FR 2665710 A1 19920214 FR 9010263 A 19900810 La présente invention se rapporte à un baculovirus recombinant exprimant les protéines E et NSI de virus appartenant aux Flaviviridae ou de virus apparentés aux Flaviviridae (Flavi-like). Par Flaviviridae, on entend la famille de virus décrite par WESTAWAY et coll. dans Intervirology 24 . 183-192 (1985) comprenant le genre Flavivirus dont le réprésentant type est le virus de la fièvre jaune (VFJ). Par virus apparentés aux Flaviviridae, on entend les Pestivirus (Marc S. Collett et coll, J. Gen. Vir (1989) 70, 253-266), notamment le virus de la diarrhée virale des bovins (BVDV), le virus du choléra porcin (HCV), le virus de la border disease des moutons (BDV), ainsi que le virus de lthépatite C (Roger H. Miller dans Proc. Natl. Acad. Sci. USA, vol. 87 pp. 2057-2061, Mars 1990). Le VFJ est un virus enveloppé contenant un génome composé d'un ARN monocaténaire de polarité positive de 10862 bases. L'ARN viral est le seul ARNm synthétisé pendant le cycle de replication (DESPRES et coll, (17)). Les séquences nucléotidiques complètes de 3 souches de VJF ont été déterminées (Rice et coll, (18), Desprès et coll, (19), Hahn et coll, (20), Dupuy et coll, (21)). L'analyse des séquences a révélé la présence d'un cadre de lecture unique ouvert de 10233 bases codant pour une polyprotéine de 3411 acides aminés (PM approximatif de 375 kDa). L'ordre des protéines sur le génome viral : 5'-C-prM-E-NS1-NS2A-NS2B NS3-ns4a -NS4B-NS5-3' a été déduit d'après les données concernant les séquences nucléiques et peptidiques, chacune des protéines matures étant générés après clivages co et post-traductionnels par les protéases virales et cellulaires. La protéine d'enveloppe E (poids moléculaire apparent de 54 kDa) présente à la surface des virions est l'antigène le plus important; elle consiste en une protéine intégrée dans les membranes qui se lie aux récepteurs cellulaires et induit des anticorps neutralisants. La glycoprotéine non structurale NS1 (poids moléculaire apparent de 48 kDa) de fonction indéterminée pourrait jouer un rôle dans l'assemblage et la maturation du virus. L'immunisation avec la protéine NS1 purifiée ou des fragments polypeptidiques de NS1 exprimés sous formes de protéines de fusion par des bactéries s'est avérée protéger des souris et des primates contre une épreuve avec le VFJ. En outre, plusieurs anticorps monoclonaux spécifiques de NS1 du VFJ possèdent une activité cytolytique en présence du complément et se sont montrés capables de protéger de manière passive des animaux d'une épreuve avec le virus infectieux homologue (Schesinger et coll, 1985 (1); Gould et coll, 1986 (2)). Ces données suggèrent fortement que dans la prévention d'une infection virale, la reconnaissance immunitaire de la protéine NS1 pourrait fournir une alternative à la neutralisation directe des flavivirus. On a cherché depuis un certain temps à provoquer une réponse immunitaire en injectant à des animaux des protéines immunogènes de ces virus produites par un vecteur approprié, notamment la protéine d'enveloppe (E) et la glycoprotéine non-structurale (NS1) connue pour conférer une bonne protection. ZHAO et coll. (Journal of Virology, dec. 1987, p. 4019-4022, vol. 61 n- 12) ont ainsi décrit l'expression des protéines structurales et non structurales du virus de la Dengue par un virus recombinant de la vaccine. Yi-Ming Zhang et coll, (Journal of Virology, août 1988, p 3027-3031, vol. 62, N- 8) ont décrit l'expression des protéines de structure C (capside), PreM (précurseur de M) et de la glycoprotéine de structure E (enveloppe) ainsi que de protéines non structurales NS1 et NS2A par un baculovirus recombinant. Cependant, bien que les animaux immunisés soient protégés contre le virus de la Dengue, aucune de ces technique n'a permis d'obtenir un titre d'anticorps suffisamment élevé. La présente invention a pour but de fournir un système d'expression des protéines immunogènes de Flaviviridae et virus apparentés aux Flaviviridae à un taux élévé, de manière à conférer une protection immunologique efficace contre les infections dues à ces virus. La présente invention a pour objet un baculovirus recombinant, caractérisé en ce qu'il comporte un ADNc codant pour tout ou partie de la protéine antigénique d'enveloppe E et/ou un ADNc codant pour tout ou partie de la protéine antigénique non structurale NS1 d'un virus appartenant aux Flaviviridae ou d'un virus apparenté aux Flaviviridae, inséré dans le gène de la polyédrine entre le nucléotide + 35 et le nucléotide de + 170, le A du codon d'initiation modifié de la polyédrine étant numéroté + 1. Lorsque le baculovirus recombinant comporte en tant que segment d'insertion un ADNc codant pour tout ou partie de E ou un ADNc codant pour tout ou partie de E et NS1, il comporte, en outre, en amont de 1'ADNc une séquence leader qui correspond à l'ex- trémité 3' de la région 5' non codante du gène de la protéine VP1 du virus SV40 comportant 11 nucléotides en 3' du site Hind III (nt 1488 sur le génome de SV40) et le codon d'initiation ATG de la protéine VP1. Lorsque le baculovirus recombinant comporte en tant que segment d'insertion un ADNc codant pour tout au partie de NS1, aucun codon d'initiation n'a été introduit artificiellement car le peptide signal de NS1 contient un nombre important d'ATG en phase; l'un au moins de ces derniers sert à initier la traduction. Dans le cas où le baculovirus recombinant comporte en tant que segment d'insertion un ADNc codant pour tout ou partie de E, un codon de terminaison est présent à l'extrémité 3'. Il a été introduit dans une étape préalable à l'insertion dans le vecteur baculovirus. Dans le cas où le baculovirus recombinant comporte en tant que segment d'insertion un ADNc codant pour tout ou partie de E qui inclut déjà un codon de terminaison, il n'est pas nécessaire qu'il comporte un codon de terminaison ajouté artificiellement. Les baculovirus recombinants selon l'invention comportant respectivement un ADNc codant pour tout ou partie des protéines E et NS1, un ADNc codant pour tout ou partie de la protéine E et un ADNc codant pour tout ou partie de la protéine NS1, sont obtenus par cotransfection et recombinaison homologue des plasmides comportant en tant que segments d'insertion les ADNc respectifs avec le génome du baculovirus Autoaranha California Nuclear Polvhedrosis (AcNPV) de type sauvage. Un plasmide recombinant préféré, dénommé pAc-E.NS1 comprenant l'ADNc codant pour E et NS1 délé tée de l'aminoacide C terminal potentiel de NS1, est avantageusement obtenu par les étapes suivantes a) digestion d'un plasmide recombinant SV40-VFJ comportant l'ADNc codant pour E et NS1, afin d'introduire un codon de terminaison à l'extrémité carboxylique de NS1. il en résulte que la protéine exprimée est délétée de son aminoacide C-terminal; b) digestion de ce plasmide par Hind III ou Bgl II; c) traitement des extrémités avec le fragment de Klenow en présence des 4 désoxynucléotides triphosphate, de manière à rendre les extrémités franches; d) digestion des ADN obtenus par Apa I;; e) isolement et ligation des fragments d'ADN obtenus avec le plasmide pVL-941 poly préalablement linéarisé avec Bam H1 et traité par le fragment de Klenow en présence des 4 désoxynucléotides triphosphate, puis par la phosphatase alcaline, pour générer un plasmide comportant l'ATG initiateur de la protéine VP1 du virus SV40 précédé des 11 nucléotides adjacents en 5' délimités par un site Hind III. Cette séquence constitue une partie de région 5' non codante du ARNm chimérique polyédrine-VFJ, permettant l'expression de E et NS1. La région 3' de l'insérant code pour la protéine NS1 où le dernier aminoacide C terminal est délété et remplacé par la séquence exogène G-G-S-S. Un autre plasmide recombinant préféré, dénommé pAC-NS1 comprenant l'ADNc codant pour NS1 délété de son aminoacide C terminal potentiel est avantageusement obtenu par les étapes suivantes a) digestion d'un plasmide recombinant SV40-VFJ comportant l'ADNc codant pour E et NS1 délétée de son aminoacide C terminal avec Xba I;; b) remplissage avec le fragment de Klenow en présence des 4 désoxynucléotides triphosphate et ligation des fragments obtenus pour générer un plasmide comportant une séquence leader correspondant à l'extrémité 3' de la région 5' non codante du gène de la protéine VP1 du virus SV 40 comportant les Il nucléotides en 3' du site Hind III et le codon d'initiation ATG de la protéine VP1 ainsi que la séquence exogène GGG GGA TCC TCT AGC TAG en aval de l'ADNc codant pour E et NS1 délétée de son aminoacide C terminal;; c) digestion du plasmide obtenu à l'étape b) avec Tth 111 I, MluI et Pst 1, d) ligation des fragments obtenus à l'étape c) après remplissage du site Tth 111I par le fragment de Klenow en présence des 4 désoxynucléotides triphosphate avec un vecteur de transfert pVL-941 poly obtenu à partir de pVL 941 par insertion d'un multilinker à l'extrémité 3' du site Bam HI digéré par BamH1 et remplissage du site Bam HI par le fragment de Klenow en présence des 4 désoxynucléotides triphosphate. Un autre plasmide recombinant préféré, dénommé pAC-E1 comprenant l'ADNc codant pour le peptide signal de la protéine E suivie de la protéine E délétée de son extrémité C terminale (aminoacides 286 à 720) est obtenu par les étapes suivantes a) digestion du plasmide pAC-E.NS1 décrit précédemment par Xho I et Apa I et d'un plasmide recombinant SV40-VFJ comportant l'ADNc codant pour la protéine E avec Apa I et Bgl II, et b) ligation des fragments FXho I - Apa I) du plasmide pAC-E.NS1 obtenu précédemment et [Apa I - Bgl IIJ du plasmide recombinant SV40-VFJ comportant l'ADNc codant pour la protéine E tronquée avec un vecteur de transfert PVL-941 poly obtenu à partir de pVL 941 par insertion d'un multilinker à l'extrémité 3' du site Bam HI et digéré par Xho I et Bam H I. Les baculovirus recombinants sont obtenus par transfection et recombinaison homologue des plasmides, de préférence Autosraba california Nuclear Polyhedrosis Virus (Ac NPV) et expriment les protéines E et NS1 après maturation (glycosylation, oligomérisation....) à des taux élevés lorsqu'ils sont propagés dans des cellules eucaryotes d'insecte, en particulier des cellules de SPodoPtera fruaiDerda. Les protéines ainsi obtenues sont antigéniques et trouvent par conséquent leur application dans des procédés de diagnostic in vitro des infections virales causées par les Flaviviridae ou virus apparentés aux Flaviviridae. La présente invention a ainsi également pour objet un procédé de diagnostic in vitro chez l'homme ou chez l'animal, par mise en évidence des anticorps dirigés contre tout ou partie de la protéine E et/ou la protéine NS1 immunogène telle qu'obtenue par un baculovirus recombinant suivant l'invention, dans un prélèvement biologique de l'homme ou de l'animal, dans lequel on met en contact la ou les protéines immunogènes E et NS1 avec le prélèvement biologique de l'homme ou de l'animal pouvant contenir lesdits anticorps et on révèle la présence des anticorps fixés. Ce procédé peut être basé sur une méthode radioimmunologique de type RIA, RIPA ou IRMA ou une méthode immunoenzymatique de type WESTERN-BLOT sur bandelettes ou de type ELISA. La présente invention a également pour objet une trousse de diagnostic in vitro des infections causées par les Flaviviridae ou les virus apparentés aux Flaviviridae pour la mise en oeuvre du procédé ci-dessus mentionné, comprenant tout ou partie de la protéine NS1 et/ou la protéine E immunogènes telles qu'obtenues par un baculovirus recombinant suivant l'invention et contenant, en outre, un anticorps spécifique d'un isotype d'immunoglobuline. La présente invention a également pour objet un vaccin destiné au traitement et à la prévention des infections causées par les Flaviviridae ou les virus apparentés aux Flaviviridae chez l'homme ou chez l'animal, dans lequel l'agent vaccinant consiste en tout ou partie de la protéine E et/ou de la protéine NS1, obtenues par un baculovirus recombinant selon l'invention. L'agent vaccinant peut être administré sous la forme de protéine(s) purifiée(s) en utilisant les propriétés de fractionnement du Triton X 114, ou encore par l'intermédiaire d'un baculovirus recombinant tel que décrit précédemment produisant la ou les peptides immunogènes ou encore par l'intermédiaire de cellules d'eucaryotes, telles que les cellules d'insectes, notamment les cellules de SPodoPtera fruaiperda servant à la propagation du baculovirus recombinant et des protéines immunogènes produites par lui. La préparation massive de ces protéines recombinantes peut être obtenue soit en fermenteur de cellules SnodoPtera fruqiPerda, soit à partir de larves d'insectes infectées par le baculovirus recombinant. Outre la séquence peptidique immunogène, le vaccin peut contenir un adjuvant doué de propriétés immunostimulantes. Parmi les adjuvants que l'on peut utiliser figurent les sels minéraux tels que l'hydroxyde d'aluminium, des composés hydrophobes ou des surfactants tels que l'adjuvant incomplet de Freund, le squalane ou des liposomes, des polynucléotides synthétiques, des microorganismes ou composants de microorganismes tels que le murabutide, des molécules artificielles synthétiques telles que l'imuthiol ou le levamisole, ou encore des cytokines telles que les interférons a, ss, y ou les interleukines. L'invention a, en outre, pour objet un anticorps monoclonal dirigé contre tout ou partie d'une protéine E et/ou NS1, obtenue par un baculovirus recombinant tel que décrit précédemment. Les anticorps monoclonaux selon l'invention peuvent être préparés selon une technique classique. A cet effet, les polypeptides peuvent être couplés si nécessaire à un agent immunogène, tel que l'anatoxine tétanique, par un agent de couplage tel que le glutaraldéhyde, un carbodiimide ou la benzidine bis diazotée. On décrira ci-après plus en détail dans le cas du virus de la fièvre jaune (VFJ) - l'obtention des baculovirus recombinants selon l'invention exprimant tout ou partie des protéines E et NS1 du VFJ, - les propriétés physicochimiques, antigéniques et immunogènes des protéines E et NS1 du VFJ produites par des baculovirus recombinants en se référant aux figures annexées sur lesquelles - la Figure 1 représente un schéma de construction du plasmide pAc-E.NS1 permettant d'obtenir le baculovirus recombinant Ac-E.NS1. La séquence codant pour les protéines E et NS1 du VFJ incluant le codon d'initiation prélevé du gène VPî du virus SV 40, le peptide signal de la protéine E et le codon de terminaison à l'extrémité C terminale de la protéine NS1 sont isolés du plasmide pSV-E.NS1-(TAG). Les séquences représentant le génome du virus AcNPV et l'ADNc du VFJ sont indiquées par les lignes épaisses et les parties hachurées, respectivement. - la Figure 2 représente l'organisation des séquences du gène de la polyédrine du plasmide pVL 941-poly servant du vecteur de transfert pour sa recombinaison homologue avec le baculovirus, et du plasmide recombinant pAc-E.NS1. La séquence nucléotidique à la jonction entre le gène de la polyédrine et l'extrémité 5' de la région codant pour les protéines E et NS1 est reportée sur la figure. Le codon d'initiation ATG et le codon de terminaison TAG sont surmontés d'un trait. La séquence d'aminoacides des extrémités N et C du polypeptide traduit est indiquée sur la figure. La numérotation correspond à celle de la polyprotéine précurseur du VFJ. - la Figure 3 représente le schéma de construction du plasmide pAc-E1 permettant d'obtenir le baculovirus recombinant Ac-E1, - la Figure 4 représente le schéma de construction du plasmide pAc-NS1 permettant d'obtenir le baculovirus recombinant Ac-NSî, - la Figure 5 représente l'organisation des séquences du baculovirus pVL 941-poly servant de vecteur de transfert, et des plasmides recombinants pAc-E1 et pAc-NSl, La séquence nucléotidique à la jonction entre le gène de la polyédrine et l'extrémité 5' de la région codant pour les protéines E et NS1 est reportée sur la figure. Le codon d'initiation ATG et les codons de terminaison TGA et TAG respectifs des ADNc codant pour E et NS1 sont surmontés à l'aide d'un trait.La séquence d'aminoacides des extrémités N et C du polypeptide traduit est indiquée sur la figure. - la Figure 6 représente les résultats d'immunisations réalisées chez les souris Swiss avec un lysat de cellules de Sodoptera fruaiperda (souche Sf9), infectées par le baculovirus sauvage AcNPV, le virus 17D ou un lysat de cellules Vero in-fectées par le virus 17D, - la Figure 7 représente les résultats d'immunisations réalisées chez des souris Swiss avec un lysat cellulaire de Sf9 infectées par le baculovirus AcNPV et les baculovirus recombinants de l'invention Ac-E.NS1, Ac-E1 et Ac-NS1; - la Figure 8 représente les résultats d'immunoprécipitation d'un lysat obtenu en tampon RIPA de cellules Vero infectées par le VFJ et marquées à la méthionine [ S] en présence d'actinomycine D.Le ly sat radiomarqué (106 cpm dans un volume de 200 p1) est immunoprécipité avec 20 pl de sérum de souris prélevé avant l'épreuve par le virus 17D en présence de protéine A Sépharose (Pharmacia). 17D i.p. : sérums de souris immunisées avec le VFJ en intrapéritonéale; 17D Lys : sérums de souris immunisées avec le lysat des cellules Vero infectées par le VFJ; AcNPV : sérums des souris immunisées avec le ly sat des cellules Sf9 infectées par le ba culovirus sauvage; Ac-E.NS1 : sérums des souris immunisées avec le ly sat des cellules Sf9 infectées par le baculovirus recombinant Ac-E.NS1; Ac-E1 : sérums des souris immunisées avec le ly sat des cellules Sf9 infectées par le ba culovirus recombinant Ac-E1; Ac-NS1(A) : sérums des souris immunisées avec le ly sat des cellules Sf9 infectées par le ba culovirus recombinant Ac-NS1 étant décé dées après l'épreuve avec le virus infec tieux; Ac-NS1(B) : sérums des souris immunisées avec le ly sat des cellules Sf9 infectées par le ba culovirus recombinant Ac-NS1 ayant survé cues après l'épreuve avec le virus infec tieux. La position des protéines E et NSî est indiquée par les flèches. I - Construction des baculovirus recombinants La construction des plasmides recombinants est effectuée en utilisant les techniques standards décrites par Maniatis et coll, (3). 1. Construction du baculovirus recombinant pAc-E.NS1 La séquence codant pour les protéines E et NS1 du VFJ comportant le peptide signal de E et le codon d'initiation ATG de la protéine VPI de SV40 est isolée du plasmide pSV-E.NS1 sous forme d'un fragment d'ADN de 2,6 kpb, comme décrit par Desprès et coll, (4). Avant son insertion dans le baculovirus vecteur, un codon de terminaison en phase est inséré à l'extrémité 3' de cet ADN complémentaire par digestion du plasmide pSV-E.NS1 avec XbaI (site unique dans le multilinker) et remplissage avec le fragment de Klenow de manière à générer la séquence peptidique exogène GGSSS à l'extrémité carboxylique de la protéine NS1 (Figure 2).Les extrémités franches sont circularisées avec l'ADN ligase de T4, générant ainsi le plasmide pSV-E.NS1-(TAG) (Figure 1). Pour faciliter son insertion dans le vecteur navette, l'ADN passager est isolé de pSV-E.NS1-(TAG) sous forme de deux fragments de 0,70 kpb et 1,90 kpb comme cela apparaît sur la Figure 1. Le fragment de 0,70 kpb contenant la séquence codant pour la moitié N-terminale de la protéine E y compris son peptide signal, est clivée par Hind III (nucléotide 1488 sur le génome de SV40), rempli avec le fragment de Klenow et digéré avec Apa I (nucléotide 1603 sur le génome du VFJ). Le fragment de 1,90 kpb contenant la séquence codant pour la moitié C terminale de la protéine E suivie par la protéine NS1 complète, est digéré par Bgl Il (site 3' terminal du multilinker de l'ADN recombinant de SV40), rempli avec le fragment de Klenow et digéré par Apa I. Le plasmide pVL 941-poly est obtenu à partir du plasmide pVL 941 décrit par Luckow et Summers (5) par insertion d'un multilinker à l'extrémité 3' du site Bam HI (Figure 2). Le plasmide pVL941-poly est digéré par Bam HI, rempli par le fragment de Klenow, déphosphorylé et utilisé pour l'insertion des fragments d'ADNc du VFJ de 0,70 et 1,90 kpb. La substitution par les gènes de E et NS1 dans le gène de la polyédrine commence au nucléotide + 35, en numérotant le A du codon d'initiation modifié ATT de la polyédrine par + 1.Le plasmide recombinant contenant le segment d'insertion de 2,6 kpb dans l'orientation correcte est désigné pAc-E.NS1. Dans le plasmide recombinant, les extrémités franches du site Bam H1 sont ligaturées à celles du site Hind III générant la séquence 5'...GGATCAGCTTATGAAGATGG...3' dans la région non-codante, comme cela apparait sur la Figure 2. Ce vecteur de transfert est utilisé pour générer le baculovirus recombinant Ac-E.NS1 après transfection et recombinaison homologue avec le génome du virus AutoaraPha California Nuclear Polvhedrosis (Ac NPV) de type sauvage en employant les techniques classiques de précipitation au calcium-phosphate décrites par Summers et Smith (6). Des particules virales occlusion-négatives sont purifiées en plages et propagées dans des cellules de SPodoPtera fruainerda Sf9 (isolat clonal 9 de la souche IPLB-Sf21-AE). Pour confirmer que la totalité de l'ADNc du VFJ a été transféré dans le génome du baculovirus, on extrait l'ADN viral à partir de cellules infectées par Ac-E.NS1. Dans le but d'isoler la séquence codant pour E et NS1, on a tiré parti de la présence de deux sites Eco RV aux deux extrémités de l'ADNc du VFJ, l'un en position-96 sur le gène de la polyédrine1 l'autre dans le multilinker en aval du segment d'insertion. Après séparation des produits de digestion sur gel d'agarose, l'ADN inséré ayant des dimensions correctes est révélé par utilisation d'une sonde d'ARNc spécifique obtenue à partir du plasmide pGX4-E1 (Ruiz Linarès et coll, (7)). 2. Construction du baculovirus recombinant Ac-E1 Le baculovirus recombinant Ac-E1 contient 1' ADNc codant pour la protéine, isolé du plasmide pSV-E (Desprès et coll, 4)). Cet ADNc code pour le peptide signal de la protéine E (aa 271 à 285 de la polypro téine précurseur du virus 17D) suivi de la protéine E délétée de son extrémité C terminale (aa 286 à 720). be plasmide pAc-E1 est généré après ligation des fragments [Xho I-Apa Il du plasmide pAc-E.NS1 (décrit précédemment), et [Apa I-Bgl II3 du plasmide pSV-E (DESPRES et coll. (4)) avec le vecteur de transfert pVL 941-poly digéré par Xho et BamH I (Figure 3). Le cadre de lecture ouvert de l'ADN passager inséré dans le gène de la polyédrine est décrit dans la Figure 5. 3. Construction du baculovirus recombinant Ac-NS1 Le baculovirus recombinant Ac-NS1 contient l'ADNc du virus 17D codant pour la glycoprotéine NS1 isolée du plasmide pSV-E.NS1-(TAG) décrit précédemment. Cet ADNc code pour le peptide signal potentiel de la protéine NS1 (aa 758 à 778) suivi de la protéine NS1 (aa 779 à 1129). Le plasmide pAc-NS1 a été généré après ligation des fragments ETth 111 I-Mlu I1 (nt 2389 à 2947 du génome viral) et [Mlu I-Pst 1) (nt 2947 à 3506; Pst 1 est un site du multilinker) avec le vecteur transfert pVL941-poly digéré par BamH 1 et Pst 1 (Figure 4). Le cadre de lecture ouvert de l'ADN passager inséré dans le gène de la polyèdrine est décrit dans la Figure 5. II - Expression des baculovirus recombinants A/ Expression du baculovirus recombinant Ac-E.NS1 1. Détection des protéines E et NS1 recombinantes Les cellules Vero infectées par le VFJ ou les cellules SF9 infectées par les différents baculovirus l'ont été à raison approximativement de 10 uni tés formant plage (UFP) par cellule. a) Marquage des protéines dans des cellules Sf9 et Vero. Avant le marquage, les cellules sont lavées à deux reprises et incubées dans un milieu exempt de méthionine pendant 60 minutes. Les cellules Sf9 sont radiomarquées pendant 180 minutes à 27 heures après l'infection (h p.i) avec 100 pCi de C méthionine par ml. Les cellules Vero (lignées cellulaires de reins de singe vert d'Afrique) infectées par le VFJ sont prétraitées à 8 h p.i avec 5 pg/ml d'actinomycine D (act D) et marquées à 25 h p.i pendant 3 heures avec 100 pCi de [35S] méthionine par ml en présence d'actinomycine D. Lorsqu'elles sont marquées en présence de tunicamycine (5 pg/ml), les cellules sont prétraitrées pendant 60 min. avec cette drogue. Pour les essais de marquage avec chasse ("pulse-chase"), on marque des cellules infectées pendant 30 minutes avec 200 Ci/ml de [35S] méthionine par ml. Après la période de marquage, les cellules sont lavées et incubées avec un excès de méthionine froide pendant des durées variables. Après marquage ou chasse, les protéines présentes dans le surnageant sont précipitées par addition de 9 volumes d'éthanol à 95% et incubation à - 20 C pendant 18 heures comme décrit par Desprès et coll, (4). Pour analyser les protéines intracellulaires, les cellules sont lavées à deux reprises avec une solution saline de tampon phosphate (PBS) froide et lysées avec un tampon RIPA froid (50 mM tris HCl pH 7,5; 150 mM NaCl; 10 mM EDTA; 0,1 % SDS; 1% Triton X 100; 1% deoxycholate) contenant 25 pg/ml d'aprotinine (Sigma). Après 5 mn d'incubation à O.C, les extraits cellulaires sont clarifiés par centrifugation pendant 5 min. dans une minicentrifugeuse. Les protéines sont immunoprécipitées en utilisant le protocole décrit par Ruiz-Linarès et coll, (7) et résolues sur des gels SDS-polyacrylamide à 12%. b) Analyse Western-blot Les protéines séparées sur gel de SDS-polyacrylamide sont transférées par électrophorèse sur des filtres de nitrocellulose (Schleicher et Schuell, RFA). La membrane est saturée avec le tampon de lavage (20 mM Tris HCl pH 7,5; 500 mM NaCl) contenant 3% de sérum foetal de bovin et mise à incuber pendant 1 nuit à 4 C avec un immunsérum de lapin dilué au 1/50 dirigé contre la protéine NS1 (Schlesinger et coll, (1)) ou une protéine de fusion TrpE-E obtenue par insertion de l'ADNc codant pour la protéine E dans la région 3' du gène TrpE de l'opéron tryptophane dans le plasmide PATH décrit par C. Dieckmann et A. Tzagoloff (J. Biol. Chem. 1985, 260, p. 1513-20). Après plusieurs lavages, la membrane est mise à incuber successivement à température ambiante avec un sérum de cheval anti-Ig de lapin biotinylé dilué au 1/500 et avec un complexe dilué au 1/500 de Streptavidine-péroxydase de raifort biotinylée (Amersham). Après lavage, les anticorps liés sont visualisés en mettant à réagir la membrane avec du 4-chloro-1-naphtol à 0,06% (Sigma) et du peroxyde d'hydrogène à 0,015%. c) Traitement par les Endo-ss-N-acétyl-D- glucosaminidases H (Endo-H) et F (Endo-F) Des cellules Sf9 infectées avec le baculovirus recombinant ou des cellules Vero infectées avec le VFJ sont marquées comme décrit ci-dessus et des extraits cellulaires immuno-précipités à l'aide d'anti corps dirigés contre les protéines du VFJ. Les complexes immuns sont traités avec llEndo-H (20 mU/ml) ou Endo-F (1U/ml) (Boehringer) en utilisant la technique décrite par Jarvis et Summers (22). d) Extraction par le Triton X 114 Les cellules sont rincées avec du PBS, mises en suspension dans une solution de Triton X 114 à 2% (BDH) dans 50 mM de tris-HCl pH 7, 5 contenant 25 pg/ml d'aprotinine et incubées pendant 10 min à O'C. Les phases aqueuse et détergent sont obtenues par incubation dans un bain marie à 37 C puis par centrifugation à 37'C dans une minicentrifugeuse à 3000 t/min. La phase aqueuse est récupérée et après plusieurs lavages avec du tampon E (10 mM de tris-HCl pH 7,5; 150 mM NaCl; 5 mM EDTA), la phase détergent est obtenue. Les phases aqueuse et détergent diluées avec 5 volumes de tampon E sont précipitées pendant une nuit à l'aide de 9 volumes d'éthanol à 95% à - 20*C. Les protéines sont analysées sur des gels de polyacrylamide. e) Essais d1immunofluorescence Des cellules de S.fruaiPerda cultivées sur des lamelles sont infectées avec AcNPV ou le virus recombinant pendant 24 heures à 27 C. Les cellules sont fixées avec du formaldéhyde et, si nécessaire, perméabilisées avec du Triton X 100 à 0,1% dans du PBS comme décrit précédemment (Desprès et coll, (8)). Les cellules fixées perméabilisées ou non sont mises à incuber pendant 20 min. à température ambiante avec un immunsérum de souris anti VFJ (dilution 1 : 40) ou avec une dilution au 1 : 20, de soit l'anticorps monoclonal (AcMc) 864 spécifique de E (Gould et coll. (9))t soit l'anticorps monoclonal 8G4 spécifique de NS1 (Schlesinger et coll.(10)). Une immunoglobuline anti-souris conjuguée à l'isothiocyanate de fluorescéine (Silenius) est utilisée comme second anticorps. 2/ Expression des protéines E et NS1 recombinantes du baculovirus Ac-E.NS1 Le plasmide recombinant Ac-E.NS1 contient l'ADNc du VFJ qui code pour une polyprotéine précurseur des protéines E et NS1, ayant un poids moléculaire théorique de 100 kDa (865 résidus d'aminoacides). Pour confirmer que ces protéines sont exprimées et subissent des maturations correctes dans les cellules Sf9, on marque des cellules infectées avec 35 Ac-E.NS1 à l'aide de [35SJ méthionine pendant 3 heures à 27 h p.i. Cette durée s' est avérée être optimale pour le marquage des protéines recombinantes. Lorsque les protéines virales sont immunoprécipitées avec un immunsérum de souris dirigé contre le VFJ ou avec des anticorps monoclonaux spécifiques de E et de NS1, les protéines recombinantes E et NS1 migrent avec les mêmes mobilités que les protéines authentiques obtenues à partir de cellules Vero infectées avec le VFJ. Lorsque les cellules sont traitées avec la tunicamycine, un inhibiteur de N-glycosylation des protéines, la protéine NS1 authentique et la protéine NS1 recombinante co-migrent avec un poids moléculaire apparent de 43 kDa. Ni la protéine recombinante, ni la protéine E authentique ne sont glycosylées comme il a pu en être jugé d'après l'absence d'effets de la drogue sur leur mobilité électrophorétique. L'antigénicité des protéines recombinantes est analysée en utilisant des anticorps monoclonaux dirigés contre les protéines E et NS1. Les anticorps monoclonaux neutralisant 2C9 (Schlesinger et coll, (10)) et 864 (ci-dessus mentionné) reconnaissent la protéine d'enveloppe synthétisée par la souche vaccinale 17D-204 du VFJ et réagissent avec la protéine E recombinante exprimée par le virus hybride SV40-VFJ (Desprès et coll, (4)). Les deux types d'anticorps monoclonaux réagissent également avec la protéine E recombinante synthétisée dans les cellules d'insectes. Comme ces anticorps monoclonaux reconnaissent la forme native mais non la forme dénaturée de la protéine E (Desprès et coll, (4)), on peut en conclure que le repliement de la protéine recombinante est similaire à celui de la protéine authentique. Les deux types d'anticorps monoclonaux immunoprécipitent des polypeptides supplémentaires qui migrent plus vite que la protéine E et pourraient être similaires aux produits de dégradation déjà trouvés dans les cellules infectées avec le VFJ, comme décrit par Schlesinger et coll, (11) et Cane et Gould (12). L'anticorps monoclonal 8G4 immunoprécipite la protéine NS1 du VFJ produite dans les cellules Vero infectées aussi bien que la forme non glycosylée synthétisée en présence de tunicamycine. La reconnaissance par l'anticorps monoclonal 8G4 est considérablement affectée lorsque, la protéine est traitée par du SDS et du dithiotréitol, ce qui indique que l'épi- tope est dépendant de la conformation. L'anticorps monoclonal 8G4 réagit également avec la protéine NS1 recombinante obtenue à partir de cellules Sf9 infectées par Ac-E.NS1. En plus de la protéine recombinante de 48 kDa, un polypeptide mineur avec un poids moléculaire apparent de 47 kDa est immuno-précipité à partir d'un lysat de cellules d'insectes infectées par Ac-E.NS1. Les analyses détaillées de cellules de Sf9 infectées avec le baculovirus recombinant Ac-E.NS1 ont révélé l'existence de deux grands polypeptides ayant des poids moléculaires apparents d'approximativement 100 kDa, ce qui représente la taille attendue pour le précurseur non clivé. Ces polypeptides réagissent avec un immunsérum de souris dirigé contre les protéines structurales et non structurales du VFJ aussi bien qu'avec les anticorps monoclonaux spécifiques de E et de NS1. Le plus grand polypeptide (105 kDa) migre avec la même mobilité que la protéine NS5 non structurale du VFJ. Lorsque la synthèse est effectuée en présence de tunicamycine, seule la bande migrant le plus rapidement est détectée ce qui suggère que les polypeptides ayant des mobilités plus rapides et plus lentes représentent les formes non glycosylées et glycosylées respectivement. Ces résultats indiquent que le polypeptide de 100 kDa est en fait le précurseur non clivé des protéines E et NS1 recombinantes. Détection des formes oliqomériaues et associées à la membrane de la protéine NS1 L'oligomérisation de NS1 dans les cellules de moustiques et de mammifères infectés par différents flavivirus a été décrite par Winkler et coll, (13, 14), Mason (15) et Schlesinger et coll, (16). La question est posée de savoir si la protéine NSî forme également des oligomères dans les cellules de lépidoptères infectées avec le virus Ac-E.NS1. Il était ainsi nécessaire d'établir les conditions pour détecter les oligomères de NS1 dans les cellules de mammifères infectés avec le VFJ. Les dimères NS1 formés pendant l'infection par le virus de la Dengue sont résistants à des trai tements réducteurs et par le SDS mais sensibles à la dénaturation par la chaleur. Les cellules de primates infectés avec la souche 17D-204 du VFJ sont marquées pendant 30 min à 25 h p.i en présence d'actinomycine D et chassées pendant des durées variables. Les protéines obtenues à partir des lysats cellulaires sont dissoutes dans un tampon de Laemmli et analysées sur gel de polyacrylamide avant et après dénaturation par la chaleur. Dans les échantillons dénaturés, la protéine NS1 de 48 kDa est détectée sous la forme d'une bande faible après une période de marquage de 30 min., et devient de plus en plus importante après une incubation de 60 min.Lorsque les échantillons ne sont pas dénaturés par la chaleur, la protéine de 48 kDa est détectée à la fin du marquage sans qu'elle s accu- mule pendant la chasse. De manière concomittante, une nouvelle bande virale avec un poids moléculaire apparent de 72 kDa appairait, qui devient de plus en plus intense durant la chasse. Le polypeptide de 72 kDa est élué à partir du gel et on montre qu'il représente une forme oligomérique de la protéine NS1. Le polypeptide isolé est analysé par Western-blot en utilisant un immunsérum de lapin dirigé contre la protéine NS1 du VFJ (Schlesinger et coll, (1)). Le polypeptide de 72 kDa réagit avec le sérum spécifique et après dénaturation par la chaleur se dissocie pour former la protéine NS1 de 48 kDa. Après traitement des extraits cellulaires avec du Triton X 114, les protéines transmembranaires ayant des séquences d'ancrage hydrophobes se répartissent de manière efficace dans la phase détergent, tandis que les protéines plus hydrophiles, cytosoliques et secrétées restent dans la phase aqueuse. La présence de la protéine d'enveloppe du VFJ ou de la protéine recombinante E exprimée par le virus Ac-E.NS1 dans la phase détergent est révélée par analyse directe de l'extrait cytoplasmique marqué et confirmée par analyse de type Western-blot au moyen d'un immunsérum de lapin dirigé contre la protéine E du VFJ. La protéine E est extraite de manière complète et totale dans la phase détergent comme attendu pour une protéine transmembranaire. La présence d'oligomères NS1 dans la phase de détergent est révelée clairement. Cependant des analyses de Wertern-blot avec un immunsérum de lapin dirigé contre la protéine NS1 du VFJ montre que l'oligomère NS1 de 72 kDa est extrait à la fois dans la phase aqueuse et dans la phase détergent. Après dénaturation par la chaleur, la forme oligomérique est dissociée et convertie en une protéine de 48 kDa. En l'absence de chauffage, la plupart des produits apparaissent sous forme d'oligomères. Lorsque la N-glycosylation est bloquée avec de la tunicamycine, on observe la présence d'un polypeptide de 62 kDa dans l'échantillon non chauffé. Lorsque l'échantillon est chauffé, ce polypeptide disparait tandis qu'apparaît le forme non glycosylée de NS1 (poids moléculaire apparent de 43 kDa).Ce résultat suggère que la protéine de 62 kDa est la forme non glycosylée de la protéine de 72 kDa et que l'oligomérisation de NS1 a lieu sans que soient nécessairement présents des groupes oligosaccharidiques fixés sur les sites NXT/S ou ASN X Thr/Ser présents sur la glycoprotéine. Aucune bande distincte autre que celle correspondant à NS1 n'apparaît après le chauffage, ce qui suggère que le polypeptide de 72 kDa est un homo-oligomère. La différence de poids moléculaire diffèrent entre 72 et 62 kDa correspond vraisemblablement au poids moléculaire de 4 oligosaccharides, étant donné que le monomère NS1 possède des résidus glycans sur les deux sites de N-glycosylation qui ensemble contribuent à 5 kDa (Desprès et coll, (4)). La protéine NS1 exprimée par le baculovirus recombinant Ac-E.NS1 est détectée par Western-blot avec l'immun sérum dirigé contre la protéine NS1 du VFJ aussi bien sous la forme monomérique gp48 que sous la forme oligomérique gp72. Si la forme monomérique est spécifiquement détectée dans la phase aqueuse, la forme oligomérique est retrouvée dans les phases aqueuse et détergent de Triton XI 14. Ces résultats signifient que l'oligomérisation et l'association aux membranes de la protéine recombinante NS1 ont lieu dans les cellules d'insectes infectées par le baculovirus recombinant Ac-E.NS1 et à une température de 27 C. Ces expériences confirment que la protéine d'enveloppe E du VFJ ou du virus Ac-E.NS1 possède les propriétés d'une protéine membranaire intégrale et montrent que la glycoprotéine NS1 de 48 kDa du VFJ ou du virus Ac-E.NS1 nouvellement synthétisée peut être convertie en une forme oligomérique thermolabile gp 72 qui peut être retrouvée associée aux membranes. Le polypeptide de 100 kDa synthétisé par Ac-E.NS1 est complètement extrait dans la phase détergent et réagit avec des immunsérums de lapin dirigés contre les protéines E ou NS1. Le résultat confirme que le polypeptide représente le précurseur non clivé de E et NS1 recombinantes et indique qu'il est fortement associé aux membranes intracellulaires. Des analyses de marquage avec chasse montrent que le clivage destiné à générer les protéines recombinantes E et NS1 a lieu après que-le précurseur ait été complètement transféré dans la lumière du RE (réticulum endoplasmique). On a également trouvé que la maturation du précurseur n'était pas modifiée par la tunicamycine, dans la mesure où les protéines E et NS1 non glycosylées étaient produites en présence de cette drogue. TransPort et sécrétion des protéines NS1 authentiques et recombinantes dans des cellules infectées Comme les protéines NS1 de différents flavivirus ont été décrites comme étant les antigènes solubles fixant le complément et plus tard comme une protéine secrétée dans le milieu de culture cellulaire, il était intéressant de déterminer si les protéines NS1 authentique et recombinante synthétisées dans des cellules Vero infectées par le VFJ ou dans des cellules Sf9 infectées par le baculovirus étaient également sécrétées dans le milieu. Les cellules Vero infectées avec le VFJ sont radiomarquées avec de la [355] de méthionine pendant 30 min. puis chassées avec un excès de méthionine froide pendant O à 5 heures. La protéine NS1 authentique est présente dans le surnageant cellulaire après 2 heures de chasse, après quoi un plateau est rapidement atteint. La forme secrétée de NS1 migre sous forme d'une bande diffuse avec un poids moléculaire apparent légèrement supérieur à sa contrepartie cellulaire. Bien que la proportion de NSî dans les fractions extra- et intracellulaires n'ait pas été quantifiée, des analyses par autoradiographie indiquent clairement qu'une grande partie reste sous forme intracellulaire. A partir de analyses de marquage avec chasse, on peut conclure que la sécrétion de NS1 est un processus plutôt lent dans la mesure où plus de 5 heures sont nécessaires pour que la moitié des protéines NS1 radiomarquées soit libérée dans le milieu de culture cellulaire. On montre également que la forme extracellulaire correspond à l'oligomère gp 72 et que celui-ci migre sous forme d'une bande plus large que l'oligomè- re intracellulaire. Il disparait après chauffage tandis que la forme monomérique de NS1 secrétée apparaît. Un traitement par la tunicamycine ne fait pas disparaitre la sécrétion de NS1 comme cela ressort de la présence de l'oligomère non glycosylé p62 de NS1, dans le milieu de culture. A l'opposé, des cellules Vero infectées avec le VFJ, la protéine recombinante NS1 obtenue à partir de cellules Sf9 infectées par Ac-E.NS1 n'est pas secrétée car aucun des polypeptides recombinants n'a pu être détecté dans la fraction extra-cellulaire après un marquage de 30 min. suivi par une chasse de 3 heures. La durée de la chasse n'excédait pas des périodes trop longues en raison d'une éventuelle lyse cellulaire due à l'infection par le baculovirus.Les cellules Sf9 infectées par Ac-E.NS1 non perméabilisées montrent une réaction clairement positive lorsqu'elles sont testées avec l'anticorps 8G4 spécifique de NS1, par immunofluorescence à 24 heures après l'infection, ce qui suggère que, bien que les oligomères de NS1 recombinants ne soient pas secrétés, ils ont pénétré dans le réticulum endoplasmique et dans l'appareil de Golgi et ont été transportés vers la membrane plasmatique avec laquelle ils se sont associés. N-alvcosvlation des Protéines NS1 authentiaues et recombinantes On sait que l'endoglycosidase H hydrolyse les résidus oligosaccharidiques à haute teneur en mannose liés à l'asparagine de la glycoprotéine, mais non les types complexes de glycans, tandis que l'endo-F clive de la même manière les oligosaccharides à haute teneur en mannose et les oligosaccharides complexes. La résistance à l'élimination des chaînes latérales hydrocarbonées par llEndo-H est acquise après la conversion de GlcNAc2-Man5 en GlcNAc2-Man3 - GlcNAc, un évènement qui a lieu dans la région médiane de l'appareil de Golgi.Ainsi la sensibilité ou la résistance aux traitements par l'endoglycosidase H, des groupes oligosaccharides liés aux aspargines présents sur la protéine NS1 exprimée par le VFJ ou par le virus Ac-E.NS1 devrait donner des indications sur son transport dans le trajet secrétoire intracellulaire et une indication quant au compartiment où a lieu l'oligomérisation. es échantillons intra- et extracellulaires obtenus à partir des expériences de marquage suivi de 2 heures de chasse sont analysés quant à leur réactivité à l'égard des endoglycosidases. La protéine NS1 extracellulaire du VFJ apparait être presque complètement résistante à l'Endo-H et montre la même hétérogénéité que la forme non traitée; mais comme on s'y attendait, est sensible à l'Endo-F. Ceci indique que NS1 doit traverser le compartiment secrétoire où les oligosaccharides à haute teneur en mannose sont modifiés en sucres complexes résistants à l'Endo-H. L'hétérogénéité de la protéine NS1 libérée est probablement due à des modifications multiples des oligosaccharides liés aux résidus Asparagine. Au contraire de la forme secrétée, la protéine NS1 intracellulaire est totalement sensible à l'Endo-H, ce qui indique qu'elle ne migre pas vers le complexe de Golgi mais reste dans le réticulum endoplasmique. Dans la mesure où la majorité de NS1 est présente sous la forme oligomérique, ces résultats suggèrent fortement que le repliement et l'oligomérisation ont lieu probablement dans le réticulum endoplasmique ou dans un compartiment qui précède le trans-Golgi. Pour caractériser la nature des N-glycans sur la protéine recombinante NS1, les protéines marquées obtenues à partir de cellules Sf9 infectées par Ac-E.NS1 et traitées avec le Triton X 114 sont réparties entre dans les phases aqueuse et détergent puis la protéine NS1 de chaque phase est immunoprécipitée. Des résultats similaires sont obtenus avec l'une ou l'autre phase. Lorsque la protéine recombinante NS1 composée des deux formes gp 48 et gp 47 est traitée avec l'endoglycosidase H, deux bandes sont observées qui migrent avec la forme p 43 non glycosylée et la forme gp 47 respectivement. Les deux bandes sont sensibles à l'Endo-F qui réduit leur taille à 43 kDa. Ces résultats suggèrent que gp 48 est la forme sensible à l'Endo-H tandis que gp 47 représente la forme résistante à l'Endo-H. L'existence de la protéine gp 47 résistante à l'Endo-H suggère que, bien que la majorité des protéines NS1 possèdent des glycans à haute teneur en mannose, certains des oligosaccharides sont raccourcis sans élongation supplémentaire. Ceci signifie que la protéine a été transportée à partir de réticulum endoplasmique vers l'appareil de Golgi où des séquences riches en mannoses ont vraisemblablement été modifiés en Man3GlcNAc2. Ce phénomène est observé dans les cellules d'insectes. De plus, de tels glycans sont connus pour être de pauvres substrats pour l'Endo-H. Ainsi, il apparait que la glycosylation de la protéine NS1 recombinante exprimée dans les cellules d'insectes est différente de celle de la protéine NS1 authentique synthétisée dans les cellules de mammifères. B/ Expression des baculovirus recombinants Ac-E I et Ac-NS1 L'étude de l'expression des protéines recombinantes E et NS1 en cellules Sf9 a été réalisée 30 h après infection par les baculovirus Ac-E 1 ou Ac-NSî. 1) Expression de la Protéine E tronquée Le baculovirus recombinant Ac-E 1 exprime la protéine d'enveloppe E du virus de la Fièvre Jaune délétée de son domaine d'ancrage transmembranaire C terminal. La protéine recombinante E a un poids moléculaire théorique de 52 kDa (96a de la protéine E du virus 17D). * Antigénicité de la protéine recombinante E La protéine E exprimée par le virus Ac-E 1 a un profil de migration électrophorétique très similaire à celles synthétisées par le virus 17D ou par le baculovirus recombinant Ac-E.NS1. Cette protéine recombinante réagit avec un immunsérum de souris anti17D ainsi qu'avec les anticorps monoclonaux neutralisants 4E8,2C9,2E10,2D12 et 5E3 (Schlesinger et coll, (10)). L'AcMc neutralisant 864 (Gould et coll, (9)), spécifique des souches vaccinales 17D-204, reconnait la protéine E recombinante. * Taux de production en cellules Sf9 La protéine E tronquée dans les cellules d'insecte infectées par le virus Ac-E 1 est visualisée par coloration au bleu de Coomassie à partir des protéines totales d'un lysat de 106 cellules après l'analyse sur un gel de polyacrylamide-SDS (PAGE-SDS). On estime la production de E à 10 pg pour 106 cellu les. * Propriétés physicochimiques de la protéine recombinante E Si le baculovirus recombinant Ac-E synthétise la protéine E en grande quantité, les essais de purification montrent qu'elle parait relativement insoluble; * Secrétion de la protéine E La protéine recombinante E n'est pas détectée dans le surnageant des cellules Sf9 infectées par le virus Ac-E.1 L'absence de sécrétion, malgré la délétion de son domaine d'ancrage transmembranaire, serait corrélée à sa propriété d'insolubilité dans le compartiment intracellulaire. * Localisation cellulaire de la protéine E par immunofluorescence Par immunofluorescence indirecte, la protéine E n'est retrouvée que dans le compartiment intracellulaire, on ne la détectée pas à la surface de la cellule. Le baculovirus recombinant Ac-E1 exprime la protéine E du virus de la Fièvre Jaune, souche vaccinale 17D-204 France, qui présente correctement les épitopes de neutralisation. 2) Expression de la Protéine NSI Le baculovirus recombinant Ac-NS1 exprime la glycoprotéine non structurale NS1 (aa 779 à 1129) du virus de la Fièvre Jaune en présence des acides aminés MSMSMILVGVIMMFLSLGVGA (aa 758 à 778) qui composeraient son peptide signal interne. * Antigénicité de la protéine recombinante NS1 La protéine recombinante NS1 synthétisée par le virus Ac-NS1 migre sous forme d'un doublet (PM apparents de 48 et 47 kDa) avec un profil de migration électrophorétique très similaire à celui de la protéine exprimée par le virus 17D ou par le baculovirus recombinant Ac-E.NS1. Le doublet de NS1 réagit avec un immunsérum de souris anti-17D et avec le AcMc 1A5,4E3,2D10,2G2 et 8G4 (Schlesinger et al, 10). Les AcMc 1A5 et 8G4 ont une activité cytolytique en présence de complément et peuvent protéger passivement- la souris et le primate contre le virus 17D injecté en intracérébral. * Glycosylation En présence de tunicamycine, un inhibiteur de la N-glycosylation des glycoprotéines ou après traitement avec l'endoglycosidase F, le doublet de NS1 de 48 et 47 kDa disparaît alors qu'apparaît un polypeptide de 43 kDa qui a un profil de migration électrophorétique très comparable à la forme non glycosylée de la protéine NS1 du virus amaril. Ce résultat indique que le doublet 48-47 kDa correspond à deux formes majeures de la protéine recombinante NS1 qui se différencient par la nature de leurs oligosaccharides. * Taux de production en cellules Sf9 La protéine NS1 dans les cellules d'insecte infectées par le virus Ac-NS1 est visualisée par coloration au bleu de Coomassie à partir d'un lysat de 106 cellules après analyse sur un PAGE-SDS. On estime qu'environ 10 pg de protéine NS1 sont produits par iO6 cellules. * Oligomérisation et association aux membranes de la protéine NS1 La forme oligomérique de la protéine NS1 (gp 72 kDa), préalablement décrite pour le virus 17D et pour le baculovirus recombinant Ac-E.NS1, est observée dans les cellules d'insecte infectées par le virus Ac-NS1 après coloration au bleu de Coomassie des protéines totales d'un lysat cellulaire non dénaturé analysé sur un PAGE-SDS. L'existence de la forme oligomérique gp 72 kDa de la protéine NS1 exprimée par le virus Ac-NS1 a été confirmée par Western blot avec un immunsérum de lapin anti-NS1. La forme oligomérique de la protéine NS1 est retrouvée associée aux membranes d'après les expériences de fractionnement au détergent non ionique Triton X 114. * Sécrétion de la protéine NS1 La protéine recombinante NS1 n'est pas détectée dans la surnageant des cellules Sf9 infectées par le virus Ac-NSî. L'absence d'excrétion de la protéine NS1 par les cellules de lépidoptère a été préalablement observée dans les cellules infectées par le baculovirus recombinant Ac-E.NS1. * Localisation cellulaire de la protéine NSî par immunofluorescence Par immunofluorescence indirecte avec l'AcMc 8G4, la protéine recombinante NS1 est retrouvée à la surface de la cellule Sf9 infectée. III - Immunité protectrice anti-VFJ induite Par les Protéines recombinantes E et NS1 chez la souris L'immunogénicité et le pouvoir protecteur des protéines recombinantes E et NS1 exprimées en cellules d'insecte Sf9 infectées par les différents baculovirus ont été testés chez la souris qui est le modèle animal de référence pour étudier la pathogénèse du VFJ. En effet, si les souches sauvages tuent le rongeur adulte après injection par les voies intracérébrale ou intrapéritonéale, les souches vaccinales 17D sont létales uniquement lorsque le virus est injecté par voie intracérébrale. Les souriceaux sont sensibles au virus sauvage ou vaccinal quelque soit la voie d'inoculation. Ainsi, pour tester le pouvoir immunogène des protéines recombinantes E et/ou NS1, on a inoculé des lysats cellulaires à des souris Swiss de trois semaines.L'épreuve par le virus virulent se fait en injectant le virus par voie intracérébrale. La détection d'anticorps dirigés contre les protéines E et NS1 dans les sérums de souris immunisées a été réalisée avant que les animaux ne reçoivent une injection intracérébrale du virus infectieux 17D (épreuve ou challenge au VFJ). a) préparation des lysats cellulaires Des cellules Sf9 infestées par le baculovirus sauvage (AcNPV) ont été utilisées comme contrôle négatif et deux types de contrôle positif ont été choisis : le virus 17D inoculé par voie intrapéritonéale et les cellules Vero infectées par le virus 17D. Toutes les cellules Sf9 ou Vero ont été prélevées à la 30ème heure après le début de l'infection. Elles ont été mises en suspension dans du PBS et l'extrait cellulaire a été obtenu par une simple étape de congé la tion-décongélation. Chaque souris Swiss reçoit une injection intrapéritonéale (i.p.) de 5 x 105 cellules (sauf 2,5 x 106 cellules infectées par Ac-E.NS1) contenues dans 0,3 ml, sans adjuvant, ou de 106 ufp de virus 17D, aux temps J O et J 15. Trois semaines après le début de l'inoculation, à J 19, les sérums des souris immunisées sont prélevés et à J 21 les animaux reçoivent une dose de 100 DL50 de virus 17D contenu dans un volume de 30 pl par voie intracérébrale (i.c.). La mortalité des souris est comptabilisée jusqu'au 21ème jour qui suit l'épreuve soit 6 semaines après le début de l'immunisation. b) Protection des souris immunisées I,es résultats sont présentés dans le tableau 1. TABLEAU I * Virus ou lysat Nombre de souris protégées Titre Ac NI cellulaire sur nombre total de souris des sérums injecté immunisées (% de protection) avant épreuve 17D i.p e 16/19 (85%) 40-80 Vero/17D 20/20 (100%) 10 AcNPV≈1/19 (5%) Ac-E.NS1 25/25 (100%) 10 Ac-E 1 17/19 (90%) 20 Ac-NS 1 5/25 (20%) (* : dilution du sérum pour obtenir 50% de réduction du titre viral) ( îo6 ufp de VFJ) (# : 0,5 x 106 cellules infectées) (+ : 2,5 x 106 cellules infectées) I,es souris Swiss inoculées par le virus 17D en intrapéritonéale ou celles qui ont reçu un lysat de cellules Vero infectées par le virus 17D sont proté gées tandis que les souris immunisées par le lysat de cellule Sf9 infectées par le baculovirus AcNPV sont décédées 15 jours après le début de l'épreuve avec le virus infectieux (Figure 6). Lorsque les souris Swiss sont inoculées par le lysat cellulaire Ac-E.NS1, la protection est totale. Pour établir le rôle respectif de E et NS1 dans l'induction d'une réponse immunitaire protectrice anti-virale, les souris Swiss ont reçu soit un lysat de cellules infectées par le baculovirus recombinant Ac-Eî, soit un lysat de cellules infectées par le baculovirus recombinant Ac-NSî. Les souris immunisées contre la protéine E tronquée de son extrémité C terminale (virus Ac-E1) sont protégées contre le virus infectieux (Figure 7), celles immunisées contre la protéine NS1 (virus Ac-NS1) restant sensibles au VFJ à 80% malgré un retard de 2 jours dans l'apparition des signes cliniques par rapport aux souris ayant reçu seulement les protéines du baculovirus (virus AcNPV) (Figure 7). Cette protection faible (20%) mais réelle suggère que la protéine NS1 seule joue un rôle non négligeable dans l'immunité anti-virale. c) Présence d'anticorps dirigés contre les protéines E et NS1 Les sérums prélevés chez les souris immunisées avant l'injection du virus 17D en intracérébrale (J21) sont testés pour la présence d'anticorps dirigés contre les protéines E ou NS1. Par radioimmunoprécipitation d'un lysat de cellules Vero infectées par le 35 VFJ et marquées à la méthionine [ S, on confirme que les sérums de souris immunisées avec le baculovirus AcNPV ne réagissent avec aucune des protéines du VFJ. Les sérums de souris ayant reçu le virus 17D en i.p. ou les protéines des cellules Vero infectées par le VFJ immunoprécipitent avec des intensités variables les protéines E et NS1 (Figure 8). Les sérums des souris immunisées avec le lysat de cellules Sf9 infectées par le virus AC.E-NS1 immunoprécipitent très bien la protéine NS1 et dans une moindre mesure la protéine E du VFJ (Figure 8). Les sérums des souris immunisées avec le lysat de cellules Sf9 infectées par les virus Ac-E1 ou Ac-NS1 immunoprécipitent très faiblement ou pas avec les protéines E ou NS1 respectivement (Figure 8). Deux hypothèses peuvent être proposées pour répondre à ce phénomène; soit les protéines recombinantes E et NSî exprimées par le virus Ac-E.NS1 sont plus immunostimulantes que celles synthétisées respectivement par les virus Ac-E1 et Ac-NS1, soit les anticorps dirigés contre les protéines E et NS1 individualisées appartiennent à des classes d'isotypes qui réagissent très mal avec la protéine A qui est spécifique des Ig2a. La deuxième explication peut être argumentée par le fait que le titre en Ac NI contre la protéine E exprimée par le virus Ac-E1 est supérieur à celui de la protéine E exprimée par le virus Ac-E.NSî bien que rien ne soit détecté par immunoprécipitation; en définitif, on peut imaginer que les protéines E et NS1 synthétisées par le virus Ac-E1 et Ac-NS1 respectivement stimulent préférentiellement certaines classes d'immunoglobulines non reconnues par la protéine A, phénomène qui n' aurait pas lieu lorsque les protéines recombinantes sont exprimées par le virus Ac-E.NS1. la réponse antigénique semble différente pour les mêmes protéines selon leur mode de présentation au système immunitaire de l'animal. Par le test de séroneutralisation in vitro, le titre en anticorps neutralisants (AcNI) présents dans les sérums a été utilisé. Le test de séroneutralisation in vitro est réalisé de la façon suivante; cent unités formant plages (ufp) du VFJ, souche vaccinale 17D-204 France, sont incubées pendant 2 heures avec des dilutions successives de sérums puis mises en contact avec des cellules de reins de porc (PS) en présence de carboxyméthylcellulose (CMC). Au bout de 5 jours, les cellules sont colorées et on détermine la dilution du sérum qui permet d'obtenir 50 plages environ soit une réduction de 50% du titre viral (titre du sérum en séroneutralisation). Le titre obtenu est de 40-80 pour les sérums de souris ayant reçu le virus 17D en i.p. et de 10 pour ceux des animaux immunisés contre le lysat de cellules Vero infectées par le VFJ (tableau 1).Comme attendu, on ne détecte pas d'Ac NI dans les sérums de souris immunisées contre les protéines du baculovirus AcNPV ou contre la protéine recombinante NS1 exprimée par le baculovirus recombinant Ac-NS1 (titre d) conclusion Les protéines E et NS1 du virus de la fièvre jaune, souche vaccinale 17D-204 France, exprimées par le baculovirus recombinant Ac-E.NS1 induisent une réponse immunitaire protectrice complète (100%) contre l'agent infectieux avec un titre en anticorps neutralisants de 10. La protéine d'enveloppe (E) délétée de son domaine d'ancrage transmembranaire carboxylique exprimée par le virus Ac-E1, immunise efficacement contre le VFJ (90% de protection) avec un titre en Ac NI de 20.Si la protéine recombinante NS1 synthétisée par le virus Ac-NS1 n'induit pas une immunité protectrice efficace contre le VFJ (20% de protection), la réponse immunitaire humorale et/ou cellulaire thymodépendante induite par elle paraît retarder l'apparition des signes cliniques, (généralement une paralysie des membres inférieurs) et peuvent protéger certains individus probablement en relation avec l'haplotype du complexe majeur d'histocomptabilité (C.M.H.) de la souris Swiss immunisée. De l'ensemble de ces résultats, il apparaît que la protéine d'enveloppe a un rôle primordial dans la réponse immunitaire protectrice anti-virale, certainement par l'induction d'anticorps neutralisants. Cependant, il semblerait que la réponse immunitaire dirigée contre les protéines E et NS1 exprimées par le virus Ac-E.NS1 soit encore plus performante pour les raisons suivantes - existence d'une protection totale contre le VFJ après seulement deux injections espacées de 15 jours d'un simple lysat cellulaire; - le taux en anticorps neutralisants titre 10) est suffisant pour une complète protection antivirale (titre comparable à celui obtenu pour les souris protégées avec le lysat de cellules Vero infectées par le virus 17D); - observation d'un haut pouvoir immunogène de la protéine NS1 produite par Ac-E.NS1. - intervention des deux compartiments de l'immunité anti-virale protectrice, la séroneutralisation du virus et la cytotoxicité dirigée contre les cellules infectées, l'ensemble permettant une double protection contre la diffusion de l'agent pathogène dans l'organisme (par les AcNI) ainsi que pour prévenir l'apparition de mutants d'échappement aux anticorps neutralisants en bloquant précocement la réplication virale en bloquant précisément la replication virale par l'intervention d'une réponse immunitaire humorale et/ou cellulaire thymodépendante dirigée contre la protéine NS1. Cette double réponse antigénique pourrait, dans le cas de la dengue, prévenir l'apparition de complications sévères telles que les fièvres hémorragiques qui ont été décrites être liées à la présence d'une immunité préexistante vis-à-vis d'un sérotype hétérologue du virus de la dengue. L'utilisation d'un vaccin sous-unité composé des protéines recombinantes E et NSI apparaît comme une réponse efficace et originale pour le développement d'une prophylaxie anti-flavivirus ou anti-flavilike. Dans le cas de la fièvre jaune, on pourrait immuniser efficacement les enfants de moins de 6 mois, ce qui n'est pas possible avec le vaccin vivant 17D actuel à cause de son niveau non négligeable de neurovirulence (recommandation de l'O.M.S.). Svmboles des acides amniés A Ala alanine C Cys cystéine D Asp acide aspartique E Glu acide glutamique F Phe phénylalanine G Gly glycine H His histidine I Ile isoleucine K Lys lysine L Leu leucine M Met méthionine N Asn asparagine P Pro proline Q Gln glutamine R Arg arginine S Ser serine T The thréonine V Val valine W Trp tryptophane Y Tyr tyrosine REFERENCES 1. Schlesinger, J.J. Brandriss, M.W. and Walsh, E.E.(1985). Protection against 17D yellow fever encephalitis in mice by passive transfer of monoclonal antibodies to the non structural glycoprotein gp 48 and by active immunization with gp 48 J. Immunol. 135,2805-2809 2. Gould, E.A. Buckley, A. Barrett, A.D.T. and Cammack., -N (1986). Neutralizing (54K) and non-neutralizing (54K and 48K) monoclonal antibodies against structural and non-structural yellow fever virus proteins confer immunity in mice. J. Gen. Virol. 67,591-595 3. Maniatis, T., Fritsch, E.F. and Sambrook, J. (1982). Molecular Cloning : A laboratory manual. Cold Spring Harbor Laboratory, New-York 4. Desprès, P., Ruiz-Linarès, A., Cahour, A., Girard, M.t Wychowski C., and Bouloy, M. (1990). The 15 amino acid residues preceding the amino terminus of the enveloppe protein in the yellow fever virus polyprotein precursor acts as a signal peptide. Virus Res. 16,59-76 5. Luckow, V.A. and Summers, M.D. (1989). High level expression of non fused foreign genes with Autographa californica nuclear polyhedrosis virus expression vectors. Virology. 170, 31-39 6. Summers, M.D. and Smith, G.E. (1987). A manual of methods for baculovirus vectors and insect cell culture procedure. In : "Texas Agricultural Experiment Station Bulletin" College Station TX, Bull. n 1555 7.Ruiz-Linarès, A., Cahour, A., Desprès, P., Girard, M. and Boloy, M. (1989). Processing of yellow fever virus polyprotein : role of cellular proteases in maturation of the structural proteins. J. Virol. 63, 4199-4209 8. Desprès, P., Cahour, A., Wychowski, C., Girard, M. and Bouloy, M. (1988). Expression of yellow fever virus enveloppe protein using hydrid SV40/yellow fever viruses. Ann.Inst.Pasteur/Virol.139,59-67 9. Gould, E.A., Buckley, A., Cammack, N. Barrett, A.D.T., Clegg, J.C.S., Ishak, R. and Varma, M.G.R. (1985). Examination of the immunological relationships between flaviviruses using yellow fever virus monoclonal antibodies. J.Gen.Viro1.66:1369-1382 10. Schlesinger, J.J. Brandriss, M.W. and Monath, T.P. (1983). Monoclonal antibodies distinguish between wild and vaccine strains of yellow fever virus by neutralization, hemagglutination inhibition and immune precipitation of the virus envelope. Virology.125.8-17 11. Schlesinger, J.J. Brandriss, M.W., Walsh, E.E., Eckels, K. Zhang, Y.M. and Lai, C.J. (1988). Development of candidate subunit flavivirus vaccines : immunogenic characterization of yellow fever and dengue virus structural and non structural proteins. In "Technological Advances in Vaccine Development" (Alan R. Less,Inc.). pp 11-20 12. Cane, P.A. and Gould, E.A. (1989). Immunobloting reveals differences in the accumulation of envelope protein by wild-type and vaccine strains of yellow fever virus. J.Gen.Virol. 70,557-564 13. Winkler, G. Randolph, V.B., Cleaves, G.R., Ryan, T.E. and Stollar, V. (1988).Evidence that the mature form of the flavivirus nonstructural protein NSî is a dimer. Virology. 162, 187-196 14. Winkler, G., Maxwell, S.E., Ruemmler, C., and Stollar, V (1989). Newly synthesized dengue-2 virus nonstructural protein NS1 is a soluble protein bu becomes partially hydrophobic and membrane-associated after dimerization. Virology. 171,302-305 15. FAN, W. and MASON, P.W. (1990). Membrane association and secretion of the japanese encephalitis virus NS1 protein from cells expressing NS1 c DNA, Virology 177, 470-476 16. Schlesinger, J.J. Brandriss, M.W., Putnak, J.R. and Walsh E.E. (1990). Cell surface expression of yellow fever virus non-structural glycoprotein NS1 : consequences of interaction with antibody J.Gen.Virol. 71,593-599 17. Desprès, P., Deubel, V., Bouloy, M. and Girard, M. (1986). Identification and characterization of intracellular yellow fever virus-specific RNA : absence of subgenomic RNA. Ann.Inst. Pasteur/Virol.137E, 193-204 18. Rice, C.M., Lenches, E.M., Eddy, S.R., Shin, S.H., Sheet R. and Strauss, J.H. (1985) Nucleotide sequence of yellow fever virus : implications for flavivirus gene expression and evolution. Science. 229, 726-733 19. Desprès, P., Cahour, A., Dupuy, A., Deubelt V., Bouloy, M. Digoutte, J.P. and Girard, M. (1987). High genetic stability of the region coding for the structural proteins of yellow fever virus strain 17D;J. Gen.virol. 68, 2245-2247 20. Hahn, Y.S., Dalrymple, J.M., Strauss, J.H. and Rice, C.M. (1987). Comparison of the virulent Asibi strain of yellow fever virus with the 17D vaccine strain derived from it. Proc.Natl.Acad.Sci (USA) 84, 2019-2023 21. Dupuy, A., Desprès, P., Cahour, A., Girard, M and Bouloy, M. (1989). Nucleotide sequence comparison of the genome of two 17D-204 yellow fever vaccines. Nucleic.Acids.Res. 17,3929 22. Jarvis, D.L. and Summers, M.D. (1989). Glycosylation and secretion of human tissue plasminogen activator in recombinant baculovirus-infected insect cells.Mol.Cell. Biol.9, 214-223 REVENDICATIONS 1 - Baculovirus recombinant, caractérisé en ce qu'il comporte un ADNc codant pour tout ou partie de la protéine antigénique d'enveloppe E et/ou un ADNc codant pour tout ou partie de la protéine antigénique non structurale NS1 d'un virus appartenant aux Flaviviridae ou d'un virus apparenté aux Flaviviridae, inséré dans le gène de la polyédrine entre le nucléotide + 35 et le nucléotide de + 170, le A du codon d'initiation modifié de la polyédrine étant numéroté + 1. 2 - Baculovirus recombinant selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comporte en tant que segment d'insertion un ADNc codant pour tout ou partie de E ou un ADNc codant pour tout ou partie de E et NS1, et en ce qu'il comporte, n outre, en amont de l'ADNc une séquence leader qui correspond à l'extrémité 3' de la région 5' non codante du gène de la protéine VP1 du virus SV40 comportant Il nucléotides en 3' du site Hind III et le codon d'initiation ATG de la protéine VP1. 3 - Baculovirus recombinant selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comporte en tant que segment d'insertion un ADNc codant pour tout ou partie de E, en ce qu'il comporte, en outre, à l'extrémité 3' un codon de terminaison introduit préalablement à l'insertion dans le baculovirus. 4 - Baculovirus recombinant selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'il est obtenu à partir de Autoaranha California Nuclear Polyhedrosis Virus. 5 - Plasmide recombinant pour l'obtention d'un baculovirus selon la revendication 1, dénommé pAc-E.NS1 comprenant l'ADNc codant pour E et NS1 délé tée de son aminoacide C terminal potentiel, caractérisé en ce qu'il est obtenu par les étapes suivantes a) digestion d'un plasmide recombinant SV40-VFJ comportant l'ADNc codant pour E et NS1, afin d'introduire un codon de terminaison à l'extrémité carboxylique de NSî.Il en résulte que la protéine exprimée est délétée de son aminoacide C-terminal; b) digestion de ce plasmide par Hind III et ou Bgl II; c) traitement des extrémités avec le fragment de Klenow en présence des 4 désoxynucléotides triphosphate, de manière à rendre les extrémités franches; d) digestion des ADN obtenus par Apa I; e) isolement et ligation des fragments d'ADN obtenus avec le plasmide pVL-941 poly préalablement linéarisé avec Bam H1 et traité par le fragment de Klenow en présence des 4 désoxynucléotides triphosphate, puis par la phosphatase alcaline pour générer un plasmide comportant l'ATG initiateur de la protéine VP1 du virus SV40 précédé des 11 nucléotides adjacents en 5' délimités par un site Hind III. 6 - Plasmide recombinant pour l'obtention d'un baculovirus selon la revendication 1, dénommé pAC-NS1 comprenant l'ADNc codant pour la protéine NS1 délétée de son aminoacide C terminal potentiel, caractérisé en ce qu'il est obtenu par les étapes suivantes a) digestion d'un plasmide recombinant SV40-VFJ comportant l'ADNc codant pour E et NSI délétée de son aminoacide C terminal avec Xba I;; b) remplissage avec le fragment de Klenow en présence des 4 désoxynucléotides triphosphate et ligation des fragments obtenus pour générer un plasmide comportant une séquence leader correspondant à l'extrémité 3' de la région 5' non codante du gène de la protéine VP1 du virus SV 40 comportant les 11 nucléotides en 3' du site Hind III et le codon d'initiation ATG de la protéine VP1 ainsi que la séquence exogène GGG GGA TCC TCT AGC TAG en aval de l'ADNc codant pour E et NS1 délétée de son aminoacide C terminal;; c) digestion du plasmide obtenu à l'étape b) avec Tth ill I, Mluî et Pst 1, d) ligation des fragments obtenus à l'étape c) après remplissage du site Tth 1111 par le fragment de Klenow en présence des 4 désoxynucléotides triphosphate avec un vecteur de transfert pVL-941 poly obtenu à partir de pVL 941 par insertion d'un multilinker à l'extrémité 3' du site Bam HI, digéré par Bam HI et remplissage du site Bam HI par le fragment de Klenow en présence des 4 désoxynucléotides triphosphate. 7 - Plasmide recombinant pour l'obtention d'un baculovirus selon la revendication 1, dénommé pAC-E1 comprenant l'ADNc codant pour le peptide signal de la protéine E suivie de la protéine E tronquée, délétée de son extrémité C terminale (aminoacides 286 à 720) , caractérisé en ce qu'il est obtenu par les étapes suivantes a) digestion du plasmide de pAC-E.NS1 décrit précédemment par Xho I et Apa I et d'un plasmide recombinant SV40-VFJ comportant l'ADNc codant pour la protéine E avec Apa I et Bgl II, et b) ligation des fragments [Xho I - Apa IJ du plasmide pAC-E.NS1 obtenu précédemment et [Apa I - Bgl II du plasmide recombinant SV40-VFJ comportant l'ADNc codant pour la protéine E tronquée avec un vecteur de transfert PVL-941 poly obtenu à partir de pVL 941 par insertion d'un multilinker à l'extrémité 3' du site Bam HI et digéré par Xho I et Bam H I. 8 - Polypeptides comprenant tout ou partie des protéines E et/ou NS1, caractérisés en ce qu'ils sont obtenus par un baculovirus recombinant selon l'une quelconque des revendications 1 à 4. 9 - Polypeptides comprenant tout ou partie des protéines E et/ou NS1, caractérisé en ce qu'il sont obtenus par propagation d'un baculovirus recombinant selon l'une des revendications 1 à 4 dans des cellules de SnodoPtera frusiPerda. 10 - Procédé de diagnostic in vitro chez l'homme ou chez l'animal, par mise en évidence des anticorps dirigés contre tout ou partie de la protéine E et/ou la protéine NSî immunogène telle qu'obtenue par un baculovirus recombinant suivant l'une des revendications 1 à 4, dans un prélèvement biologique de l'homme ou de l'animal dans lequel on met en contact la ou les protéines immunogènes E et NS1 avec le prélèvement biologique de l'homme ou de l'animal pouvant contenir lesdits anticorps et on révèle la présence des anticorps fixés. 11 - Trousse de diagnostic in vitro des infections causées y r les Flaviviridae ou les virus apparentés aux Flaviviridae pour la mise en oeuvre du procédé selon la revendication 10 comprenant tout ou partie de la protéine NS1 et/ou la protéine E immunogènes telle qu'obtenues par un baculovirus recombinant suivant l'une quelconque des revendications 1 à 4 et contenant, en outre, un anticorps spécifique d'un isotype d'immunoglobuline. 12 - Vaccin destiné au traitement et à la prévention des infections causées par les Flaviviridae ou les virus apparentés aux Flaviviridae chez l'homme ou chez l'animal, dans lequel l'agent vaccinant consiste en tout ou partie de la protéine E et/ou de la protéine NS1, obtenues par un baculovirus recombinant selon l'une quelconque des revendications 1 à 4. 13 - Anticorps monoclonal dirigé contre tout ou partie d'une protéine E et/ou NS1, obtenue par un baculovirus recombinant selon l'une quelconque des revendications 1 à 4.