FR 3035799 A1 20161111 FR 1554082 A 20150506 La présente inverl on concerne *e ddrrine. de la purification de guides biologiques, notamme de produits '".».JS du sang et, en parnc'..e.er'. la pi de plasmas, par l tion 1:1',7nticorps présents,: Plus préci concerne un nc porteur d'au raoh'-'s type .Lwr:cm3ride' notamment déterri^rarm des groupes s nr..J les procédés de pur I nt en cruvr',_: (in support et ruj tiol tel support pour st.E.roliser osaccharides 'enus dans un produH: r-3:-; u ng. Le système immuniT un mécanisme de défense de ,Pme 10 dont. ;a fonction organism con, étra-K2 -. La répons hurf-r,OE' d U i I icot P CI 0 nt le rtoire. p-opre à chaque individu. contre., rnmunit.r..) pai ler les anticorps 5 rétés réponse humoral T sont à l'orge rnaie','J ws i-a.ations d'organes ou .-Je tissus arrn.,3[.,r,,( 15 vers l'homme, lors de t.urt7 htenumains (dE de plasma ou d'organe). De même, de nombreuses maladies auto-immunes sont chles à la .:eption par l'orç isme de détermini' s protéiques, lipidiques ou :haridigues de cet ganisme même, comme étranger, ce qui génère une 2 wise -nmunitaire cnronique. E.,e même, lorsqt. On injecte à d préparations pharmaceutiques contenant des anticorp n'est cible le _ fiponsi 25 l'hémolyse due _s anticorm contre Hs déterminants énicp >s (n,11 receve provocre&- ',.ne réponse indésirat exemp t.r n injectable devra donc êtrc épourvue de groupes 5 ce typE Licc7-7. P-_ f purif ,rt.er mais celle tique, à cause de Oe7 cules complexes ..rés brt. et de la faible constante d'aff 7:Jryb protél existe dei ann-saccharir est . s Je synthèse des sont synthèse in vivo multienzym r pri-.)s et l'antigène. Cetb_ 3035799 2 affinité des anticorps .nti-scy:'-.:chcJtrès large excès d'antigène (l'excès est. tàcteur s d'antigène sacchàhoiclue étaro' diminué si l'oligosacch , s ou mérisé), friétriquement, l'afIn I d'un anticorps de en présence . Id3[..-...portaux :11, que l'on sa noo à multimère, dd7-..nt 0 pos.7''b - liaison à l'antig.le par rrclt est S pu, ndc l'oison Dan:, r les I'r Jité, (f) r 10 s\ que des multiples fonctions anticorps. Il est donc important de développer de ports rnéi _gènes saccharidiques et de les adapter à la ,.. urificatior. des autant que des IgM. La séparation des anticorps ariii-5ac;:..iha considérés cordrric 15 !sirables, d'avec un liquide l...7)1ologique conservant toutes ses propriétés, e ' une avancée rapeutkT majeure qui permet de nombreuses applications. Lors d'une trar--.4e::;àon sanguine, le sma transfusé, pour être iersel, doit êtu7 .-I,::.barrassé des antic..drg connus ou upposés 20 .onneur. Les transfusions de lio)' e plasma, sont actes thérape.',;.b.idu:,.:, it l'objectif est d'obtenir une j,'?.né Ion du système ,Las- Du de restaurer l'hémodyParnique paddnt. La présence des anticorps d'un donneur de groupe no--, ddmpatible est à même de mettre en danger le patient recevei'. en créant ur. choc hémolytique. Les 25 anticorps des groupes sanguins présents r le plasma du donneur (anti A, L: ou les deux eu fon(tion du groupe uin) sont déten-r )ar des éléments saccharici 1E sLerne Ui 3m actuel, un poti,'..:1 que des produit. son groupe sanguin ou r les, engendrant des coC.L ,'1,',d: et de stockage importants.. I' n, rw 30 d'un plasma compati ,:!.s. p a. est une s économique. prenc: en comi _ 3035799 3 De me ors d'une -,.no-greffe (c'est-à-dire la greffe d'un c animal sur ftrr les anbc 'ns contre les déterminants de l'organe greffé doivent être ei,minés pour éviter . -let massif de Vordane. Le 17-aitem- immunosuppresseur est une hérapeutiqu probe. r rr - s présentant des effets rtntt, uvant engager le pronostic vital u J :K.?. nt et ,:iont l'effi 'est pas totale. La neutralisation cies xéno- anticorps ci receveur, _ antigènes' ia.c.natît.urT: apport Lus le rnalaC , ,auto-irr 10 conséquence Mportantes, iccharidiques, par la fi) . à des xéno 0Maine des xérKa-greffes. d'auto-anticorps pell7 avoir des dans la frnaa,:lie de Lluille lc facanticorps dun système détri,ar,ent. les nerfs périp. , l'axone) démonia- que ce nticorps se fixaiena a des ganc ..jckr.-!s (pcx-ra-Irlirrrit un antigérjcp'.Je saccharidiq , - résents crins systèrre nen f 15 reconnu est lu', aLJasi saculiaridioue. -auvoir és du système immuniUre est u ste de traite la mala&.:a Hrrrl .àcisément, dar' k-' ras der 'Sj(..1q1S inc élémc figurés du sang, hématies, uet ,mi icytes, uor ,ent à leur surface des antigènes Eracchaq digues Du H, qui déterrn-reW: groupe san 20 des individus d'1..rrK.?', race de ates. Les personnes du group7 '7.:,anguin A ont c..1Fs antigènes de groL' ?.s personnes du groupe j B, des nes de grotip,e personnes du groupe. sanguin AF3 ont types d'antigènes, iroupe ..Tguin 0 portent. l'antigènf_ don haîne je se.rLL.ouve da , , antigènes de 25 groipe Les antigerre; A et B présentent un monosaccharide supplérrientaire. Les antigènes ,de groupe A et les antkiLusanes de groupe Suit, par ailleurs, portés par différents agents infectieux n Ihogènes, bactéries essentieHerrit. La mise en contact très r7e avec, ces agents infectieux entraîne u ri'rnnoz- - me contre [ éter-n-iinant A ou B que s de groupe s mr,..r-aarent une généri . des arq: r'errninant B 30 ne réponr:,e tr (également nommes anti-B) et les individus d une rre 3035799 4 ptasr en gr anticorps ent nommée - 'nt pa d'anb upe 0 des ant:cdrps anti A et anti b. Les anticorps des groupes sanguins sont essentiellement du type IgG et Ie. Le :aceur spécifique. Lc -iode de liaison Jtilise la réacticr 20 Dsaccharide portesr à I iu bras espacEd.,ir fond.: n 2 du Sepharose-NIS-activé. D'autres typE suppo type 5 harose oxy-activé sont cités. Aucun autre exempie coup;âme n'est do. té dans la description ; - la demande L.: .6504 qi.ii décrit un produit et une 25 méthocl,... pour réaliser un trac -lent ou une con!:eront au moins deux filtres ou un fIl 1 ur :entrifuck, aiDtr ons et un composar- inoins une substance capable de heç' à une. substance (.:-ysit indiqué que l. igand est lié d e o nte à la matrice et que : rhOiS4?S p ';--iornme du métier Dnt être Le mo ie p a e covalent entr:7:,un" -NH2 portée r . secduàrid: carbu i.7)résent sur la matrice nt d'obtenir une amide est 3035799 6 décrit. Il est merit Y iisonimmid''7 peut être obtenua réaction Et C/KliiS ( -,eth rn.é:'.h,/laminopr cari. et hy-droxy7'..Tcchirn!de) avec un carboxyliquê , ° matrice qui est :-êagir avec le dérivé Hdique. AUCUF exemple plus précis donné ; - la demande de brevet EP comprenant un saccharide lié via . _..as de pour perrr =) de séparer sut osaccharide-matrice -eut 10 compose SUI` une H: u.l7trce pdi NH,N,.,LII.Dc-ixy (vo iéfi ion L page 4 ligne La action de C: paras.dphe précise que la liaisr entre groupe carboxyle et f..Jne amine .une des, r.,..'.thodes 3iquement utilisées est la réactb:)n d'un rboxyliqu.'3 avec un 15 carbodiimide, p -'- ,nter s Idye avec une amine de obtenir une liaison de type s détaillés dans les exemj,,,. incorporent exclusivement cie,u edon, flljno et acide Il apparaît dcruf-::: gLie différentes solutions nt des oligosacc ' antigéniques d'un grc e sanauin greffé sur u support ont été proposé La liaison oligosacchande support portu..,r et est le plus souvent réal époxy ou acide carboxy, Dans ie cadre de un nouveau suppoi-t penr notamment de favoriser - des anticcrps du type IgG et IgM sur prt-nirnaison de natur....?. os,accharidique, et en particulier la liaison 25 de,''7ii--r,r. ps cies groupes :7: E 3t proposé. sente inventior conc:,.rne un support pour la puni:. 'un liquide 'ulula, mprenant 1;71,3 onde .:7,Ur aquelle par liaison covi. des mc:-.1-k 'au n 3 un oliqosaccharhie c_. de se lier ê un ou plusieurs antiedr- ladite phase solide étant p.cirteuse de .bnction.,7 akiéhyde -CHO lil Dan: c:. - a Je l'in \ ', :es fonctions, assurent une stabilisation aes anticorps, consécutivement à ieur rec matériau de séparati, I .lieràunerralD la 3035799 7 in r und oc pa s moléptAs d'on sharide(s) greffées sur Les fonctioIs . p:7rties sur la phase s(Dicb.2. et enrient interagir ave nent conterius dans le r:1LHT:h-, b;ohligique à purifier viennent se - par liaison d'immuno-affinfté ch molécules d'oligosdc..charide(s) greffées sur la phase culier, la stabilisation de la IL.jscr cHgosaccharide/anbc:c est obtenue La prés vention concerne égek.:.1---nent un proc&M d'un liquide bioloc. . comp - t des Luidsorps, dans !Lque est mis contact avec au moins un support selon l'invention, cie .ture d'anticorps présents dans ledit liquide biologique ilidins certaines des molécules d'ullydsaccharide(s) tra.T...rière à obter, 15 par liaison(s` greffées SU phase solide. Au de manière avantageuse, dans un procédé c.L pd.-ification, ledit aus support est utilisé pour assurer, l'intermédiaire d'au moins une partie des fonctionS aldéhyde I préser sur la phase solide, une stabik.:.tion des ant,..:::ci.rps, et en partbik.- des 20 qui viennent se lier à au n'am -rwnes des morécr k. rides) greffées s'r- bdite phase solide. L'inven'i-.ipii concerne éga'-ment u. océdé de préparation d'un s!'.!gp-ort conforme à l'invention, le greff,Dge des d'oligosaccharide(s) est phase porteuse __ 25 aldéhyde libnP:s, par r.,,,action, sur une des fonctions :hyde librc :::.:4...é.5:;erites sur d'un oligosaccharide d'une foncdcw réaclive apte (ier. prie iiaison covalente avec fonction aldéh --CHO. La lia ovalente existant entre la phase solide et les molécules d'oligosacchdes greffées sur le support final résulte 30 donc de cet-U-7.: "-D3ction sur une partie des fonctions aldéhyde -CI-10 libres a fixation, notamment par li valente, avec sut, ou cys, arginine, glutamine, ,ent sur ledit anticorps, sur Lir 10 ald6,yi,, te sur la phase solide. 3035799 8 De rr .7701» osaccharide sont greffé sur la phase pa, Fïeictior fonctionnalisé porte d'une fchnicfry- a..r>re du type 42, -Ni-i-NH2 ou -0-NH2' éventuellem- . sous une otégée, et d'une fonction aldéhyde -CHO p(.:::,i-tée avant gre- -n! par .,elon un mode c,Psolde, F,ur - mole c d'oligosacchar es est de la cellulosr des H(0CH(CH2OF1)-0-CH(CH0)-0-. 10 La présente invention a égalernen objet rubhalon'r3l1 MO'un support selon l'invention dation d', enant des anticor lediL L. olooia. rnE,: -ntact avec le au moins uTpart pour assure.' un,- '3tabili.::::,atlan des anticorps, et en particulier (1,--s Ic qui vienne-t se lier au 15 rnon ceit jnes tnolécules d'oligonac(.Tniyide(s) greffées 'à surface d- phase sol Oc.,. n -:-D,:t.utictlier, la stalAs-,Jtion est assurée i nterrnëdi. d'a!'! moins unu ;partie des '.Onctionsaft-Jérride libres présentes sur rq-u.:-:tsd G,,ttcle, qui, de pre.:férence, interagissent avec une asparagine, glutamine, tryptophane, t ou cystéine, pré ur 20 iaison co I don, di1 .; uu phases solides pourront En particulier, on uthsera r..q-iase solide insoluble dans une aqueuse. A titre d'exemple de pha.-;(,, :tzllide, on peut citer les phases 25 de nature organique, not&Ilitnent e po que, polysaccharidique ou r igue tE -ène,, yca les polyacn,lia:Le ^diysulfonent les poiyuretna. la cent.. ,:lextrar ne, la ysine, u encore les phi de inorganiqur ime I silice ou. La phase 30 sius la forme notamment de r- t.i7,ules ou d'une mat -e Cur. pouvan', ,Jbilisé ou de e,- 3035799 9 Dans le -- ,.'e s sélectionnée pour permettre de g E ïer de: p ['Lis faciles a rifidr. Dans cc i d c,7,,s Dans l'art antérieur, le ccharides aminés était résé sur dc.- ases solides porteuses de for ,-:tons époxy ou acide carboxylk .... Ces 5 ,s c-,ures par rapport celles .privilégiées dans e dre de entent des 415:: le grT est contr t celt. Fr) acide carbo),c.,--- "art. r..(-.,-,.?-'[enir des moleouies EDC etiou NH5 ,,7,u1 complexifient la réaction de couplage. Dans le cadre de l'invention, la p F.e solide orteuse Dr13 10 aldmr-rha bres ces fonctior.s. corre5:;poildei-it, en purUculier, à des for-pet:Je- ésiduelles restant sura phase solide après greffage s mol' d'oligosaccharides, dont le greffage a été resé su, In3 aldéhyde presentes initialement en surface de la phase s:...); Aus§ re avantageuse, dans les supports sebn l'invention, les 15 o osaccharic.!efrl sont greffees sur une phase solide - r-'use ,ont....bsc,r.r5 aldéhyde - ;Ibres, par réaction, sur 'me partie s ement des fonctu-is aldéhyde ibres présentes - LJ phase solide oligosaccharide port- dune fonction réactive apte D rmer . son covalente avec lad Iction aldéhyde - IO. Cette réa pn de .ffage est 20 menée de manière LtIlt fiai, des fonctions aldéfr,,/,:,.k:tent sur la phase kr.mEic.)n OE5valente existant: . molécules greffées sur le ddpporl: final corres.), de préférence, , résultant de la réaction d'une fonction ar"nrre -NH2, -0-NH2, éventuellement sous form- pr ée, 25 :ée avant 'oligosac' » et d'une foncU,.c,n aldéhyde --CF-I0 portée avant greffage hasesoli .roduction d hons aldéhyde libres sur la phase st donc ,vant le grefi'',, molécules d'oligosaccharide et sers .1.au.'ire de e,dite Les fonctions aldéhyde pL.. par 30 exemple,être direct isérées lors de la polymérisation de la phase 3035799 10 Il est également possible h nn n contielee types de fonctions réactives rerrnettre l'introductleol do- lyde libres. En particulier, ia phase. sc a peut contenir u elÉ-:-urs de fonctions réactives présentant ractère électrc :lue les acides carboxyliques et dérivés (par exemple les acides eeoxyliques activés au NHE.): épi.oxy, les isocyanate:s isothioc, nctions réaction IJn re peirt un alio', t'on -NH-NH e1H2, e(J'autre part, une fo 10 r riune un acétal. La fonctlon aldehyde pourra être egée par hydrolyse de l'ac. Par exemple, rra-c.,taidéhycle acéta réaction de une phase :ant des fere en, poxy. L'aldéhydensi dans une sok:J.1,2o acide. 15 De maniere alternative, la phipse, ,..;()lide peut contenir un ou plusleure le fon ns réacti -1 caractère tels c- r alcools, et les --NI-I-NH2 et --0--Ne 2. Une telle fceotion réac :ive pourra être , soit avec une molécLle -ente d'une part, une foncion acide que l'on activera pour forn r1.alson 20 amide avec b phase soide! et d'autre t, une tion aldéhyde masquée, soit avec n.1-,s,lécule avec deu fonctions aldéhyde teHe que le uti:ealdéhyde dlméthoxyéthanal, ce demlei- devant alors subir une étape de déprotectior. De maniè erne,r,./.., la phase solide c witenir des fonctions 25 hydroxylr. qui pourront égaiement être déproh.innees par ur . base forte et présence d'un réactif qui pce.. u e part, un ha cl Hure, et d'autre part, unr fer,'sion aldehyde masquée comme que l'halogénoacétaldéft r 'acétal. Il en résultera une -:,ry,tion rtle7 _ e on éther à la phase solide. t'onction -otégée e biléhyde. c'ii,7:me type de -,,r7:1-e hydre ré par du L r'mure nienogène qui ent avec l'amine mmcd r 9méthyl acétal. 3035799 11 .C-ins le cas d'une pharesc)ltde tele que 1 cette de: ourra être f_--ctionraU trrtk.Dro,.silane, tr :.'silane OU t ..noxysilane comportant a !ssi une fonction réactive, altiényclique ou autrE. p,ouvant être dérivée la suite vers un aldéhyde, par exemple le (3- ,iypropyl) trimett ane. Quelle que soit k : L slide inorganique il es J ement possible d'utilisE'. se de fonctions re, « chemistry pour -tior libres. De telles t-c7K-17.ions réacti',,,- « click 10 ches parn-ii les fonctions thiol, ate, _ qui pourront être mis -1 réactic correspondant adapté pour introduire pa.- r click » une foitL1. . le libn De mar -e avantageuse, k 9,1en l'invention comprendra une 15 phasr:7,.. !ide ésentant sous la 7-ne o articules du type cellu Ur choly. ç::.ermet de corD:-.....r-rtn,r.:1.- les protéines du .iide biolcj purifie jrâce udt .,.;upport Dans le cadre de l'invention. LI, ise solo- préférence, utilisée. La cellulose l'avantage d'être 20 énomicii dr, plus du lait de son pouvoir absorbant, permettra cie concentre iqukies biologiques, tels que les produits issus du ci: en particu s plasmas, qui seront pu. ales. a.,,tec le support selor rnve,ntion., en rete- partie cri.: contenue dans lesdits liquides n: Er une phase solide telle que la )se présent . 25 d'Mr. J.,iïpe.r.iée dans le milieu à traiter (sang (- *ssu au erfa. cifiquez - bonne fl r Ln. L.,1,.',71nts du sang t. Son ;ation, de 11-1:1fPre.,,Tces rme 0e stables et lues, Le. .3îne pas de dilution des s plasmatiques. En e 30 concentration des pro ,T.; .-..1,;,:si-natique est effe:.: favorable rechercht Dans le cadre de l'inv.-ion, on pourra nntaml.lent utiliser une fe[hilose micronisée ou une cellulose en tarit que phase solide. 3035799 12 La cellulose microcristalline est obtenue par désintégration mécanique contrôlée et hydrolyse acide des extrérrtès à partir de la cellulose mcronïe obtenue e= mime par désintéeretinn mécanique à partir de pulpage de matière véc tk fibreuse cellub::,,,clue. Les extrémités fibreuses présentes 5ur la cellulose. r.,:icronisée sont compacte. Dans le cas d'une phas.?. seHcle 71-10 r hH! pcn , ,-arides, et en ies sur la cellulose microcristalline, ri particulier, dans le . de la ceiLA foncUoris aldéhyTn pourront être introduites s 0-> 'igue, oxydation au TEMPO 10 (2,2,6,6-teti-amethylpipéridine de S..*ern, éthÉ avec n ildéhyde masqué hah ivation c,.::Wulose en tc r lequel on fera réav :tate du glycoLiMhyde diméthvl ou un -NH2 par sub Llion), a ion CNBr (suive réaction avec lizyl.noacétaldéhyde diméthyl acétal). le cac d'acétals formés 15 irftc...Trdédiairement, ces de .yclrolysé. La- conduire. 3 f-iyiction aldéhyde libre. L'oxydation plusWce erement, entraîne la coupure m' une liaison C-C entre les deux cartyL]nes portant.: les deux alcools vicinaux unité saccharidique et la créa i de deux rendions aldéhyde. La Fig 20 tre la création de telles fonctions aldéh"dc CbrIS le cas de la cel _Serltée SUI" onctions aldéhyde à prox c.e.'ri de fone7tir.)ns aldéhyde unités glucos illustratif. La weaticr.1,...' mité l'une ,>rle l'autre sont donc créé 3. La et toutes les quatre 1 est donnée à Lien purement Douma n.régulkee ,_2j aléatoire 25 et plus ou moins rapprochée. Aussi, ae rnieJee avantnqciie, dans les supports selon l'invention, la phase solide eci u i polysaccharide et les fonctions aldéh-4e libres résultent d'une oxyda-ben ,ériodique. manière encore plus pré .ee, dans le!: .s.!.,.ipports selon l'irva-Itiori, la phase .sokle est eÉkilose ç. comporte des unites rie fremu e 30 -CH(CH0)-CK -CH(sC, En effet, certaines de ce Jve ms la phase s porteuse des molécules d'oligobacellaride greffées. 3035799 13 Les conditions c roduction des fon-tiens aldéhydes et, en de l'oxydation péri utilisées pourront être adaptées pi cmme du métier, en foric_14- 1 de la densité de foncUons aldéhyde qu souhaite introduire sur solide. 5 On nourra, utamment.,- se référer à "Ar, r ctuction ta the rhpmistry of ci idrates", R.D. ,.3f. John Honeyman, Oxford Univ^ 1968, page 108 à 112 pour es cor :ions à appliquer pour périodique de la ou plus ralerneni., pt-culier, dans e oxydat'r 'iériodique, erioc l que le 10 métapé-odete de 5Ldfl tilisé L réactic,. oxydation périod sera le pftis SOU sur L cJe mise en sus.çr ans ut Par exempH. du rnétapériodate de sodii a104 dissot. une phase aqueuse en réaction sur u solide ype 15 polysaccharide telle que la cellulose en suspensiun. e rnanièr:, uvangeuse, la réaction est menée sous agitation de préférence dans l'obscurité, avec ou sans ch ffage, et de préférence unu rnpérature appartenant à la gnrnm °C, .,'_)référence neutre ou acide. Le taux iuctior .1ctions aldéhJn phase solide du t 20 ysaccharia wn ue la cellulose depenu, en g :lr7!,,:7 de 'a concentra n réa( utilisé, et en particulier en agent oxy..d,int tel que le . seront adaptées pour obtenir, de préférence, une aldéhyc r 100 à t monomères sacchari( préférentiellement une fonction aldéhydu ucur 25 à 8 25 saccharidiques. Des phases solides déjà cdtE;1Ees de fonctions aldéhyde libre retamment sous la forme de nre'ri)(,,;,,s .' ny!e sont également dieeen'Oles le commerce. On peut notarnru.,:rit, dt:E'.:1- es phies 5..;0Ae5 rées churtographiques mAcrnporeuses d'un polyrrr 30 cc err,falisés par notamment sous lu--ence f :,i'F-Formy1-6.'7: ou des gels d'Agarose portant des fonctions aidenycies. Une telle phase solide porteuse de foncdocu ldéhyde libres est 3035799 14 alors prête p mole fonctier,r;E' par greffage cove,r.:nr de des fonctions aldéhyde. -me Il est poss.lï greffer sur la phase solide d molécules d'un seul cuccharide eu tics molécules de p.usieur. Ji.rdosaccharides différents. Le ou les oligosaccharide -ce, un tris.accharide, un tetrasaccharide, un pentasaccharide sc'earide. Le ou les 'clgosacchee --fesgreffé() phase solide et sont) 'ifié(s) d'e nique(s) par leur capacité à tee:: eitre un ou 10 pl ieurs anticorp5. Dans le easlee, de l'invereiee --err nt, de préférence, greffées phase solide des molécules d'au riibii'es Un oligosaccharide ce a anti arminant A, t des groupes sangt Les )5 anti déterminant A sont des Nps réguliers ese les 15 ê:Li.r.mrïrn le groupe sanguilt Li ou ; les anticorps anti dé(..elminard: 9 sont )rps réguliers présents chez les êtres humains de gra sanol lin ; les anticorps anti déteerrkuint H sont des anticeufis prés lez certains êtres hurreies de groupe sanguin 0. Les . des présents sur les supports selon l'invers 20 de se lier ïrj f4iticorps anti déterminant des groupes sr ïeuvent être de tout type oligosaccharide antigénique di éterminare: A. oliçiceaccha antigénique du déterminant B notamment, par exenciphiiiii ïus urFe. naturelle hexasacchze' ou réduite en taille (tri tetra ou , saccharidique). 25 Notamment, e ce es oligosaccharide a(ont) être choisi(s) parmi les oligosaccharides capables de lier aux rre'corps anti déterminant B, présents chez grotehe eangfen A ou 0, s que tetrasaccharide de cpe qui n'est p- ; mient dans e répertf.,,,h,f±: hefferi mais qui prése( ça-, surprenant._ une exceller'' e affinité peu,: .>es 30 humains, l'in,,,,7xeeee,fleïride de type 1 et l'hexasaccharide de type 2 ,)artie du répeet cire rlurnan; parmi les oligosaccharides capables de JX anticorps anti dëterrriinarlt A, présents chez Ife.; , etus du 3035799 15 groupe sar de, ou 0, tels que le de type 5 qui niert. répertoire 1-)L.rïuBiir :nte, de façon surprenai une excellente affinité pur les prit.Voi-ps nUrriainS, l'hexaose de type 1 et l'hexaose de type 2 qui fu pertoire humain. De manière avantageuse., upport selor; rrl fr'ï:bn sera porteur de wps anti 0 et/ou mcieL.,ileS d'un olig( r..--Jc.criaride capable e se -ux anticorps anti . A, présers p-,7 les individus du groupe -nguin B ou O. A titre 10 d de tels oirgosucenurrjs, on r citer : GaINAcal-3(Fucal- - , Gala1-3(Fucal-2)Gal31' GaINAccf.1 (Fur Gelai- 1-2)GalP1-4G1c,GaINAcaTucal-2)Galp1-3G1cNAcp'... Gala1-3(Fucal-2)Gal31-3GIcNAc31-3GalP1-4Gic'. GaINAcal-3(Fuco - 2)Gal31-4G1cNAc131-3Gal31-4G1c, et Gala1-1 -2)Ga1131-4G1cNAc 15 3Gal31-4G1c, Fucal-2Gal31-3GicNAc, Fuca1-2- Fuca l-2 4G c, Fuca -2Galp1-3G1cNAcp1-3Gal, -1-GIcNJ lGal, 2Ga!r'31. -3(.3a1NAcf31r,7,. Fur..7c7. rucut cHgosaccharides Ge,lAca 3(Fucal- 2)Gal31-4G1c et Galal,- ) 1p1-4GIc étant préférés. 20 Il est possible de greffer sur la phase solide d'autres types ri./oHgosaccharides se liant à des anUc,prps présents dans des échantillons de Ou de produits issus du sang, autres que rar,-7 caper' Lrhcorps anti dererminant A, B, H des groupes ST !ler 'exem tels oligosaLcharides, on peut citer des oligosaccharides pouvant eue 25 iés dans des problèmes thérapeutie - les xéno-antigènes, de différEEDI types tels que le Xeno Levvisa (notamment commercialisé par la LITC:177YL sow, la réfei-,.7p-re GLY076), Gala1-3Ga1131-3(Fucal-4)GeN ..Neno Le w :notamment commercialisé par 71Ciété s Galal- 30 3Gal31-4(Fuca1 (.:4Ac, le r r ltigen type 2 (notamment c,(..rImerrialisé pur - 'Piété ELICITYL, sous la référence GLY074-2) , d'un oligosacchan,:ie capable de se lier B, présents che: les individus du groupe si 3035799 16 ..1--4-C.7.:IcNAc et 7 de la ilaison rt Qi g la présence de fonctiori libres réparties El',h support étant suffisante. Dans le cadre de l'invention, contrairemer r qui est classiquement fait pour le couplage notammE de protéines (A Simple Method for Coup Protito Insoluble Polysaccl J. SANDERSON Ah V. WILSON, 10 Immunology, 1971, 20, 1061.), ne procède r à rt notamment par réduction, des fonctions aldéhyde IL '3 restantes. En fet, dans le cadre riP l'invention, comme cela ressortira dans les exemples, il a é" ?. la présence de fonctions aldéhyde libres restantes pi - a liaison d'affinité créée entre le-, _ D saccharides et 15 les d I lucurps auxquels ils se lient. on pou" '3és dans tech , exemple par chrom.:,..:ographie ou par 20 adsorption sur une E iS nsion , -Tport (commurrrya é mode batch). Les supports sE:::01 permettent dE lr'ipe de liquide biologique contenant Lies anticorps pour lesqueis ou les oligosacchriciPs présents sur _ .pport présentent une affinité. Le support selon l'invention va permettre :e les anticorps nu; venir se lier à 25 des molécules d'oligosacct -ae(s) greffées sur la ç u sup selon l'invention. iiquide big > on ntend to- r-inin.s un prélèvern.:1-q Éque réalisé chez un H main ou un , liquide qgiqu , pur exemple, du sang total,, di.'! plasma, irr l'urine, u céphalo-rachidien -- issu (le selles, de ore flts nez, de gorge, de peau, de p cn.,:, de tissus ou de cellules iso etc. Le "7 ' ?. biologique pourra correspondre à ur biologique issu 3 03 5 79 9 22 d'un uniqviii OU à un mélange de différents liqL de préférence de même e (pool de plasmas, par exemple) provenant de différents individus, et notamment .7fifférents êtres humains. Par « produit issu du sianç 7n entend n ïier sérum, un 5 plasma sanguin (c'est-à-dire id linuide du constituee d'eau, de :sÉs minéraux, de molécules on protides, lipides, glucides) dans laquelle se trouvent en hés, leucoc, :7) ou une fraction plauriailque vovenant d'un se, L7H'Hdu ou lividus différents. 10 L'inventpn lrticulièrem -daptée à la purification du sang total ou d'un prod ig, en er en choisissant uile phase solide sur laquelle son... ,. des I- d'oligosaccilari.cle(s) venant ca les anticorps des groupes sang )resents. On utilisera, de préférence, un support selon l'invention de 15 molécules d'oligosaccharide(s) cap de se lier aux anut.uips anti déterminant A pour puni s sangs de groupe B ou produits issus du sang de groupe B et un pport selon l'invention porteur de molécules d'oligosaccharide(s) capable(s) de se lier aux anticorps anti déterminant B des sangs de groupe A ou produits issus du sang de groupe A. 20 Pour purifier des pi( ae plasmas ou des plasmas de groupe ' on utilisera soit deux types d supports selon l'invention, l'un port: e molécu d'oligosaccharlde(s) capable(s) d se lier atix anticorps anti déterrnt A pour élimin iiticorps et l'autre porteur de ules d'olii )lier aux anticorps anti B 25 pour éliminer les anticorps anti-B; soit un support selon l'invention porteur à la fois mi cules d'oligosaccharide(s) capable(s) de se lier aux anticorps anti déterminant A e molécules d'oliges -.(s) de se lier aux anticorps aniii déti.. imiiinant B. Ue tap( pré e d'e,' e, préalable à l mise en contact du 30 suppor vec le pn-:. issu du s à traiter, pourra être notamment étape d ii.nge dans tiii:irripon de type PBS ou un tampon salin contenant un anticoagulant (tel que ACD, acide 3 03 5 79 9 23 dextrose ou CPD citrate phosphate dextros- ne)tflsament à un pH appartenant à la gamme allant de 5,5 à 9,5 et _ ,ment dans la gamme 7,e,drf.: de 6,4 à 7,8. Dans le cas d'une purificat r adsorption sur une s=.1sperision du 5 support selon l' 7-ention' la du liquide bitheique t.té et du support sera par exnp, par une séparation du type sédimentation ou centrifugation. Selon un mode (-7,r.siît 10 nportant d pr sang reliée un - déleucx)cytation lui-mêrr oche de transfert, reposant sur un agitateur poche de ,,azrakzurit cezttenant le support en quantité suffisante pour permettre ualiser en patie siTultanémea. 3 déleucocytation du sang total uptia des anticorps, at en partP..s...ft- 15 des anticorps alti détermin7nt A, B etiou H. Dans ce mode de réalisatior sang ainsi déleucoc é en anticorps pourra uti Lé tel q.K.1 être séparé en fraction plasma: ,-zu et (Arvthrocytaire. Les supports de l'invention préférence, être ccalson es pour év )ut ri! ,:uai,nAmination croisée 20 purr deux liqulues T Jes successifs. Le coût de proc devr:?:' Han .,:mtendu, être compatrbde avec ce choix d'utilisation. Lente ,r-ention propose, en particulier, un support permettant dnter -asr ; sanguins c préparations plasmat u,:.7.qa-nettant 7éd 'one .tration ei . des groupes sang [j!n':: r.rée.nts, en 25 dessous des seuils acceptai s, que les antiur s,,»ent du type u IgM. En ajustant la nature de )saccl- 'Ci présent et en utilisant de combinée à la fois au Mt5115 un d4osaccharide '- de se lier aux anticorps anti déterminant A et au moins un oligosuddldr, capable ne -e lier aux anticorps anti rI4terrniont B. il est possible d'obtenir des nlè:r5ms 30 sanguins ou des prér ac ;-.:sr):1D> dits universels car ne presentant aucun h:zciii..Ka d'administratcct de hi mains quel que soit leur groupe sanguin A, B ou 0. support DeLiti 1me r 3 3035799 24 présencE_, de fonctions aldéh ex-es sur la phase solide permet de stabiii.ser la oligosaccharide/anticorps, en particulier dans le cas des anticorps du type IgG et IgM stabiUaL:J H..rouvant être plus 7.7rquée dans le cas des IgG. Cette ..,isa t intervenir par notamment par liaison cr.)v!er,t- ,en;: asparnine lysine.. ou glutaHne :ésente tico u on a' libre la phase 50 de n il'Llvention. De re réaiisét n d.72 - 7: .7,-1H11 11:1 comme L -Tosine, Lresent 10 l'anticorps lié à un oligo karide ui-ie fonction aldéhyde lib pv°-nte sur la phase solide du supp . selon l'invention. Dans le cas de l'asi ne, le micro-enviro-nerner . 5ée nar la fixation de l'anticorps sur aldéhyde libre située sut non enzymatiqu ne fo- )ximité de l'oligosaccharid fée 15 (et en particulie- .éhy. i r 7.Yur clu type cellulose con, ,:ies unités )-CH(CH-i- igo)-0-) U r ne de l'enticorn.,7 )ilisationpe.i-kL-. se fai r'or base de Schiff, int. ant avec un l'ail:p:.:orps fixé com !nant une fonction amine qui formera 20 une liaison covalente de type -L=N- qui pourra etï ,'. cjan7,h ca7; biologique qui présenterai >ite de fi) , 3. un Leur, a lie.rn for, Les exem perme).-ttent. 'ont 30 aucun caractère limiteî: , 'ourles ' isatic Mesui z U oance La lecturE l'absorb,-:41ce est sur un spectrophotomètre meter 20DP. L'écl.u.',ntUI,-Jn est transféré dans une cuve - IA. 25 3035799 25 HPAEC-PAD Le pofl en monosaccb:Hc3 est déterminé par HPAEC sur une c: ch-matographique ICS-45O0 La séparation est réalisée sur Uf nne Dionex CarboPac PAL est réalisée avec un gradient de Je, d'acétate de sodium et d'eu.-.isée et la colonne est thermostatée à 17°C. Les conditions d'élution sont détaillées dans le Tableau 1 ci-après : Tableau 1 NaOH 200 mM Acétate 1M 0,0% 0,0 Temps NaOH 200 eau (mn) mM déionisée 0 9.0% 91,0% 0 91,0% 0/0 3 1 50,0% 50,0% 50 50,0% 50,0% 5 9,0% 91,0% 0,0% 65 9 noir, 91,0% 0,0% La détection est assurée par ampérométrie pulsée sur une électrode d'or. 10 Chaque monosaccharide est calibré par un étalonnage externe. MALDI TOF Les spectres de masse sont obtenus sur un spectromètre de masse Mi ToF-ToF Speed (Bruker Daltonics). L'éch>^i-illon est préparé en solutio.. 2.10-4 M dans l'eau. On dépose sur une plaque 0,5 pL de la solution 15 d'échantillon préparée avec 0,5 pl de DHB (acide 2,5-dihydroxybenzoïaue) à 50 mg/mL. On laisse sécher à température ambiante ou sous un fi a température ambiante. Après séchage du dépôt, la mesure est réalisée avec le spectromètre de masse. 10 ensembles de 1000 tirs chacun sont réalisés à différents endroits du dépôt. L'ensemble des 10 000 acquisitions constitue le spectre final. L'échelle des masses est ajustée par le passage d'Jne solution de calibration « Brucker peptide calibration standard 2 ». RMN du proton L'acqui-uri Liés s7--..tres RMN du proton est réalisée sur un spectromètre de résonnance maigri que Avance III 400 MHz Bruker. L'échantillon, sous 3035799 26 forme lyophilisé, est préparé dans une solution de D20, à raison d'environ exactement 5 à 10 mg dans 700 pL de D20 comportant un étalon interne, le succinate de sodium à 1,77 g/L. L'acquisition est réalisée dans un tube RMN, à 80°C avec un temps de relaxation dl de 20 secondes et avec 16 scans. Les données brutes d'acquisition sont traitées avec le logiciel Topspin NMR de Brucker. Méthode de dosage des molécules d'oligosaccharide(s) greffé - calcul de la quantité d'oligosaccharide(s) greffée par gramme de suppor Le taux de greffage en oligosaccharide(s) est mesuré par analy-- ies 10 monosaccharides constitutifs après hydrolyse, par exemple à trifluoroacétique (TFA), du support selon vention conduisant à l'hydrolyse totale de l'oligosaccharide. Pour cela, on peut utiliser le protocole type suivant 20 mg de support selon l'invention sont hydrolysés avec 500 pL de TFA 2N pendant 4h à 99°C. Le mélange est ensuite neutralisé avec 53 pL de 15 NaOH 19N et ajusté avec à lmL avec de l'eau déionisée. Un standard de l'oligosaccharide dans sa forme mise en oeuvre pour le greffage, ou de préférence dans sa forme non fonctionnalisée, est traité dans des conditions identiques. Après filtration et dilution au quart, le profil monosaccharidique est déterminé par HPAEC-PAD. La comparaison des résultats obtenus pour le 20 support selon l'invention et le standard, sur le dosage d'unités saccharidiques spécifiques des oligosaccharides non présents dans la phase solide utilisée, notamment du fucose et du galactose dans le cas des oligosaccharides utilisés dans les exemples qui sont non présents sur la cellulose utilisés dans certains des exemples en tant que phase solide, conduit soit c ctement à la 25 quantité greffée d'oligosaccharide dans le cas où le standard est l'oligosaccharide dans sa forme réductrice non fonctionnalisée, à la quantité greffée d'oligosaccharide + bras de liaison dans le standard est l'oligosaccharide dans sa forme mise en oeuvre pour le gn:, Dans ce cas, la quantité d'oligosaccharide greffée peut directement être 30 obtenue après déduction de la masse du bras de liaison. 3035799 27 Méthode de dosage des fonctions aldéhyde libres et calcul du ratio nombre de molécules d'oligosaccharide(s) greffées sur la phase solide / nombre de fonctions aldéhyde libres présentes sur la phase solide Le nombre de fonctions aldéhyde présentes sur la phase solide peut être mesuré par dosage colorimétrique avec de l'acide ,5-dinitrosalycilique "DNS) qui va être réduit en acide 3-amino-5-nitrosalicylique (composé rouge) -ar les fonctions aldéhydE Ybres présentes, avec un étalonnage exte réalisé par exemple avec du glucose. Un protocole type est donne a l'exemple 1. On obtient ainsi le taux de fonctions aldéhydes par quantité de 10 masse de support, et plus particulièrement, pour la cellulose, ce taux peut être exprimé par unité polymérique de glucose en considérant une masse molaire de 162 g/mol par unité glucose dans le polymère de cellulose. Les dosages des oligosaccharides greffés par unité de masse de support ou par monomère de glucose de support pour la cellulose, rapportés au 15 dosage des fonctions aldéhydes par unité de masse de support ou par monomère de glucose de support pour la cellulose, permettent de déterminer le ratio nombre de molécules d'oligosaccharide(s) greffées sur la phase solide / nombre de fonctions aldéhyde libres présentes sur la phase solide. 20 Les oligosaccharides qui vont être greffés sont les suivanus : La dénomination GrA signifie que l'oligosaccharide est capable de se lier clUX anticorps anti déterminant A, présents chez les individus du groupe sanguin B ou 0 et GrB signifie que l'oligosaccharide est capable de se lier aux anticorps anti déterminant B, présents chez les individus du groupe sanguin A ou 0. 3035799 28 6GrA1 : GaINAcci.1-3(Fucal-2)Ga481-3G1cNAc81-3GalB1-4GIc : OH OH HO OH 6GrB Gata.1-3(Fuca1-2)Ga181-3G1cNAcp1-3Gal(31-4GIc 4GrB5 : Galcx1-3(Fucet 2)Galf31-4GIc 10 OH 15 4GrA5 : GaINAcct1-3(Fucal-2)Ga181-4G c OH OH O HO -H 0 20 25 3035799 29 3GrA : GaINAca1-3 Fuca 2 G I Les exemples, e après, permettent d'illustrer l'invention, mais n'ont aucun caractère limitatif. 10 PREPARATION DES SUPPOR-I.e Exemple 1: Activation de cellulose micronisée et greffage de 'oligosaccharide 6GrA1-NAc Propargyl préalablement activé avec une fonction amine De la cellulose micronisér ,c00-30 produite par Rettenmaier, est activée par la création de fonctior Idéhyde, obtenues par un traitement au métapériodate NaI04. Pour cela, mélange 500 g de cellulose micronisée avec 100 g de NaI04 et 5L d'eau. Le mélange est maintenu à température ambiante une nuit, sous agitation, puis, le support cellulosique obtenu est rincé à l'eau, puis à l'éthanol et séché à l'étuve à une température drE 20 50°C. Le nombre de fonctions aldéhyde ainsi créées sur le support cellulosique est mesuré par dosage colorimétrique des fonctions réductrices. Pour cela, 5 mg de la cellulose activée obtenue sont solubilisés dans 500 pL d'eau déionisée. On ajoute 50:' de réactif au DNS à 10g/1 (1,6 g de NaOH 25 dans 15 mL d'eau déionisée, H d'acide 3,5 dinitrosalicylique (DNS) dans 20mL d'eau déionisée, 30g d 'rate double de sodium et de potassi,' ajusté à 100mL avec de l'eau ue nisée). Après 5 minutes à 9-L. l'échantillon obtenu est refroidi rapidement sous l'eau froide. On ajoute alors 5mL d'eau déionisée. Après un repos de 20mn, nn Pffectue une lecture de 30 l'absorbance à 546 nm. Le résultat obtenu e!: :mparé à une courbe d'étalonnage externe réalisée dans les mêmes conditions avec du Glucose (comportant un aldéhyde par molécule). On en déduit que la cellulose 3035799 30 activée obtenue comporte 1 fonction aldéhyde pour 14 glucoses. En réalisant 10 fois le do; il apparaît que la précision de est de 3%. Le pourcentace 5récision est estimé par le rapport art type sur la moyenne des mesures. L'écart type étant défini par la re carrée de la somme des écarts à la moyen..c au carré divisé par le nombre de mesures moins une. Une étape d'activation préalable de l'oligosaccharide 6GrA1-NAcPropargyl est nécessaire pour permettre son greffage sur la cellulose activée par des fonctions aldéhyde obtenue. La GlycoBrick 6GrA1-NAc-Propargyi 10 fournie par Elicityl (OligoTech° Ref GLY0374-NPR) est activée par ajout d'une molécule espaceur amine comportant une fonction réactive azide, une chaîne de 3 PEG et une fonction amine, le 11-Azido-3,6,9-trioxaundecan-1- amine (TCI Chemical référence A2363). La GlycoBrick 6GrA1-NAc-Propargyi est mise en solution dans un mélange Méthanol/Eau (50/50) à 10 g/L en 15 présence de 1,2 eq. d'ascorbate de sodium, 0,4 eq. de CuSO4 et 1 équivalent d'azido espaceur amine, le 11-azido-3,6,9-trioxaundecan-1-amine. Après environ 2 heures sous agitation, le produit de la réaction, 6AGrA1 aminé est purifié par passage sur une résine échangeuse de cations. Pour cela, la solution est mise en contact avec de la résine Dowex0 50. Après élimination de la solution initiale et rinçage à l'eau, la molécule est désorbée avec une solution d'ammoniaque à 2%. Après évaporation et lyophilisation, le 6GrA1 aminé de formule : HO est prêt pour le greffage. 25 Le greffage du 6GrA1 aminé sur la cellulose ,ée obtenue précédemment est réalisé de la manière suivante : 15 g de cellulose activée, 6000 ut_ d'une solution de 6GrA1 aminé dans l'eau à 50 g/L, 2400 ut_ de tampon phosphate 0,5M pH3 et 36,600 mL d'eau sont mélangés pendant 3035799 31 environ 16 heures à température ambiante. 15 mL d'une solution de NaCNBH3 à 100g/L dans l'eau sont alors ajoutés. On laisse réagir 8 h sous agitation. Le support ffé est ensuite abondamment rincé à l'eau, l'éthanc et est en séché à une température de l'ordre de 50°C. Le aux de greffage de 6GrA1 aminé est évalué par analyse des monosaccharides constitutifs après hydrolyse totale de l'oligosaccharide. Pour cela, 20 mg de la cellulose fonctionnalisée obtenue sont hydrolysées avec 500 pL de TFA 2N pendant 4h à 99°C. Le mélange est ensuite neutralisé avec 53 pL de NaOH 19N et ajusté avec 1mL avec de l'eau déionisée. Un 10 standard de 6GrA1 aminé est traité dans des conditions identiques A nrès filtration et dilution au quart, le profil monosaccharidique est déter par HPAEC-PAD. La comparaison des résultats sur le dosage du fucose et du galactose spécifique des oligosaccharides, mais non présents sur la cellulose, entre la cellulose greffée et le standard, conduit à une quantité greffée de 15 6GrA1 aminé de 12,0 mg/g de support final, correspondant à une quantité de 6GrA1 (après soustraction de la masse correspondant au bras de liaison) greffé de 9,4 mg/g de support final. En réalisant 10 le dosage, il appa que la précision de la mesure est de 3,4%. Le pourcentage de précision est estimé par le rapport de l'écart type sur la moyenne des mesures. L'écart 20 type étant défini par la racine carrée de la somme des écarts à la moyenne au carré divisé par le nombre de mesures moins une. Ceci correspond à 688 moles d'unités glucose Oc la cellulose pour 1 mole d'oligosaccharide greffé. Le taux d'aldéhydes résiduels après greffage est déterminé selon la méthode décrite à l'exemple 1, il est ici de 1 pour 18 (un aldéhyde pour 18 unités 25 :ose, monomère de la cellulose). Le ratio nombre de molécules d'oligosaccharide(s) greffées sur la phase solide/nombre de fonctions aldéhyde libres pr - sur la phase solide est égal à 1/38. 3035799 32 Exemple 2 Greffage de l'oligosaccharide 6GrB1-NAc Propargyl préalablement activé avec une fonction amine, sur de la cellulose micronisée préalablement activée On utilise la cellulose micronisée préalablement activée, produite à l'exemple 1, comprenant 1 e^nction aldéhyde pour 14 glucoses. Une étape d'acti\ r préalable de l'oligosaccharide 6GrB1-NAc- Propargyl (GlycoBrick 6Cr__-.\1Ac-Propargyl fournie par Elicityl, OligoTech® Ref GLY040-1-NPR) est réalisée dans les mêmes conditions que celles utilisées à l'exemple 1 pour l'oligosaccharide 6GrA1-NAc-Propargyl et conduit 10 à l'oligosaccharide 6GrB1 aminé de f H OH OH OH OH N Ac Liivante 0 0 N \ OH OH N.N Ho OH Le greffage du 6GrB1 aminé sur la cellulose activée est réalisé comme à l'exemple 1. Le taux de greffage de 6GrB1 aminé est évalué selon la méthode détaillée à l'exemple 1 et permet de déterminer une quantité greffée de 6GrB1 aminé de 12,9 mg/g de support final, correspondant à une quantité de 6GrB1 (après soustraction masse correspondant au bras de liaison) greffé de 10,0 mg/g de support final. Ceci correspond à 620 moles d'unités glucose de la cellulose pour 1 mole d'oligosaccharide greffé. Le taux d'aldéhydes résiduels après greffage est déterminé selon la méthode décrite à l'exemple 1, il est ici de 1 pour 19 unités glucose. Le ratio nombre de molécules d'oligosaccharide(s) greffées sur la phase solide/nombre de fonctions aldéhyde libres présentes sur la phase solide est égal à 1/33. 25 3035799 33 Exemple 3: Préparation de 4GrA5-5-(CH2)2-NH2 et son greffage, sur de la cellulose micronisée préalablemerYl. activée 1) Préparation du précurseur de fermentation Lactose-NAcAllyle On fait réagir 25 g de lactose déshydraté (Meggle DuraLac® H) avec 50 mL d'allyle amine. Après 12 heures de réaction à 43°C sous agitation avec un barreau magnétique, le mélange est séché à l'évaporateur rotatif sous pression réduite à 40-45°C. On co-évapore ensuite à trois reprises, avec à chaque fois 100mL de méthanol et 100 mL de toluène. On reprend 10 l'ensemble dans 250 mL de méthanol auxquels on ajoute 200 mL d'anhydride acétique. On laisse réagir sous agitation et à température ambiante pendant 12 heures. Le mélange est ensuite séché à l'évaporateur rotatif sous pression réduite à 40-45°C. On co-évapore ensuite à trois reprises avet chaque fois 100mL de méthanol et 100 mL de toluène. Le mélange réa tel est repris avec 400 mL d'eau déionisée, puis lyophilisé. Le lyophilisai Cbt. repris dans 350 mL d'éthanol. On ajuste le pH à 9 avec du méthylate de sodium. On laisse réagir trois heures environ sous agittion et à température ambiante. On ajoute ensuite environ 200 mL d'eau déionisée et on neutralise l'ensemble avec de l'acide chlorhydrique. 20 2) Production du 4GrA5-Ally1 par fermentation HO H La production de 4GrA5-Ally1 est réalisée en fournissant à une souche d'E. Coli modifiée du lactose Allyl préparé précédemment (procédé décrit dans le brevet FR2796082). La souche productrice de 4GrA5 est référencée 25 SD142 par Elicityl (Randriantsoa, m. (2008). Synthèse Microbiologique des antigènes glucidiques des groupes sanguins. Grenoble : thèse de université Joseph Fourrier). Un fermenteur contenant 3,7L de milieu de culture OH H .OH Ac N H 3035799 34 (glycérol (2,4 , NH4H2PO4 (7 g/L), K 2PO4 (7 g/L), solution de traces minérales (7,5 mL/L), acide citrique (0,6 g/L), KOH (2,5 g/L), NaOH (1 g/L), MgSO4 7H20 (1 g/L), Thiamine (4,5 mg/L)+ Glucose 7,5 g/L) est ensemencé par 80 mL d'une pré-culture de la journée (à une Densité Optique de 2). L'oxygène dissout est maintenu à 40%, le pH régulé à 6,8 par addition de NH3 et la température maintenue à 34°C. La culture comporte trois phases. La première phase dure jusqu'à la consommation totale du glucose, puis du glycérol qui ont été mis au départ dans le milieu de culture. Au début de la seconde phase, les gènes codant pour les différents nucléotides synthétases 10 et glycosyltransférases sont induits par ajout d'IPTG (isopropyl n-r>1- thiogalactopyranoside), les substrats sont rajoutés au milieu de cultu t l'alimentation à haut débit (40 mL/h) est lancée pour 5h. Durant la troisième phase, le débit de l'alimentation est duit à 25 mL/h. La culture est arrêtée 48h après l'induction. 15 3) Purification du 4GrA5-Ally1 produit par fermentation Le milieu de culture obtenu précédemment est centrifugé pendant 20 mn à 8000 rpm. Le culot bactérien est récupéré, puis remis en suspension dans 2L d'eau déionisée équivalent au volume de culture. Le culot bactérien en suspension est porté à ébullition pendant 70 mn pour perméabiliser les 20 bactéries. Les débris cellulaires sont éliminés par centrifugation pendant 20 mn à 8000 rpm. Le surnageant est acidifié à un pH 3 avec de l'acide chlorhydrique. Le précipité éliminé par centrifugation pendant 20 mn à 8000 rpm. On neutralis le iiageant à la soude. On ajoute de la résine DnwexC) optipore SD2 et or: i:L;se pendant 12 heures sous agitation. Après 25 ination de la résine, la solution est concentrée à environ 500 mL à l'évaporateur rotatif sous pression réduite. La solution est ensuite purifiée en chromatographie HPLC à polarité inverse de phase sur un support lichrosphère 12pm de la société Merck. L'élution est réalisée avec un grad d'éthanol entre 0 et 9% en volume. Le 4GrA5-Ally1 est élue, concentre 30 l'évaporateur rotatif sous pression réduite et lyophilisée. On obtient par cette méthode de purification 6,8 g de 4GrA5-Allyl. L'identité et la structure de l'oligosaccharide sont validée- ectrométrie de masse MALDI TOF et 3035799 35 RMN du proton. La s _trie de masse MALDI TOF permet de déterminer la masse attendue de 772 g/mol, c'est-à-dire sous sa forme complexée au sodium -/mol. Le profil 1H RMN était à la structure. 1H RMN qt. itive avec étalonnage interne pe stimer la pureté à 95% +/- 1,9%. 4) Activation du 4GrA5-Allyi par introduction d'une fonction amine HO OH 10 Le 4GrA5-Ally1 obtenu précédemment est aminé par recetion de la fonction allyle avec la fonction thiol de la cystéamine. Pour cela, on elange 500 mg de 4GrA5-Ally1 produit précédemment avec 656 mg de cystéamine et 16,3 mg de d'acide 4-cyanovalérique dans 5 mL d'eau déionisée. La solution est maintenue deux heures sous agitation à 80°C. L'oligosaccharide ob 15 le 4GrA5-S-(CH2)2-NH2 est ensuite purifié par passage sur résine DoweAD. 50WX4. L'élution est réalisée avec de l'ammoniaque à 2%. La fraction éluée est concentrée à l'évaporateur rotatif sous pression réduite à sec. Le produit est repris avec 5 mL de méthanol et précipité avec 100 mL de THF. Le précipité est récupéré par filtration. Le produit est re-solubilisé à nouveau 20 dans 5 mL de méthanol et précipité avec 100 mL de THF. On récupère le précipité par filtration, on le reprend dans de l'eau déionisée et le concentre à l'évaporateur rotatif et le lyophilise. On obtient par cette méthode 465 mg de 4GrA5-S-(CH2)2-NH2. La spectrométrie de masse MALDI TOF permet de déterminer une masse attendue de 849 g/mol, c'est-à-dire sous sa forme 25 complexée au sodium 872 g/mol. Le profil 1H RMN était à la structure. La 1H RMN quantitative avec étalonnage interne pern- 'mer la pureté à 100% +/- 3,3%. 3035799 36 5) Couplage du 4GrA5-S-(CH2)2-NH2 sur la cellulose activée On utilise une cellulose micronisée préalablement activée comme décrit à l'exemple 1, caractérisée avec 1 fonction aldéhyde pour 12 glucoses. Le greffage du 4GrA5 aminé sur cette cellulose activée est réalisé de la manière suivante : 20 g de cellulose activée, 7,530 mL d'une solution de 4GrA5-S-(CH2)2-NH2dans l'eau à 50 g/L, 4,8 mL de tampon phosphate 0,5M pH3, 69,270 mL d'eau et 20 mL d'une solution de NaCNBH3 à 10g/L sont mélangés et agités environ 72h à température ambiante. La cellulose greffée obtenue est ensuite abondamment rincée à l'eau, puis à l'éthanol pur et 10 enfin séchée sous pression récluk. Dn obtient 18,5g de cellulose greffée. Le taux de greffage de 4 \5 aminé est évalué selon la méthode détaillée à l'exemple 1 et permet de déterminer une quantité greffée de 4GrA5 aminé de 16,4 mg/g de support final, correspondant à une quantité de 4GrA5 (après soustraction de la masse correspondant au bras de liaison) 15 greffée de 10,8 mg/g de support final. Ceci correspond à 314 moles d ut lités glucose de la cellulose pour 1 mole d'oligosaccharide greffé. Le taux d'aldéhydes résiduels après greffage est déterminé selon la méthode décrite à l'exemple 1, il est ici de 1 pour 15 unités glucose. Le ratio nombre de molécules d'oligosaccharide(s) greffées sur la phase 20 solide/nombre de fonctions aldéhyde libres présentes sur la phase solide est égal à 1/26. Exemple 4: Préparation de 4GrB5-S-(CH2)2-NH2 et son reffage, sur de la cellulose micronisée préalablement activée 25 1) Production du 4GrB5-Ally1 par fermentation 3035799 37 La production du 4GrB5-Ally1 est réalisée en fournissant à une souche d'E. Coli modifiée du Lactose Allyle préparé précédemment (procédé décrit dans le brevet \tv'0 2001004341 Al). La souche productrice de 4G-35 est référencée SD107 à Elicityl (Randriantsoa, m. (2008). Synthèse Microbiologique des antigènes glucidiques des groupes sanguins. Thèse de versité Joseph Fourrier Grenoble). On procède comme décrit à l'exemple 3--. 2) Purification du 4GrB5-Ally1 produit par fermentation 10 La purification est réalisée comme décrit à l'exemple 3-2). On obtient par cette méthode de purification 6,8 g de 4GrB5-Allyl. L'identité et la structure de l'oligosaccharide sont validées en spectrométrie de masse MALDI TOF et RMN du proton. La spectrométrie de masse MALDI TOF permet de déterminer une masse attendue de 731 g/mol, c'est-à-dire sous sa 15 forme complexée au sodium 754 g/mol. Le profil 1H RMN était conforme à la structure. La 1H RMN quantitative avec étalonnage interne permet d'estimer la pureté à 100% +/- 3,8%. 3) Activation du 4GrB5-Ally1 par introduction d'une fonction 'mine 20 IV H2 Le 4GrB5-Ally1 obtenu précédemment est aminé par réaction de la fonction any' avec la fonction thiol de la cystéamine. Pour cela, on mélange 500 mg de 4GrB5-Ally1 produit précédemment avec 699 mg de cystéamine et 17,2 mg d'acide 4-cyanovalérique dans 5 mL d'eau déionisée. La solution est 25 maintenue trois heures sous agitatior:0°C. Pour le reste, on procède comme décrit à l'exemple 3-3). On obtient par cette méthode 461 mg de 4GrA5-S-(CH2)2-NH2. L'identité et la structure de l'oligosaccharide sont 3035799 38 validées en sp.?.ctrométrie de masse WI TOF et RMN du proton. La spectromél:É masse MALDI TOF .1pparaître la masse attendue de 808, c'est-à-dire sous sa forme coirip exee au sodium 831. Le profil RMN était conforme à la structure. La RMN quantitative avec étalonnage interne +/- 4,9%. permet d'estimer la pureté à 97% (CH2)2-NH2 sur la cellulose activée 4) Couplage du 4GrB5-S- préalablement activée, comme décrit On utilise une cellulos( tu nyde pour 12 glucoses. à Vexem'e i, caractérisée avec 1 cet: e cellulose activée est LE 'reffage du 4GrB5 arru 10 comme à l'exemple 3-4), en ;. 7,166 mL d'une solution de 4GrB (0-12)2-NH2 dans l'eau à 50 g/L. On obtient 18,9 g de cellulose greffée. Le taux de greffage de 4GrB5 aminé est évalué selon la méthode détaillée à l'exemple 1 et conduit à une quantité greffée de 4GrB5 aminé 13,5 mg/g de support firr, (orrespondant à une quantité de 4GrB5 (ap; 15 soustraction de la masse correspondant au bras de liaison) greffé de mg/g de support final. Ceci correspond à 364 moles d'unités glucose de la cellulose pour 1 mole d'oligosaccharide greffé. Le taux d'aldéhydes résiduels après greffage est déterminé selon la méthode décrite à l'exemple 1, il est ici de 1 pour 16 unités glucose. Le ratio nombre de molécules d'oligosaccharide(s) greffées sur la phase solide/nombre de fonctions aldéhyde libres présentes sur la phase solide est égal à Exemples comparatifs 1 et 2 - Réduction des fonctions aldéhyde résiduelles présentes sur les supports des exemples 1 et 2 25 On met en suspension 1 1 support cellulosique greffé de l'exemple 1 ou 13g sJpport cellulosi jreffé de l'exemple 2 avec 100 mL d'eau déionisé.::. 300 mg de Na q conduisant à la réduction r!es fonctioni, aldéhyde onctions alcool. On agite 2h à température amrte. On rH-. ensuite 4 fois avec 100 mL d'eau déionisée, puis 3 fois .;_-'.rec 100 mL d'éthanol. La poudre obtenue est séchée à l'étuve à 50°C pendant 24h. On obtient respectivement 12,4 g de l'exemple 1 réduit et 12,8 g de l'exemple 2 réduit. 3035799 39 Le dosage des fonctions aldéhyde libres est réalisé suivant la méthode du dosage au MS décrite à l'exemple 1. Le taux de greffage est déterminé suivant la méthode de dosage des monosaccharides en HPAEC avec hydrolyse totale, décrite précédemment. Tableau 2 Echantillon Fonction aldéhyde ratio oligo de la phase 6GrA1 solide/nombre Aminé* de fonctions aldéhyde libres sur la phase solide 2,0 1/38 mg/g 11,5 mg/g Exemple 1 aldéhyde pour 1 glucoses Exemple 1 1 aldéhyde pour 327 glucoses (après réduction) Fonctions aldéhyde ratio oligo de la phase 6GrB1 solide/nombre Aminé* de fonctions aldéhyde libres sur la phase solide Exemple 2 Exemple 2 1 aldéhyde - 19 9 1/33 après réduction) glucoses mm, g 1/2 1 aldéhyde pour 391 glucoses 11,8 mg/g * m d'oligosaccharide amine 6GrA1 aminé ou 6GrB1 aminé /g de support 10 3035799 Exemples comparatifs 3 et 4 - Réduction des aldéhydes résiduels sur les supports décrits aux exemples 3 et 4 On met en suspension 1 g du support cellulosique greffé de l'exemple 3 ou du support cellulosique greffé de l'exemple 4 avec 5 mL de tampon phosphate 2M pH 7, 5 mL d'eE onisée et 156 mg de NaBH4. On agite 30 mn à température ambiante. -e ensuite 4 fois avec 100 mL d'eau déionisée, puis 3 fois avec 100 mÈ. o ethanol. La poudre obtenue est séchée sous pression réduite à température ambiante pendant 72h. On obtient 10 respectivement 870 mg ::Vi-:>.crnple comparatif 3 (exemple 3 avec fonction aldéhyde résiduelle sous fu rhe -éduite) et 670 mg d'exemple comparatif 4 .,-.1nple 4 avec fonction aldéhyde résiduelle sous forme réduite). Le dosage des fonctions aldéhyde libres est réalisé suivant la méthode du dosage au MS décrite à l'exemple 1. Le taux de greffage est déterminé 15 suivant la méthode de dosage des monosaccharides en HPAEC avec hydrolyse totale, décrite précédemment. 3035799 41 Tableau 3 ratio oligo de la phase solide/nombre 4GrA5 Echantillon Fonctions aldéhyde de fonctions Aminé* aldéhyde libres sur la phase solide *mg d'oligosaccharide aminé (4GrA5 aminé ou 4GrB5 aminé) /g Exemple 3 Exemple comparatif 3 (après réduction) 1 aldéhyde pour 15 g ucoses 1 aldéhyde pour 322 glucoses 13, mg/g 1/26 13,2 mg/g 1/1 Echantillon Fonctions aldé,- 4GrB5 la phase Aminé* solide/nombre de fonctions aldéhyde libres sur la phase solide Exemple 4 Exemple comparatif 4 (après réduction) 1. aldéhyde pour 16 gluco 1 aldéhyde pour 284 glucoses 11,7 mg g 11,6 mg/g 1/27 1/2 support 3035799 42 Exemple 5 - Activation de la cellulose microcristalline et greffage de l'oligosaccharide 6GrA1-NAc Propargyl préalablement -ctivé avec une fonction amine. De la cellulose microcristalline, Vivapur® type 101 p-, re par Rettenmaier, est activée par la création de fonctions aldéhy'u par traitement au métapériodate, NaI04. Pour cela, on mélange 30 g de cellulose ocristalline avec 6g de NaI04 et 300mL d'eau. Le mélange est maintenu pendant 12 heures sous agitation à température ambiante. Le si. )ort cellulosique obtenu est HCé à l'eau, puis à l'éthanol et séché à 10 environ 50°C. Le nombre de fonctions aldéhyde ainsi créées sur le support est mesuré par dosage colorimétrique des fonctions réductrices, conformément à --mple 1 et donne 1 fonction aldéhyde pour 17 unités glucose. L'oligosaccharide 6GrAl-NAc-Propargyi activé par introduction d'une 15 fonction amine (nommé 6GrA1 aminé), tel que décrit à l'exemple 1, est ;é pour le greffage. Le greffage du 6GrA1 aminé sur le support cellulosique précédemment est réalisé comme à l'exemple 1. Le taux de greffage de 6GrA1 aminé est évalué selon la méthode détaillée à l'exemple 1 et conduit à une quantité greffée de 6GrA1 aminé de 9,4 mg/g de support final, correspondant à une quantité de 6GrB1 (après soustraction de la ccwrespondant au bras de liaison) greff4e de 7,3 mg/g de support finzi correspond à 880 moles d'unités glucose de la cellulose pour 1 mole clic :accharide greffé. Le taux d'aldéhydes résiduels 25 après greffage est déterminé selon la méthode décrite à l'exemple 1 et est ici de 1 pour 18 unités glucose. Le ratio nombre de molécules d'oligosaccharite greffées sur la pi.lse solide/nombre de fonctions aldéhyde libres prés& ur la phase solide est égal à 1/49. 30 3035799 43 Exemple 6 - Activation de la cellulose microcristalline e greffage de l'oligosaccharide 6GrB1-NAc Propargyl préalablement activé avec une fonction amine. On utilise une cellulose microcristalline préa, fient activée C. FT. me décrit à Vexer , caractérisée avec 1 fonction aldéhyde pour 17 glucL,...as. L'oligosaccharide 6GrB1-NAc-Propargyl ac par introduction IP fonction amine (nommé 6GrB1 aminé), tel qu l'exemple utilisé pour le greffage. Le greffage du 6GrB1 ) r losique activé 10 l'exemple 1. Le taux de greffage de 6GrB1 aminé est évalué selon .fthode détaillée à l'exemple 1 et conduit à une quantité greffée de 6GrB1 de 10,3 mg/g de support orrespondat a une quantité de 6GrB1 (après soustraction de la masse correspondant au bras de liaison) greffé A de 8,0 15 mg/g de support final. Ceci correspond à 779 moles d'unités glucose d( cellulose pour 1 mole d'oligosi,, -ide greffé. Le taux d'aldéhydes résidi après greffage est déterminé .a méthode décrite à l'exemple 1, il es, de 1 pour 18 unités glucose. Le ratio nombre de mole ; d'o )saccharide(s) grE es sur ' ose solide/norn!.'m le fonctions aluellyue libres présentes sur la phase solide est égal à 1/4 Exemples 7 et 8 - Production de supports greffés à différentes concentration de 6 GFtAl et GRB1 On utilise la cellulose micronisée préalablement activée, produite à 25 l'exemple 1, comprenant 1 fonction aldéhyde pour 14 unités glucose. On utilise également les oligosaccharides préalablement activés, produits respectivement à l'exemple 1 pour le 6GrA1 aminé et à l'exemple 2 pour le 6GrB1 aminé. Le greffage du 6GrA1 arH et du 6GrB1 aminé sur la cellulose micronisée act ée est réalisé resctivement comme aux exemples 1 et 2, à 3035799 l'exception de la quantité d'oligosaccharide amine appliquée qui correspond à celle présentée dans le Tableau 4 ci-après : Tableau 4 Cellulose 6GrA1 Cellulose 6GrB1 Ex. Ex. 7A 7B Cellulose micronisée (g) 1,25 1,25 6GrA1 Aminé à 50mg/m1 (i,L) 500 250 6GrB1 Aminé à 50mg/m1(pL) Tampon Phosphate 0,5M pH3 200 200 (1-1 3050 3300 eau déionisée (pL) 3425 3050 3300 3425 Ex. Ex. Ex. Ex. 8C 7C 8A 86 1,25 1,25 1,25 1,25 125 500 250 125 200 200 200 200 à' Agitation environ 8 h à température ambiante Le support greffé est ensuite abondamment rincé à l'eau, puis a l'éthanot pur et est ensuite séché à une température de l'ordre de 50°C. Le taux de greffage cie amh- 6GrB1 lié est évalué sebri détaillée à l'exernrho i et coU.1 aux qu L greffées de , aminé et 6GrB1 aminé suivantes : 10 3035799 Tableau 5 - ratio oligo de mg oligo d'oligo/g a phase Supports greffés Exemple aminé /g de de solide/nombre de fonctions aldéhyde support * support** libres sur la phase solide Cellulose Ex.7A 9,1 7,1 1/57 micronisée Ex.7B 5,7 4,5 1/91 6GrA1 Ex.7C 3,3 2,6 1/158 Cellulose Ex.8A 8,6 6,7 1/58 micronisée Ex.8B 5,6 4,3 1/90 6GrB1 Ex.8C 3,7 2,9 1/136 mg d'oligosaccharld aminé (6GrA arrË 6GrE ce support ** mg d'oligosaccharide (6GrA1 ou 6GrB1 après soustraction de la masse correspondant au bras de liaison) /g de support final Exe--Ie - Prod--ddon de eprts gr« s 10 '75"1.a ""c1,-.- :-,,roupes jns A ou B ,..vdc variaton, tau),-,ce tons zikiàviot. -,észnt.,:, ',',.... g,........,.. du hràsmou utilisé 'a greffage I l'oligosaccharide - 3) de la lA '--T.,' - 'OH zharide _,, -..:;'),::.eidi - _ype 1, tetrasaccharide de type trimmchm____,. Les ,..J11uloses micronisées iMivées utilisées s,:',)nt soit activées comme à 15 l'exerrp, 1 (nommée cellulose haute activaton), soit actiiem cornrne à 1 à l'exception du fait que le niétap.ç.dnUat est ,arv.(-2d une prop tel dix fois moins imporànte (10 g de iou'f 3Od de 3035799 46 cellulose). Dans ce cas où la cellulose est activée avec moins de métapériodate, une cellulose comportant 1 fonction aldéhyde pour 105 glucoses (nommée cellulose basse activation) est obtenue. Différents oligosaccharides des groupes sanguins greffés commercialises pir Elicityl sont utilisés : 6GrA1-NAc-Propargyl (OligoTech ref GLY037-1-NPR), 6GrB1-NAc-Propargyl (OligoTech ref GLY040-1-NPR), 4GrA5-NAc-Propargyl (OligoTech ref GLY035-3-NPR), 4GrB5-NAc-Propargyl (OligoTech ref GLY038-3-NPR) et 3GrA5-NAc-Propargyl (OligoTech ref GLY031-3-NPR). Chaque oligosaccharide est activé sous forme aminée en 10 respectant les équivalences et le mode opératoire décrit dans l'exemple 1. Seul l'espaceur amine/azide utilisé présente deux variantes : soit on utilise l'espaceur utilisé dans l'exemple 1 (11-azido-3,6,9-trioxaundécan-1-amine - TCI Chemical référence A2363), soit le 0-(2-aminoéthyl)-0'-(2- azidoéthypheptaéthylène glycol (Aldrich ref 76318). 15 On obtient alors, dans le cas où l'espaceur utilisé esL 1 (11-azido- ,6,9-trioxaundécan-1-amine: Pour 6GrA1, l'oligosaccharide aminé suivant : "NH - Pour 6GrB l'oligosaccharide aminé suivaï.iL . 20 - Pour 4GrA5, l'oligosaccharide aminé suivan °H ,OH 3035799 47 - Pour 4GrB5, l'oligosaccharide aminé suivant: OH OH 2 - Pour 3GrA, l'oligosaccharide aminé suivant OH OH HO OH OH N=N On obtient alors, dans le cas où l'espaceur utilisé est le 0-(2- aminoéthyl)-0'4?-azidoéthyl)heptaéthylène glycol Oh - Pour 6GrA1, l'oligosaccharide aminé suivant : 10 Pour 6GrB1, l'oligosaccharide aminé suivant: OH OH OI-I OH I PORTS Les plasmas aven et udes : méthode ce Sirnoriln' 1-La métt d'nén référence rentaire, qi le pouvoir ,..,,Jtinant anticorps sur des 17 F- humaines du grOE.:pe à tester (A ou et:tEt-iéthode es.: e e aux Igr--,. -.7.q.-E-qtamériques (1Û tesi ié oues (cieux fonctions ives 10 2-La méthode du qe tst tLapierre Y., Rigal D., Acn J., Josef D., Meyer F. Greber Transfusion. 1990 Feb ;30(2) 13) qui utilise urle jel miniaturisée contenu anticorps anti igG, après mise en contact des bmaies avec le plasma. Cette méthode permet une quantificaion du titre en 15 anticorps de type IgG et IgM. Elle est particulièrei.;lent intéressante pour le titrage des IgG. Les L(.11antillons de plasma, avant ou puLu tion so en tampon PBS, par dilution successive d'un facteur 2 1/ 1L t mis en contact avec des hématies du groupe sangL.ln :rées 20 1/10 dans le même tampon. Le titre rendu correspond à la dernière dilt..,:t-Lon positive. A. Les supports greffé 5 les oligosaccharides 6GRA1 et 6GrB1 sont comparés, que- l'épuraticy.--t plasmatique : 3mL d'un plasma posU u u 1/32 en anticorps ar,U A et au 1/32 en 25 anticorps anti B sont mis en contact avec 100 mg soit des support__ ies exemples 1 et 2 (cellulose sée), 5 et 6 (cellulose microcrista I\ pendant 30 minutes sous agrl:.aJon. Le test étant réalisé avec un mélange de 50 mg de st. et ! - de support B p-T2 .ivement : supos7dt. 1. et 2 Ter, eellulose micronisée e 5 et, 6 pour la cellulose trat:on est totale pour l'ensemble des u uuuts lorsque l'on praticiLc le test d'he',maq(2)'.2tination. 3035799 Les résultats montrent que les oligosac:hPrges sélec4-'-nnés sont :es su 'érents supports cellujc)'ils sélec "".s pour k 9e.s. uraticn 1 .1 14 Se. - Le même essai est rev uft avec 4 mL du même plasma 1-0 des des exemples 1, 2, 5 et 6. Dans ce cas, seuls le5 F exemples 1 et 2 montrent une absorption totale du testé. B. Les supports cellulosid!...!es greffés de l'exemple 1 (fonctions aldéhyde résiduelles sous forme non et de l'exemple comparatif 1 (forons 10 aldéhyde résiduelles sous leur i'orme réduite), d'une part, et de l'eyerl--q7A: 2 (fonctions aldéhyde résiduelles sous .7cin-r réduite) et de i'exerr comparatif 2 (finctions aldéhyde due nous leur forme d'autre part, sont comparés. Les tests sont réalisés avec sma titrant 1/128 en anticorps 15 anti A et 1/128 en anticorps anis SO mg de support greffé (25 gel pour la capture des micorps anti-A et 25 le gel pc capture des anticorps anti-B) pou- TiL de plasma sou ation per 30 minutes. Les suppcts des exemples et 2 (fonctions aldéhy - Jelles 20 sous forme non réduite) permttent une absorption totale du plasma (en anticorps anti A et en anticorps anti B) avec un titre résiduel non détectable r gel test et par le test d'hémagglutination. Il y a donc une bonne élimination des IgM sur les deux supports pour c Les supports des exemples comparaJfs I et 2 (fonctior' hyde 25 iduelles sous leur forme réduite), testÉ les mêmes co ch..-Tinent chacun une épuration t'elle pc les IgG, avec un résiduel de 1/32 en gel test, Il .,'.oparaît donc que les sunno l'ir-cntion portant des ;Isinhydes libres sont plus Chf. pour l'épur3-ài-A--'' cilc..s anticorps, rticulier pour les IgG. 30 C. LE7.7 '1Apports c n bsiques greffés de l'exemple 3 (fonctions aldéhyde résiduelles sous forme non réduite) et de l'exemple comparatif 3 3035799 (fonctions aldéhydl riduelles l rme réduite), d'arc r,nrt, et de l'exemple 4 (funct.or aldéhyde _Jus forme non '.Jte) et de l'exemple co,--np, -::m_. 4 (forutir,,,,v,:: -hyde résiduel:es sous ur forme e t, sont o- .s tests sont réalisés avec ur I - de titre 1/1024 en anticorps ant , 512 er :orps anti B comme suit : 10 ma de supoor ::,:hulosique greffé de l'exerr.r._ _ :0 mg de sur rt de l'exempt( une part, et 10 mg de support cellulosique greffé de Kemple comparatif 3 et 10 mg de support de l'exempt( ompal 10 d'autre part, sont incubés pendant 30 minutes à 22(nC. us permanente en tube d'hémolyse. Les résultats sont les suivants en gel test (anti IgG et an-- détectés) : anticorps antico ,7nt i A anti E 16 1/ '4 1/64 Titre resiuuei ntitduti. s exe _ 3 15 4 .'-. lue là enc7,-e, la rct1on du '..,,;,,, rt SI3CCO7 nr1C.0 efirki.iacité pour Up, des unn--.rps, antiC, : s de .'qpe IgG. t.États d'hémostase 3SMaS groupes respectifs A et B fraîchement épurés 20 ab: 5,L4:)ports A et 3 c it aux exemples 1 et ...;our leurs qualités ,. osta'og Les résultats st.1i%1esont te:nus. entre les plasmas contd: 'ctl) et leF plasmas ,-;,---r pi',;wec 3035799 57 les supports en mélançe SEÛfl linvention (test) pour leurs anticorps .anti groupe A et B : Les paramèt, sont les suivants : FVIII c%: activitérlante du facteur VIII, mesurée par un co en une utilisant le kit bioMérieux-deficien' PIM hrance) sur l'instrument MD.AII de blet 1,eux. (bioMérieux, Marcy Ir FIXc%: activité coagulante du facteur IX, mesurée pi-- essai en une étape avec le kit Biophen FactorF (Hyphen-BioMec, ance). 10 vWF :AG% : antigène du Facteur von Willebrand, test effectué avec les réactifs vWF AG sur un appareil BCS coagulatl ri Analyser (Dade Marburg, Allemagne). vWF:Rco% : activité du Facteur von VHebrand, test effectué avec les réactifs BC vWF sur un appareil Dade Behring. 15 FI% taux du Facteur II plasmatique ou prthrombin mesuré par un essai en une deficientII, Diagnostca avec un kit utilisant un plasma u'eucient (STA Asnièru- rance). FVII+X°/0 : taux du facteur \ mesuré par un test en une étape avec un kit uti un plasma Hernoclot VII+X, Hyphen BioMed). 20 FV% : taux du Facteur V, rl é par un test en une étape avec un kit utilisant un plasma déficient :dot Factor V reageant, Hyphen BioMed). Fibrinogène Dlasm,--3 : Fibrinogène, dont la concentrnon est mesurée par le kit (bioMérieu.x) basé sur la méthode de Cluiss. 799 303 5 58 Plasma FVIIIc°/0 FIXc°/0 VVVF: VWF:CO% FII°/0 FVII+X% 0 Fibrinogène (g/1) AG% O test 80,1 99,4 114,4 95,4 73 95 0 ctl 90,1 125,4 109,2 98,4 70 106 I 107 A test 46,6 100,9 62,8 63,5 92 89 2,1 A ctl 50,5 104,1 61,4 60,7 103 88 56 2,5 B test 36,8 78,1 46,7 43,9 97 93 96 1,8 BctI 37,6 82,9 44,5 43 104 93 98 2,0 Ces résultats montrent une très bonne conservation des facteurs de coagulation après l'épuration. F- Influence du taux de greffage essais ont été réalisés avec les différents supports greffés de l'exemple 7 à différentes concentration de 6 GRAl. Les essais ont été réalisés sur deux plasmas O de titres élevés (1/1024 en anticorps anti A et 1/512 en anticorps anti A). Les incubations sont réalisées avec 50mg de support 7A, 7B ou 7C pour 10 lml de plasma, 30mn à 22°C sur agitateur circulaire. Les plasmas épurés sont ensuite testés en gel test (avec anti IgG pour déterminer le titre résiduel en IgG et IgM api absorption 15 3035799 59 Dtnir obtenus après épuration : ; na 0 de titre anticorps anii 1/1024 , Plasma 0 de titre înftà1 en 'anticorps anti A 312 Li concentration s7.7.charides greffés pour une masse donnée de supg ;t un facteur déterrri.nn le la que l'épuration. 3tifs cr Le .puration , être sous un format de col"...ylne &roma Les supponip-i-; des exerrpvcc 1 2, 5 e risée, ceUubse 10 microcristalIir ci bccch ()nt été enent. rnïs flans un format de colonne chppriatographic Les supports celulosiqu JJlulose m ,cronisée et lose ri--îcrocr'...j.alline ont montré des comportements chro- togra:cuci très 15 Les essais ont étés c-1-,n ;es de 500 mg de gc ,u Ler e plasma. Lc ips d'écoule,dent était de 14 minutes +/- 2minute pour l'ensurY)le des supports, iression 3,1 bar. Le 7 résultats d'épuration sont I ceux obtenus pour le test en 20 batch at D pn G. Les suu..,orts des 3 et 4, porteurs respectivement (1.7s c iccharides 4GrA5 et 4GrI35 ,t. été testés dans difféo(.1"de.S CO ri( Acici 11 icubation pour des temps et des concentrations différentes. 3035799 Le protocole était le suivant : Esse.; en poche de plasmaphérèse avec 10m1 de :flesma anti A 1/1024 et titre en anticorps anti B 1/512) un la me quantité de supports A et B greffés (50 mg, tOO mg ar Les titres résiduels obtenus u' :es suivants : 100 mg LQig Titre en en litre en Titre en Titre en Titre en ant O antcorn7:ntiCOr anti F rHtA Temp 30mn 1/8 O Ces résultats ny- ..ubation 10 mg/ ml r77 luffisante pour une épuration des r. corps aryii t anti B trè -,us du seuil à risque, les anticc résiduels éta,,, IgG. 10 H. Essais d'absorpti en pha: uide d'évaluer la perfi lance de- .1- préparés coopé_ des oligosaccharides fixés sur le support e,ibilisation secondaire, noui7 avons incubé un plasma Ode titre élevé (1/1 anti A et en antica art B) avec les r.r1n-pc' ceux utilisés fixés 15 sur les ;, mais directer::-de 3ok, Anrès leure d'incubation ml _ )ses (4GrA5 et 1cT O ) rc-exaoses (CA1 et 6GrB1 préal _s en PBS à 1 crETnte Je 100 UH concentra mg/m1 (soit 0,1mg/p1), le uccchnde nécessaires pour la 3035799 61 neutralisation complète des anticorps IgG et IgM anti A et B du plasma sont le7.1,..Jivantes 4GrA5 4GrB5 6GrA1 (7,7r.B1 rne d' ,:haride 6mg Hée ur des doses r1,1,7 une e 24h ne une meille' absorption des ir A .uire cmp - 50mg ô.'I support cellulosiqu [exemple 7A portant 0,455 mg d'oligosaccharides 6GrA1 ne -.:t-à-dire permet l'obtention d'un, titre 0 à la fois n -B) 10 pnra en inutes soit avec mons d'oligosE,ccharides par i're:n:r de pnn, qu'avec l'utHH3, du même olignnnnnddeni solution, du support celiulosi de l'exemple 8B portant (287 mg d'oligosaccharides 6GrB1 u&'it.ralise lml du même plaumu en 30 15 minutes soit avec 21 fois moins d'oligosaccharides par .[fflUtre de rua qu'avec l'utilisation du mêrr.,:, oligosaccharide en 200mg du : D:.:2lHkm,lcp..[,:s le ru mDle 3 po H mg )saccharlcies 4GrA5 Tr'" 0 u te s soit avec 18 fois ur dcunrncchu de 20 :7...;sma qu'avec Ju ruir 3ccharide en sc 200 mg du support cellulos4,..: de l'exemple 4 port mg uligosaccharides 4GrB5 neutralise lOrni du même pIL en 90 minutes soi l: 17 fois rno)-ls dioligosaccl7eides par mMitre de plasma qu u Wtdur du mme oligosaccharide en solution.. 25 Pour des cuaa d'i)cubatioris plus importantes, l'avantage 3035799 62 oligosaccharides fixés sur Fup rt est encore plus évident. Par ailleurs, la neutralisa bor ph:m, liquide laisse subsister di plasma des complexes immuns et une crn-tH.e très impc as qui pourront avoir des effets sec- pour .3fusés. 10 L Essa- :ompari s avec des tri, t Ces essais sont réal lexa sacch ide ue L'ire 1/128 anu A et. 1/8 anti B. Les tests sont réalisés en gel (gel test). 3035799 63 Exemple Formule du produit Résultats des test: testé test Anticorps anti B Ex 10A 6GrBi-Spi-NH2 Ex 106 6GrBi-Spi-NH2 basse activation Ex 10C 4GrB1-Spi-NH2 O Ex 10D 6GrBi-5p2-NH2 O Anticorps anti A Ex9A 6GrAl-Spi-NI-12 o Ex9B 6GrA1-Spi-NH2 1/4 basse activation Ex9C 4GrA5-Spi-NH2 Ex9D 3GrA5-Spi-N1-12 1/32 Ex9E 6GrA1-Sp2-N112 Ex9F 4GrA5-Sp2-NH2 1/2 Ex9G 3GrA5-5p2-NH2 1/32 Conclusions : Les résultats des tri-saccharides sont moins bons que ceux obtenus avec les autres oligosaccharides pour les configurations testées. Il n'y a pas d'intérêt pour un bras PEG plus long : 8 versus 3 unités éthylène glycol. Les résultats sont très proches entre 4GR5 et 6GR1. réali avec umère 10 'th E yin Jlt cor réd 10 pL el. 2 pL de chacun des deux gels obterr; aux lles 11 et comparatif 11 sont incubés pendant une heure us tation avec 1 mL de plasma de titre initial 1/1024 en anticorps 3035799 Les résultats sont ens!,..ite. Titre résidu e7:-.1.7ticor nol test : rr: 73, Support non nr' . réduit :Ex.. 11 Exemple cornp,,,,,,r 11 1/4 2. Essais avec 2pL de gel / mL d( -na : Support non réduit Jnport Ex. 11 ExerTe.?: c:ompairadf 1 10 1/128 Le test liémaggiutinalilon est négatft r "..ssaî a plasma et posbf pour les trois essais (ge réduit à 21.ÏL de gellni, rtt- nvIsma f eel rédut it)pL de ge1l, Comme dans le cal..: ,,Wisatior, c. si...ppchr. du type cellulose, 15 de fonctions d'aldéhy__ libres e ' -,rorab;e à une meilleure ' 7rnrrt.ïcorps sur le support y compris pour les IgM cc - est. 10pL de gel par mL de plasma. L'effet est toutefois nrp:::',irlsma cellulose, du fait, sans doute, de 17 drande rig du supportiusOh par rapport aux fibres de cellulose plus faible ricr,rribre 20 hvricaç librec cl Ir In Phase solide. )Ie :otal lr nl de sang prélevé sur anticoagulant ACD (Acide citrate de': 5,5 ml pla7;ma sont mis en contact avec 55 mg du support de 3 portant: çosaccharide 4GrA5, dans un tube de 50 mL et 25 souri. à une agitation roU Je 100 rpm. Après une heure d'inc 22°C, 12 ube est centrifugé. S centrifuge - le support cellulosleue occupe le fond du tube où il forme un culot blanc d'en délimité suri r le culot d'hématies, puis par la couche leucoplaquettair nfin p .)lasma. 30 Le titre anti A rhsma non traité contenu nntillon de sang r st de 1/128 en _st, , -,r7;(r.,.rIte une très fer& ',' .itination en test iiiitination. 3035799 Après traitement le titre F.-.a en gel test est de 1 est négatif en hémaggfutination. Cet exemple prouve que l'absorption des anticor déterminant des groupes san 'ls peut être réalisée sur sang total comme sur le , avec une cap-ité de recueil des fractions sanguines équvdente à _ sang non traité. Cette absorpl i peut être réalisée directement: (1--- un_ - de prélèvement. Elle p t être mise en oeuvre avant ou REVENDICATIONS1. Support pour la purifie- d'un hquide biologique comprenar: un f.u.:se solide sur laquelle sont greffées, par EHSOfl covalente, des P,rp oligosaccharide capable de sE.:7 lier à un ou plusieurs antic ladite phase solide étant porteuse de fonott:75 aldéhyde -C::-H('. res. 2 - Support selon la revendication 1 caractérisé en c que I_ IBdt biologique est i sang ou un produit issu du - , et ledit a- :chah( de se lier aux anticorps anti détermir7.7_ B ou aes groupes sanguins. 10 ; selon la revendication 2 caractérisé en ce que des molé d'un seui oliosaccharide capable de se "(- ux anticorps anti déterminant m B ou H des groupes sanguins sont gr-E.1-1 adite phase solide. 4 - Support selon une quelconc,.....: des revendications 1 à 3 caractérisé en ce que le ratio nombre de molécules d'oligosaccharide(s) greffées sur la 15 phase solide / nombre de fonctions aldéhyde libres présentes sur la phase Ae appartient à la gamme allant de 1/400 à 1/1, de préMronoà la gamme allant de 1/200 à 1/10. - Supput 11 l'une quelconque des reven :ioo 1 1 rmrmctérisé en ce que le upport comporte de 1 à 100 mg d'oligosacchar /g de 20 support, préçnlentiellement entre 2 et 40 mg d'oligosaccharide de support. 6 - Support selon l'une quelconque des revendications 1 à 5risé que les fonctions aldéhyde libres assurent une s abilisi des n los, consécutivement à leur reconnaissance immunolog par 25 leqiites molécules d'oligosaccharide(s) greffées sur la phase solide. r - Suppun: la revennA';ion 6 caractérisé. en ce que la ;ii.abilisation t. aison haride/anbnprps est obtenue par la fixatior, i-n,Dtamment pal liaison covalente, d'une :-.::Çoaragine, lysine, 7rginine, ryptophane, tyro5 présent sur l'antki:arps sur une fi:11°n 30 dlvde libre préo surnnr,a.';e solide. pport selon ciL :onque des revendications 1 à 7 caractérisé molécuk.7 rI olig s-accharide(s) sont greffées sur la phase 3035799 57 par l'intermédiaire d'urè di type -NH2, -NH- résultant de la réaction d'une fonction arrrne ou -0-NI-12 portée avant greffi par osaccharide et d'une aldéhyde -CHO portée avar :L a par la pliase solide. 9 - Support selc,7 quelconque des revendicabc.1-77 1 à 8 caractà-isé en ce que phase Fi 0 H:le eq un polysaccharide et us fonctions libres re. d'une oxyddion périodique. -2c selon l'une quelconque des revendications là 9 carac77, en ce d, -lide e a cellulose. 10 11 )orl quelconque des revendications 1 à 10 crisL En c, rolide la cellulose micronisée ou de la nicrocristy, - Support sl a revi.lication 10 ou 11 caractérisé en ce que la o:.e comporte des unités de formule : -CH(0.--1( )--CH(CH2OH)-0-CH(CH0)-0-. 1,3 - Support selon Vuûe quelconque des revendications 10 à 12 caractérisé en ce que la cellulose comporte des unités de formule -0-1(CH0)-Ch 'LJ des unités clE' - -CH(CH2NH-L-oligo)-CH(0-1,0H)-0-CH(CH0)-0- dans lesquelles L est L liaison et oligo est un oligosaccharide capable de se lier à rusieurs arti,::::c7,:rds, de préfér,,,nc un oligosaccharide capable de se lie anticorps au déterminant A, B ou H des groupes sanguins. 14 - Support selon l'une quelcr des revendicat17L 1 à 13 caractérisé en ce molé,7 d'oligosaccharide(s) phase solide est réalisé 'int( - .iaire d'un bras de liaison -NH-L- le sens phase solide oligusacchar1. 15 - Support s2un la revencric 13 ou 14 caractérisé en ce que le bre ele liaicon L cc pore un Ç3 trià7cqe ou une liaison -S- el'ou une glycc ou une chaînes alkylèr >'! itiques c iifférentes du type - 2..»',7 avec t dia v être 2, 3, 4 ou 5 n iment. 3035799 68 16 - 1a revendication 13 ou 14 ca,,ractérisé en ce que le bras d n L correspi l'enchaîry±:- -CH2-CH2-S-CH2-CH2-CH2-N(C0C1-13)- ' .nt directement lié à une unité saccha^ e de Lférence sur le carbone anomérigi I -! unité sacc, 17 - Support selon Jne cluelconci rew:T-1( ions 1 à 16 caractérisé , ce ,archaride est un tris eide, un tetreD.:haride, un FCH,E.Tkie hexasac 1 Support selol nne "nque des --idications 1 à 10 caractérisé en ce que iosacc -7 st capabl ux anticc anti déterminant B ou ; 'igosaccha,. est capab;e ,J, r aux anticc,ips -terminant A. 19 - Support selon l'une quelconque des revendications 1 à 17 caracté n ce que l'oligosaccharide est choisi pa i GaINAcc.- rucal- 15 2)Gal31, Gala1-3(Fuca1-2)Gal31, GaIN1Ac.:,.L1-3(Fucal-2)Gal[31-4(, Galcd- Lica1-2)Galf31-4Gie, GaINAca1-3(F'.1,. F LALO'. -4G1c, Galcc1-3(Fuca.1-2)Gal31-3G1cNA01-3Galp1-4G1c, aINAc 3(Fucal- 2,,?...1,1-4G1cNAcf31-3GalB1-4(-31c, et Gala.1-3(Fucial--?)Galf31-4GicNAc13Gal31-4G' Fucct1-2GalM.-3GIcNAc, Fuca -2Ga1131-4GIcNAc, Fuccd.-2Ga 4G c, Fuca1-2Gal(31-3G1cNAcB1-3Ga , Fuca1-2GalB1-4G1cNAcI31-3Ga1 2GalB1-3GaINAcf31-77,a', Fucc(1-2Gal31-3GicNAc[31-3Gal31-4G1c, Fucal2Gal31-4UNAc[31-3GalB1-4G1c, les oligosaccharides GaINAcul-3(Fuca1- 2r'. -Gic et Gala.1-3(Fucaj ''';a131-4GIc étant pr 20 Dort selon l'une gLielconque des revendications 1 à 18, 25 carani- an ce qu'il comprend une phaFe en'ide nrésentant sous la forn particules hydrophVes' .ellt ermettant concert es protéines du )logique purifié 'fice audit suppi 21 - Procécif, ae purification c liquide biologique cc.mprenant des 'ps, dz lequel le liquide bioloç,jque est mis en contact e c. au moins 30 un que défini à Lune Fueiconque des revendications 1 à 19,,_ .e manièr 0 nir la capt»'Je orps présents dans ledit liquide biologique par liaison(s) avec au caLaines des molécules d'oligosaccharide 3035799 69 greffées suri: ,.. _75e 22 - Procédé de préparation d'un support .tonforme à des revendications 1 à 20, dans lequel le greffage d'olir ^saccharide(s) est réalisé sur une ph7se solide porteuse de 5 a:._-_ .) -CHO libres, par réaction, sur une partie seulement des forcbrms aidé:., Je -CHO libres présentes sur la phase solide, d'un olinosaccl'ide porteur d'une fonction apte à former une liaison covaente avec l.71,:iit.E2l7iDnction aldéhyde -CHO. Pro selc re,,,,/,?nn7.1ort 22 caractérisé en 10 ligos d.-igosaccharide. NH2, -NH-NH2 ou fonction aldéhyde portée avant faç . , _ la phase solid( 24 r'rocédé selon la reveniication 23 caractérisé en t i réac 15 e . ée résence réducteur rédL for aldéi Iyuc libu c.J réagis--,'-. '7as avec les i'coctions anime, tel q, cyanoborohydrue sodiu selon l'une quelconque 22 à 24 caracterise en ce que la phase solide e5:. .cellulose qui comporte des 20 1ur de formule -LrnH(CH201-1 .-C-CH(CHO)-0-. 26 - Utilisation (t'au re.)ins un support tel que défini à I,f,'.' glielconque des revendications 20 pour la purificàtion d'un aiologique contfeant des anticorps à r iturer, dans lut ledit liquftie biologique est 25 n 5 contact avec le au dit su pour assurer un,i- ibilisaton de aison des anticc77- :t en particulier c.:E.:,"; lennE _-_ lier à au certaines des r, Llosaccharide(s) greffées à surface de la ltilisation selon la revenclk..ation 26 caractérisée en __ que la 30 5 'SaUon est assurée par l'interrnédiaire d'au moins une des rbw:tions aldéhyde libres préserY.,,qs jr,:-7,1 la phase solide, qui, , interagissent avec Dvec !l'un CU tisieurs des acides 7,r : nr_)rtetir if'fun forme prot 3035799 70 asparagine, lysine, argirr., ç :arrinc' ptoohane, ty-ro ':, u cystéine, r lesdits anticorps pour for ison cova!en e.