FR 2700338 A1 19940713 FR 9300171 A 19930111 1 - NOUVELNLE SEQ@UENCE PRO PERMETTNT LA: S-ECRETION DE:PROTEINES HETEROLOGUESA PARTIR ll:l::2 D'UN: C eLLUL:, E:E im::DLVR À:'-,;:,: ',,,,;: ' ' ''' ',_'__M_: La présente invention a trait à une nouvelle séquence pro capable de promouvoir la maturation de précurseurs de protéines hétérologues et la sécrétion desdites protéines hétérologues, à partir d'une cellule de levure recombinante La nouvelle séquence pro est dérivée du précurseur de la défensine A de Phormia terranovae L'invention concerne plus particulièrement une cassette d'expression, un vecteur ainsi qu'une cellule de levure contenant un fragment d'ADN codant pour ladite séquence pro et un procédé de préparation de protéines hétérologues mettant en oeuvre une telle séquence La présente invention est particulièrement destinée a la production par la levure, notamment une levure du genre Saccharomyces cerevisiae (S cerevisiae), de protéines hétérologues présentant un intérêt industriel, qui seront secrétées dans le milieu de culture des levures dans 3 o lequel elles pourront être récupérées. Les levures sont des organismes eucaryotes unicellulaires Depuis déjà de nombreuses années, les levures et plus particulièrement les levures du genre úS cerevisiae, sont couramment utilisées pour la production de protéines d'intérêt industriel En effet, la génétique et la biochimie de cette souche ont -2- été étudiées intensivement en laboratoire. Leur intérêt à titre de cellules hôte repose sur le fait qu'il s'agit d'organismes se multipliant rapidement dans des milieux non coûteux et dont la génétique peut être facilement manipulée en utilisant les techniques de I'ADN recombinant. On a établi que la levure est capable de secréter quelques protéines dans le milieu externe D'une manière générale, le processus de sécrétion est 1 o un processus complexe, qui nécessite le passage de la protéine à secréter, du cytoplasme dans le réticulum endoplasmique pour, en bout de course, être secrétée dans le milieu externe. D'une manière générale, les protéines secrétables sont exprimées sous la forme d'un précurseur contenant une séquence signal amino-terminale De nombreux précurseurs de protéines secrétées et de protéines membranaires ont été décrits dans la littérature, tant chez les procaryotes que chez les eucaryotes. D'une manière générale, une séquence signal contient un grand nombre de résidus d'acides aminés hydrophobes Sa fonction est de promouvoir le passage d'un précurseur d'une protéine devant être secrétée, dans le réticulum endoplasmique Au cours de cette étape de la sécrétion, la séquence signal est clivée par une endopeptidase associée à la membrane, 2 5 encore appelée signal peptidase, pour donner la protéine mature. Ainsi, pour qu'une protéine hétérologue soit secrétée dans la levure, elle doit être précédée d'une séquence signal, encore appelée séquence pré, reconnue par la levure En général, on utilise une séquence signal C homologue, issue d'une protéine secrétable de la levure, qui va diriger la sécrétion de la protéine de fusion, séquence signal homologue- protéine hétérologue mature. En outre, la sécrétion peut nécessiter la présence additionnelle d'une séquence dans le précurseur de la protéine destinée à être secrétée, cette séquence supplémentaire étant appelée séquence pro Ainsi, la protéine à -3- secréter est exprimée sous la forme d'un précurseur pré- pro-protéine De nombreuses protéines de levure naturellement secrétées contiennent, outre la séquence pré, une séquence pro. Ainsi, le facteura (M Fo,) qui dérive du gène M Fal, est une phéromone sexuelle secrétée par les cellules haploïdes de S cerevisiae de type MA Ta Le facteurv est initialement synthétisé sous la forme d'un précurseur prépro- facteura Ledit précurseur consiste en une séquence signal ou séquence pré de 19 acides aminés, suivie d'une séquence pro de 64 acides aminés contenant trois sites de glycosylation, elle même suivie d'une séquence Lys- Arg précédant 4 copies du facteurs séparées par des peptides espaceurs contenant entre autre le dipeptide Lys-Arg (Kurjan et Herskowitz, Cell, 1982, , 933-943). 1 5 Il est connu que le système endogène de sécrétion de la levure peut être mis en oeuvre pour permettre la sécrétion de protéines hétérologues mature dans le milieu de culture C'est un système particulièrement avantageux d'un point de vue industriel, puisque la protéine hétérologue peut être récupérée directement du milieu de culture, évitant ainsi les étapes de broyage ou de cassage des cellules difficiles à maîtriser et éliminant les risques de dégradation intracellulaire dus aux nombreuses protéases contenues dans une levure. Ainsi, de nombreuses publications relatent l'utilisation des séquences pré et pro du facteura codées par le gène M Fa 1 (pré M Fca, pro M Fal), pour produire Lun grand nombre de protéines étrangères à la levure, par exemple l'hirudine L'hirudine est un inhibiteur très spécifique et efficace de la thrombine Il s'agit donc d'un agent thérapeutique très intéressant présentant une activité anticoagulante Un certain nombre de variants de l'hirudine ont été identifiés et produits dans des souches de S cerevisiae, en utilisant le procédé de sécrétion mettant en oeuvre les séquences pré et pro M Fa 1, cornmme cela est décrit dans les demandes EPA 0252854 et EPA 0273800 au nom de la demanderesse. D'autre part, Dimarcq et al (EMBO J, 1990, 9, 2507-2515) ont récemment mis en évidence que les larves d'insecte Phormia terranovae, dans -4lesquelles ont été injectées des bactéries, produisent et secrètent dans le sang un produit bactéricide anti gram+, encore appelé défensine A Ces auteurs ont publié la séquence d'un ADN complémentaire (AD Nc) codant pour un précurseur de la défensine A Le précurseur est constitué de 94 acides aminés, dont les 40 acides aminés C-terminaux correspondent à la défensine A mature La séquence pré comprend les 23 ou 28 premiers acides aminés N- terminaux et montre toutes les caractéristiques d'une séquence signal (nature hydrophobe et présence d'un site potentiel de clivage par une signal peptidase après l'alanine en position 23 ou l'alanine en position 28) La séquence pré est suivie d'une séquence pro de 31 ou 26 acides aminés, selon la longueur de la séquence pré, qui se termine par un dipeptide basique Lys- Arg. On a maintenant trouvé que la séquence pro du précurseur de la défensine A peut être utilisée pour secréter efficacement des protéines hétérologues dans la levure, notamment dans la levure du genre S cerevisiae. L'utilisation de ladite séquence pro de défensine A est notamment utile pour produire dans la levure des protéines hétérologues présentant un intérêt industriel, comme par exemple l'hirudine ou la trophoblastine d'ovin contenant, en outre, une extension N-terminale constituée par le dipeptide Ala-Pro, ladite extension n'ayant aucun effet sur l'activité biologique du produit (Degryse et al, Gene, 1992, 118, 47-53). La présente invention a donc pour objet une cassette d'expression permettant la synthèse d'une protéine hétérologue mature, comprenant au moins un fragment d'ADN codant pour un précurseur de ladite protéine hétérologue; ledit précurseur comprenant: 3 o une séquence pré fonctionnelle dans la levure, la séquence pro du précurseur de la défensine A de Phormia terranovae, un variant ou un fragment fonctionnel de celle-ci, et une séquence correspondant à celle de ladite protéine hétérologue sous forme mature; -5- ledit fragment d'ADN étant sous le contrôle des éléments nécessaires à son expression. Par protéine hétérologue, on entend toute protéine qui n'est pas produite naturellement par la levure, ainsi que toute protéine qui n'est pas produite naturellement par Phonnia terranovae. Les protéines hétérologues qui peuvent être synthétisées dans un tel système, peuvent être constituées par toute protéine hétérologue mature native Cependant d'une manière alternative, une protéine hétêrologue mature peut être constituée par la fusion de deux ou plusieurs polypeptides d'intérêt d'origine diverse, par une protéine hétérologue mutée par rapport à la protéine hétérologue native, de manière à présenter une activité biologique améliorée ou modifiée ou par une protéine hétérologue comprenant une extension N-terminale de un ou plusieurs acides aminés. A titre d'exemple, on cite l'hirudine, notamment son variant r HV 2- Lys 47 et la trophoblastine ovine comprenant une extension N-terminale constituée par le dipeptide Ala-Pro. Par séquence pré, on entend une séquence pré principalement hydrophobe en nature, présente à l'extrémité N-terminale de la forme précurseur d'une protéine destinée à être secrêtée et dont la fonction est de permettre au précurseur de ladite protéine d'entrer dans le chemin de secretion, en particulier dans le réticulum endoplasmique, d'une cellule de levure La séquence pré est normalement clivée au cours du processus de sécrétion par une signal peptidase endogène. La séquence pré peut être naturelle ou synthétique, hétérologue ou homologue à la levure, peut être constituée par un variant d'une séquence pré naturelle ou par un fragment fonctionnel de celle-ci Par fragment fonctionnel, on entend tout fragment d'une séquence pré naturelle capable d'assurer l'entrée d'un précurseur d'une protéine secrétable dans le chemin de secrétion d'une cellule de levure. De préférence, on utilisera un fragment d'ADN codant pour un -6précurseur dont la séquence pré est une séquence pré homologue à la levure, par exemple la séquence pré du précurseur du facteur a (M Fa 1 l), de l'invertase ou de la iglucanase 2 (BGL 2) de S cerevisiae. Une séquence pro du précurseur codé par le fragment d'ADN utilisé -dans la cassette d'expression selon l'invention, peut être notamment la séquence pro native du précurseur de la défensine A de Phormia terranovae, telle que montrée dans l'identificateur de séquence SEQ ID NO:1, dans laquelle le résidu X en position + 9 est un résidu alanine et le résidu Y en position + 30 est un résidu lysine, ou un variant de cette dernière séquence pro. Un variant de la séquence pro, peut comporter plusieurs mutations par rapport à la séquence pro native du précurseur de la défensine A de Phormia terranovae, notamment la substitution, l'addition ou la délétion d'un ou plusieurs acides aminés, à la condition qu'un tel variant soit capable de diriger un précurseur d'une protéine hétérologue secrétable du réticulum endoplasmique à l'appareil de Golgi puis de permettre la secrétion de ladite protéine hétérologue dans le milieu de culture d'une cellule de levure. De manière plus particulière, une séquence pro a notamment une séquence dont le degré d'homologie avec la séquence pro native du précurseur de la défensine A de Phormia terranovae est supérieur à 80 %, de manière avantageuse supérieur à 90 % et de préférence supérieur à 95 %. Au cours du processus de sécrétion, la séquence pro est clivée par une endoprotéase, laquelle reconnaît à l'extrémité 3 ' de ladite séquence pro, une séquence cible constituée par un dipeptide basique de type Lys-Arg ou Arg- Arg et clive après ladite séquence cible, libérant ainsi la protéine hétérologue mature L'endoprotéase peut être homologue ou hérérologue à la levure, peut être constituée par un variant ou un fragment fonctionnel de celleci. Par endoprotéase, on entend toute endoprotéase capable de recomnattre et cliver après une séquence cible située à l'extrémité 3 ' de ladite séquence pro, notamment après un dipeptide basique Lys-Arg ou Arg-Arg On peut citer, par exemple, le produit de tout ou partie du gène KEX 2 de S cerevisiae ou une endoprotéase hétérologue exprimée dans la cellule de levure, comme la -7- furine des cellules de mammifères. Ainsi la séquence pro comporte à son extrémité 3 ' un dipeptide basique Lys-Arg ou Arg-Arg permettant de cliver la séquence pro de la protéine à secréter probablement dans l'appareil de Golgi, libérant ainsi la forme mature de ladite protéine. Selon un mode préféré, la séquence pro a la séquence en acides aminés telle que montrée dans l'identificateur de séquence SEQ ID NO:1, débutant à l'acide aminé en position + 1 ou + 6 et se terminant à l'acide aminé + 31, dans laquelle le résidu X en position + 9 est un résidu alanine ou thrêonine et le résidu Y en position + 30 est un résidu arginine ou lysine. Ainsi, la séquence pro est avantageusement choisie parmi: ( 1) la séquence pro du précurseur de la défensine A de hormia tetranovae, débutant à l'acide aminé en position + 1 et se terminant à l'acide aminé + 31, dans laquelle le résidu X en position + 9 est iun résidu alanine et le résidu Y en position + 30 2 o est un résidu arginine. ( 2) la séquence pro du précurseur de la défensine A de Phonnia terranovae, débutant à l'acide aminé en position + 1 et se terminant à l'acide aminé + 31, dans laquelle le résidu X en 2 5 position + 9 est un résidu thréonine et le résidu Y en position + 30 est un résidu arginine. ( 3) la séquence pro du précurseur de la défensine A de Phormia terranovae, débutant à l'acide aminé en position + 1 et se terminant à l'acide aminé + 31, dans laquelle le résidu X en position + 9 est un résidu alanine et le résidu Y en position + 30 est un résidu lysine. ( 4) la séquence pro du précurseur de la défensine A de Phtormia 3 5 terranovae, débutant à l'acide aminé en position + 1 et se terminant à l'acide aminé + 31, dans laquelle le résidu X en -8- position + 9 est un résidu thréonine et le résidu Y en position + 30 est un résidu lysine. ( 5) la séquence pro du précurseur de la défensine A de Phormia terranovae, débutant à l'acide aminé en position + 6 et se terminant à l'acide aminé + 31, dans laquelle le résidu X en position + 9 est un résidu alanine et le résidu Y en position + 30 est un résidu arginine. ( 6) la séquence pro du précurseur de la défensine A de Phomnnia terranovae, débutant à l'acide aminé en position + 6 et se terminant à l'acide aminé + 31, dans laquelle le résidu X en position + 9 est un résidu thréonine et le résidu Y en position + 30 est un résidu arginine. ( 7) la séquence pro du précurseur de la défensine A de Phonnrmia terranovae, débutant à I'acide aminé en position + 6 et se terminant i l'acide aminé + 31, dans laquelle le résidu X en position + 9 est un résidu alanine et le résidu Y en position + 30 2 o est un résidu lysine. ( 8) la séquence pro du précurseur de la défensine A de Phornnia terranovae, débutant à l'acide aminé en position + 6 et se terminant à l'acide aminé + 31, dans laquelle le résidu X en position + 9 est un résidu thréonine et le résidu Y en position + 30 est un résidu lysine. Par éléments nécessaires à l'expression du fragment d'ADN codant pour un précurseur d'une protéine hétérologue, on entend l'ensemble des éléments permettant la transcription dudit fragment d'ADN en ARN messager (AR Nm) et la traduction dle l'AR Nm en protéine. La cassette d'expression selon l'invention, comporte notamment un promoteur fonctionnel dans une cellule de levure De tels promoteurs sont 3 5 bien connus de l'homme de l'art et sont insérés dans la cassette d'expression en amont du fragment d'ADN à transcrire, par les techniques -9- conventionnelles du génie génétique Leur séquence peut être modifiée par rapport à la séquence des promoteurs naturels, afin d'inclure ou de modifier un ou plusieurs sites de restriction permettant ainsi de faciliter les étapes de clonage On citera, par exemple, les promoteurs du gène PGK (phosphoglycérate kinase), du gêne M Fa 1 et du gène ADH (alcool- dehydrogénase) de levure. Une cassette d'expression selon l'invention, présentant un intérêt particulier, est celle qui associe un fragment d'ADN codant pour un précurseur de l'hirudine, comportant la séquence pré du précurseur du facteur a de la levure, la séquence pro du précurseur de la défensine A de Phormia terranovae, débutant à l'acide aminé en position + 1 et se terminant à l'acide aminé + 31, dans laquelle le résidu X en position + 9 est un résidu alanine et le résidu Y en position + 30 est un résidu lysine et la séquence correspondant à celle du variant r HV 2-Lys 47 de l'hirudine, ledit fragment d'ADN étant sous le contrôle du promoteur du gène M Fal de la levure. Enfin, la cassette d'expression selon l'invention peut comprendre, en outre, un terminateur de transcription fonctionnel dans la levure, par 2 o exemple, une séquence de terminateur du gène PGK. La cassette d'expression selon l'invention peut être insérée dans un vecteur d'expression qui sert à transformer une cellule de levure hôte Les vecteurs d'expression selon l'invention, seront en général des plasmides à replication autonome Ces plasmides peuvent comporter des éléments assurant leur replication, c'est à dire une origine de replication, telle que celle du plasmide 2 " de levure et des éléments de sélection, tel le gène URA 3 OU LEU 2 qui assurent la complémentation des mutants de levure ura 3 ou leu 2 En particulier, on pourra avantageusement utiliser un gène de 3 o sélection délété de son promoteur afin d'augmenter le nombre de copies de plasmides dans une cellule de levure. Ces plasmides peuvent également comporter des éléments assurant leur replication dans Escheric/zia coli (E col), lorsque le plasmide doit être un plasmide navette, par exemple, une origine de replication telle que celle du plasmide p BR 322, un gène marqueur tel que le gène de la jlactamase - conférant la résistance a l'ampicilline et/ou d'autres éléments connus de l'homme du métier. De manière préférée, le vecteur d'expression selon l'invention comprend, en outre, une ou plusieurs copies de tout ou partie du gène KEX 2 menant à une augmentation de l'activité protéolytique de l'endoprotéase ysc F Le gène complet pourvu de son propre promoteur peut être utilisé ainsi que des fragments de ce gène, comme cela est décrit dans la demande EPA 396436 au nom de la demanderesse. L'invention s'étend également à une souche de levure transformée avec un vecteur d'expression selon l'invention ou comprenant une cassette d'expression selon l'invention intégrée dans son génome Parmi toutes les souches de levure envisageables, on peut citer les levures Saccharomyces cerevisiae, Hansenula polymorpha, Pichia pastoris et Kuyveromyces lactis, Cependant, on utilisera de préférence les souches du genre Saccharomyces, notamment de l'espèce cerevisiae, On utilisera, par exemple, une souche de génotype ura 3 ou leu 2 ou autre qui pourra être complémentée par le vecteur selon l'invention, pour assurer le maintien du vecteur dans la levure par une pression de sélection appropriée On pourra également utiliser une souche surproductrice de I'endoprotéase ysc F comprenant dans son génome une ou plusieurs copies de tout ou partie du gène KEX 2. L'invention a également trait à un procédé de préparation par des levures d'une protéine hétérologue mature, selon lequel on cultive la souche de levure selon l'invention dans un milieu de culture approprié et on récupère la protéine hétérologue mature secrétée dans le milieu de culture. Enfin l'invention a pour objet une protéine hétérologue mature 3 O obtenue par la mise en oeuvre d'un procédé selon l'invention. Les exemples ci-après permettront de mettre en évidence d'autres caractéristiques et avantages de la présente invention Ces exemples seront illustrés par les figures suivantes. La Figure 1 représente la reconstitution du gène synthétique de la 11 - défensine A d'insecte par assemblage de 9 oligonucléotides. La Figure 2 représente le profil de chromatographie obtenu après analyse par HPLC analytique en phase réverse, des surnageants de culture de A: la souche de S cerevsiae TGY 47 1 transformée par p TG 6823; et B: la souche de S cerevisiae TGY 47 1 transformée par p TG 6824. La Figure 3 représente le profil de chromatographie obtenu après analyse par HPLC analytique en phase réverse, des surnageants de culture de A;: la souche de S cerevisiae T O Y 47 1 transformée par p TG 8835; et B: la souche de S cerevisiae TGY 47 1 transformée par p TG 8836. La Figure 4 montre la séparation sur gel SDS-PAGE 12,5 %o des 6 chantillons issus des cultures de 2: la souche S cerevisiae T O Y 47 1 non transformée; 3: la souche S cerevisiae TGY 47 1 transformée par le plasmide p TG 8840; et 4: la souche S cerevisiae TGY 47 1 transformée par le plasmide p TO 8843 La ligne 1 correspond aux protéines marqueur, dont le poids moléculaire en k DA est indiqué sur le côté gauche de la Figure Le gel est coloré au bleu de Coommassie. EXEMPLEI -:construction des vecteurs p TG 6823 et p TG 6824 et production de r HV 2-Lys 47 dans le milieu de culture par une souche de levure transformée par lesdits vecteurs. Le gène synthétique de la défensine A de Phormia terranovae est reconstitué en assemblant 9 oligonueléotides, comme indiqué dans la Figure 1. 3 o La partie 5 ' du gène de la défensine A, à laquelle ont été rajoutés 15 nucléotides codant pour les 5 acides aminés C-terminaux de la séquence pro M Fa I de levure (Ser-leu-Asp-Lys-Arg) dont le codon codant pour la S 6 rine a été modifié pour générer en 5 ' un site Hind I Il, dérive de l'assemblage de trois oligonucléotides décrits dans les SEQ ID NO:2, 3 et 4 (bloc A sur la 3 5 Figure 1). -12- La partie 3 ' du gène de la défensine A d'insecte est obtenue par l'assemblage de six oligonucléotides décrits dans les SEO ID NO:5 à 10 (bloc B sur la Figure 1) Les oligonucléotides réassemblés sont introduits entre les sites Kpn I et Eco RI du phage M 13 TG 131 (Kieny et ai, Gene, 1983, 26, 91- 99) La partie 5 ' est ensuite insérée entre les sites Hind III et Kpn I du vecteur phagique précédant, générant ainsi le phage M 13 TG 3849 contenant le gêne complet de la défensine A d'insecte Le fragment Hindl II-Bam I Hl comprenant la séquence codant pour la Ser-Leu-Asp-Lys- Arg-défensine A est isolé de M 13 TG 3849 Parallèlement, un fragment Sph I-Hind III est purifié de M 13 TG 3868 Le phage M 13 TO 3868 contient la séquence codant pour une protéine de fusion composée de la séquence pré et la séquence pro M Fal se terminant par le dipeptide Lys- Arg, suivie de la séquence correspondant à celle du variant r HV 2-Lys 47 de l'hirudine, placée sous le contrôle du promoteur du gène de levure M Fa 1 On peut signaler que la séquence pro M Fcal contient un site artificiel Hind II au niveau du codon codant pour la sérine située 5 acides aminés avant l'extrémité C terminale de ladite séquence pro De plus, le promoteur inclu dans M 13 TG 3868 est une version modifiée du promoteur du gène MFI 1 En 2 o effet, le promoteur est modifié par le remplacement du site Eco RI 5 ' par un site Sph I et par la destruction du site Bgll I interne par un traitement au grand fragment de 1 'ADN polymérase I d'E coli Le fragment Sphl-Hind III de M 13 TG 3868 contient donc la séquence correspondant à la protéine de fusion suivante: séquence pré M Fal, séquence pro M Fa 1 dépourvue des 5 acides aminés C-terminaux Ser-Leu-Asp-Lys-Arg, le tout étant sous le contrôle du promoteur modifié du gène M Fa 1. Les deux fragments sont purifies sur gel et liés au vecteur M 13 mp 18 (Oibco BRL) dans lequel le site unique Hind III est détruit par un traitement au grand fragment de I'ADN polymérase I d'E coli On transforme le mélange de ligation dans la souche E coli NM 522 et on identifie par digestion enzymatique un clone comprenant le promoteur modifié du gène M Ful en amont de la séquence pré M Fa de la séquence pro MF"l se terminant par le dipeptide Lys-Arg suivie de la séquence synthétique codant pour la défensine A de Phonnia terranovae Ledit clone est désigné M 13 TG 4813. 13 - Le vecteur M 13 TG 4813 est soumis à une mutagénèse dirigée mettant en oeuvre l'oligonucléotide décrit dans la SEQ ID NO:1 l, afin d'introduire un site Nhe I dans la partie 3 ' de la séquence codant pour le peptide pré MF" 1 Le phage ainsi modifié constitue le M 13 TG 5879. On isole un fragment Sph I-Bam HI de M 13 TG 5879, ledit fragment contenant un bloc d'expression constitué du promoteur modifié du gane M Fcl, et de la séquence codant pour une protéine de fusion comprenant la séquence pré M Fa 1, la séquence pro M Fcrl et la séquence de la défensine A mature On introduit le fragment purifié entre Ies sites Sph I et Bam HI du plasmide p TG 3828 (Achstetter et al, Gene, 1992, l 10, 25-31) On transforme le mélange de ligation dans la souche E coli 1106 On isole un clone présentant la cartographie de restriction attendue qui est appelé p TG 5896. Ainsi, le bloc d'expression décrit ci-dessus est introduit dans un vecteur d'expression de la levure. Le vecteur M 13 JM 212 est un vecteur dérivé de M 13 mp 18 comprenant la séquence AD Nc naturelle codant pour Ia défensine A et une extension de pb (Dimarcq et al, EMBO J, 1990, 9, 2507-2515) A son extrémité 3 ', l'insert AD Nc contient environ 60 pb correspondant à la région non codante de l'AR Nm de la défensine A De plus, l'insert AD Nc est muni à ses deux extrémités de linkers Eco RI Le vecteur M 13 JM 212 est soumis à une mutagénase dirigée mettant en oeuvre l'oligonucléotide décrit dans la SEQ ID NO:12 La séquence de l'AD Nc est modifié de manière à introduire un site de restriction Hind III domnnant lieu au vecteur M 13 TG 5824. On reconstitue la séquence d'ADN codant pour la "version courte" de la séquence pro de la défensine A, débutant à l'acide aminé + 6 et se terminant à l'acide aminé + 31 de la SEQ ID NO:1, ceci en mettant en oeuvre deux oligonucléotides synthétiques décrits dans les SEQ ID NO:13 et 14 Une fois réassemblés, ces oligonucléotides forment un fragment Nhe I- Afl I Le fragment synthétique inclut la jonction avec la séquence pré M Fal ainsi que la jonction avec la séquence codant pour la défensine A mature. Le fragment synthétique Nhe I-A Ifl II ainsi que le fragment Afl I-Sali isolé de M 131 '05824 sont liés avec te vecteur p TG 5896 digéré par les 14- enzymes Nhe I et Sal I On transforme le mélange de ligation dans la souche E coli 1106 On identifie un clone présentant un digest de restriction correct qui est désigné p TG 5897 Le vecteur p TG 5897 contient donc un bloc d'expression comprenant la protéine de fusion composée de la séquence pré M Fot 1, la séquence pro version courte du précurseur de la défensine A (acides aminés + 6 à + 31) et la défensine A mature, placée sous le contrôle du promoteur modifié du gène M Fa I. Ledit bloc d'expression est isolé de p TG 5897 sous la forme d'un 0 fragment Sph I-Sall On introduit ledit fragment dans le vecteur M 13 TG 3868 digéré par les enzymes Sph I et Sal, générant ainsi le vecteur M 13 TG 6801. Le vecteur M 13 TG 6801 est soumis à une mutagénèse dirigée afin de générer la "version longue" (acides aminés + 1 à + 31) de la séquence pro du précurseur de la défensine A, en mettant en oeuvre l'oligonucléotidedécrit dans la SEQ ID NO:15 Parallèlement au cours de la même réaction, on a également modifié la séquence correspondant à la jonction entre la séquence pro du précurseur de la défensine A et la séquence mature de la défensine A. On y a introduit 5 codons comprenant un site Acc I et codant pour les 5 acides aminés N-terminaux de r HV 2-Lys 47, ceci en mettant en oeuvre l'oligonucléotide décrit dans la SEQ ID NO:16 Le vecteur M 13 TG 6806 ainsi généré, code pour la séquence pré M Fo 1, la séquence pro du précurseur de la défensine A (acides aminés + 1 à + 31), le peptide Ile-Thr-Tyr-Thr-Asp et la défensine A mature. On isole du vecteur M 13 TG 3868, un fragment Acc I-Sall comportant la séquence codant pour r HV 2-Lys 47 délétée des 5 paires de bases (pb) codant en partie pour le peptide Ile-Thr N-terminal Le fragment est introduit dans le vecteur M 13 T 06806 digéré par Acc I et Sal I, donnant lieu à 3 O M 13 TG 6807, qui contient le promoteur modifié du gène M Fa 11 précédant la protéine de fusion suivante séquence pré M Fal, séquence pro du précurseur de la défensine A (acides aminés + 1 à + 31) et séquence du variant r HV 2-Lys 47 de l'hirudine. Ce bloc d'expression est isolé de M 13 TG 6807 sous la forme d'un fragment Sph I-Sal I Le fragment est inséré dans le vecteur d'expression de la levure p TG 3828 digéré par les enzymes Sph I et Sali, donnant lieu au vecteur p TG 6823. Parallèlement, le fragment Sph I-Sal JI isolé de M 13 TG 6807 est introduit entre les sites Sph I et Sal I du vecteur p TG 4812 Le vecteur p TG 4812 est dérivé du vecteur p TG 3828, dans lequel on a introduit une copie du gêne KEX 2 de levure, ceci au niveau de la jonction de la partie 2,X et de la partie p BR 322 du vecteur On transforme le mélange de ligation dans la souche E coli NM 522 et on identifie un clone présentant un profil de digestion correct Le vecteur p TG 6824 ainsi généré, comprend la même cassette d'expression de r HVZ Lys 47 que p TG 6823 ainsi qu'une copie du gêne KEX 2 insérée en dehors de ladite cassette d'expression. On transforme les vecteurs d'expression p TG 6823 et p TG 6824 dans la souche S cerevisiae TGY 47 1 (MA Ta, pral, prbl, prcl, cpsl, ura 3- delta S, leu 2-3, leu Z-112, his) ou dans la souche TGY 48 1 qui dérive de la souche TGY 47 1, mnais présente une prototrophie pour la leucine (Leu+) Les cellules de levure sont transformées selon la technique standard de l'acétate de lithium (Ito et al, J Bacteriol, 1983, 133) D'autres protocoles de transformation de la levure peuvent également être employés Des transformants prototrophes Ura+ sont sélectionnés sur milieu minimum ( 0,67 % de bases azotées pour levure YNB (Yeast Nitrogen Base) sans acides aminés, 1 %o de casamino acides, 2 % de glucose et 2 %o de bacto agar) On vérifie la stabilité du phénotype Ura+ sur boîte d'agar en milieu sélectif contenant le milieu décrit ci-dessus. Des transformants TGY 47 1/p TG 6823 et TGY 47 1/p TG 6824 sont mis en culture en erlennmeyer à 28 C dans un milieu sélectif ( 0,67 % de YNB sans acides aminés, 1 % de casamino acides et 2 % de glucose) Après 48 h de culture, on sépare cellules et surnageants par filtration d'un aliquote de la culture sur membrane 0,22 t, Une fraction du surnageant est soumis à une HPLC (High Pressure Liquid Chromatography) analytique en phase réverse dclans les conditions décrites dans Achstetter et al (Gene, 1992, 110, 25-31). On mesure l'absorbance de l'effluent à 205 nm I Les profils de chromatographie obtenus pour les effluents issus de la culture TGY 47 1/p TG 6823 et TGY 47 1/p TG 6824 sont montrés dans les Figures 2 A 16- et 2 B, respectivement. On soumet le matériel élué de la colonne et présentant un temps de rétention d'environ 10,25 nin à un séquençage des acides aminés N- terminaux Le matériel dérivé de la culture TGY 47 1/p TG 6823 montre un profil de chromatographie hétérogène dans lequel deux types de séquences N-termrinales sont lues en quantité à peu près équivalente: ( 1) la séquence décrite dans la SEQ ID NO:17 o Xaa représente les acides aminés qui n'ont pas pu être identifiés clairementCette séquence correspond à la séquence N-terminale attendue pour le variant mature r HV 2-Lys 47 et, ( 2) la séquence décrite dans la SEQ ID NO: 18 o Xaa représente les acides aminés qui n'ont pas pu être identifiés clairementLadite séquence correspond à la séquence N- terminale du r HV 2-Lys 47 comprenant en outre une extension N-terminale de trois acides aminés provenant de la séquence pro du précurseur de la défensine A d'insecte, Par contre, avec le matériel provenant de la culture TGY 47 1/p TG 6824, on obtient un pic homogène et unique qui donne lieu à la séquence en acides aminés décrite dans la SEQ ID NO:19, correspondant à la séquence N-terminale du r HV 2-Lys 47 mature Ainsi, la coexpression du gène KEX 2 produit une protéine hétérologue mature et homogène. De plus, on détermine l'activité inhibitrice du variant r HV 2-Lys 47 secrété vis, vis de la thrombine, en utilisant un test colorimétrique (activité protéolytique sur un substrat synthétique, le chromozyme TH, Boehringer Mannheim) Le tableau 1 présente les résultats des dosages L'activité du r HV 2-Lys 47 est exprimé en ATU/A 600 ( 1-2 x 107 cellules/ml correspondent à 1 unité A 600 ninm). 17- Tableau 1 Plasmides KEX 2 r HV 2-Lys 47 (ATU/A 6 cnm) p TG 6823 8,6 p TG 6824 + 25,6 On peut voir que la présence du gène KEXZ dans le plasmide p TG 6824 permet une augmentation de la production de r HV 2-Lys 47 sous forme active d'un facteur 3. EXEMPLE 2:construction des vecteurs p TG 8835 et p TG 8836 et production de r HV 2-Lys 47 dans le milieu de culture d'une souche de levure transformée par lesdits vecteurs. Le vecteur M 13 TG 6807 est soumis à une mutagénèse dirigée afin de remplacer le résidu alanine en position + 9 de la séquence pro 'version longue" de la défensine A par un résidu thréonine, en mettant en oeuvre l'oligonucléotide décrit dams la SEQ ID NO:20 Le phage muté est vérifié par séquençage et donne lieu au M 13 T 08832. La cassette d'expression comportant le promoteur modifié du gène M Fal dirigeant l'expression de la séquence codant pour la séquence pré M Fi, la séquence pro "version longue" (Ala 9 -> Thr) du précurseur de la défensine A de Phormia terranovae et r HEIV 2-Lys 47 mature, est isolée de M 13 T 08832 sous la forme d'un fragment Sph I-Sall Le fragment purifié est 3 o inséré dans le vecteur p TG 3828 digéré par les enzymes Sphl et Sal I, donnant lieu au vecteur p TG 8835. Parallèlement, le fragment Sph I-Sal I purifié de M 13 TG 8832 est également cloné entre les sites Sph I et Sal I du vecteur p TO 4812, lequel contient une copie du gène KEX 2 de levure, -18- On transforme les plasmides p TG 8835 et p TG 8836 dans les cellules de levure et on analyse les transformants obtenus selon le protocole décrit précédemmnent. Les profils chromatographiques obtenus sont présentés dans les Figures 3 A et 3 B, correspondant respectivement aux effluents issus de la culture TGY 47 1/p TG 8835 et TGY 47 1/p TG 8836 Les résultats des dosages de l'activité antithombine sont présentés dans le tableau 2 On peut constater que la présence du gène KEX 2 dans la construction selon l'invention (p TG 8836) réduit le nombre de pics générés lors de l'analyse des surnageants de culture par chromatographie et améliore la production de r HV 2-Lys 47 active d'un facteur 2,5 fois Par contre, la mutation de l'alanine en position + 9 de la séquence pro du précurseur de la défensine A d'insecte en thréonine, ne produit qu'un effet mineur sur la qualité et la quantité de r HV 2-Lys 47 produit. EXEMPLE 3 construction des vecteurs p TG 8840 et p TG 8843 et production de l'Ala-Pro-trophoblastine ovine dans le milieu de culture d'une souche de levure transformée par lesdits vecteurs. Le vecteur M 13 TG 7720 (Degryse et al, Gene, 1992, 118, 47-53) est digéré par les enzymes 1-indl II et Eco RI puis traité par le grand fragment de l'ADN polymérase I d'E coli Le fragment de 0,Skb résultant de ce traitement, est purifié sur gel d'agarose et inséré dans le vecteur Tableau 2 _, i i i i i_ Plasmides KEX 2 r HV 2 Lys 47 (ATU/A 60 onm) p TG 8835 10,4 p TG 8836 + 25,6 19 - M 13 TG 6807, préalablement digéré par Acc I et traité par le grand fragment de l'ADN polymérase I d'E coli On transforme le mélange de ligation dans la souche E coli NM 522 et on identifie un phage ayant incorporé le fragment de O,Skb Le clone est désigné M 13 TG 8818. Le vecteur M 13 TG 8818 est soumis à une mutagénêse dirigée afin d'introduire en amont de la séquence codant pour l'extrémité N-terminale de la trophoblastine ovine, une séquence codant pour le dipeptide AlaPro, en mettant en oeuvre l'oligonucléotide décrit dans la SEQ ID NO:21 Après mutagénèse, la séquence des clones générés est vérifiée On choisit un clone contenant la mutation désirée, désigné M 13 TG 8834. Le vecteur M 13 TG 8834 est à son tour modifié par mutagénèse dirigée, mettant en oeuvre l'oligonucléotide décrit dans la SEQ ID NO:22. La mutagénèse permet de générer une jonction correcte entre les séquences codantes pour l'extrémité 3 ' de la séquence pro du précurseur de la défensine A de Phormia terranovae et la protéine hétérologue Ala-Protrophoblastine. On identifie un clone muté par séquençage, donnant lieu au vecteur M 13 TG 8838 Ce dernier contient une cassette d'expression composée de la version modifiée du promoteur du gène M Fa 1 en amont de la séquence codant pour une protéine de fusion composée de la séquence pré M Fac 1, la séquence pro du précurseur de la défensine A de Phormia terranovae ( 31 acides aminés) et la séquence correspondant à l'Ala-Pro-trophoblastine. On digère le vecteur M 13 TG 8838 par l'enzyme Eco RI et on le traite par le grand fragment de l'ADN polymérase I d'E coli Le fragment ainsi généré, contenant la cassette d'expression décrite ci-dessus, est purifié et inséré dans le vecteur p TG 3828 linéarisé par Smal On identifie un transformant ayant intégré la cassette d'expression dans l'orientation correcte 3 o par rapport au terminateur PGK, La construction est désignée p TG 8840. Parallèlement, le fragment Eco RT traité de manière à avoir les extrémités franches et isolé de M 13 TG 8838, est également inséré dans le vecteur p TG 4812 linéarisé par Simai On identifie par analyse de restriction, un clone présentant la cassette d'expression dans l'orientation correcte vis à vis du terminateur PGK Le clone est appelé p TG 8843. -20- On transforme les vecteurs d'expression p TG 8840 et p TG 8843 dans la souche de levure TGY 47 1, selon la méthode décrite précédemment. Des transformants de chaque type sont mis en culture en erlenmeyer à 28 C dans un milieu sélectif ( 0,67 % de YNB sans acides aminés, 1 % de casamino acides et 2 % de glucose) Après 48 h de culture, on sépare les cellules et surnageants par filtration d'une fraction de la culture sur membrane 0,22 p Le surnageant obtenu est concentré par ultrafiltration (Centricon YM 5 seuil de coupure Sk Da) On soumet un aliquote du filtrat obtenu à une électrophorèse en gel de polyacrylamide-SDS (SDS-PAGE). L'échantillon est chauffé à 950 C pendant 5 min avant d'être chargé sur un gel de polyacrylamide 12,5 % Après migration, le gel est coloré par le bleu de Coomassie pour visualiser l'ensemble des protéines (Figure 4), Dans le matériel provenant des levures transformées par les vecteurs p TG 8840 et p TG 8843, on visualise un doublet de bandes, l'une à 15 k Da et l'autre présentant une mobilité électrophorétique légèrement supérieure De plus, on détecte également d'autres bandes présentant une mobilité électrophorétique inférieure, qui ne sont pas non plus présentes dans l'échantillon correspondant au contrôle négatif L'ensemble des bandes spécifiquement détectées dans les échantillons p TO 8840 et p TG 8843, est en outre révélé en Western blot par un antisérumn de lapin anti-trophoblastine ovine Le matériel de mobilité électrophorétique plus élevée peut être dû à des produits de dégradation de la trophoblastine ou à un artéfact d'electrophorèse Par contre, le matériel de mobilité électrophorétique inférieure, reconnu par les anticorps de lapin anti-trophoblastine ovine, peut être dû A des aggrégats protéiques qui peuvent se former malgré le traitement des échantillons à 95 C. Les bandes formant un doublet à environ 15 à 18 k Da sont transférées sur une membrane PVDF (polyvinyliden difluoridcle) On soumet le matériel transféré à une analyse de la séquence en acides aminés N- terminaux On obtient une seule séquence en acides aminés décrite dans la SEQ ID NO:23, qui correspond à la séquence attendue pour une protéine hétérologue Ala- Pro-trophoblastine. -21 - Liste des sauences Information pour la SEQ ID NO:I TYPE DE SEQUENCE: séquence polypeptidique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 31 acides aminés TYPE DE MOLECULE: peptide ORIGINE DE LA MOLECULE: Phonnia terranovae CARACTERISTIQUES: séquence pro; X représente un résidu alanine ou thréonine et; Y représente un résidu arginine ou lysine. Ile Pro Ala Asp Ala Ala Asn Asp X His Phe Val Asp Gly 1 5 10 Val Gln Ala Leu Lys Glu Ile Glu Pro Glu Leu His Gly Arg 20 25 Tyr Y Arg Information pour la SEQ ID NO:2 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 41 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: oligonucléotile participant à la reconstitutlon du gène synthétique de la défensine A d'insecte Phornnia terranovae. AGCTTGGACA AGAGAGCTAC CTGTGACTTG TTGTCCGGTA C 41 -22 - Information pour la SEQ ID NO:3 TYPE DE SEQUENCE; acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 20 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire TYPE DE MOLECULE: ADN 0 o PROPRIETES: oligonucléotide participant à la reconstitution du gène synthétique de la défensine A d'insecte Plhormnnia terranovae. ACAGGTAGCT CTCTTGTCCA 20 Information pour la SEQ ID NO:4 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 13 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: oligonucléotide participant à la reconstitution du gène synthétique de la défensine A d'insecte Phornia terranovae. CGGACAACAA GTC 13 Information pour la SEQ ID NO:5 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 40 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire -23 - TYPE DE MOLECULE ADN PROPRIETES: oligonucléotide participant à la reconstitution du gène synthétique de la défensine A d'insecte Phormia terranovae. CGGTATTAAC CACTCCGCTT GTGCTGCTCA CTGTTTGTTG 40 Information pour la SEQ ID NO:6 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 29 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: oligonucléotide participant à la reconstitution du gène synthétique de la défensine A d'insecte Phomnnia terranovae. AGCACAAGCG GAGTGGTTAA TACCGGTAC 29 Information pour la SEQ ID NO:7 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 38 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: oligonucléotide participant à la reconstitution du gène synthétique de la défensine A d'insecte Phonnia terranovae. AGAGGTAACA GAGCTGGCTA CTGTAACGGT AAGGGTGT 38 -24 - Information pour la SEQ ID NO:8 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 37 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: oligonucléotide participant à la reconstitution du gène synthétique de la défensine A d'insecte Phormia terranovae. AGTAGCCACC TCTGTTACCT CTCAACAAAC AGTGAGC 37 Information pour la SEQ ID NO:9 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 26 nucléotides o NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: oligonucléotide participant à la reconstitution du gène synthétique de la défensitne A d'insecte Phomnnia terranovae. TTGTGTTTGT AGAAACTAAG GATCCG 26 Information pour la SEQ ID NO:10 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 46 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire -25- TYPE DE MOLECULE: ADN * PROPRIETES: oligonucléotide participant à la reconstitution du gène synthétique de la défensine A d'insecte Phormia terranovae. AATTCGGATC CTTAGTTTCT ACAAACACAA ACACCCTTAC CGTTAC 46 Information pour la SEQ ID NO:11 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 37 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: oligonucléotide de mutagénèse. TCGCAGCATC CTCCGCGCTA GCTGCTCCAG TCAACAC 37 Information pour la SEQ ID NO:12 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 36 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire 3 o TYPE DE MOLECULE ADN PROPRIETES: oligonucléotide de mutagénèse. ATGTTGCTCT CTTGTCAAAG CTTTGTAATC CTTGGC 36 26 - Information pour la SEQ ID NO'13 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 88 nucléotides NOMBRE DE BRINS t simple CONFIGURATION: linéaire TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: oligonucléotide de reconstitution de la séquence pro "version courte" de 26 acides aminés du précurseur de la défensine A d'insecte Phornia terranovae. CTAGCTGCCA ACGATGCACA TTTTGTTGAT GGCGTTCAGG 40 CTTTAAAAGA AATTGAACCC GAATTACATG GCCGTTACAA 80 GAGAGCAA 88 Information pour la SEQ ID NO:14 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 88 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: oligonucléotide de reconstitution de la séquence pro "version courte" de 26 acides aminés du précurseur de la défensine A 3 o d'insecte Phormia tetranovae. CATGTTGCTC TCTTGTAACG GCCATGTAAT TCGGGTTCAA 40 TTTCTTTTAA AGCCTGAACG CCATCAACAA AATGTGCATC 80 GTTGGCAG 88 -27 - Information pour la SEQ ID NO:15 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 45 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire TYPE DE MOLECULE: ADN 1 o PROPRIETES: oligonucléotide de mutagénèse. TCCTCCGCGC TAGCTATTCC TGCTGATGCT GCCAACGATG CACAT 45 Information pour la SEQ ID NO:16 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 45 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION linéaire TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: oligonucléotide de mutagénêse. GGCCGTTACA AGAGAATTAC GTATACAGAC GCAACATGTG ATTTA 45 Information pour la SEQ ID NO:17 TYPE DE SEQUENCE: séquence polypeptidique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: l 1 acides aminés TYPE DE MOLECULE: peptide CARACTERISTIQUES: séquence en acides aminés obtenue après séquençage des acides aminés N-terminaux du matériel dérivé de la culture 28 - de la souche S cerevisiae TGY 47 1 transformée par le plasmide p TG 6823. Ile Thr Tyr Thr Xaa Xaa Thr Glu Ser Gly Gln 1 5 10 Information pour la SEQ ID NO:18 TYPE DE SEQUENCE: séquence polypeptidique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 11 acides aminés TYPE DE MOLECULEE: peptide CARACTERISTIQUES: séquence en acides aminés obtenue après séquençage des acides aminés N-terminaux du matériel dérivé de la culture de la souche S cerevisiae TGY 47 1 transformée par le plasmide p TG 6823. Tyr Xaa Xaa Ile Thr Tyr Thr Asp Xaa Thr Glu 1 5 10 Information pour la SEQ ID NO:19 TYPE DE SEQUENCE: séquence polypeptidique LONG UEUR DE LA SEQUENCE: 15 acides aminés TYPE DE MOLECULE: peptide CARACTERISTIQUES: séquence en acides aminés obtenue après séquençage des acides aminés N-terminaux du matériel dérivé de la culture de la souche S cerevisiae TGY 47 1 transformée par le plasmide p TG 6824. Ile Thr Tyr Thr Asp Xaa Thr Glu Ser Gly Gln Asn 1 5 10 Leu Xaa Leu 29 - Information pour la SEQ ID) NO:20 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 33 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: oligonucléotide de mutagénèse. GATGCTGCCA ACGATACACA TTTTGTTGAT GGC 33 Information pour la SEQ ID NO:21 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONOUEUR DE LA SEQUENCE: 39 nucléotides NOMBRE DE BRINS * simple o CONFIGURATION: linéaire TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES;: oligonucléotide de mutagénèse. GTTACAAGAG AATTACGTGC TCCATGTTAC CTATCTCAG 39 Information pour la SEQ ID NO:22 TYPE DE SEQUENCE acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 36 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire TYPE DE MOLECULE: ADN - PROPRIETES: oligonucléotide de mutagénèse. CATGGCCGTT ACAAGAGAGC TCCATGTTAC CTATCT 36 Information pour la SEQ ID NO:23 TYPE DE SEQUENCE: séquence polypeptidique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 13 acides aminés TYPE DE MOLECU LE: peptide CARACTERISTIQUES: séquence en acides aminés obtenue après séquençage des acides aminés N-terminaux du matériel dérivé de la culture de la souche S cerevisiae TGY 47 1 transformée par le plasmide p TG 8840. Ala Pro Xaa Tyr Leu Ser Gln Arg Leu Met Leu Asp Ala 1 5 10 31 - Revendications U Une cassette d'expression permettant la synthèse d'une protéine hétérologue mature, comprenant au moins un fragment d'ADN codant pour un précurseur de ladite protéine hétérologue; ledit précurseur comprenant: une séquence pré fonctionnelle dans la levure, la séquence pro du précurseur de la défensine A de Phormia terranovae, un variant ou un fragment fonctionnel de celle-ci, et une séquence correspondant à celle de ladite protéine hétérologue sous forme mature; ledit fragment d'ADN étant sous le contrôle des éléments nécessaires A son expression. 2 Une cassette d'expression selon la revendication 1, caractérisée en ce que le fragment d'ADN code pour un précurseur comprenant une séquence pré qui est celle du précurseur du facteurs de la levure Saccharomyces cerevisiae. 3 Une cassette d'expression selon la revendication I ou 2, caractérisée en ce que la séquence pro a la séquence en acides aminés telle que montrée dans la SEQ ID NO:1, débutant à l'acide aminé en position + 1 ou + 6 et se terminant à l'acide aminé + 31, dans laquelle le résidu X en position + 9 est un résidu alanine ou thréonine et le résidu Y en position + 30 est un résidu arginine ou lysine. 4 Une cassette d'expression selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisée en ce que le fragment d'ADN comporte une séquence correspondant à celle de i'hirudine. Une cassette d'expression selon la revendication 4, caractérisée eui ce que le fragment d'ADN comporte une séquence correspondant à celle -32 - du variant r HV 2-Lys 47 de l'hirudine. 6 Une cassette d'expression selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisée en ce que le fragment d'ADN comporte une séquence correspondant à celle de la trophoblastine ovine comprenant à son extrémité 5 ' une extension constituée par le dipeptide Ala-Pro. 7 Une cassette d'expression selon l'une des revendications 1 à 6, caractérisée en ce que ladite cassette d'expression comprend en outre un terminateur de transcription fonctionnel dans la levure 8 Un vecteur d'expression comprenant une cassette d'expression selon Prune quelconque des revendications 1 à 7. 9 Un vecteur d'expression selon la revendication 8, caractérisé en ce qu'il comprend en outre une ou plusieurs copies de tout ou partie du gène KEX 2. Une souche de levure comprenant une cassette d'expression selon l'une quelconque des revendications 1 à 7 ou un vecteur d'expression selon la revendication 8 ou 9. 11 Une souche de levure selon la revendication 10, caractérisée en ce que ladite souche est sélectionnée parmi les levures Saccharomnyces cerevisitae, Hansernuta polyinorpha, Pichiapastoris et Klu 3 >veromyces lactis. 12 Procédé de préparation d'une protéine hétérologue, selon lequel: on cultive une levure selon la revendication 10 ou 11 dàns un milieu approprié et, on récupère la protéine hétérologue dans le milieu de culture sous forme mature. 13 Protéine obtenue par la mise en oeuvre d'un procédé selon la revendication 12.