FR 2646437 A1 19901102 FR 8905687 A 19890428 La présente invention a pour objet de nouvelles séquences d'ADN pouvant être utilisées en tant que séquence codant pour un peptide Signal pour la sécrétion de protéines par des microorganismes recombinants, plus particulièrement, des levures telles que des souches de Saccharomyces. Les levures sont des organismes eucaryotes unicellulaires; le genre de levure Saccharomvces comprend des souches dont la biochimie et la genétique sont étudiées intensivement en laboratoire; il comprend également des souches utilisées dans l'industrie alimentaire (pain, boissons alcoolisées ...) et produites par conséquent en très grande quantité. La facilité avec laquelle on peut manipuler la génétique des cellules de Saccharomvces cerevisiae et la longue histoire industrielle de cette espèce en font donc un hôte de choix pour la production de protéines étrangères en utilisant les techniques de 1'ADN recombinant. Lors de la préparation de protéines par les levures recombinantes, un des objectifs souvent poursuivis est l'obtention de produits qui sont d'une part correctement processés et d'autre part sécrétés dans le milieu de culture. En effet, dans le cas notamment de la préparation de protéines d'intérêt industriel, destinées à être produites en grande quantité, il est souhaitable, afin qu'elle conserve les propriétés désirées, que la protéine soit produite sous forme mature, c1 est & dire dépourvue de tout acide aminé ou séquence peptidique supplémentaires demeurées fusionnées à la protéine. Par ailleurs, il peut être intéressant dans certains cas qu'elle soit sécrétée dans le milieu de culture et non pas exprimée de façon intracellulaire, afin de faciliter les opérations de récupération et purification. I1 existe plusieurs protéines ou polypeptides naturellement sécrétés par la levure. Dans tous les Cas connus, ces protéines sont synthétisées sous forme d'un précurseur plus long dont la séquence N-terminale est décisive pour l'entrée dans le chemin métabolique conduisant a la sécrétion. La synthèse dans la levure de protéines hybrides contenant la séquence N-terminale d'un de ces précurseurs suivie de la séquence de la protéine étrangère que l'on souhaite obtenir peut, dans certains cas, aboutir & la sécrétion de cette protéine étrangere. Le fait que cette protéine étrangère soit synthétisée sous forme d'un précurseur, donc en général inactive, permet de protéger la cellule contre les effets toxiques éventuels de la molécule recherchée, le clivage qui libère la protéine active ne se faisant que dans des vésicules issues de l'appareil de Golgi qui isolent la protéine du cytoplasme. L'utilisation des chemins métaboliques conduisant à la sécrétion pour faire produire å la levure une protéine étrangère a donc plusieurs avantages 1') il permet de récupérer dans le surnageant de culture un produit raisonnablement pur et plus précisément non accompagné d'autres protéines susceptibles de le dégrader. 2') il permet de protéger la cellule contre les effets toxiques possibles de la protéine mature. L'intérêt de Saccharomvces cerevisiae en tant que souche hôte pour l'insertion d'un vecteur recombinant comprenant une séquence codant pour une protéine est que cette levure est elle-même capable de sécréter quelques protéines dans le milieu de culture. L'étude des mécanismes responsables de cette sécrétion est en plein essor et on a montré qu'il était possible de faire sécréter à la levure, après manipulation ad hoc, des hormones peptidiques humaines correctement processées et en tous points semblables à celles que l'on trouve dans le sérum humain [BUSSEY, H. et al. (1983) Mol. Celui. Biol. 3, 1362-1370 t BRAKE, A. et al. (1984) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 81, 4642-4646). Cette propriété a été mise à profit, comme cela est décrit dans la publication européenne de brevet EP-A-0116201, pour obtenir la sécrétion de protéines hétérologues par la levure. Par protéine hétérologue, on entend une protéine qui n'est ni produite naturellement par la levure, ni nécessaire à sa croissance. Le système de sécrétion décrit dans cette publication de brevet est celui de la phéromone alpha, c'est- & dire que la cassette d'expression de la protéine hétérologue comprend une séquence codant pour les éléments pré pro du précurseur de la phéromone alpha de la levure. La phéromone sexuelle alpha de levure est un peptide de 13 amino acides qui est sécrété dans le milieu de culture par les levures S. cerevisiae de type sexuel, MATalpha. Kurjan et Herskowitz (1982, Cell. 30, 933-943) ont clone un des deux gènes structuraux qui codent pour un (MF alpha 1) précurseur du facteur alphaM t å partir de la séquence du gène il a été déduit que le facteur alpha était synthétisé sous forme d'une pré-pro-protéine précurseur de 165 amino-acides. Le précurseur contient une séquence hydrophobe amino-terminale de 19 résidus (Waters et al. J. Biol. Chem. (1988) 63 p6209-6214) suivie d'une séquence de 63 acides aminés contenant 3 sites de glycosylation suivie enfin de 4 copies du facteur alpha séparées par des peptides espaceurs. C'est la totalité du précurseur (schematisé ci-après; y compris la séquence signal et la séquence Lys Arg) dont la séquence codante est utilisée dans la publication de brevet EP-A-0116201 pour obtenir la sécrétion d'une protéine hétérologue sous forme mature. Met Arg Phe Pro Ser Ile Phe Thr Ala Val Leu Phe Ala Ala Ser 1 10 Ser Ala Leu Ala Ala Pro Val ... Asn Gly Leu Leu Phe Ile Asn 19 21 62 ... Ser Leu Asp Lys Arg 83 La séquence des acides aminés de 1 à 19 correspond au peptide "pre" de MFalphal, viennent ensuite un site de reconnaissance pour une peptidase puis la séquence du peptide "pro" de MFalphal (des acides aminés 21 à 83) puis le site de clivage du produit du gène KEX2 (la séquence Lys Arg). A part le type de système de sécrétion décrit ci-dessus, c'est à dire les éléments pre pro correspondant au précurseur d'une protéine connue, on connaît également un autre type de système, constitué uniquement par la séquence codant pour un peptide signal par exemple le peptide signal du lyzozyme humain ou de la sérumalbumine humaine. La présente invention propose un nouveau système de sécrétion pour l'expression de protéines par les levures, et plus particulièrement, de protéines hétérologues. Plus précisément, l'invention a pour objet des nouvelles séquences d'ADN codant pour le peptide suivant : Arg-Phe-Ser-Thr-Thr- (A) -AIa-Thr-Ala-Ala-Thr-Ala-Leu-phe- Phe-Thr-Ala-Ser-Gln-Val-Ser-Ala, A étant un acide aminé choisi parmi Phe, Leu, Ala, Cys, Ile, Met et Val. L'invention concerne donc toute séquence d'ADN dont l'expression conduit à ces peptides. En particulier, A est choisi parmi Val et Leu. PLus précisemment l'invention a pour objet les séquences d' ADN ayant les formules suivantes CGT TTC TCT ACT ACA GTC GCT ACT GCA GCT ACT GCG CTA TTT TTC ACA GCC TCC CAA GTT TCA GCA (I), correspondant å un peptide où A = Val (peptide I) et CGT TTC TCT ACT ACA CTC GCT ACT GCA GCT ACT GCG CTA TTT TTC ACA GCC TCC CAA GTT TCA GCA (II), correspondant à un peptide ou A = Leu (peptide II). L'invention a également pour objet l'application de ces séquences d'ADN en tant que séquence codant pour un peptide signal pour la sécrétion de protéines par des levures recombinantes. En effet les séquences en acides aminés correspondantes comprennent une région hydrophobe possédant une structure en hélice alpha comprise entre la sérine en position 3 contribue à et la sérine en position 18. Cette structurelies rendeaptes à une utilisation comme peptide signal. Il est connu que la partie hydrophobe des séquences signal est composée en majorité des acides aminés Ala, Cys, Phe, Ile, Leu, Met, Val. On peut donc prévoir que certaines modifications d'acides aminés n'engendrent pas de modification dans l'aptitude du peptide signal å jouer son rôle.Ainsi, on a pu constater que le remplacement de la valine par la leucine en tant qu'acide aminé A de la séquence peptidique n'entrainait pas de changement notable. Bien entendu, en tant que séquences codant pour un peptide signal, les séquences d'ADN selon l'invention seront précédées d'un codon d'initiation de la traduction, généralement d'un codon codant pour une méthionine, en particulier un ATG. Dans la suite de la description, on désignera sous le terme de "séquence codant pour un peptide signal", les séquences d'ADN selon l'invention précédées du codon d'initiation, c'est à dire sous une forme convenant pour être insérée dans une cassette d'expression. Ces séquences peuvent être utilisées, dans une cassette d'expression d'une protéine dans les levures, seules ou en combinaison avec d'autres composantes d'un système favorisant la sécrétion. Ces séquences d'ADN peuvent être préparées par synthèse chimique, au moyen d'un synthétiseur d'oligonucléotides par une technique connue de l'homme du métier. L'invention s'applique de préférence à la sécrétion de protéines hétérologues. On vise en effet essentiellement la production de protéines d'intérêt industriel, en particulier d'intérêt thérapeutique. L'invention pourrait aussi toutefois s'appliquer à la sécrétion de protéines ou de polypeptides de levures, soit qui ne sont pas naturellement sécrétés, soit qui sont sécrétés à des taux insuffisants, l'utilisation de l'une des séquences selon l'invention permettant par exemple de sécréter la protéine en question å un niveau plus élevé. L'invention s'applique tout particulièrement bien i la production d'hirudine, c'est pourquoi les exemples illustratifs de l'invention concernent cette protéine. En effet l'hirudine, dont la source principale se trouve dans les glandes salivaires des sangsues médicinales est un inhibiteur très spécifique et très efficace de la thrombine. I1 s'agit donc d'un agent thérapeutique très intéressant dont l'utilisation en clinique exige une très grande pureté du produit, et qui est donc un candidat intéressant à la production par génie génétique. Un certain nombre de variants naturels de l'hirudine ont été identifiés et désignés par HV1, HV2, HV3. Par la suite ces variants naturels ainsi que d'autres analogues ont été préparés par génie génétique dans diverses cellules hôtes, comme cela est décrit par exemple dans les publications européennes de brevet EP-A-0200655, EP-A-0273800 au nom de la Demanderesse. La comparaison de l'hirudine synthétisée par E. coli et par une levure du genre S. cerevisiae a montré que l'hirudine synthétisée par E. coli reste intracellulaire et doit donc être purifiée à partir d'un très grand nombre de polypeptides de E. coli. Il est donc particulièrement intéressant de pouvoir faire exprimer un gene de l'hirudine dans la levure de façon a obtenir une hirudine sécrétée sous forme mature, et sans que la levure ne produise de substances pyrogènes ou toxiques pour l'homme. L'invention s'applique donc & toutes les hirudines, variants naturels ou analogues ayant subi une ou plusieurs mutations, délétions tout en conservant leur activité antithrombotique. Les exemples ci-après concerneront plus particulièrement l'analogue désigné par rHV2Lys47 (pour recombinant variant HV2 ayant subi une mutation de l'acide aminé Asp en position 47 en acide aminé Lys), décrit dans la publication de brevet EP-A-02738000 déjà mentionnée. L'invention concerne également une cassette d'expression de protéines matures dans des levures caractérisée par la présence, en tant que séquence codant pour un peptide signal, d'une séquence d'ADN selon l'invention. Une cassette d'expression permettant la sécrétion d'une protéine mature à partir de levures comporte au moins: a) une séquence d'ADN comportant les signaux assurant la transcription par la levure d'une séquence d'ADN codant pour un précurseur de la-protéine mature. b) une séquence d'ADN codant pour un peptide signal composante nécessaire d'un système de sécrétion de la protéine. c) une séquence d'ADN codant pour la protéine mature. Dans une première variante, on peut fusionner directement la séquence b) en phase avec la séquence c), la protéine mature pouvant être alors sécrétée dans le milieu de culture. Dans une deuxieme variante, la séquence b) peut être fusionnée i une séquence codant pour un peptide "pro", la protéine étant alors synthétisée sous forme d'une protéine hybride, un précurseur, qui peut être processé grâce aux signaux qu'elle comporte et qui proviennent de la séquence pro". Comme séquence "pro", on peut utiliser en particulier la séquence "pro" du gène MFalDhal qui comme indiqué précédemment code pour un peptide de 63 acides aminés contenant 3 sites de glycosylation. La séquence "pro" du gène MFalDhal peut être utilisée en totalité ou en partie, sous forme d'une séquence déletee. La séquence délétée pourra coder pour un peptide qui comporte seulement par exemple les acides aminés 20-21 et 62 à 83 de la séquence totale, soit le peptide suivant Ala Pro --- Gly Leu Leu Phe île Asn ... Ser Leu Asp Lys Arg 20 21 --- 62 83 Cette séquence "pro" sera suivie d'une séquence codant pour un peptide comprenant un site de clivage protéolytique de façon à faciliter la sécrétion de la molécule sous une forme mature. Dans le cas du gène MFalphal, le site Lys-Arg permet la liberation de la protéine mature à partir du précurseur, grâce a l'activité enzymatique de l'endopeptidase de levure yscF, codée par le gene KEX2, qui coupe au niveau de l'extrémité C-terminale le dipeptide Lys-Arg. I1 est bien entendu possible de prévoir d'utiliser, juste avant la séquence d'ADN codant pour la protéine mature, d'autres séquences d'ADN qui, au niveau des acides aminés, sont coupées sélectivement par une enzyme pour produire l'hirudine mature, sous réserve que ce site de clivage ne soit pas également présent dans l'hirudine elle-même. La séquence a) comprend un promoteur efficace dans la levure. On peut citer par exemple des promoteurs constitutifs de levure dont la fonctionnalité a été confirmée par la transcription de genes codant pour ces protéines hétérologues : le promoteur PGK, ENVOI, MFalphal, etc... ou encore des promoteurs inductibles, PH05, GAL1... Par exemple, lorsqu'on utilise dans la cassette d'expression des éléments du gène MFalDhal de levure, on pourra utiliser le promoteur du gène MFalphal. Enfin, les cassettes d'expression pourront présenter, après la séquence codant pour la protéine mature, une séquence de terminateur de levure, par exemple celui du gène PGK. De façon générale, les cassettes d'expression selon l'invention pourront être introduites dans une levure, en particulier Saccharomvces, soit sur un plasmide à replication autonome, soit directement dans le génome de la levure. Lorsque le plasmide est autonome, il comportera des éléments assurant sa replication, c'est-à-dire une origine de replication telle que celle du plasmide 2g de levure. En outre, le plasmide pourra comporter des éléments de sélection tels que le gène URA3 ou LEU2 qui assurent la complémentation de levure ura3 ou leu2. En particulier, on pourra avantageusement utiliser le gene URA3 délété de son promoteur (yRA3-d). Ces plasmides peuvent également comporter des éléments assurant leur replication dans les bactéries, lorsque le plasmide doit être un plasmide navette, par exemple une origine de replication telle que celle du pBR322, un gene marqueur de sélection tel que AmpR et/ou d'autres éléments connus de l'homme du métier. La présente invention concerne également des souches de levures transformées par une cassette d'expression selon l'invention, soit portée par un plasmide, soit intégrée dans son génome. Parmi ces levures, il faut citer plus particulièrement les levures du genre Saccharomvces notamment S. cerevisiae. Lorsque le promoteur est celui du gène MFalhal, la levure sera de préférence de type sexuel MATalpha. On utilisera, par exemple, une souche de génotype ura3 ou leu2 ou autre, complémentée par le plasmide pour assurer le maintien du plasmide dans la levure par une pression de sélection appropriée. Enfin, l'invention a pour objet un procédé de préparation d'une protéine par des levures recombinantes selon lequel on met en culture les souches transformées précédentes sur un milieu de culture adapté, et on récupere une protéine sécrétée dans le milieu de culture. Plus particulièrement, l'invention concerne un procédé de sécrétion de l'hirudine sous forme mature & partir des souches de levures transformées selon l'invention. Les exemples ci-après permettront de mettre en évidence d 'autres caractéristiques et avantages de la présente invention. Ces exemples seront illustrés par les figures suivantes - la figure 1 représente la structure schématique du plasmide pTG2958. - la figure 2 représente la structure schématique des vecteurs M13TG3839 et M13TG3841. Pour M13TG3839 les cadres hachurés aux extremites correspondeht à M13TG103 et pour M13TG3841 a M13TG3149. - la figure 3 represente la structure schématique du vecteur M13TG3845. Le cadre hachuré correspond å M13TG3149. - la figure 4 représente la structure schématique du plasmide pTG3828. - la figure 5 représente la structure schématique du plasmide pTG3864. EXEMPLE 1 : Construction des vecteurs d'expression pTG3864, pTG3867, pTG3894 et pTG3884 A. Construction du vecteur M13TG3845 Le plasmide pTG2958 (figure 1) est peu différent du plasmide pTG1833 décrit dans la publication européenne de brevet EP-A-252854 porteur de la séquence codante pour rHV2Asp47. Le plasmide pTG2958 ne contient pas le site de restriction HindIII artificiellement introduit.Le plasmide pTG2958 contient - un fragment de 547 paires de bases correspondant & la région 5' du gène MFalphål (contenant le promoteur, la séquence codant pour le peptide signal, la région "pro" et une séquence codant pour le peptide Lys-Arg), - un fragment de 234 paires de bases contenant 1'ADN complémentaire de riV2Lys47, - un fragment de 243 paires de bases comprenant le terminateur PGK de levure, - le fragment PvuII-EcoRI de pBR322 comprenant entre autres l'origine de réplication de ce plasmide et le gène de resistance & l'ampicilline (2292 paires de bases), - le fragment EcoRI-HindIII du plasmide 2 de la levure (forme B), contenant le gène LEU2 de levure, sous forme délétée et inséré dans le site PstI, - un fragment HindIII-SmaI du gène URA3 de levure. Le fragment EcoI-NcoI du vecteur pTG2958 qui porte les séquences LEU2-d, 2 et URA3 est remplacé par le fragment NcoI-NcoI de pTG2800 décrit dans la publication européenne de brevet EP-A-0268501 qui porte les séquences du plasmide 2 et du gène URA3 délété de son promoteur (URA3-d) pour donner pTG2877. Le vecteur M13TG3839 (figure 2) dérive de M13TG103 (Kieny, M.P. et al. (1983) Gene 26 p91-99) dans lequel le fragment HindIII-HindIII de pTG2877 est introduit dans le même site. Un site de restriction SalI est introduit dans ce vecteur en aval du codon de terminaison de traduction de la région codant pour rHV2Lys47 par mutagénèse dirigée à l'aide de l'oligonucléotide suivant 5' CAATGAAAAATGGTCGACTATCAATCATAG pour donner M13TG3839 SalI. Un site de restriction SohI est alors introduit en amont de la cassette d'expression en éliminant la séquence URA3-d par mutagénèse dirigée à l'aide de l'oligonucléotide suivant : 5' GACGGCCAGTGAATTGGCATGCTATTGATAAGATTTAAAG pour donner M13TG3840. Le vecteur M13TG131 tKieny M.P. et al. (1983) Gene 26 p91-99) est clivé par PstI, les extrémités rendues franche par traitement a l'aide du fragment Klenow de 1'ADN polymérase I pour être ensuite religué sur lui même pour donner M13TG3160. Ce vecteur est ensuite clivé par SmaI et EcoRV puis religué pour donner M13TG3149. Le fragment SDhI--SalI de M13TG3840 (décrit ci-dessus) portant la cassette d'expression de rHV2Lys47 (sans séquence terminatrice de transcription) est introduit dans le site SDhI-SalI de M13TG3149 pour donner M13TG3841 (figure 2). Une partie de la séquence (de l'acide aminé 22 a 61) codant pour la séquence "pro" du précurseur du facteur alpha de la levure est éliminée de M13TG3149 par mutagénèse dirigee et un site de restriction SmaI introduit en utilisant l'oîigonucléotide suivant 5' CTCCGCATTAGCTGCTCCCGGGTTATTGTTTATAAAT On obtient ainsi M13TG3842. Un site de restriction BamHI detruisant 1'ATG du précurseur du facteur alpha est introduit dans ce vecteur par mutagénèse dirigée avec l'oligonucléotide suivant 5' AATATAAACGATTAAÂAGGATCCGATTT CCTT CAATTTTTA On obtient alors M13TG3843.Après phosphorylation, les oligonucléotides suivants 5' GATCCGTTTCTCTTACTACAGTCGCTACTGCAGCTACTGCGCTATT GCAAAGTGATGATGTCAGCZATG 5' et 5' TTTCACAGCCTCCCAAGTTTCAGCTGCTCCC ACGTCGATGACGCGATAAAAAGTGTCGGAGGGTTCAAAGTCGACGAGGG 5' sont réinsérés dans les sites ltHI et SmaI du vecteur M13TG3843 introduisant ainsi la séquence I donc sans ATG. De manière à restaurer 1'ATG le site l3EHI est éliminé par mutagénèse dirigée en utilisant l'oligonucléotide suivant : 5' AATATAAACGATTAAAAGAATGCGTTTCTCTACTACAGTC pour donner le vecteur M13TG3845 (figure 3 > qui comporte - le promoteur du gène MFalDhal, - la séquence I précédée d'un ATG, - la séquence "pro" délétée du gène MFalphal, - la séquence codant pour rHV2Lys47, - une partie du vecteur M13TG3149, - le terminateur du gène codant pour la phosphoglycérate kinase (PGK) de la levure. B. Construction du plasmide pTG3864 Le plasmide pTG848 décrit dans la publication européenne de brevet EP-A-0252854 est digéré par BALAI puis religué pour donner pTG2886. Le grand fragment HindIII-EcoRI de pTG2886 est ligué en présence de ligase T4 au fragment EindIII-EcoRI de 2,1 kb du plasmide pFLl Parent, S.A. et al. (1985) Yeast 1 p83-1383 qui porte la séquence du plasmide 2 de S. cerevisiae pour donner le plasmide pTG2886 LEU2-d, URA3-d. Le fragment HindIII de 0,9 kb du plasmide pTG2800 décrit dans la publication européenne de brevet EP-A-0258501 portant le gène URA3-d est alors inséré dans le sites HindIII de ce plasmide pour donner pTG2886 URA3-d, delta LEU2-d.Le fragment SmaI-BalII de M13TG131 (Kieny et al. Gene (1983) 26 p91-99) qui possède plusieurs sites de restriction est ensuite introduit dans ce plasmide pour donner pTG3828 (figure 4) qui comporte - la séquence du gène URA3 délétée de son promoteur (URA3-d), - des sites de restriction venant de M13TGl31 permettant l'insertion des éléments de l'expression d'un gène hétérologue, rHV2Lys47 dans le cas présent, - le terminateur de transcription du gène PGK de levure - un fragment de pBR322 qui permet la réplication et la sélection chez Escherichia coli, - un fragment du plasmide 2 qui possède les éléments structuraux nécessaires à la réplication et à l'équipartition mitotique dans la levure. Le fragment Snhi-Sali du vecteur M13TG3845 (figure 3) est introduit dans le plasmide pTG3828 digéré par SDhI et SalI pour donner le vecteur d'expression pTG3864 (figure 5). Ce vecteur code pour une protéine de fusion tripartite portant le peptide codé par la séquence selon l'invention, avec A = Val (peptide I), dans sa partie N-terminale suivi par la forme délétée du peptide "pro" du précurseur du facteur alpha qui est fusionné au peptide rHV2Lys47. Entre ces deux derniers peptides on trouve la séquence de deux acides aminés (Lys-Arg) reconnue et clivée par le produit du gène KEX2 (c'est à dire la protéinase yscF). C. Construction du vecteur d'expression pTG3867 Pour supprimer complètement la séquence codant pour le précurseur du gène MFalDhal du phage M13TG3845 (figure 3) on effectue une mutagénèse dirigée & l'aide de l'oligonucléotide suivant 5' GCCTCCCAAGTTTCAGCTATTACGTATACAGACTGC pour obtenir le vecteur M13TG3846. Le fragment SphI-SalI de ce vecteur est introduit dans le plasmide pTG3828 (figure 4) digéré par Shi et EL1I pour donner le vecteur d'expression pTG3867. Dans ce vecteur, la séquence I précédée d'un ATG et celle du gene de rHV2Lys47 sont adjacentes. Pour obtenir la structure schématique de ce plasmide, il suffit sur la figure 5 de retirer la séquence "pro" dêlétée de MFalDhal. D. Construction du vecteur d'expression pTG3894 Un site SmaI est créé dans la séquence codant pour la séquence "pro" du précurseur du facteur alpha du vecteur M13TG3841 (figure 2) par mutagénèse dirigée grâce à l'oligonucléotide suivant 5' TCCGCATTAGCTGCTCCCGGGAACACTACAACAGAA pour obtenir M13TG3869. Ce vecteur est ensuite digéré par SEhI et SmaI, le petit fragment est isolé et il est ligue au grand fragment Snhi et SmaI de M13TG3845 (figure 3) pour donner le vecteur M13TG3891. Le fragment Shi-Sali de ce vecteur est introduit dans le plasmide pTG3828 (figure 4) ouvert aux sites EALI et SalI pour donner le vecteur d'expression pTG3894. E. Construction du vecteur d'expression pTG3884 La sequence I de M13TG3846 (décrite précédemment) est modifiée par mutagénese dirigée en utilisant l'oligonucléotide suivant 5' GTTTCTCTACTACACTCGCTACTGC La modification d'une seule base donne la séquence II et induit le remplacement d'une valine par une leucine en tant qu'acide aminé A du peptide signal. Le fragment SphI-SalI du vecteur obtenu est introduit dans le plasmide pTG3828 (figure 4 > ouvert aux sites Spahi et SalI pour donner le vecteur d'expression pTG3884. EXEMPLE 2: Production de rHV2Lys47 dans le surnageant de culture en fonction du plasmide utilisé Une souche de levure de l'espèce Saccharomvces cerevisiae de génotype MATalphat ura3-251,-373,-328, leu2-3,-112, his3, Dep4-3 est transformée par les plasmides pTG3864, pTG3867, pTG3894 et pTG3884 par la méthode de l'acétate de lithium (dito, H. et al. J. Bactériol. (1983) 153] et les prototrophes Ura+ sont sélectionnés. Ils sont ensuite mis en culture en erlenmeyer a 30-C sur un milieu sélectif (0,7% de bases azotees pour levures (Yeast Nitrogen Base), 0,5% de casamino acides et 18 de glucose). Après 48 heures de culture, on sépare cellules et surnageant par centrifugation et l'activité inhibitrice de la thrombine est déterminée dans le surnageant en utilisant le test colorimétrique (activité protéolytique sur un substrat synthétique, le chromozyme TH - Boehringer Mannheim). Le tableau 1 présente les résultats des dosages; chaque valeur correspond à la moyenne de deux expériences independantes. L'activité de rHV2Lys47 est exprimée en ATU/ml de surnageant. Tableau 1 Plasmide ATU/ml pTG3894 40 pTG3864 50 pTG3867 130 pTG3884 125 Dans tous les cas on mesure une activite anti-thrombine. La protéine rHV2Lys47 produite par la levure est donc excrétez dans le surnageant. De plus elle est secrétée sous forme active. Les meilleurs résultats sont obtenus pour les souches transformées par pTG3884 et pTG3867. Le contenu en protéine des surnageants est analysé par HPLC. Le pic majeur obtenu correspond bien i celui de rHV2Lys47 (sous sa forme à 65 acides aminés) et la détermination de la séquence N-terminale confirme l'obtention d'une molécule correctement synthétisée. REVENDICATIONS 1. Séquence d'ADN codant pour le peptide suivant Arg-Phe-Ser-Thr-Thr-A-Ala-Thr-Ala-Ala-Thr-Ala-Leu-Phe- Phe-Thr-Ala-Ser-Gln-Val-Ser-Ala, A étant un acide aminé choisi parmi Val, Leu, Ala, Cys, Phe, Ile et Met. 2. Séquence d'ADN selon la revendication 1 caractérisée en ce que A est choisi parmi Val et Leu. 3. Séquence d'ADN trayant la formule suivante CGT TTC TCT ACT ACA GTC GCT ACT GCA GCT ACT GCG CTA TTT TTC ACA GCC TCC CAA GTT TCA GCA (I). 4. Séquence d'ADN ayant-la formule suivante : CGT TTC TCT ACT ACA CTC GCT ACT GCA GCT ACT GCG CTA TTT TTC ACA GCC TCC CAA GTT TCA GCA (II). 5. Application de la séquence d'ADN selon l'une des revendications 1 à 4 en tant que séquence codant pour un peptide signal pour la sécrétion de protéines par des levures recombinantes, caractérisée en ce que la séquence d'ADN est précédée d'un codon d'initiation de la traduction. 6. Application selon la revendication 5 caractérisée en ce que il s'agit d'un codon ATG. 7. Cassette d'expression d'une protéine mature par des levures comprenant au moins a) une séquence d'ADN comportant les signaux assurant la transcription par la levure d'une séquence d'ADN codant pour un précurseur de la protéine, b) une séquence d'ADN codant pour un peptide signal, composante nécessaire d'un système de sécrétion de la protéine, c) une séquence d'ADN codant pour la protéine mature, caractérisée en ce que en tant que séquence b), elle comporte une séquence d'ADN selon l'une des revendications 1 å 4. 8. Cassette d'expression selon la revendication 7, caractérisée en ce que la séquence c) est une séquence codant pour l'hirudine, en particulier le variant rHV2Lys47. 9. Cassette d'expression selon l'une des revendications 7 ou 8, caractérisée en ce que la séquence b) est placée directement en amont de la séquence c). 10. Cassette d'expression selon l'une des revendications 7 ou 8, caractérisée en ce que la séquence b) est immédiatement suivie d'une séquence pro, elle même suivie d'une séquence codant pour un peptide comprenant un site de clivage protéolytique. 11. Cassette d'expression selon la revendication , caractérisée en ce que la séquence "pro" est celle du gène MFalmhal de levure suivie du site Lys Arg. 12 . Cassette d'expression selon la revendication 10 caractérisée en ce que la séquence "pro" est la séquence codant pour les acides aminés 20, 21 et 62 à 83 du gène MFalphal de levure. 13 . Cassette d'expression selon l'une des revendications 7 a 12 caractérisée en ce qu'elle comporte un terminateur de levure. 14. Vecteur plasmidique comprenant une cassette d'expression selon l'une des revendications 7 a 13. 15. Vecteur plasmidique selon la revendication 14, caractérisée en ce qu'il comporte en fragment du plasmide 2 de levure. 16. Vecteur plasmidique selon la revendication 15, caractérisée en ce qu'il comporte un gene de sélection. 17. Vecteur plasmidique selon la revendication 16, caractérisée en ce que en tant que gene de sélection il comporte le gène URA3 dblété de son promoteur. 18. Levure transformée par un vecteur plasmidique selon l'une des revendications 14 a 17 ou ayant intégré dans son génome une cassette d'expression selon l'une des revendications 7 à 13. 19. Levure selon la revendication 18 caractérisée en ce qu'il s'agit d'une levure S. cerevisiae. 20 Procédé de préparation d'une protéine par sécrétion å partir de levures, caractérisé en ce que l'on met en culture une levure transformée selon les revendications 18 ou 19 et on récupere la protéine obtenue. 21. Procédé selon la revendication 20, caractérisé en ce que ladite protéine est l'hirudine.