FR 2709754 A1 19950317 FR 9310798 A 19930910 La présente invention a pour objet un procédé de préparation stéréospécifique de composés 2' ou 3' déoxy et 2', 3'-didéoxy-&-L- pentofuranonucléosides. La présente invention concerne également des composés 2' ou 3' déoxy et 2', 3' didéoxy-B-L-pentofuranonucléosides. La présente invention concerne enfin l'utilisation de ces composés à titre de médicaments et notamment à titre d'agents anti-viraux. A ce jour, la synthèse et l'évaluation biologique des analogues nucléosidiques de configuration L ont fait l'objet de certains travaux, mais jusqu'à récemment, les activités de la plupart des nucléosides étaient uniquement associées à celles de leurs isomères D [A. Holy, in Synthesis, Structure and Chemistry of Transfer Ribonucléic Acids and their Components (Proceedings of the International Conference Held in Dymaczewo near Poznan, Poland on Septemberl3-17, 1976), Polish Academy of Sciences, Poznan, 1976, p. 134, et références citées]. Cependant, récemment, la S-L-Thymidine [S. Spadari, G. Mage, F. Focher, G. Ciarrocchi, R Manserwigi, F. Arcamone, M. Capobianco, A. Carcuro, F. Colonna, S. Iotti et A. Garbesi, J. Med. Chem. 5, 4214 (1992)] et la 2', 3'- didéoxy-B-L-cytidine (9-L-DDC) [M. M. Mansuri, V. Farina, J.E Starret Jr. , D.A. Benigni, V. Brankovan et J.C. Martin, Bioorg. Med. Chem. Letters, 165 (1991)] ont été montrées comme exerçant une activité antivirale relativement limitée en cultures cellulaires contre, respectivement, les virus herpes simplex (HSV) et le virus de l'immunodéficience humaine (HIV), ce dernier étant l'agent causal du syndrome d'immunodéficience acquise (SIDA). En réalité, la S-L-DDC a été préalablement rapportée de façon contradictoire comme, d'une part, ne présentant aucune activité contre le HIV [M. Okabe, R.C. Sun, S. Y.-K. Tam, LJ. Todaro et D.L Coffen, J. Org. Chem. 53. 4780 (1988)] et, d'autre part, exhibant une activité modérée toujours contre le HIV [IC50 = 0,66 10-6M en culture cellulaire CEM: M.M. Mansuri, Y. Farina, J.E. Starret Jr., D.A. Benigni, V. Brankovan et J.C. Martin, Bioorg. Med. Chem. Letters, 1, 65 (1991)]. D'autre part, des analogues d'isomères L de l'AZT ont été testés et sont apparus comme inactifs comme agent anti-HIV [J. Org. Chem. 56, 3591 (1991)]. C'est pourquoi en série isomérique B-L des analogues nucléotidiques de type dioxolanyl [H.O. Kim, RF. Schinazi, K. Shanmuganathan, LS. Jeong, J. W. Beach, S. Nampalli, D.L Cannon et C.K. Chu, J. Med. Chem., 3, 519 (1993) et références citées] et de type oxathiolanyl [L.S. Jeong, R.F. Schinazi, J.W. Beach, H.O. KIM, S. Mampalli, K. Shanmuganathan, A.J. Alues, A. McMillan, C.K. Chu et R. Mathis, J. Med. Chem. 36, 181 (1993), et références citées] ont été proposés qui se sont avérés présenter une activité anti-HIV. La présente invention fournit de nouveaux composés analogues nucléosidiques d'anomérie & et de configuration L. Parmi ces L énantiomères, un petit nombre d'exemples de &-L-2', 3'- didéoxynucléosides ont été rapportés dans la littérature, mais selon des procédés de synthèse impliquant toujours une séparation des anomères a. [Brevet EP 352 248 A1 24 Jan. 1990 (CA: 113 (5), 41231 w (1990)]; Brevet EP 285 884 A2 12 Oct. 1988 (CA: 111 (3), 23911x (1989)] et/ou de leurs enantiomères D. [Brevet JP 02 069 469 A2, 8 mars 1990 (CA: 115 (1), 8560w (1991)]; Brevet JP 0 222 9192 A2, 11 septembre 1990 [CA: 114(11), 102709c (1991)]; Brevet JP 0206 9476 A2 8 mars 1990 [CA: 113 (11), 97977m (1990)]; L Kaulina, E Liepins, M. Lidaks et R.A. Zhuk, Khim. Geterstsikl - Soedin. (1), 101 (1982) [CA: 96 (17), 143 248e (1982)], obtenus de façon concommittante, de sorte que leur stéréospécificité ou leur pureté isomérique peut être mise en doute. En particulier, le brevet EP 352 248 décrit un procédé de synthèse par condensation d'un sucre et d'une base purique ou pyrimidique. Toutefois, dans le brevet EP 352 248, le composé sucre de départ possède un hydrogène ou un halogène en position 2', de sorte que la condensation avec la base B conduit à un mélange d'anomères a et f. La présente invention fournit un procédé qui permet de préparer de façon stéréospécifique les composés B-L-2', 3'-didéoxy nucléosides. Il est apparu après évaluation de leur potentialité en tant qu'agent antiviral, plus particulièrement vis-à-vis du VIH, que certains de ces composés stéréoisomères étaient particulièrement actifs. La présente invention a donc tout d'abord pour objet un procédé de préparation de composés 2' ou 3' déoxy et 2', 3'-didéoxy-R-L- pentofuranocucléosides de formule I: RCR dans laquelle - B représente une base purique ou pyrimidique; - R1 représente OH; - R2 et R3 représentent indépendamment l'un de l'autre H ou OH; - l'un au moins de R2 et R3 représente H; caractérisé en ce que on réalise les étapes suivantes: 1) on condense un composé de formule (II) avc la base B pour obtenir le composé de formule (III) a formules (II) et (III) dans lesquelles - R'1 et R'2 ont les significations données pour R1 et R2 excepté que quand R1 et R2 représentent OH, ledit groupe OH est protégé par un groupe protecteur tel qu'un groupe acyle, benzoyle, benzyle ou silyle, - R'3 représente un groupe alkyl en C1 a C5 ou un radical phényl, éventuellement substitués, X est un groupe partant tel que CI, Br, I ou un groupe acyloxy ou alkoxy en CI à Cs, - B' est une base purique ou pyrimidique B éventuellement convenablement protégée, 2) l'on élimine le groupe R'3 CO en position 2' par déacélylation de manière à obtenir un groupe OH et un composé de formule ()i 3) éventuellement, on élimine le groupe OH en position 2'; 4) l'on déprotège, le cas échéant, les groupes R'1 et R'2 et la base B' de manière à obtenir les composés de formule (1). La présence d'une protection acyle en position 2' entraine un couplage stéréospécifique avec la base hétérocyclique conduisant stéréospécifiquement à l'anomère I de nucléoside au cours de la glycosylation selon les règle utrans' de Baker, car il induit la formation d'un acyloxonium intermédiaire. N'importe quelle base hétérocyclique peut être condensée avec le sucre (II). On cite en particulier B représente l'une des bases l'adénine, la guanine, l'hypoxanthine, l'uracile, la thymine ou la cytosine, ces bases pouvant être substituées notamment par halogène en position S pour l'uracile et la cytosine. Pour chaque type de base, les conditions de condensation glycosidique en synthèse nucléosidique sont multiples et bien connues de l'homme de l'art. Au lieu de l'étape 3) d'élimination ci-dessus, on peut effectuer une substitution du groupe OH par un groupe H3, F ou NH2 avec alors une inversion de configuration sur le carbone considéré. On obtient alors des composés de formule (I) avec R2 = N3, F ou NH2 avec la Configuration inverse de celle représentée à la formule (I). De préférence, dans les composés (II) et (III), R'3 représente un groupe alkyl en C1 à C5, de préférence CH3. Ainsi, on peut préparer les composés (II), dans lesquels on prépare le composé (II) di-O-acétylé en position 1, 2, dans lequel X et R'3COO représentent un groupe O-acétyle par acétolyse du composé 1, 2 isopropylidène- L-xylofuranose de formule (V) (V) 0 Cette réaction se fait en deux temps: a) en milieu acide CH3COOH 85% et H2SO4, puis b) avec (CH3 CO)2 O dans la pyridine. De préférence, R'2 et R'3 COO sont différents, en particulier R'2 est un groupe O-benzoyl et R'3 COO est un groupe 0-acyle. Ainsi, il est possible de déprotéger sélectivement l'alcool en position 2' au moyen d'hydrazine hydratée à l'étape 2) ci-dessus. Le Schéma I reprend les différentes étapes de synthèse de composés de formule (I) dans laquelle R2 et R3 représentent H ou OH en détaillant les conditions réactionnelles de l'homme de l'art. On peut introduire les composés de formule (I) sur les groupes N3, F et NH2 par substitution à la place du groupe OH avec inversion de configuration. Dans le Schéma 1, à partir du L-xylose commercial, deux voies de synthèse sont décrites, toutes deux impliquant l'obtention préalable d'un L-pentofuranose (composés 3 et 14) convenablement protégé et possédant en position 2 un groupement O-acyl participant induisant au cours des réactions de glycosylation la géométrie 1', 2'-Trans désirée pour le nucléoside obtenu (B.R. Baker, in The Ciba Foundation Symposium on the Chemistry and Biology of the Purines, G.E.W. Wrolstentiolme et C.M. O'Connor Eds, Churchill London, p. 120 (1957)). On parvient au sucre 3 et 14 à partir du L-xylose qui est transformé en 1, 2-isopropylidène-L- xylorurannose dont l'acétolyse conduit au dérivé di-O-acétylé en 1, 2. Le composé 1 est obtenu en deux temps à partir d'acétone en présence de sulfate de cuivre puis en milieu acide. Le composé 1 est mis à réagir avec du C6 H5 COCl dans de la pyridine pour obtenir le un intermédiaire dont les groupes OH en position 5' et 3' sont protégés par un benzoyle. Cet intermédiaire protégé est acétolysé en milieu acide (CH3 COOH 85%, H2 SO4) puis en présence d'anydride (CH3CO)2 O dans la pyridine pour donner le composé 3. La première voie de synthèse consiste à condenser le 1, 2-di-O- acétyl-3, 5-di-O-benzoyl-L-xylofurannose (3) avec une base hétérocyclique. La nature du groupement protecteur acétyle du sucre 3 en position 2' entraîne un couplage stéréospécifique conduisant à l'anomère 6. le groupement protecteur en position 3' étant différent, on peut ensuite désacétyler sélectivement en position 2' au moyen d'hydrazine hydratée dans de la pyridine en milieu acide le S-L- xylofurannosyl nucléoside 4 totalement protégé obtenu, conduisant ainsi au composé 5. Ce dernier est ensuite transformé en son dérivé thiocarbonyle qui est soumis à une réaction de déoxygénation radicalaire de type Barton selon un procédé expérimental déjà utilisé en série D (M.J. Robins, D. Nadej, F. Hansske, J.S. Wilson, G. Gosselin, M.C. Bergogne, J.L Imbach, J. Balzarini et F. De Clercq, Can. J. Chem. 66, 1258 (1988)), pour donner le composé 6.. La réduction radicalaire de Barton consiste à substituer l'hydrogène de la fonction alcool par un groupement C(S)X(X = imidazole, phénoxy...) puis à réduire la fonction ROC(S)X par rupture homolytique au moyen de Bu3SnH et d'AIBN. Le composé 6. est débenzoylé pour conduire au 2-déoxy-R-L-thréo-pentofuranosyl nucléoside 7. Une protection sélective de l'hydroxyle primaire 5' conduit au dérivé 8 qui est soumis à une désoxygénétion en 3' selon le procédé de type Barton. Finalement, le composé 9 résultant est déprotégé en 5' pour donner le 2', 3'-S-L-pentofuranosyl nucléoside 10. La deuxième voie de synthèse implique la préparation préalable du 1, 2di-O-acétyl-3-déoxy-5-O-benzoyl-L-erythro-pentofuranose (14), à ce jour inédit. Pour ce faire, le 1, 2-di-O-isopropylidène-ax-L-xylofuranose (1), obtenu en deux étapes à partir du L-xylose et qui est un intermédiaire dans la synthèse du sucre 3 utilisé dans la première voie, est sélectivement benzoylé en position 5 pour donner le composé 11. Ce dernier est converti en son dérivé thiocarbonylé 1 2 qui est déoxygéné au moyen de triméthylsilylsilane (D.H.R. Barton, D.O. Jang et J. Cs. Jaszberenyi, Tetrahedron, 49, 2793 (1993)) pour conduire au composé 13. Ce composé 13 est déacétoné dans de l'acide acétique aqueux en présence d'acide sulfurique, et l'intermédiaire résultant n'est pas isolé, mais directement acétylé par de l'anhydride acétique dans de la pyridine pour conduire au sucre recherché 14. La condensation de 14 avec un aglycone purique ou pyrimidique conduit au nucléoside protégé 15 qui peut soit être totalement déacylé au moyen de méthylate de sodium ou d'ammoniac en solution dans le méthanol pour conduire au 3-déoxy-l-L- érytro-pentofuranosyl nucléoside 16, soit être sélectivement déacétylé en 2' au moyen de méthylate de sodium dans le THF pour donner le dérivé 17. Une réaction de déoxygénation selon Barton sur le dérivé 2'- thiocarbonylé de 17 conduit alors au dérivé 9, identique à celui obtenu dans la première voie de synthèse. Pour illustrer la présente invention, la préparation (selon la première voie de synthèse) et la caractérisation de la 2'-3'-didéoxy-9-L- uridine (f-L-DDU), 10a) et celle de la 2', 3'-didéoxy-5-fluoro-S-Luridine (f-L-5-fluoro-DDU), 10b) sont décrites dans les exemples qui vont suivre. Pour préparer un composé de formule (I) dans lequel B est la cytosine, on peut selon la présente invention préparer un composé de formule (I) o B est l'uracile, puis transformer le dérivé d'uridine en dérivé de cytidine en transformant l'uracile en cytosine. Les conditions expérimentales sont indiquées au Schéma II qui représente la transformation de la S-L-DDU et la S-L-5-fluoro-DDU. Ces deux composés ont été respectivement transformés (Schéma II) en 2', 3'- didéoxy-R-L-cytidine (S-L-DDC, 21a) et en 2', 3'-didéoxy-9-L-5-fluoro- cytidine (&-L-5-fluoro-DDC, 2 1b). La &-L-DDU (10a) et la &-L-5-FDDU (10b) sont sélectivement acétylées en position 5' pour donner les composés 18a. b. Ces derniers sont convertis en leurs dérivés thioamides correspondants 19a. b par traitement avec le réactif de Lawesson aux reflux dans le dichloroéthane selon un procédé précédemment développé en série D de l'uridine (J.E Starrett, Jr., D.R. Tortolani, D.C. Baker, M.T. Omar, A.K. Hebbler, J.A. Wos, J.C. Martin et M.M. Mansuri, Nucleosides Nucleotides, 9, 885 (1990)). Les composés 19a. b sont traités avec de l'ammoniac dans le méthanol soit à température ambiante, soit à 100 C pour conduire, respectivement, à la 2', 3'-didéoxy-R-L-4-thiouridine 20a et à son dérivé 5-fluoré 2Qb. ainsi qu'à la g-L-DDC (21a) et à la R-L-5-FDDC (2 lb) recherchées. Alors que les isomères L sont considérés comme moins toxiques que les isomères D, car ils ne provoquent pas, semble-t-il, les mêmes mutations sur la reverse transcriptase, les résultats négatifs observés dans l'art antérieur, en ce qui concerne l'activité antivirale des composés du type 2', 3'-L-didéoxynucléosides (absence d'activité ou faible activité) pourraient être liés à un défaut de stéréospécificité. En effet, la 6-L-DCC (21a) et la I-L-5-F-DDC (21lb) obtenues selon la présente invention ont été évaluées contre le VIH en cultures cellulaires (voir exemples ci-après) sur lesquelles ces deux molécules se sont révélées actives, avec notamment une très forte activité antivirale pour la B-L-5-FDDC. En outre, la 2', 3'-didéoxy-R-L-5-fluoro-cytidine apparaît active sur des souches résistantes à l'AZT et à la névirapine, cette dernière faisant actuellement l'objet d'essais cliniques. La présente invention a donc également pour objet des composés stéréoisomères 2' ou 3' déoxy et 2, 3'-didéoxy-B-L- pentofuranonucléosides répondant à la formule suivante Rs C dans laquelle - R1, R2 et R3 et B ont les significations données ci-dessus. On cite en particulier les composés pour lesquels B représente l'uracile, la 5-fluoro-uracile, l'hypoxanthine, la 5-fluorocytosine la guanine ou l'adénine. Dans un mode de réalisation de l'invention, R2 et R3 représentent H ou OH. Ces composés, dans lesquels l'un de R2 et R3 est OH et l'autre est H, peuvent constituer des composés intermédiaires utiles dans la synthèse des dérivés 2', 3' didéoxy-&-L- nucléosides diversement substitués sur le sucre, notamment par des groupes N3, F ou NH2. En particulier, les composés 2'-déoxy de configuration "threo" (voir en particulier Schéma I, les composés 7) et les composés 3'-déoxy de configuration 'erythro" (voir en particulier Schéma I, les composés 16 par désoxygénation de leur hydroxyle conduisent aux S-L-2', 3'- didéoxynucléosides. La présente invention a plus particulièrement pour objet un composé choisi parmi la &-L-ddU, 9-L-5 fluoro-ddU, l-L-5-fluoro ddC. Enfin, la présente invention a pour objet l'utilisation des composés selon l'invention à titre de médicament. Il peut s'agir, selon les cas, d'agents antibiotiques, antitumoraux ou d'agents anti-viraux, notamment anti-VIH. En particulier, en ce qui concerne les composés 2',3' didéoxynucléosides selon l'invention, ceux-ci sont plus particulièrement utiles comme agent anti-viral. La présente invention a notamment pour objet l'application thérapeutique en chimiothérapie antirétrovirale de la S-L-5-F-DDC, plus particulièrement comme agent anti-VIH. D'autres avantages et caractéristiques de la présente invention apparaitront à la lumière des exemples qui vont suivre. La Figure 1 représente le Schéma I. La Figure 2 représente le Schéma II. EXEMPLE 1: Prévaration du 1. 2-di-O-acétvl-3. 5-di-O-benzovl- L-xvylo-furanose (3) Les modes opératoires et le matériel utilisés ont été décrits dans J. Chem. Soc., Perkin Trans. I 1943 (1992). Le L-xylose a été acheté à Interchim, France. Ce composé 3 est préparé en quatre étapes à partir du L-xylose sans purification des intermédiaires. Selon le même protocole expérimental que décrit dans Gosselin et coll., Nucleic Acid Chemistry, Improved and New Synthetic Procedures, Methods and Techniques, PT4, LB. Towsend and RS. Tipan, eds, John Witey and Sons, Inc., 1991, p. 41. Le mélange monomérique de 3 a été obtenu sous forme d'un sirop jaune pâle et une recristallisation avec de l'éthanol a conduit à l'anomère a pure (Rdt 26%) point de fusion 104-107 C. Données RMN (DMSO, d): ô 2,06 et 2,10 (2 s, H.3 chacun, 2 COCH3), 4,50 (m, H2, H5, 5'), 4,85 (m, 1H, H.1), 5.54 (dd, 1H, H-2, J = 4.6 et 5.79Hz (t, 1H, H.3, J = 6,3 Hz)), (6,43 d, 1H, H.1, J = 4,6 Hz), 7,5 - 8. 0 (m, 10H, 2 CO C6H5); [a]20D - 125,2 (C) 1,3 CHC13]; spectre de masse: (FAB > 0 matrice d'alcool 3-nitrobenzylique) m/z 443 [M + HJ+, 383 [383 [M - CH3COz], 105 [C6 Hs C = 0] CacL pour C22 H22 09 (442.41): C: 62.44; H: 5.01 - Trouvé: C: 62.28 et H: 5.04. EXEMPLE 2: PréDaration du 1 (2-0-Acétvl-3.5-di-O-benzovl-&- L-xylo-furanosvl) Uracile (4) A un mélange d'uracile (1.27 g; 11,33 mmoles) et de sucre protégé (3) (5,0 g; 11,30 mmoles), dans de l'acétonitrile anhydre (170 ml), on a ajouté successivement de l'hexaméthyl-disilazane (1,9 ml; 9,01 mmoles), du triméthylchlorosilane (1,15 ml; 9,06 mmoles) et du chlorure d'étain (IV) (1,59 ml; 13,5 g mmoles). La solution limpide obtenue a été ajitée à température ambiante pendant 24 heures. Le mélange réactionnel a été concentré en un volume réduit, puis dilué avec du chloroforme (150 ml) puis lavé deux fois avec le même volume d'une solution d'hydrogénate de carbonate de sodium aqueux et finalement de l'eau. Les couches organiques ont été séchées sur du sulfate de sodium, filtré sur celite puis évaporé. Le produit obtenu a été purifié sur colonne de chromatographie de gel de silice [éluent: gradient de méthanol (0,4%) dans du chlorure de méthylène] pour donner le composé 4 pur (3,709, 66%). _ 1 2709754 CONDITIONS GENERALES ET INSTRUMENTATION MISES EN OEUVRES: Elles sont identiques à celles rapportées par C. Périgaud. G. Gosselln et J.-L. Imbach, J. Chem. Soc., Perkin rans. 1. 1943 (1992). Exemple 3: 2',3'-DIdeoxy-[-L-uridine ({-L-DDU. IQM). 1-(2-Deoxy-[l-L-threo-pentofuranosyl)uracile (aI). Une solution de 1-(3,5-di-O-benzoyl-i-L-xylofuranosyl)uracille (h) (1.4 g: 3.21 mmol) dans du methanol ammoniacal (préalablement saturé à 10OC et hermétiquement fermé) (90 ml) est agitée durant deux Joulrs à température ambiante. La solution est évaporée plusieurs fois avec du methanol sous pression réduite. Le matériel brut obtenu est dissous dans l'eau et la solution résultante est lavée plusieurs fois avec du chloroforme. La phase aqueuse est évaporée et le résidu est directement cristallisé dans le methanol pour donner 0.6 g (rendement 82 %) de Za pur: F: 165-167'C; RMN-IH (DMSO-d4J. g ppm - 11,23 (s. 1H. 3-NH). 7.92 (d. 1H H-6; J. 8,1 Hz), 6,04 (dd, 1H, H-1': J - 2,0 et 8.3 Hz). 5.26 (d. H, H-5: J - 8.1 Hz). 5.26 (d. 1H, OH-3': J - 3,2 Hz), 4,69 (t. 1H, OH- 5': J = 5,3 Hz), 4,20 (m, 1H, H-31, 3.81 (m. 1H. H-4'), 3.80-3.60 (m, 2H. H-S' et 5"). 2.6-2.5 (m. 1H. H-2'. partiellement obscurci par DMSO-dQJ, 1.85 (dd. 1H. H-2"; J m 2.0 et 14.7 Hz): spectres de masse (matrice: glycerol-thloglycerol, 50:50, v/v):FAB>O 321 IM+glycérol+H]j. 229 IM-H]+, 117 [si+ et 113 [BH21+: FAB 12,28. Trouvé: C 47.45: H 5,46: N 12,12. 1 -(5-O-Tertiobutyldlphenylsillyl-2-deoxy-{-L-threo-pentofurano- syl)uracile (.S). A une solution de la (0.6 g: 2.63 mmol) dans de la pyrldine anhydre (8 ml) on ajoute du chlorure de tertlobutyldlphenylsllane (0.9 ml: 3,50 mmol). La solution est agitée durant 4 h à température amblante, puis le solvant est évaporé sous pression rédulte. De l'eau et du dichloromethane sont aJoutés. La phase organique est séparée, lavée A. successivement avec une solution aqueuse saturée d'hydrogenocarbonate de sodium et de l'eau. séchée sur sulfate de sodium et filtrée. Après évaporation à sec. le résidu est chromatographié sur une colonne de gel de sillce leluant: gradient par étape de méthanol (0-2 %) dans le dlchloromethane] pour condulre A 1,2 g (98 %) de a sous forme de mousse: RMN-1H (DMSO-d6) 'ppm: 11,26 (s. 1H. 3-NH}. 7.78 (d, 1H, H-6; J 8.2 Hz). 7,65-7,35 (m, 10 H. 2 C6H5), 6,09 (dd. 1H, H-t': J = 1. 9 et 6,4 Hz), 5,55 (d,1H. H-5; J 8.2 Hz), 5.30 (d. lH. OH-3': J - 3.1 Hz), 4,25 (m, H. H-31. 4,05-3.95 (m, 2H, H-4' et 5'). 3.85-3.80 (m, lH. H-5"1. 2.6-2.5 (m. 1H. H-2' partiellement obscurci par DMSO-ds). 1,85 (dd. 1H. H-2": J s 1,9 et 16,5 Hz), 0.93 [s. 9H, (CH)3CI: spectre de masse (matrice: glycerol-thioglycerol. 50:50, v/v) FAB '-O-Tertiobutyldlphenylsllyl-2'.3'-dideoxy-,-L-uridine ({a. A une solution de M (1,1 g; 2,36 mitnol) dans de l'acetonitrlle anhydre (66 ml) on ajoute du O-phenylchlorothionoformnate (0.68 ml; ,02 mmol) et de la 4-dimethylaminopyrldine (DMAP) (2,64 g: 21.6 mmol). La solution est agitée durant une nuit à température ambiante puis le solvant est évaporé sous pression réduite. Du dlchloromêthane et de l'eau sont ajoutés. La phase organique est séparée, puis successivement lavée avec une solution aqueuse refroidie 0,5 M d'acide chlorhydrlque. de l'eau, une solution aqueuse saturée d'hydrogenocarbonate de sodium et A nouveau avec de l'eau avant d'être séchée sur sulfate de sodium, flltrée et évaporée à sec. Le résldu (1,9 g) est dissous dans du dioxane anhydre. la solution résultante est évaporie sous pression réduite, et cette opération est répétée trols fois pour condulre au dérivé thiocarbonate brut. Ce dernier est dissous dans du dioxane (28 ml) et traité avec de l'hydrure de tributyletaln (1.57 ml: 5.83 mmolU et de l'ao.a'- azoblisisobutyronltrlle ABN) (0,12 g: 0.73 mrnmol) A 90'C durant 2 h sous argon. Une quantité supplémentalre de Bu3SnH (0.63 ml; 2,3 rmmol) et d'AIBN (50 mg: 0.30 mmol) est raJoutée, et le chauffage est poursuivi durant 30 min. Après évaporatiton du solvant, du dichlorométhane et de l'eau sont raJoutés. La phase organique est séparée, séchée sur sulfate de sodium et évaporée A sec. Le résidu est chromatogrphié sur une colonne de gel de silice [éluant: gradient par étape de méthanol (0-5 %} dans le dichloromethanel pour condulre A 0,54 g (rendement 51 %) de h pur qui cristallise dans l'ether éthylique: F = 145-147'C; UV (EtOH 95) >max 264 nm,,> min 235 nm: RMN-IH (DMSO-d6) J ppm: 11.29 (is, 1H. 3-NH). 7,74 (d, 1 H. H-6), 7, 65-7.40 (m, 10 H. 2 C6H5), 5,99 (dd. 1H, H-1'; J = 3,1 et 7,4 Hz). 5,21 (d,lH. H-5; J = 8.1 Hz). 4,15-4.00 (m. 1H. H-41. 3,94 (dd, 1H, H-5': J = 3,0 et 11.3 Hz), 3,75 (dd. 1H. H-5": J m 4,0 et 11,3 Hz), 2,45- 2,20 (m, 1H. H-41, 2,10-1.85 (m, 3H: H-2'. 3' et 3"), 0.99 Is,9H, (CH3)3aC]; spectre de masse (matrice; glycerol-thioglycerol, 50:50. v/v) FAB>O 451 IM+H)+. 339 [a]+ et 113 [BH21+. 2',3'-Dldeoxy-f-L-uridine (0-L-ddU:]Q). Le composé h (0.25 g: 0.55 mnrol) est dissous dans du tetrahydrofurane (1, 1 ml) et une solution 1,1 M de fluorure de tetra-n- butylammoniumn dans le THF (0,55 ml) est ajoutée. La solution est agitée durant 2 h à température ambiante, puls évaporée sous pression réduite. Du dichlorométhane et de l'eau sont raJoutés, la phase aqueuse est évaporée A sec. Le résidu est chromatographié sur une colonne de gel de silice [eluant: gradient par étape de méthanol (0-5 9%) dans le dichlorométhanef pour donner 41 mg (rendement 35 %) de lU pur qui cristallise dans le dlchlorométhane: F - 120-121'C; UV (EtOH 95) max 262 nm,X mln 231 nm: RMN- 1iH (DMSO)d) Cppm: 11,24 (s. 1H, 3-NH), 7,93 (d, 1H. H-6: J - 8.1 Hz). 5.93 (dd, l, H-I': J - 3.4 et 6.7 Hz), 5,57 (d. 1H, H-5: J a 8,1 Hz), 5.02 (triplet mal résolu, 1H, OH-S'), 4,05-3,95 (m. 1H. H-41,. 3,70-3.40 [m, 2H, H-5' et 5": après échange D20: 3,63 ppm (dd, 1H, H-5': J - 3,4 et 12,1 Hz) et 3,49 (dd, 1H, H-5" J - 4.0 et 12,1 Hz). 2.35-2.20 (m, 1H, H-21, 2,0-1,65 (m. 3H, H-2", 3' et 3': spectres de masse (matrice: glycerol-thloglycerol, 50:50, v/v): FAB>O 425 [2M+H]+, 213 [M + HI+, 113 [BH2]+i et 101 [s]+; FAB (M-HI et 111 [B1-. lemple 4: 2',3'-Dldeoxy-[-L-5-fluorouridine (P-L-5-FDDU, 0)i 1-(2-Deoxy->Lto-pentofuranosyl)-5-filuorouracle (Z). Une solution de 1-(3, 5-dl-O-benzoyl-2-deoxy-e-L-xylofuranosyl)-5- fluorouracile () (0.25 g. 0.55 mmol) dans du méthanol ammoniacal (25 ml) est agitée durant une nuit à température ambiante. La solution est évaporée sous pression rédulte et le résidu est évaporé plusieurs fois avec du méthanol. Le matérlel brut obtenu est dissous dans de l'eau et la solution résultante est lavée plusieurs fois avec du chloroforme. La phase aqueuse est évaporée et le résidu est directement cristallisé dans le méthanol pour donner 115 mg (rendement 85 %) de Z pur: F - 198- C; UV (EtOH 95)\ max 267 nm (E, 8500),>min 238 nm (6. 2100): RMN-1H (DMSO-d6) Sppm - 11,79 (s. 1H. 3-NH). 8,16 (d. 1H. H-6: J. 7.4 Hz). 6.05 (dd. 1H. H-1': J - 1,8 et 6.5 Hz). 5.38 (d. 1H. OH-3': J - 3,3 Hz). 4,73 (t. 1H, OH-5': J * 5,4 Hz). 4,30-4,20 (m, 1H. H-3'), 3.85- 3.60 (m. 3H, H-4'.5' et 5"). 2.60-2,50 (m. 1H. H-2' partiellement obscurci par DMSO-d5). 1,90 (dd. 1H H-2": J - 1.8 et 14.7 Hz); spectres de masse (matrice: glycérol-thioglycérol. 50:50. v/v): FAB>0 339 [M+ glycerol+Hl+. 247 [M+H]+. 131 [BH21] et 115 [s]'; FAB [M-HI- et 129 [(BI1'. Anal Calculé pour CgHllN205F (C - 246,20}): C 43,90: H 4.51: N 11,38: F 7.72. Trouvé: C 43.60: H 4,57: N 11,22: F 7.40. 1 -(5-0-Monomethoxytrityl-2-deoxy--L- threo-pentofuranosyl)-5- fluorouracile (l). A une solution de Zh {1.30 g: 5.28 mmol) dans de la pyridine anhydre (60 mi). on aJoute du 4-methoxrtrilphenylchloromethane (1.96 g; 6.35 mmol). La solution est agltée durant 48 h à température amblante, pu1s le solvant est évaporé sous pression rtduite. De l'eau et du dichlorométhane sont aJoutés. La phase organique est séparée,. lavée successivement avec une solution aqueuse saturée d'hydrogénocarbonate de sodium et de l'eau. séchée sur sulfate de sodium et filtrée. Après évraporation i sec, lerésidu est chromatographié sur une colonne de gel de sllice [eluant: gradient par étape de méthanol (0- 5 %) dans le dlchlorométhanel pour condulre à 2.6 g (rendement 95 %) de Bk sous forme de mousse RMN-1H (DMSO-d) S ppm: 11,82 (s. 1H. 3-NH). 7. 92 (d. 1H.H-6; J 7.3 Hz). 7.5-6,8 (m, 14H, mMTr). 6.11 (d. 1H, H-1': J m 7.9 Hz). 5.35 (d. 1H, OH-3'; J - 3,1 Hz), 4.20-4.15 {m. 1H. H-3'). 4.15-4.10 (m. 1H. H-4'), 3,72 (s. 3H, OCH), 3.40-3,10 (m, 2H, H-5' et 51, 2.60-2,45 (m. 1H. H-2' partiellement obscurcl par DMSO-d5), 1,90 (d. 1H, H-2": J m 14,7 Hz); spectre de masse (matrice: glycérol-thioglycérol. 50:50. v/v): FAB 517 [M-Hl,'. 245 [M-monomethoxytrityll' et 129 [BI'. '-O-Monomethoxytrityl-2',3'-dtdeoxy-f-L-5-fluorourldine (}). Ce composé est préparé selon un procédé analogue A celui employé lors de la synthèse de fi. Ainsi. M (2.8 g: 5,40 mmol) est mis en réaction avec du 0-phenyl chloroth1onoformate (1.5 ml; 11,08 mmol) et de la DMAP (5,97 g. 48.85 mmol) dans de l'acétonitrile anhydre (250 ml) pour donner, après traitement, un résidu qui est traité par du Bu3SnH (3,75 ml; 13,93 mmol) et de I'AIBN (0,28 g: 1,70 mmol) dans du dloxane (95 ml) durant 2 h sous argon. Après traltement, le résidu est chromatographié sur une colonne de gel de silice [ eluant: gradient par étape de méthanol (0-2 %) dans le dlchlorométhanel pour conduire à 1.6 g (rendement 59 % de e sous forme de mousse: RMN- H (DMSO-d}) Sppm: 11,84 (s. 1H, 3-NH). 7.90 (d. 1H, H-6: J a 6.8 Hz), 7.50-6,80 (m. 14 H. mMTr). 5,95 (d, IH, H-l'; J - 5,9 Hz), 4,20- 4.10 (m. 1H. H-4'). 3,72 (s. 3H, OCH3), 3,40-3,15 (m, 2H, H-5' et 5" partiellement obscurci par H20). 2.40-2.20 (m. 1H. H-2'). 2.20-1,85 (m, 3H, H-2", 3' et 3"); spectre de masse (matrice: glycérol-thioglycérol. 50 : 50. v/v): FAB 129 [BI. 2',3'-Dideoxy--L-5-fluorouridine (-L-5-FDDU: 1i). Le composé] (1.6 g; 3,18 mmonl) est dissous dans de l'acide acétique aqueux à 80 % et la solution est agitée à température amblante durant 2 h. Après évaporation des solvants, le résidu est coévaporé plusieurs fois avec un mélange tolu/ne-méthanol. Une chromatographie sur colonne de gel de silice leluant: gradient par étape de méthanol (0-5 %) dans le dichlorométhanel conduit à 0.6 g (rendement 82 %) de 1c sous forme de mousse: RMN-1H (DMSO-d) eS ppm: 11.76 (s.lH. 3- NlH). 8.38 (d. 1H, H-6; J. 7,5 Hz), 5,89 (dd. 1H. H-I'; J m 2.0 et 4.0 Hz), 5,20 (t. 1H, OH-5'; J = 5,0 Hz): 4,10-4,00 (m, 1H, H-4'), 3,80-3,65 Im. 1H. H-5': après échange D20: 3,69 ppm. dd. J - 2.8 et 12.3 HzI. 3.60-3.50 [m. 1H, H-5"; après échange D20: 3.50 ppm. dd. J - 3,3 et 12.3 Hz]. 2.35-2.20 (m. 1H, H-21. 2,10-1.80 (m, 3H. H-2", 3' et 3") spectres de masse (matrice: glycérol-thloglycérol, 50: 50, v/v): FAB>O 231 [ M+H]+, 131 [BH2]+, 101 [s91+: FAB Zzxemdle: 2'.3'-Dtdeoxy-b-L-cytldine (e-L-DDC, 2a). A une solution de 0-L-DDU (lQ) (0,4 g: 1,88 mmol) dans de la pyridlne anhydre (6 ml) on ajoute à 0OC de l'anhydride acétique (0,27 ml : 2.9 mmol) et le mélange réactionnel est agité 1 h à O'C. puis 5 h à température ambiante. On rajoute ensuite de l'eau glacée et l'on extrait deux fois avec du chloroforme. La phase organique est séchée sur sulfate de sodium. filtrée. coévaporée plusieurs fois avec du toluène et évaporée à sec pour conduite à 0.55 g d'un résidu correspondant à la '-0- acétyl I-L-DDU (iS) suffisamment pure (ccm) pour étre dlrectement utillsée dans l'étape suivante. A une solution du résidu dans du dichlorethane anhydre (49 ml) on aJoute le réactif de Lawesson (Aldrich, Art. 22,743-9: 0,64 g; 1,6 mmol) et le mélange est porté à reflux sous argon durant 2 h. Après évaporation des solvants, le résidu est chromatographit sur colonne de gel de silice [eluant: gradient par étape de méthanol (0-1 %) dans le dichlorométhanel pour donner 0,55 g de 5'-O- acetyl-0-L-4-thiouridine t suffisamment pure (ccm) pour être directement utilisée dans la dernière étape. Le résidu est dissous dans du méthanol amnmoniacal (11 ml), et la solution est chauffée à 'C pendant 3 h dans un autoclave. Le mélange est refroldi, évaporé à sec et le résidu est chromatographié sur colonne de gel de sllice feluant: gradient par étape de méthanol (0-12 %) dans le dlchlorométhanel pour donner 0,33 g (rendement 83 %) de P-L-DDC (ia) pure qul crtstallise dans l'éthanol: F = 220-222 'C; UV (EtOH 95) max 273 nm,>min 252 nm; RMN-1H (DMSO-d6) Sppm - 7,89 (d. 1H. H-6: J - 7,4 Hz), 7,15-6,95 (d large, 2H, NH2). 5,91 (dd. 1H, H-I': J 3, 0 et 6,5 Hz), 5,66 (d, 1H, H-5; J a 7.4 Hz), 4,99 (t, IH. OH-5': J -5,2 Hz), 4,05-3,95 (m, 1H, H-4'), 3,60-3,70 (m. 1H, H-6': après échange D20: dd. 3,64 ppm. J - 3,6 et 12.0 Hzl, 3.60-3.50 (in. 1H, H-S": après échange D20: dd, 3,50 ppm, J = 4,1 et 12,0 HzA. 2.30-2.15 (m, 1H. H- 2'), 1,9-1,65 (m, 3H, H-20. 3' et 3"); [aoD20 -103,6 (c 0.8. méthanol): spectres de masse (matrice: glycérol-thloglycérol. 50: 50, v/v): FAB>0 423 [2M+HJ+, 304 [M+glycérol+Hl+, 212 IM+H]+, 112 [BH2]+, 101 Isi+: FAB Anal. Calculé pour C9HlSN303 (M - 211.21): C 51,18: H 6.20: N 19,89. Trouvé: C 51,34; H 6,25: N 20,12. ExemplUl: 2',3'-Dideoxy-fi3-L-5-filuorocytidlne (A-L-5-FDDC, a]l) A une solution de [3-L-5-FDDU (lO (0,55 g; 2.39 mmol) dans de la pyridine anhydre (10 ml) on aJoute A O*C de l'anhydride acétique (0.34 ml; 3.60 mmol) et le mélange réactionnel est aglté 1 h à O 'C puis 3 h à température ambiante. Une quantité supplémentalre d'anhydride acétique (0,22 ml: 2,33 mmol) est rajoutée et l'agitation est poursuivie pendant 3 h à température ambiante. On raJoute ensuite de l'eau glacée et l'on extrait deux fois avec du chloroforme. La phase organique est séchée sur sulfate de sodium, filtrée, coévaporée plusieurs fois avec du toluène, et évaporée à sec pour condulre à 0,67 g d'un résidu correspondant à la 5'-O-acetyl-0-L-5-FDDU (l) suffisamment pure (cem) pour dtre directement utilisée dans l'étape suivante. A une solution du résidu dans du dichloroéthane anhydre (67 mU on aJoute le réactif de Lawesson (0.60 g: 1.48 mmol) et le mélange est porté au reflux sous argon. Deux quantités supplémentaires de réactif de Lawesson sont rajoutées, respectivement après 2 h (0,41 g: 1,01 mmol) et 3 h (0,20 g: 0,49 mmol) de reflux. Après évaporation des solvants, le résidu est chromatographié sur colonne de gel de sllice [eluant: gradient par étape de méthanol (0-2 %) dans le dichlorométhanel pour donner 0,48 g de 5'-O-aoetyl-{-L-5fluoro-4-thlouridlne (lm> suffisamment pure (ccmn) pour être directement utilisée dans la dernière étape. Le résidu est dissous dans du méthanol ammoniacal (12 ml) et la solution est chaufée à 100'C pendant 3 h 30 dans un autoclave. Le mélange est refroidi, évaporé à sec et le résidu est chromatographié sur colonne de gel de silice leluant: gradient par étape de méthanol (0-8 %) dans le dlchlorométhanel pour donner 0,27 g (rendement 51 %) de,3-L- -FDDC (3M pure qui cristallise dans l'acétate d'éthyle: F - 158- C: UV (EtOH 95)> max 281 nm (F, 8400) et 237 nm (C, 8500): min 260 nm (f, 5700) et 225 nm (/, 7800): RMN-1H (DMSO-d4) ppm 8,28 (d, 1H, H-6: J - 7, 4 Hz), 7,7-7,4 (d large, 2H, NH2), 5,83 (dd mal résolu, 1H, H-i'), 5,16 ( t. 1H, OH-5': J, 5.1 Hz), 4.05-3.95 (m, 1H, H- 41, 3,8-3,70 [m.1 H, H-5': après échange D20: dd, 3,71 ppm, J a 2,7 et 12,3 HzI, 3.60-3.50 Im, 1H, H-5"; après échange D20: dd, 3,52 ppm; ils J 3,3 et 12,3 HzI, 2,35-2,15 (m, 1H, H-2'), 1,95-1,75 (m, 3H, H-2", 3' et 3") la aid20 -80,0 (-c 1,0, DMSO); spectres de masse (matrice: alcool 3-nitrobenzylique) FAB>0 230 [M+HJ+; 130 [BH2]+ et 101 [s]+: FAB 228 [M-Hi'. AnaL. Calculé pour C9H12N3FO3 (M. 229,21): C 47,16: H 5,28: N 18,33, F 8.29. Trouvé: C 46,90: H 5,28: N 18,07; F 8,17. Les composés de l'invention ont été soumis à des ecsais pharmacologiques montrant leur intérêt dans le traitement de maladies virales. Evaluatinn de l'activité anti VIH I sur diverses lignées cellulaire-. VIH - virus de l'immunodéficience humaine. La réplication du VIH-1 (Isolat LAI) dans les lignées cellulaires cst mesurée par un dosage de la réverse tanscriptase (RTase) dans le surnageant de culture après 5 jours d'infecdtion. Cette activité traduit la présence de virus libéré par les cellules. Après l'adsorption du virus, les composés testés sont ajoutés à différentes concentrations dans le milieu de culture. L'activité antivirale est exprimée par la concentration la plus faible de composé qui diminue la production de RTas d'au moins 50 % (EDSe. Leffet toxique sur les cellules non infectés est apprécié par une réction colorimétrique basée sur la capacité des cellules vivantes à réduire le bromure de 3- (4,5-diméthytthiazol-2-yl)-2,5 diphenyltetrazolium en formazan après 5 jours d'incubation en présence de différentes concentrations des composés. Les résultats sont exprimés par la concentration la plus faible de composé qui provoque une inhibition d'au moins 50 % de la formation de formzan (CDS0). La BI-L-DDC la) et plus encore la B-L-SFDDC (Q1 ont une ED50 marquée sur le VIH-1 et le VIH-2 comme indiqué ci-après Compo: s: 2àa 21h AZT DDC CEM-SSIVI,-1 LAI ED% 3 107 M 3.8 108 M 2.5 10-9 M 3.5 10'8 M CD50 8.3105 M 910-5 M > 10o4 M 610"5M PBMVIlHIII MB ED50 3.510'7M 310-8 M 1. l 109 M 410-8M CD50 le0M 104M 710-SM 7 10SM PBMCIVIH-2 D 194 ED50 3.5 10-8 M 4.5 1048 M 1 109 M 2 109 M CD50 104 M 104 M 8 10"S M 2.5 10'5 M De plus cette activité anti VIH-1 est confirmne sur diverses autres lignées cellulaires: MT-4 (ED50: 2 1.5 15 M,21h 2.4 16 M; Ref: AZT 2.7 1'8 M, DDC2.5 1(J6 M) U 937 (ED0: 21U 1.5 1(T7 M, 2l 4.2 10'10 M; Ref: AZT 4 10'10 M, DDC 3.8 10>10 M) CEM TK (ED50: 2la 9.5 10'8 M,21h 9.5 10'8 M; Ref: AZT > l04 M, DDC 2.5 l06 M) Enfin ces composés présentent aussi une activité anti VIH-I sur les lign es résistantes à 'AZT et à la Nevirpine CEM-SS/Vn-I Nevirapine résistant (ED: 1a 106 M, 1h 7.2 10'7 M; Ref: AZT 7.5 10'6 M, DDC 1.2 I0-7 M) MT2/VIH-1 AZT résistant (Larder) (EDO: 2a 3.5 10-7 M, 2 0 2 107 M; Ref: AZT 7 10'6 M, DDC 2.2 le7 M) REVENDICATIONS 1. Procédé de préparation de composés 2' ou 3' déoxy et 2', 3'- didéoxy-R-L-pentofuranocucléosides de formule I: R2. dans laquelle - B représente une base purique ou pyrimidique; - R1 représente OH; - Rz et R3 représentent indépendamment l'un de l'autre H ou OH; - l'un au moins de R2 et R3 représente H, caractérisé en ce que on réalise les étapes suivantes: 1) on condense un composé de formule (II) avec la base B pour obtenir le composé de formule (III) suivant le schéma: (II) 13' R.B'tX 8 (Il) + (III) formules (II) et (III) dans lesquelles - R'1 et R'2 ont les significations données pour R1 et R2 excepté que quand R1 et R2 représentent OH, ledit groupe OH est protégé par un groupe protecteur tel qu'un groupe acyle, benzoyle, benzyle ou silyle, - R'3 représente un groupe alkyl en C1 à C5 ou un radical phényl, éventuellement substitués, - X est un groupe partant tel que Cl, Br, I ou un groupe acyloxy ou alkoxy en C1àCs, - B' est une base purique ou pyrimidique B éventuellement convenablement protégée, 2) on élimine le groupe R'3 CO en position 2' par déacétylation de manière à obtenir un groupe OH et un composé de formule R* M /lB (IV) 3) éventuellement, on élimine le groupe OH en position 2', et 4) on déprotège, le cas échéant, les groupes R'1 et R'2 et la base B' de manière à obtenir les composés de formule (1). 2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que, dans les composés (II) et (III), R'3 représente un groupe alkyl en C 1 à C5, de préférence CH3. 3. Procédé selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce que on prépare le composé (II) di-O-acétylé en position 1, 2, dans lequel X et R'3 COO représentent un groupe O-acétyle, par acétolyse du composé 1, 2 isopropylidène-L-xylofurannose de formule (V) (V) 4. Procédé selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que R'2 et R'3 COO sont différents, en particulier R'2 est un groupe O- benzoyl et R'3 est un groupe alkyle. 5. Procédé selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisé en ce qu'on prépare les composés de formule (I) ou Rz et R3 représentent HouOIH. 6. Procédé selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que B représente l'une des bases adénine, guanine, hypoxanthine, uracile, thymine ou cytosine, ces bases pouvant être substituées notamment par un halogène en position 5 pour la cytosine et l'uracile. 7. Procédé de préparation d'un composé de formule (I) o B est la cytosine selon l'une des revendications 1 à 6, caractérisé en que on prépare un composé de formule (I) dans lequel B est l'uracile selon le procédé des revendications 1 à 6 et l'on transforme le dérivé d'uridine en dérivé de cytidine en transformant l'uracile en cytosine. 8. Composés stéréoisomères 2' ou 3' déoxy et 2, 3'-didéoxy-9-L- pentofuranonucléosides répondant à la formule suivante R - R1, R2 et R3 et B ont les significations données dans la revendication 1. 9. Composés selon la revendication 7 caractérisé en ce que B représente l'uracile, la 5-fluoro-uracile, l'hypoxanthine, la 5- flurocytosine, la guanine ou l'adénine. 10. Composés selon la revendication 8 ou 9, caractérisé en ce que R2 et R3 représentent H. 11. Composé selon l'une des revendications 8 à 1 1 choisi parmi la k-L-ddU, l-L-5 fluoro-ddU, l-L-5-fluoro ddC. 12. Utilisation des composés selon l'une des revendications 8 à 11 à titre de médicament. 13. Utilisation des composés selon l'une des revendications 8 à 11 à titre de médicament anti-viral. 14. Utilisation des composés selon l'une des revendications 8 à 1l1 à titre de médicament anti-viral utile pour le traitement du SIDA. 15. Utilisation de la S-L-5-fluoro ddC selon la revendication 14 à titre d'agent antiviral. 16. Utilisation de la I-L-5 fluoro ddC selon la revendication 15 comme agent anti-VIH.