FR 2757635 A1 19980626 FR 9615987 A 19961224 L'invention a pour objet un procédé d'évaluation des dommages induits dans la peau et/ou le derme par les rayonnements ultraviolets de type A. Le rayonnement solaire est composé, entre autres, de rayonnement ultraviolet de type A de longueurs d'onde comprises entre 320 nm et 400 nm (UV-A) et de rayonnements ultraviolets de type B de longueurs d'onde comprises entre 280 et 320 nm (UV-B). Les UV-B sont fortement énergétiques et peu pénétrants, faiblement représentés dans la lumière solaire, dépendants des variations climatiques (temps nuageux, couvert, etc.) et leur présence varie en fonction des heures de la journée (notion de pic (zénith)). Les UV-A sont moins énergétiques que les UV-B mais plus pénétrants, présents en grande quantité dans la lumière solaire (au minimum 100 fois plus d'UV-A que d'UV-B), peu dépendants des variations climatiques et présents quelle que soit lI'heure de la journée. Il est connu que le rayonnement solaire est responsable d'effets bénéfiques sur la peau, comme par exemple le brunissement, mais qu'il est aussi susceptible d'induire des dommages de celle-ci, notamment dans le cas d'une peau dite "sensible" ou d'une peau continuellement exposée. On sait qu'une exposition excessive de la peau aux rayonnements ultraviolets, aux rayonnements solaires en particulier, peut entraîner un changement dans l'élasticité de la peau, dans sa teneur en certains composés, et ainsi favoriser l'accélération du processus naturel de vieillissement de la peau. Ce processus de vieillissement accéléré ou prématuré dû aux UV est généralement appelé photo- vieillissement ou vieillissement actinique ou dermatohéliose. Le photo-vieillissement résulte donc de l'action de facteurs extrinsèques sur la peau, parmi lesquels le rayonnement solaire, et en particulier les rayons U.V.. Le photo-vieillissement est donc la conséquence de la répétition d'événements définis, induits par ces facteurs extrinsèques, en particulier la rayonnement solaire, événements définis qui jusqu'à présent ont été supposés mais n'ont jamais été démontrés. Par événements définis, on entend tout événement unique et ponctuel résultant d'une irradiation par les UVs. Chez l'homme, le photo-vieillissement fait que la peau présente un aspect clinique rugueux, sec, associé à une perte d'élasticité ainsi que des rides marquées. Les signes histologiques du photo-vieillissement sont (pour revue Gilchrest B.A., Skin and Aging Processes, 1989, CRC Press) au niveau épidermique: la variation de l'épaisseur de l'épiderme (atrophie ou hyperplasie en fonction des zones observées), une atypie cellulaire (Kligman L.M. and Kligrnan A.M., Photodermatol 1986, 3: 215-227), une perte de la polarité cellulaire, une irrégularité de la couche cornée, une diminution du nombre de cellules de Langerhans (Lavker R.M. et col., J. Invest. Dermatol. 1987, 88: 44s-51s), une pigmentation caractérisée par un aspect en mosaïque avec des zones d'hypo- ou d'hyper- pigmentation, une linéarisation de la jonction dermo-épidermique (Lavker R.M., J. Invest. Dermatol. 1979, 73: 59-). Les altérations épidermiques sont en fait relativement mineures en comparaison des altérations dermiques qui sont les plus flagrantes et les plus importantes (Kligman L.M. and Kligman A.M., Photodermatol 1986, 3: 215-227). C'est en effet au niveau de la matrice extracellulaire que les principaux effets sont observés. Les fibroblastes sont hyperactifs (Kligman L.M. and Kligman A.M., Photodermatol 1986, 3: 215-227). Le collagène est diminué en quantité (Oikarinen A. et col., Photodermatol. 1985, 2: 15-26, Warren R. et col., J. Am. Acad. Dermatol. 1991, 25: 751-760). La solubilité des fibres est diminuée (Oikarinen A. and Kallioinen M., Photodermatol. 1989, 6: 24-31), et on observe une dégénération basophile. Les altérations ultrastructurales du collagène se traduisent par une diminution du nombre de fibrilles, une réduction de la densité électronique, une réduction des striations transversales (Mitchell R.E., J. Invest. Dermatol. 1967, 48: 203-220). Inversement, le tissu élastique subit une hyperplasie (Kligman A.M. J.A. M.A. 1969, 210: 2377-2380, Warren R. et col., J. Am. Acad. Dermatol. 1991, 25: 751- 760). Le derme moyen est caractérisé par un regroupement de fibres, formant ainsi une zone superficielle appelée "grenz zone", fibres qui sont absentes du derme papillaire. Dans la partie la plus profonde du derme, le tissu élastique est anormal et désorganisé (Chen V.L. et col., J. Invest. Dermatol. 1986, 87: 334- 337), mais surtout il est présent en quantité importante ce qui se traduit histologiquement par un amas de tissu élastique. Ce phénomène porte le nom d'élastose actinique (Braverman l.M. and Fonferko E., J. Invest. Dermatol. 1982, 78: 434-443; Matsuoka L.Y. and Uitto J., Aging and the skin, Balin A.K. and Kligman A.M. Eds, Raven Press N.Y. 1989, 7, 141-151). L'élastine présente un aspect granulaire (matériel élastotique) et des inclusions en microscopie électronique (Braverman I.M. and Fonferko E., J. Invest. Dermatol. 1982, 78: 434- 443). Les glycosaminoglycans et les protéoglycans sont augmentés (Smith J.G. et col., J. Invest. Dermatol. 1962, 39: 347-350, Sams WM. and Smith J.G., J. Invest. Dermatol. 1961, 37: 447-452). Il a souvent été constaté la présence d'un infiltrat dermique composé de mastocytes, de lymphocytes et d'histiocytes (Lavker R.M. and Kligman A.M. , J. Invest. Dermatol. 1988, 90: 325-330). Les vaisseaux sanguins sont également modifiés (Braverman I.M. and Fonferko E., J. Invest. Dermatol. 1982, 78: 444- 448). En particulier leur nombre est réduit, les cellules endothéliales sont dilatées et la paroi des vaisseaux est épaissie et on observe une lamination de la membrane basale des cellules endothéliales. Cependant, même si les signes cliniques et histologiques d'une peau photovieillie ont été bien étudiés, les processus qui aboutissent à ces signes restent aujourd'hui inconnus. En particulier le rôle respectif des UV-A et des UV-B dans ces processus n'est pas démontré. Cela est en grande partie dû à la difficulté de mettre en oeuvre un modèle d'étude simple et fiable. On connaît dans l'art antérieur des modèles animaux développés dans le but de reproduire les dommages causés par les U.V. et dans un but pharmacologique pour tester des molécules "antivieillissement" (Sams WM. et col., J. Invest. Dermatol., 1964, 43: 467-471; Kligman L.H., Yearly review, the hairless mouse and photoaging; Photochem. Photobiol., 1991, 54(6), 1109-1118). Mais, ces modèles nécessitent l'utilisation d'animaux de laboratoires ce qui n'est s pas sans poser des problèmes d'éthique. De plus, pour obtenir une image de photo-vieillissement proche de la réalité il faut avec ces modèles pratiquer les irradiations de manière chronique et pendant plusieurs semaines ce qui alourdit la mise en oeuvre de tels modèles. Les animaux utilisés dans ces modèles sont généralement des souris, dont les cellules sont différentes sur de nombreux points des cellules humaines. De plus, la peau de la souris est beaucoup plus fine que la peau humaine et ce paramètre est à considérer quand il s'agit des effets des rayonnements UV, car ces effets sont dépendants de la pénétration des rayons. Le derme de la souris est différent du derme humain (derme papillaire et s5 réticulaire inexistant chez la souris) et peut présenter selon l'espèce utilisée dans le modèle de nombreux résidus de follicules pileux dégénérés. Enfin, ces modèles ne donnent pas d'indications précises sur les événements précoces qui aboutissent à l'image histologique du photo-vieillissement. On connaît également des modèles d'étude chez l'homme (Scharffetter K. et coL., Arch. Dermatol. Res. 1991, 283: 506-511; Korwin-Zmijowska C. et col., Nouv. Dermatol. 1993, 12: 487) mais on comprend aisément que leur mise en oeuvre soit difficile. L'utilisation de volontaires humains présente des difficultés d'ordre éthique et induit inévitablement des contraintes pour les sujets. De plus, la variabilité entre individus (phototype de la peau, âge des sujets, antécédents, traitements en cours....) est telle que la reproductibilité des résultats est illusoire. On connaît enfin des modèles in vitro. Certains de ces modèles font appel à des cultures cellulaires dans lesquelles on étudie les effets des irradiations U.V. sur un ou plusieurs marqueurs des cellules en culture. Les effets des UVA ont ainsi été étudiés sur des kératinocytes (cellules épidermiques), des fibroblastes (cellules du derme), des cellules de Langerhans (cellules de l'épiderme immunocompétentes), ou les mélanocytes (cellules pigmentaires) (Gilchrest B.A., J. Gerontol. 1980, 35: 537-541; Scharffetter K. et col., Arch. Dermnatol. Res. 1991, 283: 506-511; Petersen M.J. et coL., J. Invest. DermatoL. 1992, 99: 440-444; Nascimento A. et col., Nucleic Acids Res., 1993, 21(5), 1103-1109). On comprend aisément que de tels modèles ne peuvent refléter la réalité du simple fait qu'il s'agit de cultures de cellules en monocouche ce qui est très 0o différent de la notion de tissu et de son aspect tridimensionnel. La plupart du temps les cultures sont réalisées à partir d'une seule population cellulaire, ce qui ne reflète pas non plus la réalité. Ainsi, I'influence de l'épaisseur des couches traversées par le rayonnement et le rôle de la pénétration des UVs dans la peau, bien évidemment fonction de l'épaisseur des couches cellulaires traversées, ne peuvent être étudiés dans de tels modèles. L'absence de contexte matriciel, notamment en ce qui concerne les fibroblastes dermiques pour lesquels il est reconnu essentiel pour leur activité métabolique, fausse les interprétations des résultats obtenus; il est en effet difficile d'extrapoler les données sur plastique avec une situation in vivo réelle chez l'homme. Il est impossible avec ce type de modèles d'effectuer des applications de produit par voie topique. Enfin, certains de ces modèles font appel à des lignées cellulaires c'est-à-dire à des cellules génétiquement modifiées qui ne peuvent refléter la réalité physiologique de cellules normales. On connaît aussi des modèles utilisant des équivalents d'épiderme ou de peau. En ce qui concerne les modèles utilisant des équivalents d'épiderme, leur principal inconvénient vient du fait qu'ils ne représentent pas la réalité du fait de l'absence de derme ou d'équivalent de derme (Noel- Hudson M.S. et col., Nouv. Dermatol., 1993, 12: 493). D'autres études utilisent des équivalents de peau (Mammone. et col., J. Invest. Dermatol. 1992, 98, (4), 655; Ridge J.M. et col., Clin. Res., 1992, 40(2): 543A; Reece B. et col., J. Soc. Cosmet. Chem., 1992, 43: 307-312; Pelle E. et col., J. Invest. Dermnatol., 1993, 100, (4), 595; Nelson D. et col., Photochem. Photobiol., 1993, 57 (5): 830-837); Haake and Polakowska, Cell death and differentiation, 1995, vol.2, 183-193. Indépendamment des modèles utilisés qui parfois sont assez éloignés d'une peau normale, ces études sont la plupart du temps restées très sommaires et n'ont en tout cas jamais étudié l'influence spécifique des UV-A sur des marqueurs corrélés l 0 au photo-vieillissement. Ainsi, à ce jour aucun modèle d'étude n'a permis d'étudier et comprendre les événements dont la répétition aboutit aux signes cliniques et histologiques du photo-vieillissement. La peau humaine est constituée de deux compartiments à savoir un compartiment superficiel, l'épiderme et un compartiment profond, le derme. L'épiderme humain naturel est composé principalement de trois types de cellules qui sont les kératinocytes, très majoritaires, les mélanocytes et les cellules de Langerhans. Chacun de ces types cellulaires contribue par ses fonctions propres au rôle essentiel joué dans l'organisme par la peau. Le derme fournit à l'épiderme un support solide. C'est également son élément nourricier. Il est principalement constitué de fibroblastes et d'une matrice extracellulaire composée elle-même principalement de collagène, d'élastine et d'une substance, dite substance fondamentale, composants synthétisés par le fibroblaste. On y trouve aussi des leucocytes, des mastocytes ou encore des macrophages tissulaires. Il est également constitué de vaisseaux sanguins et de fibres nerveuses. Dans une peau normale, c'est à dire non pathologique ni cicatricielle, le fibroblaste est à l'état quiescent, c'est à dire non prolifératif, peu actif d'un point de vue métabolique et non mobile. L'épiderme est la première cible atteinte par les rayonnements solaires, particulièrement les rayonnements UV. Les UV-B faiblement pénétrants atteignent principalement l'épiderme. Le rôle des UV-B a été clairement démontré dans l'induction de cancers de la peau UV-induits. Ils ont en effet comme principal chromophore les acides nucléiques en particulier l'acide désoxyribonucléique, au sein duquel ils induisent des lésions et/ou des mutations (Eller M.S., 1995, in Photodamage. 26-56, Blackwell ed.) A l'inverse, le rôle des UV-A dans l'induction des événements définis dont la io répétition conduit au phénotype du photo-vieillissement n'est pas connu, même si leur fort pouvoir pénétrant laisse supposer qu'ils atteignent le derme dans lequel ils induisent leurs effets néfastes. La demanderesse qui depuis fort longtemps s'intéresse à la peau et en particulier aux interactions des rayonnements solaires avec celle-ci a, après de longs travaux, maintenant découvert certains effets spécifiques des rayonnements UV de type A dans la peau, particulièrement dans le derme. La demanderesse a pu montrer qu'une irradiation aux UV-A induit dans le derme des dégâts spécifiques aux longueurs d'ondes des UV-A. Ainsi, elle a pu montrer que les UV-A induisent la production de collagénase de type I par les fibroblastes, que le nombre desdits fibroblastes décroît dramatiquement du fait de l'irradiation jusqu'à une disparition totale dans les 48 heures suivants l'irradiation, tout au moins sur une épaisseur de derme qui est fonction des paramètres de l'irradiation et que la partie de derme d'o les fibroblastes ont disparu est recolonisée par des fibroblastes sous-jacents non atteints par le rayonnement. Ces trois événements sont directement liés à l'irradiation par les UV-A. On comprend aisément que la production de collagénase (enzyme dégradant le collagène) dans une structure dont l'un des éléments essentiels est le collagène ne peut conduire qu'à des effets dramatiques pour la peau. On comprend aussi que la disparition induite par les UV-A des fibroblastes, composants majeurs du derme et éléments régénérateurs de celui-ci, ne peut également conduire qu'à des effets dramatiques pour la peau. Enfin, la recolonisation n'a lieu que si au moins une partie des fibroblastes du derme n'est pas atteinte par le rayonnement. Cette réparation spontanée du dommage induit par les rayonnements, si elle présente un caractère favorable dans le sens qu'elle corrige les effets néfastes des rayonnements UV, n'en demeure pas moins une des causes du phénotype du photo-vieillissement. En effet, les fibroblastes doivent avoir quitté leur état de quiescence pour être aptes à o10 recoloniser le tissus dermique. Cela implique qu'ils se multiplient, que leur métabolisme a repris et donc qu'ils se remettent à synthétiser les composants de la matrice extracellulaire dont une suraccumulation peut nuire à la peau. Une peau qui subit les agressions répétées des rayonnements solaires et particulièrement de leur composante UV-A, qui subit donc une dégradation de son derme, est une peau qui semble vieillir précocement. La répétition de ces phénomènes fait que la peau présente les caractéristiques d'une peau photovieillie. La découverte de ces marqueurs spécifiques de l'action des UV-A sur la peau, particulièrement sur le derme a conduit la demanderesse à mettre au point un modèle d'étude qui permet l'évaluation de produits susceptibles de moduler et/ou de corriger les dommages induits dans la peau et particulièrement dans le derme par les rayonnements ultraviolets de type A. L'invention a donc pour objet un procédé d'évaluation des dommages induits dans la peau par les rayonnements ultraviolets de type A, caractérisé en ce que l'on soumet un équivalent de peau obtenu in vitro à au moins un rayonnement ultraviolet de type A pendant un temps suffisant, que l'on mesure la variation d'un marqueur spécifique des dommages induits dans la peau par le rayonnement ultraviolet de type A et que l'on évalue les résultats de cette mesure par rapport à un témoin. Selon un aspect particulier, l'invention a pour objet un procédé d'évaluation des dommages induits dans la peau par les rayonnements ultraviolets de type A, caractérisé en ce que l'on soumet un équivalent de peau obtenu in vitro à au moins un rayonnement ultraviolet de type A pendant un temps suffisant, que l'on mesure la variation d'un marqueur spécifique des dommages induits dans le derme par les rayonnements ultraviolets de type A et que l'on évalue les résultats de cette mesure par rapport à un témoin. Selon l'invention, tout équivalent de peau qui présente un équivalent de derme vivant est utilisable. Par équivalent de derme vivant, on entend tout équivalent de derme contenant des fibroblastes vivants. On citera à cet égard par exemple les équivalents de peau décrits dans les brevets ou dans les demandes de brevets EP 0285471, EP 0285474, EP 0418035, WO-A-90/02796, WO-A-91/16010, I s EP 0197090, EP 020753, CA 2119064. Ainsi, I'invention présente de nombreux avantages liés à l'aspect tridimensionnel d'un équivalent de peau, à la présence des deux tissus (équivalent d'épiderme et équivalent de derme) qui permet d'étudier les interactions entre les deux tissus et le rôle de chaque type cellulaire dans la réponse à l'irradiation, à la nature et à l'origine des fibroblastes utilisés, à la composition de la matrice de départ, à la capacité de faire varier l'épaisseur de l'équivalent de derme, à la densité cellulaire variable de l'équivalent de derme, à la modification possible du milieu de culture utilisé pour obtenir l'équivalent de peau, à la capacité de faire varier la nature, la qualité, la quantité des rayonnements utilisés. L'équivalent de derme utilisé selon l'invention peut être constitué par exemple de lattices mixtes collagène/fibroblastes, de substituts souscutanés à base de collagéne contenant des fibroblastes, ou de tout autre support compatible avec la viabilité cellulaire dans lequel pourraient être inclus des fibroblastes. Préférentiellement selon l'invention, l'équivalent de derme est constitué de lattices mixtes collagène/fibroblastes. Les fibroblastes utilisés selon l'invention peuvent être de toute espèce (homme, souris, etc.) et de toute origine tissulaire (peau, poumon, etc.). Les fibroblastes utilisés selon l'invention peuvent provenir de tissus sains ou pathologiques. De préférence, selon l'invention, on utilise des fibroblastes de peau humaine normale. Mais, il est envisageable que le support comprenne en outre d'autres types cellulaires et/ou d'autres types de protéines. On citera par exemple les glycosaminoglycans ou les fibres d'élastine. La densité de cellules utilisée selon l'invention est en général celle décrite dans l'art antérieur à propos des équivalents de peau obtenus in vitro. Mais, il est possible de faire varier cette densité en toute proportion que l'on estime être utile à l'évaluation objet du procédé de l'invention. L'épaisseur de l'équivalent de derme utilisé selon l'invention est en général celle décrite dans l'art antérieur. On sait d'après cet art antérieur que cette épaisseur est fonction de la quantité de mélange collagène/cellule que l'on utilise. En général, cette épaisseur est comprise entre 0,05 mm et plusieurs millimètres. Préférentiellement, selon l'invention, l'épaisseur de l'équivalent de derme est comprise entre 0,20 mm et 1,5 mm. Il peut s'avérer intéressant de faire varier cette épaisseur en toute proportion que l'on estime être utile à l'évaluation objet du procédé de l'invention. L'homme du métier sait adapter la quantité de mélange collagène/cellule qu'il utilise pour obtenir l'équivalent de derme de l'épaisseur qu'il désire. Il Selon l'invention, on soumet ledit équivalent de peau traité à un rayonnement ultraviolet de type A pendant un temps suffisant. Par un rayonnement ultraviolet de type A, on entend tout rayonnement présentant au moins les caractéristiques du rayonnement ultraviolet de type A, c'est à dire ayant au moins une longueur d'onde comprise entre 320 nm et 400 nm. Ce rayonnement peut être le rayonnement solaire ou tout équivalent reproduit de manière artificielle. De préférence selon l'invention, on utilise un rayonnement reproduit de manière artificielle ayant au moins une longueur d'onde comprise entre 320 nm et 400 nm et avantageusement un rayonnement ayant des longueurs d'onde uniquement comprises entre 320 nm et 400 nm. Les appareils reproduisant ce type de rayonnement sont bien connus. On peut citer à titre d'exemple le simulateur solaire IDEM 3000 de marque ARQUANTIEL ou encore le simulateur solaire de marque ORIEL. Quelque soit l'appareil choisi, celui-ci doit être équipé de filtres SCHOTT WG 335 3 mm qui éliminent les longueurs d'onde inférieures à 320 nm. On peut également utiliser des appareils du type lampes à bronzer comme par exemple les UVASUN 3000 donnés pour un spectre de longueurs d'onde supérieures à 340 nm. A ce titre, I'invention présente l'avantage de permettre l'évaluation de la nature exacte du rayonnement émis par un matériel reproduisant le rayonnement solaire comme par exemple les lampes à bronzer. On sait qu'il est important avec un tel matériel que certaines longueurs d'onde ne soient pas émises afin de préserver la peau des effets néfastes qu'elles engendrent. Le procédé de l'invention peut permettre de parfaitement caractériser le rayonnement émis par l'évaluation des dommages causés par un tel matériel. De manière générale, le temps pendant lequel on expose l'équivalent de peau obtenu in vitro traité au rayonnement de type UV-A est conditionné à la fois par les paramètres du rayonnement que l'on désire utiliser mais également par l'effet que l'on désire obtenir. C'est au minimum le temps nécessaire pour voir apparaître une modification du niveau d'expression du marqueur spécifique des dommages induits dans le derme par les rayonnements ultraviolets de type A. Ce temps d'exposition au rayonnement peut aller de I minute à quelques heures. Préférentiellement, selon l'invention, le temps d'exposition est compris entre 5 et minutes. Selon l'invention, on mesure la variation d'un marqueur spécifique des dommages induits dans la peau, plus particulièrement dans le derme, par les rayonnements o0 ultraviolets de type A et que l'on évalue les résultats de cette mesure par rapport à un témoin. Par marqueur spécifique des dommages induits dans la peau, plus particulièrement dans le derme, par les rayonnements ultraviolets de type A, on entend, selon l'invention, tout élément dont la présence, I'absence, la modification de l'expression ou la modification de la distribution peuvent être mesurées, en réponse à l'exposition au rayonnement de type A. On peut citer à titre d'exemple de marqueur, et sans limitation, les acides nucléiques (acide ribonucléique ou désoxyribonucléique), les protéines ou groupe de protéines liées ou non, les ions, les cellules, les membranes cellulaires, les organites cellulaires, les lipides ou les polyosides. Plus particulièrement selon l'invention, le marqueur spécifique des dommages induits par les rayonnements ultraviolets de type A est localisé dans le derme. Comme on l'a vu précédemment, la demanderesse a pu montrer qu'une irradiation aux UV-A induit dans le derme des dégâts spécifiques des longueurs d'ondes des UV-A. Ainsi, elle a pu montrer que les UV-A induisent la production de collagénase de type I par les fibroblastes, ce qui se traduit par l'augmentation de la concentration de celle-ci dans le milieu. Elle a également montré que le nombre desdits fibroblastes décroît dramatiquement du fait de l'irradiation dans les 48 heures suivants l'irradiation, éventuellement jusqu'à une disparition totale, tout au moins sur une épaisseur de derme qui est fonction des paramètres de l'irradiation. Enfin elle a montré que la partie de derme d'o les fibroblastes ont disparu est recolonisée par des fibroblastes sous-jacents non atteints par le rayonnement. Préférentiellement, selon l'invention le marqueur spécifique des dommages induits dans le derme par les rayonnements ultraviolets de type A est la quantité de collagénase de type I par les fibroblastes et/ou le nombre desdits fibroblastes dans le derme et/ou le taux de recolonisation du derme par les fibroblastes sous- jacents. Par taux de recolonisation, on entend le nombre de fibroblastes ayant recolonisé la partie de derme d'o les fibroblastes ont disparu après l'irradiation, et ceux au bout d'un temps choisi. Ce temps peut être compris entre 10 et 20 jours, de préférence entre 12 et 15 jours. Les dommages induits dans le derme par les rayonnements ultraviolets de type A sont ainsi représentés par la variation du marqueur spécifique des dommages induits que l'on aura choisi de doser. Par variation, on entend toute modification de la quantité, de la concentration, de la répartition du marqueur que l'on dose. Pour cela, le procédé selon l'invention comprend une étape de dosage du marqueur spécifique des dommages induits. Bien évidemment, quel que soit le mode de mise en oeuvre du procédé selon l'invention, toute méthode de dosage connue par l'homme du métier peut être utilisée. On peut, à titre d'exemple et sans limitation, citer les méthodes de dosage des protéines ou des acides nucléiques par colorimétrie, par électrophorèse, par transcription reverse et/ou amplification par la technique des polymérisations en chaîne, par spectrographie de masse, par chromatographie (en phase gazeuse ou sur plaque), les méthodes immunologiques, ou encore la microscopie optique ou électronique et toutes les techniques histologiques, histochimiques et/ou immunohistochimiques. Par exemple dans le cas de mesure de la production de collagénase de type I par les fibroblastes, on peut utiliser des techniques classiques de biochimie permettant la détection de la collagénase de type I ou les techniques de biologie moléculaire ou encore les techniques d'immunohistochimie utilisant des anticorps dirigés contre la collagénase de type I. A cet égard, on peut citer les kits ELISA vendus par la société AMERSHAM. Dans le cas de mesure du nombre de fibroblastes, les techniques de microscopie optiques et/ou électroniques, comme celles décrites dans Ganter et Jolles, Histochimie normale et pathologique, Gauthier-Villars éditeurs, Paris, 1969, sont particulièrement adaptées. Ces techniques sontutilisées selon les protocoles les plus classiques que l'on retrouve décrites dans les ouvrages. On peut citer par exemple la coloration histologique à l'hémalun-phloxine ou les techniques d'immunomarquage à l'aide d'anticorps permettant de mettre en évidence les fibroblastes. Le résultat du dosage, qui représente la variation du marqueur spécifique des dommages induits que l'on a choisi de doser, n'est en soi pas exploitable directement. Il ne devient intéressant que dans la mesure o il est comparé à un témoin. Ce témoin est constitué par le résultat du même dosage effectué dans les mêmes conditions, mais en l'absence de toute irradiation ou en présence d'une irradiation par un rayonnement ayant des caractéristiques différentes. L'homme du métier détermine aisément, par habitude, la nature du témoin nécessaire dans la mise en oeuvre du procédé. De manière préférentielle, le témoin correspond à un équivalent de peau n'ayant subi aucune irradiation. Le procédé selon l'invention peut ainsi permettre l'évaluation des dommages induits dans la peau par les rayonnements ultraviolets de type A. Ceci est d'un grand intérêt dans l'optique de la connaissance des conséquences d'une irradiation de la peau par ce type de rayonnement et des mécanismes par lesquels la peau réagit et module ou corrige les effets de tels rayonnements. Le procédé selon l'invention fait appel à un équivalent de peau qui en soi est un objet parfaitement manipulable. Grâce à l'art antérieur, on sait que l'équivalent de peau est cultivé dans un milieu de culture à l'interface air/liquide. Il est donc envisageable d'ajouter au milieu de culture toute substance dont on veut évaluer l'influence sur les effets du rayonnement ultraviolet de type A. Cela mime donc une application systémique de la substance. Mais, dans la mesure o l'équivalent de peau présente une surface épidermique émergée, il est envisageable aussi d'appliquer sur cette surface toute substance dont on veut évaluer l'influence sur les effets du rayonnement ultraviolet de type A. Cela mime donc une application topique de la substance. On a vu par ailleurs que la demanderesse a pu montrer que le nombre des fibroblastes dans le derme décroît dramatiquement dans les 48 heures suivants l'irradiation, éventuellement jusqu'à une disparition totale, tout au moins sur une épaisseur de derme qui est fonction des paramètres de l'irradiation. On a vu également que la demanderesse a mis en évidence que la partie de derme d'o les fibroblastes ont disparu est recolonisée par des fibroblastes sous-jacents non atteints par le rayonnement. Même si cette recolonisation spontanée peut nuire à la peau, il n'en demeure pas moins que, dans certaines circonstances, il peut être préférable de favoriser, voire de stimuler, cette réparation par l'application sur la peau de produits et/ou compositions sélectionnés pour ce type de propriété. Il est donc nécessaire, dans cette optique, de bénéficier d'un modèle d'étude simple et rapide d'évaluation de tels produits et/ou compositions. Ainsi, le procédé selon l'invention peut en outre permettre l'évaluation de substances éventuellement susceptibles de moduler les dommages induits par les rayonnements ultraviolets de type A dans la peau et/ou le derme. Ainsi, le procédé selon l'invention comprend une étape supplémentaire de traitement de l'équivalent de peau obtenu in vitro avec un tel produit à tester. Cette étape de traitement par un produit peut se situer avant o après l'étape d'irradiation de l'équivalent de peau. Le témoin dans ce cas peut être constitué par un équivalent de peau préalablement traité avec une quantité différente de la substance à tester ou encore par un équivalent de peau non traité par la substance à tester. Préférentiellement, le témoin est constitué par un équivalent de peau non traité par la substance à tester. De manière générale, le temps pendant lequel on traite l'équivalent de peau obtenu in vitro avec un produit à tester est conditionné par le temps qu'il faut à l'équivalent pour répondre à ladite substance, c'est à dire au temps qu'il faut pour qu'il produise ses effets. Ce temps de traitement peut aller de quelques secondes à plusieurs jours. A titre indicatif, le temps de traitement est généralement compris entre 5 minutes et 15 jours. Par traitement de l'équivalent de peau obtenu in vitro, on entend une mise en contact de l'équivalent de peau obtenu in vitro avec la substance éventuellement susceptible de moduler les dommages induits par les rayonnements ultraviolets de type A. La modulation du dommage induit par les rayonnements ultraviolets de type A peut correspondre à une diminution, voire à une suppression de ce dommage. Elle peut aussi correspondre à une inhibition de celui-ci. En d'autres termes ces substances peuvent être utilisées à titre préventif ou curatif. La substance à tester peut être sous toute forme envisageable comme par exemple un composé éventuellement actif pur ou une composition éventuellement active ou contenant un composé éventuellement actif. A ce titre, on peut citer par exemple les filtres solaires et/ou les compositions contenant de tels filtres. Dans ce cas, on préfère traiter l'équivalent de peau par i0 simple application sur la surface dudit équivalent de peau. Les figures 1 et 2 permettent de mieux illustrer l'invention, sans toutefois en limiter sa portée. Dans la figure 1, les photos montrent des études des coupes des équivalents de peau en histologie classique (photos 1 et 3) ou en immunofluorescence (photos 2 et 4). Les photos 1 et 2 correspondent à un équivalent de peau non irradié, les photos 3 et 4 correspondent à l'équivalent de peau ayant subi une irradiation. La flèche visualise les fibroblastes dans l'équivalent de derme. 2o Dans la figure 2, les photos montrent des études des coupes des équivalents de peau en histologie classique (photos 3 et 4) ou en immunofluorescence (photos 1 et 2). Les photos 1 et 3 correspondent à un équivalent de peau préalablement traité avec un support seul, puis irradié. Les photos 2 et 4 correspondent à l'équivalent de peau préalablement traité avec le même support contenant un filtre à 5%, puis irradié. La flèche visualise les fibroblastes dans l'équivalent de derme. L'invention a également pour objet toute utilisation du procédé selon l'invention. On peut envisager par exemple l'utilisation du procédé de l'invention pour évaluer la nature du rayonnement émis par un matériel reproduisant le rayonnement solaire comme les lampes à bronzer et/ou des dommages causés par un tel matériel. On va maintenant donner, à titre indicatif et sans limitation aucune des exemples d'utilisation du procédé selon l'invention. Exemple 1: Effet du rayonnement UV de type A sur la production de collagénase I: Protocole: Equivalent de peau: les échantillons d'équivalents de peau sont préparés comme décrits dans Asselineau et col., Exp. Cell. Res., 1985, 159, 536-539; Models in Dermatology, 1987, vol 3 pp 1-7. En résumé, les équivalents de derme sont préparés comme décrits avec du collagène de type I bovin, des fibroblastes issus de peau humaine normale adulte à raison de 106 cellules pour un gel de 7 ml l5 coulé dans une boîte de diamètre 60 mm. Ainsi préparé, après 3 jours de contraction le gel mesure 0,240 mm d'épaisseur. Les kératinocytes (50000) ensemencés sur cet équivalent de derme proviennent d'une plastie mammaire d'une femme de race blanche agée de 35 ans. La culture en immersion dure 7 jours et la culture à l'interface air-liquide également 7 jours. Le milieu de culture utilisé ne contient pas de rouge de phénol. A ce stade les peaux reconstruites ont été utilisées. Irradiation: la source utilisée est un simulateur solaire de marque Arquantiel de modèle IDEM 3000 équipé d'une lampe Xénon de 1000 watts. Un filtre Schott UG1 /1 mm et un filtre Schott WG 335 de 3mm éliminent les longueurs d'onde inférieures à 320 nm. Le spectre ainsi obtenu commence à 320 nm et couvre l'ensemble des rayonnements de type UV-A. L'irradiance mesurée à l'aide d'un UV-mètre OSRAM équipé d'une sonde UV- A donne une valeur de 20 mW/cm2. Les doses délivrées sont de 20 J/cm2 et 30 J/cm2. Les peaux reconstruites sont irradiées en l'absence de milieu de culture puis après le temps nécessaire à l'irradiation, les peaux reconstruites sont remises en culture émergée pendant 48 heures. Le témoin est constitué par un équivalent d'épiderme identique ne subissant aucune irradiation (dose délivrée = 0 J/cm2). Dosage de la collagénase interstitielle (type I ou MMP1):48 heures après l'irradiation, le milieu de culture est prélevé et la collagénase interstitielle est dosée à l'aide d'un kit "Biotrack MMP-1 human ELISA system" de marque Amersham (référence N RPN 2610) selon le protocole préconisé par le fournisseur. La lecture des résultats est réalisée à l'aide d'un lecteur de microplaques LabSystems équipé d'un filtre de 450 nm. La quantité de collagénase I est calculée par rapport à une gamme étalon réalisée avec un standard fourni avec le kit, et est exprimée en ng/ml. Résultats et conclusion: Le tableau ci-dessous montre qu'une irradiation UV-A de 20 J/cm2 ou de 30J/cm2 augmente la quantité de collagénase interstitielle dosée dans le milieu 48 heures après l'irradiation, en comparaison au témoin non irradié. Dose Collagénase Interstitielle (en J/cm2) (en ng/ml) Témoin 0 19,14 Peau irradiée 20 48,65 Peau irradiée 30 100, 27 Exemple 2: Effet du rayonnement UV de type A sur le nombre des fibroblastes du derme: Un équivalent de peau identique à celui de l'exemple 1 est soumis à une irradiation de même source que dans l'exemple 1 à une dose de 25 J/cm2. 48 heures après l'irradiation, l'équivalent de peau est coupée en deux. Une moitié est préparée selon les techniques classiques d'histologie (Ganter et Jolies). Les coupes obtenues sont colorées à l'hémalun, phloxine, saphran (HPS) et observées à l'aide d'un microscope droit en lumière blanche. L'autre moitié est incluse dans du tissu-Tek (Miles USA) et congelée en azote liquide. On prépare des coupes à congélation et on réalise des immunomarquages (selon protocole Bernerd et col., J. Invest. Dermatol., 1992, 98, 902-910) à l'aide d'un anticorps anti vimentine (Monosan, mouse monoclonal antibody anti human vimentin). La vimentine est un filament intermédiaire du cytosquelette des cellules mésenchymateuses dont font partie les fibroblastes (Traub P; 1985, in: intermediate filaments; A review. Springer-Verlag, Berlin). La révélation s'effectue à l'aide d'un second anticorps anti-IG de souris couplé à de la fluorescéine. L'observation se fait à l'aide d'un microscope à fluorescence. Résultats et conclusion: L'histologie classique (figure 1, photos 1 et 3) ou l'immunofluorescence (figure 1, photos 2 et 4) montre que, 48 heures après l'irradiation UVA (25 J/cm2), les fibroblastes présents dans l'équivalent de derme non irradié (flèche, figure 1, photos 2 et 4) ont, du fait de l'irradiation, disparu dans la zone superficielle de celui-ci (figure 1, photos 1 et 3). Exemple 3: Evaluation de l'efficacité de l'application de filtres solaires sur la peau Peaux reconstruites: même que pour exemple 1. Un équivalent de peau identique à celui de l'exemple 1 préalablement traité avec est soumis à une irradiation de même source que dans l'exemple 1 à des doses de 0 J/cm2 et de 25 J/cm2. On prépare un support (émulsion huile/eau) contenant un mélange alcool cétylstéarylique (80%) / alcool cétylstéarylique oxyéthyléné (33 oe) et monodistéarate de glycérol (7%), de l'huile minérale (15%), de la glycérine (20%), et de l'eau (qsp). On prépare à partir de ce support une composition contenant un filtre solaire, le Mexoryl SX (brevet FR 8210425), à 5%. On applique le support ou la composition contenant le filtre dans le support à raison de 2 mg/cm2 à la surface de l'équivalent de peau. Les échantillons sont ensuite irradiés comme dans l'exemple 1, puis le produit est rincé 3 fois avec du tampon phosphate stérile (Seromed L 1825) et les équivalents de peau sont remis en culture, à l'interface *air-liquide pendant 48 heures. Visualisation de la disparition des fibroblastes dans le derme équivalent: Telle que décrite dans l'exemple 2. Résultats et conclusion: 48 heures après l'irradiation (UVA 25 J/cm2), les fibroblastes présents dans l'équivalent de derme ont disparu dans la zone superficielle du derme dans le cas de l'équivalent de peau préalablement traité I5 avec le support, ce qui correspond aux effets induits par les UVA illustrés dans l'exemple 2 (figure 2, photos 1 et 3). En comparaison dans l'équivalent de peau préalablement traité avec la composition contenant le filtre à 5% (figure 2, photos 2 et 4), les fibroblastes ne disparaissent pas (flèche) ce qui témoigne d'une protection apportée par le filtre par rapport aux dommages induits par les UVA. REVENDICATIONS 1. Procédé d'évaluation des dommages induits dans la peau par les rayonnements ultraviolets de type A, caractérisé en ce que l'on soumet un équivalent de peau obtenu in vitro à au moins un rayonnement ultraviolet de type A pendant un temps suffisant, que l'on mesure la variation d'un marqueur spécifique des dommages induits dans la peau par les rayonnements ultraviolets de type A et que l'on évalue les résultats de cette mesure par rapport à un témoin. 2. Procédé selon la revendication précédente, caractérisé en ce que l'on mesure la variation d'un marqueur spécifique des dommages induits par les rayonnements ultraviolets de type A dans le derme. 3. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé i5 en ce que l'équivalent de peau est constitué d'un équivalent d'épiderme et d'un équivalent de derme vivant. 4. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que le rayonnement ultraviolet de type A a au moins une longueur d'onde comprise entre 320 nm et 400 nm. 5. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que le traitement par le rayonnement ultraviolet de type A dure un temps compris entre 1 minute à quelques heures. 6. Procédé selon la revendication précédente, caractérisé en ce que le traitement par le rayonnement ultraviolet de type A dure un temps compris entre 5 et 120 minutes. 7. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé par le fait que le marqueur spécifique des dommages induits par les rayonnements ultraviolets de type A est une cellule ou une population cellulaire, un acide nucléique, une protéine ou un groupe de protéines liées ou non, un ion organite cellulaire, un lipide, ou un polyoside. 8. Procédé selon la revendication précédente, caractérisé en ce que le marqueur spécifique des dommages induits par les rayonnements ultraviolets de type A est la quantité de collagénase de type I par les fibroblastes. 9. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 a 7, caractérisé par le fait que le marqueur spécifique des dommages induits par les rayonnements ultraviolets de type A est le nombre de fibroblastes dans le derme. 10. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisé par le fait que le marqueur spécifique des dommages induits par les rayonnements ultraviolets de type A est le taux de recolonisation du derme par les fibroblastes I5 sous-jacents. 11. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé par le fait que le témoin est constitué par le résultat du même dosage effectué dans les mêmes conditions, mais en l'absence de toute irradiation ou en présence d'une irradiation par un rayonnement ayant des caractéristiques différentes. 12. Procédé selon la revendication précédente, caractérisé en ce que le témoin est constitué par un équivalent de peau n'ayant subi aucune irradiation. 13. Procédé pour évaluer une substance susceptible de moduler les dommages induits dans la peau par les rayonnements ultraviolets de type A, caractérisé par le fait que dans le procédé des revendications 1 à 12 on traite un équivalent de peau avec ladite substance pendant un temps suffisant avant ou après l'irradiation de l'équivalent de peau par les rayonnements ultraviolets de type A. 14. Procédé selon la revendication 13, caractérisé par le fait que le témoin est constitué par un équivalent de peau préalablement traité avec une quantité différente de la substance à tester ou encore par un équivalent de peau non traité par la substance à tester. 15. Procédé selon la revendication précédente, caractérisé en ce que le témoin est constitué par un équivalent de peau non traité par la substance à tester. 16. Procédé selon l'une quelconque des revendications 13 à 15, caractérisé en ce que l'on traite l'équivalent de peau pendant un temps compris entre quelques secondes et plusieurs jours. 17. Procédé selon la revendication précédente, caractérisé en ce que l'on traite l'équivalent de peau pendant un temps compris entre 5 minutes et 15 jours. 18. Utilisation du procédé selon l'une quelconque des revendications précédente, pour l'évaluation de la nature du rayonnement émis par un matériel reproduisant le rayonnement solaire et/ou des dommages causés par un tel rayonnement.