FR 2736360 A1 19970110 FR 9508068 A 19950704 CLONAGE ET CARACTERISATION DU GENE fibA DE H.PYLORI. PRODUCTION DE SOUCHES AFLAGELLEES Helicobacter Dylori (désigné également par l'expression H. pviori) est une bactérie à gram négatif retrouvée exclusivement à ce jour à la surface de la muqueuse de l'estomac chez l'homme. Comme la plupart des bactéries, H. pvylori est sensible à un milieu de pH acide mais cependant peut tolérer l'acidité en présence de taux physiologiques d'urée (Marshall et ai (1990) Gastroenterol. 99: 697-702). 1o En hydrolysant l'urée sous forme de dioxyde de carbone et d'ammoniac qui sont relargués dans le microenvironnement de la bactérie, I'uréase de H. plori permet la survie de la bactérie dans l'environnement acide de l'estomac. Récemment des études menées sur des modèles animaux ont fourni des éléments suggérant que l'uréase est un facteur important dans i5 la colonisation de la muqueuse gastrique (Eaton et al (1991) Infect. Immun. 59: 2470-2475). L'uréase est également suspectée de causer des dommages soit directement, soit indirectement, à la muqueuse gastrique. Helicobacter pylori (H. pylori) est à l'heure actuelle reconnu comme l'agent étiologique des gastrites antrales, et apparaît comme un des cofacteurs requis pour le développement des ulcères. Par ailleurs il semble que le développement de carcinomes gastriques puisse être associé à la présence de H. pylori. Afin de mettre au point des moyens nouveaux sensibles et spécifiques pour la détection in vitro d'infections par des bactéries de I'espèce Helicobacter pylori, les inventeurs se sont intéressés au système de régulation de la mobilité de ces bactéries. Dans ce but, ils se sont intéressés à différentes modifications des souches de H. pylori, modifications qui n'affectaient pas la reconnaissance de ces bactéries par des sérums de patients infectés mais qui néanmoins permettaient de ne pas obtenir de réaction de type " faux positif " en particulier avec des bactéries de la famille de Campylobacter et par exemple, Camvpylobacter ieiuni. Les inventeurs ont en outre constaté que les bactéries modifiées obtenues pouvaient être, le cas échéant, utilisées dans le cadre de la fabrication de compositions immunogènes ou vaccinantes. A cet égard, l'invention propose notamment des souches bactériennes vivantes atténuées. Dans une première étape, les inventeurs ont identifié et isolé le gène fibA ayant une implication dans la régulation de la biosynthèse des io flagelles de H. p lori et par conséquent, dans la régulation de la mobilité de la bactérie. La biosynthèse des flagelles comprend la synthèse des flagellines A et B, et de la gaine. Le gène fibA régule à la fois la synthèse des flagellines A et B, et la synthèse de la gaine contenant ces flagellines. Les inventeurs ont établi que le gène fibA était également intéressant en ce qu'il régulait la biosynthèse de la protéine d'ancrage de la bactérie, encore appelée "crochet". L'invention a donc pour objet une séquence nucléotidique du gène fibA régulant la biosynthèse des protéines des flagelles d'Helicobacter vlori, caractérisée en ce qu'elle est capable d'hybrider dans des conditions de forte stringence avec une sonde correspondant à un fragment de nucléotides de H. pylori amplifié à l'aide de deux oligonucléotides répondant aux séquences suivantes: OLFIbA-1: ATGCCTCGAGGTCGAAAAGCAAMGATG OLFIbA-2: GAATCTTCATACTGGCAGCTCCAGTC, ou capable d'hybrider dans des conditions de forte stringence avec ces oligonucléotides. Une telle séquence peut être obtenue par les étapes de: - criblage d'une banque génomique contenant l'ADN chromosomique d'une souche H. yovlori avec une sonde correspondant à un fragment de nucléotides de H. pvyIori amplifié à l'aide de deux oligonucléotides répondant aux séquences suivantes: OLFIbA-1: ATGCCTCGAGGTCGAAAAGCAAQATG OLFIbA-2: GAAATCTTCATACTGGCAGCTCCAGTC, ou capable d'hybrider dans des conditions de forte stringence avec ces oligonucléotides. - récupération des séquences d'ADN hybridant avec ladite sonde, - sous-clonage des séquences d'ADN obtenues dans un vecteur approprié de type plasmide et sélection de ceux des vecteurs modifiés hybridant dans des conditions de forte stringence avec la sonde correspondant au fragment d'ADN de H. pyIori amplifié à l'aide des oligonucléotides OLFIbA-1 et OLFIbA-2, - séquenç,age des fragments d'ADN contenus dans les vecteurs plasmidiques hybridant avec la susdite sonde et détermination de la phase ouverte de lecture contenue dans ces fragments. Avantageusement, on utilisera ces fragments d'ADN pour reconstituer la séquence codante du gène fibA correspondant à une phase ouverte de lecture comportant environ 2196 nucléotides. La banque génomique contenant l'ADN chromosomique de H. yDvlori peut être obtenue à partir de toute souche de H. pvylori. On peut aussi préparer une banque cosmidique à partir de l'ADN chromosomique de H. pylori. Une souche utilisable pour la réalisation de cette banque est par exemple la souche N6 déposée à la NCIMB le 26 Juin 1992, sous le n NCIMB40512. Les deux oligonucléotides amorces utilisés pour préparer la sonde destinée à l'hybridation de l'ADN recherché présent dans la banque d'ADN de H. pylori sont choisis parmi les régions conservées des différentes protéines de la famille LcrD/FIbF. Les deux oligonucléotides amorces OLFIbA-1 et OLFIbA-2 on permis d'amplifier un fragment, utilisable comme sonde, de 130 paires de bases répondant à la séquence suivante: ATG CCA GGA MAAG CAA ATG GCG ATT GAT GCG GAT TTA MAAT TCA GG4 CTT ATT GAT GAT MAAG GMAA GCT AAA AAA CGG CGC GCC GCT CTA AGC CMAA GMAA GCG GAT TTT TAT GGT GCG ATG GAT GGC GCG TCT AAA TTT Les conditions de forte stringence dont il est question ci-dessus sont les suivantes: I'hybridation est réalisée à 42 C en présence de 50% Formamide dans un tampon 2XSSC contenant 0,1% SDS (1XSSC correspond à 0, 15 M NaCI plus 15 mM de citrate de sodium - pH 7,0). Les lavages sont réalisés avec 2XSSC plus 0,1% SDS à 68 C par exemple deux fois pendant une heure. Une séquence nucléotidique particulièrement intéressante selon lI'invention est la séquence du gène fibA correspondant à l'enchaînement de nucléotides représenté à la figure 2, ou à un enchaînement nucléotidique hybridant dans des conditions de forte stringence avec le susdit enchaînement. Selon un autre mode de réalisation de l'invention, la séquence nucléotidique, objet de la présente demande, est caractérisée en ce qu'elle code pour une protéine répondant à la séquence d'acides aminés représentée à la figure 2 ou pour une séquence d'acides aminés ayant les mêmes propriétés régulatrices vis à vis de la biosynthèse des protéines des flagelles de H. piyori, que la susdite séquence. L'invention a également pour objet une séquence nucléotidique répondant aux définitions précédentes, modifiée par délétion, substitution ou insertion de bases ou d'un fragment d'une séquence de nucléotides, de facçon telle que: - soit le gène fibA n'est plus exprimé dans un hôte cellulaire, - soit l'expression du gène fibA dans un hôte cellulaire ne permet pas la biosynthèse des flagellines A et B ni de la gaine les contenant et le cas échéant ne permet pas la synthèse de la protéine d'ancrage de H. pylori ou le crochet. La modification subie par la séquence nucléotidique de l'invention doit être telle qu'elle est irréversible et notamment qu'elle reste irréversible, lors de la recombinaison de cette séquence avec le gène fibA présent dans une bactérie que l'on transformerait avec une séquence nucléotidique ainsi modifiée. Cette recombinaison est par exemple de type 1o " double crossing over ". De préférence, la modification de la séquence nucléotidique ne doit pas entraîner de modification substantielle - après remplacement par cette séquence modifiée du fragment correspondant du gène fibA normal dans une souche déterminée de H. yDvlori - des fonctions des gènes voisins. Entrent également dans le cadre de l'invention, des séquences nucléotidiques constituant un fragment du gène fibA répondant aux critères précédents. A titre d'exemples, des fragments objet de l'invention, comportent au moins 6 nucléotides, de préférence au moins 50, voire au moins 100 nucléotides. De tels fragments sont par exemple choisis soit pour leur caractère spécifique du gène fibA, soit pour leur appartenance à des régions conservées de plusieurs gènes codant pour des protéines de la famille LcrD/FIbF. Selon un autre mode de réalisation, I'invention vise également les fragments du gène fibA limités par les sites de restriction présents sur le gène. Certains de ces sites sont définis à titre d'exemple à la figure 1 B. Un autre fragment selon l'invention est un fragment d'au moins 1000 pb issu d'une quelconque région du gène fibA et comprenant de préférence un site de restriction ou susceptible d'accueillir un site de restriction. D'autres séquences nucléotidiques de l'invention sont par exemple des acides nucléiques recombinants comprenant une séquence nucléotidique telle que celles qui ont été décrites ci-dessus, elle-même modifiée par insertion d'une cassette contenant un marqueur, par exemple un gène de résistance à un antibiotique ou un gène de résistance à un métal lourd tel que décrit dans la demande FR 9406202 déposée le /05/94. Une insertion peut ainsi être effectuée avec une cassette de résistance à la kanamycine. A cet égard, différentes techniques peuvent io être mises en oeuvre et on se réferrera notamment à la publication de Labigne A. et al (J. of Bacteriology, vol. 170, 1988, p. 1704-1708) et à la publication de Labigne A. et ai (Res. Microbiol 1992, 143, 15-26). L'invention a également pour objet des oligonucléotides spécifiques d'une séquence nucléotidique déterminée précédemment et caractérisés en ce qu'ils répondent à l'une des séquences suivantes: OLFIbA-1: ATGCCTCGAGGTCGAAAAGCAAGATG OLFIbA-2: GAAATCTTCATACTGGCAGCTCCAGTC OLFIbA7: CGGGATCCGTGGTTACTAATGGTTCTAC OLFIbA-8: CGGGATCCTCATGGCCTCTTCAGAGACC Selon une autre variante de réalisation, I'invention concemrne une séquence d'acides aminés de la protéine FIbA de H. yDvlori caractérisée en ce qu'elle est codée par une séquence nucléotidique telle que déterminée précédemment. Une séquence d'acides aminés particulière de la protéine FIbA de H. yDvlori est présentée à la figure 2. Ainsi, dans le cadre de l'invention, le gène fibA et la protéine exprimée par ce gène peuvent présenter un intérêt, en particulier pour l'utilisation dans des compositions immunogènes ou vaccinantes. L'invention vise également des souches bactériennes d'Helicobacter piori ayant un phénotype aflagellé résultant de la mutation par substitution, addition et/ou de la délétion de bases ou d'un fragment nucléotidique de la séquence nucléotidique définie ci-dessus du gène flbA participant à la régulation de la biosynthèse des protéines des flagelles de H. Pvlori. Cette modification du gène fibA permet l'obtention d'une souche de type aflagellé c'est à dire n'exprimant plus les protéines FlaA et FlaB et de préférence n'exprimant plus les protéines de la gaine. Selon une variante de réalisation de cette souche bactérienne, la souche obtenue sera en outre dépourvue de la protéine du crochet de H. pvlori. De façon préférée, une souche bactérienne répondant aux critères précédents est caractérisée en ce qu'elle est obtenue à partir de la souche N6 déposée à la NCIMB le 26 Juin 1992 sous le numéro NCIMB 40512. A titre d'exemple, I'invention a pour objet une souche aflagellée i5 recombinante de H. pvylori, désignée par N6fibA- et déposée à la NCIMB le Juin 1995 sous le n NCIMB 40747. De telles souches aflagellées de H. pylori sont particulièrement intéressantes pour des utilisations en sérologie et par conséquent pour la détection in vitro d'une infection par H. Dpylori. Avantageusement, ces souches sont de type recombinantes. Ces souches présentent notamment l'avantage de permettre une détection in vitro spécifique et sensible de l'infection par H. pylori. En d'autres termes, l'invention permet avantageusement de détecter spécifiquement une infection par H. pvylori en évitant en particulier les résultats " faux positifs " par exemple avec des souches de bactéries telles que Salmonella ou Camvpylobacter.. Etant donné que les souches de H. Pvylori de type aflagellé ainsi définies peuvent avoir également d'autres applications, et par exemple être mises en oeuvre dans le cadre de la préparation de compositions de vaccins, on pourra avoir intérêt à préparer des souches bactériennes recombinantes aflagellées ayant une seconde modification ou mutation et par exemple on pourra avoir recours à une souche bactérienne aflagellée caractérisée en ce qu'elle est en outre mutée de façon à produire une uréase atténuée, voire à ne plus produire d'uréase, la mutation consistant par exemple en une mutation de la séquence nucléotidique d'un ou plusieurs gènes choisis parmi les gènes ureA ureB, ureC, ureD, ureE, ureF, ureG, ureH ou urel. Les gènes de structure de l'uréase désignés par ureA, ureB, ureC et ureD de l'uréase ont été décrits dans la publication (Labigne et al (1991) J. Bacteriol. 173: 1920-1931). Les autres gènes ont été décrits dans la demande de brevet EP 0610322. Les souches bactériennes de l'invention peuvent être utilisées telles quelles ou sous la forme d'extrait et en particulier l'invention a pour objet un extrait bactérien total de souche obtenu à partir des souches précédemment décrites. Un tel extrait bactérien peut être préparé par extraction au N- OctylGlucoside. En ce cas, la technique de préparation utilisée est celle décrite par LELWALA-GURUGE J. (Scand. J. Infect. Dis. 1992, 24: 457- 465). Un autre extrait bactérien peut être obtenu par extraction au PBS ou la glycine selon les techniques respectivement décrites par BAZILLOU M. et ai (Clin. Diagn. Lab. Immuno., 1994,1: 310-317) et AGUIRRE P.M. (Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis., 1992, 11:634-639). Dans le cadre de ces applications, I'invention concemrne une composition pour la détection in vitro d'une infection par H. pvlori dans un échantillon de fluide biologique chez un patient, notamment dans un échantillon de sérum, comprenant à titre de principe actif, une souche bactérienne de l'invention ou un extrait bactérien selon la description donnée ci-dessus. 9 - Les échantillons biologiques utilisés peuvent être de tous types et en particulier, il peut s'agir de tous fluides biologiques comme par exemple le sérum, la salive ou l'urine. De même, les techniques mises en oeuvre pour la détection sont toutes les techniques faisant intervenir des réactions de type immunologique et en particulier de type antigène-anticorps. On utilise par exemple les techniques de type Western Blot, ELISA.. L'invention concerne donc également un procédé de détection in vitro d'une infection par H. Pylori dans un échantillon de fluide biologique io chez un patient, notamment dans un échantillon de sérum, comprenant les étapes de: - mise en contact de l'échantillon testé avec une souche bactérienne selon l'invention ou un extrait bactérien défini plus haut, - détection d'une réaction immunologique entre ladite souche bactérienne et des anticorps dirigés contre H. pylori, présents dans l'échantillon testé. A titre d'exemple, une détection in vitro sur un échantillon biologique pour rechercher une infection par H. Pylori peut être réalisée en mettant en oeuvre les étapes suivantes: - des plaques sont recouvertes de l'antigène utilisé pour la détection, qu'il s'agisse d'une protéine pure ou recombinante ou encore d'une souche aflagellée ou d'un extrait bactérien en particulier d'extrait NOG (N-Octyl Glucoside) de la souche N6flbA- (à titre d'exemple, la quantité d'extrait pourrait être de 3 pg/ml ou la quantité d'antigène pourrait être de 2 pg/ml), - une gamme de témoins négatifs et positifs (le témoin positif étant mis en oeuvre avec des dilutions différentes) est utilisée et en parallèle, on teste des sérums de patients dilués au 1/100ème (volume déposé 100 pi), - une étape d'incubation est ensuite réalisée par exemple pendant une heure à 37 C, étape suivie de plusieurs lavages successifs et d'une incubation ultérieure, par exemple pendant 1 heure à 37 C, avec un conjugué monoclonal (de type IgG humaine marquée à la peroxydase) utilisé à différentes dilutions (par exemple à une dilution de 1/32000 pour un antigène et à une dilution de 1/64000 pour un extrait bactérien), le volume déposé est de 100 IJI, - après l'incubation avec le conjugué monoclonal, différents lavages sont pratiqués (par exemple 4) et la révélation de la réaction enzymatique par " OPD + substrat " est faite pendant 30 minutes à l'obscurité. La réaction enzymatique est ensuite arrêtée par addition de H2SO4 puis i0 lecture des densités optiques DO à 492 nm/620 nm. L'invention vise par ailleurs une composition immunogène pour l'obtention d'anticorps contre H. p yori, caractérisée en ce qu'elle comprend à titre de principe actif, une souche bactérienne selon l'invention ou un extrait de cette souche bactérienne. Selon un mode de réalisation particulier de l'invention, une composition immunogène pour l'obtention d'anticorps contre H. pvylori est caractérisée en ce qu'elle comprend une séquence d'acides aminés de la protéine FIbA. Entre également dans le cadre de la présente invention, une composition vaccinante pour l'obtention d'anticorps protecteurs contre une infection par H. pvylori, caractérisée en ce qu'elle comprend à titre de principe actif, une souche bactérienne selon l'invention ou un extrait bactérien selon les définitions précédentes. Une autre composition vaccinante pour l'obtention d'anticorps contre une infection par H. pylori, est caractérisée en ce qu'elle comprend à titre de principe actif, des antigènes de type uréase, en particulier des antigènes codés par les gènes ureA, ureB, ureC ou ureD et une protéine répondant à une séquence d'acides aminés définie plus haut. L'invention vise aussi des anticorps monoclonaux ou des sérums polyclonaux dirigés contre une séquence d'acides aminés précédemment décrite. Ces anticorps sont obtenus par des techniques connues en soi et en particulier par immunisation d'un animal avec l'antigène choisi, suivie soit de la production et de la récupération des anticorps produits et de la sélection de ceux d'entre eux qui reconnaissent spécifiquement H. pylori. soit de la préparation d'hybridomes par fusion de cellules spléniques de l'animal préalablement immunisé avec des cellules de myelome, ces hybridomes étant ensuite mis en culture pour obtenir des anticorps monoclonaux sélectionnés pour leur spécificité de reconnaissance par rapport à l'antigène choisi de H. pvlori. D'autres anticorps monoclonaux ou sérums polyclonaux selon l'invention sont dirigés contre une souche de H. yDvlori aflagellée telle que décrite dans les pages précédentes. L'invention concerne en outre une composition pour la détection in vitro d'une infection par H. pvlori dans un échantillon biologique, is comprenant à titre de principe actif des anticorps monoclonaux ou un sérum polyclonal obtenus contre une souche de H. pylori de phénotype aflagellé selon l'invention. L'invention concerne également à titre de principe actif d'un médicament, les séquences nucléotidiques codant pour les séquences d'acides aminés selon l'invention capables d'induire une réponse immunogène chez un animal ou chez un patient. Une technique pour l'utilisation de séquences nucléotidiques comme médicaments a été décrite par DONNELY et ai 1995, Nature Medic. 1(6), p. 583-587. fiqure 1 1A: Carte de restriction du plasmide pILL570 et du mini transposon Tn3 contenant la cassette du gène de résistance à la kanamycine. 1 B: Cartes de restriction linéaires des plasmides recombinants pSUS39 et pSUS207. Les chiffres indiqués correspondent à la taille des fragments de restriction exprimée en paires de bases. H: Hindll; Bg: Ball. La présence d'un astérisque indique que le site de restriction a été modifié au cours du clonage et qu'il n'est plus reconnu par l'enzyme de restriction correspondant. fiaure 2: Séquence nucléotidique du gène fibA de H. Dpylori et séquence en acides aminés déduite, donnée en code à une lettre. fiaure 3: Alignement multiple de la protéine FIbA de H. Dpylori avec cinq autres membres de la famille LcrD/FIbF. CjFIbA: Camvpylobacter ieiuni FIbA; CcFIbF Caulobacter crescentus FIbF; YpLcrD Yersinia oestis LcrD; StInvA: Salmonella typhimurium InvA; SfMxiA: Shiaella flexneri MxiA. Les astérisques indiquent la position d'acides aminés conservés io dans tous les homologues de la famille LcrD/FIbF; les points indiquent la position d'acides aminés conservés dans au moins 5 des 6 protéines homologues; les séquences en acides aminés conservés utilisées pour la synthèse des oligonucléotides dégénérés (OLFIbA-1 et OLFIbA-2) sont soulignées. On remarquera en particulier le degré de conservation du domaine N-terminal de ces protéines homologues qui contraste avec le degré de variabilité du domaine hydrophile de la région C-terminale. figure 4: Représentation schématique de l'arbre phylogénique de six protéines appartenant à la famille LcrD/FIbF. Les protéines impliquées dans la régulation de l'expression de la mobilité, FIbA de H. Dpylori (HpFIbA), et de Campylobacter ieiuni (Cj FIbA), et FIbF de Caulobacter crescentus (Cc FIbF) forment une branche distincte de celle des protéines impliquées dans la sécrétion de protéines de virulence (InvA, MxiA et LcrD de Salmonella, Shi.ella et Yersinia, respectivement). Les nombres indiqués représentent la distance évolutionnaire relative. fiaure 5: Représentation schématique de la stratégie suivie pour construire les mutants isogéniques de H. pylori souche N6, mutants dans lesquels le gène codant pour la protéine FIbA a été inactivé par insertion d'un gène codant pour la résistance à la kanamycine. fiaure 6: Analyse par immunobuvardage (Western blot) des protéines d'un mutant N6-flbA à l'aide de l'antisérum AK179 (3) dirigé spécifiquement contre les flagelles purifiés de H. pylori: 1: mutant N6-flbA: 2: double mutant flaA/flaB; 3: mutant flaB (8); 4: mutant flaA (8); 5: souche sauvage N6. figures 7 à 11: Résultats comparatifs de la sérologie réalisée sur H. pylori. fiRures 12 et 13: Extractions à partir de la souche aflagellée N6flbA-: les extractions ont été réalisées avec de la glycine, du PBS, ou du NOG. Figure 12: Les courbes ont été réalisées à partir des données suivantes: NET ABS CALC COEFFS: STD# CONC 750.0 CONC DIFF P2=2.0324 P1=2.2753 PO=-0 1 0.0000 0.0020 -0.008 0.0080 2 0.1660 0.0760 0.1721 -0.006 3 0.3300 0.1400 0.3459 -0.016 4 0.6650 0.2390 0.6474 0.0176 1.3300 0.4280 1.3336 -0.004 MOYENNE: -1.0356E-07 S.D.: 0.0130 Figure 13: Dosages protéiques en minométhode (BIOD RAD) Glycine: dilution au 1/2; glucoside: dilution au 1/10; surnageant 1 dilution au 1/4; surnageant 2: non dilué. Les courbes ont été réalisées à partir des données suivantes: NET ABS CALC COEFFS: STD# CONC 750.0 CONC DIFF P2=144.63 P1=314.31 PO=2.4815 1 0.0000 -0.003 1.5398 -1.540 2 25.000 0.0600 21.861 3.1392 3 50.000 0.1470 51.810 -1.810 4 100.00 0.2750 99.855 0.1454 200.00 0.5090 199.94 0.0636 EXEMPLES I Identification du gène fibA et préparation de souches afla.ellées Parmi les protéines connues pour jouer un rôle dans la régulation de l'expression de la mobilité chez les bactéries, les protéines appartenant à la famille LcrD/FIbF récemment identifiée, et qui inclut la protéine LcrD des bactéries du genre Yersinia (6), la protéine InvA de Salmonella (2), MxiA de Shiaella (1), FIbF de Caulobacter crescentus (7) et FIbA de CamvpyIobacter ieiuni (4) sont des protéines intéressantes. Les protéines LcrD, InvA et Mxia sont impliquées dans la régulation et/ou la sécrétion de protéines associées à la virulence des bactéries qui les expriment, alors que les protéines FIbF de Caulobacter crescentus et FIbA de Campyviobacter ieiuni sont impliquées dans la régulation de la biosynthèse des flagelles et donc de la mobilité. Les homologues connus à ce jour de la famille LcrD/FIbF ont des domaines très conservés surtout dans la partie N-terminale de ces protéines, et deux de ces régions conservées (MPGKQM, acides aminés 151 à 156 de la protéine LcrD de Yersinia) et MDGAMKF (acides aminés 189 à 195 de LcrD) ont ainsi pu être utilisées pour la définition de deux oligonucléotides dégénérés (OLFIbA-1 et OLFIbA-2, tableau 1) qui ont été synthétisés et ont servi d'amorces nucléotidiques dans des expériences d'amplification génique réalisées à partir de l'ADN chromosomique d'Helicobacter pylori. Un fragment de 130 paires de base (pb) a ainsi pu être amplifié et la détermination de sa séquence nucléotidique a montré que ce fragment codait pour un segment d'une protéine très homologue aux protéines de la famille LcrD/FIbF. Ce fragment amplifié a alors été marqué radioactivement et utilisé comme sonde pour cribler une banque cosmidique de H. Dpylori. Ce fragment correspond à la séquence comprise entre les nucléotides 575 et 707 de la séquence représentée à la figure 2. Un des cosmides de la banque génomique a été identifié comme codant pour l'homologue LcrD/FIbF de H. pylori, et a ensuite été soumis à une digestion partielle par Sau3A de faç,on a réaliser une mini banque (200 sous-clones) du cosmide dans le vecteur pILL570 contenant des fragments insérés ayant une taille comprise entre 2 et 5 (kilobases). Le vecteur pILL570 a été décrit dans la publication de Labigne A. et al (Institut Pasteur/Elsevier Paris 1992. Res. Microbiol. 1992, 143, 15-26). Sa carte de restriction est donnée à la figure 1A. Ces 200 clones ont alors été hybridés à la sonde de 130 pb et les clones hébergeant les plasmides pSUS39 et PSUS207 ont donné une hybridation positive. La carte de restriction linéaire de ces deux plasmides recombinants est représentée dans la figure 1 B et montre que les deux inserts de ces clones ont des séquences chevauchantes. La détermination de la séquence nucléotidique de ces deux inserts a révélé qu'aucun des deux ne contenait le gène flbA dans son entièreté. Le gène flbA de H. Dpylori ainsi désigné du fait de son homologie avec le gène fibA de Camvpylobacter ieiuni correspond à une phase ouverte de lecture de 2196 nucléotides et code pour une protéine de masse moléculaire calculée de 80,1 kilodaltons. La séquence nucléotidique de fibA et la séquence en acide aminés de FIbA sont données dans la figure 2. Il n'a pas été détecté en amont et en aval de la phase ouverte de lecture de séquences de consensus caractéristique de séquences promoteurs ou terminateurs. La protéine FIbA présente des similitudes avec les protéines FIbA de Campylobacter ieiuni et FIbF de Caulobacter crescentus, toutes deux impliquées dans la mobilité (51,7 % et 40,4 % d'identité, respectivement) alors que ces pourcentages sont moins élevés avec les membres de lafamille protéique LcrD/FIbF qui ne sont pas impliqués dans la mobilité: 32,8 % d'identité avec LcrD de Yersinia, 30,5 % avec MxiA de Shi.ella et 29,3 % avec InvA de Salmonella. Un alignement multiple de la séquence en acides aminés de ces protéines avec celle de FIbA de H. pvylori est donné dans la figure 3. Les régions les plus conservées des homologues de la famille LcrD/FIbF se trouvent dans la partie N-terminale des protéines. L'évolution phylogénétique des protéines impliquées dans la mobilité (FIbA et FIbF) et celle des protéines impliquées dans la régulation de l'expression et/ou la sécrétion de protéines associées à la virulence est représentée schématiquement par un arbre phylogénique (figure 4). Deux branches distinctes sont visibles; FIbA de H. vpylori appartenant sans ambiguité à la branche correspondant aux protéines de régulation impliquées dans la biosynthèse des flagelles. Construction et caractérisation de mutants iso,éniques de H. pylori déficients dans la synthèse de la protéine FIbA. Un fragment de 1600 paires de bases a été amplifié à partir du plasmide pSUS39 à l'aide des oligonucléotides OLFIbA-7 et OLFIbA-8 (Tableau 1), contenant chacun à leur extrémité 5' des sites de restriction BamHI. Ce fragment amplifié contient dans sa région centrale un site unique de restriction par l'endonucléase Hindlll et a été cloné dans le vecteur pSUS33, un dérivé du plasmide pUC19 dans lequel le site situé dans le site de polyclonage Hindill a été délété. Pour obtenir pSUS33, le plasmide pUC19 a été restreint par Hindlll; les extrémités collantes résultant de cette restriction ont été traitées avec l'enzyme de Klenow et I'ADN T4 polymérase de façon à produire des extrémités franches; le fragment résultant a été religaturé avec l'ADN T4 ligase et introduit dans E. coli DH5x pour produire pSUS33. Le plasmide recombinant résultant de l'intégration du fragment de 1600 paires de base dans pSUS33 a été désigné pSUS42; il a été linéarisé par Hindll, ses extrémités ont été transformées en extrémité à bouts francs et la cassette smal - kanamycine provenant du plasmide pILL600 (Labigne A. et ai, 1988, J. Bact., 170, 1704-1708) a été clonée dans ce site unique donnant naissance au plasmide pSUS42. Le plasmide pSUS42 a ensuite été introduit par électroporation dans la souche "N6" de H. pvylori. L'électroporation a été réalisée en suivant la technique décrite par Ferrero R.L. et al (Journal of Bacteriology, July 1992, p. 4212-4217, vol. 174, n 13). Les transformants obtenus après sélection sur un milieu sélectif contenant de la kanamycine (25 pg/ml) ont ensuite été caractérisés génotypiquement et phénotypiquement. La figure 5 montre un schéma de la procédure suivie pour réaliser la construction de mutants. La caractérisation génotypique de ces mutants par amplification génique et hybridation de type Southemrn a montré que le génome des transformants résistants à la kanamycine contenait le gène de résistance inséré au milieu du gène fibA, et donc qu'il y avait eu remplacement allélique par double crossing-over de la copie sauvage du gène fibA par la copie inactivée flbA-Km avec perte des séquences nucléotidiques du vecteur pSUS33. La caractérisation phénotypique des mutants flbA' de H. povori a montré qu'ils étaient non mobiles; par ailleurs, leur analyse par microscopie électronique révélait qu'il y avait absence totale des éléments du flagelle, et absence de la gaine du flagelle. Les expériences d'immunobuvardages (Western blots) réalisées avec des anticorps dirigés contre les protéines des flagelles totales de H. pvylori (Figure 6) montraient l'absence des deux bandes peptidiques correspondant aux sous-unités flagellaires FlaA et FlaB, ainsi qu'une bande correspondant à un polypeptide d'une masse apparente de 1o 90 kilodaltons, protéine récemment identifiée comme la protéine du crochet (ou protéine d'ancrage) du flagelle par O'Toole et collaborateurs (5). L'ensemble de ces résultats suggère que la protéine FIbA de H. Iori est essentielle pour la biosynthèse de toutes les structures flagellaires, et que l'activation du gène codant pour cette protéine, résulte en l'arrêt complet de la synthèse de toute structure entrant dans la constitution du flagelle et non pas dans l'interruption de l'exportation des constituants de ces structures. Tableau 1: Oligonucléotides utilisés dans cette étude Oligo- Position Brin Séquence nucléotidique nucléotides OLFIbA-1 AS 151-156(LcrD) + ATGCCTCGAGGTCGAAAAGCAAGATG OLFIbA-2 AS 189-195 (LcrD) GAAATCTTCATACTGGCAGCTCCAGTC OLFIbA-7 515-534 + CGGGATCCGTGGTTACTMAATGGTTCTAC OLFIbA-8 2092-2111 CGGGATCCTCATGGCCTCTTCAGAGACC Il Sérologie H. pvylori - modèles étudiés 1) HspAmalE protéine recombinante de 47,5 kD (HspA=13 kD) Sur la population dite population I de sérums documentés, une sensibilité de 41% et une spécificité de 96% avaient été obtenues. 2) N6flbA- souche aflagellée d'Helicobacter pDvlori 3 extractions ont été réalisées: -N-Octyl Glucoside -PBS -Glycine L'extraction au N-Octyl Glucoside (NOG) semble pour l'instant la meilleure. 3) -N6 souche sauvage correspondante Une extraction au N-Octyl Glucoside a été réalisée. i0 Une deuxième population de sérums a été mise en oeuvre (population 11). Il s'agit d'une centaine de sérums bien documentés du point de vue clinique, endoscopique, histologique, bactériologique et anatomopathologique. C'est grâce à cette population Il que les performances des différents modèles étudiés ont été appréciées. Cinq i5 populations différentes ont été testées. - 5 populations de sérums testées: - 300 sérums tout venant (FNTS) -18 sérums positifs par la sérologie WHITTAKER (CBMS) -92 sérums bien documentés dits sérums de la population Il - 87 sérums documentés du point de vue bactériologique et anatomopathologique dits sérums de la population I. - 23 sérums pouvant présenter des réactions croisées: - 10 sérums anti-Legionella positifs - 10 sérums anti- Chlamydia positifs - 3 sérums anti-Campylobacter positifs En parallèle, deux kits concurrents ont été testés, qui d'après les études bibliographiques sont performants. - 2 kits commerciaux testés: - Cobas Core (ROCHE) - Pylori Stat (WHITTAKER) - Résultats Les sérums tout venant (FNTS) (Figqures 8 à 11. tableau 2) - 300 sérums ont été passés dans les modèles suivants: - Hsp A malE -N6flBA- -N6 Les études épidémiologiques donnent des séroprévalences, en France, entre 20 et 25%. La répartition de 300 sérums de donneurs de sang a été étudiée et on a calculé la prévalence de positivité pour i0 différentes valeurs seuil, afin de valider la valeur seuil préalablement définie sur la sérothèque du CBMS (sérologie WHITTAKER). Cette étude permet de comparer les différents tests avec une même séroprévalence. - Les 43 premiers sérums ont également été passés dans les modèles suivants: -Cobas Core (ROCHE) -Pylori Stat (WHITTAKER) - sérologie dite JLF (test ELISA, basé sur un extrait aqueux de plusieurs souches bactériennes) Les résultats sont exprimés en unité arbitraire, et pour différentes valeurs seuil, un résultat positif est noté 1, un résultat négatif est noté 0. En comparant ces 43 sérums vis à vis des différents tests, on peut constater que: - la souche aflagellée N6flbA- et le test Cobas Core (Roche) ont des séroprévalences comparables de l'ordre de 20%. - HspA a une séroprévalence très faible (7%) ce qui laisse supposer un manque de sensibilité, compte tenu des résultats ultérieurs. - la sérologie JLF parait très spécifique puisque la séroprévalence n'est que de 14%, en tenant compte des résultats ultérieurs. - le test Pylori Stat (Whittaker) donne une séroprévalence élevée (29%) qui montrerait un manque de spécificité, ou une valeur seuil trop basse. Tableau 2A comparaison de 43 sérums FNTS vis à vis de: NSfIBA- -6 N A 150 CSO+H C30+H C.Core t P.Stat 0.35 PBS7 100 8 W NOG 100 80 60 s6roJLF 0.30 'O-Gr 1 0 0 I I 17_4.. 0I33901 In I1 13105I I I 1 0.75 I >928 1 2 0 0 0 0 0 0 0.21 0 4 0 0 0 3 0 0 0 0.01 0 5 0 3 00 0 0 3 0 0.23 0 6 0 0 0 4 0 0 0 0.01 0 6 0 4 0 0 0 0 4 0 0.19 0 4 0 0 0 3 0 0 0 0.02 0 4 0 0 0 0 0 3 0 0.28 0 12 0 0 0 a 0' 0 0 0.08 0 27 0 6 1 0 0 0 2 0 0.17 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0.01 0 0 0 7 2 0 0 0 3 0 0.32 0 41 0 0 0 36 0 0 0 0.02 0 13 0 8 79 O 0 0 137 1 0.57 1 3391 I 1 I 3109 1 I I 1.43 1 > 928 1 9 0 0 0 0 3 0 0.35 1 23 0 0 0 21 0 0 0 0.05 0 16 0 0 0 0 O 1 O 0.34 0 26 0 0 0 14 0 0 0 0.02 0 31 0 11 0 0 0 3 O 0.23 0 61 0 0 1 33 0 0 0 0.0 0 077 0 12 0 0 0 00 0 0.19 0 0 0 0 0 0 0 0 0.02 0 0 0 13 0 0 O O 1 0 0.19 0 51 0 0028 0 0 0. 02 0 57 0 14 0 0 0 0 0 0.25 0 4 0 0 0 4 0 0 0 0.02 0 11 0 1 0 0 0 3 0 0.27 0 4 0 0 0 3 0 0 0 0.02 0 7 0 16 0 0 0 0 0 0.37 I 62 0 -si10 0 0 0.05 0 97 0o 17 0 0 0 1 0 0.22 0 5 0 0 2 0 0 0.03 0 13 0 18 0 0 0 0 1 0 0.25 0 13 0 0 00 0 0.80 0 18 0 1l 0 0 0 0 0 0.27 0 4Z 0 0 0 0 0 0 0.05 0 15 0 0 00 I 0 0.21 0 2 _ 0 120 0 0 0.01 O 31 0 21 0 O O 18 0.46 1i 54 0 0 4 t I I 0.24 00331 Tableau 2B comDaraison de 43 sérums FNTS vis à vis de: r- _ - -NSflBA- NB HspA 150 | C50 +H C.Cor I P. Stat 0.35 PS 100 80 60 NOG I 10080 10 sroJLF 0.30 NOG 100 22 1 0 0 0 1 0 0.43 1 13 0 0 0 40 0 0 0 0.05 0 21 0 23 0 0 0 I 25 I 0.49 1 265 1 1 1 296 I I I1 0.37 I >928 24 9 0 1 I 125 I 0.65 1 3390 1 1 1 3100 I 1 1 1.47 1 >928 1 0 0 0 0 0 0 0 0.20 0 34 0 0 20 02 0 0 0 0 0.01 0 51 0 26 0 0 0 0 0 2 0 0.29 0 97 0 1 |1 60 0 0 0 0.04 0 105 1 27 0 0 1 1 10 1 0.33 O 265 I 1 I1 239 I 1 1 0.07 O 359 1 2 L 0 0 1 1 7 0 0.21 0 26 0 0 0 14 0 0 0 0.05 0 27 0 29 3 O0 0 0.20 0 3 0 0 0 2 0 0 0 0.01 0 0 0 I 0 0 0 2 0 0.23 0 3 0 0 3 0 0 0 0.01 0 4 0 31 0 0 0 0 1 0 0.21 0 0 0 0 i 0 0 0 0.03 0 0 32 0 0 00 2 0 0.31 0 24 0 0 0 15 0 0 0 0.05 O0 30 0 33 0 0 0 0 1 0 0.23 0 14 0 0 0 8 0 0 0 0.02 0 8 0 34 0 0 O O 3 0 0.23 O 0 0 0 0 1 0 0 0 0.00 O0 2 0O 1293 1 1 1 170 1 0.84 I1 463 1 1 1 3103 1 1 I 0.96 1 >928 1 36 O O O O 4 0 0.36 1 42 O 0 0 32 0 0 0 0.04 O0 68 r37 O O 0' 0 0 0.22 O 110 1 1 1I 109 I I 1 0.02 0 227 1 3 113 0 0 0 4 0 0.47 1 77 0 0 1 68 0 0 1 0.07 0 108 1 39 1 0 0 0 4 0 0.34 0 23 0 0 0 13 0 0 0 0.05 0 34 0 4 50 0 0 0 O 2 0 0.19 0 5 0 0 6 0 O O 0.02 O 4 O 41 0 r 0 - -r- 0u 0 -.24 0w 48 r -r 23 - 0 00 5 - 66 0 2 0 0o 0 0 170 1 0.59 13388 1 1 1 3104 1 T 1,47 1 >928 1 T-' O T I I3 0.1 O 0 7 0 0 5 0 0 0 c.8 0 %d r2 16 1%7 i 1 12 1 I 29 I89 10 l 6 iii | 4% | % 19% 129% 9| 21% 8 21% 21%# 23%1 114% 21 % 26% Les sérums positifs en sérologie WHITTAKER (CBMS) (tableau 3) Trois sérums se sont révélés positifs uniquement avec le test Pylori Stat (Whittaker). Ils n'ont été confirmés par aucun autre test. On peut supposer qu'il s'agit là d'un manque de spécificité de ce test. Si l'on prend comme référence le test Cobas Core (Roche) qui est l'un des meilleurs actuellement sur le marché, nous pouvons comparer nos différents modèles par rapport à Cobas Core. - La souche aflagellée N6flbA- est parfaitement corrélée à Cobas Core. - Les 3 sérums négatifs Cobas Core le sont également avec N6flbA- - Les 15 sérums positifs Cobas Core le sont aussi avec N6flbA-. - La souche sauvage N6 montre les mêmes performances que la souche aflagellée. - HspA manque aussi de sensibilité car 9 sérums positifs Cobas Core sont négatifs avec HspA. Les 3 sérums négatifs Cobas Core le sont aussi avec HspA. Tableau 3 19 sérums du CBMS positifs par la sérologie WHITTAKER (Pylori Stat) N6fiBA- N6 N'sérum DO HspA 150 C.Core 8 PBS 80 NOG 60 GLY NOG 100 1 1.8 0 33 I 130 I 289 I 494 830 1 2 2.41 607 >80 471 1 3257 1 6587>928 1 * 3 2.9 675 I 30 I 472 I 3263 1 1183 >928 1 4 1.4 146 42 1 156 I 407 I 825 556 1 i 179 I1 44 I 59 O 81 1 317 276 1 6 2. 6 193 1 >80 1 472 1 3260 1054>9281 A 0.7 19 l@ 4! É 13 l 8 l 33 12 ll B 2.6 5 | >80 1 471 1 3255 1 6600 >928 1 C 3.1 1352 >80 1I 470 I 3246 1 6582 >928 1 E 0 6 7 1 | X 23: 45 / 150 0 i F 2.1 0 15 1 139 t 3258 I 260 >928 1 G 0.2 0 8 D 3, 4 D 28 0. H 1. 4 25. 18 1 127 1 176 1 143 159 1 2.3 960 lZS >80 1 J 1.9 5 _!. 38 1 91 1 117 1 57 101 1 K 1.38 4 _ 52 I 88 I 182 I 167 >928 1 L 2.98 855 I1 >80 I 471 I 586 1 943 >928 1 M 2.86 0 1 51 I1 471 1 3256 1 1200 >928 1 - I I ' Les sérums de la population II 92 sérums ont été sélectionnés et se répartissent en 3 groupes: -34: patients dyspeptiques diagnostic d'ulcère (duodénal ou gastrique) à l'endoscopie et à l'histologie présence d'Helicobacter Dpylori par culture et/ou anapath; un test rapide à l'urée a également été réalisé. Ce groupe sera noté Hp+/U+ -27: patients dyspeptiques diagnostic différent d'ulcère (gastrite...) à l'endoscopie et à l'histologie présence d'Helicobacter pylori par culture et/ou anapath; un test rapide à l'urée a également été réalisé. Ce groupe sera noté Hp+/U- -31: patients dyspeptiques ou non gastro-duodénum normal à l'endoscopie et à l'histologie absence d'Helicobacter Dpylori par culture et anapath; un test rapide à l'urée a également été réalisé. Ce groupe sera noté Hp- Pour chaque patient, les données cliniques, endoscopiques, histologiques, bactériologiques et anatomopathologiques sont indiquées. Cette population bien documentée a permis de définir des critères de Sensibilité et de Spécificité. - HpA: On note toujours un manque de sensibilité important comme constaté avec la population I. La sensibilité est de 59% pour une spécificité de 100. - N6flbA-: On vérifie une sensibilité de 100% pour l'extrait au N- Octyl Glucoside avec une spécificité de 90%. La performance est comparable au test Cobas Core de Roche (sensibilité de 98% pour une spécificité de 94%). -N6: La souche sauvage est tout à fait comparable à la souche aflagellée sur la population Il. Aucun des 31 sérums négatifs n'est positif avec la souche sauvage; aucune réaction croisée dûe au flagelle n'a été détectée sur cette population Il. Tableau 4: Sérums de la population Il 34 patients Hp+/U+ _ip dld II-t N6A- H II1e 1 - -- - -r- -- D OHtfesUt - Pl- -- N _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ Vim tfl t N ateAia Clinique Endoa. U/ HIhto-A 01:ultUreHFIHpV-11 PB S VS=8C NOO VS-O N OI/(C:CORI VS-l P.STAT VS-o. 1m0.2 JLF V8-0.30 9 19/07/91 331 dyspep UD 1 0210 o O 1 0 1.. 1 1 305 1 >928 1 30 1 0.288 1 o.91 1 111203/9232 1 dyeWPe UD 1 G313 1 1 11 51. _> 44 1 1o000 1 >928 1 55 1 0.359 1 1.03 1 13 19/05/92 261 dyspep UG 1 G311 1 0 0 1 1530 1 >464 1 1452 1 >928 1 >160 1 0.377 1 0.67 1 1523/07/93 271 dapepl UD 1 0222 1 1 1 1 42!. 137 1 229 1 406 1 40 1 0.223 1 0.26 0 1610/12/91 371 dyspepse UD 1 G410 1 0 0 I 2135 1,464 1 870 1 >928 1 80 1 0.399 I 1.14 1 18/05/94 401 perforatlon UO 1 G230 1 0 1 1 1 14 >,464 1 676 1 >928 1 62 1 0.302 1 1.12 1 ro 18 16/12/92 221 dy lepsi UD 1 0222 1 0 I 1 16,464 1 1124 1 >928 I >160 1 0.373 1 0.74 1 2607/09/94 39 1 dypepei UD 1 0220 1 1 1 1 11!:82 I 64 i1 4 1 10o 1 0.209 1 0.74 1 27 0502/92 470 dynpep, UD 1 G212 1 1 11 12 i::8 104 1 398 1 18 I 0.245 1 0.23 0 28 27/04/42 1 ROO-A.UG ODN I 0320 1 1 1 7970 1 > 44 1 2344 1 >928 1 >160 1 0.477 1 1.73 1 29 24/06/94571 d 'J o 1 0222 0 1 0 1 801 1 > 464 1 230 1 >928 I >160 1 0.463 I 1.51 1 33 04/11/9o 1 d0 YPel UD 1 G231 1 1 1 1 a 1 >464 1 2720 1 >928 1 >160 1 0.505 I 0.97 1 03/0/ 46 1 dynW D UO 1 0331F 1 O 1 1 I >464 1 2676e 1 >92 1 >1e 1 0.419 1 1.34 1 39 02/03 /9471 dYp AEG UG I G212 1 1 1 422 1 240 436 1 >928 1 14 1 0.253 1 0.88 1 43 13/01/94 670 UO 1 11 i 1 0 1 1 108. 7 75 379 1 14 0204 i 0.52 1 4 01107/94 e600 dpep UD 1 0321 I 1 11 Â G ':>464 I 2878 I >928 1 >160 1 0.485 1 1.6 I "'] Tableau 4 (suite): Sérums de la population Il 34 patients Hp+/U+ DN Date 1A AR.ilx, Clinique los. -Glemsa ultU ras VuS0 NOOV NOO VS,,IIX=.0ORJV.8-P.ITATIV$-0.19-0.27?JV8,0 48 02/02/95691. dyspepsie O I 120 1 1 0 1 39 123 1 304 I >928 I 100.1 0.274 I 1.50 1 52 26/10/94 451 dYS l.U GDN 1 0221F 1 1 1 1 a 164 1 368 1 595 1 16, 1 0.257 1 0.22 0 5605/09/9472 0 dype. UD 1. 233 1 011 12m > 464117041 >928 I 65 1 0.389 1 1.21 1 19/06/91 40 1 dyspepsie UG 1 0333 0 1 0 1 3 1 11>4641 31921 I >928 1 >180 1 0.524 1 6.28 1 64 07/11/94 371 dyspepuieurt.UD 1 0323 1 1 1 1 7::-'173 1 980 1 >928 1 40 1 0.362 1 0.39 1 6515/12/94 411 perforation UD 1 0211F 1 111 3 ['100 1 310 1 >928 1 86 1 0.318 1 0.33 1 7029/0493 47 1 dyspep-nela LID I 0110 I 001 0 aY. 164 1 384 1 804 I 23 1 0.256 1 1.13 1 71 29/03/93 391 dyspepsie UD I 0221 1 0 I I1 07 " 97 1 121 1 202 1 23 1 0.183.'/0.14 O 0 76 09/06/93 361. .. c eUO 1 G12l 1 0 0 1 313 J 140i 1 726 1 785 1 37 1 0.298 1 0.25 0 78 12/0/949 0 cyspoeau GON 1 0220 1 0 11 1335 1 >464:1 9 i >928 I >1, 1 0.394 1 1.16 I. 81 08/06/94 291 d e- A U GDN.01D1 0110 I I 1 I 11 i 96 I 175 Â >928 1 36 1 0.282 1 0.72 1 8422/11/93 241 i otln liD 1 0223 1 0 11 74 i >464 1 842 1 >928 1 6 1 0.316 1 0.86 1 8817/6936 1 d,.,.. Uo 1 G121 i o O 1 l I >4641 440 I >92, I 43 I 0.288 1 0.69 1 89 22/06/ 23 1 W1M UD 1 0222 1 1 I 1 175 1 712 1 >928 I 117 1 0.344 1 0.51 1 _0254 1 8 0 jo 02 1 1 11.0 34 1, 612 Â >926 1 97 e 0.349 1 0.78 1 9202/06/93 87 1 dy::xKPi Ph.UG 1 0123 1I 1 11 21 230 I 177 1 125 1 61 1 0.168 'M" 0.17 0 0 3,o!L..... 0!L 0. I I.1 "'. 294 e 370 1 >928 I 29 G 0.382 I 1.56 1 13/05/92 381 dypepale UO 1 0221 0 1 1 1 20 415 1 444 1 359 1 67 1 0.369 1 0.31 1 Tableau 5 Sérums de la population Il 27 patients Hp+/U- _____ H P___ ___ IVari! afintNli fB -' N...... N N ate Me:-- ' Clinique ' no UU HstoAlemsul r i HspA VS150 PBS VS=80 NOG VSO 1 0( Ct 8 P.STA1VS,,.1910.27 JLF VS,0.30 1 14/04/93 240 dyspepsieurt.GDN 0 G221 I 1 1 1 218 i > 464 1 884 1 >928 1 42 1 0.293 1 0.43 1 29/06/94 45 1 dyspeptMAn. GON 0 G311 I 1 0 1 32 ' >464 1 1896 1 >928 1 >160 1 0.377 1 0.50 1 3 08/04/92 441 dysG ODN O G313 1 1 11 63:::1384 1 460 1 480 1 22 I 0.198 1 0.05 0 4 01/12/ 28 0 dyspepsie GDN 0 0321F I 101 >464 1 __ 291_ __ --______ - -, 2 i:';1411788I > 928 1 40 i 0.291 1 0.591 6 22/06/94 28 0 dyspepAle GDN 0 0220 0 101 14iO 204 I 354 1 324 1 16 1 0.233 1 0.18 0 7 21/04/93 580 dyspepsie urt.GDN 0 G320 1 1 1 770 I1 >484 1 2088 1 >928 1 77 1 0.323 1 0.42 1 12 04/11/9248 0 dyspepeie-RGOGON 0 G210 1 1 11 341 1 251 1 908 1 >928 1 101 I 0.343 1 0.71 1 23 07112/94 280 dyspepsie GDN 0G312 1 1 0 1 15501 1 460 1 452 1 >928 1 47 1 0.33 1 0.85 1 24 21/04/93 391 RGO urt. GDN 0 G321 1 0 1 1 30:;94 1 149 1 >928 1 37 1 0.237 1 0.15 0 09/11/941780 dySpepiAn. GON 0 G121 1 1 0 1 3250 1 >464 1 1384 1 >928 1 > 160 1 0.41 1 0.75 1 31 21/07/93 531 dyspepsie GDN 0 G333 1 0 0 1 3820 1 >44 1 3480 1 >928 1 >160 1 0.493 1 5.89 1 0o 3209/12/92 53 0 dyspepsie all.GDN 0 G211 1 011 61;455 I 956 1 >928 1 45 1 0.336 1 0.38 1 37 1071292 59 1 d,,.e.,,e. O G211 1 0 01 71!" i345 1 455 1 >928 1 72 1 0.3 1 0.92 1 42 28/12/94 291 dypep GDN 0 G321F 0 1 0 1 423 1 >464 1 16 1 >928 1 124 1 0.404 1 0.87 1 08/06/94 460 dyspepsie urt.GDN 0 G310 1 1 1 1 247 I1 232 1 431 1 >928 1 104 1 0.325 1 1.07 1 49 12/05/93 431 dysple u. GON 0 0220 1 1 37 l 47 el 8 251 1_ 28 1 0.179:?0. 2610 24 /93 48 n GN 0112375 dy> 464 n 786 0 >928 3 100 1 0.374 1 0.42 1 58 19/12/94 56 0 cyspepeMAn,GODN 0 G310 I 0 0 1 1615 1 > 464 1 762 1 >928 i 91 1 0.323 1 0.63 1 506/05/93 20 0 ROO GDN 0 Gll 011 O * 3 134 _2 0.183 1 0 "i6 ' 311 24 1 8 ?..018!.'::: 464 1 1028 1 >928 I se I 0. 332 1 0.48 1 67 01/06/94 370 vomimmements GDN 0 G222 0 111 72 f; " 134 I 184 1 188 1 17 1 0.203 I 0. 23 O 69 23109/92 290 clyslxXle urt.GDN 0 G222 1 0 11 175 1 >464 1 461 I 696 1 35 1 0.278 1 0.35 1 73 27/ 94 63 1 dyaptuaie GDN O G212 i 1 1 1 812 I 158 1 309 I >928 1 149 1 0.317 1 1.28 1 7420/04/941620 dyspepsie GDN O 0222 I 111 4850 I1 319l 1 2156 1 > 928 1 >160 1 0.372 1 1.01 1 7704111/92 71 1 d yspepile- iIiXGON 0 G211 1 001 13 '! 142 1 240 i 40 1 20 1 0.236 I 0.29 O 8521 RGO GON O 0121F 1 2 16128 I228 1 0.247 1 0.18 O 9371/940 ROOGON G 0321' " 1 5G9': 175 I 357 1 >928 1 123 1 0.281 1 1.54 I Tableau 5 bis: Sérums de la population Il 31 patients Hp- I1 '1 i I....... I i i IHP I I i] I Vjjarl, flemiItNG fiA NS ÀI I.I [ " i I N'î i '"Dite IAlluSexel Clinique UDAM. uHlsto-A lem"sa.ultU rHHspA_ V PS V- Vff,1101. NS lo3C.CORIVS 8P.sTATSVSÀ0.1/.27 JLFI VlS..30 8 29/07/92 441 RGO/dyq.pW urt.GON 0 normale 0 00 0 23 0 34 0 12 0 41 0 9 1 0.158 0 0.01 0 14 02/06/93 341 dYslPele ultGDN 0 normale 0 00 0 8 0 0 0 0 0 0 0 2 0 0.1 0 0.03 0 19 17/06/93 43 1IdY M GON 0 normale O 00 0 16 0 15 0 5 0 31 0 8 0 0.173 0 0.13 0 23/11/94 72 1 cortcolds GON 0 normale 0 00 0 7 0 0 0 0 0 0 0 3 0 0.188 0 0.01 O 21 15/03/93 651 c GON 0 normale O 010 0 4 0 O O 0 0 0 0 0 0 0.107 0 0.08 0 22 16/11/94 391 yspepelet GDN 0 normale 0 00 0 2 0 64 0 40 0 88 0 O 0 0.152 0 0.04 0 25/01/95 390 dyopenl GN 0 normale 0 0 O 10 0 28 0 12 0 34 0 4 0 0.095 0 0.02 0 34 13/01/94 741 dyspepli GODN 0 normale O 00 0 29 0 38 0 15 0 56 0 6 0 0. 176 0 0.00 0 1411/94 880 RGO ODN 0 normale 0 00 0 28 0 35 0 14 0 62 0 3 0 0.135 0 0. 00 O 38 31/01/94 431 dyspe: e GON 0 normale 0 00 0 9 0 4 0 2 0 22 0 4 0 0.113 0 0.08 O 41 21/04/93 371 dypopelie urt.GON 0 normale 0 00 0 15 0 122; .,Y_,:_.,,.;. 106.. 219: 9.0,17 0 0.03 0 46 07/10/92 39 1 dyspe"ie GDN 0 normale a 0 0 0 0 0 0 0 0 0 4 0 0.133 0 0.00 0 47 27/01/93 40 0 clypelmleurt.GDN 0 normale 0 00 0 7 0 114 '' 99.:' 1 99 a 6 0 0.153 0 0.03 0 r 09/07/92 191 dyspepse GDN 0 normale 0 000 4 0 il 0 5 O 13 0 0 0.13 0 0.01 0 51 1093 28 1 dy urL GDN 0 normalel 000 14 O 7 0 2 7 O 4 00.119 O 0.00 2 54 24/02/93 511 RGO GON 0 normale O 00 0 8 0 24 0 il 0 29 0 3 0 0.143 0 0.00 0 57 06/09/91 601 RGO GDN 0 normale 0 00 0 32 0 61 O - 4a 0.227 1 0.38 1 61 1l/01/95 421 I GON 0 normale O 00 0 9 0 10 0 2 O il O O 00.082 O 0.00 O 82 21/07/93 370 M*me GON 0 normale 0 00 0 4 0 a 0 3 0 8 0! 0 0.115 0 0.01 0 e6 07/01/0l2j e1d y.pp " OON 0 nornals O 00 0 6 0 70 0 33 0 89 0 a9 0 0.17 0 0.07 0 72 21/10m2 411 ROO am O normale 0 00 0 13 0 1 0 3 0 3 0 5 0 0.189 0 0.09 0 79 07/04/93 480 dyoplfll GDN 0 normale 0 0 0 0 3 0 12 0 21 0 32 0 4 0 0.124 0 0.03 0 03/02/93 41 0 dMeu rt GON 0 normali O 00 0 3 0 il 0 8 0 27 0 7 0 0.2 1 0.06 0 82 24/1/193 42 1 RGO GDN 0 normale 0 00 0 3 0 25 0 13 0 25 0 4 0 0.139 0 0.00. 0) 86 11/01/95 350 d o0YtlM O a O 00 0 2 0 0 0 O O O O 7 0 0.126 0 0.00 O 87 30/03/94 23 0 RGO GDN 0 notmule 00 0 22 0 3 0 4 0 il 0 3 0 0.125 0 0.01 0 9113/07/9 1 17 0 dylep GON 0 normala O 00 0 12 0 40 0 18 0 41 0 2 0 0.166 0 0.01 0 94 13/02/92350 dy el GN 0 normale 0 00 0 21 0 22 0 15 0 38 0 1 0 0.274 1 0.07 0 21/03/90 331 l y 0N O normam 00 0 19 0 43 0 22 0 54 I 0 0.268 0 0.00 0 07 05/01/95421 RGO GON 0 noralel l00 0 3 0 3 0 4 0 10 0 0248 0 0.02 0 Be 22./9m2 541 dy,/uw. 00W 0 oma.. 0 00 0 2 0 1 0 0 0 3 0 0 00.122 0 0.00 0 2736360 Tableau 6: Sérums de population Il Par raDpport à la présence de HP (culture et/ou anapath) et Ulcère Sensibilité Spécificité VS=100 44.1% (15/34) 100% (31/31) HspA malE VS=50 52.9% (18/34) 100% (31/31) VS=20 64.7% (22/34) 73.8% (25/31) Par rapport VS=100 94.1% (32/34) 96.8% (30/31) à Hp+ et NOG VS=80 94.1% (32/34) 93.6% (29/31) UD/UG N6flbA- VS=60 100% (34/34) 90.3% (28/31) soit: VS=100 82.4% (28/34) 93.6% (29/31) 34Hp+/U+ PBS VS=80 94.1% (32/34) 93.6% (29/31) VS=60 97.1% (33/34) 83.9% (26/31) Séro JLF VS=0.30 82.4%(28/34) 96.8% (30/31) Pylori Stat 94.1% (32/34) 90.3% (28/31) Cobas Core 100% (34/34) 93.6% (29/31) Tableau 7: Sérums de Dopulation II Par rapport à la Drésence de HP (culture et/ou anapath) Sensibilité Spécificité VS=100 45.9% (28161) 100% (31/31) HspA malE VS=50 59% (36/61) 100% (31/31) VS=20 80.7% (45/61) 73.8% (25/31) Par rapport VS=100 95.1% (58161) 96.8% (30/31) à Hp+: NOG VS=80 95.1% (58161) 93.6% (29/31) - 34 UD/UG N6flbA- VS=60 100% (61161) 90.3% (28/31) -27 GNU VS=100 85.3% (52161) 93.6% (29/31) soit: PBS VS=80 93.4% (57/61) 93.6% (29/31) 61 Hp+ VS=60 96.7% (59/61) 83.9% (26/31) 31 Hp- Séro JLF VS=0.30 78.7%(48/61) 96.8% (30/31) Pylori Stat 93.4% (57/61) 90.3% (28/31) Cobas Core 93. 3%(60/61)* 93.6% (29/31) *rum = VS Tableau 8: Sérums de population Il Par rapport à la présence de Hp (culture et/ou anapath) et l'absence d'Ulcère __ _ _ _ _ _Sensibilit Spécificité VS=100 48.2% (13/27) 100% (31/31) HspA malE VS=50 66.7% (18/27) 100% (31/31) VS=20 85.2% (23/27) 73.8% (25/31) Par rapport VS=100 96.3% (26/27) 96.8% (30/31) à HP+ et NOG VS=80 93.6% (26/27) 93.6% (29/31) GNU soit: N6flbA- VS=60 100% (27/27) 90.3% (28/31) 27 Hp+ /U- VS=100 88.9% (24/27) 93.6% (29/31) PBS VS=80 92.6% (25/27) 93.6% (29/31) VS=60 96.3% (26/27) 83.9% (26/31) Séro JLF VS=0.30 74.1%(20/27) 96.8% (30/31) Pylori Stat 92.6% (25/27) 90.3% (28/31) Cobas Core 96.3%(26/27) 93.6% (29/31) La place de la séroloaie La sérologie est placée à 2 niveaux: - Sérologie très sensible: afin de dépister le portage de la bactérie chez les sujets jeunes se plaignant de douleurs épigastriques. Si la sérologie s'avère négative, le sujet de subira pas d'endoscopie ni de biopsie, et une autre cause à ses douleurs sera recherchée. - Sérologie slécifique de risque: il s'agit là de mettre en évidence le risque de faire une infection grave à Helicobacter pylori c'est à dire un ulcère, un cancer ou un lymphome gastrique (lymphome du MALT). - soit en utilisant une molécule spécifique du risque en question - soit en utilisant un seuil spécifique de risque (valeur seuil plus élevée chez les sujets à risque que chez les sujets non à risque). Cette sérologie spécifique peut être utilisée pour faire un screening de la population générale, et ainsi de dépister les cancers et les lymphomes, liés à Helicobacter pylori qui ne seraient pas dépistés par fautes de symptômes. (Seuls les sujets se plaignant de douleurs vont consulter un gastro-entérologue). La réponse à la question de sensibilité est bonne. Tableau 9: Moyenne et écart type des U.A. dans les 3 arouDes de Datients Hp- (n=31) Hp+/U- {n=34)Z I Hsp A moyenne 10.61 775.72 770.32 cartype 8.81 131256 1666.52 N6flBA- (NOG) moyenne 17.16 895.50 944.85 écart ype26.69 818.57 915.27 o 0[ I. t 6 L ZZ C SZ _. _ _ 01. I I SL 0 O O0 AiUpv uol!wuwuud *14d: +aHlld;.T9T Z.O tLI 6M9 80 0.1LI L09 80 o Z.l 6SOZ (edAl-lBeo) RTLm _t 9ú-0O"Wo O 0 k TZú *UUSAOWu úr LO'O úSL NEI 60'0 08L SS I. O0Z GO'O LOL t19 (edAl-ieog) wo -9- - ú- aw_ 811m 0ú-0 Oú Ococ r UUOAOUU Z '0 9L0 L/. I 900 0 9tF 699 Z ZO'O 06ú t00 1 (adAi-lJBog) U -f w O Co 0ú- w o-' |uuoAow | '0 099 ZS0Z (aedAil-puo) L' m r' 22 oUUoAOw O _________ ________ ______ VBD 9S 1UQI 1D8d DON V dsH V.,SdDON V dsH v 6e _, ___'d DON V dsH 98AISPV uo!.wwe wuui lqd4V enD!psBeu e!DOlOS!HI ep uo!ouoI ue 'Fn sep eaAl peog le euueAo: O L neelqej Corrélation entre l'intensité de la gastrite et le taux en anticorps La gastrite se définit par 3 paramètres: - L'atrophie (représentée par le 1er chiffre après G); son intensité est notée de 1 à 4. - L'inflammation globale correspond à l'infiltration de Polynucléaires neutrophiles et de Monocytes; (représentée par le 2ème chiffre après le G). Son intensité est notée de 1 à 3. - L'activité correspond au nombre de Polynucléaires neutrophiles (représentée par le 3ème chiffre après le G); son intensité est notée de O io à 3. Certaines formes folliculaires sont notées F. Normalement, on peut observer la corrélation suivante: L'activité est très bien corrélée à Helicobacter Dy ori. L'inflammation est bien corrélée à Helicobacter oviori. On a donc calculé en fonction de ces 3 paramètres et de leur intensité, la i5 moyenne des titres observés dans chaque groupe. Interprétation des résultats: L'utilisation d'un test t permettra de mettre en évidence une différence significative ou non entre 2 moyennes observées avec un risque de 5%. L'hypothèse sur laquelle est fondée le test t est l'égalité des variances, mise en évidence par un test F (test de Fisher). Certaines variances n'étant pas égales, on ne pourra donc pas comparer toutes les moyennes entre elles. Les comparaisons des moyennes, lorsque cela est possible, ont pu mettre en évidence des différences significatives ou non dans les différents groupes. - Différence significative: Dans le groupe " Inflammation ", entre les moyennes des " 2 " et " 3 > de HspA et de NOG. - Différence non significative: Au niveau de l'activité, on n'a pas mis en évidence de différence significative entre les différents niveaux d'intensité: - HsDA: pas de différence significative entre les niveaux O et 2 O0et3 1 et2 1 et3 2 et3 - NOG: pas de différence significative entre les niveaux O et 1 O0et2 I1 et 2 1 et3 2 et3. On peut néanmoins constater une tendance à l'augmentation des titres en fonction de l'intensité de la gastrite: - au niveau de l'atrophie, les moyennes doublent lorsque l'on passe du niveau I à 2 et du niveau 2 à 3 pour HspA et pour l'extrait au NOG de la souche aflagellée. - au niveau de l'inflammation, les moyennes doublent lorsque l'on passe du niveau 1 à 2. Le nombre d'effectifs dans chaque groupe est relativement faible (toujours Tableau 11: Moyenne des U.A. en fonction de l'Histoloqie gastrique. sur Hp+IU+ Atrophie Inflammation Activité Hsp A NOG P.Stat Hsp A NOG P.Stat Hsp A NOG P.Stat Intensité _ _ 0 moyenne 675 0.32 (6cart-type) 2619 697 0. 09 1 moyenne 121 326 0.25 438 I6O, 1015 0.34 (6cart-type) 118 218 0.05 759 451 0.06 1298 1050 0.10 2 moyenne 304 58 846 0.33 21 827 0. 32 (écart-type) 507 784 0.09 1820 813 0.09 329 835 0.09 3 vmoyenne 20 1722 0.41 2133 2194 04 1316 0.36 (6cart-type)2856 1060 0.07 1989 1006 0.09 1502 1040 0.12 34 HD+/U+ Répartition Atrophie Inflammation Activité 0 0 0 9 I 7 10 13 2 17 19 6 3 9 5 6 4 1 0 0 Les sérums pouvant présenter des réactions croisées 2 types de sérums ont été utilisés. sérums (10 anti-LeRionella + et 10 anti-Chlamvdia +) pouvant présenter des réactions croisées avec HspA, car ces 3 bactéries possèdent des " Heat shock proteins " très voisines les unes des autres. 3 sérums antiCamnvlobacter Dositifs, afin de mettre en évidence des réactions croisées avec la souche flagellée N6, qui disparaîtraient avec la souche aflagellée N6flbA-. Il est très difficile de se procurer des sérums anti-Camylobacter positifs, c'est pourquoi il n'y a que 3 sérums. o0 HspA ne présente aucune réaction croisée, ni avec les 10 sérums anti- Leaionella positifs, ni avec les 10 sérums anti-Chlamvdia positifs. Certains de ces sérums ont des titres positifs en anticorps anti- Helicobacter pylori, aussi bien avec la souche flagellée qu'avec la souche aflagellée, mais le contexte clinique de ces sérums n'est pas connu. 4C Tableau 12: Sérums pouvant présenter des réactions croisées il- - Legionella + Tritre N6 VS100 NSfiBA-VS-O VSIOO A P2 P3 =256 0 0 4 0 47 0 B P4 P5 =64 >928 I 641 1 42 0 C P2 P3=128 212 I 87 I 68 0 D P2 P3 =64 70 0 19 0 15 0 E P1=2561P2=512>928 I 239 1 258 1 F P2 P3 P4 P5=12322 I 121 I 41 0 G P1=5121P6=1024 >928 1 193 1 121 1 H P4 P5=64 >928 I 479 1 18 0 I P2=1281P3=64 33 O 17 O 25 O J P2=256/P3=12816 O 8 O 32 O Chlamydia+ Tre N6 VS=100 N6flBA-VS=60 A VS100 A 256 6 0 8 0 25 0 B 256 7 0 9 0 34 0 c 64 636 1 290 1 39 0 D 256 367 1 225 1 19 0 E 32 >928 1 855 1 19 0 F 128 >928 1 783 1 27 0 G 32 115 1 55 0 15 0 H Twar 16 19 0 10 0 14 0 32 >928 1 592 1 >928 I1 JTwar 64 610 1 280 1 44 O !Campylobacter+ |_ N6 VS37 OCN EBA-VSI6 HspA VS 100 A 321 5 0 28 0 17 0 B 1 13 0 4 0 127 0 c 5 0 28 0 1 0 B_ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ __ _ _ _ _ _ _ 3 _ _ _ _ o0 C 5 068 I - CONCLUSION HspA malE Cette molécule ne peut toujours pas être utilisée seule car elle manque aussi de sensibilité, mais elle pourrait être intéressante si on l'associe à d'autres molécules. Elle présente toutefois un risque de réactions croisées, du fait de la conservation importante de ces " Heat shock proteins " entre les différentes espèces bactériennes N6flbA- Ce variant aflagellé paraît très intéressant, la sensibilité et la spécificité obtenues avec la population Il de sérums montre une performance très intéresssante. N6 Pour l'instant, la souche flagellée semble intéressante. Cependant, les réactions croisées relatives au flagelle n'ont été que peu étudiées en raison de la difficulté à s procurer des sérums bien documentés en sérologie CampyDvlobacter. Test JLF Un test sérologique basé sur l'extraction aqueuse (PBS) de plusieurs souches d'Helicobacter pvlori a été mis au point. Ce test semble très performant. Un extrait NOG du variant aflagellé a été utilisé pour tester la population I de sérums. 87 sérums, documentés du point de vue bactériologique et anatomopathologique uniquement ont été testés avec l'extrait bactérien aflagellé. Un sérum est positif si la culture est positive, ou si l'anapath, et le test rapide à l'urée sont positifs. Un sérum est négatif si les 3 tests (culture, anapath, et test rapide à l'urée) sont négatifs. On trouve une Sensibilité de 90.3% (28/31) pour une Spécificité de 71.4% (40156). Sur 16 sérums faux positifs avec un premier test, 9 sont positifs soit avec la sérologie JLF, soit avec le Western Blot JLF, soit avec les deux. Sur les 3 sérums faux négatifs avec un premier test, les 3 sont négatifs, soit avec la sérologie JLF, soit avec le Western Blot JLF, et un sérum est négatif avec les deux systèmes. Tableau 13: 87 sérums de la Population I testés avec l'extrait au N- Octyl Glucoside de la souche aflaaellée N0sérum jH2 VS 150lséroJLFI VS 35 WB JLF kits WB Bioptim Hp NOGIVS= 572 35 O 21 O p -+ O 2 0RE 573 11 0 46 1 3p + 1 229 574 11 0 3 0 lp D 0 0 575 0 o 63 3p 166 576 121 0 19 0 3p 0 + 0246 577 0 0 1 0 0 0o 3 578 6 0 4 0 0 *- 0 _24 0 579 2630 I 114 1 3 1 >464 1 580 721 1 125 1 4p I1 >464 1 581 0 0 2 0 0 [ 2 0 582 O O 2 0 lp 0 6 a 0 583 0 0 3 0 2p r 0 27 0 584 36 O 1 0 2p 0 12 O0 I 585 2114 1 125 1 4p + >464 1 587 19 O 2 O 2p -i 11 0 588 1388 1 58 1 3p 1 >464 1 589 323 1 3 0 4p - 0 >464 591 4 0 4 0 2p - 0 9 J 0 592 6 0 0 2p + 0 9 0 593 44 0 28 0 3p -_1 3 595 76 0 78 1 4p + 1 >464 1 597 0 0 0 0 _0 _ _ 0 _9 0 599 49 0 125 1 4p + I1 >464 1 600 0 0 3 0 0 0 3 0 601 6 0 1 0 0 _ 0 6 0, 602 5 0 0 0 0 - 0 0 0 605 11 0 0 0 0 - 0 0 608 5 0 5 0 0 - 0 9 0 609 308 1 8 0 0 - 0 13 _ 0 610 2370 1 111 1 4p + - 1 >464 1 612 477 1 34 0 4p + 0 422_ 613 46 0 0 0 0 0 3 0 616 741 I 73 1 4 + 1 >464 1 617 1725 1 125 1 4p +1 286 1 618 426 1 101 1 4p + + 1 >464 1 621 0 0 82 1 4p + I >464 1 622 15 0 6 0 2p 0 25 0 624 411 I 110 4p + 0 >464 626 46 O 11 '... I p 1 53 627 0 0 48 1p - 1 27 629 6 0 2 0 0- 0 2 0 631 31 0 21 0 2p -0 92 632 0 0 3 0 0 I 22 0 633 285 1 104 1 3p + + 11 0 >44 I 634 48 0 69 1 4p 1- >464 1 B3B 523 1 33 0 2P 1 71 1 Tableau 14: 87 sérums de la Population I testés avec l'extrait au N- Octyl Glucoside de la souche aflaqellée N6flBA- N sérum HspA VS 150 séroJLF VS 35 WB JLF interp WB Bioim Hp NOG VS60 638 922 I 36 I + + 1 >464 641 0 0 6 0 1p - 0 8 0 645 29 0 8 0 - p 0 29 0 L647 0 0 2 0 1p - - 0 4 0 649 5 0 5 0 o - 0 12 0 650 6 o 0 0 o 0 3 0 654 0 0 1 0 0 - 0 4 0 655 49 0 59 1 2p - 1 229 I1 656 0 0 3 o o0 - 0 8 0 657 363 I 105 1 |4p ++ 1 >464 I1 658 0 0 8 0 1 p - 0 8 0! 659 0 0 3 0 0 0 3 0 662 73 0 3 0 2 p 0 40o 0! 663 25 O 21 O 2 - O 103 _ 467 86 0 26 0 4p 0to - 468 32 0 68 1 4p 1 >464 469 265 1 118 I 3p + + 1 >464 1 470 734 1 77 ?".2p / + 0 >464 471 214 1 100 1 4p + 1 >464 I 472 4 0 5 0 0 -0 0 {0 473 1023 1 55 1 3p + >464 1 474 12 0 10 0 0 - 0 21 0 475 9 0 13 0 0 - + 0 210 476 2611 1 74 1 4p + + I >464 1 I 478 0 0 0 0 0 0 1 0 479 175 1 9 0 4p - 0 348 480 0 0 1 0 0 0 7 0! 481 800 1 92 1 3p + 1 425 1 482 0 0 I 0 0 - 0 8 0 483 0 0 39 1 3p + + 1 >464 1 484 0 O 3 0 0 - 0 20 O 0 485 0 0 I 0 0 0 -1 0 486 0 0 2 0 0 -- 6 0 725 O O 7 O O - 0198 730 190 1 45 ' 1p - 0 372 732 O O 10 O 1p 0 145 735 0 0 30 0 2p __ 1 143 1 736 0 0 0 0 0 - 0 0 o 737 25 0 102 1 4p ± 1 155 1 I 738 2233 I 125 1 4 + 1 >484 1 739 79 O 33 0 lp - 0 2746m TECHNIQUE Plaques coatées à: 2 pg/ml en Antigène Hsp A 3 pg/ml en extrait NOG de NflbA et N6 Gamme: 5 points de gamme témoin négatif témoin positif utilisé à 4 dilutions Sérums de patients: dilution au 1/100 volume déposé 100pI Incubation: 1 heure à 37 C - 3 lavages Coniuqué monoclonal (IgG toxo) utilisé au 1/32000 pour HspA 1/64000 pour N6flbA- 1/56000 pour N6 volume déposé 100 pl - Incubation du conjugué 1 heure a 37 C - 4 lavages - Révélation de la réaction enzymatique par OPD + substrat minutes à l'obscurité - Arrêt de la réaction enzymatique par H2SO4 - Lecture des D.O. à 492 nm /620 nm Conversion desD.O en Unités Arbitraires (UA). Tableau 15: Sérums documentés de la population I 42 sérums Hp+ -. ANATOMOPATHOLOGIE BACTERIOLOGI N séruSexe DDN Endos. Giemsa Histo Gram Urée CulIt H SéroJLF VS=0.3 NOG VS=60 952253 =_ 01/10/60 G H G 1 >464 1 236174 I 02/05/60 G 0 G I 1 1 1 10. 42 1 216 I 974107 2 15/02/32 G (minl) 0 G I 1 I 1.39 1I 272 1 34812 1 10/12/52 G. B 0 G I 1 1 0.82 I 452 1 229712 2 11/08/53 G 1 1 1 0.11 _- 148 1 46511 1 17/01/70 G 0 G 1* 0 1 1 1.26 1 213 1 180334 2 14/01/59 G 0 U 1 1 1 0.83 1 >464 1 189005 2 23/10/25 U 0 U 1 1 1 0.87 1 >464 1 49860 1 06/07/64 U 0 U 1 1 1 2 I >464 1 168332 1 0611/60 G 1 G 1 1 0.23. 394 1 195282 1 11/06/46 G I G 1 0 1 1 0.91 1 180 1 176859 1 24/04/50 G G 1 1 1 1 1.39 1 >464 1 * 987898 1 13/05/58 G G 1 1 1 1 0.69 I 297 1 954498 2 01/12/45 G G 1 1 1 1 1.12 I >464 1 195175 2 01/09/08 G I G 0 0 1 1 2.7 1I >464 1 156007 2 27/09/56 G. B 1 G 1 1 1 1 1.68 1 437 1 18318 1 19112/63 G B 1 0.36 I1 45 215979 2 04/05/19 H. G. B 1 GI 1 1 1 1.2 1 >464 1 25322 2 12/02/16 G 1 G 1 1 1 1 2.5 1 >464 1 26555 1 09/11/65 U. H 1 1 1 1 2.4 1 >464 1 193295 1 24/01/16 U bu. ant.I G 1 1 1 2.5 1 >464 1 237220 1 01/06/65 U bulb. 1 G 1 O 1 I 0.14 328 1 Légende G = Gastrite H = Hemrnie iatale U = Ulcère (UD = Ulcère duodénal) (UG = Ulcère gastrique) D = Duodénite B/Bulb. = Bulbite 0 = Oesophagite Tableau 15 bis: Sérums documentés de la Dopulation I 42 sérums Hp+ NATOMOPATHOLOGIE BACTERIOLOGI Nséru Sexe DDN Endos. Gemsa Histo Gram Urée Cul Hp SroJLF VS=0.3 NOG VS=60 237191 1 06/05/42 Ubulb. 1 G 0 1 I 1.16 1 >464 1 238683 I 13/09/30 G U bulb. 1 G 1 1 1 1 1.73 1 >464 1 79163 1 06/07/72 G 1 G 1 1 1 1 0.46 1 312 1 87951 1 15/04141 G 1 G 1 I I I 0.7 1 >464 1 93773 1 12/05/43 G 1 G 0 0 I I 1.05 1I >464 1 97478 1 04/05/65 G _ I G I 1 0.42 1 >464 1 96436 1 0611/74 G 1 G I 1 1 1 I 0.84 1 183 1 66502 1 02/10/45 G 1 G 1 I I 1 0.78 1I >464 1 42230 2 12/06/58 G 1 G I 1 I I 0.81 1 >464 1 51105 2 12/0845 G, UD I G 1 1 I I 1.1 I >464 1 "J 58631 1 21/08/43 G i G 1 1 1 1 0.8 1 214 1 79105 2 28/01/61 G U 1 1 1 1.25 1 >464 1 99121 I 28/10/59 G G 1 1 I 1 0.9 449 1 216779 i 08/04/47 G. U 1 G / U 1 1 1 1 0.25 l 283 1 996070 1 29/01/47 G I G préatroph. I 1 I I 0.31 1 121 1 72420 I 15/05/55 G. UD I G UD 1 1 I 1.2 I >464 1 205110 1 10/06/61 UD I U 1 1 1 1 0.3 386 1 62720 1 18/10/56 UG 1 U 1 1 1 1 0.68 I >464 1 67767 2 01/10/44 UGD 1U 1 I I I 1.2 1 >464 1 205855 1 09/07/38 G,U I UD 1 1 1 1 0.25. 71 1 Léaende G = Gastrite H = Hernie iatale U = Ulcère (UD = Ulcère duodénal) (UG = Ulcère gastrique) OD = Duodénite B/Bulb. Bulbite O * 0esophagite Tableau 16: Sérums documentés de la population I sérums Hp- sérun Sexe DDN Endos. GiemsaI Histo Gram Urée Cult. Hp SéroJLF VS=60 79476 1 23/06/31 G 0 Adénome ulcéré 0 0 0 0 0.02 0 6 6 75439 2 14/05/32 G 0 G 0 0 0.Ql 1.19 >464 i' 97286 2 03/01/37 G 0 G 0 0 00.45 66 68053 1 02/05/48 G 0 G 0 0 0:...: 1. 02 ' - 304 71300 2 14/10/63 G 0 G 0 0, 0.89: >464 944990 1 01/10/54 G 0 G 0 0 0 0 0.04 0 4 967659 2 28/01/46 G 0 G 0 0 0 0 0.01 0 5 0 985409 2 26/07/20 U min 0 G 0 0 0 [ 0.21 0 69 985551 2 18108109 G, U, B 0 G 0 0 0 0 0.05 0 14 992025 1 22/03/32 G 0 G 0 0 0 S 0.07 0 65 998792 2 11/04/44 G 0 G 1* 0 0 0 0.08 0 26 0 -16479 1 1307193 RAS 0 G O 0 0 0 0.02 0 0 0 77183 2 24/08/14 0 G 0 0 0 0 0.03 0 9 0 77566 1 25/01/32 G O G O O O O 0.01 O 22 O oo 991337 1 24/10/60 G 0 G + Hyperplasie 0 0 0 0 0.07 0 26 0 78471 2 15/12/15 G 0 G + métapl. intest.0 0.07 0 106 83356 1 10/07/21 U cicat. 0 G min 0 0 0 ' 0.37 >464 936515 2 05/06/81 RAS 0 G min 0 0 0 0 0.02 0 0 0 991386 2 22/01/71 G 0 G min 1* 0 0 0.17 0 3 0 6130 1 05/05172 G 0 G min 0 0 0 0 0.06 0 0 0 81415 1 23/08/31 G 0 G min O O O 0 0.03 O 5 O 82175 1 13/01/49 U cicat. 0 G min 0 0.03 0 34 0 78652 1 01/08/18 G. U 0 Hypotrophie gast. 0 0 0 0 0.04 0 10 0 89819 2 16/02/42 Normale 0 Normale 0 0 0. 0.88 >464 '. 942184 2 09/02/67 G 0 Normale 0 0 0 0 0.1 0 52 0 981000 2 10/10/47 G 0 Normale 0 0.06 0 19 1613 I 11/01/26 G, B, D 0 Normale 0 0 0 0.68 195 _" Tableau 16bis: Sérums documentés de la population I sérums Hp- _.. - ANATOMOPATHOLOGIE BACTERIOLOGIE T- olséruSexe DDN Endos. Giemsa Histo Gram Urée Cult Hp SéroJLF VS=0.3 NOG VS=60 984979 2 23/04/29 UG O Normale O O 0 O O 3 58767 2 19/12193 RAS 0 Normale 0 0 0 0 0.08 0 0 0 79861 2 26/07/63 G.O 0 Normale 0 0 0 0 0.06 0 16 0 85290 2 26/04/63 RAS O Normale O O O 0 0.01 O 2 O 91423 1 13/02/39 RAS O Normale O O O O 0.03 O 0 93252 2 26/08/85 RAS 0 Normale 0 0 0 0 0.09 0 10 0 94430 1 06/04/62 RAS 0 Normale 0 0 0. 0.13 0 >464 990363 2 03/06/36 G, B 0 Normale +l- 0 0 0 0.18 0 42 87467 1 07/10150 UGD 0 U 0.02 0 60 239085 1 05/02/45 Bulb. UG 0 U0 0 0 0.03 0 73 3473 1 06/02/46 G, U 1 G 0 0 0 1.01 _>464[_ 78605 I 14/05/83 U bulb. 1 G 0 0 0 0.56 >464 83721 1 21/01195 G 1 G 0 0 0 0.61 245 90169 1. 18/04/38 G,B 1 G 0 0 0_ 1.15 >464 91081 2 08/01/45 G, D 1 G 0 0 0 1.8 >464 43127 1 24/02/41 G 1 G 0 0 0 1.15 >464 928133 2 25/03/71 G 1I G 0 0 00 0 0.03 0 3 9128 1 08/03/77 G 1 G 0 0 0 0 0.01 0 0 0 974895 1 11/05/38 B 1 G 0 0 0 0 0.08 0 2 0 26697 1 23/08144 H. O,U 1I G 0 0.21 0 8 0 78414 1 06/02/21 G. B,U 1 G O O O 0 0.02 O 5 O 78451 1 2611/1145 G 1 G 0 0.02 0 19 0 79500 1 01/03/50 Uoesoph. I G 0 0 0 0 0.01 0 3 0 79880 1 02/01/74 UG, B 1 G 0 0 0 0.06 0 5 0 416 1 18/02/71 O G 1 Gmin 0 0 0 0 0.03 0 1 0 74548 1 25/02/45 UGD 1 U 0 0 0 O- 0.38.371 99538 1 02/04/58 U bulb. 1 U 0 0 0! > 1.08 - l >464 |1! 98953 2 19112/16 U 1 U 0 0 0 [ 0.62.. >464 Tableau 17: Population documentée de la population I sérums Hp- 42 sérums Hp+ J SENSIBILITE SPECIFICITE Séro JLF 85.7% (36142) 70.9% Q39/55) NOG 60 97.6% (41/42) 61.8% (3455) PROTOCOLES D'EXTRACTION A PARTIR DE LA SOUCHE AFFLAGELLEE N6flbA-. Quantité fournie 800 mg de bactéries recueillies avec du PBS, centrifugées 3 extractions testées. EXTRACTIONS DE LA SOUCHE AFLAGELLEE Extraction Glycine Extraction N-Octyl Extraction PBS Glucoside Récupération PBS PBS 0.01 M PBS pH 7.4 Lavage 2 fois dans du PBS 2 fois dans du PBS 8.000 rpm /12 min 8.000 rpm 1 12 min Extraction Tampon Glycine Acide PBS contenant: Vortexer pendant 1 0.2M pH 2.2 1% N-Octyl Glucoside min. min. Tp ambiante pH 7.2 agitation douce (Sigma Chemical Co.) mg (poids humide) 20 min. Tp ambiante pour 2.5 ml Centrifugation 11.000 g 23.500 g 5.000 g min. 20 min. 10 min. Neutralisation NaOH 1M Dialyse PBS pH 7.2 PBS pH 7.2 PBS pH 7.2 24 H à +4 C 24 H à +4 C 24 H à +4 C cut-off 10.000 cut-off 10.000 cut-off 10.000 Conservation détermination de la élimination des détermination de la concentration particules insolubles concentration Conservation à -20 C conservation à -20 C Conservation a - C SOS PAGE DES DIFFERENTS EXTRAITS DE LA SOUCHE AFLAGELLEE N6 FLBA- N Type d'échantillon Concentration Volume échantillon / Volume déposé puits ug/ml Volume à Tampon I Etalon PM 5 + 5 / 190 10 2 Extrait Glycine 202.9 60/60 60 4 Extrait N-Octyl Glucoside 874 51 / 39 60 6 Extrait PBS 1 539.2 60/20 60 8 Extrait PBS 2 77.9 60 / 20 60 Etalon PM 5 + 5 / 190 10 1 Culot Extrait Glycine 2778.7 20/20 20 13 Culot Extrait Glucoside 972.9 40/40 60 Extrait Glycine sédimenté 309.3 60 / 20 60 17 HspA Mal E 3000 20 / 20 20 -18 h20 Kaléidoscope 20 20 Références: 1. Andrews, G.P., Maurelli, A.T.: mxiA of Shigella flexneri 2a, which facilitates export of invasion plasmid antigens, encodes a homolog of the low-calcium-response protein. LcrD of Yersinia pestis. Infect. Immun. 60: 3287-3295 (1992). 2. Galan, J.E., Ginocchio, C. Costeas, P.: Molecular and functional io characterization of the Salmonella invasion gene invA: homology of InvA to members of a new protein family. J. Bacteriol. 174, 4338-4349 (1992. 3. Leying, H., Suerbaum, S. Geis, G., Haas, R.: Cloning and genetic characterization of a Helicobacter pylori flagellin gene. Mol. Microbiol. 6. 2563-2874 (1993). 5. O'Toole, P.W., Kostrzynska, M., Trust, T.J.: Non-mobile mutants of Helicobacter pylori and Helicobacter mustelae defective in flagellar hook production. Mol. Microbiol. 14, 691-703 (1994). 6. Plano, G.V., Barve, S.S., Straley, S.C.: LcrD, a membrane-bound regulator of the Yersinia pestis low-calcium response. J. Bacteriol. 173. 7293-7303 (1991). 7. Ramakrishnaan, G., Zhao, J-L., Newton, A.: The cell cycle-regulated gene flbF of Caulobacter crescentus is homologous to a virulence locus of Yersinia pestis. J. Bacteriol. 173, 7283-7292 (1991). 8. Suerbaum, S., Josenhans, C., Labigne, A.: Cloning and genetic characterization of the Helicobacter pylori and Helicobacter mustelae flab flagellin genes and construction of H. pylori flaA- and flaB- negative mutants by electroporation-mediated allelic exchange, J. Bacteriol. 175, 3278-3288 (1993). REVENDICATIONS 1. Séquence nucléotidique régulant la biosynthèse des protéines des flagelles d'Helicobacter pylori, capable d'hybrider dans des conditions de forte stringence avec une sonde correspondant à un fragment de nucléotides de H. pyIori amplifié à l'aide de deux nucléotides répondant aux séquences suivantes: OLFIbA-1: ATGCCTCGAGGTCGAAAAGCAAGATG OLFIbA-2: GAAATCTTCATACTGGCAGCTCCAGTC, ou capable d'hybrider dans des conditions de forte stringence avec ces oligonucléotides. 2. Séquence nucléotidique du gène fibA régulant la biosynthèse des protéines des flagelles d'Helicobacter vpylori, telle qu'obtenue par les I5 étapes de: - criblage d'une banque génomique contenant l'ADN chromosomique d'une souche H. pylori avec une sonde correspondant à un fragment de nucléotides de H. Dpylori amplifié à l'aide de deux nucléotides répondant aux séquences suivantes: OLFIbA-1 ATGCCTCGAGGTCGAAAAGCAAGATG OLFIbA-2: QAAATCTTCATACTGGCAGCTCCQTC ou capable d'hybrider dans des conditions de forte stringence avec ces oligonucléotides. - récupération des séquences d'ADN hybridant avec ladite sonde, - sous-clonage des séquences d'ADN obtenus dans un vecteur approprié de type plasmide et sélection de ceux des vecteurs modifiés hybridant dans des conditions de forte stringence avec la sonde correspondant au fragment d'ADN de H. pyiori amplifié à l'aide des oligonucléotides OLFIbA-1 et OLFIbA-2, - séquençage des fragments d'ADN contenus dans les vecteurs plasmidiques hybridant avec la susdite sonde et détermination de la phase ouverte de lecture contenue dans ces fragments. 3. Séquence nucléotidique selon la revendication 1 ou la revendication 2, caractérisée en ce qu'elle répond à l'enchaînement de nucléotides représenté à la figure 2. 4. Séquence nucléotidique selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisée en ce que qu'elle code pour une protéine répondant à la séquence d'acides aminés représentée à la figure 2 ou pour une séquence d'acides aminés ayant les mêmes propriétés régulatrices vis à vis de la biosynthèse des protéines des flagelles de H. pylori, que la susdite séquence. 5. Séquence nucléotidique selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, modifiée par délétion, substitution ou insertion de bases ou d'un fragment d'une séquence de nucléotides de façon telle que le gène fibA n'est plus exprimé dans un hôte cellulaire ou de façon telle que l'expression du gène flbA dans un hôte cellulaire ne permet pas la biosynthèse des flagelles de H. pylori et le cas échéant ne permet pas la synthèse de la protéine du crochet de H. pylori. 6. Séquence nucléotidique correspondant à un fragment du gène fibA selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisée en ce qu'il s'agit d'un fragment d'au moins 6 nucléotides, de préférence d'au moins 100 nucléotides issu du gène fibA, de préférence délimité par des sites de restriction, présents dans la séquence du gène fibA. 7. Acide nucléique recombinant, caractérisé en ce qu'il comprend une séquence nucléotidique selon l'une quelconque des revendications 1 à 6 modifiée par insertion d'une cassette contenant un marqueur, par exemple un gène de résistance à un antibiotique, ou un gène de résistance à un métal lourd. 8. Acide nucléique recombinant selon la revendication 7, caractérisé en ce que la séquence nucléotidique selon l'une quelconque des revendications 1 à 6 est modifiée par insertion d'une cassette de résistance à la kanamycine. s 9. Oligonucléotides caractérisés en ce qu'ils sont spécifiques d'une séquence selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, et en ce qu'ils répondent à l'une des séquences suivantes: OLFIbA-1: ATGCCTCGAGGTCGAAAAGCAAGATG OLFIbA-2: GAAATCTTCATACTGGCAGCTCCAGTC OLFIbA-7: CGGGATCCGTGGTTACTAATGGTTCTAC OLFIbA-8: CGGGATCCTCATGGCCTCTTCAGAGACC 10. Séquence d'acides aminés de la protéine FIbA de H. pvlori, caractérisée en ce qu'elle est codée par une séquence nucléotidique selon l'une quelconque des revendications 1 ou 2. 11. Séquence d'acides aminés caractérisée en ce qu'il s'agit de la protéine FIbA de H. Pylori, répondant à l'enchaînement présenté à la figure 2, ou en ce qu'il s'agit d'un fragment de cette protéine dès lors qu'il est reconnu par des anticorps dirigés contre la protéine FIbA. 12. Souche bactérienne d'Helicobacter Pvylori, caractérisée en ce qu'elle a un phénotype aflagellé résultant de la mutation par substitution, addition et/ou de la délétion de bases ou d'un fragment nucléotidique, la séquence nucléotidique selon l'une quelconque des revendications 1 à 3 du gène flbA participant à la régulation de la biosynthèse des protéines des flagelles de H. Piylori. 13. Souche bactérienne selon la revendication 12, caractérisée en ce qu'elle est en outre dépourvue de la protéine du crochet de H. pyvlori. 14. Souche bactérienne recombinante selon la revendication 12 ou la revendication 13, caractérisée en ce qu'elle est obtenue à partir de la souche N6 déposée à la NCIMB le 26 Juin 1992 sous le numéro NCIMB 40512. 15. Souche bactérienne recombinante selon l'une quelconque des revendications 12 ou 14, caractérisée en ce qu'il s'agit de la souche N6flbA- déposée à la NCIMB le 30 Juin 1995 sous le numéro NCIMB 40747. 16. Souche bactérienne selon l'une quelconque des revendications 12 à 15, caractérisée en ce qu'elle est en outre mutée de façon à produire une uréase atténuée, voire à ne plus produire d'uréase, la mutation consistant par exemple en une mutation de la séquence nucléotidique d'un ou plusieurs gènes choisis parmi les gènes ureA, ureB, ureC, ureD, ureE, 0 ur ureureG, ureH ou urel. 17. Extrait bactérien caractérisé en ce que qu'il s'agit d'un extrait de souches bactériennes selon l'une quelconque des revendications 12 à 15. 18. Extrait bactérien selon la revendication 17, caractérisé en ce qu'il est obtenu après une extraction au N-OctylGlucoside. 19. Extrait bactérien selon la revendication 17, caractérisé en ce qu'il est obtenu après une extraction au PBS ou à la glycine. 20. Composition pour la détection in vitro d'une infection par H. _ylori dans un échantillon de fluide biologique chez un patient, notamment dans un échantillon de sérum, comprenant à titre de principe actif, une souche bactérienne selon l'une quelconque des revendications 12 à 15 ou un extrait bactérien selon l'une quelconque des revendications 17 à 19. 21. Procédé de détection in vitro d'une infection par H. pylori dans un échantillon de fluide biologique chez un patient, notamment dans un échantillon de sérum, comprenant les étapes de: - mise en contact de l'échantillon testé avec une souche bactérienne selon l'une quelconque des revendications 12 à 15, ou avec un extrait bactérien selon l'une quelconque des revendications 17 à 19, - détection d'une réaction immunologique entre ladite souche bactérienne et des anticorps dirigés contre H. pyvlori, présents dans l'échantillon testé. 22. Composition immunogène pour l'obtention d'anticorps contre H. vlori, caractérisée en ce qu'elle comprend à titre de principe actif, une souche bactérienne selon l'une quelconque des revendications 12 à 16 ou un extrait bactérien selon l'une quelconque des revendications 17 à 19. 23. Composition immunogène, pour l'obtention d'anticorps contre H. plori, caractérisée en ce qu'elle comprend une séquence d'acides aminés selon l'une quelconque des revendications 10 ou 11. 24. Composition vaccinante pour l'obtention d'anticorps protecteurs contre une infection par H. pylori, caractérisée en ce qu'elle comprend à io titre de principe actif, une souche bactérienne selon l'une quelconque des revendications 12 à 16 ou un extrait bactérien selon l'une quelconque des revendications 17 à 19. 25. Composition vaccinante pour l'obtention d'anticorps contre une infection par H. Dylori, caractérisée en ce qu'elle comprend à titre de principe actif, des antigènes de type uréase ou participant à l'activité uréase de H. yvlori, en particulier des antigènes codés par les gènes ureA, ureB, ureC ou ureD et une protéine répondant à une séquence d'acides aminés selon l'une quelconque des revendications 10 ou 11. 26. Anticorps monoclonaux ou sérum polyclonal dirigés contre une séquence d'acides aminés selon l'une quelconque des revendications 10 ou 11. 27. Anticorps monoclonaux ou sérum polyclonal dirigé contre une souche de H. pvylori selon l'une quelconque des revendications 12 à 15. 28. Composition pour la détection in vitro d'une infection par H. ovpori dans un échantillon biologique, comprenant à titre de principe actif des anticorps monoclonaux ou un sérum polyclonal obtenus contre une souche de H. vpylori de phénotype aflagellé selon l'une quelconque des revendications 12 à 15. 29. Utilisation des séquences nucléotidiques selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, pour la préparation de compositions immunogènes pour l'obtention d'anticorps contre H. Dpylori. 30. Coffret de diagnostic d'anticorps de patients infectés par H. pRiori comprenant un extrait bactérien selon l'une quelconque des revendications 15 à 19, et des réactifs nécessaires pour mettre en évidence un réaction de type antigène/anticorps.