FR 2978456 A1 20130201 FR 1156878 A 20110727 Les virus adéno-associés recombinants (ou rAAV, pour recombinant Adeno Associated Virus en anglais) sont actuellement considérés comme les vecteurs viraux les plus prometteurs en thérapie génique. Cependant, leur production à grande échelle reste un facteur limitant pour le développement de ce type de thérapies. Des systèmes de production exploitant la capacité des baculovirus à infecter des cellules d'insecte ont donc été développés en vue de pallier ce problème, et pour des raisons de biosécurité (Urabe et al. 2002; Hum. Gene Ther. 13: 1935-1943; US 20030148506; US 20040197895). Selon le protocole initialement proposé, une infection des cellules d'insecte par 3 baculovirus différents était nécessaire pour fournir les gènes helper rep et cap et la construction comprenant le vecteur AAV recombinant contenant le transgène requis pour former la particule virale recombinante. Une simplification de ce système consiste en l'intégration des gènes rep et cap dans un baculovirus unique résultant en un système de production utilisant 2 baculovirus (bac rep/cap et bac-transgène) (Smith et al. 2009; Mol. Ther. 17: 1888-1896). Par ailleurs, le groupe de Sergei Zolotukhin (Aslanidi et al. 2009; Proc. Natl. Acad. Sci. USA 206: 5059-5064 et WO 2010/114948) a récemment développé des lignées cellulaires Sf9 stablement transformées avec les gènes rep et cap. Avec une telle lignée cellulaire, l'infection par un seul baculovirus (comprenant dans son génome le le gène thérapeutique d'intérêt flanqué d'ITR d'un AAV) permettrait l'obtention d'un AAV recombinant. Cependant, ce système présente plusieurs inconvénients. D'une part, la génération de clones cellulaires est fastidieuse et les clones obtenus sont souvent caractérisés par une instabilité génétique qui résulte en une fenêtre d'exploitation limitée dans le temps. En outre, une fréquence élevée d'empaquetage d'ADN étranger qui ne correspond pas au vecteur d'intérêt (séquences de rep, cap et de gènes de résistance à un antibiotique) a été observée, ce qui pose un problème considérable sur le plan de la biosécurité. De tels clones sont donc impropres à la production de lots de vecteurs destinés à une utilisation clinique. Tous les baculovirus utilisés dans les études mentionnées ci-dessus comprennent l'insertion du gène d'intérêt (qu'il s'agisse des gènes rep et/ou cap et du gène thérapeutique d'intérêt) dans le site de clonage polyédrine du génome baculoviral. Ce site est classiquement choisi en raison des forts niveaux d'expression susceptibles d'être obtenus à partir de ce locus. Ce site est également exploité dans le système développé par Luckow et al. (1993 ; J. Virol. 67:4566- 4579) dans lequel est inséré une origine de réplication bactérienne, un gène de résistance à la kanamycine et un site de clonage par recombinaison « Tn7 ». Ce système est appelé bacmide. Cependant, l'utilisation de ce seul locus constitue un facteur limitant, notamment si l'on souhaite pouvoir exprimer plusieurs séquence hétérologues à partir d'un baculovirus unique. C'est dans ce contexte que Noad et al. (2009) ont comparé le locus classique - polyédrine (Tn7 du bacmide, présent au site polyédrine) - à différents sites de clonage potentiels et ont identifié 7 loci additionnels (ctx, egt, 39k, orf5l, pg37, iap2, odv-e56) dans le génome d'AcMNPV permettant une forte expression de gènes hétérologues (Noad et al. 2009; BMC Molecular Biology 10: 87; WO 2010/055292). Il a également été montré que différents gènes clonés dans plusieurs de ces loci peuvent être exprimés de manière concomitante à partir du même génome. Noad et al. n'ont toutefois pas montré si ces loci alternatifs étaient efficaces pour la production d'AAV recombinant ou tout autre vecteur viral recombinant, ce qui n'était pas évident compte tenu de la complexité de ces vecteurs viraux et des difficultés majeures rencontrées classiquement lors de leur production. Résumé de l'invention De manière surprenante, nous avons pu montrer que des AAV recombinants peuvent être produits grâce à un baculovirus unique. L'invention concerne donc un bacmide recombinant comprenant des séquences hétérologues codant l'ensemble des composantes nécessaires à la production d'un vecteur viral hétérologue (c'est-à-dire les composantes protéiques du vecteur et son génome) insérés dans des locus choisis dans le groupe constitué des gènes non-essentiels du baculovirus qui peuvent être remplacés par une séquence d'intérêt sans modifier le fonctionnement du baculovirus. L'invention concerne en particulier un bacmide recombinant comprenant une ou plusieurs cassettes d'expression des composantes protéiques nécessaires à la production d'un vecteur viral hétérologue, et un génome recombinant d'un vecteur viral hétérologue, lesdites cassettes d'expression et ledit génome recombinant étant insérés dans un ou plusieurs locus choisi dans le groupe constitué des locus egt, polyédrine, ctx, 39k, orf5l, gp37, iap2 et odv-e56, p10 et p94. Le bacmide peut notamment comprendre au moins une cassette d'expression des gènes rep et/ou cap d'AAV insérée dans lesdits un ou plusieurs locus. Selon une variante, lesdits gènes rep et cap sont contenus dans une cassette d'expression unique, notamment en orientation inverse, ladite cassette étant plus particulièrement insérée dans le locus egt. Dans un mode particulier de réalisation, le génome recombinant de vecteur viral hétérologue est un génome recombinant AAV inséré dans un locus différent du(des) locus utilisés pour les gènes rep et cap d'AAV, ledit génome recombinant étant notamment inséré au niveau du locus polyédrine. L'invention concerne par ailleurs un bacmide recombinant comprenant une ou plusieurs cassettes d'expression des gènes rep et/ou cap d'AAV, lesdites une ou plusieurs cassettes d'expression étant insérées dans un locus choisi dans le groupe constitué des locus egt, ctx, 39k, orf5l, gp37, iap2, odv-e56, p10 et p94 du bacmide. Ce bacmide recombinant contient également de préférence un génome recombinant AAV dans un locus choisi parmi les locus polyédrine, egt, ctx, 39k, orf5l, gp37, iap2, odv-e56, p10 et p94 du bacmide, ledit génome recombinant AAV étant inséré dans un locus différent du(des) locus utilisés pour les gènes rep et cap d'AAV. Les bacmides recombinant selon l'invention peuvent notamment être dérivés du baculovirus 15 AcMNPV. Par ailleurs, le bacmide recombinant de l'invention peut également avoir pour caractéristique d'être déficient pour les gènes chitinase, cathépsine et p10. Lorsque le bacmide recombinant selon l'invention contient un génome recombinant de virus hétérologue, ledit génome recombinant peut comprendre un gène hétérologue codant une 20 protéine, un ARN interférant ou un ARN antisens, en particulier thérapeutique (pour permettre la production d'un vecteur viral de thérapie génique). L'invention concerne en outre un baculovirus recombinant qui a pour génome un bacmide recombinant selon l'invention. L'invention concerne par ailleurs un procédé pour produire un baculovirus recombinant, comprenant la culture d'une cellule procaryote contenant le bacmide recombinant défini dans dans la présente demande dans des conditions adaptées à la production d'un baculovirus. 30 L'invention fournit également une cellule eucaryote ou procaryote contenant le bacmide recombinant divulgué, ou infectée par le baculovirus recombinant de l'invention. Ladite cellule peut notamment être une cellule de mammifère (par exemple une cellule HEK293) ou 25 une cellule d'insecte dérivée des lignées Spodoptera frugiperda ou Trichoplusia ni (par exemple les cellules Sf2l, Sf9, TN 5B1-4 ou High Five). L'invention concerne en outre un procédé pour produire des vecteurs viraux, notamment des vecteurs viraux de thérapie génique. Elle vise plus particulièrement un procédé pour produire un AAV recombinant comprenant la mise en culture du baculovirus recombinant comprenant les séquences nécessaires pour la production des composantes protéiques et génétiques d'un AAV, avec une cellule, notamment une cellule d'insecte (par exemple une cellule Sf9, Sf2l, TN 5B1-4 ou High Five), susceptible d'être infectée par ledit baculovirus, dans des conditions permettant l'infection de la cellule par le baculovirus et la production dudit AAV recombinant. Légende des figures Figure 1. Système Monobac pour la production de vecteurs rAAV. Le bacmide d'AcMNPV a été inactivé pour les gènes chitinase, cathepsine et plO. La cassette d'expression des gènes d'AAV rep2 et cap8 a été insérée dans le génome du bacmide au locus ecdysteroid UDP-glucosyltransferase locus (EGT), laissant ainsi le site de transposition tn7 du bacmide libre pour l'insertion du génome d'AAVr. Un seul baculovirus permet ainsi de produire des particules d'AAVr en cellules d'insectes. Figure 2. Etude de l'effet locus pour l'expression des gènes d'AAV rep2 et cap8. L'expression des protéines d'AAV Rep et Capé a été suivie par Western blot à partir de baculovirus exprimant ces protéines depuis la cassette d'expression insérée au site Tn7 du bacmide ou au locus EGT, 3 jours après infection des cellules Sf9. La standardisation de l'expression des protéines est suivie en mesurant l'expression de la protéine baculoviral P35. Monobac Cl & C2: AcbacACCAplO-rep2cap8(EGT). ACCP-SR660 Cl & C2: AcbacACCAplO-rep2cap8(Tn7). WT-SR660 Cl: AcbacWT. T+ AAV8 bulk: contrôle positif de production d'AAV8-mSeAP. ACCApl O: bacmide délété des gènes cathépsine, chitinase et plO. Acbac: bacmide dérivé d'AcMNPV Figure 3. Etude de l'effet locus pour l'expression des gènes d'AAV rep2 et cap8. L'expression des protéines d'AAV Rep et Capé ont été suivies par Western blot à partir de baculovirus exprimant ces protéines depuis la cassette d'expression insérée au site Tn7 du bacmide ou au locus EGT, 3 jours après infection des cellules Sf9. La standardisation de l'expression des protéines est suivie en mesurant l'expression de la protéine baculoviral P35. Monobac Cl et C2: AcbacACCAplO-rep2cap8(EGT). Monobac Seap Cl & C2: AcbacACCAplO-rep2cap8(EGT)-mSeAPTn7). T+ AAV8 bulk: positive control from rAAV8-mSeAP production. Figure 4. productivité d'AAVr. La productivité d'AAVr dans le système monobac a été évaluée. Les résulats sont présentés en titre d'AAVr (vg/ml - vecteur génome/ml). 4 réplicats ont été utilisés par expérience, la barre d'erreur représente l'écart type. Description détaillée de l'invention La production d'un vecteur viral, notamment un vecteur viral de thérapie génique, nécessite l'expression dans une même cellule des nombreuses composantes du vecteur viral. Par exemple, dans le cas de la production d'un AAV recombinant dans une cellule d'insecte, il est nécessaire de produire dans la cellule: - un génome recombinant d'AAV comprenant une ITR (pour Inverted Terminal Repeat en anglais) 5', et une cassette d'expression d'une séquence nucléotidique hétérologue d'intérêt (au moins une séquence nucléotidique hétérologue d'intérêt sous le contrôle d'un promoteur efficace pour l'expression dudit gène dans une cellule cible définie ci-dessous), et une ITR 3'; et - les produits des gènes rep et cap d'AAV. Nous avons développé un système d'expression baculoviral pour faciliter la production de vecteurs viraux, en ce sens qu'un baculovirus unique est utilisé pour infecter les cellules hôtes productrices du vecteur viral. L'invention concerne en particulier un bacmide recombinant comprenant une ou plusieurs cassettes d'expression des composantes protéiques nécessaires à la production d'un vecteur viral hétérologue, et un génome recombinant d'un vecteur viral hétérologue, lesdites cassettes30 d'expression et ledit génome recombinant étant insérés dans un ou plusieurs locus choisi dans le groupe constitué des gènes non-essentiels du baculovirus qui peuvent être remplacés par une séquence d'intérêt sans modifier le fonctionnement du baculovirus. Dans le cadre de la présente invention, les "gènes non-essentiels du baculovirus" sont définis comme des gènes pouvant être inactivés ou éliminés du génome du baculovirus, sans modifier sa capacité à se développer en culture de cellules d'insecte. Ces gènes sont des gènes intervenant spécifiquement dans la production des ODV (Occlusion Derived Virus) ou des gènes nécessaires à la manipulation de l'insecte hôte dans l'environnement, mais non- nécessaire à l'échelle de cellules d'insecte en culture (Cohen et al. 2009 ; Virologica Sinica 24 : 359-414). Selon un mode particulier de réalisation, le ou les locus est (sont) choisi(s) dans le groupe constitué des locus polyédrine, ctx, egt, 39k, orf5l, gp37, iap2, p94, p10 et odv-e56, ledit locus étant plus particulièrement le locus egt. Dans le cadre de l'invention, on entend par "vecteur viral hétérologue" un vecteur viral qui n'est pas un baculovirus. Le vecteur viral hétérologue peut notamment être un adénovirus, un virus adéno-associé, un rétrovirus, notamment un lentivirus ou un spumavirus, etc. Plus spécifiquement, le bacmide recombinant selon l'invention est susceptible d'être utilisé pour la production de tout type de vecteurs viraux destinés à être utilisés pour introduire une séquence nucléotidique hétérologue dans une cellule, un tissu ou organisme, notamment un vecteur viral à visée thérapeutique chez l'homme ou l'animal (vecteur de thérapie génique). Dans le cadre de la présente invention, on entend par "cassette d'expression" une combinaison d'éléments nécessaires à l'expression d'un ou plusieurs gènes. Une cassette d'expression contient donc un promoteur adapté pour une expression dans une cellule hôte, en particulier une cellule eucaryote, plus particulièrement une cellule d'insecte, et une séquence de polyadénylation. L'homme du métier a plusieurs cassettes d'expression dans des cellules eucaryotes (en particulier d'insecte ou de mammifère) à sa disposition. Comme mentionné ci-dessus, le bacmide recombinant selon l'invention peut être destiné à la production de tout type de vecteurs viraux, notamment des vecteurs viraux de thérapie génique. Par exemple, le bacmide recombinant peut comprendre une ou plusieurs cassettes d'expression de protéines virales nécessaires à la production d'un virus adéno-associé, d'un adénovirus, d'un rétrovirus, notamment un lentivirus ou un spumavirus, etc. Les gènes nécessaires à la production de telles particules virales sont bien connus de l'homme du métier, qui saura adapter le présent bacmide recombinant au vecteur viral particulier qu'il souhaite produire. (Bagnis, Merten, Mezzina (guest editors) 2005 : Advanced methods for industrial production, purification, and characterization of gene vectors. Gene Ther 12(Sl): 1-177). Selon un mode préféré de réalisation, le bacmide recombinant selon l'invention comprend également un génome recombinant de vecteur viral de thérapie génique, ledit génome recombinant étant inséré dans un locus du bacmide tel que décrit ci-dessus. Le génome recombinant inséré dans le bacmide dépendra bien entendu du vecteur viral de thérapie génique à produire in fine. Ainsi, pour la production d'un AAV, le génome recombinant de vecteur viral de thérapie génique sera un génome recombinant d'AAV comprenant une ITR 5', au moins une séquence nucléotidique hétérologue d'intérêt sous le contrôle d'un promoteur efficace dans la cellule cible de l'AAV recombinant produit, et une ITR 3'. Pour la production d'un lentivirus, le génome recombinant de vecteur viral de thérapie génique sera un génome recombinant de lentivirus comprenant une LTR 5', un site majeur donneur d'épissage, un signal d'empaquetage couvrant la partie 5' du gène Gag, l'élément de réponse à Rev (RRE), l'accepteur d'épissage d'enveloppe, au moins une séquence nucléotidique hétérologue d'intérêt sous le contrôle d'un promoteur efficace dans la cellule cible du lentivirus recombinant produit, et une LTR 3', notamment une LTR 3' modifiée en vue de la génération de vecteurs SIN (lentivirus auto-inactivant - Self-INactivating). Ainsi, selon une première variante de l'invention, le bacmide recombinant décrit est un bacmide pour la production d'un vecteur AAV. A ce titre, l'invention concerne également un bacmide recombinant comprenant une ou plusieurs cassettes d'expression des gènes rep et/ou cap d'AAV, lesdites une ou plusieurs cassettes d'expression étant insérées dans un locus choisi dans le groupe constitué des locus egt, ctx, 39k, orf5l, gp37, iap2, odv-e56, p10 et p94 du bacmide. Ce bacmide recombinant contient également de préférence un génome recombinant AAV dans un locus choisi parmi les locus polyédrine, egt, ctx, 39k, orf5l, gp37, iap2, odv-e56, p10 et p94 du bacmide, ledit génome recombinant AAV étant inséré dans un locus différent du(des) locus utilisés pour les gènes rep et cap d'AAV. Dans un mode particulier de réalisation de la première variante, le bacmide recombinant selon l'invention comprend au moins une cassette d'expression des gènes rep et/ou cap d'AAV dans un locus choisi dans le groupe constitué des gènes non-essentiels du baculovirus qui peuvent être remplacés par une séquence d'intérêt sans modifier le fonctionnement du baculovirus. Ladite au moins une cassette d'expression des gènes rep et/ou cap d'AAV peut notamment être incluse dans un locus choisi dans le groupe constitué des locus polyédrine, ctx, egt, 39k, orf5l, gp37, iap2, p94, p10 et odv-e56, en particulier dans le locus egt. Dans un autre mode particulier de réalisation de la première variante, le bacmide recombinant selon l'invention comprend en outre un génome recombinant AAV. Le locus d'insertion du génome recombinant AAV est notamment choisi dans le groupe constitué des locus polyédrine, egt, ctx, 39k, orf5l, gp37, iap2, p94, p10 et odv-e56. Selon un mode particulier de réalisation, le locus choisi pour le génome recombinant AAV est un locus différent du(des) locus choisi pour la(les) cassette(s) d'expression de rep et/ou cap. Selon un mode préféré de réalisation, le génome recombinant AAV est inséré dans le locus polyédrine (notamment au niveau du site de recombinaison Tn7). Selon un premier mode préféré de réalisation, le bacmide recombinant selon l'invention 20 comprend - un génome recombinant AAV dans le locus polyédrine, et - une cassette d'expression des gènes rep/cap d'AAV dans un locus choisi dans le groupe constitué des locus ctx, egt, 39k, orf5l, gp37, iap2, p94, p10 et odv-e56, en particulier le locus egt. 25 Selon un deuxième mode préféré de réalisation, le bacmide recombinant selon l'invention comprend : - un génome recombinant AAV dans le locus p94, - une cassette d'expression des gènes rep/cap d'AAV dans un locus choisi dans le 30 groupe constitué des locus polyédrine, ctx, egt, 39k, orf5l, gp37, iap2, p10 et odv-e56, en particulier le locus egt. Les cassettes d'expression des gènes rep et cap sont notamment choisies en fonction du gène d'intérêt à exprimer à partir de l'AAV recombinant produit et du type de cellules à transduire avec ledit AAV. L'homme du métier est en mesure de sélectionner et produire les cassettes d'expression adéquates sur la base de ses connaissances générales. A titre de promoteurs particuliers, on peut citer les promoteurs baculoviraux précoces/tardifs tels que gp64, ou des promoteurs baculoviraux très tardifs tels que les promoteurs des gènes polyédrine (PPh) et pl0 (Poo), si le baculovirus est destiné à infecter des cellules d'insecte. Les promoteurs très précoces comme IE1 (Immediate Early 1) sont aussi utilisables dans le cadre de l'invention, avec possibilité de fonctionner dans des cellules de mammifères par exemple. A titre de séquences de polyadénylation, on peut notamment citer les séquences de polyadénylation de la tryptophane hydroxylase (Tph), ou des séquences de polyadénylation de gènes baculoviraux. Les gènes rep et cap peuvent être sélectionnés selon le type d'AAV recombinant dont la production est souhaitée. Ils peuvent être choisis parmi les gènes rep et cap d'AAV de tout sérotype. Les gènes rep et cap peuvent être inclus dans des cassettes d'expression différentes ou dans une cassette unique. Selon un mode préféré de réalisation, une cassette d'expression unique est utilisée pour l'expression des gènes rep et cap. Selon une variante de réalisation, la cassette d'expression des gènes rep/cap d'AAV comprend lesdits gènes en orientation inverse. Ces gènes en orientation inverse peuvent notamment être chacun sous le contrôle de promoteurs différents, notamment de promoteurs baculoviraux différents, en particuliers des promoteurs très tardif différents. Par exemple, les promoteurs très tardifs en question peuvent notamment correspondre aux promoteurs baculoviraux PPio et Pph. Selon un mode de réalisation particulièrement préféré, la cassette d'expression de rep et cap est produite et insérée dans le bacmide recombinant de l'invention selon les procédures décrites dans Smith et al., 2009; Mol. Ther. 17: 1888-1896. Selon un mode particulier, la cassette d'expression correspond à celle décrite dans les exemples ci-dessous, permettant l'expression des produits des gènes rep2 et cap8, et donc la production de vecteur AAV recombinants de type rAAV8, comprenant des protéines de capside de l'AAV8, et donc présentant le tropisme de ce sérotype particulier. Cette cassette d'expression est préférentiellement introduite dans le bacmide par transposition, selon des procédures bien connues dans le domaine, notamment en utilisant le système Bac-to-Bac commercialisé par la société Invitrogen. Selon un mode particulier de réalisation, la cassette d'expression des gènes rep/cap d'AAV est insérée dans le locus egt, en particulier selon le procédé décrit dans les exemples. Le génome recombinant d'AAV comprend une ITR (pour Inverted Terminal Repeat en anglais) 5', au moins une séquence nucléotidique hétérologue d'intérêt sous le contrôle d'un promoteur efficace dans la cellule cible de l'AAV recombinant produit, et une ITR 3'. Les ITRs peuvent être dérivées de tout sérotype d'AAV connu de l'homme du métier. Par "séquence nucléotidique hétérologue d'intérêt", on entend une séquence nucléotidique qui n'est pas un gène baculoviral ou un gène d'AAV et qui, lorsqu'elle est exprimée dans une cellule d'intérêt (aussi dite "cellule cible"), permet d'obtenir un effet souhaité. La séquence nucléotidique hétérologue peut notamment coder une protéine, un ARN interférant, un ARN antisens, un microARN ou snRNA. L'effet souhaité peut notamment correspondre à l'expression de la séquence nucléotidique hétérologue dans des cellules ou tissus d'un patient. Ainsi, la séquence nucléotidique hétérologue peut notamment être administrée afin d'obtenir un effet thérapeutique. A ce titre, l'AAV recombinant produit sera utilisable comme vecteur de thérapie génique. La séquence nucléotidique hétérologue pourra ainsi permettre la production d'une protéine thérapeutique, par exemple une protéine déficiente dans une maladie, ou un ARN interférant dans des cellules nécessitant la diminution de l'expression d'une protéine anormale, ou un snRNA (small nuclear RNA) impliqué dans l'élimination d'un exon muté responsable de la non-fonctionnalité d'une protéine. La cellule cible correspond à toute cellule dans laquelle l'expression de la séquence nucléotidique hétérologue peut avoir un intérêt, notamment thérapeutique. Le promoteur présent dans le génome AAV sera donc un promoteur permettant l'expression de la séquence nucléotidique hétérologue dans la cellule cible. Ce promoteur peut être constitutif, inductible ou spécifique d'une cellule ou d'un tissu particulier. Bien entendu, l'homme du métier est familier avec les concepts de la thérapie génique et adaptera les éléments constitutifs de la présente invention à ses besoins. Le bacmide recombinant peut également comprendre toute séquence d'AAV permettant une amélioration de la quantité ou de la qualité de l'AAV recombinant. On peut citer à ce titre l'insertion, dans l'un des locus cités ci-dessus, du gène codant AAP (ou Assembly Activating Protein en anglais - Sonntag et al., Proc Natl Acad Sci U S A. 2010 Jun 1;107(22):10220-5). Selon une seconde variante de l'invention, le bacmide recombinant décrit est un bacmide pour la production d'un vecteur lentiviral. A ce titre, l'invention concerne également un bacmide recombinant comprenant une ou plusieurs cassettes d'expression des gènes gag/pol, rev de lentivirus (par ex. en provenance d'HIV-1) et/ou env choisi selon le tropisme voulu, mais de préférence la protéine G en provenance du virus de la stomatite vesiculaire (VSV-G), lesdites une ou plusieurs cassettes d'expression étant insérées dans un locus choisi dans le groupe constitué des locus egt, ctx, 39k, orf5l, gp37, iap2, odv-e56, p10 et p94 du bacmide. Ce bacmide recombinant contient également de préférence un génome recombinant de lentivirus dans un locus choisi parmi les locus polyédrine, egt, ctx, 39k, orf5l, gp37, iap2, odv-e56, p10 et p94 du bacmide, ledit génome recombinant LV étant inséré dans un locus différent du(des) locus utilisés pour les gènes gag/pol et rev de lentivirus ainsi que le gène env. Dans un mode particulier de réalisation de la première variante, le bacmide recombinant selon l'invention comprend au moins une cassette d'expression des gènes gènes gag/pol et rev de lentivirus ainsi que le gène env dans un locus choisi dans le groupe constitué des gènes non-essentiels du baculovirus qui peuvent être remplacés par une séquence d'intérêt sans modifier le fonctionnement du baculovirus. Ladite au moins une cassette d'expression des gènes gènes gag/pol et rev de lentivirus ainsi que le gène env peut notamment être incluse dans un locus choisi dans le groupe constitué des locus polyédrine, ctx, egt, 39k, orf5l, gp37, iap2, p94, p10 et odv-e56. Dans un autre mode particulier de réalisation de la première variante, le bacmide recombinant selon l'invention comprend en outre un génome recombinant de lentivirus. Le locus d'insertion du génome recombinant de lentivirus est notamment choisi dans le groupe constitué des locus polyédrine, egt, ctx, 39k, orf5l, gp37, iap2, p94, p10 et odv-e56. Selon un mode particulier de réalisation, le locus choisi pour le génome recombinant de lentivirus est un locus différent du(des) locus choisi pour la(les) cassette(s) d'expression de gag/pol, rev et/ou env. Selon un mode préféré de réalisation, le génome recombinant de lentivirus est inséré dans le locus polyédrine (notamment au niveau du site de recombinaison Tn7). Selon un premier mode préféré de réalisation, le bacmide recombinant selon l'invention 5 comprend : - un génome recombinant de lentivirus dans le locus polyédrine, et - une cassette d'expression des gènes gag/pol et rev de lentivirus ainsi que le gène env dans un locus choisi dans le groupe constitué des locus ctx, egt, 39k, orf5l, gp37, iap2, p94, p10 et odv-e56. 10 Selon un deuxième mode préféré de réalisation, le bacmide recombinant selon l'invention comprend : - un génome recombinant de lentivirus dans le locus p94, - une cassette d'expression des gènes gag/pol et rev de lentivirus ainsi que le gène env 15 dans un locus choisi dans le groupe constitué des locus polyédrine, ctx, egt, 39k, orf5l, gp37, iap2, p10 et odv-e56. Les cassettes d'expression des gènes gag/pol et rev de lentivirus ainsi que le gène env sont notamment choisies en fonction du gène d'intérêt à exprimer à partir du lentivirus 20 recombinant produit et du type de cellules à transduire avec ledit lentivirus. L'homme du métier est en mesure de sélectionner et produire les cassettes d'expression adéquates sur la base de ses connaissances générales. A titre de promoteurs particuliers, on peut citer les promoteurs baculoviraux précoces/tardifs tels que gp64, ou des promoteurs baculoviraux très tardifs tels que les promoteurs des gènes polyédrine (PPh) et p10 (Poo), si le baculovirus est 25 destiné à infecter des cellules d'insecte. Les promoteurs très précoces comme IE1 (Immediate Early 1) sont aussi utilisables dans le cadre de l'invention, avec possibilité de fonctionner dans des cellules de mammifères par exemple. A titre de séquences de polyadénylation, on peut notamment citer les séquences de polyadénylation de la tryptophane hydroxylase (Tph), ou des séquences de polyadénylation de gènes baculoviraux. 30 Par "séquence nucléotidique hétérologue d'intérêt", on entend une séquence nucléotidique qui n'est pas un gène baculoviral ou un gène du lentivirus et qui, lorsqu'elle est exprimée dans une cellule d'intérêt (aussi dite "cellule cible"), permet d'obtenir un effet souhaité. La séquence nucléotidique hétérologue peut notamment coder une protéine, un ARN interférant, un ARN antisens, un microARN ou snRNA. L'effet souhaité peut notamment correspondre à l'expression de la séquence nucléotidique hétérologue dans des cellules ou tissus d'un patient. Ainsi, la séquence nucléotidique hétérologue peut notamment être administrée afin d'obtenir un effet thérapeutique. A ce titre, le lentivirus recombinant produit sera utilisable comme vecteur de thérapie génique. La séquence nucléotidique hétérologue pourra ainsi permettre la production d'une protéine thérapeutique, par exemple une protéine déficiente dans une maladie, ou un ARN interférant dans des cellules nécessitant la diminution de l'expression d'une protéine anormale, ou un snRNA (small nuclear RNA) impliqué dans l'élimination d'un exon muté responsable de la non-fonctionnalité d'une protéine. La cellule cible correspond à toute cellule dans laquelle l'expression de la séquence nucléotidique hétérologue peut avoir un intérêt, notamment thérapeutique. Le promoteur présent dans le génome de lentivirus sera donc un promoteur permettant l'expression de la séquence nucléotidique hétérologue dans la cellule cible. Ce promoteur peut être constitutif, inductible ou spécifique d'une cellule ou d'un tissu particulier. Bien entendu, l'homme du métier est familier avec les concepts de la thérapie génique et adaptera les éléments constitutifs de la présente invention à ses besoins. Le bacmide recombinant peut être dérivé de tout baculovirus comprenant le locus polyédrine (ou équivalent), et au moins un ou plusieurs des autres locus mentionnés ci-dessus (ou un ou plusieurs locus équivalents). Le bacmide recombinant correspond par ailleurs à une séquence capable de se répliquer dans des cellules d'insecte et dans un organisme procaryote tel que E. coli. En particulier, tout génome baculoviral comprenant une construction ADN permettant le maintien du génome dans un organisme procaryote, en particulier un réplicon BAC, peut être utilisé. Selon un aspect préféré, le bacmide de l'invention est dérivé d'un squelette AcMNPV ou Sp1iNPV. La position des locus génétiques ctx, egt, 39k, orf5l, gp37, iap2 et odv-e56 dans la séquence de référence AcMNPV (numéro d'accès N0001623) sont notamment décrits dans le tableau 1 de la demande internationale WO 2010/055292. En ce qui concerne les locus génétiques p94 et p10, leur position est présentée en Figure 1 (séquence de référence AcMNPV - numéro d'accès N0001623). Selon un mode particulier de réalisation, le bacmide recombinant est dérivé d'AcMNPV et comprend une délétion des gènes chitinase, cathépsine et p10. Ainsi, selon ce mode de réalisation, l'invention concerne un bacmide AcMNPV recombinant dépourvu des gènes chitinase, cathépsine et p10 et comprenant une cassette d'expression des gènes rep/cap d'AAV dans un locus choisi dans le groupe constitué des locus egt, polyédrine, ctx, 39k, orf5l, gp37, iap2 et odv-e56, p10 et p94, en particulier le locus egt. Dans une variante de ce mode de réalisation, le bacmide comprend par ailleurs un génome recombinant AAV dans le locus polyédrine (Tn7 du bacmide). Dans une autre variante de ce mode de réalisation, le bacmide comprend par ailleurs un 10 génome recombinant AAV dans le locus p94. La délétion des gènes chitinase, cathépsine et p10 dans le squelette baculoviral permet une production hautement efficace de vecteurs AAV, permettant une dégradation protéolytique réduite, en particulier des protéines VP1 et VP2, et donc une augmentation de l'infectivité et 15 de l'efficacité in vivo. La délétion de ces gènes peut être réalisée selon toute procédure connue de l'homme du métier. On utilisera plus particulièrement le procédé décrit dans les exemples mettant en oeuvre le processus de recombinaison homologue (Datsenko et Wanner, 2000; Proc Natl Acad Sci U S A. 97(12):6640-6645) dans des bactéries E. coli contenant le bacmide à modifier (notamment le bacmide AcMNPV décrit dans Luckow et al., 1993; J. Virol. 20 67:4566-4579). Selon un mode particulier de réalisation, les gènes chi/v-cath (nucleotides 105282-107954 selon la carte génétique d'AcMNPV (Ayres et al., 1994)) et p10 (nucleotides 118839-119121) sont délétés. 25 Selon une variante du mode de réalisation comprenant une délétion des gènes chitinase, cathépsine et p10, la délétion du gène pl0 n'est pas accompagnée d'une délétion du promoteur du gène p10. En d'autres termes, le bacmide recombinant déficient pour les gènes chitinase, cathépsine et p10 comprend un promoteur PP10 fonctionnel (correspondant aux nucléotides 30 118739-118836 de la carte génétique d'AcMNPV). Selon une autre variante du mode de réalisation comprenant une délétion des gènes chitinase, cathépsine et p10, la délétion du gène p10 et accompagnée d'une délétion des gènes p26 et p74 adjacents. Selon une aspect particulier de ce mode de réalisation, la délétion des gènes p26, p10 et p74 correspond aux nucléotides 118044-121072 de la carte génétique d'AcMNPV (Ayres et al., 1994). Selon un deuxième aspect, l'invention concerne un baculovirus recombinant comprenant un génome correspondant au bacmide décrit ci-dessus. Selon un troisième aspect, l'invention concerne un procédé pour produire un baculovirus selon l'invention, comprenant la culture d'une cellule procaryote contenant le bacmide recombinant défini ci-dessus dans des conditions adaptées à la production d'un baculovirus. Ces conditions sont bien connues de l'homme du métier (Smith et al., 2009, supra; Luckow et al., 1993, supra). Selon un quatrième aspect, l'invention concerne une cellule eucaryote ou procaryote contenant le bacmide défini ci-dessus. La cellule peut notamment être une cellule eucaryote de mammifère ou d'insecte, en particulier une cellule d'insecte qui a été infectée par un baculovirus recombinant tel que défini ci-dessus. Parmi les cellules d'insecte, on préférera celles dérivées des lignées Spodoptera fi ugiperda ou Trichoplusia ni, par exemple les cellules Sf2l, Sf9, High five ou TN 5B1-4. Parmi les cellules de mammifère, ou pourra notamment citer la lignée HEK293, connue pour être susceptible d'être infectée par un baculovirus. Dans ce dernier cas, le(s) promoteur(s) présent(s) dans la cassette d'expression des gènes rep et cap sera(seront) adapté(s) pour une expression dans des cellules de mammifère. On peut notamment citer le promoteur CMV et d'autres promoteurs bien connu dans le domaine. Selon un cinquième aspect, l'invention concerne par ailleurs un procédé pour produire un vecteur viral, notamment de thérapie génique, comprenant la mise en culture du baculovirus recombinant défini ci-dessus avec une cellule, notamment une cellule d'insecte ou une cellule de mammifère, dans des conditions permettant l'infection de la cellules par le baculovirus et la production dudit vecteur viral. En ce qui concerne le production des vecteurs enveloppés (tels que les vecteurs rétroviraux), il s'agit d'une cellule mammifère (par ex. une cellule HEK293). Selon un mode particulier de réalisation, le procédé selon l'invention est un procédé pour produire un AAV recombinant comprenant la mise en culture du baculovirus recombinant défini ci-dessus avec une cellule, notamment une cellule d'insecte (e.g. une cellule Sf2l, Sf9, High five ou TN 5B1-4), susceptible d'être infectée par ledit baculovirus, dans des conditions permettant l'infection de la cellule par le baculovirus et la production dudit AAV recombinant. Ainsi, il est possible de produire un AAV recombinant à partir d'une infection avec un baculovirus unique. Des conditions particulières, non limitatives, de production d'un AAV recombinant selon l'invention sont notamment décrites dans les exemples. Bien entendu, l'homme du métier est en mesure d'adapter ces conditions de production sur la base de ses connaissances générales (Smith et al., supra). Grâce à ce procédé, on obtient une production d'AAV recombinant au moins 5 fois supérieure à celle obtenue avec un système nécessitant une infection avec deux baculovirus tel que le système décrit par Smith et al. Selon un autre mode particulier de réalisation, le procédé selon l'invention est un procédé pour la production d'un lentivirus recombinant, comprenant la mise en culture du baculovirus recombinant défini ci-dessus avec une cellule de mammifère (par exemple une cellule HEK293), susceptible d'être infectée par ledit baculovirus, dans des conditions permettant l'infection de la cellule par le baculovirus et la production dudit lentivirus recombinant. Les exemples ci-dessous sont fournis pour illustrer l'invention. Exemples MATERIELS ET METHODES: Séquences Table 1: séquences d'amorces Séquence 5' to 3' Utilisation* Amorce EGT-lox-F TTACGGTCGTCAAGCCCAAACTGTTTGCGTATTCAACTAAAACTTATTGCG insertion de rep2 / cap8 GTAATATCACTACCGTTCGTATAGCATACATTATACGAAGTTATAATAGG dans le bacmide AcMNPV AACTTCATTTAAATGGCGC (SEQ ID NO:1) au niveau du locus EGT (11634 - 12486) EGT-SV40- TCCCGGCTTCCAAGGCCTCGTCGCTCGATTGTAGTCCGCCTTGCGTAATAA insertion de rep2 / cap8 R ACGCCGCCATTTTTTTATGACGCAGCACGG dans le bacmide AcMNPV CAGACATGATAAGATACATTGATGAGTTTG (SEQ ID NO:2) au niveau du locus EGT (11634 - 12486) EGT- ATGACTATTCTCTGCTGGC (SEQ ID NO:3) Vérification Control 150F EGT- ATTGGCCGTGTTTCCTAC (SEQ ID NO:4) Vérification Control 150R M13 PUC F CCAGTCACGACGTTGTAAAACG (SEQ ID NO:5) Vérification des bacmides transposés M13 PUC R AGCGGATAACAATTTCACACAGG (SEQ ID NO:6) Vérification des bacmides transposés Genta AGCCACCTACTCCCAACATC (SEQ ID NO:7) Vérification des bacmides transposés CC-KO-F CCGCTGTTGAAACAATATTTTATAATACCCTGTTTATAGTTAACAATGTCG inactivation des gènes GCAGCGTCTATGGCCATAGGAATAGGGCCTACCGTTCGTATAATGTATGC chitinase/cathepsine nt TATACGAAGTTAT (SEQ ID NO:8) 105771- 107700 CC-KO-R CCGCTGTTGAAACAATATTTTATAATACCCTGTTTATAGTTAACAATGTCG inactivation des gènes GCAGCGTCTATGGCCATAGGAATAGGGCCTACCGTTCGTATAATGTATGC chitinase/cathepsine nt TATACGAAGTTAT (SEQ ID NO:9) 105771- 107700 chitinase- CGCGGCCGTACATGGCGACGCCCA (SEQ ID NO:10) Vérification 105625F cathepsin- GTTTTTAAAGGTCCAATATGGAATG (SEQ ID NO:11) Vérification 107849R p10-KO-F TTGTATATTAATTAAAATACTATACTGTAAATTACATTTTATTTACAATCT inactivation de la séquence ACCGTTCGTATAGCATACATTATACGAAGTTAT (SEQ ID NO:12) codant p 10 (du codon start au codon stop) nt 118839 - 119121 P10-KO-R GAATCGTACGAATATTATAAAACAATTGATTTGTTATTTTAAAAACGATTT inactivation de la séquence ACCGTTCGTATAATGTATGCTATACGAAGTTAT (SEQ ID NO:13) codant p10 (du codon start au codon stop) nt 118839 - 119121 p10-118725- CCGGGACCTTTAATTCAACCCAACA (SEQ ID NO:14) Vérification F p10-119259- CAGCATTTGTTATACACACAGAACT (SEQ ID NO:15) Vérification R * numérotation selon Ayres et al., Virology. 1994 Aug 1;202(2):586-605. Délétion de gènes du baculovirus La délétion de la cathépsine et de la chitinase dans le bacmide AcMNPV sauvage a été réalisée à partir de la souche E. coli DH1OBac contenant le bacmide AcMNPV (Luckow et al., 1993, cf supra) et transformée par pKD46 (Datsenko et Wanner, 2000, PNAS Vol 97 (12) pages 6640-6645). Un produit de PCR nécessaire pour l'inactivation des gènes cathepsine/chitinase a été généré au moyen des amorces CC-KO-F et CC-KO-R (tableau 1). L'inactivation des gènes a été réalisée suivant la méthode décrite par Marek et al., 2011 et évaluée en utilisant les amorces chitinase-105625F et cathepsin-107849R (tableau 1). La suppression du gène marqueur CAT du bacmide cathepsine/chitinase null (AcbacACCAcat) a été réalisée selon la méthode décrite par Marek et al. (Marek et al., 2011, Biotechnol Bioeng, Vol 108 (5) pages 1056 -67) et vérifiée par PCR et séquençage, en utilisant les amorces mentionnées ci-dessus. L'inactivation de la séquence codante p10 dans AcbacACCAcat a été réalisée de la même manière, en générant un produit de PCR avec les amorces plO-KOF/plO-KO-R (tableau 1). La vérification de l'inactivation correcte du gène a été réalisée par PCR et séquençage avec la paire d'amorces plO-118725-F/ plO-119259-R (tableau 1). La dernière inactivation de gène permet la production du bacmide cathepsine%hitinase/p10 null (AcbacACCAp l 0). Insertion de la cassette rep2/cap8 au locus EGT du bacmide d'AcMNPV L'insertion de la cassette d'expression des gènes d'AAV rep2 et cap8 au locus EGT, a été réalisée dans le génome du bacmide, déjà inactivé pour les gènes chitinase, cathépsine et p10. La cassette d'expression rep2/cap8 a été amplifiée par PCR depuis le plasmide pSR660, grâce aux amorces EGT-lox-F et EGT-SV40-R. L'insertion de ce produit PCR dans le génome du bacmide a été effectuée suivant la méthode décrite par Marek et al., 2011. Brièvement, la cassette d'expression rep2/cap8 a été couplée à un gène de résistance à l'antibiotique Chloramphénicol, bordé des séquences 1ox66 et lox7l (Suzuki et al., 2005 ; appl Environ Microbiol. 71(12) 8472-8480). Ces deux éléments génétiques permettent par la suite l'élimination de ce gène de résistance, par l'action de la Cre recombinase, qui peut alors être utilisé pour des enchainements successifs de délétions ou d'insertions de gènes dans le génome du bacmide. La cassette décrite supra est alors amplifiée par PCR grâce aux amorces EGT-lox-F et EGT-SV40-R. Ce produit PCR purifié sur gel d'agarose et traité par l'enzyme de restriction Dpnl. Il est alors utilisé pour transformer chimiquement des bactéries compétentes contenant le bacmide, déjà inactivé pour les gènes chitinase, cathépsine et p10, le plasmidee pKD46 (Datsenko et Wanner 2000). L'expression des gènes de l'opéron Red du phage lambda codés par le plasmidee pKD46 est induite par l'ajout de L-arabinose à 0,1% (Masse/Volume). Les bactéries recombinantes résistantes au Chloramphenicol sont analysées par PCR pour vérifier l'insertion de la cassette d'expression rep2/cap8 dans le génome du bacmide déjà inactivé pour les gènes chitinase, cathépsine et p10, au locus EGT a été vérifié par PCR en utilisant les amorces EGT-Control 150F et EGT-Control 150R (Tableau 1). Cette insertion a permis l'obtention du bacmide Monobac-AcbacACCAplO-rep2cap8(EGT) Insertion de la cassette rep2/cap8 et du génome recombinant d'AAVr dans le bacmide au site Tn7. Les bactéries E.coli DH10b contenant soit le bacmide AcbacACCAplO, ou le bacmide Monobac-AcbacACCAplO-rep2cap8(EGT) ont été transformées par le plasmide pMON7124 (Luckow et al., 1993). Dans ces bactéries, ainsi que dans les bactéries DHlObac contenant le bacmide Acbac sauvage (Luckow et al., 1993), ont été insérés par recombinaison (Luckow et al. 1993), soit le génome recombinant d'AAV codant pour le gène rapporteur de la phosphatase alcaline sécrétée murine (ou murine secreted alkaline phosphatase (mSeAP) en anglais) sous le contrôle du promoteur CMV et entouré des ITR d'AAV ; soit la cassette d'expression des gènes d'AAV rep2 et cap8. Ces recombinaisons ont respectivement été faites à partir des plasmides pFBD-mSeAP et pFBD-SR660. Ces recombinaisons ont permis de générer les bacmides : - AcbacWT-rep2/cap8(Tn7) ; AcbacACCAp10-rep2/cap8(Tn7) permettant l'expression des gènes rep2 et cap8 depuis le site Tn7. - AcbacWT-mSeAP(Tn7) ; AcbacACCAplO-mSeAP(Tn7) contenant le génome d'AAVr codant pour le gène mSeAP au site Tn7 du bacmide. - AcbacACCAplO-rep2/cap8(EGT)mSeAP(Tn7) permettant l'expression des genes rep2 et cap8 depuis le locus EGT et contenant le génome d'AAVr codant pour le gène mSeAP au site Tn7 du bacmide. -Enfin, le bacmide AcbacACCAplO-rep2/cap8(EGT) permet l'expression des gènes rep2 et cap8 depuis le locus EGT mais n'a pas reçu le génome recombinant d'AAVr-mSeAP au site Tn7. Lignée cellulaire, baculovirus et production d'AAVr Les cellules Sf9 sont entretenues à 27°C dans du milieu SF900II (Invitrogen) dans des spinners Bellco d'un litre. Les baculovirus sont générés suivant le protocole Bac-to-Bac d'Invitrogen, puis amplifiés dans cultures en suspension de cellules Sf9, dans des spinners Bellco de 100ml. Pour produire les vecteurs AAVr les cellules Sf9 sont infectées avec un ou deux baculovirus codant pour les gènes d'AAV rep2 et cap8 et contenant la cassette mSeAP du génome d'AAVr. 70m1 de cellules Sf9 à une densité de 106cellules/ml sont donc infectées à une MOI de 0,1 pour produire les vecteurs AAVr. 96 heures après la production, un aliquot est prélevé pour effectuer les titrations des vecteurs AAVr, le reste est conservé à -80°C. Purification et caractérisation des vecteurs AAVr. Les vecteurs AAVr sont purifiés depuis l'ensemble de la culture cellulaire sur une colonne d'immuno-affinité AVB sepharose (GE Healthcare) suivant les recommandations de Smith et al., 2009. Les vecteurs AAVr purifiés sont analysés (2 x 10+10 vg) sur gel de poly-acrylamide « SDS-PAGE » (système NuPAGe Invitrogen). Après migration le gel est soit coloré au bleu de coomassie ou transféré sur membrane de nitrocellulose (iBlot gel transfer stack nitrocellulose, Invitrogen), avant une analyse par Western blot. Détermination des titres en génomes viraux des vecteurs AAVr. Afin de déterminer le titre en génomes viraux (vg) des vecteurs AAVr produits, une extraction d'ADN viral est effectuée directement depuis l'ensemble de la culture cellulaire, ou bien depuis des échantillons de vecteurs AAVr purifiés. Cette extraction est effectuée en utilisant le système MagNA Pure DNA and viral NA small volume kit (MagNA Pure 96, Roche). Une PCR quantitative en temps réel est ensuite effectuée, avec des amorces hybridant les ITRs de l'AAV. La quantification absolue est effectuée par rapport à un plasmide de référence contenant les régions amplifiées par PCR quantitative et dont le nombre de copies est connu. Les titrations sont effectuées au même moment, sur la même plaque et dans les mêmes conditions et par un opérateur indépendant, afin de réduire au maximum la variabilité expérimentale. Détection des protéines par Western Blot Les échantillons de culture contenant le vecteurs AAVr ou des échantillons purifiés, sont analysés par Western blot afin des détecter la présence des protéines VP et des protéines Rep d'AAV. La révélation des protéines est effectué suivant la méthode développée par LI-COR, avec un appareil Odyssey et le logiciel Odyssey 2.1. Les anticorps primaires utilisés sont, l'anti VP igGl clone B1 de souris (Progen) pour la détection des protéines VP et l'anti Rep igGl de souris clone 303.9 (Progen) pour la détection des Rep. Ces anticorps sont utilisés respectivement à une dilution 1/250ème et 1/100ème dans du tampon « infrared imaging system blocking buffer », LI-COR. Les anticorps secondaires de chèvre utilisés sont dirigés contre les anticorps primaires et couplés au fluorochrome «Dye 680 » de LI-COR. La protéine de baculovirus P35 est également détectée par un anticorps primaire spécifique et un anticorps secondaire couplé au « Dye 800 » de LI-COR. Analyse statistique La significativité statistique des différences observées pour les titres d'AAVr obtenu pendant la production a été analysée. Un test de Fisher a été réalisé afin de déterminer l'égalité de deux variances. Un test de Student a ensuite été mis en oeuvre. Le logiciel Excel a été utilisé pour ces analyses. RESULTATS Génération d'un baculovirus exprimant au locus EGT, les gènes d'AAV rep2 et cap8. Pour insérer les gènes d'AAV rep2 et cap8 dans le génome du bacmide d'AcMNPV, un génome de bacmide déjà modifié a été utilisé. Nous avons préalablement montré que 25 l'utilisation d'un bacmide inactivé pour les gènes chitinase, cathépsine et p10 réduisait la protéolyse de la capside d'AAVr pour certains serotypes. L'insertion des gènes d'AAV rep2 et cap8 au locus EGT a donc été effectuée dans le bacmide AcbacACCAp 1 0, suivant la méthodologie développée par Marek et al., 2011 (Figure 1.). Cette insertion a été vérifiée par PCR et séquençage. Elle a aboutit à la création du bacmide AcbacACCAplO-rep2cap8(EGT). 30 Ce bacmide dispose toujours du site classique de clonage par recombinaison, le Tn7 (Luckow et al., 1993), dans lequel a pu être inséré le génome d'AAVr exprimant le gène de la mSeAP et générant ainsi la construction AcbacACCAp10-rep2cap8(EGT)SeAP(Tn7). Parallèlement les bacmides contrôles ont été générés, avec l'insertion, au site Tn7, du génome d'AAVr ou de la cassette d'expression des gènes d'AAV rep2 et cap8. Ces bacmides20 contrôles ont été générés sur un fond génétique non modifié ou sur le fond génétique inactivé pour les gènes chitinase, cathépsine et p10. Après recombinaison, les ADN de bacmide ont été extraits et purifiés suivant le protocole Bac-to-Bac (Invitrogen) et l'absence de bacmide non recombinant a été vérifié par PCR. Les bacmides ont été transfectés dans les cellules Sf9, purifiés sur plaque par plage de lyse et amplifiés. Aucune différence en termes de titre baculoviral (pfu/ml) n'a été observé entre toutes les constructions. L'insertion des gènes d'AAV rep2 et cap8 au locus EGT permet leur expression. Tout d'abord, la capacité à générer le baculovirus AcbacACCAplO-rep2cap8(EGT) en cellules Sf9, sans modifier le titre viral, confirme la possibilité d'insérer une cassette d'expression génique au locus EGT sans modifier la viabilité du baculovirus, comme précédemment observé par Noad et al., 2009. Le niveau d'expression des protéines peut être modifié suivant le site d'insertion du gène dans le génome du baculovirus (Noad et al., 2009). Le locus EGT a donc été choisi pour insérer la cassette d'expression rep2/cap8 sur la base d'une équivalence d'expression en comparaison à l'expression dirigée depuis le site Tn7 (Noad et al.). Comme observé dans la figure 2, les protéines Rep et VP d'AAV sont exprimées à des niveaux comparables, que la cassette d'expression soit insérée au locus EGT comme dans la construction AcbacACCAplO-rep2cap8(EGT) (Figure 2, MB Cl et C2) ou au site Tn7 pour les constructions AcbacACCAplO et AcbacWT (Figure 2, ACCP-SR660 Cl et C2 ; WTSR660 Cl et C2). Après insertion du génome d'AAVr mSeAP au site Tn7 du bacmide (AcbacACCAplO-rep2cap8(EGT)SeAP(Tn7)), l'expression des gènes rep2 et cap8 reste équivalente à celle observée pour ce même baculovirus ne contenant pas le génome de l'AAVr (Figure 3). La production d'AAVr par un seul baculovirus améliore la productivité cellulaire. Des productions d'AAVr ont été réalisées en spinners dans des conditions identiques. Les titres d'AAVr ont ensuite été déterminés et sont indiqués figure 4. La production classique à 2 baculovirus (Smith et al., 2009) utilisant les baculovirus AcbacWT-rep2/cap8(Tn7) &30 AcbacWT-mSeAP(Tn7) nous permettent d'obtenir un titre de 1,44x101° vg/ml d'AAVr. La production équivalente utilisant cette fois les baculovirus inactivés pour les gènes chitinase, cathépsine et p10, AcbacACCAp1O-rep2/cap8(Tn7) & AcbacACCAp1O-mSeAP(Tn7) permettent d'obtenir des titres de 2,23x1010 vg/ml. Ces résultats sont dans le même ordre de grandeur que ceux obtenus pour des productions effectuées avec le génome du bacmide non modifié. Afin de vérifier l'effet locus du déplacement de la cassette d'expression rep2/cap8 du site Tn7 au locus EGT, des productions ont été faites avec le baculovirus AcbacACCAplO-rep2/cap8(EGT) et le baculovirus AcbacACCAplO-mSeAP(Tn7). Le titre obtenu est de 4,63x1010 vg/ml d'AAVr, soit un doublement du titre obtenu en comparaison avec les productions où la cassette rep2/cap8 est insérée au site Tn7 (p=0,005). Ce résultat montre un effet locus positif pour la production d'AAVr lorsque la cassette d'expression rep2/cap8 est insérée au locus EGT au lieu du site Tn7. Enfin, la production d'AAVr en utilisant un seul baculovirus, AcbacAC CAp 1 0-rep2/cap 8 (EGT)-mS eAP(Tn7) a conduit à un 9,4x1010 vg/ml permettant ainsi une augmentation d'un facteur 6,5 (p=0,006) de la productivité en comparaison de la production d'AAVr réalisée avec deux baculovirus AcbacWT-rep2/cap8(Tn7) & AcbacWT-mSeAP(Tn7). Par ailleurs, l'analyse du profile protéïque des vecteurs AAV recombinant purifiés montre la disparition de bandes de dégradations de la capside d'AAV recombinant associées à l'activité de la Cathépsine de baculovirus (Figure 5). Ces bandes sont visibles pour les vecteurs AAV produit avec le baculovirus sauvage (Figure 5 piste 1). Ces bandes de dégradation ne sont plus présentes dans les vecteurs AAV recombinant produits avec les baculovirus pour lesquels les gènes chitinase, cathépsine et p10 sont éliminés du génome du baculovirus (Figure 5 pistes 2 ; 3 ; 4). Cette diminution de la dégradation des vecteurs AAV recombinant est associée à une augmentation de l'infectiosité in vivo pour ces vecteurs. REVENDICATIONS1. Bacmide recombinant comprenant une ou plusieurs cassettes d'expression des composantes protéiques nécessaires à la production d'un vecteur viral hétérologue, et un génome recombinant d'un vecteur viral hétérologue, lesdites cassettes d'expression et ledit génome recombinant étant insérés dans un ou plusieurs locus choisi dans le groupe constitué des locus egt, polyédrine, ctx, 39k, orf5l, gp37, iap2 et odv-e56, p10 et p94. 2. Bacmide selon la revendication 1, comprenant au moins une cassette d'expression des gènes rep et/ou cap d'AAV insérée dans lesdits un ou plusieurs locus. 3. Bacmide recombinant selon la revendication 2, lesdits gènes rep et cap étant contenus dans une cassette d'expression unique, notamment en orientation inverse, ladite cassette étant plus particulièrement insérée dans le locus egt. 4. Bacmide recombinant selon la revendication 2 ou 3, le génome recombinant étant un génome recombinant AAV inséré dans un locus différent du(des) locus utilisés pour les gènes rep et cap d'AAV, ledit génome recombinant étant notamment inséré au niveau du locus polyédrine. 5. Bacmide recombinant selon la revendication 1, comprenant une ou plusieurs cassettes d'expression des gènes rep et/ou cap d'AAV, lesdites une ou plusieurs cassettes d'expression étant insérées dans un locus choisi dans le groupe constitué des locus egt, ctx, 39k, orf5l, gp37, iap2, odv-e56, p10 et p94 du bacmide. 6. Bacmide recombinant selon la revendication 1, comprenant un génome recombinant AAV dans un locus choisi parmi les locus polyédrine, egt, ctx, 39k, orf5l, gp37, iap2, odv-e56, p10 et p94 du bacmide, ledit génome recombinant AAV étant inséré dans un locus différent du(des) locus utilisés pour les gènes rep et cap d'AAV. 7. Bacmide recombinant selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, ledit bacmide étant dérivé d'AcMNPV. 8. Bacmide recombinant selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, dans lequel les gènes chitinase, cathépsine et p10 sont délétés. 9. Bacmide recombinant selon l'une quelconque des revendications 4 et 6 à 8, où le génome recombinant AAV comprend un gène hétérologue codant une protéine, un ARN interférant ou un ARN antisens, en particulier thérapeutique. 10. Baculovirus recombinant contenant un bacmide recombinant selon l'une quelconque des revendications 1 à 7 à titre de génome. 11. Procédé pour produire un baculovirus recombinant, comprenant la culture d'une cellule procaryote contenant le bacmide recombinant défini dans l'une quelconque des revendications 1 à 10 dans des conditions adaptées à la production d'un baculovirus. 12. Cellule eucaryote ou procaryote contenant le bacmide recombinant selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, ou infectée par le baculovirus recombinant de la revendication 10. 13. Cellule selon la revendication 12, ladite cellule étant une cellule d'insecte dérivée des lignées Spodoptera frugiperda ou Trichoplusia ni, par exemple les cellules Sf21, Sf9, TN 5B1-4 ou High Five. 14. Procédé pour produire un AAV recombinant comprenant la mise en culture du baculovirus recombinant selon la revendication 10 avec une cellule, notamment une cellule d'insecte (par exemple une cellule Sf9, Sf21, TN 5B1-4 ou High Five), susceptible d'être infectée par ledit baculovirus, dans des conditions permettant l'infection de la cellule par le baculovirus et la production dudit AAV recombinant.