FR 2642074 A1 19900727 FR 8900655 A 19890120 Dérives de molécules poLyhydroxytées permettant L'introduction d'au moins une ramification dans un oliaonucléotide, L'invention a pour objet des dérivés de molécules polyhydroxylées, par exemple de nucléosides ou de polyols, utilisables en synthèse oligonucléotidique pour former des oligonucléotides comportant au moins une ramification pouvant servir par exemple au marquage de L'oligonucléotide. Les oligonucléotides marqués, par exemple Les sondes d'acides nucléiques, constituent un outil de diagnostic très intéressant dans différents domaines tels que Les maladies génétiques, les maladies infectieuses, le cancer et le typage cellulaire. Dans les techniques de diagnostic, on utilise une sonde oligonucléotidique présentant une séquence complémentaire å ceLle de la cible, c'est-à-dire de l'ec-hantillon biologique à déterminer. Ces techniques de diagnostic sont basées sur llutili- sation de l'hybridation, c'est-à-dire l'association par des liaisons hydrogène de deux brins d'acides nucléiques (ADN ou ARN) complémentaires dont l'un est la sonde et l'autre la cible. Cette réaction peut ainsi mettre en jeu deux chaines d'ADN, une chaine dlADN et une chaine d'ARN, ou bien encore deux chaines d'ARN. Pour permettre la détection de la sonde, celle-ci comporte un élément marqueur approprié susceptible d'être détecté par des méthodes telles que Les méthodes radioactives, immunoenzymatiques, coiorimétriques, fluorimétriques ou luminescentes. Les sondes oligonucléotidiques synthétiques sont préparées en liant entre eux, par des méthodes chimiques, des nucléosides par l'intermédiaire d'un groupement phosphate pour former une chaîne d'ADN (ou d'ARN). Ceci aboutit à La formation d'un polymère synthétique dans lequel les phosphates internucléotidiaues relient toujours la fonction alcool secondaire en position 3' d'un dérivé de nucléoside à la fonction alcool primaire en position 5' d'un autre dérivé de nucléoside, Ainsi, lors de la synthèse oligonucléotidique, seules ces deux fonctions sercnt sollicitées, les autres fonctions étant protégées. Ceci va donc aboutir à la formation d'un oligonucléotide. Les oligonucléotides marqués sont préparés suivant le même principe, le marqueur étant généralecent fixé sur La base hétérocyclique d'un dérivé de nucléoside. L'introduction dans la chaine oligonucléotidicue ce ce dérive de nucléoside se fait toujours en créant une liaison internuctéotidique 3'-5' Les marqueurs peuvent être introduits ae façon différente soit à l'extrémité 5', soit à l'extrémité 3', soit à l'intérieur d'un oligonucléotide. nais dans tous les cas la chaine obtenue sera Linéaire. Lorsqu'on utilise des éléments marqueurs nc radioactifs, on peut préparer directement les sondes nucléotidiques marquées, bien avant lieur utilisation, par des procédés biochimiques ou chimi que s. En revanche, Lorsque L'élément marqueur est radioactif, l'introduction de cet élément dans la sonde doit être effectuée extemporanément. Parmi les procédés biochimiques de production d'oligonucléotides marqués, on connais un procédé d'incorporation de nucléotides biotinylés utilisant la terminale désoxynucléotidyl transférase comme il est décrit par WU dans Methods in Enzymology, vol. 65, 1980, p. 43-62. Cette méthode est intéressan te car elle permet d'incorporer statistiquement plusieurs biotines (3 à 5 générale-ment) sur une sonde oligqnucléotidique courte.Cependant, le marquage nécessite une étape supplémentaire après la synthèse de l'oligenucléotide. Par ailleurs, il est difficile de préparer une sonde comportant un nombre défini de marqueurs parce qu'on obtient un mélange cqmplexe de produits de différentes tailles qu'il faudrait séparer pour avoir une sonde de point de fusion bien défini. Parmi les méthodes chimiques, on connait une méthode selon Laquelle on fixe l'élément marqueur sur les bases de l'oligonuctéotide, après synthèse et déprotection de celui-ci, comme il est décrit par Roduit et al, dans Nucleosides & Nucleotides, 6 (1 & 2), 349-352 (1987). Dans ce cas, on peut fixer plusieurs éléments marqueurs mais la sensibilité obtenue avec ces oligonucléotides marqués est encore insuffisante car on ne peut introduire qu'un nombre limité de groupeme-nts marqueurs. Chaque marqueur est introduit de façon non quantitative, ce qui implique l'obtention, d'un mélange de produits dans lequel la sonde totalement marquée est minoritaire.. La présente invention a précisément pour objet de nouveaux dérivés de molécules pclyhydroxylées, utilisables en synthèse oligonucléotidique, qui permettent d'introduire à l'extrémité de L'oligonucléotide un nombr-e important de molécules, par exemple de molécules de marquage pou r accroître ainsi la sensibilité. Selon l'invention, ces nouveaux dérivés de molécules polyhydroxylées répondent à ta formule : dans laquelle X est un radical polyvalent obtenu par enlèvement des groupes OH d'une molécule poLyhydroxylée linéaire, ramifiée, ou cyclique portant n fonctions alcool primaire et une fonction alcool primaire ou secondaire, -R1 est un radical protecteur drun groupe OH convenant à la synthèse oligonucléotidicue, les R1 pouvant être différents, -R2 est un radical fonctionnel adapté à La synthèse oligonucléotidique, non substitué ou substitué par OR1, et - n est un nombre entier de 2 à 4, de préférence ou 3. Ce dérivé de molécule polyhydroxylée est très intéressant à utiliser dans une synthèse oligonucléotidiaue car il permet de créer à l'endroit voulu de l'oligonucléotide des ramifications qui peuvent etre formées d'une ou plusieurs molécules de types très variés. En effet, lorsau'on utilise ce dérivé de molécule polyhydroxylée en synthèse oligonucléotidique, la présence de la fonotion OR permet de fixer ce dérivé sur un oligonucléotide déjà formé et la présence de 2 à 4 fonctions OR1 permet de poursuivre la synthèse en effectuant des ramifications, c'est-à-dire en fixant ensuite sur ce dérivé 2 à 4 molécules capables de réagir avec les fonctions OH obtenues par coupure des liaisons OR Les molécules fixées peuvent être de différents types. A titre d'exemples de telles molécules, on peut citer les nucléosides, les nucléosides marqués, les molécules pouvant servir d'espaceurs, les molécules de marquage, les molécules capables d'être marquées, et les molécules capables de s'associer à d'autres molécules pour conférer à l'oligonucléotide des propriétés particulières, par exemple égaliser son accrochage sur un support solide ou le rendre thérapeutiquement actif. On peut aussi utiliser des dérivés de molécules polyhydroxylées conformes à l'invention pour réaliser d'autres ramifications. En choisissant de façon appropriée les molécules utilisées, on peut aussi poursuivre la synthèse en effectuant des ramifications formées chacune d'une succession de molécules identiques ou différentes en vue de conférer à l'oligonucléotide des propriétés intéressantes, par exemple pour sa détection. Les dérivés de molécules polyhydroxylées de l'invention présentent donc un grand intérêt en synthèse oligonucléotidiaue. Selon l'invention, le radical X peut être dérivé de molécules polyhydroxylées tres variées. A titre d'exemple, X peut être constitué par une channe hydrocarbonée, linéaire ou ramifiée, saturée ou insaturée, comportant éventuellement oes substituants. X peut aussi être formé par un radical cyclique ou hétérocyclique comportant éventuellement des substituants hétérocycliques. A titre d'exemple de radical hétérocyctique de base, on peut citer ceux dérivés des oses, par exemple du ribose ou du désoxyribose. A titre d'exemple de substituants hétérocycliqes, on peut citer ceux dérivés des bases pyrimidiques et puriques. Dans le dérivé de l'invention, R1 est un radical protecteur d'un groupe OH convenant à la synthèse nucléotidique. A titre d'exemples de radicaux R1 susceptibLes d'être utilisés, on peut citer en particulier tes radicaux phényl-9-xanthényle et les radicaux trityle de formule : sans laquelle R9, RtO et R11 qui peuvent être identiques ou différents, représentent un atome d'hydrogène, un radical alkyle, alcoxy ou amino. On cet aussi utiliser pour R Le radical t-butyl iméthyl sityl. De préférence, R1 est le radical méthoxy cu diméthoxy trityle, soit le radical répondant a La formule VII précitée dans laquelle R9 ou R9 et RlC représentent des groupes méthoxy, R11 et éventuellement R10 représentant un atome d'hydrogène. Selon l'invention, Le radical R2 est un radical fonctionnel adapté à la synthèse nucléotidique, par exemple un radical phosphoré comportant éventuellement un substituant de formule RO. A titre a'exemples de radicaux phosphorés susceptibles d'etre utilisés, on peut citer Les radicaux de formules dans lesquelles R1 a la signification donnée ci-dessus, R4 représente un radical hydrocarboné bivalent linéaire ou ramifié substitué ou non, comportant éventuellement dans sa chaîne un ou plusieurs groupements 0, S, NH, NHCO, NHS02, S02, CO, C-C, CH=CH, avec t et u étant des nombres entiers de 1 à 2, et R' et R" pris séparément représentent un radical alkyle, aralkyle ou cycloalkyle, contenant jusqu'à 10 atomes de carbone, ou R' et R" forment ensemble une chaîne alkylène contenant jusqu'à 5 atomes de carbone dans la channe principale et un total allant jusqu'à 10 atomes de carbone, ou forment ensemble avec l'atome d'azote un hétérocycle saturé qui peut contenir un ou plusieurs autres hétéroatomes choisi parmi N, O et S. séparément, ils représentent des groupes alkyle inférieur comme les radicaux isopropyle, t-butyle, isobutyle, sec-butyle, néopentyle, tert-pentyle, isopentyle, sec-pentyle. De préférence, lorsque R' et R" forment ensemble avec l'atome d'azote un hétérocycle, cet hétérocycle est la pyrrolidine, La morpholine ou La pipéridine. A titre d'exemple, R2 représente le radical de formule : Selon un premier mode de réaLisation de l'irention, le dérivé de molécule polyhydroxylée est un drivé de nucléoside répondant à la formule cans laquelle R1 et R2 ont la signification donnée ci-dessus, - R3 représente un atome d'hydrogène, le radical hydroxyle, un radical hydroxyle protégé ou le radical R40R1 avec R ayant la signification donnée ci-dessus et R4 représentant un radical hydrocarboné bivalent, linéaire ou ramifié, substitué ou non substitué, comportant éventuellement dans sa chaîne un ou plusieurs groupements choisis parmi 0, S, N, NHCO, NHS02, S02, CO, -CC-, CH=CH, avec t et u étant des nombres entiers de 1 à 2, et - B représente un radical dérivé d'une base purique ou pyrim-dique reDondant aux formules suivantes dans lesquelles R5 représente H, CH3, R40R1 ou R8Z, R6 représente un groupement protecteur d'un groupe amine utilisable en synthèse nucléotidique, le radical R40R1 ou R8Z, R7 représente un atome d'hydrogène, le radical R40R1 ou R8Z, à condition que l'un au moins des R5, R6 et R7 représente R40R1 lorsque R3 ne représente pas R40R1 et que R2 ne comporte pas de substituant R40R1, les R1 et R4 du dérivé de nucléoside pouvant être identiques ou différents, - R4 représente un radical hydrocarboné bivaLent, linéaire ou ramifié, substitué ou non substitué, comportant éventuellement dans sa chaine un ou clusieurs grousenents choisis parmi C, S, NH, NHCO, NHSO2, SO2, CO, C#C, CH=CH, avec t et u étant des nombres entiers de 1 à 2, - R8 est une simule liai son ou un radical hydrocarboné bivalent Linéaire ou ramifié, substitué ou non substitué comportant éventuellement dans sa chaîne et/ou dans ses ramifications, un ou plusieurs groupements choisis parmi O, S, NH, NHCO, NHSO2, SQ2, CO, C=C, CH=CH, avec t et u étant des nombres entiers de 1 à 2, et - Z est un rad cal dérivé d'une molécule de marquage d'une molécule d'un précurseur de marquage ou d'une molécule capable de associer a d'autres molécules. On précise cue dans la formule donnée ci-dessus, lorsque le dérivé de nucléoside de L'invention comprend plusieurs R4, ceux-ci peuvent être @dentiques ou différents. Comme on l'a vu précédemment, les radicaux R sont des radicaux hydrocarbonés substitués ou on sucstitués oui peuvent comporter de plus divers groupements. Les substituants utilisés peuvent être en particulier des radicaux aryle, cycloalkyle, cyan, halo, nitro et acyle. Généralement, R4 comprend de 1 à 20 atomes de carbone, de préférence de 3 à 10 atomes de carbone A titre d'exemples de tels radicaux, on peut citer les radicaux de formule : - (CH2)n - (CH2)n-X-(CH2)p - NH(CH2)n-X-(CH2)p - O(CH2)n-X-(CH2)p - S(CH2)n-X-(CH2)p - NHSO2(CH2)n-X-(CH2)p - CO(CH2)n-X-(CH2)p - SO2(CH2)n-X-(CH2)p dans lesquelles n est un nombre entier de 1 à 6, p est un nombre entier de 1 à 6, et X est une simple liaison ou représente CH2, NHCO, O, S, NH, N(CH2)R CH3 # C=O, -C#C-,-HC=CH-, #CH(CH2)rOR, #C=CH(CH2)OR, #N-(CH2)ROR, #CH-O(CH2)rOR, ou #CH-S-(CH2#rOR avec r étant egal à O ou étant un nombre entier de 1 à 6 et R1 ayant la signification donnée ci-dessus. Selon l'invention, R8 peut aussi représenter un radical hydrocarboné comportant divers substituants et divers groupements. Les substituants utilisés peuvent être d même type que ce-ux décrits ci-dessus. De même, R8 comprend généralement de 1 à 20, de préférence 3 à 10 atomes de carbone. A titre d'exemples de tels radicaux, on peut citer les radicaux de formule -(CH2)n -NH(CH2)n-Y-(CH2)q -NH-(CH2)n-Y-(CH2)q-NH -O-(CH2)n-Y-(CH2)q -O-(CH2)n-Y-(CH2)q-NH -S-(CH2)n-Y-(CH2)q -S-(CH2)n-Y-(CH2)q-NH -NHCO-(CH2)n-Y-(CH2)q -NHCO-(CH2)n-Y-(CH2)q-NH -NHS02- (cH2)n-Y-(cH2)q- -NHSO2-(CH2)n-Y-(CH2)q-NH -(CH2)n-Y-(CH2)q -(CH2)n-Y-(CH2)q-NH -CO-(CH2)n-Y-(CH2)q -CO-(CH2)n-Y-(CH2)q-NH dans lesquelles n est un nombre entier allant de 1 à 6, q est égal à O ou est un nombre entier de 1 à 6, Y représente CH2, O, S, NH, CO, NHCO, -HC=CH C=CH(CH2)rZ, #C=CH(CH2)rNHZ, #N(CH2)rZ, #N(CH2)rNHZ, #CH-O(CH2)rZ, #CH-O-(CH2)rNHZ , #HCS(CH2)rZ, #HCS(CH2)rNHZ avec r=1 à 6, et Z étant un radical dérivé d'une molécule de marquage ou d'une molécule d'un précurseur de marqueur. Lorsque, dans les dérivés de nucléoside de formule (Ia), R3 représente un radical hydroxyle protégé, on utilise comme groupe protecteur de cet hydroxyle les groupements habituellement utilisés dans la synthèse des ribonucléotides. Généralement, R3 représente un atome d'hydrogène. De préférence, dans les dérivés de nucléosides de formuLe la de l'invention, la fonction R4OR est disposée sur la partie B du dérivé de nucléoside, c'est-à-dire sur le radical dérivé de la base purique ou pyriridique. Lorsque la base comporte un groupement NH2 exocyclique, on peut e particulier substituer ce groupement NH2 exocycli- que par R4OR. A titre d'exemple, B peut représenter : Dans ce cas, le radical R4 peut être choisi parmi les radicaux ce formules - (CH2)n - (CH2)n-X(CH2)p - O(CH2)n-X-(CH2)p - StCH2)n-X-(CH2)p - CO(CH2)n-X-(CH2)p - SO2(CH2)n-X-(CH2)p dans lesquelles n, p et X ont la signification donnée ci-dessus. De préférence R4, représente -(CH2)n ; n peut par exemple être égal à 6. Dans le dérivé de nucléoside de formule (Ia) de l'invention, B est un radical dérivé d'une base purique ou pyrimidique telle que l'uraciLe, la thymine, la cytosine, L'adénine et La guanine. Ce radical B peut comporter différents substituants qui sont soit te radical R40R1 servant à effectuer une ramification, soit un radical protecteur des groupements NH2 exocycliques de ces bases, soit un radical R8Z comportant une molécule de marquage ou une molécule d'un précurseur de marqueur. Pour la synthèse oligonucléotidique, les groupements protecteurs des groupements NH2 exocycliques peuvent être de différents types et sont bien connus dans ta technique. Par exemple, on peut utiliser des groupes benzoyle ou anisoyle dans le cas où B est dérivé de l'adénine et de la cytosine, le groupe isobutyryle dans le cas ou B est dérivé de la guanine ainsi que les groupements protecteurs décrits dans le brevet européen EP-A- O 241 363. De préférence, on utilise un groupement phénylpropionyle, isobutyryle ou benzoyle pour Le radical de formule (I I), un groupement phénoxyacétyle ou benzoyle pour le radical de formule (IV) et un groupement phénoxy acétyle ou isobutyryle pour le radical de formule (V). Dans le cas où B comporte un groupement R8Z avec Z recrésentant une molécule de marquage ou une molécule d'un précurseur de marqueur, on peut utiliser une molécule de marquage détectable directement, par exemple des molécules capables de s'associer à l'avidine ou la streptavidine, des molécules pouvant donner lieu à une réaction du type antigène-anticorps ou des molécules ayant des propriétés fluorescentes ou luminescentes. On ceut aussi utiliser des molécules de marouage capaoles de re@evoir un élément radioactif uste au moment de leur utilisation. En effet, lorsqu'on ut lise des atomes radioactifs, il est difficile d'introduire ces éléments bien avant l'utilisation en raison de leur période et des réactiors de radiolyse qu'ils induisent. Aussi, selon l'invention, on utilise dans ce cas une molécule ce marquage susceptible d'etre marquée ensuite par un élément ra@ioactif, par exemple par de l'iode radicactif. Cn peut bien entendu utiliser dans le dérivé de nucléoside de l'invention d'autres molécules ce marquage, en carticulier celles utilisées habituelement pour la détection des antigènes, des anticorps ou des haptènes en immunologie. Dans le cas où Z représente une molécule capable de s'associer à d'autres molécules, il peut s'agir d'une molécule capable de s'associer à une autre molécule fixée par exemple sur un support solide pour permettre l'accrochage de l'oligonucléotide sur ce support. A titre d'exemple de systèmes de ce type, on peut citer les systemes biotine-avidine, dinitrophényl-anticorps Il peut s'agir également d'une molécule capable de s'associer à une autre molécule avant une activité thérapeutique pour conférer à ltoligonucléotide une activité thérapeutique. Les dérivés de nWcléosides de l'invention peuvent être préparés par des procédés classiques tels que ceux décrits dans Organic Chemistry of Nucleic Acids. Part B.N.K Kochetkov and E.I. Budovski, 1972 (Plenum New York). Généralement, on part des dérivés de nucléosides répondant à la formule dans laquelle R1 et R2 représentent l'hydrogène, p représente H ou OH et B est un radical répondant aux formules Il, III, IV ou V données ci-dessus avec R6, et R7 représentant un atome d'hydrogène, et R5 représentant un atome d'hydrogène ou un radical méthyle. On fixe ensuite sur ces dérivés les radicaux voulus par des méthodes classiques. Lorsque le radical B du dérivé de nucléoside à préparer est un radical de formule (Il), on peut aussi préparer ce dérivé en partant de la 4-thiothymidine ou de la 4-thiodésoxyuridine protégée ou non, par réaction avec une diamine, un aminoalcool, un dérivé monosubstitué de diamine ou d'aminoalcool tels que H2N-R8Z ou H2NR40R', Z pouvant être une molécule de marquage dans le cas où celle-ci peut être couplée à une fonction amine primaire. Ceci correspond au schéma réactionnel suivant dans lequel R5 représente généralement H ou CH3 et R13 et/ou R14, qui peuvent être identiques ou différents, représentent H ou un radical protecteur. Après cette réaction, on peut traiter le dérivé de nucléoside pour le rendre apte à la synthèse nucléotidique et lui ajouter une ou plusieurs fonctions R4OR1 ainsi qu'éventuellement des molecules de marquage du type R8Z. Selon un second mode de réalisation de L'invention, le dérive de molécule polyhydroxylée est un dérivé de polyol de la famille du glycérol et des homologues du glycérol. Dans ce cas, le dérivé de polyol répond a la formule dans laquelle R1, R2 et R4 ont les significations donnees ci-dessus. On précise egalement que dans La formule (Ib) aonnee ci-dessus, les deux R4 peuvent être identiques ou différents. Les dérivés de polyol de formule Ib peuvent être préparés par réduction du diester d'un acide cétodicarboxylique, de préférence symétrique. Ce critère de symétrie n'est pas absolu mais il évite la formation de diastéréoisomères et ainsi facilite la purification et l'analyse par RMN des dérivés de formule Ib fonctionnalisés en vue de leur utilisation pour la synthèse nucléotidique. Le composé de départ est par exemple un dérivé de l'acide y-oxopimélique. Comme on l'a vu précédemment, les dérivés de molécules polyhydroxylées de l'invention sont utilisables en synthèse oligonucléotidique pour former au moins une ramification sur un oligonucléotide. Aussi, l'invention a également pour objet un procédé pour former au moins une ramification sur un oligonucléotide qui comprend les étapes successives suivantes a) fixation sur cet oligonucléotide d'un dérivé de molécule polyhydroxylée de formule : dans laquelle X est un radical polyvalent obtenu par enlèvement des groupes OH d'une molécule Dolyhydroxylée linéaire, ramifiée ou cyclique portant n fonctions alcool primaire et une fonction alcool primai-re ou secondaire, - R1 est un radical protecteur d'un groupe OH convenant à la synthèse oligonucléotidique, les R1 pouvant être différents, - R2 est un radical fonctionnel adapté à la synthèse oligonucléotidique, non substitué ou substitué par OR1, et - n est un nombre entier de 2 à 4; et b) réaction des n fonctions OH du dérivé fixé avec n molécules capables de réagir avec les fonctions OH obtenues par coupure des liaisons OR1. Selon une variante de mise en oeuvre de ce procédé, on fixe tout d'abord sur l'oligonucléotide une molécule servant d'espaceu-, puis on fixe sur cette molécule servant d'espaceur le dérivé de l'invention et on fixe ensuite sur ce dérivé n molécules capables de réagir avec les n fonctions OH générées par coupure des OR1. Les molécules fixées sur le dérivé de l'invention peuvent être de différents types du moment qu'elles possèdent une fonction capable de réagir avec les fonctions OH obtenues par coupure des OR d drivé de l'invention. A titre d'exemples, ces molécules peuvent être des nucléosides, des nucléosides marqués, des molécules pouvant servir d'espaceurs (molécules cui comportent non seulement une fonction capable ce réagir avec la fonction OH obtenue par coupure ce OR , rais aussi une fonction permettant la fixation d'une autre molécule, par exemple d'un nucléoside), ces rolécules de marquage, des molécules pouvant être marquées, des molécules capables de s'associer à d'autres molécules ou d'autres dérivés de molélcules polyhydroxylées conformes à l'invention. L'utilisation des dérivés de l'invention en synthèse oligonucléotidique permet ainsi de réaliser des structures et des configurations très variées. A titre d'exemples non limitatifs, on peut réaliser les structures suivantes dans lesquelles - N représente le dérivé de l'invention, - N' représente une molécule servant d'espaceur, - M représente une molécule marquée ou susceptible d'être marquée, ou encore une molécule capable de s'associer à d'autres molécules. Dans ces structures, les molécules N' servant d'espaceurs peuvent être des chaine5 rydrocarbonées comportant à Leurs extrémités des fonctions appropriées leur permettant d'être intercalées entre des molécules N, N' et/ou M. Les molécules N' servant d'espaceurs peuvent aussi être constituées par des dérivés de nucléosides, par exemple la désoxythymidine. L'introduction de ces dérivés de nucléosides N', qui servent uniquement d'espaceurs, permet d'améliorer la solubilité dans l'eau et le milieu oiologioue de l'oligonucléotide obtenu, d'écarter Les marqueurs de la séquence d'hybridation (oligonuctéetide linéaire), et d'assurer ainsi une rei'leu-e accessibilité des marqueurs éventuellement au au bout des ramifications. Les molécules M de marquage peuvent égalerent être de différents types. Ainsi, on peut utiliser une molécule de marquage détectable directement, par exemple des marqueurs fluorescents ou phosphorescents, des molécules antigéniques ou des dérivés ayant une forte affinité pour d'autres molécules. A titre d'exemples, les molécules de marquage directement détectables peuvent être des molécules capables de s'associer à L'avidine ou la streDtavidine, des molécules pouvant donner lieu à une réaction du type antigène-anticorps ou des molécules ayant des propriétés fluorescentes ou luminescentes. On peut aussi utiliser des molécules de marquage capables de recevoir un élément radioactif juste au moment de leur utilisation. En effet, lorsqu'on utilise des atomes radioactifs, il est difficile d'introduire ces éléments bien avant l'utilisation en raison de leur période et des réactions de radiolyse qu'ils induisent. Aussi, selon l'invention, on utilise dans ce cas une molécule de marquage susceptible d'être marquée ensuite par un élément radioactif par exemple par de l'iode radioactif. Ces molécules de marquage peuvent être introduites directement ou par l'intermédiaire d'un dérivé de nucléoside les comportant, par exemple d'un dérivé de nucléoside de formule (Ia) comportant un radical R8Z et une ou plusieurs fonctions OR1 On peut encore utiliser comme molécule M susceptible d'être marquée, un dérivé de nucléoside naturel que l'on marque ensuite par un élément radioactif tel que le 32p, par exemple en faisant réagir la fonction hydroxyle de ce dérivé de nucléoside avec un phosphate radioactif, par exemple par action de y 32P ATP et de la polynucléotide kinase. Ainsi, avec les structures d'oligonucléotides obtenues selon l'invention, il est possible d'avoir une densité importante de molécules de marqueurs à L'extrémité de l'oligonucléotide et d'obtenir un signal très sensible par marquage au phosphore 32. Selon Les molécules utilisées, on peut ainsi obtenir des oligonucléotides ayant les propriétés voulues, par exemple des oligonucléotides marqués ayant une sensibilité élevée. La molécule M peut encore etre une molécule capable de s'associer à d'autres molécules, par exemple pour réaliser l'accrochage de L'oligonucléotide sur un support solide ou Le rendre thérapeutiquement actif, tomme on l'a vu précédemment. L'utilisation des dérivés de l'invention en synthèse oligonucléotidique ne pcse pas de problème car ils peuvent être utilisés directement comme d'autres synthons dans les appareils automatiques de synthèse oligonucléotidique, et ils peuvent subir sans altération toutes tes opérations de la synthèse cligonucléotidique. De plus, ils ont des réactivités proches de celles des synthons commerciaux utilisés actuellement. Pour la synthèse oligonucléotidique, on peut utiliser la méthode de synthèse du phosphotriester lorsque R2 est le radical de formule (VIII) ou (Ix), la méthode de synthèse du phosphoramidite dans le cas ou R2 est Le radical de formules X, XI ou XII, ou la méthode de synthèse des phosphonates dans le cas o R2 est le radical de formule (XIII). La synthèse peut être effectuée soit par ces méthodes en solution, soit par des méthodes de synthèse sur support. On utilise de préférence les méthodes de synthèse sur support qui donnent actuellement les meilleurs résultats. La présente invention a encore pour objet les oli gonuc léot ides obtenus par le procédé décrit ci-ces Sus Ces oligonucléotides répondent à la formule An1N'aNC dans laquelle - nl est un nombre entier supérieur a' 1, - les A sont des nucléotides identiques ou différents, - N' est une molécule servant d'espaceur, - a est égal à O ou est un nombre entier, - N est un dérivé de molécule polyhydroxylée conforme à l'invention, et - C représente l'extrémité de l'oligonucléotide qui comprend au moins deux ramifications identiques ou différentes, formées chacune d'une ou plusieurs molécules identiques ou différentes, choisies parmi N', N, M et A avec M représentant un nucléotide marqué, une molécule de marquage, une molécule d'un précurseur de marqueur ou une molécule capable de s'associer à d'autres molécules. D'autres caracteristiques et avantages de l'invention apparaîtront mieux à la lecture des exemples suivants donnés bien entendu à titre illustratif et non limitatif. ExempLe 1 : Préparation du composé n 1 de formule Ce composé n 1 est dérivé de nucléoside de formule (I) dans laquelle R1 représente le radical diméthoxytrityle (dmt), R2 et R3 représentent un atome d'hydrogène, B représente le-radical de formule (II) avec R5 représentant CH3 R7 représentant un atome d'hydrogène et R6 représentant le radical R40R1 avec R4 représentant (CH2)6 et R1 représentant H. On dissout 560mg (Immol) de 5'-diméthoxytrityl, 4-thiothymidine dans 10ml d'ethanol. On ajoute 469mg (4mmol) d'aminohexanol et on chauffe pendant 16h à 60 C dans un flacon bouché. Après évaporation à sec, on reprend le mélange par 25ml de chloroforme et on le lave 3 trois avec 50ml d'acide citrique, puis 2 fois avec 25ml d'eau distillée. On évapore à sec la phase organique et on sépare le produit sur colonne de silice en utilisant un gradient d'éthanol dans Le chloroforme. Le produit est élué par CHCl3-EtOH:94:6). On évapore à sec la fraction contenant le produit et on obtient le composé n01 avec un rendement de 95%. Exemple 2 : Préparation du composé n 2 de formule On sèche 515mg (0,8mmol) du composé n 1 par coévaporation cans de la pyridine anhydre. On ajoute 1,2éq. de chlorure de diméthoxytrityle et on laisse le mélange réactionnel pendant 5h à 0 C. Après arret de la réaction par 1ml de méthanol, on ajoute 50ml d'une solution de bicarbonate de sodium à 5% et 50ml oe chloroforme. Après décantation, on lave la phase organique deux fois par 50 de bicarbonate, puis une fois par 50ml d'eau. distillée. On contre-extrait les phases aqueuses par 50ml de chloroforme. On réunit les phases organiques et on les évapore à sec. On sépare le produit sur colonne de si lice en éluant par un gradient d'ethanol dans le chloroforme (élution à 2% d'éthanol). On obtient ainsi Le composé n 2 avec un rendement de 83%. ExempLe 3 : Préparation du composé n 3 de formule : On sèche par coévaporation dans l'acétonitrile anhydre 72mg (0,5mmol) du composé n 2, puis on redissout dans 5ml de dichlorométhane anhydre. On ajoute 0,25mmol de tétrazolate de diisopropylammonium et O,6mmol de bis-diisopropylaminocyanoéthoxyphosphine. On Laisse la réaction se poursuivre pendant 2h à ta température ambiante. On dilue le mélange réactionnel a 25ml, puis on le lave 3 fois par 25ml de NaHCO3 en solution aqueuse saturée. On évapore sous vide la phase organique, on reprend le résidu par 5ml de solution chloroformique et on Le précipite dans 100ml d'hexane refroidi à -800C. On obtient ainsi le composé n 3 avec un rendement de 94%. Exemple 4 : Préparation du compose n 4 de formule a) Préoaration du composé n0 5 de formule (composé nO 5) On dissout 1mmol de 4-thiothymidine dans 5ml d'éthanol absolu, et on y ajoute SmmoL de 1,6-diaminohexane, et on maintient pendant 16h à 60 C. On évapore à sec, on reprend par 10ml d'eau et 0,2ml de triéthylamine et on evapore. On triture te résidu par 4 fois 10ml d'éther éthylique. On adsorbe le résidu sur lg de Colite 545 et on le dépose sur une colonne de Célite préparée avec la phase inférieure du mélange acétate d'éthyle-méthoxyéthanol-eau 4:1:2, on élue la colonne par la phase supérieure de ce mélange, puis on élue le produit recherché par La phase supérieure du mélange acétate d'éthyle- n-butanol-eau 1:1:1. Par évaporation des fractions appropriées et lyophilisation, on obtient ainsi le composé n 5. b) Préparation du composé n 6. On dissout 681mg (2mmol) du composé n 5 dans 15ml de diméthylformamide et on ajoute 0,4ml (4mmol) de triéthylamine et 700mg (2mmol) de N-hydroxysuccinimidobiotine. Après 3h sous agitation à 2G C, cn évapore sous vide le mélange réactionnel, puis on le coévapore avec 2 fois 15ml d'eau distillée puis avec 2 fois 20ml d'éthanol absolu. On reprend le résidu par du méthanol, on ajoute 8g de gel de silice (0,2 à 0,5mm) et on sèche la suspension sous vide. On dépose alors sur une colonne de gel de silice (get 60 de Merck) le mélange adsorbé préalablement sur la silice, et on élue ensuite la colonne par un gradient de méthanol dans le chloroforme (5 à 20%). On obtient ainsi 715mg du composé n06, ce qui correspond à un rendement de 63%. c) Préparation du composé n 7 de formule On prépare ce composé à partir du compose n0 6 de la façon suivante. On dissout à chaud 1,149 (2mmol) du composé nc 6 dans de la pyridine anhydre, on refroidit la solution et on t'évapore sous viae. On reprend le résidu par 5ml de diméthylformamide anhydre et on dilue par 20ml de pyridine anhydre, puis on refroidit le mélange à 0CC sous agitation. On ajoute alors 744mg de chlorure de diméthoxy-4,41-trityle. On maintient le mélange pendant 16h sous agitation. On ajoute alors 2ml de méthanol, puis après 15min on verse le mélange réactionnel sur 35ml d'une solu- ticn aqueuse saturée de bicarbonate de sodium. On extrait le mélange par deux fois 50ml oe chloroforme, puis on évapore la phase organique et on la coévapore avec deux fois 20ml de toluène. On reprend le résidu par du dichlorométhane et on le purifie par chromatographie sur gel de silice (gel 60 de Merck) en utilisant pour l'solution un gradient de méthanot dans du dichlorométhane. On obtient ainsi 1,44g du compose n 7, ce qui correspond à un rendement de 83%. d) Préparation du composé n 4. On rend anhydre 870mg (Immol) du composé n07 par coévaporation dans la pyridine absolue, puis on redissout dans 10ml de dichlorométhane anhy dre. On ajoute 85mg (0,5mmol) ae tétrazolate de diisopropylammonium ainsi que 340 l de bis(diisopropylamino)cyanoéthoxyphosphine. On agite le milieu réactionnel pendant 2h à la temperature ambiante, puis on ajoute 50ml de dichicromethane. On lave la solution organique par trois fois 50ml de bicarbonate de sodium en solution aqueuse saturée, puis par 50ml d'une solution saturée de chlorure de sodium. On évapore sous vide la phase organique, on reprend le résidu par 5ml de dichlorométhane et on le précipite dans 100ml d'hexane refroidi à -78CC. On collecte le précipité et on sèche sous vide On obtient ainsi 930mg du composé n 4, ce qui correspond à un rendement de 87%. Exemple 5 : Préparation d'un oligonucléotide ramifié. Cet exemple illustre la préparation d'un oligonucléotide ramifié marqué à la biotine en utilisant tes composés n 3 et 4. L'oligonucléotide a la séquence suivante Dans cette séquence, A représente le nucléo- tide formé par l'adénine, C représente le nucléotide formé par la cytosine, G represente le nucléotide forme par la guanine, T représente le nucléotide formé avec la thymine, N représente le nucléotide forme à partir du composé n 3 conforme à l'invention, et M représente le nucleotide formé à partir du composé n 4. Pour effectuer cette synthése, on utilise le composé nc 3 comme synthon correspondant à N et le compose n 4 comme synthon correspondant à M. Les autres synthons utilisés sont des synthons correspondant à l'adénine, à la cytosine, à la guanine et à la thymine qui sont obtenus à partir des nucléosices correspondants en protégeant la fonction hydroxyle en 5' par le radical dmt et en fonctionnalisant Le fonction hydroxyle en 3' par le radicaL ce formule Pour les nucléotides correspondant à l'adénine et à la cytosine, la fonction aminée exocyclique est protégée par un groupement benzoyle. Pour -les nucléotides correspondant à la guanine, elle est protégée par le groupement isobutyrile. La synthèse a été effectuée au moyen d'un synthétiseur automatique d'oligonucléotides Applied Biosystems 381 A en utilisant pour- la synthèse de l'oligonucléotide linéaire - 0,2 moles de nucléoside greffe sur un support "Controlled Pore Glass" comportant un bras espaceur formé par une chaine aminée, la Liaison entre ce nucléoside et l'amine étant réalisée par un radical succinyle. - 10mg (40 eq) par cycle de condensation des synthons de désoxy-2'-adénosine, de désoxy-2'-cytidine, de désoxy-2'-guanosine et de thymidine, soit environ 40 équivalents par rapport au support. - 7mg par cycle de condensation d'un agent d'activation constitué par du tétrazole, soit environ 10 équivalents par rapport au nucléotide. Le cycle de condensation est le cycle standard "0,2pmol cyanoéthylphosphoramidite"de l'appa- reil Applied Biosystems 381 A qui comprend une étape préalable de détritylation, c'est-à-dire de coupure des liaisons OR1 pour les transformer en OH. A la fin du cycle de- condensation, on obtient L'oligonucléotide linéaire protégé lié de façon covalente au support par l'intermédiaire du bras espaceur succinylé. On fixe ensuite sur L'oligonucléotide linéaire Le nucléotide correspondant au synthon formé par le composé n 3 en utilisant également 1Gmg du composé n 3, soit 4Oéq., puis on procède au premier cycle de ramification en utilisant 2Omg, soit 80mélo. du composé n0 3, puis au deuxième cycle de ramification, en utilisant 4Omg, soit 16ûéq. du composé n 3. On effectue ensuite dix cycles de condensation pour fixer au bout de chaque ramification, 10 nucléotides correspondant au composé n 4. Pour les cycles de condensation faisant intervenir le composé n 3 ainsi que pour les 10 cycles dé condensation faisant intervenir le composé n 4, on utilise le cycle standard "1 mol". L'agent de condensation utilisé est le tétrazole. Le temps de réaction est de 3min pour les couplages faisant intervenir le composé n 3 et le composé n 4. En fin d'opération, l l'oligonucléotide est coupé du support par traitement à l'ammoniaque à 28% pendant 2h, puis la solution ammoniacale obtenue est chauffée 5 à 16h à 60ÇC pour éliminer les groupements protecteurs. L'ammoniaque est évaporé, le résidu est repris par 500 l d'eau distillée et filtré sur une colonne de Sephadex G25 (diamètre 1cm, hauteur 7cm), les fractions correspondant au premier pic sont lyophilisées. Le produit est séparé par électrophorèse sur gel d'agarose. Exemple 6 : On prépare de la même façon que dans l'exemple 5, un oligonucléotide dont la séquence est la suivante en utilisant Les mêmes synthons. On obtient ainsi un oligonucléotide comportant en bout de chaîne 20 nucLéotioes biotynilés à son extrémité 5'. Exemple 7. On prépare de la même façon que dans L'exemple 5 un oligonucléotide dont la séquence est La suivante -: On obtient ainsi un oligonucléotide comportant 40 nucléotides marqués à L'extrèmité de la séquence. Exempte 8. On prépare de la même façon que dans l'exemple 5 un oligo nucléotide comportant la séquence suivante : dans laquelle T représente la thymidine, trois thymidines étant intercalées dans les ramifications entre deux dérivés de nucléosi-des de l'invention pour servir d'espaceur. On obtient ainsi un oligonucléotide comportant 80 dérivés de nucléosides marqués à la biotine à son extrémité 5'. Exemple 9 : Préparation d'un polyol répondant à La formule (Ib) avec R4=(CH2)n avec n=3 et R1=R2=H. (composé n 8) On ajoute 250mg d'hydrure double de lithium aluminium à du 3-cétopimélate d'éthyle tel que celui décrit par Rabjohn, N, Org. Synth, col. vol. 4 (1963) 302 (500mg, 2,2mmol) dans le tétrahydrofurane anhydre (40ml) refroidi a OOC. Après 15min, on porte à reflux pendant 15 à 20min puis on laisse refroidir progressivement. On refroidit à 0 C et on ajoute environ 5ml d'une solution à 10% d'eau dans le tétrahydrofurane. On Laisse 30min sous agitation, on filtre Le précipite d'aluminates et on le lave par 3x10ml ce tétrahydrofurane. On évapore le filtrat et on soumet le résidu à la chromatographie sur colonne courte (silice G Merck) en utilisant un mélange chloroforme-méthanol 95:5 puis 85:15. On obtient 300mg d'un liquide visqueux. Exemple 10 : Préparation d'un polyol partiellement protégé répondant à la formule (Ib) avec R4=(CH2)n avec n=3, R1=dmt et R7=H. (composé n 9) On ajoute 20ml' de pyridine et 1,2 équivalent de chlorure de diméthoxy trityte à 300mg (2,2mmol) du composé n08 co-évaporé en présence de pyridine anhydre. On laisse le mélange sous agitation pendant 3h à 0 C. On ajoute alors 10ml d'une solution aqueuse de bicarbonate de sodium à 5% et après 30min on effectue une partition entre chloroforme et eau. La phase organique est évaporée et le résidu est chromatographié sur une colonne de silice G (Merck > en éluant par un gradient (30 à 100%) de dichlorométhane dans L'hexane puis par 2% d'acétone dans le dichlorométhane. On obtient 1,089 (72%) du composé n 9. Exempte 11 : Préparation du composé n 10 correspondant- à la formule (Ib) avec R4=(CH2)n avec n=3. R1=dmt et R2-le radical de formule (XI) Le compose n 9 est traité par la bis-diisopropylaminocyanoéthoxyphosphine suivant la méthode décrite dans L'exemple 3. Après traitement, on purifie le produit par chromatographie sur colonne courte avec un gradient de dichlorométhane dans l'hexane, suivie d'une précipitation dans l'hexane à -78 C. On obtient ainsi le composé n 10. REVENDICATIONS 1. Dérivés de molécules polyhydroxylées répondant à la formule : cars laquelle X est un radical polyvalent obtenu par enleverent des groupes OH d'une molécule polyhycroxylée Linéaire, ramifiée ou cyclique portant n fonctions alcool primaire et une fonction alcool primaire ou secondaire, - R1 est un raoical protecteur dtun groupe OH convenant à la synthèse oligonucléotidique, les R1 pouvant etre différents, - R2 est un radical fonctionneL adapté à la synthèse úligonucléoidique, non substitué ou substitué par ORI, et - n est un nombre entier de 2 à 4, de préférence 2 ou 3. 2. Dérivé selon la revendication 1, caractérisé e ce que la molécule polyhydroxylée est un nucléoside. 3. Dérivé selon La revendication 2, caractérisé en ce qu'il répond à la formule dans laquelle - R1 et R2 ont la signification donnée dans la revendication 1, - R3 représente un atome d'hydrogène, le radical hydroxyle, un radical hydroxyle protégé ou le radical R4QR1 avec R1 ayant la signification donnée ci-dessus et R4 représentant un radical hydrocarboné bivalent, linéaire ou ramifié, substitué ou non substitué, comportant éventuellement dans sa chaine un ou plusieurs groupements choisis parmi 0, S, N, NHCO, NHSO2, SO2, CO, -C=C-, CH=CH, avec t et u étant des nombres entiers de 1 à 2 et - B représente un radical dérivé d'une base purique ou pyrimidiuqe répondant aux formules suivantes dans lesquelles R5 représente H, CH3, R40R1 ou R8Z, R6 représente un groupement protecteur utilisable en synthèse nucléotidique, Le radical R40R1 ou R8Z, R7 représente un atome d'hydrogène, Le radical R40R1 ou R8Z, à condition que l'un au moins des R5, R6 et R7 représente R40R1 lorsque R3 ne représente pas R4OR1, les R1 et R4 du dérivé de nucléoside pouvant être identiques ou différents ;; - R4 représente un radical hydrocarboné bivalent, Linéaire cu ramifié, substitué ou non substitué, comportant éventuellement dans sa chaîne un ou plusieurs groupements choisis parmi 0, S, NH, NHCO, NHSO2, SO2, CO, C#C, CH=CH, avec t et u étant des nombres entiers de 1 - Re est une simple Liaison ou un radical linéaire ou ramifié, substitué ou non substitué, comportant éventuellement dans sa chaine et/ou dans ses ramification un ou plusieurs groupements choisis parmi G, S, NH, NHCO, NHSO2, S02, C0, C=C, CH=CH, avec t et u étant des nombres entiers de 1 à 2, et - Z est un radical dérivé d'une molécule de marquage, d'une molécule d'un précurseur de marqueur ou d'une molécule capable de s'associer à d'autres molécules. 4. Dérivé selon la revendication 1, caracterisé en ce que La molécule polyhydroxylée est Le glycérol ou un homologue du glycérol 5. Dérivé selon la revendication 4, caractérisé en ce qu'il répond à la formule dans laquelle - R1 et R2 ont la signification donnée dans la revendication 1, et - R4 représente un radical hydrocarboné bivalent, Linéaire ou ramifié, substitué ou non substitué, comportant éventuellement dans sa chaîne un ou plusieurs groupements choisis parmi Q, S, NH, NHCO, NHSO2, 502, CO, C#C, CH=CH, avec t et u étant des nombres entiers de 1 à 2, 6.Dérivé selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisé en ce que R1 représente un radical trityle de formule dans laquelle R9, R10 et R11 qui peuvent être identiques ou différents, représentent un atome d'hydrogène, un radical alkyle, alcoxy ou amino. 7. Dérivé selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que R2 est un radical phosphoré choisi parmi les radicaux de formule : dans lesquelles R1 et R4 ont la signification donnée dans la revendication 3, R' et R" pris séparément représentent chacun un radical alkyle, aralkyle ou cycloalkyle contenant jusqu'à 10 atomes de carbone, ou R' et R" forment ensemble une chaine alkylène contenant jusqu a 5 atomes de carbone ou forment ensemble avec L'atome d'azote un hétérocyle pouvant contenir un ou pLusieurs autres hétéroatomes choisis parmi N, O et S. 8. Dérivé selon La revendication 7, caractérisé en ce que R2 représente le radical de formule 9. Dérivé selon l'une quelconque des revendications 7 et 8, caractérisé en ce que R1 est le radical diméthoxytrityle. 10. Dérivé de nucléoside de formule (Ia) selon la revendication 3, caractérisé en ce que B représente 11. Dérivé de nucléoside selon La revendication 10, caractérisé en ce que R4 représente - (CH2)n. 12. Dérivé de nucléoside selon la revendication 11, caractérisé en ce que n est égal à 6. 13. Dérivé de nucléoside de formule (la) selon L'une quelconque des revendications 3 et 10 caractérisé en ce que R3 représente un atome d'hydrogène. 14. Dérivé de polyol de formule (Ib) selon La revendication 5, caractérisé en ce que R4 représente ~(CH2)n~. 15. Dérivé de polyol selon la revendication 14, caractérisé en ce que n est égal à 3. 16. Procédé pour former au moins une ramification sur un oligonucléotide, caractérisé en ce qu'il comprend Les étapes successives suivantes : a) fixation sur cet oligonucléotide d'un dérivé de molécule polyhydroxylée de formule dans laquelle X est un radical polyvalent obtenu par enlèvement des groupes OH d'une molécule polyhydroxylée Linéaire, ramifiée ou cyclique portant n fonctions alcool primaire et une fonction alcool primaire ou secondaire, - R1 est un radical protecteur d'un groupe OH convenant à la synthèse oligonucléotidique, tes R1 pouvant être différents, - R2 est un radical fonctionnel adapté à ta synthèse oligonucléotidique, non substitué ou substitué par OR1, et - n est un nombre entier ae 2 à 4 ; et b) réaction des n fonctions OH du dérivé fixé avec n molécules capables de réagir avec les fonctions OH obtenues par coupure des liaisons OR. 17. Procédé pour former au moins une ramification sur un oligonucléotide linéaire, caractérisé en ce qu'il comprend Les étapes successives suivantes a) fixation sur cet oligonucléotide linéaire d'une molécule servant d'espaceur, b) fixation sur cette molécule servant d'espaceur d'un dérivé de molécule polyhydroxylée de formule dans laquelle X est un radical polyvalent obtenu par enlèvement des groupes OH d'une molécule polyhydroxylée linéaire, ramifiée ou cyclique portant n fonctions alcool primaire et une fonction alcool primaire ou secondaire, - R1 est un radical protecteur d'un groupe OH convenant à la synthèse oligonucléotidique, les R1 pouvant être différents, - R2 est un radical fonctionnel adapté à la synthèse oligonucléotidique, non substitué ou substitué par OR1, et - n est un nombre entier de 2 à 4, et c) réaction des n fonctions OH du dérivé fixé avec n molécuLes capables de réagir avec les n fonctions OH obtenues par coupure des Liai sons OR1. 18. Procéda selon l'une quelconque des revendications 16 et 17, caractérisé en ce que les molécules capables de réagir avec les fonctions OH obtenues par coupure des OR1 sont choisies parmi les nucléosides, les nucléosides marqués, les molécules pouvant servir d'espaceurs, les molécules de marquage, les molécules capables d'être marquées, les dérivés de molécules polyhydroxylées de formule (I) et les molécules capables de s'associer à d'autres molécules. 19. Procédé selon l'une quelconque des revendications 16 à 18, caractérisé en ce que le dérivé de molécule polyhydroxylée répond aux formules dans lesquelles R1, R2, R3, R4 et B ont la signification donnée dans Les revendications 3 et 5. 20. Procédé selon La revendication 18, caractérisé en ce que la molécule capable d'être marquée est un dérivé de nucléoside que l'on marque ensuite au phosphore 32. 21. Procedé selon La revendication 18, caractérisé en ce que la molécule de marquage est une molécule capable de -s'associer à l'avidine ou la streptavidine. 22. Procédé selon La revendication 18, caractérisé en ce que la molécule de marquage est une molécule possédant des propriétés fluorescentes ou luminescentes. 23. Oligonucléotide répondant à la formule : A 1-N' -N-C dans laquelle : - n1 est un nombre entier supérieur à 1, - les A sont des nucléotides identiques ou différents, - N' est une molécule servant d'espaceur, - a est égal à O ou est un nombre entier, - N est un dérivé de molécule polyhydroxylée selon la revendication I, et - C représente l'extrémité de l'oligonucléotide qui comprend au moins deux ramifications identiques ou différentes, formées chacune d'une ou plusieurs molécules identiques ou différentes choisies parmi N', N, M et A avec M représentant un nucléotide marqué, une molécule de marquage ou une molécule d'un précurseur de marqueur ou une molécule capable de s'associer à d'autres molécules.