FR 2750607 A1 19980109 FR 9608484 A 19960708 COMPOSITION BACTÉRICIDE DE QUALITÉ ALIMENTAIRE ET PROCÉDÉ POUR SA MISE EN OEUVRE L'invention a pour objet une composition bactéricide de qualité alimentaire du genre de celles qui sont propres à assurer tant la prophylaxie de la mammite subclinique chez les ruminants, notamment chez la vache laitière que les opérations de désinfection d'équipements et d'instruments dans les domaines hospitaliers et agro- alimentaires, notamment dans l'industrie de la viande, dans l'industrie des boissons et à la ferme. Elle vise également un procédé de désinfection mettant en oeuvre la susdite composition bactéricide. On connaît déjà des compositions bactéricides de qualité alimentaire du genre en question; ces compositions bactéricides sont à base de monoester d'acide gras saturé en C10 ou C12 et de glycérol et d'acide éthylène-diamine- tétracétique ou EDTA. Ces compositions bactéricides connues donnent généralement satisfaction. Il n'en est pas moins vrai que l'utilisateur est toujours à la recherche de compositions bactéricides plus efficaces, c'est-à-dire donnant le même résultat à des doses plus faibles. C'est à la mise au point d'une telle composition bactéricide que la Société Demanderesse s'est attachée. Et elle a eu le mérite d'avoir trouvé, à l'issue de recherches approfondies, que, de façon totalement inattendue et surprenante, ce but était atteint en remplaçant dans les susdites compositions connues l'EDTA par une substance uniquement connue pour ses propriétés anti-oxydantes, mais reconnue comme additif alimentaire, à savoir le gallate de n-propyle. Il s'ensuit que la composition bactéricide de qualité alimentaire conforme à l'invention, à base d'un monoester d'acide gras saturé en C10 ou C12 et de glycérol et avantageusement d'un ester alcoyle de l'acide parahydroxybenzoique, est caractérisée par le fait qu'elle comprend une quantité efficace de gallate de n-propyle. Selon un mode de réalisation avantageux, la susdite composition bactéricide comporte: - de 5 à 70% et, de préférence, de 8 à 60% de gallate de n-propyle, - de 0,05 à 50% et, de préférence, de 0,1 à 47% d'un monoester d'acide gras saturé en C10 ou C12 et de glycérol, et avantageusement de 5 à 95%, de préférence de 7 à 91% d'un ester alcoyle de l'acide parahydroxybenzoique et, plus particulièrement, le parahydroxybenzoate de méthyle. Le procédé de désinfection conforme à l'invention est caractérisé par le fait que la composition bactéricide conforme à l'invention est mise en oeuvre à la température ambiante, sur les surfaces des instruments ou installa- tions à désinfecter ou sur le pis des ruminants, notamment de la vache laitière avant ou après la traite, par trem- page ou pulvérisation soit sous la forme d'une solution glycolique, avantageusement dans le propylèneglycol, soit sous la forme d'une solution hydro-alcoolique, avantageu- sement celle décrite dans les documents FR-A-94 08180 et EP-0 689 768 au nom de la Société Demanderesse, soit encore sous la forme d'une dispersion aqueuse stable du genre de celles désignées par le terme de métier "flow", les principes actifs étant peu solubles dans l'eau. Elle sera encore mieux comprise à l'aide de la description qui suit et des exemples non limitatifs rela- tifs à des modes de réalisation avantageux. Le monoglycéride en position 1 de l'acide laurique, dénommé monolaurine ou lauricidine, est autorisé dans la Communauté Européenne comme additif alimentaire à propriétés émulsifiantes (désigné par E 471) et est connu comme ayant des propriétés bactéricides sur gram+ uniquement ("Antimicrobial Agents and Chemotherapy", July 1972, vol 2 n'l p. 23-28). Il en est de même du monoglycéride en position 1 de l'acide décanoique, dénommé monocaprine. Dans les compositions bactéricides conformes à l'invention, la monolaurine est préférée. Dans les compositions bactéricides connues, le défaut d'activité des monolaurine et monocaprine sur gram- est compensé par l'adjonction d'acide éthylène-diamine- tétracétique ou EDTA ("J. Food Saf" 1994, 14(2) 131-151). Les esters d'alkyle (méthyle, éthyle, propyle) de l'acide parahydroxybenzoique connus sous les noms commerciaux SOLBROL, PARABEN ou PARASEPT qui sont autorisés comme conservateurs en cosmétique, leurs références au Journal Officiel des Communautés Européennes en tant qu'additifs alimentaires étant E 218, E 214 et E 216, ont déjà été utilisés pour améliorer l'activité bactéricide sur gram- de la nisine (document US-A- 135 910). Le gallate de n-propyle est un additif alimentaire autorisé comme antioxydant des huiles et graisses alimentaires; sa référence au Journal Officiel des Communautés Européennes est E 310; il n'a jamais été décrit comme ayant des propriétés bactériostatiques ou bactéricides. Il était donc tout à fait surprenant et inattendu de trouver que les compositions bactéricides du genre en question dans lesquelles il est utilisé à la place de 1'EDTA, sont plus efficaces que ces dernières et peuvent donc être utilisées à des doses plus faibles pour une même efficacité. Pour montrer l'activité bactéricide du gallate de n-propyle et l'efficacité des compositions à base de ce produit à la place de l'EDTA, la Société Demanderesse a effectué les essais rappelés ci-après. Ces essais comprennent la détermination de la concentration minimum inhibitrice ou CMI, c'est-à-dire la concentration de substance pour laquelle aucune croissance de microorganisme n'est observée après inoculation, et celle de la concentration minimum bactéricide ou CMB, c'est-à-dire la concentration de substance pour laquelle on enregistre une destruction significative de l'ordre de log d'une population de microorganismes dans un temps donné. L'avantage apporté par l'utilisation dans les compositions du genre en question du gallate de n-propyle à la place de l'EDTA a été démontré en déterminant dans des essais comparatifs la CMI et la CMB pour les deux compositions. Dans un premier temps, on a déterminé la CMI des produits suivants: a Monolaurate de glycérol (par exemple celui commercialisé sous la marque MONOMULS 90 L 12 PULVER par la Société HENKEL) Monocaprate de glycérol (par exemple celui de qualité analytique commercialisé sous la marque SIGMA) a Parahydroxybenzoate de méthyle (par exemple celui com- mercialisé sous la marque SOLBROL M par la Société Bayer) a Sel disodique de l'acide éthylène-diamine-tétracétique (par exemple celui commercialisé sous la marque DISSOLVINE NA-2 d'Akzo Nobel Chemie) * Gallate de n-propyle pur pour usage alimentaire (CFPI) a Acide citrique monohydraté pur pour analyse sur les microorganismes suivants (Collection de microorga- nismes de l'Institut Pasteur ou CIP et Collection de l'INRA): * Escherichia coli CIP 54127 (Gram-) * Staphylococcus aureus CIP 53154 (Gram+) Souches de * Enterococcus hirae CIP 5855 (Gram+) collection * Pseudomonas aeruginosa CIP A 22 (Gram-) À Escherichia coli INRA D6 11132 Souches ò Staphylococcus aureus INRA D4 10759 sauvages On prépare d'abord les solutions des composés à tester. Les monoesters, à savoir la monolaurine et la monocaprine, l'ester méthylique de l'acide parahydroxyben- zoique et le gallate de n-propyle sont préparés en solu- tion dans l'alcool éthylique à 60'C ou 70'C selon la solubilité du composé. Le sel disodique de 1'EDTA est préparé en solution dans l'eau distillée. Toutes ces solu- tions sont stérilisées par filtration sur membrane 0,22 gm (MILLEX GS, MILLIPORE) puis conservées au froid et utili- sées dans un délai d'un mois. Ensuite et en vue de la détermination de la CMI des composés à tester, on mélange, dans un tube à essai, les solutions de ces dérivés avec du bouillon de culture en respectant les proportions suivantes: - 4, 7 ml de bouillon trypticase soja (BACTO TSB, Difco) - 0,2 ml de solution du composé testé, ce grâce à quoi la concentration du composé à tester dans le mélange soumis aux tests est égale à 1/25 de la concen- tration dudit composé dans la solution de départ. Pour constituer une gamme de concentrations du composé à tester, on fait varier les proportions respec- tives de bouillon et de solution de composés. Dans les tubes témoins, on mélange: - 4,7 ml de bouillon trypticase soja et - 0,2 ml du diluant du composé étudié (eau distillée ou éthanol à 60 ou 70'C). La série de tubes est ensuite ensemencée par addi- tion de 0,1 ml de la dilution 10-2 d'un bouillon de culture de 24 heures à 37C de la bactérie choisie, ce qui représente un ensemencement final de 5 x 105 bact/ml environ. Les tubes sont placés à incuber à 37C et la croissance est notée, comparativement aux tubes témoins, après 4 à 5 jours d'incubation. Le CMI correspond à la dose à partir de laquelle est observée l'absence de pousse. Les résultats obtenus sont réunis dans le tableau I ci-après. TABLEAU I Résultats des CMI des composés testés seuls (les valeurs sont exprimées en mg/ml du mélange réactionnel) ooanMonoca- EDTA Gallate de Acide PARABEN Monolaurine prine sel disodique n-propyle citrique méthyle S. aureus (gram+) 0,0075 0,05 0,25 > 0,25 > 0,25 2,5 E. Hirae (gram+) 0,1/0,25 0,25 0,25 > 0,25 > 0,25 5 E. coli (gram-) >1 >1 0,5 > 0,25 > 0,25 1 P. aeruginosa (gram-) > 1 > 0,25 > 2 > 0,25 > 0,25 2,6 Insolubilité à la concentration de 0,1 RAS 0,5 Variation de (dans le mélange 0,1 0,5 RAS 0,5 pH au-delà de 2,5 réactionnel) 0,25 mg/I Il apparaît à l'examen des résultats réunis dans ce tableau que la monolaurine et la monocaprine sont actives sur gram+ mais pas sur gram-; l'EDTA est actif sur gram+ et moins bon sur gram-; le gallate de n-propyle et le PARABEN méthyle ont une certaine activité à la fois sur gram+ et gram-. Dans un deuxième temps, on a déterminé la CMI, en procédant de la même façon qu'indiqué plus haut, des mélanges binaires du gallate de n-propyle avec la monolau- rine et la monocaprine. Dans ces mélanges, on a fait varier: - la concentration de monolaurine de 0,0031 à 0,1 mg/ml du mélange réactionnel, - la concentration de monocaprine de 0,0078 à 0,25 mg/ml du mélange réactionnel, et - la concentration de gallate de n-propyle de 0,0039 à 0,25 mg/ml du mélange réactionnel. Pour les mélanges à base de monolaurine et de gallate de n-propyle, les CMI sur E. Coli, P. aeruginosa et S. aureus, déterminées de la même manière qu'avec les deux composés actifs utilisés seuls, sont réunies dans le tableau II ci-après. TABLEAU II (les valeurs sont exprimées en mg/ml du mélange réactionnel) Microorganisme Monolaurine Gallate de n-propyle E. coli 0,1 0,25 P.aeruginosa 0,1 0,125 S.aureus 0,003 0, 25 0,1 0,0625 Pour les mélanges à base de monocaprine et de gallate de n-propyle, les CMI sur E. Coli, P. aeruginosa, S. aureus, et E. hirae, déterminées de la même manière qu'avec les deux composés actifs utilisés seuls, réunies dans le tableau III ci-après. TABLEAU III (les valeurs sont exprimées en mg/ml du mélange réactionnel) Microorganisme Monocapdne Gallate de n-propyle E. cli 0,125 0,25 P. aeruginosa 0, 25 0,25 S. aureus 0,03 0,025 E. hirae 0,25 0,0039 En comparant ces résultats avec ceux réunis dans le tableau I, on constate que, dans tous les cas, il y a synergie. Dans un troisième temps, on a déterminé la CMI des mélanges ternaires "monocaprine - EDTA sel disodique - PARABEN méthyle" et "monocaprine - gallate de n-propyle - PARABEN méthyle". Dans le cas du mélange à base de EDTA, on a fixé la concentration en EDTA dans tous les essais à la valeur de 0,25 mg/ml du mélange réactionnel et on a fait varier: - la concentration en monocaprine de 0, 0078 à 0,25 mg/ml du mélange réactionnel, et - la concentration en PARABEN méthyle de 0,039 à 2,5 mg/ml du mélange réactionnel. En procédant comme indiqué plus haut en rapport avec les substances actives prises isolément, on a trouvé que, sur les microorganismes ciaprès, la CMI pour les mélanges correspond aux valeurs réunies dans le tableau IV. TABLEAU IV (les valeurs sont exprimées en mg/ml du mélange réactionnel) Microorganisme EDTA Monocaprine PARABEN méthyle E. Coli 0,25 0,015 0,15 0,25 0,125 0,078 _____________ 0,25 0,25 0,039 E. Coli INRA 0,25 0,0078 2,5 0,25 0,0625 1,25 0,25 0,125 0,625 0,25 0,25 0,078 S. aureus 0,25 0,0625 0,039 0,25 0,031 0,31 0,25 0,0078 1,25 S. aureus INRA 0,25 0,0078 0,039 En comparant ces résultats à ceux des tableaux précédents, on constate qu'il y a synergie sur les trois premiers microorganismes. Dans le cas du mélange à base de gallate de n-propyle, la dose de ce dernier est fixée à 0,25 mg/ml alors que la dose de monocaprine varie de 0,0078 à 0,25 et celle de PARABEN méthyle de 0,039 à 2,5. En procédant comme indiqué plus haut en rapport avec les substances actives prises isolément, on a trouvé que, sur les microorganismes ci-après, la CMI pour les mélanges correspond aux valeurs réunies dans le tableau V. TABLEAU V (les valeurs sont exprimées en mg/ml du mélange réactionnel) MicroorganismeGallate de |Microorganisme Galate de Monocaprine PARABEN méthyle n-propyle E. Coli 0,25 0, 0078 0,156 0,25 0,0156 0,078 E. Coli INRA 0,25 0,015 0,625 0,25 0,0625 0,32 P. aeruginosa 0,25 0,0625 0,625 0,25 0,125 0,15 S. aureus 0,25 0,0078 0,039 S. aureus INRA 0,25 0,0078 0,039 E. hirae 0, 25 0,0625 2,5 0,25 0,125 1,25 0,25 0,25 0,039 En comparant ces résultats à ceux des tableaux précédents, on constate qu'il y a synergie sur les quatre premiers et le sixième microorganismes. Les valeurs contenues dans le tableau V sont utilisées pour déterminer les domaines de concentration des trois constituants des mélanges conformes à l'inven- tion. A partir des valeurs réunies dans les tableaux IV et V, on détermine une compositions minimale pour les deux mélanges. Pour le mélange EDTA/monocaprine/PARABEN méthyle, cette composition minimale est: EDTA 0,25 mg/ml Monocaprine 0,0625 mg/ml PARABEN méthyle 1,25 mg/ml. Pour le mélange gallate de n-propyle/monocaprine/- PARABEN méthyle, cette composition minimale est: Gallate de n-propyle 0,25 mg/ml Monocaprine 0,0625 mg/ml PARABEN méthyle 0,625 mg/ml. De la comparaison de ces deux compositions, il apparaît que, pour une même efficacité, la dose du mélange à base de gallate de n-propyle est nettement inférieure à celle du mélange à base de EDTA. Ce résultat est retrouvé pour les autres composi- tions minimales qui résultent des tableaux IV et V. On a également déterminé les concentrations minimales bactéricides de deux mélanges à base de monolaurine et respectivement d'EDTA et de gallate de n- propyle; ces mélanges contiennent également du PARABEN méthyle. Dans les essais correspondants, on a choisi les proportions des constituants en fonction des résultats obtenus précédemment en rapport avec la détermination de la CMI. Les souches utilisées sont les suivantes: * Escherichia coli CIP 54127 (Gram-) * Staphylococcus aureus CIP 53154 (Gram+) Souches de * Enterococcus hirae CIP 5855 (Gram+) collection a Pseudomonas aeruginosa CIP A 22 (Gram-) Streptococcus dysgalactiae: INRA D5 50311 Souches * Streptococcus uberis: INRA D5 50726 sauvages * Streptococcus agalactiae: INRA D5 50119 Les mélanges réactionnels à base de bouillon trypticase soja et de solutions des composés à étudier sont préparés de la même façon que pour la détermination des CMI. Les mélanges sont inoculés par ajout de 100 g1 d'un bouillon de culture de 24 heures de la bactérie choisie, et un chronomètre est déclenché au moment de l'addition. Après des temps de contact de 1 heure, 6 heures ou 24 heures aux températures de 20-23'C, 100 g1 de chaque mélange sont prélevés et inoculés sur une boîte de Pétri dans une gélose nutritive additionnée d'un agent neutrali- sant (par exemple celle commercialisée sous l'appellation COUNT TACT AGAR par la Société Biokar). Après une incubation de 48 heures à 72 heures à 37'C, les germes survivants sont dénombrés et la "chute de log" est déterminée par comparaison avec la numération effectuée sur des tubes témoins ne comportant pas de composé bactéricide. La concentration en microorganismes qui est de l'ordre de 105 à 107 est exprimée en logarithmes ("log") décimaux. Et on désigne par "chute de log" la diminution de cette valeur après action du mélange. Les deux mélanges testés sont: - d'une part, un mélange A à base d'EDTA présentant la composition suivante: Monolaurine 0,1 mg/ml du mélange EDTA disodique 1 mg/ml du mélange PARABEN méthyle 1,25 mg/ml du mélange d'autre part, un mélange B à base de gallate de n-propyle et présentant la composition suivante: Monolaurine 0,1 mg/ml du mélange Gallate de n-propyle 0,25 mg/ml du mélange PARABEN méthyle 1,25 mg/ml du mélange. On a réuni dans le tableau VI les résultats obtenus avec les mélanges A et B. TABLEAU Vl (log) Mélange A Mélange B Population chute de log à chute de log à mise en test 1 heure 6 heures 24 heures 1 heure 6 heures 24 heures E. coli 5,74 3,29 4,74 5,74 1,48 4,74 5, 74 P. aeruginosa 5,08 2,60 5,08 5,08 1,80 5,08 5,08 S. aureus 6,56 3,58 6,56 6,56 3,71 5,08 6,56 E. hirae 6,59 0,31 0,5 1, 43 0,25 0,2 0,52 E. coli INRA 6,26 sous la forme de poudre inutilisable en l'état. Pour la mise en oeuvre de ces mélanges, on les présente sous forme de compositions liquides utilisables en l'état ou diluées avant l'emploi; le taux de dilution est fonction du niveau de performances recherché. Ces compositions liquides sont mises en oeuvre par pulvérisation pour désinfecter des surfaces, par circula- tion pour désinfecter des circuits et par trempage pour désinfecter des instruments. Dans l'application particulière qui constitue la prévention de la mammite chez la vache laitière, ces compositions peuvent être appliquées par trempage du pis ou par pulvérisation avant et/ou après la traite. Les additifs de formulation sont choisis parmi ceux qui sont reconnus comme additifs alimentaires dans la Communauté Européenne et comme auxiliaires technologiques en France. Ces additifs comprennent des diluants, notamment les alcools choisis dans le groupe comprenant les alcools éthylique, isopropylique, n-propylique, connus comme auxiliaires technologiques, et les glycols comme le propy- lèneglycol qui est un diluant pour colorants ou agents antioxygènes alimentaires; il est possible d'ajoindre à ces diluants de l'eau déminéralisée en quantité compatible avec le maintien en solution des principes actifs. Afin d'améliorer les propriétés mouillantes des compositions liquides, on peut avoir recours à des agents tensio-actifs comme par exemple le monolaurate de sorbitan à 20 moles d'oxyde d'éthylène (ou polysorbate 20), à savoir l'additif E 432, ou un oxyde d'une diméthyl- alkylamine en C12 ou C14, ou encore l'acide dodécylbenzène-sulfonique, ces produits étant des tensio- actifs utilisés en cosmétique et dans les compositions de nettoyage des surfaces au contact des denrées alimentaires. Pour éviter la formation de colorations indésira- bles par suite de la réaction des esters de l'acide gallique avec le fer, on peut avoir recours à des agents chélatants du groupe comprenant les gluconates, les citrates et 1'EDTA. En vue de conférer aux susdites compositions liquides une consistance suffisante pour qu'elles adhèrent au support traité, on peut utiliser des éthers de cellulose comme l'hydroxypropylcellulose, à savoir l'additif alimentaire E 463 ou encore la gomme Xanthane, à savoir l'additif alimentaire E 415. Dans le cas d'une application sur le pis des vaches avant et/ou après la traite pour prévenir la mammite, on peut envisager l'incorporation dans les compositions liquides d'un agent émollient comme le propylèneglycol et/ou de glycérine (à savoir l'additif alimentaire E 422) et/ou d'un agent filmogène du type polyvinylpyrrolidone (PVP), autorisé en France comme auxiliaire technologique dans la fabrication de la bière. Enfin, des colorants et des parfums alimentaires pourront être éventuellement utilisés. EXEMPLE 1 On prépare un mélange bactéricide ayant la composi- tion suivante: Monolaurine 6 % PARABEN méthyle 78,8 % Gallate de npropyle 15,2 % 100 % EXEMPLE 2 On prépare une composition bactéricide ayant la composition suivante et destinée au trempage du pis de la vache laitière avant et/ou après la traite: n-propanol 12 % Propylèneglycol 20 % EDTA sel disodique 0,1 % Polysorbate 20 (par exemple celui commer- cialisé sous la marque MONTANOX 20 par la Société Seppic 2 % Mélange bactéricide selon l'exemple 1 0,3 % Eau déminéralisée + parfum + colorant qsp 100 % La composition présente un aspect liquide limpide. EXEMPLE 3 On prépare une composition bactéricide ayant la composition suivante et destinée au trempage du pis de la vache laitière après la traite: Isopropanol 12 % Glycérine 5 % Hydroxyéthylcellulose 0,3 % EDTA sel disodique 0,1 % Mélange bactéricide selon l'exemple 1 0,35% Oxyde d'amine (par exemple celui commercialisé sous la marque AROMOX MCD-W par la Société Akzo Nobel Chimie) 1 % Eau déminéralisée + parfum + colorant qsp 100 % La composition a un aspect liquide limpide épais. EXEMPLE 4 On prépare une composition bactéricide ayant la composition suivante et destinée au trempage du pis de la vache laitière après la traite: Isopropanol 12 % Glycérine 5 % Gomme xanthane (par exemple celle commer- cialisée sous la marque RHODOPOL 23 par la Société Rhône-Poulenc) 0,5 % EDTA sel disodique 0,1 % Mélange bactéricide selon l'exemple 1 0,35% Polysorbate 20 2 % PVP 0,5 % Eau déminéralisée + parfum + colorant qsp 100 % La composition présente un aspect liquide limpide épais. EXEMPLE 5 On prépare une composition bactéricide ayant la composition suivante: Monolaurine 0,13% Gallate de n-propyle 0,33% PARABEN méthyle 1,67% Propylèneglycol qsp 100 % La composition présente un aspect liquide limpide. EXEMPLE 6 On prépare une composition bactéricide ayant la composition suivante: Monolaurine 0,2 % PARABEN méthyle 2,6 % Gallate de n-propyle 0,5 % n-propanol qsp 100 % La composition présente un aspect liquide limpide. Une autre manière de formuler la composition bactéricide conforme à l'invention consiste à appliquer la technologie des dispersions aqueuses stables pendant au moins un an; ces dispersions stables sont couramment utilisées pour formuler des pesticides et on les désigne par le terme technique de "flow". Les principes actifs solides sont broyés en milieu aqueux dans un broyeur à billes de verre ou de stéatite à des dimensions d'environ 2 microns. On ajoute de la gamme xanthane comme agent rhéolo- gique et de suspension, des agents mouillants non ioniques tels que le nonylphénol 10 OE et des agents dispersants tels que celui commercialisé sous la marque SOPROPHOR FL par Rhône-Poulenc, qui est un phosphate de tristyrylphénol à 16 OE sous la forme du sel de triéthanolamine. La composition ainsi obtenue peut être utilisée telle quelle ou après dilution avec de l'eau, le taux de dilution étant fonction de l'efficacité recherchée. Une telle composition est illustrée par l'exemple 7. EXEMPLE 7 On prépare une composition bactéricide ayant la composition suivante: Monolaurine 4 % Gallate de n- propyle 10 % PARABEN méthyle 4 % Propylèneglycol 5 % Dispersant (par exemple celui commercialisé sous la marque SOPROPHOR FL par la Société Rhône-Poulenc) 2 % Nonylphénol 10 OE 0,5 % Gomme xanthane 0,5 % n-propanol 0,5 % Polydiméthylsiloxane 0,01% Eau déminéralisée qsp 100 % La composition se présente sous la forme d'un liquide blanc laiteux stable. Toujours en référence aux technologies de formula- tion des pesticides, la composition solide objet de l'in- vention peut être présentée sous la forme de poudre mouillable; une poudre mouillable est une poudre qui donne au contact de l'eau une dispersion stable. Pour ce faire, on broie à sec, jusqu'à une granu- lométrie d'environ 40 microns, la composition solide en présence d'une charge du genre silicoaluminate, d'un agent mouillant du type alkylarylsulfonate alcalin et d'un agent dispersant du type lignosulfonate de soude. Une telle composition est illustrée par l'exemple 8. EXEMPLE 8 On prépare une poudre mouillable à base du mélange bactéricide conforme à l'invention. La composition de cette poudre mouillable est comme suit: Monolaurine 4 % Gallate de n-propyle 10 % PARABEN méthyle 4 % Alkylarylsulfonate de soude (par exemple celui commercialisé sous la marque GALORYL MT 703 par la Demanderesse) 1,5 % Lignosulfonate de soude 7 % Silicoaluminate qsp 100 % La poudre mouillable en question présente un aspect de poudre fine de couleur crème. REVENDICATIONS 1. Composition bactéricide de qualité alimentaire à base d'un monoester d'acide gras saturé en C10 ou C12 et de glycérol et avantageusement d'un ester alcoyle de l'acide parahydroxybenzoique, caractérisée par le fait qu'elle comprend une quantité efficace de gallate de n- propyle. 2. Composition bactéricide de qualité alimentaire selon la revendication 1, caractérisée par le fait qu'elle comporte: - de 5 à 70% et, de préférence, de 8 à 60% de gallate de n-propyle, - de 0,05 à 50% et, de préférence, de 0,1 à 47% d'un monoester d'acide gras saturé en C10 ou C12 et de glycérol, et - avantageusement de 5 à 95%, de préférence de 7 à 91% d'un ester alcoyle de l'acide parahydroxybenzoique et, plus particulièrement, le parahydroxybenzoate de méthyle. 3. Composition bactéricide de qualité alimentaire selon l'une des revendications 1 et 2, caractérisée par le fait que le monoester d'acide gras saturé en C10 ou C12 et de glycérol est choisi dans le groupe comprenant la monocaprine et la monolaurine. 4. Composition bactéricide de qualité alimentaire selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisée par le fait que l'ester de l'acide parahydroxybenzoique est l'ester éthylique ou l'ester n-propylique. 5. Composition bactéricide de qualité alimentaire selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisée par le fait que ses constituants sont formulés sous la forme d'une solution hydro-alcoolique eau-éthanol, eau- isopropanol ou eau-n-propanol. 6. Composition bactéricide de qualité alimentaire selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisée par le fait que ses constituants sont formulés sous la forme d'une solution glycolique, de préférence dans le propylèneglycol. 7. Utilisation de la composition bactéricide selon l'une des revendications 1 à 6, pour la désinfection des surfaces, des circuits et des instruments dans l'industrie laitière, dans l'industrie de la viande, dans l'industrie des boissons et à la ferme. 8. Utilisation de la composition bactéricide selon l'une des revendications 1 à 6, pour la prévention de la mammite subclinique chez les ruminants, notamment chez la vache par application sur le pis avant et/ou après la traite. 9. Procédé de désinfection caractérisé par le fait que la composition bactéricide de qualité alimentaire selon l'une des revendications 1 à 6 est mise en oeuvre à la température ambiante, sur les surfaces des instruments ou installations à désinfecter ou sur le pis des ruminants, notamment de la vache laitière avant ou après la traite, par trempage ou pulvérisation.