FR 2889591 A1 20070209 FR 0508235 A 20050802 L'invention concerne un biocapteur comportant un boîtier, un support d'immobilisation de bioéléments et des moyens de transduction, les moyens de transduction étant aptes, quand le support est monté sur le boîtier dans une position de service, à recevoir un signal émis par lesdits bioéléments, et à le convertir en un signal électrique. L'invention concerne également une carte enfichable dans ce boîtier et sur laquelle est fixé ledit support. Diverses méthodes chimiques ou physiques sont utilisées pour détecter les constituants chimiques polluants dans des secteurs aussi différents que l'environnement, la santé, ou l'agroalimentaire. En particulier, il est connu de détecter des constituants polluants au moyen de bioéléments , notamment de microorganismes, choisis pour réagir d'une manière spécifique à un agent cible c'est-à-dire à un produit chimique spécifique ou à un agent physique présent dans leur environnement. Un agent cible peut être par exemple l'ammoniaque, le cadmium, le chrome, le cobalt, le cuivre, le mercure, le zinc, une protéine particulière, un PCB, etc. En réponse à un agent cible, certains microorganismes consomment de l'oxygène pour la métabolisation, produisent du CO2 ou de la lumière. Au contraire, la mise en contact avec un agent cible peut aussi entraîner une diminution de la lumière produite par certains microorganismes. Ces microorganismes sont classiquement incorporés dans des kits de mesure jetables ou dans des systèmes d'analyse plus durables et réutilisables appelés biocapteurs . Certains biocapteurs comportent un ensemble de bactéries luminescentes en suspension dans un liquide ou immobilisées sur un support. L'ensemble de bactéries est couplé optiquement, par exemple au moyen de fibres optiques, à un photodétecteur, par exemple un luminomètre ou une photodiode. Ces biocapteurs fonctionnent à la manière d'une sonde optoélectronique: Les bactéries sont mises en contact avec un fluide susceptible de contenir l'agent cible à détecter et/ou à mesurer, dans des conditions permettant aux bactéries de réagir. La réaction éventuelle des bactéries modifie la quantité de lumière reçue par le photodétecteur. Ces modifications sont interprétées par un microprocesseur, par exemple pour fournir une mesure de la teneur de l'agent cible ou déclencher une alerte. De tels biocapteurs sont par exemple décrits dans WO 02/023168 (EP 1 317 666) ou dans WO 00/33065. Les biocapteurs nécessitant de fixer les bactéries sur un support, dits biocapteurs en phase immobilisée , peuvent être utilisés en laboratoire ou sur site. Cependant, si les bactéries meurent pendant l'utilisation du biocapteur, ce dernier est hors d'usage et doit être remplacé, à moins de fixer de nouvelles 5 bactéries. L'utilisation de tels biocapteurs peut donc générer des coûts élevés et exige une haute qualification des opérateurs. II existe donc un besoin pour un biocapteur en phase immobilisée plus simple et moins coûteux d'utilisation. Le but de l'invention est de satisfaire ce besoin. Selon l'invention, on atteint ce but au moyen d'un biocapteur comportant un boîtier, un support d'immobilisation de bioéléments et des moyens de transduction, les moyens de transduction étant aptes, quand le support est monté sur le boîtier dans une position de service, à recevoir un signal, de préférence un rayonnement électromagnétique, visible ou non, émis par lesdits bioéléments et à le convertir en une information sur sa nature et/ou son intensité. Le biocapteur selon l'invention est remarquable en ce que le support est démontable du boîtier indépendamment des moyens de transduction. Comme on le verra plus en détail dans la suite de la description, le démontage permet un remplacement rapide et simple du support, en particulier en cas de destruction des bioéléments. Une qualification élevée des opérateurs n'est pas requise à cette fin. En outre, un changement de bioéléments est possible par simple remplacement du support. Le biocapteur selon l'invention peut ainsi facilement s'adapter à un agent cible particulier. Il n'est donc pas nécessairement spécialisé pour détecter un ou plusieurs agents cibles prédéterminés. De préférence, le biocapteur selon l'invention comporte encore une ou plusieurs des caractéristiques préférées suivantes: - Le support est amovible manuellement, c'est-à-dire qu'il peut être monté et démonté du boîtier sans instrument particulier. - Le support est agencé de manière à isoler physiquement, dans la position de service, les bioéléments et les moyens de transduction. - Le support est transparent au signal. - Le support est fixé sur un cadre d'une carte enfichable dans une fente du boîtier. - Le support est collé sur le cadre au moyen d'une colle thermique. - Le cadre est réalisé dans un plastique ERTACETAL . Le biocapteur comporte des moyens de communication aptes à mettre en relation de fluide, dans la position de service, les bioéléments et une source de fluide extérieure au biocapteur, le fluide étant susceptible de contenir l'agent cible. Dans la position de service, le support s'étend sensiblement verticalement. Le biocapteur comporte des moyens pour faire circuler un fluide de bas en haut le long du support. Le signal est un rayonnement électromagnétique, de préférence de la lumière visible. L'invention concerne aussi une carte enfichable dans une fente d'un boîtier d'un biocapteur selon l'invention, comportant un support d'immobilisation de bioéléments fixé sur un cadre. D'autres caractéristiques et avantages de la présente invention apparaîtront à la lecture de la description qui va suivre et à l'examen du dessin annexé dans lequel: la figure 1 représente une vue schématique en perspective d'un biocapteur selon l'invention, une carte selon l'invention étant sur le point d'être introduite dans le boîtier du biocapteur; la figure 2 représente une vue en coupe schématique transversale verticale d'une carte selon l'invention dans une position de service. La carte est représentée insérée dans un bloc de réception d'un boîtier d'un biocapteur selon l'invention, dans la configuration spatiale qu'elle occupe de préférence dans la position de service. L'axe V représente une direction verticale. Dans la présente description, les adjectifs supérieur , inférieur , droit , gauche , vertical , horizontal , etc. sont utilisés en référence à la figure 2. Par démontage , on entend toute opération permettant de déplacer suffisamment le support hors de la position de service pour permettre son remplacement par un deuxième support. Le support n'est donc pas nécessairement désolidarisé du boîtier lors du démontage. Par exemple, un dispositif de type caroussel permettant d'insérer successivement différents supports est envisageable. Le biocapteur 10 représenté sur la figure 1 comporte un boîtier 12, une carte amovible 14 intégrant un support d'immobilisation, sous la forme d'une vitre 16, permettant d'immobiliser des bioéléments 18, par exemple de bactéries bioluminescentes, et des moyens de transduction optoéléctroniques 20. Le boîtier 12 est de préférence transportable et présente par exemple une longueur d'environ 60 cm, une largeur d'environ 40 cm et une hauteur d'environ 35 cm. II comporte un bloc de réception 22 (figure 2) présentant, en façade avant 23 du boîtier 12, une fente 24 dans laquelle la carte amovible 14 peut être insérée jusqu'à une position de service où les moyens de transduction 20 peuvent détecter un signal émis par les bactéries par réaction à un agent cible présent dans leur environnement. Ce rayonnement est par exemple une lumière visible. Les moyens de transduction 20 ont pour fonction de capter le signal émis par les bioéléments, en l'occurrence la bioluminescence des bactéries immobilisées sur le support 16, et de le convertir en une information sur sa nature et/ou son intensité. Cette information peut par exemple prendre la forme d'un signal électrique, d'un signal lumineux visible, d'une image, etc. La nature et l'intensité du signal peuvent être par exemple déduits de l'amplitude et de la fréquence du signal électrique ou de la couleur et de l'intensité lumineuse du signal lumineux ou d'une trace lumineuse sur l'image. Les moyens de transduction 20 sont connus en soi. Ils peuvent par exemple comporter un photomultiplicateur, une photodiode, un circuit CMOS, une caméra CCD, un film photographique, etc. De préférence ils permettent une mesure en continu de la bioluminescence. La carte 14 présente par exemple une forme parallélépipédique de 35 * 35 mm de côté et 17 mm d'épaisseur. La carte 14 comporte un cadre 30 et la vitre optique 16, fixée sur le cadre 30. La vitre 16 est de préférence en un verre borosilicaté, mais tout matériau transparent permettant d'immobiliser les bioéléments et de transmettre le signal qu'ils émettent pourrait convenir. A titre d'exemple, on peut citer un plastique à base de PVC, par exemple le PEEK . De préférence, le cadre 30 est réalisé dans un plastique ERTACETAL . Avantageusement, ce matériau est inerte chimiquement et biologiquement et peut être autoclavé à 120 C tout en assurant une bonne capacité calorifique. Le cadre 30 est percé d'un alésage central traversant 32 d'axe horizontal A débouchant par des ouvertures gauche 34 et droite 36 sur des faces gauche 38 et droite 40 du cadre 30. De préférence, l'alésage 32 présente un diamètre d'environ 13 mm. La vitre optique transparente 16 est insérée transversalement à l'intérieur de l'alésage 32 de manière à obturer hermétiquement ce dernier. La vitre 16 est de préférence collée sur le cadre 30, de préférence en prenant appui sur un épaulement 42 de l'alésage 32. Un tel collage est délicat dans la mesure où il s'agit de réunir hermétiquement deux matériaux aux propriétés physiques différentes, à savoir un verre borosilicaté et un plastique très inerte, le collage devant être résistant à des solvants organiques tels que l'isopropanol ou l'éthanol tout en conservant une compatibilité biologique totale. Les colles opérant par vulcanisation restent sans effet sur l'ERTACETAL , et les colles polyvinyliques couramment utilisées pour l'adhésion entre matériaux différents ne permettent pas le maintien de la vitre optique 16 au-delà d'une ou deux utilisations lorsque les cartes sont exposées à des solvants organiques. Après des recherches approfondies, les inventeurs sont parvenus à obtenir une adhésion efficace et prolongée en utilisant une colle thermique. Cette colle reste fluide et inefficace au-delà de 70 à 80 C environ, mais elle possède les propriétés d'adhésion requises une fois rigidifiée à température ambiante. A titre d'exemple, on peut citer la colle thermique Rocafix. Des colles à base de silicone conviennent également. Une face droite 46 de la vitre 16, sur laquelle sont fixées les bactéries, 20 définit un fond d'une chambre de mesure 50. Les bactéries sont immobilisées sur la face droite 46 de la vitre optique 16. Toutes les techniques d'immobilisation connues sont applicables: Par exemple, les bactéries peuvent être fixées à la chaleur directement sur la face droite 46, puis recouvertes d'une grille à maillage fin. Elles peuvent aussi être immobilisées par fonctionnalisation moléculaire, en interagissant par exemple avec des anticorps fixés sur la face droite 46. Elles peuvent encore être immobilisées dans un polymère (ou immobilisant ), du type PVA, alginate, agarose ou agar. Une suspension de bactéries est alors mélangée au polymère à une température où ce dernier est liquide. Ce mélange est ensuite coulé sur la face droite 46, de préférence via l'ouverture 36 de l'alésage 32, la carte étant disposée sensiblement horizontalement. Puis, on le traite de manière qu'il prenne en masse, par exemple en le laissant refroidir. De préférence, l'alésage 32 présente du côté droit de la vitre 16, à proximité 35 de la face droite 46, une rainure circonférentielle 52, de préférence d'environ 1 mm, dans laquelle le mélange de l'immobilisant et des bactéries peut s'écouler. Après prise en masse, la membrane de bactéries 18 ainsi constituée peut donc avantageusement être fermement maintenue dans le cadre 30. Les bactéries sont choisies en fonction de l'agent cible ou des agents cibles 5 à détecter ou à mesurer. Par exemple la souche TBT3 peut être choisie pour la détection du tributylétain. La partie de l'alésage 32 localisée à droite de la vitre 16 définit une paroi latérale 54 de la chambre de mesure 50. Un conduit d'entrée 56 est ménagé dans le cadre 30 et débouche d'une part dans la partie inférieure de la paroi latérale 54 de la chambre de mesure 50 et d'autre part sur une face inférieure du cadre 30 par une ouverture d'entrée 58. Un conduit de sortie 60 est ménagé dans le cadre 30 et débouche d'une part dans la partie supérieure de la paroi latérale 54 de la chambre de mesure 50 et d'autre part sur une face supérieure du cadre 30 par une ouverture de sortie 64. De préférence, les conduits d'entrée 56 et de sortie 60, destinés à l'introduction et l'extraction des fluides à tester dans la chambre de mesure 50, sont alignés selon un axe B sensiblement vertical. Le bloc 22 comporte des canaux supérieur 70 et inférieur 72 d'évacuation et d'alimentation de fluide, débouchant sur des faces supérieure 74 et inférieure 76 de la fente 24 par des ouvertures de sortie 78 et d'entrée 80, respectivement. De préférence les canaux supérieur 70 et inférieur 72 sont coaxiaux d'axe B. Dans la position de service, les ouvertures d'entrée 58 et de sortie 64 de la carte 14 sont en regard des ouvertures d'entrée 80 et de sortie 78 du bloc de réception 22. Des moyens d'étanchéité, par exemple sous la forme de joints toriques 82 et 84, sont prévus pour assurer une connexion étanche entre les ouvertures d'entrée 58 et de sortie 64 de la carte 14 et les ouvertures d'entrée 80 et de sortie 78 du bloc de réception 22, respectivement. Dans la position de service, la membrane bactérienne s'étend ainsi sensiblement verticalement, la circulation du fluide étant effectuée du bas vers le haut. Avantageusement, ce type de circulation permet de réduire les zones d'inertie hydraulique dans la chambre de mesure 50. Dans la position de service, l'ouverture droite 36 de l'alésage 32 est fermée par la face droite 86 de la fente 24 du bloc 22. De préférence, un joint d'étanchéité 88 empêche toute fuite de fluide hors la chambre de mesure 50 par l'ouverture droite 35 36 de l'alésage 32. Dans une variante de l'invention, non représentée, l'alésage 32 ne débouche pas sur la face 40 du cadre 30, mais forme un trou borgne. Avantageusement, les volumes de la chambre de mesure 50 et des zones d'inertie (régions dans lesquelles la vitesse du fluide à analyser est susceptible de diminuer, voire de s'annuler pendant l'analyse) sont réduits. En outre, aucun joint d'étanchéité 88 n'est plus nécessaire. Enfin, le changement de carte ne nécessite plus alors de nettoyer la face droite 86 de la fente 24, celle-ci n'étant plus jamais en contact avec les fluides analysés. Ce mode de réalisation rend cependant plus délicat la mise en place des bactéries sur la vitre 16, aucun accès direct à la face droite 46 n'étant alors disponible. Une amélioration consiste à pratiquer un alésage débouchant, comme représenté sur la figure 2, de manière à pouvoir facilement accéder à la face droite 46 de la vitre 16 pour y placer les bactéries, puis à boucher l'ouverture droite 36 de l'alésage au moyen d'un bouchon étanche. En variante, le cadre 40 pourrait encore être formé en deux demi coques conformées de manière à permettre un accès à la face droite 46 de la vitre 16 en position démontée des deux demi coques tout en assurant une étanchéité de la chambre de mesure 50 par rapport à la face droite 86 de la fente 24 dans la position assemblée des deux demi coques. De préférence, les joints d'étanchéité 82, 84 et 88 sont fixés à la surface du cadre 30, par exemple par un montage en force dans des gorges disposées autour des ouvertures correspondantes. La profondeur des gorges est déterminée pour permettre le coulissement de la carte 14 dans la fente 24 tout en assurant une écrasement des joints suffisant pour garantir l'étanchéité entre la carte 14 et le bloc 22. Le volume total de la chambre de mesure 50 est de préférence d'environ 1, 32 cm3. Le bloc 22 comporte encore un alésage 90, de préférence sensiblement horizontal d'axe A, servant de logement à un faisceau de fibres optiques 92. Le faisceau de fibres optiques 92 comporte un coeur 93 formé par une pluralité de fibres optiques, et, de préférence, une gaine 94 ceinturant le coeur 93 pour le protéger et l'isoler optiquement. L'alésage 90 débouche à l'intérieur de la fente 24, de manière que les faces terminales des fibres optiques du coeur 93 soient en regard de la face gauche 95 de 35 la vitre optique 16. Le faisceau de fibres optiques 92 est solidarisé au bloc 22 au moyen d'une férule 96. La férule 96 permet avantageusement un positionnement précis des extrémités des fibres du faisceau de fibres optiques 92 selon un plan Po parallèle au plan P, de la face gauche 95 de la vitre optique 16. La fixation du faisceau de fibres 92 au moyen d'une férule 96 permet en outre de reproduire à l'identique la position du coeur du faisceau de fibres 96 après des opérations de maintenance éventuelles. La férule 96 permet un positionnement rapide et simple du faisceau de fibres 92, évitant le recours à un système plus complexe dans lequel le signal émis par les bactéries est focalisé dans le coeur du faisceau de fibres par une lentille biconvexe, qui exige une géométrie extrêmement précise. La présente invention concerne cependant également un biocapteur comportant un tel système. A la différence des biocapteurs bactériens bioluminescents en phase immobilisée selon la technique antérieure où la membrane de bactéries est directement fixée à la surface d'un faisceau de fibres optiques, l'utilisation d'une carte amovible 14 selon l'invention impose un écartement de la face gauche 95 de la vitre optique 16 et du faisceau de fibres 92. De préférence, l'écartement a entre les plans Po et P, est cependant inférieur à environ 1 mm. Avantageusement, la dispersion des photons entre les bactéries et les fibres optiques en est limitée. De plus, de préférence, la vitre 16 isole la chambre de mesure 50 du faisceau de fibres optiques 92. Aucun fluide ne circule donc entre les bactéries 18 et le faisceau de fibres optiques 92. Avantageusement, il est ainsi possible d'analyser des échantillons disposés dans la chambre de mesure 50 qui entravent la transmission du signal émis par les bactéries, par exemple des échantillons opaques ou troubles. La fente 24 du bloc 22 est conformée pour assurer un positionnement précis de la carte 14 par rapport au faisceau de fibres optiques 92, tout en permettant l'écrasement des joints toriques d'étanchéité 82, 84 et 88. Lorsque la carte 14 est insérée dans le bloc 22, la vitre optique 16 est située exactement en face de la férule 96. De préférence, le bloc 22 comporte enfin un logement 98 situé à quelques millimètres de la vitre optique 16 et recevant un élément chauffant 100. Le transfert de chaleur depuis cet élément chauffant 100 vers la carte 14 est réalisé par simple conduction thermique grâce aux propriétés thermiques du plastique ERTACETAL . Le boîtier 12 incorpore alors de préférence des moyens de régulation de température, non représentés, permettant de maintenir les bactéries à une température de consigne au moyen de l'élément chauffant 100. La carte 14 est avantageusement totalement dépourvue de tout composant électrique ou électronique. Elle peut donc être remplacée en quelques minutes en fonction de la mesure souhaitée par un opérateur sans qualification particulière. La carte 14 est de préférence équipée d'un moyen de préhension, par exemple d'une bague non représentée, facilitant son introduction et son extraction manuelles. De préférence, le boîtier 12 incorpore encore un circuit hydraulique 102 (voir figure 1) permettant d'introduire et d'extraire différents fluides, en particulier des liquides contenant un ou plusieurs agents cibles, simultanément ou successivement, dans la chambre de mesure 50. De préférence le circuit hydraulique 102 permet le passage séparé, alternativement, d'au moins trois échantillons fluides extraits de sources 104 dans la chambre de mesure 50, en assurant une récupération des déchets. Cette récupération permet avantageusement une décontamination biologique et évite tout relargage, même accidentel, des bioéléments dans l'environnement. De préférence encore, le boîtier 12 incorpore des moyens de ventilation non représentés, de préférence à fonctionnement continu, afin de limiter à la fois l'échauffement des appareils électriques et les phénomènes éventuels de condensation. Une source d'énergie électrique ou des moyens de connexion électrique, non représentés, sont également prévus pour alimenter les différents consommateurs électriques du biocapteur. Le fonctionnement du biocapteur décrit ci-dessus est le suivant. Pour détecter ou mesurer un agent cible, l'opérateur insère une carte 14 dans la fente 24 de manière que la vitre 16 sépare le faisceau de fibres optiques 92 de la membrane de bactéries 18. Des moyens détrompeurs peuvent être prévus pour éviter toute erreur lors de cette étape. La carte 14 est insérée jusqu'à la position de service représentée sur la figure 2. Dans la position de service, les ouvertures d'entrée 58 et de sortie 64 de la carte 14 sont en regard des ouvertures d'entrée 80 et de sortie 78 du bloc de réception 22 respectivement, et la vitre 16 fait face au faisceau de fibres optiques 92. De préférence, des butées, non représentées, sont prévues dans le boîtier 12 pour n'autoriser l'enfoncement de la carte 14 dans la fente 24 que jusqu'à la position de service. L'opérateur ne rencontre ainsi aucune difficulté pour positionner la carte 14 dans cette position. Si nécessaire, l'opérateur fixe une température de consigne, aidé par exemple par un contrôleur affichant en temps réel la température du bloc 22 et commandant l'élément chauffant 100. Cette température peut par exemple être mesurée en temps réel au moyen d'un thermocouple de type J, non représenté, placé dans le bloc 22. Comme le plastique ERTACETAL présente une excellente conductivité thermique, la température du bloc 22 mesurée par le thermocouple peut avantageusement être considérée comme égale à celle de la carte 14. L'opérateur commande alors le circuit hydraulique 102, en fixant notamment le débit du fluide injecté dans la chambre de mesure 50, la séquence des différents fluides à faire transiter dans la chambre de mesure 50, et les durées pendant lesquelles ces fluides doivent être en contact avec les bactéries 18 dans la chambre de mesure 50. Les flèches en trait épais sur la figure 2 représentent la circulation du fluide. Les fluides diffusent dans la matrice d'immobilisation et font réagir les bactéries immobilisées qui émettent de la lumière. Cette lumière traverse la vitre 16, puis l'espace d'air séparant cette vitre 16 et le faisceau de fibres 92. Elle pénètre ensuite dans le faisceau de fibres optiques 92 qui la transmet à un convertisseur qui assure leur conversion en un signal électrique. Ce signal peut être enregistré, interprété ou être visualisé, de préférence en temps réel. Le boîtier 12 est de préférence suffisamment hermétique à la lumière pour permettre une mesure en continu de la bioluminescence bactérienne. La collecte des photons par le faisceau de fibres 92 est améliorée en augmentant le diamètre du coeur 93 du faisceau de fibres 92. De préférence, ce diamètre atteint celui de la vitre optique 16 (de préférence d'environ 6,35 mm). Un diamètre de coeur de fibre de 1 mm est cependant déjà satisfaisant. A la fin de la mesure, l'opérateur arrête la circulation de fluide dans la chambre de mesure 50. II peut alors extraire la carte 14 et la remplacer par une autre, par exemple pour mesurer de nouveaux agents cibles ou parce que la première carte 14 est désormais défectueuse. La carte 14 peut être conçue pour être jetable après utilisation sans que le coût d'exploitation du biocapteur n'en pâtisse. Comme cela apparaît clairement à présent, la manipulation du biocapteur selon l'invention est particulièrement simple, l'intervention de l'opérateur étant minimale. De plus, le biocapteur peut être automatisé. Le gain de temps est alors très significatif. La possibilité de remplacer aisément une carte par une autre réduit également avantageusement la maintenance du biocapteur. Des cartes prêtes à l'emploi peuvent être facilement fabriquées et commercialisées, indépendamment des moyens de transduction. Bien entendu, la présente invention n'est pas limitée au mode de réalisation décrit et représenté fourni à titre d'exemple illustratif et non limitatif. En particulier, la partie biologique du biocapteur n'est pas limitée à une membrane de bactéries bioluminescentes fixée sur un support. D'autres bioéléments que des bactéries ou d'autres microorganismes sont envisageables. Par exemple, on peut utiliser des protéines particulières, des enzymes ou des anticorps. La réponse des bioéléments ne se présente pas nécessairement sous la forme d'un signal lumineux, d'autres rayonnements électromagnétiques étant envisageables. La réponse des bioéléments peut également résulter, par exemple, en une modification du pH du fluide présent dans la chambre de mesure ou de sa teneur en oxygène ou en gaz carbonique. Dans le cas d'une mesure d'oxygène, le support est de préférence une membrane de Téflon perméable à l'oxygène mais imperméable aux bioélements. Les moyens de transduction sont alors adaptés en conséquence. Des organes supplémentaires peuvent également être prévus en fonction des bioéléments. Par exemple, une source lumineuse peut être nécessaire pour activer certains bioéléments. De préférence, cette source éclaire les bioéléments par l'intermédiaire du faisceau de fibres optiques et de la vitre. De manière générale, le biocapteur peut comporter des moyens d'émission d'un signal agencés de manière à irradier le support dans la position de service et des moyens de réception de ce rayonnement après interaction avec le support, les bioéléments étant aptes à modifier ladite interaction sous l'effet de l'agent cible à détecter. Un substrat peut également être introduit dans la chambre de mesure pour permettre la génération d'une réaction sensible des bioéléments à la présence de l'agent cible. Les moyens de transduction ne sont pas non plus limités à ceux décrits. Par exemple, le biocapteur pourrait comprendre une photodiode agencée pour recevoir la lumière émise par les bioéléments et capable de transformer directement cette lumière en une information sur sa nature et/ou son intensité, en particulier en un signal électrique. La carte selon l'invention peut aussi être "multicanal", c'est-à-dire être capable de détecter ou de mesurer plusieurs agents cibles, simultanément ou non. Les formes et les dimensions de la carte, du bloc ou du boîtier ne sontpas limitées. Il en est de même de l'orientation de la partie biologique et des conduites du circuit hydraulique. Les alésages peuvent également être de forme quelconque. La chambre de mesure et les moyens d'alimentation et d'évacuation de fluide débouchant dans cette chambre pourraient également être localisée à gauche de la vitre, à condition que les fluides à analyser soient suffisamment transparents aux rayonnements émis par les bioéléments pour atteindre le faisceau de fibres optiques. Le fluide circulerait alors entre les bactéries immobilisées sur la face gauche de la vitre et le faisceau de fibres optiques avec lequel il serait en contact. Enfin, le biocapteur et la carte selon l'invention peuvent être utilisés pour détecter et/ou mesurer un agent cible, en laboratoire ou sur site, pour analyser tout fluide, liquide ou gazeux. REVENDICATIONS 1. Biocapteur comportant un boîtier (12), un support d'immobilisation (16) de bioéléments (18) et des moyens de transduction (20), les moyens de transduction (20) étant aptes, quand le support (16) est monté sur le boîtier (12) dans une position de service, à recevoir un signal émis par lesdits bioéléments (18) et à le convertir en une information sur sa nature et/ou son intensité, caractérisé en ce que le support (16) est démontable du boîtier (12) indépendamment des moyens de transduction (20). 2. Biocapteur selon la revendication 1, dans lequel le support (16) est amovible manuellement. 3. Biocapteur selon l'une quelconque des revendications 1 et 2, dans lequel le support (16) est agencé de manière à isoler physiquement, dans la position de service, les bioéléments (18) et les moyens de transduction (20). 4. Biocapteur selon l'une quelconque des revendications précédentes, dans lequel le support (16) est transparent audit signal. 5. Biocapteur selon l'une quelconque des revendications précédentes, dans lequel le support (16) est fixé sur un cadre (30) d'une carte (14) enfichable dans une fente (24) du boîtier (12). 6. Biocapteur selon la revendication 5, dans lequel le support (16) est collé sur le cadre (30) au moyen d'une colle thermique. 7. Biocapteur selon l'une quelconque des revendications précédentes comportant des moyens de communication (102) aptes à mettre en relation de fluide, dans la position de service, les bioéléments (18) et une source de fluide extérieure (104) au biocapteur. 8. Biocapteur selon l'une quelconque des revendications précédentes dans lequel, dans la position de service, le support (16) s'étend sensiblement verticalement. 9. Biocapteur selon l'une quelconque des revendications précédentes comportant des moyens pour faire circuler un fluide de bas en haut le long du support (16) dans la position de service. 1O.Carte enfichable dans une fente (24) d'un boîtier (12) d'un biocapteur selon l'une 5 quelconque des revendications précédentes, comportant un support d'immobilisation (16) de bioéléments (18) fixé sur un cadre (30).