FR 2672901 A1 19920821 FR 9102189 A 19910215 La présente invention concerne de nouvelles molécules d' ADN recombinants codant pour une chaîne du récepteur pour l'antigène des cellules T, procédé de préparation, anticorps et médicaments les renfermant.5 Il serait intéressant de développer facilement un panel d'anticorps dirigé contre les différentes chaines de récepteurs pour l'antigène des cellules T (ci-après TCR) humaines, afin par exemple d'obtenir une discrimination et une numération précise entre les différentes sous-popula-10 tions de cellules T humaines. L'étude du déséquilibre entre les sous-populations permettrait le diagnostic différentiel des maladies provoquant une prolifération de cellules T Elle pourrait aussi être le témoin d'une réponse immunitaire spécifique contre un tissu particulier, pathogène tel qu'une tumeur par exemple On sait en particulier que des anticorps contre les antigènes CD 4 et CD 8 qui distinguent deux populations de cellules T, sont témoins d'une série de maladies immunitaires dont le SIDA.20 Ces anticorps devraient pouvoir être réalisés facilement et en grande quantité. CHOI, Y et al, a décrit dans Nature 346 pages 471-473 ( 1990) des ADN codant pour des TCR chimères, comprenant un segment Vp humain, ligué à un segment Dfi, J/3, CP 2 murin. Le TCR chimère ainsi formé, couplé à une chaîne a et associé au CD 3 a été exprimé Il est suggéré que le procédé décrit peut permettre la production d'anticorps de souris spécifiques des segments V 13 ou Va du TCR humain. Toutefois, ce procédé décrit est spécifique d'un type de construction donnée contenant la partie VP humaine seulement Il serait intéressant de pouvoir utiliser un segment CP 2 d'origine murine pour permettre la préparation d'une large série de chimères comprenant différentes parties V, J et D, notamment humaines. if La demanderesse a découvert de nouveaux ADN recombinants permettant la préparation de nouveaux vecteurs d'expression eucaryote qui étaient de remarquables agents de transfec- tion de cellules eucaryotes, lesquelles cellules transfec- tées étaient d'excellents immunogènes conduisant à des anticorps, notamment monoclonaux, dirigés vers les différentes chaines des TCR humains. C'est pourquoi la présente demande à pour objet un ADN recombinant caractérisé en ce qu'il comprend une séquence nucléotidique chimère codant pour une chaîne du récepteur pour l'antigène des cellules T, ladite séquence étant constituée: d'une séquence provenant d'une mammifère et codant pour la totalité de la partie variable (V), diversité (D) et de jonction (J), et d'une séquence d'origine murine codant pour la partie complémentaire constante (C) absente de la séquence de mammifère ci-dessus, les deux séquences étant liées au niveau d'un site de restriction naturel ou créé artificiellement Dans ce qui suit, on appellera ce site "site sélectionné". Par ADN recombinant l'on entend une séquence de nucléotides artificiellement crée. Par chimère l'on entend que l'ADN recombinant comprend au moins deux séquences provenant d'origines différentes, par exemple 3, 4 ou 5 et de préférence 2 séquences de deux origines différentes. Ces séquences proviennent de deux espèces différentes et l'origine de l'une d'entre elles est murine; l'autre (ou les autres) proviendra notamment d'un primate et de préférence de l'homme. Le récepteur des cellules T, est une protéine hétérodimère composée de deux chaînes polypeptidiques reliées par un pont disulfure Le récepteur est exprimé à la surface des cellules T en association avec le complexe CD 3 Le locus correspondant à une chaîne particulière du TCR comprend une i_+, importante sélection de segments géniques distincts, incluant de nombreux segments V différents, plusieurs segments J et un ou deux segments constants C Ces segments peuvent subir des réarrangements somatiques pendant la maturation thymique des cellules T produisant ainsi un gène unique, qui est transcrit et contenant des segments V, des segments J, un segment C et, le cas échéant, un segment D entre les segments V et J. Dans l'ADN recombinant chimère, ci-dessus décrit, la totalité de la séquence codant pour la partie C peut provenir d'un murin et dans ce cas la séquence de l'autre mammifère ne comprend aucun nucléotide correspondant à la partie C De préférence, la séquence provenant d'un autre mammifère comprend une courte partie C, de préférence inférieure à 100 nucléotides et notamment environ 60 nucléotides; de ce fait, seule une large partie C de la chimère provient du murin (cette partie étant la partie complémentaire absente de la séquence de l'autre mammifère ci-dessus) et le reste provenant du mammifère Les deux séquences d'origines différentes sont liées au niveau d'un site de restriction sélectionné, en phase dans le cadre de lecture. La séquence de l'autre mammifère comprendra nécessairement en plus des parties V, J et éventuellement D et une partie de C, la totalité de la séquence de tête. Le site de restriction sélectionné peut être naturellement présent sur chacune des deux séquences ou présent naturel- lement sur une seule des deux séquences, ledit site de restriction étant artificiellement créé sur l'autre séquence Le site de restriction cidessus doit être unique sur le segment Ce murin et de préférence unique sur le segment de l'autre mammifère. Lorsque le site de restriction sélectionné est créé artificiellement, il peut être réalisé par exemple par déletion ou adjonction de nucléotides ou de préférence par mutation selon les méthodes connues en elles- mêmes, A-ï notamment par mutagénèse dirigée L'altération ainsi réalisée de l'ADN permet l'introduction d'un site de restriction normalement absent En particulier, un site Bgl II, présent naturellement au niveau de l'ADN codant pour les régions C 13 et CP 2 humain, mais absent du gène codant pour la chaîne du TCR de la souris, peut être introduit dans le gêne CP 2 de la souris par mutagénèse dirigée, mais éventuellement mutagénèse par polymérisation en chaîne (PCR) La mutation permet de conserver le maximum d'homolo- gie avec la ou les séquences de départ Le site de restriction ainsi créé sera de préférence placé au niveau d'un site homologue au site au niveau duquel le site de restriction est naturellement présent chez le mammifère considéré, particulièrement l'homme, de manière à permettre la coupure, tant de la séquence murine que de la séquence de mammifère à l'aide de ladite enzyme, pour ensuite, par ligation en phase dans le cadre de lecture, créer la chimère désirée De ce qui précède, on comprend que si l'on choisit une enzyme de restriction donnée, un seul site de restriction correspondant doit au plus être présent sur le segment C 01 murin et de préférence unique sur le segment de l'autre mammifère et de plus, au niveau de la séquence codant pour la partie C, à un emplacement permettant la transcription en phase d'un ADN codant notamment la chaîne du TCR Dans un cas particulièrement intéressant, on peut produire tout une série de gènes codant pour une partie C d'un TCR murin, ligués à de nombreuses parties V différen- tes de TCR, notamment humain. Des ADN recombinants préférés selon l'invention sont caractérisés en ce que le site de restriction est naturel sur la séquence codant pour la partie C du mammifère. Des chimères tout particulièrement préférées selon l'inven- tion ont une partie mammifère caractérisée en ce que sa séquence provenant d'un mammifère est la séquence codant pour des segments VP, Dp, Jp humains, et une courte partie Cf 1 i ou C 02 jusqu'au site unique Bgl II de C 11 et CP 2. La partie murine des chimères notables selon l'invention est caractérisée en ce que le site de restriction, notamment Bgl II est artificiellement créé sur la chaîne d'origine murine. L'ADN recombinant selon l'invention peut se présenter sous forme d'une séquence nucléotidique mono ou simple brin, limitée aux parties V, D, J et C, ci-dessus, ou comportant d'autres nucléotides, par exemple et notamment ceux constituant la séquence de tête. C'est ainsi que la séquence ci-dessus peut en particulier être incluse dans un vecteur d'expression, et dans ce cas de préférence dans un vecteur d'expression eucaryote. La séquence ci-dessus peut également être incluse en vue de sa réplication dans un autre vecteur, par exemple dans un plasmide tel que par exemple BLUESCRIPT Comme vecteur d'expression eucaryote on peut citer tout particulièrement p Hf Prl-Néo On peut citer également p Hf 3 Prlgpt et générale- ment tout vecteur d'expression eucaryote possédant les signaux de régulation promoteur et un signal de polyadény- lation permettant l'expression de l'AD Nc Bien évidemment, le choix du couple vecteur-hôte est de la compétence de l'homme de l'art. Des ADN recombinants tout particulièrement préférés selon l'invention sont caractérisés en ce qu'ils se présentent sous forme d'un vecteur d'expression eucaryote, lequel étant de préférence dérivé de p Hp Prl-Néo. L'ADN recombinant ci-dessus, notamment sous forme de vecteur d'expression eucaryote, peut être utilisé pour transfecter dans un hôte approprié la séquence codant pour le TCR Des cellules hôtes ainsi transfectées, éventuelle- ment traitées, par exemple préalablement transfectées avec la chaîne CD 3 Zeta pour obtenir une meilleure expression, peuvent être utilisées comme immunogène de préférence chez la souris.35 On peut ainsi classiquement préparer des anticorps, notamment monoclonaux, le criblage des hybridomes obtenus à partir de cellules de myélome et de cellules de rate du murin utilisé, pouvant se faire par la reconnaissance de la lignée transfectée, versus la non- reconnaissance de la lignée de départ. C'est pourquoi, la présente demande a également pour objet les anticorps, notamment monoclonaux, caractérisés en ce qu'ils sont préparés par mise en oeuvre d'un ADN recom- binant ci-dessus décrit. Les anticorps ci-dessus présentent de remarquables propriétés car ils sont parfaitement caractérisés vis à vis des chaînes de TCR, et particulièrement vis à vis des régions variables V des chaînes de TCR, mais aussi vis-à- vis des régions D et J dans leur réarrangement typique pour un TCR donné. Ces anticorps sont donc capables de distinguer la popula- tion des cellules T humaines et ainsi spécifiquement reconnaître, par exemple une maladie ou une déficience donnée. Dans les anticorps cidessus décrits on préfère les anticorps anti partie variable, notamment VA, D et J qui présentent de remarquables propriétés à la fois pour le diagnostic et la thérapie, curative ou préventive, chez l'homme ou l'animal, des maladies auto-immunes. C'est pourquoi la présente invention a aussi pour objet les compositions pharmaceutiques caractérisées en ce qu'elles renferment au moins un des anticorps tels que définis ci-dessus. Les compositions pharmaceutiques peuvent se présenter notamment sous les formes parentérales, notamment injec- tables, couramment utilisées en médecine humaine, par exemple pour la voie sous cutanée, intramusculaire ou intraveineuse. Les anticorps ci- dessus peuvent également être utilisés pour soigner les maladies immunes ou provoquant une prolifération des cellules T, ainsi que les leucémies à cellules T par injection des anticorps ci-dessus. A cet effet, les anticorps peuvent être couplés à des toxines ou à des produits radioactifs, selon des méthodes connues en elles-mêmes. Les anticorps selon l'invention trouvent leur emploi notamment dans le traitement des maladies immunes telles que l'arthrite rhumatoïde, le diabète, la maladie de Sjôgren ou le lupus erythémateux. La dose usuelle, variable selon le produit utilisé, le sujet traité et l'affection en cause, peut être par exemple de 0,001 à 25 mg par jour et par kg de poids corporel chez l'homme d'un anticorps monoclonal selon l'invention couplé à la ricine A à titre de cytotoxique, et de préférence de 0,05 à 0,2 mg/kg/jour. Etant donné que des anticorps, notamment monoclonaux, ci- dessus trouvent aussi leur utilisation à des fins dia- gnostiques, pour la détection, l'identification ou le dosage des TCR ou de parties de TCR, la présente invention a également pour objet l'utilisation desdits anticorps ainsi que les compositions diagnostiques destinées à la détection, l'identification ou le dosage des antigènes ci- dessus. Les anticorps ci-dessus trouvent également leur utilisation dans la purification des produits renfermant la partie antigénique correspondante à des chaînes de TCR. Les anticorps ci-dessus peuvent être utilisés à fins diagnostiques en cytofluorimétrie et dans ce but peuvent être couplés, par des méthodes connues en elles-mêmes, à des marqueurs fluorescents tels que le FITC ou la phycoéry- thrine. On peut, par exemple, détecter la présence de population de cellules T en détectant un segment variable spécifique au niveau des tissus souffrant par exemple d'une infection, d'un cancer ou d'une maladie auto-immune, et en détectant sa présence selon des méthodes connues en elles-mêmes. On peut également marquer les anticorps ci-dessus décrits, à l'aide d'enzymes On peut citer par exemple, la glucose 6 phosphate deshydrogénase, l'acétylcholinéstérase, la glucoseoxydase ou la bétagalactosidase. Les anticorps totaux ci-dessus peuvent également être couplés à un radiomarqueur tel que l'indium 111, pour utilisation dans l'imagerie des populations de cellules T comportant une région variable spécifique, au niveau des parties malades du corps humain. La présente invention a également pour objet un procédé de préparation des ADN recombinants ci-dessus décrits, caractérisé en ce qu'on ligue: une séquence nucléotidique constituée d'au moins la totalité de la séquence codant pour les parties V, D et J d'une chaîne du récepteur de l'antigène des cellules T d'un mammifère jusqu'au niveau d'un site de restriction, avec une séquence nucléotidique d'origine murine comprenant la partie complémentaire de la partie C absente de la séquence de chaîne de mammifère ci-dessus, à partir du même site de restriction que ci-dessus, ledit site de restriction étant artificiellement créé sur l'une, l'autre ou les deux séquences, pour obtenir la chimère attendue, puis si désiré, ligue une séquence comprenant la totalité des parties V,D,J et C ci-dessus avec un vecteur d'expression eucaryote, puis si désiré, isole la nouvelle chimère obtenue. Dans des conditions préférentielles, le procédé décrit ci- dessus, est caractérisé en ce qu'en outre l'on transfecte une cellule eucaryote comportant tous les éléments permettant la synthèse du récepteur de l'antigène des cellules T, à l'exception de la chaîne homologue à la chaîne codée par la séquence chimère ci-dessus, utilise comme antigène les cellules ainsi transfectées chez la souche murine correspondante, fusionne des cellules de rate prélevées sur les murins auxquels a été administré l'antigène à des cellules de myélome pour préparer, selon les méthodes connues en elles-mêmes, des anticorps dirigés contre le produit de la séquence variable du mammifère. Le procédé ci-dessus décrit peut notamment être réalisé comme suit: la séquence nucléotidique codant pour les parties V, D et J d'une chaîne du TCR de mammifère et notamment un ADN double brin linéaire comportant la séquence codant pour les parties V, J, éventuellement D et éventuellement C en partie, d'une chaîne de TCR de mammifère, de même que son gène de tête, est obtenue par coupure à l'aide de deux enzymes de restriction différentes: l'enzyme correspon-10 dante au site de restriction sélectionné au niveau de la partie C, par exemple Bgl II et une autre enzyme clivant la séquence du côté opposé, après le gène de tête, par exemple Eco RI à partir d'une séquence d'ADN double brin linéaire comportant ladite séquence L'ADN ainsi obtenu est ligué à un vecteur traité par les mêmes deux enzymes de restric- tion, ce vecteur comportant la séquence codant pour le segment C de la chaîne de TCR, et les mêmes sites de restriction que ci-dessus, par exemple Bgl II et Eco RI On obtient ainsi le gène chimère attendu Celui-ci n'est toutefois pas exprimable tel quel C'est pourquoi d'une part le vecteur comportant la chimère est traité par deux enzymes de restriction coupant de part et d'autre du gène chimère codant pour le TCR chimère; d'autre part, on traite par les mêmes deux enzymes de restriction un vecteur d'expression eucaryote Par ligation du gène obtenu ci- dessus codant pour le TCR chimère avec ledit vecteur d'expression eucaryote, on obtient un nouveau vecteur chimère d'expression eucaryote Ledit vecteur d'expression eucaryote doit comporter les éléments nécessaires pour assurer la transcription correcte du gène chimère codant pour le TCR A cet égard, on peut citer par exemple comme vecteur p Hp Prl-Néo, qui peut être scindé par Bam HI et Sal I, et comprend notamment le gène de résistance à la néomycine utilisé comme un marqueur de sélection, un gène promoteur eucaryote SV 40, ainsi qu'un signal polyadenyla- tion à proximité du site Bam HI Le nouveau vecteur chimère obtenu est avantageusement utilisé pour transfecter des cellules eucaryotes, de préférence des cellules T de souris, notamment des lignées cellulaires comportant tous les éléments pour l'expression du TCR à l'exception du gène apporté par le vecteur chimère On peut citer par exemple, la lignée de souris DOIS 19 ou celle du nom de DS 23 27 4. De telles cellules permettent une sélection facile des cellules transfectées qui seules sont capables d' exprimer le TCR à la surface de la cellule. Bien entendu, chaque ligation (ci-dessus et ci-après) est suivie de la transfection d'un hôte approprié et la sélection des cellules contenant la chimère désirée. Les cellules transfectées peuvent être administrées à titre d'antigène de préférence à des souris, par exemple par injection intrapéritonéale On peut ainsi prélever des cellules de rate des murins ainsi traitées, cellules capables de secréter les anticorps recherchés pour les fusionner à des cellules immortelles, telles que le myélome Les hybridomes sélectionnés produisant les anticorps recherchés permettent ainsi la préparation d'anticorps notamment monoclonaux dirigés contre une chaîne V particulière du TCR du mammifère choisi, notamment l'homme. L'ADN double brin codant pour la chaîne du récepteur de l'antigène des cellules T de mammifère peut par exemple être préparé comme suit: L'étude de la séquence des gènes codant pour une chaîne donnée permet de sélectionner un site de restriction déjà présent sur une partie constante C, soit alors amène à créer sur ladite séquence un tel site La connaissance de ces séquences, par exemple en ce qui concerne les chaînes pour les familles VP 1, VP 2, VP 3, VP 4, Vp 5, VP 6, Vp 7, VP 8, Vp 10, VP 11, Vp 12, VP 15, V 817, V 818 permet la synthèse de nouveaux oligonucléotides utilisables pour synthétiser l'ADN complémentaire à partir de l'ARN messager. On purifie à partir de lymphocytes T de mammifère (par il exemple humains) l'AR Nm codant pour une chaîne TCR donnée. On synthétise l'ADN correspondant à l'aide d'un oligonu- cléotide OHCP spécifique d'un gène de mammifère donné et contenant le cas échéant le site unique de restriction sélectionné, synthétise le deuxième brin à partir d'un oligonucléotide spécifique de la chaîne et à l'aide de transcriptase reverse, et amplifie le gène obtenu par réactions de polymérisation en chaîne (PCR) en effectuant par exemple une trentaine de cycles. On obtient ainsi une grande quantité d'ADN double brin linéaire codant On peut alors couper par les enzymes appropriées, par exemple Bgl II et Eco RI, les fragments produits par PCR, de manière à éliminer tout ou partie de la séquence codant pour la partie C, à partir du site sélectionné et de manière à conserver les séquences V, D et J, ainsi que la totalité du gène de tête. La séquence nucléotidique d'origine murine comprenant la partie complémentaire de la partie C absente de la séquence de chaîne de mammifère ci-dessus, dans le cas o celle-ci20 se trouve sous la forme d'un vecteur comportant ladite séquence, peut être préparée comme suit: on isole un AD Nc complet contenant toute la partie codante de la chaîne du TCR choisi à partir d'une banque d'AD Nc provenant d'une lignée cellulaire murine, par exemple KB 5 C 20, à l'aide d'une sonde connue; on clone cet AD Nc dans un plasmide approprié, par exemple PU C 19, puis on transfecte le plasmide résultant appelé dans ce cas p U Cm Ce 2 dans un hôte, par exemple la souche bactérienne DH 1 de E. coli. On pourra ensuite cloner le fragment intéressant d'ADN murin dans un phage Pour cela, on peut digérer p U Cm C 82 par des enzymes de restriction appropriées, par exemple Eco RI et Hind III, de manière à obtenir trois fragments dans le cas ci-dessus On purifie le fragment contenant toute la35 séquence codante de la chaîne C murine désirée (dans le cas des enzymes précitées, Eco RI coupe dans la partie V de la séquence) On obtient ainsi une séquence codant pour une partie de la partie V, ainsi que la totalité des parties D, J et C On ligue alors ladite séquence avec un phage approprié, par exemple M 13 mpl 8, avec les mêmes enzymes de restriction Dans ce cas, l'ADN phagique existe sous deux formes: simple brin pour le phage encapsidé et double brin pour sa forme réplicative On hybride un oligonucléotide complémentaire de la région à muter, sauf pour la mutation désirée, avec la forme simple brin du phage Le brin complémentaire est synthétisé in vitro par un ADN polymé- rase utilisant le même oligonucléotide pour initier la réaction On ferme le nouveau brin sur lui-même à l'aide d'une ligase Le double brin complètement homologue est alors transfecté par exemple dans E coli, notamment J Ml O 1. Les colonies mutantes sont sélectionnées, par exemple par hybridation avec un oligonucléotide radio-marqué. Pour des détails sur la mutagénèse dirigée, se référer à MANIATIS et al ( Molecular Cloning; Elaboratory Manual, 1989, Cold Spring Harbour Laboratory Press). On purifie l'ADN double brin d'un sous-clone comportant la mutation désirée et dont le reste de la séquence codant pour la partie C est resté intègre, et le coupe par des enzymes appropriées, par exemple Eco RI et Eco RV pour isoler le fragment renfermant le gène désiré On ligue alors ce fragment dans un plasmide adapté, qu'il soit possible de séquencer et comportant des sites de restriction permettant d'extraire facilement la séquence insérée pour l'introduire dans un vecteur d'expression et préalablement ouvert par des enzymes compatibles présentes dans son site de liaisons multiples, par exemple par Eco RI et Sma I Comme à l'ac- coutumée,le produit de la ligation peut alors être transfecté dans un hôte approprié, par exemple une souche bactérienne E coli DH 1 En analysant, par exemple, par coupure avec deux couples d'enzymes tels que Eco RI-X Ba I et Eco RI-Bgl II, on peut sélectionner un clone fournissant en électrophorèse les bandes attendues. Le plasmide purifié comprend la séquence nucléotidique d'origine murine attendue complémentaire de la partie C absente de la séquence de chaîne de mammifère ci-dessus à partir du même site de restriction de manière à permettre la ligation en phase dans le cadre lecture. De ce qui précède, on comprend que le procédé de la présente invention permet une préparation facile de panels d'anticorps, notamment monoclonaux, spécifiques des différentes structures de la partie V des chaînes du TCR, à partir d'un nombre très limité de segments d'origine murine. En effet, ledit segment murin codant pour la partie C comprend par modification un site de restriction qui est présent sur la quasi totalité des chaînes constantes d'origine humaine, par exemple Bgl II pour les chaînes humaines C Pl et CP 2. Les différentes techniques utilisées ci-dessus sont bien connues de l'homme de l'art et ont fait l'objet de nombreuses publications faisant partie de l'état de la technique. Les exemples qui suivent illustrent la présente invention sans toutefois la limiter. La Figure 1 représente les comparaisons des AD Nc de chaînes CP 2 de souris et C Pl humaines de TCR. La Figure 2 représente un oligonucléotide complémentaire de l'AD Nc codant pour la chaîne C/32 du TCR murin sauf au niveau des deux bases nécessaires pour introduire le site Bgl II. La figure 3 représente des oligonucléotides spécifiques de chaînes Cp 1 et C 02 de TCR humains. La figure 4 représente les profils de cytométrie de flux de transfectants de DOI 519 (profils noirs) obtenus avec deux ADN chimériques contenant V/38 humain (cadres du haut: gauche FRN 8 1 2, droite MZ 3 DC 8) et V/32 humains (cadres du bas: gauche FRN 2 7 3, droite FRN 2 7 6); par rapport à la lignée de départ DOI 519 (profils blancs); les cellules sont marquées avec un anticorps anti CD 3 de souris. La figure 5 montre l'analyse de la lignée Jurkatt par un anticorps distinct, le surnageant de E 83 C 11 20 et le monoclonal anti CD 3 humain d'Immunotech. PARTIE EXPYIMEN TALE EXEMPLE 1 On tire parti de l'existence d'un site Bgl II sur le gène codant pour les chaines Pl et P 2 du TCR dans leur région C, à proximité de la région J, et de celle d'un site identique à l'exception de deux bases dans la partie homologue de la souris (cf Figure 1). A) Préparation de la séquence nucléotidique d'origine murine comprenant la partie complémentaire de la partie C absente de la séquence humaine d'une chaîne $ 2, sous forme d'un vecteur comportant ladite séquence. 1 Chaîne CB 2 murine La séquence de la chaîne CP 2 murine est décrite en détail dans Malissen M et al ( 1984), Cell 37: 1101-1110 Un AD Nc complet contenant toute la partie codante de C 02 a été obtenu à partir d'une banque d'AD Nc de la lignée cel- lulaire murine KB 5 C 20 (décrite dans Albert et al ( 1982), Immunogenetics 16: 533-549) Cet AD Nc a été cloné dans le plasmide p U C 19 Le plasmide résultant p UC m C/2 a été transfecté dans la souche bactérienne DH 1 La bactérie recombinante a été déposée auprès de la Collection Nationale de Cultures de Microorganismes (CNCM) à Paris le 12 Février 1991 sous le n 1-1032 et disponible sans restriction. 2 Mutaqénèse dirigée de l'AD Nc codant la chaîne CB 2 murine. Principe: La procédure de mutagénèse dirigée choisie utilise le phage filamenteux M 13 mpl B Bl ORAD Ce bac- -tériophage est décrit précisément dans Norrander et al |t ( 1983) Gene 26: 101-106 Il est disponible commercialement chez plusieurs fabricants, notamment Bl ORAD Le principe de la manipulation est le suivant: on clone le fragment d'ADN & modifier dans le site de liaisons multiples du phage ce vecteur phagique existe sous deux formes au cours de son cycle de vie La forme réplicative, dans la bactéries est essentiellement double brin,la forme encapsidée est simple brin LIADN des deux formes est purifiable Un oligonucléotide complémentaire de la région & muter, sauf pour la mutation désirée, est hybridé avec la forme simple brin du phage Le brin complémentaire est ensuite synthétisé in vitro par une ADN polymérase, utilisant loligonucléotide comportant la mutation souhaitée pour initier la réaction Une ligase est utilisée pour fermer le nouveau brin sur lui méme, à l'extrémité 5 ' de l'oligonuclotide Le -double brin complètement homologue, sauf pour la mutation voulue, est transfecté dans E Coli résultant en deux classes de colonies mutantes et non mutantes Les colonies mutantes sont ensuite sélectionnées. Pour introduire le site Bgl II dans l'AD Nc de la chaîne C 2 de souris, on clone cet AD Nc dans le phage M 13 mp 18 On utilise l'oligonucléotide de la figure 2 pour faire la mutagénèse Cet oligonucléotide est complémentaire de li AD Nc codant pour le gène C 02 murin sauf pour les deux bases nécessaires pour introduire le site Bgl II Ces deux bases sont soulignées sur la figure 2. Les procédures de clonage, transfection, étalement, analyses des colonies, purification des formes simples et doubles brins pour le phage M 13 mpl B sont décrites précis 6- ment par Maniatis et al (déj& cité) L'hôte bactérien utilisé est la souche JM 1 01 de E coli. E p 4 rimentation: a) Clonage de C 02 murin dans M 13 mpl 8 On digère p U Cm C 32 par Eco RI et Hind III Cette digestion fournit 3 fragments distinguables par électrophorèse d'agarose On purifie le fragment intermédiaire de 1000 paires de bases (pb) environ contenant toute la séquence codante de C 02 murine Ce fragment est ligué dans 1 'ADN double brin du phage M 13 mp 18 préalablement ouvert par Eco RI et Hind III, sites présents dans le site de liaisons multiples de ce vecteur On transfecte alors des colonies de E coli JM 101. De l'analyse de colonies isolées, on retient le clone M 13 EH C 07 pour la suite, on purifie la forme simple brin de M 13 EHC 37. b) Mutagénèse de C 32 de souris La procédure utilisée est précisément décrite dans Maniatis et al On doit cependant préciser les points suivants: L'oligonucléotide de la figure 2 est synthétisé sur l'appareil Applied Biosystems 380 B, puis purifié sur colonne sep Pak C 18. On hybride 0 2 gg du simple brin de M 13 EHC/ 7 avec 3 pmole de Oh C 3 kinase Aucun autre oligonucléotide n'est utilisé. La température initiale de la réaction d'hybridation est C. La polymérase utilisée est la T 4 ADN polymérase ( 1 unité par réaction) pour compléter en double brin. La transfection est effectuée dans la souche E coli JM 101. La sélection des colonies mutantes se fait par hybridation avec l'oligonucléotide de la figure 2 radiomarqué La température d'hybridation est 42 C Deux lavages de 10 mn à 4 C ont été suffisants pour discriminer les colonies mutantes par autoradiographie. L'ADN d'un sous-clone appelé mu Ce 215 d'une colonie repérée par hybridation radioactive a été digérée par Bgl II, puis séquencé par la méthode de Sanger pour confirmation de la mutation désirée et intégrité du reste de la séquence CP 2 murine L'ADN double brin de ce sous-clone est purifié et utilisé dans la suite des expériences. 3 Sous-clonage de la chaîne mutée dans p Bluescript SK+ p Bluescript SK+ est un plasmide entièrement caractérisé et disponible commercialement chez la société STRATAGENE. L'ADN double brin de mu CP 215 est coupé par Eco RI et Eco R V et le plus petit des deux fragments purifié sur gel d'Agarose Ce fragment est ligué dans p Bluescript préalablement ouvert par Eco RI et Sma I, deux sites présents dans le polylinker de ce plasmide et transfecté dans la souche d'E coli DH 1 servant d'hôte à la chimère. Des colonies isolées sont analysées par coupure avec deux couples d'enzymes Eco RI-Xba I et Eco RI-Bgl II Un clone, appelé p BS mu Cp 215, fournit les bandes attendues (respectivement 1 2 kb et 0 5 kb environ) en électropho- rèse Ce plasmide est purifié et utilisé dans la suite des expériences. B) Obtention d'AD Nc humain codant pour la chaîne du TCR La technique de polymérisation en chaîne (PCR) est choisie pour les raisons citées cidessous: beaucoup de gènes codant pour la chaîne du TCR incluant différentes régions V sont publiées, rapidité d'obtention d'AD Nc par cette technique, sûreté d'avoir des gènes complets en 5 ', comprenant le codon ATG d'initiation, facilité d'intégrer des sites de restriction en 5 ' du gène pour faciliter le clonage. Dans l'exemple préféré, et pour montrer la polyvalence permise par l'invention, plusieurs AD Nc humains contenant différents segments variables ont été isolés et couplés à la chaîne mutée CP 2 de souris. Obtention d'AR Nm de cellules T humaines On utilise un mélange de lymphocytes périphériques d'individus caucasiens obtenus auprès du Centre de Transfusion Sanguine de Marseille Après Ficoll, les lymphocytes sont ajustés à 1 million de cellules par millilitre en milieu RPMI, 10 % sérum de veau foetal 20 m M glutamine, lm M sodium pyruvate, 500 IU pénicilline, et stimulés à la phytohémagglutinine A ( 10 pg/millilitre de concentration finale) pendant 3 jours 200 millions de cellules sont utilisées pour purifier leur RNA total. Le protocole utilisé est décrit exactement dans Maniatis et al Environ 50 gg de RNA sont obtenus par cette méthode. Réactions de PCR Un oligonucléotide Oh Cp spécifique des deux chaînes humaines C 02 et C^i et contenant le site unique Bgl II présent sur les segments géniques C,1 et C 32 est syn- thétisé de manière analogue à Om Cp. Cinq oligonucléotides OL 1, OL 2, OL 3, OL 8, OL 12 spécifiques respectivement de la séquence de tête de V Pl 2, V 62 1, VP 3 1, VP 8 1, VP 12 3 d'après la définition des sous- familles Vp de Toyonaga et al ( 1987), Eur J Immunol; 17: 375-383 sont également synthétisés. Ces oligonucléotides possèdent en 5 ' les 8 bases TAGAATTC n'hybridant pas sur les séquences de têtes des régions variables Ces 8 bases contiennent le site Eco RI pour faciliter le clonage des produits d'amplification. Ces oligonucléotides sont présentés en figure 3. Cinq réactions de PCR indépendantes ont été faites en utilisant les couples d'oligonucléotides Oh CP-O Li o i est un élément de ( 1, 2, 3, 8, 12). Nous avons commencé avec le couple Oh Cp, OL 8 La procédure expérimentale est décrite en détail dans Kawasaki et al ( 1989) PCR Technology, Principles and Applications for ADN Amplification; Stockton Press, Henry A Ehrlich Edition pp 89-et suivantes Les précisions suivantes sont utiles: La quantité d'ARN de départ est 1 Mg pour la synthèse du brin complémentaire d'AD Nc. Pour la réaction de PCR proprement dite, 10 pmole de chaque oligonucléotide OL 8 et Oh CP, sont utilisés. Le cycle de PCR est: 1 mn de dénaturation à 95 C, 1 mn d'hybridation à 52 C, 1 mn d'extension à 72 C, et 30 cycles sont effectués sur le ADN Thermalcycler Version 2 2 de Perkin Elmer. Le produit de la réaction est déposé sur gel d'Agarose 1.4 % pour électrophorèse Après coloration au bromure d'éthidium, une bande distincte d'environ 500 pb est découpée et l'ADN électroélué On obtient environ 30 ng d' ADN. 1 ng de cet ADN est amplifié une seconde fois par PCR On purifie de la même manière que précédemment la bande spécifique et 300 ng d'ADN sont obtenus. Les réactions de PCR avec les couples OL 1, OL 2, OL 3, OL 12 associés respectivement à Oh CO sont effectués de la même manière, sauf que dans le cas de OL 12 et OL 3, la deuxième amplification n'a pas été nécessaire (on a obtenu plus de ng en première amplification). C) Construction des gènes chimériques Principe: On construit les gènes chimériques en clonant chaque fragment produit de PCR, coupé par Eco RI et Bgl II dans le grand fragment obtenu de la digestion de p B Smu CP 215. On coupe p B Smu Cf 215 par Eco RI et Bgl II et le grand fragment appelé Fp B Smu CP 215 est purifié sur gel d'Agarose et électroélué. ng du produit d'amplification obtenu avec les oligonu- cléotides OL 8, Oh Cf sont coupés par Eco RI et Bgl II. On ligue ces deux fragments et le produit de ligation est transfecté dans DH 1. L'analyse de colonies isolées BSGP 8 1, BSGP 8 2 BSGP 8 5 par coupure Bgl II-Eco RI fournit le fragment attendu d'environ 500 pb BSG 8 1 est séquencé entre le site Eco RI et le site Bg III L'analyse de la séquence montre une similarité totale avec la séquence publiée pour VP 8 1 de Yoshikai Y et al ( 1984) Nature 312 pp 521-524. De même, on clone les produits de PCR obtenus avec les couples d'oligonucléotides contenant OL 1, OL 2, OL 3, OL 1210 dans Fp BSCP 215. On obtient par rapport à la définition des différentes sous-familles Vp par Toyonaga et al ( 1987) Eur J Immunol, 17: 375-383: avec OL 1, les clones BSGP 1 2 et BSGP 1 3 dont la séquence pour la région V est identique à Vpl 2. avec OL 2, les clones BS Gp 2 5 dont la séquence pour la région V correspond à Vp 2 2 et BSGP 2 7 et BSGP 2 11 possédant le gène VP 2 3. avec OL 12, les clones BS Gp 12 1 et BS Gp 12 4 possédant le gène VP 12 3. EXEMPLE 2: Expression des cènes chimériques Principe: La chaîne du TCR est une protéine membranaire qui est exprimée à la surface si, et seulement si, les autres chaînes du complexe du TCR qui lui sont associées (ie chaîne a et complexe CD 3) sont présentes. Pour obtenir l'expression des gènes chimériques précédem- ment construits, on utilise la lignée cellulaire murine DOI S 19 développée par Letourneur F et al ( 1989) Eur J Immunol: 19: 2269-2274 DOI S 19 est un mutant d'un hybridome T de souris qui possède tous les composants du TCR sauf la chaine p Cette lignée n'exprime donc pas de TCR à sa surface La transfection d'une chaîne exogène induit l'expression d'un récepteur fonctionnel dans les cellules tranfectées Deux gènes chimériques de l'invention contenus dans BSGP 8 1 et BSGP 2 7 ont été transfectés dans cette cellule suivant les protocoles décrits ci- après: 1) Sous-clonage des gènes chimériques dans un vecteur d'expression eucaryote Principe: Le vecteur d'expression choisi est le plasmide p Hp Pr 1-néo Il est décrit précisément dans Gunning P et al ( 1987) Proc Natl Acad Sci USA; 84: 4831-4835 Le gène à exprimer est sous- cloné en aval du promoteur 3 actine et en amont d'un site de polyadénylation présents sur ce plasmide Ces deux signaux assurent la synthèse d'un RNA messager fonctionnel du gène inséré Par ailleurs, ce plasmide possède le gène de résistance néomycine qui confère la résistance à une série d'antibiotiques, dans l'exemple préféré l'antibiotique G 418, aux cellules ayant *intégré le plasmide. Par ailleurs, une origine de réplication et un gène de résistance à l'ampicilline sont également présents permettant la sélection et la réplication dans E coli. La souche de E coli utilisée est ici MC 1061. Expérimentation: On coupe le plasmide BSGP 8 1 par les enzymes Bam HI et Sal I et le plus petit des deux fragments ( 1 2 kb) est purifié sur gel d'Agarose Ce fragment comportant la totalité de la séquence codante du gène chimérique est ligué au plasmide p Hp Prl-néo préalablement ouvert par Bam HI et Sal I Le produit de ligation est transfecté dans E coli MC 1061 et de l'analyse de colonies isolées par la coupure Bam HI et Sal I, on retient le clone appelé néo GP 8 1 qui fournit le fragment de 1 2 kb attendu sur l'électrophorèse d'Agarose. De la même façon, le gène chimérique contenu dans p BSG 62 7 est souscloné dans p Hp Prl-néo et le clone appelé néo GP 2 7 est conservé Néo G 18 1 a été déposé à la CNCM le 12 février 1991 sous le n 1-1033. 2 Transfection des gènes chimériques dans DOIS 19 La procédure de transfection choisie est la fusion de protoplastes. On suit pas à pas le protocole décrit par MALISSEN et al (réf Technique de transfert de gènes dans les cellules eucaryotes" 1990, Editions INSERM Paris, 25-31) sauf que la concentration de G 418 dans le milieu sélectif est de 3 mg/ml avec les clones néo GP 8 1 et néo GP 2 7. 3 Analyses des transfectants Pour néo Gp 8 1, les colonies résistantes à la néomycine appelées FRN 8 1 1 FRN 8 1 24 sont analysées en cytomé- trie de flux Pour chaque clone, 105 cellules dans une solution de Dubelco Modified Eagle Medium (DMEM) à 4 % de sérum de veau foetal (SVF), 0 02 % Azide de sodium et 15 gg/ml d'anticorps anti CD 3 de souris (anticorps 2 Cll décrits dans LEO et al ( 1987) Proc Natl Acad Sci USA; 84: 1374) pendant 45 mn à 4 C sous agitation Après trois lavages en DMEM, 4 % SVF, 0 02 % Azide de sodium, on incube les cellules avec un anticorps polyclonal de chèvre anti immunoglobuline de rat marqué au FITC (réactif Immunotech), à 15 gg/ml en DMEM, 4 % SVF, 0 02 % azide pendant 30 mn à 4 C sous agitation Après trois lavages en DMEM, 4 % SVF, 0.02 % azide, les cellules sont fixées en PBS à 1 % formaldéhyde et analysées sur l'appareil de cytométrie de flux FACSCAN de Becton Dickinson 105 cellules DOIS 19 sont traitées de la même façon et servent de contrôle négatif. Le profil obtenu pour le clone FRN 8 1 2 est montré en figure 4 par rapport au profil de DOIS 19. On procède de même avec le plasmide néo G 62 7 et le profil obtenu sur FACSCAN du clone FRN 2 7 3 est montré sur la fig 4 par rapport à DOIS 19 Les deux lignées cellulaires sont retenues pour l'immunisation de souris Balb/c. 4 Immunisation des souris Balb/c Trois souris Balb/c sont immunisées avec FRNS 1 2 Le protocole d'immunisation est le suivant: Jour O: 10 millions de cellules FRNS 1 2 injectées par voie intrapéritonéale. Jour 20 10 millions de cellules FRN 8 1 2 injectées par voie intrapéritondale. Jour 40: 5 millions de cellules injectées par voie intraveineuse. Jour 43: Prélèvement des rates pour fusion. 5 Fusion par hybridation lymphocytire on fusionne les splénocytes de deux souris immunisées avec le myélome X 63 Ag 258 suivant le protocole décrit par Kohler et Milstein ( 1975) Nature 256; 495-497. L'analyse des surnageants des clones résultant de la fusion se fait par cytométrie de flux sur FRNS 1 2 versus DOIS 19. p 1 de surnageant de chaque clone est prélevé, 50 p 1 sont incubés avec 50 pl de DMEM, 4 % SVF, O 02 % azide contenant 105 cellules FRN 8 1 2, les 50 p I restants sont incubés avec 50 p 1 du même milieu mais contenant 105 cellules DOIS 19 Le protocole est le même par ailleurs que celui utilisé pour l'analyse des transfectants. Des 400 surnageants testés, deux surnageants marquent FRNS 1 2 et ne marquent pas DOI 519 Les deux monoolonaux correspondant réagissent donc avec une chaîne du complexe chimérique du Tc R contenant la chaîne humaine Vf 38 1. Le clone E 83 C 11 20 ne marque pas la lignée FRN 2 7 3 assurant que ce monoclonal ne reconnaît pas les composants souris du To R chimérique. Le clone E 93 C 11 20 marque par contre la lignée humaine Jurkatt exprimant la chaîne VP 8 1 (Yoshikai et al ( 1984) Nature: 312: 521-524) La fig 5 montre l'analyse de la lignée Jurkatt par un anticorps distinct, le surnageant de E 83 C 11 20 et le monoclonal anti CD 3 humain d'Immunotech. De ces analyses, on conclut que le monoclonal E 83 C 11 20 est spécifique d'une chaîne humaine VP 8 1. EXEMPLE 3 on a préparé une préparation injectable comprenant: Anticorps monoclonaux de l'exemple 2 5 mg eau pour préparations injectables 1 ml REVENDICATIONS 1 ADN recombinant caractérisé en ce qu'il comprend une séquence nucléotidique chimère codant pour une chaîne du récepteur pour l'antigène des cellules T, ladite séquence étant constituée: d'une séquence provenant d'un mammifère et codant pour la totalité de la partie variable (V), diversité (D) et de jonction (J), et d'une séquence d'origine murine codant pour la partie complémentaire constante (C) absente de la séquence de mammifère ci-dessus, les deux séquences étant liées au niveau d'un site de restriction naturel ou créé artificiellement. 2 ADN recombinant selon la revendication 1 caractérisé en ce que le site de restriction est naturel sur la séquence codant pour la partie C. 3 ADN recombinant selon la revendication 1 ou 2 carac- térisé en ce que la séquence provenant d'un mammifère est la séquence codant pour une chaîne VP d'origine humaine et en ce que le site de restriction est Bgl II. 4 ADN recombinant selon l'une quelconque des revendica- tions 1 à 3 caractérisé en ce que le site de restriction est créé artificiellement sur la chaîne d'origine murine. ADN recombinant selon l'une quelconque des revendica- tions 1 à 4 caractérisé en ce qu'il s'agit d'un vecteur d'expression eucaryote. 6 ADN recombinant selon la revendication 5 caractérisé en ce que le vecteur d'expression eucaryote est un plasmide dérivant de Ph I 3 -Prl-Néo. 7 Anticorps caractérisés en ce qu'ils sont obtenus par une succession d'étapes dans lesquelles intervient un ADN recombinant selon l'une quelconque des revendications 1 à 6. 8 Compositions pharmaceutiques caractérisées en ce qu'elles renferment des anticorps selon la revendication 7. 9 Produits de diagnostic caractérisés en ce qu'ils renferment des anticorps selon la revendication 7. Procédé de préparation d'un ADN recombinant tel que défini à la revendication 1, caractérisé en ce que l'on ligue: une séquence nucléotidique constituée d'au moins la totalité de la séquence codant pour les parties V, D et J d'une chaîne du récepteur de l'antigène des cellules T d'un mammifère jusqu'au niveau d'un site de restriction, avec une séquence nucléotidique d'origine murine comprenant la partie complémentaire de la partie C absente de la séquence de chaîne de mammifère ci-dessus, à partir du même site de restriction que ci-dessus, le-dit site de restriction étant artificiellement créé sur l'une, l'autre ou les deux séquences, pour obtenir la chimère attendue, puis si désiré, ligue une séquence comprenant la totalité des parties V,D,J et C ci-dessus avec un vecteur d'expression eucaryote, puis si désiré, isole la nouvelle chimère obtenue. 11 Procédé de préparation d'anticorps selon la revendication 7 qui comporte une étape de préparation selon la revendication 10 de 1 'ADN recombinant défini à la- revendication 5,-caractérisé en ce quteno-utre l'on 3 '0 transfecte une-cellule eucaryote comportant'tous les éléments permettant la synthèse du récepteur de l'antigène des cellules T, à l'exception de la chaîne homologue à la chaîne codée par-la séquence d'ADN chimère ci- dessus, utilise comme antigène les cellules ainsi transfectées chez la race murine correspondante, fusionne des cellules de rate prélevées sur les murins auxquels a été administré l'antigène à des cellules de myélome pour préparer, selon les méthodes connues en elles-mêmes, des anticorps dirigés contre le produit de la séquence variable du mammifère.