FR 2684110 A1 19930528 FR 9114972 A 19911125 Procédé d'analyse microbiologique et milieu pour détecter des levures de l'espèce Candida albicans L'invention concerne l'identification des levures de l'espèce Candida albicans, par ensemencement d'un mi- lieu de culture spécifique avec un échantillon présumé contenir lesdites levures, croissance de ces dernières sur le milieu de culture et développement sur ledit milieu d'un phénomène chromogène ou fluorigène de caractérisa- tion, à partir d'un caractère biochimique spécifique de ladite espèce de levure. Les techniques de détection des Candida albicans actuellement existantes sont basées sur la reconnaissance d'une morphologie typique des colonies de cette espèce, et/ou sur la recherche d'anticorps ou antigènes, et/ou sur la détermination d'un caractère biochimique spécifique et notamment une activité enzymatique. Les techniques faisant appel à la reconnaissance d'une morphologie typique requièrent l'intervention d'un personnel spécialisé des observations au microscope, et présentent le risque de détecter des faux positifs comme l'espèce Candida tropicales qui se trouve être la seconde espèce rencontrée en pathologie humaine. Les techniques immunologiques basées sur la recherche d'anticorps ou d'antigènes nécessitent en outre une observation au microscope pour confirmer le genre de levures identifié, du fait de l'existence de réactions croisées entre espèces de genres différents. Les techniques basées sur la détermination d'un ou plusieurs caractères biochimiques nécessitent en outre, après isolement de la levure, 4 à 72 heures supplémen- taires d'incubation de la colonie de levures dans d'autres milieux réactionnels. Il existe cependant un caractère biochimique spé- cifique des Candida albicans consistant en une activité enzymatique exercée par un enzyme appartenant au groupe des hexosaminidases et présent dans l'espèce Candida albicans. La détermination de cette activité enzymatique fait l'objet d'un test utilisant un milieu de culture et de détection, commercialisé par les Laboratoires XERCK- CLEVENOT sous la marque Fluoroplate Candida Agar, compre- nant une base nutritive métabolisée par les levures, et un substrat fluorigène, susceptible d'être hydrolysé par la N-acétyl-e-Dgalactosaminidase pour libérer un produit fluorescent Le substrat fluorigène est la 4-méthyl- umbelliféryl-N-acétyl-13-D-galactosaminide L'hydrolyse enzymatique de ce dernier par Candida albicans libère la méthylumbelliférone, un produit fluorescent bleu, détec- table sous rayonnement UV à 360 nm. Cependant, outre le fait que ces milieux de détec- tion requièrent l'utilisation d'une source de rayonnement UV pour visualiser la réaction, cette dernière n'est que très faiblement détectable au bout de 24 heures et l'est faiblement au bout de 48 heures, rendant le test inutili- sable dans le cadre d'une détection rapide. De plus, la diffusion dans le milieu du produit fluorescent libéré par l'hydrolyse enzymatique, diminue la probabilité de mise en évidence d'un culture pluri- microbienne. Le problème de la mise au point d'un procédé pour détecter sélectivement et rapidement Candida albicans n'est donc pas encore résolu Pourtant, le besoin est grand, étant donné que Candida albicans est l'espèce la plus communément isolée à partir d'échantillons cliniques,30 et provoque des infections plus ou moins importantes de la peau, des ongles et des muqueuses chez les individus pré- sentant des défenses immunitaires normales et des infec- tions très sérieuses chez les individus affaiblis et no- tamment ceux infectés par le virus HIV.35 Selon la présente invention, un procédé d'analyse microbiologique pour détecter Candida albicans et un mi- lieu de culture pour le mettre en oeuvre, ont été élaborés permettant de pallier les inconvénients du test précité. L'invention apporte également un dispositif de ca- ractérisation microbiologique comprenant un conditionne- ment d'un milieu de culture et détection de Candida albicans, agencé pour permettre l'ensemencement d'un échantillon à tester sur le milieu et son incubation. Le procédé de l'invention consiste à mettre direc- tement l'échantillon à analyser au contact d'un milieu d'identification comprenant une base nutritive, un substrat chromogène ou fluorigène, susceptible d'être hydrolysé par un enzyme du groupe des hexosaminidases et comprenant en outre au moins un composé hexosaminé. Le composé hexosaminé, qui est en fait un produit de l'hydrolyse enzymatique par une hexosaminidase, se com- porte, contrairement à l'effet rétro-inhibiteur attendu, dans le milieu de l'invention ensemencé par Candida albicans, comme un excellent activateur des hexosamini- dases.20 Grâce à l'invention, et comme démontré par le pro- tocole expérimental établi ci-après, la réaction d'hydro- lyse enzymatique peut être détectée facilement après 24 heures d'incubation. On expose ci-après, de manière générale, la compo- sition du milieu de culture, exprimée en g/l de milieu final. Le milieu comprend une base nutritive nécessaire au développement des levures et des activateurs de l'hexo- saminidase selon la présente invention. Les éléments constitutifs de la base nutritive comprennent: des peptones de 0,01 à 40 g/l, telles que la peptone de viande, le produit commercialisé par la Société BIOMERIEUX sous la marque bio Soyase ou analogue, ou encore35 un mélange de peptones; de préférence, la peptone ou le mélange de peptones est présent dans le milieu à environ 6 g/l 0, 5 g/l; un extrait de levure de 0,01 à 40 g/l, de préfé- rence environ 1,5 g/l, apportant des vitamines de crois- sance des levures; une source de carbone, telle que le glucose, le glycérol, un acétate, un pyruvate, un lactate, l'arginine, un aminobutyrate, ou un mélange de ces composants, dans la proportion de O à 10 g/l; la source de carbone est de préférence le glucose en une quantité de 1 g/l; un tampon ajouté au milieu afin d'obtenir un p H favorable pour le développement de Candida albicans, com- pris entre 5 et 8,5; le tampon est choisi parmi les tam- pons phosphate, Tris, Hépès (acide N-2-hydroxyéthyl- pipérazine-N'-2-éthasulfonique) et citrate dans la propor- tion de 2,5 à 100 m M; de préférence, le tampon est un tampon phosphate 10 m M pour ajuster le p H du milieu à une valeur voisine de 7; Agar de 11 à 20 g/l, de préférence de 15 g/l. Le substrat chromogène ou fluorigène peut être tout substrat chromogène ou fluorigène hydrolysable par une hexosaminidase, telle qu'une galactosaminidase, gluco- saminidase ou mannosaminidase, pour libérer un produit co- loré ou fluorescent De préférence, le substrat est choisi parmi ceux présentant une forte coloration ou fluorescence avec peu de molécules, n'induisant pas de modifications du métabolisme des microorganismes, excepté pour l'activité enzymatique recherchée, ne nécessitant pas, pour la révé- lation du produit coloré ou fluorescent, dit marqueur, de réactif toxique pour les microorganismes, possédant une bonne solubilité dans l'eau, libérant après hydrolyse un marqueur qui ne diffuse pas ou très peu dans le milieu, afin que le signal reste limité au voisinage immédiat des colonies, et produisant un signal qui est visualisé sans forcément nécessiter l'emploi d'un appareil tel qu'une lampe UV ou un spectrophotomètre Ces substrats sont de préférence choisis, pour les substrats chromogènes, parmi ceux comprenant un groupement chromophore tel qu'un indo- lyle substitué ou non, et notamment parmi le 5-bromo-4chloro-3-indolyl-N-acétyl-f-D-glucosamine et le 5-bromo-4-5 chloro-3indolyl-N-acétyl-1-D-galactosamine de 20 à 600 p M, avantageusement le 5-bromo-4-chloro-3-indolyl- N-acétyl-3-D-glucosamine à 200 p M, et pour les substrats fluorigènes, parmi la méthylumbelliféryl-N-acétyl-1-D- galactosamine, la méthylumbelliféryl-N-acétyl-f-D- glucosamine. L'activateur de l'hexosaminidase est choisi dans le groupe des composés hexosaminés ou leur mélange Il est notamment choisi parmi les hexosamines telles que glucosa- mine, mannosamine et galactosamine, mais aussi parmi les N-acétylhexosamines, liées ou non par l'oxygène porté par le carbone anomère à un radical alkyle linéaire ou ramifié substitué ou non, ayant de 1 à 10 atomes de carbone et no- tamment un radical méthyl ou isopropyl, à un radical alcoylène linéaire ou ramifié, substitué ou non, ayant de 1 à 10 atomes de carbone, ou à un radical aromatique ayant de 6 à 10 atomes de carbone Dans le cas o ledit radical alkyle ou alcoylène est substitué, il l'est de préférence par un groupement thiol. La quantité du composé hexosaminé est comprise entre 0,01 et 20 g/l De préférence, l'activateur choisi est la N-acétyl-glucosamine en une quantité de 1 g/l. D'autres activateurs peuvent être ajoutés au mi- lieu pour favoriser l'activité de l'hexosaminidase Ces activateurs sont choisis dans le groupe des composés ca- tioniques bivalents tels que des sels de Mn 2 +, Mg 2 +, Ca 2 + ou un mélange de ceux-ci, de O à 10 m M De préférence, le composé cationique bivalent choisi est un sel de Mn 2 + ( 1 m M). Les agents de perméabilisation ou tensioactifs pouvant être ajoutés au milieu pour favoriser un bon contact enzyme/substrat, sont choisis dans le groupe consistant en les sels biliaires, le désoxycholate de so- dium, les éthers de polyoxyéthylèneglycol et d'alkylphé- nol, commercialisés par exemple sous la marque Tritor, les esters de sorbitanne et d'acides gras, commercialisés5 par exemple sous la marque Tweed, dans la concentration de O à 5 g/l De préférence, l'agent de perméabilisation est le désoxycholate de sodium dans une quantité de 0,1 g/l. Un inhibiteur ou un mélange d'inhibiteurs des bac- téries, permettant d'inhiber la croissance des bactéries gram+ et gram-, sans affecter celle des levures, et si possible des champignons, peut être ajouté au milieu De préférence, les inhibiteurs de bactéries sont choisis dans le groupe des antibiotiques tels que gentamicine, chloramphénicol, pénicilline, streptomycine, cycloheximide, néomycine, tétracycline, oxytétracycline ou un mélange d'antibiotiques, et/ou parmi la tellurite, un molybdate et analogues, ou leurs mélanges. Avantageusement, on choisit le chloramphénicol ( 0,5 g/l), ou un mélange de gentamicine ( 0,1 g/l) et de chloramphénicol ( 0, 05 g/l) Il est également possible d'inhiber la croissance des bactéries en diminuant le p H du milieu jusqu'à un p H acide. Les caractéristiques et avantages de l'invention sont à présent exposés à l'appui des exemples 1 à 6 suivants. Exemple 1: On donne ci-après une composition du milieu préfé- rentielle pour 1 litre: bio Soyase (BIOMERIEUX) 6,0 g extrait de levure (BIOMERIEUX) 1,5 g glucose (MERCK) 1,0 g N-acétyl-glucosamine (SIGMA) 1,0 g tampon phosphate (MERCK) 10,0 mmoles Mn 2 + (MERCK) 1,0 mmole désoxycholate de sodium (MERCK) 0,1 g -bromo- 4-chloro-3-indolyl-Nacétyl-3-D-glucosamine (BIOSYNTH) 0,1 g agar (BIOMERIEUX) 15,0 g gentamicine 0,1 g chloramphénicol 0,05 g p H 7,0 Exemple 2: Des essais ont été réalisés pour tester les mi- lieux de l'invention et les comparer à des milieux conven- tionnels. Deux milieux ont été préparés selon les techniques habituelles Le premier milieu ci-après désigné Milieu I contient tous les éléments de la base nutritive, ainsi qu'un substrat chromogène d'une hexosaminidase et un inhi- biteur de bactéries. La composition du Milieu I pour un litre de milieu final est la suivante: bio Soyase (BIOMERIEUX) 6,0 g extrait de levure (BIOMERIEUX) 1,5 g glucose (MERCK) 1,0 g tampon phosphate (MERCK) 10,0 mmoles -bromo-4chloro-3-indolyl-N- acétyl-3-D-glucosamine (BIOSYNTH) 0,1 g agar (BIOMERIEUX) 15,0 g gentamicine 0,1 g chloramphénicol 0,05 g Le p H du milieu a été ajusté aux environs de 7. Le second milieu appelé Milieu II correspond au milieu selon l'invention et contient tous les éléments ci- dessus décrits pour le Milieu I, plus les activateurs de la présente invention, c'est-à-dire un composé hexosaminé, un agent de perméabilisation et des cations bivalents La composition du Milieu II correspond à celle décrite dans l'exemple 1. Sur ces deux milieux, 15 souches de levures ont été directement cultivées en boîte de Pétri Les souches provenant de la collection de la Demanderesse, appartien- nent aux espèces suivantes: Candida albicans: huit souches, Candida glabrata: trois souches, Candida tropicalis: quatre souches Les boites ont été incubées à 37 C pendant 48 heures Les colonies formées ont été exa- minées visuellement, respectivement après 24 et 48 heures d'incubation selon les interprétations suivantes: les colonies bleues correspondent à des souches Candida albicans produisant la N-acétyl-a-D- glucosaminidase; les colonies blanches correspondent aux souches qui ne produisent pas l'enzyme précité et appartiennent donc à d'autres espèces de levures qui seront alors à identifier à l'aide des techniques habituelles. Les résultats sont présentés dans le tableau I ci- après: TABLEAU I | Coloration l à 24 heures à 48 heures Espèces Milieu Forte Faiblenulle Forte Faiblenulle Calbicans N^10 3 5 3 4 I Milieu r 6 2 O 7 I O C glabrata ilic O 3 O O 3 Milieu I O 3 O O 3 C tropicalislieu O O 40 I 3 Miieul I O O 4 O I 3 *: nombre de souches. Comme cela ressort du tableau ci-dessus, l'apport de l'activateur de l'hexosaminidase permet une détection beaucoup plus précoce des souches de Candida albicans En effet, toutes les souches sont colorées dès 24 heures sur le milieu selon l'invention, six sur huit l'étant forte- ment, alors que seulement trois le sont très faiblement sur le milieu conventionnel. Exemple 3: 42 souches de levures ou de bactéries ont été pla- cées sur le milieu de la présente invention Ces souches proviennent toutes de la collection de la Demanderesse et se répartissent ainsi: 8 Candida albicans 3 Candida (Torulopsis) glabrata 2 Candida guilliermondii 2 Candida kursei 2 Candida lusitaniae 3 Candida parapsilosis 3 Candida pseudotropicalis 2 Candida rugosa 2 Candida stellatoidea 4 Candida tropicales 3 Cryptococcus neoformans 2 Saccharomyces cerevisiae 2 Trichosporon cutaneum 2 Serratia marcescens 2 Staphylococcus aureus Les boites de Pétri contenant le milieu de la pré- sente invention ont été ensemencées selon la procédure ha- bituelle avec chacune des souches décrites ci-dessus Les boites ont été incubées à 370 C pendant 48 heures Les co- lonies formées ont été examinées visuellement, respective- ment après 24 et 48 heures d'incubation. Parmi les 42 isolements, seules les huit souches de Candida albicans ont donné des colonies bleues après 24 heures d'incubation, coloration qui caractérise Candida albicans sur le milieu de l'invention, six de ces souches étant très fortement colorées et deux un peu plus faible- ment Après 48 heures d'incubation, 7 des 8 souches de Candida albicans donnent des colonies fortement colorées en bleu, une seule ne l'étant que faiblement. Parmi les autres espèces de levures, seules les souches de Trichosporon cutaneum ont une croissance nulle à 24 heures, et quasi nulle à 48 heures Toutes les autres souches de levures donnent de petites colonies blanches à 24 heures, dont la taille s'accroit à 48 heures Pour une souche de Candida tropicalis et les deux souches de Candida stellatoidea, on observe des colonies blanches après 24 heures d'incubation qui se colorent très faible- ment en bleu après 48 heures d'incubation. En fonction de l'intensité du signal obtenu avec le milieu de la présente invention pour la détection de Candida albicans, il est impossible de confondre la très faible coloration obtenue après 48 heures d'incubation avec ces deux autres espèces, de celle obtenue pour Candida albicans, même dans le cas de souches plus faible- ment colorées de Candida albicans. Par ailleurs, en ce qui concerne les souches de bactéries, c'est-à- dire Serratia marcescens et Staphylococcus aureus, aucune de ces souches ne produit de colonies, même après 48 heures d'incubation. Il ressort donc de ces essais que le milieu de l'invention présente une très bonne sensibilité et spéci- ficité pour Candida albicans, et permet de détecter et d'identifier directement et sans ambiguité les souches de Candida albicans qui sont les seules à produire des colo- nies bleues après 24 heures d'incubation. Exemple 4: Une comparaison a été effectuée entre le milieu commercialisé par MERCK sous la dénomination Fluoroplate Candida Agar et le milieu selon l'invention. Les 42 souches de l'exemple précédent ont été cul- tivées en boites de Pétri, respectivement sur chacun de ces milieux Les boites ont été incubées à 370 C pendant 48 heures et les colonies formées ont été examinées vi- suellement après 24 et 48 heures d'incubation. Sur le milieu de l'invention, les colonies expri- mant l'activité d'une hexosaminidase sont bleues, alors que sur le milieu de MERCK, elles présentent une fluores- cence bleue après observation sous lampe UV à 360 nm. Les résultats sont présentés dans le tableau II ci-après. TABLEAU II Coloration (milicu selon rinvention) - Fluorscence (mrilicu Merck) à 24 heures à 48 heures Espèces (Nb dc illea Forte Faible nullc Forte Faiblc nullc souces) C albicans ( 8) Milicu selon rinvcnion6 * 2 O 7 I O Muoplat C andidaagar O 3 5 4 3 1 C glabraa ( 3) Milicu selon vinvcndtonO O 3 O O 3 o Flhocput CandidaagarO O 3 O O 3 C gudller 'ilicu selon linvernionO O 2 O P 2 mondi ( 2) Fluopla Candida agr O O 2 O O 2 C krusd ( 2) 1 iieu selon rinvcanon O O 2 O O 2 auompl=Candidaagar O O 2 O O 2 C us;raniae ic seon rinvendon O O 2 O O 2 ( 2) Fo O Eplsc Candida agr O O 2 O O 2 C para Milicu selon rinventionO O 3 O O 3 psilosis ( 3) - lxocoplac Candid agarO O 3 O O 3 C pseudo;ieu selon Utnvenioa O O 3 O O 3 rropicalis ( 3) uocoplata Candida agarO O 3 O O 3 C rugosa ( 2) Mi Eicu sdon riavcnton O O 2 O O 2 uocoplsa Candida agarO 1 1 i 1 O C srellaroidea {ilieu selon rinveanionO O 2 O 2 O ( 2) u Eoplatc Carndidaagr O 1 1 O 2 O C tropicalis ilieu selon 'invenion O O 4 O 1 3 ( 4) Focoplatc Candida agar O O 4 O 1 3 Cryprococcus Milicu selon rinventionO O 3 O O 3 neoformans ( 3) Fluocpiat Candidaagar O O 3 O O 3 S cerevisiae Milicu seloan rinventionO O 2 O O 2 ( 2) Muoopte Candidaagar O O 2 O O 2 T_ curaneum filieu selon rinvenion O O 2 O O 2 ( 2) uocoplate Candidaagar O 2 O 2 O O S marcescens Milieu selon rinventionO O 2 O O 2 ( 2) uocoplai Candidaagar O 1 2 O O Staphaureus Milieu sdlon rinventionO O 2 O O 2 ( 2) Fluoplatec Candidaaar O O 2 O O 2 :nombre de souches. I Comme cela ressort du tableau ci-dessus, les 8 souches de Candida albicans sont détectées dès 24 heures, dans la majorité des cas avec une très forte coloration avec le milieu de l'invention, alors que seulement trois souches produisent une fluorescence faible après 24 heures d'incubation sur le milieu commercialisé par la Société MERCK De même, après 48 heures d'incubation, on constate que 7 souches de Candida albicans sont détectées avec une très forte coloration, contre seulement 4 avec le milieu Fluoroplate Candida Agar Ces résultats démontrent l'ex- cellente sensibilité du milieu de la présente invention, en comparaison avec celle du milieu antérieur. Par ailleurs, le milieu de la présente invention possède une très bonne spécificité, puisqu'on n'observe pas de faux positif à 24 heures, alors que 4 souches autres que Candida albicans présentent une fluorescence avec le milieu Fluoroplate Candida Agar Après 48 heures d'incubation, 3 souches n'appartenant pas à l'espèce Candida albicans paraissent très faiblement colorées avec le milieu de l'invention, contre 9 avec l'autre milieu dont certaines sont très fortement colorées. Enfin, on observe une excellente sélectivité du milieu selon l'invention vis-à-vis des bactéries, ce qui évite de masquer la présence de levures sur des prélève- ments fortement contaminés par des bactéries, qui peuvent également posséder une hexosaminidase. Outre les excellentes sensibilité, spécificité et sélectivité obtenues avec le milieu de la présente inven- tion, celui-ci présente encore l'avantage de permettre une lecture d'une coloration dès 24 heures, possible directe- ment sur le milieu à l'oeil nu De plus, la coloration in- tense obtenue avec le milieu de la présente invention li- mitée à la colonie, permet une détection des cultures plurimicrobiennes, alors que la fluorescence sur le milieu35 commercial diffuse dans toute la gélose. Exemple 5: On a effectué un essai pour déterminer le nombre minimal de colonies de Candida albicans pouvant être dé- tectées, à partir d'un mélange de microorganismes, sur le 5 milieu de l'invention. Cet essai a été effectué sur les 4 souches sui- vantes: Candida albicans, BIOMERIEUX référence 19 Candida (Torulopsis) glabrata, BIOMERIEUX réf é- rence 154 Candida tropicales, BIOMERIEUX référence 47 Serratia marcescens, BIOMERIEUX référence 106. Ces souches ont été cultivées pendant 24 heures à 370 C sur gélose commercialisée sous la dénomination Sabouraud Une suspension en sérum physiologique a été effectuée pour chaque souche, ajustée au néphélomètre de façon à obtenir environ 108 germes/ml Ces suspensions ont ensuite été diluées à 104 fois Pour la souche de Candida albicans, cette dernière suspension a été diluée 10 et 50 fois, permettant ainsi de disposer de trois dilutions de la suspension initiale: 104, 105 et 5 105 Les diffé- rentes suspensions de la souche de Candida albicans ont ensuite été mélangées à volume égal avec celles des trois autres souches. 20 pl de chacun de ces mélanges ont été déposés sur des boîtes de Pétri contenant le milieu de l'invention et étalés à l'aide d'une pipette Pasteur stérile recour- bée Après absorption, la boîte est retournée et incubée pendant 24 heures à 370 C Les colonies blanches et bleues sont comptées pour chaque boîte Les résultats sont pré- sentés dans le tableau III ci-après. TABLEAU III Espèces dans le mélange Dilutions dans le mélange C atbicans + C albicans+ C albicans + C albicans / Autre souche C glabrata C tropicalis S marcesens 104/104 1231152 * 931107 113/0 /104 9/119 12/122 11/0 5.105/104 3/135 1/97 2/0 *: nombre de colonies bleues / nombre de colonies blanches. D'après les résultats, il apparaît que sur le mi- lieu de l'invention, il est possible de mettre en évi- dence, sans aucune difficulté, les mélanges de souches de Candida albicans, c'est-à-dire les colonies bleues, avec celles d'autres espèces de levures, c'est-à-dire les colo- nies blanches Cette détection est aussi aisée qu'il y ait une colonie parmi 100, ou qu'elles soient en grand nombre, la coloration des colonies de Candida albicans étant constante quel que soit leur nombre sur le milieu d'isole- ment De plus, la présence de bactéries dans la suspension n'interfère en rien avec le développement et la coloration des souches de Candida albicans sur le milieu de l'inven- tion. Exemple 6: Isolement de levures sur le milieu de l'invention et utilisation de kits d'identification et de détermination des résistances aux antifongiques. Quatre souches de levures provenant de la collec- tion de la Demanderesse ont été isolées sur le milieu de l'invention, ainsi que sur le milieu Sabouraud Gentamicine Chloramphénicol (commercialisé par la Société BIOMERIEUX). Ces souches appartiennent aux espèces suivantes: 2 Candida albicans 1 Candida tropicalis 1 Candida (Torulopsis) glabrata Pour chaque isolement, après 24 heures d'incuba- tion à 370 C, des colonies ont servi à inoculer, selon les instructions du fabricant, une galerie d'identification des levures ID 32 C (nom commercial, Société BIOMERIEUX), 5 une galerie ATB Fungus (antifongigramme) de la Société BIOMERIEUX (ATB marque enregistrée) Les colonies des souches de Candida albicans sur le milieu de l'invention présentent une coloration bleue. Les galeries sont lues respectivement à 24, 48 et 72 heures et les résultats reportés sur les fiches de lec- ture Les résultats obtenus pour chaque souche isolée sur le milieu de l'invention sont identiques à ceux obtenus après isolement sur le milieu Sabouraud. Les colonies de levures, appartenant ou non à l'espèce Candida albicans, isolées sur le milieu de l'in- vention peuvent servir pour l'étude de leur résistance aux antifongiques, ou pour inoculer les kits d'identification des levures. REVENDICATIONS 1/ Procédé d'analyse microbiologique pour détecter sélectivement les levures de l'espèce Candida albicans selon lequel on met directement l'échantillon à analyser au contact d'un milieu d'identification comprenant une base nutritive métabolisée par les levures, un substrat chromogène ou fluorigène, susceptible d'être hydrolysé par un enzyme du groupe des hexosaminidases pour libérer un produit coloré ou fluorescent, caractérisé en ce que le10 milieu d'identification comprend en outre au moins un composé hexosaminé. 2/ Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que le composé hexosaminé est une hexosamine choisie parmi la glucosamine, la galactosamine et la mannosamine. 3/ Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que le composé hexosaminé est une hexosamine N- substituée. 4/ Procédé selon la revendication 3, caractérisé en ce que l'hexosamine N-substituée est une N-acétyl- hexosamine. / Procédé selon la revendication 3, caractérisé en ce que l'hexosamine N substituée est choisie parmi les N-acétyl-hexosamines, liées par l'oxygène porté par le carbone anomère à un radical alkyle linéaire ou ramifié substitué ou non, ayant de 1 à 10 atomes de carbone et no- tamment un radical méthyle ou isopropyle, à un radical alcoylène linéaire ou ramifié, substitué ou non, ayant de 1 à 10 atomes de carbone, ou à un radical aromatique ayant de 6 à 10 atomes de carbone. 6/ Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que le composé hexosaminé est présent dans le milieu d'identification à raison d'une quantité comprise entre 0,01 g et 20 g pour un litre de milieu d'identification. 7/ Procédé selon les revendications 4 et 6, carac- térisé en ce que le milieu d'identification comprend une N-acétylglucosamine en une quantité de 1 g pour 1 litre de milieu. 8/ Milieu de culture et de détection sélective de levures de l'espèce Candida albicans, comprenant une base nutritive métabolisée par lesdites levures, un substrat chromogène ou fluorigène, susceptible d'être hydrolysé par un enzyme du groupe des hexosaminidases pour libérer un produit coloré ou fluorescent, caractérisé en ce que le milieu comprend en outre au moins un composé hexosaminé.10 9/ Milieu selon la revendication 8, caractérisé en ce qu'il comprend au moins un activateur de l'hexosamini- dase choisi parmi les composés cationiques bivalents. / Milieu selon la revendication 9, caractérisé en ce que les composés cationiques bivalents sont des sels de Mn 2 +, Mg 2 +, Ca 2 +, et la concentration molaire de l'ac- tivateur dans le milieu est comprise entre O et 10 m M. 11/ Milieu selon la revendication 10, caractérisé en ce que l'activateur est un sel Mn 2 +, et sa concentra- tion molaire dans le milieu est de 1 m M. 12/ Milieu selon la revendication 8, caractérisé en ce qu'il comprend au moins un agent de perméabilisation de la paroi cellulaire de la levure. 13/ Milieu selon la revendication 8, caractérisé en ce qu'il comprend au moins un agent tensioactif. 14/ Milieu selon les revendications 12 et 13, ca- ractérisé en ce que l'agent de perméabilisation et/ou le tensioactif sont choisis parmi les sels biliaires, le désoxycholate de sodium, les éthers de polyoxyéthyléneglycol et d'alkylphénol, et les esters de30 sorbitanne et d'acides gras. / Milieu selon la revendication 14, caractérisé en ce que l'agent de perméabilisation et/ou le tensioactif sont présents dans le milieu d'identification en une quan- tité comprise entre O et 5 g par litre de milieu. 16/ Milieu selon la revendication 8, caractérisé en ce qu'il comprend un inhibiteur de croissance des bac- téries. 17/ Milieu selon la revendication 16, caractérisé en ce que l'inhibiteur de croissance des bactéries est constitué par au moins un antibiotique choisi parmi la gentamicine, le chloramphénicol, la pénicilline, la strep- tomycine, le cycloheximide, la néomycine, la tétracycline et l'oxytétracycline.10 18/ Milieu selon la revendication 17, caractérisé en ce que l'inhibiteur de croissance des bactéries est le chloramphénicol à raison de 0,5 g par litre de milieu, ou un mélange de gentamicine et de chloramphénicol, à raison de respectivement 0,1 g et 0,05 g par litre de milieu. 19/ Milieu selon la revendication 16, caractérisé en ce que l'inhibiteur de croissance des bactéries est choisi parmi la tellurite et un molybdate / Milieu selon la revendication 8, caractérisé en ce que le substrat chromogène ou fluorigène est choisi parmi la méthylumbelliféryl-N-acétyl-a-D-galactosamine, la -bromo-4-chloro-3indolyl-N-acétyl-1-D glucosamine et la -bromo-4-chloro-3-indolyl-Nacétyl-f-D-galactosamine, et sa concentration molaire dans le milieu est comprise entre et 600 AM. 21/ Milieu selon la revendication 20, caractérisé en ce que le substrat chromogène est la 5-bromo-4-chloro- 3-indolyl-N-acétyl-f-D-glucosamine et sa concentration mo- laire dans le milieu est de 200 p M. 22/ Milieu selon la revendication 8, caractérisé en ce que la base nutritive comprend une peptone en quan- tité comprise entre 0,01 et 40 g par litre de milieu, un extrait de levure en quantité comprise entre 0,01 et 40 g par litre de milieu, et une source de carbone choisie parmi le glucose, le glycérol, les acétates, les pyru- vates, les lactates, l'arginine, les amino-butyrates, la quantité de ladite source de carbone étant comprise entre O et 10 g par litre de milieu. 23/ Milieu selon la revendication 8, caractérisé en ce qu'il comprend un tampon pour ajuster le milieu à un p H compris entre 5 et 8,5. 24/ Dispositif de caractérisation microbiologique comprenant un conditionnement d'un milieu selon l'une quelconque des revendications 8 à 23, agencé pour per- mettre et l'inoculation d'un échantillon à tester sur le10 milieu, et son incubation.