FR 2860391 A1 20050408 FR 0311578 A 20031002 2860391 1 ANIMAUX TRANSGENIQUES PRESENTANT DES TROUBLES MAJEURS LIES A LA MALADIE D'ALZHEIMER La présente demande est relative à des animaux transgèniques modèles de la maladie d'Alzheimer (AD). Elle a en outre pour objet l'utilisation de ces animaux. La maladie d'Alzheimer est une maladie neurodégénérative progressive qui affecte une large proportion de la population âgée. Cette maladie est caractérisée sur le plan clinique par une perte de la mémoire et un déclin des fonctions cognitives, et sur le plan neuropathologique par une perte neuronale prononcée et la présence dans le cerveau de dépôts neurofibrillaires intracellulaires et de dépôts extracellulaires du peptide (3-amyloïde (A(3) formant des plaques amyloïdes. Les plaques amyloïdes sont majoritairement composées des peptides A(3 à 40 ou 42 résidus qui sont générés lors du processus protéolytique du précurseur du peptide A(3 (APP). Les dépôts extracellulaires de A(3 sont très spécifiques des désordres associés à la maladie d'Alzheimer. Ils représentent la caractéristique précoce et invariable de toutes les formes de la maladie d'Alzheimer, incluant les formes familiales (FAD). Les formes familiales apparaissent de manière relativement précoce (entre 30 et 60 ans) et sont dues à des mutations dans le gène de l'APP dans 5 % des cas de FAD avec huit mutations faux- sens simples ou doubles identifiées, dans le gène de la préséniline 1 (PSI) dans 50 à 70% des cas de FAD avec plus de 100 mutations différentes identifiées jusqu'à présent, et dans le gène de la préséniline 2 dans des cas plus rares de FAD avec deux mutations faux sens décrites. On a montré que des mutations dans ces trois gènes induisent des changements dans la protéolyse de l'APP, qui conduisent à une surproduction de l'An, spécialement de la forme longue A(342, et à l'apparition précoce de la pathologie et des symptômes similaires à ceux des formes sporadiques de la maladie d'Alzheimer. Des modèles animaux destinés à représenter certaines caractéristiques de la pathologie de la maladie d'Alzheimer ont déjà été décrits dans la littérature. Il s'agit d'une part de souris transgèniques portant des mutations dans le gène APP. Elles développent des pathologies similaires à la maladie d'Alzheimer à partir d'un 2860391 2 an. Ainsi la souris PDAPP, surexprimant l'APP humaine portant la mutation V717F, développe avec l'âge des dépôts de A(3 dans le cerveau mais ne montre pas de perte neuronale au delà de l'emplacement des plaques elles-mêmes (Irizarry et al., 1997, J. Neurosc. 17(18) : 7053-7059). Nous appellerons ce phénomène effet plaque . De même, la souris Tg(HuAPP695. K670N-M671L)2576, exprimant l'isoforme humaine APP K670N-M671L (APPSw pour mutation type Swedish), présente des dépôts types amyloïdes mais ne montre pas de perte neuronale (Irizarry et al., 1997, J. Neuropathol. Exp. Neurol 56: 695-973). Dans une étude de Calhoun et al. (1998, Nature 395: 755-756), une perte neuronale a été montrée dans certaines régions cérébrales à proximité des plaques amyloïdes, chez des souris transgèniques APP23 de 14-18 mois d'âge exprimant une isoforme mutée de APP humaine. Cette observation est controversée car la perte est faible et intervient chez des animaux relativement âgés et surtout à proximité des plaques, ce qui pourrait correspondre à 1 D'autre part, on connaît des souris transgèniques portant des mutations dans le gène PSI. Celles ci ne semblent pas développer de pathologie type maladie d'Alzheimer mais présentent une quantité élevée de peptide AE342 (augmentation d'un facteur 2 par rapport à aux PS 1 sauvages) qui est reconnu comme hautement pathogénique. De plus, dans les modèles animaux transgèniques décrits portant des mutations FAD P264L ou M146L dans le gène PSI de souris ( knock-in ), la protéine PSI mutée n'est pas exprimée de façon stable (Siman et al., 2000, J. Neurosci., 20: 8717-8726; Flood et al., 2002, Neurobiol. Aging 23: 335-348; Rozmahel et al., 2002, 23:187-194). Ces souris présentent aussi une quantité élevée de peptide A1342. En raison du rôle de la protéine PSI dans la formation des formes A1342, des souris doubles transgèniques portant des mutations dans les gènes APP et PSI ont aussi été fabriquées. Comme les simples transgèniques décrites plus haut, ces souris présentent 2860391 3 des dépôts d'An mais ne présentent pas de perte neuronale (Takeuchi et al., 2000, Am. J. Pathol. 157: 331-339). Ainsi les modèles animaux de la maladie d'Alzheimer existant ne sont pas satisfaisants car ils échouent à reproduire une perte neuronale qui est pourtant une 5 caractéristique majeure des maladies neurodégénératives, dont la maladie d' Alzheimer. La demanderesse s'est donc attachée à fabriquer des animaux présentant des caractéristiques majeures de la maladie d'Alzheimer, dont la perte neuronale. Elle a montré qu'il était possible d'obtenir de tels animaux en introduisant des mutations spécifiques dans le gène codant la protéine PSI chez la souris et en les croisant avec des souris surexprimant le gène humain de l'APP. Un premier aspect de l'invention concerne donc un animal non humain présentant, avantageusement dans son génome, au moins une séquence d'acide nucléique codant pour la préséniline 1 portant au moins l'une des deux mutations correspondant aux mutations M233T et L235P sur la protéine PSI de souris. Avantageusement un tel animal porte les deux mutations. De façon préférentielle la protéine PSI portant les mutations M233T et L235P est d'origine murine. De manière particulièrement préférée la protéine préséniline 1 mutée est endogène. Ainsi un animal selon la présente invention produit avantageusement une protéine comprenant la séquence SEQ ID N 2. Il produit préférentiellement une protéine présentant la séquence SEQ ID N 3. Il comprend avantageusement dans son génome la séquence d'acides nucléiques SEQ ID N 1 ou la séquence SEQ ID N 8. Les séquences SEQ ID N 1, SEQ ID N 2 et SEQ ID N 8 résultent respectivement des mutations introduites dans les séquences sauvages SEQ ID N 4, SEQ ID N 5 et SEQ ID N 9. La séquence SEQ ID N 5 est celle des résidus 229 à 237 de la protéine préséniline 1 sauvage de souris. La séquence SEQ ID N 9 est celle de l'exon 7 sauvage du gène de la souris codant la protéine préséniline 1, i.e. non mutée. Avantageusement un animal selon la présente invention coexprime l'APP, 30 préférentiellement l'APP humaine. Un tel gène peut comprendre une ou plusieurs 2860391 4 mutations FAD. Ainsi, les mutations dans le gène de l'APP peuvent être l'une des différentes mutations décrites jusqu'à présent dans la littérature. Les mutations dans le gène de l'APP peuvent être choisies parmi les mutations "Swedish" (S), "London" (L) et "Dutch" (D) seules ou en combinaison. Ces mutations sont bien décrites dans la littérature et sont caractérisées d'une manière générale par les modifications suivantes: Nature et position Mutation Swedish Mutation Dutch Mutation London par rapport à K 670 N E 693 Q V 717 I l'APP770 et et/ou M671 L A692G par rapport à K 651 N E 674 Q V 698 I l'APP751 et et/ou M 652 L A 673 G par rapport à K 595 N E 618 Q V 642 I l'APP695 et et/ou M596L A617G par rapport au E 22 Q V 46 I peptide A-13 (A42) et/ou A21G Sont également comprises par mutation London toutes les substitutions autres que par l'isoleucine qui sont situées en position 717 par référence à l'APP770, telles que par exemple les mutations V 717 G et V 717 F. Il est entendu que l'APP utilisable dans le cadre de l'invention, peut être sous différentes isoformes et en particulier dans les formes 695, 751 et 770 ou dans une forme tronquée telle que par exemple l'isoforme APP99, excluant la mutation Swedish pour cette dernière. De manière avantageuse, ledit animal comprend en plus, avantageusement dans son génome, une séquence d'acides nucléiques codant pour tout ou une partie du gène codant pour l'APP751. De manière avantageuse la protéine APP751 est d'origine 2860391 5 humaine. Elle présente préférentiellement les mutations K670N et M671 L (Swedich) et V717I (London). Dans le cadre de la présente invention, le gène de l'APP est avantageusement placé sous le contrôle de séquences permettant son expression forte dans les neurones et en particulier de séquences promotrices de la transcription tel qu'un promoteur exogène. A titre de séquences promotrices, on peut citer tout particulièrement le promoteur HMG (Gautier et al. (1989), Nucleic Acids Res 17: 20, 8389.), ainsi que le promoteur PDGF (Sasahara et al. (1991), Cell 64, 217-27), le promoteur Thy-1 (Luthi et al (1997) , JNeurosci 17, 4688-99) et le promoteur du gène du Prion (Scott et al (1992), Protein Sci 1, 986-97). Selon une mise en oeuvre particulièrement intéressante de l'invention, le modèle animal comprend le gène de l'APP ayant les mutations S, D et/ou L, placé sous le contrôle du promoteur Thyl. Ainsi un animal selon la présente invention produit préférentiellement une protéine 15 comprenant la séquence SEQ ID N 7. Il peut présenter la séquence d'acides nucléiques SEQID N 6. De façon préférentielle, il s'agit d'une souris transgènique issue du croisement entre une souris transgènique ThyAPP (TG53) portant une séquence d'acide nucléique codant la protéine humaine APP751 SL et une souris transgènique portant une séquence d'acide nucléique codant la protéine PSI de souris portant les mutations M233T et L235P. Les animaux selon la présente invention reproduisent pour la première fois l'une des caractéristiques les plus importantes des maladies neurodégénératives, qui est la perte neuronale de façon précoce. Ils montrent par ailleurs les autres caractéristiques classiquement décrites de ces pathologies. Les animaux présentent une déposition accélérée des plaques amyloïdes clairement visible dès 2 mois d'age, et de façon marquée à 6 mois. 2860391 6 Ils présentent aussi un rapport des formes A(342 sur A(3 total, A1342/A(3 supérieur à environ 0,9 et ce dès 2,5 mois. Un tel rapport est très élevé par rapport à celui est décrit dans la littérature pour d'autres souris transgèniques. La perte neuronale, déjà visible chez des souris âgées de 6 mois, est clairement 5 prononcée à 10 mois. Les caractéristiques nouvelles des animaux selon la présente invention en font des modèles d'étude plus complets et représentatifs des troubles observés chez les patients atteints de la maladie d'Alzheimer, que ceux déjà décrits. Ces animaux sont donc particulièrement adaptés pour la mise en évidence des propriétés neuroprotectrices des composés destinés au traitement des maladies neurodégénératives, de façon préférentielle la maladie d'Alzheimer. De façon préférentielle, les animaux selon la présente invention possèdent les allèles mutants de psl à l'état homozygote et ceux de APP à l'état hétérozygote. Cependant, les mêmes caractéristiques du dit animal peuvent être décrites chez un animal possédant l'une des deux allèles psl mutée à l'état hétérozygote et celles de APP à l'état hétérozygote, avec néanmoins un phénotype moins marqué ou apparaissant plus tardivement. Un autre avantage des animaux selon la présente invention est que le taux de protéine PSI mutée exprimée par cette souris transgènique est équivalent au taux de protéine PSI endogène normalement exprimée par une souris normale (non transgènique), exprimant une PSI non mutée. Cette caractéristique en fait un modèle d'étude avantageux sans surexpression de la protéine PSI- pour la mise en évidence de composés destinés au traitement des maladies neurodégénératives. Ces composés peuvent être notamment des composés ayant une action sur la régulation du gène PSI au niveau transcriptionnel, post-transcriptionnel, traductionnel, post-traductionnel, ou sur la protéine PSI elle-même en modifiant ou régulant une ou plusieurs de ses propriétés, ou ayant une action semblable sur les partenaires d'interaction ou les cibles de la protéine PSI, ou encore de composées ayant une action sur la régulation de l'APP et de façon plus large toutes molécules en aval des signaux initiés par PSI et APP au cour du processus neurodégénératif. 2860391 7 Dans le cadre de la présente invention, les animaux sont avantageusement des mammifères, tels que des rongeurs. En particulier il peut s'agir d'une souris, d'un rat ou d'un lapin. Les souris et les constructions permettant leur obtention sont obtenues par des 5 méthodes connues de l'homme du métier. Ils peuvent être obtenus selon les techniques classiques de transgenèse. A titre d'exemple illustrant l'un des procédés de transgenèse, on peut citer la méthode d'électroporation d'une construction gènique contenant les gènes modifiés dans des cellules souches embryonnaires de souris et, après sélection, transfert des cellules porteuses de l'évènement génétique désiré dans un blastocyste receveur, tel que décrit dans les exemples. A cet égard, les animaux PSI mutés selon l'invention sont obtenus par électroporation d'une cassette d'expression comprenant un acide nucléique. De manière préférentielle, cet acide nucléique est un ADN qui peut être un ADN génomique (ADNg) ou un ADN complémentaire (ADNc). La modification du génome peut résulter d'une altération ou une modification d'un ou plusieurs gènes par knock-in . Cette modification peut être due à l'action d'agents altérants ou mutagènes classiques ou bien peut-être effectuée par mutagenèse dirigée. Dans la présente invention, en ce qui concerne le gène psl muté, il s'agit préférentiellement d'une recombinaison homologue avec un vecteur de ciblage portant le transgène préalablement muté par mutagenèse dirigée telle que décrit dans les exemples qui suivent. Les animaux exprimant la protéine APP mutée sont obtenus par microinjection d'une construction gènique dans le noyau d'un zygote. Les animaux double transgèniques sont obtenues par croisement des animaux pst 25 mutés et des animaux APP mutés. Les animaux selon la présente invention peuvent avantageusement être utilisés pour la mise en évidence des propriétés neuroprotectrices des composés destinés au traitement des maladies neurodégénératives, et de préférence la maladie d'Alzheimer. 2860391 8 Ces composés peuvent être des molécules chimiques, des molécules peptidiques ou protéiques, des anticorps, des molécules chimériques ainsi que des ARNs antisens ou des ribosimes. Les composés mis en évidence peuvent être utilisés comme médicaments, tels quels ou en association avec un véhicule pharmaceutiquement acceptable afin d'obtenir une composition pharmaceutique. Il peut s'agir en particulier de solutions salines (phosphate monosodique, disodique, chlorure de sodium, potassium, calcium ou magnésium, etc., ou des mélanges de tels sels), stériles, isotoniques, ou de compositions sèches, notamment lyophilisées, qui par addition selon les cas d'eau stérilisée ou de sérum physiologique, permettent la constitution de solutés injectables. Les injections pouvant être réalisées par voie stéréotaxique, topique, orale, parentérale, intranasale, intraveineuse, intramusculaire, sous-cutanée, intraoculaire, transdermique, etc. Un autre objet de l'invention concerne donc un procédé de mise en évidence de composés destinés au traitement des maladies neurodégénératives comprenant au 15 moins les étapes suivantes: administration du composé ou d'un mélange de composés à tester à des animaux selon la présente invention, et - observation de l'évolution d'un ou plusieurs marqueurs caractéristiques reproduisant la neuropathologie observée chez l'homme. Un autre objet de l'invention concerne un procédé de mise en évidence de composés destinés au traitement des maladies neurodégénératives comprenant au moins les étapes suivantes: mise en contact de cellules extraites des animaux selon la présente invention avec un composé ou un mélange de composés, et mesure du ou des effet(s) des composés au niveau des cellules entières, dans des homogénats de cellules ou sur une fraction subcellulaire. Un autre objet de l'invention concerne tout produit biologique issu d'un des deux animaux de l'invention, ainsi que leurs utilisations pour la mise en évidence de composés destinés au traitement des maladies neurodégénératives, de préférence la 2860391 9 maladie d'Alzheimer. On entend notamment par produit biologique , des cellules, extraits protéiques, ADN, ARN, ou encore des anticorps. Ainsi, la présente invention a pour objet des cellules ou lignées cellulaires dérivées d'un animal tel que décrit ci-dessus, en particulier des cellules souches 5 embryonnaires. La présente invention a en outre pour objet une protéine PSI de souris portant les mutations des acides aminés M en T, et L en P respectivement aux positions 233 et 235. De manière avantageuse une telle protéine comprend la séquence SEQ ID N 2. Préférentiellement elle présente la séquence SEQ ID N 3. Un autre objet de la présente invention est un acide nucléique codant la protéine PSI de souris portant les mutations des acides aminés M en T, et L en P respectivement aux positions 233 et 235. De manière avantageuse un tel acide nucléique selon la revendication comprend la séquence SEQ ID N 1 ou la séquence SEQ ID N 8. La présente invention a en outre pour objet les séquences complémentaires de ces acides nucléiques et des vecteurs comprenant ces acides nucléiques ou leurs séquences complémentaires. Un autre aspect de l'invention concerne l'utilisation de ces protéines pour la mise en évidence des propriétés neuroprotectrices des composés destinés au traitement des 20 maladies neurodégénératives. La présente invention est illustrée par les exemples qui suivent, sans pour autant qu'elle soit limitée à ces seuls exemples. Dans ces exemples, les résultats décrits démontrent l'avantage des souris PS1KI et supportent clairement l'utilisation préférentielle du modèle PS1KIxAPP dans les 25 stratégies thérapeutiques car il a l'avantage de représenter les principales caractéristiques des maladies neurodégénératives connues à ce jour. LEGENDES DES FIGURES 2860391 10 Figure 1 A: Représentation schématique de la structure du gene psl murin et des principaux sites de restriction autour de l'exon 7 sauvage (ligne supérieure) et du vecteur de ciblage utilisé (ligne du milieu). Les changements de base nucléotidiques pour générer les mutations de codons M233T et L235P mutations dans l'exon 7 (*) sont représentés dans la cartouche en pointillés. L'allèle muté PS1KI contenant la cassette de résistance néomycine (Neo) est représenté sur la ligne inférieure. La position de la sonde de 230-bp utilisée pour l'identification des nouveaux-nés est aussi indiquée. Figure 1 B: Southern-blot en utilisant la sonde de 230-bp pour distinguer les allèles 10 sauvages WT (bande à 9,2 kb), et PS1KI hétérozygotes (He, double bande) et homozygotes (Ho, bande à 7.4 kb) chez différentes souris. Figure 1 C: Immunotransfert du fragment C-terminal de PSI montrant que les niveaux d'expression de la protéine PSI ne sont pas altérés par la présence des mutations de l'allèle PS 1 KI. Figures 2 A, 2B et 2C: Quantification, respectivement, de l'A(3total de l'AP42 et du rapport A(itotal/A(342, à 2,5, 4, 6 et 10 mois d'âge. Figure 3: Accélération du processus de déposition du peptide A(3 chez les souris APP751SLxPS1KI Ho. Planche illustrative de la distribution régionale des dépôts extracellulaires du peptide A(3 dans le cerveau à 6 mois. Les images représentent l'immunomarquage Ali (Ac 4G8) chez 3 souris APP751SL (Fig 3A, 3B, 3C) et 3 souris APP751SLxPS1KI Ho (Fig 3D, 3E, 3F). L'immunomarquage met en évidence l'apparition à 6 mois des premiers dépôts encore rares dans le cortex (Cx) et l'hippocampe (Hp) des souris APP751SL. Comparativement, chez les souris APP751 SLxPS 1 KI Ho du même âge, le nombre de dépôts est largement augmenté dans ces régions. A noter que, chez ces souris, des dépôts sont déjà présents en quantité notable dans le thalamus (T). Figure 4: Progression avec l'âge du processus de déposition du peptide AJ3. Planche illustrative de la distribution régionale des dépôts A(3 dans le cerveau à 10 mois. Les images correspondent à 2 souris APP751SL (Fig 4A, 4B) et 2 souris APP751SLxPS1KI Ho (Fig. 4C, 4D). Chez les souris APP751SL, l'immunomarquage 2860391 11 met en évidence une augmentation importante du nombre et de la taille des dépôts dans le cortex (Cx) et l'hippocampe (Hp) à 10 mois comparativement à 6 mois d'âge et l'apparition des premiers dépôts dans le thalamus (voir figure 3). La densité et la taille des dépôts sont également plus importantes à 10 mois dans le cortex, l'hippocampe et le thalamus des souris APP751SLxPSIKI Ho. A noter que, chez ces souris, des dépôts en petit nombre peuvent être détectés dans le striatum (St). Figure 5: Processus de mort neuronale dans CA1 chez les souris APP751SLxPS1KI Ho. Planche illustrative de l'atteinte des neurones pyramidaux dans l'hippocampe de souris APP751SLxPS1KI Ho âgées de 10 mois. Les images représentent la coloration violet de Crésyl, à faible grossissement dans l'hippocampe, chez 2 souris PS1KI Ho (Fig. 5A, 5B), 2 souris APP751SL (Fig. 5C, 5D) et 2 souris APP751 SLxPS 1 KI Ho (Fig. 5 E, 5F). La densité et l'épaisseur des couches des cellules pyramidales dans l'hippocampe sont qualitativement comparables chez les souris APP751SL et les souris PSIKI Ho âgées de 10 mois. En revanche, au même âge, elles sont nettement diminuées chez les souris APP751SL x PS 1 KI Ho, en particulier dans la couche 1 de la Corne d'Ammon (CA1). A noter que le nombre de petites cellules colorées en bleu (cellules de type glial) apparaît augmenté dans l'hippocampe des souris APP751SL x PS1KI Ho. Figure 6: Processus de mort neuronale dans CA1 chez les souris APP751SLxPS1KI Ho. Planche illustrative de l'atteinte neuronale dans CA1 à 10 mois via l'utilisation d'autres marqueurs neuronaux, le vert de méthyle et l'immunomarquage BIP. Les images représentent la coloration vert de méthyle, à fort grossissement dans CA1, chez une souris non transgénique (Fig 6A), une souris PKS1KI Ho (Fig 6B), une souris APP751SL (Fig 6C) et une souris APP751SLxPS1KI Ho (Fig 6D). Elles représentent l'immunomarquage BIP à fort grossissement dans CA1, chez une souris PSIKI Ho (Fig 6 E) et une souris APP751SLxPSIKI Ho (Fig 6F). Comparativement aux souris non transgènique, PSI KI Ho et APP751SL, le nombre de cellules neuronales colorées au vert de méthyl est nettement diminué dans la région CAl de la souris APP751 SLxPS 1 KI Ho. A noter la détection de cellules type glial colorées en nombre important dans le parenchyme hippocampal de cette souris double transgènique. L'immunomarquage BIP confirme également la perte de neurones 2860391 12 pyramidaux importante dans CA1 chez la souris APP751 SLxPS 1 KI Ho âgée de 10 mois. Figure 7: Mort neuronale dans CA1 et déposition intracellulaire du peptide Ali. Planche illustrative des deux processus pathologiques, l'atteinte neuronale et l'accumulation intracérébrale anormale du peptide A(3 à 10 mois. Les images représentent, à fort grossissement dans CA1, l'immunomarquage A(3 chez 2 souris APP751 (Fig. 7A, 7B) et 2 souris APP751SLxPS1KI Ho (Fig 7E, 7F). Elles représentent, à fort grossissement dans CAl, la coloration violet de Crésyl chez les souris APP751 (Fig. 7C, 7D), les souris APP751 SLxPS 1 KI Ho (Fig. 7G, 7H) et 2 souris PS1KI Ho (7I, 7J). A 10 mois d'âge, aussi bien chez les souris simples APP751SL que chez les doubles APP751SL x PS 1 KI Ho, les dépôts extracellulaires d'A13 sont observés majoritairement de part et d'autre de la couche de neurones dans CA1. En revanche, dans CA1 (caractérisée par une atteinte neuronale prononcée tout le long de la couche chez les souris APP751 SLxPS 1 KI Ho, Fig 7C 7D), l'immunomarquage A(3 d'aspect granulaire (correspondant à l'accumulation intraneuronale anormale du peptide A(3, voir flèches) apparaît plus intense chez les souris APP751SL x PS1KI Ho. Ceci est vrai aussi à 6 mois d'âge (voir Figure 8). Figure 8: Mise en place précoce du processus de mort neuronale dans CA1 chez les APP751 SLxPS 1 KI Ho. Planche illustrative de la région CA1 de l'hippocampe à 6 mois. Les images représentent, à fort grossissement dans CA1, l'immunomarquage A(3 chez 3 souris APP751 (8A, 8B, 8C) et 3 souris APP751 SLxPS 1 KI Ho (Fig. 8G, 8H, 8I). Elles représentent la coloration violet de Crésyl chez les souris APP751 (Fig. 8D, 8E, 8F) et les souris APP751SLxPS1KI Ho (8J, 8K, 8L). A 6 mois, la région CA1 de l'hippocampe, chez une souris APP751SLxPS1KI Ho, est caractérisée par un nombre de dépôts extracellulaires d'A(3 déjà important (Fig 81), un marquage granulaire intracellulaire d'An intense (voir flèches) et une perte de neurones colorés au violet de Crésyl associée à une augmentation du nombre de cellules type glial (Fig 8L). Pour les 2 autres souris APP751SLxPS1KI Ho, la couche de neurones CA1 colorée au violet de Crésyl apparaît peu (Fig 8J) ou pas (Fig 8K) désorganisée. A 2860391 13 noter que pour ces deux souris, l'immunomarquage A(3 intracellulaire apparaît moins intense et plus diffus (FiG 8G, 8H) que chez la 3 souris (Fi 8I). EXEMPLES Exemple 1: Construction du vecteur de ciblage portant les mutations M233T et L235P Le but a été d'introduire deux mutations dans l'exon7 du gène PSI de la souris conduisant à l'altération des résidus M233 en T et L235 en P. Les deux nouveaux codons correspondent à des mutations identifiées dans des patients Alzheimer à début précoce (FAD). Une lignée de souris PSI knock-in (PS 1 KI) a été générée en utilisant une stratégie de mutagénèse en 2 étapes similaire à celle décrite dans Kwok et al (1997 Neuroreport 8; 157-42) et Champion et al. (1996, Neuroreport 7, 1582-4). La stratégie a visé à la construction d'un vecteur de ciblage porteur de changements d'acides nucléiques dans les codons 233 et 235 du gène murinpsl (voir FiglA). Succinctement, un fragment génomique de 17-Kb du gène souris PS 1 a été isolé par criblage d'une banque d'ADN génomique de souris 129SvJ construite dans un bactériophage lambda (Stratagene, catalogue # 946313). L'analyse par digestion avec des enzymes de restriction, le séquençage et la comparaison avec les séquences partielles du gène murin PSI disponibles (Mitsuda et al. 1997, JBC 272, 23489-97), ont indiqué que ce fragment contenait la région intron5 à exon 11 du gène souris PSI. Un sous-fragment BamHI-Hindlll de 9.8-Kb contenant une partie de l'intron 5, l'exon 6, l'intron 6, l'exon 7 et une partie de l'intron 7, a été sous- clonée dans le plasmide pGEM-1lZf (+) (Promega, France) (Fig.lA). La mutagénèse des 2 codons a été réalisée en utilisant le kit Gene Editor (Promega) sur le fragment d'ADN contenant l'exon 7 et a été confirmée par séquençage nucléotidique. Le bras long (5') du vecteur de recombinaison homologue a été obtenu par clonage du fragment BamHI Xbal de 7-Kb contenant l'exon 6. Le bras court (3') a lui été généré par sous-clonage du fragment Xbal-EcoRI de 1.8-Kb contenant l'exon 7 mutagénéisé. Une cassette de sélection positive (pMCI-Neo cassette) a été introduite dans le site Xbal situé dans l'intron 6 à la position -470 bp en 5' de l'exon 7 (voir FiglA). 2860391 14 Exemple 2: Obtention de cellules ES comprenant PS1KI Le vecteur de ciblage, décrit dans l'exemple 1, a été linéarisé par digestion avec Notl et électroporé dans la lignée de cellules souche embryonnaire (ES) CK35 fournie par 5 le Dr. Charles Babinet, Institut Pasteur Paris, France. Les cellules ont été cultivées comme précédemment décrit (W.Wurtz and A. Joyner, Gene Targeting: A Practical Approach by Alexandra L. Joyner (Editor). Oxford University Press; 2nd edition (February 15, 2000)). 430 clones cellulaires susceptibles de porter la recombinaison homologue ont été sélectionnés en présence de G418. L'ADN génomique de ces clones a été analysé par Southern-blot comme précédemment décrit (Sambrook, Fritsch and Maniatis, Molecular Cloning; A Laboratory Manual, Cold String Harbor Laboratory Press, 2nd edition, 1989) en utilisant une sonde PSI située en dehors du domaine de recombinaison (FiglA) du bras long. Quatre clones cellulaires porteurs des mutations souhaitées dans le gène PSI ont ainsi pu être identifiés. Ces clones cellulaires ont servi à établir une lignée de souris transgéniques PS1KI. Exemple 3: Construction de la lignée de souris PS1KI Le clone 18C5 a été injecté dans des blastocytes de souris C57B1/6. Cinq des souris chimériques obtenues ont montré une transmission de l'allèle mutant psl à la lignée germinale (et donc à leur descendance). A partir de ces fondateurs, la lignée de souris PS1KI a été établie sur fond génétique pur 129SV et sur fond mixte 129SV-057B1/6. La présence de l'allèle muté PS1M à l'état hétérozygote (He) ou homozygote (Ho)-a été déterminée par Southern-blots avec la sonde psl de 230-bp (Fig.1B). Les souris mutantes sont viables et fertiles. Exemple 4: Dosage de PSI dans la lignée PS1KI Après euthanasie, le cerveau des souris a été prélevé et pesé. Un hémisphère a été conservé pour l'immunohistochimie (post-fixation) et l'autre a été congelé puis 2860391 15 homogénéisé individuellement sur glace à l'aide d'un Potter dans 2 mL d'une solution tampon: 0,32 M sucrose, Tris-HC1 4 mM, pH 7,4 contenant un cocktail d'inhibiteurs de protéases (CompleteTM, Roche Diagnostics). La concentration en protéine a été déterminée par la méthode BCA (Pierce). L'homogénat a été conservé à -80 C. Pour la détection de PSI, 25 g d'extrait protéique de cerveau ont été incubés à 56 C pendant 20 min dans du tampon de dépôt Laemmli contenant de l'urée 8M et du dithiothreitol 50 mM. Les protéines ont été fractionnées par électrophorèse sur gel NuPAGE 4-12% Bis-Tris polyacrylamide (SDS-PAGE) en tampon MES (acide 2-(N- morpholino) éthanesulfonique). Après transfert des protéines sur filtre de nitrocellulose (Amersham, France), le filtre a été chauffé dans du PBS pendant 5 min afin d'augmenter la sensibilité et immédiatement saturé avec 5% (w/V) de lait écrémé en poudre dans un tampon PBST (PBS, 0.05% (V/V) Tween 20) pendant 1h et incubé la nuit à 4 C avec l'anticorps primaire en tampon PBST seul. La liaison de l'anticorps a été détecté avec un anticorps -anti IgG (anti-souris) conjugué à la peroxidase de Raifort (Amersham, France) à la dilution de 1/10,000 en PBST suivi d'un système de détection par chimioluminescence (Amersham, France) selon les instructions du fabricant. Pour la détection de PSI, l'anticorps primaire MAB1563 (Chemicon, USA) a été utilisé à la dilution 1/10000. Pour l'analyse semi-quantitative, les signaux de luminescence ont été digitalisés avec une camera CCD GeneGnome 16 bits (Syngene, Cambridge, Angleterre) et analysés avec le logiciel Genetools (Syngene). La linéarité du signal a été vérifiée grâce à des courbes standards établies avec des échantillons de 2.5 à 10 g d'homogénat par piste. Cette analyse par immunotransfert a permis de déterminer que les niveaux 25 d'expression du fragment C-term de PSI muté restent normaux et ne sont pas diminués dans la souris PS1KI233/235 (Fig1C). Exemple 5: Obtention de la lignée PS1KIxAPP par croisement des lignées PS1KI et APP Les souris PS1KI (décrites dans les exemples 1 à 4) ont été croisées avec une lignée de souris transgèniques surexprimant la forme humaine du cDNA APP751 portant les 2860391 16 mutations FAD Swedish (mutation K670N; M671L) et London (V717I) sous le contrôle du promoteur Thy-1. Les souris surexprimant la forme humaine du cDNA APP751 portant les mutations ont été obtenues comme décrit dans la demande de brevet WO 01/20977. Dans toutes les expériences suivantes, les souris de même fonds génétique ont été utilisées pour minimiser tout effet dû à des variations de fond génétique. Exemple 6: Dosage du peptide amyloïde AP total et A1342 par la méthode d'immunoélectrochimioluminescence Pour la quantification du pool global d'A(3 dans le cerveau (formes solubles et formes agrégées ou insolubles), des aliquotes d'homogénat de cerveau ont été traités avec 2 volumes d'une solution de 9M d'hydrochlorate de guanidine (GH) en 50 mM Tris pH7.4. Les homogénats ont été mélangés pendant 1h avec 3 périodes de sonication de 15-min suivies d'une centrifugation à 50 000g à 4 C pendant 2h. Les extraits guanidine ont été dilués au 1/20eme en tampon 20 mM Tris-HC1, pH 7.6, 150 mM NaCl, 0.5% BSA (w/v) and 0.05% Tween 20 (w/v). La concentration du peptide A13 dans les fractions a ensuite été déterminée par immunoélectrochimioluminescence (Yang et al., 1994, Biotechnology (NY) 12(2), 193-194) à l'aide de 2 anticorps monoclonaux de souris antipeptide A13 (4G8 et 6E10) et du lecteur Origen M8 Analyzer (IGEN Europe Inc. Oxford) suivant un protocole modifié d'après Khorkova et al. (J. Neurosci. Methods 82, 159-166 (1998)). L'anticorps monoclonal 4G8 (Senetek PLC), reconnaissant l'épitope résidus 17-24 du peptide AB, est ruthénylé grâce à l'ester TAG-NHS suivant le protocole du fournisseur (IGEN Europe Inc., Oxford). Ru-4G8 et l'anticorps biotinylé 6E10, épitope 1-10 du peptide AR (Senetek PLC) sont mis en présence de la fraction soluble de cerveau et les complexes tripartites Ru-4G8/A33/6E10- biot quantifiés par le lecteur Origen. Une gamme de peptide synthétique A(3 (Bachem) est utilisée pour calibrer chaque expérience. Le taux de peptide Ali est calculé en nanogrammes par g de poids initial de tissu cérébral. 2860391 17 Pour mesurer spécifiquement les formes de peptide Af3 se terminant en position 42 (A342), l'anticorps 6E10 était remplacé par l'anticorps monoclonal 22F9 qui se fixe spécifiquement à l'extrémité Cterminale A1342 (Wirths et al., 2002, Brain Pathol. 12, 275-286). En conclusion, la présence de du gène psi knock-in (PS 1-KI) conduit à : Une accélération de l'accumulation de A(3 (Fig2A) et A(342 (Fig2B) dans le cerveau avec un effet encore plus prononcé lorsque l'allèle PS1KI est présent à l'état homozygote (effet gène-dosage). L'effet de PS1KI(Ho) est plus accentué qu'avec la souris transgénique surexprimant PS1M146L précédemment décrite dans la demande WO 01/20977. Une augmentation massive de la proportion de peptide A(3 présentant une extrémité 1342, qui représente la grande majorité de l'A(3 lorsque la mutation PS1KI est à l'état homozygote, comme le montre la figure 2C (ratio A1342/AP total égal à 0.92, à 2.5 mois d'âge, vs 0.25 en absence de PS1KI et une valeur intermédiaire 0.70 en présence d'une seule allèle PS1KI: effet gène-dosage). Il est reconnu dans la littérature que les espèces de peptide A13 se terminant à l'extrémité 1342 représentent les formes les plus pathologiques du peptide. La lignée PS1KIxAPP représente donc un modèle particulièrement enrichi en formes pathologiques. Exemple 7: Analyse des dépôts du peptide A(3 par immunohistochimie Pour les expériences d'immunohistochimie/histologie, après prélèvement puis postfixation dans du paraformaldéhyde 4 %, les hémicerveaux sont cryoprotégés pendant 1 nuit à 4 C, dans du tampon phosphate de sodium 0. 2M (NaH2PO4,2H2O / Na2HPO4,12H2O, pH 7.4) contenant du saccharose à 20% (P/V). Ils sont ensuite congelés pendant 1 min dans de l'isopentane maintenu à une température de -30 C dans de la carboglace. Des coupes de 25 m d'épaisseur, réalisées dans un cryostat thermostaté à -30 C (LEICA CM3000) sont finalement placées dans un tampon PBS 0.02M puis conservées à 4 C. 2860391 18 Sur ces coupes, la détection immunoenzymatique du peptide A(3, a été réalisée grâce au système de révélation impliquant la formation de complexes avidine-biotineperoxydase (ABC) dans lequel la peroxidase de Raifort couplée à l'avidine est biotinylée. Brièvement, après une incubation de 30 min dans du tampon de blocage (sérum normal de chèvre (Chemicon) à 10 % dans du PBS contenant 0,1 % de triton (Sigma), les coupes de cerveaux sont mises en présence d'une solution de H2O2 à 0.3 % afin d'éliminer les endopéroxidases présentes dans le tissu. Puis ces coupes sont incubées dans la solution d'anticorps primaire contenant 0.3 % de triton et 2 % de sérum normal (toute la nuit à 4 C). L'anticorps primaire anti-A13 (4G8, Senetek) (anticorps monoclonal dirigé contre le résidu 17-24 du peptide A(3) utilisé est biotinylé. Après rinçages, les coupes ont donc été mises directement en présence du complexe ABC, pendant 1 heure selon les instructions du fabricant (Kit ABC Vectastin, Laboratoires Vector, Burlingame, CA). La 3-3'-diaminobenzydine a été utilisée comme chromogène pour l'enzyme peroxidase. Ainsi, l'accélération de l'accumulation anormale du peptide Ali dans le cerveau des souris doubles transgèniques APP751SLxPS1K1 Ho, détectée précédemment par des tests biochimiques sur homogénats d'hémicerveaux, a été confirmée par immunohistochimie. En effet, l'analyse microscopique de l'immunomarquage AP obtenu sur coupe d'hémicerveaux a démontré l'existence d'un processus de déposition du peptide Aj3 accéléré dans le parenchyme cérébral de ces souris. En effet, tandis que les premiers dépôts apparaissent dans le cortex et l'hippocampe vers 6 mois d'âge chez les souris APP751SL (Fig. 3), ils peuvent être détectés dès l'âge de 2 mois chez les doubles APP751 SLxPS 1 KI à l'état homozygote. Comparativement aux simples transgèniques APP751SL, chez les doubles transgèniques (APP751 SLxPS 1 KI Ho) âgées de 6 mois, la densité des dépôts d'A(3 est nettement plus importante dans l'hippocampe et le cortex. De plus, la distribution des dépôts est plus large; en particulier des dépôts sont déjà détectés dans le thalamus et aussi le pons (Fig.3). Avec l'âge, en particulier à 10 mois, la densité et également la taille des dépôts sont 30 augmentées dans le cerveau des souris simples transgèniques APP751SL (Fig 4). La 2860391 19 distribution de ces dépôts est également plus large puisqu'ils sont présents dans le thalamus. Chez les doubles transgèniques APP751 SLxPS 1 KI Ho âgées de 10 mois, une progression similaire du processus de déposition du peptide A(3 est observée dans l'hippocampe, le cortex, le thalamus et le pons. Les premiers dépôts peuvent être détectés en nombre limité dans le striatum (Fig. 4). En revanche, le cervelet demeure épargné par le processus de déposition d'A(3. A noter que dans le cerveau des souris PSI KI Ho âgées de 10 mois (n = 4), aucun dépôt du peptide A(3 n'est détecté. Exemple 8: Analyse de la perte neuronale par histologie et immunohistochimie La présence d'une proportion très importante de peptide A(342 pathologique, a conduit à analyser si dans la lignée APP751SLxPS1KI Ho, outre l'accélération du processus de déposition du peptide Ali, une perte neuronale se développe avec l'âge. Pour ceci, 3 types de colorations permettant de visualiser la disparition de cellules neuronales sur coupes de tissu cérébral ont été réalisées: a) l'histologie au violet de crésyl qui colore les corps de Nissl (des organites cytoplasmiques associés aux ribosomes du réticulum endoplasmique granuleux) et permet la mise en évidence sur coupes de cerveau de l'ensemble des cellules neuronales et gliales; b) l'histologie au vert de méthyle qui colore l'ADN de toutes les cellules; c) l'immunohistochimie au BIP qui révèle l'expression dans les cellules d'une protéine chaperon résidente du réticulum endoplasmique. Pour la coloration au violet de crésyl, les coupes de tissu cérébral sont montées sur lames gélatinées puis incubées 10 minutes dans une solution de violet de crésyl (C 1791, Sigma) à 0.5 % dans l'eau distillée. Après un rinçage en milieu acide, les coupes sont finalement déshydratées. Pour la coloration au vert de méthyle, les coupes sont montées sur lames gélatinées, incubées pendant 10 minutes dans une solution de vert de méthyle (M5015 de sigma) à 1 % dans l'eau distillée, rincées puis déshydratées. Pour l'immunohistochimie BIP (anticorps polyclonal, SPA-826, Stressgen), le protocole est identique à celui appliqué pour l'immunohistochimie du peptide Af3 (voir ci-dessus) exceptée l'incubation supplémentaire (1h, à température ambiante) 2860391 20 des coupes dans une solution d'anticorps secondaire biotinylé (anticorps anti-IgG de lapin fait chez la chèvre, Vector) avant leur incubation dans le complexe ABC. L'analyse microscopique a mis en évidence, via l'utilisation de différents marqueurs histologiques/immunohistochimique, une diminution de l'épaisseur de la couche des cellules pyramidales de l'hippocampe, en particulier de CAl, dans le cerveau des souris APP751SLxPS1KI Ho (n = 3/3) (Figures 5 et 6). Cette diminution indique l'existence d'un processus de mort neuronale déjà bien installé à l'âge de 10 mois. A 6 mois, la mort neuronale est présente dans le cerveau d' 1/3 souris suggérant la mise en place précoce d'un processus neurotoxique (Figure 8). L'analyse en parallèle dans l'hippocampe, et en particulier dans CA1, des 2 processus pathologiques que sont l'accumulation anormale du peptide A(3 dans le cerveau et l'atteinte neuronale, suggère un rôle plus probable dans le processus neurotoxique de l'accumulation intracellulaire d'A(3 (phénomène déjà décrit chez les souris thylAPP751SLxPS1 M146L) que de son accumulation en dépôts extracellulaires (Figure 7). En effet, les neurones encore présents dans CA1 présentent une expression anormalement forte du peptide M. De plus, l'atteinte neuronale dans CA1 est clairement présente dans des régions dépourvues de dépôts extracellulaires. A noter l'existence d'un probable effet gène-dosage dans le processus de mort neuronale dans CA1. Une atteinte neuronale a été en effet retrouvée chez des souris APP751 SLxPS 1 KI très âgées (> 15 mois) n'ayant qu'un allèle PS1KI. 21 REVENDICATIONS 1. Animal non humain présentant une séquence d'acides nucléiques codant pour une protéine préséniline 1 portant au moins l'une des mutations correspondant 5 aux mutations M233T et L235P sur la protéine PSI de souris. 2. Animal selon la revendication 1, caractérisé en ce que la ou les mutations sont à l'état homozygote. 3. Animal selon l'une des revendications 1 et 2, caractérisé en ce qu'il porte les deux mutations. 4. Animal selon l'une des revendications 1 à 3 comprenant en plus une séquence d'acides nucléiques codant pour tout ou une partie du gène codant pour l'APP. 5. Animal selon l'une des revendications 1 à 4 caractérisé en ce qu'il exprime une quantité de PSI mutée comparable à la quantité de PSI endogène d'un animal exprimant une PSI non mutée. 6. Animal selon l'une des revendications 1 à 5 caractérisé en ce que la protéine préséniline 1 portant les mutations M233T et L235P est d'origine murine. 7. Animal selon l'une des revendications 4 à 6 caractérisé en ce que la protéine APP est l'APP751 et est d'origine humaine. 8. Animal selon l'une des revendications 4 à 7 caractérisé en ce que la protéine APP751 est d'origine humaine et présente les mutations Swedish et London. 9. Animal selon l'une des revendications 1 à 8 caractérisé en ce qu'il est un rongeur. 2860391 22 10. Animal selon l'une des revendications 1 à 9 caractérisé en ce qu'il est une souris, un rat ou un lapin. 11. Animal selon l'une des revendications 1 à 10 caractérisé en ce qu'il produit une protéine comprenant la séquence SEQ ID N 2. 12. Animal selon l'une des revendications 1 à 11 caractérisé en ce qu'il présente dans son génome la séquence d'acides nucléiques SEQID N 1. 13. Animal selon l'une des revendications 4 à 12 caractérisé en ce que l'expression du gène codant pour l'APP est sous le contrôle d'un promoteur exogène. 14. Animal selon l'une des revendications 1 à 13 caractérisé en ce qu'il présente une perte neuronale. 15. Animal selon l'une des revendications 1 à 12 caractérisé en ce qu'il présente un rapport Abeta42/Abeta total supérieur à environ 0,9. 16. Animal selon l'une des revendications 1 à 15 caractérisé en ce que la protéine 20 préséniline 1 mutée est endogène. 17. Cellule ou lignée cellulaire dérivée d'un animal selon l'une des revendications 1 à 16. 18. Cellule ou lignée cellulaire comprenant une séquence d'acides nucléiques codant pour le gène murin de la préséniline 1 sous une forme mutée en M233T et L235P. 19. Cellule souche embryonnaire dérivée d'un animal selon l'une des 30 revendications 1 à 16. 2860391 23 20. Protéine PSI de souris portant les mutations des acides aminés M en T, et L en P respectivement aux positions 233 et 235. 21. Protéine selon la revendication 20 caractérisée en ce qu'elle comprend la 5 séquence SEQ ID N 2. 22. Acide nucléique codant la protéine PSI de souris portant les mutations des acides aminés M en T, et L en P respectivement aux positions 233 et 235. 23. Acide nucléique selon la revendication 22 caractérisé en ce qu'il comprend la séquence SEQ ID N 1. 24. Vecteur comprenant un acide nucléique selon la revendication 23. 25. Utilisation d'un animal selon l'une des revendications 1 à 16, pour la mise en évidence de composés destinés au traitement de la maladie d'Alzheimer. 26. Procédé de mise en évidence de composés destinés au traitement des maladies neurodégénératives comprenant les étapes suivantes: administration du composé ou d'un mélange de composés à tester à un animal selon l'une des revendications 1 à 16, et observation de l'évolution d'un ou plusieurs marqueurs caractéristiques reproduisant la neuropathologie observée chez l'homme. 27. Procédé de mise en évidence de composés destinés au traitement des maladies neurodégénératives comprenant les étapes suivantes: - la mise en contact de cellules extraites d'un animal selon l'une des revendications 1 à 16 avec un composé ou un mélange de composés et - la mesure du ou des effet(s) des composés au niveau des cellules entières, dans des 30 homogénats de cellules ou sur une fraction subcellulaire. 2860391 24 28. Utilisation d'une protéine selon l'une des revendications 20 et 21 pour la mise en évidence de composés destinés au traitement de la maladie d'Alzheimer.