FR 2703996 A1 19941021 FR 9304530 A 19930416 ENSEMBLE DE TRANSPOSITION DESTINE AU TRANSFERT D'UN GENE D'INTERET DANS LE GENOME D'UNE CELLULE EUCARYOTE. La présente invention a pour objet un ensemble de transposition permettant le transfert de gènes d'intérêt dans le génome d'une cellule ou d'un organisme eucaryote. Un tel ensemble est particulièrement utile à des fins de thérapie génique. De nombreux éléments pouvant être mis en oeuvre par l'intégration de gènes d'intérêt dans le génome eucaryote, ont été décrits dans les publications de l'art antérieur. Les éléments classiques sont soit des vecteurs intégratifs, par exemple des vecteurs rétroviraux soit des vecteurs non-intégratifs, par exemple des vecteurs adénoviraux. Toutefois ces vecteurs de l'art antérieur ne présentent pas que des avantages. En effet, les vecteurs rétroviraux s'intègrent au hasard de façon non-spécifique dans le génome cellulaire. Ainsi, le risque de mutagénèse insertionnelle liée soit à l'inactivation de gènes essentiels à la cellule, soit à l'activation d'oncogènes pouvant donner lieu à une prolifération tumorale, n'est pas à négliger avant d'envisager leur utilisation en thérapie génique humaine. En ce qui concerne les vecteurs non-intégratifs, ils présentent des inconvénients liés à une instabilité du fait de leur non-intégration dans le génome cellulaire, ce qui nécessite leur administration régulièrement renouvelée. Dans le cadre d'une thérapie génique destinée à l'homme, ceci risque de poser à long terme des problèmes d'immunisation contre le virus recombinant, des patients régulièrement traités. Un troisième type de méthode, plus récemment décrite, permet le transfert de gènes d'intérêt par recombinaison homologue dans un site défini du génome cellulaire. Cependant, la technique de recombinaison homologue se heurte encore à de nombreuses difficultés techniques. De plus, des événements de recombinaison non-homologue peuvent également se produire, de sorte que le risque de mutagénèse insertionnelle subsiste. D'autre part, l'art antérieur a depuis longtemps établi le schéma d'organisation et d'expression de l'ADN ribosomal (ADNr) chez les eucaryotes (Reeder, Trends Genet. 1990, 6, 390-395). D'une manière générale, l'ADNr est constitué par des copies multiples d'unités de transcription arrangées en tandems. Une unité transcriptionnelle est composée des gènes codant respectivement pour les ARNr 18S ou 16S, 5-8S et 28S ou 26S, qui entrent dans la constitution du ribosome (ciaprès désigné gène ARNr 18S etc). Chaque gène est séparé du suivant par des séquences transcrites, dont le rôle exact n'est pas encore défini.Les trois gènes ARNr compris dans une unité transcriptionnelle sont placés sous le contrôle d'un promoteur unique situé en amont dans la région non-transcrite qui sépare une unité de la suivante. Les unités d'ADNr sont transcrites par l'ARN polymérase I en une longue molécule d'ARNr précurseur (pré ARNr), qui est ensuite maturé pour produire les trois principaux types d'ARNr associés aux sous-unités ribosomales. De nombreuses publications ont signalé la présence fréquente d'éléments génétiques étrangers dans l'ADNr d'eucaryotes. Parmi ces éléments génétiques, on peut citer des introns de classe I ou II et des rétroposons, par exemple de classe R1, R2 ou R3. La présence de ces éléments étrangers peut éventuellement inactiver une fraction des unités transcriptionnelles de l'ADNr. Cela ne semble pas avoir de conséquences graves pour la vie des organismes les contenant. Ce phénomène a surtout été décrit chez la drosophile. Les introns de classes I et II sont définis par l'existence de séquences conservées formant des éléments structuraux caractéristiques de chacune des classes tels que définis par Cech et Bass (1986, Annu. Rev. Biochem. 55. 599-629). Plusieurs auteurs ont observé que certains introns de classes I et II sont mobiles. Ils peuvent être copiés et transférés spécifiquement dans des copies de gènes qui en sont dépourvus (intro). Ce processus de transposition, au moins dans la plupart des cas, s'avère être spécifique du point de vue de la région d'insertion. Parmi la soixantaine d'introns de classe I caractérisés jusqu'à présent, la majorité est localisée dans les gènes des mitochondries et des chloroplastes. L'art antérieur mentionne, dans trois cas seulement, la présence d'introns mobiles de classe I dans les gènes nucléaires. Ces introns ont été mis en évidence au niveau des gènes ARNr de trois espèces d'eucaryotes inférieurs, respectivement les gènes ARNr 26S de plusieurs souches de Tefrahymena (Kan et Gall, 1982, Nucl. Acids Res., 10, 2809-2821) et de la souche Carolma de Physarun: polycephalum, (Muscarella et Vogt, 1989, Cell, 56, 443-454; cet intron mobile étant désigné ciaprès intron 3) et enfin dans le gène ARNr 16S de Pneumocystis carinii (Edman et al., 1988, Nature, 334, 519-522). Jusqu'à présent, on a pas pu mettre en évidence la présence d'introns interrompant les gènes ARNr d'eucaryotes supérieurs. L'intron 3 de Physarum potycephalum est le mieux caractérisé. Sa mobilité a été démontrée expérimentalement (Muscarella et Vogt, 1989, Cell, 56, 443454). Cet intron code en partie pour une protéine de 160 acides aminés (Muscarella et al., 1990, Mol. Cel. Biol., 10, 3386-3396). Le codon d'initiation de la traduction putatif est situé en amont de l'intron, à l'extrémité 3' de la séquence exonique adjacente en 5' de l'intron. La protéine codée par l'intron 3, est une endonucléase qui reconnaît une séquence cible d'au moins 18 paires de bases (pb) présente dans la région d'insertion et est capable de cliver cette séquence exactement au niveau du site d'insertion de l'intron 3 (Muscarella et Vogt, 1989, Cell, 56, 443-454). La séquence cible reconnue par l'endonucléase comprend la séquence suivante: 5'CTATGACTCTCTTAAGGTAGCCAAA3' On suppose que la transposition de l'intron 3 est initiée par la reconnaissance de la séquence cible particulière par l'endonucléase spécifiquement codée par l'intron 3, suivie d'une coupure des deux brins de la molécule d'ADN au niveau de cette séquence particulière, libérant ainsi le site d'insertion. Puis par un échange de fibres impliquant les séquences flanquantes en 5' et 3' du site d'insertion, copie de la séquence intronique et recombinaison, l'intron 3 est inséré dans la copie du gène ARNr intron?, de manière précise et site-spécifique. Une fois l'intron 3 inséré dans une copie du gène intront, la séquence cible reconnue par l'endonucléase est interrompue par la séquence intronique de la manière suivante: 5'CTATGACTCTCT intron 3 TAAGGTAGCCAAA3' D'autre part, des rétroposons semblent également être présents dans l'ADNr de certains eucaryotes. D'une manière générale, les rétroposons forment un groupe très vaste et très hétérogène, notamment au niveau de leur séquence nucléotidique. Par rétroposon, on entend des éléments apparentés aux rétrovirus, mais dépourvus de "long terminal repeats" (LTR).Ils comprennent un ou des cadre(s) de lecture ouvert(s) susceptible(s) de coder pour des protéines présentant une homologie avec des protéines rétrovirales, comme par exemple la reverse-transcriptase (Jakubczak et al., 1991, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 88, 3295-3299). Chez un certain nombre d'eucaryotes non-mammifères, notamment les insectes, on a trouvé des rétroposons présentant une spécificité d'insertion remarquable, localisée au niveau des gènes ARNr. La mobilité de certains d'entre eux a été observée. Plusieurs familles (notamment R1, R2 et R3) ont été définies en fonction de leur région d'insertion spécifique dans les gènes ARNr. Les rétroposons des classes R1 et R2 sont notamment illustrés par les rétroposons RlBm et R2Bm de Bombyx mon (Xiong et Eickbush, 1988, Cell, 55, 235-246 ; Xiong et Eickbush, 1988, Mol. Cell. Biol., 8, 114-123 ; Xiong et al., 1988, Nucl. Ac. Res., 16, 10561-10573) et les rétroposons RlDm et R2Dm de Drosophila melanogaster (Jakubczak et al., 1990, J. Mol. Biol., 212, 37-52).Ils contiennent un cadre de lecture ouvert susceptible de coder pour une protéine de grande taille dont la partie centrale présente une homologie avec la famille des réverse-transcriptases. Xiong et Eickbush (1988, Cell, 55, 235-246) rapportent que la protéine codée par le rétroposon R2Bm de Bombyx mori présente en outre une activité endonucléase. Cette nucléase reconnait et clive une séquence cible contenue dans la région d'insertion de R2Bm située dans le gène ARNr 28S du génome de l'insecte. Une nouvelle classe de rétroposons ribosomaux, désignée R3, a récemment été mise en évidence. On a pas encore caractérisé de protéine codée par cet élément. Cependant, la région d'insertion spécifique de l'élément R3 dans l'ADNr de Scana coprophila a été décrite (Kerrebrock et al., J. Mol. Biol., 1989, 210, 1-13). A côté des rétroposons, il existe un grand nombre d'éléments génétiques mobiles qui ont été parfois désignés sous le nom de rétroposons par les auteurs les décrivant, mais dont on a pas encore montré qu'ils codent pour une protéine présentant une homologie avec la famille des protéines rétrovirales, notamment la reverse-transcriptase. On a également trouvé ce type d'éléments au niveau de séquences bien définies de gènes ARNr des organismes les contenant (voir par exemple Back et al., 1984, EMBO J., 3, 2523-2529). De manière surprenante, on a maintenant trouvé que d'une part les séquences cibles reconnues par les endonucléases codées par les deux éléments génétiques mobiles pour lesquels les données sont disponibles (intron 3 de Physarum potycephalum et rétroposon R2Bm de Bombyx mori) et d'autre part les régions d'insertion de certains éléments génétiques mobiles dont on a pas encore montré qu'ils codent pour une endonucléase et qui ont été divulguées dans l'art antérieur (Jakubczak et al., 1991 Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 88, 3295-3299 ; Paskwitz et Collins, 1989, Nucleic Acid Res., 17, 8125-8133 ; Kerrebrock et al., 1989, J. Mol. Biol., 210, 1-13 ; Kan et Gall, 1982, Nucleic Acid Res., 10, 2809-2821 ; Edman et al., 1988, Nature, 263, 519-522), sont conservées dans les gènes ARNr de divers mammifères, notamment l'homme et la souris. Ainsi, les séquences des régions d'insertion des introns mobiles de Tetrahymena, de Pneumocystis cannai et de Physamm polycephalum, et des rétroposons R2Bm de Bombyx mort, et R3 de Scaria coprophila sont conservées à l'identique dans les gènes ARNr de mammifères. Par contre, les séquences de la région d'insertion des rétroposons RlDm et RlBm sont homologues mais non identiques à une séquence présente dans le gène ARNr 28S de mammifère. Par conséquent, la présente invention a pour objet un ensemble de transposition destiné au transfert d'un fragment d'ADN d'intérêt dans le génome d'une cellule hôte eucaryote, qui comprend une cassette d'intégration, essentiellement constituée d'un élément génétique mobile au sein duquel est inséré ledit fragment d'ADN d'intérêt ; ladite cassette d'intégration étant capable de s'intégrer d'une façon site-spécifique dans un site d'insertion spécifique situé dans l'ADN nucléaire ribosomal de ladite cellule hôte. Un ensemble de transposition selon l'invention présente l'avantage de permettre l'intégration d'un fragment d'ADN d'intérêt dans une région définie et non essentielle du génome cellulaire. Un tel ensemble est notamment utile à des fins de thérapie génique. Aux fins de la présente invention, la cassette d'intégration doit comporter un élément génétique mobile qui possède la capacité de s'intégrer par un mécanisme site-spécifique, dans de l'ADNr nucléaire, en particulier au niveau du gène ARNr 28S, 18S ou 5-8S. De manière plus précise, cet élément génétique mobile doit s'intégrer dans un site d'insertion situé dans une région d'insertion dont la séquence est conservée à l'identique ou non dans l'ADNr nucléaire de la cellule-hôte. Pour une meilleure compréhension, on précise que le terme "site d'insertion" définit l'endroit entre 2 nucléotides où s'insère un élément génétique mobile. De même, par "région d'insertion", on entend les séquences nucléotidiques en 5' et 3' du site d'insertion qui sont requises pour la transposition site-spécifique. D'une manière générale, chaque élément génétique mobile possède une région d'insertion qui lui est spécifique. Comme mentionné précédemment pour les rétroposons RlBm et R1Dm, il n'est pas exigé que la région d'insertion dans la cellule hôte comporte à l'identique les séquences de la région d'insertion naturelle (dans l'organisme d'origine).Ainsi, la séquence de la région d'insertion dudit élément génétique mobile dans la cellule hôte eucaryote présentera un degré d'homologie avec la séquence de la région d'insertion naturelle supérieur à 80%, de manière avantageuse supérieur à 90% et de préférence supérieur à 95%. L'élément génétique mobile est avantageusement sélectionné parmi des introns mobiles de classe I ou rl, et des rétroposons tels que les rétroposons de classe R1 R2 out3. Un élément génétique mobile peut être constitué par un fragment fonctionnel ou un variant dudit élément. Par fragment fonctionnel, on entend tout fragment ayant conservé la capacité à s'intégrer de l'élément complet. Un variant peut comporter une ou plusieurs mutations par rapport à la séquence nucléotide naturelle de l'élément, notamment la substitution, addition ou délétion d'un ou plusieurs nucléotide(s), à condition que ces mutations n'en altèrent pas la fonction. De manière plus particulière, l'élément génétique mobile est sélectionné parmi: - l'intron 3 de Physanw polycephalum, souche Carolina, un fragment ou un variant dudit intron, - l'intron mobile de classe I de Tetrahymena, un fragment ou un variant dudit intron, - l'intron mobile de classe I de Pneumocystis carinii, un fragment ou un variant dudit intron, - le rétroposon R2Bm de Bombyx mon, un fragment ou un variant dudit rétroposon et, - le rétroposon R3 de Scana coprophila, un fragment ou un variant dudit rétroposon. La présence dans cet élément génétique mobile, de tout ou partie d'un cadre de lecture ouvert susceptible de coder pour une intégrase, est une caractéristique préférée. D'une manière générale, par intégrase, on entend une protéine présentant une activité enzymatique lui permettant de participer directement ou indirectement à la transposition de l'élément génétique mobile spécifiquement au niveau de son site d'insertion dans l'ADNr nucléaire d'une cellule eucaryote. Avantageusement, l'intégrase peut être constituée notamment par: (1) une protéine présentant une activité endonucléase capable de reconnaître une séquence cible spécifique inclue dans la région d'insertion de l'élément génétique mobile qui code pour elle et de cliver ladite séquence cible, ou (2) une protéine présentant une homologie avec la famille des réversetranscriptases. On peut citer, par exemple, l'endonucléase codée en partie par l'intron 3 de Physarum popycephalum. Cette endonucléase initie la transposition de l'intron 3 en reconnaissant sa séquence cible et clivant la molécule d'ADN au niveau de cette séquence spécifique. On peut citer également la protéine codée par le rétroposon R2Bm de Bombyx mon. L'activité endonucléase de ladite protéine est probablement impliquée dans la transposition de R2Bm au niveau de sa région d'insertion spécifique mais par un mécanisme qui n'est pas connu à ce jour. Le fragment d'ADN d'intérêt peut être introduit dans l'élément génétique mobile par les techniques classiques du génie génétique. Il peut être intégré dans ou en dehors du cadre de lecture ouvert codant pour une éventuelle intégrase. Selon un aspect particulièrement avantageux de l'invention, le fragment d'ADN d'intérêt est inséré dans le cadre de lecture ouvert, afin d'empêcher l'expression de l'intégrase. Ceci introduit une sécurité pour éviter la propagation incontrôlée de la cassette d'intégration dans le génome de la cellule hôte. Dans ce cas, l'intégrase spécifique de l'élément génétique mobile mis en oeuvre dans l'ensemble de transposition selon l'invention, devra être fournie à la cellule hôte de manière transitoire pendant un temps suffisamment long pour permettre la transposition de la cassette d'intégration dans sa région d'insertion spécifique. Les moyens de fournir en trans une protéine à une cellule eucaryote sont nombreux et connus de l'homme de l'art Par exemple, l'ensemble de transposition selon l'invention peut être introduit dans un vecteur (tel que défini ci-après), comprenant en outre une cassette d'expression de l'intégrase spécifique de l'élément génétique mobile présent dans l'ensemble de transposition. D'une manière alternative, on peut transfecter parallèlement la cellule hôte eucaryote avec un vecteur helper comprenant une cassette d'expression de l'intégrase ou fournir à la cellule hôte, l'intégrase sous forme purifiée. Le fragment d'ADN d'intérêt peut être tout fragment capable d'être transcrit en ARN pour produire un ARN anti-sens, par exemple une séquence d'ARN complémentaire d'un gène pathogène susceptible de former un duplex avec un transcrit pathogène afin d'inhiber la traduction en protéine pathogène. Un gène pathogène est: (1) un gène qui n'est pas présent dans les cellules eucaryotes, par exemple un gène présent dans le génome d'un organisme pathogène (bactérie, virus ou parasite), ou (2) un gène homologue ou un gène homologue muté, par exemple un oncogène, qui est présent mais normalement pas exprimé dans les cellules eucaryotes normales et dont l'expression anormalement induite peut causer une maladie comme le cancer. De façon alternative, le fragment d'ADN d'intérêt peut coder pour une protéine d'intérêt et de manière préférée, une protéine dont l'absence d'expression ou l'expression en quantité anormale ou sous forme mutante est associée à une maladie génétique. Le fragment d'ADN d'intérêt peut coder pour une protéine mature ou un précurseur de celle-ci. Dans le premier cas, il comprend la séquence codante pour une protéine mature permettant l'expression de la protéine de façon intracellulaire. Dans le dernier cas, le fragment d'ADN d'intérêt peut également inclure une séquence signal permettant la sécrétion de ladite protéine de la cellule hôte. Le fragment d'ADN d'intérêt peut coder pour une protéine chimérique provenant de la fusion de séquences d'origines diverses. Les exemples de protéines pouvant être codées par le fragment d'ADN d'intérêt comprennent: - des cytokines, comme l'interféron alpha, l'interféron gamma et différents types de facteurs de croissance, - des récepteurs membranaires, comme les récepteurs impliqués dans la transmission des signaux de la surface à l'intérieur des cellules et les récepteurs reconnus par des organismes pathogènes, comme le récepteur CD4 présent à la surface des lymphocytes T et reconnu par la glycoprotéine d'enveloppe du virus VIH (Virus d'Immunodéficience Humaine), - des enzymes, comme les ribonucléases et la thymidine-kinase (TK) du virus simplex de l'herpès de type I (HSV-1).Cette dernière présente une affinité supérieure par rapport à l'enzyme WK de cellule mammifère pour certains analogues de nucléosides, comme l'acyclovir ou le gancyclovir. L'enzyme TK-HSV-1 convertit les analogues en précurseurs de nucléotides. Ces précurseurs toxiques seront donc incorporés dans l'ADN des cellules en état de réplication. Cette incorporation permet de tuer spécifiquement les cellules en division, comme les cellules cancéreuses, - des inhibiteurs d'une activité enzymatique, comme l'alpha antitrypsine, l'antithrombine III, la protéine C et les inhibiteurs de protéases spécifiques d'un organisme pathogène, - des facteurs de coagulation, comme le facteur VIII, le facteur IX et la thrombine, - des protéines participant aux canaux ioniques, comme la protéine CEIR (Cystic Fibrosis Transmembrane Conductance Regulator), - des protéines capables d'inhiber l'activité d'une protéine produite par un gène pathogène, comme l'antigène supresseur de tumeur p53, - des variants de protéines pathogènes mutés de façon à altérer leur fonction biologique, comme des mutants trans-dominants de la protéine de régulation TAT du virus VIH capables de compétition avec la protéine virale native pour la liaison à la séquence cible, empêchant l'activation de l'expression des gènes viraux et, - des épitopes antigéniques permettant d'accroître l'immunité de la cellule hôte. Le fragment d'ADN d'intérêt peut être muté afin de permettre l'expression d'une protéine d'intérêt dont les propriétés biologiques sont modifiées, par exemple un variant de l'alpha antitrypsine dont le résidu méthionine en position 358 du site actif a été remplacé par une leucine. Un tel variant est fonctionnel dans des conditions d'oxydation telle que des conditions d'inflammation. Une fois la cassette d'intégration introduite dans l'ADNr de la cellule hôte, le fragment d'ADN d'intérêt peut être placé sous la dépendance du promoteur de l'unité transcriptionnelle de l'ADNr de la cellule hôte. De manière alternative, le fragment d'ADN d'intérêt peut être placé sous le contrôle d'éléments d'expression appropriés insérés dans l'élément génétique mobile. Expression signifie ici transcription en ARN et/ou traduction de cet ARN en protéine. Selon cette alternative, les éléments de contrôle de l'expression comprennent notamment un promoteur approprié. De tels promoteurs sont bien connus de l'homme de l'art et sont insérés en amont du fragment d'ADN d'intérêt par les te cliniques conventionnelles du génie génétique. Le promoteur retenu peut être un promoteur reconnu par l'ARN polymérase I, de façon à favoriser l'expression du fragment d'ADN d'intérêt, après intégration de la cassette d'intégration dans les gènes ARNr de la cellule hôte eucaryote. Par exemple, le fragment d'ADN d'intérêt peut être placé sous le contrôle des éléments de régulation compris dans les régions non-transcrites de l'ADNr impliqués dans la transcription des gènes ARNr. De tels promoteurs seront choisis de manière à être fonctionnels dans la cellule hôte eucaryote qui a été retenue. De manière alternative, le promoteur retenu peut être un promoteur reconnu par l'ARN polymérase II. De tels promoteurs sont bien connus de l'homme de l'art. Le promoteur peut être isolé d'un gène cellulaire ou d'un virus. Il peut être ubiquitaire permettant une expression permanente du fragment d'ADN d'intérêt dans tous les types de cellules hôtes. Le terme promoteur inclut également un promoteur régulable, par exemple un promoteur tissu-spécifique.On peut citer notamment le promoteur du gène HMG (Hydroxy-Methyl-Glutaryl coenzyme A réductase), du gène TK du virus HSV-1, du virus SV40 (Simian virus 40), les promoteurs Em et MLP (Major Late Promoter) de l'adénovirus, le LTR du virus MoMuLV (Moloney Murine Leukemia Virus), le promoteur du gène FIX conférant une expression foie-spécifique ou le promoteur des gènes immunoglobulines spécifique des cellules lymphocytaires. De manière avantageuse, l'ensemble de transposition comprend outre une cassette d'intégration des éléments permettant ou favorisant l'intégration sitespécifique de cette cassette. Selon un mode particulier de l'invention, notamment lorsque l'élément génétique mobile mis en oeuvre est un intron mobile de classe I ou IN l'ensemble de transposition selon l'invention comprend en outre: - en 5' de la cassette d'intégration une région d'au plus îOkb, présentant au moins 80% d'homologie avec les séquences du gène ARNr de la cellule hôte immédiatement adjacentes en 5' audit site d'insertion; et - en 3' de la cassette d'intégration une région d'au plus lOkb, présentant au moins 80% d'homologie avec les séquences du gène ARNr de la cellule hôte immédiatement adjacentes en 3' audit site d'insertion. En effet, il peut être avantageux de placer ladite cassette d'intégration dans un environnement ADNr, particulièrement lorsque la transposition implique un phénomène d'échange de fibres comme cela a été montré notamment pour I'intron 3. L'échange de fibres implique les séquences donneuses intron+ (de l'ensemble de transposition) et les séquences receveuses intron? (de la cellule hôte). Seule la cassette d'intégration sera transposée dans le génome de la cellule hôte. Les séquences du gène ARNr immédiatement adjacentes en 5) et 3' du site d'insertion interviennent uniquement dans le processus de transposition. Afin de favoriser la transposition de la cassette d'intégration, on préférera avoir une homologie parfaite entre les séquences donneuses et receveuses impliquées dans l'échange de fibre. Ainsi, un ensemble de transposition préféré comprendra en outre: - en 5' de la cassette d'intégration une région d'au plus lOkb, présentant 100% d'homologie avec les séquences du gène ARNr de la cellule hôte immédiatement adjacentes en 5' audit site d'insertion; et - en 3' de la cassette d'intégration une région d'au plus lOkb, présentant 100% d'homologie avec les séquences du gène ARNr de la cellule hôte immédiatement adjacentes en 3' audit site d'insertion. Les séquences du gène ARNr immédiatement adjacentes en 5' et 3' au site d'insertion peuvent être isolées selon les techniques classiques du génie génétique, par exemple par clonage ou PCR (Polymerase Chain Reaction) ou synthèse chimique. De manière plus particulière, ces séquences auront une longueur d'au plus lOkb, de manière avantageuse d'au plus 8kb et de préférence d'au plus Skb. La présente invention concerne également un moyen d'introduction d'un ensemble de transposition selon l'invention dans une cellule eucaryote. De tels moyens consistant à introduire un acide nucléique dans une cellule eucaryote sont généralement connus de l'homme de l'art. Aux fins de la présente invention, l'ensemble de transposition selon l'invention peut être introduit dans un moyen d'introduction sélectionné parmi les véhicules de délivrance de type liposomes et lipides cationiques synthétiques et les vecteurs de clonage et d'expression classiquement utilisés dans les cellules eucaryotes. L'encapsulation dans un véhicule de délivrance et les techniques de clonage dans des vecteurs constituent des techniques classiques connues de l'homme de l'art. Mais d'autres protocoles permettant d'introduire un acide nucléique dans une cellule peuvent également être employés, comme par exemple la précipitation au phosphate de calcium, la technique du DEAE dextrane, l'injection directe de l'acide nucléique dans une cellule ou le bombardement de microparticules d'or couvertes d'acide nucléique dans les cellules d'un animal. L'acide nucléique peut être introduit sous forme superenroulée, circulaire ou linéaire. D'une manière avantageuse, le moyen d'introduction selon l'invention est un vecteur comprenant les éléments appropriés à sa maintenance dans la cellule hôte pendant un temps suffisamment long pour permettre le transfert de la cassette d'intégration dans la région d'insertion. Un tel vecteur doit être capable d'entrer dans une cellule eucaryote supérieure, de rester de préférence sous forme extrachromosomique et de se maintenir dans la cellule pendant un temps suffisamment long pour permettre la transposition de la cassette d'intégration dans le génome de la cellule hôte. Un tel vecteur peut être sous la forme d'un plasmide ou d'un vecteur viral. De préférence, le moyen d'introduction selon l'invention est un vecteur de type non-intégratif. On peut citer un vecteur dérivé du virus de l'herpes simplex ou d'un adénovirus. D'une manière particulièrement préférée, le moyen d'introduction selon l'invention est un vecteur dérivé d'un adénovirus, comme par exemple l'adénovirus de type 5. Selon un mode avantageux et comme évoqué précédemment, le moyen d'introduction selon l'invention peut contenir en outre une cassette d'expression permettant la production de l'intégrase spécifique de l'ensemble de transposition. Une telle cassette d'expression comprend le fragment d'ADN codant pour ladite intégrase, placé sous le contrôle d'éléments appropriés permettant son expression. Par éléments appropriés permettant son expression, on entend l'ensemble des éléments permettant la transcription dudit fragment d'ADN en ARNm et la traduction de l'ARNm en protéine. Ces éléments comportent notamment un promoteur approprié, de préférence un promoteur reconnu par l'ARN polymérase II et permettant une expression forte et ubiquitaire, par exemple le promoteur SV40. Le moyen d'introduction selon l'invention peut en outre comprendre une cassette d'expression permettant l'expression d'un gène de sélection, permettant la détection et l'isolement des cellules hôtes comprenant ledit moyen d'introduction. Dans le contexte de l'invention, le gène codant pour le marqueur de sélection peut être sous le contrôle d'éléments appropriés permettant son expression dans la cellule hôte, tels que définis ci-dessus. L'invention est également relative à un procédé in vitro de transfert d'un fragment d'ADN d'intérêt dans le génome d'une cellule hôte eucaryote au niveau de l'ADN nucléaire ribosomal, selon lequel on introduit dans ladite cellule hôte un ensemble de transposition selon l'invention ou un moyen d'introduction selon l'invention. Avantageusement, on peut en outre fournir dans le procédé in vitro selon l'invention, l'intégras e spécifique de l'ensemble de transposition selon l'invention à la cellule hôte. L'invention a également pour objet une cellule eucaryote comprenant un ensemble de transposition selon l'invention ou un moyen d'introduction selon l'invention. Ladite cellule sera de manière avantageuse une cellule de mammifère, et de manière préférée une cellule humaine. La présente invention concerne également une composition pharmaceutique comprenant à titre d'agent thérapeutique, un ensemble de transposition selon l'invention, un moyen d'introduction selon l'invention ou une cellule selon l'invention, en association avec un support acceptable d'un point de vue pharmaceutique. La composition pharmaceutique selon l'invention, est en particulier destinée au traitement préventif ou curatif de maladies telles que: - des maladies génétiques, comme par exemple l'hémophilie ou la mucoviscidose, - des cancers, comme par exemple ceux induits par des oncogènes ou des virus, - des maladies rétrovirales, comme par exemple le SIDA (syndrome de l'immunodéficience acquise), et - des maladies virales récurrentes, comme par exemple les infections virales provoquées par le virus de l'herpès. Une composition pharmaceutique selon l'invention peut être fabriquée de manière conventionnelle. En particulier, on associe une quantité thérapeutiquement efficace d'un agent thérapeutique à un support tel qu'un diluant. Une composition selon l'invention peut être administrée par n'importe quelle voie conventionnelle en usage dans le domaine de l'art, en particulier par voie sous-cutanée, par voie intramusculaire, par voie intraveineuse ou par voie intra-trachéale. L'administration peut avoir lieu en dose unique ou répétée une ou plusieurs fois après un certain délai d'intervalle. La voie d'administration et le dosage appropriés varient en fonction de divers paramètres, par exemple, de l'individu traité ou du fragment d'ADN d'intérêt. Une composition pharmaceutique peut comprendre en outre un adjuvant acceptable d'un point de vue pharmaceutique. Avantageusement, la composition pharmaceutique selon l'invention comprend en outre une intégrase ou une cassette d'expression de l'intégrase. L'invention s'étend également à une méthode de traitement selon laquelle on administre une quantité thérapeutiquement efficace d'un ensemble de transposition selon l'invention, un moyen d'introduction selon l'invention ou une cellule selon l'invention à un patient ayant besoin d'un tel traitement. L'invention est illustrée ci-après en référence à la figure 1 qui représente schématiquement un ensemble de transposition (1) (grande boîte blanche) qui comprend de 5' vers 3': les séquences du gène ARNr (6) (boîte hachurée) en 5' du site d'insertion (5) (traits noirs), une cassette d'intégration (3) (petite boîte blanche) constituée d'un élément génétique mobile (4) (boîte rayée horizontalement) au sein duquel est inséré un fragment d'ADN d'intérêt. (2) (boîte pointillée) et les séquences du gène ARNr (7) (boîte hachurée) en 3' du site d'insertion (5). EXEMPLES: EXEMPLE 1 : Construction d'un ensemble de transposition pour l'intégration site-spécifique dans les gènes ARNr 28S d'une cellule humaine. mettant en oeuvre l'intron 3 de Phvsarum polvcephalum souche Carolina. L'exemple se réfère à un ensemble de transposition qui comporte (1) l'intron 3 modifié de manière à créer un site unique de restriction XhoI dans la séquence intronique. Le site XhoI permettra d'introduire un fragment d'ADN d'intérêt quelconque. En effet le fragment d'ADN d'intérêt peut être isolé de manière à présenter des extrémités cohésives compatibles avec les extrémités générées par une digestion XhoI (fragment de restriction XhoI ou SalI ou Xhol-SalI ou addition de linkers XhoI et/ou SalI ou mutagénèse dirigée afin de créer les sites XhoI et/ou SalI requis). D'une manière alternative, le site de clonage XhoI peut être traité par exemple à la nucléase de haricot Mung afin de générer des extrémités franches entre lesquelles on peut cloner tout fragment d'ADN d'intérêt à bouts francs. Le fragment d'ADN de 0,94 kb comportant l'intron 3 peut être isolé notamment par clonage, PCR ou synthétisé chimiquement, et (2) les séquences immédiatement adjacentes en 5' et 3' au site d'insertion de l'intron 3. Ces séquences sont isolées du gène ARNr 28S humain comprenant la région d'insertion de l'intron 3 parfaitement conservée. Ainsi l'intron mobile sera placé dans un environnement ADNr. L'échange de fibres impliquera des séquences parfaitement homologues puisque toutes deux d'origine humaine (séquences donneuses de la cassette d'intégration et séquences receveuses de la cellule humaine hôte). Les séquences immédiatement adjacentes en 5' et 3' peuvent être isolées notamment par clonage, PCR ou synthétisées chimiquement. 1. Clonage par PCR des séquences immédiatement adjacentes en 5' et 3' au site d'insertion de l'intron 3 à partir du gène humain ARNr 28S. Des amorces ont été définies à l'aide de la séquence du gène ARNr 28S humain inclus dans la banque de donnée DNAstar (référence : HUMRGM, la séquence reportée allant de la position + 1 à la position + 5025). On a localisé le site d'insertion et la région d'insertion de l'intron 3 (tels que reportés dans Muscarella et Vogt, 1989, Cell, 56, 443454). Le site d'insertion est compris entre les nucléotides 3742 et 3743 du gène ARNr 28S humain. Un premier fragment d'ADN correspondant au fragment allant de la position 2324 à la position 3742 du gène ARNr 28S humain est généré par PCR. L'amorce correspondant au brin codant (position 2324 à 2349) est reportée dans la SEQ ID NO:1. Elle comporte en outre une extrémité 5' libre portant les sites Hindi et NheI. L'amorce reverse est décrite dans la SEQ ID NO:2 et comporte une extrémité 5' incluant les sites SpeI et XbaI. L'amplification est réalisée avec la polymérase de Thermus Aquaticus (Perkin Elmer Cetus) selon les conditions standards indiquées par le fabricant. On utilise comme matrice du DNA humain préparé classiquement. Le produit amplifié est vérifié sur gel d'agarose et séquencé. On isole également par PCR, le deuxième fragment de gène ARNr 28S humain. n s'agit de la portion de gène allant de la position 3743 à 4438. Les deux oligonucléotides mis en oeuvre sont reportés dans les SEQ ID NO:3 et 4. La première amorce comporte à son extrémité 5' un site SpeI tandis que l'amorce reverse contient de 5' vers 3' les sites EcoRI, NheI et BglII. La réaction d'amplification est réalisée à partir de l'ADN génomique humain préparé classiquement, dans les conditions standards couramment employées par l'homme du métier. Le fragment PCR ainsi généré est vérifié sur gel d'agarose et séquencé. Le fragment comprenant lkb de séquences humaines immédiatement adjacentes en 5' au site d'insertion de l'intron 3, est digéré par les enzymes Hindi et SpeI. Le fragment comprenant les séquences immédiatement adjacentes en 3' est digéré par SpeI et EcoRI. Les deux fragments sont ensuite ligués dans le plasmide pUC 19 (Yanisch-Perron et al., 1985, Gene, 33, 103-119) préalablement digéré par Hindi et EcoRL Le mélange de ligation est transformé dans la souche Eschenchia coll 5K (E. coli 5K) donnant lieu au plasmide pHREI. 2. Clonage de l'intron 3 de Phvsarum polvcephalum modifié. On isole l'intron 3 (0,94kb) par la technique PCR. Les amorces sont établies à partir des données de séquence reportées dans la littérature (Muscarella et al, 1990, Mol. Cell. Biol., 10, 3386-3996 ; Johansen et al, 1992, Curr. Genet., 22, 297304). Les amorces sont décrites dans les SEQ ID NO:5 et 6. Elles comprennent toutes deux un site KpnI dans leur région 5'. La réaction d'amplification est effectuée à partir d'un banque d'ADN génomique de Physamm polycephalum, souche Carolrna (Muscarella et Vogt, 1989, Cell, 56, 443-454), en appliquant les conditions standards connues de l'homme de métier. Après amplification, la taille du fragment obtenu est contrôlée sur gel d'agarose et sa séquence vérifiée. Le fragment PCR est digéré par KpnI et cloné dans le site KpnI du vecteur pUC19 pour donner pINEL Le vecteur pINEI est digéré par NheI, site unique situé dans l'intron 3 de Physamm polycephalum. Le vecteur pINEI linéarisé est traité à la nucléase de haricot Mung et ligué à un linker XhoI (Stratagène). Le vecteur en résultant est désigné pINEII et comporte donc un site unique XhoI pour l'insertion d'un fragment d'ADN d'intérêt. 3. Insertion de l'intron 3 de Phvsamm poEvsephalum (XhoI) dans un environnement gène ARNr 28S humain Le fragment KpnI obtenu par digestion de pINEII est traité à la polymérase de T4 pour donner un fragment à bouts francs dont les extrémités 5' et 3' correspondent exactement à celles de l'intron. Parallèlement, pHREI est digéré par les enzymes XbaI et SpeI, puis traité à la nucléase de haricot Mung (selon la technique reportée dans Sambrook et al, 1989, Cold Spring Harbor Press). Ceci génère un grand fragment comportant la majorité du vecteur pHREI, dont les extrémités franches correspondent respectivement aux nucléotides en position 3742 et 3743 du gène ARNr 28S humain. Le fragment issu de pINEII comportant l'intron 3 de Physanan polycephalum est ligué au vecteur pHREI traité comme indiqué ci-dessus, pour donner le vecteur pHREII. Après introduction d'un fragment d'ADN d'intérêt, le vecteur pHREI comprendra donc un ensemble de transposition permettant l'insertion d'une cassette d'intégration (intron 3 comprenant un fragment d'ADN d'intérêt) dans le gène ARNr 28S humain. EXEMPLE 2 : Construction d'un vecteur adénoviral pour l'intégration du gène néomycine (neo) dans le génome humain. On construit un vecteur adénoviral comportant: (1) l'intron 3 de Physarum polycephalum (Xho+) au niveau duquel on introduit une première cassette d'expression permettant l'expression du gène neo, (2) une deuxième cassette d'expression, celle de l'endonucléase site spécifique IPpo, codée en partie par l'intron 3. La deuxième cassette d'expression permettra la production de l'endonucléase IPpo pendant un temps suffisamment long pour permettre la transposition de la cassette d'intégration dans le génome de la cellule hôte. Le codon initiateur de la traduction de IPpo se situe dans la séquence exonique en 5' de l'intron 3 dans le gène ARNr 26S de Physamm polycephalum. La séquence immédiatement adjacente en 5' au site d'insertion isolée du gène ARNr 28S humain ne contient pas l'ATG initiateur présent dans la région équivalente chez Physarum, et (3) Les éléments appropriés à la maintenance du vecteur dans la cellule hôte pendant un temps suffisamment long pour permettre la transposition de la cassette d'intégration. 1. Construction de la cassette d'expression de IPpo. Un fragment de 167 nucléotides contenant la région poly A de SV40 (Fitzgerald et Shenk, 1981, Cell, 24, 251-260) est synthétisé sous forme d'un fragment HindE-EcoRI à l'aide d'un synthétiseur automatique (Milligen 7500). Un site BglII est introduit juste en amont du site EcoRL On isole un fragment HindIII-BamHI de pMSG-CAT (Pharmacia) comprenant le promoteur précoce du virus SV40. On introduit le fragment synthétique HindIII-EcoRI et le fragment HindE-BamHI dans un dérivé du vecteur pUC19 (Hindm") digéré par BamHI et EcoRI. Le dérivé est obtenu après digestion de pUC19 par HindIII et traitement à la polymérase de T4. Le vecteur obtenu est désigné pSV40EI. Un fragment d'ADN comportant la séquence codant pour la nucléase IPpo est isolé sous forme d'un fragment PCR. La séquence reportée dans l'art antérieur (Muscarella et al., 1990, Mol. Cell. Biol, 10, 3386-3396) a permis de définir deux amorces, qui sont respectivement décrites dans les SEQ ID NO:7 et 8. Les 2 oligonucléotides comportent un site Hindi à leur extrémité 5'. L'amplification est effectuée dans les conditions standards connues de l'homme de métier à partir d'une banque d'ADN génomique de Physamm polycephalum, souche Carolina. Le fragment PCR généré, après vérification sur gel d'agarose et séquençage, est digéré par Hindi et introduit dans le site unique Hindi du vecteur pSV40EI. On identifie un clone présentant une orientation correcte de la séquence codant pour IPpo vis à vis du promoteur SV40. Le clone est désigné pSV40EII. 2. Clonage de la cassette d'expression de l'endonucléase IPpo dans le vecteur pHREII. Le vecteur pHREII est digéré par BglII et traité à la polymérase de T4. Le vecteur pSV40EII est digéré par les enzymes PstI et BglII. Le fragment PstI-BglII comportant la cassette d'expression de IPpo, est traité à la nucléase de haricot Mung. Puis on ligue le fragment ainsi traité au vecteur pHREll donnant lieu à pHREm. 3. introduction de la cassette d'expression d'un fragment d'ADN d'intérêt dans l'intron 3. La première cassette d'expression du fragment d'ADN d'intérêt comprend en séquence de 5' vers 3' respectivement: (1) le promoteur TK du virus HSV, (2) le gène néomycine, et (3) la région polyA du virus SV40. Le fragment XhoI-SalI de 1,1kob comprenant ladite cassette d'expression est isolé du plasmide pMClneo (Stratagène), est cloné dans le vecteur pHREIII linéarisé par XhoI. Le vecteur en résultant est désigné pHRE IV. 4. Clonage dans un vecteur adénoviral et infection de cellules hôtes. On isole du vecteur pHREIV le fragment Nhe I comprenant l'ensemble de transposition (intron 3 dans lequel est introduit la première cassette d'expression neo, flanqué des séquences adjacentes 5' et 3' du gène ARN 28S humain) et la deuxième cassette d'expression de IPpo. Le fragment purifié est traité a la polymérase de T4 avant d'être inséré dans le vecteur pXCX2 (Spessot et aI., 1989, Virology, 168, 378-387). Le vecteur en résultant est utilisé pour générer un adénovirus recombinant par les méthodes conventionnelles, comme par exemple, la méthode reportée dans Spessot et al. (1989, Virology, 168, 378-387). Le vecteur adénoviral recombinant est construit à partir d'un mutant de délétion de l'adénovirus de type 5 (Tbimmappaye et al. 1982, Cell, 31, 543-551). Le vecteur adénoviral recombinant ainsi obtenu est utilisé pour infecter des cellules humaines en culture. On cultive les cellules dans les conditions conventionnelles connues de l'homme de l'art. 48 heures après l'infection, les cellules sont placées dans un milieu de culture contenant de la néomycine. La présence du gène neo dans les cellules peut être contrôlée par leur phénotype de résistance à la néomycine et vérifiée par Southern blot. L'insertion sitespécifique de la cassette d'intégration dans le génome cellulaire peut être vérifiée par PCR. On utilisera de préférence, une amorce complémentaire à une séquence du gène ARNr 28S humain non présente dans l'ensemble de transposition (en 5' de la position 2324 ou en 3' de la position 4438) et une amorce complémentaire à une séquence de la cassette d'intégration normalement non présente dans le génome cellulaire (par exemple de l'intron 3 ou de la cassette d'expression du gène neo). On obtiendra un fragment PCR d'une taille définie uniquement en cas d'intégration site-spécifique de la cassette d'intégration dans le gène ARNr 28S humain. Liste des séquences Information pour la SEQ ID NO:1 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 44 nucléotides NOMBRE DE BRINS : simple CONFIGURATION: linéaire TYPE DE MOLECULE : ADN PROPRIETES : amorce de PCR pour l'isolement du fragment du gène ARNr 28s humain allant de la position 2324 à la position 3742. GGGAAAAGCT TGCTAGCGGA TCTTGGTGGT AGTAGCAAAT ATTC 44 Information pour la SEQ ID NO:2 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE 42 nucléotides NOMBRE DE BRINS : simple CONFIGURATION: linéaire TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: amorce de PCR pour l'isolement du fragment du gène ARNr 28s humain allant de la position 2324 à la position 3742. CCCCAAACTA GTTCTAGAGA GAGTCATAGT TACTCCCGCC GT 42 Information pour la SEQ ID NO:3 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 37 nucléotides NOMBRE DE BRINS : simple CONFIGURATION: linéaire TYPE DE MOLéCULE: ADN PROPRIETES : amorce de PCR pour l'isolement du fragment du gène ARNr 28s humain allant de la position 3743 à la position 4438. CCCCAAACTA GTAAGGTAGC CAAATGCCTC GTCATCT 37 Information pour la SEQ ID NO:4 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 48 nucléotides NOMBRE DE BRINS : simple CONFIGURATION: linéaire TYPE DE MOLECULE : ADN PROPRIETES : amorce de PCR pour l'isolement du fragment du gène ARNr 28s humain allant de la position 3743 à la position 4438. AAAAGGGAAT TCGCTAGCAG ATCTCTGCTT CACAATGATA GGAAGAGC 48 Information pour la SEQ ID NO:S TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE 33 nucléotides NOMBRE DE BRINS : simple CONFIGURATION: linéaire TYPE DE MOLECULE : ADN PROPRIETES : amorce de PCR pour l'isolement de l'intron 3 de Physamm polycephalum, souche carolina. TTTGGGGTAC CCACCCCCTT AAATATGGCG CTC 33 Information pour la SEQ ID NO:6 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE 31 nucléotides NOMBRE DE BRINS : simple CONFIGURATION: linéaire TYPE DE MOLECULE : ADN PROPRIETES : amorce de PCR pour l'isolement de l'intron 3 de Physamm potycephalum, souche carolina. TTTGGGGTAC CGCTGATTCC AAACTCGGGT G 31 Information pour la SEQ ID NO:7 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 30 nucléotides NOMBRE DE BRINS : simple CONFIGURATION: linéaire TYPE DE MOLECULE : ADN PROPRIETES : amorce de PCR pour l'isolement de la séquence codant pour l'endonucléase IPpo du génome de Physarum polycephalum, souche carolina. CCCCAAAGCT TAAACAAACC ACCGCATGGA 30 Information pour la SEQ ID NO:8 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE 34 nucléotides NOMBRE DE BRINS : simple CONFIGURATION: linéaire TYPE DE MOLECULE : ADN PROPRIETES : amorce de PCR pour l'isolement de la séquence codant pour l'endonucléase IPpo du génome dePhysammpotycephalum, souche carolina. CCCAAAAGCT TCAGTGCTCT GGATGTTAAA ATGG 34 Revendications 1. Un ensemble de transposition (1) destiné au transfert d'un fragment d'ADN d'intérêt (2) dans le génome d'une cellule hôte eucaryote, qui comprend une cassette d'intégration (3), essentiellement constituée d'un élément génétique mobile (4) au sein duquel est inséré ledit fragment d'ADN d'intérêt ; ladite cassette d'intégration étant capable de s'intégrer d'une façon site-spécifique dans un site d'insertion spécifique (5) situé dans l'ADN nucléaire ribosomal de ladite cellule hôte. 2. Un ensemble de transposition selon la revendication 1, dans lequel l'élément génétique mobile est sélectionné parmi le groupe comprenant les introns de classe I ou II et les rétroposons de classe R1, R2 ou R3. 3. Un ensemble de transposition selon la revendication 2, dans lequel l'élément génétique mobile est sélectionné parmi: - l'intron 3 de Physanun polycephalum, souche Carolina, un fragment ou un variant dudit intron, - l'intron mobile de classe I de Tetrahymena, un fragment ou un variant dudit intron, - l'intron mobile de classe I de Pneumocystis carinji, un fragment ou un variant dudit intron, - le rétroposon R2Bm de Bombyx mort, un fragment ou un variant dudit rétroposon et, - le rétroposon R3 de Scaria coprophila, un fragment ou un variant dudit rétroposon. 4. Un ensemble de transposition selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, dans lequel l'élément génétique mobile comprend tout ou partie d'un cadre de lecture ouvert codant pour une intégrase. 5. Un ensemble de transposition selon la revendication 4, dans lequel le fragment d'ADN d'intérêt est inséré dans le cadre de lecture ouvert codant pour ladite intégrase. 6. Un ensemble de transposition selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, dans lequel le fragment d'ADN d'intérêt est susceptible d'être transcrit en ARN pour produire un ARN anti-sens ou après traduction dudit ARN, pour produire une protéine d'intérêt. 7. Un ensemble de transposition selon la revendication 6, dans lequel le fragment d'ADN d'intérêt est en outre placé sous le contrôle d'éléments appropriés permettant l'expression dudit fragment d'ADN dans la cellule hôte eucaryote. 8. Un ensemble de transposition selon la revendication 7, dans lequel les éléments appropriés comprennent un promoteur, ledit promoteur étant sélectionné parmi le groupe des promoteurs reconnus par l'ARN polymérase I et par l'ARN polymérase II. 9. Un ensemble de transposition selon l'une quelconque des revendications 1 à 8, qui comprend en outre: - en 5' de la cassette d'intégration une région d'au plus îOkb (6), présentant au moins 80% d'homologie avec les séquences du gène ARNr de la cellule hôte immédiatement adjacentes en 5' audit site d'insertion; et - en 3' de la cassette d'intégration une région d'au plus îOkb (7), présentant au moins 80% d'homologie avec les séquences du gène ARNr de la cellule hôte immédiatement adjacentes en 3' audit site d'insertion. 10. Un ensemble de transposition selon la revendication 9, qui comprend en outre: - en 5' de la cassette d'intégration une région d'au plus îOkb, présentant 100% d'homologie avec les séquences du gène ARNr de la cellule hôte immédiatement adjacentes en 5' audit site d'insertion; et - en 3' de la cassette d'intégration une région d'au plus îOkb, présentant 100% d'homologie avec les séquences du gène ARNr de la cellule hôte immédiatement adjacentes en 3' audit site d'insertion. 11. Moyen d'introduction dans une cellule eucaryote d'un ensemble de transposition selon Pune quelconque des revendications 1 à 10. 12. Moyen d'introduction selon la revendication 11, sélectionné parmi les véhicules de délivrance de type liposomes et lipides cationiques synthétiques et les vecteurs de clonage et d'expression. 13. Moyen d'introduction selon la revendication 12, dans lequel ledit moyen d'introduction est un vecteur comprenant les éléments appropriés à sa maintenance dans la cellule hôte pendant un temps suffisamment long pour permettre le transfert de la cassette d'intégration dans la région d'insertion. 14. Moyen d'introduction selon la revendication 13, dans lequel le vecteur est un vecteur de type non-intégratif. 15. Moyen d'introduction selon la revendication 14, dans lequel le vecteur est un vecteur dérivé d'un adénovirus. 16. Moyen d'introduction selon l'une quelconque des revendications 11 à 15, dans lequel le vecteur contient en outre une cassette d'expression permettant la production de l'intégrase spécifique de l'ensemble de transposition. 17. Moyen d'introduction selon l'une quelconque des revendications 11 à 16, dans lequel le vecteur contient en outre une cassette d'expression permettant l'expression d'un gène de sélection. 18. Procédé in vitro de transfert d'un fragment d'ADN d'intérêt dans le génome d'une cellule hôte eucaryote au niveau de l'ADN nucléaire ribosomal, selon lequel on introduit dans ladite cellule hôte un ensemble de transposition selon l'une quelconque des revendications 1 à 10 ou un moyen d'introduction selon l'une quelconque des revendications 11 à 17. 19. Procédé selon la revendication 18, selon lequel on fournit en outre l'intégrase spécifique de l'ensemble de transposition à la cellule hôte. 20. Cellule eucaryote comprenant un ensemble de transposition selon l'une quelconque des revendications 1 à 10 ou un moyen d'introduction selon l'une quelconque des revendications 11 à 17. 21. Cellule eucaryote selon la revendication 20, selon laquelle ladite cellule est une cellule de mammifère. 22. Cellule eucaryote selon la revendication 21, selon laquelle ladite cellule est une cellule humaine. 23. Composition pharmaceutique comprenant à titre d'agent thérapeutique, un ensemble de transposition selon l'une quelconque des revendications 1 à 10, un moyen d'introduction selon l'une quelconque des revendications 11 à 17 ou une cellule selon l'une quelconque des revendications 20 à 22, en association avec un support acceptable d'un point de vue pharmaceutique. 24. Composition pharmaceutique selon la revendication 23, comprenant en outre une intégrase ou une cassette d'expression de l'intégrase.