FR 3052163 A1 20171208 FR 1655096 A 20160603 1 Tissu de verre comme support d'ensemencement de microorganismes La présente invention est relative à un dispositif de microbiologie permettant d'effectuer un isolement microbiologique et/ou un dénombrement microbiologique. Les techniques habituelles utilisent la boîte de Pétri et un milieu solide gélose à base d'agar-agar, un échantillon ou dilution de suspension susceptible de contenir un ou plusieurs microorganismes étant étalé à la surface du milieu solide avant incubation. A contrario, l'immobilisation cellulaire consiste à faire croître des cellules généralement eucaryotes immobilisées dans une matrice d'hydrogel. Il existe différentes méthodes. L'adhésion est généralement utilisée pour stabiliser les cultures cellulaires et effectuer des analyses, ou pour fournir une matrice structurelle qui dirige la croissance et/ou la différenciation des cellules. Il est possible d'améliorer l'adhésion des cellules sur l'hydrogel en greffant des protéines adhésives. La capture est un autre mode d'immobilisation, dans lequel les cellules sont prises au piège dans la matrice par des contraintes physiques, les cellules étant immobilisées par le réseau poreux tridimensionnel de l'hydrogel. Ces gels sont alors généralement polymérisés in situ avec les cellules. Enfin, la micro-encapsulation consiste à enfermer les cellules ou des amas cellulaires par une membrane poreuse et semi-perméable. Voir A. C. Jen et al., 1996, Review : Hydrogels for cell immobilization. Biotechnology and bioengineering, 50 (4) : 357-64. L'invention a pour objectif de fournir un nouveau dispositif permettant d'effectuer un ensemencement microbiologique en surface, notamment en vue d'effectuer un isolement microbiologique et/ou un dénombrement microbiologique à un coût avantageux. Un autre objectif de l'invention est de fournir un tel dispositif permettant d'apporter les nutriments nécessaires à la croissance des microorganismes. Un autre objectif de l'invention est de fournir un tel dispositif pouvant être aisément conservé stérile et transporté et manipulé même en région chaude et/ou humide. L'invention a ainsi pour objet une pièce de tissu de verre formée de l'assemblage par tissage de fils de chaîne et de fils de trame en fils de verre, pièce dont l'une des faces est revêtue d'un film ou couche d'hydrogel. C'est cette couche ou film d'hydrogel qui sera ensemencée. De préférence, l'hydrogel est circonscrit sur ladite face de la pièce, c'est-à-dire que l'hydrogel est localisé en surface et ne traverse pas le tissu de verre, ce qui est d'ailleurs favorisé par le choix d'un tissu fermé ayant une porosité comprise dans les intervalles mentionnés ci-dessous. 3052163 2 L'hydrogel est en couche fine, qui peut se définir par le taux d'emport, à savoir la quantité d'hydrogel appliquée substantiellement uniformément à la surface du tissu de verre et exprimée en grammes d'hydrogel par m2 de tissu de verre. Le taux d'emport d'hydrogel est avantageusement égal ou supérieur à environ 7 g/m2, notamment compris entre environ 5 7 g/m2 et environ 12 g/m2, des taux un peu supérieurs étant possibles mais non indispensables et plus coûteux. Un hydrogel est un réseau macromoléculaire, de préférence élastique, à haute teneur en eau. Au sens de la présente invention, hydrogel signifie une masse viscoélastique comprenant au moins 80% d'eau en poids, de préférence au moins 90% d'eau en poids, par 10 exemple de 90 à 98,5 % d'eau en poids. L'hydrogel peut être un hydrogel chimique (notamment par la présence de liaisons covalentes inter-chaînes) ou un hydrogel physique (interactions inter-chaînes sont de type physiques, par exemple liaisons hydrogène et/ou interactions hydrophobes, interactions électrostatiques, etc.). On préfèrera les hydrogels naturels en raison du contact avec un matériel biologique 15 vivant. Un hydrogel synthétique non toxique pour les cellules pourra néanmoins être employé, comme les polyacrylamides (PAAM). On préférera également les hydrogels physiques, sans pour autant exclure les hydrogels chimiques. L'hydrogel peut notamment comprendre un polysaccharide, de préférence naturel, 20 éventuellement modifié chimiquement, un polysaccharide hybride ou une protéine structurale telle que la kératine ou le collagène, ou des mélanges. Le terme « comprendre » signifie que l'hydrogel peut contenir au moins un polysaccharide ou protéine structurale comme matériau de base de l'hydrogel. Ce dernier pourra comprendre d'autres ingrédients, tels que de l'eau, un coagulant, etc. La proportion de polysaccharide ou de protéine structurale dans l'hydrogel 25 pourra être notamment comprise entre environ 1 et environ 20% en poids de l'hydrogel.On préfèrera les hydrogels naturels en raison du contact avec un matériel biologique vivant. Un hydrogel synthétique non toxique pour les cellules pourra néanmoins être employé. L'hydrogel naturel peut notamment être choisi parmi: les polysaccharides comme l'amidon, la gomme arabique, les gommes extraites des graines (e.g. guar, caroube), les gommes 30 extraites ou dérivées des algues (e.g. agar-agar, agarose, carrhaghénanes, alginates), les gommes extraites ou dérivées des microorganismes, par exemple le xanthane, la cellulose bactérienne produite à partir d'Acetobacter xylinum - Cellulon PX - ou la gomme gellane produit par Pseudomonas elodea, et les protéines telles que l'albumine, la caséine, le collagène et le gluten, ou encore la méthylcellulose, le hyaluronane, les pectines, le chitosan, 35 la carboxyméthylcellulose ou l'acide hyaluronique. Dans un mode de réalisation, l'hydrogel est donc un hydrogel à base (ou comprenant ce composé en plus de l'eau et d'un éventuel agent réticulant) d'amidon, de gomme 3052163 3 arabique, d'agar-agar, d'agarose, de gomme de guar, de caroube, de carrhaghénane, d'alginate, de xanthane, de gellane, de cellulose bactérienne, d'albumine, de caséine, de collagène, de gluten, de méthylcellulose, de hyaluronane, de pectine, de chitosan, de carboxyméthylcellulose, d'acide hyaluronique ou de PAAM. 5 Les hydrogels peuvent être réticulés ou non, la réticulation pouvant être covalente ou ionique, comme cela est connu de l'homme du métier. Pour de plus amples informations sur les hydrogels et leurs procédés de fabrication, l'homme du métier pourra se référer à la Thèse de Leslie Rolland, Propriétés physico-chimiques des capsules d'hydrogel à coeur liquide, Université Pierre et Marie Curie, Paris VI, 10 2013, https://pastel.archives-ouvertes.fr/tel-00919083; à la Thèse de Anne-Laure Esquirol, Contrôle de la morphologie d'hydrogels poreux à partir de structures polymères, Département de génie chimique, Ecole Polytechnique de Montréal, 2013 ; et à la Thèse de Maria Bassil, Muscles artificiels à base d'hydrogel électroattractif, HAL Id: tel-00688340, https://tel.archives-ouvertes.fr/tel-00688340. 15 Suivant une caractéristique, le tissu a avantageusement une perméabilité à l'air comprise entre environ 2 1/m2/s et environ 12 1/m2/s, comme mesuré par la pénétration d'air sous 200 Pa au travers d'une cellule de surface de 20 cm2, soit au travers d'un échantillon du tissu de même surface. Cette mesure est conforme à la norme ISO 9237 : Détermination de la perméabilité à l'air des étoffes. On peut utiliser pour ce faire l'appareil FX 3300 LabAir 20 IV, Air Permeability Tester, Textest Instruments, Schwerzenbach, Switzerland, réglé aux conditions de test définies ci-dessus. Suivant une autre caractéristique, l'autre face de la pièce de tissu de verre peut être revêtue d'une couche, de préférence continue, d'un polymère hydrosoluble, naturel ou de 25 préférence synthétique. Par définition, ce polymère pourra se dégrader ou se solubiliser au contact d'un milieu aqueux, par exemple de l'eau. Ce polymère synthétique peut notamment être choisi parmi les PAM ou poly(acrylamide), les PVP ou poly(N-vinyl pyrrolidone), les PEG ou polyéthylènes Glycol, les PVA ou alcools polyvinyliques, les poly(acide acrylique) PAA + acide méthacrylique, les PEO 30 ou poly(oxyde d'éthylène), les PVAm ou poly(vinyl amine). A titre d'exemples préférés, on peut citer le PEG de poids moléculaire inférieur ou égal à 600 g.mol-1 et d'indice d'ester d'au moins environ 180 mg ou le PVA partiellement hydrolysé (de préférence dont le taux d'hydrolyse est compris entre environ 86 et environ 88% et un degré de polymérisation inférieur à environ 1000 et un taux d'indice ester 35 subsistant compris entre environ 120 et environ 170 mg). 3052163 4 Le taux d'emport de ce polymère hydrosoluble peut être compris entre environ 5 g/m2 et environ 100 g/m2, notamment entre environ 10 g/m2 et environ 50 g/m2, typiquement de 10 à 20 g/m2, par exemple 15 g/m2. Avantageusement, la couche de polymère hydrosoluble peut contenir au moins un 5 élément nutritif pour cellule procaryote, cet élément nutritif étant hydrosoluble et pouvant être sous forme dissoute, colloïdale ou solide dans ladite couche de polymère. De manière plus générale, ladite couche comprend un ou des éléments nutritifs conventionnels permettant la survie, la culture et/ou la propagation du microorganisme concerné qui pourra être ensemencé sur la face opposée de la pièce. Selon le cas, la couche pourra comprendre un 10 milieu nutritif conventionnel pour cellules procaryotes. Placé au contact d'un milieu aqueux, la couche de polymère va se dissoudre progressivement et va libérer le ou les éléments nutritifs solubilisés qui pourront migrer au travers du tissu de verre et nourrir les cellules. Suivant une caractéristique, le tissu de verre peut comporter, sur une première face, une couche d'hydrogel selon l'invention, et sur la deuxième face, une couche de polymère 15 hydrosoluble. Avantageusement, la couche d'hydrogel permet le passage des nutriments solubilisés en provenance de la couche de polymère hydrosoluble. Dans le cas où le polymère hydrosoluble serait absent, et qu'un autre milieu nutritif était placé sous la face opposée à l'hydrogel, les éléments nutritifs solubles pourraient aussi traverser le tissu de verre, puis l'hydrogel. 20 En revanche, la couche d'hydrogel, circonscrite sur sa face de dépôt sur le tissu de verre, permet d'obtenir une poussée des colonies de microorganisme en surface de la pièce. Suivant une caractéristique de l'invention, la contexture du tissu de verre peut donner une surface massique comprise entre environ 100 et environ 150 g/m2, de préférence entre 25 environ 120 et environ 135 g/m2, mieux entre environ 125 et environ 130 g/m2 . Suivant une caractéristique préférée de l'invention, les fils de chaîne et de trame sont des fils de verre multifilaments. Suivant une caractéristique de l'invention, les fils de chaîne peuvent avoir un titre compris entre 5,5 tex et 34 tex, de préférence entre 10 et 22 tex, et/ou peuvent être formés 30 de filaments de diamètre compris entre environ 5 et environ 9 pm, de préférence entre environ 5 et environ 6 pm. Suivant une caractéristique de l'invention, les fils de trame peuvent avoir un titre compris entre 22 et 68 tex, de préférence entre 22 et 34 tex, et/ou peuvent être formés de filaments de diamètre compris entre environ 5 et environ 9µm, de préférence entre environ 6 35 et environ 9 pm. Suivant une caractéristique de l'invention, les bords de la pièce peuvent être formés des fils de chaîne et de trame soudés entre eux sur tout le pourtour de la pièce. Dans un 3052163 5 mode de réalisation, la forme géométrique plane de la pièce et ses bords soudés peuvent être obtenus par découpe-soudage en une seule opération, par exemple découpe-soudage par laser ou couteau chaud d'une laize de tissu de verre de plus grande dimension, directement à la forme de la pièce. 5 Suivant une caractéristique de l'invention, la pièce de tissu, portant la couche d'hydrogel et éventuellement la couche de polymère hydrosoluble (de préférence incluant au moins un élément nutritif, de préférence encore un milieu nutritif adapté au microorganisme concerné ou recherché), peut être enfermée dans un sachet ou sous blister garantissant la stérilité de la pièce placée à l'intérieur. 10 Suivant une caractéristique de l'invention, on utilise un tissu de verre fortement désensimé et désencollé est employé, de telle manière que les cellules vivantes soient dans un environnement essentiellement non toxique et neutre, le support étant un tissu de verre, biocompatible par essence, et substantiellement pas avec des substances organiques issues 15 de l'ensimage et/ou de l'encollage ou autre traitement textile potentiellement toxique ou interférent pour des cellules vivantes et leur culture. Le tissu de verre a notamment un taux résiduel d'ensimage + encollage inférieur ou égal à 0,05, 0,04, 0,03, 0,02 ou 0,01% en poids par rapport au poids total du tissu (en ne tenant compte que du tissu de verre et de l'ensimage + encollage). On peut aussi définir le 20 tissu de verre composé de verre à une teneur en poids supérieure à 99,95% par rapport au poids total du tissu de verre, et notamment supérieure à 99,96%, 99,97%, 99,98% ou 99,99%. Suivant une caractéristique de l'invention, l'élimination de l'ensimage + encollage peut être effectué thermiquement, par un procédé statique ou dynamique, cette deuxième 25 solution étant la préférée pour obtenir de très bas taux résiduels. De préférence, les taux de perméabilité à l'air s'appliquent à un tel tissu. L'invention a aussi pour objet l'utilisation de cette pièce de tissu comme support de culture de cellules procaryotes (e.g. bactéries, archées), notamment pour ensemencement, 30 comme il sera décrit plus loin. L'invention a aussi pour objet un kit de culture de cellules procaryotes, comportant au moins une pièce de tissu selon l'invention, avantageusement enfermée dans un sachet ou sous blister garantissant la stérilité de la pièce placée à l'intérieur, et un boîtier comportant 35 un fond à rebord conçu pour pouvoir loger une pièce de tissu selon l'invention, et de préférence un couvercle, ce boîtier étant avantageusement enfermé dans un sachet ou sous blister garantissant la stérilité du boîtier. Dans une forme de réalisation, une pièce de tissu et 3052163 6 son boîtier sont tous deux placés dans le même sachet ou sous blister garantissant leur stérilité. Suivant une caractéristique, la pièce de tissu peut alors être placée à l'intérieur ou à l'extérieur du boîtier. Avantageusement, la forme et les dimensions du fond du boîtier sont ajustées à celles de la pièce de tissu. Ce boîtier peut être une boîte de Pétri. La pièce de 5 tissu peut avoir une forme ronde. Conformément à ce qui a été décrit pour les autres objets de l'invention, la pièce de tissu pourra comprendre une couche d'hydrogel, ou à la fois une couche d'hydrogel et une couche de polymère hydrosoluble éventuellement avec un ou des éléments nutritifs. De préférence, le kit comprendra un nombre égal de pièces de tissu et de boîtiers. 10 L'invention a aussi pour objet une boîte d'ensemencement, notamment boîte de Petri, contenant une pièce selon l'invention. L'invention a aussi pour objet une pièce de tissu de verre formée de l'assemblage par tissage de fils de chaîne et de fils de trame en fils de verre, le tissu de verre supportant, sur 15 une de ses faces, une couche d'hydrogel selon l'invention et un ensemencement ou une culture de cellules procaryotes (e.g. bactéries et archées), par exemple comporte des colonies. Cet objet reprend les différentes caractéristiques qui sont décrites par ailleurs au regard de la pièce de tissu. Les colonies sont avantageusement à la surface de cette couche d'hydrogel. Sur la deuxième face, une couche de polymère hydrosoluble peut être prévue, 20 comme décrit supra, cette couche pouvant également comprendre un élément nutritif, comme déjà décrit. A noter que lorsque le tissu ou les cellules sont déposées sur l'hydrogel ou le tissu de verre, ce polymère hydrosoluble peut être en cours de dissolution plus ou moins avancée au contact d'un liquide approprié. Des éléments nutritifs sont également présents, comme cela ressort de la présente description. 25 La présente invention a aussi pour objet un procédé de culture cellulaire, comprenant le fait de disposer d'une pièce de tissu formée de l'assemblage par tissage de fils de chaîne et de fils de trame en fils de verre, avec une couche d'hydrogel sur l'une de faces, d'ensemencer cet hydrogel en surface avec une suspension de cellules procaryotes, tout en 30 fournissant des éléments nutritifs permettant la culture de ces cellules au sens croissance et/ou multiplication. On peut effectuer l'ensemencement par les méthodes classiques utilisées sur milieu solide en boîte de Pétri, à savoir notamment on prélève une goutte de suspension ou un inoculum que l'on dépose sous forme de stries à la surface de l'hydrogel. On peut par exemple utiliser la méthode dite des cadrans. On peut aussi utiliser les autres 35 méthodes : l'isolement simple consistant à déposer l'inoculum à la périphérie de la couche d'hydrogel et à l'étaler en stries serrées sur la surface de l'hydrogel ; en utilisant des billes de verre que l'on dépose sur l'hydrogel avec des gouttes d'inoculum, puis on agite la boîte et on 3052163 7 enlève les billes ; ou encore l'on dépose un volume d'inoculum sur l'hydrogel, puis on l'étale à l'aide du râteau. Bien entendu, on peut travailler comme d'accoutumée avec une ou plusieurs dilutions d'inoculum. On peut faire un dénombrement microbiologique ou un isolement microbiologique. 5 Avantageusement, la culture des cellules se fait en surface de la couche d'hydrogel. Les éléments nutritifs peuvent être apportés de toute manière connue en soi, par exemple au moyen d'un milieu nutritionnel solubilisable ou liquide, stérile, placé au contact de la face opposée du tissu de verre. 10 Dans un mode de réalisation, la face opposée est revêtue de la couche de polymère hydrosoluble selon l'invention. Avantageusement, cette couche comporte un ou des éléments nutritifs, notamment un milieu nutritif conventionnel pour le microorganisme concerné ou recherché. Cette face opposée est mise en contact avec un milieu aqueux stérile, e.g. de l'eau stérile, ce qui entraîne la dissolution du polymère, et la migration des 15 nutriments vers la face ensemencée, ce qui permet la culture ou propagation. La combinaison d'une couche fine d'hydrogel et d'un tissu de verre conforme à l'invention permet avantageusement un ensemencement en stries de microorganismes, notamment de bactéries. Sans vouloir être lié à la théorie on estime que, dans cette combinaison, le tissu de verre confère une rigidité et une élasticité suffisantes à la couche 20 d'hydrogel pour que cette dernière puisse donner une réponse élastique à un stress mécanique tel que celui du va-et-vient d'un outil d'ensemencement (fil bouclé, par exemple anse de platine ou manche de Koch ; pipette pasteur ou similaire, bouchée à son extrémité ; ôse ; étaloir ; râteau ; etc.). La pièce selon l'invention a l'avantage de pouvoir être conservée dans de larges 25 conditions de température et d'hygrométrie, et sur une durée pouvant atteindre ou dépasser 1 an. Le stockage en blister ou sachet hermétique et la stérilisation des éléments constitutifs permet de conserver le tout stérilement. De préférence, l'invention se fixe pour objectif de circonscrire les couches de polymère sur leur face de dépôt. Notamment elle se fixe pour objectif de déposer la couche 30 d'hydrogel en surface du tissu de verre, sans que ce dernier ne pénètre profondément dans le tissu de verre et risque de le traverser. Par ailleurs, le polymère placé sur la face opposée étant hydrosoluble, on choisit, de préférence, de déposer l'hydrogel sur une face du tissu de verre avant de procéder au dépôt, sur l'autre face, de ce polymère hydrosoluble, de sorte que l'hydrogel est déposé sur un tissu de verre nu et il convient d'éviter la pénétration ou la 35 traversée de l'hydrogel dans ou au travers du tissu de verre. Un élément de la solution est d'utiliser un tissu de verre ayant les caractéristiques mentionnées ci-dessus, notamment de 3052163 8 porosité, surface massique et/ou titres des fils de chaîne et de trame. Un autre élément de la solution est le choix de la technique de dépôt. La fabrication de la pièce de tissu selon l'invention comprend donc de préférence l'enduction d'une face du tissu de verre d'abord avec l'hydrogel, puis en second lieu 5 l'enduction de la face opposée avec le polymère hydrosoluble, notamment polymère hydrosoluble chargé avec au moins un élément nutritif. L'enduction peut notamment être du type « racle sur cylindre », qui consiste à déposer la formule sur le tissu de verre, puis à le racler pour régler l'emport souhaité. Ce procédé d'enduction à la racle est un traitement de surface. Il permet de régulariser le dépôt 10 de matière en retenant l'excès. Une solution est coulée sur le tissu devant la racle et par déplacement du tissu, la solution est entraînée peu à peu sur celui-ci. Le tissu est ensuite séché, puis enroulé. Le tissu est maintenu par un cylindre de contrepartie (en acier ou recouvert de caoutchouc), placé du côté du tissu opposé à la racle. De préférence, mis à part ce cylindre, le tissu de verre, entraîné entre une bobine d'alimentation et une bobine de 15 réception, est libre, sans surface d'appui. L'épaisseur de l'enduction est contrôlée par l'espace entre la racle et le tissu de verre, ce qui permet de contrôler parfaitement la quantité d'enduction déposée. Cette technique permet de travailler avec des viscosités élevées allant jusqu'à 60 000 cP notamment en cas de composition rhéofluidifiante. Avant d'être enroulé sur la bobine de réception, on laisse ou fait gélifier l'hydrogel. La gélification est conduite 20 selon le mode de gélification ou de réticulation de l'hydrogel utilisé, selon les connaissances générales de l'homme du métier en matière d'hydrogels. Pour un hydrogel gélifiant en présence de chaleur, le tissu enduit passe devant ou dans un four porté à une température adaptée, permettant de gélifier l'hydrogel. Le polymère hydrosoluble peut être déposé sur l'autre face du tissu de verre, suivant 25 la même procédure de racle sur cylindre. Le passage devant ou dans un four permettra de sécher le polymère hydrosoluble. La température du four est réglée selon la nature du polymère hydrosoluble, et cela fait appel aux connaissances générales de l'homme du métier. La quantité de produit déposée et la qualité de l'application dépendent des facteurs 30 suivants : la rhéologie de la formule : plus sa viscosité sera importante, plus le dépôt final après séchage sera élevé ; la vitesse de circulation du tissu sur l'installation (vitesse d'enduction) ; la tension du tissu : elle influence principalement l'homogénéité du dépôt ; la hauteur de la racle : plus la racle sera haute, plus l'emport sera grand ; l'angle d'inclinaison de la racle par rapport au tissu ou au cylindre. 35 L'hydrogel, comme le polymère hydrosoluble peut aussi être déposé par héliogravure. Il s'agit d'un procédé d'impression par cylindres (généralement de cuivre chromé) gravés tournant dans une bacholle ou cuve. Le substrat à déposer est retenu dans 3052163 9 les rainures du cylindre graveur et ensuite déposé sur le tissu par transfert. Une racle élimine l'excès à la surface du cylindre avant dépôt du substrat sur le tissu. L'hydrogel est ensuite gélifié, par exemple par passage dans un four si c'est le mode de gélification d'hydrogel utilisé. Quant au polymère hydrosoluble, un séchage est ensuite réalisé, par exemple pare 5 passage en four. Description des figures : La figure 1 est un graphe montrant le spectre infrarouge d'un hydrogel de gomme de xanthane, obtenu par IRTF (spectroscopie infrarouge à transformée de fourier). 10 La figure 2 est un graphe montrant le spectre infrarouge d'un hydrogel de gomme de caroube, obtenu par IRTF. La figure 3 est un graphe montrant le spectre infrarouge d'un hydrogel d'agar agar, obtenu par IRTF. La figure 4 est un graphe montrant le spectre infrarouge d'un hydrogel de gomme de guar, 15 obtenu par IRTF. Exemple 1 : On part d'un tissu de verre tissu de verre de 125 g/m2 composé de fils de verre de 11 tex (chaîne) et 34 tex (trame). 20 Ce tissu est désensimé et désencollé thermiquement de façon dynamique au travers d'un caraméliseur (ou four à haute température) à air chaud à 600°C pendant 2 min. Le taux de résidu obtenu est de 0,03% et la perméabilité à l'air du tissu désensimé et désencollé est mesurée à 14 I/m2/s (mesure selon la méthode décrite supra). On utilise du xanthane grade pharmaceutique, un polysaccharide anionique à haut 25 poids moléculaire produit par fermentation d'hydrates de carbone par Xanthomonas campestris. Le polysaccharide est purifié par l'alcool isopropylique avent d'entre séché, puis broyé, pour donner une poudre blanche hydrosoluble produisant par mélange avec de l'eau une solution très visqueuse d'hydrogel. On peut utiliser le xanthane 80 Grindsted® de Danisco. 30 On mélange sous agitation (750 tr/min) dans 1L d'eau à 25°C, 50 g de xanthane pendant 30 min. Au fur et à mesure de l'incorporation, un gel non homogène se forme. Pour favoriser l'homogénéisation, il est préférable de monter la préparation à 70°C - 80°C. La solution hydrocolloïde obtenue est alors appliquée selon le mode d'enduction type « racle sur cylindre » sur le tissu de verre désensimé et désencollé. Le réglage de l'entrefer 35 entre la racle et le tissu est tel que l'emport est de l'ordre de 10 g/m2. 3052163 10 L'enduction est circonscrite à la seule face d'enduction, comme l'indique les mesures faites par IRTF sur le tissu. Sur le diagramme de la Figure 1, le spectre du xanthane pur comporte 2 pics caractéristiques, l'un à 3370 cm-1 le second à 1640 cm-1. L'analyse par IRTF faite sur le tissu enduit d'hydrogel ne révèle pas les pics caractéristiques du xanthane, ce qui 5 montre que l'enduction déposée n'est pas passée au travers du tissu. La perméabilité à l'air du tissu enduit est alors mesurée à 2,58 x 10-5 1/m2/s (mesure selon la méthode décrite supra). On enduit la seconde face d'une dispersion aqueuse de PVA et de nutriments pour cellule procaryote, d'extrait sec de 18%, par la méthode racle sur cylindre. L'emport est de 10 20 g/m2. Le PVA pourra se solubiliser en moins de 5 min lorsque la pièce sera déposée à la surface d'un milieu aqueux, face pourvue du polymère hydrosoluble au contact de ce milieu aqueux. Grâce à cette solubilisation, les nutriments vont migrer au travers du tissu de verre, puis de l'hydrogel pour atteindre la surface de celui-ci exposée aux cellules procaryotes ensemencées. 15 Exemple 2 : On mélange sous agitation (750 tr/min) dans 1L d'eau à 25°C, 50 g de xanthane pendant 30 min. Au fur et à mesure de l'incorporation un gel non homogène se forme. Pour favoriser l'homogénéisation, il est préférable de monter la préparation à 70°C - 80°C. 20 La solution hydrocolloïde obtenue est alors appliquée selon le mode d'enduction type « racle sur cylindre » sur un tissu de verre de 125 g/m2 composé de fils de verre de 11 tex et 34 tex préalablement nettoyé afin qu'il ait un niveau de pureté conforme à l'invention. Pour ce faire le tissu est désensimé et désencollé au préalable thermiquement de façon dynamique au travers d'un caraméliseur à air chaud à 600°C pendant 2 min. Le taux de 25 résidu obtenu est de 0,03% et sa perméabilité à l'air est mesurée à 20 I/m2/s. Le réglage de l'entrefer entre la racle et le tissu est tel que l'emport est de l'ordre de 10 g/m2 . L'analyse par IRTF effectuée sur la face opposée du revêtement d'hydrogel met en évidence qu'il n'y a pas eu transfert sur l'autre face lors de l'étape d'enduction. 30 La perméabilité à l'air du tissu enduit est alors mesurée à 1,46 x 10-5 I/m2/s. On enduit la seconde face d'une dispersion aqueuse de PVA et de nutriments pour cellule procaryote, d'extrait sec de 18%, par la méthode racle sur cylindre. L'emport est de 20 g/m2. Le PVA pourra se solubiliser en moins de 5 min lorsque la pièce sera déposée à la surface d'un milieu aqueux, face pourvue du polymère hydrosoluble au contact de ce milieu 35 aqueux. Grâce à cette solubilisation, les nutriments vont migrer au travers du tissu de verre, 3052163 11 puis de l'hydrogel pour atteindre la surface de celui-ci exposée aux cellules procaryotes ensemencées. Exemple 3 : Désensimage thermique en mode dynamique. La fibre de verre est élaborée à partir des matières premières traditionnelles 5 nécessaires à la fabrication du verre, généralement du type E, mais pouvant être d'un autre type, e.g. C ou AR. Il s'agit généralement et pour l'essentiel de silice, chaux, alumine et magnésie. Le mélange est broyé, puis fondu dans un four à haute température, aux environs de 1500° C. Le verre en fusion est ensuite amené àpasser dans des filières. A la sortie des filières, les fils de verre sont étirés mécaniquement à grande vitesse pour donner des 10 filaments de diamètre déterminé, généralement compris entre 3 et 13 lm. Aussitôt après l'étirage, les filaments sont « ensimés », à savoir enduits d'une composition organique, généralement à l'aide d'une émulsion aqueuse de composés organiques. Cette étape et la composition du même nom, s'appellent l'ensimage, elle permet de protéger le produit lors de sa transformation chez le fabricant, par exemple lors d'étapes d'enroulage, retordage, 15 bobinage, lors de passages dans des guides. Une fois chez le tisseur, les fils, notamment ceux de chaîne, subissent un traitement supplémentaire appelé encollage, destiné à protéger le fil des étapes telles que ourdissage et tissage, incluant le passage dans des peignes, mailles, des levages de cadres et globalement un temps de contact/friction non négligeable avec des pièces mécaniques. 20 Parmi les composés organiques de l'ensimage, on emploie couramment des huiles minérales, et éventuellement de l'amidon, du PVA et/ou des tensioactifs. Parmi les agents d'encollage, on emploie couramment de l'amidon ou du PVA et éventuellement des tensioactifs. Ainsi les agents lubrifiants, tensioactifs cationiques ou non-ionique, ont pour rôle de réduire la friction entre les fibres et ainsi de limiter les cassures ou la création de défauts 25 de surface, tandis que l'amidon et le PVA vont gainer les fils et les protéger des contraintes mécaniques qui pourraient entraîner des cassures ou des affaiblissements. A noter que les compositions d'encollage et d'ensimage sont généralement gardées secrètes. Afin d'éliminer au maximum l'ensimage et l'encollage, on utilise un caraméliseur à air chaud (MARTIN) : les températures atteintes par le tissu sont relativement élevées de l'ordre 30 de 600°C pendant 2 min. Exemple fait sur un tissu lourd réf 7628 composé de fils de verre 68 tex. Désensimage par lavage à l'eau à 80°C, puis thermique en dynamique en four équipé de radians 595-610°C : on arrive à des taux de résidusde 0,025% en 30 sec. Exemple 4 : 35 On part d'un tissu de verre tissu de verre de 125 g/m2 composé de fils de verre de 11 tex (chaîne) et 34 tex (trame). Ce tissu est désensimé et désencollé thermiquement de façon dynamique au travers d'un caraméliseur à air chaud à 600°C pendant 2 min. Le taux de 3052163 12 résidu obtenu est de 0,03% et la perméabilité à l'air du tissu désensimé et désencollé est mesurée à environ 14 I/m2/s (mesure selon la méthode décrite supra). On mélange sous agitation (750 tr/min) dans 1L d'eau à 25°C, 50 g de caroube pendant 30 min. Au fur et à mesure de l'incorporation, un gel non homogène se forme. Pour 5 favoriser l'homogénéisation, il est préférable de poursuivre l'agitation jusqu'à 1200 tr/min pendant 20 minutes ou de monter la préparation à 50°C. La solution hydrocolloïde obtenue est alors appliquée selon le mode d'enduction type « racle sur cylindre » sur le tissu de verre désensimé et désencollé. Le réglage de l'entrefer entre la racle et le tissu est tel que l'emport est de l'ordre de 10 10 g/m2. L'enduction est circonscrite à la seule face d'enduction, comme l'indique les mesures faites par IRTF sur le tissu. Sur le diagramme de la Figure 2, le spectre du caroube pur relève 2 pics caractéristiques, l'un à 3559 cm-1 le second à 845 cm-1. L'analyse par IRTF de la face 15 opposée du tissu enduit d'hydrogel ne révèle pas les pics caractéristiques, ce qui montre que l'enduction déposée n'est pas passée au travers du tissu. La perméabilité à l'air du tissu enduit est alors mesurée à 2,58 x 10-5 1/m2/s (mesure selon la méthode décrite supra). On enduit la seconde face du tissu de verre d'une dispersion aqueuse de PVA et de 20 nutriments pour cellule eucaryote ou procaryote, d'extrait sec de 18%, par la méthode racle sur cylindre. L'emport est de 20 g/m2. Le PVA pourra se solubiliser en moins de 5 min lorsque la pièce sera déposée à la surface d'un milieu aqueux, face pourvue du polymère hydrosoluble au contact de ce milieu aqueux. 25 Exemple 3 : On mélange sous agitation (750 tr/min) dans 1L d'eau à 25°C, 15 g d'Agar Agar pendant 30 min. Au fur et à mesure de l'incorporation un gel non homogène se forme. Pour favoriser l'homogénéisation, il est préférable de monter la préparation à 70°C - 80°C. La solution hydrocolloïde obtenue est refroidie et lorsque la température est inférieure 30 à 40°C, elle est alors appliquée selon le mode d'erduction type « racle sur cylindre » sur un tissu de verre de 125 g/m2 composé de fils de verre de 11 tex et 34 tex préalablement nettoyé afin qu'il ait un niveau de pureté conforme à l'invention. Pour ce faire le tissu est désensimé et désencollé au préalable thermiquement de façon dynamique au travers d'un caraméliseur à air chaud à 600°C pendant 2 min. Le taux de résidu obtenu est de 0,03% et 35 sa perméabilité à l'air est mesurée à 20 I/m2/s. Le réglage de l'entrefer entre la racle et le tissu est tel que l'emport est de l'ordre de 10 g/m2 . 3052163 13 Une analyse IRTF de la face opposée du revêtement d'hydrogel met en évidence qu'il n'y a pas eu transfert sur l'autre face lors de l'étape d'enduction où on ne constate pas la présence de ses pics caractéristiques à 3398 cm-1, 2900 cm-1 et 1067 cm-1 (Figure 3). La perméabilité à l'air du tissu enduit est alors mesurée à 1,46 x 10-5I/m2/s. 5 On enduit la seconde face du tissu de verre d'une dispersion aqueuse de PVA et de nutriments pour cellule eucaryote ou procaryote, d'extrait sec de 18%, par la méthode racle sur cylindre. L'emport est de 20 g/m2. Le PVA pourra se solubiliser en moins de 5 min lorsque la pièce sera déposée à la surface d'un milieu aqueux, face pourvue du polymère hydrosoluble au contact de ce milieu aqueux. 10 Exemple 4 :. Le tissu de verre est revêtu d'une couche d'environ 15 g/m2 d'une dispersion aqueuse de gomme de Guar à 2% d'extrait sec par heliogravure à l'aide d'un cylindre gravé en creux, suivi d'un passage dans un tunnel de séchage pour évaporer l'eau. La couche ainsi déposée est circonscrite à cette seule face comme le démontre des analyses par IRTF de la face 15 opposée où aucun des pics caractéristiques du Guar n'est identifié (2928 cm-1 et 809 cm-1, Figure 4). La perméabilité du tissu est alors de 0.94 I/m2/s. On enduit la seconde face du tissu de verre d'une dispersion aqueuse de PVA et de nutriments pour cellule eucaryote ou procaryote, d'extrait sec de 18%, par la méthode racle sur cylindre. L'emport est de 20 g/m2. Le PVA pourra se solubiliser en moins de 5 min 20 lorsque la pièce sera déposée à la surface d'un milieu aqueux, face pourvue du polymère hydrosoluble au contact de ce milieu aqueux. Exemple 5 : On mélange sous agitation (750 tr/min) dans 1L d'eau à 25°C, 50 g de caroube. Au fur et à mesure de l'incorporation un gel non homogène se forme. Pour favoriser 25 l'homogénéisation, il est préférable de poursuivre l'agitation jusqu'à 1200 tr/min pendant 20 minutes. La solution hydrocolloïde obtenue de viscosité brookfields de l'ordre de 25 000 cpo à 12 tr/min est alors appliquée selon le mode d'enduction type « racle sur cylindre » sur un tissu de verre de 125 g/m2 composé de fils de verre de 11 tex et 34 tex préalablement 30 nettoyé afin qu'il ait un niveau de pureté conforme à l'invention. Pour ce faire le tissu est désensimé et désencollé au préalable thermiquement de façon dynamique au travers d'un four à radians à 620°C pendant 2 min. Le taux de résidu obtenu est de 0,035% et sa perméabilité à l'air est mesurée à 14 I/m2/s. Le réglage de l'entrefer entre la racle et le tissu est tel que l'emport est de l'ordre de 35 10 g/m2. 3052163 14 L'analyse par IRTF effectuée sur la face opposée du revêtement d'hydrogel met en évidence qu'il n'y a pas eu transfert sur l'autre face lors de l'étape d'enduction. L'absence des pics à 3559 cm-1 et 845 cm-1 caractéristiques de cet hydrogel l'atteste. La perméabilité à l'air du tissu enduit est alors mesurée à 2.58 x 10-5 I/m2/s. 5 On enduit la seconde face du tissu de verre d'une dispersion aqueuse de PVA et de nutriments pour cellule eucaryote ou procaryote, d'extrait sec de 18%, par la méthode racle sur cylindre. L'emport est de 20 g/m2. Le PVA pourra se solubiliser en moins de 5 min lorsque la pièce sera déposée à la surface d'un milieu aqueux, face pourvue du polymère hydrosoluble au contact de ce milieu aqueux. REVENDICATIONS1. Pièce de tissu de verre formée de l'assemblage par tissage de fils de chaîne et de fils de trame en fils de verre, l'une des faces de la pièce étant revêtue d'un film d'hydrogel. 2. Pièce de tissu selon la revendication 1, caractérisée en ce que le tissu a une perméabilité à l'air comprise entre environ 2I/m2/s et environ 12 I/m2/s, comme mesuré par la pénétration d'air sous 200 Pa au travers d'une cellule de surface de 20 cm2. 3. Pièce selon la revendication 1 ou 2, caractérisée en ce que l'hydrogel est circonscrit sur ladite face de la pièce. 4. Pièce selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisée en ce que le taux d'emport d'hydrogel est supérieur ou égal à 7g/m2, de préférence compris entre environ 7 g/m2 et environ 12 g/m2. 5. Pièce selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisée en ce que l'hydrogel est un hydrogel à base d'amidon, de gomme arabique, d'agar-agar, d'agarose, de gomme de guar, de caroube, de carrhaghénane, d'alginate, de xanthane, de gellane, de cellulose bactérienne, d'albumine, de caséine, de collagène, de gluten, de méthylceilulose, de hyaluronane, d'acide hyaluronique, de pectine, de chitosan, de carboxyméthylcellulose ou de PAAM. 6. Pièce selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisée en ce que la 20 seconde face de la pièce est revêtue d'une couche continue d'un polymère synthétique hydrosoluble. 7. Pièce selon la revendication 6, caractérisée en ce que le polymère est choisi parmi les poly(acrylamide), les poly(N-viny( pyrrolidone), les polyéthylènes Glycol, les alcools polyvinyliques, les poly(acide acrylique) + acide méthacrylique, les poly(oxyde d'éthylène), 25 les poly(vinyl amine). le poly(acrylamide), le PVP poly(N-vinyl pyrrolidone), le PEG polyéthylène Glycol ou le PVA alcoolpolyvinylique. 8. Pièce selon la revendication 6 ou 7, caractérisée en ce que le polymère hydrosoluble contient au moins un élément nutritif pour cellule procaryote, cet élément pouvant être sous forme dissoute, colloïdale ou solide. 30 9. Pièce selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que la surface massique du tissu de verre est comprise entre environ 100 et environ 150 g/m2, de préférence entre environ 120 et environ 135 g/m2, mieux entre environ 125 et environ 130 g/m2. 10. Pièce selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce 35 que les fils de chaîne et de trame sont des fils de verre multifilaments. 3052163 16 11. Pièce selon la revendication 10, caractérisée en ce que les fils de chaîne ont un titre compris entre 5,5 et 34 tex, de préférence entre 10 et 22 tex, et/ou sont formés de filaments de diamètre compris entre environ 5 et environ 9 pm, de préférence entre environ 5 et environ 6 pm, et/ou les fils de trame ont un titre compris entre 22 et 68 tex, de préférence 5 entre 22 et 34 tex, et/ou sont formés de filaments de diamètre compris entre environ 5 et environ 9 pm, de préférence entre environ 6 et environ 9 pm. 12. Pièce selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que les bords de la pièce sont formés des fils de chaîne et de trame soudés entre eux sur tout le pourtour de la pièce. 10 13. Pièce selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que sa forme plane est un rond. 14. Pièce selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée par un ensemencement en stries de microorganismes, notamment de bactéries, ou par des colonies de micro-organismes, notamment bactéries, présent(s) à la surface de l'hydrogel. 15 15. Pièce selon l'une quelconque des revendications 1 à 13, pour utilisation comme support d'ensemencement de microorganisme, de préférence de bactérie. 16. Boîte d'ensemencement, notamment boîte de Petri, contenant une pièce selon l'une quelconque des revendications 1-14. 17. kit de culture de cellules procaryotes, comportant au moins une pièce de tissu selon l'une quelconque des revendications 1-13, enfermée dans un sachet ou sous blister garantissant la stérilité de la pièce placée à l'intérieur, et un boîtier comportant un fond à rebord conçu pour pouvoir loger cette pièce de tissu selon, et de préférence un couvercle, ce boîtier étant enfermé dans un sachet ou sous blister garantissant la stérilité du boîtier. 18. Procédé de culture cellulaire, comprenant le fait de disposer d'une pièce de tissu formée de l'assemblage par tissage de fils de chaîne et de fils de trame en fils de verre, avec une couche d'hydrogel sur l'une de faces, notamment selon l'une quelconque des revendications 1-13, d'ensemencer cet hydrogel en surface avec une suspension de cellules procaryotes, tout en fournissant des éléments nutritifs permettant la culture de ces cellules.