FR 3022916 A1 20160101 FR 1456117 A 20140630 PROCEDE DE DETECTION D'UNE PRESENCE OU D'UNE ABSENCE DE PARTICULES BIOLOGIQUES. [0001] L'invention porte sur un procédé de détection d'une présence ou d'une absence d'au moins une première zone d'inhibition que comprend une culture de particules biologiques sur un milieu de culture en présence d'un agent chimique, le procédé de détection comprenant une première étape d'ensemencement du milieu de culture avec les particules biologiques, une deuxième étape de réception par le milieu de culture de l'agent chimique et une troisième étape d'incubation du milieu de culture. [0002] Le document WO 2011/125033 décrit un procédé de détection d'un amas de particules biologiques sur une surface. Les particules biologiques sont choisies parmi des microorganismes, tels que des bactéries, des levures ou des champignons, voire parmi des cellules végétales ou animales. Les particules biologiques présentent un diamètre ou une dimension principale typiquement inférieure ou égale à 100 pm. La surface est choisie parmi une interface entre un milieu de culture et un milieu environnant, tel que l'air, une surface d'un substrat fonctionnalisé ou une surface d'une membrane microporeuse. [0003] Le procédé comporte une pluralité d'étapes dont une première étape consistant à déterminer une représentation topographique de la surface et une deuxième étape consistant à détecter sur la représentation topographique un contour délimitant une région susceptible de correspondre à un amas de particules biologiques, notamment des colonies bactériennes, ces étapes étant mises en oeuvre à l'aide d'un moyen électronique de traitement de données. [0004] La première étape est mise en oeuvre à partir d'un procédé optique effectué sans contact et sans préparation de l'échantillon. Selon une première variante, la première étape est mise en oeuvre par microtopographie confocale chromatique. Selon une deuxième variante, la première étape est mise en oeuvre par strioscopie ou par ombroscopie. Plus particulièrement, la première étape comporte une phase d'éclairement par une source lumineuse de la surface dont une représentation tridimensionnelle doit être réalisée, une phase de détection, par un capteur de lumière, d'un signal correspondant à la lumière réfléchie ou transmise par cette surface, et une phase de détermination d'une représentation topographique tridimensionnelle de la surface à partir du signal détecté. [0005] L'éclairement de la surface peut être dirigé du milieu ambiant vers la surface. Lorsque l'éclairement n'est pas collimaté, on peut le focaliser sur la zone à mesurer. La source de lumière peut être spatialement et/ou temporellement cohérente, ou bien être incohérente. Elle peut être polychromatique ou monochromatique. La détection peut être réalisée par un capteur d'image monodimensionnel, tel qu'une barrette, ou bidimensionnel, tel qu'une matrice, de type CMOS, CCD, photomultiplicateur, photodiode, etc... Ce capteur peut avoir une fonction spectrométrique, permettant d'analyser le spectre de la lumière détectée. Il peut aussi être couplé à un diaphragme, ou trou sténopéïque, afin de constituer un dispositif de détection confocal. [0006] Les colonies bactériennes sont susceptibles d'être observées par un montage mettant en oeuvre une technique d'ombroscopie. Un faisceau lumineux parallèle traverse une boîte de Pétri contenant le milieu de culture, puis est focalisé vers un détecteur par une première lentille. Lorsqu'une colonie bactérienne se développe à la surface du milieu de culture, elle dévie le rayonnement lumineux, du fait de la variation d'altitude, et donc de la pente locale, formée à la surface. Le rayonnement dévié par une variation d'altitude, et/ou une variation d'indice, sur la surface observée n'est pas capté par le détecteur. Ce dispositif permet de détecter une pente locale sur une surface plane à analyser, se traduisant par l'apparition d'une zone sombre sur l'image formée par le détecteur. Ainsi, selon cette méthode, les colonies bactériennes apparaissent sous la forme de taches sombres sur un fond clair, ce dernier correspondant à la surface du milieu de culture. La représentation de la topographie de la surface du milieu est une représentation bidimensionnelle, c'est-à-dire une image, sur laquelle la variation d'intensité entre deux pixels adjacents traduit une variation d'altitude de la surface éclairée. [0007] Dans le domaine des diagnostics de réponse de particules biologiques à un agent chimique, tel qu'un antibiotique ou analogue, il existe un besoin de disposer d'un procédé de détection d'une présence ou d'une absence de particules biologiques qui est rapide, efficace et fiable. Plus particulièrement, il est souhaitable de disposer d'un tel procédé dont un temps de diagnostic est notamment inférieur à huit heures avec une fiabilité et une répétabilité optimisées. [0008] Un but de la présente invention est de proposer un procédé de détection d'une présence ou d'une absence de particules biologiques qui est fiable, dont la répétabilité est optimisée et qui offre un temps de réponse relatif à une présence d'un agent chimique qui est court, notamment égal à huit heures, et plus particulièrement qui est plus rapide qu'un procédé connu de l'art antérieur qui se base sur une observation à l'oail nu des particules biologiques. Un autre but de la présente invention est de proposer un dispositif de détection pour la mise en oeuvre d'un tel procédé de détection. [0009] Un procédé de la présente invention est un procédé de détection d'une présence ou d'une absence d'au moins une première zone d'inhibition que comprend une culture de particules biologiques sur un milieu de culture en présence d'un agent chimique. Le procédé de détection comprend une première étape d'ensemencement du milieu de culture avec les particules biologiques, une deuxième étape de réception par le milieu de culture d'un support imprégné de l'agent chimique, une troisième étape d'incubation du milieu de culture. [0010] Selon la présente invention, le procédé de détection comprend une quatrième étape de mesure de la première zone d'inhibition du milieu de culture qui comporte une première phase de prise d'une image de la première zone d'inhibition par ombroscopie. [0011] Selon une première forme de réalisation de la présente invention, la quatrième étape de mesure comprend une mesure d'une distance entre le support imprégné et un bord de la première zone d'inhibition. [0012] Selon une deuxième forme de réalisation de la présente invention, la quatrième étape de mesure comprend une mesure d'un diamètre de la première zone d'inhibition. Dans ce mode de réalisation, cette quatrième étape peut avantageusement être suivie d'au moins une opération d'estimation d'une concentration minimale d'inhibition, pour déterminer une susceptibilité des particules biologiques envers l'agent chimique. [0013] Le procédé de détection comprend avantageusement une cinquième étape de traitement qui comporte une deuxième phase de prise d'un cliché témoin du milieu de culture. [0014] Le cliché témoin est par exemple le cliché d'une règle disposée sur le milieu de culture. [0015] Le procédé de détection comprend avantageusement une troisième phase de superposition de l'image et du cliché témoin pour former une représentation normée. [0016] La cinquième étape de traitement comprend avantageusement une quatrième phase de localisation d'un repère de la règle. [0017] La cinquième étape de traitement comprend avantageusement une cinquième phase de traitement de la représentation normée. [0018] La cinquième phase comprend avantageusement au moins une opération de lissage pour homogénéiser la représentation normée. [0019] La cinquième phase comprend avantageusement au moins une opération de dilatation de la dynamique de l'intensité de pixels de la représentation normée pour former un histogramme d'un contraste de la représentation normée. [0020] La cinquième phase comprend avantageusement au moins une opération de seuillage de la représentation normée qui comporte une détection d'un seuil et une détermination d'un contour de la représentation normée. [0021] Le procédé de détection comprend avantageusement au moins une opération d'estimation d'une concentration minimale d'inhibition, pour déterminer une susceptibilité des particules biologiques envers l'agent chimique. [0022] La première phase de prise de l'image et la deuxième phase de prise du cliché témoin sont par exemple des phases réalisées en continu. [0023] La première phase de prise de l'image et la deuxième phase de prise du cliché témoin sont par exemple des phases réalisées à un laps de temps déterminé. [0024] Des moyens de calcul de la présente invention sont des moyens de calcul pour la mise en oeuvre d'un tel procédé de détection. [0025] Un processeur de la présente invention comprend avantageusement de tels moyens de calcul. [0026] Un dispositif de détection de la présente invention est principalement reconnaissable en ce que le dispositif de détection comprend un tel processeur. [0027] Le dispositif de détection comprend avantageusement un moyen de captation, une source lumineuse apte à produire des rayons lumineux collimatés et un foyer lumineux. [0028] Le moyen de captation comporte avantageusement un axe de captation qui est ménagé orthogonalement par rapport à un premier plan selon lequel est étendu le milieu de culture. [0029] La source lumineuse est avantageusement placée sur l'axe de captation, le milieu de culture étant interposé entre le moyen de captation et la source lumineuse. [0030] Le dispositif de détection comprend avantageusement au moins un miroir semiréfléchissant pour renvoyer les rayons lumineux émis par la source lumineuse vers le milieu de culture. [0031] D'autres caractéristiques et avantages de la présente invention apparaîtront à la lecture de la description qui va en être faite d'exemples de réalisation, en relation avec les figures des planches annexées, dans lesquelles : [0032] La figure 1 est une vue en coupe d'une boîte de Pétri utilisée pour la mise en oeuvre d'un procédé de détection de la présente invention. [0033] La figure 2 est une vue schématique du procédé de détection de la présente invention. [0034] La figure 3 est une illustration schématique de séquences du procédé de détection de la présente invention. [0035] Les figures 4, 5 et 6 sont des illustrations schématiques de dessus de la boîte de Pétri illustrée sur la figure 1 à trois temps respectifs distincts selon un premier mode de réalisation de la présente invention. [0036] Les figures 4bis, 5bis et 6bis sont des illustrations schématiques de dessus de la boîte de Pétri illustrée sur la figure 1 à trois temps respectifs distincts selon un deuxième mode de réalisation de la présente invention. [0037] Les figures 4ter, 5ter et liter sont des illustrations schématiques de dessus de la boîte de Pétri illustrée sur la figure 1 à trois temps respectifs distincts selon un troisième mode de réalisation de la présente invention. [0038] La figure 7 est une illustration schématique d'un premier mode de réalisation d'une première variante d'un dispositif de détection pour la mise en oeuvre du procédé de détection illustré sur la figure 2. [0039] La figure 8 est une illustration d'une image obtenue à partir du dispositif de détection illustré sur la figure 7. [0040] La figure 9 est une illustration schématique d'un deuxième mode de réalisation de la première variante du dispositif de détection pour la mise en oeuvre du procédé de détection illustré sur la figure 2. [0041] La figure 10 est une illustration schématique d'une deuxième variante du dispositif de détection pour la mise en oeuvre du procédé de détection illustré sur la figure 2. [0042] Les figures 11a, 11 b et 11c sont des images prises par le dispositif de détection illustré sur la figure 10 de culture d'Escherichia cou (ATCC 35218) en présence respectivement d'ampicilline, d'ampicilline-sulbactam et de piperacilline-tazobactam, à un temps de mesure T1 de deux heures. [0043] Les figures 12a, 12b et 12c sont des images prises par le dispositif de détection illustré sur la figure 10 de culture d'Escherichia cou (ATCC 35218) en présence respectivement d'ampicilline, d'ampicilline-sulbactam et de piperacilline-tazobactam, à un temps de mesure T1 de quatre heures. [0044] Les figures 13a et 13b sont des images prises par le dispositif de détection illustré sur la figure 10 de culture d'Escherichia cou (ATCC 25922) en présence d'ampicilline, respectivement à un temps de mesure T1 de deux heures et quatre heures. [0045] Les figures 14a, 14b, 14c, 14d, 14e et 14f sont des images prises par le dispositif de détection illustré sur la figure 9 de culture d'Escherichia cou (ATCC 35218) en présence d'ampicilline à un temps de mesure T1 respectif de zéro heure, deux heures, quatre heures, six heures, huit heures et vingt-quatre heures. [0046] Les figures 15a, 15b, 15c, 15d, 15e et 15f sont des images prises par le dispositif de détection illustré sur la figure 9 de culture d'Escherichia cou (ATCC 35218) en présence d'ampicilline-sulbactam à un temps de mesure T1 respectif de zéro heure, deux heures, quatre heures, six heures, huit heures et vingt-quatre heures. [0047] Les figures 16a, 16b, 16c, 16d, 16e et 16f sont des images prises par le dispositif de détection illustré sur la figure 9 de culture d'Escherichia cou (ATCC 35218) en présence de piperacilline-tazobactam à un temps de mesure T1 respectif de zéro heure, deux heures, quatre heures, six heures, huit heures et vingt-quatre heures. [0048] La figure 17 est une illustration schématique d'une évolution temporelle d'un diamètre de la zone d'inhibition d'Escherichia cou (ATCC 25922), de Staphylococcus aureus (ATCC 25923) et d'Escherichia cou (ATCC 35218) en présence d'ampicilline observées à l'aide de la mise en oeuvre du procédé de détection de la présente invention. [0049] La figure 18 est une illustration schématique d'une évolution temporelle d'un diamètre de la zone d'inhibition d'Escherichia cou (ATCC 35218) en présence d'ampicilline-sulbactam observées à l'aide de la mise en oeuvre du procédé de détection de la présente invention. [0050] Les figures 19 et 20 sont des vues schématiques d'étapes respectives du procédé de détection illustré sur la figure 2. [0051] Les figures 21 à 25 sont des illustrations schématiques d'opérations successives d'une cinquième phase du procédé de détection illustré sur la figure 2. [0052] Les figures 26 à 30 sont des illustrations schématiques de représentation normées obtenues à partir de la mise en oeuvre du procédé de détection illustré sur la figure 2. [0053] En se reportant sur les figures 1 ou 2, dans le domaine médical et/ou pharmaceutique, il est fréquent d'avoir à utiliser un procédé de détection 100 d'une présence ou d'une absence de particules biologiques 1 sur un milieu de culture 2 au contact d'un agent chimique 3. Le milieu de culture 2 reçoit successivement les particules biologiques 1, puis l'agent chimique 3 qui est apte à inhiber un développement de certaines particules biologiques 1. Les particules biologiques 1 sont choisies indifféremment parmi des microorganismes, tels que des bactéries, des levures ou des champignons, voire parmi des cellules végétales ou animales. Le milieu de culture 2 est préférentiellement une gélose, une couche d'agar ou analogue. L'agent chimique 3 est notamment un antibiotique, un antifongique, un antimycobactérien ou un composé analogue. [0054] Plus particulièrement, il est souhaitable de pouvoir caractériser de manière fiable et rapide une réponse des particules biologiques 1 à la présence de l'agent chimique 3, une telle réponse étant classifiée couramment selon l'une des trois affirmations suivantes : susceptible, intermédiaire ou résistant. Par « susceptible », on entend qu'une croissance, voire une survie, des particules biologiques 1 en présence de l'agent chimique 3 est impossible, à partir d'une certaine concentration d'agent chimique 3. Par « intermédiaire », on entend qu'une croissance des particules biologiques 1 en présence de l'agent chimique 3 est compromise, à partir d'une certaine concentration d'agent chimique 3. Par « résistant », on entend qu'une croissance des particules biologiques 1 en présence de l'agent chimique 3 est possible. [0055] Un tel procédé de détection 100 trouve notamment des applications fréquentes dans le domaine des diagnostics médicaux et/ou pharmaceutiques mis en oeuvre pour la détection d'une pathologie chez un patient. Il en résulte qu'un tel procédé de détection 100 est souhaité fiable dans le sens où la nature de la réponse susvisée des particules biologiques 1 à l'agent chimique 3 est voulue certaine, sans doute et sans ambiguïté. Il en résulte aussi qu'un tel procédé de détection 100, dont des séquences successives sont illustrées sur la figure 3, est souhaité rapide avec un temps de réponse, qui s'écoule entre un temps initial To auquel les particules biologiques 1 sont mis au contact de l'agent chimique 3 et un temps de détection TX auquel ladite réponse fiable est obtenue, qui est souhaité le plus court possible, et est notamment inférieur à huit heures. Il en résulte aussi qu'il est souhaitable qu'un tel procédé de détection 100 comporte une répétabilité idoine. De tels buts sont avantageusement atteints à partir de la mise en oeuvre du procédé de détection 100 de la présente invention. [0056] Dans sa généralité, et en se reportant sur la figure 2, le procédé de détection 100 de la présente invention comprend une première étape d'ensemencement 101 du milieu de culture 2 avec un extrait de particules biologiques 1. L'extrait de particules biologiques 1 est par exemple un échantillon brut de particules biologiques 1 directement prélevé sur le patient. Dans ce cas-là, l'échantillon brut subit une phase de préculture permettant un isolement de souches de particules biologiques 1 en présence, dans le cas d'un échantillon comprenant une diversité de particules biologiques 1, et un accroissement des particules biologiques 1 sélectionnées et isolées. L'extrait de particules biologiques 1 est par exemple encore un échantillon préparé, notamment filtré, centrifugé et/ou purifié de manière similaire. L'échantillon de particules biologiques 1 présente une biomasse de particules biologiques 1 qui est suffisante pour être analysée valablement, tel qu'un étalon à la concentration de 0,5 Mac Farland. L'extrait de particules biologiques 1 est par exemple de l'urine, du sang, du liquide céphalorachidien ou un liquide biologique analogue. [0057] Le milieu de culture 2 est par exemple inondé par l'extrait de particules biologiques 1, ou bien le milieu de culture 2 est ensemencé en particules biologiques 1 par écouvillonnage, ou bien encore le milieu de culture 2 reçoit les particules biologiques à partir d'un étalement à l'aide d'un râteau de ces dernières. Puis, la boîte de Pétri 4 subit des agitations transversales pour répartir de la manière la plus homogène possible l'extrait de particules biologiques 1 sur le milieu de culture 2, puis un surnageant éventuel est retiré hors de la boîte de Pétri 4. La première étape d'ensemencement 101 peut présenter des caractéristiques distinctes de celles décrites ci-dessus sans déroger aux règles de la présente invention. [0058] Le procédé de détection 100 comprend ensuite une deuxième étape de réception 102 d'au moins une dose de l'agent chimique 3 à l'instant initial To, par exemple à partir de la mise en place d'au moins un support imprégné 5 inoculé de l'agent chimique 3 sur une zone de réception R du support imprégné 5 sur le milieu de culture 2. [0059] Le support imprégné 5 est par exemple un disque imprégné de l'agent chimique 3, le disque étant globalement conformé en une portion cylindrique de faible épaisseur. Le disque comporte une quantité en agent chimique 3 qui est globalement homogène dans son volume. [0060] Le support imprégné 5 est par exemple encore une bande longiligne, de conformation globalement rectangulaire. La bande comporte par exemple une concentration en agent chimique 3 qui suit un gradient croissant de concentration d'un petit bord à un petit bord opposé de la bande. [0061] Le support imprégné 5 est par exemple encore réduit à une gouttelette d'eau contenant l'agent chimique 3. [0062] Selon une variante de réalisation illustrée sur les figures 4, 5 et 6, le milieu de 25 culture 2 reçoit un unique support imprégné 5. La zone de réception R est préférentiellement formée d'un point central de la boîte de Pétri 4. [0063] Selon une autre variante de réalisation illustrée sur les figures 4bis, 5bis et 6bis, le milieu de culture 2 reçoit une pluralité de supports imprégnés 5',5",5-,5"", chaque support imprégné 5',5",5-,5"" comportant par exemple une concentration en agent 30 chimique 3 propre et distincte des autres supports imprégnés 5',5",5"',5"". Par exemple, un premier support imprégné 5' comporte une première concentration en agent chimique 3 qui est inférieure à une deuxième concentration en agent chimique 3 que comporte un deuxième support imprégné 5", la deuxième concentration étant inférieure à une troisième concentration en agent chimique 3 que comporte un troisième support imprégné 5-, la troisième concentration étant inférieure à une quatrième concentration en agent chimique 3 que comporte un quatrième support imprégné 5". Les zones de réception R sont en pluralité et sont par exemple formées de points équidistants du milieu de culture 2. Selon une autre variante de réalisation, chaque support imprégné 5',5",5-,5"" comporte par un agent chimique 3 distinct de celui des autres supports imprégnés 5',5",5"',5''. [0064] Selon encore une autre variante de réalisation illustrée sur les figures 4ter, 5ter et 6ter, le milieu de culture 2 reçoit une pluralité de supports imprégnés 5',5",5-,5"", qui sont chacun conformés en bande et qui sont imprégnés d'un agent chimique respectif 3. Les zones de réception R sont en pluralité et sont par exemple conformées selon des rayons respectifs de la boîte de Pétri 4. [0065] Ces variantes visent, selon les cas, à optimiser une efficacité et une rapidité d'analyse de la réponse des particules biologiques 1 à divers agents chimiques 3 et à différentes concentrations de ce dernier, avec une cadence d'analyse optimisée. Selon ces diverses variantes, il résulte de la deuxième étape de réception 102 une délivrance instantanée de l'agent chimique 3 à l'intérieur du milieu de culture 2 qui se propage à l'intérieur du milieu de culture 2 depuis le support imprégné 5,5',5",5"',5"". [0066] Le procédé de détection 100 comprend ensuite une troisième étape d'incubation 103 au cours de laquelle les particules biologiques 1 interagissent avec l'agent chimique 3 au cours d'un laps de temps défini correspondant à un temps d'incubation. Préférentiellement, une telle étape d'incubation 103 est effectuée à température constante, par exemple de 37°C, dans un environnement contrôlé. Le temps d'incubation est préférentiellement de l'ordre de quelques heures, et notamment de deux heures, ou bien quatre heures, ou bien huit heures, ou bien dix-huit heures, ou bien vingt heures, voire vingt-quatre heures. Typiquement, le temps d'incubation est équivalent aux temps d'observation T1,T2 décrits ci-dessous. [0067] En se reportant respectivement sur les figures 5, 5bis, 5ter d'une part et sur les figures 6, 6bis, 6ter d'autre part, il résulte de ces dispositions, lors d'une observation à un premier temps d'observation T1, puis à un deuxième temps d'observation T2, une formation d'au moins une première zone d'inhibition Z1 des particules biologiques 1 à l'intérieur de laquelle les particules biologiques 1 sont inhibées, dans le cas favorable où ces dernières sont sensibles à l'agent chimique 3. Dans ce cas, soit les particules biologiques 1 sont détruites, soit leur croissance est arrêtée. Dans le cas inverse, le milieu de culture 2 reste homogène avec une concentration en particules biologiques 1 globalement homogène à l'intérieur de l'ensemble du milieu de culture 2. Dans ce cas, on observe une absence de zone d'inhibition Z1, autrement dit, on observe une pousse de particules biologiques 1 en présence de l'agent chimique 3. [0068] Sur les figures 5,5bis et sur les figures 6,6bis, les zones d'inhibition Z1 sont globalement circulaires et centrées sur la zone de réception R. Chaque zone d'inhibition Z1 des particules biologiques 1 tend à s'accroître radialement depuis la zone de réception R, entre le premier temps d'observation T1 illustré sur les figures 5, 5bis, et le deuxième temps d'observation T2 illustré sur les figures 6, 6bis. [0069] Sur la figure 5ter et sur la figure 6ter, les zones d'inhibition Z1 sont globalement ellipsoïdales et réparties symétriquement de part et d'autre de la zone de réception R. Chaque zone d'inhibition Z1 des particules biologiques 1 tend à s'accroître de manière centrifuge depuis la zone de réception R, entre le premier temps d'observation T1 illustré sur la figure 5ter et le deuxième temps d'observation T2 illustré sur la figure 6ter. [0070] Le procédé de détection 100 comprend ensuite une quatrième étape de mesure 104 de la première zone d'inhibition Z1 par ombroscopie. La quatrième étape de mesure 104 comprend une phase de mesure d'une distance F qui s'étend entre la zone de réception R et un bord extrême B de la zone d'inhibition Z1. [0071] Sur les figures 6 et 6bis, la distance F est équivalente au diamètre D de la zone d'inhibition Z1. [0072] Sur la figure 6ter, la distance F est équivalente à une longueur de la zone d'inhibition Z1 prise le long du support imprégné 5. [0073] En se reportant sur les figures 7, 9 et 10, la quatrième étape de mesure 104 met en oeuvre un moyen de captation 6 de l'image 7 et une source lumineuse 8. Dans sa généralité, la source lumineuse 8 éclaire la boîte de Pétri 4 dont l'image 7 est prise soit à intervalle temporel régulier par le moyen de captation 6, soit après un laps de temps déterminé propre à chaque boîte de Pétri 4, soit en continu sur une même boîte de Pétri 4. Le moyen de captation 6 comporte un axe de captation A qui est préférentiellement ménagé orthogonalement par rapport à un premier plan P1 selon lequel est étendu le milieu de culture 2. Le moyen de captation 6 surplombe avantageusement la boîte de Pétri 4 de manière à prendre une vue de dessus du milieu de culture 2. Le moyen de captation 6 est par exemple une caméra CCD, notamment de type Basler piA2400 - 17 gm, qui est équipée d'un objectif télécentrique 11. La source lumineuse 8 est préférentiellement un illuminateur collimaté apte à produire des rayons lumineux 9 parallèles entre eux qui atteignent orthogonalement le milieu de culture 2. La source lumineuse 8 comprend une pluralité de diodes comportant une gamme d'émission indifféremment dans le rouge, le vert, le bleu et le blanc. [0074] Selon un premier mode de réalisation d'une première variante illustrée sur la figure 7, la source lumineuse 8 est disposée latéralement au-dessus de la boîte de Pétri 4. Selon un deuxième mode de réalisation de la première variante illustrée sur la figure 9, la source lumineuse 8 est disposée latéralement au-dessous de la boîte de Pétri 4. La source lumineuse 8 est associée à un foyer lumineux 8' qui permet un éclairage direct de la boîte de Pétri 4. Selon la première variante de réalisation, la source lumineuse 8 est associée à un miroir semi-réfléchissant 10 incliné à 45° pour renvoyer des rayons lumineux 9 émis par la source lumineuse 8 vers la boîte de Pétri 4. La source lumineuse 8 est par exemple du type Opto Engineering - LTCL 048 - W. Le foyer lumineux 8' est par exemple du type Opto Engineering - LTCL 24. Dans les deux cas, l'objectif télécentrique 11 est notamment de type Opto Engineering - TC23 048, comportant un champ focal de 46x38,5 mm et une distance de travail de 134,6 mm. [0075] Selon une deuxième variante de réalisation illustrée sur la figure 10, la source lumineuse 8 est centrée en-dessous de la boîte de Pétri 4 pour adresser directement les rayons lumineux 9 émis par la source lumineuse 8 vers la boîte de Pétri 4. Plus particulièrement, la source lumineuse 8 est disposée axialement par rapport à l'axe de captation A de manière à délivrer un retro-éclairage à la boîte de Pétri 4. Dans ce cas, la source lumineuse 8 est par exemple du type Opto Engineering - LTCL 024 - G dont la longueur d'onde d'émission est de 520 nm et l'objectif télécentrique 11 est par exemple du type Edmund Optics - 63733, comportant un champ focal de 8,44 x 7,07 mm et une distance de travail de 65 mm. [0076] Le moyen de captation 6, la source lumineuse 8 et éventuellement le miroir semi- réfléchissant 10 et le foyer lumineux 8' forment conjointement un dispositif de détection 12 apte à mettre en oeuvre le procédé de détection 100 de la présente invention. [0077] En se reportant sur les figures 5, 6 ,5bis, 6bis, 5ter, liter et 8, lorsque les rayons lumineux 9 traversent les premières zones d'inhibition Z1 du milieu de culture 2 exemptes de particules biologiques 1, les rayons lumineux 9 traversent le milieu de culture 2 sans être déviés, de telle sorte que l'image 7 prise par le moyen de captation 6 révèle une première portion de l'image 7 qui est claire, notamment blanche, et qui est de conformation identique aux premières zones d'inhibition Z1. Lorsque les rayons lumineux 9 traversent une deuxième zone de prolifération Z2 comportant des particules biologiques 1, ces dernières dévient les rayons lumineux 9, de telle sorte que l'image 7 prise par le moyen de captation 6 révèle une deuxième portion de l'image 2 qui est sombre, notamment noire, et qui est de conformation identique aux deuxièmes zones de prolifération Z2. Il en ressort qu'à un temps d'observation donné, un contraste entre une première zone d'inhibition Z1 et une deuxième zone de prolifération Z2 est supérieur au même contraste observé avec une méthode classique de l'art antérieur. On notera à ce stade de la description que l'image 7 illustrée sur la figure 8 est obtenue à l'aide du dispositif de détection 12 illustré sur la figure 7, les particules biologiques étant Staphylococcus aureus (ATCC 25923), l'agent chimique 3 étant la ciprofloxacine et le temps de détection TX étant de 18h. [0078] En se reportant sur les figures 11a, 11 b et 11c qui sont des images 7 de culture d'Escherichia cou (ATCC 35218) en présence respectivement d'ampicilline, d'ampicilline- sulbactam et de piperacilline-tazobactam, à un temps de mesure T1 de deux heures, et sur les figures 12a, 12b et 12c qui sont des images 7 de culture d'Escherichia cou (ATCC 35218) en présence respectivement d'ampicilline, d'ampicilline-sulbactam et de piperacilline-tazobactam, à un temps de mesure T1 de quatre heures ainsi que sur les figures 13a et 13b qui sont des images 7 de culture d'Escherichia cou (ATCC 25922) en présence d'ampicilline, respectivement à un temps de mesure T1 de deux heures et quatre heures, les dites images 7 sont des images partielles de la boîte de Pétri 4 constituées d'une bandelette 13 qui est radiale de cette dernière, la bandelette 13 s'étendant entre la zone de réception R et une extrémité périphérique E de la boîte de Pétri 4. Dans un tel cas, le procédé de détection 100 est un procédé de détection par micro-ombroscopie qui présente l'avantage d'offrir une meilleure résolution et une détection plus rapide de la première zone d'inhibition Z1. Ainsi, sur les figures 12b, 12c et 13b, la première zone d'inhibition Z1 est identifiable à un temps de détection TX de quatre heures, voire sur les figures 11b, 11c et 13a à un temps de détection TX de deux heures. Il en résulte une réponse fiable et certaine relative à la susceptibilité d'Escherichia cou (ATCC 35218) au mélange ampicilline-sulbactam et au mélange de piperacilline-tazobactam, à la résistance d'Escherichia cou (ATCC 35218) à l'ampicilline avec un temps de détection TX de quatre heures. Il en résulte une réponse fiable et certaine relative à la susceptibilité d'Escherichia cou (ATCC 25922) à l'ampicilline avec un temps de détection TX de deux heures, une telle réponse étant comparable à une méthode de référence de l'art antérieur, telle qu'une méthode d'observation à l'oail nu, mais dans un temps de détection beaucoup plus court. [0079] En se reportant sur les figures 14a, 14b, 14c, 14d, 14e et 14f qui sont des images 7 de culture d'Escherichia cou (ATCC 35218) en présence d'ampicilline à un temps de mesure T1 respectif de zéro heure, deux heures, quatre heures, six heures, huit heures et vingt-quatre heures, il est remarquable qu'une réponse fiable et certaine de la résistance d'Escherichia cou (ATCC 35218) à l'ampicilline est identifiable dès quatre heures. [0080] En se reportant sur les figures 15a, 15b, 15c, 15d, 15e et 15f qui sont des images 7 de culture d'Escherichia cou (ATCC 35218) en présence d'ampicilline-sulbactam à un temps de mesure T1 respectif de zéro heure, deux heures, quatre heures, six heures, huit heures et vingt-quatre heures, il est remarquable qu'une réponse fiable et certaine de la susceptibilité d'Escherichia cou (ATCC 35218) au mélange ampicilline-sulbactam est identifiable dès quatre heures. [0081] En se reportant sur les figures 16a, 16b, 16c, 16d, 16e et 16f qui sont des images 7 de culture d'Escherichia cou (ATCC 35218) en présence de piperacilline-tazobactam à un temps de mesure T1 respectif de zéro heure, deux heures, quatre heures, six heures, huit heures et vingt-quatre heures, il est remarquable qu'une réponse fiable et certaine de la susceptibilité d'Escherichia cou (ATCC 35218) au mélange ampicilline-sulbactam est identifiable dès quatre heures. [0082] En se reportant à nouveau sur la figure 2, les réponses susvisées des différentes particules biologiques 1 aux agents chimiques 3 sont obtenues à partir du procédé de détection 100 de la présente invention qui comprend avantageusement une cinquième étape de traitement 105 des images 7 obtenues par le dispositif de détection 12 de la présente invention. La cinquième étape de traitement 105 est réalisée à partir de la mise en oeuvre de moyens de calcul 14 comprenant par exemple des moyens d'analyse et de traitement d'images, les moyens de calcul 14 étant constitutifs d'un processeur que comprend le dispositif de détection 12. [0083] Selon une première approche de la cinquième étape de traitement 105, cette dernière comprend par exemple un filtrage gaussien des images 7, une acquisition de profils respectifs des images et une dérivation de tels profils. [0084] Selon une deuxième approche de la cinquième étape de traitement 105, cette dernière comprend par exemple un repérage de la zone de réception R, une mise de l'image en grande dynamique, un filtrage médian de cette dernière, une acquisition de profils par rotation de l'image autour de la zone de réception R, une dérivation de tels profils, un calcul d'une moyenne de profils pour déterminer la présence ou non d'une première zone d'inhibition Zl à l'intérieur de chacune des images 7. [0085] Selon l'une ou l'autre des approches susvisées, le procédé de détection 100 permet de déterminer des cinétiques de réactions d'inhibition représentant le diamètre D de la première zone d'inhibition Z1 en fonction du temps t, ces cinétiques étant illustrées sur les figures 17 et 18. Sur la figure 17, les courbes C'i, C'2, C'3 illustrent respectivement les cinétiques des réactions d'inhibition des figures 14a à 14f, des figures 15a à 15f et des figures 16a à 16f. Sur la figure 18, la courbe 02 illustre une cinétique de la réaction d'inhibition d'Escherichia cou (ATCC 35218) en présence de l'antibiotique ampicillinesulbactam, par rapport à un seuil de référence BP pour les entérobactéries vis-à-vis de cet antibiotique. Après six heures, le diamètre D mesuré est supérieur au seuil de référence BP spécifié. Il en résulte que cette souche est considérée comme étant sensible à cet antibiotique. [0086] Une troisième approche de la cinquième étape de traitement 105 est illustrée sur les figures 19 à 30. [0087] Sur la figure 19, la cinquième étape de traitement 105 comprend une deuxième phase X2 de prise d'un cliché témoin 7' d'une règle 15 disposée sur le milieu de culture 2 contenue à l'intérieur de la boîte de Pétri 4, la deuxième phase X2 étant également réalisée par le dispositif de détection 12. Puis, la cinquième étape de traitement 105 comprend une troisième phase X3 de superposition de l'image 7 et du cliché témoin 7' et plus particulièrement de leur zone de réception R respective pour former une représentation normée 7" du milieu de culture 2. [0088] Sur la figure 20, la cinquième étape de traitement 105 comprend une quatrième phase X4 de localisation d'un repère 16 de la règle 15. Sur l'exemple illustré, le repère 16 est l'indication « 256 » de la règle 15, le repère 16 étant susceptible d'être constitué d'une indication autre et relativement quelconque. Le repère 16 comporte des coordonnées cartésiennes X256 et Y256. [0089] Sur les figures 21 à 25, la cinquième étape de traitement 105 comprend une cinquième phase X5 de traitement de la représentation normée 7". [0090] Sur la figure 21, la cinquième phase X5 comprend au moins une opération de lissage pour homogénéiser la représentation normée 7". Une telle opération de lissage est par exemple réalisée à partir d'un filtrage gaussien de la représentation normée 7". De préférence, l'opération de lissage est réalisée à plusieurs reprises, sept fois notamment. [0091] Sur la figure 22, la cinquième phase X5 comprend au moins une opération de dilatation de la dynamique de l'intensité de pixels de la représentation normée 7" pour former un histogramme 17 d'un contraste de la représentation normée 7", le contraste étant à considérer entre pixels sombres et pixels clairs de la représentation normée 7". Il en résulte une détermination d'une dynamique utile 18 de la représentation normée 7". [0092] Sur la figure 23, la cinquième phase X5 comprend au moins une opération de seuillage de la représentation normée 7" qui comprend par exemple une détection d'un seuil 19 et la détermination d'un contour 20 à partir d'une binarisation de la représentation normée 7". [0093] Sur la figure 24, la cinquième phase X5 comprend au moins une opération d'estimation d'une concentration minimale d'inhibition, couramment dénommée selon l'acronyme CMI, à partir de la détermination d'une abscisse de la concentration minimale d'inhibition repérée Xcmi. [0094] Sur la figure 25, la cinquième phase X5 comprend au moins une opération de calcul de la concentration minimale d'inhibition CMI à partir de la relation [1] suivante : [0095] [1] [0096] Avec une constante « div » qui correspond à un nombre de pixels entre deux graduations de la règle 15 séparées d'un facteur 2. La constante « div » est par exemple égal à cent soixante-neuf pixels. [0097] L'ensemble de ces dispositions est tel que la concentration minimale d'inhibition CMI, qui est la concentration d'agent chimique 3 à partir de laquelle la première zone d'inhibition Z1 apparait, est déterminée avec précision, avec fiabilité, avec répétabilité et avec un temps de réponse fiable qui est court, notamment inférieur ou égal à huit heures. [0098] Sur les figures 26 et 27, sont représentées des représentations normées 7" de culture d'Escherichia cou (ATCC 25922) en présence d'ampicilline pour lesquelles il est remarquable qu'à partir de six heures la concentration minimale CMI calculée permet de caractériser la réponse d'Escherichia cou (ATCC 25922) comme susceptible à l'ampicilline. [0099] Sur la figure 28, est représentée la représentation normée 7" de culture de Staphylococcus aureus (ATCC 25923) en présence d'ampicilline pour laquelle il est remarquable qu'à partir de six heures la Concentration minimale CMI calculée permet de caractériser la réponse de Staphylococcus aureus (ATCC 25923) comme susceptible à l'ampicilline. [00100] Sur la figure 29, est représentée la représentation normée 7" de culture d'Escherichia cou (ATCC 35218) en présence d'ampicilline pour laquelle il est remarquable que Escherichia cou (ATCC 35218) est résistante à l'ampicilline en raison d'absence de première zone d'inhibition Z1. [00101] Sur la figure 30, sont représentées successivement en colonne depuis la gauche vers la droite les représentations normées 7" de culture d'Escherichia cou (ATCC 35218) en présence respectivement d'ampicilline, d'un mélange de piperacilline et de tazobactam et d'un mélange d'ampicilline et de sulbactam pour lesquelles il est remarquable que Escherichia cou (ATCC 35218) est à la fois résistant à l'ampicilline, susceptible au mélange de piperacilline et de tazobactam et intermédiaire au mélange d'ampicilline et de sulbactam, selon l'organisme EUCAST pour EUropean Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing. [00102] L'ensemble de ces dispositions est tel qu'à partir de la mise en oeuvre du procédé de détection 100 de la présente invention, une première zone d'inhibition Z1 est fiablement détectable quatre heures après la mise en présence des particules biologiques 1 et de l'agent chimique 3 en cas de susceptibilité des premières avec le dernier. REVENDICATIONS1. Procédé de détection (100) d'une présence ou d'une absence d'au moins une première zone d'inhibition (Z1) que comprend une culture de particules biologiques (1) sur un milieu de culture (2) en présence d'un agent chimique (3), le procédé de détection comprenant une première étape d'ensemencement (101) du milieu de culture (2) avec les particules biologiques (1), une deuxième étape de réception (102) par le milieu de culture (2) d'un support imprégné (5,5',5",5-,5"") de l'agent chimique (3), une troisième étape d'incubation (103) du milieu de culture, caractérisé en ce que le procédé de détection (100) comprend une quatrième étape de mesure (104) de la première zone d'inhibition (Z1) du milieu de culture (2) qui comporte une première phase (X1) de prise d'une image (7) de la première zone d'inhibition (Z1) par ombroscopie. 2. Procédé de détection (100) selon la revendication précédente, caractérisé en ce que la quatrième étape de mesure (104) comprend une mesure d'une distance (F) entre le support imprégné (5,5',5",5-,5"") et un bord (B) de la première zone d'inhibition (Z1). 3. Procédé de détection (100) selon la revendication 1, caractérisé en ce que la quatrième étape de mesure (104) comprend une mesure d'un diamètre (D) de la première zone d'inhibition (Z1). 4. Procédé de détection (100) selon l'une quelconque des revendications 2 et 3, caractérisé en ce que le procédé de détection (100) comprend une cinquième étape de traitement (105) qui comporte une deuxième phase (X2) de prise d'un cliché témoin (7') du milieu de culture (2). 5. Procédé de détection (100) selon la revendication 4, caractérisé en ce que le cliché témoin (7') est le cliché d'une règle (15) disposée sur le milieu de culture (2). 6. Procédé de détection (100) selon l'une quelconque des revendications 4 et 5, caractérisé en ce que le procédé de détection (100) comprend une troisième phase (X3) de superposition de l'image (7) et du cliché témoin (7') pour former une représentation normée (7"). 7. Procédé de détection (100) selon l'une quelconque des revendications 4 à 6, caractérisé en ce que la cinquième étape de traitement (105) comprend une quatrième phase (X4) de localisation d'un repère (16) de la règle (15). 8. Procédé de détection (100) selon l'une quelconque des revendications 4 à 7, caractérisé en ce que la cinquième étape de traitement (105) comprend une cinquième phase (X5) de traitement de la représentation normée (7"). 9. Procédé de détection (100) selon la revendication 8, caractérisé en ce que la cinquième phase (X5) comprend au moins une opération de lissage pour homogénéiser la représentation normée (7"). 10. Procédé de détection (100) selon l'une quelconque des revendications 8 et 9, caractérisé en ce que la cinquième phase (X5) comprend au moins une opération de dilatation dynamique de la représentation normée (7") qui comporte un étalage de la représentation normée (7") pour former un histogramme (17) d'un contraste de la représentation normée (7"). 11. Procédé de détection (100) selon l'une quelconque des revendications 8 à 10, caractérisé en ce que la cinquième phase (X5) comprend au moins une opération de seuillage de la représentation normée (7") qui comporte une détection d'un seuil (19) et une détermination d'un contour (20) de la représentation normée (7"). 12. Procédé de détection (100) selon l'une quelconque des revendications 3 ou 8 à 11, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une opération d'estimation d'une concentration minimale d'inhibition (CMI), pour déterminer une susceptibilité des particules biologiques (1) envers l'agent chimique (3). 13. Procédé de détection (100) selon l'une quelconque des revendications 4 à 12, caractérisé en ce que la première phase (X1) de prise de l'image (7) et la deuxième phase (X2) de prise du cliché témoin (7') sont des phases réalisées en continu. 14. Procédé de détection (100) selon l'une quelconque des revendications 4 à 12, caractérisé en ce que la première phase (X1) de prise de l'image (7) et la deuxième phase (X2) de prise du cliché témoin (7') sont des phases réalisées à un laps de temps déterminé. 15. Moyens de calcul (14) pour la mise en oeuvre d'un procédé de détection (100) selon l'une quelconque des revendications précédentes. 16. Processeur comprenant les moyens de calcul (14) selon la revendication 15. 17. Dispositif de détection (12) d'une première zone d'inhibition (Z1), caractérisé en ce que le dispositif de détection (12) comprend le processeur selon la revendication 16. 18. Dispositif de détection (12) selon la revendication 17, caractérisé en ce que le dispositif de détection (12) comprend un moyen de captation (6), une source lumineuse (8) apte à produire des rayons lumineux (9) collimatés et un foyer lumineux (8'). 19. Dispositif de détection (12) selon la revendication 18, caractérisé en ce que le moyen de captation (6) comporte un axe de captation (A) qui est ménagé orthogonalement par rapport à un premier plan (P1) selon lequel est étendu le milieu de culture (2). 20. Dispositif de détection (12) selon la revendication 18, caractérisé en ce que la source lumineuse (8) est placée sur l'axe de captation (A), le milieu de culture (2) étant interposé entre le moyen de captation (6) et la source lumineuse (8). 21. Dispositif de détection (12) selon la revendication 18, caractérisé en ce que le dispositif de détection (12) comprend au moins un miroir semi-réfléchissant (10) pour renvoyer les rayons lumineux (9) vers le milieu de culture (2).