FR 2980477 A1 20130329 FR 1158519 A 20110923 NOUVEAUX COMPOSÉS MODULATEURS DE LA VOIE DE SIGNALISATION DES PROTÉINES HEDGEHOG, LEURS FORMES MARQUÉES, ET APPLICATIONS La présente invention est relative à de nouveaux composés de formule (I), à leur utilisation à titre de médicament, notamment pour le traitement de tumeurs associées à une hyperactivation de la voie de signalisation des protéines Hedgehog, pour le traitement de pathologies de type neuro-dégénératif, pour le traitement de maladies liées au développement cérébral (holoprosencéphalie), au contrôle de cellules souches, au traitement d'accident vasculaire cérébral et aux accidents cardiovasculaires, ainsi qu'aux maladies des oligodentrocytes et des cellules de Schwann, pour leur application in vitro pour moduler le renouvellement des cellules souches humaines ou animales, ainsi que pour le traitement du diabète. La présente invention concerne également des compositions pharmaceutiques comprenant, à titre de principe actif, au moins un composé de formule (I). Un procédé de radio-marquage de composés de formule (I), les composés marqués et leur utilisation comme outils de recherche font également parties de l'invention. Enfin, la présente invention concerne également une méthode de criblage et/ou d'identification de ligands des sites de liaison Smo du récepteur Smoothened, des méthodes d'identification d'agonistes et d'antagonistes du récepteur Smoothened et une méthode d'identification de cellules, telles que des cellules tumorales exprimant le récepteur Smoothened. La molécule de signalisation Hedgehog (Hh) est une protéine auto-protéolytique sécrétée qui active la voie de signalisation des protéines Hedgehog, une voie de signalisation qui joue un rôle fondamental dans la morphogenèse de nombreux tissus, en particulier dans la formation de l'endoderme et de l'axe embryonnaire, le développement du cerveau et des follicules pileux, ainsi que dans la prolifération cellulaire, et serait impliquée dans le maintien et la réparation tissulaire chez l'adulte (Ingham et al., Genes Dev., 2001, 15, 3059-3087 ; Marti et al., Trends Neurosci., 2002, 25, 89-96 ; Weschler et al., Annu. Rev. Neurosci., 2001, 24, 385-428). La protéine Hedgehog et la voie de transduction associée, initialement mises en évidence chez la drosophile, sont conservées chez les vertébrés et les invertébrés. Un seul homologue de Hh est présent chez la Drosophile, alors que trois homologues de Hh : Sonic (Shh), Indian (Ihh) et Desert (Dhh) sont présents chez les mammifères. Parmi ces trois homologues, Shh a été la plus étudiée du fait de son profil d'expression étendu durant le développement. Shh participe à la ventralisation du tube neural en spécifiant le phénotype précoce de plusieurs types neuronaux le long de la ligne médiane ventrale (motoneurones de la moelle épinière, neurones dopaminergiques ou cholinergiques), et en induisant la génération des précurseurs oligodendrocytaires à partir de la moelle épinière ventrale. Par ailleurs, Shh induit la survie des neurones gabaergiques et dopaminergiques, oriente le devenir des précurseurs sérotoninergiques et prévient la mort des neurones dopaminergiques provoquée par la toxine MPP. Il induit enfin la prolifération des précurseurs des cellules granulaires dans le cervelet post-natal précoce. Les autres membres de la famille Hedgehog participent, quant à eux, respectivement au développement du tissu osseux (lhh), des testicules et des nerfs périphériques (Dhh). En outre, les résultats obtenus avec Shh s'appliquent également à Dhh et Ihh. Shh est synthétisé sous la forme d'un précurseur qui subit une série de modifications post-traductionnelles au cours desquelles la protéine est clivée par une activité enzymatique présente dans sa partie C-terminale. Cette autoprotéolyse génère un fragment C-terminal (ShhC) et un fragment N-terminal (ShhN) qui représente le fragment actif. Lors de cette réaction, on observe également l'addition d'une molécule de cholestérol dans la partie C-terminal de ShhN, qui favorise l'ancrage de ShhN à la membrane. Enfin une acétyl-transférase permet l'ajout d'une molécule de palmitate sur un résidu cystéine près de l'extrémité N-terminale. Ces évènements produisent une protéine Shh biologiquement active. La sécrétion de la protéine est dépendante de la protéine Dispatched (Disp) dont deux isoformes Disp 1 et 2 existent chez les mammifères (Heretsch et al., 2010, Bioorg. Med. Chem. Lett. 18 : 6613-6624). Le fragment ShhN soluble transmet son action par l'intermédiaire d'un complexe contenant deux protéines transmembranaires : Patched (Ptc) une protéine à 12 domaines transmembranaires présentant une structure de type transporteur et Smoothened (Smo) une protéine à 7 domaines transmembranaires homologue aux membres de la superfamille des récepteurs couplés aux protéines G (RCPG). Chez les mammifères, il existe une deuxième forme de Patched : Ptc2. En absence de son ligand Shh, Ptc inhibe Smo. Une cascade intracellulaire, faisant intervenir de nombreux facteurs dont la protéine Supressor of Fused (SuFu) et la protéine PKA, est alors induite. SuFu est un régulateur négatif de la voie de signalisation Shh, il peut se lier aux trois facteurs de transcription de la famille Gli et réguler leur activation. De plus, la délétion de Sufu résulte en une activation de la voie. Les facteurs de transcription de la famille Gli sont alors phosphorylés, ubiquitinylés puis clivés sous leur forme négative (G1iR) par le protéasome, GliR pénètre dans le noyau et la transcription est inactive. Lorsque Shh se lie à Ptc, l'inhibition que celui-ci exerce sur Smo est levée avec translocation nucléaire de la forme active des facteurs de transcription Gli (G1iA) et activation transcriptionnelle de gènes cibles tels que ptc et gli 1. La protéine Hedgehog interacting protein (Hip) est capable de lier Shh avec une affinité comparable à celle de la protéine Pte (Traiffort et al., J. Neurochem., 2010, 113 : 576-590). Hip est considérée comme un modulateur négatif de la voie car en liant Shh elle diminue la quantité de ligand disponible pour activer la voie de signalisation via Ptc. Cdo et Boc appartiennent à la famille des protéines de surface cellulaire possédant des motifs immunoglobulines et fibronectines de type III. Ces protéines régulent positivement la voie de signalisation Shh en facilitant la présentation du ligand Shh à Ptc, en accroissant les quantités de morphogène à proximité des cellules cibles et en affectant éventuellement l'activité des protéines Gli (Heretsch et al., 2010, Bioorg. Med. Chem. Lett 18 : 6613-24 : Scales et de Sauvage, 2009, Trends Pharmacol. Sci. 30 : 303-312). Le rôle régulateur de la voie de signalisation des protéines Hedgehog durant le développement embryonnaire a été largement étudié : Hh a été associée aux processus de maintien et de réparation du tissu normal, à la régulation spatiotemporelle de la prolifération et de la différenciation, permettant ainsi aux tissus en développement d'atteindre leur taille correcte avec les types cellulaires appropriés et des degrés appropriés de vascularisation et d'innervation. Elle a notamment été impliquée dans le développement du système nerveux central (Dessaud et al., 2008, Development, 135 : 2489-503). Le rôle essentiel de la fonction de signalisation Hh est démontré par les conséquences dramatiques des défauts dans cette voie de signalisation chez le foetus humain, comme l'holoprosencéphalie observée avec les mutants de Shh (Traiffort et al., J. Biol. Chem., 2004, 279 : 42889-42997). Plus récemment la voie Shh a été identifiée dans le cerveau adulte, où la forme active amino-terminale de la molécule est exprimée dans de nombreuses régions du système nerveux mature suggérant de nouveaux rôles pour cette voie. En effet, elle participe notamment à l'établissement et au maintient des niches neurogéniques et régule la prolifération de précurseurs neuraux ou gliaux dans le cerveau adulte (Traiffort et al., 2010, J. Neurochem., 113 : 576-590). La modulation de la voie de signalisation Shh représente donc un enjeu pour le développement de thérapies pour les maladies neurodégénératives. Des études ont déjà permis de mettre en évidence des effets positifs de l'activation de la voie de signalisation Shh par la protéine Shh elle-même, sur la réduction des troubles du comportement de rat atteints de la maladie de Parkinson (Tsuboi et al., 2002, Exp. Neurol. 173 : 95-104) ou sur la remyélinisation de neurones de rat atteints de sclérose en plaque (Mastronardi et al. 2004, J. Immunol. 172:6418-26). De plus, il a été montré que l'activation de la voie de signalisation Shh par un agoniste de Smo permettait une augmentation de la prolifération de précurseurs neuraux au niveau des aires de neurogenèse de souris adulte (Machold et al., 2003, Neuron., 39 : 937-950). Cependant, les agonistes de Smo restent peu nombreux et encore mal caractérisés. Des dysfonctionnements de la voie de signalisation Shh ont également été associés à de nombreux cancers. En effet, des mutations inactivatrices de Ptc sont associées au Syndrome de Gorlin ou naevomatose basocellulaire, une maladie autosomale dominante caractérisée par des malformations cranofaciales et cérébrales, mais surtout par une incidence élevée de diverses tumeurs, plus particulièrement des carcinomes basocellulaires au niveau cutané et des médulloblastomes, au niveau cervelet. Des mutations des gènes Ptc ou Smo humains sont également observées dans des tumeurs primitives neuroectodermales du système nerveux central, principalement des médulloblastomes (30% des cas), mais aussi dans des formes sporadiques de carcinomes basocellulaires (respectivement 40% et 20% des cas pour Ptc et Smo). En outre, des mutations de Shh sont également associées à des carcinomes basocellulaires. D'autres types de tumeurs ont également été associés à un défaut de la voie de signalisation Hedgehog , la localisation de ces tumeurs est étroitement corrélée aux sites d'expression des composantes de la voie au cours du développement embryonnaire (Scales et de Sauvage, 2009, Trends in Pharmacol. Sci., 30 : 303-312). A titre d'exemple non-limitatif on peut citer : des cancers du sein et des méningiomes associés à des mutations de Ptc, des glioblastomes associés à des mutations de Gli, des cancers gastro-intestinaux, notamment les cancers primaires de l'estomac et du colon, des cancers de la prostate, de la vessie, des fibromes et des dermoïdes ovariens, des rhabdomyosarcomes, des cancers du poumon à petites cellules, des carcinomes oraux à cellules squameuses. Du fait du rôle crucial de la voie de signalisation des protéines Hedgehog dans de nombreux processus physiologiques et pathologiques, les composantes de cette voie, telles que les protéines Smoothened (Smo 1 et Smo 2), Frizzled (Fz 1 à Fz 10), Patched (Ptc 1 et Ptc 2), les protéines Dispatched (Disp 1 et Disp 2) ou bien encore la protéine Hip représentent des cibles pour la mise au point de nouvelles molécules capables de moduler (activer ou inhiber) cette voie et donc de réguler positivement ou négativement le développement [prolifération, différenciation, migration, survie (apoptose)] et/ou l'activité de cellules différenciées et de cellules souches, in vitro et/ou in vivo chez l'embryon ou chez l'adulte. Il est démontré que de telles molécules sont utiles dans le traitement des tumeurs associées à une hyperactivation de la voie Hedgehog (Scales et de Sauvage, 2009, Trends in Pharmacol. Sci., 30 : 303-312). De telles molécules seraient donc utilisables dans le traitement de tumeurs variées telles que les tumeurs du tissu nerveux (médulloblastomes, tumeurs primitives neuroectodermiques, glioblastomes, méningiomes et oligodendrogliomes), des tumeurs cutanées (carcinomes basocellulaires, trichoépithéliomes), les tumeurs des tissus musculaires et osseux (rhabdomyosarcomes, ostéosarcomes, mélanomes) et les tumeurs d'autres tissus (rein, vessie, prostate, poumon, estomac, pancréas, sein, foie). De telles molécules sont également utiles dans le traitement des pathologies de type neuro-dégénératif nécessitant un blocage de la voie Hedgehog (maladie de Parkinson, Chorée de Huntington, maladie d'Alzheimer, sclérose en plaques, maladie du motoneurone), et des maladies dans lesquelles le blocage de la voie de signalisation Hedgehog pourrait être bénéfique comme le diabète. De telles molécules sont également utiles dans le traitement médical ou chirurgical (chirurgie plastique ou réparatrice, greffe de tissus ou d'organes) de nombreuses pathologies aiguës, subaiguës ou chroniques, génétiques ou acquises - impliquant un dysfonctionnement tissulaire lié à une dérégulation de la voie Hedgehog -, pour induire la formation, la régénération, la réparation et/ou l'augmentation de l'activité de tissus tels que le tissu nerveux [système nerveux central (cerveau) et périphérique (neurones sensoriels, moteurs, sympathiques)], l'os, le cartilage, les testicules, le foie, la rate, l'intestin, le pancréas, les reins, les muscles lisses et squelettiques, le coeur, les poumons, la peau et le système pileux, les muqueuses, les cellules sanguines et les cellules du système immunitaire. A titre d'exemple non-limitatif de ces pathologies, on peut citer notamment les neuropathies et les maladies neuromusculaires associées, le diabète, l'alopécie, les brûlures, les ulcérations (peau et muqueuses) et les troubles de la spermatogenèse. Différentes molécules, capables de moduler l'activité de la voie Hedgehog, ont été identifiées. En premier lieu, les protéines Hedgehog et des polypeptides dérivés (fragments, variants...), notamment des agonistes et des antagonistes des protéines Hedgehog (Demande Internationale PCT WO 01/98344 au nom de BIOGEN) ; du fait de leur taille, ces protéines et les polypeptides dérivés ne peuvent pas passer la barrière hématoencéphalique et 30 ne peuvent donc pas être administrés par voie systémique, notamment pour le traitement des tumeurs cérébrales liées à une hyperactivation de la voie de signalisation des protéines Hedgehog. En outre, de telles molécules sont peu stables, et difficiles à produire et à purifier. A l'inverse, il existe des molécules qui inhibent l'effet du ligand Shh, la robotnikinin et l'anticorps monoclonal 5E1 . La voie de signalisation 1-111 peut également être modulée plus en aval. L'effet inhibiteur de Ptc sur Smo peut par exemple être modulé. Il est augmenté par les statines et réduit par les oxystérols par un mécanisme qui n'est pas encore bien compris (Heretsch et al., Bioorg. Med. Chem. Lett., 2010, 18 : 6613-6624). Des produits naturels (Physalin F) ou synthétiques (GANT58, GANT61, HPI-1) sont également connus pour inhiber la liaison des facteurs de transcription Gli à l'ADN dans le noyau. Toutefois, la plupart des recherches se sont concentrées sur la découverte de modulateurs agissant au niveau du récepteur Smoothened : - des molécules organiques hétérocycliques inhibant ou activant (SAG et 10 dérivés) la voie de signalisation Hh : Demande Internationale PCT WO 01/74344 au nom de CURIS ; Chen et al., PNAS, 2002, 99, 14071-14076, - la purmorphamine une petite molécule activant la voie de signalisation Hh : Wu et al., Chemistry & Biology, 2004, 1229-1238, - des molécules hétérocycliques azotées : Demandes Internationales PCT 15 WO 01/19800, WO 01/26644 et WO 02/30421 au nom de CURIS ; -Kamenetsky et al., J. Biol., 2002, 1, 1-19, - des stéroïdes végétaux dérivés de Veratrum spp (jervine, cyclopamine et cycloposine) et de Solanum spp. (solanidine), substitués en position 16, 17 ou 18 par une amine ou un dérivé d'amine, et du cholestérol : Brevet américain US 6,432,970 et Demandes 20 Internationales PCT WO 99/52534 et WO 01/27135 au nom de JOHNS HOPKINS UNIVERSITY SCHOOL OF MEDICINE ; Brevet américain US 6,291,516 ; Demande Internationale PCT WO 00/41545 au nom de ONTOGENY INC. ; Demande Internationale PCT WO 02/30462 au nom de CURIS ; Taipale et al., Nature, 2000, 406, 1005-1009 ; Berman et al., Science, 2002, 297, 1559-1561. Toutefois, il a été démontré que des 25 concentrations en cyclopamine supérieures à 10 p.M s'avéraient être cytotoxiques pour les cellules (Borzillo et al., Curr. Top Med. Chem., 2005, 5(2), 147-157). De plus, les effets in vivo de la cyclopamine sur la croissance tumorale ont été remis en question car ils pourraient être liés à une activité en dehors de la tumeur elle-même (Yauch et al., 2008, Nature, 455 : 406-410). Un dérivé de la cyclopamine (IPI-926) est actuellement en phase clinique II 30 (Mahindroo et al., J. Med. Chem., 2009, 52, 3829 ; Tremblay et al., J. Med. Chem., 2009, 52 : 14, 4400-4418), - la mifepristone (17P-hydroxy 1113-(4-diméthylamino phényl) 17a-(prop-1- ynyl)estra-4,9-dien 3-one), également dénommée RU-486 ou RU-38486 (Brevet français FR 2 850 022 au nom du CNRS) pour laquelle une activité inhibitrice de l'activité de la voie de signalisation des protéines Hedgehog a été démontrée, - les molécules SANT74 et le SANT75 ayant une structure analogue à celle du SAG, composé activateur synthétique de type chlorobenzothiophène (CAS N° : 364590- 63-6) sont également connus pour être des inhibiteurs stables permettant de contrôler efficacement la conformation de l'activateur Smo (Yang et al., The Journal of Biological Chemistry, publié le 14 avril 2009). SANT75 Plus récemment, d'autres composés inhibiteurs de la voie de signalisation Hedgehog ont également été décrits (Peukert et Miller-Moslin, 2010, ChemMedChem 5 : 500-512 ; Low et De Sauvage, 2010, J. Clin. Oncol. ; Ng et Curran, 2011, Nature Review Cancer) - Des inhibiteurs à base de bisamide (Demande Internationale PCT WO 2007/059157 au nom de GENENTECH INC. et CURIS INC.) et de pyridyle (Demande Internationale PCT WO 2006/028958 au nom de GENENTECH INC. et CURIS 1NC ; Brevet US 2009/0281089 au nom de GENENTECH INC.). Un des composés à base pyridyle, le GDC-0449 (phase clinique II) a montré son efficacité chez un patient atteint de métastases de médulloblastome. Toutefois, le patient a progressivement développé une résistance à la molécule. Une mutation d'un acide aspartique (D473H) de Smo est apparue. Elle perturbe la capacité du composé à se lier à Smo et à inhiber cette voie. Une mutation du même acide aminé a été identifiée chez un modèle souris atteint de médulloblastomes et traité par ce composé (Yauch et al., 2009, Science 326 : 572-574). - Des inhibiteurs développés par la société Novartis. Par exemple, le LDE225 (phase clinique H) a été testé pour traiter des médulloblastomes chez le modèle souris et a induit une régression de ces tumeurs. Toutefois, une résistance a été observée au cours du traitement. Une étude a révélé plusieurs mécanismes de résistance dont une amplification chromosomique de G1i2 et, plus rarement, des mutations ponctuelles du récepteur Smo qui conduisent à la réactivation de la croissance tumorale. Ils ont également identifié une régulation positive de la signalisation de la phosphatidylinositol 3-kinase (PI3K) (Buonamici et al., 2010, Sci. Transi. Med., 51-70). - Des inhibiteurs développés par Bristol-Myers Squibb Inc tels que le BMS833923 (XL-139). - Des inhibiteurs décrits par la société Pfizer Products, Inc. (WO 2008/075196 et US 2009/0005416). Le PF-04449913 est actuellement en phase clinique II. - Des inhibiteurs décrits par la société MERCK (Dessole et al., 2009, Bioorg. & Med. Chem. Lett. 19 : 4191-4195). - Les composés LEQ506 de Novartis et le TAK-441 de la société Millennium viennent également d'entrer en phase clinique I. - Des inhibiteurs à base d'acyl-urées, -thiourées et -guanidines ont également été protégés en tant que modulateurs de la voie Hedgehog (WO 2009/130422 et WO 2011/010013 au nom du CNRS). Ces derniers ont le mérite d'être faciles à préparer en comparaison aux autres molécules existantes. Les dérivés acyl-guanidines sont, de plus, solublent dans l'eau. Les Inventeurs se sont maintenant donnés pour but de pourvoir à de nouveaux composés modulateurs (stimulateurs ou inhibiteurs) de la voie de signalisation des protéines Hedgehog qui répondent mieux aux besoins de la pratique, notamment en ce qu'ils sont simples à synthétiser et potentiellement utilisables en thérapie humaine. Cet objectif est atteint par les composés de formule (I) qui sont décrits ci- après et qui constituent le premier objet de l'invention, ces composés étant les plus puissants antagonistes du récepteur Smoothened identifiés à ce jour (5 à 30 fois plus puissants que les composés actuellement en phase clinique). Ces molécules présentent également une affinité 10 à 30 fois supérieure à celle des molécules GDC-0449 et LDE225, ces dernières s'étant par ailleurs heurtées à l'apparition de résistance chez certains patients (résistances en particulier liées à l'apparition de mutations sur le récepteur Smoothened). En outre, les molécules de l'invention présentent l'avantage d'être facilement préparées, généralement en trois ou quatre étapes, selon des procédés de synthèse analogues aux procédés classiques connus de l'homme de l'art, les composés acyl-urée, -thiourée et guanidine étant facilement accessibles à partir de matières premières disponibles. La fonction guanidine, en tant que base, est salifiable, ce qui a l'avantage de produire des composés ayant une bonne solubilité en milieu aqueux. L'ensemble des composés de formule (I) est obtenu de manière très commode en utilisant des réactions chimiques simples bien connues de l'homme de l'art. La présente invention a pour objet les composés de formule (I) suivante : (I) dans laquelle : - R1, R2 et R3, identiques ou différents et indépendamment les uns des autres, représentent un atome d'hydrogène ou d'halogène, un radical hydroxyle, un groupe alkyle, perfluoroalkyle, alcoxy, alkylthio ou nitrile, lesdits groupes alkyle, perfluoroalkyle, alcoxy et alkylthio pouvant comprendre de 1 à 6 atomes de carbone, X représente O, S ou NH, et de préférence X est NH, - R4 et R7, identiques ou différents et indépendamment l'un de l'autre, représentent un atome d'hydrogène ou d'halogène ou un groupe alkyle, - R5 représente un des groupes choisis parmi : substitué par au moins un radical R6 représentant un atome d'halogène ou un groupe alkyle, alcoxy, aminoalkyle, thioalkyle ou hydroxyle, lesdits groupes alkyle, alcoxy, aminoalkyle et thioalkyle pouvant comprendre de 1 à 6 atomes de carbone. Au sens de la présente invention, on entend par : - Alkyle : un groupe aliphatique hydrocarboné saturé, linéaire ou ramifié, ayant de 1 à 6 atomes de carbone, de préférence de 1 à 2 atomes de carbone. Le terme « ramifié » signifie qu'au moins un groupe alkyle inférieur tel qu'un méthyle ou un éthyle est porté par une chaîne alkyle linaire. Le terme alkyle "inférieur" désigne un alkyle ayant 1 ou 2 atomes de carbone ; le terme "alkyle supérieur" désigne un groupe alkyle linéaire ou ramifié ayant de 3 à 6 atomes de carbone. A titre de groupe alkyle, on peut mentionner par exemple les groupes méthyle, éthyle, n-propyle, i-propyle, n-butyle, t-butyle et n-pentyle. - Atome d'halogène : désigne un atome de brome, de chlore, d'iode ou de fluore ; les désignations brome, chlore et fluore étant préférées ; - Perfluoroalkyle : désigne un groupe alkyle tel que défini ci-dessus dans lequel tous les atomes d'hydrogène ont été remplacés par des atomes de fluore. Parmi les groupes perfluoroalkyle, les groupes trifluorométhyle et perfluoroéthyle sont préférés ; - Alcoxy : désigne un groupe 0-alkyle dans lequel le groupe alkyle peut prendre la même signification que celle indiquée ci-dessus. A titre d'exemple de groupes alcoxy, on peut notamment citer les groupes méthoxy, éthoxy, n-propoxy, iso-propoxy, n- butoxy et pentoxy ; - Alkylthio : désigne un groupe alkyl-S dans lequel le groupe alkyle peut prendre la même signification que celle indiquée ci-dessus. A titre d'exemples de groupe alkylthio, on peut notamment citer les groupes méthylthio, éthylthio, iso-propylthio, butylthio et pentylthio ; - Aminoalkyle : désigne un groupe alkyl-N dans lequel le groupe alkyle peut prendre la même signification que celle indiquée ci-dessus. A titre d'exemples de groupe aminoalkyl, on peut notamment citer les groupes aminométhyl, aminoéthyl, iso-propylamino, butylamino et pentylamino. Selon une forme de réalisation préférée de l'invention, les composés de formule (1) sont choisis parmi ceux dans lesquels R1, R2 et R3 représentent un radical alcoxy, et de préférence un radical méthoxy. Selon un autre mode de réalisation préféré, R4 et R7 représentent un atome d'hydrogène ou de chlore, un groupe méthyle, éthyle ou isopropyle. Selon un autre mode de réalisation avantageux, R6 représente un atome d'halogène ou un groupe alcoxy ou aminoalkyle, lesdits groupes alcoxy ou aminoalkyle pouvant comprendre de 1 à 6 atomes de carbone. Plus préférentiellement, R6 représente un atome de chlore ou de fluor, un radical méthoxy ou diméthylamino. A titre de composés de formule (I), on peut en particulier citer : l'hydrochlorure de N-(N-(3-(4-benzoylbenzamido)-4- méthylphényecarbamimidoy1)-3,4,5-triméthoxybenzamide de formule suivante : Me O NH v 0 Mea, HCI OMe 7a o (Composé 7a) ; l'hydrochlorure de N-(N-(3-(4-benzoylbenzamido)-4- méthylphényl)carbarnimidoy1)-3,4,5-triméthoxybenzamide de formule suivante : Me0 Me0 7b (Composé 7b) ; l'hydrochlorure de 3,4,5-triméthoxy-N-(N-(4-méthy1-3-(4-(3- phénylpropyl)benzamido)phényl)carbarnimidoyl) benzamide de formule suivante : Me0 Me0 Me NH 0 H - H HCI OMe 7c (Composé 7c) ; l'hydrochlorure de 3,4,5-triméthoxy-N-(N-(4-méthy1-3-(4- phénéthylbenzamido)phényecarbamimidoypbenzamide de formule suivante : (Composé 7d) ; l'hydrochlorure de (E)-N-(N-(3-(4-cinnamylbenzamido)-4- méthylphényl)carbamimidoy1)-3,4,5-triméthoxybenzamide de formule suivante : Me0 Me0 OMe Me0 Me0 NH N'LN H H HCI OMe 7e (Composé 7e) ; - l'hydrochlorure de N-(N-(3-(4-benzylbenzamido)-4- méthylphényl)carbamimidoy1)-3,4,5-triméthoxybenzamide de formule suivante : Me0 Me0 (Composé 7f) ; - l'hydrochlorure de N-(N-(3-(4-benzylbenzamido)-4- méthylphénypcarbamimidoy1)-3,4,5-triméthoxybenzamide de formule suivante : OMe Me0 Me0 7g NH Me 0 NN 1-1 H H HCI (Composé 7g) ; l'hydrochlorure de N-(N-(3 -(4-(benzyloxy)benzamido)-4- méthylphénypearbamimidoyI)-3,4,5-triméthoxybenzamide de formule suivante : OMe Me0 Me0 NH Me 0 H - H HCI 7h (Composé 7h). Les composés de formule (I) conformes à l'invention peuvent être facilement préparés, généralement en trois ou quatre étapes, selon des procédés de synthèse analogues aux procédés classiques connus de l'homme du métier. Dans un premier temps un fragment central, le fragment (VI), est préparé selon le Schéma 1 ci-dessus. O 0 NH, HCI loloene H,NCN (Bac), TEA DMAP THF NO, NHCN C 120°C NaOH NO, R, A H,0 R, III O NBoc H - H NH, VI R, V R, Il Pd/C 10% MeOR 50 psi Schéma 1 Il s'agit de condenser un chlorure de benzoyl (II) sur la cyanamide en milieu aqueux, de manière à obtenir une acyl-cyanamide (III), qui est à son tour condensé avec une aniline (A) pour obtenir la guanidine (IV). La fonction basique de la guanidine est ensuite protégée par un résidu Boc en milieu basique, pour obtenir un composé nitro (V), puis réduite en amine par hydrogénation pour obtenir l'aniline intermédiaire (VI). Le Schéma réactionnel 2 ci-après indique la préparation de composés possédant dans leur formule (I) des groupements R1= R2 =R3 = Me0. Les chlorures d'acides (l a-h) sont préparés selon les indications de la littérature (J. Med. Chem, 2001, 44, 3175 ; Chem. Eur. J. 2010, 16, 5848 ; Org. Lett. 2007, 9, 4571 ; Org. Biomol. Chem. 2008, 6, 3005 ; Adv. Cat. Synth. 2008, 350, 2065 ; J. Org. Chem. 2001, 66, 2874 ; J. Med. Chem. 2010, 53, 5770). L'intermédiaire (VI) est ensuite condensé avec différents chlorures d'acide (1a-h) le plus souvent commerciaux pour fournir les composés attendus le plus souvent sous faune de sels (chlorhydrates) (Schéma 2). CIOC * * *g* CIOC Mer) MeO Me0 MeO 0 la TEA CH,CI, 1b TEA CH,CI, MeO MeO OMe 6b Me 0 NH NiN H H H HCI 76 OMe sa* CIOC Me O NH O N" 'N H H le - Me NBoc O N,ILN H H MeO MeO OMe 6C Me O 0.1Boc O H H OMe 7d Bd * * HCI 7e AcOH/HCI O NH Me0 Me0 NN N H.IL H H MeO HCI OMe * - 1e TEA CH,CI, CIOC 1d TEA CH,CI, TEA CIOC MeO MeO MeO MeO OMe 6e OMe 6f Me O NBoc 0 H H H AcOH/HCI O - OMe 7e AcOHJNCI Me0 Me 0 O NBOC H - H H Me0 - * le CIOC CIOC OMe Me O NH 0 H - H HCI 7g 1g MeO TEA MeO CH,CI, ClOC OMe 7h Me AcOH/FICI 0 NH 0 MeO H...[LN N H H H MeO HCI OMe Me NBoc O NN H H H 6h Schéma 2 LLI 5 5 5 I 5 I 5 Les composés de formule (I) conformes à l'invention présentent la propriété de moduler négativement (effet inhibiteur) ou positivement (effet activateur) le voie de signalisation des protéines Hedgehog et peuvent donc être utilisés, à titre de principe actif, pour la préparation d'une composition pharmaceutique destinée aux traitements des pathologies associées à une hyperactivation ou à un déficit de la voie de signalisation des protéines Hedgehog. Par conséquent, la présente invention a également pour objet des composés de formule (I), pour leur application en tant que médicament, et notamment des composés de founule (I) pour leur application en tant que médicament pour le traitement de tumeurs associées à une hyperactivation de la voie de signalisation des protéines Hedgehog. Et plus particulièrement, la présente invention concerne également les composés de formule (I) : - à titre de médicament destiné au traitement des tumeurs associées à une hyperactivation de la voie de signalisation des protéines Hedgehog ; de telles tumeurs sont notamment les tumeurs du tissu nerveux (médulloblastomes, tumeurs primitives neuroectodermiques, glioblastomes, méningiomes et oligodendrogliomes), des tumeurs cutanées (carcinomes basocellulaires, trichoépithéliomes), des tumeurs des tissus musculaires et osseux (rhabdomyosarcomes, ostéosarcomes) ou des tumeurs d'autres tissus (rein, vessie, prostate, poumon, estomac, pancréas), - à titre de médicament pour le traitement de pathologies de type neuro- dégénératif comme la maladie de Parkinson, la Chorée de Huntington, la maladie d'Alzheimer, la sclérose en plaques ou la maladie du motoneurone, - à titre de médicament pour le traitement de maladies liées au développement cérébral (holoprosencéphalie), au traitement d'accident vasculaire cérébral et aux accidents cardiovasculaires, ainsi qu'aux maladies des oligodentrocytes et des cellules de Schwann, - pour une utilisation in vitro pour contrôler et moduler le renouvellement des cellules souches humaines ou animales, - à titre de médicament pour le traitement d'autres pathologies dans lesquelles la modulation de la voie de signalisation Hedgehog pourrait être bénéfique, comme par exemple le diabète. La posologie utile variera en fonction de l'affection à traiter, de la voie et du rythme d'administration, ainsi que de la nature et du poids de l'espèce à traiter (humaine ou animale) ; elle peut varier par exemple de 10 mg à 2 g par jour chez l'adulte par voie orale. Un autre objet de la présente invention est une composition pharmaceutique, caractérisée par le fait qu'elle comprend, à titre de principe actif, au moins un composé de formule (I) tel que défini précédemment, et au moins un excipient pharmaceutiquement acceptable. Au sein des compositions pharmaceutiques conformes à l'invention, le ou les composés de formule (I) sont de préférence utilisés en une quantité permettant d'administrer des doses unitaires comprises entre 10 mg et 2 g environ. L'homme du métier choisira un ou plusieurs excipients pharmaceutiquement acceptables en fonction de la voie d'administration de la composition pharmaceutique. Bien entendu, l'homme de l'art veillera, à cette occasion, à ce que le ou les excipients utilisés soient compatibles avec les propriétés intrinsèques attachées à la composition conforme à la présente invention. En outre, la forme du médicament ou de la composition pharmaceutique (par exemple, une solution, une suspension, une émulsion, des comprimés, des gélules, des suppositoires, etc...) dépendra de la voie d'administration choisie. Ainsi, au sens de la présente invention, le médicament ou la composition pharmaceutique peut être administré par n'importe quelle voie appropriée, par exemple par la voie orale, anale, locale, systémique, intraveineuse, intramusculaire ou mucosale, ou bien en utilisant un patch, ou encore sous forme encapsulée dans, ou immobilisée sur, des liposomes, des microparticules, des microcapsules, et analogues. On peut notamment citer, à titre d'exemples non limitatifs d'excipients appropriés pour une administration par voie orale, le talc, le lactose, l'amidon et ses dérivés, la cellulose et ses dérivés, les polyéthylèneglycols, les polymères d'acide acrylique, la gélatine, le stéarate de magnésium, des matières grasses animales, végétales ou synthétiques, les dérivés de la paraffine, les glycols, les stabilisants, les conservateurs, les anti-oxydants, les agents mouillants, les anti-agglomérants, les dispersants, les émulsionnants, les agents modifiants du goût, les agents de pénétrations, de solubilisation, etc... Les techniques de formulation et d'administration des médicaments et compositions pharmaceutiques sont bien connues dans la technique ici considérée, l'homme 30 du métier pouvant notamment se référer à l'ouvrage Remington' s Pharmaceutical Sciences, (21St edition). Les composés de formule (I) de l'invention s'avèrent être d'une grande utilité aussi bien comme outils pour la découverte de nouveaux modulateurs de ces voies de signalisation que pour déceler différentes formes du récepteur Smoothened ou de récepteurs apparentés et identifier des molécules capables de moduler ces différentes formes. La présente invention se rapporte donc également à l'utilisation d'au moins un composé de formule (I) marqué comme outil de recherche, notamment pour l'identification de molécules capables d'interagir avec le récepteur Smoothened ou un récepteur apparenté, par exemple en se liant sur le site de liaison Smo I ou sur le site de liaison Smo2. En effet, les Inventeurs ont constaté de manière tout à fait inattendue que l'introduction d'un marqueur sur l'une des extrémités de fragments structurales des composés de formule (I) pouvait conduire à des radio-ligands présentant une affinité subnanomolaire caractérisée dans de nombreux tests biologiques. Le marquage des composés de formule (I) peut être radioactif par incorporation d'isotopes radioactifs tels que 3H, 11C, 14C, 32P, 35S, 1251, 99mTC, 18F, 64cu, 76Br, 1241, 13-"IN, 150 ou encore 1231 selon les méthodes classiques de l'état de la technique. Le marquage du composé de formule (I) peut aussi consister en la fixation d'un fluorophore sur ledit composé selon les méthodes connues de l'homme du métier ; la détection du marquage peut se faire classiquement à l'aide de radio-imageurs sélectionnés en fonction de l'atome radioactif à détecter, ou par mesure de la fluorescence. Dans la littérature, plusieurs radio-ligands de la voie de signalisation ont été décrits, mais encore peu utilisés. Par exemple, les radio-ligands marqués au tritium 3H ou à l'iode 1251 comme le 3H SAG (Rominger et al., JPET, 2009, 995-1005), le 3H-Hh-Ag1.5 (Borzillo et Lippa., Curr. Top Med. Chem., 2005, 5(2), 147-57), le [3H]GDC-0449 (Dijkgraaf et al., 2011, Cancer Res. 435-444) ou la PA-cyclopamine [3H]-cyclopamine (Chen et al., Genes Dey., 2002, 16 : 2743-2748) : !^.11-iMe 3H SAG 3H Hh-Ag 1.5 PA-cyclopamine N H HO Une série d'analogues ont été étudiés, dans la perspective d'obtenir une substance marquée au tritium pour entreprendre des expériences de liaisons spécifiques et/ou d'autoradiographie pour analyser d'une manière approfondie le mécanisme d'action des modulateurs de récepteurs de la voie de signalisation des protéines Hedgehog, et plus 5 particulièrement du récepteur Smoothened. En effet, les composés marquées précédemment décrits dans l'art antérieur ne sont pas faciles d'accès ; ils nécessitent un grand nombre d'étapes de synthèse. De plus, parmi les radio-ligands décrits ci-dessus, seule la PAcyclopamine [3H]-cyclopamine est disponible commercialement. Elle présente en outre une faible affinité (Kd autour de 10 nM) (Rominger et aL , JPET, 2009, 995-1005), contrairement 10 aux composés de l'invention (Kd = 0.3 nM pour le composé (7d)). Plus particulièrement, les composés de formule (I) sous forme marquée peuvent être utilisée : - pour la détection de tumeurs associées à une hyperactivation de la voie 15 de signalisation des protéines Hedgehog, - pour le criblage et/ou l'identification de ligands de sites de liaison spécifiques des récepteurs de la voie de signalisation des protéines Hedgehog, tel que le récepteur Smoothened ou des récepteurs apparentés comme les récepteurs Frizzled (Frizzled 1 à 10), ou encore comme les récepteurs Patched (Patched 1 et Patched 2), Dispatched 20 (Dispatched 1 et Dispatched 2) ou Hip, lesdits récepteurs de la voie de signalisation des protéines Hedgehog pouvant être exprimés de façon naturelle ou pouvant être transfectés (transfert de gène plasmidique) ou infectés (grâce à l'utilisation de virus) de façon stable ou transitoire dans des cellules primaires, des lignées cellulaires ou des tissus sains ou pathologiques, - pour le criblage et/ou l'identification de nouvelles molécules 25 antagonistes des récepteurs de la voie de signalisation des protéines Hedgehog (molécules anticancéreuses) ou d'agonistes des récepteurs de la voie de signalisation des protéines Hedgehog agissant sur les cellules souches, en autoradiographie pour analyser le fonctionnement de la voie de signalisation des protéines Hedgehog dans des cellules primaires, des lignées cellulaires ou 30 des tissus sains ou pathologiques, - pour étudier la régulation pharmacologique des récepteurs de la voie de signalisation des protéines Hedgehog dans des cellules primaires, des lignées cellulaires ou des tissus sains ou pathologiques. Un autre objet de la présente invention concerne un procédé de radio-marquage d'un composé de formule (I) tel que défini ci-dessus comprenant une étape de tritiation d'un composé de formule (I) sous une atmosphère de tritium 3H, et ledit procédé comprenant une étape préalable d'halogénation lorsque le composé de formule (I) est substitué par un groupe R5 exempt de double liaison éthylénique. Ainsi, un objet supplémentaire de la présente invention concerne un composé de formule (I) susceptible d'être obtenu selon le procédé de radio-marquage décrit ci-dessus, dans lequel au moins un de ses atomes d'hydrogène a été remplacé par un atome de tritium 3H. Ces composés de formule (I) radio-marqués au tritium 3H peuvent être utilisés comme outils de recherche, et pour les différentes utilisations énumérées ci-dessus. Diverses méthodes de criblage de modulateurs de la voie Hedgehog sont connues : - méthodes utilisant des réponses cellulaires de lignées ou cultures primaires : différenciation cellulaire (C3H10T1/2), prolifération cellulaire (cellules primaires granulaires du cervelet) ; - méthodes utilisant une compétition avec un composé fluorescent agissant sur les domaines transmembranaires du récepteur ciblé [(bodipycyclopamine (BC)] (US 2007/0218775) ; - méthodes utilisant un gène rapporteur de la voie impliquée (Taipale et al., 2000, Nature, 406, 1005-1009) ; - un essai détectant une activité Hh en mesurant les interactions Ptc-Hh en présence ou non de composé à tester (US 2005/0282231) ; - un essai utilisant des cellules défectives pour Sufu et un rapporteur pour identifier des inhibiteurs de la voie Hh agissant en aval de Smo (WO 2006/080894). La présente invention se rapporte aussi à une méthode de criblage et/ou d'identification de ligands des sites de liaison Smo (Smo 1 ou Smog) du récepteur Smoothened comprenant les étapes suivantes : a) mise en contact du récepteur Smoothened et d'au moins un composé de formule (I) pour l'obtention d'un complexe [Smo-composé de formule (I)] ; b) mise en contact du récepteur Smoothened, dudit composé de formule (I) et d'une molécule à tester ; c) détection d'une interaction entre ledit récepteur Smoothened et lesdites molécules à tester par comparaison du récepteur Smoothened récupéré à l'étape b) avec le complexe [Smo-composé de formule (I)] ; et d) sélection desdites molécules à tester pour lesquelles une interaction avec le récepteur Smoothened est mesurée. L'étape a) peut être mise en oeuvre avec des cellules exprimant le récepteur Smoothened ou avec des extraits de membranes comprenant le récepteur Smoothened fonctionnel, il peut notamment s'agir d'extraits de membranes de levures portant le récepteur humain Smoothened fonctionnel susceptibles d'être obtenus avec le procédé décrit par de Rivoyre et al. (FEBS Letters 579, 2005, 1529-1533). Lorsque l'étape a) est mise en oeuvre avec des cellules exprimant le récepteur Smoothened, l'expression dudit récepteur est soit constitutive (le récepteur est naturellement exprimé par la cellule), soit elle résulte de la transformation d'une cellule afin qu'elle exprime ou sur-exprime un récepteur Smoothened de la même espèce ou d'une espèce différente. Ce récepteur Smoothened peut aussi porter une mutation qui lui confère des propriétés biochimiques ou pharmacologiques différentes du récepteur sauvage. Tout composé de formule (I) peut être utilisé pour la mise en oeuvre de la méthode selon l'invention ; il pourra toutefois être choisi par l'homme du métier notamment en fonction de son affinité pour le récepteur Smoothened. L'étape a) peut être mise en oeuvre en phase liquide ou sur un support solide convenable ; l'homme du métier choisira et adaptera ces modalités de mise en oeuvre par exemple selon qu'il utilise le récepteur Smoothened sous la forme d'extraits de membranes ou sous la foime de protéine purifiée. Lorsque l'étape a) est mise en oeuvre en phase liquide, la méthode de criblage en phase liquide peut être mise en oeuvre selon les étapes suivantes : a) mise en contact du récepteur Smoothened et d'au moins un composé de formule (I) pour l'obtention d'un complexe [Smo-composé de formule (I)] ; b) mise en contact du récepteur Smoothened, dudit composé de formule (I) et d'une molécule à tester ; c) récupération dudit récepteur Smoothened éventuellement lié à une ou plusieurs molécules à tester et/ou audit composé de formule (I) ; d) détection d'une interaction entre ledit récepteur Smoothened et lesdites 30 molécules à tester par comparaison du récepteur Smoothened récupéré à l'étape c) avec le complexe [Smo-composé de formule (I)] ; et e) sélection desdites molécules à tester pour lesquelles une interaction est mesurée. L'étape a) peut être mise en oeuvre avec des extraits membranaires comprenant le récepteur Smoothened qui sont alors incubés avec le composé de formule (I) et les molécules à tester ; le mélange est ensuite centrifugé ; le culot obtenu après centrifugation est à nouveau suspendu dans un tampon, puis à nouveau centrifugé pour éliminer les interactions non spécifiques. La fixation de molécule à tester au récepteur Smoothened est alors analysée soit par mesure de fluorescence, soit par mesure de radioactivité suivant le marquage du composé de formule (I) : - selon une variante de la méthode de criblage en phase liquide, ledit composé de formule (I) est préalablement marqué. L'étape d) de détection de l'interaction entre le récepteur Smoothened et une ou plusieurs des molécules à tester se fait par comparaison du marquage (par radioactivité ou fluorescence) des récepteurs Smoothened récupérés à l'étape c) avec celui du complexe [Smo-composé de formule (I)] ; les molécules sélectionnées sont celles pour lesquelles le marquage des récepteurs Smoothened récupérés à l'étape c) est plus faible que celui du complexe [Smo-composé de foiuiule (I)] ; - selon une autre variante de la méthode de criblage en phase liquide, la détection de l'interaction se fait par chromatographie en comparant la position du complexe [Smo-composé de formule (I)] avec celle du récepteur Smoothened récupéré à l'étape c), si la position est identique alors il n'y a pas d'interaction entre le récepteur Smoothened et la molécule à tester. A contratio, une différence de position indique une interaction, il convient ensuite de confirmer que l'interaction entre la molécule à tester et le récepteur Smoothened se produit bien sur un site de liaison Smo. L'étape a) de la méthode de criblage selon l'invention peut alternativement être mise en oeuvre sur un support solide convenable. Par support solide, on entend en particulier un biocapteur constitué d'une 25 membrane qui comprend une espèce biologique, telle qu'une enzyme, un anticorps, un peptide, un micro-organisme, un tissu biologique, un lipide, un acide nucléique..., permettant la liaison avec une molécule à tester et un transducteur permettant de transformer le signal biologique, tel que la fixation d'un ligand sur un récepteur protéique, en un signal physique mesurable, par exemple électrochimique (ampérométrique, potentiométrique, 30 conductimétrique), optique (lumineux), piézoélectrique ou calorimétrique. Dans le cas présent, l'espèce biologique fixée sur la membrane est le récepteur Smoothened ; dans deux expériences conduites en parallèle, le récepteur Smoothened sur support solide est mis en contact avec un composé de formule (I) et avec le mélange dudit composé de formule (I) et d'une molécule à tester, les signaux obtenus dans chacune de ces expériences sont comparés ; sont sélectionnées les molécules qui induisent une modification du signal. A titre d'exemple, le support solide est un biocapteur de détection d'une liaison par résonance plasmonique dont l'utilisation permet de visualiser et de caractériser (constantes d'affinité, d'association et de dissociation) des interactions entre une protéine et son ligand par changement de masse à la surface du biocapteur. Ce changement de masse se mesure par des variations de l'angle de résonance plasmonique à la surface du biocapteur et ne nécessite pas de ligand marqué ou fluorescent. Lorsque la méthode de criblage sur support solide est mise en oeuvre avec 10 des extraits de membranes comprenant le récepteur Smoothened, ces extraits peuvent être fixés par injection sur un biocapteur lipophile. Lorsqu'un biocapteur lipophile est utilisé, les extraits membranaires se fixent aux groupements lipophiles liés par des liaisons covalentes au dextran, ce qui permet de suivre l'interaction entre récepteurs membranaires et ligands (M. R. Pourshafie et al., J. Microbiol. Meth., 2004, 58, 313-320; A. Wikstrom, Anal. Biochem., 15 2007, 362, 98-107). Ainsi selon une variante de l'invention, le biocapteur de détection d'une liaison par résonance plasmonique est un biocapteur lipophile tel qu'un biocapteur hydrophobe « sensorchip L1 » de Biacore (GE Healthcare) sur lequel est fixée par injection une préparation de membranes contenant le récepteur Smoothened. 20 Lorsque la méthode de criblage sur support solide est mise en oeuvre avec le récepteur Smoothened purifié, ledit récepteur peut également être fixé sur un biocapteur permettant une mesure de résonance plasmonique de surface qui consiste à détecter une variation de l'indice de l'interface sur laquelle est fixé le récepteur lorsqu'un ligand s'y fixe. Selon une autre variante, la méthode de criblage sur support solide permet 25 également d'identifier des ligands du récepteur Smoothened qui ne se lient pas à un site de liaison Smo ; l'action activatrice ou inhibitrice de ces ligands peut être caractérisée par les méthodes qui suivent. La présente invention se rapporte aussi à une méthode d'identification d'agonistes du récepteur Smoothened, qui, en plus des étapes décrites pour la méthode 30 d'identification de ligand, comprend les étapes additionnelles de mise en contact du ligand identifié avec une cellule qui présente une réponse cellulaire suite à l'activation du récepteur Smoothened et de sélection des molécules agonistes capables d'induire ladite réponse cellulaire de ladite cellule. Les cellules qui présentent une réponse cellulaire suite à l'activation du récepteur Smoothened sont choisies paluli les lignées ou cultures primaires : cellules mésenchymateuses (par exemple, C3H10T1/2) répondant à une activation du récepteur Smoothened par la différenciation cellulaire mesurable par l'activité de la phosphatase alcaline ; cellules primaires granulaires du cervelet répondant à une activation du récepteur Smoothened par une prolifération cellulaire ; cellules souches du cerveau adulte ou des progéniteurs neuraux ou encore des cellules progénitrices présentes dans les tissus au cours du développement ou chez l'adulte pour lesquelles la réponse cellulaire peut, par exemple, consister en l'induction de gènes tels que ceux codants pour les facteurs de transcription de la famille des Gli, ou encore pour Patched ou Hip, gènes activés par la voie Hedgehog. La présente invention se rapporte également à une méthode d'identification d'une molécule antagoniste du récepteur Smoothened comprenant les étapes suivantes : a) mise en culture de cellules qui présentent une réponse cellulaire suite à l'activation du récepteur Smoothened avec au moins un composé de formule (I) de façon à induire ladite réponse cellulaire ; b) mise en contact des cellules obtenues à l'issue de l'étape a) avec une molécule à tester ; c) sélection des molécules induisant une inhibition de ladite réponse cellulaire desdites cellules. La molécule dont on veut tester l'activité antagoniste du récepteur Smoothened peut notamment être est un ligand se liant sur un site de liaison Smo du récepteur Smoothened identifié par l'une quelconque des méthodes précédentes d'identification de ligand selon l'invention. La présente invention se rapporte encore à un kit permettant la mise en 25 oeuvre des méthodes selon l'invention comprenant au moins le récepteur Smoothened fonctionnel et au moins un composé de formule (I). Le récepteur Smoothened fonctionnel est soit présent sous forme d'extrait membranaire, soit dans des cellules qui présentent une réponse cellulaire suite à l'activation du récepteur Smoothened. Les expériences de liaison entre le récepteur Smoothened et un composé de 30 formule (I) peuvent également être utilisées pour caractériser et identifier : - de nouveaux types cellulaires exprimant le récepteur Smoothened dans une conformation où le site de liaison Smo est actif ; - des récepteurs impliqués dans la différenciation, tels que des récepteurs apparentés au récepteur Smoothened. L'invention se rapporte alors à une méthode d'identification de cellules, telles que des cellules tumorales, exprimant le récepteur Smoothened comprenant les étapes de : a) mise en contact de cellules à tester avec un composé de formule (I) marqué ; b) nettoyage des cellules afin d'éliminer ledit composé de formule (I) marqué qui ne se serait lié à aucun récepteur des cellules à tester ; c) détections des cellules marquées. Les composés peuvent également servir à l'identification et à la caractérisation de nouveaux récepteurs ou de nouvelles formes de récepteurs impliqués dans la différenciation cellulaire, la prolifération, la mort cellulaire, la migration, la survie cellulaire ou encore permettant à la cellule d'acquérir une propriété ou un état qu'elle n'a pas encore atteint. Outre les dispositions qui précèdent, l'invention comprend encore d'autres dispositions qui ressortiront de la description qui va suivre, qui se réfère à des exemples de synthèse, de caractérisation et d'évaluation de composés de formule (I) selon l'invention, et à leur marquage, ainsi qu'aux dessins annexés dans lesquels : la Figure 1 illustre l'activité du composé (7d) et des composés de référence dans différents tests cellulaires et sur la liaison de la bodipy-cyclopamine (BC) au récepteur Smo. Les Figures lA et 1B montrent l'activité des composés sur la différenciation des cellules C3H10T1/2 (Figure 1A), et sur la prolifération des PCGs de cervelet de rat (Figure 1B). Les courbes d'inhibition ont été générées avec des concentrations croissantes des molécules étudiées en présence de SAG (0.1 uM, Figure 1 A et 0.01 uM, Figure 1B). Les valeurs sont exprimées en pourcentage de la réponse maximale induite par le SAG. La Figure 1C illustre l'inhibition de la liaison de la bodipy-cyclopamine (BC) par les différents composés. Les cellules HEK-hSmo sont incubées avec la BC (5 nM) seule (contrôle) ou en présence d'une concentration croissante des molécules étudiées. La liaison de la BC est visualisée par microscopie à fluorescence et la courbe dose-réponse des composés est obtenue après quantification. Les valeurs sont exprimées en pourcentage de la liaison spécifique de la BC. Les données correspondent aux valeurs (moyennes ± SEM) issues d'une expérience représentative de 2-4 expériences indépendantes, - la Figure 2 représente la cinétique d'association du composé 3H-(7d) à des membranes de cellules HEK-hSmo exprimant le récepteur Smoothened humain, - la Figure 3 représente la courbe de saturation de la liaison du composé 3H-(7d) au récepteur Smo exprimé dans les cellules HEK-hSmo à l'équilibre. Figure 3A : Les membranes de cellules HEK-hSmo (2 lig de protéines) ont été incubées dans un volume final de 0.4 ml de tampon HEPES 0.2 % BSA avec des concentrations croissantes de composé 3H-(7d) pendant 3 heures à 37°C. La liaison non spécifique a été évaluée en présence de 1µM de GDC-0449. L'analyse de la liaison spécifique donne des valeurs de Kd de 0.3 ± 0.1 nM et de Bn. de 1086 ± 91 cpm. Les données sont les moyennes ± SEM de triplicats (expérience représentative, n = 3). Figure 3B : Analyse de Scatchard de la liaison spécifique du composé 3H-(7d), - la Figure 4 illustre l'inhibition de la liaison du composé 3H-(7d) au récepteur Smoothened humain exprimé dans les cellules HEK-hSmo. Les membranes de 10 cellules HEK-hSmo (2 ug de protéines) ont été incubées pendant 3 heures à 37 °C dans un volume final de 0.4 ml de tampon HEPES (0.2 % BSA) avec 0.35 nM de composé 3H-(7d) seul ou en présence de concentrations croissantes de GDC-0449 (A), de composés (7d), MRT83, LDE225 et de cyclopamine (B). Les données sont les moyennes ± SEM de triplicats (expérience représentative, n = 2-3) et représentent la liaison totale du composé 3H-(7d) (A) 15 ou le pourcentage de la liaison spécifique du composé 3H-(7d) déterminée en présence de 1 uM de GDC-0449 (B), - la Figure 5 illustre l'inhibition de la liaison du composé 3H-(7d) au récepteur Smoothened humain exprimé dans les cellules HEK-hSmo par le SAG et la Purmorphamine. Les membranes de cellules HEK-hSmo (2 i_tg de protéines) ont été incubées 20 dans un volume final de 0.4 ml de tampon HEPES (0.2 % BSA) avec 0.35 nM de composé 3H-(7d) seul ou en présence de concentrations croissantes de SAG ou de Purmorphamine pendant 3 heures à 37 °C. Les données sont les moyennes ± SEM de triplicats (expérience représentative, n = 2-3) et représentent le % de la liaison spécifique du composé 3H-(7d) déterminée en présence de 1 p.M de GDC-0449. 25 EXEMPLE 1 : PROTOCOLES DE SYNTHÈSE ET CARACTERISATION DE DIFFÉRENTS COMPOSÉS SELON L'INVENTION Les réactions ont été conduites sous atmosphère de gaz inerte (azote) en utilisant des techniques de Schlenk (standard). Les solvants ont été séchés selon des méthodes 30 standards et distillés sous azote avant utilisation. Tous les réactifs ont été obtenus dans le commerce et utilisés tels quels sans purification préalable. Les spectrométries de masse (ESI+) ont été enregistrées sur un spectromètre LC/MSD vendu sous la référence Agilent® 1100. Les spectres de résonance magnétique nucléaire (RMN) ont été enregistrés sur un appareil Bruker AC200 à 200 MHz (1H) ou sur un appareil Bruker® Bruker AC400 à 400 MHz (1H). AI Préparation d'un composé de formule IV Préparation de la 3,4,5-triméthoxy-N-(N-(4-méthy1-3- nitrophényl)carbamimidoyl)benzamide (3j 0 Mi H H NÂN NO, HCI 3 Une solution de cyanamide (2) (1.12 g, 4.77 mmol) et de 4-methyl-3-nitro aniline (AI) sous forme de chlorhydrate [1.08 g, 5.72 mmol, preparé par l'addition de 1 éq. de HC1 (2M dans Et20) à l'aniline dans le Me0H (10 mL), suivi d'une concentration sous vide pour obtenir une poudre] dans du toluène (50 mL) est chauffé à reflux pendant 6 heures sous agitation. Il se forme un solide. De l'Et20 (50 mL) est ajouté pour favoriser la precipitation. Le solide est filtré et séché sous vide ; puis le solide est dissout dans une solution aqueuse saturée de NaHCO3 dans H20 (30 mL). La solution aqueuse est extraite avec de l'Et20 (2 x 50 mL). La phase organique est lavée avec de la saumure, séchée sur du Na2SO4 et concentrée pour obtenir la nitro-guanidine (3) (1.22 g, 66%). H-NMR (CDC13, 300 MHz) d = 7.80 (brs, 1 H), 7.34-7.27 (m, 5 H), 3.90 (s, 9 H). PM = 388 for Ci8H2oN406 [ES/MS] m/z 389 [M if B/ Préparation d'un composé de formule V Préparation du tert-butyl (4-méthy1-3-nitrophenylamino) (3,4,5- triméthoxybenzamido) méthylène carbamate (4) O NBoc H H NO, MeO MeO OMe MeO MeO OMe 4 A une solution de guanidine sous forme de base (3) (3.16 g, 8.13 mmol) dans le THF (90 mL) est ajouté goutte à goutte une solution de Boc2O (1.77g, 8.13 mmol) dans le THF (10 mL) à température ambiante et du DMAP (97 mg, 1 mmol) comme catalyseur. Après 1 heure d'agitation le composé de départ a été consommé. Le solvant est évacué sous vide, et le résidue purifié par chromatographie sur colonne en éluant avec un mélange AcOEt/Hept : 3/7. La Boc-guanidine est obtenue sous forme d'huile (4) (2.3 g, 58%). 11-1-NMR (CDC13, 300 MHz) d = 7.27 (s, 1 H), 7.09-7.04 (m, 3 H), 6.59 (m, 2 H), 3.82 (s, 3 H), 3.70 (s, 6 H), 2.17 (s, 4 H), 1.39 (s, 9 H). PM = 488 for C23H28N408 [ES/MS] miz 489 [M + if CI Préparation d'un composé de formule VI Préparation du tert-butyl (3-amino-4-méthylphénylamino) (3,4,5- triméthoxybenzamido) méthylène carbamate (5) Me0 MeO NBoc H H NH2 OMe 5 Dans un flacon, un mélange de Boc nitro-guanidine (4) (1.22 g, 2.5 mmol) dans du Me0H (80 mL) et du Pd/C 10% (100 mg) est agité sous H2 à 50 psi pendant 10 heures. Le substrat de départ a disparu, le catalyseur est filtré et le solvant est évacué sous vide. Le résidu est purifié par chromatographie sur colonne en éluant avec un mélange 20 d'Hept/AcOEt : 7/3 pour obtenir le compose titre comme huile jaune (5) (840 mg, 73%). 1H-NMR (CDC13, 300 MHz) d - 7.27 (s, 1 H), 7.09-7.04 (m, 3 H), 6.59 (m, 2 H), 3.82 (s, 3 H), 3.70 (s, 6 H), 2.17 (s, 3 H), 1.39 (s, 9 H). PM - 458 for C23H30N406 [ES/MS] mlz 459 [M + 1]+ 25 D/ Préparation de différents composé de formules (6) et (7) D- 1) Préparation du tert-buty1(3-(4-benzoylbenzamido)-4- méthylphénylamino) (3,4,5-triméthoxybenzarnido) méthylènecarbamate (6a) MeO MeO A une solution de Boc guanidine (5) (137 mg, 0.3 mmol) et de triéthylamine (0.1 mL, 0.66 mmol) dans du CH2C12 (10 mL) est ajouté goutte à goutte une solution de chlorure d'acide (la) (73 mg, 0.3 mmol) dans du CH2C12 (3 mL) à 0°C. Le milieu réactionnel est agité durant une nuit. De l'eau (15 mL) et du CH2Cl2 (10 mL) sont ajoutés. La phase organique est lavé avec de la saumure, séchée et concentrée sous vide. Le résidu est purifié par chromatographie sur colonne sur gel de silice en éluant avec un mélange d'Hept/AcOEt : 3/2. Le compose titre est obtenu sous la forme d'un solide blanc (6a) (142 mg, 70%, pF 96°C). 'H-NMR (CDC13, 300 MHz) d = 10.47 (brs, 1 H), 9.33 (brs, 1 H), 8.01-7.82 (m, 8 H), 7.55-7.53 (m, 3 H), 7.29-7.10 (m, 3 H), 3.82 (s, 3 H), 3.71 (s, 6 H), 2.41 (s, 3 H), 1.44 (s, 9 H). D- 2) Préparation de l'hydrochlorure de N-(N-(3-(4- benzovlbenzamido)-4-méthylphényl)carbamimidoy1)-3,4,5-triméthoxybenzamide (7a) Me O NH 0 M ' Me° HCI OMe 7a Une solution de Boc-guanidine (6a) (85 mg, 0.127 mmol) dans un mélange d'AcOH (1 mL) et de HC1 concentré (0.5 mL) est mélangé durant une nuit. Le mélange de reaction est concentré sous vide, repris dans de l'Et20, et à nouveau concentré pour donner un solide blanc (7a) (72 m, 94%, pF 138°C). 'H-NMR (MeOH, d4, 400 MHz) d 8.16 (d, J = 8 Hz, 2 H), 7.93 (d, J = 8 Hz, 2 H), 7.85-7.34 (m, 9 H), 3.97 (m, 6 H), 3.89 (s, 3 H), 2.43 (s, 3 H). PM = 566 for C32H30N406 [ES/MS] mlz 567 [M + 1]± D- 3) Préparation du tert-butyl (3-(9H-fluorène-2-earboxamido)-4- méthylphénylarnino) (3,4,5-triméthoxybenzamido) methylènecarbamate (6b) Me NBoc O N N H H H MeO MeO OMe 6b A une solution de Boc-guanidine (5) (137 mg, 0.3 mmol) et de triéthylamine (0.05 mL, 0.36 mmol) dans du CH2C12 (10 mL) du chlorure d'acide (lb) (82 mg, 0.3 mmol) en solution dans du CH2C12 (3 mL) est ajouté goutte à goutte. Le mélange est agité durant une nuit, puis de l'eau (5 mL) et du CH2C12 (10 mL) sont rajoutés. La phase organique est traitée par de la saumure, séchée et concentrée sous vide. Le résidu huileux est purifié par chromatographie sur colonne en éluant avec un mélange d'Hept/Et20 : 3/2 pour obtenir le composé titre (6b) (109 mg, 56%). 'H-NMR (CDC13, 300 MHz) d = 10.47 (bs, 1 H), 9.37 (m, 1H), 8.07-7.02 (ni, 13 H), 3.99 (s, 2 H), 3.81 (s, 3 H), 3.71 (s, 6 H), 2.41 (s, 3 H), 1.43 (s, 9 H) D- 4) Préparation de l'hydrochlorure de N-(2-méthy1-5-(3-(3,4,5- triméthoxybenzoyl)guanidino)phény1)-9H-fluorène-2-earboxamide (7b) OMe Me0 Me0 HCI 7b Mec NH H H 1-1 Le composé Boc (6b) (100 mg, 0.154 mmol) est mis en solution dans un mélange d'AcOH (1.1 mL) et de HC1 concentré (0.55 mL). Le mélange est agité pendant 4 heures à température ambiante. Le solvant est évaporé sous vide et le résidu solide est repris par de l'Et20, puis filtré pour récupérer un solide blanc (7b) (72 mg, 80%, pF 241°C) 1H-NMR (DMSO, d6, 400MHz) d = 12.24 (brs, 1 H), 11.53 (brs, 1 H), 10.2 (s, 1 H), 9.42 (brs, 1 H), 8.95 (brs, 1 H), 8.23-7.40 (m, 12 H), 4.05 (s, 2 H), 3.91 (s, 6 H), 3.78 (s, 3 H), 2.35 (s, 3 H). PM - 550 for C32H30N405 [ES/MS] m/z 551 [M + 1]F D- 5) Préparation du tert-butyl (4-méthy1-3-(4-(3- phénylpropyl)benzamido)phénylamino) (3,4,5-triméthoxybenzamido) méthyrènecarbarnate (6c) Me0 Me0 OMe 6c A une solution de Boc-guanidine (5) (137 mg, 0.3 mmol) et de triethylamine (0.1 mL, 0.66 mmol) dans du CH2C12 (10 ml) est ajoutée une solution du chlorure d'acide (1c) (73 mg, 0.3 mmol) dans du CH2C12 (3 mL) à température ambiante. Abandonner la réaction la nuit. Ajouter de l'eau (8 mL) et du CH2C12 (10 mL). Laver la phase organique avec une solution de NaC1 saturée. Puis la phase organique est séchée et concentrée sous vide. Le résidu est purifié sur colonne sur gel de silice en éluant avec un mélange d'AcOEt/Hept : 2/3. Le composé titre est obtenu sous forme d'un solide blanc (6c) (132 mg, 65%). 11-1-NMR (CDC13, 300MHz) d = 10.47 (brs, 1 H), 9.37 (brs, 1 H), 8.02-7.01 (m, 18 H), 3.81 (s, 3 1-1), 3.69 (s, 6 H) 2.72-2.64 (m, 4 H), 2.05-1.92 (m, 2 H), 1.42 (s, 9 H) Me 0 N H H H HCI 7e D- 6) Préparation de l'hydrochlorure de 3,4,5-triméthoxy-N-(N-(4- méthy1-3-(4-(3-phénylpropyl)benzamido)phényl)carbamimidoyl) benzamide (7c) Une solution du composé Bac (6e) (116 mg, 0.17 mmol) dans un mélange d'AcOH (1.5 mL) et de HCL concentré (0.75 mL) est agitée à température ambiante pendant 4 heures. Le solvant est ensuite évaporé et le résidu repris dans de l'Et20. Le composé titre est récupéré comme un solide blanc (80 mg, 82%, pF 132°C). PM = 580 pour C34H36N405 [ES/MS] m/z 581 [M + lf D- 7) Préparation de tert-butyl (4-méthy1-3-(4- phénethylbenzamido)phénylamino) (3,4,5-triméthoxybenzamido) méthylène carbamate (6d) A une solution de Boc-guanidine utilisé comme base (5) (137 mg, 0.3 25 mmol) et de triéthylamine (0.06 mL, 0.45 mmol) dans du CH2C12 (10 mL) est ajouté une solution de chlorure d'acide (1d) (80 mg, 0.33 mmol) à température ambiante. La solution est Me0 Me0 OMe Me NBoc 0 N N H H H 6d agitée durant une nuit, et de CH2C12 est ajouté (10 mL), ainsi que de l'H20 (10 mL). La phase organique est lavée avec de la saumure, séchée et concentrée sous vide. Le résidu est purifié par chromatographie sur colonne sur gel de silice en éluant avec de l'AcOEt/Hept : 2/3 pour obtenir le compose titre (6d) sous forme de solide (150 mg, 75%, pF 161°C). 11-1-NMR (CDC13, 300 MHz) d =10.47 (brs, 1 H), 9.37 (brs, 1 H), 8.02 -7.68 (m, 4 H), 7.29-7.01 (m, 11 H), 3.81 (s, 3 H), 3.68 (s, 6 H), 3.01-2.96 (ni, 4 H), 2.37 (s, 3 11)1.42 (s, 9 H). PM = 666 pour C381-142N407 [ES/MS] mlz 667 [M + 1]+ D- 8) Préparation de l'hydrochlorure de 3,4,5-triméthoxy-N-(N-(4- méthy1-3-(4-phénéthylbenzamido)phényl)carbamimidoyl)benzamide (7d) OMe Me NH 0 NIN H H H HG! 7d Une solution de l'adduit Boc (6d) (120 mg, 0.18 mmol) dans un mélange d'AcOH (1.3 mL) et de HC1 concentré (0.66 mL) est agitée à température ambiante pendant 4 heures. Le solvant est évaporé sous vide, et le résidu repris avec de l'Et20 (10 mL) et filtré pour obtenir une poudre blanche (7d) (101 mg, 93%, rnp 186°C). IH-NMR (MeOH, d4, 300 MHz) d = 7.90 (d, 2 H J = 8 Hz), 7.52-7.16 (m, 12 H), 3.95 (s, 6 H), 3.87 (s, 3 H), 3.03-2.99 (m, 4 H), 2.38 (s, 3 H). PM = 566 for C33H34N405 [ES/MS] m/z 567 [M + l]+ D- 9) Préparation du tert-butyl (3-(4-cinnamylbenzamido)-4- méthylphénylamino) (3,4,5-triméthoxybenzamido) méthylènecarbamate (6e) MeO MeO NBoc Me H H H I 6e OMe A une solution de Boc-guanidine (5) (137 mg, 0.3 mmol) et de triéthylamine (0A mL, 0.66 mmol) dans du CH2C12 (10 ml) est ajoutée une solution du chlorure d'acide (le) (73 mg, 0.3 mmol) dans du CH2C12 (3 mL) à température ambiante. Abandonner la réaction la nuit. Ajouter de l'eau. (8 mL) et du CH2C12 (10 mL). Laver la phase organique avec une solution de NaC1 saturée. Puis la phase organique est séchée et concentrée sous vide. Le résidu est purifié sur colonne sur gel de silice en éluant avec un mélange d'AcOEt/Hept : 1/4. Le composé titre est obtenu sous forme d'un solide blanc (6e) (142 mg, 70%). 11-1-NMR (CDC13, 300MHz) d = 10.47 (brs, 1 H), 9.36 (brs, 1 H), 8.02-7.01 (m, 17 H), 6.51-6.32 (m, 2 H), 3.81 (s, 3 H), 3.69 (s, 6 H), 3.62 (m, 2 H), 2.36 (s, 3 H), 1.42 (s, 9 H) D- 10) Préparation de l'hydrochlorure de (E)-N-(N-(3-(4- cinriamylbenzamido)-4-méthylphényl)carbamimidoy1)-3,4, 5-triméthoxybenzamide (7e) MeO Me0 NH Me H - H H I HCI OMe 7e Une solution du composé Boc (6e) (122 mg, 0.15 mmol) dans un mélange d'AcOH (1.5 mL) et de HCL concentré (0.75 mL) est agitée à température ambiante pendant 4 heures. Le solvant est ensuite évaporé et le résidu repris dans de l'Et20. Le composé titre est récupéré sous forme de solide blanc (7e) (101 mg, 91%, pF 127°C). 1H-NMR (MeOD, d4, 400MHz) d = 7.98-7.94 (m, 2 H), 7.52-7.28 (m, 12 H), 6.49-6.43 (m, 2 H), 3.95 (S, 6 H), 3.65 (s, 3 H), 3.66-3.64 (m, 2 H), 2.38 (s, 3 H). PM = 578 for C34H34N405 [ES/MS] m/z 579 [M 4- 1 r D- 11) Préparation du tert-butyl (4-méthy1-3-(4- styrylbenzamido)phénylamino) (3,4,5-triméthoxybenzamido)méthylènecarbamate (6f) OMe Me NBoc O NN H H H 6f Me0 Me0 A une solution de Boc guanidine (5) (137 mg, 0.3 mmol) et de triéthylamine (0.1 mL, 0.66 mmol) dans du CH2C12 (10 mL) est ajoutée une solution du chlorure d'acide (1f) dans du CH2C12 (3 mL), puis le milieu réactionnel est laissé à réagir pendant une nuit. De l'eau (10 mL) et du CH2C12 (15 mL) sont ensuite ajoutés. La phase organique est décantée et lavée avec une solution de NaC1 (saturée dans 1120), séchée, évaporée et purifiée par chromatographie sur colonne de gel de silice en éluant avec un mélange d'AcOEt/Flept : 3/7, pour obtenir le composé titre sous forme d'un solide blanc (6f) (130 mg, 65%, Mp 166°C). III-NMR (CDC13, 300MHz) d = 10.47 (brs, 1 H), 9.35 (brs, 1 H), 8.02-7.09 (m, 17 H), 3.81 (s, 3 H), 3.71 (s, 6 H), 2.39 (s, 3 H), 1.43 (s, 9 H). D- 12) Préparation de l'hydrochlorure de N-(N-(3-(4- benzylbenzamido)-4-méthylphényl)carbaminaidoy1)-3'4,5-triméthoxybenzamide (7f) Une solution de composé Boc (6f) (120 mg, 0.18 mmol) dans un mélange 10 d'AcOH (3 mL) et de HC1 concentré (1.5 mL) est agitée à température ambiante pendant 2 heures. Le solvant est ensuite évaporé et le résidu repris avec de l'Et20 pour obtenir un solide blanc (70 mg, 70%, pF 221°C). 'H-NMR (MeOD, d4, 300MHz) d = 8.02-7.29 (m, 16 H), 3.94 (s, 6 H), 3.87 (s, 3 H), 2.40 (s, 3 H). 15 PM = 564 for C35H32N405 [ES/MS] m/z 565 [M 1]+ D- 13) Préparation du tert-butyl (3-(4-benzylbenzamido)-4- méthylphénylamino) (3,4,5-trimethoxybenzamido) méthylènecarbamate (6g) MeO MeO OMe MeO MeO 20 A une solution de Boc-guanidine (5) (137 mg, 0.3 mmol) et de triéthylamine (0.1 mL, 0.66 mmol) dans du CH2C12 (10 ml) est ajoutée une solution du chlorure d'acide (I g) (73 mg, 0.3 mmol) dans du CH2C12 (3 mL) à température ambiante. Le mélange est laissé à réagir durant une nuit. De l'eau (8 mL) et du CH2C12 (10 mL) sont ensuite ajoutés. La phase organique est lavée avec une solution de NaCl saturée, puis séchée et concentrée sous vide. Le 25 résidu est purifié sur colonne sur gel de silice en éluant avec un mélange d'Ae0Et/Hept : 1/8. Le composé titre est obtenu sous forme d'un solide blanc (6g) (144 mg, 71%, pF 105°C). 'H-NMR (CDC13, 300MHz) d = 10.47 (brs, 1 H), 9.35 (brs, 1 1-1), 8.01-7.07 (m, 16 H), 4.06 (s, 2 H), 3.80 (s, 3 H), 3.68 (s, 6 H), 2.31 (s, 3 H). D- 14) Préparation de l'hydrochlorure de N-(N-(3-(4- benzylbenzamido)-4-méthylphényl)carbamimidoy1)-3,4,5-triméthoxybenzamide (7g) OMe HCI MeO MeO 7g NH Me N.1.N N H H H Une solution du composé Boc (7e) (103 mg, 0.15 mmol) dans un mélange d'AcOH (1.5 mL) et de HCL concentré (0.75 mL) est agitée à température ambiante pendant 4 heures. Le solvant est ensuite évaporé et le résidu repris dans de l'Et20. Le composé titre est 10 récupéré sous forme de solide blanc (7g) (85 mg, 90%, pF 112°C). 1H-NMR (MeOD, d4, 400MHz) d = 7.95 (d, J = 8 Hz, 1 H), 7.53-7.23 (m, 12 H), 4.09 (s, 2 H), 3.36 (s, 6 H), 3.86 (s, 3 H), 2.39 (s, 3 H). PM = 552 for C32H32N405 [ES/MS] m/z 553 [M + 1]+ 15 D- 15) Préparation du tert-butyl (3-(4-(benzyloxy)benzamido)-4- méthylphénylamino) (3,4,5-triméthoxybenzamido)méthylènecarbamate (6h) OMe MeO MeO NBoc Me O N.11.N N H H H 6h A une solution de Boc-guanidine (5) (137 mg, 0.3 mmol) et de triéthylarnine (0.1 mL, 0.66 mmol) dans du CH2C12 (10 ml) est ajoutée une solution du chlorure d'acide 20 (1h) (73 mg, 0.3 mmol) dans du CH2C12 (3 mL) à température ambiante. Le mélange est laissé à réagir durant une nuit. De l'eau (8 mL) et du CH2C12 (10 mL) sont ensuite ajoutés. La phase organique est lavée avec une solution de NaCI saturée, puis séchée et concentrée sous vide. Le résidu est purifié sur colonne sur gel de silice en éluant avec un mélange d'AcOEt/Hept : 1/4. Le composé titre est obtenu sous forme d'un solide blanc (6h) (103 mg, 68%, pF 94°C). 25 D- 16) Préparation de l'hydrochlorure de N-(N-(344- lbenzyloxy)benzamido)-4-méthylphényl)carbamimidoy1)-3, 4'5-triméthoxybenzamide (7h) OMe Me NH H - H H HCI 7h MeO Me() Une solution du composé Boc (6h) (116 mg, 0.18 mmol) dans un mélange d'AcOH (1.5 mL) et de HCL concentré (0.75 mL) est agitée à température ambiante pendant 4 heures. Le solvant est ensuite évaporé et le résidu repris dans de l'Et20. Le composé titre est récupéré sous forme de solide blanc (7h) (80 mg, 82%, pF 192°C). 1H-NMR (MeOH, d6, 300MHz) d = 8.02-7.99 (m,2 H), 7.54-7.16 (m, 11 H), 5.23 (s, 2 H), 3.97 (s, 6 H), 3.88 (s, 3 H), 2.39 (s, 3 H) 10 PM = 568 for C32H32N406 [ES/MS] mlz 569 [M 1]+ E/ Radio-marquage de composés de formule (I) E- 1) Hydrogénation du composé (7f) en composé (7d) Une solution du composé (7f) sous forme de sel de chlorhydrate (5 mg, 0.08 mmol) dans du Me0H et du Pd/C (10%) est agitée sous hydrogène (ballon) pendant 4 heures. 20 Le mélange est ensuite filtré et concentré sous vide pour obtenir le composé (7d) sous forme de sel de chlorhydrate. PM = 566 for C33H34N405 [ES/MS] mlz 567 [M 1]+ et 565 [M-1]÷ 15 MeO Mea Me O H H H HCI 7f Pd/0 10% ballon Me0H MeO MeO OMe Me 0 N N H H v H HCI 7d OMe 25 E- 2) Tritiation du composé (7f) en 3H-(7d) NH Dans un ballon de 5 mL le composé (7f) (2.5 mg, 0.04 mmol) est dissout dans du Me0H (1 mL) et la solution est refroidi (azote liquide). Le catalyseur (Pd/C 10%) est dispersé à la surface. Une fois le vide fait dans le ballon, du tritium gaz est introduit jusqu'à atteindre une pression de 30 psi. Le mélange réactionnel est agité pendant 3 heures. Le catalyseur est filtré et l'excès de tritium est évacué sous vide avec du Me0H. Le produit (7d) est obtenu directement sans purification. Caractéristique du composé [31-1]-(7d) : - Pureté : > 98% (HPLC) Activité Spécifique : 38.1 Ci/mmol (1.41 TBq/mmol) - Concentration : 1.0 mCi/m1 (37 MBq/ml) Données chromatographiques : Colonne HPLC : Macherey + Nagel Nucleodur Gravit)' C8, (5 flm), 4.6 x 150 mm Phase mobile : A : eau 0.05% TFA ; B : MeCN 0.05% TFA - Gradient : 0 min 30 % B; 10 min 95% B; 14 min 95% B; 14 min 95% B; 14.5 min 30 % - Débit : 1.0 ml/min 20 Echantillon : 1,30 mCi/ml en Methanol (48 .1 MBq/m1) - Injection : 5.0 gl (6.5 uCi , 240 KBq) - Détection UV : 254 nm - Température : 30°C Radio-détecteur : Berthold LB 513 25 - Cocktail: Zinsser Quicksz int Flow 302 - Débit : 2.0 mL/min - Temps de rétention : 7.17 min (UV) ; 7.30 min (radio-détecteur) (le décalage entre les deux temps de rétention est du à l'installation en série des 2 détecteurs). Me0 MeO Me N.N N H H H HCI 7f Pd/C 10% balloon Me0H MeO MeO OMe Me NH 0 N N H H HCI 7d OMe 30 EXEMPLE 2 : MISE EN ÉVIDENCE DE L'EFFET MODULATEUR DES COMPOSÉS DE FORMULE (I) SUR LA VOIE DE SIGNALISATION DES PROTÉINES HEDGEHOG ET DE LEUR FIXATION SUR LE RECEPTEUR SMOOTHENED. L'effet des composés de formule (I) conformes à l'invention sur l'inhibition de la voie de signalisation des protéines Hedgehog a été déterminé in vitro par analyse de la différenciation de la lignée de cellules fibroblastiques pluripotentes C3H10T1/2 après activation de cette voie dans ces cellules par un activateur synthétique : le SAG. L'activité du composé X a également été évaluée sur la croissance d'une culture primaire de cellules granulaires du cervelet. La capacité de ce dernier composé à se lier au récepteur Smoothened de souris à également été déterminée par compétition avec la body-cyclopamine, un composé fluorescent dérivé de la cyclopamine et se fixant sur les domaines transmenbranaires du récepteur, comme décrit par Chen et al., Genes Dev., 2002, 16, 2743. 1- Matériels et méthodes Inhibition de la voie Hedgehog par les composés de formule (I) sur les cellules C3H10T1/2 : Les composés de formule (I) à tester ont été dissous dans le diméthylsulfoxyde jusqu'à une concentration de 10 mM, puis stockés à une température de 20°C jusqu'à utilisation. La lignée de cellules fibroblastiques pluripotentes C3H10T1/2 (ATCC) a été cultivée dans les conditions recommandées par l'ATCC. L'activation de ces cellules a été réalisée en utilisant 0.1 uM de SAG selon les méthodes décrites par Chen et al., Proc. Nati. Acad. Sci. USA, 2002, 99, 14071 et Frank-Kamenetsky et al., J. Biol., 2002, 1, 10. L'activation par le SAG provoque la différenciation de la lignée cellulaire et leur pei let d'exprimer la phosphatase alcaline (PA). On a ainsi pu mesurer l'activité de la voie de signalisation des protéines Hedgehog via la mesure de l'activité phosphatase alcaline 30 (PA). Les cellules C3H10T1/2 ont été ensemencées sur des plaques de 96 puits à une densité de 5.103 cellules par puits, 24 heures avant l'addition des composés à tester à une concentration variant de 1 nM à 30 ;.1.M et en présence de 0.1 p.M de SAG, en utilisant comme milieu de culture du DMEM (Dulbecco's Modified Eagles's Medium) avec 10% de sérum de 35 veau foetal. Les essais ont été réalisés en quadruplate. Les plaques ont ensuite été incubées pendant 5 à 6 jours à une température de 37°C sous atmosphère à 5% de CO2. Les cellules ont ensuite été lavées dans du tampon phosphate froid (« Phosphate Buffer Serum » : PBS), puis lysées par sonication à 4°C dans 50 j.ti, d'une solution contenant 0.9% de NaCl et 0.2% de Triton X-100. A titre comparatif, l'activité d'autres inhibiteurs connus de la voie de signalisation des protéines Hedgehog ont été testés dans les mêmes conditions que celles utilisées pour tester les différents composés de formule (1) conformes à l'invention : - la cyclopamine, telle que décrite par Ineardona et al., Development, 1998, 125, 3553, et répondant à la formule suivante : CH3 HO le MRT-83 décrit ci-dessus, et le LDE225, tel que décrit par Pan et Dorsch ; ACS Med. Chem. Lett., 2010, 1 : 130-134, et répondant à la formule suivante : OCF3 HNfN L'Y° Me La mesure de l'activité phosphatase alcaline (PA) dans les lysats ainsi obtenus a ensuite été réalisée selon la méthode décrite par Pepinsky et al. (J. Biol. Chem., 1998, 273, 14037). Après addition de 100 !IL de tampon réactionnel (200 mM Tris-HCI ; pH 10,5 ; 0,4 M de 2-amino-2-méthylpropanol et 8 mM de MgC12) et de 50 FIL de substrat (4 mM de p-nitrophényl phosphate disodium), les lysats ont été incubés à 37°C pendant 30-60 min, puis la densité optique a été lue à une longueur d'onde de 415 nm. Me 0 Activité des composés de formule (I) sur la prolifération des précurseurs des cellules granulaires de cervelet : Les précurseurs des cellules granulaires (PCG) sont isolés à partir de cervelets de rats (IFFA- CREDO, France), 8 jours après la naissance (P8). Les cervelets sont 5 prélevés, coupés en petits morceaux, placés dans le tampon de Krebs-Ringer (120 mM NaC1, 5 mM KC1, 1 mM KH2PO4, 25 mM NaHCO3, 15 mM de glucose, 0.04 mM rouge de phénol) et incubés pendant 15 minutes à température ambiante dans un tampon de dissociation composé de Krebs-Ringer additionné de 250 mg/ml de trypsine (Sigma, France). La dissociation enzymatique est arrêtée par addition d'un volume égal de tampon Krebs-Ringer 10 contenant 250 mg/ml d'un inhibiteur de trypsine et de 80 mg/ml de DNase (Sigma, France). Le tissu est centrifugé à 100 g pendant 10 secondes et le culot obtenu est remis en suspension et trituré à l'aide de pipettes pasteur de diamètre décroissant pour obtenir une suspension de cellules isolées. Cette suspension est centrifugée à 200 g pendant 5 minutes et le culot obtenu est remis en suspension dans du milieu Neurobasal supplémenté par 1 mM de pyruvate, 2 mM 15 L-glutamine, pénicilline/streptomycine et 1% de supplément N2, 60 mg/ml N-acétyl cystéine et 100 mg/ml d'albumine de sérum bovin (BSA, Sigma, France). Les PCG de cervelet obtenus sont transférés en plaques 96 puits préalablement traitées à la poly-D-lysine à une densité de 2.105 cellules/puits. Le SAG en présence ou non des autres composés testés est ajouté immédiatement. 12 heures avant la fin 20 de la culture, la thymidine tritiée (3H-Thymidine) est ajoutée. Les cellules sont aspirées et récupérées sur un filtre en fibre de verre (GF/C) en utilisant un collecteur de cellules automatisé (Braudel, USA). La quantité de radioactivité incorporée par les cellules a été quantifiée en présence de scintillant dans un compteur à scintillation liquide (Wallac, USA). 25 Compétition des composés de formule (I) avec la bodipy-cyclopamine (BC) : Des cellules de la lignée de HEK293 transfectées de façon stable avec le récepteur Smo humain sont utilisées. L'expérience a été menée selon le protocole décrit dans Roudaut et al., Mol. Pharmacol. 79 : 453-460, 2011. L'inhibition de la liaison de la bodipy- 30 cyclopamine (BC) par les composés de formule (I) est mesurée par la décroissance de fluorescence photographiée et quantifiée à l'aide du logiciel Simple PCI 6.2 (Hamamatsu Corporation), puis rapportée à la surface des noyaux présents sur la photographie. Test de radio-liaison du composé tritié 3H-(7d) : Le test de liaison se fait sur des membranes enrichies en récepteur Smoothened. Nous avons utilisé des cellules de la lignée de HEK-hSmo pour préparer ces membranes. Les cellules sont lavées et récupérées dans du PBS glacé. Après une centrifugation à 100 g pendant 7 minutes à 4°C, le culot est repris dans 10 fois son volume d'un tampon A glacé (50 mM HEPES, pH 7.4, 1 mM EDTA) additionné de 10 Ill d'un cocktail d'inhibiteurs de protéases (PIC, Sigma) par ml de tampon, puis il est homogénéisé avec un broyeur Polytron. Après une centrifugation à 500 g pendant 30 minutes à 4°C qui permet d'éliminer les noyaux des cellules, le surnageant est à nouveau centrifugé à 48 000 g pendant 45 min à 4°C. Le culot est repris dans 2 ml de tampon A additionné de PIC puis la suspension est homogénéisée avec un broyeur conique en verre et passée à travers une aiguille de 23 G. Enfin, elle est aliquotée en tubes eppendorf et stockée à -80°C. La concentration de protéine totale de la préparation est déterminée par la méthode de Lowry utilisant la BSA pour réaliser la gamme étalon. Cette concentration est de 10.9 mg/ml. Les membranes sont à nouveau suspendues dans un tampon (50 mM HEPES et 3 mM MgC12) contenant 0.2 % de BSA. Les expériences de liaison du 3H-(7d) sont réalisées dans des tubes en polypropylène. Les membranes (2 .ig de protéines) sont incubées avec le 3H-(7d) en présence ou non des composés froids à tester pendant 3 heures à 37°C dans un volume final de 400 p.l. L'incubation est stoppée en plongeant les tubes dans de l'eau glacée suivie d'une filtration rapide (Braudel) à travers une membrane de filtration fibres de verre (GF/C) traitée au préalable avec 0.3% de polyéthylenimine qui permet de diminuer la liaison non spécifique du 3H-(7d) à la membrane de filtration. La radioactivité retenue sur le filtre est mesurée en présence de 3 ml de scintillant dans un compteur à scintillation liquide. La liaison spécifique est définie comme la liaison pouvant être inhibée par 1 1..tM de GDC- 0449 tel que décrit par Romer et al., Cancer Cell, 2004, 6, 229 et répondant à la formule suivante : 030 2- Résultats sur l'activité biologiques des composés de formule (1) Inhibition de la voie Hedgehog par les composés de formule (I) sur les cellules C3H10T1/2 : Des résultats obtenus avec des composés de formule (I) et les composés de référence cyclopamine, LDE225 et MRT-83 sont reportés dans le Tableau 1 ci-après. Pour chacun des composés la concentration qui permet d'inhiber 50% de l'activité phosphatase alcaline (PA) (CI50) après induction par le SAG à 0.1 uM a été évaluée. Les courbes d'inhibition obtenues avec le composé (7d) et les composés de référence sont montrées à la Figure 1A. Tableau 1 : Activité des composés sur la différenciation des cellules C3H10T1/2. Composés CI50 (nM) Cyclopamine* 620 ± 30 GDC-0449* 10 ± 1 LDE225* 22 ± 3 MRT-83* 11 ± 3 7a 32 ± 11 7b 28 ± 3 7c 39 ± 9 7d 6±1 7e 57 ± 2 7f 15 ± 4 7g 220 ± 25 7h 72 ± 15 * : Composés de référence ne faisant pas partie de l'invention L'activité du composé (7d) a également été comparée au composé MRT-10 et à différents composés thiourés (composés 20 à 27 ci-dessous). Les résultats sont résumés dans le Tableau 2. 0 s H H H 1i j RT 20: P..5 _ Ft7 OMe, Re' H; 24: 2-0Me, = R.7 =H, R- = OMe. 21: Fe =19.7 = OMe, = OEt.; 25: R5 = R6= Ft7 = 0E1: 22: R5 = F16= OEA_ R7= °Me; 26: Rn-R'' -OCH2C1120-, R7 = H: 23- F:1 OMe, R5. Ru , - 27: R = = OM.e. R7 = H Tableau 2 : Activité comparées des composés (7d), MRT-10 et de composés thiourés sur la différenciation des cellules C3H10T1/2. C3H10T1/2, (SAG 0.111M) Composé C150, p.M 7d 0.006 1 0.001 MRT-10 0.9 ± 0.2 20 1.9 = 0.2 21 0.6 ± 0.1 22 0.8 ± 0.2 23 1.1 ± 0.6 24 4.1 ± 0.3 25 0.8 + 0.1 26 inactif 27 > 5 Moyenne ± SEM : n > 3 Détermination de l'affinité des molécules sélectionnées sur la prolifération des précurseurs des cellules granulaires de cervelet de rat induite par le SAG : Les PCGs du cervelet prolifèrent en réponse à l'activation de la voie de signalisation Shh, une réponse qui peut être inhibée par les antagonistes de Smo (Rohatgi et al., 2009, Proc. Natl. Acad. Sei. USA 106 : 3196-201). Nous avons donc analysé la capacité du composé (7d) à inhiber la prolifération des PCGs de cervelet de rat en culture primaire par une mesure d'incorporation de thymidine tritiée, un marqueur de l'ADN néosynthétisé au cours du processus de prolifération. Des concentrations croissantes de SAG provoquent une augmentation dose-dépendante de l'incorporation de la thymidine tritiée au dessus du niveau basal. Le composé (7d) présente des propriétés d'antagoniste complet avec une CI50 de 0.45 nM sur la prolifération des PCGs induite par le SAG (0.01pM) (Figure 1B). Le LDE225, le composé MRT-83 et la cyclopamine bloquent également cette prolifération mais avec une affinité plus faible, leur CI50 est de 3, 6 et 103 nM respectivement (Tableau 3). Détermination de l'affinité des molécules sélectionnées sur la liaison de la bodipy-cyclopamine (BC) au récepteur Smoothened : Pour étudier les propriétés de liaison du composé (7d) à Smo, nous avons analysé si cette molécule pouvait entrer en compétition avec la liaison de la bodipycyclopamine (BC) (b) qui interagit avec Smo au niveau de ces domaines transmembranaires. Les cellules sont incubées pendant 2 heures avec la BC (5 nM) en présence ou en absence de différentes concentrations de composé (7d), MRT-83, LDE225 et cyclopamine. A la fin de l'incubation, les cellules sont fixées et colorées avec du DAPI, une molécule fluorescente de haute affinité pour l'ADN qui permet de visualiser les noyaux en bleu en microscopie à fluorescence. Les quatre molécules testées bloquent la liaison de la BC aux cellules HEK- hSmo, qui exprime de manière stable le récepteur Smo humain, de façon dose-dépendante. On observe que l'affinité du composé (7d) et du MRT-83 restent très proche et élevée (Figure 1C). Toutes ces données démontrent que le composé (7d) est un antagoniste puissant des récepteurs Smo humain et de souris (Tableau 1). Tableau 3 : Activités comparées des composés (7d), MRT-83, LDE225, GDC-0449 et de la cyclopamine. CI50 ± SEM (nM) Cellules PCGs Liaison BC (4) C3H10T1/2 (2) de cervelet de rat (3) Composé (7d) 6 ± 1 0.4 ± 0.1 8 ± 1 MRT-83 11 ±3 6± 1 5 ± 3 LDE225 22 ± 3 3 ± 1 8 ± 2 GDC-0449 10 ± 3 8± 1 5 ± 2 Cyclopamine 620 ± 30 103 ± 18 53 ± 11 Les CI50 ont été déterminées par mesure de l'activité du rapporteur Gliluciférase induite par ShhN (4 nM) dans les cellules Shh-Light2 (1), de l'activité de la phosphatase alcaline (PA) associée à la différenciation des cellules C3H10T1/2 induite par le SAG (0.1 uM) (2), de l'activité proliférative des PCGs de cervelet de rat induite par le SAG (0.01 suivie par l'incorporation de la 3H-Thymidine (3), de la liaison de la bodipy- cyclopamine (BC) au récepteur Smo humain exprimé dans les cellules HEK-hSmo (4) (d'après les courbes de la Figure 1). L'ensemble des expériences réalisées met en lumière la capacité des composés de formule (I) à moduler la voie Shh in vitro. Leur activité pourrait s'expliquer par une liaison à la protéine Smoothened sur un site concurrent de la bodipy-cyclopamine (BC). 3- Résultats sur les caractéristiques de liaison du radio-ligand 3H-(7d) Cinétique d'association du radio-ligand 3H-(7d) au récepteur Smoothened humain : Le composé (7d) est un antagoniste très puissant de la voie de signalisation Hh, ce qui nous a encouragés à synthétiser la forme tritiée de cette molécule : le composé 3H-(7d). Nous avons commencé la caractérisation des propriétés de ce radio-ligand en étudiant la cinétique d'association de la liaison du composé 3H-(7d) à des homogénats de membranes de cellules HEK293 exprimant de manière stable le récepteur Smo humain (HEK-hSmo). L'association du composé 3H-(7d) a été examinée en présence d'une concentration fixe du ligand radioactif (0.35 nM) et d'une quantité fixe de récepteur (2 ug de protéines) à 25°C et 37°C pendant 5 heures. Dans cette expérience, il s'agit de déteiminer le temps nécessaire pour que la liaison spécifique du composé 31-1-(7d) atteigne l'état d'équilibre. A 25°C, après 5 heures d'incubation, l'équilibre n'est pas atteint. A 37°C, l'équilibre est atteint après 3 heures d'incubation et se maintient après 5 heures d'incubation (Figure 2). Au-delà. de 5 minutes d'incubation, la liaison non spécifique du composé 3H-(7d) (définie en présence de 0.1 JIM de GDC0449) est faible (0.4 % de la liaison totale) et reste stable tout au long de l'expérience. Les membranes de cellules HEK-hSmo (2 pig de protéines) ont été incubées dans un volume final de 0.4 ml de tampon HEPES (0.2 % BSA) avec 0.35 nM de 3H-(7d) pendant 5 h à 25°C (bleu) ou 37°C (rose). Les liaisons non spécifiques ont été évaluées en présence de 1 uM de GDC-0449, un antagoniste de référence de Smo. L'analyse par GraphPad Prism de la liaison spécifique donne un temps de demi-association de 33 min à 37°C et de 71 min à 25°C. Les données sont les moyennes + SEM de triplicats (expérience représentative, n=2). Expérience de saturation de la liaison du composé 3H-(7d) au récepteur Smoothened humain : Les propriétés du composé 3H-(7d) ont ensuite été caractérisées en étudiant la saturation de sa liaison au récepteur Smo exprimé dans les membranes des cellules de la lignée HEK-hSmo. Il s'agit de mesurer la liaison spécifique à l'équilibre, lors de l'incubation de concentrations croissantes du ligand radioactif, avec une quantité fixe de récepteur (2 lig de protéines). La saturation de la liaison spécifique du composé 3H-(7d) au récepteur Smo exprimé dans les membranes des cellules HEK-hSmo, définie en utilisant 1 faIVI de GDC0449, est illustrée à la Figure 3A. L'analyse de la courbe indique un seul site de liaison de haute affinité : Kd = 0.3 ± 0.1 nM et B',a), = 1086 ± 91 cpm visualisés par la représentation de Scatchard (Figure 3B). Afin de s'assurer que la liaison du composé 3H-(7d) était bien spécifique au récepteur Smo, nous avons également réalisé cette expérience de saturation avec des membranes de cellules HEK293 non transfectées par l'ADNc codant pour le récepteur Smo humain. Le GDC-0449 (1 .i1\4) n'a pas d'effet sur la liaison du composé 3H-(7d) à ces membranes. La liaison du composé 3H-(7d) aux membranes des cellules HEK-hSmo est donc bien spécifique du récepteur Smo. Analyse pharmacologique de la liaison du composé 3H-(7d) au récepteur Smoothened humain : La pharmacologie de la liaison du composé 3H-(7d) au récepteur Smo exprimé dans les membranes des cellules de la lignée HEK-hSmo a été analysée en présence d'antagonistes et d'agonistes de Smo. Dans cette expérience, le ligand froid entre en compétition avec le ligand radioactif pour sa liaison au récepteur, et l'affinité (Ki) de chaque ligand froid pour le récepteur peut être analysée à partir des CI50 déduites des courbes d'inhibition. Le composé (7d) froid est le plus puissant pour inhiber la liaison du composé 3H-(7d) à Smo (CI50 = 1.5 nM). Les composés LDE225, GDC-0449 et MRT-83 présentent des valeurs de CI50 respectives de 4 nM, 12 nM et 11 nM. La concentration de 1 p.M de GDC0449 inhibe complètement la liaison spécifique du composé 3H-(7d). La liaison non spécifique a été définie pour chaque expérience en présence de 1 I.J.M de GDC-0449. La cyclopamine et le composé Cur61414 sont également capables d'inhiber la liaison du composé 3H-(7d) mais avec une affinité très inférieure, notamment pour le Cur61414 avec une valeur de CI50 de l'ordre du micromolaire (Figure 4). Pour les agonistes, le SAG présente une affinité de l'ordre du nanomolaire (CI50 = 5 nM) alors que la Purmorphamine n'est pas active (CI50> 1000) (Figure 5). Les valeurs des Ki calculées pour les composés sont présentées dans le Tableau 3. Tableau 4 : Affinités de molécules de référence vis-à-vis de la liaison du composé 311-(7d) au récepteur Smoothened humain Liaison du composé 3H-(7d) CI50 ± SEM (nM) Ki t SEM (nM) Composé (7d) 1.5 ± 0.2 0.7 ± 0.1 MRT-83 10.5 ± 2.5 4.8 ± 1.2 LDE225 4.2 ± 0.8 1.9 ± 0.3 Cyclopamine 30 ± 4 14 ± 2 GDC-0449 12 ± 5 6 ± 2 SAG 5.2 ± 0.8 2.4 ± 0.3 Purmorphamine inactive inactive Les valeurs de CI50 et Ki ont été déterminées par mesure de la liaison du composé 3H-(7d) au récepteur Smo humain exprimé dans les cellules de la lignée HEK-hSmo. Les données sont les moyennes ± SEM de 2-3 expériences représentatives.10 REVENDICATIONS1. Composé caractérisé en ce qu'il répond à la formule (I) suivante : R4 R7 X 0 R3 (I) dans laquelle : - RI, R2 et R3, identiques ou différents et indépendamment les uns des autres, représentent un atome d'hydrogène ou d'halogène, un radical hydroxyle, un groupe alkyle, perfluoroalkyle, alcoxy, alkylthio ou nitrile, X représente O, S ou NH, - R4 et R7, identiques ou différents et indépendamment l'un de l'autre, représentent un atome d'hydrogène ou d'halogène ou un groupe alkyle, - R5 représente un des groupes choisis parmi : substitué par au moins un radical R6 représentant un atome d'halogène ou un groupe alkyle, alcoxy, aminoalkyle, thioalkyle ou hydroxyle. 2. Composé de formule (I) selon la revendication 1, caractérisé en ce que Ri, R2 et R3 représentent un radical alcoxy, et de préférence un radical méthoxy. 3. Composé de formule (I) selon la revendication 1 ou la revendication 2, 20 caractérisé en ce que X est NH. 4. Composé de formule (I) selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que R4 et R7 représentent un atome d'hydrogène ou de chlore, un groupe méthyle, éthyle ou isopropyle. 5. Composé de formule (I) selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisé 25 en ce que R6 représente un atome d'halogène ou un groupe alcoxy ou aminoalkyle. 6. Composé de formule (I) selon l'une des revendications I à 5, caractérisé en ce qu'il est choisi parmi : 1'hydrochlorure de N-(N-(3-(4-benzoylbenzamido)-4- méthylphényl)carbamimidoy1)-3,4,5-triméthoxybenzamide de formule suivante : o NH MeO MeO OMe HCI o 7a (Composé 7a) ; l'hydrochlonire de N -(N-(3 -(4-benzoylbenzamido)-4- méthylphényl)carbamimidoy1)-3,4,5-trimétboxybenzan-iide de formule suivante : Me NH 0 N N H H H OMe HCI 7b Me0 Me0 (Composé 7b) ; l'hydrochlorure de 3,4,5-triméthoxy-N-(N-(4-méthy1-3-(4-(3- phénylpropyl)benzamido)phényl)carbamimidoyl) benzamide de formule suivante : MeO Me0 NH Me 0 N IN H H H I HC1 OMe 7c (Composé 7c) ; - l'hydrochlorure de 3,4,5-triméthoxy-N-(N-(4-méthy1-3-(4- phénéthylbenzamido)phénypearbamimidoyDbenzamide de formule suivante : (Composé 7d) ; l'hydrochlorure de (E)-N-(N -(3 -(4-cinnamylbenzamido)-4- méthylphényl)earbamimidoy1)-3,4,5-triméthoxybenzamide de formule suivante : Me0 MeO OMeMe0 Me0 48 Me NÂN N N H H H HCi OMe 7e (Composé 7e) ; - l'hydrochlorure de N-(N-(3-(4-benzylbenzamido)-4- méthylphényl)carbamimidoy1)-3,4,5-triméthoxybenzamide de formule suivante : Me0 Me0 0 NH Me() N --it.N N H 1-1 H HCI OMe 7f (Composé 7t) ; - l'hydrochlorure de N-(N-(3-(4-benzylbenzamido)-4- méthylphénypcarbamimidoy1)-3,4,5-triméthoxybenzamide de formule suivante : OMe Me0 Me0 HCI 7g NH Me O NÂN H H H (Composé 7g) ; - l'hydrochlorure de N-(N-(3-(4-(benzyloxy)benzamido)-4- méthylphényl)carbamimidoy1)-3,4,5-triméthoxybenzam ide de formule suivante : Me O Me0 H Me0 (Composé 7h). 7. Composé de formule (I) selon l'une des revendications 1 à 6, pour son application en tant que médicament. 8. Composé de formule (I) selon la revendication 7, pour son application en tant que médicament pour le traitement de tumeurs associées à une hyperactivation de la voie de signalisation des protéines Hedgehog. 9. Composé de formule (I) selon la revendication 8, caractérisé en ce que les tumeurs associées à une hyperactivation de la voie de signalisation des protéines Hedgehog sont des tumeurs du tissu nerveux (médulloblastomes, tumeurs primitives neuroectodermiques, glioblastomes, méningiomes et oligodendrogliomes), des tumeurs cutanées (carcinomes basocellulaires, trichoépithéliomes), des tumeurs des tissus musculaires OMe 7h 0 NH NÂN H H HCIet osseux (rhabdomyosarcomes, ostéosarcomes) ou des tumeurs d'autres tissus (rein, vessie, prostate, poumon, estomac, pancréas). 10. Composé de formule (I) selon la revendication 7, pour son application en tant que médicament pour le traitement de pathologies de type neuro-dégénératif. 11. Composé de formule (I) selon la revendication 10, caractérisé en ce que les pathologies de type neuro-dégénératif sont la maladie de Parkinson, la Chorée de Huntington, la maladie d'Alzheimer, la sclérose en plaques ou la maladie du motoneurone. 12. Composé de formule (I) selon la revendication 7, pour son application en tant que médicament pour le traitement de maladies liées au développement cérébral 10 (holoprosencéphalie), au traitement d'accident vasculaire cérébral et aux accidents cardiovasculaires, ainsi qu'aux maladies des oligodentrocytes et des cellules de Schwann. 13. Composé de formule (I) selon la revendication 7, pour son application in vitro pour moduler le renouvellement des cellules souches humaines ou animales. 14. Composé de formule (I) selon la revendication 7, pour son application 15 en tant que médicament pour le traitement du diabète. 15. Composition pharmaceutique caractérisée en ce qu'elle comprend, à titre de principe actif, au moins un composé de formule (I) selon l'une des revendications 1 à 6 et au moins un excipient pharmaceutiquement acceptable. 16. Utilisation d'un composé de formule (I) marqué comme outil de 20 recherche, notamment pour l'identification de molécules capables d'interagir avec le récepteur Smoothened ou un récepteur apparenté. 17. Procédé de radio-marquage d'un composé de formule (I) selon l'une des revendications 1 à 6, caractérisé en ce qu'il comprend une étape de tritiation d'un composé de formule (I) sous une atmosphère de tritium 3H, et ledit procédé comprenant une étape 25 préalable d'halogénation lorsque le composé de formule (I) est substitué par un groupe R5 exempt de double liaison éthylénique. 18. Composé de formule (I) selon l'une des revendications 1 à 6, caractérisé en ce qu'au moins un de ses atomes d'hydrogène a été remplacé par un atome de tritium 3H, et susceptible d'être obtenu selon le procédé de la revendication 17. 30 19. Méthode de criblage et/ou d'identification de ligands des sites de liaison Smo du récepteur Smoothened, caractérisée en ce qu'elle comprend les étapes suivantes a) mise en contact du récepteur Smoothened et d'au moins un composé de formule (I) pour l'obtention d'un complexe [Smo-composé de formule (I)] ;b) mise en contact du récepteur Smoothened, dudit composé de formule (I) et d'une molécule à tester ; c) détection d'une interaction entre ledit récepteur Smoothened et lesdites molécules à tester par comparaison du récepteur Smoothened récupéré à l'étape b) avec le 5 complexe [Smo-composé de formule (I)] ; et d) sélection desdites molécules à tester pour lesquelles une interaction avec le récepteur Smoothened est mesurée. 20. Méthode de criblage et/ou d'identification selon la revendication 19, caractérisée en ce que l'étape a) est mise en oeuvre en phase liquide, et en ce que ladite 10 méthode comprend les étapes suivantes : a) mise en contact du récepteur Smoothened et d'au moins un composé de formule (1) pour l'obtention d'un complexe [Smo-composé de formule (I)] ; b) mise en contact du récepteur Smoothened, dudit composé de formule (I) et d'une molécule à tester ; 15 c) récupération dudit récepteur Smoothened éventuellement lié à une ou plusieurs molécules à tester et/ou audit composé de formule (I) ; d) détection d'une interaction entre ledit récepteur Smoothened et lesdites molécules à tester par comparaison du récepteur Smoothened récupéré à l'étape c) avec le complexe [Smo-composé de formule (I)] ; et 20 e) sélection desdites molécules à tester pour lesquelles une interaction est mesurée. 21. Méthode d'identification d'agonistes du récepteur Smoothened, caractérisée en ce qu'elle comprend les étapes de l'une des méthodes des revendications 19 ou 20, et les étapes additionnelles suivantes : 25 - mise en contact du ligand identifié avec une cellule qui présente une réponse cellulaire suite à l'activation du récepteur Smoothened, et sélection des molécules agonistes capables d'induire ladite réponse cellulaire de ladite cellule. 22. Méthode d'identification d'une molécule antagoniste du récepteur 30 Smoothened, caractérisée en ce qu'elle comprend les étapes suivantes : a) mise en culture de cellules qui présentent une réponse cellulaire suite à l'activation du récepteur Smoothened avec au moins un composé de formule (I) de façon à induire ladite réponse cellulaire ;b) mise en contact des cellules obtenues à l'issue de l'étape a) avec une molécule à tester ; c) sélection des molécules induisant une inhibition de ladite réponse cellulaire desdites cellules. 23. Méthode d'identification de cellules, telles que des cellules tumorales, exprimant le récepteur Smoothened, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : a) mise en contact de cellules à tester avec un composé de formule (I) marqué ; b) nettoyage des cellules afin d'éliminer ledit composé de formule (I) marqué qui ne se serait lié à aucun récepteur des cellules à tester ; c) détections des cellules marquées. 24. Kit caractérisé en ce qu'il comprend au moins un récepteur Smoothened fonctionnel et au moins un composé de formule (I) selon l'une des revendications 1 à 6.