FR 3022142 A1 20151218 FR 1455491 A 20140616 INHIBITION DE LA CHIMIOKINE CCL7 OU DE SON RECEPTEUR CCR3 POUR LE TRAITEMENT ET LE DIAGNOSTIC DU CANCER DE LA PROSTATE La présente invention concerne le domaine du diagnostic et des médicaments destinés au traitement du cancer de la prostate. Le cancer de la prostate est le cancer le plus fréquemment observé chez les hommes de plus de 50 ans et représente la deuxième cause de décès par cancer dans les pays développés. Comme l'ensemble des cancers solides, l'extension du cancer de la prostate repose sur la classification TNM (T pour tumeur, N pour « nodes » ou atteinte ganglionnaire, M pour métastase) (Ohori, Wheeler et al. 1994; Salomon, Azria et al. 2010). Les cancers de la prostate sont ainsi classés en 4 stades : 1) le cancer de la prostate localisé : T1 [tumeur non palpable ou non visible en imagerie] et T2 [tumeur limitée à la prostate (apex et capsule compris)], NO, MO; 2) le cancer de la prostate localement avancé : T3 [extension au-delà de la capsule prostatique] et T4 [Extension aux organes adjacents (col vésical, sphincter urétral, rectum, paroi pelvienne) ou tumeur fixée à la paroi pelvienne], NO, MO; 3) le cancer de la prostate avec atteinte ganglionnaire pelvienne : tous T, N1, MO ; et 4) le cancer de la prostate métastatique : tous T, tous N, Ml. La prostate est entourée de tissu adipeux (tissu adipeux péri-prostatique ou TAPP). La présence de la tumeur dans le tissu adipeux péri-prostatique représente donc la première étape de l'extension locale du cancer de la prostate (stade pT3a) et est un critère établi de mauvais pronostic (Magi-Galluzzi, Evans et al. 2011; Houimel and Mazzucchelli 2013). L'envahissement des tissus environnants peut être suivi par une dissémination à distance des cellules cancéreuses (métastase). Ces métastases sont principalement localisées à l'os et sont à l'origine de la majorité des décès liés à la maladie (taux de mortalité d'environ 90%). Les os, principalement constitués de tissu osseux, contiennent également du tissu hématopoïétique, du tissu adipeux, des vaisseaux, des nerfs, du tissu cartilagineux et du tissu conjonctif. Ainsi, le tissu adipeux est présent à la fois aux étapes de dissémination locale et à distance du cancer de la prostate. Parmi les cellules qui composent le tissu adipeux, notamment le tissu adipeux péri- prostatique, on retrouve majoritairement des adipocytes matures ainsi que, dans une fraction dite « stroma vasculaire », d'autres cellules telles que des progéniteurs (Adipose Derived Stem Cells [ADSCs] et préadipoeytes), des fibroblastes, des macrophages, des lymphocytes, des péricytes et que des cellules endothéliales (Ouchi, Parker et al. 2011). Les adipocytes ont un rôle dans les fluctuations énergétiques induites par l'apport alimentaire ou les états de jeûne en stockant l'énergie sous forme de triglycérides ou en la libérant sous forme d'acides gras (AG). Les adipocytes sont également des cellules endocrines actives qui sécrètent une grande variété de molécules (appelées adipokines), qui sont impliquées notamment dans la régulation de l'appétit et de la balance énergétique, le métabolisme lipidique, la sensibilité à l'insuline et la régulation de la pression artérielle (Ouchi, Parker et al. 2011). Parmi les sécrétions adipocytaires, on retrouve des facteurs de croissance, des chimiokines, des molécules proangiogéniques ou des molécules pro-inflammatoires (Ouchi, Parker et al. 2011). Toumiaire, Romier-Crouzet et al. (2013) ont rapporté que dans des conditions d'obésité, le profil sécrétoire des adipocytes est modifié, et la sécrétion de certaines chimiokines peut être augmentée. En outre, comme résumé dans Allott, Masko et al. (2013), un ensemble convaincant de données épidémiologiques montre que l'obésité est un facteur de mauvais pronostic dans le cancer de la prostate avec une augmentation de la dissémination locale et à distance. Enfin, indépendamment de l'obésité, des données récentes montrent que l'importance du TAPP est positivement associée à l'agressivité du cancer de la prostate (Kiss, Longden et al. 2009). Les chimiokines représentent un groupe important de petites protéines (d'environ 8 à 11 kDa) qui interagissent avec des récepteurs appartenant à la superfamille des récepteurs à sept domaines transmernbranaires couplés aux protéines G (RCPG). La plupart d'entre elles possèdent quatre résidus cystéine caractéristiques qui forment deux ponts disulfures, un entre le premier et le troisième résidu cystéine et un entre le deuxième et le quatrième résidu cystéine. Selon le nombre d'acides aminés présents entre les deux premières cystéines (situées dans la partie N-terminale), les chimiokines sont classées en quatre groupes : C, CC, CXC et CX3C. Les chimiokines possèdent diverses fonctions dont la plus étudiée est l'attraction (chirniotactisme) et le contrôle de l'état d'activation des cellules du système immunitaire. Dans le cancer, ces chimiokines et leurs récepteurs sont connus pour réguler le processus tumoral (prolifération, migration, invasion, angiogenèse, infiltration des leucocytes). Certaines d'entre elles sont produites par les cellules tumorales elles-mêmes, mais également par les cellules stromales telles que les fibroblastes associés au cancer (CAF), les cellules endothéliales ou des cellules immunitaires (macrophages, lymphocytes) (Balkwill 2004), Parmi les récepteurs aux chimiokines potentiellement impliqués dans le cancer, le récepteur CXCR4 est actuellement considéré comme l'un des récepteurs les plus importants. L'interaction de CXCR4 avec son ligand CXCL12 joue un rôle dans la migration cellulaire de nombreux cancers, dont la prostate, en particulier dans le contexte de la métastase osseuse (Taichman, Cooper et al. 2002). Des études in vitro ont montré que CXCL12 stimule le caractère invasif des cellules tumorales prostatiques et qu'il peut être bloqué par l'utilisation d'un inhibiteur pharmacologique (par exemple l'antagoniste de CXCR4 dénommé Alv1D3100) ou d'un anticorps bloquant. L'interaction entre le récepteur CCR2 et la chimiokine CCL2 a également été identifiée pour son implication dans la migration des cellules tumorales prostatiques (Loberg, Day et al. 2006) et semble jouer un rôle clé dans la métastase du cancer de la prostate (Zhang, Patel et al. 2010). De plus l'expression du récepteur CCR2 est corrélée à l'agressivité des tumeurs prostatiques (Lu, Cai et al. 2007). D'autres récepteur aux chimiokines comme CXCR1 et CXCR2 ont été décrits comme jouant un rôle dans l'invasion et la croissance des cellules tumorales prostatiques via les chimiokines CXCL1, CXCL5 ou CXCL8 (moue, Slaton et al. 2000 ; Begley, Kasina et al. 2008). D'autres récepteurs aux chimiokines pouvant intervenir dans la migration des cellules tumorales dans d'autres types de cancers ont également été identifiés, comme par exemple les récepteurs CCR1 (GeneID :1230) (Loetscher, Pellegrino et al. 2001) et CCR3 (GeneID:1232) (Loetscher, Pellegrino et al. 2001 ; Jung, Che et al. 2010; Johrer, Zelle-Rieser et al. 2005; Lee, Kim et al. 2010). Ces derniers sont très fortement exprimés par les éosinophiles ou les basophiles et de manière moins importante par les lymphocytes (Thl et Th2) et certaines cellules épithéliales. CCR1 et CCR3 sont également impliqués dans la régulation de la migration des éosinophiles et joue un rôle majeur dans de nombreuses pathologies inflammatoires comme l'asthme (Joubert, Lajoie-Kadoch et al. 2008). A ce jour, un certain nombre de ligands de CCR3 ont été identifiés CCL5, CCL7, CCL11, CCL13, CCL15, CCL24, CCL26 et CCL28. Jung, Che et al. (2010) ont montré dans les carcinomes des voies aériennes supérieures que CCR3 peut jouer un rôle dans la migration cellulaires via la chimiokine CCL7 (GeneID:6354 ; Kuri-Harcuch and Green 1978). Il a été montré que le récepteur CCR3 est surexprimé dans les tumeurs rénales (Jung, Che et al. 2010) et le mélanome (Lee, Kim et al. 2010). De façon très récente, une étude préliminaire portant sur une seule lignée de cancer de la prostate Du-145 montre que le récepteur CCR3 favorise, via CCL11 (une chimiokine différente de CCL7), la migration et l'invasion in vitro des cellules cancéreuses. Dans cette étude, les auteurs ne se sont intéressés en aucune façon aux chimiokines sécrétées par le tissu adipeux (Zhu, Liao et al. 2013). De plus, l'effet in vivo de l'inhibition du récepteur CCR3 et son expression dans les tumeurs prostatiques humaines n'ont pas été abordés dans cette étude Dans toutes ces études portant sur le rôle des chimiokines dans la progression du cancer de la prostate, le rôle des sécrétions du TAPP n'a pas été envisagé ni le lien avec l'obésité et/ou l'importance du tissu adipeux périprostatique évoqué. La stratégie thérapeutique pour les tumeurs localisées s'appuie actuellement sur la classification d'Amico si l'on considère exclusivement les caractéristiques du cancer (Guide ALD30, HAS/INCA, 2012). En effet, d'autres facteurs tels que les caractéristiques du patient et ses préférences (en particulier dans le cas où il existe des alternatives thérapeutiques présentant un rapport bénéfice/risque équivalent) sont aussi considérés, La classification D'Amie() (Agrawal, Maxwell et al. 2009; Ohori, Wheeler et al. 1994) permet de prendre en compte les critères suivants : la taille de la tumeur, le score de Gleason (Kiss, Longden et al. 2009) et le marqueur sérique PSA (Prostate Specifie Antigen). La classification de Gleason est fondée sur le degré de différentiation de la tumeur, coté du grade 1 (différencié) à 5 (très indifférencié). Ce score est la somme des deux grades les plus fréquemment représentés dans la tumeur analysée. Il varie de 2 à 10. Le score de 2 correspond à une tumeur très proche d'un tissu bénin. Plus le score est élevé, plus la tumeur est agressive. La classification d'Amico établit 3 sous-groupes de cancer de la prostate localisé selon le risque de rechute (on parle de risque de rechute biologique 10 ans après un traitement local), c'est-à-dire 3 niveaux de risque de progression du cancer : un risque faible, un risque intermédiaire et un risque élevé. Les 3 sous-groupes définis en fonction de leurs caractéristiques cliniques et biologiques sont : 1) le cancer de la prostate localisé à faible risque : TNM 20. Il existe actuellement un besoin de développer des traitements permettant de retarder voire d'empêcher l'étape de la dissémination locale afin de permettre non seulement d'éviter le développement de la maladie métastatique mais aussi de maintenir le plus longtemps 30 possible le cancer de la prostate sous une forme potentiellement curable. Il existe également un besoin d'identifier par une méthode de diagnostic les tumeurs localisées du cancer de la prostate présentant un haut potentiel d'agressivité afin de les traiter de façon adaptée. Dans le cadre de leurs travaux de recherche, les inventeurs ont caractérisé un axe spécifique de régulation du processus de dissémination locale du cancer de la prostate via l'implication du récepteur à chimiokine CCR3 sous la dépendance d'un de ces ligands, CCL7, exprimé par le TAPP. Les inventeurs ont montré in vitro qu'un milieu conditionné d'adipocytes matures (MC-Ad) obtenus à partir de la différentiation de la lignée pré-adipocytaire murines F442A stimule la migration de cellules prostatiques humaines et murines. Cette migration est inhibée par l'utilisation d'un inhibiteur de CCR1/CCR3 connu (PUCB35625) dans tous les modèles de lignées de cancer de la prostate étudiés alors que CCR1 n'est pas exprimée dans ces lignées. L'importance de CCR3 dans la migration induite par le MC-Ad des cellules cancéreuses prostatiques a été confirmée par l'absence d'effet de l'UCB35625 sur la migration de différentes lignées tumorales représentatives de différents cancer (sein, colon, pancréas, mélanome), en dehors d'un effet faible sur la migration de la lignée de cancer du sein agressive MDA-MB 231. Par ailleurs, l'utilisation d'inhibiteurs dirigés contre d'autres récepteurs aux chimiokines exprimés par les cellules tumorales prostatiques (CCR2, CXCR1, CXCR2, CXCR4) a un faible effet sur la migration induite par le MC-Ad. Une inhibition a été aussi observée pour des anticorps bloquants dirigés contre CCR3 dans tous les modèles étudiés ainsi que lorsque l'expression de CCR3 est invalidée. Dans le MC-Ad, un seul ligand de CCR3 a été retrouvé : CCL7. L'inhibition de ce ligand par un anticorps bloquant inhibe la migration des cellules prostatiques humaines et murines contre le MC-Ad. Ce ligand est aussi présent dans le milieu conditionné de tissu adipeux périgonadique de souris et périprostatique chez l'homme et le milieu conditionné d'adipocytes primaires isolés à partir de tissu adipeux périgonadique de souris. La capacité à induire la migration des cellules tumorales prostatiques selon un axe CCR3/CCL7 a aussi été retrouvée pour le milieu conditionné de tissu adipeux périgonadique de souris et périprostatique chez l'homme ainsi que pour le milieu conditionné d'adipocytes primaires isolés à partir de tissu adipeux périgonadique de souris. Les inventeurs ont également montré in vivo que l'injection en intraprostatique de lignées tumorales invalidée pour CCR3 conduit à une diminution de la masse tumorale ainsi qu'à une absence de disparition du tissu adipeux périprostatique sous l'effet de l'infiltration tumorale. En outre, les inventeurs ont montré que le récepteur CCR3 est exprimé dans les tumeurs humaines et que cette expression est liée à l'agressivité des tumeurs (corrélation avec le score de Gleason, le pourcentage de cellules indifférenciées, la localisation périphérique de la tumeur) ainsi qu'à leur dissémination extra-prostatique (stade TNM) Enfin, les adipocytes médullaires sont capables de sécréter CCL7 et le milieu conditionné de ces adipoeytes induit la migration des cellules tumorales prostatiques, migration qui est inhibée par PUCB35625 ou un anticorps bloquant dirigé contre CCR3. L'ensemble de ces données montrent que l'axe CCR3/CCL7 semble être impliqué dans la dissémination à distance (métastase osseuse) du cancer de la prostate via la capacité des adipoeytes médullaires à sécréter CCL7. Ces données montrent également l'intérêt à inhiber CCR3 ou CCL7 dans le cancer de la prostate en vue d'inhiber l'extension locale ou à distance. En outre, cette stratégie visant à inhiber CCR3 ou CCL7 présente un intérêt particulier chez les sujets obèses ou présentant un TAPP abondant (dont la surface est supérieure ou égale à 10 cm2). En effet, les inventeurs ont montré que l'expression génique de CCL7 est augmentée dans les tissus adipeux de souris et d'individus obèses. Sa sécrétion est augmentée dans le milieu conditionné de tissu adipeux périgonadique de souris obèses et le milieu conditionné d'adipocytes primaires isolés à partir de tissu adipeux périgonadique de souris obèses. La migration des cellules cancéreuses prostatiques humaines contre le milieu conditionné de tissu adipeux périgonadique de souris obèses et le milieu conditionné d'adipocytes primaires isolés à partir de tissu adipeux périgonadique de souris obèses est augmentée par rapport aux mêmes milieux obtenus avec des animaux de poids normal. Cette augmentation est totalement inhibée par l'UCB35625 ou des anticorps bloquants dirigés contre CCR3 ou CCL7. In vivo, l'augmentation de la masse tumorale observée en conditions d'obésité n'est plus présente lorsque le récepteur de CCR3 est invalidé. Chez l'homme il existe une corrélation entre l'importance du TAPP visualisé par imagerie par résonnance magnétique nucléaire (1RM) ou tomodensidométrie et l'expression de CCR3. La présente invention a en conséquence pour objet un inhibiteur de l'expression de la chimiolcine CCL7 ou un inhibiteur de l'expression du récepteur CCR3 ou un inhibiteur de l'interaction CCL7/CCR3 pour leur utilisation pour prévenir ou traiter l'extension du cancer de la prostate hors de la capsule prostatique chez un sujet. On entend par « extension du cancer de la prostate hors de la capsule prostatique » le cancer de la prostate localement avancé (selon la classification TNM : T3 ou T4, NO, MO), le cancer de la prostate avec atteinte ganglionnaire pelvienne (selon la classification TNM : tous T, NI, MO) ou le cancer de la prostate métastatique (selon la classification TNM : tous T, tous N, M1). Selon un mode de réalisation préféré de l'invention, ledit inhibiteur est utilisé chez un homme obèse ou présentant un tissu adipeux péri-prostatique abondant. L'obésité est un état caractérisé par un excès de masse adipeuse. L'Indice de Masse Corporelle (IMC) est une norme internationale pour mesurer l'excès de poids et l'obésité. Il est défini comme le poids divisé par le carré de la taille, exprimé en kg,/m2. Un individu est considéré comme obèse lorsque cette valeur est supérieure ou égale à 30 kg,/m2. On entend par tissu adipeux péri-prostatique (TAPP) abondant, un TAPP dont la surface est supérieure ou égale à 10 cm2. Avantageusement, la surface du TAPP est mesurée en utilisant une méthode de mesure et de calcul d'aire elliptique à partir d'images, obtenues par exemple par imagerie scanner ou IRM chez ledit sujet, de sections transverses au niveau fémoral à l'endroit où la fusion de la symphyse pubienne débute. Le dépôt de tissu adipeux péri-prostatique pour lequel une image est obtenue se situe entre la partie antérieure de la prostate et la symphyse pubienne. Une telle méthode est décrite dans la partie Matériel et Méthodes ci-dessous. La limite de 10 cm2 a été définie statistiquement comme étant la surface au-delà de laquelle tous les patients ont un cancer significativement plus agressif (score de Gleason supérieur ou égal à 7). Les inhibiteurs de l'expression de la CCL7 ou de CCR3 incluent des acides nucléiques tels que des oligonucléotides antisens modifiés ou non, des ARN interférents, des petits ARN en épingle à cheveux (shRNA ou miRNA) ou des ribozymes, ciblant le gène codant CCL7 ou le gène codant CCR3. De tels inhibiteurs sont décrits par Zhu, Liao et al. 2013 ; Agrawal, Maxwell et al. 2009 ; Zhu, Liu et al. 2014. De préférence, l'inhibiteur de l'expression de CCR3 est un shRNA ciblant le gène CCR3. Il est avantageusement choisi parmi les shRNA: m4CCR3 (SEQ ID NO: 1), m5CCR3 (SEQ ID NO : 2), in6CCR3 (SEQ ID NO : 3). On entend par « un inhibiteur de l'interaction CCL7/CCR3 » un composé capable d'inhiber l'activation de CCR3 par CCL7, sans activer lui-même CCR3. Un inhibiteur de l'interaction CCL7/CCR3 inclue les composés capables d'interagir avec CCL7 et d'inhiber sa liaison avec CCR3 ou d'inhiber l'activation de CCR3 résultant de ladite liaison, ainsi que les composés capables d'interagir avec CCR3, et d'inhiber leur liaison avec CCL7 ou leur activation résultant de ladite liaison. En particulier, un inhibiteur de l'interaction CCL7/CCR3 inclue des antagonistes compétitifs et non-compétitifs de CCR3 (appelés antagonistes de CCR3), de préférences les antagonistes compétitifs de CCR3. Les inhibiteurs de l'interaction CCL7/CCR3 incluent les molécules organiques. A titre d'exemple de molécules organiques inhibitrices de l'interaction CCL7/CCR3 on peut citer les composés de formules I à DCCLXXXIII décrits ci-dessous, de préférence le composé UCB35625 (C30113702IN202) de formule DLI (ci-dessous). V VI VII VIII II III IV IX XIII X XIV XI XV XII XVI XVII XXI XVIII XXII XI.X )0(III XX XXIV ITXXX IITAXX DOEX ITAXX XXX IAXX AXX Z I ZZOE IAXXX AXXX IHAXXX AIXXX HAXXX ET ZZOE XLI XLV XLI1 XLVI XLIII XLVII XLIV XLVIII XLIX L111 LI LIV LII LV LVI LVII LXI LVIII LXII LIX LXIII LX LXIV LXV LXIX LXVI LXX LX VII LXXI LXVIII LXXII LXXIII LXXVII LXXIV LXX VIII LXXV LXXIX LXXVI LXXX LXXXI LXXXV LXXXII LXXXVI LXXXIII LXXX VII LXXXIV LXXXVIII IADX ADX AIDX IIIDX IIDX 1DX DX XIXXX1 OZ ZI7I ZZOE AID IID ID IIIADX 1IADX ZZOE CV CIX CVI CX CXI XXD IAXD AXD IIIAXD AIXD IIAXD IIIXD EZ ZZOE IIIAXXD AIXXD ITAXXD IIIXXD IIXXD AXXD IXXD tZ ZZOE CXXIX CXXXIII CXXX CXXXIV CXXXI CX)CKV CXXXII CXXXVI AllX3 XIXXXD IFIXD IIAXXXD fIXD ITAXXX3 9Z ZZOE IFID ID ID XIIXD IIIKIXD IINIXD TKIXD NIXD LZ ZI7IZZOE CLIII CLVII CLIV CLV CLIX CLVI CLX CLXI CLXV CLXII CLXVI CLXIII CLXVII CLXIV CLX VIII CLXIX CLXXIII CLXX CLXXIV CLXXI CLXXV CLXXII CLXXVI CLXXVII CLXXXI CLXXVIII CLXXXII CLXXIX CLXXXIII CLXXX CLX2XXIV C LXXX V CLXXXIX CLXXXV CXC I CX CI CLXXXV H CXC II CLXXXV III 33 IADX3 ADXD AIDXD 1I1DX3 XIDX3 IIIADXD ITADXD ££ ZI7I ZZOE CCI CCV CCII CCVI CCIII CCVII CCIV CCVIII ZZOE IIX33 IX33 X33 X133 IAX3D AXDD AIXDD IIIXDD AIXXDD IIIXXDD IIXXDD IXXDD XXDD XIXDD IIIAXDD IIAXDD 9E ZZOE IDOCXDD I IIAXXDD IIAXXDD XX-XDD TAXXDD AXXDD LC ZI7I ZZOE "IXDD AXXXDD XIXXXDD AXXXDD II A IAXXXDD IXXXDD TAXXXDD I XXXDD 8£ ZZOE CCXLI CCXLV CCXLII CCXLVI CCXLIII CCXLVII CCXLIV CCXLVIII CCXLIX CCLIII CCL CCLIV CCLI CCLV CCLII CCLVI CCLVI1 CCLX1 CCLX1I CCLXII1 CCLX1V CCL VIII CCLIX CCLX CCLXV CCLXIX CCLXVI CCLXX CCLX VII CCLXXI CCLXVIII CCLXX11 CCLXXIII CCLXXVI CCLXXIV CCLXXVI Ii CCLXXV CCLXXIX CCLXXVI CCLXXX CCLXXXI CCLXXX CCLXXXI V CCLXXXI II CCLXXX CCLXXXI VI CCLXXX VII CCLXXX VIII ZZOE IIIDXDD AIDXDD IADXDD ADXDD IIDXDD IDXDD DXDD X AIDDD DDD XIDXDD IIIADXDD IIAJXDD IIIDDD IIDDD 917 ZZOE IIXDDD IXDDD XaDD XIDDD IIIADJD TIADDD IAJDD ADDD Lt7 ZI7I ZZOE )00D D XIXDDD IIIAXDDD ITAXDDD IAXDDD AXD33 AIXDDD IIIXDDD 8t7 ZZOE II A IAXXDDD IXXDDD IAXXDDD IIIXXDDD TAXXDDD IIXXDDD AXXDD3 IXXDDD 617 ZZOE IA II XXXDDD XXX3DD A I XXXDDD XXXDDD A XXXDDD IXXXDDD X H IXXDDD IXXXDDD 0§ ZI7I ZZOE CCCXXX CCCXLI VII CCCXLII CCCXXX CCCXLIII VIII CCCXLIV CCCXXX IX CCCXL CCCXLV CCCXLVI CCCXLVI I CCCXLVI II CCCXLIX CCCL CCCLI CCCLII CCCLIII CCCL VII CCCLIV CCCL VIII CCCLV CCCLIX CCCLVI CCCLX Il AIVIDDD IIIXID3D IIXIDDD Ir1333 IAXIDDD I TAXIDDD TAXIDDD AVIDD3 tS ZI7I ZZOE CCCLXIX CCCLXXI Il CCCLXX CCCLXXI V CCCLXXI CCCLXX CCCLXXI V I CCCLXX VI CCCLXX CCCLXX VII XI CCCLXX CCCLXX VIII XII CCCLXXI CCCLXX X XIII CCCLXX CCCLXX X XIV CCCLXX CCCLXX XLX XV CCCXC CCCLXX CCCXCI XVI CCCXCII CCCLXX XVII CCCLXX XVIII CD IADX33J ADXDDD AIDX333 IIIDXDDD XIDX3DD II IADXDDD IADX3DD 8S ZZOE IIIACD IIAGD IAGD ACD AICD IICD ICD 6S ZI7I ZZOE CDIX CDXIII CDX CDXIV CDXI CDXV CDXII CDXVI AIXXCD XXGD IIIXXGD XIXCD IIIAXGD IXXCD 1IAXGD 19 ZI7I ZZOE CDXXV CDXXVI CDXX VII CDXXVII I CDXXIX CD)00( CDXXXI CD)(XXII 1XCD AXXXCID XI)00GD AXXXCED II A IAXXXCD ITXXXCD TAXXXCID E9 ZZOE IIIAIXCED IINIXCED INIXCID AIXCID ATIXCD FIXCED 179 ZI7I ZZOE CDXLIX CDLIII CDL CDLIV CDLI CDLV CDLII CDLVI 99 AIVICED IIIXICED IIVIGD IXICED XIICED IIINICID IINICD ZI7I ZZOE IDOCICID ITIAXICED IXXICED ITAX'IGD 3C5CIGD TAXICD XIXICED AX1GD L9 ZZOE XXXICD AXVICD XDOCICD AXXIGD II A TAXXIG3 IXXIG3 lAXXICD 89 ZZOE CDLXXX CDLXXX I V CDLXXX CDLXXX II VI CDLXXX CDLXXX III VII CDuocx Iv CDLXXX VIII CDLXXX IX CDXCIII CDXC CDXCIV CDXCI CDXCV CDXCII CDXCVI CDXCVII DI CDXCVI1 DII CDXCIX DIII D DIV DV DIX DVI DX DVII DXI DVIII DX11 £L XXCI IAXCI AXCE AIXCI IIAXCE ZZOE ZZOE ILAXXCE TAXXCE AXMI DOCCE IITAXXG ATXXG1 IAXXXCI AXXXCI AIXXXCI IIIXXXG SI, ZZOE ArIXCI XIXXXG IIIIXO I IFIXG IIAXXXCI I-IXCI ITAXXXCI 9L ZI7I ZZOE DXLV DXLIX DXLVI DL DXLVII DLI DXLVI1I DLII INIG NIG IIINICI _Ana HAIG HUM 8/. ZI7I ZZOE DLXI DLXV DLXII DLXVI DLXIII DLX VII D LXIV DLX VIII DLXIX DL)OCIII DLXX DDOEIV DLXXI DLXXV DLXXII DLXXVI 18 ATXXXICI IIIXXXIG IIXXXICE IX)OCICI XIXXICE I ITAXVIa IIMOCKI ZI7I ZZOE DLXXXV DLXXXV DLXXXV II DLXXXV III D LXXXIX DXC DXC1 DXCII DXCIII DXC VII DXCW DXCVIII DXCV DXCIX DXCVI DC DC1 DCV DCII DCVI DCIII DC VII DCIV DC VIII IAXDG AXDG AIXDU IIIXDG IX3C1 XDG XIDCI S8 ZZOE 98 AIXX3CI IIIXX3(1 ITXX3C1 IXXDCI XIXDCE IITAXDC1 TIAXDCE ZI7I ZZOE IIXXX3G IXXX3G XXXDG XIXXDCE ITAXXDG ITAXX3G IAXXDG MOOG L8 ZZOE Ixaa I XI)00(DG AX)0CDCE Il AXXXJG IAXXXDU A I I IAXXXDU II)CXXDU 88 ZI7I ZZOE DCXLI DCXLV DCXLII DCXLVI DCXLIII DCXLVII DCXLIV DCXLVIII INDU IIIDG Da ATIDG A-13(1 XIIXDG 06 ZZOE AIVIDG XIDCE IXIDC1 IIKIDG 16 ZZOE IDOCIDCI TXXIDG XX1DG XIVIDG IITAXIDG IIAXIDG TAXIDG AXIDCE Z6 ZI7I ZZOE XXXIDG I XIXXIDG AXX1DG Il. AXVIDG TA)OCIDG A I I)OCIDCI IAXXIDCE IIIXXIDG £6 ZI7I ZZOE IIIA XXVIDCI IIA XXVIDICE 1A XXXIDG A XXXIDC1 Al XXXIJC1 III XXVIDG II XXXIDCI XXX-130 ZZOE S6 IIDXDG IDXDG DXDG XI XXXIDG IADXDG ADXDG AIDXDG IIIDXDG ZI7I ZZOE ADDCE DDCE ilIDDG XIDXDU IDDCE IIADXDU IIAJXDIG 96 ZZOE DCCV DCCIX DCCVI DCCX DCC VII DCCXI DCC VIII DCCXII DCCXIII DCCX VII DCCXIV DCCX VIII DCCXV DCCXIX DCCXVI DCCXX II A TAXXDDC1 IXXD3C1 IAXXDDCE 1DOODG TAXX3DC1 IIXX3DC1 AXXD3C1 I)0(DOKE 66 ZZOE 0 DCCXX1 DCCXXXI II X DCCXXXI V DCCXXX DCCXXX DCCXXX V DCCXXX II DCCXXX VI 1 DCCXXX DCCXLI VII DCCXLII DCCXXX DCCXLIII VIII DCCXLIV DCCXXX IX DCCXL XIIXDDCE ITIDDCI '13Dia II IKIXDDsa INIXDDCE INIXD30 KIXDDG ZZOE 3 DCCLIII DCCLVII DCCLIV DCCLVIII DCCLV DCCLIX DCCLVI DCCLX II AIVIDDCI ITIXIDDia IIVIDDCI IKIDDCI IAXIDDG I TAXIDDCI IAXIDGG AVIDDG tOT ZI7I ZZOE DCCLXIX DCCLXXI H DCCLXX DCCLXXI V DCCLXXI DCCLXX DCCLXXI V I DCCLXX VI 6 DCCLXX DCCLXX VII XI DCCLXX DCCLXX VIII XII DCCLXXI DCCLXX X XIII DCCLXX X Les inhibiteurs de l'interaction CCL7/CCR3 incluent également des peptides. A titre d'exemple de peptides inhibiteurs de l'interaction CCL7/CCR3 on peut citer le peptide met- 7 RANTES (Kiss, Longden et al. 2009), ou d'autres peptides décrits dans Houimel and Mazzucchelli 2013; Elsner, Escher et al. 2004; Kiss, Longden et al. 2009; Elsner, Petering et al. 1997; Loetscher, Pellegrino et al. 2001 et Demande Internationale W02000073327. Les inhibiteurs de l'interaction CCL7/CCR3 incluent également les anticorps dirigés 5 contre CCR3 ou CCL7, de préférence des anticorps bloquant, qui peuvent être polyclonaux ou monoclonaux. Le terme "anticorps" englobe également des fragments fonctionnels d'anticorps, y compris des fragments d'anticorps chimériques, humanisés, à chaîne unique ou des fragments de ceux-ci (e. g., des fragments Fv, Fab, Fab' et F(ab)2). Des anticorps préférés sont ceux qui 10 sont dirigés contre CCL7 ou CCR3. Avantageusement, l'anticorps est un anticorps monoclonal ou un fragment de celui-ci. Les méthodes pour la préparation d'anticorps monoclonaux sont bien connues de l'homme du métier. Les anticorps monoclonaux peuvent être préparés en immunisant un mammifère (par exemple une souris, un rat, un lapin, un camélidé ou l'homme) avec la chimiokine CCL7 ou le récepteur CCR3 ou des fragments de 15 ceux-ci purifiés. A titre d'exemple d'anticorps inhibiteurs de l'interaction CCL7/CCR3 comme à titre d'exemple l'anticorps bloquant monoclonal anti-CCR3 (référence D083-3, clone 444-11, MBL international, Houimel and Mazzucchelli 2013) ou l'anticorps bloquant polyclonal anti-CCL7 (référence AF-282-NA, R&D systems, Szymczak and Deepe 2009). Les inhibiteurs de l'interaction CCL7/CCR3 incluent également les 20 peptidomimétiques. Le terme "peptidomimétique" désigne une molécule qui n'est pas un peptide mais qui imite les aspects de la structure des peptides (Elsner, Petering et al. 1997). A titre d'exemple de peptidomimétiques inhibiteurs de l'interaction CCL7/CCR3 on peut citer ceux décrits dans le Brevet US 7,488,717. 25 Les inhibiteurs de l'interaction CCL7/CCR3 incluent également les aptamères reconnaissant CCL7 ou CCR3. Les aptamères sont des molécules à un seul brin d'acide nucléique (ADN ou ARN) qui sont sélectionnés pour leur capacité à se lier à une molécule cible. D'autres inhibiteurs de l'interaction CCL7/CCR3 peuvent être identifiés, par 30 exemple, par criblage d'une collection de composés candidats pour leur capacité à inhiber l'activation de CCR3 en présence de CCL7. Des méthodes de mesure de l'activation de récepteurs RCPG qui sont connues en elles-mêmes, et qui sont par exemple couramment utilisées dans des tests de criblage à haut débit, peuvent être utilisées pour évaluer l'activation de CCR3. A titre d'exemple de méthodes d'identification d'inhibiteurs de l'interaction 8 CCL7/CCR3, on peut citer des tests in vitro d'interactions ligands/récepteurs (Loetscher, Pellegrino et al. 2001), des dosages fluoiimétriques en temps résolus (Kuri-Harcuch and Green 1978) ou encore du criblage par résonnance plasmique de surface (Ohori, Tacon° et al. 1994). Les inhibiteurs utilisés selon l'invention peuvent être administrés à un sujet seul, ou en mélange avec au moins un excipient acceptable d'un point de vue pharmaceutique qui peut être tout excipient connu de l'homme du métier. Les excipients acceptables d'un point de vue pharmaceutique varient en fonction de l'inhibiteur utilisé et du mode d'administration choisi. Les modes et voies d'administration des inhibiteurs utilisés selon l'invention peuvent être adaptés par l'homme du métier en fonction du sujet et de l'inhibiteur utilisé. A titre d'exemple, les inhibiteurs peuvent être formulés pour une administration par voie orale ou nasale, ou par injection par voie intraveineuse, intramusculaire ou sous-cutanée. La détermination de la dose à laquelle ledit inhibiteur est utilisé selon l'invention peut s'effectuer par des techniques connues de l'homme du métier, par exemple lors d'essais cliniques. Cette dose dépendra de divers facteurs comprenant notamment l'activité de l'inhibiteur, du mode d'administration, de la durée de l'administration, de la durée du traitement, d'autres médicaments ou composés utilisés en combinaison avec l'inhibiteur, de l'âge, du sexe, du poids, de l'état de santé générale et de l'histoire médicale antérieure du sujet qui est traité. La présente invention a également pour objet une méthode pour prévenir ou traiter l'extension du cancer de la prostate hors de la capsule prostatique, comprenant l'administration d'une quantité efficace d'au moins un inhibiteur de l'expression de la chimiokine CCL7 ou un inhibiteur de l'expression du récepteur CCR3 ou un inhibiteur de l'interaction CCL7/CCR3, à un sujet ayant besoin de ce traitement. Bien entendu, les spécifications décrites plus haut s'appliquent également à cet aspect de l'invention. On entend par une quantité efficace, une quantité d'inhibiteur utilisée selon l'invention pour produire le résultat biologique désiré. La présente invention a également pour objet une méthode ex vivo de détermination du degré d'agressivité d'une tumeur du cancer de la prostate chez un sujet atteint d'un cancer de la prostate, comprenant les étapes suivantes : a) déterminer la concentration ou le niveau d'expression du récepteur CCR3 dans un échantillon de cellules prostatiques tumorales obtenues chez ledit sujet, 9 b) comparer la concentration ou le niveau d'expression du récepteur CCR3 déterminée à l'étape a) avec la concentration ou le niveau d'expression de référence du récepteur CCR3 dans l'épithelium prostatique sain, une concentration ou un niveau d'expression du récepteur CCR3, dans ledit échantillon de cellules prostatiques tumorales dudit sujet, supérieure à ladite concentration ou dudit niveau d'expression de référence étant l'indication d'une tumeur agressive du cancer de la prostate à haut potentiel de dissémination extraprostatique. Un échantillon de cellules prostatiques tumorales peut être obtenu selon des méthodes connues de l'homme du métier. Par exemple, les biopsies prostatiques, dirigées ou non par un examen radiologique sont l'examen standard qui permet d'établir le diagnostic de cancer de la prostate (Ohori, Wheeler et al. 1994). Ces échantillons peuvent également être obtenus à partir de résection endoscopique de la prostate ou de pièces de prostatectomie totale (Ohori, Wheeler et al. 1994). Un échantillon d'épithelium prostatique sain peut être obtenu selon des méthodes connues de l'homme du métier. Par exemple, il peut s'agir d'epithélium prostatique normal présent en dehors des foyers cancéreux dans les biopsies prostatiques, du tissu prostatique sain présent à côté des foyers cancéreux sur les pièces de résection endoscopique et/ou de prostatectomie totale (Ohori, Wheeler et al. 1994). On entend par « tumeur agressive du cancer de la prostate à haut potentiel de dissémination extraprostatique » les cancers localisés dont l'évolution est marquée rapidement par une dissémination locale. Ces cancers à risque élevé de progression ont été définis par la classification d'Amie°, comme des tumeurs ayant un TNM > T2e (atteinte des deux lobes) ou un Score de Gleason > 8 ou valeur du PSA (ng/ml) > 20. Ledit sujet est de préférence un homme obèse et/ou présentant un TAPP abondant. La mesure de la concentration du récepteur CCR3 dans un échantillon de cellules (cellules prostatiques ou cellules de l'épithélium prostatique) peut être effectuée en mettant en oeuvre une méthode immunologique appropriée (e.g., Immunofluorescence, Immunohistochimie) au moyen d'au moins un anticorps spécifique du récepteur CCR3. L'anticorps spécifique du récepteur CCR3 peut être polyclonal ou monoclonal. Il 30 peut être d'origine humaine ou non humaine (par exemple mutin), humanisé, chimérique. 11 peut être recombinant ou synthétique. Ce peut également être un fragment d'anticorps (par exemple les fragments Fab'2 ou Fab) comprenant un domaine de l'anticorps initial reconnaissant l'antigène cible dudit anticorps initial. Ce peut être par exemple le clone Y31, (Abcam Cambridge, MA, USA ; Lee, Kim et al. 2010). 0 La concentration de référence du récepteur CCR3 dans l'épithelium prostatique sain est fonction de la méthode utilisée pour la mesure de la concentration. A titre d'exemple, la concentration de référence du récepteur CCR3 dans l'épithélium prostatique sain peut être obtenue par analyse immunohistochimique d'épithélium prostatiques. L'immunomarquage peut faire l'objet d'une évaluation semi- quantitative visuelle. Quatre niveaux d'intensité peuvent être distingués: aucun marquage (0), marquage faible (1+), marquage intermédiaire (1++) et marquage fort (1+++), comme décrit dans les publications (Ohori and Scardino 1994) et (Saitola, Miura et al. 1994). La concentration de référence du récepteur CCR3 dans l'épithélium prostatique sain est alors compris entre zéro et 1+. La méthode selon la présente invention peut comprendre une étape supplémentaire (c) après l'étape de comparaison (b), comprenant la classification dudit sujet atteint d'un cancer de la prostate selon le degré d'agressivité de la tumeur du cancer de la prostate, basé sur le niveau de concentration ou d'expression du récepteur CCR3. La présente invention a également pour objet l'utilisation d'un anticorps spécifique du récepteur CCR3, tel que défini ci-dessus, pour déterminer le degré d'agressivité d'une tumeur du cancer de la prostate chez un sujet atteint d'un cancer de la prostate. Outre les dispositions qui précèdent, l'invention comprend encore d'autres dispositions non-limitatives, qui ressortiront des exemples expérimentaux ci-dessous, ainsi qu'aux figures annexées : Figure 1: Identification des récepteurs aux chimioldnes et rôle dans la migration des cellules tumorales prostatiques. (A) Migration des cellules tumorales prostatiques humaines LNCaP, C4-2B, Du-145 et PC-3 contre milieu sans sérum, contenant 10% de sérum, ou du milieu conditionné d'adipocyte mature (MC-Ad). (B) Expression des récepteurs aux chimiokines CXCR1, CXCR2, CXCR4, CCR1, CCR2 et CCR3 par eytométrie en flux dans les cellules Du-145 et PC-3. (C) Migration des PC-3 contre du milieu conditionné d'adipocytes (MC-Ad) en présence d'inhibiteur de CXCR4 (AMD3I00), d'inhibiteur de CXCR1 et CXCR2 (SB25002), d'inhibiteur de CCR2 (SB202525), d'inhibiteur de CCRI et CCR3 (UCB35625) et de 10ug/g1 d'anticorps contrôle IgGl, anti-CCRI ou anti-CCR3. (D) Expression du récepteur CCR3 par cytométhe en flux dans les cellules tumorales humaines de la prostate (Du-145 et PC-3), du sein (T47D et MDA-MB231), de mélanome (501Mel et Lu1205), du pancréas (CAPAN et PANC-1) et du colon (sw620 et sw480). Migration des cellules tumorales humaines de la prostate (Du-145 et PC-3), du sein (T47D et MDAMB231), de mélanome (501Mel et Lu1205), du pancréas (CAPAN et PANC-1) et du colon 1 (sw620 et sw480) contre du milieu conditionné d'adipocyte mature (MC-Ad) en présence d'inhibiteur de CCR1 et CCR3 (UCB35625). Figure 2: Identification des chimioidnes adipocytaires et rôle dans la migration des cellules tumorales prostatiques. (A) analyse du sécrétante adipocytaire (adipocytes 3T3- F442A) par spectrométrie de masse et identification des ehirniokines adipocytaires. (B) Migration des cellules Du-145 et PC-3 contre du milieu (sans sérum) supplémenté ou non par la chimiokine CCL7 recombinante humaine (1-10Ong/m1). Migration des cellules Du-145 et PC-3 contre du Mc-Ad après traitement par des anticorps bloquants anti-CCL7, CCR1 et CCR3. (C) Analyse de la sécrétion de CCL7 dans les milieux conditionnés de tissus adipeux périgonadiques murins (TA-mu-PG) et périprostatiques humains (TA-hu-PP) par ELISA. Migration des cellules PC-3 contre du milieu conditionné de tissus adipeux périgonadiques murins (TA-mu-PG) et périprostatiques humains (TA-hu-PP) après traitement par l'inhibiteur de CCR1/CCR3 (UCB35625 à 200nM) ou par 10ug/m1 d'anticorps contrôle IgG I, anti-CCR3 ou anti-CCL7. Figure 3: L'expression de la chimiokine CCL7 est régulée positivement dans le tissu adipeux et les adipocytes des sujets obèses. (A) Analyse de l'ARNm de CCL7 par qPCR dans du tissu adipeux viscéral humain de patients normopondéraux ou obèses. Analyse de PARNm de CCL7 par qPCR dans du tissu adipeux périgonadiques de souris normopondérales, en régime hyperlipidique ainsi que de souris obèses Db/Db. (B) Mesure par dosage ELISA de la quantité de CCL7 sécrété par des expiants de tissus adipeux périgonadiques de souris C57BL/6 normopondérales ou obèses (régime hyperlipidique). Migration de cellules PC-3 contre le milieu conditionné d'expiants de tissu adipeux de souris normopondérales ou obèses en présence ou non d'inhibiteur de CCR1/CCR3 (UCB35625 à 200nM) ou de 10itg/m1 d'anticorps contrôle IgGl, anti-CCR1 ou anti-CCR3. (C) Mesure par dosage ELISA de la quantité de CCL7 sécrété par les adipocytes primaires ou par les cellules de la Fraction Stroma Vasculaire (SVF) isolés du tissu adipeux périgonadique de souris C57BL/6 normopondérales ou obèses (régime hyperlipidique). Migration de cellules PC-3 contre du milieu conditionné d'adipocytes primaires ou de cellules de la SVF isolés de tissus adipeux de souris obèses ou normopondérales. Migration de cellules PC-3 contre du MC-Ad des adipocytes primaires isolés en présence ou non d'inhibiteur de CCR1/CCR3 (UCB35625 à 200nM) ou de 101.1g/m1 d'anticorps contrôle IgGl, anti-CCR1 ou anti-CCR3. Figure 4: implication du récepteur CCR3 dans la migration des cellules TRAMPC1P3. (A) Expression des récepteurs CCRI et CCR3 par les cellules TRAMP-C1P3 par cytométrie en flux. Migration des cellules TRAMP-C1P3 contre du milieu (sans sérum) 2 supplémenté ou non par la ehimiokine CCL7 recombinante humaine (1-10Ong/m1). Migration des cellules TRAMP-C1P3 contre du Mc-Ad (3T3-F442A) après traitement par l'inhibiteur de CCR1 et CCR3 (UCB35625 à 200nM) et par 101.tg/m1 d'anticorps contrôle IgGl, antiCCR3 et anti-CCL7. (B) Expression du récepteur CCR3 par les cellules TRAMP-C1P3 non transfectées (WT) ou transfectées avec un plasmide contrôle (sh Ctrl), ou avec 3 shRNA indépendants ciblant le récepteur CCR3 (m4, m5 et m6CCR3) par cytométrie en flux (avec quantification de l'intensité moyenne de fluorescence). (C) Migration des cellules TRAMP-Cl P3 transfectées (shCtrl, shRNA m4CCR3, shRNA m5CCR3, shRNA m6CCR3) contre du MC-Ad (3T3-F442A) en présence ou non de l'UCB35625 (200nM). Migration des cellules TRAMP-C1P3 transfectées (shCtrl, shRNA m6CCR3) contre du milieu conditionné de tissu adipeux de souris obèses ou normopondérales en présence ou non de 10mg/0. d'anticorps contrôle IgGl, anti-CCR1 ou anti-CCR3. Figure 5: Implication du récepteur CCR3 dans la progression tumorale in vivo. (A) Mesure de la croissance tumorale des cellules TRAMP-Cl P3 (shCtrl et shCCR3) 20 jours après injection de 2 millions de cellules en intraprostatique chez la souris C57BL/6 normopondérales et obèses. (B) Observations de coupes transversales de ces tumeurs après marquage à l'hématoxyline/éosine (H&E) à différents grossissement (zoom 10X). Figure 6: L'expression du récepteur CCR3 est corrélée à l'agressivité des tumeurs prostatiques humaines. Etude réalisée à partir de deux séries de TMA de cancer de la prostate, une première collection incluant 92 tumeurs (A) et une deuxième collection annotée contenant 101 tumeurs (B). L'expression de CCR3 a été mesurée par immunohistochimie et un résultat représentatif pour l'épithélium sain et chaque groupe de tumeurs : tumeur de bas grade (Gleason 7) est montrée (A et B, panneaux de gauche). Dans les deux séries, l'expression de CCR3 est fortement corrélée aux scores de Gleason qui reflète l'agressivité du cancer de la prostate. Pour chaque cohorte analysée figure une représentation sous forme de quartile ainsi qu'un test de corrélation (test de Spearman). Figure 7: Rôle de l'axe CCR3/CCL7 dans la migration des cellules tumorales prostatiques en réponse aux sécrétions des adipocytes médullaires (contexte de métastase osseuse). (A) Mise au point de deux modèles d'adipocytes médullaires : un modèle in vitro avec la lignée 14F1.1 et un modèle ex vivo issu de la différenciation de cellules progénitrices médullaires mésenchymateuses murines. Au cours du traitement par le milieu de sélection et de différenciation ces cellules changent d'aspect et se chargent en lipides jusqu'à obtenir des adipocytes médullaires après 6 semaines de différenciation ex vivo. (B) Comparaison de la 3 sécrétion de CCL7 entre des adipocytes primaires viscéraux de souris C57B16, des adipocytes 3T3-F442A différenciés in vitro, des cellules 14E1.1 différenciés in vitro et des adipocytes médullaires murins différenciés ex vivo. Migration des cellules PC-3 contre du milieu conditionné d'adipocytes issues des différents modèles : F442A différenciés, 14F1.1 différenciés et adipocytes médullaires murins matures (ex vivo). Migration des PC-3 contre du milieu conditionné d'adipocytes issu d'adipocytes médullaires mutins matures (ex vivo) en présence ou non d'inhibiteur de CCRUCCR3 (UCB35625 à 200nM) ou de 101_1g/g1 d'anticorps contrôle IgGI, anti-CCR1 ou anti-CCR3. (C) Expression des récepteurs aux chimiokines CCR1 et CCR3 par eytométrie en flux dans les cellules RM1-BM. Migration des 10 RM1-BM contre du MC-Ad de F442A en présence ou non d'inhibiteur de CCR1/CCR3 (UCB35625 à 200nM) ou de 10gg/1.11 d'anticorps contrôle IgGl, anti-CCR1 ou anti-CCR3. Migration de cellules RIV11-BM contre du milieu sans sérum complémenté ou non par de la chimiokine recombinante CCL7 (I 001.tg/m1). Migration des RMI-BM contre du milieu conditionné d'adipocytes médullaires murins différenciés ex vivo (ex vivo) en présence ou non 15 d'inhibiteur de CCRI/CCR3 (UCB35625 à 200nM) ou de I Oiag411 d'anticorps contrôle IgGI, anti-CCR1 ou anti-CCR3. EXEMPLE: INHIBITION DU RÉCEPTEUR AUX CHIMIOKINES CCR3 DANS LA DISSÉMINATION DU CANCER DE LA PROSTATE MATERIEL ET METHODES 20 Anticorps, inhibiteurs et produit utilisés Les anticorps monoclonaux dirigés contre CCR1 (D063-3 clone 141-2) et CCR3 (D083-3, clone 444-11) proviennent de MBL International (Worburn, MA, USA). Les anticorps monoclonaux anti-CCR2 (clone E68), anti-CCR3 (clone Y31) proviennent de la société Abcam (Cambridge, MA, USA). Les anticorps monoclonaux contre CXCR2 (clone 25 48311), CXCR4 (clone 44716) et CCR1 (clone 53504) proviennent de R&D Systems (Mineapolis, MN, USA). L'inhibiteur ciblant le récepteur CXCR4, AMD3100 (Rosenkilde, Gerlach et al. 2004) provient de Sigma Aldrich et est utilisé à des concentrations finales de 1, 10, 50 et 100 nM. L'inhibiteur ciblant les récepteurs CXCR1 et CXCR2, SB225002 (White, Lee et al. 30 1998)) provident de chez Tocris (Bristol, Royaume-Uni) et est utilisé à des concentrations finales de 1, 10 et 100nM L'inhibiteur ciblant le récepteur CCR2, se-202525 (Chemey, Mo et al. 2008) provient de Santa Cruz Biotechnology (Dallas, TE, USA) et est utilisé à des concentrations finales de 1, 10 et 50 et 100 nM. L'inhibiteur ciblant le récepteur CCR1 et 4 CCR3, UCB35625 (Sabroe, Peck et al. 2000) provient de Tocris (Bristol, Royaume-Uni) et est utilisé à des concentrations finales de 1, 50, 100 et 200 nM. Culture cellulaire Les lignées tumorales prostatiques LNCaP (ATCC® CRL-1740TM, DU-145 (ATCC® 5 HTB-81T), PC-3 (ATCC® CRL-1435"«), ainsi que les lignées cellulaires humaines de carcinomes du colon sw480 (ATCC® CCL-228TM) et sw620 (ATCC® CCL-2271M), du pancréas CAPAN (ATCC® HTB-791M) et PANC-I (ATCC® CRL-2547 Tm), du sein ZR-75-1 (ATCC® CRL1500TM) et MDA-MB321 (ATCC® CRM-HTB-261M) et de mélanomes SKMe1-28 (ATCC® HTB-72Tm) et Lu1205 (don du Dr. Herlyn, Wistar Institute, Philadelphie, 10 USA) sont cultivées dans du milieu de culture RPMI (Invitrogen, Auckland, NZ) supplémenté avec 10 % de SVF (Sérum de Veau Foetal), 2 niM L-glutamine, 125 p.g/m1 de streptomycine, 125 U/nal de pénicilline. Toutes les lignées utilisées dans cette étude sont cultivées dans une atmosphère humide à 5 % de CO2. La lignée tumorale murine TRAMP-Cl P3 dérivée de la lignée TRAMP-Cl (ATCCe 15 CRL-2730Tm) est cultivée dans du milieu DMEM supplémenté avec 10% de SVP, 125 Rg/m1 de streptomycine, 125 U/rni de pénicilline, 5mg/m1 d'insuline et 1 OnM de dihydrotestostérone (18). La lignée RM1-BM est cultivée dans du milieu DMEM (Invitrogen, Auckland, NZ) à 4,5 g/1 de glucose, supplémenté avec 10 % de SVF, 125 lig/mi de streptomycine et 125 U/ml 20 de pénicilline. La lignée RM1-BM a été fournie par le Dr. Cari Power (Eastern Virginia MedicalSchool). Il s'agit d'une lignée cellulaire syngénique des souris de fond génétique C57BL/6 et dérivée de la lignée RM I et qui est caractérisée par sa forte capacité métastatique osseuse. En effet suite à une injection intracardiaque chez la souris C57BL/6 des métastases osseuses sont ainsi obtenues dans 86% des cas (Kanno, Amakasu et al. 1994). 25 Les adipocytes matures sont obtenus à partir de la différenciation in vitro de la lignée murine de pré-adipocytes 3T3-F442A (00070654 Sigma Aldrich) (Kuri-Harcuch and Green 1978). Ces cellules sont cultivées dans du milieu de culture DMEM (Invitrogen, Auckland, NZ) contenant 10% de SVF, 125 itg/m1 de streptomycine et 125 U/m1 de pénicilline (milieu DMEM complet). Pour induire la différenciation adipocytaire, 6x104 cellules sont 30 ensemencées dans une plaque 6 puits. Après 3 jours de culture, les cellules confluentes sont incubées en présence de milieu DMEM complet contenant 50 mM d'insuline (appelé milieu de différenciation des adipocytes) pour une période de 10 à 14 jours. Après 10 jours de culture dans ces conditions, 80% des cellules présentent des gouttelettes lipidiques spécifiques de la différenciation adipocytaire. Le milieu conditionné d'adipocyte (MC-Ad) (1% BSA, 0% 5 SVF) est obtenu au cours de la culture des adipocytes mutins différenciés in vitro dans les conditions décrites précédemment. Au cours de cette étude il a été utilisé un modèle d'adipocytes médullaires in vitro : la lignée 14F1.1. Cette lignée dérive de cellules de la moelle osseuse immortalisées et sélectionnées pour leur capacité à se différencier soit en cellules endothéliales, soit en adipocytes médullaires (Yarnamura, Salomon et al. 2011) et (Menzies and Salomon 2011). Ces cellules sont cultivées dans du milieu de culture DMEM (Invitrogen, Auckland, NZ) contenant 10% de SVF, 125 itg/m1 de streptomycine et 125 U/ml de pénicilline (milieu DMEM complet). La différenciation adipocytaire est obtenue 28 jours après que les cellules soient entrées en confluence. Modèle d 'adipocytes médullaires ex vivo Afin d'obtenir des adipocytes médullaires ex vivo il a été mis au point un protocole de différenciation des cellules de la fraction stroma vasculaire de la moelle osseuse en adipocytes médullaires chez la souris C57BL/6. Afin d'isoler ces cellules, les tibias et fémurs de souris C57BL/6 sont isolés puis sont placés dans du DMEM (1% BSA) à 4°C. Les os sont ensuite coupés aux deux extrémités puis, à l'aide d'une seringue, les cellules contenues dans la moelle sont récupérés par injection de milieu froid à l'intérieur de l'os. La solution cellulaire ainsi obtenue est traitée par une solution de libérase à 2,5 ug/mL à raison de 51.EL pour 2 mL de suspension cellulaire. Le mélange est laissé à incuber au bain marie à 37°C pendant 5 minutes. Cette étape permet d'éliminer toutes traces de matrice extracellulaire. La libérase est ensuite neutralisée par un ajout volume à volume de DMEM (10% SVF), puis la solution cellulaire est filtrée pour éliminer les débris et les caillots sanguins. La suspension cellulaire est centrifugée à 2000 RPM pendant 20 minutes et le culot contenant les cellules de la fraction stromale est resuspendu dans du milieu DMEM contenant 10% de SVF, 125 Ftg/m1 de streptomycine et 125 U/ml de pénicilline. Les cellules sont ensemencées dans des plaques 24 puits à une densité de 1-2x 107 cellules/mL et mis en culture à 37°C avec 5% de CO2. Les cellules sont laissées en culture de cette manière 4 jours puis le milieu de culture est changé pour ne conserver que les cellules ayant adhérées. Une fois les cellules arrivées à confluence, le milieu est remplacé par un milieu de différenciation. Ce milieu est composé de DMEM (10% SVF) complémenté avec de la dexaméthasone à 1 p,M, de l'IBMX 0,45mM, de l'indométacine à 60p,M et de l'insuline à 101.1g/mL. Le milieu est changé tous les 4 jours durant 30 à 35 jours. Au bout de cette période les précurseurs mésenchymateux se sont différenciés en adipocytes médullaires et contiennent des gouttelettes lipidiques visibles en 6 microscopie. Le milieu conditionné d'adipocyte médullaires ex vivo (MC-Ad méd) (1% BSA, 0% SVF) est obtenu de la manière décrite précédemment. Echantillons de tissus adipeux viscéraux humains pour analyse de l'expression de CCL7 par Q-PCR Les tissus adipeux viscéraux (TA-Vise) humains ont été collectés selon les directives du Comité d'éthique des hopitaux Toulouse-Rangueil et Nancy-J. d'Arc (France). Tous les patients ont donné leur consentement éclairé pour participer à l'étude et les recherches ont été effectuées en conformité avec la déclaration d'Helsinki révisée en 2000 (http://www.wma.net/e/policy/b3.htm). Les échantillons humains de TA-Vise (intra- abdominal) de sujets normopondéraux ont été obtenus à partir de 8 patients (âgés de 40,3 ± 2,2 ans et d'indice de masse corporelle (IMC) de 23,3 ± 1,2 kg/m2) ayant subi une intervention chirurgicale intra-abdominale. Les échantillons de TA-Vise de sujets obèses ont été obtenus à partir de 21 patients souffrant d'obésité morbide de grade III (âgés de 41,3 ± 2,2 ans et d'IMC de 45,7 ± 2,9 kg/m2) avant une chirurgie bariatrique. Les échantillons de tissus ont été immédiatement congelés dans de l'azote liquide après prélèvement et stockés à -80 °C. Echantillons de tissus adipeux périprostatiques humains Les échantillons de tissu adipeux périprostatique ont été collectés à partir de prostatectomie radicale en accord avec les recommandations du comité d'éthique du CHU de Rangueil (Toulouse, France). Tous les patients ont donné leur consentement éclairé pour 20 participer à cette étude qui a été menée en conformité avec la Déclaration d'Helsinki révisée en 2000. Les échantillons de tissu adipeux périprostatiques sont prélevés à proximité de la tumeur et ne présentent pas de fibrose apparente. Ce tissu adipeux est immédiatement placé à 37°C dans du milieu DMEM (sans sérum) supplémenté par 1% d'Albumine de Sérum Bovin. Echantillons de tissus adipeux périzonadiques murins 25 Il a été utilisé des souris males C57BL/6 provenant de chez Janvier (Le Genest St- Isle, France) âgées de 8 semaines et hébergées dans des cages Plexiglas ventilées (3 souris par cages). Ces souris C57BL/6 sont soit placées sous un régime normal constitué de 5% de lipides (PicoLab Rodent Diet 20; Purina Mills Inc., Brentwood, Missouri, USA), ou, sous régime hyperlipidique (60% de lipides, 22% de glucides et 18% protéines) durant 10 30 semaines. L'ensemble des procédures a été validé par le comité d'éthique animal Midi- Pyrénées (France). A la fin du régime, les animaux sont sacrifiés par dislocation cervical, pesées puis le tissu adipeux péri.gonadique (TA-PG) est prélevé et immédiatement place à 37°C dans du milieu DMEM (sans sérum) supplémenté par 1% d'Albumine de Sérum Bovin. 7 Mesure d'expression génique par Q-PCR Les ARN totaux sont extraits à l'aide du kit RNeasy® Mini (Qiagen GmbH, Hilden, Germany). Un microgramme d'ARN total est transcrit en ADNe par la reverse transcriptase Superscript il (Invitrogen, Auckland, NZ). L'incubation est réalisée en parallèle dans les mêmes conditions pour chaque échantillon en l'absence de Superscript II pour s'assurer qu'il n'y ait pas de contamination par de l'ADN génomique. La réaction de PCR en temps réel est réalisée avec 50 ng d'ADNc, 5 Ill d'une solution d'oligonucléotides ciblant le gène murin de CC L-7et 10 gl de SYBR Green TaqMan Universal PCR master mix (Applied Biosystems, Foster City, CA). La réaction de PCR est tout d'abord réalisée sur les gènes de mélanges (GAPDH et HPRT) afin de normaliser l'expression génique (utilisation du logiciel GeNomi). Des analyses ont ensuite porté sur l'expression de gène CCL7 (humain ou murin). Les séquences nucléotidiques des amorces et les concentrations optimales d'utilisation sont regroupées dans le tableau 1 ci-dessous. Tableau 1 : amorces utilisés pour la Q-PCR Gène Espèce Amorce sens (SEQ ID Amorce anti-sens (SEQ ID NO:) Concentration utilisée étudié NO:) CCL7 Humain AAACCTCCAATTCTCA TGTGGAA (4) CAGAAGTGCTGCAG AGGCTTT (5) 900nM CCL7 Murin AAGATCCCCAAGAGG AATCTCAA (6) CTTCCCAGGGACAC CGACTA (7) 900nM GAPDH Humain / Murin TGCACCACCAACTGCT TAGC (8) GGCATGGACTGTGG TCATGAG (9) 500nM HPRT Humain / Murin TGACACTGGCAAAAC AATGCA (10) GCTTGCGACCTTGA CCATCT (11) 900nM HPRT Min-in TGGCCATCTGCCTAGT AAAGC (12) GGACGCAGCAACT GACATTTC (13) 300nM Digestion du tissu adipeux à la collagénase Le tissu adipeux humain ou murin est digéré à la libérase (Roche Applied Science, Meylan, France) pendant environ 30 minutes à 37°C sous agitation. Après digestion la libérase est inhibée par ajout de sérum dans le milieu contenant les cellules. Les adipocytes, en raison de leur contenu lipidique, flottent tandis que les cellules de la fraction stroma vasculaire (SVF) coulent et se retrouvent dans le fond du tube. Les adipocytes primaires 8 isolés et les cellules de la SVF sont ensuite cultivés dans du milieu DMEM (sans sérum) contenant 1% de BSA pendant 24 heures. Du milieu conditionné est prélevé après 24h de sécrétion. Les cellules sont comptées enfin d'expérience pour rapporter les différentes sécrétions au nombre de cellules. Dosage de CCL7 humain et murin par test ELISA Les dosages de CCL7 humain et murin ont été réalisés à l'aide de kit FUSA provenant respectivement de sociétés Peprotech et R&D system en accord avec les protocoles fournis par ces fabricants. Analyse de l'expression des récepteurs aux chimiokines dans les lignées 10 tumorales par cytométrie en flux Les cellules tumorales (de la prostate, du sein, du côlon, du pancréas, ou de mélanome) ont été lavées trois fois dans du tampon FACS (PBS supplémenté avec 0,5% de BSA et 2% de SVP) et fixées avec une solution de paraforinaldéhyde à 3,7% pendant 20 min à 4°C. Les cellules tumorales ont été mises en suspension avec des anticorps anti-CXCR4 15 (10p.g/mL) anti-CXCR1 (1011g/mL), anti-CXCR2 (1/25), anti -C CR1 (lOgg/mL), anti-C CR2 (201.1g/mL), anti -CCR3 (10pg/mL) ou d'anticorps de contrôle d'isotypique anti-IgG de souris à 4 °C pendant 2 heures. Les cellules tumorales ont été incubées avec un anticorps secondaire anti IgG (dilution au 1/200) de souris couplé à l'Alexa Fluor 488 ou couplé à la Cyanine 5 (pour les cellules exprimant la GFP) pendant 30 minutes à 4 °C. Enfin, 2x104 cellules ont été 20 analysées par cytornétrie en flux en utilisant un cytomètre en flux FACScan et FACScalibur (analyse sur logiciel CellQuestTM (BD-PharMingen)). Tests de migration en chambre de Boyden Pour évaluer la capacité des cellules tumorales à migrer en fonction du milieu de culture, des tests de migration en chambre de Boyden ont été réalisés à l'aide d'inserts 25 Greiner bio-one de 8 itm de porosité. Dans le compartiment inférieur est introduit soit du milieu de culture avec ou sans sérum, soit du milieu conditionné d'adipocytes F442A (MCAd), de tissu adipeux périprostatique humain (MC-TAPP), de tissu adipeux périgonadique murin (MC-TAPG), d'adipocytes ou de cellules de la fraction vasculaire (SVF) isolés de TAPP ou de TAPG. Ces milieux conditionnés peuvent être prétraités durant 30 minutes par 30 l'ajout d'anticorps bloquants la chimiokine CCL7. Des expériences avec la chimiokine recombinante CCL7 ont également été réalisées, dans ce cas la chimiokine est ajoutée à du milieu de culture sans sérum pour vérifier son potentiel chimioattractant sur une lignée cellulaire. Dans la chambre supérieure 1x105 cellules, préalablement déplétées durant 6 heures en sérum sont déposées dans du milieu de culture sans sérum. Pour les tests de migration en 9 présence d'anticorps bloquants spécifiques de CCR1 ou CCR3 ou d'inhibiteurs de CCR1/CCR3, CCR2, CXCR1/CXCR2 et CXCR4, les cellules tumorales sont préalablement incubées dans un tube avec l'anticorps bloquant ou de l'inhibiteur pendant 30 min à 37°C. La migration des cellules tumorales est évaluée après 12h de migration à 37°C et 5% CO2 Par coloration au bleu de toluidine 1% supplémenté avec du borax 0,1M (Sigma, St Louis, MO, USA) et quantification de l'absorbanee (mesurée à 570 nm). Analyse du sécrétome adinocytaire (spectrométrie de masse) Les milieux conditionnés d'adipocytes (MC-Ad) sont prélevés après 24 heures de sécrétion (milieu sans sérum ni rouge de phénol) centrifugé et filtré pour éliminer les débris cellulaires et supplémenté en inhibiteur de protéases. La concentration de 5 ml de milieu de MC-Ad adipeux a été réalisée avec de la résine StrataClean (Agilent Technologies, Santa Clara, CA, USA) selon les instructions du fabricant. Après réduction et alkylation de la cystéine, l'échantillon a été séparé par SDS-PAGE (12% d'aerylamide). Les protéines ont été visualisées par coloration au bleu de Coomesie et chaque piste a été coupée en 13 bandes homogènes et digéré (digestion du gel par trypsine). Le produit de la digestion a été analysé par nanoLC-MS/MS via le système Ultimate3000 (Dionex, Amsterdam, Pays-Bas) couplé à un spectromètre de masse LTQ-Orbitrap (Thermo Fisher Scientific, Brême, Allemagne) comme décrit précédemment (Contreras, Ferrero Guadagnoli et al. 2010), sauf que les peptides ont été élués en utilisant un gradient de 5 à 50% de solvant B pendant 60 min à un débit de 300 nt / min. Mascot a été utilisé pour extraire automatiquement les listes « peak lists » des fichiers bruts. Les données MS / MS ont été comparées à l'ensemble des entrées dans les bases de données de souris (Mus musculus) et l'identification des peptides a été validé par informatique comme décrit précédemment (Santini, Salomon et al. 2010), sauf que 1% FDR a été utilisée pour les peptides et protéines validation. Inhibition de l'expression de CCR3 par l'utilisation de shRIVA Pour inhiber de façon stable l'expression du récepteur CCR3 (NM 009914) dans les cellules TRAMP-C1P3, il a été utilisé une approche de shRNA permettant une régulation négative stable même après plusieurs mois de culture. Les séquences interférentes ont été générées à l'aide de l'outil «Center siDesign» de Dhannacon. Les séquences des brins sens des shRNA générées sont les suivantes : m4CCR3 (SEQ ID NO: 1) : 5'- cgcgtecccAGACCACACCCTATGAATAtteaagagaTATTCATAGGGTGTGGTCTttffiggaaat -3, 0 m5CCR3 (SEQ ID NO: 2) :5'- egegteeccGACCACACCCTATGAATATttcaagagaATATTCATAGGGTGTGGTCtttttggaaat -3 et m6CCR3 (SEQ ID NO: 3) 5'- cgccgtecceGGTGAGAGGTTCCGGAAACtteaagagaGTTTCCGGAACCTCTCACCifittggaa at-3. Les nucléotides ciblant la séquence de CCR3 sont indiqués en majuscules, alors que la séquence responsable de la structure en épingle et les séquences nécessaires pour le clonage directionnel sont représentés en lettres minuscules. Le vecteur lentiviral LVTHM ce est un vecteur lentiviral (LV) codant pour les séquences shRNA CCR3 sous le contrôle du promoteur Hl exprimant également la GFP. Les cellules TRAMP-C1P3 ont ensuite été transfectées en présence de m4, m5 ou m6-LVTHM durant 24 heures à une multiplicité d'Infection (MOI) de 1:10. La population transfectée est sélectionnée par expression de la GFP (Tri de cellulaire). Ces cellules ont ensuite été analysées par cytométrie en flux pour valider la perte de l'expression du gène de CCR3. Le contrôle utilisé est le plasmide pLVTHM qui exprime une séquence shRNA inefficace. Injection intraprostatique de cellules TRAMP-C1P3 chez la souris C57BL/6 Des souris males C57BL/6 de 18 semaines sous régime normal ou hyperlipidique ont été anesthésiées sous isoflurane. Une incision transversale a été réalisée au niveau de la partie inférieure de l'abdomen. Les muscles de la paroi abdominale ont été incisés, puis la vessie et les vésicules séminales ont été libérés afin d'exposer le lobe dorsal de la prostate. Une suspension de 2x106 cellules (dans 30 pl de PBS) a ensuite été soigneusement injectée sous la capsule de la prostate par l'intermédiaire d'une aiguille de calibre 30. L'incision a été fermée à l'aide de fil de suture 4-0 et d'agrafes. Les animaux sont ensuite placés en cages et un suivi régulier est réalisé afin de suivre macroscopiquement l'état général de la souris. Après 20 jours de prise tumorale, les souris sont sacrifiées, la tumeur primaire est ainsi prélevée, mesurée et pesée, et une acquisition en lumière blanche et GFP est réalisée. Les tumeurs sont ensuite placées dans une solution de parafonnaldéhyde (4%) puis inclus en paraffine. Prélèvement des échantillons humains de tumeurs prostatiques et Tissue Micro-30 Arrays TMA La première base de données inclut une cohorte de 92 patients ont tous été opérés d'un adénocarcinome prostatique dans le Département d'Urologie du CHU de Toulouse (France). 1 Pour la seconde base de données, il s'agit d'une étude monocentrique et prospective. Les patients inclus ont tous été opérés d'un adénocarcinome prostatique, entre le ler Février 2010 et le ler Décembre 2011, dans le Département d'Urologie du CHU de Toulouse (France). Le traitement chirurgical a consisté en une prostatectomie radicale par voie laparoscopique robot-assistée ou par voie ouverte rétro-pubienne. La prostatectomie était associée dans certains cas à un curage ganglionnaire ilio-obturateur bilatéral (standard ou étendu). L'ensemble des patients inclus dans l'étude présentait une maladie localisée sans localisation métastatique lors de l'intervention. Pour tous les patients, un formulaire de non-opposition à l'utilisation de leurs échantillons tissulaires à des fins scientifiques a été recueilli et signé avant l'intervention afin d'être inclus dans une étude. La pièce fraîche, accompagnée du certificat de non-opposition, est dans les 15 minutes qui suivent l'exérèse chirurgicale prise en charge afin d'avoir un délai entre la dévascularisation et la congélation le plus court possible pour assurer une préservation des molécules labiles. Les échantillons tissulaires prélevés sont placés dans des cryotubes puis congelés dans de l'azote et stockés à -80°C. Afin de faciliter l'étude, une analyse histologique multiplex a été possible grâce à la réalisation de « tissue microarrays » (TMA) sur des zones d'intérêt sélectionnées sur des lames d'échantillons de prostate. Les zones d'intérêt retenues pour la préparation des TMA ont été sélectionnées par deux pathologistes en double aveugle : le but était de sélectionner une zone riche en tissu carcinomateux. Les zones tumorales sélectionnées correspondaient morphologiquement à des secteurs présentant une différentiation histologique comparable au score de Gleason de la tumeur ou au score de Gleason le plus péjoratif en cas de tumeur plurifocale. Après avoir choisi les blocs à échantillonner, des carottes d'un diamètre de 0,2 mm étaient incluses de manière orthonormée selon un plan préétabli dans un bloc receveur. Le bloc receveur pouvait être ensuite coupé sur un microtome standard. Analyse de l'expression de CCR3 par immunohistochimie sur tissu Des expériences d'immunohistochimie sur des biopsies de tumeurs prostatiques humaines ont été réalisées pour détecter l'expression de CCR3. L'immunomarquage a été réalisé à l'aide du EnVisionTM FLEX Mini Kit, High pH (Dako Autostainer/Autostainer Plus) (Dako France, Trappes, FR). Les TMA (Tissue Micro Arrays) sont plongés dans du xylène pour enlever la paraffine puis ensuite réhydratés par des bains successifs d'alcool gradués (100 à 70% puis eau distillée), suivie d'un traitement avec la solution de démasquage antigénique pour la récupération d'antigène (tampon citrate Dako 1 X pH 6 au bain-marie 95°C). Après une étape de saturation des péroxydases endogènes (Peroxydase blocking, Dako), les échantillons sont incubés avec l'anticorps primaire anti-CCR3 (dilué au 1/100). 2 Les TMA sont ensuite mis à incuber avec l'anticorps secondaire biotinylé, puis avec de la streptavidine conjugué HRP (Dako). Ils sont ensuite rincés, puis traités au liquide DAB (BioGenex, San Ramon, Californie), et lavés avec de Peau distillée. Enfin la contre coloration a été réalisé à Phématoxyline (Dako), et les différents TMA sont finalement montés à l'aide du réactif EUKITT. Les lames sont scannées numériquement via l'appareil Hamamatsu Nanozoomer 2.ORS et analysées à l'aide du logiciel fournis par le constructeur. La lecture des TMA a été réalisée par un anatomopathologiste. Mesure de la surface des dépôts adipeux périprostatiques La mesure de la surface des dépôts adipeux périprostatiques a été faite sur 15 patients issus de la cohorte principale utilisée dans notre étude. Les mesures ont été réalisées à partir de donnée d'imagerie de scanner ou d'IRM préopératoires de chacun de ces patients. Pour cela il a été utilisé des images de sections transverses au niveau fémoral, à l'endroit où la fusion de la symphyse pubienne débute. Le dépôt adipeux qui a été étudié se situe entre la partie antérieure de la prostate et la symphyse pubienne. Il est facilement reconnaissable par la différence d'atténuation entre l'os, la prostate et le tissu adipeux. L'épaisseur et la largeur du dépôt ont été mesurées à l'aide de ces images. L'aire de ce dépôt a ensuite été approximé pour chaque patient, par calcul d'une aire elliptique à partir des données récoltées. Analyse statistique La significativité statistique des différences entre les moyennes (au moins trois expériences indépendantes) a été évaluée à l'aide de tests student, effectuée à l'aide du logiciel Prism (GraphPad Inc.). Pour les analyses chez le patient, des tests de corrélations de rang de Speamian ont été réalisés. On parle de corrélations fortes pour des valeurs supérieures à 0,7, de corrélations moyennes pour des valeurs comprises entre 0,3 et 0,7 et de corrélations faibles pour des valeurs inférieures 0,3. Les valeurs de p inférieures à 0,05 (*), Du tissu adipeux périgonadique (TA-mu-PG) a été prélevé chez des souris mâle (3 expériences indépendantes réalisées sur 3 lots de souris indépendants, contenant de 3 à 10 souris). Des expériences similaires ont été réalisées avec du tissu adipeux périprostatique chez l'homme (TA-hu-PP). Ce TA est obtenu sur des pièces de prostatectomie, à distance de la tumeur. Ce tissu présente des caractéristiques macroscopiques de TA et ne contient pas de cellules tumorales. Ces expériences ont été réalisées chez 5 patients ayant un IMC compris entre 20 et 25. Pour ces deux types de TA, du milieu conditionné a été préparé à partir d'une culture de 24h. Ces expériences (voir Fig. 2C) montrent que CCL7 est sécrété par ces deux TA avec une moyenne de 155 ± 20 pg /mL /g de TA chez la souris et de 75± 15 pg /mL / g de TA chez l'homme (panneau de gauche). Les milieux conditionnés de TA humains et murins sont capables d'induire de façon similaire la migration des cellules tumorales (environ 20% de cellules migrantes pour les deux milieux). Enfin, cette migration est significativement inhibée par l'utilisation d'inhibiteurs et d'anticorps bloquant l'axe CCR3/CCL7 et par l'inhibiteur de CCR3 (UCB35625 à 200nM) (panneau de droite). L'axe CCR3/CCL7 est donc impliqué dans la migration des cellules prostatiques contre les sécrétions du tissu adipeux viscéral murin et périprostatique humain. 3) La sécrétion de CCL7_par le TA est augmentée dans un contexte d'obésité ce qui contribue à amplifier le rôle de l'axe CCR3/CCL7 dans la migration des cellules prostatiques L'expression génique de CCL7 a été évaluée dans une série d'échantillons de TA 25 viscéraux (TAV) humains (intra-abdominal) de patients soit normopondéraux (Indice de Masse Corporelle (IMC moyen 23,3± 1,2 kg/m2, 8 échantillons), soit obèses (IMC moyen 45,7± 2,9 kg/m2, 21 échantillons). Les résultats (voir Fig. 3A) montrent une augmentation d'environ 3 fois des ARNm de CCL7 dans les TAV de sujets obèses comparé à des sujets d'IMC normal (p Dans les tumeurs de bas grade (Score de Gleason inférieur à 7), on observe une expression de CCR3 élevée (score immunohistochirnique quantitatif + dans 10% des tumeurs contre 75% de tumeurs exprimant un CCR3 faible (score immunohistochimique quantitatif +). En revanche, dans des tumeurs plus agressives de score de Gleason égal et/ou supérieur à 7 on retrouve un marquage intense de CCR3 dans respectivement 46,8% et 76% des tumeurs contre respectivement 12,8% et 4% présentant un marquage faible. Enfin il est à noter que l'expression de CCR3 est faible voir absente dans des glandes prostatiques non tumorales. Une deuxième série d'expériences a été réalisée sur une collection annotée de 101 patients. Les patients inclus ont tous été opérés d'un adénocarcinome prostatique dans le Département d'Urologie du CHU de Rangueil (France). Les TMA ont été réalisés en double à partir d'une zone contenant de la tumeur à des pièces de prostatectomie cryoconservées. Les caractéristiques cliniques de la cohorte sont présentées dans le tableau 2 ci-dessous et les caractéristiques immunohistoehirniques dans le tableau 3 ci-dessous. Tableau 2 Caractéristiques cliniques de la cohorte. Nombre total de patient (pourcentage en colonne) 101(100) Age (Années), Médiane (étendue) 63 (47-75) IMC (kg/ , Médiane (étendue) 26,1 (19-34) PSA initial avant prostatectomie (ng/mL), Médiane (étendue) 8,8 (2-37) Poids des pièces de prostatectomie (g), Médiane (étendue) 49,5 (22-93) Moyenne de suivi (jours), Médiane (étendue) 361(31-845) Traitement proposé dans les suites de la chirurgie Surveillance seule, n (pourcentage en colonne) 80 (80.8) Radiothérapie, n 15 (15,2) (pourcentage en colonne) Hormonothérapie, n (pourcentage en colonne) 8(8,1) 0 Dernier dosage du PSA (ng/m1), Médiane (étendue) 0,11 (0-4,82) Evolution après chirurgie Récidive biologique, n (pourcentage en colonne) 12 (11,9) Aucune récidive 88 (87,10) biologique, n (pourcentage en colonne) Décès, n (pourcentage en colonne) 1 (1) Tableau 3 : Caractéristiques histologiques et immunohistochimiques de la cohorte. Nombre total de patient (pourcentage en colone) 101(100) Siège de la tumeur Transitionnel, n (pourcentage en colonne) 8 (7,9) Périphérique, n (pourcentage en colonne) 93 (92,1) Score de Gleason sur la pièce de 5, n (pourcentage en colonne) 12 (11,9) prostatectomie 6, n pourcentage en colonne) 6 (5,9) 7, n (pourcentage en colonne) 75 (74,3) 8, n (pourcentage en colonne) 3 (3) 9, n (pourcentage en colonne) 5 (5) Pourcentage de contingent peu différencié (grade 4 et 5 confondus), Médiane (étendue) 42,3 (0-100) Volume tumoral (pourcentage d'envahissement de la prostate), Médiane 16,8 (0,1-58) (étendue) Présence d'embols oui, n (pourcentage en colonne) 8 (10) non, n (pourcentage en colonne) 93 (90) Stade pTNM pT2a, n (pourcentage en colonne) 6 (5,9) pT2b, n (pourcentage en colonne) 35 (34,7) pT3a, n (pourcentage en colonne) 43 (42,6) pT3b, n (pourcentage en colonne) 16 (15,8) pT4, n (pourcentage en colonne) 1 (1) Marges chirurgicales positives Positives (R1), ri (pourcentage en colonne) 22 (21,8) réalisation d'un curage ganglionnaire bilatéral associé n (pourcentage en colonne) 80 (78,8) 1 Présence de ganglions métastatiques **, n (pourcentage en colonne) 5 (6,3) Expression de CCR3 0= absent, n (pourcentage en colonne) 0 (0) 1= faible, n (pourcentage en colonne) 15 (14,8) 2- modéré, n (pourcentage en colonne) 61 (60,4) 3= intense, n (pourcentage en colonne) 25 (24,7) Comme dans la cohorte precédente, on retrouve une expression de CCR3 dans les tumeurs prostatiques (figure représentative du résultat du marquage par immunohistochimie, panneau de gauche de la figure 6B), et son niveau d'expression est corrélé au grade de la tumeur définie par le score de Gleason (coefficient de corrélation de 0,472, p Tableau 6 : Corrélation entre la surface du dépôt adipeux périprostatique et différentes caractéristiques cliniques, histologiques et biochimiques de la cohorte. Surface du tissu adipeux Spearman périprostatique Surface faible( 10 cm) coefficient 11 value de e . corrélation Age (années), Médiane (étendue) 61 (61-71) 62 (48-69) -0,017 0,449 Score de Gleason, n (en Gleason 7 0 (0) 2 (20) Contingent indifférencié, Médiane (étendue) 5 (0-25) 25 (20-95) 0,461 0,083 Stade tumoral, n (en 1= pT2b 0(0) 1(10) 0,38 0,163 colonne) 2= pT2c 2 (40) 2 (20) 3-= pT3a 3 (60) 4 (40) 4= pT3b 0 (0) 3 (30) poids prostatique, Médiane (étendue) 52 (44-69) 38 (32-68) -0,24 0,39 PSA (ng/mL), Médiane (étendue) 6.7 (7-7,5) 7.15 (6,38- -0,163 0,89 8.96) Rechute biologique, n (en colonne) réascension 1(20) 2 (20) -0,116 0,681 1MC (kg/m2), Médiane (étendue) 28 (22-34) 27 (20-31) -0,243 0,3 Sutpoids et obésité (IMC ?_25kg/m2), n (en colonne) 3 (60) 7 (70) -0,224 0,38 Expression de CCR3 1- faible, n (pourcentage en colonne) 2 (40) 0 (0) 0,67 0,006 2= modéré, n (pourcentage en colonne) 3 (60) 7 (70) 3= intense, n (pourcentage en colonne) 0 (0) 3 (30) 0= absent, n (pourcentage en colonne) 1= faible, n (pourcentage en colonne) 2 (13,3) 2= modéré, n (pourcentage en colonne) 10 (66,7) Expression de CCR3 3- intense, n (pourcentage en colonne) 3 (20) 4 Il existe une corrélation forte entre un TAPP abondant et l'expression de CCR3 (coefficient de corrélation 0,67, p Le dosage de CCL7 par la méthode ELISA montre que les milieux conditionnés de ces cellules contiennent du CCL7 à un niveau comparable à celui des 3T3F442A différenciées in vitro (3 échantillons indépendants). Ces expériences ont également permis de mettre en évidence que ces adipocytes médullaires sécrètent des quantités de CCL7 supérieures à celles générées par des adipocytes viscéraux ND (p Begley, L. A., S. Kasina, et al. (2008). Cytokine 43(2): 194-199. Cherney, R. J., R. Mo, et al. (2008). J Med Chem 51(4): 721-724. Contreras, A. E., A. Ferrero Guadagnoli, et al. (2010). Rev Fac Cien Med Univ Nac Cordoba 67(3): 104-107. Egawa, S., M. Ohori, et al. (1994). Nihon Hinyokika Gakkai Zasshi 85(10): 1543-1551. Elsner, J., S. E. Escher, et al. (2004). Allergy 59(12): 1243-1258. Elsner, J., H. Petering, et al. (1997). Eur J Immunol 27(11): 2892-2898. Houimel, M. and L. Mazzucchelli (2013). Immunol Lett 149(1-2): 19-29. Iacono, A. T., T. N. Masciangelo, et al. (1994). Chest 106(1): 311-313. moue, K., J. W. Slaton, et al. (2000). Clin Cancer Res 6(5): 2104-2119. Johrer, K., C. Zelle-Rieser, et al. (2005). Clin Cancer Res 11(7): 2459-2465. Joubert, P., S. Lajoie-Kadoeh, et al. (2008). J Immunol 180(2): 1268-1275. Jung, D. W., Z. M. Che, et al. (2010). Int J Cancer 127(2): 332-344. Kanno, A., H. Amakasu, et al. (1994). Tohoku J Exp Med 172(1): 83-90. Kiss, D. L., J. Longden, et al. (2009). Cell Mol Biol Lett 14(4): 537-547. Kuri-Harcueh, W. and H. Green (1978). Proc Natl Acad Sci U S A 75(12): 6107-6109. Lee, Y. J., D. H. Kim, et al. (2010). Ann Dermatol 22(4): 412-417. Loberg, R. D., L. L. Day, et al. (2006). Neoplasia 8(7): 578-586. Loetscher, P., A. Pellegrino, et al. (2001). J Biol Chem 276(5): 2986-2991. Lu, Y., Z. Cai, et al. (2007). J Cell Biochem 101(3): 676-685. Magi-Galluzzi, C., A. J. Evans, et al. (2011). Mod Pathol 24(1): 26-38. Menzies, N. A. and J. A. Salomon (2011). Health Econ 20(12): 1523-1531. Ohori, M., S. Egawa, et al. (1994). Br J Urol 74(1): 72-79. Ohori, M. and P. T. Scardino (1994). Semin Oneol 21(5): 522-526. Ohori, M., T. M. Wheeler, et al. (1994). J 'Oral 152(5 Pt 2): 1714-1720. Ohori, N. P., A. T. Iacono, et al. (1994). Am J Surg Pathol 18(12): 1192-1204. Ouchi, N., J. L. Parker, et al. (2011). Nat Rev Immunol 11(2): 85-97. Rosenkilde, M. M., L. O. Gerlach, et al. (2004). J Biol Chem 279(4): 3033-3041. Sabroe, I., M. J. Peck, et al. (2000). J Biol Chem 275(34): 25985-25992. 6 Saitoh, Y., M. Miura, et al. (1994). "Changes of sei-um hepatitis C virus levels in patients with ehronie hepatitis C treated with two courses of interferon administration." Tohoku J Exp Med 173(4): 361-369. Salomon, L., D. Azria, et al. (2010). Prog Urol 20 Suppl 4: 5217-251. Santini, M. S., O. D. Salomon, et al. (2010). Rev Inst Med Trop Sao Paulo 52(4): 187-191. Szymczak, W. A. and G. S. Deepe, Jr. (2009). J Immunol 183(3): 1964-1974. Taiehman, R. S., C. Cooper, et al. (2002). Cancer Res 62(6): 1832-1837. Toumiaire, F., B. Romier-Crouzet, et al. (2013). PLoS One 8(6): e66515. Vindrieux, D., P. Escobar, et al. (2009). Endocr Relat Cancer 16(3): 663-673. White, J. R., J. M. Lee, et al. (1998). J Biol Chem 273(17): 10095-10098. Winzell, M. S. and B. Ahren (2004). Diabetes 53 Suppl 3: S215-219. Yamamura, J., G. Salomon, et al. (2011). Radiol Res Pract 2011: 616852. Zhang, J., L. Patel, et al. (2010). Cytokine Growth Factor Rev 21(1): 41-48. Zhu, F., P. Liu, et al. (2014). Oneol Rep 31(5): 2049-2054. Zhu, X. H., B. Liao, et al. (2013). Zhonghua Er Bi Yan Hou Tou Jing Wai Ke Za Zhi 48(4): 316-321. Zipoii, D., A. Friedman, et al. (1984). J Cell Physiol 118(2): 143-152. REVENDICATIONS1. Inhibiteur de l'expression de la chimiokine CCL7 ou un inhibiteur de l'expression du récepteur CCR3 ou un inhibiteur de l'interaction CCL7/CCR3 pour leur utilisation pour prévenir ou traiter l'extension du cancer de la prostate hors de la capsule prostatique chez un sujet ; l'inhibiteur de l'interaction CCL7/CCR3 étant choisi dans le groupe constitué par une molécule organique, un peptide, anticorps dirigé contre CCR3 ou CCL7, un peptidomimétique et un aptamère reconnaissant CCL7 ou CCR3, et l'inhibiteur de l'expression de la chimiokine CCL7 ou de l'expression du récepteur CCR3 étant choisi dans le groupe constitué par un oligonucleotide antisens, un ARN interférent, un petit ARN en épingle à cheveux (shRNA) ou un ribozyme, ciblant le gène codant CCL7 ou le gène codant CCR3, de préférence un shRNA. 2. Inhibiteur de l'interaction CCL7/CCR3 pour son utilisation selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il s'agit d'un antagoniste de CCR3. 3. Inhibiteur de l'interaction CCL7/CCR3 pour son utilisation selon la revendication 1 ou la revendication 2, caractérisé en ce qu'il s'agit d'une molécule organique choisie dans le groupe constitué par les composés de formules I à DCCLXXXIII, de préférence le composé UCB35625 de formule DLI. 4. Inhibiteur pour son utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que le sujet est un homme obèse et/ou présentant un tissu adipeux périprostatique (TAPP) abondant. 5. Méthode ex vivo de détermination du degré d'agressivité d'une tumeur du cancer de la prostate chez un sujet atteint d'un cancer de la prostate, comprenant les étapes suivantes : a) déterminer la concentration ou le niveau d'expression du récepteur CCR3 dans un échantillon de cellules prostatiques tumorales obtenues chez ledit sujet, b) comparer la concentration ou le niveau d'expression du récepteur CCR3 détetminée à l'étape a) avec la concentration ou le niveau d'expression de référence du récepteur CCR3 dans l'épithelium prostatique sain, une concentration ou un niveau d'expression du récepteur CCR3, dans ledit échantillon de cellules prostatiques tumorales dudit sujet, supérieure à ladite concentration ou dudit niveau d'expression de référence étant l'indication d'une tumeur agressive du cancer de la prostate à haut potentiel de dissémination extraprostatique.8 6. Méthode selon la revendication 5, caractérisée en ce que la mesure de la concentration du récepteur CCR3 dans un échantillon de cellules prostatiques et/ou de cellules de l'épithélium prostatique est effectuée en mettant en oeuvre une méthode immunologique appropriée au moyen d'au moins un anticorps spécifique du récepteur CCR3. 7. Méthode selon la revendication 5 ou la revendication 6, caractérisée en ce ledit sujet est un homme obèse et/ou présentant un TAPP abondant. 8. Utilisation d'un anticorps spécifique du récepteur CCR3 pour déterminer le degré d'agressivité d'une tumeur du cancer de la prostate chez un sujet atteint d'un cancer de la prostate.10