FR 2664614 A1 19920117 FR 9008852 A 19900711 SEQUENCES NUCLEIQUES ISSUES DU GNOME DE SALMONELLA TYPHI, ET LEURS UTILISATIONS NOTAMMENT POUR LE DIAGNOSTIC IN VITRO DE LA PRESENCE DE BACTERIES DU GENRE SALMONELLA DAN8 LE8 PRODUITS ALIMENTAIRES. La présente invention a pour objet des séquences nucléiques issues du génome de Salmonella Typhi, et leurs utilisations notamment pour le diagnostic in vitro de la présence de bactéries du genre Salmonella dans un échantillon biologique susceptible de les contenir, et plus particulièrement dans les produits alimentaires. Les produits alimentaires prennent actuellement une importance grandissante. Pour des motifs sociaux, les denrées transformées, prêtes à la consommation, ne cessent de susciter une demande accrue de la part des acheteurs. I1 en résulte que les sources de production et la présentation de ces produits se sont considérablement modifiées durant les quinze dernières années (fabrication de masse dans des usines spécialisées commercialisation en unités conditionnées, généralement sous pellicule plastique). Pour des raisons de santé publique, la technologie des fabrications et les produits eux-mêmes sont soumis à une surveillance hygiénique de plus en plus stricte. Dans le cadre des contrôles bactériologiques, les bactéries responsables de toxiinfections alimentaires sont recherchées systématiquement, et parmi celles-ci, ce sont les Salmonella qui sont concernées en priorité. Les normes de salubrité sont d'ailleurs très claires pour ce genre bactérien : absence de Salmonella dans 25 grammes de produit. Du point de vue de la taxonomie, le genre Salmonella appartient à la famille des Enterobacteriaceae. Ce genre comprend une seule et unique espèce, S.enterica, qui peut être subdivisée en sept sous-espèces. A l'intérieur de chacune de ces sousespèces, on peut individualiser un grand nombre de sérotypes à l'aide de sérums dirigés contre les antigènes O polysaccharidiques et les antigènes H flagellaires. En 1989, on connaissait 2267 sérotypes de Salmonella. Les Salmonella sont des bactéries entéro-invasives qui sont pathogènes pour l'homme et les animaux. Leur pouvoir pathogene est lié à leur capacité d'envahir l'épithélium intestinal. Cette étape peut se limiter à la muqueuse dans le cas d'une toxi-infection par exemple, ou être suivie d'une dissémination systémique (cas de la fièvre thyphoïde). La contamination de l'hôte par Salmonella a lieu par voie buccale dans la très grande majorité des cas. Ceci explique pourquoi les Salmonella sont recherchées systématiquement dans le cadre de contrôles bactériologiques d'échantillons biologiques. La méthode de référence de recherche systématique de Salmonella, recommandée par l'Association Française de Normalisation (AFNOR), comprend : la mise en culture du produit à analyser dans deux milieux d'enrichissement différents, incubés à deux températures différentes et isolés sur deux milieux sélectifs différents (cette étape est souvent précédée d'une étape de "revivification" dans un bouillon nutritif) ; repiquage de 6 colonies au minimum sur milieux d'identification rapide ; enfin typage sérologique de la souche. Si le protocole AFNOR doit être scrupuleusement suivi lors d'une expertise officielle, on conçoit qu'il soit difficilement applicable lors de contrôles systématiques en raison du temps nécessaire pour effectuer l'examen (au minimum une semaine) et de son prix de revient. Des nouvelles méthodes de recherche de Salmonella reposent soit sur des tests enzymatiques, soit sur l'utilisation de sondes nucléiques. Il faut souligner que dans les deux cas, une étape de culture en milieu riche et une subculture dans un milieu d'enrichissement sont recommandées, voire indispensables. Les tests immuno-enzymatiques qui utilisent des anticorps monoclonaux, sont aisés à mettre en oeuvre, donnent des résultats en quatre à six heures et sont d'un prix de revient abordable. Leur gros inconvénient réside dans le fait qu'ils donnent souvent de fausses réactions positives et parfois de fausses réactions négatives. Les conséquences de ces fausses réactions sont importantes dans les deux cas : s'il s'agit d'une fausse réaction positive, il y aura saisie du produit et mise en route par le laboratoire d'analyse d'un processus pour isoler une Salmonella qui n'existe pas; s'il s'agit d'une fausse réaction négative, le produit sera commercialisé avec les risques que cela comporte pour la santé publique. Une étude récente sur 250 souches de Salmonella et 75 souches bactériennes n'appartenant pas au genre Salmonella, a abouti à 17 fausses réactions positives et 2 fausses réactions négatives (D'AOUST, J.Y. (1987): "Efficacité de la trousse immunoenzymatique BIOENZABEAD pour le dépistage de Salmonella spp. dans les aliments", Microorganismes et Aliments : Technique Rapide, Contrôle industriel. Colloque de la Société Française de Microbiologie, Paris). Cet essai ayant été effectué sur des cultures pures, on peut penser que le nombre de fausses réactions auraient été plus important avec des produits poly-microbiens (compétition microbienne ; risque de réactions antigéniques croisées). Les sondes nucléiques sont constituées par un fragment d'ADN génomique (FITTS, R. et al (1983), "DNA-DNA Hybridization Assay For Detection Of Salmonella spp". In Foods, Applied and Environmental Microbiology, 46, 1146-1151). Elles sont réputées spécifiques. Il existe plusieurs trousses (ou kits) commercialisées. En fait, il apparaît que ces sondes présentent deux inconvénients majeurs : leur manque de spécificité selon les résultats communiqués par des utilisateurs (réaction croisée avec les Citrobacter, par exemple) et leur manque de sensibilité (seuil limite de détection : 105 Salmonella ; ou selon certains auteurs, 2,5 pg d'ADN soit environ 107 bactéries). La présente invention a précisément pour objet des séquences nucléiques utilisables en tant que sondes nucléiques-pour la détection de Salmonella, ces sondes étant parfaitement spécifiques du genre Salmonella (pas de réaction croisée avec d'autres bactéries, notamment avec les bactéries du genre Citrobacter). L'invention a également pour objet l'utilisation de ces sondes nucléiques dans des méthodes de détection ou de dosage in vitro de Salmonella présentant les avantages suivants - forte sensibilité, - réponse rapide ; le résultats de l'analyse peut être rendu dans les 48 heures, voire 24 heures, - mise en oeuvre aisée, notamment sans utilisation d'un produit radioactif, - prix de revient raisonnable. Salmonella sous-espèce enterica sérotype Typhi (bactérie désignée par Typhi ci-après) est l'agent de la fièvre typhoïde humaine. Cette bactérie est strictement pathogène pour l'homme. A la suite d'une contamination par voie buccale, Typhi va franchir la barrière intestinale pour atteindre les ganglions mésentériques grâce à un système génétique lui permettant d'adhérer et de pénétrer dans les cellules épithéliales de la muqueuse intestinale. Faute de modèle expérimental, cette première étape de l'infection est étudiée in vitro sur cellules HeLa en culture, car Typhi est capable d'ahérer et de pénétrer dans ces cellules. L'invention a précisément pour objet toute séquence nucléique caractérisée en ce qu'elle comporte toute ou partie de l'information génétique nécessaire à l'activité d'infection in vitro des cellules HeLa en culture par les bactéries du genre Salmonella. L'invention a plus précisément pour objet toute séquence nucléique telle que définie ci-dessus, et comprenant toute ou partie de la séquence de 7,9 kb délimitée par les deux sites Hindîli, désignés par H1 et H2 sur la carte de restriction de ladite séquence représentée sur la figure 1. Les séquences nucléiques de l'invention sont plus particulièrement celles répondant aux caractéristiques définies ci-dessus, et qui sont issus du génome de la souche Ty 2 de Typhi déposée à la Collection de l'Institut Pasteur sous le n CIP 55-35. L'invention concerne plus particulièrement toute séquence nucléique issue du génome de la souche Ty 2 sus-mentionnée, cette séquence comportant toute ou partie de l'information génétique définie ci-dessus, et comprenant toute ou partie de la séquence de 2 kb délimitée par les deux sites SacI, désignés par S1 et sur SUT la carte de restriction représentée sur la figure 1. D'une manière plus générale, l'invention concerne toute séquence nucléique comportant toute ou partie de l'information génétique nécessaire à l'activité d'infection in vitro des cellules HeLa en culture par les bactéries du genre Salmonella, et susceptible de s'hybrider avec toute ou partie de l'une au moins des séquences nucléiques définies ci-dessus, dans des conditions stringentes. Ces conditions stringentes sont les suivantes : 650C durant 18 heures en 6 x SSC (1xSSC est constitué de 0,15M NaCl et 0,015M citrate trisodique à pH 7) en milieu de Denhardt (0,1% Ficoll ; 0,1 % de polyvynil-pyrrolidone ; 0,1 % de sérum albumine de boeuf). L'invention concerne également toute séquence nucléique comprise dans l'une des séquences nucléiques définies ci-dessus, ou susceptible de s'hybrider avec l'une de ces séquences dans les conditions d'hybridation définies ci-dessus, et étant utilisable en tant que sonde pour la mise en oeuvre d'un procédé de détection in vitro de bactéries du genre Salmonella, et plus particulièrement des Salmonella pathogènes telles que Typhi, susceptibles d'adhérer et de pénétrer dans les cellules épithéliales de la muqueuse intestinale dans l'organisme. Avangateusement les sondes nucléiques de l'invention sont constituées d'une succession d'environ 200 à 500 nucléotides. A ce titre, l'invention a plus particulièrement pour objet une sonde nucléique caractérisée par l'enchaînement nucléotidique (I) suivant : 5' > CAATTACGCCCCGATTATTATATCTCCGGGCAGATGATACCCGAT GGTAATGATAATATTGTACAGATCGAGATAGTTCGGGTTAAAGGT TATCACCTGCTGCACCAGGAAAGCATTAAGTTGATAGAACACCAA CCCGCTTCTCTCTTGCAAAACAAAATTGCGAATCTTTTGCTCAGA TGTATTCCCGGACTTCGCTGGGACACAAACGAAATTAGCGAGCTA SATTCGATTGACAGTACCATGGTCTACTTACGCGGTAAGCATGAG TTAAATCAATACACCCCCTATAGCTTACAGCAAGCGCTTAAATTG CTGACTCAATGCGTTAATATGTCGCCAAACAGCATTGCGCCTTAC TGTGCGCTGGCAGAATGCTACCTCAGCATGGCGCAAATGGGGATT TTTGATAAACAAAACGCAATGATCAAAGCTAAAGAACATGCGATT AAGGCGACAGAGCTGGACCACAATAATCCACAAGCTY 587 L'invention concerne également toute séquence nucléique comprise dans l'une des sequences nucléiques définies ci-dessus, ou susceptible de s'hybrider avec l'une de ces séquences dans les conditions d'hybridation définies ci-dessus, et étant utilisable en tant qu'amorce nucléique pour l'amplification génique d'une des séquences nucléiques de l'invention. Avantageusement les amorces nucléiques de l'invention sont constituees d'une succession d'environ 10 à 30 nucléotides. Les techniques d'amplification génique sont d'un appoint considerable pour la mise au point de méthodes de diagnostic in vitro particulièrement sensibles. Parmi ces techniques d'amplification génique, on peut citer la technique PCR (Polymerase Chain Reaction) telle que décrite dans les demandes de brevet européen n" 86/302.298.4 du 27/03/1986 et n" 87/300.203.4 du 09/01/1987, ou encore la technique dite "Qssreplicase" décrite dans Biotechnology, vol.6, page 1197 (octobre 1988) et celle procédant à l'aide d'une ARN polymérase (T7RNA polymérase) décrite dans la demande de brevet international n" W089/01050. Ces techniques permettent d'améliorer la sensibilité de détection des acides nucléiques des virus ou des bactéries, et nécessitent l'utilisation d'amorces de synthèse spécifiques. A ce titre, l'invention a plus particulièrement pour objet les amorces nucléiques SS-1 et SS-2 suivantes SS-1 5' > GGT CCA GCT CTG TCG CC SS-2 5' > CCG CGC AGA TGA TAC CC Font également partie de l'invention, les acides nucléiques variants par rapport à la séquence nucléique (I) ou aux amorces SS-1 et SS-2 sus-définies et qui comportent certaines mutations localisées dans la mesure où ces acides nucléiques variants s'hybrident avec la séquence (I) ou les amorces nucléiques précédemment définies dans les conditions d'hybridation définies ci-dessus dans la description. L'invention a également pour objet tout peptide ou polypeptide correspondant selon le code génétique universel à une séquence nucléique de l'invention. A ce titre l'invention concerne plus particulièrement tout polypeptide constitué par toute ou partie de la séquence en acides aminés (II) suivante, cette séquence correspondant selon le code génétique universel à la séquence nucléique (I) décrite ci-dessus GlnLeuArgProAspTyrTyrIleSerGlyGlnMetIleProAsp GlyAsnAspAsnIleValGlnIleGluIleValArgValLysSly TyrHisLeuLeuHisGlnGluSerIleLysLeuIleGluHisGln ProAlaSerLeuLeuGlnAsnLysIleAlaAsnLeuLeuLeuArg Cys IleproGlyLeuArgTrpAspThrLysGlnlleserGluLeu AsnSerIleAspSerThrMEtValTyrLeuArgGlyLysHisGlu LeuAsnGlnTyrThrProTyrSerLeuGlnGlnAlaLeuLysLeu LeuThrGlnçysValAsnMetSerProAsnSerlleA1aProTyr CysAlaLeuAlaGluCysTyrLeuSerMetAlaGlnMetGlyIle PheAspLysGlnAsnAlaMetIleLysAlaLysGluHisAlaIle LysAlaThrGluLeuAspHisAsnAsnp roGinAla Il va de soi que toute séquence peptidique issue de la modification, par substitution et/ou par addition et/ou suppression d'un ou plusieurs acides aminés d'un polypeptide de l'invention, et plus particulièrement de la séquence peptidique (II) décrite ci-dessus) ou d'une sous-séquence peptidique issue de cette dernière, entre le cadre de la présente invention, dès lors que cette modification n'altère pas les propriétés antigéniques dudit polypeptide. L'invention concerne également les anticorps polyclonaux ou monoclonaux, susceptibles de reconnaître spécifiquement les polypeptides de l'invention, et de former des complexes immunologiques avec ces derniers. Les anticorps polyclonaux de l'invention sont obtenus par immunisation d'un animal avec les polypeptides de l'invention, suivie de la récupération des anticorps formés. Les anticorps monoclonaux de l'invention sont produits par tout hybridome susceptible d'être formé, par des méthodes classiques, à partir des cellules spléniques d'un animal, notamment de souris ou de rat, immunisés contre l'un des polypeptides purifiés de l'invention, d'une part et des cellules d'une lignée de cellules d'un myélome approprié d'autre part, et d'être sélectionné, par sa capacité à produire des anticorps monoclonaux reconnaissant le polypeptide initialement mis en oeuvre pour l'immunisation des animaux. L'invention concerne également un procédé de détection (ou méthode de diagnostic) in vitro de la présence éventuelle de bactéries du genre Salmonella dans un échantillon biologique susceptible de les contenir, caractérisé en ce qu'il comprend - le cas échéant, la mise en culture de l'échantillon, - le cas échéant, l'amplification du nombre de copies de la séquence nucléique à détecter à l'aide d'un couple d'amorces nucléiques telles que définies cidessus, - la mise en contact de l'échantillon avec une sonde nucléique telle que définie ci-dessus, dans les conditions d'hybridation sus-mentionnées, - la détection éventuelle de complexes d'hybridation formés entre la sonde sus-mentionnée et la séquence nucléique à détecter. L'étape de mise en culture de l'échantillon biologique est avantageusement réalisée de la manière suivante : 25 g de l'échantillon biologique sont mis en culture dans 200 ml de bouillon nutritif dans un erlen-meyer de 1 litre durant 18 h à 370C avec agitation. L'étape d'amplification de la séquence nucléique à détecter, dans le procédé sus-mentionné, comprend avantageusement les étapes suivantes - une étape d'extraction de l'acide nucléique à détecter appartenant au génome des bactéries du genre Salmonella éventuellement présentes dans l'échantillon biologique, et,le cas échéant, une étape de traitement à l'aide d'une transcriptase inverse dudit acide nucléique si ce dernier est sous forme d'ARN, - un cycle comprenant les étapes suivantes étape de dénaturation de l'acide nucléique double brin à détecter , ce qui conduit à la formation d'un acide nucléique simple brin ; cette étape est avantageusement réalisée à 940C pendant 120 secondes, étape de réassociation par hybridation de chacun des brins d'acide nucléique, obtenus lors de l'étape de dénaturation précédente, avec au moins une amorce telle que définie ci-dessus, par mise en contact des brins sus-mentionnés avec au moins un couple amorces sus-mentionnées ; cette étape est avantageusement réalisée à 68"C pendant 180 secondes, étape d'élongation par formation à partir des amorces des ADN complémentaires aux brins sur lesquels elles sont hybridées en présence d'une ADN polymérase et de quantités appropriées des quatre nucléosides triphosphate différents (dATP, dCTP, dGTP, dTTP), ce qui conduit à la formation d'un plus grand nombre d'acides nucléiques double brin à détecter qu'à l'étape de dénaturation précédente ; cette étape est avantageusement réalisée à 72"C pendant 90 secondes, ce cycle étant répété un nombre de fois déterminé (de préférence entre 20 et 30 fois) pour obtenir ladite séquence nucléique à détecter éventuellement présente dans l'échantillon biologique dans une proportion suffisante pour permettre sa détection. D'autres méthodes d'amplification et/ou de détection des séquences nucléiques caractéristiques des Salmonella, utilisant les sondes, et le cas échéant, les amorces nucléiques décrites ci-dessus, sont utilisables dans le cadre de la présente invention. A ce titre on peut citer la méthode décrite dans la demande de brevet internationale WO 85/06700, ou encore celle décrite dans la demande de brevet européen n" 0357336. L'invention a également pour objet des kits pour la mise en oeuvre d'un procédé de détection in vitro de bactéries du genre Salmonella tel que décrit cidessus, ces kits comprenant - le cas échéant, un milieu approprié pour la mise en culture de l'échantillon biologique, - au moins un couple d'amorces nucléiques décrites ci-dessus, - le cas échéant, des réactifs appropriés à la mise en oeuvre du cycle d'amplification, notamment de 1'ADN (ou ARN) polymérase, et des quantités appropriées des 4 nucléosides triphosphate différents, - une (ou plusieurs) sonde(s) nucléique(s) telle(s) que décrite(s) ci-dessus, pouvant être marquée, capable de s'hybrider avec la (ou les) séquence(s) nucléique(s) à détecter, - des réactifs appropriés à la mise en oeuvre de la réaction d'hybridation entre la (ou les) sonde(s) et la (ou les) séquence(s) nucléique(s) à détecter susmentionnées. - un tissu ou fluide biologique de référence dépourvu de séquences nucléiques susceptibles de s'hybrider avec la (ou les) sonde(s) sus-mentionnée(s). L'invention a également pour objet un procédé de détection in vitro de la présence éventuelle de bactéries de genre Salmonella dans un échantillon biologique susceptible de les contenir, caractérisé en ce qu'il comprend - le cas échéant, la mise en culture de l'échantillon biologique de la manière indiquée ci-dessus, - le cas échéant, l'amplification du nombre de copies de la séquence nucléique correspondant selon le code génétique universel au polypeptide à détecter (cette amplification étant réalisée suivant le cycle d'amplification décrit ci-dessus), - la mise en contact de l'échantillon sus-mentionné avec des anticorps de l'invention susceptibles de former un complexe immunologique avec le (ou les) polypeptide(s) à détecter, - la détection éventuelle des complexes immunologiques formés entre lesdits anticorps et la (ou les) séquence (s) peptidique (s) à détecter. L'invention concerne également des kits pour la mise en oeuvre du procédé de détection décrit cidessus, qui comprennent - le cas échéant, un milieu approprié pour la mise en culture de l'échantillon biologique, - le cas échéant, un couple d'amorces décrites cidessus et des réactifs appropriés à la mise en oeuvre du cycle d'amplification, notamment de l'ADN (ou ARN) polymérase et des quantités appropriées des 4 nucléosides triphosphate différents, - des anticorps, polyclonaux ou monoclonaux, pouvant être marqués, notamment de manière radioactive ou enzymatique, avec la (ou les) séquence(s) peptidique(s) à détecter, - les réactifs pour la constitution du milieu propice à la réalisation de la réaction immunologique entre les anticorps et la (ou les) séquence(s) peptidique(s) sus-mentionnés, - les réactifs permettant la détection des complexes immunologiques formés lors de la susdite réaction immunologique. De tels réactifs peuvent également porter un marqueur ou être susceptibles d'être reconnus à leur tour par un réactif marqué, - un tissu ou fluide biologique de référence dépourvu de polypeptides susceptibles d'être reconnus par les anticorps sus-mentionnés. L'invention concerne également un procédé de préparation des séquences nucléiques décrites cidessus, ce procédé comprenant les étapes suivantes: - incubation de 1'ADN génomique, isolé à partir d'une bactérie Salmonella Typhi, par traitement par la soude à pH 12,5 - traitement de l'ADN ainsi extrait par une endonucléase appropriée, - le clonage des acides nucléiques ainsi obtenus dans un vecteur approprié et la récupération de l'acide nucléique recherché à l'aide d'une sonde appropriée choisie parmi celles décrites ci-dessus. Un procédé de préparation particulièrement avantageux des séquences nucléiques de l'invention comprend les étapes suivantes - la synthèse d'ADN en utilisant la méthode automatisée des ss-cyanethyl phosphoramidite décrite dans Bioorganic Chemistry 4; 274-325 (1986), - le clonage des acides nucléiques ainsi obtenus dans un vecteur approprié et la récupération de l'acide nucléique par hybridation avec une sonde appropriée choisie parmi celles décrites ci-dessus. Un autre procédé de préparation des séquences nucléotidiques de l'invention comprend les étapes suivantes - l'assemblage d'oligonucléotides synthétisés chimiquement, pourvus à leurs extrémités de sites de restriction différents, dont les séquences sont compatibles avec l'enchaînement en acides aminés du polypeptide naturel selon le principe décrit dans Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 80; 7461-7465, (1983), - le clonage des acides nucléiques ainsi obtenus dans un vecteur approprié et la récupération de l'acide nucléique recherché par hybridation avec une sonde appropriée choisie parmi celles décrites ci-dessus. L'invention a également pour objet tout acide nucléique recombinant contenant au moins une séquence nucléique de l'invention, insérée dans un acide nucléique hétérologue vis-à-vis de ladite séquence nucléique. L'invention concerne plus particulièrement un acide nucléique recombinant tel que défini ci-dessus, dans lequel la séquence nucléique de l'invention est précédée d'un promoteur (notamment un promoteur inductible) sous le contrôle duquel la transcription de ladite séquence est susceptible d'être effectuée et, le cas échéant, suivie d'une séquence codant pour des signaux de terminaison de la transcription. L'invention concerne tout vecteur recombinant, utilisé en particulier pour le clonage d'une séquence nucléique de l'invention, et/ou l'expression du polypeptide codé par cette séquence, et caractérisé en ce qu'il contient un acide nucléique recombinant, tel que défini ci-dessus, en l'un de ses sites non essentiel pour sa réplication. A titre d'exemple de vecteur sus-mentionné, on citera les plasmides, les cosmides, ou les phages. L'invention a également pour objet un procédé de préparation d'un polypeptide de l'invention, par transformation d'un hôte cellulaire à l'aide d'un vecteur recombinant de type sus-indiqué, suivie de la mise en culture de l'hôte cellulaire ainsi transformé, et de la récupération du polypeptide dans le milieu de culture. Ainsi, l'invention concerne tout hôte cellulaire transformé par un vecteur recombinant tel que défini ci-dessus, et comprenant les éléments de régulation permettant l'expression de la séquence nucléique codant pour un polypeptide selon l'invention. La présente invention concerne plus particulièrement un procédé de préparation d'un polypeptide de l'invention comprenant les étapes suivantes - le cas échéant, l'amplification de la quantité de séquences de nucléotides codant pour ledit polypeptide à l'aide de deux amorces d'ADN choisies de manière à ce que l'une de ces amorces soit identique aux 10 à 30 premiers nucléotides de la séquence nucléotidique codant pour ledit polypeptide, tandis que l'autre amorce est complémentaire des 10 à 30 derniers nucléotides (ou s'hybride avec ces 10 à 30 derniers nucléotides) de ladite séquence nucléotidique, ou inversement de manière à ce ce que l'une de ces amorces soit identique aux 10 à 30 derniers nucléotides de ladite séquence, tandis que l'autre amorce est complémentaire des 10 à 30 premiers nucléotides (ou s'hybride avec les 10 à 30 premiers nucléotides) de ladite séquence nucléotidique, suivie de l'introduction desdites séquences de nucléotides ainsi amplifiées dans un vecteur approprié, - la mise en culture, dans un milieu de culture approprié, d'un hôte cellulaire préalablement transformé par un vecteur approprié contenant un acide nucléique selon 1'invention comprenant la séquence nucléotidique codant pour ledit polypeptide, et - la récupération, à partir du susdit milieu de culture du polypeptide produit par ledit hôte cellulaire transformé. Les peptides selon l'invention peuvent être préparés par les techniques classiques, dans le domaine de la synthèse des peptides. Cette synthèse peut être réalisée en solution homogène ou en phase solide. Par exemple, on aura recours à la technique de synthèse en solution homogène décrite par HOUBENWEYL dans l'ouvrage intitulé "Methode der Organischen Chemie" (Méthode de la Chimie Organique) édité par E. Wunsch, vol. 15-I et II., THIEME, Stuttgart 1974. Cette méthode de synthèse consiste à condenser successivement deux-à-deux les aminoacyles successifs dans l'ordre requis, ou à condenser des aminoacyles et des fragments préalablement formés et contenant déjà plusieurs aminoacyles dans l'ordre -approprié, ou encore plusieurs fragments préalablement ainsi préparés, étant entendu que l'on aura eu soin de protéger au préalable toutes les fonctions réactives portées par ces aminoacyles ou fragments, à l'exception des fonctions amines de l'un et carboxyles de l'autre ou vice-versa, qui doivent normalement intervenir dans la formation des liaisons peptidiques, notamment après activation de la fonction carboxyle, selon les méthodes bien connues dans la synthèse des peptides.En variante, on pourra avoir recours à des réactions de couplage mettant en jeu des réactifs de couplage classique, du type carbodiimide, tels que par exemple la l-éthyl-3-(3-diméthyl-aminopropyl)carbodiimide. Lorsque l'aminoacyle mis en oeuvre possède une fonction acide supplémentaire (notamment dans le cas de l'acide glutamique), ces fonctions seront protégées, par exemple par des groupes t-butylester. Dans le cas de la synthèse progressive, acide aminé par acide aminé, la synthèse débute de préférence par la condensation de 1'amino-acide Cterminal avec l'aminoacide qui correspond à l'aminoacyle voisin dans la séquence désirée et ainsi de suite, de proche en proche, jusqu'à l'acide aminé N-terminal. Selon une autre technique préférée de l'invention, on a recours à celle décrite par R.D. MERRIFIELD dans l'article intitulé "Solid phase peptide synthesis" (J. Arn. Chem. Soc., 45, 2149-2154). Pour fabriquer une chaîne peptidique selon le procédé de MERRIFIELD, on a recours à une résine polymère très poreuse, sur laquelle on fixe le premier acide aminé C-terminal de la chaîne. Cet acide aminé est fixé sur la résine par l'intermédiaire de son groupe carboxylique et sa fonction amine est protégée, par exemple par le groupe t-butyloxycarbonyle. Lorsque le premier acide aminé C-terminal est ainsi fixé sur la résine, on enlève le groupe protecteur de la fonction amine en lavant la résine avec un acide. Dans le cas où le groupe protecteur de la fonction amine est le groupe t-butyloxycarbonyle, il peut être éliminé par traitement de la résine à l'aide d'acide trifluoroacétique. On couple ensuite le deuxième acide aminé qui fournit le second amino-acyle de la séquence recherchée, à partir du résidu amino-acyle C-terminal sur la fonction amine déprotégée du premier acide aminé C-terminal fixé sur la chaîne. De préférence, la fonction carboxyle de ce deuxième acide aminé est activée, par exemple par la dicyclohexylcarbodiimide, et la fonction amine est protégée, par exemple par le t-butyloxycarbonyle. On obtient ainsi la première partie de la chaîne peptidique recherchée, qui comporte deux acide aminés, et dont la fonction amine terminale est protégée. Comme précédemment, on déprotège la fonction amine et on peut ensuite procéder à la fixation du troisième aminoacyle, dans les conditions analogues à celles de l'addition du deuxième acide aminé C-terminal. On fixe ainsi, les uns après les autres, les acides aminés qui vont constituer la chaîne peptidique sur le groupe amine chaque fois déprotégé au préalable de la portion de la chaîne peptidique déjà formée, et qui est rattachée à la résine. Lorsque la totalité de la chaîne peptidique désirée est formée, on élimine les groupes protecteurs des différents acides aminés constituant la chaîne peptidique et on détache le peptide de la résine par exemple à l'aide d'acide fluorydrique. L'invention sera davantage illustrée à l'aide des exemples contenus dans la description détaillée qui suit, cette dernière ne révêtant aucun caractère limitatif. 1. Isolement du fragment SacI de 2 Kb Le but de la présente invention est le clonage du système adhésion-invasion de Typhi. La souche utilisée est la souche Ty 2 de Typhi déposée à la Collection de L'INSTITUT PASTEUR sous la référence CIP 55-35. Partant d'une collection de 2000 mutants indépendants obtenus par insertion d'un transposon dérivé de Tn5 (MANOIL C. et BECKWITH J., 1985. TnPhoA:a transposon probe for protein export signals. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 82, 8129-8133) dans le génome de la souche Typhi Ty 2, il a été obtenu un mutant qui n'était plus invasif dans le modèle de cellules HeLa en culture. La technique d'infection des cellules HeLa en culture par Typhi est la suivante:les cellules HeLa sont cultivées en milieu RPMI 1640 contenant 10 % de sérum de veau foetal. Ces cellules sont infectées par Typhi à un ratio de 100 bactéries par cellule. Après une heure d'incubation à 37"C, les cellules sont lavées avec le milieu de culture, puis remises en culture en présence de gentamycine à 100 pg/ml. Les bactéries intracellulaires sont détectées après 24 h par une coloration de Giemsa. Après digestion du génome de ce mutant par l'endonucléase de restriction SacI, des expériences d'hybridation sur feuille de nitrate de cellulose ont montré que le transposon était inséré dans un fragment SacI de 2 kilobases (Kb). Comme le transposon utilisé code pour la résistance à la kanamycine, le fragment SacI de 2 Kb, contenant le transposon a pu être cloné dans le site SacI du plasmide pUC18 (VIEIRA J. et MESSING J., 1982. The PUC plasmids, an M13mp7- derived system for insertion mutagenesis and sequencing with synthetic universal primers. Gene, 19, 259-268). C'est en utilisant ce plasmide recombinant que les séquences nucléiques faisant l'objet de la présente d'invention ont été isolées. L'ADN génomique de la souche Ty 2 a été digéré par l'endonucléase SacI et les produits de cette restriction ont été ligaturés dans le site SacI du vecteur de clonage pUC18. Ce mélange de ligation a été utilisé pour transformer la souche Escherichia coli HB101 (déposée à la Collection de 1'INSTITUT PASTEUR sous la référence CIP 102400). La sélection des transformants a été effectuée sur gélose nutritive contenant 100 pg/ml d'ampicilline. Après incubation durant 24 heures à l'étuve à 37"C, les transformants ont été repiqués sur des disques de nitrate de cellulose déposés sur des géloses nutritives contenant 100 Ag/ml d'ampicilline. En vue de procéder à une hybridation in situ, ces disques ont ensuite été traités par une solution de dénaturation (NaOH 0,5M), puis par une solution de neutralisation (acétate d'ammonium IM, NaOH 0,02M). L'ADN libéré et dénaturé par ces traitements a été fixé sur les disques de nitrate de cellulose par chauffage à 800C durant 3 heures. Ces disques de nitrate de cellulose ainsi préparés ont été hybridés avec le fragment SacI de 2 kb contenant le transposon et marqué au 32P. Les hybridations ont été réalisées à 65"C durant 24 heures en 6 x SSC (1 x SSC est constitué de 0,15 M NaCl et 0,015M citrate trisodique à pH 7) en milieu de Denhardt (0,1 % Ficoll ; 0,1 % polyvynil-pyrrolidone 0,1 % de sérum albumine de boeuf). I1 a été ainsi isolé un clone E. coli HB101 contenant un plasmide recombinant constitué du vecteur de clonage pUC18 dans lequel était inséré un fragment SacI de 2 kb (délimité par les sites S1 et S2 dans la carte de restriction de ce fragment qui est donnée dans la figure 1 en trait épais). 2. Région génétique associée au fragment 8acI de 2 fl. L'ADN génomique de la souche Ty 2 a été digéré par l'endonucléase HindIII. Les produits de digestion, séparés par électrophorèse en gel d'agarose, ont été transférés par capillarité sur feuille de nitrate de cellulose. Ils ont ensuite été hybridés dans les conditions décrites ci-dessus avec le fragment SacI-BamHl de 1,1 kb (fragment A sur la figure 1) ou avec le fragment HindIII-EcoRl de 1,3 kb (fragment B sur la figure 1) qui sont tous les deux internes au fragment SacI de 2 kb. I1 a été constaté que le fragment SacI de 2 kb était recouvert par deux fragments Hindîli de taille respectivement égale à 2,3 kb et 5,6 kb sur le génome de la souche Typhi Ty 2 (soit un fragment de 7,9 kb délimité par les sites H1 et H2 sur la carte de restriction enzymatique de cette région qui est donnée dans la figure 1). 3. Isolement de la sonde pour Sallonella. L'ADN du plasmide recombinant contenant le fragment SacI de 2 kb a été restreint par les endonucléases SacI et HindIII. Cette double digestion libère un fragment SacI-HIndIII de 487 paires de bases, qui a été recloné entre les sites de restriction SacI et HindIII du vecteur de clonage pUC18. Ce fragment SacI-HindIII de 487 paires de bases est appelé ci-après "Sonde pour Salmonella" et correspond à la séquence nucléique (I) définie cidessus. La position de ce fragment SacI-HindIII dans le fragment SacI de 2 kb est indiquée sur la figure 1. 4. Contrôle de la spécificité de la sonde pour Salmonella. Pour effectuer ce contrôle, les souches utilisées ont été cultivées durant 24 heures à 37"C dans 200 p1 de bouillon nutritif en plaques pour microtitration à 96 puits. A l'aide d'un inoculateur multi-points, ces souches sont remises en culture durant 5 heures à 37"C sur une feuille de nitrate de cellulose disposée sur une boîte de gélose nutritive. La feuille de nitrate de cellulose est ensuite traitée et utilisée pour des expériences d'hybridation in situ. Pour préparer la sonde pour Salmonella, le plasmide recombinant (pUC18 contenant le fragment SacI-HindIII de 487 paires de bases) a été digéré par les endonucléases SacI et HindIII. Après séparation des produits de cette digestion par électrophorèse en gel d'agarose, la sonde pour Salmonella a été purifiée par électro-élution. Elle a, ensuite, été marquée au 32P par déplacement de césure. Les expériences d'hybridation ont été réalisées à 650C en 6 x SSC et en milieu de Denhardt pendant 18 heures de réaction. Dans ces conditions expérimentales, la spécificité de la sonde pour Salmonella a été contrôlée avec 768 souches bactériennes, qui se répartissent en 384 souches n'appartenant pas au genre Salmonella et 384 appartenant au genre Salmonella et représentant les sept sous-espèces du genre Salmonella . Ces 768 souches proviennent de la Collection du Centre Collaborateur de 1'OMS de Référence et de Recherche pour les Salmonella et de la collection du Centre National pour les Salmonella Aucune des 384 souches n'appartenant pas au genre Salmonella n'a répondu avec la sonde pour Salmonella. Sur les 384 souches de Salmonella, 382 ont répondu avec la sonde pour Salmonella. Les deux souches n'ayant pas répondu avec la sonde pour Salmonella appartiennent, l'une au sérotype Wedding et l'autre au sérotype Zuerich. I1 s'agit dans les deux cas de la souche de référence du sérotype. Pour ces deux souches, il a été vérifié qu'elles sont noninvasives dans le modèle sur cellules HeLa en culture et qu'elles ne possédent ni le fragment homologue de la sonde pour Salmonella , ni même le fragment SacI de 2 kb. 5. Détection de Salmonella dans les produits biologiques après amplification génique. Dans un produit biologique, on ne peut aujourd'hui détecter une bactérie appartenant à une espèce donnée parmi plusieurs dizaines de millions d'autres bactéries. Pour pouvoir mettre en évidence la présence d'une Salmonella dans un produit biologique polymicrobien à l'aide d'une sonde nucléotidique, il est indispensable de procéder à à une amplification du nombre de bactéries à détecter en mettant en culture l'échantillon à analyser et à une amplification du nombre de copies de la cible que l'on veut détecter avec la sonde nucléotidique en utilisant la technique de l'amplification génique (ou technique de la "Polymerase Chain Reaction" ou PCR). Pour les Salmonella, le fragment SacI-HindIII de 487 paires de bases (la sonde pour Salmonella) est spécifique du genre Salmonella. Si, à partir de l'échantillon biologique à analyser, on met en évidence la présence de ce fragment, on pourra en déduire que l'échantillon étudié est contaminé par Salmonella. 5.1. Description des deux amorces utilisées pour la PCR. A partir de la séquence nucléotidique (I) de la sonde pour Salmonella, deux amorces utilisées pour mettre en oeuvre la technique d'amplification génique ont été sélectionnées. Les enchaînements de 17 bases correspondant aux deux amorces, désignées SS-1 et SS-2 dans la description ci-dessus, ont été utilisés pour amplifier le nombre de copies pour Salmonella. 5.2. Protocole utilisé avec les amorces s8-1 et SS-2 pour la PCR. Ce protocole é été mis au point en utilisant le kit "Gene amp" (marque déposée) de Perkin Elmer Cetus (réf. N 801-0055). Les amorces SS-l et SS-2 ont été utilisées à la concentration finale de 200 pmole. Le mélange réactionnel a été réalisé selon les instructions du fabricant en utilisant 10 1 de la solution contenant 1'ADN à amplifier sous un volume final de 50 ttl. Ce mélange a été soumis à 20 cycles d'amplification en utilisant l'appareil "DNA thermal cycler" (marque déposée) de Perkin Elmer Cetus (réf. N801-0177) dans les conditions suivantes étape de dénaturation à 94"C durant 120 secondes, étape de réassociation à 68"C durant 180 secondes, et étape d'élongation à 720C durant 90 secondes. L'ADN ainsi amplifié a été visualisé par électrophorèse (120 volts durant 30 minutes) en gel d'agarose contenant 2 % d'agarose à bas point de fusion (BRL ; réf. 5517) et % d'agarose normal (Sigma ; réf. A-6877). Après électrophorèse, 1'ADN a été transféré sur feuille de nitrate de cellulose et hybridé avec la sonde pour Salmonella marquée au 32p. 5.3. Spécificité et sensibilité de la technique La souche LT2 de Salmonella sérotype Typhimurium, déposée à la Collection de l'Institut Pasteur sous la référence CIP 60.62T et la souche HB101 de E.coli (CIP 102.400) ont été utilisées pour étudier la spécificité et la sensibilité de la technique PCR dans les conditions expérimentales décrites ci-dessus. La solution contenant 1'ADN à amplifier a été préparée de la façon suivante 1) les bactéries entières sont mises en suspens ion dans 100 l d'eau distillée 2) la suspension bactérienne est traitée durant 10 minutes à 100 C dans un microtube pour centrifugation; 3) elle est ensuite centrifugée durant 3 minutes minutes à la vitesse maximale dans une microcentrifugeuse. En évitant le culot de centrifugation, on prélève 10 iil de cette solution pour procéder à l'amplification génique. Lorsqu'on utilise une culture pure de la souche LT2 de Salmonella sérotype Typhimurium, on détecte 1'ADN de 10 ou de moins de 10 bactéries dans 10 1 de solution soumise à l'amplification. Lorsqu'on utilise la souche HB101 de E. coli, aucune amplification n'est détectable même lorsqu'on travail avec 1'ADN correspondant à 106 bactéries dans 10 1 de solution soumise à l'amplification. Lorsqu'on réalise un mélange des deux souches bactériennes, on détecte 1'ADN de 100 ou moins de 100 Salmonella mélangé avec 1'ADN de 106 E.coli HB101 dans 10 1 de la solution soumise à amplification. 5.4. Essai de détection de Sallomella dans un échantillon reconstitué au laboratoire. L'échantillon utilisé est un lot de viande hachée destinée à l'alimentation animale. I1 est très fortement contaminé par des bacteries à Gram positif ou négatif, aérobies ou anaérobies. Un comptage approximatif effectué sous microscope permet d'évaluer le nombre total de bactéries à 109 par gramme de viande hachee. En numération sur boites de gélose nutritive, le nombre de bactéries aérobies cultivant sur ce milieu a été trouvé egal à 108 par gramme de viande hachée. Cet échantillon ne contient pas de Salmonella : trois analyses effectuées avec les techniques classiques de bactériologie alimentaire se sont révélées négatives. 5.4.1. Préparation de l'échantillon pour analyse par PCR. L'échantillon a été reconstitué en ajoutant un nombre variable de Salmonella sérotype Typhimurium (10, 102, 103, 104, 105 ou 106) à 25 g de viande hachée. Cet échantillon reconstitué est mis en culture dans 200 ml de bouillon trypto-caséine soja dans un erlenmeyer de 1 litre durant 18 heures à 37"C avec agitation. On traite de façon identique 25 g de viande hachée sans Salmonella. Le lendemain, l'erlen-meyer est laissé durant 15 minutes sur la paillasse, sans agitation, à la température du laboratoire de façon à laisser sédimenter les plus gros débris. On prélève alors en surface 1 ml de bouillon que l'on transvase dans un microtube pour centrifugation et que l'on centrifuge durant 3 minutes à la vitesse maximale dans une microcentrifugeuse. Le surnageant est complètement éliminé à l'aide d'une pipette Pasteur. Le culot bactérien est remis parfaitement en suspension dans 100 iil d'eau distillée, puis passé durant 10 minutes à 100"C. On centrifuge de nouveau durant 3 minutes à la vitesse maximale. En évitant le culot de centrifugation, on prélève 10 M1 de cette solution pour procéder à l'amplification génique dans les conditions déjà indiquées. 5.4.2. Spécificité et sensibilité de la technique. Lorsqu'on part de 25 grammes d'échantillon sans Salmonella, on ne peut détecter aucune amplification de 1'ADN contenu dans les 10 Ml de la solution amplifiée. Lorsqu'on part de 25 grammes d'échantillon contenant 102 ou plus de 102 Salmonella, on détecte une amplification de 1'ADN contenu dans les 10 p1 de la solution amplifiée. REVENDICATIONS 1. Sequence nucléique caractérisée en ce qu'elle comporte toute ou partie de l'information génétique nécessaire à l'activité d'infection in vitro des cellules HeLa en culture par les bactéries du genre Salmonella. 2. Séquence nucléique selon la revendication 1, caractérisée en ce qu'elle comprend toute ou partie de la séquence de 7,9 kb délimitée par les deux sites HindIII, désignés par H1 et H2 sur la carte de restriction de ladite séquence représentée sur la figure 1. 3. Séquence nucléique selon la revendication 1 ou la revendication 2 caractérisée en ce qu'elle est issue du génome de la souche Ty 2 de Salmonella Typhi. 4. Séquence nucléique selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisée en ce qu'elle comprend toute ou partie de la séquence de 2 kb délimitée par les deux sites SacI, designés par SX et S2 sur la carte de restriction représentée sur la figure 1. 5. Séquence nucléique comportant toute ou partie de l'information génétique nécessaire à l'activité d'infection in vitro des cellules HeLa en culture par les bactéries du genre Salmonella, et susceptible de s'hybrider avec une séquence nucléique selon l'une des revendications 1 à 4, dans des conditions stringentes. 6. Séquence nucléique constituée d'une succession d'environ 200 à 500 nucléotides, issue d'une séquence selon l'une des revendications 1 à 5, et utilisable en tant que sonde pour la detection in vitro de bactéries du genre Salmonella. 7. Sonde nucléique selon la revendication 6, caractérisée par l'enchaînement nucléotidique (I) suivant: 5' > CAATTACGCCCCGATTATTATATCTCCGGGCAGATGATACCCGAT GGTAATGATAATATTGTACAGATCGAGATAGTTCGGGTTAAAGGT TATCACCTGCTGCACCAGGAAAGCATTAAGTTGATAGAACACCAA CCCGCTTCTCTCTTGCAAAACAAAATTGCGAATCTTTTGCTCAGA TGTATTCCCGGACTTCGCTGGGACACAAACGAAATTAGCGAGCTA AATTCGATTGACAGTACCATGGTCTACTTACGCGGTAAGCATGAG TTAAATCAATACACCCCCTATAGCTTACAGCAAGCGCTTAAATTG CTGACTCAATGCGTTAATATGTCGCCAAACAGCATTGCGCCTTAC TGTGCGCTGGCAGAATGCTACCTCAGCATGGCGCAAATGGGGATT TTTGATAAACAAAACGCAATGATCAAAGCTAAAGAACATGCGATT AAGGCGACAGACGTGGACCACAATAATCCACAAGCTT 587 8.Sonde nucléique selon la revendication 6 ou la revendication 7, caractérisée en ce qu'elle correspond selon le code génétique universel à la séquence en acides aminés (II) suivante GlnLeuArgProAspTyrTyrIleSerGlyGlnMetIleProAsp GlyAsnAspAsnIleValGlnIleGluIleValArgValLysGly TyrRisLeuLeuHisGlnGluSerIleLysLeu IleGluHisGln ProAlaSerLeuLeuGlnAsnLysIleAlaAsnLeuLeuLeuArg CysIleProGlyLeuArgTrpAspThrLysGlnIleSerGluLeu AsnSerIleAspSerThrMEtValTyrLeuArgGlyLysHisGlu LeuAsnGlnTyrThrProTyrSerLeuGlnGlnlaLeuLysLêu LeuThrGlnCysValAsnMetSerProAsnSerIleAlaProTyr CysAlaLeuAlaGluCysTyrLeuSerMetAlaGlnMetGlyIle PheAspLysGlnAsnAlaMetIleLysAlaLysGluHisAlaIle LysAlaThrGluLeuAspHisAsnAsnProGlnAla 9.Séquence nucléique constitué d'une succession d'environ 10 à 30 nucléotides issue d'une séquence selon l'une des revendications 1 à 8, et utilisable en tant qu'amorce nucléique pour l'amplification genique d'une séquence selon l'une des revendications 1 à 8. 10. Séquences nucléiques selon la revendication 9, utilisables pour 1'amplification de la séquence nucléique délimitée par les nucléotides situés aux positions 26 et 469 de l'enchaînement nucléotidique (I) selon la revendication 7 ou la revendication 8, caractérisée par les enchaînements nucléotidiques suivants SS-1 5' > GGT CCA GCT CTG TCG CC SS-2 5' > CCG CGC AGA TGA TAC CC 11. Polypeptide correspondant selon le code génétique universel à une séquence nucléique selon l'une des revendications 1 à 10. 12. Polypeptide constitué par toute ou partie de la séquence en acides aminés (II) suivante, cette séquence correspondant selon le code génétique universel à la séquence nucléique (I) définie dans la revendication 7 GlnLeuArgProspTyrTyrI1eSerClyGlnMet IleProAsp GlyAsnAspAsnIleValGlnIleGluIleValArgValLysGly TyrHisLeuLeuHisGlnGluSerIleLysLeuIleGluHisGln ProAlaSerLeuLeuGlnAsnLysIleAlaAsnLeuLeuLeuArg CysIleProGlyLeuArgTrpAspThrLysGlnIleSerGluLeu AsnSerIleAspSerThrMEtValTyrLeuArgGlyLysHisGlu LeuAsnGlnTyrThrProTyrSerLeuGlnGlnAlaLeuLysLeu LeuThrGlnCysValAsnMetSerProAsnSerIleAlaProTyr CysAlaLeuAlaGluCysTyrLeuSerMetAlaGlnMetGlyIle PheAspLysGlnAsnAlaMetIleLysAlaLysGluHisAlaIle LysAlaThrGluLeuAspHisAsnAsnProGlnAla 13.Anticorps, polyclonaux ou monoclonaux, susceptibles de reconnaître spécifiquement un polypeptide selon la revendication 11 ou la revendication 12. 14. Procédé de détection in vitro de la présence éventuelle de bactéries du genre Salmonella dans un échantillon biologique susceptible de les contenir caractérisé en ce qu'il comprend - le cas échéant, la mise en culture de l'échantillon, - le cas échéant, l'amplification du nombre de copies de la séquence nucléique à détecter à l'aide d'un couple d'amorces nucléiques selon la revendication 9 ou la revendication 10, - la mise en contact de l'échantillon avec une sonde nucléique selon l'une des revendications 6 à 8, dans les conditions d'hybridation définies dans la revendication 5, - la détection éventuelle de complexes d'hybridation formés entre la sonde sus-mentionnée et la séquence nucléique à détecter. 15. Procédé selon la revendication 14, caractérisé en ce que l'étape d'amplification de la séquence nucléique à détecter, comprend les étapes suivantes - une étape d'extraction de l'acide nucléique à détecter appartenant au génome des bactéries du genre Salmonella éventuellement présentes dans l'échantillon biologique, et,le cas échéant, une étape de traitement à l'aide d'une transcriptase inverse dudit acide nucléique si ce dernier est sous forme d'ARN, - un cycle comprenant les étapes suivantes dénaturation de l'acide nucléique double brin à détecter , ce qui conduit à la formation d'un acide nucléique simple brin, hybridation de chacun des brins d'acide nucléique, obtenus lors de l'étape de dénaturation précédente, avec au moins une amorce selon la revendication 9 ou la revendication 10, par mise en contact des brins sus-mentionnés avec au moins un couple d'amorces sus-mentionnées, formation à partir des amorces des ADN complémentaires aux brins sur lesquels elles sont hybridées en présence d'une ADN polymérase et de quantités appropriées des quatre nucléosides triphosphate (dNTP) différents, ce qui conduit à la formation d'un plus grand nombre d'acides nucléiques double brin à détecter qu'à l'étape de dénaturation précédente, ce cycle étant répété un nombre de fois déterminé pour obtenir ladite séquence nucléique à détecter éventuellement présente dans l'échantillon biologique dans une proportion suffisante pour permettre sa détection. 16. Kit pour la mise en oeuvre d'un procédé selon la revendication 14 ou la revendication 15, caractérisé en ce qu'il comprend - le cas échéant, un milieu approprié pour la mise en culture de l'échantillon biologique, - au moins un couple d'amorces nucléiques selon la revendication 9 ou la revendication 10, - le cas échéant, des réactifs appropriés à la mise en oeuvre du cycle d'amplification, notamment de 1'ADN polymérase, et des quantités appropriées des 4 nucléosides triphosphate différents, - une (ou plusieurs) sonde(s) nucléique(s) selon l'une des revendication 6 à 8, pouvant être marquée, capable de s'hybrider avec la (ou les) séquence(s) nucléique(s) à détecter, - des réactifs appropriés à la mise en oeuvre de la réaction d'hybridation entre la (ou les) sonde(s) et la (ou les) séquence(s) nucléique(s) à détecter susmentionnnées. - un tissu ou fluide biologique de référence dépourvu de séquences nucléiques susceptibles de s'hybrider avec la (ou les) sonde(s) sus-mentionnée(s). 17. Procédé de détection in vitro de la présence éventuelle de bactéries de genre Salmonella dans un échantillon biologique susceptible de les contenir, caractérisé en ce qu'il comprend - le cas échéant, la mise en culture de l'échantillon biologique, - la cas échéant, l'amplification, selon le procédé défini dans la revendication 15, du nombre de copies de la (ou les) séquence(s) nucléique(s) correspondant selon le code génétique universel au(x) polypeptide(s) à détecter, - la mise en contact de l'échantillon sus-mentionné avec des anticorps selon la revendication 13, - la détection éventuelle des complexes immunologiques formés entre lesdits anticorps et la (ou les) séquence(s) peptidique(s) à détecter. 18. Kit pour la mise en oeuvre d'un procédé selon la revendication 17, caractérisé en ce qu'il comprend: - le cas échéant, un milieu approprié pour la mise en culture de l'échantillon biologique, - le cas échéant, un couple d'amorces nucléiques selon la revendication 9 ou la revendication 10, et des réactifs appropries à la mise en oeuvre du cycle d'amplification, notamment de 1'ADN polymérase et des quantités appropriées des 4 nucléosides triphosphate différents, - des anticorps, polyclonaux ou monoclonaux, selon la revendication 13, pouvant être marqués, notamment de manière radioactive ou enzymatique, avec la (ou les) séquence(s) peptidique(s) à détecter, - les réactifs pour la constitution du milieu propice à la réalisation de la réaction immunologique entre les anticorps et la (ou les) séquence(s) peptidique(s) sus-mentionnés, - les réactifs permettant la détection des complexes immunologiques formés lors de la susdite réaction immunologique, - un tissu ou fluide biologique de référence dépourvu de polypeptides susceptibles d'être reconnus par les anticorps sus-mentionnés. 19. Acide nucléique recombinant contenant au moins une séquence nucléique selon l'une des revendications 1 à 10, insérée dans un acide nucléique hétérologue vis-à-vis de ladite séquence nucléique. 20. Acide nucléique recombinant selon la revendication 19 caractérisé en ce que la séquence nucléique selon l'une des revendications 1 à 10 est précédée d'un promoteur (notamment un promoteur inductible) sous le contrôle duquel la transcription de ladite séquence est susceptible d'être effectuée et, le cas échéant, suivie d'une séquence codant pour des signaux de terminaison de la transcription. 21. Vecteurs recombinants, notamment des plasmides, cosmides, ou phages, contenant un acide nucléique recombinant selon la revendication 19 ou la revendication 20, en l'un de leurs sites non essentiel pour leur réplication. 22. Procédé de préparation d'un polypeptide selon la revendication 11 ou la revendication 12, par transformation d'un hôte cellulaire à l'aide d'un vecteur recombinant selon la revendication 21, suivie de la mise en culture de l'hôte cellulaire ainsi transformé, et de la récupération du polypeptide dans le milieu de culture. 23. Procédé de préparation d'un polypeptide selon la revendication 11 ou la revendication 12, comprenant les étapes suivantes - le cas échéant, l'amplification de la quantité de séquences de nucléotides codant pour ledit polypeptide à l'aide de deux amorces d'ADN selon la revendication 9 ou la revendication 10, choisies de manière à ce que l'une de ces amorces soit identique aux 10 à 30 premiers nucléotides de la séquence nucléotidique codant pour ledit polypeptide, tandis que l'autre amorce est complémentaire des 10 à 30 derniers nucléotides (ou s'hybride avec ces 10 à 30 derniers nucléotides) de ladite séquence nucléotidique, ou inversement de manière à ce ce que l'une de ces amorces soit identique aux 10 à 30 derniers nucléotides de ladite séquence, tandis que l'autre amorce est complémentaire des 10 à 30 premiers nucléotides (ou s'hybride avec les 10 à 30 premiers nucléotides) de ladite séquence nucléotidique, suivie de l'introduction desdites séquences de nucléotides ainsi amplifiées dans un vecteur approprié, - la mise en culture, dans un milieu de culture approprié, d'un hôte cellulaire préalablement transformé par un vecteur selon la revendication 21, - la récupération, à partir du susdit milieu de culture du polypeptide produit par ledit hôte cellulaire transformé.