FR 2687157 A1 19930813 FR 9201505 A 19920211 La présente invention est relative à des pro- téines hybrides complexes comprenant les chaînes légères et les régions variables et certains domaines constants des chaînes lourdes des immunoglobulines (anticorps) et une autre protéine homo ou hétérodimérique, à leur pro- cédé de préparation, ainsi qu'à leurs applications comme agent de diagnostic, (notamment les anticorps recombi- nants bivalents et éventuellement calorimétriques obtenus à partir de ces protéines hybrides), comme agent à visée thérapeutique ou comme réactif utilisable en imagerie médicale. Les anticorps monoclonaux ont été obtenus ini- tialement à partir de la technique des hybridomes décrite par KOLHER et MILSTEIN en 1975 (Nature, 256, 495-497). Depuis, de nombreuses techniques ont été développées, qui permettent de manipuler les séquences nucléotidiques codant pour des immunoglobulines Ainsi, il est devenu possible de choisir l'organisme qui les produit et de modifier leur structure afin de l'adapter à l'utilisation souhaitée. La structure de base d'une immunoglobuline comprend deux chaînes polypeptidiques légères identiques et deux chaînes lourdes identiques reliées par des ponts disulfures Les régions N-terminales des chaînes lourdes (H) et des chaînes légères (L) sont caractérisées par des séquences variables (V) appelées respectivement régions VH et VL Le reste de la molécule a une structure relati- vement constante La partie constante de la chaîne légère est appelée région CL et la partie constante de la chaîne lourde comprend au moins trois régions différentes: CH 1, CH 2 et CH 3 (Ig G, par exemple); ces régions globulaires, stabilisées par des ponts disulfures intracaténaires, sont également appelées "domaines" Chacun des deux sites de liaison à l'antigène est constitué par l'assemblage des domaines variables (VH et VL) et les fonctions effec- trices (fixation du complément, liaison sur les monocytes et passage à travers le placenta) sont plutôt localisées au niveau du domaine CH 3; la région charnière est loca- lisée entre C Hl et CH 2 Il est possible par clivage avec différentes enzymes protéolytiques de réduire la taille d'une immunoglobuline, tout en conservant au moins un fragment de liaison fonctionnel à l'antigène Ainsi, la pepsine libère le fragment F(ab')2, bivalent, constitué de deux fragments Fab reliés par la région charnière La papaîne clive la molécule d'Ig G en libérant deux frag- ments Fab identiques, monovalents, qui se lient à l'antigène Le plus petit fragment contenant un site de liaison complet à l'antigène est le fragment Fv, qui est constitué de l'association des domaines VH et VL Cepen- dant, l'isolement de ce fragment s'avère difficile De plus, son affinité pour l'antigène et sa stabilité sont diminuées (J S HUSTON et al, 1988, P N A S 85, 5879- 5883). Les modifications au niveau de la production des anticorps monoclonaux, telles que décrites dans l'Art antérieur comprennent: Des techniques d'ingénierie génétique des anticorps, qui permettent d'avoir accès à l'information génétique responsable de la synthèse des immunoglobu- lines, de modifier cette information à façon et de la réintroduire modifiée ou non dans des cellules d'hybridomes obtenues selon le procédé décrit dans les travaux initiaux de KOHLER et MILSTEIN en 1975 (Nature, 256, 495-497), qui permettent d'obtenir des ensembles d'anticorps homogènes et de spécificité pré- définie, utilisés dans les domaines thérapeutique et du diagnostic, ou des organismes divers, en particulier des microorganismes, qui produiront les protéines correspon- dantes. Les travaux initiaux rapportant la produc- tion chez E coli de molécules apparentées aux immuno- globulines datent de 1984 Ils concernent la production f 3 intracytoplasmique d'une ou deux chaînes d'immuno- globuline (CABILLY et al, PNAS, 1984, 81, 3273-3277; BOSS et al, Nucl Acids Res, 1984, 12, 3791-3806) La préparation d'un anticorps fonctionnel à partir de ces5 synthèses intracytoplasmiques nécessitaient des étapes de purification, solubilisation et renaturation in vitro lourdes et difficiles. Depuis, il est devenu possible de produire des fragments d'anticorps chez E coli directement dans un état natif et fonctionnel Seule la sécrétion séparée, mais simultanée des deux chaînes (ou d'un fragment simple chaîne) permet actuellement d'obtenir ce résultat Ainsi des fragments Fab, Fv, sc FV, d Ab, Fc, mru, (voir nomen- clature dans la revue de WINTER et MILSTEIN citée précé-15 demment) ont été produits; il est également possible d'exposer ces molécules à la surface de bactériophages (McCAFFERTY et al, 1990, Nature, 348, 552-554; CLACKSON et al, 1991, Nature, 352, 624-628). Il faut cependant noter que, dans tous les cas, les molécules obtenues sont monovalentes, c'est-à- dire ne comportent qu'un site de liaison à l'antigène. La production d'anticorps ou de produits dérivés ont été également décrits dans de nombreux autres organismes, tels que des champignons, des levures, des cellules de mammifère, des cellules végétales ou des sys- tèmes d'expression mixtes phage/cellule hôte comme les systèmes utilisant le baculovirus. Les molécules dérivées des immunoglobulines produites par des bactéries ou des phages et décrites dans l'Art antérieur, présentent les avantages suivants: manipulations génétiques plus faciles à mettre en oeuvre et plus riches en potentialités (voir les systèmes de criblage développés chez les phages), et la production en masse de ces nouvelles protéines s'en trouve également simplifiée; toutefois, ces molécules ont l'inconvénient majeur d'avoir une partie immunoglobuline monovalente, 4 c'est-à-dire ne comportant qu'un seul site de liaison à l'antigène. A partir de ces différents modes de produc- tion, il est possible de modifier la structure des anti- corps et de produire des anticorps recombinants possédant de nouvelles propriétés: anticorps humanisés, bispéci- fiques, hybrides; l'Art antérieur décrit notamment: des anticorps de rongeurs "humanisés", dans le but notamment de réduire la réponse immunitaire à ces anticorps, lors de leur administration chez l'Homme; de tels anticorps sont notamment obtenus par liaison des régions variables d'immunoglobulines de rongeurs avec les régions constantes d'immunoglobulines humaines; de tels anticorps, produits par des cellules d'hybridomes, ont une immunogénicité réduite (G WINTER et C MILSTEIN, Nature, 349, 293-299). des anticorps, dont chacun des deux sites de liaison aux antigènes a une spécificité différente (bispécificité de l'anticorps) ont été réalisés; ils peuvent se lier simultanément à une cellule cible et à une toxine ou à une cellule T cytotoxique et entraîner la destruction de la cellule cible (J L PHELPS et al, J. Immunol, 1990, 145, 4, 1200-1204); de tels anticorps peuvent être produits, par exemple, par des hybridomes hybrides ou l'introduction de séquences codant pour des immunoglobulines de deux spécificités différentes dans des cellules de myélome (revue de T A WALDMANN, 1991, Science, 252, 1657-1662). l'introduction de nouvelles fonctions, par fusion de fragments d'immunoglobulines à d'autres pro- téines, peut également être réalisée On peut citer par exemple NEUBERGER et al (Nature, 1984, 312, 604-608) qui ont réalisé la fusion de gènes codant pour une chaîne lourde tronquée d'immunoglobuline avec celui d'une nucléase bactérienne ou de la protéine oncogène ryc, et qui ont exprimé ces hybrides avec la chaîne légère correspondante dans une cellule de myélome Selon le même principe, SCHNEE et al ( 1987, PNAS, 84, 6904-6908) ont réalisé une protéine hybride bifonctionnelle constituée d'une partie immunoglobuline reconnaissant spécifiquement la fibrine et d'une région activateur tissulaire du plas- minogène (t-PA), formant ainsi une protéine à action thrombolytique CASADEI et al ( 1990, PNAS, 87, 2047- 2051) quant à eux ont construit un hybride anticorps- aéquorine En choisissant E coli comme cellule hôte, CHAUDHARY et al ( 1989, Nature, 339, 394-397) ont réalisé des hybrides entre un fragment Fv simple chaîne (s Fv) d'immunoglobuline et une exotoxine de Pseudomonas, expri- més de façon intracellulaire De récents travaux (BRINKMANN et al, 1991, PNAS, 88, 8616-8620) montrent que l'une de ces constructions se révèle efficace dans le traitement de carcinomes humains étudiés chez la souris. Dans ces différents documents, le gène de fusion obtenu génère une protéine de fusion bifonction- nelle, c'est-à-dire possédant des fonctions appartenant aux deux protéines qui la constituent (immunoglobuline et autre protéine) Bien que ces molécules hybrides bifonc- tionnelles aient élargi le domaine d'application des immunoglobulines monoclonales (traitement des cancers, thromboses, réactifs de diagnostic, etc), il apparaît cependant des problèmes de structuration de ces protéines recombinantes NEUBERGER et al, et CASADEI et al indi- quent, dans leurs publications, que des problèmes d'association des deux chaînes lourdes d'immunoglobuline apparaissent qui peuvent être dus à la présence, en place de la région Fc, de la seconde protéine (nucléase ou aéquorine) SCHNEE et al précisent que la présence de l'activateur de plasminogène entraîne une diminution importante de l'expression de la protéine hybride dans l'hybridome Enfin, les protéines hybrides obtenues chez E coli par CHAUDHARY et al sont localisées dans le cytoplasme et doivent être purifiées et renaturées En outre, elles ne possèdent qu'un site de liaison à l'antigène constitué d'un fragment Fv simple chaîne dont l'affinité pour l'antigène peut être diminuée, avec comme référence un fragment Fab. L'Art antérieur précité montre qu'il apparaît que la généralisation de la production d'une protéine hy- bride comprenant un anticorps bivalent, associé à une autre protéine, avec le maintien des fonctionnalités des deux protéines n'est pas évidente et que de nombreux facteurs ne sont ni maîtrisés (appariement des chaînes lourdes et légères notamment), ni généralisables. En particulier, la production d'une protéine hybride par une bactérie, comprenant une partie immuno- globuline dite bivalente, c'est-à-dire possédant deux sites de liaison aux antigènes, bifonctionnelle (portant des fonctions des deux protéines fusionnées), et produite directement sous une forme structurée et active n'est pas résolue La simple obtention directe d'un fragment d'anticorps bivalent fonctionnel (non fusionné à une autre protéine) à partir d'une bactérie n'est d'ailleurs pas non plus résolue, puisque seuls des fragments mono- valents ont été obtenus jusq U'à présent. La Demanderesse a résolu le problème de la gé- néralisation de la production dans des microorganismes de telles protéines hybrides bifonctionnelles et bivalentes exportées et naturellement structurées, comportant un fragment d'immunoglobuline (s Fv) dans sa Demande de Brevet européen 407 259. Dans la présente Demande, le problème à résoudre concerne la production directe de protéines bifonctionnelles comportant une partie immunoglobuline de structure de type Fab 2 associée à une autre protéine fonctionnelle. La présente invention s'est en conséquence donné pour but de pourvoir à de telles protéines hybrides comprenant un fragment d'immunoglobuline de structure de type Fab 2, qui répondent mieux aux besoins de la pratique que les protéines hybrides bifonctionnelles et formant un anticorps de l'Art antérieur, notamment en ce qu'elles présentent des sites de liaison aux antigènes plus proches des sites naturels que les fragments Fv, une plus grande spécificité et une plus grande affinité pour les antigènes, ce qui conduit notamment à une amélioration significative des tests immunologiques dans lesquels ces nouvelles protéines hybrides sont utilisées. On entend, au sens de la présente invention, par: bifonctionnelle, une protéine hybride, com- prenant un fragment d'immunoglobuline et une autre pro- téine, présentant des fonctions issues des deux protéines dont elle est constituée; monovalente, une protéine hybride telle que définie cidessus, comportant un seul site de liaison à l'antigène; bivalente, une protéine hybride bifonction- nelle telle que définie ci-dessus, comportant deux sites de liaison à un antigène; dans le cas o les deux sites sont identiques, la protéine hybride est dite monospéci- fique; dans le cas o les deux sites de liaison sont différents, la protéine hybride est dite bispécifique. La présente invention a pour objet une pro- téine hybride du type comprenant un fragment d'immunoglobuline fusionné à une autre protéine P, carac- térisée en ce qu'elle est constituée par une séquence hybride complexe comprenant: une unité de base U constituée par deux chaînes peptidiques différentes SU 1 et SU 2, SU 1 comprenant les régions variables et constantes d'une chaîne légère d'une immunoglobuline et SU 2 compre- nant au moins les régions variables et le domaine CH 1 d'une chaîne lourde d'une immunoglobuline, lesquelles chaînes peptidiques SU 1 et SU 2 sont reliées entre elles par au moins un pont disulfure et au moins un fragment fonctionnel d'une des deux sous-unités d'une protéine P dimérique, fusionnée par son extrémité N-terminale à l'une des chaînes peptidiques SU 1 ou SU 2, laquelle unité de base U est associée à une autre unité de base U', identique ou différente de l'unité U, par l'intermédiaire des sous-unités de la protéine P ou un fragment de celles-ci. Les sous-unités de la protéine P s'assemblent par dimérisation, pour former la protéine P fonction- nelle On entend donc, au sens de la présente invention, par fragment fonctionnel, un fragment de la protéine P susceptible de présenter la propriété recherchée de ladite protéine P, lequel fragment est généralement sous forme dimérique. La protéine hybride conforme à l'invention, dite protéine hybride complexe, forme, lorsqu'elle est exportée à partir d'une cellule hôte unicellulaire, telle que les souches bactériennes ou fungiques (E coli, Bacillus, Streptomyces), des levures, des cellules de mammifère, des cellules végétales, ou des systèmes d'expression mixtes phage/cellule hôte comme les systèmes utilisant le baculovirus, dans laquelle elle est expri- mée, un dimère fonctionnel possédant: au moins deux sites de liaison à un anti- gène, identiques ou différents et portés chacun par l'une des unités de base (U, U') de ladite protéine hybride, et une fonction biologique liée aux proprié- tés intrinsèques de la protéine P homo ou hétérodimérique additionnelle. Ces nouvelles protéines répondent ainsi parti- culièrement aux besoins de la pratique, par rapport aux protéines hybrides bifonctionnelles de l'Art antérieur produites dans des cellules de myélome et dont l'association des deux fragments Fabt en un fragment F(ab')2 par formation d'un ou plusieurs ponts disulfure peut être altérée par la présence de l'autre protéine, en ce sens que l'association des deux fragments Fab, dans la protéine hybride complexe selon l'invention, est assurée par l'interaction naturelle qui se crée entre les deux sous-unités de la protéine dimérique fusionnée à une chaîne ou un fragment de chaîne de l'immunoglobuline. Elles présentent, de plus, l'avantage de pouvoir être, simultanément, bifonctionnelles et bispécifiques. Selon un mode de réalisation avantageux de la- dite protéine hybride complexe, lesdites chaînes pepti- diques SU 1 et SU 2 comprennent en amont de leur extrémité N-terminale, un fragment d'une protéine Pl exportée ou sécrétée par une cellule hôte unicellulaire choisie dans le groupe constitué par les souches bactériennes ou fun- giques (E coli, Bacillus, Streptomyces), les levures, les cellules de mammifère, les cellules végétales, ou les systèmes d'expression mixtes phage/cellule hôte comme les systèmes utilisant le baculovirus. Selon une disposition avantageuse de ce mode de réalisation, la protéine Pl est différente de la pro- téine P. Selon une autre disposition avantageuse de ce mode de réalisation, la protéine Pl est identique à la protéine P. Selon un autre mode de réalisation avantageux de ladite protéine hybride complexe, la protéine P est choisie dans le groupe qui comprend les protéines homo- ou hétérodimériques. Parmi les protéines P particulièrement inté- ressantes, on peut citer les toxines homodimériques (toxine tétanique, toxine botulique, par exemple), les enzymes homodimériques, telles que la phosphatage et plus particulièrement la phosphatase alcaline de différentes origines, naturelles ou modifiées génétiquement, afin d'améliorer leur performance enzymatique (XUXU et al, Biochem, 1991, 30, 7789-7796); on peut citer comme pro- téine hétérodimérique, notamment une phosphatase alcaline dont les deux sous-unités sont modifiées de façon complé- mentaire au niveau de leur interface, par exemple en 5 inversant un pont salin ou bien des toxines hétérodimé- riques ou des complexes ligand/fraction soluble de récep- teur. Conformément à l'invention, ladite protéine hybride complexe comprend deux unités de base U et U' identiques ou différentes, constituées chacune: par une chaîne peptidique SU 1 comprenant les régions variables et constantes d'une chaîne légère d'une immunoglobuline appropriée (VL + CL), par une chaîne pep- tidique SU 2 comprenant les régions variables et le do- maine CH 1 d'une chaîne lourde de la même immunoglobuline (VH + CH 1), lesquelles chaînes SU 1 et SU 2 sont reliées entre elles par au moins un pont disulfure, et par un fragment fonctionnel d'une phos- phatase alcaline (protéine P), exportée ou excrétée par une cellule hôte appropriée, fusionnée par son extrémité N-terminale à l'une des chaînes SU 1 ou SU 2, lesquelles unités de base U et U' sont réunies par l'assemblage des deux sous-unités de ladite phosphatase alcaline dimérique On obtient alors un tétramère fonctionnel, qui25 possède, de manière surprenante, deux sites de liaison fonctionnels à l'antigène correspondant à ladite immuno- globuline et une fonction biologique liée aux propriétés intrinsèques de la protéine dimérique additionnelle. Dans le cas o la protéine additionnelle (P) est une enzyme et plus particulièrement une phosphatase alcaline, ladite protéine hybride complexe est un "anticorps calorimétrique" directement utilisable, dans le domaine diagnostic (réactif de diagnostic, réactif en imagerie médicale). La présente invention a également pour objet une unité de transcription Tl d'une protéine hybride com- il plexe conforme à l'invention, caractérisée en ce qu'elle comprend au moins successivement:. un promoteur approprié, un premier site de fixation aux ribosomes (séquence de Shine-Dalgarno), * une première séquence A comprenant une séquence signal d'une protéine Pl exportée ou excrétée par une cellule hôte et susceptible de permettre l'exportation des immunoglobulines associées, une séquence C d'acide nucléique constituée par une séquence choisie dans le groupe constitué soit par une séquence codant au moins pour la région variable et le domaine CH 1 de la chaîne lourde d'une immunoglobu- line, soit par une séquence codant pour la chaîne légère15 d'une immunoglobuline, une séquence D codant au moins pour un frag- ment fonctionnel d'une sous- unité de la séquence mature d'une protéine P dimérique,. au moins un codon stop, un deuxième site de fixation aux ribosomes (séquence de Shine-Dalgarno), une deuxième séquence A telle que définie ci-dessus, une séquence E d'acide nucléique codant pour la séquence de la chaîne non codée par la séquence C ci- dessus, un ou plusieurs codon stop, et un terminateur de transcription. Une telle construction permet, de manière sur- prenante, lorsqu'elle est convenablement exprimée, l'obtention d'une protéine hybride complexe, telle que définie ci-dessus, directement utilisable notamment comme réactif de diagnostic. Selon un mode de réalisation avantageux de la- dite unité de transcription Tl, elle comprend en outre, entre la première séquence A et la séquence C et entre la deuxième séquence A et la séquence E ci-dessus, une séquence B d'acide nucléique codant pour un fragment NH 2- terminal de la protéine Pl mature. Selon une disposition avantageuse de ce mode de mise en oeuvre, P est choisie dans le groupe qui comprend les protéines homo ou hétérodimériques. Selon une autre disposition avantageuse de ce mode de réalisation Pl et P sont identiques. Conformément à cette dernière disposition, ladite unité de transcription Tl est constituée par un promoteur approprié, un premier site de fixation aux ribosomes (séquence de Shine-Dalgarno), * une première séquence A comprenant une séquence signal du gène de structure d'une protéine homo- ou hétérodimérique exportée ou sécrétée par une cellule hôte, * une séquence B comprenant une séquence d'acide nucléique codant pour un fragment NH 2-terminal de la protéine homo ou hétérodimérique mature, une séquence C constituée par une séquence choisie dans le groupe constitué soit par une séquence d'acide nucléique codant pour la région variable et le domaine CH 1 de la chaîne lourde d'une immunoglobuline, soit par une séquence codant pour la chaîne légère d'une immunoglobuline, une séquence D constituée par un fragment codant pour au moins un fragment fonctionnel de la sé- quence mature de ladite protéine homo ou 'hétéro- dimérique, au moins un codon stop, un deuxième site de fixation aux ribosomes, une deuxième séquence A telle que définie ci-dessus, une séquence B comprenant une séquence d'acide nucléique codant pour un fragment NH 2-terminal de la protéine homo ou hétérodimérique mature, une séquence E constituée par une séquence d'acide nucléique codant pour la chaîne de ladite immuno- globuline, non codée par la séquence C ci-dessus, au moins un codon stop, et un terminateur de transcription, l'ensemble de ces fragments étant en phase de lecture et codant pour la protéine hybride complexe telle que défi- nie ci-dessus, présentant à la fois les propriétés de l'enzyme et certaines propriétés des fragments Fab des immunoglobulines (capacité de reconnaissance de l'anti- gène correspondant). Lorsque P est plus spécifiquement une phospha- tase alcaline, ladite unité de transcription Tl est constituée: soit par un promoteur approprié, un premier site de fixation aux ribosomes (séquence de Shine-Dalgarno), une première séquence A comprenant une séquence signal d'une protéine Pl, susceptible de permettre l'exportation des immunoglobulines associées, une séquence C d'acide nucléique choisie dans le groupe constitué soit par une séquence codant pour la région variable et le domaine CHI de la chaîne lourde d'une immunoglobuline, soit par une séquence codant pour la chaîne légère d'une immunoglobuline, un fragment D codant pour la phosphatase al- caline, au moins un codon stop, un deuxième site de fixation aux ribosomes, une deuxième séquence A telle que définie ci- dessus, une séquence E d'acide nucléique codant pour la chaîne non codée par la séquence C ci-dessus de ladite immunoglobuline, au moins un codon stop, et un terminateur de transcription, laquelle unité de transcription comprend en outre, notam- ment pour permettre l'insertion des fragments codant pour les immunoglobulines et pour la mise en phase de lecture de l'ensemble de ces fragments, en amont et/ou en aval de la séquence C et en amont et/ou en aval de la séquence E, un fragment d'acide nucléique approprié, laquelle unité de transcription, en phase de lecture, code pour une pro-10 téine hybride telle que définie ci-dessus; soit par (avec Pl identique à P) un promoteur approprié, un premier site de fixation aux ribosomes (séquence de Shine-Dalgarno), une première séquence A comprenant la séquence signal du gène de structure de la phosphatase alcaline, un fragment B codant pour les 6 aminoacides N- terminaux de la phosphatase alcaline mature, une séquence C constituée par une séquence d'acide nucléique choisie dans le groupe constitué soit par une séquence codant pour la région variable et le domaine CH 1 de la chaîne lourde d'une immunoglobuline, soit par une séquence codant pour la chaîne légère d'une immunoglobuline, une séquence D constituée par un fragment codant pour les 444 aminoacides restants C-terminaux de la séquence mature de ladite enzyme dimérique, au moins un codon stop, un deuxième site de fixation aux ribosomes, une deuxième séquence A telle que définie ci-dessus, un fragment B codant pour les 6 aminoacides N-terminaux de la phosphatase alcaline mature, une séquence E d'acide nucléique telle que définie ci-dessus codant pour la chaîne non codée par la séquence C ci-dessus de ladite immunoglobuline, au moins un codon stop, et un terminateur de transcription. Une unité de transcription Tl conforme à l'invention, dans laquelle la séquence C est insérée après le premier triplet codant pour le 6 ème aminoacide de la phosphatage alcaline mature et dans laquelle la séquence E est insérée après le deuxième triplet codant pour le 6 ème aminoacide de la phosphatage alcaline, est10 notamment préparée grâce à l'insertion d'au moins un site de restriction unique dans la séquence codant pour la phosphatase alcaline, en chaque point d'insertion défini ci-dessus Le site de restriction au niveau du premier triplet codant pour le 6 ème aminoacide de la phosphatase alcaline, déphase le cadre de lecture du gène de la pho A et empêche l'expression de la phosphatase alcaline, alors que l'insertion de la séquence C au niveau dudit site permet, dans les conditions de l'invention, le rephasage du gène de la phosphatage alcaline et l'expression de cette dernière sous sa forme dimérique. L'insertion d'au moins un site de restriction au niveau du second triplet codant pour le 6 ème acide aminé et l'introduction de la séquence E n'influencent pas l'activité phosphatage. Selon une modalité préférée de cette unité de transcription Tl, elle comprend une première séquence A signal du gène de structure de la phosphatase alcaline, une première séquence B codant pour les 6 aminoacides N- terminaux de la phosphatage alcaline, un site de restric- tion Bgl II, une séquence C, choisie dans le groupe constitué soit par une séquence codant pour la région variable et le domaine CH 1 d'une chaîne lourde d'une immunoglobuline, soit par la séquence codant pour la chaîne légère d'une immunoglobuline, un site de restric- tion Sal I, un fragment D codant pour les 444 aminoacides restants Cterminaux de la phosphatage alcaline, une deuxième séquence A, une deuxième séquence B, un site de restriction Sac I, une séquence E codant pour la séquence non codée par la séquence C, un site de restriction Xba I, au moins un codon stop et un terminateur de transcrip- tion. Une telle unité de transcription Tl est dite chargée, car elle est directement apte à coder pour une protéine hybride complexe conforme à l'invention, lorsqu'elle est insérée dans un vecteur approprié, com- prenant notamment une origine de réplication. La présente invention a également pour objet une unité de transcription T 2, caractérisée en ce qu'elle comprend: un promoteur approprié, un site de fixation aux ribosomes (séquence de Shine-Dalgarno), une première séquence A signal d'un gène de structure d'une protéine Pl, une séquence D apte à coder pour un fragment fonctionnel de la séquence mature d'une protéine P dimérique et un ou plusieurs sites de restric- tion uniques, situés à la jonction entre la première séquence A et la séquence D et apte à recevoir une séquence C telle que définie ci-dessus, au moins un codon stop, un site de fixation aux ribosomes (séquence de Shine-Dalgarno), une deuxième séquence A telle que définie ci-dessus et un ou plusieurs sites de restriction uniques, situés en aval de ladite séquence A et aptes à recevoir une séquence E telle que définie ci-dessus, au moins un codon stop, * et un terminateur de transcription. Selon un mode de réalisation avantageux de l'unité de transcription T 2, elle comprend un promoteur approprié, un site de fixation aux ribosomes (séquence de Shine-Dalgarno), une première séquence A signal d'un gène de structure d'une protéine Pl, une première séquence B codant pour un frag- ment NH 2-terminal de ladite protéine Pl mature, une séquence D apte à coder pour une pro- téine P mature ou un fragment de celle-ci et un ou plu- sieurs sites de restriction uniques, situés à la jonction entre le fragment NH 2-terminal de séquence codant pour la protéine Pl et la séquence codant pour la protéine P et aptes à recevoir une séquence C telle que définie ci-des- sus, au moins un codon stop, un site de fixation aux ribosomes (séquence de Shine-Dalgarno), une deuxième séquence A telle que définie ci-dessus, une deuxième séquence B telle que définie ci-dessus et un ou plusieurs sites de restriction uniques, situés en aval de ladite séquence A et aptes à recevoir une séquence E telle que définie ci-dessus, au moins un codon stop, et un terminateur de transcription. Selon une disposition avantageux de ce mode de réalisation, Pl et P sont identiques (protéine homo ou hétérodimérique). Conformément à l'invention, le promoteur est choisi dans le groupe qui comprend le promoteur du gène pho A et tout promoteur plus fort que le promoteur du gène pho A. La présente invention a également pour objet une famille de vecteurs d'expression et/ou de clonage d'une protéine hybride complexe conforme à l'invention, caractérisée en ce que chaque vecteur inclut une unité de transcription Tl conforme à l'invention, insérée dans une structure génétique appropriée, notamment choisie dans le 18 groupe qui comprend des plasmides, des phages, des cos- mides ou des chromosomes appropriés. Selon un mode de réalisation avantageux dudit vecteur, la structure génétique est un plasmide, et l'unité de transcription Tl comprend un gène ou un frag- ment de gène codant pour une protéine Pl, identique à la protéine P laquelle protéine P est une enzyme dimérique. La présente invention a également pour objet une autre famille de vecteurs d'expression et/ou de clo- nage d'une protéine hybride complexe conforme à l'invention, caractérisée en ce que chaque vecteur inclut une unité de transcription T 2 conforme à l'invention, in- sérée dans une structure génétique appropriée, notamment choisie dans le groupe qui comprend des plasmides, des phages, des cosmides ou des chromosomes appropriés. Un tel vecteur est dénommé p LIP 2. Lorsque ladite structure est un plasmide, ce dernier est dit non chargé; lorsque les séquences C et E sont insérées au niveau des sites de restriction uniques tels que définis ci-dessus, de tels vecteurs contiennent des séquences hybrides conformes à l'invention et expri- ment directement la protéine hybride, notamment les anti- corps calorimétriques tels que définis ci-dessus. De tels vecteurs peuvent notamment être prépa- rés à partir du vecteur non chargé dénommé p LI Pl décrit dans la Demande de Brevet européen 407 259, au nom de la Demanderesse. La présente invention a également pour objet un microorganisme obtenu par transformation génétique, caractérisé en ce qu'il est obtenu par modification ap- propriée d'une souche d'E coli par un vecteur conforme à l'invention et notamment par transformation, lorsque le- dit vecteur est un plasmide. Selon un mode de réalisation de l'invention, ledit microorganisme est avantageusement une souche CC 118 d'E coli transformée par un vecteur non chargé, compre- nant une unité de transcription T 2, tel que définie ci- dessus. Selon une disposition avantageuse de ce mode de réalisation, ledit microorganisme a été déposé en date du 31 janvier 1992, sous le numéro I-1168 auprès de la Collection Nationale des Cultures de Microorganismes te- nue par l'Institut Pasteur. D'autres cellules hôtes peuvent également ser- vir à la production de molécules hybrides complexes conformes à l'invention; on peut notamment citer, et ce de manière non limitative, les souches bactériennes ou fungiques (telles que E coli, Bacillus, Streptoomyces), les levures, les cellules de mammifère, les cellules végétales, ou les systèmes d'expression mixtes phage/cellule hôte comme les systèmes utilisant les bacu- lovirus. La protéine hybride complexe, conforme à l'in- vention présente les avantages des protéines hybrides telles que définies dans la demande de Brevet 407 259 (stabilité, utilisation directe, propriétés fonc- tionnelles des deux fragments protéiques contenus) et, de manière plus spécifique de telles protéines hybrides com- plexes possèdent deux fragments Fab associés identiques ou différents, selon le cas, en raison de la dimérisation de la protéine P. Dans le cas o la protéine P est la phospha- tase alcaline, l'anticorps calorimétrique produit chez la bactérie E coli constitue un nouvel outil de diagnostic facile à produire; son caractère bivalent (deux sites de fixation à l'antigène) lui confère une affinité apparente pour l'antigène reconnu plus importante que celle d'un fragment monovalent Il en résultera une sensibilité de détection significativement plus importante. Comparée au composé homologue réalisé par voie chimique, la protéine hybride synthétisée par la bactérie est beaucoup plus simple à produire; en effet, pour réa- liser un traceur performant par voie chimique, l'Homme de l'Art purifie l'anticorps monoclonal, le clive par des méthodes enzymatiques afin d'éliminer le fragment Fc dont la présence entraîne, en particulier, des interactions non spécifiques, purifie le fragment F(ab)'2 qui est en- suite couplé à l'enzyme choisie par des méthodes de cou- plage chimique, puis le complexe est enfin purifié. Dans la présente invention, la bactérie syn- thétise, exporte et assemble un complexe Fab 2/phosphatase alcaline bifonctionnel, utilisable après une étape d'extraction simple En outre, la reproductibilité d'une préparation à une autre est assurée, ce qui n'est généra- lement pas le cas dans les préparations réalisées par des méthodes chimiques. La présente invention a également pour objet un réactif de diagnostic, caractérisé en ce qu'il est constitué par une protéine hybride complexe conforme à l'invention. Un tel réactif trouve notamment application dans des dosages immunoenzymatiques, dans la détection de récepteurs ou en tant que marqueur inmunochimique. * La présente invention a également pour objet un procédé de dosage immunoenzymatique de protéines, caractérisé en ce qu'il consiste: à mettre en contact un échantillon biolo- gique convenable avec un réactif de diagnostic conforme à l'invention et à détecter ledit réactif de diagnostic sous forme de complexe et/ou sous forme libre par une réaction calorimétrique appropriée. La présente invention a, de plus, pour objet une trousse prête à l'emploi pour la mise en oeuvre dudit dosage immunoenzymatique, caractérisée ne ce qu'elle comprend outre les quantités appropriées de tampons et réactifs utiles pour la mise en oeuvre du dosage, des quantités appropriées du réactif conforme à l'invention. Le réactif conforme à l'invention présente l'avantage d'être directement utilisable, alors qu'habituellement, dans le cadre d'un dosage EIA ou ELISA, l'antigène ou l'anticorps est lié de façon cova- lente à une enzyme, le couplage étant réalisé par voie chimique; pour être efficace un tel couplage doit être réalisé avec deux réactifs hautement purifiés. La présente invention a également pour objet un agent à visée thérapeutique, caractérisé en ce qu'il est constitué par une protéine hybride complexe conforme à l'invention. Selon un mode de réalisation avantageux dudit agent, la protéine P est une substance cytotoxique, et les fragments d'immunoglobuline associés dans les unités de base sont d'origine humaine et présentent une spécifi- cité vis-à-vis d'une cellule cible, préalablement sélec- tionnée. La présente invention a en outre pour objet un procédé de production d'anticorps bivalents et bispéci- fiques, caractérisé en ce que: on produit, dans un vecteur conforme à l'invention, deux unités de transcription Tl dont les parties codant pour les domaines d'immunoglobulines sont différentes, lesquelles unités sont sous le contrôle du même promoteur et du même terminateur de transcription, puis, si nécessaire, on sélectionne les hybrides produits pour lesquels l'unité de base U est différente de l'unité de base UW, notamment par chromatographie d'affinité. Outre les dispositions qui précèdent, l'inven- tion comprend encore d'autres dispositions, qui ressorti- ront de la description qui va suivre, qui se réfère à des exemples de mise en oeuvre du procédé objet de la pré- sente invention. Il doit être bien entendu, toutefois, que ces exemples sont donnés uniquement à titre d'illustration de l'objet de l'invention, dont ils ne constituent en aucune manière une limitation. EXEMPLE 1: Anticorps calorimétriques bivalents monospé- cifiques produits chez un microorganisme. 1) Construction d'une unité dicistroniaue destinée à coexorimer deux fraaments d'immunoalobuline dont un est fusionné à la Dhos Dhatase alcaline: a Introduction de deux sites de restriction dans le site Sma I du vecteur p LI Pl (réf Demande de Bre- vet européen 407 259). Le vecteur p LI Pl est un plasmide portant le gène codant pour la phosphatase alcaline d'E coli sous contrôle de son promoteur naturel Un site de restriction15 Sma I unique inséré entre les codons + 6 et + 7 de la phos- phatase alcaline mature déphase le cadre de lecture du gène pho A et permet l'insertion de séquences nucléoti- diques diverses Une cassette obtenue par synthèse de deux oligonucléotides complémentaires est insérée dans le20 site Sma I Elle contient deux sites de restriction Bgl II et Sal I uniques et conserve le déphasage du cadre de lecture du gène de la phosphatase alcaline tel qu'il existe dans le vecteur p LIP 1, ceci afin de permettre la sélection ultérieure des clones ayant inséré dans ces sites le fragment adéquat, en l'occurrence une séquence nucléotidique codant pour les domaines VH et CH 1 d'une immunoglobuline. b Introduction d'une cassette synthétique entre le codon de terminaison du gène de la phosphatase alcaline et le signal de terminaison de transcription du même gène Elle comprend successivement (unité de trans- cription Tl): une partie 5 ' non codante du gène pho A com- prennent une séquence de fixation aux ribosomes (séquence de Shine-Dalgarno), la séquence codant pour le peptide signal et les six premiers acides aminés de la phosphatase alca- line, deux sites de restriction uniques, Sac I et Xba I, deux codons de terminaison. Cette portion du vecteur est conçue pour rece- voir la chaîne VL + CL d'immunoglobuline, être cotrans- crite, sous contrôle du promoteur pho A, avec le gène spé- cifiant l'hybride VH + CH 1/pho A et traduite en protéine,10 telle que représentée à la figure 1, qui illustre une unité de base U, qui comprend une chaîne d'immuno- globuline SU 1, fusionnée à l'extrémité N-terminale d'une sous-unité de la protéine homo ou hétéro-dimérique P. L'autre chaîne de l'immunoglobuline (SU 2) est associée à15 la protéine hybride par le biais du pont disulfure reliant les deux chaînes de l'immunoglobuline. Le gène obtenu est représenté à la figure 2. La figure 2 a représente l'unité de transcrip- tion T 2 (sans fragments d'immunoglobuline) et comprend successivement, à partir du promoteur, la séquence de Shine-Dalgarno (S D), la séquence signal de la phospha- tase alcaline (SS), les résidus + 1 + 6 de la phosphatase mature (+ 1 + 6), un site de restriction Bgl II, un site de restriction Sal I, le gène déphasé codant pour la phospha- tase alcaline ( 444 aminoacides) (Pho A déphasée), un codon stop, une séquence de Shine-Dalgarno (S D), une séquence signal de la phosphatase (SS), les résidus + 1 + 6 de la phosphatase mature (+ 1 + 6), un site de restriction Sac I, un site de restriction Xba I, deux codons stop et un terminateur de transcription (T T). La figure 2 b représente l'unité de transcrip- tion Tl, comprenant les fragments d'immunoglobulines: le domaine variable et le premier domaine constant de la chaîne lourde de l'immunoglobuline (VH + CH 1), entre les sites de restrictions Bgl II et Sal I et les domaines va- riable et constant de la chaîne légère de l'immunoglobuline, entre les sites de restrictions Sac I et Xba I. A partir du promoteur, l'ARN polymérase syn- thétise un transcrit unique qui s'arrête au niveau du terminateur de transcription (T T) La présence de deux sites de fixation des ribosomes (S D) permet, lors de la phase de traduction, la synthèse de deux protéines dis- tinctes La première est constituée du domaine variable et du premier domaine constant de la chaîne lourde de l'Ig G, liés à l'extrémité Nterminale de la phosphatase alcaline La seconde est constituée uniquement de la chaîne légère de l'Ig G. 2) PréDaration de fragments d'ADN codant Dour une immunoalobuline. L'anticorps monoclonal considéré est un anti- corps spécifique des neurotoxines courtes de serpent, isolé et caractérisé, le Mx 2-3 (TREMEAU et al, 1986, FEBS Lett, 208, 236-240). L'ARN messager est extrait des cellules hybri- domes sécrétant l'anticorps Ma 2-3 La réverse transcrip- tase permet d'obtenir un double brin ARN/ADN selon les techniques classiques Les séquences d'ADN de la chaîne légère (VL + CL) et d'un fragment de la chaîne lourde (VH + CH 1) de l'immunoglobuline sont obtenues par ampli- fication spécifique des séquences correspondantes selon la technique de réaction de polymérisation en chaîne (PCR) Les amorces oligonucléotidiques utilisées pour cette amplification sont complémentaires des extrémités des fragments à amplifier et possèdent, à leur extrémité 5 ', les séquences des sites de restriction nécessaires à leur introduction dans le vecteur décrit dans l'exemple 1. 3) Introduction des fragments d'ADN de l'immunoalobuline dans le vecteur d'expression. Le fragment VH + CH 1 de la chaîne lourde est introduit au niveau des sites Bgl II et Sal I du vecteur (fusion au gène pho A) On dispose d'un crible colorimé- trique pour cette insertion puisqu'elle permet le repha- sage du cadre de lecture de la phosphatase alcaline qui suit l'insert Ce crible témoigne également du fait que la phosphatase alcaline fusionnée à la chaîne d'immuno- globuline conserve tout ou partie de ses propriétés enzy- matiques, notamment sa capacité à être exportée et à s'associer en un dimère fonctionnel La chaîne légère (VL + CL) est introduite au niveau des sites Sac I et Xba I du vecteur Sa présence est vérifiée par des études de restriction L'ensemble de la construction est ensuite séquence, afin de contrôler l'ensemble de la partie codante La protéine hybride attendue, produit de traduc- tion de cette construction est représentée à la figure 3 et comprend deux unités de base U et U' identiques; il s'agit d'une protéine hybride complexe phosphatase alca- line/Fab 2. 4) Caractérisation et Dropriétés de la Drotéine recombinante obtenue. En premier lieu, les clones bactériens obtenus hydrolysent, dans des conditions appropriées, le substrat X-P sur boîte de Pétri, lorsque le vecteur qu'ils contiennent comporte soit le fragment chaîne lourde seul, soit le fragment chaîne lourde et le fragment chaîne légère Le vecteur vide ou chargé uniquement de la chaîne légère ne confère pas aux bactéries transformées par lui la capacité d'hydrolyser le substrat Des résultats iden- tiques sont obtenus en solution avec le substrat p NPP. Des chaînes polypeptidiques possédant un domaine phospha- tase alcaline traversent donc la membrane cytoplasmique et s'associent en un dimère enzymatiquement actif. Les immunoprécipitations réalisées avec des anticorps anti-phosphatase alcaline ou anti-immunoglobu- lines humaines montrent effectivement l'existence d'une protéine hybride entre enzyme et fragment VH + C Hi de l'immunoglobuline. La figure 4 illustre les immunoprécipitations réalisées avec un anticorps monoclonal anti-phosphatase (puits 1, 2 et 4) ou avec un sérum polyclonal anti- chaînes lourdes (H) et légères (L), et montre effective- ment l'existence dans le périplasme des bactéries, de la chaîne légère et d'un protéine hybride VH+CH,-monomère de la pho A Le puits 1, correspond au témoin pho A seul Le puits 4, correspond à un périplasme de bactéries trans- formées avec le vecteur p LIP 2 vide Les puits 2 et 3, représentent le résultat d'immunoprécipitation réalisées sur un milieu périplasmique de bactéries transformées avec le vecteur p LIP 2 chargé. EXEMPLE 2: Test immunoenzymatique mettant en oeuvre une protéine hybride conforme à l'invention. Un test ELISA réalisé en utilisant des plaques sur lesquelles une toxine est adsorbée permet de mettre en évidence la fixation spécifique de la protéine hybride possédant l'activité enzymatique, sur la toxine. La figure 5 illustre la courbe d'inhibition de fixation de la protéine hybride conforme à l'invention Fab 2/Pho A, sur de la toxine a adsorbée ( 1 gg/ml) par des concentrations croissantes de toxine a libre L'IC 50 dé- duite pour cette protéine hybride est de 2 10-8 M. La figure 6 illustre une comparaison des courbes d'inhibition de fixation de ladite protéine hy- bride sur la toxine a adsorbée, par des concentrations croissantes de toxine libre, en utilisant soit la pro- téine hybride Fab 2/Pho A, soit un réactif Ma 2- 3/peroxydase, obtenu par couplage chimique classique. L'IC 50 obtenue pour ces deux réactifs est respectivement de 2 10-8 M et de 0,9 10-8 M; ceci montre qu'une pro- téine hybride conforme à l'invention, présente en tant que réactif de diagnostic une sensibilité du même type que celle d'un réactif chimique, tout en présentant des avantages propres et notamment l'extrême simplicité de sa production, l'absence d'étapes longues et difficiles de 27 purification, sa stabilité au cours de la production par la bactérie et également durant le test enzymatique, puisque l'activité enzymatique persiste pendant plus de 24 heures en présence de substrat. Ainsi que cela ressort de ce qui précède, l'invention ne se limite nullement à ceux de ses modes de mise en oeuvre, de réalisation et d'application qui vien- nent d'être décrits de façon plus explicite; elle en em- brasse au contraire toutes les variantes qui peuvent ve- nir à l'esprit du technicien en la matière, sans s'écar- ter du cadre, ni de la portée de la présente invention. REVENDICATIONS 1 ') Protéine hybride du type comprenant un fragment d'immunoglobuline fusionné à une autre protéine P, caractérisée en ce qu'elle est constituée par une séquence hybride complexe comprenant: une unité de base U constituée par: deux chaînes peptidiques différentes SU 1 et SU 2, SU, comprenant les régions variables et constantes d'une chaîne légère d'une immunoglobuline et SU 2 compre- nant au moins les régions variables et le domaine CH 1 d'une chaîne lourde d'une immunoglobuline, lesquelles chaînes peptidiques SU, et SU 2 sont reliées entre elles par au moins un pont disulfure et au moins un fragment fonctionnel d'une des deux sous-unités d'une protéine P dimérique, fusionnée par son extrémité N-terminale à l'une des chaînes peptidiques SU 1 ou SU 2, laquelle unité de base U est associée à une autre unité de base U', identique ou différente de l'unité U, par l'intermédiaire des sous-unités de la protéine P ou d'un fragment de celles-ci. 2 >) Protéine hybride selon la revendication 1, caractérisée en ce que lesdites chaînes peptidiques SU 1 et SU 2 comprennent en amont de leur extrémité N-termi- nale, un fragment d'une protéine Pl exportée ou sécrétée par une cellule hôte unicellulaire choisie dans le groupe constitué par les souches bactériennes ou fungiques (E. coli, Bacillus, Streptomyces), les levures, les cellules de mammifère, les cellules végétales, ou les systèmes d'expression mixtes phage/cellule hôte comme les systèmes utilisant le baculovirus. 3 Y) Protéine hybride selon la revendication 2, caractérisée en ce que la protéine Pl est différente de la protéine P. 4) Protéine hybride selon la revendication 2, caractérisée en ce que la protéine Pl est identique à la protéine P. ) Protéine hybride selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisée en ce que la pro- téine P est choisie dans le groupe qui comprend les pro- téines homo ou hétérodimérique. 6) Protéine hybride selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisée en ce que ladite protéine hybride complexe comprend deux unités de base U et UW identiques ou différentes, constituées chacune: par une chaîne peptidique SU, comprenant les régions variables et constantes d'une chaîne légère d'une immunoglobuline appropriée (VL + CL), par une chaîne pep- tidique SU 2 comprenant les régions variables et le do- maine CH 1 d'une chaîne lourde de la même immunoglobuline (VH + CH 1), lesquelles chaînes SU 1 et SU 2 sont reliées entre elles par au moins un pont disulfure, et par un fragment fonctionnel d'une phos- phatase alcaline, exportée ou excrétée par une cellule hôte appropriée, fusionnée par son extrémité N-terminale à l'une des chaînes SU 1 ou SU 2, lesquelles unités de base U et U' sont réunies par l'assemblage des deux sous-uni- tés de ladite phosphatase alcaline dimérique. 7) Unité de transcription Tl d'une protéine hybride complexe selon l'une quelconque des revendica- tions 1 à 6, caractérisée en ce qu'elle comprend au moins successivement: un promoteur approprié, un premier site de fixation aux ribosomes (séquence de Shine-Dalgarno), une première séquence A comprenant une sé- quence signal d'une protéine Pl exportée ou excrétée par une cellule hôte et susceptible de permettre l'exporta- tion des immunoglobulines associées, une séquence C d'acide nucléique constitué par une séquence choisie dans le groupe constitué soit par une séquence codant au moins pour la région variable et le domaine CH 1 de la chaîne lourde d'une immunoglobu- line, soit par une séquence codant pour la chaîne légère d'une immunoglobuline, une séquence D codant au moins pour un frag- ment fonctionnel d'une sous-unité de la séquence mature d'une protéine P dimérique, au moins un codon stop, un deuxième site de fixation aux ribosomes (séquence de Shine-Dalgarno), une deuxième séquence A telle que définie ci-dessus, une séquence E d'acide nucléique codant pour la séquence de la chaîne non codée par la séquence C ci- dessus, un ou plusieurs codon stop, et un terminateur de transcription. 8) Unité de transcription selon la revendica- tion 7, caractérisée en ce qu'elle comprend en outre, entre la première séquence A et la séquence C et entre la deuxième séquence A et la séquence E ci-dessus, une sé- quence B d'acide nucléique codant pour un fragment NH 2- terminal de la protéine Pl mature. 9 ') Unité de transcription selon la revendica- tion 8, caractérisée en ce que Pl et P sont identiques. 10 ') Unité de transcription selon la revendi- cation 9, caractérisée en ce que P est choisie dans le groupe qui comprend les protéines homo ou hétérodimé- riques. 11) Unité de transcription selon l'une quel- conque des revendications 8 à 10, caractérisée en ce qu'elle est constituée par: un promoteur approprié, un premier site de fixation aux ribosomes (séquence de Shine-Dalgarno), une première séquence A comprenant une sé- quence signal du gène de structure d'une protéine homo- ou hétérodimérique exportée ou sécrétée par une cellule hôte, * une séquence B comprenant une séquence d'acide nucléique codant pour un fragment NH 2-terminal de la protéine homo ou hétérodimérique mature, une séquence C constituée par une séquence choisie dans le groupe constitué soit par une séquence d'acide nucléique codant pour la région variable et le domaine CH 1 de la chaîne lourde d'une immunoglobuline, soit par une séquence codant pour la chaîne légère d'une immunoglobuline, une séquence D constituée par un fragment codant pour au moins un fragment fonctionnel de la sé- quence mature de ladite protéine P homo ou hétérodimé- rique, au moins un codon stop, un deuxième site de fixation aux ribosomes, une deuxième séquence A telle que définie ci-dessus, une séquence B comprenant une séquence d'acide nucléique codant pour un fragment NH 2-terminal de la protéine homo ou hétérodimérique mature, une séquence E constituée par une séquence d'acide nucléique codant pour la chaîne de ladite immuno- globuline non codée par la séquence C ci-dessus, au moins un codon stop, et un terminateur de transcription, l'ensemble de ces fragments étant en phase de lecture et codant pour la protéine hybride complexe selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, présentant à la fois les propriétés de l'enzyme et certaines propriétés des fragments Fab des immunoglobulines. 12-) Unité de transcription selon la revendi- cation 11, caractérisée en ce que ladite protéine homo- ou hétérodimérique est une phosphatase alcaline. 13-) Unité de transcription selon la revendi- cation 12, caractérisée en ce qu'elle est constituée par. un promoteur approprié, un premier site de fixation aux ribosomes (séquence de ShineDalgarno), une première séquence A comprenant la sé- quence signal du gène de structure de la phosphatase al- caline, un fragment B codant pour les 6 aminoacides N-terminaux de la phosphatase alcaline mature, une séquence C constituée par une séquence d'acide nucléique choisie dans le groupe constitué soit par une séquence codant pour la région variable et le domaine C Hl de la chaîne lourde d'une immunoglobuline, soit par une séquence codant pour la chaîne légère d'une immunoglobuline, une séquence D constituée par un fragment codant pour les 444 aminoacides restants C-terminaux de la séquence mature de ladite enzyme dimérique, au moins un codon stop, un deuxième site de fixation aux ribosomes, une deuxième séquence A telle que définie ci-dessus, un fragment B codant pour les 6 aminoacides N-terminaux de la phosphatase alcaline mature, une séquence E d'acide nucléique telle que définie ci-dessus codant pour la chaîne non codée par la séquence C ci-dessus, de ladite immunoglobuline, au moins un codon stop, et un terminateur de transcription. 14-) Unité de transcription selon la revendi- cation 13, caractérisée en ce qu'elle comprend en outre, notamment pour permettre l'insertion des fragments codant pour les immunoglobulines et pour la mise en phase de lecture de l'ensemble de ces fragments, en amont et/ou en aval de la séquence C et en amont et/ou en aval de la séquence E, un fragment d'acide nucléique approprié, laquelle unité de transcription, en phase de lecture, code pour une protéine hybride selon l'une quelconque des revendications 1 à 6. 15-) Unité de transcription selon la revendi- cation 14, caractérisée en ce qu'elle comprend une pre- mière séquence A signal du gène de structure de la phos- phatase alcaline, une première séquence B codant pour les 6 aminoacides N-terminaux de la phosphatase alcaline, un site de restriction Bgl II, une séquence C, choisie dans le groupe constitué soit par une séquence codant pour la région variable et le domaine CH, d'une chaîne lourde d'une immunoglobuline, soit par la séquence codant pour la chaîne légère d'une immunoglobuline, un site de restriction Sal I, un fragment D codant pour les 444 aminoacides restants C-terminaux de la phosphatase alca- line, une deuxième séquence A, une deuxième séquence B, un site de restriction Sac I, une séquence E codant pour la séquence non codée par la séquence C, un site de res- triction Xba I, au moins un codon stop et un terminateur de transcription. 16-) Unité de transcription T 2, caractérisée en ce qu'elle comprend: un promoteur approprié, un site de fixation aux ribosomes (séquence de Shine-Dalgarno), une première séquence A signal d'un gène de structure d'une protéine Pl, une séquence D apte à coder pour un fragment fonctionnel de la séquence mature d'une protéine P dimérique et un ou plusieurs sites de restric- tion uniques, situés à la jonction entre la première séquence A et la séquence D et apte à recevoir une séquence C choisie dans le groupe constitué soit par une séquence codant pour la région variable et le domaine CH 1 d'une chaîne lourde d'une immunoglobuline, soit par la séquence codant pour la chaîne légère d'une immunoglobu- line, au moins un codon stop, un site de fixation aux ribosomes (séquence de Shine-Dalgarno), une deuxième séquence A telle que définie ci-dessus et un ou plusieurs sites de restriction uniques, situés en aval de ladite séquence A et aptes à recevoir une séquence E codant pour la séquence non codée par la séquence C, au moins un codon stop, et un terminateur de transcription. 17 >) Unité de transcription T 2 selon la revendication 16, caractérisé en ce qu'elle comprend un promoteur approprié, un site de fixation aux ribosomes (séquence de Shine-Dalgarno), une première séquence A signal d'un gène de structure d'une protéine Pl, une première séquence B codant pour un frag- ment NH 2-terminal d'une protéine Pl mature, une séquence D apte à coder pour une protéine P mature ou un fragment de celle-ci et un ou plusieurs sites de restriction uniques, situés à la jonction entre le fragment NH 2-ter- minal de séquence codant pour la protéine Pl et la séquence codant pour la protéine P et aptes à recevoir une séquence C telle que définie cidessus, au moins un codon stop, un site de fixation aux ribosomes (séquence de Shine-Dalgarno), une deuxième séquence A telle que définie ci-dessus, une deuxième séquence B telle que définie ci-dessus et un ou plusieurs sites de restriction uniques, situés en aval de ladite séquence A et aptes à recevoir une séquence E telle que définie ci-dessus, au moins un codon stop, et un terminateur de transcription. 18-) Unité de transcription selon la revendi- cation 17, caractérisée en ce que Pl et P sont iden- tiques.5 19 ') Unité de transcription selon l'une quel- conque des revendications 7 à 17, caractérisée en ce que le promoteur est choisi dans le groupe qui comprend le promoteur du gène pho A et tout promoteur plus fort que le promoteur du gène pho A. 20-) Famille de vecteurs d'expression et/ou de clonage d'une protéine hybride complexe selon l'une quel- conque des revendications 1 à 6, caractérisée en ce que chaque vecteur inclut une unité de transcription T 1 selon l'une quelconque des revendications 7 à 15 ou la revendi- cation 19, insérée dans une structure génétique appro- priée, notamment choisie dans le groupe qui comprend des plasmides, des phages, des cosmides ou des chromosomes appropriés. 21-) Famille de vecteur selon la revendication 20, caractérisée en ce que la structure génétique est un plasmide, et l'unité de transcription Tl comprend un gène ou un fragment de gène codant pour une protéine Pl, iden- tique à la protéine P laquelle protéine est une enzyme dimérique.25 22-) Famille de vecteurs d'expression et/ou de clonage d'une protéine hybride complexe selon l'une quel- conque des revendications 1 à 6, caractérisée en ce que chaque vecteur inclut une unité de transcription T 2 selon l'une quelconque des revendications 16 à 19, insérée dans une structure génétique appropriée, notamment choisie dans le groupe qui comprend des plasmides, des phages, des cosmides ou des chromosomes appropriés. 23-) Microorganisme obtenu par transformation génétique, caractérisé en ce qu'il est obtenu par modi- fication appropriée d'une souche d'E coli par un vecteur conforme à l'invention et notamment par transformation. 24) Microorganisme selon la revendication 23, caractérisé en ce qu'il est avantageusement une souche CC 118 d'E coli transformée par un vecteur non chargé se- lon la revendication 16. 25 >) Microorganisme selon la revendication 23 ou la revendication 24, caractérisé en ce qu'il a été dé- posé en date du 31 janvier 1992, sous le numéro I-1168 auprès de la Collection Nationale des Cultures de Microorganismes tenue par l'Institut Pasteur. 26) Réactif de diagnostic, caractérisé en ce qu'il est constitué par une protéine hybride complexe se- lon l'une quelconque des revendications 1 à 6. 27) Procédé de dosage immunoenzymatique de protéines, caractérisé en ce qu'il consiste: à mettre en contact un échantillon biolo- gique convenable avec un réactif de diagnostic selon la revendication 26 et à détecter ledit réactif de diagnostic sous forme de complexe et/ou sous forme libre par une réaction calorimétrique appropriée. 28) Trousse prête à l'emploi pour la mise en oeuvre du dosage immunoenzymatique selon la revendication 26, caractérisée ne ce qu'elle comprend outre les quanti- tés appropriées de tampons et réactifs utiles pour la mise en oeuvre du dosage, des quantités appropriées du réactif selon la revendication 26. 29) Agent à visée thérapeutique, caractérisé en ce qu'il est constitué par une protéine hybride com- plexe selon l'une quelconque des revendications 1 à 6. 30 ') Agent thérapeutique selon la revendica- tion 29, caractérisé en ce que la protéine P est une sub- stance cytotoxique, et les fragments d'immunoglobuline associés dans les unités de base sont d'origine humaine et présentent une spécificité visà-vis d'une cellule cible, préalablement sélectionnée. 31-) Procédé de production d'anticorps biva- lents et bispécifiques, caractérisé en ce que on produit, dans un vecteur selon l'une quelconque des revendications 20 à 22, deux unités de transcription Tl dont les parties codant pour les do- 5 maines d'immunoglobulines sont différentes, lesquelles unités sont sous le contrôle du même promoteur et du même terminateur de transcription, puis, si nécessaire, on sélectionne les hybrides produits pour lesquels l'unité de base U est différente de l'unité de base U', notamment par chromatographie d'affinité.