FR 2694571 A1 19940211 FR 9209882 A 19920810 i Polvpeptides possédant une activité nitrilase séquence d'ADN codant pour lesdits polypeptides, cassettes d'expression et micro-organismes hôtes permettant leur obtention, procédé de transformation des nitriles en carboxvlates au moyen desdits polvpeptides. La présente invention a pour objet de nouveaux polypeptides présentant une activité nitrilase, les outils de génie génétique pour les produire, à savoir une séquence d'ADN, les cassettes d'expression portant cette séquence d'ADN recombinant et les micro-organismes recombinés (microorganismes hôtes) contenant ladite séquence d'ADN. La présente invention a également pour objet un procédé de trans- formation enzymatique des nitriles en carboxylates au moyen des polypeptides selon l'invention ou d'un micro-organisme hôte contenant la séquence d'ADN selon l'invention Une application particulière du procédé de l'invention est la synthèse enzymatique de ladipate d'ammonium ou du cyano-5 valérate d'ammonium par hydrolyse de l'adiponitrile à l'aide d'un polypeptide ou d'un micro-organisme hôte selon l'invention. On sait que l'adipate d'ammonium est un produit particulièrement intéressant car il peut être transformé en acide adipique, un produit lui-même largement utilisé pour la préparation du Nylon-6,6. L'hydrolyse enzymatique des dinitriles a été décrite par de nombreux auteurs Cependant, les voies d'hydrolyse de ces dinitriles en acides organiques ne sont pas souvent évoquées Le schéma théorique d'hydrolyse est le suivant: NC-R-CN Ni i NH A NC-R-CONH 2 NH -0 NC-R-COO NH 4 + H 2 NOC-R-CONH 2 1 \/NH Ni\ H 2 NOC-R-COO NH 4 + + 4 HN -OOC-R-COO NH 4 + NH = nitrile hydratase Ni = nitrilase A = amidase R = (CH 2)n, N étant un nombre entier égal à 4 dans le cas de l'adiponitrile. En fait, on note très souvent que certaines voies sont privilégiées et que certains produits ne se forment pas ou bien ne sont pas hydrolysés. Parmi les micro-organismes chez lesquels on a pu démontrer l'existence d'une activité enzymatique permettant cette hydrolyse, on peut citer notamment les souches appartenant au genre Fusarium, qui dégradent le succi- nonitrile et l'adiponitrile sans indication sur les produits de la réaction lGoldlust et al, Biotechnol and Appl Biochem, 1989, 11, 581 l; les souches appartenant au genre Pseudomonas, qui dégradent l'adiponitrile lYanase et ai, Agric Biol. Chem, 1982, 46, 2925 l; et les souches appartenant au genre Rhodococcus, en particulier Rhodococcus rhodochrous NCIB 11 216, qui hydrolyse l'adiponitrile en acide adipique lBengis-Garber et al, Appl Microbiol Biotechnol, 1989, IIl et aussi Rhodococcus rhodochrous K 22 dont la nitrilase permet l'hydro- lyse de l'adiponitrile et du glutaronitrile lYamada et al, J Bacteriol, 1990, 172 ( 9), 4807-4815 l, cependant avec un rapport d'activité faible comparativement à celui de l'hydrolyse des nitriles aromatiques. Par conséquent, on voit que l'hydrolyse enzymatique des dinitriles est assez complexe: dans tous les cas, la première fonction CN est bien hydrolysée par l'enzyme, alors que la deuxième fonction ne l'est pas du tout dans certains cas ou bien avec une vitesse très faible dans d'autres. On a maintenant trouvé qu'il était possible d'hydrolyser totalement et rapidement les nitriles en carboxylates et plus particulièrement les dinitriles en carboxylates ou dicarboxylates en faisant appel à des enzymes convena- blement sélectionnées, utilisées soit telles quelles, soit, de préférence, sous la forme de micro-organismes recombinés les générant. La présente invention a donc pour objet de nouveaux polypeptides ayant une activité nitrilase, qui ont été isolés à partir d'une souche de Comamonas testosteroni Plus précisément, ces polypeptides sont préparés par extraction et purification à partir de cultures de micro- organismes naturels ou recombinants, la purification étant réalisée par une sucession d'étapes consistant à préparer un extrait enzymatique à partir de la culture cellulaire, à précipiter cet extrait avec du sulfate d'ammonium et à le purifier par différentes étapes de chromatographie et filtration sur gel Ces étapes, qui font appel à des techniques bien connues de l'homme du métier, sont décrites en détail dans les exemples illustratifs ci-après. Par "activité nitrilase", on désigne dans la présente description la conversion directe d'un nitrile en carboxylate d'ammonium, ramide correspon- dant n'étant pas un substrat de l'enzyme. Un autre objet de l'invention concerne une séquence d'ADN codant pour un polypeptide ayant une activité nitrilase La séquence d'ADN codant pour un polypeptide de l'invention peut être choisie parmi: la séquence d'ADN codant pour un polypeptide ayant une activité nitrilase, telle que représentée à la figure 4; un analogue de cette séquence résultant de la dégénérescence du code génétique; ou bien une séquence d'ADN hybridant avec l'une de ces séquences ou avec un fragment de celles-ci et codant pour un polypeptide ayant une activité nitrilase. Une telle séquence d'ADN peut être obtenue par clonage du fragment d'ADN génomique codant pour le polypeptide recherché, à l'aide de sondes nucléotidiques élaborées à partir du polypeptide purifié. L'invention concerne également les cassettes d'expression qui portent, avec les signaux assurant son expression, la séquence d'ADN recombinant définie précédemment Ces cassettes d'expression peuvent être soit intégrées dans le génome de l'hôte, soit localisées sur un vecteur d'expression, tel qu'un plasmide contenant un moyen de sélection. Ces cassettes d'expression comportent notamment des régions d'initiation de la transcription et de la traduction, qui contiennent un site de fixation des ribosomes et une séquence promotrice Ces régions peuvent être homologues ou hétérologues du micro-organisme produisant naturellement le polypeptide. Le choix de ces régions dépend notamment de l'hôte utilisé En particulier, lorsqu'il s'agit de micro-organismes hôtes procaryotes, le promoteur hétérologue peut être choisi parmi les promoteurs bactériens forts, tels que le promoteur de l'opéron tryptophane Ptrp de E coli, le promoteur de l'opéron lactose Plac de E coli, le promoteur droit du phage lambda PR, le promoteur gauche du phage lambda PL des promoteurs forts de Pseudomonas et Comamonas, les promoteurs forts de Corynébactéries. Plus particulièrement, dans le cas du promoteur droit du phage lambda, la forme thermosensible PRC Its pourra être préférée Dans le cas des micro-organismes eucaryotes, tels les levures, les promoteurs peuvent être issus de gènes glycolytiques de levure, tels les gènes codant pour la phospho- glycérate kinase (PGK), la glycéraldéhyde-3-phosphate déshydrogénase (GPD), la lactase (LAC 4), 1 'énolase (ENO). Concernant les sites de fixation des ribosomes, celui dérivé du gène CII de lambda ainsi que ceux dérivés de gènes homologues de Comamonas ou Pseudomonas ou ceux dérivés de gènes de Corynebacteries sont utilisés préfé- rentiellement lorsque le micro-organisme hôte est procaryote. Une région permettant une terminaison de la traduction et de la transcription fonctionnelle de l'hôte envisagé peut être positionnée en 3 ' de la séquence codante La cassette d'expression comprend également un ou plusieurs marqueurs permettant de sélectionner l'hôte recombinant Les marqueurs préférés sont des marqueurs dominants, c'est- à-dire conférant une résistance à des antibiotiques comme l'ampicilline ou la streptomycine ou à d'autres produits toxiques. Parmi les micro-organismes hôtes utilisés, on peut citer notamment les entérobactéries telles que E coli, les bactéries appartenant aux genres Comamonas ou Pseudomonas, les bactéries corynéformes telles que celles appartenant aux genres Corynebactérium, Brevibacterium ou Rhodococcus. L'invention a également pour objet les micro-organismes contenant la séquence d'ADN recombinante selon l'invention, par exemple sur un plasmide comportant un moyen de sélection. Un micro-organisme recombiné contenant ladite séquence d'ADN sur une structure plasmidique a été déposé à la Collection Nationale de Cultures de Micro-organismes (C N C M) (Institut Pasteur, 25 rue du Docteur Roux, Paris) sous le N 1-1242 le 21 juillet 1992 Ce micro-organisme est la souche E. coli TG 1 qui contient le plasmide p XL 2148; ce microorganisme est également identifié par la Demanderesse par la référence G 4207. L'invention a également pour objet les micro-organismes susceptibles de transformer des nitriles en carboxylates et plus particulièrement des dinitriles aliphatiques de formule NC R CN dans laquelle R est un groupe alkylène linéaire ou ramifié ayant de 1 à 10 atomes de carbone en carboxylates. L'invention concerne aussi le procédé de transformation des nitriles en carboxylates à l'aide d'un polypeptide selon rinvention ou d'un micro- organisme recombiné le générant Ce procédé consiste à mettre en présence le nitrile à transformer avec un polypeptide ou un micro- organisme recombiné tel que défini précédemment On opère généralement à la température ambiante. Selon un mode particulier de réalisation de l'invention, le polypeptide ou le micro-organisme recombiné sont immobilisés sur ou dans un support solide. Le procédé de l'invention convient pour la transformation des nitriles en carboxylates et plus particulièrement pour la transformation en carboxylates des dinitriles de formule NC R CN dans laquelle R est un groupe alkylène linéaire ou ramifié contenant 1 à 10 atomes de carbone. Le procédé de l'invention est particulièrement approprié pour la synthèse enzymatique de l'adipate d'ammonium à partir d'adiponitrile. Les exemples qui suivent permettent d'illustrer les caractéristiques et les avantages de la présente invention, sans toutefois en limiter la portée. DESCRIPTION DES FIGURES La figure 1 représente le rendement (%) d'hydrolyse de l'adiponitrile en cyanovalérate (courbe a) et en adipate d'ammonium (courbe b) en fonction du temps de réaction en heures pour la souche Comamonas testosteroni sp; la figure 2 représente la carte de restriction des plasmides p XL 2075 et p XL 2076; la figure 3 représente la carte de restriction du fragment Sst I-Sst I de 4,1 kb contenant la séquence d'ADN (dénommé sur la figure "gène de la nitrilase") codant pour le polypeptide ayant l'activité nitrilase selon l'invention, fragment présent dans les plasmides p XL 2075 et p XL 2076; la stratégie d'élaboration du fragment Xba I-Sst I contenant la séquence d'ADN selon l'invention est également représentée sur cette figure; la figure 4 représente la séquence d'ADN selon l'invention avec sa séquence d'acides aminés déduite; la figure 5 représente la carte de restriction du plasmide p XL 2087; la figure 6 représente la carte de restriction du plasmide p XL 2148; la figure 7 représente l'électrophorèse sur gel de SDS-PAGE SOS à 10 % montrant l'expression de la séquence d'ADN selon l'invention dans la souche E coli TG 1 Chaque piste correspond à une quantité de protéine équivalente à 60,l de culture à une densité optique à 610 nm de 3. Les abréviations utilisées dans la suite de la description ont les significations ci-après: SSC: tampon couramment utilisé pour des hybridations; il contient du citrate de sodium et du Na Cl ( 20 XSSC = Na Cl 3 M-citrate de sodium p H 7, 0,3 M) SDS: dodécylsulfate de sodium FPLC: chromatographie liquide dénommée en langue anglaise "fast protéin liquid chromatography" SDS-PAGE: gel d'électrophorèse à base de dodécylsulfate de sodium et de polyacrylamide IPTG: isopropylthio l 3-D galactopyranosyle. Exemple 1: Purification de la nitrilase de Comamonas testosteroni sp. 1 Préparation des cellules Une souche de Comamonas testosteroni sp a été cultivée, en fiole agitée, à 28 C, pendant 15 h 30, dans le milieu A dont la composition est la suivante: Milieu A Glucose 5 g/1 (NH 4)2504 1 g/l Na 2 HPO 4 5,24 g/l KHPO 4 2,77 g/1 Extrait de levure 5 g/l Casamino Acides 1 g/l Cette préculture a servi à ensemencer un fermenteur de 20 1 contenant 15 1 de milieu A Le p H, la température, le débit d'air et la vitesse d'agitation ont été régulés respectivement à 6,6, 28 C, 300 1/h et 350 tr/min. Après 24 h, 84 g de cellules humides ont été récoltées Cela correspond à une teneur en poids sec de cellules de 0,9 g/l et à une densité optique à 660 nm (DO 660 nm) de 2. 2 Détermination de l'activité enzymatique sur adiponitrile Un culot cellulaire contenant 13,1 mg de poids sec de cellules a été mis en suspension dans 2 ml d'une solution 52,3 m M en adiponitrile dans le tampon phosphate de potassium 50 m M; ph 7 La réaction a été conduite à ?C sous agitation et la cinétique a été suivie par prélèvement Sur chaque prélèvement ont été dosés par chromatographie liquide haute performance (CLHP) le cyano-5-valéramide, l'adipamide, le cyano-5-valérate, l'adipamate et l'adipate Les résultats sont regroupés sur la figure 1 qui représente les courbes de rendement (en ordonnées) en cyanovalérate (courbe a) et en adipate d'ammonium (courbe b) La vitesse de formation du cyanovalérate et de l'adipate était respectivement supérieure à 0,45 et égale à 0,15 U/mg de cellules poids sec ( 1 U est égale à 1 iumole de produit formé par minute). 3 Purification Toutes les étapes de la purification ont été réalisées dans le tampon Tris/H Cl 50 m M p H 7,5, 1 m M de dithioérythritol (DTE) sauf indication contraire A chacune des étapes, l'activité nitrilase des fractions a été déterminée à p H 7 et à 25 C dans le tampon phosphate 10 m M en présence d'adiponitrile 10 m M La concentration en protéine des pools a été déterminée par la méthode au bleu de Coomassie (kit PIERCE Protein assay) Le pannel de protéines a été analysé par chromatographie sur gel de polyacrylamide-SDS (Phastsystem PHARMACIA). Les modes opératoires de chacune des étapes sont commentés ci- dessous. Etape 1: Extrait brut 57 g de cellules humides ont été reprises dans 85 ml de tampon et traitées aux ultrasons pendant 30 min (Sonicateur VIBRACELL de Bioblock: Sonde 13 mm; puissance 7; 40 % du cycle actif) La DO 660 nm est passée ainsi de 97 à 60 Après centrifugation à 48 000 g maximum pendant 60 min, le surnageant a été récupéré. Ce surnageant a été amené, par adjonction progressive de sulfate d'ammonium, à 15 % de la saturation Après 1 h, la suspension a été centrifugée min à 30 000 g maximum Le surnageant a été amené à 50 % de la saturation Après 1 h, la suspension a été centrifugée dans les mêmes conditions, le précipité a été récupéré puis dialysé contre le tampon pendant deux jours. Etape 2: Colonne échangeuse d'ions (Q Sepharose Fast Flow) La fraction dialysée a été chargée à un débit de 125 ml/h sur une colonne ( 26 x 380 mm) de "Q Sepharose Fast Flow" équilibrée avec le tampon à un débit de 250 ml/h La colonne a été percolée à un débit de 250 ml/h succes- sivement par les solutions suivantes: 166 ml de tampon ml d'un gradient 0 à 0,2 M en K Cl dans le tampon ml de tampon additionné de K Cl 0,2 M 270 ml d'un gradient 0,2 à 0,4 M en K Cl dans le tampon 180 ml de tampon additionné de K Cl 0,4 M ml de tampon additionné de K Cl 1 M La fraction ayant l'activité nitrilase a été éluée dans un volume de 129 ml au cours du palier à 0,2 M en K Cl. Les étapes suivantes sont réalisées sur le système FPLC (Pharmacia). Etape 3: filtration sur gel (FPLC Superdex 200) La fraction ayant l'activité nitrilase obtenue précédemment ( 129 ml) a été concentrée jusqu'à 12 ml par précipitation des protéines avec du sulfate d'ammonium à 80 % de la saturation, suivie d'une dialyse contre le tampon La fraction ainsi concentrée ( 12 ml) a été chargée en 2 fois sur la colonne de gel ( 16 x 600 mm) équilibrée avec le tampon additionné de 0,1 M de K Cl à un débit de 0,8 m Ul/min Les fractions ayant l'activité nitrilase ont été éluées avec le tampon ci-dessus à un débit de 1 ml/min et dans un volume total de 36 ml Ces fractions correspondent à un poids moléculaire de 280 k Da. Etape 4: Colonne d'hydroxyapatite (BIO-RAD HPHT; 7,8 x 100 mm) Les fractions obtenues ci-dessus ont été concentrées à 8 ml par ultrafiltration (membrane DIAFLO PM 39 AMICON) La solution concentrée a été injectée sur la colonne d'hydroxyapatite équilibrée avec le tampon additionné de Ca C 12, 10 u M La colonne a été percolée, à un débit de 0,5 ml/min, successivement avec: ml du tampon d'équilibrage; ml d'un gradient de phosphate de potassium de O à 350 m M dans le tampon d'équilibrage; ml du tampon d'équilibrage additionné de 350 m M de phosphate de potassium. Les fractions ayant l'activité nitrilase ont été éluées entre 62 et m M en phosphate de potassium sur un volume de 3 ml. Etape 5: Colonne d'interaction hydrophobe (FPLC-Phenyl Superose HR 5/5) Les fractions actives obtenues ci-dessus, amenées à 15 % de la saturation en sulfate d'ammonium, ont été chargées à un débit de 0,5 ml/min sur la colonne, équilibrée avec du tampon contenant du sulfate d'ammonium à 15 % de la saturation La colonne a été percolée avec: 6 ml de tampon d'équilibrage, 12 ml d'un gradient décroissant de sulfate d'ammonium 15 % à O % de la saturation en sulfate d'ammonium dans le tampon, 23 ml de tampon. Une partie des fractions ayant l'activité nitrilase ont été éluées lors du lavage de la colonne avec le tampon d'équilibrage Ces fractions actives ont été réinjectées dans les mêmes conditions Cette opération a été effectuée deux fois Les fractions actives, éluées après le gradient, ont été réunies (volume 51 ml). Etape 6: Filtration sur gel (FPLC-Superdex 200) Les 51 ml ont été concentrés à 3 ml par ultrafiltration sur membrane (AMICON DIAFLO PM 30) Ces 3 ml ont été chargés sur la colonne ( 16 x 600 mm), équilibrée avec le tampon additionné de 0,1 M K Cl Les 9 ml contenant l'activité ont été élués à une position correspondant à un poids moléculaire de 280 k Da Cette solution a été amenée à 36 % de glycérol puis congelée pendant 15 jours. Etape 7: Colonne échangeuse d'ions (FPLC Mono Q HR 5/5) La solution protéique a été décongelée et chargée sur la colonne, équilibrée avec le tampon contenant 0,1 M de K Cl, à un débit de 0,5 ml/min La colonne a été percolée successivement avec: ml à 0,5 m Ul/min de tampon additionné de 0,1 M en K Cl, 4,5 ml à 1 m Ul/min de tampon additionné de 0,1 M en K Cl, 15 ml à 1 ml/min d'un gradient de K Cl de 0,1 à 0,4 M dans le tampon, ml de tampon additionné de 0,4 M de K Cl. Les fractions actives ont été éluées entre 0,15 et 0,3 M de K Cl Ces fractions sont homogènes Par analyse SDS-PAGE, deux bandes très proches de 38 et 39 k Da sont visibles Les fractions ainsi obtenues seront dénommées ci-après "nitrilase purifiée". Les données de chacune des étapes de purification ci-dessus sont rassemblées dans le tableau 1 ci-après: TABLEAU 1 Purification de la nitrilase de Comamonas testosteroni sp ETAPE DE VOL PROTEINE ACIIVITE RENDEMENT PF PURIFICATION TOTALE SPECI PRO ACTI- FIQUE TEINE VITE ml mg U U/mg % % 0/ Extrait brut 61 920 62000 68 100 100 1 2/ Q Sepharose 130 245 47000 190 27 76 2,8 FF _ 3/ Filtration sur36 27 56000 2100 2,9 90 30 gel 4/ Colonne 3 12 49000 4100 1,3 79 60 hydroxy- apatite /Phényl 51 11 11000 1000 1,1 18 15 Superose 6/ Filtration sur 9 2,7 6300 2300 0,3 10 34 gel 7/ Mono 2,9 1 1200 1200 0, 01 2 18 Q HR 5/5 Abréviations: PF coefficient de purification; U = lumol/h. 4 Détermination de la séquence N-terminale de la nitrilase A partir de la protéine purifiée, la séquence N-terminale de 27 aminoacides a été déterminée par dégradation séquentielle automatique d'Edman en utilisant un appareil "Applied Biosystems Model 470 A" Cette séquence est la suivante: Met Lys Asn Tyr Pro Thr Val Lys Val Ala Ala Val Gin Ala Ala Val 10 15 Phe Met Asn Leu Glu Ala Thr Val Asp Lys Thr 25 La recherche dans les banques de séquences a permis de trouver une identité de 53 % avec la nitrilase de Klebsiella pneumoniae active sur le Bromoxynile, qui fait l'objet de la demande de brevet EP N' 373 173. Activité de la nitrilase purifiée a) Influence du p H sur l'activité de la nitrilase La nitrilase purifiée a été testée à différents p H sur deux substrats adiponitrile et cyano-5-valérate dans les conditions indiquées dans le tableau 2 ci-après: TABLEAU 2 Activité de la nitrilase purifiée en fonction du p H sur adiponitrile et cyanovalérate Conditions communes: lsubstratl = 10 m M; tampon 10 m M; Tr C 25; lnitrilasel 12 /fg/ml pour le cyanovalérate et 3 ug/ml pour l'adiponitrile (fraction étape 6); U (Adiponitrile) = umole de cyanovalérate formé/h, U (cyanovalérate) = /mole d'adipate formé/h. SUBSTRAT TAMPON ACTIVITE SPECIFIQUE NATURE p H U/mg de protéine Adiponitrile Acétate 3, 0 2300 Acétate 4,0 2900 Acétate 4,5 2800 Acétate 5,0 2700 Phosphate 6,0 2900 Phosphate 7,0 2700 Phosphate 8,0 2800 Cyano-5-valérate Acétate 4,0 450 Acétate 5,5 180 Phosphate 7,0 30 Phosphate 8,0 6 b) Spectre d'activité de la nitrilase purifiée Les activités de la nitrilase purifiée ont été mesurées sur adiponitrile, cyano-5-valéramide, acide cyano-5-valérique, benzonitrile, propionitrile, acrylonitrile Les résultats sont donnés dans le tableau 3. TABLEAU 3 Activité relative de la nitrilase purifiée sur différents nitriles SUBSTRAT ACTIVITE RELATIVE (%) Adiponitrile 100 Cyano-5-valéramide 28 Acide cyano-5-valérique 22 Acrylonitrile 23 Propionitrile 6 Benzonitrile 4 Conditions communes: tampon acétate ( 10 m M p H 4; substrat 10 m M volume = 3 ml; T = 25 C; durée de la réaction = 1 ou 3 h; protéines: de 5 à ug/ml. Exemple 2: Clonage de la nitrilase de Comamonas testosteroni sp. A partir de la séquence NH 2 terminale présentée dans l'exemple 1, une sonde nucléotidique a été synthétisée; le pourcentage en GC élevé des souches de Comamonas décrites dans la littérature (Tamaoka et al, Int J Syst. Bacteriol, 1987, 37, 52-59) a dicté un choix pour la troisième position du codon dans le cas des lysines et dans le cas de la valine La sonde est un 26 mer 128 fois dégénéré (N remplace A, C, G ou T): M KN Y P T V K V ' ATGAAGAA Tr ATCCNACNGT CAAGGT 3 ' C C G La stratégie suivie a consisté tout d'abord à vérifier la spécificité de cette sonde nucléotidique et à déterminer la nature des fragments d'ADN géno- mique à cloner Brièvement, l'ADN génomique de Comamonas testosteroni sp. a été digéré par plusieurs enzymes de restriction (Sst I, Sph I, Bam HI, Pst I) correspondant à des sites utilisables pour le clonage. Après électrophorèse sur gel d'agarose et transfert sur membrane de Nylon, les diverses digestions ont été hybridées à la sonde On constate que la sonde a une spécificité suffisante dans les conditions d'hybridation utilisées (tampon d'hybridation = 5 x SSC, 5 x Denhardt, 0,1 % SDS, 50 m M Na PO 4 p H 6,5, 250 ug/ml ss ADN; température d'hybridation 50 C Conditions de lavage: 1 h, 6 x SSC, température ambiante et 5 min en 2 x SSC, 0,1 % SDS à C). Dans ces conditions, la sonde a permis d'obtenir des signaux importants et sans ambiguïté; en particulier, dans le cas des digestions par Sst I, Sph I, Bam HI et Pst I Les empreintes d'hybridation montrent en particulier l'existence d'un fragment unique Sst I-Sst I d'environ 4 kb Afin de cloner ce fragment, les fragments de 3,5 à 4,5 kb d'une digestion Sst I de l'ADN génomique ont été purifiés par électrophorèse préparative sur agarose et électroélution, puis ligaturés au plasmide p UC 19 (YANISCH et ai, Gene 33 ( 1985) 103), lui-même digéré par Sst I Après transformation dans la souche DH 5 a (Clontech Laboratory, Palo Alto Califomrnie), 600 clones blancs sur LB amp X gal (SAMBROOK et ai, Molecular Cloning A laboratory Manual, 2nd édition, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor Laboratory N Y 1989) ont été repiqués individuellement, transférés sur membrane de Nylon, puis analysés par hybridation avec la sonde ayant servi pour hybrider le Southern blot et ce dans les mêmes conditions de stringence. Six clones ont ainsi été repérés comme hybridant très fortement avec la sonde. Deux clones ayant inséré le même fragment d'environ 4,1 kb dans les deux orientations (p XL 2075 et p XL 2076) ont été analysés plus en détail (cartographie de restriction, séquençage partiel en utilisant la sonde comme amorce et Southern blot) Il a ainsi pu être montré que la partie 5 ' du gène qui hybride avec la sonde est localisée sur un fragment de Xho I-Xba I de 150 pb environ orienté dans le sens Xho I vers Xba I Les figures 2 a et 2 b représentent les cartes de restriction de ces plasmides. Exemple 3: Séquence d'un fragment de 1194 pb contenant l'ADN codant pour le polypeptide ayant l'activité nitrilase. La localisation sur l'insert cloné du fragment de 1194 pb contenant le gène de la nitrilase séquencé est indiquée sur la figure 3 La stratégie de séquençage de ce fragment réalisé selon des méthodes classiques connues de l'homme de métier est également indiquée sur la figure 3 Les diverses séquences ont toutes été obtenues par la méthode de terminaison de chaînes (kit sequenase en présence de 7-deaza d GTP; ( 35 S)d ATP soit sur des matrices simple brin de M 13 (mp 18 ou 19, voir YANISCH et al, op cité) recombinant portant des sous-fragments, soit directement sur le plasmide p XL 2075. Plusieurs amorces spécifiques ont également été synthétisées dans ce but. La séquence d'ADN selon l'invention est représentée sur la figure 4. Le pourcentage en G+C moyen de la séquence obtenue est de 45,7 % ce qui est inférieur au pourcentage G+C de 61,5 % décrit chez d'autres souches de Comamonas (Tamaoka et al, op cité) Une analyse de la séquence obtenue a permis de caractériser une phase ouverte de 1064 pb, appelé ci- après gène nit, codant pour un polypeptide de 354 résidus correspondant à un poids moléculaire de 38 725 Da La séquence en acides aminés de ce polypeptide est indiquée sur la figure 4 Ce polypeptide comprend la séquence NH 2 terminale utilisée pour synthétiser la sonde ainsi que trois séquences internes déterminées sur des fragments trypsiques de la nitrilase purifiée (ces séquences internes sont soulignées sur la figure 4). Ainsi, cette phase ouverte représente la séquence d'ADN selon l'invention. Exemple 4: Homologie avec d'autres protéines. identification de séquence homologue. La séquence d'ADN selon l'invention a été comparée avec l'ensemble des séquences de la banque de protéines NBRF; seule une homologie significative a été trouvée avec la Nitrilase de Klebsiella ozaenae spécifique de l'herbicide Bromoxynil (Stalker et al, J Biol Chem, 1988, 2, 6310-6314) Les deux nitrilases présentent une homologie stricte de 34,9 % répartie sur 320 acides aminés Par ailleurs, cette protéine présente 34,4 % d'homologie stricte répartie sur 312 acides aminés avec la nitrilase d'Arabidopsis spécifique de l'indole-3-acétonitrile lEur J Biochem 205, 417- 424, 1992 l. Exemple 5: Expression de la nitrilase dans E coli. Afin de confirmer l'identification de la phase codante avec la nitrilase purifiée, le gène nit, précédé de son propre site de fixation des ribosomes, a été placé sous le contrôle du promoteur de l'opéron lactose de E. coli selon le mode opératoire décrit ci-après: le plasmide p XL 2087, décrit sur la figure 5, a été obtenu -par insertion du fragment Xho I-Nco I dérivé du plasmide p XL 2075 entre les sites correspondants du vecteur p MTL 25 (Chambers et al, Gene, 1988, 68, 139-149) Ce plasmide contient donc le promoteur de l'opéron lactose Plac, suivi du site de fixation des ribosomes et du gène structural de la nitrilase, ainsi qu'un gène conférant la résistance à l'ampicilline. Le plasmide p XL 2087 a été utilisé pour transformer la souche de E coli TG 1 selon la méthode du chlorure de calcium La sélection des micro- organismes a été faite sur ampicilline. L'expression de la nitrilase a été mesurée, après sonication des cellules, en gel SDS-PAGE, dans la fraction brute ou après centrifugation dans le culot et dans le surnageant Les résultats sont présentés sur la figure 7 et montrent un niveau élevé d'expression de la nitrilase dans les extraits de cellules cultivées en présence d'IPTG; toutefois, cette protéine est essentielle- ment sous forme insoluble. Sur la figure 7, M représente le marqueur de poids moléculaires ceux-ci sont indiqués en k Da D'autre part, les pistes ont les significations ci- après: TG 1 + p UC 19 TG 1 + p UC 19 TG 1 + TG 1 + + PTG p XL 2087 p XL 2087 + IPTG fractions A D G J brutes culots B E H K surnageants C F I L A partir du plasmide p XL 2087, on a préparé le plasmide p XL 2148 par insertion du fragment Xho I-Eco RI du plasmide p XL 2087, portant le gène codant pour la nitrilase entre les sites Sal I et Eco RI de p BR 322 lSUTCLIFFE, Nucleic Acid Res 5, ( 1978): 2721-2730 l. Ce plasmide p XL 2148, dont la carte de restriction est représentée sur la figure 6, a été également utilisé pour transformer la souche de E coli TG 1 selon la méthode du chlorure de calcium La sélection des micro- organismes a été faite sur ampicilline La souche E coli TG 1 (p XL 2048) (G 4207) ainsi transformée a été déposée à la Collection Nationale de Cultures de Micro-organismes à Paris (Institut Pasteur, 25 rue du Docteur Roux) sous le n 1-1242 le 21 juillet 1992. Exemple 6: Dosage de l'activité nitrilase chez des souches de E coli recombinantes. Les exemples qui suivent illustrent la propriété de la souche E coli TG 1 (p XL 2087) qui exprime l'activité nitrilase Cette souche sera comparée à la souche témoin E coli TG 1 qui ne possède pas le gène de la nitrilase. Les activités de ces souches, induites ou non, sont mesurées sur adiponitrile et cyano-5-valérate à différents p H et comparées à la souche témoin E coli TG 1. 1 Préparation des cellules Les cultures sont réalisées dans les conditions décrites dans le tableau 4 Au cours de la phase exponentielle de croissance, une des deux cultures de la souche recombinante est induite par r IPTG 1 m M; après 2 h à 37 C, cette culture est traitée. TABLEAU 4 Culture des souches Abréviations: A milieu LB; B milieu LB + Amp 100, g/ml; C milieu B + Ajout de IPTG 1 m M à une DO à 660 nm de 1; PS poids sec. Conditions communes: ensemencement au 1/100 ème à partir d'une préculture agée de 16 h; temps de culture 5,75 h; T'C 37. MICRO-ORGANISMES MILIEU D 0660 nm PS (g/l) E coli TG 1 A 3,1 0,9 E coli (p XL 2087) B 3,2 0,9 E coli (p XL 2087) C 2,5 0,9 2 Mesures des activités spécifiques Les conditions de mesures des activités spécifiques et les résultats sont répertoriés dans le tableau 5. TABLEAU 5 Détermination des activités de la souche témoin Escherichia coli TG 1 et de la souche recombinante Escherichia coli TG 1 (p XL 2087) TG 1 TG 1 (p XL 2087) E E CVA CVA ,5 ,5 ,2 7,0 MICRO-ORGANISME CONDITIONS OPERATOIRES ACTIVITE NATURE IPTG ETAT SUBSTRAT lPSl VOLUME p H U (g/l) (ml) mg de PS o o 159 (a) 3,4 + + + + + + + + + + + E E E E E S S E E E E S S E E E ADN ADN CVA CVA CVA CVA CVA ADN ADN ADN ADN ADN ADN CVA CVA CVA ,5 ,5 1,4 1,4 1,4 1,4 1,4 0,3 1,4 1,4 1,4 1,4 1,4 1,2 1,2 1,2 ,2 7,0 4,0 ,2 7,0 ,2 7,0 4,2 4,3 6,2 7,0 6,2 7,0 4,0 ,2 7,0 L TABLEAU 5 (suite) Conditions communes: lsubstratl = 50 m M; r'C = 25; tampon 50 m M; cinétique sur 90 min. Abréviations: E: cellules entières; S: cellules soniquées; U: 1 /mol d'adipate/h sauf (a) 1 i/mol de cyano-5-valérate/h; ADN: adiponitrile; CVA: cyano-5-valérate PS: poids sec. Exemple 7: Synthèse d'adipate d'ammonium par hydrolyse d'adiponitrile en batch par E coli (p XL 2087) en suspension Dans un volume initial de 5 ml de tampon phosphate 50 m M p H 7 contenant la souche E coli (p XL 2087) à une concentration initiale de 21 g/l, on a ajouté à 25 C et sous agitation magnétique 120,ul ou 1 068,umoles d'adiponitrile à 0, 1, 2, 3, 5, 6 et 7 h de réaction Le suivi analytique a été assuré par prélèvements de 100 /1 du volume réactionnel toutes les heures On a constaté que l'hydrolyse se fait sans perte notable de la cinétique. Les activités moyennes calculées sur 30 min après ajout de l'adipo- nitrile sont rassemblées dans le tableau 6 ci-après. MICRO-ORGANISME CONDITIONS OPERATOIRES ACTIVITE NATURE IPTG ETAT SUBSTRAT lPSl VOLUME p H U (g/l) (ml) mg de PS TG 1 S CVA 1,0 i 5,2 13 (p XL 2087) _ S CVA 1,0 i 7,0 3,2 E ADN 0,3 1 4,2 75 (a) E ADN 1,2 2 4,3 16 E ADN 1,2 2 6,2 11 E ADN 1,2 2 7,0 3,4 S ADN 1,0 1 6,2 3 S ADN 1,0 1 7,0 4 TABLEAU 6 Activités moyennes des cellules E coli (p XL 2087) au cours de l'hydrolyse de l'adiponitrile TEMPS DE REACTION ACI 1 VITE SPECIFIQUE (h) #mole d'adipate hxmg de cellules Exemple 8: Synthèse d'adipate d'ammonium par hydrolyse de l'adiponitrile en réacteur à lit fixe par E coli (p XL 2087) immobilisée sur résine. Les cellules d'E coli (p XL 2087) ont tout d'abord été fixées selon la technique décrite dans le brevet U S 4 732 851. Le biocatalyseur résultant a ensuite été utilisé en colonne à lit fixe pour l'hydrolyse de l'adiponitrile en adipate d'ammonium. Fixation de E coli (p XL 2087) sur résine. Les cellules ont été fixées selon le protocole suivant: 1 g (poids humide) de E coli (p XL 2087) à 22 % de matières sèches, 1 g de polyazétidine POLYCUP, 1 g de résine DUOLITE A 171. Le gramme de cellules a été mis en suspension dans la solution de polyazétidine Après homogénéisation, la résine a été coulée dans la suspension cellulaire L'ensemble a été agité à la spatule puis abandonné pendant 18 h, à l'air libre, sous une hotte, pour séchage On a recueilli ainsi 4 ml ou 1,3 g de biocatalyseur. Les activités des cellules immobilisées et libres ont été déterminées, à 25 C p H 7 sur une solution d'adiponitrile 50 m M Elles sont respectivement de 30 et 110 umoles de cyano-2-valérate/h/mg de cellules PS On en déduit un rendement de fixation de 26 %. 0,5 16 2,5 15 ,5 11 6,5 11 7,7 15 Hydrolyse de l'adiponitrile en réacteur à lit fixe La détermination du temps de demi-vie est réalisée en réacteur à lit fixe, continûment alimenté dans les conditions indiquées ci-après: T'C 28; Catalyseur 0,5 g ou 2 ml ou 85 mg de cellules (poids sec); ladiponitrilel 50 m M; tampon phosphate 50 m M p H 7; débit 3,7 +/ 0,1 ml/h; colonne: diamètre 1 cm, hauteur 3 cm. L'activité initiale des cellules était de 1,5 imoles d'adipate/h/mg de cellules (poids sec) 66 % de l'activité initiale sont conservés après 32 jours ou 770 h. REVENDICATIONS 1 Séquence d'ADN codant pour un polypeptide ayant une activité nitrilase, capable d'hydrolyser les nitriles en carboxylates, caractérisée en ce qu'elle est choisie parmi: la séquence d'ADN codant pour un polypeptide ayant une activité nitrilase telle que représentée sur la figure 4, un analogue de cette séquence résultant de la dégénérescence du code génétique; une séquence d'ADN hybridant avec l'une de ces séquences ou un fragment de celles-ci et codant pour un polypeptide ayant une activité nitrilase. 2 Séquence d'ADN recombinant selon la revendication 1, caractérisée en ce qu'elle contient la séquence nucléotidique suivante: CTCGAGACAA TATAAAATTT TGCAAGCTGC TAGCAGAAGC GCTATCCATA TTTTCAAGAA AAAAGAATGG TGACGCAAIT CCACTAGTAG AAACAGAGTA TTGCGGCGAT CTAAAGGCGC ATCAGATCAT ATCTCGTTGG TACCGCTTGG TTCCACAAGA GAAAGTGGTT TTGATCAGTC CTTATGAAGA CCACAGCGTG AATTGGGACA TTTGAGGAAG TCCTGTATTT AGCATCTATG TITGGATTGG TGCGATTGAA AGITTACG Tr GTGGTTTGAC TGAAAGAGCT TGGGAATCTT GGGCTCATTG AGTATCATCC TAGTCAGLT CCAAGACATG TTCTGGAAAC CGCGGAGGGA ACTGGATCCC TGAACATGTA CTTACATGAA ATCGCCGCCT GTCGCCCCCT ACAGCAATGA ATGAATCTAG GGCGCCAAGG ACATCAAATA ATCCCAAGCA TGCGTTTCTG CCGAATGGTA GTATGGGGAG GGGGGACTCC AACGAACAGG AGAGTATCAT TACGCGATCA ATTGACATGA ACAGCGATTA ATTGCTGTTG GCCGGTCATT CCCGTAAAAA GATAAAATGG CTCGGGGCGT ATCTGCAAAA AAAATTATCC AGGCAACAGT TTATCGGCTT TGGACTTCAC AAGAAGTTCA TATCAGAGAA ATTTGATTGG ATGGGGATGG AGTGCTGGGA TACATGTTGC CCAGCGTCTG GCAATCAGGT TTGGGAAAGA TTTCTAACAC CAGAGATTGA ACTCTACTCC AAATAGGTGA ATATGCTAAC TCGGTTGCTG TGGAACCTCC TACAGTCAAG AGATAAAACT CCCAGAAGCA TGGAATGATG ACAAATTAGT AGATAATGCC CAAGCACAGG AAGCATGGCT ACATGCTCTC TTCCTGGCCA TGCGTCTACT ATATGTAATT TGAATTTTCC CGGTGAGATT CCTTAACCAA CGGCTTCTTA GCAGACAAAC GATTCCGCCG ATAGCCATCG TTTGCACATC GTAGCAGCAG TGTAAGTITAA TTTATTCCCG TGGGCCGTCC GATGCTGCAA TCGCTATATT AAATTCAAGC CCCGTATTTA CCATTAAACA GCCTTCGTCC AATGCGATGC ATGTCAACCA AAAAACTITC TTGGCATCAA ATAATITATG AGTIGACAT CATITCATCT AGGCGCGTAG CCTT 3 Polypeptides résultant de l'expression d'une séquence d'ADN selon l'une des revendications 1 ou 2, et possédant une activité nitrilase. 4 Polypeptide selon la revendication 3, caractérisé en ce qu'il comprend la séquence suivante: Met Lys Asn Tyr Pro Thr Val Lys Val Ala Ala Val Gln Ala Ala Pro 1 5 10 15 Val Phe Met Asn Leu Glu Ala Thr Val Asp Lys Thr Cys Lys Leu Ile 25 30 Ala Glu Ala Ala Ser Met Gly Ala Lys Val Ile Gly Phe Pro Glu Ala 40 45 Phe Ile Pro Gly Tyr Pro Tyr Trp Ile Trp Thr Setr Asn Met Asp Phe 55 60 Thr Gly Met Met Trp Ala Val Leu Phe Lys Asn Ala Ile Glu Ile Pro 70 75 80 Setr Lys Glu Val Gln Gln Ile Ser Asp Ala Ala Lys Lys Asn Gly Val 85 90 95 Tyr Val Cys Val Ser Val Setr Glu Lys Asp Asn Ala Ser Leu Tyr Leu 105 110 Thr Gln Leu Trp Phe Asp Pro Asn Gly Asn Leu Ile Gly Lys His Arg 120 125 Lys Phe Lys Pro Thr Setr Setr Glu Arg Ala Val Trp Gly Asp Gly Asp 135 140 Gly Setr Met Ala Pro Val Phe Lys Thr Glu Tyr Gly Asn Leu Gly Gly 150 155 160 Leu Gln Cys Trp Glu His Ala Leu Pro Leu Asn Ile Ala Ala Met Gly 165 170 175 Setr Leu Asn Glu Gln Val His Val Ala Setr Trp Pro Ala Phe Val Pro 185 190 Lys Gly Ala Val Setr Setr Arg Val Setr Ser Setr Val Cys Ala Setr Thr 200 205 Asn Ala Met His Gln Ile Ile Ser Gln Phe Tyr Ala Ile Setr Asn Gln 210 215 220 Val Tyr Val Ile Met Setr Thr Asn Leu Val Gly Gln Asp Met Ile Asp 225 230 235 240 Met Ile Gly Lys Asp Glu Phe Setr Lys Asn Phe Leu Pro Leu Gly Ser 245 Gly Asn Thr Ala Ile Ile Ser Asn Thr Gly Glu Ile Leu Ala Ser Ile 260 265 270 Pro Gln Asp Ala Glu Gly Ile Ala Val Ala Glu Ile Asp Leu Asn Gln 275 280 285 Ile Ile Tyr Gly Lys Trp Leu Leu Asp Pro Ala Gly His Tyr Ser Thr 290 295 300 Pro Gly Phe Leu Ser Leu Thr Phe Asp Gln Ser Glu His Val Pro Val 305 310 315 320 Lys Lys Ile Gly Glu Gln Thr Asn His Phe Ile Ser Tyr Glu Asp Leu 325 330 335 His Glu Asp Lys Met Asp Met Leu Thr Ile Pro Pro Arg Arg Val Ala 340 345 350 Thr Ala Micro-organisme contenant la séquence d'ADN selon les revendications 1 ou 2. 6 Micro-organisme contenant la séquence d'ADN selon les revendications 1 ou 2 sur un plasmide comportant un moyen de sélection. 7 Micro-organisme constitué par la souche E coli TG 1 contenant le plasmide p XL 2148, souche référencée G 4207 et déposée dans la Collection Nationale de Cultures de Micro-organismes sous le n'1-1242. 8 Micro-organisme contenant une cassette d'expression constituée de la séquence d'ADN, caractérisé dans les revendications 1 ou 2 sous la dépendance de signaux assurant l'expression de cette séquence dans le micro-organisme hôte. 9 Micro-organisme selon la revendication 8, caractérisé en ce qu'il comprend en amont de la séquence d'ADN un site de fixation des ribosomes et une séquence promotrice homologue ou hétérologue du polypeptide produit. Micro-organisme selon la revendication 9, caractérisé en ce que le promoteur peut être le promoteur de l'opéron tryptophane Ptrp de E coli, le promoteur de l'opéron lactose Plac de E coli; le promoteur droit du phage lambda PR, le promoteur gauche du phage lambda PL, des promoteurs forts de Corynébactéries, de Comamonas ou de Pseudomonas. 11 Micro-organisme selon la revendication 9, caractérisé en ce que le site de fixation des ribosomes peut être celui dérivé du gène CII du phage lambda ou ceux dérivés de gènes de E coli Comamonas, Pseudomonas ou Corynébactéries. 12 Micro-organisme selon les revendications 8 à 11, caractérisé en ce que la cassette d'expression est portée par un plasmide comportant un moyen de sélection. 13 Micro-organisme selon la revendication 12, caractérisé en ce que le moyen de sélection est un marqueur conférant la résistance à un antibiotique. 14 Micro-organisme selon les revendications 5 à 12, caractérisé en ce qu'il est choisi parmi les souches E coli, Comamonas, Corynebactérium, Brevibacterium, Rhodococcus. 15 Procédé de transformation enzymatique de nitriles caractérisé en ce qu'il consiste à mettre en contact les nitriles avec un polypeptide ayant une activité nitrilase selon l'une quelconque des revendications 3 ou 4 ou un micro-organisme hôte selon l'une quelconque des revendications 8 à 14. 16 Procédé selon la revendication 15, caractérisé en ce que le nitrile est un dinitrile de formule NC R CN dans laquelle R est un groupe alkylène ayant de 1 à 10 atomes de carbone. 17 Procédé selon l'une des revendications 15 à 16, caractérisé en ce que le nitrile est l'adiponitrile.