FR 3013732 A1 20150529 FR 1361511 A 20131122 VARIANTS D'ENDOGLUCANASES A ACTIVITE AMELIOREE ET LEURS UTILISATIONS La possibilité de produire de l'éthanol à partir de la cellulose a reçu beaucoup d'attention en raison de la disponibilité de grandes quantités de matière première ainsi que de l'intérêt de l'éthanol à titre de carburant. Les matières premières naturelles cellulosiques pour un tel processus sont désignées par le terme "biomasse". De nombreux types de biomasse, par exemple le bois, les résidus agricoles, les cultures herbacées et les déchets solides municipaux, ont été considérés comme des matières premières potentielles pour la production de biocarburant. Ces matières sont constituées principalement de cellulose, d'hémicellulose et de lignine. La cellulose est un polymère constitué de molécules de glucose reliées par des liens beta 1-4, qui sont très résistants à la dégradation ou à la dépolymérisation. Une fois la cellulose convertie en glucose, celui-ci est facilement fermenté en biocarburant, par exemple l'éthanol, en utilisant une levure. Les plus anciennes méthodes étudiées pour convertir la cellulose en glucose sont basées sur l'hydrolyse acide. Ce processus peut se faire en présence d'acides concentrés ou dilués. Cependant, plusieurs inconvénients tels que la mauvaise récupération de l'acide lors de l'utilisation d'acides concentrés et la faible production de glucose dans le cadre de l'utilisation d'acides dilués nuisent à l'économie du processus d'hydrolyse acide. Pour surmonter les inconvénients du processus d'hydrolyse acide, les processus de conversion de la cellulose ont porté plus récemment sur l'hydrolyse enzymatique, à l'aide d'enzymes de type cellulase. Cette hydrolyse enzymatique de la biomasse lignocellulosique (par exemple, la cellulose) présente cependant l'inconvénient d'être un procédé industriel coûteux. De ce fait, il est nécessaire d'utiliser des souches de microorganismes sécréteurs de cellulases de plus en plus performantes. À ce titre, beaucoup de microorganismes comportent des enzymes qui hydrolysent la cellulose, tels que les champignons Trichoderma, Aspergillus, Humicola, Fusarium ainsi que les bactéries telles que Thermomonospora, Bacillus, Cellulomonas et Streptomyces. Les enzymes sécrétées par ces microorganismes possèdent trois types d'activités utiles dans la conversion de la cellulose en glucose et se divisent en trois groupes: les endoglucanases, qui attaquent les fibres de celluloses aléatoirement en interne, les exoglucanases qui vont attaquer les extrémités des fibres en libérant du cellobiose, et les beta-glucosidases qui vont hydrolyser ce cellobiose en glucose. D'autres classes d'enzymes telles que les hémicellulases ou la classe d'enzymes récemment découverte des polysaccharides mono-oxygénases peuvent jouer également un rôle dans l'efficacité de l'hydrolyse. Il y a un intérêt industriel fort pour la diminution du coût de l'hydrolyse enzymatique, et cette diminution passe par l'utilisation d'une dose réduite d'enzymes et donc des cocktails d'enzymes plus efficaces. En conséquence, plusieurs demandes de brevets décrivent des enzymes naturelles aux capacités supérieures à celles de Trichoderma reesei, ou des variants améliorés par génie génétique. On peut citer les demandes de brevet US2010304464, W02010066411 et W02013029176 concernant les exoglucanases, les demandes W02007109441, W02012149192 et W02010076388 concernant les endoglucanases, les demandes W02010029259, W02010135836 ou W02010022518 concernant les beta-glucosidases, ou encore les demandes W012135659, W012149344 concernant les polysaccharides monooxygénases. Les enzymes hydrolysant la biomasse lignocellulosique sont 5 classées dans le système CAZy (Cantarel, B. L., Coutinho, P. M., Rancurel, C., Bernard, T., Lombard, V., & Henrissat, B. (2009). The Carbohydrate-Active EnZymes database (CAZy): an expert resource for Glycogenomics. Nucleic acids research, 37, D233-8) sur des critères principalement structuraux. Les 10 endoglucanases peuvent appartenir aux familles GH 5, 6, 7, 8, 9, 12, 16, 18, 19, 26, 44, 45, 48, 51, 74 et 124. Pour qu'une hydrolyse de la biomasse lignocellulosique soit efficace et économiquement rentable, le mélange 15 enzymatique doit comporter des proportions équilibrées d'activités enzymatiques diverses (entre autres, mais non exclusivement exoglucanases, endoglucanases, xylanases et beta-glucosidases). A titre d'exemple, dans les mélanges natifs de Trichoderma reesei on constate généralement la 20 présence de 60-70% d'exoglucanases, 15-20% d'endoglucanases, quelques pourcentages d'hémicellulases et environ 5-10% de beta-glucosidases. Ce mélange convient pour hydrolyser la majorité des substrats prétraités (ex. type paille de blé explosée à la vapeur en conditions acides) avec des rendements 25 acceptables. En somme, l'augmentation de l'activité endoglucanase ne doit pas se faire au détriment des autres activités enzymatiques. Les spécificités fonctionnelles de ces enzymes sont aujourd'hui mal connues. Le génome de Trichoderma reesei comporte au moins 3 enzymes principales, issues des 30 familles 7 (EG1, cel7b), 5 (EG2, cel5a) et 12 (EG3, Ce112a). Les enzymes EG1 et EG2 sont les endoglucanases majoritaires et peuvent représenter jusqu'à 10-20% en masse du cocktail d'enzymes complet produit par T. reesei. Les endoglucanases (EC 3.2.1.4), premières enzymes à agir sur la cellulose, sont connues pour avoir un rôle majeur dans l'hydrolyse en augmentant le nombre de sites que peuvent attaquer les exoglucanases tout en diminuant le degré de 5 polymérisation des microfibrilles attaquées. De récents travaux (Szijàrt6, N., Siika-aho, M., Sontag-Strohm, T., & Viikari, L. (2011). Liquefaction of hydrothermally pretreated wheat straw at high-solids content by purified Trichoderma enzymes. Bioresource technology, 102(2), 1968-74) soulignent 10 leur rôle dans la diminution de la viscosité de la biomasse au cours des premières heures de l'hydrolyse. Cette diminution de viscosité peut avoir un impact très important sur les coûts opératoires du procédé. Le problème de viscosité est exacerbé dans le cas de 15 procédés imposant le recours à une basse température telle que la saccharification simultanée à la fermentation (SSF), qui met en jeu à la fois les enzymes hydrolysant la biomasse et le micro-organisme qui convertit les monomères de sucres en éthanol. 20 L'hydrolyse et la fermentation peuvent être réalisées suivant différents schémas. Le plus courant consiste en une hydrolyse et une fermentation séparées (SHF - Separate Hydrolysis and Fermentation). Cette méthode permet d'optimiser 25 chaque étape par le maintien des conditions optimales de réaction. Cette fermentation s'effectue de manière extemporanée, à une température comprise entre environ 28°C et environ 30°C, tandis que l'hydrolyse a lieu généralement à une température d'au moins 45°C. Cependant, en SHF, les sucres 30 libérés en fin de réaction sont présents à très forte concentration et entraînent une inhibition des enzymes, ralentissant l'efficacité du procédé. Pour éviter ces inconvénients, un autre type de procédé peut être envisagé. En SSF, les deux étapes (hydrolyse et fermentation des hexoses) ont lieu de manière simultanée, empêchant l'accumulation des sucres à des concentrations inhibitrices pour les enzymes. Les coûts d'investissement sont également réduits grâce à l'utilisation d'un seul réacteur. Le taux d'hydrolyse est plus élevé suite à l'absence d'inhibition car les sucres libérés sont utilisés immédiatement pour la fermentation en éthanol. Dans cette méthode, la température du réacteur constitue nécessairement un compromis entre les températures optimales d'hydrolyse et de fermentation, typiquement entre environ 30°C et environ 35°C. Cependant, à une telle température, l'activité des enzymes cellulolytiques est diminuée de 30% environ. La SSF permet également l'expression d'enzymes dégradant 15 la cellulose dans l'organisme fermentant les sucres, ce qui permet de limiter, ou dans un cas extrême de supprimer le recours aux enzymes produites lors d'une étape séparée. En conséquence, l'obtention d'enzymes maintenant une 20 activité endoglucanase efficace aux températures optimales d'hydrolyse et de fermentation (soit entre 30°C et 50°C) tout en gardant la proportion de l'ensemble des enzymes du mélange serait un gain significatif pour le procédé de conversion de biomasse lignocellulosique en biocarburant. 25 Description de l'invention Les inventeurs ont développé un polypeptide ayant une activité endoglucanase améliorée, notamment par rapport à 30 l'activité endoglucanase de la protéine sauvage EG2 de séquence SEQ ID NO :2. EG2 correspond à l'endoglucanase 2 de Trichoderma reesei. Dans cette optique, les déposants, ont eu le grand mérite de trouver, après de nombreuses recherches, un polypeptide isolé ou purifié ayant une activité endoglucanase améliorée par rapport à l'activité endoglucanase de la protéine sauvage EG2 (SEQ ID NO :2. Selon l'invention, le polypeptide est choisi dans le groupe consistant en : i) une séquence d'acides aminés choisie parmi SEQ ID NO :4, SEQ ID NO :6, SEQ ID NO :8, SEQ ID NO :10, SEQ ID NO :12; SEQ ID NO :14 SEQ ID NO :16, SEQ ID NO :18, SEQ ID NO :20, SEQ ID NO :22, SEQ ID NO :24, SEQ ID NO :26, SEQ ID NO :28, SEQ ID NO :30, SEQ ID NO :32 et SEQ ID NO :34; ii) une séquence d'acides aminés présentant un pourcentage d'identité d'au moins 70%, préférentiellement 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 98% ou 99%, par rapport à la séquence SEQ ID NO :4, SEQ ID NO :6, SEQ ID NO :8, SEQ ID NO :10, SEQ ID NO :12; SEQ ID NO :14 SEQ ID NO :16, SEQ ID NO :18, SEQ ID NO :20, SEQ ID NO :22, SEQ ID NO :24, SEQ ID NO :26, SEQ ID NO :28, SEQ ID NO :30, SEQ ID NO :32 ou SEQ ID NO :34. Selon l'invention, le pourcentage d'identité d'une séquence donnée par rapport à SEQ ID NO :4, SEQ ID NO :6, SEQ ID NO :8, SEQ ID NO :10, SEQ ID NO :12; SEQ ID NO :14 SEQ ID NO :16, SEQ ID NO :18, SEQ ID NO :20, SEQ ID NO :22, SEQ ID NO :24, SEQ ID NO :26, SEQ ID NO :28, SEQ ID NO :30, SEQ ID NO :32 ou SEQ ID NO :34, correspond au nombre de résidus identiques entre cette séquence donnée et SEQ ID NO :4, SEQ ID NO :6, SEQ ID NO :8, SEQ ID NO :10, SEQ ID NO :12; SEQ ID NO :14 SEQ ID NO :16, SEQ ID NO :18, SEQ ID NO :20, SEQ ID NO :22, SEQ ID NO :24, SEQ ID NO :26, SEQ ID NO :28, SEQ ID NO :30, SEQ ID NO :32 ou SEQ ID NO :34 divisé par le nombre de résidus dans SEQ ID NO :4, SEQ ID NO :6, SEQ ID NO :8, SEQ ID NO :10, SEQ ID NO :12; SEQ ID NO :14 SEQ ID NO :16, SEQ ID NO :18, SEQ ID NO :20, SEQ ID NO :22, SEQ ID NO :24, SEQ ID NO :26, SEQ ID NO :28, SEQ ID NO :30, SEQ ID NO :32 ou SEQ ID NO :34. Lorsqu'on utilise la base de données GenomeQuest, ledit pourcentage d'identité par rapport à SEQ ID NO :4, SEQ ID NO :6, SEQ ID NO :8, SEQ ID NO :10, SEQ ID NO :12; SEQ ID NO :14 SEQ ID NO :16, SEQ ID NO :18, SEQ ID NO :20, SEQ ID NO :22, SEQ ID NO :24, SEQ ID NO :26, SEQ ID NO :28, SEQ ID NO :30, SEQ ID NO :32 ou SEQ ID NO :34 correspond au pourcentage d'identité d'Interrogation (% id Query), où Interrogation correspond à la séquence SEQ ID NO :4, SEQ ID NO :6, SEQ ID NO :8, SEQ ID NO :10, SEQ ID NO :12; SEQ ID NO :14 SEQ ID NO :16, SEQ ID NO :18, SEQ ID NO :20, SEQ ID NO :22, SEQ ID NO :24, SEQ ID NO :26, SEQ ID NO :28, SEQ ID NO :30, SEQ ID NO :32 ou SEQ ID NO :34. Dans un autre mode de réalisation, le polypeptide tel que décrit précédemment est caractérisé en ce que son expression dans un organisme fermentaire est au moins égale à 20 l'expression de la protéine sauvage EG2 (SEQ ID NO :2). L'homme du métier pourra par exemple déterminer l'augmentation ou autrement dit l'amélioration de l'activité enzymatique soit à l'aide du substrat Carboxy-Méthyl-cellulose 25 (CMC), soit avec un substrat chromogénique (p-Nitrophenyl glycoside). L'activité enzymatique sera respectivement révélée par dosage colorimétrique des sucres réducteurs ou bien du nitrophénol libérés. 30 Un exemple de protocole, que l'homme du métier pourra utiliser pour déterminer si un polypeptide selon l'invention présente une activité enzymatique améliorée par rapport à celle de la protéine sauvage EG2 (SEQ ID NO :2), est le suivant : -formation d'une culture stock d'E. cou exprimant un polypeptide selon l'invention pendant toute la nuit à 37°C ; -ensemencement d'un milieu de culture LB avec 1% de culture stock à 37°C jusqu'à l'obtention d'une densité optique de 0.4 ; -culture desdites cellules à 20°C pendant 18h ; -centrifugation pendant 5 minutes à 7900 rpm ; -resuspension des culots cellulaires avec du tampon citrate phosphate 100 mM à pH 5 contenant 1 mg/mL de lysozyme (D0600 finale 100) ; -incubation des cellules resuspendues 30 minutes sur la glace ; -lyse des cellules par 3 cycles de congélation/décongélation ; -fractionnement de l'ADN par sonication ; -centrifugation 30 minutes à 13000 rpm ; -incubation de 100 pL de surnageant de cassage dilué 50 fois avec 100 pL de tampon citrate phosphate 100 mM à pH 5 contenant 1% de CMC pendant 1h à 35 et 50°C ; -prélèvement de 100 pL de réaction ; -ajout de 100 pL de réactif DNS (Miller, 1959); -incubation 5 minutes à 100°C ; -incubation 3 minutes sur la glace ; -centrifugation pendant 10 minutes à 3000 rpm ; -lecture de la densité optique à 540 nm sur 150 pL de surnageant. L'invention a également pour objet, un acide nucléique purifié ou isolé codant au moins un polypeptide tel que décrit précédemment. Le TABLEAU 1 ci-dessous comprend les identifications des séquences nucléiques et peptidiques pour les gènes EG2, les gènes des endoglucanases 2 putative de Botryotinia fuckeliana (gène BF) et de l'endoglucanase 2 putative de Sclerotinia sclerotiorum (gène SS), ainsi que pour les séquences nucléiques et polypeptides de l'invention. De préférence, ledit acide nucléique purifié ou isolé peut être choisi parmi les séquences suivantes: SEQ ID NO :3, SEQ ID NO :5, SEQ ID NO :7, SEQ ID NO :9, SEQ ID NO :11; SEQ ID NO :13, SEQ ID NO :15, SEQ ID NO :17, SEQ ID NO :19, SEQ ID NO :21, SEQ ID NO :23, SEQ ID NO :25, SEQ ID NO :27, SEQ ID NO :29, SEQ ID NO :31 et SEQ ID NO :33. TABLEAU 1 Clones Acide nucléique Polypeptide EG2 (sauvage) SEQ ID NO :1 SEQ ID NO :2 37D12 SEQ ID NO :3 SEQ ID NO :4 45A7 SEQ ID NO :5 SEQ ID NO :6 46H1 SEQ ID NO :7 SEQ ID NO :8 50F10 SEQ ID NO :9 SEQ ID NO :10 108G5 SEQ ID NO :11 SEQ ID NO :12 140F7 SEQ ID NO :13 SED ID NO :14 146C4 SEQ ID NO :15 SED ID NO :16 149E4 SEQ ID NO :17 SEQ ID NO :18 173C6 SEQ ID NO :19 SEQ ID NO :20 191H11 SEQ ID NO :21 SED ID NO :22 222E1 SEQ ID NO :23 SED ID NO :24 225C7 SEQ ID NO :25 SEQ ID NO :26 227C4 SEQ ID NO :27 SEQ ID NO :28 229D1 SEQ ID NO :29 SED ID NO :30 231C9 SEQ ID NO :31 SEQ ID NO :32 330F9 SEQ ID NO :33 SEQ ID NO :34 Gène BF SEQ ID NO :35 SEQ ID NO :36 Gène SS SEQ ID NO :37 SEQ ID NO :38 L'invention porte également sur un vecteur comprenant un acide nucléique tel que décrit précédemment. Selon l'invention, on entend par « vecteur » toute séquence d'ADN dans laquelle il est possible d'insérer des fragments d'acide nucléique étranger, les vecteurs permettant 5 d'introduire de l'ADN étranger dans une cellule hôte. On peut citer de manière non-exhaustive comme vecteurs : les plasmides, les cosmides, les chromosomes artificiels de levures (YAC), les chromosomes artificiels de bactéries (BAC), les chromosomes artificiels dérivés du bactériophage P1 (PAC) 10 ou les vecteurs dérivés de virus. Selon l'invention, l'acide nucléique tel que décrit précédemment pourra être lié opérationnellement à un promoteur, un terminateur ou toute autre séquence nécessaire à 15 son expression dans la cellule hôte. Le vecteur selon l'invention pourra également porter un marqueur de sélection. On entend par « marqueur de sélection » un gène dont l'expression confère aux cellules qui le 20 contiennent une caractéristique permettant de les sélectionner. Il s'agit par exemple d'un gène de résistance aux antibiotiques. L'invention a également pour objet une cellule hôte isolée 25 comprenant soit au moins l'un des polypeptides tels que décrit précédemment, soit au moins l'un des acides nucléiques tels que décrit précédemment ou soit au moins l'un des vecteurs tels que décrit précédemment. 30 L'homme du métier pourra introduire l'un des polypeptides, l'un des acides nucléiques ou l'un des vecteurs tels que décrit précédemment dans la cellule hôte par des méthodes conventionnelles bien connues. Par exemple, on peut citer le traitement au chlorure de calcium, l'électroporation, l'utilisation d'un pistolet à particules. Selon un mode de réalisation, l'homme du métier pourra introduire dans la cellule hôte et par des méthodes conventionnelles, plusieurs copies d'un acide nucléique codant un polypeptide ayant une activité endoglucanase améliorée selon l'invention. Selon un mode de réalisation, la cellule hôte isolée telle que décrite précédemment est choisie parmi Trichoderma, Aspergillus, Neurospora, Humicola, Myceliophthora, Chrysosporium, Penicillium, Fusarium, Thermomonospora, Bacillus, Pseudomonas, Escherichia, Clostridium, Cellulomonas, 15 Streptomyces, Yarrowia, Pichia et Saccharomyces. Selon un mode de réalisation préféré, la cellule hôte isolée telle que décrite précédemment est choisie parmi Trichoderma reesei, Trichoderma viridae, Trichoderma koningii, 20 Aspergillus piger, Aspergillus nidulans, Aspergillus wentii, Aspergillus oryzae, Aspergillus phoenicis, Myceliophthora thermopila, Chrysosporium lucknowense, Neurospora crassa, Humicola grisae, Penicillium pinophilum, Penicillium oxalicum, Escherichia coli, Clostridium acetobutylicum, Clostridium 25 saccharolyticum, Clostridium benjerinckii, Clostridium butylicum, Pichia pastoris, Yarrowia lipolityca et Saccharomyces cerevisiae. Selon un mode de réalisation préféré, la cellule hôte 30 isolée telle que décrite précédemment est choisie parmi Trichoderma reesei et Saccharomyces cerevisiae. L'invention a également pour objet l'utilisation de l'un quelconque des polypeptides décrits précédemment pour l'hydrolyse de la cellulose. L'invention a également pour objet, l'utilisation de l'un quelconque des polypeptides décrits précédemment pour la production de biocarburant. Selon l'invention, le terme biocarburant peut être défini comme tout produit issu de la transformation de la biomasse et pouvant être utilisé à des fins énergétiques. D'une part et sans vouloir se limiter, on peut citer à titre d'exemple des biogaz, des produits pouvant être incorporés (éventuellement après transformation ultérieure) à un carburant ou être un carburant à part entière, tels que des alcools (l'éthanol, le butanol et/ou l'isopropanol selon le type d'organisme fermentaire utilisé), des solvants (acétone), des acides (butyrique), des lipides et leurs dérivés (acides gras à courtes ou longues chaînes, esters d'acides gras), ainsi que l'hydrogène. De manière préférée, le biocarburant selon l'invention est un alcool, par exemple l'éthanol, le butanol et/ou l'isopropanol. Plus préférentiellement, le biocarburant selon l'invention est l'éthanol. Dans un autre mode de réalisation, le biocarburant est du biogaz. Dans un autre mode de réalisation, le produit est une molécule intéressant l'industrie chimique, comme par exemple, un autre alcool tel que le 1,2-propane diol, le 1,3-propane diol, le 1,4-butane diol, le 2,3-butane diol, des acides organiques comme l'acide acétique, propionique, acrylique, butyrique, succinique, malique, fumarique, citrique, itaconique, ou des hydroxyacides comme l'acide glycolique, hydroxypropionique, ou lactique. On décrit ci-dessous un mode de réalisation de production d'un cocktail enzymatique utile pour l'hydrolyse de la lignocellulose. Les souches de champignons filamenteux, de préférence Trichoderma, plus préférentiellement T. reesei, capables d'exprimer au moins un polypeptide selon l'invention sont cultivées en fermenteurs, en présence d'un substrat carboné, tel que le lactose ou le glucose, choisi pour la croissance du microorganisme. Dans un mode de réalisation, ce substrat carboné, selon sa nature, est introduit dans le fermenteur avant stérilisation ou est stérilisé séparément et introduit dans le fermenteur après stérilisation de ce dernier pour obtenir une concentration initiale de 20 à 35 g/L. Une solution aqueuse contenant le substrat choisi pour la production des enzymes est ensuite ajoutée. Une composition enzymatique agissant sur la biomasse lignocellulosique produite par les champignons est enfin récupérée par filtration du milieu de culture. Dans cette composition, on retrouve notamment, la beta-glucosidase, l'exoglucanase et l'endoglucanase selon l'invention. Dans un mode de réalisation, la solution aqueuse contenant le substrat choisi pour la production des enzymes est préparée à la concentration de 200-250 g/L et contient en outre un substrat inducteur tel que le lactose. Cette solution aqueuse est injectée après l'épuisement du substrat carboné initial de façon à apporter une quantité optimisée, comprise entre 35 et 45 mg/g de cellules ("fed batch"). Pendant cette phase de "fed batch", la concentration résiduelle en sucre dans le milieu de culture est inférieure à 1 g/L et les enzymes agissant sur la biomasse lignocellulosique sont sécrétées par le champignon. Ces dernières peuvent être récupérées par filtration du milieu de culture. L'invention a pour objet une composition enzymatique 5 apte à agir sur la biomasse lignocellulosique, ladite composition enzymatique étant produite de préférence par des champignons filamenteux et comprend au moins un polypeptide ayant une activité endoglucanase améliorée par rapport à l'activité endoglucanase de la protéine sauvage EG2. Par 10 « champignons filamenteux », on entend notamment Trichoderma, plus préférentiellement T. reesei. Enfin, l'invention a pour objet un procédé de production de biocarburant à partir de la biomasse comprenant 15 les étapes successives suivantes : - mise en suspension en phase aqueuse de la biomasse à hydrolyser; - hydrolyse en présence d'une composition enzymatique de la biomasse lignocellulosique telle que décrite 20 précédemment de manière à produire un hydrolysat contenant du glucose; - fermentation du glucose de l'hydrolysat de manière à produire un moût de fermentation; - séparation du biocarburant du moût de fermentation. 25 Dans un mode de réalisation, la biomasse à hydrolyser est mise en suspension en phase aqueuse à raison de 6 à 40 % de matière sèche, de préférence 20 à 30 %. Le pH est ajusté entre 4 et 5,5; de préférence entre 4,8 et 5,2 et la 30 température entre 40 et 60°C, de préférence entre 45 et 50°C. La réaction d'hydrolyse est démarrée par l'ajout de la composition enzymatique agissant sur la biomasse lignocellulosique; la quantité habituellement utilisée est de 10 à 30 mg de protéines excrétées par gramme de substrat prétraité ou moins. La réaction dure généralement de 15 à 48 heures. La réaction est suivie par dosage des sucres libérés, notamment le glucose. La solution de sucres est séparée de la fraction solide non hydrolysée, essentiellement constituée de lignine, par filtration ou centrifugation et est ensuite traitée dans une unité de fermentation. Dans un mode de réalisation, le biocarburant pourra être séparé du moût de fermentation par exemple par 10 distillation. Un autre objet de l'invention est un procédé de production de biocarburant à partir de la biomasse, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes successives 15 suivantes : - mise en suspension en phase aqueuse de la biomasse à hydrolyser; - ajout simultané d'une composition enzymatique telle que définie précédemment et d'un organisme fermentaire de 20 manière à produire un moût de fermentation; - séparation du biocarburant du moût de fermentation. De préférence, la composition enzymatique et l'organisme fermentaire sont ajoutés simultanément puis incubés à une température comprise entre 30°C et 35°C pour 25 produire un moût de fermentation. Selon ce mode de réalisation, la cellulose présente dans la biomasse est convertie en glucose, et en même temps, dans le même réacteur, l'organisme fermentaire (par exemple 30 une levure) convertit le glucose en produit final selon un procédé de SSF (Simultaneous Saccharification and Fermentation) connu de l'homme du métier. Selon les capacités métaboliques et hydrolytiques de l'organisme fermentaire, le bon déroulement de l'opération peut nécessiter l'addition d'une quantité plus ou moins importante de mélange cellulolytique exogène. Dans un autre mode de réalisation, l'organisme 5 fermentaire produit également le polypeptide objet de l'invention par sécrétion ou en surface de sa cellule, éventuellement conjointement à d'autres enzymes agissant sur la biomasse lignocellulosique, limitant ou supprimant ainsi le besoin en enzymes produites par le champignon filamenteux. De 10 préférence, l'organisme fermentaire est une cellule hôte telle que décrite précédemment. Ainsi, de préférence, l'invention a pour objet un procédé de production de biocarburant à partir de la biomasse, 15 comprenant les étapes successives suivantes : - mise en suspension en phase aqueuse de la biomasse à hydrolyser ; - ajout d'une ou plusieurs cellules hôtes telles que décrites précédemment avec un organisme fermentaire et/ou 20 une composition enzymatique telle que décrite précédemment, de manière à produire un moût de fermentation ; -séparation du biocarburant du moût de fermentation. De préférence, les cellules hôtes avec la composition enzymatique et/ou l'organisme fermentaire, sont ajoutées puis 25 incubés à une température comprise entre 30°C et 35°C pour produire un moût de fermentation. L'utilisation du polypeptide présentant une meilleure activité endoglucanase selon la présente invention présente 30 ainsi l'avantage d'obtenir un meilleur rendement de production de glucose. Ainsi la présente invention permet d'utiliser moins d'enzyme qu'auparavant, ce qui présente un avantage du point de vue économique. D'autres aspects, objets, avantages et caractéristiques de l'invention, seront présentés à la lecture de la description non restrictive qui suit et qui décrit des modes de réalisation préférés de l'invention donnés par le biais d'exemples et des FIGURES 1 et 2. La FIGURE 1 est un graphique représentant l'hydrolyse du p-nitropheny1-13-cellotrioside (pNPC3) par l'endoglucanase de référence EG2 (SEQ ID NO :2) et des mutants 222E1 et 225C7 (respectivement SEQ ID NO :24 et 26) sécrétés dans le milieu de culture des souches Sca-EG2 et Sca-222E1 et Sca-225C7 respectivement. La FIGURE 2 est un graphique représentant l'hydrolyse de la CMC 1% par l'endoglucanase de référence EG2 (SEQ ID : 2) et des mutants 222E1 et 225C7 (respectivement SEQ ID NO :24 et 26) sécrétés dans le milieu de culture des souches Sca-EG2 et Sca-222E1 et Sca-225C7 respectivement. EXEMPLES EXEMPLE 1 : évolution par L-shuffling La séquence du gène de l'endoglucanase 2 (EG2) de 25 Trichoderma reesei a été soumise à un tour de L-shuffling selon le procédé breveté décrit dans EP1104457B1 avec les gènes de l'endoglucanase 2 putative de Botryotinia fuckeliana (gène BF) et de l'endoglucanase 2 putative de Sclerotinia sclerotiorum (gène SS) présentant chacune 64% d'identité avec 30 le gène de référence de EG2 (SEQ ID NO :1). 1-Criblage à haut débit Un test de criblage à haut débit a été mis au point afin de sélectionner les meilleurs clones issus du L-shuffling, 5 c'est-à-dire ceux présentant au moins 20% d'amélioration de l'activité endoglucanase par rapport à l'enzyme de T. reesei. Le test de criblage à haut débit a été réalisé selon les étapes suivantes : 10 - isolement sur gélose des clones de E. coli exprimant les variants de l'enzyme recombinante selon l'invention et mise en pré-cultures en milieu LB desdites colonies pendant la nuit à 37°C ; - inoculation d'un milieu LB à 6% avec la pré-culture 15 puis incubation 5 h à 37°C puis 17 h à 20°C ; - centrifugation 10 minutes à 3000 rpm ; - lyse des cellules par ajout de 80 iL d'une solution de lysozyme à 1 mg/mL dans du tampon citrate phosphate 0.1 M à pH 5 ; 20 - incubation pendant 4 h à température ambiante ; - ajout de 80 pL de tampon citrate phosphate 0.1M pH 5 contenant 1% de carboxy-méthyl cellulose ; - incubation 3 h à 35°C ; - centrifugation pendant 10 minutes à 3000 rpm ; 25 - prélèvement de 100 pL de surnageant ; - ajout de 100 pL de réactif DNS ; - incubation 10 minutes à 100°C puis 5 minutes sur la glace ; - lecture de la DO à 540 nm sur 120 pL. 30 Dans ces conditions de criblage, une amélioration de l'activité endoglucanase (augmentation de la DO à 540 nm) par rapport à l'enzyme de référence EG2 (SEQ ID NO :2) a été trouvée dans les clones 37D12, 45A7, 46H1, 50F10, 108G5, 140F7, 146C4, 149E4, 173C6, 191H11, 222E1, 225C7, 227C4, 229D1, 231C9 et 330F9. 2-Détermination de l'amélioration de l'activité endoglucanase 2-1/ Sur le substrat carboxy-méthyl cellulose (CMC) Afin de d'estimer le kcat des clones 37D12, 45A7, 46H1, 50F10, 108G5, 140F7, 146C4, 149E4, 173C6, 191H11, 222E1, 225C7, 10 227C4, 229D1, 231C9 et 330F9 par rapport aux enzymes de référence, on procède de la façon suivante : - préparation d'une culture stock d'E. cou exprimant une enzyme recombinante selon l'invention pendant toute la nuit à 37°C ; 15 - ensemencement d'un milieu de culture LB avec 1% de culture stock à 37°C jusqu'à l'obtention d'une densité optique à 600 nm de 0.4 ; - culture desdites cellules à 20°C pendant 18 h ; - centrifugation pendant 5 minutes à 7900 rpm ; 20 - resuspension des culots cellulaires avec du tampon citrate phosphate 0.1 M à pH 5 contenant 1 mg/mL de lysozyme (D0600 finale 100); - incubation des cellules resuspendues 30 minutes sur la glace ; 25 - lyse des cellules par trois cycles de congélation/décongélation ; - fractionnement de l'ADN par sonication pendant 3 secondes à puissance 5 ; - centrifugation 30 minutes à 13000 rpm ; 30 - incubation de 100 pL de surnageant de cassage avec 100 pL de tampon citrate phosphate 0.1 M à pH 5 contenant 1% de CMC pendant 1 heure à 35 et 50°C ; - prélèvement de 100 pL de réaction ; - ajout de 100 pL de réactif DNS ; - incubation 5 minutes à 100°C ; - incubation 3 minutes sur la glace ; - centrifugation 10 minutes à 3000 rpm ; - lecture de la densité optique à 540 nm sur 150 pL. Selon l'invention, le calcul des kcat est fait de la façon suivante : - expression des DO à 540 nm en fonction de la quantité de protéine d'intérêt (en nM) ; - soustraction de la valeur du témoin négatif ; - division par le coefficient de la gamme étalon de glucose (différentes quantités de glucose sont révélées avec le DNS) ; - division par le temps de réaction. Le TABLEAU 2 présente la valeur des kcat ainsi que le facteur d'amélioration par rapport à la protéine de référence EG2 (SEQ ID NO :2) obtenus pour les clones 37D12, 45A7, 46H1, 50F10, 108G5, 140F7, 146C4, 149E4, 173C6, 191H11, 222E1, 225C7, 227C4, 229D1, 231C9 et 330F9 dans les conditions expérimentales du test d'activité sur CMC. TABLEAU 2 : Activité endoglucanase sur CMC 35°C 50°C Clone , Facteur 1 Facteur 1 amélioration Kcat (min) -) amélioration Kcat (min) Clones de L-Shuffling 37D12 2717,1 2,27 5574,1 2,73 45A7 3183,8 2,66 6500 3,18 46H1 1933,1 1,61 3124,6 1,53 50F10 2864,8 2,39 5284,6 2,59 108G5 2062,2 1,72 4235,5 2,07 140F7 2024 1,69 4079,6 2,00 146C4 1692,3 1,41 3221,5 1,58 149E4 3132,9 2,61 5316,8 2,60 173C6 2472,9 2,06 6596,2 3,23 191H11 3247,8 2,71 5275,3 2,58 222E1 4484,5 3,74 9036,8 4,43 225C7 2778,2 2,32 4026 1,97 227C4 2340,3 1,95 3671,6 1,80 229D1 2737,3 2,28 6597 3,23 231C9 2344 1,95 3441,2 1,69 330F9 2172,8 1,81 4222,8 2,07 Protéine de référence EG2 I 1199,05 1 2041,7 1 Les résultats montrent des améliorations d'activité enzymatique significatives par rapport à l'enzyme de référence EG2 (SEQ ID NO :2) pour ces clones. 2-2/ Sur le substrat phosphoric acid swollen cellulose 10 (PASC) L'amélioration d'activité des clones 37D12, 45A7, 46H1, 50F10, 108G5, 140F7, 146C4, 149E4, 173C6, 191H11, 222E1, 225C7, 227C4, 229D1, 231C9 et 330F9 a ensuite été confirmée sur un 15 second substrat : phosphoric acid swollen cellulose (PASC). Le TABLEAU 3 présente la valeur des kcat ainsi que les facteurs d'amélioration obtenus pour les clones 37D12, 45A7, 46H1, 50F10, 108G5, 140F7, 146C4, 149E4, 173C6, 191H11, 222E1, 20 225C7, 227C4, 229D1, 231C9 et 330F9 à 50°C par rapport à la protéine de référence EG2 (SEQ ID NO :2) dans les conditions expérimentales du test d'activité sur PASC. TABLEAU 3 : Activité endoglucanase sur PASC 50°C Clone Kcat (min].) Facteur ' amélioration Clones de L-Shuffling 37D12 4,51 1,12 45A7 5,86 1,45 46H1 6,56 1,62 50F10 5,04 1,25 108G5 8,49 2,10 140F7 7,82 1,94 146C4 8,12 2,01 149E4 5,96 1,48 173C6 5,87 1,45 191H11 8,38 2,07 222E1 5,14 1,27 225C7 5,44 1,35 227C4 4,76 1,18 229D1 3,91 0,97 231C9 4,62 1,14 330F9 4,3 1,06 Protéine de référence EG2 4,04 1 Les résultats montrent des améliorations d'activité enzymatique significatives par rapport à l'enzyme de référence EG2 (SEQ ID NO :2) pour ces clones. 2-3/ Sur le substrat Sigmacell L'amélioration des clones 37D12, 45A7, 46H1, 50F10, 108G5, 140F7, 146C4, 149E4, 173C6, 191H11, 222E1, 225C7, 227C4, 229D1, 15 231C9 et 330F9 a aussi été évaluée sur un troisième substrat : Sigmacell. Le protocole de test est le même que celui décrit précédemment avec le substrat CMC. L'incubation avec le substrat a lieu pendant 24 h à 50°C. 10 Le TABLEAU 4 présente la valeur des kcat ainsi que les facteurs d'amélioration obtenus pour les clones 37D12, 45A7, 46H1, 50F10, 108G5, 140F7, 146C4, 149E4, 173C6, 191H11, 222E1, 225C7, 227C4, 229D1, 231C9 et 330F9 à 50°C par rapport à la protéine de référence EG2 (SEQ ID NO :2) dans les conditions expérimentales du test d'activité sur Sigmacell. TABLEAU 4 : Activité endoglucanase sur Sigmacell 50°C Clone Kcat (min 11 Facteur - amélioration Clones de L-Shuffling 37D12 6,84 1,20 45A7 6,54 1,15 46H1 6,04 1,06 50F10 7,12 1,25 108G5 5,95 1,05 140F7 6,9 1,21 146C4 9,3 1,63 149E4 5,71 1,00 173C6 5,85 1,03 191H11 5,99 1,05 222E1 9,16 1,61 225C7 7,16 1,26 227C4 7,22 1,27 229D1 6,25 1,10 231C9 6,46 1,14 330F9 5,99 1,05 Protéine de référence EG2 5,69 1 Les résultats montrent que l'amélioration d'activité pour les clones 37D12, 45A7, 46H1, 50F10, 108G5, 140F7, 146C4, 149E4, 173C6, 191H11, 222E1, 225C7, 227C4, 229D1, 231C9 et 330F9 est visible par rapport à l'enzyme de référence EG2 (SEQ ID NO :2)avec le substrat Sigmacell. Exemple 2 : Les variants 146C4, 191H11, 222E1 et 225C7, ainsi que le 20 gène de référence EG2 de T. reesei (SEQ ID NO :2) ont été clonés entre le promoteur et le terminateur cbhl dans le plasmide pUT1040 contenant un gène de résistance à la phléomycine comme marqueur, à l'aide d'une double digestion BamHl/XhoI. 5 pg de chaque vecteur ont été utilisés pour la transformation de la souche T. reesei CL847AEG1. Des protoplastes ont été transformés selon une méthode classique connue de l'homme de l'art, par choc calcique et PEG, avec 5 pg de chaque construction. Les transformants ont été sélectionnés sur milieu sélectif PDA/saccharose contenant 30 pg/L de phléomycine. Après trois repiquages successifs permettant l'obtention de clones purs, entre onze et quinze clones ont été obtenus pour chacun des variants. L'ensemble des clones ont été mis en culture dans du milieu F45 (800 pL H3PO4 85%, 4,2 g (NH4)2SO4, 0,3 g MgSO4.7H20, 0,75 g CornSteep, 1 mL Oligo Ferment, 6 g potassium phtalate, pH 5,8 - 6) avec 5 g/L glucose et 10 g/L sorbose comme substrat de carbone et inducteur. Après 7 jours de culture à 30°C, le surnageant est prélevé et l'équivalent de 10 mg/L de protéines mesurées par la méthode de Lowry est utilisé pour un test d'activité sur carboxyméthylcellulose. Pour les mesures d'activité, 150 pL d'une solution CMC 2% dans du tampon citrate 50 mM pH 4,8 sont mélangés avec 150 pL de tampon citrate contenant 10 mg/L de protéines. La réaction est incubée à 50°C et 35°C pendant 10 min, puis inactivée au bain-marie bouillant. Après centrifugation pendant 5 minutes, 20 pL sont prélevés pour réaliser un dosage de sucres réducteurs à l'aide de l'acide 3,5-dinitrosalicylique (DNS). La réduction du DNS et la formation de l'acide 3-amino-5- nitrosalicylique est suivi par lecture de l'absorption à 540 nm, et les sucres réducteurs quantifiés à l'aide d'une gamme de glucose. Le TABLEAU 5 résume les activités (exprimées en pmol équivalent glucose/mg de protéine/min) obtenues pour les meilleurs clones pour chaque variant. La valeur pour la souche AEG1 transformée avec le gène EG2 natif (AEG1cEG2) est une moyenne des quatre meilleurs clones. TABLEAU 5 : Activité endoglucanase sur CMC clone activité rapport activité rapport spécifique variant/AEG2c spécifique variant/AEG2c 50°C EG2 35°C EG2 (umol/mg/mi 50°C (umol/mg/mi 35°C n) n) AEG2cEG2 10,8 ± 1,8 8,6 ± 2,2 191H11/2 23,1 ± 1,8 2,1 9,9 ± 2,8 1,2 191H11/9 21,9 ± 4,0 2,0 10,8 ± 1,6 1,3 191H11/1 17,4 ± 0,4 1,6 9,7 ± 2,0 1,1 2 146C4/1 12,0 ± 1,1 1,1 8,5 ± 0,7 1,0 146C4/6 11,7 ± 0,4 1,1 8,6 ± 1,2 1,0 146C4/7 16,1 ± 1,1 1,5 11,9 ± 3,2 1,4 222E1/1 21,4 ± 0,8 2,0 13,9 ± 3,3 1,6 222E1/2 18,3 ± 1,3 1,7 13,7 ± 1,4 1,6 222E1/4 13,5 ± 0,6 1,3 10,4 ± 0,8 1,2 222E1/7 16,2 ± 1,3 1,5 11,4 ± 0,3 1,3 225C7/7 11,4 ± 0,1 1,1 10,3 ± 3,3 1,2 225C7/9 14,7 ± 0,4 1,4 8,1 ± 1,4 0,9 Pour chaque variant, au moins un clone possède une activité CMCase supérieure à la souche AEG1cEG2 à 35°C ou à 50°C, les meilleurs clones montrant deux fois plus d'activité que la souche AEG1cEG2.15 Exemple 3 : Expression recombinante de l'endoglucanase de référence EG2 et des variants 222E1 et 225C7 chez Saccharomyces cerevisiae 1-Production de la protéine de référence l'endoglucanase de référence EG2 et son variant 222E1 dans le milieu extracellulaire Le gène de l'endoglucanase de référence EG2 de Trichoderma reesei (SEQ ID NO :1) et les gènes des variants 222E1 et 225C7 (respectivement SEQ ID NO :23 et 25) ont été clonés sans leur peptide signal dans le vecteur pESC-LeuccAmyc (CNRS-CERMAV). Cette construction permet l'expression des protéines dans le milieu de culture de la souche Saccharomyces cerevisiae EBY100, auxotrophe pour la leucine et le tryptophane (Boder ET et Wittrup KD, Biotechnol Prog, 1998, 14:55-62). Ce plasmide permet de placer l'expression des gènes sous le contrôle du promoteur GAL1 inductible au galactose, et possède le gène marqueur de sélection de l'auxotrophie (Leu2) qui permet la sélection des transformants. La transformation de Saccharomyces cerevisiae EBY100 a été réalisée selon les méthodes classiques connues de l'homme de l'art (transformation de levures par choc thermique et acétate de lithium). Les transformants ont été sélectionnés sur milieu YNB 0,67%-Glc 2%-Trp 0,01%. Un transformant pour chaque gène (Sca-EG2, Sca-222E1 et Sca-225C7) a été utilisé pour ensemencer 15 mL d'un milieu minimum YNB 0,67%-Glc 2%-SD-Trp 0,01%. SD est un mélange d'acides aminés (40 mg/L d'adénine sulfate; 20 mg/L de Larginine; 100 mg/L de L-acide aspartique; 100 mg/L de L-acide glutamique; 20 mg/L de L-histidine; 30 mg/L de L-lysine; 20 mg/L de L-méthionine; 50 mg/L de L-phénylalanine; 375 mg/L de L-sérine; 200 mg/L de L-thréonine; 30 mg/L de L-tyrosine; 150 mg/L de L-valine et 20 mg/L d'uracile). Après 24 h de préculture à 30°C sous agitation à 220 rpm, les trois souches Sca-EG2, Sca-222E1et Sca-225C7 ont été utilisées pour ensemencer (D0600 de 0,5) 150 mL de milieu YNB 0,67%-Gal 2%-SDTrp 0,01%. Les cultures ont été incubées à 25°C sous agitation à 220 rpm. Après 8 h d'incubation, 6 mL de citrate de sodium à pH 5,6 ont été ajoutés à chaque culture afin de stabiliser le pH à 5. Après 4 jours d'incubation, 20 mL de culture ont été prélevés. Le surnageant de culture a été obtenu après centrifugation à 3000 g, à 4°C pendant 5 min. 2-Détermination de l'activité endoglucanase sur p- nitrophényl-p-cellotrioside L'activité endoglucanase des surnageants de culture a été mesurée par hydrolyse du substrat pNPC3 dans un volume de 450 20 iL dans les conditions suivantes: - 50 mM de tampon citrate à pH 5 - 2 mM de pNPC3 - 56,3 pL de surnageant de culture des souches Sca-EG2, Sca- 25 221E1 et Sca-225C7 - Incubation à 35°C pendant 6 h La réaction a été arrêtée en ajoutant 100 pL de carbonate de sodium 1M à 100 pL de réaction d'hydrolyse. La 30 concentration en para-nitrophénol (pNP) libéré par hydrolyse du pNPC3 a été déterminée par mesure de l'absorbance à 415 nm par comparaison avec une gamme étalon de para-nitrophénol (linéaire de 0,36 pM à 360 pM). Les résultats de la FIGURE 1 montrent que la souche Sca222E1 possède une activité endoglucanase améliorée d'un facteur 1,6 par rapport à la souche Sca-EG2 qui exprime l'enzyme de référence EG2 (SEQ ID NO :2). La souche Sca-225C7 se révèle, quant à elle, moins efficace pour l'hydrolyse de ce substrat. 3-Détermination de l'activité endoglucanase sur carboxyméthylcellulose L'activité endoglucanase des surnageants de culture a été mesurée par hydrolyse de la carboxyméthylcellulose (CMC) dans un volume de 700 iL dans les conditions suivantes: - 50 mM de tampon citrate à pH 5 - 1% de CMC - 210 pL de surnageant de culture des souches Sca-EG2, Sca222E1et Sca-225C7 dialysés contre du tampon citrate 50 mM pH 5 sur membrane de 10 kDa et concentrés deux fois - Incubation à 35°C pendant 24 h. La réaction a été arrêtée en ajoutant 150 pL de réactif au DNS à 100 pL de réaction d'hydrolyse. Après chauffage pendant 5 minutes à 100°C et refroidissement dans la glace, la quantité de sucres réducteurs libérés a été déterminée par mesure de l'absorbance à 550 nm par comparaison avec une gamme étalon réalisée avec du glucose. Les résultats de la FIGURE 2 indiquent que la quantité de sucres réducteurs libérés par l'action des variants des souches Sca-222E1 et Sca-225C7 est plus importante qu'avec la souche Sca-EG2. Ainsi, après 1 h d'hydrolyse de la CMC, le facteur d'amélioration à 35°C sur ce substrat est de 3,5 pour Sca-222E1 et 2,6 pour Sca-225C7 par rapport à Sca-EG2. Au-delà de ce temps d'incubation, la CMC continue d'être hydrolysée par les deux variants alors que la vitesse de réaction devient pratiquement nulle en présence de la protéine de référence EG2 (SEQ ID NO :2).5 REVENDICATIONS1. Polypeptide isolé ou purifié caractérisé en ce qu'il a une activité endoglucanase améliorée par rapport à l'activité endoglucanase de la protéine de référence EG2, ledit polypeptide étant choisi dans le groupe consistant en : i) une séquence d'acides aminés choisie parmi SEQ ID NO :4, SEQ ID NO :6, SEQ ID NO :8, SEQ ID NO :10, SEQ ID NO :12; SEQ ID NO :14 SEQ ID NO :16, SEQ ID NO :18, SEQ ID NO :20, SEQ ID NO :22, SEQ ID NO :24, SEQ ID NO :26, SEQ ID NO :28, SEQ ID NO :30, SEQ ID NO :32 et SEQ ID NO :34; ii) une séquence d'acides aminés présentant un pourcentage d'identité d'au moins 70%, préférentiellement 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 98% ou 99%, par rapport à la séquence SEQ ID NO :4, SEQ ID NO :6, SEQ ID NO :8, SEQ ID NO :10, SEQ ID NO :12; SEQ ID NO :14 SEQ ID NO :16, SEQ ID NO :18, SEQ ID NO :20, SEQ ID NO :22, SEQ ID NO :24, SEQ ID NO :26, SEQ ID NO :28, SEQ ID NO :30, SEQ ID NO :32 ou SEQ ID NO :34. 2. Acide nucléique purifié ou isolé, caractérisé en ce qu'il code au moins un polypeptide selon la revendication 1. 3. Acide nucléique purifié ou isolé selon la revendication 2 choisi parmi les séquences suivantes: SEQ ID NO :3, SEQ ID NO :5, SEQ ID NO :7, SEQ ID NO :9, SEQ ID NO :11; SEQ ID NO :13, SEQ ID NO :15, SEQ ID NO :17, SEQ ID NO :19, SEQ ID NO :21, SEQ ID NO :23, SEQ ID NO :25, SEQ ID NO :27, SEQ ID NO :29, SEQ ID NO :31 et SEQ ID NO :33. 4. Vecteur caractérisé en ce qu'il comprend un acide nucléique selon l'une des revendications 2 ou 3. 5. Cellule hôte isolée caractérisée en ce qu'elle comprend l'acide nucléique selon l'une des revendication 2 ou 3 ou le vecteur selon la revendication 4. 6. Cellule hôte isolée selon la revendication 5, caractérisée en ce qu'elle est choisie parmi Trichoderma, Aspergillus, Neurospora, Humicola, Penicillium, Fusarium, Thermomonospora, Myceliophthora, Chrysosporium, Bacillus, Pseudomonas, Escherichia, Clostridium, Cellulomonas, Streptomyces, Yarrowia, Pichia et Saccharomyces. 7. Cellule hôte isolée selon la revendication 5 ou 6, caractérisée en ce qu'elle est choisie parmi Trichoderma reesei, Trichoderma viridae, Trichoderma koningii, Aspergillus piger, Aspergillus nidulans, Aspergillus wentii, Aspergillus oryzae, Aspergillus phoenicis, Neurospora crassa, Humicola grisae, Myceliophthora thermopila, Chrysosporium lucknowense, Penicillium pinophilum, Penicillium oxalicum, Escherichia coli, Clostridium acetobutylicum, Clostridium saccharolyticum, Clostridium benjerinckii, Clostridium butylicum, Pichia pastoris, Yarrowia lipolityca et Saccharomyces cerevisiae. 8. Utilisation dudit polypeptide selon la revendication 1 pour l'hydrolyse de la cellulose. 9. Utilisation dudit polypeptide selon l'une la revendication 1 pour la production de biocarburant. 10. Composition enzymatique apte à agir sur la biomasse lignocellulosique comprenant au moins un polypeptide selon la revendication 1. 11. Procédé de production de biocarburant à partir de la biomasse, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes successives suivantes : - mise en suspension en phase aqueuse de la biomasse à hydrolyser; - hydrolyse en présence d'une composition enzymatique selon la revendication 10 de la biomasse lignocellulosique de manière à produire un hydrolysat contenant du glucose ; fermentation du glucose de l'hydrolysat de manière à produire un moût de fermentation ; - séparation du biocarburant du moût de fermentation. 12. Procédé de production de biocarburant à partir de la biomasse, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes successives suivantes : - mise en suspension en phase aqueuse de la biomasse à hydrolyser ; - ajout simultané d'une composition enzymatique selon la revendication 10 et d'un organisme fermentaire de manière à produire un moût de fermentation ; -séparation du biocarburant du moût de fermentation. 13. Procédé selon la revendication 12, dans lequel l'organisme fermentaire est choisi parmi une cellule hôte selon l'une des revendications 6 ou 7. 14. Procédé de production de biocarburant à partir de la biomasse, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes successives suivantes : - mise en suspension en phase aqueuse de la biomasse à hydrolyser ; - ajout d'une ou plusieurs cellules hôtes selon l'une des revendication 5 à 7 avec un organisme fermentaire et/ou unecomposition enzymatique selon la revendication 10, de manière à produire un moût de fermentation ; -séparation du biocarburant du moût de fermentation.5