FR 3016638 A1 20150724 FR 1450588 A 20140123 Nouvelle méthode de dépistage du cancer de la prostate La présente invention a pour objet une nouvelle méthode de diagnostic ou de dépistage du cancer de la prostate. Le cancer de la prostate est le cancer le plus fréquent en France et représente la quatrième cause de mortalité dans la population. Dans les faits, le dépistage individuel par dosage du taux d'antigène prostatique spécifique (« PSA » : « Prostate Specific Antigen ») s'est largement répandu et 70% des hommes de plus de 50 ans réalisent au moins un dosage de PSA sur une période de 3 ans (chiffres 2012 provenant de la Caisse Nationale de l'Assurance Maladie des Travailleurs Salariés). Soixante-dix mille nouveaux cas de cancer de la prostate sont diagnostiqués chaque année en France. Cependant deux grandes études randomisées, l'une américaine (« PLCO3 » : « Prostate, Lung, Colorectal and Ovarian Cancer Screening Trial), l'autre européenne (« ERSPC », « European Randomized Study of Screening for Prostate Cancer ») ont apporté des résultats contradictoires quant à l'utilité et le bénéfice du dépistage par dosage de PSA1' 2' 3. Le rapport d'orientation sur le cancer de la prostate publié en février 2012 par la Haute Autorité de Santé, et une publication dans le Bulletin du Cancer2 mettent en évidence le caractère imparfait du dosage de PSA, du toucher rectal et « l'absence à ce jour de marqueur et d'examen de dépistage ou de diagnostic permettant d'identifier précocement les formes de cancer de la prostate ». Ils soulignent également «l'importance de la recherche sur des tests de dépistage performants et des marqueurs permettant de distinguer les formes agressives des formes indolentes». Une lésion cancéreuse prostatique se traduit histologiquement par la perte de cellules basales. Actuellement, des anticorps dirigés contre des marqueurs de cellules basales (p63, CK 903, CK 5/6) sont utilisés en clinique afin de réaliser le diagnostic. Cependant leur spécificité et leur sensibilité restent limitées, et des lésions de type non cancéreux (adénoses, hyperplasie adénomateuse atypique, atrophie ou hyperplasie post atrophique) peuvent présenter une discontinuité des cellules basales, ce qui rend l'interprétation difficile5'6. A titre d'exemples de marqueurs de cellules cancéreuses prostatiques autres que le PSA envisagés à ce jour pour le diagnostic, on pourra citer AMACR®, GSTP1 méthylé® et TMPRSS2-ETS®. L'AMACR® (P504S) est le nom commercial d'un anticorps spécifique de la protéine tissulaire « a-méthylacyl CoA Racemase » qui est hyper-exprimée dans les cancers de la prostate. Cet anticorps a ainsi été développé afin d'analyser le profil d'expression dans les biopsies prostatiques. Cependant lesdits marqueurs (AMACR®, GSTP1 méthylé®, TMPRSS2-ETS (D) présentent des limites car ils sont également surexprimés dans les hyperplasies prostatiques bénignes8. D'autre part, certains cancers de la prostate ne sont pas diagnostiqués par ces marqueurs. Ainsi, aucun consensus n'a été trouvé à ce jour pour leur utilisation clinique. Le diagnostic du cancer de la prostate est réalisé actuellement par l'examen anatomopathologique d'une série de biopsies de la prostate (10 à 12 carottes de 17 mm de long obtenues par une aiguille de 18 gauge). Les prélèvements sont répartis régulièrement sous contrôle échographique sur le volume prostatique pour réaliser une cartographie. Le cancer de la prostate est hétérogène et des foyers cancéreux peuvent émerger dans l'un ou l'autre lobe prostatique ou les deux. Le diagnostic de cancer de la prostate est dépendant de la qualité du prélèvement et des modalités de sa réalisation. De plus, malgré l'observation histologique et l'analyse des marqueurs de cellules basales, certaines lésions tissulaires non cancéreuses peuvent mimer un diagnostic de cancer ou à l'inverse, une lésion cancéreuse peut échapper au diagnostic, ce qui nécessite l'addition de marqueurs tissulaires spécifiques des cellules cancéreuses prostatiques. 11 est donc d'un grand intérêt de pouvoir disposer de nouveaux outils spécifiques pour faciliter le diagnostic, l'estimation de l'agressivité tumorale et des risques individuels de progression pour orienter le choix de prise en charge du patient et éviter de laisser évoluer des lésions cancéreuses. L'un des buts de la présente invention est donc de proposer une méthode de diagnostic du cancer de la prostate ne présentant pas les inconvénients de celles proposées à ce jour. Un autre but de l'invention est de proposer une méthode de diagnostic spécifique du cancer de la prostate. Un autre but de la présente invention est de diagnostiquer un cancer de la prostate lorsque ce dernier se trouve à un stade précoce. Un autre but de l'invention est de diagnostiquer un cancer de la prostate de petite taille. La présente invention résulte de la découverte surprenante et inattendue de la surexpression au niveau tissulaire du récepteur mannose 6-phosphate cation- indépendant (dénommé ci-après RM6P-CI) dans les cellules épithéliales cancéreuses de la prostate par rapport aux cellules prostatiques saines. En effet, contre toute attente, les Inventeurs ont démontré que le RM6P-CI est surexprimé dans une large majorité des tissus prostatiques cancéreux mais qu'il ne l'est pas dans les tissus prostatiques sains. Cette découverte inattendue permet d'envisager l'intérêt du RM6P-CI en tant que marqueur spécifique en vue d'une utilisation diagnostique. Le RM6P-CI est un récepteur ubiquitaire de 300 kDa présent à la surface des cellules. Il est impliqué dans de nombreuses fonctions biologiques et principalement dans l'adressage des enzymes vers le lysosome9. Ces enzymes lysosomales disposent de résidus mannose 6-phosphate (M6P) leur permettant d'être reconnues puis internalisées par le RM6P-CI. Le RM6P-CI est aussi appelé récepteur à l'Insuline Growth Factor 2 (IGF2) puisqu'il dispose d'un site de liaison à l'IGF2 et est impliqué dans la dégradation de ce mitogène4. Lors de la carcinogenèse, le profil d'expression de nombreux gènes et protéines se trouve modifié. Dans de précédentes études réalisées sur de multiples cancers, le RM6P-CI a été caractérisé comme un gène suppresseur de tumeur. Dans les cancers du foie, du sein, du poumon, des ovaires ou encore les tumeurs adéno-corticales, le récepteur RM6P-CI présente une perte d'hétérozygotie et de nombreuses mutations somatiques10'11'12 Les modifications post-transcriptionnelles et post-traductionnelles entrainent une diminution de l'expression du récepteur RM6P-CI dans ces cancers, excepté pour le cancer du sein où sa concentration est inchangée entre tissus sains et cancéreux13. Dans les cellules cancéreuses, le rôle de suppresseur de tumeur pour le gène RM6P-CI a été validé par des expériences d'induction de surexpression14 ou à l'inverse d'inhibition de l'expression du RM6P- CI15. Dans le premier cas, la surexpression du RM6P-CI diminue la capacité des cellules à induire des tumeurs et diminue le taux de croissance tumorale. A l'inverse, l'inhibition du RM6P-CI augmente la croissance cellulaire et diminue l'index apoptotique. Il a été montré par Huang et al.16 la présence d'auto-anticorps anti-RM6P-CI chez 7 malades atteints de cancer prostatique sur 23. Cependant, ce résultat n'a pas orienté l'homme de l'art vers la recherche d'une surexpression du RM6P-CI provenant du tissu cancéreux pour deux raisons: d'une part, comme décrit précédemment le RM6P-CI était considéré comme un gène suppresseur de tumeur, dont l'expression se trouvait donc diminuée dans les cancers, et d'autre part il était clairement publié dans l'art antérieur que le meilleur marqueur circulant pronostique, le PSA, était produit par les cellules prostatiques saines et plus faiblement par les cellules cancéreuses17. Après de nombreux travaux, les Inventeurs ont surmonté un préjugé technique en montrant que le gène RM6P-CI constitue un marqueur pertinent dans le dépistage ou diagnostic du cancer prostatique. L'utilisation du nouveau marqueur de l'invention, à savoir le RM6P-CI, est spécifique du cancer de la prostate et présente de ce fait un grand intérêt pour le diagnostic dudit cancer. La présente invention a pour objet une méthode de diagnostic in vitro d'un cancer prostatique chez un sujet caractérisée en ce qu'elle comprend une étape de mesure du niveau d'expression du gène du RM6P-CI dans un échantillon biologique dudit sujet. La « méthode de diagnostic » de l'invention peut encore être dénommée « procédé de diagnostic ». Dans un mode de réalisation particulier, la méthode de l'invention est mise en oeuvre pour le diagnostic, le pronostic et/ou l'évaluation de l'évolution d'un cancer prostatique chez un sujet, une surexpression du gène RM6P-CI dans le tissu prostatique étant indicative du cancer prostatique. On entend par « diagnostic » la détermination d'une affection d'une personne atteinte par une pathologie donnée, et par « pronostic » le degré de gravité et l'évolution ultérieure d'une pathologie. Plus particulièrement, la présente invention a pour objet une méthode de diagnostic in vitro d'un cancer prostatique chez un sujet caractérisée en ce qu'elle comprend les étapes suivantes : (i) de mesure quantitative du niveau d'expression du gène du RM6P-CI dans un échantillon biologique dudit sujet ; (ii) de comparaison dudit niveau d'expression dudit sujet avec le niveau d'expression du gène du RM6P-CI d'un échantillon biologique de référence. Lorsque le niveau d'expression du RM6P-CI est plus élevé quantitativement dans l'échantillon biologique du sujet à diagnostiquer que dans l'échantillon biologique de référence, on peut conclure à un cancer de la prostate. Un niveau d'expression plus élevé signifie une expression supérieure dans au moins 10% des cellules cancéreuses, ou une expression protéique (mesurée par diverses techniques telles que le Western blots, ELISA, biocapteurs, ligands spécifiques du récepteur ou toute méthode de quantification d'une protéine ou d'un récepteur) au minimum 3 fois supérieure à celle un échantillon biologique de référence correspondant par exemple à du tissu prostatique sain. Le « sujet » au sens de la présente invention désigne un individu vertébré, en particulier un mammifère, plus particulièrement un homme. Au sens de la présente invention, on entend par « échantillon biologique », tout échantillon prélevé chez un patient, et susceptible de contenir un matériel biologique tel que défini ci après. Cet échantillon biologique peut être notamment un échantillon de sang, de sérum, de tissu, d'urines. Préférentiellement, cet échantillon biologique comprend des cellules prostatiques du patient, plus préférentiellement des cellules cancéreuses prostatiques. On dispose de cet échantillon biologique par tout type de prélèvement connu de l'homme du métier. Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, l'échantillon biologique prélevé chez le patient est issu d'une biopsie prostatique. L'« échantillon biologique de référence » est obtenu à partir de cultures cellulaires humaines ou de prélèvements tissulaires. L'échantillon biologique de référence désigne au sens de la présente invention un échantillon biologique comme défini ci-dessus issu : - d'une lignée cellulaire humaine (normale ou cancéreuse) en culture dont l'expression du gène RM6P-CI est connue pour être faible, - d'un sujet sain, à savoir ne présentant pas de cancer prostatique, - d'un sujet en rémission du cancer prostatique, ou - d'un sujet dont l'expression du gène RM6P-CI est connue et associée à un stade clinique particulier. Dans ce dernier cas, l'invention permet le suivi et le monitoring d'un patient souffrant de cancer prostatique et subissant un traitement anticancéreux. La méthode selon l'invention est encore caractérisée en ce que l'étape de mesure du niveau d'expression du gène du RM6P-CI est une étape de mesure du niveau d'expression : - des produits de transcription, en particulier l'ARNm et/ou - des produits de traduction, en particulier la protéine RM6P-CI. La mesure du niveau d'expression du gène cible du RM6P-CI peut être réalisée par n'importe quelle technique connue de l'homme du métier. Selon un mode de réalisation avantageux de l'invention, on mesure avantageusement le niveau d'expression du gène du RM6P-CI au niveau nucléique et/ou protéique, par exemple en mesurant la quantité d'ARNm transcrit et/ou en mesurant la quantité de protéine RM6P-CI à l'aide d'au moins une méthode spécifique de mesure du niveau d'expression du RM6P-CI. Les techniques permettant de détecter l'expression du gène du RM6P-CI au niveau nucléique sont bien connues de l'homme du métier. La détection peut notamment être réalisée par RT-PCR quantitative en temps réel, une technique microfluidique, une puce à ADN, le séquençage à haut débit des ARNm, ou toute technique appropriée de quantification de l'ARNm, telle que puce à ARN, méthodes LCR (« Ligase Chain Reaction »), TMA (« Transcription Mediated Amplification »), PCE (« enzyme amplified immunoassay ») et ADNb (« branched DNA signal amplification ») etc. Les techniques permettant de détecter l'expression du gène du RM6P-CI au niveau protéique sont également bien connues de l'homme du métier et peuvent notamment inclure la cytométrie en flux, l'immunohistochimie semi-quantitative, l'immunocytochimie quantitative, l'ELISA cellulaire, le test protéique Taqman(R) (Taqman(R) Protein Assay, Applied Biosystems), des puces à protéines ou anticorps couplés ou non à la spectrométrie de masse, la liaison de ligands, la détection sur biocapteurs, la détection par fibres optiques, etc. Selon un mode de réalisation avantageux de l'invention, l'étape de mesure du niveau d'expression de la protéine RM6P-CI se fait par analyse du marquage immunohistochimique du RM6P-CI dans ledit échantillon biologique dudit sujet. Cette étape permet la détection spécifique de RM6P-CI sur du matériel cytologique ou sur des coupes tissulaires. Typiquement, cette étape s'effectue sur une puce. Préférentiellement, ladite puce est une puce de type « Tissu Multi Array ». L'utilisation de puce en diagnostic permet, sur un format miniaturisé, de la taille d'une lame de verre, l'analyse et la visualisation de cibles moléculaires dans des milliers d'échantillons tissulaires simultanément, au niveau de l'ADN, de l'ARN ou de la protéine. Typiquement, l'utilisation d'une puce permet d'obtenir des profils d'expression par immunohistochimie (IHC) à partir de tissus archivés fixés, inclus en paraffine mais également à partir de tissus frais ou congelés. L'utilisation d'une telle puce tombe dans les compétences normales de l'homme du métier. Plus particulièrement, l'étape de mesure du niveau d'expression de la protéine RM6P-CI se fait à l'aide de l'anticorps polyclonal IgY 415. Cet anticorps IgY 415 a été établi chez la poulets et préalablement décrit pour l'analyse immunohistochimique 19. L'invention a encore pour objet un anticorps spécifique du RM6P-CI pour son utilisation dans une méthode de diagnostic du cancer prostatique, ledit anticorps permettant de mesurer le niveau d'expression du gène du RM6P-CI. Un autre objet de l'invention porte sur l'utilisation d'un kit comprenant au moins un réactif spécifique du produit de l'expression du gène du RM6P-CI, choisi de préférence parmi : un anticorps monoclonal ou polyclonal ; un ligand, naturel ou synthétique du RM6P-CI; tout autre type de molécules ou macro-molécules capables d'interagir de manière spécifique avec la protéine RM6P-CI ; une séquence nucléique capable de s'hybrider spécifiquement avec un fragment de l'ARNm codant pour RM6P-CI, pour le diagnostic et/ou le pronostic et/ou l'évaluation de l'évolution d'un cancer prostatique chez un sujet. La présente invention a encore pour objet une méthode de traitement thérapeutique du cancer prostatique chez un sujet, caractérisée en ce qu'elle comprend : - A) une méthode de diagnostic in vitro du cancer prostatique chez un sujet comprenant une étape de mesure du niveau d'expression du gène du RM6P-CI, - B) le traitement du cancer ainsi diagnostiqué. Typiquement, l'étape B) est une étape classique de traitement du cancer de la prostate. On peut citer à titre d'exemple: la chirurgie, la radiothérapie (telle que la radiothérapie externe et la curiethérapie), l'hormonothérapie, la chimiothérapie, le traitement par ultrasons focalisés de haute intensité, la cryothérapie, la prostatectomie, la thérapie photodynamique. Le choix de la stratégie thérapeutique mise en oeuvre dans l'étape B) dépend, entre autre, des caractéristiques du cancer telles que diagnostiquées en étape A). Les praticiens pourront également considérer d'autres critères tels que : la taille de la tumeur, l'atteinte ou non des ganglions lymphatiques voisins par des cellules cancéreuses, et/ou la présence ou non de métastases dans d'autres parties du corps, la présence de récepteurs des androgènes ou d'autres biomarqueurs (PSA, AMACR®, etc.). L'invention sera mieux comprise à la lumière des exemples non limitatifs et purement illustratifs suivants, et des figures 1 et 2. La figure 1 illustre les profils d'expression du récepteur RM6P-CI dans différents tissus prostatiques cancéreux (Fig. la) et sains (Fig. lb). L'échelle indiquée représente 500 i.tm. La figure 2 montre à plus fort grossissement deux types de marquages du RM6PCI. L'échelle indiquée représente 100 i.tm. Les figures 2a et 2b illustrent la surexpression du RM6P-CI dans les tissus prostatiques cancéreux du fait de leur marquage (coloration symbolisée par des flèches pleines) à l'aide de l'anticorps anti-RM6P-CI IgY 415. Les noyaux cellulaires sont signalés par des flèches creuses. Les figures 2c et 2d illustrent des tissus prostatiques sains. Les figures 2e et 2f illustrent l'analyse immunohistochimique de deux parties du même échantillon en l'absence (Fig. 2e) ou en présence (Fig. 2f) d'un excès du RM6P-CI afin de bloquer l'immunomarquage. Exemple : Etude de l'expression tissulaire du RM6P-CI par méthode immuno-histochimique. Cet exemple décrit de manière détaillée la technique de marquage immunohistochimique du RM6P-CI sur des lames "Tissu Multi Array" (TMA) de tissus prostatiques cancéreux ou sains. En effet, le caractère tissulaire du nouveau marqueur RM6P-CI de l'invention nécessite une analyse par immuno-marquage de biopsies prostatiques selon le même protocole que celui utilisé sur les lames TMA. Les biopsies sont réalisées en routine et finalisent le diagnostic dès lors que le toucher rectal est suspect ou que le taux de PSA total est supérieur à 4. L'urologue réalise au préalable une échographie endorectale afin de localiser l'endroit ou va être effectuée la biopsie qui est ensuite réalisée sous forme d'une série de 10 à 12 prélèvements à l'aide d'une aiguille à déclenchement automatique. La durée du prélèvement est très courte (5-15 minutes) et l'examen peu douloureux. Les complications survenant après une biopsie sont rares et un traitement antibiotique est réalisé en prévention d'une éventuelle infection. L'anatomopathologiste examine ensuite les biopsies par examen histopathologique afin d'établir ou non la présence de cellules cancéreuses et/ou par examen immunohistochimique afin d'étudier l'expression du marqueur RM6P-CI recherché. 1. Protocole du marquage L'anticorps polyclonal dénommé « anti-RM6P-CI IgY 415 » ou plus simplement « IgY 415 » dans ce qui suit, est utilisé afin de mesurer les niveaux d'expression du RM6P-CI dans les tissus prostatiques humains. Cet anticorps de haute affinité, préparé à partir d' oeufs de poule, est dirigé spécifiquement contre le récepteur purifié humain RM6P-CI18. La spécificité de cet anticorps pour le récepteur RM6P-CI a été préalablement démontrée par les études immunohistochimiques dans les cancers du sein19. L'analyse de l'expression tissulaire prostatique a été réalisée par marquage immunohistochimique du RM6P-CI sur huit lames TMA provenant du service pathologiste du CHU de Toulouse (Dr Catherine Mazerolles). Chacune de ces lames comporte 16 échantillons prostatiques cancéreux ou sains appartenant à 8 patients différents (2 échantillons par patient). Les tissus sont déparaffinés, réhydratés puis traités par du pronase à 0,1% dans une solution saline de phosphate (PBS) durant 10 mn à 37°C. Entre chaque étape les échantillons sont lavés à l'aide d'une solution de PBS-Tween 20 à 0,1%. Les peroxydases endogènes sont bloquées grâce à une solution d'eau oxygénée 1% durant 15 mn. Les lames sont ensuite incubées 30 mn à 37°C avec une solution de PBS + Gamma Globuline Bovine (BGG) 0,5% + sérum de chèvre dilué à 1/40 afin de saturer les sites aspécifiques. L'anticorps primaire IgY 415 est dilué à 1/1800 dans une solution de PBS + 0,5 % BGG et incubé sur les tissus durant une nuit à 4°C. Les anticorps IgY 415 fixés spécifiquement au RM6P-CI sont révélés à l'aide d'un anticorps secondaire polyclonal anti-poule fait chez le lapin et couplé à la peroxydase (Sigma). L'anticorps secondaire dilué à 1/300 est incubé durant 30 mn à température ambiante. Enfin, un substrat de la peroxydase, le tétrachlorure de 3,3' di- aminobenzidine (Sigma, Saint Quentin Fallavier, France), est incubé durant 20 mn et sa précipitation aboutit à un précipité marron. Les échantillons sont contre-colorés par l'hématoxyline puis déshydratés à nouveau. Les noyaux cellulaires sont ainsi colorés en violet et sont symbolisés dans la figure 2 par des flèches creuses. La surexpression du RM6P-CI est indiquée par la coloration marron et est symbolisée dans la figure 2 par des flèches pleines. 2. Quantification de l'immunomarquage Les lames ont été scannées au Nanozoomer-XR (Hamamatsu) et le marquage immunohistochimique du RM6P-CI a été analysé. Les résultats sont exprimés en fonction du pourcentage de cellules colorées et du type de coloration (périnucléaire ou dispersée dans le cytoplasme). Le tissu analysé est considéré comme positif (i.e. tissu cancéreux) si plus de 10% des cellules sont colorées en marron. Toutes les coupes de tissu sont analysées et quantifiées par deux pathologistes différents. 3. Résultats de l'analyse du marquage immunohistochimique du RM6P-CI Au total une collection de 167 échantillons de prostate humaine recueillis par prostatectomie et fixés en paraffine a été sélectionnée par un anatomopathologiste. Parmi ceux-ci, 126 échantillons étaient clairement identifiés comme tissus cancéreux et 41 étaient identifiés comme tissus non cancéreux sur la base de leur analyse histologique. Les échantillons non cancéreux comprennent 39 tissus prostatiques normaux et 2 hypertrophies bénignes. Chaque échantillon a été à la fois analysé par un pathologiste pour déterminer les scores de Gleason correspondant à la gravité du cancer et immunocoloré en utilisant un anticorps anti-M6PR (anticorps IgY 145). Les noyaux cellulaires ont été colorés par l'hématoxyline. La Figure 1 illustre les profils d'expression du récepteur RM6P-CI dans trois cancers de la prostate différents (Fig. la) et dans trois tissus prostatiques sains (Fig. lb). La différence de marquage immunohistochimique du RM6P-CI entre les tissus sains et cancéreux est très importante à ce grossissement. Dans les tissus sains, seul le marquage des noyaux par l'hématoxyline est visible. La Figure 2 montre à un plus fort grossissement les caractéristiques du marquage immunohistochimique par l'anticorps anti-RM6P-CI. Les tissus prostatiques cancéreux sont marqués de manière différente puisque la coloration des tissus de cancer de la prostate a indiqué deux types de marquage forts (deux profils d'expression) considérés comme positifs (Fig. 2a et 2b). Le premier type de coloration, observé dans 23% des échantillons, est granulaire et périnucléaire. Cette coloration est la plus classique (Fig. 2a) et est généralement observée dans les tissus normaux riches en RM6P13' 14, 15 Le deuxième type de coloration, observé dans 61% des échantillons, est également granulaire mais plus diffusé dans le cytoplasme de la cellule (Fig. 2b). Ces deux types de marquages indiquent une surexpression des RM6P-CI. En revanche, les cellules épithéliales ne sont pas colorées dans les tissus prostatiques normaux, ce qui suggère que la surexpression est spécifique des cellules malignes (Fig. 2c, 2d). En conclusion des figures 1 et 2, on note de manière surprenante que les cellules épithéliales des tissus prostatiques sains ne sont pas marquées par l'anticorps, ces tissus expriment donc peu le RM6P-CI, tandis que les tissus prostatiques cancéreux surexpriment le récepteur RM6P-CI. Le tableau 1 ci-dessous indique le pourcentage de cellules marquées dans des tissus prostatiques cancéreux et sains. Tableau 1 % de cellules R6MP-CI Tissu prostatique Tissu prostatique marquées cancéreux (126) (%) non cancéreux (41) % 0 - 3 % 0(0) 41 (100) 3 - 10 % 20(16) 0(0) 10 - 30 % 28 (22) 0 (0) 30 - 60 % 39 (31) 0 (0) 60 -100 % 39 (31) 0 (0) Pour rappel, un taux supérieur de 10% de cellules marquées a été fixé par les Inventeurs comme indicateur d'un tissu prostatique cancéreux. Les cellules marquées sont encore désignées par « cellules RM6P-CI marquées » ou « cellules RM6P-CI colorées ». Sur 126 échantillons prostatiques cancéreux, 106 échantillons au total - soit 84% d'échantillons prostatiques cancéreux - présentent plus de 10% de cellules marquées. Sur 31% d'échantillons prostatiques cancéreux, plus de 60% des cellules sont marquées. En contraste, sur l'ensemble des 41 échantillons sains, moins de 3% des cellules sont marquées. Le tableau 2 ci-dessous indique la surexpression du récepteur RM6P-CI (% RM6P-CI positif) dans 126 échantillons prostatiques cancéreux en fonction du grade de Gleason. Le terme « % RM6P-CI positif » indique que le pourcentage d'échantillons possédant un taux de cellules marquées pour le RM6P-CI est supérieur à 10%. La gravité et le risque d'évolution des cancers de la prostate sont estimés notamment grâce au grade de Gleason encore appelé score de Gleason (Score allant de 2 à 10) prenant en compte la modification de la morphologie des glandes prostatiques vers une indifférenciation croissante. Tableau 2 Grade de Gleason (nombre d'échantillons) % RM6P-CI positif Grade 4 (2) 100 Grade 5 (8) 75 Grade 6 (30) 90 Grade 7 (56) 80 Grade 8 (23) 83 Grade 9 (6) 100 Grade 10 (1) 100 Total : 126 échantillons 84% L'analyse du marquage immunohistochimique du RM6P-CI selon les scores de Gleason indique que le RM6P-CI est surexprimé (coloration positive) aussi bien pour des faibles grades de cancer (tel que le grade 4) que pour des forts grades de cancer (tel que le grade 10). En conclusion, l'analyse immunohistochimique de 126 cancers de la prostate montre une surexpression du RM6P-CI dans 84 % des cas alors que la surexpression de ce récepteur est non détectable dans 41 biopsies prostatiques saines ou hyperplasiques bénignes. Ces résultats permettent d'envisager le RM6P-CI pour son utilisation comme biomarqueur dans le diagnostic d'un cancer prostatique chez un sujet. 4. Spécificité de l'immunomarquage Afin de valider la spécificité de l'immunomarquage et les résultats obtenus, une expérience de réversion du marquage immunohistochimique a été réalisée par saturation préalable de l'anticorps IgY 415 par un excès d'antigène RM6P-CI. Des échantillons de tissus prostatiques cancéreux, fournis par le Dr Xavier Rébillard (Clinique Beausoleil, Montpellier), ont été fixés par du paraformaldéhyde 4%, inclus en paraffine et coupés au microtome Leica (Leica Biosystems) en sections de 5 !lm d'épaisseur. Deux sections consécutives d'un même échantillon ont été utilisées. Le protocole de marquage reste identique mais l'anticorps IgY 415 (1/1000) est incubé au préalable pendant 90 mn à 37°C avec une solution de RM6P-CI fortement concentrée (1,24 mg/ml) dans du PBS ou avec une solution de PBS contenant 1,24 mg/ml de gamma-globuline bovine (témoin). L'analyse des deux conditions a permis de valider la spécificité du marquage RM6P-CI car la saturation de l'anticorps IgY 415 avec un excès de récepteur RM6P- CI a bloqué la coloration immunohistochimique (Fig. 2f) observée sur la lame témoin (Fig. 2e). Conclusion: L'expression du RM6P-CI a précédemment été observée dans des lignées de cellules cancéreuses isolées en culture, y compris dans une lignée cancéreuse prostatique16. Il a ainsi été montré dans Huang et a/.16 que la lignée cellulaire cancéreuse prostatique LNCaP exprime RM6P-CI, tandis que les autres lignées cellulaires prostatiques cancéreuses PC-3 et DU-145 n'expriment pas ou très peu RM6P-CI. Cependant, le marquage sur une lignée cellulaire prostatique cancéreuse isolée ne peut en aucun cas laisser présager une surexpression du RM6P-CI dans l'ensemble des tissus prostatiques cancéreux. En effet, une lignée cellulaire est un système artificiel soumis à des artéfacts de culture, comme par exemple la présence de sérum de veau foetal indispensable à la survie de la lignée cellulaire, et donc les résultats obtenus avec une lignée cellulaire ne peuvent pas être généralisés d'autant plus si les résultats obtenus avec d'autres lignées cellulaires comparables sont différents. Par ailleurs, ainsi que décrit précédemment, le RM6P-CI était considéré comme un gène suppresseur de tumeur puisque de nombreux travaux ont décrit une diminution de l'expression du RM6P-CI dans plusieurs types de cancers. Pour finir, l'homme de l'art savait aussi que le meilleur marqueur circulant pronostique, le PSA, était produit essentiellement par les cellules prostatiques saines. Ainsi, de par l'enseignement de l'état de la technique, aucune analyse de l'expression du RM6P-CI et comparaison du tissu d'une prostate « saine » et d'une prostate « cancéreuse » n'ont été réalisées jusqu'à ce jour. Les résultats de la surexpression du RM6P-CI dans les tissus prostatiques cancéreux sont donc très inattendus puisqu'ils vont à l'encontre des connaissances de l'art antérieur et permettent de vaincre un préjugé technique. La surexpression du RM6P-CI dans les tissus prostatiques cancéreux permet d'envisager l'utilisation dudit RM6P-CI comme outil de diagnostic pour le dépistage des cancers de la prostate par les anatomopathologistes. L'absence de surexpression du RM6P-CI par les tissus prostatiques sains exclut avantageusement les problèmes récurrents de faux positifs et de sur-diagnostics observés avec d'autres marqueurs potentiels (comme par exemple AMACR)7. Ce nouveau marqueur RM6P-CI de dépistage et de diagnostic du cancer de la prostate selon l'invention permet donc avantageusement de pallier les déficiences et les limites des outils de diagnostic actuels. La présente invention propose un marqueur spécifique des cellules tumorales prostatiques puisque le RM6P-CI est surexprimé uniquement dans les cellules cancéreuses des tissus prostatiques (et non dans les tissus prostatiques sains). Afin de compléter le diagnostic anatomopathologique, la méthode de l'invention pourra encore comprendre, outre la mesure du niveau d'expression du gène RM6PCI, la mesure du niveau d'expression d'un ou plusieurs marqueurs immunohistochimiques connus à ce jour. A titre d'exemple de marqueurs immunohistochimiques, on pourra citer des marqueurs de cellules de type basales (encore appelé « marqueur de type basal »), notamment choisis parmi p63, CK 903 ou CK 5/6, ou d'autres marqueurs de cellules cancéreuses, notamment choisis parmi AMACR®, GST1 méthylé® ou TMPRSS2- ETS®. REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES 1. Andriole G. L. et al J Nat Cancer Inst 104: 1-8 (2012). 2. Schffider F. H. et al., N Engl J Med 360: 1320-1328 (2009). 3. Schffider F. H.et al., N Engl J Med 366: 981-990 (2012). 4. Valeri A. et al., Bull Cancer 12: 1499-1515 (2010). 5. Molinié V. et al., Prog Urol 4: 611-615 (2005). 6. Makarov D. V. et al, Annu Rev. Med 60: 139-151 (2009). 7. Rubin M. A. et al. Jama 287: 1662-1670 (2002). 8. 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Méthode de diagnostic in vitro d'un cancer prostatique chez un sujet caractérisée en ce qu'elle comprend une étape de mesure du niveau d'expression du gène du récepteur mannose 6-phosphate cation indépendant (RM6P-CI) dans un échantillon biologique dudit sujet. 2. Méthode selon la revendication 1, caractérisée en ce que l'étape de mesure quantitative du niveau d'expression du gène du RM6P-CI est une étape de mesure du niveau d'expression des produits de transcription, en particulier l'ARNm. 3. Méthode selon la revendication 1, caractérisée en ce que l'étape de mesure du niveau d'expression du gène du RM6P-CI est une étape de mesure du niveau d'expression des produits de traduction, en particulier la protéine RM6P-CI. 4. Méthode selon la revendication 3, caractérisée en ce que ladite étape de mesure du niveau d'expression du gène du RM6P-CI se fait par analyse du marquage immunohistochimique du RM6P-CI dans un échantillon biologique dudit sujet. 5. Méthode selon la revendication 3 ou 4, caractérisée en ce que ladite étape de mesure du niveau d'expression du gène du RM6P-CI se fait à l'aide de l'anticorps polyclonal IgY 415. 6. Méthode selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisée en ce qu'elle comprend en outre la mesure, chez ledit sujet, du niveau d'expression d'un marqueur de cellules de type basales, notamment choisi parmi p63, CK 903 ou CK 5/6, ou d'un marqueur de cellules cancéreuses, notamment choisi parmi AMACR®, GST1 méthylé® ou TMPRSS2-ETS®. 7. Anticorps spécifique du récepteur mannose 6-phosphate cation indépendant (RM6P-CI) pour son utilisation dans une méthode de diagnostic du cancer prostatique, ledit anticorps permettant de mesurer le niveau d'expression du gène du RM6P-CI.