FR 2978555 A1 20130201 FR 1157001 A 20110729 UTILISATION DU LITHIUM ET DE SES DERIVES POUR LE DOSAGE DES ALCALOIDES DESCRIPTION Domaine technique La présente invention se rapporte à l'utilisation 10 du lithium ou d'un dérivé de celui-ci pour mesurer le taux d'alcaloïdes endogènes ou exogènes, en particulier la morphine, dans les tissus et fluides corporels animal ou humain. La présente invention trouve notamment une 15 application dans le domaine diagnostic, pour améliorer l'évaluation des niveaux en alcaloïdes endogènes ou exogènes chez un patient animal ou humain susceptibles de représenter un marqueur pathologique. Dans la description ci-dessous, les références 20 entre crochets ([ ]) renvoient à la liste des références présentée à la fin du texte. Etat de la technique Le lithium, connu comme un composé ayant une 25 importance thérapeutique majeure, semble agir sur l'activité du système nerveux central, mais à ce jour aucun mode d'action spécifique n'a été décrit. Le lithium semble traverser les membranes par diffusion passive ou par des transports membranaires actifs des 30 ions sodium, potassium et calcium sur lesquels il semble agir [Pasquali et al., Behav. Pharmacol., 21(5- 6) : 473-492, 2010 ; Phiel et al., Annu. Rev.5 2 Pharmacol. Toxicol., 41 : 789-813, 2001] [1, 2]. D'autre part, à titre d'exemple, il semble que le lithium affecte à la fois certaines activités enzymatiques intracellulaires et seconds messagers (systèmes inositol-phosphate et adénylate-cyclase). Il agit également sur des neuromédiateurs, soit par action sur le transport des précurseurs des neuromédiateurs (diminution du passage de la choline, élévation du taux intracérébral du tryptophane), soit par interaction directe avec le système des neuromédiateurs tels que la sérotonine (effet potentialisateur sur la fonction sérotoninergique), la noradrénaline (diminution du turn over), l'acide gamma-amino-butyrique (GABA) dont il facilite l'activité et l'acétylcholine (effet stabilisateur). Différentes pathologies psychiatriques, e.g. la schizophrénie [Ebmeier et al., Practitioner, 254 (1729) : 19-22, 2010 ; Buckley, CNS Spectr., 13 : 1-10, 2008 ; Ratanajamit et al., J. Med. Assoc. Thai., 89(11) : 1954-1960, 2006 ; Frye et Salloum, Bipolar Disord., 8 : 677-685, 2006] [3-6], la dépression [Frye et Salloum, 2006, précité ; Kovacsics et al., Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol., 49 : 175-198, 2009] [6, 7], l'alcoolisme [Rosenberg et Salzman, CNS Spectr., 12 831-841, 2007 ; Salzman, Harv. Rev. Psychiatry, 11 230-244, 2003] [8, 9] et autres troubles du comportement ; pathologies douloureuses, e.g. algie vasculaire de la face [Bussone et al., Headache, 30 411-417, 1990 ; Leroux et Ducros, Orphanet. J. Rare Dis., 3 : 20, 2008] [10, 11], herpès douloureux [Gaby, Altern. Med. Rev., 11 : 93-101, 2006] [12], la fibromyalgie [Fontrier, Anesth. Analg., 98 : 1505, 2004 ; Teasell, CMAJ, 144 : 122-123, 1991 ; Tyber, 3 CMAJ, 143 : 902-904, 1990] [13-15] ; pathologies immunitaires, e.g. leucopénies [Focosi et al., J. Leukoc. Biol., 85 : 20-28, 2009] [16] ; pathologies hormonales, e.g. hyperthyroïdie, hyponatrémie [Zietse et al., NDT Plus, 2 : iiil2-iiil9, 2009 ; Akin et al., Med. Princ. Pract., 17 : 167-170, 2008] [17, 18] ; sont déjà traitées par le lithium. Les alcaloïdes sont des molécules organiques hétérocycliques azotées basiques d'origine naturelle, pouvant avoir une activité pharmacologique. Bien que beaucoup d'alcaloïdes soient toxiques (comme la strychnine ou l'aconitine), certains sont employés dans la médecine pour, par exemple, leurs propriétés analgésiques (comme la morphine, la codéine), dans le cadre de protocoles de sédation (anesthésie) souvent accompagnés d'hypnotiques, ou comme agent antipaludéen (quinine, chloroquinine) ou agent anticancéreux (taxol, vinblastine, vincristine). Les opiacés sont des molécules chimiques qui agissent en se liant aux récepteurs opioïdes Mu, Delta ou Kappa, qui sont exprimés dans le système nerveux central et périphérique et le tractus gastro- intestinal. Ces récepteurs médient à la fois les effets bénéfiques et les effets secondaires des opiacés (alcaloïdes) et opioïdes (peptides). Les opiacés sont parmi les plus anciennes drogues connues. Les effets analgésiques (antidouleurs) des opiacés sont dus à une perception diminuée de la douleur, une réaction diminuée à la douleur ainsi qu'une tolérance augmentée à la douleur. Les principaux effets secondaires des opiacés sont la sédation, la dépression respiratoire, et la constipation. Les opiacés peuvent provoquer la 4 suppression de la toux, qui peut être à la fois une indication pour l'administration d'opiacés ou d'un effet secondaire imprévu. Une dépendance psychique et physique peut se développer avec l'administration continue d'opiacés, ce qui conduit à un syndrome de sevrage à l'arrêt brusque. Les opiacés sont bien connus pour leur capacité à produire un sentiment d'euphorie, motivant ainsi certains à les utiliser à des fins récréatives. Il existe cinq grandes classes d'opiacés: (A) les opiacés naturels sont des alcaloïdes contenus dans la résine du pavot à opium (Papaver somniferum) mais également chez d'autres organismes vivants (mammifères et invertébrés), à savoir principalement la morphine et des dérivés morphiniques par exemple la codéine et la thébaïne, mais pas la papavérine et la noscapine qui ont éléments suivants opiacés naturels: (également appelé naturels, actifs via les récepteurs Mu et Delta. La Salvia divinorum, opioïdes kappa ; créés à partir l'hydromorphone, l'hydrocodone, l'oxycodone, l'oxymorphone, la désomorphine, la nicomorphine, la dipropanoylmorphine, la benzylmorphine, 1'éthylmorphine et la buprénorphine ; (C) les opiacés entièrement de synthèse tels que le fentanyl, la péthidine, la méthadone, le tramadol et le dextropropoxyphène ; (D) les opioïdes endogènes peptidiques produits naturellement dans le corps (comme les endorphines, les un mécanisme d'action différent. Les pourraient être considérés comme les les feuilles de Mitragyna speciosa Kratom) contiennent quelques opiacés Salvinorine A, trouvée est (B) des naturellement dans la plante un agoniste des récepteurs les opiacés semi-synthétiques opiacés naturels tels que enképhalines, les dynorphines, et les endomorphines) ; et (E) leurs dérivés synthétiques ou semi-synthétiques (DDPE, etc...). La morphine est un alcaloïde opiacé naturel utilisé 5 comme médicament contre la douleur (analgésique). Principal alcaloïde issu du pavot à opium (Papaver somniferum), la morphine est considérée comme la référence à laquelle sont comparés tous les autres analgésiques en termes d'efficacité. Elle est le plus souvent utilisée sous la forme d'un sel, de sulfate ou de chlorhydrate, d'efficacités identiques. À ce jour, la morphine est le médicament analgésique le plus efficace et le plus couramment utilisé pour soulager divers types de douleur physique. Toutefois son emploi pose de nombreux problèmes dus à la dépendance qu'elle peut induire. Aussi est-elle listée comme stupéfiant au niveau international (CII). La morphine endogène (ME), structuralement identique à la morphine du pavot à opium, ainsi que plusieurs de ses dérivés ont été caractérisés dans différents tissus et cellules de mammifères (cellules chromaffines et neutrophiles polymorphonucléaires) [Herbert et al., Nat. Prod. Rep., 17 : 317-322, 2000 ; Stefano et al., Trends Neurosci., 23 : 436-442, 2000 ; Zhu et al., J. Immunol., 175(11) . 7357-7362, 2005 ; Glattard et al., PLoS One, 5(1) . e8791, 2010] [19-22], et sont présents, par exemple, dans des vésicules de sécrétion de certains neurones [Bianchi et al., Brain Res., 627 : 210-215, 1993 ; Bianchi et al., Adv. Neuroimmunol., 4 : 83-92, 1994 ; Guarna et al., J. Neurochem., 70 : 147-152, 1998 ; Muller et al., PLoS One, 3 : Epub www.plosone.org/doi/pone.0001641, 2008] [23-26]. On 6 retrouve également de la ME dans différents fluides biologiques incluant le liquide céphalorachidien, le sang et l'urine. Tout comme chez les plantes, la voie de synthèse de la morphine chez les mammifères dérive de celle de la dopamine (figure 2) [Boettcher et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 102 : 8495-8500, 2005 ; Goumon et al., An. R. Acad. Nac. Farm., 75 : 389-418, 2009 ; Neri et al., J. Neurochem., 106(6) : 2337-2344, 2008 ; Stefano et al., Trends Neurosci., 23(9) : 436- 442, 2000] [27-30]. Le catabolisme de la morphine (endogène et exogène) par la superfamille des UDP-glucuronosyltransférases (UGT) aboutit à la formation de la morphine-3-glucuronide (M3G, dénuée d'activité analgésique) et de la morphine-6-glucuronide (M6G qui possède une activité analgésique supérieure à celle de la morphine, 1 à 600 fois) [Lotsch et Geisslinger, Clin. Pharmacokinet., 40 : 485-499, 2001] [31]. Cependant, d'autres dérivés endogènes sont également retrouvés : la normorphine, nocodéine-3-6- diglucuronide, l'hydrocodone, l'hydromorphone, etc... Il a été mis en évidence une corrélation entre le taux de morphine sérique et le sepsis (infection systémique grave) qui indique que la morphine endogène représente un biomarqueur sérique des infections [Demande de Brevet en Europe No. 07301692.5] [32]. D'autre part, de récents résultats indiquent qu'une immunoréactivité apparentée à la morphine est distribuée dans tout le cerveau de la souris et avec une densité de marquage plus forte localisée dans les régions cérébrales impliquées dans la motricité et la mémoire [Laux et al., J. Comp. Neurol., 519(12) : 2390-2416, 2011 ; Charron et al., Brain, PMID : 21742735, 2011] [33, 34]. 7 Un nombre croissant d'études suggère que la ME est un important modulateur dans les états physiologiques et pathophysiologiques. Par exemple, des patients ayant un sepsis ont des taux circulants de ME significativement plus élevés par rapport à des patients ayant un syndrome de réponse inflammatoire systémique ou des donneurs sains [Glattard et al., 2010, précité] [22]. Les traitements au lipopolysaccharide (LPS) sont également associés avec une augmentation des taux de ME chez les rats [Goumon et al., Neurosci. Lett., 293(2) . 135-138, 2000 ; Meijerink et al., Shock, 12(3) : 165-173, 1999] [35, 36]. Des taux élevés de ME dans le sang de patients ont également été associés à d'autres états pathologiques incluant le pontage cardiovasculaire [Brix-Christensen et al., Acta Anaesthesiol. Scand., 44(10) : 1204-1208, 2000 ; Brix-Christensen et al., Int. J. cardiol., 62(3) : 191-197, 1997] [37, 38], la chirurgie invasive [Madbouly et al., Br. J. Surg., 97(5) : 759-764, 2010 ; Yoshida et al., Surg. Endosc., 14(2) : 137-140, 2000] [39, 40], et le traitement de la maladie de Parkinson avec de la L-DOPA [Arun et al., Indian J. Med. Res., 107 : 231-238, 1998 ; Matsubara et al., J. Pharmacol. Exp. Ther., 260(3) : 974-978, 1992] [41, 42]. La liaison de la morphine ou de ses dérivés à des protéines a déjà été décrite [Misra et al., Nature, 232 : 48-50, 1971 ; Mullis et al., J. Pharmacol. Exp. Ther., 208 : 228-231, 1979 ; Nagamatsu et al., Drug Metab. Dispos., 11 : 190-194, 1983 ; Olsen et al., Clin. Pharmacol. Ther., 17(6) : 677-684, 1975] [43-46]. En effet la morphine a été caractérisée pour se lier faiblement à la sérum albumine, ainsi qu'à l'alpha 1- 8 acid glycoprotein [Leow et al., Ther. Drug Monit., 15 : 440-447, 1993] [47], et il a récemment été décrit que la protéine de liaison de la phosphatidyléthanolamine (la phosphatidyléthanolamine-binding protein, PEBP) était capable de lier uniquement la M6G et la M3G à faible affinité, mais ne possédait aucune affinité pour la morphine [Atmanene et al., Med. Sci. Monit., 15 : BR178-187, 2009 ; Goumon et al., J. Biol. Chem., 281(12) : 8082-9, 2006] [48, 51]. D'autres études ont indiqué qu'une protéine de 50-53kDa pouvait spontanément lier la morphine radioactive de manière covalente (protéine non caractérisée, sans mise en évidence biochimique) [Nagamatsu et Hasegawa, Biochem. Pharmacol., 43 : 2631-2635, 1992] [49]. Il a également été décrit que cette liaison morphine-protéine était diminuée en présence de sélénium [Nagatmasu et Hasegawa, Drug Chem. Toxicol., 16 : 241-253, 1993] [50]. Récemment, les Inventeurs ont mis en évidence la formation de complexes entre la créatine kinase et les alcaloïdes apparentés à la morphine endogènes ou exogènes, et plus largement de complexes protéine-alcaloïde. La créatine kinase (CK, EC 2.7.3.2), également appelée phosphocréatine kinase ou créatine phosphokinase (CPK), est une enzyme exprimée par différents tissus incluant le cerveau et les muscles où elle est présente sous une forme cytoplasmique et mitochondriale. Il existe plusieurs isoenzymes (présents sous forme de dimères non covalents) : la CKMM présente dans les muscles, la CK-MB trouvée dans les cellules myocardiaques, et la CK-BB qui se trouve dans 9 le cerveau. On trouve également de la CK mitochondriale (mtCK). Cette enzyme catalyse la conversion réversible de la créatine en phosphocréatine via l'utilisation de l'adénosine triphosphate (ATP, figure 1). Cette enzyme est primordiale pour la production d'ATP à partir des stocks de phosphocréatine. La phosphocréatine, par l'intermédiaire de l'ATP, constitue ainsi un réservoir d'énergie rapidement utilisable pour les muscles et autres organes incluant le cerveau. La CK (isoformes MM et MB ; dimères) est libérée dans le sang lors de lésions tissulaires provoquant une lyse cellulaire (par exemple atteinte musculaire telle que la rhabdomyolysis, efforts musculaires, etc...). Le dosage des isoenzymes dans le sang permet de distinguer l'origine de la destruction cellulaire. L'augmentation de CK-MB sanguine a été utilisée en dosage sanguin pour diagnostiquer l'infarctus du myocarde. Il est en outre connu de l'art que plusieurs pathologies sont associées à une augmentation des taux en créatine kinase ou en d'autres protéines liant les alcaloïdes par rapport à la normale. Il s'agit par exemple de la rhabdomyolyse [Cervellin et al., Clin. Chem. Lab. Med., 48(6) : 749-756, 2010] [40], de l'infarctus du myocarde [Navin et Hager, Curr. Probl. Cardiol., 3 : 1-32, 1979] [41], de lésions musculaires, d'un accident vasculaire cérébral, etc.... Il a été montré que cette liaison créatine kinase-alcaloïde est forte mais labile (non covalente), et que la dissociation de ces complexes nécessite des conditions extrêmes [présence d'urée associée à un traitement thermique (100°C, 10 minutes)]. Plus récemment, les inventeurs ont montré toutefois que le 10 lithium et ses dérivés étaient capables d'inhiber et/ou de dissocier les complexes créatine kinase-alcaloïde, et plus largement des complexes protéine-alcaloïde, dans des conditions douces. Du fait de cette complexion, les taux circulants ou tissulaires d'alcaloïdes endogènes ou exogènes libres seraient minorés d'où une diminution de leurs effets (analgésique, anti-inflammatoire, etc...). Du fait également des faibles taux circulants ou tissulaires de ME (0-25ng/ml), un protocole précis pour quantifier la ME serait nécessaire. Encore actuellement, il n'existe aucun consensus concernant la préparation d'échantillon pour mesurer les taux d'alcaloïdes endogènes et exogènes dans le sang. Par exemple, les meilleurs rendements actuellement décrits ne dépassent pas les 50% pour des quantités faibles de morphine exogène (pg-ng). Il existe donc un réel besoin d'identifier des protocoles et/ou molécules susceptibles d'améliorer le rendement de détection, à moindre coût, des taux d'alcaloïdes endogènes et exogènes circulants dans les tissus et fluides corporels d'un animal ou d'un humain, notamment des taux de morphine, ainsi que d'alcaloïdes qui en dérivent (codéine, morphine-6-gucuronide, morphine-3-gucuronide, etc...). Description de l'invention Les Inventeurs ont été les premiers à avoir observé que (i) la créatine kinase et les alcaloïdes formaient des complexes de très forte affinité, et plus largement des complexes protéine-alcaloïde, dans les tissus et les fluides corporels animal ou humain, et que (ii) le 11 lithium et ses dérivés étaient capables d'inhiber et/ou de dissocier lesdits complexes en conditions douces. Ils ont, à partir de cette observation, émis l'hypothèse que le lithium et ses dérivés pourraient a priori permettre d'améliorer le rendement de détection de la morphine dont les taux circulants ou tissulaires sont faibles, et par extension de tout alcaloïde endogène et exogène une fois ainsi extrait sous forme libre. Les Inventeurs ont alors mis en évidence de manière tout à fait inattendue que le lithium et ses dérivés, en particulier l'héparinate de lithium, permettait de quantifier la morphine endogène et exogène avec une meilleure efficacité dans le sang, et n'interféraient pas avec (i.e., ne surévaluaient ou ne sous-évaluaient pas) la détection de la morphine dans les échantillons. La présente invention a donc pour objet l'utilisation du lithium ou d'un dérivé de celui-ci pour le dosage du taux d'alcaloïde dans les tissus et fluides corporels d'un animal ou d'un humain. Par « dérivé du lithium » au sens de la présente invention, on entend par exemple l'héparinate de lithium, le chlorure de lithium, le citrate de lithium, le bromure de lithium, le gluconate de lithium, le carbonate de lithium, etc.... En particulier, il s'agit de l'héparinate de lithium, du chlorure de lithium et du carbonate de lithium. Par « fluide corporel » au sens de la présente invention, on entend par exemple la salive, l'urine, le 30 sang, le liquide céphalorachidien, etc.... 12 La présente invention a encore pour objet un procédé d'analyse d'un alcaloïde dans un échantillon biologique comprenant : a) la mise en contact dudit échantillon avec le lithium ou un dérivé de celui-ci ; b) la mesure du taux d'alcaloïde obtenu à l'étape a) Par « échantillon biologique » au sens de la présente invention, on entend tout fluide corporel ou tissu provenant d'un animal ou d'un humain. Par exemple, le fluide corporel comprend le sang, l'urine, la salive, le liquide céphalorachidien, et par exemple, le tissu comprend le tissu cérébral, pulmonaire, musculaire ou hépatique. Selon un mode particulier de mise en oeuvre du procédé de l'invention, le lithium ou un dérivé de celui-ci est ajouté à l'échantillon à tester dans une quantité suffisante pour dissocier tous les complexes protéine-alcaloïde. Par exemple, le lithium ou un dérivé de celui-ci est ajouté à une concentration de 0.001 à 1000 UI/ml d'échantillon, de préférence à une concentration de 17 UI/ml d'échantillon. Selon un mode de réalisation particulier, ledit procédé d'analyse peut comprendre en outre une étape c) dans laquelle les résultats de détection obtenus à l'étape b) sont comparés par rapport à un contrôle négatif et/ou positif. Par « contrôle positif » et « contrôle négatif » au sens de la présente invention, on entend un échantillon témoin respectivement comprenant ou ne comprenant pas au moins un alcaloïde. Ce témoin permet de comparer le résultat de mesure obtenu à l'étape b) 13 du procédé de l'invention et de déceler un faux positif ou faux négatif, le cas échéant. Selon un mode de réalisation particulier, ledit procédé d'analyse peut comprendre en outre une étape Ibis) dans laquelle les résultats de détection obtenus à l'étape b) sont comparés à un étalon de mesure ; ce qui permet une analyse qualitative et/ou quantitative des opiacés. Par « étalon de mesure » au sens de la présente invention, on entend une ou plusieurs analyse(s) réalisée(s) sur des solutions fabriquées pour les besoins de l'analyse selon l'invention comprenant une teneur connue en alcaloïde(s). A partir des résultats d'analyse obtenus sur ces solutions fabriquées, il est possible de déterminer la présence d'alcaloïde(s) dans l'échantillon et même sa(leur) concentration par comparaison, par exemple au moyen d'une courbe étalon réalisée à partir des étalons de mesure. Selon l'invention, les étapes c) et Ibis) peuvent être mises en oeuvre toutes les deux, avant pendant ou après les étapes a) et b) du procédé de l'invention. Selon l'invention, les étapes c) et Ibis) peuvent être mises en oeuvre simultanément ou successivement, y compris aux étapes a) et b), par exemple sur une plaque multipuits permettant de réaliser simultanément ou successivement plusieurs analyses, y compris des mesures étalons. Les procédés d'analyse d'alcaloïdes selon la présente invention, servent à analyser par exemple les alcaloïdes naturels endogènes ou exogènes, par exemple la morphine, ainsi que ses dérivés, par exemple à l'aide de test ELISA, EIA ou RIA utilisant des 14 anticorps spécifiques ou une protéine/peptide de liaison. La présente invention a encore pour objet un kit d'analyse d'un alcaloïde comprenant le lithium ou un dérivé de celui-ci et les moyens de mesure des taux d'alcaloïde circulants. Les moyens de mesure sont par exemple les tests précités (ELISA, etc...). D'autres avantages pourront encore apparaître à l'homme du métier à la lecture des résultats expérimentaux obtenus à partir des protocoles décrits dans les exemples ci-dessous mis en oeuvre par les inventeurs, et illustrés de manière non limitative par les figures annexées. Brève description des figures La figure 1 représente la réaction enzymatique catalysée par la créatine kinase. La figure 2 représente la voie de synthèse putative de la morphine endogène chez les mammifères d'après 20 [23]. La figure 3 représente les concentrations sériques en morphine en fonction des concentrations plasmatiques en morphine chez des patients gravement malades (points) et des patients traités à la morphine (croix). 25 L'encart en haut à gauche montre un agrandissement des résultats pour les plus faibles concentrations. Tous les patients sous la ligne diagonale pointillée présentent une concentration en morphine plus élevée dans le plasma que dans le sérum. 30 15 EXEMPLES Cette étude a été approuvée par le conseil d'examen institutionnel pour l'expérimentation humaine des hôpitaux universitaires de Strasbourg. EXEMPLE 1 : Les échantillons ont été prélevés à partir de patients ayant besoin d'analyses de laboratoire et qui ont donné par écrit leur consentement éclairé. Le sang de 80 patients a été collecté, en même temps, dans deux types de tubes de prélèvement : (i) pour l'analyse du sérum, le sang a été collecté dans des tubes secs (BD vacutainer® SST II advance, réf. : 367957), et le sérum a été obtenu après centrifugation (4°C, 4000rpm, 10min), (ii) pour l'analyse du plasma, le sang a été collecté dans des tubes d'héparinate de lithium (BD Vacutainer® LH PST II, réf : 367378, 17UI/ml), et le plasma a été obtenu après centrifugation (4°C, 4000rpm, 10min). Les taux en morphine du plasma et du sérum ont été mesurés en utilisant un kit ELISA commercial spécifique de la morphine (kit ELISA réf : 213-0480, Immunalysis Corporation). Les échantillons du plasma et du sérum (40µl) ont été testés en double, et les valeurs du coefficient de variation (CV) étaient sous la limite des 8%. Les échantillons avec des CV plus élevés ont été re-testés afin d'obtenir des CV en dessous de 8%. Pour tous les tests, une morphine standard (0-25ng/ml) a été diluée dans 1% de PBS-BSA (w/v) pour les échantillons du sérum et dans 1% de PBS-BSA (w/v) contenant de l'héparinate de lithium (17UI/ml) pour les 16 échantillons du plasma. La limite de détection calculée dans cette étude pour le lot de kit ELISA a été de 0,ing/ml de morphine. Comme expérience de contrôle, des concentrations connues de morphine diluée dans des tampons PBS ou PBS-héparinate de lithium ont été d'abord testés à l'aide du test ELISA. Aucune différence n'a été observée, montrant que l'héparinate de lithium n'affecte pas la détection de la morphine. Dans une seconde étape, des concentrations connues de morphine ont été ajoutées à du sérum et des tubes d'héparinate de lithium avant de collecter le sang frais (donneurs sains, n=4). Dans les échantillons de plasma, 86% de la concentration de morphine initiale a été récupéré, alors que seulement 42% a été récupéré dans les échantillons de sérum. Enfin, 80 patients ont été inclus dans trois groupes : (i) les donneurs sains (n=16), (ii) les patients traités à la morphine (patch transdermique de morphine, 12-48h avant la prise de sang, 20mg/jour, n=8), et (iii) les patients gravement malades (non traités à la morphine et de pathologies diverses, n=56). Les résultats sont présentés dans la figure 3. Chez les donneurs sains, la ME n'est pas détectable dans le sérum et dans les échantillons de plasma. Chez les patients traités à la morphine (figure 3, croix), les concentrations moyennes de morphine dans les échantillons de sérum ont varié de 3,2ng/ml à 31ng/ml, alors que celles du plasma ont été trouvées entre 25,7ng/ml et 114,8ng/ml. Par rapport à la concentration plasmatique, les concentrations en morphine dans le sérum ont été significativement plus faibles (-78±15% 17 en moyenne). Chez les patients gravement malades (figure 3, points), les taux de ME ont varié entre Ong/ml (non détectable) et 23,6ng/ml dans les échantillons de sérum et entre 0,15ng/ml et 76,3ng/ml dans les échantillons de plasma. Par rapport aux échantillons de plasma, les concentrations en ME dans le sérum ont été significativement plus faibles (de 13% à -98%, en moyenne -65±32%). Comme le montre la figure 3, la concentration en ME ou en morphine exogène a été systématiquement plus élevé dans le plasma par rapport aux échantillons de sérum pour 61 sur 64 patients testés. Ensemble, ces résultats ont montré que les tubes d'héparinate de lithium ont été les plus appropriés pour quantifier efficacement la morphine endogène (ME) et exogène. Ainsi, lors de l'ajout de quantités connues de morphine, avant le prélèvement de sang, 86% de morphine initialement ajoutée a été détectée dans les échantilons « héparinate de lithium » tandis que seulement 42% de celle-ci a été détecté dans les échantillons « sérum ». Une explication de l'échec de la quantification de la morphine libre dans le sérum pourrait impliquer la liaison de la morphine à des protéines du sang. En effet, différentes liaisons de la morphine à des protéines ont d'ores et déjà été identifiées et comprennent l'albumine sérique et l'alpha-l-glycoprotéines acide [47]. Fait intéressant, la détection de la morphine exogène dans le sang a montré qu'elle était très dépendante de l'urémie, une hypoalbuminémie, suggérant un lien important entre les protéines liant la morphine et la biodisponibilité de la morphine [47]. Autre fait intéressant, le lithium 18 est considéré comme un agent chaotropique/dénaturant et peut donc augmenter la quantité de morphine libre et ainsi permettre la réalisation de dosage avec un meilleur rendement que les techniques de l'art. In vivo, la libération de ME dans le sang est susceptible de survenir au cours de stress ou de situations pathologiques. Du fait du rôle majeur joué par la ME dans de nombreux processus physiologiques et physiopathologiques, ainsi que du fait des résultats des inventeurs qui ont montré la perte conséquente de morphine endogène et exogène dans les sérums, la concentration en morphine endogène et exogène dans le sang doit être analysée sur du plasma collecté en tube héparinate de lithium plutôt que dans le sérum.15 19 Listes des références 1. Pasquali et al., Behav. Pharmacol., 21(5-6) : 473-492, 2010 2. Phiel et al., Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol., 41 : 789-813, 2001 3. Ebmeier et al., Practitioner, 254(1729) : 19-22, 2010 4. Buckley, CNS Spectr., 13 : 1-10, 2008 5. Ratanajamit et al., J. Med. Assoc. Thai., 89(11) . 1954-1960, 2006 6. Frye et Salloum, Bipolar Disord., 8 : 677-685, 2006 7. Kovacsics et al., Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol., 49 : 175-198, 2009 8. Rosenberg et Salzman, CNS Spectr., 12 : 831-841, 2007 9. Salzman, Harv. Rev. Psychiatry, 11 : 230-244, 2003 10. 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Chem., 281(12) : 8082-9, 20065 REVENDICATIONS1) Procédé d'analyse d'un alcaloïde dans un échantillon biologique comprenant : a) la mise en contact dudit échantillon avec le lithium ou un dérivé de celui-ci ; b) la mesure du taux d'alcaloïde obtenu à l'étape a) 2) Procédé d'analyse selon la revendication 1, ledit procédé comprenant en outre une étape c) dans laquelle les résultats de mesure obtenus à l'étape b) sont comparés par rapport à un contrôle négatif et/ou positif. 3) Procédé d'analyse qualitative et/ou quantitative d'un alcaloïde dans un échantillon biologique comprenant : a) la mise en contact dudit échantillon avec une le lithium ou un dérivé de celui-ci ; b) la mesure du taux d'alcaloïde obtenu à l'étape a) c) la comparaison des résultats de mesure obtenus à l'étape b) par rapport à une courbe étalon. 4) Procédé d'analyse selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, où le taux d'alcaloïde mesuré est choisi parmi les alcaloïdes naturels exogènes ou endogènes, de préférence la morphine et ses dérivés. 5) Kit d'analyse d'un alcaloïde comprenant du lithium ou un dérivé de celui-ci, et les moyens de 30 24 mesure de taux d'alcaloïde circulant dans les tissus et fluides corporels. 6) Utilisation du lithium ou d'un dérivé de celui- ci pour le dosage du taux d'alcaloïde dans les tissus et fluides corporels d'un animal ou d'un humain. 7) Utilisation du lithium ou d'un dérivé de celui-ci selon la revendication 6, où le fluide corporel est choisi parmi l'urine, le sang, la salive et le liquide céphalorachidien. 8) Utilisation du lithium ou d'un dérivé de celui-ci selon la revendication 6, où le tissu est choisi parmi le tissu cérébral, pulmonaire, hépatique, ou musculaire.