FR 2718460 A1 19951013 FR 9404246 A 19940411 SEQUENCE D'ADN CODANT POUR LA CINNAMOYL CoA REDUCTASE CHEZ L'EUCALYPTUS, ET SES APPLICATIONS DANS LE DOMAINE DE LA REGULATION DES TENEURS EN LIGNINES DES PLANTES. La présente invention a pour objet une séquence d'ADN codant pour la cinnamoyl CoA réductase (CCR) chez l'Eucalyptus, ou tout fragment de cette séquence, ou encore toute séquence dérivée de cette dernière, susceptible de coder pour une protéine possédant une activité enzymatique équivalente à celle de la CCR. L'invention a également pour objet l'utilisation de la séquence susmentionnée, ou de sa séquence complémentaire, dans le cadre de la mise en oeuvre de procédés de régulation du taux de lignine chez les plantes. La lignine est un polymère aromatique hétérogène complexe qui imperméabilise et renforce les parois de certaines cellules des plantes. La lignine est formée par polymérisation de radicaux libres dérivant de monolignols tels que les alcools paracoumarylique, coniférylique et sinapylique (Higuchi, 1985, in Biosynthesis and degradation of wood components (T. Higuchi, ed), Academic Press, Orlando, FL, pp. 141-160). Les lignines présentent une grande variation dans leur contenu relatif en monolignols, en fonction des espèces, et des différents tissus au sein d'une même plante. Cette variation est probablement due et contrôlée par les différentes activités et spécificités de substrats, des enzymes nécessaires à la biosynthèse des monomères de la lignine (Higuchi, 1985, susmentionné). Au-delà de son rôle dans la structure et le développement des plantes, la lignine représente un composant majeur de la biomasse terrestre et revêt une grande importance économique et écologique (Brown, 1985, J. Appl. Biochem. 7, 371-387; Whetten and Sederoff, 1991, Forest Ecology and Management, 43, 301-316). Sur le plan de l'exploitation de la biomasse, il convient tout d'abord de noter que la lignine est un facteur limitant de la digestibilité et du rendement en énergie des plantes fourragères. En effet, il est clairement démontré que la digestibilité des plantes fourragères par les ruminants, est inversement proportionnelle à la teneur en lignines de ces plantes, la nature des lignines étant également un facteur déterminant dans ce phénomène (Buxton and Roussel, 1988, Crop. Sci., 28, 553-558; Jung and Vogel, 1986, J. Anim., Sci., 62, 1703-1712). Parmi les principales plantes fourragères chez lesquelles il serait intéressant de diminuer les teneurs en lignines, on peut citer: luzerne, fétuque, maïs, fourrage utilisé en ensilage... Notons également que des teneurs en lignines élevées sont en partie responsables de la qualité limitée des tourteaux de tournesol destinés à l'alimentation du bétail, et de la diminution des capacités germinatives de certaines semences dans le domaine de l'horticulture. On peut souligner également que la lignification intense qui se produit lors de la conservation des organes végétaux après récolte, rend rapidement impropres à la consommation, des productions telles que l'asperge, 1' igname, les carottes, etc... Par ailleurs, il convient de noter également que plus de 50 millions de tonnes de lignines sont extraites de la matière ligneuse chaque année dans le cadre de la production de la pâte à papier dans l'industrie papetière. Cette opération d'extraction nécessaire à l'obtention de la cellulose est énergétiquement coûteuse et secondairement polluante à travers les composés chimiques mis en jeu pour l'extraction et que l'on retrouve dans l'environnement (Dean and Eriksson, 1992, Holzforschung, 46, 135-147; Whetten and Sederoff, 1991, susmentionné). Réduire les proportions en lignines (qui selon les espèces, représentent de 20 à 30% de la matière sèche) de quelques pour cents (2 à 5%), représenterait un gain de rendement, une économie substantielle (produits chimiques) et contribuerait à l'amélioration de l'environnement (réduction des pollutions). Etant donné les échelles d'utilisation de la matière ligneuse, ces retombées auraient des répercussions extrêmement importantes. Dans ce cas, les espèces concernées pourraient être le Peuplier, l'Eucalyptus, l'Acacia mangium, le genre Casuarina et l'ensemble des angiospermes et gymnospermes utilisés pour la production de pâte à papier. I1 est clair que, dans les deux domaines considérés, la réduction des taux de lignines doit être modérée pour conserver à la plante (ou à l'arbre) ses caractéristiques de rigidité et son architecture normale puisque les lignines qui consolident les parois cellulaires jouent un rôle important dans le maintien du port dressé des végétaux. Les variations naturelles dans les teneurs en lignines observées dans la nature pour une même espèce (écarts pouvant aller jusqu'à 6-8% de la masse sèche entre individus) autorisent les diminutions évoquées plus haut. La résistance à la dégradation de la lignine, de même que les difficultés que l'on rencontre dans le cadre de son extraction, sont probablement dues à la structure complexe de ce polymère constitué de liaisons éther et carbone carbone entre les monomères, ainsi qu'aux nombreuses liaisons chimiques existant entre la lignine et d'autres composants de la paroi cellulaire (Sarkanen and Ludwig, 1971, in Lignins: Occurrence, Formation, Structure and Reactions (K.V. Sarkanen and C.H. Kudwig eds) New York: Wiley - Interscience, pp. 1-18). Partant des cinnamoyls-CoA, la biosynthèse des lignines chez les plantes, est effectuée de la manière suivante: R1 HO 1l -9Ù" cinnamoyls-CoA L, C-SCoA R2 CCR (clnnamoyl CoA reductase) R1 HO 011 aldéhydes cinnamyliques R2 C-H R2 t CAD (cinnamyl alcool deshydrogénase) R1 HO > ~ CH2-OH alcoolscinnamyllques R2 Peroxydasesetlou laccases LIGNINES Une approche, par voie de génie génétique, pour tenter de réduire le taux de lignines chez les plantes, consisterait à inhiber la synthèse d'une des enzymes de la chaîne de la biosynthèse de ces lignines indiquées ci-dessus. Une technique particulièrement appropriée dans le cadre d'une telle approche, est celle de l'utilisation d'ARNm antisens susceptible de s'hybrider avec l'ARNm codant pour ces enzymes, et par conséquent, d'empêcher, pour le moins partiellement, la production de ces enzymes à partir de leur ARNm correspondant. Un telle stratégie antisens, réalisée à l'aide du gène codant pour la CAD chez le tabac, a fait l'objet de la demande de brevet européen n" 584 117, décrivant l'utilisation d'ARNm antisens susceptible d'inhiber la production de lignines chez les plantes en s'hybridant à 1 'ARNm codant pour la CAD chez ces plantes. Les résultats au niveau des plantes ainsi transformées démontrent une réduction de l'activité de la CAD, mais paradoxalement, les teneurs en lignines ne montrent pas d'évolution. Des études complémentaires indiquent que les lignines de plantes transformées sont différentes des lignines témoins, car les aldéhydes cinnamyliques sont directement incorporés dans le polymère lignine. L'un des buts de la présente invention est précisément celui de fournir un procédé permettant de réguler efficacement les teneurs en lignines dans les plantes, soit dans le sens d'une diminution sensible de ces teneurs par rapport aux teneurs normales dans les plantes, soit dans le sens d'une augmentation de ces teneurs. Un autre but de la présente invention est de fournir les outils pour la mise en oeuvre d'un tel procédé, et plus particulièrement des constructions utilisables pour la transformation de plantes. Un autre but de la présente invention est de fournir des plantes transformées génétiquement, notamment des plantes fourragères susceptibles d'être mieux digérées que les plantes non transformées, ou encore des plantes ou arbres transformés pour la production de la pâte à papier, et dont l'extraction des lignines serait facilitée et moins polluante que dans le cas d'arbres non transformés. Un autre but de la présente invention est celui de fournir des plantes transformées davantage résistantes à des attaques de l'environnement, notamment à des attaques parasitaires, que ne le sont les plantes non transformées, ou encore des plantes transformées de plus grande taille, ou de taille plus réduite (que celle des plantes non transformées). La présente invention a pour objet toute séquence d'ADN, caractérisée en ce qu'elle comprend à titre de région codante: - tout ou partie de la séquence nucléotidique représentée par SEQ ID NO 1, codant pour un ARN messager (ARNm), cet ARNm codant lui-même pour la cinnamoyl CoA réductase (CCR) représentée par SEQ ID NO 2, ou - tout ou partie de toute séquence nucléotidique dérivée de la séquence représentée par SEQ ID NO 1 susmentionnée, notamment par mutation et/ou addition, et/ou suppression, et/ou substitution d'un ou plusieurs nucléotides, cette séquence dérivée codant pour un ARNm codant lui-même pour la CCR représentée par SEQ ID NO 2, ou pour une protéine dérivée de cette dernière et présentant une activité enzymatique équivalente à celle de ladite CCR chez les plantes. Par protéine présentant une activité enzymatique équivalente à celle de la CCR représentée par SEQ ID NO 2, on entend toute protéine possédant une activité CCR, telle que mesurée selon la méthode de Luderitz et Grisebach publiée dans Eur. J. Biochem. (1981), 119: 115-127. A titre d'illustration, cette méthode est réalisée par mesure spectrophotométrique de l'activité réductrice de la protéine (CCR ou dérivée), en suivant la disparition des cinnamoyl CoA à 366 nm. La réaction se déroule à 30"C, pendant 2 à 10 minutes. La composition du milieu réactionnel est la suivante: tampon phosphate 100 mM, pH 6.25, 0,1 mM NADPH, 70 M Feruloyl CoA, 5 à 100 ;l d'extrait enzymatique dans un volume total de 500 yl. L'invention a également pour objet toute séquence d'ADN, caractérisée en ce qu'elle comprend à titre de région codante: - tout ou partie de la séquence nucléotidique complémentaire de celle représentée par SEQ ID NO 1, cette séquence complémentaire codant pour un ARNm antisens susceptible de s 'hybrider avec l'ARNm codé par la séquence représentée par SEQ ID NO 1, ou codé par une séquence dérivée de cette dernière, telle que définie ci-dessus, ou - tout ou partie de toute séquence nucléotidique dérivée de la séquence complémentaire susmentionnée, notamment par mutation et/ou addition, et/ou suppression, et/ou substitution d'un ou plusieurs nucléotides, cette séquence dérivée codant pour un ARNm antisens susceptible de s'hybrider avec 1' ARNm codé par la séquence représentée par SEQ ID NO 1, ou codé par une séquence dérivée de cette dernière, telle que définie ci-dessus. Il va de soi que la séquence représentée par SEQ ID NO 1, ainsi que la séquence complémentaire de cette dernière, mentionnées ci-dessus, doivent être prises en considération comme étant représentées dans le sens 5' Ainsi, le premier nucléotide de la susdite séquence complémentaire dans le sens 5' o 3', est le complément du dernier nucléotide de la séquence dans le sens 5' o 3' codant pour une CCR, le second nucléotide de cette séquence complémentaire est le complément de l'avant-dernier nucléotide de la séquence codant pour une CCR, et ainsi de suite, jusqu'au dernier nucléotide de ladite séquence complémentaire qui est le complément du premier nucléotide de la séquence codant pour une CCR. L'ARNm codé par la séquence complémentaire susmentionnée est tel que, lorsque cet ARNm est représenté dans le sens 5' o 3', son premier nucléotide correspond au dernier nucléotide de la séquence codant pour une CCR, et donc s'hybride avec le dernier nucléotide de l'ARNm codé par cette dernière, tandis que son dernier nucléotide correspond au premier nucléotide de la séquence codant pour une CCR, et donc s'hybride avec le premier nucléotide de l'ARNm codé par cette dernière. Ainsi, on entend par ARNm antisens dans ce qui précède et ce qui suit, tout ARNm codé par la susdite séquence complémentaire et représenté dans le sens inverse (3' o 5') du sens dans lequel est représenté 1' ARNm codé par la séquence codant pour une CCR, ce dernier ARNm étant encore désigné ARNm sens (5' o 3'). Le terme d'ARN antisens s'adresse donc à une séquence d'ARN complémentaire de la séquence en bases de l'ARN messager: complémentaire dans le sens que chaque base (ou une majorité de bases) de la séquence antisens (lue dans le sens 3' o 5') est capable de s'apparier avec les bases correspondantes (G avec C, A avec U) de l'ARN messager (séquence lue dans le sens 5' o 3'). La stratégie des ARN antisens, dans le cadre de la présente invention, est une approche moléculaire particulièrement adaptée à l'objectif d'une modulation des taux de lignines des plantes. L'ARN antisens est un ARN produit par la transcription du brin d'ADN non codant (brin non-sens). Cette stratégie antisens est plus particulièrement décrite dans le brevet européen n" 240 208. On pense que l'inhibition de la synthèse d'une protéine selon la stratégie antisens, en l'occurrence de la CCR dans le cas présent, est la conséquence de la formation d'un duplex entre les deux ARN complémentaires (sens et antisens) empêchant ainsi la production de la protéine. Le mécanisme cependant reste obscur. Le complexe ARN-ARN peut interférer soit avec une transcription ultérieure, soit avec la maturation, le transport ou la traduction ou bien encore conduire à une dégradation de l'ARNm. Une combinaison de ces effets est également possible. L'invention concerne également tout ARNm codé par la séquence nucléotidique représentée par SEQ ID NO 1, ou codé par une séquence dérivée de cette dernière, telle que définie ci-dessus, ledit ARNm étant susceptible de coder à son tour pour tout ou partie d'une CCR chez les plantes, et plus particulièrement pour tout ou partie de la CCR représentée par SEQ ID NO 2, présente chez l'Eucalyptus. L'invention a également pour objet tout ARNm antisens, tel que défini cidessus, caractérisé en ce qu'il comprend des nucléotides complémentaires de la totalité ou d'une partie seulement des nucléotides constituant un ARNm codé par la séquence SEQ ID NO 1, ou par une séquence dérivée de cette dernière, ledit ARNm antisens étant susceptible de s'hybrider (ou de s'apparier avec ce dernier). A ce titre, l'invention vise plus particulièrement les ARNm antisens codés par des séquences d'ADN selon l'invention, comprenant au moins une région de 50 bases homologues à celles d'une région de la séquence complémentaire de SEQ ID NO 1 susmentionnée. Il n'y a pas de limite supérieure de taille pour les séquences d'ADN codant pour un ARN antisens selon l'invention; elles peuvent être aussi longues que celles du messager normalement produit dans les cellules, voire aussi longues que la séquence d'ADN génomique codant pour l'ARNm de la CCR. Avantageusement, de telles séquences d'ADN codant pour un ARN antisens selon l'invention, comprennent entre environ 100 et environ 1000 paires de bases. L'invention a plus particulièrement pour objet tout ARNm antisens, tel que décrit ci-dessus, caractérisé en ce qu'il est codé par la séquence nucléotidique complémentaire de celle représentée par SEQ ID NO 1, ledit ARNm antisens étant susceptible de s 'hybrider avec l'ARNm codé par la séquence d'ADN représentée par SEQ ID NO 1. L'invention concerne également les polypeptides recombinants codés par la séquence représentée par SEQ ID NO 1, ou par une séquence dérivée de cette dernière selon l'invention. Par l'expression "polypeptides recombinants", on doit entendre toute molécule possédant une chaîne polypeptidique susceptible d'être produite par génie génétique, par l'intermédiaire d'une phase de transcription de l'ADN du gène correspondant, ce qui conduit à l'obtention d'ARN qui est par la suite transformé en ARNm (par suppression des introns), ce dernier étant ensuite traduit par les ribosomes, sous forme de protéines, le tout étant effectué sous contrôle d'éléments de régulation appropriés à l'intérieur d'une cellule hôte. Par conséquent, l'expression "polypeptides recombinants" utilisée n'exclut pas la possibilité que lesdits polypeptides comprennent d'autres groupements, tels que les groupements glycosylés. Bien entendu, le terme "recombinant" indique que le polypeptide a été produit par génie génétique, car il résulte de l'expression, dans un hôte cellulaire approprié, de la séquence nucléotidique correspondante qui a été auparavant introduite dans un vecteur d'expression utilisé pour transformer ledit hôte cellulaire. Toutefois, ce terme "recombinant" n'exclut pas la possibilité que le polypeptide soit produit par un procédé différent, par exemple par synthèse chimique classique selon les méthodes connues utilisées pour la synthèse de protéines, ou par clivage protéolytique de molécules de plus grande taille. L'invention concerne plus particulièrement la CCR présente dans les cellules d'Eucalyptus et telle que représentée par SEQ ID NO 2, ou toute protéine dérivée de cette dernière, notamment par addition, et/ou suppression, et/ou substitution d'un ou plusieurs acides aminés, ou tout fragment issu de ladite CCR ou d'une séquence dérivée, lesdits fragments et séquences dérivées étant susceptibles de posséder une activité enzymatique équivalente à celle de la CCR susmentionnée. L'invention a également pour objet toute séquence nucléotidique codant pour la CCR représentée par SEQ ID NO 2, ou toute séquence dérivée ou fragment de cette dernière, tels que définis ci-dessus, ladite séquence nucléotidique étant caractérisée en ce qu'elle correspond à tout ou partie de la séquence représentée par SEQ ID NO 1, ou à toute séquence dérivée de cette dernière par dégénérescence du code génétique, et étant néanmoins susceptible de coder pour la CCR ou séquence dérivée ou fragment de cette dernière, tels que définis ci-dessus. L'invention vise également les complexes formés entre les ARNm antisens, tels que décrits ci-dessus, et les ARNm selon l'invention, susceptibles de coder pour tout ou partie d'une CCR chez les plantes. L'invention a plus particulièrement pour objet le complexe formé entre l'ARNm codé par la séquence SEQ ID NO 1, et l'ARNm antisens codé par la séquence complémentaire de la séquence SEQ ID NO 1. L'invention a également pour objet tout ADN recombinant, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une séquence d'ADN selon l'invention, choisie parmi celles décrites ci-dessus, ladite séquence d'ADN étant insérée dans une séquence hétérologue. L'invention concerne plus particulièrement tout ADN recombinant tel que décrit ci-dessus, comprenant, à titre de région codante, tout ou partie de la séquence nucléotidique représentée par SEQ ID NO 1, ou tout ou partie d'une séquence nucléotidique dérivée de cette dernière, telle que définie ci-dessus, lesdites séquences nucléotidiques étant insérées dans une séquence hétérologue, et étant susceptibles de coder pour la CCR représentée par SEQ ID NO 2, ou pour une protéine dérivée de cette dernière, telle que définie ci-dessus. L'invention concerne plus particulièrement encore, tout ADN recombinant comprenant, à titre de région codante, une séquence nucléotidique complémentaire de celle représentée par SEQ ID NO 1, ou toute séquence nucléotidique dérivée de cette séquence complémentaire, telle que définie cidessus, lesdites séquences étant insérées dans une séquence hétérologue, et étant susceptibles de coder pour un ARNm capable de s'hybrider avec tout ou partie de 1' ARNm codant pour une CCR chez les plantes, et plus particulièrement avec tout ou partie de l'ARNm codant pour la CCR représentée par SEQ ID NO 2. Les ADN recombinants selon 1' invention sont davantage caractérisés en ce qu'ils comprennent les éléments nécessaires pour réguler l'expression de la séquence nucléotidique codant pour une CCR, ou de sa séquence complémentaire codant pour un ARNm antisens selon l'invention, notamment un promoteur et un terminateur de la transcription de ces séquences. Parmi les différents promoteurs susceptibles d'être utilisés dans les constructions d'ADN recombinants selon l'invention, on peut citer: - le promoteur endogène contrôlant l'expression de la CCR chez une plante, notamment le promoteur situé en amont de la séquence représentée par SEQ ID NO 1 chez l'Eucalyptus, ou - des promoteurs de type constitutif à forte expression, exemples: 35S CAMV (décrit dans Benfey et al. (1990), EMBO J., 9 (6), 1677-1684), EFla (promoteur du gène d'un facteur d'élongation dans la synthèse protéique décrit par Curie et al. (1991), Nucl. Acids Res., 19, 1305-1310), - des promoteurs de type spécifique à expression particulière dans des tissus individuels, exemples: promoteur CAD (décrit par Feuillet C. (1993), Thèse de l'Université de Toulouse III), promoteur GRP 1-8 (décrit par Keller et Baumgartner, (1991), Plant Cell., 3, 1051-1061) à expression dans des tissus vasculaires spécifiques. L'invention concerne également tout ADN recombinant tel que décrit cidessus, et comprenant également à titre de région codante au moins une séquence nucléotidique codant pour tout ou partie d'un ARNm codant lui-même pour une autre enzyme que la CCR, qui se trouve être impliquée dans une étape de la biosynthèse des lignines chez les plantes, notamment i' ARNm codant pour l'alcool cinnamylique deshydrogénase (CAD), ou comprenant également à titre de région codante au moins une séquence nucléotidique codant pour tout ou partie d'un ARNm antisens susceptible de s'hybrider avec l'ARNm susmentionné, notamment avec l'ARNm codant pour la CAD. Les ADN recombinants susmentionnés de l'invention sont avantageusement obtenus à partir de vecteurs dans lesquels sont insérées les séquences d'ADN codant pour une enzyme nécessaire à la biosynthèse des lignines chez les plantes. A ce titre, l'invention a plus particulièrement pour objet le vecteur dénommé pEUCCR, comprenant la séquence représentée par SEQ ID NO 1 clonée dans le vecteur Bluescript, et déposé en culture dans des cellules de E. coli DH5a à la Collection Nationale de Culture de Micro-organismes (CNCM) de l'Institut Pasteur à Paris (France), le 17 mars 1994 sous le n" I-1405. Les vecteurs susmentionnés sont digérés à l'aide d'enzymes de restriction appropriées afin de récupérer lesdites séquences d'ADN qui s'y trouvent insérées. Ces dernières sont ensuite insérées en aval d'un promoteur approprié, et en amont d'un terminateur approprié de l'expression, au sein des ADN recombinants selon l'invention. L'invention vise plus particulièrement les ADN recombinants comprenant la séquence représentée par SEQ ID NO 1, codant pour 1 'ARNm codant luimême pour la CCR représentée par SEQ ID NO 2, tels qu'obtenus par digestion du vecteur pEUCCR susmentionné, récupération de la séquence d'ADN de l'invention et insertion de cette dernière dans le sens 5' o 3', au sein d'une séquence d'ADN hétérologue comprenant un promoteur et un terminateur de l'expression de ladite séquence. L'invention a également plus particulièrement pour objet les ADN recombinants comprenant la séquence complémentaire de la séquence SEQ ID NO 1, codant pour un ARNm antisens capable de s'hybrider avec l'ARNm codant pour la CCR représentée par SEQ ID NO 2, tels qu'obtenus par digestion du vecteur pEUCCR susmentionné, récupération de la séquence d'ADN de l'invention, et insertion de cette dernière en sens inverse, c'est-à-dire dans le sens 3' o 5', au sein d'une séquence d'ADN hétérologue comprenant un promoteur et un terminateur de l'expression de la séquence complémentaire. A titre d'exemple de terminateur utilisable dans de telles constructions, on peut citer l'extrémité 3' du gène de la nopaline synthase d'Agrobacterium tumefaciens. Ainsi, d'une manière générale, les ADN recombinants selon l'invention, contenant une séquence d'ADN codant pour une CCR, et/ou d'autres enzymes nécessaires à la biosynthèse des lignines, sont obtenus par récupération de ladite séquence d'ADN à partir des vecteurs susmentionnés, et insertion de cette séquence dans la séquence hétérologue, tandis que les ADN recombinants contenant une séquence d'ADN codant pour un ARNm antisens selon l'invention, sont obtenus par récupération de la séquence d'ADN susmentionnée et insertion en sens inverse de cette dernière dans ladite séquence hétérologue. A titre d'illustration, on peut utiliser tout ou partie du cDNA représenté par SEQ ID NO 1, pour la construction des ADN recombinants susmentionnés, ou bien tout ou partie du clone génomique correspondant à la CCR (qui correspond au cDNA susmentionné + d'éventuels introns). Ce clone génomique peut être obtenu en utilisant le cDNA comme sonde pour cribler une banque génomique, cette dernière étant elle-même obtenue suivant la méthode décrite par Sambrook, Fritsch et Maniatis, Molecular Cloning Laboratory Manual, Cold Spring Harbour Laboratory Press, 1989. L'invention a également pour objet tout vecteur recombinant, utilisable pour la transformation de plantes, caractérisé en ce qu'il comprend un ADN recombinant choisi parmi ceux décrits dessus, selon l'invention, intégré dans l'un des sites de son génome non essentiels pour sa réplication. Parmi les vecteurs recombinants susmentionnés utilisables pour la transformation de plantes, on peut citer: les vecteurs binaires dérivés de pBIN 19 (Bevan et al., (1984), Nucl. Acids Res., 12 (22), 8711-8721). Des exemples de construction de vecteurs recombinants selon l'invention sont décrits dans la description détaillée qui suit de l'invention. La présente invention a également pour objet un procédé de régulation de la biosynthèse des lignines chez les plantes, soit par diminution, soit par augmentation des quantités de lignines produites, par rapport aux quantités normales de lignines produites chez ces plantes, ledit procédé comprenant une étape de transformation de cellules de ces plantes à l'aide d'un vecteur tel que décrit dessus. L'invention a plus particulièrement pour objet un procédé de diminution de la quantité de lignines produites par biosynthèse chez les plantes, ce procédé étant effectué par transformation du génome de ces plantes, en y incorporant: - au moins une séquence d'ADN telle que décrite ci-dessus, codant pour tout ou partie d'un ARNm antisens susceptible de s'hybrider avec tout ou partie de l'ARNm codant pour la CCR représentée par SEQ ID NO 2, ou pour une protéine dérivée de cette dernière telle que définie ci-dessus, - et, le cas échéant, au moins une séquence d'ADN codant pour tout ou partie d'un ARNm antisens capable de s'hybrider à un ARNm codant pour une autre enzyme que la CCR, qui se trouve être impliquée dans une étape de la biosynthèse des lignines chez les plantes, notamment 1 'ARNm codant pour la CAD, ladite transformation étant réalisée: - soit à l'aide d'un vecteur recombinant tel que décrit ci-dessus, contenant une séquence d'ADN codant pour un ARNm antisens capable de s'hybrider avec l'ARNm codant pour la CCR ou pour une protéine dérivée, telle que définie ci-dessus, et, le cas échéant, contenant une ou plusieurs séquence(s) d'ADN codant pour un ARNm antisens capable de s'hybrider à un ARNm codant pour une autre enzyme que la CCR telle que définie ci-dessus, - soit à l'aide de plusieurs vecteurs recombinants dont l'un au moins contient une séquence d'ADN codant pour un ARNm antisens capable de s'hybrider avec l'ARNm codant pour la CCR ou pour une protéine dérivée, telle que définie ci-dessus, tandis que 1' (ou les) autre(s) vecteur(s) recombinant(s) contien(nen)t une séquence d'ADN codant pour un ARNm antisens capable de s'hybrider à un ARNm codant pour une autre enzyme que la CCR, telle que définie ci-dessus. Un autre procédé de diminution de la quantité de lignines produites par biosynthèse chez les plantes, est celui réalisé par transformation du génome de ces plantes, en y incorporant: - au moins une séquence d'ADN correspondant à la séquence représentée par SEQ ID NO 1, ou à une séquence dérivée de cette dernière, telle que définie ci-dessus, ou à une (ou plusieurs) partie(s) des séquences susmentionnées, - et, le cas échéant, au moins une séquence d'ADN codant pour tout ou partie d'une autre enzyme que la CCR, qui se trouve être impliquée dans une étape de la biosynthèse des lignines chez les plantes, notamment une séquence d'ADN codant pour tout ou partie de la CAD, ladite transformation étant réalisée: - soit à l'aide d'un v cas échéant, contenant une ou plusieurs séquence(s) d'ADN codant pour tout ou partie d'une enzyme autre que la CCR, telle que définie ci-dessus, - soit à l'aide de plusieurs vecteurs recombinants dont l'un au moins contient une séquence correspondant à la séquence représentée par SEQ ID NO 1, ou à une séquence dérivée de cette dernière, telle que définie cidessus, ou à une (ou plusieurs) partie(s) des séquences susmentionnées, tandis que 1' (ou les) autre(s) vecteur(s) recombinant(s) contien(nen)t une séquence d'ADN codant pour tout ou partie d'une enzyme autre que la CCR, telle que définie ci-dessus. Cette dernière méthode fait appel au mécanisme de co-suppression. La cosuppression a été observée quand des copies du gène endogène ont été introduites dans le génome. Bien que le mécanisme de la co-suppression soit actuellement inconnu, une des hypothèses les plus fréquemment retenue est que la régulation négative de l'expression du gène viendrait de la production d'une faible proportion d'ARN anti-sens dérivée d'un transgène à travers une lecture du "mauvais" brin du transgène (Grierson et al., Trends Biotech., 9: 122-123). I1 est important de noter que les méthodes susmentionnées permettent d'aboutir à des plantes transformées présentant des niveaux différents de réduction de l'activité CCR (selon le niveau d'insertion de la séquence d'ADN codant pour l'ARNm antisens, le nombre de copies de cette séquence d'ADN intégrée dans le génome...), et donc des teneurs en lignines. Le choix des transformants permettra donc une modulation contrôlée des teneurs en lignines compatible avec un développement normal de la plante. D'une manière générale, si l'on considère que la teneur moyenne normale en lignines d'une plante varie entre environ 15% et environ 35% en poids de matière sèche, la réduction de la teneur en lignines résultant de la mise en oeuvre d'un des procédés susmentionnés, est avantageusement telle que les plantes ainsi transformées présentent une teneur moyenne en lignines variant entre environ 10% et environ 30%. A titre d'illustration, la teneur en lignines d'une plante peut être mesurée selon une variante de la méthode de Johnson et al., (1961), T.A.P.P.I., 44, 793798, qui est décrite en détail dans Alibert et Boudet (1979), Physiol., Veg., 17 (1), 67-74, et dont les principales étapes sont les suivantes: après obtention d'une poudre alcool benzène contenant les lignines du matériel végétal, les lignines sont solubilisées par le bromure d'acétyle et dosées en fonction de leur absorption dans l'ultraviolet. L'invention vise plus particulièrement l'application des procédés susmentionnés de diminution des teneurs en lignines dans les plantes, à l'obtention de plantes fourragères transformées génétiquement, présentant des teneurs en lignines réduites par rapport aux teneurs normales en lignines chez ces plantes, et dont la digestibilité se trouve être ainsi améliorée par rapport à ces mêmes plantes non transformées. Parmi les principales plantes fourragères susceptibles d'être transformées dans le cadre de la présente invention, on peut citer: la luzerne, la fétuque, le maïs destiné à l'ensilage, etc... L'invention concerne également l'application des procédés susmentionnés de diminution des teneurs en lignines chez les plantes, à l'obtention de plantes, et plus particulièrement d'arbres, transformés génétiquement, présentant des teneurs en lignines réduites par rapport aux teneurs normales en lignines chez ces plantes, ces plantes ou arbres étant particulièrement avantageux à utiliser dans le cadre de la production de la pâte à papier. Un troisième domaine potentiel d'application des procédés susmentionnés de régulation négative de l'expression du gène de la CCR, concerne la stimulation de la croissance des plantes transformées. Divers arguments soulignent (Sauter et Kende, 1992, Plant and Cell Physiology, 33 (8):1089), qu'une lignification précoce et rapide est une frein au grandissement cellulaire et donc à la croissance des végétaux. Ainsi la mise en oeuvre des procédés susmentionnés est susceptible de permettre pour les plantes ainsi transformées à lignification réduite une meilleure croissance et donc de meilleurs rendements. L'invention concerne également un procédé d'augmentation de la quantité de lignines produites par biosynthèse chez les plantes, ce procédé étant effectué par transformation du génome de ces plantes, en y incorporant: - au moins une séquence d'ADN correspondant à la séquence représentée par SEQ ID NO 1, ou à une séquence dérivée selon l'invention, codant pour la CCR représentée par SEQ ID NO 2, ou une protéine dérivée, telle que définie ci-dessus. - et, le cas échéant, au moins une séquence d'ADN codant pour une autre enzyme que la CCR, qui se trouve être impliquée dans une étape de la biosynthèse des lignines chez les plantes, notamment une séquence d'ADN codant pour la CAD, ladite transformation étant réalisée: - soit à l'aide d'un vecteur recombinant tel que décrit ci-dessus, contenant la séquence d'ADN susmentionnée correspondant à la séquence représentée par SEQ ID NO 1, ou à une séquence dérivée de cette dernière, telle que définie cidessus, et, le cas échéant, contenant une ou plusieurs séquence(s) d'ADN codant pour un enzyme autre que la CCR, telle que définie ci-dessus, - soit à l'aide de plusieurs vecteurs recombinants dont l'un au moins contient une séquence correspondant à la séquence représentée par SEQ ID NO 1, ou à une séquence dérivée de cette dernière, tandis que l' (ou les) autre(s) vecteur(s) recombinant(s) contien(nen)t une séquence d'ADN codant pour une enzyme autre que la CCR, telle que définie ci-dessus. D'une manière générale, toujours si l'on considère que la teneur moyenne normale en lignines d'une plante varie entre environ 15% et environ 35% en poids de matière sèche, l'augmentation de la teneur en lignines résultant de la mise en oeuvre du procédé susmentionné, est avantageusement telle que les plantes ainsi transformées présentent une teneur moyenne en lignines variant entre environ 20% et environ 40%. L'invention vise plus particulièrement l'application du procédé susmentionné d'augmentation des teneurs en lignines dans les plantes (encore désigné procédé de surexpression du gène de la CCR), à l'obtention de plantes transformées génétiquement, présentant des teneurs en lignines augmentées par rapport aux teneurs normales en lignines chez ces plantes, et dont les propriétés de résistance à des attaques de l'environnement, notamment à des attaques parasitaires, se trouvent être ainsi améliorées par rapport à ces mêmes plantes non transformées. Il est particulièrement avantageux dans ce dernier cas, d'utiliser en association avec le gène CCR, ou une séquence dérivée, dans les vecteurs susmentionnés, des promoteurs spécifiques particulièrement exprimés dans les tissus de surface et/ou en réponse à la blessure. Par ailleurs, l'invention concerne également l'application du procédé susmentionné de surexpresion du gène de la CCR, à l'amélioration de la croissance des plantes ainsi transformées génétiquement, notamment dans certains domaines tels que l'horticulture ou l'arboriculture, où il est souhaitable d'obtenir des plantes de dimension réduite. Dans les deux cas de régulation négative ou de surexpression de la CCR, il est tout à fait envisageable que la modulation de cette activité se répercute sur la teneur en lignines des plantes transformées. En effet, la CCR dont le niveau d'activité est très bas dans la plante, semble constituer l'enzyme régulatrice de la synthèse des lignines. S'agissant des techniques de transformation utilisées pour la mise en oeuvre d'un des procédés décrits ci-dessus de l'invention, on aura avantageusement recours aux techniques suivantes A) La technologie de transformation par l'intermédiaire du plasmide Ti d'Agrobacterium tumefaciens décrite par Bevan (1984) Nucleic Acid Research, 12: 8711-8721. Elle fait appel essentiellement à la méthode de coculture, et fait intervenir une co-transformation avec un gène de sélection pour pouvoir repérer les transformants. Elle est particulièrement applicable aux dicotylédones, ex.: tabac, luzerne, colza. B) La technique de transfert direct de gènes par biolistique décrite en détail par (Zumbrum et al., 1989, Technique 1, 204-216; Sanford et al., 1991, Technique 3, 3-16). Cette technique implique l'association de l'ADN recombinant selon l'invention à des microparticules d'or ou de tungstène qui sont propulsées à l'aide d'un canon à particules sur le tissu à transformer. Elle sera particulièrement appliquée à la transformation d'espèces réfractaires aux Agrobactéries. Dans les deux cas susmentionnés, la vérification de la présence de i 'ADN recombinant selon l'invention sera réalisée par des expériences d'hybridation de type southern et d'amplification génique (polymerase chain reaction), à l'aide se sondes et d'amorces oligonucléotidiques issues notamment de la séquence SEQ ID NO 1. L'invention concerne également les cellules de plantes tranformées par un vecteur selon l'invention, notamment par les techniques décrites ci-dessus, et comprenant une séquence d'ADN selon l'invention intégrée de façon stable dans leur génome. L'invention vise également les plantes transformées telles qu'obtenues par culture des cellules transformées susmentionnées. Les plantes transformées peuvent être ensuite propagées par voie sexuelle ou par voie végétative in vitro ou in natura. L'invention a également pour objet les fragments de plantes, notamment fruits, semences, pollen, transformés par incorporation dans leur génome d'une séquence d'ADN selon l'invention, à l'aide des vecteurs recombinants susmentionnés. L'invention sera davantage détaillée dans la description qui suit de l'obtention de la CCR sous forme purifiée chez l'Eucalyptus, et de l'ADNc codant pour ladite CCR. I Purification de la CCR d'Eucalyptus. La CCR a fait l'objet d'un nombre très restreint d'études. Parmi les quelques publications la concernant, on peut citer: Wengenmayer H., Ebel J., Grisebach H., 1976 - Enzymatic synthesis of lignin precursors, purification and properties of a cinnamoyl CoA: NaDPH reductase from cell suspension cultures from soybean (Glycine max), Eur. J. Biochem., 65: 529-536. Luderitz T., Grisebach H., 1981 - Enzymatic synthesis of lignin precursors, comparison of cinnamoyl: CoA reductase and cinnamyl alcohol dehydrogenase: NADP dehydrogenase from spruce (Picea abies L.) and soybean(Gtydne,naxL.), Eur. J. Biochem., 119: 115-127. Sarni F., Grand C., Boudet A.M., 1984 - Purification and properties of cinnimoyl: CoA reductase and cinnamyl alcohol dehydrogenase from poplar stems (Populus x euramericana). Eur. J. Biochem., 139: 259-265. Le travail décrit ci-après a contribué à définir un protocole de purification original, simple et rapide de la CCR d'Eucalyptus. Ce protocole est également plus efficace que ceux décrits précédemment dans la littérature. En effet, il a permis pour la première fois, l'obtention de quantités d'enzyme purifiée à homogénéité, suffisantes pour obtenir des séquences peptidiques internes et conduire à terme au clonage du cDNA correspondant. Toutes les étapes de purification de la CCR ont été réalisées à 4"C. 1. Obtention d'un extrait brut de xyleme d'Eucalyptus. Le matériel végétal a été obtenu par "grattage" d'une fraction tissulaire enrichie en xylème de branches d'Eucalyptus gunnii âgés de 5 ans. 300 g de xylème préalablement congelé dans l'azote liquide ont été réduits en poudre à l'aide d'un moulin à café. Le broyat ainsi obtenu a été homogénéisé dans un litre de tampon d'extraction (100 mM Tris-HCl pH 7.6, 2% PEG 6000, 5 mM DTT, 2% PVPP), filtré sur deux épaisseurs de Miracloth, et amené à 30% de la saturation en sulfate d'ammonium. Après une centrifugation de 30 minutes à 15000xg, le culot obtenu est remis en suspension dans 60 ml de tampon 1 [20 mM Tris-HCl pH 7.5, 5 mM DTT (dithiothreitol), 5% éthylène glycol]. L'extrait ainsi obtenu est "clarifié" par une centrifugation de 15 min à 10 000xg, puis dessalé par passage sur une Sephadex G25 équilibrée dans le tampon 1. 2. Chromatographie d'affinité sur Red Sepharose. L'extrait brut dessalé est déposé sur une colonne d'affinité "Red Sepharose" (1.5 x 19 cm, Pharmacia), équilibrée dans le tampon 1. Après un premier rinçage de la colonne par 50 ml de tampon 1, les protéines sont éluées par un gradient linéaire de Tris de 20 mM à 1.5 M Tris-HCl pH7.5, contenant 5 mM DTT, 5% éthylène glycol. Le volume total du gradient est de 200 ml et le débit de 36 ml/h. les fractions présentant une activité CCR sont regroupées et dessalées par passage sur une colonne de Séphadex G25, équilibrée dans le tampon 1. 3. Chromatographie d ' échange d'anions sur MonoQ. Les fractions ainsi regroupées et dessalées sont chromatographiées sur une colonne d'échange d'anions MonoQ (HR 5/5, Pharmacia). L'élution des protéines est effectuée par l'application d'un gradient linéaire de 20 à 300 mM en Tris-HCl pH 7.5, contenant 5% d'éthylène glycol et 5 mM DTT. Le volume total du gradient est de 50 ml et le débit de 1 ml/min. Comme à l'étape précédente, les fractions contenant l'enzyme CCR active sont regroupées et dessalées, mais dans ce cas le tampon d'équilibration des colonnes de Sephadex G25 est un tampon phosphate 20 mM pH 7.6, contenant 5 mM DTT (tampon 2). 4. Chromatograpine d'affimte sur "Mimetlc Red". Le "pool" de fractions CCR ainsi obtenu est déposé sur une colonne Mimetic Red 2 A6XL (ACL, Cambridge). La colonne est préalablement lavée avec 30 ml de tampon 2 contenant 8 mM NAD. Ce lavage a pour but d'éliminer des enzymes fonctionnant spécifiquement avec le NAD comme cofacteur, telle que la malate deshydrogénase qui copurifie avec la CCR dans les étapes précédentes. L'élution spécifique de la CCR est obtenue par application d'un gradient (15 ml) de NADP 0-8 mM dans le tampon 2. Les fractions contenant la CCR pure et active sont conservées à -80 C après addition d'un stabilisateur (éthylène glycol à la concentration finale de 5 %). L'enzyme purifiée ainsi obtenue présente une activité spécifique de 451 nKat/mg de protéine, en utilisant le feruloyl CoA comme substrat. Le rendement obtenu (36 yg de protéine pure pour 300 g de matériel végétal de départ) ne reflète pas la proportion de CCR in planta, en effet dans un souci majeur d'éliminer le maximum de contaminants à chaque étape de purification, seules les fractions présentant une très forte activité CCR sont traitées par l'étape suivante. Le facteur de purification obtenu par ce protocole est de 282. II Caractérisation de la CCR. La CCR d'Eucalyptus est un monomère de 38kD comme en témoignent les résultats convergents obtenus pour la taille de l'enzyme native par chromatographie d'exclusion sur Superose 6 (Pharmacia), et pour la taille de la sous-unité monomère sur gel d'électrophorèse dénaturant. Le point isoélectrique, estimé par chromatographie sur MonoP (Pharmacia) est proche de 7. La recherche du pH et du tampon optimum fait ressortir que la mesure de l'activité CCR telle qu'elle a été initialement décrite (Luderitz et Grisebach, 1981), est parfaitement adaptée à la mesure de l'activité CCR d'Eucalyptus (tampon phosphate 100 mM, pH 6.25). La pureté de la CCR, présente à l'état d'une bande unique sur gel d'électrophorèse monodimensionnelle (SDS PAGE) a été confirmée par l'obtention d'un seul "spot" après électrophorèse bidimensionnelle et coloration à l'argent. III Obtention du cDNA codant pour la CCR d'Eucalyptus Afin de s'affranchir d'un éventuel problème de contamination résiduelle non détectable, l'enzyme pure a été soumise à une électrophorèse préparative en conditions semi-dénaturantes et digérée in situ dans le gel. La digestion a été réalisée à l'aide d'endolysine C qui coupe spécifiquement les protéines après les résidus lysine, permettant 1' obtention de peptides relativement longs. Les peptides résultant de la digestion ont été séparés en phase reverse sur HPLC et certains d'entre eux ont été séquencés à l'aide d'un microséquenceur de protéines (Applied Biosystems 470). Les séquences de ces peptides internes figurent cidessous: peptide 8 (a) Asn-Trp-Tyr-Cys-Tyr-Gly-Lys (b) His-Leu-Pro-Val-Pro-X-Pro-Pro-Glu-Asp-Ser-Val-Arg X représentant tout acide aminé peptide 10 Thr-Tyr-Ala-Asn-Ser-Val-Gln-Ala-Tyr-Val-His-Val-Lys peptide 13 Gly-Cys-Asp-Gly-Val-Val-H is-Thr-Ala-Ser-Pro-Val-Thr-Asp-Asp peptide 17 Leu-Arg-Asp-Leu-Gly-Leu-Glu-Phe-Thr-Pro-Val-Lys peptide 18 Gly-Asp-Leu-Met-Asp-Tyr-Gly-Ser-Leu-Glu-Glu-Ala-Ile-Lys Le cDNA codant pour la CCR a été obtenu par oligoscreening d'une banque de cDNA construite dans le phage X ZAPII (vecteur commercialement disponible, Stratagène) à partir de messagers extraits de xylème d'Eucalyptus gunnii. 600 000 phages ont été criblés à l'aide d'un pool d'oligonucléotides dégénérés marqués à l'extrémité 3' au phosphore 32, à l'aide d'une terminal transferase. Les séquences des oligonucléotides utilisés pour le criblage ont été déterminées à partir des séquences peptidiques internes susmentionnées. Ces peptides ayant été générés par coupure à l'endolysine C, une lysine a été rajoutée en première position pour permettre l'élaboration d'oligonucléotides à moindre dégénérescence. En effet, cet acide aminé qui ne peut être codé que par deux codons, fait partie des acides aminés dont le code est le moins dégénéré et par conséquent convient tout à fait à l'élaboration d'oligonucléotides à partir de séquences peptidiques. Les séquences des oligonucléotides utilisés pour le criblage de la banque de cDNA d'Eucalyptus dérivées des acides aminés soulignés (I = inosine), sont indiquées ci-après: peptide 8 (a) Lvs-Asn-Trp-Tyr-Cys-Tyr-Gly-Lys oligonucléotide 8 AA(A/G)AA(C/T)TGGTA(C/T)TG(C/T)TA(T/C)GGIAA peptide 13 Lys-Gly-Cys-Asp-Gly-Val-Val-His-Thr-Ala-Ser-Pro-Val-Thr-Asp-Asp oligonucléotide 13 AA(G/A)GGITG(C/T)GA(C/T)GGIGTIGTICA peptide 17 Lys-Leu-Arg-Asp-Leu-Gly-Leu-Glu-Phe-Thr-Pro-Val-Lys oligonucléotide 17 GA(G/A)TT(C/T)ACICCIGTIAA peptide 18 Lys-Gly-Asp-Leu-Met-Asp-Tyr-Gly-Ser-Leu-Glu-Glu-Ala-Ile-Lys oligonucléotide 18 AA(G/A)GGIGA(C/T)(C/T)TIATGGA(C/T)TA(C/T)GG Les conditions d'hybridation utilisées pour le screening sont les suivantes: la préhybridation est effectuée pendant 6 à 7 heures dans du 5XSSPE, 0.25% poudre de lait écrémé, 0.05% SDS (sodium dodecyl sulfate) à 42"C. L'hybridation est réalisée dans cette même solution, en présence des 4 oligonucléotides marqués en 3' au ddATPa32P, pendant 24 heures à 42"C. Au terme de ces 24 heures d'hybridation, les filtres sont lavés trois fois pendant 15 minutes dans du 2XSSC, 0.1 % SDS puis mis en contact avec un film autoradiographique pendant 24 heures à -80 C. Les phages hybridant avec le pool d'oligonucléotides ont été purifiés par 2 tours supplémentaires de screening ("plaque purification"). Une fois purifiés, les six clones positifs ont été testés avec chacun des oligonucléotides pris indépendamment. Un phage a réagi positivement avec les 4 oligonucléotides, il a été traité de manière à "exciser" le plasmide Bluescript recombinant en suivant les indications du fabricant (Stratagène). La carte de restriction de l'insert (codant pour la CCR) contenu dans ce plasmide est schématisée sur la figure 1. w Caractérisation et identification du cDNA de la CCR La séquence en acides aminés (représentée par SEQ ID NO 2) déduite de la séquence nucléotidique (représentée par SEQ ID NO 1) code pour une protéine de 335 acides aminés dont le poids moléculaire est de 36,7 kD et le point isoélectrique d'environ 6.7. Ces résultats concordent bien avec les données biochimiques obtenues à partir de la protéine purifiée. Il est important de souligner que toutes les séquences peptidiques obtenues à partir de la CCR purifiée sont retrouvées dans la séquence peptidique déduite de la séquence nucléotidique du cDNA. Des recherches d'homologies avec des clones déjà existants ont été effectuées en utilisant les programmes BLAST et FASTA dans toutes les banques protéiques et nucléiques disponibles. Une homologie significative a été trouvée avec une autre réductase du métabolisme des composés phénoliques, la dihydroflavonol réductase (DFR). L'identité est d'environ 40% et la similarité proche de 20% entre la séquence peptidique déduite du cDNA de la CCR et les séquences des diverses dihydroflavonol réductase répertoriées dans les banques, ce qui confirme que le clone identifié est différent d'un clone codant pour une DFR. V Production de CCR recombinante active dans E. Coli. Pour aller plus loin dans l'identification du cDNA de la CCR, la protéine recombinante a été produite dans E. Coli et son activité enzymatique a été recherchée. Les détails expérimentaux de cette approche sont décrits ci-après. 1- Introduction du cDNA dans le vecteur d'expression pT7-7. Afin de pouvoir cloner le cDNA dans le vecteur d'expression pT7-7 (disponible commercialement), sous le contrôle du promoteur de la T7 polymérase, nous avons du introduire un site Ndel à l'ATG du cDNA. Ceci a été réalisé à l'aide d'une Taq polymérase lors d'une réaction d'amplification génique par PCR (Polymerase Chain reaction) entre un oligonucléotide muté et un primer commercial, T7, situé sur Bluescript en aval de l'extrémité 3' du cDNA. Le produit d'amplification obtenu est digéré par Kpnl, ce site est ensuite réparé à l'aide du fragment klenow de la DNA polymérase I avant de soumettre le fragment à une digestion par Ndel, puis le fragment obtenu comportant un site Ndel en 5' et une extrémité franche en 3' est insérée à l'aide d'une T4 DNA ligase dans le vecteur pT7-7 préalablement ouvert par Ndel et Smal. La séquence de 1' oligonucléotide muté susmentionné est indiquée ci-après. Les bases soulignées et en italiques ont été modifiées par rapport à la séquence initiale permettant la création d'un site Ndel (CATATG): 5 'GGCAATCCCCATATGCCCGTCGACGC3 ' 2. Surexpression de CCR dans E. Coli BL21 La construction ainsi obtenue est introduite dans la souche E. Coli BL21 (disponible commercialement) qui porte sur son chromosome le gène de la T7 polymérase sous contrôle du promoteur lac UV5, promoteur inductible par l'IPTG. La culture recombinante est cultivée à 37"C jusqu'à obtention d'une DO mesurée de 1 à 600 nm, puis la production de la CCR est induite par l'ajout d'IPTG (0.25% final) dans le milieu de culture. Des prélèvements sont réalisés à différents temps après induction et les cellules sont lysées selon le protocole décrit par Grima-Pettenati et al. (1993). Après centrifugation le surnageant contenant les protéines solubles, est utilisé pour mesurer l'activité CCR et pour visualiser la production de CCR après électrophorèse en conditions dénaturantes. Sur la figure 2, on note l'apparition d'un polypeptide d'environ 38 kD dont l'intensité croit avec le temps post-induction et qui n'existe pas dans les témoins négatifs (souche BL21 contenant seulement le vecteur pT7-7 sans insert). De plus, la preuve finale de l'identité du clone CCR est apporté par la mesure d'une activité CCR (environ 7 nKat/ml de culture après 3h d'induction à 37"C) dans les extraits protéiques provenant des souches BL21 contenant le pT7-7 + cDNA CCR, seulement. Légendes des figures: Figure 1: carte de restriction du cDNA codant pour la CCR d'Eucalyptus. Figure 2: révélation au bleu de Coomassie d'un gel d'électrophorèse en conditions dénaturantes (SDS-PAGE) d'extraits protéiques totaux de E. Coli BL21 contenant le vecteur pT7-7 sans insert (piste 6 au temps 0 de l'induction par l'IPTG; 7, 3 heures après induction) et le vecteur pT7-7 contenant le cDNA de la CCR (pistes 1, 2, 3, 4, 5, respectivement, temps 0 de l'induction, 30 min, 1, 2, 3 heures après induction), la flèche désigne le monomère CCR. Figure 3: représentation schématique du plasmide pEUCCR contenant la séquence représentée par SEQ ID NO 1 (et identifiée par CCR dans le plasmide pEUCCR). Figure 4: représentation schématique de la construction d'un vecteur contenant une séquence d'ADN codant pour la CCR selon l'invention (ou vecteur CCR sens). Figure 5: représentation schématique de la construction d'un vecteur contenant une séquence d'ADN codant pour un ARN antisens susceptible de s'hybrider avec l'ARNm codant pour la CCR selon l'invention (ou vecteur CCR antisens). Concernant 1 'ADN "source servant a la construction d'un vecteur antlsens (ou sens) L'ARN antisens dérive préférentiellement de la séquence contenue dans le clone pEUCCR. Cette séquence peut être obtenue de différentes manières: 1) en coupant avec des enzymes de restriction appropriées la séquence d'ADN (cDNA) de la CCR contenue dans pEUCCR, 2) en réalisant une amplification génique (PCR) à l'aide d'oligonucléotides définis de manière à synthétiser le fragment d'ADN souhaité. Le fragment d'ADN ainsi obtenu est cloné dans un vecteur d'expression des plantes en aval d'un promoteur et en amont d'un terminateur. Le clonage est réalisé de telle façon que le fragment d'ADN est inséré en orientation inverse par rapport au promoteur. Dans ce nouveau vecteur, le brin qui était initialement le brin matrice devient le brin codant et vice versa. Le nouveau vecteur code pour un ARN dont la séquence est complémentaire de la séquence de 1 'ARN messager déduit de la séquence contenue dans pEUCCR. Ainsi les 2 ARN sont complémentaires de par leur séquence mais aussi de par leur orientation (5'-3'). Comme source d'ADN pour la transcription de 1 'ARN antisens il est pratique d'utiliser un clone de cDNA tel que celui contenu dans pEUCCR. Exemple de clonage (cf. figure 5) Le cDNA de la CCR est obtenu par une double digestion (BamHI et KpnI) à partir du vecteur pEUCCR. Le fragment d'ADN ainsi libéré est séparé physiquement du vecteur de clonage par une électrophorèse en gel d'Agarose (Bluescript). La partie de gel renfermant ce fragment d'ADN est découpée et traitée de façon à obtenir I' ADN purifié (plusieurs méthodes peuvent être utilisées dont la "Low melting Agarose", décrite dans Sambrook et al. susmentionné, le Gene Clean, dont le kit est disponible commercialement). Le fragment portant les extrémités BamHI et KpnI est "ligué" avec un vecteur d'expression de plantes préalablement digéré par ces mêmes enzymes choisies de façon à ce que le cDNA soit inséré en orientation inverse par rapport au promoteur 35C Le brin qui sera transcrit dans les plantes sera dans ce cas le brin non codant. Exemple de clonage sens (cf. figure 4) Dans ce cas, il n'existe pas de sites de restriction "pratiques" pour réaliser une fusion traductionnelle avec le promoteur 35S du vecteur d'expression. De nouveaux sites plus commodes ont été insérés à l'aide de la technique d'amplification génique (PCR). Deux oligonucléotides ont été définis en 5' et 3' du cDNA auxquels ont été ajoutées les séquences des sites reconnus par KpnI et BamHI (NB.: ce sont les mêmes sites qui ont été utilisés pour le clonage antisens susmentionné, mais positionnés différemment par rapport à l'orientation 5'-3'). L'amplification génique conduit à l'obtention d'un fragment contenant la totalité de LISTE DE SEQUENCES (1) INFORMATION GENERALE: (i) DEPOSANT: (A) NOM: CENTRE NATIONAL DE LA RECHERCHE SCIENTIFIQUE (B) RUE: 3, rue Michel-Ange (C) VILLE: PARIS 75016 (E) PAYS: FRANCE (F) CODE POSTAL: F-75016 (ii) TITRE DE L' INVENTION: SEQUENCE D'ADN CODANT POUR LA CINNAMOYL CoA REDUCTASE CHEZ L'EUCALYPTUS, ET SES APPLICATIONS DANS LE DOMAINE DE LA REGULATION DU TAUX DE LIGNINE CHEZ LES PLANTES (iii) NOMBRE DE SEQUENCES: 2 (iv) FORME LISIBLE PAR ORDINATEUR: (A) TYPE DE SUPPORT: Floppy disk (B) ORDINATEUR: IBM PC compatible (C) SYSTEME D' EXPLOITATION: PC-DOS/MS-DOS (D) LOGICIEL: PatentIn Release #1.0, Version #1.25 (OEB) (2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO: 1: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 1297 paires de bases (B) TYPE: acide nucléique (C) NOMBRE DE BRINS: double (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADNc pour ARNm (ix) CARACTERISTIQUE ADDITIONELLE: (A) NOM/CLE: CDS (B) EMPLACEMENT: 136..1140 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 1: CGGCCGGGAC GACCCGTTCC TCTTCTTCCG GGTCACCGTC ACCATGTTAC ACAACATCTC 60 CGGCTAAAAA AAAAAGGAAA AAAAGCGCAA CCTCCACCTC CTGAACCCCT CTCCCCCCTC 120 GCCGGCAATC CCACC ATG CCC GTC GAC GCC CTC CCC GGT TCC GGC CAG ACC 171 Met Pro Val Asp Ala Leu Pro Gly Ser Gly Gln Thr 1 5 10 GTC TGC GTC ACC GGC GCC GGC GGG TTC ATC GCC TCC TGG ATT GTC AAG 219 Val Cys Val Thr Gly Ala Gly Gly Phe Ile Ala Ser Trp Ile Val Lys 15 20 25 CTT CTC CTC GAG CGA GGC TAC ACC GTG CGA GGA ACC GTC AGG AAC CCA 267 Leu Leu Leu Glu Arg Gly Tyr Thr Val Arg Gly Thr Val Arg Asn Pro 30 35 40 GAC GAC CCG AAG AAT GGT CAT CTG AGA GAT CTG GAA GGA GCC AGC GAG 315 Asp Asp Pro Lys Asn Gly His Leu Arg Asp Leu Glu Gly Ala Ser Glu 45 50 55 60 AGG CTG ACG CTG TAC AAG GGT GAT CTG ATG GAC GAC GGG AGC TTG GAA 363 Arg Leu Thr Leu Tyr Lys Gly Asp Leu Met Asp Asp Gly Ser Leu Glu 65 70 75 GAA GCC ATC AAG GGG TGC GAC GGC GTC GTC CAC ACC GCC TCT CCG GTC 411 Glu Ala Ile Lys Gly Cys Asp Gly Val Val His Thr Ala Ser Pro Val 80 85 90 ACC GAC GAT CCT GAG CAA ATG GTG GAG CCA GCG GTG ATC GGG ACG AAA 459 Thr Asp Asp Pro Glu Gln Met Val Glu Pro Ala Val Ile Gly Thr Lys 95 100 105 AAT GTG ATC GTC GCA GCG GCG GAG GCC AAG GTC CGG CGG GTT GTG TTC 507 Asn Val Ile Val Ala Ala Ala Glu Ala Lys Val Arg Arg Val Val Phe 110 115 120 ACC TCC TCC ATC GGT GCA GTC ACC ATG GAC CCC AAC CGG GCA GAC GTT 555 Thr Ser Ser Ile Gly Ala Val Thr Met Asp Pro Asn Arg Ala Asp Val 125 130 135 140 GTG GTG GAC GAG TCT TGT TGG AGC GAC CTC GAA TTT TGC AAG AGC ACT 603 Val Val Asp Glu Ser Cys Trp Ser Asp Leu Glu Phe Cys Lys Ser Thr 145 150 155 AAG AAC TGG TAT TGC TAC GGC AAG GCA GTG GCG GAG AAG GCC GCT TGG 651 Lys Asn Trp Tyr Cys Tyr Gly Lys Ala Val Ala Glu Lys Ala Ala Trp 160 165 170 CCA GAG GGC AAG GAG AGA GGG GTT GAC CTC GTG GTG ATT AAC CCT GTG 699 Pro Glu Gly Lys Glu Arg Gly Val Asp Leu Val Val Ile Asn Pro Val 175 180 185 CTC GTG CTT GGA CCG CTC CTT CAG TCG ACG ATC AAT GCG AGC ATC ATC 747 Leu Val Leu Gly Pro Leu Leu Gln Ser Thr Ile Asn Ala Ser Ile Ile 190 195 200 CAC ATC CTC AAG TAC TTG ACT GGC TCA GCC AAG ACC TAC GCC AAC TCG 795 His Ile Leu Lys Tyr Leu Thr Gly Ser Ala Lys Thr Tyr Ala Asn Ser 205 210 215 220 GTC CAG GCG TAC GTG CAC GTC AAG GAC GTC GCG CTT GCC CAC GTC CTT 843 Val Gln Ala Tyr Val His Val Lys Asp Val Ala Leu Ala His Val Leu 225 230 235 GTC TTG GAG ACC CCA TCC GCC TCA GGC CGC TAT TTG TGC GCC GAG AGC 891 Val Leu Glu Thr Pro Ser Ala Ser Gly Arg Tyr Leu Cys Ala Glu Ser 240 245 250 GTC CTC CAC CGT GGC GAT GTG GTG GAA ATC CTT GCC AAG TTC TTC CCT 939 Val Leu His Arg Gly Asp Val Val Glu Ile Leu Ala Lys Phe Phe Pro 255 260 265 GAG TAT AAT GTA CCG ACC AAG TGC TCT GAT GAG GTG AAC CCA AGA GTA 987 Glu Tyr Asn Val Pro Thr Lys Cys Ser Asp Glu Val Asn Pro Arg Val 270 275 280 AAA CCA TAC AAG TTC TCC AAC CAG AAG CTG AGA GAC TTG GGG CTC GAG 1035 Lys Pro Tyr Lys Phe Ser Asn Gln Lys Leu Arg Asp Leu Gly Leu Glu 285 290 295 300 TTC ACC CCG GTG AAG CAG TGC CTG TAC GAA ACT GTC AAG AGC TTG CAG 1083 Phe Thr Pro Val Lys Gln Cys Leu Tyr Glu Thr Val Lys Ser Leu Gln 305 310 315 GAG AAA GGC CAC CTA CCA GTC CCC TCC CCG CCG GAA GAT TCG GTG CGT 1131 Glu Lys Gly His Leu Pro Val Pro Ser Pro Pro Glu Asp Ser Val Arg 320 325 330 ATT CAG GGA TGATCTTAGA TCCATCACGG TGCGCATTTG TAATCCGGAG 1180 Ile Gln Gly 335 AAATGAGAGA AACATGTGGG AATTTGTTTG TACTTTTCTA AGTCAAACCT GGAGATACCA 1240 ACCCTGAGTT CTGCATTGGA ATGGAAGTTG TCAATTGTTC CAAAAAAAAA AAAAAAA 1297 (2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO: 2: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 335 acides aminés (B) TYPE: acide aminé (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: protéine (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 2: Met Pro Val Asp Ala Leu Pro Gly Ser Gly Gln Thr Val Cys Val Thr 1 5 10 15 Gly Ala Gly Gly Phe Ile Ala Ser Trp Ile Val Lys Leu Leu Leu Glu 20 25 30 Arg Gly Tyr Thr Val Arg Gly Thr Val Arg Asn Pro Asp Asp Pro Lys 35 40 45 Asn Gly His Leu Arg Asp Leu Glu Gly Ala Ser Glu Arg Leu Thr Leu 50 55 60 Tyr Lys Gly Asp Leu Met Asp Asp Gly Ser Leu Glu Glu Ala Ile Lys 65 70 75 80 Gly Cys Asp Gly Val Val His Thr Ala Ser Pro Val Thr Asp Asp Pro 85 90 95 Glu Gln Met Val Glu Pro Ala Val Ile Gly Thr Lys Asn Val Ile Val 100 105 110 Ala Ala Ala Glu Ala Lys Val Arg Arg Val Val Phe Thr Ser Ser Ile 115 120 125 Gly Ala Val Thr Met Asp Pro Asn Arg Ala Asp Val Val Val Asp Glu 130 135 140 Ser Cys Trp Ser Asp Leu Glu Phe Cys Lys Ser Thr Lys Asn Trp Tyr 145 150 155 160 Cys Tyr Gly Lys Ala Val Ala Glu Lys Ala Ala Trp Pro Glu Gly Lys 165 170 175 Glu Arg Gly Val Asp Leu Val Val Ile Asn Pro Val Leu Val Leu Gly 180 185 190 Pro Leu Leu Gln Ser Thr Ile Asn Ala Ser Ile Ile His Ile Leu Lys 195 200 205 Tyr Leu Thr Gly Ser Ala Lys Thr Tyr Ala Asn Ser Val Gln Ala Tyr 210 215 220 Val His Val Lys Asp Val Ala Leu Ala His Val Leu Val Leu Glu Thr 225 230 235 240 Pro Ser Ala Ser Gly Arg Tyr Leu Cys Ala Glu Ser Val Leu His Arg 245 250 255 Gly Asp Val Val Glu Ile Leu Ala Lys Phe Phe Pro Glu Tyr Asn Val 260 265 270 Pro Thr Lys Cys Ser Asp Glu Val Asn Pro Arg Val Lys Pro Tyr Lys 275 280 285 Phe Ser Asn Gln Lys Leu Arg Asp Leu Gly Leu Glu Phe Thr Pro Val 290 295 300 Lys Gln Cys Leu Tyr Glu Thr Val Lys Ser Leu Gln Glu Lys Gly His 305 310 315 320 Leu Pro Val Pro Ser Pro Pro Glu Asp Ser Val Arg Ile Gln Gly 325 330 335 REVENDICATIONS 1. Séquence d'ADN, caractérisée en ce qu'elle comprend à titre de région codante: - tout ou partie de la séquence nucléotidique représentée par SEQ ID NO 1, codant pour un ARN messager (ARNm), cet ARNm codant lui-même pour la cinnamoyl CoA réductase (CCR) représentée par SEQ ID NO 2, ou - tout ou partie de toute séquence nucléotidique dérivée de la séquence représentée par SEQ ID NO 1 susmentionnée, notamment par mutation et/ou addition, et/ou suppression, et/ou substitution d'un ou plusieurs nucléotides, cette séquence dérivée codant pour un ARNm codant lui-même pour la CCR représentée par SEQ ID NO 2, ou pour une protéine dérivée de cette dernière et présentant une activité enzymatique équivalente à celle de ladite CCR chez les plantes. 2. Séquence d'ADN, caractérisée en ce qu'elle comprend à titre de région codante: - tout ou partie de la séquence nucléotidique complémentaire de celle représentée par SEQ ID NO 1 telle que définie dans la revendication 1, cette séquence complémentaire codant pour un ARNm antisens susceptible de s'hybrider avec un ARNm selon la revendication 1, ou - tout ou partie de toute séquence d'ADN dérivée de la séquence complémentaire susmentionnée, notamment par mutation et/ou addition, et/ou suppression, et/ou substitution d'un ou plusieurs nucléotides, cette séquence dérivée codant pour un ARNm antisens susceptible de s'hybrider avec un ARNm selon la revendication 1. 3. ARNm codé par une séquence d'ADN selon la revendication 1, et plus particulièrement codé par la séquence d'ADN représentée par SEQ ID NO 1, ledit ARNm étant susceptible de coder à son tour pour tout ou partie de la CCR présente chez l'Eucalyptus, telle que représentée par SEQ ID NO 2, ou pour tout ou partie d'une protéine dérivée de cette dernière et présentant une activité équivalente à celle de la CCR chez les plantes. 4. ARNm antisens, caractérisé en ce qu'il comprend des nucléotides complémentaires de la totalité ou d'une partie seulement des nucléotides constituant un ARNm selon la revendication 3, et en ce qu'il est susceptible de s'hybrider avec ce dernier. 5. ARNm antisens selon la revendication 4, caractérisé en ce qu'il est codé par une séquence d'ADN selon la revendication 2, et en ce qu'il est susceptible de s'hybrider avec l'ARNm codé par la séquence d'ADN représentée par SEQ ID NO 1 selon la revendication 1. 6. CCR telle que présente dans les cellules d'Eucalyptus et telle que représentée par SEQ ID NO 2, ou toute protéine dérivée de cette dernière, notamment par addition, et/ou suppression, et/ou substitution d'un ou plusieurs acides aminés, ou tout fragment issu de ladite CCR ou séquence dérivée, lesdits fragments et séquences dérivées étant susceptible de posséder une activité enzymatique équivalente à celle de la CCR. 7. Séquence nucléotidique codant pour la CCR représentée par SEQ ID NO 2, ou toute séquence dérivée ou fragment de cette dernière, selon la revendication 6, ladite séquence nucléotidique étant caractérisée en ce qu'elle correspond à tout ou partie de la séquence représentée par SEQ ID NO 1, ou à toute séquence dérivée de cette dernière par dégénérescence du code génétique, et étant néanmoins susceptible de coder pour la CCR ou séquence dérivée ou fragment de cette dernière, tels que définis dans la revendication 6. 8. Complexe formé entre un ARNm antisens selon la revendication 4 ou 5, et un ARNm selon la revendication 3, susceptible de coder pour une CCR chez les plantes. 9. ADN recombinant, caractérisé en ce qu'il comprend une séquence d'ADN selon la revendication 1, susceptible de coder pour un ARNm lui-même susceptible de coder pour une CCR chez les plantes, ladite séquence selon la revendication 1 étant insérée dans une séquence hétérologue. 10. ADN recombinant, caractérisé en ce qu il comprend une séquence d'ADN complémentaire d'une séquence d'ADN selon la revendication 1, insérée dans une séquence hétérologue, ladite séquence d'ADN complémentaire codant pour un ARNm antisens susceptible de s'hybrider avec l'ARNm codant pour une CCR chez les plantes. 11. ADN recombinant selon la revendication 9 ou la revendication 10, caractérisé en ce qu'il comprend les éléments nécessaires pour réguler l'expression de la séquence nucléotidique selon la revendication 1, ou de sa séquence complémentaire selon la revendication 2, notamment un promoteur et un terminateur de la transcription de ces séquences. 12. ADN recombinant selon l'une des revendications 9 à 11, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une séquence d'ADN codant pour tout ou partie d'une autre enzyme que la CCR, qui se trouve être impliquée dans une étape de biosynthèse des lignines chez les plantes, notamment 1' ARNm codant lui-même pour l'alcool cinnamylique deshydrogénase (CAD), ou au moins une séquence codant pour tout ou partie de 1' ARNm antisens susceptible de s'hybrider avec l'ARNm susmentionné, notamment avec l'ARNm codant pour la CAD. 13. Vecteur recombinant caractérisé en ce qu'il comprend un ADN recombinant selon l'une des revendications 9 à 12, intégré dans l'un de ses sites de son génome non essentiels pour sa réplication. 14. Procédé de régulation de la biosynthèse de lignines chez les plantes, soit par diminution, soit par augmentation des teneurs en lignines produites, par rapport aux teneurs normales en lignines produites chez des plantes, ledit procédé comprenant une étape de transformation de cellules de ces plantes à l'aide d'un vecteur selon la revendication 13. 15. Procédé de diminution de la biosynthèse de lignine chez les plantes, et donc de diminution des teneurs en lignines produites par rapport aux teneurs normales en lignines produites chez les plantes, caractérisé en ce qu'il est effectué par transformation du génome de ces plantes, en y incorporant: - au moins une séquence d'ADN selon la revendication 1, codant pour tout ou partie d'un ARNm antisens susceptible de s'hybrider avec tout ou partie de l'ARNm codant pour la CCR représentée par SEQ ID NO 2, ou pour une protéine dérivée de cette dernière telle que définie dans la revendication 1, - et, le cas échéant, au moins une séquence d'ADN codant pour tout ou partie d'un ARNm antisens capable de s'hybrider à un ARNm codant pour une autre enzyme que la CCR, qui se trouve être impliquée dans une étape de la biosynthèse des lignines chez les plantes, notamment 1' ARNm codant pour la CAD, ladite transformation étant réalisée: - soit à l'aide d'un vecteur recombinant selon la revendication 13, contenant une séquence d'ADN codant pour un ARNm antisens capable de s'hybrider avec l'ARNm codant pour la CCR ou pour une protéine dérivée, telle que définie dessus, et, le cas échéant, contenant une ou plusieurs séquence(s) d'ADN codant pour un ARNm antisens capable de s'hybrider à un ARNm codant pour une autre enzyme que la CCR telle que définie dessus, - soit à l'aide de plusieurs vecteurs recombinants dont l'un au moins contient une séquence d'ADN codant pour un ARNm antisens capable de s'hybrider avec l'ARNm codant pour la CCR ou pour une protéine dérivée, telle que définie dessus, tandis que 1' (ou les) autre(s) vecteur(s) recombinant(s) contien(nen)t une séquence d'ADN codant pour un ARNm antisens capable de s'hybrider à un ARNm codant pour une autre enzyme que la CCR, telle que définie dessus. 16. Procédé de diminution de la biosynthèse de lignine chez les plantes, et donc de diminution des teneurs en lignines produites par rapport aux teneurs normales en lignines produites chez les plantes, caractérisé en ce qu'il est effectué par transformation du génome de ces plantes, en y incorporant: - au moins une séquence d'ADN selon la revendication 1, - et, le cas échéant, au moins une séquence d'ADN codant pour tout ou partie d'une autre enzyme que la CCR, qui se trouve être impliquée dans une étape de la biosynthèse des lignines chez les plantes, notamment une séquence d'ADN codant pour tout ou partie de la CAD, ladite transformation étant réalisée: - soit à l'aide d'un vecteur recombinant selon la revendication 13, contenant la séquence d'ADN susmentionnée selon la revendication 1, et, le cas échéant, contenant une ou plusieurs séquence(s) d'ADN codant pour tout ou partie d'une enzyme autre que la CCR, telle que définie dessus, - soit à l'aide de plusieurs vecteurs recombinants dont l'un au moins contient une séquence d'ADN selon la revendication 1, tandis que 1' (ou les) autre(s) vecteur(s) recombinant(s) contien(nen)t une séquence d'ADN codant pour tout ou partie d'une enzyme autre que la CCR, telle que définie dessus. 17. Procédé d'augmentation de la biosynthèse de lignine chez les plantes, et donc d'augmentation des teneurs en lignines produites par rapport aux teneurs normales en lignines produites chez les plantes, caractérisé en ce qu'il est effectué par transformation du génome de ces plantes, en y incorporant: - au moins une séquence d'ADN selon la revendication 1, correspondant à la séquence représentée par SEQ ID NO 1, ou à une séquence dérivée selon l'invention, codant pour la CCR représentée par SEQ ID NO 2, ou une protéine dérivée, telle que définie dans la revendication 1, - et, le cas échéant, au moins une séquence d'ADN codant pour une autre enzyme que la CCR, qui se trouve être impliquée dans une étape de la biosynthèse des lignines chez les plantes, notamment une séquence d'ADN codant pour la CAD, ladite transformation étant réalisée: - soit à l'aide d'un vecteur recombinant selon la revendication 13, contenant la séquence d'ADN susmentionnée correspondant à la séquence représentée par SEQ ID NO 1, ou à une séquence dérivée de cette dernière, telle que définie dessus, et, le cas échéant, contenant une ou plusieurs séquence(s) d'ADN codant pour un enzyme autre que la CCR, telle que définie dessus, - soit à l'aide de plusieurs vecteurs recombinants dont l'un au moins contient une séquence correspondant à la séquence représentée par SEQ ID NO 1, ou à une séquence dérivée de cette dernière, tandis que 1' (ou les) autre(s) vecteur(s) recombinant(s) contien(nen)t une séquence d'ADN codant pour une enzyme autre que la CCR, telle que définie dessus. 18. Plantes ou fragments de plantes, notamment cellules, fruits, semences, pollen, transformés par incorporation dans leur génome d'au moins une séquence nucléotidique selon la revendication 1 ou la revendication 2.