FR 2778669 A1 19991119 FR 9806213 A 19980514 PROCEDÉ D'EXPRESSION D'UN COMPLEXE FORME D'AU MOINS UN PRODUIT DU COMPLEXE MAJEUR D'HISTOCOMPATIBILITÉ ET D'UN PEPTIDE CHEZ UN PHAGE, PHAGES ET COMPLEXES AINSI OBTENUS ET LEURS APPLICATIONS. La présente invention concerne un procédé d'expression d'un complexe formé d'un produit du Complexe Majeur d'Histocompatibilité (CMH) et d'un peptide (P) chez un microorganisme et plus particulièrement un phage afin de produire ledit complexe soluble et/ou présenter ledit complexe à la surface dudit microorganisme. La présente invention se rapporte encore aux complexes et aux phages ainsi obtenus et leur utilisation notamment pour le criblage de peptides reconnus par un récepteur de cellule T donné. Les produits du CMH jouent un rôle important dans le système immunitaire puisque les peptides antigéniques sont présentés aux cellules T dans leur contexte, la réponse immunnitaire cellulaire étant ainsi restreinte à ces produits. A la différence des anticorps qui reconnaissent des épitopes natifs, non modifiés, les ligands des récepteurs des cellules T (TCR) sont donc des complexes particuliers entre les produits du CMH et les peptides ayant subi un apprêtage intra-cellulaire par des cellules spécialisées (cellules présentatrices de l'antigène). La reconnaissance spécifique des antigènes par les Récepteurs des Cellules T (TCR) (1) joue un rôle clef dans l'initiation et la régulation de la réponse immunitaire. L'étude de cette interaction spécifique reste à l'heure actuelle une procédure complexe qui implique la combinaison de techniques moléculaires, biochimiques et cellulaires (2, 3, 4). En effet, les ligands naturels du TCR sont des complexes bi- ou tri- moléculaires entre un peptide antigénique de 8 à 12 acides aminés (5) et les produits (chaîne dû) du complexe majeur d'histocompatibilité (6) exprimés à la surface des cellules présentant l'antigène. Par ailleurs, l'interaction de faible affinité entre le complexe CMH-P et le TCR n'est qu'un événement transitoire qui est difficile à observer en dehors du contexte intercellulaire et qui implique des interactions multivalentes et d'autres molécules accessoires (7, 8, 9). Récemment, des étapes déterminantes devant permettre l'analyse moléculaire directe des interactions de CMH-P avec le TCR ont néanmoins été franchies. Selon une première méthode des tétramères CMH, produits par E. Coli et réassociés in vitro à un peptide antigénique ont été obtenus (10) et il a été montré qu'ils étaient capables d'interagir d'une manière peptide-spécifique avec des cellules T (11). Par ailleurs, selon une seconde méthode, des molécules CMH recombinantes fabriquées sous la forme de peptides simple chaîne, o les différents domaines du CMH et le peptide antigénique sont reliés entre eux de manière covalente ont été exprimés sous la forme de molécule fonctionnelle dans des cellules eukaryotes (12, 13, 14). Dans les deux cas, les procédés de fabrication et de purification sont complexes. Dans la première méthode (10, 11), les tétramères CMH-P doivent être assemblés in vitro à partir de composés produits séparemment. Ce procédé permet l'obtention de quantités non négligeable de complexes CMH-P, mais chaque complexe doit être préparé spécifiquement au coup par coup. La deuxième méthode (12, 13, 14) permet l'expression d'une forme simple de complexe CMH-P puisqu'il s'agit d'un peptide monochaîne. Là encore, la production doit passer par un système dont l'utilisation est relativement fastidieuse, puisqu'elle met en jeu des cellules eucaryotes. Par ailleurs, ce système ne permet pas une approche directe du criblage de la spécificité des TCR. On connaît par ailleurs dans l'art antérieur la méthode dite de "phage display", décrite par exemple dans la demande de brevet internationale PCT publiée sous le No. WO 97/02342. Le système du phage display a été utilisé pour présenter de petits peptides d'environ 10 acides aminés à la surface des bactériophages (17). Ces banques de peptides peuvent être criblées pour la recherche de ligands spécifiques. Des molécules de taille plus importantes ont été également exprimées à la surface des bactériophages, notamment des anticorps humains (31). Cependant, la manipulation des bactériophages en vue de la présentation de protéines de taille importante à leur surface pose de nombreux problèmes, notamment liés à l'assemblage des protéines et à leur présentation sur l'enveloppe du phage (39). Le procédé de présentation de molécule par un phage semble donc limité par la taille de la molécule qui est présentée. Or les travaux de recherche réalisés dans le cadre de la présente invention ont notamment permis de mettre au point un procédé d'expression de complexe CMH- P permettant, soit la présention à la surface d'un phage de complexes CMH-P d'une taille de plusieurs centaines d'acides aminés, soit la production de complexes CMH-P solubles. Les principaux avantages par rapport aux complexes CMH-P de l'art antérieur résident dans le fait que les complexes présentés à la surface d'un phage 4 2778669 permettent l'accès direct à la séquence nucléotidique codant pour des peptides présentés, puisque cette séquence est présente dans le corps du phage. Par ailleurs, les complexes CMH-P solubles de l'invention sont obtenus par un procédé beaucoup plus simple et moins coûteux que les procédés de l'art antérieur. En conséquence la présente invention se rapporte à de nouveaux procédés permettant l'expression de complexes CMH-P sous forme soluble ou présentés à la surface de microorganismes et plus particulièrement de phages présentant les avantages indiqués ci-dessus. Ce but est atteint selon la présente invention grace à un procédé d'expression d'un complexe CMH-P dans un microorganisme comprenant les étapes suivantes: a) la préparation d'une séquence nucléotidique comprenant la séquence codant pour un peptide antigénique et la séquence codant pour un ou des domaines extracellulaires d'un produit du CMH. b) le clonage de la séquence nucléotidique obtenue en (a) dans un vecteur permettant l'expression de ladite séquence dans un microorganisme, ladite séquence étant clonée en aval d'une séquence codant pour un peptide signal dirigeant le produit de ladite séquence nucléotidique vers l'espace périplasmique du microrganisme. c) la transfection d'un microorganisme avec le vecteur obtenu à l'étape (b), d) l'induction de l'expression du produit de la séquence nucléotidique par tout moyen approprié. La séquence nucléotidique préparée à l'étape (a) comprend avantageusement entre la séquence codant pour un peptide antigénique et la séquence codant pour un ou des domaines extracellulaires d'un produit du CMH, une séquence intermédiaire. Selon un premier mode de réalisation du procédé de l'invention, cette séquence intermédiaire peut coder pour un peptide liant le peptide antigénique et le produit du CMH de manière covalente. Dans ce cas, l'expression de la séquence nucléotidique conduit à un produit unique associant le peptide antigénique lié de manière covalente au produit du CMH. Cette caractéristique permet d'obtenir un plus grand nombre de produits du CMH fonctionnels. En effet, le produit du CMH doit s'associer à un peptide afin d'adopter une conformation lui permettant d'être fonctionnel. La production d'un produit du CMH lié de manière covalente à un peptide antigénique accroit donc les probalités d'obtenir des produits du CMH fonctionnels. Selon un second mode de réalisation du procédé de l'invention, cette séquence intermédiaire comporte un codon Stop afin de permettre l'expression indépendante du peptide antigénique et du produit du CMH qui se réassocient ultérieurement après l'étape (d). Ce mode de réalisation, bien que moins performant puisque le produit du CMH est un temps présent sous forme non fonctionnelle, présente néanmoins l'avantage d'augmenter le nombre de complexes CMH-P présentés par le microorganisme, puisqu'un des facteurs limitant dans la présentation d'une protéine recombinante à la surface d'un phage est la taille de ladite protéine. Dans ce second mode de réalisation, le microorganisme présente plusieurs peptides antigéniques, auquels s'associent de manière non covalente le produit du CMH produit indépendamment. L'induction de l'expresion du produit de la séquence nucléotidique selon l'étape (d) du procédé de l'invention, peut être obtenue par tout moyen approprié (i tel que des variations de concentration en ions ou des variations de température. Dans un mode de réalisation avantageux du procédé de l'invention, la séquence codant pour le peptide antigènique utilisée dans la séquence nucléotidique de l'étape (a) est: - soit une séquence naturelle provenant de l'ADNc d'un tissu ou d'un organisme déterminés, par exemple dans le but d'obtenir une information quant à la nature des tissus ou organismes antigéniques impliqués dans une réponse cellulaire T donnée. - soit une séquence nucléotidique de synthèse provenant par exemple d'une banque de séquences nucléotidiques dont tout ou partie de l'enchaînement de nucléotides est aléatoire. Une telle séquence dont tout ou partie de l'enchaînement de nucléotides est aléatoire est aisément obtenue à l'aide d'appareils synthétisant des oligonucléotides. Dans le cas des séquences naturelles comme dans le cas des séquences synthétiques, les séquences nucléotidiques sélectionnées après criblage peuvent comme il sera précisé plus loin, entrer dans la préparation d'une composition pharmaceutique utile pour moduler une réponse cellulaire T spécifique du peptide antigénique. Dans une forme de réalisation préférée du procédé d'expression de l'invention, la séquence codant pour le peptide signal est la séquence du peptide signal de la protéine pectine lyase B (PelB) d'E.coli. Ce peptide signal permet au clivage de s'effectuer avant le premier résidu du peptide antigénique. La séquence codant pour le peptide signal peut être insérée dans la séquence nucléotidique préparée à l'étape (a) du procédé de l'invention, ou présent dans le vecteur o ladite séquence est clonée selon l'étape (b) du procédé de l'invention. En effet, il est primordial de déterminer précisemment le site précis de clivage entre le peptide signal et le peptide antigénique. Ce dernier compte en général environ 8 à 12 acides aminés et si certains de ces résidus sont supprimés lors du clivage, les propriétés antigéniques du peptides risquent d'être modifiées ou de disparaître. En fonction des constructions de séquences nucléotidiques et de vecteurs utilisées dans le procédé de l'invention, les Inventeurs ont obtenu soit des complexes CMH-P solubles, soit des complexes CMH-P présentés à la surface de microorganismes. La présente invention concerne donc aussi un procédé de production d'un complexe CMH-P soluble, caractérisé en ce que l'on exprime un complexe CMH-P par le procédé d'expression précédent, dans lequel le vecteur utilisé à l'étape (b) est un vecteur plasmidique o la séquence plasmidique située en aval de la séquence nucléotidique de l'étape (a) code successivement pour un peptide étiquette et un ou plusieurs codons Stop, et en ce que le complexe CMH-peptide est récupéré, après l'étape (d), par tout moyen approprié connu de l'homme du métier à l'aide, notamment, dudit peptide étiquette. La séquence plasmidique située en aval de la séquence nucléotidique codant pour un peptide antigénique et la séquence codant pour un ou des domaines extracellulaires d'un produit du CMH, et codant successivement pour un peptide étiquette et un ou plusieurs codons Stop peut être soit introduite à l'étape (a) soit être présente dans le vecteur. En conséquence, une alternative au mode de réalisation précédent consiste à utiliser une séquence nucléotidique de l'étape (a) comprenant, en aval de la séquence codant pour un peptide antigénique et la séquence codant pour un ou des domaines extracellulaires d'un produit du CMH, une séquence codant successivement pour un peptide étiquette et un ou plusieurs codons Stop. Cette alternative est moins avantageuse, car elle nécessite de préparer à l'étape (a) des constructions différentes selon que l'on cherche à produire le complexe CMH-P soluble ou à le présenter à la surface du microorganisme. L'insertion d'une séquence nucléotidique codant successivement pour un peptide étiquette et un ou plusieurs codons Stop permet de disposer d'un moyen de mise en évidence et de purification des complexes CMH-P produits. Cette mise en évidence et cette caractérisation peuvent par exemple s'effectuer à l'aide d'un anticorps spécifiquement dirigé contre le peptide "étiquette". Parmi les peptides étiquette utilisés, on peut citer le peptide c-myc-l (Invitrogen) contre lequel est dirigé un anticorps 9E10 (Invitrogen). Tout vecteur tel que les vecteurs pUC 19 ou pHEN-l peut être utilisé dans le procédé de production de complexes CMH-P solubles de l'invention. Parmi les vecteurs plasmidiques préférés, on peut notammant citer le vecteur pAB2. Il est possible d'obtenir par le procédé de production de l'invention des complexes CMH-P sous forme multimérique. Il convient pour cela d'insérer dans la séquence nucléotidique préparée à l'étape (a) une séquence de multimérisation (11, 49). ()9 2778669 Un tel procédé présente donc l'avantage de permettre la production d'un complexe CMH-P soluble directement fonctionnel et facilement purifiable. Ce procédé est donc peu coûteux et facile à mettre en oeuvre en comparaison aux procédés de production de complexe CMH-P de l'art antérieur. L'invention a aussi pour objet un complexe CMH-peptide soluble obtenu par le procédé ci-dessus. Les complexes CMH-P solubles de l'invention peuvent notamment être utilisés dans un procédé de détermination de la spécificité antigénique de récepteurs de cellules T sous forme soluble ou présentés à la surface de cellules T. Un procédé de détermination de la spécificité antigénique de récepteurs des celulles T selon l'invention comprend les étapes suivantes: i) on met en présence: - un excès d'un complexe CMH-P soluble porteur d'un peptide étiquette, obtenu par le procédé de l'invention et, - un "pool" de récepteurs de cellules T, ii) on sélectionne les complexes CMH-P liés spécifiquement aux récepteurs de cellules T de l'étape (i) en éliminant par tout moyen approprié, tel qu'un lavage lorsque les récepteurs de cellules T sont immobilisés sur un support (21), l'excès de CMH-P soluble n'étant pas lié de manière spécifique, iii) on marque les complexes CMH-P liés aux récepteurs de cellules T sélectionnés à l'étape (ii) à l'aide d'une sonde spécifique du complexe CMH-P, comme par exemple le peptide étiquette de ce dernier, iv) on repère par tout moyen approprié les récepteurs de cellules T marqués à l'étape (iii). I0 Par pool de récepteurs de cellules T on entend au sens de la présente invention un ensemble de différents récepteurs, présentés sous forme soluble ou à la surface de cellules T, dont la spécificité antigénique est inconnue. Lorsque le peptide étiquette est par exemple le peptide myc (21) on repère les récepteurs de cellules T ayant réagit, avec un anticorps anti-MYC, Ac 9E10 (Invitrogen). Ce type de marquage permet de connaître la spécificité antigénique des récepteurs de cellules T. Les complexes CMH-P solubles de l'invention peuvent de plus être utilisés pour moduler de manière spécifique l'activité de cellules T. L'invention se rapporte donc également à l'utilisation d'un complexe CMH-P soluble pour la préparation d'une composition pharmaceutique utile pour moduler de manière spécifique l'activité de cellules T. Comme il a déjà été indiqué précédemment, la préparation de microorganismes présentant de petits peptides d'environ 10 acides aminés est bien connue dans l'art antérieur (17). Les Inventeurs ont mis en évidence dans le cadre des travaux ayant mené à la présente invention, qu'il est possible de présenter des complexes CMH-P de taille importante à la surface de microorganismes. L'invention a donc encore pour objet un procédé de préparation d'un microorganisme présentant à sa surface un complexe CMH-P, consistant à exprimer un complexe CMH-P par un procédé d'expression selon la présente invention dans lequel le vecteur utilisé à l'étape (b) comporte, en aval de la séquence nucléotidique comprenant la séquence codant pour un peptide antigénique et la séquence codant pour un ou des Il domaines extracellulaires d'un produit du CMH, le gène d'une protéine permettant la présentation du complexe CMH-P à la surface dudit microorganisme. Le gène d'une protéine permettant la présentation du complexe CMH- P à la surface dudit microorganisme peut être, soit introduite à l'étape (a) du procédé d'expression soit être présente dans le vecteur utilisé à l'étape (b) de clonage. En conséquence, une alternative au procédé ci-dessus consiste à préparer, à l'étape (a) du procédé d'expression, une séquence nucléotidique comprenant outre la séquence codant pour un peptide antigénique et la séquence codant pour un ou des domaines extracellulaires d'un produit du CMH, le gène d'une protéine permettant la présentation du complexe CMH-P à la surface dudit microorganisme On entend, au sens de la présente invention, par microorganisme présentant à sa surface un complexe CMH-P, un microorganisme sur la paroi ou la membrane externe duquel est disposé un complexe CMH-P. Un mode préférentiel de réalisation des procédés de l'invention et plus particulièrement du procédé de présentation d'un complexe P-CMH à la surface d'un microorganisme est caractérisé en ce que le microorganisme utilisé est un phage. Les protéines de phage impliquées dans la présentation de surface du complexe CMH-P permettent à celui-ci d'être accessible depuis le milieu extérieur. Parmi les protéines permettant la présentation du complexe CMH-P à la surface du phage on peut citer les protéines de manteau de phage, notamment les protéines de structure majeure et mineure que respectivement sont les protéines g8p (27) ou g3p (20). Il- 2778669 L'invention a donc également pour objet un microorganisme, plus particulièrement un phage, présentant à sa surface le complexe CMH-peptide obtenu par le procédé ci-dessus. De tels microorganismes peuvent notamment être utilisés dans un procédé de détermination de la spécificité antigénique de récepteurs de cellules T. Un tel procédé comporte les étapes suivantes: i') on met en présence: - un excès de microorganisme, notamment de phage, présentant un complexe CMH-P, obtenu par le procédé de l'invention et, - un "pool" de récepteurs de cellules T, ii') on sélectionne les récepteurs de cellules T liés spécifiquement avec les phages portant le complexes CMH-P de l'étape (i') en éliminant par tout moyen approprié l'excès de phage n'étant pas lié de manière spécifique, iii') on marque les récepteurs de cellules T liés aux phage sélectionnés à l'étape (ii') à l'aide d'une sonde spécifique du phage telle qu'un anticorps dirigé contre le phage, iv') on récupère par tout moyen approprié les récepteurs de cellules T marqués à l'étape (iii'). Les microorganismes de l'invention, et de manière préférentielle les phages de l'invention, sont particulièrement aptes à être utilisés pour la constitution de banque de complexes CMH-P utiles pour le criblage des peptides antigéniques à l'aide un récepteur de cellules T, présenté sous forme soluble ou à la surface de cellules T. La présente invention porte donc aussi sur l'utilisation de microorganismes présentant un complexe CMH-P ci-dessus pour le criblage de peptides antigéniques reconnus par un récepteur de cellule T donné. L'ensemble des microorganismes utilisés constituent une banque de complexes CMH-P. Une banque de CMH-P est alors équivalente à une banque de peptides antigéniques. Un procédé de criblage selon la présente invention est caractérisé en ce qu'il comporte les étapes suivantes: i") on met en présence une banque de complexes CMH-P selon la présente invention et un récepteur de cellules T défini, sous forme soluble ou disposé à la surface de cellules T, ii") on sélectionne les phages présentant le complexe CMH-P liés de manière spécifique avec le récepteur T de l'étape (i") en éliminant les phages qui ne sont pas liés de manière spécifique par tout moyen approprié, tel qu'un lavage, iii") on récupère par tout moyen approprié dans les phages sélectionnés à l'étape (ii") la séquence nucléotidique codant pour le peptide antigénique. Il est aisé pour l'homme du métier de récupérer la séquence nucléotidique d'un peptide provenant d'une banque de peptides. Il lui suffit, par exemple, à partir de la construction utilisée pour transformer les phages, d'obtenir la séquence nucléotidique incluse dans ladite construction et codant pour le peptide antigénique. Un autre objet de la présente invention est un peptide sélectionné dans un procédé de criblage ci- dessus. 114 2778669 En effet, les peptides sélectionnés sont reconnus par les récepteurs de cellules T et en conséquence sont dotés de propriétés immunologiques. Un objet supplémentaire de la présente invention consiste donc en l'utilisation d'un peptide sélectionné par une méthode de criblage selon l'invention pour la préparation d'une composition pharmaceutique destinée à moduler une réponse immunitaire spécifique dudit peptide. D'autres caractéristiques et avantages de la présente invention apparaîtront dans la description détaillée qui suit et qui se réfèrent aux dessins en annexes dans lesquels: La figure 1 est une représentation schématique des protéines de fusion peptides/CMH. Dans les figures et les exemples qui suivent, H-2-Kd est le domaine d'un produit du CMH sur lequel les travaux des Inventeurs ont été effectués. L'ADN codant pour le peptide antigénique, les domaines extracellulaires de H-2-Kd et la P-2- microglobuline murine (rectangle hachuré) ont été assemblés par PCR. La protéine p-CMH est exprimée sous la forme d'une fusion avec la protéine de surface mineure du phage (g3p) en clonant dans le vecteur fd- med, elle peut être également exprimée sous la forme d'une protéine soluble reliée à un petit peptide "étiquette c-myc-l", exprimé dans l'espace périplasmique, par clonage de l'ADN complémentaire codant pour P-CMH dans le vecteur pAb2. RBS: site d'interaction du Ribosome, LacZ séquence promotrice Lac, g3p peptide signal naturel de la protéine g3p de fd qui, dans le génome de fd-med est interrompu par la présence de 2 codons stop (*), PelB: peptide signal de la protéine pectine lyase B de E.Coli (italiques), la protéine mature attendue est indiquée en caractère gras. La figure 2 représente la caractérisation des protéines de fusion P-Kd solubles exprimées dans l'espace périplasmique. En A: sandwich ELISA montrant la présence de molécules P-Kd solubles dans l'espace périplasmique de E-Coli transfectées avec les vecteurs décrits dans la figure 1. Des extraits périplasmiques (abscisse) ou les dilutions contrôles de Kd (*) sont incubés dans des puits de plastique recouverts par l'anticorps monoclonal 20.8.4S (dirigé contre les domaines ol/a2 de H2-Kd) et révélés à l'aide d'un anticorps biotynilés SFll.l.1 (dirigé contre le domaine a3 de H2-Kd), cet anticorps étant lui-même révélé par un anticorps anti-biotyne conjugué à la peroxydase. En B: analyse par Western-Blot des protéines périplasmiques révélées avec un anticorps anti-MYC conjugué à la peroxydase. scAb: anticorps monochaîne contrôle OKT3. En C: stimulation de cellules T spécifiques du peptide HA et restreintes à H2-Kd à l'aide de molécules solubles P-Kd (2 ng/ml) immobilisées sur le plastique en utilisant de l'Avidine et un anticorps biotynilé SF-l.l.l. PMA-Iono: 10 ng/ml phorbol 12 Myristate 13-acétate, 150 ng/ml ionomycine; anti-TCR: anticorps anti-TCR ab biotynilés (1,g/ml) résultats exprimés sous la forme de la valeur moyenne de 3 valeurs avec déviation standard. La figure 3 représente l'expression des épitopes de H2-KD par les phages p-Kd. ELISA montrant l'interaction de différentes dilutions (abscisse) de phages Kd-fd exprimant le peptide HA (*), Cw3 (M) ou PbCS (A) ou bien I 16 l'interaction du phage sauvage fd (V) à des puits en plastique recouverts avec l'anti-H2-Kd 20.8.4.S (anticorps dirigés contre les domaines (xl et x2, cadre supérieur) ou bien avec l'anticorps SF-l.l.l (dirigé contre le troisième domaine a3, cadre inférieur) en Insert: inhibition de l'interaction de fd et de Kd-fd (abscisse) en présence (barre creuse) d'un excès d'anticorps solubles 20.8.4S (moyenne + déviation standard, n=3). La figure 4 représente la caractérisation des phages P-Kd-g3p. En A: ELISA montrant l'interaction de plusieurs dilutions (abscisse) de phages Kd-fd exprimant les peptides HA (^,O), Cw3 (M, J) ou PbCS (A, A) avec les anticorps immobilisés sur le plastique 20.8.4S (anti-H2-KD symbole noir) ou avec l'anticorps 57D1 (anti-g3p N-terminal, symbole blanc) comme contrôle les phages Cw3-Kd-fd ont été immunopurifiés sur un anticorps anti-H2-Kd SF-l.l.1 avant la réalisation du test (-, 0). En B: analyse par SDS page 12% des protéines du phage sauvage fd, du phage exprimant l'anticorps monochaîne contrôle OKT3 (scAb-FdD) et les phages HA-Kd-fd (environ 3.109 CFU). Les Westerns Blots ont été révélés avec un anticorps g3p suivit d'un anticorps anti-souris conjugué à la peroxydase et chémoluminescence. Dans l'échantillon de phage immunopurifié (IP) la chaîne lourde de l'anticorps monoclonal SF-l.l.1 est visible sous la forme d'une large bande de masse moléculaire de 50 Kd. La figure 5 représente l'interaction des phages P-Kd-fd avec le TCR immobilisé. En A: interaction (ELISA) du phage sauvage fd (barre doublement hachurée) ou bien du phage P-Kd-fd exprimant le peptide Cw3 (barre pleine), le peptide HA (barre hachurée) ou le peptide PbCs (barre vide). Avec le TCR recombinant monochaîne Cw3-1.1 (3 pg/ml spécifique de peptide-spécifique de Cw3, restreint à H2- Kd, moyenne plus ou moins déviation standard, n=9), le TCR soluble Kb5-C20 (3 fg/ml TCR alloréactif anti-H2-Kb, n=3), ou bien des protéines du lait (n=6). **: Interaction des phages Cw3-Kd-fd avec le TCR Cw3-1.1 est significativement plus importante (p du phage Cw3-Kd-fd au TCR Kb5-C20. En B: Analyse comparative de l'interaction (ELISA) des différentes dilutions (abscisse) de Cw3-Kd- fd phage avec l'anticorps monoclonal 20.84S immobilisé sur du plastique (1 tg/ml, anticorps anti-H2-Kd domaine l1/2, 1), TCR Cw3-1.1 (1 gg/ml, *) ou TCR Kb5-C20 (1 gg/ml, A). En C: Analyse comparative de l'interaction (ELISA) de phage P-Kd- fd exprimant le peptide Cw3 (-,M) ou bien le peptide HA (O, O) avec le TCR Cw3-1.1 immobilisé sur du plastique (à la concentration de 10 gg/ml, *, O). Les titres de phages Cw3-Kd-fd (abscisse) ont été corrigés (x 2, 1)pour permettre de comparer à égalité sa réactivité envers l'anticorps anti-H2-Kd 20.8.4S (1 gg/ml) avec celle du phage HA-Kd-fd (insert, *, O). En D: Récupération de phage P-Kd-fd exprimant Cw3 (barres pleines), ou bien le peptide HA (barres hachurées), ou bien le peptide PbCS (barres vides) après une seule étape de sélection contre le TCR Cw3- 1.1. immobilisé sur le plastique (à la concentration de 109g/ml), ou bien après sélection contre le TCR Kb5- C20 (immobilisé à la concentration de lOg/ml), ou bien après sélection contre des protéines du lait immobilisées. I - Matériels et Méthodes. 1) Constructions. L'ADN codant pour les domaines extracellulaires de H-2Kd, un peptide de 15 amino-acides et la 2-microglobuline murine ont été donnés par Jean- Pierre Abastado (Institut Pasteur, Paris, France (13)). Cet ADN a été amplifié par PCR en utilisant les oligonucléotides suivants: 5'-GGT GGC CCG GGG GGT GGT TCT GGG GGT GGG GGC CCA CAT TCG CTG AG et 5'-AAC AGT TTC TGC GGC CGC CAT GTC TCG ATC CCA GTA GAC G qui permettent d'ajouter des sites de clonages XmaI et NotI. L'ADN double brin codant pour les peptides antigéniques a été construit par PCR en utilisant un oligonucléotide anti- sens 5'-ACC CCC CGG GCC et un oligonucléotide sens présentant la séquence générique suivante: 5'-GCC CAG CCG GCC ATG GCC-X-GGT GGC CCG GGG GGT GGT TCT GGG-3' ou X signifie ATC TAC TCT ACT GTT GCT TCT TCA TTA (correspondant à la séquence du peptide HA: IYSTBASSL, correspondant au résidu [515-523], de l'hémaglutinine du virus de la grippe (22)) ou bien CGT TAT TTG AAA AAC GGT AAA GAA ACT TTG (correspondant au peptide Cw3: RYLKNGKETL, correspondant au résidu [170-179] de la molécule HLA-Cw3 (23)), ou bien TCT TAC ATC CCA AGC GCA GAA AAA ATA (correspondant au peptide PbCS codant pour SYIPSAEKI, et correspondant au résidu [252-260] de la protéine circumsporozoite de Plasmodium Berghei (24)). Les PCRs ont été réalisés dans un thermocycleur PTC100 (MJ. Research) et les cycles ont été les suivants: 30 cycles (95 C 40 s, 55 C 1 min., 72 C 2 min), 0,5 gM d'oligonucléotides, 250 BM de dNTP, 1 9 1,5 mM de MgC12 et 20 U/ml de Taq DNA polymerase. Les produits de PCR ont été digérés par des enzymes de restriction obtenus chez New England Biolabs, puis purifiés par Wizard Prep PCR (Promega). L'ADN codant pour le peptide et la molécule Kd ont été assemblés et clonés dans un plasmide pBluescript KS+. Les séquences d'ADN ont été vérifiées sur les deux brins en utilisant des kits de séquences et un séquenceur automatique ABI 377 de chez Perking Elmer. Une construction de contrôle codant pour un anticorps monochaîne (scAb) a été obtenue par clonage du fragment variable monochaîne de l'anticorps monoclonal OKT3 (25) en utilisant une procédure d'assemblage par PCR similaire. Pour l'expression des protéines de fusion entre P-CMH et fd g3p, les constructions décrites ont été insérées dans le vecteur fd-med au niveau des sites de restriction SfiI et NotI, ce vecteur bactériophage porte le gène de résistance à la tétracycline et a été fourni par le Docteur I. Fisch de l'Ecole Polytechnique Fédérale à Lausanne en Suisse. Pour permettre l'expression soluble, l'ADN codant pour P-Kd a été introduit entre les sites NcoI et NotI du vecteur pAB2 qui porte le gène de résistance à l'Ampicilline, et permet l'expression périplasmique des protéines recombinantes (ce vecteur a été fourni par le Docteur G. Winter, MRC, Cambridge, Grande-Bretagne). L'ADN du plasmide et du phage ont été électroporés dans des bactéries de souche DH10B fournies par la compagnie Gibco. 2. Expression de P- K- soluble. Les clones bactériens recombinants ont été cultivés pour multiplication à 27 C dans un milieu 2YT comprenant 100 mg/l d'Ampicilline, 10 g/l de glucose jusqu'à ce que la densité optique de la culture atteigne 0,6 par mesure d'absorbance à 600 nm. L'expression protéique a ensuite été induite dans les bactéries par l'addition d'isopropyl 6-D- thiogalactoside (1 mM) pendant une durée de 4 heures à la température de 30 C. Les bactéries ont été ensuite centrifugées et les culots bactériens ont été incubés pendant 45 min à 4 C dans une solution comprenant 2 mM de Tris-HCl pH 8.0, 0,5 M sucrose, 0,5 mM EDTA. Après centrifugation (10. 000 g pendant 20 min) les extraits périplasmiques ont été filtrés (0.22 tm) et stockés à -20 C. 3. Expression des phages. Les clones bactériens ont été multipliés par culture à 37 C en milieu 2YT comprenant 15 ig/ml de tétracycline, 10 g/1 de glucose jusqu'à ce que la culture atteigne une densité optique de 0.9 à 600 nm, pour être ensuite maintenue en culture pendant 16 heures à 30 C. Les particules de bactériophages ont été précipitées à partir du surnageant de culture en ajoutant à ce dernier un volume de polyéthylène glycol 8000 (Sigma, 200 mg/ml dans 2,5 M NaCl) pour 4 volumes de surnageant de culture. Le précipité de bactériophages a été ensuite remis en suspension dans une solution de PBS comportant 3 g/l de BSA, et filtré (0,45 gm) et stocké sous forme d'aliquot à -20 C. Les titres de bactériophages obtenus ont été mesurés sous la forme d'unités formant colonies (c.f.u.) en comptant le nombre de colonies d'E. Coli résistantes à la tétracycline, obtenues après infection de la souche bactérienne TG1 avec plusieurs dilutions différentes de suspension de phages. 4. Western Blot. Les protéines solubles et les protéines du phage ont été soumises à une analyse par électrophorèse en gel de polyacrylamide en présence de 12% de SDS (SDS- 12% PAGE, Novex, San Diego, Californie) dans des conditions réductrices, le contenu des gels a été ensuite transféré par électro-blot sur des membranes de nitrocellulose (Hybond C extra, Amersham), les membranes ont été ensuite bloquées par l'addition d'une solution de lait écrémé dans du PBS et analysées avec un anticorps monoclonal 9E10 dirigé contre le peptide myc (Invitrogen, dilution 1/1000 dans une solution de PBS- Tween) ou bien l'anticorps anti-g3p spécifiquement dirigé contre le troisième domaine de la g3p qui est nécessaire à l'incorporation de cette protéine dans la particule virale (26, Eurogentec, dilution 1/1000 dans une solution de PBS-Tween), après incubation avec les anticorps les membranes ont été révélées par l'addition d'un anticorps anti-souris marqué à la péroxydase (dilution 1/1000, Sigma), ses anticorps ont été détectés par chémiluminescence (kit ECL, Amersham). 5. ELISA. Brièvement, des plaques à micro-puits en polystyrène (Nunc) ont été recouvertes par incubation pendant toute une nuit d'une solution de PBS contenant différents anticorps, à 4 C. Les anticorps utilisés sont l'anticorps 20.8.4S dirigé contre les domaines al et c2 de la molécule H2Kd (clone ATCC HB-11), l'anticorps monoclonal SF-l.l.l dirigé contre le troisième domaine c3 de la molécule H-2Kd (clone ATCC HB-159, de chez Pharmigen), l'anticorps monoclonal 57D1 dirigé contre la protéine g3p du phage M13 (un don du Docteur Monaci, IRBM, Rome, Italie (27)), un anticorps de lapin anti- phage-fd (Sigma). Des molécules recombinantes solubles de TCR monochaîne ont été également immobilisées à la surface de plaques ELISA, ces TCR solubles Cw3-1.1 et Kb5-C20 ont été produits et fournis par le Docteur C. 2_ Grégoire du Centre d'Immunologie à Marseille, en France (21). Après saturation en présence d'une solution de lait écrémé dans du PBS (40 g de lait Régilait écrémé pour 1 1 de PBS) pendant 2 heures à 25 C, les phages ou les extraits périplasmiques dilués dans du PBS-lait ont été ajoutés aux plaques pendant 2 heures, puis lavés trois fois à l'aide PBS-Tween (Tween 20, Sigma, 1 mg/ml dans du PBS), puis lavés deux fois à l'aide de PBS. Les phages restant attachés aux protéines immobilisées sur le polystyrène ont ensuite été révélés avec un anticorps anti-M13 marqué à la péroxydase (Sigma, dilution 1/3.000 dans du PBS-lait pendant 1 heure). Les molécules Kd solubles restant attachées aux plaques de polystyrène ont elles été révélées avec un anticorps biotinylé SF-l.l.l (Pharmingen, 1 gg/ml dans du PBS-lait) suivi par l'incubation avec un anticorps anti-biotine marqué à la péroxydase (Sigma 1/5.000 dans du PBS-lait). Après trois lavages en PBS-Tween, l'activité péroxydase fut détectée par ajout des substrats TMB (Pierce). 6. Test de prolifération des cellules T. Les cellules CD8 purifiées ont été isolées à partir de la rate et des ganglions lymphatiques de souris transgéniques pour le TCR HA-spécifique restreint à la molécule H2- Kd (28). Les cellules ont été purifiées grâce à l'utilisation de l'anticorps de rat 53-6.7 dirigé contre la molécule CD8 murine (Pharmingen) par sélection positive à l'aide de billes magnétiques recouvertes d'anticorps anti-rat (Miltenyi Biotec, Bergisch- Gladbach, Allemagne). Par analyse cytofluorométrique, il fut déterminé que 90% des 23 2778669 cellules ainsi sélectionnées étaient de phénotype CD8+ BV8+. Les molécules P-Kd solubles ont été immobilisées dans des boîtes de culture cellulaire en polystyrène recouvertes de streptavidine au préalable incubées avec une solution à 1 tg/ml d'anticorps biotinylés SF-l.l.l. La prolifération cellulaire des cellules purifiées mise en présence de la molécule P-Kd soluble immoblisée (105 cellules purifiées dans un puits de culture) a été mesurée après 48 heures de culture cellulaire en mesurant l'incorporation de thymidine tritiée pendant une période de 12 heures. 7. Bio-panninq des bactériophages (sélection de bactériophaaes par interaction directe). Les phages (typiquement 1010 - 1011 c.f.u.) ont été incubés pendant 2 heures à la température de la pièce dans des tubes en plastique ou dans des micro- puites cotés toute la nuit avec une solution de TCR soluble ou d'anticorps monoclonaux (1 à 10 gg/ml dans du PBS). Après 5 lavages en PBS-Tween et 2 lavages en PBS, les phages restant attachés au polystyrène ont été élués de la phase solide par traitement à l'acide (50 mM glycine-HCl, 0,75 M NaCl, pH 2.8 pendant 5 min), l'éluat a été ensuite neutralisé par addition de Tris- HC1 1 M pH 7.4. La quantité de phages libres ou élués a été titrée de manière parallèle. II. Résultats. 1. Des complexes solubles P-Kg sont produits dans le périplasme de E. Coli. Les Inventeurs ont d'abord cherché à déterminer si P- Kd pouvait être produit dans le périplasme de E. Coli sous la forme d'une protéine soluble repliée de manière appropriée. L'ADN codant pour P- Kd a été cloné dans le vecteur d'expression périplasmique pAb2 (Fig. 1), un dérivé du vecteur pHEN-1 (30) qui permet le clivage du peptide signal PelB (29) exactement avant le premier résidu N-terminal du peptide antigénique (Fig. 1). Les molécules recombinantes HA-Kd et Cw3-Kd peuvent être purifiées à partir du périplasme de E. Coli après induction, même si leur concentration est environ 100 fois plus faible que celle obtenue lors de la production dans les mêmes conditions d'un anticorps monochaîne (si l'on compare cette production par un test de Dot Blot o les protéines recombinantes sont révélées à l'aide d'un anticorps monoclonal dirigé contre le peptide myc attaché aux protéines recombinantes (résultats non montrés). D'une manière intéressante, les protéines de fusion interagissent spécifiquement avec les anticorps monoclonaux 20.8.4S et SF-1.i.1 qui reconnaissent des épitopes conformationnels présents sur les domaines l1/u2 et les domaines a3 de H- 2Kd, respectivement (Fig. 2A). Les protéines HA-Kdet Cw3-Kd ont été ensuite quantifiées par une méthode Elisa-Sandwich (environs 500 et 30 ng/l de culture bactérienne, respectivement Fig. 2A). Finalement, des molécules HA-Kd peuvent être détectées par Western Blot à la taille attendue (50 kDa, Fig. 2B). 2. Les molécules P-K- immobilisées sont capables d'activer spécifiquement les cellules T. I1 a ensuite été vérifié que si la conformation adoptée par le complexe peptide-antigénique et Kd était capable d'entraîner la stimulation spécifique de cellules T comme cela a été décrit précédemment à partir de complexes P-Kd produits dans des systèmes eukaryotes (13, 16). Les extraits de protéines périplasmiques contenant des molécules P-Kd solubles ont été immobilisées sur du plastique grâce à l'anticorps monoclonal SF-l. l.1 lui même immobilisé. Cet anticorps ne gêne pas l'interaction entre P- Kd et le TCR (16). Comme il est montré dans la figure 2C, les complexes HA-Kd immobilisés sont capables de stimuler de manière HA-spécifique des cellules T restreintes par la d. molécule H2-Kd, alors que des quantités similaires de complexes Cw3-Kd immobilisés, ou bien d'un anticorps monochaîne contrôle, n'ont aucun effet sur ces cellules mêmes T. L'activation des cellules T est inhibée d'une manière spécifique par un excès (10 tg/ml) d'anticorps monoclonal 20.8.4S. 3. Les phapes P-Kd-fd expriment des épitopes conformationels de la molécules H2-Kd. Le vecteur codant pour le phage fd-med permet, comme son vecteur parental fd-DOG (30), le clonage d'un cDNA et l'expression à la partie N- terminale de la protéine g3p. Il présente par ailleurs les avantages additionnels de permettre le clivage du peptide signal à la position requise dans nos constructions (Fig. 1) et d'introduire un codon stop dans le gène codant pour g3p, en l'absence d'ADN complémentaire inséré. De cette manière, les cellules transformées avec fd-med ne produisent que de très faible titres de phages (moins de 106 c.f.u. par litre de culture). En comparaison, quand un minigène P-Kd est introduit dans le génome de fd-med (Fig.l) des titres très élevés de phages sont sécrétés dans le surnageant (de 0,1 à 5 1013 c.f.u. par litre de culture, dans différentes conditions de culture). Des titres comparables de phages HA-Kd-fd, et de phage PbCs-Kd-fd 26 2778669 et de phages exprimant l'anticorps monochaîne contrôle, ont été obtenus. Les titres des phages Cw3-Kd-fd sont d'une manière reproductible 3 à 10 fois plus bas que les titres des phages HA-Kd-fd. La figure 3 montre que les phages P-Kd-fd interagissent de manière spécifique avec les anticorps monoclonaux 20.8.4S et SF-l.l qui reconnaissent des épitopes conformationnels présents sur les domaines al1/c2 et a3 de H2-Kd, respectivement. Le niveau de bruit de fond a été défini grâce à l'utilisation du phage sauvage fd ou après compétition avec un excès d'anticorps solubles appropriés (Fig. 3, insert). Par ailleurs, les phages P-Kd-fd peuvent être immunopurifiés de manière efficace à l'aide d'un tube en plastique recouvert de l'anticorps monoclonal 20.8.4S dirigé contre H2-Kd (utilisé à la concentration de 10 pg/ml dans 0.5 ml pour l'immobilisation). La fraction de c.f.u. retirée par immunopurification (par rapport à la quantité initialement introduite dans le tube) était respectivement de 0.25%, 0.38% pour HA-Cw3-Kd-fd alors que le panning sur des protéines du lait seul ne permettait pas d'immunopurifier plus de 0,001% de phages. D'une manière intéressante, la fraction de HA- Kd-fd sélectionnée après panning décroît de 0.25% à 0,04% quand le phage a été produit à 37 C au lieu de C. 4. Valance des phaqes recombinants. Le nombre de molécules fonctionnelles P-Kd présenté par phages infectieux a été déterminé grâce à 3 différents types d'expériences. a- La concentration des molécules Kd correctement repliée à été déterminée dans les suspensions de phages par un test de sandwich ELISA, comme dans le cas de la molécule Kd soluble (110 et 17 ng/l de culture bactérienne pour HA- et CW3-Kd-fd, respectivement). Du point de vue de la molarité, ceci correspond à environ 0.01 et 0.015 Kd molécules par unité infectieuse de phages, respectivement. b- L'interaction du phage avec les anticorps monoclonaux anti-H2-Kd et 57- D1, ce dernier étant spécifique de la partie N-terminale de g3p, a été comparée (Fig. 4a). Pour obtenir le même signal ELISA (c'est-à- dire le même nombre de phages attachés au plastique) il était nécessaire d'introduire 100 fois plus de phages quand ceux-ci étaient immobilisés avec n'importe lequel des anticorps anti-H2-Kd (environ 109 c.f.u. /ml) que lorsque les anticorps anti-g3p étaient utilisés (lx107 c.f.u. /ml). Comme contrôle, des phages P-Kd-fd ayant été immunopurifiés au préalable sur des anticorps anti-H2-Kd immobilisés (et qui donc expriment tous au moins une molécule Kd par phage), sont, dans ce cas, aussi réactifs vis-à-vis de l'anti-g3p que de l'anti-H2- Kd (Fig. 4a). c- Le panning des phages Kd-fd sur des tubes "coatés" avec l'anticorps anti-H2-Kd 20.8.4S était environ 60 fois moins efficace que le panning sur des tubes coatés avec l'anti-g3p (7.4% versus 0.12%). Donc, on peut estimer qu'environ 1 à 2% de phages P- Kd-fd présentent à leur surface au moins une molécule fonctionnelle P-Kd. 5. Analyse par-SDS paae des protéines recombinantes présentes sur les phaqes. L'analyse par Western Blot des protéines des phages a été réalisée à l'aide d'un anticorps monoclonal qui interagit avec le domaine Cterminial de g3p (Fig. 4b). Cette analyse a révélé deux bandes principales (voir la ligne HA- Kd-fd): une bande de poids moléculaire de 70 Kd indistingable de la bande observée dans la préparation de protéine du phage sauvage FD (référence 26), et une bande de masse moléculaire d'environ 76 Kd, qui pourrait résulter de la cassure de la protéine de fusion près du domaine C-terminal du 3ème domaine a-3 de H2- Kd. La bande attendue correspondant à la protéine de fusion complète HA- Kd-g3p (d'une masse moléculaire d'environ 110 Kd) est visible seulement sur des gels étant chargés avec 30 fois plus de matériel (résultats non montrés) ou quand les phages sont au préalable immunopurifiés contre un anticorps anti-H2-Kd immobilisé (voir la ligne HA- Kd-fd-IP). Il est important de noter, que la proportion respective des bandes de 110 Kd, 76 Kd et 60 Kd au sein des préparations des phages immunopurifiés étaient d'environ 1:2:2. Une fragmentation similaire, mais moins importante, de la protéine contrôle anticorps monochaîne fusionnée à G3P fut aussi observée, dans ce cas, une protéine de fusion complète (de taille d'environ 90 Kd), pouvait être observée sans purification préalable (voir la ligne SCAB-FD dans la figure). En plus d'un clivage protéolytique possible, on peut suspecter l'existence d'un deuxième site d'interaction pour le Ribosome au sein de la séquence codant pour le domaine c3 de H2- Kd Ce site d'initiation alternatif permettrait la d transcription de la protéine mesurant 76 Kd. Les phages CW3- Kd-fd interagissent avec un TCR Cw3-spécifique et restreint à H2-Kd. La figure 5a montre que les phages Cw3-Kd-fd interagissent avec le TCR monochaîne spécifique de Cw3 et restreint à H2-Kd. L'interaction de ce TCR Cw3-1.1 avec les phages sauvages fd, ou bien avec des phages présentant Kd mais des peptides "irrelevants" (HA ou PBCS) est moins bonne. Aucun des phages utilisés n'interagissait avec le TCR monochaîne KB5-C20, qui est lui restreint à la molécule H2-Kd quand celui-ci était immobilisé sur le plastique à la même concentration. La figure 5B montre que des concentrations 100 fois supérieures de phages Cw3- Kd-fd sont nécessaires pour obtenir le même signal ELISA (c'est-à-dire la même quantité de phages immobilisés sur le plastique) en présence de TCR Cw3-1.1 (environ 1011 c.f.u./ml) qu'en présence d'anticorps anti-H2- Kd *(environ 109 c.f.u./ml). Pour étudier l'influence du peptide présenté par les phages Kd-fd en ce qui concerne l'interaction avec le TCR Cw3-1.1, on a mesuré en parallèle l'interaction des phages Cw3-Kd-fd et les phages HA-Kd- fd (figure 5c). Bien que les deux types de phages recombinants sont capables d'interagir avec le TCR, 3 fois moins de c.f.u. du phage Cw3Kd-fd sont nécessaires pour induire le même signal ELISA, suggérant que le peptide présenté module d'une manière spécifique l'avidité du phage pour le TCR. Afin d'exclure l'hypothèse selon laquelle les phages CW3-Kd-fd interagissent mieux que les phages HA-Kd-fd car ils présenteraient plus de complexe P-Kd, des courbes d'activité anti-H2-Kd-fd ont été obtenues dans des expériences parallèles (Fig. 5, insert) et superposées en corrigeant d'un facteur 2.1 les titres de phages Cw3-Kd-fd rapportés en corrigeant par un facteur 2.1 des titres de phages Cw3-Kd-fd reportés en abscisse dans la Figure 5C. Sans cette correction (résultats non 2778669 montrés), les phages Cw3-Kd-fd interagissent 6 fois mieux que les phages HA-Kd-fd avec le TCR Cw3-1.1. Finalement, en corrélation avec les résultats obtenus par ELISA, un cycle de sélections contre le TCR immobilisé Cw3-1.1 a permis de sélectionner 4 fois plus de phages Cw3-Kd-fd que de phages Kd présentant un peptide irrelevant (Fig. 5D). Comme cela était attendu, les phages Cw3-Kd-fdne ne sont pas sélectionnés d'une manière spécifique sur un TCR KB5-C20 ou sur des protéines du lait immobilisées en phase solide. Références. 1. Wilson, I. A. & Garcia, K. C. (1997) Curr Opin Struct Biol 7, 839-48. 2. Rotzschke, O., Falk, K., Deres, K., Schild, H., Norda, M., Metzger, J., Jung, G. & Rammensee, H. G. (1990) Nature 348, 252-4. 3. Bruggen, P., Traversari, C., Chomez, P., Lurquin, C., De Plaen, E., Van den Eynde, B., Knuth, A. ]0 & Boon, T. (1991) Science 254, 1643. 4. Hemmer, B., Vergeli, M., Pinilla, C., Houghten, R. & Martin, R. (1998) Immunol Today 19, 163- 168. 5. Rammensee, H. G. (1995) Curr Opin Immunol 7, 85-96. 6. Jones, E. Y. (1997) Curr Opin Immunol 9, -9. 7. 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REVENDICATIONS 1) Procédé d'expression d'un complexe CMH-P dans un microorganisme comprenant les étapes suivantes: a) la préparation d'une séquence nucléotidique comprenant la séquence codant pour un peptide antigénique et la séquence codant pour un ou des domaines extracellulaires d'un produit du CMH. b) le clonage de la séquence nucléotidique obtenue en (a) dans un vecteur permettant l'expression de ladite séquence dans un microorganisme, ladite séquence étant clonée en aval d'une séquence codant pour un peptide signal dirigeant le produit de ladite séquence nucléotidique vers l'espace périplasmique du microrganisme. c) la transfection d'un microorganisme avec le vecteur obtenu à l'étape (b), d) l'induction de l'expression du produit de la séquence nucléotidique par tout moyen approprié. 2) Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que la séquence nucléotidique préparée à l'étape (a) comprend entre la séquence codant pour un peptide antigénique et la séquence codant pour un ou des domaines extracellulaires d'un produit du CMH, une séquence intermédiaire. 3) Procédé selon la revendication 2, caractérisé en ce que la séquence intermédiaire code pour un peptide liant le peptide antigénique et le produit du CMH de manière covalente. 4) Procédé selon la revendication 2, caractérisé en ce que la séquence intermédiaire comporte un codon Stop permettant l'expression indépendante du if, 2778669 peptide antigénique et du produit du CMH qui se réassocient après l'étape (d). ) Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que la séquence codant pour le peptide antigènique utilisée dans la séquence nucléotidique de l'étape (a) est: - soit une séquence naturelle provenant de l'ADNc d'un tissu ou d'un organisme déterminés, - soit une séquence nucléotidique aléatoire de synthèse. 6) Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que la séquence codant pour le peptide signal est insérée dans la séquence nucléotidique préparée à l'étape (a) du procédé de l'invention, ou est présente dans le vecteur o ladite séquence est clonée selon l'étape (b). 7) Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que la séquence codant pour le peptide signal est la séquence du peptide signal de la protéine pectine lyase B d'E. coli. 8) Procédé de production d'un complexe CMH-P soluble, caractérisé en ce que l'on exprime un complexe CMH-P par le procédé d'expression selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, dans lequel le vecteur utilisé à l'étape (b) est un vecteur plasmidique o la séquence plasmidique située en aval de la séquence nucléotidique de l'étape (a) code successivement pour un peptide étiquette et un ou plusieurs codons Stop, et en ce que le complexe CMH-peptide est récupéré, après l'étape (d), par tout moyen approprié à l'aide dudit peptide étiquette. 9) Procédé selon la revendication 9, caractérisé en ce que la séquence nucléotidique préparée à l'étape (a) comprend une séquence de multimérisation. 10) Complexe CMH-peptide soluble obtenu par un procédé selon l'une des revendications 8 à 9. 11) Utilisation d'un complexe selon la revendication 10 pour la détermination de la spécificité antigénique de récepteurs de cellules T sous forme soluble ou présentés à la surface de cellules T. 12) Procédé de détermination de la spécificité antigénique de récepteurs des celulles T, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes: i) on met en présence: - un excès d'un complexe CMH-P soluble porteur d'un peptide étiquette, obtenu par un procédé selon l'une des revendications 8 à 9, et - un pool de récepteurs de cellules T, ii) on sélectionne les complexes CMH-P liés spécifiquement aux récepteurs de cellules T de l'étape (i) en éliminant par tout moyen approprié l'excès de CMH-P soluble n'étant pas lié de manière spécifique, iii) on marque les complexes CMH-P liés aux récepteurs de cellules T sélectionnés à l'étape (ii) à l'aide d'une sonde spécifique du complexe CMH-P, iv) on repère par tout moyen approprié les récepteurs de cellules T marqués à l'étape (iii). 13) Utilisation d'un complexe selon la revendication 10 pour la préparation d'une composition pharmaceutique utile pour moduler de manière spécifique l'activité de cellules T. 38 2778669 14) Procédé de préparation d'un microorganisme présentant à sa surface un complexe CMH- P, caractérisé en ce que l'on exprime un complexe CMH-P par le procédé d'expression selon l'une quelconque des revendications 1 à 7 dans lequel le vecteur utilisé à l'étape (b) comporte, en aval de la séquence nucléotidique comprenant la séquence codant pour un peptide antigénique et la séquence codant pour un ou des domaines extracellulaires d'un produit du CMH, le gène d'une protéine permettant la présentation du complexe CMH-P à la surface dudit microorganisme. ) Procédé selon la revendication 14, caractérisé en ce que le microorganisme est un phage. 16) Un microorganisme, plus particulièrement un phage, présentant à sa surface un complexe CMH- peptide. 17) Un microorganisme, plus particulièrement un phage selon la revendication 16, susceptible d'être obtenu par un procédé selon la revendication 14. 18) Utilisation d'un microorganisme, plus particulièrement d'un phage selon l'une des revendications 16 à 17, pour la détermination de la spécificité antigénique de récepteurs de cellules T. 19) Procédé de détermination de la spécificité antigénique de récepteurs de cellules T, caractérisé en ce qu'il comporte les étapes suivantes: i') on met en présence: - un excès de microorganisme, notamment de phage, présentant un complexe CMH-P, selon l'une des revendications 16 à 17, - un pool de récepteurs de cellules T, ii') on sélectionne les récepteurs de cellules T liés spécifiquement avec les phages portant le complexes CMH-P de l'étape (i') en éliminant par tout moyen approprié l'excès de phage n'étant pas lié de manière spécifique, iii') on marque les récepteurs de cellules T liés aux phage sélectionnés à l'étape (ii') à l'aide d'une sonde spécifique du phage telle qu'un anticorps dirigé contre le phage, iv') on récupère par tout moyen approprié les récepteurs de cellules T marqués à l'étape (iii'). ) Utilisation d'une banque de microorganismes, plus particulièrement de phages selon l'une des revendications 16 à 17, pour le criblage de peptides antigéniques à l'aide un récepteur de cellules T donné. 21) Procédé de criblage de peptides antigéniques, caractérisé en ce qu'il comporte les étapes suivantes: i") on met en présence une banque de microorganismes, plus particulièrement de phages selon l'une des revendications 16 à 17, et un récepteur de cellules T défini, sous forme soluble ou disposé à la surface de cellules T, ii") on sélectionne les phages présentant le complexe CMH-P liés de manière spécifique avec le récepteur T de l'étape (i") en éliminant les phages qui ne sont pas liés de manière spécifique par tout moyen approprié, tel qu'un lavage, iii") on récupère par tout moyen approprié dans les phages sélectionnés à l'étape (ii") la séquence nucléotidique codant pour le peptide antigénique. ) 2778669 22) Un peptide sélectionné par un procédé de criblage selon la revendication 21. 23) Utilisation d'un peptide sélectionné par une procédé de criblage selon la revendication 21 pour la préparation d'une composition pharmaceutique destinée à moduler une réponse immunitaire spécifique dudit peptide.