FR 3057275 A1 20180413 FR 1659745 A 20161010 1 PROCEDE ET DISPOSITIF DE PREPARATION D'ECHANTILLONS Domaine technique La présente invention concerne, de manière générale, la préparation d'échantillon aux fins 5 de capture et concentration de microorganisme ou de protéine issue dudit microorganisme. Le domaine d'application de l'invention est celui de la microbiologie et plus particulièrement celui de la microbiologie industrielle. Etat de la technique 10 Les produits bruts utilisés et les produits transformés commercialisés par l'industrie agro- alimentaire (produits carnés, produits laitiers, produits de la mer, végétaux etc.), ainsi que les produits pharmaceutiques et cosmétiques et l'eau destinée à la boisson, sont soumis à de nombreux tests microbiologiques afin de s'assurer de leur innocuité (absence de bactéries pathogènes ou de dégradation, absence de bactéries marqueurs de contamination 15 dangereuse pour la santé, absence de toxines). L'analyse microbiologique de ces produits nécessite des techniques précises dont le temps d'obtention du résultat doit être le plus court possible. 20 Dans le domaine médical, il est nécessaire de prévoir et diagnostiquer le risque infectieux : plus le diagnostic est rapide et précis, plus la prise en charge des malades est efficace et le risque de transmission minimisé. L'approche est similaire pour la santé animale dans le domaine vétérinaire. 25 Dans le domaine alimentaire, la problématique est identique. Elle distingue cependant : - les micro-organismes pathogènes (tels que les Salmonella ou la souche E. Coli 0157 :H7) et leurs toxines dont la recherche s'applique aux matières premières, produits intermédiaires, produits finis commercialisés, - les micro-organismes non pathogènes, utilisés comme indicateurs-qualité du processus 30 de production, des matières premières aux produits finis, tout au long de la chaîne, - les bactéries d'intérêt technologique telles que les ferments, - les micro-organismes marqueurs de contamination. 3057275 2 La détection rapide et précise des contaminations présumées (au sein des lots alimentaires) permet de les contrôler et d'engager ainsi à bref délai des actions correctives. Techniquement, l'analyse microbiologique met généralement en oeuvre une ou plusieurs phases de pré-enrichissement et/ou d'enrichissement, une ou plusieurs phases de détection, une ou plusieurs phases d'énumération des micro-organismes. Pour des applications particulières, telles que le contrôle microbiologique agroalimentaire, une phase de confirmation peut également être requise, afin de répondre aux normes en vigueur dans ce domaine. La phase de détection se base historiquement sur la croissance (culture) des microorganismes sur milieux essentiellement géloses, et par la mise en évidence des caractères métaboliques des micro-organismes recherchés. On utilise classiquement des substrats enzymatiques spécifiques. Ces substrats peuvent être des composés utilisés dans le métabolisme bactérien et conduisant à une modification du milieu détectée par des indicateurs (variation de pH, réduction, précipitation, etc.). Dans d'autres cas, ces substrats enzymatiques sont composés de deux parties, une première partie spécifique de l'activité enzymatique à révéler, appelée également partie cible, et une seconde partie faisant office de marqueur, appelée partie marqueur, généralement constituée par un chromophore ou un fluorophore. Par le choix de ces substrats, selon qu'il y a réaction ou non, il est possible de caractériser la nature d'un micro-organisme ou de discriminer différents groupes de micro-organismes. Ainsi, l'apparition ou la disparition d'une coloration ou d'une fluorescence sera la signature d'un genre ou d'un type de micro-organismes. A cet égard, l'utilisation de milieux chromogènes permet la détection et l'identification simultanées des germes recherchés. Elle simplifie le processus et diminue sensiblement le délai d'obtention du résultat. On citera à titre d'exemple concret les milieux ChromlD® de la demanderesse. Ces milieux chromogènes sont basés sur la détection de caractères métaboliques spécifiques des germes recherchés comme par exemple l'activité enzymatique beta-glucuronidase pour Escherichia coli. Les immuno-essais constituent une autre des technologies utilisées pour le test de détection. Ils font appel aux caractéristiques immunogènes des micro-organismes 3057275 3 recherchés. De façon non exhaustive, on peut citer les techniques ELISA (« Enzyme Linked Immuno Sorbent Assay »), par compétition ou de type sandwich. Enfin, les techniques de biologie moléculaire, basées sur les caractères génomiques des 5 micro-organismes recherchés, sont également mises en oeuvre pour détecter et identifier les micro-organismes cibles. Ces techniques de biologie moléculaire offrent des perspectives extrêmement intéressantes. On citera à titre d'exemple les techniques d'amplification classiques telles la PCR (« Polymerase Chain Reaction » en langue anglaise) et la NASBA (« Nucleic Acid Sequence Based Amplification » en langue 10 anglaise), qui peuvent être couplées à des techniques de détection en temps réel connues de l'homme du métier. La phase de confirmation, quant à elle, est parfois nécessaire pour confirmer la présence du pathogène recherché, lorsque le résultat des méthodes développées précédemment est 15 positif. Ceci impose un test complémentaire et l'utilisation d'un principe de détection différent de celui utilisé lors de la première analyse. Les techniques décrites supra sont utilisées à loisir pour la confirmation. L'identification complète et précise d'un micro-organisme dans un échantillon nécessite 20 donc l'enchaînement de plusieurs étapes : enrichissement, détection et, le cas échéant, confirmation. La standardisation des tests utilisés en routine a permis l'automatisation des méthodes de détection qui restent cependant longues à mettre en oeuvre. Un inconvénient des méthodes traditionnelles d'analyse utilisées dans l'état de la technique réside dans le fait que les étapes d'enrichissement, de détection et, le cas échéant, de confirmation sont 25 réalisées de manière séquentielle et nécessitent un grand nombre de manipulations chronophages, impactant ainsi le temps nécessaire au rendu des résultats. Tel qu'indiqué précédemment, la phase de détection est généralement précédée d'au moins une phase de pré-enrichissement et/ou d'enrichissement (plus généralement 30 dénommée phase ou étape d'enrichissement aux fins de la présente demande). Cette dernière est primordiale dans la mesure où, à l'heure actuelle, il n'existe pas de méthode pour détecter un micro-organisme cible dans un échantillon biologique, présent en 3057275 4 quantité minime, par exemple de l'ordre de quelques cellules dans l'échantillon, sans faire appel à une étape préalable d'enrichissement. Cette phase d'enrichissement requiert l'utilisation de milieux de culture, sélectifs ou non (en fonction du but recherché), qui ont pour but de promouvoir la croissance des micro-organismes cibles dans les échantillons 5 biologiques ou environnementaux, tout en limitant la croissance des flores non cibles. Les milieux de culture sont fréquemment utilisés dans des conteneurs de type sac en plastique stérile, dans lesquels ils sont mis en contact avec les échantillons alimentaires ou environnementaux, aux fins de remise en suspension et enrichissement des microorganismes recherchés. Tel que mentionné supra, cette phase d'enrichissement est 10 nécessaire notamment afin de révéler la présence d'au moins un micro-organisme cible dans une quantité d'échantillon très variable et éventuellement très grande, par exemple de 25 grammes (g) à 375 g dilués dans un volume de milieu de culture compris entre 225 et 3375 millilitres (mL). A l'issue de cette étape d'enrichissement, un aliquote (généralement d'un volume compris entre 5 microlitres ([.tL) et 5 mL) est 15 traditionnellement prélevé pour mettre en oeuvre l'étape de détection des micro- organismes cibles. Or, dans cet aliquote, il est nécessaire de disposer d'une quantité suffisante de micro-organismes cibles pour s'assurer de leur détection systématique. Ainsi en fin d'incubation et malgré l'emploi de milieux sélectifs, la concentration en 20 micro-organismes cibles reste dans certains cas insuffisante et/ou la concentration en flore annexe demeure trop importante pour effectuer une détection efficace des microorganismes cibles. Dans cette configuration, l'homme du métier a généralement recours à des méthodes de traitement de l'échantillon ayant pour objectif d'augmenter le rapport entre la concentration en micro-organismes cibles et la concentration en flore annexe. Par 25 exemple, après enrichissement, une fraction de l'échantillon (préférentiellement entre 1 et 10 mL) est traitée par une méthode d'immuno-concentration en utilisant des billes magnétiques fonctionnalisées par des anticorps spécifiques des micro-organismes cibles. Or cette méthode de traitement de l'échantillon est limitée par le faible volume de 30 l'aliquote utilisé. Elle est fastidieuse car complètement manuelle et présente, en outre, un risque de contamination de l'utilisateur car l'échantillon, contenant potentiellement des agents pathogènes, est manipulé après enrichissement. 3057275 5 En outre, l'étape d'enrichissement requiert non seulement un milieu de culture ad hoc mais également une incubation de l'ensemble formé au moins par l'échantillon biologique et le milieu de culture à une température optimale pour permettre la croissance du/des micro-organisme(s) cible(s). L'incubation s'effectue, en général, à une température allant 5 de 25 à 45°C durant un laps de temps prédéterminé (par exemple de 6h à 48h). Or, durant cette période d'incubation, aucune action supplémentaire n'est pratiquée sur l'échantillon. Ce laps de temps n'est donc pas mis à profit, il est en quelque sorte « perdu ». Or, cela va à l'encontre de la problématique présentée supra, visant à mettre au point une technique d'analyse précise et rapide. En effet, durant cette étape d'enrichissement, l'échantillon est 10 immobilisé dans une étuve sans moyen d'intervention car cette étape s'effectue en général pendant la nuit. Eu égard à la somme des problématiques développées supra, un des objectifs de la présente invention vise à améliorer la capture et/ou la concentration des micro-organismes 15 cibles (d'intérêt) ou des protéines issues desdits microorganismes en augmentant le temps de contact avec un support de capture et/ou concentration. Un autre objectif de la présente invention est de contrôler le volume d'échantillon en contact avec les partenaires de liaisons du support de capture, le temps de contact de 20 l'échantillon avec ces partenaires de liaison et donc le débit de l'échantillon au travers le support de capture. Cette nouvelle technique permet ainsi d'optimiser les conditions de réactions des partenaires de liaisons avec les microorganismes ou les protéines issues de ces microorganismes contenu(e)s dans l'échantillon. 25 Un autre objectif de la présente invention vise à proposer un traitement de l'échantillon (de préférence de manière automatisée) sur un grand volume d'échantillon et non pas uniquement sur un aliquote, ledit traitement consistant à capturer et concentrer les microorganismes cibles (d'intérêt) ou les protéines issues desdits microorganismes en vue d'améliorer la sensibilité et la spécificité de la méthode de détection utilisée post- 30 traitement. 3057275 6 L'invention a également pour objectif de valoriser/optimiser le temps d'incubation durant la phase d'enrichissement de l'échantillon biologique en effectuant, pendant la période d'incubation/enrichissement et de croissance des micro-organismes, une capture et/ou une concentration des micro-organismes cibles présents dans l'échantillon (de préférence de 5 manière automatisée). Un autre objectif de la présente invention est de fournir un procédé permettant d'augmenter la cadence d'analyse des échantillons et/ou de diminuer le temps total nécessaire à l'analyse de l'échantillon biologique. 10 Un autre objectif de la présente invention vise à limiter les manipulations de l'échantillon contenu dans le conteneur, limitant de ce fait les risques de contamination, soit du personnel manipulant l'échantillon, soit de l'échantillon lui-même. A cet égard, la présente invention a également pour objet la mise au point d'un procédé de préparation d'un 15 échantillon automatisé ou semi-automatisé. Un autre objectif de la présente invention est d'améliorer la traçabilité de l'analyse du fait de la réduction drastique des étapes de manipulation des échantillons. 20 D'autres objectifs apparaîtront à la lecture de la présente demande. La présente invention vise donc à atteindre tout ou partie des objectifs précités. Exposé de l'invention 25 Conteneur selon l'invention La présente invention a pour objet un conteneur un dispositif de capture et/ou concentration de microorganisme ou de protéine issue dudit microorganisme, comprenant un support de capture et/ou concentration, 30 un récipient comprenant au moins deux parois dont au moins une est flexible, adapté pour recevoir au moins un échantillon susceptible de contenir au moins un microorganisme cible, ledit récipient comprenant 3057275 7 o un orifice d'entrée emménagé au travers d'une desdites parois et permettant le passage de l'échantillon contenu dans le récipient vers le dispositif de capture et/ou concentration o un guide fluidique d'entrée, susceptible de contenir un volume 5 d'échantillon défini et permettant de guider ledit volume d'échantillon vers ledit orifice d'entrée o au moins un moyen de contrôle du débit d'échantillon transféré du guide fluidique vers le dispositif de capture et/ou concentration au travers dudit orifice d'entrée 10 o un orifice de sortie emménagé au travers d'une desdites parois permettant le passage de l'échantillon du dispositif de capture et/ou concentration vers le récipient, ledit dispositif de capture et/ou concentration étant fixé à une paroi du récipient. 15 Le conteneur utilisé aux fins de la présente invention comprend un récipient ouvert ou clos (par exemple de manière hermétique ou étanche) comprenant au moins deux parois dont au moins une est flexible. Selon un mode de réalisation préféré, le récipient est un sac possédant une enveloppe flexible du type sac d'homogénéisation. De préférence, au moins une paroi du récipient est transparente afin d'être en mesure de percevoir le volume 20 occupé par le liquide à l'intérieur du récipient. Selon la présente invention, le récipient comprend un guide fluidique d'entrée, susceptible de contenir un volume d'échantillon défini et permettant de guider ledit volume d'échantillon vers ledit orifice d'entrée. 25 Le guide fluidique peut être constitué par tout moyen permettant de guider l'échantillon biologique contenu dans le récipient vers l'orifice d'entrée du dispositif de capture/concentration. Selon un mode de réalisation particulièrement préféré le guide fluidique est élastique et destiné à être pressé. Il peut s'agir d'un tube en matière silicone par exemple. 30 Selon un autre mode de réalisation, le guide fluidique est une poche interne du récipient destinée à être pressée. Préférentiellement, au moins une partie de la poche interne est une partie de la paroi flexible du récipient. 3057275 8 Selon l'invention, le récipient peut comprendre un guide fluidique de sortie permettant une communication fluidique entre l'orifice de sortie du dispositif de capture et/ou concentration et le récipient. Si l'on considère la partie supérieure du conteneur comme étant la partie « haute » et la 5 partie inférieure de ce conteneur comme étant la partie « basse », l'orifice d'entrée peut être située dans la partie basse et l'orifice de sortie dans la partie haute. Dans ce cas-là, en schématisant, la circulation de l'échantillon à travers le support de capture/concentration se fait de bas en haut. Dans un autre mode de réalisation, l'orifice d'entrée peut être située dans la partie haute et l'orifice de sortie dans la partie basse. Dans ce cas-là, la circulation 10 de l'échantillon à travers le support de capture/concentration se fera par gravitation de haut en bas. Le guide fluidique peut éventuellement être muni d'un système d'évent empêchant que les parois du récipient ne se collent entre elles et obstruent le passage vers le dispositif de 15 capture et/ou concentration. Selon l'invention, le récipient comprend un moyen de contrôle du volume d'échantillon transféré du guide fluidique vers le dispositif de capture et/ou concentration au travers dudit orifice d'entrée. Dans un mode préféré, le moyen de contrôle du volume est une 20 section d'un diamètre déterminé du guide fluidique et la taille (la longueur) du guide fluidique. Selon un mode de réalisation de l'invention, le récipient peut comprendre un compartiment servant à recevoir le filtrat de l'échantillon, un filtre séparant ledit récipient 25 en deux compartiments, l'un servant à recevoir l'échantillon, l'autre servant à recevoir l'échantillon filtré. Selon un autre mode de réalisation, le guide fluidique comprend un filtre évitant que le support de capture ne soit obstrué avec certains échantillons. 30 Selon la présente invention, l'échantillon peut être de diverses origines, par exemple d'origine alimentaire, environnementale, vétérinaire ou clinique. Parmi les échantillons 3057275 9 d'origine alimentaire, l'on peut citer, de façon non-exhaustive, un échantillon de produits lactés (yaourts, fromages...), de viande, de poisson, d'oeuf, de fruit, de légume, d'eau, de boisson (lait, jus de fruits, soda, etc.). Bien évidemment, ces échantillons d'origine alimentaire peuvent aussi provenir de sauces ou de plats plus élaborés ou des matières 5 premières non (ou partiellement) transformées. Un échantillon alimentaire peut enfin être issu d'une alimentation destinée aux animaux, telle que des tourteaux, des farines animales. A titre d'exemple d'échantillons, il convient également de mentionner les échantillons liés à l'environnement tels les prélèvements de surface, d'eau, d'air, etc. Les échantillons d'origine clinique peuvent correspondre à des prélèvements de fluides 10 biologiques (sang total, sérum, plasma, urine, liquide céphalo-rachidien, etc.), de selles, de prélèvements de nez, de gorge, de peau, de plaies, d'organes, de tissus ou de cellules isolées. Cette liste n'est évidemment pas exhaustive. D'une manière générale, le terme « échantillon » se réfère à une partie ou à une quantité 15 (plus particulièrement une petite partie ou une petite quantité) prélevées à partir d'une ou plusieurs entités aux fins d'analyse. Cet échantillon peut éventuellement avoir subi un traitement préalable, impliquant par exemple des étapes de mélange, de dilution, encore de broyage, en particulier si l'entité de départ est à l'état solide, ou encore de pré-enrichissement ou d'enrichissement par mise en contact avec un milieu de culture. Il peut 20 également être filtré préalablement ou au sein même du récipient ou du dispositif de capture/concentration. L'échantillon est donc sous forme liquide au cours du procédé selon la présente invention. L'échantillon outre le milieu de culture peut, bien évidemment, comprendre des éléments additionnels, tels que des vitamines ou autres éléments nutritifs utiles à la culture de 25 micro-organismes, des agents sélectifs, des substrats spécifiques et autres éléments bien connus de l'homme du métier. L'échantillon analysé est, en général, susceptible de - ou suspecté de - contenir au moins un micro-organisme cible. Dans la plupart des cas, ce dernier est un micro-organisme 30 pathogène (tel que Salmonella) qu'il convient de détecter à des fins sanitaires. 3057275 10 Le terme « micro-organisme » a la même signification que celle généralement admise en microbiologie et comprend notamment les bactéries gram positif ou gram négatif, les levures, les moisissures et plus généralement, les organismes unicellulaires, invisibles à l'oeil nu, qui peuvent être manipulés et multipliés en laboratoire. 5 Selon un mode de réalisation préféré, le ou les micro-organisme(s) à détecter sont des bactéries, par exemple des entérobactéries telles que E. Coli. La présente invention s'applique également à la capture et/ou concentration de protéine(s) issue(s) dudit microorganisme telle que les toxines. A titre illustratif, l'on peut citer la détection des toxines sécrétées par Staphylococcus aureus. 10 Avantageusement, l'échantillon comprend au moins un milieu de culture permettant la croissance des micro-organismes et, en particulier du ou des micro-organismes cibles. Par « milieu de culture », l'on entend un milieu comprenant tous les éléments nécessaires à la survie et/ou à la croissance des micro-organismes et, en particulier des micro-organismes 15 recherchés (par exemple de l'eau tamponnée peptonée). Le milieu de culture peut contenir d'éventuels additifs, par exemple : des peptones, un ou plusieurs facteurs de croissance, des hydrates de carbone, un ou plusieurs agents sélectifs, des tampons, un ou plusieurs gélifiants, une ou plusieurs vitamines, etc. Ce milieu de culture peut se présenter sous forme liquide ou gélifiée prête à l'emploi, à savoir prête à être ensemencée en tube, en 20 flacon ou sur boîte de Pétri. L'expression « milieu de culture » englobe bien évidemment les milieux et bouillons d'enrichissement. Selon la présente invention, le conteneur comprend un dispositif de capture et/ou concentration de microorganisme ou de protéine issue dudit microorganisme, comprenant 25 un support de capture et/ou concentration. Avantageusement, le dispositif de capture et/ou concentration, est en partie accolé à la face extérieure d'une desdites parois du récipient. Encore préférentiellement, le récipient comprend au moins deux connecteurs étanches adaptés aux orifices d'entrée et de sortie du récipient. Les connecteurs étanches empêchent alors l'échantillon de se répandre hors du conteneur et ainsi de contaminer 30 l'environnement ou le technicien manipulant l'échantillon. 3057275 11 Dans un mode de réalisation préféré, le dispositif de capture/concentration peut se présenter sous la forme d'une cartouche fixée au récipient. Préférentiellement, le dispositif de capture et/ou concentration peut être désolidarisé de la paroi dudit récipient. 5 Par «support de capture et/ou concentration», l'on entend tout support permettant de fixer le microorganisme ou la protéine dudit microorganisme recherché(e) et faire en sorte qu'il(elle) soit en concentration suffisante aux fins des étapes ultérieures d'analyse. Le «support de capture et/ou concentration» sera également mentionné indifféremment par «support de capture/concentration». 10 Préférentiellement, le « support de capture et/ou concentration» est choisi parmi les supports particulaires ou les supports monoblocs. Le support de capture/concentration peut être des particules. Préférentiellement, le support de capture et concentration est un support de capture et/ou de concentration poreux. De préférence, il s'agit d'une membrane poreuse. 15 Avantageusement, le support de capture et concentration est fonctionnalisé avec au moins un partenaire de liaison spécifique du micro-organisme cible ou de protéine issue dudit microorganisme. Selon un mode de réalisation préféré, le partenaire de liaison spécifique est sélectionné dans le groupe comprenant les anticorps, les fragments Fab, les fragments Fab', les 20 protéines de phages recombinantes ou non, les phages ou tout autre ligand bien connu de l'homme du métier. L'analyse peut être réalisée in situ à partir du support de capture et concentration. La révélation de la présence des micro-organismes cibles au niveau du support de capture et concentration peut être effectuée par l'intermédiaire de tout système de révélation approprié, c'est-à-dire apte à permettre la détection du ou des micro- 25 organisme(s) cible(s). Par « système de révélation », l'on entend toute molécule capable de se coupler avec les micro-organismes ou les partenaires de liaison desdits microorganismes en permettant, par leurs propriétés de transduction (fluorescence, coloration, radioactivité, etc.) de révéler la présence desdits micro-organismes. Cette révélation de la présence des micro-organismes cibles peut être notamment obtenue par visualisation (à 30 l'oeil nu) ou lecture optique (via un dispositif de lecture optique de type caméra) d'une coloration (telle qu'une coloration rouge due à la réduction du TTC en formazan par les micro-organismes) ou d'une fluorescence sur tout ou partie du support de capture. 3057275 12 De manière non-limitative, l'analyse peut être réalisée par tout moyen de détection, ledit moyen de détection pouvant être sélectionné parmi les moyens de détection optiques, les moyens de détection électriques (notamment électrochimiques), les moyens de détection acoustiques, les moyens de détection thermiques, les moyens de détection mécaniques, les 5 moyens de détection magnétiques. La présente invention a également pour objet l'utilisation du conteneur pour capturer et concentrer un microorganisme ou une protéine issue dudit microorganisme compris dans un échantillon. 10 Dans un mode de réalisation particulier, le conteneur peut être disposé dans un dispositif comprenant au moins un emplacement pour recevoir ledit conteneur, ledit dispositif comprenant - au moins un moyen de pression sur le guide fluidique afin d'emprisonner dans 15 le guide fluidique un volume déterminé d'échantillon - et au moins un moyen de déplacement pour générer le déplacement de l'échantillon contenu dans le récipient vers le guide fluidique et/ou du guide fluidique vers le support de capture/concentration. 20 Ainsi, le déplacement de l'échantillon peut être exercé manuellement ou mécaniquement. Un tel dispositif est décrit dans la demande de brevet W02014072438 déposée par la demanderesse. Il peut s'agir d'un dispositif à pales (ou à bras), lesdites pales venant comprimer le récipient à paroi flexible (par exemple en matière plastique de type PVC, polyéthylène, polyester). Ce dispositif permet une maitrise optimale du débit de 25 circulation de l'échantillon dans le support de capture/concentration. Le moyen de pression peut être, quant à lui, tout moyen permettant de pincer le guide fluidique, empêchant à l'échantillon à l'extérieur du guide fluidique de rentrer à l'intérieur du guide fluidique. 30 La présente invention a également pour objet la mise au point d'un procédé de préparation d'un échantillon susceptible de contenir au moins un micro-organisme cible ledit procédé 3057275 13 étant réalisé au sein d'un conteneur tel que décrit dans la présente demande et comprenant essentiellement les étapes suivantes : a) générer un déplacement de tout ou partie de l'échantillon vers le guide fluidique, b) générer un déplacement d'un volume défini de l'échantillon, du guide fluidique 5 vers le dispositif de capture et/ou concentration au travers l'orifice d'entrée, c) capturer et/ou concentrer sur le support de capture et/ou concentration ledit microorganisme ou une protéine issue dudit microrganisme contenu(e) dans l'échantillon, ledit volume d'échantillon traversant le support de capture et/ou concentration puis ressortant à travers l'orifice de sortie dans le récipient. 10 Selon un mode de réalisation préféré, les étapes a) à c) sont effectuées une ou plusieurs fois. La recirculation de l'échantillon à travers le support de capture permet d'augmenter le temps de contact de microorganisme avec le support de capture/concentration et donc d'augmenter la probabilité de rencontre du microorganisme avec le support de 15 capture/concentration. Selon la présente invention, l'échantillon peut éventuellement avoir subi un traitement préalable, impliquant par exemple des étapes de pré-enrichissement ou d'enrichissement par mise en contact avec un milieu de culture. Cette étape de mise en contact de 20 l'échantillon avec un milieu de culture peut se faire également au sein du dispositif selon l'invention. Ainsi, avantageusement, ledit procédé comprend une étape d'incubation dudit échantillon à une température et durant un laps de temps suffisant pour permettre la croissance dudit au moins un micro-organisme cible, l'étape d'incubation ayant lieu avant l'étape a) ou 25 pendant tout ou partie des étapes a) à c). Dans ce contexte, le temps d'incubation peut être optimisé en choisissant d'effectuer la capture/concentration pendant l'incubation. Concernant l'étape d'incubation, l'homme du métier saura, à partir de son expérience, de ses connaissances générales et/ou des données bibliographiques à sa disposition, adapter 30 la température et le laps de temps nécessaires pour permettre une croissance suffisante du micro-organisme cible, en fonction du type de micro-organisme recherché. A titre informatif, et tel que mentionné dans le préambule de la présente demande, l'incubation 3057275 14 s'effectue, en général, à une température allant de 25 à 45°C durant un laps de temps prédéterminé (par exemple de 6h à 48h). Selon un mode de réalisation, le support de capture et/ou concentration est une membrane 5 poreuse. Préférentiellement, la circulation se fait en flux tangentiel au travers de la membrane, ce qui a pour avantage d'augmenter le temps de contact entre le microorganisme et le support de capture. Avantageusement, tout ou partie de l'échantillon contenu dans le récipient circule à travers le support de capture/concentration à un débit compris entre 0.5 mL/min par cm2 10 de support à 5 mL/min par cm2 de support, ledit support étant poreux et ayant une surface développée d'au moins 20 cm2. Ainsi la présente invention a pour avantage de permettre la capture puis la révélation de la présence de micro-organisme cible dans une quantité d'échantillon très variable et 15 éventuellement très grande, par exemple de 25 grammes (g) à 375 g dilués dans un volume de milieu de culture compris entre 225 et 3375 mL. Ainsi le volume de l'échantillon qui peut passer à travers le dispositif de capture/concentration est compris entre 10 mL et 5000 mL, préférentiellement entre 50 mL et 4000 mL, plus préférentiellement entre 200 et 3500 mL, encore plus préférentiellement entre 225 et 3375 20 mL. Ce procédé permet avantageusement d'utiliser un grand volume de départ pour effectuer la capture/concentration, ce qui permet d'augmenter la probabilité de rencontre du microorganisme cible (ou la protéine issue de ce microorganisme) avec le support de capture/concentration. Préférentiellement, au moins 10 mL de l'échantillon contenu dans 25 le récipient circule à travers le support de capture et/ou concentration, préférentiellement au moins 50 mL. Ainsi le procédé de préparation d'un échantillon, selon l'invention est un procédé de capture/concentration d'au moins un micro-organisme cible d'un échantillon susceptible 30 de contenir ledit au moins un micro-organisme cible. Il s'agit d'un procédé destiné à permettre la capture/concentration d'au moins un micro-organisme cible, de préférence, en présence d'au moins un milieu de culture/bouillon d'enrichissement. Ainsi, lorsque 3057275 15 l'on soupçonne que le(s) micro-organisme(s) recherché(s) est/sont présent(s) en quantité minime, par exemple de l'ordre de quelques cellules, dans l'échantillon, ce procédé permet que ledit au moins un micro-organisme cible soit présent en fin de procédé selon l'invention à une concentration telle que l'utilisateur puisse éventuellement le détecter de 5 manière systématique ou quasi-systématique en recourant aux méthodes traditionnelles de détection (culture sur milieux géloses, immuno-essais, techniques de biologie moléculaire, etc.). Le déplacement de tout ou partie de l'échantillon vers le guide fluidique puis vers le 10 dispositif de capture et/ou concentration au travers l'orifice d'entrée peut être obtenu par tout moyen connu par l'homme du métier. Le(s) guide(s) fluidique(s) permet(tent) au contenu de rentrer en contact avec l'orifice d'entrée tout en empêchant au contenu de rentrer en contact avec l'orifice de sortie s'il n'est pas passé à travers le dispositif de capture et concentration. 15 En particulier, ce déplacement peut être généré par l'application d'une force ou d'un ensemble de forces sur le conteneur ou encore au changement du bilan des forces s'appliquant au conteneur. Ainsi, par exemple, si le conteneur est tenu en deux points par deux forces de maintien et si l'une des deux forces cesse, le conteneur va s'incliner et le 20 niveau du contenu va varier, au niveau d'au moins une partie de la surface interne du conteneur, du niveau de repos vers un niveau situé au-dessus de ce dernier et va possiblement être mis en contact avec le moyen destiné à créer l'orifice d'entrée via le guide fluidique. Le déplacement du contenu peut également être obtenu en appliquant une force ou un système de forces à l'intérieur du récipient, par exemple en gonflant et 25 dégonflant une poche flexible gonflable (telle qu'un ballon ou un boudin gonflable) placée dans l'enceinte du récipient. Avantageusement l'étape c) se fait à l'aide d'un dispositif comprenant un moyen de déplacement et un moyen de pression tel que décrit plus-haut, afin d'exercer une pression sur le guide fluidique et permettre qu'un volume déterminé de l'échantillon soit mis en contact avec le support de capture et/ou 30 concentration. Un tel dispositif est décrit dans la demande de brevet W02014072438 déposée par la demanderesse. Il peut s'agir d'un dispositif à pales (ou à bras), lesdites 3057275 16 pales venant comprimer le récipient à paroi flexible (par exemple en matière plastique de type PVC, polyéthylène, polyester). Ainsi le procédé selon l'invention permet de capturer et concentrer efficacement un microorganisme cible d'un échantillon biologique tout en limitant les manipulations de 5 l'échantillon contenu dans le récipient, limitant de ce fait les risques de contamination, soit du personnel manipulant l'échantillon, soit de l'échantillon lui-même. Selon un mode particulier, le procédé selon l'invention comprend une étape ultérieure 10 d'analyse dudit support de capture et concentration par lecture visuelle, optique ou tout autre moyen. Ainsi ce procédé permet d'analyser ledit ou lesdits micro-organisme(s) cible(s) et/ou tout ou partie de leurs propriétés. L'analyse peut notamment consister en un procédé de détection directe - et le cas échéant d'identification - dudit ou desdits microorganisme(s) ou en un procédé de détection - et le cas échéant d'identification - indirecte, 15 par exemple lié à la détection d'informations nucléotidiques et/ou protéiques spécifiques d'un type de micro-organisme à détecter et/ou identifier. Cette détection et/ou identification indirecte peut également résulter de la détection de protéines se liant spécifiquement à des protéines de bactériophages spécifiques dudit ou desdits microorganisme(s) à détecter. La présence d'un micro-organisme cible peut également être 20 décelée par une résistance à un antibiotique donné ou à un ensemble d'antibiotiques, le profil de résistance à cet ou ces antibiotique(s) étant, dans ce cas, caractéristique du ou des micro-organisme(s) à détecter. Dans un mode de réalisation particulier, l'analyse dudit support de capture et concentration se fait après désolidarisation du dispositif de capture/concentration et/ou 25 dudit support de capture/concentration du récipient. Ainsi, l'analyse du support de capture /concentration peut également être effectuée ex situ en transférant le dispositif et/ou le support de capture/concentration dans un dispositif d'analyse. Dans un mode de réalisation préféré, les microorganismes couplés au support de capture / concentration sont lyses afin de récupérer les acides nucléiques puis analysés 30 par une méthode d'amplification telle que la PCR. Le procédé selon la présente invention permet également d'effectuer des contrôles de stérilité notamment au sein des prélèvements alimentaires et environnementaux. Pour ce 3057275 17 faire, l'on utilise, en tant que moyens d'analyse, des moyens de détection génériques de micro-organismes tels que des supports de capture fonctionnalisés avec des partenaires de liaison génériques de type anti-Gram-, anti-Gram+, etc. Le type d'analyse réalisé avec le procédé de l'invention peut donc être non seulement qualitatif (détection et identification 5 de micro-organisme(s) spécifique(s)) mais également quantitatif ou semi-quantitatif. Mode de réalisation particulier du dispositif de capture/concentration Dans un mode particulier, le dispositif de capture/concentration est composé de deux parties : 10 une première partie correspondant à un porte-cartouche fixable à la paroi du récipient et une deuxième partie correspondant à la cartouche comprenant le support de capture. 15 Selon ce mode particulier le dispositif de capture et/ou concentration de microorganisme ou de protéine issue dudit microorganisme comprend - un porte-cartouche comprenant : - au moins un moyen d'insertion permettant à une cartouche d'être insérée dans le porte-cartouche, 20 - au moins un premier conduit d'admission permettant l'entrée d'un échantillon liquide ; le premier conduit d'admission étant en liaison avec une voie d'admission de la cartouche lorsque le porte-cartouche et la cartouche sont positionnés selon un chemin fluidique dit de « capture/concentration », 25 - au moins un deuxième conduit d'admission permettant l'entrée d'un liquide de lavage et/ou d'un liquide de lyse et/ou un liquide d'élution ; le deuxième conduit d'admission étant en liaison avec une voie d'admission de la cartouche lorsque le porte-cartouche et la cartouche sont positionnés selon un chemin fluidique dit « de lyse et/ou lavage et/ou élution». 30 - au moins un conduit d'évacuation permettant la sortie de l'échantillon liquide et/ou du liquide de lavage, de lyse ou d'élution; le conduit d'évacuation étant en liaison avec la voie d'évacuation de la cartouche. 3057275 18 - une cartouche comprenant : - au moins un moyen d'insertion permettant à la cartouche d'être insérée dans au moins deux positions différentes, une première position selon un 5 chemin fluidique dit de « capture/concentration » et une deuxième position selon un chemin fluidique dit de « lyse et/ou lavage et/ou élution». - un module réactionnel comprenant - au moins une voie d'admission de l'échantillon liquide et/ou du liquide de lavage et/ou de lyse et/ou d'élution permettant son (leur) 10 entrée à l'intérieur du module, - au moins une voie d'évacuation de l'échantillon liquide et/ou du liquide de lavage et/ou de lyse et/ou d'élution permettant son (leur) évacuation vers le porte-cartouche, - un support de capture et/ou concentration disposé entre la voie 15 d'admission et la voie d'évacuation de telle sorte que tout ou partie de l'échantillon ou des liquides le traverse ; La cartouche peut comporter un couvercle et un fond assemblés par clipsage, collage, soudage, bouterollage, rivetage, sertissage, ou tout autre moyen permettant un assemblage 20 fiable et résistant. L'étanchéité entre le couvercle et le fond de la cartouche peut être réalisée par simple collage. Elle peut être aussi réalisée par ajout d'une colle, silicone, mastic entre les faces ad-hoc du couvercle et du fond de la cartouche. Elle peut également être réalisée au moyen d'un joint et contre-joint. Le support de capture est disposé à l'intérieur du module de réaction de la cartouche. 25 La cartouche et le porte-cartouche comprennent un moyen d'insertion. On entend par « moyen d'insertion » tout moyen permettant de guider la cartouche dans le porte-cartouche. Il peut, par exemple, s'agir de glissières. De façon préférentielle, le moyen d'insertion contient un détrompeur, par exemple une glissière asymétrique, permettant de guider la cartouche dans le porte-cartouche dans un seul sens. 30 Préférentiellement, le dispositif est fixé à une paroi d'un récipient adapté pour recevoir un échantillon. Préférentiellement, le porte-cartouche et/ou la cartouche peut (peuvent) être désolidarisé(e)(s) de la paroi dudit récipient. 3057275 19 Le conteneur peut être ouvert ou clos (par exemple de manière hermétique ou étanche) comprenant au moins deux parois dont au moins une est flexible. Selon un mode de réalisation préféré, le récipient est un sac possédant une enveloppe flexible du type sac d'homogénéisation. De préférence, au moins une paroi du récipient est transparente afin 5 d'être en mesure de percevoir le volume occupé par le liquide à l'intérieur du récipient. Avantageusement, le dispositif de capture et/ou concentration est fixé sur la face externe d'une paroi d'un récipient adapté pour recevoir un échantillon et en connexion avec l'intérieur dudit récipient. La connexion entre le dispositif de capture et/ou concentration à l'extérieur et l'intérieur 10 du récipient peut se faire par l'intermédiaire de connecteurs. Les deux connecteurs sont alors étanches et adaptés aux premier conduit d'admission et au conduit d'évacuation du porte-cartouche positionné à l'extérieur du récipient. Les connecteurs étanches empêchent alors l'échantillon de se répandre hors du conteneur et ainsi de contaminer l'environnement ou le technicien manipulant l'échantillon. 15 Dans un mode particulier, une base est accolée à la face interne de la paroi du récipient et comprend - au moins un canal d'admission de l'échantillon liquide en liaison fluidique avec la voie d'admission de l'échantillon de la cartouche via le premier conduit d'admission du porte-20 cartouche. - au moins un canal d'évacuation de l'échantillon liquide et/ou de lavage et/ou de lyse, en liaison fluidique avec la voie d'évacuation de la cartouche via le conduit d'évacuation du porte-cartouche 25 La cartouche, le porte-cartouche et la base peuvent être constitués d'un matériau plastique, par exemple ils peuvent être injectés dans un polymère de la classe des polyoléfines, ou les polyamides, ou des polyesters (non limitatives). Certains matériaux biosourcés peuvent aussi être envisagés. Selon un mode de réalisation préférentiel, la base est connectée à un guide fluidique 30 permettant à l'échantillon contenu dans le récipient d'arriver au canal d'admission de la base. Le guide fluidique peut être constitué par tout moyen permettant de guider l'échantillon biologique contenu dans le récipient au canal d'admission de la base. Selon un mode de 3057275 20 réalisation particulièrement préféré le guide fluidique est élastique et destiné à être pressé. Il peut s'agir d'un tube en matière silicone par exemple. Si l'on considère la partie supérieure du conteneur comme étant la partie « haute » et la partie inférieure de ce conteneur comme étant la partie « basse », la voie d'admission et le 5 premier conduit d'admission de l'échantillon peuvent être situés dans la partie basse et la voie d'évacuation et le conduit d'évacuation dans la partie haute. Dans ce cas-là, en schématisant, la circulation de l'échantillon à travers le support de capture/concentration se fait de bas en haut. Dans un autre mode de réalisation, la voie d'admission et le premier conduit d'admission peuvent être situés dans la partie haute et la voie et le conduit 10 d'évacuation dans la partie basse. Dans ce cas-là, la circulation de l'échantillon à travers le support de capture/concentration se fera par gravité de haut en bas. Selon un mode de réalisation préférentiel, le conteneur comprenant le récipient, la base, le porte-cartouche et la cartouche comprend un moyen de contrôle du volume d'échantillon transféré du guide fluidique vers le dispositif de capture et/ou concentration. Dans un 15 mode préféré, le moyen de contrôle du volume est une section d'un diamètre déterminé du guide fluidique et la taille du guide fluidique. Ainsi la présente invention permet de contrôler le volume d'échantillon en contact avec les partenaires de liaisons du support de capture, le temps de contact de l'échantillon avec ces partenaires de liaison et donc le débit de l'échantillon au travers du support de 20 capture. Cela permet ainsi d'optimiser les conditions de réactions des partenaires de liaisons avec les microorganismes ou les protéines issues de ces microorganismes contenu(e)s dans l'échantillon. Selon un autre mode de réalisation, le dispositif de capture/concentration comprend un filtre évitant que le support de capture ne soit obstrué avec certains échantillons chargés 25 en matière. Par «support de capture et/ou concentration», l'on entend tout support permettant de fixer le microorganisme ou la protéine dudit microorganisme recherché(e) et faire en sorte qu'il(elle) soit en concentration suffisante aux fins des étapes ultérieures d'analyse. Le «support de capture et/ou concentration» sera également mentionné indifféremment par 30 «support de capture/concentration». Préférentiellement, le «support de capture et/ou concentration» est choisi parmi les supports particulaires ou les supports monoblocs. Le support de capture/concentration 3057275 21 peut être des particules. Préférentiellement, le support de capture/concentration est un support de capture/concentration poreux, par exemple une membrane poreuse. Avantageusement, le support de capture/concentration est fonctionnalisé avec au moins un partenaire de liaison spécifique du micro-organisme cible ou de protéine issue dudit 5 microorganisme. Selon un mode de réalisation préféré, l'échantillon à analyser (à savoir l'échantillon tel que prélevé ou ayant subi un traitement préalable, tel qu'indiqué ci-dessus) est liquide. La présente invention a pour avantage de permettre la capture puis la révélation de la 10 présence de micro-organisme cible dans une quantité d'échantillon très variable et éventuellement très grande, par exemple de 25 grammes (g) à 375 g dilués dans un volume de milieu de culture compris entre 225 et 3375 millilitres (mL). Ainsi le volume de l'échantillon qui peut passer à travers le dispositif de capture/concentration est compris entre 10 mL et 5000 mL, préférentiellement entre 50 mL et 4000 mL, plus 15 préférentiellement entre 200 et 3500 mL, encore plus préférentiellement entre 225 et 3375 mL. Selon un mode de réalisation avantageux, la circulation se fait en flux tangentiel au travers de la membrane, ce qui a pour avantage d'augmenter le temps de contact entre le microorganisme et le support de capture/concentration. 20 Avantageusement, tout ou partie de l'échantillon contenu dans le récipient circule à travers le support de capture/concentration à un débit compris entre 0.5 mL/min par cm2 de support à 5 mL/min par cm2 de support, ledit support étant poreux et ayant une surface développée d'au moins 20 cm2. Préférentiellement, au moins 10 mL de l'échantillon contenu dans le récipient circule à 25 travers le support de capture et/ou concentration, préférentiellement au moins 50 mL. Ce procédé permet avantageusement d'utiliser un grand volume de départ pour effectuer la capture/concentration, ce qui permet d'augmenter la probabilité de rencontre du microorganisme cible (ou la protéine issue de ce microorganisme) avec le support de capture/concentration. 30 3057275 22 La présente invention a également pour objet la mise au point d'un procédé de préparation d'un échantillon susceptible de contenir au moins un micro-organisme cible comprenant les étapes suivantes : - disposer la cartouche selon un chemin fluidique dit « de capture/concentration » 5 tel qu'indiqué précédemment - générer un déplacement de tout ou partie de l'échantillon contenu dans le récipient vers le dispositif de capture et/ou concentration - capturer et/ou concentrer sur le support de capture/concentration ledit microorganisme ou une protéine issue dudit microrganisme contenu(e) dans 10 l'échantillon. Ainsi le procédé de préparation d'un échantillon, selon l'invention est un procédé de capture/concentration d'au moins un micro-organisme cible d'un échantillon susceptible de contenir ledit au moins un micro-organisme cible. Il s'agit d'un procédé destiné à 15 permettre la capture/concentration d'au moins un micro-organisme cible, de préférence, en présence d'au moins un milieu de culture/bouillon d'enrichissement. Ainsi, lorsque l'on soupçonne que le(s) micro-organisme(s) recherché(s) est/sont présent(s) en quantité minime, par exemple de l'ordre de quelques cellules, dans l'échantillon, ce procédé permet que ledit au moins un micro-organisme cible soit présent en fin de procédé selon 20 l'invention à une concentration telle que l'utilisateur puisse éventuellement le détecter de manière systématique ou quasi-systématique en recourant aux méthodes traditionnelles de détection (culture sur milieux géloses, immuno-essais, techniques de biologie moléculaire, etc.). Selon un mode particulier, le procédé selon l'invention comprend une étape ultérieure 25 d'analyse dudit support de capture et concentration par lecture visuelle, optique ou tout autre moyen. Ainsi ce procédé permet d'analyser ledit ou lesdits micro-organisme(s) cible(s) et/ou tout ou partie de leurs propriétés. L'analyse peut notamment consister en un procédé de détection directe - et le cas échéant d'identification - dudit ou desdits microorganisme(s) ou en un procédé de détection - et le cas échéant d'identification - indirecte, 30 par exemple lié à la détection d'informations nucléotidiques et/ou protéiques spécifiques d'un type de micro-organisme à détecter et/ou identifier. Cette détection et/ou identification indirecte peut également résulter de la détection de protéines de 3057275 23 bactériophages spécifiques dudit ou desdits micro-organisme(s) à détecter. La présence d'un micro-organisme cible peut également être décelée par une résistance à un antibiotique donné ou à un ensemble d'antibiotiques, le profil de résistance à cet ou ces antibiotique(s) étant, dans ce cas, caractéristique du ou des micro-organisme(s) à détecter. 5 La détection directe ou indirecte peut se faire in situ sur le support de capture après par exemple l'ajout d'un système de révélation. Dans un mode de réalisation particulier, l'analyse dudit support de capture et concentration se fait après désolidarisation de la cartouche et/ou dudit support de capture/concentration du récipient. 10 Ainsi, l'analyse du support de capture/concentration peut également être effectuée ex situ en transférant le dispositif et/ou le support de capture/concentration dans un dispositif d' analyse. Dans un mode de réalisation particulier, le procédé de préparation d'un échantillon selon 15 la présente invention comprend également une ou plusieurs étape(s) de lavage par un liquide de lavage dispensé dans le deuxième conduit d'admission du porte-cartouche, la cartouche étant disposée selon un chemin fluidique dit de lyse et/ou lavage et/ou élution. Un mouvement de translation de la cartouche dans le porte-cartouche en suivant les glissières permet de passer d'un chemin fluidique dit de « capture/concentration » à un 20 chemin fluidique dit de « lyse et/ou lavage et/ou élution». Dans un autre mode de réalisation particulier, le procédé de préparation d'un échantillon selon la présente invention comprend également une ou plusieurs étape(s) de lyse par un liquide de lyse dispensé dans le deuxième conduit d'admission du porte-cartouche, la cartouche étant disposée selon un chemin fluidique dit de lyse et/ou lavage et/ou élution. 25 Dans un autre mode de réalisation particulier, le procédé préparation d'un échantillon selon la présente invention comprend une ou plusieurs étape(s) d'élution par un liquide d'élution dispensé dans le deuxième conduit d'admission du porte-cartouche, ladite cartouche étant disposée selon un chemin fluidique dit de lyse et/ou lavage et/ou élution. Dans un autre mode de réalisation particulier, le procédé préparation d'un échantillon 30 selon la présente invention comprend une étape ultérieure d'aspirer le liquide d'intérêt contenant les acides nucléiques desdits microorganismes libérés lors de la lyse. 3057275 24 Cette étape d'aspiration peut se faire à l'aide d'une seringue (celle-ci pouvant servir à l'injection de la solution de lavage/lyse) ou encore d'une pipette, d'un vacutainer®, d'une psipette ou encore d'une pompe peristatique, mis en connexion avec le deuxième conduit d'admission du porte-cartouche. 5 Dans un autre mode de réalisation, le procédé de préparation comprend une étape ultérieure de décontamination par un décontaminant dispensé dans le deuxième conduit d'admission du porte-cartouche, la cartouche étant disposée selon un chemin fluidique dit de lyse et/ou lavage et/ou élution. 10 Brève description des dessins L'invention, sa fonctionnalité, ses applications ainsi que ses avantages seront mieux appréhendés à la lecture de la présente description, faite en référence aux figures, dans lesquelles : 15 - la figure 1 représente de manière schématique un conteneur selon l'invention, le dispositif de capture/concentration étant à l'extérieur du récipient. la figure 2 représente de manière schématique un dispositif avec un conteneur, un moyen de pression sur le guide fluidique afin d'emprisonner dans le guide fluidique un volume déterminé d'échantillon, et un moyen de déplacement pour 20 générer le déplacement de l'échantillon contenu dans le guide fluidique vers le dispositif de capture et/ou concentration. les figures 3, 4 et 5 visent à illustrer le dispositif tel que représenté figure 2 au cours des différentes étapes de mise en contact du moyen de déplacement et du moyen de pression avec le conteneur générant ainsi le déplacement de 25 l'échantillon contenu dans le guide fluidique vers le dispositif de capture et/ou concentration. La figure 6 représente une cartouche selon l'invention, la cartouche étant ouverte. La figure 7 illustre une cartouche selon l'invention, la cartouche étant refermée. La figure 8 représente un porte-cartouche selon l'invention. 30 - La figure 9 montre une base et un guide fluidique selon l'invention. La figure 10 représente une cartouche insérée dans un porte-cartouche selon un chemin fluidique dit de « capture/concentration », le premier conduit d'admission du porte-cartouche étant en liaison fluidique avec la voie d'admission de la 3057275 25 cartouche, le conduit d'évacuation du porte-cartouche étant en liaison avec la voie d'évacuation de la cartouche permettant ainsi à l'échantillon liquide de rentrer dans le module réactionnel et d'en ressortir. La figure 11 représente une cartouche insérée dans un porte-cartouche selon un 5 chemin fluidique dit « de lyse et/ou lavage et/ou élution», le deuxième conduit d'admission du porte-cartouche étant en liaison fluidique avec la voie d'admission de la cartouche, le conduit d'évacuation du porte-cartouche étant en liaison avec la voie d'évacuation de la cartouche permettant ainsi au liquide de lyse et/ou lavage de rentrer dans le module réactionnel et d'en ressortir. 10 - La figure 12 est une illustration schématique d'un dispositif de capture/concentration fixé sur la paroi externe d'un récipient. Description détaillée du conteneur selon l'invention 15 La description détaillée ci-après a pour but d'exposer l'invention de manière suffisamment claire et complète, notamment à l'aide d'exemples et de références à des figures, mais ne doit en aucun cas être regardée comme limitant l'étendue de la protection aux modes de réalisation particuliers objet desdits exemples et figures. 20 Le dispositif de préparation d'un échantillon (1), tel que représenté à la figure 1, conformément à un premier mode de réalisation, représente un récipient (3) comportant un dispositif de capture/concentration (100) fixé à la paroi externe qui peut être désolidarisé. Ce récipient (3) comporte une paroi (30) souple, éventuellement transparente, à travers 25 laquelle ont été emménagés un orifice d'entrée (31) et un orifice de sortie (33). A l'intérieur du récipient un guide fluidique d'entrée (32) permet de guider l'échantillon (4) du récipient vers l'orifice d'entrée (31) puis vers le dispositif de capture et/ou concentration (100). L'échantillon traverse le support de capture/concentration (104) puis passe à travers 30 l'orifice de sortie (33) emménagé au travers de la paroi (30) souple vers l'intérieur du récipient. Le dispositif de capture et/ou concentration comprend au moins deux connecteurs (34) et (35) adaptés aux orifices d'entrée et de sortie du récipient. Ces deux connecteurs sont 3057275 26 résistants à la pression et adaptés de façon étanche empêchant l'échantillon de se répandre hors du conteneur et ainsi de contaminer l'environnement ou le technicien manipulant l'échantillon. 5 La figure 2 représente un dispositif (5) comprenant un conteneur (1) positionné au sein du dispositif (5), dans un emplacement (57) prévu à cet effet. Cet emplacement (57) est délimité d'un côté par la paroi fixe (52) et de l'autre par des moyens de déplacement représentés par un premier et un deuxième bras amovibles (semblables à deux pales) (53) et (56). Un des rôles des bras est d'homogénéiser, de 10 malaxer l'échantillon. Les bras peuvent se déplacer à contre-sens et/ou en opposition de phase (alternance de phase). Un moyen de pression (6) est associé à une des pales afin d'exercer une pression sur le guide fluidique (32), à travers la paroi souple du récipient. Le récipient et le guide fluidique viennent en butée contre la paroi fixe. Le moyen de pression en écrasant le 15 guide fluidique à l'extrémité distale de l'orifice d'entrée contre la paroi fixe, emprisonne dans le guide fluidique un volume déterminé d'échantillon. Le guide fluidique est un tube élastique. Il peut s'agir d'un tube en silicone de faible épaisseur pour réduire la force d'écrasement mais avec des propriété élastique lui permettant un retour à sa géométrie initiale. Le moyen de contrôle du volume correspond au diamètre et à la longueur du tube. 20 Le diamètre et la longueur du tube doivent être définis dans le but d'avoir un volume d'échantillon optimisé passant au travers du support de capture. Le diamètre et la longueur du tube seront également définis en fonction de la pression exercée sur le tube afin d'établir un débit optimisé au travers le support de capture. Les moyens de déplacement (53) et (56) génèrent également le déplacement de 25 l'échantillon contenu dans le guide fluidique vers le dispositif de capture et/ou concentration. Il convient de noter que le moyen de pression (6) peut être remplacés par des applicateurs de formes variées, pourvu que ceux-ci soient capables d'exercer une certaine force permettant de presser le guide fluidique contre la paroi fixe, la communication fluidique de l'échantillon de l'extérieur du guide vers l'intérieur du guide 30 est ainsi bloquée. Le moyen de pression est une protubérance fixée à la pale (53). A des fins de clarté, la figure 2 représente uniquement une partie d'un dispositif selon l'invention. Le dispositif (5) est pourvu d'une base (51) sur laquelle une paroi (52) a été 3057275 27 fixée. Les deux pales (53) et (56), sont amovibles par rapport à la base (51). Le mouvement desdits bras (53) et (56) par rapport à la base (51) peut être généré par tout moyen adapté, tel qu'un moteur électrique. 5 Les figures 3 à 5 représentent le dispositif (5) en cours de fonctionnement à différentes étapes. Dans la figure 3, le bras (53) est dans une position éloignée du conteneur, indiquée à l'aide de la ligne (63) et le bras (56) est dans une position plus rapprochée indiquée à l'aide de la ligne (63). La distance entre le bras (53) et le conteneur ne permet pas au 10 moyen de pression (6) de presser le guide fluidique. Dans la figure 4, le bras (53) passe à une position rapprochée du conteneur indiquée à l'aide de la ligne (61), la force exercée par le moyen de pression (6) sur le guide fluidique (32) en appuie sur la paroi fixe (52) entraine le pincement du guide fluidique, emprisonnant un volume d'échantillon en son sein. 15 Dans la figure 5, le bras (53) passe à une position encore plus rapprochée du conteneur indiquée à l'aide de la ligne (60), le moyen de pression (6) se rétracte et le bras (53) en contact avec le conteneur entraine le déplacement du volume d'échantillon contenu dans le guide fluidique vers le dispositif de capture et/ou concentration. Ainsi le dispositif de capture et/ou concentration est mis en contact avec les micro- 20 organismes issus de l'échantillon biologique à analyser et, si les bactéries cibles sont présentes parmi lesdits micro-organismes, ces dernières se lient à leur partenaire spécifique de liaison présent au niveau dudit dispositif de capture et/ou concentration, par exemple à un anticorps fonctionnalisé. Les bactéries cibles sont alors (immuno)concentrées au niveau du dispositif de capture et/ou concentration et peuvent 25 être identifiées in situ, par exemple par des techniques d'immuno-détection bien connues de l'homme du métier, mettant en oeuvre des systèmes de révélation également bien connus de celui-ci. Selon une variante, l'étape d'identification est réalisée à l'extérieur du conteneur, par exemple en mettant en oeuvre un automate de type VIDAS®. 30 L'échantillon biologique (4) peut être tout échantillon pour lequel l'utilisateur souhaite contrôler la présence de micro-organismes d'intérêt. Tel qu'indiqué précédemment, l'échantillon peut être d'origine alimentaire, environnementale ou clinique (liste non- 3057275 28 exhaustive) et les micro-organismes recherchés peuvent être des micro-organismes pathogènes, par exemple du type Salmonella ou E. Coli. Lorsque le conteneur (1) est positionné dans l'emplacement (57), l'ensemble formé par le 5 dispositif (5) et le conteneur (1) peut, par exemple, être mis en incubation à l'intérieur d'un incubateur (non représenté). Les conditions peuvent être optimisées à l'intérieur dudit incubateur pour permettre la croissance des micro-organismes recherchés. Des caractéristiques, telles que la température, peuvent être réglées afin d'être optimales pour favoriser la croissance des micro-organismes cibles. Lorsque l'ensemble formé du 10 dispositif (5) et du conteneur (1), positionné dans l'emplacement (57), est introduit dans l'incubateur, le fonctionnement des bras (53) et (56) peut être activé. Les bras (53) et (56) peuvent se déplacer, de leur première position (63) vers leur deuxième position (62) (et vice versa). Ce mouvement permet d'exercer une force sur la surface extérieure de la paroi souple du conteneur (1) et imposer ainsi audit conteneur (1) 15 une déformation de cette paroi souple. A ce stade, les bras (53) et (56) peuvent servir à homogénéiser le contenu du conteneur (1). Les bras (53) et (56) peuvent être déplacés de manière périodique. La fréquence peut être choisie et adaptée au type d'échantillon et/ou au type de milieu de culture présents à l'intérieur du conteneur (1). 20 A un moment choisi au cours de l'incubation ou après l'incubation, le bras sur lequel est fixé le moyen de pression (6) peut passer dans une position plus rapprochée, comme expliqué ci-dessus. En effet, un mode de réalisation avantageux est de différer la mise en contact de l'échantillon avec le dispositif de capture et/ou concentration sans pour autant attendre la fin de l'incubation. 25 Cette phase d'incubation s'étend, par exemple, sur 24 heures durant lesquelles la concentration en micro-organismes cibles va progressivement augmenter. Dans les dix premières heures par exemple, la concentration en micro-organismes cibles est trop faible pour interagir avec le support de capture et/ou concentration. Ainsi, durant ces dix premières heures, et tel qu'indiqué précédemment, il est préférable de maintenir le 30 dispositif de capture et/ou concentration à l'écart de l'ensemble composé de l'échantillon et du milieu de culture afin de préserver son intégrité et éviter une détérioration des capacités dudit support en raison des composés non spécifiques contenus dans l'échantillon. Au bout de dix heures, le support de capture et concentration (104) est mis 3057275 29 en contact de l'échantillon (4) par l'action du moyen de pression sur le guide fluidique et des moyens de déplacement qui poussent l'échantillon vers le dispositif de capture. L'échantillon passe dans le support de capture selon un flux tangentiel avant de ressortir via l'orifice de sortie (33) dans le récipient (3). Le moyen de pression et les moyens de 5 déplacement se sont éloignés du conteneur afin de permettre au guide fluidique de reprendre sa forme initiale. Le cycle peut recommencer, le moyen de pression peut à nouveau pincer le guide fluidique et les moyens de déplacement peuvent déplacer le volume d'échantillon emprisonné dans le guide fluidique vers le dispositif de capture. La circulation répétée de l'échantillon à travers le support de capture permet d'augmenter 10 l'efficacité de la capture des microorganismes cibles. Dans le cas où la détection est effectuée directement sur le support de capture/concentration, le technicien peut lire le résultat de l'analyse sur le support capture/concentration à travers le dispositif de capture/concentration (100). 15 Description détaillée d'un mode particulier du dispositif de capture/concentration La cartouche (100) telle que représentée à la figure 6 comporte un couvercle (101) et un fond (102) assemblables par des clips (103) permettant d'assurer l'étanchéité. Le support de capture (104) est disposé à l'intérieur du module réactionnel (105) de la cartouche. Le 20 support de capture est une membrane. La cartouche comprend : -une voie d'admission (201) de l'échantillon liquide et/ou du liquide de lavage et/ou de liquide de lyse permettant son (leur) entrée à l'intérieur du module, -une voie d'évacuation (202) de l'échantillon liquide et/ou du liquide de lavage et/ou de 25 liquide de lyse et/ou du liquide d' élution. Le support de capture et/ou concentration (104) est disposé entre la voie d'admission (201) et la voie d'évacuation (202) de telle sorte que tout ou partie de l'échantillon ou des liquides le traverse. 30 La figure 7 est une vue de dessous de la cartouche représentée figure 6. La cartouche (100) est en position fermée, le fond (102) et le couvercle (101) sont assemblés par l'intermédiaire de clips (103). 3057275 30 La face externe du fond (102) comprend des glissières (106) servant de moyen d'insertion permettant à la cartouche d'être insérée dans un porte-cartouche. Les glissières peuvent jouer aussi le rôle de détrompeur. La cartouche comprend : 5 -une voie d'admission (201) de l'échantillon liquide et/ou du liquide de lavage et/ou de liquide de lyse permettant son (leur) entrée à l'intérieur du module, -une voie d'évacuation (202) de l'échantillon liquide et/ou du liquide de lavage et/ou de liquide de lyse et/ou du liquide d'élution. Un bossage oblong (203) permet d'élargir la voie d'évacuation. 10 Le support de capture et/ou concentration (104) (non visible sur la figure 2) est disposé à l'intérieur de la cartouche entre la voie d'admission (201) et la voie d'évacuation (202) de telle sorte que tout ou partie de l'échantillon ou des liquides le traverse. Le porte-cartouche (300) tel que représenté à la figure 8 comprend 15 -un premier conduit d'admission (301) permettant l'entrée d'un échantillon liquide -un deuxième conduit d'admission (303) permettant l'entrée d'un liquide de lavage et/ou d'un liquide de lyse et/ou un liquide d'élution -un conduit d'évacuation (302) permettant la sortie de l'échantillon liquide et/ou du liquide de lavage ou de lyse 20 -un moyen d'insertion (304) permettant à la cartouche d'être insérée dans le porte- cartouche. Le moyen d'insertion du porte cartouche peut jouer aussi le rôle de détrompeur et évite le retrait accidentel. Il est représenté ici par des glissières (304). Le porte-cartouche (300) est destiné à être accolé à la face externe de la paroi du récipient. 25 La base (400) telle que représentée figure 9 est destinée à être accolée à la face interne de la paroi du récipient. Elle comprend : - au moins un canal d'admission (401) de l'échantillon liquide en liaison fluidique avec la 30 voie d'admission de l'échantillon de la cartouche (201 figure 7) via le premier conduit d'admission du porte-cartouche (301 figure 8) 3057275 31 - au moins un canal d'évacuation (402) de l'échantillon liquide et/ou de lavage et/ou de lyse, en liaison fluidique avec la voie d'évacuation de la cartouche (202 figure 7) via le conduit d'évacuation du porte-cartouche (302 figure 8). La base (400) est connectée à un guide fluidique (32) permettant à l'échantillon contenu 5 dans le récipient d'arriver au canal d'admission de la base (401). La figure 10 montre la cartouche (100) disposée dans le porte-cartouche (300) selon un chemin fluidique dit de « capture/concentration ». La voie d'admission (201) (représentée figure 7) de la cartouche est en liaison fluidique avec le premier conduit d'admission 10 (301) (représentée figure 8) du porte-cartouche. La voie d'évacuation (202) (représentée figure 7) de la cartouche est en liaison avec le conduit d'évacuation du porte-cartouche (302) (représentée figure 8) permettant ainsi à l'échantillon liquide de rentrer dans le module réactionnel (105) (figure 6) et d'en ressortir. Un mouvement de translation de la cartouche dans le porte-cartouche en suivant les 15 glissières (304) permet de passer d'un chemin fluidique dit de « capture/concentration » à un chemin fluidique dit de « lyse et/ou lavage et/ou élution». La figure 11 montre la cartouche (100) disposée dans le porte-cartouche (300) selon un chemin fluidique dit de « lyse et/ou lavage et/ou élution». la voie d'admission (201) 20 (représentée figure 7) de la cartouche est en liaison fluidique avec le deuxième conduit d'admission (303) (représentée figure 8) du porte-cartouche. La voie d'évacuation (302) (représentée figure 7) de la cartouche est en liaison avec le conduit d'évacuation (202) (représentée figure 3) du porte-cartouche permettant ainsi au liquide de lyse et/ou lavage et/ou élution de rentrer dans le module réactionnel et d'en ressortir. 25 Quel que soit le chemin fluidique choisi, la voie d'évacuation (202) (représentée figure 7) de la cartouche est en liaison avec le conduit d'évacuation (302) (représentée figure 8) du porte-cartouche grâce à la présence d'un bossage oblong (203) (représentée figure 7) sur la cartouche. 30 Selon un mode de réalisation, le porte-cartouche (300) est fixé à la face externe de la paroi du récipient (3) tel que représenté à la figure 12. La cartouche peut s'insérer dans le porte-cartouche. 3057275 32 Le récipient peut contenir un guide fluidique qui permet de guider l'échantillon du récipient vers le canal d'admission de la base puis le premier conduit d'admission du porte-cartouche puis la voie d'admission de la cartouche. L'échantillon traverse le support de capture/concentration puis passe à travers la voie 5 d'évacuation de la cartouche, le conduit d'évacuation du porte-cartouche et le canal d'évacuation de la base afin de rentrer à nouveau dans le récipient. Ainsi le dispositif de capture et/ou concentration est mis en contact avec les microorganismes issus de l'échantillon biologique à analyser et, si les bactéries cibles sont présentes parmi lesdits micro-organismes, ces dernières se lient à leur partenaire 10 spécifique de liaison présent au niveau dudit dispositif de capture et/ou concentration, par exemple à un anticorps fonctionnalisé. L'échantillon passe dans le support de capture selon un flux tangentiel avant de ressortir via la voie d'évacuation dans le récipient. 15 La fonctionnalité de l'invention est illustrée avec l'exemple (non-limitatif) présenté ci- après. Exemple 1 : Efficacité de capture/concentration du dispositif selon la présente invention. 20 Matériels : - Souche Salmonella Derby réf 0904089 - Matrice : Steak haché de boeuf à 15% MG (marque Tendre et Plus) 25 - Matériel : biocapteur : membranes 550 iam (Reemay 2040) fonctionnalisées 30 qPCR : kit GeneUP Salmonella (bioMérieux Cat. No.414150) Tampon TRIS 10 mM + 0,05 % Tween 20 Réactif XT1 et XT2 du kit d'extraction d'Adiafood (Cat. No. ADIF9988) Bain sec pour tube eppendorf de 1,5 mL réglé à 120°C Tween 80 Eau Peptonée Tamponnée (EPT) 3L (bioMérieux Cat. 42629) 3057275 33 Protocole de fonctionnalisation du support de capture (membrane) : Le support de capture est en polyester, commercialisé par la société PGI (Cat. No. Reemay 2040). Le produit est redécoupé en lamelle de 4 cm2(1 cm X 4 cm). - le support est immergé à 37°C pendant une nuit dans une solution 5 de BSA (Bovin Sérum Albumin)-Biotinylée à 5µg/mL; - le support est ensuite immergé à 37°C pendant deux heures dans une solution de streptavidine à 10µg/mL - le support est alors immergé pendant deux heures à 37°C dans une solution de partenaires de liaisons spécifiques (11.tg/mL à 401.tg/mL ; le partenaire de liaison 10 spécifique étant une protéine de phage recombinante anti-Salmonella). Le support sensibilisé ainsi élaboré peut être utilisé pour la détection des microorganismes ou conservé à 2-8°C en vue d'une utilisation ultérieure. Préparation de l'essai : 15 Préparation de l'échantillon alimentaire : 375g d'échantillon alimentaire (steak haché 15% MG) sont pesés dans la poche plastique contenant la présente invention, puis 1000 mL de milieu d'enrichissement (EPT) et 5 mL de tween 80 sont ajoutés. La poche plastique est directement mise en incubation, à 39°C, dans le dispositif décrit dans la demande de brevet W02014072438 déposée par la demanderesse mettant en oeuvre une 20 homogénéisation douce de l'échantillon durant 5 heures d'incubation. Programmation du cycle d'homogénéisation du dispositif : Mode transfert latéral Vitesse : 20 mm/s Déplacement : 35 à 12 mm pour les 2 pales 25 Dans un dispositif selon l'invention tel que décrit figure 1, on dispose une membrane fonctionnalisée avec la protéine de phage anti Salmonella (membrane SLM) en tant que support de capture (échantillon Bagflow appelé B+). On immerge également une membrane SLM. Elle sera donc en « trempage ». 30 Dans un autre dispositif identique, on dispose 1 membrane fonctionnalisée avec la protéine de phage anti E. coli 0157 (membrane ECO appelée B-) en tant que support de 3057275 34 capture et jouant le rôle de témoin négatif. On immerge également une membrane ECO en témoin accrochage non spécifique. Elle sera donc en « trempage ». Préparation de la souche bactérienne : 5 A partir de la souche Salmonella Derby, réaliser une suspension à 0,6 McF puis faire des dilutions successives en tube trypsone sel de 9mL (Cat. No. AEB111499) jusqu'à la dilution 103 CFU/mL. Réaliser un contrôle d'inoculum avec 100 !IL de la dilution 103 UFC/mL étalé sur gélose TSA (Cat. No. 43011). Inoculer les poches plastique avec la souche de Salmonella Derby à 20 UFC/mL, soit 200 10 !IL de la dilution 105 UFC/mL. Les poches sont homogénéisées 5 min (le temps que la souche soit répartie de façon homogène dans le sac) avant de démarrer le cycle de capture. Pour le dispositif de la présente invention, la séquence de circulation dure 30 min à 2 mL/min, soit 60 mL d'échantillon traversent le dispositif de capture. 15 Pour le support en mode trempage, le temps de contact est de 30 min sous brassage. Traitement des supports de capture après 30 min de capture : - Lavage des membranes avec du tampon Tris 10 mM + 0,05 % Tween 20 par trempage dans un pilulier pour les membranes dites « trempages » et pour les 20 dispositifs, avec 3 mL de tampon connecté via une seringue au dispositif - Après le lavage, mettre les membranes dans des tubes eppendorfs et centrifuger 5 secondes pour évacuer le volume résiduel de tampon de lavage. - Ajouter 100 !IL du kit d'extraction sur chacune des membranes - Incuber 20 minutes à 42°C 25 - Centrifuger les membranes 5 secondes pour récupérer le surnageant contenant l'ADN bactérien - Incubée à 100°C pendant 5 minutes conformément à la notice d'utilisation du kit d' extraction. 30 En parallèle, l'échantillon alimentaire pré-enrichi pendant 5 heures est réparti en 5 aliquotes de 9 mL. Les aliquotes sont artificiellement contaminées avec la souche de 3057275 Salmonella à une concentration allant de104 à 107 CFU/mL. Cette gamme permet de comparer le gain de sensibilité entre la présente invention et la méthode existante. Protocole GeneUP BioFire : 5 - Reprendre le réactif PCR avec 45 !IL de tampon de reconstitution. - Vortexer longuement puis centrifuger pour récupérer tout le liquide. - Déposer 5 !IL de réactif dans chacun des puits - Ajouter 5 !IL d'échantillon lyse - Mettre des bouchons 10 - Agiter rapidement et centrifuger la plaque. - Lancer la qPCR Résultats : 15 Contrôle d'inoculum de la suspension à 100 CFU/mL théorique : 90 CFU/mL Résultats qPCR : Echantillon GENE UP Concentration en Salmonella qPCR Interprétation (CFU/mL) GeneUp(Ct) B + 20 29,7 B + 20 30,6 B - 20 (membrane ECO) T+ 20 33,3 T - 20 (membrane ECO) PE 104 10 000 PE I0 100 000 34,3 PE 106 1 000 000 33,0 PE 10' 10 000 000 31,1 20 3057275 36 Les échantillons subissant le procédé selon l'invention (B+) présentent un rendement de capture/concentration supérieur d'un log par rapport à l'échantillon Trempage. En effet, une différence de 3 Ct est observée entre les résultats (B+) et Trempage (T+). Il est ainsi démontré que le fait de faire circuler l'échantillon au travers le maillage de la membrane 5 améliore les probabilités de capture, entre les protéines de phages et les bactéries d' intérêt. La méthode de référence qPCR GeneUp donne un résultat positif à partir de 105 CFU/mL. La méthode de capture/concentration permet donc de gagner au minimum 3 log de sensibilité sur la méthode de détection. 10 Conclusion : Cet exemple montre le gain significatif de la capture/concentration avec le dispositif selon la présente invention, par rapport à un simple trempage de la membrane dans l'échantillon. La limite de détection de la méthode (capture+ lyse + qPCR) est clairement 15 proche de 20 UFC/mL, ce qui permet de réduire considérablement la durée d'enrichissement et donc le temps d'analyse. En effet, ce niveau de détection permet de donner une réponse positive à un échantillon de 375 g de matrice alimentaire contaminée à 1 UFC, en moins de 5h d'incubation. REVENDICATIONS1. Conteneur (1) comprenant un dispositif de capture et/ou concentration (100) de microorganisme ou de protéine issue dudit microorganisme, comprenant un support de capture et/ou concentration (104) ; un récipient (3) avec au moins deux parois dont au moins une est flexible (30), adapté pour recevoir au moins un échantillon susceptible de contenir au moins un microorganisme cible, ledit récipient comprenant o un orifice d'entrée (31) emménagé au travers d'une desdites parois et permettant le passage de l'échantillon liquide contenu dans le récipient vers le dispositif de capture et/ou concentration o un guide fluidique d'entrée (32), susceptible de contenir un volume d'échantillon défini et permettant de guider ledit volume d'échantillon vers ledit orifice d'entrée o au moins un moyen de contrôle du volume d'échantillon transféré du guide fluidique vers le dispositif de capture et/ou concentration au travers dudit orifice d'entrée o un orifice de sortie (33) emménagé au travers d'une desdites parois permettant le passage de l'échantillon du dispositif de capture et/ou concentration vers le récipient, ledit dispositif de capture/concentration était fixé à une paroi du récipient. 2 Conteneur (1) selon la revendication 1 dans lequel le dispositif de capture et/ou concentration (100), est en partie accolé à la face extérieure d'une desdites parois du récipient. 3 Conteneur (1) selon l'une quelconque des revendications précédentes dans lequel le guide fluidique (32) est élastique et destiné à être pressé. 4 Conteneur (1) selon la revendication 1 dans lequel le guide fluidique (32) est une poche interne du récipient destinée à être pressée. 3057275 38 5 Conteneur (1) selon la revendication 4 dans lequel au moins une partie de la poche interne est une partie de la paroi flexible (30) du récipient. 5 6. Conteneur (1) selon l'une quelconque des revendications précédentes dans lequel le moyen de contrôle du volume est une section d'un diamètre déterminé du guide fluidique et la taille du guide fluidique. 7 Conteneur (1) selon l'une quelconque des revendications précédentes dans lequel 10 le dispositif de capture et/ou concentration (100) comprend au moins deux connecteurs (34, 35) étanches adaptés aux orifices d'entrée et de sortie du récipient. 8 Conteneur (1) selon l'une quelconque des revendications précédentes dans lequel le dispositif de capture et/ou concentration (100) peut être désolidarisé de la paroi dudit 15 récipient. 9 Conteneur (1) selon l'une quelconque des revendications précédentes dans lequel le dispositif de capture et/ou concentration (100) comprend un support de capture et/ou concentration (104), ledit support de capture et/ou concentration étant choisi parmi les 20 supports particulaires ou les supports monobloc. 10 Conteneur (1) selon la revendication 9 dans lequel le support de capture et/ou concentration est une membrane poreuse. 25 11 Conteneur (1) selon l'une quelconque des revendications 9 ou 10 caractérisé en ce que le support de capture et/ou concentration est fonctionnalisé avec au moins un partenaire de liaison spécifique du micro-organisme cible ou de la protéine issue dudit microorganisme. 30 12 Dispositif comprenant au moins un emplacement pour recevoir au moins un conteneur selon les revendications précédentes, ledit dispositif comprenant 3057275 39 - au moins un moyen de pression sur le guide fluidique afin d'emprisonner dans le guide fluidique un volume déterminé d'échantillon - et au moins un moyen de déplacement pour générer le déplacement de l'échantillon contenu dans le récipient vers le guide fluidique et/ou du guide fluidique 5 vers le support de capture et/ou concentration. 13 Procédé de préparation d'un échantillon susceptible de contenir au moins un micro-organisme cible ledit procédé étant réalisé au sein d'un conteneur selon l'une des revendications 1 à 12 et comprenant essentiellement les étapes suivantes : 10 a) générer un déplacement de tout ou partie de l'échantillon (4) vers le guide fluidique (32), b) générer un déplacement d'un volume défini de l'échantillon du guide fluidique vers le dispositif de capture et/ou concentration (100) au travers l'orifice d'entrée (33), 15 c) capturer et/ou concentrer sur le support de capture et/ou concentration ledit microorganisme ou une protéine issue dudit microrganisme contenu(e) dans l'échantillon, ledit volume d'échantillon traversant le support de capture et/ou concentration (104) puis ressortant à travers l'orifice de sortie (33) du récipient (3). 20 14 Procédé selon la revendication 13 caractérisé en ce que les étapes a) à c) sont effectuées une ou plusieurs fois. 15 Procédé selon l'une quelconque des revendications 13 ou 14 caractérisé en ce que le support de capture et/ou concentration (100) est une membrane poreuse. 25 16 Procédé selon l'une quelconque des revendications 13 à 15 caractérisé en ce que ledit procédé comprend une étape d'incubation dudit échantillon à une température et durant un laps de temps suffisant pour permettre la croissance dudit au moins un microorganisme cible, l'étape d'incubation ayant lieu avant l'étape a) ou pendant tout ou partie 30 des étapes a) à c). 3057275 40 17 Procédé selon l'une quelconque des revendications 13 à 16 caractérisé en ce que l'étape c) se fait à l'aide d'un dispositif tel que décrit dans la revendication 12 afin d'exercer une pression sur le guide fluidique et permettre qu'un volume déterminé de l'échantillon soit mis en contact avec le support de capture et/ou concentration. 5 18 Procédé selon l'une quelconque des revendications 13 à 17 caractérisé en ce qu'au moins 10 mL de l'échantillon contenu dans le récipient circule à travers le support de capture et/ou concentration (104), préférentiellement au moins 50 mL. 10 19 Procédé selon l'une quelconque des revendications 13 à 18 caractérisé en ce que tout ou partie de l'échantillon contenu dans le récipient circule à travers le support de capture et/ou concentration à un débit compris entre 0.5 mL/min par cm2 de support à 5mL/min par cm2 de support, ledit support étant poreux et ayant une surface développée d'au moins 20 cm2. 15 20 Procédé d'analyse d'un échantillon susceptible de contenir au moins un micro- organisme cible, ledit procédé mettant en oeuvre le procédé selon l'une quelconque des revendications 13 à 19, ledit procédé comprenant une étape ultérieure d'analyse dudit support de capture et/ou concentration par lecture visuelle ou optique. 20 21 Procédé selon la revendication 20 caractérisé en ce que ledit procédé comprend une étape ultérieure d'analyse dudit support de capture et/ou concentration par désolidarisation du dispositif de capture et/ou concentration (100). 25 22 Procédé selon la revendication 20 caractérisé en ce que ledit procédé comprend une étape ultérieure d'analyse dudit support de capture et/ou concentration par désolidarisation dudit support de capture et/ou concentration (104). 23 Utilisation du conteneur selon l'une quelconque des revendications 1 à 12 pour 30 capturer et concentrer un microorganisme ou une protéine issue dudit microorganisme compris dans un échantillon.