FR 2881746 A1 20060811 FR 0501198 A 20050207 EPITOPES T CD4+ DES ANTIGENES DE LATENCE DE TYPE I et II DU VIRUS EPSTEIN- BARR APTES A ETRE RECONNUS PAR LA MAJORITE DES INDIVIDUS DE LA POPULATION CAUCASIENNE ET LEURS APPLICATIONS. La présente invention est relative à des peptides immunogènes issus des antigènes de latence de type I et II d'EBV comprenant au moins un épitope T CD4+ apte à être reconnu par la majorité des individus de la population caucasienne, et à leurs applications diagnostiques et thérapeutiques. Le virus Epstein-Barr (EBV) est un herpes virus oncogène de tropisme lymphocytaire B, infectant 95 % de la population adulte. Après la primoinfection, généralement asymptomatique chez l'enfant et parfois responsable de la mononucléose infectieuse, notamment chez l'adolescent, l'EBV persiste à l'état latent dans les lymphocytes B pendant toute la vie de l'individu. Alors que dans la majorité des cas, l'infection par EBV est contrôlée de manière efficace par le système immunitaire (porteurs sains), dans certains cas, elle est associée à différentes pathologies tumorales que l'on peut distinguer par l'expression des antigènes de latence. La latence de type I correspond à l'expression isolée de l'antigène EBNA 1. Ce profil d'expression est retrouvé dans les lymphomes de Burkitt de type endémique rencontrés principalement en Afrique et en Nouvelle Guinée (à la différence de la forme sporadique en général non liée à EBV). Ce type de latence se caractérise par la faible reconnaissance des cellules tumorales par les lymphocytes T CD8+ cytotoxiques. Cette faible capacité de reconnaissance s'explique par: (i) l'absence d'épitopes dérivés d'EBNAI présentés au niveau du CMH de classe I (répétitions de séquences Glycine-Alanine empêchant la dégradation par le protéasome); (ii) la diminution des molécules d'adhésion; (iii) la diminution d'expression des proteines TAP 1 et 2; (iv) la faible expression des molécules HLA de classe I (ou HLA I). Les cellules tumorales peuvent néanmoins être reconnues par des lymphocytes T CD4+ cytotoxiques puisqu'elles présentent une expression normale des molécules HLA de classe II (ou HLA II), associée à un processing normal. Dans la latence de type II, on retrouve une expression des antigènes de latence limitée à EBNA1, LMP1 et LMP2. Ce type de latence est rencontré dans: - le carcinome indifferencié du naso-pharynx (NPC) observé principalement en Chine du Sud et en Afrique du Nord. - 40 a 50% des maladies de Hodgkin. L'association avec EBV est plus fréquente dans les formes à cellularité mixte (50-75%) que dans les formes scléro-nodulaires (15-30%). - certains lymphomes T et NK notamment les lymphomes T/NK naso-sinusiens. En ce qui concerne la maladie de Hodgkin, on note une expression normale des molécules HLA de classe I et des transporteurs TAP 1 et 2, ainsi qu'une expression importante des molécules HLA de classe Il par les cellules de Reed- Steinberg. Toutefois, la latence de type II se caractérise par l'absence d'épitopes immunodominants (EBNA 3A, 3B, 3C). En effet, s'il existe une réponse CTL dirigée contre les protéines LMPI et LMP2, cette dernière reste faible. Il paraît donc intéressant de stimuler cette réponse dans le cadre de protocoles d'immunothérapie. La latence de type III qui correspond à l'expression de l'ensemble des protéines de latence (EBNA1, EBNA2, EBNA3A-C, EBNA-LP, LMP1 et LMP2), s'observe dans les lymphomes post-transplantation, liés à un état d'immunodépression sévère. Le contrôle de l'infection latente à EBV par des lymphocytes T spécifiques d'EBV est primordial (Rooney et al., Lancet, 1995, 345, 913; Munz, J. Exp. Med., 2000, 191, 1649-1660; Leen et al. J. Virol., 2001, 75, 8649-8659). Il est destiné à empêcher une prolifération non contrôlée de cellules infectées par EBV que l'on observe chez les sujets immunodéprimés (syndrômes prolifératifs post-transplantation, latence de type III). De manière schématique, les protéines EBNA3A-C et LMP2 sont les principales cibles des lymphocytes T CD8+ alors que EBNA1 et LMP1 sont principalement reconnues -voire presque exclusivement pour EBNA1- par des lymphocytes T CD4+. Par conséquent, le contrôle immunitaire des tumeurs associées aux latences de type I et II d'EBV repose en grande partie sur les lymphocytes T CD4+ cytotoxiques capables de reconnaître et de lyser les cellules cibles exprimant :30 des épitopes d'EBNA1 et/ou de LMP1, présentés par des molécules HLA II. D'autre part, les lymphocytes T CD4+ sont nécessaires au maintien in vivo d'une réponse cytotoxique médiée par des lymphocytes TCD8+, capables de reconnaître et de lyser les cellules cibles exprimant des épitopes de LMP2. Il n'existe pas actuellement de protocole d'immunothérapie des pathologies tumorales associées à une latence de type I ou II, qui soit réellement efficace et facile à mettre en oeuvre. En effet, l'immunothérapie cellulaire qui repose sur la préparation de lymphoytes T cytotoxiques polyclonaux obtenus par stimulation in vitro de lymphocytes T avec des lignées lymphoblastoïdes B autologues, transformées par EBV (LCL) est longue à mettre en uvre (obtention de LCL en 4 à 6 semaines) et peu efficace dans la mesure où le taux d'expansion des lymphocytes T spécifiques d'EBV est faible et nécessite l'ajout d'un cocktail mitogène chez les patients atteints de maladie de Hodgkin; en outre, aucune rémission complète des tumeurs n'est observée. Ces observations sont en faveur de l'utilisation de peptides antigéniques spécifiques des antigènes de latence EBNA1, LMP1 et LMP2 d'EBV et capables de stimuler une forte réponse T CD4+, en immunothérapie (vaccination ou thérapie cellulaire), pour la prévention et le traitement des pathologies tumorales associées aux latences de type I ou de type II. De tels peptides qui sont reconnus par des cellules T CD4+ spécifiques d'EBV sont également utiles comme réactifs dans un test de diagnostic de l'infection par EBV ou de pathologies tumorales associées, ou bien de suivi du traitement chez l'Homme, reposant sur la détection directe (test de prolifération lymphocytaire) ou indirecte (production d'anticorps, de cytokines...) desdites cellules T CD4+. L'activation des lymphocytes T CD4+ ou cellules T CD4+ se fait sous l'effet de la présentation de peptides antigéniques par les molécules du complexe majeur d'histocompatibilité de type II que portent les cellules présentatrices d'antigène; chez l'homme, elles sont dénommées molécules HLA II pour Human Leucocyte Antigen type H. Ces peptides antigéniques, appelés épitopes T, résultent de la dégradation protéolytique des antigènes par les cellules présentatrices d'antigène. Ils ont des longueurs variables, généralement de 13 à 25 acides aminés et possèdent une séquence qui les rend capables de se lier aux molécules HLA II. Il est bien connu qu'au même titre que l'antigène natif, un peptide comprenant un épitope T CD4+ est capable de stimuler in vitro des cellules T CD4+ qui lui sont spécifiques ou de les recruter in vivo. Il est donc suffisant pour induire une réponse T CD4+. Toutefois, un des problèmes majeurs qui limite l'utilisation de ces peptides comme antigène est l'identification des épitopes T CD4+, étant donné que leur séquence varie d'un individu à l'autre en raison du polymorphisme des molécules HLA II. En effet, les molécules HLA II sont des hétérodimères constitués d'une chaîne alpha (a) et d'une chaîne béta (13) polymorphes. Il existe quatre types de molécules HLA II par individu (2 HLA-DR, 1 HLA-DQ et 1 HLA-DP), dénommées en fonction de l'allèle codant la chaîne béta qui est la plus polymorphe. La molécule HLA-DR est très polymorphe. En effet, alors que sa chaîne alpha ne compte que 3 allèles, la chaîne béta ((3) codée par le gène DRB1, qui est la plus exprimée, compte à ce jour 458 allèles. Pour les molécules HLA-DQ et HLA- DP, les deux chaînes (a et [3) qui les constituent sont polymorphes mais elles présentent moins d'allèles. On a dénombré 8 allèles DQA1 (chaîne a de HLA-DQ), 56 allèles DQB1 (chaîne (3 de HLA-DQ), 20 allèles DPA1 (chaîne a de HLA-DP) et 110 allèles DPB1 (chaîne (3 de HLA-DP). Cependant, la combinaison entre les deux chaînes a et (3 codées par ces allèles donne naissance à de nombreuses molécules HLA-DQ et HLA-DP. Du fait de ce polymorphisme, ces isoformes possèdent des propriétés de liaison différentes entre elles, ce qui implique qu'elles peuvent lier des peptides différents d'un même antigène. Ainsi, chaque individu reconnaît dans un antigène un ensemble de peptides dont la nature dépend des molécules HLA II qui le caractérisent. Comme il existe un grand nombre d'allèles HLA II, il existe donc dans une séquence donnée un répertoire important d'épitopes T de séquences très différentes, chacun spécifique d'un allèle différent. Ainsi, un peptide capable de stimuler une réponse T CD4+ spécifique d'EBV chez quelques individus peut être inactif chez la majorité des autres individus, parce que ces derniers ne reconnaissent pas les antigènes d'EBV par les mêmes épitopes. La plupart des épitopes T CD4+ des antigènes EBNA 1, LMP 1 et 30 LMP2 connus, possèdent une restriction définie pour une seule molécule HLA DR, DQ ou DP (Tableau I). Tableau I: Epitopes T CD4+ des antigènes EBNA1, LMP1 et LMP2 Antigène Epitope Restriction HLA II Référence d'EBV T CD4+ EBNA1 475-489 DR1 1 Leen et al. J. Virol., 2001, 75, 8649-8659 475-489 DP Taylor et al., J. Virol., 2004, 78, 768-778 481-500 DQ Paludan et al., J. Immunol., 2002, 169, 1593-1603 482-496 DR4, DR7 Kruger et al., J. Immunother., DR11, DR15 2003, 26, 212-221 485-499 [DR11,DR13,DR15, Leen et al., précité DQ 1,DQ3, DQ6] * 514-527 DR1 Paludan et al., précité 514-533 DR1* Leen et al., précité 515-527 DR1 Khanna et al., Virology, 1995, 214, 633-637 515-528 DRI Leen et al., précité Taylor et al., précité 518-530 DP3/DR4 Voo et al. , Cancer Res., 2002, 62, 7195-7199 & Demande US 2004/0141995 519-533 DR4, DQ3* Leen et al., précité 529-543 DR14 Taylor et al., précité 529-543 [DR13, DQ3, Leen et al., précité DQ5,DQ6]* LMPI 66-85** Non-déterminée Demande WO 2004/001424 130-144 [DRI,DR4,DQI,DQ3]* Leen et al., précité 208-224 Non-déterminée Demande WO 2004/041849 212-226 DQ2* Leen et al., précité 340-354 Non-déterminée Leen et al., précité LMP2 149-163 [DRI, DR13,DQ5]* Leen et al., précité 169-182 [DR1,DR13,DQ5,DQ6]* Leen et al., précité 224-243 Non-déterminée Leen et al., précité 369-388** Nondéterminée Demande WO 2004/01424 385-398 Non-déterminée Leen et al., précité * élément de restriction potentiel déterminé en fonction de l'haplotype HLA II des individus répondeurs. ** utilisation pour induire une tolérance immunitaire dans le but de traiter des maladies autoimmunes. En conséquence, de tels peptides ne seront généralement pas reconnus par l'ensemble des molécules HLA II prépondérantes dans la population caucasienne. En effet, pour les molécules HLA-DR, par exemple, une dizaine d'allèles lo sont nécessaires pour couvrir plus de 60 % de la fréquence génique retrouvée dans la population caucasienne et donc concerner plus de 85 % de cette population. Les inventeurs ont identifié des épitopes T CD4+ dérivés des antigènes de latence EBNA1, LMPI et LMP2 d'EBV, lesquels épitopes sont aptes à être reconnus par les molécules HLA II prépondérantes dans la population caucasienne et donc capables d'induire une réponse T CD4+ spécifique d'EBV chez la majorité des individus de cette population recevant une vaccination ou une thérapie cellulaire à l'aide de peptides incluant ces épitopes. La présente invention a en conséquence pour objet, un peptide immunogène du virus Epstein-Barr (EBV) comprenant au moins un épitope T CD4+ de l'un des antigènes de latence EBNA1, LMPI ou LMP2, apte à être présenté par au moins 7 molécules HLA II différentes choisies parmi les molécules HLA-DR1, HLADR3, HLA-DR4, HLA-DR7, HLA-DR11, HLA-DR13, HLA-DR15, HLA-DRB3, HLADRB4, HLA-DRB5 et HLA-DP4, lequel peptide est sélectionné dans le groupe constitué par: a) les peptides de respectivement 26, 26 et 24 acides aminés dont la séquence s'étend des positions 475 à 500, 514 à 539, et 529 à 552 d'EBNA1, b) le peptide de 16 acides aminés dont la séquence s'étend des 15 positions 68 à 83 de LMP 1, c) les peptides de respectivement 21 et 17 acides aminés dont la séquence s'étend des positions 224 à 244 et 372 à 388 de LMP2, et d) les variants de même longueur et définis par les mêmes positions que les peptides définis en a) , b) et c), lesquels variants sont obtenus par substitution d'au moins un acide aminé desdits peptides définis en a), b) et c) par un autre acide aminé, et présentent une activité de liaison inférieure à 1000 nM, vis-à-vis d'au moins 7 molécules HLA II différentes choisies parmi HLA- DR1, HLA-DR3, HLA-DR4, HLA-DR7, HLA-DR11, HLA-DR13, HLA-DR15, HLA-DRB3, HLA-DRB4, HLADRB5 et HLA-DP4. Les peptides selon l'invention dont les séquences sont celles précisées ci-dessus présentent des propriétés distinctes des peptides de l'art antérieur et notamment les propriétés suivantes: - activité de liaison aux molécules HLA II: les peptides selon l'invention possèdent une forte affinité pour la majorité des molécules HLA II prépondérantes dans la population caucasienne et sont donc aptes à être présentés par des molécules HLA II chez la majorité des individus de la population caucasienne. Ces peptides possèdent une activité de liaison - immunogénicité : les peptides selon l'invention sont reconnus par des lymphocytes T CD4+ chez la majorité des individus de la population caucasienne et contiennent des épitopes T naturellement présentés au cours de l'infection par EBV. En conséquence, ces peptides sont donc capables d'induire des cellules T CD4+ spécifiques d'EBV à partir des précurseurs présents chez la majorité des individus naïfs ou bien de stimuler de telles cellules chez la majorité des individus séropositifs pour EBV. L'immunogénicité des peptides peut être déterminée, notamment à partir de cellules mononucléées du sang périphérique (PBMCs), par tout essai approprié connu de l'Homme du métier comme par exemple: un test de prolifération cellulaire, un test ELISPOT (dosage des cellules productrices de cytokines) ou un test de dosage de cytokines (IFN-y, IL-2, IL-4 et IL-10). - activité cytotoxique: des clones de lymphocytes T CD4+ de type Thl sont isolés à partir des lymphocytes T générés par stimulation in vitro de PBMC, à l'aide des peptides selon l'invention. Les clones ainsi obtenus sont mis en présence de cibles EBV positives de même spécificité HLA: lymphocytes issus du même individu et transformés par EBV (LCL) ou des lignées tumorales (Hodgkin, lymphomes T/NK) EBV positives en cas d'identité HLA. La présence de lymphocytes T CD4+ cytotoxiques spécifiques des antigènes de latence de type I ou II d'EBV, capables de lyser les cellules cibles EBV positives de même spécificité, est analysée par un test de cytotoxicité classique, notamment par mesure du relargage du 51Cr. L'invention englobe les peptides dont la séquence correspond à celle d'un fragment de la protéine EBNA1, LMP1 ou LMP2 de n'importe quel isolat d'EBV, incluant les variants naturels isolés à partir d'individus infectés par EBV. Les séquences du génome et des protéines correspondantes des différents isolats d'EBV sont disponibles dans les banques de données, notamment dans celle du NCBI (http://www.ncbi.nlm.nih. gov). Les positions des peptides sont indiquées relativement aux séquences présentant les numéros d'accès suivants dans la base de données NCBI: NP039875 (EBNA 1), CAA26023 (LMP 1) et AAA45887 (LMP2). Par exemple le peptide de 26 acides aminés qui s'étend des positions 475 à 500 d'EBNA1, s'étend du résidu d'asparagine (N) en position 475 au résidu d'acide glutamique (E) en position 500 de la séquence NCBI NP039875; il est notamment représenté par la séquence NPKFENIAEGLRALLARSHVERTTDE (SEQ ID NO: 4). A partir de ces indications, l'Homme du métier est en mesure de déterminer facilement les positions correspondantes dans les protéines d'autres isolats d'EBV, qui peuvent varier de quelques acides aminés du fait de courtes insertions et/ou délétions dans la séquence en acides aminés desdites protéines. L'invention englobe également les variants obtenus à partir des séquences précédentes par substitution d'un ou plusieurs acides aminés dans la séquence du peptide, dès lors que ledit variant conserve une forte affinité (activité de liaison L'invention englobe également les peptides modifiés dérivés des précédents par introduction de toute modification au niveau de résidu(s) d'acide aminé, de la liaison peptidique ou des extrémités des peptides, dès lors que ledit peptide modifié conserve une forte affinité (activité de liaison Selon un mode de réalisation avantageux dudit peptide, ladite molécule HLA II comprend une chaîne (3 codée respectivement par les allèles DRB1*0101 (molécule HLA-DR1), DRB1*0301 (molécule HLA-DR3) DRB1*0401 (molécule HLA-DR4) DRB1*0701 (molécule HLA-DR7), DRB1*1101 (molécule HLA- DR11), DRB1*1301 (molécule HLA-DR13), DRB1*1501 (molécule HLA- DR15), DRB3*0101 (molécule HLA-DRB3), DRB5*0101 (molécule HLA-DRB5), DP*0401 ou DP*0402 (molécule HLA-DP4). Selon une disposition avantageuse de ce mode de réalisation, ledit peptide est sélectionné dans le groupe constitué par les séquences SEQ ID NO:4, 5, 6, 11, 20 et 21. La présente invention a également pour objet un fragment polyépitopique, caractérisé en ce qu'il comprend au moins deux épitopes identiques ou différents d'EBV, incluant au moins un épitope T CD4+ dont la séquence est celle d'un peptide tel que défini ci-dessus. Au sens de la présente invention on entend par fragment polyépitopique, une séquence artificielle ou synthétique, obtenue à partir de fragments d'un ou plusieurs antigènes d'EBV, laquelle séquence ne correspond à aucune séquence naturellement présente dans un antigène d'EBV. De préférence, ledit fragment polyépitopique présente une longueur de 20 à 1000 acides aminés, de préférence de 20 à 100 acides aminés. Ledit fragment polyépitopique comprend avantageusement une étiquette fusionnée à l'une de ses extrémités, pour la purification ou la détection dudit fragment. L'étiquette, notamment une séquence polyhistidine ou un épitope B d'un autre virus, est de préférence séparée de la séquence polyépitopique par un site de clivage d'une protéase de façon à isoler la séquence polyépitopique, à partir de la fusion. Selon un mode de réalisation avantageux dudit fragment polyépitopique, il comprend un épitope T CD4+ dont la séquence est celle d'un peptide tel que défini ci-dessus et au moins un autre épitope sélectionné dans le groupe constitué par: - un épitope T CD8+ d'une protéine d'EBV présenté par une molécules HLA I et reconnu par des lymphocytes T cytotoxiques spécifiques d'EBV; les séquences des épitopes T CD8+ d'EBV sont connus de l'Homme du métier et incluent notamment les peptides 51-60, 125-133, 156- 164 et 159-167 de LMP1 et les peptides 131-139, 200-208, 236-244, 340-350, 419-427, 426-434, 442-451, 447-455 et 453-461 de LMP2. - un épitope B d'un antigène d'EBV reconnu spécifiquement par des anticorps dirigés contre EBV, et - un épitope T CD4+ universel naturel ou synthétique tel que le peptide de la toxine tétanique TT 830-846 (O'SULLIVAN et al., J. Immunol., 1991, 147, 2663-2669), le peptide de l'hémagglutinine du virus de la grippe HA 307-319 (O'SULLIVAN et al, précité), le peptide PADRE (KXVAAWTLKAA; Alexander et al., Immunity, 1994, 1, 751-761), le peptide 45-69 de la protéine Nef du VIH-1 et des peptides issus des antigènes de Plasmodium falciparum tels que le peptide CS.T3 (SINIGAGLIA et al., Nature, 1988, 336, 778-780) et les peptides CSP, SSP2, LSA-1 et EXP-1 (DOOLAN et al., J. Immunol., 2000, 165, 1123-1137). La combinaison de l'épitope T CD4+ avec l'un au moins des épitopes tels que définis ci-dessus permet avantageusement de déclencher ou de moduler une réponse immunitaire anti-EBV. La présente invention a également pour objet un lipopeptide, caractérisé en ce qu'il comprend un peptide ou un fragment polyépitopique tels que définis ci-dessus. Ledit lipopeptide est notamment obtenu par addition d'un lipide sur une fonction a-aminée ou sur une fonction réactive de la chaîne latérale d'un acide aminé dudit peptide ou fragment polyépitopique; il peut comprendre une ou plusieurs chaînes dérivées d'acides gras en C4_20, éventuellement ramifiées ou insaturées (acide palmitique, acide oléique, acide linoléique, acide linolénique, acide 2-amino hexadécanoïque, pimélautide, trimétauxide) ou un dérivé d'un stéroïde. La partie lipidique préférée est notamment représentée par un groupe Naacétyl-lysine N palmitoyl), également dénommé Ac-K(Pam). La présente invention a également pour objet une protéine de fusion, caractérisée en ce qu'elle est constituée par une protéine ou un fragment de protéine hétérologue, fusionnés avec un peptide ou un fragment polyépitopique tels que définis ci-dessus. Le peptide ou le fragment polyépitopique peuvent être fusionnés avec l'extrémité NH2 ou COOH de ladite protéine ou insérés dans la séquence de ladite protéine. Au sens de la présente invention, on entend par protéine hétérologue, relativement aux peptides dérivés respectivement d'EBNAI, LMP1 et LMP2, des protéines autres que EBNA1, LMP1 et LMP2. Avantageusement ladite protéine de fusion est constituée par un peptide d'EBV tel que défini ci-dessus, fusionné avec l'une des chaînes d'une molécule HLA II choisie parmi les molécules HLA-DR1, HLA-DR3, HLA-DR4, HLA-DR7, HLA-DR11, HLA-DR13, HLA-DR15, HLA-DRB3, HLA-DRB4, HLADRB5 et HLADP4, de préférence la chaîne béta, ou bien avec un fragment de celle-ci correspondant à une molécule HLA II soluble, notamment un fragment correspondant au domaine extracellulaire précédé du peptide signal homologue ou d'un peptide signal hétérologue. Ledit peptide d'EBV est avantageusement inséré entre le peptide signal et l'extrémité NH2 du domaine extracellulaire de la chaîne (3, comme décrit pour la molécule HLA-DR ( Kolzin et al., PNAS, 2000, 97, 291-296). Alternativement, ledit peptide d'EBV ou ledit fragment polyépitopique sont fusionnés avec une protéine facilitant leur purification ou leur détection, connue de l'Homme du métier comme notamment la glutathione Stransférase (GST) et les protéines fluorescentes (GFP et dérivées). Dans ce cas, la séquence du peptide ou du fragment polyépitopique d'intérêt est de préférence séparée du reste de la protéine par un site de clivage d'une protéase, pour faciliter la purification dudit peptide ou dudit fragment polyépitopique. La présente invention a également pour objet un polynucléotide, caractérisé en ce qu'il code pour un peptide, un fragment polyépitopique ou une protéine de fusion tels que définis ci-dessus. Conformément à l'invention, la séquence dudit polynucléotide est celle de l'ADNc codant ledit peptide ou fragment polyépitopique ou ladite protéine de fusion. Ladite séquence peut avantageusement être modifiée de façon à ce que l'usage des codons soit optimal chez l'hôte dans lequel elle est exprimée. L'objet de l'invention englobe également les polynucléotides recombinants comprenant au moins un polynucléotide conforme à l'invention lié à au moins une séquence hétérologue. Au sens de la présente invention, on entend par séquence hétérologue relativement à une séquence d'acide nucléique codant un peptide d'EBV, toute séquence d'acide nucléique autre que celles qui, dans la nature, sont immédiatement adjacentes à ladite séquence d'acide nucléique codant ledit peptide d'EBV. L'objet de la présente invention englobe en particulier: a) des cassettes d'expression comprenant au moins un polynucléotide tel que défini cidessus, sous le contrôle de séquences régulatrices de la transcription et éventuellement de la traduction appropriées (promoteur, activateur, intron, codon d'initiation (ATG), codon stop, signal de polyadénylation), et b) des vecteurs recombinants comprenant un polynucléotide conforme à l'invention. Avantageusement ces vecteurs sont des vecteurs d'expression comprenant au moins une cassette d'expression telle que définie ci-dessus. La présente invention a en outre pour objet des cellules hôtes procaryotes ou eucaryotes modifiées par au moins un polynucléotide ou un vecteur tel que défini ci-dessus. De nombreux vecteurs dans lesquels on peut insérer une molécule d'acidenucléique d'intérêt afin de l'introduire et de la maintenir dans une cellule hôte eucaryote ou procaryote, sont connus en eux-mêmes; le choix d'un vecteur approprié dépend de l'utilisation envisagée pour ce vecteur (par exemple réplication de la séquence d'intérêt, expression de cette séquence, maintien de cette séquence sous forme extrachromosomique, ou bien intégration dans le matériel chromosomique de l'hôte), ainsi que de la nature de la cellule hôte. Par exemple, on peut utiliser entre autres des vecteurs viraux tels que les adénovirus, les rétrovirus, les lentivirus, les AAV et les baculovirus, dans lesquels a été insérée préalablement la séquence d'intérêt; on peut également associer ladite séquence (isolée ou insérée dans un vecteur plasmidique) avec une substance lui permettant de franchir la membrane des cellules hôtes, telle qu'un transporteur comme un nanotransporteur ou une préparation de liposomes, ou de polymères cationiques, ou bien l'introduire dans ladite cellule hôte en utilisant des méthodes physiques telles que l'électroporation ou la microinjection. En outre, on peut avantageusement combiner ces méthodes, par exemple en utilisant l'électroporation associée à des liposomes. Les polynucléotides, les vecteurs recombinants et les cellules transformées tels que définis ci-dessus, sont utiles notamment pour la production des peptides, fragments polyépitopiques et protéines de fusion selon l'invention. Les polynucléotides selon l'invention sont obtenus par les méthodes classiques, connues en elles-mêmes, en suivant les protocoles standards tels que ceux décrits dans Current Protocols in Molecular Biology (Frederick M. AUSUBEL, 2000, Wiley and son Inc, Library of Congress, USA). Par exemple, ils peuvent être obtenus par amplification d'une séquence nucléique par PCR ou RT-PCR, par criblage de banques d'ADN génomique par hybridation avec une sonde homologue, ou bien par synthèse chimique totale ou partielle. Les vecteurs recombinants sont construits et introduits dans des cellules hôtes par les méthodes classiques d'ADN recombinant et de génie génétique, qui sont connues en elles-mêmes. Les peptides et leurs dérivés (variants, peptides modifiés, lipopeptides, fragments polyépitopiques, protéines de fusion) tels que définis cidessus, sont préparés par les techniques classiques connues de l'Homme du métier, notamment par synthèse en phase solide ou liquide ou par expression d'un ADN recombinant dans un système cellulaire approprié (eucaryote ou procaryote). De manière plus précise, - les peptides et leurs dérivés (variants, fragments polyépitopiques) peuvent être synthétisés en phase solide, selon la technique Fmoc, originellement décrite par Merrifield et al. (J. Am. Chem. Soc., 1964, 85: 2149-) et purifiés par chromatographie liquide haute performance en phase inverse, - les lipopeptides peuvent être notamment préparés selon le procédé décrit dans les Demandes Internationales WO 99/40113 ou WO 99/51630. - les peptides et dérivés tels que les variants, les fragments polyépitopiques et les protéines de fusion peuvent également être produits à partir des ADNc correspondants, obtenus par tout moyen connu de l'homme du métier; l'ADNc est cloné dans un vecteur d'expression eucaryote ou procaryote et la protéine ou le fragment produits dans les cellules modifiées par le vecteur recombinant sont purifiés par tout moyen approprié, notamment par chromatographie d'affinité. La présente invention a également pour objet une composition immunogène ou vaccinale, caractérisée en ce qu'elle comprend au moins un peptide d'EBV, un fragment polyépitopique, un lipopeptide ou un vecteur tels que définis ci-dessus, et un véhicule pharmaceutiquement acceptable, et/ou une substance porteuse, et/ou un adjuvant. La composition immunogène selon l'invention se présente sous une forme galénique adaptée à une administration par voie parentérale (sous-cutanée, intramusculaire, intraveineuse), entérale (orale, sublinguale), ou locale (rectale, vaginale). Les véhicules pharmaceutiquement acceptables, les substances porteuses et les adjuvants sont ceux classiquement utilisés. Les adjuvants sont avantageusement choisis dans le groupe constitué par: des émulsions huileuses, des substances minérales, des extraits bactériens, la saponine, l'hydroxyde d'alumine, le monophosphoryl lipide A et le squalène. Les substances porteuses sont avantageusement sélectionnées dans le groupe constitué par: les liposomes unilamellaires ou multilamellaires, les ISCOMS, les virosomes, les pseudoparticules virales, les micelles de saponine, les microsphères solides de nature saccharidique (poly(lactideco-glycolide)) ou aurifère, et les nanoparticules. De préférence, ladite composition immunogène comprend au moins deux des six peptides d'EBV incluant un épitope T CD4+ tels que définis ci-dessus, de préférence trois à cinq peptides, de manière préférée les six peptides, sous forme d'un mélange de peptides ou de lipopeptides, d'un fragment polyépitopique ou d'un vecteur d'expression codant lesdits peptides ou ledit fragment. De manière préférée, ladite composition comprend également, au moins un autre peptide incluant un épitope sélectionné dans le groupe constitué par: un épitope T CD4+ universel ou un épitope T CD8+ d'EBV, tels que définis ci-dessus. La présente invention a également pour objet un peptide, un fragment polyépitopique, un lipopeptide ou un vecteur tels que défini ci-dessus comme vaccin pour la prévention et/ou le traitement d'une infection par EBV ou d'une pathologie tumorale associée. La présente invention a également pour objet l'utilisation d'un peptide, d'un fragment polyépitopique, d'un lipopeptide ou d'un vecteur tels que défini ci-dessus, pour la préparation d'un vaccin destiné à la prévention et/ou au traitement d'une infection par EBV ou d'une pathologie tumorale associée. Les peptides selon la présente invention et les produits dérivés (fragment polyépitopique, lipopeptide, vecteur recombinant) peuvent être utilisés en immunothérapie dans le traitement des tumeurs associées à EBV et notamment celles présentant une latence de type I ou II. Lesdits peptides ou produits dérivés sont utilisés, soit comme vaccin, soit en thérapie cellulaire, ou bien encore par une combinaison des deux approches. La thérapie cellulaire comprend, la préparation de lymphocytes T CD4+ spécifiques d'EBV par un protocole classique de stimulation in vitro comprenant l'isolement de cellules mononucléées du sang périphérique (PBMC) d'un patient à traiter ou d'un donneur volontaire de phénotype HLA identique ou partiellement identique, et la mise en culture des PBMC en présence de peptide(s), de façon à induire la prolifération de lymphocytes T CD4+ spécifiques d'EBV. Dans une seconde étape les lymphocytes T CD4+ spécifiques d'EBV sont réinjectés au patient. La présente invention a également pour objet un réactif de diagnostic et de suivi de l'évolution d'une infection par EBV ou d'une pathologie tumorale associée, caractérisé en ce qu'il comprend au moins un peptide tel que défini ci-dessus, éventuellement marqué ou complexé, notamment complexé à des molécules HLA II marquées, sous la forme de complexes multimériques comme des tétramères. La présente invention a également pour objet l'utilisation d'un peptide tel que défini ci-dessus, pour la préparation d'un réactif de diagnostic et de suivi de l'évolution d'une infection par EBV ou d'une pathologie tumorale associée. Au sens de la présente invention, on entend par diagnostic ou suivi de l'évolution d'une infection par EBV ou d'une pathologie tumorale associée, l'évaluation de la réponse immunitaire T CD4+ spécifique d'EBV au cours d'une infection par EBV, d'une pathologie associée à EBV, ou bien d'un protocole d'immunothérapie ou de vaccination anti-EBV. La détection est effectuée à partir d'un échantillon biologique contenant des cellules T CD4+, notamment un échantillon de cellules mononucléées isolées à partir d'un prélèvement de sang périphérique (PBMCs). La présente invention a également pour objet une méthode de diagnostic et de suivi de l'évolution d'une infection par EBV ou d'une pathologie tumorale associée, caractérisée en ce qu'elle comprend: - la mise en contact d'un échantillon biologique dudit individu avec un réactif de diagnostic tel que défini ci-dessus, et - la détection de lymphocytes T CD4+ spécifiques d'un des antigènes 25 de latence EBNA1, LMP1 ou LMP2 d'EBV, par tout moyen approprié. La présente invention a également pour objet un kit de détection et de suivi de l'évolution d'une infection par EBV ou d'une pathologie tumorale associée, caractérisé en ce qu'il comprend au moins un réactif tel que défini ci-dessus, associé à un moyen de détection de lymphocytes T CD4+ spécifiques d'un des antigènes de latence EBNA1, LMP1 et LMP2 d'EBV. La détection des lymphocytes T CD4+ spécifiques d'un antigène de latence, est effectuée par tous moyens, connus en eux-mêmes. Par exemple, on peut utiliser des moyens directs comme les tests de prolifération lymphocytaire ou la cytométrie de flux en présence de complexes multimériques tels que définis ci-dessus, ou bien des moyens indirects comme le dosages de cytokines telles que l'IL-2, VIL-4, VIL-5, IL-10 et l'IFN-y, notamment par des techniques immunoenzymatiques (ELISA, RIA, ELISPOT) ou par cytométrie de flux (dosage des cytokines intracellulaires) . De manière plus précise: Une suspension de cellules (PBMC, PBMC déplétées en cellules CD8+, lymphocytes T préalablement enrichis par une étape de culture in vitro avec les peptides tels que définis ci-dessus ou des lymphocytes T clonés) est cultivée pendant 3 à 5 jours en présence desdits peptides et au besoin de cellules présentatrices appropriées, telles que des cellules dendritiques, des PBMC autologues ou hétérologues, des cellules lymphoblastoïdes telles que celles obtenues après infection par le virus EBV ou des cellules génétiquement modifiées. La présence de cellules T CD4+ spécifiques d'un antigène de latence d'EBV dans la suspension initiale est détectée à l'aide des peptides d'EBV, selon l'une des méthodes suivantes: * test de prolifération: La prolifération des cellules T CD4+ spécifiques d'un antigène de latence d'EBV est mesurée par incorporation de thymidine tritiée dans l'ADN des cellules. * test ELISPOT: Le test ELISPOT permet de révéler la présence de cellules T sécrétant de cytokines (IL-2, IL-4, IL-5, IL-10 et l'IFN-y), spécifiques d'un peptide tel que défini ci-dessus. Le principe de ce test est décrit dans Czerkinsky et al., J. Immunol. Methods, 1983, 65, 109-121 et Schmittel et al., J. Immunol. Methods, 1997, 210, 167- 174, et sa mise en oeuvre est illustrée dans la Demande Internationale WO 99/51630 ou Gahéry-Ségard et al., J. Virol., 2000, 74, 1694-1703. * détection des cytokines: La présence de cellules T spécifiques d'un antigène de latence d'EBV, sécrétant des cytokines telles que VIL-2, VIL4, VIL-5, IL-10 et l'IFN-y est détectée, soit par dosage des cytokines présentes dans le surnageant de culture, par un test immunoenzymatique, notamment à l'aide d'un kit commercial, soit par détection des cytokines intracellulaires en cytométrie de flux. Le principe de détection des cytokines intracellulaires est décrit dans Goulder et al. , J. Exp. Med., 2000, 192, 1819-1832 et Maecker et al., J. Immunol. Methods, 2001, 255, 27-40 et sa mise en oeuvre est illustrée dans Draenert et al., J. Immunol. Methods, 2003, 275, 19-29. * complexes multimériques - un échantillon biologique, de préférence des cellules mononucléées du sang périphérique (PBMC), est mis en contact avec des complexes multimériques marqués, notamment par un fluorochrome, formés par la liaison entre des molécules HLA II solubles et des peptides d'EBV tels que définis ci-dessus, et - les cellules marquées par lesdits complexes multimériques sont 10 analysées, notamment par cytométrie de flux. De manière avantageuse, préalablement à la mise en contact de l'échantillon biologique avec lesdits complexes, on l'enrichit en cellules T CD4+, en le mettant en contact avec des anticorps anti-CD4 ou par tri indirect, pour éviter une activation non-spécifique. Les complexes multimériques HLA II/peptide peuvent être préparés à partir de molécules natives extraites de cellules exprimant HLA II ou de molécules recombinantes produites dans des cellules hôte appropriées comme précisé, par exemple dans NOVAK et al. (J. Clin. Investig., 1999, 104, R63-R67) ou dans KURODA et al. (J. Virol., 2000, 74, 18, 8751-8756). Ces molécules HLA II peuvent notamment être tronquées (délétion du domaine transmembranaire) et leur séquence peut être modifiée afin de les rendre solubles ou bien de faciliter l'appariement des chaînes alpha et béta (Novak et al., précité). Le chargement de molécules HLA II avec le peptide peut se faire par mise en contact d'une préparation de molécules HLA II comme ci-dessus, avec le peptide. Par exemple, des molécules HLA II solubles et biotinylées sont incubées, pendant 72 heures à 37 C, avec un excès d'un facteur 10 de peptides d'EBV tels que définis ci-dessus, dans un tampon phosphatecitrate 10 mM, NaCl 0,15 M à un pH compris entre 4,5 et 7. Alternativement, la séquence du peptide peut être introduite dans l'une des chaînes de la molécule HLA II sous forme d'une protéine de fusion qui permet la preparation de complexes multimériques HLA II/peptides a partir de cellules hôtes appropriées exprimant ladite protéine de fusion. Lesdits complexes peuvent ensuite être marqués, notamment par la biotine. Les complexes multimériques de type tétramère sont notamment obtenus en ajoutant aux molécules HLA II chargées, de la streptavidine marquée par un fluorochrome en quantité quatre fois moindre (mole à mole) par rapport aux molécules HLA II, l'ensemble étant ensuite incubé pendant une durée suffisante, par exemple une nuit à température ambiante. Les complexes multimériques peuvent également être formés, soit par incubation de monomères HLA II/peptides avec des billes magnétiques couplées à la streptavidine comme décrit pour les molécules HLA I (Bodinier et al., Nature, 2000, 6, 707-710), soit par insertion de monomères HLA II/peptides dans des vésicules lipidiques comme décrit pour les molécules du CMH de classe II murines (Prakken, Nature Medicine, 2000, 6, 1406-1410). Pour utiliser ces complexes multimériques HLA II/peptide notamment de type tétramère, on met en contact une suspension de cellules (PBMC, PBMC déplétées en cellules CD8+, lymphocytes T préalablement enrichis par une étape de culture in vitro avec des peptides d'EBV tels que définis cidessus ou des lymphocytes T clonés) avec des complexes multimériques HLA II/peptide à une concentration appropriée (par exemple de l'ordre de 10 à 20 pg/ml), pendant une durée suffisante pour permettre la liaison entre les complexes et les cellules T CD4+ spécifiques d'EBV (par exemple, de l'ordre de 1 à 3 heures). Après lavage, la suspension est analysée par cytométrie de flux: on visualise le marquage des cellules par les complexes multimériques qui sont fluorescents. La cytométrie de flux permet de séparer les cellules marquées par les complexes multimériques HLA II/peptide des cellules non marquées et d'effectuer ainsi un tri cellulaire. La présente invention a ainsi, en outre, pour objet un procédé de tri de cellules T CD4+ spécifiques d'un antigène de latence d'EBV, caractérisé en ce qu'il comprend au moins les étapes suivantes: - la mise en contact d'un échantillon cellulaire avec des complexes multimériques HLA II/peptide marqués, notamment par un fluorochrome, lesdits complexes étant formés par la liaison de molécules HLA II solubles avec au moins un peptide d'EBV tel que défini ci-dessus, et - le tri des cellules liées auxdits complexes HLA II/peptide, notamment en cytométrie de flux. Outre les dispositions qui précèdent, l'invention comprend encore d'autres dispositions, qui ressortiront de la description qui va suivre, qui se réfère à des exemples de mise en oeuvre de l'objet de la présente invention, avec référence au dessins annexés dans lesquels: - la figure 1 illustre l'immunogénicité du mélange des six peptides issus des antigènes de latence de type I et II d'EBV se liant avec une affinité - la figure 2 illustre l'immunogénicité du mélange des six peptides issus des antigènes de latence de type I et II d'EBV se liant avec une affinité - la figure 3 illustre la réponse proliférative des lymphocytes T issus de donneurs sains d'haplotype HLA II variés, séropositifs pour EBV, après stimulation in vitro par le mélange peptidique. Les cellules mononucléées sanguines issues de sujets sains séropositifs pour 1'EBV (plaques 96 puits, 5x105 cellules par puits) ont été cultivées 4 à 6 jours en présence du mélange contenant les peptides G17F, N26E, V21V, K26L, P24G et I16L (SEQ ID NO: 21, 4, 20, 5, 6 et Il) à la concentration de 10 g/mL pour chacun d'entre eux. La réponse proliférative des lymphocytes T a été mesurée par incorporation de (3H)thymidine. L'index de stimulation correspondant au rapport du nombre de coups par minute des lymphocytes T en présence du mélange peptidique sur le nombre moyen de coups par minute des lymphocytes T en l'absence de peptide. (bruit de fond), est présenté pour chaque puits pour les différents donneurs. Un puits est considéré comme positif lorsque le nombre de coups par minute est supérieur a 1000 et l'index de stimulation supérieur à 3. Exemple 1: Identification d'épitopes T CD4+ reconnus par les molécules HLA II les plus abondantes dans la population caucasienne. 1) Matériels et méthodes 1.1) Synthèse peptidique Le logiciel TEPITOPE (Sturniolo et al., Nature Biotechnology, 1999, 17, 555-561) a été utilisé pour sélectionner des motifs de liaison potentiels aux molécules HLA de classe II, dans la séquence des antigènes de latence de type II d'EBV (EBNA1, LMP1 et LMP2). Les peptides correspondants ont été synthétisés selon la stratégie Fmoc en synthèse parallèle sur phase solide (Néosystem) , purifiés par chromatographie liquide de haute performance (HPLC; colonne C18, SYNMETRY), puis contrôlés par spectrométrie de masse (ES-MS). 1.2) Tests de liaison HLA II/peptide Les tests de liaisons aux molécules HLA II sont des tests de liaison en compétition avec une révélation immuno-enzymatique dont le principe est décrit dans le Brevet US 6,649, 169 pour les molécules HLA-DR et dans la Demande Internationale PCT WO 03/040299 pour les molécules HLA-DP4, ainsi que dans les articles aux noms de Texier et al., J. Immunol., 2000, 164, 3177 et Eur. J. Immunol., 2001, 31, 1837 et Castelli et al., J. Immunol, 2002, 169, 6928-6934. Des exemples de ces tests sont présentés dans les Demandes 5 Internationales PCT WO 02/090382, WO 03/040299 et WO 2004/014936. a) Choix des allèles HLA II 12 molécules HLA II (10 molécules HLA-DR et 2 molécules HLADP) les plus abondantes dans la population française et dont les fréquences alléliques sont caractéristiques de la population caucasienne, ont été sélectionnées: * molécules HLA-DR dont la chaîne 13 est codée par le gène DR1 Il s'agit des molécules HLA-DR1, -DR3, -DR4, - DR7, -DR11, DRI3 et -DR15 dont la chaîne 13 est codée par les allèles du locus DRB1 dont la fréquence dépasse les 5 % dans la population française: DRB 1 *0101 (9,3 %), DRB 1 *0301 (10,9 %), DRB 1 *0401 (5,6 %), DRB I*0701(14 %), DRB 1 * 1101 (9,2 %), DRB 1 * 1301 (6 %) et DRB 1 * 1501 (8 %) qui représentent à eux seuls 64 % de la population. Ces mêmes allèles sont les allèles HLA-DR les plus abondants dans les autres populations caucasiennes. Leur fréquence varie entre 53 % (en Espagne) et 82 % (au Danemark). Pour les Etats-Unis et le Canada, ils représentent respectivement 58 et 55 % des allèles DR de la population. * molécules HLA-DR dont la chaîne 13 n'est pas codée par le gène DR1 Il s'agit des molécules HLA-DRB3, -DRB4 et -DRB5 dont la chaîne 13 est codée par les allèles les plus fréquents dans la population française: HLADRB3*0101 (9,2 %), HLA-DRB4*0101 (28,4 %), et HLA-DRB5*0101 (7,9 %). Ces molécules couvrent à elles seules 45 % de la fréquence allélique. * molécules HLA-DP Il s'agit des molécules HLA-DP4 qui regroupent les molécules codées par les allèles DPB 1 *0401 et DPB I *0402. Ces molécules DP4 sont les molécules HLA II les plus abondantes en Europe et aux États-Unis. Leur fréquence allélique est en effet de 40 et 11 % respectivement ce qui signifie qu'elles sont l'une ou l'autre trouvées chez environ 76% des individus. Les peptides présents dans une séquence protéique et qui lient l'ensemble de ces molécules incluent donc les épitopes T CD4+de la majorité de la population. b) Purification des molécules HLA II Les molécules HLA II sont purifiées par immunoaffinité à partir de différentes lignées homozygotes de lymphocytes B humains transformées par le virus Epstein Barr (EBV), à savoir: HOM2 (DRB1 *0101, DPB1*0401), SCHU (DRB1*1501, DRB5*0101, DPB1*0402), STEILIN (DRBI*0301, DRB3*0101), PITOUT (DRBI *0701, DBR4*0101, DPBI *0401), SWEIG (DRB 1 *1101), BOLETH (DRB1*0401, DRB4*0103), HHKB (DRBI*1301, DRB3*0101, DPB1*0401). Les molécules HLA-DR sont purifiées par chromatographie d'affinité à l'aide de l'anticorps monoclonal monomorphique L243 (Smith et al., P.N.A.S., 1982, 79, 608-612) couplé au gel de protéine A-sépharose CL 4B (PHARMACIA), comme décrit dans Gorga et al., J. Biol. Chem., 1987, 262, 16087-16094. Les molécules HLA-DP4 sont purifiées selon le même protocole, à l'aide de l'anticorps monomorphique B7/21 (WATSON et al., Nature, 1983, 304, 358-361). Brièvement, les cellules (5x108 cells/ml) sont lysées sur de la glace, dans du tampon 150 mM NaCl, 10 mM Tris HC1, pH=8,3, contenant 1% Nonidet P40, 10 mg/1 aprotinine, 5 mM EDTA et 10 M PMSF. Après une centrifugation à 100 000 g pendant 1 h, le surnageant est chargé sur les colonnes de sépharose 4B, de protéine A-sépharose 4B, puis sur la colonne d'affinité spécifique. Les molécules HLA II sont éluées avec un tampon 1,1 mM n- dodécyl P-Dmaltoside (DM), 500 mM NaCl et 500 mM Na2CO3, pH 11,5. Les fractions sont immédiatement neutralisées à pH=7 avec un tampon 2 M Tris HC1, pH=6,8 puis dialysées de façon extensive, contre un tampon 1 mM DM, 150 mM NaCl, 10 mM, pH=7. c) Synthèse_ des peptide traceurs Les peptides traceurs utilisés dans les tests de liaison sont les suivants: HA 306-318 (PKYVKQNTLKLAT, SEQ ID NO: 23), A3 152-166 (EAEQLRAYLDGTGVE, SEQ ID NO: 24), MT 2-16 (AKTIAYDEEARRGLE, SEQ ID NO: 25), YKL (AAYAAAKAAALAA, SEQ ID NO: 26), BI 21-36 (TERVRLVTRHIYNREE, SEQ ID NO: 27), LOL 191-210 (ESWGAVWRIDTPDKLTGPFT, SEQ ID NO: 28), E2/E168 (AGDLLAIETDKATI, SEQ ID NO: 29) et Oxy 271-287 (EKKYFAATQFEPLAARL, SEQ ID NO: 30). Les peptides sont synthétisés selon la stratégie Fmoc en synthèse parallèle sur phase solide, biotinylés au niveau du résidu NH2 terminal à l'aide d'acide biotinyl-6-aminocaproïque (FLUKA CHIMIE), selon le protocole décrit dans Texier et al., J. Immunol., 2000, 164, 3177-3184), puis clivés de la résine par de l'acide trifluoroacétique (95 %) et purifiés par chromatographie liquide de haute performance en phase inverse, sur une colonne C18 (VydacTM) d) Tests de liaison HLA II/peptides Les molécules HLA II sont diluées dans du tampon phosphate 10 mM, NaCl 150 mM, dodécyl maltoside (DM) 1 mM, citrate 10 mM, thimérosal 0,003%, en présence d'un peptide biotinylé approprié (peptide traceur), à un pH donné, et de dilution sériées de peptide compétiteur (peptide à tester). A savoir: le peptide HA 306-318 est utilisé à 1 nM et 30 nM, à pH=6, respectivement pour les allèles DRB 1 *0101 et DRB 1 *0401 et à 20 nM, à pH=5, pour l'allèle DRB 1 * 1101. YKL est utilisé à 20 nM, à pH=5, pour l'allèle DRB1*0701. L'incubation est réalisée à pH=4,5 pour les allèles DRB 1 * 1501, DRB 1 * 1301 et DRB 1 *0301, en présence de respectivement, A3 152166 (10 nM), B 121-36 (200 nM) et MT 2-16 (200 nM). Le peptide oxybiotinylé est utilisé à pH=5 (10 nM) pour les allèles DPB1*0401 et DPB 1 *0402. Le mélange réactionnel (100 l par puits) est incubé dans des plaques à 96 puits en polypropylène (NUNC), à 37 C pendant 24 h, à l'exception des allèles DRB 1 * 1301 et DRB 1 *0301 qui sont incubés pendant 72 h. A la fin de l'incubation, les échantillons sont neutralisés avec 50 L de tampon Tris HCl 450 mM, pH 7,5, thimérosal 0,003 %, BSA 0,3 %, DM 1 mM. Les échantillons sont ensuite transférés sur des plaques ELISA MaxisorpTM (96 puits, NUNC) prélablement recouvertes d'anticorps L243 ou B7/21 L243 (10 g/ml) et saturées avec du tampon Tris HC1 100 mM, pH=7.5, BSA 0,3 %, thimerosal 0,003%. L'incubation des échantillons sur ces plaques est réalisée pendant deux heures à température ambiante. Des lavages avec du tampon Tris HC1 0,1 M, pH 7,5, Tween-20 0,05% sont ensuite effectuées entre chaque étape. Le peptide biotinylé lié aux molécules HLA II est détecté par l'addition de 100 L/puits du conjugué streptavidine-phosphatase alcaline (45 minutes, AMERSHAM) dilué au 1/2000 dans le tampon Tris 10 mM, pH 7, NaCl 0,15 M, Tween 20 0,05%, BSA 0,2%, thimérosal 0,003%, puis de 200 L/puits du substrat 4-méthyl-umbelliférylphosphate (MUP, SIGMA) à la concentration de 100 M, en tampon NaHCO3 0, 05M, pH 9,8, MgCl2 1mM. L'émission de fluorescence par le produit de la réaction enzymatique est mesurée à 450 nm après excitation à 365 nm, à l'aide d'un fluorimètre pour plaques à 96 puits (DYNEX). La liaison maximale est déterminée en incubant le peptide traceur biotinylé avec lamolécule HLA II en l'absence de peptide compétiteur. La spécificité de liaison est contrôlée par l'addition d'un excès de peptide non biotinylé. Le bruit de fond obtenu ne diffère pas significativement de celui obtenu en incubant le peptide biotinylé sans les molécules HLA II. Les résultats sont exprimés sous la forme de la concentration de peptide compétiteur qui inhibe 50% de la liaison maximale du peptide traceur biotinylé (IC50). Les moyennes et les écarts-types sont calculés à partir d'au moins trois expériences indépendantes. La validité de chaque expérience est déterminée à l'aide des peptides traceurs; leurs valeurs d'IC50 varient d'un facteur inférieur à trois. Un peptide dont la valeur d'IC50 est inférieure à 1000 mm est considéré comme possédant une bonne affinité pour la molécule HLA II correspondante. 2) Résultats L'analyse des séquences des antigènes EBNA1, LMP1 et LMP2 a permis d'identifier 24 séquences peptidiques de 15 à 31 acides aminés, susceptibles de contenir des motifs pour plusieurs molécules HLA-DR. Parmi ces 24 peptides, 22 ont pu être synthétisés en chimie f-moc avec une pureté de l'ordre de 90% en HPLC. Neuf peptides sont dérivés de EBNA1, 7 de LMP1 et 6 de LMP2. Les séquences des peptides dérivés des séquence présentant les numéros d'accès NP 039875, CAA26023 et AAA45886, respectivement pour EBNA1, LMPI et LMP2), sont présentées dans la liste de séquences jointe en annexe et le Tableau II. Tableau II: Séquences des peptides Peptide Position Séquence Numéro d'identification EBNA1 R19T 67-85 RDGVRRPQKRPSCIGCKGT SEQ ID NO: 1 R26D 403-428 RPFFHPVGEADYFEYHQEGGPDGEPD SEQ ID NO: 2 D22P 455-476 DGGRRKKGGWFGKHRGQGGSNP SEQ ID NO: 3 _ 475-500 NPKFENIAEGLRALLARSHVERTTDE SEQ ID NO: 4 N26E K26L 514-539 KTSLYNLRRGTALAIPQCRLTPLSRL SEQ ID NO: 5 P24G 529-552 PQCRLTPLSRLPFGMAPGPGPQPG SEQ ID NO: 6 M23T 563-585 MVFLQTHIFAEVLKDAIKDLVMT SEQ ID NO: 7 F24R 571-594 FAEVLKDAIKDLVMTKPAPTCNIR SEQ ID NO: 8 L19G 606-624 LPPWFPPMVEGAAAEGDDG SEQ ID NO:9 LMP1 E15P 2 à 16 EHDLERGPPGPRRPP SEQ ID NO: 10 116L 68-83 IIFIFRRDLLCPLGAL SEQ ID NO: 11 A16L 96-111 ALWNLHGQALFLGIVL SEQ ID NO: 12 A17H 179-195 AILIWMYYHGPRHSDEH SEQ ID NO: 13 H15D 303-317 HDPLPHSPSDSAGND SEQ ID NO: 14 S27L 211 à 237 SGHESDSNSNEGRHHLLVSGAGDGPPL SEQ ID NO: 15 D31 D 356 à 386 DPHLPTLLLGTSGSGGDDDDPHGPVQLSYYD SEQ ID NO: 16 LMP2 M20D 1 à 20 MGSLEMVPMGAGPPSPGGDP SEQ ID NO: 17 E25Y 61 à 85 EDPYWGNGDRHSDYQPLGTQDQSLY SEQ ID NO: 18 A15V 148-163 ASSYAAAQRKLLTPV SEQ ID NO: 19 V21V 224-244 VLVMLVLLILAYRRRWRRLTV SEQ ID NO: 20 G17F 372-388 GGSILQTNFKSLSSTEF SEQ ID NO: 21 L18L 410-427 LTEWGSGNRTYGPVFMCL SEQ ID NO: 22 L'activité de liaison des peptides vis-à-vis des 12 molécules HLA II prépondérantes dans la poplulation caucasienne (HLA-DR1,-DR3,-DR4,-DR7, -DR11, -DR13,-DR15,-DRB3,-DRB4, -DRB5, DP401 et DP402; Tableau III) montre que 6 peptides se lient avec une bonne affinité à au moins 7 molécules HLA II différentes: G17F (LMP2), N26E (EBNA 1), V21V (LMP2), K26L(EBNA1), P24G (EBNAI), I16L (LMP1). Tableau III: Activité de liaison des peptides vis-à-vis des molécules HLA II prépondérantes dans la population caucasienne. IC50 *(nM) Peptide DR1 DR3 DR4 DR7 DR11 DR13 DR15 DRB3 DRB4 DRB5 DP401 DP402 Nombre Classement d'allèles liés L18L Insoluble Insoluble > 100000 1061 >100000 Insoluble Insoluble Insoluble 2100 Insoluble Insoluble Insoluble 0 17 G17F 15 851 335 40 29 Insoluble 28 >100000 Insoluble 170 16 25 9 2 N26E 21 8485 235 184 447 1649 229 >100000 825 17 4094 4402 7 4 A17H 7746 7348 >100000 >100000 >100000 Insoluble 3 >100000 150 42 >100000 >100000 3 8 A16L 79 Insoluble >100000 122 10954 Insoluble 48 >100000 >100000 2683 1182 725 4 7 M20P 721 >100000 7483 >100000 4243 >100000 4690 >100000 6735 1039 11745 10595 1 12 L19G 6221 >100000 >100000 18166 1095 > 100000 69354 >100000 >100000 37417 >100000 30984 0 17 S27L > 100000 >100000 >100000 18000 19339 >100000 45000 >100000 > 100000 13477 >100000 >100000 0 17 D31D 17321 >100000 >100000 27495 25000 >100000 251 >100000 >100000 >100000 >100000 28284 1 12 A15V 1196 >100000 35496 1732 4 >100000 26458 >100000 >100000 463 >100000 >100000 2 9 E25 Y 949 >100000 5099 9798 2258 >100000 1285 >100000 >100000 >100000 >100000 > 100000 1 12 V21V 240 77 390 71 130 161 693 417 167 169 150 155 12 1 RT19 698 >100000 9899 38536 11292 >100000 7266 >100000 >100000 771 >100000 >100000 2 9 K26L 1,1 60000 346 1,7 1 2049 24 >100000 200 128 194 339 9 2 R26D 3742 >100000 20494 1129 >100000 >100000 22361 3969 79373 5477 >100000 >100000 0 17 P24 G 47 32787 2627 116 2 775 2621 31464 5532 419 120 447 7 4 F24R 65 1936 1500 56 1554 > 100000 3464 16125 63246 5399 17544 2739 2 9 D22P 62450 >100000 > 100000 86603 229 >100000 >100000 >100000 >100000 >100000 >100000 >100000 1 12 I16L 190 110 7348 175 27 >100000 9 224 529 >100000 >100000 1111 7 4 E15P >100000 >100000 >100000 > 100000 >100000 >100000 >100000 >100000 >100000 5254 > 100000 >100000 0 17 H15D >100000 >100000 >100000 >100000 >100000 >100000 >100000. >100000 >100000 >100000 > 100000 >100000 0 17 * un peptide possédant une valeur d'ICso inférieure à 1000 nM est considéré comme possédant une bonne affinité pour la molécule HLA II correspondante Compte tenu de la fréquence allélique de chacun des 12 allèles HLA II testés, un mélange comportant ces 6 peptides serait capable d'être reconnu par plus de 90% de la population caucasienne. Exemple 2: Immunogénicité des peptides in vivo chez des souris transgéniques 5 pour une molécule HLA II La capacité des peptides ayant une bonne affinité pour les molécules HLA II, tels que définis à l'exemple 1 à induire une réponse immunitaire, a été évaluée par un test de prolifération in vitro, chez des souris transgénique pour les molécules HLA-DR1 (souris transgéniques A(3 /DR1; Pancré et al., Clinical and Experimental Immunology, 2002; 129: 429-437). 1) Matériels et méthodes Un premier groupe de souris transgéniques âgées de 6 semaines, a été immunisé par une première injection sous-cutanée du mélange peptidique déterminé à l'exemple 1 (20 pg de chaque peptide, soit 120 g au total) émulsifié dans du Montanide Isa 720 (SEPPIC), suivie de deux rappels à 2 semaines d'intervalle, avec une demi-dose du mélange peptidique (10 g de chaque peptide, 60 g au total) émulsifié dans du Montanide Isa 720. Le groupe témoin a reçu uniquement des injections de Montanide Isa 720, selon le même protocole. Sept jours après la dernière injection, les animaux ont été sacrifiés et la rate ainsi que des ganglions lymphatiques ont été prélevés. Les cellules de rate ou de ganglion lymphatique (5.105/puits d'une plaque de microtitration de 96 puits (Falcon ), en triplicat), ont été mises en culture, soit en l'absence d'antigène (témoin négatif), soit en présence d'une gamme de LPS (Sigma , 10 mg et 1 mg) ou de concanavaline A (Sigma , 10 mg et 1 mg, (témoins positifs, cultures de 48h), soit en présence d'une gamme de concentrations (60 g, 30 g, 15 g, 7,5 g au total) du mélange peptidique (cultures de 5 jours). Après la culture, de la thymidine tritiée ((3H)thymidine) (1 mCi/puits, 49,0 Ci/mmol, AMERSHAM) a été ajoutée et les cellules ont été récupérées 6 heures plus tard par aspiration sur filtre en fibre de verre (WALLAC). La thymidine incorporée a été mesurée à l'aide d'un compteur de scintillation (3 (1450 Trilux, WALLAC). Les résultats sont exprimés en index de prolifération (nombre de coups par minute (CPM) en présence d'antigène/nombre de CPM en l'absence d'antigène). 2) Résultats Les résultats présentés aux figures 1 et 2 montrent que les peptides sélectionnés par le test de liaison aux molécules HLA II sont capables d'induire une forte réponse CD4+ spécifique d'EBV chez les individus immunisés. Après restimulation in vitro avec le mélange peptidique, il existe une réponse proliférative des lymphocytes de la rate et des ganglions extraits des animaux vaccinés. En revanche, cette prolifération n'est pas observée chez les animaux contrôles non immunisés (figures 1 et 2). Ces résultats indiquent donc que les peptides sélectionnés peuvent être utilisés dans des compositions immunogènes pour la prévention et le traitement des pathologies associées aux infections par EBV. Exemple 3: Immunogénicité des peptides in vitro chez des sujets sains séropositifs pour EBV 1) Matériels et méthodes a) Donneurs et typage HLA Du sang a été prélevé chez 12 donneurs volontaires sains séropositifs pour 1'EBV d'haplotype HLA II varié. Tableau IV: Haplotypes HLA-DRB1 des donneurs volontaires sains séropositifs pour 1' EBV Donneur Haplotype HLA-DRB1 1 DRBI*1101/DRB1*1301 2 DRBI *0401 / DRB 1 * 1201 3 DRBI*1501/DRBI*0301 4 DRBI *0701 / DRB 1 * 1101 DRB1*0101/DRBI*1101 6 DRBI*1501/DRBI*0401 7 DRBI*0301/DRBI*1301 8 DRBI*1101/ DRB1*1201 9 DRBI*1401/ DRBI*0701 DRB 1 * 1101 / DRB 1 * 1201 I l DRBI *0401 /DRBI * 1101 12 DRBI *0401 / DRB 1 *0801 b) Réponse proliférative des lymphocytes T au mélange peptidique ou aux peptides testés individuellement Les cellules mononucléées du sang (PBMCs) des donneurs ont été séparées par la méthode classique du gradient de Ficoll. Les PBMCs (5.105 cellules/puits d'une plaque à 96 puits) ont ensuite été cultivées 4 à 6 jours dans un milieu sans sérum (AIM V, GIBCOTM), en présence ou en l'absence du mélange peptidique (60 g/mL au total, soit 10 g/mL de chaque peptide). La réponse proliférative a été mesurée par incorporation de (3H)thymidine (1 mCi/puits, 49,0 Ci/mmol, AMERSHAM). Les résultats sont exprimés en index de stimulation (coups par minute des lymphocytes T stimulés/moyenne des coups par minute des lymphocytes T non stimulés). Les puits correspondant aux lymphocytes T stimulés ont été analysés de manière individuelle et considérés connme positifs lorsque le nombre de coups par minute était superieur à 1000 et l'index de stimulation supérieur à 3 (nombre de coups par minute en présence du mélange de peptide 3 fois supérieur à celui observé en l'absence de peptides (bruit de fond)). Les peptides ont également été testés de manière individuelle chez 6 donneurs (donneurs 1, 3, 5, 6, 9 et 10). Pour ce faire, une gamme de concentrations (2,5, 5, 10 et 20 g) a été testée en triplicat pour chaque peptide. La réponse a été considérée comme positive lorsque la moyenne des index de stimulation des triplicats était supérieure à 2 avec un puits possédant un index de stimulation supérieur a 3. c) Détection de cytokines Les PBMCs des donneurs (1.106 cellules/puits, plaques 24 puits) ont été cultivés dans du mileu AIM V (GIBCOTM) ou RPMI 1640 (GIBCOTM), supplémenté avec 10% de sérum humain de groupe AB, en présence ou en l'absence du mélange peptidique (60 g/mL), pendant 2 ou 5 jours. L'IL-2, 1' IL-4, FIL-10 et 1'IFN-y présents dans les surnageants de culture ont été dosés en ELISA sandwich, selon un protocole standard, à l'aide d'anticorps dirigés contre chacune de ces cyrtoines (BD PharMingen). L'absorbance à 492 nm a ete mesurée à l'aide d'un spectrophotomètre (Multiskan RC, LABSYSTEMS). Les résultats présentés correspondent à la moyenne obtenus sur deux puits. 2) Résultats a) réponse T CD4+ spécifique d'EBV induite par le mélange peptidique Afin de déterminer si le mélange peptidique était reconnu par les lymphocytes T CD4+ humains, des cellules mononucléées sanguines issues de donneurs volontaires sains séropositifs pour EBV, d'haplotype HLA varié (Tableau III) ont été stimulées in vitro par le mélange peptidique. Dans un premier temps, la réponse proliférative des lymphocytes T qui permet d'établir l'existence d'une réponse lymphocytaire T de type mémoire, a été évaluée par mesure de l'incorporation de (3H)thymidine après 4 à 6 jours de culture en présence du mélange peptidique. La réponse proliférative a pu être évaluée chez 11 donneurs (figure 3). Tous les donneurs montrent une réponse proliférative, avec des niveaux de prolifération variables d'un donneur à l'autre. Ces résultats indiquent la présence de lymphocytes T mémoires capables de reconnaître le mélange peptidique, chez l'ensemble des donneurs testés. Les résultats indiquent également que le mélange contient des peptides naturellement présentés au cours de l'infection par EBV. La réponse à chacun des peptides testé séparément, a été évaluée (Tableau V). Les résultats confirment l'intérêt de chacun des 6 peptides dans le mélange sélectionné. Tableau V: Analyse de la réponse T CD4+ spécifique d'EBV induite par chacun des peptides testé séparément. Peptides EBNA1 LMP1 LMP2 Donneurs N26E K26L I P24G Il 6L G 17F V21V 1 + + - - - - 2/6 3 + + - + - + 4/6 + + + + - - 4/6 6 + + + + + + 6/6 9 + + + + + + 6/6 - + + + + + 5/6 5/6 6/6 4/6 5/6 3/6 4/6 La sécrétion de cytokines dans le milieu de culture après stimulation des PBMCs avec le mélange peptidique, a également été testée en ELISA (Tableau VI). Tableau VI: Analyse de la sécrétion de cytokines après stimulation avec le mélange peptidique. Cytokines (pg/mL) IL-2 IL-4 IL-10 IFN-y AIM* SAB** AIM SAB AIM SAB AIM SAB Donneur 1 - - - - - 80 - - Donneur 2 - - - - _ - 290 - 211 Donneur 3 _ - - 645 - - _ - - Donneur 4 - - - - - - - - Donneur 5 - - - - - - - 220 Donneur 6 - -- - - 409 583 Donneur 7 - - - - - - - - Donneur 8 - - - - - 183 - -Donneur 9 - - - - - - 268* Donneur 10 - - - - - - 84 541 Donneur 11 - -- - - - 329 52 Donneur 12 - - - - - - 233 - * PBMC cultivés en milieu AIM ** PBMC cultivés en milieu RPMI+sérum humain de groupe AB Une sécrétion significative d'IFN-y a pu être mise en évidence chez 7 des 12 donneurs. Une sécrétion d'IL-10 a également été retrouvée chez 4 des 12 donneurs. Aucune production significative d'IL-4 ou d'Il-2 n'a été retrouvée par ELISA. Par comparaison, les contrôles en l'absence de mélange peptidique étaient négatifs, à l'exception d'un cas (*: IFN-y retrouvé à 126 pg/mL). REVENDICATIONS 1 ) Peptide immunogène du virus Epstein-Barr (EBV), caractérisé en ce qu'il comprend au moins un épitope T CD4+ de l'un des antigènes de latence EBNA 1, LMP1 ou LMP2, apte à être présenté par au moins 7 molécules HLA II différentes choisies parmi les molécules HLA-DRI, HLA- DR3, HLA-DR4, HLADR7, HLA-DR11, HLA-DR13, HLA-DR15, HLA-DRB3, HLA-DRB4, HLA-DRB5 et HLA-DP4, et en ce qu'il est sélectionné dans le groupe constitué par: a) les peptides de respectivement 26, 26 et 24 acides aminés dont la séquence s'étend des positions 475 à 500, 514 à 539, et 529 à 552 d'EBNA1, b) le peptide de 16 acides aminés dont la séquence s'étend des positions 68 à 83 de LMP 1, c) les peptides de respectivement 21 et 17 acides aminés dont la séquence s'étend des positions 224 à 244 et 372 à 388 de LMP2, et d) les variants de même longueur et définis par les mêmes positions que les peptides définis en a), b) et c), lesquels variants sont obtenus par substitution d'au moins un acide aminé desdits peptides définis en a), b) et c) par un autre acide aminé, et présentent une activité de liaison inférieure à 1000 nM, vis-à-vis d'au moins 7 molécules HLA II différentes choisies parmi HLA-DR1, HLA-DR3, HLA-DR4, HLA-DR7, HLA-DR11, HLA-DR13, HLA-DR15, HLA-DRB3, HLA-DRB4, HLA- DRB5 et HLA-DP4. 2 ) Peptide selon la revendication 1, caractérisé en ce que lesdites molécules HLA II comprennent une chaîne 13 codée respectivement par les allèles DRB 1 *0101 (molécule HLA-DR 1), DRB 1 *0301 (molécule HLA-DR3) DRB 1 *0401 (molécule HLA-DR4) DRB 1 *0701 (molécule HLA-DR7), DRB 1 * 1101 (molécule :25 HLA-DR 11), DRB 1 * 1301 (molécule HLA-DR13), DRB 1 * 1501 (molécule HLADR15), DRB3*0101 (molécule HLA-DRB3), DRB5*0101 (molécule HLA-DRB5), DP*0401 ou DP*0402 (molécule HLA-DP4). 3 ) Peptide selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce qu'il est sélectionné dans le groupe constitué par les séquences SEQ ID NO: 4, 5, 6, 11, 20 et 30 21. 4 ) Fragment polyépitopique, caractérisé en ce qu'il comprend deux épitopes identiques ou différents, incluant au moins un épitope T CD4+ dont la séquence est celle du peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 3. 5 ) Fragment polyépitopique selon la revendication 4, caractérisé en ce qu'il comprend un épitope T CD4+ dont la séquence est celle du peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 3 et au moins un autre épitope sélectionné dans le groupe constitué par: - un épitope T CD8+ d'un antigène d'EBV, - un épitope B d'un antigène d'EBV, et - un épitope T CD4+ universel naturel ou synthétique tel que le peptide TT 830-846, PADRE, le peptide 45-69 de la protéine Nef du VIH-1 et les peptides CS.T3, CSP, SSP2, LSA-1 et EXP-l. 6 ) Protéine de fusion, caractérisée en ce qu'elle est constituée par une protéine ou un fragment de protéine, fusionné à un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 3 ou un fragment polyépitopique selon la revendication 4 ou la revendication 5. 7 ) Protéine de fusion selon la revendication 6, caractérisée en ce que ladite protéine ou ledit fragment est sélectionné dans le groupe constitué par une chaîne alpha ou béta d'une molécule HLA II choisie parmi les molécules HLA-DR1, HLA-DR3, HLA-DR4, HLA-DR7, HLA-DR11, HLA- DR13, HLA-DRI5, HLADRB3, HLA-DRB4, HLA-DRB5 et HLA-DP4 ou un fragment de ladite chaîne correspondant à une molécule HLA II soluble. 8 ) Lipopeptide, caractérisé en ce qu'il est obtenu par addition d'un lipide sur une fonction cc-aminée ou une fonction réactive de la chaîne latérale d'un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 3 ou d'un fragment polyépitopique selon la revendication 4 ou la revendication 5. 9 ) Polynucléotide, caractérisé en ce qu'il code pour un peptide, un fragment polyépitopique ou une protéine de fusion selon l'une quelconque des revendications 1 à 7. 10 ) Vecteur d'expression, caractérisé en ce qu'il comprend un polynucléotide selon la revendication 9 sous le contrôle de séquences régulatrices appropriées, de la transcription et éventuellement de la traduction. 11 ) Cellule hôte, caractérisée en ce qu'elle est modifiée par un polynucléotide selon la revendication 9 ou un vecteur d'expression selon la revendication 10. 12 ) Composition immunogène ou vaccinale, caractérisée en ce qu'elle comprend au moins un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, un fragment polyépitopique selon la revendication 4 ou la revendication 5, un lipopeptide selon la revendication 8 ou un vecteur d'expression selon la revendication 10, et un véhicule pharmaceutiquement acceptable, et/ou une substance porteuse, et/ou un adjuvant. 13 ) Composition immunogène selon la revendication 12, caractérisée en ce qu'elle comprend au moins deux des peptides d'EBV selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, de préférence trois à cinq peptides, de manière préférée les six peptides selon la revendication 3, sous forme d'un mélange de peptides ou de lipopeptides tels que définis à la revendication 8, d'un fragment polyépitopique comprenant lesdits peptides selon la revendication 4 ou la revendication 5 ou d'un vecteur d'expression codant lesdits peptides ou ledit fragment selon la revendication 10. 14 ) Composition immunogène selon la revendication 13, caractérisée en ce qu'elle comprend également, au moins un peptide incluant un épitope sélectionné dans le groupe constitué par un épitope T CD8+ d'EBV, un épitope B d'EBV et un épitope T CD4+ universel, tels que définis à la revendication 5. 15 ) Peptide, fragment polyépitopique, lipopeptide ou vecteur selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, 8 et 10 comme vaccin pour la prévention et/ou le traitement d'une infection par EBV ou d'une pathologie tumorale associée. 16 ) Utilisation d'un peptide, d'un fragment polyépitopique, d'un lipopeptide ou d'un vecteur selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, 8 et 10, pour la préparation d'un vaccin destiné à la prévention et/ou au traitement d'une infection par EBV ou d'une pathologie tumorale associée. 17 ) Réactif de diagnostic d'une infection par EBV ou d'une pathologie tumorale associée, caractérisé en ce qu'il comprend au moins un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, éventuellement marqué ou complexé, notamment complexé à des molécules HLA II marquées, sous la forme de complexes multimériques. 18 ) Utilisation d'un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, pour la préparation d'un réactif de diagnostic d'une infection par 5 EBV ou d'une pathologie tumorale associée. 19 ) Méthode de diagnostic d'une infection par EBV ou d'une pathologie tumorale associée, caractérisée en ce qu'elle comprend: - la mise en contact d'un échantillon biologique dudit individu avec un réactif de diagnostic selon la revendication 17, et - la détection de cellules T CD4+ spécifiques d'un des antigènes de latence EBNA1, LMP1 ou LMP2 d'EBV. 20 ) Procédé de tri de cellules T CD4+ spécifiques d'un des antigènes de latence EBNA1, LMP1 ou LMP2 d'EBV, caractérisé en ce qu'il comprend au moins les étapes suivantes: - la mise en contact d'un échantillon cellulaire avec des complexes multimériques marqués, formés par la liaison de molécules HLA II solubles avec au moins un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, et - le tri des cellules liées auxdits complexes HLA II/peptide.