FR 3007410 A1 20141226 FR 1355896 A 20130621 La présente invention concerne des mutants du facteur X, et leur utilisation pour le traitement des troubles de la coagulation sanguine. Le facteur X est une protéine présente dans le sang. Cette protéine joue un rôle important dans la cascade de la coagulation. La coagulation du sang est un processus complexe qui permet d'éviter l'écoulement du sang par les vaisseaux endommagés. Aussitôt qu'un vaisseau est brisé, les éléments responsables de la coagulation interagissent entre eux pour former un bouchon, le clou plaquettaire, à l'endroit où le vaisseau est brisé. Les facteurs de la coagulation sont requis pour tenir le clou plaquettaire en place et stabiliser le caillot. La formation d'un caillot normal s'effectue en quatre étapes : Étape 1 Le vaisseau sanguin est endommagé. Étape 2 Le vaisseau sanguin se contracte de façon à restreindre l'apport de sang vers la zone lésée. Étape 3 Les plaquettes adhèrent à l'espace sous-endothélial exposé lors de la lésion du vaisseau ainsi qu'aux parois des vaisseaux sanguins stimulées. Les plaquettes s'étalent, c'est ce que l'on appelle « l'adhésion plaquettaire ». Ces plaquettes étalées libèrent des substances qui activent d'autres plaquettes avoisinantes de sorte qu'elles s'agglomèrent au siège de la lésion afin de former le clou plaquettaire. C'est ce que l'on appelle « l'agrégation plaquettaire ». Étape 4 La surface des plaquettes activées constitue ainsi une surface sur laquelle la coagulation du sang peut s'effectuer. Les protéines de la coagulation qui circulent dans le sang (dont le facteur X) sont activées à la surface des plaquettes et forment un caillot de fibrine. Ces protéines de la coagulation (c'est-à-dire, les facteurs I, II, V, VIII, IX, X, XI, XII et XIII, ainsi que le facteur de Von Willebrand) fonctionnent en une réaction en chaîne, i.e. la cascade de la coagulation. Le facteur X sous forme activée (Xa) intervient plus particulièrement dans l'activation de la prothrombine (facteur II) en thrombine (facteur lia), notamment lorsqu'il est complexé avec le co-facteur V activé pour former le complexe prothrombinase. Ce facteur est un élément essentiel dans la cascade de la coagulation. Lorsque ce facteur fait défaut, des saignements se manifestent, comme une épistaxis (saignements de nez), une hémarthrose (épanchement de sang dans une cavité articulaire) ou des saignements gastro-intestinaux. La déficience en facteur X est extrêmement rare. Sa transmission est autosomique récessive, et sa prévalence est de 1/1 000 000. L'activation du FX (FXa) intervient : - soit très précocement lors de l'étape d'initiation de la cascade de la coagulation par le complexe facteur VIIa/facteur tissulaire, dans une réaction peu efficace qui conduit à la formation de trace de thrombine ; - soit lors de l'étape d'amplification de la cascade de la coagulation issue d'un rétrocontrôle positif effectué par les traces de thrombine conduisant à l'activation des facteurs VIII et IX. Le FXa forme le complexe prothrombinase, qui catalyse la conversion de la prothrombine en thrombine. La thrombine catalyse quant à elle, la conversion du fibrinogène en fibrine, qui conduit à la formation des caillots dans le sang et à l'arrêt des saignements. L'activité du FXa peut être appelée « activité procoagulante ». Les deux facteurs VIII et IX sont manquants chez les hémophiles A et B, causant ainsi un trouble hémorragique qui peut être fatal sans traitement. L'hémophilie A comme l'hémophilie B regroupe deux types d'hémophilie, l'hémophilie constitutionnelle et l'hémophile acquise. L'hémophilie constitutionnelle de type A est une maladie hémorragique caractérisée par un déficit quantitatif ou qualitatif en FVIII résultant d'une anomalie du gène du FVIII. L'hémophilie constitutionnelle de type B est également une maladie hémorragique mais caractérisée par un déficit quantitatif ou qualitatif en FIX résultant d'une anomalie du gène du FIX. L'hémophilie acquise de type A ou B se définit par l'apparition d'auto-anticorps dirigés contre ces FVIII ou FIX. L'hémophilie se traduit par un déficit de la coagulation sanguine en réponse à une hémorragie. L'absence des facteurs VIII et IX ne permet pas de générer des quantités suffisantes de facteur X activé, pour juguler l'hémorragie. Les patients atteints d'hémophilie A et B peuvent être traités par des concentrés comprenant respectivement du FVIII ou du FIX qui peuvent être des dérivés plasmatiques ou des produits issus du génie génétique. Ces concentrés peuvent être administrés à l'occasion de chaque hémorragie ; dans ce cas, il convient de commencer le traitement le plus rapidement possible, à l'apparition des premiers signes. Le traitement peut également être administré de façon prophylactique, régulièrement 2 à 3 fois par semaine de façon à prévenir les hémorragies. Cependant, le traitement peut donner lieu à l'apparition d'anticorps dirigés contre le FVIII ou le FIX appelés inhibiteurs. La présence de tels anticorps rend alors inefficace les administrations de facteurs VIII ou IX. Ces anticorps se développent tôt dès les premières administrations, souvent avant la dixième. Certains patients restent de faibles répondeurs (titre d'anticorps II existe donc un besoin avéré pour des alternatives thérapeutiques aux traitements existants. De telles alternatives doivent en outre présenter les avantages suivants : - elles doivent permettre d'arrêter l'hémorragie, - elles ne doivent pas provoquer de thrombose, et - elles doivent permettre le traitement et/ou la prévention de l'accident hémorragique même en présence d'anticorps anti-FVIII ou FIX. La présente invention répond à ce besoin. Elle a pour objet un facteur X (FX) modifié, ledit FX modifié (appelé GPAD-FXa) consistant en la séquence SEQ ID NO :11 directement fusionnée, ou fusionnée via un linker, notamment -Arg-Lys-Arg-, à la séquence SEQ ID NO :6. Un tel facteur FXa modifié est notamment utile pour la prévention et/ou le traitement 10 d'un accident hémorragique chez un patient atteint d'hémophilie A ou B. La présente invention concerne donc une protéine consistant en la séquence SEQ ID NO :11 directement fusionnée, ou fusionnée via un linker, notamment -Arg-Lys-Arg-, à la séquence SEQ ID NO :6. Une telle protéine est également appelée GPAD-FXa dans 15 la présente demande. Des exemples de protéines FX selon l'invention sont notamment les séquences SEQ ID NO :7 et 9. 20 Un autre objet de l'invention est un polynucléotide codant pour ladite protéine. Un autre objet de l'invention est un vecteur d'expression comprenant ledit polynucléotide. Un autre objet de l'invention est une cellule hôte comprenant ledit vecteur d'expression ou ledit polynucléotide. 25 Un autre objet de l'invention est l'utilisation de ladite protéine comme médicament. En particulier, ladite protéine peut être utilisée pour le traitement des troubles de la coagulation sanguine, notamment les troubles hémorragiques, tels que les hémophilies A, B et C (déficit en facteur XI), les déficits en facteur X, voire des besoins en coagulation d'urgence pour se substituer au Facteur VIIa. Lorsqu'une réponse 30 procoagulante puissante et rapide est requise, ladite protéine peut être utilisée en combinaison avec d'autres molécules hémostatiques, telles que le facteur VIIa et/ou le fibrinogène, voire en association avec des composés procoagulants (transfusion de plaquettes, mélange procoagulant comme FEIBA, Kaskadil, Kanokad etc), qui pourront renforcer l'efficacité du traitement. Tel qu'il est utilisé ici, les termes «protéine» et «polypeptide» sont utilisés ici de manière interchangeable et se réfèrent à une séquence d'acides aminés ayant plus de 100 acides aminés. La présente invention se rapporte à un facteur X mutant consistant en la séquence SEQ ID NO :11 directement fusionnée, ou fusionnée via un linker -Arg-Lys-Arg-, à la 10 séquence SEQ ID NO :6. Le facteur X, appelé également facteur de Stuart-Prower, est codé par le gène F10 et se réfère à la sérine protéase EC3.4.21.6. Le facteur X est composé d'une chaîne lourde, de 306 acides aminés, et d'une chaîne légère, de 139 acides aminés. 15 Le facteur X est une protéine de 488 acides aminés, constitué d'un peptide signal, d'un propeptide, et des chaînes légère et lourde. La séquence du facteur X humain peut être trouvée dans UniProtKB sous le numéro d'accession P00742. 20 La protéine est traduite sous forme de prépropeptide. Après clivage du peptide signal, le propeptide est finalement coupé en une chaîne légère et une chaîne lourde (respectivement de 142 et 306 acides aminés) (zymogène), qui restent associées par des interactions non covalentes et/ou un pont disulfure. Suite au déclenchement de la coagulation, la chaîne lourde est finalement activée par clivage du peptide d'activation, 25 pour ne contenir que 254 acides aminés aminés (les 52 premiers acides aminés sont clivés lors du traitement): c'est la chaîne lourde du facteur Xa (SEQ ID NO :6). Le prépropeptide de facteur X humain correspond à SEQ ID NO: 4. La chaîne lourde avec peptide d'activation correspond à SEQ ID NO: 1, et la chaîne légère correspond à SEQ ID NO: 5. Le peptide d'activation de la chaîne lourde correspond à SEQ ID NO :3, 30 et comprend 52 acides aminés. SEQ ID NO: 2 (peptide signal et chaîne légère) est identique aux acides aminés 1 à 182 de SEQ ID NO: 4. SEQ ID NO: 1 (chaîne lourde avec peptide d'activation) est identique aux acides aminés 183 à488 de SEQ ID NO: 4. La chaîne lourde du facteur Xa (SEQ ID NO :6) correspond à la SEQ ID NO :1, dans laquelle le peptide SEQ ID NO :3 a été clivé. Le facteur X modifié selon l'invention, GPAD-FXa, est dépourvu de son domaine ycarboxyglumatic acide (Gla) de liaison aux phospholipides et de son peptide d'activation (SEQ ID NO :3). Les 42 premiers acides aminés de la chaîne légère (résidus 1-42 de SEQ ID NO :5) représentent le domaine Gla, car il contient 11 résidus modifiés de façon post traductionnelle (acide y-carboxyglutamique). Une digestion par la chymotrypsine permet de supprimer les résidus 1-42 permettant de générer enzymatiquement un FX dépourvu de son domaine de fixation aux phospholipides. Alternativement cette molécule peut être aussi exprimée directement sans ce domaine par génie génétique. Le GPAD-FXa contient ainsi uniquement un fragment de la chaîne légère, i.e. la séquence SEQ ID NO :11. Il est également : - soit fusionné directement à la séquence SEQ ID NO :6, pour donner le mutant de séquence SEQ ID NO: 9; - soit fusionné via un linker, notamment -Arg-Lys-Arg-, à la séquence SEQ ID NO :6, pour donner le mutant de séquence SEQ ID NO : 7. Un tel GPAD-FXa peut également comprendre d'autres modifications. Notamment, il peut comprendre au moins une mutation, de préférence une substitution ponctuelle. Ainsi, différentes mutations ont été introduites dans le gène codant pour le GPAD-FXa, permettant de garder une activité de génération de thrombine. Ces mutations peuvent être introduites par utilisation du kit QuickChange (Stratagene) et en suivant les recommandations du fabricant et selon la publication Wang & Malcolm (1999) - BioTechniques, 26 : 680-682. Ces mutations peuvent porter sur l'arginine 138 de la chaîne lourde du GPAD-FXa (i.e. SEQ ID NO: 6), qui peut être mutée pour donner tout autre acide aminé, préférentiellement la phénylalanine (par exemple SEQ ID NO :16), la glycine (par exemple SEQ ID NO :13), l'isoleucine (par exemple SEQ ID NO :14) ou la tyrosine (par exemple SEQ ID NO :15). Similairement la lysine 82 de la chaîne lourde (i.e. SEQ ID NO: 6) peut également être remplacée par un acide aminé tel que la tyrosine (par exemple SEQ ID NO :12). Le GPAD-FXa selon l'invention peut ainsi comprendre au moins l'une des mutations décrites ci-dessus. Il peut également comprendre la double mutation de l'arginine 138 de SEQ ID NO :6 en un acide aminé choisi parmi la phénylalanine, la glycine, l'isoleucine et la tyrosine, et de la lysine 82 de SEQ ID NO :6 en tyrosine. De préférence, il comprend la double mutation de l'arginine 138 de SEQ ID NO :6 en phénylalanine, et de la lysine 82 de SEQ ID NO :6 en tyrosine. De préférence, il comprend la double mutation de l'arginine 138 de SEQ ID NO :6 en glycine, et de la lysine 82 de SEQ ID NO :6 en tyrosine. De préférence, il comprend la double mutation de l'arginine 138 de SEQ ID NO :6 en isoleucine, et de la lysine 82 de SEQ ID NO :6 en tyrosine. De préférence, il comprend la double mutation de l'arginine 138 de SEQ ID NO :6 en tyrosine, et de la lysine 82 de SEQ ID NO :6 en tyrosine. Le clivage entre la chaîne lourde SEQ ID NO :6 et le fragment de la chaîne légère SEQ ID NO :11 peut soit se faire grâce à la présence de la séquence naturelle de clivage du facteur X par des enzymes cellulaires, les furines (RRKR), dans la séquence SEQ ID NO :11, soit se faire via un linker qui permet d'améliorer le clivage de la protéine (i) dans la cellule productrice ; (ii) à l'extérieur de la cellule lors du processus de production/purification de la molécule ; et/ou (iii) lors de l'activation de la molécule in vivo. Par « linker », on entend une courte séquence d'acides aminés, i.e. entre 2 et 5 acides aminés. Parmi les linkers possibles, ceux clivés dans la cellule productrice peuvent sans limitations et à titre d'exemple être ceux de la furine RX(K ou R)R (Hosaka J Biol Chem 1991), ou bien de toute autre protéase impliquée dans la maturation ou l'activation des protéines intracellulaires. Le linker peut aussi être choisi parmi les sites de clivages des protéases impliquées dans la cascade de la coagulation telles que par exemple le FVIIa, le FIXa, le FXa, le FXIa, le FXIIa, la kallikréine ou la protéine C activée. Le linker peut aussi être composé d'une séquence peptidique connue par l'homme du métier pour séparer les protéines recombinantes telle par exemple celle reconnue par la TEV (Tobacco Etch Virus) ou l'entérokinase. De préférence, le linker est une séquence de 3 acides aminés. Plus préférentiellement, le linker est -Arg-LysArg-. Ladite protéine selon l'invention est un facteur X muté qui est efficace dans le traitement de troubles de la coagulation. La composition selon l'invention peut également être utilisée pour la prévention ou le traitement d'un accident hémorragique chez des patients hémophiles présentant des anticorps anti-facteur VIII (FVIII) ou facteur IX (FIX). Les anticorps sont apparus soit à la suite d'un traitement par des facteurs FVIII ou FIX, ou spontanément, comme dans l'hémophilie acquise. Les séquences décrites dans la présente demande peuvent être résumées comme suit: SEQ ID NO: Protéine 1 Chaîne lourde de facteur X humain (306 acides aminés), comprenant le peptide d'activation 2 Peptide signal et chaîne légère de facteur X humain (182 acides aminés) 3 Peptide d'activation de la chaîne lourde (52 acides aminés) 4 Prépropeptide de facteur X humain (488 acides aminés) 5 Chaîne légère de facteur X humain (142 acides aminés) 6 Chaîne lourde du Facteur X humain activé (FXa) (254 acides aminés) 7 Mutant de facteur X humain GPAD-FXa selon l'invention (357 acides aminés) 8 Séquence nucléique codant pour le mutant de SEQ ID NO :7 9 Mutant de facteur X humain GPAD-FXa selon l'invention (354 acides aminés) 10 Séquence nucléique codant pour le mutant de SEQ ID NO :9 11 Fragment de chaîne légère présent dans les séquences SEQ ID NO :7 et 9 (100 acides aminés) 12 Mutant de facteur X humain GPAD-FXa identique à SEQ ID NO :7 avec K82Y 13 Mutant de facteur X humain GPAD-FXa identique à SEQ ID NO :7 avec R138G 14 Mutant de facteur X humain GPAD-FXa identique à SEQ ID NO :7 avec R1381 15 Mutant de facteur X humain GPAD-FXa identique à SEQ ID NO :7 avec R138Y 16 Mutant de facteur X humain GPAD-FXa identique à SEQ ID NO :7 avec R138F Un autre objet de l'invention est un acide nucléique (polynucléotide ou séquence nucléotidique) codant pour ladite protéine. La séquence nucléotidique codant pour le GPAD-FXa peut être synthétisée par voie chimique (Young L and Dong Q., 2004,- Nucleic Acids Res., Apr 1 5;32(7), Hoover, D.M. and Lubkowski, J. 2002,. Nucleic Acids Res., 30, Villalobos A, et al., 2006. BMC Bioinformatics, Jun 6;7:285). La séquence nucléotidique codant pour le GPAD-FXa peut être également amplifiée par PCR en utilisant des amorces adaptées. Le GPAD-FXa peut également être produit par des techniques de génie génétique bien connues de l'homme du métier. La séquence nucléotidique codant pour le facteur X humain peut ainsi être clonée dans un vecteur d'expression ; la partie de la séquence nucléotidique codant pour le peptide signal, le propeptide et domaine Gla est délétée, un peptide signal est fusionné, comme celui du TIMP-1 (Crombez et al., 2005). L'ADN codant pour un tel FX modifié est inséré dans un plasmide d'expression et inséré dans une lignée cellulaire ad hoc pour sa production (par exemple la lignée HEK-393E), la protéine ainsi produite étant ensuite purifiée par chromatographie. Ces techniques sont décrites en détails dans les manuels de référence : Molecular cloning : a laboratory manual, 3" édition-Sambrook and Russel eds. (2001) et Current Protocols in Molecular Biology - Ausubel et al. eds (2007). Le polynucléotide selon l'invention a de préférence la séquence SEQ ID NO: 8 ou 10. Un autre objet de l'invention est une cassette d'expression comprenant ledit polynucléotide codant pour ladite protéine, ou un vecteur d'expression comprenant ledit polynucléotide ou ladite cassette d'expression. Selon l'invention, les vecteurs d'expression appropriés pour une utilisation selon l'invention peuvent comprendre au moins un élément de contrôle d'expression fonctionnellement lié à la séquence d'acide nucléique. Les éléments de contrôle d'expression sont insérés dans le vecteur et permettent de réguler l'expression de la séquence d'acide nucléique. Des exemples d'éléments de contrôle d'expression incluent notamment des systèmes lac, le promoteur du phage lambda, les promoteurs de levure ou les promoteurs viraux. D'autres éléments opérationnels peuvent être incorporés, comme une séquence de tête, des codons de terminaison, des signaux de polyadénylation et des séquences nécessaires pour la transcription et la traduction ultérieure de la séquence d'acide nucléique dans le système hôte. Il sera compris par l'homme de l'art que la combinaison correcte des éléments de contrôle d'expression dépend du système hôte choisi. Il sera également entendu que le vecteur d'expression doit contenir les éléments supplémentaires nécessaires pour le transfert et la réplication ultérieure du vecteur d'expression contenant la séquence d'acide nucléique dans le système hôte. De tels vecteurs sont facilement construits en utilisant des méthodes conventionnelles ou disponibles dans le commerce. Un autre objet de l'invention est une cellule recombinante comprenant un vecteur d'expression tel que décrit ci-dessus, ou un polynucléotide tel que décrit ci-dessus. Selon l'invention, des exemples de cellules hôtes qui peuvent être utilisées sont des cellules eucaryotes, comme les cellules animales, végétales, d'insectes et de levure ; et des cellules procaryotes, comme E. coli. Les moyens par lesquels le vecteur portant le gène peut être introduit dans les cellules comprennent notamment la microinjection, l'électroporation, la transduction ou la transfection à l'aide de DEAE-dextran, la lipofection, le phosphate de calcium ou d'autres procédures connues de l'homme de l'art. Dans un mode de réalisation préféré, les vecteurs d'expression eucaryotes qui fonctionnent dans les cellules eucaryotes sont utilisés. Des exemples de tels vecteurs comprennent les vecteurs viraux tels que les rétrovirus, adénovirus, virus de l'herpès, virus de la vaccine, virus de la variole, le poliovirus, lentivirus, les vecteurs d'expression bactériens ou des plasmides tels que pcDNA5. Les lignées cellulaires eucaryotes préférées comprennent les cellules COS, les cellules CHO, les cellules HEK, les cellules BHK, les cellules Per.C6, les cellules HeLa, les cellules NIH/3T3, 293 (ATCC # CRL1573), des cellules T2, les cellules dendritiques ou les monocytes. La protéine selon l'invention peut être produite dans le lait d'animaux transgéniques. Dans ce cas, selon un premier aspect, l'expression d'une séquence d'ADN codant pour le GPAD-FXa selon l'invention est contrôlée par un promoteur de caséine de mammifère ou un promoteur de lactosérum de mammifère, ledit promoteur ne contrôlant pas naturellement la transcription dudit gène, et la séquence d'ADN contenant en outre une séquence de sécrétion de la protéine. La séquence de sécrétion comprend un signal de sécrétion interposé entre la séquence codante et le promoteur. L'animal transgénique utilisé est capable non seulement de produire la protéine désirée, mais également de transmettre cette capacité à sa descendance. La sécrétion de la protéine dans le lait facilite la purification et évite l'utilisation de produits sanguins. L'animal peut ainsi être choisi parmi la chèvre, la lapine, la brebis ou la vache. La protéine selon l'invention peut être utilisée en tant que médicament. Par conséquent, la protéine selon l'invention peut être introduite dans une composition pharmaceutique. En particulier, la protéine selon l'invention peut être utilisée pour le traitement des troubles de la coagulation, notamment des troubles hémorragiques. De préférence, la protéine selon l'invention peut être utilisée dans la prévention ou le traitement chez un patient, notamment un être humain ou un animal, des évènements hémorragiques induits par la prise d'anticoagulants, qui sont des inhibiteurs spécifiques du facteur Xa. Dans une telle utilisation, la protéine selon l'invention sert d'antidote aux inhibiteurs spécifiques du facteur Xa. Par « antidote », on désigne les molécules, et notamment les protéines, capables de neutraliser ou de renverser tout ou partie de l'activité anticoagulante des anticoagulants. Cet effet doit pouvoir intervenir dans un délai plus ou moins court, en relation avec la localisation et l'ampleur de l'évènement hémorragique pour ralentir, atténuer ou interrompre totalement cet évènement hémorragique. L'activité anticoagulante des anticoagulants peut être mesurée par des tests coagulométriques globaux (temps de Quick (PT), temps de céphaline activé (aPTT)). En leur présence, il y a diminution de l'INR (International Normalized Ratio). La mesure de leurs effets peut aussi être envisagée par des tests de coagulation qui mesurent la génération de thrombine (TGT). Par « inhibiteurs spécifiques du facteur Xa », on désigne les composés capables d'inhiber, directement ou indirectement, l'activité procoagulante du FXa qui consiste en la conversion de la prothrombine en thrombine in vitro, et/ou ex vivo, et/ou in vivo. Les inhibiteurs du FXa peuvent être classés en inhibiteurs de nature peptidique, extraits et purifiés ou obtenus par génie génétique et en inhibiteurs de nature non peptidique obtenus par synthèse chimique (Kher et al., 1998, La Lettre du pharmacologue, 12(6), 222-226). Les inhibiteurs qui bloquent le site actif du FXa sont appelés inhibiteurs directs alors que les inhibiteurs qui agissent en se liant et en catalysant l'effet de l'antithrombine vis-à-vis du FXa sont appelés inhibiteurs indirects. Des exemples d'inhibiteurs peptidiques directs du FXa incluent notamment le TAP (tick anticoagulant peptide) extrait de la salive de la tique, l'antistasine extraite des glandes salivaires de la sangsue Haementeria officinalis, l'ACAP (ancylostoma caninum anticoagulant peptide) isolé à partir de l'ankylostome ou ses formes recombinantes r Ac AP5, r Ac AP2 (également appelé NAP-5) ou encore FXa I (factor Xa inhibitor) extraite de la salive de la sangsue Hirudo medicinalis ou la protéine recombinante lui correspondant nommée Yagin. Parmi les inhibiteurs non peptidiques directs du FXa, on trouve le DX 9065a, le LY517717 et les xabans (eribaxaban, apixaban, betrixaban, edoxaban, otamixaban, rivaroxaban). Les HBPM, les oligosaccharides fondaparinux ou idraparinux et les héparinoïdes (danaparoïd, sulfodexide, sulfte de dermatan) constituent des exemples d'inhibiteurs indirects du FXa. L'utilisation de la protéine selon l'invention comme antidote des inhibiteurs du FXa permet la titration de ces inhibiteurs. De préférence, l'activité inhibitrice de la protéine selon l'invention sur les inhibiteurs spécifiques de FXa est d'au moins environ 10%, 30 20%, 30%, 40%, 50%, 60%, 70%, 80%, 90% ou 100%. La composition pharmaceutique de l'invention peut être combinée avec des excipients pharmaceutiquement acceptables, et éventuellement des matrices à libération prolongée, comme des polymères biodégradables, pour former une composition thérapeutique. La composition pharmaceutique de la présente invention peut être administrée par voie orale, sublinguale, sous-cutanée, intramusculaire, intraveineuse, intra-artérielle, intrathécale, intra-oculaire, intra-cérébrale, transdermique, pulmonaire, locale ou rectale. Le principe actif, seul ou en association avec un autre principe actif, peut alors être administré sous forme unitaire d'administration, en mélange avec des supports pharmaceutiques classiques. Des formes unitaires d'administration comprennent les formes par voie orale telles que les comprimés, les gélules, les poudres, les granules et les solutions ou suspensions orales, les formes d'administration sublinguale et buccale, les aérosols, les implants sous-cutanés, transdermique, topique, intrapéritonéale, intramusculaire, intraveineuse, sous-cutanée, intrathécale, les formes d'administration par voie intranasale et les formes d'administration rectale. De préférence, la composition pharmaceutique contient un véhicule pharmaceutiquement acceptable pour une formulation susceptible d'être injectée. 11 peut s'agir en particulier de formules isotoniques, stériles, de solutions salines (avec phosphate monosodique ou disodique, chlorure de sodium, de potassium, de calcium ou de magnésium et analogues, ou des mélanges de tels sels), ou de compositions lyophilisées, qui, lors de l'addition d'eau stérilisée ou de sérum physiologique selon les cas, permettent la constitution de solutés injectables. Les formes pharmaceutiques appropriées pour une utilisation injectable comprennent des solutions aqueuses stériles ou des dispersions, des formulations huileuses, y compris l'huile de sésame, l'huile d'arachide, et des poudres stériles pour la préparation extemporanée de solutions injectables stériles ou de dispersions. Dans tous les cas, la forme doit être stérile et doit être fluide dans la mesure où elle doit être injectée par seringue. Elle doit être stable dans les conditions de fabrication et de stockage et doit être préservée contre l'action contaminante de micro-organismes, comme les bactéries et les champignons. Les dispersions selon l'invention peuvent être préparées dans du glycérol, des polyéthylèneglycols liquides ou leurs mélanges, ou dans des huiles. Dans des conditions normales de stockage et d'utilisation, ces préparations contiennent un conservateur pour empêcher la croissance des micro-organismes. Le véhicule pharmaceutiquement acceptable peut être un solvant ou milieu de dispersion contenant, par exemple, l'eau, l'éthanol, un polyol (par exemple, la glycérine, le propylène glycol, le polyéthylène glycol, et analogues), des mélanges appropriés de ceux-ci, et/ou les huiles végétales. La fluidité convenable peut être maintenue, par exemple, par l'utilisation d'un tensioactif, tel que la lécithine. La prévention de l'action de micro-organismes peut être provoquée par divers agents antibactériens et antifongiques, par exemple, des parabènes, le chlorobutanol, le phénol, l'acide sorbique ou encore le thimérosal. Dans de nombreux cas, il sera préférable d'inclure des agents isotoniques, par exemple, des sucres ou du chlorure de sodium. L'absorption prolongée des compositions injectables peut être provoquée par l'utilisation dans les compositions d'agents retardant l'absorption, par exemple, le monostéarate d'aluminium ou la gélatine. Les solutions injectables stériles sont préparées en incorporant les substances actives en quantité requise dans le solvant approprié avec plusieurs des autres ingrédients énumérés ci-dessus, le cas échéant, suivie d'une stérilisation par filtration. En règle générale, les dispersions sont préparées en incorporant les divers ingrédients actifs stérilisés dans un véhicule stérile qui contient le milieu de dispersion basique et les autres ingrédients requis parmi ceux énumérés ci-dessus. Dans le cas de poudres stériles pour la préparation de solutions injectables stériles, les procédés de préparation préférés sont le séchage sous vide et la lyophilisation. Lors de la formulation, les solutions seront administrées d'une manière compatible avec la formulation posologique et en une quantité thérapeutiquement efficace. Les formulations sont facilement administrées dans une variété de formes galéniques, telles que les solutions injectables décrites ci-dessus, mais les capsules de libération de médicament et similaires peuvent également être utilisés. Pour l'administration parentérale dans une solution aqueuse par exemple, la solution doit être convenablement tamponnée et le diluant liquide rendu isotonique avec suffisamment de solution saline ou de glucose. Ces solutions aqueuses particulières conviennent particulièrement pour une administration intraveineuse, intramusculaire, sous-cutanée et intrapéritonéale. À cet égard, les milieux aqueux stériles qui peuvent être utilisés sont connus de l'homme de l'art. Par exemple, une dose peut être dissoute dans 1 ml de solution de NaC1 isotonique puis ajoutée à 1000 ml de liquide approprié, ou injectée sur le site proposé de la perfusion. Certaines variations de posologie devront nécessairement se produire en fonction de l'état du sujet traité. La composition pharmaceutique de l'invention peut être formulée dans un mélange thérapeutique comprenant environ 0.0001 à 1.0 milligrammes, soit environ 0.001 à 0.1 milligrammes, soit environ de 0.1 à 1.0 milligrammes, voire environ 10 milligrammes par dose ou plus. Des doses multiples peuvent également être administrées. Le niveau de dose thérapeutiquement efficace spécifique pour un patient particulier dépendra d'une variété de facteurs, y compris le trouble qui est traité et la gravité de la maladie, l'activité du composé spécifique employé, la composition spécifique utilisée, l'âge, le poids corporel, la santé générale, le sexe et le régime alimentaire du patient, le moment de l'administration, la voie d'administration, le taux d'excrétion du composé spécifique utilisé, la durée du traitement, ou encore les médicaments utilisés en parallèle. Les exemples suivants sont donnés en vue d'illustrer divers modes de réalisation de l'invention. Les légendes des figures sont les suivantes : Figure 1 :Analyse du GPAD-FXA produit en HEK293 Le FX plasmatique non activé (FX) ou activé (FXa) et le GPAD-FXa sont révélés en immunoblot par un anticorps polyclonal anti-FX après séparation en SDS-PAGE 412%. Les échantillons ont été non réduits (NR) ou réduits (R) par un traitement au 13- mercaptoéthanol. Deux marqueurs de poids moléculaire distincts (PM) sont utilisés. Seules les valeurs de celui de droite sont indiquées. Les deux flèches indiquent le niveau de migration du GPAD-FXa non réduit (flèche supérieure) et réduit (flèche inférieure). Figure 2 : Activité amidolytique du GPAD-FXa L'activité amidolytique vis-à-vis du substrat Pefachrome 8595 au cours du temps du GPAD-FXa (diamants blancs) est comparée à l'activité des facteurs X (ronds blancs) et X activé (carrés noirs). - en abscisse : le temps (en minutes) - en ordonnée : la vitesse d'apparition du produit de dégradation du Pefachrome 8595 en mUDO/min. Figure 3A: Thrombinogramme obtenu à partir de l'ajout de 0,18 iLig/mL ou 0,36 5 pg/m1 de GPAD-FXa dans un pool de plasma déficient en FVIII suite à l'activation par du facteur tissulaire: - en abscisse : le temps (en minutes) - en ordonnée : la concentration maximale de thrombine observée (en nM). L'échantillon de pool de plasma normal est représenté par la courbe - et l'échantillon 10 correspondant à un plasma déficient en facteur VIII par la courbe o. La courbe a représente un plasma déficient en FVIII substitué par 1 U/ml de FVIII recombinant (Recombinate). Le GPAD-FXa a été ajouté à raison de 0,181..tg/mL (courbe 0) ou 0,361..tg/m1 (courbe de *) dans l'échantillon de plasma déficient en FVIII. 15 Figure 3B: Thrombinogramme obtenu à partir de l'ajout de 0,18 iLig/mL ou 0,36 iLig/m1 de GPAD-FXa dans un pool de plasma déficient en FVIII suite à l'activation par la céphaline: - en abscisse : le temps (en minutes) 20 - en ordonnée : la concentration maximale de thrombine observée (en nM). L'échantillon de pool de plasma normal est représenté par la courbe - et l'échantillon correspondant à un plasma déficient en facteur VIII par la courbe o. La courbe des a représente un plasma déficient en FVIII substitué par 1 U/ml de FVIII recombinant (Recombinate). 25 Le GPAD-FXa a été ajouté à raison de 0,181..tg/mL (courbe 0) ou 0,361..tg/m1 (courbe *) dans l'échantillon de plasma déficient en FVIII. Figure 4A: Thrombinogramme obtenu à partir de l'ajout de 0,18 iLig/mL ou 0,36 iLig/m1 de GPAD-FXa dans un pool de plasma déficient en FIX suite à l'activation 30 par du facteur tissulaire: en abscisse : le temps (en minutes) en ordonnée: la concentration maximale de thrombine observée (en nM). L'échantillon de pool de plasma normal est représenté par la courbe - et l'échantillon correspondant à un plasma déficient en facteur IX par la courbe o. La courbe a représente un plasma déficient en FIX substitué par 1 U/ml de Betafact (FIX plasmatique). Le GPAD-FXa a été ajouté à raison de 0,181..tg/mL (courbe 0) ou 0,361..tg/m1 (courbe *) dans l'échantillon de plasma déficient en FIX. Figure 4B: Thrombinogramme obtenu à partir de l'ajout de 0,18 iLig/mL ou 0,36 iug/m1 de GPAD-FXa dans un pool de plasma déficient en FIX suite à l'activation 10 par la céphaline: - en abscisse : le temps (en minutes) - en ordonnée : la concentration maximale de thrombine observée (en nM). L'échantillon de pool de plasma normal est représenté par la courbe -. L'échantillon correspondant à un plasma déficient en facteur IX par la courbe o. La courbe a 15 représente un plasma déficient en FIX substitué par 1 U/ml de Betafact (FIX plasmatique). Le GPAD-FXa a été ajouté à raison de 0,181..tg/mL (courbe 0) ou 0,361..tg/m1 (courbe *) dans l'échantillon de plasma déficient en FIX. 20 Figure 5: Thrombinogramme obtenu à partir de l'ajout de 0,18 iLig/mL ou 0,36 pg/m1 de GPAD-FXa dans un pool de plasma déficient en FVIII en présence d'anticorps inhibiteurs du FVIII suite à l'activation par du facteur tissulaire: - en abscisse : le temps (en minutes) - en ordonnée : la concentration maximale de thrombine observée (en nM). 25 La génération de thrombine obtenue à partir d'un échantillon de pool de plasma normal est représentée par la courbe -, à partir d'un plasma déficient en facteur VIII par la courbe o. La courbe a représente un plasma déficient en FVIII substitué par 1 U/ml de FVIII recombinant (Recombinate) et, la courbe o le même échantillon en présence d'anticorps polyclonaux anti-FVIII possédant une activité inhibitrice de 20 Unités 30 Bethesda/ml. Les courbes . et 0 représentent le signal d'un plasma déficient en FVIII et contenant des anticorps polyclonaux anti-FVIII possédant une activité inhibitrice de 20 Unités Bethesda/ml en présence respectivement de 0,18 et 0,381..tg/m1 GPAD-FXa. Figure 6A: Thrombinogramme obtenu à partir de l'ajout de 0,18 iLig/mL ou 0,36 pg/m1 de GPAD-FXa dans un pool de plasma déficient en FIX en présence d'anticorps inhibiteurs du FIX suite à l'activation par du facteur tissulaire: - en abscisse: le temps (en minutes) - en ordonnée : la concentration maximale de thrombine observée (en nM). La génération de thrombine obtenue à partir d'un échantillon de pool de plasma normal est représentée par la courbe -, à partir d'un plasma déficient en facteur IX par la courbe o. La courbe a représente un plasma déficient en FIX substitué par 1 U/ml de FIX plasamtique (Betafact) et, la courbe o le même échantillon en présence d'anticorps polyclonaux anti-FIX (100 itg/ml). Les courbes . et 0 représentent le signal d'un plasma déficient en FIX et contenant des anticorps polyclonaux anti-FIX en présence respectivement de 0,18 et 0,381..tg/m1 GPAD-FXa. Figure 6B: Thrombinogramme obtenu à partir de l'ajout de 0,18 iLig/mL ou 0,36 pg/m1 de GPAD-FXa dans un pool de plasma déficient en FIX en présence d'anticorps inhibiteurs du FIX suite à l'activation par la céphaline: - en abscisse: le temps (en minutes) - en ordonnée : la concentration maximale de thrombine observée (en nM). La génération de thrombine obtenue à partir d'un échantillon de pool de plasma normal est représentée par la courbe -, à partir d'un plasma déficient en facteur IX par la courbe o. La courbe a représente un plasma déficient en FIX substitué par 1 U/ml de FIX plasamtique (Betafact) et, la courbe o le même échantillon en présence d'anticorps polyclonaux anti-FIX (100 itg/ml). Les courbes . et 0 représentent le signal d'un plasma déficient en FIX et contenant des anticorps polyclonaux anti-FIX en présence respectivement de 0,18 et 0,381..tg/m1 GPAD-FXa.30 Exemples Exemple 1 : Préparation du GPAD-FXa Matériel .- Les facteurs X plasmatiques humains activé ou non (FXa/FX), les substrats chromogéniques pNAPEP 1025 et Pefachrome 8595, et le plasma d'hémophile A avec inhibiteurs et les anticorps polyclonaux anti-FX et anti-FIX proviennent de Haematologic Technologies (Cryopep Montpellier, France). Le facteur VIII recombinant de contrôle (Recombinate) provient de chez Baxter. Le facteur IX plasmatique provient de LFB. Les plasmas déficients en FVIII proviennent de chez Siemens, ceux en FIX de chez Stago. Les Anticorps polyclonaux anti-F VIII proviennent de chez Cedarlane. Méthodes .- Production de l'ADNc de GPAD-FXa L'ADNc codant pour un facteur X dénué du domaine gamma-carboxyglutamique et étiqueté par la séquence HPC4 (Cf demande FR 2 972 114) va servir de matrice pour la génération de GPAD-FXa. Les amorces sens (5'- ctggaacgcaggaagaggaggaagaggatcgtgggaggc SEQ ID NO :17) et anti-sens (5' - gcctcccacgatcctcttcctcctcttcctgcgttccag SEQ ID NO :18) sont utilisées pour apporter la délétion du peptide d'activation et son remplacement par un site furine (RKR), créant ainsi un double site furine. La modification de l'ADNc est réalisée avec la méthode Quickchange (Stratagène) et l'enzyme pFU Ultra. Production du GPAD-FXa recombinant La veille de la transfection, les cellules HEK 293F sont repiquées à une concentration cellulaire de 7 X 105 vc/ml. La densité cellulaire et la viabilité des cellules sont déterminées le jour de la transfection. Le volume de culture correspondant à 30 X 106 cellules est centrifugé. Le surnageant est éliminé et le culot de cellules est repris dans 28 ml de milieu de culture F17 (Invitrogen), transféré dans un Erlenmeyer de 250 ml et incubé à 37 °C. Un complexe agent de transfection / ADN en rapport 2:1 est formé. L'agent de transfection (Fectine ou Polyethyleneimine (PET) et l'ADN correspondant au vecteur contenant une des séquences du GPAD-FXa sont préparés dans du milieu OptiMEM (Invitrogen) de la façon suivante: - Ajout de 30 tg d'ADN dans 1 ml d'OptiMEM - Ajout de 60 pl de Fectine ou 60 pl de PET dans 1 ml d'OptiMEM. Ces deux préparations sont incubées séparément pendant 5 minutes à température ambiante puis la solution contenant l'agent de transfection est ajoutée à celle contenant l'ADN. Le mélange est incubé pendant 25 minutes à température ambiante avant d'être ajouté aux 28 ml de cellules HEK 293F. Les cellules sont alors incubées à 37°C en agitation à 125 rpm. Un vecteur exprimant la GFP (Green Fluorescent Protein ; témoin positif de transfection) est également transfecté dans les mêmes conditions. L'efficacité de transfection est déterminée 24h post-transfection par microscopie à fluorescence en établissant le rapport du nombre de cellules exprimant la GFP sur le nombre total de cellules. Les cellules sont maintenues en culture durant 7 jours. La densité cellulaire et la viabilité sont déterminées tous les jours entre le Sème et le 7ème jour à l'aide d'un automate d'analyse de culture cellulaire (Cedex, Innovatis - Roche Applied Science). La mesure de la viabilité est basée sur le comptage des cellules ayant incorporé du bleu trypan. Le 7ème jour, les cellules sont centrifugées à 3000g pendant 15 minutes. Le culot cellulaire est éliminé et le surnageant cellulaire contenant le GPAD-FXa recombinant est filtré en 0,22 !lm puis congelé à -20°C. Avant utilisation, les surnageants sont concentrés jusqu'à 10 fois sur des colonnes Vivaspin 10 kDa. Visualisation des protéines suivant une séparation en SDS-PAGE Pour chaque gel au moins un témoin de masse moléculaire approprié est utilisé. Une quantité identique de protéine à détecter est ensuite chargée dans chaque puits en tampon de charge 2X concentré (Tris HC1 1M pH 6,8; 20% SDS; 20% glycérol ; 0,1% bleu bromophénol). Les échantillons réduits sont traités par du tampon de charge en présence de 0,5 M P-mercaptoéthanol. Le tampon de migration NuPAGE MOPS SDS lx (Invitrogen) est utilisé pour la migration. Les échantillons sont laissés à migrer à 200V durant 50 minutes dans un gel NuPAGE Novex Bis-Tris 4-12 %. Lorsque l'électrophorèse est terminée, les protéines séparées sur le gel sont immunodétectées après électrotransfert sur membrane de nitrocellulose ou PVDF en Tampon de Towbin (25 mM Tris, 192 mM glycine, 3,5 mM SDS, éthanol 10 %) en appliquant un courant de 0,8 mA/cm2pendant 1h30. La membrane est ensuite rincée en eau et incubée en tampon de saturation (PBS, 1% Sérum albumine bovine, 0,05% Tween-20). La membrane est ensuite incubée en tampon de saturation en présence de l'anticorps de mouton anti-FX humain (Cryopep 9-PAHFX-S) à 2 1..tg/ml pendant lh puis en présence de l'anticorps secondaire (anti-mouton IgG H+L péroxidase - Jackson Laboratory) au 1/10 000' pendant lh suite à 4 lavages par une solution d'eau physiologique (0,9% NaC1) contenant 0,05% de Tween-20. Un protocole de lavages identiques est appliqué avant révélation. L'immunoblot est révélé par chemiluminescence en utilisant le kit Super signal WEST PICO substrat chemiluminescent (PIERCE). Mesure de la concentration en facteur X La mesure de concentration des FX, FXa et GPAD-FXa est effectuée grâce au kit commercial Zymutest Factor X (Hyphen Biomed). L'ELISA donne un signal linéaire pour des concentrations allant de 200 ng/ml à 1,5 ng/ml de factor X plasmatique. Les trois protéines sont reconnues de manière identique par le kit. Mesure de l'activité chromogénique du facteur X activé Les mesures de l'activité du FX, FXa et GPAD-FXa ont été étudiées à 37°C dans le tampon stop (50 mM Tris, pH 8,8, 0,475 M NaC1, 9 mM EDTA). L'activité chromogénique du FXa à différentes concentrations a été suivie dans le temps par la mesure de l'hydrolyse du substrat Pefachrome 8595 (2501..1M) à 405 nm. Protocole de la mesure de génération de thrombine : Le Fluoroskan Ascent, tous les réactifs après reconstitution et les échantillons sont préchauffés à 37°C. Les réactifs 0,5 pM FT/4 1..1M PL (concentration finale) et Céphaline (16,7% concentration finale) seront utilisés comme inducteurs de la réaction. Le réactif « Thrombin Calibrator » (Diagnostica Stago) est utilisé systématiquement comme contrôle des essais. Chaque échantillon à tester (80 pl) est étudié en duplicate en présence de 20 pl du mélange FT/PL ou 20 pl de Céphaline. Le substrat fluorogénique (20 pt ; FluCa Kit (Diagnostica Stago) est alors ajouté et l'apparition de thrombine est suivie par une excitation à 390 nm et une émission à 460 nm durant 60 min. Les résultats sont ensuite analysés grâce au logiciel Thrombinoscope (Stago, Asnières, France). Exemple 2 : Analyse du GPAD-FXA produit en HEK293 Les surnageants de culture des cellules transfectées par un vecteur vide ou un vecteur codant pour GPAD-FXa ont été dosés avec le Kit Zymutest Factor X (Hyphen Biomed). Dans les milieux témoins, aucune quantité significative de FX n'a été détectée. En revanche, dans les milieux des cellules exprimant GPAD-FXa, des taux de 0,11 à 0,44 p.g/m1 ont été dosés. Ces concentrations varient en fonction des différents essais et des volumes de production. Ces données indiquent que GPAD-FXa est produit par les cellules HEK293 et qu'il semble reconnu par le kit de détection du facteur X. Afin de confirmer la présence et de visualiser la qualité du GPAD-FXa produit dans le surnageant de HEK293, un aliquot de milieu concentré a été analysé par SDS-PAGE sur gradient d' acrylamide (figure 1). Des quantités de protéines identiques ont été déposées sur gel et les signaux obtenus en immunoblot sont très proches, suggérant que la quantification par ELISA de GPAD-FXa est correcte. Les échantillons ont été déposés réduits (R) par le P-mercaptoéthanol ou non (NR). Ils ont été comparés avec les FX et FXa plasmatiques traités de manière identique. Le GPAD-FXa non réduit migre sous une seule forme moléculaire à un poids moléculaire apparent de 42,1 kDa correspondant au poids attendu (flèche supérieure). Après réduction, le GPAD-FXa migre sous deux formes moléculaires, l'une au même poids moléculaire que la forme non réduite et l'autre à un poids moléculaire de 35,6 kDa (flèche inférieure). Cette dernière forme migre de la même manière que la chaîne lourde du FXa. Ces résultats suggèrent que le GPAD-FXa est produit sous deux formes moléculaires : une forme simple chaîne non-clivée de 42,1 kDa et une forme dont les chaînes lourdes et légères sont clivées et retenues par un pont disulfure. Exemple 3 : Activité amidolytique du GPAD-FXa Les résultats en immunoblot suggèrent que la molécule est produite au moins partiellement sous sa forme active. Afin de confirmer cette hypothèse et de vérifier que le site catalytique du GPAD-FXa est resté fonctionnel, une mesure de l'activité amidolytique de la molécule est réalisée. Différentes concentrations de GPAD-FXa sont incubées 5 min à 37°C en présence du substrat chromogénique Pefachrome 8595, spécifique du FXa. La vitesse initiale d'apparition du substrat (en mUDO/min) est déterminée en fonction de la concentration initiale en FX(a) ou GPAD-FXa (figure 2). Comme attendu, le FX non activé (courbe 0) ne clive pas le substrat, contrairement au FXa (courbe 3). De 0 à 10 nM de FXa, la vitesse d'apparition du substrat augmente de manière linéaire. GPAD-FXa (courbe 0) montre aussi une capacité à cliver le Pefachrome 8595. Cette capacité est toutefois plus faible que celle du FXa. Cependant la présence dans le surnageant de molécules de GPAD-FXa non activées par la furine, et donc dépourvues d'activité enzymatique, peut expliquer cette différence quantitative. Exemple 4 : Le GPAD-FXa corrige un déficit en FVIII La capacité du GPAD-FXa à restaurer la génération de thrombine en plasma déficient en FVIII a été évaluée suite à une induction par le facteur tissulaire (figure 3A) ou la céphaline (figure 3 B). Dans les conditions expérimentales, le plasma déficient en FVIII (Siemens) ne permet pas de générer de thrombine (courbe 0). La supplémentation de ce plasma par 1 unité/ml de FVIII (Recombinate, Baxter) permet une génération de thrombine importante (courbe 3). La quantité de thrombine générée totale est de 1579 nM de thrombine (Table I). L'adjonction de surnageant de culture contenant le GPADFXa à 0,18 1..tg/m1 (1,8 % de la concentration plasmatique de FX soit 0,018 U/ml) permet de restaurer une production de thrombine (courbe 0). La quantité de thrombine générée par GPAD-FXa (ETP) est de l'ordre de 1545 nM correspondant à 98 % de la génération de thrombine par du FVIII de substitution normalisateur. Par ailleurs, la présence de GPAD-FXa permet aussi de normaliser le temps d'apparition de la thrombine avec un temps pour atteindre le somment du pic à 6,83 min contre 8,67 min pour le plasma substitué. Une dose deux fois plus importante de GPAD-FXa (0,36 dg/ml) possède même un effet plus important que le FVIII normalisateur avec une quantité de thrombine générée de 1651 nM et un temps d'apparition du pic raccourci à 4,83 min. Le contrôle positif Unicalibrator (Stago) permet de vérifier la validité de l'expérience par la génération de thrombine dans un plasma sain (courbe -). Une expérience similaire est réalisée en induisant la génération de thrombine par la céphaline. Dans ces conditions le plasma déficient en FVIII ne permet pas de générer de la thrombine (courbe 0). Au contraire du plasma déficient substitué en FVIII génère 1472 nM de thrombine (courbe 3). La présence de GPAD-FXa 0,18 1..tg/ml permet de générer une quantité de thrombine correspondant à 1160 nM (courbe 0 ; 79 % du FVIII). Le signal dépend de la dose rajoutée puisque une dose double de GPAD-FXa (0,36 itg/ml) permet d'obtenir 1316 nM de thrombine (courbe -; 89% du FVIII). Le contrôle positif Unicalibrator (Stago) permet de vérifier la validité de l'expérience par la génération de thrombine dans un plasma sain (courbe -). Groupe Unicalibrator Déficient Déf FVIII + Déf FVIII + De,f FVIII + FVIII Recombinate GPAD-Fxa GPAD-Fxa (0,32 pg/m1 Siemens (1 U/m I) (0,16 pg/m1) Lagtime (min) 7,5 5,67 5,83 4 3 ETP (nM) 1293 400 1579 1545,5 1651 Peak (nM) 191,57 15,34 240,83 239,96 352,7 ttPeak (min) 10,83 22,5 8,67 6,83 4,83 Table I: Paramètres cinétiques de la génération de thrombine en plasma déficient en FVIII activé par le facteur tissulaire Groupe Unicalibrator Déficient Déf FVIII Déf FVIII + De,f FVIII + FVIII +Recombinate GPAD-Fxa GPAD-Fxa (0,32 pg/m1 Siemens (1 U/m I) (0,16 pg/m1) Lagtime (min) 12,83 1,17 9,67 10,17 5,5 ETP (nM) 1139 0 1472,5 1160,5 1316 Peak (nM) 279,72 0,76 321,76 123,12 236,63 ttPeak (min) 15,5 32 11,33 16,5 8,33 Table II: Paramètres cinétiques de la génération de thrombine en plasma déficient 20 en FVIII activé par la céphaline Exemple 5 : Le GPAD-FXa corrige un déficit en FIX La capacité du GPAD-FXa à restaurer la génération de thrombine en plasma déficient en FIX a été évaluée suite à une induction par le facteur tissulaire (figure 4 A) ou la céphaline (figure 4 B). Dans les conditions expérimentales, le plasma déficient en FIX (Stago) ne permet pas de générer de thrombine (courbe 0). La supplémentation de ce plasma par 1 unité/ml de FIX (Betafact, LFB) permet une génération de thrombine importante (courbe 3). La quantité de thrombine générée totale est de 1123 nM de thrombine (Table III). L'adjonction de surnageant de culture contenant le GPAD-FXa à 0,18 1..tg/ml (1,8 % de la concentration plasmatique de FX soit 0,018 U/ml) permet de restaurer une production de thrombine (courbe 0). La quantité de thrombine générée par GPAD-FXa (ETP) est de l'ordre de 1395 nM correspondant à 124 % de la génération de thrombine par du FIX de substitution normalisateur. Par ailleurs, la présence de GPADFXa permet aussi de normaliser le temps d'apparition de la thrombine avec un temps pour atteindre le somment du pic à 9,67 min contre 14,17 min pour le plasma substitué. Une dose deux fois plus importante de GPAD-FXa (courbe - ; 0,36 idg/m1) possède un effet encore plus important que le FIX normalisateur avec une quantité de thrombine générée de 1437 nM et un temps d'apparition du pic raccourci à 6,17 min. Le contrôle positif Unicalibrator (Stago) permet de vérifier la validité de l'expérience par la génération de thrombine dans un plasma sain (courbe *). Une expérience similaire est réalisée en induisant la génération de thrombine par la céphaline. Dans ces conditions le plasma déficient en FIX ne permet pas de générer de la thrombine (courbe 0). Au contraire du plasma déficient substitué en FIX génère 1030 nM de thrombine (courbe 3). La présence de GPAD-FXa 0,181..tg/m1 permet de générer une quantité de thrombine correspondant à 493 nM (courbe 0 ; 48 % du FIX). Le signal dépend de la dose rajoutée puisque une dose double de GPAD-FXa (0,36 idg/m1) permet d'obtenir 1032 nM de thrombine (courbe -; 100% du FIX). Cette dose de GPAD-FXa permet aussi de raccourcir le temps au pic de 28 à 14 min. Le contrôle positif Unicalibrator (Stago) permet de vérifier la validité de l'expérience par la génération de thrombine dans un plasma sain (courbe *). Groupe Unicalibrator Déficient Déf FIX + Déf FIX + Déf FIX + FIX Stago Betafact GPAD-FXa GPAD-FXa (1 U/ml) (0,18 (0,32 pg/m1) pg/m1) Lagtime 7 5,17 8,33 5 3,83 ETP 1343,5 172 1123,5 1395,5 1437 Peak 190,37 5,85 90,61 132,02 279,63 ttPeak 10,67 23,83 14,17 9,67 6,17 Table III: Paramètres cinétiques de la génération de thrombine en plasma déficient en FIX activé par le facteur tissulaire Groupe Unicalibrator Déficient Déf FIX + Déf FIX + Déf FIX + FIX Stago Betafact GPAD-FXa GPAD-FXa (1 U/ml) 0,18 pg/m1 0,36 pg/m1 Lagtime (min) 12,83 0 20 14,17 7,67 ETP (nM) 1161 0 1030 493,5 1032,5 Peak (nM) 293,25 0 112,68 34,47 109,16 ttPeak (min) 15 0 28,17 24,33 14 Table IV: Paramètres cinétiques de la génération de thrombine en plasma déficient 5 en FIX activé par la céphaline Exemple 6 : Le GPAD-FXa corrige un déficit en FVIII en présence d'anticorps inhibiteurs du FVIII 10 Une expérience similaire à l'exemple 4 a été conduite mais en ajoutant dans le plasma des anticorps inhibiteurs du facteur VIII (figure 5). Les anticorps ont été dosés et une dose équivalente à 20 Unité Bethesda/ml a été rajoutée. Cette dose est capable d'inhiber toute génération de thrombine induite par 1 U/ml de FVIII (courbe o). En présence de 15 ces anticorps, GPAD-FXa à 0,18 1..tg/ml (courbe *) ou 0,36 1..tg/ml (courbe 0) est capable de restaurer une génération de thrombine supérieure au plasma déficient en FVIII substitué avec du FVIII (1 U/ml ; courbe 3) mais aussi à un plasma normal (*). Il est à noter que les temps de pic sont diminués en présence de GPAD-FXa par rapport aux différents contrôles. 20 Exemple 7 : Le GPAD-FXa corrige un déficit en FIX en présence d'anticorps inhibiteurs du FIX Une expérience similaire à l'exemple 6 a été conduite mais en ajoutant dans du plasma déficient en FIX des anticorps inhibiteurs du facteur IX (figure 6A). La génération de thrombine a été suivie soit après une induction par le facteur tissulaire (figure 7A) soit après une induction par la céphaline (figue 6B). L'efficacité des anticorps a été mesurée et une dose de 100 1..tg/ml d'anticorps a été rajoutée lors de la mesure de génération de thrombine. Cette dose est capable d'inhiber toute génération de thrombine induite par 1 U/m1 de FIX (courbe o). En présence de ces anticorps, GPAD-FXa à 0,18 1..tg/ml (courbe *) ou 0,36 1..tg/m1 (courbe 0) est capable de restaurer une génération de thrombine supérieure au plasma déficient en FIX substitué avec du FIX (1U/m1 ; courbe 3) mais aussi à un plasma normal (*). Comme pour la déficience en FVIII en présence d'inhibiteurs, les temps au pic sont aussi diminués par rapport aux contrôles. REVENDICATIONS1. Protéine consistant en la séquence SEQ ID NO :11 directement fusionnée, ou 5 fusionnée via un linker, à la séquence SEQ ID NO :6. 2. Protéine selon la revendication 1, caractérisée en ce que le linker consiste en la séquence -Arg-Lys-Arg-. 10 3. Protéine selon la revendication 1, caractérisée en ce que le linker est choisi parmi les sites de clivages du FVIIa, du FIXa, du FXa, du FXIa, du FXIIa, de la kallikréine et de la protéine C activée. 4. Protéine selon l'une des revendications 1 ou 2, caractérisée en ce qu'elle a pour 15 séquence SEQ ID NO :7 ou SEQ ID NO :9. 5. Protéine selon l'une des revendications précédentes, caractérisée en ce qu'elle comprend au moins une mutation, de préférence une substitution ponctuelle. 20 6. Protéine selon la revendication 5, caractérisée en ce que l'arginine 138 de SEQ ID NO : 6 est substituée par la phénylalanine, la glycine, l'isoleucine ou la tyrosine. 7. Protéine selon la revendication 5 ou 6, caractérisée en ce que la lysine 82 de SEQ ID NO : 6 est substituée par la tyrosine. 25 8. Acide nucléique caractérisé en ce qu'il code pour la protéine selon l'une des revendications précédentes. 9. Acide nucléique selon la revendication 8, caractérisé en ce qu'il a pour séquence SEQ 30 ID NO :8 ou SEQ ID NO :10. 10. Cassette d'expression comprenant l'acide nucléique selon la revendication 8 ou 9. 11. Vecteur d'expression, caractérisé en ce qu'il comprend la cassette d'expression selon la revendication 10 ou l'acide nucléique selon la revendication 8 ou 9. 12. Cellule recombinante comprenant l'acide nucléique selon la revendication 8 ou 9, ou le vecteur selon la revendication 11. 13. Protéine selon l'une des revendications 1 à 7 pour son utilisation en tant que médicament. 14. Protéine selon l'une des revendications 1 à 7 pour son utilisation pour traiter les troubles hémorragiques. 15. Protéine selon l'une des revendications 1 à 7 pour son utilisation dans la prévention 15 ou le traitement chez un patient, notamment un être humain ou un animal, des évènements hémorragiques induits par la prise d'anticoagulants, qui sont des inhibiteurs spécifiques du facteur Xa. 20