FR 2686097 A1 19930716 FR 9200294 A 19920114 Préparation d'antigènes et de vaccins de virus de la Mystery Disease, antigènes et vaccins obtenus pour la prévention de cette maladie. La présente invention a trait à la préparation d'antigènes et de vaccins de virus de la Mistery Disease, ainsi qu'aux antigènes et aux vaccins obtenus. La maladie dite Mystery Disease (M.D.) ou maladie mystérieuse ou encore Porcine Reproductive Respiratory Syndrome (P.R.R.S.), a commencé à être individualisée, chez le porc, en 1986 aux Etats-Unis et en 1990 en Europe. Cette maladie se traduit essentiellement chez le porc, par des signes d'abattement, une anorexie, et une hyperthermie de l'ordre de 40 C, que l'on observe classiquement sur les truies dans les élevages atteints par la maladie. Ces signes sont accompagnés ou suivis de troubles de la reproduction (mises bas précoces ou tardives et naissance de porcelets mort-nés, momifiés ou chétifs et retours en chaleurs des truies). Un syndrome respiratoire peut être observé chez les porcelets avec des lésions de pneumonie interstitielle. Des porcs plus âgés peuvent également être atteints de troubles respiratoires.Toute cette symptomatologie peut être accompagnée de maladies provoquées par des infections occasionnelles classiquement observées chez le porc. Dans G. Wensvoort et al., Mystery Swine Disease in the Netherlands : the isolation of Lelystad virus, The Veterinary Quarterly, Vol. 13, N" 3, 19 juillet 1991, on décrit l'isolation d'un agent associé à la maladie dite Mystery Disease, qui est caractérisé comme un virus, désigné Lelystad virus, et qui est présenté comme l'agent causal de la maladie. Cette découverte pouvait constituer un premier pas pour la recherche d'un vaccin contre cette maladie. Un procédé de production industrielle de ce virus ou d'antigène de ce virus n'était pas disponible, la culture ne paraissant possible que sur les macrophages alvéolaires du porc. Or, les inventeurs ont réussi à isoler et à identifier un autre virus, responsable de cette maladie. Ce virus est de type Myxovirus, selon l'analyse réalisée au microscope électronique, et a comme caractéristique de ne pas être neutralisé par des sérums antigrippe porcine H1N1 et H3N2. Une souche de ce virus identifiée sous la désignation P129-294 a été déposée à la Collection Nationale de Cultures de Micro-organismes tenue à l'institut Pasteur sous le n" I-1153. Dans la demande de brevet français n" 91 13338 déposée le 29 octobre 1991, les inventeurs ont décrit un procédé d'isolement du virus et son utilisation pour la préparation d'antigènes, un procédé de production industrielle de ce virus, ainsi que les vaccins réalisés à partir des antigènes précités contenant une quantité vaccinante efficace d'antigènes, dans des véhicules convenables. Or, parallèlement à la découverte et à l'utilisation de cet autre virus, dont une souche a été déposée sous la désignation P129-294, les inventeurs ont isolé, à partir du meme organe de la même truie provenant d'un élevage de porc d'Allemagne et identifiée sous le n" 294, un virus tout à fait différent, dont une souche identifiée sous la désignation P129-294B. Ils ont également isolé une souche virale qui est identique à cette dernière à partir d'organes d'un porcelet d'un élevage d'Allemagne, prélevés le 13 février 1991, cette souche étant identifiée sous la désignation P120-117B. Les propriétés de ce virus (souche P129-294B ou P120117B) laissent penser qu'il s'agit d'un virus similaire ou identique au virus de Lelystad. Les inventeurs ont pu établir que les deux virus, à savoir le virus de type Myxovirus (par exemple P129-294), ci-après désigné virus A, et le virus de Lelystad (ou virus correspondant aux souches P129-294B ou P120-117B), ci-après appelé virus B, se retrouvent associés dans les prélèvements effectués à partir de porcs malades ou infectés et dans les mêmes organes, et doivent être considérés comme agents conjoints responsables de la maladie dite Mystery Disease. La présente invention a donc pour objet un procédé d'isolement du virus B et son utilisation pour la préparation d'antigènes. Un procédé isolant le virus B peut comporter le passage sur des macrophages de poumon de porc ou péritonéaux. Dans un mode de mise en oeuvre perfectionné de l'invention, l'isolement du virus B peut être combiné à l'isolement du virus A dans un meme procédé d'isolement. Des procédés d'isolement comportent le prélèvement d'organes d'animaux malades ou infectés, ou de sang, des passages de surnageants d'organes broyés ou de constituants du sang sur des cellules sensibles hétérologues ou homologues, telles que notamment des cellules primaires de porc, des cellules de lignée porcine ou hétéroloque, telles que les cellules de la lignée Vero, MDCK (en présence de trypsine), ST, BHK. On préfère effectuer le prélèvement à partir de poumon d'animal infecté ou encore d'un pool d'organes comprenant, par exemple, coeur, rate, foie, rein et tissus lymphoïdes. Les récoltes virales n'hémagglutinent pas les globules rouges de poule, sont sensibles au chloroforme, réagissent avec des sérums convalescents provenant d'élevages infectés comme il a été démontré par immunofluorescence indirecte. La structure en microscopie électronique démontre des structures enveloppées d'une grandeur d'environ 50 nm. L'invention a également pour objet un procédé de production industrielle du virus B et, de préférence, simultanément du virus A, sur des cellules sensibles hétérologues ou homologues, telles que les cellules de la lignée Vero, MDCK, ST, BHK, macrophages primaires ou lignées, cellules primaires ou de lignée d'origine pulmonaire ou embryonnaire. Le virus peut être utilisé pour la préparation d'antigènes. Le procédé de production industrielle du virus A, décrit dans la demande de brevet français précitée avait, de façon remarquable, produit simultanément le virus B. Le virus, ou le mélange de virus, récolté peut être utilisé pour la préparation d'antigènes. A cette fin, il est, de préférence, convenablement purifié selon des procédures usuelles, par exemple l'ultra-centrifugation ou la chromatographie. I1 peut également être concentré par les techniques usuelles. Selon l'utilisation envisagée, les préparations d'antigènes selon l'invention peuvent être constituées de particules virales vivantes, atténuées ou non, de particules inactivées, d'antigènes de sous-unités ou encore d'antigènes obtenus par recombinaison génétique à partir de gènes du ou des virus isolés, insérés pour être exprimés dans le génome d'hôtes recombinants procaryotes ou eucaryotes. L'invention a également pour objet les vaccins réalisés à partir des antigènes précités, contenant une quantité vaccinante efficace d'antigènes, dans des véhicules convenables. Les vaccins selon l'invention comportent les antigènes du virus A, en association avec des antigènes du virus B, et éventuellement d'autres antigènes infectieux pour l'immunisation du porc ou d'autres espèces animales. Ces vaccins peuvent être prévus pour être administrés aux porcs mais également à d'autres animaux qui pourraient s'avérer sensibles à ce virus. Un vaccin atténué peut être préparé par passages du virus sur culture cellulaire. La quantité de chaque virus par dose vaccinale est de préférence comprise entre 103 et 108 DICC50 par dose. Le vaccin atténué vivant peut être présenté sous forme liquide ou lyophilisée en présence de stabilisateurs de formulations très variées, pouvant inclure des sucres, des protéines et des tampons. Le vaccin peut être adjuvé à l'aide d'adjuvants minéraux ou organiques. Le vaccin vivant peut être administré à des animaux pour les protéger dès le début de la période d'engraissement ou avant l'insémination artificielle ou la saillie, ou au cours de la gestation, en une et de préférence en deux injections à trois ou quatre semaines d'intervalle. Un vaccin inactivé peut être préparé à partir de suspensions virales obtenues par passages sur des systèmes cellulaires homologues (porcin) ou hétérologues, puis inactivation par des agents inactivants chimiques usuels tels que la Beta-propiolactone, des enzymes ou des solvants organiques ou des détergents. L'inactivation peut également être obtenue par action physique tels que rayonnement ultra-violet, irradiations gamma ou rayons X. L'agent inactivant peut être neutralisé si nécessaire. Le vaccin inactivé contient de préférence au moins l'équivalent de 105 DICC50 de chaque virus par dose vaccinale, concentration déterminée avant inactivation. Le vaccin inactivé peut être administré aux animaux pour les protéger dès le début de la période d'engraissement, ou avant l'insémination artificielle ou la saillie, ou en cours de gestation, en une et de préférence deux injections à trois ou quatre semaines d'intervalle. On préfère que le vaccin contienne un adjuvant d'origine minérale ou organique. Un vaccin recombinant peut être obtenu, par exemple, par insertion de la séquence codant pour l'antigène recherché du virus dans le génome de l'hôte. L'hôte peut être un virus, notamment pour la réalisation d'un vaccin vivant. Cet hôte peut également être un système bactérien, de levure, ou d'autres cellules eucaryotes. Dans ce cas, l'hôte est de préférence utilisé pour la production d'antigènes qui sont ensuite purifiés et conditionnés pour faire le vaccin. Le vaccin peut être présenté sous forme monovalente ou associé à d'autres agents viraux ou bactériens responsables de maladies chez le porc. L'invention a également pour objet des préparations d'antigènes à fin de diagnostic, caractérisées en ce qu'elles comportent des antigènes de virus A ou un mélange d'antigènes de virus A et B. Ces préparations d'antigènes à fin de diagnostic sont réalisées de façon usuelle et comprennent les moyens usuels permettant l'identification et éventuellement la quantification des réactions sérologiques positives. L'invention a également pour objet les préparations d'anticorps contre ces antigènes, utilisables pour le diagnostic de la maladie. D'autres avantages et caractéristiques de l'invention apparaîtront à la lecture de la description suivante, faite à titre d'exemple non limitatif. Exemple 1 : Isolement du virus P129-294B. Des prélèvements de poumon ont été réalisés sur une truie provenant d'un élevage de porcs d'Allemagne et identifiée sous le n" 294. a) Méthode Broyats d'organes : chaque prélèvement est broyé individuellement dans milieu MEM + antibiotiques. Dilution : poids organe par volume d'environ 1 pour 10. Centrifugation clarifiante pour récupération du liquide surnageant (LS). Filtration à 0,22 p. b) Essais sur cultures cellulaires Premiers passages : le LS est inoculé sur couche cellulaire établie de macrophages de poumon de porc SPF. Trois jours après inoculation, il a été observé un effet cytopathique se manifestant par une modification morphologique des macrophages, à différents stades d'évolution. Cet effet cytopathique est maximal le cinquième jour. Examen en microscopie électronique : méthode sur coupes de macrophages infectés et sains. Les macrophages infectés présentent un aspect totalement différent des macrophages sains. On note à l'intérieur des cellules infectées des vacuoles contenant des particules d'environ 50 nm. Exemple 2 : Isolement du virus P120-117B des organes d'un porcelet prélevé le 13 février 1991. a) Methode Broyats d'organes : l'organe est broyé dans du milieu MEM plus antibiotiques. Dilution : poids de l'organe par volume d'environ 1 pour 10. Centrifugation clarifiante pour récupération du liquide surnageant (LS). Filtration à 0,22 p. b) Essais sur cultures cellulaires Premiers passages : le LS est inoculé sur couche cellulaire établie de macrophages de poumon de porc SPF. Trois jours après inoculation, il a été observé un effet cytopathique se manifestant par une modification morphologique des macrophages, à différents stades d'évolution. Cet effet cytopathique est maximal le cinquième jour. Conclusion : le virus P120-117b, isolé à partir d'un porcelet, semble identique au virus P129-294B ; il confirme le rôle joué par ce virus dans les troubles de la reproduction. Exemple 3 : Etude du pouvoir pathogène comparé des deux virus : P129-294 et P129-294B. a) La souche virale P129-294 : l'agent viral isolé sur oeufs a été inoculé sous forme d'une suspension virale de liquide allantoïdien du troisième passage, à 2 porcs SPF, par voie intraveineuse, sous un volume de 1 cm3. 2 autres porcs SPF ont été inoculés également par voie intraveineuse avec du virus Newcastle, souche Texas. 2 porcs ont été conservés comme témoins et inoculés avec du liquide allantoïdien non dilué. Les animaux étaient stabulés dans des boxes différents. Ils ont été observés durant 14 jours avec prise de température quotidienne et pesée aux jours 0 et 7. Des prélèvements de sang ont été réalisés aux jours 0 et 14. Les 2 porcs inoculés avec l'agent hémagglutinant ont présenté une hyperthermie comprise entre 39 5 et 40"C entre le jour 1 après inoculation et le jour 7, alors que les 4 autres porcs n'ont jamais présenté cette élévation de température. I1 a été noté, au jour 2, des traces de vomissement dans le box des 2 porcs inoculés avec l'agent hémagglutinant. D'autre part, une inappétence de quelques jours a été observée chez ces 2 animaux, ce qui s'est traduit par une évolution pondérale très nettement défavorable pour ces 2 animaux par rapport à ceux inoculés soit avec liquide allantoïdien témoin, soit avec du virus de Newcastle. Le graphique ci-après illustre cette différence de croissance.A l'autopsie, l'un des 2 porcs inoculés avec l'agent hémagglutinant présentait des lésions peu marquées de pneumonie. b) La souche virale P129-294B a été inoculée à 2 truies, par voie nasale, avec 103'5 doses infectieuses de l'isolat aux 58ème et 66ème jours de la gestation. Les truies n'ont présenté aucun signe clinique de maladie après inoculation. Au jour 110 de la gestation, la truie n"25 a mis bas de 2 porcelets morts-nés et de 8 porcelets vivants. Les vivants avaient un aspect chétif et étaient incapables de marcher. Leur comportement ressemblait exactement à celui observé chez des porcelets dans les élevages infectés. 3 porcelets sont morts le jour de la mise bas, 2 à 24 heures, 3 à 72 heures et, enfin, 1 porcelet a été trouvé mort à 72 heures après mise bas tardive. A ce jour, la deuxième truie, en gestation plus précoce, à présenté fièvre et anorexie au jour 106 de gestation. A 112 jours de gestation elle a mis bas 5 porcelets morts-nés et un porcelet vivant très chétif. Conclusion : Le virus P129-294 est responsable de signes cliniques sur des porcelets, apparaissant sous forme d'hyperthermie et d'anorexie, alors que le virus P129-294B est responsable de troubles de la reproduction. Cet ensemble clinique reproduit les observations faites dans les élevages infectés. Enfin, ces deux virus ont été isolés du même organe, le poumon, d'une même truie. Exemple 4 : Suivi sérologique. Présence d'anticorps contre la souche P129-294. 238 sérums provenant d'élevages infectés ont été examinés pour la présence d'anticorps vis-à-vis de la souche P129-294. Dans ces élevages, des signes manifestes de maladie mystérieuse du porc ont été observés (avortements, problèmes respiratoires). La méthode sérologique est un test Elisa indirect ; l'antigène utilisé est un antigène obtenu sur oeufs après ultracentrifugation. Les sérums à tester sont traités au prélable à l'aide d'un antigène oeuf négatif ayant subi le même traitement d'ultracentrifugation. Les 238 sérums provenant d'élevages infectés d'Allemagne, de Belgique ou de Hollande, présentent des anticorps très positifs pour 43 % d'entre eux, faiblement positifs pour 37 % et négatifs pour 20 %. Conclusion : Dans les cas cliniques de maladie mystérieuse, on observe une sérologie positive contre la souche P129-294 dans 80 % des cas. I1 faut remarquer que des sérums provenant d'élevages non suspects, sont négatifs, ou que la fréquence de positivité est significativement inférieure à celle observée dans les élevages cliniquement atteints. Ces résultats montrent l'importance de l'infection à Myxovirus dans le syndrome maladie mystérieuse. Exemple 5 : Préparation de vaccin vivant. Les virus P129-294 et P120-117B ou P129-294B sont multipliés par passages sur un ou des systèmes cellules adaptés. La récolte est traitée suivant le vaccin qui est produit : vaccin lyophilisé pour reprise en solvant aqueux, en solvant huileux ou en d'autres vaccins. I1 peut aussi être présenté en vaccin liquide en solvant aqueux, huileux ou autre vaccin. Exemple 6 : Préparation de vaccin inactivé. Les virus P129-294 et P120-117B ou P129-294B sont multipliés sur cellules BHK, Vero, macrophages, ou cellules de lignée porcine, et inactivés par la Beta-propiolactone, éthylène-imine, puis adjuvés avec un adjuvant aqueux ou huileux. REVENDICATIONS 1. Procédé d'isolement de virus (B) ou de mélange de virus (A, B) de la Mystery Disease, comportant le prélèvement d'organes ou de sang de porcs malades ou infectés et des passages du surnageant de broyage ou de constituants du sang sur des cellules sensibles hétérologues ou homologues, puis la récolte du surnageant. 2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que les passages sont effectués sur cellules de la lignée Vero, MDCK, ST, BHK. 3. Procédé de production industrielle de virus (B) ou de mélange de virus (A,B) de la Mystery Disease, dans lequel on cultive le virus sur des cellules sensibles homologues, notamment macrophages de poumon de porc ou péritonéaux, des cellules primaires de porcs, des cellules de lignée porcine, ou hétérologues, notamment des cellules de la lignée Vero, MDCK, ST, BHK, et l'on récolte le dernier surnageant. 4. Préparation d'antigènes viraux purifiés de virus (A) et de virus (B) de la Mystery Disease, comprenant des particules virales vivantes, atténuées ou non, ou des particules inactivées ou des antigènes de sous-unités ou des antigènes exprimés par recombinaison génétique à partir de gènes du virus isolé. 5. Préparation d'antigènes contenant des antigènes d'au moins une des souches virales : P 129-294 déposée à la CNCM sous le n" I-1153, P129-294B et P120-117B. 6. Vaccin contre la Mystery Disease, caractérisé en ce qu'il contient, dans un véhicule approprié, une quantité vaccinante d'un antigène selon l'une des revendications 4 et 5. 7. Vaccin atténué selon la revendication 6, caractérisé en ce qu'il est préparé par passages du virus sur culture cellulaire. 8. Vaccin atténué selon la revendication 7, caractérisé en ce que la quantité des virus respectifs par dose vaccinale est comprise entre 103 et 108 DICC50. 9. Vaccin inactivé selon la revendication 6, caractérisé en ce que le surnageant de culture est inactivé par un agent inactivant chimique ou-physique. 10. Vaccin inactivé selon la revendication 9, caractérisé en ce qu'il contient au moins l'équivalent de 105 DICC50 des virus respectifs par dose vaccinale. 11. Préparation à usage de diagnostic de la maladie dite de la Mystery Disease, caractérisée en ce qu'elle comporte des antigènes selon l'une des revendications 4 et 5 ou des anticorps contre ces antigènes.