FR 2600894 A1 19880108 FR 8609625 A 19860702 CONJUGUES MACROMOLECULAIRES D'HEMOGLOBINE, LEUR PROCEDE DE PREPARATION ET LEURS APPLICATIONS L'invention concerne de nouveaux conjugués 5 macromoléculaires, leur procédé de préparation et leurs applications comme transporteurs d'oxygène, notamment dans le cadre des transfusions. On sait qu'il est possible d'injecter par voie intraveineuse une solution aqueuse d'hémoglobine exempte 10 de stroma et rendue isotonique du sang. Or l'un des inconvénients que présente l'hémoglobine est qu'elle ne reste pas dans le circuit sanguin mais qu'elle diffuse à l'extérieur du système vasculaire, en raison en particulier de sa petite taille. Afin de remédier à cet inconvénient, c'est à dire afin d'augmenter la persistance intravasculaire de l'hémoglobine libre dans le cadre de son utilisation comme "substitut" du sang ou de soluté de remplissage transporteur d'oxygène, plusieurs procédés ont été 20 utilisés. On a, par exemple, fixé l'hémoglobine à des macromolécules hydrosolubles dépourvues de toxicité, non antigéniques et hémocompatibles. C'est ainsi que de nombreux exemples d'hémoglo25 bines modifiées par la fixation chimique de polymères hydrosolubles montrent que le temps de séjour de l'hémoglobine dans l'organisme peut être largement augmenté. Parmi les différents polymères utilisés, les plus courants sont les polysaccharides et notamment le 30 dextrane (brevet français n' 2.328.478) l'hydroxyéthylamidon (brevet français n' 2.328.478), l'inuline (demande de brevet européen n' 43.675), et les polyalkylèneglycols et plus particulièrement le polyéthylène glycol Cependant dans tous les cas, l'hémoglobine ainsi 35 modifiée par fixation directe de ces polymères, possède des propriétés oxyphoriques mal adaptées à une utilisation en transfusion sanguine. On rappelle, en effet, qu'un substitut sanguin ne peut jouer un rôle équivalent à celui qu'assume l'hé5 moglobine intraérythrocytaire native que dans la mesure o la combinaison qu'il forme avec l'oxygène est réversible, c'est à dire qu'il est capable de fixer l'oxygène, (l'hémoglobine est alors sous forme oxygénée) mais également capable de relarguer facilement l'oxygène 10 (l'hémoglobine est alors sous forme déoxygénée). Cette propriété vis à vis de l'oxygène est caractérisée par la courbe (appelée courbe de Barcroft) qui correspond à la variation de la quantité d'oxygène retenue par unité de masse du transporteur en fonction 15 de la pression partielle de l'oxygène contenue dans l'atmosphère à laquelle l'hémoglobine est exposée. Dans le cas d'une solution aqueuse de l'hémoglobine native (concentration 15 pmoles/litre) cette variation est représentée par le tracé de référence 20 représenté sur la figure 1, représenté à pH 7.2 à 25'C. L'un des paramètres associé à cette courbe est la pression de demisaturation (P50) qui est la pression partielle de l'oxygène à laquelle il faut soumettre la solution d'hémoglobine pour qu'elle absorbe une masse 25 d'oxygène équivalant à 50 % de la quantité maximum à laquelle elle est capable de se combiner.Or dans le cas de l'hémoglobine modifiée (hémoglobine couplée à des polymères) comme indiqué ci-dessus, la courbe de la figure 1 représentant le pourcentage de l'oxygène combiné à l'hé30 moglobine sous des pressions partielles d'oxygène déterminées, subit une translation vers la gauche par rapport à la courbe correspondant à l'hémoglobine native. Ceci signifie que la pression P50 de l'hémoglo- bine modifiée est inférieure à celle de l'hémoglobine 35 native; en d'autres termes l'hémoglobine modifiée présente une affinité trop forte vis à vis de l'oxygène, ce qui a pour inconvénient que l'oxygène ne peut être restituée rapidement aux tissus irrigués. Cette modification des propriétés oxyphoriques 5 de l'hémoglobine modifiée peut s'expliquer notamment pour les raisons suivantes: - l'hémoglobine native_ subit à l'intérieur du globule rouge, l'influence du diphospho-2,3-glycérate (2,3 DPG) qui est l'effecteur naturel intraérythrocy10 taire, qui s'associe avec les amines du site allostérique de la déoxyhémoglobine, ce qui abaisse l'affinité de l'hémoglobine vis à vis de l'oxygène. Des améliorations pour remédier à cet inconvénient ont été proposées en effectuant le couplage entre 15 des polymères et de l'hémoglobine, en présence d'effecteurs temporaires (ou ligands) tels que le diphospho2,3glycérate ou l'inositol hexaphosphate et en absence totale d'oxygène (brevet français n' 83.145.45). Ces substances polyphosphatées complexent forte20 ment le site allostérique de la déoxyhémoglobine, stabilisant cette dernière, et protègent de cette façon les sites aminés qui sont essentiels pour le processus de transport de l'oxygène. Cependant ces effecteurs sont éliminés soit au 25 cours des étapes de purification des conjugués polymères de l'hémoglobine, soit dans le plasma, dans le cas-o la purification n'a pas entrainé l'élimination des effecteurs, en raison des conditions dissociatives du plasma. Pour remédier à cet inconvénient, on a proposé 30 d'avoir recours à des effecteurs permanents, par exemple en fixant du pyridoxal-5'-phosphate (Japan Kokai Tokkyo JP n' 59.104.323). On a également proposé d'utiliser des ligands avec plusieurs groupes phosphates qui, après fixation 35 sur l'hémoglobine, diminuent sensiblement son affinité pour l'oxygène. Cependant, l'un des inconvénients présentés par ces composés est que leur obtention met en oeuvre plusieurs opérations sur l'hémoglobine et en tout cas plus 5 de deux, ce qui- provoque la formation de produits de dégradation, notamment de méthémoglobine. L'invention a pour but de remédier à ces inconvénients en proposant de nouveaux conjugués macromoléculaires d'hémoglobine, dont la taille est telle que 10 leur diffusivité extravasculaire est limitée, voire annulée, qui sont protégés contre les conditions dissociatives du plasma, dont les propriétés oxyphoriques ne sont pas altérées, mais améliorées par rapport à celles de l'hémoglobine libre, et dont la préparation limite le 15 nombre d'étapes réactionnelles sur l'hémoglobine. Cet aspect a été atteint par les nouveaux conjugués macromoléculaires de l'invention. L'un des aspects de l'invention est de fournir de nouveaux conjugués macromoléculaires physiologique20 ment compatibles, et susceptibles de fixer l'oxygène réversiblement. L'un des autres aspects de l'invention est-de fournir de nouveaux conjugués macromoléculaires susceptibles de restituer l'oxygène plus facilement que l'hé25 moglobine libre. L'un des aspects de l'invention est de proposer de nouveaux conjugués macromoléculaires faciles à synthétiser à l'échelle industrielle. L'un des autres--aspects de l'invention est de 30 fournir de nouveaux conjugués macromoléculaires d'hémoglobine obtenus en mettant en oeuvre un procédé dans lequel l'hémoglobine n'est soumise qu'au plus à deux étapes, et généralement à une seule étape. L'un des autres aspects de l'invention est de 35 proposer de nouvelles solutions aqueuses contenant de nouveaux conjugués macromoléculaires d'hémoglobine susceptibles d'être utilisées comme substitut du sang, notamment dans les interventions nécessitant des transfusions ou la perfusion d'organe. L'un des autres aspects de l'invention est de fournir des solutions d'hémoglobine dont les propriétés oxyphoriques, révélées par une augmentation de la P50 in vitro par rapport à l'hémoglobine libre, demeurent stables in vivo. L'un des autres aspects de l'invention est de proposer de nouveaux composés macromoléculaires d'hémoglobine présentant à la fois une affinité modérée par rapport à l'oxygène, ainsi qu'un volume hydrodynamique élevé, entraînant au 'cours d'expériences 15 transfusionnelles, l'augmentation de la persistance intravasculaire de l'hémoglobine par suppression de l'hémoglobinurie. Les nouveaux conjugués macromoléculaires d'hémoglobine selon l'invention présentant pour l'oxygène une 20 affinité inférieure à celle de l'hémoglobine libre, sont caractérisés en ce qu'ils sont constitués - d'une part par de l'hémoglobine, laquelle peut'passer de façon réversible de la forme déoxygénée à la forme oxygénée, - d'autre part, par un polymère P hydrosoluble, non toxique, non antigénique, hémocompatible, de-masse moléculaire d'environ 1 000 à environ 500 000, de préférence d'environ 1 000 à environ 100 000 comportant des groupes polaires, de préférence des groupes hydroxyles, 30 carboxyles ou amines, lequel conjugué macromoléculaire comporte des sites Z fixés sur le polymère P et contenant au moins une charge négative portée par des groupes anioniques constitués par des sulfates, et/ou phosphates et/ou 35 carboxylates, - le polymère P relié à l'hémoglobine d'une part par l'intermédiaire d'au moins une liaison ionique établie entre l'un au moins des sites Z portés par le polymère et l'hémoglobine, et 5.d'autre part par l'intermédiaire d'au moins une liaison covalente établie, soit entre le polymère et l'hémoglobine, soit entre l'un des sites Z portés par le polymère et l'hémoglobine, - le nombre de liaisons covalentes entre le 10 polymère et l'hémoglobine étant tel que le conjugué macromoléculaire a une masse moléculaire moyenne d'environ 70 000 à environ 1 000 000, de préférence d'environ 70 000 à environ 500 000, - la relation entre la charge négative, le 15 nombre de sites et le nombre de monomères étant la suivante: - lorsque chaque site contient un groupe anionique unique constitué d'un sulfate ou d'un phosphate, il y a au moins un site tous les dix monomères du 20 polymère, - lorsque l'un au moins des sites contient au moifts deux groupes anioniques, constitués de sulfates et/ou de phosphates, il y a au moins un site pour le polymère, - lorsque chaque site contient des charges négatives provenant de carboxylates, il faut au moins deux groupes carboxylates sur un même site Z, et au moins un site Z tous les cinq monomères, - lorsque l'un au moins des sites con30 tient au moins -trois charges négatives provenant de carboxylates, il y a au moins un site pour le polymère. On a constaté qu'une condition nécessaire pour que les conjugués macromoléculaires de l'invention soient hydrosolubles, dénués de toxicité, non antigéni35 ques, et hémocompatibles est que les polymères P, sus- ceptibles d'entrer dans la constitution des sus-dits conjugués macromoléculaires soient hydrosolubles, dénués de toxicité, non antigéniques, et hémocompatibles. On a constaté que la présence sur la chaîne du 5 polymère de sites Z, porteurs de groupes anioniques qui jouent le rôle d'effecteurs permanents, augmente la pression partielle pour laquelle 50 % de l'hémoglobine en solution est oxygénée, sans que cela puisse être imputé à l'existence éventuelle de ligands libres. Ces effecteurs permanents sont tels qu'ils permettent également à l'hémoglobine de passer réversiblement de la forme déoxygénée à la forme oxygénée, avec une stabilisation plus forte de la conformation de la molécule d'hémoglobine sous forme déoxygénée, ce qui 15 entraine une diminution de l'affinité de l'hémoglobine vis à vis de l'oxygène. En d'autres termes, ces effecteurs permettent à l'hémoglobine de transporter réversiblement l'oxygène, et notamment de relarguer facilement l'oxygène dans les 20 tissus qui sont irrigués. La liaison covalente est telle qu'elle confère au conjugué macromoléculaire de l'invention une stabilité le rendant non biodégradable ou peu biodégradable en milieu plasmatique, pendant le temps durant lequel le 25 conjugué macromoléculaire doit assurer des fonctions oxyphoriques, c'est-à-dire 2 à 3 jours, ce qui supprime la diffusion extrarénale et extravasculaire de l'hémoglobine. Dans les conjugués macromoléculaires de l'inven30 tion, l'hémoglobine est reliée au polymère par au moins une liaison covalente mais au-delà d'un nombre critique de liaisons covalentes entre les polymères et l'hémoglobine, notamment quand il y a phénomène de réticulation intermoléculaire, ceci nuit aux propriétés de l'hémoglo35 bine. Ce nombre critique de liaisons covalentes correspond au fait que la masse moléculaire moyenne en poids des conjugués macromoléculaires de l'invention ne doit pas être supérieure à environ 1 000 000. La répartition de la densité de la charge négative doit être suffisante pour-pouvoir former une liaison ionique avec les amines du site allostérique de l'hémoglobine, c'est à dire le site de l'effecteur naturel intraérythrocytaire, le diphospho-2,3 glycérate. 10 On a constaté que statistiquement un groupe sulfate ou phosphate tous les dix monomères est nécessaire et suffisant; mais ce rapport peut être supérieur à 1/10. On a également constaté que lorsque l'un au 15 moins des sites contient au moins deux groupes anioni- ques constitués d'ions phosphates et/ou sulfates, un seul site suffit pour toute la chaîne polymère, ce qui n'exclut pas la possibilité d'avoir plusieurs sites sur la chaîne. En ce qui concerne la densité de charge négative dans le cas des carboxylates, il faut qu'il y ait au moins deux ions carboxylates sur le même site, et un site comportant deux ions carboxylates est nécessaire tous les cinq monomères. On a constaté que lorsqu'il y a au moins trois ions carboxylates, la densité de charge du site est telle qu'un site suffit pour la chaîne de polymère, ce qui n'exclut pas la possibilité d'avoir plusieurs sites sur la chaîne. Les polymères qui entrent dans la constitution des conjugués macromoléculaires de l'invention qui sont dégradés dans le milieu plasmatique ont une masse moléculaire moyenne en poids d'environ 1 000 à 500 000. Les polymères qui entrent dans la constitution 35 des conjugués macromoléculaires de l'invention et qui ne sont pas dégradés dans l'organisme doivent avoir une masse moléculaire moyenne en poids égale ou inférieure à environ 10 000, car au-delà de cette valeur les polymères passent difficilement la barrière rénale et s'accu5 mulent donc dans l'organisme. C'est notamment le cas des polyalkylène glycols, de la polyvinylpyrrolidone, du polyméthylacrylate ou de certains polysaccharides, qui n'étant pas biodégradables doivent présenter une masse moléculaires moyenne en 10 poids égale ou inférieure à environ 10 000. Les polymères qui entrent dans la constitution des conjugués macromoléculaires de l'invention doivent être utilisés dans une gamme de poids moléculaire dans laquelle ils sont non antigéniques. C'est ainsi que dans le cas du dextrane, son poids moléculaire doit être inférieur à environ 70 000. Selon un mode de réalisation avantageux de l'invention, les ponts salins entre les groupes NH3+ et les groupes COO internes de l'hémoglobine sont intacts 20 lorsque l'hémoglobine est sous forme déoxygénée. On désigne par ponts salins, certaines liaisons intra-moléculaires qui se forment entre des ions NH3+ et des anions COO, lorsque l'hémoglobine est sous forme déoxygénée. Les ponts salins dans les conjugués macromoléculaires de l'invention doivent de préférence êtfe intacts, car si les ions qui participent à la formation de ces ponts salins, sont engagés dans d'autres liaisons, le passage de l'hémoglobine de la forme oxygénée à la 30 forme déoxygénée se fait très difficilement et de manière incomplète. L'expression "ponts salins intacts" signifie qu'au moins 50 % des ponts salins ne sont pas altérés, et qu'avantageusement 80 à 90 %, voire 100 %, des ponts 35 salins ne sont pas altérés. Les critères permettant de vérifier si les ponts salins sont intacts sont notamment les suivants: a) Courbe d'affinité vis à vis de l'oxygène: si la courbe d'affinité vis à vis de l'oxygène (courbe 5 de Barcroft) est déplacée vers la droite par rapport à celle de l'hémoglobine libre, ceci implique que les ponts salins ne sont pas modifiés. b) Coefficient de Hill (n): ce paramètre traduit l'allure sigmoide de la courbe de 10 Barcroft et reflète le caractère plus ou moins coopératif de la fixation de l'oxygène. La valeur de n permet d'apprécier la permanence du comportement allostérique de l'hémoglobine. Dans le cas de l'hémoglobine native, ce coefficient est compris entre 2,7 et 3,0. 15 c) Effet Bohr: il consiste à déterminer le comportement oxyphorique de l'hémoglobine à différents pH, ce qui permet d'évaluer les perturbations consécutives aux différentes manipulations. Selon un autre mode de réalisation avantageux les conjugués macromoléculaires de l'invention sont choisis parmi les polysaccharides, notamment les hydroxyalkylamidons dont le groupe alkyle comporte de 2 à 4 atomes de carbone, l'inuline, le dextrane et ses 25 dérivés, notamment le dextrane aminé, l'alcool polyvinylique, la polyvinylpyrrolidone, le polyméthacrylate et ses dérivés, les polypeptides, les polyalkène glycols dans lesquels le groupe alkène comporte de 2 à 5 atomes de carbone, notamment le polyéthylène glycol et le poly30 propylène glycol. Selon un autre mode de réalisation avantageux de l'invention, Z provient de OSO 3H. Selon un autre mode de réalisation avantageux de l'invention, Z provient du pyridoxalsulfate, du disulfa35 te d'épinéphrine, du trisulfate d' épinéphrine, du disul- ll fate de norépinéphrine, du trisulfate de norépinéphrine, du disulfate de phénolphtaleine. Selon un autre mode de réalisation avantageux de l'invention, Z provient de OPO3H2. Selon un autre mode de réalisation avantageux de l'invention, Z provient du pyridoxalphosphate, de l'adénosine triphosphate, de la phosphotyrosine, de la phosphosérine, de l'inositolhéxaphosphate et ses dérivés, de l'inositol tri-, tétra-, pentaphosphate et 10 ses dérivés. Selon un autre mode de réalisation avantageux de l'invention, Z provient de r COOH 0H J 0-CH(COOH)2, COOH, O-CH2-- CH-CH 1-CH 2-COOH, 15 O-CH n CH2 COOH n variant de 1 à 4. Selon un autre mode de réalisation avantageux de 20 l'invention, Z provient d'acide polycarboxyliquç contenant d'environ 2 à environ 10 atomes de carbone sur la chaine principale, d'acide benzènecarboxylique comportant au moins deux fonctions carboxyliques, de diphospho 2,3glycérate, d'acide citrique, du propane 1, 2, 3 25 tricarboxylate ou du butane tétracarboxylate. Selon un autre mode de réalisation avantageux de l'invention Z provient de l'hydroxy-2-formyl-5-phosphosérine benzamide de formule: CHO COOH CO-NH-CH OH CH2 OPO3H2 ou du formyl-4-phosphosérine benzamide de formule: CHO -5 COOH CO-NH-CH CH2 P0O3H2 Selon un autre mode de réalisation avantageux de l'invention, le site Z comporte au moins trois groupes 10 fonctionnels qui sont tels que - l'une des fonctions est une fonction permettant d'attacher le groupe Z sur le polymère, - l'une des fonctions est une fonction sulfate, phosphate ou carboxylate susceptible d'établir une 15 liaison ionique avec une amine du site allostérique de l'hémoglobine, - l'une des fonctions est une fonction aldéhyde, carboxylique ou OH, -susceptible de former une liaison covalente avec un groupe NH2 de l'hémoglobine. La nature de la liaison qui relie Z au polymère dépend des éléments réactionnels en présence et des conditions de-réaction. Les liaisons qui unissent Z au polymère sont des liaisons éther, ester, amide ou amine. A titre d'exemple, la liaison ester est obtenue par action de H2SO04 ou H3P04 (après fixation H2S04-donne le site -OS03H et H3PO donne -OP03H2) sur le polymère; 3 3 4 2 la liaison éther est obtenue par greffage radicalaire de l'acide acrylique, ou par action d'acide chlorosucci30 nique, sur les groupes OH des polymères, la liaison amide est obtenue par réaction entre les groupes carboxylates des groupes Z et les groupes NH2 des polymères; la liaison amine- est obtenue par réaction entre les groupes aldéhydes des groupes Z et les groupes 35 NH2 des polymères, suivie d'une réduction. Cette dernière réaction peut également être effectuée simultanément à la première:amination réductive. Les liaisons covalentes entre le polymère et l'hémoglobine, sont établies entre les groupes NH2 de 5 l'hémoglobine et les groupes carboxyliques, aldéhydes ou hydroxyles qui se trouvent soit sur le polymère, soit sur les sites Z. La liaison entre le polymère et l'hémoglobine est une liaison amide, imine, amine ou carbamate. Selon un mode de réalisation de l'invention, les liaisons covalentes sont établies directement entre les groupes aldéhydes, carboxyles ou hydroxyles des polymères et les groupes NH2 de l'hémoglobine. Selon un autre mode de réalisation avantageux de 15 l'invention, les liaisons covalentes sont établies entre les groupes aldéhydes, carboxyles ou hydroxyles des groupes Z fixés sur les polymères et les groupes NH2 de l'hémoglobine. Selon un mode de réalisation particulièrement 20 avantageux de l'invention, les liaisons covalentes sont établies entre des groupes carboxyles et des groupes NH2 de l'hémoglobine. Des conjugués macromoléculaires d'hémoglobine avantageux selon l'invention sont ceux dans lesquels le 25 polymère est constitué par du dextrane, de préférence de masse moléculaire moyenne en poids d'environ 40 000, contenant de préférence environ 5,4 moles de groupes OS03H pour 10 moles de glucopyranose, les liaisons covalentes entre le polymère et l'hémoglobine résultant de 30 la liaison entre des groupes aldéhydes préalablement formés sur le dextrane, de préférence à raison d'environ 18 groupements aldéhydes pour 100 unités glucosidiques et des groupes NH2 de l'hémoglobine, Des conjugués macromoléculaires d'hémoglobine 35 avantageux selon l'invention sont ceux dans lesquels le polymère est constitué par du dextrane, de préférence de masse moléculaire moyenne en poids d'environ 10 000, contenant environ 9,8 moles de groupes OSO3H pour 10unités de glucopyranosê, les liaisons covalentes entre 5 le polymère et l'hémoglobine résultant de la liaison entre des groupes aldéhydes préalablement formés sur le dextrane, de préférence à raison d'environ 14 groupes aldéhydes pour 100 unités glucosidiques, et des groupes NH2 de l'hémoglobine, D'autres conjugués macromoléculaires d'hémoglobine avantageux selon l'invention sont ceux dans lesquels le polymère est constitué par du dextrane, de préférence de masse moléculaire moyenne en poids d'environ 6 000, contenant environ 1,7 ions sulfates pour 10 unités de glucopyranose, les liaisons covalentes entre le polymère et l'hémoglobine résultant de liaisons entre des groupes aldéhydes préalablement formés sur le dextrane, de préférence à raison d'environ 18 groupes aldéhydes pour 100 unités glucosidiques, et des groupes 20 NH2 de l'hémoglobine. D'autres conjugués macromoléculaires d'hémoglobine avantageux selon l'invention sont ceux dans lesquels le polymère est constitué par dudextrane, de préférence de masse moléculaire moyenne en poids d'envi25 ron 40 000, contenant environ 12 moles de groupes OP03H2 pour 10 moles de glucopyranose, les liaisons covalentes entre le polymère et l'hémoglobine résultant des liaisons entre des groupes aldéhydes préalablement formés sur le dextrane, de préférence à raison d'environ 18 30 groupes aldéhydes pour 100 unités glucosidiques, et des groupes NH2 de l'hémoglobine. D'autres conjugués macromoléculaires d'hémoglobine avantageux selonl'invention sont ceux dans lesquels le polymère est constitué par du dextrane aminé, 35 de préférence de masse moléculaire moyenne en poids d'environ 40 000, les liaisons ioniques étant réalisées par l'intermédiaire de groupes carboxylates de l'acide benzène hexacarboxylique fixé sur le polymère et les liaisons covalentes étant réalisées par l'intermédiaire 5 de groupes carboxyliques de l'acide hexacarboxylique non engagés dans les liaisons ioniques sus-définies et des groupes NH2 de l'hémoglobine. D'autres conjugués macromoléculaires d'hémoglobine avantageux selon l'invention sont ceux dans les10 quels le polymère est constitué par du dextrane polycarboxylé, de préférence de masse moléculaire moyenne en poids d'environ 40 000, contenant en moyenne environ une chaîne de diacide carboxylique par monomère, les liaisons covalentes étant réalisées par l'intermédiaire 15 de groupes carboxyliques non engagés dans la liaison ionique avec l'hémoglobine et des groupes NH2 de l'hémoglobine. Pour préparer les conjugués macromoléculaires d'hémoglobine de l'invention, on peut - dans une première étape fixer les groupes Z sur le polymère * soit, en transformant préalablement le polymère P en polyol, si besoin est, puis en fixant les groupes Z par des méthodes connues en soi, * soit en utilisant un composé Z-Y dans lequel Y est une fonction active ou activable telle que aldéhyde, carboxylique, amine, hydroxyle, halogène, par exemple chlore, à l'aide d'un réactif approprié, * soit en effectuant un greffage radio30 chimique des groupes Z sur le polymère P, - puis dans une deuxième étape, on fait réagir le polymère P comportant des groupes Z sur l'hémoglobine dans des conditions telles que l'hémoglobine ne subisse pas de dénaturation, en milieu aqueux de pH compris 35 d'environ 5 à environ 9, pour former simultanément des liaisons covalentes et des liaisons ioniques entre le polymère et l'hémoglobine. La première étape de préparation des conjugués macromoléculaires de l'invention et qui consiste à fixer 5 des groupes Z sur le polymère, peut être effectuée par des méthodes connuesr par exemple sulfatation, phosphorylation ou carboxyméthylation du polymère P sous forme de polyol. Dans le cas o le polymère P n'est pas un polyol, il est nécessaire de le transformer préalablement 10 en polyol. La première étape de préparation des conjugués macromoléculaires de l'invention peut également être effectuée en utilisant des composés du type Z-Y dans lesquels Y est une fonction aldéhyde, darboxylique, 15 amine, hydroxyle ou halogène. Ces composés Z-Y peuvent être utilisés en ayant recours à des techniques chimiques classiques; on peut par exemple fixer de l'acide penta ou- héxacarboxylique, de l'acide diphosphoro-2,3 glycérique, du pyridoxal-5'-phosphate sur un polymère 20 préalablement polyaminé. Dans ce cas, il est impératif d'éliminer toute trace du composé Z-Y, par exemple par dessalage sur une colonne de filtration sur gel. En effet, il faut éviter la présence de composé Z-Y qui n'aurait pas réagi et 25 qui, même en faible concentration avec les conjugués macromoléculaires de l'invention peut fausser- les conclusions relatives aux propriétés des conjugués de l'invention. On peut également avoir recours à toute autre 30 méthode permettant de fixer des chaînes polyanioniques sur un polymère, tel qu'une méthode de greffage radiochimique. La seconde étape mentionnée ci-dessus est une étape de réaction entre le polymère et l'hémoglobine et 35 peut, si nécessaire, être éventuellement précédée d'une phase d'activation du polymère avant que le polymère ne soit mis à réagir avec l'hémoglobine; mais cette activation peut être pratiquement simultanée avec la réaction entre le polymère et l'hémoglobine. Au cours de la seconde étape, le polymère réagit avec l'hémoglobine et d'une part les liaisons ioniques entre les sites Z du polymère et l'hémoglobine et d'autre part les liaisons covalentes entre le polymère et l'hémoglobine se forment. Dans cette seconde étape, * soit les fonctions carboxyle, aldéhyde ou hydroxyle des sites Z, sont mises en jeu, * soit les fonctions carboxyle, aldéhyde ou hydroxyle du polymère sont mises en jeu. Dans le cas o ce sont des groupes carboxyles qui sont mis en jeu avec des groupes NH2 de l'hémoglobine, on peut utiliser pour activer les groupes carboxyles les réactifs classiquement utilisés dans la synthèse peptidique, tels que les carbodiimides hydroso20 lubles, notamment le chlorhydrate de N'-éthyl-N-(3diméthyl-aminopropyl)carbodiimide (EDCI), la N.hydroxysuccinimide, ou l'éthoxy-2-quinoline-1-carbox-ylate d'éthyle (EEDQ). La liaison obtenue est alors une liaison amide. 25 Dans le cas o ce sont les groupes aldéhyde qui sont mis en jeu avec des groupes NH2 de l'hémoglobine, on peut par exemple avoir recours à l'amination réductive. L'amination réductive d'un aldéhyde consiste à 30 former une imine par l'action d'une amine, et à réduire simultanément l'imine en amine à l'aide d'un réducteur tel que NaBH4, NaCNBH3, le diméthylaminoborane ou HCOOH. La liaison obtenue est alors une liaison amine. Dans le cas o ce sont des groupes aldéhydes qui 35 sont mis en jeu avec des groupes NH2 de l'hémoglobine, on peut également opérer dans des conditions telles que la liaison obtenue soit une liaison imine, laquelle doit ensuite être stabilisée en amine par réduction avec un réducteur doux, tel que l'un de ceux mentionnés ci-dessus. Lorsque ni les groupes Z, ni le polymère P ne comportent de groupes aldéhydes, ou de groupes carboxyliques, mais qu'ils renferment des groupes hydroxyles dont certains sont sur des carbones adjacents, on peut 10 former des groupes aldéhydes, sur le polymère P par exemple par oxydation périodique de ce dernier, notamment à l'aide de NaIO4. La liaison obtenue entre ces groupes aldéhydes et les amines de l'hémoglobine est alors une liaison 15 imine, laquelle doit être stabilisée en amine par réduction, par exemple avec NaBH4. Lorsque ni les sites Z, ni le polymère P ne comportent de groupes aldéhydes ou carboxyliques, le polymère comportant des groupes OH peut être mis en jeu 20 sur des groupes NH2 de l'hémoglobine à l'aide d'un réactif approprié tel que le bromure de cyanogène ou le carbonyldiimidazole. Dans ce cas, la liaison obtenue est une liaison carbamate O II -O-C-NH25 Les conjugués macromoléculaires d'hémoglobine dans lesquels les liaisons covalentes entre le polymère sont des liaisons imines ne sont pas stables dans l'or- -ganisme, c'est pourquoi il convient de stabiliser la fonction imine en amine, par exemple par réduction par 30 NaBH4, NaCNBH3, ou le diméthylaminoborane. Les conjugués macromoléculaires d'hémoglobine dans lesquels les liaisons covalentes sont des liaisons imines sont des composés intermédiaires nouveaux, qui peuvent être utilisés comme réactifs, notamment in 35 vitro. Dans le cas o il est nécessaire de stabiliser les liaisons covalentes, l'hémoglobine n'est en tout cas pas soumise à plus de deux étapes de réaction, et dans les autres cas, qu'il y ait activation ou non du polymè5 re P, l'hémoglobine est soumise à une seule étape de réaction, ce qui est particulièrement avantageux car le nombre limité d'étapes de réaction sur l'hémoglobine (au plus égal à deux) est l'une des conditions essentielles pour que, en plus du rendement de la réaction, l'hémo10 globine ne soit pas dénaturée. Au cours de la deuxième étape, il est en effet essentiel que l'hémoglobine ne subisse au cours de la formation du conjugué macromoléculaire de l'invention ni dénaturation importante, ni réduction sensible de la mo15 bilité relative des diverses entités qui la constituent afin de conserver, au moins en partie, ses propriétés oxyphoriques. La deuxième étape de réaction a lieu en milieu aqueux, tamponné ou non, à un pH d'environ 5 à environ 20 9, éventuellement en présence d'un activateur comme indiqué ci-deqsus, en l'absence d'oxygène, pendant une durée suffisante et de préférence inférieure à celle à partir de laquelle il y a apparition de formation importante de methémoglobine (supérieure à environ 5 %), à 25 une température assurant une conservation correcte de l'hémoglobine. Le milieu aqueux est tamponné par des tampons classiquement utilisés, pour stabiliser le pH à la valeur souhaitée. La durée de réaction est d'environ 30 mn à environ 20 h, et avantageusement d'environ 1 h à environ 8 h, à une température d'environ 3 à environ 30'C. La durée de la réaction dépend notamment de la température à laquelle on travaille. L'hémoglobine utilisée est sous forme désoxygé- née, et on utilise avantageusement une solution d'hémo-globine à 9 %. Le rapport des concentrations molaires entre le polymère et l'hémoglobine doit en outre être tel que la 5 plus grande partie des molécules d'hémoglobine soit liée de façon covalente avec le polymère polyanionique. A titre d'exemple, on peut indiquer qu'en faisant réagir, à une température d'environ 3 à 30'C, en solution dans un milieu aqueux à pH voisin de 6,5, un 10 mélange de polymère dextrane, dont la masse moléculaire moyenne en poids est d'environ 10 000 à environ 40 000, et d'hémoglobine dans lequel le rapport des concentrations molaires entre le dextrane et l'hémoglobine est d'environ 0,5. à environ 2, on obtient des conjugués 15 macromoléculaires de l'invention, dont l'examen chromatographique, par exemple par permeation sur gel montre qu'il n'y a plus d'hémoglobine libre. Les conjugués macromoléculaires de l'invention présentent l'avantage d'être synthétisés facilement, 20 sans formation ou presque de methémoglobine,(inférieure à environ 5 %) et de n'impliquer qu'un nombre limité de réactions sur l'hémoglobine, ce qui évite sa dénaturation. Par ailleurs, les conjugués macromoléculaires de 25 l'invention ne renferment pas d'effecteurs de petite masse moléculaire, non liés, qui entraînent dans les expériences in vitro une augmentation de la P50, mais qui peuvent être facilement éliminés par diffusion extrarénale ou extravasculaire au cours des essais in vivo, et 30 dont l'effet s'annule rapidement. Les conjugués macromoléculaires de l'invention présentent l'avantage de n'avoir pour l'oxygène qu'une affinité modérée, et d'avoir un volume hydrodynamique élevé, ce qui pendant les opérations transfusionnelles 35 augmente la persistance intravasculaire de l'hémoglobine par suppression de l'hémoglobinurie. Les conjugués d'hémoglobine liés irréversiblement à des polymères polyanioniques préparés selon l'invention peuvent, lorsqu'ils sont dissous dans des 5 solutions aqueuses de composition convenable, jouer le rôle de substituts du sang, notamment dans des interventions nécessitant des transfusions ou la perfusion d'organe. L'invention vise par conséquent, également les 10 solutions aqueuses renfermant les conjugués décrits ci-dessus et notamment les solutions rendues isotoniques du sang, par dialyse prolongée contre une solution de Tyrode ( de composition NaCl 0,8 g/l; KCl 0,2 g/l; CaCl2 0,2 g/l; MgCl2 0,1 g/l; NaH2PO4 0,05 g/l; NaHCO3 1 g/l; D.glucose 1 g/l) par exemple et concentration par ultrafiltration jusqu'à obtenir pour l'hémoglobine, une concentration d'environ 7 %. Des préparations de conjugués macromoléculaires d'hémoglobine obtenus selon l'invention, ont été exami20 nées en tant que transporteurs d'oxygène potentiels. On a pu montrer qu'elles sont effectivement capables de fixer l'oxygène réversiblement et en particulier de le restituer plus facilement que l'hémoglobine libre ainsi que l'illustrent les courbes d'affinité pour l'oxygène 25 des produits décrits dans les exemples 1, 3 et 5 ciaprès et représentés sur la figure 5 qui sera commentée ci-dessous. Il apparait en effet, que ces préparations sont caractérisées par des pressions de demi-saturation (P50) qui peuvent être très élevées (de 900 à 5 000 Pa) 30 alors que dans les mêmes conditions (NaCl 0.05 M, pH 7, 'C) celle de l'hémoglobine native est égale à environ 480 Pa. Ainsi ces composés peuvent être utilisés pour fournir à des tissus ischémiés des quantités d'oxygène 35 importantes. Ils peuvent également être utilisés en transfusion et être administrés à des patients, sous forme d'une solution aqueuse rendue isotonique du sang, en présence ou non d'excipients. Les composés peuvent aussi être lyophilisés en présence ou non d'un cryo5 protecteur ou atomisés, et être redissous dans l'eau avant utilisation. L'invention sera mieux comprise à l'aide des exemples qui suivent ci-après donnés à titre non limitatif. EXEMPLE 1: Synthèse d'un conjugué covalent d'hémoglobine et de sulfate de dextrane (masse moléculaire du dextrane: 000). On prépare du sulfate sodique de dextrane con15 tenant 8 % de soufre (soit environ 5,4 moles d'ions sulfates pour 10 moles de glucopyranose) à partir de dextrane dont la masse moléculaire moyenne en poids est de 40 000 (Pharmacia, - Uppsala, Suède), comme indiqué dans C.R. RICKETTS. Biochem. J. 1952, 51, 129. L'activation de ce sulfate de dextrane est réalisée par oxydation périodique comme indiqué dans E. DELLACHERIE et al., Biochem. Biophys. Acta 1983, 749, 106. La quantité de NaIO4 utilisée est telle que le sulfate de dextrane dialdéhyde contient environ 18 25 groupements aldéhydiques pour 100 unités glucopyranoses. Ce composé est dialysé longuement contre de l'eau, puis lyophilisé et gardé au froid, sous vide. On dissout 10 g de ce sulfate de dextrane dialdéhyde dans 100 ml d'une solution de NaCl à 20% et 30 la solution est désoxygénée en boite à gants, mise sous vide, puis on effectue un balayage de l'azote, cette opération étant répétée 3 fois. On ajoute 120 ml d'une solution d'hémoglobine à 9%, désoxygénée par le même procédé et on ajuste le pH du mélange résultant à 7,5 35 par additon de soude O,1N désoxygénée. On maintient la solution à 25' C sans agitation et on poursuit la réaction durant 6 heures. On ajoute alors 3,5 ml d'une solution extemporanée de 200 mg de NaBH4 dans 5 ml de NaOH 10-3N. On lais5 se la réaction se poursuivre pendant 1 h puis on abaisse le pH à 7 pour détruire l'excès de réducteur. L'examen du chromatogramme obtenu en filtration sur gel sur une colonne de type TSK. SW 3000 Beckman (zone d'exclusion 300 000 daltons) montre qu'il reste 10 très peu d'hémoglobine non liée. On peut se reporter à la figure 2, sur laquelle on a représenté la variation de la densité optique en fonction du volume d'élution, et qui montre que le pic correspondant à l'hémoglobine non liée est de très faible amplitude. La courbe d'affinité pour l'oxygène de ce conjugué de l'invention est représentée sur la figure 5. La P50 est de 850 Pa. (25 C, NaCl 0,05 M, pH 7) Le taux de méthémoglobine est de 5 %. On mesure ce taux comme indiqué dans EVELYN K.A. et MALLOY H.I., 20 J. Biol. Chem. 1938, 126, 655. EXEMPLE 2: Synthèse d'un conjugué covalent d'hémoglobine et de sulfate de dextrane. (Masse moléculaire du dextrane = 10 000) On réalise la réaction entre de la déoxyhémoglobine et du sulfate sodique de dextrane dialdéhyde préparé selon la méthode décrite dans l'exemple 1 à partir de dextrane dont le poids moléculaire est de 000, et contenant 12 % de soufre (soit 9,8 ions 30 sulfates pour 10 unités glucopyranoses) et 14 groupes aldéhydiques pour 100 unités glucosidiques. Pendant 7 heures à 25' C et en l'absence totale d'oxygène,on fait réagir 10 g de sulfate de dextrane dialdéhyde et 120 ml d'une solution de déoxyhémoglobine 35 à 9 % (mêmes conditions que pour la réaction décrite dans l'exemple 1), et toute l'hémoglobine est liée au polymère et la P50 du conjugué est de 1060 Pa (25' C, NaCl 0,05 M, pH 7). EXEMPLE 3: Synthèse d'un conjugué covalent d'hémoglo5 bine et de sulfate de dextrane. (Masse moléculaire du dextrane = 6000). On réalise la réaction entre de la déoxyhémoglobine et du sulfate sodique de dextranè dialdéhyde préparé selon la méthode décrite dans l'exemple 1 à 10 partir de dextrane dont la masse moléculaire est de 6000, et contenant 3 % de soufre (soit 1,7 ions sulfates pour 10 unités glucopyranoses) et 18 groupes aldéhydiques pour 100 unités glucosidiques. Pendant 6 heures à ' C et en l'absence totale d'oxygène on fait réagir 10 g de sulfate de dextrane dialdéhyde et 120 ml d'une solution de déoxyhémoglobine à 9 % (mêmes conditions que pour la réaction décrite dans l'exemple 1), et toute l'hémoglobine est liée au polymère et la P50 du conjugué est de 602 Pa (25' C, NaCl 0,05 M, pH7). EXEMPLE 4: Synthèse d'un conjugué covalent d'hémoglobine et de phosphate de dextrane. (masse moléculaire du dextrane = 40 000) On prépare du phosphate sodique de dextrane contenant 12 % de phosphore (soit environ 12 moles 25 d'ions phosphates pour 10 moles de glucopyranose) à partir de dextrane de poids moléculaire = 40 000-comme indiqué dans G. DAUL et al, Industrial and Engineering Chemistry, 1954, 46, 1042. On réalise l'activation de ce phosphate de 30 dextrane par oxydation périodique comme cela est décrit dans l'exemple 1 de façon à créer environ 18 groupements aldéhydiques pour 100 unités glucosidiques. On met à réagir ce phosphate de dextrane dialdéhyde avec la déoxyhémoglobine dans des proportions 35 et des conditions tout à fait identiques à celles décrites dans l'exemple 1. Après 6 heures de réaction, puis réduction par NaBH4 comme indiqué à l'exemple 1, toute l'hémoglobine est liée. La courbe d'affinité pour l'oxygène de ce conjugué est représentée à la figure 5. La P50 du conjugué est de 1240 Pa (25' C, NaCl 0,05 M, pH 7). Le taux de méthémoglobine est de l'ordre de 4 %. EXEMPLE 5: Synthèse d'un conjugué covalent d'hémoglobine et de 10 polycarboxylate de dextrane. (masse moléculaire du dextrane = 40 000) (1ère méthode) Du dextrane aminé contenant 5.10-4 moles de NH2 par g de produit sec (soit 8 moles de NH2 pour 100 moles 15 de glucopyranose) est préparé selon P. HUBERT et al, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1978, 75, 3143, par action de l'ammoniaque sur du dextrane activé à l'épichlorhydrine. 1 g de ce dextrane aminé est dissous dans 20 ml d'eau et le pH est ajusté à 6,5 avec HCl 0.1N. On ajoute 20 ensuite 1,7 g d'acide benzène hexacarboxylique, puis 1 g de chlorhydrate de N'-éthyl-N-(3-diméthylaminopropyl) carbodiimide (EDCI). Le pH est ramené à 6,5 et la réaction est poursuivie pendant 3 jours à 20' C. Après dialyse contre une solution d'acétate de sodium 0,5 M, 25 le mélange est traité à l'anhydride acétique pour * bloquer les fonctions amines non substituées du dextrane. La solution est alors épurée des contaminants de petite masse moléculaire par dessalage sur une colonne d'Ultrogel AcA 202 (IBF-France) avec un tampon phosphate 30 0,2 M, pH 7,2. Après une dialyse prolongée contre de l'eau, la solution contenant le polymère polyanionique est lyophilisée. Le composé est conservé au froid sous vide. 0,5 g de ce polycarboxylate de dextrane sont 35 dissous dans 25 ml de NaCl aqueux 0,05 M. On amène le pH à 6,5 avec de la soude 0,1 N et on désoxygène la solution comme il est indiqué dans l'exemple 1. On ajoute alors 15 ml d'une solution d'hémoglobine à 10 %, désoxygénée dans les mêmes conditions. Au mélange 5 maintenu en boite à gants, sous balayage d'azote, on ajoute ensuite 60 mg d'EDCI et la réaction est poursuivie pendant 10 heures à 20 C. On vérifie qu'il n'y a plus d'hémoglobine libre sur le chromatogramme obtenu sur une colonne d'Ultrogel AcA 34. (IBFFrance). 10 On peut se reporter à la figure 3, sur laquelle on a représenté la variation de la densité optique en fonction du volume d'élution, et qui montre que le pic correspondant à l'hémoglobine non liée est de faible amplitude. La P50 du conjugué est de 1360 Pa (25'C, 15 NaCl 0,05 M, pH 7). EXEMPLE 6: Synthèse d'un conjugué covalent d'hémoglobine et de polycarboxylate de dextrane. (masse moléculaire du dextrane: 40 000) 20 2ème méthode: Du polycarboxylate de dextrane, contenant des chaînes oligomères d'acide polyacrylique, est préparé en créant le long de la chaîne polysaccharidique des radicaux sur lesquels est initiée en milieu aqueux 25 l'oligomérisation d'acide acrylique. Ce polycarboxylate sodique de dextrane est purifié par dialyse prolongée contre de l'eau, puis lyophilisé. 1 g de ce polycarboxylate sodique de dextrane contenant en moyenne un chaînon de diacide carboxylique 30 par unité glucosidique, est mis à réagir avec la déoxyhémoglobine dans des conditions tout à fait identiques à celles qui sont décrites dans l'exemple 5. La réaction est arrêtée au bout de 4 heures et le mélange est chromatographié sur une colonne Ultrogel 35 AcA 34 (IBF-France) ce qui permet de vérifier qu'il n'y a plus d'hémoglobine libre. On peut se reporter à la figure 4, sur laquelle on a représenté la variation de la densité optique en fonction du volume d'élution, et qui montre que le pic correspondant à l'hémoglobine non liée est de faible amplitude. La courbe d'affinité pour l'oxygène de ce conjugué est représentée sur la figure 5. La P50 est de 5500 Pa. (25' C, NaCI 0,05 M, pH7). Essais de toxicité aiquë sur animaux: Les différents polymères polyanioniques décrits dans les exemples ont été injectés à des souris de souche SWISS dans les conditions suivantes: les polymères sont dissous dans de l'eau distillée à une concentration comprise entre 2,5 g et 5 g/l et le pH est ajusté à 7,4. 15 0,5 ml de chaque solution sont alors injectés par voie intrapéritonéale à 5 souris, dont le comportement est ensuite observé pendant une période de 7 jours. Ces essais n'ont permis de déceler aucun symptôme de toxicité aiguë. REVENDICATIONS 1. Conjugué macromoléculaire hydrosoluble d'hémoglobine, non biodégradable ou peu biodégradable, pendant le temps durant lequel le conjugué macromoléculaire 5 doit assurer des fonctions oxyphoriques dans le plasma, présentant pour l'oxygène une affinité inférieure à celle de l'hémoglobine libre, caractérisé en ce qu'il est constitué: - d'une part par de l'hémoglobine, laquelle peut 10 passer de façon réversible de la forme déoxygénée à la forme oxygénée, - d'autre part par un polymère P hydrosoluble, non toxique, non antigénique, hémocompatible, de masse moléculaire d'environ I 000 à environ 500 000, de 15 préférence d'environ 1 000 à environ 100 000, comportant des groupes polaires, de préférence des groupes hydroxyles, carboxyles ou amines, - lequel conjugué macromoléculaire comporte des sites Z attachés sur le polymère P et contenant au moins 20 une charge négative portée par des groupes, sulfates et/ou phosphates et/ou carboxylates, - le polymère P étant relié à l'hémoglobine d'une part par l'intermédiaire d'au moins une liaison ionique établie entre l'un au moins des sites Z 25 portés par le polymère et l'hémoglobine, et * d'autre part par l'intermédiare d'au moins une liaison covalente établie, soit entre le polymère et l'hémoglobine, soit entre l'un au moins des sites Z portés par le polymère et l'hémoglobine, le nombre de liaisons covalentes entre le polymère et l'hémoglobine étant tel que le conjugué macromoléculaire a une masse moléculaire moyenne d'environ 70 000 à environ 1 000 000, de préférence d'environ 70 000 à environ 500 000, - la relation entre la charge négative, le nombre de sites et le nombre de monomères étant la suivante: lorsque chaque site contient un groupe anionique unique constitué d'un sulfaLe ou d'un phosphate, 5 il y a au moins un site tous les dix monomères du polymère, lorsque l'un au moins des sites contient au moins deux groupes anioniques, constitués de sulfates et/ou de phosphates, il y a au moins un site pour le po10 lymère, lorsque chaque site contient des charges négatives provenant de carboxylates, il faut au moins deux groupes carboxylates sur un même site Z, et au moins un site Z tous les cinq.monomères, 15. lorsque l'un au moins des sites contient au moins trois charges négatives provenant de carboxylates, il y a au moins un site pour le polymère. 2. Conjugué macromoléculaire selon la revendication, caractérisé en ce que les ponts salins entre les 20 groupes NH3+ et les groupes COO internes de l'hémoglobine sont intacts lorsque l'hémoglobine est sous forme déoxygénée, 3. Conjugué macromoléculaire selon la revendication 1, caractérisé en ce que le polymère P est choisi 25 parmi les polysaccharides, notamment les hydroxyalkylamidons dont la radical alkyle comporte de 2 à 4 atomes de carbone, l'inuline, le dextrane et ses dérivés, notamment le dextrane aminé, l'alcool polyvinylique, la polyvinylpyrrolidone, le polyméthacrylate et ses déri30 vés, les polypeptides, les polyalkène glycols dans lesquels le groupe alkène comporte de 2 à 5 atomes de carbone, notamment le polyéthylène glycol et le polypropylène glycol. 4. Conjugué macromoléculaire selon la revendica35 tion 1, caractérisé en ce que le polymère P a une masse moléculaire moyenne inférieure ou égale à 70 000, lorsqu'il est constitué par le dextrane et ses dérivés, et une masse moléculaire inférieure ou égale à 10 000 lorsqu'il est choisi parmi les polyalkylène glycols, la polyvinylpyrrolidone ou le polyméthylacrylate. 5. Conjugué macromoléculaire selon la revendication 1, caractérisé en ce que le site Z est relié au polymère par l'intermédiaire d'une fonction ester, éther, amide ou amine. 6. Conjugué macromoléculaire selon la revendication 1, caractérisé en ce que le site Z provient de OS03H, OPO3H2, O-CH(COOH)2, -O-CH(COOH)-CH2-COOH, O-CH2- CH-CH2 n-CH2-COOH, n variant de 1 à environ 4, 0OOH j ou provient du pyridoxalsulfate, du pyridoxalphosphate, de l'adénosine triphosphate, de la phosphotyrosine, de la phosphosérine, de l'inositolhéxaphosphate et ses dérivés, d'acide polycarboxylique contenant de 2 à 10 atomes de carbone sur la chaîne principale, de l'acide 20 benzènecarboxylique comportant au moins trois fonctions carboxyliques, du 2,3 diphosphoglycérate. 7. Conjugué macromoléculaire selon la revendication 1, caractérisé en ce que l'hémoglobine est liée de façon covalente au poIymère par l'intermédiaire de 25 liaisons établies d'une part entre des groupes aldéhydes, des -groupes carboxyles, ou des groupes OH et d'autre part des groupes NH2 de l'hémoglobine. :- - 8. Conjugué macromoléculaire selon la revendication 1, caractérisé en ce que les liaisons covalentes 30 entre le polymère et l'hémoglobine sont établies directement entre des groupes aldéhydes, des groupes carboxyles ou des groupes OH portés par le polymère et des groupes NH2 de l'hémoglobine, ou à partir des groupes aldéhydes, carboxyles ou hydroxyles provenant des sites 35 Z fixés sur le polymère et des groupes NH2 de l'hémo- globine. 9. Conjugué macromoléculaire selon la revendication 1, caractérisé en ce que le site Z comporte au moins trois groupes fonctionnels qui sont tels que - l'une des fonctions est une fonction permettant de-fixer le site Z sur le polymère, - l'une des fonctions est une fonction sulfate, phosphate ou carboxylate susceptible d'établir une liaison ionique avec une amine du site allostérique de 10 l'hémoglobine, l'une des fonctions est une fonction aldéhyde, carboxyle ou OH susceptible de former une liaison covalente avec un groupe NH2 de l'hémoglobine. 10. Conjugué macromoléculaire selon la revendi15 cation 1, caractérisé en ce que le polymère est constitué par du dextrane, de préférence de masse moléculaire moyenne en poids d'environ 40 000, contenant de préférence environ 5,4 moles de groupes OSO3H pour 10 moles de glucopyranose, les liaisons covalentes entre le 20 polymère et l'hémoglobine résultant de la liaison entre des groupes aldéhydes préalablement formés sur le dextrane, de préférence à raison d'environ 18 groupements aldéhydes pour 100 unités glucosidiques et des groupes NH2 de l'hémoglobine. 11. Conjugué macromoléculaire selon la revendication 1, caractérisé en ce que le polymère est constitué par du dextrane, de préférence de masse moléculaire moyenne en poids d'environ 10 000, contenant environ 9,8 moles de groupes OSO3H pour 10 unités de glucopyranose, 30 les liaisons covalentes entre le polymère et l'hémoglobine résultant de la liaison entre des groupes aldéhydes préalablement formés sur le dextrane, de préférence à raison d'environ 14 groupes aldéhydes pour 100 unités glucosidiques, et des groupes NH2 de l'hémoglobine. 12. Conjugué macromoléculaire selon la revendi- cation- 1, caractérisé en ce que le polymère est constitué par du dextrane, de préférence de masse moléculaire moyenne en poids d'environ 6 000, contenant environ 1,7 ions sulfates de groupes OSO03H pour 10 5 unités de glucopyranose, les liaisons covalentes entre le polymère et l'hémoglobine résultant de la liaison entre des groupes aldéhydes préalablement formés sur le dextrane, de préférence à raison d'environ 18 groupes aldéhydes pour 100 unités. 13. Conjugué macromoléculaire selon la revendication 1, caractérisé en ce que le polymère est constitué par du dextrane, de préférence de masse moléculaire moyenne en poids d'environ 40 000, contenant environ 12 moles de groupes OPO3H2 pour 10 moles de 15 glucopyranose, les liaisons covalentes entre le polymère et l'hémoglobine résultant des liaisons entre des groupes aldéhydes préalablement formés sur le dextrane, de préférence à raison d'environ 18 groupes aldéhydes pour 100 unités glucosidiques, et des groupes NH2 de 20 l'hémoglobine. 14. Conjugué macromoléculaire selon la revendication 1, caractérisé en ce que le polymère est constitué par du dextrane aminé, de préférence de masse moléculaire moyenne en poids d'environ 40 000, les liaisons 25 ioniques étant réalisées par l'intermédiaire de groupes carboxylates de l'acide benzène hexacarboxylique fixé sur le polymère et les liaisons covalentes étant réalisées par l'intermédiaire des autres groupes carboxyliques de l'acide hexacarboxylique non engagés dans les 30 liaisons ioniques sus-définies et des groupes NH2 de l'hémoglobine. 15. Conjugué macromoléculaire selon la revendication 1, caractérisé en ce que le polymère est constitué par du dextrane polycarboxylé, de préférence de 35 masse moléculaire moyenne en poids d'environ 40 000, contenant environ une chaîne de diacide carboxylique par monomère, les liaisons covalentes étant réalisées par l'intermédiaire de groupes carboxyliques non engagés dans la liaison ionique avec l'hémoglobine et des grou5 pes NH2 de l'hémoglobine. 16. Procédé de préparation des conjugués macromoléculaires selon la revendication 1, caractérisé en ce que: - dans une première étape, on fixe les sites Z 10 sur le polymère soit en transformant préalablement le polymère P en polyol, si besoin est, puis on fixe les sites Z par exemple par sulfatation, phosphorylation ou carboxyméthylation ou bien 15. soit en utilisant un composé Z-Y dans lequel Y est une fonction active ou activable, telle que aldéhyde, carboxyle, amine, hydroxyle ou halogène, ou bien soit en effectuant un greffage radiochimique des sites Z sur le polymère P; - puis dans une seconde étape, on fait réagir le polymère cidessus obtenu avec l'hémoglobine déoxygénée,dans des conditions telles que l'hémoglobine ne subisse pas de dénaturation, en milieu aqueux de pH compris d'environ 5 à environ 9, pour former simultanément les 25 liaisons ioniques et les liaisons covalentes entre le polymère et l'hémoglobine, éventuellement lorsque la réaction ci-dessus indiquée conduit à des fonctions imines, celles-ci sont stabilisées en fonctions amines, par exemple par réduc30 tion à l'aide de NaBH4 NaCNBH3 le diméthylaminoborane ou HCOOH. 17. Procédé selon la revendication 16, caractérisé en ce que à l'issue de la première étape, le polymère comportant les sites Z est activé avant d'être mis 35 en réaction avec l'hémoglobine. 18. Procédé selon la revendication 17, caractérisé en ce que l'activation consiste à transformer les fonctions OH en groupes aldéhydes, par exemple par oxydation périodique. 19. Procédé selon la revendication 16, caractérisé en ce que l'activation du polymère comportant les sites Z et sa mise en réaction avec l'hémoglobine sont pratiquement simultanées. 20. Procédé selon la revendication 19, caracté10 risé en ce que le polymère comportant les sites Z: - est activé par exemple à l'aide de bromure de cyanogène ou de carbonyldiimidazole, lorsque ni le polymère P, ni les sites Z comportent de groupes aldéhydes, mais qu'ils contiennent des fonctions hydroxyles. 15 - ou bien est activé à l'aide de réactifs utilisés en synthèse peptidique, lorsque le polymère P ou les groupes Z comportent des groupes carboxyles, 21. Procédé de préparation selon la revendication 20, caractérisé en ce que la réaction entre le 20 polymère et l'hémoglobine pendant un temps inférieur à celui entraînant au plus environ 5 % de méthémoglobine, de préférence pendant au plus 10 h, et à une température permettant une conservation correcte de l'hémoglobine, par exemple entre 3'C et 30'C. 25