FR 2728795 A1 19960705 FR 9416017 A 19941230 Vaccin vivant recombinant aviaire, utilisant comme vecteur un virus herpès aviaire. La présente invention a trait à des vaccins à usage aviaire à base de virus herpès aviaires recombinants vivants, à savoir notamment de virus de la maladie de Marek (MDV), et plus particulièrement de virus HVT (Herpes Virus of Turkey), dans lesquels a été insérée, par recombinaison génétique, au moins une séquence nucléotidique codant pour, et exprimant, un polypeptide antigénique d'un agent pathogène aviaire, dans des conditions assurant une immunisation conduisant à une protection efficace de l'animal vacciné contre ledit agent pathogène. Elle s'applique d'autre part au virus de la laryngotrachéite infectieuse (ILTV) et à l'herpès du canard. On a déjà proposé un certain nombre de vecteurs viraux aviaires recombinants dans l'intention de vacciner les oiseaux contre des agents pathogènes aviaires, notamment des virus pathogènes, parmi lesquels figurent les virus de la maladie de Marek (MDV), de la maladie de Newcastle (NDV), de la laryngotrachéite infectieuse (ILTV), de la maladie de Gumboro (Infectious Bursal Disease, IBDV), de la bronchite infectieuse (IBV) et de l'anémie aviaire (CAV). Les vecteurs viraux utilisés comprennent des avipox, en particulier le Fowlpox, (EP-A-0 517 292; H.-G. Heine et ai., Arch. Virol. 1993. 131. 277-292; D.B. Boyle et a/., Veterinary Microbiology 1994. 41. 173-181; C. D. Bayliss et al., Arch. Virol. 1991. 120. 193-205), les virus de Marek, notamment les sérotypes 2 et 3 (HVT) (WO-A-87 04463; WO-A-89 01040; WO-A93 25665; EP-A-O 513 921; J. McMillen, Poultry Condemnation Meeting, October 1994, 359-363; P.J.A. Sondermeijer et a/., Vaccine 1993. 11. 349-357; R.W. Morgan et a/., Avian Diseases 1992. 36. 858-870, et 1993. 37. 1032-1040) ou encore les virus ILTV et l'adénovirus aviaire. Lorsqu'ils sont utilisés pour la vaccination, ces virus recombinants induisent des protections de niveaux variables, généralement faibles ou partielles, même si, dans de rares cas particuliers, une protection importante peut être démontrée. Parmi les protections les plus difficiles à assurer par des vaccins aviaires vivants recombinants, se trouve celle contre le virus de la maladie de Gumboro, ou virus IBDV. En effet, bien qu'il existe des vaccins vivants atténués ou inactivés classiques efficaces contre cette maladie, aucun vaccin vivant recombinant n'a encore fait preuve d'une efficacité convenable. Le génome du virus de la maladie de Gumboro est constitué d'un ARN double brin. Le segment le plus grand (segment A) code pour une polyprotéine de 115 kDa secondairement clivée en trois protéines VP2 (41 kDa), VP4 (28 kDa), VP3 (32 kDa). VP4 serait une protéase intervenant dans la maturation de la polyprotéine 115 kDa. La position du site de clivage entre VP2 et VP4 n'est déterminée qu'approximativement M. Jagadish, J. Virol. 1988. 62. 1084-1087). La protéine VP2 est un immunogène induisant des anticorps neutralisants et une protection contre la maladie de Gumboro. On a déjà proposé d'insérer des gènes codant pour des protéines immunogènes d'IBDV dans divers vecteurs vivants: EP-A-0 517 292 (insertion de séquences codant pour VP2 ou la polyprotéine dans un avipox); C.D. Bayliss 1991, H.-G. Heine 1993 et D.B. Boyle 1994 supra (VP2 dans le Fowlpox). Les virus de la maladie de Marek ont également été proposés dans WO-A-90 02802 et WO-A-90 02803 (sites d'insertion divers tels que gC, TK, RR1, RR2), dans les demandes de brevet français n 90 03105 (RR2) et 90 11146 (US3), ainsi que, notamment, dans les demandes de brevet WO-A-87 04463 et WO-A-89 01040 (BamHI #16 et #19) et WO-A-93 25655 (US2). R.J. Isfort et a/. (Virology 1994. 203. 125-133) ont déterminé un certain nombre de sites d'intégration de rétrovirus dans le génome de HVT, sites qui sont situés dans les fragments de restriction BamH1 F, A et I. Divers promoteurs, y compris ceux généralement disponibles dans le commerce, ont été utilisés dans les différentes constructions de l'art antérieur, parmi lesquels les promoteurs PRV gX, HCMV IE (CMV immediate early humain), herpès simplex alpha-4, FPV P.E/L (promoteur Fowlpox) (H. Heine et ai., Arch. Virol. 1993. 131. 277-292), P7.5 (C. Bayliss eta/., Arch. Virol. 1991. 120. 193-205) et Pl1 du virus de la vaccine (D. Boyle et a/i. Vet. Microb. 1994. 41. 173-181), provenant de la séquence LTR du virus RSV (Rous Sarcoma Virus), SV40 précoce, ainsi que des promoteurs MDV ou HVT, tels que les promoteurs des gènes gB, gC, TK, RR2, etc., sans qu'ait pu apparaître une règle, notamment dans le cas des constructions dans HVT. Les séquences de certains promoteurs peuvent inhiber la réplication des vecteurs recombinants HVT ou MDV (D.R. Marshall et al., J. Vir. Meth. 1992. 40. -204 et Virology 1993. 195. 638-648). Parmi les promoteurs cités, un certain nombre, comme par exemple SV40, LTR RSV et PRV gX, ont montré une certaine efficacité, de même que certains promoteurs propres de certains gènes des virus Marek, notamment de sérotype 3. L'invention a permis de mettre au point un vaccin vivant recombinant à base d'un vecteur HVT dans lequel est insérée au moins une séquence codant pour un immunogène aviaire, en particulier la protéine VP2 d'IBDV. Un tel vaccin incorporant une séquence codant pour VP2 assure une protection satisfaisante des animaux contre la maladie de Gumboro, à savoir protection vis-à-vis de la mortalité et des lésions de la bourse de Fabricius. La présente invention a pour objet un vaccin vivant recombinant aviaire comprenant, comme vecteur, un virus herpès aviaire comprenant au moins une séquence nucléotidique codant pour, et exprimant, un polypeptide antigénique d'un agent pathogène aviaire, insérée dans la région comprise entre l'ATG de l'ORF UL55 et la jonction de U avec la région répétée adjacente, sous le contrôle du promoteur CMV immediate early. Cette région d'insertion correspond chez HVT au fragment BamHl I et chez MDV au fragment BamHI K+H, tels que présentés par A.E. Buckmaster dans J. Gen. Virol. 1988. 69. 2033-2042. Les virus herpès aviaires selon l'invention sont de préférence les virus de la maladie de Marek, notamment HVT, le virus de la laryngotrachéite infectieuse ILTV et l'herpès du canard. Les virus de la maladie de Marek et plus particulièrement le virus HVT sont préférés. Le fragment de restriction BamHI I de HVT comprend plusieurs ORF et trois régions intergéniques et, en tant que région d'insertion selon I'invention, comprend plusieurs zones préférés d'insertion, à savoir les trois régions intergéniques 1, 2 et 3 qui sont les régions préférées, et l'ORF UL55. Par insertion dans la région d'insertion, on entend notamment insertion sans délétion ou avec délétion de quelques bases pour les zones intergéniques et avec délétion totale ou partielle ou sans délétion pour les ORF. Par promoteur CMV immediate early (IE), on entend le fragment donné dans les exemples ainsi que ses sous-fragments conservant la même activité promotrice. Le promoteur CMV IE peut être le promoteur humain (HCMV IE) ou le promoteur murin (MCMV IE), ou encore un promoteur CMV IE d'une autre origine, par exemple du rat ou du cochon d'lnde. La séquence nucléotidique insérée dans le vecteur Marek pour être exprimée peut être toute séquence codant pour un polypeptide antigénique, d'un agent pathogène aviaire, capable, une fois exprimé dans les conditions favorables procurées par l'invention, d'assurer une immunisation conduisant à une protection efficace de l'animal vacciné contre l'agent pathogène. On pourra donc insérer, dans les conditions de l'invention, les séquences nucléotidiques codant pour les antigènes d'intérêt pour une maladie donnée. Les vaccins selon l'invention pourront être utilisés pour la vaccination in ovo, des poussins d'1 jour ou plus et des adultes. L'invention peut notamment être utilisée pour l'insertion d'une séquence nucléotidique codant convenablement pour le polypeptide VP2 du virus IBDV. On obtient ainsi un vaccin vivant recombinant assurant, en plus d'une protection contre la maladie de Marek, une protection satisfaisante contre la maladie de Gumboro. Si on le souhaite, on peut aussi insérer une séquence codant pour un autre antigène d'IBDV, tel que VP3 ou encore la polyprotéine VP2 + VP4 +VP3, ces autres possibilités n'étant pas préférées. Le vaccin recombinant contre la maladie de Gumboro se présentera de préférence sous de 10 à 104 PFU/dose. D'autres cas préférés de l'invention sont l'insertion de séquences nucléotidiques codant pour des antigènes du virus de la maladie de Marek, en particulier gènes gB, gC, gD, et gH +gL (WO-A-90 02803), du virus de la maladie de Newcastle, en particulier gènes F et HN, du virus de la bronchite infectieuse (IBV), en particulier gènes S et M (M. Binns et ai., J. Gen. Virol. 1985. 66. 719-726; M. Boursnell et al., Virus Research 1984. 1. 303-313), du virus de l'anémie aviaire (CAV), en particulier VP1 (52 kDa) + VP2 (24 kDa) (N.H.M. Noteborn et ai., J. Virol. 1991. 65. 3131-3139) et du virus de la laryngotrachéite infectieuse (ILTV), en particulier gB (WO- A-90 02802), gC, gD et gH + gL. Les doses seront de préférence les mêmes que celles pour le vaccin de Gumboro. Selon un développement avantageux de l'invention, on associe au promoteur CMV IE un autre promoteur selon une disposition tête-bêche, ce qui permet d'insérer, dans la zone d'insertion, deux séquences nucléotidiques, I'une sous la dépendance du promoteur CMV IE, I'autre sous celle du promoteur associé. Cette construction est remarquable par le fait que la présence du promoteur CMV IE, et notamment de sa partie activatrice (enhancer), active la transcription induite par le promoteur associé. Un promoteur associé préféré est le promoteur Marek RNA1.8, dont l'activité de transcription s'est révélée multipliée environ par 4, 4 dans ces conditions. Un cas intéressant de l'invention est un vaccin comprenant une séquence nucléotidique codant pour VP2 d'IBDV sous le contrôle de CMV IE et une séquence nucléotidique codant pour un antigène d'une autre maladie aviaire, notamment celles citées plus haut, sous le contrôle de l'autre promoteur. On peut aussi monter tête-bêche deux promoteurs CMV IE d'origines différentes. Le promoteur RNA1.8 pourra aussi être utilisé seul à la place du promoteur CMV IE, notamment pour des vaccins contre la maladie de Marek, la maladie de Newcastle, la laryngotrachéite infectieuse, la bronchite infectieuse et l'anémie aviaire. La présente invention a aussi pour objet une formule de vaccin multivalent, comprenant, en mélange ou à mélanger, au moins deux vaccins vivants recombinants aviaires tels que définis plus haut, ces vaccins comprenant des séquences insérées différentes, notamment de pathogènes différents. La présente invention a aussi pour objet une méthode de vaccination aviaire comprenant l'administration d'un vaccin vivant recombinant ou d'une formule de vaccin multivalent tel que défini plus haut. Elle a notamment pour objet une telle méthode pour la vaccination in ovo, des poussins d'1 jour ou plus et des adultes. L'invention va être maintenant décrite plus en détail à l'aide d'exemples de réalisation non limitatifs, pris en référence au dessin, dans lequel: Liste des figures et des séquences pour les constructions dans les sites intergéniques Figure 1: Séquence du fragment HVT BamHI I Figure 2: plasmide pEL039 Figure 3: plasmide pEL077 Figure 4: plasmide pEL079 Figure 5: plasmide pEL076 Figure 6: plasmide pEL078 Figure 7: plasmide pEL054 Figure 8: plasmide pEL055 Figure 9: plasmide pEL062 Figure 10: plasmide pEL066 Figure 11: plasmide pEL022 Figure 12: plasmide pEL023 Figure 13: plasmide pEL024 Figure 14: plasmide pCMVR Figure 15: plasmide pEL026 Figure 16: plasmide pEL090 Figure 17: plasmide pCDO02 Figure 18: plasmide pCDO09 Figure 19: plasmide pEL068 Figure 20: plasmide pEL070 Figure 21: plasmide pEL091 Figure 22: plasmide pCD011 Figure 23: plasmide pCD020 Figure 24: plasmide pEL092 Figure 25: Séquence du gène NDV HN Figure 26: plasmide pEL028 Figure 27: plasmide pELO29bis Figure 28: plasmide pEL030 Figure 29: plasmide pEL032 Figure 30: plasmide pEL093 Figure 31: plasmide pEL033 Figure 32: plasmide pEL034 Figure 33: plasmide pEL094 Figure 34: Séquence du promoteur MDV RNA 1.8 kpb Figure 35: plasmide pBS002 Figure 36: plasmide pEL069 Figure 37: plasmide pEL080 Figure 38: plasmide pEL081 Figure 39: plasmide pEL095 Figure 40: plasmide pEL098 Liste des séquences SEQ ID pour les constructions dans les sites intergéniques SEQ ID N 1 Séquence du fragment HVT BamHIl I SEQ ID N 2 Oligonucléotide EL102 SEQ ID N 3 Oligonucléotide EL161 SEQ ID N 4 Oligonucléotide EL147 SEQ ID N 5 Oligonucléotide EL162 SEQ ID N 6 Oligonucléotide EL1 54 SEQ ID N 7 Oligonucléotide EL1 63 SEQ ID N 8 Oligonucléotide EL1 64 SEQ ID N 9 Oligonucléotide EL1 65 SEQ ID N 10 Oligonucléotide EL132 SEQ ID N 11 Oligonucléotide EL133 SEQ ID N 12 Oligonucléotide MB070 SEQ ID N 13 Oligonucléotide MB071 SEQ ID N 14 Oligonucléotide CD001 SEQ ID N 15 Oligonucléotide CD002 SEQ ID N 16 Oligonucléotide CD003 SEQ ID N 17 Oligonucléotide CD004 SEQ ID N 18 Séquence du gène NDV HN SEQ ID N 19 Oligonucléotide EL071 SEQ ID N 20 Oligonucléotide EL073 SEQ ID N 21 Oligonucléotide EL074 SEQ ID N 22 Oligonucléotide EL075 SEQ ID N 23 Oligonucléotide EL076 SEQ ID N 24 Oligonucléotide EL077 SEQ ID N 25 Séquence du promoteur MDV RNA 1.8 kpb SEQ ID N 26 Oligonucléotide MB047 SEQ ID N 27 Oligonucléotide MB048 SEQ ID N 28 Oligonucléotide MB072 2. EXEMPLES Toutes les constructions de plasmides ont été réalisées en utilisant les techniques standards de biologie moléculaire décrites par Sambrook J. et ai. (Molecular Cloning: A Laboratory Manual. 2' Edition. Cold Spring Harbor Laboratory. Cold Spring Harbor. New York. 1989). Tous les fragments de restriction utilisés pour la présente invention ont été isolés en utilisant le kit "Geneclean" (BIO101 Inc. La Jolla, CA). Le virus utilisé comme virus parental est la souche FC126 de l'herpèsvirus de la dinde (HVT) isolé par le Dr. Witter du Regional Poultry Research Laboratory (USDA, East Lansing, Michigan), dans un troupeau de dindes de 23 semaines (Witter R.L. et al. Am. J. Vet. Res. 1970. 31. 525-538). Les conditions de culture de ce virus sont celles décrites par ailleurs (demande de brevet français 03105). Exemple 1: Extraction de l'ADN du virus de la maladie de Marek: Le sang total d'un poulet éprouvé à 7 jours avec la souche MDV RB1 B est récolté avec une seringue sur anticoagulant (solution d'héparine à 100 UI/ml) 14 jours après infection. Ce sang est ensuite centrifugé à 30 g pendant 15 minutes à température ambiante. Le plasma ainsi que le "buffy-coat" sont prélevés et dilués dans du PBS stérile pour avoir un volume final de 10 ml. Après une centrifugation de 15 minutes à 150 g, le culot cellulaire est resuspendu dans 2 mi de milieu de culture 199 (Gibco-BRL Cat# 042- 01183M) contenant 2 % de sérum de veau foetal (SVF)). L'ADN total des lymphocytes infectés est ensuite extrait selon la technique décrite par R. Morgan et aL. (Avian Diseases. 1990. 34. 345351) et peut directement servir de matrice pour les expériences de PCR. Pour le clonage de fragments génomiques du virus MDV, la souche RB1 B a été cultivée sur CEP et l'ADN viral a été préparé à partir de particules virales purifiées comme décrit par Lee Y. et al. (J. Gen. Virol. 1980. 51. 245-253). Exemple 2: Préparation de l'ADN génomique du virus MCMV (Mouse CytoMegaloVirus) Le virus MCMV souche Smith a été obtenu de l'American Type Culture Collection, Rockville, Maryland, USA (ATCC N VR-194). Ce virus a été cultivé sur cellules d'embryon de souris Balb/C et I'ADN viral de ce virus a été préparé comme décrit par Ebeling A. et al. (J. Virol. 1983. 47. 421-433). Exemple 3: Préparation de l'ADN génomique du virus HVT pour les expériences de transfection: L'ADN viral utilisé pour les expériences de transfection a été préparé selon la technique décrite par R. Morgan et al. (Avian Diseases. 1990. 34. 345-351) à partir d'une culture de CEP secondaires (CEP II) infectées avec la souche FC126 du virus HVT. Exemple 4: Description du fragment BamHI I Le fragment BamHI I de 5,8 kpb du virus HVT souche FC126 (Igarashi T. etal. J. Gen. Virol. 1989. 70. 1789-1804) a été isolé par Geneclean et clone dans le site BamHI du vecteur pBS-SK+ pour donner le plasmide pEL037. La séquence de ce fragment a été établie en totalité (5838 pb) (figure 1 et SEQ ID N O 1). 6 cadres ouverts de lecture (= "open reading frames = ORFs") ont été identifiés sur cette séquence. L'étude des protéines potentiellement codées par ces ORFs a révélé que certaines de ces protéines présentaient une homologie avec des protéines codées par des ORFs présentes chez d'autres alphaherpèsvirus. La première ORF (ORF1) (position 676 à position 1209 sur SEQ ID NO 1) présente une homologie avec les ORFs HSV-1 UL55, EHV-1 gène 4 et VZV gène 5, et code pour une protéine théorique HVT UL55 de 178 acides aminés (aa). L'ORF2 est située de la position 1941 à la position 1387 sur la séquence SEQ ID N 1 et code pour une protéine de 185 aa homologue de la protéine codée par l'ORF EHV-1 gène 3. L'ORF3 est incomplète. Elle est située de la position 5838 à 3573 sur SEQ ID N 1 et elle présente une homologie avec l'ORF 21 de MDV (Ross N. et al. Virus Genes. 1993. 7. 33-51). Trois autres ORFs identifiées sur cette séquence: ORF4 (position 1403 à position 1957 (protéine de 185 aa)), ORF5 (position 3081 à position 2287 (protéine de 265 aa)), et ORF6 (incomplète; position 479 à position 1) n'ont pas d'homologues dans les banques de séquences. L'organisation génomique du fragment BamHI I du virus HVT souche FC126 est telle qu'il existe 3 régions intergéniques qui peuvent être utilisées comme sites d'insertion pour des cassettes d'expression de gènes étrangers: Une région intergénique (région intergénique 1) existe entre l'ORF UL55 et l'ORF HVT gène 3. Une deuxième région intergénique (région intergénique 2) existe entre l'ORF HVT gène 3 et l'ORF 265 aa. Une troisième région intergénique (région intergénique 3) existe entre l'ORF 265 aa et l'ORF 21. Ces trois régions sont utilisables pour insérer des cassettes d'expression sans affecter la réplication in vivo des virus HVT recombinants ainsi obtenus. Des exemples de constructions de plasmides donneurs pour ces régions intergéniques 1, 2 et 3 sont décrits ci- dessous: Exemple 5: Construction du plasmide donneur pour la région intergénique 1 Le plasmide pEL037 a été digéré par BamHl et EcoRI pour isoler les fragments BamHI-EcoRI de 2672 pb et 2163 pb. Ces fragments ont été ligaturés avec le vecteur pBS-SK+, préalablement digéré par BamHI et EcoRI, pour donner respectivement les plasmides pEL039 de 5167 pb et pEL040 de 6104 pb. Le plasmide pEL039 (figure 2) a été digéré par BamHI et Pstl pour isoler le fragment BamHI-Pstl de 997 pb (fragment A). Une PCR a été réalisée avec les oligonucléotides suivants: EL102 (SEQ ID N 2) 5' CATTATAAGACCAACGTGCGAGTC 3' EL161 (SEQ ID N 3) 5' GTTCACGTCGACAATTATTTTATTTAATAAC 3' et la matrice pEL039 pour produire un fragment de 420 pb. Ce fragment a été digéré par Pstl et Sall pour isoler un fragment Pstl-Sall de 250 pb (fragment B). Les fragments A et B ont été ligaturés ensemble avec le vecteur pBSII-SK+ (Stratagene), préalablement digéré par BamHI et Sall, pour donner le plasmide pEL077 de 4160 pb (figure 3). Le plasmide pELO39 a été digéré par BstBI et Scal pour isoler un fragment BstBI-Scal (bout franc) de 475 pb (fragment C). Une PCR a été réalisée avec les oligonucléotides suivants: EL147 (SEQ ID N 4) 5' AAGATAATGGGCTCCCGCTGTTC 3' EL162 (SEQ ID N 5) ' TAATTGTCGACCCCGGGGAATTCGTTTAATGTTAGTTTATTC 3' et la matrice pEL039 pour produire un fragment PCR de 715 pb. Ce fragment a été digéré par BstBI et Sali pour isoler le fragment BstBI- Sall de 465 pb (fragment D). Les fragments C et D ont été ligaturés ensemble avec le plasmide pEL077, préalablement digéré par Apal, réparé avec la polymérase Klenow, et digéré par Sali, pour donner le plasmide pEL079 de 5082 pb (figure 4). Ce plasmide contient un poly-linker EcoRI-Smal-Sall dans le site intergénique 1. Exemple 6: Construction du plasmide donneur pour la région intergénique 2 Le plasmide pEL039 (exemple 5) a été digéré par BstBI et Pstl pour isoler le fragment BstBI-Pstl de 715 pb (fragment A). Une PCR a été réalisée avec les oligonucléotides suivants: EL154 (SEQ ID N 6) 5' GAAATGCAAACTAACATTATTGTC 3' EL163 (SEQ ID NI 7) 5' GTGTAAATAGTCGACAATATAGATAACGGGC 3' et la matrice pEL039 pour produire un fragment PCR de 500 pb. Ce fragment a été digéré par BstBI et Sali pour isoler le fragment BstBI- Sall de 430 pb (fragment B). Les fragments A et B ont été ligaturés ensemble avec le vecteur pBSII-SK+, préalablement digéré par Pstl et Sali, pour donner le plasmide pEL076 de 4081 pb (figure 5). Une autre PCR a été réalisée avec les oligonucléotides suivants: EL164 (SEQ ID N 8) ' CTATATTGTCGACCCCGGGGAATTCATCGACATGATTAAATAC 3' EL165 (SEQ ID N 9) 5' CAATGAAGAAATATTTTCTTTGTTCCTTGAAATGC 3' et la matrice pEL039 pour produire un fragment PCR de 565 pb. Ce fragment a été digéré par Sali et Sspl pour isoler le fragment Sall-Sspl de 535 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le plasmide pEL076, préalablement digéré par Apal, réparé avec la polymérase Klenow, et digéré par Sali, pour donner le plasmide pEL078 de 4598 pb (figure 6). Ce plasmide contient un poly-linker EcoRISmal- SalI dans la région intergénique 2. Exemple 7: Construction du plasmide donneur pour la région intergénique 3 Le plasmide pEL040 (voir exemple 5) a été digéré par Ncol et Sphl pour isoler le fragment Ncol-Sphl de 1468 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le plasmide pUC BM20 (Boehringer Mannheim Cat# 1219235), préalablement digéré par Ncol et Sphl, pour donner le plasmide pEL054 de 4182 pb (figure 7). Le plasmide pEL040 a été digéré par EcoRI et Sphl pour isoler le fragment EcoRI- Sphl de 614 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le plasmide pUC BM20, préalablement digéré par EcoRI et Sphl, pour donner le plasmide pEL055 de 3263 pb (figure 8). Le plasmide pEL055 a été digéré par EcoRI, réparé par la polymérase Klenow, ligaturé sur lui-même, digéré par Hindill, réparé avec la polymérase Klenow, et enfin ligaturé sur lui-même pour donner le plasmide pEL062 de 3279 pb (figure 9). Le plasmide pEL054 a été digéré par Ncol et Sal pour isoler le fragment Ncol-Sall de 1492 pb (fragment A). Les deux oligonucléotides suivants: EL132 (SEQ ID N 10) 5' CCGAATTCATATAAGCTTACGTG 3' EL133 (SEQ ID N 11) 5' TCGACACGTAAGCTTATATGAATTCGGCATG 3' ont été hybridés entre eux pour produire le fragment Sall-Sphl de 24 pb (fragment B). Les fragments A et B ont été ligaturés ensemble avec le plasmide pEL062, préalablement digéré par Ncol et Sphl, pour donner le plasmide pEL066 de 4787 pb (figure 10). Ce plasmide contient un polylinker EcoRI-Hindill-Sall dans la région intergénique 3. Exemple 8: Construction du plasmide donneur pEL090 et isolement de vHVT16 Le plasmide pEL004 (= plasmide pGH004 décrit dans la demande de brevet francais 92.13109) contenant le gène IBDV VP2 sous forme d'une cassette BamHI-Hindll a été digéré par BamHl et Xbal pour isoler le fragment BamHI- Xbal (gène VP2 tronqué) de 1104 pb. Ce fragment a été cloné dans le vecteur pBS-SK +, préalablement digéré avec Xbal et BarnmHIl pour donner le plasmide pEL022 de 4052 pb (figure 11). Le vecteur pBS-SK + a été digéré par EcoRV et Xbal, puis ligaturé sur lui-même pour donner pBS-SK (modifié). Le plasmide pEL004 a été digéré par Kpnl et HindIll pour isoler le fragment Kpnl-Hindlll de 1387 pb contenant le gène IBDV VP2 complet. Ce fragment a été cloné dans le vecteur pBS-SK*, préalablement digéré par Kpnl et HindIll, pour donner le plasmide pEL023 de 4292 pb (figure 12). Le plasmide pEL022 a été digéré par BamHI et Notl pour isoler le fragment BamHI-Notl de 1122 pb (fragment A). Le plasmide pEL023 a été digéré par BamHI et Notl pour isoler le fragment BamHI- Notl de 333 pb (fragment B). Les fragments A et B ont été ligaturés ensemble avec le vecteur pBS-SK+, préalablement digéré par Notl et traité avec la phosphatase alcaline, pour donner le plasmide pEL024 de 4369 pb (figure 13). Le plasmide pEL024 a été digéré par Notl pour isoler le fragment NotINotl de 1445 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le plasmide pCMVPà (Clontech Cat# 6177-1) (figure 14), préalablement digéré par Notl, pour donner le plasmide pEL026 de 5095 pb (figure 15). Le plasmide pEL026 a été digéré par EcoRI, Sali et Xmnl pour isoler le fragment EcoRI-Sall de 2428 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le plasmide pEL079 (voir exemple 5), préalablement digéré par EcoRI et Sali, pour donner le plasmide pELO90 de 7514 pb (figure 16). Ce plasmide permet l'insertion de la cassette d'expression HCMV-IE/IBDV VP2 dans le site intergénique 1 du virus HVT. Des cellules CEP primaires de 24 heures ont ensuite été transfectées avec le mélange suivant: 1 pg de plasmide pELO90 linéarisé + 5 pg d'ADN viral d'HVT dans 300 pIl de milieu OptiMEM (Gibco BRL Cat# 041-01985H) et 100 pg de LipofectAMINE dilués dans 300 pi de milieu (volume final du mélange = 600 pi). Ces 600pl ont ensuite été dilués dans 3 ml (volume final) de milieu et étalés sur 3.10 6 CEP I. Le mélange a été laissé en contact avec les cellules pendant heures, puis éliminé et remplacé par 5 ml de milieu de culture. Les cellules ont alors été laissées en culture pendant 3 jours à + 37 C, puis elles ont été pronasées, mélangées à des CEP II fraîches (mélange 3:1), et réétalées sur 1 plaque 96 puits. Cette plaque a été laissée en culture pendant 3 jours, puis les cellules ont été pronasées, mélangées à des CEP II fraîches, et réétalées sur 2 plaques de 96 puits, une cupule initiale donnant 2 cupules soeurs. Les plaques 96 puits ont été mises en culture jusqu'à apparition d'un effet cytopathique. Après 72 heures de culture, une des deux plaques 96 puits a été fixée à l'acétone 95% pendant 30 minutes et une réaction d'immunofluorescence indirecte (IFI) a été réalisée avec un anticorps monoclonal anti-VP2 pour rechercher les plages exprimant la protéine VP2. Les cupules "soeurs" des cupules présentant des plages positives en IFI ont été pronasées, mélangées à des CEP II fraîches, et déposées en dilution limite sur des plaques 96 puits. Après 3 jours de culture, les cupules présentant un effet cytopathique ont été pronasées, mélangées à des CEP II, et réétalées sur des plaques 96 puits, une cupule initiale donnant 2 cupules soeurs. 3 jours après, les plages exprimant la protéine VP2 ont été à nouveau recherchées comme précédemment par IFI sur l'une des 2 plaques soeurs. En général, 4 cycles d'isolement successifs (récolte d'une cupule, réétalement, contrôle par IFI, repiquage d'un cupule soeur...) suffisent pour obtenir des virus recombinants dont la totalité de la progénie présente une fluorescence spécifique. Une plage virale ayant donné 100 %de plages positives en IFI avec un anticorps monoclonal anti- VP2 a été désignée vHVT16. L'ADN génomique de ce virus recombinant a été caractérisé au niveau moléculaire par des techniques classiques de PCR et de Southern blot en utilisant les oligonucléotides et les sondes d'ADN appropriés. Exemple 9: Construction du plasmide donneur pEL091 et isolement de vHVT17 Le plasmide pCMVIE (figure 14) a été digéré par Sal et Smal pour isoler le fragment Sall-Smal de 3679 pb contenant le gène lacZ ainsi que le signal de poly-adénylation du gène tardif du virus SV40. Ce fragment a été inséré dans le vecteur pBS-SK +, préalablement digéré par Sall et EcoRV, pour donner le plasmide pCDO02 de 6625 pb (figure 17). Ce plasmide contient le gène reporter /acZ mais aucun promoteur n'est situé en amont de ce gène. L'ADN génomique viral du virus MCMV a été préparé comme décrit dans l'exemple 2 et digéré par Pstl pour isoler le fragment Pstl-Pstl de 2285 pb. Ce fragment a été cloné dans le vecteur pBS-SK +, préalablement digéré par Pstl et traité avec la phosphatase alcaline, pour donner le plasmide pCD004. Le plasmide pCDO04 a été digéré par Hpal et Pstl pour isoler le fragment Hpal-Pstl de 1389 pb qui contient la région promotrice/activatrice du gène Immediate-Early du cytomégalovirus murin (Murine CytoMegaloVirus = MCMV) (Dorsch-Hâsler K. et ai. Proc. Natl. Acad. Sci. 1985. 82. 8325-8329, et demande de brevet WO-A-87/03905). Ce fragment a été cloné dans le plasmide pCDO02 préalablement digéré par Pstl et Smal, pour donner le plasmide pCD009 de 8007 pb (figure 18). Un oligonucléotide double brin a été obtenu par hybridation des deux oligonucléotides suivants: MB070 (SEQ ID N 12) 'CGAATTCACTAGTGTGTGTCTGCAGGCGGCCGCGTGTGTGTCGACGGTAC 3' MB071 (SEQ ID N 13) 'CGTCGACACACACGCGGCCGCCTGCAGACACACACTAGTGAATTCGAGCT 3' Cet oligonucléotide double brin a été ligaturé dans le vecteur pBS-SK+, préalablement digéré par Kpnl et Sacl, pour donner le plasmide pELO67. Le plasmide pCD009 a été digéré par Pstl et Spel pour isoler le fragment Pstl- Spel de 1396 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le plasmide pEL067, préalablement digéré par Pstl et Spel, pour donner le plasmide pEL068 de 4297 pb (figure 19). Le plasmide pEL026 (voir exemple 8) a été digéré par HindIll et Sali pour isoler le fragment Hindill-Sail de 235 pb (fragment B). Les fragments A et B ont été ligaturés ensemble avec le plasmide pEL068, préalablement digéré par Notl et Sali, pour donner le plasmide pEL070 de 5908 pb (figure 20). Le plasmide pEL070 a été digéré par EcoRI, Sali et Xmnl pour isoler le fragment EcoRI-Sall de 3035 pb. Ce fragment a été ligaturé avec la plasmide pEL079 (voir exemple 5), préalablement digéré par EcoRI et Sali, pour donner le plasmide pELO91 de 8109 pb (figure 21). Ce plasmide permet l'insertion de la cassette d'expression MCMV-IE/IBDV VP2 dans le site intergénique 1 du virus HVT. Une co-transfection réalisée, comme décrit dans l'exemple 8, avec le plasmide pEL091 et l'ADN génomique du virus HVT a conduit à l'isolement et à la purification du recombinant vHVT17. Exemple 10: Construction du plasmide donneur pEL092 et isolement de vHVT18 Le fragment EcoRI-Sail de 3,9 kpb de l'ADN génomique du virus MDV souche RB1 B contenant le gène MDV gB (séquence publiée par Ross N. et a/. J. Gen. Virol. 1989. 70. 1789-1804) a été ligaturé avec le vecteur pUC13, préalablement digéré par EcoRI et Sali, pour donner le plasmide pCDOO7. Ce plasmide a été digéré par Sacl et Xhol pour isoler le fragment SaclXhol de 2260 pb (partie centrale du gène gB = fragment A). Une PCR a été réalisée avec les oligonucléotides suivants: CDOO1 (SEQ ID N 14) ' GACTGGTACCGCGGCCGCATGCACTTTTTAGGCGGAATTG 3' CDO02 (SEQ ID NO 15) 5' TTCGGGACATTTTCGCGG 3' et la matrice pCD007 pour produire un fragment PCR de 222 pb. Ce fragment a été digéré par Kpnl et Xbal pour isoler un fragment Kpnl-Xbal de 190 pb (extrémité 5' du gène gB = fragment B). Une autre PCR a été réalisée avec les oligonucléotides suivants: CDOO3 (SEQ ID N 16) 5' TATATGGCGTTAGTCTCC 3' CDO04 (SEQ ID NO 17) ' TTGCGAGCTCGCGGCCGCTTATTACACAGCATCATCTTCTG 3' et la matrice pCD007 pour produire un fragment PCR de 195 pb. Ce fragment a été digéré par Sacl et Sacil pour isoler le fragment SacI- Sacll de 162 pb (extrémité 3' du gène gB = fragment C). Les fragments A, B et C ont été ligaturés ensemble avec le vecteur pBS-SK +, préalablement digéré par Kpnl et Sacl, pour donner le plasmide pCD011 de 5485 pb (figure 22). Le plasmide pCDO1 1 a été digéré par Notl pour isoler le fragment NotI-Notl de 2608 pb (gène MDV gB entier). Ce fragment a été ligaturé avec le plasmide pCMVIV, préalablement digéré par Notl et traité avec la phosphatase alcaline, pour donner le plasmide pCD020 de 6299 pb (figure 23) (Dans ce plasmide, le gène MDV gB remplace le gène /acZ). Le plasmide pCD020 a été digéré par EcoRI et Sali pour isoler le fragment EcoRI-Sall de 3648 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le plasmide pEL079 (voir exemple 5), préalablement digéré par EcoRI et Sali, pour donner le plasmide pEL092 de 8718 pb (figure 24). Ce plasmide permet l'insertion de la cassette d'expression HCMV-IE/MDV gB dans le site intergénique 1 du virus HVT. Une co-transfection réalisée, comme décrit dans l'exemple 8, avec le plasmide pELO92 et l'ADN génomique du virus HVT a conduit à l'isolement et à la purification du recombinant vHVT18. Exemple 11: Construction du plasmide donneur pEL093 et isolement de vHVT19 La constitution d'une banque d'ADN complémentaire du génome du virus de la maladie de Newcastle (NDV), souche Texas, a été réalisée comme décrit par Taylor J. et al. (J. Virol. 1990. 64. 1441-1450). Un clone pBR322 contenant la fin du gène fusion (F), la totalité du gène hémagglutinine-neuraminidase (HN) et le début du gène de la polymérase a été identifié pHN01. La séquence du gène NDV HN présent sur ce clone est présentée sur la figure 25 (SEQ ID N 18). Le plasmide pHN01 a été digéré par Sphl et Xbal pour isoler le fragment Sphl-Xbal de 2520 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le vecteur pUC19, préalablement digéré par Sphl et Xbal, pour donner le plasmide pHN02 de 5192 pb. Le plasmide pHN02 a été digéré par Clal et Pstl pour isoler le fragment Clal- Pstl de 700 pb (fragment A). Une PCR a été réalisée avec les oligonucléotides suivants: EL071 (SEQ ID N 19) 5' CAGACCAAGCTTCTTAAATCCC 3' EL073 (SEQ ID N 20) 5' GTATTCGGGACAATGC 3' et la matrice pHN02 pour produire un fragment PCR de 270 pb. Ce fragment a été digéré par Hindill et Pstl pour isoler un fragment Hindlll-Pstl de 220 pb (fragment B). Les fragments A et B ont été ligaturés ensemble avec le vecteur pBS-SK+, préalablement digéré par Clal et HindIll, pour donner le plasmide pEL028 de 3872 pb (figure 26). Le plasmide pHN02 a été digéré par Bsphl et Clal pour isoler le fragment Bsphl-Clal de 425 pb (fragment C). Une PCR a été réalisée avec les oligonucléotides suivants: EL074 (SEQ ID N 21) 5' GTGACATCACTAGCGTCATCC 3' EL075 (SEQ ID N 22) ' CCGCATCATCAGCGGCCGCGATCGGTCATGGACAGT 3' et la matrice pHN02 pour produire un fragment PCR de 425 pb. Ce fragment a été digéré par Bsphl et Notl pour isoler le fragment Bsphl-Notl de 390 pb (fragment D). Les fragments C et D ont été ligaturés ensemble avec le vecteur pBS-SK+, préalablement digéré par Clal et Notl, pour donner le plasmide pELO29bis de 3727 pb (figure 27). Le plasmide pEL028 a été digéré par Clal et Sacil pour isoler le fragment Clal-Sacll de 960 pb (fragment E). Le plasmide pELO29bis a été digéré par Clal et Notl pour isoler le fragment Clal-Notl de 820 pb (fragment F). Les fragments E et F ont été ligaturés ensemble avec le vecteur pBS-SK+, préalablement digéré par Notl et SacIl, pour donner le plasmide pEL030 de 4745 pb (figure 28). Le plasmide pEL030 a été digéré par Notl pour isoler le fragment NotI-Notl de 1780 pb (gène NDV HN entier). Ce fragment a été ligaturé, à la place du gène lacZ, avec le plasmide pCMVIp, préalablement digéré par Notl et traité avec la phophatase alcaline, pour donner le plasmide pEL032 de 5471 pb (figure 29). Le plasmide pEL032 a été digéré par EcoRI et Clal pour isoler le fragment EcoRI-Clal de 1636 pb (fragment G). Le plasmide pEL032 a été digéré par Clal et Sali pour isoler le fragment Clal-Sall de 1182 pb (fragment H). Les fragments G et H ont été ligaturés ensemble avec le plasmide pEL079 (voir exemple 5), préalablement digéré par EcoRI et Sali, pour donner le plasmide pEL093 de 7890 pb (figure 30). Ce plasmide permet l'insertion de la cassette d'expression HCMV-IE/NDV HN dans le site intergénique 1 du virus HVT. Une co-transfection réalisée, comme décrit dans l'exemple 8, avec le plasmide pEL093 et l'ADN génomique du virus HVT a conduit à l'isolement et à la purification du recombinant vHVT19. Exemple 12: Construction du plasmide donneur pEL094 et isolement de vHVT20 Un clone provenant de la banque d'ADN complémentaire du génome du virus de la maladie de Newcastle (voir exemple 11) et contenant le gène fusion (F) en entier a été appelé pNDV81. Ce plasmide a été décrit précédemment et la séquence du gène NDV F présent sur ce clone a été publiée (Taylor J. et al. J. Virol. 1990. 64. 1441-1450). Le plasmide pNDV81 a été digéré par Narl et Pstl pour isoler le fragment Narl-Pstl de 1870 pb (fragment A). Une PCR a été réalisée avec les oligonucléotides suivants: EL076 (SEQ ID N 23) 5' TGACCCTGTCTGGGATGA 3' EL077 (SEQ ID N 24) 5' GGATCCCGGTCGACACATTGCGGCCGCAAGATGGGC 3' et la matrice pNDV81 pour produire un fragment de 160 pb. Ce fragment a été digéré par Pstl et Sali pour isoler le fragment Pstl-Sall de 130 pb (fragment B). Les fragments A et B ont été ligaturés ensemble avec le vecteur pBS-SK+, préalablement digéré par Clal et Sali, pour donner le plasmide pEL033 de 4846 pb (figure 31). Le plasmide pEL033 a été digéré par Notl pour isoler le fragment NotI-Notl de 1935 pb (gène F entier). Ce fragment a été ligaturé avec le plasmide pCMVE, préalablement digéré par Notl et traité avec la phosphatase alcaline, pour donner le plasmide pEL034 de 5624 pb (le gène NDV F a remplacé le gène lacZ) (figure 32). Le plasmide pEL034 a été digéré par EcoRI et Kpnl pour isoler le fragment EcoRI-Kpnl de 866 pb (fragment C). Le plasmide pEL034 a été digéré par Kpnl et Sali pour isoler le fragment Kpnl-Sall de 2114 pb (fragment D). Les fragments C et D ont été ligaturés ensemble avec le plasmide pEL079 (voir exemple 5), préalablement digéré par EcoRI et Sali, pour donner le plasmide pEL094 de 8043 pb (figure 33). Ce plasmide permet l'insertion de la cassette d'expression HCMV-IE/NDV F dans le site intergénique 1 du virus HVT. Une co-transfection réalisée, comme décrit dans l'exemple 8, avec le plasmide pEL094 et l'ADN génomique du virus HVT a conduit à l'isolement et à la purification du recombinant vHVT20. Exemple 13: Construction du plasmide donneur pEL095 et isolement de vHVT21 Les séquences situées en amont du gène MDV RNA 1.8 kpb sont décrites dans Bradley G. et ai. (J. Virol. 1989. 63. 2534-2542) (figure 34 et SEQ ID N 25). Une amplification PCR a été réalisée à partir d'ADN extrait de lymphocytes récoltés sur des poulets infectés par la souche MDV RB1B (voir exemple 1) avec les oligonucléotides suivants: MB047 (SEQ ID N 26) 5' GGTCTACTAGTATTGGACTCTGGTGCGAACGC 3' MB048 (SEQ ID N 27) 5' GTCCAGAATTCGCGAAGAGAGAAGGAACCTC 3' Le fragment PCR de 163 pb ainsi obtenu a été digéré par EcoRI et Spel, puis ligaturé avec le plasmide pCD002 (voir exemple 9), préalablement digéré par EcoRI et Spel, pour donner le plasmide pBS002 de 6774 pb (figure 35). Le plasmide pBS002 contient le promoteur du gène MDV RNA 1. 8 kb cloné en amont du gène lacZ. Une PCR a été réalisée avec les oligonucléotides: MB047 (SEQ ID N 26) et MB072 (SEQ ID N 28) 5' GTGTCCTGCAGTCGCGAAGAGAGAAGGAACCTC 3' et la matrice pBS002. Le fragment PCR ainsi obtenu a été digéré par Pstl et Spel pour isoler un fragment Pstl-Spel de 200 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le plasmide pELO67 (voir exemple 9), préalablement digéré par Pstl et Spel, pour donner le plasmide pEL069 (figure 36). Le plasmide pCDO07 (voir exemple 10) a été digéré par EcoRI et Xbal pour isoler le fragment EcoRI-Xbal de 2670 pb (fragment A). Le plasmide pCD011 (voir exemple 10) a été digéré par Notl et Xbal pour isoler le fragment Notl-Xbal de 180 pb (fragment B). Le plasmide pEL069 a été digéré par Notl et Spel pour isoler le fragment Notl-Spel de 180 pb (fragment C). Les fragments A,B et C ont été ligaturés ensemble avec le plasmide pEL067 (voir exemple 9), préalablement digéré par EcoRI et Spel, pour donner le plasmide pEL080 de 5939 pb (figure 37). Le plasmide pEL070 (voir exemple 9) a été digéré par Kpnl et Spel pour isoler le fragment Kpnl-Spel de 1345 pb (fragment D). Le plasmide pEL070 a aussi été digéré par Kpnl et SalI pour isoler le fragment KpnI-Sall de 1658 pb (fragment E). Les fragments D et E ont été ligaturés ensemble avec le plasmide pEL080, préalablement digéré par Sali et Spel, pour donner le plasmide pEL081 de 8938 pb (figure 38). Le plasmide pEL081 a été digéré par EcoRI et Sali pour isoler le fragment EcoRI-Sail de 6066 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le plasmide pELO79 (voir exemple 5), préalablement digéré par EcoRI et Sali, pour donner finalement le plasmide pEL095 de 11139 pb (figure 39). Ce plasmide permet d'insérer la double cassette d'expression VP2/MCMV-IE//RNA 1.8 kpb/MDV gB dans le site intergénique 1 du virus HVT. Une co-transfection réalisée, comme décrit dans l'exemple 8, avec le plasmide pEL095 et l'ADN génomique du virus HVT a conduit à l'isolement et à la purification du recombinant vHVT21. Exemple 14: Construction du plasmide donneur pEL098 et isolement de vHVT24 Le plasmide pEL080 (voir exemple 13) a été digéré par EcoRI et Sall pour isoler le fragment EcoRI-Sall de 3040 pb (cassette RNA 1.8 kpb / MDV gB). Ce fragment a été ligaturé avec le plasmide pEL079 (voir exemple 5), préalablement digéré par EcoRI et Sall, pour donner le plasmide pEL098 de 8140 pb (figure 40). Ce plasmide permet l'insertion de la cassette RNA 1.8 kpb / MDV gB dans le site intergénique 1 du virus HVT. Une co-transfection réalisée, comme décrit dans l'exemple 8, avec le plasmide pEL098 et l'ADN génomique du virus HVT a conduit à l'isolement et à la purification du recombinant vHVT24. Exemple 15: Construction de plasmides donneurs pour l'insertion de cassettes d'expression IBV M et S dans le site intergénique 1 du virus HVT Selon la même stratégie que celle décrite plus haut pour l'insertion de cassettes d'expression (gènes placés sous le contrôle des promoteurs HCMV-IE ou MCMV-IE ou double promoteur MCMV-IE//RNA 1.8 kpb) dans le site intergénique 1, il est possible de réaliser des virus HVT recombinants exprimant à un niveau élevé les protéines membrane (M) ou spike (S) du virus de la bronchite infectieuse aviaire (IBV). On réalise de préférence une construction o le gène IBV S est sous la dépendance du promoteur HCMV-IE ou du promoteur MCMV-IE, ou bien une construction o les gènes IBV M et IBV S sont insérés ensemble avec le double promoteur MCMV-IE/RNA 1.8 kpb dans le site intergénique 1, le gène M étant sous le contrôle du promoteur RNA 1.8 kpb et le gène S étant sous le contrôle du promoteur MCMV-IE. Dans cette configuration, le promoteur RNA 1.8 kpb est activé par la région activatrice du promoteur MCMV-IE. Exemple 16: Construction de virus HVT recombinants comprenant des gènes étrangers insérés dans les sites intergéniques 2 et 3 L'obtention de virus HVT recombinants ayant inséré des cassettes d'expression de gènes étrangers dans les sites intergéniques 2 et 3 se fait en suivant la stratégie décrite pour les exemples 8 à 14, mais en utilisant respectivement les plasmides pEL078 (site intergénique 2) et pEL066 (site intergénique 3) à la place du plasmide pEL079 dans les exemples 8 à 14 pour construire les plasmides donneurs spécifiques. REVENDICATIONS 1 - Vaccin vivant recombinant aviaire comprenant, comme vecteur, un virus herpès aviaire comprenant au moins une séquence nucléotidique codant pour, et exprimant, un polypeptide antigénique d'un agent pathogène aviaire, insérée dans la région comprise entre I'ATG de l'ORF UL55 et la jonction de UL avec la région répétée adjacente, sous le contrôle du promoteur CMV immediate early. 2 - Vaccin vivant recombinant aviaire selon la revendication 1, caractérisé en ce que le vecteur est choisi parmi le groupe consistant en virus de la maladie de Marek (MDV et HVT), virus de la laryngotrachéite infectieuse ILTV et herpès du canard. 3 - Vaccin vivant recombinant aviaire selon la revendication 2, caractérisé en ce que le vecteur est le virus HVT et l'insertion est réalisée dans le fragment BamHl I. 4 - Vaccin recombinant aviaire selon la revendication 3, caractérisé en ce que l'insertion est réalisée dans l'une des zones intergéniques 1, 2 et 3 ou dans l'ORF UL55 du fragment BarnmHI I. - Vaccin vivant recombinant aviaire selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que le promoteur CMV immediate early est le promoteur humain HCMV IE ou le promoteur murin MCMV IE. 6 - Vaccin vivant recombinant aviaire, selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisé en ce que la séquence nucléotidique insérée sous le contrôle du promoteur CMV immediate early est une séquence nucléotidique codant pour un antigène choisi parmi le groupe des antigènes de la maladie de Gumboro, de la maladie de Marek, de la maladie de Newcastle, de la bronchite infectieuse, de la laryngotrachéite infectieuse et de l'anémie aviaire. 7 - Vaccin vivant recombinant aviaire selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que la séquence nucléotidique insérée sous le contrôle du promoteur CMV immediate early est une séquence nucléotidique codant pour le polypeptide VP2 du virus IBDV. 8 - Vaccin vivant recombinant aviaire selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisé en ce qu'il comprend, associé au promoteur CMV immediate early en disposition tête-bêche avec ce dernier, un autre promoteur, deux séquences nucléotidiques étant insérées dans la région d'insertion, I'une sous la dépendance du promoteur CMV immediate early, l'autre sous celle du promoteur associé. 9 - Vaccin vivant recombinant aviaire selon la revendication 8, caractérisé en ce que le promoteur associé est le promoteur Marek RNA1.8. - Vaccin vivant recombinant aviaire selon la revendication 8 ou 9, caractérisé en ce que la séquence nucléotidique insérée sous le contrôle du promoteur CMV immediate early est une séquence nucléotidique codant pour le polypeptide VP2 du virus IBDV et en ce que la séquence nucléotidique insérée sous le contrôle du promoteur associé est une séquence nucléotidique codant pour un antigène d'une autre maladie aviaire. 11 - Vaccin vivant recombinant aviaire selon la revendication 10, caractérisé en ce que la séquence nucléotidique codant pour un antigène d'une autre maladie aviaire est choisie parmi le groupe des antigènes de la maladie de Marek, de la maladie de Newcastle, de la bronchite infectieuse, de la laryngotrachéite infectieuse et de l'anémie aviaire. 12 - Vaccin vivant recombinant aviaire selon la revendication 8, caractérisé en ce que le promoteur associé est un promoteur CMV immediate early d'origine différente. 13 - Vaccin vivant recombinant aviaire selon l'une quelconque des revendications 1 à 12, caractérisé en ce que la ou les séquences nucléotidiques insérées sont choisies parmi le groupe des séquences codant pour les gènes: - VP2, VP3 et VP2 + VP4 + VP3 du virus de la maladie de Gumboro, gB, gC, gD et gH +gL des virus de la maladie de Marek, - VP1 (52 kDa) + VP2 (24 kDa) du virus de l'anémie aviaire, - S et M du virus de la bronchite infectieuse, et - gB, gC, gD et gH + gL du virus de la laryngotrachéite infectieuse. 14 - Vaccin recombinant aviaire selon l'une des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que, au lieu du promoteur CMV immediate early, on utilise le promoteur RNA1.8. - Formule de vaccin multivalent comprenant, en mélange ou à mélanger, au moins deux vaccins vivants recombinants aviaires tels que définis dans l'une quelconque des revendications 1 à 14, ces vaccins comprenant des séquences insérées différentes. 16 - Formule de vaccin multivalent selon la revendication 15, caractérisée en ce que les séquences nucléotidiques insérées différentes proviennent de pathogènes différents.