FR 2618439 A1 19890127 FR 8710288 A 19870721 La présente invention est relative à l'isolement d'une lectine d'origine humaine, à la détermination de la sé quence en amino-acïdes de lectines de provenances diverses, y conpris des lectines d'origine humaine, et ai leur synthèse, à l'application desdites séquences en thérapeutique en tant qu'immunostimulant et immunosuppresseur et en tant qu'agent interféron-like, pour le traitement de certaines viroses et certaines formes de cancer, à la production d'anticorps poly- clonaux et monoclonaux anti-lectines et à leur application à l'immuno-diagnostic, à l'identification et l'isolement des gènes des lectines qui reconnaissent les séquences en amino- acides susdites, à l'utilisation de l'expression de ces gènes pour la production de lectines, de séquences en amino-acides et d'oligonucléotides propres à celles-ci. Les lectines sont des protéines qui ont été trouvées dans une grande variété de vertébrés allant de l'anguille électrique Woù leur nom) aux oiseaux et aux mammifères. Les lectines sont des protéines qui fixent les su cres et se combinent avec des mono- et avec des oligo- saccharides par des liaisons autres que co-valentes. Toutes les lectines sont des protéines oligome*res comportant plu sieurs sites de liaison de saccharides par molécule, c'est-à- dire qu'elles sont multivalentes. Cette structure polyvalente confère aux lectines l'aptitude d'agglutiner des cellules portant sur leur membrane externe les fractions saccharidi- ques appropriées. I Au cours des vingt dernières années, plusieurs cen taines de lectines principalement extraites de plantes, ont été purifiées et caractérisées. Les lectines sont utilisées en tant que réactifs pour la,purification et la caractérisa tion de glycoconjugués ou en tant que mitogenes de classes spécifiques de lymphocytes. Actuellement, certaines lectines sont utilisées dans des-banquee de sang pour le typage du sang, principalement en raison de l'indisponibilité d'anticorps anti-O(H) naturels et en raison du fait que c ertaines d'entre elles distinguent les sous-groupes sanguins Al et A2- Occasionnellement, les lec- tines sont utilisées pour la séparation de populations d'éry- throcytes mixtes, par exemple dans les rares cas de mosaYques de groupes sanguins résultant de la formation de chimères, de mutations somatiques ou de transplantations de moëlle osseuse. D'autre part, comme certaines lectines /par exemple la phytohemagglutinine (PRA) et la concanavaline A_7 stimulent les lymphocytes B (par exemple le mitogène de phytolaque), les lectines sont également utilisées pour identifier les principales sous-populations de lymphocytes. Contrairement aux antigènes qui ne stimulent qu'une faible proportion des lymphocytes (habituellement de 0,02 a* 0,2 %), les lectines stimulent une proportion élevée (Jusqu'à 70-80 %) de cellules B, quelle que soit la spécificité antigénique des lymphocytes récepteurs. Les lectines sont donc des activateurs poly- clonaux ou des ligands polyclonaux. Elles sont utilisées dans l'étude du mécanisme par lequel un antigène agissant à la surface de la cellule lymphoïde favorise spécifiquement ou inhibe spécifiquement l'expansion clonale et la synthèse des immunoglobulines. Comme autres produits synthétisés par des lymphocytes stimulés par des lectines, il faut citer diverses lymphokines, telles que l'interleukine 2 (Il-2) et l'inter féron. La stimulation mitogénique, en particulier par la PHA, est également utilisée en tant qu'outil de diagnostic pour la détection de déficiences immunalogiques congénitales et acquises, pour la détection de sensibilisations dues à des agents infectieux ou liées à certaines maladies auto-immunes, et pour le contrôle des effets de divers traitements immuno suppresseurs et immunothérapeutiques. Une autre application particulièrement utile de la stimulation des lymphocytes par ces lectines est représentée par les études cytogénétiques des chromosomes humaine et animaux. Les lectines sont également largement utilisées par les immunologistes pour è tudier les" propriétés et la consti- tution des membranes de lymphocytes. En utilisant des dérivés appropriés de lectines, il est possible d'examiner non seule ment la répartition des récepteurs de lectines sur la surface des lymphocytes, mais également la mobilité des récepteurs -dans la membrane, et de démontrer, par exemple, que la redis- tribut ion et le capping des récepteurs sur les surfaces des lymphocytes résultent de la fixation des lectines. Les récepteurs de lectines, c'est-à-dire les consti tuants membranaires qui réagissent avec les lectines, peuvent être détectés sur des électrophorétogrammes ou être isolés sous une forme purifiée par les mêmes méthodes que celles qu'on utilise pour isoler des antigènes de surface à l'aide des anticorps correspondants. La détection est réalisée de préférence par coloration de la lectine dans les électropho- rétogrammes de préparations de membranes. Les récepteurs peu vent être isolés à partir de membranes solubilisées, par pré cipitation soit par la lectine seule, soit en utilisant cette dernière associée à un anticorps antilectine ; les meilleurs résultats sont obtenus par isolement desdits récepteurs par chromatographie d'affinité sur des lectines immobilisées. L'existence dans de nombreux tissus de vertébrés d'une activité lectine endogène fixant de façon spécifique le B-D-galactoside, a été démontrée en 1974 et attribuée à la famille de protéines dénommée "électrolectines" (en raison du fait que la première lectine animale décrite avait été isolée de l'organe électrique de l'anguille électrique - electro- phorus electricus). Des lectines ont été isolées, depuis, de muscle, de rein, de coeur et d'intestin d'embryon de poulet, de coeur, de poumon et de rate de veau, de poumon de rat, de musciede singe, de poumon et de muscle humain. De façon re marquable, les -différentes lectines identifiées à ce jour présentent des propriétés très similaires à celles décrites pour l'électrolectine de l'anguille électrique. Toutes agglu tinent les érythrocytes de lapin traités par la trypsine, toutes sont indiquées comme ayant principalement une locali- sation cytoplasmique intercellulaire, toutes ont un poids mo léculaire compris entre 15 000 et 30 000 daltons et se compo sent de deux à quatre sous-unités, toutes possèdent la même affinité pour les saccharides suivants, dans un ordre dé- croissant : B-D-galactosyl -thioga lactopyranos ide (TDG) > lactose > D-ga- lactose. Toutes les lectines identifiées à ce jour ont été indiquées comme requérant la présence d'agents réducteurs pour le maintien de leur activité d'agglutination. De plus, il a été montré que les lectines de divers tissus du même animal et que les lectines de tissus homolo gues de mammifères différents, présentent une réactivité an- tigénique croisée. Les fonctions biologiques des lectines de vertébrés ne sont pas encore établies avec certitude. Il est cependant remarquable que leur concentration dans les tissus est régu lée en fonction du développement et qu'elles sont associées à des processus néoplastiques. Chez l'animal adulte, les lecti- .nés de vertébrés sont principalement présentes dans des orga nes impliqués dans les défenses immunitaires (c'est-à-dire le thymus, le placenta, la peau). Les lectines présentant une spécificité vis-à-vis du lactose présentent des propriétés immunomodulatrices dans des maladies auto-immunes provoquées expérimentalement (telles que myasthenia gravis et diabète type I). Les données actuellement disponibles indiquent que les lectinesprésentent une ressemblance structurale avec les interférons, qui sont des lymphokines déjà expérimentées en thérapie humaine pour certaines viroses et certaines formes de cancer. De plus, comme indiqué plus haut, l'étude fonc tionnelle de Vélectrolectine d'anguille a montré des pro- priétës immunosuppress ives dans une forme expérimentale de myasthénie grave provoquée par l'injection de récepteur d'acétylcholine. Ces deux types d'observations suggèrent que les lectines pourraient être utilisées en clinique soit en tant que lymphokines, soit/et en tant que protéines immuno- suppressives et en immunodiagnostic en utilisant la réaction de protéines antigéniques tumorales avec des anticorps anti- lectines. Dans le but d'étudier la régulation de l'expression et les fonctions biologiques des lectines de vertébrés, GITT et BARONDES (PROC.NATL-ACAD. SCI -USA, Vol. 83, p. 7603-7607, Octobre 1986) ont visé à déterminer les séquences des lec- tines et plus particulièrement celle d'une lectine dimère humaine fixant le B-D-galactoside, dont la sous-unité présen te un poids moléculaire de 14 000 daltons, cette lectine pro venant de poumon humain. Ces Auteurs ont isolé deux clones de cDNA par immunocriblage d'une banque de cDNA d'hépatome humain, à l'aide d'un antisérum qui se lie spécifiquement à une lectine fixant le B-D-galactoside, de P.M. 14 000 dal- tons. Ils ont trouvé que les séquences d'amino-acides des inserts de ces deux clones qu'ils ont ainsi déduites, présen tent une homologie importante entre elles, avec la séquence de la lectine de peau de poulet, qui fixe le B-D-galactoside, et avec 8 peptides dérivés de lectine de poumon humain puri fiée, de P.M. 14 000 daltons. Cependant, des différences entre les séquences des deux clones d'hépatome et entre cha cun de ces clones et les peptides de poumon humain, leur ont suggéré qu'il existerait au moins trois variantes du gène qui code pour cette lectine, qui seraient exprimées dans-le tissu humain, étant cependant noté qu'ils n'ont pas établi la natu re des protéines codées par les clones 1 et 2 d'hépatome hu main. Etant donné l'importance du rôle physiologique des lectines dans les évènements ontogéniques et les étapes de différenciation, il est apparu nécessaire d'établir l'homolo gie entre les diverses lectines de vertébrés en déterminant dans toute la mesure du possible leurs séquences, et d'élar gir les sources disponibles de lectines homologues, notamment en vue de leur utilisation thérapeutique et pour le diagnostic. C'est dans ces conditions que les Inventeurs ont dé- terminé l'homologie structurale de différentes lectines qui lient le B-D-galactoside, en établissant les s équences en amino-acides de ces lectines, isolées de l'anguille électri que et de placenta humain ; ils ont comparé les séquences qu'ils ont établies, avec des séquences publiées précédem ment, déduites des cADN codant pour les lectines fixant le S-D-galactoside, isolées de peau d'embryon de poulet et d'hé- patome humain, respectivement, et avec la séquence partielle en aminoacides de la lectine de poumon humain ; ils ont ainsi mis en lumière les homologies importantes entre ces lectines d'origines diverses. La présente invention a pour objet une séquence d'amino-acides correspondant à au moins une partie de la sé quence des lectines fixant le B-D-galactoside, qui est carac térisée en ce qu'elle comprend un squelette d'amino-acides qui est composé d'au moins les amino-acides suivants, dans les positions suivantes : 2 14 16 19 23 32 serine lysine glycine leucine glycine phénylalanine 35 37 43 45 46 asparagine glycine leucine leucine histidine 48 49 50 51 asparagine proline arginine phénylalanine acide 56 61 63 64 70 aspartique valine asparagine serine tryptophane 71 73 75 76 ai glycine glutamine arginine glutamine phénylalanine 84 92 93 104 105 glycine thréonine phénylalanine leucine proline 106 107 112 113 acide aspartique glycine phénylalanine proline 114 asparagine. Conformément à la présente invention, le squelette d'amino-acides correspondant à au-moins une partie de la sé- quence desdites lectines, comprend en outre les amino-acides suivants, dans les positions suivantes : 3 5 28 53 54 asparagine valine acide aspartique alanine histidine 55 67 68 72 74 80 glycine glycine glycine thréonine glutamine proline 91 102 103 109 isoleucine isoleucine isoleucine acide glutamique 132 133 isoleucine lysine Egalement conformément à l'invention, le squelette d'amino-acides correspondant à au moins une partie de la sé- quence desdites lectines, comprend en outre les amino-acides suivants, dans les positions suivantes 8 10 26 27 29 30 thréonine asparagine alanine proline alanine lysine 31 -32 36 38 39 40 sérine -valine leucine lysine acide aspartique serine 47 53 54 55 58 phénylalanine alanine histidine glycine asparagine 60 62 72 74 78 80 isoleucine cystéine thréonine glutamine valine proline 82 91 110 115 116 glutamine isoleucine phénylalanine arginine leucine 118 128 129 leucine glycine acide aspartique Selon un e autre disposition de l'invention, le sque lette d'amino-acides correspondant à au moins une partie de la séquence desdites lectines, comprend en outre les amino-acides -suivants, dans les positions suivantes : 4 6 18 20 21 22 glycine valine glutamine thréonine valine lysine acide 52 53 54 55 72 74 aspartique alanine histidine glycine thréonine glutamine 80 91 96 proline isoleucine asparagine- Selon encore une autre disposition de -linvention, le squelette dgamino-acides correspondant à au moins une par tie de la séquence desdites lectines, comprend en outre les amino-acides suivants, dans les positions suivantes : 28 67 68 74 79 acide aspartique glycine glycine glutamine phénylalanine Selon une autre disposition de l'invention, le sque lette d'amino-acides correspondant à au moins une partie de la séquence desdites lectines, comprend en outre les amino-acides suivante dans les positions suivantes : 26 27 29 30 31 33 36 alanine proline alanine lysine sérine valine leucine 38 39 40 74 78 lysine acide aspartique sérine glutamine valine 79 109 110 115 116 phénylalanine glutamine phénylalanine arginine leucine lis 123 leucine tyrosine Selon encore une autre disposition de 1 invention, la séquence d'amino-acides comprend au moins les 129 amino- acides suivants, qui sont présents selon la même séquence dans la lectine de l'anguille électrique : 1 10 (SER MET) ASN GLY VAL VAL ASP GLU ARG MET SER PHE ALA 20 GLY GLN ASN LEU THR VAL LYS GLY VAL PRO SER ILE ASP SER THR 30 40 ASN PHE ALA ILE ASN VAL GLY ASN SER ALA GLU ASP LEU ALA LEU 50 HIS ILE ASN PRO ARG PHE ASP ALA HIS GLY ASP GLN GLN ALA VAL 60 70 VAL VAL ASN SER PHE GLN GLY GLY ASN (TRP)GLY(THR) GLU GLN(ARG) 80 GLU GLY GLY PHE PRO PHE LYS GLN GLY GLU ASP PHE LYS ILE GLN 90 100 ILE THR PHE ASN SER GLU GLU PHE ARG ILE ILE LEU PRO ASP GLY 110 SER GLU ILE HIS PHE PRO ASN ASN ARG TYR MET HIS PHE GLU GLY 120 GLU ALA ARG ILE TYR SER ILE GLU ILE LYS... Selon une autre disposition avantageuse de l'inven tion, la séquence d'amino-acides comprend au moins les amino- acides suivants, qui sont présents selon la même séquence dans la lectine du placenta humain : 1 4 6 a 10 il SER( ASN TYR VAL SER( THR( ASN is 20 21 23 26 28 ILE GLY GLU VAL ALA PRO ASP ALA 30 31 34 35 36 40 41 42 43 LYS SER PRE VAL LEU ASN LEU GLY LYS ASP SER ASN ASN LEU CYS 45 46 48 50 si 53 54 55 56 LEU HIS PHE ASN PRO ARG PHE ASN ALA HIS GLY ASP ALA ASN THR 60 61 67 68 70 71 72 74 ILE VAL CYS ASN SER ASP GLY GLY ALA TRP GLY THR GLU GLN 78 80 81 82 83 84 85 86 87 88 ARG GLU' ALA VAL PHE PRO PRE GLN PRO GLY SER VAL ALA GLU 89 90 91 92 93 94 95 96 97 100 101 102 103 VAL( ILE THR PHE ASP GLN ALA ASN LEU LEU VAL ILE ILE 104 105 107 108 109 110 111 112 113 114 115 116 118 LEU PRO ASP GLY LEU GLU PRE LYS PHE PRO ASN ARG LEU ASN LEU 119 120 121 123 125 128 130 131 132 133 GLU ALA ILE ASN LEU MET ALA ALA ASP GLY ASP PHE LYS ILE LYS 134 135 Les séquences d'amino-acides conformes ai la présente invention correspondent aà au moins une partie de la séquence de lectines qui fixent le B-D-galactoside, présentent une af finité plus grande pour le B-D-galactosyl-thiogalactopyrano- side que pour le lactose et plus grande pour ce dernier que pour le galactose, et requièrent des agents réducteurs pour maintenir leur activité agglutinante ; ces séquences compren nent des déterminants essentiels desdites lectines et présen tent une réactivité croisée à l'égard d'anticorps dirigés contre des lectines d'origines diverses, tant humaine qu'ani males. Conformément ai la présente invention, les amino- -acides de la séquence qui reproduit celle de la lectine de l'anguille électrique entrent dans la composition de plu sieurs peptides qui ont été analysés par dégradation, dans un micro-séquenceur en phase gazeuse, et dont les amino-acides qui les composent ont été identifiés par chromatographie hau te pression en phase liquide (HPLC), les peptides suivants ayant ainsi été identifiés *. (1) Asn - Ser - Glu - Glu - Phe - Arg (2) Ala - Gly - Gln - Asn - Leu - Thr - Val (3) Ph e - As n - Ser - Glu - Glu - Phe - Arg (4) Tyr - Met - His - Phe - Glu - Gly - Glu Ala - Arg (5) Glu - Gly - Gly - Phe - Pro (6) Ile - Tyr - Ser - Ile - Glu - Ile (7) Ile - Tyr - Ser - Ile - Glu - Ile - Lys (8) Phe - Asp - Ala - His - Gly - Asp - Gln Gln - Ala - Val - Val - Val - Asn - Ser - Phe - Gln Gln - Asn (9) Ile - Gln - Ile - Thr - Phe - Asn - Ser Glu - Glu - Ph e - Arg (10) Ile - Ile - Leu - Pro - Asp - Gly - Ser Glu - Ile - His - Phe - Pro - Asn - As n - Arg (11) Gly - Val - Pro - Ser - Ile - Asp - Ser Thr - Asn - Phe - Ala - Ile - Asn - Val - Gly - Asn Ser - Ala - Glu - Asp - Leu - Ala - Leu - His - Ile - Asn - Pro Arg (12) Gly(Thr) - Glu - Gln. Conformément à l'invention, dans les séquences d'amino-acides conformes à la présente invention qui corres pondent au moins -à une partie de la séquence des lectines telles que définies plus haut, les amino-acides sont organi sés en structures en feuillets plissés B et lesdites se p quen- ces comprennent au moins 10 feuillets plissés B dans des po sitions qui correspondent aux positions d'amino-acides commu nes aux lectines de diverses origines. Les séquences d'amino-acides conformes à la présente invention se distinguent, en outre, par leur caractère hydro phobe, établi à l'aide de l'échelle d'hydropathie de KYTE ET DOOLITTLE. Les séquences d'amino-acides conformes à la présente invention se distinguent également par le fait que le trypto- phane qu'elles contiennent se trouve dans une position com prise entre la position 69 et la position 76 de la séquence, ainsi que deux résidus acide glutamique, et en ce que la ré gion 69-76 forme au moins en partie le site de fixation du B- D-galactoside. Lesdites séquences d'amino-acides se distinguent d'autre part par le fait qu'elles contiennent au moins deux résidus cystéine ou demi-cystine qui se trouvent en positions 44 et 62 et dont l'état chimique devrait jouer un rôle impor tant dans l'intégrité fonctionnelle de la protéine. Les séquences d'amino-acides conformes à la présente invention se distinguent en outre par le fait qu'elles com portent un peptide terminal bloqué sur l'azote, qui ne compo se d'une séquence Ser - Met N-acétylée. La présente invention a également pour objet un pro cédé de purification de lectines fixant le B-D-galactoside, à partir de tissus d'animaux vertébrés et notamment de l'an guille électrique et de placentas humains, par homogénéisa tion et fractionnement des tissus animaux, puis isolement par chromatographie d'affinité a l'aide d'une matrice de lactosyl-Sépharose, lequel procédé est caractérisé en ce que le tampon d'élution Utilisé pour isoler les lectines est constitué par une solution saline, pH 7,2, tamponnée par du phosphate, additionnée de lactose et de 2-mercaptoéthanol. La présente invention a, de plus, pour objet un pro cédé de détermination des séquences - ou séquençage - d'amino-acides correspondant au moins à une partie de la sé quence des lectines fixant le B-D-galactoside définies plus haut, qui est caractérisé en ce qu'il met en oeuvre une technique, connue en elle-même, de dégradation automatique, telle que notamment la technique mise au point par EDMAN, avec addition de polybrène. La présente invention a également pour objet un pro cédé de synthèse de séquences d'amino-acides correspondant au moins à une partie de la séquence des lectines' fixant le S-D- galactoside, définies plus haut, caractérisé en ce que ladite synthèse est réalisée en mettant en oeuvre une méthode déri vée de la méthode de BERGMAN et ZERVAS qui utilise des grou pes protecteurs pour protéger les fonctions réactives des amino-acides a partir desquels sont formées lesdites séquen- ces, et des méthodes de couplage appropriées pour coupler les amino-acides entre eux. La présente invention a, en outre, pour objet des anticorps polyclonaux anti-lectine placentaire humaine, cara ctérisés en ce qu'ils sont essentiellement constituée par des sérums obtenue à partir de sang d'animaux immunisée par in jection de lectine purifiée par chromatographie d'affinité. La présente invention a également pour objet des anticorps monoclonaux anti-lectine placentaire humaine, ca ractérisés en ce qu'ils sont constitués par des clones isolés a partir d'hybridomes obtenus par fusion de cellules tumora les appropriées, SP-2-0 ou NS-1 notamment, avec des spléno- cytes de souris immunisées contre la lectine de placenta hu main convenablement purifiée. La présente invention a également pour objet les applications de ces anticorps polyclonaux et monoclonaux en tant qu'agents de diagnostic et agents thérapeutiques pour la détection ou le traitement d'affections impliquant les défenses immunitaires. Outre les dispositions qui précèdent, l'invention comprend encore d'autres dispositions qui ressortiront de la description qui va suivre, qui comprend des exemples d'obten tion des séquences d'amino-acides définies dans ce qui précè de et des méthodes de contrôle de l'activité de lectines fi xant le B-D-galactoside, de ces séquences, en référence aux dessins annexés dans lesquels la Figure 1 représente la séquence en acides aminés de la lectine d'anguille électrique, faisant apparaÎtre l'a lignement des peptides et des fragments qui la composent ; la Figure 2 représente un profil HPLC typique d'une digestion de l'électrolectine par la trypsine, dans lequel chacune des fractions obtenues par digestion a été analysée dans un séquenceur en phase gazeuse et dans lequel la séquen ce correspondante est indiquée au-dessus du pic la Figure 3 représente une comparaison des séquences obtenues - respectivement pour les lectines fixant le B-D- galactoside, isolées d'anguille électrique, de placenta hu main (Hum.p.), et de poumon humain (Hum. 1.) avec celles ob tenues à partir des eDNA de peau d'embryon de poulet et d'hé- patome humain Li-7 ('Hum.hep.l", "Hu'm.hep.2") ; la Figure 4 représente les structures en feuillets plissés B et les profils d'hydropathie des lectines fixant le S-D-galactoside isolées de poulet et d'anguille électrique. Les deux courbes du haut ont été calculées à l'aide de la mé thode de CHOU & FASMAN [(BIOCHEMISTRY, 13, (1974), 211-2227 ; les deux courbes du bas ont été calculées en utilisant l'é- chelle d'hydropathie de KYTE & DOOLITTLE J. MOL. BIOL. .157 (1982) 105-1327- la figure 5 représente la migration de la lectine humaine en gel de polyacrylamide, obtenue par électro- focalisation ; la figure 7 représente les espèces moléculaires identifiées par hybridation, par la méthode de SOUTHERN, et la figure 8 représente un immunoblot de migration de lectine purifiée. - Il doit être bien entendu, toutefois, que ces exem ples sont donnés uniquement à titre d'illustration de l'objet de l'invention, dont ils ne constituent en aucune manière une limitation. EXEMPLE I - Purification de lectine-fixant le S-D- galactoside, à partir d'anguille électrique Des anguilles électriques, Electrophorus electricus, (obtenues vivantes du WORLDWIDE PARAMOUNT AQUARIUM/ARDSLEY, N.Y.) ont été décapitées et leur principal organe électrique a été découpé en petits cubes et congelé à -20*C. L'homogénéisation des tissus et le fractionnement ont été ralisés comme décrit par LEVI & TEICHBERG, J. BIOL. CHEM., 256 (1981), 5735-5740. Les lectines ont- été isolées par chromatographie d'affinité sur une matrice de lactosyl- Sepharose, comme décrit dans cette dernière Publication. Le tampon d'élution était constitué par une solution saline, pH 7,2, tamponnée par 0,01 M de phosphate et additionnée de 100 mM de lactose et 14 mM de 2-mercapto-éthanoi. La pureté de la lectine éluée a été vérifiée par électrophorèse sur polyacrylamide-dodécyleulfate de sodium et son activité après dialyse contre une solution saline tampon née au phosphate, a été contr8lée sur des érythrocytes de la pins trypsinisés dans un test quantitatif d'hémogglutination effectué sur des plaques de microtitration comme décrit éga lement dans la Publication précitée. EXMPLE II - Purification de lectine fixant le fi-D- galactoside à partir de placenta humain Des placentas humains frais provenant d'accouche ments nocturnes ont été maintenus sur de la glace jusqu'à le-ur collecte et leur traitement, dès le matin suivant. La lectine a été récupérée en procédant comme décrit a l'Exemple I. La pureté et l'homogénéité de la lectine placentaire humaine ont été vérifiées par électrophorèse en polyacryl- amide en présence d'un gradient de pH (technique dite d"'iso- focalisation") suivant la procédure suivante : Le pHi de la lectine humaine (ELH) est déterminé par isoélectrofocalisation (IEF), en procédant comme suit Technique Gel polyacrylamide solution stock 24,25 g acrylamide. 0,75 g bis acrylamide. 2,50 g amberlite MB-6 (Pharmacia). 250,00 ml eau distillée. Préparation du gel (plaques 115 x 230 mm) Filtrer 15 ml de la solution stock. 1,90 ml Pharmalyte (Gradient pH 3.10). 4,00 ml glycérol. Ajuster à 30 ml avec H20. Dégazer. Ajouter 300 pl N,N,N',N-'-tétraméthyl-éthylendiamin (TEMED). Couler le gel. Laisser polymériser une heure. Migration t Placer le gel sur le plateau réfrigérant de l'appa reil. Disposer les électrodes de chaque coEté, bandelette de papier LKB imprégnée d'une solution H3PO4, 1 M pour l'ano de et NaOH 1 M pour la cathode. Préfocalisation. 20 minutes 'à puissance constante 40 mW. DépÔt des échantillons (a% 1 cm de l'anode). Sur papier LKB de 1 x 0,5 cm. ELH : 20 pl déposé d'une solution à 600 pg/ml soit 12 pg. Protéines témoin : 20 MI solution étalon Pharmacia. Migration : lh30, puissance 40 mW constante. Révélation - Fixation 45 minutes acide trichloracétique 10 % puis 30 minutes dans une solution 30 % éthanol 5 % acide acétique. Coloration 1 heure au bleu de Coomassie. Décoloration dans éthanol 40 % + 5 % acide acétique. Séchage. on trace alors la courbe pRi = f (distance de migra tion) (cm) pour les protéines étalon. Le pHi de la lectine humaine ainsi déterminé est de 5,25, comme le montre la figure 5 annexée. M#MPLE III - Séparation et purification des peptides 1. Digestions enzymatiques. a) La digestion par la trypsine a été réalisée dans du NH4HC03 1 % par addition de 10 mg de trypsine traitée par de la tosylphénylalanylchlorométhylcétone, dissoute dans 0,01 mM d HC1, à 1 mg de lectine isolée d'anguille électrique ou de placenta humains comme décrit aux Exemples I et II ci- dessus. Au bout de 6 heures de digestion enzymatique à 37*C, 10 jug supplémentaires de trypsine ont été ajoutés et la di gestion a été arrêtée 6 heures plus tard en abaissant le pH jusqu'à 4. Le produit de digestion a été séparé par HPLC sur une colonne RP 300 en utilisant le gradient suivant solvant A ; H20/0,1 % TFA solvant B s CH3CN 80 %/H20 20 %/O,l % TFA (TFA - Acide trifluoroacétique)._ Les deux solvants ont été dégazés par passage d'un courant d'hélium. La séparation a été menée à son terme en utilisant un gradient de 0 % de solvant B a 40 % de solvant B en l'espace de 8 heures, à un débit de 0,5 ml/minute. Le dé- tecteur à longueur d'ondes variable a été réglé à 206 nm avec une sensibilité de 0,2 nm. La température de l'opération était de 25*C. b) La digestion par la protéase de Staphylococcus aureus (décrite dans HOUMARD & DRAPEAU, PROC. NATL. ACAD. SCI. , 69, 3506-3509) a été réalisée dans des conditions pro pres à' réaliser le clivage au niveau des liaisons peptidiques Glu-X : 10 pg de l'enzyme (fournie par MILES LABORATORIES) ont été ajoutés à 1 mg de lectine dans 50 mM de NH4HCO3 à PH 7,8 et la digestion s'est poursuivie pendant 18 heures à 37*C. Les peptides résultants ont été séparés par HPLC comme décrit plus haut. 2. Clivage par le bromure de cyanogène. ce clivage a été réalisé dans de l'acide formique à 70 %, à 25*C pendant 24 heures à l'obscurité, en utilisant 10 mg de bromure de cyanogène pour 1 mg de lectine. Les fragments résultants ont été séparés par gel- filtration sur du Sephadex G-50 Superfine, en présence de chlorhydrate de guanidine 5M. Les fragments ont été relargués sur du Sephadex G-25 dans du NH4HCO3 à 1 % et lyophilisés. Les peptides obtenus par digestion par la trypsine et par la protéase de Staphylococcus aureus, ont été séparés par chromatographie en phase inverse sur un instrument de WATERS, et contr8lés à 206 nm à l'aide d'un spectrophotométre 440. La plupart des séparations ont été réalisées sur une co lonne RP 300 (fournie par BROWNLEE) dans des tampons d'acide trifluoroacétique (TFA) à 1 %, en utilisant les gradients dé- crits plus haut. EXEMPLE IV - Séquençage des amino-acides contenue dans les peptides de lectine. 1. Analyse de la séquence. Les différents peptides ont été analysés par dégra dation d'EDMAN automatisée, dans un microséquenceur en phase gazeuse (commercialisé par APPLIED BIOSYSTEMS). Du polybrène" traité chimiquement (vendu sous la marque "CHEMUBRENE" par CHEMUNEX, PARIS)-a été ajouté pour empêcher l'extraction des peptides et pour améliorer les rendements. Les amino-acides de la phénylthiohydanto5:ne ont été identifiés par HPLC sur un instrument de WATERS équipé d'une colonne RP 18 de 5p de dia mètre (fournie par BROWNLEE) en utilisant un gradient d'acé tate de sodium/acétonitrile. a) Analyse des fragments de lectines clivés par le bromure de cyanogène. La composition en amino-acides de la lectine d'an guille indique la présence de trois résidus méthionine. Pour tirer avantage de la présence de ces résidus, la protéine a été hydrolysée en utilisant du bromure de cyanogène dans de l'acide formique à 70 %. On n'a isolé qu'un seul long frag ment et un petit fragment, qui ont été purifiée et partielle- mentment séquencés. Le troisième peptide à azote terminal (bloqué) n'a pas été récupéré. - Les résultats de des clivages sont résumés dans la Figure 1 annexée qui représente l'alignement des peptides et des fr agments de lectine isolée d'anguille électrique ; dans cette Figure, Cl, C2 et C3 désignent les fragments obtenus par clivage par le bromure de cyanogène. En remplaçant l'aci de formique à 70 % par une solution 50:50 HFBA/acide formique (HFBA acide heptafluorobutyrique), on a observé un clivage en un site supplémentaire, qui correspond selon toute proba bilité ià une liaison peptidique tryptophane -X (X: amino- acide non identifié). Ce nouveau peptide a été partiellement séquencè pour obtenir la séquence Gly-(Thr)-Glu-Gln. b) Analyse des peptides résultant de la digestion par la trypsine. La majeure partie de la séquence de la lectine d'an guille électrique et la totalité des résultats relatifs à la protéine humaine ont été obtenus par analyse des peptides ob tenus par digestion par la trypsine, séparés sur une colonne RP 300 comme décrit au paragraphe 1.a) du présent Exemple. La Figure 2 annexée représente une séparation typi que obtenue sur colonne RP 300 ; les séquences des peptides correspondants sont indiquées le long des pics, avec les si gnifications suivantes A Ala Alanine B Asx Asp ou Asn C Cys Cystéine ou demi-cystine D Asp Acide aspartique E Glu Acide glutamique F Phe Phénylalanine G Gly Glycine H His Histidine I Ile Isoleucine K Lys lysine L Leu Leucine M Met Méthionine N Asn Asparagine 0 PCA Gln cyclisé P Pro Proline Q Gln Glutamine R Arg Arginine S Ser Sérine T Thr Thréonine V Val Valine W Trp Tryptophane X inconnu Y Tyr Tyrosine Z Glx Glu ou Gln Les pics ont été numérotés en fonction de la posi tion des peptides dans la totalité de la séquence représentée dans la Figure 1, dans laquelle lesdits peptides sont dési gnés par Tl, T2, T3, T4, T5, T6, T7. Te, Tg, Tjo, Tll (T - digestion par la trypsine). Deux peptides supplémentaires (CT 8) ont été obtenus, probablement par action de la chymotryp sine contenue dans la trypsine. Les séquences indiquées à chacun des pics de la Fi gure 2 sont les suivantes : CTS:N.S.E.E.F.R=Asn-Ser-Glu.Glu.Arg. T3:A.G.Q.N.L.T.V.=Ala.Gly.Gln.Asn.Leu.Thr.Val. CTB:F.N.S.E.E.F.R.=Phe-Asn-Ser-Glu.Glu.Phe.Arg. Tlo:Y.M.H.F.E.G.E.A.R.=Tyr.Met.His.Phe.Glu.Gly Glu.Ala.Arg. T6:E.G.G.F.P.=Glu.Gly.Gly.Phe.Pro Tll:I.Y.S.I.E.I.=Ile.Tyr-Ser-Ile.Glu.Ile Tll:I.Y.S.I.E.I.K.=Ile.Tyr..Ser.Ile-Glu.Ile.Lys. T5:F.D.A.H.G.D.O.O.A.V.V.V.N.S.F.Q.G.G.N=Phe.Asp. Ala.His.Gly.Asp.Gln.Gln.Ala.Val.Val-Val.AÉn. Ser.Phe.Gln.Gly.Gly-Asn. T8:I.O.I.T.F.N.S.E.E.F.R.=Ile.Gln.Ile-Thr.Phe.Asn. Ser.Glu.Glu.Phe.Arg. Tg:I.I.L.P.D.G.S.E.I.H.F.P.N.N.R.=Ile.Ile.Leu.Pro. Asp.Gly.Ser.Glu-Ile-His.-Phe-Pro-Asn-Asn.Arg. T4:G.V.P.S.I.D.S.T.N.F.A.I.N.V.G .N.S.A.E.D.L.A.L. H.I.N.P.R.-Gly.Val-Pro-Ser.Ile.Asp-Ser-Thr.Asn. Phe.Ala.Ile.Asn-Val.Gly.Asn.Ser-Ala.Glu.Asp. Leu.Ala.Leu.His-Ile-Asn-Pro.Arg. c) Analyse des peptides résultant de la diges tion par la protèase de Staphylococcus aureus. Des séquences supplémentaires de lectine et des sé- quences en chevauchement ont été obtenues par analyse des peptides résultant de la digestion de lectine d'anguille électrique par la protéase extraite de Staphylococcus aureus qui, dans les conditions expérimentales mises en oeuvre, cli ve les protéines aux liaisons peptidiques Glu-X. Les peptides ont été séparés par HPLC avant d'analyser leur séquence à l'aide du séquenceur automatisé. Les peptides clivés par la protéase de Staphylococcus aureus sont désignés à la Figure 1 par SP1, SP2, SP3, SP4- Les analyses des séquences des peptides obtenus aus si bien par clivage chimique que par clivages protéolytiques, ont permis d'établir la totalité de la séquence en amino- acides de la lectine fixant le B-D-galactoside, isolée de l'anguille électrique et plus de 60 % de celle de la lectine placentaire humaine. L'alignement des peptides tel qu'il est représenté à la Figure 3 annexée, pour la lectine de poulet, d'anguille électrique, de placenta humain (Hum.p.), de poumon humain (Hum.l.) et d'hépatome humain (Hum. Hep. 1 et 2), est basé sur les homologies importantes que présentent les autres lectines avec la protéine de 14KD qui fixe le B-D-galacto- side, isolée d'embryon de poulet. 2. Structures secondaires des lectines Les paramètres caractéristiques des structures se condaires des lectines ont été calculés sur des lectines de poulet et d'anguille, à l'aide d'un logiciel fourni par le groupe d'informatique appliquée au génie génétique, de Vuni- versité de Wisconsin, et d'un ordinateur "Microwax IIn. Les résultats de ces calculs sont représentés à la Figure 4 anne xée qui représente la propension des lectines à former des structures en feuillets plissés B et qui représente également leurs pr6fils d'hydropathie. Les deux courbes supérieures - qui représentent les structures en feuillets plissés B en fonction du nombre de résidus d'amino-acides - ont été cal culées à l'aide de la méthode de CHOU & FASMAN rBIOCIIEMISTRY, 13, 211-222J et les deux courbes inférieures - qui représen- tent -l'hydropathie, en fonction du nombre de résidus d'amino-acides - ont été obtenues à l'aide de l'échelle d'hy- dropathie de KYTE & DOOLITTLE [J. MOL. BIOL., 157, 105-1327. Dans la Figure 4, les parties de chacune des courbes -qui se trouvent au-dessus de la ligne de seuil dont la valeur est-de 1,00, indiquent les résidus d'amino-acides probable ment impliqués dans les structures en feuillets plissée - Il s'ensuit que les lectines de poulet et d'anguille semblent être toutes deux composées d'au moins 10 feuillets plissés B qui sont tous constitués par des résidus d'amino-acides dans des positions équivalentes dans les deux protéines. Il en est de même des profils d'hydropathie dont la similarité est très grande dans les deux protéines. Les séquences d'amino-acides qui ont pu être éta blies, de même que la propension des lectines à former des feuillets plissés B et leurs profils d'hydropathie, tels que représentés à la Fig. 4, mettent en évidence l'homologie de structure des lectines d'animaux vertébrés. Les lectines de poulet et d'anguille comportent 51 résidus identiques sur les 130 positions qui ont été comparées, ce qui correspond à une homologie de 39 %. Les résidus identiques sont répartis sur toute la longueur des protéines, sauf sur le dernier tiers des chaînes, qui présente beaucoup moins de similarités que le reste-des polypeptides. outre les 51 résidus identiques, 27 positions sont occupées par des résidus homologues, codés par des codons qui ne différent que par un seul nucléotide. Le peptide terminal bloqué sur l'azote se compose d'une séquence Ser-Met N acéty- lée. L'analyse des peptides résultant'du clivage par le CNBr dans un mélange HFBA/acide formique a permis d'assigner au tryptophane la position 70. Cette position 70 assignée au résidu tryptophane est corroborée par- le fait que toutes les séquences de lectines représentées à la Fig. 3 présentent la même zone 70-76. En outre, l'alignement des peptides tel que repré- senté aux figures 1 et 3 est corroboré par la similarité des zones formant des feuillets plissés B et des profile d'hydro- pathie, en particulier des séquences de poulet et d'anguille. La comparaison entre les lectines de poulet et de placenta humain fait apparaître 59 résidus identiques sur 111 positions comparées. En fait, plusieurs séquences de peptides sont identiques dans les deux protéines : les séquences 29- 33, 35-40, 45-51, 53-56, 70-76, 78-82, 89-91, 109-111 et 125- 127. La comparaison entre la lectine d'anguille et la lectine de placenta humain fait apparaître 47 résidus identi ques sur 111 positions comparées. La comparaison entre les séquences partielles des quatre lectines d'origine humaine représentées 'à la Figure 3, fait apparaÎtre des homologies significatives : 50 résidus sur 54 positions comparables (93 % d'homologie) sont identi ques dans les lectines de poumon et de placenta humains, alors qu'on ne trouve que 41 % d'homologie entre la lectine de placenta humain et le produit du clone de cDNA d'hépatome humain 1 (42 résidus sur les 103 résidus comparés). ces ré sultats indiquent qu'au moins quatre gènes différents codant pour les lectines qui fixent le B-D-galactoside, peuvent être présents dans le génome humain et qu'ils ont une origine com mune qui a pour conséquence quion retrouve dans les séquences peptidiques des lectines de différentes origines animales, les mêmes déterminants structuraux essentiels, tels, notam ment, que le site de fixation du B-D-galactoside qui se si tuerait, au moins en partie, au niveau des positions 70-76. Cette séquence peptidique contient un résidu tryptophane et deux résidus acide glutamique, respectivement en positions 70, 73 et 76. M#MPLE V - Préparation, par voie de synthèse, d'une séquence d'amino-acides correspondant i au moins une partie d'une lectine fixant le B-D-galactoside Les peptides séquencés comme décrit a l'Exemple IV qui précédé, ont été synthétisés en mettant en oeuvre la mé thode en phase solide de MERRIFIELD rcf. J. AM. CHEM. SOC. (1963), 85, 21947. La synthèse complète de la lectine d'anguille élec trique et de la lectine de placenta humain permettra une meilleure approche des propriétés et de la constitution des membranes des lymphocytes et la synthèse de la seconde pourra permettre de disposer d'une source entièrement synthétique pour la préparation d'un agent thérapeutique, immunostimulant et immunosuppresseur, de grande valeur. EXEMPLE VI - Préparation d'anticorps polyclonaux contre la lectine-placentaire humaine. Préparation d'anticorps polyclonaux contre la lectine placen taire hi- ine - - on a.injecté à des lapins, au temps zero, 50 Mg de lectine placentaire purifiée par chromatographie d'affinité, en adju vant complet de Freund en injection intra-dermique multi points. - la deuxième immunisation a eu lieu 15 jours plus tard avec 50 Mg de lectine en adjuvant incomplet de Freund en injection sous-cutanée. - la troisième immunisation a eu lieu 15 jours plus tard avec 50 Mg de lectine en adjuvant incomplet de Freund en injection sous-cutanée. - les saignées ont été effectuées régulièrement toutes les 3 semaines. - A -partir de ces sérums, les fractions immunoglobuliniques ont été purifiées par DEAE puis testées pour déterminer leur activité anticorps par la méthode ELISA et par immunoblot. Essai -de réponse polyclonale par la méthode ELISA - la lectine diluée dans le tamp - on NaCl JB mercaptoéthanol à la concentration de 5 pg/ml, est fixée sur une immunoplaque Nunc comportant 96 puits, à raison de 50 pl par puits pendant 1 h à 30*C. - 3 lavages en PBS 1 % lait écrémé 0, 1 % Tween (PLT). - Saturation 1 h 309 C. - 50 pl par puits des différents antisérums et à différentes dilutions (en PLT) sont distribués sur la plaque et incubés 1 h à 30" C. - 3 lavages en PLT. - 50 pl par puits de sérum chèvre anti-lapin couplé i la péroxidase dilué au 1/1000 GAR-pox. - 3 lavages en PBS. - Révélation par 100 pl de substrat ABTS à 1 % dans du tampon acétique pH 4,7 contenant 0,2 % d'H202 30 vol. - L'absorption est mesurée à une longueur d'onde de 405 nm dans un analyseur Titertek Multiskan. Les résultats obtenus sont représentés à la FiG. 6 annexée. Essai de réponse polyclonale mis en évidence par Imunoblot - On réalise une électrophorèse en SDS-PAGE qui consiste en la migration de la lectine purifiée, en présence de B mercaptoéthanoi a% raison de 8pg par puits, sur gel d'acrylamide a 15 % contenant 0,1 % de SDS. 250 volts 4 h. - On transféré ensuite sur nitrocellulose, a% 30 volts pen dant 16 h. - on réalise la saturation en PLT pendant 5 h 4 C. - Des bandes de 1 cm de large sont découpées dans la nitro- cellulose. - On fait incuber des antisérums. - On lave au PLT. - GAR-pox 1/1000 (2 ml/bande). - Lavages PBS Triton 0,1 %. - La révélation est réalisée au chloronaphtol L'immunoblot est représente à la Fig. 7 annexée qui montre que les antisérums de lapin (fractions IgG purifiées) réa gissent avec la lectine : la révélation met en évidence une bande de poids moléculaire 14 KD. Dans la Fig. 7, les schéma des incubations sont les suivants : - bande n* 1 : liquide physiologique NaCl 0,15 M, phosphate de sodium 0,01 M, pH 7,4 (PBS). - bande n* 2 : sérum normal souris au 1/50. - bande n* 3 : sérum préfusion souris anti-ELH 1/50. - bande n* 4 : sérum souris anti-ELH 1/50. M#MPLE VII - Préparation d'anticorps monoclonaux anti-lectine placentaire humaine. 1. Immunisation on a immunisé des souris femelles Balb/c en leur in jectant une fois par semaine pendant trois semaines consécu tives, par voie intra-veineuse, 100 mg de lectine purifiée. Après une période de repos de trois mois, les souris ont eu un rappel par voie intra-veineuse avec la même quantité de lectine trois jours avant le prélèvement des splénocytes pour la fusion. 2. Fusion Des cellules de myélome de souris NS 1 sont utili sées pour la fusion. Elles ont été sélectionnées pour leur sensibilité à l'aminoptérine et cultivées sur le milieu RPMI contenant 10 % de sérum de veau foetal, 2mM de glutamine, lmM de pyruvate de sodium, 100 UI/ml de pénicilline et 100 mg/ml de streptomycine. - Les splénocytes ont été dispersés par injection du milieu RPMI exempt de sérum dans la rate des souris byperim- munisées et lavés trois fois dans du milieu RPMI avant fusion. Les cellules de myélome et les splénocytes ont été ensuite fusionnés dans un rapport de une cellule de myélome pour 10 splénocytes, en présence de 41 % de polyéthylèneglycol d'un poids de 1500 (Merck) selon la méthode de KOHLER et MILSTEIN (Nature, 256, 495-497, 1975), puis lavées dans le milieu RPMI et remises en suspension dans 100 ml du milieu RPMI complet. lies cellules ont ensuite été redistribuées dans des microplaques Nunclon (24 puits par plaque) à raison de lml/puits contenant 2,2.105 cellules. Après 24 heures, on a. ajouté lml/puits de milieu constitué du milieu RPMI complet contenant 0,1 M d'hypoxanthine, 0,4 M d'aminoptérine et 16 Mm de thymidine. Des parties aliquotes de milieu sélectif ont été remplacées les 3e, 6e et 10e jours après la fusion. Après 15 jours, les hybridomes survivants ont été cultivés sur le milieu RPMI complet, complété avec de l'hypoxanthine et de la thymidine et, 15 jours après la fu sion, on a recherché la présence d'anticorps anti-lectine placentaire humaine dans les surnageants de culture. Les clo nes ont été ensuite cultivés progressivement sur le milieu RPMI complet normal. Les cultures positives ont été clonées par la métho de des dilutions limites selon 01 V.T. et HERZENBERG, L.A. 1980 Immunoglobulin-producing hybrid cell lines, in Selected Methods in Cellular Immunology" (Eds. Mishell, R.B. and Shrigi, S.M., p. 351, Fillman, San Francisco). Les cellules ont 'été redistribuées dans les puits d'une microplaque Nunclon, 'à raison de 0,5 cellule en moyenne par puits, avec'3.105 thymocytes à titre de cellules nutriti ves. Après 10 jours, les puits contenant des clones uniques ont été sélectionnés et 5 jours plus tard, les surnageants ont été testés pour déterminer la présence d'anticorps anti- levures. Trois clones issus d'une culture primaire positive, ont été sélectionnés et injectés à des souris Balb/c pour ob tenir de grandes quantités d'anticorps. A cet effet, des sou ris femelles agées Balb/c ont été stimulées par une injection intrapéritonéale de 0,3 ml de tétraméthyl -pentadé cane. Après 4 jours, 20 millions de cellules hybrides ont été injectées aux souris. Au bout de 15 jours, les fluides d'ascites ont été récoltés et leur activité anti-levure a été testée. M#MPLE VIII - Clonage de sondes oligonucléotidiques. Le clonage a été réalisé en synthétisant deux sondes oligonucléotidiques basées sur les séquences peptidiques de la lectine placentaire humaine, respectivement entre les ré sidus 48 et 56 et 70 et 82. 4 espèces moléculaires majeures ont été identifiées dans une banque génomique par la méthode d'hybridation de SOUTHERN et leur clonage réalisé. De façon plus spécifique, on réalise l'hybridation de l'ADN des cellules A4 31 digéré par EcoRI, et de l'ADN de phage X digéré par HINDIII avec la sonde P38 marquée au 32p. L'activité spécifique de la sonde P38 est de 3.105 cpm/pmole. La figure 7 représente l'hybridation de SOUTHERN réalisée dans les conditions ci-dessus. 1 : ADN de phage X: 10 mg par puits 2 : ADN A4 31 : 10 mg par puits. M#MPLE IX - Applications des anticorps polyclonaux et monoclonaux anti-lectine placentaire humaine. 1. Les anticorps polyclonaux préparés comme décrit à l'Exemple VI ci-dessus, contre la lectine placentaire humaine ont.été utilisés pour révéler la présence et la taille de la lectine placentaire dans un mélange de protéines soumis à électrophorèse en gel de polyacrylamide, suivie de transfert éle ctrophor étique sur membrane de nitrate de cellulose et d'absorption des anticorps (technique dite "d'immunoblotn), par la technique de l'immunablot, qui est réalisée comme décrit plus haut à l'Exemple VI. 2. Les anticorps polyclonaux, préparés comme décrit à VExemple VI ci-dessus, contre la lectine placentaire hu maine, ont été utilisés pour détecter la présence de lectine à la surface de certaines cellules lymphoides aussi bien nor males que tumorales. Les résultats obtenus à ce jour suggèrent que le taux de lectine exprimée 'à' la surface de cellules tumorales varie en fonction de la capacité de ces cellules d'essaimer et de former des métastases. Ces anticorps polyclonaux constituent, en conséquen ce, des agents de détection efficaces de la présence de mé tastases. 3. Les anticorps polyclonaux ou monoclonaux anti- lectine constituent, en outre, des agents de diagnostic uti les pour la détermination de la capacité mètastasique des tu meurs en utilisant l'une des techniques connues telles qu'im- munofluorescence et ELISA, notamment. 4. Les anticorps polyclonaux et monoclonaux anti- lectine constituent en outre des produits thérapeutiques de valeur, en ce qu'ils peuvent -être utilisés en tant que vec teurs pour cibler des toxines ou des enzymes sur des cellules tumorales exprimant la lectine à leur surface. Ainsi que cela ressort de ce qui précède, l'inven tion ne se limite nullement à ceux de ses modes de mise en oeuvre, de réalisation et d'application qui viennent d'être décrits de façon plus explicite ; elle en embrasse au con traire toutes les variantes qui peuvent venir 'à l'esprit du technicien en la matière, sans s'écarter du cadre, ni de la portée de la présente invention. REVEMICATIONS l*) Séquence d'amino-acides caractérisée en ce qu'elle coi#respond à au moins une partie de la séquence des lectines fixant le B-D-galactoside et en ce qu'elle comprend un squelette d'amino-acides qui est composé d'au moins les amino-acides suivants, dans les positions suivantes 2 14 16 19 23 32 sèrine lysine glycine leucine glycine phénylalanine 35 37 43 45 46 asparagine glycine leucine leucine histidine 48 49 50 51 asparagine proline arginine phénylalanine acide 56 61 63 64 70 aspartique valine asparagine serine tryptophane 71 .73 75 76 si glycine glutamine arginine glutamine phénylalanine 84 92 93 104 105 glycine thréonine phénylalanine leucine proline 106 107 112 113 acide aspartique glycine phénylalanine proline 114 asparagine. 2*) Séquence d'amino-acides selon la revendication 1, caractérisée en-ce que son squelette comprend en outre les amino-acides suivants, dans les positions suivantes : 3 5 28 53 54 asparagine valine acide aspartique alanine histidine 55 67 68 72 74 glycine glycine glycine thréonine glutamine proline 91 102 103 109 isoleucine isoleucine isoleucine acide glutamique # 132 133 isoleucine lysine V) Séquence d'amino-acides selon la revendication 1, caractérisée en ce que son squelette comprend en outre les amino-acides suivants, dans les positions suivantes : 8 10 26 27 29 30 thréonine asparagine alanine proline alanine lysine 31 32 36 38 39 40 sérine valine leucine lysine acide aspartique sérine 47 53 54 55 58 phénylalanine alanine histidine glycine asparagine 60 62 72 74 78 80 isoleucine cystéine thréonine glutamine valine proline 82 91 110 115 116 glutamine isoleucine phénylalanine arginine leucine 118 128 129 leucine glycine acide aspartique 4*) Séquence d'amino-acides selon la revendication 1, caractérisée en ce que son squelette comprend en. outre les amino-acides suivants, dans les positions suivantes : 4 6 is 20 21 22 glycine valine glutamine thréonine valine lysine acide 52 53 54 55 72 74 aspartique alanine histidine glycine thréonine glutamine 80 91 96 proline isoleucine asparagine 5") séquence d'amino-acides selon la revendication 1, caractérisée en ce que son squelette comprend en outre les amino-acides suivants, dans les positions suivantes : 28 67 68 74 79 acide aspartique glycine glycine glutamine phénylalanine 6*) Séquence d'amino-acides selon la revendication 1, caractérisée en ce que son squelette comprend en outre les amino-acides suivants, dans les positions suivantes : # 26 27 29 30 31 33 36 alanine proline alanine lysine sérine valine leucine 38 39 40 74 76 lysine acide aspartique sérine glutamine valine 79 109 110 115 116 phénylalanine glutamine phénylalanine arginine leucine 118 123 leucine tyrosine 7*) Séquence d'amino-acides selon la revendication 1, caractérisée en ce qu'elle comprend au moins les 129 amino-acides suivants, qui sont présents selon la même séquence dans la lectine de l'anguille électrique : 1 10 (SER MET) ASN GLY VAL VAL ASP GLU ARG MET SER PRE LYS ALA 20 GLY GLN ASN LEU THR VAL LYS GLY VAL PRO SER ILE ASP SER THR 30 40 ASN PHE ALA ILE ASN VAL GLY -ASN SER ALA GLU ASP LEU ALA LEU 50 RIS IL ASN PRO ARG PHE ASP ALA RIS GLY ASP GIN GLN ALA VAL 60 70 VAL VAL ASN SER PRE GIN GLY GLY ASN (TRP)GLY(THR) GLU GLN(ARG 80 GLU GLY GLY PHE PRO PHE LYÉ GIN GLY GLU ASP PHE LYS ILE GLN 90 100 ILE THR PHE ASN SER GLU GLU PHE ARG ILE ILE LEU PRO ASP GLY 110 SER GLU ILE RIS PHE PRO ASN ASN ARG TYR MET RIS GLU GLY 120 GLU ALA ARG ILE TYR-SER ILE GLU ILE LYS ... B*) Séquence d'amino-acides selon la revendication 1 caractérisée en ce qu'elle comprend au moins les acides 0 suivants, qui se présentent selon la même séquence dans la lectine de placenta humain : 1 4 6 e 10 il SER( ASN TYR VAL SER( THR( ASN -18 20 21 23 26 28 ILE GLY GLU VAL ALA PRO ASP ALA 30 31 34 35 36 40 41 42 43 LYS SER PHE VAL LEU ASN LEU GLY LYS ASP SER ASN ASN LEU CYS 45 46 48 50 51 53 54 55 56 LEU RIS PHE ASN PRO ARG PRE ASN ALA RIS GLY ASP ALA ASN THR 60 61 67 68 70 71 72 74 ILE VAL LYS ASN SER ASP GLY GLY ALA TRP GLY THR GLU GLN 78 80 81 82 83 84 85 86 87 88 ARG GLU ALA VAL PHE PRO PHE GLN PRO GLY SER VAL ALA GLU 89 90 91 92 93 94 95 96 97 100 101 102 103 VAL( ILE THR PHE ASP GLN ALA ASN LEU LEU VAL ILE ILE 104 105 107 108 109 110 111 111 113 114 115 116 118 LEU PRO ASP GLY LEU GLU PHE LYS PHE PRO ASN ARG LEU ASN LEU 119 120 121 123 125 128 130 131 132 133 GLU ALA ILF. ASN LEU MET ALA ALA ASP GLY ASP PHE LYS ILE LYS 134 135 9 ) Séquence d'amino-acides selon la revendication 7, caractérisée en ce que lesdits amino-acides entrent dans la composition des peptides suivante : (1) Asn Ser - Glu - Glu - Phe - Arg (2) Ala Gly - Gln - Asn - Leu - Thr - Val (3) Phe Asn - Ser - Glu - Glu - Phe - Arg (4) Tyr - Met - Ris - Phe - Glu - Gly - Glu - Ala - Arg (5) Glu - Gly - Gly - Phe - Pro (6) Ile - Tyr - Ser - Ile - Glu - Ile (7) Ile - Tyr - Ser - Ile - Glu - Ile - Lys (8) Phe - Asp - Ala - Ris - Gly - Asp - Gln - Gln - Ala - Val - Val - Val - Asn - Ser - Phe - Gln - Gln - Asn (9) Ile - Gln - Ile - Thr - Phe - Asn - Ser - Glu - Glu - Phe - Arg (10) Ile - Ile - Leu - Pro - Asp - Gly - Ser - Glu - Ile - Ris - Phe - Pro - Asn - Asn - Arg (11) Gly - Val - Pro - Ser - Ile - Asp - Ser - Thr - Asn - Phe - Ala - Ile - Asn - Val - Gly - Asn - Ser - Ala - Glu - Asp - Leu - Ala - Leu - Ris - Ile - Asn - Pro Arg (12) Gly(Thr) - Glu - Gln. 10*) Peptide caractérisé en ce qu'il présente la composition suivante : Asn-Ser-Glu-Glu-Phe-Arg. ll*) Peptide caractérisé en ce qu#il présente la composition suivante : Ala-Glu-Gln-Asn-Leu-Thr-Val. 12*) Peptide caractérisé en ce qu'il présente la composition suivante : Phe-Asn-Ser-Glu-Glu-Phe-Arg. 13*) Peptide caractérisé en ce qu'il présente la composition suivante : Tyr-Met-His-Phe-Glu-Gly-Glu-Ala-Arg. 14*) Peptide caractérisé en ce qu'il présente la composition suivante : Glu-Gly-Gly-Phe-Pro. 15") Peptide caractérisé en ce qu'il présente la composition suivante : Ile-Tyr-Ser-Ile-Glu-Ile. 16") Peptide caractérisé en ce qu'il présente la composition suivante : Ile-Tyr-Ser-#Ile-Glu-Ile-Lys. 17*) Peptide caractérise en ce qu'il présente la composition suivante : Phe-Asp-Ala-His-Gly-Asp-Gln-Gln-Ala Val-Val-Val-Asn-Ser-Phe-Gln-Gln-Asn. 18'o) Peptide caractérisé en ce qu'il présente la composition suivante : Ile-Gln-Ile-Thr-Phe-Asn-Ser-Glu-Glu Phe-Arg. 19*) Peptide caractérisé en ce qu'il présente la composition suivante : Ile-Ile-Leu-Pro-Asp-Gly-Ser-Glu-Ile- His-Phe-Pro-Asn-Asn-Arg. 20*) Peptide caractérisé en ce qu'il présente la composition suivante s Gly-Val-Pro-Ser-Ile-Asp-Ser-Thr-Asn Phe-Ala-Ile-Aan-Val-Gly-Aen-Ser-Ala-Glu-Asp-Leu-Ala-Leu-His- Ile-Asn-Pro-Arg. 21") Peptide caractérisé en ce qu'il présente la composition suivante : Gly(Thr)-Glu-Gln. 22*) Séquence d'amino-acides selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, caractérisée en ce qu'elle présente une.structure en feuillets plissés B et en ce que ces feuil lets sont au moins au nombre de 10, dans des positions cor respondant à des positions d'amino-acides communs aux lecti- nes de diverses origines. 230) Séquence. d'amino-acides selon l'une quelconque des revendications 1 à 9 et 22, caractérisée en ce qu'elle contient du tryptophane qui se trouve dans une position com prise -entre la position 69 et la position 76 de la séquence, ainsi que deux résidus d'acide glutamique et en ce que la ré gion 69-76 forme au moins en partie le site de fixation du B- D-galactoside. 24") Séquence d'amino-acides selon l'une quelconque des revendications 1 à 9 et 22, 23, caractérisée en ce qu'elle contient au moins deux résidus cystéine ou demi- cystine qui se trouvent en positions 44 et 62. 25*) Séquence d'amino-acides selon l'une quelconque des revendications 1 à 9 et 22 à 24, caractérisée en ce queelle comporte un peptide terminal bloqué sur l'azote, qui se compose d'une séquence Ser-Met N-acétylée. 26') Procédé de purification de lectines fixant le B-D-galactoside, à partir de tissus d'animaux vertébrés et notamment de l'anguille électrique et d'organes humains, tels que le placenta notamment, par homogénéisation et fraction nement des tissus animaux, puis isolement par chromatographie d'affinité à l'aide d'une matrice de lactosyl-Sepharose, lequel procédé est caractérisé en ce que le tanpon d'élution utilisé pour isoler les lectines est con stitué par une solution saline pH 7,2, tamponnée par du phos phate, additionnée de lactose et de 2-mercaptoëthanol. 27") Procédé de détermination des séquences OU séquençage - d'amino-acides correspondant au moins une partie de la séquence des lectines fixant le B-D-galactoside selon l'une quelconque des revendications 1 à 25, caractérisé par la mise en oeuvre d'une méthode de dégradation automatique par couplage de phénylisothiocyanate avec l'azote terminal du peptide à séquencer, clivage dudit résidu amino-terminal par cyclisation en milieu acide, et conversion du dérivé de thiazolinom formé, en un dérivé de phénylthiohydanto3Cne, laquelle méthode de dégradation est réalisée en présence de polybrène. 28*) Procédé d'obtention par voie de synthèse de séquences d'amino-acides correspondant au moins ai une partie de la séquence de lectines fixant le B-D-galactoside, caractérisé en ce que ladite synthèse est réalisée en mettant en oeuvre une méthode dérivée de la méthode de BERGMAN et ZERVAS et utilisant des groupes protecteurs pour protéger les fonctions réactives des amino-acides à coupler, et des méthodes de couplage appropriées pour coupler entre eux les amino-acides protégés, pour former les séquences recherchées selon l'une quelconque des revendications 7 à 25. 29*) Anticorps polyclonaux anti-lectine placentaire humaine, caractérisés en ce qu'ils sont essentiellement cons titués par des sérums obtenus a partir de sang d'animaux immunisés par injection de lectine purifiée par chromatographie d'affinité. 30*) Anticorps monoclonaux anti-lectine placentaire humaine, caractérisés en ce qu'ils sont constitués par des clones isolés à partir d'hybridomes obtenus par fusion de cellules tumorales appropriées, SP 2-0 ou NS-1 notamment, avec des spiénocytes de souris immunisées contre la lectine de placenta humain convenablement purifiée. 31-) Agent de diagnostic d'affections ti rales, caractérisé en ce qu'il comprend des anticorps polyclonaux selon la revendication 29 et/ou des anticorps monoclonaux selon la revendication 30. 32*) Agent thérapeutique caractérisé en ce qu'il comprend des anticorps polyclonaux selon la revendication 29 et/ou des anticorps monoclonaux selon la revendication 30, éventuellement associés a des toxines et/ou des enzymes dirigées comme la lectine.