FR 3010530 A1 20150313 FR 1358721 A 20130911 Méthode de diagnostic des hémopathies malignes et kit associé La présente invention concerne une méthode de diagnostic d'un cancer chez un sujet, comprenant une étape de RT-MLPA sur un échantillon biologique obtenu à partir dudit sujet à l'aide d'au moins un couple de sondes choisi parmi : - les sondes SEQ ID NO :1 à 25, 30, 31 et 113 à 120, - les sondes SEQ ID NO : 374 à 405, et - les sondes SEQ ID NO : 524 à 559, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d' amorçage. De préférence, la présente invention concerne une méthode de diagnostic d'un cancer chez un sujet, comprenant une étape de RT-MLPA réalisée sur un échantillon biologique obtenu à partir dudit sujet, notamment dans le but de rechercher des transcrits de fusion, à l'aide des sondes SEQ ID NO :1 à 25, 30, 31 et 113 à 120, et/ou à l'aide des sondes SEQ ID NO : 374 à 405, et/ou à l'aide d'au moins les sondes SEQ ID NO : 524 à 559, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d'amorçage. La présente invention concerne également un kit comprenant au moins les sondes SEQ ID NO :1 à 25, 30, 31 et 113 à 120, et/ou au moins les sondes SEQ ID NO : 374 à 405, et/ou au moins les sondes SEQ ID NO : 524 à 559, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d'amorçage. Les cancers sont dus à une accumulation d'anomalies génétiques par les cellules tumorales. Parmi ces anomalies figurent de nombreux réarrangements chromosomiques (translocations, délétions et inversions) qui entraînent la formation de gènes de fusion. Ces gènes de fusions sont souvent associés à des formes particulières de tumeur, et leur mise en évidence peut contribuer de façon significative à poser le diagnostic (The impact of translocations and gene fusions on cancer causation. Mitelman F, Johansson B, Mertens F., Nat Rev Cancer. 2007 Apr;7(4):233-45.). Ils sont aussi souvent utilisés comme marqueurs moléculaires pour contrôler l'efficacité des traitements et suivre l'évolution de la maladie, comme par exemple dans les leucémies aiguës (Standardized RT-PCR analysis of fusion gene transcripts from chromosome aberrations in acute leukemia for detection of minimal residual disease. Report of the BIOMED-1 Concerted Action: investigation of minimal residual disease in acute leukemia. van Dongen JJ, Macintyre EA, Gabert JA, Delabesse E, Rossi V, Saglio G, Gottardi E, Rambaldi A, Dotti G, Griesinger F, Parreira A, Gameiro P, Diàz MG, Malec M, Langerak AW, San Miguel JF, Biondi A. Leukemia. 1999 Dec;13(12):1901-28.). Aujourd'hui, les deux principales techniques qui permettent de rechercher ces gènes de fusion sont la cytogénétique et la RT-PCR. La cytogénétique consiste à établir le caryotype des cellules cancéreuses pour rechercher d'éventuelles anomalies de nombre et/ou de structure des chromosomes. Elle possède l'avantage de fournir une vision globale de l'ensemble du génome. Elle est cependant relativement peu sensible, son efficacité dépendant fortement du pourcentage de cellules tumorales dans l'échantillon à analyser et de la possibilité d'obtenir des cultures cellulaires viables. Un autre de ses inconvénients est sa faible résolution qui ne permet pas de détecter certains réarrangements (en particulier des inversions et délétions de petite taille). Enfin, certaines tumeurs sont associées à une instabilité génomique majeure qui masque les anomalies génétiques pathognomoniques. L'analyse des caryotypes est donc souvent difficile et ne peut être réalisée que par du personnel possédant une excellente expertise. La seconde technique, la RT-PCR, est elle réalisée à partir de l'ARN extrait des cellules tumorales. Elle possède une excellente sensibilité, bien supérieure à la cytogénétique. Cette sensibilité en fait la technique de référence pour analyser des échantillons biologiques où le pourcentage de cellules tumorales est faible, ce qui permet de contrôler l'efficacité des traitements ou d'anticiper très précocement d'éventuelles rechutes. En revanche, sa limite principale est liée au fait qu'il est extrêmement difficile de multiplexer ce type d'analyses. Chaque translocation devant en général être recherchée par un test spécifique, seuls quelques fusions récurrentes parmi les très nombreuses qui sont aujourd'hui connues sont recherchées dans les laboratoires d'analyse de routine. Il existe donc aujourd'hui un besoin pour un test spécifique et sensible, qui soit également simple et rapide à mettre en oeuvre, permettant de diagnostiquer avec précision un cancer, notamment une tumeur solide (sarcome ou carcinome) ou une leucémie. De façon surprenante, les inventeurs ont réussi à mettre en oeuvre un test permettant de diagnostiquer un cancer spécifique, notamment une tumeur solide (par exemple sarcome ou carcinome) ou une leucémie. Ce test permet de rechercher simultanément un très grand nombre de réarrangements chromosomiques dans de nombreuses formes de cancer, et ce de façon économique et rapide (le test peut être réalisé en une journée). En outre, sa simplicité de mise en oeuvre permet à une personne maîtrisant les techniques classiques de biologie moléculaire de réaliser l'ensemble des étapes sans formation spécifique, en utilisant des équipements déjà disponibles dans la plupart des laboratoires de diagnostic de routine. L'invention se rapporte donc à un test moléculaire comprenant notamment une étape de RT-MLPA (Reverse Transcriptase Ligation-Dependent Probe Amplification), réalisée en mode multiplex. Le mode multiplex permet un gain de temps, car il est plus rapide que plusieurs monoplex, et est économiquement avantageux. Il permet également de rechercher simultanément un nombre beaucoup plus élevé d'anomalies que les techniques actuellement disponibles. La présente invention se rapporte donc à une méthode de diagnostic d'un cancer 20 chez un sujet, comprenant une étape de RT-MLPA sur un échantillon biologique obtenu à partir dudit sujet, à l'aide d'au moins un couple de sondes choisi parmi : - les sondes SEQ ID NO :1 à 25, 30, 31 et 113 à 120, - les sondes SEQ ID NO : 374 à 405, et - les sondes SEQ ID NO : 524 à 559, 25 chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d'amorçage. De préférence, la présente invention se rapporte à une méthode de diagnostic d'un cancer chez un sujet, comprenant une étape de RT-MLPA réalisée sur un échantillon 30 biologique obtenu à partir dudit sujet à l'aide des sondes SEQ ID NO :1 à 25, 30, 31 et 113 à 120, et/ou à l'aide des sondes SEQ ID NO : 374 à 405, et/ou au moins les sondes SEQ ID NO : 524 à 559, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d'amorçage. La présente invention se rapporte également à un kit comprenant au moins les sondes SEQ ID NO :1 à 25, 30, 31 et 113 à 120, et/ou les sondes SEQ ID NO : 374 à 405, et/ou au moins les sondes SEQ ID NO : 524 à 559, de préférence comprenant en outre les sondes SEQ ID NO : 26 à 29, 66 à 112 et 121 à 219, et/ou les sondes SEQ ID NO : 438 à 480, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d'amorçage. De préférence, le kit comprend au moins les sondes SEQ ID NO :35 à 59, 64, 65 et 267 à 274, et/ou les sondes SEQ ID NO : 406 à 437, et/ou les sondes SEQ ID NO : 560 à 595. Par "MLPA", on entend Multiplex Ligation-Dependent Probe Amplification, qui permet l'amplification simultanée de plusieurs cibles d'intérêt contiguës l'une de l'autre, en utilisant une ou plusieurs sondes spécifiques. Cette technique est très avantageuse, dans le cadre de la présente invention, pour déterminer la présence de translocations, qui sont fréquentes dans les tumeurs malignes. Par "RT-MLPA", on entend Multiplex Ligation-Dependent Probe Amplification précédée d'une Transcription Inverse (Reverse transcription, RT), qui permet, dans le cadre de la présente invention, de partir de l'ARN d'un sujet pour amplifier et caractériser les gènes de fusion d'intérêt. Par "sujet", on entend un individu sain ou susceptible d'être atteint d'un cancer ou en quête de dépistage, de diagnostic ou de suivi. Par "échantillon biologique", on entend un échantillon contenant de la matière biologique. Plus préférentiellement, on entend tout échantillon contenant de l'ARN. Cet échantillon peut provenir d'un prélèvement biologique effectué chez un être vivant (patient humain, animal, végétal). Préférentiellement, les échantillons biologiques selon l'invention sont choisis parmi le sang total, la moelle osseuse et une biopsie obtenus à partir d'un sujet, notamment humain. Par "sensibilité", on entend la proportion de tests positifs chez les sujets atteints de cancers et porteurs des anomalies recherchées. Par "spécificité", on entend la proportion de tests négatifs chez les sujets non atteints de cancers et non porteurs des anomalies recherchées. Par « cancer », on entend une maladie caractérisée par une prolifération cellulaire anormalement importante au sein d'un tissu normal de l'organisme, de telle manière que la survie de ce dernier est menacée. Selon l'invention, le cancer est de préférence choisi parmi les leucémies, les sarcomes et les carcinomes. Les leucémies sont des cancers des cellules de la moelle osseuse, des systèmes lymphoïdes et myéloïdes. Les sarcomes sont des tumeurs malignes développées aux dépens du tissu conjonctif commun extra- squelettique comme le tissu adipeux, le tissu musculaire, les vaisseaux et le système nerveux périphérique. Les carcinomes sont des tumeurs malignes développées aux dépens d'un tissu épithélial. Par « sonde », on entend une séquence d'acide nucléique de longueur comprise entre 15 et 40 nucléotides, de préférence comprise entre 20 et 25 nucléotides, et 10 complémentaire d'une séquence d'ADNc issue d'un ARN du sujet (endogène). Elle est donc capable de s'hybrider avec ladite séquence d'ADNc issue d'un ARN du sujet. Par « séquence d'amorçage », on entend une séquence d'acide nucléique de longueur comprise entre 15 et 30 nucléotides, de préférence comprise entre 20 et 25 nucléotides, et non complémentaire des séquences d'ADNc issues d'ARN du sujet. Elle 15 n'est donc pas complémentaire de l'ADNc correspondant à l'ARN endogène. Elle ne peut donc pas s'hybrider avec lesdites séquences d'ADNc. De préférence, la séquence d'amorçage est choisie parmi les séquences SEQ ID NO :33 et SEQ ID NO :34. Les inventeurs ont identifié des sondes spécifiques pour chaque type de 20 translocation observé dans certains cancers. Cette identification repose sur l'analyse de la structure intron-exon des gènes impliqués dans les translocations, comme cela est montré en figure 1. En particulier, les points de cassures susceptibles de conduire à l'expression de protéines chimériques fonctionnelles sont recherchés (figure 1B). A partir de ces résultats, des séquences d'ADN de 25 à 40 paires de bases sont définies, correspondant 25 précisément aux extrémités 5' et 3' des exons des deux gènes juxtaposés après épissage des transcrits hybrides (figure 1C). Un ensemble de sondes est ensuite défini de la façon suivante : une séquence d'amorçage (SA sur la figure 1) d'une vingtaine de paire de bases, est ajoutée en 5' de toutes les sondes complémentaires des exons des gènes formant la partie 5' des transcrits de fusion. Une deuxième séquence d'amorçage (SB sur 30 la figure 1), également d'une vingtaine de paire de bases mais différente de SA, est ajoutée aux extrémités 3' de toutes les sondes complémentaires des exons des gènes formant la partie 3' des transcrits de fusion (figure 1D). Ces sondes sont ensuite regroupées dans un mélange, et contiennent tous les éléments nécessaires à la détection d'un ou de plusieurs transcrits de fusion, produits par une ou plusieurs translocations. Les sondes utilisées dans l'invention sont donc capables de s'hybrider soit avec les derniers nucléotides du dernier exon en 5' de la translocation, soit avec les premiers nucléotides du premier exon en 3' de la translocation. Les différentes translocations identifiées selon la présente invention sont illustrées dans les figures 10 à 12. Les sondes selon l'invention peuvent être les séquences SEQ ID NO :1 à 25, 30, 31 et 113 à 120, éventuellement combinées avec les sondes SEQ ID NO : 26 à 29, 66 à 112 et 121 à 219. Les sondes selon l'invention peuvent être les séquences SEQ ID NO : 374 à 405, éventuellement combinées avec les sondes SEQ ID NO : 438 à 480 et/ou au moins avec les sondes SEQ ID NO : 524 à 559. Les sondes selon l'invention peuvent être les séquences SEQ ID NO : 524 à 559, éventuellement combinées avec les sondes SEQ ID NO : 438 à 480 et/ou au moins avec les sondes SEQ ID NO : 374 à 405. Les figures 4, 5, et 7 à 9 détaillent le nom de chaque sonde, leur position (i.e. si elles sont en 5' (G) ou en 3' (D) de la jonction anormale), leur structure (présence ou non d'une séquence d'amorçage, et caractéristiques de cette séquence), ainsi que le gène et l'exon auxquels chaque sonde s'hybride. De préférence, chacune des sondes SEQ ID NO :3 à SEQ ID NO :8 ; SEQ ID 25 NO :10 à SEQ ID NO :12 ; SEQ ID NO :20, SEQ ID NO :22, SEQ ID NO :23, SEQ ID NO :26 et SEQ ID NO :30 est fusionnée en 5' avec une séquence d'amorçage, et chacune des sondes SEQ ID NO :1, SEQ ID NO :2, SEQ ID NO :9, SEQ ID NO :13 à SEQ ID NO :19 ; SEQ ID NO :21, SEQ ID NO :24, SEQ ID NO :25, SEQ ID NO :27 à SEQ ID NO :29 ; et SEQ ID NO :31 est fusionnée en 3' avec une séquence 30 d'amorçage différente. De préférence, les sondes fusionnées aux séquences d'amorçage utilisables selon l'invention sont les séquences SEQ ID NO : 35 à 59, 64, 65 et 267 à 274, éventuellement combinées aux sondes SEQ ID NO : 60 à 63, 220 à 266 et 275 à 373. De préférence, les sondes fusionnées aux séquences d'amorçage utilisables selon l'invention sont les séquences SEQ ID NO : 406 à 437, éventuellement combinées aux sondes SEQ ID NO : 481 à 523. De préférence, les sondes fusionnées aux séquences d'amorçage utilisables selon l'invention sont les séquences SEQ ID NO : 560 à 595, éventuellement combinées aux sondes SEQ ID NO : 481 à 523. La méthode de diagnostic selon l'invention s'effectue avec au moins un couple de sondes choisi parmi : - les sondes SEQ ID NO :1 à 25, 30, 31 et 113 à 120, - les sondes SEQ ID NO : 374 à 405, et - les sondes SEQ ID NO : 524 à 559, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d' amorçage. Le couple de sondes peut être choisi parmi les sondes de séquence spécifique décrites ci-dessus, et comme cela est explicité en figures 4, 7 et 9. Par « couple de sondes », on entend un ensemble de deux sondes, l'une étant située en 5' (« G» sur les figures 4-5, et 7 à 9) de la translocation ou mutation génique, l'autre étant située en 3' (« D » sur les figures 4-5, et 7 à 9) de la translocation ou mutation génique. De préférence, la méthode de diagnostic selon l'invention concerne le diagnostic de leucémies, et comprend une étape de RT-MLPA réalisée sur un échantillon biologique obtenu à partir dudit sujet à l'aide des sondes SEQ ID NO :1 à 25, 30, 31 et 113 à 120, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d' amorçage. Les leucémies sont de préférence choisies parmi les leucémies aiguës lymphoblastiques B, les leucémies aiguës lymphoblastiques T, les leucémies aiguës myéloblastiques, les leucémies myéloïdes chroniques, les lymphomes et les myélomes. De préférence, dans ce cas, la méthode de diagnostic selon l'invention utilise également les sondes SEQ ID NO : 26 à 29, 66 à 112 et 121 à 219, pour l'étape de RT- MLPA, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d'amorçage. Ainsi, dans ce cas, un mélange des sondes SEQ ID NO :1 à 25, 30, 31 et 113 à 120 et 26 à 29, 66 à 112 et 121 à 219 est utilisé, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d'amorçage. De préférence, l'invention se rapporte à un kit de diagnostic des leucémies comprenant les sondes SEQ ID NO : 1 à 25, 30, 31 et 113 à 120 et 26 à 29, 66 à 112 et 121 à 219, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d'amorçage. De préférence, ledit kit comprend les sondes SEQ ID NO : 35 à 59, 64, 65 et 267 à 274, et de préférence également les sondes SEQ ID NO : 60 à 63, 220 à 266 et 275 à 373. De préférence, la méthode de diagnostic selon l'invention concerne le diagnostic des sarcomes, et comprend une étape de RT-MLPA dans un échantillon biologique obtenu à partir dudit sujet à l'aide des sondes SEQ ID NO : 374 à 405, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d'amorçage. Les sarcomes sont de préférence choisis parmi les sarcomes d'Ewing, les rhabdomyosarcomes, les tumeurs desmoplastiques à cellules rondes, les synovialosarcomes et les liposarcomes mixoïdes. De préférence, dans ce cas, la méthode de diagnostic selon l'invention utilise également les sondes SEQ ID NO : 438 à 480, pour l'étape de RT-MLPA, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d'amorçage. Ainsi, dans ce cas, un mélange des sondes SEQ ID NO : 374 à 405 et 438 à 480, est utilisé, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d' amorçage. De préférence, l'invention se rapporte à un kit de diagnostic des sarcomes comprenant les sondes SEQ ID NO : 374 à 405, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d'amorçage. De préférence, ledit kit comprend les sondes SEQ ID NO : 406 à 437, et de préférence également les sondes SEQ ID NO : 481 à 523. De préférence, la méthode de diagnostic selon l'invention concerne le diagnostic des carcinomes, et comprend une étape de RT-MLPA dans un échantillon biologique obtenu à partir dudit sujet à l'aide des sondes SEQ ID NO : 524 à 559, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d'amorçage. Les carcinomes sont de préférence choisis parmi les carcinomes bronchopulmonaires non à petites cellules, les adénocarcinomes prostatiques, les carcinomes du rein, de la thyroïde et du sein. De préférence, dans ce cas, la méthode de diagnostic selon l'invention utilise également les sondes SEQ ID NO : 438 à 480, pour l'étape de RT-MLPA, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d'amorçage. Ainsi, dans ce cas, un mélange des sondes SEQ ID NO : 524 à 559 et 438 à 480, est utilisé, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d' amorçage. De préférence, l'invention se rapporte à un kit de diagnostic des sarcomes comprenant les sondes SEQ ID NO : 524 à 559, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d'amorçage. De préférence, ledit kit comprend les sondes SEQ ID NO : 560 à 595, et de préférence également les sondes SEQ ID NO : 481 à 523. Préférentiellement la méthode de l'invention utilise un échantillon biologique choisi parmi le sang total, la moelle osseuse et une biopsie obtenus à partir du sujet. L'étape de RT-MLPA est dérivée de la MLPA (Multiplex Ligation-Dependent Probe Amplification), décrite notamment dans le brevet US 6,955,901. Elle permet la détection et le dosage simultané d'un grand nombre de séquences oligonucléotidiques différentes. Le principe est le suivant (voir figure 2) : l'ARN extrait du tissu tumoral est d'abord converti en ADN complémentaire (ADNc) par transcription inverse. Cet ADNc est ensuite incubé avec le mélange de sondes adéquates, chacune pouvant alors s'hybrider sur les séquences des exons auxquels elles correspondent. Si un des transcrits de fusion recherché est présent dans l'échantillon, deux sondes viennent se fixer côte à côte sur l'ADNc correspondant. Une réaction de ligation est alors réalisée à l'aide d'une enzyme à activité ADN ligase, qui établit une liaison covalente entre les deux sondes contiguës. Une réaction de PCR (Polymérase Chain Reaction) est ensuite réalisée, en utilisant des amorces correspondant aux séquences d'amorçage (SA et SB sur la figure 2), qui permet d'amplifier spécifiquement les deux sondes liguées. L'obtention d'un produit d'amplification après l'étape de RT-MLPA indique que l'une des translocations recherchée est présente dans l'échantillon analysé. De préférence, l'étape de RT-MLPA utilisée dans la méthode selon l'invention comprend au moins les étapes suivantes : a) extraction de l'ARN de l'échantillon biologique du sujet ; b) conversion de l'ARN extrait en a) en ADNc par transcription inverse ; c) incubation de l'ADNc obtenu en b) avec au moins un couple de sondes choisi parmi : - les sondes SEQ ID NO :1 à 25, 30, 31 et 113 à 120, - les sondes SEQ ID NO : 374 à 405, et - les sondes SEQ ID NO : 524 à 559, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d' amorçage. De préférence, dans cette étape c), l'ADNc obtenu en b) est incubé avec au moins les sondes SEQ ID NO :1 à 25, 30, 31 et 113 à 120, et/ou avec au moins les sondes SEQ ID NO : 374 à 405, et/ou avec au moins les sondes SEQ ID NO : 524 à 559, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d'amorçage ; d) addition d'une ADN ligase dans le mélange obtenu en c), afin d'établir une liaison covalente entre deux sondes contiguës ; e) amplification par PCR des sondes contiguës liées de manière covalente obtenues en d). Typiquement, l'extraction d'ARN de l'échantillon biologique selon l'étape a) s'effectue selon les techniques classiques, bien connues de l'homme du métier. Par exemple, cette extraction peut être effectuée par lyse cellulaire des cellules issues de l'échantillon biologique. Cette lyse peut être de nature chimique, physique ou thermique. Cette lyse cellulaire est généralement suivie d'une étape de purification permettant de séparer et concentrer les acides nucléiques d'autres débris cellulaires. Pour la mise en oeuvre de l'étape a), les kits commerciaux de type QIAGEN et Zymo Research, ou encore ceux commercialisés par Invitrogen, peuvent être utilisés. Bien entendu, les techniques pertinentes diffèrent en fonction de la nature de l'échantillon biologique testé. Les connaissances de l'homme du métier lui permettent aisément d'adapter ces étapes de lyse et de purification audit échantillon biologique testé. De préférence, l'ARN extrait à l'étape a) est alors converti par transcription inverse en ADNc ; c'est l'étape b) (voir figure 2B). Cette étape b) peut être effectuée à l'aide de toute technique de transcription inverse connue de l'art antérieur. Elle peut notamment se faire à l'aide de transcriptase inverse commercialisée par Qiagen, Promega ou Ambion, selon les conditions classiques d'utilisation, ou encore à l'aide de M-MLV Reverse Transcriptase de chez Invitrogen. De préférence, l'ADNc obtenu à l'étape b) est ensuite incubé avec au moins les sondes SEQ ID NO :1 à 25, 30, 31 et 113 à 120, et/ou avec au moins les sondes SEQ ID NO : 374 à 405, et/ou avec au moins les sondes SEQ ID NO : 524 à 559, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d'amorçage. C'est l'étape c) d'hybridation des sondes (voir figure 2C). En effet, les sondes, qui sont complémentaires d'une portion d'ADNc, vont venir s'hybrider avec cette portion si celle-ci est présente dans l'ADNc. Comme cela est montré dans la figure 2C, en raison de leur séquence, les sondes vont donc s'hybrider : - soit avec la portion d'ADNc correspondant aux derniers nucléotides du dernier exon en 5' de la translocation. Il s'agit alors de sondes « F » ou « Forward », appelées aussi « G » ou « Gauche » ; - soit avec la portion d'ADNc correspondant aux premiers nucléotides du premier exon en 3' de la translocation. Il s'agit alors de sondes « R » ou « Reverse », appelées aussi « D » ou « Droite ». A la fin de l'étape c), les sondes hybridées à l'ADNc sont contiguës, si et seulement si la translocation a eu lieu. Cette étape c) est typiquement réalisée en incubant l'ADNc et le mélange de sondes à une température comprise entre 90°C et 100°C, pendant une durée de 1 à 5 minutes, puis en laissant incuber pendant une durée d'au moins lh, de préférence 16h, à une température d'environ 60°C. Elle peut être réalisée à l'aide du kit commercial, vendu par la société MRC-Holland (SALSA MLPA Buffer). A la fin de l'étape c), une ADN ligase est typiquement ajoutée pour lier de manière covalente uniquement les sondes contiguës ; c'est l'étape d) (voir figure 2D). L'ADN ligase est notamment la ligase 65, vendue par MRC-Holland, Amsterdam, Netherlands (SALSA Ligase-65). Cette étape d) est typiquement réalisée à l'aide des kits Lig-5a, Lig-10 ou Lig-50 de MRC-Holland, Amsterdam, Netherlands. Elle est typiquement réalisée en incubant l'ADN ligase et le mélange obtenu à l'étape c) à une température comprise entre 50°C et 60°C, pendant une durée de 10 à 20 minutes, puis pendant une durée de 2 à 10 minutes à une température comprise entre 95°C et 100°C. A la fin de l'étape d), chaque couple de sondes contiguës G et D est lié de manière covalente, et la séquence d'amorçage de chaque sonde est toujours présente en 5' et en 3'. De préférence, la méthode comprend également une étape e) d'amplification par PCR des sondes contiguës liées de manière covalente obtenues en d) (voir figure 2E). Cette étape de PCR se fait à l'aide d'un couple d'amorces, l'une des amorces étant identique à la séquence d'amorçage en 5', l'autre amorce étant complémentaire de la séquence d'amorçage en 3'. De préférence, l'amplification par PCR de l'étape e) se fait à l'aide des amorces SEQ ID NO :32 et 33, de préférence l'une étant marquée à son extrémité 5' par une biotine, afin de permettre l'étape (f). La PCR est typiquement réalisée à l'aide de kits commerciaux, tels que les kits prêts à l'emploi vendus par Eurogentec (Red'y'Star Mix). Typiquement, la PCR se déroule en une première phase de dénaturation initiale à une température comprise entre 90°C et 100°C, typiquement d'environ 94°C, pendant un temps de 5 à 8 minutes ; puis une seconde phase d'amplification comprenant plusieurs cycles, typiquement 35 cycles, chaque cycle comprenant 30 secondes à 94°C, puis 30 secondes à 58°C, puis 30 secondes à 72°C ; et une dernière phase de retour à 72°C pendant 4 minutes environ. A la fin de la PCR, les amplicons sont conservés de préférence à 4°C. Typiquement, les amorces utilisables dans l'étape e) de PCR sont les suivantes : SEQ ID NO : Amorce 596 CMV Forward : CGC AAA TGG GCG GTA GGC GTG 597 CMV Reverse : CGC CAT CCA CGC TGT TTT G 598 pcDNA3 Forward : GGC TAA CTA GAG AAC CCA CTG 599 pcDNA3 Reverse : GGC AAC TAG AAG GCA CAG TC 600 pCEP Forward : AGA GCT CGT TTA GTG AAC CG 601 pCEP Reverse : GTG GTT TGT CCA AAC TCA TC 602 pEGFPC1 Forward: GAT CAC TCT CGG CAT GGA C 603 pEGFPC1 Reverse : CAT TTT ATG TTT CAG GTT CAG GG 604 pEGFPN1 Forward : GTC GTA ACA ACT CCG CCC 605 pEGFPN1 Reverse : GTC CAG CTC GAC CAG GAT G 606 pGex Forward : ATA GCA TGG CCT TTG CAG G 607 pGex Reverse : GAG CTG CAT GTG TCA GAG G 608 pGL Forward: GTA TCT TAT GGT ACT GTA ACT G 609 pGL Reverse : CTT TAT GTT TTT GGC GTC TTC C 610 pShuttleCMV Forward : GGT CTA TAT AAG CAG AGC TG pShuttleCMV Reverse : GTG GTA TGG CTG ATT ATG ATC 611 AG Reverse : GGGTTCCCTAAGGGTTGGA (complémentaire de la 32 séquence d'amorçage SEQ ID NO :34) 33 Forward : GTGCCAGCAAGATCCAATCTAGA De préférence, la méthode selon l'invention comprend une étape f) d'analyse des résultats de la PCR de l'étape e), de préférence par pyroséquençage. A cette fin, on peut utiliser un pyroséquenceur, tel que le pyroséquenceur PyroMark Q24 vendu par la société Qiagen, en utilisant le kit commercial Pyromark Gold Q24 Reagent et l'un des oligonucléotides d'amorçage. Cette étape d'analyse permet une lecture immédiate du résultat, et indique directement si l'échantillon du sujet est porteur d'une translocation spécifique identifiée ou non. Cela est notamment démontré dans la figure 3. Les différentes séquences citées dans la présente invention sont résumées dans le tableau ci-dessous : SEQ ID NO : Identification 1-25, 30, 31 et 113 à 120 Sondes en tant que telles, pour le diagnostic des leucémies notamment 32 Amorce reverse PCR 33 Amorce forward PCR et séquence d'amorçage en 5' 34 Séquence d'amorçage en 3' 35-59, 64, 65 et 267-274 Sondes SEQ ID NO :1-25, 30, 31 et 113 à 120 fusionnées à la séquence d'amorçage 26-29, 66-112 et 121-219 Sondes en tant que telles 60-63, 220-266 et 275-373 Sondes SEQ ID NO :26-29, 66-112 et 121219 fusionnées à la séquence d'amorçage 374-405 Sondes en tant que telles, pour le diagnostic des sarcomes notamment 406-437 Sondes SEQ ID NO :374-405 fusionnées à la séquence d'amorçage 438-480 Sondes en tant que telles 481-523 Sondes SEQ ID NO :438-480 fusionnées à la séquence d'amorçage 524-559 Sondes en tant que telles, pour le diagnostic des carcinomes notamment 560-595 Sondes SEQ ID NO :524-559 fusionnées à la séquence d'amorçage 596-611 Amorces de PCR Figure 1 : Schéma de définition des sondes. Figure 2 : Schéma de la RT-MLPA. A) Exemple de translocation dans l'intron situé entre l'exon 2 du gène 1 et l'exon 2 du gène 2, aboutissant à un ARNm de fusion. B) Etape 1 : transcription inverse de cet ARNm de fusion, pour obtenir un ADNc. C) Etape 2 : incubation avec les sondes et hybridation de celles-ci avec les portions complémentaires d'ADNc. La sonde 51 est constituée d'une séquence complémentaire des derniers nucléotides de l'exon 2 du gène 1 d'ADNc, et la sonde S2 est constituée d'une séquence complémentaire des premiers nucléotides de l'exon 2 du gène 2 d'ADNc. La sonde 51 est fusionnée en 5' avec une séquence d'amorçage SA. La sonde S2 est fusionnée en 3' avec une séquence d'amorçage SB. De par la contiguïté entre les exons 2 du gène 1 et du gène 2, les sondes 51 et S2 se retrouvent côte à côte. D) Etape 3 : ligation par une ADN ligase. Les sondes côte à côte se retrouvent alors liées. 51 et S2 forment ainsi une séquence continue, avec SA et SB. E) Etape 4 : PCR : à l'aide d'amorces adéquates, les sondes liées sont amplifiées. En l'occurrence, les amorces utilisées sont la séquence SA, et la séquence complémentaire de SB (appelée B'). F : analyse des résultats obtenus. La figure montre un exemple de résultats obtenus avec les sondes se liant aux translocations impliquant le gène MLL (caractéristique des leucémies) sur des échantillons provenant de 15 patients (pistes 1 à 15). Les pistes 16 et 17 sont des témoins négatifs. Il apparaît que 11 tumeurs sur les 15 sont porteuses d'un réarrangement du gène MLL. Figure 3 : Identification des translocations dans les cas de leucémies. Identification des partenaires du gène MLL des échantillons n°14 (A) et 15 (B) de la figure 2. Les produits d'amplifications de PCR ont été analysés par pyroséquençage. La séquence A correspond à une jonction entre le Sème exon du gène MLL et le 2ème exon du gène AF6, indiquant que la tumeur portait une translocation t(6;11)(q27;q23). La séquence B correspond à une jonction entre le 10ème exon du gène MLL et le 2ème exon du gène AF1Q, indiquant que la tumeur portait une translocation t(1;11)(q21;q23). Ces deux translocations confirment le diagnostic de leucémie aigue, et sont associées à des formes de très mauvais pronostic. Figure 4 : Tableau des sondes SEQ ID NO :1 à 25, 30, 31 et 113 à 120 (correspondant aux sondes fusionnées à la séquence d'amorçage SEQ ID NO : 35 à 59, 64, 65 et 267 à 274). Le tableau indique le gène et l'exon auxquels la sonde s'hybride. La colonne « SEQ ID NO : » indique le numéro de séquence de la sonde en tant que telle, et entre parenthèses le numéro de séquence de la sonde fusionnée à la séquence d'amorçage. Figure 5 : Tableau des sondes SEQ ID NO : 26 à 29, 66 à 112 et 121 à 219 (correspondant aux sondes fusionnées à la séquence d'amorçage SEQ ID NO : 60 à 63, 220 à 266 et 275 à 373). Le tableau indique le gène et l'exon auxquels la sonde s'hybride. La colonne « SEQ ID NO : » indique le numéro de séquence de la sonde en tant que telle, et entre parenthèses le numéro de séquence de la sonde fusionnée à la séquence d'amorçage. Figure 6 : Identification des translocations dans les cas de leucémies (A) et de tumeurs solides (B). Les produits d'amplifications de PCR ont été analysés par pyroséquençage. A) Les translocations identifiées correspondent à : « AML1 exon5 - ETO exon2 » : LAM2 (Leucémie aiguë myléoblastique de type 2) « MLL exon9 - AF10 exon9 » : LAL (Leucémie aiguë lymphoïde) « BCR exonl3 - ABL exon2 » : leucémie myéloïde chronique « PML exon3 - RARa exon3 » : LAM3 (Leucémie aiguë myléoblastique de type 3) « BCR exonl - ABL exon2 » : LAL (Leucémie aiguë lymphoïde) ; et « CBFB exon5 - MYH11 exon12 » : LAM4 (Leucémie aiguë myléoblastique de type 4). B) Les translocations identifiées correspondent à un synovialosarcome (SYT-SSX), à un Rhabdomyosarcome (PAX-FKHR), et à un lymphome anaplasique (NPM-ALK). Figure 7 : Tableau des sondes SEQ ID NO :374 à 405 (correspondant aux sondes 10 fusionnées à la séquence d'amorçage SEQ ID NO : 406 à 437). Le tableau indique le gène et l'exon auxquels la sonde s'hybride. La colonne « SEQ ID NO : » indique le numéro de séquence de la sonde en tant que telle, et entre parenthèses le numéro de séquence de la sonde fusionnée à la séquence d'amorçage. 15 Figure 8 : Tableau des sondes SEQ ID NO :438 à 480 (correspondant aux sondes fusionnées à la séquence d'amorçage SEQ ID NO : 481 à 523). Le tableau indique le gène et l'exon auxquels la sonde s'hybride. La colonne « SEQ ID NO : » indique le numéro de séquence de la sonde en tant que telle, et entre parenthèses le numéro de séquence de la sonde fusionnée à la séquence d'amorçage. 20 Figure 9 : Tableau des sondes SEQ ID NO :524 à 559 (correspondant aux sondes fusionnées à la séquence d'amorçage SEQ ID NO : 560 à 595). Le tableau indique le gène et l'exon auxquels la sonde s'hybride. La colonne « SEQ ID NO : » indique le numéro de séquence de la sonde en tant que telle, et entre parenthèses 25 le numéro de séquence de la sonde fusionnée à la séquence d'amorçage. Figure 10 : Identification des gènes de fusion. A) Gènes de fusion dans les cas de leucémies. Les transcrits de fusion s'hybrident avec les sondes SEQ ID NO : 1 à 25, 30, 31 et 113 à 120. 30 B) Gènes de fusion dans les cas de sarcomes. Les transcrits de fusion s'hybrident avec les sondes SEQ ID NO : 374 à 405. C) Gènes de fusion dans les cas de carcinomes. Les transcrits de fusion s'hybrident avec les sondes SEQ ID NO : 524 à 559. Figure 11 : Identification des gènes de fusion dans le cas de leucémies, lymphomes et myélomes. Les transcrits de fusion s'hybrident avec les sondes SEQ ID NO : 1 à 25, 30, 31 et 113 à 120 et 26 à 29, 66 à 112 et 121 à 219. Figure 12 : Identification des gènes de fusion dans le cas de sarcomes et carcinomes. Les transcrits de fusion s'hybrident avec les sondes SEQ ID NO : 374 à 405, 524 à 559 et 438 à 480. EXEMPLE Matériel & Méthodes Etape a) : extraction d'ARN : Les cellules obtenues à partir de sang ou de moelle osseuse ou de fragments de biopsie sont conservés à -80°C dans 1 mL de trizol (Life Technologies, Carlsbad, CA, USA). 2001.1L de chloroforme (Merck, Darmstadt, Allemagne) sont ajoutés à chaque échantillon préalablement décongelé. Le mélange est homogénéisé avant d'être incubé environ 5 min dans la glace puis centrifugé 15 min à 12000 rpm et à 4°C. 500 1.1L d'isopropanol 100% (Sigma Aldrich, St Quentin Fallavier, France) sont ajoutés à la phase aqueuse préalablement isolée. Le mélange est homogénéisé avant d'être incubé environ 10 min dans la glace et centrifugé 10 min à 12000 rpm et à 4 °C. Après décantation, les culots sont lavés par environ 1 mL d'éthanol à 70% et centrifugés 5 min à 7500 rpm et à 4°C. Après 2 autres lavages les culots sont décantés et séchés avant d'être repris dans environ 1001.1L d'eau. Les ARN sont alors incubés au bain marie à environ 55°C pendant 5 à 10 min. La concentration des ARN obtenus est ajustée entre 50 et 250 ng/I.IL Etape b) : transcription inverse: 4 !IL ARN (200-1000ng) sont incubés avec 2,5 !IL Tampon 5x (Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA), 1µl DTT 100mM (Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA) 2 pl dNTPs 10mM (Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA) et 2 pl d'hexamères à 100 pmolffil (Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA), pendant 2 minutes à 80°C, puis 5 minutes à 37°C, puis les échantillons sont conservés à 4°C. La transcriptase inverse (RT) est alors ajoutée (1 !IL RT (30u) (M-MLV, Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA)), et le mélange résultant est incubé 15 minutes à 37°C, puis 2 minutes à 98°C, puis conservé à 4°C. Etape c) : incubation et hybridation de l'ADNc avec les sondes (MLPA) : 5 pl du mélange précédent (- la moitié de la réaction initiale) obtenu à l'étape b) est incubé avec 1,5 !IL MLPA Buffer (Old Salsa MLPA Buffer. MRC Holland, Amsterdam, Netherlands) et 1,5 !IL du mélange de sondes décrit ci-après, pendant 2 Minutes à 95°C, puis au moins 1 heure à 60°C. Mélange de sondes pour MLPA (3 finol/L5,ul final): Première étape : Reprise de chaque sonde à 1001.1M (H2O) Deuxième étape : Dilution de chaque sonde à 10 11M (H2O) Troisième étape : Mélange de sondes : 2 pl de chaque sonde à 101.1M Volume Final : + volume idem TE20:2 pour Mix en TE10 :1 final Quatrième étape : Dilution finale : (0.2111 du mélange de sondes F et R de l'étape 3 x n sondes) + TE10 :1 qsp lml (exemple : mélange de sondes F avec 10 sondes différentes : 0.2x10=21.1.1 mélange F ; mélange R avec 10 sondes: 0.x10=4111 mélange R ; Mélange Final = 2111 mélange F + 4111 mélange R +994111 TE10 :1) Etape d) : Ligation : La ligase 65 (n tubes+10%) (Salsa Ligase-65. MRC-Holland, Amsterdam, Netherlands) est préparée avec le mélange suivant : 3 !IL Ligase Buffer A (Ligase Buffer A, MRC-Holland, Amsterdam, Netherlands), 3 !IL Ligase Buffer B (Ligase Buffer B, MRC-Holland, Amsterdam, Netherlands), 25 !IL H2O Vortex mix ligase 65 (Salsa Ligase-65. MRC-Holland, Amsterdam, Netherlands) Vortex. Le mélange de sondes de l'étape c) est mélangé à 54 °C avec 32 !IL de ce mix ligase, puis incubé 15 minutes à 54°C, et 5 minutes à 98°C, puis conservé à 4°C. Etape e) : PCR : La PCR (n tubes + 10%) est effectuée dans le mélange suivant: 20 pl Mix Eurogentec Red'y'Start Mix (Eurogentec, Angers, France) 1 pl d'amorce SEQ ID NO:32 (Biot) 1 pl d'amorce SEQ ID NO:33 13 pl H2O 5 pl du mélange de l'étape d) sont mélangés à 35 pl du mélange PCR ci-dessus, puis soumis au programme de PCR suivant : 94°C 6min 94°C 30" 35x 58°C 30" 72°C 30" 72°C 4min 4°C Etape : P Ip_yz)qtgien_ a e : Contrôle (optionnel) : gel d' acrylamide 8% (Acrylamide/Bis-Acrylamide 29:1, 40%, Biosolve B.V., Valkenswaard, Netherlands) 20111 du produit amplifié par PCR est analysé par pyroséquenceur. Résultats Les résultats obtenus sont présentés en Figures 2, 3 et 6A pour les cas de leucémies, et en Figure 6B pour les tumeurs solides. A l'issue de la PCR, si la translocation recherchée est détectée, alors l'échantillon est positif, et le diagnostic de la maladie est immédiat.5 REVENDICATIONS1. Méthode de diagnostic d'un cancer chez un sujet, comprenant une étape de RT-MLPA sur un échantillon biologique obtenu à partir dudit sujet à l'aide d'au moins un couple de sondes choisi parmi : - les sondes SEQ ID NO :1 à 25, 30, 31 et 113 à 120, - les sondes SEQ ID NO : 374 à 405, et - les sondes SEQ ID NO : 524 à 559, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d' amorçage. 2. Méthode selon la revendication 1, dans laquelle l'étape de RT-MLPA sur un échantillon biologique obtenu à partir du sujet est effectuée avec au moins les sondes SEQ ID NO :1 à 25, 30, 31 et 113 à 120, et/ou avec au moins les sondes SEQ ID NO : 374 à 405, et/ou avec au moins les sondes SEQ ID NO : 524 à 559, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d'amorçage. 3. Méthode selon la revendication 1 ou 2, caractérisée en ce que la séquence d'amorçage est choisie parmi les séquences SEQ ID NO : 33 et SEQ ID NO :34. 4. Méthode selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisée en ce que ledit échantillon biologique est choisi parmi le sang total, la moelle osseuse et une biopsie dudit sujet. 5. Méthode selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que les sondes SEQ ID NO : 26 à 29, 66 à 112 et 121 à 219 et/ou les sondes SEQ ID NO : 438 à 480 sont également utilisées pour l'étape de RT-MLPA, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d'amorçage. 6. Méthode selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisée en ce que 30 l'étape de RT-MLPA comprend au moins les étapes suivantes : a) extraction de l'ARN de l'échantillon biologique du sujet ; b) conversion de l'ARN extrait en a) en ADNc par transcription inverse ; c) incubation de l'ADNc obtenu en b) avec au moins un couple de sondes choisi parmi :- les sondes SEQ ID NO :1 à 25, 30, 31 et 113 à 120, - les sondes SEQ ID NO : 374 à 405, et - les sondes SEQ ID NO : 524 à 559, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d' amorçage, de préférence avec au moins les sondes SEQ ID NO : 1 à 25, 30, 31 et 113 à 120, et/ou avec au moins les sondes SEQ ID NO : 374 à 405, et/ou avec au moins les sondes SEQ ID NO : 524 à 559, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d'amorçage ; d) addition d'une ADN ligase dans le mélange obtenu en c), afin d'établir une liaison covalente entre deux sondes contiguës ; e) amplification par PCR des sondes contiguës liées de manière covalente obtenues en d). 7. Méthode selon la revendication 6, caractérisée en ce qu'elle comprend une étape f) d'analyse des résultats de la PCR de l'étape e), de préférence par pyroséquençage. 8. Méthode selon l'une quelconque des revendications 6 ou 7, caractérisée en ce que l'amplification par PCR de l'étape e) se fait à l'aide des amorces SEQ ID NO :32 et 33. 9. Kit comprenant au moins les sondes SEQ ID NO :1 à 25, 30, 31 et 113 à 120, et/ou les sondes SEQ ID NO : 374 à 405, et/ou les sondes SEQ ID NO : 524 à 559, de préférence comprenant en outre les sondes SEQ ID NO : 26 à 29, 66 à 112 et 121 à 219 et/ou les sondes SEQ ID NO : 438 à 480, chacune des sondes étant fusionnée, à au moins une extrémité, avec une séquence d'amorçage. 10. Kit comprenant au moins les sondes SEQ ID NO : 35 à 59, 64, 65 et 267 à 274, et/ou les sondes SEQ ID NO : 406 à 437, et/ou les sondes SEQ ID NO : 560 à 595.