FR 2984328 A1 20130621 FR 1161981 A 20111220 L'invention concerne la détection in vitro d'une infection par un virus de l'hépatite C (VHC), et l'utilisation, à cette fin, d'un peptide antigénique dérivé de la protéine de capside du virus. Arrière-plan technologique de l'invention : L'infection par le virus de l'hépatite C est un problème de santé préoccupant et reconnu depuis longtemps, en particulier en transfusion sanguine. Pour réduire les risques post-transfusionnels, il est nécessaire de détecter la présence du virus lui-même, avant l'apparition d'anticorps, et le plus tôt possible après la contamination. Cette période entre la contamination et la séroconversion (c'est à dire l'apparition d'anticorps) est appelée « fenêtre sérologique ». Dans l'optique de disposer d'une méthode simple, sensible, spécifique, reproductible, bon marché et de mise en oeuvre facile, automatisable, en vue du dépistage de masse-pour détecter, en premier lieu, l'antigène VHC pendant la période de la fenêtre sérologique, puis suivre l'évolution sérologique du patient après la séroconversion, une détection des anticorps anti-VHC, associée à une détection d'un antigène de VHC, a été proposée. Cependant, ceci pose un problème majeur, celui de l'interférence entre les anticorps anti-VHC présents dans le sérum et des anticorps anti-VHC marqués. Ainsi l'introduction sur une phase solide, en vue de la détection d'un anticorps donné, d'un antigène cible qui aurait les mêmes épitopes que ceux reconnus par le(s) anticorps marqué(s), utilisé(s) en vue de la détection simultanée en sandwich d'un antigène, entraînerait irrémédiablement une fixation d'anticorps marqué s) sur la phase solide et donc une réponse faussement positive de l'essai. Ceci est particulièrement vrai dans un système de détection simultanée, sur la même phase solide, d'anticorps anti-capside du VHC et d'antigène de capside du VHC. Ainsi le dépôt sur la phase solide, en vue de la détection d'anticorps anti-capside du VHC, d'un antigène de capside qui a les mêmes épitopes que ceux reconnus par le(s) anticorps anti-capside VHC marqué(s) utilisé(s) en vue de la détection de l'antigène capsidique entraîne une fixation d'anticorps marqué(s) sur la phase solide et résulte en une réponse faussement positive de l'essai. Face au problème des interférences, la demande EP 1 020 727 (Advanced Life Science Institute) propose une méthode de mesure simultanée de l'antigène de capside VHC et des anticorps anti-capside VHC (un essai de type « Combo »), dans laquelle l'antigène est capturé et marqué par des anticorps dirigés contre des épitopes capsidiques différents des épitopes capsidiques servant simultanément à la capture et la révélation ou détection d'anticorps anti-capside. Un exemple représentatif est donné où, dans l'essai simultané de détection de l'antigène en sandwich et des anticorps en essai indirect, on utilise, pour détecter l'antigène, un premier anticorps (de capture), dirigé contre les épitopes de la séquence de l'acide aminé (AA) 100 à l'acide aminé 130 de la capside du VHC, et un deuxième anticorps (de détection), dirigé contre les épitopes de la séquence AA40-50, et, pour détecter les anticorps, l'antigène de capture utilisé contient pour sa part les séquences AA1-42 et AA66-80. La demande de brevet WO 01/96875 (CHIRON) décrit, entre autres, un essai de détection simultanée de la capside et des anticorps anti NS3 et NS4 faisant usage de N- laurylsarcosine comme détergent. Elle évoque un essai de détection simultanée de l'antigène de capside (en sandwich) et des anticorps anti- capside et anti-protéines non-structurales du VHC (en sandwich double antigène). On utilise, pour capturer l'antigène, deux anticorps, c11-3 et c11-7, réputés reconnaître une vaste portion N-terminale (AA 10-53) de la capside du VHC, et pour la détection un troisième anticorps, c11-14, réputé reconnaître une portion C-terminale (AA 120-130) de la capside du VHC. Pour détecter les anticorps, l'antigène de capture utilisé est un antigène de fusion à épitopes multiples qui contient, en fusion avec un fragment de superoxyde-dismutase (« SOD »), des antigènes NS3, NS4, NS5 et des séries de séquences capsidiques de plusieurs souches de VHC : AA 9-53, porteuse de la mutation R47L, AA 64-88 et AA 67-84. La demande de brevet EP 1 251 353 (Ortho-Clinical Diagnostics) décrit un essai «Combo complet » utilisant les mêmes anticorps pour la détection de la capside, sans toutefois préciser leur origine ni leur spécificité épitopique. La détection des anticorps anti-capside se fait à l'aide d'un antigène de capside modifié (par mutagenèse) : C22KSNV47, 48 (protéine de fusion avec la SOD comprenant la séquence capsidique AA 10-99 délétée des acides aminés 47 et 48) ou C22KSR47L (protéine de fusion avec la SOD comprenant la séquence capsidique AA 10-99, avec une leucine remplaçant une arginine en position 47). La demande de brevet W02003/002749 (Abbott) décrit de nombreux antigènes et essais de détection d'antigène capsidique du VHC. Le seul essai « Combo complet » qu'elle décrit-sous le nom de « Real Combo » fait usage, pour la détection des anticorps anti capside, d'un peptide biotinylé correspondant aux acides aminés 11-28 de la capside, immobilisé en phase solide. Pour la détection de la capside, elle met en oeuvre la combinaison d'anticorps d'Advanced Life Science Institute C11-14 (reconnaissant la séquence capsidique AA 45-50) en phase solide et C11-10 (reconnaissant la séquence capsidique AA 32-36) marqué à l'acridine. La demande WO 03/002 749 réalise donc la capture de l'antigène capsidique et la capture des anticorps anti-capside par le biais de deux sites capsidiques clairement distincts, i. e. non superposés, (AA 11-28 pour détecter les anticorps et anticorps anti AA 32-36 et AA 45-50 pour détecter l'antigène). La demande de brevet EP 1 310 512 (Ortho-Clinical Diagnostics) décrit l'utilisation de peptides contenant une séquence de capside mutée, éliminant la possibilité de se lier à des anticorps monoclonaux de souris, spécifiques de VHC, utilisés dans un essai de détection d'une infection par VHC. Les auteurs de l'invention décrite dans la demande de brevet W02003/095968 ont rendu artificiellement différents, par modification de structure, certains épitopes des antigènes cibles utilisés pour capturer les anticorps. Les épitopes ainsi modifiés sont alors détruits. Simultanément, les anticorps utilisés pour la capture et/ou la détection des antigènes sont eux choisis de telle sorte qu'ils reconnaissent précisément des épitopes non modifiés présents sur les antigènes du patient, et qu'ils ne puissent ainsi pas se lier aux antigènes modifiés, qui ne présentent plus ces mêmes épitopes. Puisque les épitopes ne sont plus identiques, il n'existe donc plus de compétition entre les anticorps utilisés pour capturer et/ou détecter l'antigène de VHC et les anticorps du patient. La demande de brevet W02003/095968 décrit plus précisément un peptide de capside du VHC muté en au moins deux sites épitopiques distincts, et notamment le peptide 1-75 (G34-G44-G47), Résumé de l'invention : Les inventeurs proposent maintenant un procédé de détection d'une infection par le VHC, encore plus avantageux. Tout en évitant le problème d'interférence, le procédé présente une excellente sensibilité, permet une détection précoce, tout en permettant de suivre l'évolution sérologique du patient après la séroconversion. Plus précisément, l'invention fournit un procédé de détection in vitro d'une infection par un virus de l'hépatite C (VHC) dans un échantillon biologique, comprenant la détection simultanée de la protéine de capside de VHC, et d'un anticorps dirigé contre ladite protéine de capside, ce procédé utilisant, pour capturer les anticorps anti-capside, un peptide comprenant un fragment antigénique dérivé de la capside de VHC tronquée. Ainsi un objet de l'invention est un procédé de détection in vitro d'une infection par un virus de l'hépatite C (VHC) dans un échantillon biologique, comprenant la détection simultanée de la protéine de capside de VHC, et d'un anticorps dirigé contre ladite protéine de capside, présents dans l'échantillon biologique, procédé comprenant a) la mise en présence de l'échantillon biologique avec un anticorps de capture dirigé contre ladite protéine de capside, et un antigène de capture capable de capturer les anticorps anti-protéine de capside présents dans l'échantillon; b) l'incubation du mélange dans des conditions permettant la formation de complexes antigènes- anticorps ; c) la révélation des complexes antigènes-anticorps formés, qui met éventuellement en oeuvre un anticorps de détection, marqué, capable de se lier à la protéine de capside capturée et/ou éventuellement aussi un antigène de détection, marqué, capable de se lier à l'anticorps dirigé contre la capside capturé; caractérisé en ce que ledit antigène de capture est un peptide comprenant, ou consistant en, un fragment antigénique dérivé de la capside de VHC allant au maximum de l'acide aminé 1 à l'acide aminé 44, ledit fragment antigénique comprenant, ou consistant en, i) une séquence allant des acides aminés 6 à 37 de la protéine de capside de VHC, et présentant au moins une mutation ponctuelle d'au moins un acide aminé aux positions 33 à 36, et de préférence de l'acide aminé en position 34, ou ii) une séquence homologue de celle-ci Un autre objet de l'invention est un peptide comprenant un tel fragment antigénique. Un autre objet de l'invention est une trousse utile pour la détection d'une infection par un virus VHC dans un échantillon biologique, comprenant un tel peptide, en tant qu'antigène de capture des anticorps anti-capside de VHC. Description détaillée de l'invention : Définitions Le terme « virus de l'hépatite C » ou « VHC » couvre ici toutes les souches, tous les types, sous-types et génotypes du virus responsable de l'hépatite C. Le procédé de l'invention vise en effet à détecter toute infection par le VHC, quels que soient son origine et son génotype. Ceci comprend en particulier les types et sous-types bien connus du virus circulant en Europe, aux Etats-Unis, au Japon, etc... (c'est à dire les 6 génotypes majeurs : 1,2, 3, 4,5, 6 et leurs sous-types la, 1b, 3a,...). Voir Stuyver et al. (1994) ; Bukh (1995). La protéine de capside de VHC est une protéine de 191 acides aminés, de séquence SEQ ID NO :1 : 1 mstnpkpqrk tkrntnrrpq dvkfpgggqi vggvyllprr gprlgvratr ktsersqprg 61 rrqpipkarq pegrawaqpg ypwplygneg mgwagwllsp rgsrpswgps dprrrsrnlg 121 kvidtltcgf adlmgyiplv gaplggaara lahgvrvled gvnyatgnlp gcsfsiflla 181 llscltipas a Sauf indication contraire, les acides aminés sont localisés dans la protéine de capside en référence à la séquence SEQ ID NO :1 qui est une séquence consensus du génotype 1 (sous-types la, 1 b, 1c). Plusieurs épitopes de la protéine de capside ont été identifiés. On connaît notamment les épitopes localisés entre l'acide aminé 16 et l'acide aminé 40. Par l'expression « allant au maximum de l'acide aminé 1 à l'acide aminé 44 », on entend que le peptide d'au maximum 44 acides aminés, qui ne s'étend pas au-delà de l'acide aminé 44 de la séquence SEQ ID NO :1, mais peut être éventuellement plus court, pour autant qu'il contienne la séquence 6-37 (toujours en référence à SEQ ID NO :1). Dans le contexte de l'invention, un « échantillon biologique » est de préférence constitué par un liquide biologique, tel que du sang, plasma, sérum, de l'urine, du liquide céphalorachidien, de la salive, etc... Le terme « anticorps » se réfère à tout anticorps entier ou fragment fonctionnel d'un anticorps comprenant ou consistant en au moins un site de reconnaissance antigénique, permettant audit anticorps de se lier à au moins un déterminant antigénique d'un composé antigénique. A titre d'exemple de fragments d'anticorps on peut citer les fragments Fab, Fab', F (ab') 2 ainsi que les chaînes scFv (Single chain variable fragment), dsFv (Double-stranded variable fragment), etc... Ces fragments fonctionnels peuvent notamment être obtenus par génie génétique. La production d'anticorps monoclonaux ou de sérums polyclonaux monospécifiques utiles dans le cadre de l'invention relève de techniques conventionnelles, qui sont détaillées plus loin. Par « anticorps de capture », on entend un anticorps ou une partie d'anticorps, de préférence fixé sur une phase solide, qui est capable de retenir un antigène du VHC présent dans un échantillon biologique, par liaison affine. La présence des anticorps et antigènes dans l'échantillon biologique est révélée par des marqueurs spécifiques. S'agissant de la détection de l'antigène, l'invention prévoit notamment une détection à l'aide d'au moins un « anticorps de détection ». Un tel « anticorps de détection », marqué, est capable de se lier à l'antigène capturé, par liaison affine, en reconnaissant un site épitopique, différent de celui reconnu par l'anticorps de capture. S'agissant de la détection des anticorps, on peut utiliser notamment des anticorps anti-immunoglobuline, ou anti-isotype, marqués, par exemple des anti-immunoglobulines G dans un format ELISA indirect ou des antigènes marqués dans un format sandwich. L'anticorps de capture et/ou l'anticorps de détection reconnaît l'épitope naturel de la portion 33-36 de la protéine de capside de VHC. Le terme « marqué » se réfère aussi bien à un marquage direct (par le biais d'enzymes, radioisotopes, fluorochromes, composés luminescents, etc) qu'à un marquage indirect (par exemple, par le biais d'anticorps eux- mêmes marqués de manière directe ou à l'aide de réactifs d'une « paire d'affinité » marquée, telle que, mais non exclusivement, la paire avidine marquée-biotine, etc.). Par « antigène de capture », on entend un fragment antigénique isolé, de préférence fixé sur une phase solide, qui est capable d'être reconnu par des anticorps anti- VHC et de permettre une liaison affine avec ces derniers. Par « antigène de détection », on entend un antigène marqué. Il permet soit de détecter par compétition l'antigène capturé, soit de détecter des anticorps par méthode sandwich antigène-anticorps-antigène classique, encore appelée méthode « sandwich double antigène » (Maiolini et al. (1978)). Le terme « spécifique » ou « spécifiquement », quand il se réfère à une reconnaissance ou une liaison spécifique d'un anticorps pour un antigène, signifie que l'anticorps interagit avec l'antigène sans interaction substantielle avec d'autres antigènes, ou si l'on parle de reconnaissance « spécifique » avec un épitope, par reconnaissance quasi-exclusive de cet épitope. Des constantes d'association supérieures à 108 L. mol-1 sont préférables. Le terme « homologue » se réfère à un peptide comprenant un fragment antigénique dérivé de la capside de VHC d'au maximum 44 acides aminés. Ce fragment antigénique comprend une séquence différant de la séquence allant au maximum des acides aminés 1 à 44 de la protéine de capside de VHC, par une substitution conservative d'un ou plusieurs acides aminés, ou une délétion d'un ou plusieurs acides aminés à l'extrémité N-terminale (acides aminés 1 à 5) et /ou C-terminale (acides aminés 38 à 44). Anticorps et antigènes de capture et de détection Les anticorps utilisés dans la présente invention sont des anticorps spécifiques de l'antigène, et, pour cette raison, sont des anticorps monoclonaux ou des anticorps polyclonaux monospécifiques, c'est à dire qu'ils ne reconnaissent spécifiquement qu'un épitope. Le procédé de l'invention vise plus particulièrement à détecter des anticorps anticapside, et utilisent des antigènes de capture qui fixent les anticorps anti-capside présents dans l'échantillon biologique. Le peptide destiné à capturer les anticorps anti-capside comprend un fragment antigénique dérivé de la capside de VHC allant au maximum des acides aminés 1 à 44, ledit fragment antigénique comprenant une séquence allant des acides aminés 6 à 37 de la protéine de capside de VHC, ou une séquence homologue de celle-ci. Le peptide présente au moins une mutation ponctuelle d'au moins un acide aminé dans la séquence 33-36, et de préférence de l'acide aminé en position 34. Il peut s'agir d'une substitution par n'importe quel acide aminé non conservatif. Pour l'acide aminé 34 on utilise de préférence différent d'un résidu isoleucine, leucine, methionine, phénylalanine ou alanine. De préférence, on choisit un acide aminé non chargé. De préférence l'acide aminé valine en position 34 est substitué par une glycine. Du fait de la mutation du peptide antigénique de capture, il n'y a pas interférence entre la réaction antigène immobilisé-anticorps anti-capside de l'échantillon, et la réaction anticorps immobilisé-antigène de capside de l'échantillon. Selon un mode de réalisation préféré, l'anticorps de capture immobilisé sur la phase solide est un anticorps dirigé contre l'épitope naturel 33-36 de la protéine de capside, tandis que l'anticorps de détection en cl), marqué directement ou indirectement, est dirigé contre un épitope différent des épitopes naturels présents dans la portion 33 à 36, plus généralement 6 à 37, de ladite protéine de capside du VHC. Par exemple il peut s'agir d'un anticorps dirigé contre l'épitope 44-47 de la capside. Selon un autre mode de réalisation préféré, l'anticorps de capture immobilisé sur la phase solide est un anticorps dirigé contre un épitope différent des épitopes naturels présents dans la portion 33 à 36, plus généralement 6 à 37, de ladite protéine de capside du VHC - par exemple il peut s'agir d'un anticorps dirigé contre l'épitope 44-47 de la capside-, tandis que l'anticorps de détection en cl), marqué directement ou indirectement, est un anticorps dirigé contre l'épitope naturel 33-36 de la protéine de capside. Selon un mode de réalisation particulier, l'antigène de capture est un peptide consistant en la séquence 1 à 44 de la protéine de capside de VHC, et présentant une mutation ponctuelle de l'acide aminé en position 34, de préférence une substitution en glycine. Un exemple préféré est donc le peptide de séquence SEQ ID NO :2. 1MSTNPKPQRKTKRNTNRRPQDVKFPGGGQIVGGG34YLLPRRGPRL Un peptide homologue, consistant en une séquence telle que définie ci-dessus, mais tronquée en outre de 1 à 5 acides aminés du côté N-terminal ou C-terminale, peut aussi être utilisé. On peut ainsi utiliser le peptide 6-37, présentent une mutation ponctuelle d'au moins un acide aminé dans la séquence 33-36, et de préférence de l'acide aminé en position 34. De préférence il s'agit du peptide de séquence SEQ ID NO :3. 6KPQRKTKRNTNRRPQDVKFPGGGQIVGGG34Y1-1-37 Des peptides ne se distinguant des peptides ci-dessus que par substitution conservative&, sont également compris dans l'invention. L'expression "substitution conservative" exprime tout remplacement d'un résidu acide aminé par un autre, sans altération de la conformation générale ni de l'antigénicité du peptide. La substitution conservative inclut, sans s'y limiter, le remplacement par un acide aminé ayant des propriétés similaires (comme par exemple la forme, la polarité, le potentiel de liaison hydrogène, l'acidité, la basicité, l'hydrophobicité et autres). Les acides aminés ayant des propriétés similaires sont bien connus dans l'art. Par exemple, l'arginine, l'histidine et la lysine sont des acides aminés hydrophiles basiques et peuvent être interchangeables. De la même façon, l'isoleucine, un acide amine hydrophobe, peut être remplacé par une leucine, une méthionine ou une valine. Les acides aminés hydrophiles neutres pouvant se substituer les uns les autres incluent l'asparagine, la glutamine, la sérine et la thréonine. Par "substitué" et "modifié " l'invention comprend les acides aminés ayant été altéré ou modifié par rapport à un acide aminé trouvé dans la nature. Ainsi, dans le contexte de la présente invention, une substitution conservative est une substitution d'un acide aminé par un autre ayant des propriétés similaires. Des exemples de substitutions conservatives sont donnés dans le tableau 1 ci-dessous : Tableau 1. Substitutions conservatives I Caractéristique de la chaîne latérale Acide aminé Non polaire GAPILV Polaire non chargée C S T M N Q Polaire chargée D E K R Aromatique H F W Y autre NQDE Selon Lehninger, 1975, les acides aminés conservatifs peuvent également être groupés comme illustré dans le tableau 2 ci-dessous : Table 2. Substitutions conservatives Il Caractéristique de la chaîne latérale Acide aminé Non polaire (hydrophobe) A. Aliphatique : ALIVP B. Aromatique : F W C. Contenant un sulfuryle : M D. Autre G Polaire non chargée A. Hydroxyle : S T Y B. Amides : N Q C. Sulfhydryle: C D. Autre G Chargée positivement (basique) K R H Chargée négativement (acide) D E Encore une autre alternative de substitution conservative est présentée dans le tableau 3 ci-dessous: Table 3. Substitutions Conservatives III Résidu d'origine Exemple de substitution Ala (A) Val (V), Leu (L), Ile(I) Arg (R) Lys (K), Gln (Q), Asn (N) Asn (N) Gln (Q), His (H), Lys (K), Arg (R) Asp (D) Glu (E) Cys(C) Ser (S) Gln (Q) Asn (N) Glu (E) Asp (D) His (H) Asn (N), Gln (Q), Lys (K), Arg (R) Ile(I) Leu (L), Val (V), Met (M), Ala (A), Phe (F) Leu (L) Ile(I), Val (V) , Met (M), Ala (A), Phe (F) Lys (K) Arg (R), Gln (Q), Asn (N) Met (M) Leu (L), Phe (F), Ile(I) Phe (F) Leu (L), Val (V), Ile(I), Ala (A) Pro (P) Gly (G) Ser (S) Thr (T) Thr (T) Ser (S) Trp (W) Tyr (Y) Tyr (Y) Trp (W), Phe (F),Thr (T), Ser (S) Val (V) Ile(I), Leu (L), Met (M), Phe (F), Ala (A) Les peptides conformes à l'invention peuvent être préparés par toutes les techniques classiques de synthèse peptidique, à savoir notamment par synthèse chimique ou recombinaison génétique. Dans un mode de réalisation préféré, les peptides sont obtenus par synthèse chimique. De préférence encore, les peptides sont obtenus soit par condensation successive des résidus d'acides aminés dans l'ordre requis, soit par condensation des résidus sur un fragment préalablement formé et contenant déjà plusieurs acides aminés dans l'ordre approprié, ou encore par condensation de plusieurs fragments préalablement préparés, en prenant soin de protéger, au préalable, toutes les fonctions réactives portées par les résidus d'acides aminés, excepté les fonctions amine et carboxyle engagées dans la liaison peptidique lors de la condensation, et notamment par la technique de synthèse en phase solide de Merrifield, qui est avantageuse pour des raisons de pureté, de spécificité antigénique, d'absence de produits secondaires non désirés et pour sa facilité de mise en oeuvre (Merrifield, (1963) ; R. C. Sheppard (1971) ; Atherton et al. (1989)). Comme synthétiseur automatique, on peut utiliser le synthétiseur"9050 Plus Pep Synthesizer"de Millipore, le synthétiseur "Pioneer"de Perseptive, le synthétiseur "433A"de ABI (Applied Biosystems Inc.) ou le synthétiseur «Symphony » de Rainin. Les peptides peuvent également être obtenus par synthèse en phase homogène. Le peptide antigénique destiné à capturer les anticorps anti-capside peut être prolongé à son extrémité N-Terminale par un bras espaceur Un objet de l'invention est aussi un tel conjugué peptidique comprenant le peptide antigénique, lié de manière covalente, à son extrémité N-Terminale, à un bras espaceur.. Par « bras espaceur», on entend une molécule qui est de préférence un peptide, de préférence de 1 à 8 acides aminés de préférence fonctionnalisé, c'est-à-dire présentant des fonctions thiol, hydrazide, aldehyde, ou une biotine, par exemple. Il s'agit.généralement d'un peptide de 1 à 8 acides aminés, qui peut comprendre des acides aminés non naturels, tels les acides o-aminés. De préférence ce bras espaceur contient au moins un résidu cystéine. Selon un mode de réalisation préféré, le bras espaceur est C-Hx, où C est une cystéine et Hx l'acide 6-aminohexanoïque. Selon un autre mode de réalisation, le bras espaceur est le peptide de séquence CGG. Le peptide de capture peut être couplé de manière covalente à lui-même ou il peut être couplé à une molécule porteuse via le bras espaceur .Le bras espaceur permet ainsi d'optimiser l'accrochage du peptide antigénique sur une surface solide, une protéine ou un polymère fonctionnalisé soluble et/ou permet de conjuguer plusieurs molécules antigéniques. De préférence, la molécule porteuse est une protéine comme l'albumine bovine sérique (BSA), ou l'ovalbumine. Selon un autre mode de réalisation, le peptide est lié, via le bras espaceur, à un amino-dextran. Ainsi, selon un mode de réalisation particulier, le conjugué peptidique comprend un bras espaceur lié de manière covalente à plusieurs peptides antigéniques, identiques ou différents. De préférence un homodimère est ainsi formé. On peut combiner la détection des anticorps anti-capside à celle d'anticorps contre une autre protéine de VHC. Divers antigènes de capture, ou de détection, peuvent être combinés ensemble. Ce mode de réalisation, qui met en oeuvre plusieurs antigènes de capture, et/ou de détection, différents, permet, par exemple, la détection simultanée d'anticorps anti-capside et d'anticorps anti- protéines non structurales, par exemple NS3 et/ou NS4 ou NS5 du VHC. Une détection simultanée des anticorps anti-capside et des anticorps anti-NS3 est particulièrement préférée. L'invention comprend également une détection simultanée d'antigène capsidique, d'anticorps anti- capside, d'anticorps anti-protéines structurales d'enveloppe El et/ou E2, d'antigène d'enveloppe El et/ou E2, et/ou d'anticorps anti-protéines non structurales NS3 et/ou NS4 ou NS5 du VHC. D'autres combinaisons envisageables font aussi partie de l'invention. Procédés de détection Le procédé de l'invention comprend la détection simultanée de la protéine de capside de VHC, et d'un anticorps dirigé contre ladite protéine de capside, présents dans l'échantillon biologique, procédé comprenant a) la mise en présence de l'échantillon biologique avec un anticorps de capture dirigé contre ladite protéine de capside, et un antigène de capture capable de capturer les anticorps anti-protéine de capside présents dans l'échantillon; b) l'incubation du mélange dans des conditions permettant la formation de complexes antigènes-anticorps ; c) la révélation des complexes antigènes-anticorps formés, qui met éventuellement en oeuvre un anticorps de détection, marqué, capable de se lier à la protéine de capside capturée et/ou éventuellement aussi un antigène de détection, marqué, capable de se lier à l'anticorps dirigé contre la capside capturé. De manière générale, et sauf indication contraire, l'antigène de capture se réfère ici aussi bien au fragment antigénique dérivé de la capside de VHC allant au maximum de l'acide aminé 1 à l'acide aminé 44, qu'à un conjugué peptidique comprenant ce fragment, comme décrit plus haut. L'échantillon biologique peut être éventuellement traité dans une étape préalable, ou mis en présence de l'antigène de capture et de l'anticorps de capture dans des conditions favorisant l'exposition des antigènes à détecter. Avantageusement, on traite l'échantillon par un agent dénaturant, avant la détection, et de préférence, avant sa mise en contact avec les anticorps utilisés. Cet agent dénaturant peut notamment être constitué d'un ou plusieurs détergents de type non-ionique, tel (s) que, par exemple, le Tween 20, le Triton X-100, le Nonidet P-40 (NP40) (tert-Octylphenoxy poly (oxyethylene) ethanol, encore appelé IGEPAL CA630), le noctyl beta D-glucopyranoside, ou encore d'une solution acide. Cet immunoessai combiné peut être réalisé selon divers formats bien connus de l'homme du métier : en phase solide ou en phase homogène ; en un temps ou en deux temps ; en méthode double sandwich (sandwich pour les deux détections d'antigènes et d'anticorps) ; ou en méthode indirecte (pour la détection d'anticorps) combinée à une méthode sandwich (pour la détection d'antigène), à titre d'exemples non limitatifs. Selon un mode de réalisation préféré, l'anticorps de capture et l'antigène de capture sont immobilisés sur une phase solide. On peut utiliser, à titre d'exemples non limitatifs de phase solide, des microplaques, en particulier des microplaques de polystyrène, telles que celles commercialisées par la société Nunc, Danemark. On peut également utiliser des particules ou des billes solides, des billes paramagnétiques, telles que celles fournies par Dynal ou Merck-Eurolab (France) (sous la marque Estapor), ou encore des tubes à essai en polystyrène ou polypropylène, ou encore une membrane de nitrocellulose, etc... Un format d'immunoessai de type sandwich entre deux anticorps (de capture et de détection) est particulièrement avantageux pour la détection des antigènes présents dans l'échantillon biologique, tandis que les anticorps peuvent être révélés en mettant en oeuvre un antigène de capture et un conjugué marqué qui se fixe sur l'anticorps (selon un format communément désigné comme « format indirect »), par exemple la proteine A marquée ou encore un anticorps anti immunoglobuline, ou anti-isotype, marqué. On peut encore détecter avantageusement les anticorps en mettant en oeuvre un antigène de capture et un antigène marqué qui se fixent sur l'anticorps (selon un format désigné comme « sandwich antigène-anticorps-antigène » ou « sandwich double antigène »). Un format d'immunoessai de détection des antigènes par compétition est également possible. D'autres modalités d'immunoessai sont encore envisageables et bien connues de l'homme du métier. La détection simultanée de l'antigène de VHC et des anticorps anti-VHC selon l'invention, peut être réalisée en un seul temps, à savoir en mettant simultanément en présence l'échantillon biologique, les moyens de détection, tels que notamment le ou les anticorps de détection, en même temps que le ou les anticorps de capture et le ou les antigène (s) de capture. Dans ce cas, l'immunoessai de détection de l'antigène et l'immunoessai de détection des anticorps sont tous les deux réalisés de préférence en sandwich. De manière alternative, les moyens de détection, tels que notamment le ou les anticorps de détection, peuvent être ajoutés au mélange dans un deuxième temps, c'est à dire après que les premiers complexes antigènes-anticorps se sont formés. On parle alors d'essai en deux temps. Selon un mode de réalisation préféré de l'invention, le procédé de détection d'une infection par le virus de l'hépatite C (VHC) dans un échantillon biologique comprend : a) la mise en présence de l'échantillon avec un anticorps de capture de la protéine de capside du VHC et un antigène de capture des anticorps anti-capside de VHC fixés sur une phase solide ; b) l'incubation du mélange dans des conditions permettant la formation de complexes antigènes-anticorps ; c) la séparation de la phase solide et de la phase liquide ; d) la mise en contact de la phase solide avec un anticorps de détection, marqué, capable de lier l'antigène de VHC capturé, et un ou des anticorps anti-immunoglobuline, ou anti-isotype, marqué, capable de lier l'anticorps anti-VHC capturé. Dosages ELISA, radioimmunoessais, ou toute autre technique de détection peuvent être mises en oeuvre pour révéler la présence des complexes antigènes-anticorps formés. La détection de la présence d'antigènes ou d'anticorps dans l'échantillon biologique peut être complétée par une quantification, par exemple par mesure des signaux émis par les marqueurs (couleur, luminescence, radioactivité,...), selon les techniques standards bien connues de l'homme de métier. Trousses Les trousses et réactifs utiles pour la détection d'une infection par le VHC dans un échantillon biologique, conformément au procédé de l'invention, peuvent être fournis pour une mise en pratique de l'invention facile et applicable à de nombreux échantillons biologiques. L'invention fournit donc une trousse utile pour la détection d'une infection par un virus VHC dans un échantillon biologique, comprenant un peptide antigénique capable de capturer des anticorps anti-capside de VHC. La trousse peut comprendre en outre un moyen de détection desdits anticorps anti-VHC présents dans l'échantillon biologique et complexés audit antigène de capture, ledit moyen de détection étant de préférence un anticorps anti-immunoglobuline ou anti-isotype marqué. De manière avantageuse, cette trousse peut contenir plusieurs antigènes et plusieurs anticorps de capture. La trousse peut contenir en outre des antigènes d'autres protéines du virus, telles que NS3 et/ou NS4, et/ou NS5 ces antigènes étant alors destinés à capturer des anticorps anti-NS3 et/ou anti-NS4, et/ou NS5. De préférence ces antigènes sont mélangés à l'antigène de capture dérivé de la capside. Comme cela est décrit ci-dessus, l'anticorps de capture et l'antigène de capture, peuvent être présentés de manière avantageuse sous une forme immobilisée sur une phase solide, telle qu'une microplaque. Une trousse préférée comprend al) un antigène de capture qui est un peptide comprenant, ou consistant en, un fragment antigénique dérivé de la capside de VHC allant au maximum de l'acide aminé 1 à l'acide aminé 44' ledit fragment antigénique comprenant, ou consistant en, i) une séquence allant des acides aminés 6 à 37 de la protéine de capside de VHC, et présentant au moins une mutation ponctuelle de l'acide aminé en position 34, ou ii) une séquence homologue de celle-ci ; a2) de préférence également des antigènes de capture des anticorps anti-protéines non structurales comprenant tout ou partie des protéines non structurales NS3, NS4, et/ou NS5, b) un anticorps de capture dirigé la protéine de capside du VHC; ledit antigène de capture et ledit anticorps de capture étant immobilisés sur une phase solide ; et cl) un anticorps de détection, marqué, c2) un anticorps ou des anticorps anti-immunoglobulines ou éventuellement un antigène de détection, marqué, qui comprend, ou est, un fragment antigénique qui un peptide comprenant, ou consistant en, un fragment antigénique dérivé de la capside de VHC allant au maximum de l'acide aminé 1 à l'acide aminé 44' ledit fragment antigénique comprenant, ou consistant en, i) une séquence allant des acides aminés 6 à 37 de la protéine de capside de VHC, et présentant une mutation ponctuelle d'au moins un acide aminé aux positions 33 à 36 ou ii) une séquence homologue de celle-ci. L'anticorps de capture et/ou l'anticorps de détection reconnaît l'épitope naturel de la portion 33-36 de la protéine de capside de VHC. Selon un mode de réalisation préféré, l'anticorps de capture immobilisé sur la phase solide est un anticorps dirigé contre l'épitope naturel 33-36 de la protéine de capside, tandis que l'anticorps de détection en cl), marqué directement ou indirectement, est dirigé contre un épitope différent des épitopes naturels présents dans la portion 33 à 36, plus généralement 6 à 37, de ladite protéine de capside du VHC. Par exemple il peut s'agir d'un anticorps dirigé contre l'épitope 44-47 de la capside. Selon un autre mode de réalisation préféré, l'anticorps de capture immobilisé sur la phase solide est un anticorps dirigé contre un épitope différent des épitopes naturels présents dans la portion 33 à 36, plus généralement 6 à 37, de ladite protéine de capside du VHC - par exemple il peut s'agir d'un anticorps dirigé contre l'épitope 44-47 de la capside-, tandis que l'anticorps de détection en cl), marqué directement ou indirectement, est un anticorps dirigé contre l'épitope naturel 33-36 de la protéine de capside. La trousse peut encore comprendre, en outre, un détergent, plus particulièrement un détergent non-ionique connu de l'homme du métier. Les exemples suivants illustrent l'invention sans en limiter la portée. EXEMPLES : Détection d'une infection par le virus de l'hépatite C Matériels pour le protocole d'essai: 1) Phase solide choisie : microplaque Maxisorp, Nunc (Danemark). 2) Conjugué anticorps monoclonal anti-capside-biotine(« acm-POD ») : un conjugué de l'anticorps monoclonal anti-capside, Acm 2 marqué à la peroxydase est préparé selon le protocole décrit dans la demande de brevet EP 0 752 102. Un autre anticorps monoclonal anti-capside, Acm 1 est aussi utilisé. 3) Conjugué anticorps polyclonal de souris anti-IgG (Fco,) humainesPOD : ce conjugué est obtenu chez Jackson lmmunoresearch Laboratories, USA (format ELISA indirect). Conjugué peptide capside marqué à la biotine (format sandwich) 4) Diluants des lère et 2ème étapes des protocoles selon l'invention : Diluant de la 1 ère étape : Tampon Tris, NaCI 0.05M, à pH 6,7 additionné d'IGEPAL CA 630 (Sigma) à 0,25%. Diluant de la 2ème étape : Tampon citrate (50 mM), à pH 6,7, glycérolé à 20%. 5) Solution de révélation: la solution de révélation était composée 5a) d'un tampon substrat : Solution d'acide citrique (0,075M), et d'acétate de sodium (0,1M), à pH 4,0 , contenant de l'H202 à 0,015% et du Diméthylsulfoxyde (DMSO) (PROLABO) à 4%, et 5b) d'un chromogène : Solution contenant de la tetraméthylbenzidine (TMB) (8 mM), (Sigma). Méthodes : Protocole de détection simultanée de l'antigène capside et des anticorps (anti- capside et anti NS3, NS4) du virus de l'hépatite C dans un échantillon (sérum ou plasma) Le principe du test est basé sur une méthode immunoenzymatique de type sandwich pour la détection de l'antigène, et de type indirect, pour la détection des anticorps. Il repose sur les étapes suivantes : Une solution de sensibilisation est tout d'abord réalisée: - avec un mélange d'antigènes VHC : un peptide muté CHx-1-44 (G34) (capside) comprenant la séquence SEQ ID n°2 et deux protéines recombinées produites par Escherichia cou à partir de clones sélectionnés dans les régions non structurales NS3 (AA 1192-1657), et NS4 (AA 1694-1735) et - avec un anticorps monoclonal anti-capside (Acm 1), en tampon Tris 0,5M, pH 7,4. Les cupules d'une plaque de microtitrage (Nunc, Maxisorp) sont alors sensibilisées avec la solution ci-dessus à raison de 110 pI par cupule. Les plaques de microtitrage sont mises à incuber pendant une nuit à température ambiante (18-24°C). Après élimination de la solution de sensibilisation, les plaques sont lavées à l'aide d'un tampon phosphate (0,01M, pH 7.4) contenant 0,1% de Tween 20, puis saturées par addition d'un tampon phosphate (0,01M, pH 7) contenant 5% de saccharose, 25% de lait écrémé (CandiaTM, France, ou tout autre lait écrémé équivalent du commerce) et 10mM d'EDTA. Dans chaque cupule, on distribue successivement 100 pI de diluant de 1ère étape) contenant l'anticorps monoclonal anti-capside Acm 2 marqué à la peroxydase, puis 50 pI d'échantillon (sérum ou plasma). Le milieu réactionnel est mis à incuber à 37°C pendant 1,5 heure. Les antigènes de capside du VHC éventuellement présents se fixent sur l'anticorps monoclonal de la phase solide Acm 1 et forment des complexes avec l'anticorps monoclonal anticapside Acm 2 marqué à la peroxydase. De même, si des anticorps anti-VHC sont présents, ils se lient aux antigènes fixés sur la phase solide. Les plaques sont ensuite lavées (3 fois) à l'aide d'une solution de lavage (tampon Tris NaCI 0,01M, pH 7,4 additionné de Tween 20 à 0,1%). Dans chaque cupule, on distribue 100p1 de diluant de 2ème étape contenant les anticorps anti-IgG humaines marqués à la peroxydase ou le peptide capside marqué à la biotine. Le milieu réactionnel est mis à incuber à température ambiante (18-24°C) pendant 30 minutes. Les anticorps anti-IgG humaines marqués ou le peptide capside marqué biotine se fixent à leur tour aux anticorps spécifiques retenus sur la phase solide. Les plaques sont ensuite lavées (5 fois) à l'aide d'une solution de lavage (tampon Tris NaCI 0,01M, pH 7,4 additionné de Tween 20 à 0,1%). Le conjugué anti-IgG humaines non lié est ainsi éliminé. Dans chaque cupule, on distribue 100 pl d'une solution de révélation (tampon substrat + chromogène). On laisse la réaction se développer à l'obscurité pendant 30 minutes à température ambiante (18-24°C). On distribue ensuite 100 pl de solution d'arrêt (H2SO4 1N) dans chaque cupule. Après arrêt de la réaction, la lecture de la densité optique est effectuée au spectrophotomètre à 450/620 nm. Définition de la valeur-seuil : La valeur seuil a été déterminée après analyse statistique des données de spécificité et sensibilité en utilisant la courbe de ROC (Receiver Operating Characteristic) (Berck et Schultz, (1986)). L'étude de spécificité a porté sur 5000 échantillons de sujets sains et l'étude de sensibilité sur des échantillons positifs VHC (notamment des débuts de séroconversion) de panels commerciaux : BBI (Boston Biomedica Company, USA) , lmpath (USA), Serologicals (USA), Nabi (USA), ProMedDx (USA)). La valeur seuil est calculée pour chaque plaque à partir du signal obtenu sur un témoin positif, divisé par un coefficient X, constant, spécifique du test. Elle est d'environ 0.45 unité de DO (Densité Optique) dans l'exemple présenté en format indirect.35 Exemple 1 : Détection d'anticorps anti-capside dans des échantillons (sérums ou plasmas) négatifs en antigène VHC Trois panels d'échantillons de séroconversion PHV 905, 907 et 914 (c'est à dire deux échantillons consécutifs de sérums ou plasmas, prélevés chez deux patients après infection par le VHC ou en cours de séroconversion) commercialisés (Seracare Life Sciences / BBI Diagnostics, USA) ont été testés suivant le protocole sandwich. Le peptide capside 1-44 G34 (SEQ ID NO : 2) a alors été marqué à la biotine et le complexe révélé par de la streptavidine-peroxydase. Il s'agit donc d'une détection anticapside unique. Ces échantillons ont été trouvés positifs avec une valeur seuil calculée par la moyenne des trois échantillons négatifs plus 6 déviations standard (DO : 0.077) Tableau 1 : Echanti I Ion Densité optique 905-08 0.058 négatif 905-09 0.209 positif 907-05 0.480 positif 907-06 0.694 positif 914-08 0.409 positif 914-09 0.824 positif Neg 1 0.043 négatif Neg 2 0.048 négatif Neg 3 0.044 négatif L'invention permet donc de détecter chez des sujets contaminés par le VHC des échantillons positifs en anticorps anti-capside Exemple 2: Comparaison de performances et classement de diverses techniques sur des sérums de séroconversion positifs en anticorps et/ou antigène 9 panels de séroconversion commercialisés (Seracare Life Sciences / BBI, USA ; lmpath, USA), présentant des spécificités différentes ont été testés avec le test selon l'invention en suivant le protocole indiqué, et les résultats ont été comparés avec une série de tests commercialisés. Cette comparaison tient compte du nombre de jours de retard de détection par rapport à la détection d'ARN (test PCR). Ainsi la trousse présentant la plus petite somme est la plus performante en précocité de détection. Ces panels présentent une positivité en antigène et/ ou anticorps dirigés contre les protéines NS3 et capside du virus VHC (caractérisation réalisée par le test RIBA commercialisé par la société Ortho Clinical Diagnostics). Tableau 2: Nombre de jours de retard de la detection par rapport à une detection par PCR Panel Protocole invention Axsym HCV "Ortho HCV 3.0 short Access HCV Ab Antigène Impath/ version3 incubation" Plus (BIO-RAD) cible BBI (Abbott) (Ortho Clinical Diagnostics) 912 0 7 7 7 Capside 913 0 12 7 7 Capside 6215 0 20 20 20 Capside Sous-total 0 39 34 34 915 5 5 14 17 NS3 6212 12 12 12 23 NS3 6224 11 19 19 19 NS3 9041 27 62 62 62 NS3 9044 0 21 25 25 NS3 9047 0 28 28 28 NS3 Sous-total 55 147 160 174 Total 60 186 194 208 L'invention permet de détecter des échantillons positifs en anticorps et en antigène, de façon plus précoce qu'un test anticorps. REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES - Atherton et al. (1989)"solid phase peptide synthesis, a practical approach", IRL Press' Oxford University Press, pp. 25-34 - Bukh, Semin. Liver Dis. (1995) 15 : 41-63 ; - Maiolini et al., (1978) Journal of Immunological Methods, 20, pp. 25-34 - Merrifield (1963) J. Amer. Chem. Soc' 85, pp. 2149-2154 - Sheppard, dans « Peptides 1971 », Nesvadba H (ed.) North Holland, Amsterdam, p. 111 - Stuyver et al. (1994), P. N. A. S. USA, 91, pp. 10134-10138 10 REVENDICATIONS1. Procédé de détection in vitro d'une infection par un virus de l'hépatite C (VHC) dans un échantillon biologique, comprenant la détection simultanée de la protéine de capside de VHC, et d'un anticorps dirigé contre ladite protéine de capside, présents dans l'échantillon biologique, procédé comprenant a) la mise en présence de l'échantillon biologique avec un anticorps de capture dirigé contre ladite protéine de capside, et un antigène de capture capable de capturer les anticorps anti-protéine de capside présents dans l'échantillon; b) l'incubation du mélange dans des conditions permettant la formation de complexes antigènes-anticorps ; c) la révélation des complexes antigènes-anticorps formés, qui met éventuellement en oeuvre un anticorps de détection, marqué, capable de se lier à la protéine de capside capturée et/ou éventuellement aussi un antigène de détection, marqué, capable de se lier à l'anticorps anti-capside capturé; caractérisé en ce que ledit antigène de capture est un peptide comprenant, ou consistant en, un fragment antigénique dérivé de la capside de VHC allant au maximum de l'acide aminé 1 à l'acide aminé 44' ledit fragment antigénique comprenant, ou consistant en, i) une séquence allant des acides aminés 6 à 37 de la protéine de capside de VHC, et présentant une mutation ponctuelle d'au moins un acide aminé aux positions 33 à 36, ou ii) une séquence homologue de celle-ci. 2. Procédé selon la revendication 1, dans lequel l'antigène de capture est un peptide présentant une mutation ponctuelle de l'acide aminé 34. 3. Procédé selon la revendication 2, dans lequel l'antigène de capture est un peptide consistant en la séquence 1 à 44 de la protéine de capside de VHC, et présentant une mutation ponctuelle de l'acide aminé en position 34. 4. Procédé selon l'une des revendications 1 à 3, dans lequel l'acide aminé en position 34 est un résidu glycine.Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, dans lequel ledit anticorps de capture et ledit antigène de capture sont immobilisés sur une phase solide. Procédé selon la revendication 5, dans lequel la phase solide comprend en outre au moins un antigène dérivé d'une protéine de VHC qui n'est pas la capside, de préférence NS3 ou NS4. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, dans lequel l'anticorps de détection est ajouté au mélange après que les complexes antigènes-anticorps se sont formés. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, dans lequel l'anticorps de détection, et/ou l'antigène de détection, est mis en présence de l'échantillon biologique en même temps que l'anticorps de capture et l'antigène de capture. Peptide comprenant, ou consistant en, un fragment antigénique dérivé de la capside de VHC allant au maximum de l'acide aminé 1 à l'acide aminé 44' ledit fragment antigénique comprenant, ou consistant en, une séquence allant des acides aminés 6 à 37 de la protéine de capside de VHC, et présentant une mutation ponctuelle d'au 20 moins un acide aminé aux positions 33 à 36, ou ii) une séquence homologue de celle-ci. 10. Peptide selon la revendication 9, présentant une mutation ponctuelle de l'acide aminé 34. 25 11. Peptide selon la revendication 10, consistant en la séquence 1 à 44 de la protéine de capside de VHC, et présentant une mutation ponctuelle de l'acide aminé en position 34. 30 12. Peptide selon l'une des revendications 9 à 11 dans lequel l'acide aminé en position 34 est un résidu glycine.5. 6. 7. 8. 9.13. Conjugué peptidique comprenant le peptide de l'une des revendications 9 à 12, lié de manière covalente, à son extrémité N-Terminale, à un bras espaceur. 14. Conjugué peptidique selon la revendication 13, dans lequel le bras espaceur est C- Hx, où C est une cystéine et Hx l'acide 6-aminohexanoïque. 15. Conjugué peptidique selon l'une des revendications 13 ou 14, dans lequel le peptide tel que défini à l'une des revendications 9 à 12 est couplé de manière covalente à lui-même ou a une molécule porteuse via le bras espaceur . 16. Trousse utile pour la détection d'une infection par un virus VHC dans un échantillon biologique, comprenant un peptide tel que défini à l'une des revendications 9 à 12, en tant qu'antigène de capture des anticorps anti-capside de VHC. 17. Trousse selon la revendication 16, comprenant, outre l'antigène de capture, un moyen de détection desdits anticorps anti-VHC présents dans l'échantillon biologique et complexés audit antigène de capture, ledit moyen de détection étant de préférence un anticorps anti-immunoglobuline ou anti-isotype marqué. 18. Trousse selon l'une des revendications 16 ou 17, comprenant al) un antigène de capture des anticorps anti-capside de VHC qui est un peptide tel que défini à l'une des revendications 9 à 12; a2) de préférence également des antigènes de capture des anticorps anti-protéines non structurales comprenant tout ou partie des protéines non structurales NS3, NS4, et/ou NS5, b) un anticorps de capture dirigé la protéine de capside du VHC; ledit antigène de capture et ledit anticorps de capture étant immobilisés sur une phase solide ; et cl) un anticorps de détection, marqué, c2) un anticorps ou des anticorps anti-immunoglobulines ou éventuellement un antigène de détection, marqué, qui est un peptide tel que défini à l'une des revendications 9 à 12.19. Trousse selon l'une des revendications 16 à 18, comprenant un anticorps de capture des anticorps anti-capside de VHC, immobilisé sur la phase solide, dirigé contre l'épitope naturel 33-36 de la protéine de capside, et un anticorps de détection marqué directement ou indirectement, est dirigé contre un épitope différent des épitopes naturels présents dans la portion 33 à 36, plus généralement 6 à 37, de ladite protéine de capside du VHC. 20. Trousse selon l'une des revendications 16 à 18, comprenant un anticorps de capture des anticorps anti-capside de VHC, immobilisé sur la phase solide, dirigé contre un épitope différent des épitopes naturels présents dans la portion 33 à 36, plus généralement 6 à 37, de ladite protéine de capside du VHC, et un anticorps de détection marqué directement ou indirectement, dirigé contre l'épitope naturel 33-36 de ladite protéine de capside du VHC.15