FR 2599755 A1 19871211 FR 8608387 A 19860610 La présente invention décrit des procédés permettant de faire sécréter une glucoamylase par différentes souches de levure du genre Saccharomyces, y compris les souches industrielles qui n'ont pas la capacité dL dégrader des substrats carbonés complexes tels que l'amidon ou les dextrines. L'amidon qui est couramment utilisé comme source de carbone dans la fermentation alcoolique doit etre préalablement hydrolysé (soit chimiquement, soit enzymatiquement) dans un procédé séparé pour produire des substrats utilisables pour les levures fermentatives. I1 serait désirable donc de construire par recombinaison génétique des souches industrielles qui soient capables de synthétiser une ou plusieurs enzymes dégradant l'amidon en substrats directement assimilables par ces souches. Plus particulièrement, le but de la présente invention est de construire par recombinaison génétique une souche responsable de la fermentation brassicole capable de dégrader les dextrines résiduelles du moût afin de produire des bières à faible teneur en sucres. De même, l'enrichissement du moût en sucres fermentescibles permet de penser également à la production de bières à degré d'alcool élevé. L'utilisation d'une souche brassicole produisant une enzyme responsable de la dégradation des dextrines au cours de la fermentation alcoolique peut s'avdrer être un moyen de simplifier et de rentabiliser les procédés de fabrication. La fabrication de bières à teneur faible en sucres résiduels peut, notamment, être obtenue en ajoutant à diverses étapes du procédé de fabrication une glucoamylase (Amylo 1,6 glucosidase) d'Aspergillus niger Cette glycoamylase catalyse la libération de résidus glucose à partir des extrémités non réductrices de l'amidon ou des dextrines. Cette enzyme joue un grand rôle dans la production de sirops de glucose à partir d'amidon et dans la fabrication d'autres boissons alcoolisées. Cette glucoamylase d'Aspergillus niger est acceptée comme additif dans les industries agroalimentaires. Donc, en premier lieu, l'objet de la présente invention est l'expression de l1alpha-amyloglucosidase d'Aspergillus niger NCI22343 dans une souche de brasserie. En second lieu, un des intérêts de l'invention est que les souches de brasserie transformées possèdent l'ADN étranger intégré dans un chromosome de la levure. Lorsque l'ADN étranger est intégré dans le chromosome suivant le procédé décrit plus loin, la propriété de production de l'alpha-amyloglucosidase est stable et la souche ne diffère de la souche de départ que par ce nouveau caractère. La stabilité de l'information peut être aussi obtenue en construisant une structure d'ADN appelée minichromosome, constitué de trois éléments essentiels telomère, centromère et origine de réplication. Un autre objet de la présente invention concerne plus particulièrement un bloc fonctionnel d'ADN permettant la sécrétion de l'amyloglucosidase à partir de la levure, caractérisé par le gène de l'amyloglucosidase dépourvu de tout ou partie de ses introns une séquence d'ADN comportant les signaux assurant la trans cription du gène de l'amyloglucosidase par la levure une séquence codante contenant le signal nécessaire à l'export de l'amyloglucôsidase mature dans le milieu extracellulaire le choix s'est porté sur un système propre de sécrétion de la levure, celui de la phéromone alpha (1), d'autres systèmes pourraient être utilisés (par exemple le système de la protéine killer (2) ou celui d'une séquence signal synthétique) enfin, le bloc d'expression pourra présenter après le gène de l'amyloglucosidase une séquence de terminaison de levure, par exemple celle du gène de la phosphoglycérate kinase. De préférence, le gène de l'amyloglucosidase sera dépourvu de la totalité de ses introns (cADN). Parmi les éléments de la séquence assurant la transcription du gène de l'amyloglucosidase, il faut citer les promoteurs, notamment le promoteur de la PGK. Ce bloc fonctionnel peut être intégré dans un plasmide à réplication autonome comportant, par exemple, une origine de réplication dans la levure, par exemple l'origine de réplication du plasmide 2ss. Lorsqu'un tel plasmide est utilisé, il est intéressant qu'il s'agisse d'un plasmide navette susceptible de se répliquer dans une bactérie ; pour ce faire,il pourra comporter des éléments de réplication dans une bactérie, par exemple E. coli et un gène de sélection telle que la résistance à un antibiotique, par exemple Ampr. De façon générale, le plasmide comportera, de préférence, un gène de sélection effectif dans les levures, par exemple un gène complémentant une auxotrophie tel que ura3 , ou bien un gène conférant un phénotype dominant, par exemple la résistance au G418. Lorsque le bloc d'expression est intégré dans le génome de la souche de levure, l'intégration sera effectuée dans un site non essentiel pour la levure, par exemple le gène MFalpha1. -La constitution d'un vecteur d'intégration est connue et sera décrite en détail dans les exemples. L'invention concerne également les souches comportant un bloc d'expression selon l'invention, qu'il s'agisse de plasmide ou d'une intégration chromosomique. Parmi les souches transformées, il faut citer, en particulier, les souches de Saccharomyces, notamment S. cerevisiae et S. uvarum, en particulier les souches industrielles telles que les souches brassicoles. Enfin, l'invention concerne un procédé de préparation d 'amyloglucosidase, notamment d'alpha-amylo- glucosidase, caractérisé en ce qu'on fait fermenter sur un milieu de culture approprié une souche selon l'invention et on récupère l'enzyme dans le milieu extracellulaire. L'invention concerne, enfin, un procédé de dégradation de l'amidon ou des dextrines, caractérisé en ce qu'on fait fermenter un milieu industriel contenant de amidon ou des dextrines. Enfin, le gène de llalpha-amyloglucosidase utilisé est de préférence celui d'Aspergillus niger. En dernier lieu, inaction conjointe de l'amyloglucosidase et d'une alpha-amylase liquéfiante conduit à une synergie totale de dégradation dé l'amidon en résidus glucoses. A partir des souches industrielles telles que Saccharomyces, dans lesquelles l'informàtion génétique pour une alpha-amyloglucosidase ainsi que celle pour une endo-alphaamylase (par exemple de Bacillus licheniformis) sont intégrées ensemble dans les chromosomes de la levure, la production d'thanol peut être obtenue en utilisant comme source de carbone l'amidon. Les exemples ci-après sont destinés à illustrer d'autres caractéristiques et avantages de la présente invention et seront décrits en se référant aux figures sur lesquelles . la figure 1 représente a) la structure et la carte de restriction du gène de la glucoamylase d'Aspergillus niger, b) la structure du plasmide pTG1831, c) la structure du plasmide pTG1830, . la figure 2 représente la séquence du gène de l'amylo glucosidase d'Aspergillus niger, . la figure 3 représente la structure de M13TG1839, la figure 4 représente la structure et la construction de M13TG1843, la figure 5 reprKésente la structure et la construction de M13TG1837, . la figure 6 représente la structure et la construction de M13TG1846, . la figure 7 représente la structure et la construction de M13TG1848, . la figure 8 représente a) la structure du plasmide pTG1848, b) la structure et la construction du plasmide pTG1850, . la figure 9 représente la structure et la construction du M13TG1857, la figure 10 représente la structure du plasmide pTG1858, . la figure 11 représente la détection de la production d'amyloglucosidase par la souche TGY2sp13 pTG1858 par test I2/KI, . la figure 12 représente la structure et la construction du plasmide pTG1867, . la figure 13 représente l'hydridation des fragments de restriction EcoRI de l'ADN génomique des souches TGY2spl3b AMGB et TGY2sp13b avec l'oligonucléotide TG529 correspondant à la partie 3' du gène MFalpha1 de S. cerevisiae, la figure 14 représente l'hybridation des fragments de restriction de l'ADN génomique des souches TGY2sp13b et 2285TG2 avec soit l'oligonucléotide TG529, soit avec l'oligonucléotide TG170 EXEMPLE 1 CLONAGE DU GENE DE L'ALPHA-AMYLOGLUCOSIDASE D'ASPERGILLUS NIGER DANS LE PLASMIDE pBR322 On a complètement digéré par EcoRI et SalI, 1 rg d'ADN génomique d'Aspergillus niger NCI22343 et 0,5 iig d'ADN du plasmide pBR322, puis lié covalemment ces ADN à 1'aide de la T4 ADN ligase. On a ensuite transformé la souche Escherichia coli 1106 par les produits de ligation.La sélection des clones portant un insert correspondant au gène de l'alpha-amyloglucosidase a été réalisée après transfert des clones recombinants sur feuille de nitrocellulose suivant la méthode classique (3). Les clones recombinants ont été hybridés avec un mélange de trois oligonucléotides TG282, TG283, TG284, définis sur base des séquences déjà publiées (4). TG282 5' ATAGTTAAAGGATGGGGATGAGGGC 3' TG283 5' AGGACACGTACTACAACGGCAACCC 3' TG284 5' CTGGGTGACTGGGAAACCAGCGACG 3' Deux clones positifs ont été isolés et contiennent un fragment EcoRI-Sall différent. L'un des inserts (2,4 kb) qui hybride deux des trois oligonucléotides (TG283, TG284) correspond à la partie 5' du gène de l'amyloglucosidase. Par contre, l'autre insert (1 kb) qui hybride avec un seul des trois oligonucléotides (TG282) correspond à la région 3' du gène de l'amyloglucosidase d'Aspergillus niger (figure 2). Ces nouveaux plasmides sont appelés pTG1830 et pTGî83î (figure 1). EXEMPLE 2 CLONAGE DU cADN DE L'ALPHA-AMYLOGLUCOSIDASE D'ASPERGILLUS NIGER DANS LE BACTERIOPHAGE,LAMBDA La séquence du gène de l'amyloglucosidase ainsi que celle du cADN de l'amyloglucosidase d'Aspergillus niger (BU-1) a déjà été publiée (4a,b). ta comparaison de ces deux séquence s révèle la présence de 4 régions introniques dans le gène de l'amyloglucosidase G1 d'Aspergillus niger (BU-1) figure 2). A l'exception de l'intron D, qui présente une séquence comparable à la séquence consensus TATAAC,élément indispensable dans le mécanisme d'excision des introns chez la la levure (5), il semble qu'aucun des autres introns ne puisse être excisé par la levure in vivo. Le clonage du cADN de l'amyloglucosidase a donc été entrepris. On a purifié les ARN messagers d'Aspergillus niger NCI22343 à partir d'une culture de ce champignon sur milieu riche contenant 2 % d'amidon comme source de carbone afin de produire un cADN correspondant à l'amyloglucosidase, par transcription inverse. Les mARN extraits furent ajoutés à un mélange réactionnel contenant comme- amorce de transcription un oligonucléotide dT. La synthèse du cADN a été réalisée selon la méthode décrite par Chang et al. (6). Une banque de cADE fut préparée dans le bactériophage lambda selon Le Bouc et al. (7). L'ADN du bactériophage lambda a été empaqueté in vitro dans les particules phagiques et les phages ainsi formés ont servi à transduire la souche indicatrice Escherichia coli POP101. La banque de cADN d'Aspergillus niger NCI22343 fut criblée pour l'amyloglucosidase en utilisant comme sonde un oligonucléotide TG433 défini sur base des séquences publiées (4a): TG433 S'GGTGTAGCCATTGTCAAGCAGCCACTGCCC 3' correspondant à la séquence complémentaire de la séquence codant pour les aminoacides 163 à 172 de la protéine mature (figure 2). Cinq signaux positifs furent détectés. Deux clones sur les cinq furent confirmés par cross hybridation avec un autre oligonucléotide TG387 correspondant à la séquence complémentaire de la séquence codant pour les aminoacides 226 à 236 de la protéine mature (figure 2). TG387 5 'CAGGACGAGCCGACGGCCGTCGCGA 3' la taille des inserts de ces deux candidats est d'environ 800 pb. Après analyse par les enzymes de restriction, un des deux fragments a été recloné dans un dérivé M13 (M13mp8) afin de le séquencer. Ce nouveau vecteur est appelé M13TG1839 (figure 3). La séquence du fragment cADN du M13TG1839 codant pour les aminoacides 62 à 319 de la protéine mature s'est avérée identique à celle déjà publiée (figure 2). EXEMPLE 3 CONSTRUCTION D'UN VECTEUR D'EXPRESSION DE L'ALPHA-AMYLO GLUCOSIDASE POUR-LA LEVURE S. CEREVISIAE 1) Reconstitution de la partie 3' du gène de l'amylo glucosidase d'Aspergillus niger L'ADN du plasmide pTG1830 a été digéré par PstI et SalI de façon à libérer un fragment de 1,2 kb. De même, l1ADN du plasmide pTG1831 a été digéra par EcoRI et SalI libérant un fragment de 1 kb. Ces deux fragments ont été isoles et ligués avec 1'ADNdu M13mp8 digéré par PstI et EcoRi. On reconstitue un nouveau vecteur appelé M13TG1843 (figure 4). Ce vecteur M13TG1843 possède la partie 3' du gène de 1 'amyloglucosidase. 2) Reconstitution de la partie 5' de la région codante de l'amyloglucosidase mature d'Aspergillus niger a) Elimination de l'intron A par mutagénèse in vitro Tout d'abord, le fragment BamHI-EcoRI (2 kb) de pTG1830 contenant la partie 5' du gène de l'amyloglucosidase a été transféré dans l'ADN phagique M13TG127 entre les sites BamHI et EcoRI.Ceci a donné l'ADN simple brin M13TG1835 à partir duquel la mutagénèse in vitro a été réalisée. Un oligonucléotide TG403 (30 mer) dont la séquence est complémentaire à celles des régions flanquant l'intron A fut employé comme amorce pour la synthèse de l'ADN utilisant comme matrice le simple brin de l'ADN du M13TG1835 (figure 5). La séquence de l'oligonucléotîde TG403 est la suivante TG403 5' ACGGATAACCCGGACTACTTCTACACCT 3' Une picomole d'ADN simple brin du M13TG1835 fut hybridée avec une picomole d'oligonucléotide TG403 dont les extrémités 5' sont phosphorylées dans un mélange réactionnel qui contient 10 mM Tris pH 7,5, 10 mM MgCl2, 50 mM NaCl. Le mélange fut chauffé à 1000C pendant .3 minutes et incubé pendant 5 heure à température ambiante. Au mélange d'hybridation, 1,25 al de chaque déoxynucléotide triphosphate à 5 mM fut ajouté, afin d'obtenir une concentration finale de 500 M. 5 unités du fragment Klenow de l'ADN polymérase I furent ensuite ajoutées à une unité de T4 ADN ligase ; la réaction d'élongation fut poursuivie b température ambiante pendant deux heures. Après précipitation b l'éthanol, les produits de ligation obtenus furent digérés par l'enzyme de restriction SacI. Ceci permet d'augmenter la fréquence d'obtention des clones recombinants contenant la forme mutée. Les cellules compétentes de la souche E. coli JM103 furent transformées avec le mélange de digestion.On a analysé les plages issues de cette transformation par hybridation ADN-ADN en utilisant comme sonde l'oligonucléotide TG403 décrit précédemment marqué au 32P par kination suivant les techniques habituelles (8). Plusieurs signaux positifs ont été observés. La séquence d'ADN d'un des clones est identique à celle de l'ADN du M13TG1833 sans la séquence de l'intron A. Ce nouveau phage est appelé M13TG1837 (figure 5). b) Construction du vecteur M13TG1846 L'ADN du vecteur M13TG1837 a été digéré par BssHII et AvaII. Le fragment BssHII-AvaII de 380 pb contenant la séquence d'ADN codant pour la région NH2-terminale de l'amyloglucosidase mature d'Aspergillus niger (amino-acides 21 à 151) a été isolé (figure 2). De même, le fragment PstI-AvaII de 280 pb du M13TG1839 a été isolé. Ce fragment contient la séquence du cADN codant pour les amino-acides 151 à 256. Ces deux fragments BssHII-AvaII, AvaII-PstI avec deux oligonucléotides synthétiques TG453, TG454 destinés à reconstituer l'extrémité 5' de l'amyloglucosidase mature et permettant la lecture en phase de la séquence pre-pro de la phéromone alpha suivie de la séquence mature de l'amyloglucosidase (figure 6) sont ligués dans le M13mp8 digéré par HindIII et PstI. Ce nouveau vecteur est appelé M13TG1846 (figure 6). 3) Construction du M13TG1848 Tout d'abord, le fragment HindIII-PstI du M13TG1846 (670 pb) contenant la séquence codant pour les amino-acides 21 à 246 a été isolé. L'ADN du M13TG1843 a été digéré avec PstI et EcoRV et le fragment PstI-EcoRV de 1736 kb issu de cette digestion a été isolé et éludé d'un gel. Ce fragment contient la partie 3' du gène de l'amyloglucosidase (présence de l'intron D) codant pour les amino-acides 246.640. Le site EcoRV est situé en aval du codon stop TGA (environ 140 pb). Le site de polyadénylation est situé à environ 70 pb en amont du site EcoRV. Ces deux fragments sont ligues dans le M13TG131 digéré par HindIII et HindII. Ce nouveau vecteur est appelé M13TG1848 (figure 7). Ce nouveau vecteur a servi comme source de séquence codante d'aniyloglucosidase pour le vecteur de sécrétion décrit ci-dessous, malgré la présence du dérnier intron D. 4) Construction d'un vecteur d'expression de l'amylo glucosidase pour la levure S. cerevisiae Le plasmide de départ est le pTG848 (identique au pTG849 décrit dans la demande de brevet français nO 83 15716) à l'exception du gène ura3 dont l'orientation est inverse il est constitué des fragments suivants (figure 8a) : a) Le fragment EcoRI-HindIII d'environ 3,3 kb, en provenance du plasmide pJDB207 (9). Le site HindIII correspond à la coordonnée 105 du plasmide 2; forme B, le site EcoRI à la coordonnée 2243. Dans ce fragment le 2 est de la forme B (10). Ce fragment permet la réplication autonome du plasmide dans la levure. b) Un fragment HindIII portant le gène URA3 (11) qui permet la sélection du plasmide dans les souches ura3 sur milieu dépourvu de source de pyrimidine. c) Le grand fragment EcoRI (coordonnée O)-SalI (coordonnée 650) de pBR322 (12). Dans le site PvuII de ce fragment a été inséré le fragment EcoRI-HindIII dont les extrémités ont été préalablement rendues franches par action de la Klenow en présence des 4 désoxyribonucléotides, de 510 pb et correspondant à la fin du gène PGK (13). L'extrémité EcoRI arasée du gène PGK lorsque jointe à l'extrémité PvuII de pBR322 régénère un site EcoRi. d) Le fragment HindIII-SalI (2,15 kb) du gène PGK (13). Le fragment BglII-HindIII du M13TG1848 a été isolé et élué sur gel. Il a été ligué ensuite avec le fragment HindIII-BamHI du M13TG889 contenant la séquence pre-pro de la phéromone alpha dans les sites BglII du plasmide pTG848. On a obtenu un nouveau plasmide appelé pTG1850 (figure 8b). En résumé, le' plasmide pTG1850 possède 1) un fragment du plasmide 2 de S. cerevisiae qui permet sa réplication dans Saccharomyces 2) le gène URA3 de S. cerevisiae qui permet la sélection des cellules transformées à partir d'une souche réceptrice ura3 sur milieu dépourvu de source de pyrimidine 3) l'origine de réplication du plasmide pBR322 et le gène de résistance à l'ampicilline qui permettent la réplication du plasmide et la sélection des transformés chez E. coli 4) le promoteur et le terminateur du gène PGK de levure qui assurent respectivement l'initiation et l'arrêt de transcription du bloc d'expression de l'alpha-amylo glucosidase 5) un gène codant pour un précurseur de cette alpha-amylo glucosidase constitué des séquences pre-pro du gène de la phéromone alpha (MFalpha1) de S. cerevisiae fusionné à la séquence codant pour la partie mature de l'alpha-amylo glucosidase qui présente encore son intron D. 5) Transformation d"une- souche de laboratoire avec l1ADN du plasmide pTG1850 L'ADN plasmidique pTG1850 fut amplifié dans E. coli, purifié sur un gradient de chlorure de cesium et utilisé pour transformer la souche TGY2sp13b qui est une souche haploïde de S. cerevisiae ayant comme marqueurs auxotrophiques leucine et uracile (Matalpha, ura3-251-373-328, leu2 3-12). Suivant les techniques décrites par Ito et al. (14) les transformants ura furent testés pour l'expression du gène de l'amyloglucosidase d'Aspergillus niger. La technique est la suivante : Les clones ura ont été repiqués sur milieu solide contenant 2 % d'amidon. Après 48 heures de croissance, 5 ml de mélange aqueux iodé (I2/KI) ont été ajoutés à chaque boîte. L'amidon au contact de l'iode (I2) prend une coloration bleue. Les levures qui produisent de l'amyloglucosidase dans le milieu de culture dégradent l'amidon et il s'ensuit un halo de décoloration autour des colonies. Aucun des transformés ne sécrète de 1 'amyloglucosidase active. 6) Excision de l'intron D par mutagénèse in vitro Pour réaliser cette mutagénèse in vitro, on a hybridé un oligonucléotide TG496 dont la séquence est complémentaire de celle des régions flanquant l'intron D de l'ADN du phage M13TG1847 décrit figure 9-. Cet oligonucléotide a servi comme amorce pour la synthèse in vitro du brin complémentaire au génome du phage M13TG1847. La séquence de l'olîgonucléotide TG496 est la suivante TG496 5' TTCGTCTCTATTGTGGAAACTCACGCCGCA 3'. La méthode utilisée est identique à celle utilisée pour l'excision de l'intron A. Par contre, aucune enzyme de restriction n'a pu être utilisée pour saboter" les formes non mutées. Plusieurs signaux positifs ont été observés. L'ADN d'un des clones positifs a été séquencé. L'intron D a été correctement délété.- Ce nouveau phage est appelé M13TG1857 (figure 9). 7) Construction du plasmide pTG1858 Tout d'abord, le fragment BamHI-SphI de 670 pb du M13TG1857 a été isolé et purifié sur gel. Il a été ligué avec le grand fragment BamHI-SphI pTG1850. On reconstitue un noveau vecteur d'expression amyloglucosidase appelé pTG1858. Ce vecteur possède la région codante pour l'amyloglucosidase mature d'Aspergillus niger (figure 10) EXEMPLE 4 TRANSFORMATION D'UNE SOUCHE DE LABORATOIRE AVEC L'ADN DE pTG1858 L'ADN de pTG1858 a servi à transformer une levure TGY2spl3b (Matalpha, ura3-251-373-328, leu 2-3-18) pour ura suivant les techniques décrites (14), la présence d'alphaglucoamylase a été testée autour des colonies comme cela a été décrit ci-dessus (figure 11). Comme attendu, on a trouvé que tous les transformés avec le plasmide de pTG1858 sécrètent de l'amyloglucosidase active. De plus, la croissance des souches de levure transformées par le plasmide pTG1858 fut comparée à celle de la même souche transformée par le plasmide pTG848. Les levures transformées avec les deux plasmides croissent sur milieu minimum contenant 2 % d'amidon comme source de carbone. Cependant la souche transformée par le plasmide pTG1858 montre toujours une meilleure croissance que la souche transformée par le plasmide pTG848 sur ce milieu. EXEMPLE 5 CARACTERISATION D'UNE ACTIVITE AMYLOGLUCOSIDASE DANS LES SURNAGEANTS DE CULTURE DE LA LEVURE La quantité d'amyloglucosidase sécrétée par la souche de levure TGY2spî3b contenant le plasmide pTG1858 fut dosée. Après deux jours d'incubation dans le milieu YNBG + 0,5 % casamino acides à 300C sous une agitation de 250 RPM, la culture de TGY2spl3b contenant pTG1858 a consommé tout le glucose et fut en phase stationnaire ; la culture fut arrêtée à une densité cellulaire approximative de 2,6 x 108 cellules/ml.La mesure de la quantité d'amylo glucosidase présente dans le surnageant non concentrd indique que 360 unités par litre de surnageant d'amyloglucosidase active furent produites (une unité d'activitX amyloglucosidase correspond au relargage d'une gmole de glucose/mn à partir de 2 % d'amidon Zulkowsky dans 50 mM tampon acétate de sodium pH 4,3 à 55 C). EXEMPLE 6 CONSTRUCTION DUN PLAMIDE D'INTEGRATION POUR SACCHAROMYCES CEREVISIAE Pour ce falre, on a cloné dans le site EcoRI d'un dérivé du pUC8 (pTG1864) un fragment EcoRI (1,7 kb) correspondant à la région chromosomique portant le gène MFalphal de S. cerevisiae (1). Ce nouveau vecteur est appelé pTG1865 (figure 12). L'ADN de pTG1865 a été digéré par Hindi libérant un petit fragment d'environ 0,5 kb interne au gène MFalphal. On a inséré aux sites HindII du pTG1865 par "Blunt end" ligation le fragment SmaI-BglII du pTG1858 qui comprend la séquence du précurseur pre-pro amyloglucosidase sous contrôle du promoteur du gène de la phosphoglycérate kinase et le fragment BglII-HindIII du pTG830 qui comprend la séquence du terminateur du gène PGK après action de la polymérase Klenow sur le site HindIII. Ce nouveau vecteur est appelé pTG1867 (figure 12). La digestion de pTG1867 par EcoRI libère un fragment d'ADN de levure (4 kb) dans lequel on a intégré le bloc d'expression de l'amyloglucosidase. EXEMPLE 7 COTRANSFORMATION DE TGY2sp13b EN WE D'OBTENIR DES LEVURES SACCHAROMYCES AYANT INTEGRE LE BLOC D'EXPRESSION AMYLOGLUCOSIDASE La présence aux extrémités d'un fragment d'ADN linéaire de régions homologues-d une région du génome de levure favorise les événements de recombinaison entre la région chromosomique et le fragment linéaire. Ceci nous permet de substituer à la séquence chromosomique celle du fragment linéaire qui peut renfermer des séquences étrangères. On peut donc obtenir aussi l'intégration de séquences étrangères dans le chromosome de la levure. On a donc cotransformé la souche TGY2spl3b (Matalpha ura3-251-373-328, leu 2-3-12) par la technique habituelle (14) avec 2 g d'ADN de pFL1 (15) conférant le phénotype ura et en même temps avec 10 g d'ADN de pUC1867 préalablement coupé par EcoRI. Sur les 300 clones ura obtenus, on a testé ceux qui étaient devenus MFalpha1. En effet, la substitution au locus MFalpha1 par le fragment d'ADN linéaire entraîne une inactivation du gène MFalpha11 c'est-à-dire une perte de production du facteur alpha d1au moins 75 % (16). Le phénotype MFalpha1 est testé de la façon suivante : Un tapis de cellules FL 100 Mata (5 x 104 cellules) est étalé sur boîte YNBG + 0,5 % casamino acides. On a déposé sur ce tapis un Râté de cellules provenant des clones ura . Au bout de 48 heures, à température ambiante, on a observé la présence d'un halo d'inhibition de croissance de la souche Mata autour des souches ayant le phénotype MFalpha1. Ceci traduit le fait que la souche MFalpha1 sécrète suffisamment de phéromone alpha pour inhiber la croissance des souches Mata. Autour des souches mfalpha1 aucun halo d'inhibition de croissance n'a été observé. Sur les 300 clones ura+, on a obtenu un transformé alpha appelé TGY2sp1SbX AMGB. Ce clone produit un halo de décoloration au test I2/KI au bout de 5 jours de croissance à 300C.Donc ce clone TGY2spl3B ç AMGB produit de l'amyloglucosidase active. Ce clone exprime l1alpha-amyloglucosidase de façon stable au cours des générations. L'analyse de l'ADN génomique de la souche TGY2spl3b AMGB par Southern révèle que le bloc d'expression amyloglucosidase est intégré dans le génome au locus MFalpha1 (figure 13) et que l'intégration de ce fragment étranger a été réalisée par un processus d'échange sans intégration de séquence du vecteur pTG1864. La quantité d'amyloglucosidase sécrétée par la souche de levure TGY2spl35 AMGt3 et la souche TGY2spl3b contenant le plasmide pTG1858 a été dosée. Après 2 heures d'incubation à 300Csous agitation de 250 RPM, la souche TGY2spl3h AMGB produit environ 6 à 8 fois moins d'amyloglucosidase active que la souche TGYisp13b contenant le plasmide pTG1858. EXEMPLE 8 INTEGRATION DANS UNE SOUCHE POLYPLOIDE DE BRASSERIE SACCHAROMYCES UVARUM (2285TG2) Le lieu d'intégration du bloc d'expression de l'amyloglucosidase dans le génome de la souche de brasserie doit être choisi de manière à ne pas modifier la physiologie ni les caractéristiques de la souche 2285TG2. Le choix du site d'intégration s'est porté sur le gène MFalpha1 responsable de la synthèse du facteur alpha.Une souche de type sexuel Mata ne présente pas d'inhibition de croissance détectable lorsque mise au contact d'une souche de brasserie polyplolde. Le facteur alpha joue un rôle dans la conjugaison entre deux levures de type sexuel opposé. Dans la souche 2285TG2, l'inactivation du gène MFalpha1 ne doit pas modifier la physiologie de la souche. On a déterminé la présence de ce gène dans la souche 2285TG2 en analysant l1ADN génomique de cette souche par Southern (figure 14). Le gent MFalphal présent dans la souche 2285TG2 apparaît largement homologue d celui de la souche S. cerevisiae. Une seule différence a été décelée au niveau de la région codant pour le facteur alpha situé entre les deux sites HindlI (figure 12). Cette zone contient, suivant les souches, un nombre variable de copies de ce facteur alpha (17). La différence observée est vraisemblablement due à la présence au moins d'une copie supplémentaire dans la souche Saccharomyces uvarum.De ce fait, le bloc d'expression de l'amyloglucosidase a été inséré dans les sites Hindi du gène MFalpha1 de S. cerevisiae délimitant la région codant pour le facteur alpha. La souche 2285TG2 polyploïde et n'ayant donc aucun marqueur d'auxotrophie, la cotransformation avec le pTG1867 se fait en utilisant un plasmide conférant un phénotype dominant. On a utilisé la résistance au G418. Ce plasmide que l'on a utilisé est un dérivé du plasmide pTG861 décrit dans le brevet français nO 84 04453. Le plasmide pTG1825 ne diffère de pTG1861 que par l'absence d'un ATG hors phase qui a été délété par mutagénèse in vitro pour permettre une meilleure expression du gène de résistance au G418. On a transformé la souche 2285TG2 avec 1 g d'ADN de pTG1825 et 10 Ag de pTG1867 préalablement digéré par EcoRI par la technique dérivé de Dickson (18). La modification suivante a été réalisée : environ 15 heures après la transformation, on a ajouté une surcouche sur milieu complet (10 ml) contenant de la généticine, G418 (Difco) de façon à ce que la concentration finale de l'antibiotique soit de 300 Ag/ml dans la boîte. Sur 300 clones G418 résistants, un clone 2285TG2 AMGC produit de l'amyloglucosidase. Ce clone exprime l'alpha-amyloglucosidase de façon stable au cours des générations. L'analyse de l'ADN génomique de la souche 2285TG2 AMGC par Southern révèle que le bloc d'expression amyloglucosidase est intégré dans le génome au locus MFalpha1 . La quantité d'amyloglucosidase sécrétée par la souche brassicole a été dosée. Après 3 jours d'incubation en milieu complet YPG à 300C sous agitation à 250 RPM, la culture de 2285TG2 AMGC produit, à une densité cellulaire approximative de 4 x 107 cellules/ml, 100 U par litre de surnageant d'alpha-amyloglucosidase active. La souche suivante a été déposée à la Collection Nationale de Cultures de Microorganismes de l'institut Pasteur, 28 rue du Docteur-Roux, 75724 PARIS CEDEX 15 Saccharomyces uvarum 2285TG2 AMGC le 6 juin 1986 sous le n I-568. REFERENCES 1. broake, A.J., Merryweather, J.P., Colt, D.C., Seberlein, U.A., Mariarz, F.R., Xullenbach, C.T., Urdea, M.S., Valensuela, P. and Barr, P.J. (1984) Proc. Sati. Acad. Sci. USA 81, 4642-4646. 2. Bussey, H., Saville, D., Greene, D. et al. (1983) Moi. Cell. Biol. 3, 1362 1970. 3. Grunstein M. and Hogness, D.S. (1975) Colony hybridization : A method for the isolation of cloned DNAs that contain a specific gene. Proc. Natl. Acad. Sel. USA 72, 10, 4961-3965. 4. a) Boel, E., Hansen, M.T., Hjort, J., Boegh, I. and Fiil, N.P. (1984) Embo Journal vol. 3, 7, 1581-1585. b) Boel, E., Hjort, I., Svensson, B., Norris, F., Norris, K.E. and Fiil, N.P. (1984) Embo Journal vol. 3, 5, 1097-1102. 5. Langford, C.J. and Gallwitz, D. (1983) Cell 33, 519-527. 6. Chang, A.C.Y., Nunberg, J.H., Kaufman, R.M.J., Erlich, M.A., Schimke, R.T. and Cohen, S.N. (1978) Nature 275,'617-624. 7. Le Bouc, Y., Dreyer, D., Jaeger, F., Blnoux, M. and Sondermeyer, P. (1986) FEBS vol.196, 1, 108-112. 8. Zollet, M. J. and Smith, M.H. (1983) Meth. in Enzym. 100, 469. 9. Beggs, J. (1981) Genetic Engineering 2, 175-203. 10. Broach, J.R. (1981) in the Molecular Biology of the Yeast Saccharomyces. Life cycle and Inheritance CHS press, New York. 11. Bach, M.L., Lacroute, F. and Botstein, D. (1979) Proc. Natl. Acad. Sci. (USA) 76, 386-390. 12. Sutcliffe, J.G. (1978) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 75, 3737-3741. 13. Hitzeman, R.A., Hagie, E. F., Hayfflick, J.S, et ml. (1982) Nucleic Acide Res. 10. 7791-7808. 14. Ito, H., Pukuda, 'L., Murata, K. and Kimura, A. (1983) J. Bactertol. 153, 163 168. 15. Chevallier, M.R., Bloc, J.C. and lacroute, F. (1980) Gene 11, 11-19. 16. Kurjan, J. (1985) Molecular and Cellular Biology 5, 787-796. 17. Brake, A.S., Julius, D.S. and Thorner, J. (1983) Moiecular and cellular Biology 3, 1440-1450. 18. Webster, T.D. and Dickson, R.C. (1983) 26, 243-252. REVENDICATIONS 1) Bloc d'expression d'une amyloglucosidase dans une levure, caractérisé en ce qutil comporte : . le gène de l'amyloglucosidase dépourvu de tout ou partie de ses introns la séquence d'ADN contenant les signaux assurant la transcription du gène de l'amyloglucosidase par la levure . une séquence codante contenant le signal nécessaire à l'export de l'amyloglucosidase mature dans le milieu extracellulaire. 2) Bloc d'expression selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comporte le gène de l'amyloglucosidase dépourvu de ses introns. 3) Bloc d'expression selon l'une des revendications 1 et 2, caractérisé en ce que la séquence codante contenant le signal nécessaire à l'export de l'amyloglucosidase mature contient un signal de sécrétion choisi parmi la phéromone alpha ou bien le système de sécrétion de la protéine "killer" ou bien une séquence de sécrétion synthétique. 4) Bloc d'expression selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'il comporte, en outre, après le gène de l'amyloglucosidase, une séquence de terminaison de levure. 5) Bloc d'expression selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que la séquence d'ADN assurant la transcription du gène comporte le promoteur du gène PGK. 6) Bloc d'expression selon l'une des revendications 1 à 5, caractérisé en ce qu'il est intégré dans un plasmide comportant une origine de réplication dans les levures. 7) Bloc d'expression selon la revendication 6, caractérisé en ce que l'origine de réplication dans les levures est l'origine de réplication du plasmide 2g. 8) Bloc d'expression selon l'une des revendications 6 et 7, caractérisé en ce que le plasmide comporte, en outre, un gène de sélection. 9) Bloc d'expression selon la revendication 8, caractérisé en ce que le gène de sélection est un gène complémentant une auxotrophie. 10) Bloc d'expression selon la revendication 8, caractérisé en ce que le gène de sélection est un gène conférant un phénotype dominant. 11) Bloc d'expression selon la revendication 10, caractérisé en ce que le phénotype dominant est la résistance au G418. 12) Bloc d'expression selon l'une des revendications 1 d 6, caractérisé en ce qu'il est intégré dans le génome de la souche de levure. 13) Bloc d'expression selon la revendication 12, caractérisé en ce que l'intégration est effectuée dans le gène MFalpha1. 14) Souche de levure transformée comportant un bloc d'expression selon l'une des revendications 1 à 13. 15) Souche selon la revendication 14, caractérisée en ce qu'il s'agit d'une souche de Saccharomyces. 16) Souche selon la revendication 15, caractérisée en ce qu'il s'agit d'une souche choisie parmi S. cerevisiae et S. uvarum. 17) Procédé de production d'alpha-amyloglucosidase, caractérisé en ce qu'on fait fermenter sur un milieu de culture approprié une souche selon l'une des revendications 14 à 16 et en ce qu'on récupère l'enzyme dans le milieu extracellulaire. 18) Procédé de dégradation de l'amidon ou des dextrines, caractérisé en ce qu'on fait fermenter un milieu de fermentation contenant de l'amidon .ou des dextrines.