FR 2881339 A1 20060804 FR 0550303 A 20050202 DISPOSITIF DE PRELEVEMENT MOLECULAIRE PAR CONTACT DESCRIPTION DOMAINE TECHNIQUE L'invention concerne le domaine du diagnostic clinique et/ou du suivi thérapeutique non invasifs. Plus particulièrement, l'invention se rapporte à un dispositif de prélèvement de molécules d'intérêt biologique par contact, qui ne nécessite pas d'ablation ni de biopsie, et dont l'architecture est telle que son insertion ne cause pas de dommage au tissu environnant. L'invention est notamment adaptée à la protéomique ou la génomique. L'invention concerne également un procédé permettant la détermination de la composition protéique des différentes couches d'un tissu. En particulier, ce procédé est adapté à la cartographie de tumeurs, par exemple dans le cerveau. ÉTAT DE LA TECHNIQUE ANTÉRIEURE Tout comme la chirurgie tend à être de moins en moins invasive, les techniques de diagnostic clinique et de suivi thérapeutique tendent à la miniaturisation des outils nécessaires aux divers prélèvements et contrôles. Les progrès de l'imagerie ont fortement contribué à cette évolution à travers, par exemple, deux voies, en particulier en cancérologie: amélioration de la limite de détection de tumeurs cancéreuses, aide accrue pour le chirurgien grâce à l'utilisation systématique de méthodologies de repérage et d'assistance au positionnement. Parallèlement, la biologie moléculaire, que ce soit au niveau de la génomique ou de la protéomique, est de plus en plus associée à l'établissement d'un diagnostic. En fait, il est envisagé de remplacer dans certains cas l'oeil de l'anatomopathologiste par une méthode d'analyse moléculaire, et de nombreux développements ont lieu dans les domaines de la protéomique et de l'analyse de masse associée pour identifier et caractériser des marqueurs biologiques. Il n'en reste pas moins que la méthode de prélèvement des molécules cibles est cruciale. Or les outils existants permettant de faire de l'analyse moléculaire sont tous basés sur le principe de la biopsie, c'est-à-dire sur le prélèvement de cellules ou de tissus plus ou moins entiers, qui seront analysés ex situ. Ces techniques altèrent donc l'intégrité biologique; de plus, elles ne peuvent pas toujours être utilisées, d'autant plus que l'insertion même d'un dispositif de prélèvement doit être minimale dans certaines régions, en particulier par exemple dans le cerveau. EXPOSÉ DE L'INVENTION L'invention sous l'un de ses aspects vise à pallier les inconvénients des dispositifs de prélèvement existants. L'empreinte moléculaire est une nouvelle approche. Elle consiste à non plus extraire des tissus de la zone d'intérêt mais à simplement y apposer l'outil de prélèvement. Par contact, sur une surface associée adaptée, de nombreuses molécules, comme les protéines, se retrouvent piégées sur l'outil et peuvent ensuite être désorbées et analysées ex situ. L'invention se propose donc d'utiliser le simple contact pour le prélèvement de molécules d'intérêt biologique: une empreinte du tissu est obtenue sur un dispositif selon l'invention, et les molécules ainsi récupérées dans une zone de capture du dispositif peuvent être analysées. En particulier, comme la taille du dispositif, habituellement plan, est réduite, la surface développée de la zone de capture du dispositif selon l'invention est augmentée de sorte que la quantité de molécules cibles piégées soit suffisante pour permettre une analyse ultérieure efficace. Le dispositif de prélèvement selon l'invention comprend ainsi un support ayant au moins une zone de capture moléculaire sur une face. La zone de capture est telle que sa surface développée est au moins trois fois plus grande que sa surface en vue de dessus; le rapport entre les surfaces développée et projetée peut atteindre un facteur vingt, voire plus. Le support peut comprendre une autre zone de capture sur une face opposée à la première. Avantageusement, le dispositif selon l'invention comprend, sur une face ou les deux, plusieurs zonës de capture étagées, c'est-à-dire séparées par des zones d'intervalle définies matériellement. Ainsi, il est possible d'analyser les molécules présentes à différentes profondeurs dans le tissu où le dispositif a été inséré. De préférence, le dispositif est sécable entre les différentes zones de capture. Par exemple, des moyens de séparation, comme des encoches obtenues par gravure partielle du support, sont présents dans les zones d'intervalle. Différents modes de réalisation sont prévus pour les zones de capture. Les zones de capture comprennent une paroi de fond, qui peut délimiter une cavité. Pour augmenter la surface développée, la paroi de fond peut servir de base à la mise en place de microbilles, qui y sont maintenues par une membrane semi-perméable, et/ou présenter des protubérances. Pour réaliser ces protubérances, les techniques microtechnologiques ou de moulage plastique sont possibles, afin de créer par exemple des réseaux organisés de colonnes carrées ou hexagonales de 3 à 50 pm, par exemple entre 5 et 20 pm, de côté et de hauteur comprise entre 10 et 400 pm, par exemple de l'ordre de 50 pm. De façon avantageuse, les zones de capture sont fonctionnalisées, c'est-àdire que les parois du support et/ou les microbilles sont associées à des marqueurs. Le dispositif selon l'invention est de préférence associé à une tige de manipulation et un manchon de guidage qui permettent de le positionner avec précision au sein du tissu à analyser. En particulier, le manchon peut comprendre des moyens qui permettent de ne mettre les zones de capture en contact avec le milieu environnant que lorsque le dispositif est en place. Sous un autre aspect, l'invention concerne un procédé permettant de réaliser une cartographie ou une analyse différenciée selon la profondeur de la zone cible. Un dispositif possédant plusieurs zones de capture étagées est inséré dans le tissu à analyser, un prélèvement par contact est effectué, et les molécules prélevées par les différentes zones de capture sont analysées séparément. Pour réaliser les analyses, les zones de capture peuvent être séparées les unes des autres par section du dispositif, ou le support des zones de capture peut être utilisé dans l'appareillage de mesure. BRÈVE DESCRIPTION DES DESSINS Les caractéristiques et avantages de l'invention seront mieux compris à la lecture de la description qui va suivre et en référence aux dessins annexés, donnés à titre illustratif et nullement limitatifs. La figure 1 représente un système de prélèvement par contact selon un mode de réalisation de l'invention. La figure 2 montre un mode de réalisation d'une zone de capture pour un dispositif selon l'invention. Les figures 3A et 3B montrent, en coupe, un autre mode de réalisation d'une zone de capture pour un dispositif selon l'invention. La figure 4 présente un mode de réalisation d'une zone de capture pour un dispositif selon l'invention. Les figures 5 montrent différents modes de 5 réalisation de moyens pour séparer les zones de capture d'un dispositif selon l'invention. La figure 6 présente un procédé d'utilisation d'un dispositif selon l'invention pour une cartographie. EXPOSÉ DÉTAILLÉ DE MODES DE RÉALISATION PARTICULIERS La biochimie moléculaire, par exemple la génomique ou surtout la protéomique, à savoir l'étude des ensembles de protéines, permet d'analyser des composants individuels d'intérêt, en particulier biologique. Ainsi, un système de prélèvement 1 selon l'invention, schématisé manchon de guidage 2, guide 2 permet entre passage du dispositif particulier le mettre en figure 1, peut comprendre un par exemple un cathéter: le autres de définir la voie de de prélèvement. On peut en en place, éventuellement sous contrôle optique ou zone cible 3, par radiologique, préalablement dans la exemple une tumeur ou un tissu, in vivo ou déjà prélevée, par exemple par biopsie. 25 Avantageusement, la partie d'extrémité 4 du guide 2 est munie de moyens d'obturation 5 qui protègent le dispositif de prélèvement 6 lors de son insértion et permettent de le mettre en contact avec le tissu d'intérêt 3 une fois en place. Dans le cadre de 30 l'invention, les moyens d'obturation 5 sont de préférence localisés le long de l'axe longitudinal du guide 2 dont l'extrémité distale est fermée. Les moyens d'obturation 5 peuvent par exemple être une fenêtre rotative ou coulissante, ou une membrane résorbable partiellement. Le dispositif de prélèvement 6 comprend avantageusement une tige de manipulation 7, dont la longueur dépend de l'utilisation et de la profondeur d'insertion, et qui peut coulisser dans le guide 2. La partie d'extrémité 8 de la tige 7 est destinée au prélèvement proprement dit. Avantageusement, le guide 2 et donc la tige de manipulation 7 ont un diamètre très faible de façon à ne pas altérer le tissu 3, et à permettre des interventions non invasives chez un patient. Ainsi, la tige 7 peut avoir un diamètre restreint à quelques millimètres, voire 100 pm; le guide 2 a un diamètre externe voisin du diamètre de la tige 7. Cependant, pour des analyses fines et précises de composés présents de façon minoritaire dans la zone d'intérêt 3, comme des molécules, la quantité de fluide prélevé doit être suffisante pour permettre l'extraction d'informations quant à la nature tissulaire. En particulier, l'utilisation d'une simple aiguille 7 de petit diamètre ne permet pas une analyse ultérieure efficace en raison de la faible quantité de molécules cibles piégées sur sa surface, qui est réduite même si un usinage est réalisé. Or selon l'invention, le système de prélèvement 1 peut être utilisé sans restriction, en particulier également dans le cerveau, et donc le dispositif 6 est inclus dans un cylindre de diamètre de l'ordre de 995 nm, voire moins. Selon l'invention, la partie d'extrémité 8 du dispositif de prélèvement 6 possède au moins une zone de capture 10 dont la surface développée est très supérieure à la surface normale, de 3 à plus de 20 fois, ce qui permet de diminuer la taille du dispositif 6 tout en maintenant le prélèvement dans des proportions adéquates. Le dispositif de prélèvement 6 comprend ainsi un support 12 qui est de préférence indépendant de la tige de manipulation 7 à l'extrémité de laquelle il peut être solidarisé, par exemple par collage. Ceci permet notamment de séparer les procédés de fabrication des deux parties de manipulation et de prélèvement, et d'utiliser une tige 7 classique de faible coût. Le support 12 est fabriqué de préférence en un matériau biocompatible, tout comme la tige 7, et les différents éléments composant le manchon de guidage 2, qui par exemple peuvent être en or ou en plastique,.... Le support 12 peut être de forme quelconque, mais avantageusement il est plan, sous forme de plaque, tel qu'il apparaîtra à la description des procédés de fabrication. Quoi qu'il en soit, on peut définir sur le support 12 une première face 14 et une deuxième face opposée 16: dans le cas d'un support 12 non plan, les termes face et face opposée désignent des portions de la surface externe du support 12 qui sont symétriques par rapport à un plan sécant du support 12. Avantageusement, les faces 14, 16 sont comprise dans un support 12 qui fait de l'ordre de 1 cm de long sur une largeur de 300 pm. La première face 14 du support 12 est munie d'une zone de capture 10. De façon préférée, et tel que schématisé, une pluralité de zones de capture 10a, 10b, 10c, 10d sont présentes sur la face 14 du support 12, séparées par des zones d'intervalle 18. Dans le cadre représenté, quatre zones de capture sont présentes, mais il est clair que leur nombre dépend de l'utilisation, en particulier de la taille du dispositif 6, de la taille de la zone cible 3 et de la concentration de molécules d'intérêt dans cette zone 3, ainsi que de la surface développée des zones de capture 10 et du procédé de fabrication. Il est possible aussi que des zones de capture 20 soient placées sur la deuxième face 16. De façon préférée, et tel qu'il apparaîtra plus clairement plus loin, les deuxièmes zones de capture 20 sont alignées et en opposition avec les premières zones 10. Les deuxièmes zones de capture 20 peuvent être de nature et géométrie identiques aux premières zones 10, ou différentes, tel que schématisé dans la figure 1: les divers modes de réalisation présentés plus loin peuvent être combinés. La surface développée de chacune des zones de capture 10, 20 est supérieure à trois fois la surface plane de la zone de capture 10, 20. Un mode de réalisation est présenté sur la figure 2. La zone de capture 10 comprend une paroi de fond 22. Suivant le mode de fabrication, la paroi de fond 22 peut être localisée sur le support 12, ou peut y délimiter une cavité (voir figure 4). La paroi de fond 22 a une surface s. La paroi de fond 22 présente une pluralité de protubérances 24. De préférence, si la zone de capture comprend une cavité, la hauteur des protubérances 24 est identique à la profondeur de la cavité, mais il est possible qu'elles soient saillantes. Par ailleurs, il est préférable que la surface du support 12 soit uniforme, de préférence plane, à l'exception des zones de capture 10, et des éventuels moyens de séparation (décrits plus loin). En effet, une telle surface plane peut plus aisément être analysée par exemple lors d'une désorption laser en analyse de masse au vu de l'uniformité de l'énergie d'impact. La surface développée S de la zone de capture 10 est donc égale à la surface s de la paroi de fond 22 à laquelle s'ajoute la surface de chacune des parois latérales des protubérances 24. Selon l'invention, les surfaces vérifient la relation: (1) S 3.s, le facteur 3 pouvant avantageusement prendre les valeurs 5 ou 10 par exemple. Les protubérances 24 peuvent prendre toute géométrie désirée, par exemple des colonnes carrées ou à section hexagonale. De préférence, les protubérances 24 sont arrangées de façon régulière, par exemple en réseau à mailles carrées ou hexagonales. Différents procédés de fabrication sont envisageables pour de telles zones de capture 10: par exemple, si le support 12 est en plastique, il est possible d'utiliser des techniques d'injection ou d'empreinte à chaud ( hot embossing ), qui permettent d'obtenir par réplication des pièces complémentaires de moules réalisés préalablement. On pourra ainsi fabriquer des protubérances de 20 pm de côté, sur une hauteur de 50 pm à bas coût, sur un support 12 en polyéthylène, ou poly(méthyl)métacrylate (PMMA), ou polycarbonate, ou polydiméthylsiloxane (PDMS), ou parylène, ou TéflonTM; une option est également de déposer un de ces matériaux, notamment le parylène ou le Téflon", sur une surface plastique, voire métallique, quelconque afin de la rendre biocompatible. Si un rapport surface/volume plus élevé est souhaité, il est possible d'utiliser des techniques de microtechnologie. Par exemple, le procédé décrit en référence aux figures 7 du document FR-A-2 846 957 peut être utilisé ; le procédé décrit dans ce document est cependant simplifié car seul le support 12 est usiné : il n'y a pas de formation de canaux d'alimentation et/ou de scellement de capot. Un tel procédé permet d'obtenir des protubérances 24 de 5 pm de côté sur une hauteur de 100 pm sur un support 12 en silicium. Plus généralement, les protubérances 24 peuvent faire de 5 à 20 pm de côté pour 50 à 400 pm de profondeur; l'usinage du support 12 est tel qu'en fin de procédé, le dispositif soit biocompatible. En particulier, un support 12 en silicium est oxydé pour être revêtu de SiO2, de comportement biocompatible analogue au verre. Pour réaliser des zones de capture 10, 20 sur les deux faces opposées du support 12, il est possible par exemple de coller deux supports 12, 12' réalisés comme précédemment (voir figure 5E), ou de fabriquer un module double face par les techniques microtechnologiques sur silicium ou de moulage plastique (figure 5D). Afin d'augmenter encore la surface développée de la zone de capture 10, il est possible de remplir les espaces 26 entre les protubérance 24 par des microbilles 28. Les microbilles 28 sont utilisées de façon courante en microbiologie; elles ont classiquement un diamètre de l'ordre d'une dizaine de nm jusqu'une centaine de pm, et peuvent être composées de verre, poreux ou non, ce qui leur permet d'être fonctionnalisées et de rester biocompatibles. Suivant le mode de réalisation de la zone de capture 10 et le positionnement des protubérances 24, tel qu'expliqué dans le document FRA-2 846 957, il est possible d'aboutir à un alignement des billes 28 dans les espaces 26 entre les protubérances 24 (figure 3B), ce qui facilite la quantification de la surface développée. Par exemple, les espaces 26 entre les protubérances ont une largeur inférieure à 50 pm. Cependant, tout autre mode de réalisation est possible, avec notamment un entassement au hasard. Il est possible également de dimensionner les espaces 26 de sorte que des premières billes 28 soient localisées précisément et que des deuxièmes billes 28' de diamètre inférieur puissent ensuite être mises en place (figure 3A). En particulier, les microbilles 28 augmentent la surface développée de la zone de capture 10 de façon notable. Il peut être avantageux dans ce cas de ne pas avoir de protubérances 24, mais des zones de capture 30 composées de cuvettes 32 emplies de billes 28, tel que schématisé sur la figure 4. Les cuvettes 32 des zones de capture 30 peuvent être réalisées par exemple par gravure microtechnologique du support 12, ou par report d'un maillage de parois 34, ou par moulage de matériau plastique. Elles sont ensuite remplies par des microbilles 28, avantageusement calibrées. En présence de microbilles comme sur les figures 3 et 4, il est avantageux de maintenir les billes 28 en place par une membrane poreuse 36. Le film poreux 36 est choisi de façon à laisser les molécules d'intérêt migrer à l'intérieur de la zone de capture 10, 30. On peut utiliser des filtres commerciaux en polycarbonate de porosité inférieure au pm que l'on colle sur les cavités par sérigraphie (par exemple DynamaskTM, de la société Dynatech), ou des films secs de résine photosensible (comme OrdylTM de la société Elga) que l'on insole par photolithographie pour réaliser la porosité ; cette technique est plus adaptée pour des billes 28 de diamètre supérieur à 1 pm. Il peut être intéressant de fonctionnaliser tout ou partie des éléments des zones de capture 10, 30 en contact avec le milieu 3 à analyser pour assurer une optimisation de la fonction de capture et/ou pour cibler certaines molécules d'intérêt. En particulier, il est possible de fixer un marqueur sur les protubérances 24 et/ou les billes 28 et/ou les parois 22, 34. Comme fonctionnalisation, on peut envisager la fixation de sondes ADN, la fixation d'anticorps spécifiques, la fixation d'une matrice d'affinité pour des analyses ultérieures en spectromètre de masse. Par exemple, il est possible de réaliser une chimie de couplage sur le dispositif de la figure 2 qui présente un oxyde épais SiO2 en surface. Il est à noter qu'il est possible d'avoir dans une même zone de capture 10, 30 plusieurs fonctions différentes en jouant soit sur le fait que billes et parois sont fonctionnalisées différemment, soit sur un mélange de billes 28, 28', en particulier si leur diamètre est différent, tel que décrit dans FR-A-2 846 957. Par ailleurs, dans le cas où le dispositif de prélèvement 6 possède plusieurs zones de capture 10 (voir figure 1), il est possible d'utiliser les mêmes fonctions sur chaque zone de capture, ou d'opérer une différenciation spatiale, comme par exemple par le dépôt localisé par gouttes ( spotting ) connu pour les puces à ADN. Selon l'utilisation et notamment les analyses des molécules prélevées, il peut être intéressant de séparer les zones de capture 10a-10d d'un même dispositif 6. En particulier, les supports 12 peuvent être sécables pour chacun des modes de réalisation précédents. Afin de faciliter la section du support 12, avantageusement, les zones d'intervalle 18 entre les zones de capture 10, 30 sont munies de moyens de séparation. Par exemple, des encoches peuvent avoir été gravées en même temps que la réalisation des protubérances 24 et/ou des parois 34: figures 5. Les zones d'intervalle 18, 34 peuvent alors facilement être sectionnées. Différents modes de réalisation sont envisageables: par exemple, il est possible de réaliser une amorce de clivage 42 par gravure du support 12 sur la face 16 opposée à la face 14 comprenant les zones de capture 10, par masque et gravure par exemple (figure 5A). On peut également réaliser cette encoche 44 sur la face avant 14, ou choisir par exemple une gravure chimique isotrope, par exemple au KOH (figure 5B). En ce qui concerne les dispositifs du type de la figure 4, c'est-à-dire à cuvette simple 32, habituellement, les zones d'intervalle sont composées de parois 34. Il peut être souhaitable dans ce cas de définir également des encoches de clivage 46 en face arrière en dessous des parois 34: figure 5C. Si des zones de capture 10, 20 sont présentes sur chaque face 14, 16, il est possible de ne positionner des moyens de séparation que sur l'une des faces (figure 5D), ou sur les deux (figure 5E). On peut noter à cet égard deux modes de réalisation pour les dispositifs comprenant des zones de capture 10, 20 sur chacune de leurs faces opposées 14, 16: un support 12 (figure 5D) ou collage de deux supports 12, 12' (figure 5E). Il est clair également que les différents modes de réalisation d'encoches 42, 44, 46 peuvent être utilisés indifféremment et en combinaison. Selon un mode d'utilisation du dispositif selon l'invention schématisé en figure 6, le guide 2 est d'abord mis en place, de préférence sous contrôle dans la zone cible 3; le support 12 est collé en bout de tige 7. La tige 7 est insérée dans le guide 2, sous contrôle optique également afin d'assurer la précision de son positionnement, et en particulier de déterminer les zones A, B, C, D de la tumeur 3 correspondant à chacune des zones de capture 10a-10d. Une fois les zones de capture 10a-10d en place, les moyens d'obturation 5 sont ouverts, et le prélèvement est effectué ; aucune manipulation du dispositif lui-même n'est nécessaire, la surface de contact des zones de capture 10 étant directement accessible (sans capot par exemple). Ceci permet par ailleurs une miniaturisation de l'ensemble, et notamment du support 12. Les moyens d'obturation 5 peuvent ensuite être refermés. La tige 7 est ensuite retirée du guide 2, le support 12 en est détaché, et les zones de capture 10a-10d peuvent être analysées. Deux approches pour le traitement de 20 l'échantillon prélevé peuvent être mises en oeuvre lors de l'analyse: 1) Le dispositif 6 est sécable, et chaque zone 10a-10d est traitée de façon indépendante. De fait, une fois la tige 7 retirée, le support 12 est cassé et les différentes zones 10a-10d sont introduites dans des tubes de lavage et d'extraction 50a-50d. Les molécules A, B, C, D ainsi extraites peuvent être stockées dans une banque de données et/ou déposées sur une barrette pour une analyse, par exemple en masse pour une analyse protéomique. 2) Il est possible également de ne pas couper le support 12, qui conserve ainsi la définition des zones actives A-D étagées au sein de la tumeur 3. C'est le support 12 lui-même qui sert de substrat pour le dispositif 60 d'analyse finale, par exemple par une désorption directe assistée sous laser. Quelle que soit l'approche choisie, on peut obtenir une cartographie du tissu d'intérêt, et des résultats concernant la composition protéique en fonction de la profondeur dans la zone cible 3. Le dispositif de prélèvement selon l'invention présente ainsi des caractéristiques particulièrement avantageuses: - le prélèvement est peu invasif: en particulier, le diamètre apparent du dispositif 6, et même du système 1, est réduit, notamment à quelques mm voire 100}gym tout en conservant une forte surface développée pour capturer suffisamment de molécules cibles; - le prélèvement est peu agressif: il se fait par contact (ou imposition ) sans section de tissu; - la partie du dispositif usinée et servant réellement au prélèvement est réduite et ne couvre que le support 12, qui peut être associé à une tige de manipulation 7 de bas coût; - l'usinage de la partie servant au prélèvement 12 est réduit à la fabrication des zones de contact 10, 20, 30, sans autres éléments mécaniques ni étapes supplémentaires de scellement ou collage; la forte surface développée des zones de capture 10, 20, 30 compense la miniaturisation et permettent des analyses fiables; - le dispositif 6 peut être utilisé en geste opératoire in vivo ou en post-opératoire, voire in vitro sur un tissu prélevé et demandeur d'analyse moléculaire; - la présence de zones de capture 10a-10d étagées permet d'analyser après empreinte la répartition des molécules d'intérêt dans la zone de prélèvement 3; - chaque zone de capture 10, 30 peut être fonctionnalisée selon les molécules ciblées et/ou le type d'analyse finale (génomique, protéomique) - chaque zone de capture 10a-10d peut être séparée des autres et être analysée par une technique propre; - le support du dispositif 12 peut être compatible avec tout équipement d'analyse ultérieure, par exemple il peut comprendre une matrice spécifique pour la spectrographie de masse; - une cartographie selon l'axe de profondeur de la zone 3 analysée peut être établie selon les zones actives A-D successives différentiées le long du dispositif; la méthode opératoire sous stéréoscopie permet en effet de guider précisément le dispositif 6 et de savoir exactement quelle région A-D a été sondée. REVENDICATIONS 1. Dispositif (6) de prélèvement de molécules d'intérêt biologique par contact comprenant un support (12) ayant une première face (14) opposée à une deuxième face (16) et au moins une première zone de capture (10) sur la première face (14) telle que la surface développée (S) de la première zone de capture (10) est au moins trois fois supérieure à sa surface (s). 2. Dispositif selon la revendication 1 comprenant au moins une deuxième zone de capture (20) sur la deuxième face (16) telle que la surface développée de la deuxième zone de capture (20) est supérieure à sa surface. 3. Dispositif selon la revendication 2 dans lequel la surface développée de la deuxième zone de capture (20) est au moins trois fois supérieure à sa surface. 4. Dispositif selon l'une des revendications 1 à 3 comprenant une pluralité de premières zones de capture (10a-10d) sur la première face (14) séparées par des premières zones d'intervalle (18). 5. Dispositif selon la revendication 4 comprenant une pluralité de deuxièmes zones de capture sur la deuxième face (16) séparées par des deuxièmes zones d'intervalle, chaque première zone étant opposée à une deuxième zone. 6. Dispositif selon l'une des revendications 4 ou 5 comprenant des moyens (42, 44, 46) pour séparer les zones de capture (10a-10d, 30) dans les zones d'intervalle (18, 34). 7. Dispositif selon la revendication 6 dans 10 lequel les moyens pour séparer comprennent des encoches sur la première et/ou la deuxième face (14, 16). 8. Dispositif selon l'une des revendications 1 à 7 dans lequel le support (12) est sous forme de plaque. 9. Dispositif selon la revendication 8 dans lequel les première et deuxième faces (14, 16) du support (12) sont planes à l'exception des zones de capture (10, 20) et des éventuels moyens pour séparer (42, 44, 46). 10. Dispositif selon l'une des revendications 1 à 9 dans lequel une zone de capture (10) comprend une paroi de fond (22) munie d'une pluralité de protubérances (24). 11. Dispositif selon la revendication 10 dans lequel le support (12) est en plastique. 12. Dispositif selon la revendication 10 dans lequel le support (12) est un substrat microtechnologique. 13. Dispositif selon l'une des revendications 10 à 12 dans lequel la hauteur des protubérances (24) est comprise entre 10 pm et 400 pm et la surface des protubérances (24) est comprise entre 3 x 3 pm et 50 x 50 pm. 14. Dispositif selon l'une des revendications 10 à 13 dans lequel les protubérances (24) sont séparées par des espaces (26) dont la largeur est inférieure à 50 pm. 15. Dispositif selon l'une des revendications 10 à 14 dans lequel les protubérances (24) sont à section hexagonale. 16. Dispositif selon l'une des revendications 10 à 15 dans lequel la paroi de fond (22) et/ou les protubérances (24) sont fonctionnalisées. 17. Dispositif selon l'une des revendications 10 à 16 comprenant des microbilles (28) dans les espaces (26) entre les protubérances (24). 18. Dispositif selon l'une des revendications 1 à 17 dans lequel une zone de capture (30) au moins comprend une cuvette (32) et des microbilles (28) disposées dans la cuvette (32). 19. Dispositif selon l'une des revendications 17 ou 18 dans lequel les microbilles (28) sont fonctionnalisées. 20. Dispositif selon l'une des revendications 17 à 19 comprenant une membrane (36) pour maintenir les microbilles (28) dans la zone de capture (10, 30). 21. Dispositif selon l'une des revendications 1 à 20 comprenant en outre une tige de manipulation (7), le support (12) pouvant être associé à une extrémité de la tige. 22. Système de prélèvement (1) comprenant un dispositif (6) selon la revendication 21 et un manchon de guidage (2). 23. Procédé de cartographie d'un tissu (3) comprenant: - la mise en place au sein du tissu d'un dispositif (6) comprenant une pluralité de zones de capture (10a-10d) étagées, une zone de capture (10) ayant une surface développée supérieure à trois fois sa surface, - le contact entre le tissu (3) et les zones de capture (10), - l'analyse du prélèvement. 24. Procédé selon la revendication 23 comprenant la section du dispositif (6) de façon à séparer les zones de capture (10a-10d).