FR 3019384 A1 20151002 FR 1452534 A 20140325 B13302 1 RÉACTEUR IMPLANTABLE BIOCOMPATIBLE Domaine La présente invention concerne un réacteur implantable in vivo, au niveau duquel est susceptible de se produire une réaction entre des éléments confinés dans ce réacteur et des composés présents dans l'organisme hôte. Cette réaction peut par exemple conduire à une déformation du réacteur, à la génération d'un potentiel électrique, ou à la transformation chimique du composé interagissant avec le réacteur. Un réacteur conduisant à la génération d'un potentiel 10 électrique pourra constituer une électrode d'une biopile ou d'un biocapteur, de type à sucre-oxygène, par exemple à glucose-oxygène. Un réacteur conduisant à la transformation chimique d'un composé interagissant avec le réacteur constituera par 15 exemple un destructeur de glucose (glucose killer) en transformant par exemple du glucose en un composé qui sera éliminé par l'organisme. Bien que l'invention et l'état de la technique soient décrits ici principalement dans le cas de bioélectrodes d'une 20 biopile, on comprendra que l'invention s'applique de façon générale à tout réacteur implantable in vivo. B13302 2 Exposé de l'art antérieur Divers types de biopiles à glucose-oxygène sont décrits dans l'art antérieur, par exemple dans la demande de brevet PCT/FR2009/050639 (B8606). Dans ces biopiles connues, chaque électrode, anode et cathode, correspond à une enceinte contenant un milieu liquide dans lequel plonge un fil d'électrode. Les enceintes d'anode et de cathode sont délimitées par des membranes pouvant être traversées par l'hydrogène et l'oxygène mais évitant la circulation d'autres éléments plus lourds. L'anode comprend dans une solution une enzyme et un médiateur redox. L'enzyme est apte à catalyser l'oxydation du sucre et est par exemple choisie dans le groupe comprenant glucose-oxydase si le sucre est du glucose et lactose-oxydase si le sucre est du lactose. Le médiateur redox a un potentiel redox bas susceptible d'échanger des électrons avec l'enzyme d'anode et est par exemple choisi dans le groupe comprenant : ubiquinone (UQ) et ferrocène. La cathode comprend également dans une solution une enzyme et de préférence un médiateur redox. L'enzyme est apte à catalyser la réduction de l'oxygène et est par exemple choisie dans le groupe comprenant : polyphénol oxydase (PPO), laccase et bilirubine oxydase. Le médiateur redox a un potentiel redox haut susceptible d'échanger des électrons avec l'enzyme de cathode et est par exemple choisi dans le groupe comprenant : hydroquinone (QH2) et 2,2'-azinobis-(3-éthylbenzo-thiazoline-6-sulfonate) (ABTS). Il se produit alors au niveau de l'anode et de la cathode des réactions du type suivant : Cathode : QH2 + 1/2 02 PPO>Q + H2O Anode : glucose + UQ GKEK>gluconolactone + UQH2 Cathode : Q + 2H+ + 2e--*QH2 Anode : UQH2-÷UQ + 2H+ + 2e- ces réactions étant données dans le cas particulier où le sucre est du glucose, l'enzyme d'anode est de la glucose-oxydase B13302 3 (GOX), le médiateur redox d'anode est de l'ubiquinone (UQ), l'enzyme de cathode est de la polyphénol oxydase (PPO), et le médiateur redox de cathode est de la quinhydrone (QH2). On obtient alors un potentiel d'anode de 20 mV et un potentiel de cathode de 250 mV, ce qui conduit à une différence de potentiel à courant nul de la biopile de 230 mV. De telles biopiles fonctionnent convenablement mais, notamment en ce qui concerne la biopile décrite dans la demande de brevet PCT/FR2009/050639, nécessitent que des conducteurs 10 d'anode et de cathode trempent dans des enceintes contenant des liquides appropriés, ce qui constitue un inconvénient pratique dans de nombreux cas et rend notamment très difficile sinon impossible d'implanter de telles biopiles dans un être vivant. En effet, on cherche à implanter de telles biopiles 15 dans des êtres vivants, notamment pour alimenter divers actionneurs, tels que des stimulateurs cardiaques, des sphincters artificiels, ou même des coeurs artificiels. On a proposé des biopiles à électrodes solides. Toutefois, des biopiles utilisant de telles électrodes, 20 notamment quand elles sont implantées dans un être vivant, ont présenté une faible durée de vie. Une biopile à glucose d'oxygène implantable in vivo est décrite notamment dans le brevet européen EP 2 375 481 de la demanderesse (B10272). 25 Dans ce brevet, il est proposé de fabriquer des pastilles d'anode et de cathode d'une biopile à partir d'une compression d'un conducteur tel que du graphite et d'une enzyme 30 auxquels est ajouté un médiateur redox. La cathode et l'anode, ainsi que de préférence l'ensemble de l'anode et de la cathode, sont entourés d'une enceinte semi-perméable, par exemple du type utilisé en dialyse, pour laisser passer le glucose et l'oxygène et ne pas laisser passer les enzymes et les médiateurs redox. Le 35 matériau conducteur à partir duquel sont effectuées la compres- B13302 4 sion d'anode et la compression de cathode est indiqué comme étant du graphite ou un polymère conducteur. La figure 1 ci-jointe reproduit la figure 2 de ce brevet antérieur. On y voit une pastille d'anode A et une pastille de cathode K solidaires respectivement de conducteurs 1 et 3. L'anode est entourée d'une membrane semi-perméable 11, la cathode d'une membrane semi-perméable 12 et l'ensemble est entouré d'une membrane semi-perméable 13. Des résultats expérimentaux in vivo satisfaisants ont 10 été obtenus avec les électrodes de biopile décrites dans ce brevet. Il est toutefois souhaitable d'améliorer encore la durée de vie des électrodes, c'est-à-dire la durée de fonctionnement de la biopile et d'améliorer au maximum la 15 biocompatibilité de cette pile. Plus généralement, il est souhaitable d'améliorer la durée de vie de bioréacteurs tels que définis ci-dessus. Résumé Ainsi, on prévoit ici un bioréacteur obtenu par 20 compression d'un mélange d'une enzyme, d'un conducteur et de chitosane. Selon un mode de réalisation, le conducteur est constitué de nanotubes de carbone. On prévoit aussi un procédé de fabrication d'un 25 bioréacteur comprenant les étapes suivantes : préparer un mélange de poudres dans laquelle la proportion de poudre d'enzyme par rapport à une poudre de nanotubes de carbone est de l'ordre de 50/50 en poids ; préparer une solution visqueuse de chitosane dans un 30 rapport de 5 à 15 (en mg) de chitosane à 0,75 à 1,25 (en ml) d'acide acétique dilué à 0,4 à 0,6 % en volume dans de l'eau ; ajouter au mélange de poudres la chitosane visqueuse dans une proportion pondérale de 3 à 5 pour la poudre à 5 à 10 pour la chitosane ; B13302 procéder à une première compression puis à un broyage léger ; procéder à une deuxième compression pour réaliser une pastille ; et 5 sécher à température ambiante. Selon un mode de réalisation, la pression appliquée pendant la deuxième compression est située dans une plage de 2000 à 6000 kPa. Selon un mode de réalisation, la solution comprend de 0,002 à 0,005 % en masse par volume de génipine. Selon un mode de réalisation, la solution comprend de 0,001 à 0,005 % en masse par volume d'acide caféique. On prévoit aussi un bioréacteur dans lequel une membrane poreuse à base de chitosane est posée sur la face 15 active et collée à la périphérie de celle-ci. Selon un mode de réalisation, le bioréacteur constitue une bioélectrode en forme de pastille, dans laquelle un conducteur est collé par l'intermédiaire d'une colle conductrice à la face de la pastille opposée à la face active. 20 Selon un mode de réalisation, la membrane comprend des pores d'un diamètre moyen de l'ordre de 1 à 10 nanomètres. Selon un mode de réalisation, la membrane comprend une face lisse tournée vers la pastille et une face rugueuse tournée vers l'extérieur. 25 On prévoit aussi un procédé de fabrication d'une membrane poreuse pour un bioréacteur, comprenant les étapes suivantes : préparer une solution dans un rapport de 5 à 15, (en mg) de chitosane à 0,75 à 1,25 (en ml) d'acide acétique dilué à 30 0,4 à 0,6 % dans de l'eau ; agiter ; verser sur un support lisse ; et sécher pendant une durée de 2 à 4 jours à température ambiante. B13302 6 Brève description des dessins Ces caractéristiques et avantages, ainsi que d'autres, seront exposés en détail dans la description suivante de modes de réalisation particuliers faite à titre non limitatif en 5 relation avec les figures jointes parmi lesquelles : la figure 1 correspond à la figure 2 du brevet européen EP 2 375 481 ; les figures 2A et 2B sont respectivement une vue en coupe et une vue de dessus d'un mode de réalisation d'une 10 électrode ; et la figure 3 représente des caractéristiques de courant en fonction du temps de diverses biopiles. Description détaillée Tout d'abord, on prévoit ici de fabriquer une pastille 15 de bioélectrode non pas à partir de la compression de seulement un conducteur et une enzyme, mais à partir d'une compression de chitosane, d'une enzyme et d'un conducteur et éventuellement d'un médiateur redox et d'autres additifs. Le conducteur peut avantageusement être constitué de nanotubes de carbone 20 multiparois (MWCNT - MultiWalled Carbon NanoTubes). On prépare initialement un mélange de poudres d'une enzyme et de nanotubes de carbone, la proportion de poudre d'enzyme par rapport à la poudre de nanotubes de carbone étant de l'ordre de 50/50 en poids, cette proportion pouvant varier 25 environ 20 %. On prépare également une solution visqueuse de chitosane en ajoutant de la poudre de chitosane dans de l'acide acétique dilué à 0,5 % en volume chauffé à 50°C, et en agitant pendant 2 heures à température ambiante. 30 On ajoute au mélange de poudres la chitosane visqueuse dans une proportion pondérale de 2 pour la poudre à 3 pour la chitosane. Pour une pastille on utilisera par exemple 0,04 gramme de poudre et 0,06 gramme de chitosane. On réalise un mélange de la poudre et de la chitosane 35 à l'état visqueux et on procède à une première compression puis B13302 7 à un broyage léger. On réalise ensuite une deuxième compression à une pression choisie dans une plage de 2000 à 6000 kPa pour fournir une pastille, puis on procède à un séchage pendant deux à quatre jours à température ambiante (20 à 30°C) pour que l'ensemble se polymérise. On pourra ajouter au mélange initial un agent de réticulation, par exemple de la génipine à 0,0045 % en masse par volume (g/100 ml) dans la solution visqueuse de chitosane après 2h d'agitation. La génipine est préalablement solubilisée dans une solution de 12 % de diméthylsulfoxyde (DMSO) et 88 % d'eau (H20) . On pourra également pour améliorer la résistance de la membrane aux acides ajouter au mélange initial un produit tel que de l'acide caféique dans une proportion de 0,0032 % en masse par volume (g/100 ml) dans la solution visqueuse de chitosane. L'acide caféique est préalablement solubilisé à 4 % dans de l'éthanol. On laisse agiter la solution 30 min avant de prélever 3 g à étaler sur le support lisse pour le séchage comme décrit précédemment. Une caractéristique du procédé décrit ici est que, lors de la deuxième compression et du séchage, la chitosane se met en fibres longues interconnectées d'un diamètre d'environ 30 nm. On soulignera le fait qu'un réseau tridimensionnel nanofibreux et nanoporeux est obtenu simplement par compression du polymère avec la poudre et évaporation du solvant à température ambiante. Il en résulte que l'enzyme et les nanotubes de carbone sont immobilisés dans la matrice de fibres de chitosane et ne migrent pas vers l'extérieur de la pastille. Ceci présente un avantage important car l'enzyme, piégée par la matrice de fibres, reste protégée et active pendant une longue durée. De plus, il convient de piéger les nanotubes de carbone, des questions se posant actuellement sur la nocivité éventuelle des nanotubes de carbone in vivo. Une biocathode comprenant seulement un conducteur et une enzyme, telle que décrite dans le brevet antérieur 35 susmentionné, présente une stabilité de 1 mois en fonctionnement B13302 8 discontinu. Une biocathode à base de chitosane-MWCNT-laccase, telle que décrite ici, présente une stabilité supérieure à 2 mois en fonctionnement continu. Des mesures in vitro montrent que la stabilité en fonctionnement discontinu de la biocathode décrite ici dépasse les six mois. De plus cette stabilité est aussi assurée in vivo pour une période supérieure à 200 jours. Ceci démontre que la bioélectrode décrite ici offre à l'enzyme un environnement protecteur à son activité mais aussi retient l'enzyme à l'intérieur de la pastille d'électrode et à proximité des nanotubes de carbone pour la conduction électrique. La porosité de la matrice tridimensionnelle de chitosane permet une bonne diffusion des substrats de l'enzyme. A titre de variante, au lieu d'utiliser des nanotubes de carbone, on pourra utiliser comme conducteur du graphène, de 15 la poudre d'or ou un polymère conducteur tel que de la polyaniline. Des modes de réalisation particuliers ont été décrits. Diverses variantes et modifications apparaîtront à l'homme de l'art. En particulier, le polymère peut être de la chitosane ou 20 autre polymère biocompatible par exemple : alcool polyvinylique, poly(méthylméthacrylate), gélatine, dextrane, ou copolymères comme le chitosane-polyéthylène glycol ou un mélange de ces polymères. Le procédé de fabrication des électrodes à base de 25 polymère conducteur et d'enzyme peut être appliqué à la cathode ou à l'anode. Différentes enzymes peuvent être immobilisées dans cette structure laccase, bilirubine-oxydase, polyphénol- oxydase, glucose-oxydase, glucose-déshydrogénase, catalase, peroxydase. 30 Selon un autre aspect de la présente invention, on prévoit une membrane filtrante particulière pour une bioélectrode enzymatique telle que ci-dessus ou toute autre bioélectrode enzymatique obtenue par compression d'un conducteur, d'une enzyme et éventuellement d'un médiateur redox 35 - le médiateur redox n'étant pas indispensable dans la cathode. B13302 9 Comme l'illustrent les figures 2A et 2B, l'électrode se présente sous forme d'une pastille 20 ayant par exemple une forme circulaire en vue de dessus, un diamètre de 0,5 à 1 cm et une épaisseur de 0,5 à 2 mm. Sur la face inférieure de la 5 pastille 20 est fixé un ruban conducteur 22 par exemple par une colle conductrice, par exemple une pâte de carbone 24 elle-même revêtue d'une couche protectrice de colle au silicone 25, choisie parmi des colles biocompatibles. Sur la face supérieure de la pastille 20 est posée - et non pas déposée - une membrane 10 26 collée à sa périphérie à la pastille par un anneau de colle au silicone 28. On prévoit ici d'utiliser pour la membrane 26 une membrane à base de chitosane. Cette membrane est par exemple obtenue en partant d'une solution dans un rapport de 5 à 15, par 15 exemple 10 (en mg) de chitosane à 0,75 à 1,25, par exemple 1 (en ml) d'acide acétique dilué à 0,4 à 0,6 % en volume dans de l'eau et chauffé à 50°C. Dans un essai, on a réalisé une dissolution de 200 mg de chitosane dans 20 ml d'acide acétique dilué à 0,5 % en volume dans de l'eau. Ce mélange est agité pendant deux 20 heures. Ensuite, on a prélevé 3 g de ce mélange qu'on a étalé sur un support lisse non adhésif (diamètre 28 cm), par exemple une coupelle de polystyrène antistatique, et séché pendant une durée de 2 à 4 jours à température ambiante, par exemple à une température de 20 à 30°C. Dans un essai, on a séché pendant 25 trois jours à 25°C. On obtient ainsi un film nanoporeux flexible. Des expériences effectuées par la demanderesse ont montré que cette flexibilité était liée au fait que le séchage est effectué pendant une longue durée à température ambiante. Cette 30 caractéristique n'est pas obtenue par exemple si l'on utilise des températures de séchage supérieures à 40°C. Pour une épaisseur de film de l'ordre de 7 à 15 pin, par exemple 10 pin, on a obtenu une membrane poreuse avec des diamètres moyens de pores de l'ordre de 1 à 10 nanomètres. On préfèrera se placer dans des 35 conditions où ce diamètre moyen est de l'ordre de 5 à 8 nm pour B13302 10 permettre de laisser passer le glucose et de filtrer les composés de plus grandes dimensions. Comme dans le cadre de la réalisation d'une pastille, on pourra ajouter au mélange initial un agent de réticulation, 5 par exemple de la génipine, et un agent de résistance aux acides, par exemple de l'acide caféique. Le film obtenu présente une différence de rugosité entre les deux faces qui est due au fait que l'une des faces (la plus rugueuse) a été au contact de l'air et non du support (face 10 lisse). Lors du montage, on placera de préférence la face rugueuse vers l'extérieur par rapport à la surface de la pastille de bioélectrode. En effet, la différence de rugosité sur un film mince influence la diffusion ionique et par conséquent, la résistivité électrique. Les inventeurs ont montré 15 que le film de chitosane présente une bonne conductivité ionique (10-4 S.cm-1). Cette conductivité ionique est meilleure que celle obtenue avec des membranes commerciales telles que le Nafion ou l'acétate de cellulose. Le film de chitosane décrit ici permet, par ses 20 propriétés mécaniques notamment sa flexibilité et son taux de gonflement adéquat, de conférer une stabilité mécanique à l'électrode en épousant la surface de la pastille après gonflement de celle-ci dans le liquide. Il confère une interface biocompatible au contact des tissus après implantation de la 25 biopile. Il constitue une barrière efficace contre un éventuel relargage des constituants de l'électrode d'une part, et contre les molécules biologiques venant du liquide extra-cellulaire. On pourra régler le diamètre des pores en modifiant : la concentration de la chitosane dans le solvant (acide 30 acétique), le ratio chitosane/agent de réticulation, le poids moléculaire de la chitosane en poudre mis dans la solution initiale d'acide acétique. La figure 3 représente une caractéristique de courant en mA/m1 (les millilitres correspondant au volume de la 35 pastille) en fonction du temps en jours pour diverses biopiles. B13302 11 La courbe A correspond au cas où on a utilisé une membrane d'acétate de cellulose, la courbe B au cas où on a utilisé une membrane de Nafion, et la courbe C au cas où on a utilisé une membrane à base de chitosane telle que décrite précédemment. On constate que le courant (négatif) est nettement plus important dans le cas de la membrane à base de chitosane et que les caractéristiques de la biocellule ne se dégradent pas, bien au contraire, en fonction du temps. Par contre, on note que pour l'acétate de cellulose, la caractéristique part d'une valeur de -0,15 et chute à une valeur de l'ordre de -0,05 au bout d'environ 70 jours. Avec une membrane en Nafion, on obtient une caractéristique relativement constante mais des densités de courant deux à trois fois plus faibles qu'avec une membrane à base de chitosane. Bien que l'invention et l'état de la technique soient décrits ici principalement dans le cas d'une bioélectrode, on comprendra que l'invention s'applique de façon générale à tout bioréacteur implantable in vivo, tel que défini en tête de la présente description. REVENDICATIONS1. Bioréacteur obtenu par compression d' tin mélange d'une enzyme, d'un conducteur et de chitosane. 2. Bioréacteur selon la revendication 1, dans lequel le conducteur est constitué de nanotubes de carbone. 3. Procédé de fabrication d'un bioréacteur selon la revendication 1 ou 2, comprenant les étapes suivantes préparer un mélange de poudres dans laquelle la proportion de poudre d'enzyme par rapport à une poudre de nanotubes de carbone est de l'ordre de 50/50 en poids ; préparer une solution visqueuse de chitosane dans un rapport de 5 à 15 (en mg) de chitosane à 0,75 à 1,25 {en ml) d'acide acétique dilué à 0,4 à 0,6 % en volume dans de l'eau ; ajouter au mélange de poudres la chitosane visqueuse dans une proportion pondérale de 3 à 5 pour la poudre à 5 à 10 pour la chitosane ; procéder à une première compression puis à un broyage léger ; procéder à une deuxième compression pour réaliSer une pastille ; et sécher à température ambiante. 4. Procédé selon la revendication 3, dans lequel la pression appliquée pendant la deuxième compression est située dans une plage de 2000 à 6000 kPa. 5. Procédé de fabrication d'une membrane selon la 25 revendication 3 ou 4, dans lequel la solution comprend de 0,002 à 0,005 % en masse par volume de génipine. 6. Procédé de fabrication d'une membrane selon la revendication 3 ou 4, dans lequel la solution comprend de 0,001 à 0,005 % en masse par volume d'acide caféique. 30 7. Bioréacteur selon la revendication T ou 2, dans lequel une membrane poreuse (26) à base de chitosane est posée sur une face active du bioréacteur et collée à la périphérie de celle-ci.B13302 13 8 Bioréacteur selon la revendication 7 constituant une bioélectrode en forme de pastille (20), dans laquelle un conducteur (22) est collé par l'intermédiaire d'une colle conductrice (24) à la face de la pastille opposée à la face active. 9. Bioréacteur selon la revendication 7 ou 8, dans lequel la membrane comprend des pores d'un diamètre moyen de l'ordre de 1 à 10 nanomètres. 10. Bioréacteur selon l'une quelconque des revendications 7 à 9, dans lequel la membrane comprend une face lisse 10 tournée vers la pastille et une face rugueuse tournée vers l'extérieur. 11. Procédé de fabrication d'une membrane poreuse pour un bioréacteur selon l'une quelconque des revendications 7 à 9, comprenant les étapes suivantes : 15 préparer une solution dans un rapport de 5 à 15, (en mg) de chitosane à 0,75 à 1,25 (en ml) d'acide acétique dilué à 0,4 à 0,6 % dans de l'eau ; agiter ; verser sur un support lisse ; et 20 sécher pendant une durée de 2 à 4 jours à température ambiante.