FR 2787581 A1 20000623 FR 9815882 A 19981216 PROCEDE ET EQUIPEMENT DE GARNISSAGE DE SITES D'UNE BIOPUCE Domaine technique La présente invention concerne un procédé et un équipement de garnissage de sites d'une biopuce. L'association de techniques empruntées aux domaines de la microélectronique et de la biologie a permis le développement et la réalisation de puces d'analyse biologique et en particulier de puces à ADN spécifiques pour l'analyse du séquençage de génomes ou pour la détection et l'identification de gènes ou de mutations génétiques. Ces outils, qui sont utilisés pour l'analyse médicale, la recherche en biologie, et la recherche en pharmacie, sont essentiellement basés sur la capacité d'hybridation (ou d'appariement) de deux brins d'ADN ou d'oligonucléotides complémentaires avec éventuellement reconstitution de la double hélice d'ADN. Une puce d'analyse biologique est utilisée comme un capteur d'informations génétiques, par exemple, pour la détection de la séquence d'un échantillon d'ADN cible. Le principe d'analyse consiste à utiliser une puce équipée d'une matrice de sondes comportant, par exemple, des brins d'oligonucléotides de séquence connue, greffées à la surface de la puce. Dans la suite du texte une telle puce est désignée par "biopuce". L'hybridation entre les oligonucléotides cibles et certaines sondes de la puce est ensuite détectée par des moyens optiques, par exemple par fluorescence dans le cas o les cibles à analyser portent un marqueur fluorescent. B 13192.3/EW w-r Cir Sur la biopuce on localise une pluralité de sites recevant chacun des sondes spécifiques d'un type donné. Les sondes présentes dans les différents sites sont généralement distinctes. Les sites peuvent être définis, par exemple, par des électrodes formées à la surface d'un substrat et/ou se présenter comme des dépressions ou des cuvettes pratiquées dans le substrat. De façon plus précise, l'invention concerne un procédé de garnissage des sites. Ce garnissage peut comporter soit la formation sur les sites d'un composé comportant les molécules sondes (brins d'oligonucléotide) soit simplement la formation d'un composé destiné à accueillir ultérieurement ces molécules. Etat de la technique antérieure On connait différentes méthodes permettant la mise en place sélective des molécules sondes sur les sites des biopuces. Une première méthode est désignée par méthode d'adressage photochimique. Selon cette méthode, les sondes d'oligonucléotides sont synthétisées en parallèle, sur la puce, par des procédés alliant des techniques de chimie combinatoire et de photolithographie. Les oligonucléotides sont synthétisés par un adressage photochimique comprenant des cycles de déprotection sélective par la lumière d'un nucléoside puis le couplage avec le nucléoside suivant, par une de ses fonctions hydroxyles, l'autre étant protégée. On réalise ainsi la synthèse in situ de l'oligonucléotide pas à pas sur le substrat. B 13192.3/EW Cette méthode nécessite la réalisation d'un nombre de masques de lithographie (verre + chrome) égal à celui du nombre de nucléotides à fixer. Chaque niveau de masquage permet de déprotéger les n terminaisons des nucléotides sur lesquels on doit greffer le nucléoside suivant Une deuxième méthode, dite par micropipetage, consiste pour l'essentiel à déposer sur chaque site de la puce (plots en polymères, ou microcuvettes usinées dans le substrat, ou microélectrodes) des nanogouttes d'oligonucléotides synthétiques, à l'aide de micropipettes alimentées par un robot dispenseur. Cet adressage mécanique permet de distribuer un oligonucléotide de séquence connue en un site précis. Les documents (1), (2) et (3) dont les références sont précisées à la fin de la présente description, illustrent les méthodes décrites ci- dessus, ainsi qu'une troisième méthode décrite ci- après. La troisième méthode de mise en place des oligonucléotides s'applique à des biopuces pour lesquelles les sites sont des électrodes conductrices électriquement adressables. Elle consiste pour l'essentiel à réaliser une électropolymérisation d'un mélange de pyrrole et de pyrrole fonctionnalisé avec un oligonucléotide donné, respectivement sur une électrode (site) donnée, adressée électriquement. L'adressage successif des électrodes de la biopuce, en contact avec différents mélanges électro-polymérisables permet de garnir successivement toutes les électrodes (sites). L'adressage sélectif d'un grand nombre d'électrodes peut avoir lieu au moyen d'un circuit multiplexeur intégré dans la biopuce. B 13192.3/EW Les méthodes exposées ci-dessus comportent généralement un grand nombre d'opérations et ne permettent pas la préparation de biopuces avec un nombre élevé de sites, dans de bonnes conditions de rendement. De plus, dans le cas de la troisième méthode exposée, la réalisation d'un système d'adressage complexe augmente la complexité des puces et reste peu compatible avec une augmentation du nombre et de la densité des sites sur une puce. Exposé de l'invention La présente invention a pour but de proposer un procédé de garnissage de biopuces ne présentant pas les limitations des procédés exposés ci-dessus. En particulier un but est de proposer un tel procédé permettant de traiter collectivement et à très faible coût un grand nombre de biopuces. Un autre but est de proposer un procédé compatible avec le traitement de biopuces de très forte densité, c'est-à-dire présentant un nombre élevé de sites par unité de surface. Un but est enfin de proposer un procédé permettant d'utiliser des biopuces sans système d'adressage interne et mettant en oeuvre un équipement de travail réduit. Pour atteindre les buts mentionnés ci-dessus, l'invention a plus précisément pour objet un procédé de garnissage de sites d'une biopuce, caractérisé par une polymérisation par oxydation chimique sur les sites de monomères dits monomères hôtes, et de monomères fonctionnalisés. B 13192.3/EW Le procédé de l'invention s'applique de façon générale à l'immobilisation de sondes biologiques ou chimiques sur des polymères. Les sondes sont par exemple des oligonucléotides ou des molécules biologiques, des colorants, de la biotine, des antigènes ou des anticorps. Les polymères peuvent être obtenus à partir de monomères polymérisables choisis en particulier parmi les pyrroles, les thiophènes, les anilines ou leurs dérivés. La description qui suit se rapporte plus explicitement à un exemple particulier dans lequel les monomères hôtes et les monomères fonctionnalisés sont des monomères pyrroles. Toutefois, on comprendra que l'invention n'est pas limitée à cet exemple et que d'autres composés monomères, notamment parmi ceux cités ci-dessus, peuvent être mis en oeuvre. Comme indiqué plus haut, on entend par garnissage aussi bien la mise en place sur les sites d'un revêtement sur lequel sont greffées des sondes, par exemple des oligonucléotides, que la mise en place d'un revêtement pouvant recevoir ultérieurement des sondes. Le type de revêtement de garnissage réalisé dépend du type de monomères fonctionnalisés mis en oeuvre. Les monomères pyrroles fonctionnalisés sont compris comme étant des composés ayant une fonction chimique sur laquelle est fixée ou sur laquelle peut être fixée ultérieurement une sonde et notamment un oligonucléotide. Cette fixation peut être obtenue par liaison chimique directe ou, comme décrit plus loin, par l'intermédiaire d'un agent de liaison bi- fonctionnel dit agent de réticulation. B 13192.3/EW Les sites de la biopuce peuvent être réalisés de préférence, mais non obligatoirement, sous forme de microcuvettes dont le fond, et éventuellement les parois latérales, sont recouverts d'une couche d'accrochage telle qu'une couche d'or. Le garnissage peut aussi avoir lieu directement sur une surface de verre ou de plastique (ou autre) de la puce. Selon un aspect particulier de l'invention, on peut provoquer la polymérisation par mise en contact d'un mélange comportant des monomères hôtes et des monomères greffés, avec au moins un réactif oxydant. Cette particularité est avantageuse dans la mesure o elle permet de contrôler l'instant auquel la polymérisation a lieu. Elle est mise à profit notamment pour le traitement collectif de biopuces présentant une forte densité de sites. Le réactif oxydant est par exemple un sel ferrique qui peut être utilisé sous forme d'une solution aqueuse oxydante ou dispersée dans une matrice de polymères. Le sel ferrique se présente par exemple sous forme de chlorure (FeCl3), de perchlorate, de paratoluène sulfonate (PTS) ou de persulfate. Dans une première mise en oeuvre possible du procédé, celui-ci peut comporter une étape de mise en place des monomères hôtes et fonctionnalisés sur au moins un site choisi et une étape de mise en place du réactif oxydant sur ledit site pour l'additionner aux monomères. Le mélange de monomères et du réactif oxydant, lorsqu'ils sont liquides, peuvent être déposés sous forme de nanogouttes au moyen d'un robot dispenseur par capillarité ou avec une plume (type robot BROWN) ou au B 13192.3/EW moyen d'une impression par jets liquides (type robot GESIM) avec, par exemple, une tête piézo-électrique. L'ordre des étapes de mise en place du mélange de monomères et du réactif oxydant n'a a priori pas d'importance. Toutefois, il convient de noter que la polymérisation est déclenchée généralement dès la mise en contact des monomères et du réactif. Ainsi, pour éviter tout problème d'obstruction et de polymérisation dans le robot dispenseur, on peut utiliser un robot dispenseur avec au moins une première tête de distribution d'un mélange de monomères et au moins une deuxième tête de distribution de réactif pour distribuer séparément, mais simultanément, sur un même site les monomères et le réactif. Selon un perfectionnement, le procédé peut aussi comporter, dans l'ordre: a) une étape de formation d'au moins un mélange, dit mélange de garnissage, comportant les monomères hôtes, les monomères fonctionnalisés et le réactif oxydant, et b) la mise en place du mélange de garnissage sur au moins un site, les étapes a) et b) étant opérées à une température suffisamment basse pour retarder la polymérisation au moins jusqu'à l'achèvement de l'étape b). Grâce au refroidissement, par exemple à une température de l'ordre de 5 C, il est possible de retarder de plusieurs minutes jusqu'à quelques heures la polymérisation. Le retardement peut être amélioré en utilisant un sel ferrique oxydant sous la forme d'un anion présentant un effet stérique important (tel que le paratoluène sulfonate). B 13192.3/EW Ainsi, il est possible d'utiliser un robot avec une (ou plusieurs) tête(s) commune(s) dans laquelle (lesquelles) le mélange de garnissage, incluant les monomères et le réactif, peut circuler sans provoquer d'obstruction. Selon une mise en oeuvre du procédé, constituant une variante, le procédé peut encore comporter les étapes suivantes: a) formation sur au moins un site de la biopuce d'un revêtement en un matériau polymère contenant un réactif oxydant, b) mise en place sur ledit site d'un mélange de monomères hôtes et de monomères fonctionnalisés. Le matériau polymère contenant le réactif est par exemple un polyvinylalcool (PVA) ou un polyvinylchlorure (PVC) qui a la fonction d'une matrice dans laquelle est dispersé le sel ferrique oxydant. La formation du revêtement de matériau polymère comportant le réactif peut comporter la mise en place d'une couche dudit matériau, comportant un réactif oxydant photoréductible, sur tout ou partie de la biopuce puis l'insolation de la couche à travers un masque préservant des sites sélectionnés, pour réduire sélectivement le réactif oxydant en dehors desdits sites sélectionnés. Selon encore une autre variante, le procédé peut comporter les étapes suivantes: a) la formation autour des sites d'une couche de polymère sacrificiel, b) la mise en contact alternativement de la puce avec une solution d'un mélange de monomères pyrroles hôtes et de monomères pyrroles fonctionnalisés, et B 13192.3/EW avec une solution oxydante, jusqu'à l'obtention d'une couche polymère polypyrrole, c) dissolution de la couche de polymère sacrificiel et élimination par pelage de la couche de polypyrrole en dehors des sites. Comme évoqué précédemment, le procédé peut être mis en oeuvre pour garnir les sites directement avec des polypyrroles sur lesquels sont déjà greffés des oligonucléotides, soit pour garnir les sites avec des polymères pouvant recevoir ultérieurement des oligonucléotides. Dans ce dernier cas, on peut utiliser des polymères polypyrroles fonctionnalisés pourvus de fonctions chimiques propres à la fixation d'oligonucléotides. De plus, après l'étape c), on peut mettre en place différents oligonucléotides sur lesdits polymères fonctionnalisés de différents sites de la puce, les oligonucléotides étant eux-mêmes fonctionnalisés avec une fonction chimique apte à établir une liaison avec la fonction chimique du polypyrrole. La liaison entre fonctions chimique peut être directe, par fonctions complémentaires, ou être réalisée par l'intermédiaire d'un agent de réticulation bifonctionnel prenant place entre les fonctions chimiques de liaison des polymères polypyrroles et les oligonucléotides. Dans le cas o le garnissage a été effectué à partir de monomères dépourvus d'oligonucléotides, on peut mettre en place les oligonucléotides sur les sites, avant ou après la polymérisation. D'autres caractéristiques et avantages de la présente invention ressortiront mieux de la description B 13192.3/EW qui va suivre, en référence aux figures des dessins annexés. Cette description est donnée à titre purement illustratif et non limitatif. Brève description des figures - La figure 1 est une représentation schématique simplifiée d'un équipement de mise en oeuvre du procédé. - Les figures 2 et 3 sont des coupes schématiques simplifiées et partielles d'une puce dans des états successifs lors d'une mise en oeuvre particulière du procédé de l'invention. - Les figures 4, 5 et 6 sont des coupes schématiques simplifiées et partielles montrant des étapes successives d'une autre mise en oeuvre particulière de l'invention. - Les figures 7 à 11 sont des coupes schématiques simplifiées et partielles montrant des étapes successives d'encore une autre possibilité de mise en oeuvre de l'invention. - Les figures 12, 13 et 14 sont des représentations schématiques en coupe de sites de biopuces garnis conformément à l'invention. Description détaillée de modes de mise en oeuvre de l'invention Dans la description qui suit, des éléments ou parties identiques ou similaires des différentes figures sont repérés avec les mêmes signes de référence. L'équipement représenté sur la figure 1 comporte une table de déplacement 10 à deux dimensions, B 13192.3/EW Il.--11r, encore appelée table XY, sur laquelle sont disposées une pluralité de biopuces 100. Les biopuces se présentent chacune sous la forme d'un substrat 102 dans lequel sont pratiquées une pluralité de microcuvettes 104, sous la forme de dépressions, agencées de préférence selon un réseau orthogonal. Le matériau du substrat peut être, par exemple, un matériau isolant tel que l'alumine, l'oxyde de tantale, le verre, le silicium ou les matières plastiques. Les microcuvettes 104 constituent respectivement les sites de la biopuce et sont de préférence tapissées par un revêtement en or formé, par exemple, par métallisation sélective. Pour des raisons de simplification, seul un nombre réduit de biopuces avec un nombre réduit de microcuvettes 104 sont représentées. Les microcuvettes 104 présentent une largeur ou longueur de l'ordre de 50 à 650 jim et une profondeur de l'ordre 5 à 100 pm. A titre d'exemple, des cuvettes carrées de 100 pm de côté et de 120 pm de profondeur peuvent être agencées régulièrement avec un pas de 15 pm. Un support thermostaté 12, séparé de la table XY 10, comporte un ensemble de micropuits 14 susceptibles de contenir des liquides, et des moyens de refroidissement non représentés, tels qu'une enceinte cryogénique ou un élément Peltier, destinés à refroidir les liquides. Le volume des micropuits est, par exemple de quelques microlitres à quelques millilitres. Les micropuits 14 sont remplis de mélanges de monomères pyrroles non fonctionnalisés, ou hôtes, et de monomères pyrroles fonctionnalisés. B 13192.3/EW Il D 111-dir Les monomères fonctionnalisés possèdent une fonction chimique pouvant fixer, ou étant fixée, directement ou indirectement à un oligonucléotide. Le type et la proportion de monomères pyrroles fonctionnalisés contenus dans les mélanges des différents micropuits est dicté par le type de garnissage et la densité des sondes dont on veut équiper les différents sites de la biopuce. Lorsque les mélanges des micropuits sont refroidis, il peuvent contenir également un réactif oxydant sous la forme d'un sel ferrique. Le refroidissement des mélanges permet de retarder la polymérisation. Lorsque le mélange des micropuits n'est pas refroidi, le sel ferrique, en solution aqueuse est séparé des monomères. Un ou plusieurs micropuits sont réservés, par exemple, à la solution de sel ferrique. La référence 20 désigne un robot dispenseur avec quatre têtes 22, prévu pour venir prélever les mélanges contenus dans les micropuits 14 et pour venir en déposer respectivement une certaine quantité sur les sites 104 des biopuces 102. Les quantités de liquide délivrées par le robot peuvent varier de quelques dizaines de picolitres à quelques nanolitres, ou plus, suivant l'épaisseur de la couche de garnissage que l'on souhaite obtenir et en fonction de la surface du site, ou du volume de la microcuvette qui le constitue. Dans le cas o les monomères et le réactif oxydant ne sont pas mélangés, deux têtes du robot sont respectivement associées pour disposer, simultanément ou non, sur les sites, les monomères et le réactif oxydant. B 13192.3/EW Lorsque les monomères refroidis et le réactif oxydant sont mélangés, les têtes du robot sont indépendantes et prélèvent directement dans les micropuits le mélange destiné à chaque site. La multiplication du nombre de têtes du robot est alors simplement destinée à accélérer le traitement de garnissage. Dans une réalisation particulière, le nombre de micropuits 14 peut être choisi égal au nombre de sites 104 de chaque biopuce, de sorte que chaque micropuits contient le mélange destiné à un seul site donné de chaque biopuce. La figure 2 représente à plus grande échelle, et en coupe, une portion d'un substrat 102 avec plusieurs sites 104, sous la forme de cuvettes, dans lesquels sont déposés respectivement des nanogouttes 106 de mélange de monomères et de sel ferrique. Les nanogouttes délivrées par l'extrémité d'une tête 22 d'un robot, sous la forme de micropipette, viennent en contact avec une couche d'or 108 qui tapisse le fond et les parois latérales des microcuvettes. Une flèche 110 indique un déplacement du substrat 102, entraîné par la table XY non représentée, pour le remplissage successif des microcuvettes des sites. Les monomères contenus dans les gouttes 106 ne polymérisent pas immédiatement en raison du refroidissement initial du mélange. Le processus de polymérisation a lieu sur les sites, en contact avec le revêtement en or et est accéléré lorsque le liquide n'est plus refroidi. B 13192.3/EW La figure 3 montre de façon schématique l'état des sites 104 après la polymérisation. Les sites sont recouverts d'un revêtement polymère de polypyrrole fonctionnalisé 114 sur lequel les groupements chimiques fonctionnels (fonctions chimiques de liaison et/ou oligonucléotides) sont indiqués sommairement avec la référence 116. Le polypyrrole se présente sous la forme d'un dépôt noir et insoluble, et adhère parfaitement au revêtement d'or 108. Selon une variante, il est possible de disposer dans les microcuvettes successivement une gouttelette de mélange de monomère puis une gouttelette de réactif. La polymérisation, à température ambiante, a alors lieu instantanément, ou en quelques minutes, pour obtenir un résultat semblable également à la figure 3. Après la polymérisation, la biopuce est séchée puis rincée par trempage dans un bain aqueux. Elle peut aussi être rincée au moyen d'un solvant par centrifugation sur une tournette, de façon à éliminer tout excès de réactif. Les excès de réactif sont limités en choisissant judicieusement les quantités de monomères et de solution oxydante, pour l'obtention d'un film de polypyrrole avec une épaisseur et une densité de fonctions chimiques souhaitées pour la formation de sondes. Une autre possibilité de mise en oeuvre de l'invention est décrite à présent en référence aux figure 4 à 6. La figure 4 montre, à plus grande échelle, une portion de biopuce, avec deux sites 104 sous la forme de microcuvettes. B 13192.3/EW [irF -irt,- La surface principale de la biopuce portant les sites 104 est recouverte d'une couche 120 continue de polymère. La couche peut être formée par dépôt à la tournette, c'est-à-dire par centrifugation, d'une solution d'un polymère contenant un sel ferrique. Il s'agit, par exemple, d'une couche de polyvinylchlorure ou de polyvinylacool dans laquelle est dispersé le sel ferrique oxydant. Elle est désignée ci- après par "couche de réactif". L'épaisseur de la couche de réactif 120 est comprise par exemple entre 0,5 à 3 pin pour des microcuvettes d'une profondeur de à 30 pm. Lorsqu'un robot dispenseur dépose une goutte de mélange de monomères pyrroles sur la couche 120, une polymérisation au contact du sel ferrique de ladite couche a lieu et conduit à la formation d'un polymère pyrrole de la façon décrite précédemment. Selon un aspect particulièrement avantageux, qui permet d'éviter la formation de polymère par dépôt accidentel de mélange en dehors des sites, on inhibe les sels ferriques en dehors des sites. De façon plus précise, on utilise à cet effet un sel ferrique sensible à la lumière comme décrit dans le document (4) dont la référence est précisée à la fin de la description. Comme le montre la figure 4, on dispose au- dessus de la surface principale de la biopuce 102 un masque 122 présentant des ouvertures qui coïncident avec les portions de la surface situées en dehors des sites 104. La biopuce est alors soumise à une insolation par un rayonnement U.V., ou visible, à travers le masque pour réduire sélectivement dans les zones B 13192.3/EW exposées le fer ferrique de la couche de réactif 120, en fer ferreux. L'insolation, figurée par des flèches 124, peut être effectuée au moyen d'une lampe à vapeur de mercure, non représentée. Au terme de cette opération, on obtient, comme le montre la figure 5, une couche de réactif 120 dont certaines parties 120a, coïncidant avec les sites 104, sont capables de provoquer la polymérisation des monomères pyrroles, et dont des parties complémentaires b ont perdu leur propriété de réactif. Ainsi, des nanogouttes qui débordent, accidentellement ou non, des microcuvettes, ne peuvent pas subir de polymérisation. La figure 6 montre la puce de la figure 5 après dépôt sur les sites de monomères et après polymérisation. On obtient un revêtement de polymère pyrrole fonctionnalisé tel que décrit en référence à la figure 3. Le revêtement de polymère pyrrole n'est présent que sur les sites 104, tandis que les régions 120b de la couche de réactif en restent dépourvues. La description qui suit, en référence aux figures 7 à 11 concerne encore une autre possibilité de mise en oeuvre de l'invention. La figure 7 montre une biopuce comprenant un substrat de silicium 102 recouvert d'une couche 108 continue en or. Sur la couche d'or on forme une couche sacrificielle 130 de polymère ou de résine pouvant être éliminée de façon sélective par rapport au polymère fonctionnalisé (polypyrrole), par dissolution dans un solvant approprié. B 13192.3/EW La couche sacrificielle est de préférence une couche photosensible de façon à pouvoir être localement éliminée par des techniques usuelles de photolithographie, et mettre ainsi à nu des portions de la couche d'or. La mise en forme de la couche sacrificielle permet de définir des sites 104 sur la biopuce sous la forme de cuvettes dont le fond est constitué par la couche d'or et dont les parois latérales sont constituées par la couche sacrificielle. Comme le montre la figure 8, à plus petite échelle, la biopuce est successivement et alternativement plongée dans un bain d'une première solution 142 contenant un mélange de monomères hôtes et de monoméres fonctionnalisés, et dans une solution oxydante 144 d'un sel ferrique. A titre d'exemple, le mélange de la première solution 142 peut contenir des monomères pyrrole et des monomères pyrroles fonctionnalisés avec des fonctions amine, thiol, succinimide ou autres, en solution dans un mélange eau/éthanol. La proportion des monomères fonctionnalisés est par exemple de 1%. On obtient au terme de ce traitement une biopuce conforme à la figure 9, avec une couche 114 de polypyrrole fonctionnalisé recouvrant notamment l'ensemble de la surface principale, c'est-à-dire la douche d'or 108 au fond des cuvettes, et la couche sacrificielle 130. L'épaisseur de la couche de polypyrrole, qui constitue un revêtement de garnissage, peut être ajustée en augmentant ou diminuant le nombre de mouillages successifs de la biopuce dans les bains 142 et 144 décrits en référence à la figure 8. B 13192.3/EW Il 11,- Une étape ultérieure du procédé, représenté à la figure 10, comporte l'élimination de la couche sacrificielle 130 qui est par exemple dissoute dans un solvant organique tel que l'acétone. L'élimination de la couche sacrificielle provoque également l'élimination du revêtement de polypyrrole fonctionnalisé qui la recouvre, par un effet de pelage (lift-off). Le polypyrrole ne demeure que sur les sites 104 de la biopuce. Dans l'exemple décrit, à ce stade, le polypyrrole est dépourvu de sondes de type oligonucléotide mais est simplement équipé de fonctions chimiques de liaison utiles à la fixation des oligonucléotides. Les différents oligonucléotides devant équiper les sites sont disposés sur les sites par un adressage mécanique à l'aide d'un robot dispenseur du type décrit précédemment. Les oligonucléotides sont fonctionnalisés avec des fonctions chimiques complémentaires des fonctions chimiques de liaison qui équipent le polypyrrole. On obtient une structure telle que représentée schématiquement à la figure 11 sur laquelle les oligonucléotides sont indiqués avec la référence 116a. La liaison entre le polypyrrole fonctionnalisé et l'oligonucléotide peut être directe ou avoir lieu par l'intermédiaire d'un agent de réticulation bi- fonctionnel. Il convient de rappeler que la possibilité de garnir les sites avec des oligonucléotides postérieurement à la polymérisation est offerte également pour les procédés exposés précédemment. B 13192.3/EW 1 l1 *7k A titre d'illustration, on indique ci-après des formules du pyrrole et ses dérivés fonctionnalisés pouvant être mis en oeuvre dans le cadre de l'invention. H Pyrrole SH C/HX / C C H2 CHH / 2 CH2 CH 1 2 CH2, È 1-N(hexaméthyl thiol) pyrrole B 13192.3/EW H I CH2 C-o / o o "L. (3-N-hydroxy succinimide pyrrole) OMe OMe Si- OMe CH2 CH CH 2 N N(3(triméthoxysilyl)propyl)pyrrole B 13192.3/EW NH2 CH CH/ N N-éthylamine pyrrole H I N CH \2 -O OH 3- acide acétique pyrrole Les figures 12, 13, 14 décrites ci-après sont des représentations hybrides d'un site d'une biopuce avec indication des formules chimiques des revêtements de garnissage. Sur les figures, le site 104 est défini par une couche d'or 108 qui en constitue le fond et d'une couche de polymère 130 mise en forme, qui en constitue les parois latérales. La formation du revêtement de garnissage peut avoir lieu par l'une quelconque des méthodes décrites ci-dessus. Sur la figure 12, le polypyrrole Py est pourvu de fonctions amines. B 13192.3/EW Sur la figure 13 un agent de réticulation R est mis en contact avec le polypyrrole présent sur le site. Sur la figure 14, l'agent de réticulation R est fixé au polypyrrole Py et on observe une réaction entre une fonction maléimide de l'agent de réticulation et un oligonucléotide OLIGO fonctionnalisé (fonction SH). La figure 14 montre également un oligonucléotide associé à un marqueur d'identification (formé de biotine B et de streptavidine S). DOCUMENTS CITES (1) Chem. Tech., February 1997, p. 27-29 (2) US-5 474 796 (3) FR-A-2 741 476 (4) FR-A-2 696 043 B 13192.3/EW REVENDICATIONS 1. Procédé de garnissage de sites (104) d'une biopuce (10), caractérisé par la polymérisation par oxydation chimique sur les sites de monomères dits monomères hôtes, et de monomères fonctionnalisés. 2. Procédé selon la revendication 1, dans lequel les monomères sont des composés monomères polymérisables par voie chimique choisis parmi les pyrroles, les thiophènes, les anilines ou leurs dérivés. 3. Procédé selon la revendication 1, dans lequel on provoque la polymérisation par mise en contact d'au moins un réactif oxydant avec un mélange comportant des monomères hôtes et des monomères greffés. 4. Procédé selon la revendication 3, dans lequel le réactif oxydant comporte un sel ferrique. 5. Procédé selon la revendication 3, comprenant une étape de mise en place des monomères hôtes et des monomères fonctionnalisés sur au moins un site (104) choisi et une étape de mise en place du réactif oxydant sur ledit site pour additionner le réactif oxydant aux monomères sur le site. 6. Procédé selon la revendication 5, dans lequel on utilise des monomères fonctionnalisés dépourvus d'oligonucléotides et on fixe des oligonucléotides sur des polymères fonctionnalisés obtenus après polymérisation. 7. Procédé selon la revendication 5, dans lequel la mise en place des monomères et du réactif oxydant est effectuée par au moins un robot dispenseur (20). B 13192.3/EW 8. Procédé selon la revendication 7, dans lequel on utilise un robot dispenseur (20) avec au moins une première tête (22) de distribution d'un mélange de monomères et au moins une deuxième tête (22) de distribution de réactif pour distribuer simultanément sur un même site les monomères et le réactif. 9. Procédé selon la revendication 3, comportant dans l'ordre: a) une étape de formation d'au moins un mélange dit mélange de garnissage comportant les monomères hôtes, les monomères fonctionnalisés et le réactif oxydant, b) la mise en place du mélange de garnissage sur au moins un site, les étapes a) et b) étant opérées à une température suffisamment basse pour retarder la polymérisation au moins jusqu'à l'achèvement de l'étape b). 10. Procédé selon la revendication 9, dans lequel on utilise un robot dispenseur (20) avec au moins une tête de distribution (22) pour distribuer ledit mélange de garnissage. 11. Procédé selon la revendication 3, comprenant les étapes suivantes: a) formation sur au moins un site (104) de la biopuce d'un revêtement (120) en un matériau polymère contenant un réactif oxydant, b) mise en place sur ledit site d'un mélange de monomères hôtes et de monomères fonctionnalisés. 12. Procédé selon la revendication 11, dans lequel la formation du revêtement en matériau polymère comporte la mise en place d'une couche (120) dudit matériau comportant un réactif oxydant photoréductible B 13192.3/EW sur tout ou partie de la biopuce et l'insolation de la couche (120) à travers un masque (122) préservant des sites (104) sélectionnés, pour réduire sélectivement le réactif oxydant en dehors desdits sites sélectionnés. 13. Procédé selon la revendication 12, dans lequel on utilise comme réactif oxydant photoréductible un sel de fer ferrique pouvant être transformé en fer ferreux sous l'effet d'une lumière d'insolation. 14. Procédé selon la revendication 1, dans lequel on recouvre les sites (104) d'un film (108) de matériau d'accrochage avant une étape de mise en place sur les sites des monomères et réactif. 15. Procédé selon la revendication 1, dans lequel les monomères fonctionnalisés sont pourvus d'oligonucléotides avant ladite polymérisation. 16. Procédé selon la revendication 1, comportant les étapes successives suivantes: a) la formation autour des sites d'une couche (130) de polymère sacrificiel, b) la mise en contact alternativement de la puce avec une solution (142) d'un mélange de monomères hôtes et de monomères fonctionnalisés, et avec une solution oxydante (144) jusqu'à l'obtention d'une couche de polymère fonctionnalisé recouvrant les sites, c) la dissolution de la couche de polymère sacrificiel (130) et élimination par pelage de la couche de polymère fonctionnalisé en dehors des sites (104). 17. Procédé selon la revendication 16, dans lequel on forme des polymères fonctionnalisés pourvus d'une fonction chimique propre à la fixation d'un oligonucléotide et dans lequel après l'étape c), on met en place différents oligonucléotides sur lesdits B 13192.3/EW polymères fonctionnalisés de différents sites de la puce, les oligonucléotides étant eux-mêmes fonctionnalisés avec une fonction chimique apte à établir une liaison avec la fonction chimique du polymère fonctionnalisé. 18. Procédé selon la revendication 17, dans lequel la fonction chimique du polymère est une fonction amine ou un thiol. 19. Procédé selon la revendication 17, dans lequel on utilise un agent de réticulation comme intermédiaire de liaison entre les fonctions chimiques de liaison des polymères fonctionnalisés et des oligonucléotides. 20. Procédé selon la revendication 17, dans lequel la liaison est une liaison directe par fonctions complémentaires. 21. Equipement pour la mise en oeuvre du procédé de garnissage selon la revendication 1, comprenant: - au moins un robot dispenseur (20) avec une table de déplacement (10) apte à recevoir au moins une biopuce présentant des sites (104) à garnir, - un support (12) comprenant une pluralité de puits (14) de réception de mélanges pour le garnissage, et étant équipé de moyens de refroidissement des puits. B 13192.3/EW