FR 2825095 A1 20021129 FR 0106931 A 20010528 l'adénome gonadotrope. 1 2825095 L' invention concerne un dispositif de présentation de peptides ou de protélnes, qui est utilisable comme " puce à polypept ides " pour la détect ion miniaturisoe de molécules structurellement ou fonctionnellement complémentaires S desdits polypeptides. Ce dispositif consiste en un support plat sur lequel les polypeptides sont liés de manière covalente, cette liaison entre les polypeptides et le support résultant de la formation d'un lien semicartazone. Le lien semicarbazone résulte en particulier de la réaction entre - des polypoptides portant une fonction aldéhyde ou cétone - et un support fonctionnalisé par des groupements semi- carbazides. On utilisera ci-après le terme général de " polypeptide " pour désigner des peptides (comprenant au moins 2 acides aminés, qui peuvent être de la série L ou D, des alpha-aminoacides, des beta- aminoacides, des alpha hydrazinoacides, des alpha-aminoacides protéinogéniques ou non), des peptidomimétiques (mimes de structure secondaire, mimes de coude beta par exemple), et des protéines ou fragments de protéines. Le terme de " puce à polypeptides " correspond aux termes anglais " peptide arrays, peptide microarrays ou peptide chips ", courants dans la littérature. L' invention concerne également le procédé de préparation des supports et de fixation des polypeptides sur ces supports ainsi que leur utilisation comme puces à polypoptides. De tel les puces sont part icul ièrement favorables à la détection, dans divers milieux biologiques liquides, danticorps ou de parties spécifiques de ceux-ci, 2 2825095 d'antigènes (notamment viraux, bactériens ou parasitaires), de récepteurs, de séquences responsables de la liaison à une molécule (euzyme, récepteur, anticorps), à l'étude de la spécificité d'enzymes, à la mise au point de récepteurs S artificiels... Les blopuces ont d'abord été mises au point et développées pour la détection d'acides nucléiques. Des produits similaires à base de polypeptides font l'objet de nombreuses recherches mais ne sont pas encore optimisés. C' est donc surtout dans les publications et les brevets concernant les puces à ADN qu'on trouve l'art antérieur pertinent. Hormis la technologie de photolitographie d'Affymetrix et de jet d'encre de ProtoGene, qui mettent en jeu la synChèse d'oligonucléotides in situ, la fabrication de " microarrays " utilise le plus souvent des " spoLters " à - aiguilles et des lames de verre comme supports. Les aiguilles prélèvent les sondes préparées dans des puits de plaques de microtitration et viennent frapper la surface du matériau qui sert de support. Il est maintenant communément admis que les microarrays à ADN élaborés par dépôt de sondes sur un support souffrent de nombreuses limitations. Certaines sont liées à l'appareillage lui-même (reproductibilité du volume déposé), mais la plupart sont la conséquence de la chimie organique/inorganique et d' interface mise en jeu: bruit de fond trop important, sensibilité, rendement d'immobilisation, dogradation des sondes due aux différents traitements nécessaires à l'immobilisation, stabilité du lien sonde-support lors des différents lavages et lors de l'étape de recyclage du microarray, qualité du support (uniformité du traitement, stabilité dans le temps), adsorption non spécifique sur le support, faux positifs. 3 2825095 En plus de ces problèmes connus, liés à la fixation des nualéctides, la conception de puces à polypeptides comporte des problèmes spécifiques dus à l'existence, sur les polypeptides, de diverses fonctions réactives situées sur des chaînes latérales des acides aminés qui peuvent interférer avec les méthodes d'immobilisation, ce qui entraîne la fixation par des liens multiples ou la formation de liaisons latérales entre polypoptides, ce qui risque de diminuer la réactivité des polypaptides fixés vis-à-vis des liquides biologiques qui seront testés sur ces puces. Les méthodes mises au point pour fabriquer des puces à nualéotides ne sont donc pas directement transposables à la fabrication des puces à polypeptides, celles-ci nécessitant la mise en _uvre de méthodes de couplage chimiosélectives. Diverses méthodes de couplage plus ou moins prometteuses ont déjà été décrites. - Ainsi, la chimie des thiols a été utilisée mais elle présente des limitations importantes: oxydation des thiols lors de leur préparation, de leur conservation et de leur dépôt sur les supports (problème d'autant plus important que lors du dépôt, la surface de contact du film avec l'air est importante). Par exemple, cette chimie a été utilisce pour ancrer des peptides de type RGD sur de la silice (Porté-Durrieu, MC et al. J. Colloid Interface Science 1990, 134, 368-375), ou des anticorps sur du quartz (Weiping, Q. et al. Supramoleaular Science 1998, 5, 701- 703, formation de disulfures). On peut également citer la formation de thioéthers, et la formation de liaison Hg-S (Rao, S.V. et al. Mikrochim. Acta 1998, 128, 127-143). - De nombreux laboratoires ont immobilisé des protéines via la formation d'un lien hydrazone entre un aldéhyde et 4 2825095 un hydrazide. Cependant, ces méthodologies présentent aussi de nombreuses limitations. Le lien hydrazone n'est pas très stable et s'hydrolyse rapidement (King, TP et al. Biochemistry 1986, 25, 5774-5579). Pour cette raison, de nombreux auteurs réduisent ce lien avec un borohydrure pour stabiliser la liaison (voir par ex King, TP et al. Biochemistry 1986, 25, 5774-5579, Ruhn, P.F. et al. J. Chromatography A 1994, 669, 9-19). D'autre part, la réaction d'un hydrazide avec un aldéhyde est relativement lente. - Falipou, S. et al. (Bioconjugate Chem 1999, 10, 346- 53) décrivent la silanisation de billes de SiO2 ou de lames de verre avec du 3-cyanopropyldimethylchlorosilane. Les surfaces ainsi traitées permettent d'immobiliser des anticorps (via les hydroxyles des parties glycosylées) de façon non covalente. - Dans le brevet US4874813, il est décrit que le couplage d'IgG (après oxydation periodique pour générer une fonction aldéhyde) à un support hydrazide s'effectue avec un rendement de 53% seulement. Cette chimie n'est pas bien adaptée à la technologie biopuces, o les réactions doivent être très rapides pour compenser la faible concentration de substance à fixer et sa mobilité au cours du séchage du dépôt. Dans le même brevet, il est décrit que l' incorporation au niveau du support d'une amine tertiaire (pKa faut éviter au maximum dans le cadre des biopuces. - L'immobilisation d'IgG oxydée au periodate sur une silice hydrazide est décrite par Ruhn, AF et al. (J. Chromatography A 1994, 669, 9-19). La réaction prend 1 j our à 4 C; ce support se décompose à plus haute température et donne lieu à une adsorption non spécifique importante qui s'élève à 20\ de la valeur obtenue par liaison covalente. Ce type de chimie n'est pas favorable pour la réalisation de biopuces. - Dans le brevet US 4801726, il est décrit un support (silice) hydrazide pour l'immobilisation de toxines de nature non peptidique par un lien non hydrazone. Le support (uniquement des gels de silice, pas de surfaces planes) est préparé par réaction avec un silane époxyde puis ouverture de l'époxyde avec un dihydrazide. Or, la réaction de dinucléophiles sur un support est connue pour donner de nombreuses réactions de pontage. Ce point est bien documenté dans l' article de Ruhn, PF et al. J. Chromatrography A 1994, 669, 9-19. Ainsi, la densité de fonction de surface est fortement diminuée. Les réactions de pontage sont également la source de problèmes de reproductibilité. - Plusieurs travaux font appel à la synthèse in si tu des polypeptides sur le support: Ashfield, C. et al. " Synthesis of peptides in picoliter virtual flasks " (16th American Peptide Symposium Minneapolis, Minnesota, june 26-july 1, 1999 Poster 823) décrivent la synthèse in situ de peptides sur semiconducteur. Des électrodes sont couvertes d'un polymère 6 2825095 poreux, au sein duquel s'effectue la synChèse poptidique. Un linker comportant une fonction -NH-Fmoc est lié au polymère. Le groupement Fmoc est enlevé en générant in si tu une base grâce à l' application d'un potentiel redox. La fonction amine ainsi libérée est mise en réaction avec des acides aminés activés de façon traditionnelle. À Pellois, J. P. et al. (J. Comb. Chem. 2000, 2, 355-360) décrivent la synthèse in si tu sur lame de verre. La chimie de base est de type Boc/beuzyl. La lame de verre est silanisée amine, puis le premier acide aminé est couplé de manière traditionnelle. La déprotection du groupement tBoc s'effectue par irradiation (400 nm) en présence de triaryleulfonium hexafluoroantimonate ou de diaryl iodium hexafluoroantimonate. Le couplage de l'acide aminé suivant est fait de manière traditionnelle. À Dans le Brevet W00053625, un mode de synthèse in situ de biopuce est décrit. Un polymère poreux est déposé sur une série d'électrodes. Dans un premier temps, un Fmoc-acide aminé-OH est couplé au polymère poreux. Le groupement Fmoc est enlevé grâce à l'application d'un potentiel sur une électrode donnse en présence d'azobenzone. La biopuce est ensuite immergée dans une solution contenant l'acide aminé suivant activé. La synthèse in situ souffre de nombreuses limitations: - elle nécessite l'utilisation de groupements protecteurs photolabiles ou de réactifs activés par l' application d'un potentiel électrique; - cette technologie est peu efficace actuellement (limitation de la taille des peptides, coût élevé, peu flexible - cf commentaires de Pellois, J.P. J. Comb. Chem. 2000, 2, 355-360), 7 2825095 - la caractérisation des peptides liés au support est difficile. Dans un tout autre domaine, l'utilisation de billes de résines de polystyrène fonctionnalisées par des fonctions semicarLazides a été décrite pour réaliser la synChèse, pas à pas, de peptides aldéhydes: À Siev, DV et al. (Org. Lett 2000, 2, 19-22) décrivent une résine polystyrène hydrazinocarbonyl-aminomethylé (billes) pour la synthèse de peptides et peptidomimétiques aldéhyde. 10. Patterson, JA et al. (Tetrahedron Lett. 1999, 40, 6121 6124) décrivent, à partir d'une résine de type polystyrène aminé, la formation de l'isocyanate avec du triphosgène et la réaction de l'isocyanate avec Fmoc-NH-NH2 (préparée selon Fhang, Z.E. et al. Anal. Biochem. 1991, 195, 160 170). Le support sert à l'immobilisation d'aldéhydes aminés, puis à la synChèse en phase solide de peptides aldéhydes protégés sous forme de semicarLazide. La semicarLazone est échangée en solution par de l'acide pyruvique pour libérer le peptide aldéhyde. 20. Murphy, AM et al. (J. Am. Chem. Soc. 1992, 114, 3156 3157) décrivent la réaction d'un aldéhyde aminé en phase homogène avec un semicarbazide fonctionnalisé par une fonction acide carboxylique. Après la formation de la semicarbazone, le synthon est ancré à un support solide (billes) et sert à la synthèse de peptides aldéhydes en phase solide. Un progrès significatif dans l'élaboration de biopuces à peptides a été présenté par Falsey et al. (16th American Peptide Symposium - Minneapolis 1999 - Poster n 822). Ces auteurs ont lié des peptides fonctionnalisés par une hydroxylamine H2N-O- ou un beta-aminothiol (cystéine N terminale) à des lames de verre fonctionnalisées par une 8 2825095 fonction alpha-oxoaldéhyde. La lame de verre a été silanisée amine, puis les fonctions amines ont été dérivatisées par une Fmoc-Ser-OH. Après déprotection du groupement Fmoc à la pipéridine, les lames ont été traitées par du periodate de sodium (oxydation du beta-aminoalcool en alpha-oxoaldéhyde). L'inconvénient majeur de cette méthadologie est l' adsorption non spécifique de polypeptides à la surface, menant à un bruit de fond important. Les Demanderesses ont cherché à résoudre les principales limitations des dispositifs développés précédemment, et en particulier: - les problèmes de bruit de fond dus à l' adsorption non spécifique des échantillons à tester; - la fonctionnalisation trop faible ou irréqulière de la surface du support; - l'ancrage peu efficace des sondes (polypeptides). Ainsi, les dispositifs selon l' invention comprennent des supports plats, en matériau solide, organique ou inorganique qui peuvent être par exemple en verre, en silicium ou ses dérivés, en polymère naturel ou de synthèse.. ., présentant une surface plane fonctionnalisée par un groupement tel qu'un groupement semicarbazide pour immobi l i ser de façon contrôlée des polypopt ides choi s i s en tirant parti de la formation d'une liaison semicarbazone. Celle-ci est obtenue par l'utilisation de polypeptides préalablement fonctionnalisés par un groupement aldéhyde ou cétone, et de préférence alpha-oxoaldahyde ou alpha- oxocétone. 9 2825095 Dans le cas de polypeptides de synthèse, le groupement aldéhyde ou cétone est introduit en cours de synthèse soit à l'extrémité N-termlnale, soit à l'extrémité C-terminale, ou sur une chaîne latérale (de Lys ou Cys). Dans le cas de polypeptides naturels glycosylés on génère des groupements aldéhyde par oxydation des résidus polysaccharidiques. Dans le cas de polypeptides (fragments de protéines) naturels (glycosylés ou non) on peut générer une fonction cétone ou aldéhyde par transamination du résidu N-terminal ou une fonction aldéhyde ou cétone grâce à l'utilisation d'un agent bifonctionnel. La fonction aldéhyde ou cétone peut être située sur un bras espaceur. Le dépôt des polypeptides fonctionnalisés sur le support semicarbazide s'accompagne de la liaison spontanée du peptide au support, dans des conditions de pH, de température et d'humidité choisies. Le s lames semicarbaz ides peuvent êt re imprimée s par exemp l e avec un " spoUter " à aiguilles. Après le dépôt des polypeptides sur la lame, celle-ci peut être trempée, lorsque cela est nécessaire, dans une solution contenant un polyéthylèneglycol dérivatisé par une fonction a- oxoaldéhyde ou cétone. Ainsi, tous les sites réactifs présents entre les spots sont liés de manière covalente à un PEG, via le même lien semicarbazone utilisé pour immobiliser les polypeptides, ce qui réduit encore l' adsorption non spécifique des échantillons-tests. Ainsi la stratégie d'immobilisation - est simple au niveau expérimental et d'une grande reproductibilité; 2825095 - s'applique aux peptides polyfonctionnels, y compris les polypeptides comprenant des cystéines; - met en jeu des polypeptides modifiés par une fonction stable et facile à introduire; S - met en jeu des surfaces fonctionnalisées par une fonction stable, non hydrolysable; - fait intervenir des fonctions très réactives, compensant la faible concentration des polypeptides au niveau du dépôt; - permet d'obtenir une grande densité de fixation de surface ce qui assurera un rapport signal sur bruit de fond très élevé; - respecte la structure du polypeptide (liaison spécifique au support par un seul point d'ancrage); - permet un contrôle qualité de toutes les étapes. La chimie de ligation hydrazone a été fortement développée dans le domaine de l'ingénierie des protéines pour la synthèse convergente de macromoléaules grâce à la liaison contrôlée de fragments totalement déprotogés et purifiés. Les deux groupements fonctionnels, présents sur chacun des fragments, se reconnaissent mutuellement avec une grande sélectivité dans des conditions très douces (voir par exemple J.P. Tam et a7. Biomed. Peptide Protein & Nucleic Acids 1995, 1, 123-132). Les liaisons semicartazones sont beaucoup plus stables que les hydrazones et ont été choisies pour cette raison pour la fixation des polypeptides selon la présente invention. De plus il est apparu, de manière surprenante, que la liaison des groupements semicarLazides sur le support se 11 2825095 réalisait de manière dense, homogène et reproductible. Cette densité de fonctionnalisation est apparue comme une des clefs de la réussite des biopuces selon l' invention: en effet elle augmente la sensibilité du test ce qui est essentiel pour travailler avec des microquantités et permet ainsi de mesurer des réponses (sonde-cible, antigène- anticorps...) sans avoir recours à des artifices d'amplification. Elle assure également un bruit de fond extrêmement faible et donc un rapport signal sur bruit de fond très élevé ce qui augmente la sensibilité du test et sera particulièrement favorable dans le cas de tests mettant en muvre des liquides biologiques très riches en protéines diverses. La qualité de la fonctionnalisation du support selon l'invention (densité et homogénéité) peut être contrôlée par sa capacité de fixer une sonde poptidique de synthèse, fluorescente, dérivatisée par une fonction a-oxoaldéhyde. L' invention concerne également le procédé de préparation des dispositifs de présentation des polypeptides qui comprend les étapes suivantes: 1introduction d'une fonction aldéhyde ou cétone, par synthèse ou par modification d'une fonction naturelle, à l'une des extrémités N ou C ou sur une chaîne latérale d'un polypeptide de synChèse ou naturel; 2fonctionnalisation d'un support solide par des groupements semicarbazides; 3- dépôt sous forme de spots d'échantillons de polypeptides obtenus par l'étape 1 sur le support fonctionnalisé de l'étape 2, dans des conditions de pH et d'humidité assurant la réaction entre la fonction aldéhyde 12 2825095 ou cétone et la fonction semicartazide pour créer le lien semicarbazone. L'étape 1 peut être effectuée en cours de synthèse d'un polypeptide à l' aide d'un synChétiseur automatique. Elle peut comprendre l' introduction d'un bras espaceur entre le dernier acide aminé de la séquence du polypeptide et la fonction aldéhyde ou cétone. L'étape 1 peut être effectuée par oxydation d'un polysaccharide d'une glycoprotéine naturelle ou dun fragment de celle-ci ou par transamination d'un acide aminé N-terminal d'une protéine naturelle non glycosylée ou d'un fragment de celle-ci, ou par l' action d'un agent bifonctionnel. L'étape 2 comprend - une réaction de silanisation du support, introduisant une fonction amine; - la transformation de la fonction amine en fonction isocyanate; - la réaction de la fonction isocyanate avec un dérivé d'hydrazine pour former le groupement semicarLazide. Alternativement, l'étape 2 peut être effectuée en une seule résction d'un silane portant un groupement semicarbazide qui est. de préférence protégé par le Fmoc. L'étape 3 comprend de préférence - la préparation de solutions des polypeptides de l'étape 1 à 10-3 ou 10-4M dans un tampon acétate O,lM à pH 5,5, 13 2825095 - leur distribution dans un récipient approprié à leur prélèvement, de type puits de plaque de microtitration, - leur prélèvement à l' aide d'un " spotteur ", - et leur dépôt sur le support semicarLazide; - l' incubation des lames pendant une nuit à 37 C sous aLmosphère humide - et leur lavage et la saturation des sites réactifs non .. speclflques. L'invention concerne également l'utilisation des dispositifs de présentation des polypeptides comme " puces à polypoptides " en tant qu'outil de diagnostic. Cette ut i l i sat ion comprend la détect ion des réponses de type antigène-anticorps par l'utilisation de réactifs marqués, fluorescents, radioactifs ou marqués chimiquement, comme dans les tests de diagnostic non miniaturisés. Les dispositifs selon l' invention peuvent également être utilisés comme puces à polypeptides pour le criblage de molécules et pour l'analyse des relations entre moléaules, de type ligand-récepteur. Les exemples qui suivent illustrent l' invention sans toutefois en limiter la portée. Les figures suivantes y sont annexées: Figure l: test comparatif de sérums sur le peptide HCVpc21-2 en ELISA (mesure de la DO) et en lames semicarbazides (mesure de la fluorescence/20000). 14 2825095 Figure 2: étude de la corrélation entre les mesures de la DO et de la fluorescence, présentées dans la figure 1. Figure 3: test comparatif de sérums sur 3 peptides HCVpc21 " petit linker ", " grand linker " et N-terminal (HCVpc21 3. 2 et 1); mesure de la fluorescence. Figure 4: comparaison des réponses de 30 sérums positifs avec les peptides HCVpc21, NS4 et un mélange pc21/NS4 (1 pour 10); mesure de la fluorescence. Exemple 1 - Fonctionnalisation de lames de verre La liaison covalente de groupements semicarLazides sur des lames de verre a été réalisoe selon 2 stratégies. Première variante Etape A: lavage, décapage et silanisation Des lames porte-objets commerciales (Esco) prénettoyées, à bords rodés et à marge dépolie sont plongées dans une solution " piranha " (eau oxygénée/acide sulfurique, 50/50) pendant une nuit. Des rinçages préalables de trois minutes sont effectués par de l'eau desionisée (3 fois) puis par du méthanol (1 fois), avant de plonger les lames dans un bain à 3% d'aminopropyl-triméthoxysilane dans du méthanol à 95 pendant 30 minutes aux ultrasons. Les lames sont rincées successivement par des bains de 3 minutes dans du méthanol (1 fois), par de l'eau desionisée (2 fois) et enfin par du méthanol (1 fois). Les lames sont ensuite égouLtées pendant quelques minutes, séchées 15 minutes dans une étuve à 110 C puis stockées dans un dessiccateur sous vide. 2825095 Etape B: formation d'un isocyanate Les lames précédemment silanisées sont plongées pendant 2 heures dans une solution de 1,2-dichloroéthane contenant du triphosgène (100 mmol/1) et de la DIEA (800 mmol/1). Etape C: fonctionnalisation par un semicarbazide. Ces lames sont ensuite rapidement égouttées avant d'être directement plongées dans la solution contenant le Fmoc- NH-NH2 (préparé selon Zhang et al. Anal. Biochem. 1991, 195, 160-170) à 22 mmol/l dans le DMF et traitées pendant 2 heures aux ultrasons. Les lames sont ensuite rincées successivement par deux bains de 3 minutes dans du DMF. Etape D: déprotection Les lames précédemment obtenues sont plongées dans une solution de DMF contenant de la pipéridine (0,2% en volume) et du diazabicyclo-undecène (2% en volume) pendant 30 minutes. Les lames sont alors rincées successivement par des bains de 3 minutes dans du DMF (1 fois), par de l'eau desionisée (2 fois) et enfin par du méthanol (1 fois) avant d'être séchées et stockées dans un dessiccateur sous vide. Deuxième variante Les étapes de silanisation et de fonctionnalisation semicarLazide sont couplées en une seule réaction, par préparation préalable du réactif. Etape A:préparation du réactif Fmoc-NH-NH-CO-NH-(CH2)3-Si (OEt) 3) 16 2825095 La préparation du réactif est effectuée selon le schéma suivant: 1 ) Préparation du réactif s N tOEt OO\NN O NH oEOtEt HN:rO NH2 HN sOEt | OEt OEt 515 mg de Fmoc-NHNH2 (2.03 mmoles) sont mis en suspension dans 15 ml d'éthanol absolu. Le mélange est porté au reflux (75-80 C). 570 ml d'isocyanopropyltriethoxysilane (2,28 mmoles, 1,2 eq) sont alors ajoutés en une fois. Après disparition de la suspension (15-20 minutes), l' ethanol est évaporé. Le solide blanc est dissous dans un minimum de dichlorométhane sec. puis précipité grâce à du pentane sec. Après filtration sous argon, on réaupère 841 mg (83%) d'un solide pur. Etape B:préparation des lames Des lames porte-objets (Esco) prénettoyées, à bords rodés et à marge dépolie sont plongées pendant une nuit sous agitation dans une solution fraîchement préparée de piranha (H2SO4/H2O2). Les lames sont ensuite rincées sous agitation dans les bains successifs suivants: eau 17 2825095 desionisée (3 fois 3 minutes), éthanol absolu (1 fois 3 minutes) puis séchées à la pompe à palettes. Elles sont ensuite plongées pendant 2 heures dans une solution à lmg/ml de réactif de silanisation (Fmoc-NH-NH S CO-NH-(CH2) 3-Si (OEt) 3) dans un mélange de THF à 10% dans du toluène à 47 C et sous ultrasons. Les lames sont ensuite rincées sous agitation dans du toluène (2 fols 3 minutes) avant d'être égouttées, puis séchées 15 minutes dans une étuve à 120 C et stockées dans un dessiocateur sous vide. Etape C: déprotection Les lames précédemment obtenues sont plongées dans une solution de DMF pendant 3 minutes avant d'être mises sous agitation dans un bain contenant de la pipéridine (0,2% en volume) et du diazabicyclo-undecène (2% en volume) dans du DMF pendant 30 minutes sous agitation. Les lames sont alors rincces successivement par des bains de 3 minutes dans du DMF (1 fois 3 minutes), dans de l'eau desionisée (2 fois 3 minutes) et enfin dans du méthanol (1 fois 3 minutes) avant d'être séchées et stockées dans un dessiccateur sous vide. Exemple 2 - Contrôle de qualité des lames semicartazide I1 est important de vérifier que la fonctionnalisation des lames est homogène et reproductible pour garantir une fixation homogène des polypoptides. La qualité des lames est donc contrôlée en utilisant la même réaction que celle qui sera utilisée pour fixer les polypeptides. On utilise un petit peptide de synChèse fonctionnalisé par un groupe a-oxoaldéhyde et marqué à la 18 2825095 rbodamine (marqueur fluorescent), et, comme contrôle négatif, le même peptide mais dans lequel la fonction - oxoaldahyde est remplacée par un groupe amide. Le poptide rbodaminé fonctionnalisé par un groupe a S oxoaldéhyde de séquence (5)-6-carboxyLetraméthylrhodamine Lys-Arg-NH-(CH2)3-NH-CO-CHO a été synChétisé à partir du linker IPT (2,3-0-isopropylidène-D-tartrate), décrlt par J.S. Fruchart et al. H. Gras-Masse, O. Melnyk (A new linker for the synChesis of C-terminal peptide a-oxoaldéhydes; Tet. Lett.; 40; 6225-6228-1999),et dans la demande de brevet PCT/FROO/01035. On synChétise comme peptide de contrôle: (5)-6 carboxytétraméthylrhodamine-Lys-Arg-NH2. Révélation: Les lames fonctionnalisées par un groupe semicarbazide sont trempées pendant 1 heure à 37 C dans un bain du peptide rbodaminé (fonctionnalisé du coté C-terminal par un a- oxoaldéhyde ou témoin non fonctionnalisé) à une concentration de 0,1 mM dans un tampon acétate 100 mM et à pH 5,5. Les lames sont ensuite rincces par un passage dans un baln deau desionisoe. Elle sont ensuite tranevasées dans une solution de K2HPO4 à 5% dans l'eau pendant 2 heures et traitéss aux ultrasons. Les lames sont ensuite rincées par des bains sous agitation d'eau desionisée (2 fois 3 minutes) puis sont trempées pendant 30 minutesaux ultrasons dans une solution de Tris-acétate (lOOmM) à pH ,5 en présence de Tween 20 (0,1 %). Les lames sont ensuite rincées successivement par bains dans de l'eau desionisée (2 fois 3 minutes) et enfin dans du méthanol (1 fois 3 minutes). Les lames sont ensuite séchées dans un dessiccateur sous vide. 19 2825095 Les lames sont ensuite passées au scanner MWG (L30 PMT45). On quantifie la fluorescence de l' ensemble de la lame en utilisant une grille de 32 lignes et 10 colonnes de spots sur le logiciel ScanAlyse. Les valeurs de fluorescence sont présentéss dans le tableau suivant: Type de lame Lames fonctionnalisces Lames non fonctionnalisées Première variante Deuxième variante Type de sonde a-oxo- -oxo- a -oxo aldéhyde amide |aldahyde amide aldéhyde amide Fluorescence moyenne 36260 3450 28882 1732 7789 5270 Ecart type 3939 486 3427 91 671 934 Exemule 3 - Synthése de peptides tests Les peptides suivants ont été synChétisés (sur un synthétiseur automatique de type Pioneer PerSeptive Biosystem). 1 - Peptides du virus de l'hépatite C À Peptide HCVpc21-1 fonctionnalisé par un groupe a oxoaldéhyde du côté N-terminal: NH2- I H-CO-TNRRPQDVKFPGGGQIVGGVYLLPRRGPRLG-NH2 (CH2)4 NH-C-C''O ô H Ce peptide est synthétisé en phase solide depuis l'extrémité Cterminale vers l'extrémité N-terminale selon une stratégie Fmoc, sur une résine Fmoc-PAL-PEG-PS (Perseptive Biosystems). 2 o 2825095 À Peptide HCVpc21-2 fonctionnalisé par un groupe 4,7,10- trioxa-1,13-diamino-tridecanyl-a-oxoaldéhyde du côté C- terminal, " grand linker ": H-NTNRRPQDVKFPGGGQlVGGVYLLPRRGPRLNH-(CH2)3-O((CH2)2-O)2NCH2)3H-NH Ce peptide est synthétisé en phase solide depuis l'extrémité C-terminale vers l'extrémité N-terminale selon une stratégie Fmoc sur une résine " méthyl-2,3-O- isopropylidène-D-tartryl-Val-PEGA, préparce comme décrit dans publisLers, Dordrecht, 2000, pl04-106). 0,1 mmole de résine sont conditionnés dans un réacteur de phase solide par des lavages au DCM (2 fois 2 minutes) puis au DMF (2 fois 2 minutes). On additionne alors sur la résine presque sèche un mélange de 1,688 ml de 4,7,10 Trioxa-1,13-tridecane-diamine (7,7 mmoles) et de DFM (812 l). Après 45 minutes d' agitation, la résine est lavée par deux lavages successifs au DMF. Le premier aminoacide de la séquence est couplé dans le réacteur et on additionne à la résine presque sèche 10 eq des réactifs suivants: Fmoc-Gly-OH, HBTU, HOBt et 30 eq de DIEA dans du DMF (2,5ml). La solution est agitée pendant 45 minutes avant d'être lavée au DMF (4x2min) puis au DCM (4x2min). Les aminoacides suivants sont alors greffés en transférant la résine obtenue sur un synthétiseur automatique de peptide de type Pioneer PerSeptive Biosystem. À Peptide HCVpc21-3 fonctionnalisé par un groupe 1-3 diaminopropyl-aoxoaldéhyde du côté C-terminal " petit linker ": 21 2825095 H-NTNRRPQDVKFPGGGQIVGGVYLLPRRG PRLG-NH-(CH2)3NH-C' -C Ce peptide est synthétisé en phase solide depuis l'extrémité C-terminale vers l'extrémité N-terminale selon une stratégie Fmoc sur une résine méthyl-2,3-O- isopropylidène-D-tartryl-Val-PEGA. 0,1 mmole de résine sQnt conditionnés dans un réacteur de phase solide par des lavages au DCM (2 fois 2 minutes) puis au DMF (2 fois 2 minutes). On additionne alors sur la résine presque sèche un mélange de 649 pl de 1,3 diaminopropane (7,7 mmoles) et de DMF (351 pl). Après 20 minutes d' agitation, la résine est lavée par deux lavages successifs au DMF. On additionne alors à la résine presque sèche 10 eq des réactifs suivants: Fmoc-Gly-OH, HBTU, HOBt et 30 eq de DIEA dans du DMF. La solution est agitée pendant 45 minutes avant d'être lavée au DMF (4x2min) puis au DCM (4x2min). Les autres aminoacides sont ensuite greffés successivement. À Dérivé du peptide NS4 fonctionnalisé par un groupe 4,7,10-trioxa-1,13diamino-tridecanyl-a-oxoaldéhyde du côté C-termlnal: H-AFASRGNHVSPTHYVPESDAAARG-NH-(CH2)3-O(-(CH2)2-O)2-(CH2)3-NH-C-CNH Ce peptide est synChétisé en phase solide depuis l'extrémité C-terminale vers l'extrémité N-terminale selon une stratégie Fmoc sur une résine méthyl-2,3-O- isopropylidène-D-tartryl-Val-PEGA. La synthèse est effectuée selon le même protocole que celle du peptide HCVpc21-2. 22 2825095 2 - Peptide du virus EBV Dérivé du peptide VCA pl8 (EBV) fonctionnalisé par un groupe 4,7,10-trioxa-1,13-diamino-tridecanyl--oxoaldéhyde du côté C-terminal: H-AVDTGSG G GGQPH DTAPRGARKKQ-N H-(CH2)3-O(-(CH2)2-0)2-(CH2)3-N H-C-C Ce peptide est synthétisé en phase solide depuis l'extrémité C-terminale vers l'extrémité N-terminale selon une stratégie Fmoc sur la résine méthyl-2,3-O- isopropylidène-D-tartryl-Val-PEGA suivant le même protocole que pour le peptide HCVpc21-2. Exemple 4 - Protocole d'utilisation des lames semicarbazides 1 - Liqation des peptides Les peptides fonctionnalisés sont tout d'abord solubilisés (à 10-3 M ou 10-4 M) dans du tampon acétate O,lM pH 5,5. Ils sont alors distribués dans les puits d'une plaque ELISA de 384 puits (Microtest TM, Becton Dickinson, NJ USA). A l' aide d'un " Spotteur " manuel à 32 aiguilles (Microarray Printer XMM 47832-Xenopore, Hawthorne, US), les peptides sont prélevés depuis la plaque ELISA et déposés sur une lame de verre semicarbazide. Les lames sont alors mises à incuber 1 nuit à 37 C sous atmosphère humide. Ces lames sont ensuite lavées, par passage de 60 minutes sous ultrasons dans une solution de Tris-acétate (O,lM Tris(hydroxyméthyl)-aminométhane Merck, Darmstadt, Allemagne-). 23 2825095 Les lames sont ensuite lavéss 4 fois pendant 3 minutes en solution de PBS (Tampon phosphate 0,0lM additionné à l,8% de NaCl pH 7,4) en présence de 0,05% de Tween 20. 2 - Mise en contact des sérums-tests Les lames sont alors incubées en présence de l00l de sérum de patients dilué au l/50ème dans le tampon de dilution (PBS + 2,5% de lait demi-écrémé en poudre + 0,5% de Tween 20) sous une lamelle de verre couvre-objet (24x60mm). L' incubation des lames s'effectue pendant 2 heures à 37 C sous aLmosphère humide. On réalise alors 4 lavages successifs pendant 3 minutes en solution de PBS additionné de 0,05% de Tween 20. 3 - Détection d'anticorps spécifiques dans les sérums par mesure de la fluorescence La réact ion des ant icorps de pat ient s sur les polypept ides fixés sur la lame est détectée par la fixation, sur ceux- ci, d'anticorps anti-Ig humaines fluorescents. l00 l de solution d'anticorps anti-IgG-A-M humaines marqués à la rbodamine (TRITC) (Jackson ImmunoResearch Laboratories, Baltimore, US) diluée au l/l00ème dans le tampon de dilution (PBS + 2,5% de lait demi- écrémé en poudre + 0,5% de Tween 20) sont ensuite déposés sur chaque lame. On recouvre alors chaque lame par une lamelle (24x60 mm) et on la laisse incuber l heure à 37 C sous aLmosphère humide. Une série de 4 lavages successifs en solution de PBS additionné de 0,05% de Tween 20 est réalisée. Les lames sont ensuite rincées à l' aide d'une pissette d'eau mQ puis 24 2825095 - d'éthanol 95 pendant 1 minute, puis séchées 15 minutes à l'air ambiant. La fluorescence émise est ensuite détectée à l' aide d'un scanner à lame (L35/PMT 50, Affymetrix 418 Array Scanner, MWG). Exemole 5 - Utilisation des lames comme " nuces " à polynentides pour la détection d'anticorus présents dans des sérums 1 - Etude sur le peptide HCVpc21 Des sérums de patients dont la sérologie est connue (c'est- à-dire vérifise avec des tests de référence) ont été comparés en test ELISA et par les " biopuces " selon l' invention: sérums positifs numérotés de P1 à P30 sérums négatifs numérotés de N1 à N10 Les lames selon l' invention sont utilisées avec 16 spots du peptide HCVpc21-2 (décrit dans l'exemple 3). Les tests ELISA sont effectués sur des plaques COSTAR carbobind, avec le même poptide HCVpc21-2. Les résultats du test ELISA, exprimés en densité optique, et les résultats du test " biopuces " exprimés en fluorescence/20000 (moyenne de la mesure de la fluorescence des 16 spots par échantillon) sont présentés sur la figure 1. Le test biopuces s'est révélé sensible et spécifique à 100% pour cette étude sur ces sérums HCV référencés, puisqu'il a permls de détecter tous les positlis et aucun négatif. 2825095 2 - Comparai son entre la densité opt ique obtenue avec le test ELISA et la fluorescence des lames semicarbazides pour le poptide HCVpc21 Les résultats de l'étude précédente ont été reportés sur la figure 2 qui montre la corrélation entre fluorescence et densité optique. On n'observe pour les sérums négatifs aucune fluorescence (fluorescence correspondant au bruit de fond), ce qui n'est pas le cas pour 1'ELISA o les négatifs ont une valeur. Dès qu'une fluarescence est observée avec la technique biopuce on sait que c'est un positif, ce qui n'est pas le cas en ELISA o une faible valeur de DO peut correspondre à un négatif. Ceci implique en ELISA la définition d'une valeur seuil qui correspond à la moyenne des sérums négatifs + 3 fois leur écart type; avec les biopuces, la valeur seuil est la moyenne du bruit de fond + 3 fois l'écart type, ce qui correspond à une valeur très faible contrairement à l'ELISA. Par conséquent, le différentiel entre sérums négatifs et positifs est beaucoup plus important pour les *bLopuces que pour l'ELISA. De plus il est encore possible d' augmenter le gain de sensibilité en augmentant la puissance du scanner. Ainsi on garde touj ours une valeur de fluorescence correspondant au bruit de fond pour les sérums négatifs, par contre on augmente la valeur de fluorescence des spots positifs; ceci est particulièrement intéressant dans le cas de sérums faiblement positifs que l'on détecte alors sans aucune ambiguité. 3 - Etude de reproductibilité Le tableau suivant exprime la fluorescence moyenne observée sur 9 lames différentes, vis à vis d'un même sérum identifié HCV positif par le test ELISA. Sur chaque lame 2 6 2825095 ont été réalisés 120 spots du peptide HCVpc21-2 " grand linker " à la concentration de 10-4 M. La moyenne de fluerescence observoe sur les 9 lames est de 41095. L'écart type sur les 9 lames est de 1891, soit un écart type de 4,5%. Tableau I LmesN Fluorescence L1 42104 L2 40282 L3 37676 L4 40853 L5 40337 L6 42375 L7 39568 L8 43918 L9 42734 4 - Comparai son entre l es différent s types de eptides HCVc21 Cette étude a été réalisée sur 5 lames différentes (5 sérums différents, 1 sérum par lame, sérums HCV positifs par le test ELISA carbobind HCVpC21 et par le test EIA 3.0 de AbLoUt, actuellement sur le marché). Sur chaque lame, 8 spots par peptide HCVPc21 ont été déposés à la concentration de 10-4 M. 3 types de poptides différents (tels que décrits dans l'exemple 3) ont été étudiés, HCVpc21-1, HCVpc21-2, HCVpc21-3. Les résultats sont présentés sur la figure 3. La fluorescence est plus élevée avec le peptide HCV n grand linker ". Les résultats sont comparables pour le peptide n petit linker " et HCVpC21-1. Le gain de fluorescence 27 2825095 moyen sur les 5 lames est de 9.9% en faveur du " grand linker " par rapport au " petit linker " et est de 11.11% pour le " grand linker " par rapport au peptide HCVpc21-1 (fonction COCHO sur la position N-terminale). - Etude de sérums avec les peptides HCVpc21, NS4, et un mélanqe HCVpc21/NS4 Le poptide HCVpc21 est " spoUté " selon le protocole décrlt dans l'exemple 4 à la concentration de 10-4 M, le peptide NS4 est spoUté à 10-3 M. Pour le mélange, le peptide NS4 est à une concentration de 0,5 10-3M et le peptide HCVpc21 à une concentration de 0,5 10-4M (ratio 10/1). Chaque peptide est spoUté 16 fois par lame. Les résultats exprimés correspondent à la fluorescence moyenne des 16 spots. Les résultats présentés sur la figure 4 concernent 30 sérums référencés HCV positifs selon le test de la société Abbott. Ces sérums ont été numérotés de P1 à P30. Le test selon l' invention a permis la détection de tous les sérums positifs. 10 sérums témoins négatifs ont été testés, pour lesquels aucune fluorescence n'a été détectée (fluorescence correspondant au bruit de fond). Le test s'est donc révélé sensible et spécifique à 100% sur les échantillons testés. 6 - Essai sur le sanq total pour le virus EBV Sur une lame de verre semicarbazide, 16 spots du peptide EBV (10-4 M) et 16 spots du peptide HCV (10-4 M) ont été réalisés. Un échantillon de sang frais (patient négatif pour HCV et positif pour EBV), de 100 l prélevés au bout du doigt a été dilué dans 50 l de tampon de dilution (tampon PBS, Tween 0,1%, lait demi-écrémé 2,5%). Ces 150 pl sont alors 28 2825095 déposés sur la lame et mis à incuber 2 heures à 37 C sous une lamelle. Le protocole de révélation des lames est le même que précédemment décrit. s Résultats: La fluorescence HCV est nulle, la fluorescence EBV est de 22991 (moyenne des 16 spots, écart type de 8,1% sur ces 16 spots). 7 - Mise en évidence de la sensibilité des biopuces à polypeptides Pour une puissance de scanner L35/PMT50, le bruit de fond après la mise en contact avec le sérum et l'anticorps fluorescent est en moyenne de 50, à savoir 0.1% du signal maximum observé (étude statistique sur 100 sérums référencés). Ce bruit de fond est 16 fois inférieur à celui obtenu sur plaques Carbobind avec les mêmes peptides. D'autre part, pour les sérums nagatifs, aucune fluorescence n'est observée au niveau des spots de peptides, hormis celle attribuée au bruit de fond. Exemule 6 - Utilisation d'un peutide fonctionnalisé Par un rouPement cetone Un peptide dérivé du HCVpc21 a été synthétisé en phase solide depuis l'extrémité N-terminale selon une stratégie Fmoc/tBu, sur une résine Fmoc-PAL-PEG-PS. Une partie du produit (HCVpc21-Met) sera utilisé comme contrôle: H-MTNRRPQDVKFPGGGQIVGGVYLLPRRGPRLG-NH2 2 9 2825095 Une partie du produit a subi une transamination pour donner le dérivé suivant (HCVpc21-TA): o , Il TNRRPQDVKFPGGGQIVGGVYLLPRRGPRLG-NH2 CH3-S(CH2) 2 il o La réaction est effectuée selon le protocole suivant: Une partie du produit précédent (m=10,45 mg) est solubilisoe dans 1165 pl d'eau; on ajoute à cette solution 1,165 ml d'une solution aqueuse à pH 5, 5 contenant: acétate de sodium 2M, acide acétique 0,2M, sulfate de cuivre 2,5 mM, acide glyoxylique O,lM. Après 5 heures de réaction, on additionne 1,165 ml d'EDTA 7mM sous agitation. La solution obtenue est purifiée par HPLC préparative et les fractions correspondant au produit sont lyophilisoes. Les 2 peptides HCVpc21-Met (non transaminé) et pc21-TA (transaminé) ainsi que le peptide HCVpc21-2 (décrit dans l'exemple 3) ont été fixés sur des lames semicarbazides à raison de 16 spots de chaque paptide par lame. Chaque peptide est déposé à la concentration de 10-4M. Les lames sont incubées en présence de 4 sérums positifs et de 2 sérums négatifs. Les résultats présentés dans le tableau suivant montrent que * le peptide transaminé se lie correctement à la lame semicarLazide, * le peptide contrôle pc21-Met donne une réponse faible correspondant à une adsorption non covalente (non spécifique). Tableau II 3 2825095 Fluorescence Moyenne + (E.T. %) Peptides: pc21-2 pc21-TA pc21-Met Bruit de fond Sérum 43 18158 12910 2810 50 DO/ELISA 1,7 (5,9) (6,3) (10,2) Sérum 45 968 1880 356 58 DO/ELISA 0,7 (6,2) (10,1) (5,6) Sérum 53 26963 23063 7741 56 DO/ELISA 2,7 (7,1) (6,8) (7,8) Sérum 41 6225 6169 960 61 DO/ELISA 1,4 (5,5) (6,5) (5,0) Sérum 48 58 58 59 57 Négatif Sérum 55 56 54 55 54 Négatif s 3 1 2825095 Exemple 7 - Fxation d'une protéine glycosvlée sur les lames semicarbazides A titre de modèle de fixation d'une protéine glycosylée sur les lames semicarbazides, on utilise un anticorps fluorescent, ce qui permet sa détection directe. Un anticorps anti-IgG-A-M rhodaminé, est oxydé pour générer une fonction aldéhyde selon le mode opératoire décrit par Wolfe et Hage (Anal. Bioch.; 231; 123-130 1995): 440 q1 d'anticorps (1,5 mg/ml), dilués dans un tampon 0,02M acétate de sodium 0,15M NaC1 à pH 5,5 sont placés à 4 C pendant 15 minutes. Une solution de periodate de sodium 2OmM dans le même tampon est également placée à 4 C à l'abri de la lumière. 275 p1 de la solution de periodate de sodium sont additionnés à 275 l de la solution d'anticorps à l'abri de la lumière, sous agitation: solution A. 275 y1 de la solution de tampon 0,1M acétate de sodium - 0, 15M NaC1 à pH 5,5 sont additionnés à 275 p1 de la solution d' anticorps à l' abri de la lumière, sous agitation: solution B. Les deux solutions sont placées à 4 C pendant 20 minutes. On additionne alors à chacune d'elles 137 p1 d'éthylène glycol (0,25 ml par millilitre d'échantillon) sous agitation. Ces deux solutions sont alors transvasées dans un tube à dialyse (Nanosep, Microconcentrators, GelmanSciences, Filtron Brand). L'excès de réactif est éliminé par une série de 4 centrifugations effectuées sans sécher la membrane (3 000 tours par minute, 60 minutes puis 10 000 tours par minute, 20 minutes) en rediluant chaque fois dans la solution de tampon acétate à pH 5,5 (aj out de 200 l de tampon). Ces deux solutions ont été prélevées à l' aide d'un minicaps de 1 l (Hirschmann Laborgerate) et spoLtées 8 fois sur une 32 2825095 lame de verre fonctionnalisé par des groupes semicarbazides comme écrit précédemment. La lame est ensuite mise à incuber 6 heures à 37 C sous aLmosphère humide. Elle est alors lavoe par trempage dans une solution de Tris acétate 0,1 M Tween 20 0,1% pendant 60 minutes sous ultra-sons. La lame est ensuite rincée à l'eau et séchée à l'éthanol. La fluorescence est révélée au scanner à lames. Les valeurs de fluorescence obtenues pour l'anticorps oxydé (solution A) et l'anticorps non oxydé (solution B) sont présentées dans le tableau suivant: Fluorescence Ecart type (%) Anticorps oxydé 26 270 9,8 Anticorps non oxydé 6 068 14,5 Bruit de fond 141 33 2825095 REVEND I CATI ONS 1. Dispositif de présentation de polypaptides, utilisable comme " puce " pour la détection miniaturisée de moléaules structurellement ou fonctionnellement complémentaires, et consistant en un support plat sur lequel lesdits polypeptides sont liés de manière covalente, caractérisé en ce que la liaison entre les polypeptides et le support résulte de la formation d'un lien semicarbazone. 2. Dispositif selon la revendication 1, caractérisé en ce que le lien semicarbazone résulte de la réaction entre - des polypeptides portant une fonction aldéhyde ou cétone - et un support fonctionnalisé par des groupements semi carLazides. 3. Dispositif selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce que le support est constitué en un matériau solide, organique ou inorganique, de type verre, silicium ou ses dérivés, polymères synChétiques, et présentant une surface plane. 4. Dispositif selon la revendication 2 ou 3, caractérisé en ce que le support est fonctionnalisé de manière dense, homogène et reproductible par les groupements semicarbazides. 5. Dispositif selon la revendication 4, caractérisé en ce que la qualité de la fonctionnalisation du support (densité et homogénéité) est contrôlée par sa capacité de fixer une 34 2825095 sonde peptidique de synthèse, fluorescente, dérivatisée par une fonction -oxoaldéhyde. 6. Dispositif selon l'une quelcouque des revendications 2 à 5, caractérisé en ce que les fonctions aldéhyde ou cétone portées par les polypeptides sont des a-oxoaldéhyde ou a- oxocétone, et sont situées du côté C-terminal ou du côté N- terminal, ou sur une chaîne latérale. 7. Dispositif selon la revendication 6 caractérisé en ce que la fonction aldéhyde ou cétone est située sur un bras espaceur. 8. Procédé de préparation d'un dispositif selon l'une quelcouque des revendications 2 à 7 caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes: 1- introduction d'une fonction aldéhyde ou cétone, par synthèse ou par modification d'une fonction naturelle, à l'une des extrémités N ou C ou sur une chaîne latérale d'un polypeptide de synthèse ou naturel; 2- fonctionnalisation d'un support solide par des groupements semicarbazides; 3- dépôt sous forme de spots d'échantillons de polypeptides obtenus par l'étape 1 sur le support fonctionnalisé de l'étape 2, dans des conditions de pH et d'humidité assurant la réaction entre la fonction aldéhyde ou cétone et la fonction semicarbazide pour créer le lien semicarbazone. 9. Procédé selon la revendication 8, caractérisé en ce que l'étape 1 est effectuée en cours de synthèse d'un polypeptide à l' aide d'un synChétiseur automatique. 2825095 10. Procédé selon la revendication 8 ou 9, caractérisé en ce que l'étape 1 comprend en outre l' introduction d'un bras espaceur entre le dernier acide aminé de la séquence du polypeptide et la fonction aldéhyde ou cétone. s 11. Procédé selon la revendication 8, caractérisé en ce que l'étape 1 est effectuée par oxydation d'un polysaccharide d'une glycoprotéine naturelle ou d'un fragment de celle-ci. 12. Procédé selon la revendication 8, caractérisé en ce que l'étape 1 est effectuée par transamination d'un acide aminé N-terminal d'une protéine naturelle, glycosylée ou non, ou d'un fragment de celle-ci. 13. Procédé selon l'une quelconque des revendications 8 à 12, caractérisé en ce que l'étape 2 comprend - une réaction de silanisation du support, introduisant une fonction amine; - la transformation de la fonction amine en fonction isocyanate; - la réaction de la fonction isocyanate avec un dérivé d'hydrazine pour former le groupement semicarbazide. 14. Procédé selon l'une quelconque des revendications 8 à 12, caractérisé en ce que l'étape 2 est effectuée en une seule réaction d'un silane portant un groupement semicarbazide. 15. Procédé selon la revendication 14 caractérisé en ce que le groupement semicarLazide est de préférence protégé par le Fmoc. 36 2825095 16. Procédé selon l'une quelconque des revendications 8 à , caractérisé en ce que l'étape 3 comprend - la préparation de solutions des polypoptides de l'étape 1 à 10-3 OU 10-4M dans un tampon acétate O,lM à pH 5,5, - leur distribution dans un récipient approprié à leur prélèvement, de type puits de plaque de microtitration, - leur prélèvement à l' aide d'un " spoUteur ", - et leur dépôt sur le support semicarbazide; - l' incubation des lames pendant une nuit à 37 C sous aLmosphère humide et leur lavage et la saturation des sites réactifs non spécifiques. 17. Utilisation de dispositifs selon l'une quelconque des revendications 1 à 7 comme puces à polypeptides en tant qu'outil de diagnostic. 18. Utilisation de dispositifs selon la revendication 17, caractérisoe en ce qu'elle comprend la détection des réponses de type antigène-anticorps par l'utilisation de réactifs marqués, fluorescents, radioactifs ou marqués chimiquement, comme dans les tests de diagnostic non miniaturisés. 19. Utilisation de dispositifs selon l'une quelconque des revendicat ions 1 à 7 comme puces à polypept ides pour le criblage de molécules. 37 2825095 20. Utilisation de dispositifs selon l'une quelcouque des revendications 1 à 7 comme puces à polypeptides pour l'analyse des relations entre molecules, de type ligand-