FR 2703927 A1 19941021 FR 9304332 A 19930413 La présente invention concerne essentiellement l'utilisation d'une réaction de transacylation avec formation de liaisons covalentes entre un polysaccharide estérifié et une polyamine pour former en milieu aqueux une membrane stable au moins en surface de particules gélifiées, les particules ainsi réalisées, leurs procédés de fabrication ainsi que les compositions en contenant. Plus précisément, la présente invention concerne essentiellement l'utilisation d'une réaction de transacylation entre d'une part un polysaccharide porteur de groupements carboxyliques estérifiés, et d'autre part une polyamine, pour former en milieu aqueux une membrane stable au moins en surface de particules gélifiées, les particules modifiées ainsi réalisées, les procédés utilisés pour former de telles particules modifiées, et les compositions contenant les particules ainsi obtenues, telles que compositions cosmétiques, pharmaceutiques, agroalimentaires, enzymatiques, biotechnologiques, d e réactifs ou de diagnostic. II est bien connu que l'on peut préparer très facilement des sphères par exemple à partir d'alginate de sodium, en utilisant la propriété que présentent les solutions d'alginate de gélifier en présence de cations tels que par exemple les ions calcium. Le matériau à encapsuler dans les sphères est tout d'abord dispersé dans la solution aqueuse d'alginate. Cette solution est ajoutée goutte à goutte à une solution aqueuse d'un sel de calcium. II y a gélification immédiate, qui produit des sphères d'alginate gélifié. La surface des sphères peut être ensuite stabilisée par immersion dans une solution d'un polymère polycationique tel que la poly-L-lysine ou la polyéthylèneimine (Lim, F., US Patent, 4, 352, 883, 1982).Il se forme une membrane en périphérie résultant de l'association ionique entre l'alginate et le polycation. Cette membrane laisse passer les petites molécules tout en retenant les grosses molécules et les cellules. Il est possible ensuite de liquéfier le gel interne en immergeant les sphères d'alginate stabilisées par le polymère polycationique, dans une solution de citrate, de manière à chélater le calcium dans les sphères (Lim, F., US Patent, 4, 352, 883, 1982). Le matériau incorporé reste alors enfermé à l'intérieur de la membrane. Ce procédé présente le grand avantage de s'effectuer entièrement en milieu aqueux et de conserver une excellente viabilité aux cellules vivantes encapsulées, qui peuvent se multiplier à l'intérieur de la capsule. Aussi est-il largement utilisé pour l'inclusion de microorganismes, de cellules et de tissus vivants. Ainsi des sphères d'alginate contenant des microorganismes sont utilisées pour réaliser des fermentations dans l'industrie alimentaire (fermentation des produits laitiers, de la bière, du champagne ). Ces techniques sont appliquées à des cellules ou organes végétaux ou animaux dans un but de cryoprotection ou de production de métabolites, à des cellules ou tissus animaux (îlots de Langerhans, hépatocytes....) pour implantation en médecine humaine ou vétérinaire.Des cellules sont également cultivées dans de telles sphères pour la production de substances biologiques telles que les anticorps monoclonaux élaborés par les hybridomes, qui s'accumulent dans les sphères et sont ainsi aisément récoltées après ouverture des membranes. Toutefois, le procédé présente des inconvénients liés à la nature de la membrane. Comme elle n'implique pas de liaisons covalentes mais uniquement des liaisons ioniques entre l'alginate et un polycation, elle est d'une stabilité limitée (Dupuy et al., J. Biomed. Mat. Res., 1988, 22, 10611070). Les polymères ont tendance à la longue à passer en solution. Par ailleurs, si la pression augmente à l'intérieur de la capsule sous l'effet de la multiplication cellulaire, la membrane ne peut résister à la pression et il y a relargage de cellules dans le milieu. II est donc souvent nécessaire d'appliquer successivement des couches alternées d'alginate puis de polycation ("sandwiches") pour obtenir une membrane solide, qui ne laisse pas diffuser le contenu (Wong H. and Chang T.M.S. Biomat. Art. Cells & BR Immob. Biotech., 1991, 19, 675-686). La présente invention a pour but de créer, en milieu aqueux, une membrane stable, impliquant des liaisons covalentes, au moins en surface de sphères individualisées par gélification d'un polysaccharide ou d'une polyamine en particulier par un cation mono ou polyvalent, comme par exemple par un sel de calcium. La présente invention a encore pour but de préparer des particules, stables, à partir de polyamines notamment de protéines, à température du laboratoire, en milieu aqueux, sans agent réticulant bifonctionnel, et renfermant soit une substance hydrosoluble, soit une mousse de bulles d'air, soit une substance insoluble dans l'eau, soit un matériau vivant tel que des cellules, des tissus ou des organes animaux ou végétaux, ou des graines ou des oeufs, ou des microorganismes, soit une phase hydrophobe, selon que l'on préparera au départ, soit une solution, soit une mousse, soit une suspension, soit une émulsion dans la solution gélifiable initiale. La présente invention a également pour but de préparer des particules stables, à partir de protéines, en limitant les altérations de leur structure, de manière à obtenir une biocompatibilité améliorée, et dans le cas où la protéine est douée d'une activité biologique spécifique, de manière à préserver cette activité. Le document Demande Française N"9210173 (1992) décrit l'utilisation d'une réaction de transacylation entre un ester polysaccharidique, tel que l'alginate de propylène glycol (PGA) et une substance polyaminée, telle qu'une diamine ou une protéine, pour fabriquer des microcapsules. La réaction de transacylation entre l'ester et la polyamine est déclenchée en milieu alcalin et produit une membrane formée d'un polysaccharide associé à une polyamine par des liaisons amide. Ce document décrit plusieurs procédés de préparation de microcapsules, tous mettant en jeu une étape d'émulsification, au cours de laquelle soit une phase aqueuse est dispersée dans une phase hydrophobe, soit une phase hydrophobe est dispersée dans une phase aqueuse. Dans tous les cas, les microcapsules s'individualisent à partir de l'émulsion initiale, par alcalinisation de l'émulsion. Si on tente d'appliquer directement cette réaction de transacylation à une suspension aqueuse de sphères formées d'un polysaccharide gélifiant sous forme gélifiée par un agent de gélification tel qu'un cation mono ou polyvalent, on ne parvient pas à créer unemembrane autour des sphères. Ainsi par exemple, si on prépare des sphères en ajoutant goutte à goutte une solution d'alginate de sodium à une solution aqueuse calcique1 si ensuite on disperse lesdites sphères dans une solution aqueuse renfermant un polysaccharide estérifié, tel que l'alginate de propylène glycol, et une protéine, et si enfin on alcalinise la suspension aqueuse de manière à déclencher la réaction de transacylation entre le polysaccharide estérifié et la protéine, on observe une prise en masse de la solution aqueuse dès que le pH est suffisamment élevé pour permettre la réaction. La présente invention a pour but d'utiliser la réaction de transacylation entre un polysaccharide estérifié et une polyamine pour fabriquer des particules sphériques entourées d'une membrane, en milieu strictement aqueux. La présente invention a encore pour but d'appliquer la réaction de transacylation entre un polysaccharide estérifié et une polyamine à des sphères formées d'un polysaccharide gélifiant ou d'une polyamine gélifiante sous forme gélifiée par un agent de gélification tel qu'un cation mono ou polyvalent, ou un triphosphate, ou une solution de pH > 6,2 selon la nature du composé gélifiant, de manière à fournir soit des sphères à membrane externe et contenu gélifié, soit des sphères à membrane externe et contenu liquide, soit des sphères constituées d'un gel rigidifié dans toute sa masse. La présente invention a encore pour but de résoudre les problèmes techniques ci-dessus énoncés, avec l'utilisation de procédés de fabrication simples, utilisables à l'échelle industrielle et permettant en outre de règler la taille des particules, en particulier dans une plage de dimension allant de quelques micromètres à 10 millimètres. Selon la présente invention, il a été découvert de manière parfaitement inattendue, que la création d'une membrane stable impliquant des liaisons covalentes, au moins en surface de sphères formées d'un polysaccharide gélifiant ou d'une polyamine gélifiante sous forme gélifiée par un agent de gélification, pouvait être réalisée de manière extrêmement simple par exemple par dissolution d'un polysaccharide estérifié et d'une polyamine dans la solution initiale d'un polysaccharide gélifiant tel que l'alginate de sodium. La solution obtenue est ajoutée sous forme de gouttes à un bain gélifiant tel que par exemple une solution d'un sel de calcique, de manière à individualiser les particules par gélification.Les particules sont lavées à l'eau puis redispersées dans l'eau. II suffit alors d'alcaliniser la suspension aqueuse pour déclencher immédiatement la réaction de transacylation entre le polysaccharide estérifié et la polyamine incorporés aux sphères. On peut aussi disperser directement les sphères dans une solution aqueuse alcaline, ou encore alcaliniser directement le bain de gélification après la formation des particules gélifiées. On constate alors qu'une membrane se forme au moins à la périphérie des sphères. Après réaction, la suspension est neutralisée au moyen d'un acide et les particules sont lavées à l'eau.On obtient alors des sphères formées du polysaccharide gélifiant sous forme gélifiée, entourées au moins en surface d'une membrane constituée d'une polyamine directement associée par des liaisons amide au polysaccharide porteur de carboxyles initialement estérifiés. II a été également découvert que l'on pouvait créer une membrane stable au moins en surface de sphères formées du polysaccharide gélifiant sous forme gélifiée, par exemple d'alginate gélifié par un cation polyvalent, tel que par exemple un sel de calcium, en incorporant seulement le polysaccharide estérifié à la solution initiale du polysaccharide gélifiant. Les sphères sont individualisées par gélification, par exemple au contact d'un sel de calcium, lavées, puis dispersées dans une solution aqueuse renfermant la polyamine. On déclenche alors la réaction par alcalinisation de la suspension. On peut aussi disperser directement les sphères dans une solution aqueuse alcaline de la polyamine1 ou encore ajouter directement la solution alcaline de polyamine au bain de gélification.Après réaction, on neutralise la suspension par addition d'un acide. II a été encore découvert que, dans le cas où le polysaccharide estérifié est lui-même capable de gélifier en présence de cations polyvalents, comme c'est le cas par exemple pour l'alginate de propylène-glycol ou les pectines au contact de sels de calcium, il est possible alors de ne pas ajouter de polysacharide gélifiant à la solution aqueuse initiale à gélifier contenant la polyamine et le polysaccharide estérifié. Le polysaccharide estérifié est alors employé à des concentrations plus élevées de manière à pouvoir jouer un double rôle dans cette variante: assurer la formation des sphères par gélification d'une part, intervenir dans la formation ultérieure de la membrane par transacylation lors de l'alcalinisation ultérieure de la suspension de sphères d'autre part. On a également découvert que le contenu gélifié des particules ainsi entourées d'une membrane selon les principes ci-dessus, pouvait être liquéfié par immersion dans une solution de citrate ou de phosphate. Après rinçage des particules, on obtient des sphères dont la membrane parfaitement visible emprisonne un contenu liquide. Enfin on a découvert que dans ces systèmes, on pouvait aisément contrôler l'épaisseur de la membrane par variations des conditions d'alcalinisation de la phase aqueuse au cours de l'étape de transacylation. La membrane est d'autant plus épaisse, et d'autant moins sensible à la lyse protéasique, que la quantité d'agent alcalin ajoutée à la suspension aqueuse de sphères à enrober, ou à la phase aqueuse utilisée pour leur dispersion ou encore au bain de gélification, est plus élevée. Les quantités d'acide à ajouter sont alors augmentées également, de manière à permettre la neutralisation de la suspension. Si l'alcalinisation est réalisée avec des quantités d'agent alcalin encore plus élevées, la réaction de transacylation concerne alors la totalité de la masse de la sphère dont le contenu est ainsi rigidifié et garde sa consistance solide même après traitement au citrate de sodium. C'est sur la base de cette découverte totalement inattendue pour l'homme de l'art, que la présente invention a été réalisée. L'invention représente un progrès déterminant pour l'homme de l'art, compte tenu de ce que les membranes des sphérules obtenues résultent de l'établissement de liaisons covalentes, liaisons amide, par la réaction de transacylation. Elles sont ainsi parfaitement stables. De plus, leur constitution ne fait intervenir que des substances biocompatibles. Elles pourront donc trouver de nombreuses applications dans divers domaines tels que la pharmacie, la cosmétique, le domaine biomédical, I'industrie alimentaire et les biotechnologies. En outre, la réaction de transacylation pouvant se limiter à la couche superficielle des sphères, le procédé permet l'incorporation de substances fragiles y compris des produits biologiques et des cellules, tissus ou organes vivants, ou encore de microorganismes, sans altération. Enfin, la possibilité de faire varier l'épaisseur de la membrane offre l'avantage de permettre un ajustement des propriétés de la membrane. Par exemple, si les sphères contiennent une substance active dans le domaine de la cosmétologie, on pourra choisir des conditions telles que la membrane présente une résistance mécanique faible, de sorte qu'elle se détruise lors de l'application sur la peau en libérant son contenu. Ou bien au contraire, on pourra choisir que la membrane résiste et joue le rôle de réservoir à libération prolongée permettant la difusion lente du contenu in situ. Dans ce cas, les variations d'épaisseur de la membrane permettront également de moduler la cinétique de diffusion du contenu dans le milieu extérieur. En outre, I'épaisseur de la membrane conditionnera sa sensibilité à la lyse enzymatique.C'est ainsi par exemple que l'on pourra préparer des capsules gastrorésistantes dont l'entérosolubilité sera modulable, ce qui permettra d'administrer par la voie orale des principes actifs susceptibles d'être dégradés par l'estomac ou des substances irritantes pour la muqueuse gastrique. Ces substances seront libérées plus ou moins rapidement dans l'intestin, selon que la membrane sera plus ou moins rapidement dégradée par les protéases intestinales. Enfin, les variations d'épaisseur des membranes et le choix de la protéine peuvent permettre d'obtenir des variations dans leur transparence. Selon les cas on pourra préparer des membranes complètement transparentes ou translucides ou opaques. Des membranes opaques pourront être préférées par exemple si le contenu est altérable à la lumière. Ainsi, selon un premier aspect, Ia présente invention a pour objet l'utilisation d'une réaction de transacylation avec formation de liaisons covalentes entre un poysaoeharide porteur de groupements carboxyliques estérifiés et une substance polyaminée pour la fabrication en milieu aqueux de particules, notamment billes, capsules ou sphères, comprenant au moins en surface une membrane formée par le produit de réaction selon la dite réaction de transacylation avec formation de liaison covalente entre ledit polysaoeharide estérifié et la dite polyamine, ledit polysaccharide estérifié et ladite polyamine étant plus particulièrement définis à partir de la description suivante dans son ensemble, ainsi que par les revendications.De préférence, ces particules contiennent un principe actif cosmétique, pharmaceutique, ou une substance d'intérêt agro-alimentaire, ou une protéine douée d'une activité biologique telle qu'une enzyme, une hormone, un anticorps ou l'hémoglobine, ou des particules insolubles telles que des particules de charbon actif, ou des cellules, tissus, embryons, matériel génétique ou organes vivants animaux ou végétaux, ou des oeufs ou des graines, ou des microorganismes tels que des bactéries ou des levures. Selon un deuxième aspect, la présente invention a également pour objet des particules, notamment billes, capsules ou sphères, caractérisées en ce qu'elles comprennent un polysaccharide estérifié et une polyamine, additionnés d'un polysaccharide gélifiable lorsque ni le polysaccharide estérifié ni la polyamine ne sont gélifiables dans les conditions opératoires choisies, ladite particule comprenant au moins en surface une membrance formée par le produit de la réaction de transacylation avec formation de liaisons covalentes entre le polysaccharide estérifié et ladite polyamine au sein d'un gel éventuellement liquifiable. Selon une variante de réalisation, le polysaccharide estérifié précité est un polysaccharide porteur de groupement carboxyliques estérifiés, -. en particulier un alginate de propylène glycol, une pectine, en particulier une pectine fortement méthylée, ou tout autre composé obtenu par estérification de carboxyles, de polysaccharides porteurs de carboxyles. Selon une autre variante de réalisation, la polyamine précitée comprend une protéine, un polypeptide, un polyaminoacide, un polysaccharide porteur de groupements aminés tels que le chitosan, une substance organique, aliphatique, alicyclique ou aromatique porteuse de plusieurs groupements aminés primaires ou secondaires, tels que ltéthylènediamine, la pentaméthylènediamine, l'hexaméthylènediamine, la pipérazine, la phénylènediamine. Selon autre variante de réalisation, le polysaccharide précité est un polysaccharide gélifiable, en particulier choisi parmi le groupe consistant d'un alginate, d'un carraghénane, en particulier le kappa-carraghénane, une pectine gélifiable, en particulier une pectine faiblement méthylée, le chitosan. Dautres variantes de réalisation sont mentionnées dans la description et les revendications. Selon une variante de réalisation, les particules présentent, à l'intérieur de la membrane, un contenu solide formé du constituant gélifiable sous forme gélifiée notamment par un cation mono ou polyvalent, tel qu'un sel de calcium, dans lequel est dissous ou dispersé le matériau encapsulé. Selon une autre variante de réalisation, les particules sont caractérisées en ce qu'elles présentent, à l'intérieur de la membrane, un contenu liquéfié, du fait d'un traitement ultérieur de liquéfaction du gel interne des sphères par exemple par le citrate ou le phosphate, pouvant contenir des substances en solution, suspension ou émulsion Selon une autre variante de réalisation, les particules sont caractérisées en ce qu'elles présentent à l'intérieur de la membrane un contenu liquide constitué d'un liquide hydrophobe, introduit dans les particules par coextrusion laminaire de la solution aqueuse à gélifier et du liquide hydrophobe à encapsuler. Avantageusement, les proportions de polysaccharide gélifiant par rapport au polysaccharide estérifié peuvent varier de 0 % à 300 % en poids. Les proportions de polysaccharide estérifié par rapport à la polyamine peuvent varier de 3 % à 500 % en poids. Selon un mode de réalisation particulièrement avantageux, ces particules, en particulier ces sphères ou capsules, contiennent un principe actif en particulier choisi parmi le groupe consistant d'un principe actif cosmétique, pharmaceutique, une substance d'intérêt agro-alimentaire, une substance intéressant le diagnostic ou les réactifs, une protéine douée d'une activité biologique telle qu'une enzyme, une hormone, un anticorps, ou l'hémoglobine, ou des particules insolubles telles que des particules de charbon actif, des cellules, tissus ou organes vivants du règne animal ou végétal, des embryons, des oeufs, du matériel génétique, des graines éventuellement additionnées de substances diverses, ou des microorganismes tels que des bactéries ou des levures. Selon un troisième aspect, la présente invention concerne un procédé de fabrication de particules, en particulier de billes, capsules ou sphères, caractérisé par les étapes successives suivantes: a) on prépare une solution aqueuse initiale contenant un polysaccharide estérifié et une polyamine, additionnés d'un polysaccharide gélifiable, lorsque ni le polysaccharide estérifié, ni la polyamine ne sont gélifiables dans les conditions opératoires choisies. b) On fait tomber des gouttes de cette solution dans une solution aqueuse formant bain de gélification, contenant un agent de gélification, de manière à individualiser des particules par gélification à l'aide dudit agent de gélification. c) On met ensuite en contact les particules gélifiées obtenues avec une solution aqueuse alcaline, de manière à déclencher la réaction de transacylation, au moins à la surface des particules gélifiées entre le polysaccharide estérifié et la polyamine contenus dans lesdites particules, pendant une période de temps prédéterminée, pour former une membrane au moins en surface desdites particules. d) On ajoute au mileu réactionnel un agent acide de manière à neutraliser et ainsi stabiliser les particules. En variante, on peut alcaliniser le bain de gélification, ou bien on sépare les particules du bain de gélification, on les lave à l'eau puis on les disperse dans une solution alcaline, ou bien on les disperse dans Liteau puis on alcalinise la suspension. Selon un quatrième aspect, la présente invention concerne un procédé de fabrication de particules caractérisé par les étapes successives suivantes: a) on prépare une solution aqueuse initiale contenant u n polysaccharide estérifié additionné d'un polysaccharide gélifiable lorsque le polysaccharide estérifié n'est pas gélifiable dans les conditions opératoires choisies. b) on fait tomber des gouttes de cette solution dans une solution aqueuse formant bain de gélification contenant un agent de gélification; de manière à individualiser des particules par gélification à I'aide dudit agent de gélification, c) on met en contact les particules gélifiées obtenues avec une solution aqueuse alcaline contenant une polyamine, de manière à déclencher une réaction dite de transacylation à la surface des particules gélifiées, entre le polysaccharide estérifié contenu dans lesdites particules et la polyamine, pendant une période de temps prédéterminée, pour former une membrane en surface desdites particules, d) on ajoute au milieu réactionnel n agent acide de manière à neutraliser et ainsi stabiliser les particules. Avantageusement, les procédés précités pourront utiliser, pour former les gouttes de solution gélifiable, tout moyen permettant d'individualiser des gouttes tel que par exemple une seringue munie d'une aiguille ou une pompe péristaltique équipée d'un tube muni d'une aiguille ou un système de dispersion par utilisation d'un pulvérisateur à air comprimé, ou encore en coupant mécaniquement à l'aide d'un vibreur un écoulement laminaire réalisé par extrusion à travers une buse. Selon un cinquième aspect, la présente invention fournit encore un procédé de fabrication de particules, en particulier billes, capsules ou sphères, pour l'encapsulation d'une phase liquide hydrophobe, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes successives suivantes: a) on prépare une solution aqueuse initiale contenant un polysaccahride estérifié et une polyamine, additionnés d'un polysaccharide gélifiable lorsque ni le polysaccharide estérifié, ni la polyamine ne sont gélifiables dans les conditions opératoires choisies. b) on réalise à travers une buse d'extrusion une coextrusion laminaire de la solution aqueuse et de la phase hydrophobe à encapsuler, tout en soumettant l'écoulement laminaire à des vibrations pour dissocier l'écoulement laminaire en gouttelettes individuelles c) on fait tomber les gouttelettes individuelles dans une solution aqueuse contenant un agent de gélification de manière à individualiser des particules par gélification à Itaide dudit agent de gélification. d) on met en contact les particules gélifiées obtenues avec une solution aqueuse alcaline de manière à déclencher la réaction de transacylation au moins à la surface des particules entre le polysaccharide estérifié et la protéine pendant une période de temps prédéterminée pour former une membrane au moins en surface desdites particules. e) on ajoute au milieu réactionnel un agent acide de manière à neutraliser et ainsi stabiliser les particules. Selon un sixième aspect, la présente invention fournit encore un procédé de fabrication de particules, en particulier billes, capsules ou sphères pour l'encapsulation d'un phase liquide hydrophobe, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes successives suivantes: a) on prépare une solution aqueuse renfermant un polysaccharide estérifié additionné d'un polysaccharide gélifiable lorsque le polysaccharide estérifié n'est pas gélifiable dans les conditions opératoires choisies. b) on réalise à travers une buse d'extrusion une coextrusion laminaire de la solution aqueuse et de la phase hydrophobe à encapsuler, tout en soumettant l'écoulement laminaire à des vibrations pour dissocier l'écoulement laminaire en gouttelettes individuelles c) on fait tomber les gouttelettes individuelles dans une solution aqueuse contenant un agent de gélification de manière à individualiser des particules par gélification. d) on met en contact les particules gélifiées avec une solution aqueuse alcaline contenant une polyamine de manière à déclencher la réaction de transacylation à la surface des particules entre le polysaccharide estérifié et la protéine, pendant une période de temps prédéterminée, pour former une membrane en surface des particules. e) on ajoute au milieu réactionnel un agent acide de manière à neutraliser et ainsi stabiliser les particules. Avantageusement, les procédés précités peuvent encore comprendre une étape complémentaire de séparation de particules par tout moyen approprié, notamment par décantation naturelle, après avoir effectué un ou plusieurs lavages. Selon une caractéristiques avantageuse du procédé de fabrication selon l'invention, les particules, une fois séparées du milieu réactionnel, peuvent être placées dans une solution d'agent liquéfiant en particulier de citrate ou de phosphate de sodium, de manière à liquéfier le gel interne. Les échanges entre le matériau encapsulé dans les particules et le milieu externe seront ainsi facilités. En outre, s'il s'agit d'un matériau biologique vivant, celui-ci pourra continuer à croître et se multiplier, à l'intérieur de la particule. Selon une autre caractéristique avantageuse du procédé de fabrication, les particules pourront être aisément produites dans des conditions d'asepsie, en opérant en atmosphère stérile et en utilisant des matières premières radiostérilisées. Selon une autre caractéristique avantageuse du procédé de fabrication, les particules une fois fabriquées pourront être stérilisées par radiostérilisation. Ainsi elles seront utilisables par exemple pour l'administration de principes actifs par voie parentérale, en médecine humaine ou vétérinaire. Selon une caractéristique avantageuse du procédé de fabrication, la polyamine est une protéine, de préférence choisie parmi les protéines hydrophiles ou traitées de manière à être rendue hydrophile, c'est-à-dire solubles dans l'eau ou dispersibles dans l'eau, contenant des groupements aminés libres. II n'est pas essentiel que les matières protéiques utilisées dans la réaction soient des protéines pures. Elles peuvent être utilisées sous la forme de mélanges naturels ou non contenant des protéines hydrophiles, comme par exemple le lait ou un concentré de protéines du lactosérum. Des exemples de protéines qui peuvent être utilisées dans l'invention et qui remplissent les conditions qui consistent à être hydrophiles ou bien qui peuvent être traitées pour être hydrophiles, sont les albumines comme la sérumalbumine, I'ovalbumine, I'aSpha-lactalbumine, des globulines, le fibrinogène, la caséine, des protéines végétales telles que les protéines du soja ou du blé, des gluténines qui de préférence auront été dégradées, des scléroprotéines solubilisées, le collagène, I'atélocollagène, les mélanges d'atélocollagène et de glycosaminoglycannes, la gélatine, les hydrolysats de gélatine, les peptones, I'hémoglobine, des enzymes telles que la catalase, la phosphatase alcaline1 des hormones, des anticorps tels que les anticorps monoclonaux. Comme exemples de mélanges contenant des protéineS-hydrophiles, on peut citer le lait entier ou écrémé totalement ou partiellement, le lait en poudre, le lait condensé, les protéines du lactosérum, I'oeuf entier, le blanc d'oeuf, le jaune d'oeuf, la farine de soja, les mélanges d'atélocollagène et de glycosaminoglywannes. Selon une caractéristique avantageuse du procédé de fabrication selon l'invention, la substance polyaminée est un polysaccharide porteur de groupements aminés, tel que par exemple le chitosan. Selon une caractéristique avantageuse du procédé de fabrication selon l'invention, le polysaccharide estérifié est un polysaccharide hydrophile porteur de nombreux groupements carboxyliques, lesquels sont estérifiés dans une proportion au moins égale à 50 %, soit par modification chimique, soit naturellement. Selon une caractéristique préférée, le polysaccharide estérifié est choisi parmi l'alginate de propylène-glycol (PGA) et les pectines, de préférence choisie parmi les pectines fortement méthylées. Selon une caractéristique avantageuse du procédé de fabrication selon l'invention, le polysaccharide gélifiable est choisi parmi un alginate, une pectine, en particulier une pectine faiblement méthylée, un carraghénane, en particulier un kappa-carraghénane, un polysaccharide porteur de groupements aminés de préférence gélifiable pour un pH supérieur à 6,2 ou en présence de KkW1rtU tel que le chitosan. Selon une caractéristique avantageuse du procédé de fabrication selon l'invention, la concentration en polysaccharide gélifiant de la solution aqueuse initiale à disperser et gélifier, est comprise entre 0 et 5 %, de préférence de 1 % (pu). Selon une autre caractéristique avantageuse du procédé selon l'invention, la concentration en polysaccharide estérifié de la solution aqueuse initiale est comprise entre 1 % et 5 %, et encore de préférence voisine de 2 % pfv. Selon une autre caractéristique avantageuse du procédé selon l'invention, la concentration en polyamine de la solution aqueuse initiale est comprise entre 1 % et 30 % ph. Selon une autre caractéristique avantageuse du procédé selon l'invention, la concentration du bain gélifiant en cation monovalent ou polyvalent en particulier en sel de calcium, ou en triphosphate, est comprise entre 0,3 M et 3 M, et de préférence 0,8 M à 1 M. Selon une autre caractéristique avantageuse du procédé selon l'invention, le temps pendant lequel les particules sont agitées au sein du bain gélifiant est compris entre 1 et 40 minutes. Selon une autre caractéristique avantageuse du procédé selon l'invention, la quantité d'agent alcalin à ajouter pour déclencher la réaction de transacylation, à la suspension aqueuse des particules gélifiées d'alginate, ou à la phase aqueuse dans laquelle on disperse directement les sphères, est telle que le pH de la suspension aqueuse de sphères soit compris entre 8 et 14, et encore de préférence entre 10, 5 et 11. Selon une autre caractéristique avantageuse du procédé selon l'invention, la quantité d'agent acide à ajouter à la suspension alcaline de particules après la réaction de transacylation, est telle que l'eau de suspension des particules soit neutralisée ou amenée à un pH légèrement acide. Selon une autre caractéristique avantageuse du procédé selon l'invention, L'agent alcalin à ajouter pour déclencher la réaction de transacylation est par exemple choisi parmi la soude, la potasse, I'ammoniaque ou un composé aminé tel que par exemple la triéthanolamine ou la triéthylamine. Selon une autre caractéristique avantageuse du procédé selon l'invention, I'épaisseur de la membrane formée par la réaction de transacylation, et sa résistance à la lyse enzymatique, peuvent être modulée par des variations de la composition de la solution alcaline déclenchant ladite réaction de transacylation, et en particulier, de la quantité d'agent alcalin utilisé pour préparer la dite solution alcaline. Selon une autre caractéristique avantageuse du procédé selon l'invention, le temps pendant lequel les particules sont maintenues au sein de la solution alcaline pour que se développe la réaction de transacylation est compris entre 5 min et 1 heure, de préférence entre 5 min et 30 min, de préférence encore, il est de 15 min. Selon une autre caractéristique avantageuse du procédé selon l'invention, L'agent acide utilisé pour neutraliser la suspension aqueuse de particules après la réaction de transacylation, est par exemple choisi parmi les acides organiques monocarboxyliques ou polycarboxyliques, porteurs ou non de fonctions alcool, comme l'acide acétique, L'acide citrique, L'acide tartrique, L'acide succinique, L'acide malique, L'acide lactique ou un acide minéral comme l'acide chlorhydrique ou l'acide sulfurique. Selon une autre caractéristique avantageuse du procédé selon l'invention, le temps de neutralisation des particules, c'est-à-dire le temps d'agitation nécessaire après ajout de l'acide au milieu réactionnel est compris entre 5 min et 1 heure, de préférence entre 5 min et 30 min,- de préférence encore, il est de 15 min. Selon une autre caractéristique avantageuse du procédé selon l'invention, la concentration de la solution de citrate ou de phosphate à utiliser pour liquéfier le contenu des particules après formation de la membrane par transacylation est comprise entre 0,1 M et 1 M, de préférence elle est voisine de 0,2 à 0,5 M. Selon une autre caractéristique avantageuse du procédé selon l'invention, le temps pendant lequel les particules, après la réaction de transacylation, doivent être agitées dans la solution de citrate ou de phosphate pour liquéfaction du contenu est compris entre 2 min et 30 min, de préférence il est de 10 min. On peut introduire dans la phase aqueuse initiale un ou plusieurs principes actifs, à l'état de solutions, de suspensions ou d'émulsions, en particulier une ou plusieurs substances d'intérêt cosmétique, pharmaceutique ou biomédical ou alimentaire. On peut aussi disperser dans la solution aqueuse initiale des particules d'un matériau adsorbant tel que le charbon actif. De telles sphères contenant un matériau adsorbant enfermé dans une membrane ont des applications en particulier dans des circuits extracorporels d'épuration sanguine pour débarrasser le sang de ses métabolites toxiques (insuffisance rénale) ou de substances toxiques dans des cas d'intoxication. On peut également emprisonner une mousse à l'intérieur des particules. Ainsi par exemple, on peut incorporer des bulles de gaz tel que l'air à la solution initiale contenant l'alginate de sodium, le polysaccharide estérifié et la protéine, en la soumettant à une agitation très vive. On applique ensuite à la mousse le procédé de l'invention en la faisant tomber en gouttes dans le bain gélifiant, puis en formant une membrane autour des particules gélifiées, par réaction de transacylation. Après séchage, les particules contiennent une multitude de bulles de gaz emprisonnées. De telles particules trouvent une indication d'emploi dans les méthodes de diagnostic médical par échographie.En outre, leur faible densité leur permet de flotter à la surface de l'eau, ce qui laisse envisager d'autres applications telles que la préparation de formes à durée de séjour gastrique prolongé pour permettre une libération prolongée d'un principe actif en amont des sites de résorption intestinaux. Une autre application intéressante de particules dégradables flottantes à membrane est la préparation de sphérules à disperser à la surface des eaux et renfermant une substance toxique pour les larves de moustiques. La libération lente du produit en surface de l'eau permet une grande efficacité du traitement avec moins de produit car elle cible les larves situées à ce niveau. On peut également disperser dans la phase aqueuse initiale des microorganismes, des oeufs, des graines éventuellement additionnées de substances diverses protectrices ou influençant leur germination et leur croissance, ou encore des cellules, tissus ou organes, embryons ou matériel génétique, animaux ou végétaux. Lorqu'on utilise pour réagir avec le polysaccharide estérifié une protéine douée d'une activité biologique spécifique telle qu'une enzyme ou l'hémoglobine, les particules obtenues selon l'invention peuvent constituer une forme immobilisée d'utilisation facile, notamment dans les domaines des biotechnologies, des bioréactifs ou de la thérapeutique. Ainsi par exemple, les particules préparées à partir d'enzymes ont des indications d'emploi en thérapie substitutive dans les déficiences enzymatiques, ou dans les systèmes extra-corporels d'épuration sanguine, ou pour catalyser des réactions en biotechnologie. Les particules préparées à partir d'hémoglobine ont des application comme hématies artificielles ou encore en biotechnologie pour l'oxygénation des bioréacteurs. Enfin, selon un septième aspect, la présente invention concerne encore une composition telle qu'une composition cosmétique, ou une composition pharmaceutique, ou une composition alimentaire, ou une composition enzymatique, ou une composition pour épuration sanguine, ou une composition pour diagnostic ou pour réactif, ou une composition pour graines enrobées, ou une composition pour production biotechnologique, caractérisée en ce qu'elle comprend des particules présentant une membrane constituée du produit de réaction d'une polyamine et d'un polysaccharide porteur de groupements carboxyliques estérifiés, par l'intermédiaire de liaisons amide impliquant les groupements amine de la polyamine d'une part, et d'autre part, les groupements carboxyliques du polysaccharide porteur de groupements carboxyliques estérifiés. D'autres buts, cactéristiques et avantages de l'invention apparaîtront clairement à la lumière de la description explicative qui va suivre, faite en référence à plusieurs exemples de réalisation de l'invention donnés simplement à titre d'illustration et qui ne sauraient donc en aucune façon limiter la portée de l'invention et en référence aux dessins annexés dans lesquels:: - la Figure 1 représente une vue obtenue en microscopie électronique à balayage de capsule selon l'invention de l'exemple 26 montrant des fibroblastes humains tapissant la paroi interne de la membrane de la capsule; - la Figure 2 représente un appareil de fabrication de particules selon l'invention sous forme de billes, capsules ou sphères par coextusion laminaire, en référence aux exemples 29 et 30; - la Figure 3 représente la courbe de dosage en ordonnée de paranitrophénol formé en Moles en fonction du temps en abscisse en minute, sous forme libre; - la Figure 4 représente aussi la courbe de dosage en ordonnée de paranitrophénol formé en Fmol en fonction du temps en abscisse en minute, sous forme encapsulée dans les capsules de l'invention. Exemple 1 selon l'invention Fabrication de sphères à contenu solide avec membrane formée à partir de sérumalbumine humaine (HSA) et d'alginate de propylène glycol (PGA). a) Préparation de la solution aaueuse initiale On prépare, par agitation magnétique à température ambiante, 12 ml d'une solution dans l'eau distillée renfermant 2% d'un PGA présentant un taux d'estérification compris entre 80 et 85% ( Kelcoloïd S ), KELCO International), 1% d'alginate de sodium (Manucol DH, KELCO) et 5% d'HSA (Centre de Transfusion Sanguine, Strasbourg). b) Individualisation des sphères par traitement au chlorure de calcium A l'aide d'une pompe péristaltique Gilson équipée d'un tube Tygon muni d'une aiguille, on fait tomber environ 10 ml de cette solution goutte à goutte dans 50 ml d'une solution de CaC12 à 10% sous agitation magnétique. On maintient l'agitation pendant 10 min, puis les sphères formées sont rincées plusieurs fois à l'eau distillée. c) Formation de la membrane Les sphères sont remises en suspension dans 50 ml d'eau distillée sous agitation magnétique. - On ajoute 400 pI de NaOH 1 N, et on laisse agiter 15 min. - On ajoute 150 pI de HCI 1N, et on laisse agiter 15 min. Les sphères à membrane obtenues sont rincées plusieurs fois à l'eau distillée. On obtient des sphères pleines lisses et opalescentes, de diamètre environ 4 mm, présentant une membrane externe bien visible. A l'état de suspension aqueuse, elles peuvent être conservées plus de 3 semaines aussi bien à +4"C qu'à l'étuve à 45"C. Ces sphères sont intactes après Iyophilisation et se réhydratent rapidement. Elles peuvent être radiostérilisées (par rayons gamma, 25 kGy) sans altération. Essai de tolérance après implantation sous-cutanée chez l'animal Ces essais ont été effectués sur quatre rats anesthésiés, dont le dos a été rasé. Deux incisions latérales ont été pratiquées sur chaque animal, par lesquelles ont été introduites, d'un côté, 3 à 4 sphères lyophilisées telles quelles, de l'autre côté 3 à 4 sphères lyophilisées préalablement réhydratées dans du soluté isotonique de NaCI stérile. Les incisions ont été suturées. Aucune réaction inflammatoire importante n'a été constatée chez les animaux, qui n'ont pas manifesté d'oedème, ni développé d'infection. Un examen des sites d'implantation après sacrifice 24 h, 3 jours, une semaine et 2 semaines après l'implantation, n'a pas révélé de réaction tissulaire anormale. En outre l'examen a montré la résorption des sphères, bien amorcée après une semaine, très avancée après 2 semaines. Exemple 2 selon l'invention Fabrication de particules à contenu liquide, à membrane formée à partir de sérumalbumine humaine (HSA) et d'alginate de propylène glycol (PGA). Le protocole décrit à l'exemple 1 est reproduit. Les particules à membranes obtenues subissent alors un traitement destiné à liquéfier le gel interne: Traitement au citrate de sodium: Le lot de particules est remis en suspension dans 50 ml d'une solution aqueuse de citrate de sodium à 10% et agité pendant 10 min. Ensuite les particules liquéfiées sont rincées plusieurs fois à l'eau distillée. On obtient des sphères transparentes, de diamètre voisin de 3,3 mm, formées d'un contenu liquide emprisonné dans une fine membrane, souple et incolore. Après lyophilisation, la fine membrane est souvent cassée. Essais de stabilité des particules conservées à l'état de susDension aaueuse - Un lot de particules est conservé à l'état de suspension dans l'eau distillée à la température de +4"C. Aucune dégradation des particules n'est observée après 6 mois de conservation. - Un lot de particules est mis en suspension dans l'eau distillée, puis placé dans une étuve à la température de 45"C. Aucune dégradation n'a été observée après 3 semaines. Essais de dégradation in vitro par les protéases Protocole: Un échantillon de 20 particules est placé dans un tube à essais contenant: - soit une solution de pepsine ( from porcine stomach mucosa, SIGMA) à pH 1, 2 (milieu gastrique artificiel, USP XXI) - soit une solution de trypsine (from porcine pancreas, type Il, SIGMA) à 0,5%, dans un tampon de pH 7,5. Une agitation magnétique est installée dans les tubes, qui sont placés au bain-marie à 37"C. L'essai est reproduit trois fois. Résultats: (Moyenne des trois essais) Les particules résistent à la pepsine pendant plus de 24 H, tandis qu'il n'y a plus aucune capsule intacte après une incubation de 130 min en présence de trypsine. Exemple 3 selon l'invention Le protocole décrit à l'exemple 2 est appliqué en utilisant, au cours du stade de formation de la membrane: - 800 pI de NaOH 1 N pour l'alcalinisation - puis 300 pI de HCI 1 N pour la neutralisation. Les vésicules obtenues après liquéfaction du gel interne présentent une paroi nettement plus épaisse que celles de l'exemple 2 obtenues en utilisant deux fois moins de soude. Après lyophilisation, la membrane est intacte, et, placée en présence d'eau se réhydrate en 15 min. Essais de dégradation enzvmatiaue - Pepsine: aucune dégradation après 24 h. - Trypsine: le temps au bout duquel il n'y a plus une particule intacte est prolongé à 175 min. Exemple 4 selon l'invention Le protocole décrit à l'exemple 2 est appliqué en utilisant, au cours du stade de formation de la membrane: - 1200 pI de NaOH 1 N pour l'alcalinisation - puis 450 pI de HCI 1 N pour la neutralisation. La membrane des particules obtenues est très épaisse, plus épaisse et moins élastique que celle des capsules de l'exemple 3. Après lyophilisation, la réhydratation des vésicules est plus lente (90 min). Essais de dégradation enzymatique - Pepsine: aucune dégradation après 24 h. - Trypsine: le temps au bout duquel il n'y a plus une particule intacte est prolongé à 215 min. Exemple 5 selon l'invention Le protocole décrit à l'exemple 2 est appliqué en utilisant, au cours du stade de formation de la membrane: - 1600 prl de NaOH 1 N pour l'alcalinisation - puis 600 pi de HCI 1 N pour la neutralisation. Les particules ne présentent pratiquement plus de contenu liquide, la transacylation concernant dans ce cas des couches plus profondes des particules. Après lyophilisation, la réhydratation des sphères est obtenue après 1 h. Essais de dégradation enzymatique - Pepsine: aucune dégradation après 24 h. - Trypsine: le temps au bout duquel il n'y a plus une particule intacte est prolongé à 250 min. Les observations des particules obtenues selon les protocoles des exemples 2, 3, 4 et 5 montrent bien que l'on peut moduler l'épaisseur de la membrane et faire varier sa sensibilité à la lyse protéasique, en faisant varier les volumes de soude ajoutés pour déclencher la réaction de transacylation. Exemple 6 selon l'invention Fabrication de sphères à membrane formée à partir d'HSA et de PGA, et renfermant des particules de charbon actif. Le protocole décrit à l'exemple 3 est appliqué en dispersant dans la phase aqueuse initiale, 600 mg de particules de charbon actif (granulométrie de 125 à 315 pm) et en utilisant une seringue pour ajouter cette suspension à la solution calcique. On obtient des sphères de couleur noire, de taille voisine de 4 mm, dans lesquelles on distingue les particules de charbon. Ces particules sont intactes après lyophilisation. Exemple 7 selon l'invention Fabrication aseptique de particules à membrane formée à partir d'HSA et de PGA. Le protocole décrit à l'exemple 3 est reproduit, en utilisant des matières premières (alginate de sodium, HSA, et PGA) stérilisées par rayons gamma (25 kGy) et de l'eau stérile pour préparations injectables. La fabrication est réalisée sous flux laminaire. On obtient des sphères régulières entourées d'une membrane qui apparaît parfaitement bien formée après le traitement de liquéfaction au citrate de sodium. Exemple 8 selon l'invention Fabrication de particules à membrane formée à partir d'HSA et de PGA et contenant des bulles d'air. Le protocole décrit à l'exemple 3 est appliqué en ajoutant un stade d'incorporation de bulles d'air à la phase aqueuse initiale et en utilisant une seringue pour ajouter la mousse ainsi obtenue à la solution calcique. A cet effet, la solution initiale renfermant l'alginate de sodium, le PGA et l'HSA est soumise à une agitation mécanique à 2000 rpm pendant 5 min, ce qui produit une mousse. La mousse est ensuite ajoutée goutte à goutte à la solution calcique sous agitation magnétique, et les opérations suivantes sont effectuées comme décrit à l'exemple 3. Ensuite, après formation de la membrane par alcalinisation puis neutralisation par acidification de la suspension de particules, les particules recouvertes d'une membrane sont rincées plusieurs fois à l'eau distillée et remises en suspension dans l'eau distillée. La suspension est ensuite divisée en deux parties. La moitié du lot, séparée par centrifugation est remise en suspension dans 25 ml de solution de citrate de sodium à 10 % et agitée pendant 10 min. Puis les sphères liquéfiées sont rincées plusieurs fois à l'eau distillée. L'autre partie du lot est conservée en suspension aqueuse. Les particules non citratées flottent sur l'eau, sont sphériques, blanches opaques, dures, et on aperçoit les bulles d'air en périphérie. Elles sont intactes après lyophilisation, se réhydratent lentement et flottent sur l'eau. Après liquéfaction au citrate et regonflement dans l'eau, le diamètre des particules augmente et on voit nettement la membrane formée d'une mousse rigidifiée. Exemple 9 selon l'invention Fabrication de particules à membrane formée à partir d'ovalbumine et de PGA. Le protocole décrit à l'exemple 1 est appliqué, en remplaçant l'HSA par de l'ovalbumine (OS I), en augmentant à 8 % la concentration de protéine, et en doublant toutes les quantités de réactifs. Après formation de la membrane et neutralisation par HCI de la suspension de particules, celle-ci est divisée en deux parties: - I'une subit le traitement de liquéfaction au citrate de sodium, tel que décrit à l'exemple 2, - L'autre ne subit pas de traitement de liquéfaction. Les particules non traitées au citrate ont une forme ovoïde et un aspect opalescent. A l'état de suspension aqueuse, elles peuvent être conservées plus de 3 semaines aussi bien à +4"C qu'à l'étuve à 45"C. Elles sont intactes après lyophilisation, et se réhydratent rapidement. Les particules traitées au citrate sont parfaitement sphériques et translucides. A l'état de suspension aqueuse, elles peuvent être conservées plus de 3 semaines aussi bien à +4"C qu'à l'étuve à 45"C. Beaucoup sont cassées après le traitement de lyophilisation. Exemple 10 selon l'invention Le protocole décrit à l'exemple 9 est reproduit en utilisant un volume double de solution de soude et de solution acide. Tandis que les particules d'alginate gélifié se présentent, avant le traitement d'alcalinisation, comme des billes ovoïdes, beiges, translucides, elles deviennent, après alcalinisation de la suspension puis neutralisation, beaucoup plus opaques, et de consistance plus dure. Après traitement de liquéfaction au citrate, les particules deviennent translucides et molles. Elles présentent une paroi épaisse, et reprennent progressivement une forme sphérique après séjour dans l'eau distillée. Elles résistent parfaitement au traitement de lyophilisation et se réhydratent en 5 à 10 min. Exemple il selon l'invention Le protocole décrit à l'exemple 9 est reproduit en utilisant un volume triple de solution de soude et de solution acide. Avant liquéfaction au citrate, les particules, opaques, présentent un paroi plus épaisse et sont de consistance plus dure que les particules de l'exemple 10. Après liquéfaction au citrate, elles deviennent plus translucides et plus molles. Elles résistent parfaitement à la lyophilisation et se réhydratent en 1h 30 environ. Exemple 12 selon l'invention Fabrication de particules à membrane formée à partir d'ovalbumine et de PGA et contenant de l'huile d'olive. Le protocole décrit à l'exemple 9 est reproduit en émulsionnant dans la solution aqueuse initiale 4,8 ml d'huile d'olive par agitation mécanique à 5000 rpm pendant 5 min. On obtient après formation de la membrane et acidification de la suspension, des billes blanches, flottant sur l'eau. Des gouttelettes d'huile sont visibles dans les sphères au microscope. Après liquéfaction du gel interne par le citrate, les billes sont plus molles et plus plates. Elles redeviennent sphériques après quelques heures de séjour dans l'eau distillée. Le centre des particules se présente sous forme d'une émulsion fluide. Exemple 13 selon l'invention Fabrication de particules à membrane formée à partir d'ovalbumine et de PGA et contenant de l'huile essentielle de menthe poivrée. Le protocole décrit à l'exemple 12 est reproduit en remplaçant l'huile d'olive par de l'huile essentielle de menthe poivrée. L'aspect des particules obtenues avant et après traitement au citrate est comparable à celui des particules préparées selon l'exemple 12. Exemple 14 selon l'invention Fabrication de particules à membrane formée à partir d'ovalbumine et de pectine. Le protocole décrit à l'exemple 10 est reproduit en remplaçant le PGA par la pectine de pomme (FLUKA, estérification 70 à 75%). Les particules traitées au citrate de sodium comme les particules non traitées sont semblables aux particules préparées à partir de PGA selon l'exemple 10. Après lyophilisation, les sphères sont intactes avec une membrane bien visible. La réhydratation est rapide (10 min). Exemple 15 selon l'invention Fabrication de particules à membrane formée à partir de sérumaibumine bovine (BSA) et de PGA . Le protocole décrit à l'exemple 10 est reproduit en remplaçant l'ovalbumine par la sérumalbumine bovine (fraction V, SIGMA) utilisée à la concentration de 2 %. Les particules ont des caractéristiques comparables à celles des particules préparées selon l'exemple 10. Après traitement au citrate, les particules peuvent être conservées à l'état de suspension aqueuse plus de 3 semaines, aussi bien à +4"C qu'à l'étuve à 45"C. Exemole 16 selon l'invention Fabrication de particules à membrane formée à partir d'hémoglobine et de PGA . Le protocole décrit à l'exemple 10 est reproduit en remplaçant l'ovalbumine par l'hémoglobine bovine (SIGMA) utilisée à la concentration de 10 %. Les particules ont des caractéristiques comparables à celles des particules préparées selon l'exemple 10. Après traitement au citrate, les particules peuvent être conservées à l'état de suspension-- aqueuse plus de 3 semaines, aussi bien à +4"C qu'à l'étuve à 45"C. Exemple 17 selon l'invention Fabrication de particules à membrane formée à partir de protéines du lactosérum et de PGA. Le protocole décrit à l'exemple 10 est reproduit en remplaçant l'ovalbumine par un concentré de protéines du lactosérum (Prosobel S65E, Bel Industries) utilisée à la concentration de 5 %. Les particules ont des caractéristiques comparables à celles des particules préparées selon l'exemple 10. Après traitement au citrate, les particules peuvent être conservées à l'état de suspension aqueuse plus de 3 semaines, aussi bien à +4"C qu'à l'étuve à 45"C. Exemple 18 selon l'invention Fabrication de particules à membrane formée à partir d'un hydrolysat de gélatine et de PGA Le protocole décrit à l'exemple 10 est reproduit en remplaçant l'ovalbumine par un hydrolysat de gélatine, soluble dans l'eau à froid (gélatine atomisée DSF, Méro-Rousselot-Satia) utilisée à la concentration de 10%. Les particules ont des caractéristiques comparables à celles des particules préparées selon l'exemple 10. Après traitement au citrate, les particules peuvent être conservées à l'état de suspension aqueuse plus de 3 semaines, aussi bien à +4"C qu'à l'étuve à 45"C. lIExemIe 19 selon l'invention Fabrication de particules-à membrane formée à partir de protéines du soja et de PGA. Le protocole décrit à l'exemple 10 est reproduit en remplaçant l'ovalbumine par la farine de soja (type I: not roasted, SIGMA). Pour préparer la phase aqueuse, on procède alors comme suit: on ajoute à 20 ml d'eau distillée 10 % de farine de soja. Après 15 min d'agitation magnétique, le milieu est centrifugé pendant 3 min à 5000 rpm. Dans 12 ml du surnageant, on dissout 1 % d'alginate de sodium et 2 % de PGA. Les particules ont des caractéristiques comparables à celles des particules préparées selon l'exemple 10. Après traitement au citrate, les particules peuvent être conservées à l'état de suspension aqueuse plus de 3 semaines, aussi bien à +4"C qu'à l'étuve à 45"C. Exemple 20 selon l'invention Fabrication de particules à membrane formée à partir d'ovalbumine et de PGA et contenant du rouge de phénol. Le protocole décrit à l'exemple 9 est reproduit en diminuant de moitié les quantités de réactifs, en dissolvant 6 mg de rouge de phénol dans la solution initiale contenant l'alginate, le PGA et l'ovalbumine et en supprimant le stade de liquéfaction. La solution initiale est jaune d'or. Après addition de la solution de soude qui déclenche la réaction de transacylation, on observe les particules au microscope. Durant les 15 min. qui suivent l'addition, il n'y a pas de modification de la couleur jaune du coeur des particules. En revanche, la couche superficielle est colorée en rose fuschia, ce qui indique l'alcalinisation de la périphérie du gel. Cette observation est confirmée par un examen des particules après incision de la partie périphérique. Cette expérience avec un colorant indicateur de pH montre que, dans les conditions de l'essai, la réaction de transacylation est localisée dans la couche superficielle des sphères, puisque les variations de pH n'en atteignent pas le centre. La réaction, bien localisée, peut donc être appliquée à l'encapsulation de cellules et autres matériaux vivants. ExemIe 21 selon l'invention Fabrication de particules à membrane formée à partir d'ovalbumine et de PGA et contenant des bactéries lactiques. L'expérience a été effectuée en utilisant des bactéries lactiques lyophilisées, Lactobacillus casei var. rhamnosus, présentées en gélules de 250 mg, renfermant au minimum 8 108 germes / gramme (Antibiophilus #, Lyocentre). * Encapsulation des bactéries Dans 12 ml l'eau distillée stérile, on dissout: - 240 mg de PGA - 120 mg d'alginate de sodium - 720 mg d'ovalbumine On disperse dans cette solution 240 mg de poudre de bactéries lyophilisées et on prépare les sphères comme décrit dans l'exemple 1. Rincées à l'eau distillée stérile après formation de la membrane par transacylation et neutralisation, les sphères de bactéries sont immédiatement utilisées pour les essais de fermentation du lait. * Essais de fermentation du lait On utilise du lait demi-écrémé Nactalia, en briques stériles de 200 ml. Conduite de ltexpérience (dupliquée) On mesure le pH de divers échantillons de 50 ml de lait au temps zéro, après 24 h et après 30 h d'agitation magnétique douce à température du laboratoire: - échantillons de lait pur (sans addition de microsphères, ni de bactéries) - échantillons de lait additionnés d'un lot de microsphères contenant 240 mg de bactéries lactiques - échantillons de lait additionnés de 240 mg de bactéries lactiques libres - échantillons de lait additionnés d'un lot de microsphères sans bactéries. Résultats Le tableau I rassemble les résultats moyens obtenus. Le pH initial du lait était de 6,75. On note qu'il évolue spontanément pour s'abaisser à 6 après 30 h (échantillons témoins: lait seul). Quand on ajoute au lait des sphères sans bactéries, le pH s'abaisse légèrement moins que dans les échantillons témoins. En revanche, on constate que les bactéries encapsulées ont une nette activité sur le pH du lait, plus bas après 30 h que dans le cas des échantillons additionnés de bactéries libres. II est possible que le contenu des sphères, lequel se liquéfie au cours de l'expérience, exerce un effet favorable en constituant un aliment pour les bactéries. Exemple 22 selon l'invention Fabrication de particules à membrane formée à partir d'ovalbumine et de PGA et contenant des oeufs d' Arfemia salina. Cette expérience a été effectuée en utilisant des oeufs secs dlArtemia salina, commercialisés comme nourriture de poissons d'aquariums (Hobby). *Encapsulation La solution de polymères est préparée comme décrit à l'exemple 20, mais en dissolvant du NaCI à la concentration de 3% dans les 12 ml d'eau, avant d'y dissoudre les polymères. Dans la solution ainsi obtenue, on disperse 240 mg d'oeufs secs d'Artemia salina et on applique à cette suspension le protocole décrit à l'exemple 2. Les capsules obtenues sont rincées ensuite à l'eau, puis à l'eau additionnée de 3% de NaCI. Elles sont finalement dispersées dans de l'eau additionnée de 3% de NaCI et laissées à température du laboratoire. résultats Les particules sont examinées au microscope à intervalles de temps réguliers. Moins de 24 h après l'encapsulation, les oeufs éclosent à l'intérieur des microcapsules et les mouvements des crustacés sont très visibles à travers la membrane transparente. Le procédé d'encapsulation est donc bien compatible avec le maintien de la viabilité d'organismes vivants. Exemple 23 selon l'invention Fabrication de particules à membrane formée à partir de phosphatase alcaline et de PGA. Le protocole décrit à l'exemple 3 est reproduit en remplaçant la sérumalbumine humaine par la phosphatase alcaline (type I-S, SIGMA). Après liquéfaction du gel, les sphères liquéfiées sont rincées plusieurs fois à l'eau distillée. Elles sont ensuite congelées et lyophilisées. *Dosage de l'activité enzymatique des sphères de phosphatase alcaline -Principe: Le dosage consiste à effectuer une détermination spectrophotométrique (lecture à 405 nm) de la quantité de paranitrophénol (pNP) libéré par hydrolyse du paranitrophénylphosphate (pNPP) à 37"C. - Préparation des réactifs On prépare les réactifs suivants: - un tampon glycine 100 mM, pH 10,4, contenant MgCI2 1 mM et ZnCl2 lmM. - Une solution de Mg Cl2 1 mM - Une solution de paranitrophénylphosphate 60 mM - Une solution de NaOH 0,2 M *Protocole de dosage On effectue parallèlement une détermination de l'activité de la phosphatase alcaline libre (non encapsulée: PAL) et de l'activité de la phosphatase alcaline immobilisée sous forme de sphères lyophilisées. Les conditions figurent dans le tableau 2. Les quantités de pNP libérés dans les deux séries d'essais sont évaluées après 1 min, 2 min et 3 min. Tous les essais sont dupliqués. * Résultats Ils sont regroupés sur le tableau 3. Les résultats sont exprimés en unités par mg d'enzyme pure ou de sphères, Purnté étant définie comme la quantité capable d'hydrolyser une pmole de substrat par minute dans les conditions expérimentales définies. On observe donc que les sphères, avec une activité moyenne de 0,6227 unités par mg, ont une activité enzymatique égale à 11,1 % de celle de l'enzyme pure. Etant donné que 1 mg de sphères contient au maximum 0,625 mg de phophatase alcaline, L'enzyme encapsulée a conservé au minimum 17,7 % de son activité. Exemple 24 selon l'invention Fabrication de particules à membrane formée à partir de PGA ajouté à la solution initiale, et d'ovalbumine ajoutée en phase externe. a)Préparation de la solution initiale Dans 12 ml d'eau distillée on dissout: - de l'alginate de sodium à la concentration de 1% - du PGA à la concentration de 2 %. b) Individualisation des sphères par traitement au chlorure de calcium On procède comme décrit à l'exemple 1. c) Formation de la membrane Les sphères sont mises en suspension dans 50 ml d'une solution aqueuse d'ovalbumine à 5 %, pendant 5 min sous agitation magnétique. Puis - on ajoute 1,6 ml de NaOH 1 M, et on laisse agiter 15 min. - on ajoute 1,2 ml de HCI 1 M, et on laisse agiter 15 min. Les sphères à membrane obtenues sont rincées plusieurs fois à l'eau distillée. d) Liquéfaction du gel On applique aux sphères le traitement au citrate de sodium décrit à l'exemple 2. Après traitement au citrate, les sphères perdent leur aspect opalescent pour devenir transparentes. Elles se présentent alors comme des vésicules non sphériques dont la membrane est parfaitement visible. Après 5 min en suspension dans l'eau, les sphères reprennent une forme sphérique en gonflant dans l'eau. Leur diamètre devient environ le double de celui des sphères d'alginate-PGA obtenues dans la solution calcique. Ces sphères transparentes se colorent en bleu au contact d'une solution diluée de bleu de méthylène. Exemple 25 selon l'invention Fabrication de particules à membrane formée à partir d'ovalbumine et de PGA et contenant des graines de Cresson. Le protocole décrit à l'exemple 10 est reproduit en dispersant dans la phase aqueuse initiale 480 mg de graines de Cresson (Vilmorin). Après individualisation dans la solution calcique, les sphères, blanches, contiennent un nombre variable de graines. Après le traitement de liquéfaction au citrate, les sphères sont ramollies mais ne laissent pas échapper les graines. Après rinçage à l'eau et mise en suspension dans l'eau, les sphères regonflent instantanément. Mise en germination: Dans trois boîtes de Pétri garnies de coton hydrophile imbibé d'eau, on place respectivement, à température ambiante (20 C): - une dizaine de sphères chargées de graines et non traitées au citrate, - une dizaine de sphères chargées de graines et traitées au citrate, - et des graines non encapsulées. Après 24 h, tandis que les graines non encapsulées ne sont pas modifiées, dans les sphères, traitées ou non par le citrate, on aperçoit par transparence au travers des membranes, des germes sortant des graines. Après 3 jours, les graines nues ont commencé à germer tandis que les germes des graines encapsulées ont percé la membrane et sont déjà bien développés. Exemple 26 selon l'invention Fabrication de particules à membrane formée à partir d'ovalbumine et de PGA et contenant des fibroblastes de peau humains. L'ensemble des opérations décrites ci-dessous est réalisé dans des conditions stériles: manipulations sous une hotte à flux laminaire; utilisation de matériel préalablement stérilisé. a) Préparation de la phase aaueuse initiale Dans 12 ml de PBS ("phosphate buffered saline", sans calcium ni magnésium, Gibco), on dissout: - 240 mg de PGA - 120 mg d'alginate de sodium (Laserson et Sabetay) - 720 mg d'albumine de blanc d'oeuf (Laserson et Sabetay). La solution est centrifugée pendant quelques minutes à faible vitesse, de façon à éliminer les bulles d'air. b) Incorporation des fibroblastes Des fibroblastes de peau humains, préalablement cultivés e n monocouches dans des boîtes de culture, sont recueillis par un traitement à la trypsine, puis mis en suspension dans du sérum de veau foetal, et dispersés dans la solution précédente à raison de 50.000 cellules ml. c) Formation des sphères Cette suspension est versée goutte à goutte à l'aide d'une seringue et d'une aiguille dans 50 ml d'une solution aqueuse de CaC12 à 10%, agitée par agitation magnétique. L'agitation est poursuivie pendant 5 min. Les sphères sont ensuite rincées plusieurs fois à l'eau distillée. d) Formation de la membrane Les sphères sont remises en suspension dans 50 ml d'eau distillée avec agitation magnétique. On ajoute à la suspension 50 l de NaOH 1M et on laisse la réaction se développer pendant 5 min. On ajoute alors à la suspension 50 pI de HCI 1 M et on laisse l'agitation se poursuivre pendant 5 min. Les sphères sont ensuite rincées plusieurs fois à l'eau distillée puis au PBS. Après incision de la membrane, on voit bien les cellules encapsulées, qui apparaissent comme de petites sphères réfringentes. e) Mise en culture Les sphères contenant les cellules sont mises à incuber dans un milieu de culture (DMEM, Gibco) contenant 10 % de sérum de veau foetal et 2 mM de glutamine. L'ensemble est introduit dans un incubateur, en atmosphère contenant 5 % de C02, à 37 C Le milieu de culture est changé régulièrement. L'examen périodique des sphères à chaque changement de milieu montre une augmentation progressive du nombre de cellules encapsulées. Les fibroblastes prolifèrent donc régulièrement à l'intérieur des sphères cz-e montré à la figure 1 en microscopie électronique à balayage. ExemIe 27 selon l'invention Fabrication de particules de diamètre 20 -100 pm, à membrane formée à partir d'ovalbumine et de PGA. a) Préparation de la solution aaueuse initiale Dans 50 ml d'eau distillée, on dissout: - 500 mg de PGA - 500 mg d'alginate de sodium - 2,5 g d'ovalbumine On agite jusqu'à dissolution, puis on laisse les bulles d'air s'éliminer spontanément pendant 15 min. b) Formation des microsphères On pulvérise cette solution en fines gouttelettes, à l'aide d'un pulvérisateur à air comprimé, dans 500 ml d'une solution aqueuse de CaC12 à 10 %, sous agitation. On maintient l'agitation pendant 10 min. c) Formation de la membrane On ajoute 8 ml de NaOH 1M, et on agite 15 min. On ajoute 8 ml de HCI 1M, et on agite 15 min. Les microsphères à membrane sont ensuite centrifugées et rincées plusieurs fois à l'eau distillée. d) liquéfaction du qel La moitié du sédiment est remise en suspension dans 50 ml d'une solution aqueuse de citrate de sodium à 10 % pendant 10 min, puis les microsphères liquéfiées sont rincées plusieurs fois à i'eau distillée et conservées en suspension aqueuse. On obtient des microsphères à membranes dont le diamètre est compris entre 20 et 100 um. ExemDle 28 selon l'invention Fabrication de particules à membrane formée à partir d'ovalbumine et de PGA. Le protocole décrit à l'exemple 10 est appliqué, en supprimant l'alginate de sodium de la phase aqueuse initiale et en utilisant le PGA à la concentration de 5 % et l'ovalbumine à la concentration de 5 % également. L'étape de gélification est poursuivie pendant 30 min en augmentant à 30 % la concentration de la solution de chlorure de calcium. On obtient des sphères stables à membrane bien visible. ExemDle 29 selon l'invention Fabrication de particules à membrane formée à partir d'ovalbumine et contenant de l'huile de bourrache. a) Préparation de la solution aaueuse initiale Dans 600 ml d'eau distillée, on dissout: - 12 g de PGA (Kelcoloïd S, Kelco) - 6 g d'alginate de sodium (Manucol DH, Kelco) - 36 g d'ovalbumine (Laserson et Sabetay) On agite jusqu'à dissolution, puis on laisse les bulles d'air s'éliminer. b) Formation des sphères oar coextrusion et gélification Pour ce faire, on utilise l'appareil Extramet schématisé à la figure 2 annexée. Cet appareil comprend essentiellement une buse d'extrusion 10 permettant de réaliser une coextrusion par la présence de deux orifices concentriques alimentés séparément par deux conduits d'alimentation 12 et 14 servant respectivement à l'alimentation externe en solution ovalbumine PGA-alginate de sodium selon l'invention depuis un réservoir 16, et à l'intérieur, de l'huile de bourrache depuis un réservoir 18. A cette buse 10, est associé un dispositif vibreur 20 commandé par des moyens de commande 22. Ce dispositif comprend également un bain gélifiant 24 disposé à distance sous la buse 10, dans lequel est placée la solution 25 de CaC12 à 10 %. Cet appareil comprend également une électrode 26 à extrémité hélicoïdale disposée concentriquement à l'écoulement du flux laminaire 30 coextrudé de la buse 10 de manière à maintenir séparées les gouttelettes générées par le vibreur 20. On peut également prévoir un dispositif de stroboscopie par flash 32 pour observer visuellement les gouttelettes ainsi générées tombant dans le bain de gélification. Le débit de la solution ovalbumine-PGA-alginate de sodium présente dans le réservoir 16 est de 11/h et celui de l'huile de bourrache présente dans le réservoir 18 est de 250 mini. La fréquence de vibration du vibreur 20 est 230 Hz.Les diamètres des deux orifices concentriques sont de 350 et 400 pm. Les gouttelettes 34 générées par le vibreur 20 à partir de l'écoulement laminaire réalisé dans la buse de coextrusion 10 sont reçues dans 11 de solution de gélification 25 maintenue sous agitation magnétique. Le bain est renouvelé après extrusion de 250 g de la solution ovalbumine-PGA-alginate de sodium. Les sphères formées sont lavées plusieurs fois à l'eau distillée. c) Formation de la membrane Les sphères sont mises en suspension dans 2,5 I d'eau distillée sous agitation magnétique. - On ajoute 20 ml de NaOH 1 N, et on laisse agiter 15 min. - On ajoute 7,5 ml de HCI 1 N, et on laisse agiter 15 min. Les sphères obtenues sont rincées plusieurs fois à l'eau distillée. On obtient des sphères lisses, de diamètre 1,5 mm, renfermant une gouttelette d'huile de bourrache. Exemple 30 selon l'invention Fabrication de particules à membrane formée à partir d'ovalbumine a) Préparation de la solution aaueuse initiale Dans 600 ml d'eau distillée, on dissout: - 12 g de PGA (Kelcoloïd S, Kelco) - 6 g d'alginate de sodium (Manucol DH, Kelco) - 36 g d'ovalbumine (Laserson et Sabetay) On agite jusqu'àdissolution, puis on laisse les bulles d'air s'éliminer. b) Formation des sphères par extrusion et aélification On réalise l'extrusion et la gélification des sphères dans les mêmes conditions que celles décrites à l'exemple 29, sauf en ce qui concerne la buse d'extrusion 10 qui ne comporte qu'un seul orifice de 250 pm. Le protocole décrit à l'exemple 29 est ensuite appliqué. On obtient des sphères lisses, opalescentes, de diamètre 1,4 mm. Tableau 1 - Bactéries lactiques encansulées: effet sur le DH du lait pH après 24 h pH après 30 h Lait seul 6.28 6.00 Lait + capsules 6.06 5.41 contenant 240 mg de bactéries Lait + 240 mg 6.02 5.78 de bactéries libres Lait + 6.29 6.35 capsules vides Les variations du pH du lait (50 ml, pH initial = 6,75) sont la moyenne de deux essais réalisés à température ambiante et sous agitation magnétique. Tableau 2 - Protocole de dosaae de l'activité enzymatique des sphères de phosphatase alcaline Dosage PAL* Blanc PAL # Dosage sphères , Blanc sphères Tampon Glycine pH 10.4 2.6 ml 2.6 ml 13 ml 13 ml PAL dans MgCl2 1mM 100 l Billes PAL - - 15 mg MgCl2 1mM - 10 l 500 l 500 l Mise à température 15 mn au bain-marie à 37 C Solution de pNPP 60 mM 300 l 300 l 1.5 ml 1.5 ml Nombre de j'mol de pNPP 18 mol 18 mol 90 mol 90 j'mol Concentration pNPP finale 6mM 6mM 6mM 6mM Arrêt NaOH 0.2N 3 ml après 1 ou 2 ou 3 mn 15 ml après 1 ou 2 ou 3 mn Dilution 1/20e avec NaOH 0.2 N dans fioles jaugées de 20 ml Dosage Lecture D.O. au spectrophotomètre à 405 nm contre le blanc *PAL = phosphatase alcaline libre (non encapsulée) Tableau 3 - Résultats du dosage de l'activité enzymatique des 2703927 de nhosphatase alcaline et comnaraison avec l'enzyme libre Tableau 3-A Dosage de la phosphatase alcaline libre (PAL) mol pNP/mn Dosage 1 Dosage 2 1 mn 0. 8627 0.8432 2 mn 0.8238 0.84 3 mn 0.8519 0.8324 Moyenne ar essai nités par mg de PA Moyenne générale Tableau 3-B Dosage de la phosphatase alcaline encapsulée mol pNP/mn Dosage 1 Dosage 2 1 mn 0.5505 0.7204 2 mn 0.7108 0.5766 3 mn 0.5112 0.6668 Moyenne par essai 0.5908 0.6546 Moyenne générale 0.6227 Il/mg REvENDIcATIONS 1 - Particule, notamment bille, capsule ou sphère, caractérisée en ce qu'elle comprend un polysaccharide estérifié et une polyamine, additionnés d'un polysaccharide gélifiable lorsque ni le polysaccharide estérifié ni la polyamine ne sont gélifiables dans les conditions opératoires choisies, la dite particule comprenant au moins en surface une membrane formée par le produit de la réaction de transacylation avec formation de liaisons covalentes entre le polysaccharide estérifié et la dite polyamine au sein d'un gel éventuellement liquéfiable. 2- Particule selon la revendication 1, caractérisée en ce que le polysaccharide estérifié précité est un polysaccharide porteur de groupements carboxyliques estérifiés, en particulier un alginate de propylène glycol, une pectine, en particulier une pectine fortement méthylée, ou tout autre composé obtenu par estérification de carboxyles de polysaccharides porteurs de carboxyles. 3 - Particule selon l'une des revendications 1 et 2, caractérisée en ce que la polyamine précitée comprend une protéine, un polypeptide, un polyaminoacide, un polysaccharide porteur de groupements aminés tel que le chitosan, une substance organique, aliphatique, alicyclique ou aromatique porteuse de plusieurs groupements amine primaires ou secondaires, telle que l'éthylènediam ine, la pentaméthylènediamine, l'hexaméthylènediamine, la pipérazine, la phénylènediamine. 4 - Particule selon l'une des revendications I à 3, caractérisée en ce que le polysaccharide précité est un polysaccharide gélifiable, en particulier choisi parmi le groupe consistant d'un alginate, d'un carraghénane, en particulier le kappa-carraghénane, une pectine gélifiable, en particulier une pectine faiblement méthylée, le chitosan. 5 - Particule selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisée en ce que la membrane précitée emprisonne un contenu liquide, constitué d'un gel liquéfié ou d'un liquide non miscible à l'eau. 6 - Particule selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisée en ce que la membrane précitée enveloppe un noyau gélifié comprenant soit le polysaccharide gélifiable précité, soit le polysaccharide estérifié précité, soit encore la polyamine précitée, sous une forme gélifiée par une entité de gélification. 7 - Particule selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisée en ce qu'elle est constituée d'un gel rigidifié dans toute sa masse, composé du produit de la réaction dite de transacylation entre le polysaccharide estérifié et la polyamine, éventuellement additionnés d'un polysaccharide gélifiable. 8 - Particule selon l'une des revendications précédentes, caractérisée en ce que la proportion relative en poids de polysaccharide estérifié par rapport à la polyamine est comprise entre 3 % et 500 % en poids. 9 - Particule selon l'une des revendications précédentes, caractérisée en ce que la proportion relative en poids de polysaccharide gélifiable par rapport au polysaccharide estérifié est comprise entre 0 % et 300 % en poids. 10 - Particule selon l'une des revendications précédentes, caractérisée en ce qu'elle contient un principe actif, en particulier choisi parmi le groupe consistant d'un principe actif cosmétique, pharmaceutique, une substance d'intérêt agroalimentaire, une substance intéressant le diagnostic ou les réactifs, une protéine ayant une activité biologique telle qu'une enzyme, une hormone, un anticorps ou l'hémoglobine, des particules insolubles telles que des particules de charbon actif, des cellules, tissus ou organes vivants du règne animal ou végétal, des oeufs ou des graines, des microorganismes tels que des bactéries ou des levures. 1 1 - Procédé de fabrication de particules, en particulier de billes, capsules ou sphères, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes successives suivantes: a) on prépare une solution aqueuse initiale contenant un polysaccharide estérifié et une polyamine, additionnés d'un polysaccharide gélifiable lorsque ni le polysaccharide estérifié ni la polyamine ne sont gélifiables dans les conditions opératoires choisies, b) on fait tomber des gouttes de cette solution dans une solution aqueuse formant bain de gélification contenant un agent de gélification, de manière à individualiser des particules par gélification à l'aide dudit agent de gélification, c) on met en contact les particules gélifiées obtenues avec une solution aqueuse alcaline, de manière à déclencher une réaction dite de transacylation, au moins à la surface des particules gélifiées, entre le polysaccharide estérifié et la polyamine contenus dans lesdites particules, pendant une période de temps prédéterminée, pour former une membrane au moins en surface desdites particules, d) on ajoute au milieu réactionnel un agent acide de manière à neutraliser et ainsi stabiliser les particules, en obtenant ainsi des particules comprenant au moins en surface une membrane formée par le produit de réaction avec formation de liaisons covalentes entre le polysaccharide estérifié et la polyamine. 12 - Procédé de fabrication de particules, en particulier de billes, capsules ou sphères, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes successives suivantes: a) on prépare une solution aqueuse initiale contenant un polysaccharide estérifié, additionné d'un polysaccharide gélifiable lorsque le polysaccharide estérifié n'est pas gélifiable dans les conditions opératoires choisies, b) on fait tomber des gouttes de cette solution dans une solution aqueuse formant bain de gélification contenant un agent de gélification, de manière à individualiser des particules par gélification à l'aide dudit agent de gélification, c) on met en contact les particules gélifiées obtenues avec une solution aqueuse alcaline contenant une polyamine, de manière à déclencher une réaction dite de transacylation, à la surface des particules gélifiées, entre le polysaccharide estérifié contenu dans lesdites particules et la polyamine, pendant une période de temps prédéterminée, pour former une membrane en surface desdites particules, d) on ajoute au milieu réactionnel un agent acide de manière à neutraliser et ainsi stabiliser les particules, en obtenant ainsi des particules comprenant en surface une membrane formée par le produit de réaction avec formation de liaisons covalentes entre le polysaccharide estérifié et la polyamine. 13 - Procédé de fabrication de particules, en particulier de capsules ou microcapsules, contenant une phase liquide hydrophobe, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes successives suivantes: a) on prépare une solution aqueuse initiale contenant un polysaccharide estérifié et une polyamine, additionnés d'un polysaccharide gélifiable lorsque ni le polysaccharide estérifié ni la polyamine ne sont gélifiables dans les conditions opératoires choisies. b) on réalise à travers une buse d'extrusion une coextrusion laminaire de la solution aqueuse et de la phase hydrophobe à encapsuler, tout en soumettant l'écoulement laminaire à des vibrations pour dissocier l'écoulement laminaire en gouttes individelles. c) on fait tomber ces gouttes dans une solution aqueuse formant bain de gélification contenant un agent de gélification, de manière à individualiser des particules par gélification à l'aide dudit agent de gélification, lesdites particules contenant ladite phase liquide hydrophobe. d) on met en contact les particules gélifiées obtenues avec une solution aqueuse alcaline, de manière à déclencher une réaction dite de transacylation, au moins à la surface des particules gélifiées, entre le polysaccharide estérifié et la polyamine contenus dans lesdites particules pendant une période de temps prédéterminée, pour former une membrane au moins en surface desdites particules, e) on ajoute au milieu réactionnel un agent acide de manière à neutraliser et ainsi stabiliser les particules, en obtenant ainsi des particules comprenant au moins en surface une membrane formée par le produit de réaction avec formation de liaisons covalentes entre le polysaccharide estérifié et la polyamine et renfermant une goutte du liquide hydrophobe précité. 14 - Procédé de fabrication de particules, en particulier de capsules ou microcapsules, contenant une phase liquide hydrophobe, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes successives suivantes: a) on prépare une solution aqueuse initiale contenant un polysaccharide estérifié, additionné d'un polysaccharide gélifiable lorsque le polysaccharide estérifié n'est pas gélifiable dans les conditions opératoirës choisies. On prévoit un liquide hydrophobe que l'on souhaite introduire dans lesdites particules. b) on réalise à travers une buse d'extrusion une coextrusion laminaire de la solution aqueuse et de la phase hydrophobe à encapsuler, tout en soumettant l'écoulement laminaire à des vibrations pour dissocier l'écoulement laminaire en gouttes individelles. c) on fait tomber ces gouttes dans une solution aqueuse formant bain de gélification contenant un agent de gélification, de manière à individualiser des particules par gélification à l'aide dudit agent de gélification, lesdites particules contenant ladite phase liquide hydrophobe. d) on met en contact les particules gélifiées obtenues avec une solution aqueuse alcaline contenant une polyamine, de manière à déclencher une réaction dite de transacylation à la surface des particules gélifiées, entre le polysaccharide estérifié contenu dans lesdites particules et la polyamine1 pendant une période de temps prédéterminée, pour former une membrane en surface desdites particules. e) on ajoute au milieu réactionnel un agent acide de manière à neutraliser et ainsi stabiliser les particules, en obtenant ainsi des particules comprenant en surface une membrane formée par le produit de réaction avec formation de liaisons covalentes entre le polysaccharide estérifié et la polyamine et renfermant une goutte du liquide hydrophobe précité. 15 - Procédé selon l'une des revendications 1 1 à 14, caractérisé en ce que le polysaccharide estérifié précité est un polysaccharide hydrophile porteur de groupements carboxyliques qui sont estérifiés dans une proportion au moins égale à 50 %. 16 - Procédé selon la revendication 15, caractérisé en ce que le polysaccharide estérifié précité est choisi parmi un alginate de propylène glycol, une pectine, en particulier une pectine fortement méthylée, ou tout autre composé obtenu par estérification de carboxyles de polysaccharides porteurs de carboxyles. 17 - Procédé selon l'une des revendications 1 1 à 16, caractérisé en ce que le polysaccharide gélifiable précité est par exemple choisi parmi un alginate, une pectine, en particulier une pectine faiblement méthylée, un carraghénane, en particulier le kappa-carraghénane, un polysaccharide porteur de groupements aminés de préférence gélifiable pour un pH supérieur à 6, 2 ou en présence d'un polyphosphate, tel que le chitosan. 18 - Procédé selon l'une des revendications 1 1 à 17, caractérisé en ce que la polyamine précitée est choisie parmi une protéine en particulier une protéine hydrophile ou traitée de manière à être rendue hydrophile, c'est-àdire soluble dans l'eau ou dispersible dans l'eau, contenant des groupements aminés libres, de préférence choisie parmi les groupes consistant d'albumines comme la sérumalbumine, l'ovalbumine, l'alpha-lactalbumine, des globulines, le fibrinogène, la caséine, des scléroprotéines solubilisées, le collagène, I'atélocollagène, les mélanges d'atélocollagène et d e glycosaminoglycannes, la gélatine, les hydrolysats de gélatine, les peptones, I'hémoglobine, des protéines végétales telles que les protéines du soja ou du blé, des gluténines, qui de préférence auront été dégradées, des enzymes telles que la catalase, les phosphatases, des hormones, des anticorps tels que des anticorps monoclonaux, des polypeptides, des polyaminoacides, le lait entier ou écrémé totalement ou partiellement, le lait condensé, le lait en poudre, les protéines du lactosérum, l'oeuf entier, le blanc d'oeuf, le jaune d'oeuf, des polysaccharides porteurs de groupements aminés tels que le chitosan, des substances aliphatiques, alicycliques ou aromatiques porteuses de plusieurs groupements aminés telle que l'hexaméthylène diamine. 19 - Procédé selon l'une des revendications 1 1 à 18, caractérisé en ce que les gouttes de solution gélifiable sont formées par tout moyen d'individualiser les gouttes tels que les systèmes d'injection comprenant une seringue munie d'une aiguille ou une pompe péristaltique équipée d'un tube muni d'une aiguille ou un système de dispersion par utilisation d'un pulvérisateur à air comprimé ou encore en coupant mécaniquement à l'aide d'un vibreur un écoulement laminaire réalisé soit par extrusion d'une solution à travers une buse, soit par coextrusion de deux écoulements concentriques de deux liquides non miscibles à travers une buse. 20 - Procédé selon l'une des revendications 1 1 à 19, caractérisé en ce que l'agent de gélification est un cation mono ou polyvalent, en particulier choisi parmi le groupe consistant d'un sel de calcium ou d'un sel de potassium, ou d'un sel de fer, ou d'aluminium, ou de cuivre, ou de manganèse ou de baryum, ou une solution aqueuse de pH supérieur à 6,2 ou une solution de polyphosphate, selon la nature du constituant gélifiant. 21 - Procédé selon l'une des revendications 11 à 20, caractérisé en ce que la concentration en polysaccharide gélifiable précité dans la solution aqueuse initiale à disperser et gélifier n'est pas supérieure à environ 5 %, et de préférence est comprise entre 0,5 % et 2 % encore mieux d'environ 1 % en poids. 22 - Procédé selon l'une des revendications Il à 21, caractérisé en ce que la concentration en polysaccharide estérifié dans la solution aqueuse initiale précitée est comprise entre 1 % et 5 % en poids et encore de préférence est voisine de 2 %. 23 - Procédé selon l'une des revendications 1 1 à 22, caractérisé en ce que la concentration en polyamine dans la solution aqueuse initiale précitée ou dans la solution dans laquelle sont dispersées les particules gélifiées, est comprise entre 1 % et 30 % en poids. 24 - Procédé selon l'une des revendications 11 à 23, caractérisé en ce que la concentration en agent de gélification en particulier en cation mono ou polyvalent ou en polyphosphate dans la solution aqueuse formant bain gélifiant précité, est comprise entre 0,3 M et 3M, de préférence entre 0,8 M et 1 M. 25 - Procédé selon l'une des revendications 1 1 à 24, caractérisé en ce que l'agent de gélification est une solution de pH supérieur à 6, 2. 26 - Procédé selon l'une des revendications 1 1 à 25, caractérisé en ce que la solution alcaline déclenchant la réaction précitée de transacylation avec formation de liaisons covalentes au moins à la surface des particules présente un pH compris entre 8 et 14, encore de préférence entre 10,5 et 11, et en ce que l'épaisseur de la membrane et sa résistance à la lyse enzymatique peuvent être augmentées par augmentation de la quantité d'agent alcalin incorporé à la phase alcaline déclenchant ladite réaction de transacylation. 27 - Procédé selon la revendication 26, caractérisé en ce que la solution aqueuse alcaline est formée par ajout d'un agent alcalin pour amener le pH à la valeur de pH précitée, cette solution aqueuse alcaline pouvant être éventuellement obtenue par ajout de l'agent alcalin dans la solution aqueuse formant bain gélifiant précité. 28 - Procédé selon l'une des revendications 1 1 à 27, caractérisé en ce que la quantité d'acide ajoutée à la suspension alcaline de particules après la réaction précitée de transacylation avec formation de liaisons covalentes est telle que l'eau de suspension des particules soit neutralisée ou amenée à un pH légèrement acide. 29 - Procédé selon l'une des revendications 1 1 à 28, caractérisé en ce que la solution aqueuse alcaline est formée par ajout d'un agent alcalin par exemple choisi parmi la soude, la potasse, I'ammoniaque, ou un composé organique aminé tel que par exemple la triéthanolamine ou la triéthylamine. 30 - Procédé selon l'une des revendications il à 29, caractérisé en ce que l'agent acide précité utilisé pour neutraliser la suspension alcaline de particules après la réaction dite de transacylation avec formation de liaisons covalentes, est par exemple choisi parmi un acide organique monocarboxylique ou polycarboxylique, porteur ou non de fonction alcool, et en particulier choisi parmi le groupe consistant de l'acide acétique, acide citrique, acide tartrique, acide succinique, acide malique, acide lactique, ou un acide minéral comme l'acide chlorhydrique ou l'acide sulfurique. 31 - Procédé selon l'une des revendications il à 30, caractérisé en ce qu'il comprend l'étape supplémentaire de liquéfaction du contenu des particules, après formation de la membrane précitée par la réaction de transacylation avec formation de liaisons covalentes, avec un agent liquéfiant. 32 - Procédé selon la revendication 31, caractérisé en ce que l'agent liquéfiant précité est une solution aqueuse de citrate ou de phosphate contenant en particulier une concentration de citrate ou de phosphate comprise entre 0,1 M et 1 M, et de préférence entre 0,2 M et 0, 5 M. 33 - Procédé selon l'une des revendications 11 à 32, caractérisé en ce que, dans la solution aqueuse initiale préparée à l'étape (a) précitée, on introduit un ou plusieurs principes actifs, à l'état de solution, de suspension ou émulsion, en particulier une ou plusieurs substances d'intérêt cosmétique, pharmaceutique, biomédical, ou agroalimentaire, des substances utilisables pour le diagnostic ou comme réactifs, des particules d'un matériau adsorbant tel que du charbon actif, une mousse contenant des bulles de gaz tel que l'air, des microorganismes, des oeufs, des graines éventuellement additionnées de substances diverses protectrices ou influençant leur germination ou leur croissance, des cellules, tissus, organes, embryons, du matériel génétique du règne animal ou végétal. 34 - Procédé selon l'une des revendications 1 1 à 33, caractérisé en ce que la polyamine précitée est une protéine douée d'une activité biologique spécifique telle qu'une enzyme, une hormone, un anticorps tel qu'un anticorps monoclonal, I'hémoglobine, seule ou mélangée à une autre protéine. 35 - Utilisation d'une réaction de transacylation avec formation de liaisons covalentes entre un polysaccharide porteur de groupements carboxyliques estérifiés et une substance polyaminée pour la fabrication en milieu aqueux de particules, notamment billes, capsules ou sphères, comprenant au moins en surface une membrane formée par le produit de réaction selon la dite réaction de transacylation avec formation de liaisons covalentes entre ledit polysaccharide estérifié et ladite polyamine, ledit polysaccharide estérifié et ladite polyamine étant avantageusement définis selon l'une quelconque des revendications précédentes. 36 - Composition telle qu'une composition cosmétique, pharmaceutique, alimentaire, enzymatique, composition pour épuration sanguine, composition pour réactifs, compositions pour agriculture, compositions pour graine enrobée, composition pour production biotechnologique, caractérisée en ce qu'elle comprend des particules définies à l'une quelconque des revendications 1 à 10, ou telle qu'obtenue par le procédé selon l'une quelconque des revendications 1 1 à 34.