FR 2793498 A1 20001117 FR 9905995 A 19990511 PROCEDE DE PRODUCTION D'ARABITOL PAR FERMENTATION CONTINUE La présente invention concerne un procédé de production d'arabitol par fermentation continue d'au moins un sucre par des micro-organismes producteurs d'arabitol. Elle a plus particulièrement pour objet un procédé de production d'arabitol par fermentation continue d'au moins un sucre par des microorganismes producteurs d'arabitol qui met en oeuvre au moins deux zones de fermentation reliées l'une à l'autre. Plus précisément, le procédé conforme à l'invention consiste à réaliser la production d'arabitol dans une première zone de fermentation, en favorisant la consommation d'une partie du sucre introduit dans le milieu de fermentation qu'elle contient, puis à transférer une partie dudit milieu de fermentation dans une seconde zone de fermentation, tout en maintenant constant le volume de ladite première zone par ajout de sucre, et à poursuivre la production d'arabitol dans la seconde zone de fermentation de manière à consommer le sucre résiduel. On procède ensuite, dans la seconde zone de fermentation, à la séparation en continu du milieu de fermentation à faible teneur en sucre résiduel ainsi obtenu en une fraction concentrée en micro- organismes et une autre fraction soluble enrichie en arabitol, et éventuellement au recyclage desdits micro-organismes à l'entrée de la première zone de fermentation. La préparation industrielle de l'arabitol repose principalement sur des procédés fermentaires. De manière générale, les procédés micro-biologiques de production d'arabitol peuvent mettre en oeuvre deux modes de fermentation différents: le mode discontinu et le mode continu. Dans le mode discontinu, deux techniques sont classiquement utilisées: la technique de fermentation discontinue proprement dite (ou batch) et la technique de fermentation discontinue alimentée (ou fed batch). Dans la technique de fermentation discontinue proprement dite, tous les substrats nécessaires à l'alimentation des micro-organismes sont introduits au début de la fermentation, et l'arabitol produit est extrait en fin de fermentation. On entend par " substrats ", l'ensemble des éléments nutritifs que l'on introduit dans le milieu de fermentation. Au sens de l'invention, les substrats sont principalement les sources carbonées (y compris le sucre) et azotées directement assimilables par les micro- organismes producteurs d'arabitol. Cette technique de fermentation discontinue présente cependant l'inconvénient de demander de longs temps de fermentation, pour permettre la consommation totale du sucre introduit dans le milieu de fermentation, et de nécessiter la mise en oeuvre de grands volumes de milieu de fermentation, et donc de fermenteurs, pour obtenir des rendements de conversion satisfaisants. Ce qui se traduit par une productivité volumique médiocre. De plus, il arrive que la variation de la concentration en l'un des constituants du milieu de fermentation affecte le rendement ou la productivité en arabitol. Une solution consiste à mettre en oeuvre la seconde technique de fermentation discontinue, appelée fermentation discontinue alimentée. Cette technique consiste notamment à introduire les substrats progressivement dans le milieu de fermentation. L'avantage de cette technique est alors non seulement de pouvoir contrôler la concentration en substrats du milieu de fermentation, mais également de permettre la consommation totale du sucre introduit. La technique de fermentation discontinue alimentée permet alors de résoudre les problèmes liés aux effets inhibiteurs potentiels de certains des constituants des substrats de la fermentation vis à vis de la croissance des micro-organismes ou de la production d'arabitol, ou de régler par exemple plus finement l'aération qui conditionne la production de l'arabitol. Cependant, pour obtenir des rendement et productivité satisfaisants, il est nécessaire de mettre en oeuvre des concentrations élevées en substrats. Surtout, les durées de fermentation sont longues et il faut assurer un contrôle lourd et fastidieux des différentes étapes de la fermentation. Ainsi, le procédé décrit par ESCALANTE et al. (in Journal of Fermentation and Bioengineering, 70-4, 228-231, 1990) pour la production d'arabitol par Hansenula en fermentation discontinue alimentée, ne permet pas d'atteindre des rendement et productivité industriellement intéressants. En effet, même si l'arabitol est sélectivement produit, et si le procédé de fermentation discontinue alimentée permet d'assurer la consommation de tout le glucose introduit dans le milieu de fermentation, l'arabitol n'est obtenu qu'avec un rendement de l'ordre de 14 %. Le second mode de fermentation classiquement mis en oeuvre pour la production d'arabitol par voie biologique, est le mode continu, comme par exemple décrit par JAKOBUS van ZYL et PRIOR dans Appl. Microbiol. Biotechnol. (1990), 33, 12-17. Dans le mode continu, tous les substrats de fermentation sont ajoutés de manière continue dans le fermenteur, et des fractions du milieu de fermentation sont extraites avec le même débit que l'apport en substrats, de manière à travailler à volume constant. Ce mode de fermentation permet un gain appréciable de rendement et de productivité, mais ne permet pas d'obtenir un produit de haute pureté, puisque l'arabitol soutiré est obligatoirement contaminé par les substrats réintroduits en cours de fermentation. Par conséquent, l'inconvénient majeur des procédés de fermentation en mode continu est la nécessité de purifier l'arabitol. En outre, les techniques de purification ne permettent que difficilement de séparer l'arabitol du sucre résiduel non assimilé par les micro-organismes. De ce fait, on trouve classiquement associé à ces procédés de fermentation continus, des installations de purification complexes, lourdes et coûteuses. Tous les efforts des spécialistes en fermentation portent donc sur la recherche des conditions opératoires qui conduisent à concilier les meilleurs rendement et productivité en arabitol, avec une faible teneur en sucre résiduel qui autorise une purification peu coûteuse et aisée de l'arabitol produit. La présente invention a donc pour but de résoudre ce problème de production d'arabitol de pureté satisfaisante avec d'excellents rendement et productivité par la mise en oeuvre d'une technique de fermentation en mode continu particulière. Le procédé de production d'arabitol mis au point par la société Demanderesse consiste à réaliser la fermentation d'au moins un sucre par les micro-organismes producteurs d'arabitol dans deux zones de fermentation. L'invention porte plus particulièrement sur un procédé de production d'arabitol par fermentation continue d'au moins un sucre par des microorganismes producteurs d'arabitol, caractérisé par le fait que l'on: a) conduit la production d'arabitol dans une première zone de fermentation, comprenant au moins un fermenteur, de manière à ce qu'une partie du sucre introduit dans le milieu de fermentation soit consommée par lesdits micro- organismes, b) transfère une partie du milieu de fermentation ainsi obtenu dans une seconde zone de fermentation, comprenant au moins un fermenteur, en maintenant le volume constant dans la première zone de fermentation par ajout de sucre, c) poursuit la production d'arabitol dans ladite seconde zone de fermentation de manière à consommer le sucre résiduel du milieu de fermentation, d) sépare en continu le milieu de fermentation de ladite seconde zone de fermentation ainsi obtenu en une fraction concentrée en micro-organismes et une autre fraction soluble enrichie en arabitol. e) collecte l'arabitol ainsi produit. La première étape du procédé conforme à l'invention consiste à conduire la production d'arabitol dans une première zone de fermentation, comprenant au moins un fermenteur, de manière à ce qu'une partie du sucre introduit dans le milieu de fermentation, soit consommée par lesdits micro-organismes. On choisit avantageusement les micro-organismes parmi les levures osmotolérantes, naturelles ou modifiées, productrices d'arabitol à partir de sucre comme source de carbone directement assimilable. Par " levures osmotolérantes ", on entend des levures capables de supporter des pressions osmotiques importantes et appartenant aux genres Yamadazyma, Debaromyces, Hansenula, Candida, Zygosaccharomyces et Saccharomyces... sans que cette liste ne soit limitative. Par " levures osmotolérantes naturelles ", on entend des levures osmotolérantes qui sont isolées de leur environnement pour leurs capacités naturelles à produire un métabolite donné, ici l'arabitol. Par " levures osmotolérantes modifiées ", on entend des levures osmotolérantes dont les capacités naturelles à produire un métabolite donné, ici l'arabitol, ont été optimisées par la mise en oeuvre de techniques de mutagenèse (aléatoires ou dirigées) ou de techniques de biologie moléculaire. Par " sucre ", on entend dans la présente invention toutes les sources carbonées directement assimilables par les micro-organismes producteurs d'arabitol. Un tel sucre est par exemple choisi dans le groupe constitué par le glucose, le galactose, le saccharose, l'arabinose, le glycérol, le fructose, le maltose, le xylulose, le ribulose, le mannitol, le myoinositol, l'éthanol, l'amidon et le maltose, seuls ou en mélange entre eux. La première zone de fermentation est mise en oeuvre de façon à assurer une production élevée en arabitol, en favorisant la consommation d'une partie du sucre introduit dans le milieu de fermentation. On entend par " une partie du sucre " au sens de l'invention, une quantité de sucre d'au moins 50 % en poids, de préférence d'au moins 80 % en poids, et de manière plus préférentielle encore, d'au moins 90 % en poids. Dans un premier mode préférentiel de réalisation du procédé conforme à l'invention, la production d'arabitol est initiée dans la première zone de fermentation en mode discontinu, tous les substrats de fermentation, y compris le sucre, et les micro-organismes étant introduits simultanément. Dans un second mode préférentiel de réalisation du procédé conforme à l'invention, la production d'arabitol est initiée dans la première zone de fermentation en mode discontinu alimenté, l'alimentation en sucre des micro- organismes producteurs d'arabitol étant conduite de manière progressive. Un mode d'alimentation discontinu alimenté est avantageusement choisi pour démarrer la fermentation dans le procédé conforme à l'invention. Ce mode d'alimentation discontinu permet d'assurer le remplissage progressif de la première zone de fermentation en substrats de manière à maintenir un taux élevé de croissance des micro-organismes, une bonne conversion du sucre en arabitol et une concentration en sucre du milieu de fermentation à une valeur tolérée par le micro-organisme producteur d'arabitol considéré. On entend par " concentration en sucre tolérée par le micro-organisme ", une concentration en sucre minimale qui n'inhibe ni la croissance du dit micro-organisme, ni sa production d'arabitol. De manière générale, pour tous les micro-organismes producteurs d'arabitol, les conditions mises en oeuvre sont réglées de manière à éviter une consommation totale du sucre. La production élevée d'arabitol dans la première zone de fermentation conduit généralement au maintien de quantités également relativement élevées en sucre résiduel non consommé, dont l'importance est fonction des micro- organismes considérés. De manière générale, ce taux de sucre résiduel est au moins égal à 2,5 % en poids. La deuxième étape du procédé conforme à l'invention consiste alors à transférer une partie du milieu de fermentation ainsi obtenu dans une seconde zone de fermentation, comprenant au moins un fermenteur, tout en maintenant le volume constant dans la première zone de fermentation par ajout de sucre. On effectue ainsi le transfert d'une partie du milieu de fermentation de la première zone de fermentation à la seconde, lorsque ledit milieu de fermentation est enrichi en arabitol, mais contient cependant encore du sucre résiduel non consommé, en quantité telle qu'elle rend la purification de l'arabitol produit lourde et complexe. Ce transfert s'accompagne d'une alimentation continue en sucre dans la première zone de fermentation, ceci afin non seulement de maintenir le volume constant, mais surtout de continuer la production en arabitol avec une productivité et un rendement de conversion au moins égaux aux valeurs obtenues lors de la phase d'initiation de la production d'arabitol décrite ci-dessus. On choisit avantageusement d'alimenter en continu la première zone de fermentation avec les substrats, plutôt qu'uniquement avec du sucre, comme exemplifié ci-après. La troisième étape du procédé conforme à l'invention consiste à poursuivre la production d'arabitol dans la seconde zone de fermentation de manière à consommer le sucre résiduel de la partie du milieu de fermentation en provenance de la première zone de fermentation. La seconde zone de fermentation est donc mise en oeuvre à la fois pour poursuivre la production d'arabitol, mais surtout pour terminer la consommation du sucre qui contamine la partie du milieu de fermentation transférée de la première zone de fermentation à la seconde, de manière à ne laisser qu'un faible taux de sucre résiduel. Une faible teneur en sucre résiduel s'entend avantageusement d'une concentration en sucre dans le milieu de fermentation au plus égale à 2 % en poids, et de préférence au plus égale à 1 % en poids. Dans un mode préférentiel du procédé conforme à l'invention, on conduit alors cette étape en mettant en oeuvre des fermenteurs de taille différente, les fermenteurs de la seconde zone de fermentation présentant un volume inférieur à ceux de la première zone de fermentation. Dans un mode encore plus préférentiel du procédé conforme à l'invention, on choisit de n'utiliser qu'un fermenteur par zone de fermentation. La quatrième étape du procédé conforme à l'invention consiste à séparer en continu le milieu de fermentation à faible teneur en sucre résiduel ainsi obtenu en une fraction concentrée en micro-organismes et une autre fraction soluble enrichie en arabitol. On réalise la séparation continue entre les micro- organismes et la fraction enrichie en arabitol par tout moyen connu par ailleurs par l'homme du métier, par exemple par micro-filtration, en utilisant des membranes dont le diamètre des pores est adapté à la taille du micro- organisme considéré ou par centrifugation dans un intervalle de 1.000 à 10.000 G, et de manière préférentielle par micro-filtration, comme exemplifié ci- apres. La solution clarifiée, enrichie en arabitol, obtenue au terme de cette étape de séparation, constitue l'arabitol produit. Il a été également établi par la société Demanderesse qu'il peut être avantageux de recycler la fraction enrichie en micro-organismes à l'entrée de la première zone de fermentation. L'avantage de cette étape de recyclage des micro- organismes est de réintroduire une biomasse dont les capacités de fermentation sont entières, et d'éviter par là même un retard de mise en oeuvre qu'occasionnerait la préparation d'une nouvelle culture de micro-organismes producteurs d'arabitol. La récupération de l'arabitol produit est effectuée par exemple par concentration à une valeur de l'ordre de 20 % et plus, et peut être suivi par une étape de cristallisation par toute méthode connue en soi par l'homme du métier. D'autres caractéristiques et avantages de l'invention apparaîtront à la lecture des exemples non limitatifs décrits ci-dessous. Exemple 1 Les deux zones de fermentation mises en oeuvre comportent chacune un fermenteur, mais de taille différente. Le premier fermenteur de marque CHEMAP présente un volume de 20 1 (17 1 utiles), et le second de même marque, un volume de 5 1 (4 1 utiles). Une préculture du micro-organisme Yamadazyma ohmeri, souche ATCC 20209, est tout d'abord réalisée dans un autre fermenteur de 20 1. Le milieu de préculture est constitué de glucose à g/l, de liqueur de corn steep à 8 g/l, de KH2PO4 à 2 g/l et de MgSO4 à 1 g/l. La préculture est réalisée à 30 C, sous une agitation à 600 rpm, une aération de 1 vvm, pendant 12 h, et une régulation de pH à 4,5 avec du NH4OH à %. Le fermenteur de la première zone de fermentation est ensemencée avec 1 1 de cette préculture. On complète à 6 1 avec un milieu renfermant du glucose à 50 g/l, de la liqueur de corn steep à 8 g/l, du KH2PO4 à 2,5 g/l, du MgSO4 à 1 g/l et du FeSO4 à 0,05 g/l. La température est fixée à 30 C. Le pH est régulé à 4,5 jusque 35 h à l'aide de NH4OH 20 %, puis la régulation est fixée à 3 à l'aide de KOH 5 N. L'ajout de glucose est assuré comme indiqué dans le tableau I suivant. La biomasse est estimée par la mesure de l'absorbance (densité optique ou DO) du milieu à 620 nm. Pour Yamadazyma ohmeri, une unité d'absorbance à 600 nm équivaut à une biomasse de l'ordre de 0,2 g/l. Tableau I Temps DO Glucose Arabitol Volume Ajouts de (h) (g/l) (g/l) (1) glucose 0 14 50 0 6 49 29 8 6 500 g dans 5 l 91 30 15 10 1200 g dans 5 1 154 30 31 15 I1300 g dans 3 1 190 29 60 17 Après 40 h de fermentation, le volume utile du fermenteur de la première zone de fermentation est atteint, et la concentration en glucose résiduel est de 29 g/l. 4 1 de milieu de fermentation de ce premier fermenteur sont alors transférés dans le fermenteur de la seconde zone de fermentation, et 800 g de glucose sont alors ajoutés dans un volume de 2 1 dans le premier fermenteur. La température de la seconde zone de fermentation est fixée à 38 C, et le pH est régulé à 3,5 à l'aide de KOH 5 N. Les fermenteurs évoluent ensuite séparément jusque 46 h, heure à partir de laquelle on effectue le premier prélèvement d'arabitol dans le second fermenteur. A partir de 46 h, le fermenteur de la première zone de fermentation est alimenté en glucose à 250 g/l à un débit de l'ordre de 0,4 l/h, et en liqueur de corn steep à g/l à un débit de l'ordre de 10 ml/h. Le milieu circule de la première zone de fermentation à la seconde à l'aide d'une pompe PCM , puis de la seconde zone de fermentation à un module de filtration tangentielle MEMBRALOX , qui permet de récupérer un perméat riche en arabitol et un rétentat riche en micro-organismes. Le rétentat est alors réintroduit à l'entrée de la première zone de fermentation. De façon à maintenir les niveaux dans les deux fermenteurs, le débit du perméat sortant est égal au débit d'alimentation en glucose. Ce débit évolue au cours du temps en fonction de la vitesse de consommation du glucose par les micro-organismes dans les fermenteurs. A 200 h, l'alimentation est stoppée, et le fermenteur de la deuxième zone de fermentation est vidé. On laisse se terminer la fermentation dans le fermenteur de la première zone de fermentation pendant 10 h supplémentaires, avant de traiter le milieu sur le module de filtration tangentielle. Le tableau II suivant présente les mesures effectuées après transfert du milieu de fermentation de la première zone de fermentation à la seconde. Tableau II Premier fermenteur Second fermenteur Temps DO Glucose Arabitol Volume DO Glucose Arabitol Volume (h) (g/l) (g/l) (1) (g/l) (g/l) (1) 190 29 60 17 ,1 165 75 57 15 190 28 61 4 46 170 39 74 15 190 10 74 4 173 25 95 15 175 5 102 4 177 26 107 15 174 6 115 4 182 25 111 15 183 4 119 4 184 25 113 15 186 5 123 4 191 27 112 15 190 6 121 4 193 25 108 15 194 6 119 4 194 28 105 15 189 7 114 4 201 25 102 15 194 9 110 4 210 198 1 115 15 Globalement, 8,8 kg d'arabitol sont récupérés pour 18,7 kg de glucose mis en oeuvre, soit un rendement de 47 % et une productivité de 2,2 g/l/h. En fermentation discontinue réalisée dans les mêmes conditions de milieu de production, avec le même apport en glucose, le rendement est de 40 % et la productivité n'est que de 1,5 g/l/h. Le procédé conforme à l'invention permet ainsi d'assurer de bien meilleurs rendement et productivité. En outre, le faible taux de glucose résiduel permet de récupérer un arabitol présentant une pureté tout à fait satisfaisante. Exemple 2 On conduit la préparation d'arabitol dans des conditions de fermentation identique à celles de l'exemple 1, mais en utilisant un micro-organisme Yamadazyma ohmeri, souche ATCC 20209 modifié par la technique de mutagenèse aléatoire classique aux ultraviolets (en mettant en oeuvre au moins un cycle de mutagenèse aux ultraviolets avec enrichissement à la nystatine), la souche étant sélectionnée pour son aptitude à produire l'arabitol avec un rendement de 8 à 10 points supérieur à la souche mère. Après l'obtention d'une préculture de ladite souche modifiée, et transfert dans la première zone de fermentation comme indiqué dans l'exemple 1, l'ajout de glucose est assuré comme présenté dans le tableau III suivant. Tableau III Temps DO Glucose Arabitol Volume Ajouts de (h) (g/l) (g/l) (1) glucose 0 15 50 0 6 50 19 8 6 500 g dans 5 1 102 31 15 10 1200 g dans 5 1 164 29 36 15 I300 g dans 3 1 204 28 70 17 Après 40 h de fermentation, le volume utile du fermenteur de la première zone de fermentation est atteint, et la concentration en glucose résiduel est de 28 g/l. 4 1 de milieu de fermentation de ce premier fermenteur sont alors transférés dans le fermenteur de la seconde zone de fermentation, et 800 g de glucose sont alors ajoutés dans un volume de 2 1 dans le premier fermenteur. La température de la seconde zone de fermentation est fixée à 38 C, et le pH est régulé à 3,5 à l'aide de KOH 5N. Les fermenteurs évoluent ensuite séparément jusque 46 h, heure à partir de laquelle on effectue le premier prélèvement d'arabitol dans le second fermenteur. A partir de 46 h, le fermenteur de la première zone de fermentation est alimenté en glucose à 250 g/l à un débit de l'ordre de 0,4 1/h, et en liqueur de corn steep à g/l à un débit de l'ordre de 10 ml/h. Le tableau IV suivant présente les mesures effectuées après transfert du milieu de fermentation de la première zone de fermentation à la seconde. Tableau IV Premier fermenteur Second fermenteur Temps DO Glucose Arabitol Volume DO Glucose Arabitol Volume (h) (g/l) (g/l) (1)( l) (g/l) (1) 204 28 70 17 ,1 180 76 62 15 204 28 70 4 46 191 39 85 15 196 12 90 4 204 23 121 15 200 5 128 4 212 22 141 15 210 7 152 4 222 24 150 15 225 6 163 4 225 26 151 15 224 5 165 4 230 25 150 15 230 6 166 4 227 24 149 15 225 6 164 4 228 21 148 15 227 8 163 4 231 25 145 15 235 7 161 4 210 230 1 164 15 Globalement, 12 kg d'arabitol sont récupérés pour 19 kg de glucose mis en oeuvre, soit un rendement de 63 % et une productivité de 4 g/l/h. En fermentation discontinue réalisée dans les mêmes conditions de milieu de production, avec le même apport en glucose, le rendement est de 55 % et la productivité n'est que de 2,5 g/l/h. Le procédé conforme à l'invention permet ainsi d'assurer de bien meilleurs rendement et productivité. En outre, le faible taux de glucose résiduel permet toujours de récupérer un arabitol présentant une pureté tout à fait satisfaisante. Exemple 3 Les deux zones de fermentation sont mises en oeuvre comme dans l'exemple 1. Une préculture du micro-organisme Candida polymorpha, souche ATCC 20213 naturelle, est tout d'abord réalisée dans un fermenteur CHEMAP de 20 1, dans les mêmes conditions que pour la souche de Y. ohmeri de l'exemple 1. Le fermenteur de la première zone de fermentation est ensemencée avec 1 1 de cette préculture. - On complète à 6 1 avec un milieu renfermant du glucose à 50 g/l, de l'extrait de levure à 3 g/l, du KH2PO4 à 2 g/l et du MgSO4 à 1 g/l. La température est fixée à 30 C. Le pH est régulé à 4,5 jusque 30 h à l'aide de NH4OH 20%, puis à l'aide de KOH 5 N. L'ajout de glucose est contrôlé comme indiqué dans le tableau III suivant. La biomasse est estimée par la mesure de l'absorbance (densité optique) du milieu à 620 nm. Pour Candida polymorpha, une unité d'absorbance à 600 nm équivaut à une biomasse de l'ordre de 0,22 g/l. Tableau V Temps DO Glucose Arabitol Volume Ajouts de (h) (g/l) (g/l) (1) glucose 0 10 50 0 6 45 21 3 6 500 g dans 5 1 85 27 8 10 1200 g dans 5 1 144 33 19 15 1300 g dans 3 1 174 30 30 17 A 40 h de fermentation, le volume utile du fermenteur de la première zone de fermentation est atteint, et la concentration en glucose résiduel est de 30 g/l. 4 1 de milieu de fermentation de ce premier fermenteur sont alors transférés dans le fermenteur de la seconde zone de fermentation, et 800 g de glucose sont ajoutés dans un volume de 2 1 dans le premier fermenteur. La température de la seconde zone de fermentation est fixée à 37 C, et le pH est régulé à 4,5 par KOH 5 N. Les fermenteurs évoluent ensuite séparément jusque 46 h, heure à partir de laquelle on effectue le premier prélèvement d'arabitol dans le second fermenteur. A partir de 46 h, le fermenteur de la première zone de fermentation est alimenté en glucose à 250 g/l à un débit de l'ordre de 0,4 1/h, et en liqueur de corn steep à g/l à un débit de l'ordre de 10 ml/h. Le tableau IV suivant présente les mesures effectuées après transfert du milieu de fermentation de la première zone de fermentation à la seconde. Tableau VI Premier fermenteur Second fermenteur Temps DO Glucose Arabitol Volume DO Glucose Arabitol Volume (h) (g/l) (g/l) (1l) 174 30 30 17 ,1 150 77 27 15 174 29 30 4 46 160 44 34 15 174 14 36 4 165 31 46 15 164 11 50 4 167 29 51 15 169 8 56 4 172 23 52 15 171 6 58 4 176 27 51 15 174 5 59 4 180 29 50 15 179 7 57 4 184 28 49 15 181 7 55 4 183 24 50 15 177 8 55 4 186 26 47 15 182 8 53 4 210 185 1 54 15 Globalement, 4,1 kg d'arabitol sont récupérés pour 17,4 kg de glucose mis en oeuvre, soit un rendement de 23,6 % et une productivité de 1 g/1/h. En fermentation discontinue réalisée dans les mêmes conditions de milieu de production, avec le même apport en glucose, le rendement est de 16,5 % et la productivité n'est que de 0,6 g/l/h. Le procédé conforme à l'invention permet ainsi, pour une souche considérée, d'assurer de bien meilleurs rendement et productivité que les procédés classiquement mis en oeuvre. * En outre, le faible taux de glucose résiduel permet de récupérer un arabitol présentant ici encore une pureté tout à fait satisfaisante. REVENDICATIONS 1. Procédé de production d'arabitol par fermentation continue d'au moins un sucre par des micro-organismes producteurs d'arabitol, caractérisé par le fait que l'on: a) conduit la production d'arabitol dans une première zone de fermentation, comprenant au moins un fermenteur, de manière à ce qu'une partie du sucre introduit dans le milieu de fermentation soit consommée par lesdits micro- organismes, b) transfère une partie du milieu de fermentation ainsi obtenu dans une seconde zone de fermentation, comprenant au moins un fermenteur, tout en maintenant le volume constant dans la première zone de fermentation par ajout de sucre, c) poursuit la production d'arabitol dans ladite seconde zone de fermentation de manière à consommer le sucre résiduel du milieu de fermentation, d) sépare en continu le milieu de fermentation de ladite seconde zone de fermentation ainsi obtenu en une fraction concentrée en micro- organismes et une autre fraction soluble enrichie en arabitol, e) collecte l'arabitol ainsi obtenu. 2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé par le fait que l'on recycle à l'entrée de la première zone de fermentation ladite fraction concentrée en micro- organismes. 3. Procédé selon l'une ou l'autre des revendications 1 et 2 caractérisé par le fait que la partie du sucre consommé par les micro-organismes producteurs d'arabitol dans la première zone de fermentation est d'au moins 50 % en poids, de préférence d'au moins 80 % en poids, et plus préférentiellement encore d'au moins 90 % en poids du sucre introduit dans le milieu de fermentation. 4. Procédé selon l'une ou l'autre des revendications 1 et 3, caractérisé par le fait que la teneur en sucre résiduel dans la seconde zone de fermentation est d'au plus 2 % en poids, de préférence d'au plus 1 % en poids. 5. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé par le fait que les fermenteurs de la seconde zone de fermentation présentent un volume inférieur à ceux des fermenteurs de la première zone. 6. Procédé selon la revendication 5, caractérisé par le fait que la première et la seconde zone de fermentation comprennent chacune un seul fermenteur. 7. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisé par le fait que les micro-organismes producteurs d'arabitol sont choisis dans le groupe constitué des levures osmotolérantes naturelles ou modifiées du genre Yamadazyma, Debaromyces, Hansenula, Candida, Zygosaccharomyces et Saccharomyces. 8. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisé par le fait que le sucre est choisi parmi les sources carbonées directement assimilables par les micro-organismes producteurs d'arabitol, et est préférentiellement le glucose.