FR 3001227 A1 20140725 FR 1350503 A 20130121 P124420.FR 1 MOYEN, PROCEDE ET PRODUIT-PROGRAMME D'ORDINATEUR POUR DETERMINER LE TAUX DE CONCENTRATION DE MICRO-ORGANISMES LORS D'UNE ANALYSE DE FLUIDE Domaine technique La présente invention concerne le domaine de l'analyse biologique et, plus précisément, un moyen, un procédé et un produit-programme d'ordinateur pour déterminer le taux de concentration de micro-organismes présents dans un fluide, lors de l'analyse d'un échantillon de ce fluide. Etat de la technique Dans le domaine de l'analyse biologique, il existe de nombreux procédés afin de déterminer les taux de concentration de micro-organismes dans des échantillons biologiques. Ces procédés s'appliquent notamment en utilisant une boîte de Pétri et un dispositif d'ensemencement, tel qu'un peigne adapté comme décrit dans les demandes de brevet W02005/071055 et W02008/093439. Ainsi, dans l'art antérieur, la boîte de Pétri comprend un milieu de culture tel qu'un milieu gélosé. Un échantillon de fluide comprenant des micro-organismes est introduit sur le milieu de culture. Le fluide est appliqué selon une bande qui s'étend du centre de la boîte de Pétri vers le bord de la boîte de Pétri. La longueur de cette bande de fluide s'étend donc dans la direction du rayon de la boîte de Pétri. Ensuite, dans le cas d'un ensemencement manuel ou automatique, un peigne, tel que décrit dans les demandes de brevet W02005/071055 et W02008/093439, déplace les micro-organismes, amassés au sein de la bande de fluide, sur toute la circonférence de la boîte de Pétri. Le peigne, situé au-dessus de la boîte de Pétri, peut se déplacer selon un axe perpendiculaire au plan de la boîte de Pétri, ladite boîte de Pétri pouvant décrire une rotation sur elle-même. De manière générale, la largeur du peigne correspond environ au rayon de la boîte de Pétri. Le peigne est positionné de telle sorte qu'une première dent du peigne est située au centre de la boîte de Pétri et 18 janvier 2013 P124420.FR 2 une dernière dent du peigne est située à proximité du bord de la boîte de Pétri. Le peigne permet alors de répartir le contenu de la bande de fluide selon un angle allant de 0° à environ 330° au sein du milieu de culture. Dans le cas d'un ensemencement manuel ou automatique, plusieurs procédés de détermination de concentration des micro-organismes sont applicables. Un de ces procédés utilise un découpage de la boîte de Pétri en huit secteurs c'est-à-dire en octants, sur un milieu ChromIDTM CPS® (Réf. 43541) pour l'identification et le dénombrement des germes urinaires. Ainsi, lorsque l'utilisateur souhaite évaluer le taux de concentration bactérienne du fluide réparti sur le milieu de culture, l'utilisateur estime le taux de recouvrement du milieu de culture dans chaque octant, puis utilise un abaque préalablement établi et fourni à l'utilisateur. Cette méthode est fastidieuse car l'utilisateur doit recenser toutes les colonies présentes dans tous les octants. Ce recensement peut donc engendrer des erreurs de dénombrement et par conséquent des erreurs sur le taux de concentration bactérienne à déterminer. Lors du déplacement du peigne, la répartition du fluide sur le milieu de culture n'est pas homogène au sein d'un secteur donné, selon la dent du peigne considérée. En effet, pour un angle de rotation associé au déplacement du peigne, les dents du peigne parcourent une distance qui varie selon la localisation des dents sur le peigne. Si l'on considère des dents situées à proximité du centre de la boîte de Pétri, la distance azimutale parcourue par ces dents est inférieure à la distance azimutale parcourue par des dents situées à proximité du bord de la boîte de Pétri, et ce pour un angle de rotation identique du peigne sur le milieu de culture. Ainsi, en appliquant la méthode qui utilise le découpage de la boîte de Pétri en huit secteurs, la distance parcourue par le fluide pour un secteur considéré dépend de la dent du peigne associée au déplacement dudit fluide. Par conséquent, chaque secteur contient une quantité de fluide dont la concentration en bactéries est variable sur la surface d'un secteur donné. 18 janvier 2013 P124420.FR 3 La répartition non-homogène du fluide au sein des différents secteurs génère également des erreurs de mesure lors de la détermination de la concentration des micro-organismes présents dans le fluide à analyser. Ainsi, cette méthode ne permet pas de déterminer avec précision la concentration des micro-organismes au sein du fluide. Exposé de l'invention La présente invention vise à surmonter au moins partiellement les problèmes mentionnés ci-dessus. Un objectif de la présente invention consiste à fournir un moyen de repérage pour déterminer la concentration en micro-organismes d'un fluide à analyser au moyen d'une boîte de Pétri, ladite boîte de Pétri comprenant un milieu de culture sur lequel un dispositif d'ensemencement mobile en rotation par rapport à la boîte de Pétri est adapté pour répartir le fluide, ledit dispositif d'ensemencement comprenant au moins un point de contact associé à une zone de contact avec ledit milieu de culture, ledit moyen de repérage comprenant : un cercle Cl correspondant à la circonférence de la boîte de Pétri, le cercle Cl comprenant un centre 0 et un rayon RC1 correspondant au rayon de la boîte de Pétri; une ligne d'ensemencement LR de longueur R représentant la zone d'inoculation du fluide sur le milieu de culture et correspondant à une portion du rayon RC1 de la boîte de Pétri ; au moins une zone de repérage Zn pour repérer la présence de micro- 2 5 organismes sur le milieu de culture, ladite zone de repérage Zn étant délimitée par la ligne d'ensemencement LR et une ligne de limite de zone LZ délimitant une distance identique d parcourue sur la surface du milieu de culture par chaque point de contact de la zone de contact du dispositif 30 d'ensemencement à partir de la ligne d'ensemencement LR. 18 janvier 2013 P124420.FR 4 De manière avantageuse, le fluide comprend une concentration en microorganismes supérieure à 103 micro-organismes par millilitre (ml). De manière avantageuse, chaque zone de repérage Zn correspond à une valeur prédéterminée de la concentration en micro-organismes du fluide. De manière avantageuse, la valeur prédéterminée est définie par une fonction exponentielle de l'angle de rotation du dispositif d'ensemencement, de la longueur R de la ligne d'ensemencement et d'une constante définissant la vitesse d'épuisement de la concentration bactérienne dans le fluide en fonction de la distance parcourue sur le milieu de culture. De manière avantageuse, la zone de repérage Zn est délimitée par le cercle Cl et par un cercle de rayon RC2 concentrique au cercle Cl et tel que RC2 est inférieur à RC1. 15 De manière avantageuse, la ligne de limite de zone LZ est formée par un ensemble de points Pn, chaque point Pn étant situé sur un cercle Cn concentrique au cercle Cl, ledit cercle Cn comprenant un rayon RCn tel que RCn est inférieur à RC1 et supérieur à RC2, et chaque point Pn étant situé à une distance égale de la ligne 20 d'ensemencement LR pour une même ligne de limite de zone LZ. De manière avantageuse, les micro-organismes comprennent des bactéries. De manière avantageuse, le milieu de culture comprend un milieu gélosé. 25 De manière avantageuse, le fluide est constitué par un échantillon d'origine clinique, alimentaire, environnementale, vétérinaire, pharmaceutique ou cosmétique. Un autre objectif de l'invention consiste à fournir un procédé de repérage pour 30 déterminer la concentration en micro-organismes d'un fluide à analyser au moyen d'une boîte de Pétri de rayon RC1, ladite boîte de Pétri comprenant un milieu de culture, ledit procédé comprenant les étapes suivantes : 18 janvier 2013 P124420.FR déposer le fluide sur le milieu de culture pour former une ligne d'ensemencement LR correspondant à une portion du rayon RC1 de la boîte de Pétri ; répartir le fluide contenu dans la ligne d'ensemencement LR sur le 5 milieu de culture au moyen d'un dispositif d'ensemencement mobile en rotation par rapport à la boîte de Pétri, ledit dispositif d'ensemencement comprenant au moins un point de contact avec le milieu de culture ; incuber la boîte de Pétri pour permettre la croissance des micro- organismes sur le milieu de culture ; identifier des zones de repérage Zn adjacentes pour repérer la présence des micro-organismes sur le milieu de culture, lesdites zones de repérage Zn couvrant au moins une partie de la surface de la boîte de Pétri, et dans lequel, une première zone de repérage Zn est délimitée par la ligne d'ensemencement LR et une ligne de limite de zone LZ délimitant une même distance d parcourue sur le milieu de culture, par chaque point de contact du dispositif d'ensemencement à partir de la ligne d'ensemencement LR. De manière avantageuse, le fluide comprend une concentration en microorganismes supérieure à 103 micro-organismes par millilitre (ml). De manière avantageuse, le procédé de repérage comprend l'étape suivante : identifier une zone de repérage Zn comprenant des colonies isolées de micro-organismes. De manière avantageuse, le procédé de repérage comprend l'étape suivante : retrouver dans une table de correspondance une valeur prédéterminée de concentration en micro-organismes associée à la zone de repérage Zn identifiée afin de déterminer la concentration des micro-organismes dans le fluide. 18 janvier 2013 P124420.FR 6 Un autre objectif de l'invention consiste à fournir un produit-programme d'ordinateur comprenant des instructions logicielles pour la mise en oeuvre d'un procédé de repérage ci-dessus mentionné lorsque ledit programme est exécuté par un processeur de données. Brève description des dessins L'invention, sa fonctionnalité, ses applications ainsi que ses avantages seront mieux appréhendés à la lecture de la présente description, faite en référence aux figures, dans lesquelles : - la figure 1 montre un schéma d'un moyen de repérage, selon un mode de réalisation de l'invention, à titre d'exemple ; - la figure 2 montre un premier schéma détaillé d'un moyen de repérage en cours d'élaboration, selon un mode de réalisation de l'invention, à titre d'exemple ; - la figure 3 montre un deuxième schéma détaillé d'un moyen de repérage en cours d'élaboration, selon un mode de réalisation de l'invention, à titre d'exemple ; - la figure 4 montre un schéma d'un moyen de repérage intégré sur le couvercle d'une boîte de Pétri ; - la figure 5 montre un fond d'une boîte de Pétri comprenant un milieu gélosé, selon un mode de réalisation de l'invention, à titre d'exemple ; - la figure 6 montre un dispositif d'ensemencement, tel qu'un peigne, localisé au-dessus d'un fond d'une boîte de Pétri, selon un mode de réalisation de l'invention, à titre d'exemple ; - la figure 7 montre une bande de fluide disposée sur le milieu de culture du fond de la boîte de Pétri, selon un mode de réalisation de l'invention, à titre d'exemple ; 18 janvier 2013 P124420.FR 7 - la figure 8 montre un diagramme des étapes du procédé de repérage, selon un mode de réalisation de l'invention, à titre d'exemple ; - les figures 9, 10 et 11 montrent des exemples d'application du moyen de repérage sur le contenu de différentes boîtes de Pétri comprenant différents types de fluides avec différentes concentrations de micro-organismes ; - les figures 12, 13 et 14 montrent des exemples d'application du moyen de repérage sur le contenu de différentes boîtes de Pétri lors de l'analyse de différents types de fluide au cours du temps. Description détaillée de l'invention La description détaillée ci-après a pour but d'exposer l'invention de manière suffisamment claire et complète, notamment à l'aide d'exemples, mais ne doit en aucun cas être regardée comme limitant l'étendue de la protection aux modes de réalisation particuliers et aux exemples présentés ci-après. La présente invention concerne l'analyse d'un échantillon. Selon la présente invention, l'échantillon peut être de diverses origines, par exemple d'origine 20 alimentaire, environnementale, vétérinaire, clinique, pharmaceutique ou cosmétique. Parmi les échantillons d'origine alimentaire, l'on peut citer, de façon non-exhaustive, un échantillon de produits lactés (yaourts, fromages, etc.), de viande, de poisson, 25 d'oeuf, de fruit, de légume, d'eau, de boisson (lait, jus de fruits, soda, etc.). Bien évidemment, ces échantillons d'origine alimentaire peuvent aussi provenir de sauces ou de plats plus élaborés ou des matières premières non transformées ou partiellement transformées. Un échantillon alimentaire peut également être issu d'une alimentation destinée aux animaux, telle que des tourteaux, des farines 30 animales. 18 janvier 2013 P124420.FR 8 Tel qu'indiqué précédemment, l'échantillon peut être d'origine environnementale et peut consister, par exemple, en un prélèvement de surface, d'eau, d'air, etc. L'échantillon peut également consister en un échantillon d'origine clinique, pouvant correspondre à des prélèvements de fluide biologique (urine, sang total, ou dérivés tel que sérum, salive, pus, liquide céphalo-rachidien, etc.), de selles (par exemple diarrhées cholériques), de prélèvements de nez, de gorge, de peau, de plaies, d'organes, de tissus ou de cellules isolées. Cette liste n'est évidemment pas exhaustive. D'une manière générale, le terme « échantillon » se réfère à une partie ou à une quantité, plus particulièrement une petite partie ou une petite quantité, prélevée à partir d'une ou plusieurs entités aux fins d'analyse. Cet échantillon peut éventuellement avoir subi un traitement préalable, impliquant par exemple des étapes de mélange, de dilution ou encore de broyage, en particulier si l'entité de départ est à l'état solide. L'échantillon prélevé est, en général, susceptible de - ou suspecté de - contenir au moins un micro-organisme externe cible tel qu'une bactérie, une levure, un champignon. Selon la présente invention, l'analyse est réalisée à l'aide d'une boîte de Pétri comprenant un fond et un couvercle. Le fond comprend un milieu de culture tel qu'un milieu de culture gélosé. Le but de l'analyse est de déterminer la présence de micro-organismes spécifiques et la concentration en micro-organismes au sein du fluide sur le milieu de culture, après incubation de la boîte de Pétri. La présente invention propose de déterminer la concentration des microorganismes présents sur le milieu de culture en repérant les colonies de micro- organismes isolées sur ledit milieu de culture. 18 janvier 2013 P124420.FR 9 La figure 1 montre un moyen de repérage 10. Ce moyen de repérage 10 peut être réalisé dans une matière translucide afin d'être posé sur le couvercle d'une boîte de Pétri pour observer le milieu de culture gélosé comprenant les micro-organismes. Le moyen de repérage 10 peut également être intégré au couvercle d'une boîte de Pétri au moyen d'un procédé graphique par exemple. Enfin, le moyen de repérage peut également être intégré au sein d'un logiciel informatique afin de permettre une analyse de présence des micro-organismes au moyen d'un ordinateur. Le moyen de repérage 10 comprend un cercle Cl dont les dimensions sont du même 10 ordre de grandeur que les dimensions d'un cercle représentant le fond d'une boîte de Pétri. Le cercle Cl comprend un centre 0 et un rayon RC1. Le moyen de repérage 10 comprend également un cercle C2 concentrique au cercle Cl et de rayon RC2 tel que le rayon RC2 est inférieur au rayon RC1. Le cercle Cl comprend également une ligne d'ensemencement LR de longueur R s'étendant dans la direction du rayon RC1 et telle que la longueur R est inférieure ou égale à la valeur de la différence entre les rayons RC1 et RC2, c'est à dire R Le dispositif d'ensemencement peut également comprendre une spatule à extrémité recourbée telle que décrite dans le modèle US D582,564. Ainsi, l'extrémité recourbée représente une zone de contact continue du dispositif d'ensemencement avec le milieu de culture gélosé. Lors de la répartition du fluide sur le milieu de culture au moyen du dispositif d'ensemencement, chaque point de contact de la zone de contact du dispositif d'ensemencement parcourt une distance azimutale à partir de la ligne d'ensemencement LR. Cette distance azimutale varie selon le point de contact considéré de la zone de contact du dispositif d'ensemencement. Le moyen de repérage 10 comprend également un ensemble de zones de repérage Zn qui couvrent la totalité ou une partie de la surface du milieu de culture gélosée comprise dans la surface délimitée par les cercles de rayons RC1 et RC2. Ces zones sont numérotées par exemple de Z1 à Z7. Chaque zone de repérage Zn comprend une ligne de limite de zone LZ permettant de séparer deux zones de repérage adjacentes. Le disque associé au cercle C2 représente une surface non utilisable pour le dispositif d'ensemencement. En effet, pour des valeurs de rayon inférieures à la valeur de RC2, dans le disque de rayon RC2, les distances azimutales parcourues par les points de contact de la zone de contact du dispositif d'ensemencement sont trop faibles pour permettre de déterminer la concentration en micro-organismes en utilisant le moyen de repérage selon la présente invention. Les lignes de limite de zone LZ sont référencées par exemple de LZ1 à LZ7. Ces lignes sont réalisées sur le moyen de repérage 10 en utilisant un procédé illustré sur la figure 2. 18 janvier 2013 P124420.FR 11 La figure 2 montre le moyen de repérage 10 lors de son élaboration pour obtenir la représentation des lignes de limite de zone LZ. Le moyen de repérage 10 comprend les cercles Cl et C2 comme précédemment indiqué. Afin d'élaborer le moyen de repérage 10, des cercles Cn concentriques de rayon RCn et de centre 0 sont tracés sur le moyen de repérage 10. Les cercles Cn sont tels que chaque rayon RCn est inférieur au rayon RC1 et supérieur au rayon RC2. La présence de la représentation graphique des cercles Cn n'est pas nécessaire lors de l'utilisation ultérieure du moyen de repérage 10. La circonférence du cercle Cl est divisée en un nombre déterminé de portions de cercle où chaque portion de cercle représente une distance azimutale d. La distance azimutale d correspond à un déplacement des points de contact de la zone de contact du dispositif d'ensemencement depuis la ligne d'ensemencement LR, lors d'une rotation du dispositif d'ensemencement. On définit Ai comme étant l'angle réel ou effectif de rotation du dispositif d'ensemencement sur le cercle Cl par rapport à la ligne d'ensemencement LR. Chaque distance azimutale d sur le cercle Cl délimite les zones de repérage telles que Z1 à Z7. Ainsi, chaque zone de repérage Zn est délimitée, sur la circonférence du cercle Cl, par une distance azimutale qui est un multiple de la distance azimutale d et de préférence égale à la distance azimutale d. Ainsi, de manière connue, la portion d représente une distance azimutale égale au produit de la distance R, inférieure ou égale à la différence RC1 - RC2 et représentant la longueur de la ligne d'ensemencement LR, par l'angle de rotation Ai prédéterminé et associé à la rotation du dispositif d'ensemencement lors du déplacement du dispositif d'ensemencement sur la circonférence du cercle Cl. Ainsi, on obtient d = R x Ai. 18 janvier 2013 P124420.FR 12 Un des buts de la présente invention est de fournir un moyen de repérage 10 permettant de repérer les zones du milieu de culture dans lesquelles des colonies isolées de micro-organismes sont observées. Ainsi, le moyen de repérage 10 permet de déterminer la concentration initiale de micro-organismes dans le fluide d'intérêt, c'est-à-dire le liquide porteur comprenant les bactéries. Pour chaque cercle Cn, une distance azimutale dn est repérée. Cette distance dn est la représentation de la distance azimutale parcourue par les points de contact de la zone de contact du dispositif d'ensemencement sur un cercle Cn spécifique lors de la rotation du dispositif d'ensemencement d'un angle Ai. La distance azimutale dn est donc égale à un multiple de la distance azimutale d, dont la valeur est définie par une valeur déterminée. Ainsi, en se référant à la valeur connue de d, on obtient dn = (R x Ai) x k où k est un nombre représentant le coefficient relatif à la multiplicité de d par rapport à dn. On définit Aj comme étant l'angle fictif de rotation du dispositif d'ensemencement sur un cercle Cn par rapport à la ligne d'ensemencement LR pour un point de contact situé à une distance Rn du centre 0, tel que la distance azimutale dn soit égale à d pour un cercle Cn spécifique. La distance azimutale dn est aussi égale au produit du rayon Rn par l'angle de rotation Aj associé à la rotation d'un point de contact de la zone de contact du dispositif d'ensemencement, soit dn = Rn x Aj. La valeur de dn correspond à la distance parcourue par un point de contact de la zone de contact du dispositif d'ensemencement sur le cercle concentrique Cn lors de la rotation du dispositif d'ensemencement selon l'angle Aj. Chaque portion dn permet de représenter la distance ou le chemin que chaque point de contact de la zone de contact doit parcourir sur un cercle Cn donné pour obtenir une distance azimutale parcourue et relative à la zone Zn considérée telle que dn est égale à d. 18 janvier 2013 P124420.FR 13 La valeur de d est donc déterminable dans la mesure où les valeurs de l'angle de rotation Ai du dispositif d'ensemencement et du rayon R associé à la longueur de la ligne d'ensemencement sont connues. En utilisant Aj = dn/Rn, on obtient la valeur de l'angle de rotation Aj. Ainsi, sur le cercle Cn, pour une rotation d'angle Aj à partir de la ligne d'ensemencement LR, on obtient un point Pn qui représente l'extrémité de la portion dn sur la circonférence correspondante du cercle Cn. Ainsi, comme montré sur la figure 3, une rotation du dispositif d'ensemencement d'un angle Ai représenté par une portion d sur le cercle Cl correspond à une rotation du peigne d'un angle Aj pour obtenir une portion de longueur d2 identique à d sur le cercle C2. On obtient donc Aj = d2/RC2, avec d2 = d = Ai x R, ce qui permet de définir l'angle Aj associé à la distance d2 sur le cercle C2, tel que Aj = (Ai x R) / RC2. Ainsi, en répétant ce procédé sur l'ensemble des cercles Cn, on obtient un point Pn+1 sur le cercle Cn+1, un point Pn+2 sur le cercle Cn+2, et ainsi de suite sur l'ensemble des cercles Cn comme montré sur la figure 2. Pour chaque rotation du dispositif d'ensemencement on définit les points P1 et P2 associés sur les cercles Cl et C2. Pour une même rotation d'angle Ai l'ensemble des points Pn, Pn+1, Pn+2, etc. associés à une même zone Zn, sont reliés ensemble comme montré sur la figure 2 pour former une ligne. L'extrémité de cette ligne est reliée aux points P1 et P2, respectivement localisés sur les cercles Cl et C2, pour obtenir la représentation d'une zone de repérage Zn comme montré sur la figure 2. La zone de repérage Zn contient une quantité de fluide associée à un déplacement du dispositif d'ensemencement sur une même distance d. Ainsi, lors de la rotation d'un angle Ai du dispositif d'ensemencement, le point de contact de la zone de contact parcourt une distance azimutale d sur la circonférence 18 janvier 2013 P124420.FR 14 du cercle Cl. La zone Z1 permet de repérer la quantité de fluide ayant parcouru la même distance d depuis la ligne d'ensemencement LR. Chaque zone Zn est repérée sur la circonférence du cercle Cl par une distance azimutale égale à d. Le dispositif d'ensemencement effectue un nombre déterminé de rotations d'angle Ai vis-à-vis du fond de la boîte de Pétri. Ces rotations d'angle Ai permettent d'étaler sur le milieu de culture la totalité du fluide contenu dans la ligne d'ensemencement LR. De manière pratique, le moyen de repérage 10 peut faire l'objet d'un support indépendant à appliquer sur le couvercle d'une boîte de Pétri après incubation de la boîte de Pétri. Alternativement, un couvercle d'une boîte de Pétri peut intégrer une représentation graphique du moyen de repérage 10. Ainsi, la figure 4 montre un couvercle 40 d'une boîte de Pétri intégrant une représentation graphique des différentes zones de repérage. La figure 5 montre un fond 50 d'une boîte de Pétri comprenant un milieu de culture gélosé. Ainsi, le couvercle 40 peut être disposé sur le fond 50 afin de procéder au repérage des micro-organismes sur le milieu de culture gélosé. Comme montré sur la figure 6, un dispositif d'ensemencement tel qu'un peigne 60 est disposé au-dessus du fond 50 d'une boîte de Pétri. Le fond 50 est représenté par un cercle Cl de centre O. Le fond 50 peut être posé sur un support capable de se déplacer selon un mouvement circulaire afin de produire une rotation du fond 50. Le fond 50 contient un milieu de culture tel qu'un milieu de culture gélosé. Une ligne d'ensemencement LR de longueur R est disposée sur le milieu de culture. Le peigne 60 comprend un support de dents 61 pourvus d'une pluralité de dents 62 comprenant au moins une dent. De manière préférentielle, le peigne 60 comprend 17 dents. Chaque dent 62 est séparée d'une dent adjacente par une même distance. La largeur totale du peigne 60 correspond à une valeur inférieure à la longueur R de la ligne d'ensemencement. Le peigne 60 est mobile en rotation par rapport au fond 50 de la boîte de Pétri. 18 janvier 2013 P124420.FR 15 Le procédé de repérage selon l'invention permet de repérer des micro-organismes présents au sein d'un fluide sur le milieu de culture, après incubation de la boîte de Pétri. Le fluide comprend, par exemple, un échantillon biologique comme précédemment mentionné. Aux fins du présent exemple, considérons l'hypothèse où la longueur R de la ligne d'ensemencement LR est égale au rayon RC1 de la boîte de Pétri. Le procédé selon l'invention comprend les étapes décrites en figure 8. Dans une étape 800, un dispositif d'inoculation (non montré) dépose une quantité de fluide sous la forme d'une ligne d'ensemencement LR sur le milieu de culture comme indiqué en figure 7. La ligne d'ensemencement LR s'étend sur le fond 50 de la boîte de Pétri, dans la direction du rayon RC1 de la boîte de Pétri. De manière connue, dans une étape 810, le peigne 60 est appliqué sur le fluide localisé sur la ligne d'ensemencement LR. Le peigne 60 et le fond 50 de la boîte de Pétri sont prévus pour fonctionner ensemble de la manière suivante : lors d'une rotation du fond 50, le peigne 60 entre en contact avec la ligne d'ensemencement LR. Ainsi, dans une étape 820, le fond de la boîte de Pétri entre en rotation et le peigne 60 répartit, sur le milieu de culture, le fluide contenu dans la ligne d'ensemencement LR. Le peigne 60 peut être préalablement paramétré afin d'effectuer, par rapport au fond 50 de la boîte de Pétri, des rotations répétées centrées sur le centre 0 du fond 50 de la boîte de Pétri et d'un même angle Ai. Lors du déplacement du peigne, seule la dent 21 localisée sur la périphérie du fond 50 de la boîte de Pétri se déplace d'une distance azimutale d sur la circonférence du cercle Cl telle que d = R x Ai. Les autres dents 62 du peigne 60 parcourent une distance azimutale dont la longueur est inférieure à d. Ainsi, pour un même peigne 60, l'angle fictif de rotation Aj de chaque dent 62 située strictement à l'intérieur du cercle Cl, doit être supérieur à l'angle réel de rotation Ai, afin que chaque dent 62 parcourt une distance azimutale identique à d sur le cercle concentrique Cn correspondant. En effet, au fur et à mesure que l'on considère une dent 62 proche du 18 janvier 2013 P124420.FR 16 centre 0 du cercle Cl, la distance azimutale parcourue par la dent 62 diminue, pour un angle de rotation Ai donné. Le déplacement du peigne 60 associé au déplacement du fond de la boîte de Pétri se répète jusqu'à ce que la totalité du contenu du fluide de la ligne d'ensemencement LR soit réparti sur le milieu de culture gélosé. Ensuite, dans une étape 830, le fond 50 de la boîte de Pétri recouvert par un couvercle adapté pour une boîte de Pétri est incubé dans un incubateur pour une période prédéterminée. Le but de l'incubation est de permettre la croissance de micro-organismes potentiellement contenus dans le fluide réparti sur le milieu de culture. La période d'incubation peut s'étendre sur quelques heures ou sur quelques jours, préférentiellement sur vingt-quatre heures. Cette période d'incubation peut être continue c'est-à-dire sans analyse intermédiaire du contenu de la boîte de Pétri, entre l'inoculation de l'échantillon biologique et la fin de la période d'incubation. La période d'incubation peut également être discontinue, c'est-à-dire avec une analyse régulière du contenu de la boîte de Pétri à des instants prédéterminés pendant la période d'incubation. A un instant prédéterminé, soit au cours de la période d'incubation, soit à la fin de la période d'incubation, dans une étape 840, le moyen de repérage 10 selon la présente invention est appliqué sur la boîte de Pétri. Après incubation, le milieu de culture, dans le fond 50 de la boîte de Pétri, comporte des colonies de micro-organismes localisées à différents endroits de la surface du milieu de culture. Certaines colonies peuvent apparaître isolées et donc être facilement dénombrées visuellement par l'utilisateur. D'autres colonies peuvent être amassées sans possibilité d'être dénombrées. Dans une situation où la valeur de la concentration en micro-organismes par millilitre (ml) est supérieure à une concentration de l'ordre de 103 micro-organismes par ml, de préférence supérieure à une concentration égale à 103 micro-organismes par ml, la distribution des colonies est représentée par des zones continues de colonies sur le milieu de 18 janvier 2013 P124420.FR 17 culture. L'utilisation du moyen de repérage 10 selon la présente invention est alors optimale. Dans une étape 850, l'utilisateur dénombre visuellement les colonies isolées au sein des zones de repérage du moyen de repérage 10. Ensuite dans une étape 860, l'utilisateur recherche la valeur de la concentration associée au nombre de colonies isolées dénombrées dans une zone considérée en utilisant, par exemple, la table de correspondance ci-dessous : Concentration en CFU/ml (CFU : Unité Formant Colonie (Colony Forming Unit)) Nombre de colonies isolées repérées dans une zone de repérage 102 Inférieur à 10 colonies 103 Inférieur à 30 colonies 104 Supérieur à 30 colonies et la zone de repérage Z1 n'est pas pleine 105 Zone de repérage Z1 remplie (aucune colonie isolée) Zones de repérage Z2 et Z3 comprenant des colonies isolées 106 Zone de repérage Z1 et Z2 remplies (aucune colonie isolée) Zones de repérage Z3 et Z4 comprenant des colonies isolées 107 Zone de repérage Z1, Z2 et Z3 remplies (aucune colonie isolée) Zone de repérage Z4 comprenant des colonies isolées 108 Zone de repérage Z1, Z2, Z3 et Z4 remplies (aucune colonie isolée) Zone de repérage Z5 comprenant des colonies isolées Les valeurs de concentration présentées dans le tableau ci-dessus sont obtenues en utilisant la formule mathématique C (RCn, A) = Coexp(-RCn x A/K) qui définit la distribution de concentration des micro-organismes sur le milieu de culture. Dans cette formule mathématique : A est la valeur de l'angle réel de rotation du dispositif d'ensemencement (60) ; Co est la concentration initiale en micro-organismes du fluide inoculé; 18 janvier 2013 P124420.FR 18 RCn est le rayon du cercle concentrique considéré; K est une constante d'épuisement spécifique d'un fluide par rapport au milieu de culture gélosé sur lequel le fluide est réparti. Les figures 9, 10 et 11 montrent des exemples d'application du procédé de repérage pour des échantillons urinaires. La figure 9 montre des concentrations progressives de 102 à 104 CFU/ml sur gélose TSA (Tryptic Soy Agar). La figure10 montre des concentrations progressives de 105 à 106 CFU/ml sur gélose TSA. La figure 11 montre des concentrations progressives de 107 à 108 CFU/ml sur gélose TSA. De manière similaire, les figures 12, 13 et 14 montrent un exemple d'analyse d'un même fluide à différentes concentrations (102 à 108 CFU/ml) inoculé sur milieu ChromIDTM CPS® à différents moments successifs dans le temps. Ainsi, en se basant sur un nombre d'heures, on peut observer l'évolution de la concentration en micro- organismes à une heure H donnée puis successivement à une heure H+10 heures, H+26 heures, et ainsi de suite par exemple. Il s'agit d'une préparation de solution bactérienne extemporanée. Ainsi, la reproductibilité de la méthode de repérage peut être estimée. Au total, 122 boîtes ont été testées avec la méthode selon la présente invention sur milieu ChromIDTM CPS®, c'est-à-dire un milieu dédié à la numération urinaire, pour lequel l'intérêt de cette méthode est majeur. La valeur seuil de concentration était de 104 CFU/ml. Comme montré sur le tableau ci-dessous, on obtient une sensibilité et une spécificité de 100% par rapport à la concentration bactérienne théorique. 18 janvier 2013 P124420.FR 19 Estimation avec le moyen de repérage selon la présente invention Négatif Incertitude Positif Total T Négatif ( 104 CPU/mi) 0 0 59 59 Total 40 18 59 117 La présente invention est spécifiquement adaptée aux dispositifs d'ensemencement précédemment décrits ou à des dispositifs d'ensemencement similaires dans leur mode de fonctionnement concernant la répartition du fluide sur un milieu de culture adapté au mode de répartition. De tels dispositifs d'ensemencement comprennent, par exemple, des dispositifs mobiles en rotation par rapport au centre de la boîte de Pétri et permettant un dépôt radial du fluide au moyen d'une extension radiale. 18 janvier 2013 REVENDICATIONS1. Moyen de repérage (10) pour déterminer la concentration en micro- organismes d'un fluide à analyser au moyen d'une boîte de Pétri, ladite boîte de Pétri comprenant un milieu de culture sur lequel un dispositif d'ensemencement (60) mobile en rotation par rapport à la boîte de Pétri est adapté pour répartir le fluide, ledit dispositif d'ensemencement (60) comprenant au moins un point de contact, associé à une zone de contact, avec ledit milieu de culture, ledit moyen de repérage (10) comprenant : un cercle Cl correspondant à la circonférence de la boîte de Pétri, le cercle Cl comprenant un centre 0 et un rayon RC1 correspondant au rayon de la boîte de Pétri ; une ligne d'ensemencement LR de longueur R représentant la zone d'inoculation du fluide sur le milieu de culture et correspondant à une portion du rayon RC1 de la boîte de Pétri ; au moins une zone de repérage Zn pour repérer la présence de microorganismes sur le milieu de culture, ladite zone de repérage Zn étant délimitée par la ligne d'ensemencement LR et une ligne de limite de zone LZ délimitant une distance identique d parcourue sur la surface du milieu de culture par chaque point de contact du dispositif d'ensemencement (60) à partir de la ligne d'ensemencement LR. 2. Moyen de repérage (10) selon la revendication 1, dans lequel le fluide comprend une concentration en micro-organismes supérieure à 103 micro-organismes par millilitre (ml). 3. Moyen de repérage (10) selon la revendication 1 ou 2, dans lequel chaque zone de repérage Zn correspond à une valeur prédéterminée de la concentration en micro-organismes du fluide. 18 janvier 2013P124420.FR4. 5. 6. 20 7. 8. 25 30 21 Moyen de repérage (10) selon l'une des revendications précédentes, dans lequel la valeur prédéterminée est définie par une fonction exponentielle de l'angle de rotation du dispositif d'ensemencement (60), de la longueur R de la ligne d'ensemencement LR, de la boîte de Pétri et d'une constante définissant la vitesse d'épuisement de la concentration bactérienne dans le fluide en fonction de la distance parcourue sur le milieu de culture. Moyen de repérage (10) selon l'une des revendications précédentes, dans lequel la zone de repérage Zn est délimitée par le cercle Cl et par un cercle C2 de rayon RC2 concentrique au cercle Cl et tel que RC2 est inférieur à RC1. Moyen de repérage (10) selon la revendication 5, dans lequel la ligne de limite de zone LZ est formée par un ensemble de points Pn, chaque point Pn étant situé sur un cercle Cn concentrique au cercle Cl, ledit cercle Cn comprenant un rayon RCn tel que RCn est inférieur à RC1 et supérieur à RC2, et chaque point Pn étant situé à une distance égale de la ligne d'ensemencement LR pour une même ligne de limite de zone LZ. Moyen de repérage selon l'une des revendications précédentes, dans lequel les micro-organismes comprennent des bactéries. Procédé de repérage pour déterminer la concentration en microorganismes d'un fluide à analyser au moyen d'une boîte de Pétri de rayon RC1, ladite boîte de Pétri comprenant un milieu de culture, ledit procédé comprenant les étapes suivantes : déposer le fluide sur le milieu de culture pour former une ligne d'ensemencement LR correspondant à une portion du rayon RC1 de la boîte de Pétri ; répartir le fluide contenu dans la ligne d'ensemencement LR sur le milieu de culture au moyen d'un dispositif d'ensemencement (60) mobile en rotation par rapport à la boîte de Pétri, ledit dispositif 18 janvier 2013P124420.FR 22 d'ensemencement (60) comprenant au moins un point de contact avec le milieu de culture ; incuber la boîte de Pétri pour permettre la croissance des microorganismes sur le milieu de culture ; identifier des zones de repérage Zn adjacentes pour repérer la présence des micro-organismes sur le milieu de culture, lesdites zones de repérage Zn couvrant au moins une partie de la surface de la boîte de Pétri, et dans lequel, une première zone de repérage Zn est délimitée par la ligne d'ensemencement LR et une ligne de limite de zone LZ délimitant une même distance d parcourue sur le milieu de culture, par chaque point de contact du dispositif d'ensemencement (60) à partir de la ligne d'ensemencement LR. 9. Procédé de repérage selon la revendication 8, dans lequel le fluide comprend une concentration en micro-organismes supérieure à 103 micro-organismes par millilitre (ml). 10. Procédé de repérage selon la revendication 8 ou 9, ledit procédé comprenant l'étape suivante : identifier une zone de repérage Zn comprenant des colonies isolées de micro-organismes. 11. Procédé de repérage selon la revendication 10, ledit procédé comprenant l'étape suivante : retrouver dans une table de correspondance une valeur prédéterminée de concentration en micro-organismes associée à la zone de repérage Zn identifiée afin de déterminer la concentration des micro-organismes dans le fluide. 18 janvier 2013P124420.FR 23 12. Produit-programme d'ordinateur comprenant des instructions logicielles pour la mise en oeuvre d'un procédé selon l'une des revendications 8 à 11 lorsque ledit programme est exécuté par un processeur de données. 18 janvier 2013