FR 2724183 A1 19960308 FR 9410585 A 19940902 Vecteurs de criblage et/ou d'expresssion fonctionnels chez les iycobactéries - Utilisation pour l'identification et l'expression de polypeptides exportes. Le genre Mycobacterium inclut des pathogènes humains majeurs tels que M. leprae et M. tuberculosis, les agents responsables de la lèpre et de la tuberculose, qui restent des problèmes graves de santé publique dans le monde entier. M. bovis et M. tuberculosis, les agents causals de la tuberculose, sont des bactéries facultatives intracellulaires. En dépit des problèmes majeurs de santé liés à ces organismes pathogènes, on sait peu de choses sur leurs protéines exportées et/ou sécrétées. Des analyses en SDS-PAGE de filtrat de culture de n, tuberculosis montrent au moins 30 protéines sécrétées (1,19,38). Certaines d'entre elles ont été caractérisées, leurs gènes clonés et séquencés (7,35,37). D'autres, bien qu'il s'agisse d'antigènes immunodominants d'importance majeure pour induire une immunité protectrice (2,21), ne sont pas totalement identifiés.En outre, il est probable que de nombreuses protéines exportées restent fixées sur la membrane cellulaire et par conséquent ne soient pas présentes dans les surnageants de culture. I1 a été montré que les protéines localisées à la surface externe de diverses bactéries pathogènes, telles que l'invasine de 103 kDa de Yersina pseudotuberculosis (14) ou l'internaline de 80 kDa de Listeria sonocst wenes (10) jouent un rôle important dans les interactions avec les cellules hôtes et par conséquent, dans la pathogénicité comme dans l'induction de réponses protectrices. Ainsi, une protéine liée à la membrane pourrait être importante pour 1'infection à M. tuberculosis conte pour l'induction de réponse protectrice contre cette infection.Ces protéines pourraient revêtir un intérêt certain pour la préparation de vaccins. Le BCG (Bacille de Calmette et Guérin), une souche avirulente dérivée de M. bovis, a été très utilisé comme vaccin contre la tuberculose. C'est également un vecteur très intéressant pour la construction de vaccins recombinants vivants, particulièrement en raison de son pouvoir immunogène fort. Par conséquent, l'étude de la biologie moléculaire des mycobactéries suscite actuellement beaucoup d'intérêt. Le développement de nouveaux vaccins contre les mycobactéries pathogènes, ou l'amélioration des vaccins disponibles nécessitait la mise au point d'outils spécifiques permettant d'isoler ou d'obtenir des séquences de polypeptides immunogènes. Les inventeurs ont défini et réalisé dans ce but de nouveaux vecteurs permettant le criblage de séquences d'ADN de mycobactéries afin d'identifier parmi ces séquences, des acides nucléiques codant pour des protéines d'intérêt. Des vecteurs ont été définis pour évaluer l'efficacité de séquences de régulation de l'expression au sein de mycobactéries. L'invention vise aussi de nouveaux polypeptides de mycobactéries ayant pu être isolés au moyen des vecteurs précédents et susceptibles d'entrer dans la réalisation de compositions pour la détection d'une infection par des mycobactéries, ou pour la protection contre une infection due à des mycobatéries. L'invention a donc pour objet un vecteur recombinant de criblage et/ou de clonage et/ou d'expression, caractérisé en ce qu'il se réplique chez des mycobactéries, en ce qu'il contient - 1) un réplicon fonctionnel chez les mycobactéries - 2) un marqueur de sélection - 3) une cassette reporteur comprenant a) un site de clonage multiple (polylinker), b) un terminateur de transcription actif chez les mycobactéries, en amont du polylinker, et c) une séquence nucléotidique codante issue d'un gène codant pour un marqueur d'exportation et/ou de sécrétion de protéine, ladite séquence nucléotidique étant dépourvue de son codon d'initiation et de ses séquences de régulation. Le marqueur d'exportation et/ou de sécrétion est une séquence de nucléotides dont l'expression suivie de l'exportation et/ou de la sécrétion dépend des éléments de régulation qui contrôlent son expression. Par "séquences ou éléments de régulation de l'expression", on entend une séquence promotrice de la transcription, une séquence comprenant le site de liaison au ribosome (RBS), les séquences responsables de l'exportation et/ou la sécrétion telles que la séquence dite séquence signale. Un premier marqueur intéressant d'exportation et/ou d'expression est une séquence codante issue du gène phoA. Le cas échéant, elle est tronquée de telle façon que l'activité phosphatase alcaline est cependant susceptible d'être restaurée lorsque la séquence codante tronquée est placée sous le contrôle d'un promoteur et d'éléments de régulation appropriés. D'autres marqueurs d'exposition et/ou d'exportation et/ou de sécrétion peuvent être utilisés. On citera à titre d'exemples une séquence du gène de la P-agarase ou de la nucléase d'un staphylocoque ou de la ss-lactamase d'une mycobactérie. Le terminateur de transcription doit être fonctionnel chez les mycobactéries. Un terminateur avantageux est à cet égard le terminateur du coliphage T4 (tT4). D'autres terminateurs appropriés pour la réalisation de l'invention peuvent être isolés en utilisant la technique présentée dans les exemples, par exemple au moyen du vecteur pJNll ou du vecteur pJEM1S, Un vecteur particulièrement préféré pour la réalisation de l'invention est le plasmide pJEMll déposé à la CNCM (Collection Nationale de Cultures de Microorganismes à Paris - France) sous le nI-l375, le 3 novembre 1993. Pour la sélection, ou l'identification de séquences d'acides nucléiques de mycobactéries codant pour des produits susceptibles d'être incorporés dans des compositions immunogènes ou antigéniques pour la détection d'une infection par des mycobactéries, le vecteur de l'invention comprendra, en l'un des sites du polylinker, une séquence de nucléotides d'une mycobactérie chez laquelle on recherche la présence de séquences régulatrices associées à tout ou partie d'un gène d'intérêt permettant, lorsque le vecteur portant ces séquences (vecteur recombinant) est intégré dans un hôte cellulaire de type mycobactérie, d'obtenir l'exposition au niveau de la membrane ou de la paroi cellulaire de l'hôte et/ou l'exportation et/ou la sécrétion du produit d'expression de la susdite séquence de nucléotides. La séquence en question de mycobactéries peut être toute séquence dont on cherche à détecter si elle contient des éléments de régulation de l'expression associés à tout ou partie d'un gène d'intérêt et susceptibles de permettre ou de favoriser l'exposition au niveau de la membrane cellulaire d'un hôte chez laquelle elle serait exprimée et/ou l'exportation et/ou la sécrétion d'un produit d'expression d'une séquence codante donnée et à titre d'essai du marqueur d'exportation et/ou de sécrétion. De préférence, cette séquence est obtenue par digestion enzymatique de 1'ADN génomique ou de 1'ADN complémentaire d'un ARN d'une mycobactérie et de préférence d'une mycobactérie pathogène. Selon un premier mode de réalisation de l'invention, la digestion enzymatique de 1'ADN génomique ou de 1'ADN complémentaire est effectuée à partir de M. tuberculosis. De préférence cet ADN est digéré avec une enzyme telle que sau3A. D'autres enzymes de digestion telles que Sciai, ApaI, Scail, KPnI ou encore des exonucléases ou des polymérases, peuvent naturellement être mises en oeuvre, dès lors qu'elles permettent l'obtention de fragments dont les extrémités peuvent être insérées dans l'un des sites de clonage du polylinker du vecteur de l'invention. Le cas échéant, des digestions avec différentes enzymes seront effectuées simultanément. Des vecteurs recombinants préférés pour la réalisation de l'invention sont choisis parmi les vecteurs recombinants suivants déposés à la CNCM le 8 Août 1994 pExp53 déposé à la CNCM sous le n-I-1464 pExp59 déposé à la CNCM sous le n-I-1465 pExp410 déposé à la CNCM sous le n-I-1466 pExp421 déposé à la CNCM sous le n-I-1467. Les vecteurs de l'invention peuvent également être utilisés pour déterminer la présence de séquences d'intérêt, selon ce qui a été exposé précédemment, chez des mycobactéries telles que M. africanum, M. bovis, n. avium ou M. leyrae dont on aura traité 1'ADN ou l'ADNc avec des enzymes déterminées. L'invention a également pour objet un procédé de criblage de séquences de nucléotides issues de mycobactéries, pour déterminer la présence au sein de ces séquences, d'éléments de régulation contrôlant l'expression dans un hôte cellulaire de séquences d'acide nucléique les contenant et/ou l'exposition à la surface de l'hôte cellulaire et/ou l'exportation et/ou la sécrétion des séquences polypeptidiques résultant de l'expression des susdites séquences de nucléotides, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes a) la digestion des séquences d'ADN de mycobactéries par au moins une enzyme déterminée et la récupération des fragments de digestion obtenus, b) l'insertion des fragments de digestion dans un site de clonage compatible avec l'enzyme de l'étape a, du polylinker d'un vecteur ci-dessus, c) si besoin, l'amplification du fragment de digestion contenu dans le vecteur, par exemple par réplication de ce dernier après insertion du vecteur ainsi modifié dans une cellule déterminée, par exemple E coli, d) la transformation d'hôtes cellulaires par le vecteur amplifié à l'étape c), ou en l'absence d'amplification, par le vecteur de l'étape b), e) la culture des hôtes cellulaires transformés dans un milieu permettant la mise en évidence du marqueur d'exportation et/ou de sécrétion contenu dans le vecteur, f) la détection des hôtes cellulaires positifs (colonies positives) pour l'expression du marqueur d'exposition et/ou d'exportation et/ou de sécrétion, g) l'isolement de 1'ADN des colonies positives et l'insertion de cet ADN dans une cellule identique à celle de l'étape c), h) la sélection des insertions contenues dans le vecteur, permettant l'obtention de clones positifs pour le marqueur d'exportation et/ou de sécrétion, i) l'isolement et la caractérisation des fragments d'ADN de mycobactéries contenues dans ces insérats. La mise en oeuvre de ce procédé permet la construction de banques d'ADN comportant des séquences susceptibles d'être exportées et/ou sécrétées, lorsqu'elles sont produites au sein de mycobactéries recombinantes. L'étape i) du procédé peut comprendre une étape de séquençage des insertions sélectionnées. De préférence, le vecteur utilisé est le plasmide pJEMll (CNCM I-1375) et la digestion est effectuée au moyen de l'enzyme sau3A. Selon un mode de réalisation préféré de l'invention, le procédé de criblage est caractérisé en ce que les séquences de mycobactéries sont issues d'une mycobactérie pathogène, par exemple de M. tuberculosis, M. bovis, M. avium, M. africanum ou n. leprae. L'invention a également pour objet les séquences nucléotidiques de mycobactéries sélectionnées après la réalisation du procédé ci-dessus décrit. Selon un mode de réalisation particulier de l'invention, des séquences intéressantes sont par exemple les fragments d'ADN de mycobactéries contenus dans les vecteurs pIPX412 (CNCn I-1463 déposé le 8/08/94), pExp53, pExp59, pExp410 ou pExp421. Lorsque la séquence codante issue du gène marqueur d'exportation et/ou de sécrétion est une séquence issue du gène phoA, l'exportation et/ou la sécrétion du produit du gène phoA, le cas échéant tronqué, n'est obtenue que lorsque cette séquence est insérée en phase avec la séquence placée en amont, qui contient les éléments contrôlant l'expression et/ou l'exportation et/ou de sécrétion issus de séquence de mycobactéries. L'invention a aussi pour objet des mycobactéries recombinantes contenant un vecteur recombinant décrit précédemment. Une mycobactérie préférée est une mycobactérie du type n. smegmatis. M. smegmatis permet avantageusement de tester l'efficacité de séquences de mycobactéries, pour le contrôle de l'expression et/ou de l'exportation et/ou de la sécrétion d'une séquence donnée, par exemple d'une séquence codant pour un marqueur tel que la phosphatase alcaline. Une autre mycobactérie intéressante est une mycobactérie du type M. bovis, par exemple la souche BCG utilisée actuellement pour la vaccination contre la tuberculose. L'invention a par ailleurs pour objet une mycobactérie recombinante, caractérisée en ce qu'elle contient un vecteur recombinant ci-dessus défini. L'invention concerne aussi une séquence de nucléotides issue d'un gène codant pour une protéine exportée de M. tuberculosis, caractérisée en ce qu'elle est choisie parmi les séquences suivantes - une séquence I répondant à l'enchaînement de nucléotides décrit à la figure 6, ou hybridant dans des conditions stringentes avec cet enchaînement, - une séquence II comprenant l'enchaînement de nucléotides I et codant pour une protéine P28 de n. tuberculosis ayant un poids moléculaire théorique d'environ 28kDa, - une séquence III comprise dans la séquence I et codant pour un polypeptide reconnu par des anticorps dirigés contre la protéine P28 de M. tuberculosis, - une séquence IV comprenant les sequences régulatrices du gène comprenant la séquence codante I, - une séquence V répondant à l'enchaînement compris entre les nucléotides 1 et 72 de la séquence I et correspondant à la séquence signal, - une séquence VI répondant à l'enchaînement compris entre les nucléotides 62 à 687 de la séquence I, - une séquence VII répondant à l'enchaînement compris entre les nucléotides 688 et 855 de la séquence I. Entre également dans le cadre de l'invention, un polypeptide de M. tuberculosis, caractérisé en ce qu'il répond à l'enchaînement d'acides aminés VIII représenté à la figure 6 ou en ce qu'il comprend cet enchaînement. Un polypeptide préféré est caractérisé en ce qu'il a un poids moléculaire théorique d'environ 28kDa, déterminé selon la technique décrite dans les exemples. Un autre polypeptide intéressant dans le cadre de l'invention comprend une partie de l'enchaînement VIII d'acides aminés précédemment décrit et réagit immunologiquement avec des anticorps dirigés contre la protéine p28 de M. tuberculosis. De façon préférée, un tel polypeptide est en outre caractérisé en ce qu'il ne réagit pas immunologiquement avec la protéine p28 de M. leprae. Des séquences d'acides aminés particulièrement intéressantes dans le cadre de l'invention sont les séquences comprenant l'un des enchaînements suivants ou répondant à l'un de ces enchaînements en une ou plusieurs copies PGLTS, PGLTD, PGLTP, PALTN, PALTS, PAIaG, PTGAT, PTGLD, PVGLD. D'autres séquences intéressantes sont par exemple la séquence signal comprise entre les positions de nucléotides 1 et 72 de la figure 6 ou encore la séquence comprise entre les nucléotides 688 et 855 susceptible de se comporter comme une séquence transmembranaire. Ces séquences polypeptidiques peuvent être exprimées sous la forme de polypeptides recombinants. Dans ces polypeptides recombinants, elles peuvent être remplacées en partie notamment en ce qui concerne les séquences de 5 acides aminés précédemment décrites, par des séquences d'intérêt provenant de mycobactéries ou d'autres organismes pathogènes, ce remplacement pouvant conduire à inclure, au sein des polypeptides recombinants, des épitopes ou des déterminants antigéniques d'un organisme pathogène ou d'une protéine d'intérêt contre lequel (laquelle) on chercherait à obtenir des anticorps. Ainsi, les polypeptides de l'invention, tout en présentant éventuellement eux-mêmes des propriétés antigéniques, voire immunogènes, peuvent être utilisés comme molécules porteuses intéressantes pour préparer, le cas échéant, des vaccins ayant des propriétés variées. L'invention a également pour objet des anticorps monoclonaux ou des sérums polyclonaux dirigés contre un polypeptide tel que défini précédemment. S'agissant des anticorps monoclonaux, ils sont de préférence dirigés spécifiquement contre un polypeptide de l'invention et ne reconnaissent par exemple pas la protéine p28 de M. leprae. L'invention a aussi pour objet une composition pour la détection in vitro d'une infection par n. tuberculosis, caractérisée en ce qu'elle comprend un polypeptide ci-dessus défini, capable de réagir immunologiquement avec des anticorps formés chez un patient infecté par M. tuberculosis. Une autre composition pour la détection in vitro d'une infection par n. tuberculosis est caractérisée par une séquence de nucléotides contenant au moins 9 nucléotides, issue d'une séquence ci-dessus définie, ou une séquence de nucléotides contenant au moins 9 nucléotides et hybridant dans des conditions stringentes avec 1'ADN de M. tuberculosis et n'hybridant pas dans les mêmes conditions avec 1'ADN de M. leprae, cette séquence étant une séquence d'ADN ou d'ARN, le cas échéant marquée. L'invention a aussi pour objet un hôte cellulaire procaryote ou eucaryote caractérisé en ce qu'il est transformé par une séquence de nucléotides telle que décrite dans les pages précédentes, dans des conditions permettant l'expression de cette séquence et/ou son exposition au niveau de la membrane de l'hôte cellulaire et/oc son exportation et/ou sa sécrétion à partir de la susdite membrane. A titre préféré, les hôtes cellulaires sont des mycobactéries telles que M. smegiatis ou M. bovis BCG. D'autres hôtes cellulaires sont par exemple E. coli, des cellules CHO, BHK, Spf9/Bacculovirus, des levures telles que Saccharomyces cerevisiae, le virus de la vaccinee. L'invention a aussi pour objet une composition immunogène comprenant un polypeptide tel que présenté plus haut ou un hôte cellulaire tel que défini cidessus. L'invention concerne par ailleurs un vecteur pour le criblage et/ou le clonage et/ou pour l'expression de séquences de nucléotides fonctionnelles dans des mycobactéries, dérivé d'un vecteur précédemment décrit et caractérisé en ce que la séquence codante issue d'un gène codant pour un marqueur d'exportation et/ou de sécrétion est remplacée par un gène reporteur ou une séquence reporteur. De façon préférée, le gène ou la séquence reporteur est dépourvue de ses séquences régulatrices, en particulier de ses séquences de liaison au ribosome et/ou de ses séquences permettant l'exportation et/ou la sécrétion du marqueur produit lorsque le vecteur est incorporé à un hôte cellulaire recombinant. De préférence, le gène ou la séquence reporteur contient la séquence codant du gène lacZ ou une partie de cette séquence suffisante pour que le polypeptide présente une activité 8-galactosidase. Un vecteur préféré de l'invention est caractérisé en ce qu'il comprend en l'un des sites de clonage du polylinker, un enchaînement de nucléotides comprenant un promoteur et le cas échéant des séquences de régulation, par exemple pour l'ancrage à la surface, l'exportation voire la sécrétion d'un polypeptide qui serait produit sous le contrôle du promoteur, dont on souhaite évaluer la capacité à promouvoir ou réguler l'expression d'une séquence nucléotidique reporteur chez des mycobactéries. Des vecteurs préférés sont des plasmides choisis parmi les plasmides pJEN12, pJEN13, pJEN14 ou plEn15 tels que représentés à la figure 13. Un tel vecteur peut être utilisé pour évaluer l'intérêt de séquences de régulation d'expression ou de promoteurs, par exemple les séquences de promoteurs pAN, pblaF0, psul3, pgroES/ELl. L'invention comprend également un procédé pour déterminer l'activité d'une séquence contenant en l'un des sites de clonage du polylinker, un enchaînement de nucléotides comprenant un promoteur et le cas échéant des séquences de régulation, par exemple pour l'exposition, l'exportation voire la sécrétion d'un polypeptide qui serait produit sous le contrôle du promoteur dans des mycobactéries, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes de - transformation d'une souche de mycobactérie, par exemple M. smegmatis ou M. tuberculosis avec un vecteur ci-dessus décrit, - détection de l'activité normalement associée à la présence du gène reporteur ou de la séquence reporteur. D'autres caractéristiques et avantages de l'invention apparaissent à la lecture des exemples qui suivent ainsi que dans les figures. LEGENDE DES FIGURES Fig. 1 Construction de pJ=Ull. Voir Matériel et Méthodes. pJENll a des origines de réplication (ori) de E. coli et des mycobactéries. I1 s'agit donc d'un plasmide navette. Le marqueur de sélection est le gène de résistance à la kanamycine (Km). Le gène PhoA tronqué de pPH07 (22) est dépourvu de promoteur, de codon de départ et de séquence signal, ainsi l'expression et l'exportation de PhoA dépendent de la fusion traductionnelle avec les extrémités amino-terminales d'autres protéines. Le terminateur transcriptionnel (T) de la cassette omega évite la transcription par "readthrough" à partir de séquences plasmidiques. Fig. 2 Construction des plasmides pLA71, pLA72 et pLA73. L'insertion dans le site Bam H1 de pJEMll de fragments BlaF* (34) de 3 longueurs différentes conduit à l'expression de protéines de fusion avec l'activité phoA. Des dosages colorimétriques ont été effectués selon la technique de Brockman et Heppel (8), avec le p-nitrophényl-phosphate comme substrat. Les teneurs en protéines ont été mesurées à l'aide du dosage Bic-Rad. Les unités arbitraires de phosphatase alcaline (aU) ont été calculées comme décrit dans Matériel et Méthodes. Fig. 3 Analyses de Western-blot de protéines de fusion PhoA. Des souches de M. smegmatis transformées ont été mises en culture en milieu Beck contenant de la kanamycine (20 Hg/ml). Des extraits totaux de bactéries soniquées ont été solubilisés par du SDS, résolus par SDS-PAGE et soumis à immunoempreinte. La préparation du sérum de lapin anti-PhoA a été décrite précédemment (34). Des anticorps de lapin couplés à PhoA (Promega) et, comme substrat, un mélange de X-P et de nitrobleutétrazolium (BCIP-NBT, Promega) ont été utilisés pour révéler les fusions PhoA.Colonne 1: PhoA bactérienne purifiée, n, smeqmatis transformée par des plasmides pJEMll: colonne 2, pLA71: colonne 3, pLA72: colonne 4, pLA73: colonne 5, pExp410: colonne 6, pExp53: colonne 7, pExp59: colonne 8, pExp421: colonne 9 Fig. 4 Séquences nucléotidiques et d'acides aînés déduites de segments dlinsérats sélectionnés des plasmides pzxp410, pExp53, plYp59 et pExpo21. Les clones de M. smegmatis avec l'activité de la phosphatase alcaline ont été sélectionnés sur des boites X-P/kanamycine. Leurs plasmides ont été amplifiés chez E. coli XL-1 B, et la séquence nucléotidique des insérats déterminée comme décrit dans Matériel et Méthodes. A: pExp410 inclut une partie de la lipoprotéine de 19 kDa. Le cadre de lecture est maintenu à la jonction avec phoA (Bam Hl/Sau 3A). B: pExp53 inclut une partie d'un gène présentant des similitudes avec l'antigène de 28 kDa de x. lenrae. Les acides aminés divergents sont en caractères gras. Le codon de début de traduction est GTG. Les sites de clivage putatifs par signal peptidase sont indiqués par des flèches. C: pExp59 code pour une séquence signal caractéristique.Un site de liaison aux ribosomes putatif (RBS) est souligné. Le site putatif de clivage par la signal peptidase est indiqué par une flèche. D: pExp421 code pour des motifs d'acides aminés conservés avec des protéines de la famille des stéaroyle protéine-porteuse-d'acyle (ACP) désaturases. R. comm: R. communis (ricin). Fig. S Le gène similaire au gène de l'antigène de 25 kDa de M. leprae est présent en une seule copie bans le genou de M. tuberculosis. L'ADN génomique de M. tuberculosis a été extrait en suivant des protocoles standard (27), digéré par des endonucléases Pst I, Sma I, Bst EII, Sph I, Ban HI et soumis à une migration sur un gel d'agarose à 1 %. L'hybridation de Southern-blot a été effectuée selon des protocoles standard (27). La sonde marquée au 32P était un fragment de PCR de 180 pb de l'insérat de pExp53. Fig 6 Séquence de nucléotides et d'acides aminés du produit du gène IRSA codant pour la protéine P28 de n. tuberculosis. Fig. 7 Séquences de nucléotides préliminaires flanquant le gene IRSA de M. tuberculosis. Fig. 8 Gènes de bactéries pour la régulation du fer (IRG's). Fig. 9 Profil d'hydrophilie. Fig. 10 A) Alignement des séquences de nucléotides du gène codant pour les protéines p28 de N. tuberculosis et de M. leyrae. B) Alignement des séquences d'acides aminés des protéines p28 de M. tuberculosis et de N. leprae. Fig. 11 Construction des plasmides pJ3 et pJB11. Seuls les sites de restriction et éléments génétiques pertinents sont montrés. Les plasmides pRR3 et pJNl ont été décrits dans l'art antérieur (60) (58). La cassette omega a été obtenue par digestion par SmaI de pHP45n (59), suivie de la purification d'un fragment de 2 kb d'un gel d'agarose en utilisant le kit Geneclean (Bio 101 Inc.). Les techniques standard d'ADN recombinant ont été utilisées conformément à la description donnée dans l'état de la technique (61). Dans pJN3 et pJNll, le gène de la ss-lactamase (bla) a été interrompu. oriE et oriM désignent les origines de réplication de pUC (E. coli) et de pAL5000 (mycobactéries), respectivement. Fig. 12. Structure des plasmides de la série pJEX. (A) Dans la représentation schématique des plasmides, seuls les éléments génétiques pertinents sont indiqués. pJEM15 a résulté du clonage, dans le site ScaI de pRR3, i) d'un fragment obtenu par amplification par PCR (en utilisant OJN1:5'- AAGCTTCCGATTCGTAGAGCC-3 'et OJN2:5'-GGGCTCGAGCTGCAG TGGATGACCTTTTGA-3' comme amorces; et pJNll cone matrice) et contenant tT4 et l'extrémité N-terminale de cII; ii) des oligonucléotides de synthèse correspondant à MCS1; et iii) le fragment lacZ' de HindIII-DraI de pNM480. pJEM12-13-14 ont été obtenus par clonage du fragment amplifié par PCR décrit ci-dessus dans le site ScaI de pRR3. Les oligonucléotides de synthèse correspondant à MCS2 ont été ensuite insérés. Enfin, chacune des trois formes de la série pNM480 a été introduite dans le site HindIII dans MCS2. (B) Séquences nucléotidiques des régions entre l'amorce OJN1 et le 8ème codon de lacZ' (marqué ****). Ces séquences ont été vérifiées expérimentalement. La région tT4 est soulignée et le RBS de synthèse est en caractères gras. La séquence d'acides aminés de l'extrémité N-terminale de cII est donnée en-dessous de la séquence d'ADN. Les sites HindIII sont marqués par un astérisque car ils ne sont pas uniques. Pour des descriptions complémentaires, voir la légende de la fig.ll. TEMPLES I) Identification de gènes codant our des protéines exportées de X. tuberculosis. Les résultats rapportés ici décrivent la définition pour des mycobactéries d'une méthode génétique d'identification de protéines exportées. Cette méthodologie est basée sur la fusion traductionnelle avec la phosphatase alcaline bactérienne (PhoA). De telles protéines de fusion doivent être exportées pour avoir l'activité PhoA (6,13,16). Un gène PhoA a été utilisé après délétion de la région promoteur, du site de liaison aux ribosomes et de l'ensemble de la région codant pour la séquence signal dont le codon de début de traduction a été utilisé. Ainsi, l'activité phosphatase alcaline est dépendante de la fusion traductionnelle réalisée dans la bonne phase de lecture avec une partie d'une protéine exportée. La construction d'un vecteur plasmidique phoA pour les mycobactéries est décrite en premier lieu puis on a montré que l'introduction dans ce vecteur du gène de la ss-lactamase exportée de M. fortuitum (blaF*)(34) (34 > conduit à la production chez M. smegmatis de protéines de fusion présentant l'activité enzymatique PhoA. Une banque de séquences de fusion entre 1'ADN génomique de M. tuberculosis et le gène phoA a ensuite été construite. Douze clones indépendants qui exportaient de protéines de fusion ont été isolés. Parmi eux, on a pu identifier la lipoprotéine exportée de 19 kDa déjà décrite chez n. tuberculosis, une nouvelle séquence de M. tuberculosis présentant des similitudes avec la protéine de 28 kDa de M. leprae, une protéine comportant des résidus d'acides aminés conservés avec des stéaroyle-protéineporteuse-d'acyle (ACP) désaturases, et d'autres séquences nouvelles. MATERIEL ET NETHODES Souches bacériennes, plasmides, et conditions de culture Les souches bactériennes et les plasmides utilisés dans cette étude sont présentés au tableau 1. La croissance de souches de E. coli et de M. smegmatis, l'électroporation, le criblage sur gélose contenant 20 rg/ml de kanamycine et 20 pg/ml de phosphate de 5bromo-4-chloro-3-indolyle (X-P) ont été réalisés comme décrit précédemment (14) M. tuberculosis, isolat d'un patient, a été cultivé sur milieu solide de Lowenstein-Jensen. Manipulation et séquençage d'ADX La manipulation d'ADN et les analyses de Southern-blot ont été effectuées à l'aide de techniques standard (27). Pour les déterminations des séquences, les oligonucléotides (5-GGCCCGACGAGTCCCGC-3' et 5' TTGGGGACCCTAGAGGT-3') ont été mis au point en vue du séquençage à travers les jonctions de fusion des insérats de M. tuberculosis dans pJEMll (voir cidessous).Les séquences d'ADN plasmidique à double brin ont été déterminées par la méthode de terminaison de chaînes par des dideoxy (28) en utilisant le kit de séquençage T7 (Pharmacia) selon les instructions du fabricant, ou avec le kit de séquençage Cycle Terminateur Taq Dyc Désoxy (Applied Biosystems), sur un système de PCR GeneAmp 9600 (Perkin Elmer), et passées sur un système d'analyse d'ADN - Modèle 373 (Applied Biosystems). Analyses des banques de données Les séquences nucléotidiques ont été comparées à celles des banques de données D'EMBU et de GenBank en utilisant l'algorithme FASTA (23) et les séquences de protéines dérivées ont été analysées pour déterminer une similitude éventuelle avec les séquences contenues dans les banques de données de protéines PIR et SwissProt en utilisant l'algorithme BLAST (1). Constructions des plasmides pJEM11 : La construction de pJEM11 est résumée sur la fig. 1. Brièvement, pJEM2 a été construit à partir du plasmide navette pRR3 de E. colimycobactéries (26), par insertion du fragment lacZ tronqué de pNM480 (18), d'un multisite de clonage ou poly-linker (MCS), et du terminateur transcriptionnel de la cassette omega (24). Le fragment N-terminal EcoRV-KpnI de lacZ est remplacé par le fragment phoA tronqué de pPHo7 (11), sans codon de départ ou de séquence signal pour donner pJEN10. Enfin, un codon de départ potentiel dans le MCS a été éliminé pour donner pJEMll. pLA71, pLA7 2, et pLA73 : Des fragments de longueur différente de blaF*(34) obtenus par amplification par PCR ont été insérés au site Ban H1 de pJEM11 pour donner pLA71, pLA72, et pLA73 3 (fig. 2). Les oligonucléotides (Genset, Paris) utilisés pour l'amplification par PCR étaient vers l'Avant 5' CGGGATCCTGCTCGGCGGACTCCGGG-3' et vers l'Arrière 5' CGGGATCCGGTCATCGATCGGTGCCGCGAA-3',5'-CGGGATCCCGCCGTGCTCGG CCATCTGCAG-3'et 5'-CGGGATCCAGAGTAAG GACGGCAGCACCAG-3', pour pLA71, pLA72 et pLA73 respectivement. Les amplifications par PCR ont été effectuées dans un Cycleur Thermique à ADN (Perkin Elmer), en utilisant la Taq polymérase (Cetus), selon les recommandations du fabricant. Construction des banques génomiques de M. tuberculosis De 1'ADN génomique de M. tuberculosis a été extrait selon des protocoles standard (27). Cet ADN a été partiellement digéré par Sau3A (avec 1U par 2ng) & 37iC pendant 2min 30sec. La digestion a été arrêtée par l'addition de phénol. On a alors fait migrer cet ADN sur de l'agarose à bas point de fusion (Gibco, BRL). La fraction contenant les fragments ayant de 400 à 2000 pb a été extraite par de l'agarase (GELase, Epicentre Technologies) et ligaturée au site Bam HI compatible de pJEM11 avec la T4 DNA ligase (Boehringer Mannheim), à 16-C pendant une nuit. Dosage de la phosphatase alcaline Pour les dosages de la phosphatase alcaline, M. smegmatis a été cultivé dans du bouillon L additionné de tylaxopol à 0,05 % (Sigma) à 37- pendant 48 h. L'activité de la phosphatase alcaline a été dosée par la méthode de Brockman et Heppel (8), dans des extraits soniqués comme décrit précédemment (34), en utilisant le phosphate de p-nitrophényle comme substrat de la réaction. Les teneurs en protéines ont été mesurées à l'aide du dosage Bio-Rad (Bio-Rad). L'activité de la phosphatase alcaline est exprimée en Unités arbitraires (aU)=DO420x105x g de protéine~lxmin~l. Préparations d'anticorps, électrophorèse sur gel de SDS-polyacrylalide et inunocipreintes La préparation d'un sérum de lapin anti-PhoA a été décrite précédemment (34). Des extraits cellulaires de M. smegmatis ont été préparés par sonication, la SDS PAGE et l'immunoempreinte ont été réalisées conte décrit précédemment (36). RESULTATS Construction d'un vecteur plasmidique navette (pJEM11) pour la production de protéines de fusion avec PhoA chez X. negmatis pJEMll possède un gène phoA tronqué de E. coli sans codon d'initiation ou éléments de régulation quelconques (fig. 1). Le site multiple de clonage permet l'insertion de fragments provenant de gènes codant pour des protéines exportées putatives en même temps que leurs éléments de régulation.Ainsi, des protéines de fusion ont pu être produites, elles exprimaient l'activité de la phosphatase alcaline lorsque la fusion était exportée. pJEMll est un plasmide navette E. col i/mycobactéries qui inclut le gène de résistance à l'antibiotique kanamycine de tn903 comme marqueur de sélection. L'insertion d'éléments génétiques responsables de l'expression et de l'exportation de p-lactanue chez pJEa11 conduisent à la production de protéines de fusion PhoA enzymatiquement actives chez X. siogmatis Les trois plasmides ont été construits par insertion de fragments de différente longueur provenant du gène de la p-lactamase de la souche surproductrice M. fortuitum D316 (blaF*) (34) au site Bam HI de pJEMll (fig. 2).Dans pLA71, le fragment de 1384 pb inclut le promoteur, le segment codant pour les 32 acides aminés de la séquence signal, et les 5 premiers acides aminés de la protéine mature (il n'y a pas de séquence Shine Dalgarno pour la fixation ribosomique dans la séquence d'origine de blaF*). pLA72 porte un fragment de 1550 pb incluant les éléments codant pour la séquence signal et les 61 premiers acides aminés de la protéine mature. Dans pLA73, le fragment de 2155 pb contient la blaF* entière. Ces plasmides ont été utilisés pour transformer M. smegmatis et les transformants ont été criblés pour les fusions PhoA enzymatiquement actives par étalement sur milieux gélosés contenant de la kanamycine et du X-P. Le X-P est soluble et incolore, mais après clivage du phosphate par la phosphatase alcaline, un précipité bleu est produit. Ainsi, des clones produisant la phosphatase alcaline pouvaient être facilement identifiés par leur coloration bleue. L'expression de pLA71, 72 et 73 chez n. siegiatis, conduit à des colonies bleues, alors que des colonies avec plus11 sont restées blanches. Des analyses de Western-blot ont montré la production de protéines de fusion phoA avec un poids moléculaire apparent d'environ 47,5 kDa, 54 kDa, et 76 kDa, pour pu71, pLA72 et pLA73 respectivement (fig. 3, colonne 3,4,5). Ces poids moléculaires sont en accord avec la longueur de la protéine mature fusionnée à la phosphatase alcaline (P.M. apparent de 46 kDa, fig. 3, colonne 1). Dans pJEMll, il n'y a pas d'expression de PhoA, conte prévu (fig. 3, colonne 2). Le dosage de l'activité de la phosphatase alcaline (voir la fig. 2) de ces bactéries confirme l'expression d'une activité enzymatique avec les 3 constructions pLA. Toutefois, M. smeamatis avec pLA73 exprime environ deux fois plus d'activité comparée à pLA73 et 72. Dans des expériences distinctes, nous avons confirmé que la production intracellulaire de phoA sous le contrôle d'un promoteur mycobactérien, sans fusion avec une protéine exportée, n'était pas associée à l'expression de l'activité de la phosphatase alcaline. L'ensemble de ces résultats indique que dans ce système, l'activité de la phosphatase alcaline dépend de la fusion traductionnelle et de l'exportation proprement dite du produit. Par conséquent, pJEMll convient & l'identification génétique des protéines exportées par les mycobactéries. Construction chez X. negmatis d'une banque de fusions phoA avec des fragments d'ADM génomique de M. tuberculosis L'ADN génomique d'un isolat clinique de M. tuberculosis a été purifié et partiellement digéré par Sau3A. La fraction de 400/2000 pb a été insérée au site Bam HI compatible de pJEMll. Les produits de ligation ont été transférés dans E. coli XL-1 bleu par électroporation pour obtenir une étape d'amplification. Environ 2500 clones contenant des plasmides avec des insertions ont poussé sur un milieu gélosé contenant de la kanamycine. Les plasmides purifiés à partir des transformants ont été réunis et transférés par électroporation dans M. smegmatis Mut155. Les bactéries transformées ont été étalées sur gélose L-kanamycine X-P. Environ 14000 clones ont été obtenus. Après 4 jours d'incubation, les premières colonies bleues donc PhoA+ ont été observées. Chaque jour, les boites ont été vérifiées, et de nouvelles colonies PhoA+ ont été isolées. Les colonies clonées ont été lysées, et leur ADN introduit par électroporation dans E. coli XL-1 bleu, pour les préparations de plasmides. En tout, 12 inserts différents permettant l'expression de phoA ont été isolés et séquencés. Trois séquences présentaient des similitudes avec des séquences connues. Fusion de PhoA avec le gène de la lipoprotéine de ig kDa de X. tuberculosis L'un des plasmides (pExp410) possède une insertion correspondant à une partie du gène de la protéine de 19 kDa déjà connue. Ce gène code pour une lipoprotéine exportée (5,31). La fig. 4 A montre la séquence d'ADN correspondant à la fusion entre ce gène et phoA. Comme prévu, la même phase de lecture est maintenue entre les deux protéines. Le poids moléculaire attendu de la protéine de fusion, selon la séquence serait près de 57 kDa. Toutefois, le vrai poids moléculaire observé par analyse de Western-blot est identique à la protéine PhoA purifiée (fig. 3, colonne 1 et 6), ce qui suggère que la protéine de fusion est clivée près de la jonction PhoA. Fusion avec une séquence similaire au gène de la protéine de 28 kDa de M. leprae. La protéine de 28 kDa de M. leprae est un antigène majeur qui est très souvent reconnu par les sérums de patients atteints de la forme lépromateuse de la lèpre (9). Dans la banque d'insertion de M. tuberculosis préparée, une séquence portée par un vecteur recombinant (pExp53) présentant une similitude de 77 t avec la séquence nucléotidique de ce gène et de 68 t pour la séquence d'acides aminés déduite (fig. 4 B) a été identifiée. Dans l'analyse par Western-blot, le poids moléculaire de la protéine de fusion est d'environ 52 kDa (fig. 3, colonne 7), ce qui prévoit environ 45 acides aminés de la protéine mycobactérienne dans la protéine de fusion, après clivage du peptide signal. Ceci est conforme à la longueur du fragment du gène de H. tuberculosis fusionné avec phoA (fig. 4 B). Des analyses de Southern-blot de 1'ADN génomique de M. tuberculosis ont été réalisées. Il a été montré qu'un fragment de 180 pb de l'insertion de 2 kb du plasmide pExp53 ne contient aucun site de restriction pour les endonucléases PstI, SmaI, BamHI, BstEII et SphI. Ce fragment a été amplifié par PCR. L'ADN génomique de M. tuberculosis a été digéré à l'aide de ces enzymes, et sondé avec le fragment de PCR marqué au 32P. Comme on peut le voir sur la fig. 5, une bande seulement a été observée lorsque 1'ADN génomique a été digéré avec chacune des cinq enzymes, ce qui suggère que le gène est présent en une seule copie dans le génome de M. tuberculosis. D'autres fusions PhoA portant les séquences signal putatives La fig. 4 C montre la séquence d'une insértion portée par un vecteur recombinant (pExp59) fusionné avec phoA. Elle présente une séquence signal typique permettant l'exportation de protéines. La séquence présentée est conforme aux règles habituelles telles qu'établies chez les bactéries Gram négatif (25). Elle contient deux acides aminés chargés positivement (Arg, Asn) après le codon de départ, suivis d'un peptide hydrophobe, avec un Gly, correspondant probablement à une boucle dans la structure tridimensionnelle du peptide. Un site potentiel de clivage par la signal peptidase est indiqué par une fleche, ce qui donne une protéine de fusion avec un poids moléculaire proche de celui de phoA, comme le montre la fig. 3, colonne 8, conformément. Protéines de fusion PhoA avec des motifs d'acides aminés conservés avec des stéaroyle-protéine-porteuse- dacyleXACP) désaturases Les ACP-désaturases sont des enzymes impliquées dans les voies de la biosynthèse des acides gras. En général, ces enzymes sont des protéines membranaires intégrales (29). Des analyses du plasmide pExp421 de la banque préparée ont révélé deux motifs d'acides aminés conservés avec des ACP-désaturases, un de 9 acides aminés et le deuxième de 14 acides aminés (fig. 4 D). Le reste de la séquence na révélé aucune similitude significative avec des protéines connues. DISCUSSION Plus de 30 protéines sécrétées ont été trouvées dans des filtrats du BCG ou de M. tuberculosis à court terme, avec un minimum de lyse de la bactérie (1,19,38). Ces protéines ont été classées selon leur poids moléculaire et leurs réactivités immunologiques. Certaines ont été caractérisées de manière plus poussée. Par exemple, les protéines sécrétées du complexe de l'antigène 85 (les antigènes 85 A,B et C) sont des protéines de 32 kDa présentant des réactions sérologiques croisées (7,35). Les antigenes 85 A et 85 B présentent une affinité vis-à-vis de la fibronectine et seraient impliqués dans l'internalisation de n, tuberculosis dans les macrophages. Les gènes de ces protéines immunogènes (7), et de protéines de 23 kDa (MPB64) (37) et de 19 kDa (5) ont été clonés et séquencés et des séquences de peptides signal caractéristiques de protéines exportées ont été trouvées. Les protéines recombinantes produites i partir de ces gènes seraient des outils intéressants pour le diagnostic sérologique de la tuberculose.La superoxyde dismutase (SOD) de 23/28 kDa est abondante dans les filtrats de culture à court terme, et serait impliquée dans la survie des mycobactéries dans le phagolysosome. Le gène codant pour la SOD chez n, tuberculosis a été cloné et séquencé (39). De manière intéressante, aucune séquence de peptide signal caractéristique n'a été trouvée. Ceci suggère une voie spécifique de sécrétion de cet enzyme par les mycobactéries.Des protéines sécrétées dans deux gammes étroites de poids moléculaire (6-10 kDa et 26-34 kDa) sont des antigènes majeurs des cellules T (3) et induisent chez la souris des réponses immunitaires en cellules T protectrices vis-å-vis d'une épreuve par des mycobactéries vivantes du complexe de M. tuberculosis (4). I1 a été suggéré que les différences dans les réponses immunitaires observées entre les bactéries vivantes et tuées sont dues à ces protéines exportées/sécrétées (20). Ces divers résultats préliminaires suggèrent qu'une meilleure caractérisation de protéines exportées/sécrétées des bactéries pathogènes du complexe de M. tuberculosis serait de grande utilité à la fois pour la compréhension de leur pouvoir pathogène et pour la mise au point de nouveaux vaccins. Si les protéines sécrétées ont été étudiées par des méthodes biochimiques, d'autres méthodologies génétiques s'avéreraient nécessaires. En utilisant un gène phoA tronqué, des systèmes de fusion ont été mis au point permettant la fixation des extrémités amino d'autres protéines sur PhoA. Cette approche est basée sur la phosphatase alcaline bactérienne périplasmique de E. coli. Cette enzyme doit être localisée de manière extracytoplasmique pour être active. Ainsi, la phosphatase alcaline peut être utilisée comme sonde de localisation subcellulaire. Une méthodologie PhoA a été élaborée et décrite ici pour l'identification de protéines exportées par les mycobactéries. L'insertion de blaF* dans pJEMll conduit à la production chez M. smeqmatis de protéines de fusion avec l'activité phosphatase alcaline. De plus, des fusions PhoA avec 3 fragments différents de BlaF* étaient enzymatiquement actives, ce qui suggère que la plupart des fusions en phase avec des protéines exportées auront une activité PhoA. Une banque d'insértions de M. tuberculosis dans pJEMll a été construite et exprimée chez n. smegmatis, Dans cette banque, une partie du gène codant pour la lipoprotéine exportée connue de 19 kDa (pExp410) a été isolée. Cette protéine de M. tuberculosis est l'un des antigènes sérologiquement immunodominants trouvés chez ce bacille. Des analyses de la séquence d'ADN du gène codant pour cet antigène indiquent que la région NH2terminale hydrophobe est un peptide signal de lipoprotéine (5). Une partie de cette lipoprotéine a été fusionnée à la protéine A de surface externe de Borrelia burqdorferi pour construire un vaccin BCG recombinant capable d'induire une forte réponse immunitaire (31). Deux autres séquences partageant des similitudes avec les protéines exportées ou membranaires ont également été identifiées: pExp53 s'est révélé présenter des similitudes avec le gène de l'antigène de 28 kDa de M. leprae. Cet antigène de M. leprae a été trouvé par criblage d'une banque de Agt 11 avec le sérum de patients atteints de la forme lépromateuse de la lèpre. C'est un antigène majeur impliqué dans la réponse immunitaire humorale à M. lePrae (9). De manière intéressante, il a été montré qu'un peptide de 20 acides aminés de cette protéine présente une similitude considérable avec un peptide de l'antigène de 19 kDa de M. tuberculosis, et c'est un épitope de cellules T présentant des réactions croisées (12).La séquence d'ADN du gène codant pour l'antigène de 28 kDa de M. leprae suggère que "la séquence d'acides aminés prédite de la protéine contient un peptide signal potentiel à son extrémité aminoterminale et deux longs domaines hydrophobes, ce qui suggère qu'elle est ciblée pour la localisation sur la membrane plasmatique bactérienne ou la paroi cellulaire" (9). Une protéine de fusion codée par un plasmide de notre banque (pExp421) partageait des motifs d'acides aminés avec les désaturases. Les ACP-désaturases sont des enzymes impliquées dans les voies de la biosynthèse des acides gras. En général, ces enzymes sont des protéines membranaires intégrales (39). Ce résultat suggère que l'on peut avoir isolé une partie d'un gene important dans le métabolisme des lipides chez n. tuberculosis, peut-être impliqué dans la voie de la biosynthèse de la paroi cellulaire lipidique. Un autre plasmide (pExp59) avec une séquence signal putative caractéristique a été trouvée. En conclusion, les résultats présentés dans cette publication démontrent que la technologie de PhoA pour l'identification génétique de protéines exportées peut être adaptée avec succès pour H. tuberculosis. Des criblages préliminaires d'une banque d'insertions donnant des protéines de fusion PhoA ont mis en évidence des séquences présentant des similitudes avec des protéines exportées connues. II) "pression de la protéine P28 de X. tuberculosis Le BCG est un vaccin vivant. C'est le seul vaccin utilisé pour protéger contre la tuberculose. Son efficacité s'est avérée variable suivant les populations vaccinées, allant d'environ 80% en Grande Bretagne à 0% en Inde. I1 apparaît donc indispensable de recherche un vaccin plus efficace. D'autre part, le fait d'utiliser un vaccin vivant pose aujourd'hui des problèmes en raison de l'extension de l'épidémie du SIDA. Plusieurs travaux ont montré que des antigènes exportés par Mycobacterium tuberculosis, l'agent de la tuberculose, avaient un effet protecteur contre une épreuve par la souche virulente. Les travaux rapportés ici ont consisté à utiliser une méthode génétique pour isoler et étudier les gènes de M. tuberculosis codant pour des protéines exportées. Nous décrivons ici l'isolement et la caractérisation d'un gène codant pour une protéine possédant des homologies avec la protéine de 28kDa de Mycobacterium leprae déjà décrite. Méthodologie pour le clonage de gènes codant pour des protéines exportées. La méthodologie exposée en détails dans la partie I repose sur l'utilisation de fusions traductionnelles avec le gène codant pour la phosphatase alcaline de Escherichia coli, PhoA. De telles protéines de fusion n'ont une activité phosphatase alcaline détectable que si elles sont exportées. Un vecteur plasmidique portant un gène phoA dépourvu de son promoteur, de son site d'attachement à 1'ARN ribosomal et de sa séquence signale a été construit. A partir de ce vecteur une activité PhoA ne peut être observée qu'après fusion traductionnelle dans le bon cadre de lecteur avec une protéine exportée. Le vecteur, appelé pJEMll possède une origine de réplication pour E. coli et une autre pour les mycobactéries. I1 possède également un marqueur de ,élection, le gène de résistance à la kanamycine du transposon Tn905.Un site multiple de clonage précède le gène phoA tronqué. Une banque d'ADN génomique provenant d'une souche de H. tuberculosis (Mt103) isolée d'un patient tuberculeux, a été construite dans pJEM11 en insérant des fragments d'ADN issus d'une hydrolyse partielle par l'enzyme Sau3a. Les clones sélectionnés ont permis d'identifier un fragment de nucléotide du gène de 28kDa de M. tuberculosis homologue au gène codant pour la protéine de 28kDa de n. lePrae. Chez les malades lépromateux, des anticorps dirigés contre cette protéine de 28kDa sont observés, laissant supposer que cette protéine est un antigène immunodominant. L'hypothèse a été faite que chez n. tuberculosis, la protéine de 28kDa possédant des homologies avec la protéine de 28kDa de n. leprae pourrait être aussi un antigène immunodominant et qu'il pourrait servir à la construction de tests immunologiques spécifiques permettant la détection de l'infection tuberculeuse ou de la tuberculose maladie. I1 pourrait peut-être être utilisé pour la construction de vaccins sous unitaires dans différentes préparations vaccinales. De plus, il pourrait être utile comme vecteur pour l'expression d'antigènes chez les mycobactéries pour la construction de vaccins recombinants. Clonage et séquençage du gène codant pour une protéine de 2skia de x. tuberculosis En utilisant l'insertion comme sonde, le gène entier codant pour la protéine de 28kDa de n. tuberculosis a été cloné par hybridation sur colonie d'une banque d 'ADN de M. tuberculosis construite en insérant des fragments d'ADN de M. tuberculosis obtenus par hydrolyse totale avec l'enzyme PstI dans le vecteur pBluescript KS-. Le fragment PstI de M. tuberculosis correspondant au clone positif a été séquencé. La figure 10 montre la séquence nucléotidique du fragment et les similarités avec le gène codant pour la protéine de 28kDa de N. leprae. La séquence du gène de 28kDa de M. tuberculosis est comme celui de M. leprae précédée d'une séquence possédant des similarités avec les boites "fer" retrouvées en amont des gènes exprimés lors d'une carence en fer. Une situation de carence en fer est rencontrée lors de la croissance in vivo. L'hypothèse est faite que l'expression de ce gène est induite lors de la croissance dans les macrophages des mycobactéries hébergeant ce gène. De plus, la protéine de 28kDa de M. tuberculosis possède dans sa partie centrale deux régions contenant des motifs de 5 acides aminés répétés en tandem, qui sont absents de la protéine homologue de M. leprae. Des structures répétées analogues ont été identifiées précédemment dans des antigènes majeurs présents à la surface d'autres agents pathogènes bactériens ou parasitaires tels que la protéine M (40) des Streptococcacea et la protéine CS des Plasmodiae (41). Tout ou partie de la protéine de 28kDa de n. tuberculosis dont la séquence du gène est présentée ici pourrait être un antigène protecteur potentiel pour la construction d'un vaccin antituberculeux. Un tel antigène peut être obtenu par purification à partir d'extraits cellulaires de M. tuberculosis ou à partir d'extraits cellulaires d'organismes hétérologues génétiquement recombinés. De plus, la protéine de 28kDa de M. tuberculosis ou des peptides en dérivant, pourrait être un antigène utilisable dans des tests ELISA pour le dépistage de malades tuberculeux. En utilisant le gène de 28kDa de M. tuberculosis comme sonde, une hybridation dans des conditions de stringence élevée n'a été observée qu'avec 1'ADN génomique des souches appartenant au complexe n. tuberculosis. En conséquence, la séquence correspondant au gène de 28kDa de M. tuberculosis est une séquence spécifique qui peut être utilisée pour des tests de détection des bacilles de la tuberculose, utilisant des sondes ADN ou ARN et des méthodes d'amplification génique in vitro. La région régulatrice et le gène de la 28kDa de N. tuberculosis peuvent être utilisés en tant que molécules porteuses pour exprimer des antigènes hétérologues dans le BCG ou tout autre vecteur mycobactérien utile pour la construction de vaccins. III) "pression de gènes do lycobactéries ; évaluation de différents promoteurs d'expression Un aspect important des résultats obtenus concerne la construction d'outils génétiques pour l'étude de l'expression des genes chez les mycobactéries. Des vecteurs séquence de régulation-sonde ont été utilisés dans l'art antérieur pour isoler et analyser des séquences de régulation chez un grand nombre de bactéries (54). La définition par les inventeurs de tels outils propres aux mycobactéries facilite l'étude des mécanismes génétiques régulant la virulence chez les espèces pathogènes, et l'isolement de nouvelles séquences de régulation qui seraient utiles pour la mise au point de vaccins BCG recombinants améliorés. Initialement, l'expression de gènes mycobactériens a été étudiée dans des systèmes hétérologues, Escherichia coli et strePtomsces lividans (46) (51) (60). Ces analyses suggèrent que la plupart des gènes mycobactériens sont plus efficacement exprimés chez S. lividans que chez E. coli. Ultérieurement, des vecteurs à base de plasmides mycobactériens ont été construits qui pourraient être utilisés pour des études dans des systèmes homologues. Les vecteurs pYUB75 et pYUB76 ont été conçus pour sélectionner des fusions de gènes à un gène lacZ tronqué de Escherichia coli (42). Le plasmide pSD7 permet la construction de fusions d'opérons à un gène de la chloramphénicol acétyltransférase (CAT) sans promoteur (47). En utilisant ces vecteurs, un certain nombre de séquences de régulation mycobactériennes ont été isolées et évaluées à la fois chez E. coli et chez Mycobacterium smegmatis. Les inventeurs ont décrits d'autres constructions de vecteurs de la série pJEM, qui ont plusieurs avantages: ils portent un terminateur de transcription, des multisites de clonages adaptés, et ils permettent des fusions à la fois d'opérons et de genes à lacZ. lacZ a été choisi comme gène rapporteur car l'enzyme codée, la P-galactosidase, reste active lorsque des séquences hétérologues sont fusionnées à son extrémité amino-terminale (45) (64). Son activité peut être facilement mesurée in vitro, même à des niveaux très bas à l'aide de composés fluorescents (48). La - galactosidase est également hautement immunogène. Elle induit des réponses immunitaires à la fois humorales et cellulaires après présentation au système immunitaire de souris par des bactéries recombinantes (44) (56). Ainsi, la 8-galactosidase peut également être utilisée comme rapporteur du pouvoir immunogène d'un vaccin recombinant. En utilisant des vecteurs pJEM, de nouvelles séquences de régulation actives chez BCG pourraient être isolées et les souches BCG recombinantes facilement testées pour leur capacité à induire des réponses immunitaires chez la souris. Une étude comparative des activités de divers promoteurs chez n. smegmatis et BCG a également été faite. Les résultats suggèrent que les ARN polymérases de M. smegmatis et de BCG ne partagent pas la même spécificité. Construction de vecteurs pJEM. Idéalement, un vecteur plasmidique promoteur-sonde doit contenir cinq éléments: i) un réplicon, ii) un marqueur de sélection, et une cassette rapporteur contenant iii) un terminateur de transcription suivi iv) de multisites de clonage (MCS) et v) d'un gène rapporteur dépourvu de ses séquences de régulation. Pour construire un vecteur de clonage de promoteur les mycobactéries, nous avons utilisé le réplicon dérivé du plasmide pAL5000 de Necobacterium fortuitum et le gène de la résistance à la kanamycine (aph) de Tn903 (58) ont été utilisés. Ces éléments génétiques sont les composants de base de la plupart des plasmides actuellement utilisés pour la transformation des mycobactéries. Ils semblent conférer une haute stabilité aux clones transformés de N. smeqmatis et M. bovis BCG à la fois in vitro et in vivo (chez la souris) même en l'absence de sélection par les antibiotiques (56). Pour faciliter la préparation et la manipulation d'ADN épisomal, la plupart des ces plasmides contiennent également un réplicon de E. coli. Ainsi, nous avons choisi le plasmide pRR3, un vecteur navette E. coli-mycobactéries qui contient ces trois éléments génétiques comme vecteur de base (58). Aucun terminateur de transcription mycobactérien n'a encore été caractérisé. Pour examiner si le terminateur de transcription du coliphage T4 (tT4) était actif comme site de terminaison pour les ARN polymérases de mycobactéries, l'interposon oméga (57) a été cloné dans le plasmide pJN3, en amont de l'élément sRBS-cII-lacZ, générant pJNll (fig. 11). Le fragment oméga est composé d'un gène de résistance à la streptomycine/spectinomycine encadré par de courtes répétitions inversées contenant tT4. L'insertion de oméga dans un fragment d'ADN conduit à la terminaison de la synthèse d'ARN chez E. coli (57). pJN3 a été construit en clonant, dans le site ScaI de pRR3, une cassette composée d'un lacZ tronqué associé à un RBS de synthèse (sRBS) et l'extrémité 5' du gène de régulation cII du phage lambda et le promoteur pL (fig. 11). M. smeqmatis mc2155 (61) a été transformé avec pJN3 (pL sRBS-cII-lacZ) ou pJNll (pL-n-sRBS-cII-lacZ) par électroporation et les clones transformants ont été repérés après croissance sur des boîtes LB-Xgal. Les clones transformants portant pJN3 ont donné des colonies bleues et les clones transformants portant pJNll ont donné des colonies blanches. L'activité de la 8-galactosidase chez M. smegmatis (pTN11) était 50 fois inférieure à celle chez M. smegmatis (pJN3) (tableau 2). Ainsi, tT4 contenu dans l'insert a agit comme terminateur de transcription efficace chez M. smegmatis. Un fragment d'ADN contenant le segment tT4 suivi de l'élement sRBS-cII-lacZ de pJNll a été synthétisé in vitro par amplification par PCR et un MCS (MCS1), contenant 6 sites de restriction uniques, a été ajouté. La cassette résultante a ensuite été clonée dans le site ScaI de pRR3, donnant le vecteur de fusion d'opérons pJEM1S (fig. 12 > . L'électroporation de n. smeqmatis Mu2155 et du BCG avec ce plasmide a conduit à des colonies blanches sur des boîtes de LB-Xgal avec une très faible activité de la P-galactosidase (tableau 2). Par contre chez E. coli, pJEM15 a exprimé une activité de la p-galactosidase plus élevée, et par conséquent une coloration bleue sur des boîtes de LB Xgal. Ceci est probablement dû à son nombre de copies élevé. Chez E. coli, des vecteurs pUC sont présents en un nombre de copies élevé (supérieur à 500), alors que chez les mycobactéries, les plasmides dérivés de réplicons pAL5000 ont un nombre de copies d'approximativement 3 à 10 (50).Le test de fragments d'ADN pour l'activité promoteur, à l'aide de pJEM15, par criblage bleu-blanc doit ainsi être effectué directement chez les mycobactéries. Pour obtenir des vecteurs permettant des fusions de gènes à lacZ, nous avons suivi une stratégie similaire. Les trois formes de lacZ tronqué de la série pNM480 (55), qui diffèrent les unes des autres par la "mise en phase traductionnelle" d'un site HindIII localisé à son extrémité 5', ont été clonées, en aval de tT4 et d'un MCS (mis2) contenant 7 sites de restriction uniques, dans le site ScaI de pRR3. Les plasmides résultants pJEM12-13-14 (fig. 12) permettent ainsi le clonage d'une large gamme de fragments de restriction en phase avec lacZ. Evaluation de divers promoteurs chez n. smegmatis et BCG. Des fusions d'opérons entre la cassette rapporteur cII-lacZ de pJEM1S et les promoteurs pAN (56), pblaF* (63), psul3 (52), et pgroES/ELl (49) ont été construits. L'activité de ces promoteurs a été évaluée chez N. smeqmatis et chez M. bovis BCG. Les trois premiers promoteurs ont été isolés à partir d'espèces mycobactériennes : pblaF* est un mutant d'expression élevée de pblaF, qui dirige l'expression du gène de la p-lactamase de M. fortuitum ; pAN est un promoteur de M. paratuberculosis et psul3 un composant d'élément génétique mobile de M. fortuitum Tn610.Ces promoteurs ont été localisés sur la base de la cartographie de sites de début de transcription (pblaF* et pAN) ou par analyse de délétion (psul3) (62). pgroES/ELl est un promoteur de Streptonyces albus qui régule l'expression de l'opéron groES/ELl, et est actif à la fois chez n. smegmatis et le BCG (65). Les expériences de clonage ont été effectuées directement chez M. smegmatis. Des fragments d'ADN contenant chacun des promoteurs ont été isolés et insérés à MCS1 de pTEM1S digéré par les enzymes de restriction appropriées. Les mélanges de ligation résultants ont été utilisés pour transformer n. smegmatis mc2155 par électroporation et des colonies bleues ont été sélectionnées pour électroduire E. coli MC1061 (45) comme décrit précédemment (43). Les plasmides ont été isolés de ces clones de E. coli et analysés. Ceux correspondant aux constructions recherchées pJN29 à pJN32 (tableau 2), ont été utilisés pour l'électroporation de BCG (souche Pasteur). L'activité de la P-galactosidase a été dosée sur des extraits soniqués de M. smeqmatis et de BCG (tableau 2 > . L'activité des promoteurs a varié considérablement aussi bien entre les promoteurs chez un hôte mycobactérien et entre les hôtes pour chaque promoteur. La force relative de ces promoteurs n'était pas la même chez M. smegmatis et BCG. Bien que pblaF* ait été le promoteur le plus puissant à la fois chez n. smeqmatis et chez le BCG, la situation est différente pour les autres promoteurs : pAN et pgroES/ELl étaient plus actifs que psul3 chez le BCG, mais chez n. smeqmatis, psul3 était plus actif que pAN ou pgroES/Ell. Das Gupta et ses collaborateurs (47) ont criblé des banques d'ADN de M. smegmatis et de M. tuberculosis pour l'activité promoteur chez n. smegmatis. Ils ont signalé une fréquence de promoteurs 10 à 20 fois plus élevée dans 1'ADN de M. smegmatis. De plus, des promoteurs très actifs étaient plus rares dans les banques d'ADN de M. tuberculosis que dans celles de n. smegmatis. Ces auteurs ont suggéré que les promoteurs de M. tuberculosis peuvent avoir divergé considérablement de ceux de M. snegmatis. Les résultats présentés ici suggèrent que la machinerie transcriptionnelle de M. smeqmatis et de n. bovis BCG, espèce très apparentée à M. tuberculosis, peut être différente. En conclusion, la famille de vecteurs construits facilite l'étude de l'expression de gènes chez les mycobactéries. Une large gamme de fragments peuvent être facilement clonés en phase à lacZ' (fusion de gènes) ou en amont de cII-lacZ (fusion d'opérons) et évalués pour l'activité promoteur par criblage bleublanc de transformants mycobactériens sur boites LB Xgal. L'activité de ces promoteurs peut aussi être mesurée (par dosage de l'activité de la P- galactosidase), leurs séquences déterminées, et leur site de début de transcription cartographié (par analyse d'extension d'amorce) en utilisant wu'amorce universelle" ou des séquences apparentées (53) comme amorce. REFERENCES 1. Altschul, S.F. et al., 1990, J. Mol.. Biol., 21S: 403-410. 2. Andersen, P. et al., 1991, Infect. Immun. 59: 1905-1910. 3. Andersen, P. et al., 1991, Infect. Immun. 59: 1558-1563. 4. Andersen, P. et al., 1994, Immun. 62: 2536-2544. 5. Ashbridge, K.R. et al., 1989, Nucl. Acid. Res. 17: 1249. 6. Boquet, P. et al., 1987, J. Bacteriol. 169: 1663-1669. 7. Borremans, M. et al., 1989, Infect. Immun. 57: 3123-3130. 8. Brockman, R.w. et al., 1968, Biochemistry 7: 2554-2561. 9. Cherayil, B. et al., 1988, J. Immunol. 12: 4370-4375. 10. Gaillard, J.-L. et al., 1991, Cell 65: 1127-1141. 11. Gutierrez, C. et al., 1989, Nucl. Acids. Res. 17: 3999. 12. Marris, D.P. et al., 1991, J. Immun. 147: 2706-2712. 13. Hoffman, C.8. et al., 1985, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 82: 5107-5111. 14. Isberg, R.R. et al., 1987, Cell 50: 769-778. 15. Knapp, S. et al., 1988, J. Bact. 170: 5059-5066. 16. Manoir, C. et al., 1990, J. Bacteriol. 172: 515-518. 17. Tiller, V.L. et al., 1987, cell. 48: 271-279. 18. Minton, B.P., 1984, Gene. 31: 269-273. 19. Vagal, S. et al., 1991, Infect. Immun. 59: 372-382. 20. Orme, I.M., 1988, Infect. Immun. 56: 3310-3312. 21. Orme, I.M. et al., 1993, J. Infect. Disea. 167: 1481-1497. 22. Pearce, B.J. et ai., 1993, Mol. Microbiol. 9: 1037-1050. 23. Pearson, W.R. et al., 1988, Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 85: 2444-2448. 24. Prentki, P. et al., 1984, Gene. 29: 303-313. 25. Pugsiey, A.P., 1993, Microbiol. Rev. 57: 50-108. 26. Rafles, L.G. et al., 1990, J. Bacteriol. 172: 2793-2797. 27. 8a brook, J. et al., 1989. Molecular Cloning: a Laboratory Manual, 2nd ed. Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbour, N.Y. 28. Sanger, F. et al., 1977, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 74: 5463-5467. 29. Shantlin, J. et al., 1991, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88: 2510-2514. 30. Snapper, S.B. et al., 1990, Mol. Microbiol. 11: 1911-1919. 31. Stover, K.C. et ai., 1993, J. Exp. Med. 178: 197-209. 32. Taylor, 1.1. et al., 1987, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 84: 2833-2837. 33. Taylor, R.I. et ai., 1989, J. Bact. 171: 1870-1878. 34. Tin, J. et al., 1994, Mol. Microbiol. 12: 491-504. 35. Wiker, X.G. et al., 1992, Nicrobiol. Rev. 56: 648-661. 36. linter, N. et al., 1991, Gene. 109: 47-54. 37. Yaiaguchi, R. et al. , 1989, Infect. Immun. 57: 283-288. 38. Young, D.B. et al., 1992, Mol. Nicrobiol. 6: 133-145. 39. Zhang, Y. et al., 1991, Mol. Microbiol. 5: 381-391. 40. sollingstead 8. et al., 1986, J.Biol. Chem. 262: 1677-1686. 41. Zavala, F. et alt, J. Exp. Med. 157: 194-1957. 42. Barletta, R.G. et al., 1992, J. Gen. Microbiol. 138: 23-30. 43. Baulard, A. et al., 1992, Nucleic Acids Res. 20: 4105. 44. Brown, A. et al., 1987, J. Infect. Dis. 155: 86-92. 45. Casabadan, M.J. et al., 1980, J. Bacteriol. 143: 971-980. 46. Clark-Curtiss, J.E. et ai., 1985, J. Bacteriol. 161: 1093-1102. 47. Das Gupta, S.x. et al., 1993, J. Bacteriol. 175: 5186-5192. 48. Garcia-del-Portillo, F. et ai., 1992, Mol. Microbiol. 6: 3289-3297. 49. Guglielmi, G. et ai., 1993, Basic and Applied Genetics. Americain Society for Microbiology, Washington, D.C. 50. Batfull, G.X. et al., 1993. Genetic transformation of mycobacteria. TIM 1: 310-314. 51. Kieser, T. et al., 1986, J. Bacteriol. 168: 72-80. 52. Martin, C. et al., 1990, Nature 345: 739-743. 53. Messing, J., 1983, New M13 vectors for cloning, p. 20-78. In R. Wu, L. Grossman and K. Moldave (eds.), Methods in Enzymology. Academic Press, New York. 54. Miller, J.X., 1991, Bacterial Genetic Systems, In J.N. Abelson and M.I. Simon (eds.), Nethods in Enzymology, Academic Press, San Diego. 55. Minton, N.P., 1984, Gene 31: 269-273. 56. Murray, A. et al., 1992, Mol. Microbiol. 6: 3331-3342. 57. Prontki, P. et al., 1984, Gene 29: 303-313. 58. Runes, X.G. et al., 1990, J. Bacteriol. 172: 2793-2797. 59. Sambrook, J. et al., 1989, Molecular cloning: a laboratory manual, 2nd ed. Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N.Y. 60. Sirakova, T.D. et al., 1989, FEMS Nicrobiol. Lett. 59: 153-156. 61. Snapper, 8.B. et al., 1990, Mol. Microbiol. 4: 1911-1919. 62. Tin, J. et al. Unpublished data. REVENDICASIOX8 1. Vecteur recombinant de criblage et/ou de clonage et/ou d'expression, caractérisé en ce qu'il se réplique chez des mycobactéries, en ce qu'il contient - 1) un réplicon fonctionnel chez les mycobacteries - 2) un marqueur de sélection - 3) une cassette reporteur comprenant a) un site de clonage multiple (polylinker), b) un terminateur de transcription actif chez les mycobactéries, situé en amont du polylinker, et c) une séquence nucléotidique codante issue d'un gène codant pour un marqueur d'exportation et/ou de sécrétion de protéine, ladite séquence nucléotidique étant dépourvue de son codon d'initiation et de ses séquences de régulation. 2. Vecteur recombinant de criblage et/ou de clonage et/ou d'expression capable de se répliquer chez des mycobactéries selon la revendication 1, caractérisé en ce que la séquence codante issue du gène codant pour un marqueur d'exportation et/ou de sécrétion est une séquence du gène phoA de la phosphatase alcaline. 3. Vecteur recombinant selon l'une quelconque des revendications 1 ou 2, caractérisé en ce que la séquence codante issue du gène codant pour un marqueur d'exportation et/ou de sécrétion est une séquence du gène de la P-agarase ou de la nucléase d'un staphylocoque ou d'une P-lactamase. 4. Vecteur recombinant selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que le terminateur de transcription fonctionnel chez les mycobactéries est le terminateur du coliphage T4 (tT4 > . 5. Vecteur recombinant selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé en ce qu'il s'agit du plasmide pJEM11 déposé à la CNCM sous le n'I-1375, le 3 novembre 1993. 6. Vecteur recombinant selon la revendication 5, caractérisé en ce que la séquence codante issue du gène phoA est tronquée dans des conditions telles que le polypeptide exprimé par cette séquence conserve l'activité de la phosphatase alcaline. 7. Vecteur recombinant selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisé en ce qu'il comprend, en l'un des sites de clonage du polylinker, une séquence de nucléotides d'une mycobactérie chez laquelle on recherche la présence de séquences régulatrices permettant, lorsque le vecteur est intégré dans un hôte cellulaire de type mycobactérie, d'obtenir l'exportation et/ou la sécrétion du produit d'expression de la susdite sequence de nucléotides. 8. Vecteur recombinant selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisé en ce que la séquence de nucléotides de mycobactérie qu'il contient est obtenue par digestion enzymatique de 1'ADN génomique ou de 1'ADN complémentaire d'ARNs d'une mycobactérie pathogène. 9. Vecteur recombinant selon l'une quelconque des revendications 1 à 8, caractérise en ce que la séquence de nucléotides de mycobactérie qu'il contient est obtenue par digestion enzymatique de 1'ADN génomique ou de 1'ADN complémentaire d'ARNs de M. tuberculosis. 10. Vecteur recombinant selon la revendication 9, caractérisé en ce que 1'ADN de n. tuberculosis a été digéré avec Sau3A. 11. Vecteur recombinant selon la revendication 10, caractérisé en ce qu'il s'agit de l'un des vecteurs suivants pExp53 déposé à la CNCM sous le ntI-1464 pExp59 déposé à la CNCM sous le n"I-1465 pExp410 déposé à la CNCM sous le n-I-1466 pExp421 déposé à la CNCM sous le n'I-1467. 12. Vecteur recombinant selon la revendication 8, caractérisé en ce que la mycobactérie est H. africanum, M bovis ou M avium ou M leprae. 13. Procédé de criblage de séquences de nucléotides issues de mycobactéries, pour déterminer la présence au sein de ces séquences, d'éléments de régulation contrôlant l'expression dans un hôte cellulaire de séquences d'acide nucléique les contenant et/ou l'exportation et/ou la sécrétion des séquences polypeptidiques résultant de l'expression des susdites sequences de nucléotides, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes a) la digestion des séquences d'ADN de mycobactéries par au moins une enzyme déterminée et la récupération des fragments de digestion obtenus, ou leur synthèse in vitro par une technique d'amplification génique (telle que PCR) b) l'insertion des fragments de digestion dans un site de clonage compatible avec l'enzyme de l'tape a) du polylinker d'un vecteur selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, c) si besoin, l'amplification du fragment de digestion contenu dans le vecteur, par exemple par réplication de ce dernier après insertion du vecteur ainsi modifié dans une cellule déterminée, par exemple E coli, d) la transformation d'hôtes cellulaires par le vecteur amplifié à l'étape c), ou en l'absence d'amplification, par le vecteur de l'étape b), e) la culture des hôtes cellulaires transformés dans un milieu permettant la mise en évidence du marqueur d'exportation et/ou de sécrétion contenu dans le vecteur, f) la détection des hôtes cellulaires positifs (colonies positives) pour l'expression du marqueur d'exportation et/ou de sécrétion, g) l'isolement de 1'ADN des colonies positives et l'insertion de cet ADN dans une cellule identique à celle de l'étape c), h) la sélection des insertions contenues dans le vecteur, permettant l'obtention de clones positifs pour le marqueur d'exportation et/ou de sécrétion, i) l'isolement et la caractérisation des fragments de digestion des séquences de mycobactéries contenues dans ces insérats. 14. Procédé de criblage selon la revendication 13, caractérisé en ce que le vecteur utilisé est pJEKll (CNCM I-1375) et en ce que la digestion des séquences de mycobactéries est réalisée avec Sau3a. 15. Procédé de criblage selon l'une quelconque des revendications 13 ou 14, caractérisé en ce que les séquences de mycobactéries sont issues d'une mycobactérie pathogène, par exemple de M. tuberculosis, M. bovis, M. avium, M. africanum ou N. leprae ou non pathogène. 16. Séquences nucléotidiques de mycobactéries contenant des éléments de régulation de l'exportation et/ou de la sécrétion telles qu'obtenues par mise en oeuvre du procédé selon l'une quelconque des revendications 13 à 15. 17. Mycobactérie recombinante, caractérisée en ce qu'elle contient un vecteur selon l'une quelconque des revendications 1 à 12. 18. Mycobactérie selon la revendication 17, caractérisée en ce qu'il s'agit d'une souche M. smegmatis. 19. Mycobactérie selon la revendication 18, caractérisée en ce qu'il s'agit d'une souche de M. bovis, par exemple de la souche BCG. 20. Séquence de nucléotides issue d'un gène codant pour une protéine exportée de M. tuberculosis, caractérisée en ce qu'elle est choisie parmi les séquences suivantes - une séquence I répondant à l'enchaînement de nucléotides suivant, ou hybridant dans des conditions stringentes avec cet enchaînement, - une séquence II comprenant l'enchaînement de nucléotides I et codant pour une protéine P28 de M. tuberculosis ayant un poids moléculaire d'environ 28kDa, - une séquence III comprise dans la séquence I et codant pour un polypeptide reconnu par des anticorps dirigés contre la protéine P28 de M. tuberculosis, - une séquence IV comprenant les séquences régulatrices du gène inclus dans la séquence codante I, - une séquence V répondant à l'enchaînement compris entre les nucléotides 1 et 72 de la sequence I et correspondant à la séquence signal, - une séquence VI répondant à l'enchaînement compris entre les nucléotides 62 à 687 de la séquence I, - une séquence VII répondant à l'enchainement compris entre les nucléotides 688 et 855 de la séquence I. 21. Polypeptide de M. tuberculosis, caractérisé en ce qu'il répond à l'enchaînement d'acides aminés VIII représenté à la figure 6 ou en ce qu'il comprend cet enchaînement. 22. Polypeptide selon la revendication 21, caractérisé en ce qu'il a un poids moléculaire théorique d'environ 28kDa. 23. Polypeptide caractérisé en ce qu'il comprend une partie de l'enchaînement VIII d'acides aminés selon la revendication 21, et en ce qu'il réagit immunologiquement avec des anticorps dirigés contre la protéine P28 de M. tuberculosis. 24. Polypeptide selon l'une quelconque des revendications 20 à 23, caractérisé en ce qu'il ne réagit pas immunologiquement avec la protéine P28 de N. leprae. 25. Séquence d'acides aminés d'un polypeptide selon la revendication 21 ou 22, caractérisée en ce qu'elle répond à l'un des enchaînements suivants, ou en ce qu'elle comprend un ou plusieurs de ces enchaînements PGLTS,PGLTD,PGLTP,PALTN,PALTS,PALGG,PTGAT,PTGLD,PVGLD. 26. Séquence d'acides aminés selon l'une quelconque des revendications 21 à 24, caractérisée en ce qu'au moins l'un des enchaînements suivants PGLTS, PGLTD, PGLTP, PALTN, PALTS, PALGG, PTGAT, PTGLD, PvGLD est remplacé par une séquence d'acides aminés d'un épitope ou d'un déterminant antigénique d'un organisme pathogène déterminé. 27. Anticorps monoclonaux ou sérum polyclonal dirigés spécifiquement contre un polypeptide selon l'une quelconque des revendications 21 à 26. 28. Composition pour la détection in vitro ou in vivo d'une infection par M. tuberculosis, caractérisée en ce qu'elle comprend un polypeptide selon l'une quelconque des revendications 21 à 26, capable de réagir immunologiquement avec des anticorps formés chez un patient infecté par M. tuberculosis. 29. Composition pour la détection in vitro d'une infection par M. tuberculosis, caractérisée en ce qu'elle comprend une séquence de nucléotides contenant au moins 9 nucléotides, issue d'une séquence selon la revendication 20, ou une séquence de nucléotides contenant au moins 9 nucléotides et hybridant dans des conditions stringentes avec 1'ADN de H. tuberculosis et n'hybridant pas dans les mêmes conditions avec 1'ADN de M. leprae, cette séquence étant une séquence d'ADN ou d'ARN, le cas échéant marquée. 30. Utilisation d'un polypeptide ou d'une séquence d'acides aminés selon l'une quelconque des revendications 21 à 26, en tant que molécule porteuse. 31. Hôte cellulaire procaryote ou eucaryote, caractérisé en ce qu'il est transformé par une séquence de nucléotides selon la revendication 21 dans des conditions permettant l'expression de cette séquence et/ou son exposition au niveau de la membrane de l'hôte cellulaire et/ou son exportation et/ou sa sécrétion à partir de la susdite membrane. 32. Hôte cellulaire selon la revendication 31, caractérisé en ce qu'il s'agit d'une mycobactérie, par exemple d'une souche de M. smeqmatis, M. tuberculosis ou M. bovis. 33. Composition immunogène caractérisée en ce qu'elle comprend un polypeptide selon l'une quelconque des revendications 21 à 26 ou un hôte cellulaire selon l'une quelconque des revendications 31 ou 32. 34. Vecteur selon la revendication 1 pour le criblage et/ou le clonage et/ou pour l'expression de séquences de nucléotides fonctionnelles dans des mycobacteries, caractérisé en ce que la séquence codante issue d'un gène codant pour un marqueur d'exportation et/ou de sécrétion est remplacée par un gène rapporteur ou une séquence rapporteur dont on cherche à détecter l'expression lorsqu'elle est placée sous le contrôle de séquences données de régulation. 35. Vecteur selon la revendication 34, caractérisé en ce que le gène ou la séquence rapporteur est dépourvu de ses séquences régulatrices. 36. Vecteur selon la revendication 34 ou la revendication 35, caractérisé en ce qu'il contient la séquence codante du gène lacZ ou une partie de cette séquence suffisante pour que le polypeptide exprimé présente une activité de p-galactosidase. 37. Vecteur selon l'une quelconque des revendications 34 à 36, caractérisé en ce qu'il comprend en l'un des sites de clonage du polylinker, un enchaînement de nucléotides comprenant un promoteur et le cas échéant des séquences de régulation, par exemple pour l'exportation voire la sécrétion d'un polypeptide qui serait produit sous le contrôle du promoteur, et dont on souhaite évaluer la capacité à promouvoir ou réguler l'expression d'une séquence nucléotidique rapporteur chez des mycobactéries. 38. Vecteur selon l'une quelconque des revendications 34 à 37, caractérisé en ce qu'il s'agit d'un plasmide choisi parmi pJEM12, pJEM13, pJEM14 ou pTEM1S, tels que représentés à la figure 13. 39. Vecteur selon l'une quelconque des revendications 34 à 37, caractérisé en ce qu'il comprend en l'un des sites de clonage du polylinker, une séquence d'un promoteur, par exemple une séquence d'un promoteur pAN, pblaF*1 psul3, pgroES/ELl. 40. Procédé pour déterminer l'activité d'une séquence contenant en l'un des sites de clonage du polylinker, un enchaînement de nucléotides comprenant un promoteur et le cas échéant des séquences de régulation, par exemple pour l'exposition, l'exportation voire la sécrétion d'un polypeptide qui serait produit sous le contrôle du promoteur dans des mycobactéries, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes de - transformation d'une souche de mycobactérie, par exemple M. sregmatis ou faisant partie du complexe n. tuberculosis avec un vecteur selon l'une quelconque des revendications 30 à 35, - détection de l'activité normalement associée à la présence du gène reporteur ou de la séquence reporteur. 41. Vecteur recombinant selon la revendication 1 caractérisé en ce qu'il s'agit de pIPX412 déposé à la CNCM sous le n- I-1463.