FR 2733755 A1 19961108 FR 9505494 A 19950503 La présente invention relève du domaine des techniques de détection et/ou d'amplification de matériel nucléique, à l'aide de sondes ou d'amorces oligonucléotidiques, et leur application notamment à la recherche de la présence ou à l'identification des bactéries du genre Corynebacterium. Les corynébactéries sont des bactéries commensales constituant un groupe hétérogène sur les plans morphologique, taxonomique, pathogénique et thérapeutique. Cette hétérogénéité a longtemps conduit à une méconnaissance de ce groupe et limité l'identification des différentes souches. Chez l'homme, la pathogénicité des espèces appartenant au genre Corynebacterium est très variable, et de nombreuses corynébactéries font partie de la flore normale de la peau et des muqueuses. Ainsi, sur le plan pathogénique, certaines souches sont hautement pathogènes pour l'homme (Corynebacterium diphteriae), mais la plupart sont des bactéries opportunistes, responsables d'infections chez des patients immunodéprimés ou affaiblis. En effet, d'un point de vue épidémiologique, le pouvoir pathogène des corynébactéries a pendant longtemps été limité à la diphtérie (Corynebacterium diphteriae) mais cette maladie est actuellement en régression, en raison notamment des mesures de vaccination obligatoire, et a laissé la place à de nouvelles pathologies liées à l'évolution de la médecine hospitalière. Ainsi, les corynébactéries sont de plus en plus fréquemment isolées dans le cadre d'infections nosocomiales. Ces infections à corynébactéries (voir tableau ci-après) survenant essentiellement chez des patients très affaiblis, il est important de disposer d'un test de diagnostic bactériologique suffisamment spécifique et sensible pour permettre une détection rapide et sélective de l'espèce responsable, afin de mettre en oeuvre le plus rapidement possible une thérapie appropriée. Or, actuellement, les laboratoires d'analyses ne disposent que de tests biochimiques et bactériologiques, limités par des étapes d'isolement et de culture bactérienne indispensables aux tests, et qui souvent ne sont pas suffisamment spécifiques et sensibles pour diagnostiquer la présence d'une espèce déterminée de corynébactéries dans un échantillon biologique. La présente invention pallie les inconvénients précédemment cités pour la mise en évidence de la présence de bactéries du genre Corynebacterium, et plus particulièrement de certaines espèces précises, par utilisation d'un marqueur génétique dans un procédé de détection par hybridation d'acides nucléiques, alliant spécificité, sensibilité et rapidité. infections infections de endocardites septicémies urinaires pneumonies plaies (suppura- pharyngites adénopathies tions, abcès) Corynebacterium jeikelum + + + + + + Corynebacterium minutissimum + Corynebacterium pseudotuberculosis + + Corynebecterium ulcerans + Corynebacterium xerosis + + + >- rj Corynebacterium du groupe A4 + Corynebacterium du groupe D2 + + + + Corynebacterium du groupe G2 + + Corynebacterium du groupe I + Arcanobacterium haemolyticum + + Rhodococcus equi + Les ribosomes bactériens contiennent au moins trois molécules d'ARN distinctes appelées ARNr 5S, 16S et 23S. Historiquement, ces dénominations ont été choisies par référence à leur vitesse de sédimentation, qui est reliée à la taille de ces molécules d'ARN. Dans le procédé de l'invention, l'ARN ribosomique (ARNr) des bactéries peut être utilisé comme cible. Un des avantages de cette utilisation est que l'ARNr est retrouvé en abondance dans toutes les cellules des organismes vivants. La valeur taxonomique des sous-unités 16S et 23S ribosomiques de diverses espèces bactériennes a été mise en évidence dans des procédés d'hybridation pour quantifier des niveaux d'homologies entre ces espèces. Ainsi, Woese et coll., Microbiological Reviews 47: 621-669 (1983), et Grayet et coll., Nucleic Acids Research 12: 5837-5852 (1984) montrent, par des comparaisons de séquences d'ARN 16S, que des régions hautement conservées sont intercalées avec des régions de moyenne et basse homologies, même dans le cas d'espèces proches. Selon la présente invention, on a déterminé sur l'ARN ribosomique de la sous-unité 16S, des zones variables au sein du genre Corynebacterium, ce qui permet de subvenir au besoin actuel de diagnostiquer une infection notamment chez les sujets immunodéprimés, en apportant des sondes de détection spécifiques qui permettent de discriminer au moins un groupe d'espèces, voire une seule espèce, du genre Corynebacterium, parmi d'autres genres ou groupes de genres bactériens Le point de départ de l'invention est la détermination des séquences nucléotidiques de la sousunité 16S de l'ARN ribosomique pour un nombre suffisant d'espèces de corynébactéries, ce qui a permis de mettre en évidence plusieurs régions variables permettant de discriminer plusieurs espèces de corynébactéries. Ce travail est illustré à la Figure 1, constituée de 35 feuilles (1/35 à /35), qui, mises côte à côte, représentent la séquence nucléotidique complète de la sous-unité 16S de l'ARNr de 28 souches de 25 espèces de corynébactéries, ainsi que celle d'espèces de genre différent mais phylogéniquement proches. Avant d'exposer l'invention, différents termes utilisés dans la description 3 o et les revendications sont à présent définis: - par "acide nucléique extrait de bactéries" on entend soit l'acide nucléique total, soit l'ARN ribosomique, en particulier l'ARNr 16S, soit l'ADN génomique, soit encore l'ADN obtenu à partir de la transcription inverse de I'ARN ribosomique, en particulier l'ARN 16S, - selon l'invention, un fragment nucléotidique ou un oligonucléotide est un enchaînement de monomères, caractérisé par la séquence informationnelle des acides nucléiques naturels, susceptibles de s'hybrider à un fragment nucléotidique dans des conditions prédéterminées, l'enchaînement pouvant contenir des monomères de structures différentes et être obtenu à partir d'une molécule d'acide nucléique naturelle et/ou par recombinaison génétique et/ou par synthèse chimique, - ainsi un monomère peut être un nucléotide naturel d'acide nucléique dont les éléments constitutifs sont un sucre, un groupement phosphate et une base azotée; dans l'ADN le sucre est le ribose, dans l'ARN le sucre est le désoxy-2- ribose; selon qu'il s'agisse de l'ADN ou l'ARN, la base azotée est choisie parmi l'adénine, la guanine, l'uracile, la cytosine, la thymine; ou un nucléotide modifié dans l'un au moins des trois éléments constitutifs; à titre d'exemple, la modification peut intervenir au niveau des bases, générant des bases modifiées telles que l'inosine, la méthyl-5-désoxycytidine, la désoxyuridine, la diméthylamino-5- désoxyuridine, la diamino-2,6-purine, la bromo-5-désoxyuridine et toute autre base modifiée favorisant l'hybridation, au niveau du sucre à savoir le remplacement d'au moins un désoxyribose par un polyamide (P.E. Nielsen et al, Science, 254, 1497-1500 (1991)), au niveau du groupement phosphate par exemple son remplacement par des esters notamment choisis parmi les esters de diphosphate, d'alkyl et arylphosphonate et de 2 0 phosphorothioate, - par "séquence informationnelle", on entend toute suite ordonnée de monomères, dont la nature chimique et l'ordre dans un sens de référence constituent une information de même qualité que celle des acides nucléiques naturels, - par "hybridation", on entend le processus au cours duquel, dans des conditions appropriées, deux fragments nucléotidiques ayant des séquences suffisamment complémentaires sont susceptibles de s'associer par des liaisons hydrogène stables et spécifiques, pour former un double brin. Les conditions d'hybridation sont déterminées par la "stringence", c'est-àdire la rigueur des conditions opératoires. L'hybridation est d'autant plus spécifique qu'elle est effectuée à plus forte stringence. La stringence est fonction notamment de la composition en bases du duplex sonde/cible, ainsi que du degré de mésappariement entre deux acides nucléiques. La stringence peut également être fonction des paramètres de la réaction d'hybridation, tels que la concentration et le type d'espèces ioniques présentes dans la solution d'hybridation, la nature et la concentration d'agents dénaturants et/ou la température d'hybridation. La stringence des conditions dans lesquelles une réaction d'hybridation doit être réalisée dépend notamment des sondes utilisées. Toutes ces données sont bien connues de l'homme du métier, et les conditions appropriées peuvent éventuellement être déterminées dans chaque cas par des expériences de routine. En général, selon la longueur des sondes utilisées, la température pour la réaction d'hybridation est comprise entre environ 20 et 65 C, en particulier entre 35 et 65 C, dans une solution saline à une concentration d'environ 0,8 à 1M. - une sonde est un fragment nucléotidique comprenant au moins 5 monomères, avantageusement au moins 8 monomères, possédant une spécificité d'hybridation dans des conditions déterminées pour former un complexe d'hybridation avec un fragment nucléotidique ayant une séquence nucléotidique déterminée comprise dans l'ARN ribosomique, ou l'ADN obtenu par transcription inverse dudit ARN ribosomique, ou l'ADN dont ledit ARN ribosomique est le produit de transcription; une sonde peut être utilisée à des fins de diagnostic, et être dans ce cas une sonde de capture et/ou de détection, ou à des fins de thérapie, - la sonde de capture peut être immobilisée sur un support solide par tout moyen approprié, c'est-à-dire directement ou indirectement, par exemple par covalence ou adsorption passive, - la sonde de détection est marquée au moyen d'un marqueur choisi parmi les isotopes radioactifs, des enzymes notamment choisis parmi la péroxydase et la phosphatase alcaline et ceux susceptibles d'hydrolyser un substrat chromogène, fluorigène ou luminescent, des composés chimiques chromophores, des composés chromogènes, fluorigènes ou luminescents, des analogues de bases nucléotidiques, et la biotine, - les sondes utilisées à des fins de diagnostic de l'invention peuvent être mises en oeuvre dans toutes les techniques d'hybridation connues et notamment les techniques dites "DOT-BLOT" (MANIATIS et al, Molecular Cloning, Cold Spring Harbor, 1982), "SOUTHERN BLOT" (SOUTHERN. E.M., J. Mol. Biol., 98, 503 (1975), "NORTHEN BLOT" qui est une technique identique à la technique "SOUTHERN BLOT" mais qui utilise de l'ARN comme cible, la technique SANDWICH (DUNN A.R., HASSEL J.A., Cell, 12, 23 (1977)); avantageusement, on utilise la technique SANDWICH dans la présente invention comprenant une sonde de capture spécifique et/ou une sonde de détection spécifique, étant entendu que la sonde de capture et la sonde de détection doivent présenter une séquence nucléotidique au moins partiellement différente, - une autre application de l'invention est une sonde de thérapie pour traiter les infections dues aux corynébactéries, ladite sonde étant susceptible de s'hybrider in vivo sur l'ARN ribosomique 16S desdites bactéries et/ou sur l'ADN génomique pour bloquer les phénomènes de traduction et/ou de transcription, - une amorce est une sonde comprenant de 5 à 30 monomères, possédant une spécificité d'hybridation dans des conditions déterminées pour l'initiation d'une polymérisation enzymatique, par exemple dans une technique d'amplification telle que la PCR (Polymerase Chain Reaction), dans un procédé d'élongation, tel que le séquençage, dans une méthode de transcription inverse ou analogue, - l'homologie caractérise le degré de similitude de deux fragments nucléotidiques comparés. En particulier, les sondes et amorces selon la présente invention, sont celles dont les séquences sont identifiées ci-après ou celles qui présentent au moins % d'homologie et au moins 5 monomères consécutifs de séquence informationnelle identique avec ces dernières. Selon l'invention et dans des conditions qui seront détaillées plus loin dans le texte, on a déterminé la séquence nucléotidique des ARN ribosomiques 16S pour 25 espèces de corynébactéries et pour un certain nombre d'espèces bactériennes phylogéniquement voisines (voir figure). On a recherché des régions variables au sein du genre Corynebacterium qui permettent de distinguer plusieurs espèces ou groupes d'espèces de Corynebacterium. On a ainsi sélectionné des fragments nucléotidiques monocaténaires appartenant à des régions spécifiques d'au moins une espèce de corynébactéries. Pour définir ces fragments et pour les aligner, on a utilisé comme référence la numérotation de la séquence nucléotidique de 1'ARN ribosomique 16S de Corynebacterium diphteriae, complètement identifiée par le déposant au cours de ce travail, et figurant en tête des séquences décrites dans la figure. Les fragments nucléotidiques monocaténaires de l'invention présentent une séquence nucléotidique choisie parmi les séquences suivantes (numérotation en 3 0 référence à la figure): commençant au nucléotide N 72 et finissant au nucléotide N 100 commençant au nucléotide N 195 et finissant au nucléotide N 215 commençant au nucléotide N 466 et finissant au nucléotide N 494 commençant au nucléotide N 608 et finissant au nucléotide N 631 commençant au nucléotide N 838 et finissant au nucléotide N 853 commençant au nucléotide N 859 et finissant au nucléotide N 875 commençant au nucléotide N 1013 et finissant au nucléotide N 1033 de la sous-unité 16S de l'ARN ribosomique de toute espèce appartenant au genre Corynébactérie, selon le séquençage de ladite sous-unité de Corynebacterium diphteriae, et leurs séquences complémentaires. Plus particulièrement, les séquences nucléotidiques des fragments de l'invention sont choisies parmi les séquences SEQ ID NO 1 à SEQ ID NO 108 décrites en fin de description et leurs séquences complémentaires. Conformément à la définition ci-dessus les fragments de l'invention sont des fragments d'ARN, mais ils peuvent aussi être des fragments monocaténaires d'ADN résultant de la transcription inverse des fragments d'ARN précités, ou leurs fragments complémentaires, ainsi que des fragments monocaténaires d'ADN génomique dont les produits de transcription sont les fragments d'ARN précités, ou leurs fragments complémentaires. Un autre objet selon la présente invention sont des sondes ou des amorces nucléiques. Les sondes préférentielles sont celles présentant une séquence comprise dans les séquences (numérotation en référence à la figure): commençant au nucléotide N 72 et finissant au nucléotide N 100 commençant au nucléotide N 195 et finissant au nucléotide N 215 commençant au nucléotide N 466 et finissant au nucléotide N 494 commençant au nucléotide N 608 et finissant au nucléotide N 631 commençant au nucléotide N 838 et finissant au nucléotide N 853 commençant au nucléotide N 859 et finissant au nucléotide N 875 commençant au nucléotide N 1013 et finissant au nucléotide N 1033 et leurs séquences complémentaires. et plus particulièrement, une séquence comprise dans les séquences identifiées SEQ ID N0 1 à 25 SEQ ID NO 26 à 46 3 0 SEQ ID NO 47 à 60 SEQ ID NO 61 à 68 SEQ ID NO 69 à 82 SEQ ID NO 83 à 95 SEQ ID NO 96 à 108 et leurs séquences complémentaires. I1 est par ailleurs utile de noter que l'on a montré qu'il existait également, pour certaines espèces de corynébactéries, dans des régions pourtant fortement conservées de I'ARN 16S, des microhétérogénéités de séquence. Ces positions seulement conservées pour lesdites espèces de corynébactéries (voir les alignements présentés dans la figure) permettent de déterminer des sondes assurant une identification sélective, dans des conditions d'hybridation déterminées, desdites espèces de corynébactéries. Citons pour exemple; les sondes que l'on peut définir à partir du nucléotide variant (U au lieu de C) de la position 31, qui sont spécifiques de C. afermentans afermentans, C. afermentans lipophilum, C. mycetoides, C. sp group F1 @ 1 et C. sp group F1 @ 2, ou les sondes que l'on peut définir à partir des nucléotides des positions 145 à 148, comme par exemple la séquence 145 UCGU - 148 qui sont spécifiques dans les conditions d'hybridation de l'invention, de C. diphteriae, C. pseudotuberculosis et C. ulcerans. Un autre objet de l'invention est une amorce pour la transcription inverse spécifique d'une séquence d'ARN ribosomique 16S des corynébactéries appartenant à une région variable, en une séquence d'ADN complémentaire, ou une amorce notamment pour l'amplification spécifique, par réaction de polymérisation en chaîne, de la séquence d'ADN complémentaire à une séquence d'ARN ribosomique 16S des corynébactéries, appartenant à une région variable. L'invention concerne aussi un réactif pour détecter et/ou identifier au moins une espèce de corynébactéries dans un échantillon biologique comprenant au moins une sonde de l'invention, et en particulier une sonde de capture et une sonde de détection, l'une et/ou l'autre répondant à la définition d'une sonde selon l'invention. Le réactif peut comprendre un mélange de sondes de l'invention dans le but de détecter au moins deux espèces de corynébactéries. Enfin, l'invention apporte un procédé pour détecter sélectivement et/ou identifier une espèce de corynébactérie dans un échantillon biologique selon lequel on expose I'ARN ribosomique 16S, extrait des corynébactéries et éventuellement dénaturé, ou l'ADN génomique, extrait et dénaturé des bactéries, ou l'ADN obtenu à partir de la transcription inverse de l'ARN ribosomique 16S, à au moins une sonde de l'invention et on détecte l'hybridation de ladite sonde. De manière préférentielle, avant d'exposer l'ADN à la sonde de l'invention, on réalise une amplification de cet ADN en présence d'un système enzymatique adapté et au moins une amorce d'amplification de l'invention et éventuellement une amorce eubactérienne. La génèse de l'invention et certaines de ces applications sont exposées ci- après avec les Exemples 1 et 2, en référence à la figure représentant les alignements des séquences appartenant aux zones variables de I'ARN 16S pour 25 espèces de corynébactéries et 20 espèces phylogéniquement proches. Dans ces alignements, A désigne l'adénine, G la guanine, C la cytosine, U l'uracile, N l'une quelconque des 4 bases précitées, * figure l'absence de nucléotide à la position indiquée et les tirets annoncent qu'aucune modification de séquence n'est observée en référence à la séquence de C. diphteriae. Plus particulièrement, la figure se rapporte aux séquences objet de l'invention dans l'ordre de leur apparition sur l'ARNr 16S des corynébactéries et correspondent aux séquences respectivement SEQ ID NO 1 à 25 SEQ ID NO 26 à 46 SEQ ID NO 47 à 60 SEQIDNO 61 à68 SEQ ID NO 69 à 82 SEQ ID NO 83 à 95 SEQ ID NO 96 à 108 2 0 EXEMPLE 1 Détermination de la séquence nucléotidique des ARN ribosomique 16S de corynébactéries La séquence nucléotidique de l'ARN ribosomique 16S de 28 souches des espèces suivantes a été déterminée: Corynebacteriumn afermentans afermantans Corynebacterium afermnantans lipophilum Corynebacterium amoniagenes Corynebacterium amycolatuni Corynebacterium argentorarense Corynebacterium asperum Corynebacteriumin bovis Corynebacterium callunae Corynebacteriumni cystitidis Corynebacteriumn diphtheriae Corynebacterluni fiavescens Corynebacterium glutamicum Corynebacterium jeikeium Corynebacterium matruchotii Corynebacterium minutissimum Corynebacterium mycetoides Corynebacterium pilosum Corynebacterium propinquum Corynebacterium pseudodiphteriticum Corynebacteriumn pseudotuberculosis Corynebacteriumn seminale Corynebacterium sp group F-1 Corynebacterium striatum Corynebacterium ulcerans Corynebacteriumn urealyticum L'acide nucléique total de ces souches a été isolé par la méthode de Sjôbring et al. (1990. Polymerase chain reaction for detection of Mycobacterium tuberculosis. J. Clin. Microbiol. 28(10):2200-2204). Des produits d'amplification PCR qui couvrent 90% de la séquence ont été générés à partir de l'ARN ribosomique à l'aide d'amorces d'amplification de spécificité eubactérienne. Les produits d'amplification obtenus ont été directement séquençés par la méthode de terminaison de chaîne (Sanger et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1977, 74: 5463-5467), par cyclisation thermique utilisant une Taq ADN polymérase thermostable ( Perkin). EXEMPLE 2 Utilisation d'une sonde spécifique dirigée contre l'ARN ribosomique 16S pour l'identification de Corynebacterium striatum La sonde correspondant au brin complémentaire du fragment commençant au nucléotide N 6 et finissant au nucléotide N 22 de la SEQ ID N 22, a priori spécifique pour les souches de Corynebacterium striatum, a été déduite d'après les alignements des séquences nucléotidiques d'ARN ribosomique 16S de la figure. Une collection de souches de corynébactéries a été testée par hybridation sur I'ARN ribosomique 16S et a permis de constater a posteriori la spécificité de cette sonde. L'hybridation des ARN ribosomiques d'une bactérie-cible a été conduite selon le procédé de détection non-radioactif et semi-automatisé décrit dans le brevet français n 90 07249. Une sonde de capture S8L correspondant à une sonde de spécificité eubactérienne (décrite dans la demande de brevet FR n 93 02127) et un conjugué spécifique de détection oligonucléotide (correspondant à la sonde définie au début de l'exemple 2) -enzyme sont utilisés. La manipulation a été conduite dans une plaque de microtitration selon le protocole suivant. L'ARN ribosomique des souches a été extrait selon le protocole de base pour l'extraction de l'ARN des bactéries à Gram positif décrit dans "Current Protocols in Molecular Biology" 1987, Ausubel FM et al., Wiley interscience, New York. Dans une plaque de microtitration (Nunc 439454) est déposée une solution de 1 ng//l de l'oligonucléotide de capture dont l'extrémité 5' a réagi avec le réactif Aminolink 2 (Applied Biosystems, Foster city, Californie) dans du PBS 3X (0,45 M NaCl 0,15 M phosphate de sodium pH 7,0). La plaque est incubée 2 h à 37 C puis lavée 3 fois avec 300 il de PBST (PBS lx, Tween 20: 0,5 0/00O (Merck 822184)). Le réactif Aminolink 2 permet d'ajouter à l'extrémité 5' de la sonde un bras comportant un groupement 6-aminohexyle. La sonde ainsi couplée à un ligand possédant un groupement polaire (amine primaire), et fixée de façon passive sur le support, procure un signal amélioré; voir la demande FR 91 09057. La cible constituée par 10 /l d'extrait d'ARN totaux est mélangée avec Ftl de tampon PBS saumon (PBS-3X + ADN de sperme de saumon 10 gg/ml (Sigma D 9156)). L'ensemble est ajouté dans le puits dans lequel est fixée la sonde de capture, avec 50 xl d'une solution du conjugué oligonucléotide-peroxydase, constituant la sonde de détection, à la concentration de 0,1 ng/vl en oligonucléotide dans un tampon PBS-cheval (PBS 3X + 10 % sérum de cheval (BioMérieux 55842)). La plaque est incubée 1 h à 37 C puis lavée par 3 fois avec 300 1l de tampon PBST. Dans chaque puits, on rajoute 100 1l de substrat OPD (orthophénylènediamine Cambridge Medical Biotechnology ref/456) dans un tampon 0,055 M acide citrique, 0,1 M monohydrogénophosphate de sodium, pH 4,93) à la concentration de 4 mg/ml, auquel on ajoute extemporanément du peroxyde d'hydrogène à 30% dilué au 1/1000. Après 20 min de réaction l'activité enzymatique est bloquée par 100 V1 d'acide sulfurique 1N et la lecture est effectuée sur un appareil Axia Microreader (AXIA: marque enregistrée) (bioMérieux) à 492 nim. Les bactéries-cibles étaient notamment les suivantes - 8 isolats de Corynebacterium striatum - 1 souche des espèces suivantes Corynebacterium afermentans afermantans Corynebacterium afermantans lipophilum Corynebacterium amoniagenes Corynebacterium amycolatum Corynebacterium argentoratense Corynebacterium asperum Corynebacterium bovis Corynebacterium callunae Corynebacterium cystitidis Corynebacterium diphtheriae Corynebacterium fia vescens Corynebacterium glutamicum Corynebacterium jeikeium Corynebacteriumni matruchotii Corynebacterium minutissimum Corynebacterium mycetoides Corynebacterium pilosun Corynebacterium propinquumn Corynebacterium pseudodiphteriticum Corynebacterium pseudotuberculosis Corynebacterium seminale Corynebacterium sp group F-1 Corynebacteriuni ulcerans Corynebacterium urealyticum - autres espèces bactériennes: M. tuberculosis, N. asteroides, R. equi. Les résultats obtenus indiquent que la combinaison de sondes utilisée est, a posteriori, spécifique de Corynebacterium striatum. Elle ne présente pas de réaction croisée avec les acides nucléiques, en particulier l'ARN ribosomique, des autres espèces bactériennes. On a controlé que les ARN ribosomiques-cibles des autres espèces sont bien libérés lors de l'étape de lyse puisqu'ils réagissent avec une combinaison de sondes de capture et de détection dirigées contre l'ARN ribosomique 16S et de spécificité eubactérienne. L'adaptation de la combinaison spécifique sur l'automate VIDAS (marque déposée - commercialisé par la société bioMérieux-VITEK) a été effectuée. La paroi du puits de microplaque est ici remplacée par le SPR (marque de commerce) ("Solid Phase Receptacle") qui est un support conique réalisé à partir d'un matériau vendu sous la dénomination K résine (copolymère butadiène-styrène) et commercialisé par la société bioMérieux-VITEK (USA). Les divers réactifs sont disposés dans une barrette à plusieurs cuvettes et les différentes étapes se déroulent dans le SPR qui est capable d'aspirer et de refouler les réactifs et qui fait donc office de pipette. La réaction d'hybridation sandwich décrite dans le protocole ci- dessous se produit sur la paroi interne du cône. Sur la surface interne du SPR, est fixé passivement l'oligonucléotide de capture comportant à son extrémité 5' le ligand Aminolink 2 (Applied Biosystems- réf.400808) à une concentration de 1 ng/ul dans un volume de 315.l d'une solution de PBS 4x (phosphate de sodium 200 mM pH 7,0, NaCl 600 mM). Après une nuit à température ambiante ou deux heures à 37 C, les cônes sont lavés 2 fois par une solution PBS Tween, puis séchés sous vide. La barrette contient dans des cuvettes les réactifs nécessaires à la détection, c'est à dire: 200 1Àl d'une solution à 0,1 ng/l du conjugué de détection oligonucléotide-phosphatase alcaline, 2 fois 600 tl de solution de lavage PBS Tween et une cuvette de substrat. Dans le premier puits de la barrette, sont déposés 10 pl de l'ARN extrait dans le même tampon que pour le protocole microplaque ci-dessus. Après incubation 30 minutes du cône par le mélange cible plus sonde de détection, le cône est lavé 2 fois par une solution de PBS Tween. 250 /l de substrat MUP (méthyl-4 umbelliféryl phosphate) en solution dans un tampon diéthanolamine sont aspirés dans le cône, puis relachés dans une cuvette de lecture. L'appareil mesure le signal fluorescent exprimé en URF (unités relatives de fluorescence) de la cuvette. Les résultats obtenus avec ce système sont les mêmes que ceux obtenus en microplaque. LISTE DES SEQUENCES SEQIDN 1 ACGGAAAGGCCUAGCUUGCUAG 5 SEQ ID N 2 ACGGAAAGGCAGUGCUUGCACUG SEQIDN 3 ACGGAAAGGCCAAGCUUGCUUG SEQ ID N 410 ACGGAAAGGCCUGUACUUGUACAG SEQ ID N 5 ACGGUAAGGCUCCAGCUUGCUGGG SEQ ID N 6 ACGGAAAGGCCUAAGCUUGCUUGG15 SEQ ID N 7 ACGGAAAGGCCCCAGCUUGCUGGG SEQIDN 8 ACGAUGAAGCUUAGCUUGCUAG SEQ ID N 92 o ACGGAAAGGCUCUAGCUUGCUAGG SEQ ID N 10 ACGGAAAGGCCCCUAGCUUGCUGGGG SEQ ID N 11 ACGCUNNAACCGGAGCUUGCUUUG25 SEQIDN 12 ACGGAAAGGCUCCUUGCUUGCAAGGG SEQ ID N 13 ACGGAAAGGCCCCCACUUUUUUGGUGGGG SEQ ID N 143 o ACGGAAAGGCCGAAGCUUGCUUUG SEQ ID N 15 ACGGAAAGGCCUGCUUGCAGG SEQ ID N 16 ACGGAAAGGCCUUUUCGGAG35 SEQIDN 17 ACGGAAAGGCCUCUUCGGAG SEQ ID N 18 ACGGAAAGGCCCCUUCGGGG SEQ ID N 19 5 ACGGAAAGGCUCCAGCUUGCUGGG SEQ ID N 20 ACGGAAAGGCUCCUGCUUGCUAGGG SEQ ID N 21 ACGGAAAGGCAGUGCUUGCUACUGlo SEQIDN 22 ACGGAAAGGCCGCAGCUUGCUGCGG SEQ ID N 23 ACGGAAAGGCCCCUUCGGG SEQ ID N 2415 ACGGAAAGGCCCCUUCGGG SEQ ID N 25 ACGGAAAGGCCCCUGCUUGCAGG SEQ ID N 26 CAUGCUUUAGUGUGUGUG20 SEQIDN 27 CACAUUUUGGAUGGUGUG SEQ ID N 28 CACUUCUUGGAUGUUGUG SEQ ID N 2925 CAUGGUGUGGAUGCUGUG SEQ ID N 30 CAUCCUUUAGUGUGUGAUG SEQ ID N 31 CGCACCGUGAGGGUGUG30 SEQIDN 32 CGUGCUUUAGUGUGUGCG SEQ ID N 33 ACACUAUCUUUACGGUGGUGU SEQ ID N 3435 GUAUCUUUUGUGGGUGU SEQ ID N 35 GGUCUUUGGUGUGAUUG SEQ ID N 36 ACCACCGUAGGGGUGGU 5 SEQIDN 37 CAUGGUUUAGUGUCUCAUG SEQ ID N 38 CCGUCUUUAGUGUGGUGG SEQ ID N 3910 CUGCAUGUUGGUGUGUGG SEQ ID N 40 CUUUGUG SEQ ID N 41 NGCACUUUAGUGUGUGUG15 SEQIDN 42 CGCGCUUUAGUGUGUGUG SEQ ID N 43 CGCAUCGUGGUUGGUGUG SEQ ID N 4420 AACUUUUUGGAUAUUGUU SEQ ID N 45 AGCUGUUUAGUGUCAGUU SEQ ID N 46 CAAUCUUUAGUGUGGUUG25 SEQIDN 47 GAAGCUUUUGUGACGGU SEQ ID N 48 GAAGCGUAUUUGUGACGGU SEQ ID N 4930 NNNNNNNNNGGUGGUGACGGU SEQ ID N 50 GAAGGGUUUCUGACGGU SEQ ID N 51 GAAGAGUUACAUUGACGGU35 SEQIDN 52 GAAGCGUGUGUGACGGU SEQ ID N 53 GAAGCCUUUNNNAAGGUGACGGU SEQ ID N 545 GAAGCCUUAUGGUGACGGU SEQ ID N 55 GAAGCACUGUGUGGUGACGGU SEQ ID N 56 GAAGCGUUUUGUGACGGU10 SEQ ID N 57 GAAGCUUUUUGUGACGGU SEQ ID N 58 GAAGCAUUAUGUGACGGU SEQ ID N 5915 GAAGCGUAAGUGACGGU SEQ ID N 60 GAAGCCUUCGGGUGACGGU SEQ ID N 61 CGUCUGUGAAAUUCCGGGGCUUAA20 SEQIDN 62 CGUUUGUGUAAGCNNNCAGCUUAA SEQ ID N 63 CGUCUGUGAAAUCCCGGGGCUUAA SEQ ID N 6425 CGUCUGUGGAAGUCCGGGGCUUAA SEQ ID N 65 CGUUUGUGUAAGUCCACGGCUUAA SEQ ID N 66 CGUCUGUGAAAUUCCACAGCUUAA30 SEQIDN 67 CGUCUGUGUAAUCCAGGGGCUUAA SEQ ID N 68 CGUUUGUGUAAGUCCACAGCUUAA SEQ ID N 6935 UAGGUGUGAGGGUCU SEQ ID N 70 UAGGUGUGAGUCCCU SEQ ID N 71 UAGGUGUAGGGGGCU 5 SEQIDN 72 UAGGUGUGGGUUUCCU SEQ ID N 73 UAGGUGUAGGGGACU SEQ ID N 7410 UAGGUGUGGGGAUCU SEQ ID N 75 UAGGUGUGAGAUCCU SEQ ID N 76 UAGGUGUAGGGGUCU15 SEQIDN 77 UAGGUGUGGGGGUUUN SEQ ID N 78 UAGGUGUGGGGACC SEQ ID N 7920 UAGGUGUAGGGGCCU SEQ ID N 80 UAGGUGUAGGGACCU SEQ ID N 81 UAGGUGUGAGUCCCNU25 SEQIDN 82 UAGGUGUGGGGAUUU SEQ ID N 83 GACUUUCGUGCCGUAG SEQ ID N 8430 GGGGUUCGUGCCGUAG SEQ ID N 85 GUCUUCUGUGCCGUAG SEQ ID N 86 GAUUUCCGUGCCGUAG35 SEQIDN 87 GUCUUCUGUGCCGCAG SEQ ID N 88 GGGUUUUGUGCCGUAG SEQ ID N 89 5 GACUUCUGUGCCGCAG SEQ ID N 90 GAUUCCCGUGCCGUAG SEQ ID N 91 GGUUUCNGUGCCGUAG10 SEQIDN 92 GUUUUCUGUGCCGUAG SEQ ID N 93 GGUUUCUGUGCCGUAG SEQ ID N 9415 GGGGUUUGUGCCGUAG SEQ ID N 95 GGGAUUUGUGCCGUAG SEQ ID N 96 UGCAGGAUCGGCGUAGUGAU20 SEQIDN 97 CACCAGAUCGCCGUAGAGAU SEQ ID N 98 UACAGGAUUGGGCUAGAGAU SEQ ID N 9925 UACAGGAUCGCGCCAGAGAU SEQ ID N 100 UACAGGAUCGCUGCAGAGAU SEQ ID N 101 GGCAGGACCGGCGUGGAGAC30 SEQIDN 102 CACUGGAUUGCCAUGGAGAC SEQ ID N 103 UGCAGGAUUGGGUCAGAGAU SEQ ID N 10435 CACCAGACGGUCGUAGAGAUA SEQID N 105 CACUAGAUCGCUGUAGAGAU SEQ ID N 106 CACCGGAUCGGGCUAGAGAU SEQID N 107 UACGGGAUCGCCGCAGAGAU SEQ ID N 108 UACAAGACAGGCGUAGAGAU REVENDICATIONS 1) Fragment nucléotidique monocaténaire appartenant à une région variable de 1'ARN ribosomique 16S des espèces du genre Corynebacterium, caractérisé en ce que ledit fragment est choisi parmi les fragments présentant les séquences nucléotidiques suivantes de I'ARN 16S: commençant au nucléotide N 72 et finissant au nucléotide N 100 commençant au nucléotide N 195 et finissant au nucléotide N 215 commençant au nucléotide N 466 et finissant au nucléotide N 494 commençant au nucléotide N 608 et finissant au nucléotide N 631 commençant au nucléotide N 838 et finissant au nucléotide N 853 commençant au nucléotide N 859 et finissant au nucléotide N 875 commençant au nucléotide N 1013 et finissant au nucléotide N 1033 et leurs séquences complémentaires, les numéros des nucléotides correspondant à leur position par rapport à la séquence nucléotidique de I'ARN ribosomique 16S de Corynebacteriumn diphteriae, utilisée comme référence. 2) Fragment selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il présente une séquence informationnelle choisie parmi les séquences SEQ ID N à SEQ ID N 108, et leurs séquences complémentaires. 3) Fragment nucléotidique monocaténaire d'ADN, caractérisé en ce qu'il est obtenu par transcription inverse d'un fragment nucléotidique selon la revendication 1 ou 2, ou son fragment complémentaire. 4) Fragment nucléotidique monocaténaire d'ADN génomique caractérisé en ce que son produit de transcription est un fragment nucléotidique selon la revendication 1 ou 2, ou son fragment complémentaire. 5) Sonde pour l'identification d'espèces de bactéries du genre Corynebacterium, caractérisée en ce qu'elle comprend une séquence d'au moins cinq monomères appartenant à la séquence d'un fragment selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, ou à toute séquence homologue. 6) Sonde selon la revendication 5, caractérisée en ce qu'elle comprend une séquence d'au moins huit monomères. 7) Sonde de thérapie pour le traitement des infections dues à une espèce déterminée de corynébactéries, caractérisée en ce qu'elle comprend une séquence nucléotidique appartenant à la séquence d'un fragment selon l'une quelconque des revendications 1 à 4. 8) Amorce pour la transcription inverse spécifique d'une séquence d'ARN ribosomique 16S des corynébactéries appartenant à une région variable, en une séquence d'ADN complémentaire, caractérisée en ce qu'elle comprend une séquence nucléotidique d'au moins cinq monomères appartenant à la séquence d'un fragment nucléotidique selon l'une des revendications 1 à 4, ou à toute séquence homologue. 9) Amorce notamment pour l'amplification enzymatique spécifique d'au moins une séquence d'acide nucléique, telle que par réaction de polymérisation en chaîne, caractérisée en ce qu'elle comprend une séquence d'au moins cinq monomères appartenant à la séquence d'un fragment nucléotidique selon l'une des revendications 1 à 4, ou à toute séquence homologue. ) Réactif pour détecter et/ou identifier au moins une espèce de corynébactéries dans un échantillon biologique, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une sonde d'identification selon l'une des revendications 5 à 6. 11) Réactif selon la revendication 10, caractérisé en ce qu'il comprend une sonde dite de capture et/ou une sonde dite de détection selon la revendication 5 ou 6, ladite sonde de capture et ladite sonde de détection présentant une séquence nucléotidique au moins partiellement différente. 12) Réactif selon la revendication 11, caractérisé en ce que la sonde de capture est fixée sur un support solide directement ou indirectement. 13) Réactif selon les revendications 11 ou 12, caractérisée en ce que la sonde de détection est marquée au moyen d'un marqueur choisi parmi les isotopes radioactifs, des enzymes notamment choisis parmi la péroxydase et la phosphatase alcaline et ceux susceptibles d'hydrolyser un substrat chromogène, fluorigène ou luminescent, des composés chimiques chromophores, des composés chromogènes, fluorigènes ou luminescents, des analogues de bases nucléotidiques, et la biotine. 14) Réactif pour détecter et/ou identifier au moins deux espèces différentes de corynébactéries dans un échantillon biologique, caractérisé en ce qu'il comprend un mélange de sondes selon l'une quelconque des revendications 5 à 6. 15) Réactif selon la revendication 10, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une amorce selon la revendication 8 et/ou au moins une amorce selon la revendication 9. 16) Procédé de détection sélective et/ou d'identification d'une espèce de corynébactéries dans un échantillon biologique, caractérisé en ce qu'on expose l'ARN ribosomique 16S, extrait des bactéries contenues dans ledit échantillon à au moins une sonde selon la revendication 5 ou 6, et on détecte l'hybridation de ladite sonde. 17) Procédé de détection sélective et/ou d'identification d'une espèce de corynébactéries dans un échantillon biologique, caractérisé en ce qu'on expose l'ADN génomique, extrait et dénaturé des bactéries contenues dans ledit échantillon à au moins une sonde selon la revendication 5 ou 6, puis on détecte l'hybridation de ladite sonde. 18) Procédé de détection sélective et/ou d'identification d'une espèce de corynébactéries dans un échantillon biologique, caractérisé en ce qu'on expose I'ADN obtenu par transcription inverse de l'ARN ribosomique 16S des bactéries contenues dans ledit échantillon à au moins une sonde selon la revendication 5 ou 6, puis on détecte l'hybridation de ladite sonde. 19) Procédé selon la revendication 17 ou 18, caractérisé en ce qu'avant d'exposer l'ADN à ladite sonde, on réalise une amplification dudit ADN génomique en présence d'un système enzymatique adapté et au moins une amorce selon la revendication 9.