FR 2824843 A1 20021122 FR 0106641 A 20010521 biotiques, notamrnent aux virus et inseetes, par rapport à la plante non transgénique. i::t Séquence du gène rpoB de la bactérie Tropheryma whippelli et oligonucléotide pour le diagnostic moléculaire de la maladie de Whipple La présente invention concerne le domaine du diagnostic. Plus précisément, I'invention concerne le diagnostic moléculaire de la maladie de Whipple par les techniques de détection et/ou d' amplification et séquençage à l'aide de sondes ou d'amorces oligonucléotidiques, et leur application à la recherche de la présence ou à l' identification des bactéries de l'espèce Tropheryma whippelii. lo La maladie de Whipple est une maladie qui se présente sous des formes varices. La forme la plus classique est celle d'une fièvre avec une diarrhée chronique qui entrane un amaig rissement, mais c' est aussi une maladie q ui est susceptible de donne r des atteintes articulaires chroniques, des atteintes cérébrales avec démence, des atteintes ophtalmologiques avec uvéte et aussi une atteinte cardiaque en particulier une endocardite à hémoculture négative. Dès sa description en 1907, Whipple évoque l'existence d'une bactérie associée à la > devant l'observation de nombreux microorganismes après coloration argentique d'un ganglion mésentérique [Whipple GH (1907) Bull. John Hopkins Hosp.18: 328]. La mise en évidence du caractère PAS (de l'anglais ) positif non spécifique de cette bactérie, puis les observations en microscopie électronique confirment la présence d'une espèce bactérienne intracellulaire de structure Gram positif [Chears et al. (1961) Gastroenterology 41:1296]. L'outil moléculaire universel 16S ARNr a permis de confirmer cette hypothèse en précisant la taxonomie phylogénique de cette nouvelle espèce bactérienne, et en lui assignant le nom provisoire de Tropheryma whippelii pour évoquer la notion de malabsorption intestinale et honorer le découvreur de l'affection [Relman D. et al. (1992) N. Engl. J. Med. 327:293]. Le séquençage direct de 721 bases d'un fragment amplifié à partir d'une biopsie de l'intestin grêle d'un patient [Wilson KH et al. (1991) Lancet 338:474], puis à partir d'un ganglion d'un autre patient [VVilson KH et al. (1992) ASM News 58:318] confirme l'originalité de l'espèce bactérienne associée à la maladie de Whipple. Le séquençage par Relman et al. (op. cité) de 1.321 bases représentant 90% du gène 16S rADN sur un échantillon, et un fragment de 284 bases chez quatre autres - '. patients a permis de confirmer que l'espèce bactérienne associce à la maladie de Whipple représentait une nouvelle espèce, de préciser sa position taxonomique dans le phylum des actinomycètes, c'est-à-dire des bactéries de structure Gram positif à haut contenu en guanosine plus cytosine, représentant un nouvel embranchement relativement proche de s deux espèces connues en pathologie humaine, Actinomyces pyogenes et Rothia dentocariosa. Le gène rpoB code une des sous-unités de l'ARN polymérase bactérienne et constitue un marqueur génétique permettant la détection spécifique de la bactérie de l'espèce Tropheryma whippelli. lo Selon Lazcano et al. [J. Mol. Evol. (1988) 27:365-376], les ARN polymérases sont divisées en deux groupes selon leur origine, I'un constitué par les ARN polymérases virales ARN- ou ADN-dépendantes, et l'autre constitué par ies ARN polymérases ADN dépendantes d'origine eucaryote ou procaryote (archaébactéries et eubactéries). Les ARN polymérases ADN-dépendantes eubactériennes sont caractérisées par une constitution multimérique simple et conservée notée > représentée par a,B,B'c [Yura and Ishihama, Ann. Rev. Genet. (1979) 13:59-97]. De nombreux travaux ont mis en évidence le rôle fonctionnel, au sein du complexe enzymatique multimérique, de la sous-unité,B de l'ARN polymérase eubactérienne. Les ARN polymérases archaébactérienne et eucaryote présentent, pour leur part, une structure plus complexe pouvant atteindre une dizaine, voire une trentaine de sous-unités [Puhiet et al. Proc. Natl. Acad. Sci. USA (1989) 86:45694573]. Les gènes qui codent les différentes sous-unités x,B,B'a de l'ARN polymérase ADN dépendante chez les eubactéries, respectivement les gènes rpoA, rpoB, rpoC et rpoD, sont classés en différents groupes comprenant les gènes codant pour des protéines constitutives des sous-unités ribosomiques ou pour des enzymes impliquées dans la réplication et la réparation du génome [Yura and Yshihma, Ann. Rev. Genet. (1979) 13:59-97]. Certains auteurs ont montré que les séquences des gènes rpoB et rpoC pouvaient être utilisées afin de construire des arbres phylogénétiques [Rowland et al. Biochem. Soc. Trans. (1992) 21:40S] permettant de séparer les différents embranchements et sous-embranchements parmi les règnes du vivant. =F ï i Le diagnostic de la maladie est actuellement fait par l'observation, après coloration, de frottis m icroscopiq ues obten us de biopsie ou par amplification et séquençage de l' outil gène universel 16S ARNr (Relman et al., op. cité). Toutefois, le gène 16S est un gène moyennement discriminant pour l'identification s des bactéries. En outre, il est nécessaire de disposer de plusieurs cibles moléculaires d' identification des bactéries, notamment pour pallier les problèmes de contamination moléculaire. Par ailleurs, cette bactérie a été pour la première fois isolée et cultivée dans des systèmes cellulaires dans le laboratoire des inventeurs [Raoult D. et al. (2000) N. Engl. J. o Med. 342:620 et WO 00/58440] à partir de la valve cardiaque prélevée chez un patient présentant une endocardite à hémoculture négative (souche Twist). Les inventeurs ont déjà décrit dans WO - A - 00/58440 un fragment de 612 bases du gène rpoB de la bactérie Thropheryma whippelli correspondant à SEQ ID N 3 à partir duquel ils avaient déterminé deux séquences nucléotidiques spécifiques du gène rpoB de Thropheryma whippelli utilisables comme amorces d'amplification spécifiques et sondes de détection spécifiq u es de l' espèce Tropheryma whippelii. Les techniques décrites dans WO - A - 00/58440 n'avaient pourtant pas permis d'obtenir la séquence complète du gène rpoB de Tropheryma whippelli. Un but de la présente invention est de fournir des fragments du gène rpoB additionnels, notamment la séquence complète du gène rpoB de Tropheryma whippeJii, afin en particulier de fournir de nouvelles séquences spécifiques du gène rpoB de Tropheryma whippelli; plus particulièrement encore, des séquences présentant une plus grande spécificité de détection que les séquences tirées des fragments SEQ ID N 3 décrites dans WO - A - 00/58440. Plusieurs tentatives pour allonger la séquence SEQ ID N 3 avec des amorces consensus issues de gène rpoB d'autres bactéries et des amorces spécifiques développées par les inventeurs (SEQ ID N 13, 15 et 17) n'ont permis d'allonger la séquence que jusqu'à i'obtention de la séquence SEQ ID N 4 de 2750 problèmes décrites ci-après, mais n'ont pas ensuite permis d'obtenir la séquence complète du gène. Les inventeurs ont développé une série d'amorces spécifiques pour mettre en _uvre la i. technique dite "" marche sur le génome >> ( , décrite dans Siebert et al Nucleic Acids Research 23:1087-1088, 1995) à partir de la détermination d'une série d'amorces d'amplification spécifique, à savoir les amorces d'amplification identifiées ci après comme SEQ ID N 5 à 8. Ces différentes amorces d'amplification ont permis de proche en proche d'obtenir des fragments de plus en plus étendus à partir de SEQ ID N 4, jusqu'à obtenir la séquence complète SED ID N 9. La présente invention a donc pour objet la séquence complète du gène rpoB de la bactérie Tropheryma whippelii constituée par la séquence SEQ ID N 9. La séquence complète du gène rpoB a été déterminée par la combinaison de deux techniques, 0 I'amplification enzymatique et le séquençage automatique direct avec des amorces consensus entre un grand nombre d'autres bactéries, de genre et d'espèces différentes d'une part; et par séquençage automatique direct à partir des produits d'amplification obtenus après application de la technique Genome Walker (marche sur le génome) à l'ADN extrait de la première souche Twist de Tropheryma whippelli, d'autre part. Cette dernière technique consiste à marcher le long du gène à partir d'un premier fragment connu en réalisant une banque partielle de l'ADN chromosomique de la bactérie étudiée. Cette technique, qui sera décrite plus loin, requiert donc une quantité d'ADN chromosomique bactérien qui ne peut étre obtenue qu'après extraction dudit ADN à partir d'une culture bactérienne pure et elle suppose donc la disponibilité d'un isolat en culture. C' est la disponibilité de cet isolat et la détermination des différentes amorces d'amplification SEQ ID N 5 à 8 à partir de SEQ ID N 4 qui ont permis l'application avec succès de la technique de marche sur le génome pour la détermination de la séquence complète du gène rpoB chez une souche Twist de la bactérie Tropheryma whippelli. La présente invention concerne donc également des séquences d'acides nucléiques de l'espèce Trophyrema whippelIi, dont la séquence nucléotidique est comprise dans la séquence SEQ ID N 9 du gène rpoB de ladite bactérie visée ci-dessus et non entièrement comprise dans la SEQ ID N 3, ou une séquence complémentaire de ladite séquence nucléotidique. A partir de la séquence complète SEQ ID N 9, les inventeurs ont en effet déterminé une séquence SEQ ID N 10 de plus grande spécificité vis à vis du gène rpoB de Tropheryma whippelli en dehors de la zone correspondant à SEQ ID N 3, à partir de laquelle ils ont pu déterminer deux séquences particulières spécifiques encadrant un j s s fragment d'environ 500 paires de bases, à savoir les séquences SEQ ID N 11 et 12 conférant une fiabilité optimale pour la détection spécifique de la bactérie Tropheryma whippelli par amplification et séquençage d u produit d' amplification ou par hybridation en tant que sonde de détection. s Un objet de la présente invention est donc un oligonucléotide monocaténaire choisi parmi les oligonucléotides ayant une séquence d'au moins 10 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans une séquence choisie parmi: - la séquence SEQ ID N 9 et non entièrement comprise dans la séquence SEQ ID N 3 et de préférence non comprise dans SEQ ID N 3, et - de préférence l'une des séquences SEQ ID N 10, SED ID N 11 et SEQ ID N 12, et - les séquences complémentaires de ces oligonucléotides. Un oligonucléotide plus particulièrement préféré a une séquence choisie parmi les séquences complètes SEQ ID N 11 et SEQ ID n 12 et leurs séquences complémentaires. La présente invention a également pour objet un oligonucléotide qui présente une séquence choisie parmi: - les séquences d'au moins 10 nucléotides consécutifs incluses dans une séquence choisie par les séquences SEQ ID N 5 à 8 et SEQ ID N 17, et leurs séquences complémentaires, et - de préférence, lesdites séquences SEQ ID N 5 à 8 et SEQ ID N 17 complètes et leurs séquences complémentaires. En particulier les oligonucléotides selon la présente invention possèdent au moins motifs nucléotidiques tels que décrits ci-dessus et au plus 100, de préférence au plus motifs. Plus particulièrement, un oligonucléotide selon la présente invention possède de préférence de 12 à 35 motifs, de préférence encore de 18 à 22. Les séquences nucléotidiques selon l'invention peuvent être préparées par synthèse chimique en utilisant les techniques bien connues de l'homme du métier et j -l décrites par exemple dans l'article de Itakura K. et al. [(1984) Annu. Rev. Biochem. 53: 323]. Une première application d' un oligonucléotide selon l' invention est son utilisation comme sonde d'espèce pour la détection, dans un échantillon biologique, de bactéries de s l'espèce Tropheryma whippel/i. Dans la suite de la description, une telle sonde de l'invention sera appelée sonde d'espèce. De préférence une sonde d'espèce selon l' invention est constituée par un oligonucléotide choisi parmi: - les oligonucléotides ayant une séquence nucléotidique d'au moins 10 nucléotides consécutifs incluse dans i'une des séquences SEQ ID N 10, SEQ ID N 11 et SEQ ID N 12, et leurs séquences complémentaires, et - les oligonucléotides ayant une séquence nucléotidiques choisies parmi les séquences complètes SEQ ID N 11 et SEQ ID N 12 et leurs séquences complémentaires. 1 5 Les sondes selon l' invention peuvent étre utilisées, à des fins de diagnostic, dans la recherche de la présence ou de l'absence d'un acide nuclélque cible dans un échantillon, selon toutes les techniques d'hybridation connues et notamment les techniques de dépôt ponctuel sur filtre, dites > [Southern E.M., J. Mol. Biol. (1975) 98:503], les techniques de transfert d'ARN dites >, ou les techniques dites "" sandwich >>, avec une sonde de capture eVou une sonde de détection, lesdites sondes étant capables de s'hybrider avec deux régions différentes de l'acide nucléique cible, et l'une au moins desdites sondes (généralement la sonde de détection) étant capable de s'hybrider avec une région de la cible qui est spécifique de l'espèce, étant entendu que la sonde de capture et la sonde de détection doivent avoir des séquences nucléotidiques au moins partiellement différentes. L'acide nucléique à détecter (cible) peut étre obtenu suite à une amplification classique, c'est à dire donnant de l'ADN, obtenu après amplification par PCR, ou de l'ARN, obtenu suite à une amplification transcriptionnelle par TAM, NASBA, 3SR etc Dans le - r' cas de la détection d'une cible de type acide nuclélque double brin, il convient de procéder à la dénaturation de ce dernier avant la mise en _uvre du procédé de détection. L'acide nuclélque cible peut étre obtenu par extraction selon les méthodes connues des acides nuclélques d'un échantillon à examiner. La dénaturation d'un acide nucléique double brin s peut étre effectuée par les méthodes connues de dénaturation chimique, physique ou enzymatique, et en particulier par chauffage à une température appropriée, supérieure à C. Pour mettre en _uvre les techniques d'hybridation précitées, et en particulier les techniques >, une sonde de l'invention, appelée sonde de capture est immobilisée sur un support solide, et une autre sonde de l' invention, appelée sonde de détection, est marquée avec un agent marqueur. Les exemples de support et d'agent marqueur sont tels que définis précédemment. Un autre objet de l' invention est un procédé de détermination de la présence ou de l'absence d'une bactérie Tropheryma whippelIi dans un échantillon contenant ou susceptible de contenir des acides nuclélques d'au moins une telle bactérie, comprenant les étapes consistant à mettre en contact ledit échantillon avec au moins une sonde d' espèce de l' invention, puis à déterm iner de façon connue en soi la formation ou l'absence de formation d' un complexe d' hybridation entre ladite sonde et l'acide nucléique de l'échantillon. Des exemples de détection de la formation ou de l'absence de formation d'un complexe d'hybridation entre ladite sonde et l'acide nucléique comprennent les techniques >, > et . Selon une mise en _uvre particulière de ce procédé pour la détermination de la présence ou de l'absence d'une espèce Tropheryma whippelii, on utilise plusieurs sondes 2s d'espèce de 1'invention, étant entendu que lesdites sondes sont capables de s'hybrider avec des régions non chevauchantes d'un acide nucléique correspondant au gène rpoB de Tropheryma whippelii. De manière avantageuse, une sonde d'espèce est immobilisée sur un support solide, et une autre sonde est marquée par un agent marqueur, dite sonde de détection, laquelle n'est pas nécessairement une sonde d'espèce. - Une autre application d'un oligonucléotide de l' invention est son utilisation comme amorce nucléotidique utilisable dans la synthèse d'un acide nuclélque de Thropheryma whippelii en présence d'une polymérase par un procédé connu en soi, notamment dans des méthodes d'amplification utilisant une telle synthèse en présence d'une polymérase (PCR, RT-PCR, etc...). En particulier, une amorce de l' invention peut étre utilisée pour la transcription inverse spécifique d'une séquence d'ARN messager de Tropheryma whippelii pour obtenir une séquence d'ADN complémentaire correspondante. Une telle transcription inverse peut constituer le premier stade de la technique RT-PCR, le stade suivant étant l'amplification par PCR de l'ADN complémentaire obtenu. On peut également utiliser les 0 amorces de l' invention pour l'amplification spécifique par réaction de polym érisation en chane de la séquence totale de l'ADN du gène rpoB de Tropheryma whippelii. Selon un cas particulier ladite amorce comprenant un oligonucléotide de l'invention comprend en outre la séquence sens ou anti-sens d'un promoteur reconnu par une ARN polymérase (promoteurs T7, T3, SP6 par exemple [Studier FW, BA Moffatt (1986) J. Mol. Biol. 189:113]: de telles amorces sont utilisables dans des procédés d'amplification d'acide nucléique faisant intervenir une étape de transcription, tels que, par exemple, les techniques NASBA ou 3SR [Van Gemen B. et al. Abstract MA 1091, 7th International Conference on AIDS (1991) Florence, Italy]. Plus particulièrement, un objet de l' invention est une amorce nucléotidique utilisable pour le séquençage total ou partiel du gène rpoB d'une souche quelconque de Tropheryma whippelli, de préférence une séquence spécifique du gène rpoB de Thropheryma whippelii. En particulier, I'amorce nucléotidique est utilisable pour le séquençage d'un acide nuclélque amplifié. Le séquençage est l'obtention de la séquence totale ou partielle du gène rpoB par un procédé connu en soi, polymérisation abortive utilisant les di-déoxynucléotides [Sanger F., Couison AR (1975) J. Mol. Biol. 94:441] ou hybridations multiples utilisant les puces à ADN. De préférence, dans une utilisation comme amorce pour le séquençage d'une séquence spécifique du gène rpoB de Thropheryma whippelii, on utilise un oligonucléotide qui est constitué par: - les oligonucléotides ayant une séquence nucléotidique d'au moins 10 nucléotides consécutifs incluses dans l'une des séquences SEQ ID N 10, SEQ ID N 11 et SEQ ID N 12, et leurs séquences complémentaires, et J s - les oligonucléotides ayant une séquence nucléotidiques choisies parmi les séquences complètes SEQ ID N 11 et SEQ ID N 12 et leurs séquences complémentaires. La présente invention fournit donc également un procédé de détermination de la présence ou de l'absence d'une bactérie Tropheryma whippelli dans un échantillon contenant, ou susceptible de contenir des acides nuclélques d'au moins une telle bactérie, caractérisé en ce qu'on réalise une amplification de l'ADN de l'échantillon à l'aide de deux amorces selon l'invention et on compare la séquence obtenue avec la séquence SEQ ID N 9. Plus particulièrement, on compare la séquence du produit d'amplification obtenu en réalisant au préalable son séquençage. De préférence, on réalise une amplification de l'ADN de l'échantillon à l'aide des deux amorces SEQ ID N 11 et 12 et on compare la séquence obtenue avec la séquence SEQ ID N 10. L' invention sera mieux comprise à l'aide de l' exposé ci-après, divisé en deux exemples, qui concernent des expériences effectuées dans le but de réaliser l' invention et qui sont données à titre purement illustratif et explicatif. La figure n 1 représente les positions des amorces spécifiques et consensuelles utilisées pour la détermination des fragments successifs du gène complet rpoB de I'espèce bactérienne Tropheryma whippelii. La figu re 2 représente la visualisation des produ its d' amplification obtenus à l'aide des amorces SEQ ID N 11 et 12 visualisés par coloration au bromure d'éthidium après électrophorèse sur un gel d'agarose de l'exemple 2. Différe nts term es, uti l isés dans la description et les revendications, sont défin is ci après: - par " , on entend soit l'acide nuclélque total, soit l'ADN génomique, soit les ARN messagers, soit encore l'ADN obtenu à partir de la transcription inverse des ARN messagers, soit encore les ARN ribosomaux; ! è_ - un > ou un > sont deux termes synonymes désignant un enchanement de motifs nucléotidiques caractérisé par une séquence informationnelle des acides nucléiques naturels (ou éventuellement modifiés) et susceptibles de s'hybrider, comme les acides nuclélques naturels, avec un fragment s nucléotidique complémentaire ou sensiblement complémentaire, dans des conditions prédéterminées de stringence stricte. L'enchanement peut contenir des motifs nucléotidiques de structure différente de celle des acides nucléiques naturels. Un fragment nucléotidique (ou oligonucléotide) peut contenir par exemple jusqu'à 100 motifs nucléotidiques. Il contient généralement au moins 10, et en particulier au moins 12 motifs lo nucléotidiques et peut être obtenu à partir d'une molécule d'acide nuclélque naturelle eVou par recombinaison génétique eVou par synthèse chimique, - un motif nucléotidique est dérivé d'un monomère qui peut être un nucléotide naturel d'acide nucléique dont ies éléments constitutifs sont un sucre, un groupement phosphate et une base azotée choisie parmi l'adénine, la guanine, I'uracile, la cytosine, la thymine; ou bien le monomère est un nucléotide modifié dans l'un au moins des trois éléments constitutifs précédents; à titre d'exemple, la modification peut intervenir soit au niveau des bases, avec des bases modifiées telles que l'inosine, la méthyl-5 désoxycytidine, la désoxyuridine, la diméthylamino-5- désoxyuridine ou toute autre base modifiée capable d'hybridation, soit au niveau du sucre, par exemple le remplacement d'au moins un désoxyribose par un polyamide [Nielsen PE et al., Science (1991) 254:1497-1500], soit encore au niveau du groupement phosphate, par exemple par remplacement par des esters choisis notamment parmi les diphosphates, les alkylphosphonates et les phosphorothioates, par >, on entend le processus au cours duquel, dans des conditions appropriées, deux fragments nucléotidiques ayant des séquences suffisamment complémentaires sont susceptibles de s'associer par des liaisons hydrogène stables et spécifiques, pour former un double brin. Les conditions d'hybridation sont déterminées par la >, c'està-dire la rigueur des conditions opératoires. L'hybridation est d'autant plus spécifique qu'elle est effectuée à plus forte stringence. La stringence est fonction notamment de la composition en bases d'un duplex sonde/cible, ainsi que par le degré de mésappariement entre deux acides nuclélques. La stringence peut également être fonction des paramètres de la réaction d'hybridation, tels que la concentration et le type d'espèces ioniques présentes dans la solution d'hybridation, la nature et la -t L. > est un fragment nucléotidique comprenant par exemple de 10 à motifs nucléotidiques, notamment de 12 à 35 motifs nucélotidiques, possédant une spécificité d'hybridation dans des conditions déterminées pour former un complexe d'hybridation avec un acide nuclélque ayant, dans le cas présent, une séquence nucléotidique comprise soit dans un ARN messager, soit dans un ADN obtenu par transcription inverse dudit ARN messager, produit de transcription; une sonde peut être utilisée à des fins de diagnostic (notamment sondes de capture ou de détection) ou à des fins de thérapie, une " sonde de capture,' est immobilisée ou immobilisable sur un support solide par tout moyen approprié, par exemple par covalence, par adsorption, ou par synthèse directe sur un solide. Des exemples de supports comprennent les plaques de microtitration et les puces à ADN, ou des particules magnétiques, comme celles décrites dans WO 6 A - 99/35500. - une " sonde de détection >> peut être marquée au moyen d'un agent marqueur choisi par exemple parmi les isotopes radioactifs, les enzymes, en particulier les enzymes susceptibles d'agir sur un substrat chromogéne, fluorigène ou luminescent (notamment une peroxydase ou une phosphatase alcaline), les composés chimiques chromophores, les composés chromogènes, fluorigènes ou luminescents, les analogues des bases nucléotidiques et les ligands tels que la blotine, - une " sonde d'espèce >> est une sonde permettant l'identification de l'espèce d'une bactérie, - une , est une séquence comprenant par exemple 10 à 100 motifs nucléotidiques et possédant une spécificité d'hybridation dans des conditions déterminées pour l' initiation d' une polymérisation enzymatique, par exemple dans une technique l d' amplification telle q ue la PCR, dans un p rocédé de séq uençage, dans u ne méthode de transcription, etc. EXEMPLE 1: Séquence complète du gène rpoB de Tropheryma whippelli. La séquence complète du gène rpoB de Tropheryma whippelli a été déterminée par la combinaison successive de deux techniques, I'amplification enzymatique et séquençage automatique direct utilisant des amorces consensus dans un premier temps puis la marche sur le gène par la technique du > dans un deuxième temps. 1 - Amplification enzymatique associée au séquençage automatique Les amorces consensus ayant permis l'obtention d'un premier fragment de la séquence Tropheryma whippelli rpoB ont été déterminées à partir de la comparaison des séquences rpoB de Bacillus subtilis, Baffonella henselae, Borrelia burgdofferi, Buchnera aphidicola, Chlamydia pneumoniae, Chlamydia trachomafIs, Coxiella burnetii, Escherichia coli, Haemophilus influenzae, Helicobacter pylori, Legionella pneumophila, Mycobacterium leprae, Mycobacterium smegmatis, MycobacterIum tuberculosis, Mycoplasma gatlisepticum, Mycoplasma genitallum, Mycoplasma pneumonise, Nelsseria menrngitidis, Pseudomonas putIda, Rickettsia prowazekii, Rickettsia typhi, Salmonella enterica Typhimurium, Spiroplasma citri, Staphylococcus aureus, Synechocystis spp., Thermotoga maritima, Treponema pallidum, et Human Granulocytic Ehrlichiosis agent. Ces séquences ont été choisies par alignement des séquences de l'ADN du gène rpoB de ces différentes autres bactéries et en sélectionnant celles qui étaient les plus conservées avec pour hypothèse qu'elles étaient aussi présentes dans le gène rpoB de Tropheryma whippelii. Les amorces utilisées avaient pour séquence: SEQ ID n01 = 5' - TIA TGG Gll CIA AIA TGC A- 3' (position 1967-1985) SEQ ID n02 = 5'- GCC CAI CAT TCC ATI TCI CC - 3' (position 3198-3217, reverse), dans lesquelles I représente l'inosine. La numérotation des positions mentionnées ci-dessus et ci-après correspondent à des positions sur la séquence complète SEQ ID N 9. : CesamomEson1permlsramp1OUionpusquengeunfmgmentde1.400 pskOsdébasesdont612psPesdebaseson1Atdsquences&FsedesamorcesSEO IDn letSEOIDn 2etCorrespondA1ssquenceSEOlOn 3(pos#ns2063-2673)dont squencoes1: 3 SEOID 3:- OAGTCCCCTGGTC6GCACAGG GGAGCGG OTAGCO^TCO^TGCGGOTG^TGT TTTAATTGCCGAGG^TCC0GGCATTGTGGGGGATOI1ICC0CTGATGTTGTCACTGTC AAGCAGGATGACGGGAAAC^TCGCOACTACC^TOTTGGTA^ATTTGTTCGTTCAAATCA GGGCAACTGTTACAACCAGCNAGTTGTGGTCCGATCCGOAG^TCOTOTAGAAAAAGG TACAGTTCTTGCAC^TGGTCC^TGTACTGACAAAGGTGAGCTTACTCTTGGTAGAAATC UCTGGTTGC'''CATGCCCTGOCAG6GCACTTTGAGGATGCGATAAT CAGC CAGAnToCTCAAGGACCACACCCTTTcNTcA^TccAcATAGAAGAACAT6AGoTTA GCACCCGGATACGAAGCTGGGCAGT0AAGAAAACGCGAOACCTTCCGAATÈTA^ GC^TGGAnCATAAAGGACTTGGACGAAcGGGoTrTCCGGATTGGCGCTGAGGT TGGCCCTOGGGACATTTTGGTTGGTAAGGTGACCCCAAAG0OCGAGACCGAACTCA OCOCGG OACCOUTOCTGAGGOC CTU - 3' Le squengage de ce premr fragment F1 a permls de dA1ermlner des amorces spAclf[ques d'ampliflcat[on qul, combindes dans des rAac110ns d'amplificatlon PCR avec des smorces consensueNes dgAnArdes, ont permis longer Is squence SEOID n 3 sur ses erAmlts 3' et e1 ont permls obtenk tmls aubes hagments cheuchant F2, F3 et F4 pour une longueur 101ale de 2.750 pakes de bases coespondant SEO ID N 4. La poskn des amomes e1 des hagments es1 indlquo sur la figure n l. Le fmgmen1 F3 (poshns 1248 2163) a 61d obtenu par appcadon des amorces SEO iD N 13 (amorce spAciflque posI110ns 2145 2183): 5'- CGG AAA C CCC CCA CAA T3' e1 SEO ID N 14 (amorce consensueMe pos#ns 1248 1264): 5' - ACC GAC G C GAC CA J; Esgment F2 (pos#ns 2592 A 3229) s Atd ob1enu par appcadon des smorces SEO ID N 15 (amorce spAclflque; posltions 2592 2610) : 5' - 00 0 AOO TGA CCC CAA A -3' et SEO ID N 16 (amorce consensuene; posknd 3213 322g): - GGT AAA GCG CAG TTC GG - J; le hagment F4 (pos#ns 484 1331) a dtd obtenu par -7; 15 1): CCA OCC CGG AOC TO - 3' e1 SEO ID N 18 (amorce consensuelle; posi1Ions 484 A4):- I I 1 OGCCAAGC-. ' SEQ ID N 4: 5' ATCCCCCATAGMGATTCGGCTGGCAATATGCAGCTTAATTTCTCCAAGCCGGTTCTGG AGGCCGMGAGTTGAGCGTMGGGAATGCCGTGTTCGAGGCAGGACCTATTCGGCG CCCCTGTATGTTGAGGCCGAGTTCATGAATCATGATACGGGCGAGATAAGACTCAGAC s GGTT' I IATGGGCGATTTCCCGCTTATGACTGACAAGGGTACATTCGTCATAAACGGCA CCGAGAGAGTTGTTGTCTCTCAGCTTGTTCGCAGCCCTGGTGTTTATTTTGAGCGCAC GCCGGMMAAMCAGTGAAAAGGATCT' i ITTCGGGCAGAATAATCCCCGCTCGCGGT GCTTGGCTAGAATTCGMGTTGACAGGCATGACCAGCTTGGCGTTAGGGTTGACAGG AAGCGCAGGCAGCCGGTTATTTTCTTTCTGAGAGCMTTGGCATGACTGATGATGAGA lo TCAGGGATGCAI I IGGCGAGI I IGAATCMTAAGCGTCCAGCACGAMAGMTATTGG GCTGTCCAGAGATGACGCGCTCCGGGAAATATACCGTCGCGTTCGTCCGGGGGAGC AGGCATCGGCTGAGGCTGGGCGTGCACTCTTAGAGAA' I I I IACTTTACCAGCAGACG TTTTGACCTGGCAAGGGTTGGAAGGTACMMGTAAATCGCAAACTCGGTGTTGATGTT GATCCMCTCGGATGGTTCTTACGAGGTCGGATATTATCGCAACAATTCGTTATCTCGC GGCCTTGCATCTCGGTTTCTCCGAGGTTGCGGTGCTAMCAGCAACMGAGTGTACC AATTTCMCCGATGATATTGACCATCTTGGTAATAGGCGCATTAGACCGGTTGGTGAGT TGGTGCMAACCAGCTCCGGGCTGGTCTGGCCAGAATGGAGCGGGTTGTGAGAGAG CGCATGACMCCCAGGATATAGAGGCGATTATCCCGCAGACACTCATAAATGTCATGCC MTTGTTGCAGCGCTGAAGGAGI I ITATGGCACCAGCCAGCTCTCGCAGTTTATGGAT CAGAATAACCCCCTTGCCGGCCTTACGCACMGAGGCGCTTGTCAGCTCTTGGCCCC GGTGGACTGTCCCGCGAACGTGCCGGTGTTGAGGTTCGAGACGTAAATCCCAGTCAT TACGGCAGGATGTGTCCGATCGAAACCCCAGMGGTCCAMTATTGGCCTTATAGGGT CTTTAGCGTGCTATTCCAG GGTGMCAGTTTCG GCmATAGMMCCCCATATAGACGT GTTGTCMCGGMMGTCACAGACGATATTGAGTATATGACAGCAACACAGGAAGATG as AGCATGCGATTGCCCAGGCAAGCACTCCGCTGCGACCGGACAACTCGTTTGTTGATG AGCGTGTTCTGGTTCGCCGAAMGGTGGAGAGGTCGAGGTTGTACCGGCCGATCAG GTTGATTATATGGATGTGTCTGGACGTCAGATGGTGTCTGTTGCMCTTCGCTTATACC CTTCCTTGMCATMTGACGCTMCCGTGCTCTCATGGGATCGMTATGCAGAGACAG GCTGTACCACTTCTGGTTACGGAGAGTCCCCTGGTCGGCACAGGTATGGAGCGGTAT GTAGCGATCGATGCGGGTGATG' I iTMTTGCCGAGGATCCGGGCATTGTGGGGGAT Gl I ICCGCTGATGTTGTCACTGTCAAGCAGGATGACGGGAAACATCGCGACTACCATG TTGGTAAA' I IGTTCGTTCMMTCAGGGCMCTGTTACMCCAGCNAGTTGTGGTCCG ATCCGGAGATCGTGTAGAMAAGGTACAGTTCTTGCACATGGTCCATGTACTGACAAA GGTGAGCTTAGTCTTGGTAGAMTCTTCTGGTTGCTTTCATGCCCTGGGAGGGCTATA AC I I I GAGGATGCGATAATTATCAGCCAGAATTTGGTCMGGACGACACCCTTTCGTCA ATCCACATAGAAGAACATGAGGTTAGCACCCGGGATACGAAGCTGGGCAGTGAAGM ATMCGCGAGACCTTCCGAATGTAAGCATGGATTACATAAAGGACTTGGACGMCGGG GTATTATCCGGATTGGCGCTGAGGTTGGCCCTGGGGACAmTGGTTGGTMGGTGAC s CCCAMGGGCGAGACCGMCTCAGCGCGGAAGAGCGTTTGCTGAGGGCTATCI I IAA CGAGMGAGCATGGAGGTTCGCGACACAAG I I I GAAGGTCCCACACGGGCAGCAGG GGACCGTMTCGATGTTAAGTTG I I I GATGCGGTTGACGGTGAAGATAAGCTGGGTGC CGGCATAAATCAGCGGGTTGTTGTGtACATAGCGCATMGCGCAAGATTACGGAGGGA GATMGCTTGCTGGGCGCCATGGCAACMGGGTGTTATTTCAAAGATCCTTCCGGTAG lo AGGATATGCCCTTCATGGCTGATGGGACCCCCGTTGATATMTCCTTAATCCGCTCGGC GTGCCCGCGCGTATGMCTTCGGGCAGG I I I TGGAAACCCAI I I GGGGTGGATCTCT MGCMGGATGGAAAATAGAGGGTGATCCTGATTGGGCMAAGATATTCGGGTGCGC GAGGCGCAGCCTGATAGTAGGG' I ICMGTCCGGTT' I IGATGGAAl I ICCGMGGG GAGATAACCGGGCTTT I I I CTTCTGTATTTCCMMCCGTGATGGTGAGCGTGCTGTCG GTTCTGATGGTMGGCTATTCTCTATGATGGCCGCAC - 3' Les tentatives suivantes pour allonger cette séquence par la technique des amorces consensus ont ensuite échoué, ne permettant pas de poursuivre le séquençage du gène selon cette approche. En particulier, les amorces consensus suivantes choisies parmi les séquences les plus conservées des gènes rpoB d'autres bactéries phylogénétiquement proches de Tropheryma whippelli: Mycobacterium smegmatis, Mycobacterium leprse, Mycobacterium tuberculosis, Bacillus licheniformis, Salmonella enterica Typhimurium ont été testées sans succès: Balich7f: 5' - GGT MM GCG CAG TTC GG - 3' (SEQ ID N 19); Balich 460f: 5' - GTC ATT CCA AAC CGT GG - 3' (SEQ ID N 20); Balich37f: 5' - CTA TGC ACG CAT TAG CGA - 3'(SEQ ID N 21); Myco12F: 5' GM CCG CTT GAG GTT C - 3'(SEQ ID N 22); Myco43F: 5'- ACC TTC ATC ATC MC GG - 3'(SEQ ID N 23); Myco8R: 5' - GAT TCG TTG CGG GAC A 3'(SEQ ID N 24). 2 - Marche sur le gène par la technique du , Cet échec survenant sur la souche de Tropheryma whippelli en culture explique qu'il aurait été impossible d'obtenir a fortiori la totalité de la séquence du gène rpoB de Tropheryma whippelii à partir de prélèvements cliniques contenant la bactérie Tropheryma whippelii. Une deuxième technique dite de "marche sur le génome >, a été ensuite ' J2 appliquée afin de compléter la séquence de Tropheryma whippelli rpoB dans la direction 3' et dans la direction 5'. Cette technique a été décrite [(1995) Siebert et al. Nucl. Acids Res.23:1087-1088] et consiste à réaliser une banque de l'ADN génomique de la bactérie puis à amplifier des fragments de cette banque à l'aide d'amorces universelles s indépendantes de la séquence recherchée et d'amorces spécifiques de la séquence recherchée. Après avoir extrait une grande quantité d'ADN (de l'ordre du microgramme) purifié à partir de la souche bactérienne Tropheryma whippelli Twist décrite dans WO 00/58440, I'ADN bactérien est fragmenté par digestion enzymatique à l'aide d' endonucléases de restriction et les fragments ainsi obtenus sont liés à l' une de leu rs lo deux extrémités à des oligonucléotides synthétiques appelés adaptateurs fournis dans une trousse commercialisée (Genome Walker kit, Clontech Laboratories, Palo Alto, Californie). Des oligonucléotides complémentaires des adaptateurs, également fournis dans la même trousse de laboratoire, constituent alors des amorces d'amplification pour la technique d'amplification enzymatique en chane ( >, PCR). Ces oligonucléotides constituent donc des amorces universelles qui sont utilisées dans cette technique indépendamment de la séquence de l'ADN bactérien étudié. Afin de réaliser les réactions de PCR, un deuxième oligonucléotide doit être incorporé comme amorce d'amplification dans les réactions PCR. Cet oligonucléotide amorce doit répondre à plusieurs critères et la détermination de sa séquence constitue donc un aspect de I'invention: (1) la séquence de cet oligonucléotide est complémentaire de SEQ ID n 4 (2) cet oligonucléotide est positionné à une cinquantaine de bases de l'extrémité de SEQ ID n 4 (3) cet oligonucléotide a une longueur supérieure à 20 bases. L'utilisation d'un premier oligonucéotide présentant ces caractéristiques correspondant à la séquence SEQ ID n 5 = 5'- CTT ATC TCG CCC GTA TCA TG - 3' (position 627-646, inverse) a ainsi permis d'obtenir un fragment F6 (positions 146 à 646) de 500 paires de bases. Sur la base de la séquence ainsi obtenue, l'utilisation d'un second oligonucléotide spécifique correspondant à la séquence SEQ ID N 6: = 5' CCA GTC MM ACT ATC GAG CTG CM A - 3' (position 307-331, inverse) a permis l'amplification d'un fragment F8 de 1.100 paires de bases contenant l'extrémité 3' du gène rpoB (positions 1 à 331) et s'étendant en aval de cette extrémité. Par ailleurs, sur la base de la séquence SEQ ID N 4, on a allongé la séquence SEQ ID N 4 dans le sens 5' par l'utilisation d'un oligonucléotide SEQ ID N 7: 5' - TTC TCT ATG ATG GCC GCA C -3' (position 3168-3187) d'un fragment F5 (positions 3168 à 3668) de 500 paires de bases. Enfin, sur la base de ce dernier fragment, un oligonucléotide spécifique a été déterminé de séquence SEQ ID N 8: 5' - GCA GCG CTT CGG AGA GAT GGA G - 3' (position 3357-3379) qui a permis d'obtenir un fragment F7 de 1.500 paires de bases contenant l'extrémité 5' du gène rpoB (positions 3357 à 3657) et s'étendant au delà de cette extrémité. Cette technique de marche sur le génome suppose l'obtention d'une grande quantité d'ADN chromosomique de Tropheryma whippelIi et son application a été rendue possible par l'obtention de la souche Twist de la bactérie Tropheryma whipelli et l' extraction en grande quantité d' ADN à parti r de ladite souche. L'obtention d'une souche isolée et cultivée de Tropheryma whippelii était nécessaire pour la détermination de la séquence entière de rpoB chez la bactérie Tropheryma whippelli. lo L'amplification de la banque génomique à l'aide des oligonucléotides SEQ N 5 à SEQ N 8 a permis d'allonger dans les sens 3' et 5' la séquence SEQ ID n 4 afin d'obtenir la séquence complète du gène rpoB de Tropheryma whippelli souche Twist. La séquence complète du gène rpoB de Tropheryma whippelii obtenue par application des techniques d'amplification consensuelle et de marche sur le génome déposée dans GenBank avec comme numéro d'accès (accession number) AF243072, correspond à SEQ ID n 9. Au total, cette séquence SEQ ID N 9 a été obtenue selon le schéma de la figure n 1 qui précise la position des amorces consensuelles et des fragments successifs obtenus: Dans la séquence SEQ ID N 9 représentée ci-après, la séquence SEQ ID N 4 est soulignée, et la séquence en caractères gras sont dans l'ordre: -SEQ ID N 6 (séquence compiémentaire), -SEQ ID N 5 (séquence complémentaire), -SEQ ID N 11 (séquence identique), -SEQ ID N 12 (séquence complémentaire), -SEQID N 7 (séquence identique), -SEQID N 8 (séquence identique), SEQ ID n09 = 5' ATGCCMTGTGGCGTTATAACTGCCCCAGTGTTATTCCTGTAAACGCGCGGGGTGCTG TMAGTGTCGCAGCTTGCTATGCtGCCCTGGAI l IGCTACAATCGTTCTCGCTGTCTCG CCACTTGCCTTCATATTGCGGTCGGCTCTGGC l l l GTCGGGG l l lmCCCTCTTGCC CGCl l IGGGTGTCl l lGl l IGGGGTAGGTl l ITTGGCTTCTGCTAAGGGTAAMGGGT TTGTGCGATAGGTCGCTCCTCTCTCGGTMGATCTCTGATCCGCTTGAGGTTCCGMC CTTCTTGA l l l GCAGCTCGATAG l l l I GACTGGCTCATAGGCGGCCCTAGGTGGCGC ' GTCGCCCTTGATGCTTACCGCMMATCCGTCAGGCGCCCCAATTGCCGAAAAGAGT GGGCTGGATGAGGTGTTTGATGAGATATCCCCCATAGAAGATTCGGCTGGCAATATGC AGCTTAA' I ICTCCAAGCCGGTTCTGGAGGCCGAAGAGTTGAGCGTAAGGGAATGCC GTGTTCGAGGCAGGACCTATTCGGCGCCCCTGTATGTTGAGGCCGAGTTCATGAATC ATGATACGGGCGAGATAAGACTCAGACGGTTmATGGGCGAI I ICCCGCTTATGACT GACAAGGGTACATTCGTCATAMCGGCACCGAGAGAGTTGTTGTCTCTCAGCTTGTTC GCAGCCCTGGTG' I IA' I I IGAGCGCACGCCGGAAAAAAACAGTGAAAAGGATCTTT TTTCGGGCAGAATAATCCCCGCTCGCGGTGCTTGGCTAGAATTCGAAGTTGACAGGC ATGACCAGCTTGGCGTTAGGGTTGACAGGAAGCGCAGGCAGCCGGTTAI I ITCI I iCT lo GAGAGCMTTGGCATGACTGATGATGAGATCAGGGATGCATTTGGCGAGI I IGAATCA ATAAGCGTCCAGCACGMAAGAATATTGGGCTGTCCAGAGATGACGCGCTCCGGGAA ATATACCGTCGCGTTCGTCCGGGGGAGCAGGCATCGGCTGAGGCTGGGCGTGCACT CTTAGAGAATT' I IAC' I IACCAGCAGACG' I ITGACCTGGCAAGGGTTGGAAGGTAC AMGTAMTCGCAAACTCGGTGTTGATGTTGATCCAACTCGGATGGTTCTTACGAGGT CGGATATTATCGCAACAATTCGTTATCTCGCGGCCTTGCATCTCGGI I éCTCCGAGGTT GCGGTGCTAAACAGCAACAAGAGTGTACCMTTTCAACCGATGATATTGACCATCTTGG TAATAGGCGCATTAGACCGGTTGGTGAGTTGGTGCAAAACCAGCTCCGGGCTGGTCT GGCCAGAATGGAGCGGGTTGTGAGAGAGCGCATGACMCCCAGGATATAGAGGCGAT TATCCCGCAGACACTCATAAATGTCATGCCMTTGTTGCAGCGCTGMGGAG I I I TATG GCACCAGCCAGCTCTCGCAGI I IATGGATCAGMTMCCCCCTTGCCGGCCTTACGCA CAAGAGGCGCTTGTCAGCTCTTGGCCCCGGTGGACTGTCCCGCGMCGTGCCGGTG TTGAGGTTCGAGACGTAAATCCCAGTCATTACGGCAGGATGTGTCCGATCGAMCCCC AGMGGTCCAAATATTGGCCTTATAGGGTCTTTAGCGTGCTATTCCAGGGTGMCAGTT TCGGCI I IATAGMACCCCATATAGACGTGTTGTCAACGGAAAAGTCACAGACGATATT GAGTATATGACAGCAACACAGGAAGATGAGCATGCGATTGCCCAGGCMGCACTCCG CTGCGACCGGACAACTCGTTTGTTGATGAGCGTGTTCTGGTTCGCCGAAAAGGTGGA GAGGTCGAGGTTGTACCGGCCGATCAGGTTGATTATATGGATGTGTCTGGACGTCAGA TGGTGTCTGTTGCAACTTCGCTTATACCCTTCCTTGAACATAATGACGCTMCCGTGCT CTCATGGGATCGAATATGCAGAGACAGGCTGTACCACTTCTGGTTACGGAGAGTCCCC TGGTCGGCACAGGTATGGAGCGGTATGTAGCGATCGATGCGGGTGATGTTTTMTTGC CGAGGATCCGGGCATTGTGGGGGATG I TTCCGCTGATGTTGTCACTGTCAAGCAGGA TGACGGGMACATCGCGACTACCATGTTGGTAAAmGTTCGTTCAAATCAGGGCAAC TGTTACAACCAGCNAGTTGTGGTCCGATCCGGAGATCGTGTAGMMAAGGTACAGTTC TTGCACATGGTCCATGTACTGACAAAGGTGAGCTTAGTCTTGGTAGMATCTTCTGGTT GC I I I CATGCCCTGGGAGGGCTATMCTTTGAGGATGCGATAATTATCAGCCAGAATTT GGTCMGGACGACACCCTTTCGTCAATCCACATAGAAGAACATGAGGTTAGCACCCG GGATACGAAGCTGGGCAGTGAAGAAATAACGCGAGACCTTCCGAATGTAAGCATGGAT TACATAAAGGACTTGGACGAACGGGGTATTATCCGGATTGGCGCTGAGGTTGGCCCTG s GGGACAT' I IGGTTGGTAAGGTGACCCCMMGGGCGAGACCGAACTCAGCGCGGM GAGCGmGCTGAGGGCTATC' I IAACGAGAAGAGCATGGAGGTTCGCGACACAAGT TTGAAGGTCCCACACGGGCAGCAGGGGACCGTAATCGATGTTAAGTTGTTTGATGCG GTTGACGGTGMGATAAGCTGGGTGCCGGCATAAATCAGCGGGTTGTTGTGTACATAG CGCATAAGCGCAAGATTACGGAGGGAGATAAGCTTGCTGGGCGCCATGGCAACAAGG o GTGTTA I I I CAMGATCCTTCCGGTAGAGGATATGCCCTTCATGGCTGATGGGACCCC CGTTGATATMTCCTTMTCCGCTCGGCGTGCCCGCGCGTATGAACTTCGGGCAGGTT TTGGMMCCCATTTGGGGTGGATCTCTAAGCAAGGATGGMMTAGAGGGTGATCCTG ATTGGGCAAAAGATATTCGGGTGCGCGAGGCGCAGCCTGATAGTAGGGTTTCMGTC CGG' I I I IGATGGAATTTCCGAAGGGGAGATAACCGGGC' I I ITTCTTCTGTAI I ICCA AACCGTGATGGTGAGCGTGCTGTCGGTTCTGATGGTAAGGCTATTCTCTATGATGGCC GCACGGGGGAGCCCTTCCCGGAACCTATTTCCGTCGGTTACATGTATGTCCTAAAGTT GCACCATCTGGTAGACGACMGATTCATGCTCGCTCAACAGGACCGTATTCGATGATA ACCCAGCMCCGCTGGGCGGCMGGCACMTTCGGTGGGCAGCGCTTCGGAGAGAT GGAGGTGTGGGCGCTTGAGGCATATGGTGCAGCGCACGCACTCCAAGAGTTGCTM CAATMMGTCTGATGACGTTGTTGGCCGGGTMMGGTATACGATGCGATTGTCMGGG TTATCCAATTCCTACCCCCGGTGTGCCTGMTCA' I IAAGGTTATTGTCAAGGAAATGC AGTC I i I GTGCATMATATTGAGGTTG I I I CTGACGGTGAGGATGATG I I I CCGCTGAT GCTGAAACCCTACAGATAGMGMGGTCTGGATACGTCTCCCAAGGTAGAAGTTGGTT CGCTTGMGAGGTCTAGTCGGGCATTCGCMAAGAGGTTTGI I I IGTCTACATCI I I IA AAGAAATCCGGGTTAGTATGGCCACGACTGMGATATTCGTCGTTGGTCATATGGCGTT GTAA - 3' Cette séquence mesure 3.657 paires de bases et présente un contenu en cytosine plus guanosine de 50.4%. Exemple 2: Détection spécifique du gène rpoB de Tropheryma whippelli. Deux amorces spécifiques ont été déterminées à partir de la SEQ ID n 9 de façon à encadrer de façon spécifique un fragment de 507 paires de bases du gène rpoB de Tropheryma whippelli, de séquence SEQ ID N 10 = 5' ' TTGAGCGCACGCCGGAAAAAAACAGTGMAAGGATCI I I lTTCGGGCAGAATAATCC * CCGCTCGCGGTGCTTGGCTAGMTTCGMGTTGACAGGCATGACCAGCTTGGCGTTA GGGTTGACAGGAAGCGCAGGCAGCCGGTTATI I ICTTTCTGAGAGCAATTGGCATGA CTGATGATGAGATCAGGGATGCA I I I GGCGAGTTTGAATCMTAAGCGTCCAGCACGA s AAAGMTATTGGGCTGTCCAGAGATGACGCGCTCCGGGAMTATACCGTCGCGTTCGT CCGGGGGAGCAGGCATCGGCTGAGGCTGGGCGTGCACTCTTAGAGAAI I lTTACTTT ACCAGCAGACG' I ITGACCTGGCAAGGGTTGGAAGGTACAMGTMMTCGCAAACTC GGTGTTGATGTTGATCCMCTCGGATGGTTCTTACGAGGTCGGATATTATCGCMCAAT TCGTTATCTCGCGGCCTTGCATCTCGG I I I CTCCGAGGTTGCGGTGC - 3' La détermination de ces deux amorces SEQ ID N 11 et SEQ ID N 12 a été réalisée in silico de façon à respecter des contraintes propres aux amorces d' identification moléculaire. L'énoncé de ces contraintes fait partie intégrante du processus inventif en ce qu'il n'est pas disponible actuellement dans la littérature scientifique: (1) longueur de 18 22 paires de bases 2 séquences des deux amorces présentant une température de fusion voisine 3 séquences des deux amorces ne permettant pas d'autohybridation ni de complémentarité 4 séquence encadrée par ces deux amorces spécifique de la bactérie Tropheryma whippelii; cette condition est vérifise après alignement de la SEQ ID n 9 avec l'ensemble des séquences des gènes bactériens rpoB disponibles dans les banques de données informatiques; 5 séquence encadrée par ces deux amorces présentant une longueur optimale d'environ 500 paires de bases; cette longueur optimale correspondant à un compromis entre la recherche d'une région d'identification la plus longue possible permettant donc une discrimination la plus grande possible entre une séquence quelconque issue de la SEQ n 9 et l' ensemble des séquences rpoB bactériennes homologues connues et la recherche d'une région d' identification la plus courte possible 2s afin d'augmenter le plus possible la sensibilité de la détection moléculaire. Il est en effet acquis qu'il existe une relation inverse entre sensibilité de détection et longueur de la séquence d'ADN bactérien à détecter dans un prélèvement. Enfin, la taille de 500 paires de bases correspond à la longueur moyenne de séquence obtenue après un run sur un séquenceur automatique actuellement disponible. Ces deux amorces sont localisées so respectivement en position 713-745 et 1181- 1200 de la séquence SEQ ID N 9 du gène rpoB de la bactérie Tropheryma whippelLi. La séquence de ces deux amorces est la suivante: SEQ IDn 11 =5'-TTGAGCGCACGCCGGMA AA-3' - [0 SEQ ID n012 = 5'- GCA CCG CAA CCT CGG AGA M - 3' (amorce inverse complémentaire) La région du gène rpoB de Tropheryma whippelli encadrée par ces deux amorces, région dénommée SEQ ID N 10 (position 713-1200) présente le plus haut taux de s discrimination à savoir un pourcentage d'homologie inférieur à 70% par rapport aux autres régions du même gène, y compris par rapport à la région SEQ ID N 3 présentant un pourcentage d'homologie de 75 à 85 %. Il est important de maintenir le taux de discrimination le plus haut afin de tenir compte de la marge d'erreur introduite lors des manipulations des échantillons en pratique de laboratoire diagnostique et qui résultent des erreurs d'amplification commises par les polymérases thermostables, en particulier la Taq polymérase et des erreurs de séquençage. Les erreurs ainsi introduites sont de l'ordre de 0.5%. Le gène rpoB a été amplifié par la tech nique PCR util isant 35 cycles d' amplification comportant chacun une phase de dénaturation de 94 C pendant 30 secondes, une phase d'hybridation des amorces SEQ ID n 11 et 12 à 58 C pendant 30 secondes et une phase d'élongation à 72 C pendant 60 secondes. Le produit d'amplification est visualisé après coloration par le bromure d'éthidium (Figure 2). Les bactéries contrôles: Mycobacterium avium, Mycobacterium taberculosis, Nocardia otitidiscaviarum, Escherichia coli, Sfaphylococcus epidermidis, Corynebacterium amycolatum n'ont pas été amplifiées par les oligonucléotides amorces SEQ ID n 11 et 12, démontrant la spécificité des ces amorces sur des espèces bactériennes phylogénétiquement proches de Tropheryma whippelii. Cette technique a été appliquée à la détection de la présence et de l'absence du gène rpoB de Tropheryma whippelii dans dix blopsies jéjunales obtenues chez dix patients différents dont trois blopsies avaient auparavant été montrées contenir de l'ADN de Tropheryma whippelIi de façon indépendante et dont sept avaient été montrées exemptes d'ADN de Tropheryma whippelli. Cette technique a été appliquée de façon aveugle après codage des dix prélèvements, les expérimentateurs ne connaissant pas le code et ne connaissant donc pas la qualité des prélèvements travaillés. Cette technique a permis de détecter 100% de vrais positifs et 100% de vrais négatifs. Les produits d'amplification obtenus pour les trois biopsies positives ont été séquencés et les trois séquences obtenues avaient 100% d'homologie avec SEQ ID n 10. - Sur la figure 2 sont représentés les produits d'amplification PCR obtenus à partir de dix biopsies jéjunales prélevées chez des patients présentant une maladie de Whipple confirmée (colonnes D, I et K) et ne présentant pas une maladie de Whipple (colonnes C, E, F. G. H. J. et L). Les colonnes A et N représentent le marqueur de poids moléculaire, s les colonnes B et M correspondent aux témoins négatifs d'amplification (eau stérile). Les produits d'amplification sont obtenus après incorporation des amorces SEQ ID n 11 et n 12 selon l'invention et sont visualisés par coloration au bromure d'éthidium après électrophorèse sur un gel d'agarose. 23 2824843 REVENDICATIONS 1. Séquence totale du gène rpoB de la bactérie Tropheryma whippelIi, caractérisée en ce qu'elle est constituée par la séquence nucléotidique SEQ ID n 9. s 2. Oligonucléotide comprenant une séquence du gène rpoB de la bactérie Tropheryma whippelR comprise dans la séquence nucléotidique SEQ ID N 9 et non entièrement comprise dans la séquence SEQ ID N 3, ou une séquence compiémentaire de ladite séquence. 3. Oligonucléotide selon la revendication 2 choisi parmi les oligonucléotides ayant une séquence nucléotidique d'au moins 10, motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans la séquence SEQ ID n 9 et non entièrement comprise dans la séquence SEQ ID n 3, de préférence non comprise dans la séquence SEQ ID N 3, et parmi les oligonucléotides complémentaires de ces oligonucléotides. 4. Oligonucléotide selon la revendication 3, caractérisé en ce qu'il présente une séquence nucléotidique d'au moins 10, motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans l'une des séquences SEQ ID N 10, SEQ ID N 11 et SEQ ID N 12, et leurs séquences complémentaires. 5. Oligonucléotide selon la revendication 4, caractérisé en ce qu'il présente une séquence choisie parmi les séquences complètes SEQ ID N 11 et SEQ ID N 12 et leurs séquences complémentaires. 6. Oligonucléotide selon la revendication 3, caractérisé en ce qu'il présente une séquence choisie parmi: - les séquences d'au moins 10 nucléotides consécutifs incluses dans une séquence choisie par les séquences SEQ ID N 5 à 8 et SEQ ID N 17, et leurs 2s séquences complémentaires, et - de préférence, lesdites séquences SEQ ID N 5 à 8 et SEQ ID N et 17 complètes et leurs séquences complémentaires. :;::;: ::: - - 24 2824843 7. Sonde pour la détection, dans un échantillon biologique, de bactéries de l'espèce Trophyrema whippeJD caractérisée en ce qu'elle comprend un oligonucléotide selon l'une des revendications 2 à 6. 8. Sonde selon ia revendication 7, caractérisée en ce qu'elle est constituée s par un oligonucléotIde choisi parmi: - les oligonucléotides ayant une séquence nucléotidique d'au moins 10 nucléotides consécutifs incluses dans l'une des séquences SEQIDN 10,SEQIDN 11 et SEQIDN 12, et leurs séquences complémentaires, et - les oligonucléotides ayant une séquence nucléotidiques choisies parmi les lo séquences complètes SEQ ID N 11 et SEQ ID N 12 et ieurs séquences complémentaires. 9. Procédé de détermination de la présence ou de l'absence d'une bactérie de l'espèce Tropheryma whippelil dans un échantillon contenant ou susceptible de contenir des acides nucléiques d'au moins une telle bactérie, caractérisé en ce qu'on met en contact ledit échantillon avec au moins une sonde selon l'une des revendications 7 ou 8, puis on détermine la formation ou l'absence de formation d'un complexe d'hybridation entre ladite sonde et l'acide nuclélque de l'échantillon. 10. Amorce nucléotidique utilisable pour la synthèse d'un acide nuclélque de Thropheryma whJppelIi, de préférence la synthèse d'une séquence spécifique du gène rpoB de Tropheryma whippelR en présence d'une polymérase, caractérisée en ce qu'elle comprend un oligonuciéotide selon l'une des revendications 2 à 6. 11. Amorce selon la revendication 10, caractérisée en ce qu'elle est constituée par un oligonucléotide choisi parmi: - les oligonucléotides ayant une séquçnce nucléotidique d'au moins 10 nucléotides consécutifs incluses dans l'une des séquences SEQIDN 10,SEQIDN 11 et SEQIDN 12, et leurs séquences complémentaires, et - les oligonucléotides ayant une séquence nucléotidiques choisies parmi les séquences complètes SEQ ID N 11 et SEQ ID N 12 et leurs séquences complémentaires. ::; 3- 25 2824843 12. Procédé de détermination de la présence ou de l'absence d'une bactérie de l'espèce Tropheryma whippelii dans un échantillon contenant, ou susceptible de contenir des acides nucléiques d'au moins une telle bactérie, caractérisé en ce qu'on réalise une amplification de l'ADN de l' échantillon à l'aide de deux amorces selon l' une des revendications 10 ou 11 et on compare la séquence obtenue avec la séquence SEQ IDN 9. 13. Procédé selon la revendication 12, caractérisé en ce qu'on compare la séquence d u p roduit d' amplification obtenu en réalisant au p réalable son séquençage. 14. Procédé la revendication 12 ou 13, caractérisé en ce qu'on réalise une o amplification de l'ADN de l'échantillon à l'aide des deux amorces SEQ ID N 11 et 12 et on