FR 2676069 A1 19921106 FR 9105712 A 19910502 La présente invention concerne de nouvelles molécules d' ADN recombinants codant notamment pour une chaîne V,02 du récepteur pour l'antigène des cellules T, procédé de préparation, anticorps et médicaments les renfermant. Il serait intéressant de développer facilement un panel d'anticorps dirigé contre les différentes chaines de récepteurs pour l'antigène des cellules T (ci-après TCR) humaines, afin par exemple d'obtenir une discrimination et une numération précise entre les différentes sous-popula- tions de cellules T humaines. L'étude du déséquilibre entre les sous-populations permettrait le diagnostic différentiel des maladies provoquant une prolifération de cellules T Elle pourrait aussi être le témoin d'une réponse immunitaire spécifique contre un tissu particulier, pathogène tel qu'une tumeur par exemple On sait en particulier que des anticorps contre les antigènes CD 4 et CD 8 qui distinguent deux populations de cellules T, sont témoins d'une série de maladies immunitaires dont le SIDA. Ces anticorps devraient pouvoir être réalisés facilement et en grande quantité. On sait aussi que la toxine TSST 1 des staphylocoques active spécifiquement les lymphocytes T humains porteurs de chaînes Vf 2 Il serait donc intéressant de disposer d'anticorps anti VP 2 afin de permettre la détection et la numération in vivo et in vitro des cellules T porteuses de chaînes VP 2 Il serait aussi très intéressant de disposer d'un traitement curatif et/ou préventif du choc endotoxini- que, notamment dû aux staphylocoques. La demanderesse a découvert de nouveaux ADN recombinants permettant la préparation de nouveaux vecteurs d'expression eucaryote qui étaient de remarquables agents de transfec- tion de cellules eucaryotes, lesquelles cellules transfec- tées étaient d'excellents immunogènes conduisant à des anticorps, notamment monoclonaux, dirigés vers la chaine VP 2 des TCR humains. C'est pourquoi la présente demande à pour objet un ADN recombinant caractérisé en ce qu'il comprend une séquence5 nucléotidique chimère codant pour une chaîne du récepteur pour l'antigène des cellules T, ladite séquence étant constituée: d'une séquence provenant d'une mammifère et codant pour la totalité de la partie variable VP 2 et de préférence sa séquence de tête, diversité Df et de jonction Jo, et d'une séquence d'origine murine codant pour la partie complémentaire constante (C,2) absente de la séquence de mammifère ci-dessus, les deux séquences étant liées au niveau d'un site de restriction naturel ou créé artificiellement Dans ce qui suit, on appellera ce site "site sélectionné". Par ADN recombinant l'on entend une séquence de nucléotides artificiellement crée. Par chimère l'on entend que l'ADN recombinant comprend au moins deux séquences provenant d'origines différentes, par exemple 3, 4 ou 5 et de préférence 2 séquences de deux origines différentes. Ces séquences proviennent de deux espèces différentes et l'origine de l'une d'entre elles est murine; l'autre (ou25 les autres) proviendra notamment d'un primate et de préférence de l'homme. Le récepteur ap des cellules T, est une protéine hétérodi- mère composée de deux chaînes polypeptidiques reliées par un pont disulfure Le récepteur est exprimé à la surface des cellules T en association avec le complexe CD 3 Le locus correspondant à une chaîne particulière du TCR comprend une importante sélection de segments géniques distincts, incluant de nombreux segments V différents, plusieurs segments J et un ou deux segments constants C. Ces segments peuvent subir des réarrangements somatiques pendant la maturation thymique des cellules T produisant ainsi un gène unique, qui est transcrit et contenant des segments V, des segments J, un segment C et, le cas échéant, un segment D entre les segments V et J. Dans l'ADN recombinant chimère ci-dessus décrit, la totalité de la séquence codant pour la partie C 0/ peut provenir d'un murin et dans ce cas la séquence de l'autre mammifère ne comprend aucun nucléotide correspondant à la partie Cp De préférence, la séquence provenant d'un autre mammifère comprend une courte partie C 0/, de préférence inférieure à 100 nucléotides et notamment environ 60 nucléotides; de ce fait, seule une large partie CP de la chimère provient du murin (cette partie étant la partie complémentaire absente de la séquence de l'autre mammifère ci- dessus) et le reste provenant du mammifère Les deux séquences d'origines différentes sont liées au niveau d'un site de restriction sélectionné, en phase dans le cadre de lecture. La séquence de l'autre mammifère comprendra nécessairement en plus des parties V/32, Jfi et éventuellement DP et une partie de C/, la totalité de la séquence de tête. Le site de restriction sélectionné peut être naturellement présent sur chacune des deux séquences ou présent naturel- lement sur une seule des deux séquences, ledit site de restriction étant artificiellement créé sur l'autre séquence Le site de restriction cidessus doit être unique sur le segment C 0/2 murin et de préférence unique sur le segment de l'autre mammifère. Lorsque le site de restriction sélectionné est créé artificiellement, il peut être réalisé par exemple par délétion ou adjonction de nucléotides ou de préférence par mutation selon les méthodes connues en elles- mêmes, notamment par mutagénèse dirigée L'altération ainsi réalisée de l'ADN permet l'introduction d'un site de restriction normalement absent En particulier, un site35 Bgl II, présent naturellement au niveau de l'ADN codant pour la région C 0/1 et C 0/2 humaine, mais absent du gène codant pour la chaîne du TCR de la souris, peut être introduit dans le gêne CP 2 de la souris par mutagénèse dirigée, mais éventuellement mutagénèse par polymérisation en chaîne (PCR) La mutation permet de conserver le maximum d'homolo- gie avec la ou les séquences de départ Le site de restriction ainsi créé sera de préférence placé au niveau d'un site homologue au site au niveau duquel le site de restriction est naturellement présent chez le mammifère considéré, particulièrement l'homme, de manière à permettre la coupure, tant de la séquence murine que de la séquence de mammifère à l'aide de ladite enzyme, pour ensuite, par ligation en phase dans le cadre de lecture, créer la chimère désirée De ce qui précède, on comprend que si l'on choisit une enzyme de restriction donnée, un seul site de restriction correspondant doit au plus être présent sur le segment CP 2 murin et de préférence unique sur le segment de l'autre mammifère et de plus, au niveau de la séquence codant pour la partie CP 2, à un emplacement permettant la transcription en phase d'un ADN codant notamment la chaîne du TCR. Des ADN recombinants préférés selon l'invention sont caractérisés en ce que le site de restriction est naturel sur la séquence codant pour la partie C du mammifère. Des chimères tout particulièrement préférées selon l'inven- tion ont une partie mammifère caractérisée en ce que sa séquence provenant d'un mammifère est la séquence codant pour des segments VP 2, Dp, Jf humains, et une courte partie CP jusqu'au site unique Bgl II de Cp. La partie murine des chimères notables selon l'invention est caractérisée en ce que le site de restriction, notamment Bgl II est artificiellement créé sur la chaîne d'origine murine. L'ADN recombinant selon l'invention peut se présenter sous forme d'une séquence nucléotidique mono ou simple brin, limitée aux parties V, D, J et C, ci-dessus, ou comportant d'autres nucléotides, par exemple et notamment ceux constituant la séquence de tête. C'est ainsi que la séquence ci-dessus peut en particulier être incluse dans un vecteur d'expression, et dans ce cas de préférence dans un vecteur d'expression eucaryote. La séquence ci-dessus peut également être incluse en vue de sa réplication dans un autre vecteur, par exemple dans un plasmide tel que par exemple BLUESCRIPT Comme vecteur d'expression eucaryote on peut citer tout particulièrement p Hp Prl-Néo On peut citer également p Hp Prlgpt et générale- ment tout vecteur d'expression eucaryote possédant les signaux de régulation promoteur et un signal de polyadény- lation permettant l'expression de l'AD Nc Bien évidemment, le choix du couple vecteur-hâte est de la compétence de l'homme de l'art. Des ADN recombinants tout particulièrement préférés selon l'invention sont caractérisés en ce qu'ils se présentent sous forme d'un vecteur d'expression eucaryote, lequel étant de préférence dérivé de p Hp Prl-Néo. L'ADN recombinant ci-dessus, notamment sous forme de vecteur d'expression eucaryote, peut être utilisé pour transfecter dans un hôte approprié la séquence codant pour le TCR Des cellules hôtes ainsi transfectées, éventuelle- ment traitées, par exemple préalablement transfectées avec la chaîne CD 3 Zeta pour obtenir une meilleure expression,25 peuvent être utilisées comme immunogêne de préférence chez la souris. On peut ainsi classiquement préparer des anticorps, notamment monoclonaux, le criblage des hybridomes obtenus à partir de cellules de myélome et de cellules de rate du murin utilisé, pouvant se faire par la reconnaissance de la lignée transfectée, versus la non-reconnaissance de la lignée de départ. C'est pourquoi, la présente demande a également pour objet les anticorps, notamment monoclonaux, caractérisés en ce qu'ils sont préparés par mise en oeuvre d'un ADN recom- binant ci- dessus décrit. La présente invention a aussi pour objet les anticorps anti chaîne Vf 32 du récepteur de cellules T. Les anticorps ci-dessus présentent de remarquables propriétés car ils sont parfaitement caractérisés vis à vis des chaînes f 2 de TCR, et particulièrement vis à vis des régions variables VP 2 des chaînes de TCR, mais aussi vis-à- vis des régions Dfl et Jfe dans leur réarrangement typique. Ces anticorps sont donc capables de distinguer les éléments Vf 32 de la population des cellules T humaines et ainsi spécifiquement reconnaître, par exemple une maladie ou une déficience donnée. Dans les anticorps ci-dessus décrits on préfère les anticorps anti partie variable, notamment Vp 2, qui présen- tent de remarquables propriétés à la fois pour le diagno- stic et la thérapie, curative ou préventive, chez l'homme ou l'animal, des maladies auto-immunes et des maladies septiques, notamment celles dues aux staphylocoques, particulièrement ceux à toxine TSSTI. Les anticorps selon l'invention peuvent à cette fin être utilisés directement ou, si désiré, couplés selon les méthodes connues en ellesmêmes, par exemple à l'aide d'un agent hétérobifonctionnel comme le SMCC, à une toxine ou un cytotoxique auxquels sont sensibles les cellules T, réduisant ainsi notamment les réactions du choc septique.25 C'est pourquoi la présente invention a aussi pour objet les compositions pharmaceutiques caractérisées en ce qu'elles renferment au moins un des anticorps tels que définis ci-dessus. Les compositions pharmaceutiques peuvent se présenter notamment sous les formes parentérales, notamment injec- tables, couramment utilisées en médecine humaine, par exemple pour la voie sous cutanée, intramusculaire ou intraveineuse. Les anticorps ci- dessus peuvent également être utilisés pour soigner les maladies immunes ou provoquant une prolifération des cellules T porteuses de chaînes VP 2, ainsi que les leucémies à cellules T porteuses de chaîne VP 2 par injection des anticorps ci-dessus. Les anticorps peuvent aussi être couplés à des produits radioactifs, selon des méthodes connues en elles-mêmes (Chelatants de métaux comme l'Indium, substitution d'Iode, etc). Les anticorps selon l'invention trouvent leur emploi notamment dans le traitement du choc septique dû aux staphylocoques et des maladies auto-immunes telles que l'arthrite rhumatoïde, le diabète, la maladie de Sjôgren ou le lupus erythémateux. La dose usuelle, variable selon le produit utilisé, le sujet traité et l'affection en cause, peut être par exemple de 0,001 à 25 mg par jour et par kg de poids corporel chez l'homme d'un anticorps monoclonal selon l'invention couplé à la ricine A à titre de cytotoxique, et de préférence de 0,05 à 0,2 mg/kg/jour. Etant donné que des anticorps, notamment monoclonaux, ci- dessus trouvent aussi leur utilisation à des fins dia- gnostiques, pour la détection, l'identification ou le dosage des TCR ou de parties de TCR à chaînes Vp 2, la présente invention a également pour objet l'utilisation desdits anticorps ainsi que les compositions diagnostiques destinées à la détection, l'identification ou le dosage des antigènes ci-dessus. Les anticorps ci-dessus trouvent également leur utilisation dans la purification des produits renfermant la partie antigénique correspondante à des chaînes de TCR. Les anticorps ci-dessus peuvent être utilisés à fins diagnostiques en cytofluorimétrie et dans ce but peuvent être couplés, par des méthodes connues en elles-mêmes, à des marqueurs fluorescents tels que l'isothiocyanate de fluorescéine (FITC) ou la phycoérythrine, technique plus avantageuse que l'étude par PCR. On peut, par exemple, détecter la présence d'une population de cellules T portant la chaîne VP 2 en détectant le segment variable V 132 au niveau des tissus souffrant par exemple d'une infection, d'un cancer ou d'une maladie auto-immune, et en détectant sa présence selon des méthodes connues en elles-mêmes. 5 On peut également marquer les anticorps ci-dessus décrits, à l'aide d'enzymes On peut citer par exemple, la glucose 6 phosphate deshydrogénase, l'acétylcholinéstérase, la glucoseoxydase ou la bétagalactosidase. Les anticorps totaux ci-dessus peuvent également être couplés à un radiomarqueur tel que l'indium 111, pour utilisation dans l'imagerie des populations de cellules T comportant la région VP 2, au niveau des parties malades du corps humain. La présente invention a également pour objet un procédé de15 préparation des ADN recombinants ci-dessus décrits, caractérisé en ce qu'on ligue: une séquence nucléotidique constituée d'au moins la totalité de la séquence codant pour les parties VP 2, Dp et Jp d'une chaîne du récepteur de l'antigène des cellules T d'un mammifère jusqu'au niveau d'un site de restriction, avec une séquence nucléotidique d'origine murine comprenant l'homologue de la partie complémentaire de la partie C 012 absente de la séquence de chaîne de mammifère ci-dessus, à partir du même site de restriction que ci-dessus, ledit site de restriction étant artificiellement créé sur l'une, l'autre ou les deux séquences, pour obtenir la chimère attendue, puis si désiré, ligue une séquence comprenant la totalité des parties VP 2, Dp, Jp et CP ci- dessus avec un vecteur d'expression eucaryote, puis si désiré, isole la nouvelle chimère obtenue. Dans des conditions préférentielles, le procédé décrit ci- dessus, est caractérisé en ce qu'en outre l'on transfecte une cellule eucaryote comportant tous les éléments35 permettant la synthèse du récepteur de l'antigène des cellules T, à l'exception de la chaîne homologue à la chaîne codée par la séquence chimère ci-dessus, utilise comme antigène les cellules ainsi transfectées chez la souche murine correspondante, fusionne des cellules de rate prélevées sur les murins auxquels a été administré l'antigène à des cellules de myélome pour préparer, selon les méthodes connues en elles-mêmes, des anticorps dirigés contre le produit de la séquence variable du mammifère. Le procédé ci-dessus décrit peut notamment être réalisé comme suit: La séquence nucléotidique codant pour les parties VP 2, Dfl et 3 p d'une chaîne du TCR de mammifère et notamment un ADN double brin linéaire comportant la séquence codant pour les parties V 132, J 31, Df 32 et éventuellement C 01 en partie, d'une chaîne de TCR de mammifère, de même que son gène de tête, est obtenue par coupure à l'aide de deux enzymes de restriction différentes: l'enzyme correspondante au site de restriction sélectionné au niveau de la partie Cp, par exemple Bgl II et une autre enzyme clivant la séquence du côté opposé, après le gène de tête, par exemple Eco RI à partir d'une séquence d'ADN double brin linéaire comportant ladite séquence L'ADN ainsi obtenu est ligué à un vecteur traité par les mêmes deux enzymes de restriction, ce vecteur comportant la séquence codant pour le segment CP 2 de la chaîne de TCR murin, et les mêmes sites de restric- tion que ci-dessus, par exemple Bgl II et Eco RI On obtient ainsi le gène chimère attendu Celui-ci n'est toutefois pas exprimable tel quel C'est pourquoi d'une part le vecteur comportant la chimère est traité par deux enzymes de restriction coupant de part et d'autre du gène chimère codant pour le TCR chimère; d'autre part, on traite par les mêmes deux enzymes de restriction un vecteur d'expression eucaryote Par ligation du gène obtenu ci- dessus codant pour le TCR chimère avec ledit vecteur d'expression eucaryote, on obtient un nouveau vecteur chimère d'expression eucaryote Ledit vecteur d'expression eucaryote doit comporter les éléments nécessaires pour assurer la transcription correcte du gène chimère codant pour le TCR A cet égard, on peut citer par exemple comme vecteur p Hp Prl-Néo, qui peut être scindé par Bam HI et Sal I, et comprend notamment le gène de résistance à la néomycine utilisé comme un marqueur de sélection, un gène promoteur eucaryote SV 40, ainsi qu'un signal polyadenyla- tion à proximité du site Bam HI Le nouveau vecteur chimère obtenu est avantageusement utilisé pour transfecter des cellules eucaryotes, de préférence des cellules T de10 souris, notamment des lignées cellulaires comportant tous les éléments pour l'expression du TCR à l'exception du gène apporté par le vecteur chimère On peut citer par exemple, la lignée de souris DOI S 19 ou celle du nom de DS 23 27 4. De telles cellules permettent une sélection facile des cellules exprimant la chimère qui seules sont capables d'exprimer le TCR à la surface de la cellule. Bien entendu, chaque ligation (ci-dessus et ci-après) est suivie de la transfection d'un hôte approprié et la sélection des cellules contenant la chimère désirée. Les cellules transfectées peuvent être administrées à titre d'antigène de préférence à des souris, par exemple par injection intrapéritonéale On peut ainsi prélever des cellules de rate des murins ainsi traitées, cellules capables de secréter les anticorps recherchés pour les fusionner à des cellules immortelles, telles que le myélome Les hybridomes sélectionnés produisant les anticorps recherchés permettent ainsi la préparation d'anticorps notamment monoclonaux dirigés contre la chaîne VP 2 du TCR du mammifère choisi, notamment l'homme.30 L'ADN double brin codant pour la chaîne du récepteur de l'antigène des cellules T de mammifère peut par exemple être préparé comme suit: L'étude de la séquence des gènes codant pour la chaîne VP 2 permet de sélectionner un site de restriction déjà présent sur une partie constante CP, soit alors amène à créer sur ladite séquence un tel site et permet la synthèse de il nouveaux oligonucléotides utilisables pour synthétiser l'ADN complémentaire à partir de 1 'ARN messager. On purifie à partir de lymphocytes T de mammifère (par exemple humains) l'AR Nm codant pour une chaîne TCR donnée. 5 On synthétise l'ADN complémentaire à l'aide d'un oligonu- cléotide, par exemple OHCP, spécifique d'un gène de mammifère donné et contenant le cas échéant le site unique de restriction sélectionné à l'aide d'une transcriptase reverse, synthétise le deuxième brin à partir d'un oligonucléotide spécifique de la chaîne, par exemple OL 2, à l'aide d'une polymérase, et amplifie le gène obtenu par réactions de polymérisation en chaîne (PCR) en effectuant par exemple une trentaine de cycles. On obtient ainsi une grande quantité d'ADN double brin linéaire codant On peut alors couper par les enzymes appropriées, par exemple Bgl II et Eco RI, les fragments produits par PCR, de manière à éliminer tout ou partie de la séquence codant pour la partie C O f, à partir du site sélectionné et de manière à conserver les séquences V,32, Df et Jfi, ainsi que la totalité de la séquence de tête. La séquence nucléotidique d'origine murine comprenant la partie complémentaire de la partie Cf 2 absente de la séquence de chaîne de mammifère ci-dessus, dans le cas o celle-ci se trouve sous la forme d'un vecteur comportant ladite séquence, peut être préparée comme suit: On isole un AD Nc complet contenant toute la partie codante de la chaîne p du TCR choisi à partir d'une banque d'AD Nc provenant d'une lignée cellulaire murine, par exemple KB 5 C 20, à l'aide d'une sonde connue; on clone cet AD Nc dans un plasmide approprié, par exemple PUC 19, puis on transfecte le plasmide résultant appelé dans ce cas p U Cm CP 2 dans un hôte, par exemple la souche bactérienne DHI de E. coli. On pourra ensuite cloner le fragment intéressant d'ADN murin dans un phage Pour cela, on peut digérer p U Cm CP 2 par des enzymes de restriction appropriées, par exemple Eco RI et Hind III, de manière à obtenir trois fragments dans le cas ci-dessus On purifie le fragment contenant toute la séquence codante de la chaîne CP 2 murine désirée (dans le cas des enzymes précitées, Eco RI coupe dans la partie V de5 la séquence) On obtient ainsi une séquence codant pour une partie de la partie V, ainsi que la totalité des parties Dp, Jfl et Cp On ligue alors ladite séquence avec un phage approprié, par exemple M 13 mpl 8, ouvert avec les mêmes enzymes de restriction Dans ce cas, l'ADN phagique existe10 sous deux formes: simple brin pour le phage encapsidé et double brin pour sa forme réplicative On hybride un oligonucléotide complémentaire de la région à muter, sauf pour la mutation désirée, avec la forme simple brin du phage Le brin complémentaire est synthétisé in vitro par une ADN polymérase utilisant le même oligonucléotide pour initier la réaction On ferme le nouveau brin sur lui-même à l'aide d'une ligase Le double brin complètement homologue est alors transfecté par exemple dans E coli, notamment JM 101 Les colonies mutantes sont sélectionnées, par exemple par hybridation avec un oligonucléotide radio- marqué. Pour des détails sur la mutagénèse dirigée, se référer à MANIATIS et al ( Molecular Cloning; Elaboratory Manual, 1989, Cold Spring Harbour Laboratory Press). On purifie l'ADN double brin d'un sous-clone comportant la mutation désirée et dont le reste de la séquence codant pour la partie C 02 est resté intègre, et le coupe par des enzymes appropriées, par exemple Eco RI et Eco RV pour isoler le fragment renfermant le gène désiré On ligue alors ce30 fragment dans un plasmide adapté, qu'il soit possible de séquencer et comportant des sites de restriction permettant d'extraire facilement la séquence insérée pour l'introduire dans un vecteur d'expression et préalablement ouvert par des enzymes compatibles présentes dans son site de liaisons multiples, par exemple par Eco RI et Sma I Comme à l'ac- coutumée,le produit de la ligation peut alors être transfecté dans un hôte approprié, par exemple une souche bactérienne E coli DH 1 En analysant, par exemple, par coupure avec deux couples d'enzymes tels que Eco RI-X Ba I et Eco RI-Bgl II, on peut sélectionner un clone fournissant en électrophorèse les bandes attendues. Le plasmide purifié comprend la séquence nucléotidique d'origine murine attendue complémentaire de la partie C absente de la séquence de chaîne de mammifère ci-dessus à partir du même site de restriction de manière à permettre la ligation en phase dans le cadre lecture. Les différentes techniques utilisées ci-dessus sont bien connues de l'homme de l'art et ont fait l'objet de nombreuses publications faisant partie de l'état de la technique. Les exemples qui suivent illustrent la présente invention sans toutefois la limiter. La Figure 1 représente les comparaisons des AD Nc de chaînes C 02 de souris et Cp 1 humaines de TCR. La Figure 2 représente un oligonucléotide complémentaire de l'AD Nc codant pour la chaîne C 0/2 du TCR murin sauf au niveau des deux bases nécessaires pour introduire le site Bgl II. La figure 3 représente un oligonucléotide spécifique des chaînes VP 2 de TCR humain. La figure 4 représente les profils de cytométrie de flux obtenus avec un anticorps anti CD 3 de souris de transfec- tants de DOI 519 (profils noirs) obtenus avec deux ADN chimériques de l'invention contenant un VP 2 humain, mais de régions D et J différentes (histogramme de gauche FRN 2 7 6, histogramme de droite FRN 2 11 4) par rapport à la lignée de départ DOI 519 (profils blancs). La figure 5 montre l'analyse de deux transfectants V 132 (profils noirs): en haut FRN 2 7 6; en bas FRN 2 11 2 par le surnageant de E 25 G 8 (histogrammes de droite) et le monoclonal anti CD 3 murin (histogrammes de gauche) par rapport à la lignée de départ DOI 519 (profils blancs). La figure 6 montre l'analyse de deux transfectants V 62 (profils noirs) à gauche FRN 2 7 6; à droite FRN 2 11 2 par le surnageant E 22 E 7 2 (histogrammes du bas) et le monoclo- nal anti CD 3 murin (histogrammes du haut) par rapport à la lignée de départ DOI S 19 (profils blancs). La figure 7 représente le marquage en double couleur (anti CD 3 humain d'Immunotech marqué à la phicoérythrine: E 22 E 7 2 révélé par GAMIG-FITC) des lymphocytes de sang périphérique. La figure 8 montre l'expansion spécifique du compartiment Vf 2 positif après stimulation de lymphocytes T périphéri- ques par la TSST (histogrammes de droite) par rapport à la PHA (histogrammes de gauche). PARTIE EXPERIMENTALE EXEMPLE 1 On tire parti de l'existence d'un site Bgl II sur le gène codant pour les chaines Pl et P 2 du TCR humain dans leur région C, à proximité de la région J, et de celle d'un site identique à l'exception de deux bases dans la partie homologue de la souris (cf Figure 1). A) Préparation de la séquence nucléotidique codant pour la chaîne C 32 murine mutée contenant un site Bgl II dans la séquence homologue humaine correspondant au site Bgl II présent sur les chaînes C 1 i et C 02 humaines sous forme d'un vecteur comportant ladite séquence. 1 Chaîne C 32 murine La séquence de la chaîne CP 2 murine est décrite en détail dans Malissen M et al ( 1984), Cell 37: 1101-1110 Un AD Nc complet contenant toute la partie codante de Ce 2 a été obtenu à partir d'une banque d'AD Nc de la lignée cel- lulaire murine KB 5 C 20 (décrite dans Albert et al ( 1982), Immunogenetics 16: 533-549) Cet AD Nc a été cloné dans le plasmide p UC 19 Le plasmide résultant p U Cm CP 2 a été transfecté dans la souche bactérienne DH 1 La bactérie recombinante a été déposée auprès de la Collection Nationale de Cultures de Microorganismes (CNCM) à Paris le 12 Février 1991 sous le n 1-1032 et disponible sans restriction. 2 Mutagénèse dirigée de l'AD Nc codant la chaîne C 02 murine. Principe: La procédure de mutagénèse dirigée choisie utilise le phage filamenteux M 13 mp 18 BIORAD Ce bac- tériophage est décrit précisément dans Norrander et al ( 1983) Gene 26: 101-106 Il est disponible commercialement chez plusieurs fabricants, notamment BIORAD Le principe de la manipulation est le suivant: on clone le fragment d'ADN à modifier dans le site de liaisons multiples du phage Ce vecteur phagique existe sous deux formes au cours de son cycle de vie La forme réplicative, dans la bactérie, est essentiellement double brin, la forme encapsidée est simple brin L'ADN des deux formes est purifiable Un oligonucléotide complémentaire de la région à muter, sauf pour la mutation désirée, est hybridé avec la forme simple brin du phage Le brin complémentaire est ensuite synthétisé in vitro par une ADN polymérase, utilisant l'oligonucléotide comportant la mutation souhaitée pour initier la réaction Une ligase est utilisée pour fermer le nouveau brin sur lui même, à l'extrémité 5 ' de l'oligonucléotide Le double brin complètement homologue, sauf pour la mutation voulue, est15 transfecté dans E Coli résultant en deux classes de colonies mutantes et non mutantes Les colonies mutantes sont ensuite sélectionnées. Pour introduire le site Bgl II dans l'AD Nc de la chaîne C 02 de souris, on clone cet AD Nc dans le phage M 13 mp 18 On utilise l'oligonucléotide de la figure 2 pour faire la mutagénèse Cet oligonucléotide est complémentaire de l'AD Nc codant pour le gène C 02 murin sauf pour les deux bases nécessaires pour introduire le site Bgl II Ces deux bases sont soulignées sur la figure 2. Les procédures de clonage, transfection, étalement, analyses des colonies, purification des formes simples et doubles brins pour le phage M 13 mp 18 sont décrites précisé- ment par Maniatis et al (déjà cité) L'hôte bactérien utilisé est la souche JM 101 de E coli. Expérimentation: a) Clonage de CB 2 murin dans M 13 mp 18 On digère p U Cm CP 2 par Eco RI et Hind III Cette digestion fournit 3 fragments distinguables par électrophorèse d'Agarose On purifie le fragment intermédiaire de 1000 paires de bases (pb) environ contenant toute la séquence codante de C,32 murine Ce fragment est ligué dans 1 'ADN double brin du phage M 13 mp 18 préalablement ouvert par Eco RI et Hind III, sites présents dans le site de liaisons multiples de ce vecteur On transfecte alors des colonies de E coli JM 101. De l'analyse de colonies isolées, on retient le clone M 13 EHC,67 pour la suite, on purifie la forme simple brin de M 13 EHCP 7. b) Mutagénèse de C 02 de souris La procédure utilisée est précisément décrite dans Maniatis et al On doit cependant préciser les points suivants: L'oligonucléotide de la figure 2 est synthétisé sur l'appareil Applied Biosystems 380 B, puis purifié sur colonne sep Pak C 18. On hybride 0 2 gg du simple brin de M 13 EHC,7 avec 3 pmoles de Oh C, kinase Aucun autre oligonucléotide n'est utilisé. La température initiale de la réaction d'hybridation est C. La polymérase utilisée est la T 4 ADN polymérase ( 1 unité par réaction) pour compléter en double brin. La transfection est effectuée dans la souche E coli JM 101. La sélection des colonies mutantes se fait par hybridation avec l'oligonucléotide de la figure 2 radiomarqué La température d'hybridation est 42 C Deux lavages de 10 mn à 4 C ont été suffisants pour discriminer les colonies mutantes par autoradiographie. L'ADN d'un sous-clone appelé mu C,6215 d'une colonie repérée par hybridation radioactive a été digérée par Bgl II, puis séquencé par la méthode de Sanger pour confirmation de la mutation désirée et intégrité du reste de la séquence C 02 murine L'ADN double brin de ce sous-clone est purifié et utilisé dans la suite des expériences. 3 Sous-clonaqe de la chaîne mutée dans p Bluescript SK+ p Bluescript SK+ est un plasmide entièrement caractérisé et disponible commercialement chez la société STRATAGENE. L'ADN double brin de mu CP 215 est coupé par Eco RI et Eco RV et le plus petit des deux fragments purifié sur gel 5 d'Agarose Ce fragment est ligué dans p Bluescript préalablement ouvert par Eco RI et Sma I, deux sites présents dans le site de liaisons multiples de ce plasmide, et transfecté dans la souche d'E coli DH 1 servant d'hôte à la chimère Des colonies isolées sont analysées par coupure10 avec deux couples d'enzymes Eco RI- Xba I et Eco RI-Bgl II Un clone, appelé p B Smu Cf 3215, fournit les bandes attendues (respectivement 1 2 kb et 0 5 kb environ) en électropho- rèse Ce plasmide est purifié et utilisé dans la suite des expériences. B) Obtention d'AD Nc humain codant pour la chaîne du TCR La technique de polymérisation en chaîne (PCR) est choisie pour les raisons citées cidessous: beaucoup de gènes codant pour la chaîne du TCR incluant différentes régions V sont publiés, dont le segment Vp 2, rapidité d'obtention d'AD Nc par cette technique, sûreté d'avoir des gènes complets en 5 t, comprenant le codon ATG d'initiation, facilité d'intégrer des sites de restriction en 5 ' du gène pour faciliter le clonage. Dans l'exemple préféré, et pour montrer la polyvalence permise par l'invention, plusieurs AD Nc humains contenant différents segments 2 ont été isolés et couplés à la chaîne mutée CP 2 de souris. Obtention d'AR Nm de cellules T humaines On utilise un mélange de lymphocytes périphériques d'individus caucasiens obtenus auprès du Centre de Transfusion Sanguine de Marseille Après Ficoll, les lymphocytes sont ajustés à 1 million de cellules par millilitre en milieu RPMI, 10 % sérum de veau foetal 20 m M glutamine, lm M pyruvate de sodium, 500 UI de pénicilline, et stimulés à la phytohémagglutinine A ( 10 gg/millilitre de concentration finale) pendant 3 jours 200 millions de5 cellules sont utilisées pour purifier leur RNA total. Le protocole utilisé est décrit exactement dans Maniatis et al Environ 50 Mg de RNA sont obtenus par cette méthode. 4 Réactions de PCR Un oligonucléotide Oh Cp spécifique des deux chaînes humaines CP 2 et C 1 et contenant le site unique Bgl II présent sur les segments géniques Ci 1 et C 02 est syn- thétisé de manière analogue à Om Cp. Un oligonucléotide OL 2 spécifique de la séquence de tête de Vf 2 1, VP 2 2 et VP 2 3 d'après la définition des sous-15 familles Vp de Toyonaga et al ( 1987), Eur J Immunol; 17: 375-383 est également synthétisé. Cet oligonucléotide est présenté en figure 3. Une réaction de PCR a été effectuée avec le couple d'oligonucléotides Oh C 6-OL 2. La procédure expérimentale est décrite en détail dans Kawasaki et al ( 1989) PCR Technology, Principles and Applications for ADN Amplification; Stockton Press, Henry. A Ehrlich Edition pp 89-et suivantes Les précisions suivantes sont utiles: La quantité d'ARN de départ est de 1 Mg pour la synthèse du brin complémentaire d'AD Nc. Pour la réaction de PCR proprement dite, 10 pmoles d'oligo- nucléotides OL 2 et Oh C 6, sont utilisés. Le cycle de PCR est: 1 mn de dénaturation à 95 C, 1 mn d'hybridation à 52 C, 1 mn d'extension à 72 C, et 30 cycles sont effectués sur le ADN Thermalcycler Version 2 2 de Perkin Elmer. Le produit de la réaction est déposé sur gel d'Agarose 1.4 % pour électrophorèse Après coloration au bromure d'éthidium, une bande distincte d'environ 500 pb est découpée et l'ADN électroélué On obtient environ 30 ng d' ADN.5 1 ng de cet ADN est amplifié une seconde fois par PCR On purifie de la même manière que précédemment la bande spécifique et 300 ng d'ADN sont obtenus. C) Construction des gènes chimériques Principe:10 On construit les gènes chimériques en clonant le fragment produit de PCR, coupé par Eco RI et Bgl II dans le grand fragment obtenu de la digestion de p B Smu CP 215. On coupe p B Smu Cp 215 par Eco RI et Bgl II et le grand fragment appelé Fp B Smu C$ 215 est purifié sur gel d'Agarose et15 électroélué. ng du produit d'amplification obtenu avec les oligonu- cléotides OL 2, Oh C 3 sont coupés par Eco RI et Bgl II. On ligue ces deux fragments et le produit de la ligation est transfecté dans DH 1. L'analyse de colonies isolées BS Gf 2 1, BS Gp 2 11 par coupure Bgl II-Eco RI fournit le fragment attendu d'environ 500 pb Tous les sites sont séquencés entre le site Eco RI et le site Bgl II. Les clones BSGP 2 7 et BSGP 2 11 sont retenus pour la suite des expériences Ces deux clones possèdent la séquence d'acides aminés Vp 2 3 telle que décrite dans Toyonaga et al (déjà cité) Ils possèdent par contre des régions D et J différentes. EXEMPLE 2: Expression des qènes chimériques Principe: La chaîne du TCR est une protéine membranaire qui est exprimée à la surface si, et seulement si, les autres chaînes du complexe du TCR qui lui sont associées (ie chaîne a et complexe CD 3) sont présentes. Pour obtenir l'expression des gènes chimériques précédem- ment construits, on utilise la lignée cellulaire murine DOI 519 développée par Letourneur F et al ( 1989) Eur J5 Immunol 19: 2269-2274 DOI 519 est un mutant d'un hybridome T de souris qui possède tous les composants du TCR sauf la chaîne p Cette lignée n'exprime donc pas de TCR à sa surface La transfection d'une chaîne P exogène induit l'expression d'un récepteur fonctionnel dans les10 cellules tranfectées Les deux gènes chimériques de l'invention contenus dans BSGP 2 7 et BSGP 2 11 ont été transfectés dans cette cellule suivant les protocoles décrits ci-après: 1) Sous-clonage des gènes chimériques dans un vecteur d'expression eucaryote Principe: Le vecteur d'expression choisi est le plasmide p Hp Prl-néo. Il est décrit précisément dans Gunning P et al ( 1987) Proc Natl Acad Sci USA; 84: 4831-4835 Le gène à exprimer est -sous-cloné en aval du promoteur p actine et en amont d'un site de polyadénylation présents sur ce plasmide Ces deux signaux assurent la synthèse d'un RNA messager fonctionnel du gène inséré Par ailleurs, ce plasmide possède le gène de résistance néomycine qui confère la résistance à une série d'antibiotiques, dans l'exemple préféré l'antibioti- que G 418, aux cellules ayant intégré le plasmide. De plus, une origine de réplication et un gène de résis- tance à l'ampicilline sont également présents permettant la sélection et la réplication dans E coli. La souche de E coli utilisée est ici MC 1061. Expérimentation: On coupe le plasmide BSGP 2 7 par les enzymes Bam HI et Sal I et le plus petit des deux fragments ( 1 2 kb) est purifié sur gel d'Agarose Ce fragment comportant la totalité de la séquence codante du gène chimérique est ligué au plasmide p H 3 Prl-néo préalablement ouvert par Bam HI et Sal I Le produit de ligation est transfecté dans E coli MC 1061 et de l'analyse de colonies isolées par la coupure Bam HI et Sal I, on retient le clone appelé néo GP 2 7 qui fournit le fragment de 1 2 kb attendu sur l'électrophorèse d'Agarose. De la même façon, le gène chimérique contenu dans p BSGP 2 11 est souscloné dans p H 3 Prl-néo et le clone appelé néo Gp 2 11 est conservé Néo G 62 7 a été déposé à la CNCM le 30 avril 1991 sous le n I 1090. 2 Transfection des gènes chimériques dans DOI S 19 La procédure de transfection choisie est l'électroporation. Les plasmides néo Gp 2 7 et néo G 62 11 sont purifiés sur gradient de chlorure de Césium tel que décrit dans Maniatis et al (déjà cité), et repris dans du TE (Tris 10 m M, EDTA 1 m M p HS), à raison de 1 mg/ml Les cellules DOI 519 sont cultivées en milieu complet (Dubelco modified Eagle Medium, (DMEM) 10 % de serum veau foetal (SVF), 2 m M glutamine, 1 m M sodium pyruvate, 500 IU penicilline, 500 IG streptomy- cine, 50 LM p mercaptoéthanol) 10 millions de cellules DOI S 19 en phase exponentielle de croissance sont lavées 3 fois en tampon phosphate salé (PBS: 0,14 Na Cl, 10 m M phosphate de sodium p H 7,2) Les cellules sont reprises dans 500 M 1 de PBS dans une cuve d'électroporation (Biorad), 0,4 cm entre les électrodes On ajoute 10 p 1 de plasmide à transfecter ( 10 Mg) et on incube 10 mn à température ambiante Le choc électrique est effectué conformément aux instructions du constructeur sur un appareil Biorad (Gene Pulser Apparatus) suivant les conditions suivantes: voltage à 250 V, capacité à 250 micro Farad Après le choc, les cellules sont incubées 10 mn à température ambiante puis reprise en milieu complet. Les cellules sont ensuite incubées 24 h à 37 C en atmosphère humide à 7 % CO 2 On distribue alors les cellules35 à raison de 5 104 cellules par ml en plaques 24 puits (Falcon) en milieu complet supplémenté à 3 mg/ml d'an- tibiotiques G 418 (GIBCO). Après 15 jours les colonies résistantes à l'antibiotique sont analysées en cytométrie de flux Avec le plasmide néo GP 2 7 on obtient les clones résistants FRN 2 7 1 FRN 2 7 24 Avec le plasmide néo G 82 11 on obtient les clones FRN 2 11 1 FRN 2 11 24 Ces clones sont analysés en cytométrie de flux avec un anticorps anti CD 3 murin (anticorps 2 Cll décrit dans Leo et ( 1987) Proc Natl Acad Sci USA 84: 1374). Pour chaque clone, 105 cellules dans une solution de DMEM 4 % SVF, 0,02 % azide de sodium (milieu de FACS) et 15 pg/ml d'anticorps anti CD 3 murin sont incubés pendant 45 mn à 4 C sous agitation Après trois lavages en milieu de FACS, on incube les cellules avec un anticorps polyclonal de chèvre anti-immunoglobuline de rat marqué au FITC (Réactif Immunotech à 15 gg/ml en milieu de FACS pendant 30 mn à 4 C sous agitation Après 3 lavages en milieu de FACS, les cellules sont fixées en PBS à 1 % formaldéhyde et analysées sur l'appareil de cytométrie de flux Facscan de Becton Dickinson 105 cellules DOI S 19 sont traitées de la même façon et servent de contrôle négatif. Les profils obtenus pour les deux meilleurs expresseurs de chacune des transfections (FRN 2 7 6 pour la première et FRN 2 11 2 pour la seconde) sont montrés en figure 4 (profils noirs) par rapport au profil de DOI S 19 (profil blanc) La lignée cellulaire FRN 2 7 6 a été retenue pour l'immunisation. 3 Immunisation des souris Balb/c Trois souris Balb/c sont immunisées avec FRN 2 7 6 Le protocle d'immunisation est le suivant: Jour O: 10 millions de cellules FRN 2 7 6 injectées par voie intrapéritonéale. Jour 20: 10 millions de cellules FRN 2 7 6 injectées par voie intrapéritonéale. Jour 40: 5 millions de cellules injectées par voie intraveineuse. * Jour 43: Prélèvement des rates pour fusion. 4 Fusion par hybridation lymphocytaire On fusionne les splénocytes de deux souris immunisées avec le myélome X 63 Ag 8 653 suivant le protocole décrit par Kohler et Milstein ( 1975) Nature 256; 495-497. L'analyse des surnageants des clones résultant de la fusion se fait par cytométrie de flux sur FRN 2 7 6 versus DOI S 19. 100 Ml de surnageant de chaque clone sont prélevés 50 pl sont incubés avec 50 pl de milieu de FACS contenant 105 cellules FRN 2 7 6 Les 50 1 restant sont incubés avec 50 pl de milieu de FACS mais contenant 105 cellules DOI 519. Le protocole est le même par ailleurs que celui utilisé pour l'analyse des transfectants. Des 300 surnageants testés, deux surnageants marquent FRN 2 7 6 et ne marquent pas DOI 519 Les deux monoclonaux correspondant E 25 G 8 et E 22 E 7 sont analysés de manière plus poussée. 5 Analyse des deux monoclonaux E 25 G 8 et E 22 E 7 a Cytométrie de flux sur les transfectants FRN 2 7 6 et FRN 2 11 2 La figure 5 montre les profils obtenus sur les deux transfectants FRN 2 7 6 et FRN 2 11 2 et DOI S 19 avec les surnageants E 25 G 8 et E 22 E 7 suivant le protocle décrit pour le screening des anticorps comparés aux profils obtenus avec l'anti CD 3 murin On constate que E 22 E 7 marque de façon comparable par rapport à l'anti CD 3 les trois lignées FRN 2 7 6, FRN 2 11 2 et DOI S 19 Par contre, E 25 G 8 marque beaucoup moins bien FRN 2 11 2 par rapport à l'anti CD 3. b Cytométrie de flux sur des transfectants portant d'autres VB humains De la même manière que pour les transfectants FRN 2 7 6 et FRN 2 11 2, on a obtenu des transfectants FRN 8 1 2 exprimant un gène chimère portant VP 5 1; FRN 17 4 2 exprimant un gène chimère portant V/17 1 en transfectant les gènes chimères correspondant dans DOI S 19 Les deux surnageants E 22 E 7 et E 25 G 8 ne marquent pas ces différentes lignées. c Cytométrie de flux sur sang total Si les anticorps reconnaissent bien la chaîne Vp 2, une sous population de lymphocytes T périphériques exprimant VP 2 doit être marquée spécifiquement par ces anticorps Des doubles marquages ont été effectués sur sang périphérique avec les anticorps E 22 E 7 et E 25 G 8 révélés par un polyclonal marqué au FITC, et l'anticorps SPVT 3 b spécifique du CD 3 humain (réactif Immunotech) marqué à la phicoérythrine. Expérimentation Le sang est prélevé sur EDTA ( 10 m M final) pour éviter la15 coagulation 100 1 pl de sang sont centrifugés et le culot cellulaire est repris par 200 pl de surnageant E 22 E 7 et incubé 30 mn à température ambiante Deux lavages sont effectués en milieu de FACS et le culot cellulaire est repris par 100 gl de milieu de FACS contenant 15 pg/ml d'un anticorps polyclonal de chèvre anti-immunoglobuline de souris (réactif Immunotech) Deux lavages sont effectués en milieu de FACS Le culot cellulaire est repris en milieu de FACS contenant 15 gg/ml d'un anticorps de souris distinct (réactif de contrôle Ig G 2 a d'Immunotech) On incube 2 mn à température ambiante On effectue deux lavages supplémen- taires en milieu de FACS et le culot cellulaire est repris dans 200 pl de milieu de FACS contenant 10 gg/ml de l'an- ticorps SPVT 3 b marqué à la phycoérythrine (réactif Immunotech) On incube 15 mn à température ambiante On effectue deux lavages en milieu de FACS On ajoute 1 ml de tampon de lyse préchauffé à 25 C (dilution 1/25 du réactif de lyse d'Immunotech) et l'on mélange vivement aussitôt. Après la lyse, on ajoute 250,l de fixateur (réactif Immunotech) On centrifuge et on reprend le culot dans 0,5 ml de PBS à 0,5 % de formaldéhyde Les cellules sont analysées sur Facscan de Becton Dikckinson Le résultat obtenu avec le surnageant E 22 E 7 est présenté en figure 6. On constate qu'environ 5 % des cellules T sont marquées par 5 l'anticorps E 22 E 7 La même manipulation effectuée avec l'anticorps E 25 G 8 ne donne pas de marquage significatif d'une sous population T. Par le même protocole, on effectue des marquages sur le sang d'autres individus à l'aide de l'anticorps E 22 E 7 Cet anticorps marque entre 2 et 10 % des cellules T périphéri- ques pour les individus testés. On en déduit, en raison de l'homologie de séquence supérieure à 99 % entre les différents segments VP 2 humains, que l'anticorps E 22 E 7 est spécifique des segments VP 2, notamment V 2 3. L'anticorps E 25 G 8 reconnaît soit la jonction VDJ du clone néo Gp 2 7, soit l'association a souris, a humain. Intérêt de l'anticorps E 22 E 7 dans le choc septique Les analyses en PCR on montré l'expansion du compartiment TVP 2 positif lors du choc septique à la toxine de staphylo- coque TSST (Choï Y et al ( 1990) Exp Med 172: 981-984) Des études de répertoires, lors de tels chocs, sont grandement simplifiées par l'usage d'anticorps monoclonaux anti VP 2. L'intérêt de l'anticorps de l'invention, E 22 E 7, lors de ces chocs, ressort du test in vitro ci-après montrant la mise en évidence d'une expansion spécifique du compartiment VP 2 par la toxine TSST par l'anticorps E 22 E 7. Expérimentation On prélève stérilement du sang d'un individu sain Après Ficoll, les cellules blanches du sang sont distribuées en milieu complet contenant soit lpg/ml TSST (Toxin Technolo- gy), soit 10 gg/ml phytohémagglutinine A (PHA) (Sigma) à 5.105 cellules par millilitre en petit flacon de culture (Falcon). Après 72 h de culture, les cellules sont lavées en milieu complet et reprises à 106 cellules par millilitre en milieu complet contenant 5 U/ml d'interleukine 2 (Cetus) en plaques 24 puits Après 24 h, les cellules sont analysées5 en cytométrie de flux avec un anticorps distinct (contrôle négatif) anti VP 2 de souris, un anticorps CD 3 humain (SPVT 3 b, anticorps Immunotech), et E 22 E 7, anticorps de l'invention Ces anticorps sont révélés avec un anticorps polyclonal de chèvre anti souris marqué au FITC La figure10 7 montre l'expansion spécifique du compartiment des cellules V 62 positives lors de la stimulation à la TSST par rapport à l'activation par la PHA qui active toutes les cellules T non spécifiquement. EXEMPLE 3 On a préparé une préparation injectable comprenant: Anticorps monoclonaux de l'exemple 2 5 mg eau pour préparations injectables 1 ml REVENDICATIONS 1 ADN recombinant caractérisé en ce qu'il comprend une séquence nucléotidique chimère codant pour la chaîne /3 du récepteur pour l'antigène des cellules T, ladite séquence étant constituée: - d'une séquence provenant d'un mammifère et codant pour la totalité d'une partie variable (Vfi 2) et sa séquence de tête, diversité (Dfl) et de jonction (Jo), et d'une séquence d'origine murine codant pour la partie complémentaire constante (C 0/2) absente de la séquence de mammifère ci-dessus, les deux séquences étant liées au niveau d'un site de restriction naturel ou créé artificiellement. 2 ADN recombinant selon la revendication 1 caractérisé en ce que le site de restriction est naturel sur la séquence codant pour la partie Cp. 3 ADN recombinant selon la revendication 1 ou 2 carac- térisé en ce que la séquence provenant d'un mammifère est la séquence codant pour une chaîne VP 2 d'origine humaine et en ce que le site de restriction est Bgl II. 4 ADN recombinant selon l'une quelconque des revendica- tions 1 et 3 caractérisé en ce que le site de restriction est créé artificiellement sur la chaîne d'origine murine. ADN recombinant selon l'une quelconque des revendica- tions 1 à 4 caractérisé en ce qu'il s'agit d'un vecteur d'expression eucaryote. 6 ADN recombinant selon la revendication 5 caractérisé en ce que -le vecteur d'expression eucaryote est un plasmide dérivant de Php Prl-Néo. 7 Anticorps caractérisés en ce qu'ils sont obtenus par une succession d'étapes dans lesquelles intervient un ADN recombinant selon l'une quelconque des revendications 1 à 6. 8 Anticorps anti chaîne VP 2 du récepteur des cellules T. 9 Compositions pharmaceutiques caractérisées en ce qu'elles renferment des anticorps selon la revendication 7 ou 8. Produits de diagnostic caractérisés en ce qu'ils renferment des anticorps selon la revendication 7 ou 8. 11 Procédé de préparation d'un ADN recombinant tel que défini à la revendication 1, caractérisé en ce que l'on ligue: une séquence nucléotidique constituée d'au moins la totalité de la séquence codant pour les parties Vp 2, Df et Jfl d'une chaîne du récepteur de l'antigène des cellules T d'un mammifère jusqu'au niveau d'un site de restriction, avec une séquence nucléotidique d'origine murine comprenant l'homologue de la partie complémentaire de la partie C 0,2 absente de la séquence de chaîne de mammifère ci-dessus, à partir du même site de restriction que ci-dessus, le-dit site de restriction étant artificiellement créé sur l'une, l'autre ou les deux séquences, pour obtenir la chimère attendue, puis si désiré, ligue une séquence comprenant la totalité des parties VP 2, Dfl, Jp et Cp ci- dessus avec un vecteur d'expression eucaryote, puis si désiré, isole la nouvelle chimère obtenue. 12 Procédé de préparation d'anticorps mettant en oeuvre initialement le procédé selon la revendication il qui comporte une étape de préparation de l'ADN recombinant j'1 défini à la revendication 5 caractérisé en ce qu'en outre l'on transfecte une cellule eucaryote comportant tous les éléments permettant la synthèse du récepteur de l'antigène des cellules T, à l'exception de la chaîne homologue à la chaîne codée par la séquence d'ADN chimère ci-dessus, utilise comme antigène les cellules ainsi transfectées chez la race murine correspondante, fusionne des cellules de rate prélevées sur les murins auxquels a été administré l'antigène à des cellules de myélome pour préparer, selon10 les méthodes connues en elles-mêmes, des anticorps et sélectionne les anticorps contre le produit de la séquence variable du mammifère à l'aide des cellules eucaryotes transfectées à l'aide des ADN chimères ci-dessus.