FR 2861991 A1 20050513 FR 0313134 A 20031107 HO (I) HO 2861991 1 UTILISATION D'INHIBITEURS DE GLUCOSIDASE POUR UNE THERAPIE DE LA MUCOVISCIDOSE La présente invention a pour objet l'utilisation d'inhibiteurs de glucosidase pour la préparation de médicaments pour le traitement de la mucoviscidose. La mucoviscidose (CF: Cystic Fibrosis) est la maladie génétique récessive, autosomique, létale la plus répandue dans les populations européennes et nord américaines. Le gène CF (locus 7g31) code pour la protéine transmembranaire nommée CFTR (pour Cystic Fibrosis Transmembrane Conductance Regulator) (Tsui et al., 1985; Riordan et al., 1989). Des mutations du gène CF provoquent un transport anormal d'eau et d'électrolytes à travers les membranes cellulaires de divers organes comme les poumons, les glandes sudoripares, l'intestin et le pancréas exocrine. Bien qu'il existe plus de 1000 mutations de la protéine CFTR, la mutation la plus fréquente (70% des patients) est la délétion d'une phénylalanine dans le domaine NBF1 en position 508 (delF508). La principale cause de mortalité des patients CF est liée à cette délétion et conduit à des infections ou à une insuffisance pulmonaire provoqués par une augmentation de la viscosité du mucus. Cette viscosité entraîne l'occlusion des voies respiratoires et favorise les infections par les bactéries opportunistes. Une aggravation est de plus constatée au niveau digestif et notamment pancréatique (patient pancréatique-insuffisant). La protéine CFTR est une glycoprotéine de 1480 acides aminés, appartenant à la super famille des transportéurs membranaires ABC. CFTR est un canal chlorure localisé dans la membrane plasmique apicale des cellules épithéliales pulmonaires chez les individus sains. CFTR est responsable du transport transépithélial d'eau et d'électrolytes et permet chez un individu sain l'hydratation des voies aériennes pulmonaires. Chez les patients CF, cette protéine est absente des membranes plasmiques du fait d'un mauvais adressage de la protéine qui est retenue dans le réticulum endoplasmique (RE). L'hydratation des voies aériennes pulmonaires n'est plus fonctionnelle dans ce cas. La délétion delF508 perturbe le repliement du domaine NBF1 et empêche la maturation complète de la protéine qui est donc dégradée très tôt au cours de sa biosynthèse. Cependant, si la protéine delF508 atteint la membrane, elle fonctionne comme un canal chlorure. Une des clés d'un traitement de cette maladie consiste donc en un ré-adressage de 2861991 2 delF508 vers la membrane des cellules. Une fois à la membrane, l'activité de transport de delF508 peut être stimulée par des agonistes physiologiques endogènes ou exogènes. Le mécanisme d'adressage de la protéine CFTR s'effectue de la manière suivante. Après sa néosynthèse, la protéine CFTR se retrouve dans la lumière du RE où elle subit diverses glycosylations grâce à des glycosyl transférases. La protéine se retrouve avec entre autres 3 glucoses et 1 mannose N-liés. Deux des glucoses sont ôtés par les glucosidases I et II. La calnexine ou la calréticuline, chaperonnes calcium dépendantes, reconnaissent la protéine monoglucosylée et se fixent sur celle-ci via le glucose N-lié. Ces chaperonnes évitent aux différentes protéines CFTR présentes dans le RE de s'agréger entre elles et permettent la fixation d'autres chaperonnes telle que ERp57. Le complexe CFTR/Calnexine/ERp57 ainsi formé permet le repliement du CFTR. Puis, la glucosidase II enlève le glucose restant, libérant ainsi le CFTR des chaperonnes. Si le repliement est incorrect, une glucosyltransférase ajoute un glucose au CFTR qui pourra à nouveau subir un ou plusieurs cycles jusqu'à ce qu'il soit bien replié. Si le repliement est toujours incorrect, une mannosidase ôte le mannose N-lié, la protéine va alors être transportée dans le cytosol, via le complexe canal du translocon, où elle pourra être dégradée (Ellgard & Helenius, 2003). Ce phénomène est observé pour 80% du CFTR-WT et 99% du delF508-CFTR. Une fois dans le cytosol, la protéine est prise en charge par différentes chaperonnes telles que Hsp70, Hsp90 ou Hdj-2. Ces chaperonnes permettent à l'ubiquitine de se fixer sur le CFTR. Ainsi marqué, le CFTR est reconnu et dégradé par le complexe du protéasome 26S qui est ATP-dépendant (Gelman et al., 2002). Si le repliement du CFTR est considéré comme correct par la machinerie de contrôle du réticulum, la protéine pourra atteindre l'appareil de Golgi. Elle sera prise en charge par la protéine cargo ERGIC-53 (appartenant à la famille des lectines) qui se lie au CFTR via le mannose. La traversée du ERGIC se fait par l'intermédiaire de vésicules formées par le facteur COP I (Ellgard & Helenius, 2003). Il semble que si la protéine est mal repliée, elle est sensible à l'endoglycosidase H de l'appareil de Golgi (Cheng et al., 1990) et sera alors ramenée dans le réticulum où elle sera dégradée. En revanche, la protéine correctement repliée, résistante à l'endoglycosidase FI, sera prise en charge par le facteur VIP 36 (homologue de ERGIC-53) et amenée à la membrane apicale (Fiedler & Situons, 1995). S'il a déjà été observé qu'un inhibiteur de glucosidase, la castanospermine, avait un effet sur le renouvellement de la présence de delF508 à la surface de cellules épithéliales pulmonaires (Wei et al., 1996), il n'a en revanche jamais été décrit que ce composé était capable non seulement de restaurer l'adressage membranaire de delF508, mais également de permettre à delF508 de fonctionner en tant que transporteur ionique. A ce titre, les auteurs de 2861991 3 cet article n'avaient formulé aucune hypothèse quant à l'utilisation possible de ce composé dans le cadre du traitement de la mucoviscidose. Les Inventeurs ont précisément étudié ces inhibiteurs de glucosidase afin de déterminer s'ils étaient à la fois capables d'assurer l'adressage correct et spécifique de delF508 sans pour autant affecter son activité de transporteur ionique ni la viabilité cellulaire. Le N-butyl-deoxynojirimycin (NB-DNJ), est un inhibiteur des glucosidases I et II du réticulum endoplasmique, qui a tout d'abord été développé en tant que molécule anti-virale pour l'homme. L'inhibition de ces enzymes modifie le repliement d'une glycoprotéine de l'enveloppe du virus HIV (Human Immunodeficiency Virus) et par conséquent, le cycle du virus s'en trouve bloqué (Platt et al., 2001). Une thérapie utilisant le NB-DNJ a été évaluée sur des patients atteints du syndrome d'immunodéficience acquise: cette molécule est bien tolérée et n'est pas cytotoxique sur des tissus en culture même à forte concentration (2mM). En outre, ces essais cliniques ont révélé que le NB-DNJ avait également un effet inhibiteur des glucosyltransférases. C'est pourquoi cette molécule, également nommée OGT 918, a été étudiée dans le traitement de la maladie du Gaucher (Dwek et al., 2000, Cox et al., 2000). Cette maladie génétique est due à un déficit en enzyme lysosomale, la f3-glucocérébrosidase qui entraîne une accumulation de glucocérébrosides (substrat de l'enzyme). Le NB-DNJ, inhibiteur de la glucosyltransférase impliquée dans la biosynthèse des glucocérébrosides, empêche ainsi leur synthèse et leur accumulation (Dwek et al., 2000, Cox et al., 2000). Le NB-DNJ a obtenu l'AMM comme médicament dans la maladie du Gaucher sous le nom de Zavesca en 2002. La présente invention découle de la mise en évidence par les Inventeurs, du fait que le NB-DNJ, et les inhibiteurs de la glucosidase en général, sont capables de restaurer l'adressage membranaire de delF508 sans altérer les autres canaux chlorure, et permettent à delF508 de fonctionner en tant que transporteur ionique. La présente invention a pour objet l'utilisation de composés inhibiteurs de glucosidase pour la préparation d'un médicament destiné au traitement de la mucoviscidose. Par l'expression inhibiteur de glucosidase on entend tout inhibiteur des glucosidases I et/ou II, l'inhibition de ces glucosidases pouvant être mesurée notamment selon la méthode décrite dans Platt et al., 1994. 2861991 4 L'invention a plus particulièrement pour objet l'utilisation susmentionnée de composés inhibiteurs de glucosidase choisis parmi les composés de formule générale (I) suivante: dans laquelle - RI représente un groupe CH3, ou CH2OH, - R2 représente H ou un groupe alkyle de 1 à 5 atomes de carbone, - ou RI et R2 forment ensemble avec la carbone en position (a) et l'azote de la formule (1) ci-dessus un groupe de formule: L'invention concerne plus particulièrement l'utilisation susmentionnée des composés de formule (I) suivants: HO (I) HO HO HO HCI \ .HC1 NH) NH HO OH OH DNJ (deoxynojirimycin) DFJ (deoxyfuconojirimycin) DMJ (deoxymannojirimycin) HOC HO CH3 HCI NH N HO--ÉÉ HOI^,.. OH DGJ (deoxygalactonojirimycin) NB-DNJ (N-butyl-deoxynojirimycin) OH HO HO HO HO NB-DGJ (N-butyl-deoxygalactonojirimycin) Castanospermine De préférence, le composé de formule (I) utilisé dans le cadre de la présente invention 5 est le NB-DNJ. L'invention a également pour objet l'utilisation susmentionnée de composés inhibiteurs de glucosidase définis ci-dessus, pour la préparation d'un médicament administrable par voies orale (sirop, suspension, gélule, tablettes, poudre ou granule), rectale (suppositoire), nasale (aérosol par inhalation, ou gouttes), notamment à raison d'environ 1 mg à 2 g par jour de composé actif chez l'adulte, ou de 1 mg à 1 g par jour chez l'enfant et le nourrisson, en une ou plusieurs prises. L'invention concerne également l'utilisation susmentionnée de composés inhibiteurs de glucosidase définis ci-dessus en association avec un composé activateur du canal CFTR. A ce titre, l'invention a plus particulièrement pour objet l'utilisation susmentionnée de composés inhibiteurs de glucosidase définis ci-dessus en association avec un composé activateur du canal CFTR choisi parmi: - la génistéine de formule suivante: HO HO OH - ou les dérivés des benzo[c] quinoliziniums de formule (II) suivante: 2861991 6 dans laquelle: - RI et R2 représentent un atome d'hydrogène, ou forment en association avec CI et C2 un cycle aromatique à 6 atomes de carbone, - R5 représente un atome d'hydrogène, ou un groupe alkyle linéaire ou substitué de 1 à 10 atomes de carbone, notamment un groupe butyle, ou un ester de formule COOR' dans laquelle R' représente un groupe alkyle linéaire ou substitué de 1 à 10 atomes de carbone, notamment un groupe éthyle, - Y représente un groupe -OH, -SH, -NH2, ou -NHCOCH3, - R7, R8, R9 et R10 représentent un atome d'hydrogène, ou l'un au moins de R7, R8, R9 10 ou R10, représente un atome d'halogène, notamment un atome de chlore. de brome ou de fluor, - X représente un atome d'halogène sous forme anionique, notamment un atome de brome Br-, ou de chlore Cl-, ou un groupe d'atomes sous forme anionique. L'invention a plus particulièrement pour objet l'utilisation susmentionnée de composés 15 inhibiteurs de glucosidase définis ci-dessus en association avec des dérivés des benzo[c] quinoliziniums de formule (II) choisis parmi les composés suivants: composé 13 (MPB-01) composé 11 (MPB-26) composé 14 (MPB-02) composé 15 (MPB-03) NH2 Cl composé 16 composé 17 Cl NH2 NH2 composé 22 composé 23 H N COCH3 composé 24 C104- NH2 composé 12 (MPB-05) composé 18 (MPB-06) OH composé 19 (MPB-07) composé 20 (MPB-08) Cl OH Cl composé 21 (MPB-27) composé 25 (MPB-30) composé 26 (MPB-29) Cl composé 27 (MPB-32) OH Cl OH Cl OH OH composé MPB-91 Cl 2861991 9 composé MPB 73 composé MPB 75 COOC2H5 OH COOC2H5 OH composé MPB 86 composé MPB 77 COOC2H5 OH COOC2H5 OH composé MPB 87 composé MPB 88 Cl composé MPB 102 composé MPB 103 C4H9 SH Cl SH Cl L'invention a également pour objet les produits comprenant au moins un composé inhibiteur de glucosidase, notamment un composé de formule (I) tel que défini ci-dessus, et au moins un composé activateur du canal CFTR tel que défini ci-dessus, comme produits de combinaison pour une utilisation simultanée, séparée ou étalée dans le temps, en thérapie de la mucoviscidose. L'invention sera davantage illustrée à l'aide de la description détaillée qui suit de la démonstration expérimentale de l'effet d'adressage correct et spécifique de de1F508 par MBDNJ, sans que ce dernier affecte pour autant son activité de transporteur ionique ni la viabilité cellulaire. I) MATERIEL ET METHODES MI. Culture cellulaire Cellules CHO-WT: Les cellules CHO (Chinese Hamster Ovary) sont des fibroblastes qui ont été transfectées avec le gène du CFTR sauvage (CFTR-WT). Ces cellules vont donc surexprimer la protéine CFTR. Milieu de culture: Milieu MEM alpha (GIBCO) + 7% de sérum de veau foetal + 0,5% de pénicilline/streptomycine + 100 M de Méthothrexate (Améthoptérine, Sigma) Cellules CF15: Les cellules CF15 sont des cellules épithéliales humaines d'origine nasale qui expriment le gène AF508-CFTR. Milieu de culture: Milieu DMEM + HAM F12 + 10% de FCS + 0,6% de 30 pénicilline/streptomycine + facteurs de croissance (insuline 5 g/ml, transferrine 5 g/ml, épinéphrine 5,5 M, adénine 0,18 mM, EGF 10 ng/ml, T3 2 nM, Hydrocortisone 1,1 M) Cellules Calu-3: Les cellules Calu-3 sont des cellules épithéliales humaines d'origine pulmonaire qui expriment le gène du CFTR sauvage. Milieu de culture: Milieu DMEM/F12 avec glutamax + 7% de sérum de veau foetal + 1% de pénicilline/streptomycine M2. Immunomarquage L'immunomarquage permet de visualiser la localisation cellulaire de la protéine CFTR grâce à un anticorps (Ac) primaire anti-CFTR puis un anticorps secondaire anti-anticorps primaire marqué au fluorophore Cy3. Les cellules sont préalablement ensemencées sur des lamelles dans du milieu de culture approprié. 3 lavages au TBS (NaCl: 157mM, Tris base: 201,tM, pH 7,4) de 5 min chacun sont effectués. Les cellules sont alors fixées par ajout de TBS-paraformadéhyde (3%) pendant 20 min. Après 3 lavages au TBS (5 min), les cellules sont incubées avec du TBS-triton 0, 1% (10 min) qui permet la formation de trous dans la membrane cellulaire, puis 3 lavages au TBS sont à nouveau effectués avant la mise en présence des cellules avec le TBS-BSA 0,5%-saponine 0,05% pendant 1 h. Les cellules sont ensuite incubées avec l'anticorps primaire anti-C terminal CFTR (2 gg/ml) pendant 1 h. 3 lavages au TBS-BSA-saponine de 5 min chacun sont réalisés avant l'incubation avec l'anticorps secondaire GAM-cy3 (1/400) pendant 1 h. Suite à 2 lavages au TBS de 5 min, les noyaux sont marqués par incubation au Topro3 (1/1000) pendant 5 min. Enfin, les lamelles peuvent être montées sur lame après 3 derniers lavages au TBS de 5 min. Les lames sont observées au microscope confocal (Bio-Rad) grâce à une excitation au laser aux longueurs d'ondes appropriées. Afin de différencier le marquage entre Cy3 et Topro3 la couleur de fluorescence de Topro3 a été changé en bleu (couleur des noyaux). M3. Efflux de radiotraceurs Les mesures de transport d'ions chlorure dans les cellules ont êté réalisées à l'aide de la technique des efflux d'iodure radioactif (Becq et al., 1999; Dormer et al., 2001). Le traceur (1251) est incorporé dans le milieu intracellulaire. Puis, la quantité de radiotraceur qui sort de la cellule est comptée après l'ajout de différents agents pharmacologiques. L'iodure est utilisée comme un traceur du transport d'ions chlorure. Il a été montré que les deux radiotraceurs 125I et 36C1 pouvaient être considérés comme équivalents pour la mesure de l'activité d'un canal chlorure (Venglarick et al., 1990) . 1251 a de plus l'avantage d'avoir une courte durée de vie comparée à celle de "Cl (1/2 vie respectives: 30 jours et 300000 ans). Les cellules sont mises en culture sur des plaques 24 puits dans un milieu adéquat. 2 rinçages avec du milieu d'efflux (NaCl: 136,6 mM, KC1: 5,4 mM, KH2PO4: 0, 3 mM, NaH2PO4: 0,3 mM, NaHCO3: 4,2 mM, CaCl2: 1,3 mM, MgC12: 0,5 mM, MgSO4: 0,4 mM, HEPES: 10 mM, D-glucose: 5,6 2861991 12 rnM) sont effectués afin d'éliminer les cellules mortes qui relarguent la radioactivité de façon anarchique. Puis, les cellules sont mises à incuber avec 500 l de charge (1 Ci/ml de 125INa) pendant 30 min pour les CHO-WT ou 1 h pour les CF15 et Calu-3. L'iodure s'équilibre de part et d'autre de la membrane cellulaire. Le robot (MultiPROBE, Packard) réalise les étapes suivantes: Le milieu de charge est rincé avec du milieu d'efflux pour éliminer la radioactivité extracellulaire. Le surnageant est collecté toutes les minutes dans des tubes à hémolyse et le milieu est remplacé par un volume équivalent (500 l). Les prélèvements des 3 premières minutes ne subissent pas l'addition de drogue, ils permettent d'obtenir une ligne de base stable, caractérisant la sortie passive des ions F. Les 7 prélèvements suivants sont obtenus en présence de la molécule à tester. A la fin de l'expérience, les cellules sont lysées par ajout de 500 gl de NaOH (0,1 N) / 0,1% SDS (30 min), ainsi, la radioactivité restée à l'intérieur de la cellule peut être déterminée. La radioactivité présente dans les tubes à hémolyse est comptée en coups par minute (cpm) grâce à un compteur gamma (Cobra II, Packard).Les résultats en cpm sont exprimés sous forme de vitesse de sortie d'iodure radioactif (R) d'après la formule suivante: R (min-1) = [In(125I ti)-ln(1251 t2)]/(ti-t2) avec 125I t1: cpm au temps ti; 125I t2: cpm au temps t2. Ce flux d'iodure est représenté sous forme de courbe. Afin de quantifier la sortie d'iodure due à l'administration de la molécule testée, on calcule le flux relatif suivant qui permet de s'affranchir du flux de base:Vitesse relative (min-1) = Rpic Rbasal. Enfin, ces résultats sont normalisés pour pouvoir comparer l'effet des différentes drogues entre elles. Les résultats sont présentés sous la forme de moyenne +/- SEM. Le test statistique de Student est utilisé pour comparer l'effet des drogues aux contrôles (les valeurs correspondantes à P M4. Test de cytotoxicité Le test de toxicité au MTT est un test colorimétrique qui repose sur la capacité des déshydrogénases mitochondriales à métaboliser le MTT (sel de tetrazolium jaune) en formazan (pourpre). L'absorbance, proportionnelle à la concentration de colorant converti, peut être alors mesurée par spectrophotométrie.Les cellules sont mises à incubées sur des plaques 96 puits en présence de l'agent à tester pendant 2 h. 3 contrôles sont réalisés: 100% cellules vivantes: cellules sans agent; 0% cellules vivantes: cellules laissées à l'air libre; blanc: milieu sans cellule. Les cellules sont rincées avec du milieu RPMI sans rouge de phénol pour que la couleur du milieu n'interfère pas dans les mesures de l'absorbance. Puis, elles sont incubées pendant 4 h avec l00111 de solution de RPMI supplémentée en MTT (0,5mg/ml). Le milieu est alors éliminé, l'ajout de 100 l de DMSO permet de solubiliser le colorant converti (formazan).L'absorbance est mesurée par spectrophotométrie à :570 nm 2861991 13 (pourpre) ; 630 nm (bruit de fond). Afin de s'affranchir du bruit de fond, le calcul suivant est effectué : D(1éellé DO57Onm DO630nm. Puis, les résultats sont normalisés par rapport aux contrôles (100% et 0% de cellules vivantes) et sont présentés sous forme de moyenne +/-SEM. II) RESULTATS RI. Effet du NB-DNJ sur l'adressage de delF508 dans les cellules CF15 L'étude de l'adressage de la protéine delF508-CFTR est réalisée au laboratoire en combinant des approches de pharmacologie, d'imagerie cellulaire, des tests biochimiques et électrophysiologiques sur des cellules CF15 épithéliales humaines pulmonaires homozygotes pour la délétion delF508. Il existe différentes molécules capables d'interférer avec certains facteurs impliqués dans l'adressage du CFTR. C'est le cas du N-butyl-deoxynojirimycin (NBDNJ) qui est inhibiteur des glucosidases I et II et qui a été testé. Pour chaque expérience, l'addition d'un cocktail (Forskoline 101.tM, Génistéine 30 M) permet l'activation du CFTR quand celui-ci est à la membrane. Ainsi, un efflux d'iodure pourra être observé si l'adressage de delF508 a été restauré. Les résultats, présentés sous forme d'histogramme ont été normalisés par rapport à un traitement de référence (traitement des cellules au MPB-91 2501.tM pendant 2 h) pour lequel on considère qu'on a 100% d'activité CFTR. Nous montrons ici que le traitement par un inhibiteur de glucosidase, N- butyldeoxynojirimycin (NB-DNJ) (structure présentée ci-dessous), des cellules CF15 pendant deux heures à 37 C restaure un adressage de la protéine delF508 et permet à celui ci de fonctionner en tant que transporteur ionique (figure 1). En absence de traitement des cellules, la protéine delF508 n'çst pas membranaire et il n'y a pas d'efflux d'iodure stimulé par le cocktail (Forskoline 101.tM, Génistéine 301.tM). L'EC50 (concentration de la molécule qui donne 50% de l'efficacité maximale) du NB-DNJ a été déterminé à 123 micromolaire (figure 2). Par imagerie cellulaire nous avons localisé la protéine delF508 dans les compartiments membranaires plasmatiques après traitement par le NB-DNJ. R2. Effet du NB-DNJ sur l'activité de CFTR dans les cellules Calu-3 Afin de montrer que l'effet du NB-DNJ est spécifique de l'adressage du delF508 et n'altère pas les autres canaux chlorure, le NB-DNJ a été testé en tant qu'activateur potentiel sur des cellules Calu-3. Les résultats présentés dans la figure 3 ont été obtenus en efflux 14 2861991 d'iodure sur cellules Calu-3. Nos contrôles sont la forskoline (5 M, n=8) et le MPB91 (250 1 M, n=8). Le NB-DNJ (n=8) n'est pas un activateur du CFTR sauvage ni d'autres transports anioniques de ces cellules car il n'y a pas de différence significative entre l'effet avec ou sans NB-DNJ (basal). R3. Effet du NB-DNJ sur l'adressage de CFTR dans les cellules Calu-3 Afin de montrer que l'effet du NB-DNJ est spécifique de l'adressage du delF508 le NBDNJ a été testé en tant que modulateur de l'adressage du CFTR sauvage sur des cellules Calu-3. Les résultats présentés dans la figure 4 ont été obtenus en efflux d'iodure sur cellules Calu- 3 traitées 2 heures par du NB-DNJ (500 M). Sur la figure 4, le basal correspond à des cellules non traitées et sans stimulation par le MPB-91. Aucun efflux d'iodure n'est stimulé. Le second contrôle correspond à des cellules sans traitement mais stimulées avec 250 M de MPB-91. Dans ce cas CFTR est activé et un efflux d'iodure est mesuré. Le troisième contrôle correspond à des cellules traitées avec du MPB-91 2h à 37 C puis stimulées par 250 M MPB-91. L'activité CFTR dans cette condition expérimentale n'est pas différente significativement par rapport aux deux autres situations expérimentales. Enfin quand les cellules Calu-3 sont traitées 2h à 37 C par 5001.tM NB-DNJ et stimulées par le 2501.tM MPB-91, le niveau d'activité de CFTR n'est pas affecté. Ces résultats démontrent que le NB-DNJ n'affecte pas la voie d'adressage du CFTR sauvage ou d'autres canaux chlorure, ni n'altère l'activité de CFTR dans les cellules épithéliales humaines pulmonaires non-CF R4. Cytotoxicité des différents inhibiteurs de la voie d'adressage Dans le but de tester la cytotoxicité du NB-DNJ, des cellules CHO-WT ont été incubées 2h avec différentes concentrations en inhibiteurs avant de subir le test de viabilité cellulaire au MTT. La figure 5 présente un résumé des résultats. Les résultats montrent que les cellules sont viables pour toutes les concentrations de NB-DNJ. Cette molécule ne présente donc pas de cytotoxicité cellulaire. III) CONCLUSIONS Les tests d'efflux ont révélé que le NB-DNJ provoquant une accumulation du delF508 dans le réticulum endoplasmique permet une relocalisation membranaire de cette protéine et représente donc un moyen pharmacologique important de ré-adressage du delF508 dans une cellule épithéliale humaine pulmonaire. Le NB-DNJ permet l'adressage membranaire 2861991 15 spécifique de delF508 sans affecter l'activité de transporteur ionique de cette protéine, et n'a pas d'effet sur les autres canaux chlorure, ni sur la viabilité cellulaire. BIBLIOGRAPHIE BECQ et al. (1999) Journal of Biological Chemistry 274, 27415-27425. CHENG et al. (1990) Cell 63, 827-834. COX et al. (2000) The Lancet 355, 1481-1485. DORMER et al. (2001) Journal of Cell Science 114, 4073-4081. DWEK et al. (2000) Brevet WO 00/62779 ELLGAARD & HELENIUS (2003). Molecular Cell Biology, 4, 181-191. FI I- DLER & SIMONS K. (1995) Journal of Cell Science 109, 271-276. GELMAN et al. (2002) The Journal of Biological Chemistry 277, 11709-11714. PLATT et al. (1994) The Journal of Biological Chemistry 269, 27108-27114. PLATT et al. (2001) J. Inherit. Metab. Dis. 24, 275-290. RIORDAN et al. (1989) Science 245, 1066-1073 TSUI et al. (1985) Science 230, 1054-1057. WEI et al., (1996) Journal of Cellular Physioly, 168, 373-384. LEGENDE DES FIGURES Figure 1: Effet du NB-DNJ sur l'adressage de de1F508. Les cellules CF15 ont été pré-traitées 2h avec le NB-DNJ (5001.tM). L'effet du MPB-91 (25011M) est considéré comme représentant 100 % dans ce test. L'activité du CFTR est mesurée en efflux d'iodure (n=8 pour chaque condition) après stimulation par fsk 1011M + Gst 30 M. Ns: différence non significative.*** : différence significative P Les cellules CF15 ont été pré-traitées 2h avec le NB-DNJ à différences concentrations. L'activité du CFTR est mesurée en efflux d'iodure (n=4 pour chaque concentration) après stimulation par fsk 1011M + Gst 30 M. Figure 3: Effet du NB-DNJ sur les transports anioniques des cellules Calu3. L' activité du CFTR est mesurée en efflux d'iodure (n=8 pour chaque condition) après stimulation par forskoline (fsk) 5 M, MPB-91 250p.M,NBDNJ 50011M. Noter que la fsk et le 2861991 16 composé MPB-91 active un efflux d'iodure dans cette cellule, mais pas le NB-DNJ qui n'a aucun effet. Ns: différence non significative.*** : différence significative P Les cellules Calu-3 sont pré-incubées 2 h à 37 avec 500 M NB-DNJ, avec WB-91 25011M. Cellules non traitées: no treat. Le basal indique que les cellules n'ont ni été traitées ni stimulées. L'activité du CFTR est mesurée en efflux d'iodure (n=8 pour chaque condition) après stimulation par MPB-91 250 M. Noter qu'un traitement avec le NB-DNJ est sans aucun effet car le niveau de stimulation des efflux est le même pour les trois conditions. Ns: différence non significative. Figure 5: Effet du NB-DNJ sur la cytotoxicité des cellules CHO. Noter qu'à 5 et 50 M aucune cytotoxicité n'est mesurable. Une faible toxicité apparaît à 504tM. 2 h de traitement des cellules. Ns: différence non significative.*** : différence 15 significatyive P REVENDICATIONS 1. Utilisation d'inhibiteurs de glucosidase pour la préparation d'un médicament destiné au traitement de la mucoviscidose. 2. Utilisation d'inhibiteurs de glucosidase selon la revendication 1, choisis parmi les composés de formule générale (I) suivante: dans laquelle - R1 représente un groupe CH3, ou CH2OH, - R2 représente H ou un groupe alkyle de 1 à 5 atomes de carbone, - ou R1 et R2 foiment ensemble avec la carbone en position (a) et l'azote de la formule (I) ci-dessus un groupe de formule: pour la préparation d'un médicament destiné au traitement de la mucoviscidose. 3. Utilisation selon la revendication 1 ou 2, des composés suivants: (I) HO HOC HO HCI.HCI NH NH HO HO DNJ (deoxynojirimycin) DFJ (deoxyfuconojirimycin) DMJ (deoxymannojirimycin) HOC HO HC1 NH ' N OH HO HO OH HO DGJ (deoxygalactonojirimycin) NB-DNJ (N-butyl-deoxynojirimycin) HO HO / sy"".-CH3 i HO OH HO.OH NB-DGJ (N-butyl-deoxygalactonojirimycin) Castanospermine 4. Utilisation selon l'une des revendications 1 à 3, du composé NB-DNJ. 5. Utilisation de composés définis dans l'une des revendications 1 à 4, pour la préparation d'un médicament administrable par voies orale (sirop, suspension, gélule, tablettes, poudre ou granule), rectale (suppositoire), nasale (aérosol par inhalation, ou gouttes), notamment à raison d'environ 1 mg à 2 g par jour de composé actif chez l'adulte, ou de 1 mg à 1 g par jour chez l'enfant et le nourrisson, en une ou plusieurs prises.