19 acides aminés de séquence SEQ ID n" 3. - ScFv.antip53*-75-AS(H182), comprenant en plus une histidine en position 182, En outre, le terme actif préférentiellement indique que ces variants exercent leur activité essentiellement lorsqu'ils sont exprimés dans des cellules transformées. Une activité résiduelle peut toutefois exister dans les cellules non transformées, mais inférieure à celle observée dans les cellules transformées. Un autre objet de la présente invention concerne un variant de la protéine p53 comprenant une délétion de la partie C-terminale, à partir du résidu 367, fusionné à la séquence SEQ ID n" 3 (AS). Cette séquence correspond aux 19 derniers acides aminés du produit d'épissage alternatif de la protéine p53 murine. Ce variant présente donc une modification du domaine d'oligomérisation basée sur une protéine décrite chez la souris comme un variant d'épissage alternatif de la protéine sauvage dans laquelle les 27 acides aminés C-terminaux sont remplacés par 19 acides aminés différents. Ce variant possède une affinité pour les séquences spécifique de liaison à l'ADN potentiellement accrue. Ce variant comporte avantageusement des modification dans la partie Nterminale comme indiqué ci-avant pour améliorer encore ses propriétés. Ainsi, il comporte avantageusement une délétion de tout ou partie du domaine transactivateur, qui peut être remplacé par tout domaine transactivateur hétérologue. II s'agit plus préférentiellement du domaine transactivateur dérivé de la protéine VP16 ou d'un domaine protéique capable de lier spécifiquement un transactivateur ou un complexe transactivateur présent dans une cellule transformée. En outre, le résidu 182 de la protéine p53 est avantageusement remplacé par une histidine. Des exemples précis de ce type de variants selon l'invention sont notamment: Sc Fv. antip53*-75-AS, décrit c i-avant, . pEC143 (VP16-75-AS), possédant une délétion de la partie Nterminale de la protéine p53 comprenant les résidus 1-74, substituée par le domaine transactivateur de VP16 de séquence SEQ ID n" 2; et une délétion de la partie C-terminale, à partir du résidu 367, additionnée des 19 acides aminés de séquence SEQ ID n" 3. La séquence complète du variant pEC143 est représentée SEQ ID n" 28. ScFv.antip53*-75-AS(Hî 82), décrit ci-avant, pEC153 (VP16-75-AS(H182)), correspond à pEC143 avec une histidine en position 182. Selon une manière plus générale, I'invention concerne toute protéine chimère comprenant un domaine transactivateur, un domaine de liaison à l'ADN, un domaine d'adressage au noyau et un domaine d'oligomérisation, dans laquelle les domaines de liaison à l'ADN et d'adressage au noyau sont constitués par les acides aminés 75 à 325 de la protéine p53 sauvage humaine (SEQ ID n" 4). La demanderesse a en effet montré que cette région de la protéine p53, couplée à des domaines transactivateur et d'oligomérisation appropriés, permet la création de molécules de type p53 ayant des propriétés particulièrement avantageuses en terme de stabilité, de résistance aux effets négatifs des mutants de p53 et de sensibilité à l'inactivation par certains facteurs cellulaires. Selon une variante, les domaines de liaison à l'ADN et d'adressage au noyau sont constitués par les acides aminés 75 à 336 de la protéine p53 sauvage humaine (SEQ ID n" 5). Les protéines chimères selon l'invention peuvent comporter différents types de domaines transactivateur. Il peut s'agir du domaine transactivateur de la protéine p53. Préférentiellement, il s'agit d'un domaine transactivateur hétérologue, choisi par exemple parmi le domaine transactivateur de VP16 ou un domaine protéique capable de lier spécifiquement un transactivateur ou un complexe transactivateur présent dans une cellule transformée. Concernant le domaine d'oligomérisation, il s'agit préférentiellement d'un domaine artificiel, et donc spécifique, tel que par exemple un leucine zipper artificiel, en particulier de séquence SEQ ID n" 1. Les protéines chimères selon l'invention peuvent en outre comporter un résidu histidine en position 182. Des exemples précis de protéines chimères telles que décrites dans la présente demande sont notamment pEC114, pEC116, pEC147 et pEC149. La présente invention a également pour objet tout acide nucléique codant pour un variant ou une protéine chimère tel que défini ci-avant. L'acide nucléique selon l'invention peut être un acide ribonucléique (ARN) ou désoxyribonucléique (ADN). En outre, il peut s'agir d'un ADN complémentaire (ADNc) éventuellement comprenant un ou plusieurs introns du gène p53. II peut être d'origine humaine, animale, virale, synthétique ou semi-synthétique. II peut être obtenu de différentes manières et notamment par synthèse chimique en utilisant les séquences présentées dans la demande et par exemple un synthétiseur d'acides nucléiques. II peut également être obtenu par criblage de banques au moyen de sondes spécifiques, notamment telles que décrites dans la demande. Il peut encore être obtenu par des techniques mixtes incluant la modification chimique (élongation, délétion, substitution, etc) de séquences criblées à partir de banques.D'une manière générale, les acides nucléiques de l'invention peuvent être préparés selon toute technique connue de l'homme du métier. Préférentiellement, l'acide nucléique selon l'invention est un ADNc ou un ARN. L'acide nucléique selon l'invention est avantageusement choisi parmi: (a) tout ou partie des séquences SEO ID n" 25, 26, 27, 28 et 29 ou de leur brin complémentaire, (b) toute séquence hybridant avec les séquences (a) et codant pour un dérivé selon l'invention, (c) les variants de (a) et (b) résultant de la dégénérescence du code génétique. Comme indiqué précédemment, la demanderesse a maintenant construit de nouvelles séquences d'acide nucléique codant pour des polypeptides variants de p53, ayant des propriétés antiprolifératives et apoptotiques tout à fait remarquables. Ces acides nucléiques peuvent être utilisés comme agents thérapeutiques pour produire dans les cellules des dérivés selon l'invention capables de détruire ou de corriger des dysfonctionnements cellulaires. A cet effet, la présente invention concerne également toute cassette d'expression comprenant un acide nucléique tel que défini ciavant, un promoteur permettant son expression et un signal de terminaison de la transcription. Le promoteur est avantageusement choisi parmi les promoteurs fonctionnels dans les cellules mammifères, de préférence humaines.Plus préférentiellement, il s'agit d'un promoteur permettant l'expression d'un acide nucléique dans une cellule hyperproliférative (cancéreuse, resténose, etc). A cet égard, différents promoteurs peuvent être utilisés. Il peut s'agir par exemple du propre promoteur du gène p53. Il peut également s'agir de régions d'origine différente (responsables de l'expression d'autres protéines, ou même synthétiques). Il peut ainsi s'agir de tout promoteur ou séquence dérivée stimulant ou réprimant la transcription d'un gène de façon spécifique ou non, inductible ou non, forte ou faible. On peut citer notamment les séquences promotrices de gènes eucaryotes ou viraux. Par exemple, il peut s'agir de séquences promotrices issues du génome de la cellule cible.Parmi les promoteurs eucaryotes, on peut utiliser en particulier de promoteurs ubiquitaires (promoteur des gènes HPRT, PGK, a-actine, tubuline, etc), de promoteurs des filaments intermédiaires (promoteur des gènes GFAP, desmine, vimentine, neurofilaments, kératine, etc), de promoteurs de gènes thérapeutiques (par exemple le promoteur des gènes MDR, CFTR, Facteur VIII, ApoAl, etc), de promoteurs spécifiques de tissus (promoteur du gène pyruvate kinase, villine, protéine intestinale de liaison des acides gras, aactine du muscle lisse, etc) ou encore de promoteurs répondant à un stimulus (récepteur des hormones stéroides, récepteur de l'acide rétinoique, etc).De même, il peut s'agir de séquences promotrices issues du génome d'un virus, tel que par exemple les promoteurs des gènes E1A et MLP d'adénovirus, le promoteur précoce du CMV, ou encore le promoteur du LTR du RSV, etc. En outre, ces régions promotrices peuvent être modifiées par addition de séquences d'activation, de régulation, ou permettant une expression tissu-spécifique ou majoritaire. La présente invention fournit maintenant de nouveaux agents thérapeutiques permettant, par leurs propriétés antiprolifératives etlou apoptotiques d'interférer avec de nombreux dysfonctionnements cellulaires. Dans ce but, les acides nucléiques ou cassettes selon l'invention peuvent être injectés tels quels au niveau du site à traiter, ou incubés directement avec les cellules à détruire ou traiter. Il a en effet été décrit que les acides nucléiques nus pouvaient pénétrer dans les cellules sans vecteur particulier. Néanmoins, on préfère dans le cadre de la présente invention utiliser un vecteur d'administration, permettant d'améliorer (i) I'efficacité de la pénétration cellulaire, (ii) le ciblage (iii) la stabilité extra- et intracellulaires. Dans un mode de mise en oeuvre particulièrement préféré de la présente invention l'acide nucléique ou la cassette est incorporé dans un vecteur. Le vecteur utilisé peut être d'origine chimique (liposome, nanoparticule, complexe peptidique, lipides ou polymères cationiques, etc) virale (rétrovirus, Adénovirus, virus de l'herpès, AAV, virus de la vaccine, etc) ou plasmidique. L'utilisation de vecteurs viraux repose sur les propriétés naturelles de transfection des virus. II est ainsi possible d'utiliser par exemple les adénovirus, les herpès virus, les rétrovirus et les virus adéno associés. Ces vecteurs s'avèrent particulièrement performants sur le plan de la transfection. A cet égard, un objet préféré selon l'invention réside dans un rétrovirus recombinant défectif dont le génome comprend un acide nucléique tel que défini ci-avant. Un autre objet particulier de l'invention réside dans un adénovirus recombinant défectif dont le génome comprend un acide nucléique tel que défini ci-avant. Le vecteur selon l'invention peut également être un agent non viral capable de promouvoir le transfert et l'expression d'acides nucléiques dans des cellules eucaryotes. Les vecteurs chimiques ou biochimiques, synthétiques ou naturels, représentent une alternative intéressante aux virus naturels en particulier pour des raisons de commodité, de sécurité et également par l'absënce de limite théorique en ce qui concerne la taille de l'ADN à transfecter. Ces vecteurs synthétiques ont deux fonctions principales, compacter l'acide nucléique à transfecter et promouvoir sa fixation cellulaire ainsi que son passage à travers la membrane plasmique et, le cas échéant, les deux membranes nucléaires. Pour pallier à la nature polyanionique des acides nucléiques, les vecteurs non viraux possèdent tous des charges polycationiques. L'acide nucléique ou le vecteur utilisé dans la présente invention peut être formulé en vue d'administrations par voie topique, orale, parentérale, intranasale, intraveineuse, intramusculaire, sous-cutanée, intraoculaire, transdermique, etc. De préférence, I'acide nucléique ou le vecteur est utilisé sous une forme injectable. Il peut donc être mélangé à tout véhicule pharmaceutiquement acceptable pour une formulation injectable, notamment pour une injection directe au niveau du site à traiter. II peut s'agir en particulier de solutions stériles, isotoniques, ou de compositions sèches, notamment lyophilisées, qui, par addition selon le cas d'eau stérilisée ou de sérum physiologique, permettent la constitution de solutés injectables.Une injection directe de l'acide nucléique dans la tumeur du patient est intéressante car elle permet de concentrer l'effet thérapeutique au niveau des tissus affectés. Les doses d'acide nucléique utilisées peuvent être adaptées en fonction de différents paramètres, et notamment en fonction du gène, du vecteur, du mode d'administration utilisé, de la pathologie concernée ou encore de la durée du traitement recherchée. L'invention concerne également toute composition pharmaceutique comprenant au moins un acide nucléique tel que défini ci-avant. Elle concerne également toute composition pharmaceutique comprenant au moins un vecteur tel que défini ci-avant. Elle concerne aussi toute composition pharmaceutique comprenant au moins un variant de p53 tel que défini ci-avant. En raison de leurs propriétés antiprolifératives, les compositions pharmaceutiques selon l'invention sont tout particulièrement adaptées pour le traitement des désordres hyperprolifératifs, tels que notamment les cancers et la resténose. La présente invention fournit ainsi une méthode particulièrement efficace pour la destruction de cellules, notamment de cellules hyperprolifératives. Elle peut être utilisée in vitro ou ex vivo. Ex vivo, elle consiste essentiellement à incuber les cellules en présence d'un ou plusieurs acides nucléiques (ou d'un vecteur, ou cassette ou directement du dérivé). In vivo, elle consiste à administrer à l'organisme une quantité active d'un vecteur (ou d'une cassette) selon l'invention, de préférence directement au niveau du site à traiter (tumeur notamment).A cet égard, l'invention a également pour objet une méthode de destruction de cellules hyperprolifératives comprenant la mise en contact desdites cellules ou d'une partie d'entre-elles avec un acide nucléique tel que défini ci-avant. La présente invention est avantageusement utilisée in vivo pour la destruction de cellules en hyperprolifération (i.e. en prolifération anormale). Elle est ainsi applicable à la destruction des cellules tumorales ou des cellules de muscle lisse de la paroi vasculaire (resténose). Elle est tout particulièrement appropriée au traitement des cancers dans lesquels un mutant de p53 est observé.A titre d'exemple, on peut citer les adénocarcinomes du colon, les cancers de la thyroïde, les carcinomes du poumon, les leucémies myéloldes, les cancers colorectaux, les cancers du sein, les cancers du poumon, les cancers gastriques, les cancers de l'oesophage, les lymphômes B, les cancers ovariens, les cancers de la vessie, les glioblastomes, les hépatocarcinomes, les cancers des os, de la peau, du pancréas ou encore les cancers du rein et de la prostate, les cancers de l'oesophage, les cancers du larynx, les cancers tête et cou, les cancers ano-génitaux HPV positifs, les cancers du nasopharynx EBV positifs, les cancers dans lesquels la protéine cellulaire mdm2 est surexprimée, etc. Les variants de l'invention sont particulièrement efficaces pour le traitement des cancers dans lesquels la protéine MDM2 est en outre surexprimée, ainsi que des cancers liés au virus HPV tels que les cancers ano-génitaux HPV positifs. La présente invention est décrite plus en détail dans les exemples qui suivent, qui doivent être considérés comme illustratifs et non limitatifs. Légende des Figures Figure 1 : Domaines fonctionnels de la protéine p53 sauvage. TA: Domaine activateur de la transcription; DNB: domaine de liaison à l'ADN; NLS : signal de localisation nucléaire; OL : domaine d'oligomérisation; REG : domaine de régulation. Figure 2: Construction d'un ADNc codant pour la forme AS de la p53. Figure 3 : Clonage des ADNc codant pour les constructions pEC104, pEC106, pEC131, pEC132 et pEC133 et pour leur variant H182. Figure 4 : Construction des variants pEC107, pEC110, pEC139 et pEC140 par fusion avec le domaine d'oligomérisation artificiel. Figure 5 : Construction des variants pEC114, pEC116, pEC141, pEC143, pEC145, pEC147, pEC149, pEC151, pEC153 et pEC155. Figure 6 : Activité transactivatrice de la protéine p53 et des variants de l'invention. Figure 7 : Effet de la protéine E6 sur la fonction transactivatrice de la protéine p53 et des variants de l'invention dans les cellules SAOS-2. Figure 8 : Effet de la protéine E6 sur la fonction transactivatrice de la protéine p53 et des variants de l'invention dans les cellules HeLa. Figure 9 : Effet du mutant dominant-négatif de p53 H175 sur la fonction transactivatrice des variants de l'invention. Exemples Exemple A. Construction de differents fragments nucleotidiques necessaires a la realisation des genes codant pour les variants de la proteine p53 Al. Construction du cDNA codant pour la p53 sauvage humaine Le gène de la p53 humaine a été cloné par réaction d'amplification en chaine (PCR) sur de l'ADN d'une banque de placenta humain (Clontech) en utilisant les oligonucléotides 5'-1 et 3'-393. Oligonucléotide 5'-1 (SEQ ID n" 6): ATGGAGGAGCCGCAG Oligonucléotide 3'-393 (SEQ ID n" 7): GGCGGCCGCGATATCGATTCATCAGTCTGAGTCAGGCCCTTC Ce produit a ensuite été cloné directement après PCR dans le vecteur pCRII (Invitrogène). A2 - Construction d'un ADNc codant pour la forme AS de la p53 La forme AS de la p53 comprend un fragment codant pour les acides aminés 1 à 366 de la protéine p53 humaine additionné des 19 derniers acides aminés du produit d'épissage alternatif de la protéine p53 murine. La forme AS de la p53 a été obtenue en deux étapes: - amplification par PCR d'un fragment codant pour les acides aminés 1 à 367 de la protéine p53 en utilisant les oligonucléotides 5'-1 (Cf exemple Al) et 3'367. Oligonucléotide 3'-367 (SEQ ID n" 8): GGCGGCCGCGATATCGATTCATCAGCTCGAGTGAGC Le fragment PCR ainsi obtenu a ensuite été cloné dans le vecteur pCRII (Invitrogène). Le fragment ainsi cloné possède un site de reconnaissance pour l'enzyme de restriction Xho I (fragment 1-367). - les oligonucléotides 5'-AS1, 5'-AS2, 3'-AS1 et 3'-AS2 ont été phosphorylés puis hybridés ensemble pour constituer le fragment codant pour les 19 derniers acides aminés du produit d'épissage alternatif de la protéine p53 murine. 5'-AS1 (SEQ ID n" 9): TCGAGCCTGCAGCCTAGAG CCTTCCAAGCCCTCATGAAG GAG G 5'-AS2 (SEQ ID n" 10): AAAGCCCAAACTG CTGATGAATCGATATCGC 3'-AS1 (SEQ ID n" 11): TGAGGGCTTGGAAGGCTCTAGGCTGCAGGC 3'-AS2 (SEQ ID n" 12): GGCCGCGATATCGATTCATCAGCAGTTTGGGCTTTCCTCCTTCA Ce fragment a ensuite été inseré au niveau du site Xho I du fragment 1-367 (voir figure 2). Le gène ainsi construit code pour le variant humain du produit d'épissage alternatif de la protéine p53 murine (AS). La séquence protéique ainsi modifiée est la suivante: 364 367 386 393 I I I I p53:- A H S S H L K S K K G Q S T S R H K K L M F K T E G P D S D Z AS: - A H S S L Q P R A F Q A L M K E E S P N C Z Z 367:- A H S S Z Z A3 - Construction d'ADNc codant pour différents fragments de la protéine p53 portant le domaine de liaison à l'ADN. Cet exemple décrit la construction de différents ADNc codant pour différents fragments de la protéine p53 humaine, portant tout ou partie du domaine de liaison à l'ADN de p53. Ces fragments sont ensuite utilisés dans la construction des variants de p53. Ces fragments ont été obtenus par réaction d'amplification par la polymérase sur les matrices décrites dans les exemples Al et A2 au moyen de différents oligonucléotides. Les réactions d'amplification ont été réalisées dans les conditions décrites dans l'exemple A4.1. A3.1 - Construction d'un ADNc codant pour la région 75-325 de p53 et de son dérivé H182 Cet exemple décrit la construction d'un ADNc codant pour les acides aminés 75 à 325 de la protéine p53 humaine sauvage (75-325). Cet ADNc a été obtenu par réaction d'amplification en chaine (PCR) sur I'ADN de p53 (décrit dans l'exemple Al) avec les oligonucléotides 5'-75 et 3'325 suivants: 5'-75 (SEQ ID n" 13): GGGAAGCTTGGGCCGGGTCGACCTGCACCAGCAGCTCCT 3'-325 (SEQ ID n" 14): GGCGGCCGCGGATCCCCATCCAGTGGTTTCTT Un dérivé de ce fragment portant une mutation ponctuelle sur l'acide aminé 182 de la protéine p53 humaine (cystéine - > Histidine) a été obtenu par mutagénèse dirigée au moyen du kit Amersham, en utilisant l'oligonucléotide H182 de séquence: Oligonucléotide H182 3' (SEO ID n" 15): ATCTGAATGGCGCTC Ce fragment a été désigné 75-325(H182). A3.2 - Construction d'un ADNc codant pour la région 75-336 de p53 et de son dérivé H 182 Cet exemple décrit la construction d'un ADNc codant pour les acides aminés 75 à 336 de la protéine p53 humaine sauvage (75-336). Cet ADNc a été obtenu par réaction d'amplification en chaine (PCR) sur I'ADN de p53 (décrit dans l'exemple Al) avec les oligonucléotides 5'-75 (SEQ ID n" 13) et 3'-336 suivant: 3'-336 (SEQ ID n" 16): GGCGGCCGCGGATCCTCACGCCCACGGATCTG Un dérivé de ce fragment portant une mutation ponctuelle sur l'acide aminé 182 de la protéine p53 humaine (cystéine - > Histidine) a été obtenu par mutagénèse dirigée au moyen du kit Amersham, en utilisant l'oligonucléotide H182 (SEQ ID n" 15). Ce fragment a été désigné 75-336(H182). A3.3 - Construction d'un ADNc codant pour la région 75-367 de p53 et de son dérivé H182 Cet exemple décrit la construction d'un ADNc codant pour les acides aminés 75 à 367 de la protéine p53 humaine sauvage (75-367). Ce fragment a été obtenu par réaction d'amplification en chaine (PCR) sur l'ADN de p53 décrit dans l'exemple Al avec les oligonucléotides 5'-75 (SEQ ID n" 13) et 3'-367 (SEQ ID n" 8). Le fragment ainsi obtenu inclut un site de reconnaissance par l'endonucléase Xhol (75-367). Un dérivé de ce fragment portant une mutation ponctuelle sur l'acide aminé 182 de la protéine p53 humaine (cystéine - > Histidine) a été obtenu par mutagénèse dirigée au moyen du kit Amersham, en utilisant l'oligonucléotide H182 (SEQ ID n" 15). Ce fragment a été désigné 75-367(H182). A3.4 - Construction d'un ADNc codant pour le fragment 75-AS et de son dérivé H182 Cet exemple décrit la construction d'un ADNc codant pour les acides aminés 75 à 366 de la protéine p53 humaine sauvage (75-366) additioné des 19 derniers acides aminés du produit de splicing alternatif de la protéine p53 murine. Ce fragment a été obtenu par réaction d'amplification en chaine (PCR) sur l'ADN du fragment AS décrit dans l'exemple A2 avec les oligonucléotides 5'75 (SEQ ID n" 13) et 3'-AS2 (SEQ ID ne12). Un dérivé de ce fragment portant une mutation ponctuelle sur l'acide aminé 182 de la protéine p53 humaine (cystéine - > Histidine) a été obtenu par mutagénèse dirigée au moyen du kit Amersham, en utilisant l'oligonucléotide H182 (SEQ ID n" 15). Ce fragment a été désigné 75-AS(H182). A3.5 - Construction d'un ADNc codant pour le fragment 75-393 de p53 et de son dérivé H182 Cet exemple décrit la construction d'un ADNc codant pour les acides aminés 75 à 393 de la protéine p53 humaine (75-393). Ce fragment a été obtenu par réaction d'amplification en chaine (PCR) sur l'ADN p53 décrit dans l'exemple Al avec les oligonucléotides 5'-75 (SEQ ID n" 13) et 3'-393 (SEQ ID n" 7). Un dérivé de ce fragment portant une mutation ponctuelle sur l'acide aminé 182 de la protéine p53 humaine (cystéine - > Histidine) a été obtenu par mutagénèse dirigée au moyen du kit Amersham, en utilisant l'oligonucléotide H182 (SEQ ID n" 15). Ce fragment a été désigné 75-393(H182). A4 - Construction d'ADNc codant pour différents fragments portant un domaine activateur de la transcription (domaine transactivateur). Cet exemple décrit la construction de différents ADNc codant pour différents fragments portant un domaine transactivateur. Ces fragments sont ensuite utilisés dans la construction des variants de p53. A4.1 - Récations de PCR Les différents fragments ont été obtenus par réaction d'amplification par la polymérase sur différentes matrices au moyen de différents oligonucléotides. Les réactions d'amplification ont été réalisées dans les conditions suivantes : Enzyme Amplitaq DNA polymerase (Perkin-Elmer) dans le tampon fourni par le fournisseur, avec une concentration de dNTP de 0,2 mM, 100 ng de matrice et 500 ng de chacun des deux oligonucléotides. - cycle: 2 min à 91"C cycle: 1 min à 91"C min à 55"C min à 72"C - cycle: 5 min à 72"C A4.2 - Construction d'un ADNc codant pour la région 411-490 de la protéine virale VP16 (VP16 TA) Cet exemple décrit la construction d'un ADNc codant pour les acides aminés 411-490 de la protéine virale VP16 (VP16 TA). Cette région porte le domaine transactivateur de cette protéine. Le fragment transactivateur dérivé de la protéine virale VP16 (411-490) du virus de l'herpès simplex a été obtenu par réaction d'amplification en chaine (PCR) en utilisant les conditions précédemment définies (Cf A4.1) et les oligonucléotides 5'-VP16 et 3'-VP16 suivants: 5'-VP16 (SEQ ID n" 17): AAGCTTGAATTCGTTAACATGTCCACGGCCCCCCCGACC 3'-VP16 (SEQ ID n" 18): GGTCGACCACCGTACTCGTCAAT et 100 ng du plasmide pUHD15-1 (Gossen & Bujard, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89 (1992) 5547) Le fragment ainsi obtenu comprend 334 paires de bases dont la séquence est donnée SEQ ID n" 2. Il comprend dans sa partie N-terminale un résidu méthionine apporté par le site d'initiation de la transcription (ATG), ajouté lors de l'étape de clonage par PCR. A5 - Construction d'ADNc codant pour différents fragments portant un domaine d'oligomérisation. Cet exemple décrit la construction de différents ADNc codant pour différents fragments portant un domaine d'oligomérisation. Ces fragments sont ensuite utilisés dans la construction des variants de p53. Ces fragments ont été obtenus par réaction d'amplification par la polymérase sur différentes matrices (p53 pour le domaine homologue et matrices d'origine différentes pour les domaines d'oligomérisation hétérologues, notamment artificiels) au moyen de différents oligonucléotides. Les réactions d'amplification ont été réalisées dans les conditions décrites en A4.1 ci-dessus. A5.1 - Construction d'un ADNc comprenant un domaine d'oligomérisation artificiel. Cet exemple décrit la construction d'un ADNc comprenant un domaine d'oligomérisation artificiel, constitué d'un leucine zipper artificiel. Cet ADNc est ensuite utilisé pour la construction de variants à partir des fragments 75325 (exemple A3.1) et 75-336 (exemple A3.2.) de la protéine p53 humaine et de leurs dérivés modifiés au niveau de la cystéine 182. Cet ADNc a été construit à partir des 6 oligonucléotides suivants. lzl-5' (SEQ ID n" 19): GATCTGAAGGCCCTCAAGGAGAAGCTGAAGGCC lz2-5' (SEQ ID n" 20): CTG GAGGAGAAGCTGAAG GCCCTGGAGGAGAAG CTG lz3-5' (SEQ ID n" 21): AAGGCACTAGTGGGGGAGCGATGATGAATCGATATCGC lzl-3' (SEQ ID n" 22): CTCCTCCAGGGCCTTCAGCTTCTCCTTGAGGGCCTTCA lz2-3' (SEQ ID n" 23): TAGTGCCTTCAGCTTCTCCTCCAGGGCCTTCAGCrr lz3-3' (SEQ ID n" 24): GGCCGCGATATCGATTCATCATCGCTCCCCCAC Ces oligonucléotides ont été synthétisés au moyen d'un synthétiseur automatique d'ADN, en utilisant la chimie des phosphoramidites.Ces six oligonucléotides présentent des complémentarités deux à deux (Iz1-5'/lz1-3', lz2-5'/lz2-3', lz3-5'/lz3-3') et des complémentarités chevauchantes (Iz1-3'/lz2- 5', lz2-3'/lz3-5') permettant l'obtention du domaine d'oligomérisation par simple hybridation et ligation. La séquence LZ résultante est donnée SEQ ID ne 1. A5.2 - Construction d'un ADNc comprenant le domaine d'oligomérisation naturel de la p53 humaine. Cet exemple décrit la construction d'un ADNc comprenant le domaine d'oligomérisation naturel de la p53 humaine. Cet ADNc est représenté par le fragment codant pour les acides aminés 325 à 356 de p53 contenu dans les constructions 75-367 (exemple A3.3), 75-AS (exemple A3.4), 75-393 (exemple A3.5) et de leurs dérivés modifiés au niveau de la cystéine 182. Exemple - Construction des genes codant pour differents variants de la protéine p53 B1 - Clonage des differents fragments de p53 Chacun des différents fragments obtenus par PCR décrit dans l'exemple A a été cloné après PCR dans le vecteur pBC SK+ (Stratagène) en utilisant les sites de reconnaissance par les enzymes de restriction Hind III et Not I (Figure 3). Les produits de ces constructions portent les numéros suivants: 75-325 -- > pEC 104 75-336 -- > pEC 106 75-367 -- > pEC 131 75-AS -- > pECî32 75-393 -- > pEC 133 A partir de ces produits et par mutagénèse dirigée en utilisant l'oligonucleotide-directed in vitro mutagenesis system (Amersham) et l'oligonucléotide H182, ont été obtenues les constructions correspondantes portant une histidine en position 182.Ces constructions portent les numéros suivants: 75-325(H182) -- > pEC 134 75-336(H182) -- > pEC 135 75-367(H182) -- > pEC 136 75-AS(H182) -- > pEC 137 75-393(H182) -- > pEC 138 B2 - Fusion du leucine-zipper aux fragment 75-325 et 75-336 et à leur variant K182 Les oligonucléotides constituant le leucine-zipper (lzl-5', lzl-3', lz2-5', lz2-3', lz3-5' et lz3-3') ont été phosphorylés à l'aide de la T4 kinase, puis hybridés tous ensemble et insérés dans les vecteurs pEC 104, 106, 134 et 135 préalablement digérés par les enzymes de restriction BamHI et Notl (Figure 4). Les produits de ces constructions portent les numéros suivants: 75-325-lz -- > pEC 107 75-336-lz -- > pEC 110 75-325(H 182)-lz -- > pEC 139 75-336(H182)-lz -- > pEC 140 B3 - Fusion du domaine activateur de la transcription à l'ensemble des fragments p53 Les produits finaux ont été obtenus par une ligation à trois partenaires effectuée de la façon suivante (Figure 5): Le domaine activateur de la transcription dérivé de VP16 décrit dans l'exemple A3 a été préparé par digestion enzymatique des produits de PCR par les enzymes de restriction Hind III et Sal I. Les différents fragments p53 précédement obtenus (75-325-lz, 75-336-lz, 75 AS, 75-367, 75-393 et leurs variants H182) ont été isolés après digestion enzymatique des plasmides les contenant par les enzymes de restriction Sall et Notl. Les combinaisons possibles (domaine activateur/p53) ont été constituées et insérées simultanément dans le vecteur pBC SK+ (Stratagène) préalablement digéré par les enzymes de restriction Hind III et Not I. Les produits de ces constructions portent les numéros suivants: VP16-75-325-lz V-325 -- > pEC 114 (SEQ ID n" 25) VP16-75-336-lz V-336 -- > pEC 116 (SEQ ID n" 26) VP16-75-367 V-367 -- > pEC 141 (SEQ ID n" 27) VP16-75-AS V-AS - > pEC 143 (SEQ ID n" 28) VP16-75-393 V-393 -- > pEC 145 (SEQ ID n" 29) VP16-75-325(H 182)-lz V-325H -- > pEC 147 VP16-75-336(H 182)-lz V-336H -- > pEC 149 VP16-75-367(H182) V-367H -- > pEC 151 VP16-75-AS(H182) V-ASH -- > pEC 153 VP16-75-393(H182) V-393H -- > pEC 155 Les produits correspondants portant un domaine liant spécifiquement un transactivateur ou un complexe transactivateur à la place du domaine VP16 sont construits de la même façon. Ces constructions sont désignées cidessous: ScFv-75-325-lz S-325 ScFv-75-336-lz S-336 ScFv-75-367 S-367 ScFv-75-AS S-AS ScFv-75-393 S-393 ScFv-75-325(H 182)-lz S-325H ScFv-75-336(H182)-lz S-336H ScFv-75-367(H182) S-367H ScFv-75-AS(Hî 82) S-ASH ScFv-75-393(H 182) S-393H Exemple C - Construction de vecteurs d'expression des variants de p53 Cet exemple décrit la construction de vecteurs utilisable pour le transfert des acides nucléiques de l'invention in vitro ou in vivo. CI - Construction de vecteurs plasmidiques Pour la construction de vecteurs plasmidiques, 2 types de vecteurs ont été utilisés. - Le vecteur pSV2, décrit dans DNA Cloning, A practical approach Vol.2, D.M. Glover (Ed) IRL Press, Oxford, Washington DC, 1985. Ce vecteur est un vecteur d'expression eucaryote. Les acides nucléiques codant pour les variants ont été insérés dans ce vecteur sous forme de fragments Hpal-EcoRV. Ils sont ainsi placés sous le controle du promoteur de l'enhancer du virus SV40. - Le vecteur pCDNA3 (Invitrogen). II s'agit également d'un vecteur d'expression eucaryote. Les acides nucléiques codant pour les variants de l'invention sont ainsi placés, dans ce vecteur, sous le controle du promoteur précoce du CMV. Toutes les constructions décrites dans l'exemple B3 ont été introduites dans ce vecteur sous forme d'un fragment Hind lit / Not I pour être testées dans les différents systèmes d'évaluation in viva C2 - Construction de vecteurs viraux Selon un mode particulier, I'invention réside dans la construction et l'utilisation de vecteurs viraux permettant le transfert et l'expression in vivo des acides nucléiques tels que définis ci-avant. S'agissant plus particulièrement d'adénovirus, différents sérotypes, dont la structure et les propriétés varient quelque peu, ont été caractérisés. Parmi ces sérotypes, on préfère utiliser dans le cadre de la présente invention les adénovirus humains de type 2 ou 5 (Ad 2 ou Ad 5) ou les adénovirus d'origine animale (voir demande W094/26914). Parmi les adénovirus d'origine animale utilisables dans le cadre de la présente invention on peut citer les adénovirus d'origine canine, bovine, murine, (exemple Mail, Beard et al., Virology 75 (1990) 81), ovine, porcine, aviaire ou encore simienne (exemple : SAV). De préférence, I'adénovirus d'origine animale est un adénovirus canin, plus préférentiellement un adénovirus CAV2 [souche manhattan ou A26/61 (ATCC VR-800) par exemple].De préférence, on utilise dans le cadre de l'invention des adénovirus d'origine humaine ou canine ou mixte. Préférentiellement, les adénovirus défectifs de l'invention comprenent les ITR, une séquence permettant l'encapsidation et un acide nucléique selon l'invention. Encore plus préférentiellement, dans le génome des adénovirus de l'invention, la région El au moins est non fonctionnelle. Le gène viral considéré peut être rendu non fonctionnel par toute technique connue de l'homme du métier, et notamment par suppression totale, substitution, délétion partielle, ou addition d'une ou plusieurs bases dans le ou les gènes considérés. De telles modifications peuvent être obtenues in vitro (sur de l'ADN isolé) ou in situ, par exemple, au moyens des techniques du génie génétique, ou encore par traitement au moyen d'agents mutagènes.D'autres régions peuvent également être modifiées, et notamment la région E3 (W095/02697), E2 (W094/28938), E4 (W094/281 52, W094/1 2649, W095/02697) et L5 (W095/02697). Selon un mode préféré de mise en oeuvre, I'adénovirus selon l'invention comprend une délétion dans les régions El et E4. Selon un autre mode de réalisation préféré, il comprend une délétion dans région El au niveau de laquelle sont insérés la région E4 et l'acide nucléique de l'invention (Cf FR94 13355). Dans les virus de l'invention, la délétion dans la région El s'étend préférentiellement des nucléotides 455 à 3329 sur la séquence de l'adénovirus Ad5. Les adénovirus recombinants défectifs selon l'invention peuvent être préparés par toute technique connue de l'homme du métier (Levrero et al., Gene 101 (1991) 195, EP 185 573; Graham, EMBO J. 3 (1984) 2917). En particulier, ils peuvent être préparés par recombinaison homologue entre un adénovirus et un plasmide portant entre autre la séquence d'ADN d'intérêt. La recombinaison homologue se produit après co-transfection desdits adénovirus et plasmide dans une lignée cellulaire appropriée. La lignée cellulaire utilisée doit de préférence (i) être transformable par lesdits éléments, et (ii), comporter les séquences capables de complémenter la partie du génome de l'adénovirus défectif, de préférence sous forme intégrée pour éviter les risques de recombinaison. A titre d'exemple de lignée, on peut mentionner la lignée de rein embryonnaire humain 293 (Graham et al., J. Gen.Virol. 36 (1977) 59) qui contient notamment, intégrée dans son génome, la partie gauche du génome d'un adénovirus Ad5 (12 %) ou des lignées capables de complémenter les fonctions El et E4 telles que décrites notamment dans les demandes n" WO 94/26914 et W095/02697. Ensuite, les adénovirus qui se sont multipliés sont récupérés et purifiés selon les techniques classiques de biologie moléculaire, comme illustré dans les exemples. Concernant les virus adéno-associés (AAV), il s'agit de virus à ADN de taille relativement réduite, qui s'intègrent dans le génome des cellules qu'ils infectent, de manière stable et site-spécifique. Ils sont capables d'infecter un large spectre de cellules, sans induire d'effet sur la croissance, la morphologie ou la différenciation cellulaires. Par ailleurs, ils ne semblent pas impliqués dans des pathologies chez l'homme. Le génome des AAV a été cloné, séquencé et caractérisé. II comprend environ 4700 bases, et contient à chaque extrémité une région répétée inversée (ITR) de 145 bases environ, servant d'origine de réplication pour le virus.Le reste du génome est divisé en 2 régions essentielles portant les fonctions d'encapsidation : la partie gauche du génome, qui contient le gène rep impliqué dans la réplication virale et l'expression des gènes viraux; la partie droite du génome, qui contient le gène cap codant pour les protéines de capside du virus. L'utilisation de vecteurs dérivés des AAV pour le transfert de gènes in vitro et in vivo a été décrite dans la littérature (voir notamment WO 91/18088; WO 93/09239; US 4,797,368, US5,139,941, EP 488 528). Ces demandes décrivent différentes constructions dérivées des AAV, dans lesquelles les gènes rep et/ou cap sont délétés et remplacés par un gène d'intérêt, et leur utilisation pour transférer in vitro (sur cellules en culture) ou in vivo (directement dans un organisme) ledit gène d'intérêt. Les AAV recombinants défectifs selon l'invention peuvent être préparés par cotransfection, dans un lignée cellulaire infectée par un virus auxiliaire humain (par exemple un adénovirus), d'un plasmide contenant une séquence nucléique de l'invention d'intérêt bordée de deux régions répétées inversées (ITR) d'AAV, et d'un plasmide portant les gènes d'encapsidation (gènes rep et cap) d'AAV. Une lignée cellulaire utilisable est par exemple la lignée 293. Les AAV recombinants produits sont ensuite purifiés par des techniques classiques. Concernant les virus de l'herpès et les rétrovirus, la construction de vecteurs recombinants a été largement décrite dans la littérature : voir notamment Breakfield et al., New Biologist 3 (1991) 203; EP 453242, EP178220, Bernstein et al. Genet. Eng. 7 (1985) 235; McCormick, BioTechnology 3 (1985) 689, etc. En particulier, les rétrovirus sont des virus intégratifs, infectant sélectivement les cellules en division. Ils constituent donc des vecteurs d'intérêt pour des applications cancer. Le génome des rétrovirus comprend essentiellement deux LTR, une séquence d'encapsidation et trois régions codantes (gag, pol et env). Dans les vecteurs recombinants dérivés des rétrovirus, les gènes gag, pol et env sont généralement délétés, en tout ou en partie, et remplacés par une séquence d'acide nucléique hétérologue d'intérêt.Ces vecteurs peuvent être réalisés à partir de différents types de rétrovirus tels que notamment le MoMuLV ("murine moloney leukemia virus"; encore désigné MoMLV), le MSV ("murine moloney sarcoma virus"), le HaSV ("harvey sarcoma virus"); le SNV ("spleen necrosis virus"); le RSV ("rous sarcoma virus") ou encore le virus de Friend. Pour construire des rétrovirus recombinants selon l'invention comportant un acide nucléique selon l'invention, un plasmide comportant notamment les LTR, la séquence d'encapsidation et ledit acide nucléique est construit, puis utilisé pour transfecter une lignée cellulaire dite d'encapsidation, capable d'apporter en trans les fonctions rétrovirales déficientes dans le plasmide. Généralement, les lignées d'encapsidation sont donc capables d'exprimer les gènes gag, pol et env.De telles lignées d'encapsidation ont été décrites dans l'art antérieur, et notamment la lignée PA317 (US4,861,719); la lignée PsiCRIP (WO90/02806) et la lignée GP+envAm-12 (W089/07150). Par ailleurs, les rétrovirus recombinants peuvent comporter des modifications au niveau des LTR pour supprimer l'activité transcriptionnelle, ainsi que des séquences d'encapsidation étendues, comportant une partie du gène gag (Bender et al., J. Virol. 61 (1987) 1639). Les rétrovirus recombinants produits sont ensuite purifiés par des techniques classiques. Pour la mise en oeuvre de la présente invention, il est tout particulièrement avantageux d'utiliser un adénovirus ou un rétrovirus recombinant défectif. Ces vecteurs possèdent en effet des propriétés particulièrement intéressantes pour le transfert de gènes dans les cellules tumorales. C3 - Vecteurs chimiques Parmi les vecteurs synthétiques développés, on préfère utiliser dans le cadre de l'invention les polymères cationiques de type polylysine, (LKLK)n, (LKKL)n, polyéthylène immine et DEAE dextran ou encore les lipides cationiques ou lipofectants. Ils possèdent la propriété de condenser l'ADN et de promouvoir son association avec la membrane cellulaire. Parmi ces derniers, on peut citer les lipopolyamines (lipofectamine, transfectam, etc) différents lipides cationiques ou neutres (DOTMA, DOGS, DOPE, etc) ainsi que des peptides d'origine nucléaire. En outre, le concept de la transfection ciblée a été développé, médiée par un récepteur, qui met à profit le principe de condenser l'ADN grâce au polymère cationique tout en dirigeant la fixation du complexe à la membrane grâce à un couplage chimique entre le polymère cationique et le ligand d'un récepteur membranaire, présent à la surface du type cellulaire que l'on veut greffer. Le ciblage du récepteur à la transferrine, à l'insuline ou du récepteur des asialoglycoprotéines des hépatocytes a ainsi été décrit. La préparation d'un composition selon l'invention utilisant un tel vecteur chimique est réalisée selon toute technique connue de l'homme du métier, généralement par simple mise en contact des différents composants. ExemDle D - Evaluation fonctionnelle des variants de p53 Les variants de p53 selon l'invention ont été évalués en test cellulaire pour les critères suivants: - fonction transactivatrice - activité antiproliférative - activité apoptotique - potentiel oncogénique associé à certaines mutations de p53 Les constructions utilisées plus particulièrement pour cette évaluation sont les constructions V-325, V-336 et AS décrites dans l'exemple B. D1 - Evaluation de la fonction transactivatrice La fonction transactivatrice des constructions a été évaluée dans un système de transactivation in vivo dans les cellules SAOS-2 (ostéosarcome humain) déficientes pour les deux allèles de la protéine p53 (cellules accessibles à l'ATCC sous le numéro HTB85) et dans des lignées tumorales H358 (Maxwell & Roth, Oncogene 8 (1993), 3421) et HeLa (ATCC CCL 2). Ce sytème repose sur l'utilisation d'un gène rapporteur dosable enzymatiquement et placé sous la dépendance d'un promoteur contenant les motifs nucléotidiques de reconnaissance spécifique par la forme sauvage de la p53 (cf protocoles expérimentaux). Dans ce test, le gène rapporteur est le gène CAT (chloramphénicol-acétyl transférase) et la séquence de reconnaissance par la p53 est la séquence consensus (p53RE) définie par Funk et collaborateurs (Mol. Cell. Biol. 12 (1992) 2866). L'évaluation de cette fonction a été effectuée en comparaison avec celle de la protéine sauvage pour trois types de critères différents. D1.1 - Activité transactivatrice en dose réponse Les cellules ( 3,5 105) sont ensemencées dans des boites de Pétri de 6 cm de diamètre contenant 3 ml de milieu DMEM (Gibco BRL) additioné de 10% de sérum de veau foetal inactivé à la chaleur, et cultivées sur la nuit dans un incubateur à CO2 (5%) à 37"C. Les différentes constructions sont alors transfectées en utilisant la lipofectAMINE (Gibco BRL) comme agent de transfection de la façon suivante: 3 pg de plasmide total sont incubés (dont 0,5 pg du plasmide reporter) avec 10 pI de lipofectAMINE pendant 30 min avec 3 ml de milieu Opti-MEM (Gibco BRL) sans sérum (mélange de transfection).Pendant ce temps, les cellules sont rincées deux fois au PBS puis incubées 4 h à 37"C avec le mélange de transfection, après quoi celui-ci est aspiré et remplacé par 3 ml de milieu DMEM additioné de 10% de sérum de veau foetal inactivé à la chaleur et les cellules remises à pousser pendant 48hà37 C. Protocole de dosage de l'activité CAT 48h après la transfection, les cellules sont lavées une fois en PBS puis gratées et récupérées dans 100 pI de tampon Tris 0,25 M pH 8 et à lysées par trois cycles de congélation - décongélation dans un bain éthanol/carboglace. L'extrait cellulaire total ainsi obtenu est mis à centrifuger 15 min à 10000 rpm et le surnageant récupéré pour le dosage de l'activité. Celui-ci est effectué en additionnant 20 1ll d'extrait cellulaire à 130 1ll d'un mélange réactionnel dont la composition finale est la suivante: - Acétyl-Coenzyme A 0,4mu - Chloramphénicol, D-th réo-(dich loroac8tyl-l ,2-14C) 23 pM (200 nCi) -Tris 0,18M pH8 Après 1 heure d'incubation à 37"C, les produits de la réaction sont extraits par 250 ,ul d'acétate d'éthyle dont 20 ,ul sont déposés sur une plaque de silice (chromatographie en couche mince) mise à migrer dans un mélange contenant 95% de chloroforme et 5% de méthanol.La plaque de chromatographie ainsi obtenue est enfin révélée à l'aide d'un instantimager (Packard instruments) qui permet de calculer le rapport des différents produits d'acétylation, rapport qui reflète l'activité de l'enzyme Ch Ioramphénicoî-Acétyl-Transférase et donc l'activité transactivatrice des différentes constructions. Les résultats obtenus dans la lignée SAOS-2 avec les constructions placées sous contrôle du promoteur CMV (pCDNA3) et présentés dans la Figure 6 montrent les propriétes suivantes pour chacune des constructions: - la protéine p53 présente une activité dose-dépendante qui tend vers la saturation pour des doses élevées (à partir de 100ng de plasmide). Cette saturation peut traduire la nécessité de cofacteurs qui seraient limitants dans ces conditions. - la protéine AS conserve la capacité d'activer la transcription de la protéine sauvage - les protéines V-325 et V-336 présentent, tout comme la protéine p53, une activité transactivatrice qui ne semble pas quant à elle saturable aux fortes doses. Il est donc possible que cette absence apparente de saturation puisse conduire à une augmentation globale de l'activité. Il apparait en outre que la construction V-325 est plus active que son homologue V-336, ce qui suggère que les protéines chimères portant la région 75-325 sont particulièrement avantageuses. Dans le but de confirmer ces propriétés une expérience similaire a été effectuée dans la lignée tumorale H 358 qui est tout comme la lignée SAOS2, déficiente pour les deux allèles du gène p53. Dans cette expérience, chaque transfection a été effectuée avec 50 ng de chacune des construction placée sous dépendance du promoteur CMV. Les résultats présentés sur le Tableau 1 montrent clairement que les deux variants V-325 et V-336 présentent une activité transactivatrice améliorée par rapport à celle de la protéine p53 sauvage, avec de nouveau une meilleure activité du variant V325. Tableau 1: Activité transactivatrice dans les cellules de la lignée tumorale H 358. pCDNA 3 p53 sauvage V-325 V-336 Activité CAT 1 6 25 16 Relative Ces deux essais confirment que les variants de l'invention possèdent au moins une des propriétés de la p53 améliorée. D1.2 - Effet de la protéine E6 (HPV18) sur la fonction transactivatrice Les protocoles utilisés sont identiques à ceux décrits dans l'exemple D1.1. Dans cette expérience de transfection, les constructions placées sous contrôle du promoteur CMV (pCDNA3) ont été co-transfectées avec des concentrations croissantes d'un plasmide exprimant E6 sous contrôle du promoteur SV40 (pSV2). Les résultats obtenus dans la lignée SAOS-2 et présentés dans la Figure 7 montrent les propriétes suivantes pour chacune des constructions: - I'activité de la p53 décroit au fur et à mesure que l'on augmente la concentration de E6, cette décroissance étant très probablement le reflet de la dégradation de la p53 induite par E6. - la protéine V-336 présente une absence de sensibilité à E6. - la protéine V-325 semble pouvoir être légèrement activée par E6. La protéine V-325 est toujours, et dans toutes les situations observées, plus active que la p53. Pour confirmer cette différence de comportement vis-à-vis de la protéine E6, l'activité transactivatrice des constructions V-325 et V-336 dans des cellules HPV18 positives (HeLa) et donc exprimant la protéine E6, a été testée et comparée à celle de la p53 sauvage. Dans cette expérience de transfection effectuée selon le protocole décrit précédemment, les différentes constructions ont été placées sous contrôle du promoteur CMV (pCDNA3). Les résultats présentés dans la Figure 8 montrent une très nette activité transcriptionnelle des deux constructions V-325 et V-336, dans un contexte ou la protéine p53 sauvage est très peu active, laissant supposer à nouveau que ces deux constructions sont insensibles à E6 contrairement à la protéine sauvage. Ce comportement fait de ces deux constructions des candidats supersauvage particulièrement avantageux pour le traitement de pathologies liées à l'infection par HPV16 ou HPV18. D1.3 - Effet d'un mutant p53 dominant-négatif sur la fonction transactivatrice Dans cette expérience, le mutant H175, décrit comme dominant oncogénique et dominant négatif vis à vis de la protéine p53 sauvage, a été utilisé. Dans cette expérience de transfection effectuée selon le protocole décrit précédemment, les différentes constructions ainsi que le mutant H175 ont été placés sous contrôle du promoteur CMV (pCDNA3). Chacune des constructions a été co-transfectée avec des concentrations croissantes du plasmide exprimant le mutant H175. Les résultats présentés dans la Figure 9 montrent les propriétes suivantes pour chacune des constructions: - la protéine p53 voit son activité transactivatrice diminuer lorsqu'elle est en présence d'un excès de forme mutée H175, ce qui correspond bien à une situation physiologique puisque l'on sait que ce type de forme mutante est beaucoup plus stable que la p53 sauvage et donc toujours en excès. On mesure donc bien là l'effet dominant-négatif de ce mutant. - la protéine AS présente une sensibilité accrue à l'effet dominant négatif du mutant H175, puisque sensible à des concentrations plus faibles de celui-ci. - au contraire, les protéines V-325 et V-336 ne sont non seulement plus sensibles à l'effet dominant-négatif mais voient même leur activité augmentée de façon dose-dépendante en présence de la forme mutante H175. De nouveau, dans cet essai la protéine V-325 présente un effet accru par rapport à la protéine V-336 la confirmant un peu plus dans son possible statut de super-sauvage. Les résultats de ces trois expériences montrent clairement que les variants selon l'invention, notamment les variants contenant la région 75-325-lz ou 75-336-lz, présentent 1) une activité transactivatrice accrue, 2) une sensibilité moindre à l'effet de la protéine E6 de HPV18 avec même la possibilité d'un relative stabilisation par celle-ci, et 3) I'absence de sensibilité à l'effet dominant -négatif de certains mutants de la p53 et même l'accroissement de son activité dans un tel contexte. Ces différentes propriétés sont tout à fait remarquables et inattendues et confèrent aux variants de l'invention des avantages thérapeutiques considérables. D2 - Effet sur la croissance cellulaire L'effet des constructions V-325 et V-336 sur la croissance cellulaire a été testé en parallèle avec la p53 sur différents types de lignées cellulaires dans une expérience de formation de colonies résistantes à la néomycine suite à la transfection par des plasmides exprimant ces trois protéines. Dans cette expérience de transfection effectuée selon le protocole décrit précédemment, les différentes constructions ont été placées sous contrôle du promoteur CMV (pCDNA3). Protocole de formation de colonies résistantes à la néomycine 48h après transfection, les cellules sont gratées et transferées dans des boites de Pétri de 10 cm de diamètre et remises à pousser avec 10 ml de milieu DMEM additioné de 10% de sérum de veau foetal inactivé à la chaleur et contenant 400 pg/ml de généticine (G418). Suite à une séléction de 15 jours en présence de G418, le nombre de colonies NeoR est déterminé par comptage après coloration à la fuchsine. Cette expérience a été effectuée sur différents types cellulaires dont le statut des protéines p53 et Ras est présenté dans le Tableau 2 Tableau 2: Statut des lignées cellulaires utilisées dans le test de formation de colonies NéoR lignée p53 Ras n" ATCC SAOS-2 / I - ? HTB 85 HCT 116 sauvage Ki-Ras muté CCL 247 H322 L248 ? (*) H 460 sauvage Ki-Ras muté HTB 177 HeLa sauvage ? CCL 2 (*) Putnam et al., Surg. Oncol., (1993), 49 Le résultat de ces expériences est présenté dans le Tableau 3 Tableau 3: Formation de colonies NéoR lignée vecteur p53 SAOS-2 253 17 12 13 HCT116 112 62 58 61 H 322 93 5 2 3 H460 153 110 87 92 HeLa 172 151 31 47 Ces résultats montrent que les constructions V-325 et V-336 possèdent la capacité de bloquer la croissance cellulaire de façon au moins aussi efficace que la protéine p53 sauvage dans des contextes cellulaire où celle-ci peu fonctionner normalement (p53 sauvage ou double délétant), mais surtout qu'elles conservent cette activité même dans des contextes cellulaires ou la protéine p53 sauvage est très peu active (cellules HeLa exprimant la protéine E6 de HPV18). Cette propriété confère aux variants de l'invention des avantages thérapeutiques considérables. LISTE DE SEQUENCES LZ (SEQ ID n01) AGATCTGAAGGCCCTCAAGGAGAAGCTGAAGGCCCTGGAGGAGAAGCTGAAGGCCCTGG AGGAGAAGCTGAAGGCACTAGTGGGGGAGCGATGATGAATCGATATCGCGGCC VP16 (SEQ ID n02) AAGCTTGAATTCGTTAACATGTCCACCCCCCCCCCGACCGATGTCAGCCTGGGGGACGA GCTCCACTTAGACGGCGAGGACGTGGCGATGGCGCATGCCGACGCGCTAGACGATTTCG ATCTGGACATGTTGGGGGACGGGGATTCCCCGGGGCCGGGATTTACCCCCCACGACTCC GCCCCCTACGGCGCTCTGGATATGGCCGACTTCCAGTTTGAGCAGATGTTTACCGATCC CCTTGGAATTGACGAGTACGGTGGTCGACC AS (SEQ ID n03) TCGAGCCTGCAGCCTAGAGCCTTCCAAGCCCTCATGAAGGAGGAAACCCCAAACTCCTA GTGAGGATCCGCGGCCG p53 75-325 (SEQ ID n04) GGGAAGCTTGCGCCGGGTCGACCTGCACCAGCACCTCCTACACCGGCGGCCCCTGCACC AGCCCCCTCCTGGCCCCTGTCATCTTCTGTCCCTTCCCAGAAAACCTACCAGGGCAGCT ACGGTTTCCGTCTGGGCTTCTTGCATTCTGGGACAGCCAAGTCTGTGACTTGCACGTAC TCCCCTGCCCTCAACAAGATGTTTTGCCAACTGGCCAAGACCTGCCCTGTGCAGCTGTG GGTTGATTCCACACCCCCGCCCGGCACCCGCGTCCGCGCCATGGCCATCTACAAGCAGT CACAGCACATGACGGAGGTTGTGAGGCGCTGCCCCCACCATGAGCGCTGCTCAGATAGC GATGGTCTGGCCCCTCCTCAGCATCTTATCCGAGTGGAAGGAAATTTGCGTGTGGAGTA TTTGGATGACAGAAACACTTTTCGACATAGTCTGGTGGTGCCCTATGAGCCGCCTGAGG TTGGCTCTGACTGTACCACCATCCACTACAACTACATGTGTAACAGTTCCTGCATGGGC GGCATGAACCGGAGGCCCATCCTCACCATCATCACACTGGAAGACTCCAGTGGTAATCT ACTGGGACGGAACAGCTTTGAGGTGCGTGTTTGTGCCTGTCCTGGGAGAGACCGGCGCA CAGAGGAAGAGAATCTCCGCAAGAAAGGGGAGCCTCACCACGAGCTGCCCCCAGGGAGC ACTAAGCGAGCACTGCCCAACAACACCAGCTCCTCTCCCCAGCCAAAGAAGAAACCACT GGATGGGGATCCGCGGCCGCC p53 75-336 (SEQ ID n05) GGGAAGCTTGGGCCGGGTCGACCTGCACCAGCAGCTCCTACACCGGCGGCCCCTGCACC AGCCCCCTCCTGGCCCCTGTCATCTTCTGTCCCTTCCCAGAAAACCTACCAGGGCAGCT ACGCTTTCCGTCTGGGCTTCTTGCATTCTGGGACAGCCAÂGTCTGTGACTTGCACGTAC TCCCCTCCCCTCAACAAGATGTTTTGCCAACTGGCCAAGACCTCCCCTGTGCAGCTGTG GGTTGATTCCACACCCCCGCCCGGCACCCGCGTCCGCGCCATGGCCATCTACAAGCAGT CACAGCACATGACGGAGGTTGTGAGGCGCTGCCCCCACCATGAGCGCTCCTCAGATAGC GATGGTCTGGCCCCTCCTCAGCATCTTATCCGACTGGAACGAAATTTGCGTGTGGAGTA TTTGGATGACAGAAACACTTTTCGACATAGTGTGGTGGTGCCCTATGAGCCGCCTGAGG TTGGCTCTGACTGTACCACCATCCACTACAACTACATGTGTAACAGTTCCTGCATGGGC GGCATGAACCGGAGGCCCATCCTCACCATCATCACACTGGAAGACTCCAGTGGTAATCT ACTGGGACGGAACAGCTTTGAGGTGCGTGTTTGTGCCTGTCCTGGGAGAGACCGGCGCA CAGAGGAAGAGAATCTCCGCAAGAAAGGGGAGCCTCACCACGAGCTGCCCCCAGGGAGC ACTAAGCGAGCACTCCCCAACAACACCAGCTCCTCTCCCCAGCCAAAGAAGAAACCACT GGATCGAGAATATTTCACCCTTCAGATCCGTGGGCGTGAGGATCCGCGGCCGCC SEQ ID n0 25 : V-325 1/1 31/11 ATG TCC ACG GCC CCC CCG ACC GAT GTC AGC CTG GGG GAC GAG CTC CAC TTA GAC GGC GAG M S T A P P T D V S t G D E t H t D G E 61/21 97/31 GAC GTG GCG ATG GCG CAT GCC GAC GCG CTA GAC GAT TTC GAT CTG GAC ATG TTG GGG GAC D V A M A H A D A t D D F D t D M t G D 121/41 151/51 GGG GAT TCC CCG GGG CCG GGA TTT ACC CCC CAC GAC TCC GCC CCC TAC GGC GCT CTG GAT G D S P G P G F T P H D S A P Y G A t D 181/61 211/71 ATG GCC GAC TTC GAG TTT GAG CAG ATG TTT ACC GAT GCC CTT GGA ATT GAC GAG TAC GGT M A D F E F E Q M F T D A t C I D E Y G 241/81 271/91 GGT CGA CCT GCA CCA GCA GCT CCT ACA CCG GCG GCC CCT GCA CCA GCC CCC TCC TGG CCC G R P A P A A P T P A A P A P A P S W P 301/101 331/111 CTG TCA TCT TCT GTC CCT TCC CAG AAA ACC TAC CAG GGC AGC TAC GGT TTC CGT CTG GGC L S S S V P S Q X T Y Q G S Y G F R L G 361/121 391/131 TTC TTC CAT TCT GGG ACA GCC AAG TCT GTG ACT TGC ACG TAC TCC CCT GCC CTC AAC AAG F t H S G T A K S V T C T Y S P A t N K 421/141 451/151 ATG TTT TGC CAA CTG GCC AAG ACC TGC CCT GTG CAG CTG TGG GTT GAT TCC ACA CCC CCG M F C Q t A K T C P V Q t W V D S T P P 481/161 511/171 CCC GGC ACC CGC GTC CGC GCC ATG GCC ATC TAC AAG CAG TCA CAG CAC ATG ACG GAG GTT P G T R V R A M A I Y K Q S Q H M T E V 541/181 571/191 GTG AGG CGC TGC CCC CAC CAT GAG CGC TGC TCA GAT AGC GAT GGT CTG GCC CCT CCT CAG V R R C P H H E R C S O S O G t A P P Q 601/201 631/211 CAT CTT ATC CGA GTG GAA GGA AAT TTG CGT GTG GAG TAT TTG GAT GAC AGA AAC ACT TTT H L I R V E G N L R V E Y L D D R N T F 661/221 691/231 CGA CAT AGT GTG GTC GTG CCC TAT GAG CCG CCT GAG GTT GGC TCT GAC TGT ACC ACC ATC R H S V V V P Y E P P E V G S D C T T I 721/241 751/251 CAC TAC AAC TAC ATG TGT AAC AGT TCC TGC ATG GGC GGC ATG AAC CGG AGG CCC ATC CTC H Y N Y M C N S S C M G G M N R R P I L 781/261 811/271 ACC ATC ATC ACA CTG GAA GAC TCC AGT GGT AAT CTA CTG GGA CGG AAC AGC TTT GAG GTC T I I T t E O S S G N t t G R N S F E V 841/281 871/291 CGT GTT TGT GCC TGT CCT CGC AGA GAC CGG CGC ACA GAG GAA GAG AAT CTC CGC AAG AAA R V C A C P G R D R R T E E E N L R K K 901/301 931/311 GGG GAG CCT CAC CAC GAG CTG CCC CCA GGG AGC ACT AAG CGA GCA CTG CCC AAC AAC ACC G E P H H E L P P G S T K R A L P N N T 961/321 991/331 AGC TCC TCT CCC CAG CCA AAG AAG AAA CCA CTG GAT GGG GAT CTG AAG GCC CTC AAG GAG S S S P Q P K R R P L D G D L R A L R E 1021/341 1051/351 AAG CTG AAG GCC CTG GAG GAG AAC CTC AAG GCC CTC GAG GAG AAG CTG AAG GCA CTA GTG K t K A t E E K t K A t E E K t K A t V 1081/361 GGG GAG CGA TGA TGA G E R * * SEQ ID n" 26:V-336 1/1 31/11 ATG TCC ACG GCC CCC CCG ACC GAT GTC AGC CTG GGG GAC GAG CTC CAC TTA GAC GGC GAG M S T A P P T D V S t G D E t H t D G E 61/21 91/31 GAC GTG GCG ATG GCG CAT GCC GAC GCG CTA GAC GAT TTC GAT CTG GAC ATC TTG GGG GAC D V A M A H A D A t D D F D t D M t G D 121/41 151/51 GGG GAT TCC CCG GGG CCG GGA TTT ACC CCC CAC GAC TCC GCC CCC TAC GGC GCT CTG GAT G D S P G P G F T P H D S A P Y G A t D 181/61 211/71 ATG GCC GAC TTC GAG TTT GAG CAG ATG TTT ACC GAT GCC CTT GGA ATT GAC GAG TAC GGT M A O F E F E Q M F T D A t G I D E Y G 241/81 271/91 GGT CGA CCT GCA CCA GCA GCT CCT ACA CCG GCG GCC CCT GCA CCA GCC CCC TCC TGG CCC G R P A P A A P T P A A P A P A P S W P 301/101 331/111 CTG TCA TCT TCT GTC CCT TCC CAG AAA ACC TAC CAG GGC AGC TAC GGT TTC CGT CTG GGC L S S S V P S Q R T Y Q G S Y G F R L G 361/121 391/131 TTC TTG CAT TCT GGG ACA GCC AAG TCT GTG ACT TGC ACG TAC TCC CCT GCC CTC AAC AAG F T H S G T A K S V T C T Y S P A L N K 421/141 451/751 ATG TTT TGC CAA CTG GCC AAG ACC TGC CCT GTG CAG CTG TGG GTT GAT TCC ACA CCC CCG M F C Q L A K T C P V Q L W V D S T P P 481/161 511/171 CCC GGC ACC CGC GTC CGC GCC ATC GCC ATC TAC AAG CAG TCA CAG CAC ATG ACG GAG GTT P G T R V R A M A I Y K Q S Q H M T E V 541/181 571/797 GTG AGG CGC TGC CCC CAC CAT GAG CGC TGC TCA GAT AGC GAT GGT CTG GCC CCT CCT CAG V R R C P H H E R C S D S D G L A P P Q 601/201 631/211 CAT CTT ATC CGA GTG GAA GGA AAT TTG CGT GTG GAG TAT TTG GAT GAC AGA AAC ACT TTT H L I R V E G N L R V E Y L D D R N T F 661/221 691/231 CGA CAT AGT GTG GTG GTG CCC TAT GAG CCC CCT GAG GTT GGC TCT GAC TGT ACC ACC ATC R H S V V V P Y E P P E V G S D C T T I 721/241 751/251 CAC TAC AAC TAC ATG TGT AAC AGT TCC TGC ATG GCC GGC ATG AAC CGC ACC CCC ATC CTC H Y N Y M C N S S C M G G M N R R P I L 781/261 811/271 ACC ATC ATC ACA CTG GAA GAC TCC AGT GCT AAT CTA CTC GGA CCG AAC AGC TTT GAG GTG T I I T L E D S S G N L L G R N S F E V 841/281 871/291 CGT GTT TGT GCC TGT CCT CGC AGA GAC CCG CGC ACA GAG GAA GAG AAT CTC CGC AAG AAA R V C A C P G R D R R T E E E N L R K K 901/301 931/311 CGC GAG CCT CAC CAC GAG CTG CCC CCA CCC AGC ACT AAG CGA GCA CTG CCC AAC AAC ACC G E P H H E L P P G S T K R A L P N N T 961/321 991/331 AGC TCC TCT CCC CAG CCA AAG AAG AAA CCA CTG GAT GGA GAA TAT TTC ACC CTT CAG ATC S S S P Q P K K K P L D G E Y F T L Q I 1021/341 1051/351 CGT CGC CGT GAG GAT CTG AAG GCC CTC AAC GAG AAG CTG AAG GCC CTG GAG GAG AAG CTG R G R E D L K A L K E K L K A L E E K L 1081/361 1111/371 AAG GCC CTC GAG GAG AAC CTG AAG GCA CTA CTC CGC GAG CGA TGA TGA K A t E E K t K A t V G E R * SEQ ID n 27:V-367 1/1 31/11 ATG TCC ACG GCC CCC CCC ACC GAT GTC AGC CTG GGG GAC GAG CTC CAC TTA GAC CCC GAG M S T A P P T O V S t G O E t H t O G E 61/21 91/31 GAC GTG CCC ATG GCG CAT GCC GAC CCC CTA GAC GAT TTC GAT CTG GAC ATG TTG GGG GAC D V A M A H A D A L D D F D L D M L G D 121/41 151/51 GGG GAT TCC CCG GGG CCG GGA TTT ACC CCC CAC GAC TCC GCC CCC TAC GGC GCT CTG GAT G D S P G P G F T P H D S A P Y G A L D 181/61 211/71 ATG GCC GAC TTC GAG TTT GAG CAG ATG TTT ACC GAT GCC CTT GGA ATT GAC GAG TAC GGT M A O F E F E Q M F T O A t G I O E Y G 241/81 271/91 GGT CGA CCT GCA CCA GCA GCT CCT ACA CCG CCC GCC CCT GCA CCA GCC CCC TCC TGG CCC G R P A P A A P T P A A P A P A P S W P 301/101 331/111 CTG TCA TCT TCT GTC CCT TCC CAG AAA ACC TAC CAG GGC AGC TAC GGT TTC CGT CTG GGC L S S S V P S Q K T Y Q G S Y G F R L G 361/121 391/131 TTC TTG CAT TCT GGG ACA GCC AAG TCT GTG ACT TGC ACG TAC TCC CCT GCC CTC AAC AAG F L H S G T A K S V T C T Y S P A L N K 421/141 451/151 ATG TTT TGC CAA CTG GCC AAG ACC TGC CCT GTG CAG CTG TGG GTT GAT TCC ACA CCC CCG M F C Q L A K T C P V Q L W V D S T P P 481/161 511/171 CCC GGC ACC CGC GTC CGC GCC ATG GCC ATC TAC AAG CAG TCA CAG CAC ATG ACG GAG GTT P G T R V R A M A I Y K Q S Q H M T E V 541/181 571/191 GTG AGG CGC TGC CCC CAC CAT GAG CGC TGC TCA GAT AGC GAT GGT CTG GCC CCT CCT CAG V R R C P H H E R C S D S D G L A P P Q 601/201 631/211 CAT CTT ATC CGA GTG GAA GGA AAT TTC CGT GTG GAG TAT TTC ACC CTT CAG ATC CGT CGC H L I R V E G N L R V E Y F T L Q I R G 661/221 691/231 CGT GAG CCC TTC GAG ATG TTC CGA GAG CTG AAT GAG GCC TTC GAA CTC AAG GAT GCC CAG R E R F E M F R E L N E A L E L K D A Q 721/241 751/251 GCT GGG AAC GAG CCA CCC CGC AGC AGG GCT CAC TCG AGC TGA TGA A G K E P C G S R A H S S * * SEQ ID n" 28 :V-AS 1/1 31/11 ATC TCC ACG GCC CCC CCC ACC GAT GTC AGC CTG CGC GAC GAG CTC CAC TTA GAC GGC GAG M S T A P P T D V S L G D E L H L D G E 61/21 91/31 GAC GTG CCC ATC CCC CAT GCC GAC CCC CTA GAC GAT TTC GAT CTG GAC ATG TTC CGC GAC D V A M A H A D A L D D F D L D M L G D 121/41 151/51 GGG GAT TCC CCC CGC CCC GGA TTT ACC CCC CAC GAC TCC GCC CCC TAC CCC GCT CTG GAT G D S P G P G F T P H D S A P Y G A L D 181/61 211/71 ATC GCC GAC TTC GAG TTT GAG CAG ATG TTT ACC GAT GCC CTT GGA ATT GAC GAG TAC GGT M A D F E F E Q M F T D A L G I D E Y G 241/81 271/91 GGT CGA CCT GCA CCA GCA GCT CCT ACA CCC CCC GCC CCT GCA CCA GCC CCC TCC TCG CCC C R P A P A A P T P A A P A P A P S W P 301/101 331/111 CTC TCA TCT TCT GTC CCT TCC CAG AAA ACC TAC CAG GGC AGC TAC GGT TTC CGT CTC CCC L S S S V P S Q K T Y Q G S Y G F R L G 361/121 391/131 TTC TTC CAT TCT CGC ACA GCC AAG TCT GTG ACT TGC ACC TAC TCC CCT GCC CTC AAC AAC F L H S G T A K S V T C T Y S P A L N K 421/141 451/151 ATC TTT TGC CAA CTC GCC AAC ACC TGC CCT GTG CAG CTC TCG GTT GAT TCC ACA CCC CCC M F C Q L A K T C P V Q L W V D S T P P 481/161 511/171 CCC GGC ACC CGC GTC CGC GCC ATG GCC ATC TAC AAG CAG TCA CAG CAC ATG ACG GAG GTT P C T R V R A M A I Y K Q S Q H M T E V 541/181 571/191 CTC AGG CGC TGC CCC CAC CAT GAG CCC TGC TCA GAT AGC GAT GGT CTG GCC CCT CCT CAG V R R C P H H E R C S D S D G L A P P Q 601/201 631/211 CAT CTT ATC CGA GTG GAA GGA AAT TTC CGT GTG GAG TAT TTC ACC CTT CAG ATC CGT GGG H L I R V E G N L R V E Y F T L Q I R G 661/221 691/231 CGT GAG CGC TTC GAG ATG TTC CGA GAG CTG AAT GAG GCC TTG GAA CTC AAG GAT GCC CAG R E R F E M F R E t N E A t E t K D A Q 721/241 751/251 GCT GGG AAG GAG CCA GGG GGG AGC AGG GCT CAC TCG AGC CTG CAG CCT AGA GCC TTC CAA A G K E P G G S R A H S S t Q P R A F Q 781/261 811/271 GCC CTC ATG AAG GAG GAA AGC CCA AAC TGC TGA TGA A t M K E E S P N C * * SEQ ID n" 29 :V-393 1/1 31/11 ATG TCC ACG GCC CCC CCG ACC GAT GTC AGC CTG GGG GAC GAG CTC CAC TTA GAC GGC GAG M S T A P P T O V S t G O E t H t O G E 61/21 91/31 GAC GTG GCG ATG GCG CAT GCC GAC GCG CTA GAC GAT TTC GAT CTG GAC ATG TTG GGG GAC D V A M A H A D A L D D F D L D M L G D 121/41 151/51 GGG GAT TCC CCG GGG CCG GGA TTT ACC CCC CAC GAC TCC GCC CCC TAC GGC GCT CTG GAT G D S P G P G F T P H D S A P Y G A L D 181/61 211/71 ATG GCC GAC TTC GAG TTT GAG CAG ATG TTT ACC GAT GCC CTT GGA ATT GAC GAG TAC GGT M A O F E F E Q N F T O A t G I O E Y G 241/81 271/91 GGT CGA CCT GCA CCA GCA GCT CCT ACA CCG GCG GCC CCT GCA CCA GCC CCC TCC TGG CCC G R P A P A A P T P A A P A P A P S W P 301/101 331/111 CTG TCA TCT TCT GTC CCT TCC CAG AAA ACC TAC CAG GGC AGC TAC GGT TTC CGT CTG GGC t S S S V P S Q K T Y Q G S Y G F R t G 361/121 391/131 TTC TTG CAT TCT GGG ACA GCC AAG TCT GTG ACT TGC ACG TAC TCC CCT GCC CTC AAC AAG F t H S G T A K S V T C T Y S P A t N K 421/141 451/151 ATG TTT TGC CAA CTG GCC AAG ACC TGC CCT GTG CAG CTG TGG GTT GAT TCC ACA CCC CCG M E C Q L A K T C P V Q L W V D S T P P 481/161 511/171 CCC GGC ACC CGC GTC CGC GCC ATG GCC ATC TAC AAG CAG TCA CAG CAC ATG ACG GAG GTT P G T R V R A M A T Y K Q S Q H M T E V 541/181 571/191 GTG AGG CGC TGC CCC CAC CAT GAG CGC TGC TCA GAT AGC GAT GGT CTG GCC CCT CCT CAG V R R C P H H E R C S D S D G L A P P Q 601/201 631/211 CAT CTT ATC CGA GTG GAA GGA AAT TTG CGT GTG GAG TAT TTG GAT GAC AGA AAC ACT TTT H L I R V E G N L R V E Y L D D R N T F 661/221 691/231 CGA CAT AGT GTG GTG GTG CCC TAT GAG CCG CCT GAG GTT GGC TCT GAC TGT ACC ACC ATC R H S V V V P Y E P P E V G S D C T T I 721/241 751/251 CAC TAC AAC TAC ATG TGT AAC AGT TCC TGC ATG GGC GGC ATG AAC CGG AGG CCC ATC CTC H Y N Y M C N S S C M G G M N R R P I L 781/261 811/271 ACC ATC ATC ACA CTG GAA GAC TCC AGT GGT AAT CTA CTG GGA CCG AAC AGC TTT GAG GTG T I I T L E D S S G N L L G R N S F E V 841/281 871/291 CGT GTT TGT GCC TGT CCT GGG AGA GAC CGG CGC ACA GAG GAA GAG AAT CTC CGC AAG AAA R V C A C P G R D R R T E E E N L R K K 901/301 931/311 CGC GAG CCT CAC CAC GAG CTG CCC CCA GGG AGC ACT AAG CGA GCA CTG CCC AAC AAC ACC G E P H H E L P P G S T K R A L P N N T 961/321 991/331 AGC TCC TCT CCC CAG CCA AAG AAG AAA CCA CTG GAT GGA GAA TAT TTC ACC CTT CAG ATC S S S P Q P K K K P L D G E Y F T L Q I 1021/341 1051/351 CGT GGG CGT GAG CGC TTC GAG ATG TTC CGA GAG CTG AAT GAG GCC TTG GAA CTC AAG GAT R G R E R F E M F R E t N E A t E t K O 1081/361 1111/371 GCC CAG GCT GGG AAG GAG CCA GGG GGG AGC AGG GCT CAC TCC AGC CAC CTG AAG TCC AAA A Q A G K E P G G S R A H S S H L K S K 1141/381 1171/391 AAG GGT CAG TCT ACC TCC CGC CAT AAA AAA CTC ATG TTC AAG ACA GAA GGG CCT GAC TCA K G Q S T S R H K K L M F K T E G P D S 1201/401 GAC TGA TGA O * REVENDICATIONS 1. Variant de la protéine p53 dans lequel tout ou partie du domaine d'oligomérisation est délété et remplacé par un domaine leucine zipper artificiel. 2. Variant selon la revendication 1 caractérisé en ce que la délétion comprend également tout ou partie du domaine de régulation. 3. Variant selon la revendication 2 caractérisé en ce qu'il comporte une délétion de la partie C-terminale, à partir du résidu 326. 4. Variant selon la revendication 2 caractérisé en ce qu'il comporte une délétion de la partie C-terminale, à partir du résidu 337. 5. Variant selon l'une des revendications précédentes caractérisé en ce que le domaine leucine zipper artificiel est un domaine non présent à l'état naturel assurant une sélectivité d'oligomérisation. 6. Variant selon la revendication 5 caractérisé en ce que le domaine leucine zipper possède la séquence SEQ ID n" 1. 7. Variant selon l'une des revendications 1 à 6 caractérisé en ce que le résidu cystéine en position 182 de la protéine p53 est remplacé par une histidine. 8. Variant selon l'une des revendications précédentes dans lequel tout ou partie du domaine transactivateur est délété et remplacé par un domaine transactivateur hétérologue. 9. Variant selon la revendication 8 caractérisé en ce qu'il comporte une délétion des résidus 1 à 74. 10. Variant selon la revendication 8 ou 9 caractérisé en ce que le domaine transactivateur hétérologue est le domaine transactivateur de VP16. 11. Variant selon la revendication 10 caractérisé en ce que le domaine transactivateur comporte la séquence SEQ ID n" 2. 12. Variant selon la revendication 8 ou 9 caractérisé en ce que le domaine transactivateur hétérologue est un domaine transactivateur spécifique des cellules transformées. 13. Variant selon la revendication 12 caractérisé en ce que le domaine transactivateur est composé d'un domaine protéique capable de lier sélectivement un transactivateur ou un complexe transactivateur présent dans une cellule transformée. 14. Variant de la protéine p53 actif préférentiellement dans les cellules transformées dans lequel un au moins des domaines fonctionnels de p53 est délété en tout ou en partie et est substitué par un domaine hétérologue actif préférentiellement dans les cellules transformées. 15. Variant selon la revendication 14 caractérisé en ce que le domaine fonctionnels de p53 délété et substitué est le domaine transactivateur. 16. Variant selon la revendication 15 comprenant un domaine transactivateur actif préférentiellement dans les cellules contenant une protéine ras oncogénique ou un mutant de p53. 17. Variant selon la revendication 16 caractérisé en ce que le domaine transactivateur est un domaine protéique capable de lier sélectivement un transactivateur ou un complexe transactivateur présent dans une cellule transformée. 18. Variant selon la revendication 17 caractérisé en ce que le domaine protéique comprend un fragment ou un dérivé d'anticorps, de préférence un Fab ou un ScFv. 19. Variant selon la revendication 18 caractérisé en ce que le domaine protéique comprend un ScFv dirigé contre un mutant de la protéine p53. 20. Variant selon l'une des revendications 15 à 19 caractérisé en ce que le domaine transactivateur naturel est délété par suppression des résidus 1 à 74. 21. Variant de la protéine p53 comprenant une délétion de la partie Cterminale, à partir du résidu 366, fusionné à la séquence SEQ ID n" 3 (AS). 22. Variant selon la revendication 21 dans lequel tout ou partie du domaine transactivateur est délété et remplacé par un domaine transactivateur hétérologue. 23. Variant selon la revendication 21 ou 22 caractérisé en ce que le résidu cystéine en position 182 de la protéine p53 est remplacé par une histidine. 24. Protéine chimère comprenant un domaine transactivateur, un domaine de liaison à l'ADN, un domaine d'adressage au noyau et un domaine d'oligomérisation, caractérisé en ce que les domaines de liaison à l'ADN et d'adressage au noyau sont constitués par les acides aminés 75 à 325 de la protéine p53 sauvage humaine (SEQ ID n" 4). 25. Protéine chimère comprenant un domaine transactivateur, un domaine de liaison à l'ADN, un domaine d'adressage au noyau et un domaine d'oligomérisation, caractérisé en ce que les domaines de liaison à l'ADN et d'adressage au noyau sont constitués par les acides aminés 75 à 336 de la protéine p53 sauvage humaine (SEQ ID n" 5). 26. Protéine chimère selon la revendication 24 ou 25 caractérisée en ce que le résidu cystéine en position 182 de la protéine p53 est remplacé par une histidine. 27. Protéine chimère selon l'une des revendications 24 à 26 caractérisée en ce que le domaine transactivateur est constitué par le domaine transactivateur de VP16. 28. Protéine chimère selon l'une des revendications 24 à 27 caractérisée en ce que le domaine transactivateur est constitué par un domaine protéique capable de lier sélectivement un transactivateur ou un complexe transactivateur présent dans une cellule transformée. 29. Protéine chimère selon l'une des revendications 24 à 28 caractérisée en ce que le domaine d'oligomérisation est constitué par un leucine zipper artificiel. 30. Composé V-325 de séquence SEQ ID n" 25 et son variant V-325H comportant une histidine en position 182 de la p53. 31. Composé V-336 de séquence SEQ ID n" 26 et son variant V-336H comportant une histidine en position 182 de la p53. 32. Composé V-367 de séquence SEQ ID nO 27 et son variant V-367H comportant une histidine en position 182 de la p53. 33. Composé V-AS de séquence SEQ ID n" 28 et son variant V-ASH comportant une histidine en position 182 de la p53. 34. Composé V-393 de séquence SEQ ID n" 29 et son variant V-393H comportant une histidine en position 182 de la p53. 35. Acide nucléique codant pour un variant ou une protéine chimère selon l'une des revendications 1 à 34. 36. Acide nucléique selon la revendication 35 caractérisé en ce qu'il s'agit d'un ADNc, d'un ARN, d'un acide synthétique ou semi-synthétique. 37. Acide nucléique selon la revendication 35 caractérisé en ce qu'il est choisi parmi les acides nucléiques de séquence SEQ ID n" 25, 26, 27, 28 et 29. 38. Cassette d'expression comprenant un acide nucléique selon la revendication 35, un promoteur permettant son expression et un signal de terminaison de la transcription. 39. Vecteur comprenant un acide nucléique selon la revendication 35 ou une cassette selon la revendication 38. 40. Vecteur selon selon la revendication 39 caractérisé en ce qu'il s'agit d'un vecteur viral. 41. Vecteur selon selon la revendication 40 caractérisé en ce qu'il s'agit d'un adénovirus recombinant défectif. 42. Vecteur selon selon la revendication 40 caractérisé en ce qu'il s'agit d'un rétrovirus recombinant défectif. 43. Vecteur selon selon la revendication 40 caractérisé en ce qu'il s'agit d'un AAV recombinant défectif. 44. Vecteur selon selon la revendication 40 caractérisé en ce qu'il s'agit d'un HSV recombinant défectif. 45. Vecteur selon selon la revendication 39 caractérisé en ce qu'il s'agit d'un vecteur chimique ou biochimique. 46 Composition pharmaceutique comprenant un acide nucléique et ou un vecteur selon l'une des revendications 35 à 45. 47. Composition pharmaceutique comprenant un variant ou une protéine chimère selon l'une des revendications 1 à 35. 48. Composition pharmaceutique selon l'une des revendications 46 ou 47 pour le traitement des désordres hyperprolifératifs.