FR 3026735 A1 20160408 FR 1459439 A 20141002 Procédé de dessalement d'effluents salés par voie microbiologique. 1. Domaine de l'invention Le domaine de l'invention est celui du dessalement des effluents salés. Plus précisément, l'invention concerne un procédé biologique de dessalement de milieux salés tels l'eau de mer, les effluents industriels et les eaux saumâtres. 2. Art antérieur L'accès à l'eau potable est une priorité pour de nombreux pays à travers le monde, à la fois pour des raisons économiques, écologiques et de santé publique. Une alternative à la production d'eau potable pour ces pays passe par le dessalement des eaux saumâtres ou de l'eau de mer. Actuellement, les méthodes de production d'eau potable à partir d'eau salée s'appuient: - soit sur des procédés thermiques d'évaporation, tels que l'évaporation flash à multiples étages ou l'évaporation à multiple-effets ; - soit sur un procédé par membrane d'osmose inverse nécessitant en amont un prétraitement de l'eau de mer (clarification et filtration des eaux salées) ; - soit sur un procédé d'électrodialyse nécessitant en amont un prétraitement de l'eau de mer (clarification et filtration des eaux salées). Il est à noter que pour des milieux de salinité supérieure à 6 g/L (0,1 M NaCI), la consommation énergétique de l'électrodialyse devient significativement supérieure à celle de l'osmose inverse. Ces techniques sont aujourd'hui bien maîtrisées mais présentent l'inconvénient majeur d'être particulièrement onéreuses, notamment en raison de l'importante consommation énergétique qu'elles nécessitent pour leur mise en oeuvre. Pour pallier ce problème, différents travaux de développement sont en cours pour aboutir à de nouvelles filières moins énergivores pour le traitement des eaux salées. Certaines de ces alternatives s'appuient sur l'emploi de mécanismes d'origine biologique, et ceci dans le but de réduire significativement l'apport externe d'énergie. La demande WO-2010/124079-A divulgue notamment un procédé de dessalement d'eau via une cellule électrochimique. L'énergie pour le fonctionnement de la cellule est apportée par des microorganismes donneurs d'électrons. Toutefois, ce procédé hybride découplant la production d'une différence de potentiel énergétique et une cellule d'électrodialyse énergétiquement alimentée par cette première, n'est que le résultat d'une juxtaposition d'un procédé biologique de production d'énergie électrique (pile à bactéries) et de l'électrodialyse, technique éprouvée pour la séparation des sels dissous. De par ses caractéristiques intrinsèques, l'électrodialyse est une technologie d'intérêt pour éliminer des sels dissous d'eau salée à des concentrations en NaCI inférieures à 0,1 M. Cependant, et comme énoncé précédemment, pour des salinités supérieures à ces valeurs, l'électrodialyse devient un procédé beaucoup plus énergivore que l'osmose inverse et perd donc tout intérêt économique. Une autre approche récemment proposée, et restant à ce jour à un stade conceptuel, consiste à utiliser des souches de cyanobactéries génétiquement modifiées pour éliminer les sels dissous (J.M.Amezaga et al. Plant Physiology, 2014, 164(4) :1661). Plus exactement, ces souches de cyanobactéries utilisent l'énergie de la lumière pour pomper les sels dissous dans le milieu dans lequel elles évoluent. Ainsi, l'énergie pour le fonctionnement du procédé vient de la lumière, source d'énergie universellement disponible et non coûteuse. Cependant, de nombreuses contraintes limitent la transposition de ce procédé à l'échelle industrielle. Tout d'abord, l'utilisation de souches génétiquement modifiées est coûteuse du fait de la production même de ces souches. De plus, les auteurs identifient de nombreux freins à une exploitation industrielle de leur proposition et notamment la nécessité d'un accès suffisant à la lumière pour les cyanobactéries dans de grandes cuves industrielles. De plus, l'étape de récupération des bactéries reste problématique, les techniques de séparation actuelles entrainant la destruction des cyanobactéries. Par ailleurs, les installations à mettre en oeuvre pour le fonctionnement de ce procédé sont radicalement différentes de celles généralement utilisées pour le traitement de l'eau. Ceci signifie que des installations de traitement de l'eau existantes ne pourraient pas être recyclées pour la mise en oeuvre du procédé décrit dans cette publication mais que des stations de dessalement ad hoc devraient être conçues, fabriquées et installées en fonction du lieu et des besoins. Sur le plan industriel, de telles exigences sont coûteuses et contraignantes. Enfin, la mise en oeuvre de microorganismes génétiquement modifiés pose souvent un problème d'acceptation par les populations, notamment sur le plan de la sécurité en cas de dissémination accidentelle dans l'environnement de ces microorganismes génétiquement modifiés. Aussi, bien que différentes alternatives aient été explorées pour rendre les procédés de dessalement conventionnels complètement indépendants sur le plan énergétique ou à tout le moins limiter cette dépendance, aucune solution satisfaisante et industriellement exploitable n'a encore été proposée. 3. Objectifs de l'invention L'invention a notamment pour objectif de pallier ces inconvénients de l'art antérieur. Plus précisément, un objectif de l'invention est de fournir, dans au moins un mode de réalisation, un procédé permettant de réduire la salinité, et notamment la concentration en ions chlorure, de milieux salés. Un autre objectif de l'invention est de mettre en oeuvre, dans au moins un mode de réalisation, un tel procédé moins consommateur en énergie que les procédés conventionnels tels l'évaporation, l'osmose inverse et l'électrodialyse. L'invention a encore pour objectif de mettre en oeuvre, dans au moins un mode de réalisation, un procédé permettant de réduire la teneur en sels dissous, et notamment en ions chlorure, de milieux salés tout en étant sûr pour l'environnement. 4. Exposé de l'invention Ces objectifs, ainsi que d'autres qui apparaîtront par la suite, sont atteints à l'aide d'un procédé de dessalement d'un milieu salé. Selon l'invention, le procédé comprend une étape de traitement biologique par au moins une Bactérie halophile dessalante, ladite Bactérie halophile dessalante présentant un taux de croissance compris entre 0,005 h' et 0,5 h' dans ledit milieu salin comprenant entre 1 g/L et 200 g/L de chlorure de sodium NaCI. Ainsi, l'invention repose sur une approche tout à fait nouvelle et originale d'exploiter la capacité de certaines Bactéries à survivre et se multiplier dans un milieu comprenant de grandes quantités de chlorure. Le contre-ion des ions chlorures peut être le sodium Na+ ou le potassium K. Plus exactement, l'invention utilise la capacité de certaines Bactéries, notamment les Bactéries halophiles, à transporter des sels dissous, tels les ions chlorure, potassium ou sodium, notamment en phase de croissance (division cellulaire). L'invention repose donc sur le maintien en division cellulaire de sorte à maximiser le mécanisme de transport d'ions à travers la membrane cellulaire. En d'autres termes, le procédé selon l'invention peut comprendre les étapes de : - fournir au moins une Bactérie halophile déssalante, et - cultiver ladite Bactérie halophile déssalante à un taux de croissance compris entre 0,005 h' et 0,5 h' dans ledit milieu salin comprenant entre 1 g/L et 200 g/L de chlorure de sodium NaCI. On entend par « dessalement » une co-élimination de Cl et Na+ qui résulte en une réduction de la concentration en chlorure de sodium d'au moins 10%, de préférence d'au moins 20%, de manière davantage préférée d'au moins 25% par rapport à la concentration de chlorure de sodium initiale. On entend par « milieu salé » un effluent dont la concentration en ion chlorure est d'au moins 0,05 M. On entend par « osmolyte » une molécule organique permettant de lutter contre le stress osmotique. On peut citer à titre d'exemple d'osmolyte les glucides de petite taille comme le tréhalose, le sorbitol, l'inositol, le glycérol et les polyols ; les acides aminés comme la proline, la glycine et les methylamines comme la glycine bétaïne. Il est à noter que les termes « Bactérie(s) » et « bactérie(s) » ne sont pas interchangeables dans la présente demande. Le terme « Bactérie(s) » renvoie au règne Bacteria, précédemment connu sous le nom d'Eubactérie, dans la taxonomie. Ce terme « Bactérie(s) » (Bactérie avec une première lettre majuscule) peut également être désigné sous l'expression « bactérie(règne) » dans la demande. Le terme « bactérie(s) » renvoie à la cellule bactérienne et peut donc être également identifié par les termes « souche », « biomasse » ou « cellule ». Différents mode de fonctionnement des Bactéries halophiles ont été décrits (Aharon Oren et al., Microbial life at high sait concentrations: phylogenetic and metabolic diversity ; Saline Systems, 2008 (4)2- doi:10.1186/1746-1448-4-2). Selon l'auteur de cette revue, les microorganismes développent principalement deux stratégies pour survivre dans un milieu salé : - la première stratégie implique l'accumulation d'ions Cl- et d'un contre- ion (K+ ou Na) dans le cytoplasme (désignée dans la littérature sous le terme anglais de « sait-in strategy »); et la seconde implique de maintenir l'eau dans la cellule grâce à l'accumulation des solutés organiques qui n'interfèrent pas avec le métabolisme de la bactérie (désignée dans la littérature sous le terme anglais de « osmotic solutes-in strategy »). Plus précisément, la première stratégie (« sait-in strategy ») est celle développée par les bactéries halophiles extrêmes, telles les Archaea Halobactericeae qui sont présentes dans des niches écologiques particulières telles que la Mer rouge, la Mer morte, les marais salants etc. Ces bactéries ne peuvent vivre qu'a des concentrations de Cl- comprises entre 2,5 (146 g/L NaCI) et 5,2M (304 g/L NaCI), selon la définition de Donn Kushner (Di Kushner, Life in high sait and solute concentrations, Microbial Life in Extreme Environments, Academia Press, London, 1978: 317-368). Ces bactéries ont besoin de Cl-, qu'elles absorbent dans le cytoplasme, pour leur croissance et leur multiplication. Certaines rhodopsines et halorhodopsines impliquées dans le transport des ions Cl- des bactéries halophiles extrêmes sont décrites dans la littérature scientifique. En revanche, à l'heure actuelle, les protéines impliquées dans le transport des ions Cl dans le cytoplasme d'Halobacillus halophilus ne sont pas identifiées. Il est important de souligner que les bactéries halophiles extrêmes sont incapables de survivre dans des milieux dans lesquels la concentration en NaCI est inférieure à 2,5M. Par conséquent, ces microorganismes ne peuvent pas être mis en oeuvre pour dessaler des effluents comme l'eau de mer dont la concentration en NaCI est inférieure à 2,5 M. La seconde stratégie (« osmotic solutes-in strategy ») est celle mise en oeuvre par les bactéries halotolérantes qui peuvent survivre dans des milieux dont la concentration en sel est inférieure ou égale à 0,5M de NaCI, selon la définition de Donn Kushner (Di Kushner, Life in high sait and solute concentrations, Microbial Life in Extreme Environments, Academia Press, London, 1978: 317-368). Ces microorganismes synthétisent des osmolytes qui leur permettent d'équilibrer la pression osmotique de part et d'autre de la membrane cellulaire et éviter la perte d'eau par la cellule. Plusieurs études ont démontré le transport et l'accumulation intracellulaire de chlorure par les bactéries halophiles. Cependant, à l'heure actuelle, aucune étude n'a réussi à démontrer un impact de ces microorganismes halophiles sur le milieu extérieur. En effet, la concentration intracellulaire mesurée de chlorure reste toujours inférieure à la concentration en chlorure du milieu extérieur. Et compte tenu des densités cellulaires observées dans ces études (109 cellules/mi), seuls quelques mg de Cl par litre pourraient être effectivement dessalés par ces bactéries. En d'autres termes, la réduction de la concentration en chlorure du milieu, grâce à son accumulation intracellulaire, est - dans les études décrites dans la littérature - négligeable par rapport à la concentration initiale. Ainsi, bien que ces études ont permis de mettre à jour la fonction microbienne de transport de chlorure de certains microorganismes, les résultats obtenus ne suffisent pas à en faire un procédé de dessalement efficace. Les inventeurs, au contraire, proposent de mettre en oeuvre au moins une Bactérie halophile déssalante dans le cadre d'un procédé de dessalement d'effluents salés dans des conditions particulières. Une condition pour la mise en oeuvre du procédé est la fixation ou la présence d'un taux de croissance compris entre 0,005 h' et 0,5 h 1. En effet, les inventeurs ont observé que le dessalement d'un effluent se produisait en condition de multiplication cellulaire. L'imposition d'un taux de croissance de ces Bactéries halophiles dessalantes dans cette gamme de valeur permet de maintenir lesdites Bactéries dans un état de multiplication permanent. Ainsi, le procédé de dessalement se fait de manière continue et ne connaît pas de phase plateau. Cette caractéristique est particulièrement intéressante dans le cadre d'un procédé de traitement de l'eau par dessalement à l'échelle industrielle. Il est également important de souligner que ledit taux de croissance correspond à un taux de croissance imposé lorsque le procédé se fait en continu ou un taux de croissance apparent lorsque le procédé se fait en mode discontinu (batch ou fed- batch). Différentes techniques pour contrôler le taux de croissance des bactéries, via le temps de séjour de la biomasse dans le réacteur, sont disponibles pour l'homme du métier. Par exemple, il est possible de prévoir un réacteur biologique opéré en CSTR (pour Continous Stirred Tank Reactor en anglais) ou chemostat, c'est à dire un réacteur dans lequel le débit d'entrée est égal au débit de sortie. Dans ce cas, le taux de croissance est égal au taux de dilution D (exprimé en h 1). Le taux de dilution D se calcule selon la formule suivante : D = volume du réacteur (L) / débit entrée (L/h) Il est également possible de prévoir un réacteur du type MBR (pour Membrane Biological Reactor en anglais) dans lequel une purge de la cuve avec un débit fixé permet de définir le temps de séjour des cellules et donc d'y contrôler la densité cellulaire afin de stimuler la multiplication des cellules. Le réacteur pour la mise en oeuvre du procédé peut être aussi bien à culture libre qu'a culture fixée. Le taux de croissance de la biomasse fixée peut être contrôlé et imposé selon toute méthode bien connue de l'homme de l'art, et notamment le contrôle de l'épaisseur du biofilm qui peut être régulée par la fréquence des lavages, l'imposition de contraintes hydrodynamiques, le design du support de fixation de la biomasse, etc. Au sens de l'invention, ladite Bactérie halophile est capable d'absorber le chlorure pour le bon fonctionnement de son métabolisme et sa multiplication. Les Bactéries qui sont uniquement capables de synthèse d'osmolytes, et ne présentant pas de capacité d'accumulation du chlorure dans leur cytoplasme, ne sont donc pas concernées par le procédé selon l'invention. Autrement dit, ladite au moins une Bactérie halophile dessalante pour la mise en oeuvre du procédé selon l'invention n'est pas une Bactérie halotolérante. En effet, comme expliqué plus haut, les Bactéries halotolérantes ne sont d'aucune utilité dans un procédé de dessalement dans la mesure où elles sont incapables d'absorber des ions Cl- dans leur cytoplasme. De préférence, ladite au moins une Bactérie halophile dessalante peut être fixée sur un support dans une cuve pour la mise en oeuvre du procédé selon l'invention. La fixation des Bactéries halophiles dessalantes sur support permet de récupérer les cellules gorgées de sel plus simplement et de faciliter le renouvellement de la biomasse dans le réacteur. Avantageusement, ladite Bactérie halophile dessalante n'est pas une Bactérie génétiquement modifiée. En l'état actuel, la production de microorganismes génétiquement modifiés est onéreuse, ce qui est un frein pour une exploitation industrielle. De plus, la mise en oeuvre de microorganismes génétiquement modifiés dans un procédé implique des contraintes d'exploitations lourdes. En effet, il est nécessaire de confiner ces microorganismes dans le procédé afin d'éviter un impact négatif sur l'environnement. De préférence, ladite au moins une Bactérie halophile dessalante n'est pas photosynthétique. Les bactéries photosynthétiques dépendent entièrement de la lumière pour leur croissance et leur métabolisme. Cette caractéristique implique de nombreuses contraintes en termes de génie civil et de procédé pour assurer une quantité suffisante de lumière à toutes les bactéries présentes dans le réacteur. Si la condition de l'accès à la lumière n'est pas respectée, le procédé perd en efficacité. De plus, les bactéries manquant de lumière cessent de se multiplier et meurent. Dans un mode de réalisation intéressant, ledit procédé utilise ladite Bactérie halophile dessalante sous la forme d'une souche unique. Dans ce mode de réalisation, le réacteur pour la mise en oeuvre du procédé selon l'invention est inoculé avec une souche unique d'une Bactérie halophile permettant le dessalement du milieu. Dans un autre mode de réalisation, ledit procédé utilise un consortium comprenant ladite au moins une Bactérie halophile dessalante. De préférence, ladite Bactérie halophile dessalante est une Bactérie aérobie. De préférence, ledit taux de croissance de ladite Bactérie halophile dessalante est compris entre 0,01 h l et 0,4 h 1. Ces valeurs particulières du taux de croissance permettent de maintenir ladite Bactérie halophile dessalante en phase exponentielle de croissance, de sorte que les cellules soient au maximum de leur capacité d'élimination du NaCI. Cette caractéristique permet d'optimiser les performances du procédé selon l'invention, à savoir maximiser le taux spécifique de dessalement. De manière davantage préférée, ledit taux de croissance de ladite Bactérie halophile dessalante est fixé entre 0,1 h' et 0,4 h l. Ces plages de taux de croissance ont montré une efficacité de dessalement d'environ 20-25% de la quantité initiale de NaCI. Avantageusement, ladite Bactérie halophile dessalante est hétérotrophe. Dans un mode de réalisation particulièrement avantageux, ladite Bactérie halophile dessalante est une Bactérie halophile modérée. A l'heure actuelle, il n'existe aucune définition standardisée et universellement admise des Bactéries halophiles modérées. Au sens de l'invention, on entend donc par Bactéries halophiles dessalantes modérées des Bactéries : capables de se diviser et croître à des concentrations de Cl comprises entre 0,05M et 3,5M, et qui présentent un mécanisme d'adaptation à la salinité hybride entre la stratégie développée par les bactéries halotolérantes (« osmotic solutes-in strategy ») et les bactéries halophiles extrêmes (« sait-in strategy »). Toutes les Bactéries Halophiles modérées ne sont pas capables de dessalement. Plus exactement, au sens de l'invention, les Bactéries halophiles dessalantes modérées sont des Bactéries halophiles modérées qui combinent les deux mécanismes d'adaptation au chlorure, à savoir : - la synthèse d'osmolytes afin de résister à la pression osmotique ; et - l'absorption et l'accumulation cytoplasmique Cl- contenu dans le milieu. Ces deux mécanismes peuvent soit être déclenchés de manière successive, en fonction de la concentration en ions chlorure dans le milieu, soit survenir simultanément. Les Bactéries halophiles déssalantes modérées présentent l'avantage de pouvoir traiter des eaux dont la concentration en NaCI est inférieure ou égale à 3,5M, ce qui n'est pas le cas des halophiles extrêmes. En outre, contrairement aux halophiles extrêmes, les Bactéries halophiles déssalantes modérées permettent de réduire davantage la concentration en NaCI puisqu'elles peuvent se multiplier à des teneurs en NaCI aussi faibles que 0,05M. Dans une variante intéressante, ladite Bactérie halophile dessalante est une Bactérie halophile extrême. L'utilisation de telles Bactéries halophiles extrêmes est intéressante lorsqu'il s'agit de dessaler des milieux dont la salinité est supérieure à 2,5M de NaCI comme par exemple des eaux de mer particulièrement riches en sel telle la Mer morte ou des effluents industriels salés. En ce cas, le procédé peut comprendre une première étape de dessalement par au moins une Bactérie halophile extrême puis une seconde étape de dessalement par au moins une Bactérie halophile déssalante modérée. Avantageusement, ladite Bactérie halophile déssalante exprime au moins un des marqueurs choisi parmi le groupe comprenant la glycine, la bétaïne, la glutamine, la proline, l'opéron ectoïne (SEQ-ID1), le gène de l'ectoïne B (SEQ-ID2); de préférence, parmi le groupe comprenant la proline et/ou l'ectoïne. Les séquences du listage de séquences ont été préparées à l'aide de la base de données NCBI dont la date de mise à jour est le 6 juillet 2014. Avantageusement, ladite Bactérie halophile déssalante exprime au moins un des marqueurs choisi parmi le groupe comprenant la glycine, la bétaïne, la glutamine, la proline, l'opéron ectoïne (SEQ-ID1), le gène de l'ectoïne B (SEQ-ID2) ou un marqueur présentant un degré d'homologie de 80%, de préférence de 85%, de manière encore plus préférée de 90%, de manière davantage préférée de 95%, de manière encore plus préférée de 99% avec ceux-ci. On détermine une « séquence homologue » ou une « homologie de séquence» entre deux séquences nucléotidiques par la comparaison linéaire des séquences nucléotidiques par le logiciel BLAST (Basic Local Alignment Search Tool), algorithme microbial blastn disponible sur le site du NCBI : (http:fiblast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast. cgi?PAGE_TYPE=BlastSearch&BLAST_SPEC=Microbi alGenomes). Les paramètres choisis pour cette analyse sont les suivants : - base de données (database): Microbes, representative genomes only; - optimisation du programme : blastn (Highly similar sequences) ; - requêtes courtes (short queries) = paramètres automatiques pour la séquence d'entrée (automatically adjust parameters for input sequence) ; - seuil (expect treshold) = 10; - longueur de séquence (word size) = 28; - appariement maximum (max match in a query range) = 0; Concernant les paramètres d'enregistrement des résultats (scoring parameters), les paramètres sont fixés par défaut (match/mismatch scores = 2-3; gap costs = existence : 5, extension : 2). Enfin, aucun filtre n'est appliqué. Les paramètres étant en anglais sur le site, les noms exacts des paramètres sont indiqués entre parenthèses. Les régions hypervariables v3 ou v4 de l'ARN ribosomal (ARNr) 16S sont des marqueurs classiquement utilisés pour la classification et l'identification des microorganismes, ces régions étant extrêmement spécifiques d'une souche à l'autre. Différentes bases de données permettent de relier la séquence de la région v3 ou v4 de l'ARNr 16S à une souche particulière. On peut citer à titre d'exemple la base de donnée EzTaxon (http://www.ezbiocloud.net/eztaxon). La recherche de cette région permet de quantifier une souche donnée dans un échantillon naturel. Les inventeurs ont remarqué que la présence de ces marqueurs dans le génome des Bactéries testées permettait de distinguer les Bactéries halophiles dessalantes modérées, au sens de l'invention, des Bactéries halophiles extrêmes qui ne sont pas capables des deux types d'adaptation. Avantageusement, ladite Bactérie halophile dessalante est capable d'accumuler Cl- dans son cytoplasme. En accumulant le chlorure dans leur cytoplasme, les Bactéries halophiles dessalantes au sens de l'invention permettent de réduire la concentration en NaCI dans l'eau à dessaler. Avantageusement, ladite Bactérie halophile dessalante est choisie parmi le groupe comprenant Halobacillus halophilus, Bacillus hwajinpoensis, Bacillus mojavensis, Bacillus pumilus, Oceanobacillus iheyensis, Virgibacillus dokdonensis, Salimicrobium salexigens, Salimicrobium halo philum, Salimicrobium flavidum et leur combinaisons. Les inventeurs ont sélectionné ces Bactéries car elles correspondent aux critères des Bactéries halophiles dessalantes modérées au sens de l'invention. En effet, ces Bactéries sont capables de produire des osmolytes leur permettant de résister à la pression osmotique engendrée par une faible concentration en NaCI dans le milieu comprise entre 0 et 0,5M, ainsi que pomper les ions Cl dans leur cytoplasme. De préférence, ladite Bactérie halophile dessalante est Halobacillus halophilus. Les inventeurs ont constaté que cette souche permettait de dessaler efficacement les milieux salés. Plus exactement, cette Bactérie est capable de réduire la concentration en ions chlorure et sodium dans le milieu de culture. La souche Halobacillus halophilus peut être obtenue, conformément au Traité de Budapest, auprès de la collection allemande DSMZ (Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen GmbH, Leibniz lnstitute, lnhoffenstrasse 7B, 38124 Braunschweig, Allemagne) sous le numéro d'accession DSM-2266. La souche Bacillus hwajinpoensis peut être obtenue, conformément au Traité de Budapest, auprès de la collection allemande DSMZ sous le numéro d'accession DSM-16206. La souche Bacillus mojavensis peut être obtenue, conformément au Traité de Budapest, auprès de la collection allemande DSMZ sous le numéro d'accession DSM- 9205. La souche Bacillus pumilus peut être obtenue, selon le Traité de Budapest, auprès de la collection allemande DSMZ sous le numéro d'accession DSM-27. La souche Virgibacillus dokdonensis peut être obtenue, selon le Traité de Budapest, auprès de la collection allemande DSMZ sous le numéro d'accession DSM- 16826. La souche Salimicrobium salexigens peut être obtenue, conformément au Traité de Budapest, auprès de la collection allemande DSMZ sous le numéro d'accession DSM-22782. La souche Salimicrobium, halophilum peut être obtenue auprès de la collection allemande DSMZ sous le numéro d'accession DSM-4771, conformément au Traité de Budapest. La souche Oceanobacillus iheyensis peut être obtenue, conformément au Traité de Budapest, auprès de la collection allemande DSMZ sous le numéro d'accession DSM-14371. La souche Salimicrobium flayidum peut être obtenue, conformément au Traité de Budapest, auprès de la collection sud-coréenne KCTC (Korean Collection for Type Culture, Korea Research lnstitute of Bioscience and Biotechnology, 125 Gwahak-ro, Yuseong-gu, Daejep, 305-806 Corée du Sud) sous le numéro d'accession KTCT 13260. De préférence, ledit milieu salé présente une concentration en chlorure de sodium NaCI comprise entre 20 g/L et 100 g/L. De manière intéressante, ledit milieu salé est choisi parmi l'eau de mer, les eaux saumâtres, les effluents salés industriels. L'invention concerne en outre l'utilisation d'au moins une Bactérie halophile pour le dessalement d'un milieu salé. Une telle utilisation peut comprendre les étapes 20 de: - fournir au moins une Bactérie halophile dessalante, et - cultiver ladite Bactérie halophile dessalante à un taux de croissance compris entre 0,005 h' et 0,5 h' dans ledit milieu salin comprenant entre 1 g/L et 200 g/L de chlorure de sodium NaCI. 25 De préférence, l'utilisation selon l'invention ne comprend pas les Bactéries génétiquement modifiées ou les Bactéries photosynthétiques. Dans un mode de réalisation, ladite Bactérie halophile dessalante dans l'utilisation selon l'invention est sous forme de souche unique. Dans un autre mode de réalisation, ladite Bactérie halophile dessalante dans 30 l'utilisation selon l'invention est sous forme d'inoculum comprenant ladite Bactérie dessalante modérée Avantageusement, ledit taux de croissance de ladite Bactérie halophile dessalante dans l'utilisation selon l'invention est compris entre 0,01 h 1 et 0,4 h 1. Ainsi, l'invention comprend l'utilisation de Bactéries halophiles dessalantes dans leur phase de croissance pour le dessalement d'effluents salés. On peut citer comme milieux salés l'eau de mer, les effluents industriels salés, les eaux saumâtres. Dans une première variante de l'utilisation selon l'invention, ladite Bactérie est une Bactérie halophile dessalante modérée. Dans une autre variante de l'utilisation selon l'invention, ladite Bactérie est une Bactérie halophile extrême. Avantageusement, dans l'utilisation selon l'invention, ladite Bactérie halophile dessalante exprime au moins un des marqueurs parmi le groupe comprenant la glycine, la bétaîne, la glutamine, la proline, l'ectoïne, ou leur combinaison; de préférence, parmi le groupe comprenant la proline et/ou l'ectoïne. De manière encore plus avantageuse, ladite Bactérie halophile dessalante dans l'utilisation selon l'invention est en outre capable d'accumuler Cl- dans son 15 cytoplasme. De préférence, ladite Bactérie halophile dessalante est choisie parmi le groupe comprenant Halobacillus halophilus, Bacillus hwajinpoensis, Bacillus mojayensis, Bacillus pumilus, Oceanobacillus iheyensis, Virgibacillus dokdonensis, Salimicrobium salexigens, Salimicrobium, halophilum, Salimicrobium flayidum et leur combinaisons. 20 De manière davantage préférée, ladite Bactérie halophile dessalante dans l'utilisation selon l'invention est Halobacillus halophilus. De préférence, ledit milieu salé dans l'utilisation selon l'invention présente une concentration en chlorure de sodium NaCI comprise entre 20 g/L et 100 g/L. 25 5. Liste des figures D'autres caractéristiques et avantages de l'invention apparaîtront plus clairement à la lecture de la description suivante d'un mode de réalisation préférentiel, donné à titre de simple exemple illustratif et non limitatif, et des dessins annexés, parmi lesquels : 30 - la figure 1 est un graphique présentant une courbe de croissance - densité cellulaire en fonction du temps - pour la souche Halobacillus halophilus , cette courbe permet d'estimer le taux de croissance d'Halobacillus halophilus ; - la figure 2 est un graphique illustrant l'évolution du taux de croissance (estimé tel que pour la figure 1) en fonction de la concentration initiale en NaCI pour la souche Halobacillus halophilus ; - la figure 3 présente (A) un graphique comparant l'évolution de la concentration en ions chlorure et sodium (en g/L) et en biomasse (densité optique donnée par l'absorbance à 600 nm) en fonction du temps pour un premier essai avec la souche Halobacillus halophilus et (B) la comparaison de la dynamique de concentrations de Cl et Na+ en Mol/L; - la figure 4 est un graphique illustrant l'évolution comparée de la concentration en ions chlorure et sodium et en biomasse en fonction du temps pour un second essai Halobacillus halophilus. 6. Description d'un mode de réalisation de l'invention L'invention repose sur l'utilisation d'au moins une Bactérie halophile dessalante capable d'accumuler le chlorure dans son cytoplasme pour le dessalement de milieux salés et leur maintien dans un état de multiplication permanent, préférentiellement exponentiel, induisant une élimination forcée des ions chlorure et sodium du milieu extérieur. De préférence, ladite Bactérie halophile est une Bactérie halophile dessalante modérée. Au sens de l'invention, les Bactéries halophiles dessalantes modérées sont capables de se multiplier dans des milieux salés comprenant entre 0,05 et 3,5M NaCI. Plus exactement, les Bactéries halophiles dessalantes modérées au sens de l'invention sont capables de s'adapter à un environnement salé selon les deux mécanismes d'adaptation connus, à savoir : - la synthèse d'osmolytes permettent de résister à la pression osmotique, et - l'absorption et l'accumulation des ions chlorures Cl dans leur cytoplasme. Ces deux mécanismes peuvent soit survenir l'un après l'autre, en fonction de la concentration en ions chlorure dans le milieu, soit être déclenchés de manière concomitante. 6.1. Détermination du caractère dessalant des Bactéries halophiles modérées. La méthode de détermination du caractère dessalant d'une Bactérie halophile modérée comprend deux volets, qui seront détaillés dans la description qui va suivre : (1) choix de la souche : soit choix d'une souche spécifique connue pour avoir un mécanisme d'accumulation de Cl-, soit par criblage (isolement) à partir d'un inoculum naturel (via l'utilisation d'un marqueur génétique), (2) démonstration de la capacité de co-élimination des ions chlorures et sodium d'un surnageant de milieu de culture. 6.1.1 Choix d'une souche de Bactérie halophile convenant à la mise en oeuvre du procédé selon l'invention 6.1.1.1 Test de croissance en fonction de la salinité du milieu pour une souche 15 déterminée. Le premier volet de la méthode consiste à évaluer la capacité de la souche à croître en milieu salin ainsi que la dépendance de sa croissance à la présence de CL Cette dépendance est un indicateur de Bactérie halophile et non halotolérante. La souche est mise en culture pendant 18 à 24h, à une température comprise 20 entre 20°C et 30°C et un pH compris entre 6 et 8, dans une flasque agité à 150 tours par minute à la température et au pH permettant une croissance optimale. Les températures et pH optimaux de croissance sont dépendants de chaque souche testée. Toutefois, lorsque la souche est obtenue à partir d'une collection, cette information est disponible. Dans le cas contraire, il est aisé de déterminer les valeurs 25 optimales en faisant des tests rapides aisément accessibles pour l'homme du métier. Brièvement, il s'agit de mettre en culture de petites quantités déterminées de bactéries à différentes températures dans la gamme 20°C et 30°C et à différents pH entre 6 et 8. Il suffit de procéder à un dénombrement des bactéries 24h ou 48h après afin de déterminer quelles conditions de pH et de température permettent un 30 maximum de croissance. Le milieu de culture utilisé doit contenir au moins une source de carbone, une source de phosphore et une source d'azote. Les milieux MB (Marine Browth), NB (Nutrient Browth) ou tout milieu de culture pour Bactéries comprenant de la peptone ou un extrait de levure conviennent à la mise en oeuvre de la méthode. De préférence, ces milieux comprennent les sources de C, P et N en excès, de sorte que la croissance des souches dépende uniquement de la concentration en ions chlorure dans le milieu. Pour ce faire, différentes concentrations en NaCI sont testées sur des bactéries issues d'une même culture. Les bactéries sont ainsi exposées à une gamme de concentration en NaCI variant entre 0,05M et 3.5M. Les essais sont réalisés en parallèle, en triplicat. Environ 0,5 à 2% en volume de bactéries sont inoculées dans la fiole. Toutes les 1 à 2 heures, un échantillon de culture de chaque flasque est prélevé. La densité optique à 600 nm est mesurée par spectrophotomètre (Spectrophotometer WPA Biowave II UV/Visible) afin de pouvoir déterminer une courbe de croissance dans le milieu et ainsi, calculer le taux de croissance de la souche pour les conditions testées. La courbe de croissance est rapportée au temps. La variation du taux de croissance obtenu en fonction de la concentration en NaCI permet de déterminer la dépendance en chlorure de la souche. 6.1.1.2 Recherche de marqueurs génétiques. L'expression de certains gènes permettant de détecter les microorganismes capables de synthétiser des osmolytes en réponse à la présence d'ions chlorure dans le milieu, la présence de ces marqueurs dans des bactéries capables de croître et de se développer dans des milieux hyper-salins est un indicateur potentiel d'une stratégie mixte de la régulation de la pression osmotique. Pour rechercher un marqueur génétique, un échantillon d'une culture de la souche sélectionnée (exemple : Halobacillus halophilus) ou d'un inoculum naturel en provenance d'un milieu hyper-salin est prélevé. L'ADN métagénomique est récupéré selon toute technique bien connu de l'homme de l'art. Par exemple, il est possible d'utiliser le protocole du kit FastDANTM Spin kit For Soil (MP Biomedicals) pour extraire l'ADN métagénomique. Les ADN métagénomiques sont analysés par PCR quantitative en temps réel. Dans le cas d'une souche bactérienne sélectionnée, la quantification est réalisée par PCR quantitative en temps réel sur le gène de ARNr 16S (régions V3 et/ou V4). Par exemple dans le cas d'Halobacillus halophilus, il est possible d'utiliser un protocole de PCR quantitative en temps réel qui amplifie spécifiquement une fraction des régions V3 et V4 du gène de l'ARNr 16S d'Halobacillus halophilus (SEQ ID 3). Dans le cas d'un échantillon naturel le marqueur utilisé est l'opéron ectoïne. Néanmoins, tout autre marqueur génétique précédemment décrit et spécifiquement impliqué dans la régulation de la pression osmotique peut être utilisé. La quantification du marqueur ectoïne est réalisée par PCR quantitative en temps réel. Ce protocole de PCR quantitative en temps réel sur gène ectB (un des gènes de l'opéron ectoïne) permet d'amplifier spécifiquement le gène ectB sans distinction d'espèce bactérienne. Exemple de qPCR avec Halobacillus halophilus : Brièvement, dans le cas d'Halobacillus halophilus, le protocole de qPCR est le suivant. L'ARNm d'Halobacillus halophilus est extrait à partir d'une suspension de cellules selon toute méthode bien connue de l'homme de l'art. L'ARNm est ensuite rétro-transcrit en ADNc selon toute méthode bien connue de l'homme de l'art. Divers kits d'extraction (par exemple le kit RNeasy0 micro de Qiagen, Etats Unis d'Amérique) et de rétro-transcription (par exemple le kit QuantiTectO Reverse Transcription Qiagen) sont disponibles à l'homme du métier avec des protocoles adaptés aux populations bactériennes. Un mélange réactionnel pour qPCR est préparé comme suit (volume final = 20 III): 10 il de prémix 2X SsoFastTM Evagreen® Supermix (Biorad, Etats Unis d'Amérique), 2 il d'ADNc d'Halobacillus halophilus à une concentration comprise entre 5 et 10 ng/ml , 4 il d'amorce sens 475F ciblant le gène de l'ARNr 16S d'Halobacillus halophilus ; et 4 il d'amorce anti-sens 673R ciblant le gène de l'ARNr 16S d'Halobacillus halo philus. Les amorces 475F et 673R ont été dessinées avec le logiciel Primer Blast développé par le NCBI (National Center for Biotechnology Information, Etats Unis d'Amérique : http://www.ncbi.nlm.nih.gov/tools/primer-blasta Les caractéristiques des amorces sont résumées dans le tableau 1 ci-dessous : Tableau 1 Amorce sens 475F Amorce anti-sens 673R Séquence (5' vers 3') ACAAGTACCGTGCGAACAGA TCCCCAGTTTCCAATGACCC Taille (en nucléotides) 20 20 Position sur le gène ARNr 475 673 16S (SEQ-ID 3) Température de fusion Ti, 59,61 59,59 (°C) % de GC 50 55 Le cycle de qPCR appliqué est le suivant : 1 cycle de dénaturation à 98°C pendant 30 secondes ; 40 cycles d'amplifications à 95°C pendant 10 secondes, 63°C pendant 20 secondes puis une courbe de fusion entre 65°C et 95°C est réalisée afin de s'assurer de la spécificité de l'amplification. Le thermocycleur utilisé est le CFX 96 Real Time System CT1000Tm (Biorad, Etats Unis d'Amérique). Les essais sont réalisés en triplicat pour une meilleure précision. Les résultats bruts sont ensuite normalisés selon la méthode de référence utilisée pour calculer la quantité d'ADN initiale, lors d'une PCR quantitative. Brièvement, les résultats de chaque puit sont normalisés puis linéarisés comme suit: Cp gène ménager - Cp gène ARNr 16S = ACp, gène ARNr 16S / gène ménager = 2 ACp le Cp étant le nombre de cycles d'amplification avant détection du signal fluorescent par l'appareil. La validation de ce protocole de qPCR a été réalisée en utilisant des quantités connues de plasmide ARNr 16S d'Halobacillus halophilus pour établir une courbe d'étalonnage, les quantités en plasmide s'échelonnant entre 2,52.102 et 2,52.108 copies du plasmide de l'ARNr 16S d'Halobacillus halophilus. Chaque point est fait en 5 réplicats pour augmenter la précision de la validation. Une courbe de régression portant en abscisse le logarithme de la quantité de plasmide de départ et en ordonnées le Cp est tracée à l'issue de la qPCR. La pente est calculée et le coefficient de régression linéaire r2 calculé. Les résultats obtenus donnent un r2 = 0,9992. Le modèle linéaire a ensuite été validé en utilisant le test de Fisher-Snedecor et a démontré que la valeur p est supérieure à 0,05, ce qui valide le protocole de qPCR. 6.1.2 Détermination de la capacité de dessalement La concentration en chlorure du milieu de culture est mesurée régulièrement tout au long de la culture pour mesurer sa décroissance dans le milieu. Observer une telle décroissance permet de démontrer la capacité d'une Bactérie à absorber et accumuler le chlorure dans son cytoplasme. La mesure de la concentration en chlorure peut être faite selon toute méthode bien connue de l'homme du métier telle la chromatographie ionique, les kits de détection rapide comme le kit LCK 311 (Hach-Lange). Une valeur de densité optique DO (mesure d'absorbance à 600 nm) supérieure à 4 unités est nécessaire pour cette étape. Ce test permet donc de détecter les souches effectivement capables d'éliminer les ions chlorure du surnageant. En prenant en compte les résultats des point 6.1.1 à 6.1.3, il est possible d'identifier les souches réunissant les conditions pour la mise en oeuvre du procédé à savoir : ayant un besoin en Cl pour assurer leur croissance, et/ou étant capables de croître dans des milieux hyper-salins en étant capables de synthétiser des osmolytes ; et étant en outre effectivement capables d'éliminer des ions chlorure du surnageant d'un milieu de culture. 6.2. Exemple d'un mode de réalisation du procédé selon l'invention : évolution du taux de croissance de la souche Halobacillus halophilus en fonction de la salinité. La souche Halobacillus halophilus a été cultivée à différentes concentrations de chlorure. La concentration cellulaire a été suivie par prélèvement d'échantillons et mesure de la densité optique à 600 nm par spectrophotomètre. La courbe de croissance pour une des conditions testées est présentée à la figure 1. Cette courbe permet de déduire le taux de croissance observé. Pour chaque condition testée, une courbe similaire a été déduite et le taux de croissance estimé. La variation du taux de croissance observé en fonction de la concentration de NaCI imposée est présentée à la figure 2. Ces résultats démontrent que la souche Halobacillus halophilus est capable de se multiplier en présence de sel. Par ailleurs, cette Bactérie semble avoir besoin de sel pour se multiplier, les concentrations croissantes en Cl favorisant sa propre croissance. Ces observations sont confortées par le calcul du taux de croissance p,, exprimé en h I-, en fonction de la concentration de Cl dans le milieu de culture (voir figure 2). Comme on peut l'observer sur cette figure, plus la concentration en Cl est élevée, plus le taux de croissance des bactéries augmente. La souche Halobacillus halophilus remplit donc les critères d'une Bactérie halophile modérée au sens de l'invention. 6.3. Essais de dessalement utilisant la souche Halobacillus halophilus Deux essais de dessalement ont été menés en utilisant la souche Halobacillus halophilus. Les résultats de chacun des essais sont présentés aux figures 3A, 3B et 4. Brièvement, les cellules sont mises en culture dans du milieu MB comprenant 43 g/L (figure 3), 38 g/L (figure 4) de NaCI. Les essais ont été réalisés en fiole, à 30°C, sous agitation à 150 rpm. Les taux de croissance p, calculés pour chaque essai sont respectivement de 0,37 h' pour le premier essai (figure 3) et 0,19 h' pour le second essai (voir figure 4). Plusieurs observations peuvent être faites. La première observation est que la diminution de la concentration en Cl est concomitante à la phase exponentielle de croissance (voir figures 3 et 4). La seconde observation est que l'on observe la co-élimination de ions Cl et Na+ (voir figure 3). La troisième observation qui peut être faite est que les cellules relarguent les ions chlorure dans le milieu lorsqu'elles atteignent la phase plateau de leur courbe de croissance (voir figure 3). Ce phénomène s'explique vraisemblablement par la lyse cellulaire des bactéries. Une autre explication pourrait être qu'un nouvel équilibre de part et d'autre de la membrane bactérienne se met en place en phase stationnaire. En effet, les bactéries accumulant le Cl à des fins de croissance, il est possible qu'elle cesse de l'accumuler lorsqu'elles cessent de croître. Un quatrième fait est que le pourcentage de diminution d'ions mesuré est d'environ 10% pour le second essai (voir figure 4) et de 22 % pour le premier essai (figure 3). Cette différence peut s'expliquer par la différence observée de taux de croissance entre les deux essais. En conclusion, une plus grande efficacité de dessalement est obtenue lorsque les cellules sont en phase de croissance exponentielle. Un taux de croissance élevé assure une plus grande efficacité de dessalement. REVENDICATIONS1. Procédé de dessalement d'un milieu salé comprenant une étape de traitement biologique par au moins une Bactérie halophile dessalante, ladite Bactérie halophile dessalante présentant un taux de croissance compris entre 0,005 h l et 0,5 h l dans ledit milieu salin comprenant entre 1 g/L et 200 g/L de chlorure de sodium NaCI. 2. Procédé selon la revendication 1 dans lequel ladite Bactérie halophile dessalante n'est pas une Bactérie photosynthétique. 3. Procédé selon la revendication 1 ou 2 dans lequel ledit procédé utilise ladite Bactérie halophile dessalante sous la forme d'une souche unique. 4. Procédé selon l'une des revendications 1 ou 2 dans lequel ledit procédé utilise un consortium comprenant ladite au moins une Bactérie halophile dessalante. 5. Procédé selon l'une des revendications précédentes dans lequel ladite Bactérie halophile dessalante est aérobie. 6. Procédé selon l'une des revendications précédentes dans lequel ledit taux de croissance de ladite Bactérie halophile dessalante est compris entre 0,01 h' et 0,4 h l. 7. Procédé selon l'une des revendications précédentes dans lequel ladite Bactérie halophile dessalante est hétérotrophe. 8. Procédé selon l'une des revendications précédentes dans lequel ladite Bactérie halophile dessalante est une Bactérie halophile modérée. 9. Procédé selon l'une des revendications précédentes dans lequel ladite Bactérie halophile dessalante est une Bactérie halophile extrême. 10. Procédé selon l'une des revendications précédentes dans lequel ladite Bactérie halophile dessalante exprime au moins un des marqueurs choisi parmi le groupe comprenant la glycine, la bétaïne, la glutamine, la proline, l'opéron ectoïne (SEQ-ID1), le gène de l'ectoïne B (SEQ-ID2), ; de préférence, parmi le groupe comprenant la proline et/ou l'opéron ectoïne. 11. Procédé selon l'une des revendications précédentes dans lequel ladite Bactérie halophile dessalante est capable d'accumuler Cl- dans son cytoplasme. 12. Procédé selon l'une des revendications précédentes dans lequel ladite Bactérie halophile dessalante est choisie parmi le groupe comprenant Halobacillus halo philus, Bacillus hwajinpoensis, Bacillus mojayensis, Bacillus pumilus, Oceanobacillus iheyensis, Virgibacillus dokdonensis, Salimicrobium salexigens, Salimicrobium halo philum, Salimicrobium flayidum et leur combinaisons. 13. Procédé selon la revendication 12 dans lequel ladite Bactérie halophile dessalante est Halobacillus halo philus. 14. Procédé selon l'une des revendications précédentes dans lequel ledit milieu salé présente une concentration en chlorure de sodium NaCI comprise entre 20 g/L et 100 g/L. 15. Procédé selon l'une des revendications précédentes dans lequel ledit milieu salé est choisi parmi l'eau de mer, les eaux saumâtres, les effluents salés industriels.